JP2022518355A - Hlaクラスii特異的エピトープの予測およびcd4+ t細胞の特徴付けのための方法およびシステム - Google Patents
Hlaクラスii特異的エピトープの予測およびcd4+ t細胞の特徴付けのための方法およびシステム Download PDFInfo
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Abstract
Description
本出願は、それぞれの全体が参照により本明細書に組み込まれる、2018年12月21日出願の米国仮出願第62/783,914号;2019年3月29日出願の米国仮出願第62/826,827号;2019年5月31日出願の米国仮出願第62/855,379号;および2019年8月23日出願の米国仮出願第62/891,101号の利益を主張する。
主要組織適合性遺伝子複合体(MHC)は、ヒト白血球抗原(HLA)遺伝子をコードする遺伝子複合体である。HLA遺伝子は、循環T細胞に対してヒト細胞の表面上にディスプレイされるタンパク質ヘテロ二量体として発現される。HLA遺伝子は、高度に多型的であり、それにより、HLA遺伝子による適応免疫系の微調整が可能になる。適応免疫応答は、一部において、ヒト白血球抗原(HLA)ヘテロ二量体と結合した疾患関連ペプチド抗原をディスプレイする細胞を同定し、排除するT細胞の能力に依拠する。
本明細書に記載の方法および組成物は、広範囲の適用に使用される。例えば、本明細書に記載の方法および組成物を、免疫原性抗原ペプチドを同定するために使用することができ、また、個別化医薬品などの薬物の開発、ならびに抗原特異的T細胞の単離および特徴付けのために使用することができる。
本明細書において言及されている全ての刊行物、特許および特許出願は、個々の刊行物、特許、または特許出願が、具体的にかつ個別に参照により組み込まれることが示されたものと同じく参照により本明細書に組み込まれる。参照により組み込まれている刊行物および特許または特許出願が本明細書に含有される開示と矛盾する範囲では、本明細書がそのような矛盾する材料のいずれにも取って代わり、かつ/または優先するものとする。
用語は全て、当業者によって理解される通り理解されることが意図されている。別段の定義のない限り、本明細書において使用される全ての科学技術用語は、本開示が関係する分野の当業者に一般に理解されるものと同じ意味を有する。
免疫系は、2つの機能的下位系:自然免疫系および適応免疫系に分類することができる。自然免疫系は、感染に対する防御の第一選択であり、大多数の潜在的な病原体が、例えば注目すべき感染症を引き起こす前に自然免疫系によって迅速に中和される。適応免疫系は、侵入生物体の抗原と称される分子構造に反応する。自然免疫系とは異なり、適応免疫系は病原体に対して高度に特異的である。適応免疫では長続きする保護ももたらされ得る;例えば、麻疹から回復したある人はそれから生涯にわたって麻疹から保護される。適応免疫反応には2つの型が存在し、それらには体液性免疫反応および細胞媒介性免疫反応が含まれる。体液性免疫反応では、B細胞によって体液中に分泌された抗体が病原体由来の抗原に結合し、それにより、種々の機構、例えば、補体媒介性溶解を通じた病原体の消失が導かれる。細胞媒介性免疫反応では、他の細胞を破壊することができるT細胞が活性化される。例えば、疾患に関連するタンパク質が細胞に存在する場合、それらのタンパク質は細胞内でタンパク質分解により断片化されてペプチドになる。次いで、特定の細胞内タンパク質自体が抗原またはこのように形成されたペプチドに付着し、それらを細胞の表面に輸送し、そこで、それらを体のT細胞内の分子防御機構に対して提示する。細胞傷害性T細胞がこれらの抗原を認識し、その抗原を有する細胞を死滅させる。
単一のHLAクラスI対立遺伝子、HLAクラスII対立遺伝子の単一の対、または単一のHLAクラスI対立遺伝子およびHLAクラスII対立遺伝子の単一の対を発現する単一対立遺伝子細胞株を、適切な細胞集団に単一のHLA対立遺伝子をコードするポリ核酸、例えばベクターを形質導入またはトランスフェクトすることによって生成することができる(図2)。適切な細胞集団としては、例えば、単一のHLAクラスI対立遺伝子を外因的に発現するHLAクラスI欠損細胞株、HLAクラスII対立遺伝子の単一の外因性対を発現するHLAクラスII欠損細胞株、または単一のHLAクラスIおよび/またはクラスII対立遺伝子の単一の対を外因的に発現するクラスIおよびクラスII欠損細胞株が挙げられる。例示的な実施形態として、HLAクラスI欠損B細胞株は、B721.221である。しかし、HLAクラスIおよび/またはHLAクラスIIが欠損した他の細胞集団を生成することができることが当業者には明らかである。内因性HLAクラスIまたはHLAクラスII遺伝子を欠失させる/不活化するための典型的な方法としては、例えばTHP-1細胞におけるCRISPR-Cas9媒介性ゲノム編集が挙げられる。一部の実施形態では、細胞の集団は、マクロファージ、B細胞、および樹状細胞などのプロフェッショナル抗原提示細胞である。細胞は、B細胞または樹状細胞であり得る。一部の実施形態では、細胞は、腫瘍細胞または腫瘍細胞株に由来する細胞である。一部の実施形態では、細胞は、患者から単離されたものである。一部の実施形態では、細胞は、感染因子またはその一部を含有する。一部の実施形態では、細胞の集団は、少なくとも107個の細胞を含む。一部の実施形態では、細胞の集団を、例えば、少なくとも1つの遺伝子の発現および/または活性を増大させるまたは低減することによってさらに改変する。一部の実施形態では、遺伝子は、免疫プロテアソームのメンバーをコードする。免疫プロテアソームは、HLAクラスI結合性ペプチドのプロセシングに関与し、LMP2(β1i)、MECL-1(β2i)、およびLMP7(β5i)サブユニットを含むことが公知である。免疫プロテアソームはまた、インターフェロン-ガンマによって誘導することができる。したがって、一部の実施形態では、細胞の集団を、1つまたは複数のサイトカイン、増殖因子、または他のタンパク質と接触させることができる。細胞を、インターフェロン-ガンマ、IL-10、IL-6、および/またはTNF-αなどの炎症性サイトカインで刺激することができる。細胞の集団を、ストレス(熱ストレス、酸素欠乏、グルコース飢餓性、DNA損傷剤など)などの種々の環境条件に供することもできる。一部の実施形態では、細胞を、化学療法薬、放射線、標的化治療、または免疫治療のうちの1つまたは複数と接触させる。したがって、本明細書に開示される方法を使用して、HLAペプチドのプロセシングおよび提示に対する種々の遺伝子または条件の影響を試験することができる。一部の実施形態では、使用する条件を、HLA-ペプチドの集団を同定する患者の状態に適合するように選択する。
がん特異的変異、したがって、同じヒト対象のがん細胞にはDNAに変異が存在するが正常細胞にはその変異が存在しないこと、および変異によりDNAによってコードされるタンパク質の1つまたは複数のアミノ酸の変化が導かれることが同定されたら、その変異を宿主免疫応答の標的とすることができる。天然の免疫応答を変異タンパク質に方向付けることができ、それにより、そのタンパク質を発現するがん細胞の破壊を導くことができる。がん性組織における天然の寛容性応答および免疫無防備状態の環境に起因して、免疫治療は、そのような免疫応答を強化して、体の寛容性および免疫抑制効果を無効にすることを試みる臨床経路である。したがって、上記の変異を含むタンパク質またはペプチドは免疫治療の適切な候補である。
一態様では、免疫活性化のために、MHC-IIタンパク質によって提示される1つまたは複数のペプチドを同定する方法が本明細書で提示される。一部の実施形態では、1つまたは複数のペプチドは、エピトープを含む。一部の実施形態では、方法は、特異的なエピトープがMHC-IIタンパク質によって提示される可能性のコンピュータによる予測を伴う。一部の実施形態では、方法は、MHC-II提示に対するエピトープの特異性のコンピュータによる予測を伴う。一部の実施形態では、コンピュータによる予測方法は、ペプチド-MHC相互作用の評価を伴う。一部の実施形態では、コンピュータによる予測方法は、抗原提示に対するペプチドの対立遺伝子特異性の予測を伴う。一部の実施形態では、コンピュータによる予測方法は、バイオインフォマティクス情報、例えば、ヌクレオチド配列、生体分子の構造モチーフ、タンパク質間相互作用の特色および免疫原性などの機能的力価の組込みを伴う。一部の実施形態では、コンピュータによる予測方法は、機械学習を伴う。MHCクラスIおよびクラスIIの両方について、単純パターンモチーフ、サポートベクターマシン(SVM)、隠れマルコフモデル(HMM)、ニューラルネットワーク(NN)モデル、定量的構造と活性の関連性(QSAR)分析、構造に基づく方法、および生物物理学的方法などの機械学習手法に基づいてペプチド-MHC相互作用を予測するためのイムノインフォマティクス方法が多数開発されている。これらの方法は、2つのカテゴリー、すなわち、対立遺伝子内(対立遺伝子特異的)方法およびトランス-対立遺伝子(汎特異的)方法に分けることができる。対立遺伝子内方法は、実験的なペプチド結合性データの限定されたセットに対して特定のMHC分子についての訓練を行い、ペプチド結合性の予測をその分子に適用する。MHC分子が極度に多型的であり、何千もの対立遺伝子バリアントが存在することから、十分な実験的な結合データが欠如していることと相まって、各対立遺伝子に対して予測モデルを築くことは不可能である。したがって、多くの対立遺伝子または種間にわたって拡大するペプチド結合性データを使用して、トランス-対立遺伝子および汎用方法、例えば、NetMHCIIpan(Karosiene E etal., NetMHCIIpan-3.0, a common pan-specific MHC class II prediction method including all three human MHC class II isotypes, HLA-DR, HLA-DP and HLADQ. Immunogenetics (2013) 65(10):711-24)、およびTEPITOPEpan(Zhang L、et al., TEPITOPEpan: extending TEPITOPE for peptide binding prediction covering over 700 HLA-DR molecules. PLoS One (2012) 7(2):e30483)などが開発されている。NetMHCpanおよびKISSなどの、MHC-Iに対する同様の方法も利用可能である。
ある態様では、機械学習HLA-ペプチド提示予測モデルを訓練する方法は、コンピュータプロセッサを使用して、HLAクラスII対立遺伝子を発現する細胞由来の1つまたは複数のHLA-ペプチド複合体から単離されたHLA-ペプチドのアミノ酸位置情報配列をHLA-ペプチド提示予測モデルに入力するステップを含み得、機械学習HLA-ペプチド提示予測モデルを訓練することは、ニューラルネットワークのノードに対する重み付けされた値を、提供された訓練用データに最良に適合するように調整することを含み得る。
治療方法
コンピュータ制御システム
HLA Class II結合予測器の性能
本実施例では、ヒットペプチドをランダムにシャッフリングすることによって1:19(ヒット:デコイ)の比で生成された観察された質量分析ペプチドおよびデコイペプチドを含む検証用データセットを使用して、neonmhc2(NEON)およびNetMHCIIpanの結合予測器を解析した(図4)。NEON結合予測器に関しては、示されている各MHC II対立遺伝子について別々のモデルを築いた。棒の高さは陽性適中率(PPV)を示す。対立遺伝子は、その対立遺伝子について予測した場合のモデルの性能によってソートされている。NEON結合予測器では、NetMHCIIpanと比較した場合、全ての対立遺伝子にわたってより高いPPVが示された。
ニューラルネットワークアーキテクチャ
本実施例では、ニューラルネットワークを使用して、訓練用アルゴリズムを得る(図9)。入力ペプチドは20merで表され、それよりも短いペプチドは「欠損」文字が記入される。各ペプチドは31次元の埋め込みを有し、したがって、ニューラルネットワークへの入力は20×31行列であった。ニューラルネットワークによって処理する前に、20×31行列に対する特色の正規化を訓練セットにおける特色値の平均および標準偏差に基づいて実施した。第1の畳み込み層は、ReLU活性化関数を用いる9アミノ酸および50フィルター(チャネルとも称される)のカーネルを有した。この後にバッチ正規化、次いで空間ドロップアウトをドロップアウト率20%で行った。この後に、カーネル3および20フィルターおよびReLU活性化関数を用いた別の畳み込み層、次いで、再度バッチ正規化およびドロップアウト率20%での空間ドロップアウトを行った。次いで、20フィルターの各々において最大限に活性化されたニューロンを取ってグローバル最大プーリングを適用し、次いで、これらの20個の値を、シグモイド活性化関数を使用し、単一のニューロンを有する全結合(dense)層に渡した。この出力を結合/非結合予測として扱った。L2正則化をそれぞれ0.05、0.1、および0.01の重みを有する第1の畳み込み層、第2の畳み込み層、および高密度層の重みに適用した。
単一対立遺伝子MHCクラスIIリガンドプロファイリングのためのスケーラブルプロトコール
MHCクラスII結合性モチーフに関する現在の知見は、2つのin vitro結合アッセイに基づくものであり得、2つのアッセイの一方は、細胞MHCを使用してEC50を算出するものであり、他方は、精製されたMHCを使用してIC50を算出するものである。主要なHLAクラスII予測アルゴリズムであるNetMHCIIpanは、これらのデータに排他的に基づいて訓練される。
表1は、例示的な実験に使用したサンプルの要約を示す。
MAPTAC(商標)プロトコールにより既知のおよび新規のMHC II結合性モチーフが明らかになる
クラスIIペプチドのMHC結合性部分配列はN末端またはC末端に対して固定された位置にないので、正確なクラスIIモチーフの発見では、各結合体ペプチドについて異なる結合レジスターの可能性を動的に検討しなければならない。Gibb’s Clusterツールでは、期待値最大化(EM)アルゴリズムによってこの難題に対処する。畳み込みニューラルネットワーク(CNN)を使用した新規モチーフ発見手法の使用を探求した。CNNは、コンピュータビジョンの分野では成功しており、同様に、翻訳不変パターン認識を実現しようとしている。CNNを、MHC結合性ペプチドとそれらのスクランブルバージョンを区別するように訓練し、次いで、最後から2番目のネットワーク層において最大のノード活性化を実現した部分配列に従って陽性例をアラインメントした。単一対立遺伝子MSデータに適用する場合、この手法では、ギブスクラスタリングと一致したモチーフが得られ、また、総体的な1位、4位、6位、および9位にアンカーが示された(図13)。これらのモチーフは、IEDBからの高親和性結合体(親和性<50nM;図13)について観察されたCNN由来のモチーフと高度に一致した。DRB1*11:01に関しては、モチーフが細胞株にわたって安定であり、以前に汎DR抗体を用いてプロファイリングされたDRB1*11:01ホモ接合性細胞株と一致することをさらに検証した。同様に、MHCクラスI対立遺伝子に関して導き出されたモチーフは、親和性に基づく方法および以前のMSに基づく試験によるものと一致した(図14A)。
単一対立遺伝子MHC II MSデータに対して訓練されたアルゴリズムにより免疫原性が予測される
次に、単一対立遺伝子MSプラットフォームからのデータにより改善されたMHCクラスII結合予測器を生成することができるかどうかを検討した。CNN手法を足場として、フィルターサイズ、スキップ接続、および総受容野を有する多層ネットワークを創出した(図31A)。neonmhc2と称されるこのディープラーニングモデルを訓練し、評価するために、プロテオームを遺伝子の75%、12.5%、および12.5%を表す3つの区分に区分した。第1の区分はCNNを確率的勾配降下法によって訓練するために使用し、第2の区分はアーキテクチャおよびハイパーパラメータ最適化のために使用した。第3の区分は、解析の最後に1回だけ、性能を評価するために使用した。評価の完全性を確実にするために、パラロガスな遺伝子群内の全ての遺伝子が同じ区分に入るように注意を払った。
複対立遺伝子MSデータに対して訓練されたアルゴリズムは劣る
標準の汎DRおよび汎II抗体精製に基づく多数の複対立遺伝子クラスIIデータベースがパブリックドメインに存在することを考慮して、適切な予測器を複対立遺伝子データのみを使用して訓練することができるかどうかを試験した。いくつかのグループがMHCクラスI対立遺伝子モチーフの複対立遺伝子クラスIデータからの逆畳み込みに関して成功を示しているが、これらの試みはまだ公的に入手可能な予測器には変換されていない。クラスIIモチーフの逆畳み込みは、各ペプチドの結合レジスターとクラスターメンバーシップの両方を同時に分解する必要性によってさらに複雑になる。クラスII逆畳み込みの可能性を探究するためにギブスクラスターツールが使用されているが、この手法の忠実度は広範囲には検証されていない。
供給源タンパク質の特色が提示可能性に影響を及ぼす
MHCクラスIに関しては、提示されるエピトープのレパートリーの決定、したがって、タンパク質からペプチドへのプロセシングが特徴付けられたクラスIIレパートリーをどのように形づくるかにおいてプロテアソームが重要な役割を果たす。
正確なMHC II予測にはエンドサトーシス経路を理解することが必要である
クラスII遺伝子の供給源経路を理解することに加えて、どの細胞型が大多数のクラスII提示を担うかを理解することが極めて重要であり得る。がんの場合では、線維芽細胞を含めた非プロフェッショナルAPCおよび腫瘍自体が、炎症を起こした腫瘍微小環境(TME)内でクラスIIを提示すると考えられている。さらなる洞察を得るために、肺がん、頭頸部がん、および黒色腫をプロファイリングしたものである3つの最近公開された単一細胞RNA-SeqデータセットにおいてHLA-DRB1発現を解析した。細胞にわたって患者-細胞型レベルを平均することにより、規準のAPC(マクロファージ、樹状細胞、およびB細胞)が、腫瘍および他の間質細胞型よりもはるかに高レベルのクラスIIを提示し、この傾向が多数の患者および腫瘍型にわたって一致することが明らかになった。
新しい予測概念により、免疫原性新抗原のより正確な同定が可能になる
neonmhc2および関連するプロセシング規則の有用性を探求するために、いくつかの予測シナリオにおける性能を検討した。まず、MSにより同定されたペプチドを予測する能力を、汎DR抗体を用いてプロファイリングされた、7名の健康なドナー由来のPMBCにおいて評価した。この解析により、MAPTAC(商標)システムまたは我々の産生細胞株に固有のあらゆる系統的な偏りを制御することができる。ヒットとデコイを1:499の比で使用し、タンパク質をコードするエクソームからデコイをランダムにサンプリングして、neonmhc2およびNetMHCIIpanベースのモデルならびに追加的なプロセシング特色が組み入れられたモデルの陽性適中率を評価した(図18Bによる、発現、遺伝子レベルの偏り、および以前のMHC IIペプチドとの重複)。これらのモデルにより、結合予測およびプロセシング予測のどちらに関しても実質的な改善が確認された(図20)。
細胞株におけるクラスII HLAペプチドの発現およびMHC-IIと結合したペプチドの単離
構築物の設計、細胞培養およびHLA-ペプチド免疫沈降
本例示的試験では、単一の親和性タグ付けされたHLA構築物を細胞株(A375、HEK293T、Expi293、HeLa)にトランスフェクトし、親和性タグ付けされたHLA-ペプチド複合体を免疫沈降させることによって単一対立遺伝子細胞株を生成した。図12Aおよび12Eでは、MHCクラスII対立遺伝子頻度は、特に断りのない限り、allelefrequencies.net/から得られた対立遺伝子頻度である。米国集団に関する対立遺伝子頻度は、62.3%ヨーロッパ人、13.3%アフリカ人、6.8%アジア人、および17.6%ヒスパニックの混合を仮定することによって帰属させた。
HLAクラスIおよびHLAクラスII対立遺伝子の遺伝子配列をIPD-IMGT/HLAウェブページ(ebi.ac.uk/ipd/imgt/hla)によって同定し、組換え発現構築物の設計に使用した。HLAクラスIに関しては、α鎖をC末端GSGGSGGSAGGリンカーと融合し、その後にビオチン-アクセプター-ペプチド(BAP)タグ配列GLNDIFEAQKIEWHE、終止コドン、および変動するDNAバーコードを続け、pSF Lentiベクター(Oxford Genetics、Oxford、UK)にNcoIおよびXbaI制限部位を介してクローニングした。HLAクラスII構築物は、同様にpSF LentiにNcoIおよびXbaI制限部位を介してクローニングし、C末端においてクラスI構築物由来のリンカー-BAP配列(SGGSGGSAGGGLNDIFEAQKIEWHE)、その後、別の短いGSGリンカー、F2Aリボソームスキッピング配列(VKQTLNFDLLKLAGDVESNPGP)、α鎖の配列、HAタグ(GSYPYDVPDYA)、終止コドン、および変動するDNAバーコードと融合したβ鎖配列からなるものであった。全てのDNA配列の同一性をサンガーシーケンシングによって検証した。
Expi293細胞(Thermo Scientific)を、Expi293培地(Thermo Scientific)中、8%CO2、37℃、125rpmで振とうしながら成長させた。Expi293細胞を、定期的な隔週での継代を伴って、0.5×106個/mLから6×106個/mLの間の細胞密度で維持した。Expi293細胞懸濁液30mLを、およそ3×106個/mLの細胞密度および>90%生存能力での一過性トランスフェクションのために使用した。簡単に述べると、DNA30μg(細胞懸濁液1mL当たり1μg/mLのDNA)を1つのチューブ中、Opti-MEM培地(Thermo Scientific)1.5mLに希釈し、一方、ExpiFectamine(商標)293トランスフェクション試薬(Thermo Scientific)80μLをOpti-MEM、1.5mLを含有する第2のチューブ中に希釈した。これらの2つのチューブを室温で5分間インキュベートし、組み合わせ、穏やかに混合し、室温で30分間インキュベートした。DNAとExpiFectamineの混合物をExpi293細胞に添加し、37℃、8%CO2、80%相対湿度でインキュベートした。48時間後、トランスフェクトされた細胞を4回の技術的反復実験においてチューブ当たり細胞50×106個で回収し、遠心分離し、1×Gibco DPBS(Thermo Scientific)で1回洗浄し、質量分析のために液体窒素で急速冷凍した。細胞1×106個の一定分量を各トランスフェクションバッチから収集し、抗BAP(Rockland Immunochemicals Inc.、Limerick、PA)または抗HA(Bio-Rad、Hercules、CA)ウエスタンブロットによって分析して、親和性タグ付けされたHLAタンパク質発現を検証した。
C末端ヘキサ-ヒスチジンタグと融合したE.coli BirAをコードするpET19ベクターを使用した。化学的コンピテントE.coli BL21(DE3)細胞(New England Biolabs)を、BirA発現プラスミドで形質転換し、LBブロスプラス100μg/mlのアンピシリン中、37℃でOD600が0.6~0.8になるまで成長させ、30℃まで冷却した後、0.4mMのイソプロピル-β-D-チオガラクトピラノシドを添加することによって発現を誘導した。E.coli細胞の成長を30℃で4時間継続した。4℃、8000×gで30分間遠心分離することによってE.coli細胞を回収し、使用するまで-80℃で保存した。組換えBirAを発現する凍結細胞ペレットを、5mMのイミダゾールを伴うIMAC緩衝剤(50mMのNaH2PO4、pH8.0、300mMのNaCl)に再懸濁し、1mg/mlのリゾチームと一緒に氷上で20分間インキュベートし、超音波処理によって溶解させた。4℃、16,000×gで30分間遠心分離することによって細胞デブリおよび不溶性材料を除去した。清澄化した上清をその後、AKTA pure chromatography system(GE Healthcare)を使用してHisTrap HP 5mLカラムにローディングし、IMAC緩衝剤プラス25mMおよび50mMのイミダゾールで洗浄した後、500mMのイミダゾールを用いて溶出させた。BirAを含有する画分をプールし、20mMのTris-HCl、pH8.0に対して25mMのNaClを用いて透析し、HiTrap Q HP 5mLカラム(GE Healthcare)にローディングし、25mMのNaClから600mMのNaClまでの直線勾配を適用することによって溶出した。高度に純粋なBirAを含有する画分をプールし、緩衝剤を保存緩衝剤(20mMのTris-HCl、pH8.0、100mMのNaCl、5%グリセロール)に交換し、およそ5~10mg/mLに濃縮し、分注し、-80℃での保存のために液体窒素で急速冷凍した。BirAタンパク質濃度を、UV分光法により、算出された吸光係数ε=47,440M-1cm-1を使用してOD280nmにおいて決定した。
試料をXT Sample BufferおよびXT Reducing Agent(Bio-Rad、Hercules、CA)に添加し、95℃で5分間加熱し、次いで、約100,000個の細胞に対応する体積を10%Criterion XT Bis-Trisゲル(Bio-Rad)にローディングし、PowerPac Basic Power Supply(Bio-Rad、Hercules、CA)を使用し、XT MES Running Buffer(Bio-Rad、Hercules、CA)を用いて200Vで35分間電気泳動した。ゲルを水で簡単にすすぎ、次いで、タンパク質を、Invitrogen iBlot2 Gel Transfer Device(Thermo Scientific)で設定P3を使用してInvitrogen iBlot Transfer Stacks(Thermo Fisher Scientific)内のPVDF膜に移した。Precision Plus Protein All Blue Standard(Bio-Rad、Hercules、CA)を使用して分子量をモニタリングした。次に、膜をPierce TBS Tween20(TBST)緩衝剤(25mMのTris、0.15mMのNaCl、0.05%(v/v)Tween20、pH7.5)で3×5分間洗浄し、TBST-M(5%(w/v)無脂肪インスタントドライミルクを含有するTBST)中、室温で1時間ブロッキングし、次いで、TBST-B(5%(w/v)Bovine Serum Albumin(Sigma Aldrich)を含有するTBST)ならびにウサギ抗ベータチューブリン抗体(カタログ番号ab6046、Abcam)およびウサギ抗ビオチンリガーゼエピトープタグ抗体(カタログ番号100-401-B21、Rockland Immunochemicals)の両方の1:5,000希釈物中、4℃で終夜インキュベートした。次に、膜をTBSTで3×5分間洗浄し、ヤギ抗ウサギIgG(H+L-西洋ワサビペルオキシダーゼとコンジュゲートした抗体(カタログ番号170-6515、Bio-Rad、Hercules、CA)の1:10,000希釈物を含有するTBST-M中、室温で1時間インキュベートし、次いで、TBSTを用いて室温で3×5分間洗浄した。最後に、膜をPierce ECL Western Blotting Substrate(Thermo Fisher Scientific、Rockford、IL)に浸し、ChemiDoc XRS+Imager(Bio-Rad)を使用して展開し、Image Lab software(Bio-Rad)を使用して可視化した。
BAPタグが付されたHLA対立遺伝子を発現する細胞およびBAPタグを伴わない内因性HLA-ペプチド複合体のみを発現する陰性対照細胞株からの親和性タグ付けされたHLA-ペプチド複合体の単離を実施した。NeutrAvidinビーズを付したアガロース樹脂を低温PBS 1mLで3回洗浄した後、HLA-ペプチドアフィニティー精製に使用した。BAPタグが付されたHLAペプチドを発現する細胞50×106個を含有する凍結ペレットを氷上で20分間にわたって解凍し、低温溶解緩衝剤[20mMのTris-Cl、pH8、100mMのNaCl、6mMのMgCl2、1.5%(v/v)Triton X-100、60mMのオクチルグルコシド、0.2mMの2-ヨードアセトアミド、1mMのEDTA、pH8、1mMのPMSF、1×完全EDTAフリープロテアーゼ阻害剤カクテル(Roche、Basel、Switzerland)]1.2mL中に手動でピペッティングすることによって穏やかに溶解させた。溶解物を、≧250単位のベンゾナーゼヌクレアーゼ(Sigma-Aldrich)と一緒に4℃で15分間、回転させながらインキュベートしてDNA/RNAを分解し、4℃、15,000×gで20分間遠心分離して細胞デブリおよび不溶性材料を除去した。清澄化した上清を新しいチューブに移し、0.56μMのビオチン、1mMのATP、および3μMのBirAを伴う1.5mLチューブ中、室温で10分間、回転させながらインキュベートすることにより、BAPタグが付されたHLAペプチドをビオチン化した。上清を、200μLのPierce high-capacity NeutrAvidin beaded agarose resin(Thermo Scientific)スラリーに対応する体積で、4℃で30分間、回転させながらインキュベートして、ビオチン化HLA-ペプチド複合体を親和性富化した。最後に、HLAが結合した樹脂を低温洗浄緩衝剤(20mMのTris-Cl、pH8、100mMのNaCl、60mMのオクチルグルコシド、0.2mMの2-ヨードアセトアミド、1mMのEDTA、pH8)1mLで4回洗浄し、次いで、低温の10mMのTris-Cl、pH8、1mLで4回洗浄した。洗浄間に、HLAが結合した樹脂を手動で穏やかに混合し、次いで、4℃、1,500×gで1分間遠心分離することによってペレット化した。洗浄済みのHLAが結合した樹脂を-80℃で保存したかまたはすぐにHLA-ペプチドの溶出および脱塩に供した。
HLAクラスII DR-ペプチド複合体を健康なドナー末梢血単核細胞(PBMC)から単離した。GammaBind Plus Sepharose樹脂75μLに対応する体積を低温PBS 1mLで3回洗浄し、抗体10μgと一緒に4℃で終夜、回転させながらインキュベートし、次いで、低温PBS1mLで3回洗浄した後、HLA-ペプチド免疫沈降に使用した。細胞50×106個を含有する凍結PBMCペレットを氷上で20分間にわたって解凍し、低温溶解緩衝剤[20mMのTris-Cl、pH8、100mMのNaCl、6mMのMgCl2、1.5%(v/v)Triton X-100、60mMのオクチルグルコシド、0.2mMの2-ヨードアセトアミド、1mMのEDTA、pH8、1mMのPMSF、1×完全EDTAフリープロテアーゼ阻害剤カクテル(Roche、Basel、Switzerland)]1.2mL中にピペッティングすることによって穏やかに溶解させた。溶解物を、>250単位のベンゾナーゼヌクレアーゼ(Sigma-Aldrich)と一緒に4℃で15分間、回転させながらインキュベートしてDNA/RNAを分解し、4℃、15,000×gで20分間遠心分離して細胞デブリおよび不溶性材料を除去した。次いで、上清を、GammaBind Plus Sepharose樹脂(GE Life Sciences)に結合させた抗HLA DR抗体(TAL 1B5、製品番号sc-53319;Santa Cruz Biotechnology、Dallas、TX)と一緒に4℃で3時間、回転させながらインキュベートして、HLA DR-ペプチド複合体を免疫沈降させた。最後に、HLAが結合した樹脂を低温洗浄緩衝剤(20mMのTris-Cl、pH8、100mMのNaCl、60mMのオクチルグルコシド、0.2mMの2-ヨードアセトアミド、1mMのEDTA、pH8)1mLで4回洗浄し、次いで、低温の10mMのTris-Cl、pH8、1mLで4回洗浄した。洗浄間に、HLAが結合した樹脂を穏やかに混合し、次いで、4℃、1,500×gで1分間遠心分離することによってペレット化した。洗浄済みのHLAが結合した樹脂を-80℃で保存したかまたはすぐにHLA-ペプチドの溶出および脱塩に供した。
HLA-ペプチドを親和性タグ付けされた内因性HLA複合体から溶出させ、同時に、Sep-Pak(Waters、Milford、MA)固相抽出系を使用して脱塩した。簡単に述べると、Sep-Pak Vac 1cc(50mg)37~55μm粒子サイズtC18カートリッジを24位置抽出マニホールド(Restek)に付着させ、MeOH、200μL、その後、50%(v/v)ACN/1%(v/v)FA、100μLを用いて2回活性化し、その後、1%(v/v)FA、500μLで4回洗浄した。HLA-ペプチドを親和性タグ付けされたHLAペプチドから解離させ、tC18固相へのペプチド結合を容易にするために、3%(v/v)ACN/5%(v/v)FA、400μLをHLAが結合したビーズが付されたアガロース樹脂を含有するチューブに添加した。ピペッティングすることによってスラリーを混合し、次いで、Sep-Pakカートリッジに移した。チューブおよびピペットチップを1%(v/v)FA(2×200μL)ですすぎ、すすぎ液をカートリッジに移した。ローディング対照としてPierce Peptide Retention Time Calibration(PRTC)混合物(Thermo Scientific)100fmolをカートリッジに添加した。ビーズが付されたアガロース樹脂を、10%(v/v)AcOH、200μLと一緒に2回、5分間にわたってインキュベートして、HLA-ペプチドを親和性タグ付けされたHLAペプチドからさらに解離し、次いで、1%(v/v)FA、500μLで4回洗浄した。HLA-ペプチドを、15%(v/v)ACN/1%(v/v)FA、250μL、その後、30%(v/v)ACN/1%(v/v)FA、2×250μLを用いたステップ分画によってtC18から溶出させて新しい1.5mLマイクロチューブ(Sarstedt)に入れた。活性化、試料ローディング、洗浄、および溶出に使用した溶液は重力によって流出させたが、残りの溶出液をカートリッジから取り出すために真空(≦-2.5 PSI)を使用した。HLA-ペプチドを含有する溶出液を凍結させ、真空遠心分離によって乾燥させ、-80℃で保存した後、第2の脱塩ワークフローに供した。
全てのnanoLC-ESI-MS/MS分析に同じ下記のLC分離条件を使用した。試料を、PicoFrit(New Objective,Inc.、Woburn、MA)にフィットさせたProxeon Easy NanoLC 1200(Thermo Scientific、San Jose、CA)を使用してクロマトグラフィーにより分離した。10μmのエミッターを有する75μm内径キャピラリーに、1.9μm粒子サイズ/200Å孔径のC18 Reprosilビーズを用い、1000psiの圧力でHeを約30~40cmまで充填し、分離の間、60℃で加熱した。カラムを、10×ベッド体積の緩衝剤A(0.1%(v/v)FAおよび3%(v/v)ACN)を用いて平衡化し、試料を3%(v/v)ACN/5%(v/v)FA、4μLにローディングし、7~30%の緩衝剤B(0.1%(v/v)FAおよび80%(v/v)ACN)を82分間、30~90%緩衝剤Bを6分間の直線勾配を用いてペプチドを溶出させ、次いで、90%緩衝剤Bで15分間保持してカラムを洗浄した。試料のサブセットを、6~40%緩衝剤Bを84分間、40~60%緩衝剤Bを9分間の直線勾配を用いて溶出させ、次いで、90%緩衝剤Bを5分間および50%緩衝剤Bで9分間保持してカラムを洗浄した。試料溶出のための直線勾配は毎分200nLの速度で流し、約13秒のピーク幅中央値がもたらされた。
この節は、例えば、図29に関連する。質量スペクトルを、Spectrum Mill software package v6.0 pre-Release(Agilent Technologies、Santa Clara、CA)を使用して解釈した。MS/MSスペクトルの前駆体MH+が600~2000(クラスI)/600~4000(クラスII)の範囲内に入らない、前駆体電荷が>5(クラスI)/>7(クラスII)である、または検出ピークが最低<5である場合にはそのMS/MSスペクトルを検索から除外した。同じクロマトグラフィーピークで取得された同じ前駆体m/zを有する同様のスペクトルのマージは無効にした。MS/MSスペクトルを、264種の一般的な夾雑物と組み合わせた、ゲノムのhg19アノテーションおよびそのタンパク質コード転写物を伴う全てのUCSC Genome Browser遺伝子を含有するデータベース(63,691種のエントリー;10,917,867種の独特の9merのペプチド)に対して検索した。データベース検索の前に、全てのMS/MSを、配列タグの長さが>2である、例えば、最小で3つの質量がアミノ酸の鎖内質量から分離されるスペクトル品質フィルターを通過させなければならなかった。最小の骨格切断スコア(BCS)を5に設定し、ESI QExactive HLAv2スコア化スキームを使用した。還元もアルキル化もされていないネイティブなHLA-ペプチド試料からのスペクトルの全てを、酵素特異性なし、システイニル化として固定されたシステインの修飾を使用し、以下の可変の修飾:酸化メチオニン(m)、ピログルタミン酸(N末端q)、カルバミドメチル化(c)を用いて検索した。還元およびアルキル化されたHLA-ペプチド試料を、酵素特異性なし、カルバミドメチル化として固定されたシステインの修飾を使用し、以下の可変の修飾:酸化メチオニン(m)、ピログルタミン酸(N末端q)、システイニル化(c)を用いて検索した。ネイティブなHLA-ペプチドデータセットならびに還元およびアルキル化されたHLA-ペプチドデータセットの両方に対して前駆体質量許容誤差±10ppm、生成物質量許容誤差±10ppm、および最小のマッチしたピーク強度30%を使用した。個々のスペクトルについてのペプチドスペクトルマッチ(PSM)を、Spectrum Mill自動検証モジュールを使用して標的-デコイのPSM順位でのFDR推定に基づいた利用に確信的に割り当てられたものと自動的に指定して、スコア化閾値基準を設定した。HLA対立遺伝子に対して最小の配列長7、自動可変範囲前駆体質量フィルタリング、ならびに全てのLC-MS/MS実行にわたって最適化されたスコアおよびデルタ順位1-順位2スコア閾値を使用した自動閾値戦略により、各前駆体電荷の状態についてPSM FDR推定値<1.0%がもたらされた。
LC-MS/MSにより同定されたペプチドへの単一対立遺伝子HLAの割り当ては、2つの手法に従った。HLA-DRA1の対立遺伝子バリエーションは限られており、ペプチド結合に影響を及ぼすとは考えられないので、DR実験(DRB1、3、4および5のプロファイリング)からの全てのデータを、単一対立遺伝子性である、つまり、ペプチドが捕捉用アルファ鎖と対形成した捕捉用ベータ鎖を含むHLAクラスIIヘテロ二量体に結合する可能性が最も高いとみなした。しかし、一部のペプチドが、別個の内因性に発現されたアルファ鎖と対形成したノックインベータ鎖を含むHLA IIヘテロ二量体に結合し得る可能性が残る。
以下の節は、少なくとも図12A~12F、図35、図36A~36B、図38D、図39A~39C、図40A~40Bに関する。.rawファイルで提供された公開されたLC-MS/MSデータセットを、Spectrum Mill software package v6.0 pre-Release(Agilent Technologies、Santa Clara、CA)を使用して再処理した。HCD断片化ならびにオービトラップ(高分解能)へのMSおよびMS/MSデータ収集を利用したThermo Orbitrap機器(例えば、Velos、QExactive、Fusion、Lumos)に収集されたデータセットを、上記の節「LC-MS/MSデータの解釈」に記載されているパラメータを使用して解析した。CID断片化を利用したMSおよびMS/MS高分解能データセットに対して、ESIオービトラップスコア化スキームを用い、上記と同じパラメータを使用した。オービトラップへのMSデータ収集およびイオントラップへのMS/MSデータ収集を用いたデータセットに対しても同様に上記と同じ以下のパラメータを使用し、以下の偏差を用いた。HCDデータに対してはESI QExactive HLAv2スコア化スキームを使用し、一方CIDデータに対してはESIオービトラップスコア化スキームを使用した。前駆体質量許容誤差±10ppm、生成物質量許容誤差±0.5Daを使用した。高分解能MS/MSデータセットおよび低分解能MS/MSデータセットの両方に対して、個々のスペクトルについてのペプチドスペクトルマッチ(PSM)を、Spectrum Mill自動検証モジュールを使用して標的-デコイのPSM順位でのFDR推定に基づいた利用に確信的に割り当てられたものと自動的に指定して、スコア化閾値基準を設定した。HLA対立遺伝子に対して最小の配列長7、自動可変範囲前駆体質量フィルタリング、ならびに全てのLC-MS/MS実行にわたって最適化されたスコアおよびデルタ順位1-順位2スコア閾値を使用した自動閾値戦略により、各前駆体電荷の状態についてPSM FDR推定値<1.0%がもたらされた。
各クラスI対立遺伝子(図14Aに示されている)について、対応するペプチドの最初の5つの位置(ロゴ位置1~5にマッピングされる)および最後の4つの位置(ロゴ位置6~9にマッピングされる)におけるアミノ酸頻度をプロファイリングすることによって長さ9の配列ロゴを創出した。このように、ペプチドは、長さにかかわらず配列ロゴに寄与した。クラスIIロゴと同様に、文字の高さは各位置における各アミノ酸の頻度に比例し、また、エントロピーが低い位置に色分けを使用する。
この節は、少なくとも図14Cに関連する。各クラスII対立遺伝子について、14から17までの独特のペプチド長を全て同定し、結合潜在性についてNetMHCIIpanを使用してスコア化した。比較のために、ランダムな長さを釣り合わせたペプチドをヒトプロテオームからサンプリングした。密度分布(図14Cに示されている)を対数変換された値に基づいて決定した。一部の対立遺伝子は、NetMHCIIpanにより予測が支持されなかったので、解析から除外された。
ペプチドを、予測されるNetMHCIIpan結合親和性が不十分なものである場合(DRB1*01:01については>100nMまたはDRB1*09:01およびDRB1*11:01については>500nM)または以前に公開された生化学的MHC-ペプチド親和性アッセイにおいて試験されるヒューリスティックに定義されたアンカーが≦2である場合、親和性測定値について選択した。
この節は、少なくとも図15Aに関連する(図31Aも参照されたい)。各ノードがタンパク質をコードする転写物を表し、少なくとも5つの独特の9merのアミノ配列内容を共有する転写物の全ての対の間にエッジが存在する(UCSC hg19遺伝子アノテーション)グラフを創出した。Rパッケージigraph内のクラスターコマンド(cran.r-project.org/web/packages/igraph/citation.html)を使用して、接続したノードのクラスターを同定し、各クラスターを「転写物群」と定義した。このように、2つの転写物がエッジを共有する場合(共有される9merが5つ以上)、同じ転写物群に入ることが保証された。転写物群をランダムにサンプリングし、75%を訓練区分に入れ、12.5%をチューニング区分に入れ、12.5%を試験区分に入れた。全ての解析において、MSにより観察されたペプチド(および観察されていないデコイペプチド)をそれらの供給源転写物の区分に従って区分(訓練、チューニング、または試験)に入れた。供給源転写物が多数の異なる区分にマッピングされる非常に稀な場合には、割り当て優先順序を訓練し(優先性が最も高い)、チューニングし、次いで、試験した(優先性が最も低い)。プロテオームの同じ区分化を区分に基づく分析の全てに使用した。プロテオームの区分化のグラフに基づく手法を使用して、訓練および評価中に同様のペプチド配列が現れ、それにより予測性能が人為的に膨張し得る可能性を最小限にした。
少なくとも図15Aとの関連で、アミノ酸は「ワンホット」符号化によって表すことができるが、他方ではPMBEC行列およびBLOSUM行列を使用してアミノ酸を符号化する選択をし、その場合、同様のアミノ酸は同様の特色プロファイルを有する。我々のペプチド特色付けの目的のために、解かれたタンパク質構造においてアミノ酸近接性に基づいた独特の行列を生成した。この手法の概念は、アミノ酸の典型的な近隣アミノ酸に化学的特性が反映されるはずであるというものである。約100,000種のDSSPタンパク質構造の各アミノ酸について(cdn.rcsb.org/etl/kabschSander/ss.txt.gz,)、3D空間では最も近いが、一次配列では少なくとも10アミノ酸離れている残基を決定した。このデータを使用して、アラニンの最も近くの近隣アミノ酸がアラニンである回数、アラニンの最も近くの近隣アミノ酸がシステインなどである回数を決定して、近接計数の20×20行列を創出した。行列の各要素をその対応する列および行の合計の積で割り、行列全体を対数変換した。最後に、行列全体の平均値を各要素から引いた。3つの追加的な物理的特色である疎水性、電荷、およびサイズを追加的な列として加え、したがって、各アミノ酸を23の入力特色によって表した。
所与の対立遺伝子についての予測性能を評価するために、観察することができたが(プロテオームに存在することが理由で)、MSデータでは観察されなかったペプチドのセットを定義することが必要であった。これらの陰性例を「天然のデコイ」と称した(上記の「スクランブルデコイ」とは対照的に)。指導原理の通り、以下を決定した:
1.天然のデコイの長さ分布はMSにより観察されたヒットの長さ分布とマッチすべきである。
2.天然のデコイは、他の天然のデコイと重複する配列を含有すべきではない。
3.天然のデコイはヒットと重複するべきではない。
4.天然のデコイは、少なくとも1つのヒットから生じた遺伝子に由来すべきである。
図15Bに関する通り、NetMHCIIpanをIEDB親和性データに対して訓練したので、そのサンプル外性能をわずかに旧式のバージョンおよびIEDB測定値を使用して評価した。予測された親和性と測定された親和性の対応をケンドールのタウ係数によって決定した。同じ統計値を使用して、同じ測定値のセットに対するneonmhc2の性能を評価した。評価は、対立遺伝子によって、および公開群(SetteまたはBuus)によって別々に行った。
IEDBにおいて実証されたCD4+ T細胞応答の大部分は未知のまたはコンピュータにより帰属されたクラスII対立遺伝子制限を有するので、クラスII四量体によって実験的に確認された記録のサブセットに焦点を当てた。ほぼ全てのそのような記録はWilliam Kwok Laboratory(Benaroya Research Institute、Seattle、WA)によって寄託されており、免疫反応性個体の血液を使用して、多様な病原体およびアレルゲンの四量体によりガイドされるエピトープマッピング(TGEM)を実施している。陰性ペプチドは一部の試験に関してはポストされているが、他の試験に関してはポストされていないので、供給源である刊行物を精査して、陽性および陰性ペプチド反応性の完全なセットを再構築した。20merのペプチド全てをneonmhc2によって、およびNetMHCIIpanによってスコア化した。対立遺伝子にわたる陽性適中率(PPV)を同等のやり方で対立遺伝子にわたって算出するために、各対立遺伝子についての陰性例を陽性対陰性の比が1:19になるまでランダムにダウンサンプリングした。PPVを、ペプチドの上位のスコア化された5%にわたって実験的に確認された陽性の分率として算出した。性能を受信者操作者曲線によっても評価した。
GibbsCluster(v2.0)ツールの、複対立遺伝子MHCクラスIIペプチドデータを対立遺伝子起源によってクラスター化する能力を評価するために、DR遺伝子型が分かっている対象に対する公開されたDR特異的実験の多様なセットからのペプチド(表2)をまずキュレートした。一部の場合では、元の刊行物ではHLA-DRB1タイピングは提示されているが、HLA-DRB3/4/5についてのタイピングは省略されている。これらの場合に対処するために、IMGTにより提供されたDR1:DR3/4/5連結を仮定し、それが4桁タイピングを分解するのに不十分な場合は、集団「USASanFranciscoCaucasian」において観察された連結(allelefrequencies.net,、集団ID 3098:表2を使用した。
免疫精製を使用してヒト組織をプロファイリングしたいくつかの試験にわたるペプチド同定をマージすることによる、天然にプロセシングされ、提示されるMHC IIペプチドの大きなデータセットが本明細書に開示される(表2)。多くのペプチドが同じN末端(例えば、GKAPILIATDVASRGLDVおよびGKAPILIATDVASRGLD)または同じC末端(例えば、GKAPILIATDVASRGLDおよびKAPILIATDVASRGLD)を共有するので、N末端について1つ、およびC末端について1つの、2セットの重複していないカット部分をキュレートした。次いで、同等数の独特の観察されていないN末端およびC末端カット部分を少なくとも1つのMHC IIペプチドを産生した遺伝子のセットからランダムにサンプリングした。これらの4つのデータセットをN末端ヒット、C末端ヒット、N末端デコイ、およびC末端デコイと称した。さらに、図41に示されている、ペプチドの上流、ペプチド内部、およびペプチドの下流の位置を指すための命名システムを使用した。
健康なドナー由来の末梢血をDR結合性ペプチドについてプロファイリングした。これらの試料を使用して、切断関連変数/予測器の、提示されるクラスIIエピトープの同定を増強する能力をベンチマークした。
ヒト卵巣組織のHLA-DRリガンドームがプロファイリングされた以前に公開されたMS実験にわたってペプチドをプールした。RNA-Seqデータが入手可能な各試料について、生のfastqをSRAからダウンロードし、bowtie2を使用してUCSC hg19トランスクリプトームにアラインメントした。RSEMによって算出される百万当たりの転写物数(TPM)を使用して転写レベルでの遺伝子数量化を実施した。発現推定値を、遺伝子レベルを合計すること、非コード遺伝子を外すこと、および総TPMが合計1000000になるように再正規化すること(ncRNA存在量のライブラリー間の変動の原因となるタンパク質をコードする遺伝子にわたって再正規化すること)によってさらに処理した。
MHC IIリガンドームにおいて過剰に表された遺伝子および過少に表された遺伝子を同定するために、卵巣組織、結腸直腸組織、ならびに皮膚黒色腫、肺がんおよび頭頸部がんがプロファイリングされた5つの以前の試験からのデータをコンパイルした。各遺伝子について、我々のベースライン仮定は、ペプチドがその長さにその発現レベルを掛けた割合でもたらされるはずであるというものであった。各遺伝子の長さを決定するために、全ての転写物アイソフォームにわたる独特の9merを数え上げた。転写物アイソフォームにわたって合計することによって遺伝子レベル発現を得た。観察された、各遺伝子にマッピングされるペプチドの数を入れ子セットレベルで決定した(例えば、ペプチド GKAPILIATDVASRGLDV、GKAPILIATDVASRGLD、およびKAPILIATDVASRGLDVを単一の観察として計数した)。
2つのオートファジー関連遺伝子セットを定義した。第1のセットは、公知のオートファジー関連遺伝子の物理的相互作用パートナーとして実験的に同定されたタンパク質を含むものであった。オートファジー相互作用ネットワークデータベース(besra.hms.harvard.edu/ipmsmsdbs/cgi-bin/downloads.cgiからアクセスされる)に寄託されている、IP-MS実験においてベイトとして使用された規準のオートファジー関連遺伝子各々(genenames.org/cgi-bin/genefamilies/set/1022)について、「WD」信頼度スコア(besra.hms.harvard.edu/ipmsmsdbs/cgi-bin/tutorial.cgi)に従った上位100種のタンパク質同定を同定した。22の実験にわたってプーリングを行い、少なくとも1つの規準のオートファジー関連遺伝子に確信的に関連付けられる1004種の独特の遺伝子のセットを得た(図18C)。
上記と同じlog(R)スコアを使用して、各供給源遺伝子の局在に従った分布をプロットした(図18D)。供給源遺伝子の局在を、Uniprot(uniprot_sprot.dat)を使用して決定した。
単一細胞RNA-Seqデータを、3つの、ヒト腫瘍試料がプロファイリングされた以前に公開されたデータセットから得た。
第3の試験には、無処置の非小細胞肺からのデータを含めた。ファイル「RawDataLung.table.rds」および「metadata.xlsx」をArrayExpress(ebi.ac.uk/arrayexpress/;accessions:E-MTAB-6149およびE-MTAB-6653)からダウンロードした。データ(すでにTPM)単位を、以前に記載されているタンパク質をコードする遺伝子のセットにわたって再尺度化して、1,000,000まで合計した。最後に、同じ細胞型および同じ供給源の生検材料に対応する単一細胞観察を平均して患者-細胞型レベルの発現推定値を生じさせた。結腸直腸がんおよび卵巣がんにおける同様の試験を実施した。結果を図19Aに示す。
腫瘍に起因するMHCクラスII結合性ペプチド発現と間質に起因するMHCクラスII結合性ペプチド発現の相対量を決定するために、TCGA患者におけるクラスII経路遺伝子の変異を同定し(DNAに基づいてコールされる)、クラスII変異を有する各患者について、遺伝子の変異したコピーおよび変異していないコピーの相対的な発現量を対応するRNA-Seqで数量化した。さらに、以下を仮定した:
1.変異リードは腫瘍から生じる
2.非変異リードは間質または腫瘍における野生型対立遺伝子について生じる
3.腫瘍は変異コピーとほぼ等しい発現を有する野生型コピーを保持する
7体の健康なドナー由来の末梢血を、上の節「抗体に基づくHLA-ペプチド複合体の単離」に記載されている通り、DR特異的抗体を用いてプロファイリングした。これらの結果に基づいて、2つのデータセットを定義した:一方は多変量ロジスティック回帰を当てはめるためのものであり、他方は回帰の予測性能を評価するものであった。
HLAクラスII対立遺伝子結合性エピトープのハイスループットな同定および検証
本実施例では、新規のMHC-II対立遺伝子結合性ペプチドを同定および検証するための、時間分解蛍光エネルギー移動(TR-FRET)を使用した代表的な信頼できるハイスループット方法を記載する。アッセイには以下のいくつかの部分がある。(1)細胞に、FRETアッセイ用の蛍光タグを有するMHC-IIα鎖およびβ鎖の発現および分泌に適したベクター構築物をトランスフェクトすること、(2)分泌されたMHC-II構築物のタンパク質産物を精製すること、(3)ペプチド交換アッセイを実施すること(図22A)。図22Bおよび図23に設計および手順をさらに例証する。本明細書に記載のアッセイでは、安定な細胞株を必要としなくてよく、また、単純な単離戦略を包含するので、高速かつ効率的な検出および検証プロトコールが促進される。さらに、四量体または多量体を使用して、例えばneonmhc2により予測されたエピトープをin vivoで投与した後に抗原特異的CD4細胞を検出することができ、その後に生じた免疫応答を使用してCD4+ T細胞応答を検証する。
単一の構築物におけるCMVプロモーターによって駆動されるHLAクラスIIα鎖およびβ鎖の発現のための例示的なベクター、適当にフォールディングされたα鎖およびβ鎖対がもたらされるタンパク質産物が本明細書で提示される。適当にフォールディングされたα鎖およびβ鎖の形態では、α1サブユニットおよびβ1サブユニットは二量体の形態であり、α1サブユニットおよびβ1サブユニットは、生理的立体配置が似ているペプチドを受容することができる開いた受容末端を形成する。このアッセイの目的に関しては、これらのベクターにより発現された、適当にフォールディングされたα鎖およびβ鎖の形態を有するHLAタンパク質産物は、HLA単量体と称される。発現構築物は、リンカー、1つまたは複数のペプチド切断部位、分泌シグナル、二量体形成因子、例えば、c-FosおよびJun、これらと連結したビオチン化モチーフ(BAP)および10×-Hisタグを含む。単量体を安定化し、分泌を補助するためにプレースホルダーペプチドを使用する。プレースホルダーペプチドは、CMVペプチドであり得る。プレースホルダーペプチドは、CLIPペプチドであり得る。プレースホルダーペプチドは、対立遺伝子についてのMSに基づくリガンドームによって同定されたペプチドであり得る。プレースホルダーペプチドは、開いたα1-β1ペプチド受容末端においてHLAペプチドと共有結合により結合したものであり得る。
ペプチドを、上記のHLA-単量体タンパク質をExpi293細胞などの細胞株において発現させ、上清から収集および精製し、ペプチド交換アッセイに供することを伴うアッセイを使用して新規にスクリーニングすることができる。予測アルゴリズムによって予測されたHLAクラスII結合性ペプチドを、ペプチド交換アッセイを使用して試験することができた。ペプチド交換アッセイは、蛍光偏光を伴う方法を使用して実施することができる。例えば、プレースホルダーペプチドを標識するため、または試験ペプチドを標識するため、または2つの異なるフルオロフォアを使用してその両方を標識するために任意のフルオロフォアを使用することができる。置換え反応を定量的に評価するために、フルオロフォアで予め標識されていたプレースホルダーペプチドの結合の喪失によるか、または、そうでなければHLAと結合した形態では生化学的反応によってクエンチされる、遊離したフルオロフォアの蛍光発光による蛍光の変化を記録することができる。あるいは、非蛍光プレースホルダーペプチドが標識された蛍光ペプチドに置き換わったことを記録して、置換え反応を定量的に決定することができる。例示的なアッセイでは、FITCで標識されたプレースホルダーCLIPペプチドを使用して、CMVペプチドなどの既存の共有結合したペプチドを置き換える。FITCで標識されたペプチドは、HLAと結合している場合、高い極性化を誘導する。試験ペプチドを用いてFITC-プレースホルダーペプチドの力価測定を行った場合、試験ペプチドによりFITC-CLIPが置き換えられ、それにより、蛍光の低減が導かれる。
この方法では、特定のHLA対立遺伝子に結合し得るペプチドをスクリーニングするためのハイスループットアッセイ、およびまた、HLA二量体とのペプチド結合の強度を決定する(図26F)。このアッセイでは、熱の適用によって対立遺伝子が互いに解離した場合にのみタンパク質の疎水性残基に結合し、したがって、MHC対立遺伝子に結合し得る蛍光プローブを使用する。MHCクラスII二量体が同類ペプチドに結合すると、二量体はその二量体形態で一緒に保持される。結合した形態のMHC二量体-ペプチドに熱を適用すると、弱く結合しているペプチドはより速くMHCクラスIIタンパク質二量体から解離し、それにより、フルオロフォアが解離したMHCアルファ鎖およびベータ鎖に結合することが可能になり、高い蛍光が生じる。蛍光を温度に応じて記録する。代表的な融解曲線を図26Fに示す。融解曲線を比較して、強力な結合体(より高い温度で蛍光が検出される)と弱い結合体(より低い温度で蛍光が検出される)とを決定することができる。
エピトープ:HLA結合および解離カイネティクスを生化学的アッセイにおいて試験するために、HLAクラスII四量体の大きなレパートリーを生成した。したがって、これらの生成されたクラスII四量体を、ペプチド結合および提示をアッセイするために使用する。例えば、四量体をペプチド交換アッセイに使用した。図27Aに示されている通り、12種の四量体を生成し、6種の四量体を15mg/mlよりも高い濃度で保存し、4種の四量体を<5mg/mlで保存した。HLA四量体をフローサイトメトリーに使用して、ネオ抗原反応性CD4+ T細胞を同定する。インフルエンザウイルスエピトープ(HA)およびHIVエピトープを、存在する場合にはT細胞認識についてHLA四量体によって試験した(図27E)。
MHCクラスIIタンパク質に結合したペプチドと遊離のペプチドを区別するためのアッセイに蛍光偏光顕微鏡を使用した。蛍光タグが付されたプレースホルダーペプチドは、MHCクラスII二量体と結合すると、その遊離形態、フルオロフォアタグ付けされていない競合エピトープペプチドがプレースホルダーペプチドに置き換わることによってMHCクラスII二量体に結合したままの場合と比較して、蛍光偏光(FP)顕微鏡による高度に極性化した光をもたらす。図28Aは原理をグラフ表示によって示す。簡単に述べると、アッセイを以下の一般化された方法で実施し、変形形態がそれぞれの説明に示されているか、または当業者に容易に理解される。
治療的に標的化可能ながん抗原を同定するためのHLAクラスII結合およびプロセシング規則
増加しているエビデンスにより、CD4+ T細胞はがん特異的抗原を認識し、腫瘍成長を制御することができることが示されている。しかし、依然としてヒト白血球抗原クラスII分子(HLAクラスII)によって提示される抗原を予測することは難しく、それにより、それらの抗原を治療的に最適に標的化する試みが妨害されている。障害には、不正確なペプチド結合予測およびHLAクラスII経路の未解決の複雑さが含まれる。本実施例では、HLAクラスII結合性モチーフを発見するための改善された技術を記載する。さらに、腫瘍微小環境(TME)における関連性のあるプロセシング規則を学習するために行う腫瘍-リガンドームの包括的な解析が本明細書に記載されている。
MAPTAC(商標)構築物の設計および細胞培養
HLAクラスIに関しては、α鎖を、C末端GSGリンカー、その後、ビオチン-アクセプター-ペプチド(BAP)配列、終止コドン、および変動するDNAバーコードと融合し、pSF Lentiベクター(Oxford Genetics)にクローニングした。HLAクラスII構築物をpSF Lentiに同様にクローニングし、これは、C末端において融合した同じリンカー-BAP配列を有し、その後に別の短いGSGリンカー、F2Aリボソームスキッピング配列、C末端HAタグを有するα鎖の配列、終止コドン、および変動するDNAバーコードが続くβ鎖配列からなった。MAPTAC(商標)構築物をExpi293細胞、HEK293T細胞、A375細胞、HeLa細胞、KG-1細胞、K562細胞およびB721.221細胞にトランスフェクトまたは形質導入した。
BAPタグが付されたHLAを発現する細胞50×106個を含有する急速冷凍した細胞ペレットを氷上で20分間にわたって解凍し、低温溶解緩衝剤1.2mL中に手動でピペッティングすることによって穏やかに溶解させた。DNA、RNA、および細胞デブリを一掃した後、上清を新しい1.5mLチューブに移し、0.56μMのビオチン、1mMのATP、および3μMのBirAと一緒に室温で10分間インキュベートすることにより、BAPタグが付されたHLAをビオチン化した。ビオチン化溶解物を、NeutrAvidin樹脂200μLと一緒に4℃で30分間インキュベートして、ビオチン化HLA-ペプチド複合体を親和性富化させた。洗浄後、HLAが結合した樹脂を4℃、1,500×gで1分間遠心分離することによってペレット化し、-80℃で保存した、またはSep-Pak固相抽出を使用してすぐにHLA-ペプチドの溶出および脱塩に供した。健康なドナー材料の内因性HLAクラスIIリガンドームをプロファイリングするために、社内で生成した抗HLA-DR抗体L243を使用して、または市販のTAL 1B5抗体を用いてHLA-ペプチド複合体を単離した。
全てのnanoLC-ESI-MS/MS分析に同じLC分離条件、機器パラメータ、およびデータ分析法を使用した。簡単に述べると、試料を、社内でC18 Reprosilビーズを充填し、60℃で加熱したPicoFritカラムに合わせたProxeon Easy NanoLC 1200を使用してクロマトグラフィーにより分離した。データ依存性取得の間、溶出したペプチドを、Nanospray Flex Ion sourceを備えたOrbitrap Fusion Lumos質量分析計に導入した。Spectrum Mill software package v6.0 pre-Releaseを使用して質量スペクトルを解釈した。PSM FDR推定値<1%を通過した同定されたペプチドを、参照データベース内の264種の一般的な夾雑物タンパク質に割り当てられた全てのペプチドを除去することによって、および陰性対照MAPTAC(商標)親和性プルダウンにおいて同定されたペプチドを除去することによって夾雑物についてフィルタリングした。さらに、参照データベースのin silicoトリプシン消化物にマッピングされた全てのペプチドを除去してトリプシン試料キャリーオーバーを説明した。生の質量分析データセットをMassIVEに受け入れられ次第寄託する(massive.ucsd.edu)。
各対立遺伝子について、畳み込みニューラルネットワークのアンサンブルを、MAPTAC(商標)ペプチドとスクランブルデコイを区別するように訓練した。各ネットワークは、ReLU活性化畳み込み層を2つ含み、各々が50の6ワイドフィルターを有する。層当たりフィルター当たりの最大活性化および平均活性化を経由してシグモイド活性化を用いる最終的な高密度層に送る。L2-norm、各畳み込み層後の20%空間ドロップアウト、および早期停止によって正則化を実現し、対立遺伝子毎に重複していないペプチド(約12.5%)のホールドアウト区分に従ってチューニングした。性能ベンチマーキングでは、NetMHCIIpan-v3.1による予測を各クエリペプチド内の最大スコア化15merとして算出し、これは、ネイティブなNetMHCIIpan-v3.1による予測よりも良好に一様に実施される手法である。
PBMCを、1:10の比で合計3回の刺激にわたってペプチドをパルスしたmDCと共培養した。次いで、誘導されたT細胞を、以前に記載されている一意的な2色バーコードで標識し、ペプチドをパルスし、成熟させた自己mDCと1:10の比で終夜培養した。その後、細胞を、ペプチドに応答したIFN-γの産生についてフローサイトメトリーによって評価した。ペプチドに対して正に応答した誘導試料は、IFN-γ産生をペプチドなし対照よりも3%高く誘導した試料であった。
K562細胞(ATCC、Manassas、VA)を、重同位元素アミノ酸、L-リシン2HCl13C6 15N2(Life Technologies)およびL-ロイシン13C6(Life Technologies)を含有するSILAC用RPMI培地(ThermoFisher)中で5倍加に成長させた。単球由来樹状細胞(mDC)を、UV処理したK562細胞と一緒に終夜、またはHOCl処理後に生成された溶解物と一緒に5時間にわたって、1:3の比で共培養した。プロテオミクス解析のために、細胞を回収し、ペレット化し、液体窒素で急速冷凍した。
MAPTAC(商標):単一対立遺伝子HLAクラスIIリガンドプロファイリングのためのスケーラブルなプラットフォーム
HLAクラスII結合性モチーフに関する現行の知見は、主に2種の生化学的結合アッセイを使用して生成されたデータに基づく。そのような以前の手法の1つでは、アッセイペプチドおよび放射性標識した競合ペプチドを細胞質由来のHLA抽出物と共インキュベートしてIC50を決定する。別の手法では、EC50を決定するために、コンフォメーション的に特異的な抗体によりアッセイペプチドと結合したHLAの割合を測定する。これらのアッセイからのデータを免疫エピトープデータベース(IEDB)にコンパイルし、NetMHCIIpanなどのHLAクラスII予測アルゴリズムを訓練するために使用する。5種の最も一般的なコーカサス人HLA-DRB1対立遺伝子はIEDBでは十分に支持されるが(各々3326~8967ペプチド)、強力な結合体(親和性<100nM)であるのはたった約29%であり、IEDBペプチド全体の85%はきっかり15merである(図12B、図12E)。HLA-DPおよびHLA-DQ対立遺伝子および非コーカサス人HLA-DR対立遺伝子(例えば、HLA-DRB1*15:02)は相当少ないデータによって支持される。
MAPTAC(商標)を使用して、対立遺伝子特異的HLAクラスII結合性モチーフを分解した。40種のHLAクラスII対立遺伝子をプロファイリングし、そのうち15種は、非コーカサス人集団において一般的な対立遺伝子(DRB1*12:02、DRB1*15:03、およびDRB1*04:07)を含め、以前に特徴付けられていないものであった(IEDBにおいて100nM未満の親和性を有する30種未満のペプチド)。HLAクラスIIペプチドは結合溝の残基数より長い可能性があるので、各ペプチドのいずれの部分がHLAと相互作用するかはすぐには明らかにならない(「コア」)とそれに対して突出;しかし、結合性コアの分解は結合性モチーフの特徴付けに極めて重要である。結合性コアを同定するために、各ペプチドに対して結合レジスターを繰り返し指名し、結合性モチーフをペプチドにわたって再学習するために期待値最大化アルゴリズムを使用するツールGibbsCluster-2.0を使用してコンセンサス結合性コアに対するペプチドをアラインメントした。若干の例外を除いて、一般的なHLA-DR対立遺伝子に対する結合性コアモチーフはIEDBに基づくモチーフとの強力な一致を示した(図35)。MAPTAC(商標)により観察されたペプチドは一般的な対立遺伝子に対して必ずしも強力なNetMHCIIpanスコアを示さなかったが(図36A)、それでも、NetMHCIIpanによって不十分に予測された、観察された結合体は、非常に強力な測定された親和性を有することが示され(図36B)、これにより、これらの知見が偽陽性である可能性が低いことが示される。とりわけ、MAPTAC(商標)モチーフは多数の細胞株にわたって常に安定していた(図36C)。
MAPTAC(商標)データにより正確度が改善されたHLAクラスII結合予測器を生成することができるかどうかを検討した。HLAクラスIIペプチドのHLA結合性部分配列はN末端またはC末端に対して固定された位置にないので、学習アルゴリズムでは、各ペプチドについて異なる結合性コアの可能性を動的に検討しなければならない。この制約に対処するために、翻訳不変パターン認識に関して熟練していることからコンピュータビジョンの分野で成功している畳み込みニューラルネットワーク(CNN)を使用した。各対立遺伝子について、CNNのアンサンブルを訓練し(図31A)、全体的な予測器を「neonmhc2」と名付けた。
HLAクラスII対立遺伝子特異的ペプチド結合優先性の特徴付けおよび予測の両方を可能にする技術を開発したので、HLAクラスIIがん抗原を生じる可能性が最も高いタンパク質配列の優先順位付けに極めて重要である抗原プロセシングに関するさらなる洞察を用いて結合予測改善を補完しようと試みた。TMEの状況でこれらの疑問に対処するために、腫瘍におけるHLAクラスIIリガンドームを調査した単一細胞RNA-Seqおよび公開されたMSに基づく試験を含めた非MAPTAC(商標)データセットを解析した。微小環境においていずれの細胞型が治療的に標的化可能ながん抗原を提示する最も可能性が高いかを検討した。現在、がん抗原が、エンドサイトーシスによって取り込まれた腫瘍タンパク質を有するプロフェッショナルAPCによって提示されるのか、または腫瘍細胞自体によって提示されるのかに関しては意見が一致していない。そのために、肺がん、頭頸部がん、結腸直腸がん、卵巣がん、および黒色腫をプロファイリングし、規準のAPC(マクロファージ、樹状細胞、およびB細胞)がTME内の腫瘍細胞および他の間質細胞型よりもはるかに高いレベルのHLAクラスIIを発現することが見いだされた5つの公開された単一細胞RNA-SeqデータセットにおいてHLA-DRB1発現を解析した。この観察は、多数の患者および腫瘍型にわたって一貫している(図19A)。腫瘍細胞はTME内ではAPCに数で勝り得るので、腫瘍細胞によるHLAクラスII発現のレベルがより低いことには、それにもかかわらず、免疫学的関連性がある可能性がある。いかほどの全体的なHLAクラスII発現が腫瘍細胞によってもたらされるか、対していかほどの全体的なHLAクラスII発現が間質によってもたらされるかを評価するために、HLAクラスII特異的遺伝子に変異を有するTCGA患者(CIITA、CD74、およびCTSS)を同定し、HLA-DRB1発現のどの画分が腫瘍に由来するか、対してどの画分が間質に由来するかを帰属させるために、体細胞バリアントを示したRNA-Seqリードの画分を決定した(図19B、方法を参照されたい)。17種の別個の腫瘍型を表す153名の患者において同定された変異に基づいて、大多数のHLAクラスII発現が非腫瘍細胞から生じると思われた。実際、患者の45%パーセントでゼロの腫瘍由来HLAクラスII発現が示された。最高レベルのT細胞浸潤を有する患者に焦点を当て(上位10%、以前に公開された18遺伝子シグネチャー(Ayers et al., 2017)を使用して同定されたもの)、腫瘍のHLA-DR低発現はそれでも正常であると思われ、16名の患者のうち3名のみが>1000TPMを発現した。免疫治療によりこの傾向が乱されるかどうかを探索するために、チェックポイント遮断応答性腫瘍型からの追加的な単一細胞RNA-Seqを解析し、処置の前後のHLA-DRB1発現を評価した。1つの確認された応答者を含んだ黒色腫コホートでは、治療前生検材料および治療後生検材料のどちらにおいても腫瘍細胞による一様に低いHLA-DRB1発現が示された(図19C)。抗PD1治療に対して55%臨床応答率を示した基底細胞癌コホートは、同様に、時点にかかわらず、腫瘍細胞由来HLA-DRB1の低発現を示した(図19C)。これらの結果により、大多数の腫瘍内HLAクラスII提示が主にプロフェッショナルAPCによって駆動され、「ホット」TME条件ではこの一般的なパターンとの相違が保証されないことが示唆される。
腫瘍に存在するAPCによって優先的に提示されるエピトープの供給源遺伝子、およびそれらが、オートファジーから生じるのかまたはエンドサイトーシスから生じるのかを決定するために、腫瘍組織を使用して実施された3つの公開されたHLAクラスIIリガンドーム試験を解析した。
いずれの配列が抗原プロセシングのために好ましいかに関する理論が多数存在する(図32D)。1つのモデルによると、HLAクラスIの場合と同様に、供給源タンパク質はHLAクラスIIに結合する前に酵素により切断される(Sercarz and Maverakis, 2003)。第2のモデルでは、まずペプチド結合が起こり、その後、結合したペプチドがエキソペプチダーゼ酵素により、HLAクラスIIによって立体的に妨げられるまでトリミングされることが提起される。第3のモデルでは、ペプチド切断事象はHLA結合の前後どちらでも起こる。HLAクラスIIペプチドがどのように生成されるかに関する競合モデルが存在するので、予測のための3つの異なるフレームワークを生成した(図32D)。第1のモデルでは、エンドペプチダーゼが優位を占めると仮定する(「まず切断」);第2のモデルでは、HLAクラスIIが全長タンパク質とかみ合い、それがその後、エキソペプチダーゼによって内向きにトリミングされると仮定する(「まず結合」);および第3のモデルでは、酵素的消化がHLA結合の前後の両方で起こると提起する(「ハイブリッド」)。各モデルは異なるアルゴリズム手法を必要とする。具体的には、まず切断展望によって動機づけられるアルゴリズムは、MSにより観察されたリガンドの端のアミノ酸モチーフに焦点を当てるべきであるが、まず結合展望によって動機づけられるアルゴリズムでは、これらのモチーフを無視し、HLA結合接近可能性を規定する局所的なタンパク質構造特性に焦点を当てる方がよい。ハイブリッドモデルにより呼び起こされるアルゴリズムは、観察されたHLAクラスIIペプチドの上流および下流を候補前駆体カット部分として調べるべきである。
結合規則がプロセシング関連特色とどのように協同するかを数量化するために、HLAクラスIIを提示する細胞株、樹状細胞、および健康なドナー末梢血単核細胞(PBMC)のHLA-DRリガンドームを予測するための多変量モデルを創出した。提示されるペプチドは変異していないが、予測シナリオでは、ランダムにサンプリングされたゲノムの遺伝子座をそれらのHLAクラスIIペプチドを産生する能力に関して評価しなければならない新抗原予測を模倣する。ヒットとデコイを1:499の比で使用し、タンパク質をコードするエクソームからデコイをランダムにサンプリングして、neonmhc2に基づくモデルの性能およびNetMHCIIpanに基づくモデル、ならびに、RNA-Seq由来発現、遺伝子レベルの偏り(図32Aに従って、関連する図39Bを参照されたい)、および以前に観察されたHLA-DQペプチドとの重複を含めた追加的なプロセシング特色が組み入れられたモデルの性能を評価した。変異腫瘍エピトープ標的の、がんの処置に関する優先順位付けのされ方と一致するモデルを作出するために、遺伝子レベルの偏り特色を、新抗原の供給源に関連しない血漿遺伝子の優先性が中和されるように改変した。
HLAクラスIIリガンドームの予測における我々の正確度を評価したので、プロフェッショナルAPCによりエンドサイトーシスによって取り込まれた腫瘍由来のリガンドを予測することができるかどうかを試験することに注意をシフトした。TMEにおける大多数のHLAクラスII発現がプロフェッショナルAPCに由来するという我々の知見により、このプロセシング経路が腫瘍抗原提示に関して最も関連性がある経路の可能性が高いことが示される。残念ながら、腫瘍組織の従来のMSに基づくリガンドームでは、いずれのペプチドがエンドサイトーシスによって取り込まれた腫瘍タンパク質を起源とするものであるかは同定されない。したがって、SILACで標識された腫瘍細胞を「フィーディング」した樹状細胞(DC)のHLA-DRリガンドームをプロファイリングする実験を考案した(図33A)。
補足情報
関連するメタデータを用いた実験およびデータ供給源の要約
MAPTAC(商標)データ、非MAPTAC(商標)原稿データ、および以前に公開されたデータを含めたデータセットの網羅的な一覧。適切な場合には、試料遺伝子型などの関連性のある付随する特色が提供される。B)実験的MAPTAC(商標)反復実験、PBMCドナー、細胞株、およびSILACフィーディング実験にわたってマージした独特のペプチド同定。夾雑物および完全なトリプシンペプチドを除去する。例えば、少なくとも、とりわけ図12E~12F、34A~34Bを参照されたい。
スパイクイン解析において対立遺伝子毎に使用した20種のペプチド例の例示的な一覧。ペプチドを、最小SPI、70、長さ12アミノ酸から20アミノ酸の間を要求することによって、および他のMAPTAC(商標)によりプロファイリングされたDR対立遺伝子について観察されたあらゆる結合体との9merの重複を許容しないことによって選択した。さらに、所与の対立遺伝子について、9merを共有する2つのスパイクインペプチドは存在しない。例えば、少なくとも、とりわけ図35、36A~36Cを参照されたい。
多様な病原体およびアレルゲンペプチドに関するDRB1*01:01、DRB1*03:01、DRB1*04:01、DRB1*07:01、DRB1*11:01、およびDRB1*15:01についてのHLAクラスII四量体の結果ならびにそれらの対応するNetMHCIIpan予測およびneonmhc2予測。データをKwokおよび共同研究者によって公開された論文からキュレートした。とりわけ、図38A~38Cを参照されたい。
HLAクラスII対立遺伝子頻度および親和性データ統計値、図12Aおよび12Eに関連する
対立遺伝子頻度を、リソース、bioinformatics.bethematchclinical.org/hla-resources/haplotype-frequencies/high-resolution-hla-alleles-and-haplotypes-in-the-us-populationから得た。mhc_ligand_full.csvデータセットを2018年9月21日にIEDBデータ(iedb.org/databse_export_v3.php)からダウンロードした。「細胞MHC/競合/蛍光」、「細胞MHC/競合/放射活性」、「細胞MHC/直接/蛍光」、「精製されたMHC/競合/蛍光」、「精製されたMHC/競合/放射活性」、または「精製されたMHC/直接/蛍光」と同等の「方法/技法」および「解離定数KD」、「解離定数KD(およそのEC50)」、「解離定数KD(およそのIC50)」、「最大半量の有効濃度(EC50)」、または「最大半数阻害濃度(IC50)」と同等の「アッセイ群」を有するためには有効な親和性測定が必要であった。「著者」欄に列「Buus」が表示されている場合、測定はSoren Buusグループ(University of Copenhagen、Denmark)によるものである。他の場合では、著者欄に列「Sette」または「Sidney」が含まれる場合、測定はAlessandro Sette group(La Jolla Institute for Immunology、U.S.A)によるものである。他の全ての測定は「他」と標識した。強力な結合体を数え上げるために、測定された親和性が100nMよりも強力であるペプチドのみを計数した。
HLAクラスIおよびHLAクラスII対立遺伝子の遺伝子配列をIPD-IMGT/HLAウェブページ(ebi.ac.uk/ipd/imgt/hla)によって同定し、組換え発現構築物の設計に使用した。HLAクラスIに関しては、α鎖をC末端GSGGSGGSAGGリンカーと融合し、その後にビオチン-アクセプター-ペプチド(BAP)タグ配列GLNDIFEAQKIEWHE、終止コドン、および変動するDNAバーコードを続け、pSF Lentiベクター(Oxford Genetics、Oxford、UK)にNcoIおよびXbaI制限部位を介してクローニングした。HLAクラスII構築物(DR、DPおよびDQ)を同様にpSF LentiにNcoIおよびXbaI制限部位を介してクローニングし、これは、C末端においてHLAクラスI構築物由来のリンカー-BAP配列(SGGSGGSAGGGLNDIFEAQKIEWHE)、その後、別の短いGSGリンカー、F2Aリボソームスキッピング配列(VKQTLNFDLLKLAGDVESNPGP)、α鎖の配列、HAタグ(GSYPYDVPDYA)、終止コドン、および変動するDNAバーコードと融合したβ鎖配列からなるものであった。全てのDR対立遺伝子について、ベータ鎖をDRA*01:01と対形成させた。HLA-DM構築物を、BAP配列およびHAタグを欠いた以外は同様にHLAクラスII構築物にクローニングした。HLA-DMをHLAクラスII実験のサブセットに加えた。全てのDNA配列の同一性をサンガーシーケンシングによって検証した。
Expi293細胞(Thermo Scientific)を、Expi293培地(Thermo Scientific)中、8%CO2、37℃、オービタルシェーカーにおいて125rpmで成長させた。Expi293細胞を、定期的な隔週での継代を伴って、0.5×106個/mLから6×106個/mLの間の細胞密度で維持した。Expi293細胞懸濁液30mLを、およそ3×106個/mLの細胞密度および>90%生存能力での一過性トランスフェクションのために使用した。簡単に述べると、DNA30μg(細胞懸濁液1mL当たりDNA 1μg)を1つのチューブ中、Opti-MEM培地(Thermo Scientific)1.5mLに希釈し、一方、ExpiFectamine(商標)293トランスフェクション試薬(Thermo Scientific)80μLをOpti-MEM、1.5mLを含有する第2のチューブ中に希釈した。これらの2つのチューブを室温で5分間インキュベートし、組み合わせ、穏やかに混合し、室温で30分間インキュベートした。DNAとExpiFectamineの混合物をExpi293細胞に添加し、37℃、8%CO2、80%相対湿度でインキュベートした。48時間後、トランスフェクトされた細胞を4回の技術的反復実験においてチューブ当たり細胞50×106個で回収し、遠心分離し、1×Gibco DPBS(Thermo Scientific)で1回洗浄し、質量分析のために液体窒素で急速冷凍した。細胞1×106個の一定分量を各トランスフェクションバッチから収集し、ウエスタンブロット分析を使用して抗BAP(Rockland Immunochemicals Inc.、Limerick、PA)または抗HA(Bio-Rad、Hercules、CA)によって解析して、親和性タグ付けされたHLAタンパク質発現を検証した。Expi293の内因性HLAクラスII遺伝子型はDRB1*15:01、DRB1*01:01、DPB1*04:02、DPA1*01:03、DQB1*06:02、DQA1*01:02であることが決定された(Laboratory Corporation of America、Burlington、NC)。一部の実験では、HLAクラスII対立遺伝子にHLA-DMを同時トランスフェクトし、その場合、両方のプラスミドに使用するDNA濃度を細胞懸濁液1mL当たりDNA 0.5μgまで低下させた。
C末端ヘキサ-ヒスチジンタグと融合したE.coli BirAをコードするpET19ベクターを使用した。化学的コンピテントE.coli BL21(DE3)細胞(New England Biolabs)を、BirA発現プラスミド(C末端ヘキサ-ヒスチジンと融合したE.coli BirAをコードするpET19ベクター)で形質転換し、LBブロスプラス100μg/mlのアンピシリン中、37℃で、OD600が0.6~0.8になるまで成長させ、30℃まで冷却した後、0.4mMのイソプロピル-β-D-チオガラクトピラノシドを添加することによって発現を誘導した。E.coli細胞の成長を30℃で4時間継続した。E.coli細胞を4℃、8000×gで30分間遠心分離することによってE.coli細胞を回収し、使用するまで-80℃で保存した。組換えBirAを発現する凍結細胞ペレットを、5mMのイミダゾールを伴うIMAC緩衝剤(50mMのNaH2PO4、pH8.0、300mMのNaCl)に再懸濁し、1mg/mlのリゾチームと一緒に氷上で20分間インキュベートし、超音波処理によって溶解させた。4℃、16,000×gで30分間遠心分離することによって細胞デブリおよび不溶性材料を除去した。清澄化した上清をその後、AKTA pure chromatography system(GE Healthcare)を使用してHisTrap HP 5mLカラムにローディングし、IMAC緩衝剤プラス25mMおよび50mMのイミダゾールで洗浄した後、500mMのイミダゾールを用いて溶出させた。BirAを含有する画分をプールし、20mMのTris-HCl、pH8.0に対して25mMのNaClを用いて透析しHiTrap Q HP 5mLカラム(GE Healthcare、Chicago、IL)にローディングし、25mMのNaClから600mMのNaClまでの直線勾配を適用することによって溶出した。高度に純粋なBirAを含有する画分をプールし、緩衝剤を保存緩衝剤(20mMのTris-HCl、pH8.0、100mMのNaCl、5%グリセロール)に交換し、およそ5~10mg/mLに濃縮し、分注し、-80℃での保存のために液体窒素で急速冷凍した。BirAタンパク質濃度を、UV分光法により、算出された吸光係数ε=47,440M-1cm-1を使用してOD280nmにおいて決定した。
試料をXT Sample BufferおよびXT Reducing Agent(Bio-Rad、Hercules、CA)に添加し、95℃で5分間加熱し、次いで、約100,000個の細胞に対応する体積を10%Criterion XT Bis-Trisゲル(Bio-Rad、Hercules、CA)にローディングし、PowerPac Basic Power Supply(Bio-Rad、Hercules、CA)を使用し、XT MES Running Buffer(Bio-Rad、Hercules、CA)を用いて200Vで35分間電気泳動した。ゲルを水で簡単にすすぎ、次いで、タンパク質を、Invitrogen iBlot2 Gel Transfer Device(Thermo Scientific)で設定P3を使用してInvitrogen iBlot Transfer Stacks(Thermo Fisher Scientific)内のPVDF膜に移した。Precision Plus Protein All Blue Standard(Bio-Rad、Hercules、CA)を使用して分子量をモニタリングした。次に、膜を、Pierce TBS Tween20緩衝剤[(TBST)25mMのTris、0.15mMのNaCl、0.05%(v/v)Tween20、pH7.5、Thermo Fisher Scientific)]を用いて3×5分間洗浄し、TBST-M[5%(w/v)無脂肪インスタントドライミルクを含有するTBST]中、室温で1時間ブロッキングし、次いで、TBST-B[5%(w/v)Bovine Serum Albumin(Sigma Aldrich)を含有するTBST]ならびにウサギ抗ベータチューブリン抗体(カタログ番号ab6046、Abcam、Cambridge、MA)およびウサギ抗ビオチンリガーゼエピトープタグ抗体(カタログ番号100-401-B21、Rockland Immunochemicals、Limerick、PA)の1:5,000希釈物中、4℃で終夜インキュベートした。次に、膜をTBSTで3×5分間洗浄し、ヤギ抗ウサギIgG(H+L-西洋ワサビペルオキシダーゼとコンジュゲートした抗体(カタログ番号170-6515、Bio-Rad)の1:10,000希釈物を含有するTBST-M中、室温で1時間インキュベートし、次いで、TBSTを用いて室温で3×5分間洗浄した。最後に、膜をPierce ECL Western Blotting Substrate(Thermo Fisher Scientific)に浸し、ChemiDoc XRS+Imager(Bio-Rad)を使用して展開し、Image Lab software(Bio-Rad)を使用して可視化した。
BAPタグが付されたHLA対立遺伝子を発現する細胞およびBAPタグを伴わない内因性HLA-ペプチド複合体のみを発現する陰性対照細胞株からの親和性タグ付けされたHLA-ペプチド複合体の単離を実施した。NeutrAvidinビーズを付したアガロース樹脂を低温PBS 1mLで3回洗浄した後、HLA-ペプチドアフィニティー精製に使用した。BAPタグが付されたHLA分子を発現する細胞50×106個を含有する凍結ペレットを氷上で20分間にわたって解凍し、低温溶解緩衝剤[20mMのTris-Cl、pH8、100mMのNaCl、6mMのMgCl2、1.5%(v/v)Triton X-100、60mMのオクチルグルコシド、0.2mMの2-ヨードアセトアミド、1mMのEDTA、pH8、1mMのPMSF、1×完全EDTAフリープロテアーゼ阻害剤カクテル(Roche)1.2mL中に手動でピペッティングすることによって穏やかに溶解させた。溶解物を、≧250単位のベンゾナーゼヌクレアーゼ(Sigma-Aldrich)と一緒に4℃で15分間、回転させながらインキュベートして、DNA/RNAを分解し、4℃、15,000×gで20分間遠心分離して細胞デブリおよび不溶性材料を除去した。清澄化した上清を新しいチューブに移し、0.56μMのビオチン、1mMのATP、および3μMのBirAを伴う1.5mLチューブ中、室温で10分間、回転させながらインキュベートすることにより、BAPタグが付されたHLA分子をビオチン化した。上清を、200μLに対応する体積のPierce high-capacity NeutrAvidin beaded agarose resin(Thermo Scientific)スラリーと一緒に4℃で30分間、回転させながらインキュベートして、ビオチン化HLA-ペプチド複合体を親和性富化した。最後に、HLAが結合した樹脂を低温洗浄緩衝剤(20mMのTris-Cl、pH8、100mMのNaCl、60mMのオクチルグルコシド、0.2mMの2-ヨードアセトアミド、1mMのEDTA、pH8)1mLで4回洗浄し、次いで、低温の10mMのTris-Cl、pH8、1mLで4回洗浄した。洗浄間に、HLAが結合した樹脂を手動で穏やかに混合し、次いで、4℃、1,500×gで1分間遠心分離することによってペレット化した。洗浄済みのHLAが結合した樹脂を-80℃で保存したかまたはすぐにHLA-ペプチドの溶出および脱塩に供した。
HLA DR-ペプチド複合体を健康なドナー末梢血単核細胞(PBMC)から単離した。75μLに対応する体積のGammaBind Plus Sepharose樹脂を低温PBS 1mLで3回洗浄し、抗体10μgと一緒に4℃で終夜、回転させながらインキュベートし、次いで、低温PBS1mLで3回洗浄した後、HLA-ペプチド免疫沈降に使用した。細胞50×106個を含有する凍結PBMCペレットを氷上で20分間にわたって解凍し、低温溶解緩衝剤[20mMのTris-Cl、pH8、100mMのNaCl、6mMのMgCl2、1.5%(v/v)Triton X-100、60mMのオクチルグルコシド、0.2mMの2-ヨードアセトアミド、1mMのEDTA、pH8、1mMのPMSF、1×完全EDTAフリープロテアーゼ阻害剤カクテル(Roche)1.2mL中にピペッティングすることによって穏やかに溶解させた。溶解物を、≧250単位のベンゾナーゼヌクレアーゼ(Sigma-Aldrich)と一緒に4℃で15分間、回転させながらインキュベートして、DNA/RNAを分解し、4℃、15,000×gで20分間遠心分離して細胞デブリおよび不溶性材料を除去した。次いで、上清を、GammaBind Plus Sepharose樹脂(GE Life Sciences)に結合させた抗HLA DR抗体(TAL 1B5、製品番号sc-53319;Santa Cruz Biotechnology、Dallas、TX)と一緒に4℃で3時間、回転させながらインキュベートしてHLA DR-ペプチド複合体を免疫沈降させた。最後に、HLAが結合した樹脂を低温洗浄緩衝剤(20mMのTris-Cl、pH8、100mMのNaCl、60mMのオクチルグルコシド、0.2mMの2-ヨードアセトアミド、1mMのEDTA、pH8)1mLで4回洗浄し、次いで、低温の10mMのTris-Cl、pH8、1mLで4回洗浄した。洗浄間に、HLAが結合した樹脂を穏やかに混合し、次いで、4℃、1,500×gで1分間遠心分離することによってペレット化した。洗浄済みのHLAが結合した樹脂を-80℃で保存したかまたはすぐにHLA-ペプチドの溶出および脱塩に供した。
HLA-ペプチドを親和性タグ付けされた内因性HLA複合体から溶出させ、同時にSep-Pak(Waters)固相抽出系を使用して脱塩した。簡単に述べると、Sep-Pak Vac 1cc(50mg)37~55μm粒子サイズtC18カートリッジを24位置抽出マニホールド(Restek)に付着させ、MeOH、200μLで2回活性化し、その後、50%(v/v)ACN/1%(v/v)FA、100μL、次いで、1%(v/v)FA、500μLで4回洗浄した。HLA-ペプチドを親和性タグ付けされたHLA分子から解離させ、tC18固相へのペプチド結合を容易にするために、3%(v/v)ACN/5%(v/v)FA、400μLをHLAが結合したビーズが付されたアガロース樹脂を含有するチューブに添加した。ピペッティングすることによってスラリーを混合し、次いで、Sep-Pakカートリッジに移した。チューブおよびピペットチップを1%(v/v)FA(2×200μL)ですすぎ、すすぎ液をカートリッジに移した。Pierce Peptide Retention Time Calibration(PRTC)mixture(Thermo Scientific)100fmolをローディング対照としてカートリッジに添加した。ビーズが付されたアガロース樹脂を10%(v/v)AcOH、200μLと一緒に2回、5分間にわたってインキュベートして、HLA-ペプチドを親和性タグ付けされたHLA分子からさらに解離させ、次いで、1%(v/v)FA、500μLで4回洗浄した。HLA-ペプチドをtC18から溶出させて新しい1.5mLマイクロチューブ(Sarstedt)に15%(v/v)ACN/1%(v/v)FA、250μL、その後、30%(v/v)ACN/1%(v/v)FA、2×250μLを用いたステップ分画によって入れた。活性化、試料ローディング、洗浄、および溶出に使用した溶液は重力によって流出させたが、残りの溶出液をカートリッジから取り出すために真空(≦-2.5 PSI)を使用した。HLA-ペプチドを含有する溶出液を凍結させ、真空遠心分離によって乾燥させ、-80℃で保存した後、第2の脱塩ワークフローに供した。以前に記載されている通りEmpore C18固相抽出ディスク(3M、St.Paul、MN)の16ゲージの穿孔を2つ使用して充填した社内で築いたStageTipsを用いてHLA-ペプチド試料の二次脱塩を実施した。StageTipsを、MeOH、100μLを用い、その後、50%(v/v)ACN/0.1%(v/v)FA、50μLを用いて、2回活性化し、次いで、1%(v/v)FA、100μLで3回洗浄した。乾燥HLA-ペプチドを、3%(v/v)ACN/5%(v/v)200μLを添加し、次いで、StageTipsにローディングすることによって可溶化した。チューブおよびピペットチップを1%(v/v)FA(2×100μL)ですすぎ、すすぎ体積をStageTipsに移し、次いで、StageTipsを1%(v/v)FA、100μLで5回洗浄した。ペプチドを、15%(v/v)ACN/1%(v/v)FA、20μL、その後、30%(v/v)ACN/1%(v/v)FAの2つの20μLのカットの段階的勾配を使用して溶出させた。試料ローディング、洗浄、および溶出は、卓上遠心分離機において1,500~3,000×gの最大スピードで実施した。溶出液を凍結させ、真空遠心分離によって乾燥させ、-80℃で保存した。
全てのnanoLC-ESI-MS/MS分析に同じ下記のLC分離条件を使用した。試料を、PicoFrit(New Objective,Inc.、Woburn、MA)75μm内径キャピラリーにフィットさせたProxeon Easy NanoLC 1200(Thermo Scientific、San Jose、CA)を使用してクロマトグラフィーにより分離した。10μmのエミッターに、1.9μm粒子サイズ/200Å孔径のC18 Reprosilビーズを用い、1000psiの圧力でHeを約30~40cmまで充填し(Dr.Maisch GmbH、Ammerbuch、Germany)、分離の間、60℃で加熱した。カラムを10×ベッド体積の緩衝剤A[0.1%(v/v)FAおよび3%(v/v)ACN]で平衡化し、試料を3%(v/v)ACN/5%(v/v)FA、4μLにローディングし、7~30%の緩衝剤B[0.1%(v/v)FAおよび80%(v/v)ACN]を82分間、30~90%の緩衝剤Bを6分間の直線勾配を用いてペプチドを溶出させ、次いで、90%緩衝剤Bで15分間保持してカラムを洗浄した。試料のサブセットを、6~40%の緩衝剤Bを84分間、40~60%の緩衝剤Bを9分間の直線勾配を用いて溶出させ、次いで、90%緩衝剤Bで5分間および50%緩衝剤Bで9分間保持してカラムを洗浄した。試料溶出のための直線勾配は毎分250nLの速度で流し、約13秒のピーク幅中央値がもたらされた。
質量スペクトルを、Spectrum Mill software package v6.0 pre-Release(Agilent Technologies、Santa Clara、CA)を使用して解釈した。MS/MSスペクトルの前駆体MH+が600~2000(HLAクラスI)/600~4000(HLAクラスII)の範囲内に入らない、前駆体電荷が>5(HLAクラスI)/>7(HLAクラスII)である、または検出ピークが最低<5である場合にはそのMS/MSスペクトルを検索から除外した。同じクロマトグラフィーピークで取得された同じ前駆体m/zを有する同様のスペクトルのマージは無効にした。MS/MSスペクトルを、264種の一般的な夾雑物と組み合わせた、ゲノムのhg19アノテーションおよびそのタンパク質コード転写物を伴う全てのUCSC Genome Browser遺伝子を含有するデータベース(63,691種のエントリー;10,917,867種の独特の9merのペプチド)に対して検索した。データベース検索の前に、全てのMS/MSを、配列タグの長さが>2である、例えば、最小で3つの質量がアミノ酸の鎖内質量から分離されるスペクトル品質フィルターを通過させなければならなかった。最小の骨格切断スコア(BCS)を5に設定し、ESI QExactive HLAv2スコア化スキームを使用した。還元もアルキル化もされていないネイティブなHLA-ペプチド試料からのスペクトルの全てを、酵素特異性なし、システイニル化として固定されたシステインの修飾を使用し、以下の可変の修飾:酸化メチオニン(m)、ピログルタミン酸(N末端q)、カルバミドメチル化(c)を用いて検索した。還元およびアルキル化されたHLA-ペプチド試料を、酵素特異性なし、カルバミドメチル化として固定されたシステインの修飾を使用し、以下の可変の修飾:酸化メチオニン(m)、ピログルタミン酸(N末端q)、システイニル化(c)を用いて検索した。前駆体質量許容誤差±10ppm、生成物質量許容誤差±10ppm、および最小のスコア化ピーク強度30%をネイティブなHLA-ペプチドデータセットならびに還元およびアルキル化されたHLA-ペプチドデータセットの両方に対して使用した。個々のスペクトルについてのペプチドスペクトルマッチ(PSM)を、Spectrum Mill自動検証モジュールを使用して標的-デコイのPSM順位でのFDR推定に基づいた利用に確信的に割り当てられたものと自動的に指定して、スコア化閾値基準を設定した。HLA対立遺伝子に対して最小の配列長7、自動可変範囲前駆体質量フィルタリング、ならびに全てのLC-MS/MS実行にわたって最適化されたスコアおよびデルタ順位1-順位2スコア閾値を使用した自動閾値戦略により、各前駆体電荷の状態についてPSM FDR推定値<1%がもたらされた。
MAPTAC(商標)プロトコールではHLAクラスIIのベータ鎖のみにグ付けするので、ペプチド-MHC複合体がノックインまたは内因性アルファ鎖を含有するかどうかにかかわらず、ペプチド-MHC複合体をプルダウンステップにより単離する。HLA-DRの場合では、アルファ鎖の対立遺伝子バリエーションはペプチド結合に影響すると考えられない;したがって、内因性アルファ対形成を伴う対形成の相対的な程度はデータ解釈には関連しない、つまり、データは有効に単一対立遺伝子性である。しかし、HLA-DPおよびHLA-DQ遺伝子座に関しては、アルファ鎖は、重要な対立遺伝子バリアントを示し、したがって、ノックインおよび内因性アルファ鎖対立遺伝子の両方が存在することにより、1~3種の別個の特異性の潜在性が生じる(細胞株が1つまたは2つのアルファ鎖対立遺伝子を有するかどうか、およびいずれかがノックイン対立遺伝子とマッチするかどうかに応じて)。この問題は、原理上は、ノックインアルファ鎖を用いて、および用いずにプロトコールを実行し、アルファを用いた実験に特異的なペプチドのセットを同定することによって軽減することができる。本明細書ではノックインアルファ対立遺伝子とマッチする単一のアルファ対立遺伝子を発現する細胞株を使用する手法をとった。
.rawファイルをもたらした、公開されたLC-MS/MSデータセットを、Spectrum Mill software package v6.0 pre-Release(Agilent Technologies、Santa Clara、CA)を使用して再処理した。HCD断片化ならびにオービトラップ(高分解能)へのMSおよびMS/MSデータ収集を利用したThermo Orbitrap機器(例えば、Velos、QExactive、Fusion、Lumos)に収集されたデータセットを、上記の節「LC-MS/MSデータの解釈」に記載されているパラメータを使用して解析した。CID断片化を利用したMSおよびMS/MS高分解能データセットに対して、ESIオービトラップスコア化スキームを用い、上記と同じパラメータを使用した。オービトラップへのMSデータ収集およびイオントラップへのMS/MSデータ収集を用いたデータセットに対しても同様に上記と同じ以下のパラメータを使用し、以下の偏差を用いた。HCDデータに対してはESI QExactive HLAv2スコア化スキームを使用し、一方CIDデータに対してはESIオービトラップスコア化スキームを使用した。前駆体質量許容誤差±10ppm、生成物質量許容誤差±0.5Daを使用した。高分解能MS/MSデータセットおよび低分解能MS/MSデータセットの両方に対して、個々のスペクトルについてのペプチドスペクトルマッチ(PSM)を、Spectrum Mill自動検証モジュールを使用して標的-デコイのPSM順位でのFDR推定に基づいた利用に確信的に割り当てられたものと自動的に指定して、スコア化閾値基準を設定した。HLA対立遺伝子に対して最小の配列長7、自動可変範囲前駆体質量フィルタリング、ならびに全てのLC-MS/MS実行にわたって最適化されたスコアおよびデルタ順位1-順位2スコア閾値を使用した自動閾値戦略により、各前駆体電荷の状態についてPSM FDR推定値<1.0%がもたらされた。いくつかの以前に公開されたデータからのペプチド同定の解析により、高い率の9mer(>10%)が明らかになった。これらは潜在的に夾雑したHLAクラスIリガンドを表し得るので、短いペプチド(長さ<12)を全ての外部データセットから外した。
各ペプチドを、UCSC hg19遺伝子アノテーション内の1つまたは複数のタンパク質をコードする転写物に割り当てた(genome.ucsc.edu/cgi-bin/hgTables)。多くのペプチド同定は他と重複し、したがって、大部分が重複する情報を構成するので、ペプチドを、各々が約1つの独特の結合事象に対応することが意図されている「入れ子セット」に群分けした。例えば、ペプチドGKAPILIATDVASRGLDV、GKAPILIATDVASRGLD、およびKAPILIATDVASRGLDVは全て、保存された配列KAPILIATDVASRGLDを含有し、おそらく全てが同じレジスター内のMHCに結合する。所与のデータセットのペプチドを入れ子状にするために、各ノードが独特のペプチドに対応するグラフを築き、少なくとも1つの9merを共有し、少なくとも1つの共通の転写物にマッピング可能なペプチドの任意の対間にエッジを創出した。Rパッケージigraph内のクラスターコマンド(Team, 2014)(cran.r-project.org/web/packages/igraph/citation.html)を使用して、接続したノードのクラスターを同定し、各クラスターを入れ子セットと定義した。この手順により、エッジ基準(共通の9merが1つ以上、共通の転写物が1つ以上)を満たす任意の2つのペプチドが同じ入れ子セット内に入ることが保証される。入れ子を配列ロゴ生成のために使用した(各入れ子セット内の最も短いペプチドを使用してロゴを生成した;図30A~30C、機械学習(合計1になる、入れ子セット内のペプチドにわたる重要性の重み付け;図31A~31D)、および遺伝子の偏り解析(各入れ子セットを個々のペプチドではなく1つの観察として計数した;図32A~32E)。
ヒトプロテオームにおけるアミノ酸頻度を、UCSC hg19アノテーション内のタンパク質をコードする遺伝子全ての配列に基づいて算出した(多数の転写物アイソフォームによって表される遺伝子に対して1つの転写物をランダムに選択する)。IEDB頻度を、少なくとも1つの親和性観察≦100nMを有するペプチドの独特のセットを同定することによって決定した(C末端に六価ポリヒスチジンを有するペプチドは除外する)。MAPTAC(商標)頻度をまず、入れ子セット当たりただ1つのペプチド(最長のもの)を使用し、5種のDRB1対立遺伝子(DRB1*01:01、DRB1*03:01、DRB1*09:01、およびDRB1*11:01)にわたって標準の順相プロトコールに関して検討した。さらに、還元およびアルキル化プロトコールによってプロセシングされた試料のサブセットについてMAPTAC(商標)頻度を別々に算出した。外部データセットからのMSデータを、潜在的対立遺伝子起源を考慮せずに、同様に入れ子セット当たり最長ペプチドを使用して解析した。
各HLAクラスI対立遺伝子について、対応するペプチドの最初の5つの位置(ロゴ位置1~5にマッピングされる)および最後の4つの位置(ロゴ位置6~9にマッピングされる)におけるアミノ酸頻度をプロファイリングすることによって長さ9の配列ロゴを創出した。このように、ペプチドは、長さにかかわらず配列ロゴに寄与した。HLAクラスIIロゴの場合と同様に、文字の高さは各位置における各アミノ酸の頻度に比例し、頻度が≧10%のアミノ酸について色分けを使用した。
GibbsCluster(v2.0)ツールの、複対立遺伝子HLAクラスIIペプチドデータを対立遺伝子起源毎にクラスター化する能力を評価するために、PBMC試料4つ、黒色腫細胞株(A375)1つ、および以前に公開されたリンパ芽球様細胞株3つを含む8つの試料に対するその性能を解析した。各試料遺伝子型に存在する各DRB1/3/4/5対立遺伝子について、我々の単一対立遺伝子MAPTAC(商標)データからの20種のペプチドをスパイクインした。スパイクされたペプチドはSPI≧70の12~20merに制限し、他のHLA-DR対立遺伝子についてのMAPTAC(商標)データ内のいずれのペプチドとも9merを共有しなかった、または目的の対立遺伝子についてのスパイクされたペプチドのいずれとも9merを共有しなかった。次いで、これらの強化されたデータセットをGibbsCluster-v2.0に、逆畳み込みのために、その他は以前から有しているのと同様に1位における疎水性優先性を強制した以外はデフォルトHLAクラスII設定を使用してサブミットした。各試料について、溶液中のクラスターの数を手動で指定し、遺伝子型に存在するHLA-DR対立遺伝子の数と等しくなるように設定した。
アンカー位置を、最も低いエントロピーを有する4つの位置と定義し、それらの位置内の「優先される」アミノ酸には、≧10%の頻度を有するアミノ酸全てが含まれた。n位に優先されるアミノ酸を有するペプチドの分率を算出する場合、入れ子セット当たりただ1つのペプチドを使用した(最も短いもの)。
各HLAクラスII対立遺伝子について、14から17までの独特のペプチド長を全て同定し、結合潜在性についてNetMHCIIpan-v3.1を使用してスコア化した。比較のために、50,000種のランダムな長さを釣り合わせたペプチドをヒトプロテオームからサンプリングした。密度分間布を対数変換された値に基づいて決定した。
ペプチドを、予測されるNetMHCIIpan-v3.1結合親和性が不十分なものである場合(DRB1*01:01については>100nMまたはDRB1*11:01については>500nM)、または≦2のヒューリスティックに定義されたアンカーを示す場合、親和性測定値について選択した。
各ノードがタンパク質をコードする転写物を表し、少なくとも5つの独特の9merのアミノ配列内容を共有する転写物の全ての対の間にエッジが存在する(UCSC hg19遺伝子アノテーション)グラフを創出した。Rパッケージigraph内のクラスターコマンド(Team, 2014)(cran.r-project.org/web/packages/igraph/citation.html)を使用して、接続したノードのクラスターを同定し、各クラスターを「転写物群」と定義した。このように、2つの転写物がエッジを共有する場合(共有される9merが5つ以上)、同じ転写物群に入ることが保証された。転写物群をランダムにサンプリングし、プロテオームを8つの大まかに同等のサイズにした区分に分割した。MSにより観察されたペプチド(および観察されていないデコイペプチド)をそれらの供給源転写物の区分に従って区分に入れ、これらの区分を交差検証およびハイパーパラメータチューニングのために使用した。プロテオームの区分化のグラフに基づく手法を使用して、訓練および評価中に同様のペプチド配列が現れ、それにより予測性能が人為的に膨張し得る可能性を最小限にした。
訓練のために陰性例(デコイ)をヒットペプチドの配列をランダムにシャッフリングすることによって生成した。一般的なアミノ酸優先性をもたらす可能性があるMSの偏りを排除するために、プロテオームから観察されていない領域を選択するのではなく、このデコイ生成方法を選択した。このように、我々の結合予測器では、例えば、システインの相対的枯渇を知らない(図12F)。同様に、これにより、我々のモデルが、全体的な疎水性などのペプチドの全体的特性に関連するMSの偏りを学習することが防止される。この方法は、図31Aに示されている結果に関連する。
モデルのアンサンブルを各対立遺伝子について訓練する際、アーキテクチャは固定したが、L2正則化の量は変動させた。基本のL2正則化の重み0.05を第1の畳み込み層に使用し、および第2の畳み込み層には0.1を使用した。L2正則化の量を変動させるために、これらの値に0.1、0.5、および1を掛けた。アンサンブルにおける各反復について、正則化レベル当たり1つのモデルを訓練し、チューニング区分に対する性能に基づいて最良のモデルを保持した。
HLA対立遺伝子によってコードされる所与のペプチドまたはタンパク質についての予測性能値の一部の例示的な評価では、「スクランブルデコイ」を含む方法を使用することができる。スクランブルデコイは、例えば質量分析データに基づいて所与のHLAペプチドまたはタンパク質と結合することが分かっているペプチドと同じペプチド長およびアミノ酸を有するが、アミノ酸の配列がスクランブルされているペプチドである。図7Aに示されている通り、質量分析によって同定されたすべての単一のペプチドについて、そのようなスクランブルペプチドデコイを19使用した(ヒット:デコイ1:19)。提示予測モデルを試験し、PPVを、試験区分におけるペプチドの最良スコア化5%を解析し、どの画分が陽性であるかを調べることによって決定した。このように生成されたPPVが図7Aおよび以下の表12に示されている。
所与の対立遺伝子についての予測性能を評価するために、観察することができたが(プロテオームに存在することが理由で)、MSデータでは観察されなかったペプチドのセットを定義することが必要であった。これらの陰性例は訓練された「天然のデコイ」であった(上記の「スクランブルデコイ」とは対照的に)。指導原理の通り、以下を決定した:天然のデコイの長さ分布はMSにより観察されたヒットの長さ分布とマッチすべきである、天然のデコイは、他の天然のデコイと重複する配列を含有すべきではない、天然のデコイは重複ヒットであるべきではない、および/または天然のデコイは、少なくとも1つのヒットを生じた遺伝子に由来すべきである。
ヒットの空リスト2つ、HminimalおよびHexhaustiveを初期化する
MSにより観察されたペプチドの各入れ子セットSについて:
S内に訓練またはチューニング区分内の転写物にマッピングすることができるペプチドがない場合:
S内の最も短いペプチドをHminimalに加える
S内の全てのペプチドをHexhaustiveに加える
デコイペプチドの空リスト、Dを初期化する
試験区分内の各タンパク質をコードする転写物(最長が最初、最短が最後)について:
Hexhaustive内に転写物にマップされるペプチドがない場合:
飛ばして次の転写物に進む
転写物のタンパク質配列に重複ペプチドPのセットをかぶせる。ペプチド長はHminimalの長さ分布からランダムにサンプリングする。重複は8アミノ酸である(P内の最後のペプチドが一般にはタンパク質の終わりからぶら下がる)。
P内の最後のペプチドがまだぶら下がっている間に:
P内の最長ペプチドの長さから1アミノ酸を差し引く
P内の各ペプチドについて:
Hexhaustive内のペプチドと9merを共有せず、D内のペプチドのいずれかに観察される9merのいずれも有さない場合:
当該ペプチドをDに加える
他の場合には:
当該ペプチドをはねる
HminimalおよびDは評価データセットを構成する
初期の解析では、非15merに対するNetMHCIIpan-v3.1親和性およびパーセント順位予測はベンチマークに対して不十分に実施された。しかし、以下の手法により性能が著しく改善された:ペプチドが15アミノ酸よりも長い場合、全ての構成物を15merとスコア化し、最も強い予測を全体的なペプチドスコアとして選択した;ペプチドが15アミノ酸より短い場合、N末端にGを当ててペプチドの長さを15にし、得られた伸長したペプチドをスコア化した。
我々のモデルの性能が我々のデータセットのサイズによってどのように限定されるかを理解するために、飽和解析を実施した。これは、使用する訓練用データの画分を変動させることがホールドアウト区分に対する性能にどのように影響を及ぼすかを理解するために、使用する訓練用データの画分を変動させながらモデルのアンサンブルを再訓練することを伴うものであった。図38Aは、訓練セットに使用したヒットペプチドの数に応じた評価区分(区分8)PPVを示す。各データポイントは、10モデルの集合にわたる平均PPVを示し、エラーバーは標準偏差を示す。
IEDBにおいて実証されたCD4+ T細胞応答の大部分(tcell_full_v3.zip at iedb.org/database_export_v3.php)は未知のまたはコンピュータにより帰属されたHLAクラスII対立遺伝子制限を有するので、HLAクラスII四量体によって実験的に確認された記録のサブセットに焦点を当てた。そのような記録はほぼ全てがWilliam Kwok Laboratory(Benaroya Research Institute、Seattle、WA)により寄託されたものであり、免疫反応性個体の血液を使用して、多様な病原体およびアレルゲンの四量体によりガイドされるエピトープマッピング(TGEM)を実施している。陰性ペプチドは一部の試験に関してはポストされているが、他の試験に関してはポストされていないので、ソース刊行物を精査して、陽性および陰性ペプチド反応性の完全なセットを再構築した。一部の場合では、陰性ペプチドはソース刊行物に明確に列挙されている。他の場合では、陰性を刊行物の方法で指定されているタイリング手順に従って帰属させ、それにより、ペプチド境界が既知の陽性例と一致することを確認する。図31Cに示されているこのアッセイでは、インフルエンザウイルスおよびライノウイルスのウイルス遺伝子からウイルスエピトープをマッピングし、エピトープを含むペプチド配列を使用して、各エピトープに対するHLAクラスIIタンパク質結合体を予測した。この場合、ペプチドに対するCD4+メモリーT細胞応答についてのPPVをそれぞれのHLA-DRB1タンパク質について予測した。PPVを、陽性結合体に関して、上位に順位付けられるエピトープのいずれの画分が真のヒットであったかを問うことによって決定した。HLAクラスIIタンパク質分子とペプチドの陽性対形成、およびそれぞれのウイルスを感染させた対象においてHLA分子が存在する場所を考慮して、対象においてCD4応答が生じる。Neonmhc2と公的に入手可能な予測器(NetMHCIIpan)の予測効率(PPV、言い換えれば、真のヒット数の予測)の比較が図31Cにこの例示的試験において試験した各DRB1タンパク質毎に示されている。試験した6種の対立遺伝子の各々についてneonmhc2の方がNetMHCIIpanよりも優れていた。
単球由来樹状細胞(mDC)を生成するために、CD14+単球を、HLA-DRB1*11:01+健康ドナー末梢血単球(PBMC)から、ヒトCD14マイクロビーズを製造者のプロトコール(Miltenyi Biotec)の通り使用し、磁気分離によって単離した。単離されたCD14+細胞を、800U/mlのrhGM-CSFおよび400U/mlのrhIL-4を補充したCellgenix GMP DC培地(Cellgenix)中で5日間にわたって分化させた。5日目に、mDCを回収し、0.4μMのペプチドを37摂氏温度で1時間にわたってパルスし、その後、10ng/mlのTNF-α、10ng/mlのIL-1β、10ng/mlのIL-6(Cellgenix)、および0.5μg/mlのPGE1(Cayman Pharma)を使用して成熟化させた。48時間後、mDCを、AIMV/RPMI(ThermoFisher)、10%ヒト血清(Sigma-Aldrich)、1%Pen/Strep(ThermoFisher)を含有し、5ng/mlのIL7およびIL15(Cellgenix)を補充した培地中、自己PBMCと1:10の比で共培養した。12日目に、T細胞を回収し、0.4μMのペプチドをパルスした成熟DCで7日間、2回の追加的な刺激で合計3回の刺激にわたって再刺激した。
単一細胞RNA-Seqデータを、3つの、ヒト腫瘍試料がプロファイリングされた以前に公開されたデータセットから得た。第1の試験には皮膚黒色腫からのデータを含めた。ファイル「GSE72056_melanoma_single_cell_revised_v2.txt」をGene Expression Omnibus(ncbi.nlm.nih.gov/geo/;accession:GSE72056)からダウンロードした。腫瘍の状態フラグ「2」を有する細胞を腫瘍細胞として扱い、腫瘍の状態フラグ「1」、および「1」から「6」までと等しい免疫細胞型フラグで標識された細胞をそれぞれT細胞、B細胞、マクロファージ、内皮、線維芽細胞、およびNKとして扱った。他の細胞は全て外した。データをlog2(TPM/10+1)の単位でネイティブなまま示し、したがって、TPM尺度に数学的に変換した。TPM尺度になったら、各細胞についてのデータを、タンパク質をコードするUCSC遺伝子の符号のセットにわたって再正規化して、1,000,000まで合計した(発現行列に現れないタンパク質をコードする遺伝子は暗黙のうちにゼロ発現を有するものとして扱った)。最後に、同じ細胞型および同じ供給源の生検材料に対応する単一細胞観察を平均して患者-細胞型レベルの発現推定値を生じさせた。
腫瘍由来HLAクラスII発現と間質由来HLAクラスII発現との特徴付け、図19Bに関連する
腫瘍に起因するHLAクラスII発現と間質に起因するHLAクラスII発現の相対量を決定するために、TCGA患者におけるHLAクラスII経路遺伝子のDNA配列決定からコールされた変異を同定し、HLAクラスII変異を有する各患者について、遺伝子の変異したコピーおよび変異していないコピーの相対的な発現量を対応するRNA-Seqで数量化した。さらに、変異リードが腫瘍から生じ、変異していないリードが間質または腫瘍における野生型対立遺伝子について生じ、および腫瘍が変異コピーとほぼ等しい発現を有する野生型コピーを保持することが仮定された。
卵巣がん、結腸直腸がん、および黒色腫のMHC-IIリガンドームがプロファイリングされた以前に公開されたMS実験からの試料を解析した。卵巣がんデータセットからの多くの試料はRNA-Seqが利用可能なものであり、これらの試料のデータをSRA(NCBI BioProject PRJNA398141)からダウンロードし、STARアライナーを使用してUCSC hg19トランスクリプトームとアラインメントした。RNA-Seqが利用可能でなかった卵巣試料については、RNA-Seqが利用可能であった試料にわたって平均することによって発現を推定した。結腸直腸試験および黒色腫試験に関しては、いずれの試料についても対応するRNA-Seqが存在せず、したがって、TCGA(The Cancer Genome Atlas Network)からのデータを使用して代理試料にわたって平均を算出した。RSEMバージョン-1.2.31によって算出される百万当たりの転写物数(TPM)を使用して転写レベルでの遺伝子数量化を実施した。発現推定値を、遺伝子レベルを合計すること、非コード遺伝子を外すこと、および総TPMが合計1000000になるように再正規化すること(ncRNA存在量のライブラリー間の変動の原因となるタンパク質をコードする遺伝子にわたって再正規化すること)によってさらに処理した。
過剰に表された遺伝子の多くが血漿遺伝子であることが観察された。血清遺伝子の包括的な一覧を得、血漿遺伝子に由来するHLA DR結合ペプチドについて、非血清遺伝子に由来するHLA-DR結合ペプチドと、ならびに、免疫ペプチドームにおいて表された遺伝子からサンプリングした長さを釣り合わせた非結合性(例えば、MSでは観察されていない)ペプチドとneonmhc2結合スコアを比較した。汎DR抗体を用いてプロファイリングされたHLAクラスIIペプチドを有する、遺伝子型決定された複対立遺伝子データセットについて(図30Bにおける解析と同じ試料)、neonmhc2で各DR対立遺伝子について試料が発現されたペプチドをスコア化した。発現された対立遺伝子全てにわたるneonmhc2による最良のスコア出力を各ペプチドの代表的なスコアとした。データを全ての使用可能なデータセットにわたってプールし、ペプチドの各カテゴリーについてスコアの分布を箱ひげ図で可視化した。
ターンオーバーがプロテアソームによって調節されるタンパク質を表すことが意図された2つの遺伝子セットを同定した。第1の遺伝子セットは、細胞株KG1、Jurkat、またはMM1Sにおける少なくとも1つの観察されたユビキチン化部位を有する遺伝子を含むものであった。第2のセットは、p値フィルター0.01を適用し、上向きの変化倍率が最も大きな300種の遺伝子を選択して、公開された論文のプロテアソーム阻害剤ボルテゾミブ(BTZ)を適用するとレベルが上昇する遺伝子を含むものであった。
4つの遺伝子発現プロファイルを創出した。第1の遺伝子発現プロファイルは、APCを表すことが意図され、上記の単一細胞RNA-Seq実験からの細胞型特異的プロファイルを平均することによって推定されたものである。平均には「マクロファージ」(頭頸部試験、肺試験、および黒色腫試験からのもの)、「CLEC9A DC」(肺試験からのもの)、および「monoDC」(肺試験からのもの)を含めた。他の3つの発現プロファイルは卵巣がん、結腸直腸がん、および黒色腫からのバルク腫瘍プロファイルに対応するものである(データ、図19A)。卵巣プロファイルはSchusterらによって公開された試料の平均であり、他のプロファイルは、腫瘍型毎の、「絶対的」アルゴリズムを使用して以前に推定された最も高い腫瘍細胞充実性を有する5つのTCGA試料に由来するものである。各腫瘍型について、遺伝子当たりのペプチドの数(入れ子セットレベルで)を計数し、遺伝子の長さ、APC特異的遺伝子発現、および腫瘍特異的遺伝子発現に応じた各遺伝子のペプチド計数を線形回帰を使用してモデル化した。出力変数および全ての入力変数をlog(x+1)によって転換した。モデルのパラメータ推定値を使用し、腫瘍の寄与をβ腫瘍/(β腫瘍+βAPC)として算出し、APCの寄与をβAPC/(β腫瘍+βAPC)として算出した。各試料について、遺伝子レベルでのブートストラップリサンプリング(M=100)を使用して、説明的割合についての信頼区間を算出した。
天然にプロセシングされ、提示されるHLAクラスIIペプチドを6つのデータセット:PBMCドロー、DC様MUTZ3細胞株、結腸直腸がん組織、黒色腫、卵巣がん、およびexpi293細胞株から解析した。多くのペプチドが同じN末端(例えば、GKAPILIATDVASRGLDVおよびGKAPILIATDVASRGLD)または同じC末端(例えば、GKAPILIATDVASRGLDおよびKAPILIATDVASRGLD)を共有するので、N末端にについて1つ、およびC末端について1つの、2セットの重複していないカット部分をキュレートした。図41に示されている命名システムを使用してペプチドの上流、ペプチド内部、およびペプチドの下流の位置を指す。上流および下流の頻度(...U1およびD1...)、をプロテオームアミノ酸頻度と比較し、有意な偏差をカイ二乗検定によってスコア化した。ペプチド位(N1...C1)をMSペプチドにおいて観察された頻度と比較した。
4つのPBMC試料および公開されたデータセットを使用して、切断関連変数/予測器の、提示されたHLAクラスIIエピトープの同定を増強する能力をベンチマークした。
1.溶媒露出度に基づく切断予測器および障害に基づく切断予測器に関しては、ヒト腫瘍組織からのHLAクラスIIリガンドームデータを使用してロジスティックモデルを当てはめた。リガンドーム実験において観察されたペプチドについては、首尾よくプロセシングされたに違いないことが推定された(ニューラルネットワークおよびCNNに基づく切断予測器に関しては、訓練用データを、下記の表において説明されている通り、同じデータセットを使用し、別個の様式で生成した)。
2.所与の切断予測器では結合単独に対して性能がブーストされるかどうかを評価するために、B721細胞およびKG1細胞を用いて生成した単一対立遺伝子MAPTAC(商標)データを使用してモデルを当てはめ、大多数の機能的にAPC様の細胞株を調べた。neonmhc2を使用して結合潜在性を算出し、ロジスティック回帰により前方予測において結合および切断変数に乗せられる相対的な重みを決定した。
3.前方予測の性能を評価するために、PBMC試料についてのデータセットおよび公開されたデータセットを前と同じ様式で構築した。しかし、これらの試料は複対立遺伝子であったので、各ペプチド候補ペプチドについての結合スコアを、各ドナーの遺伝子型によって示される1~4種のDR対立遺伝子の最大のスコア化のために取った。PPVを図31Bについて記載されている通り算出した。
MSにより観察されたカット部分からの切断シグナルを学習するために、腫瘍組織由来HLAクラスIIリガンドームにおけるU3からN3まで、およびC3からD3まで(「HLAクラスIIペプチドの観察された切断部位の特徴付け、図40Aに関連する」の節で導入された命名法を使用)の独特の6merのアミノ酸配列の全てを、それぞれN末端カットおよびC末端カットをモデル化する2つの別個のニューラルネットワークを訓練するための陽性例として使用した。前と同様に、同等数の独特の観察されていないN末端およびC末端カット部分(陰性例)を、そのコンテキストについてのプロテオームのアミノ酸頻度から、およびペプチドについてMSにより観察されたリガンドームから合成により生成した。アミノ酸配列を、neonmhc2に使用したものと同じ特色のサブセット、具体的には、タンパク質構造に基づくアミノ酸近接性、およびアミノ酸特性(例えば、酸性、脂肪族など)で符号化した。N末端およびC末端で観察されたカット部分モデルの各々について(lr=0.0005、Adam最適化器、損失関数としてバイナリ交差エントロピー)、次いで、全結合ニューラルネットワークを、ReLu活性化を用いた2つの隠れ層(1つの層に20個のニューロン、その後、次の層に10個のニューロン)を用いて訓練し、その後、最終的なシグモイド層を用いて訓練した。正則化のために、ドロップアウト率20%、L2ノルム0.001(C末端モデルについてのみ)、および最大ノルム制約4を使用した。
ペプチドの厳密な末端が分かっていない場合に、観察されたカット部分から学習した切断モデルが予測的であるかどうかを決定するために、上で学習した同じニューラルネットワークを、ペプチド末端を15アミノ酸越えて、拡張されたコンテキストに適用した。この場合の候補ペプチドをスコア化するために、3つの領域:N末端モデルを用いてスコア化した、ペプチドの15アミノ酸上流(真のN末端切断部位の位置にかかわらず)、N末端モデルおよびC末端モデルの両方を用いてスコア化したペプチド配列、およびC末端モデルを用いてスコア化した、ペプチドの15アミノ酸下流にわたって最大のスコアを算出した。neonmhc2結合スコアならびに4つの領域特異的スコア(ペプチド自体がN末端およびC末端モデルからの値の2つのセットに寄与するので)を使用してロジスティック回帰をMAPTAC(商標)データに対して訓練した。
SCRATCH suite内で、ACCpro20ツールを使用して、総体的な溶媒露出度を予測した。次いで、ペプチドの平均溶媒露出度スコアを考慮してペプチドがプロセシングされる可能性を、腫瘍組織データを使用してロジスティック回帰に当てはめた。最後に、neonmhc2結合スコアおよび腫瘍組織により訓練された予測器からの出力を使用してロジスティック回帰を単一対立遺伝子データに対して訓練した。
配列障害の残基毎のスコアをプロテオーム全体にわたって決定し、当該位置を不規則と標識した予測エンジンの数に従って0~5の尺度でスコア化した(使用したサーバー:anchor、espritz-d、espritz-n、espritz-x、iupred-l、およびiupred-s)。各候補ペプチドにわたって平均障害スコアを算出し、6つの障害予測器の出力を合計した。溶媒露出度と同様に、まず、ロジスティックモデルを、この全体的な障害スコアを使用して腫瘍組織データに当てはめた。この後に、neonmhc2結合スコアおよび腫瘍組織により訓練された予測器からの出力を使用してロジスティック回帰の単一対立遺伝子データに対する訓練を行った。
ヒットに対する訓練用データを、「まず切断、カット部分既知」切断予測器について記載されている通り、独特の6mer配列U3からN3まで、およびC3からD3までを使用する代わりに、ペプチドにフランキングする30アミノ酸(U30~U1、およびD1~D30)をモデル入力としたことを例外として生成した。さらに、30merの配列がN末端フランクに由来するのかC末端側フランクから由来するのかは区別せず、その代わりに、観察されたペプチドの両側に存在し得ると仮定された前駆体カットシグナルを学習させるために、データをプールして単一のモデルを訓練した。この状況では、合成デコイを使用する代わりに、同じ供給源遺伝子から引き出された観察されていないペプチド由来のフランキング配列を陰性例として使用した。配列を前と同様に、タンパク質構造に基づくアミノ酸近接性、およびアミノ酸特性(例えば、酸性の、脂肪族のなど)を使用して符号化した。CNNのアーキテクチャは、2つの畳み込み層、カーネルサイズが2であり、フィルターを48個有する第1の層と、その後の、カーネルサイズが3であり、フィルターを40個有する層とからなった。これらの層はReLu活性化を有した。畳み込み層の後にグローバル最大プーリング層が続き、その後、シグモイド活性化を用いる最終的な高密度層が続いた。CNNを学習率0.001で、Adam最適化およびバイナリ交差エントロピーを損失関数として用いて訓練した。
MSに基づくペプチド同定をBergseng et al., 2015からのHLA-DQリガンドームにわたってプールした。新しい候補ペプチドが前に観察されたペプチドのうちの1つと重複するかどうかを表す新しい特色を創出した。具体的には、以前に観察されたHLA-DQリガンドのセット内の任意のペプチドと少なくとも1つの9merを共有する場合には特色を1に設定し、他の場合には特色を0に設定した。neonmhc2結合スコアおよび重複特色を使用してロジスティック回帰を単一対立遺伝子データに対して訓練した。
7体の健康なドナー由来の末梢血を、上の節「抗体に基づくHLA-ペプチド複合体の単離」に記載されている通り、DR特異的抗体を用いてプロファイリングした。訓練データセットおよび評価データセットを、図31Bとの関連で前に記載されているヒットおよびデコイ選択アルゴリズムを使用して構築した。手短に言えば、これは、各入れ子セットを1つのヒットペプチド(入れ子セット内で最も短いペプチド)で表すことおよび遺伝子にわたって長さを釣り合わせたデコイをタイリングすることを意味し、したがって、ヒットと最小に重複し、互いに最小に重複する。この状況では、デコイ選択はMSにより観察された遺伝子に制約されず、その代わりに、デコイを、プロテオーム全体から、元に戻すことなくランダムにサンプリングした。プロテオームにおけるHLA-DRにより提示されたペプチドの大まかな推定頻度を反映する、ヒットとデコイの率1:499を利用した。MHC結合スコア(NetMHCIIpanまたはneonmhc2からのもの)ならびに他の入力特色(発現、遺伝子の偏り、およびDQ重複)を用いたロジスティック回帰モデルをKG1細胞株およびB721細胞株からのMAPTAC(商標)データに対して訓練した。
単球由来樹状細胞(mDC)を生成するために、CD14+単球を、健康ドナー末梢血単球(PBMC)から、ヒトCD14マイクロビーズを製造者のプロトコール(Miltenyi Biotec)の通り使用し、磁気分離によって単離した。単離された細胞を、800U/mlのrhGM-CSFおよび400U/mlのrhIL-4(CellGenix、Germany)を補充したCellGenix GMP DC培地中で6日間にわたって分化させた。K562細胞(ATCC、Manassas、VA)を、細胞培養物中、アミノ酸を伴う安定な同位元素標識を使用して同位体標識した(SILAC)。細胞を、重同位元素アミノ酸、L-リシン2HCl13C615N2(Life Technologies、Carlsbad、CA)およびL-ロイシン13C6(Life Technologies、Carlsbad、CA)を15%の熱失活透析ウシ胎仔血清(ThermoFisher)と共に含有するSILAC(ThermoFisher)についてRPMI 1640培地の存在下で5倍に成長させた。SILAC標識されたK562細胞を、60μMの次亜塩素酸(HOCl)を使用して以前に記載されている通り溶解させた、または室温で3時間にわたってUV処理してアポトーシスを誘導し、終夜静置した。7500万個のmDCをUV処理したSILAC標識K562細胞と1:3の比で、37℃で14時間共培養したか、またはHOClを用いて溶解させたK562と1:3の比で、37℃で10分間または5時間培養した。共培養後、プロテオミクス解析のために、細胞を回収し、ペレット化し、液体窒素で急速冷凍した。
重標識された(腫瘍由来)ペプチドの予測についてのPPVを算出するために、図33Bにおいて使用されているものと同じモデルおよび評価手法を使用した。K562細胞株についての発現を、ENCODE(encodeproject.org/experiments/ENCSR545DKY/;ライブラリーENCLB075GEKおよびENCLB365AUY;(ENCODE Project Consortium、2012))からのデータに基づいて決定した。樹状細胞についての発現をGSE116412(受託GSM3231102、GSM3231111、GSM3231121、GSM3231133、GSM3231145の平均)に基づいて決定した。
トリプシンペプチドを用いたFAIMSのベンチマーキング
本実施例では、高磁場非対称波形イオン移動度分光分析(FAIMS)の使用のための標準のHLA-ペプチドームワークフローを記載する。A375細胞により内因性にプロセシングされ、提示されたHLAクラスIおよびHLAクラスIIペプチドを特徴付けた。ペプチドを酸性逆相(aRP)および塩基性逆相(bRP)オフライン分画の両方に供した後、FAIMS Proインターフェースを備えていない(-)および備えた(+)Thermo Scientific Orbitrap Fusion Lumos Tribrid質量分析計を使用してnLC-MS/MSによる分析を行った。図42Aに示されている図にワークフローが示されている。図42Bは、FAIMSによりトリプシン試料におけるペプチド検出が10ngの低さまで改善されることを示す結果を示す。FAIMSにより、MS1強度が低いにもかかわらずHLA-1およびHLAクラスIIペプチド検出がLC勾配全体を通して増大する(図43Aおよび図44A、それぞれHLA-1およびHLAクラスIIペプチドについてのデータ)。著しいことに、FAIMS評価を用いて、酸性および塩基性逆相試料において独特のペプチド検出の増大が観察される(図43B、および図44B、それぞれHLA-1およびHLAクラスIIペプチドについてのデータ)。この試験により、FAIMSを用いるとMS1強度が低いにもかかわらずHLAクラスIおよびHLAクラスIIペプチドの検出がLC勾配全体を通して増大することが示された。図45および図46(それぞれHLA-1およびHLAクラスIIペプチド)に示されている通り、オフライン分画とFAIMSを組み合わせることにより、HLAペプチドレパートリーの解析の深さが増大する。
Claims (61)
- (a)複数の提示予測を生成するために、機械学習HLAペプチド提示予測モデルを使用して複数の候補ペプチド配列のアミノ酸情報を処理するステップであって、前記複数の候補ペプチド配列の各候補ペプチド配列が、対象のゲノムもしくはエクソーム、または前記対象における病原体もしくはウイルスによってコードされ、前記複数の提示予測が、前記複数の候補ペプチド配列の各々についてのHLA提示予測を含み、各HLA提示予測により、前記対象の細胞のクラスII HLA対立遺伝子によってコードされる1つまたは複数のタンパク質により前記複数の候補ペプチド配列のうちの所与の候補ペプチド配列が提示され得る可能性が示され、
前記機械学習HLAペプチド提示予測モデルが、訓練用細胞において発現されるHLAタンパク質によって提示されることが質量分析によって同定された訓練用ペプチドの配列の配列情報を含む訓練用データを使用して訓練される、ステップと、
(b)少なくとも前記複数の提示予測に基づいて、前記複数のペプチド配列のうち、前記対象の細胞のクラスII HLA対立遺伝子によってコードされる前記1つまたは複数のタンパク質のうちの少なくとも1つによって提示されるペプチド配列を同定するステップと、
を含み、前記機械学習HLAペプチド提示予測モデルの陽性適中率(PPV)が、提示PPV決定法に従うと少なくとも0.07である、方法。 - (a)複数の結合予測を生成するために、機械学習HLAペプチド結合予測モデルを使用して対象のゲノムまたはエクソームによってコードされる複数のペプチド配列のアミノ酸情報を処理するステップであって、前記複数の結合予測が、複数の候補ペプチド配列の各々についてのHLA結合予測を含み、各結合予測により、前記対象の細胞のクラスII HLA対立遺伝子によってコードされる1つまたは複数のタンパク質が前記複数の候補ペプチド配列のうちの所与の候補ペプチド配列に結合する可能性が示され、
前記機械学習HLAペプチド結合予測モデルが、HLAクラスIIタンパク質またはHLAクラスIIタンパク質類似体に結合することが同定されたペプチドの配列の配列情報を含む訓練用データを使用して訓練される、ステップと、
(b)少なくとも前記複数の結合予測に基づいて、前記複数のペプチド配列のうち、前記対象の細胞のクラスII HLA対立遺伝子によってコードされる前記1つまたは複数のタンパク質のうちの少なくとも1つとの結合に関する閾値結合予測確率値よりも大きな確率を有するペプチド配列を同定するステップと
を含み、
前記機械学習HLAペプチド結合予測モデルの陽性適中率(PPV)が、結合PPV決定法に従うと少なくとも0.1である、方法。 - 前記機械学習HLAペプチド提示予測モデルが、訓練用細胞において発現されるHLAタンパク質によって提示されることが質量分析によって同定された訓練用ペプチドの配列の配列情報を含む訓練用データを使用して訓練される、請求項2に記載の方法。
- 前記提示予測に基づいて、前記対象の細胞のクラスII HLA対立遺伝子によってコードされる前記1つまたは複数のタンパク質のうちの少なくとも1つによって提示されることが同定された少なくとも2つのペプチドに順位を付けることを含む、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記2つまたはそれよりも多くの順位付けされたペプチドのうちの1つまたは複数のペプチドを選択することを含む、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記対象の細胞のクラスII HLA対立遺伝子によってコードされる前記1つまたは複数のタンパク質のうちの少なくとも1つによって提示されることが同定された前記複数のうちの1つまたは複数のペプチドを選択することを含む、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記提示予測に基づいて順位付けされた2つまたはそれよりも多くのペプチドのうちの1つまたは複数のペプチドを選択することを含む、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 複数の試験ペプチド配列のアミノ酸情報を処理して、複数の試験提示予測を生成し、各試験提示予測により、前記対象の細胞のクラスII HLA対立遺伝子によってコードされる前記1つまたは複数のタンパク質により前記複数の試験ペプチド配列のうちの所与の試験ペプチド配列が提示され得る可能性が示される場合に、前記機械学習HLAペプチド提示予測モデルの陽性適中率(PPV)が少なくとも0.07であり、前記複数の試験ペプチド配列が、(i)細胞において発現されるHLAタンパク質によって提示されることが質量分析によって同定された少なくとも1つのヒットペプチド配列と、(ii)生物体のゲノムによってコードされるタンパク質内に含有される少なくとも499のデコイペプチド配列とを含む少なくとも500の試験ペプチド配列を含み、前記生物体と前記対象が同じ種であり、前記複数の試験ペプチド配列が、前記少なくとも1つのヒットペプチド配列と前記少なくとも499のデコイペプチド配列を1:499の比で含み、前記機械学習HLAペプチド提示予測モデルにより、前記複数の試験ペプチド配列の上位パーセンテージが、細胞において発現される前記HLAタンパク質によって提示されることが予測される、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 複数の試験ペプチド配列のアミノ酸情報を処理して、複数の試験結合予測を生成し、各試験結合予測により、前記対象の細胞のクラスII HLA対立遺伝子によってコードされる前記1つまたは複数のタンパク質が前記複数の試験ペプチド配列のうちの所与の試験ペプチド配列に結合する可能性が示される場合に、前記機械学習HLAペプチド提示予測モデルの陽性適中率(PPV)が少なくとも0.1であり、前記複数の試験ペプチド配列が、(i)細胞において発現されるHLAタンパク質によって提示されることが質量分析によって同定された少なくとも1つのヒットペプチド配列と、(ii)細胞において発現されるHLAタンパク質、例えば、細胞において発現される単一HLAタンパク質(例えば、単一対立遺伝子細胞)によって提示されることが質量分析によって同定された少なくとも1つのペプチド配列を含むタンパク質内に含有される少なくとも19のデコイペプチド配列とを含む少なくとも20の試験ペプチド配列を含み、前記複数の試験ペプチド配列が、前記少なくとも1つのヒットペプチド配列と前記少なくとも19のデコイペプチド配列を1:19の比で含み、前記機械学習HLAペプチド提示予測モデルにより、前記複数の試験ペプチド配列の上位パーセンテージが細胞において発現される前記HLAタンパク質に結合することが予測される、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記少なくとも1つのヒットペプチド配列と前記デコイペプチド配列の間にアミノ酸配列の重複が存在しない、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記機械学習HLAペプチド提示予測モデルの陽性適中率(PPV)が、少なくとも0.08、0.09、0.1、0.11、0.12、0.13、0.14、0.15、0.16、0.17、0.18、0.19、0.2、0.21、0.22、0.23、0.24、0.25、0.26、0.27、0.28、0.29、0.3、0.31、0.32、0.33、0.34、0.35、0.36、0.37、0.38、0.39、0.4、0.41、0.42、0.43、0.44、0.45、0.46、0.47、0.48、0.49、0.5、0.51、0.52、0.53、0.54、0.55、0.56、0.57、0.58、0.59、0.6、0.61、0.62、0.63、0.64、0.65、0.66、0.67、0.68、0.69、0.7、0.71、0.72、0.73、0.74、0.75、0.76、0.77、0.78、0.79、0.8、0.81、0.82、0.83、0.84、0.85、0.86、0.87、0.88、0.89、0.9、0.91、0.92、0.93、0.94、0.95、0.96、0.97、0.98または0.99である、請求項1から10のいずれか一項に記載の方法。
- 前記少なくとも1つのヒットペプチド配列が、少なくとも5、10、20、50または100のヒットペプチド配列を含む、請求項1および請求項3から11のいずれか一項に記載の方法。
- 前記少なくとも499のデコイペプチド配列が、少なくとも2500、5000、10000、25000、50000または100000のデコイペプチド配列を含む、請求項1および請求項3から12のいずれか一項に記載の方法。
- 前記少なくとも500の試験ペプチド配列が、少なくとも2500、5000、10000、25000、50000または100000の試験ペプチド配列を含む、請求項1および請求項3から13のいずれか一項に記載の方法。
- 前記上位パーセンテージが、上位0.2%、0.3%、0.4%、0.5%、0.6%、0.7%、0.8%、0.9%、1.00%または2.00%である、請求項1および請求項3から14のいずれか一項に記載の方法。
- 前記少なくとも1つのヒットペプチド配列が、少なくとも5、10、20、50または100のヒットペプチド配列を含む、請求項2から11のいずれか一項に記載の方法。
- 前記少なくとも19のデコイペプチド配列が、少なくとも500、1000、2000、5000または10000のデコイペプチド配列を含む、請求項2から11および16のいずれか一項に記載の方法。
- 前記少なくとも20の試験ペプチド配列が、少なくともを含み、前記少なくとも500の試験ペプチド配列が、少なくとも500、1000、2000、5000または10000の試験ペプチド配列試験ペプチド配列を含む、請求項2から11、16および17のいずれか一項に記載の方法。
- 前記上位パーセンテージが、上位5%、6%、7%、8%、9%、10%、15%、または20%である、請求項2から11および16から18のいずれか一項に記載の方法。
- 前記PPVが、表11の対応するHLA対立遺伝子によってコードされるタンパク質についての表11の2列目のPPVよりも大きい、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記PPVが、HLAクラスII対立遺伝子によってコードされるタンパク質についての表16の2列目のPPVよりも大きい、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記対象が、単一の対象である、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記細胞が、前記対象の細胞のクラスII HLA対立遺伝子によってコードされる単一のタンパク質を発現する細胞である、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記細胞が、単一対立遺伝子HLA細胞またはアフィニティータグを有するHLA対立遺伝子を発現する細胞である、請求項1から23のいずれか一項に記載の方法。
- 前記複数のペプチド配列の各ペプチド配列が、がんに関連付けられる、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記複数のペプチド配列のうちの少なくとも1つのペプチド配列が、前記対象のがん細胞によって過剰発現される、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記複数のペプチド配列の各ペプチド配列が、前記対象のがん細胞によって過剰発現される、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記複数のペプチド配列のうちの少なくとも1つのペプチド配列が、がん細胞特異的ペプチドである、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記複数のペプチド配列の各ペプチド配列が、がん細胞特異的ペプチドである、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記複数のペプチド配列の各ペプチド配列が、前記対象のがん細胞によって発現される、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記複数のペプチド配列のうちの少なくとも1つのペプチド配列が、前記対象の非がん細胞によってコードされない、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記複数のペプチド配列の各ペプチド配列が、前記対象の非がん細胞によってコードされない、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記複数のペプチド配列のうちの少なくとも1つのペプチド配列が、前記対象の非がん細胞では発現されない、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記複数のペプチド配列の各ペプチド配列が、前記対象の非がん細胞では発現されない、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記対象の前記複数のペプチド配列を得ることを含む、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記対象の複数のポリヌクレオチド配列を得ることを含む、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 対象のゲノムまたはエクソームによってコードされる複数のペプチド配列をコードする前記対象の複数のポリヌクレオチド配列を得ることを含む、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 対象のゲノムまたはエクソームによってコードされる複数のペプチド配列をコードする前記対象の複数のポリヌクレオチド配列をコンピュータプロセッサによって得ることを含む、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記対象の複数のポリヌクレオチド配列をゲノム配列決定またはエクソーム配列決定によって得ることを含む、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記対象の複数のポリヌクレオチド配列を全ゲノム配列決定または全エクソーム配列決定によって得ることを含む、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記対象に、ペプチド配列の選択されたサブセットの1つまたは複数を含む組成物を投与するステップをさらに含む、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記HLAクラスIIタンパク質が、HLA-DRタンパク質、HLA-DQタンパク質、またはHLA-DPタンパク質を含む、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記HLAクラスIIタンパク質が、HLA-DPB1*01:01/HLA-DPA1*01:03、HLA-DPB1*02:01/HLA-DPA1*01:03、HLA-DPB1*03:01/HLA-DPA1*01:03、HLA-DPB1*04:01/HLA-DPA1*01:03、HLA-DPB1*04:02/HLA-DPA1*01:03、HLA-DPB1*06:01/HLA-DPA1*01:03、HLA-DQB1*02:01/HLA-DQA1*05:01、HLA-DQB1*02:02/HLA-DQA1*02:01、HLA-DQB1*06:02/HLA-DQA1*01:02、HLA-DQB1*06:04/HLA-DQA1*01:02、HLA-DRB1*01:01、HLA-DRB1*01:02、HLA-DRB1*03:01、HLA-DRB1*03:02、HLA-DRB1*04:01、HLA-DRB1*04:02、HLA-DRB1*04:03、HLA-DRB1*04:04、HLA-DRB1*04:05、HLA-DRB1*04:07、HLA-DRB1*07:01、HLA-DRB1*08:01、HLA-DRB1*08:02、HLA-DRB1*08:03、HLA-DRB1*08:04、HLA-DRB1*09:01、HLA-DRB1*10:01、HLA-DRB1*11:01、HLA-DRB1*11:02、HLA-DRB1*11:04、HLA-DRB1*12:01、HLA-DRB1*12:02、HLA-DRB1*13:01、HLA-DRB1*13:02、HLA-DRB1*13:03、HLA-DRB1*14:01、HLA-DRB1*15:01、HLA-DRB1*15:02、HLA-DRB1*15:03、HLA-DRB1*16:01、HLA-DRB3*01:01、HLA-DRB3*02:02、HLA-DRB3*03:01、HLA-DRB4*01:01およびHLA-DRB5*01:01;DPA*01:03/DPB*04:01、DRB1*01:01、DRB1*01:02、DRB1*03:01、DRB1*04:01、DRB1*04:02、DRB1*04:04、DRB1*04:05、DRB1*07:01、DRB1*08:01、DRB1*08:02、DRB1*08:03、DRB1*09:01、DRB1*11:01、DRB1*11:02、DRB1*11:04、DRB1*12:01、DRB1*13:01、DRB1*13:02、DRB1*13:03、DRB1*14:01、DRB1*15:01、DRB1*15:02、DRB1*15:03、DRB1*16:02、DRB3*01:01、DRB3*02:01、DRB3*02:02、DRB3*03:01、DRB4*01:01、DRB4*01:03およびDRB5*01:01からなる群から選択されるHLA-DRタンパク質;DPB1*01:01、DPB1*02:01、DPB1*02:02、DPB1*03:01、DPB1*04:01、DPB1*04:02、DPB1*05:01、DPB1*06:01、DPB1*11:01、DPB1*13:01、DPB1*17:01からなる群から選択されるHLA-DPタンパク質;またはA1*01:01+B1*05:01、A1*01:02+B1*06:02、A1*01:02+B1*06:04、A1*01:03+B1*06:03、A1*02:01+B1*02:02、A1*02:01+B1*03:03、A1*03:01+B1*03:02、A1*03:03+B1*03:01、A1*05:01+B1*02:01およびA1*05:05+B1*03:01からなる群から選択されるHLA-DQタンパク質複合体、
からなる群から選択される、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。 - 前記HLAタンパク質によって提示されるペプチドの長さが、15~40アミノ酸である、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 個別化がん治療が、アジュバントをさらに含む、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 前記個別化がん治療が、免疫チェックポイント阻害剤をさらに含む、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
- 対象に対する免疫治療のためのHLAクラスII特異的ペプチドを同定する方法であって、
(a)コンピュータプロセッサにより、エピトープを含む候補ペプチド、およびそれぞれが前記エピトープを含む複数のペプチド配列を得るステップと、
(b)免疫細胞に対する前記複数のペプチド配列の各々についての提示予測を生成するために、コンピュータプロセッサにより、機械学習HLA-ペプチド提示予測モデルを使用して前記複数のペプチド配列のアミノ酸情報を処理するステップであって、各提示予測により、HLAクラスII対立遺伝子によってコードされる1つまたは複数のタンパク質により前記複数のペプチド配列のうちの所与のペプチド配列が提示され得る可能性が示され、前記機械学習HLA-ペプチド提示予測モデルが、細胞において発現されるHLAタンパク質によって提示され、質量分析によって同定されたペプチドの配列の配列情報を含む訓練用データを使用して訓練される、ステップと、
(c)前記対象の細胞の前記HLAクラスII対立遺伝子によってコードされる1つまたは複数のタンパク質から、前記候補ペプチドに結合することが前記機械学習HLA-ペプチド提示予測モデルによって予測されたタンパク質を選択するステップであって、前記タンパク質が、免疫細胞に対する前記候補ペプチドの提示についての提示予測確率値の閾値よりも大きな確率を有する、ステップと、
(d)前記候補ペプチドを前記選択されたタンパク質と接触させ、したがって、前記候補ペプチドを、前記選択されたタンパク質と会合したプレースホルダーペプチドと競合させるステップと、
(e)前記候補ペプチドが前記プレースホルダーペプチドに置き換わるかどうかに基づいて、前記候補ペプチドを前記選択されたタンパク質に特異的な免疫治療のためのペプチドとして同定するステップと
を含む方法。 - MHCクラスII結合性ペプチドの免疫原性をアッセイするための方法であって、
(a)前記MHCクラスII結合性ペプチドに結合することが機械学習HLA-ペプチド提示予測モデルによって予測された、HLAクラスII対立遺伝子によってコードされるタンパク質を選択するステップであって、前記機械学習HLA-ペプチド提示予測モデルが、所与のペプチド配列についての提示予測を生成するように構成されており、前記提示予測により、前記HLAクラスII対立遺伝子によってコードされる1つまたは複数のタンパク質により前記所与のペプチド配列が提示され得る可能性が示され、前記タンパク質が、前記MHCクラスII結合性ペプチドの提示についての提示予測確率値の閾値よりも大きな確率を有する、ステップと、
(b)前記ペプチドを前記選択されたタンパク質と接触させ、したがって、前記ペプチドを、前記選択されたタンパク質と会合したプレースホルダーペプチドと競合させ、前記プレースホルダーペプチドを置き換え、それにより、前記HLAクラスIIタンパク質と前記MHCクラスII結合性ペプチドとを含む複合体を形成するステップと、
(c)前記複合体をCD4+ T細胞と接触させるステップと、
(d)サイトカインの誘導、ケモカインの誘導、および細胞表面マーカーの発現からなる群から選択されるCD4+ T細胞の活性化パラメータの1つまたは複数についてアッセイするステップと
を含む方法。 - がん免疫治療のために対象におけるCD4+ T細胞活性化を誘導するための方法であって、
(a)がんに関連付けられ、がん変異を含むペプチド配列を同定するステップであって、前記ペプチド配列の同定が、前記対象のがん細胞由来のDNA、RNA、またはタンパク質配列を前記対象の正常細胞由来のDNA、RNA、またはタンパク質配列と比較することを含む、ステップと、
(b)前記対象の細胞によって通常発現され、前記ペプチドに結合することが機械学習HLA-ペプチド提示予測モデルによって予測された、HLAクラスII対立遺伝子によってコードされるタンパク質を選択するステップであって、前記予測モデルの陽性適中率が、少なくとも0.1%、0.1%~50%または最大で50%の再現率で少なくとも0.1であり、前記タンパク質が、前記同定されたペプチド配列の提示についての提示予測確率値の閾値よりも大きな確率を有する、ステップと、
(c)前記同定されたペプチドを、前記選択された、前記HLAクラスII対立遺伝子によってコードされるタンパク質と接触させて、前記同定されたペプチドが、500nM未満のIC50値で、前記選択された、前記HLAクラスII対立遺伝子によってコードされるタンパク質と会合したプレースホルダーペプチドと競合して前記プレースホルダーペプチドに置き換わるかどうかを検証するステップと、
(d)必要に応じて、前記同定されたペプチドを精製するステップと、
(e)前記同定されたペプチドの配列を含むポリペプチドまたは前記ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを前記対象に有効量で投与するステップと
を含む方法。 - ポリペプチド配列を含む薬物を対象における免疫原性についてスクリーニングする方法であって、
(a)コンピュータプロセッサにより、前記ポリペプチド配列の複数のペプチド配列を得るステップと、
(b)前記複数のペプチド配列の各々についての提示予測を生成するために、コンピュータプロセッサにより、機械学習HLA-ペプチド提示予測モデルを使用して前記複数のペプチド配列のアミノ酸情報を処理するステップであって、各提示予測により、前記対象の細胞のクラスIまたはクラスII MHC対立遺伝子によってコードされる1つまたは複数のタンパク質により前記複数のペプチド配列のうちの所与のペプチド配列のエピトープ配列が提示され得る可能性が示され、前記機械学習HLA-ペプチド提示予測モデルが、細胞において発現されるHLAタンパク質に関連する配列情報を含む訓練用データを使用して訓練される、ステップと、
(c)前記複数の提示予測に基づいて、前記ポリペプチド配列の前記複数のペプチド配列の各々が前記対象に対して免疫原性ではないことを決定または予測するステップと、
(d)前記対象に、前記薬物を含む組成物を投与するステップと
を含む方法。 - 4つの個々のHLAタンパク質アルファ1およびベータ1ヘテロ二量体をコンジュゲートすることによってHLAクラスII四量体を製造するための方法であって、
(a)真核細胞において、HLAタンパク質のアルファ鎖およびベータ鎖をコードする核酸配列、分泌シグナル、ビオチン化モチーフおよび同定用または精製用の少なくとも1つのタグを含むベクターを発現させ、したがって、各HLAタンパク質アルファ1およびベータ1ヘテロ二量体を、二量体を形成した状態で分泌させるステップであって、前記ヘテロ二量体が、プレースホルダーペプチドと会合している、ステップと、
(b)前記分泌されたヘテロ二量体を細胞培地から精製するステップと、
(c)ペプチド交換アッセイを使用して前記ペプチド結合活性を検証するステップと、
(d)ストレプトアビジンを添加し、それにより、ヘテロ二量体をコンジュゲートして四量体にするステップと、
(e)前記四量体を精製し、1mg/Lを超える収量を得るステップと
を含む方法。 - HLA-DRヘテロ二量体、またはHLA-DPヘテロ二量体、またはHLA-DQヘテロ二量体のいずれかを含むHLAクラスII四量体または多量体であって、各ヘテロ二量体がアルファ鎖とベータ鎖とを含み、前記ヘテロ二量体が精製されており、1mg/Lを超える濃度で存在する、HLAクラスII四量体または多量体。
- HLAタンパク質が、HLA-DPB1*01:01/HLA-DPA1*01:03、HLA-DPB1*02:01/HLA-DPA1*01:03、HLA-DPB1*03:01/HLA-DPA1*01:03、HLA-DPB1*04:01/HLA-DPA1*01:03、HLA-DPB1*04:02/HLA-DPA1*01:03、HLA-DPB1*06:01/HLA-DPA1*01:03、HLA-DQB1*02:01/HLA-DQA1*05:01、HLA-DQB1*02:02/HLA-DQA1*02:01、HLA-DQB1*06:02/HLA-DQA1*01:02、HLA-DQB1*06:04/HLA-DQA1*01:02、HLA-DRB1*01:01、HLA-DRB1*01:02、HLA-DRB1*03:01、HLA-DRB1*03:02、HLA-DRB1*04:01、HLA-DRB1*04:02、HLA-DRB1*04:03、HLA-DRB1*04:04、HLA-DRB1*04:05、HLA-DRB1*04:07、HLA-DRB1*07:01、HLA-DRB1*08:01、HLA-DRB1*08:02、HLA-DRB1*08:03、HLA-DRB1*08:04、HLA-DRB1*09:01、HLA-DRB1*10:01、HLA-DRB1*11:01、HLA-DRB1*11:02、HLA-DRB1*11:04、HLA-DRB1*12:01、HLA-DRB1*12:02、HLA-DRB1*13:01、HLA-DRB1*13:02、HLA-DRB1*13:03、HLA-DRB1*14:01、HLA-DRB1*15:01、HLA-DRB1*15:02、HLA-DRB1*15:03、HLA-DRB1*16:01、HLA-DRB3*01:01、HLA-DRB3*02:02、HLA-DRB3*03:01、HLA-DRB4*01:01およびHLA-DRB5*01:01からなる群から選択されるHLAクラスIIタンパク質である、請求項52に記載のHLAクラスII四量体または多量体。
- 前記請求項のいずれか一項のHLAタンパク質のアルファ鎖およびベータ鎖をコードする核酸配列、分泌シグナル、ビオチン化モチーフおよび同定用または精製用の少なくとも1つのタグを含み、したがって、各HLAタンパク質アルファ1およびベータ1ヘテロ二量体を、二量体を形成した状態で分泌させるベクターであって、必要に応じて、前記分泌されるヘテロ二量体が、プレースホルダーペプチドと会合している、ベクター。
- 請求項54に記載のベクターを含む細胞。
- ポリペプチド配列を含む薬物を対象における免疫原性についてスクリーニングする方法であって、
(a)コンピュータプロセッサにより、前記ポリペプチド配列の複数のペプチド配列を得るステップと、
(b)前記複数のペプチド配列の各々についての提示予測を生成するために、コンピュータプロセッサにより、機械学習HLA-ペプチド提示予測モデルを使用して前記複数のペプチド配列のアミノ酸情報を処理するステップであって、各提示予測により、前記対象の細胞のクラスIまたはクラスII MHC対立遺伝子によってコードされる1つまたは複数のタンパク質により前記複数のペプチド配列のうちの所与のペプチド配列のエピトープ配列が提示され得る可能性が示され、前記機械学習HLA-ペプチド提示予測モデルが、細胞において発現されるHLAタンパク質によって提示され、質量分析によって同定されたペプチドの配列の配列情報を含む訓練用データを使用して訓練されるステップと、
(c)前記複数の提示予測に基づいて、前記ポリペプチド配列の複数のペプチド配列のうちの少なくとも1つが前記対象に対して免疫原性であることを決定または予測するステップと
を含む方法。 - ポリペプチド配列を含む薬物を対象における免疫原性についてスクリーニングする方法であって、
(a)コンピュータプロセッサを使用して前記ポリペプチド配列のペプチド配列のアミノ酸情報を機械学習HLA-ペプチド提示予測モデルに入力して、前記ペプチド配列についての提示予測のセットを生成するステップであって、各提示予測により、前記対象の細胞のクラスIまたはクラスII MHC対立遺伝子によってコードされる1つまたは複数のタンパク質により所与のペプチド配列のエピトープ配列が提示される確率が示され、前記機械学習HLA-ペプチド提示予測モデルが、少なくとも訓練用データに基づいて同定された複数の予測変数を含み、前記訓練用データが、細胞において発現されるHLAタンパク質によって提示され、質量分析によって同定されたペプチドの配列の配列情報;アミノ酸位置情報を含む訓練用ペプチド配列情報であって、前記細胞において発現されるHLAタンパク質に関連付けられる、訓練用ペプチド配列情報;ならびに、入力として受け取られた前記アミノ酸位置情報と前記アミノ酸位置情報および前記予測変数に基づいて出力として生成された提示可能性との関係を表す関数を含む、ステップと、
(b)前記提示予測のセットに基づいて、前記ポリペプチド配列のペプチド配列の各々が前記対象に対して免疫原性ではないことを決定または予測するステップと、
(c)前記対象に、前記薬物を含む組成物を投与するステップと
を含む方法。 - ポリペプチド配列を含む薬物を対象における免疫原性についてスクリーニングする方法であって、
(a)コンピュータプロセッサを使用して前記ポリペプチド配列のペプチド配列のアミノ酸情報を機械学習HLA-ペプチド提示予測モデルに入力して、前記ペプチド配列についての提示予測のセットを生成するステップであって、各提示予測により、前記対象の細胞のクラスIまたはクラスII MHC対立遺伝子によってコードされる1つまたは複数のタンパク質により所与のペプチド配列のエピトープ配列が提示される確率が示され、前記機械学習HLA-ペプチド提示予測モデルが、少なくとも訓練用データに基づいて同定された複数の予測変数を含み、前記訓練用データが、細胞において発現されるHLAタンパク質によって提示され、質量分析によって同定されたペプチドの配列の配列情報;アミノ酸位置情報を含む訓練用ペプチド配列情報であって、前記細胞において発現されるHLAタンパク質に関連付けられる、訓練用ペプチド配列情報;ならびに、入力として受け取られた前記アミノ酸位置情報と前記アミノ酸位置情報および前記予測変数に基づいて出力として生成された提示可能性との関係を表す関数を含む、ステップと、
(b)前記提示予測のセットに基づいて、前記ポリペプチド配列のペプチド配列のうちの少なくとも1つが前記対象に対して免疫原性であることを決定または予測するステップと
を含む方法。 - ポリペプチド配列を含む薬物を対象における免疫原性についてスクリーニングする方法であって、
(a)コンピュータプロセッサにより、前記ポリペプチド配列の複数のペプチド配列を得るステップと、
(b)前記複数のペプチド配列の各々についての提示予測を生成するために、コンピュータプロセッサにより、機械学習HLA-ペプチド提示予測モデルを使用して前記複数のペプチド配列のアミノ酸情報を処理するステップであって、各提示予測により、前記対象の細胞のクラスIまたはクラスII MHC対立遺伝子によってコードされる1つまたは複数のタンパク質により前記複数のペプチド配列のうちの所与のペプチド配列のエピトープ配列が提示され得る可能性が示され、前記機械学習HLA-ペプチド提示予測モデルが、前記細胞において発現されるHLAタンパク質に関連する配列情報を含む訓練用データを使用して訓練されるステップと、
(c)前記複数の提示予測に基づいて、前記ポリペプチド配列の前記複数のペプチド配列の各々が前記対象に対して免疫原性ではないことを決定または予測するステップと、
(d)前記対象に、前記薬物を含む組成物を投与するステップと
を含む方法。 - 自己免疫疾患または状態を有する対象を処置する方法であって、
(a)前記対象の細胞のクラスIまたはクラスII MHCによって提示される発現されたタンパク質のエピトープを同定または予測するステップであって、前記同定または予測されたエピトープと前記クラスIまたはクラスII MHCとを含む複合体が、前記対象のCD8 T細胞またはCD4 T細胞の標的とされる、ステップと、
(b)前記複合体に結合するT細胞受容体(TCR)を同定するステップと、
(c)前記TCRを前記対象由来の調節性T細胞または同種異系の調節性T細胞において発現させるステップと、
(d)前記TCRを発現する前記調節性T細胞を前記対象に投与するステップと
を含む方法。 - 自己免疫疾患または状態を有する対象を処置する方法であって、前記対象に、(i)前記対象の細胞のクラスIまたはクラスII MHCによって提示されることが同定または予測された発現されたタンパク質のエピトープと(ii)前記クラスIまたはクラスII MHCとを含む複合体であって、前記対象のCD8T細胞またはCD4 T細胞の標的とされる、複合体に結合するT細胞受容体(TCR)を発現する調節性T細胞を投与するステップを含む方法。
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