JP2022059393A - Methods for producing tissue body and methods for treating disease using the tissue body - Google Patents
Methods for producing tissue body and methods for treating disease using the tissue body Download PDFInfo
- Publication number
- JP2022059393A JP2022059393A JP2020167102A JP2020167102A JP2022059393A JP 2022059393 A JP2022059393 A JP 2022059393A JP 2020167102 A JP2020167102 A JP 2020167102A JP 2020167102 A JP2020167102 A JP 2020167102A JP 2022059393 A JP2022059393 A JP 2022059393A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- cell
- tubular container
- cells
- hair follicle
- layer
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/36—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
- A61L27/38—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/40—Composite materials, i.e. containing one material dispersed in a matrix of the same or different material
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/50—Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials
- A61L27/60—Materials for use in artificial skin
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P17/00—Drugs for dermatological disorders
- A61P17/14—Drugs for dermatological disorders for baldness or alopecia
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
Abstract
Description
本発明は、組織体の製造方法及び組織体を用いた疾患の治療方法に関する。 The present invention relates to a method for producing a tissue and a method for treating a disease using the tissue.
特許文献1には、器官由来の細胞を表面上で培養することを含む器官型培養物の生産方法において、当該細胞が圧縮される方法が記載されている。 Patent Document 1 describes a method for producing an organ-type culture, which comprises culturing cells derived from an organ on a surface, in which the cells are compressed.
特許文献2には、器官型培養用装置であって、当該装置は1つの開口端と、多孔質膜によって閉鎖された1つの末端とを有し、当該閉鎖末端はその全体にわたって融着された当該多孔質膜により閉鎖されている培地導管、及び、当該培地導管を実質的に鉛直方向に保持する枠体を備え、当該多孔質膜の表面に接触し、それにより、当該多孔質膜上で成長しうる細胞に栄養分を供給するのに十分な体積の液体培地を毛管現象により当該培地導管中に保持することができるように、当該培地導管が適合している装置が記載されている。
特許文献3には、細胞非接着性であるか、細胞非接着性に変化することが可能である内底面を有する培養容器に、細胞及び細胞接着性微粒子を含有する培養液を加える細胞添加工程と、当該培養容器に加えられた当該細胞に対し当該内底面方向への遠心力を作用させながら細胞培養を行い、当該細胞間を接着させて組織を形成する細胞培養工程と、得られた当該組織を当該内底面から剥離し回収する剥離工程とを含む、組織の作製方法が記載されている。 Patent Document 3 describes a cell addition step of adding a culture solution containing cells and cell-adhesive fine particles to a culture vessel having an inner bottom surface that is non-cell-adhesive or can be changed to non-adherent cells. The cell culture step of performing cell culture while applying a centrifugal force toward the inner bottom surface of the cells added to the culture vessel and adhering the cells to form a tissue, and the obtained cell culture step. A method for producing a tissue is described, which comprises a peeling step of peeling and collecting the tissue from the inner bottom surface.
特許文献4には、細胞非接着性であるか、細胞非接着性に変化することが可能である内底面を有する培養容器に、細胞を含有する培養液を加える細胞添加工程と、培養容器に加えられた細胞に内底面方向への遠心力を作用させながら、細胞間接着が形成される条件下で細胞培養を行い、細胞間を接着させて組織を形成する細胞培養工程と、細胞培養工程において得られた組織を前記内底面から剥離し回収する剥離工程とを含む、組織の作製方法が記載されている。 Patent Document 4 describes a cell addition step of adding a culture solution containing cells to a culture vessel having an inner bottom surface that is non-adherent to cells or can be changed to non-adhesive cells, and to the culture vessel. A cell culture step of performing cell culture under conditions where cell-cell adhesion is formed while applying a centrifugal force toward the inner bottom surface of the added cells, and a cell culture step of forming a tissue by adhering the cells to each other, and a cell culture step. Described is a method for producing a tissue, which comprises a peeling step of peeling and recovering the tissue obtained in 1) from the inner bottom surface.
特許文献5には、ガイドを有する移植用再生器官原基の製造方法であって、間葉系細胞から実質的に構成される第1の細胞集合体と、上皮系細胞から実質的に構成される第2の細胞集合体とを密着させて支持体内部で培養することにより再生器官原基を調製する工程と、前記再生器官原基にガイドを挿入する工程とを含む方法が記載されている。 Patent Document 5 describes a method for producing a regenerative organ primordium for transplantation having a guide, which is substantially composed of a first cell aggregate substantially composed of mesenchymal cells and epithelial lineage cells. A method including a step of preparing a regenerating organ primordium by bringing the second cell aggregate into close contact and culturing inside the support and a step of inserting a guide into the regenerating organ primordium are described. ..
しかしながら、従来、複数の細胞層を含む組織体を簡便に製造することは難しかった。 However, conventionally, it has been difficult to easily produce an organization containing a plurality of cell layers.
本発明は、上記課題に鑑みて為されたものであり、複数の細胞層を含む組織体を簡便に製造する方法及び当該組織体を用いた効果的な疾患の治療方法を提供することをその目的の一つとする。 The present invention has been made in view of the above problems, and the present invention is to provide a method for easily producing an organization containing a plurality of cell layers and an effective method for treating a disease using the tissue. It is one of the purposes.
上記課題を解決するための本発明の一実施形態に係る組織体の製造方法は、底部を有する管状容器に、間葉系細胞及び上皮系細胞のうち一方である第一細胞の懸濁液を加える第一準備工程と、前記第一細胞の懸濁液を含む前記管状容器に第一遠心処理を施し、遠心力によって前記底部の上に第一細胞層を形成する第一遠心工程と、前記管状容器内の前記第一細胞層の上に、間葉系細胞及び上皮系細胞のうち他方である第二細胞の懸濁液を加える第二準備工程と、前記第二細胞の懸濁液を含む前記管状容器に第二遠心処理を施し、遠心力によって前記第一細胞層の上に第二細胞層を形成する第二遠心工程と、前記第一細胞層と前記第二細胞層とを含む組織体を前記管状容器から取り出す取り出し工程と、を含む。本発明によれば、複数の細胞層を含む組織体を簡便に製造する方法が提供される。 In the method for producing a tissue according to an embodiment of the present invention for solving the above-mentioned problems, a suspension of first cells, which is one of mesenchymal cells and epithelial cells, is placed in a tubular container having a bottom. The first preparatory step to add, the first centrifugation step of subjecting the tubular container containing the suspension of the first cells to the first centrifugation treatment and forming the first cell layer on the bottom by centrifugal force, and the first centrifugation step. The second preparatory step of adding a suspension of the second cell, which is the other of the mesenchymal cells and the epithelial cells, and the suspension of the second cell on the first cell layer in the tubular container. The tubular container containing the tubular container is subjected to a second centrifugation treatment, and a second centrifugation step of forming a second cell layer on the first cell layer by centrifugal force, and the first cell layer and the second cell layer are included. Includes a removal step of removing the tissue from the tubular container. INDUSTRIAL APPLICABILITY According to the present invention, there is provided a method for easily producing an organization containing a plurality of cell layers.
また、前記組織体は、毛包原基であることとしてもよい。また、前記間葉系細胞は、毛包間葉系細胞及びその前駆細胞からなる群より選択される1以上であることとしてもよい。また、前記上皮系細胞は、毛包上皮系細胞及びその前駆細胞からなる群より選択される1以上であることとしてもよい。 Further, the tissue may be a hair follicle primordium. Further, the mesenchymal cells may be one or more selected from the group consisting of hair follicle mesenchymal cells and progenitor cells thereof. Further, the epithelial cells may be one or more selected from the group consisting of hair follicle epithelial cells and progenitor cells thereof.
また、前記組織体の外径に対する、前記組織体の長さの比は、1.0以上であることとしてもよい。また、前記管状容器の前記底部は、非透水性であることとしてもよい。また、前記管状容器の側壁部は、非透水性であることとしてもよい。また、前記管状容器の前記底部は、生体適合性材料から形成された生体適合層を含み、前記取り出し工程において、前記管状容器から、前記生体適合層が付着した前記組織体を取り出すこととしてもよい。 Further, the ratio of the length of the tissue to the outer diameter of the tissue may be 1.0 or more. Further, the bottom portion of the tubular container may be impermeable. Further, the side wall portion of the tubular container may be impermeable. Further, the bottom of the tubular container may include a biocompatible layer formed of a biocompatible material, and the tissue to which the biocompatible layer is attached may be removed from the tubular container in the removal step. ..
また、前記管状容器の側壁部には、取り出し工程において前記管状容器から前記組織体を取り出す際の前記側壁部と前記組織体との摩擦を低減する潤滑層が形成されていることとしてもよい。この場合、前記潤滑層は、第一の条件で流動性を有し、第二の条件で流動性を失う材料で構成され、前記第二の条件で前記第一準備工程、前記第一遠心工程、前記第二準備工程、及び前記第二遠心工程を実施し、前記第一の条件で前記取り出し工程を実施することとしてもよい。 Further, the side wall portion of the tubular container may be formed with a lubricating layer that reduces friction between the side wall portion and the tissue body when the tissue body is taken out from the tubular container in the taking-out step. In this case, the lubricating layer is composed of a material that has fluidity under the first condition and loses fluidity under the second condition, and the first preparation step and the first centrifugation step under the second condition. , The second preparation step and the second centrifugation step may be carried out, and the taking-out step may be carried out under the first condition.
また、前記第一遠心処理における遠心時間、及び、前記第二遠心処理における遠心時間は、いずれも30分未満であることとしてもよい。また、前記方法においては、前記取り出し工程の前に、前記管状容器内にファイバー部材を配置して、前記ファイバー部材が結合した前記組織体を形成し、前記取り出し工程において、前記管状容器から、前記ファイバー部材が結合した前記組織体を取り出すこととしてもよい。また、前記方法においては、規則的に配置された複数の前記管状容器を有する遠心器具を用い、前記遠心器具の前記複数の管状容器の各々について、前記第一準備工程、前記第一遠心工程、前記第二準備工程、前記第二遠心工程、及び前記取り出し工程を実施することとしてもよい。 Further, the centrifugation time in the first centrifugation treatment and the centrifugation time in the second centrifugation treatment may both be less than 30 minutes. Further, in the method, a fiber member is arranged in the tubular container before the take-out step to form the tissue to which the fiber member is bonded, and in the take-out step, the tubular container is used as described above. The tissue to which the fiber member is bonded may be taken out. Further, in the method, a centrifuge having a plurality of the tubular containers arranged regularly is used, and for each of the plurality of tubular containers of the centrifuge, the first preparation step, the first centrifuge step, and the like. The second preparation step, the second centrifugation step, and the taking-out step may be carried out.
上記課題を解決するための本発明の一実施形態に係る疾患の治療方法は、底部を有する管状容器に、間葉系細胞及び上皮系細胞のうち一方である第一細胞の懸濁液を加える第一準備工程と、前記第一細胞の懸濁液を含む前記管状容器に第一遠心処理を施し、遠心力によって前記底部の上に第一細胞層を形成する第一遠心工程と、前記管状容器内の前記第一細胞層の上に、間葉系細胞及び上皮系細胞のうち他方である第二細胞の懸濁液を加える第二準備工程と、前記第二細胞の懸濁液を含む前記管状容器に第二遠心処理を施し、遠心力によって前記第一細胞層に積層された第二細胞層を形成する第二遠心工程と、前記第一細胞層と前記第二細胞層とを含む組織体を前記管状容器から取り出す取り出し工程と、前記管状容器から取り出された前記組織体を、疾患を有する生体に移植する移植工程と、を含む。本発明によれば、組織体を用いた効果的な疾患の治療方法が提供される。 In a method for treating a disease according to an embodiment of the present invention for solving the above-mentioned problems, a suspension of first cells, which is one of mesenchymal cells and epithelial cells, is added to a tubular container having a bottom. The first preparatory step, the first centrifugation step of subjecting the tubular container containing the suspension of the first cells to the first centrifugation treatment and forming the first cell layer on the bottom by centrifugal force, and the tubular. The second preparatory step of adding a suspension of the second cell, which is the other of the mesenchymal cells and the epithelial cells, onto the first cell layer in the container, and the suspension of the second cells are included. The tubular container is subjected to a second centrifugation treatment to form a second cell layer laminated on the first cell layer by centrifugal force, and includes the first cell layer and the second cell layer. It includes a step of taking out the tissue from the tubular container and a step of transplanting the tissue taken out from the tubular container into a living body having a disease. INDUSTRIAL APPLICABILITY According to the present invention, an effective method for treating a disease using a tissue is provided.
本発明によれば、複数の細胞層を含む組織体を簡便に製造する方法及び当該組織体を用いた効果的な疾患の治療方法が提供される。 INDUSTRIAL APPLICABILITY According to the present invention, a method for easily producing an organization containing a plurality of cell layers and an effective method for treating a disease using the tissue are provided.
以下に、本発明の一実施形態について説明する。なお、本発明は本実施形態に限られるものではない。 Hereinafter, an embodiment of the present invention will be described. The present invention is not limited to the present embodiment.
本実施形態に係る方法(以下、「本方法」という。)の一側面は、組織体の製造方法である。ここで、本明細書においては、組織体として、移植用毛包原基を製造する例について主に説明する。 One aspect of the method according to the present embodiment (hereinafter referred to as "the present method") is a method for producing an organization. Here, in the present specification, an example of producing a hair follicle primordium for transplantation as a tissue will be mainly described.
毛包原基は、間葉系細胞の細胞層と上皮系細胞の細胞層とを含み、生体の皮膚に移植可能であり、且つ、移植された当該生体の皮膚において発毛する能力を有する組織体である。毛包原基は、生体外の培養系において発毛する能力をさらに有するものであってもよい。移植用毛包原基は、生体の皮膚への移植に用いられる毛包原基である。 The hair follicle primordium contains a cell layer of mesenchymal cells and a cell layer of epithelial cells, is a tissue that can be transplanted into the skin of a living body, and has the ability to grow hair in the skin of the transplanted living body. The body. The hair follicle primordium may further have the ability to grow hair in an in vitro culture system. The hair follicle primordium for transplantation is a hair follicle primordium used for transplantation into the skin of a living body.
図1A~1Fには、本方法に含まれる主な工程を管状容器10の断面視にて概略的に示す。なお、本願の図面は、あくまでも概略的な説明図であり、図示される部材、細胞、細胞層等の要素の相対的な大きさは実際のものとは必ずしも一致しない。また、本明細書においては、管状容器10の長手方向に沿った方向のうち、遠心処理において遠心力をかける方向(図1Aに示す矢印Xの指す方向)を「下方」といい、その逆方向を「上方」という。
FIGS. 1A to 1F schematically show the main steps included in this method in a cross-sectional view of the
本方法は、底部11を有する管状容器10(図1A)に、間葉系細胞及び上皮系細胞のうち一方である第一細胞21の懸濁液S1を加える第一準備工程(図1B)と、当該第一細胞21の懸濁液S1を含む当該管状容器10に第一遠心処理を施し、遠心力によって当該底部11の上に第一細胞層31を形成する第一遠心工程(図1C)と、当該管状容器10内の当該第一細胞層31の上に、間葉系細胞及び上皮系細胞のうち他方である第二細胞22の懸濁液S2を加える第二準備工程(図1D)と、当該第二細胞22の懸濁液S2を含む当該管状容器10に第二遠心処理を施し、遠心力によって当該第一細胞層31の上に第二細胞層32を形成する第二遠心工程(図1E)と、当該第一細胞層31と当該第二細胞層32とを含む毛包原基30を当該管状容器10から取り出す取り出し工程(図1F)と、を含む。
In this method, the first preparation step (FIG. 1B) of adding the suspension S1 of the
本方法においては、毛包原基30を形成する細胞として、間葉系細胞及び上皮系細胞を用いる。第一細胞21は、間葉系細胞及び上皮系細胞の一方であり、第二細胞22は、当該間葉系細胞及び上皮系細胞の他方である。すなわち、第一細胞21が間葉系細胞である場合、第二細胞22は上皮系細胞である。また、第一細胞21が上皮系細胞である場合、第二細胞22は間葉系細胞である。毛包原基30の製造においては、第一細胞21が間葉系細胞であり、第二細胞22が上皮系細胞であることが好ましい。
In this method, mesenchymal cells and epithelial cells are used as the cells forming the
間葉系細胞は、毛包原基30の形成に寄与する間葉系細胞であれば特に限られないが、毛包間葉系細胞及びその前駆細胞からなる群より選択される1以上であることが好ましい。
The mesenchymal cell is not particularly limited as long as it is a mesenchymal cell that contributes to the formation of the
毛包間葉系細胞は、毛包原基における発毛に寄与する間葉系細胞(より具体的には、例えば、毛包上皮系細胞と協調して発毛に寄与する間葉系細胞)である。毛包間葉系細胞は、例えば、生体の毛包から採取されたものであってもよい。 Hair follicle mesenchymal cells are mesenchymal cells that contribute to hair growth in the hair follicle primordia (more specifically, for example, mesenchymal cells that contribute to hair growth in cooperation with hair follicle epithelial cells). Is. The hair follicle mesenchymal cells may be, for example, those collected from the hair follicles of a living body.
また、毛包間葉系細胞は、例えば、生体外で未分化細胞から分化誘導されたものであってもよい。毛包間葉系細胞の分化誘導に用いられる未分化細胞は、当該毛包間葉系細胞に分化する能力を有する細胞であれば特に限られないが、例えば、多能性幹細胞(例えば、iPS(induced Pluripotent Stem)細胞、ES(Embryonic Stem)細胞、又はEG(Embryonic Germ)細胞)であってもよいし、又は、当該多能性幹細胞以外の幹細胞(例えば、分化細胞のリプログラミングにより得られた幹細胞)であってもよい。 Further, the hair follicle mesenchymal cells may be, for example, those induced to differentiate from undifferentiated cells in vitro. The undifferentiated cells used for inducing the differentiation of hair follicle mesenchymal cells are not particularly limited as long as they have the ability to differentiate into the hair follicle mesenchymal cells, but for example, pluripotent stem cells (for example, iPS). It may be (induced Pluripotent Stem) cells, ES (Embryonic Stem) cells, or EG (Embryonic Germ) cells, or stem cells other than the pluripotent stem cells (eg, obtained by reprogramming differentiated cells). It may be a stem cell).
具体的に、毛包間葉系細胞は、毛乳頭(dermal papilla)細胞、及び真皮毛根鞘(dermal sheath cup)細胞からなる群より選択される1以上であることが好ましく、毛乳頭細胞であることが特に好ましい。 Specifically, the hair follicle mesenchymal cells are preferably one or more selected from the group consisting of dermal papilla cells and dermal root sheath cells, and are dermal papilla cells. Is particularly preferred.
毛包間葉系細胞の前駆細胞は、毛包原基において当該毛包間葉系細胞に分化する能力を有する細胞であれば特に限られないが、例えば、胎児又は新生児の皮膚間葉系細胞(例えば、胎児又は新生児の皮膚の真皮層に由来する間葉系細胞)、及び、毛包原基において当該毛包間葉系細胞に分化する幹細胞からなる群より選択される1以上であることが好ましく、胎児又は新生児の皮膚間葉系細胞であることが特に好ましい。 The precursor cells of the hair follicle mesenchymal cells are not particularly limited as long as they have the ability to differentiate into the hair follicle mesenchymal cells in the hair follicle primordia, and are, for example, fetal or neonatal skin mesenchymal cells. (For example, mesenchymal cells derived from the dermal layer of fetal or neonatal skin) and one or more selected from the group consisting of stem cells that differentiate into the mesenchymal cells of the hair follicle primordia. Is preferable, and it is particularly preferable to use fetal or neonatal cutaneous mesenchymal cells.
上皮系細胞は、毛包原基30の形成に寄与する上皮系細胞であれば特に限られないが、毛包上皮系細胞及びその前駆細胞からなる群より選択される1以上であることが好ましい。
The epithelial cell is not particularly limited as long as it is an epithelial cell that contributes to the formation of the
毛包上皮系細胞は、毛包原基における発毛に寄与する上皮系細胞(より具体的には、例えば、毛包間葉系細胞と協調して発毛に寄与する上皮系細胞)である。毛包上皮系細胞は、生体の毛包から採取されたものであってもよい。 Hair follicle epithelial cells are epithelial cells that contribute to hair growth in the hair follicle primordia (more specifically, for example, epithelial cells that contribute to hair growth in cooperation with hair follicle mesenchymal cells). .. Hair follicle epithelial cells may be those collected from living hair follicles.
また、毛包上皮系細胞は、例えば、生体外で未分化細胞から分化誘導されたものであってもよい。毛包上皮系細胞の分化誘導に用いられる未分化細胞は、当該毛包上皮系細胞に分化する能力を有する細胞であれば特に限られないが、例えば、多能性幹細胞(例えば、iPS細胞、ES細胞、又はEG細胞)であってもよいし、又は、当該多能性幹細胞以外の幹細胞(例えば、分化細胞のリプログラミングにより得られた幹細胞)であってもよい。 Further, the hair follicle epithelial cells may be, for example, those induced to differentiate from undifferentiated cells in vitro. The undifferentiated cells used for inducing the differentiation of hair follicle epithelial cells are not particularly limited as long as they have the ability to differentiate into the hair follicle epithelial cells, and are, for example, pluripotent stem cells (eg, iPS cells, etc.). It may be an ES cell or an EG cell), or it may be a stem cell other than the pluripotent stem cell (for example, a stem cell obtained by reprogramming a differentiated cell).
具体的に、毛包上皮系細胞は、毛包上皮幹細胞、毛母(hair matrix)細胞、外毛根鞘(outer root sheath)細胞、及び内毛根鞘(inner root sheath)細胞からなる群より選択される1以上であることが好ましく、毛包上皮幹細胞、毛母細胞、及び外毛根鞘細胞からなる群より選択される1以上であることが特に好ましい。 Specifically, the hair follicle epithelial lineage cells are selected from the group consisting of hair follicle epithelial stem cells, hair matrix cells, outer root shear cells, and inner root shear cells. It is preferably 1 or more, and it is particularly preferable that it is 1 or more selected from the group consisting of hair follicle epithelial stem cells, hair matrix cells, and outer root sheath cells.
毛包上皮系細胞の前駆細胞は、毛包原基において当該毛包上皮系細胞に分化する能力を有する細胞であれば特に限られないが、例えば、胎児又は新生児の皮膚上皮系細胞(例えば、胎児又は新生児の皮膚の表皮層に由来する上皮系細胞)、及び、毛包原基において当該毛包上皮系細胞に分化する幹細胞からなる群より選択される1以上であることが好ましく、胎児又は新生児の皮膚上皮系細胞であることが特に好ましい。 The precursor cell of the hair follicle epithelial cell is not particularly limited as long as it is a cell capable of differentiating into the hair follicle epithelial cell in the hair follicle primordia, and is, for example, a fetal or neonatal cutaneous epithelial cell (for example,). It is preferably one or more selected from the group consisting of epithelial cells derived from the epidermal layer of the skin of a fetal or newborn) and stem cells that differentiate into the hair follicle epithelial cells in the hair follicle primordia. Particularly preferred are neonatal cutaneous epithelial cells.
間葉系細胞及び上皮系細胞は、毛包を有する動物に由来するものであれば特に限られない。動物は、ヒトであってもよいし、ヒト以外の動物(非ヒト動物)であってもよい。非ヒト動物は、非ヒト哺乳類であることが好ましい。非ヒト哺乳類は、例えば、霊長類(例えば、サル)、げっ歯類(例えば、マウス、ラット、ハムスター、モルモット、ウサギ)、食肉類(例えば、イヌ、ネコ)、又は有蹄類(例えば、ブタ、ウシ、ウマ、ヤギ、ヒツジ)であってもよい。ただし、ヒトに移植する毛包原基30を製造する場合には、ヒト間葉系細胞及びヒト上皮系細胞を用いる。
The mesenchymal cells and epithelial cells are not particularly limited as long as they are derived from an animal having a hair follicle. The animal may be a human or a non-human animal (non-human animal). The non-human animal is preferably a non-human mammal. Non-human mammals are, for example, primates (eg, monkeys), rodents (eg, mice, rats, hamsters, guinea pigs, rabbits), meats (eg, dogs, cats), or ungulates (eg, pigs). , Cow, horse, goat, sheep). However, when producing the
間葉系細胞及び上皮系細胞は、毛包原基30を移植する個体に由来するものであってもよいし、又は、当該移植する個体以外の個体に由来するものであってもよい。例えば、ヒト間葉系細胞及びヒト上皮系細胞は、移植する患者に由来するものであることが好ましいが、当該患者以外のヒトに由来するもの(例えば、当該患者以外のヒトに由来する多能性幹細胞(例えば、セルバンクに保存されているiPS細胞)から分化誘導されたもの)であってもよい。
The mesenchymal cells and epithelial cells may be derived from an individual to which the
間葉系細胞及び/又は上皮系細胞(すなわち、間葉系細胞及び上皮系細胞の一方又は両方)は、予め細胞接着性高分子による被覆処理が施されていてもよい。この場合、間葉系細胞及び/又は上皮系細胞は、個々の細胞表面に細胞接着性高分子の被膜を有する。 The mesenchymal cells and / or the epithelial cells (that is, one or both of the mesenchymal cells and the epithelial cells) may be previously coated with a cell adhesion polymer. In this case, the mesenchymal cells and / or the epithelial cells have a cell-adherent polymer coating on the individual cell surface.
細胞接着性高分子は、間葉系細胞及び/又は上皮系細胞に対して細胞接着性を示す分子であれば特に限られず、例えば、細胞表面の分子(例えば、インテグリン等のタンパク質、又は糖鎖)と結合する分子であることが好ましい。 The cell adhesion polymer is not particularly limited as long as it is a molecule that exhibits cell adhesion to mesenchymal cells and / or epithelial cells, and is, for example, a molecule on the cell surface (for example, a protein such as integrin, or a sugar chain. ), It is preferable that it is a molecule that binds to.
具体的に、細胞接着性高分子は、例えば、細胞表面の分子と結合する特定のアミノ酸配列(例えば、アルギニン-グリシン-アスパラギン酸(RGD)配列等の細胞接着性アミノ酸配列)及び/又は糖鎖を有する高分子であることが好ましい。 Specifically, the cell adhesion polymer is, for example, a specific amino acid sequence that binds to a molecule on the cell surface (for example, a cell adhesion amino acid sequence such as arginine-glycine-aspartic acid (RGD) sequence) and / or a sugar chain. It is preferable that the polymer has.
より具体的に、細胞接着性高分子は、例えば、コラーゲン(例えば、I型、II型、III型、IV型、V型、及びXI型からなる群より選択される1以上のコラーゲン)、ゼラチン、フィブロネクチン、ラミニン、ビトロネクチン、エラスチン、グリコサミノグリカン(例えば、ヒアルロン酸)、プロテオグリカン、フィブリン、エンタクチン及びバーシカンからなる群より選択される1以上であることとしてもよい。 More specifically, the cell adhesion polymer is, for example, collagen (for example, one or more collagen selected from the group consisting of type I, type II, type III, type IV, type V, and type XI), gelatin. , Fibronectin, laminin, vitronectin, elastin, glycosaminoglycan (eg, hyaluronic acid), proteoglycan, fibron, entactin and versican.
間葉系細胞及び/又は上皮系細胞に対する細胞接着性高分子による被覆処理は、例えば、当該細胞接着性高分子を含む溶液中に当該間葉系細胞及び/又は上皮系細胞を浸漬することにより行う。この場合、細胞接着性高分子を含む溶液中に浸漬後の間葉系細胞及び/又は上皮系細胞を当該細胞接着性高分子を含まない溶液で洗浄して、当該間葉系細胞及び/又は上皮系細胞の細胞表面に接着していない余分な細胞接着性高分子を除去してもよい。 The coating treatment of the mesenchymal cells and / or the epithelial cells with the cell adhesion polymer is performed, for example, by immersing the mesenchymal cells and / or the epithelial cells in a solution containing the cell adhesion polymer. conduct. In this case, the mesenchymal cells and / or epithelial cells after immersion in a solution containing the cell adhesion polymer are washed with a solution not containing the cell adhesion polymer, and the mesenchymal cells and / or the epithelial cells are washed. Excess cell-adhering polymers that are not adhered to the cell surface of epithelial cells may be removed.
間葉系細胞及び/又は上皮系細胞が、その細胞表面に細胞接着性高分子の被膜を有することにより、本方法において製造される毛包原基30における細胞間結合が強化される。
The mesenchymal cells and / or epithelial cells have a cell-adhesive polymer coating on the cell surface, whereby the cell-cell binding in the
第一準備工程においては、まず管状容器10を準備する。管状容器10は管状の中空容器である。管状容器10の断面形状は特に限られず、例えば、円形、楕円形又は多角形であってもよいが、円形であることが好ましい。管状容器10は、図1Aに示すように、液体又は気体を収容する内部空間12を有する。この内部空間12は、管状容器10の長手方向に延びる筒状の側壁部13と、当該管状容器10の下端部14を塞ぐ底部11とに囲まれている。
In the first preparation step, the
管状容器10の底部11は、当該管状容器10の下端部14を塞ぐ部材であれば特に限られないが、非透水性であることが好ましい。すなわち、底部11は、例えば、第一遠心処理及び第二遠心処理において、第一細胞21の懸濁液(以下、「第一懸濁液」という)S1及び第二細胞22の懸濁液(以下、「第二懸濁液」という。)S2に含まれる水分を透過させない非透水性を有する。
The
底部11は、多孔質体(好ましくは、非透水性の多孔質体)であってもよいし、又は、非多孔質体(好ましくは、非透水性の非多孔質体)であってもよい。底部11は、透光性を有することが好ましい。底部11が透光性を有することにより、例えば、管状容器10内における細胞層の形成の確認が容易になる。底部11を構成する材料は、本発明の効果が得られるものであれば特に限られず、有機材料、無機材料及び金属からなる群より選択される1以上であってもよい。
The bottom 11 may be a porous body (preferably a non-permeable porous body) or a non-porous body (preferably a non-permeable non-porous body). .. The bottom 11 is preferably translucent. The translucency of the bottom 11 facilitates, for example, confirmation of the formation of a cell layer within the
底部11の内面11aは、細胞接着性であってもよいし、又は、細胞非接着性であってもよい。すなわち、取り出し工程において、毛包原基30から底部11を剥離して除去する場合、当該底部11の内面11aは、細胞非接着性であることが好ましい。
The
一方、後述するように、取り出し工程において、管状容器10から、その底部11の一部又は全部が付着した毛包原基30を取り出す場合には、当該底部11の内面11aは、細胞接着性であることが好ましい。
On the other hand, as will be described later, in the removal step, when the
細胞接着性の内面11aは、細胞接着性高分子を含むことが好ましい。細胞接着性高分子は、底部11の内面11aと接する毛包原基30の下端面30aを構成する細胞(図1Eに示す例では、第一細胞層31の第一細胞21)に対して細胞接着性を示す分子であれば特に限られないが、上述した細胞接着性高分子が好ましく用いられる。
The cell-adhesive
管状容器10において、底部11は、脱離可能に設けられてもよい。すなわち、この場合、底部11は、側壁部13から独立して形成され、当該側壁部13に脱離可能に接着された部材である。
In the
また、管状容器10において、底部11及び側壁部13は、一体的に形成されていてもよい。すなわち、管状容器10は、一体成形された有底管状体であってもよい。また、底部11は、管状容器10の下端部14を構成する側壁部13の一部を、当該下端部14を塞ぐように変形させることにより形成されてもよい。
Further, in the
管状容器10の側壁部13は、内部空間12を囲む筒状の部材であれば特に限られないが、非透水性であることが好ましい。すなわち、側壁部13は、例えば、第一遠心処理及び第二遠心処理において、第一懸濁液S1及び第二懸濁液S2に含まれる水分を透過させない非透水性を有する。
The
側壁部13は、多孔質体(好ましくは、非透水性の多孔質体)であってもよいし、又は、非多孔質体(好ましくは、非透水性の非多孔質体)であってもよい。側壁部13は、透光性を有することが好ましい。側壁部13が透光性を有することにより、例えば、管状容器10内における細胞層の形成の確認が容易になる。側壁部13を構成する材料は、本発明の効果が得られるものであれば特に限られず、有機材料、無機材料及び金属からなる群より選択される1以上であってもよく、合成樹脂が好ましく用いられる。
The
側壁部13の内面13aは、細胞接着性であってもよいし、又は、細胞非接着性であってもよい。側壁部13が細胞非接着性の内面13aを有する場合、例えば、取り出し工程において、管状容器10から毛包原基30を容易に取り出すことができる。
The
管状容器10の上端部15は、開口していてもよいし、又は、閉塞されていてもよい。すなわち、例えば、管状容器10への液体(例えば、細胞懸濁液)の添加や、当該管状容器10からの液体(例えば、遠心処理後の上清)の除去は、当該管状容器10の上端部15の開口を介して好ましく行われる。
The
一方、例えば、遠心処理中や、管状容器10の下方端14から毛包原基30を取り出す際は、管状容器10の上端部15は通気不能に閉塞されていてもよいし、又は、通気可能に閉塞されてもよい。通気可能な閉塞は、例えば、無菌的な通気が可能なフィルターを管状容器10の上端部15に接続することにより行われる。
On the other hand, for example, during the centrifugation or when the
管状容器の内径D10は、当該管状容器10内で形成する毛包原基30のサイズに応じて適宜決定されればよいが、例えば、0.050mm以上、2.0mm以下であることが好ましく、0.075mm以上、1.0mm以下であることがより好ましく、0.10mm以上、0.50mm以下であることが特に好ましい。
The inner diameter D 10 of the tubular container may be appropriately determined according to the size of the
管状容器の内部空間12の長さL10は、当該管状容器10内で形成する毛包原基30のサイズに応じて適宜決定されればよいが、例えば、0.050mm以上、20.0mm以下であってもよく、0.075mm以上、10.0mm以下であってもよく、0.10mm以上、5.0mm以下であってもよい。
The length L 10 of the
第一準備工程においては、管状容器10の内部空間12に、第一懸濁液S1を入れる(図1B)。すなわち、例えば、管状容器10の上端部15の開口から内部空間12に、第一懸濁液S1を入れる。
In the first preparation step, the first suspension S1 is placed in the
第一懸濁液S1は、水溶液と、当該水溶液中に分散された第一細胞21とを含む。第一細胞21が分散される水溶液は、当該第一細胞21の生存が維持されるものであれば特に限られず、例えば、生理食塩水(例えば、リン酸緩衝生理食塩水)、又は培養培地が好ましく用いられる。
The first suspension S1 contains an aqueous solution and the
なお、本明細書において、水溶液中に分散された細胞とは、他の細胞と結合していない細胞、又は、他の細胞に付着しているが、ピペッティング等の操作で当該水溶液を流動させることにより当該他の細胞から容易に分離される細胞である。 In the present specification, the cells dispersed in the aqueous solution are cells that are not bound to other cells or are attached to other cells, but the aqueous solution is made to flow by an operation such as pipetting. This is a cell that is easily separated from the other cells.
第一懸濁液S1における第一細胞21の密度は、第一遠心処理によって第一細胞層31が形成される範囲内であれば特に限られないが、例えば、5×103cells/mL以上、1×107cells/mL以下であってもよく、1×104cells/mL以上、5×106cells/mL以下であることが好ましく、5×104cells/mL以上、1×106cells/mL以下であることが特に好ましい。
The density of the
第一懸濁液S1は、細胞として主に第一細胞21を含む。第一懸濁液S1に含まれる細胞の総数に対する、当該第一懸濁液S1に含まれる第一細胞21の数の割合は、例えば、50%以上(50%以上、100%以下)であってもよく、60%以上であることが好ましく、70%以上であることがより好ましく、80%以上であることがより一層好ましく、90%以上であることが特に好ましい。第一懸濁液S1は、第一細胞21以外の成分を含んでもよいが、例えば、ゲル化可能な濃度でハイドロゲル高分子を含まないこととしてもよい。
The first suspension S1 mainly contains the
第一遠心工程においては、第一懸濁液S1を含む管状容器10に第一遠心処理を施し、遠心力によって当該管状容器10の底部11の上に第一細胞層31を形成する(図1CC)。
In the first centrifugation step, the
第一遠心処理は、管状容器10の下方に遠心力をかける処理である。第一遠心処理によって、管状容器10内で第一懸濁液S1中に浮遊していた第一細胞21は、当該管状容器10の底部11に向かって沈降する。沈降により堆積した第一細胞21は、遠心力によってさらに圧縮される。この結果、底部11の上には、第一細胞21の集合体である第一細胞層31が形成される。
The first centrifugal treatment is a treatment in which a centrifugal force is applied to the lower part of the
第一遠心処理で発生させる遠心力は、管状容器10内において第一懸濁液S1から第一細胞層31が形成される範囲内であれば特に限られないが、例えば、30G以上であってもよく、60G以上であることが好ましく、90G以上であることがより好ましく、120G以上であることが特に好ましい。また、第一遠心処理で発生させる遠心力は、例えば、2000G以下であってもよく、1000G以下であることが好ましく、500G以下であることがより好ましく、250G以下であることが特に好ましい。第一遠心処理で発生させる遠心力は、上記いずれかの下限値と、上記いずれかの上限値とを任意に組み合わせて特定されてもよい。
The centrifugal force generated by the first centrifugation treatment is not particularly limited as long as it is within the range in which the first suspension S1 forms the
第一遠心処理の時間は、管状容器10内において第一懸濁液S1から第一細胞層31が形成される範囲内であれば特に限られないが、例えば、0.5分以上であってもよく、1分以上であってもよく、2分以上であってもよい。また、第一遠心処理の時間は、例えば、60分以下であってもよく、45分以下であってもよく、30分以下であってもよい。
The time of the first centrifugation is not particularly limited as long as it is within the range in which the
第一遠心処理の時間は、例えば、30分未満であることが好ましい。この場合、第一遠心処理の時間は、例えば、29分以下であってもよく、25分以下であってもよく、20分以下であってもよく、15分以下であってもよく、10分以下であってもよく、5分以下であってもよい。第一遠心処理の時間は、上記いずれかの下限値と、上記いずれかの上限値とを任意に組み合わせて特定されてもよい。 The time of the first centrifugation is preferably less than, for example, 30 minutes. In this case, the time of the first centrifugation may be, for example, 29 minutes or less, 25 minutes or less, 20 minutes or less, 15 minutes or less, or 10 minutes. It may be less than a minute or less than 5 minutes. The time of the first centrifugation treatment may be specified by arbitrarily combining any of the above lower limit values and any of the above upper limit values.
なお、本実施形態において、遠心処理は、管状容器10を遠心分離機に設置して、当該遠心分離機を作動させることにより好ましく行われる。この場合、遠心処理で発生させる遠心力は、遠心分離機で設定した回転数(遠心処理における最大回転数)により発生する遠心力である。また、遠心処理の時間は、遠心分離機で設定した回転数(遠心処理における最大回転数)で遠心を継続する時間である。
In the present embodiment, the centrifugal treatment is preferably performed by installing the
第一細胞層31における第一細胞21の密度は、例えば、5×105cells/cm3以上であってもよく、1×106cells/cm3以上であることが好ましく、5×106cells/cm3以上であることが特に好ましい。第一細胞層31における第一細胞21の密度の上限値は特に限られないが、当該密度は、例えば、1×107cells/cm3以下であってもよい。
The density of the
第一細胞層31は、管状容器10の底部11の内面11aと接していてもよい。具体的に、この場合、第一細胞層31の下端面31aを構成する第一細胞21が、底部11の内面11aと接する。
The
第二準備工程においては、管状容器10の内部空間12における第一細胞層31の上に、第二懸濁液S2を入れる(図1D)。すなわち、例えば、第一遠心処理後の管状容器10の上端部15の開口から内部空間12に、第二懸濁液S2を入れる。
In the second preparation step, the second suspension S2 is placed on the
第二懸濁液S2は、水溶液と、当該水溶液中に分散された第二細胞22とを含む。第二細胞22が分散される水溶液は、当該第二細胞22の生存が維持されるものであれば特に限られず、例えば、生理食塩水(例えば、リン酸緩衝生理食塩水)、又は培養培地が好ましく用いられる。
The second suspension S2 contains an aqueous solution and the
第二懸濁液S2における第二細胞22の密度は、第二遠心処理によって第二細胞層32が形成される範囲内であれば特に限られないが、例えば、5×103cells/mL以上、1×107cells/mL以下であってもよく、1×104cells/mL以上、5×106cells/mL以下であることが好ましく、5×104cells/mL以上、1×106cells/mL以下であることが特に好ましい。
The density of the
第二懸濁液S2は、細胞として主に第二細胞22を含む。第二懸濁液S2に含まれる細胞の総数に対する、当該第二懸濁液S2に含まれる第二細胞22の数の割合は、例えば、50%以上(50%以上、100%以下)であってもよく、60%以上であることが好ましく、70%以上であることがより好ましく、80%以上であることがより一層好ましく、90%以上であることが特に好ましい。第二懸濁液S2は、第二細胞22の成分を含んでもよいが、例えば、ゲル化可能な濃度でハイドロゲル高分子を含まないこととしてもよい。
The second suspension S2 mainly contains the
第二遠心工程においては、第一細胞層31の上に第二懸濁液S2を含む管状容器10に第二遠心処理を施し、遠心力によって当該管状容器10内の当該第一細胞層31の上に第二細胞層32を形成する(図1E)。
In the second centrifugation step, the
第二遠心処理は、管状容器10の下方に遠心力をかける処理である。第二遠心処理によって、管状容器10内で第二懸濁液S2中に浮遊していた第二細胞22は、予め形成された第一細胞層31に向かって沈降する。沈降により堆積した第二細胞22は、遠心力によってさらに圧縮される。この結果、第一細胞層31の上には、第二細胞22の集合体である第二細胞層32が形成される。
The second centrifugal treatment is a treatment in which a centrifugal force is applied to the lower part of the
第二遠心処理で発生させる遠心力は、管状容器10内において第二懸濁液S2から第二細胞層32が形成される範囲内であれば特に限られないが、例えば、30G以上であってもよく、60G以上であることが好ましく、90G以上であることがより好ましく、120G以上であることが特に好ましい。また、第一遠心処理で発生させる遠心力は、例えば、2000G以下であってもよく、1000G以下であることが好ましく、500G以下であることがより好ましく、250G以下であることが特に好ましい。第一遠心処理で発生させる遠心力は、上記いずれかの下限値と、上記いずれかの上限値とを任意に組み合わせて特定されてもよい。
The centrifugal force generated by the second centrifugation is not particularly limited as long as it is within the range in which the second suspension S2 forms the
第二遠心処理の時間は、管状容器10内において第二懸濁液S2から第二細胞層32が形成される範囲内であれば特に限られないが、例えば、0.5分以上であってもよく、1分以上であってもよく、2分以上であってもよい。また、第二遠心処理の時間は、例えば、60分以下であってもよく、45分以下であってもよく、30分以下であってもよい。
The time of the second centrifugation is not particularly limited as long as it is within the range in which the
また、第二遠心処理の時間は、例えば、30分未満であることが好ましい。この場合、第二遠心処理の時間は、例えば、29分以下であってもよく、25分以下であってもよく、20分以下であってもよく、15分以下であってもよく、10分以下であってもよく、5分以下であってもよい。第二遠心処理の時間は、上記いずれかの下限値と、上記いずれかの上限値とを任意に組み合わせて特定されてもよい。 Further, the time of the second centrifugation is preferably less than, for example, 30 minutes. In this case, the time of the second centrifugation may be, for example, 29 minutes or less, 25 minutes or less, 20 minutes or less, 15 minutes or less, or 10 minutes. It may be less than a minute or less than 5 minutes. The time of the second centrifugation may be specified by arbitrarily combining any of the above lower limit values and any of the above upper limit values.
第二細胞層32における第二細胞22の密度は、例えば、5×105cells/cm3以上であってもよく、1×106cells/cm3以上であることが好ましく、5×106cells/cm3以上であることが特に好ましい。第二細胞層32における第二細胞22の密度の上限値は特に限られないが、当該密度は、例えば、1×107cells/cm3以下であってもよい。
The density of the
管状容器10内において、第二細胞層32は、第一細胞層31と接していることが好ましい。具体的に、この場合、第一細胞層31と第二細胞層32との境界において、当該第一細胞層31に含まれる第一細胞21の一部と、当該第二細胞層32に含まれる第二細胞22の一部とが接する。
In the
第一細胞層31と第二細胞層32とが接することにより、当該第一細胞層31に含まれる第一細胞21と、当該第二細胞層32に含まれる第二細胞22との相互作用(例えば、生体の毛包で行われているような、毛包原基30からの発毛に寄与する相互作用)が効果的に達成される。
When the
取り出し工程においては、第一細胞層31と第二細胞層32とを含む毛包原基30を管状容器10から取り出す(図1F)。管状容器10から毛包原基30を取り出す方法は、当該管状容器10の内部空間12から当該管状容器10の外部に毛包原基30を取り出す方法であれば特に限られないが、当該管状容器10の下端部14から当該毛包原基30を取り出すことが好ましい。
In the removal step, the
図2A~図2Cには、毛包原基30を管状容器10から取り出す操作の一例を概略的に示す。この例では、まず毛包原基30を含む管状容器10の底部11(図2A)を、当該管状容器10から除去する(図2B)。
2A-2C schematically show an example of an operation of removing the
管状容器10から底部11を除去する方法は特に限られないが、例えば、当該底部11が脱離可能に設けられている場合、当該底部11の一部を引っ張ることにより、当該底部11を側壁部13から剥がしてもよい。
The method for removing the
そして、底部11の除去によって形成された管状容器10の下端部14の開口から、毛包原基30を取り出す。管状容器10の下端部14から毛包原基30を取り出す方法は特に限られないが、例えば、当該管状容器10内の毛包原基30の上方の内部空間12を加圧する(より具体的には、内部空間12に収容されている液体及び/又は気体を加圧する)ことにより、当該毛包原基30を当該下端部14から押し出すことが好ましい。
Then, the
管状容器10から取り出された毛包原基30は、当該管状容器10の内部形状に対応した柱形状を有する。すなわち、円筒状の管状容器10を用いて製造された毛包原基30は、円柱形状を有する。
The
毛包原基30の外径D30(図1F)は、本発明の効果が得られる範囲内であれば特に限られないが、例えば、0.050mm以上、2.0mm以下であることが好ましく、0.075mm以上、1.0mm以下であることがより好ましく、0.10mm以上、0.50mm以下であることが特に好ましい。
The outer diameter D 30 (FIG. 1F) of the
毛包原基30の長さL30(毛包原基30の上端面30b(すなわち、最も上方に配置される細胞層(図1Fの例における第二細胞層32)の上端面)から、下端面30a(すなわち、最も下方に配置される細胞層(図1Fの例における第一細胞層31)の下端面)までの長さ)(図1F)は、本発明の効果が得られる範囲内であれば特に限られないが、例えば、0.050mm以上、20.0mm以下であってもよく、0.075mm以上、10.0mm以下であることが好ましく、0.10mm以上、5.0mm以下であることが特に好ましい。
From the length L 30 of the hair follicle primordium 30 (that is, the
毛包原基30の外径D30に対する、当該毛包原基30の長さL30の比(以下、「L/D比」という。)は、本発明の効果が得られる範囲内であれば特に限られないが、例えば、0.2以上であってもよく、0.5以上であってもよく、0.8以上であってもよく、1.0以上であってもよく、1.5以上であってもよく、2.0以上であってもよく、3.0以上であってもよく、4.0以上であってもよく、5.0以上であってもよい。
The ratio of the length L 30 of the
毛包原基30のL/D比の上限値は特に限られないが、当該長さ/外径比は、例えば、10.0以下であってもよく、9.0以下であってもよく、8.0以下であってもよく、7.0以下であってもよく、6.0以下であってもよい。毛包原基30のL/D比は、上記いずれかの下限値と、上記いずれかの上限値とを任意に組み合わせて特定されてもよい。
The upper limit of the L / D ratio of the
管状容器10の底部11は、生体適合性材料から形成された生体適合層111を含むこととしてもよい。図3A~図3Cには、管状容器10が生体適合層111を含む底部11を有する場合の一例を概略的に示す。
The bottom 11 of the
生体適合層111を構成する生体適合性材料は、本発明の効果が得られるものであれば特に限られないが、移植可能な材料であり、及び/又は、生分解性であることが好ましい。
The biocompatible material constituting the
図3A及び図3Bに示す例において、生体適合層111は、底部11の内面11aを構成する。また、図3A及び図3Bに示す例において、毛包原基30は、生体適合層111と接している。すなわち、毛包原基30の下端面30aを構成する細胞(図3A及び図3Bの例では、第一細胞層31に含まれる第一細胞21)は、生体適合層111から構成される内面11aと接している。
In the examples shown in FIGS. 3A and 3B, the
生体適合層111は、細胞接着性であることが好ましい。この場合、毛包原基30の下端面30aを構成する細胞(図3A及び図3Bに示す例では、第一細胞層31に含まれる第一細胞21)が当該生体適合層111に接着するため、当該毛包原基30と当該生体適合層111との結合が強化される。
The
細胞接着性の生体適合層111は、細胞接着性高分子から構成されることが好ましい。生体適合層111を構成する細胞接着性高分子は、当該生体適合層111から構成される底部11の内面11aと接する、毛包原基30の下端面30aを構成する細胞に対して細胞接着性を示す分子であれば特に限られないが、上述した細胞接着性高分子が好ましく用いられる。
The cell-adhesive
具体的に、生体適合層111を構成する細胞接着性高分子は、例えば、コラーゲン(例えば、I型、II型、III型、IV型、V型、及びXI型からなる群より選択される1以上のコラーゲン)、ゼラチン、フィブロネクチン、ラミニン、ビトロネクチン、エラスチン、グリコサミノグリカン(例えば、ヒアルロン酸)、プロテオグリカン、フィブリン、エンタクチン及びバーシカンからなる群より選択される1以上であることとしてもよい。
Specifically, the cell adhesion polymer constituting the
生体適合層111は、例えば、ハイドロゲルで構成されてもよい。ハイドロゲルは、上述した細胞接着性高分子を含むハイドロゲルであることが好ましい。具体的に、生体適合層111は、例えば、コラーゲン(例えば、I型、II型、III型、IV型、V型、及びXI型からなる群より選択される1以上のコラーゲン)、ゼラチン、フィブロネクチン、ラミニン、ビトロネクチン、エラスチン、グリコサミノグリカン(例えば、ヒアルロン酸)、プロテオグリカン、フィブリン、エンタクチン及びバーシカンからなる群より選択される1以上を含むハイドロゲルから構成されることが好ましく、コラーゲン、ゼラチン、フィブリン、及びラミニン-エンタクチン複合体からなる群より選択される1以上を含むハイドロゲルから構成されることが特に好ましい。生体適合層111を構成するハイドロゲルは、例えば、ハイドロゲル高分子に対する架橋性官能基の人為的な導入や架橋剤の添加等を利用した化学架橋又は光架橋によって形成してもよい。生体適合層111は、例えば、ハイドロゲルの乾燥体であってもよい。ハイドロゲルの乾燥体は、例えば、当該ハイドロゲルを凍結乾燥することにより得られる。
The
底部11が生体適合層111を含む場合、当該底部11は、図3Aに示すように、当該生体適合層111のみから構成されてもよいし、又は、図3Bに示すように、当該生体適合層111と、当該生体適合層111の下方を覆う被覆層112とを含むこととしてもよい。
When the
被覆層112は、生体適合層111の下方を覆う部材であれば特に限られないが、例えば、非透水性であることが好ましい。また、被覆層112は、非多孔質体であることが好ましい。被覆層112を構成する材料は特に限られず、有機材料、無機材料及び金属からなる群より選択される1以上であってもよく、合成樹脂が好ましく用いられる。
The
被覆層112は、生体適合層111から脱離可能であることが好ましい。すなわち、被覆層112は、生体適合層111と毛包原基30との接着を維持したまま、当該生体適合層111から剥離可能に設けられていることが好ましい。底部11が生体適合層111に加えて被覆層112を含むことにより、当該底部11の強度が向上する。
The
管状容器10の底部11が生体適合層111を含む場合、取り出し工程において、図3Cに示すように、管状容器10から、生体適合層111が付着した毛包原基30を取り出すこととしてもよい。
When the
例えば、管状容器10の底部11が、生体適合層111のみから構成される場合、まず、底部11として当該生体適合層111のみを有する管状容器10を用いて、第一準備工程、第一遠心工程、第二準備工程、及び第二遠心工程を実施し、当該管状容器10内で毛包原基30を形成する(図3A)。
For example, when the
その後、取り出し工程においては、例えば、管状容器10内の毛包原基30の上方の内部空間12を加圧することにより、図3Cに示すように、当該管状容器10の下端部14から、生体適合層111と毛包原基30とを一体的に押し出す。
Then, in the taking-out step, for example, by pressurizing the
また、例えば、管状容器10の底部11が、生体適合層111と被覆層112とを含む場合、当該生体適合層111及び被覆層112を含む底部11を有する管状容器10を用いて、第一準備工程、第一遠心工程、第二準備工程、及び第二遠心工程を実施し、当該管状容器10内で毛包原基30を形成する(図3B)。
Further, for example, when the
そして、取り出し工程においては、まず、管状容器10から、底部11の一部である被覆層112を除去する。すなわち、生体適合層111から被覆層112を剥がす。この結果、管状容器10は、図3Aに示すように、底部11として生体適合層111のみを有することとなる。
Then, in the taking-out step, first, the
その後、例えば、管状容器10内の毛包原基30の上方の内部空間12を加圧することにより、図3Cに示すように、当該管状容器10の下端部14から、生体適合層111と毛包原基30とを一体的に押し出す。
Then, for example, by pressurizing the
また、管状容器10の底部11が、生体適合層111と被覆層112とを含む場合、取り出し工程において、当該被覆層112と毛包原基30との間の位置で、当該管状容器10の下端部14を切断することにより、当該被覆層112を除去してもよい。
When the
すなわち、この場合、被覆層112とともに、生体適合層111の一部と、管状容器10の側壁部13の一部とが除去される。その後、図3Cに示すように、管状容器10の下端部14から、残された生体適合層111と毛包原基30とを一体的に押し出す。
That is, in this case, a part of the
なお、管状容器10から取り出される毛包原基30に付着した生体適合層111は、流動性を有していてもよい。すなわち、例えば、生体適合層111がゼラチンで構成される場合、当該ゼラチンが流動性を失う温度で管状容器10内の当該生体適合層111上に毛包原基30を形成し、その後、当該ゼラチンが流動性を有する温度で当該管状容器10から毛包原基30を取り出すこととしてもよい。この場合、管状容器10から取り出された毛包原基30に付着した生体適合層111は、流動性を有するゼラチンから構成される。
The
取り出し工程において、管状容器10から、生体適合層111が付着した毛包原基30を取り出す場合、当該生体適合層111が付着した毛包原基30をそのまま生体の皮膚への移植に用いてもよい。
In the removal step, when the
すなわち、この場合、本方法は、毛包原基30と、当該毛包原基30に付着した生体適合層111とを含む複合移植片を製造する方法であるともいえる。そして、この毛包原基30及び生体適合層111を含む複合移植片が生体の皮膚に移植される。
That is, in this case, it can be said that this method is a method for producing a composite graft containing the
管状容器10の側壁部13には、取り出し工程において当該管状容器10から毛包原基30を取り出す際の当該側壁部13と当該毛包原基30との摩擦を低減する潤滑層40が形成されていてもよい。
A
図4A~図4Cには、管状容器10の側壁部13が潤滑層40を含む場合の一例を概略的に示す。この例において、潤滑層40は、管状容器10の側壁部13の内面13aを構成する。
4A to 4C schematically show an example of the case where the
潤滑層40を構成する材料は、取り出し工程において、管状容器10の側壁部13と毛包原基30との摩擦を、当該側壁部13が当該潤滑層40を含まない場合に比べて低減するものであれば特に限られないが、生体適合性材料であることが好ましい。この場合、潤滑層40を構成する材料は、移植可能な材料であり、及び/又は、生分解性であることが好ましい。
The material constituting the
具体的に、潤滑層40は、例えば、第一の条件で流動性を有し、第二の条件で流動性を失う材料で構成されることが好ましい。この場合、本方法においては、第二の条件で第一準備工程、第一遠心工程、第二準備工程、及び第二遠心工程を実施し、第一の条件で取り出し工程を実施する。
Specifically, it is preferable that the
すなわち、第二条件で実施される第一準備工程、第一遠心工程、第二準備工程、及び第二遠心工程において、流動性を有しない潤滑層40は、管状容器10内で第一細胞層31及び第二細胞層32を支持する側壁部13の内面13aとして機能する。
That is, in the first preparation step, the first centrifugation step, the second preparation step, and the second centrifugation step carried out under the second condition, the
一方、管状容器10内で毛包原基30が形成された後、第二条件を第一条件に切り替えることで、潤滑層40は流動性を獲得する。そして、第一条件で実施される取り出し工程において、流動性を有する潤滑層40は、当該管状容器10内を移動する当該毛包原基30と当該側壁部13との摩擦を低減する潤滑液として機能する。
On the other hand, after the
管状容器10の側壁部13が潤滑層40を有することにより、例えば、当該管状容器10から毛包原基30を取り出す際の当該毛包原基30の損傷を効果的に回避することができる。
Since the
第一条件及び第二条件は、潤滑層40を構成する材料の流動性を変化させる条件の組み合わせであれば特に限られないが、例えば、温度、光、溶媒組成、電場、イオン強度、及び磁力からなる群より選択される1以上の条件であることとしてもよく、温度の条件であることが特に好ましい。
The first condition and the second condition are not particularly limited as long as they are a combination of conditions that change the fluidity of the material constituting the
すなわち、潤滑層40を構成する材料は、第一の温度で流動性を有し、第二の温度で流動性を失う感温性高分子であることが好ましい。具体的に、感温性高分子は、例えば、ゼラチン、ポリN-イソプロピルアクリルアミド(PNIPAM)、及びヒドロキシプロピルセルロースからなる群より選択される1以上であることが好ましく、ゼラチンであることが特に好ましい。
That is, the material constituting the
本方法においては、毛包原基30の上に細胞を含まないハイドロゲル層50を形成してもよい。図5A~図5Cには、毛包原基30の上にハイドロゲル層50を形成する場合の一例を概略的に示す。
In this method, a cell-
この例では、まず、図5Aに示すように、管状容器10内で第一細胞層31及び第二細胞層32を含む毛包原基30を形成する。毛包原基30の形成においては、ゲル化可能な濃度でハイドロゲル高分子を含まない第一懸濁液S1を用いて第一細胞層31を形成し、及び/又は、ゲル化可能な濃度でハイドロゲル高分子を含まない第二懸濁液S2を用いて第二細胞層32を形成してもよい。すなわち、この場合、第一細胞層31は、ハイドロゲルに第一細胞21を包埋することにより形成されたものではなく、及び/又は、第二細胞層32は、ハイドロゲルに第一細胞22を包埋することにより形成されたものではない。
In this example, first, as shown in FIG. 5A, a
次いで、図5Bに示すように、管状容器10内で、毛包原基30の上にハイドロゲル層50を形成する。すなわち、まず、管状容器10内の毛包原基30の上に、ゲル化可能な濃度でハイドロゲル高分子を含み細胞を含まない水溶液を加え、次いで、当該ハイドロゲル高分子をゲル化することにより、当該毛包原基30の上にハイドロゲル層50を形成する。図5Bに示す例において、ハイドロゲル層50は、毛包原基30の上端面30bに接している。
Then, as shown in FIG. 5B, the
管状容器10内におけるハイドロゲル高分子のゲル化は、毛包原基30の上の当該ハイドロゲル高分子の水溶液を、当該ハイドロゲル高分子がゲル化する条件(例えば、当該ハイドロゲル高分子がゲル化する温度)で保持することにより行う。
The gelation of the hydrogel polymer in the
このハイドロゲル高分子のゲル化は、当該ハイドロゲル高分子がゲル化する条件で、毛包原基30の上にハイドロゲル高分子の水溶液を含む管状容器10に遠心処理を施すことにより行ってもよい。
The gelation of the hydrogel polymer is performed by subjecting the
ハイドロゲル層50を構成するハイドロゲル高分子は、本発明の効果が得られるものであれば特に限られないが、例えば、上述した細胞接着性高分子であることとしてもよい。この場合、毛包原基30の上端面30bを構成する細胞(図5Bに示す例では、第二細胞層32の第二細胞22)は、ハイドロゲル層50に接着する。
The hydrogel polymer constituting the
具体的に、生体適合層111は、例えば、コラーゲン(例えば、I型、II型、III型、IV型、V型、及びXI型からなる群より選択される1以上のコラーゲン)、ゼラチン、フィブロネクチン、ラミニン、ビトロネクチン、エラスチン、グリコサミノグリカン(例えば、ヒアルロン酸)、プロテオグリカン、フィブリン、エンタクチン及びバーシカンからなる群より選択される1以上を含むハイドロゲルから構成されることが好ましい。
Specifically, the
そして、取り出し工程においては、図5Cに示すように、ハイドロゲル層50が積層された毛包原基30を管状容器10から取り出してもよい。毛包原基30に積層されたハイドロゲル層50は、例えば、当該毛包原基30の形状の維持に寄与する。
Then, in the taking-out step, as shown in FIG. 5C, the
管状容器10から取り出された毛包原基30を生体の皮膚に移植する際には、ハイドロゲル層50が積層された当該毛包原基30をそのまま移植してもよいし、又は、当該ハイドロゲル層50が除去された当該毛包原基30を移植してもよい。
When the
本方法においては、ファイバー部60が結合した毛包原基30を製造することとしてもよい。すなわち、この場合、管状容器10内において、ファイバー部60が結合した毛包原基30を形成し、当該管状容器10から、当該ファイバー部60が結合した毛包原基30を取り出す。
In this method, the
図6A~図6Dには、ファイバー部60が結合した毛包原基30の一例を概略的に示す。図6Aに示す例において、ファイバー部60は、管状容器10内の底部11の上に配置されている。そして、ファイバー部60は、その下端部61が毛包原基30の内部(具体的には、第一細胞層31及び第二細胞層32の内部)に配置されることにより、当該毛包原基30と結合している。また、ファイバー部60の上端部62は、毛包原基30の上方に延びる自由端となっている。
6A to 6D schematically show an example of the
そして、取り出し工程においては、図6Bに示すように、管状容器10から、ファイバー部60が結合した毛包原基30を取り出す。管状容器10から取り出された毛包原基30においては、当該毛包原基30の上端面30bから上方にファイバー部60が延び出している。一方、ファイバー部60の下端部61は、毛包原基30の下端面30aより下方には突出していないこととしてもよい。
Then, in the taking-out step, as shown in FIG. 6B, the
図6Cに示す例において、ファイバー部60は、その下端部61が管状容器10の底部11の内部に配置されている。すなわち、この場合、ファイバー部60は、毛包原基30のみならず、管状容器10の底部11にも結合している。
In the example shown in FIG. 6C, the
具体的に、図6Cに示す例において、管状容器10の底部11は、生体適合層111を含み、ファイバー部60の下端部61は、毛包原基30を貫通して、当該生体適合層111の内部に配置されている。すなわち、ファイバー部60は、毛包原基30のみならず、管状容器10の生体適合層111にも結合している。
Specifically, in the example shown in FIG. 6C, the
そして、取り出し工程においては、図6Dに示すように、管状容器10から、ファイバー部60及び生体適合層111が結合した毛包原基30を取り出す。管状容器10から取り出された毛包原基30においては、当該毛包原基30の上端面30bから上方にファイバー部60が延び出している。一方、ファイバー部60の下端部61は、毛包原基30の下端面30aからさらに下方に延び出して生体適合層111の内部に配置されている。ファイバー部60の下端部61は、生体適合層111の下端面111aより下方には突出していないこととしてもよい。
Then, in the taking-out step, as shown in FIG. 6D, the
ファイバー部60が結合した毛包原基30を製造する場合、本方法においては、例えば、第一遠心処理前に、ファイバー部60を管状容器10の内部空間12に配置し、当該ファイバー部60が配置された管状容器10に対して、第一遠心処理、及び第二遠心処理を順次施すことにより、当該ファイバー部60が結合した毛包原基30を形成してもよい。
In the case of producing the
この場合、第一遠心処理前に、ファイバー部60の下端部61を管状容器10の底部11(例えば、生体適合層111)の内部に配置にして、当該ファイバー部60を当該底部11に固定してもよい。管状容器10内に配置されたファイバー部60を底部11に固定することにより、当該管状容器10内における当該ファイバー部60の位置を効果的に制御することができる。
In this case, before the first centrifugation treatment, the
また、本方法においては、例えば、第一細胞層31の形成後であって第二細胞層32の形成前に、ファイバー部60を当該第一細胞層31の上に配置し、又は、ファイバー部60の下端部61を当該第一細胞層31に挿入してもよい。後者の場合、ファイバー部60の下端部61を底部11の内部にまで挿入してもよい。
Further, in the present method, for example, after the formation of the
また、本方法においては、例えば、第二細胞層32の形成後、ファイバー部60の下端部61を当該第二細胞層32に挿入してもよい。この場合、ファイバー部60の下端部61を、第一細胞層31にまで挿入してもよいし、さらに、底部11の内部にまで挿入してもよい。
Further, in this method, for example, after the formation of the
ファイバー部60は、管状容器10の内部空間12に配置できるファイバー状の部材であれば特に限られず、図6A~図6Dに示すものに限られない。ファイバー部60は、可撓性を有することが好ましい。ファイバー部60を構成する材料は特に限られず、有機材料、無機材料、金属、セラミック等、任意の材料が用いられるが、生体適合性材料であることが好ましい。
The
ファイバー部60は、生分解性であってもよいし、又は、非生分解性であってもよい。ファイバー部60は、中実体であってもよいし、中空体であってもよい。ファイバー部60の形状は特に限られないが、例えば、動物の毛(特に、ヒトの毛髪)に類似した形状であることが好ましい。
The
具体的に、ファイバー部60の外径D60は、管状容器10の内径D10以下であれば特に限られないが、例えば、10μm以上であってもよく、20μm以上であってもよく、30μm以上であってもよく、40μm以上であってもよく、50μm以上であってもよい。
Specifically, the outer diameter D 60 of the
ファイバー部60の長さは、本発明の効果が得られる範囲内であれば特に限られないが、例えば、0.10mm以上、30.0mm以下であってもよく、0.15mm以上、20mm以下であってもよく、0.20mm以上、10.0mm以下であってもよい。
The length of the
毛包原基30にファイバー部60が結合していることにより、例えば、管状容器10から取り出された当該毛包原基30の操作性が向上する。すなわち、例えば、毛包原基30を移送する際の操作性が向上し、及び/又は、毛包原基30の向き(例えば、第一細胞層31及び第二細胞層32の配置)の把握が容易となる。
By binding the
ファイバー部60が結合した毛包原基30を生体の皮膚に移植する場合、当該ファイバー部60が当該毛包原基30から当該皮膚の外部まで延びるように当該毛包原基30を移植することが好ましい。ファイバー部60が結合した毛包原基30を移植することによって、移植後に毛包原基30から生えてきた毛髪が伸びるための空間が効果的に確保される。
When the
本方法においては、規則的に配置された複数の管状容器10を有する遠心器具70を用い、当該遠心器具70の複数の管状容器10の各々について、第一準備工程、第一遠心工程、第二準備工程、第二遠心工程、及び取り出し工程を実施することとしてもよい。
In this method, a
図7には、遠心器具70の一例を概略的に示す。遠心器具70は、規則的に配置された複数の管状容器10を有する。すなわち、遠心器具70において、複数の管状容器10は、一定の間隔で配置されるとともに、互いに連結されている。
FIG. 7 schematically shows an example of the
また、図7に示す例において、遠心器具70は、複数の管状容器10の各々と連通し、液体及び気体を収容可能なリザーバ部71を有している。すなわち、各管状容器10の上端部15は、リザーバ部71内に開口している。また、各管状容器10の上端部15は、上方に向かって内径が増大するテーパ形状を有している。
Further, in the example shown in FIG. 7, the
このような遠心器具70を用いることにより、複数の毛包原基30を効率よく製造することができる。すなわち、本方法においては、第一準備工程及び第二準備工程において、それぞれ第一懸濁液S1及び第二懸濁液S2を遠心器具70のリザーバ部71に加えることにより、当該遠心器具70の複数の管状容器10の各々に当該第一懸濁液S1及び第二懸濁液S2を入れることができる。
By using such a
また、第一遠心工程及び第二遠心工程においては、遠心器具70に第一遠心処理及び第二遠心処理をそれぞれ施すことにより、当該遠心器具70の複数の管状容器10の各々において、第一細胞31及び第二細胞層32を形成することができる。
Further, in the first centrifugation step and the second centrifugation step, by subjecting the
本方法の他の側面は、脱毛を伴う疾患の治療方法であってもよい。この場合、本方法は、上述のようにして製造された毛包原基30を、脱毛を伴う疾患を有する生体の皮膚に移植する移植工程を含む。
Another aspect of the method may be a method of treating a disease associated with hair loss. In this case, the method comprises a transplantation step of transplanting the
具体的に、本方法は、例えば、上述した第一準備工程、第一遠心工程、第二準備工程、第二遠心工程、及び取り出し工程に加えて、管状容器10から取り出された毛包原基30を、脱毛を伴う疾患を有する生体の皮膚に移植する移植工程をさらに含む、脱毛を伴う疾患の治療方法であってもよい。
Specifically, in this method, for example, in addition to the first preparation step, the first centrifugation step, the second preparation step, the second centrifugation step, and the taking-out step described above, the hair follicle primordia taken out from the
毛包原基30を移植する生体は、非ヒト動物であってもよいが、ヒトであることが好ましい。毛包原基30を移植する生体の皮膚は、本来的に毛が生えている皮膚であれば特に限られないが、例えば、脱毛を伴う疾患を有するヒト患者に当該毛包原基30を移植する場合、当該毛包原基30を当該ヒト患者の頭皮に移植することが好ましい。
The living body into which the
脱毛を伴う疾患は、特に限られないが、例えば、男性型脱毛症(Androgenetic Alopecia:AGA)、女子男性型脱毛症(Female Androgenetic Alopecia:FAGA)、分娩後脱毛症、びまん性脱毛症、脂漏性脱毛症、粃糠性脱毛症、牽引性脱毛症、代謝異常性脱毛症、圧迫性脱毛症、円形脱毛症、神経性脱毛症、抜毛症、全身性脱毛症、及び症候性脱毛症からなる群より選択される1以上であることとしてもよい。 Diseases associated with hair loss are not particularly limited, but are, for example, androgenetic alopecia (AGA), female androgenetic alopecia (FAGA), postpartum alopecia, diffuse alopecia, and seborrhea. It consists of androgenetic alopecia, androgenetic alopecia, traction alopecia, metabolic alopecia, compression alopecia, circular alopecia, neurogenic alopecia, alopecia, systemic alopecia, and symptomatic alopecia. It may be 1 or more selected from the group.
図8A~図8Cには、毛包原基30を生体の皮膚200に移植する場合の操作の一例を概略的に示す。この例では、まず図8Aに示すように、生体の皮膚200に、毛包原基30を挿入する移植創210を形成する。移植創210は、例えば、皮膚200に対する針やメス等の医療器具を用いた穿刺又は切開により形成される。
8A-8C schematically show an example of an operation when the
次いで、図8Bに示すように、内部空間12に毛包原基30を含む管状容器10の下端部14を、移植創210に挿入する。その後、管状容器10の下端部14から、移植創210内に、毛包原基30を押し出すことにより、図8Cに示すように、当該移植創210内に当該毛包原基30を挿入する。こうして、管状容器10内の毛包原基30を、皮膚200の移植創210に移植する。なお、図8A~図8Cに示す例においては、取り出し工程と移植工程とが並行して実施される。
Then, as shown in FIG. 8B, the
移植工程においては、上述した生体適合層111が付着した毛包原基30(図3C)を生体の皮膚に移植してもよい。また、移植工程においては、生体適合層111が付着した毛包原基30を管状容器10から取り出した後、当該生体適合層111を当該毛包原基30から除去して、当該生体適合層111が付着していない毛包原基30を生体の皮膚に移植してもよい。
In the transplantation step, the hair follicle primordium 30 (FIG. 3C) to which the
移植工程においては、上述したハイドロゲル層50が積層された毛包原基30(図5C)を生体の皮膚に移植してもよい。また、移植工程においては、ハイドロゲル層50が積層された毛包原基30を管状容器10から取り出した後、当該ハイドロゲル層50を当該毛包原基30から除去して、当該ハイドロゲル層50が積層されていない毛包原基30を生体の皮膚に移植してもよい。
In the transplantation step, the hair follicle primordium 30 (FIG. 5C) on which the above-mentioned
移植工程においては、上述したファイバー部60が結合した毛包原基30(図6B、図6D)を移植してもよい。この場合、移植創210においては、移植された毛包原基30に結合したファイバー部60が当該移植創210の開口211を介して皮膚200の外部まで(すなわち、皮膚200の表面201よりさらに上方まで)延びることとなる。この結果、ファイバー部60によって移植創210の開口211の閉塞が阻害されることで、当該移植創210に移植された毛包原基30から生えた毛が上方に伸びる空間が確保される。
In the transplanting step, the hair follicle primordium 30 (FIGS. 6B and 6D) to which the above-mentioned
移植工程においては、規則的に配置された複数の管状容器10を有する遠心器具70を用いて、複数の毛包原基30を生体の皮膚200に移植してもよい。すなわち、この場合、例えば、生体の皮膚200に、遠心器具70における複数の管状容器10の配置に対応する規則的な配置で複数の移植創210を形成する。その後、遠心器具70の複数の管状容器10の各々を、図8Bに示すように、複数の移植創210の1つに挿入し、当該複数の管状容器10から当該複数の移植創210に複数の毛包原基30を移植する。この場合、複数の移植創210及び複数の管状容器10の規則的な配置は、生体の皮膚における毛穴の配置に対応する配置であることが好ましい。
In the transplantation step, a plurality of
本方法は、管状容器10内で形成された毛包原基30を、当該毛包原基30に含まれる第一細胞21及び第二細胞22の生存を維持したまま、凍結することなく冷却保存する冷却保存工程を含むこととしてもよい。
In this method, the
この場合、冷却保存工程においては、例えば、管状容器10内で毛包原基30を冷却保存してもよい。すなわち、例えば、管状容器10内で毛包原基30を形成した後、当該管状容器10から毛包原基30を取り出す前に、当該管状容器10内で当該毛包原基30を冷却保存する。
In this case, in the cooling storage step, for example, the
具体的に、例えば、複数の管状容器10を用いて複数の毛包原基30を製造した場合、当該複数の毛包原基30のうち、一部の毛包原基30について取り出し工程を実施している間、他の毛包原基30について冷却保存工程を実施する。
Specifically, for example, when a plurality of hair follicle primordiums 30 are produced using a plurality of
より具体的に、例えば、複数の管状容器10を用いて製造した複数の毛包原基30を生体の皮膚に移植する場合には、当該複数の毛包原基30のうち、一部の毛包原基を当該皮膚に移植する操作を実施している間、残りの毛包原基30を管状容器10内にて冷却保存する。
More specifically, for example, when a plurality of
冷却保存工程において毛包原基30を冷却保存する温度は、当該毛包原基30に含まれる第一細胞21及び第二細胞22の生存を維持したまま凍結することなく保存できる低温であれば特に限られないが、例えば、0℃超、10℃以下の範囲内であってもよく、0℃超、5℃以下の範囲内であることが好ましい。
The temperature at which the
本方法は、管状容器10から取り出された毛包原基30を培養する培養工程をさらに含むこととしてもよい。培養工程においては、例えば、管状容器10から取り出された毛包原基30を、培養液中で浮遊培養してもよいし、基材表面上で培養してもよいし、又は、ハイドロゲル中で包埋培養してもよい。
The method may further include a culturing step of culturing the
一方、本方法においては、管状容器10から取り出された毛包原基30を基材表面上で培養しないこととしてもよい。また、本方法においては、管状容器10から取り出された毛包原基30を培養しないこととしてもよい。
On the other hand, in this method, the
毛包原基30は、間葉系細胞及び上皮系細胞に加えて、1種以上の他の細胞をさらに含んでもよい。他の細胞は、毛包原基30からの発毛に寄与する細胞であれば特に限られないが、例えば、色素細胞及び/又は色素幹細胞であることが好ましい。
The
1種以上の他の細胞は、第一細胞層31及び/又は第二細胞層32に含まれてもよい。具体的に、例えば、色素細胞及び/又は色素幹細胞は、第一細胞層31に含まれてもよいし、及び/又は、第二細胞層32に含まれてもよいが、第一細胞21が間葉系細胞である場合、第一細胞層31に含まれることが好ましい。
One or more other cells may be included in the
毛包原基30は、細胞層として、第一細胞層31及び第二細胞層32のみを含むこととしてもよいし、当該第一細胞層31及び第二細胞層32に加えて、1以上の他の細胞層をさらに含んでもよい。
The
毛包原基30が1以上の他の細胞層を含む場合、当該他の細胞層は、上述した第一細胞層31及び第二細胞層32と同様の遠心処理によって形成する。具体的に、本方法は、例えば、第一遠心工程後、第二準備工程前に、管状容器10内の第一細胞層31の上に、第三の細胞(例えば、色素細胞及び/又は色素幹細胞)の懸濁液を加える第三準備工程と、当該第三の細胞の懸濁液を含む当該管状容器10に第三遠心処理を施して、遠心力によって当該第一細胞層31の上に第三細胞層を形成する第三遠心工程を含み、当該第一細胞層31、当該第一細胞層の上に形成された当該第三細胞層、及び当該第三細胞層の上に形成された第二細胞層32を含む毛包原基30を製造することとしてもよい。
When the
本方法においては、上述のとおり、毛包原基30に含まれる各細胞層を遠心処理によって形成するため、当該遠心処理の条件によって、当該毛包原基30の特性を調節することもできる。すなわち、例えば、遠心処理の時間が長くなることにより、細胞層に含まれる細胞間の結合は、より強固になる。
In this method, as described above, since each cell layer contained in the
一方、毛包原基30を生体の皮膚に移植した後、当該毛包原基30に含まれる細胞は、新たな毛包構造を構築するために、当該皮膚内で移動できることが好ましい。この点、遠心処理の時間を短くすることにより、細胞層に含まれる細胞間の結合が強固になり過ぎることを回避でき、移植後に移動しやすい細胞を含む毛包原基を製造することができる。
On the other hand, after transplanting the
また、毛髪再生のための移植には、数千個の毛包原基30を製造することが好ましい。この点、遠心処理の時間が短くなることにより、大量の毛包原基を迅速に製造することができる。
Further, for transplantation for hair regeneration, it is preferable to produce thousands of
そこで、本方法において毛包原基30を製造するために細胞を含む管状容器10に対して施される遠心処理の時間の合計(例えば、第一遠心処理後に、第二遠心処理以外にも1以上の他の遠心処理を行う場合には、当該第一遠心処理の時間と、当該第二遠心処理の時間と、当該1以上の他の遠心処理の時間との合計)は、例えば、1分以上であってもよく、2分以上であってもよく、4分以上であってもよい。
Therefore, in this method, the total time of centrifugation applied to the
また、上記遠心処理の時間の合計は、例えば、120分以下であってもよく、90分以下であってもよく、60分以下であってもよく、30分以下であってもよい。さらに、上記遠心処理の時間の合計は、例えば、30分未満であることが好ましい。この場合、第一遠心処理の時間は、例えば、29分以下であってもよく、25分以下であってもよく、20分以下であってもよく、15分以下であってもよく、10分以下であってもよい。上記遠心処理の時間の合計は、上記いずれかの下限値と、上記いずれかの上限値とを任意に組み合わせて特定されてもよい。 Further, the total time of the centrifugation may be, for example, 120 minutes or less, 90 minutes or less, 60 minutes or less, or 30 minutes or less. Further, the total time of the centrifugation is preferably less than, for example, 30 minutes. In this case, the time of the first centrifugation may be, for example, 29 minutes or less, 25 minutes or less, 20 minutes or less, 15 minutes or less, or 10 minutes. It may be less than a minute. The total time of the centrifugation may be specified by arbitrarily combining any of the above lower limit values and any of the above upper limit values.
本方法は、上述した移植用毛包原基の例に限られない。すなわち、本方法において製造する毛包原基は、移植以外の目的に用いられものであってもよい。具体的に、毛包原基は、例えば、生体外における試験又は研究に用いてもよい。また、毛包原基は、発毛に関する物質のスクリーニングに用いてもよい。 This method is not limited to the above-mentioned example of hair follicle primordium for transplantation. That is, the hair follicle primordium produced in this method may be used for purposes other than transplantation. Specifically, the hair follicle primordium may be used, for example, for in vitro testing or research. In addition, the hair follicle primordium may be used for screening a substance related to hair growth.
本方法においては、毛包原基以外の組織体を製造してもよい。毛包原基以外の組織体は、移植用組織体であってもよいし、移植以外の目的に用いられる組織体であってもよい。 In this method, a tissue other than the hair follicle primordium may be produced. The tissue body other than the hair follicle primordium may be a tissue body for transplantation or a tissue body used for a purpose other than transplantation.
本方法が、疾患の治療方法である場合、本方法は、組織体を、当該疾患を有する生体に移植する移植工程を含む。すなわち、本方法は、例えば、上述した第一準備工程、第一遠心工程、第二準備工程、第二遠心工程、及び、取り出し工程に加えて、管状容器から取り出された組織体を、疾患を有する生体に移植する移植工程をさらに含む、疾患の治療方法であってもよい。 When the method is a method of treating a disease, the method comprises a transplantation step of transplanting the tissue into a living body having the disease. That is, in this method, for example, in addition to the above-mentioned first preparation step, first centrifugation step, second preparation step, second centrifugation step, and removal step, the tissue taken out from the tubular container is treated with a disease. It may be a method for treating a disease, further comprising a transplantation step of transplanting into a living body having the disease.
治療の対象となる疾患は、組織体を移植する生体の臓器又は組織に構造的及び/又は機能的な欠損を有する疾患であれば特に限られない。すなわち、本方法により製造された移植用組織体は、生体の臓器又は組織の構造及び/又は機能を回復させるために、当該臓器又は組織に移植する。 The disease to be treated is not particularly limited as long as it is a disease having a structural and / or functional defect in the organ or tissue of the living body into which the tissue is transplanted. That is, the tissue for transplantation produced by this method is transplanted into the organ or tissue of a living body in order to restore the structure and / or function of the tissue.
間葉系細胞は、生体の任意の臓器又は組織に由来する間葉系細胞であってもよいし、生体外において多能性幹細胞等の幹細胞から分化誘導された間葉系細胞であってもよい。上皮系細胞は、生体の任意の臓器又は組織に由来する上皮系細胞であってもよいし、生体外において多能性幹細胞等の幹細胞から分化誘導された上皮系細胞であってもよい。 The mesenchymal cell may be a mesenchymal cell derived from any organ or tissue of a living body, or may be a mesenchymal cell differentiated from a stem cell such as a pluripotent stem cell in vitro. good. The epithelial cells may be epithelial cells derived from any organ or tissue of a living body, or may be epithelial cells induced to differentiate from stem cells such as pluripotent stem cells in vitro.
移植以外の目的で用いられる組織体を製造する場合、上述したハイドロゲル層50の形成に用いられるハイドロゲル高分子は、上述した例に限られず、例えば、アガロース、アルギン酸ナトリウム、及び合成高分子(例えば、ポリアクリルアミド、ポリビニルアルコール、メチルセルロース、ポリエチレンオキシド等)からなる群より選択される1以上であってもよい。
When producing a tissue used for a purpose other than transplantation, the hydrogel polymer used for forming the
次に、本実施形態に係る具体的な実施例について説明する。 Next, a specific embodiment according to the present embodiment will be described.
[管状容器の作製]市販の樹脂製のピペットチップの先端の開口をシリコーン系材料(PDMS)で閉塞した。このピペットチップ内に、20重量%ゼラチン溶液で満たすとともに、当該ゼラチン溶液中に外径約0.3mm、長さ約100mmの針金を配置した。次いで、ピペットチップを4℃で保持することによりゼラチンを固化した。その後、ピペットチップから針金を抜去することにより、ゼラチンに囲まれた、針金の外形に対応する内部空間(内径約0.3mm、長さ約30mm)を有する管状容器を得た。すなわち、この管状容器は、ゼラチンで形成された生体適合層と、PDMSで形成された被覆層とから構成される底部を有していた。また、この管状容器は、ゼラチンで形成された潤滑層から構成される側壁内面を有していた。そして、管状容器の上端部(すなわち、ピペットチップの上端部)は、市販の樹脂製のシリンジを結合し、当該管状容器と当該シリンジとから構成される遠心器具を作製した。 [Preparation of tubular container] The opening at the tip of a commercially available resin pipette tip was closed with a silicone-based material (PDMS). The pipette tip was filled with a 20 wt% gelatin solution, and a wire having an outer diameter of about 0.3 mm and a length of about 100 mm was placed in the gelatin solution. The gelatin was then solidified by holding the pipette tip at 4 ° C. Then, by removing the wire from the pipette tip, a tubular container surrounded by gelatin and having an internal space (inner diameter of about 0.3 mm and length of about 30 mm) corresponding to the outer shape of the wire was obtained. That is, the tubular container had a bottom composed of a biocompatible layer formed of gelatin and a coating layer formed of PDMS. The tubular container also had a side wall inner surface composed of a lubricating layer made of gelatin. Then, a commercially available resin syringe was bonded to the upper end of the tubular container (that is, the upper end of the pipette tip) to prepare a centrifuge device composed of the tubular container and the syringe.
[細胞の調製]胎齢18日のC57BL/6マウス胎児より背部の皮膚組織を採取し、中尾らが報告した方法(Koh-ei Toyoshima et al. Nature Communication, Vol.3, Article Number 784, 2012)を一部改変して、ディスパーゼ処理を4℃で1間、30rpm震盪条件で行い、当該皮膚組織の上皮層と間葉層とを分離した。その後、上皮層に100U/mLのコラゲナーゼ処理を2時間施し、さらにトリプシン処理を10分施し、最終的に40μmメッシュセルストレイナーを通過した、分散された上皮系細胞を得た。また、間葉層には100U/mLのコラゲナーゼ処理を2時間施し、最終的に40μmメッシュセルストレイナーを通過した、分散された間葉系細胞を得た。 [Cell preparation] The method reported by Nakao et al. (Koh-ei Toyoshima et al. Nature Communication, Vol.3, Article Number 784, 2012) by collecting the skin tissue on the back from a C57BL / 6 mouse fetus at the age of 18 days. Was partially modified and treated with dispase at 4 ° C. for 1 time under 30 rpm shaking conditions to separate the epithelial layer and the mesenchymal layer of the skin tissue. Then, the epithelial layer was treated with 100 U / mL collagenase for 2 hours and then with trypsin for 10 minutes to finally obtain dispersed epithelial cells that had passed through a 40 μm mesh cell strainer. The mesenchymal layer was treated with 100 U / mL collagenase for 2 hours to finally obtain dispersed mesenchymal cells that had passed through a 40 μm mesh cell strainer.
[毛包原基の製造]
間葉系細胞を赤色蛍光試薬(Vybrant(商標) DiI Cell-Labeling Solution、Invitrogen(商標))により染色した。また、上皮系細胞を緑色蛍光試薬(Vybrant(商標) DiO Cell-Labeling Solution、Invitrogen(商標))により染色した。
[Manufacturing of hair follicle primordium]
Mesenchymal cells were stained with a red fluorescent reagent (Vybrant ™ DiI Cell-Labeling Solution, Invitrogen ™). In addition, epithelial cells were stained with a green fluorescent reagent (Vybrant ™ DiO Cell-Labeling Solution, Invitrogen ™).
そして、まず遠心容器のシリンジを介して管状容器に間葉系細胞を1×106cells/mLの密度で含む懸濁液200μLを加えた。次いで、間葉系細胞の懸濁液を含む遠心容器を市販の遠心分離機に設置し、当該遠心容器に4℃にて、1000rpm(遠心力180G)で180秒の遠心処理を施した。この結果、管状容器の底部の生体適合性層上に間葉系細胞の第一細胞層が形成された。 Then, first, 200 μL of a suspension containing mesenchymal cells at a density of 1 × 10 6 cells / mL was added to the tubular container via a syringe in the centrifuge container. Next, a centrifuge container containing a suspension of mesenchymal cells was placed in a commercially available centrifuge, and the centrifuge was subjected to centrifugal treatment at 4 ° C. at 1000 rpm (centrifugal force 180 G) for 180 seconds. As a result, the first cell layer of mesenchymal cells was formed on the biocompatible layer at the bottom of the tubular container.
その後、遠心容器のシリンジを介して管状容器に上皮系細胞を5×105cells/mLの密度で含む懸濁液200μLを加えた。そして、上皮系細胞の懸濁液を含む遠心容器に4℃にて、1000rpmで180秒の遠心処理を施した。 Then, 200 μL of a suspension containing epithelial cells at a density of 5 × 10 5 cells / mL was added to the tubular vessel via a syringe in the centrifuge vessel. Then, the centrifuge vessel containing the suspension of epithelial cells was centrifuged at 4 ° C. at 1000 rpm for 180 seconds.
この結果、管状容器内において、間葉系細胞の第一細胞層に積層された、上皮系細胞の第二細胞層が形成された。すなわち、間葉系細胞の第一細胞層及び上皮系細胞の第二細胞層から構成される毛包原基が形成された。 As a result, a second cell layer of epithelial cells was formed in the tubular container, which was laminated on the first cell layer of mesenchymal cells. That is, a hair follicle primordium composed of a first cell layer of mesenchymal cells and a second cell layer of epithelial cells was formed.
その後、遠心容器のシリンジを介して管状容器にタイプIコラーゲンを2.4mg/mL含む溶液を加えた。そして、コラーゲン溶液を含む遠心容器に37℃にて、1000rpmで180秒の遠心処理を施した。 Then, a solution containing 2.4 mg / mL of Type I collagen was added to the tubular container via a syringe in the centrifuge container. Then, the centrifuge container containing the collagen solution was centrifuged at 37 ° C. at 1000 rpm for 180 seconds.
この結果、管状容器内において、ゼラチンは液化するとともに、コラーゲンはゲル化した。すなわち、管状容器内において生体適合層及び潤滑層が流動性を獲得するとともに、毛包原基の上に積層されたコラーゲンのハイドロゲル層が形成された。 As a result, gelatin was liquefied and collagen was gelled in the tubular container. That is, the biocompatible layer and the lubricating layer acquired fluidity in the tubular container, and a collagen hydrogel layer laminated on the hair follicle primordium was formed.
その後、管状容器の下端部のうち、被覆層と毛包原基との間の部分(すなわち、ゼラチンの生体適合層が配置されている部分)を切断することにより、当該被覆層を除去し、当該下端部に開口を形成した。次いで、遠心容器のシリンジを介した加圧により、管状容器の下端部の開口から、下端面にゼラチンが付着し上端面にコラーゲンゲルが積層された毛包原基を押し出した。 Then, the coating layer is removed by cutting the portion of the lower end of the tubular container between the coating layer and the hair follicle primordium (that is, the portion where the biocompatible layer of gelatin is arranged). An opening was formed at the lower end. Then, by pressurizing through a syringe of the centrifuge container, the hair follicle primordium in which gelatin adhered to the lower end surface and collagen gel was laminated on the upper end surface was extruded from the opening at the lower end of the tubular container.
図9には、管状容器から取り出された毛包原基(ゼラチン及びコラーゲンゲルが除去された毛包原基)の蛍光顕微鏡写真を示す。図9において、スケールバーは200μmを示す。図9に示すように、赤色蛍光色素で染色された間葉系細胞の第一細胞層と、緑色蛍光色素で染色された上皮系細胞の第二細胞層とから構成される円柱状の毛包原基が形成された。 FIG. 9 shows a fluorescence micrograph of the hair follicle primordium (the hair follicle primordium from which gelatin and collagen gel have been removed) taken out from the tubular container. In FIG. 9, the scale bar indicates 200 μm. As shown in FIG. 9, a columnar hair follicle composed of a first cell layer of mesenchymal cells stained with a red fluorescent dye and a second cell layer of epithelial cells stained with a green fluorescent dye. The primordia was formed.
[管状容器の作製]上述の実施例1と同様にして、管状容器を含む遠心器具を作製した。 [Preparation of Tubular Container] A centrifuge device including a tubular container was prepared in the same manner as in Example 1 described above.
[細胞の調製]上述の実施例1と同様にして、間葉系細胞及び上皮系細胞を調製した。 [Preparation of cells] Mesenchymal cells and epithelial cells were prepared in the same manner as in Example 1 above.
[毛包原基の製造]間葉系細胞及び上皮系細胞の蛍光染色を行わなかったこと、及び、毛包原基に積層されたコラーゲンのハイドロゲル層を形成しなかったこと以外は上述の実施例1と同様にして、管状容器内で毛包原基を製造した。 [Production of hair follicle primordium] The above-mentioned is described except that the mesenchymal cells and epithelial cells were not fluorescently stained and the hydrogel layer of collagen laminated on the hair follicle primordium was not formed. Hair follicle primordium was produced in a tubular container in the same manner as in Example 1.
[毛包原基の移植]ヌードマウスにイソフルラン吸引麻酔を施し、その背部にイソジン消毒を施した。Vランスマイクロメス(日本アルコン株式会社製)を用いて、ヌードマウスの背部皮膚の表皮層から真皮層下部に至る移植創を形成した。 [Transplantation of hair follicle primordium] Nude mice were anesthetized by inhalation of isoflurane, and their backs were disinfected with isoflurane. V-lance micromes (manufactured by Nippon Archon Co., Ltd.) was used to form transplant wounds from the epidermal layer of the back skin of nude mice to the lower part of the dermis layer.
一方、内部空間に毛包原基を含む管状容器のPDMS製被覆層と毛包原基との間の部分を切断し、当該管状容器の下端部に開口を形成した。そして、管状容器の下端部を、ヌードマウスの移植創に挿入し、当該下端部の開口から当該移植創内に毛包原基(具体的には、流動性を有するゼラチンに被覆された毛包原基)を押し出すことにより、当該毛包原基を当該ヌードマウスの皮膚に移植した。なお、動物の飼育及び動物実験は横浜国立大学動物実験委員会の指針を遵守して行った。 On the other hand, a portion between the PDMS coating layer of the tubular container containing the hair follicle primordium in the internal space and the hair follicle primordium was cut to form an opening at the lower end of the tubular container. Then, the lower end of the tubular container is inserted into the transplant wound of a nude mouse, and the hair follicle primordium (specifically, the hair follicle coated with fluid gelatin) is inserted into the transplant wound through the opening of the lower end. By extruding the primordium), the hair follicle primordium was transplanted into the skin of the nude mouse. Animal breeding and animal experiments were carried out in compliance with the guidelines of the Yokohama National University Animal Experiment Committee.
図10には、移植から3週間後に、ヌードマウスの皮膚の毛包原基を移植した部分を撮影して得られた写真を示す。図10に示すように、移植された毛包原基から複数の毛が生えていることが確認された。
FIG. 10 shows a photograph obtained by photographing a portion of the skin of a nude mouse into which a hair follicle primordium was transplanted 3 weeks after transplantation. As shown in FIG. 10, it was confirmed that a plurality of hairs were grown from the transplanted hair follicle primordium.
Claims (14)
前記第一細胞の懸濁液を含む前記管状容器に第一遠心処理を施し、遠心力によって前記底部の上に第一細胞層を形成する第一遠心工程と、
前記管状容器内の前記第一細胞層の上に、間葉系細胞及び上皮系細胞のうち他方である第二細胞の懸濁液を加える第二準備工程と、
前記第二細胞の懸濁液を含む前記管状容器に第二遠心処理を施し、遠心力によって前記第一細胞層の上に第二細胞層を形成する第二遠心工程と、
前記第一細胞層と前記第二細胞層とを含む組織体を前記管状容器から取り出す取り出し工程と、
を含む、組織体の製造方法。 The first preparatory step of adding a suspension of the first cell, which is one of the mesenchymal cells and the epithelial cells, to the tubular container having the bottom.
A first centrifugation step in which the tubular container containing the suspension of the first cells is subjected to the first centrifugation treatment to form a first cell layer on the bottom by centrifugal force.
A second preparatory step of adding a suspension of the second cell, which is the other of the mesenchymal cells and the epithelial cells, onto the first cell layer in the tubular container.
A second centrifugation step in which the tubular container containing the suspension of the second cells is subjected to a second centrifugation treatment to form a second cell layer on the first cell layer by centrifugal force.
A step of taking out the tissue containing the first cell layer and the second cell layer from the tubular container, and
A method of manufacturing an organization, including.
請求項1に記載の方法。 The tissue is a hair follicle primordium,
The method according to claim 1.
請求項1又は2に記載の方法。 The mesenchymal cell is one or more selected from the group consisting of hair follicle mesenchymal cells and progenitor cells thereof.
The method according to claim 1 or 2.
請求項1乃至3のいずれかに記載の方法。 The epithelial cell is one or more selected from the group consisting of hair follicle epithelial cells and progenitor cells thereof.
The method according to any one of claims 1 to 3.
請求項1乃至4のいずれかに記載の方法。 The ratio of the length of the tissue to the outer diameter of the tissue is 1.0 or more.
The method according to any one of claims 1 to 4.
請求項1乃至5のいずれかに記載の方法。 The bottom of the tubular container is impermeable,
The method according to any one of claims 1 to 5.
請求項1乃至6のいずれかに記載の方法。 The side wall portion of the tubular container is impermeable.
The method according to any one of claims 1 to 6.
前記取り出し工程において、前記管状容器から、前記生体適合層が付着した前記組織体を取り出す、
請求項1乃至7のいずれかに記載の方法。 The bottom of the tubular container contains a biocompatible layer formed from a biocompatible material.
In the removal step, the tissue to which the biocompatible layer is attached is removed from the tubular container.
The method according to any one of claims 1 to 7.
請求項1乃至8のいずれかに記載の方法。 A lubricating layer is formed on the side wall portion of the tubular container to reduce friction between the side wall portion and the tissue body when the tissue body is taken out from the tubular container in the removal step.
The method according to any one of claims 1 to 8.
前記第二の条件で前記第一準備工程、前記第一遠心工程、前記第二準備工程、及び前記第二遠心工程を実施し、
前記第一の条件で前記取り出し工程を実施する、
請求項9に記載の方法。 The lubricating layer is composed of a material that has fluidity under the first condition and loses fluidity under the second condition.
The first preparation step, the first centrifugation step, the second preparation step, and the second centrifugation step are carried out under the second condition.
The extraction step is carried out under the first condition.
The method according to claim 9.
請求項1乃至10のいずれかに記載の方法。 The centrifugation time in the first centrifugation treatment and the centrifugation time in the second centrifugation treatment are both less than 30 minutes.
The method according to any one of claims 1 to 10.
前記取り出し工程において、前記管状容器から、前記ファイバー部材が結合した前記組織体を取り出す、
請求項1乃至11のいずれかに記載の方法。 Prior to the removal step, a fiber member is placed in the tubular container to form the tissue to which the fiber member is bonded.
In the take-out step, the tissue to which the fiber member is bonded is taken out from the tubular container.
The method according to any one of claims 1 to 11.
前記遠心器具の前記複数の管状容器の各々について、前記第一準備工程、前記第一遠心工程、前記第二準備工程、前記第二遠心工程、及び前記取り出し工程を実施する、
請求項1乃至12のいずれかに記載の方法。 Using a centrifuge with the plurality of regularly arranged tubular containers,
Each of the plurality of tubular containers of the centrifuge device is subjected to the first preparation step, the first centrifugation step, the second preparation step, the second centrifugation step, and the taking-out step.
The method according to any one of claims 1 to 12.
前記第一細胞の懸濁液を含む前記管状容器に第一遠心処理を施し、遠心力によって前記底部の上に第一細胞層を形成する第一遠心工程と、
前記管状容器内の前記第一細胞層の上に、間葉系細胞及び上皮系細胞のうち他方である第二細胞の懸濁液を加える第二準備工程と、
前記第二細胞の懸濁液を含む前記管状容器に第二遠心処理を施し、遠心力によって前記第一細胞層に積層された第二細胞層を形成する第二遠心工程と、
前記第一細胞層と前記第二細胞層とを含む組織体を前記管状容器から取り出す取り出し工程と、
前記管状容器から取り出された前記組織体を、疾患を有する生体に移植する移植工程と、
を含む、疾患の治療方法。
The first preparatory step of adding a suspension of the first cell, which is one of the mesenchymal cells and the epithelial cells, to a tubular container having a bottom,
A first centrifugation step in which the tubular container containing the suspension of the first cells is subjected to the first centrifugation treatment to form a first cell layer on the bottom by centrifugal force.
A second preparatory step of adding a suspension of the second cell, which is the other of the mesenchymal cells and the epithelial cells, onto the first cell layer in the tubular container.
A second centrifugation step in which the tubular container containing the suspension of the second cells is subjected to a second centrifugation to form a second cell layer laminated on the first cell layer by centrifugal force.
A step of taking out the tissue containing the first cell layer and the second cell layer from the tubular container, and
A transplantation step of transplanting the tissue taken out from the tubular container into a living body having a disease,
How to treat the disease, including.
Priority Applications (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2020167102A JP2022059393A (en) | 2020-10-01 | 2020-10-01 | Methods for producing tissue body and methods for treating disease using the tissue body |
PCT/JP2021/032632 WO2022070787A1 (en) | 2020-10-01 | 2021-09-06 | Method for producing tissue construct and method for treating diseases by using tissue construct |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2020167102A JP2022059393A (en) | 2020-10-01 | 2020-10-01 | Methods for producing tissue body and methods for treating disease using the tissue body |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JP2022059393A true JP2022059393A (en) | 2022-04-13 |
JP2022059393A5 JP2022059393A5 (en) | 2023-08-22 |
Family
ID=80950169
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2020167102A Pending JP2022059393A (en) | 2020-10-01 | 2020-10-01 | Methods for producing tissue body and methods for treating disease using the tissue body |
Country Status (2)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JP2022059393A (en) |
WO (1) | WO2022070787A1 (en) |
Family Cites Families (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4418691A (en) * | 1981-10-26 | 1983-12-06 | Massachusetts Institute Of Technology | Method of promoting the regeneration of tissue at a wound |
EP2679674B1 (en) * | 2011-02-24 | 2019-04-24 | Organ Technologies, Inc. | Method of preparing regenerated hair follicle germ for transplantation in which hair color is controlled |
US20210196861A1 (en) * | 2018-06-04 | 2021-07-01 | Organ Technologies, Inc. | Method for producing regenerated hair follicle primordium |
WO2020262554A1 (en) * | 2019-06-28 | 2020-12-30 | 京セラ株式会社 | Culture container and method for producing regenerative hair follicle germ using culture container |
-
2020
- 2020-10-01 JP JP2020167102A patent/JP2022059393A/en active Pending
-
2021
- 2021-09-06 WO PCT/JP2021/032632 patent/WO2022070787A1/en active Application Filing
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
WO2022070787A1 (en) | 2022-04-07 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
KR101840078B1 (en) | Method for producing regenerative organ primordium provided with guide for transplantation, composition containing regenerative organ primordium provided with guide for transplantation produced thereby, and method for transplanting regenerative organ primordium provided with guide for transplantation | |
JP5887333B2 (en) | Method for producing regenerated hair follicle primordium for transplantation with controlled hair color, composition containing regenerated hair follicle primordium for transplantation, and method for transplanting the same | |
CN108138133B (en) | Method for producing aggregate of regenerative hair follicle germ, hair follicle tissue-containing sheet, and method for producing hair follicle tissue-containing sheet | |
AU2008219982B2 (en) | Method for production of tooth, and tooth produced by the method | |
JP7142840B2 (en) | Cell-containing hydrogel and method for producing the same | |
JP2024051005A (en) | Method for producing regenerated hair follicle primordia | |
JP6999132B2 (en) | Method for producing cultured skin having regenerated hair follicle primordium and its use | |
WO2022070787A1 (en) | Method for producing tissue construct and method for treating diseases by using tissue construct | |
JP7403734B2 (en) | Fiber carrier-cell-containing gel complex, method for producing the same, and kit for producing fiber carrier-cell-containing gel complex | |
CN109415695A (en) | Hair regeneration is with cell embedding pearl and preparation method thereof and hair regeneration kit | |
WO2023058429A1 (en) | Method for producing cell aggregate having hair regeneration ability, and method related thereto | |
JP7303962B2 (en) | Culture vessel and method for producing cell-carrier complex | |
RU2789860C2 (en) | Membrane for separating stem cells from biological samples, a method for obtaining the specified membrane and a method and device for separation, including the specified membrane | |
JP2023056592A (en) | Hair-like tissue for transplant and method related thereto |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20230814 |
|
A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20230814 |