JP2021532735A - がんの非侵襲的検出のためのdnaメチル化マーカーとその使用 - Google Patents

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Abstract

患者由来の生体物質中のDNAにあるがんを検出し、他の組織の無細胞DNAおよび血球DNAと区別するために、ヒトゲノム(CG ID)内の少数の精巧なDNAメチル化位置の組み合わせを見つけるための「バイナリーカテゴリー区別」法である。腫瘍DNAの起源の組織を検出する別の方法は、ヒトゲノム(CG ID)の固有のDNAメチル化位置の組み合わせを使用する。腫瘍DNAに由来するCG IDの組み合わせは、がんを正確に検出するために、特定のCG IDの組み合わせのDNAメチル化を測定し、「メチル化スコア」を導出することにより、開示されている。少量の血漿から、多重化された次世代シーケンスメチル化アッセイ、パイロシーケンスアッセイそしてメチル化特異的PCRを使用して、CG IDを使用してがんを予測するためのキットである。生物学的材料を使用するさまざまな方法が、他にがんの臨床的証拠がない人のがんの予測につながる。【選択図】図1

Description

本発明は、ヒトDNA特に分子診断の分野におけるDNAメチル化シグネチャに関する。
がんは人間の主要な死因になっている。がんの早期発見は、治癒率を大幅に改善し、患者とその家族および医療システムへの甚大な個人的および経済的コストを削減できる。例えば、肝細胞がん(HCC)は、世界で5番目に多いがんである(El−Serag、2011年)。これは特にアジアで蔓延しており、その発生率はB型肝炎が蔓延している地域で最も高く、因果関係の可能性を示している(Flores&Marrero、2014年)。慢性肝炎患者などの高リスク集団のフォローアップおよび慢性肝炎からHCCへの移行の早期診断は、治癒率を改善するだろう。肝細胞がんの生存率は、ほとんどの場合末期に診断されるため、現在非常に低い。早期に診断されれば、肝臓がんは80%を超える治癒率で効果的に治療できる。イメージングの進歩により、HCCの非侵襲的検出が改善された(Tan、Low、&Thng、2011;Valente et al.、2014)。しかし、α−フェトプロテインなどの単一タンパク質を用いたイメージングやイムノアッセイを含む現在の診断方法では、HCCを早期に診断できないことがよくある(Flores&Marrero、2014年)。これらの課題はHCCに限定されず、他のがんにも共通している。例えば、乳がんと大腸がんの早期発見は、罹患率と死亡率、および公衆衛生システムと保険会社のコストを劇的に削減する可能性がある。さらに、膵臓がんなどの特定のがんは、ほぼ常に遅れて検出され、その結果、事実上一定の死亡率を生じる。イメージングの進歩によりがんの早期発見が改善されているが、MRIなどの高解像度イメージングは高価であり、高度な訓練を受けた人材が必要であり、多くの場所では利用できない。それはまだ多数の集団をスクリーニングする方法に進化していない。がんによる罹患率と死亡率の低減に影響を与えるには、集団の定期的なスクリーニングのために広い地理的領域で使用できる、非侵襲的で強力にもかかわらず低コストの方法を開発する必要がある。主な課題は、固形腫瘍が内臓に隠れ、臨床症状を示すずっと前に進化することである。しかしながら、腫瘍材料を非侵襲的に得ることは可能である。
腫瘍DNAがシステムに放出され、血漿で見つけられ得ること(Warton&Samimi、2015)、そして尿や唾液などのその他の分泌された体液や糞中に見つかる可能性があることは、今では広く確立されている。腫瘍DNAの分子特性を測定することにより、体液に見つかったDNAが腫瘍に由来することを確認できる(Zhai et al.、2012)。腫瘍細胞は腫瘍DNAと正常細胞DNAを区別できる突然変異を発生させるが、起こり得る突然変異の数は膨大であり、すべての腫瘍で一般的な突然変異が起こるわけではない(Dominguez−Vigil、Moreno−Martinez、Wang、Roehrl、&Barrera−Saldana、2018)。
DNAの共有結合修飾であるDNAメチル化は、ゲノム機能のエピジェネティック制御の主要なメカニズムであり、腫瘍内で遍在的に変化している(Aguirre−Ghiso、2007;Baylin et al.、2001;Ehrlich、2002;Issa et al.、1993)。腫瘍のDNAメチル化プロファイルは、腫瘍の分類、予後、および化学療法に対する反応の予測のための強力なツールとなる可能性がある(Stefansson et al.、2014)。早期診断で腫瘍DNAメチル化を使用することの主な欠点は、疑わしい腫瘍の侵襲的手順と解剖学的視覚化が必要なことである。循環腫瘍細胞は非侵襲的な腫瘍DNAの供給源であり、腫瘍抑制遺伝子のDNAメチル化を測定するために使用される(Radpour et al.、2011)。HCC
DNAの低メチル化は患者の血液で検出可能であり(Ramzy、Omran、Hamad、Shaker、&Abboud、2011)、最近ゲノムワイドバイサルファイトシーケンス(bisulfite sequencing)が、HCC患者の血漿中の低メチル化DNAを検出するために適用された(Chan et al.、2013)。ただし、特にがんの初期段階では、この情報源は限られており、DNAメチル化プロファイルは宿主(host)のDNAメチル化プロファイルによって混同されている。ゲノムワイドバイサルファイトシーケンスは比較的費用のかかる手順であり、重要なバイオインフォマティクス分析を必要とするため、スクリーニングツールとしては実行不可能である。したがって、課題は、腫瘍DNAと非腫瘍DNAを確実に区別できる少数のCGを描き、広範で多様な地理的領域の幅広い集団のスクリーニングを可能にする低コストハイスループットアッセイを開発することである。最近、いくつかのグループが、がんと正常なDNAおよび血中DNAのゲノムワイドなDNAメチル化マップの比較分析を実施した(Zhai et al.、2012)。ただし、これらのアプローチの主な課題は、先験的に予期しないさまざまなレベルで血液中に見られる他の組織からの無細胞DNAを考慮に入れていないことである。がん組織と同様のメチル化プロファイルを持つ別の組織からのDNAの混入は、偽陽性を引き起こす可能性がある。さらに、過去のアプローチでは、正常組織とがん組織におけるDNAメチル化を定量的に比較している。この定量的な違いは、腫瘍DNAが他の非形質転換組織からの異なる未知の量のDNAと混合されると希釈され、偽陰性を引き起こす可能性がある。現在の方法におけるこれらの欠陥は、本発明の主題において開示される異なるアプローチを必要とする。
がんを検出するためのシステムと方法の使用に関連するさらなる出版物は次のとおりである:Grigg G、Clark S。ゲノムDNAの5−メチルシトシン残基のシーケンス。Bioessays。1994年6月;l6(6):431−6、431;Zeschnigk M、Schmitz B、Dittrich B、Buiting K、Horsthemke B、Doerfler W。ヒトのゲノムにインプリントされたセグメント:ゲノムシーケンス法で決定されたプラダー・ウィリー/アンジェルマン症候群領域の異なるDNAメチル化パターン。Hum Mol Genet。1997年3月;6(3):387−95;Feil R、Charlton J、Bird A P、Walter J、Reik W。個々の染色体のメチル化分析:バイサルファイトゲノムシーケンスのための改良されたプロトコル。Nucleic Acids Res。
1994年2月25日;22(4):695−6;Martin V、Ribieras S、Song−Wang X、Rio M C、Dante R。ゲノムシーケンスは、pS2遺伝子の5’領域のDNA低メチル化とヒト乳がん細胞株におけるその発現との相関を示す。Gene。1995年5月19日;l57(l−2):26l−4;WO
97 46705、WO 95 15373およびWO 45560。
Aguirre−Ghiso,J.A.(2007)。がん休眠のモデル、メカニズム、および臨床的証拠。Nat Rev Cancer、7(11)、834−846。doi:l0.l038/nrc2256
Baylin,S.B.、Esteller,M.、Rountree,M.R.、Bachman,K.E.、Schuebel,K.、&Herman,J.G.(2001)。がんにおけるDNAメチル化、クロマチン形成および遺伝子発現の異常なパターン。Hum Mol Genet、10(7)、687−692。
Breitbach,S.、Tug,S.、Helmig,S.、Zahn,D.、Kubiak,T.、Michal,M.、...Simon,P.(2014)。未精製血漿からの無細胞循環DNAの直接定量。PLoS One、9(3)、e87838。doi:l0.l37l/journal.pone.0087838
Chan,K.C.、Jiang,P.、Chan,C.W.、Sun,K.、Wong,J.、Hui,E.P.、...Lo,Y.M.(2013)。血漿DNAバイサルファイトシーケンスによるがん関連ゲノムワイドの低メチル化とコピー数異常の非侵襲的
検出。Proc Natl Acad Sci U S A、110(47)、18761−18768。doi:l0.l073/pnas.l3l3995110
Dominguez−Vigil,I.G.、Moreno−Martinez,A.K.、Wang,J.Y.、Roehrl,M.H.A.、&Barrera−Saldana,H.A.(2018)。がんとの闘いにおけるリキッドバイオプシーの夜明け。Oncotarget、9(2)、2912−2922。doi:l0.18632/oncotarget.23l3l
Ehrlich,M.(2002)。がんにおけるDNAメチル化:多すぎるが少なすぎる。Oncogene、21(35)、5400−5413。
El−Serag,H.B.(2011)。肝細胞がん。N Engl J Med、365(12)、1118−1127。doi:10.1056/NEJMra1001683
Flores,A.、&Marrero,J.A.(2014)。肝細胞がんの最新動向:診断と治療に焦点を当てる。Clin Med Insights Oncol、8、71−76.doi:l0.4l37/CMO.S9926
Issa,J.P.、Vertino,P.M.、Wu,J.、Sazawal,S.、Celano,P.、Nelkin,B.D.、...Baylin,S.B.(1993)。結腸がんの進行中のシトシンDNA−メチルトランスフェラーゼ活性の増加。J
Natl Cancer Inst、85(15)、1235−1240。
Luczak,M.W.、&Jagodzinski,P.P.(2006)。がん進行におけるDNAメチル化の役割。Folia Histochem Cytobiol、44(3)、143−154
Radpour,R.、Barekati,Z.、Kohler,C.、Lv,Q.、Burki,N.、Diesch,C.、...Zhong,X.Y.(2011)。乳がんの血液検査を開発するための重要な調節経路に関与する腫瘍抑制遺伝子の高メチル化。PLoS One、6(1)、el6080。doi:l0.l37l/journal.pone.00l6080
Ramzy,II,Omran,D.A.、Hamad,O.、Shaker,O.、&Abboud,A.(2011)。肝細胞がんの予後マーカーとしての血清LINE−1低メチル化の評価。Arab J Gastroenterol、12(3)、139−142。doi:l0.l0l6/j.ajg.20l1.07.002
Stefansson,O.A.、Moran,S.、Gomez,A.、Sayols,S.、Arribas−Jorba,C.、Sandoval,J.、...Esteller,M.(2014)。生物学的に区別される乳がんのサブタイプのDNAメチル化に基づく定義。Mol Oncol。doi:l0.l0l6/j.molonc.20l4.l0.0l2
Tan,C.H.、Low,S.C.、&Thng,C.H.(2011)。肝細胞がんの画像診断に関するAPASLおよびAASLDコンセンサスガイドライン:レビュー。Int J Hepatol、2011、519783。doi:10.4061/2011/519783
Valente,S.、Liu,Y.、Schnekenburger,M.、Zwergel,C.、Cosconati,S.、Gros,C.、...Mai,A.(2014)。がん幹細胞を含むがんで活性化するヒトDNAメチルトランスフェラーゼの選択的非ヌクレオシド阻害剤。J Med Chem、57(3)、701−713。doi:l0.l02l/jm40l2627
Warton,K.、&Samimi,G.(2015)。がんの診断における無細胞循環DNAのメチル化。Front Mol Biosci、2、13。doi:l0.3389/fmolb.20l5.000l3
Xu,R.H.、Wei,W.、Krawczyk,M.、Wang,W.、Luo,H.、Flagg,K.、...Zhang,K.(2017)。肝細胞がんの診断と予
後のための循環腫瘍DNAメチル化マーカー。Nat Mater、16(11)、1155−1161。doi:l0.l038/nmat4997
Zhai,R.、Zhao,Y.、Su,L.、Cassidy,L.、Liu,G.、&Christiani,D.C.(2012)。食道腺がんおよびバレット食道における無細胞血清DNAのゲノムワイドなDNAメチル化プロファイリング。Neoplasia、14(1)、29−33。
請求される主題の実施形態は、がんが、任意の正常組織および血球のDNAメチル化プロファイルとは異なる、一連の「カテゴリー的に」区別されるDNAメチル化シグネチャに関連付けられることを示す。これらのサイト(site)は、がんと他の組織との間に二元的な分化を作り、これにより、これらのサイトはがんでのみメチル化され、他のがんでは完全にメチル化されない。したがって、ディープ次世代シーケンスを使用して、メチル化の正常な細胞DNAプロファイルのバックグラウンドにあるがん細胞の数個の分子さえも検出することが可能である。本発明の主題の実施形態は、他の組織からの無細胞DNAの高いバックグラウンド上でさえ、無細胞腫瘍DNAの検出を可能にし、したがって、例えば、唾液、血漿、尿、糞便など体液から抽出された無細胞(CF)DNAを使用するがんの早期検出に特に適している。実施形態はまた、パップテストなどの組織スミアならびにバイオプシーおよび針バイオプシーにおけるがんの早期検出を可能にする。従来技術での以前の分析では、同じ組織と血液の正常細胞とがん細胞、およびDNAメチル化レベルが量的に異なる派生サイト(site)のみが比較されていた(Xu et al.、2017)。ただし、このような先行技術の分析で発見されたサイトは、他の組織のCF
DNAと混合した場合、CF腫瘍DNAを検出できない(中山大学がん病院のHCCのctDNAマーカーについては、図2を参照する)。本発明請求の主題の一実施形態は、すべての組織ではメチル化されていないが、特定のがんではメチル化されているユニークなサイトのセットを明らかにしている。別の実施形態は、次世代シーケンシング、MeDIPアレイ、MeDIPシーケンスなどによって得られたゲノムワイドなDNAメチル化データのさまざまなソースを使用して、「バイナリーカテゴリー区別(BCD)法」(binary−categorical differentiation method)と呼ばれるがん、他の組織および他の疾患におけるカテゴリー的に区別されるメチル化サイトを発見する方法を明らかにする。一実施形態は、ゲノムワイドデータの発見セットにおけるa.肝細胞がん(HCC)、b.肺がん、c.前立腺がん、d.乳がん、e.大腸がん、f.頭頸部扁平上皮がん(HNSC)、g.膵臓がん、h.脳がん(膠芽腫)、i.胃がん、j.卵巣がん、k.子宮頸がん、l.食道がん、m.膀胱がん、n.腎臓がん、o.精巣がん、p.一般的な固形腫瘍、q.血液がんのプロファイルの検出のための「カテゴリー」DNAメチル化サイトの組み合わせを明らかにする。別の実施形態はまた、起源の組織によって腫瘍を区別する「カテゴリー」DNAメチル化サイトの組み合わせを明らかにする。この実施形態は、組織特異性が低いメチル化CF DNAを検出するための先行技術の方法とアッセイを区別する。実施形態は高い感度および特異性で、何百人もの患者からのDNAメチル化データならびに腫瘍の起源の組織におけるがんの検出のためのポリジーンDNAメチル化アッセイを検証する。本発明は、ターゲット特異的プライマーとそれに続くバーコードプライマーによる逐次増幅、および単一の次世代Miseqシーケンス反応におけるマルチプレックスシーケンス、血漿、唾液、尿などの少量の体液からのデータ抽出とメチル化の定量化により、何百もの人々のCG IDのポリジーンセットにおけるDNAメチル化を同時に正確に測定する方法を開示する。本発明の主題の別の実施形態はまた、パイロシーケンスアッセイまたはメチル化特異的PCRを使用する、前記DNAメチル化CG IDのメチル化の測定を開示する。別の実施形態は、がんを有する人を健康な人から区別する、「カテゴリー」またはポリジーン加重メチル化スコアのいずれかの計算を開示する。別の実施形態は、血漿、尿、糞便、組織バイオプシーまたは組織スワブからがんの他の臨床的証拠がない人のがんの予測に至る新規プロセスを開示す
る。別の実施形態は、がんならびに、細胞死およびアルツハイマー病およびニューロンの他の神経変性疾患、心筋細胞の心臓病などのCF DNAの放出を含む他の疾患を検出するために当業者によって使用され得る。実施形態に記載されているDNAメチル化マーカー(CG ID)は、下記に利用される。a.定期的な「健康診断」による、すなわち「健康な」人のがんの非侵襲的早期発見。b.HCCのリスクが高い慢性肝炎患者や肺がんのリスクが高い喫煙者などの、「リスクの高い」人の監視。c.がん治療を受けている患者の治療への反応を監視し、再発または転移を検出。
実施形態は、本明細書に開示されるDNAメチル化測定方法に基づいて、ポリジーンまたはカテゴリースコアを使用して未知のサンプルのがんを検出する有用性を実証する。開示された実施形態は、体液、糞便、尿、および任意のがんの組織または罹患組織におけるがんを検出するために、例えば次世代バイサルファイトシーケンス(bisulfite
sequencing)、Illumina Epicマイクロアレイ、キャプチャーシーケンス、メチル化DNA免疫沈降(MeDIP)メチル化特異的PCR、および利用可能になるメチル化測定法など、当業者が利用できるメチル化分析の方法を使用することで、当業者によって使用され得る。
実施形態はまた、次世代バイサルファイトシーケンス、MeDipシーケンス、イオントレントシーケンス、Epicマイクロアレイなどに続いて、疾患の非侵襲的検出に使用される特定の高感度マーカーを発見するためのバイナリーカテゴリー区別(BCD)法の分析など、ゲノムワイドシーケンスのために当業者が利用可能な任意の方法を使用して、他のがんおよび疾患の新しい「ポリジーン」カテゴリーDNAメチル化マーカーの発見の可能性を開示する。
本発明の主題の実施形態は、以下を含む。
第1の態様では、実施形態は、がんの早期検出のために、血漿などの体液中の無細胞DNAにおけるがんのポリジーンDNAメチル化マーカーを提供し、前記ポリジーンDNAメチル化マーカーセットは、本明細書に開示されている「バイナリーカテゴリー区別(BCD)分析」を使用して、Illumina 450KやEPICアレイ、ゲノムワイドバイサルファイトシーケンス、メチル化DNA免疫沈降(MeDIP)シーケンス、またはオリゴヌクレオチドアレイとのハイブリダイゼーションなどのマッピング方法によって得られたゲノム全体のDNAメチル化から得られる。
他の実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液CF DNAを使用した肝臓がん肝細胞がん(HCC)の早期検出のために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストのCG IDの組み合わせ(または表1の下に例として示される本リストの短いサブセット)である。
Figure 2021532735
検出するためのサブセット:
cg02012576,cg03768777,cg24804544,cg05739190
他の実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液DNAを使用してがんの起源をHCCとして特定し、そして他の10種の一般的な固形腫瘍がんと区別するために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストのCG IDの組み合わせまたは本リストの短いサブセット(表2の下に例として示される)である。
Figure 2021532735
特異性(specificity、スペック)のためサブセット:
cg14126493
他の実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液CF DNAを使用した肺がんの早期検出のために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストのCG IDの組み合わせまたは本リストの短いサブセット(表3の下に例として示される)である。
Figure 2021532735
検出するためのサブセット:
cg04223424,cg23141355
他の実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液DNAを使用してがんの起源を肺がんとして特定し、そして他の10種の一般的な固形腫瘍がんと区別するために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストのCG IDの組み合わせまたは本リストの短いサブセット(表4の下に例として示される)である。
Figure 2021532735
スペックのためのサブセット:
cg05917732, cg25470077
他の実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液CF DNAを使用して、前立腺がんを早期に検出し、そしてがんの起源を前立腺がんとして特定し、ならびに他の16種の一般的な固形腫瘍がんと区別するために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストのCG IDの組み合わせ(または表5の下に例として示される本リストの短いサブセット)である。
Figure 2021532735
検出_スペックのためのサブセット:
cg14283569
[上記の表に示された4つの組み合わせのサブセットである]
他の実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液CF DNAを使用して、乳がんを早期に検出するために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストのCG IDの組み合わせまたは本リストの短いサブセット(表6の下に示される例など)である。
Figure 2021532735
検出するためのサブセット:
cg13031251,cg09734791,cg09695735,cg03637878
他の実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液DNAを使用してがんの起源を乳がんとして特定し、そして他の10種の一般的な固形腫瘍がんと区別するために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストのCG IDの組み合わせまたは本リストの短いサブセット(表7の下に例として示される)である。
Figure 2021532735
スペックのためのサブセット:
cg03113878,cg20180843
他の実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液CF DNAを使用して、大腸がん(CRC)を早期に検出し、そしてがんの起源を大腸がんとして特定し、ならびに他の16種の一般的な固形腫瘍がんと区別するために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストのCG IDの組み合わせまたは本リストの短いサブセット(表8の下に例として示される)である。
Figure 2021532735
検出−スペックのためのサブセット:
cg09854653,cg01566242
他の実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液CF DNAを使用して、膵臓がんを早期に検出するために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストのCG
IDの組み合わせまたは本リストの短いサブセット(表9の下に例として示される)である。
Figure 2021532735
検出するためのサブセット:
cg25024074,cg15386964,cg16232979
他の実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液DNAを使用してがんの起源を膵臓がんとして特定し、そして他の10種の一般的な固形腫瘍がんと区別するために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストのCG IDの組み合わせまたは本リストの短いサブセット(表10の下に例として示される)である。
Figure 2021532735
スペックのためのサブセット:
cg01237565,cg08182975,cg20983577,cg25591377
他の実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液CF DNAを使用して、脳がん(膠芽腫)を早期に検出し、そしてがんの起源を脳がん(膠芽腫)として特定し、ならびに他の10種の一般的な固形腫瘍がんと区別するために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストのCG IDの組み合わせまたは本リストの短いサブセット(表11の下に例として示される)である。
Figure 2021532735
検出−スペックのためのサブセット:
cg19929355
他の実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液CF DNAを使用して、胃(stomach)[胃(gastric)]がんを早期に検出するために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストのCG IDの組み合わせまたは本リストの短いサブセット(表12の下に例として示される)である。
Figure 2021532735
検出するためのサブセット:
cg05611779,cg09734791,cg15760257
他の実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液DNAを使用してがんの起源を胃がんとして特定し、そして他の10種の一般的な固形腫瘍がんと区別するために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストのCG IDの組み合わせまたは本リストの短いサブセット(表13の下に例として示される)である。
Figure 2021532735
スペックのためのサブセット:
cg0511779,cg19235339
他の実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液CF DNAを使用して、卵巣がんを早期に検出するために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストのCG
IDの組み合わせまたは本リストの短いサブセット(表14の下に例として示される)である。
Figure 2021532735
検出するためのサブセット:
cg24339193,cg22694l53,cg11252337,cg21210985
他の実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液CF DNAを使用してがんの起源を卵巣がんとして特定し、そして他の10種の一般的な固形腫瘍がんと区別するために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストのCG IDの組み合わせまたは本リストの短いサブセット(表15の下に例として示される)である。
Figure 2021532735
スペックのためのサブセット:
cg07068768,cg19846609
他の実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液CF DNAを使用して、子宮頸
がんを早期に検出するために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストのCG IDの組み合わせまたは本リストの短いサブセット(表16の下に例として示される)である。
Figure 2021532735
検出するためのサブセット:
cg00757182,cg01601746
他の実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液DNAを使用してがんの起源を子宮頸がんとして特定し、そして他の10種の一般的な固形腫瘍がんと区別するために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストのCG IDの組み合わせまたは本リストの短いサブセット(表17の下に例として示される)である。
Figure 2021532735
スペックのためのサブセット:
cg07066594,cg09260640,cg1296l842
他の実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液CF DNAを使用して、頭頸部扁平上皮がん(HNSC)を早期に検出するために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストのCG IDの組み合わせまたは本リストの短いサブセット(表18の下に例として示される)である。
Figure 2021532735
検出するためのサブセット:
cg07900968,cg20334243,cg27420520
他の実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液DNAを使用してがんの起源を頭頸部扁平上皮がん(HNSC)として特定し、そして他の10種の一般的な固形腫瘍がんと区別するために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストのCG IDの組み合わせまたは本リストの短いサブセット(表19の下に例として示される)である。
Figure 2021532735
スペックのためのサブセット:
cg18006328,cg19287220
他の実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液CF DNAを使用して、食道がんを早期に検出するために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストのCG
IDの組み合わせまたは本リストの短いサブセット(表20の下に例として示される)である。
Figure 2021532735
検出するためのサブセット:
cg03280624,cg03735888,cg09734791,cg27420520
一実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液DNAを使用してがんの起源を食道がんとして特定し、そして他の10種の一般的な固形腫瘍がんと区別するために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストのCG IDの組み合わせまたは本リストの短いサブセット(表21の下に例として示される)である。
Figure 2021532735
スペックのためのサブセット:
Cg09556952,cg12473285
他の実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液CF DNAを使用して、膀胱がんを早期に検出するために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストのCG
IDの組み合わせまたは本リストの短いサブセット(表22の下に例として示される)である。
Figure 2021532735
検出するためのサブセット:
cg04223424,cg10723962,cg25024074
他の実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液DNAを使用してがんの起源を膀胱がんとして特定し、そして他の10種の一般的な固形腫瘍がんと区別するために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストのCG IDの組み合わせまたは本リストの短いサブセット(表23の下に例として示される)である。
Figure 2021532735
スペックのためのサブセット:
cg13544006
他の実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液DNAを使用して、腎臓(renal)[腎臓(kidney)]がんを早期に検出し、がんの起源を腎臓がんとして特定し、そして他の10種の一般的な固形腫瘍がんと区別するために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストのCG IDの組み合わせまたは本リストの短いサブセット(表24の下に例として示される)である。
Figure 2021532735
検出 スペックのためのサブセット:
cg08884571,cg00011225,cg00011225
他の実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液CF DNAを使用して、精巣がんを早期に検出し、がんの起源を精巣がんとして特定し、そして他の10種の一般的な固形腫瘍がんと区別するために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストのCG IDの組み合わせまたは本リストの短いサブセット(表25の下に例として示される)である。
Figure 2021532735
検出とスペックのためのサブセット:
cg14531093,cg25159927
他の実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液CF DNAを使用して、13種の最も一般的な固形腫瘍の1つを早期に検出するために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストのCG IDの組み合わせまたは本リストの短いサブセット(表26の下に例として示される)である。
Figure 2021532735
検出するためのサブセット:
cg10723962,cg15759056,cg24427504,cg25024074
他の実施形態では、白血球、血漿CF DNAまたは他の体液CF DNAを使用して、AML、CLLなどの血液がんを早期に検出するために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、表27に示されるようなゲノムワイドなDNAメチル化データに対してのBCD法によって描かれたCG IDの組み合わせ(または表27の下に示される本組み合わせの短いサブセット)である。
Figure 2021532735
検出−スペックのためのサブセット:
cg18658397,cg18780412,cg20439288,cg22828045,cg25375340
他の実施形態では、血漿CF DNAまたは他の体液CF DNAを使用して、黒色腫を早期に検出し、がんの起源を黒色腫として特定し、そして他の16種一般的な固形腫瘍がんと区別するために、ポリジーンDNAメチル化マーカーは、以下のリストに示されるCG IDの組み合わせ(または表28の下に例として示される本リストの短いサブセット)である。
Figure 2021532735
検出−スペックのためのサブセット:
cg15307891,cg18866529,cg27084903
本発明の主題の別の態様では、ポリジーンDNAメチル化マーカーのDNAメチル化測定値を検出するための手段および試薬を含む、がんを検出するためのキットおよびプロセスが提供される。
一実施形態では、表1および表2のCG IDのDNAメチル化測定値のための手段および試薬を含む、肝細胞がんを検出するためのキットが提供される。
別の実施形態では、表3および表4のCG IDのDNAメチル化測定値のための手段および試薬を含む、肺がんを検出するためのキットが提供される。
別の実施形態では、表5のCG IDのDNAメチル化測定値を検出するための手段および試薬を含む、前立腺がんを検出するためのキットが提供される。
別の実施形態では、表6および表7のCG IDのDNAメチル化測定値を検出するための手段および試薬を含む、乳がんを検出するためのキットが提供される。
別の実施形態では、表8のCG IDのDNAメチル化測定値のための手段および試薬を含む、大腸がんを検出するためのキットが提供される。
別の実施形態では、表9および表10のCG IDのDNAメチル化測定値を検出するための手段および試薬を含む、膵臓がんを検出するためのキットが提供される。
さらに別の実施形態では、表11のCG IDのDNAメチル化測定値を検出するための手段および試薬を含む、脳がんを検出するためのキットが提供される。
別の実施形態では、表12および表13のCG IDのDNAメチル化測定値を検出するための手段および試薬を含む、胃がんを検出するためのキットが提供される。
別の実施形態では、表14および表15のCG IDのDNAメチル化測定値を検出するための手段および試薬を含む、卵巣がんを検出するためのキットが提供される。
別の実施形態では、表16および表17のCG IDのDNAメチル化測定値を検出するための手段および試薬を含む、子宮頸がんを検出するためのキットが提供される。
別の実施形態では、表18および表19のCG IDのDNAメチル化測定値を検出するための手段および試薬を含む、頭頸部扁平上皮がん(HNSC)を検出するためのキットが提供される。
別の実施形態では、表20および表21のCG IDのDNAメチル化測定値を検出するための手段および試薬を含む、食道がんを検出するためのキットが提供される。
別の実施形態では、表22および表23のCG IDのDNAメチル化測定値を検出するための手段および試薬を含む、膀胱がんを検出するためのキットが提供される。
別の実施形態では、表24のCG IDのDNAメチル化測定値を検出するための手段および試薬を含む、腎臓がんを検出するためのキットが提供される。
別の実施形態では、表25のCG IDのDNAメチル化測定値を検出するための手段および試薬を含む、精巣がんを検出するためのキットが提供される。
他の実施形態では、表26のCG IDのDNAメチル化測定値を検出するための手段および試薬を含む、13種の一般的ながん(膀胱、脳、乳房、子宮頸部、大腸、食道、HNSC、HCC(肝臓)、肺、卵巣、膵臓、前立腺、胃)のうちの1つを検出するための
キットが提供される。
別の実施形態では、表27の血液がんの異なるサブタイプに特異的であるBCD法によって検出されたCG IDのDNAメチル化測定値を検出するための手段および試薬を含む、AMLおよびCLLなどの血液がんを検出するためのキットが提供される。
別の実施形態では、表28のCG IDのDNAメチル化測定値を検出するための手段および試薬を含む、黒色腫を検出するためのキットが提供される。
別の実施形態では、DNAパイロシーケンスメチル化アッセイは、上記にリストされるCG IDを使用することにより、例えば以下に開示されるプライマーおよびパイロシーケンス反応の標準条件を使用することにより、血漿CF DNAなどの体液中のHCCを予測するために使用される。
cg02012576
フォワード:
Figure 2021532735
リバース (ビオチン標識された):
Figure 2021532735
配列:
Figure 2021532735
cg03768777(VASH2)
フォワード:
Figure 2021532735
リバース (ビオチン標識された):
Figure 2021532735
配列:
Figure 2021532735
cg05739190(CCNJ)
フォワード:
Figure 2021532735
リバース (ビオチン標識された):
Figure 2021532735
配列:
Figure 2021532735
cg24804544(GRID2IP)
フォワード(ビオチン標識された):
Figure 2021532735
リバース:
Figure 2021532735
配列:
Figure 2021532735
がんの起源の組織の特異性は、以下のCGID cg02012576(HPX)のDNAメチル化を測定することによって決定される。
フォワード(ビオチン標識された):
Figure 2021532735
リバース (ビオチン標識された):
Figure 2021532735
配列:
Figure 2021532735
別の実施形態では、ポリジーン多重増幅バイサルファイトシーケンスDNAメチル化アッセイ(polygenic multiplexed amplicon bisulfite sequencing DNA methylation assay)が、上記のCG IDを使用することにより、血漿CF DNAなどの体液中のがんを予測するために使用される。例えば、以下に開示されているプライマーと標準条件を使用して前立腺がんを予測する。該標準条件は、バイサルファイト変換、ターゲット特異的プライマー(PCR1)とそれに続くバーコードプライマー(PCR2)による逐次増幅、および単一の次世代Miseqシーケンサー(Illumina)でのマルチプレックスシーケンス、Illuminaソフトウェアを使用した逆多重化(demultiplexing)、Methylkitなどのメチル化分析の標準的な方法を使用したデータ抽出とメチル化の定量化、その後の加重DNAメチル化(weighted DNA methylation)スコアの計算と、血漿、唾液または尿などの少量の体液からのがんの予測を含む。
第一のPCRで前立腺がんを検出するステップは次のとおりである:
CGID cg02879662の場合
フォワードプライマー:
Figure 2021532735
リバースプライマー:
Figure 2021532735
CGID cg16232979の場合
フォワードプライマー:
Figure 2021532735
リバースプライマー:
Figure 2021532735
がんが前立腺に特異的に発生していることをテストするために、第一のPCRは次のように実行される:
CGID:cg14041701およびcg14498227の場合
フォワードプライマー:
Figure 2021532735
リバースプライマー:
Figure 2021532735
サンプルをバーコード化するには、次のプライマーを用いて第二のPCR反応を使用する。
フォワードプライマー:
Figure 2021532735
バーコードプライマー (リバース):
Figure 2021532735
(赤い塩基はインデックスであり、このインデックスの200のバリエーションが使用される)
他の実施形態では、受信者動作特性(ROC)アッセイは、CG IDの加重DNAメチル化測定値を使用して、がんと正常との間のしきい値を定義することによってがんを検出するために使用される。しきい値を超える/下回るサンプルは、がんとして分類される。例えば、HCCを検出するための上記のCGIDがある:
Figure 2021532735
別の実施形態では、上記にリストされるCG IDのメチル化の測定値を使用することによってがんを予測するために、階層的クラスタリング分析アッセイが使用される。
本発明の主題の別の態様では、がんおよび他の疾患を検出するためのDNAメチル化マーカーを同定する方法は、臨床サンプルから得られたDNAメチル化測定値に関して以前に開示された「バイナリーカテゴリー区別(BCD)」法で統計分析を行うステップを含む。
別の実施形態では、この方法は、サンプルから得られたDNAメチル化測定値に対して統計分析および「バイナリーカテゴリー区別(BCD)」法を実行することを含み、Illumina Beadchip 450Kまたは少なくとも1つのサンプルから抽出されたDNAのEPICアレイを実行することによって得られたDNAメチル化測定値を伴う。
別の実施形態において、DNAメチル化測定値は、サンプルから抽出されたDNAのDNAパイロシーケンス、続いて質量分析ベース(EpityperTM)、PCRベースのメチル化アッセイ、およびバイサルファイト変換されたDNAに続いて、増幅の第二のセットにおけるバーコード化、そしてIllumina次世代シーケンサーでのインデックス付きマルチプレックスシーケンスからの、本明細書に開示される、標的CG IDにまたがる領域の標的増幅の実行により得られる。
他の実施形態では、統計分析は、受信者動作特性(ROC)アッセイを含む。
他の実施形態では、統計分析は、階層的クラスタリング分析アッセイを含む。
定義
本明細書で使用されるように、「CG」という用語は、シトシンおよびグアノシン塩基を含むDNA中のジヌクレオチド配列を指す。これらのジヌクレオチドシーケンスは、人間や他の動物のDNAでメチル化される可能性がある。CG IDは、Illumina
450Kマニフェストで定義されているように、ヒトゲノムにおけるその位置を明らかにする(ここにリストされているCGの注釈は、https://bioconductor.org/packages/release/data/annotation/html/IlluminaHumanMethylation450k.db.htmlで公開され、RパッケージIlluminaHumanMethylation450k.db IlluminaHumanMethylation450k.db:Illumina Human Methylation 450k注釈データとしてインストールされている。Rパッケージバージョン2.0.9.)。
本明細書で使用されるように、診断機器または機器という用語は、1つ以上の試薬と共に使用して、例えば請求される主題の実施形態によるDNAメチル化スコアのDNAメチル化測定値を導出するために使用される診断テストを実行できる、当業者に知られている任意の機器である。
本明細書で使用されるように、「ベータ値」という用語は、式 ベータ値=メチル化C強度/(メチル化C強度+非メチル化C強度)を使用するメチル化プローブと非メチル化プローブの強度比を使用して、Illumina 450Kアレイの正規化および定量化によって導き出されたCG ID位置での推定のメチル化レベルを指す。ベータ値は0と1の間で、0は完全にメチル化されておらず、1は完全にメチル化されている。
本明細書で使用されるように、「ペナルティ付き回帰」という用語は、例えば、R統計パッケージにおける、「ペナルティ付き」が、Goeman J.J.、Cox比例ハザードモデルでのL1ペナルティ付き推定 Biometrical Journal 52(1),70−84で説明されているように、実施されるバイオマーカーのより大きなリストから結果を予測するために必要な予測因子の最小数を特定することを目的とした統計的方法を指す。
本明細書で使用されるように、「クラスタリング」という用語は、同じグループ(クラスターと呼ばれる)内の対象が、他のグループ(クラスター)より(ある意味では)互いに類似するように、対象セットをグループ化することを指す。
本明細書で使用するように、「階層的クラスタリング」という用語は、例えば、Kaufman,L.;Rousseeuw,P.J.(1990)データ内のグループの検索:クラスター分析の概要(1版)New York:John Wiley.ISBN 0−471−87876−6で説明されているように、互いにクラスターがどの程度類似(近い)または類似していない(遠い)かに基づいて「クラスター」の階層を構築する統計的方法を指す。
本明細書で使用されるように、「受信者動作特性(ROC)アッセイ」という用語は、予測因子の性能を例示するグラフィカルプロットを作成する統計的方法を指す。例えば、Hanley,James A.、McNeil,Barbara J.(1982)「
受信者操作特性(ROC)曲線下の面積の意味と使用」Radiology 143(1):29−36で説明されているように、予測の真の陽性率は、予測因子のさまざまなしきい値設定(すなわち、メチル化の異なる%)での偽陽性率に対してプロットされる。
本明細書で使用される「多変量またはポリジーン線形回帰」という用語は、CG IDのメチル化の割合などの複数の「独立変数」または「予測値」と、がんなどの「従属変数」の間の関係を推定する統計的方法を指す。この方法は、CG IDなどのいくつかの「独立変数」がモデルに含まれている場合の「結果」(がんなどの従属変数)を予測する際に、各CG IDの「重み(weight)」または係数(coefficient)を決定する。
図1は、何百人もの血液サンプルと正常組織にまたがる完全にメチル化されていないサイトの候補リストを示す。図Aは、Illumina 450Kのゲノムワイドなメチル化アレイのすべての個体(<0.l)(GSE50192)でメチル化されていない17組織にわたるCG IDが、312の個体からの血液サンプル(GSE61496)のゲノムワイドなDNAメチル化アレイの非メチル化CG IDと重複して33477個のCG IDのリストを生成したことを示している。Bは、最も強力な非メチル化CG IDの候補リストを示しており、Aの33477個のCG IDのリストは、19歳から101歳までの656人(女性および男性)の血液サンプル(GSE40279)のDNAメチル化アレイの非メチル化CG IDと重複していた。結合された部分について、これらの分析により、すべての年齢層の多くの個人の組織と血液サンプルにわたってメチル化されていない信頼度の高い28754個のCG IDのリストが生成された。これらの28754個の位置は、本発明の主題によって開示される「バイナリーカテゴリー区別(BCD)」法を使用して、がんにおいてカテゴリー的にメチル化されているが他の組織ではメチル化されていないサイトの発見に使用された。 図2は、HCCに対する現在の循環DNAマーカーの組織特異性の欠如を示す図である。図示されたヒートマップは、他の正常な組織におけるこれらのサイトのHCCとメチル化レベルのバイオマーカーとしてXu等(Xu等、2017)に候補としてリストされた10個のCG IDを示す。HCCの特定のバイオマーカーとして提案されているCG IDのいくつかは、他の組織でもメチル化されており、そして血中DNAのメチル化レベルがさまざまであることを示す。(青は0メチル化、暗赤色は100%メチル化) 図2Aは、本発明の主題の実施形態による図2の一部の分解図である。 図2Bは、本発明の主題の実施形態による図2の一部の分解図である。 図2Cは、本発明の主題の実施形態による図2の一部の分解図である。 図3は、がんDNAに対してBCD法を使用して発見されたHCC DNAメチル化マーカーの特異性を示す図である。図示されたヒートマップは、ここで説明するBCD法によってHCC DNAメチル化マーカーとして選択された4つのCG IDを示す。メチル化レベルは、がん(HCC)と正常な組織および血液との間でカテゴリー的に異なり、これにより、血液および他の組織のすべての個体で該サイトがメチル化されず、HCCで測定可能な程度にメチル化される。 図3Aは、本発明の主題の実施形態による図3の一部の分解図である。 図3Bは、本発明の主題の実施形態による図3の一部の分解図である。 図3Cは、本発明の主題の実施形態による図3の一部の分解図である。 図4は、大腸がんに対する現在のDNAメチル化マーカーのがん組織起源特異性の欠如、および本発明の主題の実施形態による「検出−スペック」法との比較を示す図である。図Aは、大腸がんのCF DNAメチル化マーカー「Epi−大腸がん」(エピゲノミクス社より販売)に含まれるSept9遺伝子のCGサイトを示しており、マーカーはがんDNAメチル化データのTCGAコレクションからのメチル化データを利用して他の多くのがんを検出するために使用できるため、大腸がんに対する特異性に欠けている(HKG−大腸がん(HKG−epiCRC)、青)。BCD法(HKG−大腸がんオレンジ)(表10)を用いて発見された大腸がんの検出のために本発明の主題で開示されるマーカー(表9)は、他の一般的な固形腫瘍がんに対して試験した場合、大腸がんに非常に特異的である。図Bと図Cは、HKG−大腸がん(HKG−epiCRC)(B)またはEpi−大腸がん(C)のいずれかのDNAメチル化マーカーを使用した、さまざまながんの異なる個人からの腫瘍DNAのDNAメチル化値の散布図である。注目すべきは、HKG−epiCRCマーカー(B)対Epi−大腸がんマーカー(C)の散在する異質なプロファイルを使用した、大腸がんと他のがんの間のDNAメチル化の厳格なカテゴリー的な違いである。 図4Aは、本発明の主題の実施形態による図4の一部の分解図である。 図4Bは、本発明の主題の実施形態による図4の一部の分解図である。 図5は、肝臓がん(HCC)の早期発見のためのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見を示す図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表を示し、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表1)および起源特定のがんを決定するためのCG ID(表2)を使用する実施形態による、HCCの検出のための4つの一連のCGIDの発見に使用された。図5の左下のパネルの図B(検出)は、1〜145(正常79名およびHCC66名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表1)のメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、HCCを有する人と正常な肝組織を有する人をカテゴリー的に区別する。右下のパネルの図Cは、8種の異なる腫瘍(表2)のデータを使用して特定の腫瘍の起源を検出する1つのCGID(表2)のメチル化スコアを示す。マーカーは、他の起源のがんとHCCをカテゴリー的に区別する。 図6は、GSE76269(n=227)からのDNAメチル化データを使用した、HCC(スペック)のポリジーンDNAメチル化マーカーの検証の図である。図Aは、肝臓がん患者227名のDNAメチル化データと正常10名を使用したHCC DNAメチル化マーカーの曲線下の領域を示すROCプロットである。図6の図Bは、HCC検出の感度、特異性、および精度を示す。図Cは、検証データセットにおけるHCCの検出の予測率を示す。 図7は、TCGAメチル化データ(n=4166)における、HCC対他のがんに対するポリジーンHKG−epi肝臓がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図7の図Aは、異なるがんを有する患者のHKG−肝臓検出/スペックマーカーDNAメチル化データの検出率を示す。HCCのほぼ完全な特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける4166人の患者のDNAメチル化データにおける、HCCのHKG−肝臓−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、HCC対他の起源のがんに対する感度と特異性である。 図8は、肺がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図8の図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表3)および起源特定のがん組織を決定するためのCG ID(表4)を使用する実施形態に開示される、肺がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図8の左下のパネルの図B(検出)は、1〜20名(正常10名および肺がん10名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表3)のメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、肺がんを有する人と正常な組織を有する人をカテゴリー的に区別する。図8の右下のパネルの図Cは、8種の異なる腫瘍(n=80)のある人からのデータを使用して特定の腫瘍の起源を検出するCGID(表4)のメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは他の起源のがんと肺がんをカテゴリー的に区別する。 図9は、TCGAメチル化データ(n=4166)における、HCC対他のがんに対するポリジーンHKG−epi肺がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図9の図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用したHKG−epi肺がん検出/スペックマーカーの検出率を示す。肺がんの特異性に注目すべきである。図9の図Bは、TCGAからの4166名の患者のDNAメチル化データにおける、肺がんのHKG−肺がん−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットを示す。図9の図Cは、肺がん対他の起源のがんに対する感度と特異性を示す。 図10は、前立腺がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図10の図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表5)および起源特定のがん組織を決定するためのCG ID(表6)を使用する実施形態に開示される、前立腺がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図10の左下のパネルの図B(検出)は、1〜15(正常5名および前立腺がん10名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表5)のメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、前立腺がんを有する人と正常な人をカテゴリー的に区別する。図10の右下のパネルの図Cは、8種の異なる腫瘍(n=80)のある人からのデータを使用して起源特定の腫瘍組織を検出するCG(表6)のメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは他の起源のがんと前立腺がんをカテゴリー的に区別する。 図11は、TCGAメチル化データ(n=4166)における、前立腺がん対他のがんに対するポリジーンHKG−epi前立腺がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図11の図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用したHKG−前立腺がん検出/スペックマーカーの検出率を示す。前立腺がんの特異性に注目すべきである。図11の図Bは、TCGAにある4166名の患者からのDNAメチル化データを使用する、肺がんのHKG−前立腺がん−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図11の図Cは、前立腺対他の起源のがんに対する感度と特異性を示す。 図12は、乳がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図12の図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表7)および起源特定のがんを決定するためのCG ID(表8)を使用する実施形態に開示される、乳がんの検出のための一連のCGの発見に使用された。図12の左下のパネルの図B(検出)は、1〜27(正常17名および乳がん10名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表7)のメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、乳がんを有する人と正常な乳組織を有する人をカテゴリー的に区別する。図12の右下のパネルの図Cは、8種の異なる腫瘍(n=80)のある人からのデータを使用して特定の腫瘍の起源を検出するCGID(表8)のメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは他の起源のがんと乳がんをカテゴリー的に区別する。 図13は、検証コーホートGSE60185(n=285)において、HKGepi乳がん−検出ポリジーンDNAメチル化マーカーが非浸潤性および浸潤性乳がんを検出する図である。図13の図Aは、239名の乳がん患者のDNAメチル化データ、17名の乳がんではない乳房形成術患者および29名の隣接組織を使用した乳がんポリジーンDNAメチル化マーカーの曲線下の領域を示すROCプロットである。すべての乳がんの感度、特異性および精度をBに示し、DCIS(非浸潤性乳管がん)、浸潤性乳がんおよび混合乳がんのサンプルの予測率を図13の図Cに示す。注目すべきは、乳がんマーカーが非常に早期の乳がん(DCIS)を検出することである。 図14は、TCGAメチル化データ(n=4166)における、乳がん対他のがんに対するポリジーンHKG−epi乳がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図14の図Aは、異なるがんを有する患者からのDNAメチル化データにおいて、HKG−epi乳がん検出/スペックマーカーの検出率を示す。乳がんの特異性に注目すべきである。図14の図Bは、TCGAにおける4166人患者のDNAメチル化データを使用して乳がんを検出するための、HKG−乳がん−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図14の図Cは、乳がん対他の起源のがんに対する感度と特異性を示す。 図15は、大腸がん(CRC)のポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図15の図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表9)および起源特定のがんを決定するためのCG ID(表10)を使用する実施形態に開示される、大腸がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図15の左下のパネルの図B(検出)は、1〜75(正常25名および大腸がん50名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG IDのメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、がんを有する人と正常な組織を有する人をカテゴリー的に区別する。図15の右下のパネルの図Cは、8種の異なる腫瘍(n=80)のある人からのDNAメチル化データを使用して腫瘍の特定の起源を検出するCGIDのメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは他の起源のがんと大腸がんをカテゴリー的に区別する。 図16は、TCGA DNAメチル化データセット(n=4166)を使用した、大腸がん対他のがんに対するポリジーンHKG−epiCRC−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図16の図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用するHKG−epiCRC検出/スペックマーカーの検出率を示す。大腸がんの特異性に注目すべきである。図16の図Bは、TCGAにおける4166名の患者からのDNAメチル化データを使用する、大腸がんのHKG−epi大腸がん−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図16の図Cは、大腸がん対他の起源のがんに対する感度と特異性を示す。 図17は、膵臓がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図17の図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表11)および起源特定のがんを決定するためのCG ID(表12)を使用する本発明に開示される膵臓がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図17の左下のパネルの図B(検出)は、1〜32(正常12名および膵臓がん20名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表11)のメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、膵臓がんを有する人と正常な組織を有する人をカテゴリー的に区別する。図17の右下のパネルの図Cは、10種の異なる腫瘍(n=100)のある人からのデータを使用して腫瘍の特定の起源を検出するCGID(表12)のメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは他の起源のがんと膵臓がんをカテゴリー的に区別する。 図18は、TCGAメチル化データ(n=4854)における、膵臓がん対他のがんに対するポリジーンHKG−epi膵臓がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図18の図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用する、HKG−epi膵臓がん検出/スペックマーカーの検出率である。膵臓がんの特異性に注目すべきである。図18の図Bは、TCGAにおける4854名の患者からのDNAメチル化データを使用する、膵臓がんのHKG−epi膵臓がん−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、膵臓がん対他の起源のがんに対する感度と特異性を示す。 図19は、脳がん(膠芽腫)のポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図19の図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表13)およびがんの特定起源を決定するためのCG ID(表13)を使用する、本発明に開示される、脳がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。左下のパネルの図B(検出/スペック)は、1〜16(正常6名および脳がん10名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表13)のメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、脳がんを有する人、110名の別のがんを有する人と正常な組織を有する人をカテゴリー的に区別する。 図20は、TCGAメチル化データ(n=4854)における、乳がん対他のがんに対するポリジーンHKG−epi脳がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用する、HKG−epi脳がん検出/スペックマーカーの検出率である。脳がんの特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける4854名の患者からのDNAメチル化データを使用する、脳がんのHKG−epi脳がん−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、TCGAデータセット(n=695)における脳がんに対する感度と特異性を示す。 図21は、胃(gastric)[胃(stomach)]がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表14)およびがんの特定起源を決定するためのCG ID(表15)を使用する、本発明に開示される胃がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図21の左下のパネルの図B(検出)は、1〜28(正常14名および胃がん20名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表14)のメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、胃がんを有する人と正常な組織を有する人をカテゴリー的に区別する。図21の右下のパネルの図C(スペック)は、10種の異なる腫瘍(n=100)のある人のポリジーンメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは他の起源のがんと胃がんをカテゴリー的に区別する。 図22は、TCGAメチル化データ(n=4817)における、胃がん対他のがんに対するポリジーンHKG−胃−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用する、HKG−epi胃がん検出/スペックマーカーの検出率である。胃がんの特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける4420名の患者からのDNAメチル化データを使用する、胃(胃がん)のHKG−epi胃がん−検出 スペック 1マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、TCGAにおける4854名の患者からのDNAメチル化データを使用する、胃がんのHKG−epi胃がん−スペック 1マーカーの特異性と感度のROCプロットである。注目すべきは、大腸がんおよび食道がんとの有意な交差反応性があり、それが共通の起源であることを証明していることである。 図23は、卵巣がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表16)および起源特定のがんを決定するためのCG ID(表17)を使用する、本発明に開示される卵巣がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図23の左下のパネルの図B(検出)は、1〜15(正常5名および卵巣がん10名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG IDのメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、卵巣がんを有する人と正常な組織を有する人をカテゴリー的に区別する。図23の右下のパネルの図Cは、11種の異なる腫瘍(n=110)のある人からのデータを使用して特定の腫瘍起源を検出するCGIDのメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは他の起源のがんと卵巣がんをカテゴリー的に区別する。 図24は、TCGAメチル化データ(n=6522)における、子宮頸がん対他のがんに対するポリジーンHKG−epi卵巣がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用する、HKG−epi卵巣がん検出/スペックマーカーの検出率である。卵巣がんの特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける4723名の患者からのDNAメチル化データにおける、卵巣がんのHKG−epi卵巣がん−検出およびスペックマーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、卵巣がんに対する感度と特異性を示す。 図25は、子宮頸がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表18)および起源特定のがんを決定するためのCG(表19)を使用する、本発明に開示される子宮頸がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図25の左下のパネルの図B(検出)は、1〜30(正常20名および卵巣がん10名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表18)のメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、子宮頸がんを有する人と正常な組織を有する人をカテゴリー的に区別する。図25の右下のパネルの図Cは、8種の異なる腫瘍(n=80)のある人からのデータを使用して腫瘍の特定起源を検出するCGID(表19)のメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは他の起源のがんと子宮頸がんをカテゴリー的に区別するが、大腸がんのいくつかの測定可能な検出に留意されたい。 図26は、TCGAメチル化データ(n=6522)における、子宮頸がん対他のがんに対するポリジーンHKG−子宮頸がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用する、HKG−子宮頸がん検出/スペックマーカーの検出率を示す。子宮頸がんの特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける4420名の患者からのDNAメチル化データを使用する、子宮頸がんのHKG−子宮頸がん−検出 スペックマーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、子宮頸がんに対する感度と特異性を示す。 図27は、頭頸部扁平上皮がん(HNSC)のポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表20)および起源特定のがんを決定するためのCG(表21)を使用する、本発明に開示されるHNSCの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図27の左下のパネルの図Bは、1〜140(がん10名、正常10名および他のがん120名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表20)のメチル化スコアの合計を示す。図Cは、実施形態においてHNSCと正常組織サンプルをカテゴリー的に区別するとともに、他の起源からのがんとHNSCをカテゴリー的に区別するポリジーンスコアを示す。 図28は、TCGAメチル化データ(n=4166)における、HNSC対他のがんに対するポリジーンHKG−epiHNSC−検出/スペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用する、HKG−epiHNSC 検出/スペックマーカーの検出率である。HNSCの特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける4166名の患者からのDNAメチル化データにおけるHNSCのHKG−epiHNSC−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、HNSC対他の起源のがんに対する感度と特異性を示す。 図29は、食道がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表22)およびがんの特定起源を決定するためのCGID(表23)を使用する、実施形態に開示される、食道がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図29の左下のパネルの図Bは、1〜15(正常6名、がん10名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表22)のメチル化スコアの合計を示す。図Cは、実施形態において食道がんと正常組織をカテゴリー的に区別するとともに、他の起源からのがんと1〜220(がん20名、他のがん190名および正常血液10名)からリストされた食道がんをカテゴリー的に区別するポリジーンスコアを示す。 図30は、TCGAメチル化データ(n=7102)における、食道がん対他のがんに対するポリジーンHKG−epi食道がん−検出/スペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用する、HKG−epi食道がん検出/スペックマーカーの検出率を示す。食道がんの特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける4166名の患者のDNAメチル化データにおけるHNSCのHKG−epi食道がん−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、食道がん対他の起源のがんに対する感度と特異性を示す。 図31は、膀胱がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表24)およびがんの特定起源を決定するためのCGID(表25)を使用する、実施形態に開示される膀胱がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図31の左下のパネルの図B(検出)は、1〜15(正常5名、膀胱がん10名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表24)のメチル化スコアの合計を示す。図31の右下のパネルの図Cは、13種の異なる腫瘍(n=130)を有する人からのデータを使用して腫瘍の特定の起源を検出するCGID(表25)のメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは、他の起源からのがんと膀胱がんとを区別する。これらのマーカーによる大腸がんの測定可能な検出も注目すべきである。 図32は、TCGA(n=4723)における膀胱がん対他のがんに対するポリジーンHKG−epiBladder−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがん(A)および膀胱がん(B)を有する患者のDNAメチル化データにおいて、HKG−epi膀胱がんスペックマーカー(A)および検出マーカー(B)の検出率を示す。図Cは、TCGAにおける4420名の患者からのDNAメチル化データを使用した、膀胱がんのHKG−epi膀胱がんスペックマーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Dは、膀胱がんのHKG−epi膀胱がん検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである(n=440)。 図33は、腎臓がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD(hypo)法を使用する、実施形態で開示された腎臓がんの検出およびがんの特定の起源の決定(表26)のための一連のCGIDの発見に使用された。図33の左下のパネルの図B(検出/スペック)は、1〜226(その他のがん180名、健康な血液10名、正常な腎臓6名、腎がん30名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表26)のメチル化スコアの合計を示す。これらの実施形態では、該ポリジーンスコアは腎臓がん、別のがんと正常な血液をカテゴリー的に区別する。 図34は、TCGA DNAメチル化データ(n=7102)を使用する、腎臓がん対他のがんおよび正常組織に対するポリジーンHKG−epi腎臓がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんからのDNAメチル化データを使用する、HKG−epiKidney 検出/スペックマーカーの検出率である。腎臓がんの特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける6367のがんのDNAメチル化データを使用する、腎臓がんのHKG−子宮頸がん−検出 スペックマーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、腎臓(renal)[腎臓(kidney)]がんに対する感度と特異性を示す。さらに注目すべきは、脳、HCCおよび精巣がんとのクロスオーバーである。 図35は、精巣がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD(hypo)法を使用する実施形態で開示された精巣がんの検出および起源特定のがんの決定(表27)のための一連のCGIDの発見に使用された。図35の左下のパネルの図B(検出/スペック)は、1〜226(精巣がん10名、その他のがん180名、健康な血液10名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表27)のメチル化スコアの合計を示す。これらの実施形態では、該ポリジーンスコアは精巣がん、正常な血液と別のがんをカテゴリー的に区別する。 図36は、TCGAメチル化データ(n=7102)における、精巣がん対他の正常な組織およびがんに対するポリジーンHKG−epi精巣がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんを有する患者からのDNAメチル化データを使用する、HKG−epi精巣がん 検出/スペックマーカーの検出率を示す。精巣がんの特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける6367名の患者のDNAメチル化データを使用する、精巣がんのHKG−epi精巣がん−検出 スペックマーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、精巣がんに対する感度と特異性を示す。 図37は、13種の一般的ながんの汎がんポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表28)を使用する実施形態で開示された13種の一般的ながん(表28)(膀胱がん、脳がん、乳がん、子宮頸がん、大腸がんCRC、食道がん、肝臓がん、肺がん、卵巣がん、膵臓がん、前立腺がん、胃がん)の検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図Bは、1〜310(がん180名、正常10名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCGIDのメチル化スコアの合計を示す。これらの実施形態では、該ポリジーンスコアはがんと正常な組織を区別する。 図38は、TCGAメチル化データ(n=7102)における、ポリジーンHKG epi汎がんマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、TCGAデータを使用し、13人の異なるがん患者のepi汎がんポリジーンDNAメチル化マーカーを使用して計算されたメチル化スコアを示す。図Bは、TCGAにおける4878名の患者からのすべてのがんのDNAメチル化データを使用する、HKG−汎がん 検出およびスペックマーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、13種の一般的ながんの検出のための特異性と感度を表すepi汎がんポリジーンマーカーのROCプロットである。図Dは、がんを検出するための汎がんマーカーの全体的な感度と特異性を示す。これらの実施形態では、1つ以上の色、例えば、オレンジ(加重メチル化スコア)および青(サンプルあたり1つのBCDマーカーの検出が陽性がんとしてスコア付けされる)が使用される。 図39は、黒色腫のポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表45)を使用する実施形態で開示された黒色腫の検出(表45)のための一連のCGIDの発見に使用された。図Bは、1〜220(その他のがんおよび健康な血液)および10名の黒色腫を有する患者からリストされた各テスト対象者のこれらのCGIDのメチル化スコアの合計である。これらの実施形態では、該ポリジーンスコアは黒色腫、別のがんそして正常な組織を区別する。 図40は、TCGAメチル化データ(n=7102)における、黒色腫対他の正常な組織およびがんに対するポリジーンHKG−epi黒色腫−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんを有する患者からのDNAメチル化データを使用する、HKG−epi黒色腫 検出/スペックマーカーの検出率を示す。黒色腫(肝臓がん、脳がんおよび前立腺がんとの重複検出)の特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにある6367名の患者のDNAメチル化データを使用する、黒色腫のHKG−黒色腫−検出 スペックマーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、黒色腫に対する感度と特異性を示す。 図41は、血液がん(急性骨髄性白血病(AML))のポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表46)を使用する実施形態で開示された血液がんAMLの検出(表46)のための一連のCGIDの発見に使用された。図Bは、1〜10(健康な血液)および10名のAMLを有する患者からリストされた各テスト対象者のこれらのCGIDのメチル化スコアの合計である。これらの実施形態では、該ポリジーンスコアはAMLと正常な血液を区別する。 図42は、GSE86409(n=79)およびTCGA(n=140)におけるAML対GSE40279およびGSE61496(n=968)における正常な血液に対するポリジーンHKG−epiAML−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、AMLを有する患者及び健康な血液を有する者からのDNAメチル化データを使用する、HKG−epiAML 検出/スペックマーカーの検出率を示す。黒色腫(肝臓がん、脳がんおよび前立腺がんとの重複検出)の特異性に注目すべきである。図Bは、GSE86409(n=79)、TCGA(n=140)、GSE40279およびGSE61496(n=968)からのDNAメチル化データを使用する、AMLのHKG−AML−検出 スペックマーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、AMLに対する感度と特異性を示す。 図43は、正常な人に由来する血漿においてBCD特性〜0のメチル化を示す異なるがんを検出するために選択されたプライマーの検証の図である(各サンプルは正常な患者からの血漿の混合物である)。特定のCGをターゲットとする第一のPCR1反応は、シーケンスターゲットプライマーを使用して実行された。第二のPCRの後、増幅されたフラグメントを精製し、次世代シーケンスを行った。DNAメチル化は、示された各々のCG ID位置で定量化された。 図44は、正常な人に由来する血漿においてBCD特性〜0のメチル化を示す異なるがんを検出するために選択された、示されたプライマーの検証の図である(各サンプルは正常な患者からの血漿の混合物である)。 図45は、多重増幅およびシーケンスのためのプライマー設計の図である。第一のPCR反応は対象となる特定の関心領域をターゲットにするが、PCR1プライマーは第二のPCR2プライマーに相補的な配列を持っていることに注意されたい。プライマーの第二セットは、各患者のインデックスと、リバースおよびフォワードシーケンスプライマーを導入する。 図46は、前立腺がんを検出するためのPCR条件の最適化の図である。右側のパネルには、前立腺がんの3つのマーカーHIF3A 232 bp、TPM4 213bp、およびCTTN 199bpについて、示されているDNAのようなさまざまなプライマー濃度を使用したマルチプレックスPCR1反応が示されている。 図47は、DNAメチル化レベルを決定するためのバイオインフォマティクスワークフローの図である。PCR2の産物を組み合わせ、定量化および精製し、Miseq Illuminaシーケンサーで次世代シーケンスを行う。シーケンスは逆多重化(demultiplexed)され、FASTQファイルは患者ごとに生成され、スキームに示されているワークフローで分析される。DNAメチル化スコアは患者ごとに計算される。
詳細な説明
図面のすべての説明は、選択された実施形態を説明するためのものであり、請求される主題の範囲を限定することを意図するものではない。
実施形態1:正常組織および血液DNAにおける数百人の個体にわたるカテゴリー的にメチル化されていないCGIDの発見
腫瘍に由来する無細胞DNAは、血漿、尿などの体液や糞中に見られることが知られている。CF腫瘍DNAのDNAメチル化プロファイルが腫瘍DNAに類似していることも確立されている(Dominguez−Vigil et al.、2018)。膨大な量のデータにより、腫瘍DNAは正常組織と比較して区別的にメチル化されていることが確立されている(Luczak&Jagodzinski、2006)。したがって、多くのグループは、がん性の組織とその正常な起源の組織、例えば肝臓がんと隣接する肝臓組織との間で区別的にメチル化されているDNAのCGID位置(Illumina 450KマニフェストのCG ID)をロジスティック回帰によって描写しようとした。ただし、これらの方法は、カテゴリー的な質的な違いではなく、がんと非形質転換組織の間の量的な違いを測定するため、腫瘍と正常組織の間の量的な違いが正常組織からのCF DNAによって希釈および消去され、偽陰性と感度低下につながる。さらに、分析に含まれなかった他の組織は、腫瘍DNAと同様のDNAメチル化プロファイルを持っている可能性があり、そしてほとんどの研究は腫瘍DNAを、他の組織ではなくその非形質転換対応物とのみ比較するため、これは偽陽性につながる可能性がある。異なる組織からの変動する予測不可能な量のDNAがCF DNAで検出されている(Breitbach et al.、2014)ため、測定されたDNAメチル化は、異なるソースからの組織DNAと腫瘍DNAの未知の予測不可能な混合物の複合を反映する。数千の腫瘍サンプルがIllumina 450Kアレイを使用したゲノムワイドDNAメチル化分析にかけられており、パブリックドメイン(TCGA)で発見されている。多くの正常組織およびがん組織のメチル化のプロファイルを調べると、発明者らは、すべての正常組織で完全にメチル化されていないが、腫瘍のDNAでメチル化されているゲノムにCGの重要なグループがあることを発見した。これらのサイトのサブセットは、DNAメチル化がパブリックドメインでプロファイルされた多数の個人にわたってメチル化されていない。本発明者ら
はまた、多くのがんにおいて、これらの強力に非メチル化されたサイトががんにおいてメチル化されることに気づいた。したがって、腫瘍DNAと血液中に見つかる可能性のある他のすべてのDNAとの間に質的な「カテゴリー的な違い」を生み出す。深い次世代シーケンスを使用すると、完全にメチル化されていないコピーのバックグラウンドで、わずかなメチル化分子でも簡単に識別できる。
データベース; Illumina 450K DNAメチル化データ
遺伝子発現オムニバス(Gene expression Omnibus)(GEO)https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/またはがんゲノムアトラス(The Cancer Genome Atlas)TCGA https://cancergenome.nih.gov/公開データベースのいずれかに寄託された多数の個人からのヒトゲノム全体の〜450,000CGのメチル化の正規化されたベータ値の公開されているデータベースを使用した。次のデータベースを使用して、多くの正常組織および血液DNA:GSE50192、GSE50192、GSE40279にある強力な非メチル化CG IDのリストを取得した。
白血球からのDNAは、血漿中のCF DNAの主要なソースの1つである。発明者らはまず、GSE50192のIllumina 450KデータとExcelの論理式COUNTIFおよびIF関数を使用して、17の異なる体細胞ヒト組織のすべての個体でメチル化されていない47981個のCGIDのリストを生成した:
NmCGIDx=COUNTIF (betaCGIDxn1:ni,“>0.1”)
umCGIDx=IF(NmCGIDx=0, TRUE, FALSE)
NmCGIDx=メチル化されたCGIDxを有する正常な被験者の数。
umCGIDx=すべての被験者における非メチル化CGIDx
betaCGIDx=与えられたCGIDxのメチル化値
x=Illumina 450kアレイ上の任意のCGID
=アレイにおける最初のサブジェクト
=アレイにおける最後のサブジェクト。
次に、発明者らは、同じ基準を使用して、312個体からの血液DNA中の68260個の非メチル化CGID(UMCGID)のリストを生成した。次に、発明者らは、47981と68260のCG IDのリストを重ね、すべての個人の血液組織と体細胞組織の両方でメチル化されていない33477のCG IDのリストを取得した(図1A)。非メチル化CG IDのこのリストの頑健性を高めるために、発明者らは、19歳から101歳までの656人の男性と女性(GSE40279)の全血DNAのIllumina 450Kアレイにおける非メチル化CGIDの60,379のCG IDのリストを描いた。これらは、数百人の性別や年齢に依存しない血液中における強力にメチル化されていない部位である。この60,379のCG IDのリストは、体組織と血液の両方でメチル化されていない33,477のCG IDのリストと重複して、がんのカテゴリー的なメチル化マーカーの発見に使用された28,754のCG IDの最終リストを生成した。このリストには、組織および個人間で強力にメチル化されていないCG IDの位置が含まれる。
がんと正常組織との間でカテゴリー的に異なるDNAメチル化位置を特定するために、発明者らはこれらの28754のCG IDのいずれかが異なるがんでメチル化されているかどうかを調べた。発明者らは、腫瘍DNAメチル化データの調査に続いて、これらの28754のCG IDのサブセットのメチル化が、個々の患者からの腫瘍DNAにおいて一般的であることに気付いた。ただし、すべての個人が同じ位置でメチル化されているわけではない。そのため、高い特異性でがんを検出するには、CG IDの組み合わせが必要である。したがって、本発明者らは、がんの検出のためのCG IDのポリジーンの
組み合わせを発見した。
発明者らは、TCGAまたはGEOのパブリックドメインの10〜50個のDNAメチル化プロファイルを「発見セット」として使用し、メチル化状態が腫瘍と正常組織の間で「カテゴリー的に」異なり、最高の感度と特異性でがんを検出できるCGIDのポリジーンセットを発見した。次に、これらのCGIDを「検証セット」として数百のTCGAおよびGEO腫瘍DNAメチル化アレイデータでテストし、実施形態2に開示されているように、がんを検出するためのポリジーンDNAメチル化マーカーの感度と特異性を検証した。
実施形態2:無細胞DNA中のがんを検出するためのバイナリーカテゴリー区別(BCD)法。
ヒトゲノム全体の〜450,000のCG(CG ID)のメチル化の正規化されたベータ値の公開されている以下のデータベースを使用して、がん特有のDNAメチル化マーカーのリストを導き出した。
Figure 2021532735

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BCD法
以下は、異なるがんの早期予測のためのポリジーンDNAメチル化マーカーを発見するために実施形態で使用されるバイナリーカテゴリー区別法(BCD)のステップである。
正常な組織で強力にメチル化されていない28,754個のCGIDをフィルター処理した。
発見コーホートについては、Microsoft ExcelのCOUNTIFおよびIF関数を使用して、正常な組織で強力にメチル化されていない28,754個のCG IDのリスト内に描いた。該CGIDは特定のがんではカテゴリー的にメチル化され、影響を受けていない組織および正常な組織ではメチル化されない。
NmcCGIDx=COUNTIF (betaCGIDxCancer n1:ni,“>0.2”)
NmnCGIDx=COUNTIF (betaCGIDxNormal n1:ni,“>0.1”)
DMCGIDx= IF((AND(NmcCGIDx>0, NmnCGIDx=0)),”TRUE”,”FALSE”)
DM CGIDxは最も高い番号から最も低い番号へとソートされた。
上位20までのTRUE DM CGIDxの位置が選択された。
NmcCGIDx=メチル化されたCGIDxを有するがん患者の数
Nmn=メチル化されたCGIDxを持つ正常な隣接または類似の組織サンプルの数
betaCGIDx=CGIDxのメチル化のレベル
n=1からiまでの患者
DM=区別的にメチル化されたCGIDx
本発明者らは、精巣がんおよび腎臓がんがすべての組織で高度にメチル化されているCG IDでメチル化の広範な欠如を示すことに気付いた。したがって、がんではカテゴリー的にメチル化されておらず正常な組織ではメチル化されることに対して、「BCDhypo」と呼ぶ改良したBCD法を使用して、精巣がんおよび腎臓(kidney)[腎臓(renal)]がんのカテゴリー的に区別的にメチル化されたCG IDの位置を発見した。以下のステップは、精巣がんと腎臓がんにおいて区別的に低(hypo)メチル化されたCGIDの位置を発見するために使用された。
発見コーホートでは、ExcelのCOUNTIFおよびIF関数を使用して、正常な組織で完全にメチル化されている精巣または腎臓における低メチル化CGIDを描いた。NucCGIDx=COUNTIF (betaCGIDxCancer n1:ni,“<0.2”)
NunCGIDx=COUNTIF (betaCGIDxNormal n1:ni,“<0.9”)
DHMCGIDx= IF((AND(NucCGIDx>0, NunCGIDx=0)),”TRUE”,”FALSE”)
DHM CGIDの位置が最も高い番号から最も低い番号へとソートされた。
上位20のTRUE DHMのサイトが選択され、罰則付き回帰分析が行われた。
NucCGIDx=非メチル化CGID Xのがん患者の数
NunCGIDx=非メチル化CGID Xの正常な組織サンプルの数
n=1からiまでの患者
DHM=区別的に低メチル化されたCGID
次に、発明者らは、上位20のDM(またはDHM)CGIDxで、Rで罰則するパッケージを使用して罰則付き回帰を実行し、最高の感度と特異性でがんを予測するCGIDxの最小の組み合わせを描いた。ポリジーンの組み合わせとがんにおけるこれらのCGIDのメチル化レベル間の回帰係数を決定するために、CGIDxのポリジーンの組み合わせが多変量線形回帰方程式でさらにテストされた。このモデルを使用して、典型的ながんの各患者のメチル化スコアを計算した。
Figure 2021532735
Ms=メチル化スコア、α=切片、β=CG IDの係数、CG=CGあたりのメチル化レベルの組み合わせ。1からi=組み合わせたCGの数。
実施形態3:肝臓がん(HCC)のポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE61258(正常な肝臓)から、そしてHCC DNAメチル化データのTCGA HCCコレクションからランダムに選択された66個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDxを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性でHCCを検出する(図5B、表1)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、8種の異なる腫瘍タイプを表すTCGAからランダムに選択された80個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、HCCと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図5C、表2)(スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態4:HCCを検出するためのHCCポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、加重HCC DNAメチル化スコアが、表1のCGIDの227人のHCC患者のGSE76269からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値を含む「検証コーホート」でHCCを検出したことを実証した。この方法を使用して、95%のHCCサンプルがHCCとして検出された(図6C)。図6Aに示されるROC曲線は、がんを検出するためのこのメチル化スコアの特異性(1)および感度(0.96)を明らかにしている。次に、発明者らは、HCCと他の8種類のがんのGSE75041とTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、HCCの検出およびHCCと他のがんを区別するための、スペックおよび検出のDNAメチル化スコアを組み合わせた有用性を実証した。図7Bに示されるROC曲線は、HCCを他の正常な組織および他のがんと区別するためのこのメチル化スコアの特異性(0.97)および感度(0.95)を明らかにしている。これらのDNAメチル化マーカーと計算されたメチル化スコアは、組織、糞便、唾液、血漿および尿などの人とは異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人におけるがんのスクリーニングと早期発見に使用できる。
実施形態5:肺がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE61258(正常な肺)からの10人の、そして肺がんDNAメチル化データのTCGA肺がんコレクションからランダムに選択された10個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で肺がん(腺がんおよび扁平上皮がんの両方を含むサンプル)を検出する(図8B、表3)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、8種の異なる腫瘍タイプを表すTCGAからランダムに選択された80個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、肺がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図8C、表4)(スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態6:肺がんを検出するための肺がんポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態3(検出)で開発された加重肺がんDNAメチル化スコアおよび閾値が、GSE66836、GSE63704、GSE76269からの、およびTCGAの919人の肺がん患者からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」で肺がんを検出することを実証した。この方法を使用して、96%の肺がんサンプルが肺がんとして検出された(図9A)。次に、発明者らは、肺がんと他の8種類のがんのGSEとTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、肺がんと他のがんを区別するための、スペックおよび検出のDNAメチル化スコアを組み合わせた有用性を実証した(図9A)。図9Bに示されるROC曲線は、肺がんを他の正常な組織および他のがんから検出するための、このメチル化スコアの特異性(0.96)および感度(0.84)を明らかにしている(図9C)。これらのDNAメチル化マーカーと計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人におけるがんの早期発見に使用できる。
実施形態7:前立腺がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE52955(正常な前立腺)からの5人の、そして前立腺がんDNAメチル化データのTCGA前立腺がんコレクションからランダムに選択された10個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で前立腺がんを検出する(図10B、表5)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、8種の異なる腫瘍タイプを表すTCGAからランダムに選択された80個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、前立腺がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図10C、表6)(スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態8:前立腺がんを検出するための前立腺がんポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態3(検出)で開発された加重前立腺がんDNAメチル化スコアおよび閾値が、GSE73549、GSE2955からの、およびTCGAの430人の前立腺がん患者からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」で前立腺がんを検出することを実証した。この方法を使用して、99%の前立腺がんサンプルが前立腺がんとして検出された(図11A)。次に、発明者らは、前立腺がんと他の8種類のがんのGSEとTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、前立腺がんと他のがんを区別するための、スペックおよび検出のDNAメチル化スコアを組み合わせた有用性を実証した(図11A)。図11Bに示されるROC曲線は、前立腺がんを他の正常な組織および他のがんから検出するための、このメチル化スコアの特異性(0.99)および感度(0.98)を明らかにしている(図11C)。これらのDNAメチル化マーカーと計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人におけるがんの早期発見に使用できる。
実施形態9:乳がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE60185(正常な乳房)からの17人の、そして乳がんDNAメチル化データのTCGA乳がんコレクションからランダムに選択された10個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で乳がんを検出する(図12B、表7)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、8種の異なる腫瘍タイプを表すTCGAからランダムに選択された80個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、乳がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図12C、表8)(スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態10:乳がんを検出するための乳がんポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態9(検出)で開発された加重乳がんDNAメチル化スコアおよび閾値が、GSE60185、GSE75067からの、およびTCGAからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値を使用する891人の乳がん患者が含まれる「検証コーホート」で乳がんを検出することを実証した。この方法を使用して、91%の乳がんサンプルが乳がんとして検出され(図13A)、DCISと浸潤性がんの両方が検出された。次に、発明者らは、乳がんと他の8種類のがんのGSEとTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、乳がんと他のがんを区別するための、スペックおよび検出のDNAメチル化スコアを組み合わせた有用性を実証した(図14A)。図14Bに示されるROC曲線は、乳がんを他の正常な組織および他のがんと区別するためのこのメチル化スコアの特異性(0.89)および感度(0.87)を明らかにしている(図14C)。これらのDNAメチル化マーカーとメチル化値からの計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある女性や一般的な健康な人における乳がんの早期発見に使用できる。
実施形態11:大腸がん(CRC)のポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE(32146)(正常)からの25人の、そして大腸がんDNAメチル化データのTCGA大腸がんコレクションからランダムに選択された50個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で大腸がんを検出する(図15B、表9)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、8種の異なる腫瘍タイプを表すTCGAからランダムに選択された80個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、大腸がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図15C、表10)(スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態12:大腸がんを検出するための大腸がんポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態11(検出)で開発された加重大腸がんDNAメチル化スコアおよび閾値が、GSE69550からの、およびTCGAの459人の大腸がん患者からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」で大腸がんを検出することを実証した。この方法を使用して、98%の大腸がんサンプルが大腸がんとして検出された(図16A)。次に、発明者らは、大腸がんと他の8種類のがんのGSEとTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、大腸がんと他のがんを区別するための、スペックおよび検出のDNAメチル化スコアを組み合わせた有用性を実証した(図16A)。図16Bに示されるROC曲線は、大腸がんを他の正常な組織および他のがんを区別するためのこのメチル化スコアの特異性(0.96)および感度(0.98)を明らかにしている(図16C)。これらのDNAメチル化マーカーとメチル化値からの計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、CRCのリスクのある人や一般的な健康な人におけるがんの早期発見に使用できる。
実施形態13:膵臓がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE53051(正常)からの12人の、そして膵臓がんDNAメチル化データのTCGAコレクションからランダムに選択された20個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で膵臓がんを検出する(図17B、表11)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、10種の異なる腫瘍タイプを表すTCGAからランダムに選択された100個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、膵臓がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図17C、表12)(スペック)。実施
形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態14:膵臓がんを検出するための膵臓がんポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態13(検出)で開発された加重膵臓がんDNAメチル化スコアおよび閾値が、TCGAからの891人の膵臓がん患者からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」で膵臓がんを検出することを実証した。この方法を使用して、86%の膵臓がんサンプルが膵臓がんとして検出された(図18A)。次に、発明者らは、膵臓がんと他の9種類のがんのGSEとTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、膵臓がんと他のがんを区別するための、スペックおよび検出のDNAメチル化スコアを組み合わせた有用性を実証した(図18A)。図18Bに示されるROC曲線は、膵臓がんの検出および膵臓がんを他の正常な組織および他のがんと区別するためのこのメチル化スコアの特異性(0.93)および感度(0.86)を明らかにしている(図18C)。これらのDNAメチル化マーカーとメチル化値からの計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人におけるがんの早期発見に使用できる。
実施形態15:脳がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE65820(正常)からの10人の、そして脳がんDNAメチル化データのTCGAコレクションからランダムに選択された10個のサンプからルの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で脳がんを検出する(図19B、表13)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、11種の異なる腫瘍タイプを表すTCGAからランダムに選択された110個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、検出のCGIDはまた、脳がんと他の腫瘍とを区別することを発見した(図19C、表13)(検出−スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態16:脳がんを検出するための脳がんポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態15(検出)で開発された加重脳がんDNAメチル化スコアおよび閾値が、TCGAからの689人の脳がん患者、GSE58298からの40人の患者およびGSE36278からの136人の患者からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」で脳がんを検出することを実証した。この方法を使用して、91%〜97%の脳がんサンプルが脳がんとして検出された(図20A)。次に、発明者らは、脳がんと他の9種類のがんのGSEとTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、脳がんと他のがんを区別するための、同様のCGIDの有用性を実証した(図20A)。図22Bに示されるROC曲線は、脳がんを他の正常な組織および他のがんから検出するためのこのメチル化スコアの特異性(1)および感度(0.97)を明らかにしている(図20C)。これらのDNAメチル化マーカーとメチル化値からの計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人におけるがんの早期発見に使用できる。
実施形態17:胃がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE99553(正常)からの18人の、そして胃がんDNAメチル化データのTCGAコレクションからランダムに選択された10個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で胃がんを検出する(図21B、表14)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、11種の異なる腫瘍タイプを表すTCGAからランダムに選択された100個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、胃がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図21C、表15)(スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態18:胃がんを検出するための胃がんポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態17(検出)で開発された加重胃がんDNAメチル化スコアおよび閾値が、TCGAからの397人の胃がん患者からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」で胃がんを検出することを実証した。この方法を使用して、88%の胃がんサンプルが胃がんとして検出された(図23A)。次に、発明者らは、胃がんと他の10種類のがんのGSEとTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、胃がんと他のがんを区別するための、スペックおよび検出のDNAメチル化スコアを組み合わせた有用性を実証した(図23A)。図22Bに示されるROC曲線は、胃がんを他の正常な組織および他のがんから検出するためのこのメチル化スコアの特異性(0.9)および感度(0.9)を明らかにしている(図22C)。これらのDNAメチル化マーカーとメチル化値からの計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人におけるがんのスクリーニングと早期発見に使用できる。
実施形態19:卵巣がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE65820(正常)からの5人の、そして卵巣がんDNAメチル化データのTCGAコレクションからランダムに選択された10個のサンプからルの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で卵巣がんを検出する(図23B、表16)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、10種の異なる腫瘍タイプおよび血液を表すTCGAからランダムに選択された100個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、卵巣がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図2C、表17)(スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発され
た。
実施形態20:卵巣がんを検出するための卵巣がんポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態19(検出)で開発された加重卵巣がんDNAメチル化スコアおよび閾値が、TCGAからの114人の卵巣がん患者からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」で卵巣がんを検出することを実証した。この方法を使用して、86%の卵巣がんサンプルが卵巣がんとして検出された(図24A)。次に、発明者らは、卵巣がんと他の9種類のがんのGSEとTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、卵巣がんと他のがんを区別するための、スペックDNAメチル化スコアの有用性を実証した(図24A)。図24Bに示されるROC曲線は、卵巣がんを他の正常な組織および他のがんから区別するためのこのメチル化スコアの特異性(0.99)および感度(1)を明らかにしている(図24C)。これらのDNAメチル化マーカーとメチル化値からの計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人におけるがんの早期発見に使用できる。
実施形態21:子宮頸がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE46306(正常)からの20人の、そして子宮頸がんDNAメチル化データのTCGAコレクションからランダムに選択された10個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で子宮頸がんを検出する(図25B、表18)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、8種の異なる腫瘍タイプおよび血液を表すTCGAからランダムに選択された80個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、子宮頸がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図25C、表19)(スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態22:子宮頸がんを検出するための子宮頸がんポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態21(検出)で開発された加重子宮頸がんDNAメチル化スコアおよび閾値が、TCGAからの313人の子宮頸がん患者からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」で子宮頸がんを検出することを実証した。この方法を使用して、91%の子宮頸がんサンプルが子宮頸がんとして検出された(図26A)。次に、発明者らは、子宮頸がんと他の9種類のがんのGSEとTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、子宮頸がんと他のがんを区別するための、スペックDNAメチル化スコアの有用性を実証した(図26A)。図26Bに示されるROC曲線は、子宮頸がんの検出、および子宮頸がんを他の正常な組織および他のがんから区別するためのこのメチル化スコアの特異性(0.9)および感度(0.9)を明らかにしている(図26C)。これらのDNAメチル化マーカーとメチル化値からの計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人におけるがんの早期発見に使用できる。
実施形態23:頭頸部扁平上皮がん(HNSC)のポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE(52068)(正常)からの10人の、そしてHNSC DNAメチル化データのTCGAがんコレクションからランダムに選択された10個のサンプルから正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性でHNSCを検出する(図27B、表20)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、12種の異なる腫瘍タイプを表すTCGAからランダムに選択された80個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、HNSCと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図27C、表21)(スペック)。
実施形態24:HNSCを検出するための頭頸部扁平上皮がん(HNSC)ポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態23(検出)で開発された加重HNSC DNAメチル化スコアおよび閾値が、GSE52068からの正規化されたIllumina 450K
DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」でHNSCを検出することを実証した。この方法を使用して、88%〜96%のHNSCサンプルが検出された(図28A)。次に、発明者らは、HNSCと他の12種類のがんのGSEとTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、HNSCと他のがんを区別するための、DNAメチル化検出スコアの有用性を実証した(図28A)。図28Bに示されるROC曲線は、HNSCを他の正常な組織および他のがんから区別するためのこのメチル化スコアの特異性(0.86)および感度(0.88)を明らかにしている(図28C)。マーカーは、他のいくつかのがんも検出する(比較的高感度であるため、これらのがんに対する特異性は限られている)。これらのDNAメチル化マーカーとメチル化値からの計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人におけるがんの早期発見に使用できる。
実施形態25:食道がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE(52068)(正常)からの10人の、そして食道がんDNAメチル化データのTCGAがんコレクションからランダムに選択された10個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で食道がんを検出する(図29B、表22)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、12種の異なる腫瘍タイプを表すTCGAからランダムに選択された80個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、食道がんと他の腫瘍との間で区別的にメ
チル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図29C、表23)(スペック)。
実施形態26:食道がんを検出するための食道がんポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態25(検出)で開発された加重食道がんDNAメチル化スコアおよび閾値が、GSE52068からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」で食道がんを検出することを実証した。この方法を使用して、88%〜96%の食道がんサンプルが検出された(図30A)。次に、発明者らは、食道がんと他の12種類のがんのGSEとTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、食道がんと他のがんを区別するための、検出DNAメチル化スコアの有用性を実証した(図30A)。図30Bに示されるROC曲線は、食道がんを他の正常な組織および他のがんから区別するためのこのメチル化スコアの特異性(0.86)および感度(0.88)を明らかにしている(図30C)。マーカーは、他のいくつかのがんも検出する(比較的高感度であるため、これらのがんに対する特異性は限られている)。これらのDNAメチル化マーカーとメチル化値からの計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人におけるがんの早期発見に使用できる。
実施形態27:膀胱がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE52955(正常)からの5人の、そして膀胱がんDNAメチル化データのTCGAがんコレクションからランダムに選択された10個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で膀胱がんを検出する(図31B、表24)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、13種の異なる腫瘍タイプおよび正常な血液を表すTCGAからランダムに選択された80個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、膀胱がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図31C、表25)(スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態28:膀胱がんを検出するための膀胱がんポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態27(検出)で開発された加重膀胱がんDNAメチル化スコアおよび閾値が、TCGAからの439人の膀胱がん患者からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」で膀胱がんを検出することを実証した。この方法を使用して、96%の膀胱がんサンプルが膀胱がんとして検出された(図32B)。次に、発明者らは、膀胱がんと他の13種類のがんのGSEとTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、膀胱がんと他のがんを区別するための、スペックDNAメチル化スコアの有用性を実証した(図32B)。図32Cに示されるROC曲線は、膀胱がんを他の正常な組織および他のがんから区別するためのこのメチル化スコアの特異性(0.86)および感度(0.88)を明らかにしている(図32C)。しかし、かなり高い割合で胃がん、膵臓がん、食道がん、お
よび大腸がんの交差検出がある。これらのDNAメチル化マーカーとメチル化値からの計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人におけるがんの早期発見に使用できる。
実施形態29:腎臓がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE52955(正常)からの10人の、そしてTCGAデータセットにある13種のがんよりがんごとにランダムに選択された10個のサンプルからの、腎臓がんのための正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用し、そして正常な組織および血液(GSE40279、GSE52955)を使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCDhypo法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で腎臓がんを検出し、そして他のがんに対して腎臓がんに特異的である「検出−スペック」(図33B、表26)(検出−スペック)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。
実施形態30:腎臓がんを検出するための腎臓がんポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
発明者らは、実施形態27(検出−スペック)で開発された加重腎臓がんDNAメチル化スコアおよび閾値が、TCGAからの871人の腎臓がん患者からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」で腎臓がんを検出し、腎臓がんを他のがんから区別することを実証した。この方法を使用して、90%の腎臓がんのサンプルが腎臓がんとして検出された(図34A)。次に、発明者らは、腎臓がんと他の13種類のがんのGSEとTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、腎臓がんと他のがんを区別するための、「検出−スペック」DNAメチル化スコアの有用性を実証した(図34A)。図34Bに示されるROC曲線は、腎臓がんを他の正常な組織および他のがんから検出するためのこのメチル化スコアの特異性(0.87)および感度(0.91)を明らかにしている(図34C)(HCC、脳がん、精巣がんとの高い交差)。これらのDNAメチル化マーカーとメチル化値からの計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人における腎臓がんの早期発見に使用できる。
実施形態31:精巣がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE46306(正常)からの13人の、そしTCGAデータセットにある13種のがんよりがんごとにランダムに選択された10個のサンプルからの、正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用し、そして正常な組織および血液(GSE40279、GSE61496)を使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCDhypo法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で精巣がんを検出し、そして他のがんに対して精巣がんに特異的である「検出−スペック」(図35B、表27)(検出−スペック)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。
実施形態32:精巣がんを検出するための精巣がんポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態31(検出−スペック)で開発された加重精巣がんDNAメチル化スコアおよび閾値が、TCGAからの156人の精巣がん患者からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」で精巣がんを検出し、精巣がんを他のがんから区別することを実証した。この方法を使用して、96%の精巣がんサンプルが精巣がんとして検出された(図36A)。次に、発明者らは、精巣がんと他の13種類のがんのGSEとTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、精巣がんと他のがんを区別するための、「検出−スペック」DNAメチル化スコアの有用性を実証した(図36A)。図36Bに示されるROC曲線は、精巣がんを他の正常な組織および他のがんから検出するためのこのメチル化スコアの特異性(0.97)および感度(0.96)を明らかにしている(図36C)これらのDNAメチル化マーカーとメチル化値からの計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人におけるがんの早期発見に使用できる。
実施形態33:13種の一般的な固形腫瘍のポリジーン汎がんDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、TCGAデータセットにある13種のがん(膀胱がん、脳がん、乳がん、子宮頸がん、大腸がん、食道がん、HNSC、肝臓がん、肺がん、卵巣がん、膵臓がん、前立腺がん、胃がん)よりがんごとにランダムに選択された10個のサンプルからの、正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用し、そしてTCGAとGEOからの正常な組織および血液を使用した。次に、発明者らは、表x−yにリストされている10種類のがんを検出するCGIDの組み合わせリストおよび10種の一般的ながんのいずれかを高い感度および特異性で検出する候補リストに挙げられたCGIDに対して罰則付き回帰を実行した(図37B、表28)(検出)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。
実施形態34:がんを検出するための汎がんポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態33(「検出」)で開発された加重がんDNAメチル化スコアおよび閾値が、他の正常な組織によるTCGAからの3644人のがん患者からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」で13種の一般的なのがん(膀胱がん、脳がん、乳がん、子宮頸がん、大腸がん、食道がん、HNSC、肝臓がん、肺がん、卵巣がん、膵臓がん、前立腺がん、胃がん)を検出することを実証した。この方法を使用して、90%〜95%のがんサンプルが検出された(図38A)。図38Bに示されるROC曲線は、13種のがんを他の正常な組織から検出するためのこのメチル化スコアの特異性(0.99)および感度(0.95)を明らかにしている(図38C)。これらのDNAメチル化マーカーとメチル化値からの計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人におけるがんの早期発見に使用できる。
実施形態35.黒色腫を検出するためのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、TCGAおよびGEOデータセット内のランダムに選択された10個の黒色腫サンプルと他のがん(膀胱がん、脳がん、乳がん、子宮頸がん、大腸がん、食道がん、HNSC、肝臓がん、肺がん、卵巣がん、膵臓がん、前立腺がん、胃がん)および正常血液からの220個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DN
Aメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。次に、発明者らは、黒色腫の検出のためのCGIDの組み合わせリスト、および黒色腫を高い感度および特異性で検出する候補リストに挙げられたCGID対して罰則付き回帰を実行した(図39、表28)(検出−スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよび黒色腫の閾値がCGIDのために開発された。
実施形態36:黒色腫を検出するための黒色腫ポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態35(「検出−スペック」)で開発された加重黒色腫DNAメチル化スコアおよび閾値が、他のがんおよび正常な組織によるTCGAからの475人の黒色腫患者からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」で黒色腫を検出することを実証した。この方法を使用して、98%の黒色腫サンプルが検出された(図40A)。図40Bに示されるROC曲線は、黒色腫を他の正常な組織および他のがんから検出するためのこのメチル化スコアの特異性(0.98)および感度(0.95)を明らかにしている(図40C)。これらのDNAメチル化マーカーとメチル化値からの計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人における黒色腫の早期発見に使用できる。
実施形態37:急性骨髄性白血病(AML)を検出するためのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GEOデータセット内のランダムに選択された10個のAMLサンプルと10個の正常な血液サンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。次に、発明者らは、AMLの検出のためのCGIDの組み合わせリスト、および黒色腫を高い感度および特異性で検出する候補リストに挙げられたCGID対して罰則付き回帰を実行した(図41、表27)(検出−スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよび黒色腫の閾値がCGIDのために開発された。
実施形態38:血液DNA中のAMLを検出するための急性骨髄性白血病(AML)ポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態37(「検出−スペック」)で開発された加重黒色腫DNAメチル化スコアおよび閾値が、GEOからの79人のAML患者およびTCGAからの140人の患者、そして正常な血液からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」でAMLを検出することを実証した。この方法を使用して、100%のAMLサンプルが検出された(図42A)。図42Bに示されるROC曲線は、血液からのAMLを検出するためのこのメチル化スコアの特異性(1)および感度(1)を明らかにしている(図42C)。これらのDNAメチル化マーカーとメチル化値からの計算されたメチル化スコアは、血液DNAを使用して、リスクのある人や一般的な健康な人におけるAMLの早期発見に使用できる。
実施形態39:前立腺がんを予測するためのバイサルファイト変換、多重増幅および次世代シーケンスおよびメチル化スコアの計算。
血液は、K3−EDTAを含む9mlチューブに収集され、1時間以内に処理された。新鮮な血液サンプルを4℃で1000gで10分間遠心分離した。細胞層を乱すことなく上澄みをファルコンチューブに注意深く移し、残りの細胞を完全に除去するために再度10分間遠心分離し、−80℃で凍結した。血漿サンプルを解凍し、血漿DNA用のQiagenキットやEZ DNA直接抽出法など、血漿DNA抽出用のいくつかの利用可能な方法と市販のキットでDNAを抽出する。AMPure XP磁気ビーズなどの市販の方法を使用してDNAを精製し、精製したDNAを、例えばEZ DNAバイサルファイト
処理キットを使用して亜硫酸水素ナトリウムで処理する。ターゲット配列のライブラリーは、2段階のPCR反応によって生成される(図40)。第一のPCR反応は、表5および表6の特定のCGIDをターゲットにする。PCR1プライマーは、第二のPCR2プライマーと相補的な配列を持っていることに注意する(図40)。本発明者らは、HEK293細胞からのヒトバイサルファイト変換ゲノムDNAを使用して、標準的なTaqポリメラーゼ反応で以下のプライマーを使用したマルチプレックスPCR反応において、HIF3A(232塩基対領域)、TPM4(213塩基対領域)、およびCTTN(199塩基対領域)から前立腺がんを検出するCGIDを含むDNAの3つの配列を同時に増幅した:CGID cg02879662の場合、フォワードプライマー:
Figure 2021532735
およびリバースプライマー:
Figure 2021532735
CGID cg16232979の場合、フォワードプライマー:
Figure 2021532735
およびリバースプライマー:
Figure 2021532735
CGID:cg14041701およびcg14498227の場合、フォワードプライマー:
Figure 2021532735
およびリバースプライマー:
Figure 2021532735
増幅した断片をアガロースゲルで分画した。
サンプルをバーコード化するために、次のプライマーを使用した第二のPCR反応を使用する:
フォワードプライマー:
Figure 2021532735
バーコードプライマー(リバース):
Figure 2021532735
(太字の塩基はインデックスである。このインデックスの200のバリエーションが使用される。プライマーの第二のセットは、各患者のインデックスと、リバースおよびフォワードシーケンスプライマーを導入する。前立腺がんHIF3A 232 bp、TPM4
213 bp、およびCTTN 199 bpの3つのマーカーに対するマルチプレックスPCR1反応は、図41に示すように、さまざまなプライマー濃度を使用する右側のパネルに表示される。
実施形態40:バイサルファイト変換、マルチプレックス増幅および次世代シーケンスの
方法の有用性、およびがんを予測するためのメチル化スコアの計算。
本発明者らは、実施形態35が、何百人もの患者からの血漿サンプルを使用して、前立腺がんおよび他のがんを同時にハイスループット(high throughput)予測することに使用され得ることを実証する。高度に予測可能なCG IDのインデックス付き増幅と、がんを示すメチル化スコアを計算するための合理化された方法は、前立腺がんと他のがんの早期発見に使用できる。
実施形態41:選択されたバイオマーカーが真のBCD特性を示すことの実証は、健康な人々の血漿では完全に低メチル化されている。
血漿DNAは、40人の健康な個人から調製された血漿から抽出され、次のがんのがん特異的プライマーによる標的増幅に供された:肝臓がん、前立腺がん、肺がん(図43)および胃がん、汎がんおよびCRC(図44)、その後、実施形態39および実施形態40に記載されているように、第2の増幅セット(PCR2)および次世代シーケンスを使用したバーコード化を行った。すべてのCGは、健康な人々からの血漿において非常に低レベルのメチル化を示した(図43および図44)。
実施形態42:DNAメチル化レベルを決定するためのバイオインフォマティクスワークフロー。
PCR2の産物は、定量化と精製を組み合わせて、Miseq Illuminaシーケンサーで次世代シーケンスにかけられる。シーケンスは、インデックス付きシーケンス用のIlluminaのソフトウェアを使用して逆多重化され(demultiplexed)、各患者に対してFASTQファイルが生成される。Perlテキスト編集スクリプトhttps://www.activestate.com/activeperl/downloadsを使用して、患者ごとのCG IDごとのFASTQファイル内のTとCをカウントし、C/C+Tの数を除算して患者の一つのCG ID内のメチル化したCの割合を定量化する。(図42のスキームを参照)。出力CSVファイルは、方程式を使用して各患者のメチル化スコア(Ms)を計算するために使用される。方程式:
Figure 2021532735
、α=切片、β=CG IDの係数、CG=1からnまでのCG IDの組み合わせでのCGあたりのメチル化レベル。n=組み合わせたCGの数。MS=メチル化スコア。
本発明の主題の用途
本発明の主題の用途は、一般に、分子診断およびがんの早期予測の分野にある。当業者は、本発明の主題を使用して、神経疾患、糖尿病、肝硬変および心血管疾患における心臓組織の損傷などの心臓病など、細胞死および無細胞DNAのシステムへの脱落を伴う他のがんおよび他の疾患の早期予測のための同様の非侵襲性バイオマーカーを導き出すことができる。本発明の主題は、BCDおよびBCDhypo法を使用して、特定の細胞のタイプおよび組織の精巧なメチル化マーカーを見つける方法を提供する。がんを早期に検出し、生存率を劇的に高め、がんから治癒するために当業者が使用することができる広範囲のがんの早期予測のための方法およびバイオマーカーも開示される。本発明により開示された方法は、健康な人々に定期的な毎年のスクリーニングを行い、がんを発症し始めている人々を特定し、直ちに治療し、がんの死亡率と罹患率の悲惨な個人的社会的および経済的影響を防止するため、また、「リスクの高い」人々を監視し、再発または転移を検出するために治療を受けている患者の治療に対する反応を監視するために、当業者により使用され得る。ここに記載された本発明の、医療提供者および健康診断施設による日常の医療管理のための採用は、がんの負担および医療費の削減に大きな影響を与えるであろう。
本発明の主題が多数の異なる従属請求項を含むという事実は、がんを予測するためにこ
れらの請求項の組み合わせを使用できないことを意味するものではない。がんを測定し、統計的に分析および予測するために本明細書に開示されている実施形態は、限定的であると考えられるべきではない。Illumina EPICアレイ、キャプチャーアレイシーケンス、次世代シーケンス、メチル化特異的PCR、エピタイパー、制限酵素ベースの分析、そしてパブリックドメインにあるその他の方法など、がん患者のDNAメチル化を測定するためのさまざまな他の変更が当業者には明らかである。同様に、患者サンプル中のがんの予測のために本発明の主題を使用するために、ここに挙げられているものに加えて、パブリックドメインには多数の統計方法がある。
本発明の主題は、1つ以上の好ましい実施形態を含むその実施形態に関連して説明されてきたが、請求される主題の精神および範囲から逸脱することなく、他の多くの可能な修正および変更を行うことができることを理解されたい。
検出 スペックのためのサブセット:
cg08884571,cg00011225,cg23946709
図1は、何百人もの血液サンプルと正常組織にまたがる完全にメチル化されていないサイトの候補リストを示す。図Aは、Illumina 450Kのゲノムワイドなメチル化アレイのすべての個体(<0.l)(GSE50192)でメチル化されていない17組織にわたるCG IDが、312の個体からの血液サンプル(GSE61496)のゲノムワイドなDNAメチル化アレイの非メチル化CG IDと重複して33477個のCG IDのリストを生成したことを示している。Bは、最も強力な非メチル化CG IDの候補リストを示しており、Aの33477個のCG IDのリストは、19歳から101歳までの656人(女性および男性)の血液サンプル(GSE40279)のDNAメチル化アレイの非メチル化CG IDと重複していた。結合された部分について、これらの分析により、すべての年齢層の多くの個人の組織と血液サンプルにわたってメチル化されていない信頼度の高い28754個のCG IDのリストが生成された。これらの28754個の位置は、本発明の主題によって開示される「バイナリーカテゴリー区別(BCD)」法を使用して、がんにおいてカテゴリー的にメチル化されているが他の組織ではメチル化されていないサイトの発見に使用された。 図2は、HCCに対する現在の循環DNAマーカーの組織特異性の欠如を示す図である。図示されたヒートマップは、他の正常な組織におけるこれらのサイトのHCCとメチル化レベルのバイオマーカーとしてXu等(Xu等、2017)に候補としてリストされた10個のCG IDを示す。HCCの特定のバイオマーカーとして提案されているCG IDのいくつかは、他の組織でもメチル化されており、そして血中DNAのメチル化レベルがさまざまであることを示す。(青は0メチル化、暗赤色は100%メチル化) 図2Aは、本発明の主題の実施形態による図2の一部の分解図である。 図2Bは、本発明の主題の実施形態による図2の一部の分解図である。 図2Cは、本発明の主題の実施形態による図2の一部の分解図である。 図3は、がんDNAに対してBCD法を使用して発見されたHCC DNAメチル化マーカーの特異性を示す図である。図示されたヒートマップは、ここで説明するBCD法によってHCC DNAメチル化マーカーとして選択された4つのCG IDを示す。メチル化レベルは、がん(HCC)と正常な組織および血液との間でカテゴリー的に異なり、これにより、血液および他の組織のすべての個体で該サイトがメチル化されず、HCCで測定可能な程度にメチル化される。 図3Aは、本発明の主題の実施形態による図3の一部の分解図である。 図3Bは、本発明の主題の実施形態による図3の一部の分解図である。 図3Cは、本発明の主題の実施形態による図3の一部の分解図である。 図4は、大腸がんに対する現在のDNAメチル化マーカーのがん組織起源特異性の欠如、および本発明の主題の実施形態による「検出−スペック」法との比較を示す図である。図Aは、大腸がんのCF DNAメチル化マーカー「Epi−大腸がん」(エピゲノミクス社より販売)に含まれるSept9遺伝子のCGサイトを示しており、マーカーはがんDNAメチル化データのTCGAコレクションからのメチル化データを利用して他の多くのがんを検出するために使用できるため、大腸がんに対する特異性に欠けている(HKG−大腸がん(HKG−epiCRC)、青)。BCD法(HKG−大腸がんオレンジ)(表)を用いて発見された大腸がんの検出のために本発明の主題で開示されるマーカー(表)は、他の一般的な固形腫瘍がんに対して試験した場合、大腸がんに非常に特異的である。図Bと図Cは、HKG−大腸がん(HKG−epiCRC)(B)またはEpi−大腸がん(C)のいずれかのDNAメチル化マーカーを使用した、さまざまながんの異なる個人からの腫瘍DNAのDNAメチル化値の散布図である。注目すべきは、HKG−epiCRCマーカー(B)対Epi−大腸がんマーカー(C)の散在する異質なプロファイルを使用した、大腸がんと他のがんの間のDNAメチル化の厳格なカテゴリー的な違いである。 図4Aは、本発明の主題の実施形態による図4の一部の分解図である。 図4Bは、本発明の主題の実施形態による図4の一部の分解図である。 図5は、肝臓がん(HCC)の早期発見のためのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見を示す図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表を示し、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表1)および起源特定のがんを決定するためのCG ID(表2)を使用する実施形態による、HCCの検出のための4つの一連のCGIDの発見に使用された。図5の左下のパネルの図B(検出)は、1〜145(正常79名およびHCC66名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表1)のメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、HCCを有する人と正常な肝組織を有する人をカテゴリー的に区別する。右下のパネルの図Cは、8種の異なる腫瘍(表2)のデータを使用して特定の腫瘍の起源を検出する1つのCGID(表2)のメチル化スコアを示す。マーカーは、他の起源のがんとHCCをカテゴリー的に区別する。 図6は、GSE76269(n=227)からのDNAメチル化データを使用た、HCC(スペック)のポリジーンDNAメチル化マーカーの検証の図である。図Aは、肝臓がん患者227名のDNAメチル化データと正常10名を使用したHCC DNAメチル化マーカーの曲線下の領域を示すROCプロットである。図6の図Bは、HCC検出の感度、特異性、および精度を示す。図Cは、検証データセットにおけるHCCの検出の予測率を示す。 図7は、TCGAメチル化データ(n=4166)における、HCC対他のがんに対するポリジーンHKG−epi肝臓がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図7の図Aは、異なるがんを有する患者のHKG−肝臓検出/スペックマーカーDNAメチル化データの検出率を示す。HCCのほぼ完全な特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける4166人の患者のDNAメチル化データにおける、HCCのHKG−肝臓−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、HCC対他の起源のがんに対する感度と特異性である。 図8は、肺がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図8の図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表3)および起源特定のがん組織を決定するためのCG ID(表4)を使用する実施形態に開示される、肺がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図8の左下のパネルの図B(検出)は、1〜20名(正常10名および肺がん10名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表3)のメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、肺がんを有する人と正常な組織を有する人をカテゴリー的に区別する。図8の右下のパネルの図Cは、8種の異なる腫瘍(n=80)のある人からのデータを使用して特定の腫瘍の起源を検出するCGID(表4)のメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは他の起源のがんと肺がんをカテゴリー的に区別する。 図9は、TCGAメチル化データ(n=4166)における、肺がん対他のがんに対するポリジーンHKG−epi肺がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図9の図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用したHKG−epi肺がん検出/スペックマーカーの検出率を示す。肺がんの特異性に注目すべきである。図9の図Bは、TCGAからの4166名の患者のDNAメチル化データにおける、肺がんのHKG−肺がん−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットを示す。図9の図Cは、肺がん対他の起源のがんに対する感度と特異性を示す。 図10は、前立腺がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図10の図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表5)および起源特定のがん組織を決定するためのCG ID(表)を使用する実施形態に開示される、前立腺がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図10の左下のパネルの図B(検出)は、1〜15(正常5名および前立腺がん10名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表5)のメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、前立腺がんを有する人と正常な人をカテゴリー的に区別する。図10の右下のパネルの図Cは、8種の異なる腫瘍(n=80)のある人からのデータを使用して起源特定の腫瘍組織を検出するCG(表)のメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは他の起源のがんと前立腺がんをカテゴリー的に区別する。 図11は、TCGAメチル化データ(n=4166)における、前立腺がん対他のがんに対するポリジーンHKG−epi前立腺がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図11の図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用したHKG−前立腺がん検出/スペックマーカーの検出率を示す。前立腺がんの特異性に注目すべきである。図11の図Bは、TCGAにある4166名の患者からのDNAメチル化データを使用する、前立腺がんのHKG−前立腺がん−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図11の図Cは、前立腺対他の起源のがんに対する感度と特異性を示す。 図12は、乳がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図12の図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表)および起源特定のがんを決定するためのCG ID(表)を使用する実施形態に開示される、乳がんの検出のための一連のCGの発見に使用された。図12の左下のパネルの図B(検出)は、1〜27(正常17名および乳がん10名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表)のメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、乳がんを有する人と正常な乳組織を有する人をカテゴリー的に区別する。図12の右下のパネルの図Cは、8種の異なる腫瘍(n=80)のある人からのデータを使用して特定の腫瘍の起源を検出するCGID(表)のメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは他の起源のがんと乳がんをカテゴリー的に区別する。 図13は、検証コーホートGSE60185(n=285)において、HKG−epi乳がん−検出ポリジーンDNAメチル化マーカーが非浸潤性および浸潤性乳がんを検出する図である。図13の図Aは、239名の乳がん患者のDNAメチル化データ、17名の乳がんではない乳房形成術患者および29名の隣接組織を使用した乳がんポリジーンDNAメチル化マーカーの曲線下の領域を示すROCプロットである。すべての乳がんの感度、特異性および精度をBに示し、DCIS(非浸潤性乳管がん)、浸潤性乳がんおよび混合乳がんのサンプルの予測率を図13の図Cに示す。注目すべきは、乳がんマーカーが非常に早期の乳がん(DCIS)を検出することである。 図14は、TCGAメチル化データ(n=4166)における、乳がん対他のがんに対するポリジーンHKG−epi乳がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図14の図Aは、異なるがんを有する患者からのDNAメチル化データにおいて、HKG−epi乳がん検出/スペックマーカーの検出率を示す。乳がんの特異性に注目すべきである。図14の図Bは、TCGAにおける4166人患者のDNAメチル化データを使用して乳がんを検出するための、HKG−乳がん−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図14の図Cは、乳がん対他の起源のがんに対する感度と特異性を示す。 図15は、大腸がん(CRC)のポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図15の図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表)および起源特定のがんを決定するためのCG ID(表)を使用する実施形態に開示される、大腸がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図15の左下のパネルの図B(検出)は、1〜75(正常25名および大腸がん50名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG IDのメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、がんを有する人と正常な組織を有する人をカテゴリー的に区別する。図15の右下のパネルの図Cは、8種の異なる腫瘍(n=80)のある人からのDNAメチル化データを使用して腫瘍の特定の起源を検出するCGIDのメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは他の起源のがんと大腸がんをカテゴリー的に区別する。 図16は、TCGA DNAメチル化データセット(n=4166)を使用した、大腸がん対他のがんに対するポリジーンHKG−epiCRC−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図16の図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用するHKG−epiCRC検出/スペックマーカーの検出率を示す。大腸がんの特異性に注目すべきである。図16の図Bは、TCGAにおける4166名の患者からのDNAメチル化データを使用する、大腸がんのHKG−epi大腸がん−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図16の図Cは、大腸がん対他の起源のがんに対する感度と特異性を示す。 図17は、膵臓がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図17の図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表)および起源特定のがんを決定するためのCG ID(表10)を使用する本発明に開示される膵臓がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図17の左下のパネルの図B(検出)は、1〜32(正常12名および膵臓がん20名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表)のメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、膵臓がんを有する人と正常な組織を有する人をカテゴリー的に区別する。図17の右下のパネルの図Cは、10種の異なる腫瘍(n=100)のある人からのデータを使用して腫瘍の特定の起源を検出するCGID(表10)のメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは他の起源のがんと膵臓がんをカテゴリー的に区別する。 図18は、TCGAメチル化データ(n=4854)における、膵臓がん対他のがんに対するポリジーンHKG−epi膵臓がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図18の図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用する、HKG−epi膵臓がん検出/スペックマーカーの検出率である。膵臓がんの特異性に注目すべきである。図18の図Bは、TCGAにおける4854名の患者からのDNAメチル化データを使用する、膵臓がんのHKG−epi膵臓がん−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、膵臓がん対他の起源のがんに対する感度と特異性を示す。 図19は、脳がん(膠芽腫)のポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図19の図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表11)およびがんの特定起源を決定するためのCG ID(表11)を使用する、本発明に開示される、脳がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。左下のパネルの図B(検出/スペック)は、1〜16(正常6名および脳がん10名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表11)のメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、脳がんを有する人、110名の別のがんを有する人と正常な組織を有する人をカテゴリー的に区別する。 図20は、TCGAメチル化データ(n=4854)における、脳がん対他のがんに対するポリジーンHKG−epi脳がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用する、HKG−epi脳がん検出/スペックマーカーの検出率である。脳がんの特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける4854名の患者からのDNAメチル化データを使用する、脳がんのHKG−epi脳がん−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、TCGAデータセット(n=695)における脳がんに対する感度と特異性を示す。 図21は、胃(gastric)[胃(stomach)]がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表12)およびがんの特定起源を決定するためのCG ID(表13)を使用する、本発明に開示される胃がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図21の左下のパネルの図B(検出)は、1〜28(正常14名および胃がん20名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表12)のメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、胃がんを有する人と正常な組織を有する人をカテゴリー的に区別する。図21の右下のパネルの図C(スペック)は、10種の異なる腫瘍(n=100)のある人のポリジーンメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは他の起源のがんと胃がんをカテゴリー的に区別する。 図22は、TCGAメチル化データ(n=4817)における、胃がん対他のがんに対するポリジーンHKG−胃−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用する、HKG−epi胃がん検出/スペックマーカーの検出率である。胃がんの特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける4420名の患者からのDNAメチル化データを使用する、胃(胃がん)のHKG−epi胃がん−検出 スペック 1マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、TCGAにおける4854名の患者からのDNAメチル化データを使用する、胃がんのHKG−epi胃がん−スペック 1マーカーの特異性と感度のROCプロットである。注目すべきは、大腸がんおよび食道がんとの有意な交差反応性があり、それが共通の起源であることを証明していることである。 図23は、卵巣がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表14)および起源特定のがんを決定するためのCG ID(表15)を使用する、本発明に開示される卵巣がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図23の左下のパネルの図B(検出)は、1〜15(正常5名および卵巣がん10名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG IDのメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、卵巣がんを有する人と正常な組織を有する人をカテゴリー的に区別する。図23の右下のパネルの図Cは、11種の異なる腫瘍(n=110)のある人からのデータを使用して特定の腫瘍起源を検出するCGIDのメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは他の起源のがんと卵巣がんをカテゴリー的に区別する。 図24は、TCGAメチル化データ(n=6522)における、卵巣がん対他のがんに対するポリジーンHKG−epi卵巣がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用する、HKG−epi卵巣がん検出/スペックマーカーの検出率である。卵巣がんの特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける4723名の患者からのDNAメチル化データにおける、卵巣がんのHKG−epi卵巣がん−検出およびスペックマーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、卵巣がんに対する感度と特異性を示す。 図25は、子宮頸がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表16)および起源特定のがんを決定するためのCG(表17)を使用する、本発明に開示される子宮頸がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図25の左下のパネルの図B(検出)は、1〜30(正常20名および子宮頸がん10名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表16)のメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、子宮頸がんを有する人と正常な組織を有する人をカテゴリー的に区別する。図25の右下のパネルの図Cは、8種の異なる腫瘍(n=80)のある人からのデータを使用して腫瘍の特定起源を検出するCGID(表17)のメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは他の起源のがんと子宮頸がんをカテゴリー的に区別するが、大腸がんのいくつかの測定可能な検出に留意されたい。 図26は、TCGAメチル化データ(n=6522)における、子宮頸がん対他のがんに対するポリジーンHKG−子宮頸がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用する、HKG−子宮頸がん検出/スペックマーカーの検出率を示す。子宮頸がんの特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける4420名の患者からのDNAメチル化データを使用する、子宮頸がんのHKG−子宮頸がん−検出 スペックマーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、子宮頸がんに対する感度と特異性を示す。 図27は、頭頸部扁平上皮がん(HNSC)のポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表18)および起源特定のがんを決定するためのCG(表19)を使用する、本発明に開示されるHNSCの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図27の左下のパネルの図Bは、1〜140(がん10名、正常10名および他のがん120名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表18)のメチル化スコアの合計を示す。図Cは、実施形態においてHNSCと正常組織サンプルをカテゴリー的に区別するとともに、他の起源からのがんとHNSCをカテゴリー的に区別するポリジーンスコアを示す。 図28は、TCGAメチル化データ(n=4166)における、HNSC対他のがんに対するポリジーンHKG−epiHNSC−検出/スペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用する、HKG−epiHNSC 検出/スペックマーカーの検出率である。HNSCの特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける4166名の患者からのDNAメチル化データにおけるHNSCのHKG−epiHNSC−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、HNSC対他の起源のがんに対する感度と特異性を示す。 図29は、食道がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表20)およびがんの特定起源を決定するためのCGID(表21)を使用する、実施形態に開示される、食道がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図29の左下のパネルの図Bは、1〜22(正常名、がん14名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表20)のメチル化スコアの合計を示す。図Cは、実施形態において食道がんと正常組織をカテゴリー的に区別するとともに、他の起源からのがんと1〜220(がん20名、他のがん190名および正常血液10名)からリストされた食道がんをカテゴリー的に区別するポリジーンスコアを示す。 図30は、TCGAメチル化データ(n=7102)における、食道がん対他のがんに対するポリジーンHKG−epi食道がん−検出/スペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用する、HKG−epi食道がん検出/スペックマーカーの検出率を示す。食道がんの特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける4166名の患者のDNAメチル化データにおける食道がんのHKG−epi食道がん−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、食道がん対他の起源のがんに対する感度と特異性を示す。 図31は、膀胱がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表22)およびがんの特定起源を決定するためのCGID(表23)を使用する、実施形態に開示される膀胱がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図31の左下のパネルの図B(検出)は、1〜15(正常5名、膀胱がん10名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表22)のメチル化スコアの合計を示す。図31の右下のパネルの図Cは、13種の異なる腫瘍(n=130)を有する人からのデータを使用して腫瘍の特定の起源を検出するCGID(表23)のメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは、他の起源からのがんと膀胱がんとを区別する。これらのマーカーによる大腸がんの測定可能な検出も注目すべきである。 図32は、TCGA(n=4723)における膀胱がん対他のがんに対するポリジーンHKG−epiBladder−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがん(A)および膀胱がん(B)を有する患者のDNAメチル化データにおいて、HKG−epi膀胱がんスペックマーカー(A)および検出マーカー(B)の検出率を示す。図Cは、TCGAにおける4420名の患者からのDNAメチル化データを使用した、膀胱がんのHKG−epi膀胱がんスペックマーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Dは、膀胱がんのHKG−epi膀胱がん検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである(n=440)。 図33は、腎臓がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD(hypo)法を使用する、実施形態で開示された腎臓がんの検出およびがんの特定の起源の決定(表24)のための一連のCGIDの発見に使用された。図33の左下のパネルの図B(検出/スペック)は、1〜226(その他のがん180名、健康な血液10名、正常な腎臓6名、腎がん30名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表24)のメチル化スコアの合計を示す。これらの実施形態では、該ポリジーンスコアは腎臓がん、別のがんと正常な血液をカテゴリー的に区別する。 図34は、TCGA DNAメチル化データ(n=7102)を使用する、腎臓がん対他のがんおよび正常組織に対するポリジーンHKG−epi腎臓がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんからのDNAメチル化データを使用する、HKG−epi腎臓がん 検出/スペックマーカーの検出率である。腎臓がんの特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける6367のがんのDNAメチル化データを使用する、腎臓がんのHKG−epi腎臓がん−検出 スペックマーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、腎臓(renal)[腎臓(kidney)]がんに対する感度と特異性を示す。さらに注目すべきは、脳、HCCおよび精巣がんとのクロスオーバーである。 図35は、精巣がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD(hypo)法を使用する実施形態で開示された精巣がんの検出および起源特定のがんの決定(表25)のための一連のCGIDの発見に使用された。図35の左下のパネルの図B(検出/スペック)は、1〜190(精巣がん10名、その他のがんおよび血液180名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表25)のメチル化スコアの合計を示す。これらの実施形態では、該ポリジーンスコアは精巣がん、正常な血液と別のがんをカテゴリー的に区別する。 図36は、TCGAメチル化データ(n=7102)における、精巣がん対他の正常な組織およびがんに対するポリジーンHKG−epi精巣がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんを有する患者からのDNAメチル化データを使用する、HKG−epi精巣がん 検出/スペックマーカーの検出率を示す。精巣がんの特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける6367名の患者のDNAメチル化データを使用する、精巣がんのHKG−epi精巣がん−検出 スペックマーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、精巣がんに対する感度と特異性を示す。 図37は、13種の一般的ながんの汎がんポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表26)を使用する実施形態で開示された13種の一般的ながん(表26)(膀胱がん、脳がん、乳がん、子宮頸がん、大腸がんCRC、食道がん、肝臓がん、肺がん、卵巣がん、膵臓がん、前立腺がん、胃がん)の検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図Bは、1〜180(がん170名、健康な血液10名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCGIDのメチル化スコアの合計を示す。これらの実施形態では、該ポリジーンスコアはがんと正常な組織を区別する。 図38は、TCGAメチル化データ(n=7102)における、ポリジーンHKG epi汎がんマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、TCGAデータを使用し、13人の異なるがん患者のepi汎がんポリジーンDNAメチル化マーカーを使用して計算されたメチル化スコアを示す。図Bは、TCGAにおける4878名の患者からのすべてのがんのDNAメチル化データを使用する、HKG−汎がん 検出およびスペックマーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、がんを検出するための汎がんマーカーの全体的な感度と特異性を示す。これらの実施形態では、1つ以上の色、例えば、オレンジ(加重メチル化スコア)および青(サンプルあたり1つのBCDマーカーの検出が陽性がんとしてスコア付けされる)が使用される。 図39は、黒色腫のポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表45)を使用する実施形態で開示された黒色腫の検出(表28)のための一連のCGIDの発見に使用された。図Bは、1〜220(その他のがんおよび健康な血液)および10名の黒色腫を有する患者からリストされた各テスト対象者のこれらのCGIDのメチル化スコアの合計である。これらの実施形態では、該ポリジーンスコアは黒色腫、別のがんそして正常な組織を区別する。 図40は、TCGAメチル化データ(n=7102)における、黒色腫対他の正常な組織およびがんに対するポリジーンHKG−epi黒色腫−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんを有する患者からのDNAメチル化データを使用する、HKG−epi黒色腫 検出/スペックマーカーの検出率を示す。黒色腫(肝臓がん、脳がんおよび前立腺がんとの重複検出)の特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにある6367名の患者のDNAメチル化データを使用する、黒色腫のHKG−黒色腫−検出 スペックマーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、黒色腫に対する感度と特異性を示す。 図41は、血液がん(急性骨髄性白血病(AML))のポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表27)を使用する実施形態で開示された血液がんAMLの検出(表27)のための一連のCGIDの発見に使用された。図Bは、1〜10(健康な血液)および10名のAMLを有する患者からリストされた各テスト対象者のこれらのCGIDのメチル化スコアの合計である。これらの実施形態では、該ポリジーンスコアはAMLと正常な血液を区別する。 図42は、GSE86409(n=79)およびTCGA(n=140)におけるAML対GSE40279およびGSE61496(n=968)における正常な血液に対するポリジーンHKG−epiAML−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、AMLを有する患者及び健康な血液を有する者からのDNAメチル化データを使用する、HKG−epiAML 検出/スペックマーカーの検出率を示す。図Bは、GSE86409(n=79)、TCGA(n=140)、GSE40279およびGSE61496(n=968)からのDNAメチル化データを使用する、AMLのHKG−AML−検出 スペックマーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、AMLに対する感度と特異性を示す。 図43は、正常な人に由来する血漿においてBCD特性〜0のメチル化を示す異なるがんを検出するために選択されたプライマーの検証の図である(各サンプルは正常な患者からの血漿の混合物である)。特定のCGをターゲットとする第一のPCR1反応は、シーケンスターゲットプライマーを使用して実行された。第二のPCRの後、増幅されたフラグメントを精製し、次世代シーケンスを行った。DNAメチル化は、示された各々のCG ID位置で定量化された。 図44は、正常な人に由来する血漿においてBCD特性〜0のメチル化を示す異なるがんを検出するために選択された、示されたプライマーの検証の図である(各サンプルは正常な患者からの血漿の混合物である)。 図45は、多重増幅およびシーケンスのためのプライマー設計の図である。第一のPCR反応は対象となる特定の関心領域をターゲットにするが、PCR1プライマーは第二のPCR2プライマーに相補的な配列を持っていることに注意されたい。プライマーの第二セットは、各患者のインデックスと、リバースおよびフォワードシーケンスプライマーを導入する。 図46は、前立腺がんを検出するためのPCR条件の最適化の図である。右側のパネルには、前立腺がんの3つのマーカーHIF3A 232 bp、TPM4 213bp、およびCTTN 199bpについて、示されているDNAのようなさまざまなプライマー濃度を使用したマルチプレックスPCR1反応が示されている。 図47は、DNAメチル化レベルを決定するためのバイオインフォマティクスワークフローの図である。PCR2の産物を組み合わせ、定量化および精製し、Miseq Illuminaシーケンサーで次世代シーケンスを行う。シーケンスは逆多重化(demultiplexed)され、FASTQファイルは患者ごとに生成され、スキームに示されているワークフローで分析される。DNAメチル化スコアは患者ごとに計算される。
データベース; Illumina 450K DNAメチル化データ
遺伝子発現オムニバス(Gene expression Omnibus)(GEO)https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/またはがんゲノムアトラス(The Cancer Genome Atlas)TCGA https://cancergenome.nih.gov/公開データベースのいずれかに寄託された多数の個人からのヒトゲノム全体の〜450,000CGのメチル化の正規化されたベータ値の公開されているデータベースを使用した。次のデータベースを使用して、多くの正常組織および血液DNA:GSE61496、GSE40279にある強力な非メチル化CG IDのリストを取得した。
実施形態6:肺がんを検出するための肺がんポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態(検出)で開発された加重肺がんDNAメチル化スコアおよび閾値が、GSE66836、GSE63704、GSE76269からの、およびTCGAの919人の肺がん患者からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」で肺がんを検出することを実証した。この方法を使用して、96%の肺がんサンプルが肺がんとして検出された(図9A)。次に、発明者らは、肺がんと他の8種類のがんのGSEとTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、肺がんと他のがんを区別するための、スペックおよび検出のDNAメチル化スコアを組み合わせた有用性を実証した(図9A)。図9Bに示されるROC曲線は、肺がんを他の正常な組織および他のがんから検出するための、このメチル化スコアの特異性(0.96)および感度(0.84)を明らかにしている(図9C)。これらのDNAメチル化マーカーと計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人におけるがんの早期発見に使用できる。
実施形態7:前立腺がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE52955(正常な前立腺)からの5人の、そして前立腺がんDNAメチル化データのTCGA前立腺がんコレクションからランダムに選択された10個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で前立腺がんを検出する(図10B、表5)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、8種の異なる腫瘍タイプを表すTCGAからランダムに選択された80個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、前立腺がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図10C、表)(スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態8:前立腺がんを検出するための前立腺がんポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態(検出)で開発された加重前立腺がんDNAメチル化スコアおよび閾値が、GSE73549、GSE2955からの、およびTCGAの430人の前立腺がん患者からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」で前立腺がんを検出することを実証した。この方法を使用して、99%の前立腺がんサンプルが前立腺がんとして検出された(図11A)。次に、発明者らは、前立腺がんと他の8種類のがんのGSEとTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、前立腺がんと他のがんを区別するための、スペックおよび検出のDNAメチル化スコアを組み合わせた有用性を実証した(図11A)。図11Bに示されるROC曲線は、前立腺がんを他の正常な組織および他のがんから検出するための、このメチル化スコアの特異性(0.99)および感度(0.98)を明らかにしている(図11C)。これらのDNAメチル化マーカーと計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人におけるがんの早期発見に使用できる。
実施形態9:乳がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE60185(正常な乳房)からの17人の、そして乳がんDNAメチル化データのTCGA乳がんコレクションからランダムに選択された10個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で乳がんを検出する(図12B、表)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、8種の異なる腫瘍タイプを表すTCGAからランダムに選択された80個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、乳がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図12C、表)(スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態11:大腸がん(CRC)のポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE(32146)(正常)からの25人の、そして大腸がんDNAメチル化データのTCGA大腸がんコレクションからランダムに選択された50個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で大腸がんを検出する(図15B、表)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、8種の異なる腫瘍タイプを表すTCGAからランダムに選択された80個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、大腸がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図15C、表)(スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態13:膵臓がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE53051(正常)からの12人の、そして膵臓がんDNAメチル化データのTCGAコレクションからランダムに選択された20個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプ
ル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で膵臓がんを検出する(図17B、表)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、10種の異なる腫瘍タイプを表すTCGAからランダムに選択された100個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、膵臓がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図17C、表10)(スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態15:脳がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE65820(正常)からの10人の、そして脳がんDNAメチル化データのTCGAコレクションからランダムに選択された10個のサンプからルの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で脳がんを検出する(図19B、表11)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、11種の異なる腫瘍タイプを表すTCGAからランダムに選択された110個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、検出のCGIDはまた、脳がんと他の腫瘍とを区別することを発見した(図19、表11)(検出−スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態16:脳がんを検出するための脳がんポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態15(検出)で開発された加重脳がんDNAメチル化スコアおよび閾値が、TCGAからの689人の脳がん患者、GSE58298からの40人の患者およびGSE36278からの136人の患者からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」で脳がんを検出することを実証した。この方法を使用して、91%〜97%の脳がんサンプルが脳がんとして検出された(図20A)。次に、発明者らは、脳がんと他の9種類のがんのGSEとTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、脳がんと他のがんを区別するための、同様のCGIDの有用性を実証した(図20A)。図20Bに示されるROC曲線は、脳がんを他の正常な組織および他のがんから検出するためのこのメチル化
スコアの特異性(1)および感度(0.97)を明らかにしている(図20C)。これらのDNAメチル化マーカーとメチル化値からの計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人におけるがんの早期発見に使用できる。
実施形態17:胃がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE99553(正常)からの18人の、そして胃がんDNAメチル化データのTCGAコレクションからランダムに選択された10個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で胃がんを検出する(図21B、表12)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、11種の異なる腫瘍タイプを表すTCGAからランダムに選択された100個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、胃がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図21C、表13)(スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態19:卵巣がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE65820(正常)からの5人の、そして卵巣がんDNAメチル化データのTCGAコレクションからランダムに選択された10個のサンプからルの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で卵巣がんを検出する(図23B、表14)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、10種の異なる腫瘍タイプおよび血液を表すTCGAからランダムに選択された100個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、卵巣がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図2C、表15)(スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態21:子宮頸がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE46306(正常)からの20人の、そして子宮頸がんDNAメチル化データのTCGAコレクションからランダムに選択された10個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で子宮頸がんを検出する(図25B、表16)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、8種の異なる腫瘍タイプおよび血液を表すTCGAからランダムに選択された80個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、子宮頸がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図25C、表17)(スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態23:頭頸部扁平上皮がん(HNSC)のポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE(52068)(正常)からの10人の、そしてHNSC DNAメチル化データのTCGAがんコレクションからランダムに選択された10個のサンプルから正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性でHNSCを検出する(図27B、表18)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、12種の異なる腫瘍タイプを表すTCGAからランダムに選択された80個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、HNSCと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図27C、表19)(スペック)。
実施形態24:HNSCを検出するための頭頸部扁平上皮がん(HNSC)ポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態23(検出)で開発された加重HNSC DNAメチル化スコアおよび閾値が、GSE52068、GSE75537およびGSE79556からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」でHNSCを検出することを実証した。この方法を使用して、88%〜96%のHNSCサンプルが検出された(図28A)。次に、発明者らは、HNSCと他の12種類のがんのGSEとTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、HNSCと他のがんを区別するための、DNAメチル化検出スコアの有用性を実証した(図28A)。図28Bに示されるROC曲線は、HNSCを他の正常な組織および他のがんから区別するためのこのメチル化スコアの特異性(0.86)および感度(0.88)を明らかにしている(図28C)。マーカーは、他のいくつかのがんも検出する(比較的高感度であるため、これらのがんに対する特異性は限られている)。これらのDNAメチル化マーカーとメチル化値からの計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人におけるがんの早期発見に使用できる。
実施形態25:食道がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE(52068)(正常)からの10人の、そして食道がんDNAメチル化データのTCGAがんコレクションからランダムに選択された10個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で食道がんを検出する(図29B、表20)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、12種の異なる腫瘍タイプを表すTCGAからランダムに選択された80個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、食道がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図29C、表21)(スペック)。
実施形態26:食道がんを検出するための食道がんポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態25(検出)で開発された加重食道がんDNAメチル化スコアおよび閾値が、GSE52068、GSE75537およびGSE79556からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コ
ーホート」で食道がんを検出することを実証した。この方法を使用して、88%〜96%の食道がんサンプルが検出された(図30A)。次に、発明者らは、食道がんと他の12種類のがんのGSEとTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、食道がんと他のがんを区別するための、検出DNAメチル化スコアの有用性を実証した(図30A)。図30Bに示されるROC曲線は、食道がんを他の正常な組織および他のがんから区別するためのこのメチル化スコアの特異性(0.86)および感度(0.88)を明らかにしている(図30C)。マーカーは、他のいくつかのがんも検出する(比較的高感度であるため、これらのがんに対する特異性は限られている)。これらのDNAメチル化マーカーとメチル化値からの計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人におけるがんの早期発見に使用できる。
実施形態27:膀胱がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE52955(正常)からの5人の、そして膀胱がんDNAメチル化データのTCGAがんコレクションからランダムに選択された10個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で膀胱がんを検出する(図31B、表22)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、13種の異なる腫瘍タイプおよび正常な血液を表すTCGAからランダムに選択された80個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、膀胱がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図31C、表23)(スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態29:腎臓がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE52955(正常)からの10人の、そしてTCGAデータセットにある13種のがんよりがんごとにランダムに選択された10個のサンプルからの、腎臓がんのための正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用し、そして正常な組織および血液(GSE40279、GSE52955)を使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCDhypo法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で腎臓がんを検出し、そして他のがんに対して腎臓がんに特異的
である「検出−スペック」(図33B、表24)(検出−スペック)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。
実施形態30:腎臓がんを検出するための腎臓がんポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
発明者らは、実施形態29(検出−スペック)で開発された加重腎臓がんDNAメチル化スコアおよび閾値が、TCGAからの871人の腎臓がん患者からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」で腎臓がんを検出し、腎臓がんを他のがんから区別することを実証した。この方法を使用して、90%の腎臓がんのサンプルが腎臓がんとして検出された(図34A)。次に、発明者らは、腎臓がんと他の13種類のがんのGSEとTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、腎臓がんと他のがんを区別するための、「検出−スペック」DNAメチル化スコアの有用性を実証した(図34A)。図34Bに示されるROC曲線は、腎臓がんを他の正常な組織および他のがんから検出するためのこのメチル化スコアの特異性(0.87)および感度(0.91)を明らかにしている(図34C)(HCC、脳がん、精巣がんとの高い交差)。これらのDNAメチル化マーカーとメチル化値からの計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人における腎臓がんの早期発見に使用できる。
実施形態31:精巣がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE46306(正常)からの13人の、そしTCGAデータセットにある13種のがんよりがんごとにランダムに選択された10個のサンプルからの、正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用し、そして正常な組織および血液(GSE40279、GSE61496)を使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCDhypo法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で精巣がんを検出し、そして他のがんに対して精巣がんに特異的である「検出−スペック」(図35B、表25)(検出−スペック)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。
実施形態33:13種の一般的な固形腫瘍のポリジーン汎がんDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、TCGAデータセットにある13種のがん(膀胱がん、脳がん、乳がん、子宮頸がん、大腸がん、食道がん、HNSC、肝臓がん、肺がん、卵巣がん、膵臓がん、前立腺がん、胃がん)よりがんごとにランダムに選択された10個のサンプルからの、正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用し、そしてTCGAとGEOからの正常な組織および血液を使用した。次に、発明者らは、表x−yにリストされている10種類のがんを検出するCGIDの組み合わせリストおよび10種の一般的ながんのいずれかを高い感度および特異性で検出する候補リストに挙げられたCGIDに対して罰則付き回帰を実行した(図37B、表26)(検出)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。
実施形態37:急性骨髄性白血病(AML)を検出するためのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GEOデータセット内のランダムに選択された10個のAMLサンプルと10個の正常な血液サンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。次に、発明者らは、AMLの検出のためのCGIDの組み合わせリスト、およびAMLを高い感度および特異性で検出する候補リストに挙げられたCGID対して罰則付き回帰を実行した(図41、表27)(検出−スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびAMLの閾値がCGIDのために開発された。
実施形態38:血液DNA中のAMLを検出するための急性骨髄性白血病(AML)ポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態37(「検出−スペック」)で開発された加重AML DNAメチル化スコアおよび閾値が、GEOからの79人のAML患者およびTCGAからの140人の患者、そして正常な血液からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」でAMLを検出することを実証した。この方法を使用して、100%のAMLサンプルが検出された(図42A)。図42Bに示されるROC曲線は、血液からのAMLを検出するためのこのメチル化スコアの特異性(1)および感度(1)を明らかにしている(図42C)。これらのDNAメチル化マーカーとメチル化値からの計算されたメチル化スコアは、血液DNAを使用して、リスクのある人や一般的な健康な人におけるAMLの早期発見に使用できる。
実施形態39:前立腺がんを予測するためのバイサルファイト変換、多重増幅および次世代シーケンスおよびメチル化スコアの計算。
血液は、K3−EDTAを含む9mlチューブに収集され、1時間以内に処理された。新鮮な血液サンプルを4℃で1000gで10分間遠心分離した。細胞層を乱すことなく上澄みをファルコンチューブに注意深く移し、残りの細胞を完全に除去するために再度10分間遠心分離し、−80℃で凍結した。血漿サンプルを解凍し、血漿DNA用のQiagenキットやEZ DNA直接抽出法など、血漿DNA抽出用のいくつかの利用可能な方法と市販のキットでDNAを抽出する。AMPure XP磁気ビーズなどの市販の方法を使用してDNAを精製し、精製したDNAを、例えばEZ DNAバイサルファイト処理キットを使用して亜硫酸水素ナトリウムで処理する。ターゲット配列のライブラリーは、2段階のPCR反応によって生成される(図40)。第一のPCR反応は、表5および表6の特定のCGIDをターゲットにする。PCR1プライマーは、第二のPCR2プライマーと相補的な配列を持っていることに注意する(図45)。本発明者らは、HEK293細胞からのヒトバイサルファイト変換ゲノムDNAを使用して、標準的なTaqポリメラーゼ反応で以下のプライマーを使用したマルチプレックスPCR反応において、HIF3A(232塩基対領域)、TPM4(213塩基対領域)、およびCTTN(199塩基対領域)から前立腺がんを検出するCGIDを含むDNAの3つの配列を同時に増幅した:CGID cg02879662の場合、フォワードプライマー:
Figure 2021532735
およびリバースプライマー:
Figure 2021532735
CGID cg16232979の場合、フォワードプライマー:
Figure 2021532735
およびリバースプライマー:
Figure 2021532735
CGID:cg14041701およびcg14498227の場合、フォワードプライマー:
Figure 2021532735
およびリバースプライマー:
Figure 2021532735
増幅した断片をアガロースゲルで分画した。
サンプルをバーコード化するために、次のプライマーを使用した第二のPCR反応を使
用する:
フォワードプライマー:
Figure 2021532735
バーコードプライマー(リバース):
Figure 2021532735
(太字の塩基はインデックスである。このインデックスの200のバリエーションが使用される。プライマーの第二のセットは、各患者のインデックスと、リバースおよびフォワードシーケンスプライマーを導入する。前立腺がんHIF3A 232 bp、TPM4
213 bp、およびCTTN 199 bpの3つのマーカーに対するマルチプレックスPCR1反応は、図46に示すように、さまざまなプライマー濃度を使用する右側のパネルに表示される。
実施形態40:バイサルファイト変換、マルチプレックス増幅および次世代シーケンスの方法の有用性、およびがんを予測するためのメチル化スコアの計算。
本発明者らは、実施形態39が、何百人もの患者からの血漿サンプルを使用して、前立腺がんおよび他のがんを同時にハイスループット(high throughput)予測することに使用され得ることを実証する。高度に予測可能なCG IDのインデックス付き増幅と、がんを示すメチル化スコアを計算するための合理化された方法は、前立腺がんと他のがんの早期発見に使用できる。
検出 スペックのためのサブセット:
cg08884571,cg00011225,cg23946709
図1は、何百人もの血液サンプルと正常組織にまたがる完全にメチル化されていないサイトの候補リストを示す。図Aは、Illumina 450Kのゲノムワイドなメチル化アレイのすべての個体(<0.l)(GSE50192)でメチル化されていない17組織にわたるCG IDが、312の個体からの血液サンプル(GSE61496)のゲノムワイドなDNAメチル化アレイの非メチル化CG IDと重複して33477個のCG IDのリストを生成したことを示している。Bは、最も強力な非メチル化CG IDの候補リストを示しており、Aの33477個のCG IDのリストは、19歳から101歳までの656人(女性および男性)の血液サンプル(GSE40279)のDNAメチル化アレイの非メチル化CG IDと重複していた。結合された部分について、これらの分析により、すべての年齢層の多くの個人の組織と血液サンプルにわたってメチル化されていない信頼度の高い28754個のCG IDのリストが生成された。これらの28754個の位置は、本発明の主題によって開示される「バイナリーカテゴリー区別(BCD)」法を使用して、がんにおいてカテゴリー的にメチル化されているが他の組織ではメチル化されていないサイトの発見に使用された。 図2は、HCCに対する現在の循環DNAマーカーの組織特異性の欠如を示す図である。図示されたヒートマップは、他の正常な組織におけるこれらのサイトのHCCとメチル化レベルのバイオマーカーとしてXu等(Xu等、2017)に候補としてリストされた10個のCG IDを示す。HCCの特定のバイオマーカーとして提案されているCG IDのいくつかは、他の組織でもメチル化されており、そして血中DNAのメチル化レベルがさまざまであることを示す。(青は0メチル化、暗赤色は100%メチル化) 図2Aは、本発明の主題の実施形態による図2の一部の分解図である。 図2Bは、本発明の主題の実施形態による図2の一部の分解図である。 図2Cは、本発明の主題の実施形態による図2の一部の分解図である。 図3は、がんDNAに対してBCD法を使用して発見されたHCC DNAメチル化マーカーの特異性を示す図である。図示されたヒートマップは、ここで説明するBCD法によってHCC DNAメチル化マーカーとして選択された4つのCG IDを示す。メチル化レベルは、がん(HCC)と正常な組織および血液との間でカテゴリー的に異なり、これにより、血液および他の組織のすべての個体で該サイトがメチル化されず、HCCで測定可能な程度にメチル化される。 図3Aは、本発明の主題の実施形態による図3の一部の分解図である。 図3Bは、本発明の主題の実施形態による図3の一部の分解図である。 図3Cは、本発明の主題の実施形態による図3の一部の分解図である。 図4は、大腸がんに対する現在のDNAメチル化マーカーのがん組織起源特異性の欠如、および本発明の主題の実施形態による「検出−スペック」法との比較を示す図である。図Aは、大腸がんのCF DNAメチル化マーカー「Epi−大腸がん」(エピゲノミクス社より販売)に含まれるSept9遺伝子のCGサイトを示しており、マーカーはがんDNAメチル化データのTCGAコレクションからのメチル化データを利用して他の多くのがんを検出するために使用できるため、大腸がんに対する特異性に欠けている(HKG−大腸がん(HKG−epiCRC)、青)。BCD法(HKG−大腸がんオレンジ)(表)を用いて発見された大腸がんの検出のために本発明の主題で開示されるマーカー(表)は、他の一般的な固形腫瘍がんに対して試験した場合、大腸がんに非常に特異的である。図Bと図Cは、HKG−大腸がん(HKG−epiCRC)(B)またはEpi−大腸がん(C)のいずれかのDNAメチル化マーカーを使用した、さまざまながんの異なる個人からの腫瘍DNAのDNAメチル化値の散布図である。注目すべきは、HKG−epiCRCマーカー(B)対Epi−大腸がんマーカー(C)の散在する異質なプロファイルを使用した、大腸がんと他のがんの間のDNAメチル化の厳格なカテゴリー的な違いである。 図4Aは、本発明の主題の実施形態による図4の一部の分解図である。 図4Bは、本発明の主題の実施形態による図4の一部の分解図である。 図5は、肝臓がん(HCC)の早期発見のためのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見を示す図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表を示し、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表1)および起源特定のがんを決定するためのCG ID(表2)を使用する実施形態による、HCCの検出のための4つの一連のCGIDの発見に使用された。図5の左下のパネルの図B(検出)は、1〜145(正常79名およびHCC66名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表1)のメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、HCCを有する人と正常な肝組織を有する人をカテゴリー的に区別する。右下のパネルの図Cは、8種の異なる腫瘍(表2)のデータを使用して特定の腫瘍の起源を検出する1つのCGID(表2)のメチル化スコアを示す。マーカーは、他の起源のがんとHCCをカテゴリー的に区別する。 図6は、GSE76269(n=227)からのDNAメチル化データを使用た、HCC(スペック)のポリジーンDNAメチル化マーカーの検証の図である。図Aは、肝臓がん患者227名のDNAメチル化データと正常10名を使用したHCC DNAメチル化マーカーの曲線下の領域を示すROCプロットである。図6の図Bは、HCC検出の感度、特異性、および精度を示す。図Cは、検証データセットにおけるHCCの検出の予測率を示す。 図7は、TCGAメチル化データ(n=4166)における、HCC対他のがんに対するポリジーンHKG−epi肝臓がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図7の図Aは、異なるがんを有する患者のHKG−肝臓検出/スペックマーカーDNAメチル化データの検出率を示す。HCCのほぼ完全な特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける4166人の患者のDNAメチル化データにおける、HCCのHKG−肝臓−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、HCC対他の起源のがんに対する感度と特異性である。 図8は、肺がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図8の図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表3)および起源特定のがん組織を決定するためのCG ID(表4)を使用する実施形態に開示される、肺がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図8の左下のパネルの図B(検出)は、1〜20名(正常10名および肺がん10名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表3)のメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、肺がんを有する人と正常な組織を有する人をカテゴリー的に区別する。図8の右下のパネルの図Cは、8種の異なる腫瘍(n=80)のある人からのデータを使用して特定の腫瘍の起源を検出するCGID(表4)のメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは他の起源のがんと肺がんをカテゴリー的に区別する。 図9は、TCGAメチル化データ(n=4166)における、肺がん対他のがんに対するポリジーンHKG−epi肺がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図9の図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用したHKG−epi肺がん検出/スペックマーカーの検出率を示す。肺がんの特異性に注目すべきである。図9の図Bは、TCGAからの4166名の患者のDNAメチル化データにおける、肺がんのHKG−肺がん−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットを示す。図9の図Cは、肺がん対他の起源のがんに対する感度と特異性を示す。 図10は、前立腺がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図10の図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表5)および起源特定のがん組織を決定するためのCG ID(表)を使用する実施形態に開示される、前立腺がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図10の左下のパネルの図B(検出)は、1〜15(正常5名および前立腺がん10名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表5)のメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、前立腺がんを有する人と正常な人をカテゴリー的に区別する。図10の右下のパネルの図Cは、8種の異なる腫瘍(n=80)のある人からのデータを使用して起源特定の腫瘍組織を検出するCG(表)のメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは他の起源のがんと前立腺がんをカテゴリー的に区別する。 図11は、TCGAメチル化データ(n=4166)における、前立腺がん対他のがんに対するポリジーンHKG−epi前立腺がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図11の図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用したHKG−前立腺がん検出/スペックマーカーの検出率を示す。前立腺がんの特異性に注目すべきである。図11の図Bは、TCGAにある4166名の患者からのDNAメチル化データを使用する、前立腺がんのHKG−前立腺がん−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図11の図Cは、前立腺対他の起源のがんに対する感度と特異性を示す。 図12は、乳がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図12の図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表)および起源特定のがんを決定するためのCG ID(表)を使用する実施形態に開示される、乳がんの検出のための一連のCGの発見に使用された。図12の左下のパネルの図B(検出)は、1〜27(正常17名および乳がん10名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表)のメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、乳がんを有する人と正常な乳組織を有する人をカテゴリー的に区別する。図12の右下のパネルの図Cは、8種の異なる腫瘍(n=80)のある人からのデータを使用して特定の腫瘍の起源を検出するCGID(表)のメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは他の起源のがんと乳がんをカテゴリー的に区別する。 図13は、検証コーホートGSE60185(n=285)において、HKG−epi乳がん−検出ポリジーンDNAメチル化マーカーが非浸潤性および浸潤性乳がんを検出する図である。図13の図Aは、239名の乳がん患者のDNAメチル化データ、17名の乳がんではない乳房形成術患者および29名の隣接組織を使用した乳がんポリジーンDNAメチル化マーカーの曲線下の領域を示すROCプロットである。すべての乳がんの感度、特異性および精度をBに示し、DCIS(非浸潤性乳管がん)、浸潤性乳がんおよび混合乳がんのサンプルの予測率を図13の図Cに示す。注目すべきは、乳がんマーカーが非常に早期の乳がん(DCIS)を検出することである。 図14は、TCGAメチル化データ(n=4166)における、乳がん対他のがんに対するポリジーンHKG−epi乳がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図14の図Aは、異なるがんを有する患者からのDNAメチル化データにおいて、HKG−epi乳がん検出/スペックマーカーの検出率を示す。乳がんの特異性に注目すべきである。図14の図Bは、TCGAにおける4166人患者のDNAメチル化データを使用して乳がんを検出するための、HKG−乳がん−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図14の図Cは、乳がん対他の起源のがんに対する感度と特異性を示す。 図15は、大腸がん(CRC)のポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図15の図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表)および起源特定のがんを決定するためのCG ID(表)を使用する実施形態に開示される、大腸がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図15の左下のパネルの図B(検出)は、1〜75(正常25名および大腸がん50名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG IDのメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、がんを有する人と正常な組織を有する人をカテゴリー的に区別する。図15の右下のパネルの図Cは、8種の異なる腫瘍(n=80)のある人からのDNAメチル化データを使用して腫瘍の特定の起源を検出するCGIDのメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは他の起源のがんと大腸がんをカテゴリー的に区別する。 図16は、TCGA DNAメチル化データセット(n=4166)を使用した、大腸がん対他のがんに対するポリジーンHKG−epiCRC−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図16の図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用するHKG−epiCRC検出/スペックマーカーの検出率を示す。大腸がんの特異性に注目すべきである。図16の図Bは、TCGAにおける4166名の患者からのDNAメチル化データを使用する、大腸がんのHKG−epi大腸がん−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図16の図Cは、大腸がん対他の起源のがんに対する感度と特異性を示す。 図17は、膵臓がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図17の図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表)および起源特定のがんを決定するためのCG ID(表10)を使用する本発明に開示される膵臓がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図17の左下のパネルの図B(検出)は、1〜32(正常12名および膵臓がん20名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表)のメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、膵臓がんを有する人と正常な組織を有する人をカテゴリー的に区別する。図17の右下のパネルの図Cは、10種の異なる腫瘍(n=100)のある人からのデータを使用して腫瘍の特定の起源を検出するCGID(表10)のメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは他の起源のがんと膵臓がんをカテゴリー的に区別する。 図18は、TCGAメチル化データ(n=4854)における、膵臓がん対他のがんに対するポリジーンHKG−epi膵臓がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図18の図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用する、HKG−epi膵臓がん検出/スペックマーカーの検出率である。膵臓がんの特異性に注目すべきである。図18の図Bは、TCGAにおける4854名の患者からのDNAメチル化データを使用する、膵臓がんのHKG−epi膵臓がん−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、膵臓がん対他の起源のがんに対する感度と特異性を示す。 図19は、脳がん(膠芽腫)のポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図19の図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表11)およびがんの特定起源を決定するためのCG ID(表11)を使用する、本発明に開示される、脳がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。左下のパネルの図B(検出/スペック)は、1〜16(正常6名および脳がん10名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表11)のメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、脳がんを有する人、110名の別のがんを有する人と正常な組織を有する人をカテゴリー的に区別する。 図20は、TCGAメチル化データ(n=4854)における、脳がん対他のがんに対するポリジーンHKG−epi脳がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用する、HKG−epi脳がん検出/スペックマーカーの検出率である。脳がんの特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける4854名の患者からのDNAメチル化データを使用する、脳がんのHKG−epi脳がん−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、TCGAデータセット(n=695)における脳がんに対する感度と特異性を示す。 図21は、胃(gastric)[胃(stomach)]がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表12)およびがんの特定起源を決定するためのCG ID(表13)を使用する、本発明に開示される胃がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図21の左下のパネルの図B(検出)は、1〜28(正常14名および胃がん20名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表12)のメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、胃がんを有する人と正常な組織を有する人をカテゴリー的に区別する。図21の右下のパネルの図C(スペック)は、10種の異なる腫瘍(n=100)のある人のポリジーンメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは他の起源のがんと胃がんをカテゴリー的に区別する。 図22は、TCGAメチル化データ(n=4817)における、胃がん対他のがんに対するポリジーンHKG−胃−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用する、HKG−epi胃がん検出/スペックマーカーの検出率である。胃がんの特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける4420名の患者からのDNAメチル化データを使用する、胃(胃がん)のHKG−epi胃がん−検出 スペック 1マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、TCGAにおける4854名の患者からのDNAメチル化データを使用する、胃がんのHKG−epi胃がん−スペック 1マーカーの特異性と感度のROCプロットである。注目すべきは、大腸がんおよび食道がんとの有意な交差反応性があり、それが共通の起源であることを証明していることである。 図23は、卵巣がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表14)および起源特定のがんを決定するためのCG ID(表15)を使用する、本発明に開示される卵巣がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図23の左下のパネルの図B(検出)は、1〜15(正常5名および卵巣がん10名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG IDのメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、卵巣がんを有する人と正常な組織を有する人をカテゴリー的に区別する。図23の右下のパネルの図Cは、11種の異なる腫瘍(n=110)のある人からのデータを使用して特定の腫瘍起源を検出するCGIDのメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは他の起源のがんと卵巣がんをカテゴリー的に区別する。 図24は、TCGAメチル化データ(n=6522)における、卵巣がん対他のがんに対するポリジーンHKG−epi卵巣がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用する、HKG−epi卵巣がん検出/スペックマーカーの検出率である。卵巣がんの特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける4723名の患者からのDNAメチル化データにおける、卵巣がんのHKG−epi卵巣がん−検出およびスペックマーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、卵巣がんに対する感度と特異性を示す。 図25は、子宮頸がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表16)および起源特定のがんを決定するためのCG(表17)を使用する、本発明に開示される子宮頸がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図25の左下のパネルの図B(検出)は、1〜30(正常20名および子宮頸がん10名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表16)のメチル化スコアの合計を示す。該ポリジーンスコアは、子宮頸がんを有する人と正常な組織を有する人をカテゴリー的に区別する。図25の右下のパネルの図Cは、8種の異なる腫瘍(n=80)のある人からのデータを使用して腫瘍の特定起源を検出するCGID(表17)のメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは他の起源のがんと子宮頸がんをカテゴリー的に区別するが、大腸がんのいくつかの測定可能な検出に留意されたい。 図26は、TCGAメチル化データ(n=6522)における、子宮頸がん対他のがんに対するポリジーンHKG−子宮頸がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用する、HKG−子宮頸がん検出/スペックマーカーの検出率を示す。子宮頸がんの特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける4420名の患者からのDNAメチル化データを使用する、子宮頸がんのHKG−子宮頸がん−検出 スペックマーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、子宮頸がんに対する感度と特異性を示す。 図27は、頭頸部扁平上皮がん(HNSC)のポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表18)および起源特定のがんを決定するためのCG(表19)を使用する、本発明に開示されるHNSCの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図27の左下のパネルの図Bは、1〜140(がん10名、正常10名および他のがん120名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表18)のメチル化スコアの合計を示す。図Cは、実施形態においてHNSCと正常組織サンプルをカテゴリー的に区別するとともに、他の起源からのがんとHNSCをカテゴリー的に区別するポリジーンスコアを示す。 図28は、TCGAメチル化データ(n=4166)における、HNSC対他のがんに対するポリジーンHKG−epiHNSC−検出/スペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用する、HKG−epiHNSC 検出/スペックマーカーの検出率である。HNSCの特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける4166名の患者からのDNAメチル化データにおけるHNSCのHKG−epiHNSC−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、HNSC対他の起源のがんに対する感度と特異性を示す。 図29は、食道がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表20)およびがんの特定起源を決定するためのCGID(表21)を使用する、実施形態に開示される、食道がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図29の左下のパネルの図Bは、1〜22(正常名、がん14名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表20)のメチル化スコアの合計を示す。図Cは、実施形態において食道がんと正常組織をカテゴリー的に区別するとともに、他の起源からのがんと1〜220(がん20名、他のがん190名および正常血液10名)からリストされた食道がんをカテゴリー的に区別するポリジーンスコアを示す。 図30は、TCGAメチル化データ(n=7102)における、食道がん対他のがんに対するポリジーンHKG−epi食道がん−検出/スペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんを有する患者のDNAメチル化データを使用する、HKG−epi食道がん検出/スペックマーカーの検出率を示す。食道がんの特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける4166名の患者のDNAメチル化データにおける食道がんのHKG−epi食道がん−検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、食道がん対他の起源のがんに対する感度と特異性を示す。 図31は、膀胱がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表22)およびがんの特定起源を決定するためのCGID(表23)を使用する、実施形態に開示される膀胱がんの検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図31の左下のパネルの図B(検出)は、1〜15(正常5名、膀胱がん10名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表22)のメチル化スコアの合計を示す。図31の右下のパネルの図Cは、13種の異なる腫瘍(n=130)を有する人からのデータを使用して腫瘍の特定の起源を検出するCGID(表23)のメチル化スコアを示す。これらの実施形態では、マーカーは、他の起源からのがんと膀胱がんとを区別する。これらのマーカーによる大腸がんの測定可能な検出も注目すべきである。 図32は、TCGA(n=4723)における膀胱がん対他のがんに対するポリジーンHKG−epiBladder−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがん(A)および膀胱がん(B)を有する患者のDNAメチル化データにおいて、HKG−epi膀胱がんスペックマーカー(A)および検出マーカー(B)の検出率を示す。図Cは、TCGAにおける4420名の患者からのDNAメチル化データを使用した、膀胱がんのHKG−epi膀胱がんスペックマーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Dは、膀胱がんのHKG−epi膀胱がん検出マーカーの特異性と感度のROCプロットである(n=440)。 図33は、腎臓がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD(hypo)法を使用する、実施形態で開示された腎臓がんの検出およびがんの特定の起源の決定(表24)のための一連のCGIDの発見に使用された。図33の左下のパネルの図B(検出/スペック)は、1〜226(その他のがん180名、健康な血液10名、正常な腎臓6名、腎がん30名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表24)のメチル化スコアの合計を示す。これらの実施形態では、該ポリジーンスコアは腎臓がん、別のがんと正常な血液をカテゴリー的に区別する。 図34は、TCGA DNAメチル化データ(n=7102)を使用する、腎臓がん対他のがんおよび正常組織に対するポリジーンHKG−epi腎臓がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんからのDNAメチル化データを使用する、HKG−epi腎臓がん 検出/スペックマーカーの検出率である。腎臓がんの特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける6367のがんのDNAメチル化データを使用する、腎臓がんのHKG−epi腎臓がん−検出 スペックマーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、腎臓(renal)[腎臓(kidney)]がんに対する感度と特異性を示す。さらに注目すべきは、脳、HCCおよび精巣がんとのクロスオーバーである。 図35は、精巣がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD(hypo)法を使用する実施形態で開示された精巣がんの検出および起源特定のがんの決定(表25)のための一連のCGIDの発見に使用された。図35の左下のパネルの図B(検出/スペック)は、1〜190(精巣がん10名、その他のがんおよび血液180名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCG ID(表25)のメチル化スコアの合計を示す。これらの実施形態では、該ポリジーンスコアは精巣がん、正常な血液と別のがんをカテゴリー的に区別する。 図36は、TCGAメチル化データ(n=7102)における、精巣がん対他の正常な組織およびがんに対するポリジーンHKG−epi精巣がん−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんを有する患者からのDNAメチル化データを使用する、HKG−epi精巣がん 検出/スペックマーカーの検出率を示す。精巣がんの特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにおける6367名の患者のDNAメチル化データを使用する、精巣がんのHKG−epi精巣がん−検出 スペックマーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、精巣がんに対する感度と特異性を示す。 図37は、13種の一般的ながんの汎がんポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表26)を使用する実施形態で開示された13種の一般的ながん(表26)(膀胱がん、脳がん、乳がん、子宮頸がん、大腸がんCRC、食道がん、肝臓がん、肺がん、卵巣がん、膵臓がん、前立腺がん、胃がん)の検出のための一連のCGIDの発見に使用された。図Bは、1〜180(がん170名、健康な血液10名)からリストされた各テスト対象者のこれらのCGIDのメチル化スコアの合計を示す。これらの実施形態では、該ポリジーンスコアはがんと正常な組織を区別する。 図38は、TCGAメチル化データ(n=7102)における、ポリジーンHKG epi汎がんマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、TCGAデータを使用し、13人の異なるがん患者のepi汎がんポリジーンDNAメチル化マーカーを使用して計算されたメチル化スコアを示す。図Bは、TCGAにおける4878名の患者からのすべてのがんのDNAメチル化データを使用する、HKG−汎がん 検出およびスペックマーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、がんを検出するための汎がんマーカーの全体的な感度と特異性を示す。これらの実施形態では、1つ以上の色、例えば、オレンジ(加重メチル化スコア)および青(サンプルあたり1つのBCDマーカーの検出が陽性がんとしてスコア付けされる)が使用される。 図39は、黒色腫のポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表45)を使用する実施形態で開示された黒色腫の検出(表28)のための一連のCGIDの発見に使用された。図Bは、1〜220(その他のがんおよび健康な血液)および10名の黒色腫を有する患者からリストされた各テスト対象者のこれらのCGIDのメチル化スコアの合計である。これらの実施形態では、該ポリジーンスコアは黒色腫、別のがんそして正常な組織を区別する。 図40は、TCGAメチル化データ(n=7102)における、黒色腫対他の正常な組織およびがんに対するポリジーンHKG−epi黒色腫−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、異なるがんを有する患者からのDNAメチル化データを使用する、HKG−epi黒色腫 検出/スペックマーカーの検出率を示す。黒色腫(肝臓がん、脳がんおよび前立腺がんとの重複検出)の特異性に注目すべきである。図Bは、TCGAにある6367名の患者のDNAメチル化データを使用する、黒色腫のHKG−黒色腫−検出 スペックマーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、黒色腫に対する感度と特異性を示す。 図41は、血液がん(急性骨髄性白血病(AML))のポリジーンDNAメチル化マーカーの発見の図である。図Aは、ソースと患者数をリストした表であり、これらの患者のメチル化データは、BCD法(表27)を使用する実施形態で開示された血液がんAMLの検出(表27)のための一連のCGIDの発見に使用された。図Bは、1〜10(健康な血液)および10名のAMLを有する患者からリストされた各テスト対象者のこれらのCGIDのメチル化スコアの合計である。これらの実施形態では、該ポリジーンスコアはAMLと正常な血液を区別する。 図42は、GSE86409(n=79)およびTCGA(n=140)におけるAML対GSE40279およびGSE61496(n=968)における正常な血液に対するポリジーンHKG−epiAML−検出およびスペックマーカーの精度および特異性の検証の図である。図Aは、AMLを有する患者及び健康な血液を有する者からのDNAメチル化データを使用する、HKG−epiAML 検出/スペックマーカーの検出率を示す。図Bは、GSE86409(n=79)、TCGA(n=140)、GSE40279およびGSE61496(n=968)からのDNAメチル化データを使用する、AMLのHKG−AML−検出 スペックマーカーの特異性と感度のROCプロットである。図Cは、AMLに対する感度と特異性を示す。 図43は、正常な人に由来する血漿においてBCD特性〜0のメチル化を示す異なるがんを検出するために選択されたプライマーの検証の図である(各サンプルは正常な患者からの血漿の混合物である)。特定のCGをターゲットとする第一のPCR1反応は、シーケンスターゲットプライマーを使用して実行された。第二のPCRの後、増幅されたフラグメントを精製し、次世代シーケンスを行った。DNAメチル化は、示された各々のCG ID位置で定量化された。 図44は、正常な人に由来する血漿においてBCD特性〜0のメチル化を示す異なるがんを検出するために選択された、示されたプライマーの検証の図である(各サンプルは正常な患者からの血漿の混合物である)。 図45は、多重増幅およびシーケンスのためのプライマー設計の図である。第一のPCR反応は対象となる特定の関心領域をターゲットにするが、PCR1プライマーは第二のPCR2プライマーに相補的な配列を持っていることに注意されたい。プライマーの第二セットは、各患者のインデックスと、リバースおよびフォワードシーケンスプライマーを導入する。 図46は、前立腺がんを検出するためのPCR条件の最適化の図である。右側のパネルには、前立腺がんの3つのマーカーHIF3A 232 bp、TPM4 213bp、およびCTTN 199bpについて、示されているDNAのようなさまざまなプライマー濃度を使用したマルチプレックスPCR1反応が示されている。 図47は、DNAメチル化レベルを決定するためのバイオインフォマティクスワークフローの図である。PCR2の産物を組み合わせ、定量化および精製し、Miseq Illuminaシーケンサーで次世代シーケンスを行う。シーケンスは逆多重化(demultiplexed)され、FASTQファイルは患者ごとに生成され、スキームに示されているワークフローで分析される。DNAメチル化スコアは患者ごとに計算される。
データベース; Illumina 450K DNAメチル化データ
遺伝子発現オムニバス(Gene expression Omnibus)(GEO)https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/またはがんゲノムアトラス(The Cancer Genome Atlas)TCGA https://cancergenome.nih.gov/公開データベースのいずれかに寄託された多数の個人からのヒトゲノム全体の〜450,000CGのメチル化の正規化されたベータ値の公開されているデータベースを使用した。次のデータベースを使用して、多くの正常組織および血液DNA:GSE61496、GSE40279にある強力な非メチル化CG IDのリストを取得した。
実施形態6:肺がんを検出するための肺がんポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態(検出)で開発された加重肺がんDNAメチル化スコアおよび閾値が、GSE66836、GSE63704、GSE76269からの、およびTCGAの919人の肺がん患者からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」で肺がんを検出することを実証した。この方法を使用して、96%の肺がんサンプルが肺がんとして検出された(図9A)。次に、発明者らは、肺がんと他の8種類のがんのGSEとTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、肺がんと他のがんを区別するための、スペックおよび検出のDNAメチル化スコアを組み合わせた有用性を実証した(図9A)。図9Bに示されるROC曲線は、肺がんを他の正常な組織および他のがんから検出するための、このメチル化スコアの特異性(0.96)および感度(0.84)を明らかにしている(図9C)。これらのDNAメチル化マーカーと計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人におけるがんの早期発見に使用できる。
実施形態7:前立腺がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE52955(正常な前立腺)からの5人の、そして前立腺がんDNAメチル化データのTCGA前立腺がんコレクションからランダムに選択された10個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で前立腺がんを検出する(図10B、表5)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、8種の異なる腫瘍タイプを表すTCGAからランダムに選択された80個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、前立腺がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図10C、表)(スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態8:前立腺がんを検出するための前立腺がんポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態(検出)で開発された加重前立腺がんDNAメチル化スコアおよび閾値が、GSE73549、GSE2955からの、およびTCGAの430人の前立腺がん患者からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」で前立腺がんを検出することを実証した。この方法を使用して、99%の前立腺がんサンプルが前立腺がんとして検出された(図11A)。次に、発明者らは、前立腺がんと他の8種類のがんのGSEとTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、前立腺がんと他のがんを区別するための、スペックおよび検出のDNAメチル化スコアを組み合わせた有用性を実証した(図11A)。図11Bに示されるROC曲線は、前立腺がんを他の正常な組織および他のがんから検出するための、このメチル化スコアの特異性(0.99)および感度(0.98)を明らかにしている(図11C)。これらのDNAメチル化マーカーと計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人におけるがんの早期発見に使用できる。
実施形態9:乳がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE60185(正常な乳房)からの17人の、そして乳がんDNAメチル化データのTCGA乳がんコレクションからランダムに選択された10個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で乳がんを検出する(図12B、表)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、8種の異なる腫瘍タイプを表すTCGAからランダムに選択された80個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、乳がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図12C、表)(スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態11:大腸がん(CRC)のポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE(32146)(正常)からの25人の、そして大腸がんDNAメチル化データのTCGA大腸がんコレクションからランダムに選択された50個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で大腸がんを検出する(図15B、表)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、8種の異なる腫瘍タイプを表すTCGAからランダムに選択された80個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、大腸がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図15C、表)(スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態13:膵臓がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE53051(正常)からの12人の、そして膵臓がんDNAメチル化データのTCGAコレクションからランダムに選択された20個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプ
ル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で膵臓がんを検出する(図17B、表)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、10種の異なる腫瘍タイプを表すTCGAからランダムに選択された100個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、膵臓がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図17C、表10)(スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態15:脳がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE65820(正常)からの10人の、そして脳がんDNAメチル化データのTCGAコレクションからランダムに選択された10個のサンプからルの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で脳がんを検出する(図19B、表11)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、11種の異なる腫瘍タイプを表すTCGAからランダムに選択された110個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、検出のCGIDはまた、脳がんと他の腫瘍とを区別することを発見した(図19、表11)(検出−スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態16:脳がんを検出するための脳がんポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態15(検出)で開発された加重脳がんDNAメチル化スコアおよび閾値が、TCGAからの689人の脳がん患者、GSE58298からの40人の患者およびGSE36278からの136人の患者からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」で脳がんを検出することを実証した。この方法を使用して、91%〜97%の脳がんサンプルが脳がんとして検出された(図20A)。次に、発明者らは、脳がんと他の9種類のがんのGSEとTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、脳がんと他のがんを区別するための、同様のCGIDの有用性を実証した(図20A)。図20Bに示されるROC曲線は、脳がんを他の正常な組織および他のがんから検出するためのこのメチル化
スコアの特異性(1)および感度(0.97)を明らかにしている(図20C)。これらのDNAメチル化マーカーとメチル化値からの計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人におけるがんの早期発見に使用できる。
実施形態17:胃がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE99553(正常)からの18人の、そして胃がんDNAメチル化データのTCGAコレクションからランダムに選択された10個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で胃がんを検出する(図21B、表12)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、11種の異なる腫瘍タイプを表すTCGAからランダムに選択された100個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、胃がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図21C、表13)(スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態19:卵巣がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE65820(正常)からの5人の、そして卵巣がんDNAメチル化データのTCGAコレクションからランダムに選択された10個のサンプからルの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で卵巣がんを検出する(図23B、表14)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、10種の異なる腫瘍タイプおよび血液を表すTCGAからランダムに選択された100個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、卵巣がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図2C、表15)(スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態21:子宮頸がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE46306(正常)からの20人の、そして子宮頸がんDNAメチル化データのTCGAコレクションからランダムに選択された10個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で子宮頸がんを検出する(図25B、表16)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、8種の異なる腫瘍タイプおよび血液を表すTCGAからランダムに選択された80個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、子宮頸がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図25C、表17)(スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態23:頭頸部扁平上皮がん(HNSC)のポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE(52068)(正常)からの10人の、そしてHNSC DNAメチル化データのTCGAがんコレクションからランダムに選択された10個のサンプルから正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性でHNSCを検出する(図27B、表18)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、12種の異なる腫瘍タイプを表すTCGAからランダムに選択された80個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、HNSCと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図27C、表19)(スペック)。
実施形態24:HNSCを検出するための頭頸部扁平上皮がん(HNSC)ポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態23(検出)で開発された加重HNSC DNAメチル化スコアおよび閾値が、GSE52068、GSE75537およびGSE79556からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」でHNSCを検出することを実証した。この方法を使用して、88%〜96%のHNSCサンプルが検出された(図28A)。次に、発明者らは、HNSCと他の12種類のがんのGSEとTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、HNSCと他のがんを区別するための、DNAメチル化検出スコアの有用性を実証した(図28A)。図28Bに示されるROC曲線は、HNSCを他の正常な組織および他のがんから区別するためのこのメチル化スコアの特異性(0.86)および感度(0.88)を明らかにしている(図28C)。マーカーは、他のいくつかのがんも検出する(比較的高感度であるため、これらのがんに対する特異性は限られている)。これらのDNAメチル化マーカーとメチル化値からの計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人におけるがんの早期発見に使用できる。
実施形態25:食道がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE(52068)(正常)からの10人の、そして食道がんDNAメチル化データのTCGAがんコレクションからランダムに選択された10個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で食道がんを検出する(図29B、表20)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、12種の異なる腫瘍タイプを表すTCGAからランダムに選択された80個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、食道がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図29C、表21)(スペック)。
実施形態26:食道がんを検出するための食道がんポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態25(検出)で開発された加重食道がんDNAメチル化スコアおよび閾値が、GSE52068、GSE75537およびGSE79556からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コ
ーホート」で食道がんを検出することを実証した。この方法を使用して、88%〜96%の食道がんサンプルが検出された(図30A)。次に、発明者らは、食道がんと他の12種類のがんのGSEとTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、食道がんと他のがんを区別するための、検出DNAメチル化スコアの有用性を実証した(図30A)。図30Bに示されるROC曲線は、食道がんを他の正常な組織および他のがんから区別するためのこのメチル化スコアの特異性(0.86)および感度(0.88)を明らかにしている(図30C)。マーカーは、他のいくつかのがんも検出する(比較的高感度であるため、これらのがんに対する特異性は限られている)。これらのDNAメチル化マーカーとメチル化値からの計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人におけるがんの早期発見に使用できる。
実施形態27:膀胱がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE52955(正常)からの5人の、そして膀胱がんDNAメチル化データのTCGAがんコレクションからランダムに選択された10個のサンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCD法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で膀胱がんを検出する(図31B、表22)(検出)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。次に、発明者らは、13種の異なる腫瘍タイプおよび正常な血液を表すTCGAからランダムに選択された80個のDNAメチル化サンプルから「トレーニングコーホート」を生成した。本発明者らは、このトレーニングコーホートを使用して、膀胱がんと他の腫瘍との間で区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した(図31C、表23)(スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアがCGIDのために開発された。
実施形態29:腎臓がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE52955(正常)からの10人の、そしてTCGAデータセットにある13種のがんよりがんごとにランダムに選択された10個のサンプルからの、腎臓がんのための正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用し、そして正常な組織および血液(GSE40279、GSE52955)を使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCDhypo法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で腎臓がんを検出し、そして他のがんに対して腎臓がんに特異的
である「検出−スペック」(図33B、表24)(検出−スペック)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。
実施形態30:腎臓がんを検出するための腎臓がんポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
発明者らは、実施形態29(検出−スペック)で開発された加重腎臓がんDNAメチル化スコアおよび閾値が、TCGAからの871人の腎臓がん患者からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」で腎臓がんを検出し、腎臓がんを他のがんから区別することを実証した。この方法を使用して、90%の腎臓がんのサンプルが腎臓がんとして検出された(図34A)。次に、発明者らは、腎臓がんと他の13種類のがんのGSEとTCGAからのメチル化データと共に「検証コーホート」を使用して、腎臓がんと他のがんを区別するための、「検出−スペック」DNAメチル化スコアの有用性を実証した(図34A)。図34Bに示されるROC曲線は、腎臓がんを他の正常な組織および他のがんから検出するためのこのメチル化スコアの特異性(0.87)および感度(0.91)を明らかにしている(図34C)(HCC、脳がん、精巣がんとの高い交差)。これらのDNAメチル化マーカーとメチル化値からの計算されたメチル化スコアは、患者からの組織、糞便、唾液、血漿および尿からの異なる生体材料を使用して、リスクのある人や一般的な健康な人における腎臓がんの早期発見に使用できる。
実施形態31:精巣がんのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GSE46306(正常)からの13人の、そしTCGAデータセットにある13種のがんよりがんごとにランダムに選択された10個のサンプルからの、正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用し、そして正常な組織および血液(GSE40279、GSE61496)を使用した。本発明者らは最初に、実施形態1で正常な組織および血液サンプル全体で強力にメチル化されていないサイトとして発見された、「トレーニングコーホート」データセット28754 CGIDを候補リストに挙げた。次に、発明者らは、実施形態2に記載のBCDhypo法を使用して、トレーニングコーホートにおいて高い感度および特異性で精巣がんを検出し、そして他のがんに対して精巣がんに特異的である「検出−スペック」(図35B、表25)(検出−スペック)、バイナリーカテゴリー区別的にメチル化されたCGIDのポリジーンセットを発見した。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。
実施形態33:13種の一般的な固形腫瘍のポリジーン汎がんDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、TCGAデータセットにある13種のがん(膀胱がん、脳がん、乳がん、子宮頸がん、大腸がん、食道がん、HNSC、肝臓がん、肺がん、卵巣がん、膵臓がん、前立腺がん、胃がん)よりがんごとにランダムに選択された10個のサンプルからの、正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用し、そしてTCGAとGEOからの正常な組織および血液を使用した。次に、発明者らは、表x−yにリストされている10種類のがんを検出するCGIDの組み合わせリストおよび10種の一般的ながんのいずれかを高い感度および特異性で検出する候補リストに挙げられたCGIDに対して罰則付き回帰を実行した(図37B、表26)(検出)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびがんの閾値がCGIDのために開発された。
実施形態37:急性骨髄性白血病(AML)を検出するためのポリジーンDNAメチル化マーカーの発見。
本発明者らは、GEOデータセット内のランダムに選択された10個のAMLサンプルと10個の正常な血液サンプルからの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化データを「トレーニング」コーホートとして使用した。次に、発明者らは、AMLの検出のためのCGIDの組み合わせリスト、およびAMLを高い感度および特異性で検出する候補リストに挙げられたCGID対して罰則付き回帰を実行した(図41、表27)(検出−スペック)。実施形態2で説明したように、加重DNAメチル化スコアおよびAMLの閾値がCGIDのために開発された。
実施形態38:血液DNA中のAMLを検出するための急性骨髄性白血病(AML)ポリジーンDNAメチル化マーカーの有用性。
次に、発明者らは、実施形態37(「検出−スペック」)で開発された加重AML DNAメチル化スコアおよび閾値が、GEOからの79人のAML患者およびTCGAからの140人の患者、そして正常な血液からの正規化されたIllumina 450K DNAメチル化ベータ値が含まれる「検証コーホート」でAMLを検出することを実証した。この方法を使用して、100%のAMLサンプルが検出された(図42A)。図42Bに示されるROC曲線は、血液からのAMLを検出するためのこのメチル化スコアの特異性(1)および感度(1)を明らかにしている(図42C)。これらのDNAメチル化マーカーとメチル化値からの計算されたメチル化スコアは、血液DNAを使用して、リスクのある人や一般的な健康な人におけるAMLの早期発見に使用できる。
実施形態39:前立腺がんを予測するためのバイサルファイト変換、多重増幅および次世代シーケンスおよびメチル化スコアの計算。
血液は、K3−EDTAを含む9mlチューブに収集され、1時間以内に処理された。新鮮な血液サンプルを4℃で1000gで10分間遠心分離した。細胞層を乱すことなく上澄みをファルコンチューブに注意深く移し、残りの細胞を完全に除去するために再度10分間遠心分離し、−80℃で凍結した。血漿サンプルを解凍し、血漿DNA用のQiagenキットやEZ DNA直接抽出法など、血漿DNA抽出用のいくつかの利用可能な方法と市販のキットでDNAを抽出する。AMPure XP磁気ビーズなどの市販の方法を使用してDNAを精製し、精製したDNAを、例えばEZ DNAバイサルファイト処理キットを使用して亜硫酸水素ナトリウムで処理する。ターゲット配列のライブラリーは、2段階のPCR反応によって生成される(図40)。第一のPCR反応は、表5および表6の特定のCGIDをターゲットにする。PCR1プライマーは、第二のPCR2プライマーと相補的な配列を持っていることに注意する(図45)。本発明者らは、HEK293細胞からのヒトバイサルファイト変換ゲノムDNAを使用して、標準的なTaqポリメラーゼ反応で以下のプライマーを使用したマルチプレックスPCR反応において、HIF3A(232塩基対領域)、TPM4(213塩基対領域)、およびCTTN(199塩基対領域)から前立腺がんを検出するCGIDを含むDNAの3つの配列を同時に増幅した:CGID cg02879662の場合、フォワードプライマー:
Figure 2021532735
およびリバースプライマー:
Figure 2021532735
CGID cg16232979の場合、フォワードプライマー:
Figure 2021532735
およびリバースプライマー:
Figure 2021532735
CGID:cg14041701およびcg14498227の場合、フォワードプライマー:
Figure 2021532735
およびリバースプライマー:
Figure 2021532735
増幅した断片をアガロースゲルで分画した。
サンプルをバーコード化するために、次のプライマーを使用した第二のPCR反応を使
用する:
フォワードプライマー:
Figure 2021532735
バーコードプライマー(リバース):
Figure 2021532735
(太字の塩基はインデックスである。このインデックスの200のバリエーションが使用される。プライマーの第二のセットは、各患者のインデックスと、リバースおよびフォワードシーケンスプライマーを導入する。前立腺がんHIF3A 232 bp、TPM4
213 bp、およびCTTN 199 bpの3つのマーカーに対するマルチプレックスPCR1反応は、図46に示すように、さまざまなプライマー濃度を使用する右側のパネルに表示される。
実施形態40:バイサルファイト変換、マルチプレックス増幅および次世代シーケンスの方法の有用性、およびがんを予測するためのメチル化スコアの計算。
本発明者らは、実施形態39が、何百人もの患者からの血漿サンプルを使用して、前立腺がんおよび他のがんを同時にハイスループット(high throughput)予測することに使用され得ることを実証する。高度に予測可能なCG IDのインデックス付き増幅と、がんを示すメチル化スコアを計算するための合理化された方法は、前立腺がんと他のがんの早期発見に使用できる。

Claims (54)

  1. ゲノムワイドDNAメチル化マップから「バイナリーカテゴリー区別(BCD)」法を使用して「バイナリー」DNAメチル化シグネチャを導出するステップを含む、がんの「バイナリーカテゴリー」DNAメチル化シグネチャを使用してがんを検出する方法。
  2. 前記ゲノムワイドDNAメチル化マップが、がん細胞、正常な組織および血液DNAの1つ以上である、請求項1に記載の方法。
  3. 前記「バイナリーカテゴリー区別(BCD)」法が、Illumina27K、450KまたはEPICアレイ、ゲノムワイドバイサルファイトシーケンス、メチル化DNA免疫沈降(MeDIP)シーケンス、およびオリゴヌクレオチドアレイとのハイブリダイゼーションの1つ以上の使用を含む、請求項1に記載の方法。
  4. 次の表とサブセットから1つ以上のCG IDのDNAメチル化レベルを測定すること、そして患者由来の唾液、尿、糞便および無細胞血漿DNAなどの生物学的材料にある腫瘍に由来するDNAの「バイナリーカテゴリー」または線形回帰方程式を使用した「がんメチル化スコア」を導き出すことにより、肝細胞がん(HCC)肝臓がんを検出し(検出)、そして他の腫瘍と区別する(スペック)ための請求項1に記載の方法。
    表とサブセットは、次のとおりである。
    Figure 2021532735
    Figure 2021532735
    検出するためのサブセット:cg02012576,cg03768777,cg24804544,cg05739190;およびスペックのためのサブセット:cg14126493
  5. 次の表とサブセットから1つ以上のCG IDのDNAメチル化レベルを測定すること、そして患者由来の唾液、尿、糞便および無細胞血漿DNAなどの生物学的材料にある腫瘍に由来するDNAの「バイナリーカテゴリー」または線形回帰方程式、および受信者動作特性(ROC)アッセイを使用した「がんメチル化スコア」を導き出すことにより、肺がんを検出し(検出)、そして他の腫瘍と区別する(スペック)ための請求項1に記載の方法。
    表とサブセットは、次のとおりである。
    Figure 2021532735
    Figure 2021532735
    検出するためのサブセット:
    cg04223424,cg23141355;および
    スペックのためのサブセット:
    cg05917732,cg25470077
  6. 次の表とサブセットから1つ以上のCG IDのDNAメチル化レベルを測定すること、そして患者由来の唾液、尿、糞便および無細胞血漿DNAなどの生物学的材料にある腫瘍に由来するDNAの「バイナリーカテゴリー」または線形回帰方程式、および受信者動作特性(ROC)アッセイを使用した「がんメチル化スコア」を導き出すことにより、前立腺がんを検出し(検出)、そして他の腫瘍と区別する(スペック)ための請求項1に記載の方法。
    表とサブセットは、次のとおりである。
    Figure 2021532735

    検出_スペックのためのサブセット:
    cg14283569
  7. 次の表とサブセットから1つ以上のCG IDのDNAメチル化レベルを測定すること、そして患者由来の唾液、尿、糞便および無細胞血漿DNAなどの生物学的材料にある腫瘍に由来するDNAの「バイナリーカテゴリー」または線形回帰方程式、および受信者動作特性(ROC)アッセイを使用した「がんメチル化スコア」を導き出すことにより、乳
    がんを検出し(検出)、そして他の腫瘍と区別する(スペック)ための請求項1に記載の方法。
    表とサブセットは、次のとおりである。
    Figure 2021532735
    Figure 2021532735
    検出するためのサブセット:
    cg13031251,cg09734791,cg09695735,cg03637878;および
    スペックのためのサブセット:
    cg03113878,cg20180843
  8. 次の表とサブセットから1つ以上のCG IDのDNAメチル化レベルを測定すること、そして患者由来の唾液、尿、糞便および無細胞血漿DNAなどの生物学的材料にある腫瘍に由来するDNAの「バイナリーカテゴリー」または線形回帰方程式、および受信者動作特性(ROC)アッセイを使用した「がんメチル化スコア」を導き出すことにより、大腸がん(CRC)を検出し(検出)、そして他の腫瘍と区別する(スペック)ための請求項1に記載の方法。
    表とサブセットは、次のとおりである。
    Figure 2021532735
    検出−スペックのためのサブセット:
    cg09854653,cg01566242
  9. 次の表とサブセットから1つ以上のCG IDのDNAメチル化レベルを測定すること、そして患者由来の唾液、尿、糞便および無細胞血漿DNAなどの生物学的材料にある腫瘍に由来するDNAの「バイナリーカテゴリー」または線形回帰方程式、および受信者動
    作特性(ROC)アッセイを使用した「がんメチル化スコア」を導き出すことにより、膵臓がんを検出し(検出)、そして他の腫瘍と区別する(スペック)ための請求項1に記載の方法。
    表とサブセットは、次のとおりである。
    Figure 2021532735
    Figure 2021532735
    検出するためのサブセット:
    cg25024074,cg15386964,cg16232979;および
    スペックのためのサブセット:
    cg01237565,cg08182975,cg20983577,cg25591377
  10. 次の表とサブセットから1つ以上のCG IDのDNAメチル化レベルを測定すること、そして患者由来の唾液、尿、糞便および無細胞血漿DNAなどの生物学的材料にある腫瘍に由来するDNAの「バイナリーカテゴリー」または線形回帰方程式、および受信者動作特性(ROC)アッセイを使用した「がんメチル化スコア」を導き出すことにより、脳がん(膠芽腫)を検出し(検出)、そして他の腫瘍と区別する(スペック)ための請求項1に記載の方法。
    表とサブセットは、次のとおりである。
    Figure 2021532735
    検出とスペックのためのサブセット:
    cg19929355
  11. 次の表とサブセットから1つ以上のCG IDのDNAメチル化レベルを測定すること、そして患者由来の唾液、尿、糞便および無細胞血漿DNAなどの生物学的材料にある腫瘍に由来するDNAの「バイナリーカテゴリー」または線形回帰方程式、および受信者動作特性(ROC)アッセイを使用した「がんメチル化スコア」を導き出すことにより、胃(gastric)[胃(stomach)]がんを検出し(検出)、そして他の腫瘍と区別する(スペック)ための請求項1に記載の方法。
    表とサブセットは、次のとおりである。
    Figure 2021532735
    Figure 2021532735
    検出するためのサブセット:
    cg05611779,cg09734791,cg15760257;および
    スペックのためのサブセット:
    cg0511779,cg19235339
  12. 次の表とサブセットから1つ以上のCG IDのDNAメチル化レベルを測定すること、そして患者由来の唾液、尿、糞便および無細胞血漿DNAなどの生物学的材料にある腫瘍に由来するDNAの「バイナリーカテゴリー」または線形回帰方程式、および受信者動作特性(ROC)アッセイを使用した「がんメチル化スコア」を導き出すことにより、卵巣がんを検出し(検出)、そして他の腫瘍と区別する(スペック)ための請求項1に記載の方法。
    表とサブセットは、次のとおりである。
    Figure 2021532735
    Figure 2021532735
    検出するためのサブセット:
    cg24339193,cg22694l53,cg11252337,cg21210985;および
    スペックのためのサブセット:
    cg07068768,cg19846609
  13. 次の表とサブセットから1つ以上のCG IDのDNAメチル化レベルを測定すること、そして患者由来の唾液、尿、糞便および無細胞血漿DNAなどの生物学的材料にある腫瘍に由来するDNAの「バイナリーカテゴリー」または線形回帰方程式、および受信者動作特性(ROC)アッセイを使用した「がんメチル化スコア」を導き出すことにより、子宮頸がんを検出し(検出)、そして他の腫瘍と区別する(スペック)ための請求項1に記載の方法。
    表とサブセットは、次のとおりである。
    Figure 2021532735
    Figure 2021532735
    検出するためのサブセット:
    cg00757182,cg01601746;および
    スペックのためのサブセット:
    cg07066594,cg09260640,cg1296l842
  14. 次の表とサブセットから1つ以上のCG IDのDNAメチル化レベルを測定すること、そして患者由来の唾液、尿、糞便および無細胞血漿DNAなどの生物学的材料にある腫瘍に由来するDNAの「バイナリーカテゴリー」または線形回帰方程式、および受信者動作特性(ROC)アッセイを使用した「がんメチル化スコア」を導き出すことにより、頭頸部扁平上皮がんを検出し(検出)、そして他の腫瘍と区別する(スペック)ための請求項1に記載の方法。
    表とサブセットは、次のとおりである。
    Figure 2021532735
    Figure 2021532735
    検出するためのサブセット:
    cg07900968,cg20334243,cg27420520;および
    スペックのためのサブセット:
    cg18006328,cg19287220
  15. 次の表とサブセットから1つ以上のCG IDのDNAメチル化レベルを測定すること、そして患者由来の唾液、尿、糞便および無細胞血漿DNAなどの生物学的材料にある腫瘍に由来するDNAの「バイナリーカテゴリー」または線形回帰方程式、および受信者動作特性(ROC)アッセイを使用した「がんメチル化スコア」を導き出すことにより、食道がんを検出し(検出)、そして他の腫瘍と区別する(スペック)ための請求項1に記載の方法。
    表とサブセットは、次のとおりである。
    Figure 2021532735
    Figure 2021532735
    検出するためのサブセット:
    cg03280624,cg03735888,cg27420520,cg09734791;および
    スペックのためのサブセット:
    cg09556952,cg12473285
  16. 次の表とサブセットから1つ以上のCG IDのDNAメチル化レベルを測定すること、そして患者由来の唾液、尿、糞便および無細胞血漿DNAなどの生物学的材料にある腫瘍に由来するDNAの「バイナリーカテゴリー」または線形回帰方程式、および受信者動作特性(ROC)アッセイを使用した「がんメチル化スコア」を導き出すことにより、膀胱がんを検出し(検出)、そして他の腫瘍と区別する(スペック)ための請求項1に記載の方法。
    表とサブセットは、次のとおりである。
    Figure 2021532735
    Figure 2021532735
    検出するためのサブセット:
    cg04223424,cg10723962,cg25024074;および
    スペックのためのサブセット:
    cg13544006
  17. 次の表とサブセットから1つ以上のCG IDのDNAメチル化レベルを測定すること、そして患者由来の唾液、尿、糞便および無細胞血漿DNAなどの生物学的材料にある腫瘍に由来するDNAの「バイナリーカテゴリー」または線形回帰方程式、および受信者動作特性(ROC)アッセイを使用した「がんメチル化スコア」を導き出すことにより、腎臓(renal)[腎臓(kidney)]がんを検出し(検出)、そして他の腫瘍と区別する(スペック)ための請求項1に記載の方法。
    表とサブセットは、次のとおりである。
    Figure 2021532735
    検出 スペックのためのサブセット:
    cg08884571,cg00011225,cg00011225
  18. 次の表とサブセットから1つ以上のCG IDのDNAメチル化レベルを測定すること、そして患者由来の唾液、尿、糞便および無細胞血漿DNAなどの生物学的材料にある腫瘍に由来するDNAの「バイナリーカテゴリー」または線形回帰方程式、および受信者動作特性(ROC)アッセイを使用した「がんメチル化スコア」を導き出すことにより、精巣がんを検出し(検出)、そして他の腫瘍と区別する(スペック)ための請求項1に記載の方法。
    表とサブセットは、次のとおりである。
    Figure 2021532735
    検出とスペックのためのサブセット:
    cg14531093,cg25159927
  19. 次の表とサブセットから1つ以上のCG IDのDNAメチル化レベルを測定すること、そして患者由来の唾液、尿、糞便および無細胞血漿DNAなどの生物学的材料にある腫瘍に由来するDNAの「バイナリーカテゴリー」または線形回帰方程式、および受信者動作特性(ROC)アッセイを使用した「がんメチル化スコア」を導き出すことにより、13種の一般的な固形腫瘍(汎がん)を検出する(検出)ための請求項1に記載の方法。
    表とサブセットは、次のとおりである。
    Figure 2021532735
    検出するためのサブセット:
    cg10723962,cg15759056,cg24427504,cg25024074
  20. 次の表とサブセットから1つ以上のCG IDのDNAメチル化レベルを測定すること、そして患者由来の唾液、尿、糞便および無細胞血漿DNAなどの生物学的材料にある腫瘍に由来するDNAの「バイナリーカテゴリー」または線形回帰方程式、および受信者動作特性(ROC)アッセイを使用した「がんメチル化スコア」を導き出すことにより、血液がんを検出する(検出)ための請求項1に記載の方法。
    表とサブセットは、次のとおりである。
  21. 次の表とサブセットから1つ以上のCG IDのDNAメチル化レベルを測定すること、そして患者由来の唾液、尿、糞便および無細胞血漿DNAなどの生物学的材料にある腫瘍に由来するDNAの「バイナリーカテゴリー」または線形回帰方程式、および受信者動作特性(ROC)アッセイを使用した「AMLメチル化スコア」を導き出すことにより、急性骨髄性白血病(AML)を検出する(検出)ための請求項1に記載の方法。
    表とサブセットは、次のとおりである。
    Figure 2021532735
    検出−スペックのためのサブセット:
    cg18658397,cg18780412,cg20439288,cg22828045,cg25375340
  22. 次の表とサブセットから1つ以上のCG IDのDNAメチル化レベルを測定すること、そして患者由来の唾液、尿、糞便および無細胞血漿DNAなどの生物学的材料にある腫瘍に由来するDNAの「バイナリーカテゴリー」または線形回帰方程式、および受信者動作特性(ROC)アッセイを使用した「黒色腫メチル化スコア」を導き出すことにより、黒色腫を検出する(検出)ための請求項1に記載の方法。
    表とサブセットは、次のとおりである。
    Figure 2021532735
    検出−スペックのためのサブセット:
    cg15307891,cg18866529,cg27084903
  23. 請求項1に記載の方法に従ってDNAメチル化スコアのDNAメチル化測定値を導き出すために使用される機器および1つ以上の試薬を含む、がんを検出するためのキット。
  24. 請求項4に記載の方法による、DNAメチル化シグネチャのDNAメチル化測定値のための機器および1つ以上の試薬を含む、肝細胞がん(HCC)を検出するためのキット。
  25. 請求項5に記載の方法による、DNAメチル化シグネチャのDNAメチル化測定値のための機器および1つ以上の試薬を含む、肺がんを検出するためのキット。
  26. 請求項6に記載の方法による、DNAメチル化シグネチャのDNAメチル化測定値のための機器および1つ以上の試薬を含む、前立腺がんを検出するためのキット。
  27. 請求項7に記載の方法による、DNAメチル化シグネチャのDNAメチル化測定値のための機器および1つ以上の試薬を含む、乳がんを検出するためのキット。
  28. 請求項8に記載の方法による、DNAメチル化シグネチャのDNAメチル化測定値のための機器および1つ以上の試薬を含む、大腸がんを検出するためのキット。
  29. 請求項9に記載の方法による、DNAメチル化シグネチャのDNAメチル化測定値のための機器および1つ以上の試薬を含む、膵臓がんを検出するためのキット。
  30. 請求項10に記載の方法による、DNAメチル化シグネチャのDNAメチル化測定値のための機器および1つ以上の試薬を含む、脳がん(膠芽腫)を検出するためのキット。
  31. 請求項11に記載の方法による、DNAメチル化シグネチャのDNAメチル化測定値のための機器および1つ以上の試薬を含む、胃(gastric)[胃(stomach)]がんを検出するためのキット。
  32. 請求項12に記載の方法による、DNAメチル化シグネチャのDNAメチル化測定値のための機器および1つ以上の試薬を含む、卵巣がんを検出するためのキット。
  33. 請求項13に記載の方法による、DNAメチル化シグネチャのDNAメチル化測定値のための機器および1つ以上の試薬を含む、子宮頸がんを検出するためのキット。
  34. 請求項14に記載の方法による、DNAメチル化シグネチャのDNAメチル化測定値のための機器および1つ以上の試薬を含む、頭頸部扁平上皮がん(HNSC)を検出するためのキット。
  35. 請求項15に記載の方法による、DNAメチル化シグネチャのDNAメチル化測定値のための機器および1つ以上の試薬を含む、食道がんを検出するためのキット。
  36. 請求項16に記載の方法による、DNAメチル化シグネチャのDNAメチル化測定値のための機器および1つ以上の試薬を含む、膀胱がんを検出するためのキット。
  37. 請求項17に記載の方法による、DNAメチル化シグネチャのDNAメチル化測定値のための機器および1つ以上の試薬を含む、腎臓がんを検出するためのキット。
  38. 請求項18に記載の方法による、DNAメチル化シグネチャのDNAメチル化測定値のための機器および1つ以上の試薬を含む、精巣がんを検出するためのキット。
  39. 請求項19に記載の方法による、DNAメチル化シグネチャのDNAメチル化測定値のための機器および1つ以上の試薬を含む、一般的な固形腫瘍を検出するためのキット。
  40. 請求項20に記載の方法による、DNAメチル化シグネチャのDNAメチル化測定値のための機器および1つ以上の試薬を含む、血液がんを検出するためのキット。
  41. 請求項21に記載の方法による、DNAメチル化シグネチャのDNAメチル化測定値のための機器および1つ以上の試薬を含む、急性骨髄性白血病(AML)を検出するためのキット。
  42. 請求項22に記載の方法による、DNAメチル化シグネチャのDNAメチル化測定値のための機器および1つ以上の試薬を含む、黒色腫を検出するためのキット。
  43. DNAメチル化の組み合わせを使用することによりがんを予測するためにDNAパイロシーケンスメチル化アッセイを使用するステップをさらに含む、請求項1乃至請求項22に記載の方法。
  44. がんを検出するためにIllumina MiSeqなどの次世代シーケンサーで多重増幅標的化バイサルファイトシーケンスを使用するステップをさらに含む、請求項1乃至請求項22に記載の方法。
  45. がんを予測するためのメチル化スコアを計算するために「バイナリーカテゴリーアッセイ」を使用するステップをさらに含む、請求項1乃至請求項22に記載の方法。
  46. がんを予測するためのメチル化スコアを計算するために多変量線形回帰方程式を使用するステップをさらに含む、請求項1乃至請求項22に記載の方法。
  47. DNAメチル化の組み合わせの測定値を使用することにより、受信者動作特性曲線(R
    OC)アッセイを使用してがんを非がんおよび起源の組織から区別する「メチル化スコア」閾値を定義するステップをさらに含む、請求項1乃至請求項22に記載の方法。
  48. 唾液、尿、血漿、糞などの体液中の無細胞DNAの起源の組織または組織バイオプシーを検出するためのDNAメチル化シグネチャおよび「ポリジーンDNAメチル化マーカー」を識別する方法であり、該方法は、特定の組織のゲノムワイドDNAメチル化マップおよび他のすべての正常な組織と血液DNAのゲノムワイドDNAメチル化マップにおいて、Illumina27K、450KまたはEPICアレイ、ゲノムワイドバイサルファイトシーケンス、メチル化DNA免疫沈降(MeDIP)シーケンス、またはサンプルから取得したDNAメチル化測定値の統計分析を実行するステップを含むオリゴヌクレオチドアレイとのハイブリダイゼーションなどの「バイナリーカテゴリー区別(BCD)」法を使用することを含む。
  49. 血漿中の死にゆくニューロンCF DNAなどの識別がアルツハイマー病などの病気の早期発見に使用され得る、脳のニューロン、糖尿病の膵臓、虚血の心臓、および心臓病などの病変組織の「ポリジーンDNAメチル化マーカー」をさらに識別するための請求項48に記載の方法。
  50. 前記DNAメチル化測定値が、1つ以上のサンプルから抽出されたDNAのIlluminaビーズチップ450KまたはEPICアッセイを行うことによって得られる、請求項48に記載の方法。
  51. 前記DNAメチル化測定値が、iSeq、MiniSeq、MiSeqまたはNextSeqシーケンサー、トレントシーケンス、DNAパイロシーケンス、サンプルから抽出されたDNAの質量分析ベース(EpityperTM)およびPCRベースのメチル化アッセイの1つ以上のプラットフォームでIllumina次世代シーケンスを実行することにより得られる、請求項48に記載の方法。
  52. 前記統計分析はピアソン相関を含む、請求項48に記載の方法。
  53. 前記統計分析が受信者動作特性曲線(ROC)アッセイを含む、請求項48に記載の方法。
  54. 前記統計分析が階層的クラスタリング分析アッセイを含む、請求項48に記載の方法。
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Families Citing this family (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN111710427A (zh) * 2020-06-17 2020-09-25 广州市金域转化医学研究院有限公司 宫颈癌癌前早期病变阶段诊断模型及建立方法
CN112430657B (zh) * 2020-10-27 2022-09-09 哈尔滨医科大学 结直肠癌相关的甲基化标志物以及用于检测结直肠癌的试剂盒
CN112779334B (zh) * 2021-02-01 2022-05-27 杭州医学院 一种用于前列腺癌早期筛查的甲基化标志物组合及筛选方法
CN114093500B (zh) * 2021-10-12 2022-12-02 湖南索莱智能科技有限公司 融合多个检测结果的诊断模型建立方法
WO2023066972A1 (en) * 2021-10-19 2023-04-27 INSERM (Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale) Dna methylation signature for diagnosing hepatocellular carcinoma
CN117165689A (zh) * 2023-10-26 2023-12-05 深圳市睿法生物科技有限公司 一种用于泛实体瘤早期筛查的甲基化标志物及其应用

Family Cites Families (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20180143198A1 (en) * 2014-12-26 2018-05-24 Peking University Method for detecting differentially methylated cpg islands associated with abnormal state of human body
EP3350344A1 (en) * 2015-09-17 2018-07-25 The United States Of America, As Represented By The Secretary, Department Of Health And Human Services Cancer detection methods
WO2017143296A2 (en) * 2016-02-18 2017-08-24 Gill Inderbir Singh Prostate cancer aggressiveness biomarkers
WO2017201606A1 (en) * 2016-05-04 2017-11-30 Queen's University At Kingston Cell-free detection of methylated tumour dna
CN107541565B (zh) * 2016-06-23 2021-07-06 首都医科大学附属北京佑安医院 宿主外周血单个核细胞和t细胞的癌症dna甲基化标志物
US20190203303A1 (en) * 2016-06-29 2019-07-04 Sameer Chopra Classification of subtypes of kidney tumors using dna methylation
WO2018009709A1 (en) * 2016-07-06 2018-01-11 Youhealth Biotech, Limited Lung cancer methylation markers and uses thereof
EP3481941A4 (en) * 2016-07-06 2020-04-15 Youhealth Biotech, Limited BREAST AND OVARY CANCER METHYLATION MARKERS AND USES THEREOF
US10093986B2 (en) * 2016-07-06 2018-10-09 Youhealth Biotech, Limited Leukemia methylation markers and uses thereof
EP3481951A4 (en) * 2016-07-06 2020-08-05 Youhealth Biotech, Limited METHYLATION MARKERS FOR COLON CARCINOMA AND USES THEREOF
CN109680060A (zh) * 2017-10-17 2019-04-26 华东师范大学 甲基化标志物及其在肿瘤诊断、分类中的应用

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