JP2021517242A - Magea4を検出する方法 - Google Patents
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Abstract
Description
腫瘍関連抗原(TAA)(例えばMAGEA4)を特異的に認識するように設計されている療法のために、患者腫瘍サンプルにおける所与のTAAの発現の検出は、患者を有望なレスポンダーに分類し、したがって対応する療法での処置に適格であるとする簡便な診断アプローチを提供する。TAAの検出に適用し得る既知の技法が幾らか存在するものの、正確で再現可能なコンパニオン診断アッセイを得ることは簡単ではなく、注意深い最適化が求められる。偽陰性の結果は、患者が有益であり得る処置を受けられないことを意味する一方、偽陽性の結果は、患者に対して不必要で、有害であり得る副作用を導き得る。したがって、TAAを検出し、ガンを診断し、処置前に適格患者を特定する診断法の必要性が引き続き存在している。
抗MAGEA4抗体を前記サンプルに2〜20μg/mlの範囲内の濃度で添加すること;
該抗体及び該サンプルをインキュベートすること;
該サンプルに結合した抗体を検出すること
を含んでなり、該抗体がOTI1F9である、方法を提供する。
抗MAGEA4(又は「一次」抗体)はモノクローナル抗体であり得る。抗MAGEA4はヒト若しくはマウス抗体であり得、及び/又はIgA、IgD、IgE、IgG若しくはIgMサブタイプであり得る。当業者に公知であるように、MAGEA4は、MAGEファミリーの他のタンパク質に対して高レベルの配列相同を有する。したがって、偽陽性を最小とするために、一次抗体は、MAGEA4を特異的に認識することができ、腫瘍サンプルにおいて評価されたとき、他のMAGEファミリーメンバーとの交差反応性が限定的であるか又は無いことを証明されていることが好ましい。
抗体の濃度は、4〜15、4〜10、5〜13、6〜12、7〜11又は6、7、8、9、10、11又は12μg/mlの範囲内であり得る。好適な範囲は4〜10であり、好適な濃度は10μg/mlである。OTI1F9抗体を用いる本発明の実施形態において、用いる濃度は6〜12、7〜11又は9、10又は11μg/mlであり得、10μg/mlが好ましい。
インキュベーションの条件及び期間は、用いる特定の抗体に依存する。サンプル及び抗体は、30〜60、25〜50、25〜39、27〜35、28〜34、30〜33、31、32又は33分間36℃にてインキュベートされ得る。サンプル及び抗体は、上記期間のいずれかの間33〜39、34〜38、35〜37、35、36又は37℃にてインキュベートされ得る。本発明者らは、32分間36℃が最適な結果(特にOTI1F9について)をもたらすことを見出した。しかし、時間及び温度は変化し得る。例えば、より低い温度を用いる場合、インキュベーション時間はより長く、例えば4℃一晩であり得る。同じく、より高い温度を用いる場合、インキュベーション時間はより短くあり得る。
興味深い特異的蛍光染料としては、キサンテン染料、例えばフルオレセイン及びローダミン染料、例えばフルオレセインイソチオシアネート(FITC)、6-カルボキシフルオレセイン(略号FAM及びFで一般に知られる)、6-カルボキシ-2',4',7',4,7-ヘキサクロロフルオレセイン(HEX)、6-カルボキシ-4',5'-ジクロロ-2',7'-ジメトキシフルオレセイン(JOE又はJ)、N,N,N',N'-テトラメチル-6-カルボキシローダミン(TAMRA又はT)、6-カルボキシ-X-ローダミン(ROX又はR)、5-カルボキシローダミン-6G、6-カルボキシローダミン-6G及びローダミン110;シアニン染料、例えば、Cy3、Cy5及びCy7染料;クマリン、例えば、ウンベリフェロン;ベンズイミド染料、例えばHoechst 33258;フェナントリジン染料、例えば、Texas Red;エチジウム染料;アクリジン染料;カルバゾール染料;フェノキサジン染料;ポルフィリン染料;ポリメチン染料、例えばシアニン染料、例えばCy3、Cy5など;BODIPY染料及びキノリン染料が挙げられる。対象の適用に広く用いられている興味深い特異的蛍光体としては、ピレン、クマリン、ジエチルアミノクマリン、FAM、フルオレセインクロロトリアジニル、フルオレセイン、R110、エオシン、JOE、R6G、テトラメチルローダミン、TAMRA、Lissamine、ナフトフルオレセイン、Texas Red、Cy3及びCy5などが挙げられる。
抗体結合は、蛍光顕微鏡及び各蛍光体に適切なフィルターを用いて、又は複数の蛍光体を見るための二重若しくは三重バンドパスフィルターセット(例えば、米国特許第5776688号)により観察することができる
二次抗体は、好ましくは、HRPに接合されていてもよく、HRP標識抗体のカクテル(ヤギ抗マウスIgG、ヤギ抗マウスIgM及びヤギ抗ウサギ)を含んでいてもよい。抗MAGEA4抗体/二次抗体複合体は、好ましくは、過酸化水素基質及び3,3'-ジアミノベンジジンテトラヒドロクロリド(DAB)を用いて視覚化され得る。過酸化水素基質は0.4%であり得、3,3'-ジアミノベンジジンテトラヒドロクロリド(DAB)色原体は0.2%であり得る。好ましくは、酢酸緩衝剤中の硫酸銅(5g/L)を用いて染色を増強させる。染色は光学顕微鏡観察により評価し得る。
染色は対照と比較されてもよい。対照は、染色の妥当性を支持するため及び実験アーチファクトを同定するために有用である。幾つかの場合、対照は参照サンプル又は参照データセットであり得る。参照は、既知の程度の適切性を有する被験体から以前に取得したサンプルであり得る。参照は、参照サンプルを分析して取得したデータセットであり得る。対照は、標的分子が存在するか又は高レベルで発現していることが既知である陽性対照であってもよいし、標的分子が存在しないか又は低レベルで発現していることが既知である陰性対照であってもよい。適切な陽性対照組織は精巣であり、適切な陰性対照組織は卵巣である。
試験結果を確実に正確に解釈するため、形態学及び免疫組織化学の解釈が病理学者により行われてもよい。その方法には、発現パターンが予測パターンと相関することの確証が含まれ得る。方法には、標的シグナル対ノイズ比が閾値レベルを超えることにより、特異的シグナルと非特異的バックグランドシグナルとの明確な識別が可能であることの検証を含み得る。
最終的に、患者の処置についての適格性の決定は、IHC手順に熟達した有資格の病理学者が行う。
本発明の方法に用いるサンプルは細胞株であってもよく、細胞株はヒト由来であり得る。或いは、そして好ましくは、サンプルは被験体(ヒトであり得る)からの組織サンプルである。サンプルはヒト腫瘍組織サンプルであり得る。
前処理は、サンプルへの抗MAGEA4抗体の添加前の、エピトープ回復若しくは顕在化工程を含み得る。ホルマリンによる組織の固定は、アルデヒドと組織中に存在するアミノ基との間の共有結合の形成を生じる。この結合の形成は、タンパク質を変性させ、抗原性の喪失をもたらす。加えて、ホルムアルデヒドは、組織タンパク質を架橋するメチレンブリッジを形成し得、このため、大きな分子(例えば抗体)の組織透過性が減少し得る。pH及び温度を組み合わせてこれら結合を除去することにより、タンパク質分子の復元及び抗体接近性増大が可能になる。これら変化は、抗体結合の顕著な増大及びS/N比の向上を生じることが多い。一般に、エピトープ回復に適切な任意の緩衝剤−特に、Ventana/Rocheにより供給されるもの-がこの工程に適切である。エピトープ回復又は顕在化工程に用いられる緩衝剤は、EDTAベース(pH8〜9)又はクエン酸ベース(pH6)であり得る。本発明者らは、EDTAベースの緩衝剤がクエン酸緩衝剤と比較して良好な細胞外観をもたらすことを見出した。適切な緩衝剤は、10mM Tris塩基、1mM EDTA、0.05% Tween 20, pH 8.0を含有し得る;このような緩衝剤は市販されており、例えば、Ventana Medical Systemsが供給する細胞コンディショニング液1(product code 950-124)であり得る。この工程を行う時間及び温度は、形態学的外見と組織破壊との間の適正なバランスが達成されるとの条件で、変化し得る。温度が高ければ、一般に、短いインキュベーションで済む一方、低い温度では、一般に、長いインキュベーションが必要となる。エピトープ回復工程の温度は、80〜110、90〜100、92〜108、94、95又は96℃であり得る。エピトープ回復工程の期間は、10〜30、12〜28、13〜27、14〜26、15〜25、16〜24、17〜23、18〜22、18、19、20、21又は22分間であり得る。好適なエピトープ回復工程は、95℃にて20分間行われ、好適な緩衝剤はVentana Medical Systemsにより供給される細胞コンディショニング液1である(product code 950-124)。
本発明の方法は、随意に、特にサンプルが組織サンプルである場合、以下の前処理工程の1又は2以上(好ましくは全て)を含む。
パラフィンワックスは溶媒交換により、例えば、サンプルをパラフィン溶媒(例えば、キシレン、トルエン又はリモネン)に暴露し、次いで溶媒をアルコールにより除去することにより除去され得る。ここで、アルコールは、最終的に組織が水又は水溶液により浸潤さら易くなるまで、アルコール濃度が漸減する系列アルコール/水混合物により除去される。サンプルに水が浸潤することにより、水溶性化学及び免疫化学染料による細胞抗生物質の染色が可能となる。
サンプルを、例えばサンプルを60℃に30分間加温した後、該サンプルを反応緩衝剤(例えば、EZ-Prep溶液)中69℃にて8分間の3回インキュベートすることにより、脱パラフィン化する工程;
エピトープを、例えばサンプルを細胞コンディショニング液1中95℃にて20分間インキュベートすることにより、回復させる工程;
内因性ペルオキシダーゼ活性を、例えばサンプルをDABインヒビター中室温にて8分間インキュベートすることにより、阻害する工程;
サンプルをブロッキング試薬中、随意に36℃にて12分間、インキュベートする工程;
抗体OFI1F9をサンプルに10μg/mlの濃度で添加する工程;
抗体及びサンプルを36℃にて32分間インキュベートする工程;及び
サンプルに結合した抗体を検出する工程
を含んでなる。
本発明に従うIHCは自動染色システムを用いて行い得る。好ましくは、自動染色システムはVentana BenchMark ULTRAである。代替のスライド染色システムとして、Ventana BenchMark GX、Ventana BenchMark GT、Dako Autostainer Link 48、Dako Omnis、Leica BOND-III及びLeica BOND-MAXが挙げられる。
本発明の方法は単独で用いてもよく、他のアッセイ(他の形態学的染色、インサイチュハイブリダイゼーション、qRT-PCT、ELISA、ウェスタンブロッティング、プロテオミクス、FACSを含むがこれらに限定されない)との組合せで用いてもよい。
本発明の方法は、腫瘍サンプル中のMAGEA4タンパク質の存在を決定する診断キットの一部として提供されてもよい。好ましくは、キットは、MAGEA4標的療法に対する患者の適格性を決定するために用いられる。キットは、抗MAGEA4抗体を含んでなってもよく、随意に本発明の方法の実施に必要な試薬との組合せで含んでいてもよい。
本発明の方法は、MAGEA4標的療法に適格な患者を特定するためのコンパニオン診断としての使用に特に適切である。したがって、別の1つの観点で、本発明は、必要とするヒト又は哺乳動物被験体を処置する方法(有利には、個人に合わせた又は個別化された処置(MAGEA4標的療法を含む)を含んでなる)を提供し、当該方法は、
該被験体からのサンプルに抗MAGEA4抗体を2〜20μg/mlの範囲内の濃度で添加することにより、該サンプル中のMAGEA4を検出すること;抗体及びサンプルをインキュベートすること;及びdetectingサンプルに結合した抗体を検出すること
を含んでなり、サンプル中にMAGEA4が検出されれば、MAGEA4標的療法を該被験体に施術する。
方法は、MAGEA4を発現することが知られている任意の腫瘍タイプ(好ましくは、肺ガン(NSCLCを含む)、食道ガン、頭頸部ガン又は尿路上皮/膀胱ガン並びにメラノーマ)を有する患者を処置するために用い得る。
本発明の各観点の好適な特徴は、必要な変更を加えて本発明の他の観点の各々にも該当する。本明細書中で言及する先行技術文献は、参照により、法が許容する最大限で本明細書に組み込まれる。
ここから、本発明を下記の非限定的な実施例において更に説明する。添付図面についても言及する。
実施例1-腫瘍サンプル中のMAGEA4の検出のためのIHC診断アッセイ
1.1 ホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)組織サンプルの調製
組織サンプルを約5mmのスライスに切り出し、20×組織体積に等しい最少体積の10% NBF中で24時間(範囲16〜36時間)固定した。組織標本は、ホルマリンの効率的な灌流が可能となるよう寸法の1つが5mmを超えないようにした(例えば10mm×10mm×5mm)。サンプルが大きければ(例えば10mm×10mm×10mm)、2片(又は3片以上)に切断して、各サンプルについて、寸法の1つが5mm以下となるようにした(例えば、各々10mm×10mm×5mmの2サンプルに切断した)。組織を24時間後にホルマリンから取り出し、70%エタノール中で1回洗浄し、標識組織カセット内に置いた。サンプルカセットを組織プロセッサー内に搭載して、遅延開始特徴を用いる3ワックスタンクプログラムにより加工処理した(プログラム:2×1時間 室温 75%エタノール;2×1時間 室温 90%エタノール;2×1時間 室温 100%エタノール、3×1時間 室温 キシレン;3×80分間 60℃ ワックス)。
プログラムが終了しとき、サンプルカセットを組織プロセッサーから取り出し、続いて適切な配向でパラフィンワックス中に包埋した(FFPEフォーマット)。十分に固化し冷却したとき、ワックスブロックを4℃で保存した。
染色アッセイをアーカイブ化されたFFPEサンプルを用いて行う場合、サンプルの品質検査(QC)を行い、サンプルが適切に固定されており、偽陰性が低減されることを確証することが好ましい。QC検査はPTENに対する抗体を用いて行い得る。
アッセイは、下記のプロトコルに従って、Ventana BenchMark ULTRA自動化IHC/ISHスライド染色システム(Ventana Medical Systems Inc. USA)を用いて行った。
アッセイ試薬
- 一次抗体 - マウスモノクローナル抗MAGE A4抗体(Clone OTI1F9、Origene Cat# TA505362)、ブロッキング試薬中に濃度10μg/ml(範囲4〜10μg/ml)に希釈
- EZ-Prep溶液(Ventana, Cat# 950-102)[洗剤水溶液]
- 細胞コンディショニング液1(Ventana, Cat# 950-124)(Tris-EDTA緩衝剤、pH8〜9)
- ブロッキング試薬 - カゼイン(Ventana, Cat# 760-219)(<20mMのタンパク質(カゼイン及びヤギグロブリン)、<50mMの塩、<15mMのEDTA、brij洗剤及び保存剤(0.05% ProClin 300)を含有する100mMリン酸緩衝剤)で希釈
- ultraView universal DAB検出キット(Ventana, Cat#760-500)、HRPマルチマー - HRP標識抗体(ヤギ抗マウスIgG及びIgM+ヤギ抗ウサギ)のカクテル(<50ug/ml);3,3'-ジアミノベンジジンテトラヒドロクロリド(DAB)色素原(0.2%);リン酸緩衝剤中の過酸化水素(0.04%);酢酸緩衝剤中の硫酸銅(5g/L))を含む。
スライドを30分間60℃にて乾燥させた。スライドを反応緩衝剤中69℃にて8分間の3回インキュベートすることにより脱パラフィン化した。次いで、細胞コンディショニング液1中で95℃にて20分間エピトープ回復を行った。続いて、スライドをDABインヒビター(ultraView検出キットの構成成分)中室温にて8分間インキュベートした後、ブロッキング試薬中36℃にて12分間インキュベートした。一次抗体をスライドあたり約100μlで自動分注し、スライドを36℃にて32分間インキュベートした。抗体検出はultraView検出キットを製造業者の指示通りに用いて行った。スライドをHRPマルチマー中36℃にて20分間インキュベートした。
染色手順の完了時に、スライドを洗浄緩衝剤中で簡潔に洗浄し、蒸留水で濯いで残存するオイルを除去した。続いて、スライドを脱水和し(1×3分間 70%エタノール;3×3分間 100%エタノール;2×5分間 100%キシレン)、マウントし、CTM6自動カバースリップ装置でDPXを用いて封入した。スライドをドラフト内で一晩風乾させた。
3DHistech Pannoramic250スキャナー(ホワイトバランスについて毎週校正)で、スライドを倍率40×でデジタルイメージ化した。
陽性染色はサンプル中のMAGEA4の存在を示した。
ヒト腫瘍組織切片を調製し、上記のように染色した。各FFPEサンプル中のMAGEA4発現をqRT-PCTにより標準法を用いて測定し、100ngのRNAあたりの転写物の数として算出した。
図1は、肺ガン、食道ガン、頭頸部ガン及び膀胱ガン(それぞれA〜D)から取得したサンプルの代表的な染色を示す。各場合において、染色は10ug/mlの抗体濃度を用いて行った。各腫瘍タイプについて、染色強度はRNAレベルと相関することが示される(RNA-高、-中又は-低/無し)。
本アッセイの対照として、健常ヒト組織サンプルを精巣(MAGEA4陽性)及び卵巣(MAGEA4陰性)から取得し、同じ手順を用いて染色した。サンプルは、各症例で3人のドナー個体から取得した。
図2は、精巣サンプルの強い染色及び卵巣サンプルの無染色を示す。
実施例1で用いたヒト腫瘍サンプルを、一次抗体の濃度が最適範囲より低いこと以外は同じ手順を用いて染色した。
図3は、4つの異なる腫瘍(A〜D)についての、最適化した抗体濃度と最適化していない抗体濃度との間(それぞれ10μg/ml及び1.25μg/ml)での染色の比較を示す。
本実施例は、一次抗体濃度の低下が最適でない染色を生じることを証明する。このことは、特にMAGEA4レベルが低いサンプルにおいて、偽陰性の結果に至り得る。
Claims (20)
- サンプル中のMAGEA4を検出する方法であって、
抗MAGEA4抗体を該サンプルに2〜20μg/mlの範囲内の濃度で添加すること;
該抗体及び該サンプルをインキュベートすること;
該サンプルに結合した抗体を検出すること
を含んでなり、該抗体がOTI1F9である、方法。 - 前記抗体の濃度が4〜15、4〜10、5〜13、6〜12又は7〜11μg/mlである、請求項1に記載の方法。
- 前記抗MAGEA4抗体の濃度が10μg/mlである、請求項2に記載の方法。
- 前記サンプル及び前記抗MAGEA4抗体を30〜60、25〜50、25〜39、27〜35、28〜34、30〜33、31、32若しくは33分間及び/又は33〜39、34〜38、35〜37、35、36若しくは37℃にてインキュベートする、請求項1〜3のいずれか1項に記載の方法。
- 前記サンプル及び前記抗MAGEA4抗体を32分間36℃にてイキュベートする、請求項1〜4のいずれか1項に記載の方法。
- 前記サンプルに結合した抗MAGEA4抗体を、該抗MAGEA4抗体に結合する二次抗体により間接的に検出する請求項1〜5のいずれか1項に記載の方法。
- 前記二次抗体がホースラディッシュペルオキシダーゼに結合されている、請求項1〜6のいずれか1項に記載の方法。
- 前記サンプルへの前記抗MAGEA4抗体の添加前にエピトープ回復工程を更に含んでなる請求項1〜7のいずれか1項に記載の方法。
- 前記エピトープ回復工程の温度が80〜110、90〜100若しくは92〜108℃であり、及び/又は該エピトープ回復工程の期間が10〜30、12〜28、13〜27、14〜26、15〜25、16〜24、17〜23、18〜22分間である、請求項8に記載の方法。
- 前記エピトープ回復工程を95℃で20分間行う請求項8又は9に記載の方法。
- 前記サンプル中の内因性ペルオキシダーゼ活性を阻害することを更に含み、前記阻害は該サンプルをDAB(3,3'-ジアミノベンジジン)インヒビターと接触させることにより行われてもよい、請求項1〜10のいずれか1項に記載の方法。
- 前記サンプルを前記DABインヒビターと少なくとも5、6、7、8、9、10又は11分間、好ましくは少なくとも8分間、室温にて接触させる請求項11に記載の方法。
- 前記サンプルをブロッキング試薬と接触させる工程を更に含み、該工程は内因性ペルオキシダーゼ活性の阻害後に行われてもよい、請求項1〜12のいずれか1項に記載の方法。
- 前記サンプルを前記ブロッキング試薬と8〜16、9〜15、10〜14若しくは11〜13分間及び/又は33〜39、34〜38、35〜37℃にて接触させる請求項13に記載の方法。
- 前記サンプルを前記ブロッキング試薬と12分間36℃にて接触させる請求項14に記載の方法。
- 前記サンプルをパラフィン中に包埋する請求項1〜15のいずれか1項に記載の方法。
- 脱パラフィン化工程を更に含んでなる請求項16に記載の方法。
- 前記脱パラフィン化工程が前記サンプルを反応緩衝剤中で8分間69℃のインキュベーションを3サイクル行うことを含んでなる、請求項17に記載の方法。
- 前記サンプルを脱パラフィン化すること、ここで、該脱パラフィン化は、該サンプルをEZ-Prep溶液のような反応緩衝剤中でインキュベートすることによってもよく、該インキュベーションは8分間69℃で3サイクル行われてもよく;
エピトープを回復させること、ここで、該エピトープの回復は、該サンプルを細胞コンディショニング液1中で95℃にて20分間インキュベートすることにより行われてもよく;
内因性ペルオキシダーゼ活性を阻害すること、ここで、該阻害は、該サンプルをDABインヒビター中で8分間室温にてインキュベートすることによって行われてもよく;
該サンプルブロッキング試薬中でインキュベートすること、ここで、該インキュベーションは12分間36℃にて行われてもよく;
抗体OFI1F9を該サンプルに10μg/mlの濃度で添加すること;
該抗体及び該サンプルを32分間36℃にてインキュベートすること;及び
該サンプルに結合した抗体を検出すること
を含んでなる請求項1〜18のいずれか1項に記載の方法。 - 抗MAGEA4抗体を、請求項1〜19のいずれか1項に記載の方法の実施に必要な試薬と組み合わせて含んでなる、サンプル中のMAGEA4を検出するキット。
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