JP2021165292A - Hematologic malignancy therapeutic agent, and screening method - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、造血器腫瘍治療剤、およびそのスクリーニング方法の技術分野に属する。本発明は、ＳＭＳ（スフィンゴミエリン合成酵素）２の機能を抑制することができる薬物等（例えば、ＳＭＳ２阻害薬、抗ＳＭＳ２抗体）を有効成分として含有することを特徴とする造血器腫瘍治療剤、およびそのためのＳＭＳ２阻害薬を見出すためのスクリーニング方法に関するものである。 The present invention belongs to the technical field of hematopoietic tumor therapeutic agents and screening methods thereof. The present invention is a hematopoietic tumor therapeutic agent, which comprises a drug or the like capable of suppressing the function of SMS (sphingomyelin synthase) 2 (for example, SMS2 inhibitor, anti-SMS2 antibody) as an active ingredient. And a screening method for finding an SMS2 inhibitor for that purpose.
造血器腫瘍である白血病は、血液細胞の一種である白血球が腫瘍化し白血病細胞となり、無制限に増殖する白血病細胞が、正常の赤血球、白血球、血小板等の産生を抑制し、貧血、感染症、出血などを引き起こす疾患である。白血病には急性白血病と慢性白血病があるが、特に難治性白血病である急性白血病の進行は非常に早く、早期の治療が行われなければ、僅か数ヶ月で患者は死へ至る。急性白血病としては、急性骨髄腫白血病（ＡＭＬ）、急性リンパ性白血病（ＡＬＬ）などが知られている。ＡＭＬは成人に多い予後不良な悪性の血液疾患であり、５年生存率は４０％程度である。 Leukemia, which is a hematopoietic tumor, is a type of blood cell in which white blood cells become tumors and become leukemia cells, and leukemia cells that proliferate indefinitely suppress the production of normal red blood cells, white blood cells, platelets, etc., resulting in anemia, infection, and bleeding. It is a disease that causes such things as. Leukemia includes acute leukemia and chronic leukemia, but acute leukemia, which is a refractory leukemia, progresses very quickly, and if not treated early, the patient will die in just a few months. As acute leukemia, acute myeloid leukemia (AML), acute lymphocytic leukemia (ALL) and the like are known. AML is a malignant blood disease with a poor prognosis, which is common in adults, and has a 5-year survival rate of about 40%.
現在、最も一般的に行われている急性白血病の治療法は、ＴＣＫ（Ｔｏｔａｌ ｃｅｌｌ ｋｉｌｌ）と言われる方法であり、例えば、ＡＭＬではキロサイド（登録商標）、ＡＬＬではアントラサイクリンなどの抗がん剤により白血病細胞を正常骨髄細胞とともに死滅させる方法である。白血病細胞は抗がん剤に感受性が高いため、当該治療を繰り返すことにより、白血病細胞を完全に根絶させることができる。このような化学療法は非常に有効であるが、抗がん剤の副作用のため、患者には非常に負担が大きい。 Currently, the most commonly used treatment for acute leukemia is a method called TCK (Total cell kill). For example, anticancer cancers such as kiloside (registered trademark) in AML and anthracycline in ALL. It is a method of killing leukemia cells together with normal bone marrow cells by an agent. Since leukemia cells are highly sensitive to anticancer drugs, leukemia cells can be completely eradicated by repeating the treatment. Although such chemotherapy is very effective, it is very burdensome for the patient due to the side effects of anticancer drugs.
特許文献１には、化合物Ｎ−［２−（２，１，３−ベンゾチアジアゾール−５−イルアミノ）−６−（２，６−ジクロロフェニル）ピリド［２，３−ｄ］ピリミジン−７−イル］−Ｎ’−（１，１−ジメチルエチル）−尿素またはこの水和物、塩もしくは溶媒和物と、少なくとも１種の医薬として許容可能な賦形剤とを含む、ＡＭＬなどの骨髄性白血病の治療用の医薬組成物が開示されている。当該医薬組成物は、従来の抗がん剤の治療法の代替療法として開発されたものであるが、抗がん剤を含有する医薬組成物であるため、上記と同様の副作用が懸念される。
ところで、ＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子は、ＭＬＬ（ｍｉｘｅｄ ｌｉｎｋａｇｅ ｌｅｕｃｅｍｉａ）遺伝子とＡＦ９（ＡＬＬ１ ｆｕｓｅｄ ｇｅｎｅ ｆｒｏｍ ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ ９）遺伝子とが、染色体転座によって融合することにより生じたキメラ遺伝子である。かかるキメラ遺伝子は、造血器腫瘍、特にＡＭＬにおいて遺伝子発現量の増加が観察される。
当該遺伝子を人為的に造血器細胞に過剰発現させることにより、造血器細胞を腫瘍化できることが知られている（非特許文献１）。
By the way, the MLL / AF9 chimeric gene is a chimeric gene generated by fusion of an MLL (mixed linkage leukemia) gene and an AF9 (ALL1 fused gene from chromosome 9) gene by a chromosomal translocation. Such chimeric genes are observed to have increased gene expression levels in hematopoietic tumors, especially AML.
It is known that hematopoietic cells can be made into tumors by artificially overexpressing the gene in hematopoietic cells (Non-Patent Document 1).
急性白血病の研究には、その病態モデル動物、主にマウスが使用されている。病態モデルマウスは、例えば、発がん作用を有する上記ＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子等を過剰発現させた白血病細胞を、レシピエントマウスに移植することにより作製されるが、移植による白血病細胞の免疫拒絶を回避するため、レシピエントは、例えば放射線照射された免疫不全マウスであることが一般的である。
しかしながら、免疫不全マウスは、骨髄微小環境を有する免疫応答性（ｉｍｍｕｎｏｃｏｍｐｅｔｅｎｔ）の動物ではないため、腫瘍免疫活性を活用した治療法の研究には適さない。
The pathological model animals, mainly mice, have been used in the study of acute leukemia. The pathological model mouse is produced, for example, by transplanting a leukemia cell overexpressing the above-mentioned MLL / AF9 chimeric gene having a carcinogenic effect into a recipient mouse, but avoids immune rejection of the leukemia cell by transplantation. Therefore, the recipient is generally, for example, a irradiated immunodeficient mouse.
However, immunodeficient mice are not immunocompetent animals having a bone marrow microenvironment, and are therefore not suitable for research on therapeutic methods utilizing tumor immunoactivity.
ＳＭＳは、ホスファチジルコリンのリン酸コリン部分をセラミドに転移してスフィンゴミエリンを生成するとともに、ジアシルグリセロールを生成する酵素である。ＳＭＳは、ヒトでは細胞内での局在の異なるＳＭＳ１とＳＭＳ２の２つのホモログが知られている。
腫瘍とＳＭＳの関係については、ＳＭＳ１の欠損状態ががん細胞増殖抑制や遊走促進などに関与するが、ＳＭＳ２のがん細胞機能への関与は少ないという報告がある（非特許文献２、３）。また、動物個体におけるＳＭＳ１やＳＭＳ２の病理的意義については、様々なマウス疾患モデルがＳＭＳ１やＳＭＳ２の遺伝子欠損（ＫＯ）マウスで実験され、ＳＭＳ１欠損による難聴、耐糖能異常などが報告され、ＳＭＳ２欠損では動脈硬化症や脂肪肝の抑制が報告されている（非特許文献４）。
SMS is an enzyme that transfers the choline phosphate portion of phosphatidylcholine to ceramide to produce sphingomyelin and diacylglycerol. Two homologues of SMS, SMS1 and SMS2, which have different intracellular localizations, are known in humans.
Regarding the relationship between tumor and SMS, it has been reported that the deficient state of SMS1 is involved in the suppression of cancer cell growth and the promotion of migration, but the involvement of SMS2 in the cancer cell function is small (Non-Patent
難治性腫瘍の白血病の発症、進展の阻止には白血病細胞の増殖抑制のみならず、抗腫瘍活性を担う骨髄微小環境細胞（Ｂ細胞，Ｔ細胞，ＮＫ細胞や骨髄由来免疫抑制細胞（ＭＤＳＣ）など）の制御、特に細胞障害性Ｔ細胞（ＣＴＬ）の活性化やＭＤＳＣの抑制が必須である。近年、ＣＴＬを抑制するＰＤ１／ＰＤＬ系を抗体により阻害する事で抗腫瘍活性を復活する治療法が、肺がんやメラノーマで臨床応用され、白血病においても腫瘍免疫療法の有用性が実証されている。
上述のＴＣＫのように、白血病細胞と共に正常造血細胞を死滅させることで患者の免疫機能を抑制してしまう療法だけでなく、患者自身の抗腫瘍免疫を利用した、難治性白血病に対する新規の抗腫瘍活性を亢進した治療法の開発が不可欠である。
本発明は、造血器腫瘍（特にＡＭＬやＡＬＬ等の急性白血病）の治療に有効な新規な造血器腫瘍治療剤を提供すること、またはその治療薬を見出すためのスクリーニング方法を提供することを主な課題とする。
Bone marrow microenvironmental cells (B cells, T cells, NK cells, bone marrow-derived immunosuppressive cells (MDSC), etc.) that are responsible for antitumor activity as well as suppressing the growth of leukemia cells are used to prevent the onset and progression of leukemia in refractory tumors. ), Especially activation of cytotoxic T cells (CTL) and suppression of MDSC are essential. In recent years, a therapeutic method that restores antitumor activity by inhibiting the PD1 / PDL system that suppresses CTL with an antibody has been clinically applied in lung cancer and melanoma, and the usefulness of tumor immunotherapy in leukemia has been demonstrated.
Not only the therapy that suppresses the patient's immune function by killing normal hematopoietic cells together with leukemia cells like TCK mentioned above, but also a new antitumor for refractory leukemia using the patient's own antitumor immunity. It is essential to develop a therapeutic method with enhanced activity.
The present invention mainly provides a novel therapeutic agent for hematopoietic tumors effective for the treatment of hematopoietic tumors (particularly acute leukemia such as AML and ALL), or a screening method for finding a therapeutic agent thereof. It is an issue.
本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意研究した結果、ＳＭＳ２が造血器腫瘍に関係すること、およびＳＭＳ２の機能を阻害することにより抗腫瘍免疫が亢進され、造血器腫瘍を治療し得ることを見出し、本発明に到達した。 As a result of diligent research to solve the above problems, the present inventors have enhanced antitumor immunity by relating SMS2 to hematopoietic tumors and inhibiting the function of SMS2 to treat hematopoietic tumors. We have found that we can obtain it and have reached the present invention.
本発明として、例えば、以下のものを挙げることができる。
［１］ＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子が過剰発現する造血幹細胞を移植された免疫応答性の病態モデル動物を用いて、造血器腫瘍の治療のためのＳＭＳ２阻害薬を見出すことを特徴とする、スクリーニング方法。
［２］前記造血幹細胞が、次の１〜４の工程を含む方法により樹立されたものである、上記［１］に記載のスクリーニング方法。
１：動物の骨髄細胞に含まれる造血幹細胞を採取し、かかる幹細胞にＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子を移入し、当該遺伝子が過剰発現する細胞を作製する工程、
２：上記１の工程において作製された細胞を、放射線照射された動物に投与ないし移植し、後に当該動物の骨髄からＭＬＬ／ＡＦ９遺伝子が過剰発現する細胞を採取する工程、
３：上記２の工程において採取された細胞を、上記２の工程で動物に照射された放射線よりも弱い放射線を照射された動物に投与ないし移植し、後に当該動物の骨髄からＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子が過剰発現する細胞を採取する工程、および
４：必要に応じて、徐々に動物に照射する放射線量を弱めながら、免疫応答性の動物に投与ないし移植することができるまで上記３の工程を１回以上繰り返す工程。
［３］動物が、マウスまたは造血幹細胞の移植が可能な動物である、上記［１］または［２］に記載のスクリーニング方法。
［４］造血器腫瘍が急性白血病である、上記［１］〜［３］のいずれか一項に記載のスクリーニング方法。
Examples of the present invention include the following.
[1] A screening method comprising finding an SMS2 inhibitor for the treatment of hematopoietic tumors using an immune-responsive pathological model animal transplanted with hematopoietic stem cells overexpressing the MLL / AF9 chimeric gene. ..
[2] The screening method according to the above [1], wherein the hematopoietic stem cells are established by a method including the
1: A step of collecting hematopoietic stem cells contained in animal bone marrow cells, transferring the MLL / AF9 chimeric gene into the stem cells, and preparing cells in which the gene is overexpressed.
2: A step of administering or transplanting the cells prepared in the
3: The cells collected in the above 2 steps are administered or transplanted to an animal irradiated with a radiation weaker than the radiation irradiated to the animal in the above 2 steps, and later, the MLL / AF9 chimeric gene is administered from the bone marrow of the animal. Steps of collecting cells overexpressing the above, and 4: as needed, while gradually reducing the amount of radiation applied to the animals, the above 3 steps are performed until it can be administered or transplanted to an immunoresponsive animal. A process that repeats more than once.
[3] The screening method according to the above [1] or [2], wherein the animal is a mouse or an animal capable of transplanting hematopoietic stem cells.
[4] The screening method according to any one of the above [1] to [3], wherein the hematopoietic tumor is acute leukemia.
［５］ＳＭＳ２遺伝子がノックアウトされている免疫応答性の動物に、ＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子が過剰発現する造血幹細胞が移植されていることを特徴とする、病態モデル動物。
［６］次の１〜５の工程を含む方法により作製される、上記［５］に記載の病態モデル動物。
１：動物の骨髄細胞に含まれる造血幹細胞を採取し、かかる幹細胞にＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子を移入し、当該遺伝子が過剰発現する細胞を作製する工程、
２：上記１の工程において作製された細胞を、放射線照射された動物に投与ないし移植し、後に当該動物の骨髄からＭＬＬ／ＡＦ９遺伝子が過剰発現する細胞を採取する工程、
３：上記２の工程において採取された細胞を、上記２の工程で動物に照射された放射線よりも弱い放射線を照射された動物に投与ないし移植し、後に当該動物の骨髄からＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子が過剰発現する細胞を採取する工程、
４：必要に応じて、徐々に動物に照射する放射線量を弱めながら、免疫応答性の動物に投与ないし移植することができるまで上記３の工程を１回以上繰り返す工程、および
５：上記３または４の工程において採取された細胞を、ＳＭＳ２遺伝子がノックアウトされた放射線照射されていない免疫応答性の動物に投与ないし移植する工程。
［７］動物が、マウスまたは造血幹細胞の移植が可能な動物である、上記［５］または［６］に記載の病態モデル動物。
[5] A pathological model animal characterized in that hematopoietic stem cells overexpressing the MLL / AF9 chimeric gene are transplanted into an immune-responsive animal in which the SMS2 gene is knocked out.
[6] The pathological model animal according to the above [5], which is produced by a method including the
1: A step of collecting hematopoietic stem cells contained in animal bone marrow cells, transferring the MLL / AF9 chimeric gene into the stem cells, and preparing cells in which the gene is overexpressed.
2: A step of administering or transplanting the cells prepared in the
3: The cells collected in the above 2 steps are administered or transplanted to an animal irradiated with a radiation weaker than the radiation irradiated to the animal in the above 2 steps, and later, the MLL / AF9 chimeric gene is administered from the bone marrow of the animal. The process of collecting cells that overexpress
4: If necessary, while gradually reducing the amount of radiation applied to the animal, the step of repeating the above 3 steps one or more times until the animal can be administered or transplanted to an immune-responsive animal, and 5: the above 3 or The step of administering or transplanting the cells collected in
[7] The pathological model animal according to the above [5] or [6], wherein the animal is a mouse or an animal capable of transplanting hematopoietic stem cells.
［８］上記［５］〜［６］のいずれか一項に記載の病態モデル動物を用いることを特徴とする、造血器腫瘍の治療のための候補薬物を見出すためのスクリーニング方法。
［９］造血器腫瘍が急性白血病である、上記［８］に記載のスクリーニング方法。
[8] A screening method for finding a candidate drug for the treatment of hematopoietic tumor, which comprises using the pathological model animal according to any one of the above [5] to [6].
[9] The screening method according to the above [8], wherein the hematopoietic tumor is acute leukemia.
［１０］ＳＭＳ２阻害薬、抗ＳＭＳ２抗体、またはＳＭＳ２遺伝子を欠損させたヒト骨髄細胞もしくは免疫細胞を有効成分として含有することを特徴とする、造血器腫瘍治療剤。
［１１］造血器腫瘍が急性白血病である、上記［１０］に記載の造血器腫瘍治療剤。
[10] A therapeutic agent for hematopoietic tumors, which comprises an SMS2 inhibitor, an anti-SMS2 antibody, or a human bone marrow cell or immune cell lacking the SMS2 gene as an active ingredient.
[11] The therapeutic agent for hematopoietic tumor according to the above [10], wherein the hematopoietic tumor is acute leukemia.
［１２］次の１〜４の工程を含むことを特徴とする、造血器腫瘍の治療方法。
１：ヒトの骨髄細胞または免疫細胞を採取する工程、
２：採取した骨髄細胞または免疫細胞のＳＭＳ２遺伝子を欠損させる工程、
３：当該遺伝子を欠損させた細胞を増殖する工程、および
４：増殖した細胞を患者に移植ないし投与する工程。
［１３］造血器腫瘍が急性白血病である、上記［１２］に記載の治療方法。
[12] A method for treating a hematopoietic tumor, which comprises the
1: The process of collecting human bone marrow cells or immune cells,
2: A step of deleting the SMS2 gene of the collected bone marrow cells or immune cells,
3: A step of proliferating cells lacking the gene, and 4: a step of transplanting or administering the proliferated cells to a patient.
[13] The treatment method according to the above [12], wherein the hematopoietic tumor is acute leukemia.
本発明に係るスクリーニング方法によれば、抗腫瘍免疫活性を亢進させ、造血器腫瘍を治療し得るＳＭＳ２阻害薬を見出すことができる。また、造血器腫瘍を治療し得る造血器腫瘍治療剤を得ることができる。
本発明に係る造血器腫瘍治療剤は、特に、ＡＭＬなどの急性白血病に有用である。
According to the screening method according to the present invention, it is possible to find an SMS2 inhibitor capable of enhancing antitumor immune activity and treating hematopoietic tumors. In addition, a hematopoietic tumor therapeutic agent capable of treating a hematopoietic tumor can be obtained.
The therapeutic agent for hematopoietic tumors according to the present invention is particularly useful for acute leukemia such as AML.
１ 本発明に係るスクリーニング方法
本発明に係るスクリーニング方法（本発明スクリーニング方法）は、ＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子が過剰発現する造血幹細胞を移植された免疫応答性の病態モデル動物（以下、「本発明モデル動物」という。）を用いて、造血器腫瘍の治療のためのＳＭＳ２阻害薬を見出すことを特徴とする。
1 Screening method according to the present invention The screening method according to the present invention (the screening method of the present invention) is an immune-responsive pathological model animal transplanted with hematopoietic stem cells overexpressing the MLL / AF9 chimeric gene (hereinafter, "model of the present invention"). It is characterized by finding an SMS2 inhibitor for the treatment of hematopoietic tumors using "animals").
１．１ ＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子が過剰発現する造血幹細胞
本発明モデル動物に移植された造血幹細胞は、ＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子が過剰発現する。当該遺伝子を人為的に骨髄細胞に過剰発現させることにより、造血幹細胞を腫瘍化することができる。本発明モデル動物を作製するためのＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子は、通常、ヒトの当該遺伝子であるが、ヒト以外の動物（例えば、マウス、ラット、モルモット、フェレット、ウサギ、イヌ、ネコ、イタチ、サル等の哺乳動物）の相当する遺伝子であってもよい。
1.1 Hematopoietic stem cells overexpressing the MLL / AF9 chimeric gene The hematopoietic stem cells transplanted into the model animal of the present invention overexpress the MLL / AF9 chimeric gene. By artificially overexpressing the gene in bone marrow cells, hematopoietic stem cells can be tumorigenic. The MLL / AF9 chimeric gene for producing the model animal of the present invention is usually the human gene, but non-human animals (eg, mice, rats, guinea pigs, ferrets, rabbits, dogs, cats, weasels, monkeys). It may be a gene corresponding to (such as a mammal).
造血幹細胞は、骨髄細胞中の１万〜１０万個に一つ程度の割合で存在する細胞であり、白血球（好中球、好酸球、好塩基球、リンパ球、単球、マクロファージ）、赤血球、血小板、肥満細胞、樹状細胞等を生み出す細胞である。したがって、造血幹細胞は、モデル動物（ドナー）の骨髄から採取した骨髄細胞に含まれており、かかる骨髄細胞をそのまま移植して本発明モデル動物を作製することができる。また、骨髄細胞をフローサイトメトリー等の従来の手法で選別ソート（例えば、ｃ−ｋｉｔ＋ Ｓｃａ−１＋ Ｌｉｎ−）した造血幹細胞を移植して本発明モデル動物を作製することもできる。 Hematopoietic stem cells are cells that are present at a ratio of about 1 in 10,000 to 100,000 in bone mast cells, and are leukocytes (neutrophils, eosinophils, basal spheres, lymphocytes, monospheres, macrophages), It is a cell that produces red blood cells, white blood cells, mast cells, dendritic cells, and the like. Therefore, hematopoietic stem cells are contained in bone marrow cells collected from the bone marrow of a model animal (donor), and the bone marrow cells can be directly transplanted to prepare the model animal of the present invention. Moreover, sort sorted bone marrow cells in a conventional manner in the flow cytometry (e.g., c-kit + Sca-1 + Lin -) hematopoietic stem cells can also be made transplanted to the present invention an animal model.
ここで「過剰発現する」とは、ベクター等を用いて細胞に遺伝子を導入し、遺伝子発現量が遺伝子未導入細胞に比較して増加していることを意味し、発現量そのものの増加量の程度は問題としない。
上記ベクターとしては、通常、ウイルスベクターが用いられる。ウイルスベクターとしては、例えば、レトロウイルスベクター、レンチウイルスベクター、アデノ随伴ウイルスベクター、アデノウイルスベクターが挙げられる。
Here, "overexpressing" means that a gene is introduced into a cell using a vector or the like and the gene expression level is increased as compared with a gene-unintroduced cell, and the expression level itself is increased. Degree does not matter.
As the vector, a viral vector is usually used. Examples of the viral vector include a retrovirus vector, a lentiviral vector, an adeno-associated virus vector, and an adenovirus vector.
本発明モデル動物は、ＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子が過剰発現すればよく、ＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子が単独発現するものでも、他の遺伝子も同時発現するものでもよいが、ＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子が単独発現するものが好ましい。 In the model animal of the present invention, the MLL / AF9 chimeric gene may be overexpressed, and the MLL / AF9 chimeric gene may be expressed alone or other genes may be co-expressed, but the MLL / AF9 chimeric gene is expressed alone. Is preferable.
１．２ 免疫応答性の動物
本発明スクリーニング方法には、免疫応答性（ｉｍｍｕｎｏｃｏｍｐｅｔｅｎｔ）の動物が用いられる。免疫応答性の動物は、抗腫瘍活性を有する正常骨髄微小環境（Ｂ細胞，Ｔ細胞，ＮＫ細胞やＭＤＳＣなど）を保持する動物である。造血器腫瘍のモデル動物には、免疫不全動物を使用するのが一般的であるが、本発明スクリーニング方法においては免疫応答性の動物、例えば野生型の動物をレシピエントとして使用することができる。
1.2 Immune-responsive animals Immune-responsive animals are used in the screening method of the present invention. Immune-responsive animals are animals that retain a normal bone marrow microenvironment with antitumor activity (B cells, T cells, NK cells, MDSCs, etc.). Although immunodeficient animals are generally used as model animals for hematopoietic tumors, immune-responsive animals such as wild-type animals can be used as recipients in the screening method of the present invention.
ここで、本発明モデル動物の動物種としては、造血幹細胞の移植が可能な動物であれば特に制限されない。かかる動物としては、具体的には、例えば、マウス、ラット、モルモット、フェレット、ウサギ、イヌ、ネコ、イタチ、サル等の哺乳動物を挙げることができる。この中、マウスが好ましい。 Here, the animal species of the model animal of the present invention is not particularly limited as long as it is an animal capable of transplanting hematopoietic stem cells. Specific examples of such animals include mammals such as mice, rats, guinea pigs, ferrets, rabbits, dogs, cats, weasels, and monkeys. Of these, mice are preferred.
１．３ 造血幹細胞の移植
ＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子が過剰発現する腫瘍化された造血幹細胞（以下、「腫瘍化細胞」という。）は、免疫応答性の動物に移植される。当該腫瘍化細胞が移植される部位としては、例えば、骨髄、血管内、リンパ節が挙げられる。腫瘍化細胞は、移植されることにより、主として、レシピエントの骨髄に生着し、レシピエントは造血器腫瘍を発病する。
1.3 Transplantation of hematopoietic stem cells Tumorized hematopoietic stem cells (hereinafter referred to as “tumorized cells”) overexpressing the MLL / AF9 chimeric gene are transplanted into immunoresponsive animals. Sites where the tumorigenic cells are transplanted include, for example, bone marrow, intravascular, and lymph nodes. By transplantation, the tumorigenic cells engraft mainly in the bone marrow of the recipient, and the recipient develops a hematopoietic tumor.
１．４ 造血器腫瘍の治療のためのＳＭＳ２阻害薬
本発明スクリーニング方法により、造血器腫瘍の治療のためのＳＭＳ２阻害薬を見出すことができる。当該スクリーニングは、通常、複数の候補薬物を本発明モデル動物に投与し、その効果効能を比較することにより行われ、有効性のあるＳＭＳ２阻害薬が選別される。
1.4 SMS2 Inhibitors for the Treatment of Hematopoietic Tumors According to the screening method of the present invention, SMS2 inhibitors for the treatment of hematopoietic tumors can be found. The screening is usually performed by administering a plurality of candidate drugs to the model animal of the present invention and comparing their efficacy and efficacy, and an effective SMS2 inhibitor is selected.
本発明スクリーニング方法が対象とする造血器腫瘍としては、造血器細胞の腫瘍であれば特に制限されないが、例えば、急性白血病を挙げることができる。急性白血病としては、例えば、急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、急性リンパ性白血病（ＡＬＬ）、骨髄異形性症候群（ＭＤＳ）、乳児白血病、二次性白血病が挙げられる。 The hematopoietic tumor targeted by the screening method of the present invention is not particularly limited as long as it is a tumor of hematopoietic cells, and examples thereof include acute leukemia. Examples of acute leukemia include acute myeloid leukemia (AML), acute lymphocytic leukemia (ALL), myelodysplastic syndrome (MDS), infantile leukemia, and secondary leukemia.
本発明スクリーニング方法によりスクリーニングされる候補薬物としては、ＳＭＳ２の阻害作用を有しうるものであれば特に制限されないが、例えば、ＳＭＳ２の阻害作用を有しうる、低分子化合物、抗体を挙げることができる。本発明スクリーニング方法においては、候補薬物を本発明モデル動物に投与し、ＳＭＳ２の阻害作用、抗腫瘍免疫活性、造血器腫瘍の治療効果等を調べることにより、造血器腫瘍の治療に有効なＳＭＳ２阻害薬をスクリーニングすることができる。また、既知のＳＭＳ２阻害薬の中から、より有効な薬物を選別するために本発明スクリーニング方法を用いることもできる。
The candidate drug screened by the screening method of the present invention is not particularly limited as long as it can have an inhibitory effect on SMS2, and examples thereof include small molecule compounds and antibodies that can have an inhibitory effect on SMS2. can. In the screening method of the present invention, a candidate drug is administered to a model animal of the present invention, and SMS2 inhibition effective for the treatment of hematopoietic tumor is examined by examining the inhibitory effect of SMS2, antitumor immunoactivity, therapeutic effect of hematopoietic tumor, and the like. Drugs can be screened. In addition, the screening method of the present invention can also be used to select a more effective drug from among known SMS2 inhibitors.
２ 本発明に係る腫瘍化細胞
腫瘍化細胞は、次の１〜４の工程を含む方法により樹立されたもの（以下、「本発明腫瘍化細胞」という。）であることが好ましい（図１参照）。なお、動物の定義等は、前述と同義である。
１：動物の骨髄細胞に含まれる造血幹細胞を採取し、かかる幹細胞にＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子を移入し、当該遺伝子が過剰発現する細胞を作製する工程、
２：上記１の工程において作製された細胞を、放射線照射された動物に移植し、後に当該動物の骨髄からＭＬＬ／ＡＦ９遺伝子が過剰発現する細胞を採取する工程、
３：上記２の工程において採取された細胞を、上記２の工程で動物に照射された放射線よりも弱い放射線を照射された動物に投与ないし移植し、後に当該動物の骨髄からＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子が過剰発現する細胞を採取する工程、および
４：必要に応じて、徐々に動物に照射する放射線量を弱めながら、免疫応答性の動物に投与ないし移植することができるまで上記３の工程を１回以上繰り返す工程。
2 Tumorized cells according to the present invention Tumorized cells are preferably those established by a method including the following
1: A step of collecting hematopoietic stem cells contained in animal bone marrow cells, transferring the MLL / AF9 chimeric gene into the stem cells, and preparing cells in which the gene is overexpressed.
2: A step of transplanting the cells prepared in the
3: The cells collected in the above 2 steps are administered or transplanted to an animal irradiated with a radiation weaker than the radiation irradiated to the animal in the above 2 steps, and later, the MLL / AF9 chimeric gene is administered from the bone marrow of the animal. Steps of collecting cells overexpressing the above, and 4: as needed, while gradually reducing the amount of radiation applied to the animals, the above 3 steps are performed until it can be administered or transplanted to an immunoresponsive animal. A process that repeats more than once.
以下、それぞれの工程について詳述する。 Hereinafter, each step will be described in detail.
（１）第１工程
第１工程は、動物の骨髄細胞に含まれる造血幹細胞を採取し、かかる幹細胞にＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子を移入し、当該遺伝子が過剰発現する細胞を作製する工程である。
第１工程として、具体的には、例えば、次のような方法を挙げることができる。ＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子を含むウイルスベクター（例、レトロウイルスベクター）をパッケージ細胞であるＰＬＡＴ−Ｅで増産する。一方、ドナー動物の造血幹細胞が含まれる骨髄細胞を採取し、必要に応じて、フローサイトメトリー等の従来の手法で選別ソートし、当該造血幹細胞にＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子を含む前記ウイルスベクターを感染させることにより、ＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子が過剰発現する第１工程の細胞を作製することができる。
(1) First Step The first step is a step of collecting hematopoietic stem cells contained in animal bone marrow cells, transferring the MLL / AF9 chimeric gene into the stem cells, and producing cells in which the gene is overexpressed.
Specifically, as the first step, for example, the following method can be mentioned. Increase production of viral vectors containing the MLL / AF9 chimeric gene (eg, retroviral vectors) in PLAT-E packaged cells. On the other hand, bone marrow cells containing hematopoietic stem cells of donor animals are collected, and if necessary, sorted and sorted by a conventional method such as flow cytometry, and the hematopoietic stem cells are infected with the virus vector containing the MLL / AF9 chimeric gene. By allowing the cells to be overexpressed, the cells of the first step in which the MLL / AF9 chimeric gene is overexpressed can be prepared.
（２）第２工程
第２工程は、第１工程において作製された細胞を、放射線照射された動物に投与ないし移植し、後に当該動物の骨髄からＭＬＬ／ＡＦ９遺伝子が過剰発現する細胞を採取する工程である。
(2) Second step In the second step, the cells prepared in the first step are administered or transplanted to an irradiated animal, and then cells overexpressing the MLL / AF9 gene are collected from the bone marrow of the animal. It is a process.
レシピエント動物に放射線を照射することにより、当該動物の免疫機能が抑制され、免疫拒絶反応を引き起こすことなく、第１工程で得られた細胞を投与ないし移植することができ、定着させることができる。放射線としては、通常、Ｘ線が使用される。第２工程における放射線の照射量としては、レシピエント動物の種類などによって異なるが、致死量より少し低い量が好ましい。マウスの場合には、通常、Ｘ線量として１０Ｇｙ（グレイ）または９．５Ｇｙ程度である。 By irradiating the recipient animal with radiation, the immune function of the animal is suppressed, and the cells obtained in the first step can be administered or transplanted without causing an immune rejection reaction, and can be established. .. X-rays are usually used as the radiation. The amount of radiation in the second step varies depending on the type of recipient animal and the like, but is preferably a little lower than the lethal dose. In the case of mice, the X-ray dose is usually about 10 Gy (gray) or 9.5 Gy.
投与ないし移植する当該細胞数としては、レシピエント動物の種類などによって異なるが、例えばマウスの場合、１×１０３〜１×１０７（個）の範囲内が適当であり、１×１０５〜５×１０６（個）の高容量投与により移植成功率が向上する。１×１０３（個）より少ないと、レシピエントマウスにおいて当該造血器腫瘍細胞が十分に増加しないおそれがあり、１×１０７（個）より多いと、血管内腫瘍血栓のおそれがあるので適当でない。 The number of cells to be administered or transplanted varies depending on the type of recipient animal, etc., but in the case of mice, for example, the range of 1 × 10 3 to 1 × 10 7 (cells) is appropriate, and 1 × 10 5 to 1 × 10 5 to High-dose administration of 5 × 10 6 (pieces) improves the success rate of transplantation. If it is less than 1 × 10 3 (pieces), the hematopoietic tumor cells may not increase sufficiently in the recipient mouse, and if it is more than 1 × 10 7 (pieces), there is a risk of intravascular tumor thrombus, so it is appropriate. Not.
続いて、第１工程で得られた細胞を、放射線照射したレシピエント動物に投与ないし移植した後、当該動物の骨髄からＭＬＬ／ＡＦ９遺伝子が過剰発現する細胞を採取する。当該投与ないし移植から第２工程の細胞の採取までの期間としては、レシピエント動物が死亡する直前が好ましく、レシピエント動物の種類などによって異なるが、例えばマウスの場合、ドナー細胞として１×１０５個のＭＭＬ／ＡＦ９発現骨髄細胞を用いた場合には４０〜７０日間が好ましい細胞採取期間となる。 Subsequently, the cells obtained in the first step are administered or transplanted to the irradiated recipient animal, and then the cells overexpressing the MLL / AF9 gene are collected from the bone marrow of the animal. The as the period from administration to transplantation until harvesting of the cells in the second step, preferably immediately before the recipient animal is killed, varies depending on the type of the recipient animal, for example, in the case of mouse, 1 × 10 5 as donor cells When 100 MML / AF9 expressing bone marrow cells are used, 40 to 70 days is a preferable cell collection period.
（３）第３工程
第３工程は、第２工程において採取された細胞を、第２工程で動物に照射された放射線よりも弱い放射線を照射された動物に投与ないし移植し、後に当該動物の骨髄からＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子が過剰発現する細胞を採取する工程である。
(3) Third step In the third step, the cells collected in the second step are administered or transplanted to an animal irradiated with radiation weaker than the radiation irradiated to the animal in the second step, and later, the animal concerned. This is a step of collecting cells overexpressing the MLL / AF9 chimeric gene from the bone marrow.
第２工程で得られた細胞は、第２工程と比較して弱い放射線を照射したレシピエント動物であっても、免疫拒絶反応を引き起こすことなく、第２工程で得られた細胞を投与ないし移植することができ、定着させることができる。第３工程における放射線の照射量としては、レシピエント動物の種類などによって異なるが、例えばマウスの場合、第２工程の照射量の３５〜８５％程度が適当であり、４５〜７５％程度が好ましく、５５〜６５％程度がより好ましい。 The cells obtained in the second step are administered or transplanted with the cells obtained in the second step without causing immunorejection, even if the recipient animal is irradiated with weak radiation as compared with the second step. Can be done and can be fixed. The irradiation amount of radiation in the third step varies depending on the type of recipient animal and the like, but in the case of a mouse, for example, about 35 to 85% of the irradiation amount in the second step is appropriate, and about 45 to 75% is preferable. About 55 to 65% is more preferable.
投与ないし移植する当該細胞数としては、レシピエント動物の種類などによって異なるが、
例えばマウスの場合、１×１０３〜１×１０７（個）の範囲内が適当であり、１×１０５〜５×１０６（個）の高容量投与により移植成功率が向上する。１×１０３（個）より少ないと、レシピエントマウスにおいて当該造血器腫瘍細胞が十分に増加しないおそれがあり、１×１０７（個）より多いと、血管内腫瘍血栓のおそれがあるので適当でない。
The number of cells to be administered or transplanted varies depending on the type of recipient animal, etc.
For example, in the case of mice, the range of 1 × 10 3 to 1 × 10 7 (pieces) is appropriate, and the high-dose administration of 1 × 10 5 to 5 × 10 6 (pieces) improves the success rate of transplantation. If it is less than 1 × 10 3 (pieces), the hematopoietic tumor cells may not increase sufficiently in the recipient mouse, and if it is more than 1 × 10 7 (pieces), there is a risk of intravascular tumor thrombus, so it is appropriate. Not.
続いて、第２工程で得られた細胞を、放射線照射したレシピエント動物に投与ないし移植した後、当該動物の骨髄からＭＬＬ／ＡＦ９遺伝子が過剰発現する細胞を採取する。当該投与ないし移植から第３工程の細胞の採取までの期間としては、レシピエント動物が死亡する直前が好ましく、レシピエント動物の種類などによって異なるが、例えばマウスの場合、２５〜６０日間が適当であり、３０〜５０日間が好ましく、３５〜４５日間がより好ましい。 Subsequently, the cells obtained in the second step are administered or transplanted to the irradiated recipient animal, and then the cells overexpressing the MLL / AF9 gene are collected from the bone marrow of the animal. The period from the administration or transplantation to the collection of cells in the third step is preferably immediately before the death of the recipient animal, and varies depending on the type of recipient animal, for example, in the case of mice, 25 to 60 days is appropriate. There are, preferably 30 to 50 days, more preferably 35 to 45 days.
（４）第４工程
第４工程は、必要に応じて、徐々に動物に照射する放射線量を弱めながら第３工程を１回以上繰り返す工程である。
(4) Fourth Step The fourth step is a step of repeating the third step one or more times while gradually reducing the radiation dose irradiating the animal as needed.
第３工程において採取された細胞を、放射線照射しない免疫応答性のレシピエント動物に投与ないし移植すると、免疫拒絶反応を引き起こす場合には、第４工程、即ち、徐々に動物に照射する放射線量を弱めながら第３工程を１回以上、通常は１〜５回程度まで、好ましくは１、２回程度繰り返す。第３工程において採取された細胞を、放射線照射しない免疫応答性のレシピエント動物に投与ないし移植しても、免疫拒絶反応を引き起こさない場合には、本工程を行う必要はない。 If the cells collected in the third step are administered or transplanted to an immune-responsive recipient animal that is not irradiated to cause an immune rejection reaction, the fourth step, that is, the radiation dose to be gradually irradiated to the animal is applied. While weakening, the third step is repeated once or more, usually about 1 to 5 times, preferably about 1 or 2 times. If the cells collected in the third step are not induced to cause immunorejection even when administered or transplanted to an immune-responsive recipient animal that is not irradiated, this step does not need to be performed.
第４工程における放射線の照射量としては、レシピエント動物の種類などによって異なるが、例えばマウスの場合、第３工程または前工程の照射量の３５〜８５％程度が適当であり、４５〜７５％程度が好ましく、５５〜６５％程度がより好ましい。 The irradiation amount of radiation in the fourth step varies depending on the type of recipient animal and the like, but in the case of a mouse, for example, about 35 to 85% of the irradiation amount in the third step or the previous step is appropriate, and 45 to 75%. The degree is preferable, and about 55 to 65% is more preferable.
投与ないし移植する細胞数としては、レシピエント動物の種類などによって異なるが、例えばマウスの場合、１×１０３〜１×１０７（個）の範囲内が適当であり、１×１０５〜５×１０６（個）の高容量投与により移植成功率が向上する。１×１０３（個）より少ないと、レシピエントマウスにおいて当該造血器腫瘍細胞が十分に増加しないおそれがあり、１×１０７（個）より多いと、血管内腫瘍血栓のおそれがあるので適当でない。 The number of cells to be administered or transplanted varies depending on the type of recipient animal, etc., but in the case of mice, for example, the range of 1 × 10 3 to 1 × 10 7 (cells) is appropriate, and 1 × 10 5 to 5 The success rate of transplantation is improved by high-dose administration of × 10 6 (pieces). If it is less than 1 × 10 3 (pieces), the hematopoietic tumor cells may not increase sufficiently in the recipient mouse, and if it is more than 1 × 10 7 (pieces), there is a risk of intravascular tumor thrombus, so it is appropriate. Not.
第４工程を行う場合、第３工程または前工程で得られた細胞を、放射線照射したレシピエント動物に投与ないし移植した後、当該動物の骨髄からＭＬＬ／ＡＦ９遺伝子が過剰発現する細胞を採取する。当該投与ないし移植から第４工程の細胞の採取までの期間としては、レシピエント動物が死亡する直前が好ましく、レシピエント動物の種類などによって異なるが、例えば、マウスの場合、２５〜６０日間が適当であり、３０〜５０日間が好ましく、３５〜４５日間がより好ましい。 When the fourth step is performed, the cells obtained in the third step or the previous step are administered or transplanted to the irradiated recipient animal, and then the cells overexpressing the MLL / AF9 gene are collected from the bone marrow of the animal. .. The period from the administration or transplantation to the collection of cells in the fourth step is preferably immediately before the death of the recipient animal, and varies depending on the type of recipient animal, etc., but for example, in the case of mice, 25 to 60 days is appropriate. It is preferably 30 to 50 days, more preferably 35 to 45 days.
第３工程または本工程により、放射線を照射しない免疫応答性のレシピエント動物であっても、免疫拒絶反応を引き起こすことなく、投与ないし移植することができ、また定着させることができる本発明腫瘍化細胞を得ることができる。 By the third step or this step, even an immune-responsive recipient animal that is not irradiated with radiation can be administered or transplanted without causing immunorejection, and can be established as a tumor of the present invention. Cells can be obtained.
上述の方法により樹立された本発明腫瘍化細胞は、動物への移植に際して、免疫拒絶反応が抑制されており、免疫応答性の動物に移植することができる。また、本発明腫瘍化細胞が移植された動物は、ＭＬＬ／ＡＦ９遺伝子が単独で過剰発現し、免疫応答性を有しながら白血病等の造血器腫瘍を発症させることができる。
したがって、本発明腫瘍化細胞を移植された動物は、造血器腫瘍の病態モデル動物として有用である。
なお、免疫応答性の動物への本発明腫瘍化細胞の投与ないし移植する細胞数としては、レシピエント動物の種類などによって異なるが、例えばマウスの場合、１×１０３〜１×１０７（個）の範囲内が適当であり、１×１０４〜１×１０６（個）の範囲内が好ましく、１×１０５〜５×１０６（個）の範囲内がより好ましい。１×１０３（個）より少ないと、レシピエントマウスにおいて当該造血器腫瘍細胞が十分に増加せず、造血器腫瘍を発病しないおそれがあり、１×１０７（個）より多いと、血管内腫瘍血栓のおそれがあるので適当でない。
The tumorigenic cells of the present invention established by the above-mentioned method have suppressed immune rejection when transplanted into animals, and can be transplanted into immunoresponsive animals. In addition, the animal into which the tumorigenic cells of the present invention have been transplanted can overexpress the MLL / AF9 gene alone and develop hematopoietic tumors such as leukemia while having immunoresponsiveness.
Therefore, the animal transplanted with the tumorigenic cells of the present invention is useful as a pathological model animal for hematopoietic tumors.
The number of cells to be administered or transplanted from the tumorigenic cells of the present invention to immune-responsive animals varies depending on the type of recipient animal, etc., but in the case of mice, for example, 1 × 10 3 to 1 × 10 7 (cells). ) Is appropriate, preferably in the range of 1 × 10 4 to 1 × 10 6 (pieces), and more preferably in the range of 1 × 10 5 to 5 × 10 6 (pieces). If it is less than 1 × 10 3 (pieces), the number of the hematopoietic tumor cells does not increase sufficiently in the recipient mouse, and hematopoietic tumors may not develop. If it is more than 1 × 10 7 (pieces), it is intravascular. Not suitable as there is a risk of tumor thrombus.
３ ＳＭＳ２遺伝子がノックアウトされている病態モデル動物
本発明は、ＳＭＳ２遺伝子がノックアウトされている免疫応答性の動物に、ＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子が過剰発現する造血幹細胞が移植されていることを特徴とする病態モデル動物（以下、「本発明ＳＭＳ２−ＫＯ動物」という。）を含む。
3 Pathological model animal in which the SMS2 gene is knocked out The present invention is characterized in that hematopoietic stem cells overexpressing the MLL / AF9 chimeric gene are transplanted into an immunoresponsive animal in which the SMS2 gene is knocked out. A pathological model animal (hereinafter, referred to as "SMS2-KO animal of the present invention") is included.
本発明ＳＭＳ２−ＫＯ動物は、ＳＭＳ２遺伝子がノックアウトされているだけで、免疫機能を保持している。しかも、後述する試験例から明らかな通り、腫瘍免疫が亢進しており、ＣＴＬの増強とＭＤＳＣの抑制が同時に確認され、その結果、腫瘍化細胞が移植されていても、ＳＭＳ２遺伝子がノックアウトされていない動物と異なり、造血器腫瘍の発病が抑えられ、延命できることを本発明者らは見出した。したがって、ＳＭＳ２の機能を、例えばＳＭＳ２阻害薬などで抑制することより、急性白血病等の造血器腫瘍を治療しうる。 The SMS2-KO animal of the present invention retains an immune function only by knocking out the SMS2 gene. Moreover, as is clear from the test examples described later, tumor immunity is enhanced, and enhancement of CTL and suppression of MDSC are confirmed at the same time. As a result, even if tumorigenic cells are transplanted, the SMS2 gene is knocked out. The present inventors have found that, unlike animals without hematopoietic tumors, the onset of hematopoietic tumors can be suppressed and their lives can be extended. Therefore, hematopoietic tumors such as acute leukemia can be treated by suppressing the function of SMS2 with, for example, an SMS2 inhibitor.
本発明ＳＭＳ２−ＫＯ動物としては、例えば、次の１〜５の工程を含む方法により作製されるものが好ましい。なお、動物の定義等は、前述と同義である。
１：動物の骨髄細胞に含まれる造血幹細胞を採取し、かかる幹細胞にＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子を移入し、当該遺伝子が過剰発現する細胞を作製する工程、
２：上記１の工程において作製された細胞を、放射線照射された動物に投与ないし移植し、後に当該動物の骨髄からＭＬＬ／ＡＦ９遺伝子が過剰発現する細胞を採取する工程、
３：上記２の工程において採取された細胞を、上記２の工程で動物に照射された放射線よりも弱い放射線を照射された動物に投与ないし移植し、後に当該動物の骨髄からＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子が過剰発現する細胞を採取する工程、
４：必要に応じて、徐々に動物に照射する放射線量を弱めながら、免疫応答性の動物に投与ないし移植することができるまで上記３の工程を１回以上繰り返す工程、および
５：上記３または４の工程において採取された細胞を、ＳＭＳ２遺伝子がノックアウトされた放射線照射されていない免疫応答性の動物に投与ないし移植する工程。
As the SMS2-KO animal of the present invention, for example, those produced by a method including the following
1: A step of collecting hematopoietic stem cells contained in animal bone marrow cells, transferring the MLL / AF9 chimeric gene into the stem cells, and preparing cells in which the gene is overexpressed.
2: A step of administering or transplanting the cells prepared in the
3: The cells collected in the above 2 steps are administered or transplanted to an animal irradiated with a radiation weaker than the radiation irradiated to the animal in the above 2 steps, and later, the MLL / AF9 chimeric gene is administered from the bone marrow of the animal. The process of collecting cells that overexpress
4: If necessary, while gradually reducing the amount of radiation applied to the animal, the step of repeating the above 3 steps one or more times until the animal can be administered or transplanted to an immune-responsive animal, and 5: the above 3 or The step of administering or transplanting the cells collected in
上記第１工程〜第４工程までは、前述の項目２と同様である。第１工程〜第４工程までの動物は、ＳＭＳ２遺伝子が正常発現していることが好ましい。
第１工程〜第４工程により樹立された腫瘍化細胞（本発明腫瘍化細胞）を、ＳＭＳ２遺伝子がノックアウトされた放射線照射されていない免疫応答性の動物に投与ないし移植することにより、本発明ＳＭＳ２−ＫＯ動物を作製することができる（第５工程）。
The first to fourth steps are the same as those in
By administering or transplanting the tumorigenic cells (tumorized cells of the present invention) established by the first to fourth steps into an immune-responsive animal in which the SMS2 gene has been knocked out and not irradiated, the SMS2 of the present invention -KO animals can be produced (5th step).
ＳＭＳ２遺伝子がノックアウトされた放射線照射されていない免疫応答性の動物への投与ないし移植する細胞数としては、レシピエント動物の種類などによって異なるが、例えばマウスの場合、１×１０３〜１×１０７（個）の範囲内が適当であり、１×１０４〜１×１０６（個）の範囲内が好ましく、１×１０５〜５×１０６（個）の範囲内がより好ましい。 The number of cells to be administered or transplanted to an immune-responsive animal in which the SMS2 gene has been knocked out and not irradiated varies depending on the type of recipient animal, for example, in the case of mice, 1 × 10 3 to 1 × 10. The range of 7 (pieces) is appropriate, preferably the range of 1 × 10 4 to 1 × 10 6 (pieces), and more preferably the range of 1 × 10 5 to 5 × 10 6 (pieces).
本発明ＳＭＳ２−ＫＯ動物は、造血器腫瘍の治療のための候補薬物をスクリーニングするために用いることができる。本発明には、本発明ＳＭＳ２−ＫＯ動物を用いることを特徴とする、造血器腫瘍の治療のための候補薬物を見出すためのスクリーニング方法も含まれる。 The SMS2-KO animals of the present invention can be used to screen for candidate drugs for the treatment of hematopoietic tumors. The present invention also includes a screening method for finding candidate drugs for the treatment of hematopoietic tumors, which comprises using the SMS2-KO animals of the present invention.
本発明ＳＭＳ２−ＫＯ動物と当該遺伝子がノックアウトされていない通常のモデル動物（例、非ＳＭＳ２−ＫＯの本発明モデル動物）を用いて、本発明スクリーニング方法の結果を比較することにより、ＳＭＳ２阻害剤の候補薬物の効能効果が、ＳＭＳ２の阻害によるものであるということを、より明確にすることができる。また、本発明ＳＭＳ２−ＫＯ動物に、ＳＭＳ２阻害剤以外の抗腫瘍剤を投与することにより、ＳＭＳ２阻害剤と当該薬剤の併用効果を予測することもできる。
本発明ＳＭＳ２−ＫＯ動物を用いた本発明スクリーニング方法は、ＳＭＳ２阻害剤の実用化に向けた研究に有用である。
By comparing the results of the screening method of the present invention using the SMS2-KO animal of the present invention and a normal model animal in which the gene is not knocked out (eg, a model animal of the present invention of non-SMS2-KO), the SMS2 inhibitor It can be further clarified that the efficacy and effect of the candidate drug is due to the inhibition of SMS2. In addition, by administering an antitumor agent other than the SMS2 inhibitor to the SMS2-KO animal of the present invention, the combined effect of the SMS2 inhibitor and the drug can be predicted.
The screening method of the present invention using the SMS2-KO animal of the present invention is useful for research toward practical use of an SMS2 inhibitor.
４ 造血器腫瘍治療剤
本発明は、ＳＭＳ２阻害薬、抗ＳＭＳ２抗体、またはＳＭＳ２遺伝子を欠損させたヒト骨髄細胞もしくは免疫細胞を有効成分として含有することを特徴とする造血器腫瘍治療剤（以下、「本発明治療剤」という。）を含む。
4 Hematopoietic tumor therapeutic agent The present invention is characterized by containing an SMS2 inhibitor, an anti-SMS2 antibody, or a human bone marrow cell or immune cell lacking the SMS2 gene as an active ingredient (hereinafter referred to as a hematopoietic tumor therapeutic agent). "Therapeutic agent of the present invention").
後述する試験結果から明らかな通り、本発明ＳＭＳ２−ＫＯ動物は、造血器腫瘍（急性白血病）を十分に発症せず、延命することから、ＳＭＳ２の機能を抑制することができる、例えば、ＳＭＳ２阻害薬、抗ＳＭＳ２抗体、またはＳＭＳ２遺伝子を欠損させたヒト骨髄細胞もしくは免疫細胞は、造血器腫瘍の治療に有用である。 As is clear from the test results described later, the SMS2-KO animal of the present invention does not sufficiently develop a hematopoietic tumor (acute leukemia) and prolongs the life, so that the function of SMS2 can be suppressed, for example, SMS2 inhibition. Drugs, anti-SMS2 antibodies, or human bone marrow cells or immune cells deficient in the SMS2 gene are useful in the treatment of hematopoietic tumors.
具体的なＳＭＳ２阻害薬としては、本発明スクリーニング方法で見出されるもの、ｉｎ ｖｉｔｒｏでＳＭＳ２阻害活性が確認されるもの、または従来知られているものを挙げることができる。従来から知られているＳＭＳ２阻害薬としては、例えば、下の化学式に示すＤ６０９（Ｔｒｉｃｙｃｌｏｄｅｃａｎ−９−ｙｌ−ｘａｎｔｈｏｇｅｎａｔｅ）が挙げられる。 Specific examples of the SMS2 inhibitor include those found by the screening method of the present invention, those whose SMS2 inhibitory activity is confirmed in vitro, and those conventionally known. Conventionally known SMS2 inhibitors include, for example, D609 (Trickycodecan-9-yl-xanthogenate) represented by the chemical formula below.
本発明治療剤に使用される抗ＳＭＳ２抗体としては、本発明スクリーニング方法で見出されるもの、ｉｎ ｖｉｔｒｏでＳＭＳ２阻害活性が確認されるもの、または従来知られているものを挙げることができる。当該抗体は、ＳＭＳ２の酵素活性を阻害する阻害抗体であることが好ましい。 Examples of the anti-SMS2 antibody used in the therapeutic agent of the present invention include those found by the screening method of the present invention, those whose SMS2 inhibitory activity is confirmed in vitro, and those conventionally known. The antibody is preferably an inhibitory antibody that inhibits the enzymatic activity of SMS2.
ＳＭＳ２阻害薬、抗ＳＭＳ２抗体、またはＳＭＳ２遺伝子を欠損させたヒト骨髄細胞もしくは免疫細胞を、例えば、いわゆるゲノム編集でＳＭＳ２遺伝子を欠損することにより得ることができる。患者自身から採取された骨髄細胞または免疫細胞を用いて、ＳＭＳ２遺伝子を欠損したものが好ましい。
上記ゲノム編集の方法としては、例えば、ＺＥＮ（ジンクフィンガーヌクレアーゼ）、ＴＡＬＥＮ（転写活性化様エフェクターヌクレアーゼ）、またはＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９（ｃｌｕｓｔｅｒｅｄ ｒｅｇｕｌａｒｌｙ ｉｎｔｅｒｓｐａｃｅｄ ｓｈｏｒｔ ｐａｌｉｎｄｒｏｍｉｃ ｒｅｐｅａｔｓ ／ ＣＲＩＳＰＲ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｐｒｏｔｅｉｎｓ）を用いた方法を挙げることができる。
Human bone marrow cells or immune cells lacking an SMS2 inhibitor, anti-SMS2 antibody, or SMS2 gene can be obtained, for example, by deleting the SMS2 gene by so-called genome editing. Bone marrow cells or immune cells collected from the patient himself are preferably deficient in the SMS2 gene.
Examples of the method for genome editing include ZEN (zinc finger nuclease), TALEN (transcriptional activation-like effector nuclease), or CRISPR / Cas9 (crustered regulatory interspaced short palindromic reports / CRISPR associated method). Can be done.
５ 本発明に係る造血器腫瘍の治療方法
本発明は、以下の工程を含むことを特徴とする造血器腫瘍の治療方法（以下、「本発明治療方法」という。）を含む。本発明治療方法は、造血器腫瘍の中でも急性白血病（例、ＡＭＬ、ＡＬＬ）の治療に用いることが好ましい。
１：ヒトの骨髄細胞または免疫細胞を採取する工程、
２：採取した骨髄細胞または免疫細胞のＳＭＳ２遺伝子を欠損させる工程、
３：当該遺伝子を欠損させた細胞を増殖する工程、および
４：増殖した細胞を患者に移植ないし投与する工程。
5. Therapeutic method for hematopoietic tumor according to the present invention The present invention includes a method for treating a hematopoietic tumor, which comprises the following steps (hereinafter, referred to as "therapeutic method of the present invention"). The therapeutic method of the present invention is preferably used for the treatment of acute leukemia (eg, AML, ALL) among hematopoietic tumors.
1: The process of collecting human bone marrow cells or immune cells,
2: A step of deleting the SMS2 gene of the collected bone marrow cells or immune cells,
3: A step of proliferating cells lacking the gene, and 4: a step of transplanting or administering the proliferated cells to a patient.
以下、それぞれの工程について詳述する。 Hereinafter, each step will be described in detail.
第１工程は、ヒトの骨髄細胞を採取する工程である。
骨髄細胞または免疫細胞は、常法により、ヒトの骨髄から採取することができる。当該ヒトは、患者自身であっても、他者であってもよい。患者自身であることが好ましい。
The first step is a step of collecting human bone marrow cells.
Bone marrow cells or immune cells can be harvested from human bone marrow by conventional methods. The person may be the patient himself or others. It is preferably the patient himself.
第２工程は、第１工程で採取した骨髄細胞または免疫細胞のＳＭＳ２遺伝子を欠損させる工程である。
本工程は、例えば、いわゆるゲノム編集により行うことができる。かかるゲノム編集の方法としては、例えば、ＺＥＮ（ジンクフィンガーヌクレアーゼ）、ＴＡＬＥＮ（転写活性化様エフェクターヌクレアーゼ）、またはＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９（ｃｌｕｓｔｅｒｅｄ ｒｅｇｕｌａｒｌｙ ｉｎｔｅｒｓｐａｃｅｄ ｓｈｏｒｔ ｐａｌｉｎｄｒｏｍｉｃ ｒｅｐｅａｔｓ ／ ＣＲＩＳＰＲ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｐｒｏｔｅｉｎｓ）を用いた方法を挙げることができる。
The second step is a step of deleting the SMS2 gene of the bone marrow cells or immune cells collected in the first step.
This step can be performed, for example, by so-called genome editing. Examples of such genome editing methods include ZEN (zinc finger nuclease), TALEN (transcription activation-like effector nuclease), or CRISPR / Cas9 (crustered regulatory interspaced short palindromic reports / CRISPR associated method). Can be done.
第３工程は、第２工程でＳＭＳ２遺伝子を欠損させた細胞を増殖する工程である。
本工程は、生体外で常法により当該細胞を培養し、増殖することにより行うことができる。当該細胞の培養には、従来、骨髄細胞や免疫細胞の培養に使用されている方法を使用することができる。具体的には、例えば、免疫細胞を採取したヒト個体の血液から血清を分離して、約２０％の濃度で細胞培養液であるＲＰＭＩ１６４０などに混入した後、細胞増殖因子（ＩＬ２，ＩＬ６など）を追加添加してヒト免疫細胞培養液を調製し、腫瘍免疫作用をヒト体内で発現するために必要な細胞数を得るために培養を継続し、最終目標数の免疫細胞（例えば、１×１０８〜１×１０９個）を得る方法が挙げられる。
The third step is a step of proliferating cells lacking the SMS2 gene in the second step.
This step can be performed by culturing and proliferating the cells in vitro by a conventional method. For culturing the cells, a method conventionally used for culturing bone marrow cells or immune cells can be used. Specifically, for example, serum is separated from the blood of a human individual from which immune cells have been collected, mixed with RPMI1640, which is a cell culture medium, at a concentration of about 20%, and then cell growth factors (IL2, IL6, etc.). To prepare a human immune cell culture medium, continue culturing to obtain the number of cells required to express tumor immunity in the human body, and continue culturing to obtain the final target number of immune cells (for example, 1 × 10). 8 to 1 × 10 9 pieces) can be obtained.
第４工程は、第３工程で増殖した細胞を患者に移植ないし投与する工程である。
増殖した当該細胞の患者への移植ないし投与は、常法により行うことができる。患者における当該移植ないし投与部位としては、例えば、患者の骨髄、血管、リンパ管が挙げられる。
増殖した当該細胞の患者への移植量ないし投与量は、患者の状態、移植ないし投与部位などによって異なり、既知のＤＬＩ（ドナーリンパ球注入）法などに基づき適宜設定される。
The fourth step is a step of transplanting or administering the cells proliferated in the third step to the patient.
The proliferated cells can be transplanted or administered to a patient by a conventional method. The transplantation or administration site in the patient includes, for example, the patient's bone marrow, blood vessels, and lymphatic vessels.
The transplantation amount or dose of the proliferated cells to the patient varies depending on the patient's condition, transplantation or administration site, etc., and is appropriately set based on a known DLI (donor lymphocyte injection) method or the like.
上述のように、ＳＭＳ２遺伝子を欠損させた骨髄細胞または免疫細胞を患者に移植ないし投与することにより、患者の抗腫瘍免疫活性が亢進し、抗腫瘍活性が発揮されるから、造血器腫瘍（特に急性白血病（例、ＡＭＬ、ＡＬＬ））を治療することができる。
As described above, by transplanting or administering bone marrow cells or immune cells lacking the SMS2 gene to a patient, the antitumor immune activity of the patient is enhanced and the antitumor activity is exhibited. Therefore, hematopoietic tumors (particularly, hematopoietic tumors (particularly) Acute leukemia (eg, AML, ALL)) can be treated.
以下、実施例、試験例等を用いて本発明をより詳細に説明するが、本発明はこれら実施例等に何ら限定されるものではない。 Hereinafter, the present invention will be described in more detail with reference to Examples, Test Examples and the like, but the present invention is not limited to these Examples and the like.
［実施例１］本発明腫瘍化細胞の作製
図１に示す手順のようにして、本発明腫瘍化細胞を作製した。
（１）ＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子レトロウイルスの産生
トランスフェクションする１６〜２４時間前に、パッケージング細胞ＰＬＡＴ−Ｅを１０ｃｍ組織培養皿に３×１０６まいた。遺伝子導入用ベクターであるＭＬＬ／ＡＦ９キメラ遺伝子を持つレトロウイルスベクターｐＭＳＣＶ−ＭＬＬ／ＡＦ９−ＩＲＥＳ−ＧＦＰＩＩ １０μｇ、Ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ３０００（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）３０μＬ、Ｐ３０００ ｒｅａｇｅｎｔ ２０μＬを１．０ｍＬのＯｐｔｉ−ＭＥＭ培地（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）に混合し、２０分おいた。その後、これを、パッケージング細胞をまいた１０ｃｍ皿にゆっくり加えた。培養開始から４８時間後に培養上清を１０ｍＬシリンジで回収し、０．４５μｍフィルターに通した。Ｒｅｔｒｏ−Ｘ Ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｏｒ（タカラバイオ社製）１／３量を加え転倒混和後４℃に一晩置き、１，５００×ｇで４５分間遠心した。沈殿物をＳＦ−０３培地（エーディア社製）８０〜１００μＬに懸濁し濃縮ウイルス液とした。
[Example 1] Preparation of tumorigenic cells of the present invention The tumorigenic cells of the present invention were prepared according to the procedure shown in FIG.
(1) Production of MLL / AF9
（２）骨髄細胞回収とレトロウイルス感染
安楽死させた８〜１０週齢マウスの大骸骨、脛骨、上腕骨を取り出し、２６Ｇ注射針とシリンジを用いて、ＤＭＥＭを骨内に５〜１０回通すことで骨髄細胞を回収し、２００μｍメッシュを通した後、１，２００ｒｐｍで５分間遠心した。上清を除き、ＤＭＥＭ培地４ｍＬに懸濁後、Ｌｙｍｐｈｏｐｒｅｐ（コスモバイオ社製）４ｍＬに重層し、１，８００ｒｐｍで２０分遠心した。中間層の単核球分画を回収し、Ｄ−ＰＢＳ（−）１３ｍＬを加え、１，２００ｒｐｍで５分間遠心し、１％ＢＳＡ、０．１μｇ／ｍＬ ｒｈＴＰＯ（和光純薬工業社製）および０．１μｇ／ｍＬのＳＣＦ（和光純薬工業社製）を加えたＳＦ−０３培地に懸濁して骨髄細胞液とした。
(2) Bone marrow cell recovery and retrovirus infection Remove the skeleton, tibia, and humerus of euthanized 8-10 week old mice and pass DMEM into the
レトロウイルス感染を行う２４時間以上前にＲｅｔｒｏＮｅｃｔｉｎ（タカラバイオ社）２０μｇ／ｍＬを加えたＤ−ＰＢＳ（−）１００μＬを９６穴プレートに加え、室温で２時間静置後、上清を除き、２％ＢＳＡを加えたＤ−ＰＢＳ（−）１００μＬを加え、室温で３０分静置した。その後上清を除き、ＲｅｔｒｏＮｅｃｔｉｎコートプレートとして４℃で遮光保存した。レトロウイルス感染を行う２時間以上前に、濃縮レトロウイルス液４０〜１００μＬをＲｅｔｒｏＮｅｃｔｉｎコートプレートに加え、１，０００×ｇで９０分間遠心した。遠心後上清を除き、骨髄細胞１×１０７をまき、３７℃で一晩培養することでレトロウイルス感染を行った。
Add 100 μL of D-PBS (-) containing 20 μg / mL of RetroNectin (Takara Bio Inc.) to a 96-
（３）１ｓｔレシピエント病態モデルマウスの作製
骨髄移植を行う前日に、７〜１０週齢１ｓｔレシピエントマウスへ９〜１０Ｇｙ致死量放射線照射を行った。骨髄移植を行う当日に、安楽死させた８〜１０週齢ドナーマウスの大骸骨、脛骨、上腕骨より上記と同様の方法で骨髄細胞を採取し、ドナー骨髄細胞とした。レトロウイルス感染を行ったＭＬＬ／ＡＦ９レトロウイルス感染骨髄細胞１×１０６をドナー骨髄細胞１×１０６とＳＦ−０３培地中で混ぜ、２７Ｇ注射針とシリンジを用いてレシピエントマウスの尾静脈より注射を行った。
(3) Preparation of 1st Recipient Pathological Model Mouse The day before bone marrow transplantation, 9 to 10 Gy lethal dose irradiation was performed on 7 to 10 week old 1st recipient mice. On the day of bone marrow transplantation, bone marrow cells were collected from the skeleton, tibia, and humerus of euthanized 8- to 10-week-old donor mice by the same method as described above, and used as donor bone marrow cells. Retrovirus-infected MLL / AF9 retrovirus-infected
（４）２ｎｄ、３ｒｄレシピエント病態モデルマウスの作製
骨髄移植を行う前日に、７〜１０週齢２ｎｄレシピエントマウスへ６Ｇｙ半致死量放射線照射を行った。上記（３）と同様の方法により上記の骨髄移植を行った５６日目の１ｓｔレシピエント病態モデルマウスより骨髄細胞を採取後、フローサイトメトリーにより導入遺伝子を有する細胞（ＧＦＰ陽性）である腫瘍化細胞が存在することを確認した。回収した腫瘍化細胞を含む骨髄細胞をＳＦ−０３培地に懸濁し、２×１０６を２ｎｄレシピエントマウスへ尾静脈注射により骨髄移植した。
(4) Preparation of 2nd and 3rd Recipient Pathological Model Mice The day before bone marrow transplantation, 6Gy median lethal dose irradiation was performed on 7 to 10 week old 2nd recipient mice. After collecting bone marrow cells from the 1st recipient pathological model mouse on the 56th day when the above bone marrow transplantation was performed by the same method as in (3) above, tumorigenesis is performed as cells having the introduced gene (GFP positive) by flow cytometry. It was confirmed that cells were present. Bone marrow cells containing the recovered tumorigenic cells were suspended in SF-03 medium was bone marrow transplantation by
骨髄移植を行う前日に、７〜１０週齢３ｒｄレシピエントマウスへ４．５Ｇｙ非致死量放射線照射を行った。上記（３）と同様の方法により骨髄移植を行った４０日目の２ｎｄレシピエント病態モデルマウスより骨髄細胞を採取後、フローサイトメトリーにより導入遺伝子を有する細胞（ＧＦＰ陽性）である腫瘍化細胞が存在することを確認した。回収した腫瘍化細胞を含む骨髄細胞をＳＦ−０３培地に懸濁し、１×１０６を３ｒｄレシピエントマウスへ尾静脈注射により骨髄移植した。 The day before bone marrow transplantation, 4.5 Gy non-lethal dose irradiation was performed on 7 to 10 week old 3rd recipient mice. After collecting bone marrow cells from the 2nd recipient pathological model mouse on the 40th day after bone marrow transplantation by the same method as in (3) above, tumorigenic cells which are cells having the introduced gene (GFP positive) are generated by flow cytometry. Confirmed to exist. Bone marrow cells containing the recovered tumorigenic cells were suspended in SF-03 medium, and 1 × 10 6 was transplanted into 3rd recipient mice by tail intravenous injection.
（５）腫瘍化細胞の作製
上記（３）と同様の方法により骨髄移植を行った４０日目の３ｒｄレシピエントマウスより骨髄細胞を採取し、フローサイトメトリーにより、導入遺伝子を有する細胞（ＧＦＰ陽性）である腫瘍化細胞が存在することを確認した。回収した腫瘍化細胞を含む骨髄細胞をＳＦ−０３培地に懸濁することより、本発明腫瘍化細胞を作製した。
(5) Preparation of Tumorized Cells Bone marrow cells were collected from 3rd recipient mice on the 40th day after bone marrow transplantation by the same method as in (3) above, and cells having the introduced gene (GFP positive) were collected by flow cytometry. ) Was confirmed to be present. The tumorigenic cells of the present invention were prepared by suspending bone marrow cells containing the recovered tumorigenic cells in SF-03 medium.
［実施例２］本発明モデルマウスの作製
実施例１で作製した本発明腫瘍化細胞１×１０４〜２×１０６（個）を７〜１０週齢４ｔｈレシピエントマウスへ尾静脈注射することにより本発明モデルマウス（ＡＭＬ−４ｔｈ）を作製した。
作製した本発明モデルマウスの体重、脾臓の重量、脾臓／体重量比、体重（ｂｏｄｙ ｗｅｉｇｈｔ）、脾臓重量（ｓｐｌｅｅｎ）の解析、および血液検査（白血球数（ＷＢＣ）、赤血球数（ＲＢＣ）、血小板数（ＰＬＴ）など）を行った。その結果を表１および図２〜図４に示す。
[Example 2] Preparation of the model mouse of the present invention The tumorigenic cells of the present invention prepared in Example 1 (1 × 10 4 to 2 × 10 6 ) are injected into a 7 to 10 week old 4th recipient mouse by tail vein injection. the present invention model mice (AML-4 th) prepared by.
Analysis of body weight, spleen weight, spleen / body weight ratio, body weight, spleen weight (splen), and blood test (white blood cell count (WBC), red blood cell count (RBC), platelets) of the prepared model mouse of the present invention. Number (PLT) etc.) was performed. The results are shown in Table 1 and FIGS. 2 to 4.
表１および図２〜図４に示したように、本発明モデルマウス（ＡＭＬ−４ｔｈ、又はＷＴＡＭＬ−４ｔｈ）は、移植後の体重変化については、図２のように野生型コントロールマウスと比べて大差はないが、死亡前には急激な減少を認めた。ＭＬＬ／ＡＦ９遺伝子発現ベクターを感染させた１×１０６個の骨髄細胞の移植１５日後（ＷＴＡＭＬ−４ｔｈ）に末梢血中の白血球数が野生型（ＷＴ）マウスの１０４０／μＬから７万１７００／μＬへと著増した（表１参照）。白血病細胞はクラゲ蛍光タンパクであるＧＦＰ（緑色蛍光タンパク）を強制発現しており、細胞内の蛍光物質を測定できるフローサイトメーターを用いて、検体内の白血病細胞数を計測した。結果は、図４に示したように、移植１５日後にはフローサイトメトリー法による解析で、骨髄、脾臓での白血病細胞の増殖が９４％と６９％にそれぞれ認められた。移植２３日後には、腋窩リンパ節（ａｘｉｌｌａｒ ｌｙｍｐｈ ｎｏｄｅ）においても９５％の白血病細胞の増殖が認められ、脾臓（ｓｐｌｅｅｎ）の増大（６０ｍｇから３１８ｍｇへ）、貧血による骨の白色化が著明であった。これらの結果は、免疫応答性を有する野生型マウスでＭＬＬ／ＡＦ９過剰発現細胞の増殖によってヒト白血病発症モデルが作製できたことを示す。 Table 1 and as shown in FIGS. 2-4, the present invention model mice (AML-4 th, or WT AML-4th), for the change in body weight after transplantation, and wild-type control mice as shown in FIG. 2 There was no big difference in comparison, but a sharp decrease was observed before death. 15 days after transplantation of 1 × 10 6 bone marrow cells infected with the MLL / AF9 gene expression vector (WT AML-4th ), the white blood cell count in the peripheral blood increased from 1040 / μL to 71,700 in wild-type (WT) mice. It increased significantly to / μL (see Table 1). Leukemia cells forcibly express GFP (green fluorescent protein), which is a jellyfish fluorescent protein, and the number of leukemia cells in the sample was measured using a flow cytometer capable of measuring intracellular fluorescent substances. As a result, as shown in FIG. 4, 15 days after transplantation, the growth of leukemia cells in the bone marrow and spleen was observed in 94% and 69%, respectively, by the analysis by the flow cytometry method. Twenty-three days after transplantation, 95% of leukemic cell proliferation was also observed in the axillary lymph nodes, spleen growth (from 60 mg to 318 mg), and bone whitening due to anemia were prominent. there were. These results indicate that a human leukemia development model could be prepared by proliferation of MLL / AF9 overexpressing cells in immune-responsive wild-type mice.
［実施例３］本発明ＳＭＳ２−ＫＯマウスの作製
最後のレシピエントマウスがＳＭＳ２遺伝子をノックアウトしたマウスであること、また４ｔｈレシピエントマウスへの本発明腫瘍化細胞の投与量が５×１０５（個）であること以外は、実施例１、２と同様の手順で本発明ＳＭＳ２−ＫＯマウス（ＳＭＳ２−ＫＯ＃１、ＳＭＳ２−ＫＯ＃２）を作製した。そして、作製した本発明ＳＭＳ２−ＫＯマウスの体重、脾臓の重量、脾臓／体重量比などを解析、および血液検査を行った。その結果を表２、および図５に示す。
[Example 3] The present invention SMS2-KO mice produce final recipient mice to be a knockout mice SMS2 gene, also 4th dose of the present invention tumorigenesis cells into
図５に示したように、造血器腫瘍（急性白血病）を発症する本発明モデルマウス（ＷＴ）では、ＳＭＳ２−ＫＯマウス（本発明ＳＭＳ２−ＫＯマウス）においても、野生型コントロールマウス（ＳＭＳ２正常発現の本発明モデルマウス（ＷＴ））においても、体重の変化はなかった（図５Ａ参照）。しかしながら、明らかに生存曲線がＳＭＳ２−ＫＯマウスでは＃１と＃２の２グループ共に有意に延長しており（図５Ｂ参照）、脾臓の増大により判定される白血病の脾臓への浸潤増殖は、ＳＭＳ２欠損状態で明らかに抑制されていた（図５Ｃ、Ｄ参照）。
As shown in FIG. 5, in the model mouse (WT) of the present invention that develops a hematopoietic tumor (acute leukemia), the wild-type control mouse (SMS2 normal expression) is also expressed in the SMS2-KO mouse (SMS2-KO mouse of the present invention). There was no change in body weight in the model mouse (WT) of the present invention (see FIG. 5A). However, the survival curve was clearly significantly prolonged in both
表２に示したように、作製した血病発症モデルでは、野生型マウス（本発明モデルマウス：ＷＴＡＭＬ）に対してＳＭＳ２−ＫＯマウス（ＳＭＳ２−／−ＡＭＬ）の末梢血液中の白血球細胞数が３万６４００／μＬから２万８００／μＬに減少し、貧血の使用のヘモグロビンは１１．６ｇ／ｄＬから１３．６ｇ／ｄＬに回復し、血小板数は１１．１万／μＬから６８．７万／μＬに増加していた。これらの結果は、急性白血病がＳＭＳ２−ＫＯマウスでは全く発症していないわけではなく、一旦発症後に時間経過と共に白血病状態が回復することを示唆している。 As shown in Table 2, in the prepared blood disease onset model, the number of leukocyte cells in the peripheral blood of the SMS2-KO mouse (SMS2 -/-AML ) relative to the wild-type mouse (model mouse of the present invention: WT AML). Decreased from 36,400 / μL to 20,800 / μL, hemoglobin used for anemia recovered from 11.6 g / dL to 13.6 g / dL, and white blood cell count increased from 111,000 / μL to 68.7. It had increased to 10,000 / μL. These results suggest that acute leukemia does not occur at all in SMS2-KO mice, and that the leukemia state recovers over time after the onset.
一方、４ｔｈレシピエントマウスへの移植前の、Ｘ線照射（４．５Ｇｙ）を施行した３ｔｈレシピエントマウスに本発明腫瘍化細胞を移植して白血病を発症させたところ、図６に示すように、ＳＭＳ２遺伝子をノックアウトしていないコントロールマウス（ＳＭＳ２正常マウス、ＷＴ４．５Ｇｙ（ＭＬＬ／ＡＦ９非移植）又はＷＴＡＭＬ−３ｒｄ＋４．５Ｇｙ（ＭＬＬ／ＡＦ９移植））とＳＭＳ２−ＫＯマウス（ＳＭＳ２−ＫＯ４．５Ｇｙ（ＭＬＬ／ＡＦ９非移植）又はＳＭＳ２−ＫＯＡＭＬ−３ｒｄ＋４．５Ｇｙ（ＭＬＬ／ＡＦ９移植））との間で、生存期間の差異は見られなかった（図６Ｂ参照）。即ち、腫瘍免疫活性が抑制された放射線照射後には、免疫応答性（ｉｍｍｕｎｏｃｏｍｐｅｔｅｎｔ）のＳＭＳ２−ＫＯマウスで見られた白血病細胞の増殖抑制が認められておらず、ＳＭＳ２欠損状態での骨髄微小環境における抗腫瘍活性の亢進が、白血病の発症、進展に必須であることが確認された。言い換えれば、骨髄微小環境に起因する腫瘍に対する免疫応答性が、ＳＭＳ２−ＫＯによる白血病の抑制効果に重要であることが示された。 On the other hand, when the tumorigenic cells of the present invention were transplanted into the 3rd recipient mouse subjected to X-ray irradiation (4.5 Gy) before transplantation to the 4th recipient mouse to develop leukemia, as shown in FIG. , SMS2 gene not knocked out control mouse (SMS2 normal mouse, WT 4.5Gy (MLL / AF9 non-transplanted) or WT AML-3rd + 4.5Gy (MLL / AF9 transplanted)) and SMS2-KO mouse (SMS2-KO 4) No difference in survival was observed between .5 Gy (MLL / AF9 non-transplanted) or SMS2-KO AML-3rd + 4.5 Gy (MLL / AF9 transplanted) (see FIG. 6B). That is, after irradiation with suppressed tumor immunoactivity, the suppression of leukemic cell proliferation observed in immunocompetent SMS2-KO mice was not observed, and in the bone marrow microenvironment in the SMS2-deficient state. It was confirmed that enhanced antitumor activity is essential for the onset and progression of leukemia. In other words, it was shown that immune responsiveness to tumors caused by the bone marrow microenvironment is important for the suppressive effect of SMS2-KO on leukemia.
［試験例１］本発明ＳＭＳ２−ＫＯマウスにおける当該白血病細胞の骨髄への生着
本発明ＳＭＳ２−ＫＯマウスにおいて、本発明腫瘍化細胞が骨髄に生着しているか否かについて検討した。実験は、本発明腫瘍化細胞移植後に経時的に１６日ごと２４日後にマウスを安楽死することで、野生型とＳＭＳ２−ＫＯマウスにおける白血病の進展程度を評価することをフローサイトメトリー法による白血病細胞の計測と腫瘍免疫細胞であるＣＴＬと骨髄由来免疫抑制細胞（ＭＤＳＣ）の計測により行った。白血病細胞の骨髄（ＢＭＣｓ）と末梢血（ｂｌｏｏｄ）への浸潤は白血病細胞にタグ化したＧＦＰ（緑蛍光蛋白）の測定、またＣＴＬ（ＣＤ４陽性または非陽性（ＣＤ８陽性相当）細胞）とＭＤＳＣ（ＣＤ１１ｂとＧｒ１陽性細胞）を各種抗体によって測定した。その結果を図７、図８に示す。
[Test Example 1] Engraftment of the leukemia cells in the bone marrow in the SMS2-KO mouse of the present invention In the SMS2-KO mouse of the present invention, it was examined whether or not the tumorigenic cells of the present invention were engrafted in the bone marrow. The experiment was to evaluate the degree of leukemia progression in wild-type and SMS2-KO mice by euthanizing the
移植１６日後と２４日後のマウスの白血病細胞の増殖を解析したところ、図７Ｃに示した通り、コントロール（ＳＭＳ２正常発現の本発明モデルマウス、ＷＴ又はＷＴＡＭＬ）群と本発明ＳＭＳ２−ＫＯマウス群（ＳＭＳ２−ＫＯＡＭＬ、又は２ＫＯＡＭＬ）では、ＳＭＳ２欠損状態での骨髄、末梢血、脾臓での白血病細胞浸潤の若干の低下が見られたが、移植したＭＬＬ／ＡＦ９過剰発現白血病細胞がＳＭＳ２欠損状態で生着不全を誘導する証拠は全く認められなかった。したがって、本発明ＳＭＳ２−ＫＯマウスにおいても、本発明腫瘍化細胞が骨髄に生着していることは明らかである。
When the proliferation of leukemia cells in
［試験例２］本発明ＳＭＳ２−ＫＯマウスにおける骨髄微小環境の検討
試験例１で生存していた本発明ＳＭＳ２−ＫＯマウスから骨髄細胞を採取し、フローサイトメトリー法により骨髄微小環境を解析した。具体的な実験方法としては、各細胞に特異的な細胞表面抗原に対する選択的な蛍光化された抗体をフローサイトメーターで測定した。一般的には、ＣＴＬ（細胞障害性Ｔ細胞）は抗ＣＤ４抗体陽性細胞、もしくは抗ＣＤ８陽性（抗ＣＤ４陰性）であり、ＭＤＳＣ（骨髄由来抑制性細胞）は、抗ＣＤ１１ｂ陽性とＧｒ１陽性の二重陽性である。その結果を図８に示す。
[Test Example 2] Examination of bone marrow microenvironment in the SMS2-KO mouse of the present invention Bone marrow cells were collected from the SMS2-KO mouse of the present invention that survived in Test Example 1, and the bone marrow microenvironment was analyzed by a flow cytometry method. As a specific experimental method, selective fluorescent antibodies against cell surface antigens specific to each cell were measured with a flow cytometer. In general, CTL (cytotoxic T cells) are anti-CD4 antibody positive cells or anti-CD8 positive (anti-CD4 negative), and MDSC (bone marrow-derived inhibitory cells) are anti-CD11b positive and Gr1 positive. It is heavily positive. The result is shown in FIG.
図８に示したように、生存している本発明ＳＭＳ２−ＫＯマウス（ＳＭＳ２−ＫＯＡＭＬ）においては、抗腫瘍免疫効果の重要な細胞であるＣＤ８陽性ＣＴＬ（ＣＤ４陰性）が明らかにコントロール群に比較して３２％から６２％へ増加していた。また、がん微小環境におけるＭＤＳＣ（骨髄由来抑制性細胞）について、Ｇ−ＭＤＳＣ（ＣＤ１１ｂ陽性＋Ｇｒ１強陽性細胞）が２０％から３％へ、および、Ｍ−ＭＤＳＣ（（ＣＤ１１ｂ陽性＋Ｇｒ１弱陽性細胞）が２９％から９％へと顕著に減少していた。
このことは、ＳＭＳ２欠損状態で抗腫瘍免疫活性に必須のＣＴＬの増強とＭＤＳＣの抑制が同時に確認されたことを示している。
As shown in FIG. 8, in the surviving SMS2-KO mice of the present invention (SMS2-KO AML ), CD8-positive CTL (CD4-negative), which is an important cell for anti-tumor immune effect, is clearly in the control group. In comparison, it increased from 32% to 62%. Regarding MDSCs (bone marrow-derived inhibitory cells) in the cancer microenvironment, G-MDSC (CD11b positive + Gr1 strong positive cells) increased from 20% to 3%, and M-MDSC ((CD11b positive + Gr1 weak positive cells)). Was significantly reduced from 29% to 9%.
This indicates that the enhancement of CTL and the suppression of MDSC, which are essential for anti-tumor immune activity, were confirmed at the same time in the SMS2-deficient state.
以上から、ＳＭＳ２の機能が抑制された免疫応答性の動物（ＳＭＳ２−ＫＯ野生型動物）においては、抗腫瘍免疫活性が増強され、造血器腫瘍の発病が抑制されることが明らかである。したがって、ＳＭＳ２の活性を何らかの手段で阻害することにより、例えば、ＳＭＳ２に対する低分子阻害剤や抗ＳＭＳ２抗体を投与することにより、難治性の造血器腫瘍（急性白血病（例、ＡＭＬ、ＡＬＬ））を治療しうることが明らかである。また、ＳＭＳ２欠損により抗腫瘍活性が亢進したＣＴＬを担がん個体（ヒト）に注入することにより、造血器腫瘍を治療しうることも明らかである。
From the above, it is clear that in immunoresponsive animals (SMS2-KO wild-type animals) in which the function of SMS2 is suppressed, the antitumor immune activity is enhanced and the onset of hematopoietic tumors is suppressed. Therefore, refractory hematopoietic tumors (acute leukemia (eg, AML, ALL)) can be treated by inhibiting the activity of SMS2 by some means, for example, by administering a small molecule inhibitor or anti-SMS2 antibody against SMS2. It is clear that it can be treated. It is also clear that hematopoietic tumors can be treated by injecting CTLs whose antitumor activity is enhanced by SMS2 deficiency into cancer-bearing individuals (humans).
本発明スクリーニング方法は、造血器腫瘍の治療のためのＳＭＳ２阻害薬を開発することにおいて有用である。また、ＳＭＳ２阻害薬などを有効成分として含有する造血器腫瘍治療剤は、造血器腫瘍の治療、特にＡＭＬなどの急性白血病の治療に有用である。 The screening method of the present invention is useful in developing SMS2 inhibitors for the treatment of hematopoietic tumors. In addition, a hematopoietic tumor therapeutic agent containing an SMS2 inhibitor or the like as an active ingredient is useful for the treatment of hematopoietic tumors, particularly acute leukemia such as AML.
Claims (2)
The therapeutic agent for hematopoietic tumor according to claim 1, wherein the hematopoietic tumor is acute leukemia.
Priority Applications (1)
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