JP2020536864A - 投与方法および組成物 - Google Patents

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Abstract

【課題】ヒト以外の被験体の非B非C型肝細胞癌の治療投与方法および組成物を提供する。【解決手段】本発明は、ヒト以外の被験体におけるHBV(B型肝炎ウイルス)/HCV(C型肝炎ウイルス)陰性の肝細胞癌(HCC)すなわち非B非C型肝細胞癌(NBNC−HCC)を治療するための方法および医薬組成物に関し、特に治療を必要とするヒト以外の被験体に治療有効量の阻害剤を投与して、CD36増幅およびABCG4欠失を含む脂質ホメオスタシス関連遺伝子の遺伝的変化を制御することを含む。本発明によれば、脂質代謝経路を標的とする医薬は、CD36増幅および/またはABCG4欠失を有する被験体における非B非C型肝細胞癌(NBNC−HCC)を治療するために開発される。【選択図】図1

Description

本発明は一般に、肝炎ウイルス感染の病歴を欠くヒト以外の被験体における肝細胞癌(以下、HCC)を処置するための方法に関する。特に、本発明は、脂質ホメオスタシス関連遺伝子の遺伝的変化を標的とすることによって、特にCD36増幅および/またはABCG4欠失の制御を調節することによって、ヒト以外の被験体におけるB型肝炎ウイルス(以下、HBV)/C型肝炎ウイルス(以下、HCV)感染)陰性のHCCすなわち非B非C型HCC(以下、NBNC−HCC)を治療するための方法に関する。
肝細胞癌(HCC)は肝臓の高度悪性腫瘍である。世界がん罹患率で5位であり、年間660,000例以上の死亡を引き起こしている(Jemal、A et al.、CA Cancer J Clin. 57、43-66、2007; El-Serag、HBN Engl J Med. 365、1118-1127、2011)。HCCは通常、B型肝炎ウイルス(HBV)またはC型肝炎ウイルス(HCV)による感染と関連している(Farazi、PA.、DePinho、R A.、Nat Rev Cancer 6、674-687、2006)。しかし最近、代謝障害によって誘導されるHCCの発生率が増加している(Starley、BQ et al. Hepatology 51、1820-1832、2010; Fujiwara、N et al. J Hepatol. S0168-8278、32328-32340、2017)。ウイルス性肝炎の既往がない患者群では、HCCに至る分子事象は明らかではない。
世界的に、ワクチン接種プログラムおよび抗ウイルス薬の開発はウイルス性肝疾患の管理に重大な影響を与えており、これらの因子は肝臓悪性腫瘍の状況を変化させている。米国、日本、欧州、豪州では、非アルコール性脂肪性肝疾患(NAFLD)の有病率が上昇傾向にあり、非アルコール性脂肪性肝炎(NASH)の結果、糖尿病や肥満の流行の増加と並行してHCCが増加することが予想される。
ゲノム不安定性は多くの癌の特徴であり、これにはHCCが含まれ(Niu、ZS et al. World J Gastroenterol. 22、9069-9095、2016)、重要なことにいくつかの癌関連遺伝子が同定され、染色体不安定性を調べることにより検証されている。しかしこのような研究において、HCCに関連する様々な異なる危険因子に関連したゲノム変化はまだ解析されていない。
本発明は、ウイルス性肝炎感染に関して異なる背景履歴を有するHCCの臨床的およびゲノム的特徴を検討した。特に脂質ホメオスタシスに関連する2つの遺伝子であるCD36およびABCG4の変化は、HBV)/HCV感染歴のないHCCであるNBNC−HCCで高頻度に検出される分化マーカーとして同定されている。公開されているゲノムデータレポジトリーで利用可能な情報は、CD36およびABCG4を含む脂質ホメオスタシス遺伝子がHCC発癌において重要な役割を果たすとの結論を支持する独立した証拠を提供する。
本発明では、CD36遺伝子増幅が一貫してHCCサンプルの25%で検出され、BGIデータセットからのHBV−HCCサンプルよりもNBNC−HCCサンプルにおいてより一般的であることが見出される。CD36およびABCG4のコピー数変化を調べることにより、CD36遺伝子増幅およびABCG4遺伝子欠失は、ICGC HCCサンプルのそれぞれ15.6%および10.3%で検出され、TCGA HCCサンプルのそれぞれ15.3%および9.7%で検出される。
したがって本発明は、脂質ホメオスタシス関連遺伝子の遺伝的変化を調節制御するために阻害剤を投与することを含め、ヒト以外の被験体におけるB型/C型肝炎ウイルス感染陰性の肝細胞癌の予防または治療のための投与方法を提供する。本発明の一実施形態において、遺伝的変化はCD36増幅を含む。本発明の別の実施形態において、遺伝的変化はABCG4欠失を含む。本発明のさらに別の実施形態において、遺伝的変化はCD36増幅およびABCG4欠失を含む。HCCにおけるCD36増幅およびABCG4欠失の調節制御は、HCC被験者の生存率を改善するために有用である。
別の態様では、本発明が脂質ホメオスタシス関連遺伝子の遺伝的変化を制御する調節剤を含む、被験体におけるB型/C型肝炎ウイルス感染陰性の肝細胞癌を予防または治療するための組成物を提供する。本発明の一実施形態では、調節剤はCD36過剰発現を抑制することを目的とする。本発明の別の実施形態において、調節剤はHCC細胞における脂質取り込みをブロックすることを目的とする。本発明の例示的な実施形態では、調節剤は抗CD36抗体である。
本発明の一実施形態では、調節剤がABCG4発現を誘導することを目的とする。本発明の別の実施形態では、調節剤がHCC細胞内のコレステロール輸送を促進することを目的とする。本発明の好ましい実施形態において、調節剤はABCG4タンパク質である。
以上の概要ならびに以下の本発明の詳細な説明は、添付の図面と併せて読めば、より良く理解されるであろう。
図1A〜1Bは、HCC腫瘍の様々なサブタイプ間の対比較を示す。DNAコピー数の変化をPennCNVによって分析する。HCCサブタイプ間のDNAコピー数変化の差の統計解析は、フィッシャーの直接確率検定を用いて得られる。(A)HCCサブタイプ間のDNAコピー数増加の異なるパターン。(B)HCCサブタイプ間のDNAコピー数喪失の異なるパターン。有意水準は、赤色の水平線を用いてマークされる。SNPアレイから得られたペアHCCサンプルの遺伝子型の結果は、それらのウイルス感染歴に基づいて表示される。PennCNVは、(A)DNAコピー数増加と(B)DNAコピー数減少を分析する。赤い線は、P<0.001の有意性を示す。 図2A〜2Dは、SNP遺伝子型タイピングアレイによって検出されたCD36増幅およびABCG4欠失を示す。(A)7番染色体上のDNAコピー数増加。7番染色体領域に影響を及ぼすDNA増幅の程度を腫瘍ごとに図示した。色は、HCC腫瘍の様々なサブタイプを示す。青色:HBV−HCC、緑色:HCV−HCC、橙色:NBNC−HCC。(B)CD36遺伝子領域(Chr7:80.23Mb-80.30Mb)に影響する体細胞増幅事象は、NBNC−HCC腫瘍と関連することがわかる。(C)11番染色体上のDNAコピー数の消失。11番染色体領域に影響を及ぼすDNA欠失の程度を腫瘍ごとに図示する。(D)ABCG4遺伝子領域内の体細胞欠失事象(Chr11:119.02Mb-119.03Mb)は、NBNC−HCCと関連することがわかる。*P<0.05。 図3A〜3Dは、NBNC−HCCにおけるCD36遺伝子のRNAとタンパク質発現を示したものである。図3Aでは、定量的PCR法を用いて、HBCまたはHCV感染の既往がない5対のHCC試料のCD36 DNAコピー数およびmRNA発現レベルを測定する。DNAコピー数分析は、PCRプライマーとしてCD36遺伝子の5’末端(5’CN)および3’末端(3’CN)配列を使用するように設計される。結果は、三重測定(平均・標準偏差)を用いて得られる。図3Bは、症例235からのサンプル中のCD36タンパク質発現を検出するための、抗CD36抗体を使用する免疫組織化学染色である。試料を10倍の倍率で、光学顕微鏡下で評価する。特定の領域のさらなる詳細が示される:図3Cの腫瘍組織切片(赤いボックス)および図3Dの非腫瘍組織切片(青いボックス)。 図4は、BGIデータセットからの88個のHCCについてのCD36 DNAコピー数増幅比を示す。CD36遺伝子増幅を有する症例の割合は、HBV−HCC腫瘍組織と比較して、NBNC−HCC腫瘍組織で有意に高い。**P<0.01、フィッシャーの直接確率検定。 図5は、ICGCおよびTCGA肝癌データセットから得られたCD36遺伝子増幅およびABCG4遺伝子欠失事象を示す。2つの遺伝子変異に陽性を示すHCC症例の割合は、ICGC収集およびTCGA収集に関して類似している。 図6Aおよび6Bは、HCC患者の生存および腫瘍サイズに対するCD36遺伝子増幅およびABCG4遺伝子欠失の効果を示す。分析したデータは、CD36増幅およびABCG4欠失のために腫瘍サンプルが遺伝子型決定されたHCC患者から得られる。腫瘍組織におけるCD36増幅およびABCG4欠失の両方を有する患者の生存率中央値は、CD36増幅のみを有する患者またはABCG4欠失のみを有する患者よりも有意に短い(P<0.0001)。統計解析は、図6Aに示されるデータについてのログランク検定を用いて行われる。図6Bでは、CD36増幅およびABCG4欠失の両方を含むHCCにおいて、腫瘍サイズが有意に増加する。エラーバーは標準偏差を示す。有意水準は以下のように示される:*P<0.05および**P<0.01であり、対応のないMann-WhitneyのU検定を用いて得られる。 図7A〜7Dは、HCC細胞増殖に対する抗CD36抗体の効果を示す。(A)3つのHCC細胞株の細胞生存率は、72時間、40μg/mlの抗CD36抗体の存在下で有意に減少することが見出される。(B)抗CD36抗体処理がHuH-7細胞生存率に及ぼす影響は用量依存性である。(C)20μg/mlの抗CD36抗体処理を経た後、HuH-7細胞の細胞生存能力は時間依存的に低下する。(D)HuH-7細胞のアポトーシス比率は対照抗体(IgG)と比較して40μg/mlの抗CD36抗体存在時に上昇する。すべてのグラフについて、エラーバーは平均標準偏差を示す。有意水準は以下のように示される:*P<0.05、**P<0.01および***P<0.001であり、対応のない両側t検定を用いて得られる。
別段の定義がない限り、本明細書で使用されるすべての技術用語および科学用語は、本発明が属する技術分野の当業者によって一般に理解されるものと同じ意味を有する。
本明細書で使用される場合、単数形「a」、「an」および「the」は明らかに文脈に沿わないことが示されない限り、複数の指示対象を含む(原文(英語)に関する指示)。したがって例えば「サンプル」への言及は、そのような複数のサンプルおよび当業者に公知の等価物を含む。
本発明はヒト以外の被験体におけるHBV/HCV感染(NBNC−HCC)陰性のHCCを予防または治療するための投与方法であって、脂質ホメオスタシス関連遺伝子の遺伝的変化を制御するために、特にHCC患者におけるCD36遺伝子増幅および/またはABCG4遺伝子欠失に影響を及ぼすために阻害剤を投与することを含む方法を提供する。
本明細書中で使用される場合、用語「遺伝的変化」は特定の遺伝子の正常なDNA配列における変化をいう。遺伝暗号が変化すると、機能不全により異常に活性化されたタンパク質がつくられてがんになることがある。異常に活性化されたタンパク質や機能不全のタンパク質は正常な生物学的過程や細胞を調節して増殖させ、癌化させることがある。遺伝的変化のゲノムワイド検出のための現在の方法には、以下が含まれる。
1.染色体異常および再配列の分子細胞遺伝学的評価。
2.ヘテロ接合性喪失(LOH)または対立遺伝子不均衡を検出するためのDNA多型分析。
3.セグメントコピー数変化を同定するための比較ゲノムハイブリダイゼーション(CGH)アプローチ。
本明細書中で使用される場合、用語「CD36遺伝子増幅」は他の遺伝子の比例的な増加なくCD36遺伝子のコピー数が増加することをいう。これは、DNA複製および修復機構の誤りを介してCD36遺伝子を含むDNA領域が重複することによって起こりうる。
本明細書中で使用される用語「ABCG4遺伝子欠失」は、「ABCG4遺伝子欠失」または「ABCG4欠失突然変異」とも呼ばれ、染色体の一部またはDNAの配列がDNA複製中に失われる突然変異(遺伝的異常)を意味する。任意の数のヌクレオチドを単一の塩基から染色体の断片全体まで欠失させることができる。遺伝的欠失はガン(https://www.medicinenet.com/cancer/article.htm)の発達において生まれた異常(https://www.medicinenet.com/birth_defects/article.htm)に関与する。
本発明に従って使用するための医薬組成物は、医薬的に使用することができる製剤への活性化合物の加工を容易にする賦形剤および補助剤を含む1つ以上の生理学的に許容される担体を使用し、従来の様式で製剤化できる。適切な処方は、選択される投与経路に依存する。
非経口投与については筋肉内、静脈内、腹腔内、および皮下を含む注射が好ましい。注射のため、本発明の組成物は水溶液中、好ましくはハンクス溶液、リンガー溶液、または生理食塩水緩衝液などの生理的に適合性の緩衝液中にて製剤化されてもよい。さらに化合物は固体形態で処方されてもよく、使用の直前に再溶解または懸濁されてもよい。凍結乾燥形態も含まれる。
経口投与のため、組成物は活性化合物を当該分野で周知の薬学的に受容可能なキャリアと組み合わせることによって処方され得る。このような担体は、本発明の組成物を患者による経口摂取のための錠剤、丸剤、トローチ、糖衣錠、カプセル、液体、ゲル、シロップ、スラリー、懸濁液などとして製剤化することを可能にする。経口使用のための医薬製剤は固体賦形剤を使用し、任意に得られた混合物を粉砕し、所望により他の適切な補助剤を添加した後に顆粒の混合物を加工することで、錠剤または糖衣錠コアが得られる。有用な賦形剤は、特にラクトース、スクロース、マンニトールまたはソルビトールを含む糖などの充填剤、例えばトウモロコシデンプン、コムギデンプン、コメデンプンおよびジャガイモデンプンなどのセルロース調製物、ならびにゼラチン、トラガントゴム、メチルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、カルボキシメチルセルロースナトリウム、および/またはポリビニルピロリドン(PVP)などの他の材料である。所望であれば架橋ポリビニルピロリドン、寒天、またはアルギン酸などの崩壊剤を添加してもよい。アルギン酸ナトリウムのような塩も使用できる。
用語「有効量」は所望の効果を達成するため、すなわちHBV/HCV感染(NBNC−HCC)に対し陰性HCCを予防または処置するために計算された所定量をいう。本発明の特定の実施形態では医薬組成物は、CD36増幅を伴う、HCC被験体における脂質取り込み阻害を制御するための有効量の抗CD36抗体を含む。
本発明は、限定目的でなく実証目的で提供される以下の実施例によってさらに説明される。
以下、図中の"deletion"は「欠失」、"amplification"は「増幅」、"tumor tissue"は「腫瘍組織」、"tumor adjacent tissue"は「腫瘍隣接組織」、"cell viability"は「細胞生存率」をそれぞれ意味する。
(実施例)
本発明の他の特徴および利点は、以下の実施例においてさらに例示され、記載される。本明細書に記載される実施例は例示のために使用されるものであって本発明を限定するために使用されるものではない。
本発明の実施は細胞生物学、細胞培養および遺伝子工学の従来技術を含む技術を使用する。これらは当技術分野の通常の技術の範囲内である。このような技術は文献により全て説明されている。
(CoreExome-24 SNPアレイ)
Infinium CoreExome-24 BeadChip(Illumina)を用いて遺伝子型タイピングを行い、選択した115組のHCCサンプルの遺伝子型を決定する。手順は製造業者の指示に従う。簡潔には、HCC症例のHCC腫瘍組織または非腫瘍組織のいずれかからの約200ngのゲノムDNAを増幅し、断片化し、沈殿させ、ハイブリダイゼーション緩衝液に懸濁する。変性後、サンプルをBeadChipsに48℃で16時間ハイブリダイズさせる。
次に単一塩基伸長を行い、チップを染色し、Illumina Bead Array Reader上でスキャンする。
次いで画像データセットをIllumina GenomeStudio v2ソフトウェアおよび標準パラメータを使用して分析する。
次いで、生の遺伝子型データは、DNAコピー数を計算するためテキストファイルに出力される。遺伝子型決定チップからのデータを用いてDNAコピー数変化を検出するために、B対立遺伝子頻度(BAF)およびlog R比(LRR)をGenomeStudio v2ソフトウェアを用いて抽出し、PennCNV v1.0.3によって分析し、WGAViewerによって可視化する。SNPアレイ結果上にあるDNAコピー数解析の妥当性は、HCC試料についてqPCRアッセイを行うことによって確認される。
(CD36 DNAコピー数分析)
HCC腫瘍組織サンプル中のCD36のDNAコピー数を測定するため、定量的PCRを実施し、腫瘍サンプルと隣接する非腫瘍組織との間でCD36 DNAコピー数と参照DNAコピー数を比較する。5’末端領域、CD36遺伝子の3’末端領域、および参照配列をそれぞれ増幅するため、3つのプライマーが設計される。CD36配列を増幅するために使用されるプライマーの配列は、以下の通りである。
1.5’末端領域については、5’GGCTCATTCACCAAGGAC(順方向、配列番号1)および5’GACTTAATGAGAAGGAACAAC(逆方向、配列番号2)、
2.3’末端領域については、5’GTTACTACCTTCTCTTCTG(順方向、配列番号3)および5’GTAAAGTGAATCCAGTTATC(逆方向、配列番号4)、
3.参照配列については、5’GAAACTGTTTTCCTTGTCTG(順方向、配列番号5)および5’GCTTTGTACTGGGAGGAG(逆方向、配列番号6)。
定量的なPCRアッセイはすべてABI StepOneリアルタイムPCRシステムでSensiFAST SYBR(登録商標)Hi-ROXキット(バイオライン)を使用して実行される。腫瘍組織と隣接する非腫瘍組織とのΔCTの差を用い、CD36 DNAコピー数を算出する。
(CD36発現の定量分析)
腫瘍(T)組織および非腫瘍(N)組織試料の相対的発現レベルを、逆転写定量PCR(RT‐qPCR)を用いて測定する。100対のHCC試料からの全RNAを、製造業者の説明書に従ってSuperScriptII(Invitrogen)を用いてcDNAに逆転写する。その後、標的遺伝子およびGAPDHに対するqPCR反応は、SensiFAST SYBR(登録商標)Hi-ROXキットを使用して、リアルタイムPCRシステムABI StepOneで三段階的に実行される。
RT−qPCRに使用されるプライマーの配列は以下の通りである。
1.CD36は、5’GAACCTATAACTGGATTCAC(順方向、配列番号7)および5’GTCCCAGTCTCATTAAGC(逆方向、配列番号8)、
2.GAPDHは、5’GTGAAGCAGGCGTCGGAG(順方向、配列番号9)および5’GTTGTCATACCAGGAAATG(逆方向、配列番号10)。
全ての試料を分析し、内部対照遺伝子GAPDHの発現レベルを用いて正規化する。倍率変化に関する相対定量は、腫瘍組織サンプルのΔCTを隣接する非腫瘍組織サンプルのΔCTと比較することによって得られる。
(パブリックドメインデータセットを用いたDNAコピー数解析)
国際がんゲノムコンソーシアム(ICGC)およびがんゲノムアトラス(TCGA)肝がんデータセットのゲノムデータをhttp://xena.ucsc.eduからダウンロードしている。88対のHCC症例の全ゲノム配列決定(WGS)データをNCBIシークエンスリードアーカイブ(SRA)からダウンロードし、受付番号はPRJEB2869である。
WGSデータを用いてCD36とABCG4のDNAコピー数(CN)変化を解析するために、生のリードをIsacc変異型カルラー20によりヒトゲノムhg19に並べ、DNAコピー数をCNVSegにより解析した。
(統計解析)
Mann-WhitneyのU検定を行い、年齢、腫瘍サイズ、腫瘍数、AFP値などの臨床データの意義を算出する。フィッシャーの直接確率検定を用いて、肝硬変比、脂肪肝比、およびDNAコピー数の変化のHCC群間の有意差を決定する。抗CD36抗体治療データについては、両側対応のないStudentのt検定を用いて、異なるHCC群間の大きさ、または抗CD36抗体で治療されたもの間または対照IgGで治療されたもの間の増殖阻害効果を比較する。HCC患者の生存分析はログランク検定により行う。全てのデータは、平均標準偏差および代表的な3つの独立した実験として提示される。Prism(GraphPad)をこれらの分析に使用する。
(実施例1:NBNC−HCC腫瘍に連鎖する第7染色体および第11染色体のDNAコピー数の変化)
(症例選択)
ウイルス性肝炎感染の既往がないHCC症例に関連する遺伝的特徴を同定するため、台湾肝癌ネットワーク(TLCN)を介した250例のHCC症例の肝組織試料を得、これらのHCC組織試料のゲノムプロファイルを調査した。このバイオリポジトリは、臨床的および病理学的情報につながる研究を支援するために広範な同意を得て確立される(Chang、IC et al. Medicine(Baltimore)95、e3284、2016)。
試験症例は、HBV感染歴(HBV−HCC)のある被験者100例(男性50例、女性50例)とHCC感染歴(HCV−HCC)のある被験者100例(男性50例、女性50例)である。残りの50例(男性25例、女性25例)のHCC患者には、HBV感染またはHCV感染の既往歴はない(すなわちNBNC−HCC患者)。これらのHCC症例の臨床的特徴を表1に示す。
Figure 2020536864
肝硬変の発生率は、NBNC−HCC群(8%)では他の2群よりも有意に低い(P<0.0001)。さらにNBNC−HCC群の男性患者についてはHBV−HCC群(19.1%)またはHCV−HCC群(20.9%)のいずれかよりも脂肪肝変化を有する個人の頻度の方が有意に高い(52.4%)。
(ゲノム解析)
ゲノム解析を行うため、TP53変異状態に基づいて115症例を選択した。これらは38人のHBV−HCC、42人のHCV−HCC、および35人のNBNC−HCCで構成された(表1)。一般的なTP53ホットスポット変異についてスクリーニングするため、DNA質量分析を使用する検出パネルを設計する。PCRおよび伸長プライマーは、MassArray Assay Design 3.1ソフトウェア(Sequenom)を使用して設計される。
Figure 2020536864
Infinium CoreExome-24 BeadChip(Illumina)を用いて遺伝子型タイピングを行い、選択した115組のHCCサンプルの遺伝子型を決定する。手順は製造業者の指示に従う。簡潔には、HCC症例のHCC腫瘍組織または非腫瘍組織のいずれかからの約200ngのゲノムDNAを増幅し、断片化し、沈殿させ、ハイブリダイゼーション緩衝液に懸濁する。変性後、サンプルをBeadChipsに48℃で16時間ハイブリダイズさせる。
次に単一塩基伸長を行い、チップを染色し、Illumina Bead Array Reader上でスキャンする。
次いで、画像データセットをIllumina GenomeStudio v2ソフトウェアおよび標準パラメータを使用して分析する。
次いで、生の遺伝子型データはDNAコピー数を計算するために、テキストファイルに出力される。遺伝子型決定チップからのデータを用いてDNAコピー数変化を検出するため、B対立遺伝子頻度(BAF)およびlog R比(LRR)をGenomeStudio v2ソフトウェアを用いて抽出し、PennCNV v1.0.3によって分析し、WGAViewerによって可視化する。SNPアレイ結果上にあるDNAコピー数解析の妥当性は、HCC試料についてqPCRアッセイを行うことによって確認される。
PennCNVソフトウェアを適用することにより、HCC症例の遺伝子におけるDNAコピー変化を検出することができるプローブを同定することができる。異なるカテゴリーのHCC間の対比較を行った結果を図1に示す。DNAコピーの増加を同定するという点では、HBV−HCC患者に関連する13番染色体上のピークとNBNC−HCC患者に関連する7番染色体上のピークがある(図1A)。DNAコピーの消失を同定するという点ではHBV−HCC患者に関連する第2染色体上のピーク、およびNBNC−HCC患者に関連する第11染色体上のピークがある(図1B)。
以上、本試験から、HBV/HCV感染を伴わないHCCはHBV/HCVに関連するHCCと比較して、異なる臨床症状ならびに異なる染色体プロファイルを示すと結論付けられる。
(実施例2:HBV/HCV感染陰性のHCC症例ではCD36増幅とABCG4欠失が高頻度に検出される)
DNAコピー数の変化に関連するピークを本実施例においてさらに調査する。本発明はNBNC−HCCに最も関心があるため、79.1Mbから80.7Mbまで拡大した第7色素の領域を詳細に分析する。
図2Aに示すように、この領域を標的とするプローブはDNAコピー数増加を検出した。全ての陽性例において、増幅は80.3Mb付近の位置で、特異的遺伝子、CD36を含む。CD36はスカベンジャー受容体として機能し、それは複数の機能を有する。それらの1つは、脂肪酸取り込みを容易にすることである。このDNA増幅事象の性質を解析すると、コピーの変化は腫瘍組織サンプルでのみ起こることがわかる。さらにこの事象は、NBNC−HCC個体において最も顕著である(図2B)。
最近の研究により、ATP結合カセット(ABC)輸送体が細胞および全身脂質ホメオスタシスの制御において重要な役割を果たし得ることが報告されている(Baldan、A.ら、Curr Opin Lipidol. 17,227−232,2006)。これらのトランスポーター中、ABCG1およびABCG4はヘテロダイマーを形成でき、このヘテロダイマーは細胞内のコレステロールの輸送を媒介して脂質化リポタンパク質を形成することが示されている(Hegyi、Z et al. PLoS One 11、e0156516、2016)。
11番染色体上のDNA欠失に影響される領域の遺伝子座を検索すると、ABCG4遺伝子領域に及ぶ体細胞欠失(図2C)を同定することができ、NBNC−HCC症例の40%にABCG4の欠失が生じた(図2D)。NBNC−HCC症例におけるこの所見を上記に概説したCD36遺伝子増幅所見と統合すると、ウイルス性肝炎感染の既往がない場合に脂質ホメオスタシス経路を含む遺伝的変化がHCCの病因に何らかの役割を果たしている可能性が高いという仮説を支持している。
(qPCR法)
SNPアレイから得られた遺伝子型データを検証するため、qPCRアッセイを開発してHCC組織サンプル中のCD36のDNAコピー数およびmRNA発現レベルを調べる。
図3Aに示すように、腫瘍組織サンプル中にCD36の3つ以上のコピーを有するHCCサンプル(症例235、243、および247)は、ペアの非腫瘍組織サンプルと比較すると、サンプル中のCD36 mRNA発現レベルが上昇していることが見出される。さらにCD36遺伝子発現は症例235、243および247において、非腫瘍隣接組織(N)に対し、腫瘍組織(T)において上昇し、その各々はCD36遺伝子の3コピー以上を有する。
一方、症例241および242ではCD36コピー数が二倍体ゲノムについて予測されるものから逸脱せず、腫瘍と非腫瘍隣接組織との間のCD36 mRNA発現比は1に近い。
図3に示すように、抗CD36抗体は腫瘍組織中の癌細胞を強く染色できる(図3C)。これは、CD36タンパク質がHCC癌細胞で過剰発現していることを示唆している。しかし、比較してみると、CD36タンパク質は類洞内皮細胞に豊富に発現しているのに対し、良性肝細胞は非常に弱いCD36発現しか示さないことがわかる(図3D)。非腫瘍組織試料中の類洞内皮細胞を、内部陽性対照として用いる。
図4に示したように、CD36遺伝子増幅はこれらのHCCの25%で一貫して検出され、HBV−HCCサンプルよりもNBNC−HCCサンプルでより一般的である。
次に、ICGCおよびTCGAデータベースからの遺伝子型データを調査し、CD36およびABCG4におけるコピー数変化を得る。
図5に示すように、CD36遺伝子増幅およびABCG4遺伝子欠失は、ICGC HCCサンプルのそれぞれ15.6%および10.3%で検出され、TCGA HCCサンプルのそれぞれ15.3%および9.7%で検出される。したがって、公開されているゲノムデータレポジトリーで利用可能な情報は、これら2つの脂質ホメオスタシス遺伝子がHCC発癌において重要な役割を果たすというわれわれの結論を支持する独立した証拠を提供する。
CD36が肝細胞への脂質の輸送に関与していること、およびCD36が腫瘍転移に役割を果たしているとの報告(Nath、A & Chan、CSci Rep.6、18669、2016)を踏まえ、本例ではCD36増幅および/またはABCG4欠失がHCCの臨床像および患者の転帰に及ぼす影響についてさらに検討する。
図6Aに示すように、CD36増幅およびABCG4欠失の両方を有する患者の生存期間中央値は1385日であり、これはCD36増幅のみ(2344日)またはABCG4欠失(2045日)のみを有する患者よりも有意に短い(P<0.0001)。CD36増幅は一貫して高α-フェトプロテインレベルと関連し(表3参照)、CD36増幅とABCG4欠失の両方を含むHCCでは腫瘍サイズが有意に増加していることがわかる(図6B)。
Figure 2020536864
CD36および/またはABCG4に影響を及ぼす遺伝子変化は脂質ホメオスタシス経路に影響を及ぼす。これはHCC発癌において役割を果たす可能性がある。われわれは脂質代謝経路を標的とする薬剤がCD36増幅および/またはABCG4欠失を有するHCC患者を治療するために開発できると予想する。
(実施例3:抗CD36抗体はHCC細胞株の増殖を阻害した)
最近の研究により、CD36が転移細胞のマーカーであることが報告されている。われわれは、肝がん細胞における脂質取り込みを遮断することで抗CD36抗体が細胞増殖を阻害できると仮定する。これに基づき、本実施例では培養肝癌細胞を用いた実験を行った。
(細胞増殖アッセイ)
肝細胞癌細胞株を96ウェルプレート(1ウェル当たり104細胞)に24時間播種し、次いで3%FBSおよび抗CD36抗体(Cayman、CAY188150)を含むDMEM培地で72時間処理する。次いで細胞増殖アッセイをユーザマニュアルに従ってalamarBlue細胞生存試薬(Thermo Fisher Scientific)を使用して実施する。
図7に示すように、72時間40μg/mlの濃度で抗CD36抗体を加えると、HuH-7、HepG2、Hep3Bセルラインの細胞生存能力が低下する(図7A)。HuH-7細胞を用いた場合、抗CD36抗体の効果は濃度に依存し(図7B)、また時間に依存していることが判明した(図7C)。
(アポトーシスアッセイ)
HuH−7細胞をトリプシン処理して200μlの氷冷PBSに再懸濁する。アポトーシスアッセイのため、100μlの細胞懸濁液を微量遠心管にアリコートし、300gで5分間の遠心分離によって収集する。次いで細胞を100μlのアネキシンV FITCアポトーシス検出キット(BD Biosciences)インキュベーション緩衝液に再懸濁し、1μlのアネキシンV+1μlのPIと共に室温で15分間インキュベートする。アポトーシス検出の前に、500μlのインキュベーション緩衝液を細胞に添加する。結果はサンプル当たり5,000事象を記録するように設定されたBD FACSCaliburフローサイトメーターシステム(BD Biosciences)を使用して得られる。
図7Dに示したデータはまた、この効果がおそらくアポトーシス関連機構を介して媒介されることを示唆している。
要約すると、本発明はウイルス性肝炎感染に関して異なる背景履歴を有するHCCの臨床的およびゲノム的特徴を検討した。特に脂質ホメオスタシスに関連する2つの遺伝子であるCD36およびABCG4の変化は、HBV/HBC感染歴を欠くHCCにおいてより頻繁に検出される分化マーカーとして同定されている。著者らの知見はまた、HCC患者におけるCD36増幅および/またはABCG4欠失と生存率の低下、高α‐フェトプロテインレベルおよび腫瘍サイズの増加との関連を開示する。したがってCD36およびABCG4遺伝子の変化は、高リスクの個人におけるHCCの発見および予防のための診断因子を提供できる可能性がある。

Claims (11)

  1. ヒト以外の被験体におけるB型/C型肝炎ウイルス感染陰性の肝細胞癌の予防または治療のため、前記被験体に、脂質ホメオスタシス関連遺伝子の遺伝的変化を制御するための調節剤の治療有効量を投与することを含む、投与方法。
  2. 前記遺伝的変化がCD36増幅を含む、請求項1に記載の投与方法。
  3. 前記遺伝的変化がABCG4欠失を含む、請求項1に記載の投与方法。
  4. 前記遺伝的変化がCD36増幅およびABCG4欠失を含む、請求項1に記載の投与方法。
  5. 脂質ホメオスタシス関連遺伝子の遺伝的変化を阻害または促進するための治療有効量の調節剤を含む、被験体におけるB型/C型肝炎ウイルス感染陰性の肝細胞癌を予防または治療するための組成物。
  6. 前記調節剤がCD36の過剰発現を抑制するための薬剤である、請求項5に記載の組成物。
  7. 前記調節剤が前記肝細胞癌の癌細胞における脂質取り込みをブロックする薬剤である、請求項5または6に記載の組成物。
  8. 前記調節剤が抗CD36抗体である、請求項7に記載の組成物。
  9. 前記調節剤がABCG4発現を誘導する薬剤である、請求項5に記載の組成物。
  10. 前記調節剤が前記肝細胞癌の癌細胞内のコレステロール輸送を促進する薬剤である、請求項5または9に記載の組成物。
  11. 前記調節剤がABCG4タンパク質である、請求項10に記載の組成物。
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