JP2020533986A - 細胞を培養および増殖させるための組成物および方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2017年9月15日に提出された米国特許仮出願第62/559,391号および2018年8月31日に提出された米国特許仮出願第62/725,376号の利益を主張する。上述の出願の内容全体が、参照により本明細書に組み込まれる。
別段定義されない限り、本明細書で使用される全ての技術用語および科学用語は、(例えば、細胞培養、免疫学、分子遺伝学、および生化学の)当業者によって一般的に理解されるものと同じ意味を有するものとする。
(a)免疫グロブリンの様々なクラスまたはサブクラスのいずれか(例えば、任意の動物、例えば、従来使用される動物のいずれか、例えば、ヒツジ、ウサギ、ヤギ、マウス、ラクダ類、または卵黄由来のIgG、IgA、IgM、IgD、またはIgE)、
(b)モノクローナルまたはポリクローナル抗体、
(c)モノクローナルであるかポリクローナルであるかに関わらず、無傷抗体または抗体の断片(この断片は、抗体の結合領域を含有するもの、例えば、Fc部分を欠く断片(例えば、Fab、Fab‘、F(ab’)2、scFv、VHH、または他の単一ドメイン抗体)、無傷抗体内の重鎖成分を接続するジスルフィド結合の還元開裂によって得られるいわゆる「半分子」断片である。Fvは、2つの鎖として発現した、軽鎖の可変領域および重鎖の可変領域を含有する断片と定義され得る)、
(d)モノクローナル抗体、抗体の断片、「ヒト化抗体」、キメラ抗体、または合成的に作製もしくは変更された抗体様構造体を含む、組み換えDNAまたは他の合成技術によって産生または修飾された抗体が含まれる。
一態様では、シクロデキストリン、および少なくとも1つの脂質(例えば、約または少なくとも約1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、15、または20個の脂質)を含む、(例えば、T細胞のための)細胞培養培地が本明細書で提供される。実施形態では、細胞培養培地は、(1)シクロデキストリン、および(2)少なくとも2つの脂質、少なくとも3つの脂質、少なくとも4つの脂質、少なくとも5つの脂質、少なくとも6つの脂質、少なくとも7つの脂質、少なくとも8つ脂質、少なくとも9つの脂質、少なくとも10個の脂質、少なくとも15個の脂質、または少なくとも20個の脂質(例えば、約3〜約20個、約4〜約20個、約5〜約20個、約6〜約20個、約7〜約20個、約3〜約15個、約3〜約12個、約3〜約10個、約3〜約8個、約5〜約20個、約5〜約15個、約5〜約12個、約5〜約9個等の脂肪酸))を含む。別の態様では、細胞培養培地は、シクロデキストリン、少なくとも1つの脂質(例えば、約もしくは少なくとも約1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、15、もしくは20個の脂質)、および/または2−デオキシ−D−グルコース(2−DG)を含む。
本発明はまた、異なる化合物の組成物、ならびにそのような組成物を調製および/または使用するための方法を含む。これらの異なる化合物は、(1)培養培地補助剤としてまたはその中に存在しても、(2)培養培地として存在してもよい。さらに、そのような組み合わせは、キットに含まれてもよい。本発明の組成物は、(1)コレステロールおよび/もしくはその誘導体、(2)1つ以上のシクロデキストリン、(3)1つ以上の脂肪酸、(4)2−DG、ならびに/または(5)1つの他の化合物(例えば、プロスタグランジン、エトモキシル、ロイコトリエン、スタチン等)を含み得る。したがって、本発明の組成物は、コレステロール、1つ以上の脂肪酸、および2−DGは含有するが、シクロデキストリンは含有しない、培養培地を含む。本発明の組成物はまた、コレステロール、1つ以上の脂肪酸、およびシクロデキストリンは含有するが、2−DGは含有しない、培養培地も含む。さらに、本発明の組成物はまた、コレステロール、1つ以上の脂肪酸、シクロデキストリン、および2−DGを含有する、培養培地も含む。
本明細書には、所望のCD4+:CD8+T細胞比を含有するT細胞集団を得るための組成物および方法もまた含まれる。例えば、本主題は、T細胞集団内のあるT細胞亜集団(例えば、CD8+T細胞)のメンバーを優先的に増殖させるための方法を提供する。そのような方法は、(CD8+T細胞、および例えば、CD4+T細胞を含む)T細胞の混合集団を、2−DGと接触させることを含む。
一態様では、疾患の治療を必要とする対象において疾患を治療する方法であって、その実施形態を含む、本明細書で提供される方法によって得られたT細胞を、対象に投与することを含む、方法が提供される。CD8+T細胞(例えば、増加したCD8+T細胞の割合を含むT細胞の増殖集団、またはそのような増殖集団から単離したCD8+T細胞)の用途の非限定的な例には、免疫抑制された移植患者の治療のための、サイトメガロウイルス(CMV)感染症およびエプスタイン・バーウイルス(EBV)感染症等のためのウイルス特異的T細胞に基づく免疫療法が含まれる。例えば、その内容全体が、参照により本明細書に組み込まれる、Heslop et al.(2010)Blood115(5):925−35を参照されたい。追加の非限定的な例には、がんおよび感染性疾患の治療のための、CAR−Tおよび他の様式のウイルス特異的T細胞の操作の使用が含まれる。例えば、それら各々の内容全体が、参照により本明細書に組み込まれる、Pule et al.(2008)Nature Medicine115(5):925−35およびGhazi et al.(2013)J Immunother35(2):159−168を参照されたい。CD4+T細胞(例えば、増加したCD4+T細胞の割合を含むT細胞の増殖集団、またはそのような増殖集団から単離したCD4+T細胞)の用途の非限定的な例には、HIV+患者の治療、および増殖させたCD4+Tヘルパーサブセット(例えば、TH1、TH2、TH3、TH17、TH9、またはTFH)、および自己免疫を治療するための制御性T細胞(Treg、CD4+CD25+FoxP3+)が含まれる。例えば、それら各々の内容全体が、参照により本明細書に組み込まれる、Tebas et al.(2014)N Engl J Med370(10):901−10およびRiley et al.(2009)Immunity30(5):656−665を参照されたい。
本明細書の他の箇所に示されるように、シクロデキストリンおよび1つ以上の脂質を含有する培養培地中で細胞(例えば、ヒト細胞、ヒト二倍体細胞、霊長類二倍体細胞、ウイルス産生に有用な細胞、T細胞等)を培養するための組成物および方法が本明細書で提供される。そのような細胞を使用して、タンパク質、核酸分子、ならびにウイルスおよびVLP等の組み立て材料等の産物を産生することができる。
一態様では、T細胞培地の補充のための系であって、(i)2つ以上の異なるシクロデキストリンであって、各シクロデキストリンが、別個の容器内にある、シクロデキストリンと、(ii)2つ以上の異なる脂質(例えば、脂肪酸)であって、各脂質が、別個の容器内にある、脂肪酸とを含む、系が提供される。別の態様では、T細胞培地の補充のための系であって、(i)2つ以上の異なるシクロデキストリンの組み合わせであって、各シクロデキストリンが、別個の容器内にある、シクロデキストリン、および2つ以上の異なる脂質(例えば、脂肪酸)であって、各脂質が、別個の容器内にある、脂肪酸と、(ii)2−DGとを含む、系が提供される。さらに別の態様では、2−DGを含む、T細胞培地の補充のための系が提供される。実施形態では、2つ以上の異なるシクロデキストリンは、本明細書に開示されるシクロデキストリンの任意の組み合わせを含む。実施形態では、2つ以上の異なる脂質は、本明細書に開示される脂質(例えば、脂肪酸)の任意の組み合わせを含む。
実施形態では、T細胞の混合集団の出発源は、対象から単離され得る血液(例えば、循環血液)である。実施形態では、循環血液は、1単位以上の血液から、またはアフェレーシスもしくは白血球アフェレーシスから得ることができる。実施形態では、アフェレーシス産物は、典型的には、T細胞、単球、顆粒球、B細胞、他の有核白血球細胞、赤血球細胞、および血小板を含む、リンパ球を含有する。T細胞は、血液単核細胞、骨髄、胸腺、組織バイオプシー、腫瘍、リンパ節組織、胃腸管関連リンパ組織、粘膜関連リンパ組織、脾臓組織、または任意の他のリンパ組織、および腫瘍を含む(がこれらに限定されない)いくつかの源から得ることができる。T細胞は、T細胞株および自己または同種の源から得ることができる。T細胞はまた、異種の源、例えば、マウス、ラット、非ヒト霊長類、およびブタからも得ることができる。
材料および方法
CD補助剤配合物:各1LのCD補助剤について、0.5Lの製造等級の水を4度に予冷し、さらに0.5Lを80度以上まで加熱した。合成コレステロールならびに粉末脂肪酸(該当する場合、ミリスチン酸、パルミチン酸、およびステアリン酸)を熱水に添加し、最大10分間混合した。混合している間に、36gのメチル−β−シクロデキストリンを緩徐に添加し、各添加が、タンクの周囲に触れることなく、表面上でわずかに層になるようにした。タンクに覆いをして、最低60分間高温を維持した。54gのメチル−β−シクロデキストリンを以前に述べたように緩徐に添加し、覆いをし、最低30分間混合した。気泡が消散するまで、混合速度を低減させた。予冷水を使用して、QSおよび総産生体積(1L)をもたらし、温度が25度未満に達するまで混合した。残りの脂質(該当する場合、アラキドン酸、リノレン酸、オレイン酸、およびパルミトレイン酸)を添加し、覆いをし、最低90分間混合した。各CD補助剤を、1LのSTERICUP(登録商標)フィルターユニット(Millipore、カタログ番号SCVPU11RE)を使用してフィルター滅菌し、4℃で保管した。
表1〜3は、細胞、例えば、T細胞、二倍体細胞内で配合および試験した3つのシクロデキストリンベースの補助剤をまとめたものである。簡潔には、コレステロールを熱水中に可溶化し、その後メチル−β−シクロデキストリンおよび脂肪酸を緩徐に添加した。外観が透明になるまで溶液を監視し、滅菌濾過した。CD補助剤1(表1)の配合は、CD補助剤2およびCD補助剤3(それぞれ表2および3)で同じ脂肪酸:コレステロールのモル比を維持しながら変更した。CD補助剤2の配合物は、脂質濃縮物中の脂肪酸濃度(g/L)に基づいている一方で、CD補助剤3の配合は、ウシ血清アルブミン中に典型的に見出される脂肪酸濃度(g/L)に基づいている。既知組成の脂質濃縮物(Thermo Fisher Scientific、カタログ番号11905−031)、略称「脂質濃縮物」。
脂質は、無血清培地中で成長させたT細胞の酸化的リン酸化(OXPHOS)のエネルギー源であるようであり、最適なT細胞の増殖に必要とされる。DYNABEADS(登録商標)UNTOUCHED(商標)ヒトT細胞キットで、3人の正常なドナー由来の初代ヒトT細胞を、PBMCから負に単離した。T細胞(播種密度1×106vc/mL)を、1個のT細胞当たり3個のビーズの割合で、DYNABEADS(登録商標)ヒトT増殖剤CD3/CD28を用いて活性化した。細胞を、4つの脂質補助剤のうちの1つを補充した、または対照として脂質補充を有しない、コレステロールおよび遊離脂肪酸を含まない無血清培地中で培養した。5、7、10、および12日目にT細胞をBeckman−Coulter Vi−CELL XR分析機で計数し、3、5、および7日目に5×105vc/mLの密度まで、ならびに10日目に1×106vc/mLの密度まで供給した。T細胞の増殖を、累積集団倍加または経時的な累積生存T細胞のいずれかとして表した。図1〜4の結果は、無血清培地が、最適なT細胞増殖をもたらすのに定義された濃度での脂質補充を必要とすることを実証する。CD補助剤1、2、および3(1:500)は、脂質濃縮物(1:100)、他の濃度のCD補助剤1、2、および3、ならびに脂質補充なしと比較して、最適なT細胞の増殖を提供する。結果は、少なくとも3つの独立した実験を代表するものである。
CD補助剤1を含有する無血清培地中でのCD8+T細胞サブセットの優先的な増殖を、分析した。DYNABEADS(登録商標)UNTOUCHED(商標)ヒトT細胞キットで、3人の正常なドナー由来の初代ヒトT細胞を、PBMCから負に単離した。T細胞(播種密度1×106vc/mL)を、1個のT細胞当たり3個のビーズの割合で、DYNABEADS(登録商標)ヒトT増殖剤CD3/CD28を用いて活性化した。細胞を、4つの脂質補助剤のうちの1つ、または対照として5%のヒトAB血清を補充したコレステロールおよび遊離脂肪酸を含まない無血清培地中で培養した。5、7、および10日にT細胞をBeckman−Coulter Vi−CELL XR分析機で計数し、3、5、および7日目に5×105vc/mLの密度まで供給した。T細胞の増殖を、累積集団倍加または経時的な累積生存T細胞のいずれかとして表した(図1〜6)。各条件からの2×106個の細胞を、CD3、CD4、CD8、CCR7、およびCD62Lに対する抗体で染色した。連続ゲーティングを使用して、T細胞を、セントラルメモリー(TCM:CCR7+/CD62L+)、中間体(CCR7−/CD62L+)、およびエフェクターメモリー(TEM:CCR7−/CD62L−)として特性評価した(図7)。フローサイトメトリー分析を、Beckman−Coulter Gallios分析機で実行した。図8の結果は、CD補助剤2、3、および5%のヒトAB血清を含有する培地中での頻度と比較した場合の、CD補助剤1を含有する無血清培地中でのCD8+T細胞の優先的な増殖を実証する。結果は、少なくとも3つの独立した実験を代表するものである。
DYNABEADS(登録商標)UNTOUCHED(商標)ヒトT細胞キットで、3人の正常なドナー由来の初代ヒトT細胞を、PBMCから負に単離した。T細胞(播種密度1×106vc/mL)を、1個のT細胞当たり3個のビーズの割合で、DYNABEADS(登録商標)ヒトT増殖剤CD3/CD28を用いて活性化した。細胞を、4つの脂質補助剤のうちの1つ、または対照として5%のヒトAB血清を補充したコレステロールおよび遊離脂肪酸を含まない無血清培地中で培養した。5、7、および10日にT細胞をBeckman−Coulter Vi−CELL XR分析機で計数し、3、5、および7日目に5×105vc/mLの密度まで供給した。T細胞の増殖を、累積集団倍加または経時的な累積生存T細胞のいずれかとして表した(図1〜6)。各条件からの2×106個の細胞を、CD3、CD4、CD8、CCR7、およびCD62Lに対する抗体で染色した。連続ゲーティングを使用して、T細胞を、セントラルメモリー(TCM:CCR7+/CD62L+)、中間体(CCR7−/CD62L+)、およびエフェクターメモリー(TEM:CCR7−/CD62L−)として特性評価した(図7)。フローサイトメトリー分析を、Beckman−Coulter Gallios分析機で実行した。図9は、CD補助剤1、2、および3対5%のヒトAB血清を含有する無血清培地中で増殖させたCD4+T細胞の分化状態を描写する。図10は、CD補助剤1、2、および3対5%のヒトAB血清を含有する無血清培地中で増殖させたCD8+T細胞の分化状態を描写する。結果は、対照培地に対して、採取時のより高い頻度のTCMおよび中間体サブセットによって定義される、CD補助剤1、2、および3を含有する無血清培地中で増殖させたT細胞のより好ましい表現型を実証する。結果は、少なくとも3つの独立した実験を代表するものである。
DYNABEADS(登録商標)ヒトT増殖剤CD3/CD28で増殖させたT細胞は、典型的には、主要なTh1様エフェクター機能を示す。IFN−γは、Th1免疫応答の重要なメディエーターである。Th1サイトカインプロファイルを、CD補助剤1を含有する無血清培地対血清含有培地中で成長させたT細胞間で比較した。DYNABEADS(登録商標)UNTOUCHED(商標)ヒトT細胞キットを用いて、正常なドナー由来の初代ヒトT細胞を、PBMCから負に単離した。T細胞(播種密度1×106vc/mL)を、1個のT細胞当たり3個のビーズの割合で、DYNABEADS(登録商標)ヒトT増殖剤CD3/CD28を用いて活性化し、CD補助剤1(1:500)を補充したコレステロールおよび遊離脂肪酸を含まない無血清培地中、または5%のヒトAB血清を補充した対照培地X−VIVO(商標)15(Lonza、カタログ番号BE02−054Q)中で培養した。5および7日目にT細胞をBeckman−Coulter Vi−CELL XR分析機で計数し、3、5、および7日目に5×105vc/mLの密度まで供給した。11日目にDYNABEADS(登録商標)を培養物から除去し、細胞を回転させて、条件培地を除去し、新鮮な培地中に一晩静置した。100万個のT細胞を、1:1のビーズ対細胞比でDYNABEADS(登録商標)CD3で再刺激し、24時間インキュベートした。Luminex(商標)用Invitrogen Cytokine Human Magnetic35−Plex Panelによる分析のために、上清を収集し、処理した。図11および表11に描写されるように、結果は、CD補助剤1を含有する無血清培地中で増殖させたT細胞が、対照血清含有培地と比較した場合に、IFN−γ産生の障害なく、同様のサイトカイン産生プロファイルを示すことを示す。結果は、2つの独立した実験を代表するものである。
材料/方法:
2−デオキシ−D−グルコースの調製:2−デオキシ−D−グルコース(2−DG、164.16g/mol)は、(Acros Organics、カタログ番号111980−250)によって製造された。2−DG溶液を、100mMのストック濃度で滅菌濾過水中に調製し、その後各チューブ内1mLの最終体積でEppendorfチューブ内にアリコートした。
細胞の成長および生存率:T細胞の増殖を、累積集団倍加として表す。結果は、少なくとも3つの独立した実験を代表するものである。表12、14〜15、18〜19、22〜23はそれぞれ、図12、15〜16、19〜20、24〜25に表示されるグラフ結果を定量化する。図12の結果は、2−DGの補充が、T細胞成長に影響を与えないことを実証する。より低い濃度の2−DGは、無血清培地中のより高い濃度と比較して、(累積集団倍加として表される)最適以下のT細胞増殖を提供する。4mMの2−DGは、約6倍の集団倍加まで増殖した。実施形態では、2−DGの濃度は、4mM以下である。実施形態では、2−DGの濃度は、0.5mM以下である。実施形態では、2−DGの濃度は、0.25mM以下である。
T細胞を12日間増殖させ、(登録商標)ヒトT増殖剤CD3/CD28を用いて再刺激した。再刺激時のサイトカイン産生を、LUMINEX(商標)用Invitrogen Cytokine Human Magnetic35−Plex Panelを用いて評価した。35プレックスのアッセイのうち15個のサイトカインが示された。全ての値を、5%のヒトAB血清を補充したX−VIVO(商標)15培地に対して正規化した。結果は、サイトカイン産生に変化が存在しないことを実証し、これは、2−DGが、マルチプレックスサイトカインアッセイによって測定して、細胞の機能を変化させないことを意味する(図27)。
材料/方法:
2−デオキシ−D−グルコースの調製:2−デオキシ−D−グルコース(2−DG、164.16g/mol)は、Acros Organics(Thermo Fisher Scientificの一部)によって製造された。2−DG溶液を、100mMのストック濃度で滅菌濾過水中に調製し、その後各チューブ内1mLの最終体積でEppendorfチューブ内にアリコートした。
細胞の成長および生存率:T細胞の増殖を、累積集団倍加として表す。結果は、少なくとも3つの独立した実験を代表するものである。表25、27〜28、31、33〜34、37〜38、および40〜41はそれぞれ、図28、31〜32、35、38〜39、43〜44、および46〜47に表示されるグラフ結果を定量化する。図28は、バルクT細胞内での2−DG(0、1mM、2mM、および4mM)の用量応答を例示する。結果は、2−DGの補充が、T細胞成長に影響を与えないことを実証する。図31および32は、ナイーブおよび非ナイーブT細胞の成長曲線を実証する。細胞増殖は、累積集団倍加として表される。細胞は、4mMの2−DGありまたはなしで、5%のヒト血清とともに12日間増殖させた。2−DGの補充は、ナイーブT細胞内での成長には影響を与えなかったが、非ナイーブT細胞にはわずかな効果が存在した。
図29は、分化表現型決定のゲーティング戦略を描写する。増殖前の0日目に、CD8+T細胞の頻度は、27%で開始した。増殖後の10日目に、2−DGを添加せずに、CD8+T細胞集団は、38%まで成長した。しかしながら、4mMの2−DGでは、CD8+T細胞の数は、63%まで増加した。
T細胞を12日間増殖させ、(登録商標)ヒトT増殖剤CD3/CD28を用いて再刺激した。再刺激時のサイトカイン産生を、LUMINEX(商標)用Invitrogen Cytokine Human Magnetic35−Plex Panelを用いて評価した。結果は、サイトカイン産生に変化が存在しないことを実証し、これは、示されるように、2−DGが、マルチプレックスサイトカインアッセイによって測定して、細胞の機能を変化させないことを意味する(データ示さず)。
背景
ウシ胎仔血清によって伝統的に供給される脂質もまた、無血清培地中で成長する二倍体細胞および最適な二倍体細胞増殖に必要であるようである。
下記のCDシクロデキストリン−脂質補助剤を調製するための組成物および方法論は、実施例1:CD補助剤配合物の下に上記のものと同じである。二倍体成長補助剤(Thermo Fisher Scientific、カタログ番号A39695SA)を、下記のように、CDシクロデキストリン−脂質補助剤ありまたはなしで調製した。
MRC−5 pd19細胞(ECACC、カタログ番号05072101)を、CD脂質補助剤ありまたはなしで、6mMのL−グルタミンおよび1%の二倍体成長補助剤を含有する二倍体基本SFM(Thermo Fisher Scientific、カタログ番号No.A39693DK)中に解凍した。対照のために、MRC−5 pd19細胞を、10%のウシ胎児血清(Thermo Fisher Scientific、カタログ番号10082)、4mMのL−グルタミン、および2g/LのD−グルコースを補充したMEMα培地(Thermo Fisher Scientific、カタログ番号12571−063)中に解凍した。細胞を、ダルベッコリン酸緩衝食塩水(Thermo Fisher Scientific、カタログ番号14190−136)で洗浄し、トリプシン−EDTA(0.05%)(Thermo Fisher Scientific、カタログ番号25300−054)で解離させ、定義された2×トリプシン阻害剤(Thermo Fisher Scientific、カタログ番号R−007−100)で反応停止させ、3〜4日ごとに継代した。細胞計数は、Vi−CELL XR分析機(Beckman Coulter、Indianapolis,IN)を使用して行い、通気Tフラスコ75cm2(Corning、カタログ番号353136)内での3日間の培養のために、25mLの成長培地中に0.6×106VCDの密度で播種したか、または通気Tフラスコ75cm2(Corning、カタログ番号353136)内での4日間の培養のために、25mLの成長培地中に0.3×106VCDの密度で播種した。で播種した。
ウイルス産生(例えば、水痘帯状疱疹ウイルス産生)のために、例示的な二倍体細胞、例えば、MRC−5を、6mMのL−グルタミンおよび1%の二倍体産生(Thermo Fisher Scientific、カタログ番号A39696SA)を含有する二倍体基本SFM(Thermo Fisher Scientific、カタログ番号A39693DK)中、または対照のために、10%のウシ胎児血清(Thermo Fisher Scientific、カタログ番号10082)、4mMのL−グルタミン、および2g/LのD−グルコースを補充したMEMα培地中のいずれかで、40,000個の細胞/cm2で播種した。24時間後、培地を、6mMのL−グルタミンを含有する二倍体SFM、または2%のFBS、4mMのL−グルタミン、および2g/LのD−グルコースを有するMEMαとそれぞれ交換した。細胞を、水痘帯状疱疹ウイルス(ATCC(登録商標)VR−1367(商標))に0.01のMOIで感染させ、2日後に採取した。ウイルス力価を、TCID50アッセイによって決定した。
細胞成長および生存率測定
二倍体生細胞密度(VCD)は、1ミリリットルあたりの生存細胞として表され、二倍体成長SFM対血清含有培地対照(MEMα+10%のFBS)内の各細胞株の対照%として示され、これらの結果は、少なくとも3つの独立した実験を代表するものである。
二倍体および非二倍体細胞を含む、ワクチン産生用の細胞を培養するための例示的なキットは、キット1および2に示される以下の成分を含有し得る。
1.これら全てが参照により本明細書に組み込まれる、以下の参考文献に記載の方法および/またはプロトコルを使用する、ウイルス/ワクチン産生用。
a)Mirchamsy et al.,Arch.Inst.Razi,(1979)31,97−102.Production of Measles and Rubella virus vaccines、
b)Rabies Vaccine Imovax(登録商標)Rabies by Sanofi Pasteur,April(2013)v0.2 https://www.fda.gov/downloads/biologicsbloodvaccines/vaccines/approvedproducts/ucm133484.pdf。
c)Liu et al.,“High Genetic Stability of Dengue Virus Propagated in MRC−5Cells as Compared to the Virus Propagated in Vero Cells,”3:e1810(2008)。
本発明を、発明を実施するための形態と併せて記載している一方で、前述の記載は、例示を意図し、添付の特許請求の範囲によって定義される本発明の範囲を制限するものではない。他の態様、利点、および修正は、以下の特許請求の範囲の範囲内である。
(a)リノール酸、リノレン酸、アラキドン酸、ミリスチン酸、オレイン酸、パルミチン酸、パルミトレイン酸、もしくはステアリン酸のいずれか1つ、
(b)リノール酸、リノレン酸、アラキドン酸、ミリスチン酸、オレイン酸、パルミチン酸、パルミトレイン酸、およびステアリン酸のうちの2、3、4、5、6、もしくは7つ、
(c)リノール酸、リノレン酸、アラキドン酸、ミリスチン酸、オレイン酸、パルミチン酸、パルミトレイン酸、およびステアリン酸、
(d)飽和脂肪酸であって、酪酸、カプリル酸、カプリン酸、ラウリン酸、ミリスチン酸、パルミチン酸、ステアリン酸、アラキジン酸、ベヘン酸、リグノセリン酸、もしくはセロチン酸である、飽和脂肪酸、
(e)一価不飽和脂肪酸であって、パルミトレイン酸、オレイン酸、エイコセン酸、エルカ酸、もしくはネルボン酸である、一価不飽和脂肪酸、
(f)多価不飽和脂肪酸であって、ヘキサデカトリエン酸、リノール酸、α−リノレン酸、γ−リノレン酸、ステアリドン酸、エイコサジエン酸、エイコサトリエン酸、ジホモ−γ−リノレン酸、ミード酸、アラキドン酸、エイコサテトラエン酸、エイコサペンタエン酸、ヘネイコサペンタエン酸、ドコサジエン酸、アドレン酸、ドコサペンタエン酸、ドコサペンタエン酸、ドコサヘキサエン酸、テトラコサテトラエン酸、テトラコサペンタエン酸、テトラコサペンタエン酸、もしくはテトラコサヘキサエン酸である、多価不飽和脂肪酸、
(g)オメガ−3脂肪酸であって、ヘキサデカトリエン酸、α−リノレン酸、ステアリドン酸、エイコサトリエン酸、エイコサテトラエン酸、エイコサペンタエン酸、ヘネイコサペンタエン酸、ドコサペンタエン酸、ドコサヘキサエン酸、テトラコサペンタエン酸、もしくはテトラコサヘキサエン酸である、オメガ−3脂肪酸、
(h)オメガ−6脂肪酸であって、リノール酸、γリノレン酸、エイコサジエン酸、ジホモ−γ−リノレン酸、アラキドン酸、ドコサジエン酸、アドレン酸、ドコサペンタエン酸、テトラコサテトラエン酸、もしくはテトラコサペンタエン酸である、オメガ−6脂肪酸、または
(i)オメガ−9脂肪酸であって、パルミトレイン酸、オレイン酸、エイコセン酸、エルカ酸、ネルボン酸、またはミード酸である、オメガ−9脂肪酸である、項1〜11のいずれかに記載の組み合わせ。
(a)リノレン酸、アラキドン酸、ミリスチン酸、オレイン酸、パルミチン酸、パルミトレイン酸、もしくはステアリン酸のいずれか1つ、
(b)リノレン酸、アラキドン酸、ミリスチン酸、オレイン酸、パルミチン酸、パルミトレイン酸、およびステアリン酸のうちの2、3、4、5、6、もしくは7つ、
(c)リノレン酸、アラキドン酸、ミリスチン酸、オレイン酸、パルミチン酸、パルミトレイン酸、およびステアリン酸、
(d)飽和脂肪酸であって、酪酸、カプリル酸、カプリン酸、ラウリン酸、ミリスチン酸、パルミチン酸、ステアリン酸、アラキジン酸、ベヘン酸、リグノセリン酸、もしくはセロチン酸である、飽和脂肪酸、
(e)一価不飽和脂肪酸であって、パルミトレイン酸、オレイン酸、エイコセン酸、エルカ酸、もしくはネルボン酸である、一価不飽和脂肪酸、
(f)多価不飽和脂肪酸であって、ヘキサデカトリエン酸、リノール酸、α−リノレン酸、γ−リノレン酸、ステアリドン酸、エイコサジエン酸、エイコサトリエン酸、ジホモ−γ−リノレン酸、ミード酸、エイコサテトラエン酸、エイコサペンタエン酸、ヘネイコサペンタエン酸、ドコサジエン酸、アドレン酸、ドコサペンタエン酸、ドコサペンタエン酸、ドコサヘキサエン酸、テトラコサテトラエン酸、テトラコサペンタエン酸、テトラコサペンタエン酸、もしくはテトラコサヘキサエン酸である、多価不飽和脂肪酸、
(g)オメガ−3脂肪酸であって、ヘキサデカトリエン酸、α−リノレン酸、ステアリドン酸、エイコサトリエン酸、エイコサテトラエン酸、エイコサペンタエン酸、ヘネイコサペンタエン酸、ドコサペンタエン酸、ドコサヘキサエン酸、テトラコサペンタエン酸、もしくはテトラコサヘキサエン酸である、オメガ−3脂肪酸、
(h)オメガ−6脂肪酸であって、リノール酸、アラキドン酸、γリノレン酸、エイコサジエン酸、ジホモ−γ−リノレン酸、アラキドン酸、ドコサジエン酸、アドレン酸、ドコサペンタエン酸、テトラコサテトラエン酸、もしくはテトラコサペンタエン酸である、オメガ−6脂肪酸、または
(i)オメガ−9脂肪酸であって、パルミトレイン酸、オレイン酸、エイコセン酸、エルカ酸、ネルボン酸、またはミード酸である、オメガ−9脂肪酸である、項42〜52のいずれかに記載の組み合わせ。
(i)シクロデキストリン、および
(ii)脂肪酸に曝露することを含み、
2つ以上の脂肪酸のモル比が、T細胞亜集団のメンバーを誘導して、他のT細胞亜集団のメンバーに対して優先的に増殖するように調整される、方法が提供される。
(i)培地または補助剤が、細胞の成長、細胞の生存細胞密度、ウイルスに感染した細胞のウイルス力価、またはそれらの組み合わせを増加させ、かつ/あるいは
(ii)二倍体細胞が、無血清条件下で、ワクチン、ウイルス、ウイルス粒子、ウイルスタンパク質もしくは核酸、またはそれらのウイルス断片を産生することができ、かつ/あるいは
(iii)細胞が、ウイルスに感染している、方法。
(i)ウイルスが、動物ウイルス、植物ウイルス、もしくはバクテリオファージであり、かつ/または
(ii)ウイルスが、水痘帯状疱疹ウイルス(VZV)、風疹、麻疹、流行性耳下腺炎、A型肝炎、アデノウイルス、ポリオ、ロタウイルス、痘瘡、水痘、黄熱、パピローマウイルス、エボラウイルス、HIV、狂犬病もしくは水疱性口内炎ウイルス(VSV)、およびデングウイルスからなる群から選択され、かつ/または
(iii)ウイルス粒子が、パルボウイルス科、レトロウイルス科、フラビウイルス科、もしくはバクテリオファージに由来する、方法。
(i)細胞の集団、(ii)シクロデキストリンおよび少なくとも1つの脂質を含む無血清細胞培養培地、または
(i)細胞の集団、(ii)無血清基本細胞培地、ならびに(iii)シクロデキストリンおよび少なくとも1つの脂質を含む補助剤、または
(i)細胞の集団、(ii)無血清基本細胞培地、ならびに(iii)好適な希釈度の表1および/もしくは表2に記載の補助剤を含む、組み合わせ。
(i)細胞が、動物細胞であるか、または
(ii)動物細胞が、ウシ細胞、ネコ細胞、昆虫細胞、鳥類細胞、霊長類細胞、もしくはヒト細胞であるか、または
(iii)動物細胞が、二倍体細胞であるか、または
(iv)細胞が、MRC−5、MRC−5 RCB、MRC−9、WI−38、2BS、Walvax−2、IMR−90、IMR−91、KMB−17、HUT系列細胞、チャン肝臓、U937、MDCK、CD4発現T細胞、CD8発現T細胞、VERO、および前述の細胞の任意のクローンからなる群から選択される、組み合わせ。
(i)細胞の集団、(ii)無血清基本細胞培地、ならびに(iii)シクロデキストリンおよび少なくとも1つの脂質を含む補助剤、または
(i)細胞の集団、(ii)無血清基本細胞培地、ならびに(iii)好適な希釈度の表1および/もしくは表2に記載の補助剤を含む、組み合わせを含む、細胞または細胞株を培養するためのキット。
(i)細胞が、動物細胞であるか、または
(ii)動物細胞が、ウシ細胞、イヌ細胞、ネコ細胞、昆虫細胞、鳥類細胞、霊長類細胞、もしくはヒト細胞であるか、または
(iii)動物細胞が、二倍体細胞であるか、または
(iv)細胞が、MRC−5、MRC−5 RCB、MRC−9、WI−38、2BS、Walvax−2、IMR−90、IMR−91、KMB−17、HUT系列細胞、チャン肝臓、U937、MDCK、CD4発現T細胞、CD8発現T細胞、VERO、および前述の細胞の任意のクローンからなる群から選択される、キット。
Claims (94)
- リノール酸、少なくとも1つの他のオメガ−6脂肪酸、コレステロール、およびシクロデキストリンを含む、無血清細胞培養培地組成物。
- リノール酸、少なくとも1つの他のオメガ−6脂肪酸、コレステロール、およびシクロデキストリンを含む、無血清細胞培養補助剤組成物。
- 前記シクロデキストリンが、メチル化シクロデキストリンである、請求項1に記載の無血清細胞培養培地組成物または請求項2に記載の無血清細胞培養補助剤組成物。
- 前記メチル化シクロデキストリンが、約50μM〜約200μMのレベルで存在する、請求項3に記載の無血清細胞培養培地組成物または無血清細胞培養補助剤組成物。
- 前記コレステロールが、合成コレステロールであり、かつ/または前記コレステロールが、約5μM〜約30μMのレベルで存在する、請求項1〜4のいずれかに記載の無血清細胞培養培地組成物または請求項1〜4のいずれかに記載の無血清細胞培養補助剤組成物。
- 前記少なくとも1つの他のオメガ−6脂肪酸が、多価不飽和オメガ−6脂肪酸である、請求項1〜5のいずれかに記載の無血清細胞培養培地組成物または請求項1〜5のいずれかに記載の無血清細胞培養補助剤組成物。
- 前記少なくとも1つの他のオメガ−6脂肪酸が、アラキドン酸である、請求項1〜6のいずれかに記載の無血清細胞培養培地組成物または請求項1〜6のいずれかに記載の無血清細胞培養補助剤組成物。
- 前記多価不飽和オメガ−6脂肪酸が、アラキドン酸、リノール酸、リノレン酸、ミリスチン酸、オレイン酸、パルミチン酸、パルミトレイン酸、およびステアリン酸からなる群から選択される、請求項1〜7のいずれかに記載の無血清細胞培養培地組成物または請求項1〜7のいずれかに記載の無血清細胞培養補助剤組成物。
- 前記補助剤の有効希釈度が、約1:10〜約1:5000である、請求項1〜8のいずれかに記載の無血清細胞培養補助剤組成物。
- ワクチン、ウイルス、ウイルス粒子、ウイルスタンパク質もしくは核酸、またはウイルス断片を産生し得る細胞を培養することができる、請求項1に記載の無血清細胞培養培地組成物または請求項2に記載の無血清細胞培養補助剤組成物。
- 前記細胞が、動物細胞である、請求項1〜10のいずれかに記載の無血清細胞培養培地組成物または無血清細胞培養補助剤組成物。
- 前記動物細胞が、ウシ細胞、イヌ細胞、ネコ細胞、昆虫細胞、鳥類細胞、霊長類細胞、またはヒト細胞である、請求項11に記載の無血清細胞培養培地組成物または無血清細胞培養補助剤組成物。
- 前記動物細胞が、二倍体細胞である、請求項11または12に記載の無血清細胞培養培地組成物または無血清細胞培養補助剤組成物。
- 2−デオキシ−D−グルコースをさらに含む、請求項1〜13のいずれかに記載の無血清細胞培養培地組成物。
- 前記細胞が、MRC−5、MRC−5 RCB、MRC−9、WI−38、2BS、Walvax−2、IMR−90、IMR−91、KMB−17、HUT系列細胞、チャン肝臓、U937、MDCK、CD4発現T細胞、CD8発現T細胞、VERO、および前述の細胞のクローンからなる群から選択される、請求項1〜14のいずれかに記載の無血清細胞培養培地組成物または無血清細胞培養補助剤組成物。
- 培地または補助剤が、前記細胞の成長、前記細胞の生存細胞密度、ウイルスに感染した細胞のウイルス力価、またはそれらの組み合わせを増加させる、請求項1〜15のいずれかに記載の無血清細胞培養培地組成物または無血清細胞培養補助剤組成物。
- 前記細胞が、ウイルスに感染している、請求項1〜16のいずれかに記載の無血清細胞培養培地組成物または無血清細胞培養補助剤組成物。
- 前記ウイルスが、動物ウイルス、植物ウイルス、またはバクテリオファージである、請求項16または17に記載の無血清細胞培養培地組成物または無血清細胞培養補助剤組成物。
- 前記ウイルスが、水痘帯状疱疹ウイルス(VZV)、風疹、麻疹、流行性耳下腺炎、A型肝炎、アデノウイルス、ポリオ、ロタウイルス、痘瘡、水痘、黄熱、パピローマウイルス、エボラウイルス、HIV、狂犬病または水疱性口内炎ウイルス(VSV)、およびデングウイルスからなる群から選択される、請求項16〜18に記載の無血清細胞培養培地組成物または無血清細胞培養補助剤組成物。
- 前記ウイルス粒子が、パルボウイルス科、レトロウイルス科、フラビウイルス科、またはバクテリオファージに由来する、請求項10〜19のいずれかに記載の無血清細胞培養培地組成物または無血清細胞培養補助剤組成物。
- ワクチン、ウイルス、ウイルス粒子、ウイルスタンパク質もしくは核酸、またはウイルス断片を産生することができる二倍体細胞を培養するために基本培地に添加され、前記細胞が、無血清条件下で培養されるものである、請求項2に記載の無血清細胞培養補助剤組成物。
- 二倍体細胞集団を培養するための方法であって、前記細胞集団を、シクロデキストリンおよび少なくとも1つの脂質を含む細胞培養培地中でインキュベートすることを含む、方法。
- ワクチン産生二倍体細胞を含む、請求項22に記載の細胞集団を培養する方法であって、前記細胞集団を、
(i)シクロデキストリン、リノール酸、少なくとも1つの他のオメガ−6脂肪酸、およびコレステロール、または
(ii)好適な希釈度の表1および/もしくは表2に記載の補助剤を含む、無血清細胞培養培地中でインキュベートすることを含み、
前記培養が、シクロデキストリンを有しない血清含有培地中の生存細胞密度と比較して、前記無血清細胞培養培地中の生存細胞密度を増加させる、方法。 - 前記シクロデキストリンが、メチル化シクロデキストリンである、請求項23に記載の二倍体細胞集団を培養するための方法。
- 前記メチル化シクロデキストリンが、約50μM〜約200μMのレベルで存在する、請求項24に記載の二倍体細胞集団を培養するための方法。
- 前記少なくとも1つの他のオメガ−6脂肪酸が、多価不飽和オメガ−6脂肪酸である、請求項23に記載の二倍体細胞集団を培養するための方法。
- 前記多価不飽和オメガ−6脂肪酸が、アラキドン酸、リノレン酸、ミリスチン酸、オレイン酸、パルミチン酸、パルミトレイン酸、およびステアリン酸からなる群から選択される、請求項23に記載の二倍体細胞集団を培養するための方法。
- (i)前記培地または補助剤が、前記細胞の成長、前記細胞の生存細胞密度、ウイルスに感染した細胞のウイルス力価、またはそれらの組み合わせを増加させ、かつ/あるいは
(ii)前記二倍体細胞が、無血清条件下で、ワクチン、ウイルス、ウイルス粒子、ウイルスタンパク質もしくは核酸、またはそれらのウイルス断片を産生することができ、かつ/あるいは
(iii)前記細胞が、ウイルスに感染している、
請求項22〜27のいずれかに記載の二倍体細胞集団を培養するための方法。 - (i)前記ウイルスが、動物ウイルス、植物ウイルス、もしくはバクテリオファージであり、かつ/または
(ii)前記ウイルスが、水痘帯状疱疹ウイルス(VZV)、風疹、麻疹、流行性耳下腺炎、A型肝炎、アデノウイルス、ポリオ、ロタウイルス、痘瘡、水痘、黄熱、パピローマウイルス、エボラウイルス、HIV、狂犬病もしくは水疱性口内炎ウイルス(VSV)、およびデングウイルスからなる群から選択され、かつ/または
(iii)前記ウイルス粒子が、パルボウイルス科、レトロウイルス科、フラビウイルス科、もしくはバクテリオファージに由来する、請求項22〜28のいずれかに記載の二倍体細胞集団を培養するための方法。 - 前記細胞集団が、MRC−5、MRC−5 RCB、MRC−9、WI−38、2BS、Walvax−2、IMR−90、IMR−91、KMB−17、HUT系列細胞、チャン肝臓、U937、MDCK、CD4発現T細胞、CD8発現T細胞、VERO、および前述の細胞のクローンからなる群から選択される、請求項22〜29のいずれかに記載の方法。
- (i)細胞の集団、(ii)シクロデキストリンおよび少なくとも1つの脂質を含む無血清細胞培養培地、または
(i)細胞の集団、(ii)無血清基本細胞培地、ならびに(iii)シクロデキストリンおよび少なくとも1つの脂質を含む補助剤、または
(i)細胞の集団、(ii)無血清基本細胞培地、ならびに(iii)好適な希釈度の表1および/もしくは表2に記載の補助剤
を含む、組み合わせ。 - (i)前記細胞が、動物細胞であるか、または
(ii)前記動物細胞が、ウシ細胞、ネコ細胞、昆虫細胞、鳥類細胞、霊長類細胞、もしくはヒト細胞であるか、または
(iii)前記動物細胞が、二倍体細胞であるか、または
(iv)前記細胞が、MRC−5、MRC−5 RCB、MRC−9、WI−38、2BS、Walvax−2、IMR−90、IMR−91、KMB−17、HUT系列細胞、チャン肝臓、U937、MDCK、CD4発現T細胞、CD8発現T細胞、VERO、および前述の細胞のクローンからなる群から選択される、請求項31に記載の組み合わせ。 - 前記二倍体細胞が、無血清条件下で、ワクチン、ウイルス、ウイルス粒子、ウイルスタンパク質もしくは核酸、またはウイルス断片を産生する、請求項31または32に記載の組み合わせ。
- 無血清二倍体細胞培養培地を作製する方法であって、(i)基本培地と、(ii)シクロデキストリンおよび少なくとも1つの脂質を含む補助剤、または(ii)好適な希釈度の表1および/もしくは表2に記載の補助剤、のいずれかとを混合することを含む、方法。
- 前記補助剤が、成長因子をさらに含む、請求項34に記載の無血清二倍体細胞培養培地を作製する方法。
- (i)1種以上の異なるシクロデキストリンであって、各シクロデキストリンが、別個の容器内にある、シクロデキストリンと、(ii)2種以上の異なる脂肪酸であって、各脂肪酸が、別個の容器内にある、脂肪酸とを含む、二倍体細胞培地の補充のための系。
- 細胞または細胞株を培養するためのキットであって、
(i)細胞の集団、(ii)シクロデキストリンおよび少なくとも1つの脂質を含む無血清細胞培養培地、または
(i)細胞の集団、(ii)無血清基本細胞培地、ならびに(iii)シクロデキストリンおよび少なくとも1つの脂質を含む補助剤、または
(i)細胞の集団、(ii)無血清基本細胞培地、ならびに(iii)好適な希釈度の表1および/もしくは表2に記載の補助剤、を含む、キット。 - (i)前記細胞が、動物細胞であるか、または
(ii)前記動物細胞が、ウシ細胞、イヌ細胞、ネコ細胞、昆虫細胞、鳥類細胞、霊長類細胞、もしくはヒト細胞であるか、または
(iii)前記動物細胞が、二倍体細胞であるか、または
(iv)前記細胞が、MRC−5、MRC−5 RCB、MRC−9、WI−38、2BS、Walvax−2、IMR−90、IMR−91、KMB−17、HUT系列細胞、チャン肝臓、U937、MDCK、CD4発現T細胞、CD8発現T細胞、VERO、および前述の細胞のクローンからなる群から選択される、請求項37に記載のキット。 - 前記細胞が、無血清条件下で、ワクチン、ウイルス、ウイルス粒子、ウイルスタンパク質もしくは核酸、またはウイルス断片を産生する、請求項37〜38のいずれかに記載のキット。
- (i)T細胞の集団、ならびに(ii)シクロデキストリンおよび少なくとも1つの脂質を含む培地を含む、組み合わせ。
- 前記少なくとも1つの脂質が、コレステロール、脂肪酸、脂肪酸エステル、リン脂質、またはグリセロ脂質である、請求項40に記載の組み合わせ。
- 前記脂肪酸が、飽和脂肪酸、一価不飽和脂肪酸、または多価不飽和脂肪酸である、請求項41に記載の組み合わせ。
- 前記脂肪酸が、オメガ−3脂肪酸、オメガ−6脂肪酸、またはオメガ−9脂肪酸である、請求項41に記載の組み合わせ。
- 前記脂肪酸が、リノール酸である、請求項41に記載の組み合わせ。
- リノレン酸をさらに含む、請求項41に記載の組み合わせ。
- 前記リノレン酸が、α−リノレン酸、γ−リノレン酸、またはα−リノレン酸およびγ−リノレン酸である、請求項45に記載の組み合わせ。
- アラキドン酸をさらに含む、請求項41に記載の組み合わせ。
- 前記少なくとも1つの脂質が、コレステロールである、請求項40に記載の組み合わせ。
- 前記シクロデキストリンが、α−シクロデキストリン、β−シクロデキストリン、またはγ−シクロデキストリンである、請求項40に記載の組み合わせ。
- 前記シクロデキストリンが、メチル化されている、請求項40に記載の組み合わせ。
- 前記シクロデキストリンが、メチル−β−シクロデキストリンである、請求項50に記載の組み合わせ。
- 組成物が、複数の異なるシクロデキストリンを含み、前記複数のシクロデキストリンが、少なくとも2種のシクロデキストリンを含む、請求項40に記載の組み合わせ。
- 前記シクロデキストリン対コレステロールのモル比が、11.5:1より小さいである、請求項48に記載の組み合わせ。
- 前記細胞培養培地が、約10μM〜約200μMであるレベルのシクロデキストリンを含む、請求項40に記載の組み合わせ。
- 前記細胞培養培地が、無血清培養培地である、請求項40に記載の組み合わせ。
- 前記細胞培養培地が、アルブミンを含まない、請求項40に記載の組み合わせ。
- 2−デオキシ−D−グルコースをさらに含む、請求項40に記載の組み合わせ。
- T細胞集団を培養するための方法であって、前記集団を、シクロデキストリンおよび少なくとも1つの脂質を含む細胞培養培地中でインキュベートすることを含む、方法。
- 前記細胞培養培地が、リノール酸、少なくとも1つの他のオメガ−6脂肪酸、コレステロール、およびシクロデキストリンを含む無血清細胞培養補助剤組成物を含む、請求項58に記載の方法。
- 前記T細胞集団が、CD8+T細胞を含む、請求項58に記載の方法。
- 前記T細胞集団が、CD4+T細胞を含む、請求項58に記載の方法。
- 前記T細胞集団が、CD8+T細胞およびCD4+T細胞を含む、請求項58に記載の方法。
- 前記細胞培養培地が、2−デオキシ−D−グルコースをさらに含む、請求項58に記載の方法。
- CD8+T細胞およびCD4+T細胞を含むT細胞集団を培養する方法であって、前記集団を、シクロデキストリンおよび多価不飽和脂肪酸を含む細胞培養培地中でインキュベートすることを含み、
前記集団内のCD4+T細胞対CD8+T細胞の比の変化が、10日間の培養後に50%未満であり、
前記細胞培養培地が、0.1mM〜約10mMの2−デオキシ−D−グルコースを含有する、方法。 - 前記多価不飽和脂肪酸が、オメガ−6多価不飽和脂肪酸である、請求項64に記載の方法。
- 前記オメガ−6多価不飽和脂肪酸が、リノール酸である、請求項64に記載の方法。
- 前記細胞培養培地が、コレステロールをさらに含む、請求項64に記載の方法。
- 前記集団が最初に前記培地と接触するとき、前記集団が、約1:1のCD4+T細胞対CD8+T細胞の比を含む、請求項64に記載の方法。
- T細胞亜集団のメンバーを優先的に増殖させるための方法であって、T細胞の混合集団を、
(i)シクロデキストリン、および
(ii)2種以上の脂肪酸に曝露することを含み、
2種以上の脂肪酸のモル比が、前記T細胞亜集団の前記メンバーを誘導して、他のT細胞亜集団のメンバーに対して優先的に増殖するように調整される、方法。 - 前記T細胞亜集団が、CD8+T細胞である、請求項69に記載の方法。
- 前記T細胞亜集団が、CD4+T細胞である、請求項69に記載の方法。
- 前記T細胞の混合集団を、2−デオキシ−D−グルコースに曝露することをさらに含む、請求項69に記載の方法。
- 前記T細胞の混合集団が、他の脂肪酸よりも多くの多価不飽和脂肪酸に曝露される、請求項69に記載の方法。
- 前記T細胞が、初代T細胞である、請求項69に記載の方法。
- 前記T細胞が、ヒト対象の血液から単離されたものである、請求項74に記載の方法。
- 前記T細胞が、遺伝子改変T細胞である、請求項69に記載の方法。
- 前記T細胞が、遺伝子改変T細胞受容体を発現する、請求項76に記載の方法。
- 前記T細胞が、キメラ抗原受容体を発現する、請求項69に記載の方法。
- CD8+T細胞対CD4+T細胞の比を増加させながらCD8+T細胞およびCD4+T細胞を含むT細胞集団を培養する方法であって、前記集団を、2−デオキシ−D−グルコースを含む細胞培養培地中でインキュベートすることを含む、方法。
- 前記2−デオキシ−D−グルコースが、約0.1mM〜約5mMのレベルで存在する、請求項79に記載の方法。
- 前記細胞培養培地が、血清をさらに含む、請求項79に記載の方法。
- 前記細胞培養培地が、無血清細胞培養培地である、請求項79に記載の方法。
- 前記集団内のCD8+T細胞対CD4+T細胞の比が、前記培養培地との最初の接触から7日後に2倍〜5倍増加する、請求項79に記載の方法。
- 前記T細胞が、初代T細胞である、請求項79に記載の方法。
- 前記T細胞が、ヒト対象の血液から単離されたものである、請求項79に記載の方法。
- 前記T細胞が、遺伝子改変T細胞である、請求項79に記載の方法。
- 前記T細胞が、遺伝子改変T細胞受容体を発現する、請求項79に記載の方法。
- 前記T細胞が、キメラ抗原受容体を発現する、請求項79に記載の方法。
- 前記T細胞が、制御性T細胞(Treg)、ヘルパーT細胞、Th17細胞、Th9細胞、メモリーT細胞、エフェクターメモリーT細胞、セントラルメモリーT細胞、高分化型エフェクター(TTD)T細胞、ナイーブT細胞、または操作されたT細胞である、請求項79に記載の方法。
- 疾患または病態に罹患しているか、またはそれに罹患するリスクがある対象への投与のための培養T細胞を調製することをさらに含む、請求項79に記載の方法。
- 前記T細胞を前記対象に投与することをさらに含む、請求項90に記載の方法。
- 疾患の治療を必要とする対象において疾患を治療するための方法であって、請求項91に記載の方法によって得られたT細胞を、前記対象に投与することを含む、方法。
- 無血清培地、シクロデキストリン、および1つ以上の脂質を含むT細胞を培養するための、キット。
- 2−デオキシ−D−グルコースをさらに含む、請求項93に記載のキット。
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