JP2019508686A - サンプルから成分を抽出するための方法および装置 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2016年3月2日に出願された米国特許仮出願第62/302674号および2016年5月10日に出願された米国特許仮出願第62/333939号(これらは、参照により本明細書に組み込まれる。)の優先権の利益を主張する。
本開示は、サンプルから目的の成分を抽出するための固相マイクロ抽出のための方法および装置に関する。
以下の段落は、その中で述べられるいずれかが先行技術または当業者の知識の一部であることを容認するものではない。
以下の序論は、読者を本明細書に導くものであって、いかなる発明も定義するものではない。以下または本文書の他の部分に記載の装置要素または方法ステップの組み合わせあるいはサブコンビネーションにおいて、1つまたは複数の発明が存在し得る。本発明者らは、そのような1つまたは複数の他の発明を特許請求の範囲に単に記載しないことによって、本明細書に開示の1つまたは複数のいかなる発明に対するそれらの権利も放棄しない。
一般に、本開示は、サンプルから目的の成分を抽出するために固体もしくは半固体材料内に、または固体もしくは半固体材料を通じて挿入するための固相マイクロ抽出サンプリング装置を提供する。サンプリング装置は、目的の成分を抽出するための抽出相で少なくとも部分的に被覆された支持構造物を含み、支持構造物は、材料内に、または材料を通じて、サンプル内に挿入するための挿入部分を有する。挿入部分は、挿入部分の前側および後側を画定する突起を含み、抽出相は、突起の後側に少なくとも位置し、突起の後側縁部に隣接する。支持構造物の挿入軸に沿った方向に挿入中にコーティングを遮蔽する突起に抽出相が隣接する場合、突起は、抽出相の厚さとほぼ等しい支持構造物からの高さで突出する。挿入軸からサンプリング装置の外縁まで延びる挿入部分内の断面平面内の距離は、目的の断面平面と挿入部分の挿入端部との間に位置するすべての断面平面内の対応する距離よりも長いかまたはそれと等しい。
挿入軸に沿った支持構造物の長さは、サンプル内の望ましい抽出深さに応じて選択され得る。本開示によるいくつかの例では、例えば、(1)サンプリングされるサンプルの部分がさらに深い、(2)さらに大きい抽出表面積が望ましい、または(3)これらの組み合わせのとき、支持構造物の長さはさらに長い。本開示によるいくつかの例では、支持構造物は、長さが約1.0cm〜約30.0cm、例えば、1.0cm、2.0cm、3.0cm、4.0cm、5.0cm、10.0cm、15.0cm、20.0cm、25.0cm、30.0cmであり、または、長さは、上に列挙した長さのいずれか1つから、上に列挙したその他の任意の長さまでである。本開示によるいくつかの例では、例えば、サンプルが脳組織などの感受性組織サンプルであるとき、支持構造物の長さはさらに長く、抽出相コーティングの長さはより短い。
突起が抽出相コーティングを遮蔽するか確認するための予備実験を実施した。これらの実験のために、本開示によるサンプリング装置および突起のないサンプリング装置を使用した。図14A〜図14Bは、本開示による挿入軸に沿った固相マイクロ抽出サンプリング装置(図14A)および突起のないマイクロ抽出サンプリング装置(図14B)の断面図である。図14Aは、ニードル先端部(1404)を有するニードル状形状の支持構造物(1402)を有するサンプリング装置(1400)を示す。挿入中にPANを遮蔽するために、支持構造物(1402)は2個の突起(1406)を有し、ポリアクリロニトリル(PAN)接着剤(1408)に懸濁させた親水性−親油性バランス(HLB)粒子で2個の突起の間が被覆されている。拡大図に示したように、3つの確認される断面平面は、サイズがほぼ等しい。支持構造物(1402)はまた、直径が約6.5mmで、airsoft銃に連結されるように構成されたバッキング(1410)も有する。破線の矢印は挿入方向を示す。図14Bは、突起がなく、ニードル先端部(1454)を有するニードル状形状の支持構造物(1452)、HLB−PAN(1456)で部分的に被覆された支持構造物(1452)を有するサンプリング装置(1450)を示す。支持構造物(1452)は、直径が約6.5mmで、airsoft銃に連結されるように構成されたバッキング(1458)を有する。破線の矢印は挿入方向を示す。HLBに対する親和性を示す多種多様な化合物のために、HLB−PANコーティングを使用した。装置の堅牢性を試験すると共に、迅速な片手のサンプラー導入を容易にするために、装置をカスタム発射体に組み込み、変更されていないairsoft(商標)銃から魚鱗内に発射した。図15は、固相マイクロ抽出法の概略図である。サンプリング装置は、そのカバーから取り外され(1502)、airsoft銃に連結され、約90m.s−1の速度で至近距離から魚内に発射される(1504)。激しい取り扱いをシミュレートし、in vivo用途向けの速いサンプリングツールとして使用される例示的なサンプリング装置の能力を示すために速度を選択した。約60分後、サンプリング装置を魚から取り出した(1506)。次いで、すべての魚組織を除去するためにサンプリング装置をキムワイプで清浄にし、nanopure水で約10秒間すすいだ(1508)。洗浄後、サンプリング装置は、分析前の保管のためにそのカバーに元通り挿入される(1510)。
穿刺事象の結果生じる化学変化から抽出相コーティングを保護する突起の能力を評価するために、5つの本開示によるサンプリング装置を2組使用して、7つの医薬標的化合物(濃度15ng/mLのセルトラリン、フルオキセチン、パロキセチン、ジアゼパム、サルブタモール、ラニチジンおよびコデイン)をスパイクした質量分析計(MS)グレードの水からの抽出を実施した。サンプルに接近するために、1組のサンプリング装置をまず従来の液体クロマトグラフィー(LC)オートサンプラープレスリットセプタムに押し通した。一方、第2の組をスパイクした溶液に直接曝露した。
ボルテックス撹拌下、2分間の抽出を使用して、20ng/mLでスパイクした1.5mLのMSグレードの水からの抽出を実施することによって、HLB−PANで被覆された本開示によるサンプリング装置間の再現性を調査した。抽出後、サンプリング装置を1.5mLの質量分析計グレードの水中ですすぎ、メタノール溶液中で脱離させた。分析法No.1を使用した実施例2の機器分析(表1)により、すべてのサンプリング装置にわたって、内部標準補正なしで14%未満のRSDが観察された(n=5、図18A〜図18G)。続いて、15回にわたるセプタム穿刺ベースのサンプリングでサンプリング装置内の再現性を観察した。ここで、30ng/mLでスパイクした1M、pH=7.1、リン酸緩衝溶液(PBS)からなるサンプル溶液に接近するために、HLB−PANで被覆された本開示によるサンプリング装置を従来のLCオートサンプラープレスリットセプタムキャップに押し通した。ボルテックス撹拌を2分間使用して抽出を実施した。その後、サンプリング装置を1.5mLのMSグレードの水中ですすぎ、メタノール溶液中で脱離させた。分析法No.1を使用した実施例2の機器分析(表1)により、試験したすべての化合物において、内部標準補正を使用せずに13%未満のRSDが観察された。この観察の例外はサルブタモールのものであり、サンプリング装置内の%RSDは21と示されたが、おそらく、抽出された化合物が比較的少量だったためである(表2参照)。
ヒト血漿に医薬品カルバマゼピン、ラニチジン、ジアゼパムおよびモネンシンを75ng/mLの濃度でスパイクした。次いで、スパイクしたサンプルの均質性を確保するために、スパイクした血漿を400rpmで5時間撹拌した後、琥珀色の2mLバイアルに1.6mLの一定分量に分けた。抽出を実施する前に、3つの本開示によるサンプリング装置および3つの混合モードSPME繊維を50:50 メタノール:水中、1200rpmで30分間コンディショニングした。コンディショニング溶液バイアルセプタムキャップのセプタムを通じてサンプリング装置を引き、次いで、スパイクした血漿サンプルが入った2mLバイアルのセプタムを刺すことにより、サンプリング装置を使用した抽出を実施した。次いで、このサンプリング装置/サンプルバイアルアセンブリを4分間ボルテックスした。次いで、サンプリング装置を、サンプルバイアルのセプタムを通じて引き、1.6mLのMSグレードの水を含む洗浄溶液のセプタムに押し通し、5秒間ボルテックスし、次いで、この洗浄ステップを新しい洗浄バイアルで繰り返した。次いで、サンプリング装置を、洗浄バイアルのセプタムを通じて引き、ギ酸0.1%を含む1.5mLの4:1 メタノール/アセトニトリルが入った2mLバイアルのセプタムに押し通し、1500rpmで30分間撹拌した。3つの混合モードSPME繊維については、抽出、洗浄および脱離の条件はサンプリング装置と同じであったが、コーティングがキャップのセプタムを通じて引かれたり、またはキャップのセプタムに押し通されたりしないように、混合モードSPME繊維を除去し、セプタムを通じて引き、次いで、新しいキャップに逆に押し通す必要があったため、バイアルのキャップは各ステップの後に取り外して交換した。第2の脱離を実施することによって、サンプリング装置および繊維に分析物のキャリーオーバーは確認されなかった。次いで、三つ組で注入された各脱離溶液を含む、実施例2で概説した分析法No.1(表1)を使用して脱離溶液を分析した。
実施例3および4においてサンプリング装置の堅牢性および再現性を示す実験検証を完了後、in vivoサンプリングについて本開示によるサンプリング装置を試験した。これを示すため、混合モードSPME繊維との比較調査において、サケ中の多価不飽和脂肪酸(PUFA)であるドコサヘキサエン酸(DHA)、エイコサペンタエン酸(EPA)およびアラキドン酸(AA)の標的分析に対してサンプリング装置を三つ組で適用した。サンプリング装置は、HLB−PANまたはC18−PANで被覆され、SPME繊維は、強カチオン交換官能化された疎水性コーティングで被覆された。
サンプリング装置の真の堅牢性を確認するために、サンプリング装置を使用して、サーモンステーキの保護組織を通じた直接穿刺による保護組織の繰り返し穿刺を実施した。本開示によるサンプリング装置を手作業で保護組織に押し通し、次いで除去した。除去した後、装置に100%アセトニトリル中、1200rpmで約1時間脱離を行い、続いて実施例5に記載の洗浄およびプレコンディショニングを行った後、再び保護組織に押し通した。9回の穿刺事象の間、このプロセスを繰り返した。実験では5つの別々のサンプリング装置を利用し、それぞれが9回の穿刺の間使用された。ほぼ間違いなく、in vivoサンプリング装置は一回使用の装置になるであろうが、これらの条件下でも装置への著しい機械的損傷の発生は試験の間に観察されなかった。
この予備作業において、生体サンプルマトリックスからの繰り返し抽出の後、タンパク質などのマトリックス分子、および生物付着プロセスに関連する他の化合物の付着の結果、本開示によるいくつかのサンプリング装置の応答が低下し得ることが認められた。そのため、サンプリング装置の挿入部分上に別のコーティング、例えば、滑らかな層を提供する手段として、上塗りのプロセスを調査した。この滑らかな表面特性は、マトリックスの付着を制限し、したがって、生体適合性コーティングを向上させると共に、被覆堅牢性のためのマトリックスと抽出用コーティングとの間の障壁となり得、サンプル内で失われるコーティングの量を低減させる。ここで、PANで上塗りされたその挿入部分を有するサンプリング装置を、上塗りされていないサンプリング装置と比較した。すべてのサンプリング装置を、同じ寸法のHLB抽出用コーティングで被覆した。(上塗りありと上塗りなしの)各タイプの4つのサンプリング装置をサケ組織に直接押し入れた。抽出、洗浄、脱離および分析を実施例5のように実施した。4回の繰り返し抽出の間、各サンプリング装置を順番に使用した。
本開示によるサンプリング装置の性能および適用性を評価するために、2つの異なるタイプの脳腫瘍、髄膜腫および神経膠腫からのin situ抽出を実施した。8つのサンプリング装置を使用し、髄膜腫脳腫瘍用の4つおよび神経膠腫脳腫瘍用の4つをメタノール/水 1:1 v/v中で一晩プレコンディショニングし、次いで、LC−MSグレードの水中で素早くすすいで(5秒間浸漬、撹拌なし)、可能性のある有機溶媒残留物を表面から除去し、続いて所与の腫瘍に30分間挿入した。抽出後、ボルテックス撹拌を使用して、各タイプの腫瘍に使用した2つのサンプリング装置をLC−MSグレードの水で洗浄し、同じ撹拌条件を使用して、残りのサンプリング装置を10%アセトンで洗浄した。次いで、得られた抽出物に対して、Q−Exactive Focus Orbitrap質量分析計を使用して、m/z 80〜1000の走査範囲設定でESI正モードのLC−MS分析を行った。表4で概説した分析法No.3を使用して脱離溶液を分析した。
いくつかの化合物は、髄膜腫サンプルおよび神経膠腫サンプルの判別において統計的有意性(P<0.05および1<log2倍率変化)<−1)を示した(図25)が、これは、バイオマーカー解析におけるサンプリング装置の使用の可能性を示す。調査した脳腫瘍サンプル中の例示的な化合物のアップまたはダウンレギュレーションを図26A〜図26Bに示した。仮同定は、差異を生じる代謝産物のいくつか、例えば、5−オキソプロリナ(ピログルタミン酸)が、脳腫瘍診断において潜在的価値のある化合物として文献において既報であったことを明らかにした。
被覆された生検針の実験の一般的なワークフローは実施例8の脳腫瘍の分析手順と同一であった。ただし、コーティング全体の浸漬を向上させるために1.5mLに増加した脱離溶媒の体積を除く。上で説明の通り、被覆された生検針およびサンプリング装置の主な違いは、後者の場合における組織引き抜きのないサンプリングの使用、および被覆された生検針の接近に伴って採取される生検サンプルが消費されないそのサンプルのサンプリングであり、したがって、生検サンプルをルーチン分析でさらに試験できる。ここで、ギロチン生検針の標準的な生検手順を使用して髄膜腫組織の断片を採取した。本開示によるサンプリング装置を組織に挿入中に外側生検鞘内に固定し、組織に入ったら、抽出が行われるように鞘を引き戻してサンプリング装置の挿入部分を曝露した。抽出後、サンプリング装置の抽出相コーティング上にある組織の薄層を鞘の鋭い先端部が切断するように鞘を順方向に引いた。切断後、サンプリング装置を組織から引き抜いた。図27Aは、サンプリング採取および成分抽出の間の図である。図27Bは、サンプリング採取および成分抽出の後の図である。抽出中、生検針の外側部分は、汚染または乾燥からサンプルを保護する。
Claims (55)
- サンプルから目的の成分を抽出するために固体もしくは半固体材料内に、または固体もしくは半固体材料を通じて挿入するための固相マイクロ抽出サンプリング装置であって、前記固相マイクロ抽出サンプリング装置は、
前記目的の成分を抽出するための抽出相で少なくとも部分的に被覆された支持構造物
を含み、前記支持構造物は、
前記材料内に、または前記材料を通じて、前記サンプル内に挿入するための挿入部分
を有し、前記挿入部分は、
前記挿入部分の前突起側および後突起側を画定する突起
を含み、
前記抽出相は、前記突起の前記後突起側に少なくとも位置し、前記突起の後側縁部に隣接し、
前記支持構造物の挿入軸に沿った方向に挿入中にコーティングを遮蔽する前記突起に前記抽出相が隣接する場合、前記突起は、前記抽出相の厚さとほぼ等しい前記支持構造物からの高さで突出し、
前記挿入軸から前記サンプリング装置の外縁まで延びる前記挿入部分内の断面平面内の距離は、目的の断面平面と前記挿入部分の挿入端部との間に位置するすべての断面平面内の対応する距離よりも長いかまたはそれと等しい、固相マイクロ抽出サンプリング装置。 - 鞘なしである、請求項1に記載のサンプリング装置。
- 前記突起の前記後側縁部が、前記支持構造物に対して実質的に垂直である、請求項1または2に記載のサンプリング装置。
- 前記突起が、前記支持構造物の前記挿入部分の外周の周りに延びる、請求項1から3のいずれか一項に記載のサンプリング装置。
- 複数の突起を含む、請求項1から4のいずれか一項に記載のサンプリング装置。
- 前記複数の突起のそれぞれの高さがほぼ等しい、請求項5に記載のサンプリング装置。
- 突起の隣接する対が、約0.01mm〜約2.0cmの距離だけ離れている、請求項5または6に記載のサンプリング装置。
- 前記抽出相が、突起の隣接する対それぞれの間に位置する、請求項5から7のいずれか一項に記載のサンプリング装置。
- 前記支持構造物が、ネジ状の形で前記支持構造物の外周の周りに延びる1個の突起を含む、請求項1から4のいずれか一項に記載のサンプリング装置。
- 前記ネジ状突起の隣接するネジ山が、約0.01mm〜約2.0mmの距離だけ離れている、請求項9に記載のサンプリング装置。
- 前記抽出相が、ネジ山の隣接する対それぞれの間に位置する、請求項10に記載のサンプリング装置。
- 前記突起の高さが約1μm〜約1.0cmである、請求項1から11のいずれか一項に記載のサンプリング装置。
- 前記抽出相が、収着ポリマー、またはポリマーと前記ポリマー内に固定された収着材料との組み合わせを含む、請求項1から12のいずれか一項に記載のサンプリング装置。
- 前記収着材料が、粒子、ポリマー、ナノシート、ナノチューブまたはこれらの任意の組み合わせを含む、請求項13に記載のサンプリング装置。
- 前記収着材料が、無機、有機、または無機/有機ハイブリッドである、請求項13または14に記載のサンプリング装置。
- 前記収着材料が、順相シリカ粒子、C−1/シリカ粒子、C−4/シリカ粒子、C−6/シリカ粒子、C−8/シリカ粒子、C−18/シリカ粒子、C−30/シリカ粒子、逆相アミドシリカ粒子、HS−F5/シリカ粒子、フェニル/シリカ粒子、シアノ/シリカ粒子、ジオール/シリカ粒子、イオン性液体/シリカ粒子、分子インプリントポリマー粒子、親水性−親油性バランス(HLB)粒子、carboxen 1006粒子、carbowax粒子、ジビニルベンゼン(DVB)粒子、オクタデシルシラン粒子、ナノ粒子、加工鉱物ベースの粒子、カーボンナノチューブ、官能化カーボンナノチューブ、グラフェン、酸化グラフェン、官能化グラフェン、量子ドットまたはこれらの任意の組み合わせを含む、請求項13から15のいずれか一項に記載のサンプリング装置。
- 前記ポリマーが、置換もしくは非置換のポリ(ジメチルシロキサン)、ポリアクリレート、ポリ(エチレングリコール)、ポリ(ジビニルベンゼン)、ポリピロール、誘導体化セルロース、キチンまたはキトサンを含む、請求項13から16のいずれか一項に記載のサンプリング装置。
- 前記収着ポリマーが、有機ポリマーを含む、請求項13に記載のサンプリング装置。
- 前記有機ポリマーが、ポリジビニルベンゼン(DVD)、ポリジメチルシロキサン(PDMS)、親水性−親油性バランス(HLB)またはポリエチレングリコール(PEG)を含む、請求項18に記載のサンプリング装置。
- 前記支持構造物が、金属または金属合金で作製されている、請求項1から19のいずれか一項に記載のサンプリング装置。
- 前記金属または金属合金が、鋼、ステンレス鋼またはニッケル−チタン合金である、請求項20に記載のサンプリング装置。
- 前記支持構造物がポリマーである、請求項1から19のいずれか一項に記載のサンプリング装置。
- 前記ポリマーが、ポリブチレンテレフタレート、ポリエーテルエーテルケトン、ポリエチレンまたはポリヘキサメチレンアジパミドである、請求項22に記載のサンプリング装置。
- 前記支持構造物が溶融石英である、請求項1から19のいずれか一項に記載のサンプリング装置。
- 前記支持構造物が炭素格子である、請求項1から19のいずれか一項に記載のサンプリング装置。
- 前記炭素格子が、炭素繊維またはカーボンナノチューブ超構造体からなる、請求項25に記載のサンプリング装置。
- 前記支持構造物が、木材で作製されている、請求項1から19のいずれか一項に記載のサンプリング装置。
- 前記支持構造物が、ニードル、ピン、平坦なブレード、ボルトまたはネジの形態である、請求項1から27のいずれか一項に記載のサンプリング装置。
- 前記ニードルが生検針である、請求項28に記載のサンプリング装置。
- 前記ニードルがステンレス鋼ニードルである、請求項28または29に記載のサンプリング装置。
- 前記支持構造物が、約0.03mm〜約3.00mmの太さを有する、請求項28から30のいずれか一項に記載のサンプリング装置。
- 前記支持構造物が、前記サンプル内への挿入深さを制御するように構成されている、請求項1から31のいずれか一項に記載のサンプリング装置。
- 前記支持構造物が、ばね荷重推進デバイスまたは圧縮空気発射デバイスに連結されるように構成されている、請求項1から32のいずれか一項に記載のサンプリング装置。
- 前記圧縮空気発射デバイスがairsoft(商標)銃である、請求項33に記載のサンプリング装置。
- 前記ばね荷重推進デバイスがAccuCheck(商標)メータである、請求項33に記載のサンプリング装置。
- 前記支持構造物がボルトである、請求項28に記載のサンプリング装置。
- 前記支持構造物が、約0.5mm〜約15.0mmの太さを有する、請求項36に記載のサンプリング装置。
- 前記装置の少なくとも前記挿入部分上に位置する別のコーティングをさらに含む、請求項1から37のいずれか一項に記載のサンプリング装置。
- 前記別のコーティングが生体適合性ポリマーコーティングからなる、請求項38に記載のサンプリング装置。
- 前記生体適合性ポリマーコーティングが、ポリアクリロニトリル、ポリテトラフルオロエチレン、ポリジメチルシロキサン、ポリエチレングリコールまたはこれらの組み合わせを含む、請求項39に記載のサンプリング装置。
- 前記固体もしくは半固体材料が、組織、膜またはセプタムである、請求項1から40のいずれか一項に記載のサンプリング装置。
- 前記固体もしくは半固体材料が、前記サンプルの一部である、請求項1から41のいずれか一項に記載のサンプリング装置。
- 前記固体もしくは半固体材料が、前記サンプルと同じである、請求項42に記載のサンプリング装置。
- 前記サンプルが、果物、野菜または生物組織である、請求項1から43のいずれか一項に記載のサンプリング装置。
- 前記生物組織が、臓器組織、上皮組織、筋肉組織、神経組織、結合組織または石灰化組織である、請求項44に記載のサンプリング装置。
- 前記生物組織が脳組織である、請求項44または45に記載のサンプリング装置。
- 前記生物組織が魚組織である、請求項44に記載のサンプリング装置。
- 前記目的の成分が、細菌、ウイルス、細胞内成分、生体高分子、DNA、タンパク質、薬物、薬物代謝産物、ホルモン、ビタミン、環境汚染物質、化学物質、細胞またはこれらの組み合わせである、請求項1から47のいずれか一項に記載のサンプリング装置。
- サンプルから目的の成分を抽出するための方法であって、
請求項1から48のいずれか一項に記載の装置を固体もしくは半固体材料内に、または固体もしくは半固体材料を通じて、前記サンプル内に挿入するステップと、
前記目的の成分を収着するステップと、
前記装置を前記サンプルから除去するステップと
を含む方法。 - 前記目的の成分の脱離、および測定または同定のために前記抽出相を分析装置内に配置するステップをさらに含む、請求項49に記載の方法。
- 前記分析装置がエレクトロスプレーイオン化質量分析計である、請求項50に記載の方法。
- サンプルから目的の成分を抽出するために固体もしくは半固体材料内に、または固体もしくは半固体材料を通じて挿入するための固相マイクロ抽出サンプリング装置を製造する方法であって、
支持構造物を抽出相内に浸漬するステップであって、前記支持構造物は、前記材料内に、または前記材料を通じて、前記サンプル内に挿入するための挿入部分を有し、前記挿入部分は、前記挿入部分の前側および後側を画定する突起を含み、前記抽出相は、前記突起の前記後側に少なくとも接触し、前記突起の後側縁部に隣接する、ステップと、
膜が抽出相を除去して、ほぼ一定の断面積を有する被覆された支持構造物を形成するように、前記支持構造物よりわずかに大きい前記膜の開口部に前記支持構造物を滑り込ませるステップと
を含む方法。 - 請求項1から48のいずれか一項に記載の装置から目的の成分を脱離するための脱離チャンバであって、
前記装置の前側を受け入れるように適合されている開口部であって、分析装置とのその間で流体連通している開口部を有する膜を含む、前記装置を保持するためのハウジングと、
脱離溶媒を前記ハウジング内に導入するための弁と
を含み、
前記装置が前記膜によって受け入れられるとき、前記装置は前記流体連通を遮断する、脱離チャンバ。 - 前記分析装置がエレクトロスプレーイオン化質量分析計である、請求項53に記載の脱離チャンバ。
- 請求項1から48のいずれか一項に記載の装置から目的の成分を脱離するための方法であって、
前記膜が受け入れる前記装置を請求項53または54に記載の脱離チャンバ内に配置するステップと、
脱離溶媒を前記ハウジング内に導入するステップと、
前記目的の成分を脱離するステップと、
前記装置を前記脱離チャンバから除去するステップと、
前記目的の成分を含む前記脱離溶媒の前記脱離チャンバを空にするステップと
を含む方法。
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