JP2019195283A - Information acquisition method of sterilization treatment - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、殺菌処理の情報取得方法に関する。 The present invention relates to an information acquisition method for sterilization treatment.
食中毒の原因とならないよう、微生物学的な観点から安全性の高い飲食品を提供するには、原材料や製品に含まれる微生物の殺菌を十分に行うことが重要である。
従来の殺菌方法として、加熱殺菌が一般的に知られている。しかし、殺菌のために原材料や製品を加熱すると、変質や加熱臭が発生し、栄養成分や風味が損なわれる場合がある。
In order to provide foods and drinks with high safety from a microbiological viewpoint so as not to cause food poisoning, it is important to sufficiently sterilize microorganisms contained in raw materials and products.
As a conventional sterilization method, heat sterilization is generally known. However, when raw materials and products are heated for sterilization, alteration and heating odor are generated, and nutritional components and flavors may be impaired.
そこで、加熱殺菌に代わる殺菌方法として、電界殺菌が注目を集めている。
電界殺菌とは、原材料や製品を電極で挟み、交流高電圧を印加することで、電気的な殺菌作用により、混入した微生物を殺菌する方法である。電界殺菌方法は、従来の加熱のみによる殺菌方法に比べて、熱による変色や加熱臭の発生、栄養成分の減少を抑えることができる。
さらに、点滴や注射液など、安全性の高い液体医薬品を提供するために、電界殺菌の利用も検討されている。
Thus, electric field sterilization has attracted attention as a sterilization method that replaces heat sterilization.
Electric field sterilization is a method in which raw materials and products are sandwiched between electrodes and an alternating high voltage is applied to sterilize mixed microorganisms by electrical sterilization. The electric field sterilization method can suppress discoloration due to heat, generation of a heated odor, and a decrease in nutrient components, as compared with a conventional sterilization method only by heating.
Furthermore, the use of electric field sterilization is also being studied in order to provide highly safe liquid pharmaceuticals such as infusions and injection solutions.
一般に、飲食品の種類や混入している微生物の種類によって、電界殺菌条件を適宜設定しなければならない。そして、設定した電界殺菌条件により殺菌効果が十分であるかを確認する必要がある。さらに、殺菌や抗菌の知見を深めるためには、殺菌処理により微生物がどのように死滅したのかを解明することも重要である。 In general, the electric field sterilization conditions must be appropriately set according to the type of food and drink and the type of microorganisms mixed therein. And it is necessary to confirm whether the bactericidal effect is sufficient by the set electric field sterilization conditions. Furthermore, in order to deepen knowledge of sterilization and antibacterial, it is also important to elucidate how microorganisms were killed by sterilization treatment.
殺菌処理後の死菌を観察するには、死菌を回収する必要がある。従来の死菌の回収方法としては、死菌を含む懸濁液を遠心分離し、分離され沈降したペレットから死菌を回収する方法が一般的である。また、特許文献１には、走査型電子顕微鏡（ＳＥＭ）標本作製のために、微生物試料を液体透過性膜上に採取・設置した後、少なくとも固定工程若しくは洗浄・固定工程、洗浄工程、並びに脱水工程を、液体透過性膜の下部より吸引しながら行う、微生物試料の処理方法が記載されている。
上記の方法などにより、生菌や加熱殺菌により死滅した死菌の回収は可能である。しかしこれまで、従来法により、電界殺菌により死滅した死菌を回収したとの報告はされていない。
In order to observe dead bacteria after sterilization treatment, it is necessary to collect dead bacteria. As a conventional method for collecting dead bacteria, a method is generally used in which a suspension containing dead bacteria is centrifuged, and the dead bacteria are collected from the separated and settled pellet. Further, in Patent Document 1, in order to prepare a scanning electron microscope (SEM) specimen, a microbial sample is collected and placed on a liquid permeable membrane, and then at least a fixing process or a cleaning / fixing process, a cleaning process, and dehydration. A method for treating a microbial sample is described in which the steps are performed while aspirating from the bottom of the liquid permeable membrane.
By the above-mentioned method, it is possible to collect live bacteria or dead bacteria killed by heat sterilization. However, until now, there has been no report that dead bacteria that have been killed by electric field sterilization have been recovered by conventional methods.
一方で、殺菌処理により死滅した菌の殺菌機序の解析方法としては、ヒートショックプロテイン（ＨＳＰ）等の各種のストレス応答反応（バイオインジケーター）の多層的な解析が主流である。
しかし、バイオインジケーターを利用した解析方法は、簡便性や迅速性に欠ける。さらに、バイオインジケーターを利用した解析方法は、細胞集団の解析方法である。そのため、個々の細胞の殺菌機序を個別に解析することは困難である。
On the other hand, as a method for analyzing the sterilization mechanism of bacteria killed by sterilization treatment, multi-layer analysis of various stress response reactions (bioindicators) such as heat shock protein (HSP) is the mainstream.
However, analysis methods using bioindicators lack simplicity and speed. Furthermore, the analysis method using a bioindicator is a cell population analysis method. Therefore, it is difficult to individually analyze the bactericidal mechanism of individual cells.
本発明は、電界殺菌処理などにより死滅した死菌の殺菌機序を、個々の死菌に対して解析できる、殺菌処理の情報取得方法の提供を課題とする。 This invention makes it a subject to provide the information acquisition method of the sterilization process which can analyze the sterilization mechanism of the dead bacteria killed by the electric field sterilization process etc. with respect to each dead bacteria.
上記課題に鑑み、本発明者は鋭意検討を行った。その結果、電界殺菌処理により死滅した死菌の懸濁液を従来法の条件で遠心分離しても、電界殺菌処理により死滅した死菌がペレットには移行しないことを見出した。さらに、懸濁液を従来法とは異なる条件で遠心分離した場合、電界殺菌処理により死滅した死菌が上清を浮遊することを見出した。そこで、電界殺菌処理により死滅した死菌が浮遊する遠心分離後の上清をメンブレンフィルターを用いてろ過して死菌をメンブレンフィルターに吸着し、メンブレンフィルターに死菌を固定することにより、電界殺菌処理により死滅した死菌を特異的に回収できることを見出した。
さらに、電界殺菌処理後の死菌は、他の殺菌方法により死滅した死菌や生菌とは大きく異なる、特徴的な細胞形状を有することを見出した。そして、このような特徴的な細胞形状を判断基準とすることで、電界殺菌処理などにより死滅した死菌の殺菌機序を、個々の微生物に対して解析できることを見出した。
本発明はこれらの知見に基づき完成に至ったものである。
In view of the above problems, the present inventor has intensively studied. As a result, it has been found that even when a suspension of killed bacteria killed by the electric field sterilization treatment is centrifuged under the conditions of the conventional method, the dead bacteria killed by the electric field sterilization process do not migrate to the pellet. Furthermore, when the suspension was centrifuged under conditions different from those of the conventional method, it was found that dead bacteria killed by the electric field sterilization treatment floated the supernatant. Therefore, the supernatant after centrifugation in which dead bacteria killed by the electric field sterilization treatment float is filtered using a membrane filter, adsorbed to the membrane filter, and fixed to the membrane filter. It was found that killed bacteria killed by treatment can be specifically recovered.
Furthermore, it has been found that killed bacteria after electric field sterilization treatment have a characteristic cell shape that is greatly different from killed bacteria or live bacteria killed by other sterilization methods. And it has been found that the sterilization mechanism of killed bacteria killed by electric field sterilization can be analyzed for individual microorganisms by using such characteristic cell shape as a criterion.
The present invention has been completed based on these findings.
本発明は、殺菌処理後の菌を電子顕微鏡を用いて撮像し、菌の細胞表層の撮像画像から、死菌の所定のデータを得、殺菌処理による殺菌機序の情報を得る、殺菌処理の情報取得方法に関する。 The present invention captures bacteria after sterilization using an electron microscope, obtains predetermined data of dead bacteria from captured images of the cell surface of the bacteria, and obtains information on the sterilization mechanism by sterilization. It relates to information acquisition methods.
また本発明は、殺菌処理による殺菌機序の情報を得るための、死菌画像の撮像方法であって、殺菌処理後の菌を溶媒で懸濁し、懸濁液を遠心分離し、遠心分離後の上清をメンブレンフィルターを用いてろ過して菌をメンブレンフィルターに吸着し、メンブレンフィルターに菌を固定し、菌をメンブレンフィルターごと回収し、回収したメンブレンフィルターを臨界点乾燥溶液に浸漬させ、メンブレンフィルターを凍結させ、凍結したメンブレンフィルターを臨界点乾燥させ、臨界点乾燥させたメンブレンフィルターに存在する菌を電子顕微鏡を用いて撮像する、死菌画像の撮像方法に関する。 Further, the present invention is a method for imaging a dead bacteria image for obtaining information on a sterilization mechanism by a sterilization process, wherein the sterilized bacteria are suspended in a solvent, the suspension is centrifuged, and the centrifuged The supernatant is filtered using a membrane filter, the bacteria are adsorbed on the membrane filter, the bacteria are fixed to the membrane filter, the bacteria are collected together with the membrane filter, and the collected membrane filter is immersed in a critical point dry solution to obtain a membrane. The present invention relates to a method for imaging a dead bacteria image in which a filter is frozen, a frozen membrane filter is critical point dried, and bacteria present in the critical point dried membrane filter are imaged using an electron microscope.
本発明によれば、特定の遺伝子或いはタンパク質の発現を解析するバイオインジケーターの解析をすることなく、細胞表面の形状から、電界殺菌処理などにより死滅した死菌とそれ以外の死菌や生菌とを区別し、電界殺菌処理などにより死滅した死菌の殺菌機序、殺菌強度、安全性などを個々の死菌に関する情報を得、解析することができる。 According to the present invention, without analyzing a bioindicator that analyzes the expression of a specific gene or protein, from the shape of the cell surface, killed bacteria killed by electric field sterilization treatment and other dead bacteria and live bacteria It is possible to obtain and analyze information on individual killed bacteria such as the killing mechanism, killing strength, and safety of killed bacteria killed by electric field sterilization treatment.
電界殺菌処理により死滅した死菌は、その細胞形状が大きく崩壊し、生菌や他の原因により死滅した菌と明確に区別できる。よって本発明において、電界殺菌処理などにより細胞形状が大きく崩壊した死菌を回収し、回収した死菌の細胞形状を撮像し所定の情報を得ることで、細胞形状が大きく崩壊した死菌の殺菌機序を解析することができる。 The dead bacteria that have been killed by the electric field sterilization treatment can be clearly distinguished from the dead bacteria due to the viable bacteria and other causes, since the cell shape is greatly collapsed. Accordingly, in the present invention, killed germs whose cell shape has been largely collapsed by electric field sterilization treatment, etc. are collected, and the cell shape of the collected killed bacteria is imaged to obtain predetermined information, so that the killed germs whose cell shape is largely disrupted are sterilized. The mechanism can be analyzed.
電界殺菌処理などにより細胞の構造が大きく変化（崩壊）した死菌について、電界殺菌処理により死滅した死菌を具体例として図１（Ａ）〜（Ｃ）を参照しながら説明する。しかし本発明は、細胞の構造が大きく変化（崩壊）した死菌である限り、電界殺菌処理により死滅した死菌に限定するものではない。 With reference to FIGS. 1 (A) to 1 (C), killed bacteria whose cell structure has been greatly changed (collapsed) by the electric field sterilization process will be described with reference to FIGS. However, the present invention is not limited to killed bacteria that have been killed by the electric field sterilization treatment as long as the structure of the cells is greatly changed (collapsed).
電界殺菌処理後の死菌は、他の殺菌方法（例えば、加熱殺菌、アルコール殺菌）により死滅した死菌とは大きく異なる、特徴的な形状を有する（図１（Ａ）〜（Ｃ）参照）。
具体的には、細胞表層は、約０．０１〜０．５μｍの細孔状であり、かつ突起構造を有する。また、ひだ状の突起が、細胞表層の全体にわたり存在するのも、電界殺菌処理後の死菌特有の特徴である。図１（Ａ）〜（Ｃ）に示す死菌はいずれも、これらのような構造が細胞表層の全体にわたり存在し、表面が粗面化している。
さらに、電界殺菌処理後の死菌の多くは断片化され、細胞表層に孔が存在する（図１（Ａ）〜（Ｃ）参照）。この孔から、細胞内物質が細胞外に漏洩している。
さらに、電界殺菌処理後の死菌は、電界殺菌処理前の生菌よりも細胞径は小さくなる傾向がある。例えば、電界殺菌処理前の黄色ブドウ球菌の生菌の細胞径は約０．８〜１．０μｍである。これに対して、電界殺菌処理後の黄色ブドウ球菌の死菌の細胞径は、約０．４〜１．０μｍであり、その多くは約０.４〜０.５μｍである（図１（Ａ）〜（Ｃ）参照）。
The killed bacteria after the electric field sterilization treatment have a characteristic shape that is greatly different from killed bacteria killed by other sterilization methods (for example, heat sterilization, alcohol sterilization) (see FIGS. 1A to 1C). .
Specifically, the cell surface layer has a pore shape of about 0.01 to 0.5 μm and has a protruding structure. In addition, the presence of pleated protrusions throughout the cell surface is a characteristic characteristic of dead bacteria after electric field sterilization treatment. In any of the killed bacteria shown in FIGS. 1A to 1C, such a structure is present throughout the cell surface layer, and the surface is roughened.
Furthermore, most of the killed bacteria after the electric field sterilization treatment are fragmented, and pores exist in the cell surface layer (see FIGS. 1A to 1C). Through this hole, intracellular substances leak out of the cell.
Furthermore, the dead bacteria after the electric field sterilization treatment tend to have a smaller cell diameter than the live bacteria before the electric field sterilization treatment. For example, the cell diameter of live Staphylococcus aureus before electric field sterilization is about 0.8 to 1.0 μm. On the other hand, the cell diameter of Staphylococcus aureus killed after electric field sterilization is about 0.4 to 1.0 μm, most of which is about 0.4 to 0.5 μm (FIG. 1A). ) To (C)).
これに対して、生菌は、前述の電界殺菌により死滅した死菌とは異なり、細胞表面にはひだ状の突起は存在せず、全体が滑らかである（図２（Ａ）参照）。また、熱が原因で死滅した死菌には、細胞表面に微細な孔が存在するが、生菌と同様細胞表面は全体が滑らかである（図２（Ｂ）参照）。また、黄色ブドウ球菌の生菌及び加熱殺菌処理後の死菌はいずれも、細胞がブドウの房状に連結している。
生菌については、これまでの知見として、グラム陽性菌、グラム陰性菌に関わらず、細胞表層が非常になめらかであり、細胞表面に凹凸はほとんど認められない。さらに、死菌であったとしても、例えば酸刺激や乾燥刺激等により死滅した菌は生菌と同様に表面が滑らかであり、電界殺菌処理後の死菌とは異なり細胞形状に大きな変化は認められない。
On the other hand, unlike the killed bacteria killed by the above-mentioned electric field sterilization, the live bacteria have no pleated projections on the cell surface and are smooth as a whole (see FIG. 2A). In addition, dead cells killed due to heat have fine pores on the cell surface, but the whole cell surface is smooth like the live cells (see FIG. 2B). In addition, both live S. aureus bacteria and killed bacteria after heat sterilization treatment have cells linked to a bunch of grapes.
As for the living bacteria, the cell surface layer is very smooth regardless of the gram-positive bacteria and gram-negative bacteria, and there are almost no irregularities on the cell surface. Furthermore, even if they are dead, for example, bacteria that have been killed by acid stimulation or drying stimulation have a smooth surface like live bacteria. I can't.
以上のように、電界殺菌により死滅した死菌は、細胞形状が大きく変化し、細胞表面には細孔形状やひだ状の突起が存在する。しかし、それ以外の微生物（生菌、並びに電界殺菌以外の機序により死滅した死菌）では、このような形状の細胞は確認されない。
よって、後述の方法により撮像した死菌の画像から、ひだや突起等の有無を確認することで、死菌の死因が電界殺菌による細胞内外の電位差であるか否かを判断することができる。また、電界が原因で死滅した菌と熱が原因で死滅した菌との間でも、細胞表面の形状が大きく異なる。
さらに、後述の方法により撮像した死菌の画像から、ＨＳＰなどのバイオインジケーターを解析することなく、個々の死菌の死滅原因を解析することもできる。
As described above, killed bacteria killed by electric field sterilization change greatly in cell shape, and there are pore-shaped and pleated projections on the cell surface. However, in other microorganisms (live bacteria and dead bacteria killed by a mechanism other than electric field sterilization), cells having such a shape are not confirmed.
Therefore, it is possible to determine whether or not the cause of death of the dead bacteria is a potential difference inside and outside the cells due to electric field sterilization by confirming the presence or absence of folds or protrusions from an image of dead bacteria imaged by the method described later. In addition, the shape of the cell surface is greatly different between bacteria killed due to an electric field and bacteria killed due to heat.
Furthermore, it is possible to analyze the cause of death of individual dead bacteria without analyzing a bioindicator such as HSP from an image of dead bacteria imaged by the method described later.
次に、本発明の殺菌処理の情報取得方法に用いる菌の画像の撮像方法について説明する。しかし本発明は、これに制限するものではない。
本発明の好ましい実施態様では、殺菌処理の情報を取得する殺菌処理後の菌を溶媒で懸濁し、懸濁液を遠心分離し、遠心分離後の上清をメンブレンフィルターを用いてろ過して菌をメンブレンフィルターに吸着し、メンブレンフィルターに菌を固定し、電界殺菌処理により死滅した死菌など、殺菌処理後の菌をメンブレンフィルターごと回収する。そして、回収したメンブレンフィルターに対して、電子顕微鏡を用いた画像の撮影のために必要な処理を行い、電子顕微鏡を用いて死菌画像を撮像する。
Next, a method for capturing a fungus image used in the information acquisition method of the sterilization process of the present invention will be described. However, the present invention is not limited to this.
In a preferred embodiment of the present invention, the bacteria after sterilization treatment for obtaining information on sterilization treatment is suspended in a solvent, the suspension is centrifuged, and the supernatant after centrifugation is filtered using a membrane filter. Is adsorbed on the membrane filter, the bacteria are fixed on the membrane filter, and the sterilized bacteria such as dead bacteria killed by the electric field sterilization are collected together with the membrane filter. Then, the collected membrane filter is subjected to processing necessary for photographing an image using an electron microscope, and a dead bacteria image is captured using the electron microscope.
懸濁液の調製に用いる溶媒に特に制限はなく、適宜選択することができる。例えば、ポリオキシエチレンソルビタンモノオレアート（Polyoxyethylene Sorbitan Monooleate）、ポリオキシエチレンソルビタンモノラウレート（Polyoxyethylene sorbitan monolaulate）、ポリオキシエチレンソルビタンモノパルミタート（Polyoxyethylene sorbitan monopalmitate）、モノパルミタートモノステアラート（monopalmitate monostearate）及びモノステアラートモノオレアート（monostearate monooleate）からなる群より選ばれる少なくとも１種の界面活性剤を含有する水溶液が挙げられる。
また、死菌を遠心分離後の上清に移行させるために、溶媒の濃度を適宜設定することが好ましい。例えば、0.05〜0.2質量％が好ましい。
There is no restriction | limiting in particular in the solvent used for preparation of suspension, It can select suitably. For example, polyoxyethylene sorbitan monooleate (Polyoxyethylene Sorbitan Monooleate), polyoxyethylene sorbitan monolaulate, polyoxyethylene sorbitan monopalmitate, monopalmitate monostearate And an aqueous solution containing at least one surfactant selected from the group consisting of monostearate monooleate.
In order to transfer dead bacteria to the supernatant after centrifugation, the concentration of the solvent is preferably set as appropriate. For example, 0.05 to 0.2% by mass is preferable.
調製した懸濁液を遠心分離し、上清を回収する。上清には、前述のように細胞形状が大きく変化した死菌が含まれている。
細胞形状が大きく変化した死菌を分離できれば、遠心分離条件に特に制限はなく、遠心分離により細胞が損傷を受けて崩壊しない範囲で適宜設定することができる。例えば、７０００〜１５０００Ｇで５〜１５分間遠心分離することが好ましく、１００００〜１５０００Ｇで１０〜１５分間することがより好ましく、１５０００Ｇで１５分間することがさらに好ましい。懸濁液を冷却しながら遠心分離を行うことが好ましいこの遠心分離条件は、例えば特開２００８−２８６５９１号公報等に示される従来法における条件（10,000Ｇで10分間程度）よりも、遠心分離の度合いが大きい。このような条件を採用することにより、細胞形状が大きく変化した死菌を上清中に移行させることができる。
本発明において、遠心分離前の懸濁液には、電界殺菌などにより細胞形状が大きく変化した死菌に加え、細胞のサイズが大きい生菌や死菌、微生物の細胞片などが含まれる。このような懸濁液に対して、遠心分離を行わずに後述するメンブレンフィルターを用いたろ過を行うと、容易に目詰まりが起きてしまい、死菌の回収効率が大きく低下する。これに対して、メンブレンフィルターを用いてろ過を行う前に懸濁液の遠心分離を行うことで、細胞のサイズが大きい生菌や死菌、微生物の細胞片等の夾雑物の多くはペレットとして分離できる。その結果、後段のメンブレンフィルターを用いたろ過を効率的に行うことができる。さらに、従来法における条件よりも遠心分離の度合いを高めることで、生菌などの夾雑物の大部分が上清に残らず、死菌と生菌との識別能を上げることができる。そのため、残渣の少ない鮮明な死菌画像の撮像を行うことができる。
Centrifuge the prepared suspension and collect the supernatant. The supernatant contains dead bacteria whose cell shape has changed significantly as described above.
As long as dead cells whose cell shape has greatly changed can be separated, the centrifugation conditions are not particularly limited, and can be set as appropriate as long as the cells are not damaged and destroyed by centrifugation. For example, it is preferable to centrifuge at 7000 to 15000 G for 5 to 15 minutes, more preferably 10000 to 15000 G for 10 to 15 minutes, and further preferably 15000 G for 15 minutes. It is preferable to perform the centrifugal separation while cooling the suspension. The centrifugal conditions are, for example, higher than those in the conventional method shown in Japanese Patent Application Laid-Open No. 2008-286591 (about 10,000 minutes at 10,000 G). The degree is large. By adopting such conditions, killed bacteria whose cell shape has greatly changed can be transferred into the supernatant.
In the present invention, the suspension before centrifugation includes dead bacteria whose cell shape has been greatly changed by electric field sterilization or the like, live bacteria and dead bacteria having a large cell size, microbial cell fragments, and the like. When such a suspension is subjected to filtration using a membrane filter described later without performing centrifugation, clogging easily occurs, and the collection efficiency of dead bacteria is greatly reduced. On the other hand, by centrifuging the suspension before filtration using a membrane filter, many contaminants such as viable and dead cells with large cell size and microbial cell debris are formed as pellets. Can be separated. As a result, it is possible to efficiently perform filtration using the subsequent membrane filter. Furthermore, by increasing the degree of centrifugation over the conditions in the conventional method, most of the contaminants such as live bacteria do not remain in the supernatant, and the ability to discriminate between dead and live bacteria can be improved. Therefore, it is possible to capture a clear dead germ image with little residue.
遠心分離後の上清に対してメンブレンフィルターを用いてろ過を行い、ろ液中の死菌をメンブレンフィルターに吸着させる。本発明においてメンブレンフィルターの孔径は、殺菌処理前後の細胞のサイズを比較し、適宜設定することができる。
具体的には、黄色ブドウ球菌の生菌の細胞径は約０．８〜１．０μｍである。これに対して、電界殺菌処理後の死菌をＳＥＭで観察したところ、細胞形状が大きく変化しており、死菌の多くは、約０．４〜０．５μｍである。よって、細胞形状が大きく変化した死菌の大きさが生菌の約半分程度であることを考慮して、メンブレンフィルターの孔径を設定することが好ましい。具体的には、メンブレンフィルターの孔径は、０．１〜０．４５μｍが好ましい。
The supernatant after centrifugation is filtered using a membrane filter, and dead bacteria in the filtrate are adsorbed on the membrane filter. In the present invention, the pore size of the membrane filter can be appropriately set by comparing the cell sizes before and after the sterilization treatment.
Specifically, the cell diameter of live Staphylococcus aureus is about 0.8 to 1.0 μm. On the other hand, when the dead bacteria after the electric field sterilization treatment were observed with an SEM, the cell shape was greatly changed, and most of the dead bacteria were about 0.4 to 0.5 μm. Therefore, it is preferable to set the pore size of the membrane filter in consideration that the size of dead bacteria whose cell shape has greatly changed is about half that of live bacteria. Specifically, the pore size of the membrane filter is preferably 0.1 to 0.45 μm.
本発明において、メンブレンフィルターを用いたろ過を行う前に、上清に含まれる細胞形状が大きく変化した死菌を、細胞のサイズが大きい生菌や死菌、微生物の細胞片などと分離するために、除塵処理を行うことが好ましい。除塵処理とメンブレンフィルターを用いたろ過とを段階的に行うことで、メンブレンフィルターの目詰まりを抑制し、目的の死菌をメンブレンフィルターに吸着させるために要する時間を短縮することができる。
除塵処理は、通常の除塵目的のフィルター、例えばストマフィルター等のデプスタイプのフィルターを用いて行うことができる。除塵処理に用いることができるフィルターは、遠心処理でも落としきれなかったサイズの大きい残渣や、一部生菌の透過を阻止するが、粒径が小さい本発明で回収する死菌は透過できるよう、適宜選択することができる。
In the present invention, before performing filtration using a membrane filter, in order to separate dead bacteria whose cell shape is greatly changed contained in the supernatant from living bacteria or dead bacteria having a large cell size, microbial cell fragments, etc. In addition, it is preferable to perform a dust removal treatment. By performing the dust removal process and the filtration using the membrane filter in stages, the clogging of the membrane filter can be suppressed, and the time required for adsorbing the target dead bacteria to the membrane filter can be shortened.
The dust removal treatment can be performed using a normal dust removal filter, for example, a depth type filter such as a stoma filter. The filter that can be used for dust removal treatment prevents large-sized residues that could not be removed even by centrifugation, and some viable bacteria, but allows the killed bacteria recovered in the present invention with a small particle size to penetrate, It can be selected appropriately.
上述の工程を経ることで、細胞形状が大きく変化した死菌をメンブレンフィルターに吸着させることができる。そして、吸着した死菌をメンブレンフィルターに固定し、死菌が固定されたメンブレンフィルターごと回収することで、目的の死菌を回収することができる。そして、回収したメンブレンフィルターには死菌が吸着及び固定しているので、回収したメンブレンフィルターをＳＥＭなどの電子顕微鏡で観察することで、目的の死菌の撮像を容易に行うことができる。 Through the above-described steps, dead bacteria whose cell shape has changed greatly can be adsorbed to the membrane filter. And the target dead microbe can be collect | recovered by fixing the adsorbed dead microbe to a membrane filter, and collect | recovering the whole membrane filter to which the dead microbe was fixed. Since dead bacteria are adsorbed and fixed on the collected membrane filter, the desired dead bacteria can be easily imaged by observing the collected membrane filter with an electron microscope such as SEM.
メンブレンフィルターに吸着した死菌を固定する方法に特に制限はない。例えば、グルタールアルデヒドなどの固定液に、目的の死菌が吸着したメンブレンフィルターを浸漬し、メンブレンフィルターに死菌を固定する。そして、脱水溶液を滴下し、メンブレンフィルターに固定した死菌を脱水する。脱水処理後、メンブレンフィルターを回収する。
より具体的には、ろ過後のメンブレンフィルターに前固定（予備固定）として2％グルタールアルデヒドを通液し、その後、100mM HEPESを用いてメンブレンフィルター及び吸着した死菌を洗浄する。その後、メンブレンフィルターをディスポーサブルディッシュに菌体を吸着させた表面が上になるように、かつ死菌がはがれ落ちないように極力静かに、メンブレンフィルターの下面が空気を巻き込まないように設置する。空気を巻き込んでしまった場合は、適宜ピンセットで空気抜きを行う。その後、4℃に冷却した2％グルタールアルデヒドを、メンブレンフィルター表面の菌がはがれないように、ディスポーサブルディッシュの壁面に当たるように、緩やかに４〜５ｍＬ滴下する。その後、4℃で18時間以上固定する。固定の際、メンブレンフィルターが浮き上がり、メンブレンフィルターに菌体（死菌）が固定されないことがあるため、一定時間毎にメンブレンフィルターが固定液（グルタールアルデヒド）に完全に浸漬されているかを確認する。メンブレンフィルターが浮かび上がっている場合は、メンブレンフィルター外周部をピンセットで押さえつけ、完全に固定液に浸漬させる。そして、メンブレンフィルターに固定した死菌に対して５０〜１００容量％の数段階の濃度区の脱水溶液（エタノール上昇系が好ましい）を低濃度から段階的に順次滴下し、メンブレンフィルターに固定した死菌を脱水する。脱水処理後、メンブレンフィルターを回収する。
There is no particular limitation on the method for fixing dead bacteria adsorbed on the membrane filter. For example, a membrane filter to which the target dead bacteria are adsorbed is immersed in a fixing solution such as glutaraldehyde, and the dead bacteria are fixed to the membrane filter. Then, a dewatered aqueous solution is dropped to dehydrate dead bacteria fixed on the membrane filter. After the dehydration treatment, collect the membrane filter.
More specifically, 2% glutaraldehyde is passed through the membrane filter after filtration as pre-fixation (preliminary fixation), and then the membrane filter and adsorbed dead bacteria are washed with 100 mM HEPES. After that, the membrane filter is placed so that the surface on which the microbial cells are adsorbed on the disposable dish is on the top and quietly as much as possible so that dead bacteria do not come off, and the lower surface of the membrane filter is placed so as not to entrain air. If air is trapped, remove the air with tweezers. Thereafter, 4% to 5 mL of 2% glutaraldehyde cooled to 4 ° C. is gently dropped so as to hit the wall surface of the disposable dish so that bacteria on the surface of the membrane filter do not peel off. Then, fix at 4 ℃ for 18 hours or more. When fixing, since the membrane filter may float and the cells (dead bacteria) may not be fixed to the membrane filter, check whether the membrane filter is completely immersed in the fixing solution (glutaraldehyde) at regular intervals. . If the membrane filter is floating, press the outer periphery of the membrane filter with tweezers and immerse it completely in the fixative. Then, 50 to 100% by volume of dehydrated solution (ethanol-elevating system is preferable) is gradually dropped from a low concentration step by step to the dead bacteria fixed on the membrane filter, and the dead fixed on the membrane filter. Dehydrate bacteria. After the dehydration treatment, collect the membrane filter.
従来の殺菌方法で死滅する死菌は、懸濁液を遠心分離すると、死菌はペレットに移行する。これに対し本発明では、懸濁液の遠心分離後の上清をろ過し、死菌が吸着したメンブレンフィルターを回収する。したがって、前述の工程を経て回収したメンブレンフィルターは、所定の処理を行うことで電子顕微鏡での撮像に供することができる。
電子顕微鏡を用いた撮像方法に特に制限はなく、常法により行うことができる。以下、死菌の撮像方法について具体的に説明する。しかし本発明は、これに制限するものではない。
例えば、脱水処理後のメンブレンフィルターをディスポーサブルディッシュに移し、t-ブタノール（試薬特級）などの臨界点乾燥溶液に完全に浸漬させ、凍結させる。その後、凍結したメンブレンフィルターをディスポーサブルディッシュごと臨界点乾燥器に設置し臨界点乾燥を行う。臨界点乾燥前にメンブレンフィルターを臨界点乾燥溶液に浸漬させることで、死菌の細胞表層の微細構造（鞭毛や繊毛など）を保護ないし維持したまま、乾燥させることができる。なお本発明において「臨界点乾燥」とは、脱水後の試料を液化炭酸ガスと共に圧力容器中に入れて加温する方法であり、常法により行うことができる。
臨界点乾燥溶液を完全に揮散させた後、メンブレンフィルターをSEM試料台に観察面が上になるように載置し、イオンスパッターで白金バナジウムを蒸着させる。その後、常温ＳＥＭやクライオ(FIB)ＳＥＭなどにより、死菌を撮像することができる。
The dead bacteria that are killed by the conventional sterilization method are transferred to a pellet when the suspension is centrifuged. In contrast, in the present invention, the supernatant after centrifugation of the suspension is filtered, and the membrane filter to which dead bacteria are adsorbed is collected. Therefore, the membrane filter collected through the above-described steps can be used for imaging with an electron microscope by performing a predetermined process.
There is no restriction | limiting in particular in the imaging method using an electron microscope, It can carry out by a conventional method. Hereinafter, a method for imaging dead bacteria will be described in detail. However, the present invention is not limited to this.
For example, the dehydrated membrane filter is transferred to a disposable dish, completely immersed in a critical point dry solution such as t-butanol (special grade reagent), and frozen. After that, the frozen membrane filter is disposed in the critical point dryer together with the disposable dish to perform critical point drying. By immersing the membrane filter in a critical point dry solution before critical point drying, the membrane surface layer of dead bacteria can be dried while protecting or maintaining the fine structure (flagella, cilia, etc.). In the present invention, “critical point drying” is a method in which a sample after dehydration is placed in a pressure vessel together with liquefied carbon dioxide gas and heated, and can be performed by a conventional method.
After the critical point dry solution is completely volatilized, the membrane filter is placed on the SEM sample stage with the observation surface facing up, and platinum vanadium is deposited by ion sputtering. Thereafter, killed bacteria can be imaged by room temperature SEM, cryo (FIB) SEM, or the like.
上述した実施形態に関し、本発明はさらに以下の殺菌処理の情報取得方法並びに死菌画像の撮像方法を開示する。 In relation to the above-described embodiment, the present invention further discloses the following information acquisition method of sterilization treatment and imaging method of killed bacteria image.
＜１＞殺菌処理後の菌を電子顕微鏡を用いて撮像し、菌の細胞表層の撮像画像から、死菌の所定のデータを得、殺菌処理による殺菌機序の情報を得る、殺菌処理の情報取得方法。 <1> Sterilization treatment information obtained by taking an image of bacteria after sterilization treatment using an electron microscope, obtaining predetermined data of killed bacteria from an image of the cell surface of the bacterium, and obtaining information on the sterilization mechanism by the sterilization treatment Acquisition method.
＜２＞殺菌処理後の菌を溶媒で懸濁し、
懸濁液を遠心分離し、
遠心分離後の上清をメンブレンフィルターを用いてろ過して菌をメンブレンフィルターに吸着し、
メンブレンフィルターに菌を固定し、
菌をメンブレンフィルターごと回収し、
回収したメンブレンフィルターを臨界点乾燥溶液に浸漬させ、
メンブレンフィルターを凍結させ、
凍結したメンブレンフィルターを臨界点乾燥させ、
臨界点乾燥させたメンブレンフィルターに存在する菌を電子顕微鏡を用いて撮像し、
菌の細胞表層の撮像画像から、死菌の所定のデータを得、殺菌処理による殺菌機序の情報を得る、
殺菌処理の情報取得方法。
<2> Suspend the sterilized bacteria with a solvent,
Centrifuge the suspension,
The supernatant after centrifugation is filtered using a membrane filter to adsorb bacteria to the membrane filter,
Fix the bacteria on the membrane filter,
Collect the fungus together with the membrane filter,
Immerse the collected membrane filter in the critical point dry solution,
Freeze the membrane filter,
Dry the frozen membrane filter at the critical point,
Take an image of the bacteria present in the critical point dried membrane filter using an electron microscope,
From the captured image of the cell surface layer of the fungus, obtain the predetermined data of dead bacteria, get information on the sterilization mechanism by sterilization treatment,
Information acquisition method of sterilization treatment.
＜３＞前記撮像画像から、細胞表層に細孔形状及び突起構造が出現し、細胞表層全体が粗面化しているとき、電界殺菌処理の電界により菌が死滅したとの情報を得る、前記＜１＞又は＜２＞項記載の方法。
＜４＞前記死菌の細胞表層の細孔のサイズが約０．０１〜０．５μｍである、前記＜３＞項記載の方法。
＜５＞前記撮像画像から、菌の細胞表層の全体にわたり、細孔形状が露出したひだ状の突起が存在するとき、電界殺菌処理の電界により菌が死滅したとの情報を得る、前記＜１＞又は＜２＞項記載の方法。
＜６＞前記撮像画像から、菌の細胞が断片化され、断片化細胞内に孔が存在しているとき、電界殺菌処理の電界により菌が死滅したとの情報を得る、前記＜１＞〜＜５＞のいずれか１項記載の方法。
＜７＞前記撮像画像から、菌の細胞内物質が、前記孔から細胞外に漏洩しているとき、電界殺菌処理の電界により菌が死滅したとの情報を得る、前記＜６＞項記載の方法。
＜８＞前記撮像画像から、菌の細胞径が約０．４〜１．０μｍ、好ましくは約０.４〜０.５μｍであるとき、電界殺菌処理の電界により菌が死滅したとの情報を得る、前記＜１＞〜＜７＞のいずれか１項記載の方法。
＜９＞メンブレンフィルターに固定した菌それぞれの殺菌機序の情報を得る、前記＜１＞〜＜８＞のいずれか１項記載の方法。
＜１０＞前記撮像画像から、ひだ、ないし突起の有無を確認することで、死菌の死因が電界殺菌による細胞内外の電位差であるか否かを判断する、前記＜１＞〜＜９＞のいずれか１項記載の方法。
<3> From the captured image, when the pore shape and the protrusion structure appear on the cell surface and the entire cell surface is roughened, the information that the bacteria are killed by the electric field of the electric field sterilization treatment is obtained, The method according to item 1 or <2>.
<4> The method according to <3>, wherein the size of the pores on the cell surface layer of the killed bacteria is about 0.01 to 0.5 μm.
<5> From the captured image, when there are pleated protrusions whose pore shape is exposed over the entire cell surface layer of the fungus, information that the fungus has been killed by the electric field of the electric field sterilization treatment is obtained. > Or <2>.
<6> From the captured image, when bacteria cells are fragmented and pores are present in the fragmented cells, information indicating that the bacteria have been killed by the electric field of the electric field sterilization treatment is obtained. The method according to any one of <5>.
<7> The information according to <6>, wherein information is obtained from the captured image that the bacteria have been killed by an electric field of an electric field sterilization treatment when the intracellular substance of the bacteria leaks out of the cell through the holes. Method.
<8> From the captured image, when the cell diameter of the bacteria is about 0.4 to 1.0 μm, preferably about 0.4 to 0.5 μm, information that the bacteria have been killed by the electric field of the electric field sterilization treatment The method according to any one of <1> to <7>, which is obtained.
<9> The method according to any one of <1> to <8>, wherein information on the sterilization mechanism of each bacterium fixed to the membrane filter is obtained.
<10> The above <1> to <9>, wherein it is determined from the captured image whether or not the cause of death of the killed bacteria is a potential difference between the inside and outside of the cells due to electric field sterilization by confirming the presence or absence of folds or protrusions. The method of any one of Claims.
＜１１＞前記＜１＞〜＜１０＞のいずれか１項で用いる死菌画像の撮像方法であって、
殺菌処理後の菌を溶媒で懸濁し、
懸濁液を遠心分離し、
遠心分離後の上清をメンブレンフィルターを用いてろ過して菌をメンブレンフィルターに吸着し、
メンブレンフィルターに菌を固定し、
菌をメンブレンフィルターごと回収し、
回収したメンブレンフィルターを臨界点乾燥溶液に浸漬させ、
メンブレンフィルターを凍結させ、
凍結したメンブレンフィルターを臨界点乾燥させ、
臨界点乾燥させたメンブレンフィルターに存在する菌を電子顕微鏡を用いて撮像する、
死菌画像の撮像方法。
<11> A method for capturing a killed bacteria image used in any one of <1> to <10>,
Suspend the sterilized bacteria with a solvent,
Centrifuge the suspension,
The supernatant after centrifugation is filtered using a membrane filter to adsorb bacteria to the membrane filter,
Fix the bacteria on the membrane filter,
Collect the fungus together with the membrane filter,
Immerse the collected membrane filter in the critical point dry solution,
Freeze the membrane filter,
Dry the frozen membrane filter at the critical point,
Imaging the bacteria present in the critical point dried membrane filter using an electron microscope,
Imaging method of dead bacteria image.
＜１２＞前記臨界点乾燥溶液がt-ブタノールである、前記＜１＞〜＜１１＞のいずれか１項記載の方法。
＜１３＞遠心分離後の上清に対して除塵処理を行い、除塵処理後の上清に対して前記メンブレンフィルターを用いてろ過を行う、前記＜１＞〜＜１２＞のいずれか１項記載の方法。
＜１４＞デプスタイプのフィルターを用いて前記除塵処理を行う、前記＜１３＞項記載の方法。
＜１５＞前記除塵処理により、上清に含まれる細胞形状が大きく変化した死菌を、細胞径の大きい生菌及び死菌、並びに微生物の細胞片などと分離する、前記＜１３＞又は＜１４＞項記載の方法。
＜１６＞メンブレンフィルターの孔径が０．１〜０．４５μｍである、前記＜１＞〜＜１５＞のいずれか１項記載の方法。
＜１７＞前記懸濁液を７０００〜１５０００Ｇで５〜１５分間、好ましくは１００００〜１５０００Ｇで１０〜１５分間、より好ましくは１５０００Ｇで１５分間遠心分離する、前記＜１＞〜＜１６＞のいずれか１項記載の方法。
＜１８＞前記溶媒が、ポリオキシエチレンソルビタンモノオレアート、ポリオキシエチレンソルビタンモノラウレート、ポリオキシエチレンソルビタンモノパルミタート、モノパルミタートモノステアラート及びモノステアラートモノオレアートからなる群より選ばれる少なくとも１種の界面活性剤を含有する水溶液である、前記＜１＞〜＜１７＞のいずれか１項記載の方法。
＜１９＞前記溶媒の濃度が0.05〜0.2質量％である、前記＜１＞〜＜１９＞のいずれか１項記載の方法。
<12> The method according to any one of <1> to <11>, wherein the critical point dry solution is t-butanol.
<13> Any one of <1> to <12>, wherein the supernatant after centrifugation is subjected to dust removal, and the supernatant after dust removal is filtered using the membrane filter. the method of.
<14> The method according to <13>, wherein the dust removal treatment is performed using a depth type filter.
<15> The above-described <13> or <14, wherein the dead bacteria whose cell shape is greatly changed by the dust removal treatment is separated from live bacteria and dead bacteria having a large cell diameter, microbial cell fragments, and the like. The method described in the item>.
<16> The method according to any one of <1> to <15>, wherein the pore size of the membrane filter is 0.1 to 0.45 μm.
<17> Any of the above <1> to <16>, wherein the suspension is centrifuged at 7000 to 15000 G for 5 to 15 minutes, preferably 10000 to 15000 G for 10 to 15 minutes, more preferably 15000 G for 15 minutes. The method according to claim 1.
<18> The solvent is selected from the group consisting of polyoxyethylene sorbitan monooleate, polyoxyethylene sorbitan monolaurate, polyoxyethylene sorbitan monopalmitate, monopalmitate monostearate, and monostearate monooleate The method according to any one of <1> to <17>, wherein the method is an aqueous solution containing at least one surfactant.
<19> The method according to any one of <1> to <19>, wherein the concentration of the solvent is 0.05 to 0.2% by mass.
以下、本発明を実施例に基づきさらに詳細に説明するが、本発明はこれに限定されるものではない。 EXAMPLES Hereinafter, although this invention is demonstrated further in detail based on an Example, this invention is not limited to this.
（１）供試菌の調製
黄色ブドウ球菌 NBRC 12732及び大腸菌 ATCC 8739をそれぞれ液体培地（ニュートリエントブロス）10ｍLに1白金耳量接種し、37℃、120rpmで24時間振盪培養を行った。その後、培養液100μLを液体培地（ニュートリエントブロス）10mLに接種し、37℃、120rpmで２〜４時間振盪培養（本培養）を行った。
本培養菌液を20倍に希釈したニュートリエントブロスを用いて、菌数を1〜3×105CFU/mLになるように調整し、菌液を調製した。
(1) Preparation of Test Bacteria Staphylococcus aureus NBRC 12732 and E. coli ATCC 8739 were each inoculated in a volume of 1 platinum in 10 mL of a liquid medium (Nutrient broth) and cultured with shaking at 37 ° C. and 120 rpm for 24 hours. Thereafter, 100 μL of the culture solution was inoculated into 10 mL of a liquid medium (nutrient broth), and shaking culture (main culture) was performed at 37 ° C. and 120 rpm for 2 to 4 hours.
Using a nutrient broth obtained by diluting the main culture bacterial solution 20 times, the bacterial count was adjusted to 1 to 3 × 10 5 CFU / mL to prepare a bacterial solution.
（２）殺菌試験
圧電性ポリ乳酸で作成したニットを伸長させると電界が発生する。この電界で菌を死滅させられることが知られている。
圧電性ポリ乳酸で作成したニットを引張機に150g加重で設置した。設置後、前記菌液200μLを10〜15スポット試験布上及びJIS L 1902指定の普通布に接種した。その後圧電性ポリ乳酸製ニットは引張機により10mmのストロークで、普通布は静置条件において、37℃で18時間培養した。
培養後の各試験布は抽出液を用いて、布上の菌を回収し、培養法にて生菌数を測定した。
(2) Bactericidal test When a knit made of piezoelectric polylactic acid is stretched, an electric field is generated. It is known that bacteria can be killed by this electric field.
A knit made of piezoelectric polylactic acid was placed on a tension machine with a load of 150 g. After the installation, 200 μL of the bacterial solution was inoculated on a 10 to 15 spot test cloth and a normal cloth designated by JIS L 1902. Thereafter, the piezoelectric polylactic acid knit was cultivated at 37 ° C. for 18 hours under a standing condition with a 10 mm stroke by a tension machine.
For each test cloth after culture, the extract on the cloth was used to collect the bacteria on the cloth, and the number of viable bacteria was measured by a culture method.
（３）死菌の回収
0.2〜0.05質量％Tween80（ポリオキシエチレンソルビタンモノオレアート）水溶液20ｍＬに、電界殺菌処理後の菌を懸濁した。そして、高速冷却遠心機（ヤマト科学）及びアングルローターF-35-6-30を用いて、１５０００Ｇで１５分間、4℃に冷却しながら懸濁液を遠心分離した。
遠心分離後の上清を回収し、ストマフィルター（アズワン）でろ過し、除塵処理を行った。その後、ポアサイズ0.2μｍのアイソポアＧＴＴＰ０４７００及びディスポーサブルシリンジを用いて全量ろ過し、死菌をメンブレンフィルター上に吸着させた。
ろ過後のメンブレンフィルターに0.1MHEPES1mLを通液してメンブレンフィルターを洗浄し、さらに2％グルタールアルデヒド1mLを通液し前固定を行った。通液後のメンブレンフィルターを、ろ過面が上になるようにディスポーザブルディッシュに設置した。メンブレンフィルターに直接固定液がかからないようにディスポーザブルディッシュの壁面に2％グルタールアルデヒド4mLを滴下し、メンブレンフィルターが浮かび上がらないようにピンセットなどで押さえながら、4℃で18時間固定した。
その後、固定液全量を回収廃棄した後、フィルター表面に直接かからないようにしながら、エタノール上昇系（50、70、80、90、95、100（1回目）、100（2回目）％）で各30分間4℃で脱水した。
(3) Recovery of dead bacteria
The bacteria after the electric field sterilization treatment were suspended in 20 mL of 0.2 to 0.05 mass% Tween80 (polyoxyethylene sorbitan monooleate) aqueous solution. Then, using a high-speed cooling centrifuge (Yamato Scientific) and an angle rotor F-35-6-30, the suspension was centrifuged while being cooled to 4 ° C. for 15 minutes at 15000 G.
The supernatant after centrifugation was collected, filtered through a stoma filter (As One), and dust-removed. Thereafter, the whole amount was filtered using an isopore GTTP04700 having a pore size of 0.2 μm and a disposable syringe to adsorb dead bacteria on the membrane filter.
The membrane filter was washed by passing 1 mL of 0.1 MHEPES through the membrane filter after filtration, and further fixed with 1 mL of 2% glutaraldehyde. The membrane filter after passing was placed in a disposable dish so that the filtration surface was on top. 4 mL of 2% glutaraldehyde was dropped on the wall surface of the disposable dish so that the fixing solution was not directly applied to the membrane filter, and the membrane filter was fixed at 4 ° C. for 18 hours while holding it with tweezers so that the membrane filter did not rise.
Then, after recovering and discarding the entire fixative solution, 30% each in the ethanol ascending system (50, 70, 80, 90, 95, 100 (first time), 100 (second time)%) while avoiding direct contact with the filter surface Dehydrated at 4 ° C. for minutes.
（４）死菌の撮像
脱水処理後のメンブレンフィルターは4mlのt-ブタノールに完全に浸漬させてディスポーサブルディッシュごと−20℃で30分以上凍結させた。凍結後のディスポーサブルディッシュ及びメンブレンフィルターは臨界点乾燥器ES-2030（日立）を用いて臨界点乾燥を行った。乾燥後のメンブレンフィルターはSEM試料台（日新EM）に固定し、イオンスパッターE-1030（日立）を用いて３０ｍＡで80秒白金蒸着した。白金蒸着後のメンブレンフィルターはSEM S-4300E（日立）を用いて観察及び撮影を行った。
(4) Imaging of dead bacteria The membrane filter after the dehydration treatment was completely immersed in 4 ml of t-butanol and frozen at −20 ° C. for 30 minutes or more together with the disposable dish. The disposable dish and the membrane filter after freezing were subjected to critical point drying using a critical point dryer ES-2030 (Hitachi). The dried membrane filter was fixed on a SEM sample stage (Nisshin EM), and platinum was deposited at 30 mA for 80 seconds using an ion sputtering E-1030 (Hitachi). The membrane filter after platinum deposition was observed and photographed using SEM S-4300E (Hitachi).
その結果を図１に示す。図１に示すように、遠心分離後の上清から回収した電界殺菌処理後の菌は、グラム陽性、グラム陰性に関わらず細胞が断片化されている。また細胞表層が粗面化し、細胞を覆うようにひだ状の構造物（突起）が露出している。さらに、生菌では認められない細胞表層の細孔（ポア）が認められ、細胞内物質が細胞外に漏洩している。細胞表層のひだ状構造は、それ以外の部位と比較して盛り上がった状態であり、細胞骨格様の構造として存在している。
さらに、黄色ブドウ球菌の死菌は、ブドウの房状の連結が認められなくなる（図１（Ａ）及び（Ｂ）参照）。
The result is shown in FIG. As shown in FIG. 1, the cells after the electric field sterilization treatment collected from the supernatant after centrifugation are fragmented regardless of whether they are gram positive or gram negative. Further, the cell surface layer is roughened, and pleated structures (projections) are exposed so as to cover the cells. In addition, pores (pores) in the cell surface that are not recognized by viable bacteria are observed, and intracellular substances leak out of the cells. The pleated structure of the cell surface layer is in a raised state as compared with other parts, and exists as a cytoskeleton-like structure.
Furthermore, Staphylococcus aureus killed bacteria are no longer connected to the tufts of grapes (see FIGS. 1A and 1B).
以上のように、電界殺菌により死滅した菌は、生菌や他の殺菌処理により死滅した死菌の公知の細胞の形状とは大きく異なる。よって、本発明の方法によれば、バイオインジケーターの解析をすることなく、電界殺菌処理により死滅した死菌の殺菌機序、殺菌強度、安全性などを個々の死菌に関する情報を得、解析することができる。 As described above, the bacteria killed by the electric field sterilization are greatly different from the known cell shape of the dead bacteria killed by the live bacteria and other sterilization treatments. Therefore, according to the method of the present invention, without analyzing the bioindicator, information on individual killed bacteria is obtained and analyzed for killing mechanism, killing strength, safety, etc. of killed bacteria killed by electric field sterilization treatment. be able to.
Claims (13)
懸濁液を遠心分離し、
遠心分離後の上清をメンブレンフィルターを用いてろ過して菌をメンブレンフィルターに吸着し、
メンブレンフィルターに菌を固定し、
菌をメンブレンフィルターごと回収し、
回収したメンブレンフィルターを臨界点乾燥溶液に浸漬させ、
メンブレンフィルターを凍結させ、
凍結したメンブレンフィルターを臨界点乾燥させ、
臨界点乾燥させたメンブレンフィルターに存在する菌を電子顕微鏡を用いて撮像し、
菌の細胞表層の撮像画像から、死菌の所定のデータを得、殺菌処理による殺菌機序の情報を得る、
殺菌処理の情報取得方法。 Suspend the sterilized bacteria with a solvent,
Centrifuge the suspension,
The supernatant after centrifugation is filtered using a membrane filter to adsorb bacteria to the membrane filter,
Fix the bacteria on the membrane filter,
Collect the fungus together with the membrane filter,
Immerse the collected membrane filter in the critical point dry solution,
Freeze the membrane filter,
Dry the frozen membrane filter at the critical point,
Take an image of the bacteria present in the critical point dried membrane filter using an electron microscope,
From the captured image of the cell surface layer of the fungus, obtain the predetermined data of dead bacteria, get information on the sterilization mechanism by sterilization treatment,
Information acquisition method of sterilization treatment.
殺菌処理後の菌を溶媒で懸濁し、
懸濁液を遠心分離し、
遠心分離後の上清をメンブレンフィルターを用いてろ過して菌をメンブレンフィルターに吸着し、
メンブレンフィルターに菌を固定し、
菌をメンブレンフィルターごと回収し、
回収したメンブレンフィルターを臨界点乾燥溶液に浸漬させ、
メンブレンフィルターを凍結させ、
凍結したメンブレンフィルターを臨界点乾燥させ、
臨界点乾燥させたメンブレンフィルターに存在する菌を電子顕微鏡を用いて撮像する、
死菌画像の撮像方法。 An imaging method for killed bacteria image used in any one of claims 1 to 8,
Suspend the sterilized bacteria with a solvent,
Centrifuge the suspension,
The supernatant after centrifugation is filtered using a membrane filter to adsorb bacteria to the membrane filter,
Fix the bacteria on the membrane filter,
Collect the fungus together with the membrane filter,
Immerse the collected membrane filter in the critical point dry solution,
Freeze the membrane filter,
Dry the frozen membrane filter at the critical point,
Imaging the bacteria present in the critical point dried membrane filter using an electron microscope,
Imaging method of dead bacteria image.
The method according to claim 1, wherein the suspension is centrifuged at 7000 to 15000 G for 5 to 15 minutes.
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