JP2018143186A - ブリ類のハダムシ抵抗性検査方法 - Google Patents
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Abstract
【課題】ブリ類のハダムシ抵抗性を検査するための方法を提供する。【解決手段】ブリ類から採取したＤＮＡの、ブリ連鎖群ＬＧ２上のマイクロサテライトマーカーＤＮＡマーカー座Ｓｅｑｕ０１２５ＴＵＦとＳｅｑｕ１０６６ＴＵＦとの間に位置する特定の塩基配列の特定の塩基の一塩基多型の遺伝型を調べる段階、及び該遺伝型に基づいてブリ類のハダムシ抵抗性を判定する段階から成る、ブリ類のハダムシ抵抗性を検査する方法、及び検査に使用するためのプライマーセット。【選択図】なし
Description
この発明は、天然のブリ類のハダムシ抵抗性を検査する方法に関し、より詳細には、一塩基多型（SNP）を利用してブリ類のハダムシ抵抗性を検査する方法に関する。
ブリ類は日本における海面養殖生産量の過半を占める重要養殖対象種である。現状のブリ養殖は天然種苗を採捕し出荷サイズまで畜養する天然資源に依存した養殖である。より安定した養殖生産のために、天然種苗に依存しない人工種苗の早期導入と、人工種苗への優良形質の付与に関する技術開発が行われている。ブリ養殖における大きな障害の一つとしてベネデニア症があげられる。ベネデニア症は単生類の寄生虫ハダムシ（Benedenia seriolae）がブリ類の体表に寄生することによって生じる。ベネデニア症は粘液過多や成長不良の原因となる他、ハダムシを排除するために魚が体を生簀の網地に擦り付けるために体表に生じる擦り傷からの二次日和見感染による大量斃死も誘引し、大きな経済的な損失をもたらしている。現在、ベネデニア症の治療法として、淡水浴、市販の駆虫薬への薬浴、駆虫薬の経口投与などの方法が用いられている（特許文献１，２等）。
発明者らはブリ天然魚F1を用いたQTL（Quantitative trait locus、量的形質遺伝子座）解析により、ベネデニア症抵抗性（ハダムシが寄生し難い、寄生数が少ない）形質と遺伝学的に連鎖したゲノム領域が連鎖群LG2上のマイクロサテライトDNAマーカー座Sequ0125TUF とSequ1066TUFの間の遺伝距離5.5 cM（センチモルガン）にあることを特定している（非特許文献1）。
発明者らはブリ天然魚F1を用いたQTL（Quantitative trait locus、量的形質遺伝子座）解析により、ベネデニア症抵抗性（ハダムシが寄生し難い、寄生数が少ない）形質と遺伝学的に連鎖したゲノム領域が連鎖群LG2上のマイクロサテライトDNAマーカー座Sequ0125TUF とSequ1066TUFの間の遺伝距離5.5 cM（センチモルガン）にあることを特定している（非特許文献1）。
Plos one 8, e64987 (June 2013)
ブリ類の天然種苗からのハダムシの寄生への抵抗性を有する個体選別が可能となり遺伝的にベネデニア症抵抗性形質を持つ人工種苗が作出されれば、ブリ類養殖における感染症のリスク軽減や駆虫薬や駆虫作業に関わる労務コストの削減等の養殖効率の向上に大きく貢献できるといえる。
発明者らはブリ天然魚について、ベネデニア症抵抗性形質と遺伝学的に連鎖したゲノム領域が連鎖群LG2上のマイクロサテライトDNAマーカー座領域（Sequ0125TUF とSequ1066TUFの間）を特定したが（非特許文献１）、この領域内にどのような遺伝子が存在し、どのようなメカニズムでベネデニア症抵抗性形質が発現するかについては分かっていなかった。
そのため、本発明は、天然のブリ類のハダムシ抵抗性を検査する方法を提供する。
発明者らはブリ天然魚について、ベネデニア症抵抗性形質と遺伝学的に連鎖したゲノム領域が連鎖群LG2上のマイクロサテライトDNAマーカー座領域（Sequ0125TUF とSequ1066TUFの間）を特定したが（非特許文献１）、この領域内にどのような遺伝子が存在し、どのようなメカニズムでベネデニア症抵抗性形質が発現するかについては分かっていなかった。
そのため、本発明は、天然のブリ類のハダムシ抵抗性を検査する方法を提供する。
本発明者らは、ブリ連鎖群LG2上のマイクロサテライトマーカーDNAマーカー座Sequ0125TUFとSequ1066TUFとの間に位置する塩基配列を検査した結果、ベネデニア症抵抗性遺伝子（配列番号１）を見出し（後記の実験例２）、その中に複数の一塩基多型（Single Nucleotide Polymorphism, SNP）を見出した（後記の実施例１）。そして、天然ブリのこの一塩基多型と、別途調べた寄生虫ハダムシの体表への寄生数とを比較した結果、特定の一塩基多型を保持するブリ類においてハダムシの寄生数が減少していることを見出し（後記の実施例１）、ブリ類のハダムシ抵抗性を検査するための方法を見出した。
即ち、本発明は、ブリ類から採取したＤＮＡの、ブリ連鎖群LG2上のマイクロサテライトマーカーDNAマーカー座Sequ0125TUF とSequ1066TUFとの間に位置する配列番号１で示される塩基配列の860番目の塩基の一塩基多型の遺伝型を調べる段階、及び該遺伝型に基づいてブリ類のハダムシ抵抗性を判定する段階から成る、ブリ類のハダムシ抵抗性を検査する方法である。
即ち、本発明は、ブリ類から採取したＤＮＡの、ブリ連鎖群LG2上のマイクロサテライトマーカーDNAマーカー座Sequ0125TUF とSequ1066TUFとの間に位置する配列番号１で示される塩基配列の860番目の塩基の一塩基多型の遺伝型を調べる段階、及び該遺伝型に基づいてブリ類のハダムシ抵抗性を判定する段階から成る、ブリ類のハダムシ抵抗性を検査する方法である。
本発明はベネデニア抵抗性形質と強く連鎖しているブリ連鎖群LG2（非特許文献１のSqu2Fに相当する。）上のマイクロサテライトマーカーDNAマーカー座Sequ0125TUF とSequ1066TUF（図１、非特許文献１のTable２及びTable３）との間に領域に位置するベネデニア症抵抗性遺伝子（配列番号1）の860番目 の塩基の一塩基多型を用いて、ブリ類のベネデニア症抵抗性、すなわちハダムシが体表へ寄生し難いブリ類個体を識別する方法である。
本発明の方法によりベネデニア症への抵抗性を調べることができる魚類は、Seriola 属の魚類であり、和名では、ブリ（学名：Seriola quinqueradiata）、ヒラマサ（学名：Seriola lalandi）、カンパチ（学名：Seriola dumerili）、ヒレナガカンパチ（学名：Seriola rivoliana）、アオブリ、ガンド、ガンドブリ、モジャコ、モジャッコ、イナダ、イナラ、ワラサ、コゾクラ、コズクラ、ツバイソ、フクラギ、フクラゲ、ワカナ、ショウジンゴ、ツバス、ヤズ、ハマチ、メジ、メジロ、ハナジロ、マルゴ、ワカナゴ、オオイナ、スズイナ、オオイオ、ワカシ、マサギ、ヒラサ、ヒラス、ヒラソ、テンコツ、セントク、アガユ、マヤ、外国名では、(Japanese) Amberjack、(Five-ray) Yellowtailと称される魚を含む。本明細書では、これらを総称してブリ類という。
本発明の方法は、特に天然のブリ類のべネデニア症抵抗性を識別することに優れる。
ブリ類同士はゲノム配列と染色体構造の相同性が非常に高いため、この遺伝子の情報は他のブリ類にも適用できるものと推測される。
本発明の方法によりベネデニア症への抵抗性を調べることができる魚類は、Seriola 属の魚類であり、和名では、ブリ（学名：Seriola quinqueradiata）、ヒラマサ（学名：Seriola lalandi）、カンパチ（学名：Seriola dumerili）、ヒレナガカンパチ（学名：Seriola rivoliana）、アオブリ、ガンド、ガンドブリ、モジャコ、モジャッコ、イナダ、イナラ、ワラサ、コゾクラ、コズクラ、ツバイソ、フクラギ、フクラゲ、ワカナ、ショウジンゴ、ツバス、ヤズ、ハマチ、メジ、メジロ、ハナジロ、マルゴ、ワカナゴ、オオイナ、スズイナ、オオイオ、ワカシ、マサギ、ヒラサ、ヒラス、ヒラソ、テンコツ、セントク、アガユ、マヤ、外国名では、(Japanese) Amberjack、(Five-ray) Yellowtailと称される魚を含む。本明細書では、これらを総称してブリ類という。
本発明の方法は、特に天然のブリ類のべネデニア症抵抗性を識別することに優れる。
ブリ類同士はゲノム配列と染色体構造の相同性が非常に高いため、この遺伝子の情報は他のブリ類にも適用できるものと推測される。
上記一塩基多型の検出は、検査対象のブリ類の個体の一部、例えば、尾鰭、血液、腎臓、筋肉などの核が存在する組織からＤＮＡを採取し、このＤＮＡに含まれる一塩基多型の遺伝型を検査する。一塩基多型の検出は、一塩基多型部分の塩基配列を決定することによって行うことができる。一塩基多型部分の塩基配列の決定には、例えば、TaqMan法、ダイレクトシークエンス法、ターゲットシークエンス法、ARMS-PCR法、飽和型DNA結合色素によるHRM解析、PCR-制限酵素切断断片長多型による方法(PCR-RFLP解析)、MALDI-TOF/MSによるSNPタイピング法、DNAチップを用いた方法などを挙げることができる。
一塩基多型の検出には、例えば、ダイレクトシークエンス法を用いることができる。具体的には、上記遺伝子における一塩基多型の検出は、例えば、ブリ類からゲノムＤＮＡを抽出し、前記一塩基多型を含む塩基配列の外側に結合する特異的な配列を有する一対のＰＣＲプライマーを用いてＰＣＲ反応を行い、得られたＰＣＲ産物を増幅に用いたＰＣＲプライマーの内側に設計したプライマー又は増幅に用いたＰＣＲプライマーそのものを用いてDNA塩基配列のシークエンスを行い、得られたＤＮＡの遺伝型を識別することで行うことができる。
一塩基多型の検出には、例えば、ダイレクトシークエンス法を用いることができる。具体的には、上記遺伝子における一塩基多型の検出は、例えば、ブリ類からゲノムＤＮＡを抽出し、前記一塩基多型を含む塩基配列の外側に結合する特異的な配列を有する一対のＰＣＲプライマーを用いてＰＣＲ反応を行い、得られたＰＣＲ産物を増幅に用いたＰＣＲプライマーの内側に設計したプライマー又は増幅に用いたＰＣＲプライマーそのものを用いてDNA塩基配列のシークエンスを行い、得られたＤＮＡの遺伝型を識別することで行うことができる。
各方法に用いるＰＣＲプライマーは、当該遺伝子の塩基配列（配列番号１）の860番目の塩基（C860T）を含む領域を検出するためのプライマーであって、該塩基を含む該塩基配列中の５０〜１００塩基の長さの領域の両端に設定された長さが１５塩基以上、好ましくは１９〜２４塩基のフォワードプライマー及びリバースプライマーから成るプライマーセットである。これらの塩基配列に９０％以上相同であるプライマーを使用してもよい。
このようにして、ブリ類のベネデニア症抵抗性遺伝子（配列番号１）の860番目の塩基（C860T）の一塩基多型を調べた結果、遺伝マーカーC860Tの遺伝型がT/T又はC/Tの場合、好ましくはT/Tの場合には、ベネデニア症抵抗性を有する、すなわちハダムシが寄生し難い、寄生数が少ない個体と判定し、C/Cの場合には抵抗性を持たない個体と判定することができる（スラッシュ(/)を挟む塩基は各アレルの塩基を表す。）。
このようにして、ブリ類のベネデニア症抵抗性遺伝子（配列番号１）の860番目の塩基（C860T）の一塩基多型を調べた結果、遺伝マーカーC860Tの遺伝型がT/T又はC/Tの場合、好ましくはT/Tの場合には、ベネデニア症抵抗性を有する、すなわちハダムシが寄生し難い、寄生数が少ない個体と判定し、C/Cの場合には抵抗性を持たない個体と判定することができる（スラッシュ(/)を挟む塩基は各アレルの塩基を表す。）。
以下、実施例にて本発明を例証するが本発明を限定することを意図するものではない。
実験例１
ブリ類の連鎖群LG2のベネデニア症抵抗性領域の概要を図１に示す。本発明の一塩基多型は、連鎖群LG2のベネデニア症抵抗性領域内に位置するベネデニア症抵抗性遺伝子（配列番号1）のタンパク質翻訳領域内に存在する。発明者らはマイクロサテライトDNAマーカー座Sequ0125TUF とSequ1066TUFを用いてブリゲノムDNA断片（平均DNA断片長140.7 kb）を保持する細菌人工染色体（BAC）ライブラリーのスクリーニングを行った。ＤＮＡマーカーSequ0125TUF により、BACクローン #013_k04、#102_l17、#028_c14、#019_k17を同定した。またSequ1066TUFにより、#101_o14、#077_f22、#078_k13、#075_e05、#114_l03を同定した。次にこれらのBACクローンの末端の塩基配列を決定し、決定した配列をもとに隣接するクローンを探索した。BACクローン末端配列による隣接クローンの探索を繰り返し、最終的に16個のベネデニア症抵抗性領域のゲノムDNAを保持するBACクローンが得られた。得られたBACクローンは図１のように整列化された。16個クローンのうち#102_l17、#013_p20、#066_e22、#090_d18、#013_a02、#070_j15、#101_o14の7個のクローン（図１で点線で囲む）により、最も少ないクローン数（最小の経路）でベネデニア症抵抗性領域がカバーされた。
この7個のBACクローンについて塩基配列のショットガンシークエンス（長いクローンを断片化し塩基配列を決定）とde novo アセンブル（参照配列なしの断片化した塩基配列の再構築）を行い、DNAマーカーSequ0125TUF とSequ1066TUF間のゲノム領域の全DNA塩基配列（約520,000 bp）を取得した（ここには示さない。）。
実験例１
ブリ類の連鎖群LG2のベネデニア症抵抗性領域の概要を図１に示す。本発明の一塩基多型は、連鎖群LG2のベネデニア症抵抗性領域内に位置するベネデニア症抵抗性遺伝子（配列番号1）のタンパク質翻訳領域内に存在する。発明者らはマイクロサテライトDNAマーカー座Sequ0125TUF とSequ1066TUFを用いてブリゲノムDNA断片（平均DNA断片長140.7 kb）を保持する細菌人工染色体（BAC）ライブラリーのスクリーニングを行った。ＤＮＡマーカーSequ0125TUF により、BACクローン #013_k04、#102_l17、#028_c14、#019_k17を同定した。またSequ1066TUFにより、#101_o14、#077_f22、#078_k13、#075_e05、#114_l03を同定した。次にこれらのBACクローンの末端の塩基配列を決定し、決定した配列をもとに隣接するクローンを探索した。BACクローン末端配列による隣接クローンの探索を繰り返し、最終的に16個のベネデニア症抵抗性領域のゲノムDNAを保持するBACクローンが得られた。得られたBACクローンは図１のように整列化された。16個クローンのうち#102_l17、#013_p20、#066_e22、#090_d18、#013_a02、#070_j15、#101_o14の7個のクローン（図１で点線で囲む）により、最も少ないクローン数（最小の経路）でベネデニア症抵抗性領域がカバーされた。
この7個のBACクローンについて塩基配列のショットガンシークエンス（長いクローンを断片化し塩基配列を決定）とde novo アセンブル（参照配列なしの断片化した塩基配列の再構築）を行い、DNAマーカーSequ0125TUF とSequ1066TUF間のゲノム領域の全DNA塩基配列（約520,000 bp）を取得した（ここには示さない。）。
実験例２
実験例１で決定した連鎖群LG２ベネデニア症抵抗性ゲノム領域の塩基配列を遺伝子予測ソフトウェアGENSCAN、Augustus等を用いて解析し検討した結果、この領域には20個程度の既知の遺伝子と部分的に相同性を示す遺伝子、及びその他に10から20個程度の既知遺伝子とは相同性を示さない機能不明な遺伝子が存在することが示唆された。これらの候補遺伝子の中でC-type lectin様の機能ドメインを持つ新規免疫応答関連遺伝子（配列番号1）がハダムシの寄生部位である表皮でmRNAが発現していること、免疫システムにおいて重要な機能を果たすことが知られているC-type lectinドメインを持つことからベネデニア症抵抗性形質の責任遺伝子であることが示唆された。その他の候補遺伝子には免疫システムへの関与が想定され、かつ表皮で発現している遺伝子は存在しなかった。
実験例１で決定した連鎖群LG２ベネデニア症抵抗性ゲノム領域の塩基配列を遺伝子予測ソフトウェアGENSCAN、Augustus等を用いて解析し検討した結果、この領域には20個程度の既知の遺伝子と部分的に相同性を示す遺伝子、及びその他に10から20個程度の既知遺伝子とは相同性を示さない機能不明な遺伝子が存在することが示唆された。これらの候補遺伝子の中でC-type lectin様の機能ドメインを持つ新規免疫応答関連遺伝子（配列番号1）がハダムシの寄生部位である表皮でmRNAが発現していること、免疫システムにおいて重要な機能を果たすことが知られているC-type lectinドメインを持つことからベネデニア症抵抗性形質の責任遺伝子であることが示唆された。その他の候補遺伝子には免疫システムへの関与が想定され、かつ表皮で発現している遺伝子は存在しなかった。
当該新規免疫応答関連遺伝子cDNAをRT-PCRにより増幅し、遺伝子のクローニングを行った。全RNAはブリ天然魚の表皮からRNeasy Mini Kit (QIAGEN社)を用いて抽出した。一本鎖cDNAへの逆転反応はoligo-dT primersを用いてOminiscript RT kit (QIAGEN社) により行った。PCRはTakara Ex taq（Takara Bio社）を用いて行った。PCR条件は9℃ 2分; 95℃ 30秒、58℃ 30秒、72℃ 1分を35サイクル;その後、伸長反応72℃ 5分とした。
Forward primerには
Squ_clec-1F 5'-TTCTGATTATGTCTGTTGTCCTCTG-3'（配列番号２）、
Squ_clec-2F 5'-CTACTTCTTAGCCAACCATCCTGA-3'（配列番号３）、
Squ_clec-3F 5'-CTGGATCGGAGGTTACTACTTTCAG-3'（配列番号４）、
Squ_clec-4F 5'-ATGACTTTAAAGCCTCTTAATGTGC-3'（配列番号５）
Reverse primerには
Squ_clec-5R 5'-CTTTGTCTCCCAGTTGCACAGTAG-3'（配列番号６）、
Squ_clec-6R 5'-GAATGGGAAGTTCATGTTGCAG-3'（配列番号７）、
Squ_clec-7R 5'-AATGGGAAGTTCATGTTGCAG-3'（配列番号８）、
Squ_clec-8R 5'-CTCAGAGTGAAGACAGTGATTCG-3'（配列番号９）
を用いた。
増幅したcDNA断片はpGEM-T easy vector (Promega社)にクローニングし、塩基配列のシークエンスを行った。
Forward primerには
Squ_clec-1F 5'-TTCTGATTATGTCTGTTGTCCTCTG-3'（配列番号２）、
Squ_clec-2F 5'-CTACTTCTTAGCCAACCATCCTGA-3'（配列番号３）、
Squ_clec-3F 5'-CTGGATCGGAGGTTACTACTTTCAG-3'（配列番号４）、
Squ_clec-4F 5'-ATGACTTTAAAGCCTCTTAATGTGC-3'（配列番号５）
Reverse primerには
Squ_clec-5R 5'-CTTTGTCTCCCAGTTGCACAGTAG-3'（配列番号６）、
Squ_clec-6R 5'-GAATGGGAAGTTCATGTTGCAG-3'（配列番号７）、
Squ_clec-7R 5'-AATGGGAAGTTCATGTTGCAG-3'（配列番号８）、
Squ_clec-8R 5'-CTCAGAGTGAAGACAGTGATTCG-3'（配列番号９）
を用いた。
増幅したcDNA断片はpGEM-T easy vector (Promega社)にクローニングし、塩基配列のシークエンスを行った。
次に5'-及び3'-RACE（rapid amplification of cDNA ends）法による当該新規免疫応答関連遺伝子完全長cDNAの取得を行った。RACE用cDNAはSMART RACE cDNA Amplification Kit (Clontech社)を用いて、上記のcDNA断片のクローニングに用いた個体と同一個体の表皮由来のRNAから合成した。5'及び3'-RACE PCRはネストPCR法で行った。5'RACEでは1回目のPCRは上記のcDNA断片から設計した
5'-CTGGATCGGAGGTTACTACTTTCAG-3' （配列番号１０）
をgene specific primerとして用い、PCR条件は94℃ 1分; 94℃ 30秒、55℃ 30秒、72℃ 2分を20サイクルとした。一回目のPCR産物1.25μlを2回目のネストPCRに用いた。2回目のPCRは
5'-TTCTGATTATGTCTGTTGTCCTCTG-3' （配列番号１１）
をgene specific primerとして用い、PCR条件は94℃ 1分; 94℃ 30秒、55℃ 30秒、72℃ 2分を20サイクルとした。3'RACEでは1回目のPCRは
5'-ACTGCCTGACCTGACACACGAATGG-3' （配列番号１２）
をgene specific primerとして用い、PCR条件は94℃ 1分; 94℃ 30秒、70℃ 30秒、72℃ 2分を5サイクル; 94℃ 30秒、68℃ 30秒、72℃ 2分を15サイクルとした。2回目のPCRは
5'-ACCGTGAGCCATCTTCCCATCTCCA-3' （配列番号１３）
をgene specific primerとして用い、PCR条件は94℃ 1分; 94℃ 30秒、68℃ 30秒、72℃ 2分を30サイクルとした。増幅した5'及び3' RACE産物はpGEM-T easy vector (Promega社)にクローニングし、塩基配列のシークエンスを行った。これによりC-type lectin様の機能ドメインを持つ新規免疫応答関連遺伝子cDNA全長の塩基配列が得られた（図２、配列番号1）。
5'-CTGGATCGGAGGTTACTACTTTCAG-3' （配列番号１０）
をgene specific primerとして用い、PCR条件は94℃ 1分; 94℃ 30秒、55℃ 30秒、72℃ 2分を20サイクルとした。一回目のPCR産物1.25μlを2回目のネストPCRに用いた。2回目のPCRは
5'-TTCTGATTATGTCTGTTGTCCTCTG-3' （配列番号１１）
をgene specific primerとして用い、PCR条件は94℃ 1分; 94℃ 30秒、55℃ 30秒、72℃ 2分を20サイクルとした。3'RACEでは1回目のPCRは
5'-ACTGCCTGACCTGACACACGAATGG-3' （配列番号１２）
をgene specific primerとして用い、PCR条件は94℃ 1分; 94℃ 30秒、70℃ 30秒、72℃ 2分を5サイクル; 94℃ 30秒、68℃ 30秒、72℃ 2分を15サイクルとした。2回目のPCRは
5'-ACCGTGAGCCATCTTCCCATCTCCA-3' （配列番号１３）
をgene specific primerとして用い、PCR条件は94℃ 1分; 94℃ 30秒、68℃ 30秒、72℃ 2分を30サイクルとした。増幅した5'及び3' RACE産物はpGEM-T easy vector (Promega社)にクローニングし、塩基配列のシークエンスを行った。これによりC-type lectin様の機能ドメインを持つ新規免疫応答関連遺伝子cDNA全長の塩基配列が得られた（図２、配列番号1）。
実施例１
次に連鎖群LG2のクローニングしたべネデニア症抵抗性領域に位置する新規免疫応答関連遺伝子（配列番号１）について遺伝子の翻訳領域内のアミノ酸置換を伴う一塩基多型の探索を行った。
飼育している天然ブリ200尾より、ハダムシ抵抗性の高い個体（ハダムシ寄生数が少ない個体）とハダムシ抵抗性の低い個体（ハダムシ寄生数が多い個体）について各20尾を得た。これらのブリの尾ビレからDNeasy tissue and blood kit（QIAGEN社）を用いてゲノムDNAを抽出した。
塩基配列多型探索の基準となる参照配列にはRACE法によって得られた当該遺伝子cDNA配列（配列番号１）を用いた。当該遺伝子の位置するゲノム領域（約3000bp、ここには示さない。）をprimer 5'-AAATGTCAAAAGCACCTATGAAACG-3'（配列番号１４）、5'-GCAATCGGTTGAAATATGGAGGAG-3'（配列番号１５）を用いてPCRにより増幅した。PCRはTakara Ex taq（Takara Bio）を用いて行い、PCR条件は9℃ 2分; 95℃ 30秒、55℃ 30秒、72℃ 3分を35サイクル;その後、伸長反応72℃ 5分とした。当該遺伝子の塩基配列決定はダイレクト
シークエンス法により行った。
次に連鎖群LG2のクローニングしたべネデニア症抵抗性領域に位置する新規免疫応答関連遺伝子（配列番号１）について遺伝子の翻訳領域内のアミノ酸置換を伴う一塩基多型の探索を行った。
飼育している天然ブリ200尾より、ハダムシ抵抗性の高い個体（ハダムシ寄生数が少ない個体）とハダムシ抵抗性の低い個体（ハダムシ寄生数が多い個体）について各20尾を得た。これらのブリの尾ビレからDNeasy tissue and blood kit（QIAGEN社）を用いてゲノムDNAを抽出した。
塩基配列多型探索の基準となる参照配列にはRACE法によって得られた当該遺伝子cDNA配列（配列番号１）を用いた。当該遺伝子の位置するゲノム領域（約3000bp、ここには示さない。）をprimer 5'-AAATGTCAAAAGCACCTATGAAACG-3'（配列番号１４）、5'-GCAATCGGTTGAAATATGGAGGAG-3'（配列番号１５）を用いてPCRにより増幅した。PCRはTakara Ex taq（Takara Bio）を用いて行い、PCR条件は9℃ 2分; 95℃ 30秒、55℃ 30秒、72℃ 3分を35サイクル;その後、伸長反応72℃ 5分とした。当該遺伝子の塩基配列決定はダイレクト
シークエンス法により行った。
Sequencing primerには
Squ_clec-9F 5'-TGTTCAGTCCGGTATAAAGAGC-3' （配列番号１６）
Squ_clec-10R 5'-ACATAAACAGCAACATCAGGATCAT-3' （配列番号１７）
Squ_clec-13F 5'-GTGTTCAGTCCGGTATAAAGATC-3' （配列番号１８）
Squ_clec-14F 5'-GAACTCATTAGAACTTGTTTAGCGC-3' （配列番号１９）
Squ_clec-15F 5'-CTTTATTACTGTACAAGCTGCGATG-3' （配列番号２０）
Squ_clec-16F 5'-TCAGCTTCATTTGAGTGCAGTATAT-3' （配列番号２１）
Squ_clec-17F 5'-ATACACCAAGATCCACTGCATACTA-3' （配列番号２２）
Squ_clec-18R 5'-CAAACCAGTCGATCAATAAGAGGAT-3' （配列番号２３）
Squ_clec-19R 5'-GAGGGGAACAAATCATGAGAATAGG-3' （配列番号２４）
Squ_clec-20R 5'-TTCATCTGCTTCTGTTCTTGTTGTA-3' （配列番号２５）
Squ_clec-21R 5'-ACATAAACAGCAACATCAGGATCAT-3' （配列番号２６）
を用いた。
Squ_clec-9F 5'-TGTTCAGTCCGGTATAAAGAGC-3' （配列番号１６）
Squ_clec-10R 5'-ACATAAACAGCAACATCAGGATCAT-3' （配列番号１７）
Squ_clec-13F 5'-GTGTTCAGTCCGGTATAAAGATC-3' （配列番号１８）
Squ_clec-14F 5'-GAACTCATTAGAACTTGTTTAGCGC-3' （配列番号１９）
Squ_clec-15F 5'-CTTTATTACTGTACAAGCTGCGATG-3' （配列番号２０）
Squ_clec-16F 5'-TCAGCTTCATTTGAGTGCAGTATAT-3' （配列番号２１）
Squ_clec-17F 5'-ATACACCAAGATCCACTGCATACTA-3' （配列番号２２）
Squ_clec-18R 5'-CAAACCAGTCGATCAATAAGAGGAT-3' （配列番号２３）
Squ_clec-19R 5'-GAGGGGAACAAATCATGAGAATAGG-3' （配列番号２４）
Squ_clec-20R 5'-TTCATCTGCTTCTGTTCTTGTTGTA-3' （配列番号２５）
Squ_clec-21R 5'-ACATAAACAGCAACATCAGGATCAT-3' （配列番号２６）
を用いた。
得られた各個体の当該遺伝子の塩基配列と参照配列を比較した結果、当該遺伝子内に4個のアミノ酸置換を伴うSNP（C175A、A699C、C742A、C860T、図２に黒三角で示す。）と4個のアミノ酸置換を伴わないSNP（C204T、T705C、T807G、A861G、図２に白三角で示す。）が同定された。C175Aは当該遺伝子cDNA（配列番号1）の175番目のCがAに、A699Cは699番目のAがCに、C742Aは742番目のCがAに、C860Tは860番目のCがTに変異していた。その結果、C175Aではロイシン（L）からメチオニン（M）へ、A699Cではグルタミン酸（E）からアスパラギン酸（D）へ、C742Aではロイシン（L）からイソロイシン（I）へ、C860Tではプロリン（P）からロイシン（L）へアミノ酸が変化していた。一方、C204Tは当該遺伝子cDNA（配列番号1）の204番目のCがTに、T705Cは705番目のTがCに、T807Gは807番目のTがGに、A861Gは861番目のAがGに変異していたが、アミノ酸の変化はない。
これらのSNPのうちA699C、C742A及びC860Tは当該遺伝子の機能ドメインであると考えられるC-type lectinドメイン（図２中の網掛け領域）内に位置し、アミノ酸変化によりタンパク質の生理活性に影響を与える可能性があると考えられた。
これらのSNPのうちA699C、C742A及びC860Tは当該遺伝子の機能ドメインであると考えられるC-type lectinドメイン（図２中の網掛け領域）内に位置し、アミノ酸変化によりタンパク質の生理活性に影響を与える可能性があると考えられた。
ブリ天然魚40個体についてハダムシの寄生数と当該遺伝子内のSNPとの相関解析の結果を表１及び２に示す。
C860Tについては、SNP型C/C（アミノ酸型P/P）とSNP型T/T（アミノ酸型L/L）の比較では最も高い統計的な有意差が検出された（U検定（片側検定）、p= 0.0004）。C860TがC/Cのジェノタイプを持つ個体群のハダムシ寄生数は平均200.82匹であったのに対し、T/T（アミノ酸型L/L）の群では平均133.11匹であり、約30％のハダムシ寄生数の減少がみられた。C860T がC/Tで片方の遺伝子座のみロイシンとなっている個体群においてもハダムシ寄生数は平均157.35匹と減少の傾向がみられた。またロイシン（L）を持つもの（SNP型：T/TとC/T、アミノ酸型：L/LとL/P）と持たないもの（SNP型：C/C、アミノ酸型：P/P）の2群比較においてもハダムシの寄生数に統計的に有意な差が検出された（U検定（片側検定）, P= 0.0408）。
一方、C175A、A699C、C742A、C204T、T705C、T807G、A861GについてはSNPのジェノタイプとハダムシの寄生数との間には統計的有意差は検出されなかった。
一方、C175A、A699C、C742A、C204T、T705C、T807G、A861GについてはSNPのジェノタイプとハダムシの寄生数との間には統計的有意差は検出されなかった。
なお、このように、ベネデニア症抵抗性形質の責任遺伝子であることが示唆された（実験例２）新規遺伝子（配列番号1）中のSNPがベネデニア症抵抗性を示したことから、この遺伝子がベネデニア症抵抗性形質の責任遺伝子であることが示された。非特許文献１で示されたブリ連鎖群LG２ベネデニア症抵抗性QTL領域内の当該遺伝子以外の領域で同様の検査を行ってもブリのベネデニア症抵抗性を知ることはできないと考えられる。
Claims (5)
- ブリ類から採取したDNAの、ブリ連鎖群LG2上のマイクロサテライトマーカーDNAマーカー座Sequ0125TUF とSequ1066TUFとの間に位置する配列番号1で示される塩基配列の860番目の塩基の一塩基多型の遺伝型を調べる段階、及び該遺伝型に基づいてブリ類のハダムシ抵抗性を判定する段階から成る、ブリ類のハダムシ抵抗性を検査する方法。
- 検査の対象であるブリ類の個体からゲノムDNAを抽出し、ブリ連鎖群LG2上のマイクロサテライトマーカーDNAマーカー座Sequ0125TUF とSequ1066TUFとの間に位置する配列番号1で示される塩基配列の860番目の塩基の一塩基多型を含む塩基配列の外側に結合する特異的な配列を有する一対のプライマーを用いてＰＣＲ反応を行い、得られた増幅産物中の該一塩基多型の遺伝型を調べる段階、及び該遺伝型に基づいてブリ類のハダムシ抵抗性を判定する段階から成る、ブリ類のハダムシ抵抗性を検査する方法。
- 前記配列番号1で示される塩基配列の860番目の塩基の遺伝型がＴ／Ｔ又はＣ／Ｔの場合にはハダムシ抵抗性と判定する請求項１又は２に記載の方法。
- 前記配列番号1で示される塩基配列の860番目の塩基の遺伝型がＴ／Ｔの場合にはハダムシ抵抗性と判定する請求項１又は２に記載の方法。
- 請求項１〜４のいずれか一項に記載のブリ類のハダムシ抵抗性を検査する方法に使用するためのプライマーセットであって、ブリ連鎖群LG２上のマイクロサテライトマーカーDNAマーカー座Sequ0125TUF とSequ1066TUFとの間に位置する配列番号1で示される塩基配列の860番目の塩基を含む領域を検出するためのプライマーであって、該塩基を含む該塩基配列中の５０〜１００塩基の長さの領域の両端に設定された長さが１５塩基以上のフォワードプライマー及びリバースプライマー又はこれらと９０％以上相同のフォワードプライマー及びリバースプライマーから成るプライマーセット。
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| CN112662785A (zh) * | 2021-01-28 | 2021-04-16 | 中国水产科学研究院南海水产研究所 | 一种鉴别哈氏本尼登虫和鰤本尼登虫的分子标记引物对、试剂盒及鉴别方法 |
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