JP2018087163A - マウス精子の冷蔵保存液及び保存方法 - Google Patents
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Abstract
【課題】本発明の目的は、マウス精子の冷蔵保存に関し、従来技術より長期間の冷蔵保存が可能な保存液および方法を提供することである。
【解決手段】マウス精子上体尾部中に保持されたマウス精子を冷蔵保存するための保存液であって、ジメチルスルフォオキサイド、またはジメチルスルフォオキサイドおよびケルセチンを含有する保存液、および該保存液をもちいたマウス精子の冷蔵保存方法が提供される。本発明により冷蔵保存されたマウス精子は、高い受精率及び運動能を保持できる。
【選択図】図１
【解決手段】マウス精子上体尾部中に保持されたマウス精子を冷蔵保存するための保存液であって、ジメチルスルフォオキサイド、またはジメチルスルフォオキサイドおよびケルセチンを含有する保存液、および該保存液をもちいたマウス精子の冷蔵保存方法が提供される。本発明により冷蔵保存されたマウス精子は、高い受精率及び運動能を保持できる。
【選択図】図１
Description
本発明は、マウスの精子を冷蔵保存するための保存液および保存方法に関する。
遺伝子改変マウスを用いた研究を支援する機関として、マウスバンクが世界中に設立されており、遺伝子改変マウスは、遺伝子機能の解析およびヒト疾患のモデル動物として、医学研究に広く利用されている。ほとんどのマウスバンクは、遺伝子改変マウスを収集、保管および供給する機能を担っており、研究者は必要に応じてそれらマウスを容易に入手することが可能である。
現在、遺伝子改変マウスの輸送方法として、生体、凍結精子あるいは凍結胚による輸送が利用されている。生体による輸送は、微生物学的汚染の拡大、輸送中の逃亡や死亡のリスク、遺伝子組み換え生物の使用に関する法規制および実験動物の福祉の観点から多くの課題がある。一方、凍結精子または凍結胚による輸送では、輸送中にドライシッパーなど専用の輸送容器が必要であり、凍結精子や凍結胚を作製するために専門の技術を習得しなければならない等の欠点があることから、これらの方法に代替する新規輸送技術の開発が求められている。
そこで、上記方法に替わる簡便な輸送技術として、マウス精巣上体尾部の冷蔵保存法の開発が進められてきた。この方法は、成熟した精子を貯蔵する雄性生殖器官である精巣上体尾部を冷蔵保存液に浸漬し、低温条件下で精子を輸送する技術である。輸送された精巣上体尾部から精子を回収し、体外受精および胚移植を行うことで、特定の病原体を持たないマウス個体を作製することが可能である。
これまで、マウス精巣上体尾部の冷蔵保存において、流動パラフィンやミネラルオイルを冷蔵保存液として用いた場合、冷蔵保存精巣上体尾部から採取した精子の受精能保持時間はせいぜい１日であった。そこで、本発明者らは、透明帯をレーザーで穿孔した卵子を用いて体外受精を行うことにより、受精率を向上さることに成功した。しかしながら、レーザー穿孔卵の作製には、高価な装置や専門の技術が必要となること、また、レーザー穿孔により胚の発生能が低下するため、冷蔵保存液そのものの改良が望まれた。
本発明者らは様々な保存液を検討した結果、ヒト臓器の冷蔵保存液であるＬｉｆｏｒ（登録商標）保存液(Lifeblood Medical, Inc.) が、流動パラフィン、Ｍ２培地およびＣＰＳ−１に比べて、高い低温保護効果を示すことを見いだし報告した（非特許文献１）。Ｌｉｆｏｒは、栄養素、成長因子、および非タンパク性の酸素および栄養素のキャリアを含む人工の保存液である。
また本発明者らは、メチル−β−シクロデキストリン（ＭＢＣＤ）と還元グルタチオン（ＧＳＨ）を体外受精に用いることにより、マウス凍結精子に対して受精率を改善したこと、および、その技術は冷蔵精子に対しても受精率改善に有効であることを報告した（非特許文献２、非特許文献３、特許文献１、特許文献２）。これらの技術改良により、マウス精子の冷蔵保存期間は、３日間まで延長することができた。
現在、日本国内における精巣上体尾部の冷蔵輸送は、３日間の輸送時間があれば可能である。しかしながら、国際輸送では、輸送時のトラブルや通関の遅延等の理由で、輸送時間が延長することがあり、高い受精能を維持した精子を輸送するには、更なる冷蔵保存期間の延長が必要である。
竹尾ら（2012）Cryobiology 65(3): 163-168
竹尾ら（2008）Biology of Ｒeproduction 78: 546-551
竹尾ら（2011）Biology of Ｒeproduction 85: 1066-1072
本発明の目的は、精子の冷蔵保存に関し、従来技術より長期間の冷蔵保存が可能な保存液および保存方法を提供することである。
前記課題を解決するために本発明者らは鋭意研究をした結果、精子、特には精子を含む精巣上体尾部の冷蔵保存において、ジメチルスルフォオキサイド（ＤＭＳＯ）、またはケルセチン (quercetin)およびジメチルスルフォオキサイド (ＤＭＳＯ)の組合せを用いることにより、より長い期間、冷蔵保存した精子においても高い受精率及び運動能を保持できることを見出し、本発明を完成した。
本発明は以下のものを含む。
（１）マウス精子を冷蔵保存するための保存液であって、ジメチルスルフォオキサイドを１％以上の濃度にて含有する保存液。
（２）ジメチルスルフォオキサイドの濃度が５％以上である前記（１）に記載の保存液。
（３）マウス精子を冷蔵保存するための保存液であって、ケルセチンおよびジメチルスルフォオキサイドを含有する保存液。
（４）前記マウス精子がマウス精巣上体尾部中に保持されたマウス精子である前記（３）に記載の保存液。
（５）ケルセチン濃度が１０μｇ／ｍｌ〜２００μｇ／ｍｌであり、ジメチルスルフォオキサイドの濃度が１％〜２０％である、前記（４）に記載の保存液。
（６）ケルセチン濃度が５０μｇ／ｍｌ以上であり、ジメチルスルフォオキサイドの濃度が５％以上である、前記（５）に記載の保存液。
（７）前記マウス精子がマウス精子懸濁液である前記（３）に記載の保存液。
（８）ケルセチン濃度が１０μｇ／ｍｌ〜１００μｇ／ｍｌであり、ジメチルスルフォオキサイドの濃度が１％〜１０％である、前記（７）に記載の保存液。
（９）ケルセチン濃度が１０μｇ／ｍｌ〜５０μｇ／ｍｌであり、ジメチルスルフォオキサイドの濃度が１％〜５％である、前記（８）に記載の保存液。
（１０）前記保存液が、ジメチルスルフォオキサイドまたはケルセチンを含有するＬｉｆｏｒ（登録商標）保存液またはＭ２保存液である前記（１）〜（９）のいずれか一つに記載の保存液。
（１１）前記（１）〜（１０）のいずれか一つに記載の保存液を用いてマウス精子を保存する方法。
（１２）マウス精子を冷蔵保存するための保存液のキットであって、ケルセチン、ジメチルスルフォオキサイド、および保存液からなるキット。
（１３）ケルセチンをジメチルスルフォオキサイドに溶解した後、保存液と混合した場合、ケルセチンの最終濃度が１０μｇ／ｍｌ〜２００μｇ／ｍｌ、ジメチルスルフォオキサイドの最終濃度が１％〜２０％となるように組み合わされている、前記（１２）に記載のキット。
（１４）前記保存液が、Ｌｉｆｏｒ（登録商標）保存液またはＭ２保存液である前記（１２）または（１３）に記載のキット。
（１５）ジメチルスルフォオキサイドを１％以上の濃度にて含有する保存液中に雄マウスから摘出したマウス精巣上体尾部を浸漬し、４℃〜１０℃の温度にて冷蔵保存する工程を含む、マウス精子の冷蔵保存方法。
（１６）ジメチルスルフォオキサイドの濃度が５％以上である前記（１５）に記載の冷蔵保存方法。
（１７）ケルセチンおよびジメチルスルフォオキサイドを含有する保存液中に雄マウスから摘出したマウス精巣上体尾部を浸漬し、４℃〜１０℃の温度にて冷蔵保存する工程を含む、マウス精子の冷蔵保存方法。
（１８）ケルセチン濃度が１０μｇ／ｍｌ〜２００μｇ／ｍｌであり、ジメチルスルフォオキサイドの濃度が１％〜２０％の濃度である、前記（１７）に記載の冷蔵保存方法。
（１９）ケルセチン濃度が５０μｇ／ｍｌ〜１００μｇ／ｍｌであり、ジメチルスルフォオキサイドの濃度が５％〜１０％の濃度である、前記（１８）に記載の冷蔵保存方法。
（２０）ケルセチンおよびジメチルスルフォオキサイドを含有する保存液中に雄マウスから得られたマウス精子を懸濁し、該精子懸濁液を、４℃〜１０℃の温度にて冷蔵保存する工程を含む、マウス精子の冷蔵保存方法。
（２１）前記保存液が、ケルセチン濃度が１０μｇ／ｍｌ〜５０μｇ／ｍｌであり、ジメチルスルフォオキサイドの濃度が１％〜５％である前記（２０）に記載の冷蔵保存方法。
（２２）前記保存液が、ジメチルスルフォオキサイドまたはケルセチンを含有するＬｉｆｏｒ（登録商標）保存液またはＭ２保存液である前記（１５）〜（２１）のいずれか一つに記載の冷蔵保存方法。
（１）マウス精子を冷蔵保存するための保存液であって、ジメチルスルフォオキサイドを１％以上の濃度にて含有する保存液。
（２）ジメチルスルフォオキサイドの濃度が５％以上である前記（１）に記載の保存液。
（３）マウス精子を冷蔵保存するための保存液であって、ケルセチンおよびジメチルスルフォオキサイドを含有する保存液。
（４）前記マウス精子がマウス精巣上体尾部中に保持されたマウス精子である前記（３）に記載の保存液。
（５）ケルセチン濃度が１０μｇ／ｍｌ〜２００μｇ／ｍｌであり、ジメチルスルフォオキサイドの濃度が１％〜２０％である、前記（４）に記載の保存液。
（６）ケルセチン濃度が５０μｇ／ｍｌ以上であり、ジメチルスルフォオキサイドの濃度が５％以上である、前記（５）に記載の保存液。
（７）前記マウス精子がマウス精子懸濁液である前記（３）に記載の保存液。
（８）ケルセチン濃度が１０μｇ／ｍｌ〜１００μｇ／ｍｌであり、ジメチルスルフォオキサイドの濃度が１％〜１０％である、前記（７）に記載の保存液。
（９）ケルセチン濃度が１０μｇ／ｍｌ〜５０μｇ／ｍｌであり、ジメチルスルフォオキサイドの濃度が１％〜５％である、前記（８）に記載の保存液。
（１０）前記保存液が、ジメチルスルフォオキサイドまたはケルセチンを含有するＬｉｆｏｒ（登録商標）保存液またはＭ２保存液である前記（１）〜（９）のいずれか一つに記載の保存液。
（１１）前記（１）〜（１０）のいずれか一つに記載の保存液を用いてマウス精子を保存する方法。
（１２）マウス精子を冷蔵保存するための保存液のキットであって、ケルセチン、ジメチルスルフォオキサイド、および保存液からなるキット。
（１３）ケルセチンをジメチルスルフォオキサイドに溶解した後、保存液と混合した場合、ケルセチンの最終濃度が１０μｇ／ｍｌ〜２００μｇ／ｍｌ、ジメチルスルフォオキサイドの最終濃度が１％〜２０％となるように組み合わされている、前記（１２）に記載のキット。
（１４）前記保存液が、Ｌｉｆｏｒ（登録商標）保存液またはＭ２保存液である前記（１２）または（１３）に記載のキット。
（１５）ジメチルスルフォオキサイドを１％以上の濃度にて含有する保存液中に雄マウスから摘出したマウス精巣上体尾部を浸漬し、４℃〜１０℃の温度にて冷蔵保存する工程を含む、マウス精子の冷蔵保存方法。
（１６）ジメチルスルフォオキサイドの濃度が５％以上である前記（１５）に記載の冷蔵保存方法。
（１７）ケルセチンおよびジメチルスルフォオキサイドを含有する保存液中に雄マウスから摘出したマウス精巣上体尾部を浸漬し、４℃〜１０℃の温度にて冷蔵保存する工程を含む、マウス精子の冷蔵保存方法。
（１８）ケルセチン濃度が１０μｇ／ｍｌ〜２００μｇ／ｍｌであり、ジメチルスルフォオキサイドの濃度が１％〜２０％の濃度である、前記（１７）に記載の冷蔵保存方法。
（１９）ケルセチン濃度が５０μｇ／ｍｌ〜１００μｇ／ｍｌであり、ジメチルスルフォオキサイドの濃度が５％〜１０％の濃度である、前記（１８）に記載の冷蔵保存方法。
（２０）ケルセチンおよびジメチルスルフォオキサイドを含有する保存液中に雄マウスから得られたマウス精子を懸濁し、該精子懸濁液を、４℃〜１０℃の温度にて冷蔵保存する工程を含む、マウス精子の冷蔵保存方法。
（２１）前記保存液が、ケルセチン濃度が１０μｇ／ｍｌ〜５０μｇ／ｍｌであり、ジメチルスルフォオキサイドの濃度が１％〜５％である前記（２０）に記載の冷蔵保存方法。
（２２）前記保存液が、ジメチルスルフォオキサイドまたはケルセチンを含有するＬｉｆｏｒ（登録商標）保存液またはＭ２保存液である前記（１５）〜（２１）のいずれか一つに記載の冷蔵保存方法。
本発明の一つの態様は、マウス精子の冷蔵保存に関し、従来技術より長期間の冷蔵保存が可能な保存液および保存方法を提供するものである。
本発明の別の一つの態様は、マウスの精子を例えば７日間冷蔵保存した後でも、実用上問題のない運動能、受精能および産子発生能を達成できる精子を提供できる冷蔵保存液および冷蔵保存方法を提供するものである。
本発明の別の一つの態様は、マウスの精子を例えば７日間冷蔵保存した後でも、実用上問題のない運動能、受精能および産子発生能を達成できる精子を提供できる冷蔵保存液および冷蔵保存方法を提供するものである。
本発明の保存液及び保存方法により、従来技術より長期間にわたり、マウス精子を冷蔵保存できる。また、本発明を用いて保存されたマウス精子は、実用上問題のない運動能、受精能および産子発生能を有する。
以下、本発明を、例示的な実施態様を例として詳細に説明するが、本発明は以下に記載の実施態様に限定されるものではない。
なお、文中で特に断らない限り、本明細書で用いるすべての技術用語及び科学用語は、本発明が属する技術分野の当業者に一般に理解されるのと同じ意味をもつ。また、本明細書に記載されたものと同等又は同様の任意の材料および方法は、本発明の実施において同様に使用することができる。
また、本明細書に記載された発明に関連して本明細書中で引用されるすべての刊行物および特許は、例えば、本発明で使用できる方法や材料その他を示すものとして、本明細書の一部を構成するものである。
なお、文中で特に断らない限り、本明細書で用いるすべての技術用語及び科学用語は、本発明が属する技術分野の当業者に一般に理解されるのと同じ意味をもつ。また、本明細書に記載されたものと同等又は同様の任意の材料および方法は、本発明の実施において同様に使用することができる。
また、本明細書に記載された発明に関連して本明細書中で引用されるすべての刊行物および特許は、例えば、本発明で使用できる方法や材料その他を示すものとして、本明細書の一部を構成するものである。
本明細書中で、「Ｘ〜Ｙ」という表現を用いた場合は、下限としてＸを、上限としてＹを含む意味で用いる。
本発明者らは、ケルセチンに着目し、マウス精子の冷蔵保存、特に精巣上体尾部の冷蔵保存に対するケルセチンの効果を確認した。
フラボノイド配糖体化合物であるケルセチングルコシドは、生体材料の低温保存用の保存剤として提案されており、細胞の生存率が高められ低温障害保護効果が得られると報告されている（特許文献３）。また、同じ発明者により、フラボノイド配糖体化合物（例えば、ケルセチングルコシド）に加えてフラボノイド化合物（例えば、ケルセチン）を含む生体材料の低温保存用の保存剤も提案されている（特許文献４）。ここでは、フラボノイド配糖体化合物単独では低温障害保護効果がほとんど認められないか、十分な効果が得られない濃度範囲で、フラボノイド配糖体化合物とフラボノイド化合物を併用することにより、両者が相乗的に作用して低温障害保護効果が得られると記載されている。
フラボノイド配糖体化合物であるケルセチングルコシドは、生体材料の低温保存用の保存剤として提案されており、細胞の生存率が高められ低温障害保護効果が得られると報告されている（特許文献３）。また、同じ発明者により、フラボノイド配糖体化合物（例えば、ケルセチングルコシド）に加えてフラボノイド化合物（例えば、ケルセチン）を含む生体材料の低温保存用の保存剤も提案されている（特許文献４）。ここでは、フラボノイド配糖体化合物単独では低温障害保護効果がほとんど認められないか、十分な効果が得られない濃度範囲で、フラボノイド配糖体化合物とフラボノイド化合物を併用することにより、両者が相乗的に作用して低温障害保護効果が得られると記載されている。
本発明者らはまた、ジメチルスルフォオキサイドに精子保護効果があることを見いだし、ジメチルスルフォオキサイドにより、精子の冷蔵保存期間、特には精巣上体尾部の冷蔵保存期間を延長できることを確認した。
そして、ジメチルスルフォオキサイド単独、またはケルセチンとジメチルスルフォオキサイドを組み合わせて用いることにより、従来の方法より長い期間、精子を冷蔵保存できることを確認し、冷蔵保存されたマウス精子は、実用上問題のない運動能、受精能および産子発生能を有することを確認した。組み合わせて用いた場合、効果は特に顕著である。
そして、ジメチルスルフォオキサイド単独、またはケルセチンとジメチルスルフォオキサイドを組み合わせて用いることにより、従来の方法より長い期間、精子を冷蔵保存できることを確認し、冷蔵保存されたマウス精子は、実用上問題のない運動能、受精能および産子発生能を有することを確認した。組み合わせて用いた場合、効果は特に顕著である。
本発明において用いるケルセチン（クエルセチンともよばれる）とは、フラボノイドの一種で、以下の式で表される化合物であり、本発明においては、ケルセチン、およびその水和物や塩のいずれも用いることができる。本明細書中で、ケルセチンという場合は、ケルセチンおよびその水和物や塩を含む意味で用いられる。
ケルセチンは市販されている。市販のケルセチンは、例えば、水和物として販売されているが、それを本発明において制限なく用いることができる。
ジメチルスルフォオキサイドは、市販されているものを、本発明において制限なく用いることができる。
本発明において冷蔵保存とは、０℃〜１０℃、好ましくは４℃〜８℃での保存をいう。冷蔵保存では、精巣上体尾部をマウスから摘出した後、本発明の保存液中に浸漬し、できる限り早くに１０℃以下、好ましくは８℃以下にすることが好ましい。懸濁した精子の冷蔵保存の際は、マウスから摘出した精巣上体尾部から精子を回収した後、その懸濁液を本発明の保存液中に混合し、できる限り早くに１０℃以下、好ましくは８℃以下にすることが好ましい。
本発明の保存液中で冷蔵保存されるまたは本発明の保存方法で冷蔵保存されるマウス精子は、マウス精子懸濁液の精子および精巣上体尾部中に含まれる精子のいずれも含むが、精巣上体尾部中に保持された状態で保存されるのが好ましい。また、雄マウスからの精巣上体尾部の摘出および保存液中への浸漬等の操作は、公知の方法に従って行うことができる。
本発明で冷蔵保存されるマウス精子が由来するマウスの種類は特に制限なく、いずれの種類のまたは系統のマウスでもよい。
本発明で冷蔵保存されるマウス精子が由来するマウスの種類は特に制限なく、いずれの種類のまたは系統のマウスでもよい。
本発明の保存液におけるケルセチンの濃度は、精巣上体尾部の保存の場合は、通常、１〜１０００μｇ／ｍｌ、好ましくは１０〜２００μｇ／ｍｌ、より好ましくは５０〜２００μｇ／ｍｌ、さらに好ましくは５０〜１００μｇ／ｍｌであり、精子懸濁液の保存の場合は、通常、１〜１０００μｇ／ｍｌ、好ましくは１０〜２００μｇ／ｍｌ、より好ましくは１０〜１００μｇ／ｍｌ、さらに好ましくは１０〜５０μｇ／ｍｌである。
本発明の保存液におけるジメチルスルフォオキサイドの濃度は、精巣上体尾部の保存の場合は、通常、１〜２０％、好ましくは５〜２０％、より好ましくは５〜１０％であり、精子懸濁液の場合は、通常、１〜２０％、好ましくは１〜１０％、より好ましくは１〜５％である。
本発明の保存液は、細胞または組織、好ましくは胚または精子の凍結または冷蔵保存液として用いられている任意の公知の保存液に、ジメチルスルフォオキサイド単独、またはケルセチンおよびジメチルスルフォオキサイドの組合せを上記の濃度で添加することにより調製できる。公知の保存液としては、これに限定されないが、例えば、Ｌｉｆｏｒ（登録商標）保存液（Lifeblood Medical, Inc.により販売されている）、Ｍ２保存液（複数のメーカーから市販されている）をあげることができる。
ケルセチンおよびジメチルスルフォオキサイドの組合せを添加する場合、ケルセチンが難水溶性であるので、目的の最終濃度となるようにしてケルセチンをジメチルスルフォオキサイドに溶解した後、その溶解液を保存液に添加することが好ましい。
ケルセチンおよびジメチルスルフォオキサイドの組合せを添加する場合、ケルセチンが難水溶性であるので、目的の最終濃度となるようにしてケルセチンをジメチルスルフォオキサイドに溶解した後、その溶解液を保存液に添加することが好ましい。
本発明の保存液は、用時調製可能なキットを含むものであり、具体的には、これに限定されないが、ケルセチン、ジメチルスルフォオキサイド、および保存液のキットからなるマウス精子保存液のキットを含むものである。
本発明の保存液のキットにおいては、ケルセチンをジメチルスルフォオキサイドに溶解した後、その全量または一定量を保存液と混合した場合、ケルセチンの最終濃度およびジメチルスルフォオキサイドの最終濃度が所定の濃度となるように組み合わされている。ケルセチンおよびジメチルスルフォオキサイドの最終濃度は、それぞれ、上記した濃度である。保存液は、細胞または組織、好ましくは胚または精子の凍結または冷蔵保存液として用いられている任意の公知の保存液を用いることができ、これに限定されないが、例えば、Ｌｉｆｏｒ保存液、Ｍ２保存液をあげることができる。
本発明の保存液のキットにおいては、ケルセチンをジメチルスルフォオキサイドに溶解した後、その全量または一定量を保存液と混合した場合、ケルセチンの最終濃度およびジメチルスルフォオキサイドの最終濃度が所定の濃度となるように組み合わされている。ケルセチンおよびジメチルスルフォオキサイドの最終濃度は、それぞれ、上記した濃度である。保存液は、細胞または組織、好ましくは胚または精子の凍結または冷蔵保存液として用いられている任意の公知の保存液を用いることができ、これに限定されないが、例えば、Ｌｉｆｏｒ保存液、Ｍ２保存液をあげることができる。
本発明の方法は、以下の工程（ａ）、（ｂ）を含む精子の冷蔵保存方法である。以下、マウスを例に説明する。
工程（ａ）：雄マウスからマウス精巣上体尾部を摘出する工程。マウス精巣上体尾部の摘出は常法に基づいて行うことができるが、たとえば、本発明者らの文献（非特許文献１）を参照することができる。
工程（ｂ）：摘出したマウス精巣上体尾部を、ジメチルスルフォオキサイド、または、ジメチルスルフォオキサイドおよびケルセチンを含有する保存液中へ浸漬し、４℃〜１０℃の温度にて冷蔵保存する工程。保存液中への浸漬操作および冷蔵保存方法は、常法に従い行うことができる。
或いは、摘出したマウス精巣上体尾部から精子を分離し、本発明の保存液に精子を懸濁し、マウス精子懸濁液として、４℃〜１０℃の温度にて冷蔵保存する。
ジメチルスルフォオキサイドおよびケルセチンの含有量、および保存液については、本発明の保存液に関して記載した濃度を本発明の方法においてもそのまま適用できる。
工程（ａ）：雄マウスからマウス精巣上体尾部を摘出する工程。マウス精巣上体尾部の摘出は常法に基づいて行うことができるが、たとえば、本発明者らの文献（非特許文献１）を参照することができる。
工程（ｂ）：摘出したマウス精巣上体尾部を、ジメチルスルフォオキサイド、または、ジメチルスルフォオキサイドおよびケルセチンを含有する保存液中へ浸漬し、４℃〜１０℃の温度にて冷蔵保存する工程。保存液中への浸漬操作および冷蔵保存方法は、常法に従い行うことができる。
或いは、摘出したマウス精巣上体尾部から精子を分離し、本発明の保存液に精子を懸濁し、マウス精子懸濁液として、４℃〜１０℃の温度にて冷蔵保存する。
ジメチルスルフォオキサイドおよびケルセチンの含有量、および保存液については、本発明の保存液に関して記載した濃度を本発明の方法においてもそのまま適用できる。
以下、実施例により、本発明を具体的に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
１．材料と方法
（１−１）動物
精子および卵子の採取には、性成熟期に達した雄（１０〜１５週齢）および雌（８〜１２週齢）のＣ５７ＢＬ／６Ｊマウス（日本クレア）を使用した。胚移植用のレシピエントマウスおよび精管結紮雄には、成熟雄（１２〜２０週齢）および雌（８〜１２週齢）のＩＣＲマウス（日本クレア）を用いた。飼育環境は、７時から１９時までの明期、１９時から７時までの暗期、室温は２２±１℃、固形飼料および水は不断給与した。なお、全ての動物実験は、熊本大学動物実験指針に準じて行った。
（１−１）動物
精子および卵子の採取には、性成熟期に達した雄（１０〜１５週齢）および雌（８〜１２週齢）のＣ５７ＢＬ／６Ｊマウス（日本クレア）を使用した。胚移植用のレシピエントマウスおよび精管結紮雄には、成熟雄（１２〜２０週齢）および雌（８〜１２週齢）のＩＣＲマウス（日本クレア）を用いた。飼育環境は、７時から１９時までの明期、１９時から７時までの暗期、室温は２２±１℃、固形飼料および水は不断給与した。なお、全ての動物実験は、熊本大学動物実験指針に準じて行った。
（１−２）保存液および培地
（ｉ）精巣上体尾部冷蔵保存液
精巣上体尾部の冷蔵保存液は、Ｌｉｆｏｒ（登録商標）保存液（Lifeblood Medical,Inc.）（以下、”Ｌｉｆｏｒ”と略す）またはＭ２保存液（Sigma-Aldrich）を使用した。以下の実験例において、ジメチルスルフォオキサイド（ＤＭＳＯ）は、最終濃度が１、５、１０％（ｖ／ｖ）になるようＬｉｆｏｒに添加した。また、ケルセチン（以下、”Ｑｕｅ”と略す）は、１ ｍｇ／ｍＬとなるようにＤＭＳＯに溶解し、Ｑｕｅの最終濃度が１、５、１００ μｇ／ｍＬになるようＬｉｆｏｒに添加した。
（ｉ）精巣上体尾部冷蔵保存液
精巣上体尾部の冷蔵保存液は、Ｌｉｆｏｒ（登録商標）保存液（Lifeblood Medical,Inc.）（以下、”Ｌｉｆｏｒ”と略す）またはＭ２保存液（Sigma-Aldrich）を使用した。以下の実験例において、ジメチルスルフォオキサイド（ＤＭＳＯ）は、最終濃度が１、５、１０％（ｖ／ｖ）になるようＬｉｆｏｒに添加した。また、ケルセチン（以下、”Ｑｕｅ”と略す）は、１ ｍｇ／ｍＬとなるようにＤＭＳＯに溶解し、Ｑｕｅの最終濃度が１、５、１００ μｇ／ｍＬになるようＬｉｆｏｒに添加した。
（ｉｉ）精子前培養培地および体外受精培地
精子前培養培地はmodified Krebs-Ringer bicarbonate solution（ＴＹＨ）よりＢＳＡを除去したｆｒｅｅ−ＴＹＨに、０．７５ ｍＭのメチル−β−シクロデキストリン（ＭＢＣＤ）および１００ ｍｇ／１００ｍＬのポリビニルアルコールを添加したｃＴＹＨを使用した。また、体外受精培地には、１．０ ｍＭの還元グルタチオン（ＧＳＨ）を含有したmodified human tubal fluid（ｍＨＴＦ）を使用した。なお、調製した培地は、フィルター濾過（０．２２ μｍ）により滅菌した後、４℃で保存した。
精子前培養培地はmodified Krebs-Ringer bicarbonate solution（ＴＹＨ）よりＢＳＡを除去したｆｒｅｅ−ＴＹＨに、０．７５ ｍＭのメチル−β−シクロデキストリン（ＭＢＣＤ）および１００ ｍｇ／１００ｍＬのポリビニルアルコールを添加したｃＴＹＨを使用した。また、体外受精培地には、１．０ ｍＭの還元グルタチオン（ＧＳＨ）を含有したmodified human tubal fluid（ｍＨＴＦ）を使用した。なお、調製した培地は、フィルター濾過（０．２２ μｍ）により滅菌した後、４℃で保存した。
（ｉｉｉ）胚培養培地
体外受精により得られた胚は、potassium simplex optimized medium（ＫＳＯＭ）により、胚盤胞期まで体外培養を行った。なお、調製した培地は、フィルター濾過（０．２２ μｍ）により滅菌した後、４℃で保存した。
体外受精により得られた胚は、potassium simplex optimized medium（ＫＳＯＭ）により、胚盤胞期まで体外培養を行った。なお、調製した培地は、フィルター濾過（０．２２ μｍ）により滅菌した後、４℃で保存した。
（１−３）精子の回収
（ｉ）新鮮精子
精子は、安楽死させた成熟雄マウスの精巣上体尾部から採取した。採取した精子は、１００ μＬのｃＴＹＨに導入し、３７℃、５％ ＣＯ2のインキュベーター中で、６０分間の前培養を行い、各検討に用いた。
（ｉｉ）冷蔵保存精子（精子懸濁液）
精子懸濁液の冷蔵保存には、予め冷蔵したＣＡＲＤ冷蔵輸送キット（九動株式会社）を使用した。精子は、安楽死させた成熟雄マウスの精巣上体尾部から採取した。採取した精子は、冷蔵保存液であるＭ２保存液に各種濃度のＤＭＳＯおよびＱｕｅを添加した冷蔵保存液に導入して精子懸濁液にした。その後、精子懸濁液を０．２ ｍＬチューブに移した。続いて、ボタン温度計とともにチューブを紙箱に入れ、紙箱を魔法瓶に封入した後に、保冷剤と共に発泡スチロールの箱に梱包した。保存容器は、使用するまで冷蔵庫内（４℃）で保存した（３日間）。保存後、精子懸濁液を回収し、遠心処理（６００ｇ、４℃、５分）によって冷蔵保存液を除去した。その後、１００ μＬの精子前培養培地中に精子を導入した。導入した精子は、インキュベーター中で、３７℃、５％ ＣＯ2にて、６０分間の前培養を行い、各検討に用いた。
（ｉ）新鮮精子
精子は、安楽死させた成熟雄マウスの精巣上体尾部から採取した。採取した精子は、１００ μＬのｃＴＹＨに導入し、３７℃、５％ ＣＯ2のインキュベーター中で、６０分間の前培養を行い、各検討に用いた。
（ｉｉ）冷蔵保存精子（精子懸濁液）
精子懸濁液の冷蔵保存には、予め冷蔵したＣＡＲＤ冷蔵輸送キット（九動株式会社）を使用した。精子は、安楽死させた成熟雄マウスの精巣上体尾部から採取した。採取した精子は、冷蔵保存液であるＭ２保存液に各種濃度のＤＭＳＯおよびＱｕｅを添加した冷蔵保存液に導入して精子懸濁液にした。その後、精子懸濁液を０．２ ｍＬチューブに移した。続いて、ボタン温度計とともにチューブを紙箱に入れ、紙箱を魔法瓶に封入した後に、保冷剤と共に発泡スチロールの箱に梱包した。保存容器は、使用するまで冷蔵庫内（４℃）で保存した（３日間）。保存後、精子懸濁液を回収し、遠心処理（６００ｇ、４℃、５分）によって冷蔵保存液を除去した。その後、１００ μＬの精子前培養培地中に精子を導入した。導入した精子は、インキュベーター中で、３７℃、５％ ＣＯ2にて、６０分間の前培養を行い、各検討に用いた。
（ｉｉ）冷蔵保存精子（精巣上体尾部）
精巣上体尾部の保存は、竹尾らの方法に従って行った（非特許文献１）。精巣上体尾部の冷蔵保存には、予め冷蔵したＣＡＲＤ冷蔵輸送キット（九動株式会社）を使用した。精巣上体尾部の保存は、まず、安楽死させた成熟雄マウスから精巣上体尾部を採取し、冷蔵保存液であるＬｉｆｏｒまたはＭ２保存液に各種濃度のＤＭＳＯおよびＱｕｅを添加した冷蔵保存液で満たした０．２ ｍＬチューブに精巣上体尾部を移した。続いて、ボタン温度計とともにチューブを紙箱に入れ、紙箱を魔法瓶に封入した後に、保冷剤と共に発泡スチロールの箱に梱包した。保存容器は、使用するまで冷蔵庫内（４℃）で保存した（〜７日間）。保存後、精巣上体尾部を回収し、１００ μＬの精子前培養培地中に精子を採取した。採精後、インキュベーター中で、３７℃、５％ ＣＯ2にて、６０分間の前培養を行い、各検討に用いた。保存０日は、成熟雄マウスから採取した精巣上体尾部から、精子前培養培地中に精子を採取して用いた。
精巣上体尾部の保存は、竹尾らの方法に従って行った（非特許文献１）。精巣上体尾部の冷蔵保存には、予め冷蔵したＣＡＲＤ冷蔵輸送キット（九動株式会社）を使用した。精巣上体尾部の保存は、まず、安楽死させた成熟雄マウスから精巣上体尾部を採取し、冷蔵保存液であるＬｉｆｏｒまたはＭ２保存液に各種濃度のＤＭＳＯおよびＱｕｅを添加した冷蔵保存液で満たした０．２ ｍＬチューブに精巣上体尾部を移した。続いて、ボタン温度計とともにチューブを紙箱に入れ、紙箱を魔法瓶に封入した後に、保冷剤と共に発泡スチロールの箱に梱包した。保存容器は、使用するまで冷蔵庫内（４℃）で保存した（〜７日間）。保存後、精巣上体尾部を回収し、１００ μＬの精子前培養培地中に精子を採取した。採精後、インキュベーター中で、３７℃、５％ ＣＯ2にて、６０分間の前培養を行い、各検討に用いた。保存０日は、成熟雄マウスから採取した精巣上体尾部から、精子前培養培地中に精子を採取して用いた。
（１−４）精子運動能の評価
前培養した精子をｍＨＴＦにより希釈し、専用チャンバー（Hamilton Thorne, Inc.）に精子を導入した。その後、ＨＴＭ−ＩＶＯＳ（Hamilton Thorne, Inc.）にセットし、精子運動能を解析した。運動能を持つ精子（Motile sperm）の割合（％）は、精子全体数のうち、１秒間に５ μｍ 以上動いた精子の割合を示した。前進運動能を持つ精子（Progressive motile sperm）の割合（％）は、精子全体数のうち、精子進行方向性速度の平均値（Path Velocity）が５０ μｍ／秒 以上であり、かつ直線性（Straightness）が５０ ％ 以上である精子の割合を示した。
前培養した精子をｍＨＴＦにより希釈し、専用チャンバー（Hamilton Thorne, Inc.）に精子を導入した。その後、ＨＴＭ−ＩＶＯＳ（Hamilton Thorne, Inc.）にセットし、精子運動能を解析した。運動能を持つ精子（Motile sperm）の割合（％）は、精子全体数のうち、１秒間に５ μｍ 以上動いた精子の割合を示した。前進運動能を持つ精子（Progressive motile sperm）の割合（％）は、精子全体数のうち、精子進行方向性速度の平均値（Path Velocity）が５０ μｍ／秒 以上であり、かつ直線性（Straightness）が５０ ％ 以上である精子の割合を示した。
（１−５）卵子の回収
過排卵処理のため、成熟雌マウスに、７．５ ＩＵ pregnant mare serum gonadotropin（ＰＭＳＧ）を腹腔内投与し、４８時間後に７．５ ＩＵ human chorionic gonadotropin（ｈＣＧ）を腹腔内投与した。ｈＣＧ投与後１４〜１７時間後に、過排卵処理した雌マウスを安楽死させ、採取した卵管膨大部から、卵子卵丘細胞複合体を、パラフィンオイルで被覆した２００ μＬの１．０ ｍＭ 還元グルタチオン（ＧＳＨ）含有ｍＨＴＦ（体外受精培地）に導入した。導入後、インキュベーター中で、３７℃、５％ ＣＯ2にて、３０〜６０分間の前培養を行った。
過排卵処理のため、成熟雌マウスに、７．５ ＩＵ pregnant mare serum gonadotropin（ＰＭＳＧ）を腹腔内投与し、４８時間後に７．５ ＩＵ human chorionic gonadotropin（ｈＣＧ）を腹腔内投与した。ｈＣＧ投与後１４〜１７時間後に、過排卵処理した雌マウスを安楽死させ、採取した卵管膨大部から、卵子卵丘細胞複合体を、パラフィンオイルで被覆した２００ μＬの１．０ ｍＭ 還元グルタチオン（ＧＳＨ）含有ｍＨＴＦ（体外受精培地）に導入した。導入後、インキュベーター中で、３７℃、５％ ＣＯ2にて、３０〜６０分間の前培養を行った。
（１−６）体外受精、胚培養および胚移植
体外受精、胚培養および胚移植は、常法に従い行った。
体外受精、胚培養および胚移植は、常法に従い行った。
（１−７）統計解析
実験結果は、Ｓｔａｔｃｅｌ３を用いて分散分析を行い、有意差が認められた場合に限り、ＴｕｋｅｙまたはＤｕｎｎｅｔｔの方法により各群間の有意差検定を行った。有意水準 Ｐ＜０．０５のとき、その結果に有意に差があると判定した。
実験結果は、Ｓｔａｔｃｅｌ３を用いて分散分析を行い、有意差が認められた場合に限り、ＴｕｋｅｙまたはＤｕｎｎｅｔｔの方法により各群間の有意差検定を行った。有意水準 Ｐ＜０．０５のとき、その結果に有意に差があると判定した。
２．実験例
（２−１）実験例１：精子の運動能に対するＤＭＳＯまたはＱｕｅの影響
精巣上体尾部の冷蔵保存におけるＤＭＳＯまたはＱｕｅの精子の運動能に及ぼす影響を検討した。安楽死させた雄マウスから採取した精巣上体尾部を、Ｌｉｆｏｒ、各種濃度（５、１０％）のＤＭＳＯ含有Ｌｉｆｏｒ、あるいは各種濃度（５０、１００μｇ／ｍＬ）のＱｕｅおよび各種濃度（５、１０％）のＤＭＳＯ含有Ｌｉｆｏｒ中において４日間あるいは７日間冷蔵保存した。その後、精子を、０．７５ ｍＭ メチル−β−シクロデキストリン（ＭＢＣＤ）含有ｆｒｅｅ−ＴＹＨ（ｃＴＹＨ）で６０分間前培養した。続いて、前培養した精子をｍＨＴＦにより希釈し、ＨＴＭ−ＩＶＯＳにて精子運動能を解析した。結果を図１に示す。
運動能を持つ精子の割合および前進運動能を持つ精子の割合が、ＤＭＳＯの添加により顕著に向上した。また、ＤＭＳＯに加えてＱｕｅを添加することにより、それらの向上がより顕著になった。
（２−１）実験例１：精子の運動能に対するＤＭＳＯまたはＱｕｅの影響
精巣上体尾部の冷蔵保存におけるＤＭＳＯまたはＱｕｅの精子の運動能に及ぼす影響を検討した。安楽死させた雄マウスから採取した精巣上体尾部を、Ｌｉｆｏｒ、各種濃度（５、１０％）のＤＭＳＯ含有Ｌｉｆｏｒ、あるいは各種濃度（５０、１００μｇ／ｍＬ）のＱｕｅおよび各種濃度（５、１０％）のＤＭＳＯ含有Ｌｉｆｏｒ中において４日間あるいは７日間冷蔵保存した。その後、精子を、０．７５ ｍＭ メチル−β−シクロデキストリン（ＭＢＣＤ）含有ｆｒｅｅ−ＴＹＨ（ｃＴＹＨ）で６０分間前培養した。続いて、前培養した精子をｍＨＴＦにより希釈し、ＨＴＭ−ＩＶＯＳにて精子運動能を解析した。結果を図１に示す。
運動能を持つ精子の割合および前進運動能を持つ精子の割合が、ＤＭＳＯの添加により顕著に向上した。また、ＤＭＳＯに加えてＱｕｅを添加することにより、それらの向上がより顕著になった。
（２−２）実験例２：精子の受精能に対するＤＭＳＯまたはＱｕｅの影響
精巣上体尾部の冷蔵保存におけるＤＭＳＯまたはＱｕｅの精子の受精能に及ぼす影響を検討した。安楽死させた雄マウスから採取した精巣上体尾部を、Ｌｉｆｏｒ、各種濃度（１、５、１０％）のＤＭＳＯ含有Ｌｉｆｏｒ、あるいは各種濃度（１０、５０、１００μｇ／ｍＬ）のＱｕｅおよび各種濃度（１、５、１０％）のＤＭＳＯ含有Ｌｉｆｏｒ中において７日間冷蔵保存した。その後、精子を、ｃＴＹＨで６０分間前培養した。続いて、卵子を回収した１．０ ｍＭ ＧＳＨ含有ｍＨＴＦに精子を導入し、体外受精を行った。受精率（Fertilization rate）は次式にて算出した。Fertilization rate （％）＝二細胞期胚数／供試卵子数× １００。結果を図２に示す。
受精能を持つ精子の割合がＤＭＳＯの添加により顕著に向上した。また、ＤＭＳＯに加えてさらにＱｕｅを添加することにより、向上がより顕著になった。
また、ＤＭＳＯ含有Ｌｉｆｏｒ、またはＤＭＳＯ＋Ｑｕｅ含有Ｌｉｆｏｒにて冷蔵保存を行った精巣上体尾部から採取した精子を用いた体外受精を行ったところ、いずれの場合も体外受精により得られた二細胞期胚は、正常な産子へ発生した。
精巣上体尾部の冷蔵保存におけるＤＭＳＯまたはＱｕｅの精子の受精能に及ぼす影響を検討した。安楽死させた雄マウスから採取した精巣上体尾部を、Ｌｉｆｏｒ、各種濃度（１、５、１０％）のＤＭＳＯ含有Ｌｉｆｏｒ、あるいは各種濃度（１０、５０、１００μｇ／ｍＬ）のＱｕｅおよび各種濃度（１、５、１０％）のＤＭＳＯ含有Ｌｉｆｏｒ中において７日間冷蔵保存した。その後、精子を、ｃＴＹＨで６０分間前培養した。続いて、卵子を回収した１．０ ｍＭ ＧＳＨ含有ｍＨＴＦに精子を導入し、体外受精を行った。受精率（Fertilization rate）は次式にて算出した。Fertilization rate （％）＝二細胞期胚数／供試卵子数× １００。結果を図２に示す。
受精能を持つ精子の割合がＤＭＳＯの添加により顕著に向上した。また、ＤＭＳＯに加えてさらにＱｕｅを添加することにより、向上がより顕著になった。
また、ＤＭＳＯ含有Ｌｉｆｏｒ、またはＤＭＳＯ＋Ｑｕｅ含有Ｌｉｆｏｒにて冷蔵保存を行った精巣上体尾部から採取した精子を用いた体外受精を行ったところ、いずれの場合も体外受精により得られた二細胞期胚は、正常な産子へ発生した。
（２−３）実験例３：精子の運動能に対するＤＭＳＯの影響
ＤＭＳＯが冷蔵保存精子の運動能に及ぼす影響を検討した。安楽死させた雄マウスから採取した精巣上体尾部を、Ｌｉｆｏｒ、１０％のＤＭＳＯ含有Ｌｉｆｏｒ中において０、１、２、３、４、５、６、７日間冷蔵保存しした。その後、精子を、ｃＴＹＨで６０分間前培養した。続いて、前培養した精子をｍＨＴＦにより希釈し、ＨＴＭ−ＩＶＯＳにて精子運動能を解析した。結果を図３に示す。
ＤＭＳＯの添加により、７日間まで、冷蔵保存した精子において、運動能を持つ精子の割合および前進運動能を持つ精子の割合が、０日間保存精子（新鮮精子）と同等に維持された。
ＤＭＳＯが冷蔵保存精子の運動能に及ぼす影響を検討した。安楽死させた雄マウスから採取した精巣上体尾部を、Ｌｉｆｏｒ、１０％のＤＭＳＯ含有Ｌｉｆｏｒ中において０、１、２、３、４、５、６、７日間冷蔵保存しした。その後、精子を、ｃＴＹＨで６０分間前培養した。続いて、前培養した精子をｍＨＴＦにより希釈し、ＨＴＭ−ＩＶＯＳにて精子運動能を解析した。結果を図３に示す。
ＤＭＳＯの添加により、７日間まで、冷蔵保存した精子において、運動能を持つ精子の割合および前進運動能を持つ精子の割合が、０日間保存精子（新鮮精子）と同等に維持された。
（２−４）実験例４：精子の運動能に対するＱｕｅの影響
Ｑｕｅが冷蔵保存精子の運動能に及ぼす影響を検討した。安楽死させた雄マウスから採取した精巣上体尾部を、Ｌｉｆｏｒ、１０％のＤＭＳＯおよび１００μｇ／ｍＬのＱｕｅ含有Ｌｉｆｏｒ中において０、１、２、３、４、５、６、７日間冷蔵保存しした。その後、精子を、ｃＴＹＨで６０分間前培養した。続いて、前培養した精子をｍＨＴＦにより希釈し、ＨＴＭ−ＩＶＯＳにて精子運動能を解析した。結果を図４に示す。
ＤＭＳＯ＋Ｑｕｅの添加により、７日間まで、冷蔵保存した精子において、運動能を持つ精子の割合および前進運動能を持つ精子の割合が、０日間保存精子（新鮮精子）と同等に維持された。
Ｑｕｅが冷蔵保存精子の運動能に及ぼす影響を検討した。安楽死させた雄マウスから採取した精巣上体尾部を、Ｌｉｆｏｒ、１０％のＤＭＳＯおよび１００μｇ／ｍＬのＱｕｅ含有Ｌｉｆｏｒ中において０、１、２、３、４、５、６、７日間冷蔵保存しした。その後、精子を、ｃＴＹＨで６０分間前培養した。続いて、前培養した精子をｍＨＴＦにより希釈し、ＨＴＭ−ＩＶＯＳにて精子運動能を解析した。結果を図４に示す。
ＤＭＳＯ＋Ｑｕｅの添加により、７日間まで、冷蔵保存した精子において、運動能を持つ精子の割合および前進運動能を持つ精子の割合が、０日間保存精子（新鮮精子）と同等に維持された。
（２−５）実験例５：精子の受精能に対するＤＭＳＯまたはＱｕｅの影響
ＤＭＳＯ、またはＤＭＳＯおよびＱｕｅを含有するＬｉｆｏｒで０〜７日間冷蔵保存した精巣上体尾部から採取した精子の受精能を検討した。安楽死させた雄マウスから採取した精巣上体尾部を、Ｌｉｆｏｒ、１０％のＤＭＳＯを含有するＬｉｆｏｒ、１０％のＤＭＳＯ＋１００μｇ／ｍＬのＱｕｅを含有するＬｉｆｏｒ中において０、１、２、３、４、５、６、７日間冷蔵保存した。その後、精子をｃＴＹＨで６０分間前培養した。続いて、卵子を回収した１．０ ｍＭ ＧＳＨ含有ｍＨＴＦに精子を導入し、体外受精を行った。なお、受精率（Fertilization rate）は次式にて算出した。Fertilization rate （％）＝二細胞期胚数／供試卵子数 × １００（ｎ＝３〜５）。結果を図５に示す。
ＤＭＳＯの添加により、５日間まで冷蔵保存した精子において、０日間保存精子（新鮮精子）と同等の受精率を維持した。また、ＤＭＳＯ＋Ｑｕｅの添加により、７日間まで冷蔵保存した精子において、新鮮精子と同等の受精率を維持した。
ＤＭＳＯ、またはＤＭＳＯおよびＱｕｅを含有するＬｉｆｏｒで０〜７日間冷蔵保存した精巣上体尾部から採取した精子の受精能を検討した。安楽死させた雄マウスから採取した精巣上体尾部を、Ｌｉｆｏｒ、１０％のＤＭＳＯを含有するＬｉｆｏｒ、１０％のＤＭＳＯ＋１００μｇ／ｍＬのＱｕｅを含有するＬｉｆｏｒ中において０、１、２、３、４、５、６、７日間冷蔵保存した。その後、精子をｃＴＹＨで６０分間前培養した。続いて、卵子を回収した１．０ ｍＭ ＧＳＨ含有ｍＨＴＦに精子を導入し、体外受精を行った。なお、受精率（Fertilization rate）は次式にて算出した。Fertilization rate （％）＝二細胞期胚数／供試卵子数 × １００（ｎ＝３〜５）。結果を図５に示す。
ＤＭＳＯの添加により、５日間まで冷蔵保存した精子において、０日間保存精子（新鮮精子）と同等の受精率を維持した。また、ＤＭＳＯ＋Ｑｕｅの添加により、７日間まで冷蔵保存した精子において、新鮮精子と同等の受精率を維持した。
（２−６）実験例６：本発明の冷蔵保存液を用いた輸送
本発明の冷蔵保存液および方法を用い、旭川医科大学より熊本大学へ国内冷蔵輸送試験を行った。
安楽死させた雄マウスから採取した精巣上体尾部を、Ｌｉｆｏｒ、１０％のＤＭＳＯおよび１００μｇ／ｍＬのＱｕｅ含有Ｌｉｆｏｒ中においてＣＡＲＤ冷蔵輸送キットを用いて冷蔵保存し、旭川医科大学より熊本大学へ冷蔵輸送を行った。輸送キットの内部に設置した温度計の測定結果を図６に示す。輸送を開始した時間を０とし、精子を回収した時間まで温度を測定した。保存温度は１４℃から漸次低下し、５．５℃で一定となった。
本発明の冷蔵保存液および方法を用い、旭川医科大学より熊本大学へ国内冷蔵輸送試験を行った。
安楽死させた雄マウスから採取した精巣上体尾部を、Ｌｉｆｏｒ、１０％のＤＭＳＯおよび１００μｇ／ｍＬのＱｕｅ含有Ｌｉｆｏｒ中においてＣＡＲＤ冷蔵輸送キットを用いて冷蔵保存し、旭川医科大学より熊本大学へ冷蔵輸送を行った。輸送キットの内部に設置した温度計の測定結果を図６に示す。輸送を開始した時間を０とし、精子を回収した時間まで温度を測定した。保存温度は１４℃から漸次低下し、５．５℃で一定となった。
次いで、冷蔵輸送された精巣上体尾部から精子を回収し、ｃＴＹＨで６０分間前培養した。なお、冷蔵保存開始から精子回収までの保存時間は７日間であった。続いて、前培養した精子をｍＨＴＦにより希釈し、ＨＴＭ−ＩＶＯＳにて精子運動能を解析した。結果を図７に示す。
Ｑｕｅ含有Ｌｉｆｏｒを用いて冷蔵保存した場合は、Ｌｉｆｏｒのみの場合に比べて、運動能を持つ精子の割合および前進運動能を持つ精子の割合が著しく向上した。
続いて、冷蔵輸送した精巣上体尾部から回収した精子を用いて受精能を確認した。卵子を回収した１．０ ｍＭ ＧＳＨ含有ｍＨＴＦに精子を導入し、体外受精を行った。受精率（Fertilization rate）は、以下により算出した。Fertilization rate（％）＝二細胞期胚数／供試卵子数×１００（ｎ＝３）。
Ｑｕｅ含有Ｌｉｆｏｒを用いて冷蔵保存した場合は、Ｌｉｆｏｒのみの場合に比べて、精子の受精率が著しく向上した。
また、Ｑｕｅ含有Ｌｉｆｏｒにて冷蔵保存を行った精巣上体尾部から採取した精子を用いた体外受精を行ったところ、体外受精により得られた二細胞期胚は、正常な産子へ発生した。
Ｑｕｅ含有Ｌｉｆｏｒを用いて冷蔵保存した場合は、Ｌｉｆｏｒのみの場合に比べて、運動能を持つ精子の割合および前進運動能を持つ精子の割合が著しく向上した。
続いて、冷蔵輸送した精巣上体尾部から回収した精子を用いて受精能を確認した。卵子を回収した１．０ ｍＭ ＧＳＨ含有ｍＨＴＦに精子を導入し、体外受精を行った。受精率（Fertilization rate）は、以下により算出した。Fertilization rate（％）＝二細胞期胚数／供試卵子数×１００（ｎ＝３）。
Ｑｕｅ含有Ｌｉｆｏｒを用いて冷蔵保存した場合は、Ｌｉｆｏｒのみの場合に比べて、精子の受精率が著しく向上した。
また、Ｑｕｅ含有Ｌｉｆｏｒにて冷蔵保存を行った精巣上体尾部から採取した精子を用いた体外受精を行ったところ、体外受精により得られた二細胞期胚は、正常な産子へ発生した。
（２−７）実験例７：Ｍ２保存液を用いた冷蔵保存
実施例１と同様にして、ＤＭＳＯまたはＤＭＳＯ＋Ｑｕｅを含有するＭ２保存液で冷蔵保存した場合の精子の運動能を確認した。Ｍ２保存液、１０％のＤＭＳＯ含有Ｍ２保存液（Ｍ２−ＤＭＳＯ）、あるいは１０％のＤＭＳＯおよび１００μｇ／ｍＬのＱｕｅを含有するＭ２保存液（Ｍ２−ＤＭＳＯ＋Ｑ）、のそれぞれを用いて４日間冷蔵保存を行ったのち、精子の運動能を測定した。結果を図９に示す。
Ｍ２保存液を用いた場合でも、受精能を持つ精子の割合が、ＤＭＳＯの添加あるいはＤＭＳＯ＋Ｑｕｅの添加により顕著に向上した。
実施例１と同様にして、ＤＭＳＯまたはＤＭＳＯ＋Ｑｕｅを含有するＭ２保存液で冷蔵保存した場合の精子の運動能を確認した。Ｍ２保存液、１０％のＤＭＳＯ含有Ｍ２保存液（Ｍ２−ＤＭＳＯ）、あるいは１０％のＤＭＳＯおよび１００μｇ／ｍＬのＱｕｅを含有するＭ２保存液（Ｍ２−ＤＭＳＯ＋Ｑ）、のそれぞれを用いて４日間冷蔵保存を行ったのち、精子の運動能を測定した。結果を図９に示す。
Ｍ２保存液を用いた場合でも、受精能を持つ精子の割合が、ＤＭＳＯの添加あるいはＤＭＳＯ＋Ｑｕｅの添加により顕著に向上した。
（２−８）実験例８：精子懸濁液の冷蔵保存
精子懸濁液の冷蔵保存におけるＤＭＳＯまたはＱｕｅの精子の運動能に及ぼす影響を検討した。安楽死させた雄マウスから採取した精巣上体尾部から回収した精子の懸濁液を、Ｍ２保存液、各種濃度（１、５、１０％）のＤＭＳＯ含有Ｍ２保存液、あるいは各種濃度（１０、５０、１００μｇ／ｍＬ）のＱｕｅおよび各種濃度（１、５、１０％）のＤＭＳＯ含有Ｍ２保存液中において３日間冷蔵保存した。その後、精子を、ｃＴＹＨで６０分間前培養した。続いて、前培養した精子をｍＨＴＦにより希釈し、ＨＴＭ−ＩＶＯＳにて精子運動能を解析した。結果を図１０に示す。
運動能を持つ精子の割合および前進運動能を持つ精子の割合が、５％のＤＭＳＯの添加により顕著に向上した。また、１％のＤＭＳＯ＋１０μｇ／ｍＬのＱｕｅを組み合わせて添加することにより、同様に運動能を持つ精子の割合が顕著に向上した。
精子懸濁液の冷蔵保存におけるＤＭＳＯまたはＱｕｅの精子の運動能に及ぼす影響を検討した。安楽死させた雄マウスから採取した精巣上体尾部から回収した精子の懸濁液を、Ｍ２保存液、各種濃度（１、５、１０％）のＤＭＳＯ含有Ｍ２保存液、あるいは各種濃度（１０、５０、１００μｇ／ｍＬ）のＱｕｅおよび各種濃度（１、５、１０％）のＤＭＳＯ含有Ｍ２保存液中において３日間冷蔵保存した。その後、精子を、ｃＴＹＨで６０分間前培養した。続いて、前培養した精子をｍＨＴＦにより希釈し、ＨＴＭ−ＩＶＯＳにて精子運動能を解析した。結果を図１０に示す。
運動能を持つ精子の割合および前進運動能を持つ精子の割合が、５％のＤＭＳＯの添加により顕著に向上した。また、１％のＤＭＳＯ＋１０μｇ／ｍＬのＱｕｅを組み合わせて添加することにより、同様に運動能を持つ精子の割合が顕著に向上した。
上記の記載は、本発明の目的及び対象を単に説明するものであり、添付の特許請求の範囲を限定するものではない。添付の特許請求の範囲から離れることなしに、記載された実施態様に対しての、種々の変更及び置換は、本明細書に記載された教示より当業者にとって明らかである。
本発明の方法により、マウスの精子を例えば７日間冷蔵保存した後でも、実用上問題のない運動能、受精能および産子発生能を達成できる精子を提供でき、マウス精子の冷蔵保存技術として有用である。
Claims (22)
- マウス精子を冷蔵保存するための保存液であって、ジメチルスルフォオキサイドを１％以上の濃度にて含有する保存液。
- ジメチルスルフォオキサイドの濃度が５％以上である請求項１に記載の保存液。
- マウス精子を冷蔵保存するための保存液であって、ケルセチンおよびジメチルスルフォオキサイドを含有する保存液。
- 前記マウス精子がマウス精巣上体尾部中に保持されたマウス精子である請求項３に記載の保存液。
- ケルセチン濃度が１０μｇ／ｍｌ〜２００μｇ／ｍｌであり、ジメチルスルフォオキサイドの濃度が１％〜２０％である、請求項４に記載の保存液。
- ケルセチン濃度が５０μｇ／ｍｌ以上であり、ジメチルスルフォオキサイドの濃度が５％以上である、請求項５に記載の保存液。
- 前記マウス精子がマウス精子懸濁液である請求項３に記載の保存液。
- ケルセチン濃度が１０μｇ／ｍｌ〜１００μｇ／ｍｌであり、ジメチルスルフォオキサイドの濃度が１％〜１０％である、請求項７に記載の保存液。
- ケルセチン濃度が１０μｇ／ｍｌ〜５０μｇ／ｍｌであり、ジメチルスルフォオキサイドの濃度が１％〜５％である、請求項８に記載の保存液。
- 前記保存液が、ジメチルスルフォオキサイドまたはケルセチンを含有するＬｉｆｏｒ（登録商標）保存液またはＭ２保存液である請求項１〜９のいずれか一つに記載の保存液。
- 請求項１〜１０のいずれか一つに記載の保存液を用いてマウス精子を保存する方法。
- マウス精子を冷蔵保存するための保存液のキットであって、ケルセチン、ジメチルスルフォオキサイド、および保存液からなるキット。
- ケルセチンをジメチルスルフォオキサイドに溶解した後、保存液と混合した場合、ケルセチンの最終濃度が１０μｇ／ｍｌ〜２００μｇ／ｍｌ、ジメチルスルフォオキサイドの最終濃度が１％〜２０％となるように組み合わされている、請求項１２に記載のキット。
- 前記保存液が、Ｌｉｆｏｒ（登録商標）保存液またはＭ２保存液である請求項１２または１３に記載のキット。
- ジメチルスルフォオキサイドを１％以上の濃度にて含有する保存液中に雄マウスから摘出したマウス精巣上体尾部を浸漬し、４℃〜１０℃の温度にて冷蔵保存する工程を含む、マウス精子の冷蔵保存方法。
- ジメチルスルフォオキサイドの濃度が５％以上である請求項１５に記載の冷蔵保存方法。
- ケルセチンおよびジメチルスルフォオキサイドを含有する保存液中に雄マウスから摘出したマウス精巣上体尾部を浸漬し、４℃〜１０℃の温度にて冷蔵保存する工程を含む、マウス精子の冷蔵保存方法。
- ケルセチン濃度が１０μｇ／ｍｌ〜２００μｇ／ｍｌであり、ジメチルスルフォオキサイドの濃度が１％〜２０％の濃度である、請求項１７に記載の冷蔵保存方法。
- ケルセチン濃度が５０μｇ／ｍｌ〜１００μｇ／ｍｌであり、ジメチルスルフォオキサイドの濃度が５％〜１０％の濃度である、請求項１８に記載の冷蔵保存方法。
- ケルセチンおよびジメチルスルフォオキサイドを含有する保存液中に雄マウスから得られたマウス精子を懸濁し、該精子懸濁液を、４℃〜１０℃の温度にて冷蔵保存する工程を含む、マウス精子の冷蔵保存方法。
- 前記保存液が、ケルセチン濃度が１０μｇ／ｍｌ〜５０μｇ／ｍｌであり、ジメチルスルフォオキサイドの濃度が１％〜５％である請求項２０に記載の冷蔵保存方法。
- 前記保存液が、ジメチルスルフォオキサイドまたはケルセチンを含有するＬｉｆｏｒ（登録商標）保存液またはＭ２保存液である請求項１５〜２１のいずれか一つに記載の冷蔵保存方法。
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