JP2016519573A

JP2016519573A - 眼の疾患を防ぐおよび／または治療する方法における使用ための修飾ｔｇｆ−ベータオリゴヌクレオチド

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Publication number: JP2016519573A
Application number: JP2016504683A
Authority: JP
Inventors: ヤシンスキ、フランク; ヤニコット、ミシェル; ウールマン、オイゲン
Original assignee: イサルナセラピューティクスゲゼルシャフトミットベシュレンクテルハフツング
Priority date: 2013-03-27
Filing date: 2014-03-27
Publication date: 2016-07-07
Anticipated expiration: 2034-03-27
Also published as: EP2978846A2; DK2978846T3; EA201591594A1; CN105283551B; US20160040167A1; US9688988B2; US20170314025A1; US20190144865A1; LT2978846T; HUE049246T2; EP2978846B1; PL2978846T4; CN105283551A; BR112015024760A2; US10125368B2; SI2978846T1; KR20150140702A; WO2014154836A2; PT2978846T; WO2014154836A3

Abstract

本発明は、ＬＮＡおよび／若しくはＥＮＡ、ポリアルキレンオキシド−、２’−フルオロ、２’−Ｏ−メトキシ−、および／または２’Ｏ−メチル−修飾ヌクレオチドのような修飾ヌクレオチドを含む、ＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２、ＴＧＦ−ベータ３核酸配列の選択領域の１０から２０ヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチドに関する。本発明はさらに、例えばオリゴヌクレオチドを含む医薬組成物に関し、組成物またはオリゴヌクレオチドは、緑内障、後嚢混濁、ドライアイ、マルファンまたはロエイス−ディーツ症候群、線維芽細胞腫、脈絡膜癌、加齢黄斑変性症、糖尿病性黄斑エンドマ、または白内障などのような黄斑変性症を予防および／または治療の方法において使用される。【選択図】なし

Description

本発明は、眼の疾患を防ぐおよび／または治療するための方法において使用される、架橋型ヌクレオチド、ポリアルキレンオキシド−、２’−フルオロ、２’−Ｏ−メトキシおよび／または２’−Ｏ−メチル修飾ヌクレオチドを含むＴＧＦ−ベータオリゴヌクレオチドに向けられる。

様々な他の増殖因子も関与するが、トランスフォーミング増殖因子ベータ（ＴＧＦ−ベータ）、例えば増殖または細胞分化を制御する多機能性増殖因子は、発展または組織修復の生理的または病理的過程における眼の組織の細胞挙動の調整に関与する最も重要なリガンドの１つである。このリガンドの増加した活性は、好ましくない炎症反応や組織線維症を誘発し得る。哺乳類では、ＴＧＦ−ベータの３つのイソ体、すなわちベータ１、ベータ２、ベータ３が知られている。ほとんどの場合、ＴＧＦ−ベータは、細胞外マトリックスの生産を促進し、細胞増殖を抑制する。さらに、ＴＧＦ−ベータは、多くの成長因子、すなわち、それ自体がＴＧＦ−ベータ１である、結合組織増殖因子（ＣＴＧＦ）、血小板由来増殖因子（ＰＤＧＦ）、線維芽細胞増殖因子（ＦＧＦｓ）、および血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）を誘発し得る。これらすべての要因は、損傷後の正常組織の修復において重要な役割を担う。

内側の眼の構造（角膜内皮、虹彩、水晶体、小柱網および網膜）を浸す房水は、種々のサイトカインおよび増殖因子を含む。ＴＧＦ−ベータは、特にＴＧＦ−ベータ２、支配的なサイトカインである。生理学的には、ＴＧＦ−ベータは、成熟したＴＧＦ−ベータ、潜伏関連ペプチド（ＬＡＰ）（小潜在型）、および潜在ＴＧＦ−ベータ結合性タンパク質（ＬＴＢＰ）からなる潜伏性、非活性型のような毛様体上皮およびレンズ上皮において主に生産される。水晶体の各ＴＧＦ−ベータイソ体の不均一な発現パターンは、ヒトおよび動物において報告されている。様々な眼の疾患の臨床経過の間、房水中のＴＧＦ−ベータ２の濃度は変化する。例えば、増殖性硝子体網膜症（ＰＶＲ）、ポスト網膜剥離および網膜線維症の障害を伴う眼において、硝子体液中のＴＧＦ−ベータ２の濃度は、網膜線維症の進行に伴って増加する。総および活性ＴＧＦ−ベータ２の濃度も、通常の被験者よりも糖尿病性網膜症および開放隅角緑内障を有する患者の方が高い。糖尿病の網膜症において、網膜微小血管の慢性閉塞は、ＶＥＧＦのアップレギュレーションおよびマクロファージ（ＴＧＦ−ベータの強力なソース）のケモタキシスを誘発する。ＶＥＧＦおよびＴＧＦ−ベータは、潜在的に網膜剥離や出血を引き起こし得る、これらの新しい血管の周りの網膜血管新生および線維症の両方を誘発するように協力しあう。増加ＴＧＦ−ベータ２のレベルは、水の排水経路の閉塞および緑内障眼における眼圧の上昇につながる、小柱網細胞におけるマトリックス発現および沈着を誘発する。これらの例の各々において、ＴＧＦ−ベータは、疾患の病因における役割を果たす。偽落屑症候群、レンズ、絞り、または小柱網上の剥脱性の物質の堆積を伴う緑内障の一種、を伴う眼において、ＴＧＦ−ベータ１のレベルは上昇するが、この疾患の病因におけるＴＧＦ−ベータ１の正確な役割は不明である（非特許文献１を参照）。

ＴＧＦ−ベータは、細胞外マトリクスの生産および沈着の最も強力な調節因子の１つである。これは、生産を刺激し、２つの主要なメカニズムによる細胞外マトリクスの接着特性に影響を与える。第１に、ＴＧＦ−ベータは、線維芽細胞および、コラーゲン、フィブロネクチン、およびインテグリンなどの細胞外マトリックスタンパク質および細胞接着タンパク質を生産する他の細胞を刺激する。第２に、ＴＧＦ−ベータは、コラゲナーゼ、ヘパリナーゼおよびストロメライシンを含む細胞外マトリックスを分解する酵素の生産を減少させ、プラスミノーゲンアクチベーターインヒビター１型とメタロプロテアーゼの組織阻害剤を含む細胞外マトリックスを分解する酵素を阻害するタンパク質の生産を増加させる。これらの変化の正味の効果は、細胞外マトリックスタンパク質の生産を増加させ、且つ細胞の特異的な様式における細胞の接着特性を増加または低下させることのいずれか一方である。（非特許文献２を参照）。

ＴＧＦ−ベータを標的とすることは、例えば緑内障の潜在的な治療手段として提案されている。緑内障の発症におけるＴＧＦ−ベータの様々な態様について、治療法は、その生産、活性化、受容体との相互作用、下流の細胞内調節機構および／または最終的な構造並びにＥＣＭの変更を調整するように向けられている（非特許文献３を参照）。

慢性的な眼圧の上昇に基づく緑内障（ＧＣＭ）は、視神経乳頭神経網膜リム組織の喪失、網膜神経線維層の欠陥、および機能的視野検査での欠損であると臨床的に示される、網膜神経節細胞の進行の喪失によって特徴づけられる進行性視神経症神経障害である（非特許文献４を参照）。緑内障は、米国の成人における失明の２番目の主要原因である。手に負えない患者の外科手術を含む治療の選択肢は多数であるにもかかわらず、失明は大きな脅威のままである。原発開放隅角緑内障（ＰＯＡＧ）は、米国における緑内障の最も一般的な形態である。世界的に、２０００年において、ＰＯＡＧを持つ人々の数は、両目が失明している６７０万人を含むおおよそ６６８０万人と見積もられている（非特許文献５を参照）。

白内障手術は、最も一般的な眼科手術の手順である。米国だけで、３，０００，０００に及ぶ白内障手術が毎年行われている。現在、米国政府は、白内障の治療（メディケア患者のみ）に年間３０億ドル以上を費やしている。その手順により眼のレンズを除去し、眼内レンズが移植される。水晶体レンズはその場に残り、水晶体の後部には、レンズ交換に伴う機械的破壊および潜在的な他の要因による後嚢混濁（ＰＣＯ）がしばし発現する。この条件は、２０から４０％のＰＣＯ患者に発生し、混濁を除去するために、ＹＡＧレーザー後嚢切が最初の２年以内に行われる（頻度は、国、用いられるレンズの種類および手術経験に依存する）（非特許文献６を参照）。ＹＡＧレーザーの使用は、網膜剥離（１〜３％）、嚢胞様黄斑浮腫（５％まで）および二次的緑内障を含む別のリスクと関連する（非特許文献７を参照）。

ＴＧＦ−ベータは、ＧＣＭおよびＰＣＯの両方の病態生理と密接に関連していた。これまで、ＴＧＦ−ベータタンパク質の影響は、例えば特許文献１に記載されているようなＡＬＫ５阻害剤または例えば特許文献２に開示されているそのイソ型の１つであるＴＧＦ−ベータに対する抗体によって阻害されてきた。これまでにこれらの化合物のいずれも、眼におけるＴＧＦ−ベータの効果的な阻害に成功していないので、例えば、ＧＣＭまたはＰＣＯなどの眼疾患の予防および／または治療への成功が期待されている。

国際公開第２００９／１４６４０８号国際公開第２０１２／１６７１４３号

ＳｈｉｚｕｙａＳａｉｋａ，ＬａｂｏｒａｒｔｏｒｙＩｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎ（２００６），８６，１０６−１１５ＢｌｏｂｅＧＣｅｔａｌ．，Ｍａｙ２０００， "Ｒｏｌｅｏｆｔｒａｎｓｆｏｒｍｉｎｇｇｒｏｗｔｈｆａｃｔｏｒｂｅｔａｉｎｈｕｍａｎｄｉｓｅａｓｅ"，Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．３４２（１８），１３５０−１３５８ＰｒｅｎｄｅｓＭＡｅｔａｌ．，ＢｒＪＯｐｈｔｈａｌｍｏｌ（２０１３），９７，６８０−６８６Ｄａｎｅｓｈ−Ｍｅｙｅｒｅｔａｌ．，Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌ．２００６，１１３：６０３−６１１Ｑｕｉｎｇｌｅｙ，ＢｒＪＯｐｈｔｈａｌｍｏｌ．１９９６Ｍａｙ；８０（５）：３８９−３９３ＪｏｈａｎｓｓｏｎＢｅｔａｌ．，ＢｒＪＯｐｈｔｈａｌｍｏｌ（２０１０），９４，４５０−４５５；ＭａｔｈｅｗＲＧｅｔａｌ．，ＯｐｈｔｈａｌｍｉｃＳｕｒｇＬａｓｅｒｓＩｍａｇｉｎｇ（２０１０），４１，６５１−６５５ＢｉｌｌｏｔｔｅＣａｎｄＢｅｒｄｅａｕｘＧ，ＪＣａｔａｒａｃｔＲｅｆｒａｃｔＳｕｒｇ（２００４），３０（１０），２０６４−２０７１

本発明の目的は、特にＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２、および／若しくはＴＧＦ−ベータ３ｍＲＮＡ、ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡ、またはＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ３ｍＲＮＡ、またはＴＧＦ−ベータ２およびＴＧＦ−ベータ３ｍＲＮＡの発現を阻害するオリゴヌクレオチド、好ましくはアンチセンスオリゴヌクレオチドを提供することであり、結果的に、任意の（深刻な）副作用を引き起こすことなく、眼疾患の予防および／または治療に使用するために非常に効果的である。

本発明は、ドライアイ、緑内障または後嚢混濁のような眼の疾患を治療するための方法において用いられるＴＧＦ−ベータのオリゴヌクレオチド、好ましくは、ＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２、および／またはＴＧＦ−ベータ３のアンチセンスオリゴヌクレオチドの使用に言及する。

ＴＧＦ−ベータのオリゴヌクレオチドは、ＳＥＱＩＤＮＯ．１（図１参照）のＴＧＦ−ベータ１の核酸配列、またはＳＥＱＩＤＮＯ．２（図２参照）のＴＧＦ−ベータ２の核酸配列、またはＳＥＱＩＤＮＯ．３（図３参照）のＴＧＦ−ベータ３の核酸配列の１０から２０、好ましくは１２から１８のヌクレオチドからなり、オリゴヌクレオチドの、１以上のヌクレオチドは修飾されている。本発明のオリゴヌクレオチドのいくつかは、ＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２およびＴＧＦ−ベータ３、またはＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２、またはＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ３、またはＴＧＦ−ベータ２およびＴＧＦ−ベータ３、並びにこれらの配列の１つ以上とのハイブリダイズに対応する。

特に、本発明において使用されるオリゴヌクレオチドは、ＳＥＱＩＤＮｏ．２の核酸ｎｏ．１３８０から１５１０の領域の１０から２０、より好ましくは１２から１８のヌクレオチドを含む、または、からなり、オリゴヌクレオチドの、１以上のヌクレオチドは修飾されている。これらのオリゴヌクレオチドは、それぞれ、ＴＧＦ−ベータ２の発現および活性の減少および阻害に非常に有効である。好ましいオリゴヌクレオチドは、ＳＥＱＩＤＮＯ．５（例えば、ＡＳＰＨ３６：ＧＡＣＣＡＧＡＴＧＣＡＧＧＡ）、ＳＥＱＩＤＮＯ．６（例えば、ＡＳＰＨ８０：ＧＣＧＡＣＣＧＴＧＡＣＣＡＧＡＴ）、ＳＥＱＩＤＮＯ．７（例えば、ＡＳＰＨ９８：ＧＣＧＣＧＡＣＣＧＴＧＡＣＣ）、ＳＥＱＩＤＮＯ．８（例えば、ＡＳＰＨ１１１：ＡＧＣＧＣＧＡＣＣＧＴＧＡ）、または、ＳＥＱＩＤＮＯ．９（例えば、ＡＳＰＨ１２１またはＡＳＰＨ１５３：ＧＡＣＣＧＴＧＡＣＣＡＧＡＴ）、ＳＥＱＩＤＮＯ．１０（例えば、ＡＳＰＨ１５：ＣＴＧＣＣＣＧＣＧＧＡＴ）、ＳＥＱＩＤＮＯ．１１（例えば、ＡＳＰＨ１７：ＴＣＴＧＣＣＣＧＣＧＧＡＴ）、ＳＥＱＩＤＮＯ．１２（例えば、ＡＳＰＨ２６またはＡＳＰＨ２７：ＧＧＡＴＣＴＧＣＣＣＧＣＧＧＡ）、ＳＥＱＩＤＮＯ．１３（例えば、ＡＳＰＨ３７：ＣＴＴＧＣＴＣＡＧＧＡＴＣＴＧＣＣ）、ＳＥＱＩＤＮＯ．１４（例えば、ＡＳＰＨ５２または５３：ＧＣＴＣＡＧＧＡＴＣＴＧＣＣＣＧＣＧＧＡ）、ＳＥＱＩＤＮＯ．１５（例えば、ＡＳＰＨ１１２：ＧＧＡＴＣＧＣＣＴＣＧＡＴ）、ＳＥＱＩＤＮＯ．１６（例えば、ＡＳＰＨ１１９：ＣＣＧＣＧＧＡＴＣＧＣＣ）、またはＳＥＱＩＤＮＯ．３４（例えば、ＡＳＰＨ３０：ＣＧＡＴＣＣＴＣＴＴＧＣＧＣＡＴ）を含む、または、からなる。

他の実施形態において、本発明は、ＳＥＱＩＤＮＯ．２のＴＧＦ−ベータ２核酸配列のｎｏ．２７４０から２８１０の核酸領域の１０から２０、より好ましくは１２から１８のヌクレオチドを含む、または、からなる、オリゴヌクレオチドに言及し、オリゴヌクレオチドの、１以上のヌクレオチドは修飾されている。これらのオリゴヌクレオチドは、それぞれ、ＴＧＦ−ベータ２の発現および活性の減少および阻害に非常に有効である。好ましいヌクレオチドは、ＳＥＱＩＤＮＯ．６０（例えば、ＡＳＰＨ６５：ＴＣＴＧＡＡＣＴＡＧＴＡＣＣＧＣＣ）、ＳＥＱＩＤＮＯ．７６（例えば、ＡＳＰＨ８２：ＡＡＣＴＡＧＴＡＣＣＧＣＣＴＴＴ）、またはＳＥＱＩＤＮＯ．１０６（例えば、ＡＳＰＨ１１５：ＣＴＡＧＴＡＣＣＧＣＣＴＴ）を含む、または、からなる。

さらなる実施形態において、本発明は、ＳＥＱＩＤＮＯ．２のＴＧＦ−ベータ２核酸配列のｎｏ．１６６０から１６８０の核酸領域の１０から２０、より好ましくは１２から１８のヌクレオチドを含む、または、からなる、オリゴヌクレオチドに言及し、オリゴヌクレオチドの、１以上のヌクレオチドは修飾されている。これらのオリゴヌクレオチドは、それぞれ、ＴＧＦ−ベータ１および／またはＴＧＦ−ベータ２の発現および活性の減少および阻害に非常に有効である。好ましいオリゴヌクレオチドは、ＳＥＱＩＤＮＯ．１７（例えば、ＡＳＨＰ０１またはＡＳＰＨ０２：ＡＣＣＴＣＣＴＴＧＧＣＧＴＡＧＴＡ）、ＳＥＱＩＤＮＯ．１８（例えば、ＡＳＰＨ０３またはＡＳＰＨ０４：ＣＣＴＣＣＴＴＧＧＣＧＴＡＧＴＡ）、ＳＥＱＩＤＮＯ．１９（例えば、ＡＳＰＨ０５、ＡＳＰＨ０６またはＡＳＰＨ０７：ＣＴＣＣＴＴＧＧＣＧＴＡＧＴＡ）、またはＳＥＱＩＤＮＯ．２０（例えば、ＡＳＰＨ０８：ＴＣＣＴＴＧＧＣＧＴＡＧＴＡ）を含む、または、からなる。

他の実施形態において、本発明は、ＳＥＱＩＤＮＯ．２のＴＧＦ−ベータ２核酸配列のｎｏ．２３９０から２４１０の核酸領域の１０から２０、より好ましくは１２から１８、最もこのましくは１３のヌクレオチドを含む、または、からなる、オリゴヌクレオチドに関し、オリゴヌクレオチドの、１以上のヌクレオチドは修飾されている。これらのオリゴヌクレオチドは、それぞれ、ＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２および／またはＴＧＦ−ベータ３の発現および活性の減少および阻害に非常に有効である。好ましいヌクレオチドは、ＳＥＱＩＤＮＯ．２１（例えば、ＡＳＰＨ９またはＡＳＰＨ１０：ＣＡＧＡＡＧＴＴＧＧＣＡＴ）を含む、または、からなる。

他の実施形態において、本発明は、ＳＥＱＩＤＮＯ．２のＴＧＦ−ベータ２核酸配列の１０から２０、より好ましくは１２から１８のヌクレオチドを含む、または、からなる、オリゴヌクレオチドに言及し、オリゴヌクレオチドの、１以上のヌクレオチドは修飾されている。これらのオリゴヌクレオチドは、それぞれ、ＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２および／またはＴＧＦ−ベータ３、最も好ましくはＴＧＦ−ベータ２の発現および活性の減少および阻害に非常に有効である。好ましいヌクレオチドは、ＳＥＱＩＤＮＯ．２２から５９、６１から７５、７７から１０５、１０７から１４０（例えば、ＡＳＨＰ１１−ＡＳＰＨ１４、ＡＳＰＨ１６、ＡＳＰＨ１８−ＡＳＰＨ２５、ＡＳＰＨ２８−ＡＳＰＨ３５、ＡＳＰＨ３８−ＡＳＰＨ５１、ＡＳＰＨ６０−ＡＳＰＨ６４、ＡＳＰＨ６６−ＡＳＰＨ７９、ＡＳＰＨ８１、ＡＳＰＨ８３−ＡＳＰＨ９７、ＡＳＰＨ９９−ＡＳＰＨ１１０、ＡＳＰＨ１１３、ＡＳＰＨ１１４、ＡＳＰＨ１１６−ＡＳＰＨ１１８、ＡＳＰＨ１２０、ＡＳＰＨ１２２−ＡＳＰＨ１５２、ＡＳＰＨ１５４−ＡＳＰＨ１８３、またはＴ−ＬＮＡ（ＳＥＱＩＤＮＯ：１４４））の１つを含む、または、からなる。

本発明の好ましいオリゴヌクレオチドは、ＡＳＰＨ０１、ＡＳＰＨ０３、ＡＳＰＨ０５、ＡＳＰＨ１７、ＡＳＰＨ２２、ＡＳＰＨ２６、ＡＳＰＨ２７、ＡＳＰＨ３５、ＡＳＰＨ３６、ＡＳＰＨ３７、ＡＳＰＨ４５、ＡＳＰＨ４７、ＡＳＰＨ４８、ＡＳＰＨ６５、ＡＳＰＨ６９、ＡＳＰＨ７１、ＡＳＰＨ８０、ＡＳＰＨ８２、ＡＳＰＨ９８、ＡＳＰＨ１０５、ＡＳＰＨ１１５、ＡＳＰＨ１９０、ＡＳＰＨ１９１、ＡＳＰＨ１９２、およびＡＳＰＨ１９３のいずれかである。

本発明のさらなる好ましいオリゴヌクレオチドは、好ましくは、表１に示された、ＴＧＦベータ１ｍＲＮＡの発現および／または活性を阻害するＡＳＰＨ１０００からＡＳＰＨ１１３２である。この群の好ましいヌクレオチドは、例えばＡＳＰＨ１０４７、ＡＳＰＨ１０５１、ＡＳＰＨ１０５９、ＡＳＰＨ１１０６、ＡＳＰＨ１１３９、ＡＳＰＨ１１５０、ＡＳＰＨ１１６２、ＡＳＰＨ１１６３、ＡＳＰＨ１１７５、ＡＳＰＨ１１７８、およびＡＳＰＨ１１８１の群のいずれかである。

別の実施形態において、オリゴヌクレオチドは、好ましくは、ＴＧＦ−ベータ３ｍＲＮＡの発現および／または活性を阻害する。そのようなオリゴヌクレオチドは、例えば、ＡＳＰＨ２０００、ＡＳＰＨ２００１、ＡＳＰＨ２００２、ＡＳＰＨ２００３、ＡＳＰＨ２００４、ＡＳＰＨ２００５、ＡＳＰＨ２００６、ＡＳＰＨ２００７、ＡＳＰＨ２００８、ＡＳＰＨ２００９、ＡＳＰＨ２０１０、ＡＳＰＨ２０１１、ＡＳＰＨ２０１２、ＡＳＰＨ２０１３、ＡＳＰＨ２０１４、ＡＳＰＨ２０１５、ＡＳＰＨ２０１６、ＡＳＰＨ２０１７、ＡＳＰＨ２０１８、ＡＳＰＨ２０１９、ＡＳＰＨ２０２０、ＡＳＰＨ２０２１、ＡＳＰＨ２０２２、ＡＳＰＨ２０２３、ＡＳＰＨ２０２４、ＡＳＰＨ２０２５、ＡＳＰＨ２０２６、ＡＳＰＨ２０２７、ＡＳＰＨ２０２８、ＡＳＰＨ２０２９、ＡＳＰＨ２０３０、ＡＳＰＨ２０３１、ＡＳＰＨ２０３２、ＡＳＰＨ２０３３、ＡＳＰＨ２０３４、ＡＳＰＨ２０３５、ＡＳＰＨ２０３６、ＡＳＰＨ２０３７、ＡＳＰＨ２０３８、ＡＳＰＨ２０３９、ＡＳＰＨ２０４０、ＡＳＰＨ２０４１、ＡＳＰＨ２０４２、ＡＳＰＨ２０４３、ＡＳＰＨ２０４４、ＡＳＰＨ２０４５、ＡＳＰＨ２０４６、ＡＳＰＨ２０４７、ＡＳＰＨ２０４８、ＡＳＰＨ２０４９、ＡＳＰＨ２０５０、ＡＳＰＨ２０５１、ＡＳＰＨ２０５２、ＡＳＰＨ２０５３、ＡＳＰＨ２０５４、ＡＳＰＨ２０５５、ＡＳＰＨ２０５６、ＡＳＰＨ２０５７、ＡＳＰＨ２０５８、ＡＳＰＨ２０５９、ＡＳＰＨ２０６０、ＡＳＰＨ２０６１、ＡＳＰＨ２０６２、ＡＳＰＨ２０６３、ＡＳＰＨ２０６４、ＡＳＰＨ２０６５、およびＡＳＰＨ２０６６のいずれかである。

本発明のオリゴヌクレオチドは、ＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２若しくはＴＧＦ−ベータ３、またはＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２の予期しないほど強く且つ特異的な阻害を示す。あるいは、本発明のオリゴヌクレオチドは、ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ３、またはＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２、またはＴＧＦ−ベータ２およびＴＧＦ−ベータ３、さらにはＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２およびＴＧＦ−ベータ３をも強く且つ特異的に阻害することを示す。

本発明のオリゴヌクレオチドの、１つ以上のヌクレオチドの修飾は、ＬＮＡ、ＥＮＡ、トリエチレングリコール（ＴＥＧ）、２’−フルオロ、２’−Ｏ−メトキシおよび２’−Ｏ−メチルのようなポリアルキレンオキシドからなる群から選択される。修飾は、オリゴヌクレオチドの５’−および／または３’−末端に位置することが好ましい。そのような修飾ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチドは、修飾オリゴヌクレオチドである。

修飾ヌクレオチドは、例えば、１つが直接他の隣にあるように１列に配置され、または異なるパターンで配置され、１以上の未修飾のヌクレオチドは、修飾されたヌクレオチドに続く。例えば、オリゴヌクレオチドは、１以上の修飾ヌクレオチドで始まり、次いで、１つ以上、例えば、１つ、２つ、３つまたは４つの未修飾またはロックされていないヌクレオチドが続き、次いで、再び１つ以上の修飾ヌクレオチドが続く。１つの実施形態において、オリゴヌクレオチドの両末端は、修飾および未修飾またはロックされていないヌクレオチドの同一パターンを含む。別の実施形態において、３’−および５’−末端での修飾パターンは異なり、例えば、一方の末端が修飾ヌクレオチドを含まない。好ましくは、修飾オリゴヌクレオチドは８または９のロックされていない一連のヌクレオチドを含む。

あるいは、オリゴヌクレオチド内の任意の他の位置のヌクレオチドは、修飾され、またはオリゴヌクレオチドの５’−および／若しくは３’−末端並びにオリゴヌクレオチドの任意の他の位置における少なくとも１つのヌクレオチドが修飾される。例えば、ＡＳＰＨ１０７１、ＡＳＰＨ１１００、ＡＳＰＨ１１０９、ＡＳＰＨ１１１０、ＡＳＰＨｌｌｌｌ、ＡＳＰＨ１１１５、ＡＳＰＨ１１２６、ＡＳＰＨ１１２７およびＡＳＰＨ１１２８は、例えば、ロックされていないヌクレオチドによって互いに分離された異なるパターンにおけるＬＮＡ、ＥＮＡ等のような修飾ヌクレオチドを含むＴＧＦ−ベータ１オリゴヌクレオチドのようなＴＧＦ−ベータオリゴヌクレオチド群に属する。オリゴヌクレオチドは、修飾の１つのタイプまたは１つ以上の異なる修飾のいずれかを含む。必要に応じて、オリゴヌクレオチドの２つの連続するヌクレオチド（修飾または非修飾）の間の少なくとも１つのリン酸結合は、ホスホロチオエートまたはメチルホスホネートである。好ましい実施形態において、本発明のオリゴヌクレオチドは、ホスホロチオエートである。

さらに、本発明は、たとえ、オリゴヌクレオチドがＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２、および／またはＴＧＦ−ベータ３配列に対して１００％相補的でなくても１より多くのＴＧＦ−ベータイソ型の発現と相互作用し、かつ阻害するＴＧＦ−ベータアンチセンスオリゴヌクレオチドに言及する。このようなアンチセンスオリゴヌクレオチドはそれぞれ、例えばＡＳＰＨ１０２４、ＡＳＰＨ１０９６、ＡＳＰＨ１１３１およびＡＳＰＨ１１３２である。例えばＡＳＰＨ１１３１およびＡＳＰＨ１１３２のそれぞれに関し、これらのオリゴヌクレオチドは、ヒト、サル、ラットまたはマウスのような同じまたは異なる種のＴＧＦ−ベータ配列と好ましく相互作用する。

別の実施形態のすべてのオリゴヌクレオチドは、ドライアイ、緑内障、後嚢混濁（ＰＣＯ）、網膜芽細胞腫、脈絡膜癌、マルファンまたはロエイス−ディーツ（Ｌｏｅｙｓ−Ｄｉｅｔｚ）症候群、加齢黄斑変性症のような黄斑変性、糖尿病性黄斑、または白内障のような眼の疾患を予防および／または治療する方法において使用される。

図１は、ヒトＴＧＦ−ベータ１ｍＲＮＡ（ＮＭ＿０００６６０．４）の核酸配列を示す。図２は、ヒトＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡ（ＮＭ＿００３２３８．３）の核酸配列を示す。図３は、ヒトＴＧＦ−ベータ３ｍＲＮＡ（ＮＭ＿００３２３９．２）の核酸配列を示す。図４は、ヌクレオチド修飾の例を示す。図５ａ）は、ヒトＡ１７２グリオーマ細胞のＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２の発現の阻害を表す。Ａ１７２細胞は、１０ｎＭ（トランスフェクション剤の存在下で）の用量で異なる修飾オリゴヌクレオチドでトランスフェクトされ、ＴＧＦ−ベータ１（白カラム）およびＴＧＦ−ベータ２（黒カラム）ｍＲＮＡ発現の阻害は、トランスフェクションから２４時間後に測定された。図５ａ）は、ＡＳＰＨ０１、ＡＳＰＨ０２、ＡＳＰＨ０３、ＡＳＰＨ０４、ＡＳＰＨ０５、ＡＳＰＨ０６、ＡＳＰＨ０７、ＡＳＰＨ０８、ＡＳＰＨ０９、ＡＳＰＨ１０、ＡＳＰＨ１１、ＡＳＰＨ１２、ＡＳＰＨ１３、ＡＳＰＨ１４、ＡＳＰＨ１５、ＡＳＰＨ１６、ＡＳＰＨ１７、ＡＳＰＨ１８、ＡＳＰＨ１９、ＡＳＰＨ２０、ＡＳＰＨ２１、ＡＳＰＨ２２、ＡＳＰＨ２４、ＡＳＰＨ２５、ＡＳＰＨ２６、ＡＳＰＨ２７、ＡＳＰＨ２９、ＡＳＰＨ３０、ＡＳＰＨ３１、ＡＳＰＨ３２、ＡＳＰＨ３３、ＡＳＰＨ３４、ＡＳＰＨ３５、ＡＳＰＨ３６、ＡＳＰＨ３７、ＡＳＰＨ３８、ＡＳＰＨ３９、ＡＳＰＨ４０、ＡＳＰＨ４１、ＡＳＰＨ４２、ＡＳＰＨ４３、ＡＳＰＨ４４、ＡＳＰＨ４５、ＡＳＰＨ４６、ＡＳＰＨ４７、ＡＳＰＨ４８、ＡＳＰＨ４９、ＡＳＰＨ５０、ＡＳＰＨ５１、ＡＳＰＨ５２、ＡＳＰＨ５３、およびＡＳＰＨ５４修飾オリゴヌクレオチドに対する結果を表す。実験は、実施例１に記載されている。図５ｂ）は、ヒトＡ１７２グリオーマ細胞のＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２の発現の阻害を表す。図５ｂ）は、ＡＳＰＨ３６、ＡＳＰＨ６０、ＡＳＰＨ６１、ＡＳＰＨ６２、ＡＳＰＨ６３、ＡＳＰＨ６４、ＡＳＰＨ６５、ＡＳＰＨ６６、ＡＳＰＨ６７、ＡＳＰＨ６８、ＡＳＰＨ６９、ＡＳＰＨ７０、ＡＳＰＨ７１、ＡＳＰＨ７２、ＡＳＰＨ７３、ＡＳＰＨ７４、ＡＳＰＨ７５、ＡＳＰＨ７６、ＡＳＰＨ７７、ＡＳＰＨ７８、ＡＳＰＨ７９、ＡＳＰＨ８０、ＡＳＰＨ８１、ＡＳＰＨ８２、ＡＳＰＨ８３、ＡＳＰＨ８４、ＡＳＰＨ８５、ＡＳＰＨ８６、ＡＳＰＨ８７、ＡＳＰＨ８８、ＡＳＰＨ８９、ＡＳＰＨ９０、ＡＳＰＨ９１、ＡＳＰＨ９２、ＡＳＰＨ９３、ＡＳＰＨ９４、ＡＳＰＨ９５、ＡＳＰＨ９６、ＡＳＰＨ９７、ＡＳＰＨ９８、ＡＳＰＨ９９、ＡＳＰＨ１００、ＡＳＰＨ１０１、ＡＳＰＨ１０２、ＡＳＰＨ１０３、ＡＳＰＨ１０４、ＡＳＰＨ１０５、ＡＳＰＨ１０６、ＡＳＰＨ１０７、ＡＳＰＨ１０８、ＡＳＰＨ１０９、ＡＳＰＨ１１０、ＡＳＰＨ１１１、ＡＳＰＨ１１２、ＡＳＰＨ１１３、ＡＳＰＨ１１４、ＡＳＰＨ１１５、ＡＳＰＨ１１６、ＡＳＰＨ１１７、ＡＳＰＨ１１８、およびＡＳＰＨ１１９修飾オリゴヌクレオチドに対する結果を表す。実験は、実施例１に記載されている。図５ｃ）は、ヒトＡ１７２グリオーマ細胞のＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２の発現の阻害を表す。図５ｃ）は、ＡＳＰＨ３６、ＡＳＰＨ７１、ＡＳＰＨ７３、ＡＳＰＨ１２０、ＡＳＰＨ１２１、ＡＳＰＨ１２２、ＡＳＰＨ１２３、ＡＳＰＨ１２４、ＡＳＰＨ１２５、ＡＳＰＨ１２６、ＡＳＰＨ１２７、ＡＳＰＨ１２８、ＡＳＰＨ１２９、ＡＳＰＨ１３０、ＡＳＰＨ１３１、ＡＳＰＨ１３２、ＡＳＰＨ１３３、ＡＳＰＨ１３４、ＡＳＰＨ１３５、ＡＳＰＨ１３６、ＡＳＰＨ１３７、ＡＳＰＨ１３８、ＡＳＰＨ１３９、ＡＳＰＨ１４０、ＡＳＰＨ１４１、ＡＳＰＨ１４２、ＡＳＰＨ１４３、ＡＳＰＨ１４５、ＡＳＰＨ１４６、ＡＳＰＨ１４７、ＡＳＰＨ１４８、ＡＳＰＨ１４９、ＡＳＰＨ１５０、ＡＳＰＨ１５１、ＡＳＰＨ１５２、ＡＳＰＨ１５３、ＡＳＰＨ１５４、ＡＳＰＨ１５５、ＡＳＰＨ１５７、ＡＳＰＨ１５８、ＡＳＰＨ１６０、ＡＳＰＨ１６１、ＡＳＰＨ１６２、ＡＳＰＨ１６３、ＡＳＰＨ１６４、ＡＳＰＨ１６５、ＡＳＰＨ１６６、ＡＳＰＨ１６７、ＡＳＰＨ１６８、ＡＳＰＨ１６９、ＡＳＰＨ１７０、ＡＳＰＨ１７１、ＡＳＰＨ１７２、ＡＳＰＨ１７３、ＡＳＰＨ１７４、ＡＳＰＨ１７５、ＡＳＰＨ１７６、ＡＳＰＨ１７７、ＡＳＰＨ１７８、ＡＳＰＨ１７９、ＡＳＰＨ１８０、ＡＳＰＨ１８１、ＡＳＰＨ１８２、およびＡＳＰＨ１８３修飾オリゴヌクレオチドに対する結果を表す。実験は、実施例１に記載されている。図６ａ）は、ヒトＰａｎｃ−１膵臓癌細胞におけるＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの発現の阻害を表す。Ｐａｎｃ−１細胞は、１０ｎＭ（トランスフェクション剤の存在下で）の用量で異なる修飾オリゴヌクレオチドでトランスフェクトされ、ＴＧＦ−ベータ１（白カラム）およびＴＧＦ−ベータ２（黒カラム）ｍＲＮＡ発現の阻害は、トランスフェクションから２４時間後に測定された。図６ａ）は、ＡＳＰＨ０１、ＡＳＰＨ０２、ＡＳＰＨ０３、ＡＳＰＨ０４、ＡＳＰＨ０５、ＡＳＰＨ０６、ＡＳＰＨ０７、ＡＳＰＨ０８、ＡＳＰＨ１２、ＡＳＰＨ１４、ＡＳＰＨ１７、ＡＳＰＨ１８、ＡＳＰＨ２０、ＡＳＰＨ２１、ＡＳＰＨ２２、ＡＳＰＨ２４、ＡＳＰＨ２５、ＡＳＰＨ２６、ＡＳＰＨ２７、ＡＳＰＨ２９、ＡＳＰＨ３０、ＡＳＰＨ３１、ＡＳＰＨ３２、ＡＳＰＨ３３、ＡＳＰＨ３５、ＡＳＰＨ３６、ＡＳＰＨ３７、ＡＳＰＨ３８、ＡＳＰＨ３９、ＡＳＰＨ４０、ＡＳＰＨ４１、ＡＳＰＨ４２、ＡＳＰＨ４３、ＡＳＰＨ４４、ＡＳＰＨ４５、ＡＳＰＨ４６、ＡＳＰＨ４７、ＡＳＰＨ４８、ＡＳＰＨ４９、ＡＳＰＨ５０、ＡＳＰＨ５１、およびＡＳＰＨ５２修飾オリゴヌクレオチドの結果を表す。実験は、実施例２に記載されている。図６ｂ）は、ヒトＰａｎｃ−１膵臓癌細胞におけるＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの発現の阻害を表す。図６ｂ）は、ＡＳＰＨ３６、ＡＳＰＨ６０、ＡＳＰＨ６１、ＡＳＰＨ６２、ＡＳＰＨ６３、ＡＳＰＨ６４、ＡＳＰＨ６５、ＡＳＰＨ６６、ＡＳＰＨ６７、ＡＳＰＨ６８、ＡＳＰＨ６９、ＡＳＰＨ７０、ＡＳＰＨ７１、ＡＳＰＨ７２、ＡＳＰＨ７３、ＡＳＰＨ７４、ＡＳＰＨ７５、ＡＳＰＨ７６、ＡＳＰＨ７７、ＡＳＰＨ７８、ＡＳＰＨ７９、ＡＳＰＨ８０、ＡＳＰＨ８１、ＡＳＰＨ８２、ＡＳＰＨ８３、ＡＳＰＨ８４、ＡＳＰＨ８５、ＡＳＰＨ８６、ＡＳＰＨ８７、ＡＳＰＨ８８、ＡＳＰＨ８９、ＡＳＰＨ９０、ＡＳＰＨ９１、ＡＳＰＨ９２、ＡＳＰＨ９３、ＡＳＰＨ９４、ＡＳＰＨ９６、ＡＳＰＨ９７、ＡＳＰＨ９８、ＡＳＰＨ９９、ＡＳＰＨ１００、ＡＳＰＨ１０１、ＡＳＰＨ１０２、ＡＳＰＨ１０３、ＡＳＰＨ１０４、ＡＳＰＨ１０５、ＡＳＰＨ１０６、ＡＳＰＨ１０７、ＡＳＰＨ１０８、ＡＳＰＨ１０９、ＡＳＰＨ１１０、ＡＳＰＨ１１１、ＡＳＰＨ１１２、ＡＳＰＨ１１３、ＡＳＰＨ１１４、ＡＳＰＨ１１５、ＡＳＰＨ１１６、ＡＳＰＨ１１７、ＡＳＰＨ１１８、およびＡＳＰＨ１１９修飾オリゴヌクレオチドの結果を表す。実験は、実施例２に記載されている。図６ｃ）は、ヒトＰａｎｃ−１膵臓癌細胞におけるＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの発現の阻害を表す。図６ｃ）は、ＡＳＰＨ３６、ＡＳＰＨ７１、ＡＳＰＨ７３、ＡＳＰＨ１２０、ＡＳＰＨ１２１、ＡＳＰＨ１２２、ＡＳＰＨ１２７、ＡＳＰＨ１２８、ＡＳＰＨ１２９、ＡＳＰＨ１３０、ＡＳＰＨ１３１、ＡＳＰＨ１３２、ＡＳＰＨ１３３、ＡＳＰＨ１３５、ＡＳＰＨ１３６、ＡＳＰＨ１３７、ＡＳＰＨ１３９、ＡＳＰＨ１４１、ＡＳＰＨ１４２、ＡＳＰＨ１４３、ＡＳＰＨ１４５、ＡＳＰＨ１４６、ＡＳＰＨ１４７、ＡＳＰＨ１４９、ＡＳＰＨ１５０、ＡＳＰＨ１５１、ＡＳＰＨ１５２、ＡＳＰＨ１５３、ＡＳＰＨ１５４、ＡＳＰＨ１５５、ＡＳＰＨ１５７、ＡＳＰＨ１６０、ＡＳＰＨ１６１、ＡＳＰＨ１６２、ＡＳＰＨ１６３、ＡＳＰＨ１６４、ＡＳＰＨ１６５、ＡＳＰＨ１６６、ＡＳＰＨ１６７、ＡＳＰＨ１６８、ＡＳＰＨ１６９、ＡＳＰＨ１７０、ＡＳＰＨ１７１、ＡＳＰＨ１７２、ＡＳＰＨ１７３、ＡＳＰＨ１７４、ＡＳＰＨ１７５、ＡＳＰＨ１７６、ＡＳＰＨ１７７、ＡＳＰＨ１７８、ＡＳＰＨ１７９、ＡＳＰＨ１８０、ＡＳＰＨ１８１、ＡＳＰＨ１８２、およびＡＳＰＨ１８３修飾オリゴヌクレオチドの結果を表す。実験は、実施例２に記載されている。図７は、Ｐａｎｃ−１細胞におけるＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの発現の阻害を表す。Ｐａｎｃ−１細胞は、トランスフェクション剤（ジムノティックトランスフェクションまたはアンアシステッドトランスフェクション）の非存在下で、３．３μＭの用量で異なる修飾オリゴヌクレオチドで処理され、ＴＧＦ−ベータ１（白カラム）およびＴＧＦ−ベータ２（黒カラム）ｍＲＮＡ発現の阻害は、７２時間後測定された。図７は、ＡＳＰＨ１７、ＡＳＰＨ１８、ＡＳＰＨ２２、ＡＳＰＨ２５、ＡＳＰＨ３３、ＡＳＰＨ３５、ＡＳＰＨ３６、ＡＳＰＨ４１、ＡＳＰＨ４２、ＡＳＰＨ４５、ＡＳＰＨ４６、ＡＳＰＨ４７、ＡＳＰＨ４８、ＡＳＰＨ４９、ＡＳＰＨ６５、ＡＳＰＨ６６、ＡＳＰＨ６７、ＡＳＰＨ６９、ＡＳＰＨ７１、ＡＳＰＨ７９、ＡＳＰＨ８０、ＡＳＰＨ８２、ＡＳＰＨ８８、ＡＳＰＨ８９、ＡＳＰＨ９０、ＡＳＰＨ９１、ＡＳＰＨ９８、ＡＳＰＨ９９、ＡＳＰＨ１０２、ＡＳＰＨ１０５、ＡＳＰＨ１１１、ＡＳＰＨ１１５、ＡＳＰＨ１１９、ＡＳＰＨ１２１、ＡＳＰＨ１３９、ＡＳＰＨ１４０、ＡＳＰＨ１４６、ＡＳＰＨ１５１、ＡＳＰＨ１５３、ＡＳＰＨ１６５、ＡＳＰＨ１７１、ＡＳＰＨ１７２、ＡＳＰＨ１７６、ＡＳＰＨ１７８、ＡＳＰＨ１８０、およびＡＳＰＨ１８３修飾オリゴヌクレオチドの結果を表す。実験は、実施例４に記載されている。図８ａは、Ｐａｎｃ−１細胞のＴＧＦ−ベータ１（図８ａ）ｍＲＮＡの発現の阻害を表す。Ｐａｎｃ−１細胞は、ジムノティックトランスフェクション（つまり、トランスフェクション剤が存在しない）を通じて、１０μＭの用量で異なる修飾オリゴヌクレオチドで処理され、ＴＧＦ−ベータ１（白カラム）およびＴＧＦ−ベータ２（黒カラム）ｍＲＮＡ発現の阻害は、トランスフェクションから４日後に測定された。図８ａ）は、ｍＲＮＡレベルでのＡＳＰＨ０１、ＡＳＰＨ０３、ＡＳＰＨ０５、ＡＳＰＨ０９、ＡＳＰＨ１７、ＡＳＰＨ１８、ＡＳＰＨ２２、ＡＳＰＨ３５、ＡＳＰＨ３６、ＡＳＰＨ３７、ＡＳＰＨ４１、ＡＳＰＨ４５、ＡＳＰＨ４６、ＡＳＰＨ４７およびＡＳＰＨ４８修飾オリゴヌクレオチドの結果を表す。実験は、実施例５に記載されている。図８ｂは、Ｐａｎｃ−１細胞のＴＦＧ−ベータ２（図８ｂ）ｍＲＮＡの発現の阻害を表す。Ｐａｎｃ−１細胞は、ジムノティックトランスフェクション（つまり、トランスフェクション剤が存在しない）を通じて、１０μＭの用量で異なる修飾オリゴヌクレオチドで処理され、ＴＧＦ−ベータ１（白カラム）およびＴＧＦ−ベータ２（黒カラム）ｍＲＮＡ発現の阻害は、トランスフェクションから４日後に測定された。図８ｂ）は、ｍＲＮＡレベルでのＡＳＰＨ０１、ＡＳＰＨ０３、ＡＳＰＨ０５、ＡＳＰＨ０９、ＡＳＰＨ１７、ＡＳＰＨ１８、ＡＳＰＨ２２、ＡＳＰＨ３５、ＡＳＰＨ３６、ＡＳＰＨ３７、ＡＳＰＨ４１、ＡＳＰＨ４５、ＡＳＰＨ４６、ＡＳＰＨ４７およびＡＳＰＨ４８修飾オリゴヌクレオチドの結果を表す。実験は、実施例５に記載されている。図９ａは、Ｐａｎｃ−１細胞のＴＧＦ−ベータ１（図９ａ）タンパク質の阻害を表す。Ｐａｎｃ−１細胞は、ジムノティックトランスフェクション（つまり、トランスフェクション剤が存在しない）を通じて、１０μＭの用量で異なる修飾オリゴヌクレオチドで処理され、ＴＧＦ−ベータ１（白カラム）およびＴＧＦ−ベータ２（黒カラム）タンパク質の阻害は、トランスフェクション後４日で測定された。図９ａ）は、タンパク質レベルでのＡＳＰＨ０１、ＡＳＰＨ０３、ＡＳＰＨ０５、ＡＳＰＨ０９、ＡＳＰＨ１７、ＡＳＰＨ１８、ＡＳＰＨ２２、ＡＳＰＨ３５、ＡＳＰＨ３６、ＡＳＰＨ３７、ＡＳＰＨ４１、ＡＳＰＨ４５、ＡＳＰＨ４６、ＡＳＰＨ４７およびＡＳＰＨ４８修飾オリゴヌクレオチドの結果を表す。実験は、実施例５に記載されている。図９ｂは、Ｐａｎｃ−１細胞のＴＧＦ−ベータ２（図９ｂ）タンパク質の阻害を表す。Ｐａｎｃ−１細胞は、ジムノティックトランスフェクション（つまり、トランスフェクション剤が存在しない）を通じて、１０μＭの用量で異なる修飾オリゴヌクレオチドで処理され、ＴＧＦ−ベータ１（白カラム）およびＴＧＦ−ベータ２（黒カラム）タンパク質の阻害は、トランスフェクション後４日で測定された。図９ｂ）は、タンパク質レベルでのＡＳＰＨ０１、ＡＳＰＨ０３、ＡＳＰＨ０５、ＡＳＰＨ０９、ＡＳＰＨ１７、ＡＳＰＨ１８、ＡＳＰＨ２２、ＡＳＰＨ３５、ＡＳＰＨ３６、ＡＳＰＨ３７、ＡＳＰＨ４１、ＡＳＰＨ４５、ＡＳＰＨ４６、ＡＳＰＨ４７およびＡＳＰＨ４８修飾オリゴヌクレオチドの結果を表す。実験は、実施例５に記載されている。図１０ａは、ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡ発現に対するＡＳＰＨ０５とＡＳＰＨ３６修飾オリゴヌクレオチドの用量依存効果を示す。Ｐａｎｃ−１細胞は、トランスフェクション剤の非存在下で、１５μＭ、１０μＭ、７．５μＭ、５μＭ、２．５μＭ、１．２５μＭまたは０．６２５μＭのＡＳＰＨ０５（デュアルＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２オリゴヌクレオチド）またはＡＳＰＨ３６（選択的ＴＧＦ−ベータ２オリゴヌクレオチド）修飾オリゴヌクレオチドで４日間処理された。残りのＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡ（図１０ｂ）は、４日後に測定された。実験は、実施例６に記載されている。図１０ｂは、ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡ発現に対するＡＳＰＨ０５とＡＳＰＨ３６修飾オリゴヌクレオチドの用量依存効果を示す。Ｐａｎｃ−１細胞は、トランスフェクション剤の非存在下で、１５μＭ、１０μＭ、７．５μＭ、５μＭ、２．５μＭ、１．２５μＭまたは０．６２５μＭのＡＳＰＨ０５（デュアルＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２オリゴヌクレオチド）またはＡＳＰＨ３６（選択的ＴＧＦ−ベータ２オリゴヌクレオチド）修飾オリゴヌクレオチドで４日間処理された。残りのＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡ（図１０ｂ）は、４日後に測定された。実験は、実施例６に記載されている。図１１は、マウスＳＭＡ−５６０グリオーマ細胞におけるＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡ発現の阻害を表す。ＳＭＡ−５６０細胞は、１０ｎＭ用量（トランスフェクション剤の存在下で）でＡＳＰＨ０１、ＡＳＰＨ０３、ＡＳＰＨ０５、ＡＳＰＨ０９、ＡＳＰＨ１７、ＡＳＰＨ１８、ＡＳＰＨ２２、ＡＳＰＨ２６、ＡＳＰＨ３６、ＡＳＰＨ３７、ＡＳＰＨ４１、ＡＳＰＨ４２、ＡＳＰＨ４５、ＡＳＰＨ４６、ＡＳＰＨ４７、またはＡＳＰＨ４８でトランスフェクトされた。ＴＧＦ−ベータ１（白カラム）およびＴＧＦ−ベータ２（黒カラム）ｍＲＮＡの阻害は、トランスフェクションから２４時間後に決定された。実験は、実施例７に記載されている。図１２は、雌の無胸腺ヌードマウスを５日間連続、皮下注射により１４ｍｇ／ｋｇ体重の条件でＡＳＰＨ０１、ＡＳＰＨ０３、ＡＳＰＨ０５、ＡＳＰＨ１７、ＡＳＰＨ２２、ＡＳＰＨ３７、ＡＳＰＨ４１、ＡＳＰＨ４５、ＡＳＰＨ４６、ＡＳＰＨ４７、またはＡＳＰＨ４８で処置したインビボデータを表す。処置後２４時間、マウスを屠殺し、マウスＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡは、腎臓組織溶解物中で定量した。ＴＧＦ−ベータ２のＧＡＰＤＨｍＲＮＡに対する割合を表すデータは、中央値と最小および最大とを表すボックスプロットで示されている（ＡＳＰＨ４６群ｎ＝３を除いて、データはｎ＝４で表されている）。実験は、実施例８に記載されている。図１３は、Ｐａｎｃ−１細胞におけるＴＧＦ−ベータ３のｍＲＮＡの発現の阻害を表す。Ｐａｎｃ−１細胞は、任意のトランスフェクション剤（ジムノティックトランスフェクションまたはアンアシステッドトランスフェクション）の非存在下で、１０μΜの用量のＡＳＰＨ０９で処理し、ＴＧＦ−ベータ３のｍＲＮＡ発現の阻害は、４日後に測定された。ＡＳＰＨ０９は、ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２（図８ａおよび図８ｂ）と同様に、ＴＧＦ−ベータ３の発現を阻害する汎特異的オリゴヌクレオチドである。実験は、実施例９に記載されている。図１４は、ヒトＰａｎｃ−１膵臓癌細胞におけるＴＧＦ−ベータ１ｍＲＮＡの発現の阻害を表す。Ｐａｎｃ−１細胞（トランスフェクション剤の存在下で）１０ｎＭの用量において異なる修飾オリゴヌクレオチドでトランスフェクトし、ＴＧＦ−ベータ１ｍＲＮＡ発現の阻害は、トランスフェクションから２４時間後に測定した。図１４は、ＡＳＰＨ０５、ＡＳＰＨ０９、ＡＳＰＨ１０００、ＡＳＰＨ１００１、ＡＳＰＨ１００２、ＡＳＰＨ１００３、ＡＳＰＨ１００４、ＡＳＰＨ１００５、ＡＳＰＨ１００６、ＡＳＰＨ１００７、ＡＳＰＨ１００８、ＡＳＰＨ１００９、ＡＳＰＨ１０１０、ＡＳＰＨ１０１１、ＡＳＰＨ１０１２、ＡＳＰＨ１０１３、ＡＳＰＨ１０１４、ＡＳＰＨ１０１５、ＡＳＰＨ１０１６、ＡＳＰＨ１０１７、ＡＳＰＨ１０１８、ＡＳＰＨ１０１９、ＡＳＰＨ１０２０、ＡＳＰＨ１０２１、ＡＳＰＨ１０２２、ＡＳＰＨ１０２３、ＡＳＰＨ１０２４、ＡＳＰＨ１０２６、ＡＳＰＨ１０２７、ＡＳＰＨ１０２８、ＡＳＰＨ１０２９、ＡＳＰＨ１０３０、ＡＳＰＨ１０３１、ＡＳＰＨ１０３２、ＡＳＰＨ１０３３、ＡＳＰＨ１０３４、ＡＳＰＨ１０３５、ＡＳＰＨ１０３６、ＡＳＰＨ１０３８、ＡＳＰＨ１０３９、ＡＳＰＨ１０４０、ＡＳＰＨ１０４１、ＡＳＰＨ１０４２、ＡＳＰＨ１０４３、ＡＳＰＨ１０４４、ＡＳＰＨ１０４５、ＡＳＰＨ１０４６、ＡＳＰＨ１０４７、ＡＳＰＨ１０４８、ＡＳＰＨ１０４９、ＡＳＰＨ１０５０、ＡＳＰＨ１０５１、ＡＳＰＨ１０５２、ＡＳＰＨ１０５４、ＡＳＰＨ１０５５、ＡＳＰＨ１０５６、ＡＳＰＨ１０５７、ＡＳＰＨ１０５８、ＡＳＰＨ１０５９、ＡＳＰＨ１０６０、およびＡＳＰＨ１０６１修飾オリゴヌクレオチドの結果を表す。実験は、実施例１２に記載されている。図１５は、マウスＳＭＡ−５６０神経膠腫細胞におけるＴＧＦ−ベータ１ｍＲＮＡの発現の阻害を表す。細胞は、１０ｎＭの用量において異なる修飾オリゴヌクレオチドでトランスフェクトし（トランスフェクション剤の存在下で）、ＴＧＦ−ベータ１ｍＲＮＡ発現の阻害は、トランスフェクションから２４時間後に測定された。図１５は、ＡＳＰＨ０９、ＡＳＰＨ１０００、ＡＳＰＨ１００１、ＡＳＰＨ１００２、ＡＳＰＨ１００３、ＡＳＰＨ１００４、ＡＳＰＨ１００５、ＡＳＰＨ１００６、ＡＳＰＨ１００７、ＡＳＰＨ１００８、ＡＳＰＨ１００９、ＡＳＰＨ１０１０、ＡＳＰＨ１０１１、ＡＳＰＨ１０１２、ＡＳＰＨ１０１３、ＡＳＰＨ１０１４、ＡＳＰＨ１０１５、ＡＳＰＨ１０１６、ＡＳＰＨ１０１７、ＡＳＰＨ１０１８、ＡＳＰＨ１０１９、ＡＳＰＨ１０２０、ＡＳＰＨ１０２１、ＡＳＰＨ１０２２、ＡＳＰＨ１０２３、ＡＳＰＨ１０２４、ＡＳＰＨ１０２６、ＡＳＰＨ１０２７、ＡＳＰＨ１０２８、ＡＳＰＨ１０２９、ＡＳＰＨ１０３０、ＡＳＰＨ１０３１、ＡＳＰＨ１０３２、ＡＳＰＨ１０３３、ＡＳＰＨ１０３４、ＡＳＰＨ１０３５、ＡＳＰＨ１０３６、ＡＳＰＨ１０３７、ＡＳＰＨ１０３８、ＡＳＰＨ１０３９、ＡＳＰＨ１０４０、ＡＳＰＨ１０４１、ＡＳＰＨ１０４２、ＡＳＰＨ１０４３、ＡＳＰＨ１０４４、ＡＳＰＨ１０４５、ＡＳＰＨ１０４６、ＡＳＰＨ１０４７、ＡＳＰＨ１０４８、ＡＳＰＨ１０４９、ＡＳＰＨ１０５０、ＡＳＰＨ１０５１、ＡＳＰＨ１０５２、ＡＳＰＨ１０５３、ＡＳＰＨ１０５４、ＡＳＰＨ１０５５、ＡＳＰＨ１０５６、ＡＳＰＨ１０５７、ＡＳＰＨ１０５８、ＡＳＰＨ１０５９、ＡＳＰＨ１０６０、ＡＳＰＨ１０６１、およびＡＳＰＨ１０６２修飾オリゴヌクレオチドの結果を表す。実験は、実施例１３に記載されている。図１６は、ヒトＡ１７２細胞におけるＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２のｍＲＮＡの発現の阻害を表す。細胞は、１０ｎＭの用量において異なる修飾オリゴヌクレオチドでトランスフェクトし（トランスフェクション剤の存在下で）ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２のｍＲＮＡ発現の阻害は、トランスフェクションから２４時間後に測定された。図１６は、ＡＳＰＨ０５、ＡＳＰＨ０９、ＡＳＰＨ１０００、ＡＳＰＨ１００１、ＡＳＰＨ１００２、ＡＳＰＨ１００４、ＡＳＰＨ１００５、ＡＳＰＨ１００６、ＡＳＰＨ１００７、ＡＳＰＨ１００８、ＡＳＰＨ１００９、ＡＳＰＨ１０１０、ＡＳＰＨ１０１１、ＡＳＰＨ１０１２、ＡＳＰＨ１０１３、ＡＳＰＨ１０１４、ＡＳＰＨ１０１５、ＡＳＰＨ１０１６、ＡＳＰＨ１０１７、ＡＳＰＨ１０１８、ＡＳＰＨ１０１９、ＡＳＰＨ１０２０、ＡＳＰＨ１０２１、ＡＳＰＨ１０２２、ＡＳＰＨ１０２３、ＡＳＰＨ１０２４、ＡＳＰＨ１０２６、ＡＳＰＨ１０２７、ＡＳＰＨ１０２８、ＡＳＰＨ１０２９、ＡＳＰＨ１０３０、ＡＳＰＨ１０３１、ＡＳＰＨ１０３２、ＡＳＰＨ１０３３、ＡＳＰＨ１０３４、ＡＳＰＨ１０３５、ＡＳＰＨ１０３６、ＡＳＰＨ１０３８、ＡＳＰＨ１０３９、ＡＳＰＨ１０４０、ＡＳＰＨ１０４１、ＡＳＰＨ１０４２、ＡＳＰＨ１０４３、ＡＳＰＨ１０４４、ＡＳＰＨ１０４５、ＡＳＰＨ１０４６、ＡＳＰＨ１０４７、ＡＳＰＨ１０４８、ＡＳＰＨ１０４９、ＡＳＰＨ１０５０、ＡＳＰＨ１０５１、ＡＳＰＨ１０５２、ＡＳＰＨ１０５３、ＡＳＰＨ１０５４、ＡＳＰＨ１０５６、ＡＳＰＨ１０５７、ＡＳＰＨ１０５８、ＡＳＰＨ１０５９、ＡＳＰＨ１０６０、ＡＳＰＨ１０６１、およびＡＳＰＨ１０６２修飾オリゴヌクレオチドの結果を表す。実験は、実施例１４に記載されている。図１７は、Ｐａｎｃ−１細胞におけるＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２のｍＲＮＡの発現の阻害を表す。Ｐａｎｃ−１細胞は、任意のトランスフェクション試薬（ジムノティックトランスフェクションまたはアンアシステッドトランスフェクションまたはジムノティックデリバリー）の非存在下で、３．３μΜの用量で異なる修飾オリゴヌクレオチドで処理し、ＴＧＦ−ベータ１（黒カラム）の阻害およびＴＧＦ−ベータ２（白カラム）のｍＲＮＡ発現は、７２時間後に測定された。図１７は、修飾オリゴヌクレオチドＡＳＰＨ０５、ＡＳＰＨ０９、ＡＳＰＨ１０００、ＡＳＰＨ１００１、ＡＳＰＨ１００２、ＡＳＰＨ１００４、ＡＳＰＨ１００６、ＡＳＰＨ１００７、ＡＳＰＨ１００８、ＡＳＰＨ１００９、ＡＳＰＨ１０１０、ＡＳＰＨ１０１１、ＡＳＰＨ１０１２、ＡＳＰＨ１０１３、ＡＳＰＨ１０１４、ＡＳＰＨ１０１５、ＡＳＰＨ１０１７、ＡＳＰＨ１０１８、ＡＳＰＨ１０１９、ＡＳＰＨ１０２０、ＡＳＰＨ１０２１、ＡＳＰＨ１０２２、ＡＳＰＨ１０２４、ＡＳＰＨ１０２６、ＡＳＰＨ１０２７、ＡＳＰＨ１０２８、ＡＳＰＨ１０２９、ＡＳＰＨ１０３２、ＡＳＰＨ１０３３、ＡＳＰＨ１０３４、ＡＳＰＨ１０３５、ＡＳＰＨ１０３６、ＡＳＰＨ１０３７、ＡＳＰＨ１０３８、ＡＳＰＨ１０３９、ＡＳＰＨ１０４０、ＡＳＰＨ１０４１、ＡＳＰＨ１０４２、ＡＳＰＨ１０４３、ＡＳＰＨ１０４４、ＡＳＰＨ１０４５、ＡＳＰＨ１０４６、ＡＳＰＨ１０４７、ＡＳＰＨ１０４９、ＡＳＰＨ１０５０、ＡＳＰＨ１０５１、ＡＳＰＨ１０５２、ＡＳＰＨ１０５３、ＡＳＰＨ１０５４、ＡＳＰＨ１０５５、ＡＳＰＨ１０５６、ＡＳＰＨ１０５７、ＡＳＰＨ１０５８、ＡＳＰＨ１０５９、ＡＳＰＨ１０６０、ＡＳＰＨ１０６１、ＡＳＰＨ１０６２修飾オリゴヌクレオチドの結果を表す。実験は、実施例１５に記載されている。図１８は、ヒトＡ１７２細胞におけるＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２およびＴＧＦ−ベータ３のｍＲＮＡの発現の阻害を表す。細胞は、１０ｎＭ（トランスフェクション剤の存在下で）の用量で異なる修正オリゴヌクレオチドでトランスフェクトし、およびＴＧＦ−ベータ１（黒カラム）、ＴＧＦ−ベータ２（白カラム）およびＴＧＦ−ベータ３（ストライプカラム）ｍＲＮＡ発現の阻害は、トランスフェクションから２４時間後に測定された。図１８は、ＡＳＰＨ０９、ＡＳＰＨ１０４７、ＡＳＰＨ１０５１、ＡＳＰＨ１０５９、ＡＳＰＨ１０６３、ＡＳＰＨ１０６４、ＡＳＰＨ１０６５、ＡＳＰＨ１０６６、ＡＳＰＨ１０６７、ＡＳＰＨ１０６８、ＡＳＰＨ１０６９、ＡＳＰＨ１０７０、ＡＳＰＨ１０７１、ＡＳＰＨ１０７２、ＡＳＰＨ１０７３、ＡＳＰＨ１０７４、ＡＳＰＨ１０７５、ＡＳＰＨ１０７６、ＡＳＰＨ１０７７、ＡＳＰＨ１０７８、ＡＳＰＨ１０７９、ＡＳＰＨ１０８０、ＡＳＰＨ１０８１、ＡＳＰＨ１０８２、ＡＳＰＨ１０８３、ＡＳＰＨ１０８４、ＡＳＰＨ１０８５、ＡＳＰＨ１０８６、ＡＳＰＨ１０８７、ＡＳＰＨ１０８８、ＡＳＰＨ１０８９、ＡＳＰＨ１０９０、ＡＳＰＨ１０９１、ＡＳＰＨ１０９２、ＡＳＰＨ１０９３、ＡＳＰＨ１０９４、ＡＳＰＨ１０９５、ＡＳＰＨ１０９７、ＡＳＰＨ１０９８、ＡＳＰＨ１０９９、ＡＳＰＨ１１００、ＡＳＰＨ１１０１、ＡＳＰＨ１１０２、ＡＳＰＨ１１０３、ＡＳＰＨ１１０４、ＡＳＰＨ１１０５、ＡＳＰＨ１１０６、ＡＳＰＨ１１０７、ＡＳＰＨ１１０８、ＡＳＰＨ１１０９、ＡＳＰＨ１１１０、ＡＳＰＨ１１１１、ＡＳＰＨ１１１２、ＡＳＰＨ１１１３、ＡＳＰＨ１１４、ＡＳＰＨ１１１５、ＡＳＰＨ１１１６、ＡＳＰＨ１１１７、ＡＳＰＨ１１１８、ＡＳＰＨ１１１９、ＡＳＰＨ１１２０、ＡＳＰＨ１１２１、ＡＳＰＨ１１２２、ＡＳＰＨ１１２３、ＡＳＰＨ１１２４、ＡＳＰＨ１１２５、ＡＳＰＨ１１２６、ＡＳＰＨ１１２７、ＡＳＰＨ１１２８、ＡＳＰＨ１１２９、ＡＳＰＨ１１３０、ＡＳＰＨ１１３１、およびＡＳＰＨ１１３２修飾オリゴヌクレオチドの結果を表す。実験は、実施例１６に記載されている。図１９ａは、ヒトＰａｎｃ−１およびＲｅｎＣａ細胞において、ＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２およびＴＧＦ−ベータ３ｍＲＮＡの発現の阻害を表す。細胞は、任意のトランスフェクション剤（ジムノティックトランスフェクションまたはアンアシステッドトランスフェクションまたはジムノティックデリバリー）の非存在下で、３．３μΜの投与用量で異なる修飾オリゴヌクレオチドでトランスフェクトし、ＴＧＦ−ベータ１（黒カラム）、ＴＧＦ−ベータ２（白カラム）およびＴＧＦ−ベータ３（ストライプカラム）ｍＲＮＡ発現の阻害は、トランスフェクションから７２時間後に測定された。図１９ａは、ＡＳＰＨ１０６３、ＡＳＰＨ１０６４、ＡＳＰＨ１０６５、ＡＳＰＨ１０６６、ＡＳＰＨ１０６７、ＡＳＰＨ１０６８、ＡＳＰＨ１０６９、ＡＳＰＨ１０７０、ＡＳＰＨ１０７１、ＡＳＰＨ１０７２、ＡＳＰＨ１０７３、ＡＳＰＨ１０７４、ＡＳＰＨ１０７５、ＡＳＰＨ１０７６、ＡＳＰＨ１０７７、ＡＳＰＨ１０７８、ＡＳＰＨ１０７９、ＡＳＰＨ１０８０、ＡＳＰＨ１０８１、ＡＳＰＨ１０８２、ＡＳＰＨ１０８３、ＡＳＰＨ１０８４、ＡＳＰＨ１０８５、ＡＳＰＨ１０８６、ＡＳＰＨ１０８７、ＡＳＰＨ１０８８、ＡＳＰＨ１０８９、ＡＳＰＨ１０９０、ＡＳＰＨ１０９１、ＡＳＰＨ１０９２、ＡＳＰＨ１０９３、ＡＳＰＨ１０９４、ＡＳＰＨ１０９５、ＡＳＰＨ１０９７、ＡＳＰＨ１０９８、ＡＳＰＨ１０９９、ＡＳＰＨ１１００、ＡＳＰＨ１１０１、ＡＳＰＨ１１０２、ＡＳＰＨ１１０３、ＡＳＰＨ１１０４、ＡＳＰＨ１１０５、ＡＳＰＨ１１０６、ＡＳＰＨ１１０７、ＡＳＰＨ１１０８、ＡＳＰＨ１１０９、ＡＳＰＨ１１１０、ＡＳＰＨ１１１１、ＡＳＰＨ１１１２、ＡＳＰＨ１１１３、ＡＳＰＨ１１４、ＡＳＰＨ１１１５、ＡＳＰＨ１１１６、ＡＳＰＨ１１１７、ＡＳＰＨ１１１８、ＡＳＰＨ１１１９、ＡＳＰＨ１１２０、ＡＳＰＨ１１２１、ＡＳＰＨ１１２２、ＡＳＰＨ１１２３、ＡＳＰＨ１１２４、ＡＳＰＨ１１２５、ＡＳＰＨ１１２６、ＡＳＰＨ１１２７、ＡＳＰＨ１１２８、ＡＳＰＨ１１２９、ＡＳＰＨ１１３０、ＡＳＰＨ１１３１、およびＡＳＰＨ１１３２修飾オリゴヌクレオチドの結果を表す。図１９ｂは、ＲｅｎＣａ細胞におけるこれらのオリゴヌクレオチドの阻害効果を示す。図２０は、それぞれ、ＴＧＦ−ベータ２およびＴＧＦ−ベータ３のヒト配列を備えるＴＧＦ−ベータ１のヒト配列に対して１００％の相同であるＡＳＰＨ１０２４およびＡＳＰＨ１０９６の配列アラインメントを表す。ＡＳＰＨ１０２４は、ＴＧＦ−ベータ２のヒト配列を有する３つのミスマッチ（図２０ａ）およびＴＧＦ−ベータ３のヒト配列を有する２つのミスマッチ（図２０ｂ）がある。ＡＳＰＨ１０９６は、ＴＧＦ−ベータ２のヒト配列を持つ１つのミスマッチ（図２０ａ）およびＴＧＦ−ベータ３のヒト配列を持つ１つのミスマッチ（図２０ｂ）がある。両方のオリゴヌクレオチドは、異なるヒトＴＧＦ−ベータイソ型（ＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２およびＴＧＦ−ベータ３）の阻害を示す。例えばＡＳＰＨ１０２４は、ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２の発現および活性を阻害し（図１７参照）、ＡＳＰＨ１０９６は、例えば図１８に示すようにＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２およびＴＧＦ−ベータ３の発現および活性を阻害する。ＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２およびＴＧＦベータ３のヒト配列に１００％相同であるＡＳＰＨ００９を対照として使用した。図２１は、ＴＧＦ−ベータ２のヒト配列を持つＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ３のヒト配列に対して１００％の相同であるＡＳＰＨ１１３１およびＡＳＰＨ１１３２の配列アラインメントを表す。ＡＳＰＨ１１３１およびＡＳＰＨ１１３２のそれぞれは、ＴＧＦ−ベータ２のヒト配列を持つ１つのミスマッチがある。両方のオリゴヌクレオチドは、例えば図１８に示すようにすべての３つのヒトイソ型の発現を強く阻害する。図２２は、ＴＧＦ−ベータ２のマウス配列を備え、ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦベータ３のマウス配列に対して１００％の相同であるＡＳＰＨ１１３１およびＡＳＰＨ１１３２の配列アラインメントを表す。ＡＳＰＨ１１３１およびＡＳＰＨ１１３２のそれぞれは、ＴＧＦ−ベータ２のマウス配列に対して２つのミスマッチがある。ＡＳＰＨ１１３１は、マウスＴＧＦ−ベータ２およびＴＧＦ−ベータ３を強力に阻害するが、ＡＳＰＨ１１３２は、例えば図１９ｂに示すように、すべてのマウスのＴＧＦ−ベータイソ型を非常に強力に抑制する。図２３は、皮下ヒト膵臓癌Ｐａｎｃ−１腫瘍を有するマウスの腎臓におけるＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡ発現を表す。マウスは、５日間指示された処理日程後に１０、３、１および３０ｍｇ／ｋｇのＡＳＰＨ４７で処理された：ＱｌＤｘｌ−ｄ６（１回ＳＣ注射、終了５日後）、ＱｌＤｘ５−ｄ６（５日間毎日ＳＣ注射、終了２４時間後）、およびＱｌＤｘ５−ｄ１０（５日間毎日ＳＣ注射、終了５日後）。ＴＧＦ−ベータ２およびハウスキーピング遺伝子ＧＡＰＤＨｍＲＮＡ発現は、ｂＤＮＡアッセイによって検出された。ＧＡＰＤＨｍＲＮＡに対するＴＧＦ−ベータ２の割合を表すデータはボックスプロットで表され、そこでは中央値並びに最小値および最大値が表されている（ビヒクルおよび３ｍｇ／ｋｇＱｌＤｘｌｄ６群についてｎ＝９であるが、それ以外はデータはｎ＝１０で表されている）。図２４は、ヒト膵臓癌Ｐａｎｃ−１腫瘍を有するマウスの腎臓におけるＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡ発現を表す。示された処置用量で５日間連続して様々なオリゴヌクレオチドの皮下注射でマウスを処理した：１、５、１５、または５０ｍｇ／ｋｇのオリゴヌクレオチドの毎日の注射を５日間連続。ＴＧＦ−ベータ２およびハウスキーピング遺伝子ＧＡＰＤＨｍＲＮＡ発現は、ｂＤＮＡアッセイによって検出された。ＧＡＰＤＨｍＲＮＡに対するＴＧＦ−ベータ２の割合を表すデータはボックスプロットで表され、そこでは中央値並びに最小値および最大値が表されている（データはｎ＝５で表されている）。図２５は、皮下ヒト腎細胞癌７８６−Ｏ腫瘍におけるＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡ発現を表す。マウスを、５日間連続で５０ｍｇ／ｋｇのオリゴヌクレオチドの毎日の注射で処理した。腫瘍は、最後の処理から２４時間に回収され、スナップ凍結された。ＴＧＦ−ベータ２およびハウスキーピング遺伝子ＧＡＰＤＨｍＲＮＡ発現は、ｂＤＮＡアッセイによって検出された。ＧＡＰＤＨｍＲＮＡに対するＴＧＦ−ベータ２の割合を表すデータはボックスプロットで表され、そこでは中央値並びに最小値および最大値が表されている（ＡＳＰＨ７１群ｎ＝９であるが、それ以外はデータはｎ＝１０で表されている）。図２６ａは、ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２タンパク質の発現に対する、本発明のオリゴヌクレオチドの阻害効果を表す。Ｐａｎｃ−１細胞は、修飾オリゴヌクレオチドＡＳＰＨ４７（図２６ａ）の２０、６．６７、２．２２、０．７４、０．２５、０．０８または０．００９μΜでトランスフェクトした。細胞上清中のＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２タンパク質レベルは、ＥＬＩＳＡによって決定され、ＴＧＦ−ベータ１の結果はダイヤモンドに示され、ＴＧＦ−ベータ２結果は四角に示されている。図２６ｂは、ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２タンパク質の発現に対する、本発明のオリゴヌクレオチドの阻害効果を表す。Ｐａｎｃ−１細胞は、修飾オリゴヌクレオチドＡＳＰＨ１０４７（図２６ｂ）の２０、６．６７、２．２２、０．７４、０．２５、０．０８または０．００９μΜでトランスフェクトした。細胞上清中のＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２タンパク質レベルは、ＥＬＩＳＡによって決定され、ＴＧＦ−ベータ１の結果はダイヤモンドに示され、ＴＧＦ−ベータ２結果は四角に示されている。図２６ｃは、ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２タンパク質の発現に対する、本発明のオリゴヌクレオチドの阻害効果を表す。Ｐａｎｃ−１細胞は、修飾オリゴヌクレオチドＡＳＰＨ１１０６（図２６ｃ）の２０、６．６７、２．２２、０．７４、０．２５、０．０８または０．００９μΜでトランスフェクトした。細胞上清中のＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２タンパク質レベルは、ＥＬＩＳＡによって決定され、ＴＧＦ−ベータ１の結果はダイヤモンドに示され、ＴＧＦ−ベータ２結果は四角に示されている。図２６ｄは、ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２タンパク質の発現に対する、本発明のオリゴヌクレオチドの阻害効果を表す。Ｐａｎｃ−１細胞は、修飾オリゴヌクレオチドＡＳＰＨ１１３２（図２６ｄ）の２０、６．６７、２．２２、０．７４、０．２５、０．０８または０．００９μΜでトランスフェクトした。細胞上清中のＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２タンパク質レベルは、ＥＬＩＳＡによって決定され、ＴＧＦ−ベータ１の結果はダイヤモンドに示され、ＴＧＦ−ベータ２結果は四角に示されている。図２６ｅは、ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２タンパク質の発現に対する、本発明のオリゴヌクレオチドの阻害効果を表す。Ｐａｎｃ−１細胞は、修飾オリゴヌクレオチドＡＳＰＨ１０４７（図２６ｅ）と組み合わせたＡＳＰＨ４７の２０、６．６７、２．２２、０．７４、０．２５、０．０８または０．００９μΜでトランスフェクトした。細胞上清中のＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２タンパク質レベルは、ＥＬＩＳＡによって決定され、ＴＧＦ−ベータ１の結果はダイヤモンドに示され、ＴＧＦ−ベータ２結果は四角に示されている。図２６ｆは、ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２タンパク質の発現に対する、本発明のオリゴヌクレオチドの阻害効果を表す。陰性対照は、４０、１３．３３、４．４４、１．４８、０．４９、０．１６、０．０５、または０．０２μΜの濃度のＳＥＱＩＤＮＯ．１４５（図２６ｆ）のスクランブルオリゴヌクレオチド（ｓｃｒＬＮＡ）である。細胞上清中のＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２タンパク質レベルは、ＥＬＩＳＡによって決定され、ＴＧＦ−ベータ１の結果はダイヤモンドに示され、ＴＧＦ−ベータ２結果は四角に示されている。図２７ａは、ヒトＰａｎｃ−１細胞におけるＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２およびＴＧＦ−ベータ３ｍＲＮＡの発現の阻害を表す。Ｐａｎｃ−１およびＲｅｎＣａ細胞は、任意のトランスフェクション剤（ジムノティックトランスフェクションまたはアンアシステッドトランスフェクションまたはジムノティックデリバリー）の非存在下で、１．１μΜの用量で異なる修飾オリゴヌクレオチドで処理し、ＴＧＦ−ベータ１（黒カラム）、ＴＧＦ−ベータ２（白カラム）、およびＴＧＦ−ベータ３（ストライプカラム）ｍＲＮＡ発現の阻害は、７２時間後に測定された。図１７は、それぞれＡＳＰＨ１９０、ＡＳＰＨ１９１、ＡＳＰＨ１９２、ＡＳＰＨ１９３、ＡＳＰＨ１９４、ＡＳＰＨ１９５、ＡＳＰＨ１９６、ＡＳＰＨ１９７、ＡＳＰＨ１９８、ＡＳＰＨ１９９、ＡＳＰＨ２００、ＡＳＰＨ２０１、ＡＳＰＨ２０２、ＡＳＰＨ２０３、ＡＳＰＨ２０４、ＡＳＰＨ２０５、ＡＳＰＨ２０６、ＡＳＰＨ２０７、ＡＳＰＨ２０８、ＡＳＰＨ２０９、ＡＳＰＨ２１０、ＡＳＰＨ２１１、ＡＳＰＨ２１２、ＡＳＰＨ２１３、ＡＳＰＨ２１４、ＡＳＰＨ２１５、ＡＳＰＨ２１６、ＡＳＰＨ２１７、ＡＳＰＨ２１８、ＡＳＰＨ２１９、ＡＳＰＨ２２０、ＡＳＰＨ２２１、ＡＳＰＨ２２２、およびＡＳＰＨ２２３修飾オリゴヌクレオチドの結果を表す。図２７ａは、Ｐａｎｃ−１細胞におけるこれらのＴＧＦ−ベータオリゴヌクレオチドの阻害効果を表す。図２７ｂは、マウスＲｅｎＣａ細胞におけるＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２およびＴＧＦ−ベータ３ｍＲＮＡの発現の阻害を表す。Ｐａｎｃ−１およびＲｅｎＣａ細胞は、任意のトランスフェクション剤（ジムノティックトランスフェクションまたはアンアシステッドトランスフェクションまたはジムノティックデリバリー）の非存在下で、１．１μΜの用量で異なる修飾オリゴヌクレオチドで処理し、ＴＧＦ−ベータ１（黒カラム）、ＴＧＦ−ベータ２（白カラム）、およびＴＧＦ−ベータ３（ストライプカラム）ｍＲＮＡ発現の阻害は、７２時間後に測定された。図１７は、それぞれＡＳＰＨ１９０、ＡＳＰＨ１９１、ＡＳＰＨ１９２、ＡＳＰＨ１９３、ＡＳＰＨ１９４、ＡＳＰＨ１９５、ＡＳＰＨ１９６、ＡＳＰＨ１９７、ＡＳＰＨ１９８、ＡＳＰＨ１９９、ＡＳＰＨ２００、ＡＳＰＨ２０１、ＡＳＰＨ２０２、ＡＳＰＨ２０３、ＡＳＰＨ２０４、ＡＳＰＨ２０５、ＡＳＰＨ２０６、ＡＳＰＨ２０７、ＡＳＰＨ２０８、ＡＳＰＨ２０９、ＡＳＰＨ２１０、ＡＳＰＨ２１１、ＡＳＰＨ２１２、ＡＳＰＨ２１３、ＡＳＰＨ２１４、ＡＳＰＨ２１５、ＡＳＰＨ２１６、ＡＳＰＨ２１７、ＡＳＰＨ２１８、ＡＳＰＨ２１９、ＡＳＰＨ２２０、ＡＳＰＨ２２１、ＡＳＰＨ２２２、およびＡＳＰＨ２２３修飾オリゴヌクレオチドの結果を表す。図２７ｂはＲｅｎＣａ細胞におけるものである。図２８ａは、ＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２およびＴＧＦ−ベータ３の発現に対する本発明のオリゴヌクレオチドの阻害効果を示す。Ｐａｎｃ−１細胞（図２８ａ）は、トランスフェクション剤の非存在下で、３．３μΜの異なるＴＧＦ−ベータ特異的オリゴヌクレオチドでトランスフェクトした。ＴＧＦ−ベータ１（黒カラム）、ＴＧＦ−ベータ２（白カラム）およびＴＧＦ−ベータ３（ストライプカラム）ｍＲＮＡの発現は、トランスフェクションから７２時間後に測定された。図２８ｂは、ＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２およびＴＧＦ−ベータ３の発現に対する本発明のオリゴヌクレオチドの阻害効果を示す。ＲｅｎＣａ細胞（図２８ｂ）は、トランスフェクション剤の非存在下で、３．３μΜの異なるＴＧＦ−ベータ特異的オリゴヌクレオチドでトランスフェクトした。ＴＧＦ−ベータ１（黒カラム）、ＴＧＦ−ベータ２（白カラム）およびＴＧＦ−ベータ３（ストライプカラム）ｍＲＮＡの発現は、トランスフェクションから７２時間後に測定された。図２９は、ＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２およびＴＧＦ−ベータ３の発現に対する本発明のオリゴヌクレオチドの阻害効果を表す。Ａ１７２神経膠腫細胞は、トランスフェクション剤の存在下で、１０ｎΜの異なるＴＧＦ−ベータ特異的オリゴヌクレオチドでトランスフェクトされた。ＴＧＦ−ベータ１（黒カラム）、ＴＧＦ−ベータ２（白カラム）およびＴＧＦ−ベータ３（ストライプカラム）ｍＲＮＡの発現は、トランスフェクションから２４時間後に測定された。図３０ａは、時間依存性プラズマ（３０ａ）の分析の比較を表す。図３０ｂは、ＡＳＰＨ＿００４７の５０ｍｇ／ＫｇをＢａｌｂ／ｃマウスに１回皮下ボーラス投与した後、ＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡ（ＰＤプロファイル）の腎臓（３０ｂ）濃度（ＰＫプロファイル；μｇ／ｍＬまたはμｇ／ｇｒで表記された値とともに）および腎臓におけるダウンレギュレーションの比較を表す。図３１は、ＡＳＰＨ＿００４７または対照オリゴヌクレオチドの繰り返し皮下投与後の免疫不全マウスの腎臓における形成した皮下腫瘍（図３０Ａ−Ｄ）または腎臓（図３０Ｅ−Ｆ）のＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡダウンレギュレーションを示す。ＴＧＦ−ベータ２およびＧＡＰＤＨｍＲＮＡ発現は、ｂＤＮＡにより検出した。結果は、ＴＧＦ−ベータ２／ＧＡＰＤＨｍＲＮＡの割合として表され、そして個々の試験された試料は、中央値を示す線で表されている。図３２は、同所および静脈内マウスＲｅｎｃａ腎臓癌腫モデルにおけるＢａｌｂ／ｃマウスをＡＳＰＨ＿００４７（選択的ＴＧＦ−ｂ２アンチテーゼオリゴヌクレオチド）で全身処置した肺転移への影響を表す。肺転移のレベルは、転移の数または肺重量に基づいて決定された。結果は、ボックスプロットで示され、そこでは中央値、上四分位点および下四分位点、第９０番および第１０番百分位点が示されている。図３３は、トランスフェクション剤（ジムノティックトランスフェクションまたはジムノティックデリバリー）の非存在下で、３．３μΜの示されたオリゴヌクレオチドで処理されたヒトＰａｎｃ−１膵臓癌細胞を表す。ＴＧＦ−ベータ１（黒カラム）、ＴＧＦ−ベータ２（白カラム）およびＴＧＦ−ベータ３（ストライプカラム）ｍＲＮＡの発現は、トランスフェクションから７２時間後に決定された。図３４は、同所性マウス４Ｔ１乳癌モデルにおけるＡＳＰＨ＿００４７でＢａｌｂ／ｃマウスを全身処理の肺転移に対する効果を表す。個々の動物のデータは、太字黒線で示された中央値とともに示されている。

本発明は、少なくとも１つの修飾ヌクレオチドを含み、ドライアイ、緑内障、後嚢混濁、網膜芽細胞腫または脈絡膜癌のような眼の疾患を予防および／または治療するための方法において使用される、ＴＧＦ−ベータｍＲＮＡとの相互作用に適したオリゴヌクレオチド、特にアンチセンスオリゴヌクレオチドに関する。オリゴヌクレオチドは、ＳＥＱＩＤＮＯ．２によるＴＧＦ−ベータ２核酸、ＳＥＱＩＤＮＯ．１によるＴＧＦ−ベータ１核酸、または、ＳＥＱＩＤＮＯ．３によるＴＧＦ−ベータ３核酸の核酸配列の１０から２０、より好ましくは１２から１８のヌクレオチドを含む、または、からなる。最も好ましいオリゴヌクレオチドは、１２、１３、１４、１５、１６、１７または１８のヌクレオチドを含む、または、からなる。オリゴヌクレオチドは、好ましくは、ＳＥＱＩＤＮＯ．２の核酸ｎｏ．１３８０から１５１０（好ましくはｎｏ．１３８０から１４５０および／またはｎｏ．１４８０から１５１０）、１６６０から１６８０、または２３９０から２４１０の領域から選択される。オリゴヌクレオチドは、ｓｉＲＮＡ、マイクロＲＮＡ、アプタマーまたはスピエゲルマー（Ｓｐｉｅｇｅｌｍｅｒ）を含む一または二重らせんＲＮＡまたはＤＮＡである。好ましくは、オリゴヌクレオチドは、アンチセンスオリゴヌクレオチドである。

ヌクレオチドは、オリゴヌクレオチドのビルディングブロックを形成し、例えば、核酸塩基（窒素塩基、例えば、プリンまたはピリミジン）、５炭糖（例えば、リボース、２−デオキシリボース、アラビノース、キシロース、リキソース、アロース、アルトース（ａｌｔｏｒｓｅ）、グルコース、マンノース、グロース、イドース、ガラクトース、タロース、またはそれらの糖の安定化された修飾）、および１つ以上のリン酸基から構成されている。修飾リン酸基の例としては、ホスホロチオエートまたはメチルホスホネートである。ヌクレオチドの各化合物は修飾可能で、当該化合物は天然存在するものでも、または天然には存在しないものでもよい。後者は、例えばＦｒｅｉｅｒ＆Ａｌｔｍａｎｎ（Ｎｕｃｌ．ＡｃｉｄＲｅｓ．，１９９７，２５，４４２９−４４４３）およびＵｈｌｍａｎｎ（Ｃｕｒｒ．ＯｐｉｎｉｏｎｉｎＤｒｕｇ＆Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ（２０００，３（２）：２９３−２１３））に記載されているような、図４に示された、例えば、ロックされた核酸（ＬＮＡ）、ａ２’−Ｏ，４’−Ｃ−エチレン架橋核酸（ＥＮＡ）、ポリアルキレンオキシド（例えば、トリエチレングリコール（ＴＥＧ））、２’−フルオロ、２’−Ｏ−メトキシおよび２’−Ｏ−メチル修飾ヌクレオチドである。

ＬＮＡは、修飾ＲＮＡヌクレオチドであり、リボース部分は、２’酸素と４’炭素（２’−４’リボヌクレオシド）と接続する余分な架橋で修飾されている。架橋は、Ａ型二重鎖でよく見られる３’−エンド（北）立体配置中のリボースを「ロック」する。ＬＮＡヌクレオシドおよびヌクレオチドは、それぞれ、例えば、アルファ−Ｄ−またはベータ−Ｌ−立体配置のチオ−ＬＮＡ、オキシ−ＬＮＡ、またはアミノ−ＬＮＡの形態を含み、オリゴヌクレオチドの（未修飾）ＤＮＡまたはＲＮＡ残基と混合され得、且つ組み合わされ得る。

本発明のオリゴヌクレオチド、すなわち、修飾オリゴヌクレオチドは、オリゴヌクレオチドの５’−および／または３’−末端に、少なくとも１つの修飾ヌクレオチド、好ましくは、ＬＮＡおよび／若しくはＥＮＡを含む。好ましい実施形態において、オリゴヌクレオチドは、５’−末端に１、２、３、若しくは４ＬＮＡまたはＥＮＡＳ、および３’−末端に１、２、３、若しくは４ＬＮＡまたはＥＮＡＳを含む。別の好ましい実施形態において、オリゴヌクレオチドは、５’−末端または３’−末端に１、２、３、若しくは４ＬＮＡまたはＥＮＡＳ、および３’−末端および５’−末端にＴＥＧのようなポリアルキレンオキシドを含む。修飾オリゴヌクレオチドは、それぞれ、悪性または良性腫瘍、免疫疾患、線維症、緑内障や後嚢混濁（ＰＣＯ）などの眼の疾患、ＣＮＳ疾患の脱毛等の改善された予防および／または治療につながるＴＧＦ−ベータの発現および活性に対して有意に増加した阻害を示す。本発明のオリゴヌクレオチドは、ＴＧＦ−ベータｍＲＮＡ、好ましくはＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２、またはＴＧＦ−ベータ３、代替的にＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２および／またはＴＧＦ−ベータ３ｍＲＮＡ（つまり、ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２、またはＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ３、またはＴＧＦ−ベータ２およびＴＧＦ−ベータ３、またはＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２およびＴＧＦ−ベータ３ｍＲＮＡ）、またはＴＧＦ−ベータ系に直接または間接的に影響を与える任意の他のものとのハイブリダイゼーションのいずれかによる疾患とリンクしたＴＧＦ−ベータを対象とする。ＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２、およびＴＧＦ−ベータ３の発現を阻害するオリゴヌクレオチドは、汎特異的オリゴヌクレオチドとして規定される。

好ましい実施形態において、本発明のオリゴヌクレオチドは、ドライアイ、緑内障または後嚢混濁のような眼の疾患を予防および／または治療する方法において使用される。

好ましくは、２以上オリゴヌクレオチドが組み合わされ、少なくとも１つのオリゴヌクレオチドは特異的にＴＧＦ−ベータ１を阻害し、且つ少なくとも１つのオリゴヌクレオチドは特異的にＴＧＦ−ベータ２を阻害し、または少なくとも１つのオリゴヌクレオチドは特異的にＴＧＦ−ベータ１を阻害し、且つ少なくとも１つのオリゴヌクレオチドは特異的にＴＧＦ−ベータ３を阻害し、または少なくとも１つのオリゴヌクレオチドは特異的にＴＧＦ−ベータ２を阻害し、かつ少なくとも１つのオリゴヌクレオチドは特異的にＴＧＦ−ベータ３を阻害し、または少なくとも１つのオリゴヌクレオチドは特異的にＴＧＦ−ベータ１を阻害し、少なくとも１つのオリゴヌクレオチドは特異的にＴＧＦ−ベータ２を阻害し、且つ少なくとも１つのオリゴヌクレオチドは特異的にＴＧＦ−ベータ３を阻害する。

他の実施形態において、１つのオリゴヌクレオチドは、ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２、ＴＧＦ−ベータ２およびＴＧＦ−ベータ３、またはＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ３のような２つのＴＧＦ−ベータイソ型を阻害する。ＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２、およびＴＧＦ−ベータ３のすべての３つのイソ型の発現を阻害するオリゴヌクレオチドは、汎特異的オリゴヌクレオチドとして規定される。

さらなる実施形態において、３つ以上のオリゴヌクレオチドが組み合わされ、少なくとも１つのオリゴヌクレオチドは特異的にＴＧＦ−ベータ１を阻害し、他のオリゴヌクレオチドは特異的にＴＧＦ−ベータ２を阻害し、さらに他のオリゴヌクレオチドは、特異的にＴＧＦ−ベータ３を阻害し、選択的に、１以上の追加のオリゴヌクレオチドは、ＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２、またはＴＧＦ−ベータ３および／または必要に応じて他の任意の因子を阻害する。

本発明のオリゴヌクレオチドは、例えば、０．１から２０μΜの範囲、好ましくは０．２から１５μΜの範囲、より好ましくは０．４から１０μΜの範囲、さらにより好ましくは０．５から５μΜの範囲のＩＣ_５０を有する。

本発明は、活性成分として本発明によるオリゴヌクレオチドを含む医薬組成物に言及する。医薬組成物は、少なくとも１つの本発明のオリゴヌクレオチド、および任意にさらなるアンチセンス化合物、抗体、化学療法化合物、抗炎症化合物、抗ウイルス化合物および／または免疫調節化合物を含む。薬学的に許容される結合剤およびアジュバントは、必要に応じて、医薬組成物の一部を含む。

１つの実施形態において、オリゴヌクレオチドおよび医薬組成物は、それぞれ、例えば、カプセル剤、錠剤および丸剤等の形態で投与ユニットとして処方され、それぞれ、以下の化合物を含有する。
結合剤としての微結晶性セルロース、ガムまたはゼラチン
賦形剤としてのデンプンまたはラクトース
潤滑剤、種々の甘味剤または香味剤としてのステアリン酸塩
カプセル剤のための投薬ユニットは、脂肪油などの液体担体を含有し得る。同様に、糖または腸溶性剤のコーティングは、投与ユニットの一部であり得る。

好ましい実施形態において、本発明のそのようなオリゴヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチドまたは医薬組成物は、眼剤または眼軟膏として製剤化され、選択的にＢＢＧ、ＢＢＲ、またはトリパンブルーのような色素、ポリビニルピロリドン、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、好ましくはＰＥＧ２００、ＰＥＧ４００、ＰＥＧ１０００、またはカリウムまたはナトリウムのリン酸水素塩を含む。

オリゴヌクレオチドおよび／または医薬組成物は、異なる経路を介して投与可能である。これらの投与経路は、限定されないが、エレクトロポレーション、表皮、皮膚への圧痕、動脈内、関節内、頭蓋内、皮内、病変内、筋肉内、鼻腔内、眼内、房内、髄腔内、腹腔内、前立腺内、肺内、脊髄内、気管内、腫瘍内、静脈内、膀胱内、体の空洞内に配置、鼻吸入、経口、肺吸入（例えば、粉末またはエアロゾルの吸入またはガス注入によるもので、ネブライザーによるものを含む）、皮下、真皮下、局所（眼を含み、膣および直腸送達を含む粘膜へ）、または経皮を含む。

非経口、皮下、皮内または局所投与のために、オリゴヌクレオチドおよび／または医薬組成物は、例えば、滅菌希釈剤、緩衝剤、毒性および抗菌の調節剤を含む。好ましい実施形態において、オリゴヌクレオチドまたは医薬組成物は、制御された放出特性を有するインプラントまたはマイクロカプセルを含む、体からの分解または即時排除に対して保護する担体で調製される。静脈内投与のために好適な担体は、例えば、生理食塩水またはリン酸緩衝生理食塩水である。経口投与のためのオリゴヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチドおよび／または医薬組成物は、例えば、粉末または顆粒、微粒子、ナノ粒子、水系懸濁液または水溶液または非水性媒体、カプセル、ゲルカプセル、サシェ、錠剤またはミニ錠剤を含む。例えば非経口、髄腔内、房内または脳室内投与を含むオリゴヌクレオチドおよび／または医薬組成物は、例えば必要に応じて緩衝液、希釈剤、および浸透促進剤、担体化合物および他の薬学的に許容される担体または賦形剤などの他の適切な添加剤を含む滅菌水溶液を含有する。

核酸および所定の医薬組成物の他の成分と組み合わせた場合、薬学的に許容される担体は、例えば、液体または固体であり、且つ所望のバルク、堅さ（ｃｏｎｓｉｓｔｅｎｃｙ）等を提供するように、投与の計画された方法を考慮して選択される。典型的な薬学的に許容される担体としては、限定されないが、結合剤（例えばアルファ化トウモロコシデンプン、ポリビニルピロリドンまたはヒドロキシプロピルメチルセルロースなど）、フィラー（例えば、ラクトースおよび他の糖、微結晶性セルロース、ペクチン、ゼラチン、硫酸カルシウム、エチルセルロース、ポリアクリレートまたはリン酸水素カルシウム）、潤滑剤（例えば、ステアリン酸マグネシウム、タルク、シリカ、コロイド状二酸化ケイ素、ステアリン酸、ステアリン酸金属塩、水素化植物油、コーンスターチ、ポリエチレングリコール、安息香酸ナトリウム、酢酸ナトリウムなど）、崩壊剤（例えば、デンプン、デンプングリコール酸ナトリウムなど）、または湿潤剤（例えば、ラウリル硫酸ナトリウムなど）を含む。経口投与剤形のための徐放性経口送達系および／または腸溶コーティングは、米国特許第４７０４２９５号明細書、同第４５５６５５２号明細書、同第４３０９４０６号明細書および同第４３０９４０４号明細書に記載されている。アジュバントはこれらの表現の下に含まれる。

１つの実施形態において、オリゴヌクレオチドまたは医薬組成物は、医療機器、好ましくは例えば直接眼内にまたは眼に注入するミニポンプのような小型ポンプを介して投与される。このようなデバイスは、眼内に治療的荷重、すなわちオリゴヌクレオチドまたは医薬組成物を送達するための眼球運動筋に接続される。

ヒト疾患の予防および/または治療の方法において使用される他に、本発明のオリゴヌクレオチドおよび/または医薬組成物は、獣医学的動物、爬虫類、鳥類、エキゾチックアニマルおよび哺乳類、げっ歯類等の家畜を含む他の対象を予防および／または治療するための方法においても使用される。哺乳類は、例えば、ウマ、イヌ、ブタ、ネコ、または霊長類（例えば、サル、チンパンジー、またはキツネザル）が含まれる。げっ歯類には、例えば、ラット、ウサギ、マウス、リス、またはモルモットが含まれる。

本発明によるオリゴヌクレオチドまたは医薬組成物は、多くの異なる疾患、好ましくは良性または悪性腫瘍、免疫疾患、気管支喘息、心臓病、線維症（例えば、肝線維症、特発性肺線維症、肝硬変、腎性肝硬変、強皮症）、糖尿病、創傷治癒、結合組織の疾患（例えば、心臓内、血管内、骨内、関節内、マルファンやロエイス・ディーツ症候群のような眼内）、乾癬、眼の疾患（例えば、緑内障、二次白内障として知られている後嚢混濁（ＰＣＯ）、網膜芽細胞腫、脈絡膜癌、マルファンまたはロエイス・ディーツ症候群、加齢黄斑変性症、糖尿病性黄斑変性症などの黄斑変性、または白内障）、ＣＮＳ疾患（例えば、アルツハイマー病、パーキンソン病）、冠動脈アテローム性動脈硬化症（冠動脈インターベンションまたは冠動脈バイパス移植（ＣＡＢＧ）手術や脱毛を予防および／または治療するための方法において使用される。腫瘍は、例えば、固形腫瘍、血液腫瘍、白血病、腫瘍転移、血管腫、聴神経腫、神経線維腫、トラコーマ、化膿性肉芽腫、未分化星状細胞腫などの星状細胞腫、聴神経腫瘍、芽細胞腫、ユーイング腫瘍、頭蓋咽頭腫、上衣腫、髄芽腫、神経膠腫、神経膠芽腫、血管芽腫（ｈｅｍａｎｇｌｏｂｌａｓｔｏｍａ）、ホジキンリンパ腫、髄芽細胞腫（ｍｅｄｕｌｌａｂｌａｓｔｏｍａ）、白血病、一次および／または転移性メラノーマのようなメラノーマ、中皮腫、骨髄腫、神経芽腫、神経線維腫、非ホジキンリンパ腫、松果体腫、網膜芽細胞腫、肉腫、セミノーマ、トラコーマ、ウィルムス腫瘍、胆管癌、膀胱癌、脳腫瘍、乳癌、気管支癌、腎臓癌、子宮頸癌、絨毛癌、嚢胞腺癌（ｃｙｓｔａｄｅｎｏｃａｒｃｉｎｏｍｅ）、胎生期癌、上皮癌、食道癌、子宮頚癌、結腸癌、結腸直腸癌、子宮内膜癌、胆嚢癌、胃癌、頭部癌、肝癌、肺癌、髄様癌、頸部癌、非小細胞気管支／肺癌、卵巣癌、膵臓癌、乳頭癌、乳頭状腺癌、前立腺癌、小腸癌、前立腺癌、直腸癌、腎細胞癌（ＲＣＣ、例えば、明細胞ＲＣＣ、乳頭状ＲＣＣ、色素嫌性ＲＣＣ）、腎臓癌好酸性顆粒細胞腫、移行細胞腎臓癌、皮膚癌、小細胞気管支／肺癌、扁平上皮細胞癌、皮脂腺癌、睾丸癌、および子宮癌の群から選択される。本発明のオリゴヌクレオチドまたは医薬組成物は、腫瘍を予防および／または治療するための方法において使用されるだけでなく、同転移にも同様に使用される。

本発明は、好ましくは、限定されないが、緑内障、後嚢混濁、ドライアイ、例えば、加齢黄斑変性症のような黄斑変性、糖尿病性黄斑エンドマ、白内障、増殖性硝子体網膜症、マルファンまたはロエイス−ディーツ症候群、ＴＧＦ−ベータ、特にＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２、および／またはＴＧＦ−ベータ３に結合可能な任意の他の眼の疾患、および／または線維症、炎症、変性、老化またはこららの同類と関連する眼の疾患の予防および／または治療に関する。

本発明のアンチセンスオリゴヌクレオチドは、それらが予想外に低い毒性を示すことを特徴とし（例えば、表７を参照）、それ故、異なる生物において十分許容される。それらのオリゴヌクレオチドは、生物において、適切な分配を示し、最高濃度が、腎臓、肝臓、皮膚、および脾臓において測定される。

本発明は、オリゴヌクレオチドの配列の特異的選択およびヌクレオチドの修飾により、各ＴＧＦ−ベータ、特にＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２および／またはＴＧＦ−ベータ３の発現を減少および阻害するのに高効率な多くのオリゴヌクレオチドを提供する。以下の表１は、本発明（修飾ヌクレオシドは、太字で示されている）による多数の好適な修飾オリゴヌクレオチドを示す。各オリゴヌクレオチドはＡＳＰＨとヌクレオシドの特定の配列および修飾によって規定された番号で次のように規定されている。

表１は、ヌクレオチドの修飾と同様に本発明の選択されたオリゴヌクレオチドの核酸配列を表し、ＬＮＡ４＋４は、オリゴヌクレオチドの５’−および３’−末端に４ｘＬＮＡが修飾されたことを意味し、ＬＮＡ４＋３は、オリゴヌクレオチドの５’−末端に４ｘＬＮＡおよびオリゴヌクレオチドの３’−末端に３ｘＬＮＡが修飾されたことを意味し、ＬＮＡ３＋４は、オリゴヌクレオチドの５’−末端に３ｘＬＮＡおよびオリゴヌクレオチドの３’−末端に４ｘＬＮＡが修飾されたことを意味し、ＬＮＡ３＋３は、オリゴヌクレオチドの５’−末端および３’−末端に３ｘＬＮＡが修飾されたことを意味し、ＬＮＡ３＋２は、オリゴヌクレオチドの５’−末端に３ｘＬＮＡおよびオリゴヌクレオチドの３’−末端に２ｘＬＮＡが修飾されたことを意味し、ＬＮＡ２＋３は、オリゴヌクレオチドの５’−末端に２ｘＬＮＡおよびオリゴヌクレオチドの３’−末端で３ｘＬＮＡが修飾されたことを意味し、ＬＮＡ２＋２は、オリゴヌクレオチドの５’−末端および３’−末端に２ｘＬＮＡが修飾されたことを意味する。あるいは、いくつかのオリゴヌクレオチドは、ＥＮＡ４＋４、すなわち、オリゴヌクレオチドの５’−末端および３’−末端に４ｘＥＮＡが修飾されたもの、または、ＥＮＡ３＋３、すなわち、オリゴヌクレオチドの５’−末端および３’−末端に３ｘＥＮＡが修飾されたものを含む。さらに、オリゴヌクレオチドは、２’Ｏ−メチル４＋４であって、オリゴヌクレオチドの５’−末端および３’−末端に４ｘ２’Ｏ−メチル修飾ヌクレオチドを含むもの、または、２’フルオロ４＋４であって、５’−末端および３’−末端に４ｘ２’フルオロ修飾ヌクレオチドを含むもの、を含む。ＬＮＡ３＋ＴＥＧを含むオリゴヌクレオチドは、オリゴヌクレオチドの５’−末端に３ｘＬＮＡおよびオリゴヌクレオチドの３’−末端に１つのトリエチレングリコール（ＴＥＧ）を含む。いくつかのオリゴヌクレオチドは、一列には配置されていないが、例えば、３ＬＮＡ＋９Ｎ＋１ＬＮＡ＋１Ｎ＋２ＬＮＡ、１ＬＮＡ＋１Ｎ＋２ＬＮＡ＋８Ｎ＋１ＬＮＡ＋１Ｎ＋１ＬＮＡ、２ＬＮＡ＋８Ｎ＋２ＬＮＡ＋１Ｎ＋１ＬＮＡ、２ＬＮＡ＋９Ｎ＋１ＬＮＡ＋１Ｎ＋１ＬＮＡ、２ＬＮＡ＋８Ｎ＋１ＬＮＡ＋２Ｎ＋１ＬＮＡ、３ＬＮＡ＋８Ｎ＋１ＬＮＡ＋１Ｎ＋１ＬＮＡ、３ＬＮＡ＋８Ｎ＋１ＬＮＡ＋１Ｎ＋１ＬＮＡ、２ＬＮＡ＋９Ｎ＋１ＬＮＡ＋１Ｎ＋１ＬＮＡ、または２ＬＮＡ＋８Ｎ＋２ＬＮＡ＋１Ｎ＋１ＬＮＡ配列を有する未ロックヌクレオシドによって分けられたＬＮＡを含み、ここで「Ｎ」は、ロックされた修飾のないヌクレオシドである。数字と組み合わされた「ＡＳＰＨ」は、表１に記載されているように異なるオリゴヌクレオチドおよびそれらの異なる修飾を表す。これらの修飾オリゴヌクレオチドは、例えば実施例に示す実験において試験された。本発明のアンチセンスオリゴヌクレオチドは、例えば、同じオリゴヌクレオチドを表すＡＳＰＨ４７、ＡＳＰＨ００４７、ＡＳＰＨ＿４７またはＡＳＰＨ＿００４７のように異なって記述され得る。

表２には、ＡＳＰＨ４７（ＳＥＱＩＤＮＯ．４９）の配列および／またはＬＮＡパターンのバリエーションである、本発明のさらに好ましいオリゴヌクレオチドが示されている。

表２の修飾の説明は、表１で表記された説明に対応し、加えて、ＬＮＡヌクレオシドは、太字で示されている配列に示され、トリエチレングリコールは表２ではＴＥＧと略記する。

明確かつ簡潔な説明の目的のために、特徴は、同じまたは別個の実施形態の一部として本明細書中に記載されているが、本発明の範囲は、記載した特徴の全部又は一部の組合せを有する実施形態を含み得ると理解される。

しかしながら、以下の実施例は、同時に、そのいずれの限定を構成することなく本発明をさらに描くために仕えうる。対照的に、本発明の範囲は、本明細書を読んだ後、本発明の真意から逸脱することなく当業者にそれらが提案され得るような様々な他の実施形態、改変例、およびそれらの同等物に言及していることは明確に理解される。

実施例
以下の実施例において、表１および表２で挙げられたオリゴヌクレオチドの影響は、それぞれＴＧＦ−ベータ１および／またはＴＧＦ−ベータ２発現の減少および阻害の観点から試験されている。ＳＥＱＩＤＮＯ．１４４（Ｔ−ＬＮＡ：ＣＧＧＣＡＴＧＴＣＴＡＴＴＴＴＧＴＡ、５’−末端および３’−末端の３ｘヌクレオチドはＬＮＡである）およびＳＥＱＩＤＮＯ．１４５（ｓｃｒ−ＬＮＡ：ＣＧＴＴＴＡＧＧＣＴＡＴＧＴＡＣＴＴ、５’−末端および３’−末端の３ｘヌクレオチドはＬＮＡのある）が対照オリゴヌクレオチドとして使用され、ＳＥＱＩＤＮＯ．１４５（陰性対照）はＳＥＱＩＤＮＯ．１４４（陽性対照）のスクランブル形式である。細胞は、トランスフェクション剤（例えば、リポフェクタミン）の存在下、または任意のトランスフェクション剤の非存在下（ジムノティックトランスフェクションまたはアンアシステッドトランスフェクションまたはジムノティックデリバリー）のいずれかでトランスフェクションされる。ジムノティックトランスフェクションの場合のように、細胞へのオリゴヌクレオチドのエントリーがオリゴヌクレオチドおよび細胞の相互作用にもっぱら依存し、化合物はエントリーをサポートせず、ジムノティックトランスフェクションは、インビボでの実験的な設定のより良い条件を反映している。

実施例１
トランスフェクション剤の存在下で、ヒトＡ１７２神経膠腫細胞をそれぞれ、１０ｎＭのＡＳＰＨ０１、ＡＳＰＨ０２、ＡＳＰＨ０３、ＡＳＰＨ０４、ＡＳＰＨ０５、ＡＳＰＨ０６、ＡＳＰＨ０７、ＡＳＰＨ０８、ＡＳＰＨ０９、ＡＳＰＨ１０、ＡＳＰＨ１１、ＡＳＰＨ１２、ＡＳＰＨ１３、ＡＳＰＨ１４、ＡＳＰＨ１５、ＡＳＰＨ１６、ＡＳＰＨ１７、ＡＳＰＨ１８、ＡＳＰＨ１９、ＡＳＰＨ２０、ＡＳＰＨ２１、ＡＳＰＨ２２、ＡＳＰＨ２４、ＡＳＰＨ２５、ＡＳＰＨ２６、ＡＳＰＨ２７、ＡＳＰＨ２９、ＡＳＰＨ３０、ＡＳＰＨ３１、ＡＳＰＨ３２、ＡＳＰＨ３３、ＡＳＰＨ３４、ＡＳＰＨ３５、ＡＳＰＨ３６、ＡＳＰＨ３７、ＡＳＰＨ３８、ＡＳＰＨ３９、ＡＳＰＨ４０、ＡＳＰＨ４１、ＡＳＰＨ４２、ＡＳＰＨ４３、ＡＳＰＨ４４、ＡＳＰＨ４５、ＡＳＰＨ４６、ＡＳＰＨ４７、ＡＳＰＨ４８、ＡＳＰＨ４９、ＡＳＰＨ５０、ＡＳＰＨ５１、ＡＳＰＨ５２、ＡＳＰＨ５３、およびＡＳＰＨ５４（図５ａを参照）；ＡＳＰＨ３６、ＡＳＰＨ６０、ＡＳＰＨ６１、ＡＳＰＨ６２、ＡＳＰＨ６３、ＡＳＰＨ６４、ＡＳＰＨ６５、ＡＳＰＨ６６、ＡＳＰＨ６７、ＡＳＰＨ６８、ＡＳＰＨ６９、ＡＳＰＨ７０、ＡＳＰＨ７１、ＡＳＰＨ７２、ＡＳＰＨ７３、ＡＳＰＨ７４、ＡＳＰＨ７５、ＡＳＰＨ７６、ＡＳＰＨ７７、ＡＳＰＨ７８、ＡＳＰＨ７９、ＡＳＰＨ８０、ＡＳＰＨ８１、ＡＳＰＨ８２、ＡＳＰＨ８３、ＡＳＰＨ８４、ＡＳＰＨ８５、ＡＳＰＨ８６、ＡＳＰＨ８７、ＡＳＰＨ８８、ＡＳＰＨ８９、ＡＳＰＨ９０、ＡＳＰＨ９１、ＡＳＰＨ９２、ＡＳＰＨ９３、ＡＳＰＨ９４、ＡＳＰＨ９５、ＡＳＰＨ９６、ＡＳＰＨ９７、ＡＳＰＨ９８、ＡＳＰＨ９９、ＡＳＰＨ１００、ＡＳＰＨ１０１、ＡＳＰＨ１０２、ＡＳＰＨ１０３、ＡＳＰＨ１０４、ＡＳＰＨ１０５、ＡＳＰＨ１０６、ＡＳＰＨ１０７、ＡＳＰＨ１０８、ＡＳＰＨ１０９、ＡＳＰＨ１１０、ＡＳＰＨ１１１、ＡＳＰＨ１１２、ＡＳＰＨ１１３、ＡＳＰＨ１１４、ＡＳＰＨ１１５、ＡＳＰＨ１１６、ＡＳＰＨ１１７、ＡＳＰＨ１１８、およびＡＳＰＨ１１９（図５ｂを参照）、またはＡＳＰＨ３６、ＡＳＰＨ７１、ＡＳＰＨ７３、ＡＳＰＨ１２０、ＡＳＰＨ１２１、ＡＳＰＨ１２２、ＡＳＰＨ１２３、ＡＳＰＨ１２４、ＡＳＰＨ１２５、ＡＳＰＨ１２６、ＡＳＰＨ１２７、ＡＳＰＨ１２８、ＡＳＰＨ１２９、ＡＳＰＨ１３０、ＡＳＰＨ１３１、ＡＳＰＨ１３２、ＡＳＰＨ１３３、ＡＳＰＨ１３４、ＡＳＰＨ１３５、ＡＳＰＨ１３６、ＡＳＰＨ１３７、ＡＳＰＨ１３８、ＡＳＰＨ１３９、ＡＳＰＨ１４０、ＡＳＰＨ１４１、ＡＳＰＨ１４２、ＡＳＰＨ１４３、ＡＳＰＨ１４５、ＡＳＰＨ１４６、ＡＳＰＨ１４７、ＡＳＰＨ１４８、ＡＳＰＨ１４９、ＡＳＰＨ１５０、ＡＳＰＨ１５１、ＡＳＰＨ１５２、ＡＳＰＨ１５３、ＡＳＰＨ１５４、ＡＳＰＨ１５５、ＡＳＰＨ１５７、ＡＳＰＨ１５８、ＡＳＰＨ１６０、ＡＳＰＨ１６１、ＡＳＰＨ１６２、ＡＳＰＨ１６３、ＡＳＰＨ１６４、ＡＳＰＨ１６５、ＡＳＰＨ１６６、ＡＳＰＨ１６７、ＡＳＰＨ１６８、ＡＳＰＨ１６９、ＡＳＰＨ１７０、ＡＳＰＨ１７１、ＡＳＰＨ１７２、ＡＳＰＨ１７３、ＡＳＰＨ１７４、ＡＳＰＨ１７５、ＡＳＰＨ１７６、ＡＳＰＨ１７７、ＡＳＰＨ１７８、ＡＳＰＨ１７９、ＡＳＰＨ１８０、ＡＳＰＨ１８１、ＡＳＰＨ１８２、およびＡＳＰＨ１８３（図５ｃを参照）、並びにＳＥＱＩＤＮＯ．１４４および１４５の対照でトランスフェクトした。ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの発現は、トランスフェクションから２４時間後に決定された。ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの発現の有意な減少を図５ａ）から図５ｃ）に示す。選択的ＴＧＦ−ベータ２オリゴヌクレオチドがＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡ発現を有意に阻害するのに対し、デュアルＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２反応性オリゴヌクレオチドＡＳＰＨ０ｌ、ＡＳＰＨ０２、ＡＳＰＨ０３、ＡＳＰＨ０４、ＡＳＰＨ０５、ＡＳＰＨ０６、ＡＳＰＨ０７、ＡＳＰＨ０８およびＡＳＰＨ０９は、ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの両方の発現の有意な減少を示す。

実施例２
トランスフェクション剤の存在下で、ヒトＰａｎｃ−１膵臓癌細胞をそれぞれ、１０ｎＭのＡＳＰＨ０ｌ、ＡＳＰＨ０２、ＡＳＰＨ０３、ＡＳＰＨ０４、ＡＳＰＨ０５、ＡＳＰＨ０６、ＡＳＰＨ０７、ＡＳＰＨ０８、ＡＳＰＨ１２、ＡＳＰＨ１４、ＡＳＰＨ１７、ＡＳＰＨ１８、ＡＳＰＨ２０、ＡＳＰＨ２１、ＡＳＰＨ２２、ＡＳＰＨ２４、ＡＳＰＨ２５、ＡＳＰＨ２６、ＡＳＰＨ２７、ＡＳＰＨ２９、ＡＳＰＨ３０、ＡＳＰＨ３１、ＡＳＰＨ３２、ＡＳＰＨ３３、ＡＳＰＨ３５、ＡＳＰＨ３６、ＡＳＰＨ３７、ＡＳＰＨ３８、ＡＳＰＨ３９、ＡＳＰＨ４０、ＡＳＰＨ４１、ＡＳＰＨ４２、ＡＳＰＨ４３、ＡＳＰＨ４４、ＡＳＰＨ４５、ＡＳＰＨ４６、ＡＳＰＨ４７、ＡＳＰＨ４８、ＡＳＰＨ４９、ＡＳＰＨ５０、ＡＳＰＨ５１、およびＡＳＰＨ５２（図６ａを参照）、ＡＳＰＨ３６、ＡＳＰＨ６０、ＡＳＰＨ６１、ＡＳＰＨ６２、ＡＳＰＨ６３、ＡＳＰＨ６４、ＡＳＰＨ６５、ＡＳＰＨ６６、ＡＳＰＨ６７、ＡＳＰＨ６８、ＡＳＰＨ６９、ＡＳＰＨ７０、ＡＳＰＨ７１、ＡＳＰＨ７２、ＡＳＰＨ７３、ＡＳＰＨ７４、ＡＳＰＨ７５、ＡＳＰＨ７６、ＡＳＰＨ７７、ＡＳＰＨ７８、ＡＳＰＨ７９、ＡＳＰＨ８０、ＡＳＰＨ８１、ＡＳＰＨ８２、ＡＳＰＨ８３、ＡＳＰＨ８４、ＡＳＰＨ８５、ＡＳＰＨ８６、ＡＳＰＨ８７、ＡＳＰＨ８８、ＡＳＰＨ８９、ＡＳＰＨ９０、ＡＳＰＨ９１、ＡＳＰＨ９２、ＡＳＰＨ９３、ＡＳＰＨ９４、ＡＳＰＨ９６、ＡＳＰＨ９７、ＡＳＰＨ９８、ＡＳＰＨ９９、ＡＳＰＨ１００、ＡＳＰＨ１０１、ＡＳＰＨ１０２、ＡＳＰＨ１０３、ＡＳＰＨ１０４、ＡＳＰＨ１０５、ＡＳＰＨ１０６、ＡＳＰＨ１０７、ＡＳＰＨ１０８、ＡＳＰＨ１０９、ＡＳＰＨ１１０、ＡＳＰＨ１１１、ＡＳＰＨ１１２、ＡＳＰＨ１１３、ＡＳＰＨ１１４、ＡＳＰＨ１１５、ＡＳＰＨ１１６、ＡＳＰＨ１１７、ＡＳＰＨ１１８、およびＡＳＰＨ１１９（図６ｂを参照）、またはＡＳＰＨ３６、ＡＳＰＨ７１、ＡＳＰＨ７３、ＡＳＰＨ１２０、ＡＳＰＨ１２１、ＡＳＰＨ１２２、ＡＳＰＨ１２７、ＡＳＰＨ１２８、ＡＳＰＨ１２９、ＡＳＰＨ１３０、ＡＳＰＨ１３１、ＡＳＰＨ１３２、ＡＳＰＨ１３３、ＡＳＰＨ１３５、ＡＳＰＨ１３６、ＡＳＰＨ１３７、ＡＳＰＨ１３９、ＡＳＰＨ１４１、ＡＳＰＨ１４２、ＡＳＰＨ１４３、ＡＳＰＨ１４５、ＡＳＰＨ１４６、ＡＳＰＨ１４７、ＡＳＰＨ１４９、ＡＳＰＨ１５０、ＡＳＰＨ１５１、ＡＳＰＨ１５２、ＡＳＰＨ１５３、ＡＳＰＨ１５４、ＡＳＰＨ１５５、ＡＳＰＨ１５７、ＡＳＰＨ１６０、ＡＳＰＨ１６１、ＡＳＰＨ１６２、ＡＳＰＨ１６３、ＡＳＰＨ１６４、ＡＳＰＨ１６５、ＡＳＰＨ１６６、ＡＳＰＨ１６７、ＡＳＰＨ１６８、ＡＳＰＨ１６９、ＡＳＰＨ１７０、ＡＳＰＨ１７１、ＡＳＰＨ１７２、ＡＳＰＨ１７３、ＡＳＰＨ１７４、ＡＳＰＨ１７５、ＡＳＰＨ１７６、ＡＳＰＨ１７７、ＡＳＰＨ１７８、ＡＳＰＨ１７９、ＡＳＰＨ１８０、ＡＳＰＨ１８１、ＡＳＰＨ１８２、およびＡＳＰＨ１８３（図６ｃを参照）、並びにＳＥＱＩＤＮＯ．１４４および１４５の対照でトランスフェクトした。ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの発現は、トランスフェクションから２４時間後に決定された。ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの発現の有意な減少を図６ａ）から図６ｃ）に示す。選択的ＴＧＦ−ベータ２オリゴヌクレオチドがＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡ発現を有意に阻害するのに対し、デュアルＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２反応性オリゴヌクレオチドＡＳＰＨ０ｌ、ＡＳＰＨ０２、ＡＳＰＨ０３、ＡＳＰＨ０４、ＡＳＰＨ０５、ＡＳＰＨ０６、ＡＳＰＨ０７およびＡＳＰＨ０８は、ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの両方の発現の有意な減少を示す。

実施例３
さらなる実験において、ＡＳＰＨ０ｌ、ＡＳＰＨ０３、ＡＳＰＨ０５、ＡＳＰＨ１７、ＡＳＰＨ１８、ＡＳＰＨ２２、ＡＳＰＨ２６、ＡＳＰＨ２７、ＡＳＰＨ３３、ＡＳＰＨ３６、ＡＳＰＨ３７、ＡＳＰＨ４１、ＡＳＰＨ４２、ＡＳＰＨ４５、ＡＳＰＨ４６、ＡＳＰＨ４７、ＡＳＰＨ４８、ＡＳＰＨ４９、ＡＳＰＨ６４、ＡＳＰＨ６５、ＡＳＰＨ６６、ＡＳＰＨ６９、ＡＳＰＨ７１、ＡＳＰＨ８０、ＡＳＰＨ８２、ＡＳＰＨ８８、ＡＳＰＨ８９、ＡＳＰＨ９０、ＡＳＰＨ９８、ＡＳＰＨ９９、ＡＳＰＨ１０２、ＡＳＰＨ１０５、ＡＳＰＨ１１５、ＡＳＰＨ１２１、ＡＳＰＨ１４０、ＡＳＰＨ１５３、ＡＳＰＨ１６５、ＡＳＰＨ１７１、ＡＳＰＨ１７８、ＡＳＰＨ１８１、ＡＳＰＨ１８４、ＡＳＰＨ１８５、ＡＳＰＨ１８６、ＡＳＰＨ１８７、ＡＳＰＨ１８８、ＡＳＰＨ１８９、並びにＳＥＱＩＤＮＯ．１４４および１４５の対照の阻害効果を、それぞれ、Ａ１７２細胞において試験した。トランスフェクション剤の存在下で、Ａ１７２細胞を、それぞれ、２０ｎＭ、４ｎＭ、０．８ｎＭ、０．１６ｎＭ、０．０４ｎＭの用量でこれらの修飾オリゴヌクレオチドでトランスフェクトした。残りのＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡは、トランスフェクションから２４時間後に測定された。ＴＧＦ−ベータ２の値は、ＧＡＰＤＨに対して標準化され、ＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの５０％の減少（＝ＩＣ_５０値）をもたらすオリゴヌクレオチド濃度が算出された。すべてのＩＣ_５０値は、ＡＳＰＨ＿０３６（ＡＳＰＨ０３６）のＩＣ_５０値が０．３３ｎＭであることを参照し、結果は、表３にＡＳＰＨ＿０３６のＩＣ_５０値の何倍差として示されている。

すべての修飾オリゴヌクレオチドは、ＳＥＱＩＤＮＯ．１４４の対照オリゴヌクレオチドに対するＩＣ_５０よりも著しく低いナノモルからピコモル範囲のＩＣ_５０を示す。；ＳＥＱＩＤＮＯ．１４５の対照のＩＣ_５０は、計算できなかった。

実施例４
トランスフェクション剤（ジムノティックトランスフェクション）の非存在下で、Ｐａｎｃ−１細胞を、３．３μＭの各ＡＳＰＨ１７、ＡＳＰＨ１８、ＡＳＰＨ２２、ＡＳＰＨ２５、ＡＳＰＨ３３、ＡＳＰＨ３５、ＡＳＰＨ３６、ＡＳＰＨ４１、ＡＳＰＨ４２、ＡＳＰＨ４５、ＡＳＰＨ４６、ＡＳＰＨ４７、ＡＳＰＨ４８、ＡＳＰＨ４９、ＡＳＰＨ６５、ＡＳＰＨ６６、ＡＳＰＨ６７、ＡＳＰＨ６９、ＡＳＰＨ７１、ＡＳＰＨ７９、ＡＳＰＨ８０、ＡＳＰＨ８２、ＡＳＰＨ８８、ＡＳＰＨ８９、ＡＳＰＨ９０、ＡＳＰＨ９１、ＡＳＰＨ９８、ＡＳＰＨ９９、ＡＳＰＨ１０２、ＡＳＰＨ１０５、ＡＳＰＨ１１１、ＡＳＰＨ１１５、ＡＳＰＨ１１９、ＡＳＰＨ１２１、ＡＳＰＨ１３９、ＡＳＰＨ１４０、ＡＳＰＨ１４６、ＡＳＰＨ１５１、ＡＳＰＨ１５３、ＡＳＰＨ１６５、ＡＳＰＨ１７１、ＡＳＰＨ１７２、ＡＳＰＨ１７６、ＡＳＰＨ１７８、ＡＳＰＨ１８０およびＡＳＰＨ１８３、またはＳＥＱＩＤＮＯ．１４４および１４５の対照でそれぞれ処理した。ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの発現に対する修飾オリゴヌクレオチドの阻害効果はそれぞれ、処理開始から２４時間後に決定された。ジムノティックトランスフェクション実験条件下で、オリゴヌクレオチドは細胞に入り、ＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの発現を強く阻害する。実験結果を図７に示す。

実施例５
さらなる実験において、トランスフェクション剤（ジムノティックトランスフェクションまたはジムノティックデリバリー）の非存在下で、Ｐａｎｃ−１細胞は、１０μＭの修飾オリゴヌクレオチドＡＳＰＨ０１、ＡＳＰＨ０３、ＡＳＰＨ０５、ＡＳＰＨ０９、ＡＳＰＨ１７、ＡＳＰＨ１８、ＡＳＰＨ２２、ＡＳＰＨ３５、ＡＳＰＨ３６、ＡＳＰＨ３７、ＡＳＰＨ４１、ＡＳＰＨ４５、ＡＳＰＨ４６、ＡＳＰＨ４７、およびＡＳＰＨ４８、またはＳＥＱＩＤＮＯ．１４４および１４５の対照でそれぞれトランスフェクトした。オリゴヌクレオチド含有培養培地が変更された後、２日間細胞にオリゴヌクレオチドが追加され、さらに２日間インキュベーションが行われた。ＴＧＦ−ベータ１ｍＲＮＡ（図８ａ）参照）およびＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの発現（図８ｂ参照）を測定し、ＨＰＲＴｌ（Ｈｙｐｏｘａｎｔｈｉｎ−Ｐｈｏｓｐｈｏｒｉｂｏｓｙｌ−Ｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ１）対して正規化された。細胞上清を、ＥＬＩＳＡによって、ＴＧＦ−ベータ１（図９ａ参照）およびＴＧＦ−ベータ２（図９ｂ参照）タンパク質について分析した。ジムノティックデリバリー実験条件下では、二重反応性オリゴヌクレオチドはＡＳＰＨ０１、ＡＳＰＨ０３、ＡＳＰＨ０５、およびＡＳＰＨ０９が、タンパク質レベルと同様にｍＲＮＡについてＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２の発現を有意に阻害する。すべての他のオリゴヌクレオチドは、ｍＲＮＡおよびタンパク質レベルについてＴＧＦ−ベータ２の発現を有意に阻害する。

実施例６
他の実験において、本発明の修飾ヌクレオチド阻害効果の用量依存が試験された。トランスフェクション剤を用いずに、Ｐａｎｃ−１細胞を、１５μＭ、１０μＭ、７．５μＭ、５μＭ、２．５μＭ、１．２５μＭ、または０．６２５μＭのＡＳＰＨ０５若しくはＡＳＰＨ３６、またはＳＥＱＩＤＮＯ．１４４および１４５の対照で処理した。２日間細胞にオリゴヌクレオチドが追加された。その後、オリゴヌクレオチド含有培養培地が変更され、さらに２日間細胞のインキュベーションが行われた。その後（総処理時間：４日）、オリゴヌクレオチド濃度に依存するＴＧＦ−ベータ１（図１０ａ参照）およびＴＧＦ−ベータ２（図１０ｂ参照）ｍＲＮＡの発現が測定された。デュアルＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２反応性オリゴヌクレオチドＡＳＰＨ０５は、ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡ発現の両方に対して著しく用量に依存した阻害を示し、そして用量依存的にＡＳＰＨ３６はＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの発現を特異的に阻害する。

実施例７
マウスＳＭＡ−５６０の神経膠腫細胞を、トランスフェクション剤の存在下で、１０ｎＭのＡＳＰＨ０１、ＡＳＰＨ０３、ＡＳＰＨ０５、ＡＳＰＨ０９、ＡＳＰＨ１７、ＡＳＰＨ１８、ＡＳＰＨ２２、ＡＳＰＨ２６、ＡＳＰＨ３６、ＡＳＰＨ３７、ＡＳＰＨ４１、ＡＳＰＨ４２、ＡＳＰＨ４５、ＡＳＰＨ４６、ＡＳＰＨ４７、若しくはＡＳＰＨ４８、またはＳＥＱＩＤＮＯ．１４４および１４５の対照でそれぞれトランスフェクトした。トランスフェクションから２４時間後、ＴＧＦ−ベータ１（白カラム）およびＴＧＦ−ベータ２（黒カラム）の発現の阻害が決定された。デュアルＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２反応性オリゴヌクレオチドＡＳＰＨ０９は、マウスＴＧＦ−ベータ１ｍＲＮＡの発現を阻害し、試験された他のオリゴヌクレオチドは、マウスＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの発現を強く阻害する。結果は、図１１に示されている。

実施例８
雌の無胸腺ヌードマウス（ＨＳＤ：無胸腺ヌード−Ｆｏｘｎ１^ｎｕ）を、１４ｍｇ／ｋｇまたは５０ｍｇ／ｋｇのオリゴヌクレオチドＡＳＰＨ０１、ＡＳＰＨ０３、ＡＳＰＨ０５、ＡＳＰＨ１７、ＡＳＰＨ２２、ＡＳＰＨ３７、ＡＳＰＨ４１、ＡＳＰＨ４５、ＡＳＰＨ４６、ＡＳＰＨ４７またはＡＳＰＨ４８およびＳＥＱＩＤＮＯ．１４５の対照または生理食塩水を皮下注射により連続５日間連続して処理した。最後の処理日の後に、マウスを屠殺した。マウスＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡを、腎臓組織溶解物中で定量した。図１２において、ＧＡＰＤＨｍＲＮＡに対するＴＧＦ−ベータ２の比率を表すデータはボックスプロットで表され、中央値と最小および最大値が表されている（ＡＳＰＨ４６群ｎ＝３を除いて、ｎ＝４でデータは表されている）。試験した全てのオリゴヌクレオチドは、これらのマウスの腎臓においてＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの発現を阻害した。

実施例９
他の実験において、トランスフェクション剤（ジムノティックトランスフェクション）の非存在下で、Ｐａｎｃ−１細胞を、１０μΜの修飾オリゴヌクレオチドＡＳＰＨ０９またはＳＥＱＩＤＮＯ．１４５の対照でトランスフェクトした。細胞に２日間オリゴヌクレオチドが追加され、その後培養培地を含有するオリゴヌクレオチドが変更され、さらに２日間インキュベーションを行った。ＴＧＦ−ベータ３ｍＲＮＡの発現（図１３参照）を測定し、ＨＰＲＴ１（ヒポキサンチンホスホリボシルトランスフェラーゼ１）に対して正規化した。ジムノティックトランスフェクション実験条件下で、三重反応性オリゴヌクレオチドＡＳＰＨ０９がＴＧＦ−ベータ３ｍＲＮＡの発現を有意にに阻害する。

実施例１０
トランスフェクション剤（ジムノティックトランスフェクション）の非存在下で、Ｐａｎｃ−１細胞を、１０μＭ、３．３μＭ、１．１μＭ、０．３７μＭおよび０．１２μＭのＡＳＰＨ０３、ＡＳＰＨ３６、ＡＳＰＨ４５、ＡＳＰＨ４７、ＡＳＰＨ６５、ＡＳＰＨ６９、ＡＳＰＨ７１、ＡＳＰＨ８０、ＡＳＰＨ１１５、ＡＳＰＨ１２１、ＡＳＰＨ１５３、ＡＳＰＨ１８５およびＡＳＰＨ１８９でそれぞれ、処理した。ＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの発現に対する修飾オリゴヌクレオチドの阻害効果は、処理開始から７２時間後に決定された。ＴＧＦ−ベータ２の値は、ＧＡＰＤＨに対して正規化し、ＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの５０％の減少（＝ＩＣ_５０値）をもたらすオリゴヌクレオチド濃度を算出した。ジムノティックトランスフェクション実験条件下で、オリゴヌクレオチドは細胞に入り、ＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの発現を強く阻害する。実験の結果を表４に示す。

すべての修飾オリゴヌクレオチドは、それらがトランスフェクション剤を必要とせずに非常に高い効力を有することを示しつつ、低マイクロモルまたはサブマイクロモル（マイクロモルの下のオーダー）の範囲のＩＣ_５０を示している。

実施例１１
Ｐａｎｃ−１細胞を、トランスフェクション剤（ジムノティックトランスフェクション）の非存在下で１０μＭ、３．３μＭ、１．１μＭ、０．３７μＭおよび０．１２μＭのＡＳＰＨ４７、ＡＳＰＨ１９０、ＡＳＰＨ１９１、ＡＳＰＨ１９２およびＡＳＰＨ１９３で処理した。ＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの発現に対する修飾オリゴヌクレオチドの阻害効果は、処理開始から７２時間後に決定された。ＴＧＦ−ベータ２の値は、ＧＡＰＤＨに対して正規化し、ＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの５０％の減少（＝ＩＣ_５０値）をもたらすオリゴヌクレオチド濃度を算出した。ジムノティックトランスフェクション実験条件下で、オリゴヌクレオチドは細胞に入り、ＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの発現を強く阻害する。実験の結果を表５に示す。

すべての修飾オリゴヌクレオチドは、それらがトランスフェクション剤を必要とせずに非常に高い効力を有することを示す、サブマイクロモルから低サブマイクロモルの範囲のＩＣ_５０を示している。

実施例１２
ヒトＰａｎｃ−１膵臓癌細胞を、トランスフェクション剤の存在下で、１０ｎＭのＡＳＰＨ０５、ＡＳＰＨ０９、ＡＳＰＨ１０００、ＡＳＰＨ１００１、ＡＳＰＨ１００２、ＡＳＰＨ１００３、ＡＳＰＨ１００４、ＡＳＰＨ１００５、ＡＳＰＨ１００６、ＡＳＰＨ１００７、ＡＳＰＨ１００８、ＡＳＰＨ１００９、ＡＳＰＨ１０１０、ＡＳＰＨ１０ｌｌ、ＡＳＰＨ１０１２、ＡＳＰＨ１０１３、ＡＳＰＨ１０１４、ＡＳＰＨ１０１５、ＡＳＰＨ１０１６、ＡＳＰＨ１０１７、ＡＳＰＨ１０１８、ＡＳＰＨ１０１９、ＡＳＰＨ１０２０、ＡＳＰＨ１０２１、ＡＳＰＨ１０２２、ＡＳＰＨ１０２３、ＡＳＰＨ１０２４、ＡＳＰＨ１０２６、ＡＳＰＨ１０２７、ＡＳＰＨ１０２８、ＡＳＰＨ１０２９、ＡＳＰＨ１０３０、ＡＳＰＨ１０３１、ＡＳＰＨ１０３２、ＡＳＰＨ１０３３、ＡＳＰＨ１０３４、ＡＳＰＨ１０３５、ＡＳＰＨ１０３６、ＡＳＰＨ１０３８、ＡＳＰＨ１０３９、ＡＳＰＨ１０４０、ＡＳＰＨ１０４１、ＡＳＰＨ１０４２、ＡＳＰＨ１０４３、ＡＳＰＨ１０４４、ＡＳＰＨ１０４５、ＡＳＰＨ１０４６、ＡＳＰＨ１０４７、ＡＳＰＨ１０４８、ＡＳＰＨ１０４９、ＡＳＰＨ１０５０、ＡＳＰＨ１０５１、ＡＳＰＨ１０５２、ＡＳＰＨ１０５４、ＡＳＰＨ１０５５、ＡＳＰＨ１０５６、ＡＳＰＨ１０５７、ＡＳＰＨ１０５８、ＡＳＰＨ１０５９、ＡＳＰＨ１０６０、またはＡＳＰＨ１０６１（図１４参照）、およびＳＥＱＩＤＮＯ．１４５の対照でトランスフェクトした。トランスフェクションから２４時間後にＴＧＦ−ベータ１ｍＲＮＡの発現を決定した。Ｐａｎｃ−１細胞のＴＧＦ−ベータ１の発現の有意な減少を、図１４に示す。

実施例１３
マウスＳＭＡ−５６０神経膠腫細胞を、トランスフェクション剤の存在下で、１０ｎＭのＡＳＰＨ０９、ＡＳＰＨ１０００、ＡＳＰＨ１００１、ＡＳＰＨ１００２、ＡＳＰＨ１００３、ＡＳＰＨ１００４、ＡＳＰＨ１００５、ＡＳＰＨ１００６、ＡＳＰＨ１００７、ＡＳＰＨ１００８、ＡＳＰＨ１００９、ＡＳＰＨ１０１０、ＡＳＰＨ１０１１、ＡＳＰＨ１０１２、ＡＳＰＨ１０１３、ＡＳＰＨ１０１４、ＡＳＰＨ１０１５、ＡＳＰＨ１０１６、ＡＳＰＨ１０１７、ＡＳＰＨ１０１８、ＡＳＰＨ１０１９、ＡＳＰＨ１０２０、ＡＳＰＨ１０２１、ＡＳＰＨ１０２２、ＡＳＰＨ１０２３、ＡＳＰＨ１０２４、ＡＳＰＨ１０２６、ＡＳＰＨ１０２７、ＡＳＰＨ１０２８、ＡＳＰＨ１０２９、ＡＳＰＨ１０３０、ＡＳＰＨ１０３１、ＡＳＰＨ１０３２、ＡＳＰＨ１０３３、ＡＳＰＨ１０３４、ＡＳＰＨ１０３５、ＡＳＰＨ１０３６、ＡＳＰＨ１０３７、ＡＳＰＨ１０３８、ＡＳＰＨ１０３９、ＡＳＰＨ１０４０、ＡＳＰＨ１０４１、ＡＳＰＨ１０４２、ＡＳＰＨ１０４３、ＡＳＰＨ１０４４、ＡＳＰＨ１０４５、ＡＳＰＨ１０４６、ＡＳＰＨ１０４７、ＡＳＰＨ１０４８、ＡＳＰＨ１０４９、ＡＳＰＨ１０５０、ＡＳＰＨ１０５１、ＡＳＰＨ１０５２、ＡＳＰＨ１０５３、ＡＳＰＨ１０５４、ＡＳＰＨ１０５５、ＡＳＰＨ１０５６、ＡＳＰＨ１０５７、ＡＳＰＨ１０５８、ＡＳＰＨ１０５９、ＡＳＰＨ１０６０、ＡＳＰＨ１０６１、またはＡＳＰＨ１０６２（図１５参照）およびＳＥＱＩＤＮＯ．１４５の対照でトランスフェクトした。トランスフェクションから２４時間後にＴＧＦ−ベータ１ｍＲＮＡの発現を決定した。ＳＭＡ−５６０細胞のＴＧＦ−ベータ１の発現の有意な減少を図１５に示す。

実施例１４
これらの実験では、ヒトＡ１７２神経膠腫細胞を、トランスフェクション剤の存在下で、１０ｎＭのＡＳＰＨ０５、ＡＳＰＨ０９、ＡＳＰＨ１０００、ＡＳＰＨ１００１、ＡＳＰＨ１００２、ＡＳＰＨ１００４、ＡＳＰＨ１００５、ＡＳＰＨ１００６、ＡＳＰＨ１００７、ＡＳＰＨ１００８、ＡＳＰＨ１００９、ＡＳＰＨ１０１０、ＡＳＰＨ１０１１、ＡＳＰＨ１０１２、ＡＳＰＨ１０１３、ＡＳＰＨ１０１４、ＡＳＰＨ１０１５、ＡＳＰＨ１０１６、ＡＳＰＨ１０１７、ＡＳＰＨ１０１８、ＡＳＰＨ１０１９、ＡＳＰＨ１０２０、ＡＳＰＨ１０２１、ＡＳＰＨ１０２２、ＡＳＰＨ１０２３、ＡＳＰＨ１０２４、ＡＳＰＨ１０２６、ＡＳＰＨ１０２７、ＡＳＰＨ１０２８、ＡＳＰＨ１０２９、ＡＳＰＨ１０３０、ＡＳＰＨ１０３１、ＡＳＰＨ１０３２、ＡＳＰＨ１０３３、ＡＳＰＨ１０３４、ＡＳＰＨ１０３５、ＡＳＰＨ１０３６、ＡＳＰＨ１０３８、ＡＳＰＨ１０３９、ＡＳＰＨ１０４０、ＡＳＰＨ１０４１、ＡＳＰＨ１０４２、ＡＳＰＨ１０４３、ＡＳＰＨ１０４４、ＡＳＰＨ１０４５、ＡＳＰＨ１０４６、ＡＳＰＨ１０４７、ＡＳＰＨ１０４８、ＡＳＰＨ１０４９、ＡＳＰＨ１０５０、ＡＳＰＨ１０５１、ＡＳＰＨ１０５２、ＡＳＰＨ１０５３、ＡＳＰＨ１０５４、ＡＳＰＨ１０５６、ＡＳＰＨ１０５７、ＡＳＰＨ１０５８、ＡＳＰＨ１０５９、ＡＳＰＨ１０６０、ＡＳＰＨ１０６１、またはＡＳＰＨ１０６２（図１６参照）およびＳＥＱＩＤＮＯ．１４５の対照でトランスフェクトした。トランスフェクションから２４時間後にＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの発現を決定した。ＴＧＦ−ベータ１ｍＲＮＡの発現の有意な減少を図１６に示す。選択的ＴＧＦ−ベータ１オリゴヌクレオチドがＴＧＦ−ベータ１ｍＲＮＡの発現を有意に阻害するのに対し、デュアルＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡ反応性オリゴヌクレオチドＡＳＰＨ０５は、ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの両方の発現を有意に減少させる。

実施例１５
Ｐａｎｃ−１細胞は、トランスフェクション剤（ジムノティックトランスフェクションまたはジムノティックデリバリー）の非存在下で、３．３μＭのＡＳＰＨ０５、ＡＳＰＨ０９、ＡＳＰＨ１０００、ＡＳＰＨ１００１、ＡＳＰＨ１００２、ＡＳＰＨ１００４、ＡＳＰＨ１００６、ＡＳＰＨ１００７、ＡＳＰＨ１００８、ＡＳＰＨ１００９、ＡＳＰＨ１０１０、ＡＳＰＨ１０１１、ＡＳＰＨ１０１２、ＡＳＰＨ１０１３、ＡＳＰＨ１０１４、ＡＳＰＨ１０１５、ＡＳＰＨ１０１７、ＡＳＰＨ１０１８、ＡＳＰＨ１０１９、ＡＳＰＨ１０２０、ＡＳＰＨ１０２１、ＡＳＰＨ１０２２、ＡＳＰＨ１０２４、ＡＳＰＨ１０２６、ＡＳＰＨ１０２７、ＡＳＰＨ１０２８、ＡＳＰＨ１０２９、ＡＳＰＨ１０３２、ＡＳＰＨ１０３３、ＡＳＰＨ１０３４、ＡＳＰＨ１０３５、ＡＳＰＨ１０３６、ＡＳＰＨ１０３７、ＡＳＰＨ１０３８、ＡＳＰＨ１０３９、ＡＳＰＨ１０４０、ＡＳＰＨ１０４１、ＡＳＰＨ１０４２、ＡＳＰＨ１０４３、ＡＳＰＨ１０４４、ＡＳＰＨ１０４５、ＡＳＰＨ１０４６、ＡＳＰＨ１０４７、ＡＳＰＨ１０４９、ＡＳＰＨ１０５０、ＡＳＰＨ１０５１、ＡＳＰＨ１０５２、ＡＳＰＨ１０５３、ＡＳＰＨ１０５４、ＡＳＰＨ１０５５、ＡＳＰＨ１０５６、ＡＳＰＨ１０５７、ＡＳＰＨ１０５８、ＡＳＰＨ１０５９、ＡＳＰＨ１０６０、ＡＳＰＨ１０６１、またはＡＳＰＨ１０６２およびＳＥＱＩＤＮＯ．１４５の対照で処理した。処理開始から７２時間後にＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの発現に対する修飾オリゴヌクレオチドの阻害効果をそれぞれ決定した。ＴＧＦ−ベータ１ｍＲＮＡの発現の有意な減少を図１７に示す。選択的ＴＧＦ−ベータ１オリゴヌクレオチドがＴＧＦ−ベータ１ｍＲＮＡの発現を有意に阻害するのに対し、デュアルＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡ反応性オリゴヌクレオチドＡＳＰＨ０５は、ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの両方の発現を有意に減少させる。

実施例１６
ヒトＡ１７２細胞を、１０ｎＭ（トランスフェクション剤の存在下で）のＡＳＰＨ０９、ＡＳＰＨ１０４７、ＡＳＰＨ１０５１、ＡＳＰＨ１０５９、ＡＳＰＨ１０６３、ＡＳＰＨ１０６４、ＡＳＰＨ１０６５、ＡＳＰＨ１０６６、ＡＳＰＨ１０６７、ＡＳＰＨ１０６８、ＡＳＰＨ１０６９、ＡＳＰＨ１０７０、ＡＳＰＨ１０７１、ＡＳＰＨ１０７２、ＡＳＰＨ１０７３、ＡＳＰＨ１０７４、ＡＳＰＨ１０７５、ＡＳＰＨ１０７６、ＡＳＰＨ１０７７、ＡＳＰＨ１０７８、ＡＳＰＨ１０７９、ＡＳＰＨ１０８０、ＡＳＰＨ１０８１、ＡＳＰＨ１０８２、ＡＳＰＨ１０８３、ＡＳＰＨ１０８４、ＡＳＰＨ１０８５、ＡＳＰＨ１０８６、ＡＳＰＨ１０８７、ＡＳＰＨ１０８８、ＡＳＰＨ１０８９、ＡＳＰＨ１０９０、ＡＳＰＨ１０９１、ＡＳＰＨ１０９２、ＡＳＰＨ１０９３、ＡＳＰＨ１０９４、ＡＳＰＨ１０９５、ＡＳＰＨ１０９７、ＡＳＰＨ１０９８、ＡＳＰＨ１０９９、ＡＳＰＨ１１００、ＡＳＰＨ１１０１、ＡＳＰＨ１１０２、ＡＳＰＨ１１０３、ＡＳＰＨ１１０４、ＡＳＰＨ１１０５、ＡＳＰＨ１１０６、ＡＳＰＨ１１０７、ＡＳＰＨ１１０８、ＡＳＰＨ１１０９、ＡＳＰＨ１１１０、ＡＳＰＨ１１１１、ＡＳＰＨ１１１２、ＡＳＰＨ１１１３、ＡＳＰＨ１１４、ＡＳＰＨ１１１５、ＡＳＰＨ１１１６、ＡＳＰＨ１１１７、ＡＳＰＨ１１１８、ＡＳＰＨ１１１９、ＡＳＰＨ１１２０、ＡＳＰＨ１１２１、ＡＳＰＨ１１２２、ＡＳＰＨ１１２３、ＡＳＰＨ１１２４、ＡＳＰＨ１１２５、ＡＳＰＨ１１２６、ＡＳＰＨ１１２７、ＡＳＰＨ１１２８、ＡＳＰＨ１１２９、ＡＳＰＨ１１３０、ＡＳＰＨ１１３１、およびＡＳＰＨ１１３２、または陽性対照ＡＳＰＨ１０４７で処理した。ＴＧＦ−ベータ１（黒カラム）、ＴＧＦ−ベータ２（白カラム）およびＴＧＦ−ベータ３（ストライプカラム）ｍＲＮＡの発現をトランスフェクションから２４時間後に決定した。ＴＧＦ−ベータ１ｍＲＮＡの発現の有意な減少を図１８に示す。選択的ＴＧＦ−ベータ１オリゴヌクレオチドがＴＧＦ−ベータ１ｍＲＮＡの発現を有意に阻害するのに対し、汎特異的ＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２およびＴＧＦ−ベータ３反応性オリゴヌクレオチドＡＳＰＨ０００９、ＡＳＰＨ１０９６、ＡＳＰＨ１１３１、およびＡＳＰＨ１１３２は、すべての３つのイソ型の発現を有意に減少させることを示す。

実施例１７
Ｐａｎｃ−１細胞（図１９ａ）またはＲｅｎＣａ細胞（図１９ｂ）のいずれかを、トランスフェクション剤（ジムノティックトランスフェクションまたはジムノティックデリバリー）の非存在下で、３．３μＭのＡＳＰＨ０９、ＡＳＰＨ１０４７、ＡＳＰＨ１０５１、ＡＳＰＨ１０５９、ＡＳＰＨ１０６３、ＡＳＰＨ１０６４、ＡＳＰＨ１０６５、ＡＳＰＨ１０６６、ＡＳＰＨ１０６７、ＡＳＰＨ１０６８、ＡＳＰＨ１０６９、ＡＳＰＨ１０７０、ＡＳＰＨ１０７１、ＡＳＰＨ１０７２、ＡＳＰＨ１０７３、ＡＳＰＨ１０７４、ＡＳＰＨ１０７５、ＡＳＰＨ１０７６、ＡＳＰＨ１０７７、ＡＳＰＨ１０７８、ＡＳＰＨ１０７９、ＡＳＰＨ１０８０、ＡＳＰＨ１０８１、ＡＳＰＨ１０８２、ＡＳＰＨ１０８３、ＡＳＰＨ１０８４、ＡＳＰＨ１０８５、ＡＳＰＨ１０８６、ＡＳＰＨ１０８７、ＡＳＰＨ１０８８、ＡＳＰＨ１０８９、ＡＳＰＨ１０９０、ＡＳＰＨ１０９１、ＡＳＰＨ１０９２、ＡＳＰＨ１０９３、ＡＳＰＨ１０９４、ＡＳＰＨ１０９５、ＡＳＰＨ１０９７、ＡＳＰＨ１０９８、ＡＳＰＨ１０９９、ＡＳＰＨ１１００、ＡＳＰＨ１１０１、ＡＳＰＨ１１０２、ＡＳＰＨ１１０３、ＡＳＰＨ１１０４、ＡＳＰＨ１１０５、ＡＳＰＨ１１０６、ＡＳＰＨ１１０７、ＡＳＰＨ１１０８、ＡＳＰＨ１１０９、ＡＳＰＨ１１１０、ＡＳＰＨ１１１１、ＡＳＰＨ１１１２、ＡＳＰＨ１１１３、ＡＳＰＨ１１４、ＡＳＰＨ１１１５、ＡＳＰＨ１１１６、ＡＳＰＨ１１１７、ＡＳＰＨ１１１８、ＡＳＰＨ１１１９、ＡＳＰＨ１１２０、ＡＳＰＨ１１２１、ＡＳＰＨ１１２２、ＡＳＰＨ１１２３、ＡＳＰＨ１１２４、ＡＳＰＨ１１２５、ＡＳＰＨ１１２６、ＡＳＰＨ１１２７、ＡＳＰＨ１１２８、ＡＳＰＨ１１２９、ＡＳＰＨ１１３０、ＡＳＰＨ１１３１、およびＡＳＰＨ１１３２、または陽性対照ＡＳＰＨ１０４７で処理した。ＴＧＦ−ベータ１（黒カラム）、ＴＧＦ−ベータ２（白カラム）およびＴＧＦ−ベータ３（ストライプカラム）ｍＲＮＡの発現をトランスフェクションから７２時間後に決定した。ＴＧＦ−ベータ１ｍＲＮＡの発現の有意な減少を図１８に示す。選択的ＴＧＦ−ベータ１オリゴヌクレオチドがＴＧＦ−ベータ１ｍＲＮＡの発現を有意に阻害するのに対し、汎特異的ＴＧＦ−ベータ１、ＴＧＦ−ベータ２およびＴＧＦ−ベータ３反応性オリゴヌクレオチドＡＳＰＨ０９、ＡＳＰＨ１０９６、ＡＳＰＨ１１３１、およびＡＳＰＨ１１３２は、すべての３つのイソ型の発現を有意に減少させることを示す。

実施例１８
皮下ヒト膵臓癌Ｐａｎｃ−１腫瘍を有するマウスは、以下の様々な処理スケジュールの下で、１、３、１０および３０ｍｇ／ｋｇのＡＳＰＨ４７で処理した。
ＱｌＤｘｌ−ｄ６（１回ＳＣ注射、５日後終了）
ＱｌＤｘ５−ｄ６（５日間毎日ＳＣ注射、２４時間後終了）
ＱｌＤｘ５−ｄ１０（５日間毎日ＳＣ注射、５日後終了）
これらの動物の腎臓におけるＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの用量依存ダウンレギュレーションが存在した。１回投与した後だけでさえも、ＴＧＦ−ベータ２のダウンレギュレーションは、ＡＳＰＨ４７での最後の処理後５日まで持続していた。ＴＧＦ−ベータ２発現をｂＤＮＡアッセイ（捕捉されたターゲットＲＮＡからシグナルを増幅するｂＤＮＡ分子を使用するサンドイッチ核酸ハイブリダイゼーション法である、分枝ＤＮＡアッセイ）により検知し、ＧＡＰＤＨに対して正規化した。図２３に示すように、ＧＡＰＤＨｍＲＮＡに対するＴＧＦ−ベータ２の比率を表すデータをボックスプロットで表し、中央値と最小および最大値を示す（ビヒクルおよび３ｍｇ／ｋｇＱｌＤｘｌｄ６群についてｎ＝９であることを除いては、ｎ＝１０で表す）。

実施例１９
左右の脇腹に皮下ヒト膵臓癌Ｐａｎｃ−１腫瘍を有するマウスは、５日間連続して、１、５、１５または５０ｍｇ／ｋｇのオリゴヌクレオチドの毎日の注射で処理した。腫瘍は、最後の処理から２４時間後に回収し、スナップ凍結した。腫瘍におけるＴＧＦ−ベータｍＲＮＡ発現は、ｂＤＮＡアッセイによって検出した。ＧＡＰＤＨｍＲＮＡに対するＴＧＦ−ベータ２の比率を表すデータをボックスプロットで表し、中央値と最小および最大値を示す（ｎ＝５で表す）。ＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡは、様々なオリゴヌクレオチド（図２４）で処理された腫瘍にダウンレギュレーションされた。これらの群では、有意なＴＧＦ−ベータ１ｍＲＮＡのダウンレギュレーションが存在しなかった（データは示さず）。

実施例２０
左右の脇腹に皮下ヒト腎細胞癌７８６−Ｏ腫瘍を有するマウスを、５日間連続の５０ｍｇ／ｋｇのオリゴヌクレオチドの毎日の注射で処理した。腫瘍は、最後の処理から２４時間後に回収し、スナップ凍結した。腫瘍におけるＴＧＦ−ベータｍＲＮＡ発現をｂＤＮＡアッセイによって検出した。ＡＳＰＨ０５、ＡＳＰＨ１７、ＡＳＰＨ２６、ＡＳＰＨ３６、ＡＳＰＨ４５、ＡＳＰＨ４７、ＡＳＰＨ７１、ＡＳＰＨ８２、ＡＳＰＨ９８、およびＡＳＰＨ１０５でそれぞれ処理された腫瘍におけるＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの有意なダウンレギュレーションが存在した（図２５）。ＧＡＰＤＨｍＲＮＡに対するＴＧＦ−ベータ２の比率を表すデータをボックスプロットで表し、中央値と最小および最大値を示す（ＡＳＰＨ７１についてｎ＝９であることを除いては、ｎ＝１０で表されている）。

実施例２１
ヒトＰａｎｃ−ｌ細胞を、２０、６．６７、２．２２、０．７４、０．２５、０．０８または０．００９μΜの修飾オリゴヌクレオチドＡＳＰＨ４７、ＡＳＰＨ１０４７、ＡＳＰＨ１１０６、ＡＳＰＨ１１３２、またはＡＳＰＨ１０４７との組み合わせられたＡＳＰＨ４７でトランスフェクトした。結果は、図２６ａから図２６ｅに示されている。陰性対照は、ＳＥＱＩＤＮＯ．１４５（図２６ｆ）のスクランブルオリゴヌクレオチド（ｓｃｒＬＮＡ）である。すべての細胞を、トランスフェクション剤（ジムノティックトランスフェクションまたはジムノティックデリバリー）の非存在下で、トランスフェクトした。修飾オリゴヌクレオチドは、３７℃でインキュベートされた細胞に３日間添加された。その後、培地を含有するオリゴヌクレオチドを、培地を含有する新鮮なオリゴヌクレオチドと交換し、細胞を３７℃でさらに４日間インキュベートした。細胞上清中のＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２タンパク質レベルは、ＥＬＩＳＡによって決定された。ＡＳＰＨ４７は、用量依存的にＴＧＦ−ベータ２の発現を特異的に阻害し、ＴＧＦ−ベータ１に対するターゲット阻害効果を全く有しない（図２６ａ）。ＡＳＰＨ１０４７は、ＴＧＦ−ベータ１の発現を特異的に阻害し、ＴＧＦ−ベータ２に対するターゲット阻害効果を全く有しない（図２６ｂ）、または高濃度でもわずかなＴＧＦ−ベータ２の阻害効果しか有しない。また、ＡＳＰＨ１１０６は、用量に依存してＴＧＦ−ベータ１の発現を阻害する（図２６ｃ）。多重ＡＳＰＨ１１３２は、ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２タンパク質の発現の用量依存的な阻害を示す（図２６ｄ）。ＡＳＰＨ４７とＡＳＰＨ１０４７とが組み合わされている場合、ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２タンパク質の両方の発現は、用量に依存してに阻害される（図２６ｅ）。たとえ、ＡＳＰＨ４７、ＡＳＰＨ１０４７、ＡＳＰＨ１１０６、またはＡＳＰＨ１１３２の各濃度と比較して２倍の濃度（４０、１３．３３、４．４４、１．４８、０．４９、０．１６、０．０５、０．０２μＭ）にしても、ＳＥＱＩＤＮＯ．１４５のｓｃｒＬＮＡは、ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２のいずれの発現に対しても全く阻害効果を示さない。図２６ａから図２６ｆ中に、ＴＧＦ−ベータ１の結果を菱形で示し、ＴＧＦ−ベータ２の結果を四角で示す。

実施例２２
Ｐａｎｃ−１細胞（図２７ａ）またはＲｅｎＣａ細胞（図２７ｂ）を、トランスフェクション剤（ジムノティックトランスフェクションまたはジムノティックデリバリー）の非存在下で、１．１μΜのＡＳＰＨ１９０、ＡＳＰＨ１９１、ＡＳＰＨ１９２、ＡＳＰＨ１９３、ＡＳＰＨ１９４、ＡＳＰＨ１９５、ＡＳＰＨ１９６、ＡＳＰＨ１９７、ＡＳＰＨ１９８、ＡＳＰＨ１９９、ＡＳＰＨ２００、ＡＳＰＨ２０１、ＡＳＰＨ２０２、ＡＳＰＨ２０３、ＡＳＰＨ２０４、ＡＳＰＨ２０５、ＡＳＰＨ２０６、ＡＳＰＨ２０７、ＡＳＰＨ２０８、ＡＳＰＨ２０９、ＡＳＰＨ２１０、ＡＳＰＨ２１１、ＡＳＰＨ２１２、ＡＳＰＨ２１３、ＡＳＰＨ２１４、ＡＳＰＨ２１５、ＡＳＰＨ２１６、ＡＳＰＨ２１７、ＡＳＰＨ２１８、ＡＳＰＨ２１９、ＡＳＰＨ２２０、ＡＳＰＨ２２１、ＡＳＰＨ２２２、およびＡＳＰＨ２２３で処理した。ＴＧＦ−ベータ１（黒カラム）、ＴＧＦ−ベータ２（白カラム）およびＴＧＦ−ベータ３（ストライプカラム）ｍＲＮＡの発現をトランスフェクションから７２時間後に決定した。ＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの発現の有意な減少を図２７ａおよび図２７ｂに示す。陰性対照は、ＳＥＱＩＤＮＯ．１４５のスクランブルＬＮＡ（ｓｃｒＬＮＡ）である。

実施例２３
Ｐａｎｃ−１細胞を、トランスフェクション剤（ジムノティックトランスフェクションまたはジムノティックデリバリー）の非存在下で、１０μΜ、３．３μΜ、１．１μΜ、０．３７μΜおよび０．１２μΜのＡＳＰＨ４７、Ｍ１−ＡＳＰＨ４７、Ｍ２−ＡＳＰＨ４７、Ｍ３−ＡＳＰＨ４７、Ｍ４−ＡＳＰＨ４７、Ｍ５−ＡＳＰＨ４７、Μ６−ＡＳＰＨ４７、Ｍ７−ＡＳＰＨ４７、Ｍ８−ＡＳＰＨ４７、Ｍ９−ＡＳＰＨ４７、Ｍ１０−ＡＳＰＨ４７、Ｍ１１−ＡＳＰＨ４７、Ｍ１２−ＡＳＰＨ４７、Ｍ１３−ＡＳＰＨ４７、Ｍ１４−ＡＳＰＨ４７、またはＭ１５−ＡＳＰＨ４７で処理した。ＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの発現に対する修飾オリゴヌクレオチドの阻害効果を、処理開始から７２時間後に測定した。ＴＧＦ−ベータ２の値は、ＧＡＰＤＨに対して正規化し、ＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの５０％の減少（＝ＩＣ_５０値）をもたらすオリゴヌクレオチド濃度を算出した。ジムノティックトランスフェクション実験条件下で、オリゴヌクレオチドは細胞に入り、ＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの発現を強くに阻害する。実験結果を表６に示す。

修飾オリゴヌクレオチドの大部分は、トランスフェクション剤を必要とせずに非常に高い効力を有することを示す、サブマイクロモルから低サブマイクロモルの範囲のＩＣ_５０を示す。

実施例２４
ヒトＰａｎｃ−１膵臓癌細胞（図２８ａ）またはマウスＲｅｎＣａ腎細胞癌細胞（図２８ｂ）を、トランスフェクション剤（ジムノティックトランスフェクションまたはジムノティックデリバリー）の非存在下で、３．３μΜのＡＳＰＨ０００９、ＡＳＰＨ１１３２、ＡＳＰＨ２０００、ＡＳＰＨ２００１、ＡＳＰＨ２００２、ＡＳＰＨ２００３、ＡＳＰＨ２００４、ＡＳＰＨ２００５、ＡＳＰＨ２００６、ＡＳＰＨ２００７、ＡＳＰＨ２００９、ＡＳＰＨ２０１０、ＡＳＰＨ２０１２、ＡＳＰＨ２０１３、ＡＳＰＨ２０１４、ＡＳＰＨ２０１５、ＡＳＰＨ２０１６、ＡＳＰＨ２０１７、ＡＳＰＨ２０１８、ＡＳＰＨ２０１９、ＡＳＰＨ２０２０、ＡＳＰＨ２０２１、ＡＳＰＨ２０２３、ＡＳＰＨ２０２４、ＡＳＰＨ２０２５、ＡＳＰＨ２３０２６、ＡＳＰＨ２０２７、ＡＳＰＨ２０２８、ＡＳＰＨ２０２９、ＡＳＰＨ２０３０、ＡＳＰＨ２０３１、ＡＳＰＨ２０３２、ＡＳＰＨ２０３３、ＡＳＰＨ２０３４、ＡＳＰＨ２０３５、ＡＳＰＨ２０３６、ＡＳＰＨ２０３７、ＡＳＰＨ２０３８、ＡＳＰＨ２０３９、ＡＳＰＨ２０４０、ＡＳＰＨ２０４１、ＡＳＰＨ２０４３、ＡＳＰＨ２０４４、ＡＳＰＨ２０４５、ＡＳＰＨ２０４６、ＡＳＰＨ２０４７、ＡＳＰＨ２０４８、ＡＳＰＨ２０４９、ＡＳＰＨ２０５０、ＡＳＰＨ２０５２、ＡＳＰＨ２０５３、ＡＳＰＨ２０５４、ＡＳＰＨ２０５５、ＡＳＰＨ２０５６、ＡＳＰＨ２０５７、ＡＳＰＨ２０６０、ＡＳＰＨ２０６１、ＡＳＰＨ２０６２、ＡＳＰＨ２０６３、ＡＳＰＨ２０６４、ＡＳＰＨ２０６５、またはＡＳＰＨ２０６６で処理した。ＴＧＦ−ベータ１（黒カラム）、ＴＧＦ−ベータ２（白カラム）およびＴＧＦ−ベータ３（ストライプカラム）ｍＲＮＡの発現をトランスフェクションから７２時間後に決定した。ＴＧＦ−ベータ３ｍＲＮＡの発現の有意な減少を図２８ａおよび図２８ｂに示す。配列から予想されたように、ヒトＴＧＦ−ベータ１および−ベータ３のｍＲＮＡに対して１００％の相同性を有するが、ＴＧＦ−ベータ２には不一致であるＴＧＦ−ベータ１、−ベータ２と−ベータ３反応性オリゴヌクレオチドＡＳＰＨ＿０００９（汎選択的）およびＡＳＰＨ＿１１３２は、全３つのイソ型の発現の有意な減少を示す。選択的ＴＧＦ−ベータ３オリゴヌクレオチドは、有意にＴＧＦ−ベータ３ｍＲＮＡの発現を阻害するだけである。

実施例２５
ヒトＡ１７２神経膠腫細胞を、１０ｎＭの（トランスフェクション剤の存在下で）ＡＳＰＨ０００９、ＡＳＰＨ１１３２、ＡＳＰＨ２０００、ＡＳＰＨ２００１、ＡＳＰＨ２００２、ＡＳＰＨ２００３、ＡＳＰＨ２００４、ＡＳＰＨ２００６、ＡＳＰＨ２００７、ＡＳＰＨ２００８、ＡＳＰＨ２００９、ＡＳＰＨ２０１０、ＡＳＰＨ２０１１、ＡＳＰＨ２０１２、ＡＳＰＨ２０１３、ＡＳＰＨ２０１４、ＡＳＰＨ２０１６、ＡＳＰＨ２０１７、ＡＳＰＨ２０１８、ＡＳＰＨ２０２０、ＡＳＰＨ２０２１、ＡＳＰＨ２０２２、ＡＳＰＨ２０２３、ＡＳＰＨ２０２４、ＡＳＰＨ２０２５、ＡＳＰＨ２０２６、ＡＳＰＨ２０２７、ＡＳＰＨ２０２８、ＡＳＰＨ２０２９、ＡＳＰＨ２０３０、ＡＳＰＨ２０３１、ＡＳＰＨ２０３２、ＡＳＰＨ２０３３、ＡＳＰＨ２０３４、ＡＳＰＨ２０３５、ＡＳＰＨ２０３６、ＡＳＰＨ２０３７、ＡＳＰＨ２０３８、ＡＳＰＨ２０３９、ＡＳＰＨ２０４０、ＡＳＰＨ２０４１、ＡＳＰＨ２０４２、ＡＳＰＨ２０４３、ＡＳＰＨ２０４４、ＡＳＰＨ２０４５、ＡＳＰＨ２０４７、ＡＳＰＨ２０４９、ＡＳＰＨ２０５０、ＡＳＰＨ２０５１、ＡＳＰＨ２０５２、ＡＳＰＨ２０５３、ＡＳＰＨ２０５４、ＡＳＰＨ２０５６、ＡＳＰＨ２０５７、ＡＳＰＨ２０５８、ＡＳＰＨ２０５９、ＡＳＰＨ２０６０、ＡＳＰＨ２０６１、ＡＳＰＨ２０６２、ＡＳＰＨ２０６３、またはＡＳＰＨ２０６６で２４時間処理した。そして、ＴＧＦ−ベータ１（黒カラム）、ＴＧＦ−ベータ２（白カラム）およびＴＧＦ−ベータ３（ストライプカラム）ｍＲＮＡの発現を、ｂＤＮＡアッセイによって細胞抽出物から決定した。ＴＧＦ−ベータ３ｍＲＮＡの発現の有意な減少を図２９に示す。配列から予想されたように、ヒトＴＧＦ−ベータ１および−ベータ３のｍＲＮＡに対して１００％の相同性を有するが、ＴＧＦ−ベータ２には不一致であるＴＧＦ−ベータ１、−ベータ２と−ベータ３反応性オリゴヌクレオチドＡＳＰＨ＿０００９（汎選択的）およびＡＳＰＨ＿１１３２は、全３つのイソ型の発現の有意な減少を示す。選択的ＴＧＦ−ベータ３オリゴヌクレオチドは、有意にＴＧＦ−ベータ３ｍＲＮＡの発現を阻害するだけである。

実施例２６：ウサギの細胞におけるターゲットｍＲＮＡのダウンレギュレーション
選択されたオリゴヌクレオチドの配列は、ＴＧＦ−ベータ１およびベータ２のウサギｍＲＮＡ配列と連携されていた。ＡＳＰＨ＿００３６（ヒトｍＲＮＡ配列に基づくＴＧＦ−ベータ２選択的アンチセンスオリゴヌクレオチド）は、ウサギＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡと１００％の相同性を示したが、ＡＳＰＨ＿１０５９（ヒトｍＲＮＡ配列に基づく、ＴＧＦ−ベータ１選択的アンチセンスオリゴヌクレオチド）は、ウサギのＴＧＦ−ベータ１ｍＲＮＡと１００％の相同性を示した。

ウサギＲａｂ−９皮膚線維芽細胞を、トランスフェクション剤の存在下で、５ｎＭまたは２０ｎＭのＡＳＰＨ＿００３６またはＡＳＰＨ＿１０５９の一方で２４時間処理した。そして、ＴＧＦ−ベータ１およびＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの発現を、ｂＤＮＡアッセイにより細胞抽出物中で決定した。ＴＧＦ−ベータ１ｍＲＮＡの発現の有意な減少（それぞれ、５および２０ｎＭで５１および７７％）が、ＡＳＰＨ＿１０５９で達成された。ＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの発現の有意な減少（それぞれ、５および２０ｎＭで７９および８０％）が、ＡＳＰＨ＿００３６で達成された。

実施例２７：Ｂａｌｂ／ｃマウスにおける、ＡＳＰＨ＿００４７の全身投与後の組織生体内分布およびターゲットｍＲＮＡダウンレギュレーション

Ｂａｌｂ／Ｃマウスを、５、２０および５０ｍｇ／ｋｇ動物体重で、ＡＳＰＨ＿００４７（滅菌生理食塩水で製剤化）の一回皮下注射で処理した。血漿および組織を、示された時間（３個体の動物から）に採取し、スナップ凍結し、ＡＥＸ−ＨＰＬＣ法（プラズマ／組織ＰＫ）での分析までまたはｂＤＮＡアッセイによるＴＧＦ−ベータ２およびＧＡＰＤＨｍＲＮＡレベルの測定のために−８０℃で保存した。ＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡレベルは、対応するサンプル中のＧＡＰＤＨｍＲＮＡ発現レベルに対して表された。

データは、５０ｍｇ／ｋｇＡＳＰＨ＿００４７の一回の皮下ボーラス投与が、急速初期排出段階（２４時間以内）を伴う、血漿中の二相性薬物動態プロファイルである、皮下から循環血液コンパートメントへの薬物の迅速な移動をもたらし（〜５から３０分のＴ_ＭＡＸ）、その後、長い半減期（図３０ａ）が続いたことを示す。様々な選択された組織において薬の長期間続く著しい蓄積がさらに実証された。主要なターゲット器官（最高曝露／Ｃ_ＭＡＸ）は、腎臓、そして肝臓、皮膚および脾臓であり、脳内では最低である（データは示さず）。図３０ｂにも示すように、ＡＳＰＨ＿００４７は、２４時間から１４日まで薬理的に適切な用量（１０μΜに相当する、〜５０μｇ／ｇｒ）で、腎臓組織におけるＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡ発現の結果的に生じる持続性および著しい抑制を伴い、すくなくとも１４日間観察された効果的〜８０％ターゲットｍＲＮＡダウンレギュレーションを伴いながら、腎臓組織に残った。

実施例２８
免疫不全マウスを、ヒト７８６−Ｏ腎細胞癌細胞（図３０Ａ）、膵臓Ｐａｎｃ１癌細胞（図３０Ｂ、Ｃ）、またはマウスＳＭＡ−５６０神経膠腫細胞（図３０Ｄ）を皮下注射した。皮下腫瘍が１００から３００ｍｍ^３（確立された腫瘍）の大きさに達したとき、動物を、ＱｌＤｘ５、生理食塩水（モック）、対照オリゴヌクレオチド（対照；５０ｍｇ／ｋｇ）、この文脈では不活性オリゴヌクレオチド（例えば、ＡＳＰＨ＿００６５およびＡＳＰＨ＿００７１；５０ｍｇ／ｋｇ）または５０ｍｇ／ｋｇでＡＳＰＨ＿００４７、または示された用量で皮下的に処理した。腫瘍（図３０Ａ−Ｄ）および腎臓（図３０Ｅ−Ｆ）は、最後の投与後２４時間に採取した。次に、腫瘍／腎臓をｂＤＮＡアッセイによりＴＧＦ−ベータ２およびＧＡＰＤＨｍＲＮＡレベルの決定のためにさらに処理した。これらの実験において、対照オリゴヌクレオチドは、１８−ｍｅｒ、３＋３ＬＮＡギャップマースクランブル配列であった。結果は、ＴＧＦ−ベータ２／ＧＡＰＤＨｍＲＮＡの比率で表され、個々の試験された試料は、赤い線として示された中央値で表される。記載された実験条件（スケジュールおよび投与経路）下で、Ｂａｌｂ／ｃマウスにおけるＡＳＰＨ＿００４７の全身反復投与は、確立された皮下腫瘍および腎臓におけるＴＧＦ−ベータ２ｍＲＮＡの配列特異的ダウンレギュレーションをもたらした。

実施例２９
Ｂａｌｂ／ｃマウスは、０日目に、腎被膜下に（図３２Ａ、Ｂ）または静脈内投与（ｉ．ｖ．）（図３２Ｃ、Ｄ）によりマウスＲＥＮＣＡ細胞を注射された。ビヒクルまたは指されたオリゴヌクレオチドでの全身治療は、７日目（図３２Ａ；５０ｍｇ／ｋｇ、皮下、週二回）、１日目（図３２Ｂ；１２．５ｍｇ／ｋｇ、皮下、週二回）（２週連続）、または７日目（図３２Ｃおよび３２Ｄ；示された投与量、皮下、週二回）（２６〜２７日間）に開始した。肺転移の数を肉眼で評価し、肺転移のレベルは、転移（図３２Ａ、Ｃ）の数または肺重量（図３２Ｂ、Ｄ）に基づいて決定した。結果を、中央値、上および下四分位、および９０番目および１０番目百分位でボックスプロットとして表す。記載された実験デザインの下、ＡＳＰＨ＿００４７で処理されたＢａｌｂ／ｃマウスは、マウスのＲｅｎｃａ腎細胞癌モデルにおける肺転移の数の減少または肺重量の低下（肺重量は肺転移の程度に関連する）を表す。

実施例３０
ヒトＰａｎｃ−１膵臓癌細胞は、トランスフェクション剤（ジムノティックトランスフェクションまたはジムノティックデリバリー）の非存在下で、３．３μΜの示されたオリゴヌクレオチドで処理した。ＴＧＦ−ベータ１（黒カラム）、ＴＧＦ−ベータ２（白カラム）およびＴＧＦ−ベータ３（ストライプカラム）ｍＲＮＡの発現は、トランスフェクションから７２時間後に測定した。ＴＧＦ−ベータ１ｍＲＮＡの発現の有意な減少を図３２に示す。対照オリゴヌクレオチドＬＮＡ−ｓｃｒは、いかなるＴＧＦ−ベータイソ型の発現にも影響を与えないが、ＴＧＦ−ベータ１オリゴヌクレオチドは、有意にＴＧＦ−ベータ１ｍＲＮＡの発現を阻害するだけである。

実施例３１
Ｂａｌｂ／ｃマウスは、０日目の乳房脂肪パッドにマウス４Ｔ１細胞を注射された。動物を犠牲にすると、生理食塩水（モック）、全ＴＧＦ−ベータ抗体（１Ｄ１１）、対照オリゴヌクレオチド（ＬＮＡ−ｓｃｒ）またはＡＳＰＨ＿００４７による全身処理を３日目に開始し（３０ｍｇ／ｋｇ、皮下、週に２回）、Ｄ２８まで続けられた。肺転移の数を肉眼で評価し、肺転移のレベルは、転移（左のパネル）の数によって決定または肺重量（右パネル）に基づいて決定された。記載された実験デザインの下、ＡＳＰＨ＿００４７での処理は、肺への転移を減少させたのに対し、陽性対照、モノクローナルＴＧＦ−ベータ抗体１Ｄ１１は、このモデルにおいて肺転移に影響を及ぼさなかった。

実施例３２
ＣＢ１７ＳＣＩＤまたはＢａｌｂ／ｃヌードマウス（ＡＳＰＨ＿００１８についてｎ＝１であり、およびＡＳＰＨ＿００３７についてｎ＝２であることを除いて、ｎ＝３〜５で表されている）は、１４から１５ｍｇ／ｋｇの示されたＬＮＡ修飾オリゴヌクレオチドで４または５日間連続して処理した（ＱｌＤｘ４−５）。血漿は、最後の処理から２４時間後に採取し、ＡＬＴレベルは血漿中で決定された。結果を中央値で表す。この実験条件下では、試験されたオリゴヌクレオチドの６／４８（１２．５％）だけが、肝毒性を示す血漿ＡＬＴ（＞３００ユニット／ｌ）の著しい増加を誘発した。下記表７は、全身投与されたＬＮＡ修飾オリゴヌクレオチドの肝臓毒性を示す。

Claims

オリゴヌクレオチドの、１以上のヌクレオチドが修飾され、修飾ヌクレオチドは、ＬＮＡおよび／若しくはＥＮＡ、ポリアルキレンオキシド−、２’−フルオロ−、２’−Ｏ−メトキシ−、並びに／または２’Ｏ−メチル−修飾ヌクレオチドであり、眼の疾患を予防および／または治療する方法において使用される、ＳＥＱＩＤＮＯ．２のＴＧＦ−ベータ２核酸配列の１２から１８ヌクレオチドからなるアンチセンスオリゴヌクレオチド。
前記修飾ヌクレオチドは、前記オリゴヌクレオチドの５’および／または３’末端に位置する、請求項１に記載の方法において使用されるアンチセンスオリゴヌクレオチド。
前記オリゴヌクレオチドは、ＧＡＣＣＡＧＡＴＧＣＡＧＧＡ（ＡＳＰＨ３６）、ＣＡＡＡＧＴＡＴＴＴＧＧＴＣＴＣＣ（ＡＳＰＨ４７）、ＡＣＣＴＴＧＧＧＣＴＴＧＣＧ（ＡＳＰＨ１０５９）およびＣＧＧＧＴＧＣＴＧＴＴＧＴＡ（ＡＳＰＨ１１３２）からなる群から選択される、請求項１または２に記載の方法において使用されるアンチセンスオリゴヌクレオチド。
請求項１から３のいずれか１項に記載のアンチセンスオリゴヌクレオチドと、眼の疾患を予防および／または治療する方法において使用される薬学的に許容される担体と、を含む、医薬組成物。
前記眼の疾患は、緑内障、後嚢混濁、ドライアイ、マルファンまたはロエイス−ディーツ症候群、黄斑変性、網膜芽細胞腫、および脈絡膜癌からなる群から選択される、請求項１から３のいずれか１項に記載の方法において使用されるアンチセンスオリゴヌクレオチドまたは請求項４に記載の方法において使用される医薬組成物。
前記黄斑変性は、加齢黄斑変性症、糖尿病性黄斑エンドマ、または白内障である、請求項５に記載の方法において使用されるアンチセンスオリゴヌクレオチドまたは医薬組成物。