JP2016504417A - Intein-mediated protein purification - Google Patents
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Abstract
本発明は、インテインC断片のC末端に融合した、所望のタンパク質(POI)を含む第1の融合タンパク質と、インテインN断片及び精製タグを含む第2の融合タンパク質とを接触させて、第1の融合タンパク質と、第2の融合タンパク質との複合体を形成するステップと、インテインC断片からPOIを切断するステップであって、タンパク質を複合体から遊離させるステップと、POIを単離するステップとを含むPOIを精製するための方法、組成物、使用及びキットを含む。本発明はまた、融合タンパク質及びベクターを含む。The present invention comprises contacting a first fusion protein containing a desired protein (POI) fused to the C-terminus of an intein C fragment with a second fusion protein containing an intein N fragment and a purification tag, Forming a complex of the fusion protein of and a second fusion protein, cleaving the POI from the intein C fragment, releasing the protein from the complex, and isolating the POI Including methods, compositions, uses and kits for purifying POI. The present invention also includes fusion proteins and vectors.
Description
本発明は一般的に、タンパク質精製及びタンパク質切断の分野に関する。 The present invention relates generally to the fields of protein purification and protein cleavage.
連邦政府資金援助研究の声明
本発明は、米国空軍/空軍科学研究所提供のFA9550−12−1−0330及び全米科学財団提供の1150478によって米国政府の支援を受けて行われた。政府は、本発明に一定の権利を有する。
STATEMENT OF FEDERALLY SPONSORED RESEARCH This invention was made with US government support by FA95550-12-1-0330 provided by the US Air Force / Air Force Science Laboratory and 1150478 provided by the National Science Foundation. The government has certain rights in the invention.
本発明の範囲を限定することなく、インテイン媒介によるタンパク質の精製に関連する本発明の背景を記載する。 Without limiting the scope of the invention, the background of the invention relating to intein-mediated protein purification is described.
米国特許出願第2006/0141570号明細書(2005年11月16日出願)は、生成物タンパク質ドメイン、インテイン及び少なくとも1種の凝集体タンパク質ドメインを含む融合タンパク質であって、この凝集体タンパク質ドメインがポリヒドロキシアルカノエート(PHA)の顆粒に特異的に関与することができるタンパク質を含み、宿主細胞において発現させることによって実施した、組換えタンパク質の精製について開示している。 US 2006/0141570 (filed Nov. 16, 2005) is a fusion protein comprising a product protein domain, an intein and at least one aggregate protein domain, wherein the aggregate protein domain comprises: Disclosed is the purification of recombinant proteins, including proteins that can be specifically involved in granules of polyhydroxyalkanoate (PHA) and carried out by expression in host cells.
欧州特許出願第1117693B1号明細書(1999年9月30日出願)は、インテインに融合した標的タンパク質を第1のステップでチオール試薬によって選択的に切断し、標的タンパク質のカルボキシ末端チオエステルを形成し、インテインから標的タンパク質を遊離させる、半合成融合タンパク質を産生するためのインビトロでの方法について開示している。その後のステップにおいて、アミノ末端にシステインを有する所望の合成タンパク質又はペプチドを標的タンパク質に連結する。DTTなどの標準的チオール試薬又は無臭のMESNAなどの連結用に最適化したチオール試薬を第1のステップにおいて使用することができる。この方法は、標的タンパク質をインテインに結合させるチオエステル結合に所望のペプチドを直接連結させると言われている。この方法のインビボでの変法は、細胞毒性タンパク質の産生を可能にすると言われており、インテリンに融合した不活性な切断型タンパク質をインビボに導入し、次にこの融合生成物を選択的に切断し、細胞毒性タンパク質の本来の活性を復活させるために、合成タンパク質又はペプチドをその後標的タンパク質のカルボキシ末端チオエステルに連結する。 European Patent Application No. 1117693B1 (filed Sep. 30, 1999) selectively cleaves a target protein fused to an intein with a thiol reagent in a first step to form a carboxy-terminal thioester of the target protein; An in vitro method for producing a semisynthetic fusion protein that releases a target protein from an intein is disclosed. In subsequent steps, the desired synthetic protein or peptide having a cysteine at the amino terminus is linked to the target protein. Standard thiol reagents such as DTT or thiol reagents optimized for ligation such as odorless MESNA can be used in the first step. This method is said to link the desired peptide directly to a thioester bond that binds the target protein to the intein. An in vivo modification of this method is said to allow the production of cytotoxic proteins, introducing an inactive truncated protein fused to intelin in vivo, and then selectively selecting the fusion product. To cleave and restore the original activity of the cytotoxic protein, the synthetic protein or peptide is then linked to the carboxy terminal thioester of the target protein.
欧州特許出願第1151117A4号明細書(2005年8月10日出願)は、インテイン、例えば、メタノバクテリウム・サーモトロフィーカム(Methanobacterium thermotrophicum)のRIR1インテインを利用する、発現タンパク質の連結方法を開示している。インテインのC末端アスパラギン又はN末端システインのいずれかがアラニンに置換したMthのRIR1インテインの構築物は、2以上の発現タンパク質の融合で使用するために、指定のN末端、例えば、システインを有するタンパク質の単離を容易にすることができる。この方法は、C末端チオエステルをタグ付けした標的タンパク質及び改変MthのRIR1インテインなどのインテインを介して指定のN末端を有する第2の標的タンパク質を生成するステップと、これらのタンパク質を連結するステップとを含む。環式の、又は重合したタンパク質を産生するために類似の方法を提供する。C末端又はN末端それぞれを切断するために操作した改変インテイン及びこれらの改変インテインをコードするDNA及びプラスミドも提供する。 European Patent Application No. 1151117A4 (filed Aug. 10, 2005) discloses a method for linking expressed proteins utilizing an intein, for example the RIR1 intein of Methanobacterium thermotrophicum. Yes. Mth RIR1 intein constructs in which either the intein C-terminal asparagine or the N-terminal cysteine is replaced by alanine are used for the fusion of two or more expressed proteins of proteins with a specified N-terminus, eg, cysteine. Isolation can be facilitated. The method comprises generating a second target protein having a designated N-terminus via an intein such as a target protein tagged with a C-terminal thioester and a modified Mth RIR1 intein; and linking these proteins including. Similar methods are provided for producing cyclic or polymerized proteins. Also provided are modified inteins engineered to cleave each C-terminus or N-terminus, and DNAs and plasmids encoding these modified inteins.
本発明は、インテインC断片のC末端に融合した、所望のタンパク質(POI;protein of interest)を含む第1の融合タンパク質と、インテインN断片及び精製タグを含む第2の融合タンパク質とを接触させて、第1の融合タンパク質と、第2の融合タンパク質との複合体を形成するステップと、インテインC断片からPOIを切断するステップであって、タンパク質を複合体から遊離させるステップと、POIを単離するステップとを含む、POIの精製方法を含む。特定の態様では、インテインは、スプリットインテイン、ノストック・パンクチフォルメ(Nostoc punctiforme)の天然にスプリットしたインテインDnaEであり、及び/又はシネコシスティス(Synechocystis)種のSsp、アファノティーキ・ハロフィチカ(Aphanothece halophytica)のAha、アファニゾメノン・オバリスポラム(Aphanizomenon ovalisporum)のAov、アナバエナ(Anabaena)種のAsp、アナバエナ・バリアビリス(Anabaena variabilis)のAva、シリンドロスペルモプシス・ラシボルスキイ(Cylindrospermopsis raciborskii)のCra(CS505)、シアノセイス(CyanotiIece)種のCsp(CCYOllO)、シアノセイス(Cyanothece)種のCsp(PCC8801)、クロコスファエラ・ワトソニイ(Crocosphaera watsonii)のCwa、ミクロシスチス・エルギノサ(Microcystis aeruginosa)のMaer(NIES843)、ミクロコレス・クソノプラステス(Microcoleus chthonoplastes)のMcht(PCC7420)−2、オシラトリア・リムネティカ(Oscillatoria limnetica)のOli、シネココッカス・エロンガタス(Synechococcus elongates)のSel(PC7942)、シネココッカス(Synechococcus)種のSsp(PCC7002)、サーモシネココッカス・エロンガタス(Thernlosynechococcus elongates)のTel、トリコデスミウム・エリスラエウム(Trichodesmium erythraeum)のTer−3及びサーモシネココッカス・ウルカヌス(Thernlosynechococcus vulcanus)のTvuからなる群から選択される。特定の態様では、インテインC断片は、変異していない(non-mutated)インテインC断片と比較してN末端切断を著しく遅らせ、トランススプライシング能力を抑制し、C末端切断速度及び効率を増加させる変異(mutation)を有し、C−インテイン断片は、C−インテイン断片内にAsp118Gly変異を有し、及び/又はインテインC断片は、配列番号37のアミノ酸配列を含む。特定の態様では、精製タグは、インテインN断片のC末端にあるインテインスプリット接合部に位置し、インテインN断片はN末端切断活性を消失させる変異を有し、及び/又はインテインN断片は、配列番号39のアミノ酸配列を含む。特定の態様では、精製タグは、キチン結合ドメイン(CBD)、6×ヒスチジン、マルトース結合ドメイン(MBP)、グルタチオン−S−トランスフェラーゼ(GST)及びそれらの組み合わせからなる群から選択される親和性タグである。特定の態様では、精製タグは、配列番号38からなる群から選択される親和性タグであり、並びに/又は第2の融合タンパク質は、配列番号4、10、24及びそれらの組み合わせからなる群から選択されるアミノ酸配列を含む。特定の態様では、精製タグは、エラスチン様ペプチド(ELP)であり、及び/又は精製タグは、配列番号38のアミノ酸配列を含む沈降タグ(precipitation tag)である。特定の態様では、精製タグは、沈降タグであり、この方法はさらに、複合体を沈降させるステップと、複合体を洗浄するステップと、複合体を可溶化するステップと、インテイン切断を導入するステップとを含み、特定の態様では、複合体の沈降及び複合体の洗浄は、1又は2以上の切断阻害剤の存在下で実行する。特定の態様では、精製タグは親和性タグであり、この方法はさらに、複合体を親和性タグに結合することができる親和性樹脂に結合させるステップと、切断ステップの前に複合体を洗浄緩衝液で洗浄するステップと、インテイン切断を誘導するステップとを含む。特定の態様では、複合体の結合及び複合体の洗浄は、1又は2以上の切断阻害剤の存在下で実行する。特定の態様では、インテイン切断の誘導は、還元剤又はキレート剤によって実行する。特定の態様では、インテイン切断の誘導は、複合体とエチレングリコールアミノエチルエステル(ethyleneglycolaminoethylester)四酢酸(EGTA)、ジエチレントリアミン五酢酸(DTPA)、ジピコリン酸(DPA)、ニトリロ三酢酸(NTA)からなる群から選択される1又は2以上のキレート剤とを接触させることを含む。特定の態様では、方法はさらに、切断を誘導する前に複合体を第1の洗浄緩衝液でインキュベートするステップであって、この洗浄緩衝液が切断を阻害し、及び/又はZn2+、Cu2、Mg2+、Co2+、Mn2+及びFe2+からなる群から選択される切断阻害剤を含むステップ;並びに/又は切断を誘導する前に複合体を第1の洗浄緩衝液で洗浄するステップであって、この洗浄緩衝液がC末端切断反応を阻害する切断阻害剤を含むステップを含む。特定の態様では、C末端タンパク質切断は、硫黄誘導性C末端切断の誘導、DTT、Zn2+キレート剤、トリアルキルホスフィン(トリス(2−カルボキシエチル)ホスフィン(TCEP)、2−メルカプトエタノール、システイン及びそれらの組み合わせからなる群から選択される切断誘導剤の存在下での硫黄誘導性C末端切断の誘導を含むC末端タンパク質切断の誘導、キレート剤を使用した切断阻害剤のキレートによるインテイン切断の誘導を含むC末端タンパク質切断の誘導を含む。特定の態様では、精製タグが親和性タグの場合、この方法はさらに、複合体を親和性樹脂に結合させるステップを含み、複合体からのPOIの分離は複合体が結合した親和性樹脂からPOIを分離することを含み、及び/又は精製タグが沈降タグの場合、この方法はさらに、複合体を沈降させるステップであって、沈降した複合体を形成し、複合体からのPOIの分離が沈降した複合体の可溶化を含み、可溶化した複合体が形成されるステップと、可溶化した複合体からPOIを分離するステップとを含む。特定の態様では、この方法はさらに、第2の融合タンパク質からインテインC断片を解離することによって第2の融合タンパク質を再生するステップを含む。特定の態様では、POIは生理活性ペプチド、酵素、酵素阻害剤、酵素触媒部位、DNA結合タンパク質、単離したタンパク質ドメイン、受容体のリガンド、受容体、成長因子、サイトカイン、構造タンパク質、抗体、抗体断片、エピトープ、エピトープ結合領域、抗原、アレルゲン及び所望のタンパク質配列の連続した又は重複した断片から選択される。特定の態様では、精製タグは親和性タグであり、この方法はさらに、C末端タンパク質切断を誘導する前に複合体を親和性樹脂に結合させ第2の融合タンパク質からインテインC断片を解離することによって親和性樹脂を再生するステップを含む。特定の態様では、この方法はさらに、第2の融合タンパク質からインテインC断片を解離することによって第2の融合タンパク質を再生するステップと、再生した第2の融合タンパク質と第1の融合タンパク質とを再度接触させるステップとを含む。特定の態様では、精製タグが親和性タグの場合、第2の融合タンパク質はキチンビーズ、ニッケル樹脂、アミロース樹脂、グルタチオン及びそれらの組み合わせからなる群から選択される親和性樹脂に結合させ、精製タグが第2の融合タンパク質の沈降を媒介する沈降タグの場合、複合体を沈降させる。 In the present invention, a first fusion protein containing a desired protein (POI; protein of interest) fused to the C-terminus of an intein C fragment is contacted with a second fusion protein containing an intein N fragment and a purification tag. Forming a complex of the first fusion protein and the second fusion protein, cleaving the POI from the intein C fragment, releasing the protein from the complex, and And a step of purifying the POI. In a particular embodiment, the intein is split intein, a naturally split intein DnaE of Nostoc punctiforme and / or Ssp of Synechocystis sp., Aphanothece halophytica Aha, Aov of Aphanizomenon ovalisporum, Asp of Anabaena spp., Ava of Anabaena variabilis, Cylindrospermopsis raCiboroti (Cylindrospermopsis raCiboroti) Species Csp (CCYOllO), Cyanothece Species Csp (PCC8801), Crocosphaera watsonii Cwa, Microcystis et Maer (NIES843) of Microcystis aeruginosa, Mcht (PCC7420) -2 of Microcoleus chthonoplastes, Oli of Oscillatoria limnetica (long) of Synechococcus elongatas (PC) Synspococcus species Ssp (PCC7002), Thermocinecococcus elongatas Tel, Trichodesmium erythraeum Ter-3 and Thermocinecocus vulcanus coccus ulcanus cc Selected from the group consisting of Tvu. In certain embodiments, the intein C fragment is a mutation that significantly delays N-terminal cleavage, suppresses trans-splicing ability, and increases C-terminal cleavage rate and efficiency compared to a non-mutated intein C fragment. The C-intein fragment has an Asp118Gly mutation within the C-intein fragment, and / or the intein C fragment comprises the amino acid sequence of SEQ ID NO: 37. In certain aspects, the purification tag is located at the intein split junction at the C-terminus of the intein N fragment, the intein N fragment has a mutation that eliminates N-terminal cleavage activity, and / or the intein N fragment is a sequence It contains the amino acid sequence of number 39. In a particular embodiment, the purification tag is an affinity tag selected from the group consisting of a chitin binding domain (CBD), 6x histidine, maltose binding domain (MBP), glutathione-S-transferase (GST) and combinations thereof. is there. In certain embodiments, the purification tag is an affinity tag selected from the group consisting of SEQ ID NO: 38, and / or the second fusion protein is from the group consisting of SEQ ID NOs: 4, 10, 24, and combinations thereof. Contains a selected amino acid sequence. In certain embodiments, the purification tag is an elastin-like peptide (ELP) and / or the purification tag is a precipitation tag comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 38. In certain aspects, the purification tag is a sedimentation tag, and the method further includes precipitating the complex, washing the complex, solubilizing the complex, and introducing intein cleavage. In certain embodiments, the precipitation of the complex and the washing of the complex are performed in the presence of one or more cleavage inhibitors. In certain embodiments, the purification tag is an affinity tag, and the method further includes binding the complex to an affinity resin capable of binding to the affinity tag, and washing the complex before the cleavage step. Washing with a liquid and inducing intein cleavage. In certain embodiments, complex binding and complex washing are performed in the presence of one or more cleavage inhibitors. In certain aspects, induction of intein cleavage is performed by a reducing agent or a chelating agent. In a particular embodiment, the induction of intein cleavage is a group consisting of a complex and ethyleneglycolaminoethylester tetraacetic acid (EGTA), diethylenetriaminepentaacetic acid (DTPA), dipicolinic acid (DPA), nitrilotriacetic acid (NTA). Contacting with one or more chelating agents selected from: In certain aspects, the method further comprises incubating the complex with a first wash buffer prior to inducing cleavage, wherein the wash buffer inhibits cleavage and / or Zn 2+, Cu 2, Mg 2+. Including a cleavage inhibitor selected from the group consisting of Co2 +, Mn2 + and Fe2 +; and / or washing the complex with a first wash buffer prior to inducing cleavage comprising the wash buffer Comprising a cleavage inhibitor that inhibits the C-terminal cleavage reaction. In certain aspects, C-terminal protein cleavage is sulfur-induced C-terminal cleavage induction, DTT, Zn2 + chelator, trialkylphosphine (tris (2-carboxyethyl) phosphine (TCEP), 2-mercaptoethanol, cysteine and the like Induction of C-terminal protein cleavage, including induction of sulfur-induced C-terminal cleavage in the presence of a cleavage inducer selected from the group consisting of combinations of the above, induction of intein cleavage by chelation of a cleavage inhibitor using a chelating agent In certain embodiments, when the purification tag is an affinity tag, the method further comprises binding the complex to an affinity resin, wherein the separation of the POI from the complex comprises Separating the POI from the complex-bound affinity resin and / or the purification tag is In this case, the method further comprises the step of sedimenting the complex, comprising forming a sedimented complex, and the separation of the POI from the complex comprises solubilization of the sedimented complex, whereby the solubilized complex is formed. And separating the POI from the solubilized complex, In certain embodiments, the method further comprises isolating the second fusion protein by dissociating the intein C fragment from the second fusion protein. In certain embodiments, the POI is a bioactive peptide, enzyme, enzyme inhibitor, enzyme catalytic site, DNA binding protein, isolated protein domain, receptor ligand, receptor, growth factor, cytokine, Consecutive or structural proteins, antibodies, antibody fragments, epitopes, epitope binding regions, antigens, allergens and desired protein sequences In certain embodiments, the purification tag is an affinity tag, and the method further includes binding the complex to an affinity resin prior to inducing C-terminal protein cleavage, and a second fusion protein. Regenerating the affinity resin by dissociating the intein C fragment from the method In certain embodiments, the method further regenerates the second fusion protein by dissociating the intein C fragment from the second fusion protein. And re-contacting the regenerated second fusion protein with the first fusion protein In certain embodiments, when the purification tag is an affinity tag, the second fusion protein is chitin beads, Binding to an affinity resin selected from the group consisting of nickel resin, amylose resin, glutathione and combinations thereof, If the produced tag is a precipitation tag that mediates precipitation of the second fusion protein, the complex is precipitated.
本発明は、所望のタンパク質(POI)及びインテインC断片を含む第1の融合タンパク質を提供するステップであって、POIがインテインC断片のC末端に融合し、インテインが天然にスプリットしたインテインDnaEであり、インテインC断片がインテインC断片内にAsp118Gly変異を有するステップと、インテインN断片及び精製タグを含む第2の融合タンパク質を提供するステップであって、精製タグをインテインN断片のC末端のインテインスプリット接合部に挿入し、インテインN断片がN末端切断活性を消失させる変異を有するステップと、結合緩衝液中で第1の融合タンパク質と第2の融合タンパク質とを接触させるステップであって、第2の融合タンパク質が精製タグに結合する樹脂に結合し、精製タグが精製樹脂に特異的に結合することができ、第1の融合タンパク質と第2の融合タンパク質の複合体が形成され、結合緩衝液がPOIとインテインC断片の間の第1の融合タンパク質のC末端タンパク質切断を阻害するステップと、POIとインテインC断片との間の第1の融合タンパク質のC末端タンパク質切断を誘導し、それによってPOIを遊離させるステップと、第1の融合タンパク質及びインテインC断片のC末端からPOIを分離するステップとを含む、POIの精製方法の実施形態を含む。 The present invention provides a first fusion protein comprising a desired protein (POI) and an intein C fragment, wherein the POI is fused to the C-terminus of the intein C fragment and the intein is naturally split in DnaE. The intein C fragment has an Asp118Gly mutation in the intein C fragment and providing a second fusion protein comprising the intein N fragment and a purification tag, wherein the purification tag is an intein at the C-terminus of the intein N fragment. Inserting the split junction and having the mutation that causes the intein N fragment to lose N-terminal cleavage activity, and contacting the first fusion protein and the second fusion protein in a binding buffer, wherein The two fusion proteins bind to the resin that binds to the purification tag, and the purification tag C-terminal protein of the first fusion protein that can bind specifically to the resin, forms a complex of the first fusion protein and the second fusion protein, and the binding buffer is between the POI and the intein C fragment Inhibiting the cleavage, inducing C-terminal protein cleavage of the first fusion protein between the POI and the intein C fragment, thereby releasing the POI, and C of the first fusion protein and the intein C fragment. Separating the POI from the terminus, and an embodiment of a method for purifying the POI.
本発明はまた、所望のタンパク質(POI)及びインテインC断片を含む第1の融合タンパク質を提供するステップであって、POIがインテインC断片のC末端に融合し、インテインが天然にスプリットしたインテインDnaEであり、インテインC断片がインテインC断片内にAsp118Gly変異を有するステップと、インテインN断片及び沈降タグを含む第2の融合タンパク質を提供するステップであって、沈降タグをインテインN断片のC末端にあるインテインスプリット接合部に挿入し、インテインN断片がN末端切断活性を消失させる変異を有するステップと、結合緩衝液中で第1の融合タンパク質と第2の融合タンパク質とを接触させるステップであって、第1の融合タンパク質と第2の融合タンパク質の複合体が形成され、結合緩衝液がPOIとインテインC断片の間の第1の融合タンパク質のC末端タンパク質切断を阻害するステップと、第1の融合タンパク質と第2の融合タンパク質の複合体を沈降させるステップと、複合体を低塩緩衝液中で可溶化するステップと、POIとインテインC断片の間の第1の融合タンパク質のC末端タンパク質切断を誘導し、それによってPOIを遊離させるステップと、第1の融合タンパク質と第2の融合タンパク質の複合体から2回目の沈降によってPOIを分離するステップとを含む、POIの精製方法の実施形態を含む。 The present invention also provides a first fusion protein comprising a desired protein (POI) and an intein C fragment, wherein the POI is fused to the C-terminus of the intein C fragment, and the intein DnaE is naturally split. The intein C fragment has an Asp118Gly mutation in the intein C fragment and a second fusion protein comprising an intein N fragment and a precipitation tag, wherein the precipitation tag is attached to the C-terminus of the intein N fragment. Inserting an intein split junction with a mutation that causes the intein N fragment to lose N-terminal cleavage activity, and contacting the first and second fusion proteins in a binding buffer. A complex of the first fusion protein and the second fusion protein is formed Binding buffer inhibits C-terminal protein cleavage of the first fusion protein between POI and intein C fragment, precipitating the complex of the first fusion protein and the second fusion protein, Solubilizing the body in a low salt buffer, inducing C-terminal proteolytic cleavage of the first fusion protein between the POI and the intein C fragment, thereby releasing the POI, and the first fusion protein And separating the POI from the complex of the second fusion protein by a second round of sedimentation.
本発明は、所望のタンパク質(POI)及びインテインC断片を含み、POIがインテインC断片のC末端に融合し、インテインが天然にスプリットしたインテインDnaEであり、インテインC断片がインテインC断片内にAsp118Gly変異を有する融合タンパク質の実施形態を含む。特定の態様では、融合タンパク質は配列番号37を含む。特定の態様では、POIは生理活性ペプチド、酵素、酵素阻害剤、酵素触媒部位、DNA結合タンパク質、単離したタンパク質ドメイン、受容体のリガンド、受容体、成長因子、サイトカイン、抗体、抗体断片、エピトープ、エピトープ結合領域、抗原、アレルゲン及び所望のタンパク質配列の連続した又は重複した断片から選択される。 The present invention includes the desired protein (POI) and the intein C fragment, the POI is fused to the C-terminus of the intein C fragment, the intein is a naturally split intein DnaE, and the intein C fragment is within the intein C fragment. Embodiments of fusion proteins having mutations are included. In a particular embodiment, the fusion protein comprises SEQ ID NO: 37. In certain embodiments, the POI is a bioactive peptide, enzyme, enzyme inhibitor, enzyme catalytic site, DNA binding protein, isolated protein domain, receptor ligand, receptor, growth factor, cytokine, antibody, antibody fragment, epitope Selected from contiguous or overlapping fragments of the epitope binding region, antigen, allergen and the desired protein sequence.
本発明は、インテインN断片及び精製タグを含み、精製タグがインテインN断片のC末端にあるインテインスプリット接合部に位置し、インテインN断片がN末端切断活性を消失させる変異を有する融合タンパク質の実施形態を含む。特定の態様では、融合タンパク質は配列番号10、24、配列番号21、22、配列番号4、配列番号23又はそれらの組み合わせを含む。 The present invention implements a fusion protein comprising an intein N fragment and a purification tag, wherein the purification tag is located at the intein split junction at the C-terminus of the intein N fragment and the intein N fragment has a mutation that eliminates N-terminal cleavage activity Includes form. In particular aspects, the fusion protein comprises SEQ ID NO: 10, 24, SEQ ID NO: 21, 22, SEQ ID NO: 4, SEQ ID NO: 23, or combinations thereof.
本発明は、プロモーターに作動可能に結合したインテインC断片のC末端をコードする第1のDNAエレメントを含むベクターであって、インテインC断片が変異していないインテインC断片と比較してN末端切断を抑制し、C末端切断を増加させる変異を有し、ベクターが所望のタンパク質(POI)をコードする第2のDNAエレメントのインテインC断片のC末端への挿入を可能にするクローニング部位を有するベクターの実施形態を含む。特定の態様では、インテインは、ノストック・パンクチフォルメの天然にスプリットしたインテインDnaEであり、C−インテイン断片はC−インテイン断片内にAsp118Gly変異を有する。特定の態様では、第1のDNAエレメントは配列番号37のアミノ酸配列をコードし、及び/又は第1のDNAエレメントは配列番号40を含む。特定の態様では、POIは生理活性ペプチド、酵素、酵素阻害剤、酵素触媒部位、DNA結合タンパク質、単離したタンパク質ドメイン、受容体のリガンド、受容体、成長因子、サイトカイン、抗体、抗体断片、エピトープ、エピトープ結合領域、抗原、アレルゲン及び所望のタンパク質配列の連続した又は重複した断片から選択される。 The present invention relates to a vector comprising a first DNA element encoding the C-terminus of an intein C fragment operably linked to a promoter, wherein the intein C fragment is not mutated compared to an intein C fragment. Vector having a cloning site that has a mutation that suppresses C and increases C-terminal truncation, and allows the vector to insert the intein C fragment of the second DNA element encoding the desired protein (POI) Embodiments are included. In a particular embodiment, the intein is a naturally split intein DnaE of Nostock punctiforme and the C-intein fragment has an Asp118Gly mutation within the C-intein fragment. In certain embodiments, the first DNA element encodes the amino acid sequence of SEQ ID NO: 37 and / or the first DNA element comprises SEQ ID NO: 40. In certain embodiments, the POI is a bioactive peptide, enzyme, enzyme inhibitor, enzyme catalytic site, DNA binding protein, isolated protein domain, receptor ligand, receptor, growth factor, cytokine, antibody, antibody fragment, epitope Selected from contiguous or overlapping fragments of the epitope binding region, antigen, allergen and the desired protein sequence.
本発明は、プロモーターに作動可能に結合したインテインN断片及び精製タグを含む融合タンパク質をコードするDNAエレメントを含むベクターであって、精製タグがインテインN断片のC末端にあるインテインスプリット接合部に位置し、インテインN断片がN末端切断活性を消失させる変異を有するベクターの実施形態を含む。特定の態様では、精製タグは、親和性タグであり、及び/又は精製タグは、沈降タグである。特定の態様では、DNAエレメントは配列番号23又は配列番号41を含む。 The present invention is a vector comprising a DNA element encoding a fusion protein comprising an intein N fragment operably linked to a promoter and a purification tag, wherein the purification tag is located at the intein split junction at the C-terminus of the intein N fragment And an embodiment of the vector in which the intein N fragment has a mutation that abolishes N-terminal cleavage activity. In certain aspects, the purification tag is an affinity tag and / or the purification tag is a precipitation tag. In certain embodiments, the DNA element comprises SEQ ID NO: 23 or SEQ ID NO: 41.
本発明は、プロモーターに作動可能に結合したインテインC断片のC末端をコードする第1のDNAエレメントを含む第1のベクターであって、インテインC断片が変異していないインテインC断片と比較してN末端切断を抑制し、C末端切断を増加させる変異を有し、第1のベクターが所望のタンパク質(POI)をコードする第2のDNAエレメントのインテインC断片のC末端への挿入を可能にするクローニング部位を有する第1のベクターと、プロモーターに作動可能に結合したインテインN断片及び精製タグを含む融合タンパク質をコードする第2のDNAエレメントを含む第2のベクターであって、精製タグがインテインN断片のC末端にあるインテインスプリット接合部に位置し、インテインN断片がN末端切断活性を消失させる変異を有する第2のベクター;又はインテインN断片及びインテインN断片のC末端にあるインテインスプリット接合部に位置する精製タグを含む融合タンパク質であって、インテインN断片がN末端切断活性を消失させる変異を有する融合タンパク質と、POIをコードするDNAエレメントを第1のベクターのクローニング部位に挿入するための指示書と、POIを単離するための指示書とを含む、POIを単離するためのキットの実施形態を含む。 The present invention relates to a first vector comprising a first DNA element encoding the C-terminus of an intein C fragment operably linked to a promoter, as compared to an intein C fragment in which the intein C fragment is not mutated. Has mutations that suppress N-terminal truncation and increase C-terminal truncation, allowing the first vector to insert the intein C fragment of the second DNA element encoding the desired protein (POI) into the C-terminus A second vector comprising a first vector having a cloning site that comprises a second DNA element encoding a fusion protein comprising an intein N fragment operably linked to a promoter and a purification tag, wherein the purification tag is an intein Located at the intein split junction at the C-terminus of the N fragment, the intein N fragment loses N-terminal cleavage activity A fusion protein comprising an intein N fragment and a purification tag located at the intein split junction at the C-terminus of the intein N fragment, wherein the intein N fragment abolishes N-terminal cleavage activity A method for isolating a POI comprising a fusion protein having a mutation, instructions for inserting a DNA element encoding the POI into the cloning site of the first vector, and instructions for isolating the POI. Includes kit embodiments.
本発明は、インテインC断片のC末端に融合した所望のタンパク質(POI)を含む第1の融合タンパク質とインテインN断片及び精製タグを含む第2の融合タンパク質とを接触させて第1の融合タンパク質と第2の融合タンパク質の複合体を形成するステップであって、インテインC断片が変異していないインテインC断片と比較してN末端切断を著しく遅らせ、トランススプライシング能力を抑制し、C末端切断速度及び効率を増加させる変異を有するステップと;インテインC断片からPOIを切断するステップであって、タンパク質を複合体から遊離させるステップと、POIを単離するステップとを含む、POIの精製方法の実施形態を含む。特定の態様では、インテインは、天然にスプリットしたインテインDnaEであり、C−インテイン断片はC−インテイン断片内にAsp118Gly変異を有する。 The present invention provides a first fusion protein comprising contacting a first fusion protein containing a desired protein (POI) fused to the C-terminus of an intein C fragment with a second fusion protein containing an intein N fragment and a purification tag. And a second fusion protein complex, wherein the intein C fragment is significantly delayed in N-terminal cleavage compared to an intein C fragment in which the intein C fragment is not mutated, the trans-splicing ability is suppressed, and the C-terminal cleavage rate is reduced. Carrying out a method of purifying POI, comprising: cleaving POI from an intein C fragment, and releasing the protein from the complex; and isolating the POI. Includes form. In a particular embodiment, the intein is a naturally split intein DnaE and the C-intein fragment has an Asp118Gly mutation within the C-intein fragment.
本発明は、所望のタンパク質(POI)及びインテインC断片を含む第1の融合タンパク質を提供するステップであって、POIがインテインC断片のC末端に融合し、インテインは天然にスプリットしたインテインDnaEであり、インテインC断片がインテインC断片内にAsp118Gly変異を有するステップと、インテインN断片及び精製タグを含む第2の融合タンパク質を提供するステップであって、インテインN断片がN末端切断活性を消失させる変異を有するステップと、結合緩衝液中で第1の融合タンパク質と第2の融合タンパク質とを接触させるステップであって、第2の融合タンパク質が精製タグに結合する樹脂に結合し、精製タグが精製樹脂に特異的に結合することができ、第1の融合タンパク質と第2の融合タンパク質の複合体が形成され、結合緩衝液がPOIとインテインC断片の間の第1の融合タンパク質のC末端タンパク質切断を阻害するステップと、POIとインテインC断片の間の第1の融合タンパク質のC末端タンパク質切断を誘導し、それによってPOIを遊離させるステップと、第1の融合タンパク質及びインテインC断片のC末端からPOIを分離するステップとを含む、POIの精製方法の実施形態を含む。 The present invention provides a first fusion protein comprising a desired protein (POI) and an intein C fragment, wherein the POI is fused to the C-terminus of the intein C fragment and the intein is a naturally split intein DnaE. Yes, the intein C fragment has an Asp118Gly mutation in the intein C fragment, and provides a second fusion protein comprising the intein N fragment and a purification tag, wherein the intein N fragment abolishes N-terminal cleavage activity Contacting the first fusion protein and the second fusion protein in a binding buffer, wherein the second fusion protein binds to a resin that binds to the purification tag, and the purification tag is A first fusion protein and a second fusion tongue that can specifically bind to a purified resin A protein complex is formed and the binding buffer inhibits C-terminal protein cleavage of the first fusion protein between POI and intein C fragment; and first fusion protein between POI and intein C fragment An embodiment of a method for purifying POI comprising the steps of inducing C-terminal protein cleavage of the protein and thereby releasing POI and separating the POI from the C-terminus of the first fusion protein and the intein C fragment.
本発明は、所望のタンパク質(POI)及びインテインC断片を含む融合タンパク質であって、POIがインテインC断片のC末端に融合し、インテインが天然にスプリットしたインテインDnaEであり、インテインC断片がインテインC断片内にAsp118Gly変異を有する融合タンパク質の実施形態を含む。 The present invention relates to a fusion protein comprising a desired protein (POI) and an intein C fragment, wherein the POI is fused to the C-terminus of the intein C fragment, the intein is naturally split into DnaE, and the intein C fragment is the intein C fragment. Embodiments of fusion proteins having Asp118Gly mutations within the C fragment are included.
本発明は、プロモーターに作動可能に結合したインテインC断片のC末端をコードする第1のDNAエレメントを含む第1のベクターであって、インテインC断片がインテインC断片内にAsp118Gly変異を有し、第1のベクターが所望のタンパク質(POI)をコードする第2のDNAエレメントのインテインC断片のC末端への挿入を可能にするクローニング部位を有する第1のベクターと、プロモーターに作動可能に結合したインテインN断片及び精製タグを含む融合タンパク質をコードする第2のDNAエレメントを含む第2のベクター;又はインテインN断片及び精製タグを含む融合タンパク質と、POIをコードするDNAエレメントを第1のベクターのクローニング部位に挿入するための指示書と、POIを単離するための指示書とを含む、POIを単離するためのキットの実施形態を含む。 The present invention is a first vector comprising a first DNA element encoding the C-terminus of an intein C fragment operably linked to a promoter, the intein C fragment having an Asp118Gly mutation in the intein C fragment, A first vector having a cloning site that allows insertion of an intein C fragment of a second DNA element encoding the desired protein (POI) into the C-terminus and operably linked to a promoter; A second vector comprising a second DNA element encoding a fusion protein comprising an intein N fragment and a purification tag; or a fusion protein comprising an intein N fragment and a purification tag and a DNA element encoding POI of the first vector Instructions for insertion into the cloning site and isolation of POI And a of instructions, including an embodiment of a kit for isolating a POI.
本発明は、インテインC断片のC末端に融合した所望のタンパク質(POI)を含む第1の融合タンパク質とインテインN断片及び精製タグを含む第2の融合タンパク質とを接触させて第1の融合タンパク質と第2の融合タンパク質の複合体を形成するステップであって、精製タグがN断片のC末端にあるインテインスプリット接合部に位置するステップと、インテインC断片からPOIを切断するステップであって、タンパク質を複合体から遊離させるステップと、POIを単離するステップとを含む、POIの精製方法の実施形態を含む。 The present invention provides a first fusion protein comprising contacting a first fusion protein containing a desired protein (POI) fused to the C-terminus of an intein C fragment with a second fusion protein containing an intein N fragment and a purification tag. Forming a complex of the second fusion protein with a purification tag located at the intein split junction at the C-terminus of the N fragment, and cleaving POI from the intein C fragment, An embodiment of a method for purifying POI comprising the step of releasing the protein from the complex and isolating the POI.
本発明の特徴及び利点をより完全に理解するために、添付した図面に沿って本発明の詳細な説明をここに記載する。
本発明の様々な実施形態の作製及び使用を以下に詳細に論じるが、本発明は、多種多様な具体的な状況において実施することができる多くの応用可能な本発明の概念を提供するものであることを理解されたい。本明細書で記載した具体的な実施形態は、本発明を作製し、使用するための具体的な方法を例示するのみであり、本発明の範囲を限定しない。 The making and use of various embodiments of the present invention are discussed in detail below, but the present invention provides many applicable inventive concepts that can be implemented in a wide variety of specific situations. I want you to understand. The specific embodiments described herein are merely illustrative of specific ways to make and use the invention, and do not limit the scope of the invention.
本発明の理解を容易にするために、いくつかの用語を以下に定義する。本明細書で定義した用語は、本発明に関連する分野の当業者によって通常理解されている意味を有する。「1つの(a)」、「1つの(an)」及び「その(the)」などの用語は、単数の実体のみを意味するだけではなく、具体的な実施例を例示のために使用することができるその一般型を含む。本明細書の専門用語は、本発明の特定の実施形態を説明するために使用されているが、それらの使用は、特許請求の範囲で概説されている場合を除いて、本発明を限定しない。 In order to facilitate understanding of the present invention, several terms are defined below. Terms defined herein have meanings as commonly understood by a person of ordinary skill in the areas relevant to the present invention. Terms such as “a”, “an” and “the” do not only mean a singular entity, but also a specific example is used for illustration. Including its general type that can. The terminology herein is used to describe specific embodiments of the invention, but their use does not limit the invention except as outlined in the claims. .
用語「遺伝子」とは、機能的タンパク質、ポリペプチド又はペプチドをコードする単位を意味するために使用される。当業者によって理解されるように、この機能的用語には、ゲノム配列、cDNA配列又はそれらの断片若しくは組み合わせ、並びに、ヒトの手によって改変することができるものを含む遺伝子産物のいずれもが含まれる。精製された遺伝子、核酸、タンパク質などは、通常関連する少なくとも1種の混入核酸又はタンパク質から同定され、分離されたとき、これらの実体を意味するために使用される。 The term “gene” is used to mean a unit that encodes a functional protein, polypeptide or peptide. As will be appreciated by those skilled in the art, this functional term includes any of genomic products, cDNA sequences, or fragments or combinations thereof, as well as gene products, including those that can be modified by human hands. . Purified genes, nucleic acids, proteins, etc. are usually used to mean these entities when identified and separated from at least one contaminating nucleic acid or protein of interest.
本明細書で使用したように、用語「ベクター」とは、1つの細胞から別の細胞へDNA断片を移す核酸分子に関して使用する。ベクターはさらに、特定の配列を増やすために設計されたベクター、又は特定の配列に作動可能に結合したプロモーターを含む発現ベクター、又はこのようなプロモーターの導入を引き起こすように設計されたベクターと定義することができる。ベクターは、宿主細胞染色体と独立した状態で存在していてもよく、又は宿主細胞染色体に組み込まれていてもよい。 As used herein, the term “vector” is used in reference to nucleic acid molecules that transfer DNA fragments from one cell to another. A vector is further defined as a vector designed to increase a specific sequence, or an expression vector containing a promoter operably linked to a specific sequence, or a vector designed to cause the introduction of such a promoter. be able to. The vector may exist independently of the host cell chromosome or may be integrated into the host cell chromosome.
用語「宿主細胞」とは、古細菌、原核細胞又は真核細胞を問わず、核酸セグメント又は改変されたセグメントを含有するように操作された細胞を意味する。したがって、操作された、又は組換えられた細胞は、人の手によって組換えられた導入遺伝子を含有しない、天然に生じる細胞と区別することができる。 The term “host cell” means a cell that has been engineered to contain a nucleic acid segment or a modified segment, whether archaea, prokaryotic or eukaryotic. Thus, engineered or recombined cells can be distinguished from naturally occurring cells that do not contain a transgene that has been recombined by the hand of man.
核酸又はポリペプチド配列に関して、用語「改変された」又は「改変」又は「変更した」とは、挿入、欠失、置換、関連のある、若しくは関連のない配列との融合などの変化、人の手によって生じ得る変化、又は多型、対立遺伝子及びその他の構造型などの天然に生じ得る変化を含むことを意味する。改変には、所与のハイブリダイゼーションプローブを使用したハイブリダイゼーション特性が異なるゲノムDNA及びRNA配列が包含される。ポリヌクレオチド配列又はそれらの断片の改変には、機能を増加、減少させるか、又は機能に全く影響を及ぼさないものが含まれる。ポリペプチドの改変とは、アミノ酸誘導体若しくはコンジュゲート、又は翻訳後修飾などの組換えDNA操作、化学的若しくは生化学的修飾によって変化したものを意味する。 With respect to nucleic acid or polypeptide sequences, the term “altered” or “altered” or “altered” refers to changes such as insertions, deletions, substitutions, fusions with related or unrelated sequences, It is meant to include changes that may occur by hand, or naturally occurring changes such as polymorphisms, alleles and other structural types. Modifications include genomic DNA and RNA sequences that differ in their hybridization properties using a given hybridization probe. Modifications of the polynucleotide sequence or fragments thereof include those that increase, decrease or have no effect on function. Polypeptide alteration means amino acid derivatives or conjugates, or those altered by recombinant DNA manipulation such as post-translational modification, chemical or biochemical modification.
用語「制御配列」とは、特定の宿主生物において、作動可能に結合したコーディング配列の発現のために必要なDNA配列を意味する。原核細胞に適した制御配列は、例えば、プロモーター、場合によってオペレーター配列、リボソーム結合部位及び転写ターミネーターを含む。細胞培養物が成長し、成熟する間、例えば、対数期中に、増殖阻害量未満のレベルでFab’ポリペプチド合成を抑制する、強く調節された誘導プロモーターを使用することができる。 The term “control sequence” refers to a DNA sequence that is required for expression of an operably linked coding sequence in a particular host organism. The control sequences that are suitable for prokaryotes, for example, include a promoter, optionally an operator sequence, a ribosome binding site, and a transcription terminator. A strongly regulated inducible promoter can be used that suppresses Fab 'polypeptide synthesis at a level below the growth inhibitory amount during cell culture growth and maturation, for example, during log phase.
別の核酸配列と機能的に関係がある場合、核酸は「作動可能に結合」している。例えば、ポリペプチドの分泌に関与するタンパク質前駆体として発現させる場合、プレ配列若しくは分泌リーダー用のDNAをポリペプチドのDNAに作動可能に結合させ、配列の転写を達成する場合、プロモーター又はエンハンサーをコーディング配列に作動可能に結合させ、又は翻訳を容易にするために配置する場合、リボソーム結合部位をコーディング配列に作動可能に結合させる。一般的に、「作動可能に結合した」とは、結合したDNA配列は連続しており、分泌リーダーの場合、同じリーディングフレーム内に連続していることを意味する。エンハンサーは、連続している必要はない。結合は、便利な制限部位でのライゲーションによって実現する。このような部位が存在しないならば、合成オリゴヌクレオチドアダプター又はリンカーを従来の実施にしたがって使用する。 A nucleic acid is “operably linked” when it is functionally related to another nucleic acid sequence. For example, when expressed as a protein precursor involved in polypeptide secretion, a presequence or secretory leader DNA is operably linked to the polypeptide DNA to achieve sequence transcription, coding a promoter or enhancer. A ribosome binding site is operably linked to a coding sequence when operably linked to the sequence or arranged to facilitate translation. In general, “operably linked” means that the bound DNA sequences are contiguous and, in the case of a secretory leader, are contiguous within the same reading frame. Enhancers do not have to be contiguous. Binding is achieved by ligation at convenient restriction sites. If such sites do not exist, synthetic oligonucleotide adapters or linkers are used according to conventional practice.
「外因性」要素とは、本明細書では、細胞にとって外来の核酸配列であるか、又は細胞にとってホモログであるが、その要素が通常見いだされない宿主細胞核酸内の位置にあることを意味するものと定義される。 By “exogenous” element is meant herein a nucleic acid sequence that is foreign to the cell or is a homologue to the cell but in a position within the host cell nucleic acid that is not normally found. Is defined as
本明細書で使用したように、「細胞」及び「細胞培養物」という表現は同義に使用され、このような名称には全て後代が含まれる。したがって、「形質転換体」及び「形質転換した細胞」という語には、初代対象細胞及び継代の回数に関係なく、それらから得られた培養物が含まれる。計画的又は偶発的な変異があるため、後代は全て、DNA内容物が正確に一致していないこともあることを理解されたい。元々の形質転換細胞でスクリーニングされたのと同じ機能又は生物学的活性を有する変異体後代が含まれる。様々な呼び方は、前後関係から明らかだろう。 As used herein, the expressions “cell” and “cell culture” are used interchangeably and all such designations include progeny. Thus, the terms “transformants” and “transformed cells” include the primary subject cell and cultures obtained from them regardless of the number of passages. It should be understood that all progeny may not have exactly matched DNA contents due to planned or accidental mutations. Variant progeny that have the same function or biological activity as screened on the original transformed cells are included. Various names will be clear from the context.
「プラスミド」は、大文字及び/又は数字の前後の小文字pによって指定される。本明細書の開始プラスミドは市販されており、制限なく公的に入手可能であるか、又は公表された手法にしたがってこのような入手可能なプラスミドから構築することができる。さらに、その他の同等のプラスミドは、当業界では公知で、当業者には明らかであろう。 A “plasmid” is designated by uppercase letters and / or lowercase letters p before and after numbers. The starting plasmids herein are commercially available and are publicly available without limitation, or can be constructed from such available plasmids according to published procedures. In addition, other equivalent plasmids are known in the art and will be apparent to those skilled in the art.
制限酵素消化からのDNAの所与の断片の「回収」又は「単離」とは、電気泳動によるポリアクリルアミド若しくはアガロースゲルでの消化物の分離、公知の分子量のマーカーDNA断片に対するその移動度の比較による所望の断片の同定、所望の断片を含有するゲル部分を取り出し、及びDNAからのゲルの分離を意味する。この手法は一般的に公知である。例えば、Lawn et al. (Nucleic Acids Res. 1981. 9:6103-6114)及びGoeddel et al. (Nucleic Acids Res. 1980. 8:4057)を参照のこと。 “Recovery” or “isolation” of a given fragment of DNA from restriction enzyme digestion refers to the separation of the digest on polyacrylamide or agarose gel by electrophoresis, its mobility relative to a marker DNA fragment of known molecular weight. It means identification of the desired fragment by comparison, removal of the gel part containing the desired fragment, and separation of the gel from DNA. This technique is generally known. See, for example, Lawn et al. (Nucleic Acids Res. 1981. 9: 6103-6114) and Goeddel et al. (Nucleic Acids Res. 1980. 8: 4057).
細胞からのDNAの「調製」とは、宿主細胞の培養物からのプラスミドDNAの単離を意味する。DNA調製に通常使用される方法は、Sambrook et al., (Molecular Cloning: A Laboratory Manual New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989)の1.25〜1.33項に記載された大規模及び小規模のプラスミド調製である。DNA調製物は、当業界で周知の方法によって精製する(Sambrook et al.,上記の1.40節を参照のこと)。 “Preparation” of DNA from cells means the isolation of plasmid DNA from a culture of host cells. Commonly used methods for DNA preparation are the large and small plasmid preparations described in Sections 1.25 to 1.33 of Sambrook et al., (Molecular Cloning: A Laboratory Manual New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989). It is. The DNA preparation is purified by methods well known in the art (see Sambrook et al., Section 1.40 above).
本明細書で使用したように、用語「タンパク質−タンパク質複合体」又は「タンパク質複合体」とは、1つ以上のタンパク質の会合を意味する。複合体のタンパク質は、限定はしないが、機能的、立体化学的、構造的、生化学的若しくは静電気的会合を含む様々な手段又は手段の任意の組み合わせによっても会合することができる。この用語には、任意の数のタンパク質の会合も包含することを意図する。 As used herein, the term “protein-protein complex” or “protein complex” means an association of one or more proteins. The proteins of the complex can be associated by various means or any combination of means including but not limited to functional, stereochemical, structural, biochemical or electrostatic association. The term is intended to encompass the association of any number of proteins.
本明細書で使用したように、用語「タンパク質」、「ポリペプチド」又は「ペプチド」とは、ペプチド結合によって結合したアミノ酸を含む化合物を意味し、同義に使用される。 As used herein, the term “protein”, “polypeptide” or “peptide” means a compound comprising amino acids joined by peptide bonds and is used interchangeably.
本明細書で使用したような用語「所望のタンパク質」とは、本発明の方法及び構築物を使用して単離又は精製することが所望されるタンパク質、その機能及び/又は発現を意味する。本発明は、原核生物にせよ真核生物にせよ、任意の生物の任意の遺伝子によって発現した任意のタンパク質の単離及び/又は精製に関して有用であり得る。 The term “desired protein” as used herein means the protein, its function and / or expression that it is desired to isolate or purify using the methods and constructs of the invention. The present invention may be useful for the isolation and / or purification of any protein expressed by any gene of any organism, whether prokaryotic or eukaryotic.
ヌクレオチドに関して、用語「基本的に配列番号(#)に記載の配列(a sequence essentially as set forth in SEQ ID NO. (#))」、「に類似の(a sequence similar to)」、「ヌクレオチド配列(nucleotide sequence)」及び類似の用語は、本明細書において配列番号1として同定した配列のいかなる分にも実質的に対応する配列を意味する。これらの用語は、合成的に、並びに天然に得られる分子を意味し、例えば、核酸配列によるハイブリダイゼーション、又は活性の全体又は一部をコードする能力に関して、生物学的、免疫学的、実験的又はその他に機能的に同等な活性を保有する配列を含む。もちろん、これらの用語は、その直線的順番によって指定されるこのような配列の情報を含むことを意味する。 Regarding nucleotides, the terms “a sequence essentially as set forth in SEQ ID NO. (#)”, “A sequence similar to”, “nucleotide sequence “Nucleotide sequence” and like terms means a sequence that substantially corresponds to any portion of the sequence identified herein as SEQ ID NO: 1. These terms refer to molecules obtained synthetically as well as naturally occurring, eg, biological, immunological, experimental, with respect to hybridization with nucleic acid sequences, or the ability to encode all or part of an activity. Or other sequences having functionally equivalent activity. Of course, these terms are meant to include such sequence information specified by its linear order.
用語「相同性」とは、2つの核酸が相補的である範囲を意味する。部分的又は完全な相同性であってもよい。部分的に相補的な配列とは、完全に相補的な配列が標的核酸にハイブリダイズするのを少なくとも部分的に阻害する配列であり、機能用語「実質的に相同な」を使用して表現される。ハイブリダイゼーションの程度又は範囲は、ハイブリダイゼーション又はその他のアッセイ(競合PCRアッセイ)などを使用して調べることができ、当業者に公知なように、ストリンジェンシーが低くても特異的に相互作用することを含むことを意味する。 The term “homology” refers to the extent to which two nucleic acids are complementary. There may be partial or complete homology. A partially complementary sequence is a sequence that at least partially inhibits a completely complementary sequence from hybridizing to a target nucleic acid and is expressed using the functional term “substantially homologous”. The The degree or range of hybridization can be examined using hybridization or other assays (competitive PCR assays), etc., and as specifically known to those skilled in the art, it interacts specifically even with low stringency. Is included.
標的配列に対して完全に相補的な配列のハイブリダイゼーションの阻害はまた、低ストリンジェンシー条件下で、固体支持体を含むハイブリダイゼーションアッセイ(例えば、サザン又はノーザンブロット、溶液ハイブリダイゼーションなど)を使用して調べることができる。低ストリンジェンシー条件とは、2つの配列が互いに結合し、まだ特異的(すなわち、選択的)であることを同定するために使用することができる。非特異的結合がないことは、部分的な相補性さえも欠如している(例えば、約30%同一性を下回る)第2の標的を使用することによって試験することができる。非特異的結合がなければ、プローブは第2の非相補的標的にハイブリダイズせず、元々の相互作用が選択であることが見いだされる。低ストリンジェンシー条件は一般的に、5×SSPE(NaCl 43.8g/l、NaH2PO4−H2O 6.9g/l及びEDTA 1.85g/l、pH7.4)、0.1%SDS、5×デンハート試薬(50×デンハートは、500ml当たりFicoll(Type 400、Pharmacia社)5g、BSA(画分V;Sigma社)5g及び変性鮭精子DNA100マイクログラム/ml)からなる溶液中における摂氏42度での結合又はハイブリダイゼーションと同等の条件であり、長さ約500ヌクレオチドのプローブを使用するときは、その後摂氏42度で5×SSPE、0.1%SDS含む溶液で洗浄する。低ストリンジェンシー条件を実現するために数多くの同等の条件を使用することができることは当業界では公知である。ストリンジェンシーのレベルに影響を及ぼす要素には、プローブの長さ及び性質(DNA、RNA、塩基組成)並びに標的の性質(DNA、RNA、塩基組成、溶液中に存在するか、又は固定されているかなど)並びに塩及びその他の成分(例えば、ホルムアミド、デキストラン硫酸、ポリエチレングリコール)の濃度が含まれる。同様に、ハイブリダイゼーション溶液は、上記の条件と異なるが同等の低ストリンジェンシーハイブリダイゼーションの条件を作製するために変化させることができる。さらに、高ストリンジェンシーの条件下(例えば、ハイブリダイゼーション温度の上昇及び/又は洗浄ステップの増加、ホルムアミドの包含など)でハイブリダイゼーションを促進する条件は当業界で公知である。 Inhibition of hybridization of sequences that are fully complementary to the target sequence also uses hybridization assays involving solid supports (eg, Southern or Northern blots, solution hybridizations, etc.) under conditions of low stringency. Can be examined. Low stringency conditions can be used to identify that two sequences bind to each other and are still specific (ie, selective). The absence of non-specific binding can be tested by using a second target that lacks even partial complementarity (eg, below about 30% identity). Without non-specific binding, the probe will not hybridize to the second non-complementary target and the original interaction is found to be selective. Low stringency conditions are generally 5 × SSPE (NaCl 43.8 g / l, NaH 2 PO 4 —H 2 O 6.9 g / l and EDTA 1.85 g / l, pH 7.4), 0.1% SDS, 5 × Denhart Binding at 42 degrees Celsius in a solution consisting of 5 g Ficoll (Type 400, Pharmacia), 5 g BSA (Fraction V; Sigma) and 100 microgram / ml denatured sperm DNA per 500 ml. Alternatively, when a probe having a length of about 500 nucleotides is used under the same conditions as hybridization, the probe is subsequently washed with a solution containing 5 × SSPE and 0.1% SDS at 42 degrees Celsius. It is well known in the art that many equivalent conditions can be used to achieve low stringency conditions. Factors that affect the level of stringency include probe length and nature (DNA, RNA, base composition) and target nature (DNA, RNA, base composition, whether present in solution or immobilized Etc.) and salts and other components (eg, formamide, dextran sulfate, polyethylene glycol). Similarly, the hybridization solution can be varied to produce conditions of low stringency hybridization that differ from those described above but are equivalent. Furthermore, conditions that promote hybridization under conditions of high stringency (eg, increased hybridization temperature and / or increased wash steps, inclusion of formamide, etc.) are known in the art.
本発明者等は、短時間でタグの付いていないタンパク質を精製するために、操作されたスプリットインテインの使用を可能にする超高速法(SIRP)を開発した。特定の実施形態では、この技術は、小規模利用においてタグの付いていないタンパク質を精製するための強力な新規方法を提供する。特定の実施形態では、低コストのキチンビーズを使用する。その他の実施形態では、CBDの親和性支持体として低コストのCBD結合アモルファスセルロースマトリクスを使用する。これによって、このインテイン媒介による方法の利用は、大規模なタンパク質精製用の親和性をベースにしたステップとして魅力的となる。その他の実施形態では、エラスチン様ポリペプチド(ELP)の沈降を使用する。 We have developed an ultra-fast method (SIRP) that allows the use of engineered split inteins to purify untagged proteins in a short time. In certain embodiments, this technology provides a powerful new method for purifying untagged proteins in small scale applications. In certain embodiments, low cost chitin beads are used. In other embodiments, a low cost CBD-bound amorphous cellulose matrix is used as the affinity support for CBD. This makes the use of this intein-mediated method attractive as an affinity-based step for large-scale protein purification. In other embodiments, precipitation of elastin-like polypeptide (ELP) is used.
いくつかの実施形態には、図23及び図24に掲示したインテインが含まれる。 Some embodiments include the inteins listed in FIGS. 23 and 24.
本発明者等は、組換えタンパク質の精製において、タグの迅速で効率的な除去は重要な問題であることを認識している。ノストック・パンクチフォルメの天然のスプリットDnaEインテインの操作されたC末端切断を使用して、本発明者等は、1時間未満で大腸菌溶解物からのタグの付いていない組換えタンパク質の精製を可能にするタグの付いていないタンパク質のスプリットインテインによる超高速精製(SIRP)を開発した。 We recognize that rapid and efficient removal of tags is an important issue in the purification of recombinant proteins. Using engineered C-terminal truncation of the natural split DnaE intein of Nostock punctiforme, we can purify untagged recombinant proteins from E. coli lysates in less than 1 hour. An ultra-rapid purification (SIRP) of split-tained untagged proteins has been developed.
本発明者等は、親和性タグが組換えタンパク質の精製を簡単にし、現代のバイオテクノロジーには極めて重要であることを認識している。しかし、今のところ親和性タグを除去する簡単で低コストな方法はないので、タグの除去に必要なプロテアーゼに余分な時間及び高いコストがかかるため、大規模な工業プロセスにおいては親和性タグの有用性が大きく損なわれる。タグ除去に使用されるほとんどのプロテアーゼは、特異性が低いか又は活性が低く、切断後に標的タンパク質の特定のアミノ酸を遊離させる。最近発見されたSUMO−プロテアーゼは、高い特異性及び効率の両方を示している(22℃で20分以内に90%超完了)。しかし、SUMO−プロテアーゼ(Life Technologies社)を使用して組換えタンパク質1gを切断するコストは673,000ドルで、ほとんどの適用において使用することができない。 We recognize that affinity tags simplify the purification of recombinant proteins and are extremely important for modern biotechnology. However, there is currently no simple and low-cost method for removing affinity tags, so the protease required for tag removal takes extra time and high costs, so in large industrial processes Usefulness is greatly impaired. Most proteases used for tag removal have low specificity or low activity and liberate specific amino acids of the target protein after cleavage. The recently discovered SUMO-protease shows both high specificity and efficiency (over 90% complete within 20 minutes at 22 ° C.). However, the cost of cleaving 1 g of recombinant protein using SUMO-protease (Life Technologies) is $ 673,000 and cannot be used in most applications.
本発明者等は、酸性(pH6)又は還元環境においてN/C末端切断反応を行うために操作されたインテインを使用した、プロテアーゼを用いないタンパク質精製方法が開発されたことを認識している。インテインは、ペプチド結合を介して関連するN−及びC−エクステインを結合させるスプライシング反応を触媒するタンパク質である。インテインは、酸性(pH6)又は還元環境においてN又はC末端で切断反応を1回実施するように操作することができ、これらの操作されたインテインは、タンパク質精製への適用において刺激応答性タグを除去するために利用することができる。しかし、これらのタンパク質精製の適用において使用した操作されたインテインは、常に非効率的で、顕著な切断/タグ除去を実現するためには少なくとも一晩インキュベートすることが必要である(図1)。また、これらの系では、インビボにおいて切断が不完全で、標的タンパク質が遊離する。したがって、作用が遅いインテインを使用しなければ、標的タンパク質を発現させる条件はしばしば、インビボにおけるインテイン切断を最小限に抑えるために最適化させる必要がある。場合によっては、発現条件を最適化した後でも、不完全なタンパク質切断がまだかなり標的タンパク質収率に影響を及ぼす。本発明者等は、インビボにおいてインテインによる不完全な切断を誘導する可能性がなく、ずっと短い時間で切断/タグ除去反応を実施する、したがって、経済的で、広範に使用しやすい、タグの付いていない組換えタンパク質を精製するためのインテインによるシステムを作り出した。 The present inventors have recognized that a protease purification method has been developed that uses inteins that have been engineered to perform N / C terminal cleavage reactions in an acidic (pH 6) or reducing environment. Inteins are proteins that catalyze a splicing reaction that binds related N- and C-extanes via peptide bonds. Inteins can be engineered to perform a single cleavage reaction at the N- or C-terminus in an acidic (pH 6) or reducing environment, and these engineered inteins can be labeled with stimulus-responsive tags in protein purification applications. Can be used to remove. However, the engineered inteins used in these protein purification applications are always inefficient and need to be incubated at least overnight to achieve significant cleavage / tag removal (FIG. 1). Also in these systems, cleavage is incomplete in vivo and the target protein is released. Thus, unless slow-acting inteins are used, the conditions for expressing the target protein often need to be optimized to minimize intein cleavage in vivo. In some cases, even after optimizing the expression conditions, incomplete protein cleavage still significantly affects the target protein yield. We carry out the cleavage / tag removal reaction in a much shorter time without the possibility of inducing incomplete cleavage by inteins in vivo, and thus, economical, widely used, tagged An intein-based system for the purification of non-recombinant proteins was created.
特定の実施形態では、本発明者等は、2つのペプチド鎖:N末端インテイン(IN)とC末端インテイン(IC)の間でその触媒残基がスプリットするスプリットインテインを使用して、インビボにおける標的タンパク質切断を防ぐ溶液を認識している。スプリットインテインは、2つの断片が会合したときにのみ活性を有する。シネコシスティス(Synethocystis)種(Ssp)の人工的にスプリットしたDnaBインテイン使用した2つのタンパク質精製系を開発した。1つでは、人工的なスプリットS1 DnaBインテインは11−アミノ酸N−インテイン(IN)及び144−アミノ酸C−インテイン(IC)からなる。標的タンパク質をICに融合させ、タグ除去はINペプチドを付加することによって実現する。N−エクステインは全く存在しないので、野生型触媒残基は維持される。十分な切断を実現するために、40対1モル比でIN対ICが融合した標的タンパク質が必要である。INのサイズが小さいにも関わらず、ペプチド合成はコストが高いので、大規模プロセスにおいてこの系は利用することはできない。異なるスプリット接合部を備えた同じSspDnaBインテインを使用する類似の親和性をベースにした精製系も開発した。この系では、N及びC末端の適切な触媒残基の変異を、それぞれC及びN末端切断を実現するために使用する。しかし、野生型SspDnaBの反応速度は比較的速いにも関わらず(図1)、変異体インテインは、反応速度が遅く、十分なC末端切断を実現するために室温でインキュベーション時間を延長する必要がある(16時間)。インキュベーション時間が長いため、この系の有用さは限られる。 In certain embodiments, we use split inteins that split their catalytic residues between two peptide chains: an N-terminal intein (IN) and a C-terminal intein (IC) to target in vivo Recognizes solutions that prevent protein cleavage. Split inteins are active only when two fragments are associated. Two protein purification systems were developed using artificially split DnaB inteins of Synethocystis sp. (Ssp). In one, the artificial split S1 DnaB intein consists of 11-amino acid N-intein (IN) and 144-amino acid C-intein (IC). The target protein is fused to the IC and tag removal is achieved by adding an IN peptide. Since there is no N-extane, the wild type catalytic residue is retained. In order to achieve sufficient cleavage, a target protein fused with IN to IC in a 40 to 1 molar ratio is required. Despite the small size of IN, peptide synthesis is expensive and this system cannot be used in large scale processes. A similar affinity-based purification system using the same SspDnaB intein with different split junctions was also developed. In this system, mutations in the appropriate catalytic residues at the N and C terminus are used to achieve C and N terminal truncation, respectively. However, despite the relatively fast reaction rate of wild-type SspDnaB (FIG. 1), the mutant intein has a slow reaction rate and it is necessary to extend the incubation time at room temperature to achieve sufficient C-terminal cleavage. Yes (16 hours). The usefulness of this system is limited due to the long incubation time.
特定の実施形態では、本発明者等は、人工的なスプリットインテインを使用するにはさらに2つの制限があること:人工的スプリットインテインは、(1)一部にはスプリット断片間の親和性が低いため、連続したものよりも活性が低く、(2)単独で発現させた場合、凝集体を形成する傾向が高いことを認識している。本発明者等は、Ssp及びNpuのDnaEなどの天然のスプリットインテインは活性が高く、可溶性で、2つのスプリット断片間で非常に高い親和性を表すことを認識している。2つの天然のスプリットDnaEインテインはいずれも、タンパク質精製に使用されたことはない。DnaEのINの高度に曝露された疎水性表面(Npu及びSspそれぞれのDnaEの102及び123アミノ酸)は、N−エクステインの折り畳みに干渉する傾向があり、いくつかの融合タンパク質が誤って折り畳まれ、不溶性凝集体が形成される原因となり、一般的な精製タグとしてのN断片の有用さが限定される。本発明者等は、そのサイズが小さく(Npu及びSspの両方とも36アミノ酸)、標的タンパク質の溶解性にあまり干渉しないにも関わらず、DnaEのC断片はまた、C及びN末端切断反応と密接に共役しているので、精製タグとして適していないことを認識している。天然のスプリットDnaEインテインでは、C末端切断は、N末端切断後にのみ生じることができ、最初のCysをAlaに変異させると、C末端切断活性を干渉することなくN末端切断を正常に妨害し、C末端切断も消失させる(図2B)。 In certain embodiments, we have two additional restrictions on the use of artificial split inteins: artificial split inteins are (1) partially compatible with split fragments Since it is low, the activity is lower than the continuous one, and (2) it is recognized that when expressed alone, the tendency to form aggregates is high. We recognize that natural split inteins such as Ssp and Npu's DnaE are highly active, soluble and exhibit very high affinity between the two split fragments. Neither of the two natural split DnaE inteins has been used for protein purification. The highly exposed hydrophobic surface of DnaE IN (Npu and Ssp, DnaE 102 and 123 amino acids, respectively) tends to interfere with the folding of N-extane, and some fusion proteins are misfolded Cause the formation of insoluble aggregates, limiting the usefulness of N fragments as a general purification tag. Although we have a small size (both Npu and Ssp are 36 amino acids) and do not significantly interfere with the solubility of the target protein, the C fragment of DnaE is also closely related to the C and N-terminal cleavage reactions. It is recognized that it is not suitable as a purification tag. In natural split DnaE inteins, C-terminal cleavage can only occur after N-terminal cleavage, and mutating the first Cys to Ala normally prevents N-terminal cleavage without interfering with C-terminal cleavage activity, C-terminal truncation is also eliminated (FIG. 2B).
特定の実施形態のために、本発明者等は、N末端を切断することなくC末端を切断するために、ミニ−MtuRecAインテインに対する配列アラインメントをベースにして、1個の変異、Asp118を導入することによってNpuDnaE(Npu*と称する)を操作した。Npu*は、22℃で反応3時間以内に、約80%のC末端切断収率を実現する。比較として、同程度のC末端切断を実現するためには、SceVma1及びSspDnaBインテイン(IMPACT Manual社)を使用するIMPACT系(New England Biolab社)では23℃で約16時間かかる。Npu*を使用して、本発明者等はさらに、2つのタンパク質精製法を開発し、短時間以内(4時間未満)に高収率(大腸菌培養物1リットル当たり最高84mg)で電気泳動的に純粋に複数の標的タンパク質を精製し、これらの技術の有用さ及び大規模な産業的タンパク質精製のための可能性を示唆した。 For certain embodiments, we introduce a single mutation, Asp118, based on sequence alignment to the mini-MtuRecA intein to cut the C-terminus without cutting the N-terminus. NpuDnaE (referred to as Npu * ) was manipulated. Npu * achieves a C-terminal cleavage yield of about 80% within 3 hours of reaction at 22 ° C. For comparison, to achieve the same degree of C-terminal cleavage, the IMPACT system (New England Biolab) using SceVma1 and SspDnaB intein (IMPACT Manual) takes about 16 hours at 23 ° C. Using Npu *, we have further developed two protein purification methods that are electrophoretically in high yield (up to 84 mg per liter of E. coli culture) within a short time (less than 4 hours). Purely purifying multiple target proteins suggested the usefulness of these techniques and the potential for large-scale industrial protein purification.
本発明者等は、N末端切断の非存在下で迅速なC末端切断を触媒することができるDnaEインテインの操作を開示する。特定の実施形態では、以前に操作したC末端切断インテインミニ−MtuRecAとの配列アラインメントをベースにして、ノストック・パンクチフォルメPCC73102のDnaEインテイン(NpuDnaE)に1変異、Asp118Glyを導入した。この変異は、トランススプライシン活性を抑制し、N末端切断を遅らせ、C末端切断効率を著しく上昇させることができた。分子モデリングによって、NpuDnaEにおいて、Asp118は最後から2番目のAsnと水素結合を形成し、N末端切断前の自然発生的な環化を妨害することが示唆される。Asp118をGlyに変異させると、この制限がなくなり、その後、N末端切断非存在下でC末端切断が導かれる。Gly118 NpuDnaE変異体は、迅速な硫黄依存性(又は硫黄誘導性)C末端切断反応速度を示し、室温で3時間以内に80%が完了する。様々な実施形態において、本発明者等はこの新たに操作したインテインを使用して、除去可能な精製タグとして、エラスチン様ペプチドを利用するカラムを使わないタンパク質精製法及びキチン結合タンパク質を利用するクロマトグラフィーをベースにしたタンパク質精製法の両方を開発した。特定の実施形態では、電気泳動的な純度で、収率が大腸菌培養物1リットル当たり最高84mgで、標的タンパク質を迅速に精製する。 We disclose the manipulation of DnaE inteins that can catalyze rapid C-terminal cleavage in the absence of N-terminal cleavage. In a specific embodiment, a single mutation, Asp118Gly, was introduced into the DnaE intein (NpuDnaE) of Nostock punctiforme PCC73102, based on a sequence alignment with a previously engineered C-terminally truncated intein mini-MtuRecA. This mutation could suppress trans-splicin activity, delay N-terminal cleavage and significantly increase C-terminal cleavage efficiency. Molecular modeling suggests that in NpuDnaE, Asp118 forms a hydrogen bond with the penultimate Asn, preventing spontaneous cyclization prior to N-terminal cleavage. Mutating Asp118 to Gly removes this restriction, which then leads to C-terminal truncation in the absence of N-terminal truncation. The Gly118 NpuDnaE mutant shows a rapid sulfur-dependent (or sulfur-induced) C-terminal cleavage reaction rate, which is 80% complete within 3 hours at room temperature. In various embodiments, we have used this newly engineered intein as a removable purification tag for protein purification methods that do not use a column that utilizes an elastin-like peptide and a chromatography that utilizes a chitin binding protein. Both methods of protein purification based on graphy were developed. In certain embodiments, the target protein is rapidly purified with electrophoretic purity and a yield of up to 84 mg per liter of E. coli culture.
特定の実施形態では、インテインのインビトロにおける活性を分析するために、NpuDnaEのIN又はIC(N又はC)を含有する様々な融合タンパク質を図3に例示したように生成した。タンパク質精製タグとして応用するために、インテイン活性は外部刺激によって調節されることが重要である。理論上では、インテイン反応はいかなるチオール試薬も必要としないが、NpuDnaEインテイン内には、分子内ジスルフィド結合を形成することができ、酸化還元トラップを形成することによってインテイン反応を妨害し得る不対システイン残基がいくつかある。本発明者等は、NpuDnaE活性が硫黄依存性であるかどうかを測定した。精製したCBD−N(構築物2)は、DTT2mMの非存在下又は存在下で、同濃度のC−GFP(構築物1)と混合した。トランススプライシング生成物CBD−GFPは、DTTを含有する反応においてのみ存在したので、スプリットNpuDnaEインテインは硫黄依存性であることが確認された(図4)。トランススプライシング反応は、30分後にほぼ完了する。微量の切断されたN及びCエクステインはまた、視覚化することができ、DTT濃度50mMで実施した反応では若干目立っている(図2A)。DTTは、直鎖状又は分岐状中間体のチオエステル結合への求核攻撃を開始することができ(それぞれ図5A、ステップ1及び2)、N末端切断を引き起こす。本発明者等は、SspDnaEインテインでは、DTT50mMが存在するとタンパク質トランススプライシングがほぼ完全にブロックされ、N末端切断及びその後のC末端切断の反応が遮断されることが見いだされたことを認識している。DTT50mMでも、NpuDnaEインテインにおいて認められた一定限度の量のN末端切断は、直鎖状/分岐状中間体のトランススプライシング生成物への変換がDTTによる求核攻撃と有効に競合するならば、極めて迅速なトランススプライシング反応速度によるものであり得る。 In certain embodiments, various fusion proteins containing NpuDnaE IN or IC (N or C) were generated as illustrated in FIG. 3 to analyze the in vitro activity of inteins. For application as a protein purification tag, it is important that intein activity is regulated by external stimuli. Theoretically, the intein reaction does not require any thiol reagent, but an unpaired cysteine can form an intramolecular disulfide bond within the NpuDnaE intein and can interfere with the intein reaction by forming a redox trap. There are several residues. We measured whether NpuDnaE activity was sulfur dependent. Purified CBD-N (construct 2) was mixed with the same concentration of C-GFP (construct 1) in the absence or presence of 2 mM DTT. Since the trans-splicing product CBD-GFP was present only in reactions containing DTT, it was confirmed that split NpuDnaE intein is sulfur dependent (FIG. 4). The trans-splicing reaction is almost complete after 30 minutes. Trace amounts of cleaved N and C exteins can also be visualized and are somewhat noticeable in reactions performed at a DTT concentration of 50 mM (FIG. 2A). DTT can initiate a nucleophilic attack on the thioester bond of a linear or branched intermediate (FIG. 5A, steps 1 and 2, respectively), causing an N-terminal cleavage. We recognize that with SspDnaE intein, the presence of DTT 50 mM has found that protein trans-splicing is almost completely blocked and the N-terminal cleavage and subsequent C-terminal cleavage reactions are blocked. . Even at DTT 50 mM, the limited amount of N-terminal truncation observed in the NpuDnaE intein is very significant if the conversion of linear / branched intermediates into trans-splicing products effectively competes with nucleophilic attack by DTT. This may be due to rapid trans-splicing kinetics.
特定の実施形態では、最初のCysがAlaに置換した変異体N、CBD−NC1A(構築物4)は、DTT50mMでもトランススプライシング活性を示さず、C末端切断活性は無視でき(図2B)、C末端切断反応はDnaEインテインにおいてN末端切断と密接に共役しているという以前の発見と一致した。本発明者等は、この特有の特性が、C末端タンパク質精製適用に野生型DnaEインテインを使用することの妨げとなることを認識している。 In a specific embodiment, mutant N, CBD-NC1A (construct 4), in which the first Cys is replaced with Ala, does not show trans-splicing activity even at DTT 50 mM, C-terminal cleavage activity is negligible (FIG. 2B), The cleavage reaction was consistent with previous findings that it was closely coupled with N-terminal cleavage in DnaE intein. We recognize that this unique property precludes the use of wild-type DnaE inteins for C-terminal protein purification applications.
C末端を切断するNpu DnaEの合理的設計:いくつかの例外はあるが、ほとんどのインテインスプライシング反応は、4つの協調性の高い求核置換を含む(図5A)。最初のステップは、インテインの最初の残基、システイン(Cys1)又はセリンが前のペプチドカルボニルを攻撃し、直鎖状(チオ)エステルを形成するN−Xアシルシフト(X:C又はS)を含む。第2のステップにおいて、C−エクステインの第1の残基、システイン(Cys+1)、セリン又はトレオニンは、この(チオ)エステルカルボニルを攻撃し、Nエクステインを切断し、1つはインテインに属し、他方はNエクステインに属する2つのN末端を備えた分岐状中間体を形成する。この状況で、エクステインは一緒に結合するが、まだインテインC末端に結合している。次に、この分岐状中間体は、インテインの最後のアスパラギン残基が関与するトランスアミド化反応によってインテインから切断される(ステップ3)。最終ステップにおいて、遊離のエクステインは、自然発生的なX−Nアシルシフトを受け、ペプチド結合への(チオ)エステルを復帰させ、スプライスしたタンパク質生成物を形成する。 Rational design of Npu DnaE that cleaves the C-terminus: With some exceptions, most intein splicing reactions involve four highly coordinated nucleophilic substitutions (FIG. 5A). The first step involves an NX acyl shift (X: C or S) where the first residue of the intein, cysteine (Cys1) or serine attacks the previous peptide carbonyl to form a linear (thio) ester. . In the second step, the first residue of C-extein, cysteine (Cys + 1), serine or threonine attacks this (thio) ester carbonyl and cleaves N extein, one belonging to intein The other forms a branched intermediate with two N-termini belonging to the N extein. In this situation, the exteins bind together but are still bound to the intein C-terminus. This branched intermediate is then cleaved from the intein by a transamidation reaction involving the last asparagine residue of the intein (step 3). In the final step, the free extein undergoes a spontaneous X-N acyl shift, reverting the (thio) ester to the peptide bond and forming a spliced protein product.
ほとんどのインテインにおいて、N及びC末端での反応は独立しており、したがって1末端での反応を消失させる触媒残基の変異は、その他の末端での切断反応を引き起こす(図1及び5B)。しかし、N及びC末端切断反応が密接に共役しているため、従来の方法は、C末端切断DnaEインテインの操作に使用することはできない。C末端切断インテイン、ミニ−MtuRecAは、定向進化を使用して操作した。単一の変異、D422Gが、C末端切断活性の上昇及びN末端切断の抑制を担うことが発見された。NpuDnaE及びミニ−MtuRecAインテインのアラインメントによって、配列レベルの高い相同性(図6)及び構造レベルでもより高い相同性(図5C)が明らかになった。Asp422(NpuDnaEのAsp118)を含む触媒残基のほとんどは、NpuDnaEとミニ−MtuRecAインテインの間で保存されている(図6)。本発明者等は、変異D118GがNpuDnaEインテインにC末端切断活性を付与できることを認識している。 In most inteins, the reactions at the N and C termini are independent, and thus mutation of the catalytic residue that eliminates the reaction at one terminus causes a cleavage reaction at the other terminus (FIGS. 1 and 5B). However, conventional methods cannot be used to manipulate C-terminal truncated DnaE inteins because the N and C terminal cleavage reactions are closely conjugated. The C-terminal truncated intein, mini-MtuRecA, was engineered using directed evolution. It was discovered that a single mutation, D422G, is responsible for increasing C-terminal cleavage activity and suppressing N-terminal cleavage. Alignment of NpuDnaE and mini-MtuRecA intein revealed high sequence level homology (FIG. 6) and higher structural level homology (FIG. 5C). Most of the catalytic residues including Asp422 (NspDnaE Asp118) are conserved between NpuDnaE and the mini-MtuRecA intein (FIG. 6). We recognize that mutation D118G can confer C-terminal cleavage activity to NpuDnaE intein.
Asp118Gly変異を有するNpu DnaEインテインの活性:D118G変異の効果を試験するために、部位特異的変異誘発を介してアミノ酸置換をC−GFPに導入し、C*−GFP(構築物3)を形成した。野生型NpuDnaEと同様に、変異体Npu*の活性も硫黄依存性である。D118G変異は、トランススプライシング反応を完全に消失させ、還元条件下で迅速なC末端切断を誘導した(図7A)。自然発生的なC末端切断は、C*−GFPを単独で、又はDTTと共に室温でインキュベートすると、20時間後でも認められず、C末端切断活性はN依存性であることが確かめられた。反応を低DTT濃度で実施した場合、遊離のN−エクステインはほとんど認められず、高DTT濃度(50mM)での反応では遊離Nエクステインは非常に限定された量のみ認められ、このD118G変異は基本的に第1のN−Xアシルシフトを消失させ、N末端切断とは独立したC末端切断反応を誘導することが示唆された。Npu*がN末端切断の非存在下でC末端切断を行うことができることをさらに確認するために、本発明者等は、ジスルフィド結合を破壊することはできるが、チオエステル結合は破壊しないトリアルキルホスフィン(トリス(2−カルボキシエチル)ホスフォン、TCEP)の存在下で反応を実施した。TCEPはまた、N末端切断が全くなくてもC末端切断反応を誘導するので(図7B)、Npu*ではN及びC末端切断活性が共役していないことが示唆された。本発明者等はまた、CBD−NC1A(構築物4)と混合したときのC*−GFPの活性を測定した。還元条件下で同様の速度のC末端切断が認められた。しかし、DTTの非存在下でも迅速なC末端切断が認められ、制御可能なタンパク質精製タグとして使用するためには不適切となった(図8)。Cys1及びCys+1は、非常に接近しているので、2つのインテイン断片の会合のすぐ側にジスルフィド結合を形成することができ、インテイン反応をさらに妨害し、還元剤によるC末端切断開始の制御を可能にする。本発明者等はまた、様々な温度でNpu*のC末端切断反応速度を測定した(図7C)。最高の切断速度が37℃で得られ、約80%の切断がちょうど1時間で実現した。同じ80%切断を実現するため、室温(22℃)でインキュベートした試料では3時間、16℃では4.5時間が必要だった。85%を上回るC末端切断が4℃で20時間後に得られた。この切断速度は、類似の切断効率を実現するために23℃で約16時間のインキュベーションを必要とするIMPACT系(New England Biolab社)で現在使用されているSspDnaB及びSceVma1インテインの速度よりも著しく速い。Nが過剰に存在すると、より速い切断速度を実現することが可能であり得る。一緒に考え合わせると、これらの結果は、タンパク質精製の自己切断タグとしてのNpu*の有用性を示唆している。 Activity of Npu DnaE intein with Asp118Gly mutation: To test the effect of D118G mutation, amino acid substitutions were introduced into C-GFP via site-directed mutagenesis to form C * -GFP (construct 3). Similar to wild type NpuDnaE, the activity of mutant Npu * is also sulfur dependent. The D118G mutation completely abolished the trans-splicing reaction and induced rapid C-terminal truncation under reducing conditions (FIG. 7A). Spontaneous C-terminal cleavage was not observed after 20 hours when C * -GFP alone or with DTT was incubated at room temperature, confirming that C-terminal cleavage activity is N-dependent. When the reaction was carried out at a low DTT concentration, almost no free N-extein was observed, and in the reaction at a high DTT concentration (50 mM), only a very limited amount of free N-extein was observed. Was suggested to essentially eliminate the first NX acyl shift and induce a C-terminal cleavage reaction independent of N-terminal cleavage. To further confirm that Npu * can perform C-terminal cleavage in the absence of N-terminal cleavage, we have determined that trialkylphosphines can break disulfide bonds but not thioester bonds. The reaction was carried out in the presence of (tris (2-carboxyethyl) phosphone, TCEP). TCEP also induces a C-terminal cleavage reaction without any N-terminal cleavage (FIG. 7B), suggesting that Npu * is not coupled with N- and C-terminal cleavage activities. We also measured the activity of C * -GFP when mixed with CBD-NC1A (construct 4). A similar rate of C-terminal cleavage was observed under reducing conditions. However, rapid C-terminal truncation was observed even in the absence of DTT, making it inappropriate for use as a controllable protein purification tag (FIG. 8). Cys1 and Cys + 1 are so close that they can form a disulfide bond immediately adjacent to the association of the two intein fragments, further hindering the intein reaction and allowing control of the initiation of C-terminal cleavage by reducing agents. To. We also measured the Npu * C-terminal cleavage kinetics at various temperatures (FIG. 7C). The highest cutting speed was obtained at 37 ° C. and about 80% cutting was achieved in just 1 hour. Samples incubated at room temperature (22 ° C) required 3 hours and 4.5 hours at 16 ° C to achieve the same 80% cleavage. More than 85% C-terminal truncation was obtained after 20 hours at 4 ° C. This cleavage rate is significantly faster than that of the SspDnaB and SceVma1 inteins currently used in the IMPACT system (New England Biolab) which requires about 16 hours incubation at 23 ° C. to achieve similar cleavage efficiency. . If N is present in excess, it may be possible to achieve faster cutting speeds. Taken together, these results suggest the usefulness of Npu * as a self-cleaving tag for protein purification.
略語:ELP、エラスチン様ペプチド;CBDキチン結合ドメイン;POI、所望のタンパク質;Mtu、マイコバクテリウム・チュバーキュロシス;Npu、ノストック・パンクチフォルメ;IN/IC、スプリットインテインN/C断片;N/C、NpuDnaE N/C断片;IPTG、イソプロピルβ−D−1−チオガラクトピラノシド;SDS、ドデシル硫酸ナトリウム。 Abbreviations: ELP, elastin-like peptide; CBD chitin binding domain; POI, desired protein; Mtu, Mycobacterium tuberculosis; Npu, Nostock punctiforme; IN / IC, split intein N / C fragment; N / C, NpuDnaE N / C fragment; IPTG, isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside; SDS, sodium dodecyl sulfate.
SIRPで使用したC末端切断反応速度及び効率を得るために、本発明者等はインテインスプリット接合部(インテインN断片のC末端)にタンパク質精製タグを再配置し、標的タンパク質をC断片のC末端に融合させた。この系は、極端に迅速な硫黄誘導性C末端切断を示し、22℃及び6℃の両方で30秒以内に約50%が完了した。これは、今までにインテインについて報告された最速のC末端切断活性である。反応速度は最初の1分後に減速するように見えたが、85%を超える切断の完了が、22℃では30分以内に、6℃では3時間以内に実現する。超高速切断反応速度は、精製タグをインテインスプリット接合部に配置し、したがって、N−とC−エクステインの間の重要な相互反応の立体的障害の可能性を回避することによって可能になる。操作されたスプリットインテインのC末端切断効率は、C−エクステインの最初の残基が何であるかによって影響を受けず(プロリンは例外であることが見いだされた)、SIRPによって精製タグを完全に除去し、天然のN末端を備えたタンパク質を精製することが可能であった。C末端切断反応は、非還元条件下で二価Zn2+によって効果的に阻害することができる。重要なことに、インテインN及びC断片の会合は可逆的なので、タンパク質を捉えるカラム結合インテインN断片を何回も使用するために再生することが可能で、タンパク質精製のコストをさらに低減する。SIRP技術は、タグの付いていないタンパク質及びペプチドを精製するための有用な手段を提供するはずである。 In order to obtain the C-terminal cleavage kinetics and efficiency used in SIRP, we rearranged the protein purification tag at the intein split junction (C-terminus of the intein N fragment) and placed the target protein at the C-terminus of the C fragment. Fused to. This system showed extremely rapid sulfur-induced C-terminal truncation and was about 50% complete within 30 seconds at both 22 ° C. and 6 ° C. This is the fastest C-terminal cleavage activity reported to date for inteins. Although the reaction rate seemed to slow down after the first minute, more than 85% cleavage completion was achieved within 30 minutes at 22 ° C and within 3 hours at 6 ° C. Ultrafast cleavage kinetics are made possible by placing the purification tag at the intein split junction, thus avoiding the possibility of steric hindrance of important interactions between N- and C-exteins. The C-terminal cleavage efficiency of the engineered split intein is not affected by what is the first residue of the C-extane (proline was found to be an exception), and the purified tag was completely removed by SIRP. It was possible to remove and purify the protein with the natural N-terminus. The C-terminal cleavage reaction can be effectively inhibited by divalent Zn 2+ under non-reducing conditions. Importantly, because the association of intein N and C fragments is reversible, the column-bound intein N fragment that captures the protein can be regenerated for multiple uses, further reducing the cost of protein purification. SIRP technology should provide a useful means for purifying untagged proteins and peptides.
ノストック・パンクチフォルメの天然のスプリットDnaE(NpuDnaE)は、非常に高いトランススプライシング活性を有し、構成断片が別々の宿主で発現するので、不完全なインビボにおけるインテイン切断は生じない。本発明者等は、点変異、Asp118GlyをC−インテイン断片(C)に導入して変異体C*を生成することによって、硫黄誘導性C末端切断を実施するためにNpuDnaEを操作した。特定の実施形態では、N−インテイン断片の第1の残基(N)をAlaに変異させて(NC1A)、いかなるN末端切断活性も完全に消失させ、親和性タグ、キチン結合ドメイン(CBD)をNC1AのC末端に付加して構築物NC1A−CBD(構築物12)を生成した。この構築物は、N−エクステインとして1個のMetを含有し、親和性タグをN−エクステインとして用い、C−エクステインによる立体的障害によって切断活性を干渉することができるタンパク質精製用に使用される従来のインテイン系とは対照的である(図9A)。所望のタンパク質(POI)は、C*のC末端に結合させた。 The natural split DnaE (NpuDnaE) of Nostock punctiforme has very high trans-splicing activity and does not produce incomplete intein cleavage in vivo because the constituent fragments are expressed in separate hosts. We engineered NpuDnaE to perform sulfur-induced C-terminal truncation by introducing the point mutation, Asp118Gly, into the C-intein fragment (C) to produce mutant C * . In certain embodiments, the first residue (N) of the N-intein fragment is mutated to Ala (NC1A) to completely eliminate any N-terminal cleavage activity, and the affinity tag, chitin binding domain (CBD) Was added to the C-terminus of NC1A to generate construct NC1A-CBD (construct 12). This construct contains 1 Met as N-extein, uses affinity tag as N-extein and is used for protein purification that can interfere with cleavage activity by steric hindrance by C-extein This is in contrast to the conventional intein system (FIG. 9A). The desired protein (POI) was attached to the C-terminus of C * .
本発明者等は、図3に挙げたような操作したインテイン対を含有する様々な融合タンパク質を作製した。C末端切断反応速度を測定するために、球状タンパク質ホスファイト脱水素酵素(PTDH)に融合したC*を含むC*−PTDH(構築物6)を、NC1A−CBD(構築物12)と1:1モル比でDTT50mMの存在下で混合した。22℃及び6℃の両方で、30秒以内にC*−PTDHからPTDH約50%が切断した(図10、A及びB)。30秒は、正確に測定できる最も早い時点なので、このような切断を実現するために必要な時間はさらに短い可能性がある。対照的に、C末端切断インテイン、gp41−1C1Aで報告された最も速い時間は37℃でのt1/25分である。反応速度は、最初の1分で減速するが、85%を上回るC末端切断が22℃で30分以内、6℃で3時間以内に実現する(図10D)。この迅速な切断速度は、おそらく1)野生型NpuDnaEの高い活性、2)インテインC断片における変異Asp118Gly、及び3)POIで干渉される可能性があるN−エクステインの排除によるものだろう。興味深いことに、野生型Cの切断に使用できないCBD−NC1A(構築物4)とは異なり、NC1A−CBDはまた、会合時に野生型Cの著しいC末端切断を誘導することができ、22℃で3時間で約30%が切断される(図10D、2B)。これらのデータは、SspDnaEインテインでも認められるように、N末端切断がNpuDnaEインテインで見られるまでC末端切断が厳しく制限されるのは、少なくとも部分的にはN−エクステインの存在によるものであることをさらに実証している。 We have made various fusion proteins containing engineered intein pairs as listed in FIG. To measure the C-terminal cleavage kinetics, C * -PTDH comprising C * fused to globular proteins phosphite dehydrogenase (PTDH) a (construct 6), NC1A-CBD and (construct 12) 1: 1 mole The ratio was mixed in the presence of 50 mM DTT. Approximately 50% of PTDH was cleaved from C * -PTDH within 30 seconds at both 22 ° C. and 6 ° C. (FIGS. 10, A and B). Since 30 seconds is the earliest time that can be accurately measured, the time required to achieve such a cut may be even shorter. In contrast, the fastest time reported for the C-terminal truncated intein, gp41-1C1A, is t 1/2 5 minutes at 37 ° C. The reaction rate slows down in the first minute, but over 85% C-terminal cleavage is achieved within 30 minutes at 22 ° C. and within 3 hours at 6 ° C. (FIG. 10D). This rapid cleavage rate is probably due to the elimination of 1) high activity of wild-type NpuDnaE, 2) the mutated Asp118Gly in the intein C fragment, and 3) N-extein that may be interfered with POI. Interestingly, unlike CBD-NC1A (construct 4), which cannot be used to cleave wild-type C, NC1A-CBD can also induce significant C-terminal truncation of wild-type C upon association, 3 About 30% is cut in time (FIGS. 10D, 2B). These data indicate that the C-terminal truncation is severely limited until the N-terminal truncation is seen with the NpuDnaE intein, as is also observed with the SspDnaE intein, due at least in part to the presence of N-extane. Is further demonstrated.
NC1A−CBDはまた、還元条件下よりもずっと遅い速度ではあるが、非還元条件下でC*−PTDHの迅速なC末端切断を誘導する(図11B、Zn2+ 0mM)。DDTの非存在でも、中性及び酸性pHの両方で30分以内に50%を上回るC*−PTDHが切断される。この基本レベルの切断はおそらく、Cys+1とジスルフィド結合を形成することができインテイン反応を阻害するCys1が存在しないためであろう。本発明者等は、操作したNpuDnaE構築物のC末端切断を阻害するZn2+の能力を試験した。図11Aに示したように、ZnCl2(0.5mM)は、非還元条件下で効果的にC末端切断反応を阻害するが、DTTの存在下ではほとんど阻害効果を有さない。阻害は、pH6でより強力で、22℃で3時間インキュベートした後のインテイン切断はたったの約10%である。これらの結果は、Zn2+及びDTTはそれぞれ、C末端切断の停止及び開始の効果的なスイッチとして使用することができることを実証している。Zn2+濃度がより高いと、より効率よくC末端切断反応を阻害することができ、長時間の洗浄ステップ中の生成物の損失を防ぐために役立つ。本発明者等は、1mM以上の濃度のZn2+イオンがいくつかの細胞性タンパク質を沈降させることがあり、したがって細胞溶解物中で直接使用すべきではないことを認識している。SspDnaEの結晶構造によると、Zn2+は、Asp140、His48(NpuDnaEのAsp118、His48と同等である)及びCys+116に配位する。しかし、C*においてAsp118がGlyに変異すると、N末端切断の非存在下においてC末端切断活性が付与される。したがって、本発明者等は、NpuDnaEにZn2+結合のための別の部位があることを認識している。本発明者等はまた、その他のイオン/分子が切断阻害剤を構成し、非還元条件下でZn2+より効果的にC末端切断を阻害することができることを認識している。 NC1A-CBD also induces rapid C-terminal cleavage of C * -PTDH under non-reducing conditions, although at a much slower rate than under reducing conditions (FIG. 11B, Zn2 + 0 mM). Even in the absence of DDT, more than 50% of C * -PTDH is cleaved within 30 minutes at both neutral and acidic pH. This basic level of cleavage is probably due to the absence of Cys1, which can form a disulfide bond with Cys + 1 and inhibit the intein reaction. We tested the ability of Zn 2+ to inhibit C-terminal truncation of engineered NpuDnaE constructs. As shown in FIG. 11A, ZnCl 2 (0.5 mM) effectively inhibits the C-terminal cleavage reaction under non-reducing conditions, but has little inhibitory effect in the presence of DTT. Inhibition is more potent at pH 6, with only about 10% intein cleavage after 3 hours incubation at 22 ° C. These results demonstrate that Zn 2+ and DTT can be used as effective switches for C-terminal truncation termination and initiation, respectively. Higher Zn 2+ concentrations can more efficiently inhibit the C-terminal cleavage reaction and help prevent product loss during long washing steps. We recognize that Zn 2+ ions at concentrations of 1 mM and above may precipitate some cellular proteins and therefore should not be used directly in cell lysates. According to the crystal structure of SspDnaE, Zn 2+ coordinates to Asp140, His48 (equivalent to Asp118, His48 of NpuDnaE) and Cys + 116. However, when Asp118 is mutated to Gly in C * , C-terminal cleavage activity is conferred in the absence of N-terminal cleavage. Therefore, we recognize that there is another site for Zn 2+ binding in NpuDnaE. We also recognize that other ions / molecules constitute cleavage inhibitors and can inhibit C-terminal cleavage more effectively than Zn 2+ under non-reducing conditions.
特定の実施形態では、非天然のアミノ酸は全て、標的タンパク質から完全に除去することが望ましい。インテイントランススプライシング反応のために、+1位のシステインはトランスエステル化及びS/O−Nアシルシフト反応を完了するために必要である。しかし、Cys+1は、C末端切断に関与するアスパラギン環化反応には必要ない。本発明者等は、C−エクステインの第1の残基(X)が小さい、大きい、疎水性、極性、陽性及び陰性に荷電した側鎖のアミノ酸の代表として5個の異なるアミノ酸、Ala、Leu、Asp、Arg及びProと置換した様々なC*−X−GFP融合タンパク質(図3、構築物14〜18)を設計した。Pro+1以外、生じたその他の置換は全て、室温で30分後にC末端切断を完了し(図12)、+1位にCysを含有する元のC*構築物で認められたものと同程度の切断プロファイルであった(図10)。 In certain embodiments, it is desirable to completely remove all unnatural amino acids from the target protein. For the intein trans-splicing reaction, a cysteine at position +1 is required to complete the transesterification and S / O-N acyl shift reactions. However, Cys + 1 is not required for the asparagine cyclization reaction involved in C-terminal cleavage. We have five different amino acids, Ala, as representative of side-chain amino acids that are small, large, hydrophobic, polar, positive and negatively charged in the first residue (X) of C-extein. Various C * -X-GFP fusion proteins (FIG. 3, constructs 14-18) were designed that replaced Leu, Asp, Arg and Pro. All other substitutions that occurred, except Pro + 1, completed C-terminal cleavage after 30 minutes at room temperature (FIG. 12) and had a cleavage profile similar to that seen with the original C * construct containing Cys at position +1 (FIG. 10).
特定の実施形態は、キチン結合ドメイン(CBD)を含み、操作したインテイン対の有用性を示すために、本発明者等はキチン結合ドメイン(CBD)をベースにしたタンパク質精製法を設計し(図13)、キチン親和性クロマトグラフィーによって2つのタンパク質を精製した(図14A及び14B)。キチン樹脂1mL当たり高純度のPTDHが14mg、GFPが18mgも得られた。NC1A−CBDへのC*−PTDH及びC*−GFPの結合のモル比は、SDS−PAGE分析で測定すると、それぞれ0.35及び0.92である。結合能の差はおそらく、二量体であるPTDHのサイズが球状単一ドメインGFPと比較して大きいためであろう。親和性樹脂に固定したときの両タンパク質のインテインC末端切断効率は、溶液中で認められたものと同程度で、22℃で30分及び6℃で3時間で80%超が切断する(図14、レーン5、6)。C*−GFP試料中に少量の切断GFPが存在する(図14B、レーン3)。これは主に、細胞溶解中のタンパク質分解切断及びGFPとキチン樹脂の非特異的相互作用によるものである。pH11.4緩衝液で選択的に未切断C*−PTDH/GFPがキチン結合NC1A−CBDから溶出するので、C*とNC1Aの会合は可逆的で(図14、レーン4)、C*とNC1Aの間の高い親和性が静電気的相互作用によって大体決定されることを実証している。 Certain embodiments include a chitin binding domain (CBD), and to demonstrate the utility of engineered intein pairs, we designed a protein purification method based on the chitin binding domain (CBD) (FIG. 13) Two proteins were purified by chitin affinity chromatography (FIGS. 14A and 14B). 14 mg of high-purity PTDH and 18 mg of GFP were obtained per mL of chitin resin. The molar ratio of the binding of C * -PTDH and C * -GFP to NC1A-CBD, as measured by SDS-PAGE analysis, 0.35 and 0.92, respectively. The difference in binding ability is probably due to the large size of the dimeric PTDH compared to the globular single domain GFP. The intein C-terminal cleavage efficiencies of both proteins when immobilized on an affinity resin are similar to those observed in solution, with more than 80% cleaving at 22 ° C. for 30 minutes and 6 ° C. for 3 hours (see FIG. 14, lanes 5 and 6). There is a small amount of cleaved GFP in the C * -GFP sample (FIG. 14B, lane 3). This is mainly due to proteolytic cleavage during cell lysis and non-specific interaction between GFP and chitin resin. Since uncleaved C * -PTDH / GFP elutes from chitin-bound NC1A-CBD selectively with pH 11.4 buffer, the association of C * and NC1A is reversible (FIG. 14, lane 4), C * and NC1A It demonstrates that the high affinity between is largely determined by electrostatic interactions.
特定の実施形態では、NC1Aを含む融合タンパク質を再利用する。キチン結合NC1A−CBDの再利用性を示すために、本発明者等は同じキチンカラムを4回使用して、PTDHの精製を繰り返した(図15)。切断したPTDHの溶出後、及びC*−PTDHを含有する新鮮な溶解物を添加する前に、切断したC*をカラム上のNC1A−CBDから除去するために、キチン樹脂をpH11.4緩衝液で徹底的に洗浄した。精製したPTDHの収率は、4回のサイクル全てにおいて同程度で、NC1A−CBD−キチン親和性マトリクスは複数回使用サイクルのための再生能力があることが確認された。切断したC*は、完全長C*−PTDHよりも容易にpH11.4緩衝液中でNC1A−CBDから解離することができるのは明らかである。 In certain embodiments, a fusion protein comprising NC1A is reused. In order to demonstrate the reusability of chitin-bound NC1A-CBD, we repeated the purification of PTDH using the same chitin column four times (FIG. 15). In order to remove the cleaved C * from the NC1A-CBD on the column after elution of the cleaved PTDH and before adding the fresh lysate containing C * -PTDH, the chitin resin was pH 11.4 buffered. Wash thoroughly. The yield of purified PTDH was similar in all four cycles, confirming that the NC1A-CBD-chitin affinity matrix was capable of regeneration for multiple use cycles. Cut C * It is clear can be dissociated from NC1A-CBD easily in pH11.4 buffer than the full length C * -PTDH.
本発明者等は、タンパク質溶出のための切断誘導剤としてDTTを使用することが、特定の適用、例えば、3次元及び4次元構造のために表面に曝露したジスルフィド結合を利用するタンパク質にとっては望ましくないことを認識している。本発明者等は、基本的な切断を抑制し、POIを遊離させるZn2+イオンをキレートすることができるならば、EDTAをC末端切断の誘導剤として使用できることを認識している(図11B、DTT及びZn2+ 0mM)。 We prefer to use DTT as a cleavage inducer for protein elution for proteins that utilize disulfide bonds exposed to the surface for certain applications, such as 3D and 4D structures. Recognize that there is no. The inventors recognize that EDTA can be used as an inducer of C-terminal cleavage if it can chelate Zn 2+ ions that inhibit basic cleavage and liberate POI (FIG. 11B, DTT and Zn 2+ 0 mM).
可逆的沈降及びキチン樹脂によるタンパク質精製:タンパク質精製におけるNpu*の有用性を示すために、本発明者等は、タンパク質精製法の様々な実施形態を開発した(図16)。特定の実施形態には、エラスチン様ペプチド(ELP)の可逆的沈降と制御可能なNpu*のC末端切断を組み合わせる方法が含まれる(図16、方法1)。可動性リンカーELP−N(構築物5)を介してNをエラスチン様ポリペプチド(ELP)のC末端に結合させ、変異体C*を様々な試料標的タンパク質のN末端に融合させたC*−POI(構築物3、6〜10)。非還元条件下で、N及びC*は切断しなくても互いに非共有的に相互反応し、POIとELPを物理的に会合させる。硫酸アンモニウムの添加は、ELPの相分離を誘発し、ELP及び会合したPOIの凝集を引き起こす。上清中の細胞性タンパク質を除去した後、この沈降物を次に低塩還元緩衝液中で溶解し、相転移を逆転させ、インテインのC末端切断を誘導する。切断すると、POIはELP−インテイン複合体から遊離し、2回目の硫酸アンモニウム沈降及び遠心によって選択的に除去され、溶液中に高純度のPOIを生じさせる。 Reversible precipitation and protein purification with chitin resin: To demonstrate the utility of Npu * in protein purification, we developed various embodiments of protein purification methods (FIG. 16). Certain embodiments include a method that combines reversible precipitation of elastin-like peptide (ELP) with controllable Npu * C-terminal truncation (FIG. 16, Method 1). C * -POI in which N is attached to the C-terminus of elastin-like polypeptide (ELP) via the mobile linker ELP-N (construct 5) and the mutant C * is fused to the N-terminus of various sample target proteins (Construct 3, 6-10). Under non-reducing conditions, N and C * interact non-covalently with each other without cleavage, causing the POI and ELP to physically associate. Addition of ammonium sulfate induces ELP phase separation and causes aggregation of ELP and associated POI. After removal of cellular proteins in the supernatant, the precipitate is then lysed in low salt reduction buffer, reversing the phase transition and inducing C-terminal cleavage of the intein. Upon cleavage, POI is released from the ELP-intein complex and is selectively removed by a second ammonium sulfate precipitation and centrifugation, resulting in a highly pure POI in solution.
球状タンパク質ホスファイト脱水素酵素(PTDH)の精製例を図17Aに示す。インテイン自己切断反応による収率は、22℃で3時間及び20時間でそれぞれ大腸菌培養物1リットル当たり精製PTDH 49.8及び59.3mgであった。さらなる様々なサイズ及び多量体のタンパク質5種類(構築物3、7〜10)の精製を図18A〜18Eに示す。DsRed(構築物7)の精製方法は、視覚検査によって都合よくモニターすることができる(図17B)。可溶性溶解物からの標的タンパク質精製収率及び回収パーセントを図19にまとめて示す。試験したタンパク質全てについて高純度が得られた。驚くことではないが、ELPの引き下げ効率及びインテイン切断反応速度は、標的タンパク質によって影響を受ける(図20)。単量体及び多量体タンパク質はいずれも、この方法によって効率よく精製することができる。ほとんどの場合、インテイン自己切断反応は、基本的に4時間で完了し、全手順が完了する時間は従来のクロマトグラフィーによるタンパク質精製法と同程度である。 An example of purification of globular protein phosphite dehydrogenase (PTDH) is shown in FIG. 17A. The yield from the intein self-cleavage reaction was 49.8 and 59.3 mg of purified PTDH per liter of E. coli culture at 22 ° C. for 3 hours and 20 hours, respectively. Purification of five additional proteins of various sizes and multimers (constructs 3, 7-10) are shown in FIGS. The purification method for DsRed (construct 7) can be conveniently monitored by visual inspection (FIG. 17B). The target protein purification yield and percent recovery from the soluble lysate are summarized in FIG. High purity was obtained for all proteins tested. Not surprisingly, the ELP reduction efficiency and intein cleavage kinetics are affected by the target protein (FIG. 20). Both monomeric and multimeric proteins can be efficiently purified by this method. In most cases, the intein self-cleavage reaction is essentially complete in 4 hours, and the time to complete the entire procedure is comparable to conventional chromatographic protein purification methods.
クロマトグラフィーをベースにした方法は、相変わらず組換えタンパク質精製の柱であるので、本発明者等はまた、操作したインテインの用途をさらに拡大するために親和性をベースにした精製法を使用する実施形態を開発した。この方法では、ELPをキチン結合ドメイン(CBD)に置き換え、精製は、キチンビーズへの結合によって実行する(図16、方法2)。GFPの精製例を図17Cに示す。精製したGFPの収率は、100μlキチンカラムでは約2mgであった。キチンビーズの結合能力は、マルトース結合タンパク質で報告されたものよりもずっと高いようである(0.2mg/キチンビーズ100μL、New England Biolabs社 website)。確かな理由は分からないが、部分的にはマルトース結合タンパク質と比較してNのサイズがずっと小さいためであろう。 Since chromatographic-based methods are still the pillars of recombinant protein purification, we also implement using affinity-based purification methods to further expand the use of engineered inteins. Developed form. In this method, ELP is replaced with a chitin binding domain (CBD) and purification is performed by binding to chitin beads (FIG. 16, method 2). An example of GFP purification is shown in FIG. 17C. The yield of purified GFP was about 2 mg on a 100 μl chitin column. The binding capacity of chitin beads appears to be much higher than that reported for maltose binding protein (0.2 mg / 100 μL of chitin beads, New England Biolabs website). The exact reason is not known, but may be due in part to the much smaller size of N compared to maltose binding protein.
特定の実施形態は、N末端を切断することなく迅速なC末端切断反応を実施することができる操作されたスプリットNpuDnaEインテインを含む。スプリットNpuDnaEインテインは、今日同定されている最も活性のあるインテインの1つである(図1)。しかし、NpuDnaEの迅速な反応速度及び高い溶解性にも関わらず、C末端アスパラギン環化がN末端のアシルシフトに依存するため、タンパク質精製などの多くの適用においてDnaEインテインを使用することはできない。インテイントランススプライシングを導く複数のステップの触媒経路が緊密に協調しているが、この一連の反応に関与する正確な機構は分からないままである。インテインN/C末端切断は、スプライス接合部における切断速度の増加又は別のステップの反応速度の減少から生じ得る。本発明者等は、ミニ−MtuRecAインテインにおける単一の変異、D422Gがトランススプライシング活性を消失させ、C末端切断活性を著しく上昇させることができることを認識している。Asp422はインテイン活性部位内の保存されたブロックF領域(C2モチーフとも称する)にあり、スプリットNpuDnaE及びSspDnaEインテインを含む様々な種の全インテイン中で75%保存されている(図6)。このブロックFアスパラギン酸は、インテイン反応の第1及び第2のステップの両方に必須であることが以前に示されたことがある(図5A)。SspDnaEを含む複数のインテインの結晶構造は、このアスパラギン酸がN末端Cys1のオキシアニオンと水素結合を形成することを示しており、第1のステップN−Xアシルシフトのためにこの残基は配置されるようである。さらに、その他のインテインの量子力学シミュレーション及び構造の研究によって、このアスパラギン酸はまた、Cys+1のチオール基を脱プロトン化し、求核攻撃を開始して分岐状中間体を形成させることができることを示唆している。ミニ−MtuRecAにおいてこのAsp422が変異すると、N末端切断反応及び分岐状中間体の形成が著しく遅くなる。NMR構造では、この位置にはAlaが含まれていたが、NpuDnaEインテインのNMR構造は、Asp118(ミニ−MtuRecAのAsp422と同等)が第1の残基のオキシアニオンとの水素結合距離内にあることを示した。対応するアスパラギン酸がGlyに変化したNpu*は、DTT50mMでも非常に限られたN末端切断を示し(図7A)、この変異はおそらくまた、第1のステップN−Xアシルシフト及び分岐状中間体の形成をブロックすることを示唆している。 Certain embodiments include engineered split NpuDnaE inteins that can perform rapid C-terminal cleavage reactions without cleaving the N-terminus. Split NpuDnaE intein is one of the most active inteins identified today (FIG. 1). However, despite the rapid reaction rate and high solubility of NpuDnaE, DnaE inteins cannot be used in many applications such as protein purification because the C-terminal asparagine cyclization relies on the N-terminal acyl shift. Although the multi-step catalytic pathway leading to intein trans-splicing is closely coordinated, the exact mechanism involved in this series of reactions remains unknown. Intein N / C end truncation can result from an increase in the cleavage rate at the splice junction or a decrease in the reaction rate of another step. The inventors have recognized that a single mutation in the mini-MtuRecA intein, D422G, can eliminate trans-splicing activity and significantly increase C-terminal cleavage activity. Asp422 is in a conserved block F region (also referred to as the C2 motif) within the intein active site and is 75% conserved among all inteins of various species including split NpuDnaE and SspDnaE inteins (FIG. 6). This block F aspartic acid has previously been shown to be essential for both the first and second steps of the intein reaction (FIG. 5A). The crystal structures of multiple inteins, including SspDnaE, show that this aspartic acid forms a hydrogen bond with the oxyanion of the N-terminal Cys1, and this residue is located for the first step NX acyl shift. It seems. Furthermore, quantum mechanical simulation and structural studies of other inteins suggest that this aspartic acid can also deprotonate the Cys + 1 thiol group and initiate nucleophilic attack to form branched intermediates. ing. Mutation of this Asp422 in mini-MtuRecA significantly slows the N-terminal cleavage reaction and the formation of branched intermediates. In the NMR structure, this position contained Ala, but in the NMR structure of NpuDnaE intein, Asp118 (equivalent to Asp422 of mini-MtuRecA) is within the hydrogen bond distance with the oxyanion of the first residue. Showed that. Npu * whose corresponding aspartic acid was changed to Gly showed very limited N-terminal truncation even at DTT 50 mM (FIG. 7A), and this mutation was also probably due to the first step NX acyl shift and branched intermediates. Suggests blocking formation.
ミニ−MtuRecAインテインではC及びN末端切断反応は共役しておらず、したがって、インテイン反応の第1及び第2のステップの遅れは、C末端切断生成物が上昇する原因となる。しかし、DnaEインテインでは、C及びN末端切断反応は強く共役している。C1Aを有する変異体DnaEインテインはほとんど又は全くC末端切断を示さないので、最初の2つのステップを阻害しても、C末端切断生成物の上昇は直接に導かれない。NpuDnaEインテインにおいてD118GがどのようにC末端切断を誘導するのかを理解するために、本発明者等はNpuDnaEの溶液構造をその最も近似したホモログSspDnaEの結晶構造と比較した。SspDnaEインテインにおいて、C末端アスパラギンの環化は、C末端スプライシング接合部の近くのHis147、Asn159、Arg73及び水分子が関与する電荷リレー過程によって媒介される(図21A)。水分子は、Asn159及びHis147のNδ原子とLeu143の主鎖窒素の水素結合距離内にあり、プロトンをAsn159からHis147に移す(図21A)。脱プロトン化したAsn159 Nδは、そのカルボニル炭素原子に求核攻撃を開始し、C末端インテイン−エクステイン結合の切断を引き起こす。同じ機構は、類似の位置に水分子を含有するSspDnaB及びミニ−MtuRecAにおけるアスパラギン環化に関与する。NpuDnaEのNMR構造は、Asp118がAsn137のNδと水素結合を形成することができ、電荷リレーに都合が悪くなり、したがって、C末端切断を阻害することを示している(図21B)。いくつかの研究において、Cys+1のチオール基の水素によってAsp118をプロトン化することが必要であることが示された分岐状中間体の形成は、Asn137とAsp118のH結合相互作用を分断し、電荷リレーにおいてAsn137を関与させ、C末端切断を導かせる。分岐状中間体の形成によって、C末端アスパラギン環化反応を加速するインテイン構造のわずかな変化が引き起こされる。Asp118をより小さなGlyに変異させると、H結合相互反応が排除され、構造変化を必要とすることなく電荷リレーにおいてAsn137を自由に関与させることができ、脱共役C末端切断が導かれる。したがって、インテイン反応の最初の2つのステップの阻害に加えて、D118Gはまた、Npu*におけるアスパラギン環化を加速することができ、迅速なC末端切断を導く。図22は、C*−GFP(3)とCBD−NpuN(1)の反応を様々な温度でDTT5mMでインキュベートしたことを示す。反応は、試料をSDS試料緩衝液と混合し、5分間煮沸することによって停止した。 In the mini-MtuRecA intein, the C and N-terminal cleavage reactions are not conjugated, and therefore the delay in the first and second steps of the intein reaction causes the C-terminal cleavage product to rise. However, with DnaE intein, the C and N-terminal cleavage reactions are strongly conjugated. Mutant DnaE inteins with C1A show little or no C-terminal truncation, so inhibiting the first two steps does not directly lead to an increase in C-terminal truncation products. To understand how D118G induces C-terminal truncation in the NpuDnaE intein, we compared the solution structure of NpuDnaE with the crystal structure of its closest homolog SspDnaE. In the SspDnaE intein, C-terminal asparagine cyclization is mediated by a charge relay process involving His147, Asn159, Arg73 and water molecules near the C-terminal splicing junction (FIG. 21A). The water molecules are within the hydrogen bond distance of the Asn159 and His147 Nδ atoms and the main chain nitrogen of Leu143, transferring protons from Asn159 to His147 (FIG. 21A). Deprotonated Asn159 Nδ initiates nucleophilic attack on its carbonyl carbon atom, causing cleavage of the C-terminal intein-extein bond. The same mechanism is involved in asparagine cyclization in SspDnaB and mini-MtuRecA containing water molecules at similar positions. The NMR structure of NpuDnaE shows that Asp118 can form a hydrogen bond with Nδ of Asn137, making it inconvenient for charge relay and thus inhibiting C-terminal cleavage (FIG. 21B). In some studies, the formation of a branched intermediate that was shown to require protonation of Asp118 by the hydrogen of the Cys + 1 thiol group disrupted the H-bond interaction of Asn137 and Asp118, resulting in charge relaying. Asn137 is involved in leading C-terminal truncation. Formation of the branched intermediate causes a slight change in the intein structure that accelerates the C-terminal asparagine cyclization reaction. Mutating Asp118 to a smaller Gly eliminates H-bond interactions and allows Asn137 to participate freely in charge relays without the need for structural changes, leading to uncoupled C-terminal truncation. Thus, in addition to inhibiting the first two steps of the intein reaction, D118G can also accelerate asparagine cyclization at Npu * , leading to rapid C-terminal truncation. FIG. 22 shows that the reaction of C * -GFP (3) and CBD-NpuN (1) was incubated with 5 mM DTT at various temperatures. The reaction was stopped by mixing the sample with SDS sample buffer and boiling for 5 minutes.
Npu*の切断反応速度は、野生型インテイントランススプライシング反応よりもわずかに遅い(図1)。これは、Asp118側鎖の非存在下ではAsn137の配置が不完全であるためであろう。それにも関わらず、室温で3時間以内に約80%のC末端切断を実現することができ、この変異体インテインはタンパク質精製におけるタグ除去に有益となる。Npu*を使用して、本発明者等は、カラムを使わないタンパク質精製方法及びクロマトグラフィーをベースにしたタンパク質精製方法を、それぞれN−エクステインをELP及びCBDに置換することによって開発し、様々なサイズ及び多量体の状態の様々な標的タンパク質を高純度及び高収率で迅速に精製すること(4時間未満)を示した(図19、17A及び18A〜18E)。しかし、インテイン切断を誘発するために還元剤を使用するので、この方法は天然に生じるジスルフィド結合を含有するタンパク質の精製では試験しなかった。第1の方法では、ELPを使用することによって、コストの高いカラムの必要性がなくなり、大規模な産業的タンパク質精製において、その使用が容易になるはずである。第2の方法では、hisタグなどのその他の精製タグをCBDの位置に使用して、親和性精製を媒介することができることが便利である。 The Npu * cleavage rate is slightly slower than the wild-type intein trans-splicing reaction (FIG. 1). This may be due to the incomplete arrangement of Asn137 in the absence of the Asp118 side chain. Nevertheless, about 80% C-terminal cleavage can be achieved within 3 hours at room temperature, and this mutant intein is beneficial for tag removal in protein purification. Using Npu *, we developed a column-free protein purification method and a chromatography-based protein purification method by substituting ELP and CBD for N-extein, respectively. Various target proteins of various sizes and multimers were shown to be rapidly purified (less than 4 hours) in high purity and yield (Figure 19, 17A and 18A-18E). However, since a reducing agent is used to induce intein cleavage, this method was not tested in the purification of proteins containing naturally occurring disulfide bonds. In the first method, the use of ELP should eliminate the need for costly columns and facilitate its use in large-scale industrial protein purification. In the second method, it is convenient that other purification tags, such as a his tag, can be used at the CBD position to mediate affinity purification.
特定の実施形態では、標的タンパク質は精製後にN末端にトリペプチドCFNを含有する(図3)。構築物6〜10に存在するASは、NheI部位に対応し、クローニングを容易にするために導入された。Cys+1は、おそらくCys1とのジスルフィド結合によって、非還元条件下でインテインを不活性にするために重要である。Phe+2及びAsn+3の機能は知られていないが、野生型NpuDnaEにおけるトランススプライシング活性で既に報告されたように、これらの残基はおそらくNpu*C末端切断活性において重要な役割を果たさないだろう。C末端切断効率は、すぐ近くのエクステイン残基に依存するだけでなく、標的タンパク質にも依存する(図20)。このばらつきはC*とNの会合における様々な標的タンパク質による立体的障害によるもので、これらの2つの断片の親和性並びにインテイン触媒効率の両方に影響を及ぼす可能性がある。 In certain embodiments, the target protein contains the tripeptide CFN at the N-terminus after purification (Figure 3). The AS present in constructs 6-10 corresponds to the NheI site and was introduced to facilitate cloning. Cys + 1 is important for inactivating the intein under non-reducing conditions, presumably by a disulfide bond with Cys1. Although the functions of Phe + 2 and Asn + 3 are not known, these residues probably do not play an important role in Npu * C-terminal truncation activity, as previously reported for trans-splicing activity in wild-type NpuDnaE. The C-terminal cleavage efficiency depends not only on the immediate extein residue but also on the target protein (FIG. 20). This variability is due to steric hindrance by various target proteins in the association of C * and N, which can affect both the affinity of these two fragments as well as the intein catalytic efficiency.
特定の実施形態では、本発明者等は合理的な設計によってNpuDnaEインテインを操作した。このインテインは、N末端切断とは独立した迅速なC末端切断反応速度を示す。本発明者等は、タンパク質精製におけるこの操作されたインテインの応用を示した。変異体NpuDnaEインテインをベースにした精製方法を人工的なスプリットDnaBインテインによるその他の精製方法と比較すると、本発明で開示した方法によって、小さなペプチドの依存性がなくなり、さらにより迅速な切断速度が実現する。したがって、本発明で開示した方法は、大規模なタンパク質精製への応用において有用である。 In certain embodiments, we have engineered the NpuDnaE intein with a rational design. This intein exhibits a rapid C-terminal cleavage reaction rate independent of N-terminal cleavage. We have shown the application of this engineered intein in protein purification. Comparing purification methods based on mutant NpuDnaE inteins with other purification methods using artificial split DnaB inteins, the method disclosed in the present invention eliminates the dependence of small peptides and provides even faster cleavage rates To do. Thus, the method disclosed in the present invention is useful in large-scale protein purification applications.
SIRPによる精製例(図14):キチン樹脂150μLを含有する使い捨てカラムに緩衝液A(NaCl 0.5M、Tris−HCl 10mM、pH8.0)に溶かしたNC1A−CBDを含有する可溶性溶解物を添加し、10カラム体積(CV)の緩衝液B(NaCl 0.5M、NaPOi 50mM、pH6.0)で4回洗浄した。全添加及び洗浄ステップは、バッチ相で実施した。最後の洗浄にはZnCl2 0.5mMを補給した。溶解物を同じキチン樹脂に添加する直前に、同濃度のZnCl2を緩衝液Bに溶かしたC*−PTDH/GFPの可溶性溶解物に添加した。その後、カラムをZnCl2(0.5mM)を含む10CVの緩衝液Bで洗浄し、最後にDTT 50mMを含有する4CVの緩衝液Aで室温で30分間又は6℃で3時間インキュベートした。精製したPTDH及びGFPをフロースルーに収集した。フロースルー中の微量のNC1A−CBDは、新鮮なキチンカラムに通過させることによって除去することができる。NC1A−CBD−キチン親和性マトリクスを再生するために、使用した樹脂を緩衝液C(NaCl 1.5M、Na2HPO4 50mM/NaOH、pH11.4、ZnCl2 0.5mM)で徹底的に洗浄して、結合したC*を遊離させた。再生したカラムは保存緩衝液(NaCl 0.5M、Tris−HCl 10mM、EDTA 1mM、0.15%NaN3、pH8.0)で4℃で約1週間、活性をあまり損失することなく保存することができる。 Example of purification by SIRP (FIG. 14): A soluble lysate containing NC1A-CBD dissolved in buffer A (NaCl 0.5M, Tris-HCl 10 mM, pH 8.0) was added to a disposable column containing 150 μL of chitin resin. And washed 4 times with 10 column volumes (CV) of buffer B (NaCl 0.5 M, NaPOi 50 mM, pH 6.0). All addition and washing steps were performed in the batch phase. The last wash was supplemented with ZnCl 2 0.5mM. Just prior to adding the lysate to the same chitin resin, the same concentration of ZnCl 2 was added to the soluble lysate of C * -PTDH / GFP dissolved in buffer B. The column was then washed with 10 CV Buffer B containing ZnCl 2 (0.5 mM) and finally incubated with 4 CV Buffer A containing 50 mM DTT for 30 minutes at room temperature or 3 hours at 6 ° C. Purified PTDH and GFP were collected in the flow-through. Traces of NC1A-CBD in the flow-through can be removed by passing through a fresh chitin column. In order to regenerate the NC1A-CBD-chitin affinity matrix, the resin used is thoroughly washed with buffer C (NaCl 1.5M, Na 2 HPO 4 50 mM / NaOH, pH 11.4, ZnCl 2 0.5 mM). Bound C * was released. The regenerated column can be stored in storage buffer (NaCl 0.5M, Tris-HCl 10 mM, EDTA 1 mM, 0.15% NaN3, pH 8.0) at 4 ° C. for about 1 week without losing much activity. it can.
化学物質及び株:化学物質は全て試薬等級で、特に記載していない限り、Sigma-Aldrich社(St. Louis, MO)又はVWR International社(Radnor, PA)から購入した。大腸菌DH5α(Invitrogen社、Grand Island、NY)は、組換えDNAクローニング及び操作のために使用した。大腸菌BLR(DE3)(Novagen社、Madison、WI)は、組換えタンパク質の発現のために使用した。ONPGは、Research Products International Corp.社(Mount Prospect、IL)から購入した。キチンビーズは、New England Biolabs社(Ipswich、MA)から購入した。 Chemicals and strains: All chemicals were reagent grade and were purchased from Sigma-Aldrich (St. Louis, MO) or VWR International (Radnor, PA) unless otherwise noted. E. coli DH5α (Invitrogen, Grand Island, NY) was used for recombinant DNA cloning and manipulation. E. coli BLR (DE3) (Novagen, Madison, WI) was used for expression of the recombinant protein. ONPG was purchased from Research Products International Corp. (Mount Prospect, IL). Chitin beads were purchased from New England Biolabs (Ipswich, Mass.).
プラスミド構築:特定の実施形態のアミノ酸配列、構造及びそれらの番号の概要を図3に示す。 Plasmid construction: A summary of the amino acid sequence, structure and numbering of a particular embodiment is shown in FIG.
C−GFP(構築物1)を作製するために、プライマーNpuC_F_NdeI及びOXP-NC-G-Revを使用してプラスミドKanR-IntRBS-NpuNC-CFN9からNpuC遺伝子を増幅し、重複伸長PCRによってGFP pet26-GFPのN末端にプライマーOXP-GFP-NC-FWD及びXhoI_GFP_Rを用いて結合し、pET-26b(+)(Novagen社、Madison、WI)のNdeIとXhoI部位の間にクローニングした。部位特異的変異誘発を使用して変異D118Gを導入して、プライマーNpuCD17G-F及びNpuCD17G-RによってC*−GFP(3)を作製した。 To generate C-GFP (construct 1), the NpuC gene was amplified from plasmid KanR-IntRBS-NpuNC-CFN9 using primers NpuC_F_NdeI and OXP-NC-G-Rev, and GFP pet26-GFP by overlap extension PCR Was ligated to the N terminus of the plasmid using primers OXP-GFP-NC-FWD and XhoI_GFP_R, and cloned between the NdeI and XhoI sites of pET-26b (+) (Novagen, Madison, WI). Mutation D118G was introduced using site-directed mutagenesis to generate C * -GFP (3) with primers NpuCD17G-F and NpuCD17G-R.
CBD−N(2)を作製するために、NpuNはまた、プライマーHindIII-Link-Npu F及びNpuN_R_XhoIを使用してプラスミドKanR-IntRBS-NpuNC-CFN9から増幅し、キチン結合ドメイン(CBD)に結合し、重複伸長PCRによってプライマーNdeI-CBD-F及びHindIII-CBD-Rを用いてpTWIN1(New England BioLabs社)から増幅し、pET-26b(+)(Novagen社、Madison、WI)のNdeIとXhoI部位の間に挿入した。CBD−NpuNC1A(4)は、プライマーNheI-C1A-F及びNpuN_R_XhoIを使用して部位特異的変異誘発によって作製した。 To make CBD-N (2), NpuN is also amplified from plasmid KanR-IntRBS-NpuNC-CFN9 using primers HindIII-Link-Npu F and NpuN_R_XhoI and binds to the chitin binding domain (CBD). Amplified from pTWIN1 (New England BioLabs) using primers NdeI-CBD-F and HindIII-CBD-R by overlap extension PCR and NdeI and XhoI sites of pET-26b (+) (Novagen, Madison, WI) Inserted between. CBD-NpuNC1A (4) was generated by site-directed mutagenesis using primers NheI-C1A-F and NpuN_R_XhoI.
ELP−N(5)は、NpuN(アミノ酸1〜102)をプラスミドpET-EI:MBP10のEcoRIとHindIII部位の間に挿入することによって構築した。NpuNは、最初にプライマーHindIII-リンク-Npu F及びHindIII-6H-NupN-Rを使用して増幅し、次いで制限部位及び可動性リンカーを含めるためにプライマーEcorI-リンカー-NpuN F及びHindIII-6H-NupN-Rを用いて再度増幅した。 ELP-N (5) was constructed by inserting NpuN (amino acids 1-102) between the EcoRI and HindIII sites of plasmid pET-EI: MBP10. NpuN is first amplified using the primers HindIII-Link-Npu F and HindIII-6H-NupN-R, then the primers EcorI-Linker-NpuN F and HindIII-6H- to include restriction sites and a flexible linker. Amplification was performed again using NupN-R.
C*−DsRed(7)は、pET-26b(+)(Novagen社、Madison、WI)のNdeIとXhoI部位の間にクローニングした。NpuC*は、プライマーNpuC_F_NdeI及びNheI-NpuC CFN-Rを用いてC*−GFPから増幅した。DsRedは、プライマーHindII-L-DsRed-fwd及びXhoI_DsRed_Rを用いてpTY24プラスミド(NCRR、YRS、Seattle、WA)から増幅した。NheI酵素の消化によって生成物をNpuC*に結合させ、短いリンカーペプチドCFNASを生じた。標準CFN配列とは別に、「AS」ジペプチドは、NheI制限部位に対応し、その後のクローニングを容易にするために含めた。 C * -DsRed (7) was cloned between the NdeI and XhoI sites of pET-26b (+) (Novagen, Madison, WI). NpuC * was amplified from C * -GFP using primers NpuC_F_NdeI and NheI-NpuC CFN-R. DsRed was amplified from pTY24 plasmid (NCRR, YRS, Seattle, WA) using primers HindII-L-DsRed-fwd and XhoI_DsRed_R. The product was coupled to NpuC * by digestion of the NheI enzyme, resulting in the short linker peptide CFNAS. Apart from the standard CFN sequence, an “AS” dipeptide corresponds to the NheI restriction site and was included to facilitate subsequent cloning.
C*−PTDH(6)をクローニングするために、リン酸脱水素酵素「PTDH」をプライマーNheI-PTDH-F及びXhoI-PTDH12x-Rを用いてプラスミドPTDH12xA176R-pet15b11から増幅し、NheI及びXhoIで消化したNpuC*−DsRed(7)に挿入した。プラスミド構築物C*−β_Gal(8)、C*−CAT(9)及びC*−MBP(10)は、同じ方法で適切なプライマーを用いてNheIとXhoI部位の間に挿入することによって合成した。β−ガラクトシダーゼ遺伝子は、プラスミドpET-E-I:β−ガラクトシダーゼから増幅した。同様に、クロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ(CAT)及びマルトース結合タンパク質(MBP)遺伝子は、プラスミドpET-E-I:CAT及びpET-E-MBP(David Wood教授から恵与された)それぞれから増幅した。 To clone C * -PTDH (6), the phosphate dehydrogenase “PTDH” was amplified from plasmid PTDH12xA176R-pet15b11 using primers NheI-PTDH-F and XhoI-PTDH12x-R and digested with NheI and XhoI Inserted into NpuC * -DsRed (7). Plasmid construct C * -β_Gal (8), C * -CAT (9) and C * -MBP (10) was synthesized by inserting between the NheI and XhoI sites using appropriate primers in the same way. The β-galactosidase gene was amplified from the plasmid pET-EI: β-galactosidase. Similarly, chloramphenicol acetyltransferase (CAT) and maltose binding protein (MBP) genes were amplified from plasmids pET-EI: CAT and pET-E-MBP (a gift from Professor David Wood), respectively.
タンパク質発現及び精製:大腸菌BLR(DE3)は適切な発現プラスミドを用いて形質転換し、テトラサイクリン5μg/mL及びアンピシリン100μg/mL(図3、構築物5)又はテトラサイクリン5μg/mL及びカナマイシン50μg/mL(その他の全構築物)を含有する寒天プレートに播種した。翌日、1個のコロニーを採取し、5mLのLuria−Bertani(LB)ブロス中でOD600約0.6まで増殖させた。培養物を、同じ抗生物質を含有する1LのLBブロスに移し、OD600が約0.6になるまで37℃で増殖させた。タンパク質発現は、イソプロピルβ−D−1−チオガラクトピラノシド(IPTG、0.2mM)を添加することによって18℃で14時間誘導した。発現後、細胞を4℃で6000×gで15分間遠心することによって収集し、使用するまで−80℃で保存した。 Protein expression and purification: E. coli BLR (DE3) was transformed with the appropriate expression plasmid, tetracycline 5 μg / mL and ampicillin 100 μg / mL (FIG. 3, construct 5) or tetracycline 5 μg / mL and kanamycin 50 μg / mL (others) Agar plates containing the entire construct). The next day, one colony was picked and grown in 5 mL Luria-Bertani (LB) broth to an OD600 of about 0.6. The culture was transferred to 1 L LB broth containing the same antibiotic and grown at 37 ° C. until the OD600 was approximately 0.6. Protein expression was induced at 18 ° C. for 14 hours by adding isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside (IPTG, 0.2 mM). After expression, cells were harvested by centrifugation at 6000 × g for 15 minutes at 4 ° C. and stored at −80 ° C. until use.
CBD−N/NC1A(図3、構築物2、4)を精製するために、細胞ペレットを緩衝液A(NaCl 0.5M、Tris−HCl 10mM、pH8.0)に湿潤ペレット1グラム当たり10mLで再懸濁し、超音波処理によって破壊した(QSonica Misonix 200、Amp10、16〜20W、1秒パルス6秒休止を1分間)。可溶性溶解物を4℃で16,000×gで20分間遠心した後収集し、5−mlのNi−NTAカラム(GE Healthcare Life Sciences社、Piscataway、NJ)に通過させ、洗浄緩衝液(NaCl 0.5M、Tris−HCl 10mM、イミダゾール45mM、pH8)で洗浄し、イミダゾール150mMを含有する緩衝液Aで溶出した。 To purify CBD-N / NC1A (FIG. 3, constructs 2, 4), the cell pellet was reconstituted in buffer A (NaCl 0.5M, Tris-HCl 10 mM, pH 8.0) at 10 mL per gram wet pellet. Suspended and disrupted by sonication (QSonica Misonix 200, Amp 10, 16-20W, 1 second pulse 6 seconds rest for 1 minute). The soluble lysate was collected after centrifugation at 16,000 × g for 20 minutes at 4 ° C., passed through a 5-ml Ni-NTA column (GE Healthcare Life Sciences, Piscataway, NJ) and washed with a buffer of NaCl (NaCl 0). Washed with 5 M, Tris-HCl 10 mM, imidazole 45 mM, pH 8) and eluted with buffer A containing 150 mM imidazole.
タンパク質C/C*−GFP(図3、構築物1、3)は、類似の方法であるが、タンパク質分解を最小限に抑えるために緩衝液B(NaCl 0.5M、NaPOi 50mM、pH6.0、1×プロテアーゼ阻害剤又はカクテル(Roche Applied Science社、Indianapolis、IN))を用いて精製した。精製したタンパク質は、緩衝液Aに緩衝液交換し、10kDa限外濾過スピンカラム(Amicon Ultra、Millipore社、Billerica、MA)によって濃縮した。 Protein C / C * -GFP (FIG. 3, constructs 1, 3) is a similar method but buffer B (NaCl 0.5M, NaPOi 50 mM, pH 6.0, to minimize proteolysis). Purified using 1 × protease inhibitor or cocktail (Roche Applied Science, Indianapolis, Ind.). The purified protein was buffer exchanged into buffer A and concentrated by a 10 kDa ultrafiltration spin column (Amicon Ultra, Millipore, Billerica, Mass.).
方法1を使用した精製例では(図16)、全細胞ペレットを緩衝液Aに再懸濁した。方法2を使用した精製例では、全細胞ペレットをカラム緩衝液(NaCl 1M、Tris−HCl 10mM、pH8)に再懸濁して標的タンパク質のキチン樹脂への結合を増加させた。 In the purification example using Method 1 (FIG. 16), the whole cell pellet was resuspended in Buffer A. In a purification example using Method 2, the whole cell pellet was resuspended in column buffer (NaCl 1M, Tris-HCl 10 mM, pH 8) to increase binding of the target protein to the chitin resin.
インテイン反応速度の特徴:インテインを特徴づける実験は全て、緩衝液Aで希釈した精製タンパク質を使用して、指示した量の還元剤を用いて指定した温度で実施した。反応は全て、各インテイン断片20μMを含有した。反応開始後様々な時点で試料を採取し、特に記載がなければ2×SDS試料緩衝液(Tris−HCl 0.5M、pH6.8、20%グリセロール、10%w/vSDS、0.1%w/vブロモフェノールブルー、2%β−メルカプトエタノール)と混合し、95℃で5分間インキュベートし、12%SDS−PAGEゲルを使用して分析した。ゲルはクーマシーブリリアントブルーR250で染色した。0分時点に対応する試料については、精製したC/C*−GFP(構築物1及び3)タンパク質をまずβ−メルカプトエタノールの非存在下で2×SDS試料と混合し、95℃で3分間インキュベートした。CBD−N/NC1A(図3、構築物2及び4)及びβ−メルカプトエタノールをその後混合物に添加した。混合物全体を95℃でさらに3分間インキュベートしてタンパク質を不活性化した。反応物及び生成物に対応するバンド強度は、Quantity Oneソフトウェア(BioRad社、Hercules、CA)においてTrace Quantity moduleを使用して定量した。 Intein kinetic characteristics: All experiments characterizing intein were performed using the purified protein diluted in buffer A at the indicated temperature with the indicated amount of reducing agent. All reactions contained 20 μM of each intein fragment. Samples were taken at various times after the start of the reaction and unless otherwise stated 2 × SDS sample buffer (Tris-HCl 0.5M, pH 6.8, 20% glycerol, 10% w / v SDS, 0.1% w / V bromophenol blue, 2% β-mercaptoethanol), incubated at 95 ° C. for 5 minutes and analyzed using a 12% SDS-PAGE gel. The gel was stained with Coomassie Brilliant Blue R250. For samples corresponding to the 0 minute time point, purified C / C * -GFP (constructs 1 and 3) protein is first mixed with 2 × SDS sample in the absence of β-mercaptoethanol and incubated at 95 ° C. for 3 minutes. did. CBD-N / NC1A (FIG. 3, constructs 2 and 4) and β-mercaptoethanol were then added to the mixture. The entire mixture was incubated at 95 ° C. for an additional 3 minutes to inactivate the protein. Band intensities corresponding to reactants and products were quantified using the Trace Quantity module in Quantity One software (BioRad, Hercules, CA).
エラスチン様ペプチドの可逆的沈降によるタンパク質精製:この実施形態では、ELP−N(図3、構築物5)を硫酸アンモニウム沈降1回によって予備精製してSDS−PAGEゲルの解読を容易にしたが、このステップでタンパク質精製の効率は改善しないことが見いだされた。ELP−N及びC*−POIの清澄にした細胞溶解物(図3、構築物3、6〜10)を徹底的に混合し、室温で10分間インキュベートし、C*とNを会合させた(図17A、レーン3)。硫酸アンモニウム(最終濃度0.4M)を混合物に添加して、ELP複合体の沈降を誘導した。ELPに非共有結合した標的タンパク質を含有するペレットを緩衝液Aに再懸濁した(図17A、レーン5)。インテイン反応は、DTT(50mM)を添加することによって開始し、室温で3又は20時間実施した。C末端切断を誘導するためにより低いDTT濃度を使用することができる(図7)。反応の終了時に、硫酸アンモニウム(0.4M)を混合物に添加して、ELP−N/C*複合体を沈降させた。この沈降物は、遠心によって除去した。上清は、高度に精製された標的タンパク質を含有した(図17A、レーン8、9)。 Protein purification by reversible precipitation of elastin-like peptides: In this embodiment, ELP-N (FIG. 3, construct 5) was pre-purified by one ammonium sulfate precipitation to facilitate the decoding of SDS-PAGE gels. It has been found that the efficiency of protein purification is not improved. Clarified cell lysates of ELP-N and C * -POI (FIG. 3, constructs 3, 6-10) were mixed thoroughly and incubated at room temperature for 10 minutes to allow C * and N to associate (FIG. 17A, lane 3). Ammonium sulfate (final concentration 0.4M) was added to the mixture to induce precipitation of the ELP complex. The pellet containing the target protein non-covalently bound to ELP was resuspended in buffer A (FIG. 17A, lane 5). The intein reaction was started by adding DTT (50 mM) and carried out at room temperature for 3 or 20 hours. Lower DTT concentrations can be used to induce C-terminal truncation (Figure 7). At the end of the reaction, ammonium sulfate (0.4M) was added to the mixture to precipitate the ELP-N / C * complex. This sediment was removed by centrifugation. The supernatant contained highly purified target protein (Figure 17A, lanes 8, 9).
キチン樹脂によるタンパク質精製:キチンビーズのスラリーを最初にCBD−Nの溶解物(図3、構築物2)と共に室温で10分間インキュベートし、混入するタンパク質全てを除去するためにカラム緩衝液で集中的に洗浄し(図17C、レーン3)、次にC*−GFPを含有する溶解物を添加した(図3、構築物3)。洗浄後、DTT(5mM)を混合物に添加してC末端切断を誘導した。反応は、室温で3時間反応すると基本的に完了し(図17C、レーン5)、精製したGFPはフロースルーに収集した(図17C、レーン7)。CBD−N並びに微量の未反応C*−GFPが相変わらずキチンビーズに結合していた(図17C、レーン6)。切断したC*は、非常にサイズが小さいので(4kDa)ゲル上で視覚化することができないが、Nとの相互作用によってカラムに残存することが推定された。 Protein purification with chitin resin: The slurry of chitin beads is first incubated with CBD-N lysate (Figure 3, Construct 2) for 10 minutes at room temperature and concentrated with column buffer to remove all contaminating proteins. Washed (FIG. 17C, lane 3), then lysate containing C * -GFP was added (FIG. 3, construct 3). After washing, DTT (5 mM) was added to the mixture to induce C-terminal cleavage. The reaction was essentially complete after 3 hours of reaction at room temperature (FIG. 17C, lane 5) and purified GFP was collected in the flow-through (FIG. 17C, lane 7). CBD-N and a small amount of unreacted C * -GFP were still bound to the chitin beads (FIG. 17C, lane 6). The cleaved C * is so small in size (4 kDa) that it cannot be visualized on the gel, but it was estimated that it would remain on the column due to interaction with N.
分子モデリング:ミニ−MtuRecA(pdb:2IMZ)、NpuDnaE(pdb:2KEQ)及びSspDnaE(pdb:1ZD7)の構造はVisual Molecular Dynamics(VMD)を使用して視覚化し、VMDにおいてMultiSeq moduleを使用して整列させた。水素結合の相互作用はVMDによって同定した。NpuDnaEのNMR構造には、20の異なる溶液構造が含まれる。明瞭にするために、SspDnaEとNpuDnaEの構造#7のアラインメントのみを図5Cに示す。 Molecular modeling: The structures of mini-MtuRecA (pdb: 2IMZ), NpuDnaE (pdb: 2KEQ) and SspDnaE (pdb: 1ZD7) are visualized using Visual Molecular Dynamics (VMD) and aligned using the MultiSeq module in VMD I let you. Hydrogen bond interactions were identified by VMD. The NMR structure of NpuDnaE includes 20 different solution structures. For clarity, only the alignment of structure # 7 of SspDnaE and NpuDnaE is shown in FIG. 5C.
温度依存性反応速度:異なる温度でのC*−GFPのC末端切断反応の半減期を測定するためにLab Fitソフトウェアパッケージ(Campina Grande社、Paraiba、Brazil)を使用して、図7Cの全データ点に最も合致する傾向線を作成した。50%切断に対応する時間は、近似曲線に基づいて推定した。 Temperature-dependent kinetics: using Lab Fit software package (Campina Grande, Paraiba, Brazil) to determine the half-life of C * -GFP C-terminal cleavage reaction at different temperatures, all data in FIG. 7C A trend line that best matches the point was created. The time corresponding to 50% cut was estimated based on the approximate curve.
様々な温度でのC*−GFP切断の推定半減期:
温度 半減期
4℃ 243分
16℃ 70分
22℃ 55分
37℃ 16分
Estimated half-life of C * -GFP cleavage at various temperatures:
Temperature Half-life 4 ° C 243 minutes 16 ° C 70 minutes 22 ° C 55 minutes 37 ° C 16 minutes
精製タンパク質含量の定量:標的タンパク質精製収率は、Bradford法(Coomassie Plus Bradford Assay Reagent、Pierce Biotechnology社、Rockford、IL)を使用して精製した試料の濃度を測定することによって定量した。パーセント回収率を推定するために、可溶性溶解物及び精製タンパク質を同じSDS−PAGEに添加し、SimplyBlue SafeStain(Life Technology社、Carlsbad、CA)で染色し、標的タンパク質に対応するバンド強度はQuantity Oneソフトウェア(BioRad社、Hercules、CA)においてTrace Quantity moduleを使用して測定した。 Quantification of purified protein content: Target protein purification yield was quantified by measuring the concentration of the purified sample using the Bradford method (Coomassie Plus Bradford Assay Reagent, Pierce Biotechnology, Rockford, IL). To estimate percent recovery, soluble lysate and purified protein were added to the same SDS-PAGE, stained with SimplyBlue SafeStain (Life Technology, Carlsbad, Calif.), And the band intensity corresponding to the target protein was determined by Quantity One software. (BioRad, Hercules, Calif.) Using the Trace Quantity module.
ELP−Nの予備精製:硫酸アンモニウム(0.4M)を可溶性溶解物に添加し、ELP−N相分離を誘導した。混合物を室温で約3分間インキュベートし、14,000×gで10分間遠心した。得られたペレットを元の体積の3分の1の緩衝液Aに再懸濁した。低強度水浴超音波装置(Ultrasonic Cleaner、GB928)を使用して(5分)、ELP−Nの再懸濁を支援した。 Prepurification of ELP-N: Ammonium sulfate (0.4M) was added to the soluble lysate to induce ELP-N phase separation. The mixture was incubated at room temperature for about 3 minutes and centrifuged at 14,000 × g for 10 minutes. The resulting pellet was resuspended in 1/3 of the original volume of buffer A. A low intensity water bath sonicator (Ultrasonic Cleaner, GB928) was used (5 minutes) to assist in the resuspension of ELP-N.
試料タンパク質活性の測定:精製PTDHの活性は、Mayer et alによって記載されたようにNBTアッセイによって確認した。DTTは高濃度でNBT反応を干渉するので、精製タンパク質中におけるDTT濃度は、測定前に30kDaカットオフスピンカラム(Amicon Ultra-15 Centrifugal Filter Unit、Millipore社、Billerica、MA)を使用して緩衝液交換によって約5μMに低減させた。 Measurement of sample protein activity: The activity of purified PTDH was confirmed by NBT assay as described by Mayer et al. Since DTT interferes with the NBT reaction at high concentrations, the DTT concentration in the purified protein is buffered using a 30 kDa cut-off spin column (Amicon Ultra-15 Centrifugal Filter Unit, Millipore, Billerica, Mass.) Prior to measurement. Reduced to about 5 μM by exchange.
MBPの活性は、アミロース樹脂(New England Biolabs社、Ipswich、MA)に結合させることによって確認した。アミロースビーズ(25μL)は室温で10分間精製タンパク質(500μL)と共にインキュベートして、緩衝液A 500μLで2回洗浄して、緩衝液A 500μLに再懸濁した。この懸濁液10μLを2×SDS添加緩衝液10μLと混合し、95℃で3分間煮沸し、SDS−PAGEによって分析した。MBPタンパク質は、アミロースビース懸濁液中では視覚化できるが、洗浄緩衝液中では視覚化できなかった。 The activity of MBP was confirmed by binding to amylose resin (New England Biolabs, Ipswich, Mass.). Amylose beads (25 μL) were incubated with purified protein (500 μL) for 10 minutes at room temperature, washed twice with 500 μL of buffer A and resuspended in 500 μL of buffer A. 10 μL of this suspension was mixed with 10 μL of 2 × SDS addition buffer, boiled at 95 ° C. for 3 minutes, and analyzed by SDS-PAGE. MBP protein could be visualized in amylose beads suspension but not in wash buffer.
タンパク質GFP及びDsRedは、非蛍光タンパク質CATに対する蛍光測定によってアッセイした。精製したGFP又はDsRedは、2倍に希釈し、96ウェルプレート(150μL/ウェル)に移した。蛍光強度は、蛍光光度計SpectraMax Gemini EM(Molecular Devices社、Sunnyvale、CA)を使用して、励起/放射波長485/538nm(GFP)又は544/590nm(DsRed)で測定した。対照タンパク質CATは、両アッセイにおいてバックグラウンド値を生じた。 Proteins GFP and DsRed were assayed by fluorescence measurements against the non-fluorescent protein CAT. Purified GFP or DsRed was diluted 2-fold and transferred to a 96-well plate (150 μL / well). Fluorescence intensity was measured using a fluorimeter SpectraMax Gemini EM (Molecular Devices, Sunnyvale, Calif.) At excitation / emission wavelengths of 485/538 nm (GFP) or 544/590 nm (DsRed). The control protein CAT produced background values in both assays.
β−ガラクトシダーゼ活性は、o−ニトロフェニルβ−D−ガラクトピラノシド(ONPG)を420nmに吸収のあるo−ニトロフェノールに加水分解することによって測定した。精製したβ−ガラクトシダーゼはZ緩衝液(Na2HPO4 0.06M、NaH2PO4 0.04M、KCl 0.01M、MgSO4 0.001M及び0.27% 2−メルカプトエタノール)で1000倍に希釈した。希釈したタンパク質(30μL)をZ緩衝液(200μL)及びONPG(70μL、リン酸カリウム緩衝液100mM pH7 1mL当たり4mg)と混合し、22℃で15又は30分間インキュベートした。反応終了時に、停止緩衝液(Na2CO3 1M)500μLを添加し、420nmでの吸収はBiomate3分光光度計(Thermo Electron Corporation社)で測定した。 β-galactosidase activity was measured by hydrolyzing o-nitrophenyl β-D-galactopyranoside (ONPG) to o-nitrophenol having an absorption at 420 nm. The purified β-galactosidase was diluted 1000 times with Z buffer (Na2HPO4 0.06M, NaH2PO4 0.04M, KCl 0.01M, MgSO4 0.001M and 0.27% 2-mercaptoethanol). Diluted protein (30 μL) was mixed with Z buffer (200 μL) and ONPG (70 μL, 4 mg per mL of potassium phosphate buffer 100 mM pH 7) and incubated at 22 ° C. for 15 or 30 minutes. At the end of the reaction, 500 μL of stop buffer (Na 2 CO 3 1M) was added and the absorbance at 420 nm was measured with a Biomate 3 spectrophotometer (Thermo Electron Corporation).
β-ガラクトシダーゼの酵素単位を推定するために、以下の式を使用した: To estimate the enzyme unit of β-galactosidase, the following equation was used:
8x105ナノリットルは反応の体積である;4500M−1cm−1は、o−ニトロフェノールの吸光係数であり、1−cmは光路の長さである。β−ガラクトシダーゼ1単位は、22℃で1分当たりONPG 1マイクロモルを加水分解するために必要な酵素の量と定義する。 8 × 10 5 nanoliters is the volume of the reaction; 4500 M−1 cm−1 is the extinction coefficient of o-nitrophenol and 1-cm is the length of the optical path. One unit of β-galactosidase is defined as the amount of enzyme required to hydrolyze 1 micromole of ONPG per minute at 22 ° C.
β−ガラクトシダーゼの試料回収を推定するために、精製したβ−ガラクトシダーゼをZ緩衝液で1000倍に希釈することによって類似の活性アッセイ法を96ウェルプレートで実施した。希釈したタンパク質(50μL)をZ緩衝液(50μL)及びONPG溶液10μlと混合した。420nmの吸収は、SpectraMax 340PC384吸光度マイクロプレートリーダー(Molecular Devices社、Sunnyvale、CA)を使用して20分間インキュベーションした後に測定した。 To estimate the sample recovery of β-galactosidase, a similar activity assay was performed in 96-well plates by diluting purified β-galactosidase 1000-fold with Z buffer. Diluted protein (50 μL) was mixed with Z buffer (50 μL) and 10 μl of ONPG solution. Absorption at 420 nm was measured after incubation for 20 minutes using a SpectraMax 340PC384 absorbance microplate reader (Molecular Devices, Sunnyvale, Calif.).
本明細書で記載したいかなる実施形態も本発明のいかなる方法、キット、試薬又は組成物に関して実施することができ、逆の場合も同じであると考えられる。さらに、本発明の組成物は、本発明の方法を実現するために使用することができる。 Any embodiment described herein can be practiced with respect to any method, kit, reagent or composition of the invention, and vice versa. Furthermore, the compositions of the present invention can be used to implement the methods of the present invention.
本明細書で記載した特定の実施形態は例示のために示されており、本発明を限定するものではないことを理解されたい。本発明の主要な特徴は、本発明の範囲を逸脱することなく、様々な実施形態で使用することができる。当業者であれば、本明細書で記載した特定の方法には数多くの同等物があることを認識するか、又は所定の実験のみを使用して確認することができるであろう。このような同等物は、本発明の範囲内であると考えられ、特許請求の範囲によってカバーされている。 It will be understood that the particular embodiments described herein are shown by way of illustration and not as limitations of the invention. The principal features of this invention can be used in various embodiments without departing from the scope of the invention. One skilled in the art will recognize that there are numerous equivalents to the specific methods described herein, or will be able to confirm using only routine experimentation. Such equivalents are considered to be within the scope of this invention and are covered by the claims.
本明細書で言及した出版物及び特許出願は全て、本発明が関係する業界の当業者のレベルの指標となる。出版物及び特許出願は全て、それぞれ個々の出版物又は特許出願が参考として組み込まれることが具体的かつ個々に示されるのと同程度に、本明細書に参考として組み込まれる。 All publications and patent applications mentioned in this specification are indicative of the level of ordinary skill in the art to which this invention pertains. All publications and patent applications are hereby incorporated by reference to the same extent as if each individual publication or patent application was specifically and individually indicated to be incorporated by reference.
特許請求の範囲及び/又は明細書において「含む(comprising)」という用語と併用したとき、「1つの(a)」又は「1つの(an)」という語の使用は、「1つ(one)」を意味することができるが、「1又は2以上(one or more)」、「少なくとも1つの(at least one)」及び「1又は1より多い(one or more than one)」の意味とも合致する。特許請求の範囲における「又は」という用語は、開示が選択肢のみ及び「及び/又は」を意味する定義を支持していても、選択肢のみを意味しているか、又は選択肢が互いに排他的であることが明示的に示されていなければ、「及び/又は」を意味するために使用される。本明細書全体にわたって、「約」という用語は、値の測定に使用されたデバイス、方法に本来備わっている誤差の変動、又は研究対象間に存在する変動が値に含まれることを示すために用いられる。 When used in conjunction with the term “comprising” in the claims and / or the specification, the use of the word “a” or “an” means “one”. ", But also matches the meaning of" one or more "," at least one "and" one or more than one " To do. The term “or” in the claims means that only the option or the options are mutually exclusive, even though the disclosure supports a definition that only means the option and “and / or”. Is used to mean "and / or" unless explicitly indicated. Throughout this specification, the term “about” is used to indicate that a value includes the variation in error inherent in the device, method, or study object used to measure the value. Used.
本明細書及び特許請求の範囲で使用したように、「含む(comprising)」(及び「含む(comprise)」及び「含む(comprises)」などを含む(comprising)の任意の形態)、「有する(having)」(及び「有する(have)」及び「有する(has)」などを有する(having)の任意の形態)、「含む(including)」(及び「含む(includes)」及び「含む(include)」などを含む(including)の任意の形態)又は「含有する(containing)」(及び「含有する(contains)」及び「含有する(contain)」などを含有する(containing)の任意の形態)の用語は包括的又は非限定的であり、さらに、列挙されていない付加的な要素又は方法ステップを排除しない。本明細書で使用したように、「から本質的になる(consisting essentially of)」という表現は、指定の材料又はステップ及び請求した発明の基本的及び新規特性に実質的に影響を及ぼさないものに請求の範囲を限定する。本明細書で使用したように、「からなる(consisting of)」という表現は、例えば、要素又は限定に通常関連する不純物以外の、請求の範囲で指定していないいかなる要素、ステップ又は成分も排除する。 As used herein and in the claims, “comprising” (and any form of “comprising” including “comprise” and “comprises”), “having ( having "(and any form of having) and" including "(and" includes "and" include "). "Including any form") or "containing" (and any form containing "contains", "contain", etc.) The terms are inclusive or non-limiting and do not exclude additional elements or method steps not listed. As used herein, the phrase “consisting essentially of” refers to a specified material or step and that does not substantially affect the basic and novel characteristics of the claimed invention. Limit the scope of the claims. As used herein, the expression “consisting of” excludes any element, step, or ingredient not specified in the claim, for example, an impurity usually associated with the element or limitation. To do.
本明細書で使用したように、用語「又はそれらの組み合わせ(or combinations thereof)」とは、用語の前に挙げた事項の順列及び組み合わせ全てを意味する。例えば、「A、B、C又はそれらの組み合わせ」は、A、B、C、AB、AC、BC又はABCの少なくとも1つを含むことを意図しており、特定の文脈において順番が重要ならば、BA、CA、CB、CBA、BCA、ACB、BAC又はCABも含むことを意図する。この例に続いて、BB、AAA、AB、BBC、AAABCCCC、CBBAAA、CABABBなどの1又は2以上の事項又は用語の反復を含有する組み合わせも明らかに含まれる。当業者であれば、文脈から明らかでない限り、通常、いかなる組み合わせにおいても事項又は用語の数には制限がないことを理解するだろう。特定の実施形態では、本発明はまた、移行句「から本質的になる(consisting essentially of)」又は「からなる(consisting of)」も使用することができる方法及び組成物を含むことができる。 As used herein, the term “or combinations thereof” means all permutations and combinations of the items listed before the term. For example, “A, B, C, or a combination thereof” is intended to include at least one of A, B, C, AB, AC, BC, or ABC, and if order is important in a particular context , BA, CA, CB, CBA, BCA, ACB, BAC or CAB. This example is also explicitly followed by combinations containing one or more repetitions of one or more items or terms such as BB, AAA, AB, BBC, AAABCCCC, CBBAAA, CABABB. Those skilled in the art will appreciate that there is usually no limit on the number of items or terms in any combination, unless otherwise apparent from the context. In certain embodiments, the present invention can also include methods and compositions that can also use the transitional phrase “consisting essentially of” or “consisting of”.
本明細書で使用したように、限定はしないが、「約(about)」、「実質的(substantial)」又は「実質的に(substantially)」などの近似を示す用語は、そのような変更が絶対的又は完全である必要はないと思われるが、当業者が提示したような条件を指定することが正当であると考えるのにほぼ十分なときの条件を意味する。記載の変動可能な範囲は、変化がどのような大きさで起こり得るかに左右され、改変された特徴が改変していない特徴の必要な特性及び能力をまだ備えていることを当業者がまだ認識できる範囲である。一般的に、まだ考察は行っていないが、「約(about)」などの近似の語句によって修飾された本明細書の数値は、提示された値から少なくとも±1、2、3、4、5、6、7、10、12又は15%変化していてもよい。 As used herein, terms indicating approximations such as, but not limited to, “about”, “substantial”, or “substantially” are intended to It does not need to be absolute or complete, but means a condition when it is nearly sufficient to consider it reasonable to specify a condition as suggested by one skilled in the art. The variable range of the description will depend on how large the change can occur, and those skilled in the art will still understand that the modified features still have the necessary properties and capabilities of the unmodified features. It is the range that can be recognized. In general, although not yet discussed, the numerical values herein modified by approximate terms such as “about” are at least ± 1, 2, 3, 4, 5 from the values presented. , 6, 7, 10, 12 or 15%.
本明細書で開示し、請求した組成物及び/又は方法は全て、本開示に関して不適切な実験を行うことなく作製し、実行することができる。本発明の組成物及び方法は好ましい実施形態を用いて記載してきたが、当業者であれば、本発明の概念、精神及び範囲を逸脱することなく、本明細書で記載した組成物及び/又は方法及びステップ又は方法のステップの順番に変更を加えることができることを理解するだろう。添付の特許請求の範囲に定義したように、当業者に明らかなこのような類似の置換及び改変は全て、本発明の精神、範囲及び概念内にあると見なされる。 All of the compositions and / or methods disclosed and claimed herein can be made and executed without undue experimentation with respect to the present disclosure. While the compositions and methods of the present invention have been described using preferred embodiments, those skilled in the art will understand the compositions and / or described herein without departing from the concept, spirit and scope of the present invention. It will be understood that changes may be made in the method and sequence of steps or method steps. All such similar substitutes and modifications apparent to those skilled in the art are deemed to be within the spirit, scope and concept of the invention as defined by the appended claims.
使用した配列の表
構築物1
C−GFP:
ATGATCAAAATAGCCACACGTAAATATTTAGGCAAACAAAATGTCTATGACATTGGAGTTGAGCGCGACCATAATTTTGCACTCAAAAATGGCTTCATAGCTTCTAATTGTTTCAATGTGAGCAAGGGCGAGGAGCTGTTCACCGGGGTGGTGCCCATCCTGGTCGAGCTGGACGGCGACGTAAACGGCCACAAGTTCAGCGTGTCCGGCGAGGGCGAGGGCGATGCCACCTACGGCAAGCTGACCCTGAAGTTCATCTGCACCACCGGCAAGCTGCCCGTGCCCTGGCCCACCCTCGTGACCACCCTGACCTACGGCGTGCAGTGCTTCAGCCGCTACCCCGACCACATGAAGCAGCACGACTTCTTCAAGTCCGCCATGCCCGAAGGCTACGTCCAGGAGCGCACCATCTTCTTCAAGGACGACGGCAACTACAAGACCCGCGCCGAGGTGAAGTTCGAGGGCGACACCCTGGTGAACCGCATCGAGCTGAAGGGCATCGACTTCAAGGAGGACGGCAACATCCTGGGGCACAAGCTGGAGTACAACTACAACAGCCACAACGTCTATATCATGGCCGACAAGCAGAAGAACGGCATCAAGGTGAACTTCAAGATCCGCCACAACATCGAGGACGGCAGCGTGCAGCTCGCCGACCACTACCAGCAGAACACCCCCATCGGCGACGGCCCCGTGCTGCTGCCCGACAACCACTACCTGAGCACCCAGTCCGCCCTGAGCAAAGACCCCAACGAGAAGCGCGATCACATGGTCCTGCTGGAGTTCGTGACCGCCGCCGGGATCACTCTCGGCATGGACGAGTTACTCGAGCACCACCACCACCACCAC(配列番号1)
翻訳されたC−GFP:
MIKIATRKYLGKQNVYDIGVERDHNFALKNGFIASNCFNVSKGEELFTGVVPILVELDGDVNGHKFSVSGEGEGDATYGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTLTYGVQCFSRYPDHMKQHDFFKSAMPEGYVQERTIFFKDDGNYKTRAEVKFEGDTLVNRIELKGIDFKEDGNILGHKLEYNYNSHNVYIMADKQKNGIKVNFKIRHNIEDGSVQLADHYQQNTPIGDGPVLLPDNHYLSTQSALSKDPNEKRDHMVLLEFVTAAGITLGMDELLEHHHHHH(配列番号2)
構築物2
CBD−N
ATGAAAATCGAAGAAGGTAAACTGACAAATCCTGGTGTATCCGCTTGGCAGGTCAACACAGCTTATACTGCGGGACAATTGGTCACATATAACGGCAAGACGTATAAATGTTTGCAGCCCCACACCTCCTTGGCAGGATGGGAACCATCCAACGTTCCTGCCTTGTGGCAGCTTCAAGAAGCTTGTGGAGGCGGAGGGAGCGGAGGCGGAGGGAGCGCTAGCTGTTTAAGCTATGAAACGGAAATATTGACAGTAGAATATGGATTATTACCGATTGGTAAAATTGTAGAAAAGCGCATCGAATGTACTGTTTATAGCGTTGATAATAATGGAAATATTTATACACAACCTGTAGCACAATGGCACGATCGCGGAGAACAAGAGGTGTTTGAGTATTGTTTGGAAGATGGTTCATTGATTCGGGCAACAAAAGACCATAAGTTTATGACTGTTGATGGTCAAATGTTGCCAATTGATGAAATATTTGAACGTGAATTGGATTTGATGCGGGTTGATAATTTGCCGAATCTCGAGCACCACCACCACCACCAC(配列番号3)
翻訳されたCBD−N:
MKIEEGKLTNPGVSAWQVNTAYTAGQLVTYNGKTYKCLQPHTSLAGWEPSNVPALWQLQEACGGGGSGGGGSASCLSYETEILTVEYGLLPIGKIVEKRIECTVYSVDNNGNIYTQPVAQWHDRGEQEVFEYCLEDGSLIRATKDHKFMTVDGQMLPIDEIFERELDLMRVDNLPNLEHHHHHH(配列番号4)
構築物3
C*−GFP:
ATGATCAAAATAGCCACACGTAAATATTTAGGCAAACAAAATGTCTATGGCATTGGAGTTGAGCGCGACCATAATTTTGCACTCAAAAATGGCTTCATAGCTTCTAATTGTTTCAATGTGAGCAAGGGCGAGGAGCTGTTCACCGGGGTGGTGCCCATCCTGGTCGAGCTGGACGGCGACGTAAACGGCCACAAGTTCAGCGTGTCCGGCGAGGGCGAGGGCGATGCCACCTACGGCAAGCTGACCCTGAAGTTCATCTGCACCACCGGCAAGCTGCCCGTGCCCTGGCCCACCCTCGTGACCACCCTGACCTACGGCGTGCAGTGCTTCAGCCGCTACCCCGACCACATGAAGCAGCACGACTTCTTCAAGTCCGCCATGCCCGAAGGCTACGTCCAGGAGCGCACCATCTTCTTCAAGGACGACGGCAACTACAAGACCCGCGCCGAGGTGAAGTTCGAGGGCGACACCCTGGTGAACCGCATCGAGCTGAAGGGCATCGACTTCAAGGAGGACGGCAACATCCTGGGGCACAAGCTGGAGTACAACTACAACAGCCACAACGTCTATATCATGGCCGACAAGCAGAAGAACGGCATCAAGGTGAACTTCAAGATCCGCCACAACATCGAGGACGGCAGCGTGCAGCTCGCCGACCACTACCAGCAGAACACCCCCATCGGCGACGGCCCCGTGCTGCTGCCCGACAACCACTACCTGAGCACCCAGTCCGCCCTGAGCAAAGACCCCAACGAGAAGCGCGATCACATGGTCCTGCTGGAGTTCGTGACCGCCGCCGGGATCACTCTCGGCATGGACGAGTTACTCGAGCACCACCACCACCACCAC(配列番号5)
翻訳されたC*−GFP:
MIKIATRKYLGKQNVYGIGVERDHNFALKNGFIASNCFNVSKGEELFTGVVPILVELDGDVNGHKFSVSGEGEGDATYGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTLTYGVQCFSRYPDHMKQHDFFKSAMPEGYVQERTIFFKDDGNYKTRAEVKFEGDTLVNRIELKGIDFKEDGNILGHKLEYNYNSHNVYIMADKQKNGIKVNFKIRHNIEDGSVQLADHYQQNTPIGDGPVLLPDNHYLSTQSALSKDPNEKRDHMVLLEFVTAAGITLGMDELLEHHHHHH(配列番号6)
構築物4
CBD−NC1A
ATGAAAATCGAAGAAGGTAAACTGACAAATCCTGGTGTATCCGCTTGGCAGGTCAACACAGCTTATACTGCGGGACAATTGGTCACATATAACGGCAAGACGTATAAATGTTTGCAGCCCCACACCTCCTTGGCAGGATGGGAACCATCCAACGTTCCTGCCTTGTGGCAGCTTCAAGAAGCTTGTGGAGGCGGAGGGAGCGGAGGCGGAGGGAGCGCTAGCGCCTTAAGCTATGAAACGGAAATATTGACAGTAGAATATGGATTATTACCGATTGGTAAAATTGTAGAAAAGCGCATCGAATGTACTGTTTATAGCGTTGATAATAATGGAAATATTTATACACAACCTGTAGCACAATGGCACGATCGCGGAGAACAAGAGGTGTTTGAGTATTGTTTGGAAGATGGTTCATTGATTCGGGCAACAAAAGACCATAAGTTTATGACTGTTGATGGTCAAATGTTGCCAATTGATGAAATATTTGAACGTGAATTGGATTTGATGCGGGTTGATAATTTGCCGAATCTCGAGCACCACCACCACCACCAC(配列番号7)
翻訳されたCBD−NC1A:
MKIEEGKLTNPGVSAWQVNTAYTAGQLVTYNGKTYKCLQPHTSLAGWEPSNVPALWQLQEACGGGGSGGGGSASALSYETEILTVEYGLLPIGKIVEKRIECTVYSVDNNGNIYTQPVAQWHDRGEQEVFEYCLEDGSLIRATKDHKFMTVDGQMLPIDEIFERELDLMRVDNLPNLEHHHHHH(配列番号8)
構築物5
ELP−N
ATGGGCCACGGCGTGGGTGTTCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGCAGGTGTTCCTGGTGTAGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTACCAGGTGGCGGTGTTCCGGGTGCAGGCGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGCAGGTGTTCCTGGTGTAGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTACCAGGTGGCGGTGTTCCGGGTGCAGGCGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGCAGGTGTTCCTGGTGTAGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTACCAGGTGGCGGTGTTCCGGGTGCAGGCGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGCAGGTGTTCCTGGTGTAGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTACCAGGTGGCGGTGTTCCGGGTGCAGGCGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGCAGGTGTTCCTGGTGTAGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTACCAGGTGGCGGTGTTCCGGGTGCAGGCGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGCAGGTGTTCCTGGTGTAGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTACCAGGTGGCGGTGTTCCGGGTGCAGGCGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGCAGGTGTTCCTGGTGTAGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTACCAGGTGGCGGTGTTCCGGGTGCAGGCGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGCAGGTGTTCCTGGTGTAGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTACCAGGTGGCGGTGTTCCGGGTGCAGGCGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGCAGGTGTTCCTGGTGTAGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTACCAGGTGGCGGTGTTCCGGGTGCAGGCGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGCAGGTGTTCCTGGTGTAGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTACCAGGTGGCGGTGTTCCGGGTGCAGGCGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGCAGGTGTTCCTGGTGTAGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTACCAGGTGGCGGTGTTCCGGGTGCAGGCGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGGGCTGGTGAGCTCGAACAACAACAACAATAACAATAACAACAACCTCGGGATCGAGGGAAGGATTTCAGAATTCGGAGGCGGAGGGAGCGGAGGCGGAGGGAGCGCTAGCTGTTTAAGCTATGAAACGGAAATATTGACAGTAGAATATGGATTATTACCGATTGGTAAAATTGTAGAAAAGCGCATCGAATGTACTGTTTATAGCGTTGATAATAATGGAAATATTTATACACAACCTGTAGCACAATGGCACGATCGCGGAGAACAAGAGGTGTTTGAGTATTGTTTGGAAGATGGTTCATTGATTCGGGCAACAAAAGACCATAAGTTTATGACTGTTGATGGTCAAATGTTGCCAATTGATGAAATATTTGAACGTGAATTGGATTTGATGCGGGTTGATAATTTGCCGAATCTCGAGCACCACCACCACCACCAC(配列番号9)
翻訳されたELP−N:
MGHGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGGLVSSNNNNNNNNNNLGIEGRISEFGGGGSGGGGSASCLSYETEILTVEYGLLPIGKIVEKRIECTVYSVDNNGNIYTQPVAQWHDRGEQEVFEYCLEDGSLIRATKDHKFMTVDGQMLPIDEIFERELDLMRVDNLPNLEHHHHHH(配列番号10)
構築物6
C*−PTDH:
ATGATCAAAATAGCCACACGTAAATATTTAGGCAAACAAAATGTCTATGGCATTGGAGTTGAGCGCGACCATAATTTTGCACTCAAAAATGGCTTCATAGCTTCTAATTGTTTCAATGCTAGCATGCTGCCGAAACTCGTTATAACTCACCGAGTACACGAAGAGATCCTGCAACTGCTGGCGCCACATTGCGAGCTGATAACCAACCAGACCGACAGCACGCTGACGCGCGAGGAAATTCTGCGCCGCTGTCGCGATGCTCAGGCGATGATGGCGTTCATGCCCGATCGGGTCGATGCAGACTTTCTTCAAGCCTGCCCTGAGCTGCGTGTAATCGGCTGCGCGCTCAAGGGCTTCGACAATTTCGATGTGGACGCCTGTACTGCCCGCGGGGTCTGGCTGACCTTCGTGCCTGATCTGTTGACGGTCCCGACTGCCGAGCTGGCGATCGGACTGGCGGTGGGGCTGGGGCGGCATCTGCGGGCAGCAGATGCGTTCGTCCGCTCTGGCAAGTTCCGGGGCTGGCAACCACGGTTCTACGGCACGGGGCTGGATAACGCTACGGTCGGCTTCCTTGGCATGGGCGCCATCGGACTGGCCATGGCTGATCGCTTGCAGGGATGGGGCGCGACCCTGCAGTACCACGCGCGGAAGGCTCTGGATACACAAACCGAGCAACGGCTCGGCCTGCGCCAGGTGGCGTGCAGCGAACTCTTCGCCAGCTCGGACTTCATCCTGCTGGCGCTTCCCTTGAATGCCGATACCCTGCATCTGGTCAACGCCGAGCTGCTTGCCCTCGTACGGCCGGGCGCTCTGCTTGTAAACCCCTGTCGTGGCTCGGTAGTGGATGAAGCCGCCGTGCTCGCGGCGCTTGAGCGAGGCCAGCTCGGCGGGTATGCGGCGGATGTATTCGAAATGGAAGACTGGGCTCGCGCGGACCGGCCGCAGCAGATCGATCCTGCGCTGCTCGCGCATCCGAATACGCTGTTCACTCCGCACATAGGGTCGGCAGTGCGCGCGGTGCGCCTGGAGATTGAACGTTGTGCAGCGCAGAACATCCTCCAGGCATTGGCAGGTGAGCGCCCAATCAACGCTGTGAACCGTCTGCCCAAGGCCAATCCTGCCGCAGACCTCGAGCACCACCACCACCACCAC(配列番号11)
翻訳されたC*−PTDH:
MIKIATRKYLGKQNVYGIGVERDHNFALKNGFIASNCFNASMLPKLVITHRVHEEILQLLAPHCELITNQTDSTLTREEILRRCRDAQAMMAFMPDRVDADFLQACPELRVIGCALKGFDNFDVDACTARGVWLTFVPDLLTVPTAELAIGLAVGLGRHLRAADAFVRSGKFRGWQPRFYGTGLDNATVGFLGMGAIGLAMADRLQGWGATLQYHARKALDTQTEQRLGLRQVACSELFASSDFILLALPLNADTLHLVNAELLALVRPGALLVNPCRGSVVDEAAVLAALERGQLGGYAADVFEMEDWARADRPQQIDPALLAHPNTLFTPHIGSAVRAVRLEIERCAAQNILQALAGERPINAVNRLPKANPAADLEHHHHHH(配列番号12)
構築物7
C*−DsRed
ATGATCAAAATAGCCACACGTAAATATTTAGGCAAACAAAATGTCTATGGCATTGGAGTTGAGCGCGACCATAATTTTGCACTCAAAAATGGCTTCATAGCTTCTAATTGTTTCAATGCTAGCGCCTCCTCCGAGGACGTCATCAAGGAGTTCATGCGCTTCAAGGTGCGCATGGAGGGCTCCGTGAACGGCCACGAGTTCGAGATCGAGGGCGAGGGCGAGGGCCGCCCCTACGAGGGCACCCAGACCGCCAAGCTGAAGGTGACCAAGGGCGGCCCCCTGCCCTTCGCCTGGGACATCCTGTCCCCCCAGTTCCAGTACGGCTCCAAGGTGTACGTGAAGCACCCCGCCGACATCCCCGACTACAAGAAGCTGTCCTTCCCCGAGGGCTTCAAGTGGGAGCGCGTGATGAACTTCGAGGACGGCGGCGTGGTGACCGTGACCCAGGACTCCTCCCTGCAGGACGGCTCCTTCATCTACAAGGTGAAGTTCATCGGCGTGAACTTCCCCTCCGACGGCCCCGTAATGCAGAAGAAGACTATGGGCTGGGAGGCCTCCACCGAGCGCCTGTACCCCCGCGACGGCGTGCTGAAGGGCGAGATCCACAAGGCCCTGAAGCTGAAGGACGGCGGCCACTACCTGGTGGAGTTCAAGTCCATCTACATGGCCAAGAAGCCCGTGCAGCTGCCCGGCTACTACTACGTGGACTCCAAGCTGGACATCACCTCCCACAACGAGGACTACACCATCGTGGAGCAGTACGAGCGCGCCGAGGGCCGCCACCACCTGTTCCTGCTCGAGCACCACCACCACCACCAC(配列番号13)
翻訳されたC*−DsRed:
MIKIATRKYLGKQNVYGIGVERDHNFALKNGFIASNCFNASASSEDVIKEFMRFKVRMEGSVNGHEFEIEGEGEGRPYEGTQTAKLKVTKGGPLPFAWDILSPQFQYGSKVYVKHPADIPDYKKLSFPEGFKWERVMNFEDGGVVTVTQDSSLQDGSFIYKVKFIGVNFPSDGPVMQKKTMGWEASTERLYPRDGVLKGEIHKALKLKDGGHYLVEFKSIYMAKKPVQLPGYYYVDSKLDITSHNEDYTIVEQYERAEGRHHLFLLEHHHHHH(配列番号14)
構築物8
C*−β−Gal
ATGATCAAAATAGCCACACGTAAATATTTAGGCAAACAAAATGTCTATGGCATTGGAGTTGAGCGCGACCATAATTTTGCACTCAAAAATGGCTTCATAGCTTCTAATTGTTTCAATGCTAGCATGACCATGATTACGGATTCACTCGCCGTCGTTTTACAACGTCGTGACTGGGAAAACCCTGGCGTTACCCAACTTAATCGCCTTGCAGCACATCCCCCTTTCGCCAGCTGGCGTAATAGCGAAGAGGCCCGCACCGATCGCCCTTCCCAACAGTTGCGCAGCCTGAATGGCGAATGGCGCTTTGCCTGGTTTCCGGCACCAGAAGCGGTGCCGGAAAGCTGGCTGGAGTGCGATCTTCCTGAGGCCGATACTGTCGTCGTCCCCTCAAACTGGCAGATGCACGGTTACGATGCGCCCATCTACACCAACGTGACCTATCCCATTACGGTCAATCCGCCGTTTGTTCCCACGGAGAATCCGACGGGTTGTTACTCGCTCACATTTAATGTTGATGAAAGCTGGCTACAGGAAGGCCAGACGCGAATTATTTTTGATGGCGTTAACTCGGCGTTTCATCTGTGGTGCAACGGGCGCTGGGTCGGTTACGGCCAGGACAGTCGTTTGCCGTCTGAATTTGACCTGAGCGCATTTTTACGCGCCGGAGAAAACCGCCTCGCGGTGATGGTGCTGCGCTGGAGTGACGGCAGTTATCTGGAAGATCAGGATATGTGGCGGATGAGCGGCATTTTCCGTGACGTCTCGTTGCTGCATAAACCGACTACACAAATCAGCGATTTCCATGTTGCCACTCGCTTTAATGATGATTTCAGCCGCGCTGTACTGGAGGCTGAAGTTCAGATGTGCGGCGAGTTGCGTGACTACCTACGGGTAACAGTTTCTTTATGGCAGGGTGAAACGCAGGTCGCCAGCGGCACCGCGCCTTTCGGCGGTGAAATTATCGATGAGCGTGGTGGTTATGCCGATCGCGTCACACTACGTCTGAACGTCGAAAACCCGAAACTGTGGAGCGCCGAAATCCCGAATCTCTATCGTGCGGTGGTTGAACTGCACACCGCCGACGGCACGCTGATTGAAGCAGAAGCCTGCGATGTCGGTTTCCGCGAGGTGCGGATTGAAAATGGTCTGCTGCTGCTGAACGGCAAGCCGTTGCTGATTCGAGGCGTTAACCGTCACGAGCATCATCCTCTGCATGGTCAGGTCATGGATGAGCAGACGATGGTGCAGGATATCCTGCTGATGAAGCAGAACAACTTTAACGCCGTGCGCTGTTCGCATTATCCGAACCATCCGCTGTGGTACACGCTGTGCGACCGCTACGGCCTGTATGTGGTGGATGAAGCCAATATTGAAACCCACGGCATGGTGCCAATGAATCGTCTGACCGATGATCCGCGCTGGCTACCGGCGATGAGCGAACGCGTAACGCGAATGGTGCAGCGCGATCGTAATCACCCGAGTGTGATCATCTGGTCGCTGGGGAATGAATCAGGCCACGGCGCTAATCACGACGCGCTGTATCGCTGGATCAAATCTGTCGATCCTTCCCGCCCGGTGCAGTATGAAGGCGGCGGAGCCGACACCACGGCCACCGATATTATTTGCCCGATGTACGCGCGCGTGGATGAAGACCAGCCCTTCCCGGCTGTGCCGAAATGGTCCATCAAAAAATGGCTTTCGCTACCTGGAGAGACGCGCCCGCTGATCCTTTGCGAATACGCCCACGCGATGGGTAACAGTCTTGGCGGTTTCGCTAAATACTGGCAGGCGTTTCGTCAGTATCCCCGTTTACAGGGCGGCTTCGTCTGGGACTGGGTGGATCAGTCGCTGATTAAATATGATGAAAACGGCAACCCGTGGTCGGCTTACGGCGGTGATTTTGGCGATACGCCGAACGATCGCCAGTTCTGTATGAACGGTCTGGTCTTTGCCGACCGCACGCCGCATCCAGCGCTGACGGAAGCAAAACACCAGCAGCAGTTTTTCCAGTTCCGTTTATCCGGGCAAACCATCGAAGTGACCAGCGAATACCTGTTCCGTCATAGCGATAACGAGCTCCTGCACTGGATGGTGGCGCTGGATGGTAAGCCGCTGGCAAGCGGTGAAGTGCCTCTGGATGTCGCTCCACAAGGTAAACAGTTGATTGAACTGCCTGAACTACCGCAGCCGGAGAGCGCCGGGCAACTCTGGCTCACAGTACGCGTAGTGCAACCGAACGCGACCGCATGGTCAGAAGCCGGGCACATCAGCGCCTGGCAGCAGTGGCGTCTGGCGGAAAACCTCAGTGTGACGCTCCCCGCCGCGTCCCACGCCATCCCGCATCTGACCACCAGCGAAATGGATTTTTGCATCGAGCTGGGTAATAAGCGTTGGCAATTTAACCGCCAGTCAGGCTTTCTTTCACAGATGTGGATTGGCGATAAAAAACAACTGCTGACGCCGCTGCGCGATCAGTTCACCCGTGCACCGCTGGATAACGACATTGGCGTAAGTGAAGCGACCCGCATTGACCCTAACGCCTGGGTCGAACGCTGGAAGGCGGCGGGCCATTACCAGGCCGAAGCAGCGTTGTTGCAGTGCACGGCAGATACACTTGCTGATGCGGTGCTGATTACGACCGCTCACGCGTGGCAGCATCAGGGGAAAACCTTATTTATCAGCCGGAAAACCTACCGGATTGATGGTAGTGGTCAAATGGCGATTACCGTTGATGTTGAAGTGGCGAGCGATACACCGCATCCGGCGCGGATTGGCCTGAACTGCCAGCTGGCGCAGGTAGCAGAGCGGGTAAACTGGCTCGGATTAGGGCCGCAAGAAAACTATCCCGACCGCCTTACTGCCGCCTGTTTTGACCGCTGGGATCTGCCATTGTCAGACATGTATACCCCGTACGTCTTCCCGAGCGAAAACGGTCTGCGCTGCGGGACGCGCGAATTGAATTATGGCCCACACCAGTGGCGCGGCGACTTCCAGTTCAACATCAGCCGCTACAGTCAACAGCAACTGATGGAAACCAGCCATCGCCATCTGCTGCACGCGGAAGAAGGCACATGGCTGAATATCGACGGTTTCCATATGGGGATTGGTGGCGACGACTCCTGGAGCCCGTCAGTATCGGCGGAATTCCAGCTGAGCGCCGGTCGCTACCATTACCAGTTGGTCTGGTGTCAAAAACTCGAGCACCACCACCACCACCAC(配列番号15)
翻訳されたC*−β−Gal:
MIKIATRKYLGKQNVYGIGVERDHNFALKNGFIASNCFNASMTMITDSLAVVLQRRDWENPGVTQLNRLAAHPPFASWRNSEEARTDRPSQQLRSLNGEWRFAWFPAPEAVPESWLECDLPEADTVVVPSNWQMHGYDAPIYTNVTYPITVNPPFVPTENPTGCYSLTFNVDESWLQEGQTRIIFDGVNSAFHLWCNGRWVGYGQDSRLPSEFDLSAFLRAGENRLAVMVLRWSDGSYLEDQDMWRMSGIFRDVSLLHKPTTQISDFHVATRFNDDFSRAVLEAEVQMCGELRDYLRVTVSLWQGETQVASGTAPFGGEIIDERGGYADRVTLRLNVENPKLWSAEIPNLYRAVVELHTADGTLIEAEACDVGFREVRIENGLLLLNGKPLLIRGVNRHEHHPLHGQVMDEQTMVQDILLMKQNNFNAVRCSHYPNHPLWYTLCDRYGLYVVDEANIETHGMVPMNRLTDDPRWLPAMSERVTRMVQRDRNHPSVIIWSLGNESGHGANHDALYRWIKSVDPSRPVQYEGGGADTTATDIICPMYARVDEDQPFPAVPKWSIKKWLSLPGETRPLILCEYAHAMGNSLGGFAKYWQAFRQYPRLQGGFVWDWVDQSLIKYDENGNPWSAYGGDFGDTPNDRQFCMNGLVFADRTPHPALTEAKHQQQFFQFRLSGQTIEVTSEYLFRHSDNELLHWMVALDGKPLASGEVPLDVAPQGKQLIELPELPQPESAGQLWLTVRVVQPNATAWSEAGHISAWQQWRLAENLSVTLPAASHAIPHLTTSEMDFCIELGNKRWQFNRQSGFLSQMWIGDKKQLLTPLRDQFTRAPLDNDIGVSEATRIDPNAWVERWKAAGHYQAEAALLQCTADTLADAVLITTAHAWQHQGKTLFISRKTYRIDGSGQMAITVDVEVASDTPHPARIGLNCQLAQVAERVNWLGLGPQENYPDRLTAACFDRWDLPLSDMYTPYVFPSENGLRCGTRELNYGPHQWRGDFQFNISRYSQQQLMETSHRHLLHAEEGTWLNIDGFHMGIGGDDSWSPSVSAEFQLSAGRYHYQLVWCQKLEHHHHHH(配列番号16)
構築物9
C*−CAT
ATGATCAAAATAGCCACACGTAAATATTTAGGCAAACAAAATGTCTATGGCATTGGAGTTGAGCGCGACCATAATTTTGCACTCAAAAATGGCTTCATAGCTTCTAATTGTTTCAATGCTAGCATGGAGAAAAAAATCACTGGATATACCACCGTTGATATATCCCAATGGCATCGTAAAGAACATTTTGAGGCATTTCAGTCAGTTGCTCAATGTACCTATAACCAGACCGTTCAGCTGGATATTACGGCCTTTTTAAAGACCGTAAAGAAAAATAAGCACAAGTTTTATCCGGCCTTTATTCACATTCTTGCCCGCCTGATGAATGCTCATCCGGAATTTCGTATGGCAATGAAAGACGGTGAGCTGGTGATATGGGATAGTGTTCACCCTTGTTACACCGTTTTCCATGAGCAAACTGAAACGTTTTCATCGCTCTGGAGTGAATACCACGACGATTTCCGGCAGTTTCTACACATATATTCGCAAGATGTGGCGTGTTACGGTGAAAACCTGGCCTATTTCCCTAAAGGGTTTATTGAGAATATGTTTTTCGTCTCAGCCAATCCCTGGGTGAGTTTCACCAGTTTTGATTTAAACGTGGCCAATATGGACAACTTCTTCGCCCCCGTTTTCACCATGGGCAAATATTATACGCAAGGCGACAAGGTGCTGATGCCGCTGGCGATTCAGGTTCATCATGCCGTCTGTGATGGCTTCCATGTCGGCAGAATGCTTAATGAATTACAACAGTACTGCGATGAGTGGCAGGGCGGGGCGCTCGAGCACCACCACCACCACCAC(配列番号17)
翻訳されたC*−CAT:
MIKIATRKYLGKQNVYGIGVERDHNFALKNGFIASNCFNASMEKKITGYTTVDISQWHRKEHFEAFQSVAQCTYNQTVQLDITAFLKTVKKNKHKFYPAFIHILARLMNAHPEFRMAMKDGELVIWDSVHPCYTVFHEQTETFSSLWSEYHDDFRQFLHIYSQDVACYGENLAYFPKGFIENMFFVSANPWVSFTSFDLNVANMDNFFAPVFTMGKYYTQGDKVLMPLAIQVHHAVCDGFHVGRMLNELQQYCDEWQGGALEHHHHHH(配列番号18)
構築物10
C*−MBP
ATGATCAAAATAGCCACACGTAAATATTTAGGCAAACAAAATGTCTATGGCATTGGAGTTGAGCGCGACCATAATTTTGCACTCAAAAATGGCTTCATAGCTTCTAATTGTTTCAATGCTAGCATGAAAATCGAAGAAGGTAAACTGGTAATCTGGATTAACGGCGATAAAGGCTATAACGGTCTCGCTGAAGTCGGTAAGAAATTCGAGAAAGATACCGGAATTAAAGTCACCGTTGAGCATCCGGATAAACTGGAAGAGAAATTCCCACAGGTTGCGGCAACTGGCGATGGCCCTGACATTATCTTCTGGGCACACGACCGCTTTGGTGGCTACGCTCAATCTGGCCTGTTGGCTGAAATCACCCCGGACAAAGCGTTCCAGGACAAGCTGTATCCGTTTACCTGGGATGCCGTACGTTACAACGGCAAGCTGATTGCTTACCCGATCGCTGTTGAAGCGTTATCGCTGATTTATAACAAAGATCTGCTGCCGAACCCGCCAAAAACCTGGGAAGAGATCCCGGCGCTGGATAAAGAACTGAAAGCGAAAGGTAAGAGCGCGCTGATGTTCAACCTGCAAGAACCGTACTTCACCTGGCCGCTGATTGCTGCTGACGGGGGTTATGCGTTCAAGTATGAAAACGGCAAGTACGACATTAAAGACGTGGGCGTGGATAACGCTGGCGCGAAAGCGGGTCTGACCTTCCTGGTTGACCTGATTAAAAACAAACACATGAATGCAGACACCGATTACTCCATCGCAGAAGCTGCCTTTAATAAAGGCGAAACAGCGATGACCATCAACGGCCCGTGGGCATGGTCCAACATCGACACCAGCAAAGTGAATTATGGTGTAACGGTACTGCCGACCTTCAAGGGTCAACCATCCAAACCGTTCGTTGGCGTGCTGAGCGCAGGTATTAACGCCGCCAGTCCGAACAAAGAGCTGGCAAAAGAGTTCCTCGAAAACTATCTGCTGACTGATGAAGGTCTGGAAGCGGTTAATAAAGACAAACCGCTGGGTGCCGTAGCGCTGAAGTCTTACGAGGAAGAGTTGGCGAAAGATCCACGTATTGCCGCCACCATGGAAAACGCCCAGAAAGGTGAAATCATGCCGAACATCCCGCAGATGTCCGCTTTCTGGTATGCCGTGCGTACTGCGGTGATCAACGCCGCCAGCGGTCGTCAGACTGTCGATGAAGCCCTGAAAGACGCGCAGACTAATTCGAGCTCGAACAACAACAACAATAACAATAACAACAACCTCGGGATCGAGGGAAGGGGACTCGAGCACCACCACCACCACCAC(配列番号19)
翻訳されたC*−MBP:
MIKIATRKYLGKQNVYGIGVERDHNFALKNGFIASNCFNASMKIEEGKLVIWINGDKGYNGLAEVGKKFEKDTGIKVTVEHPDKLEEKFPQVAATGDGPDIIFWAHDRFGGYAQSGLLAEITPDKAFQDKLYPFTWDAVRYNGKLIAYPIAVEALSLIYNKDLLPNPPKTWEEIPALDKELKAKGKSALMFNLQEPYFTWPLIAADGGYAFKYENGKYDIKDVGVDNAGAKAGLTFLVDLIKNKHMNADTDYSIAEAAFNKGETAMTINGPWAWSNIDTSKVNYGVTVLPTFKGQPSKPFVGVLSAGINAASPNKELAKEFLENYLLTDEGLEAVNKDKPLGAVALKSYEEELAKDPRIAATMENAQKGEIMPNIPQMSAFWYAVRTAVINAASGRQTVDEALKDAQTNSSSNNNNNNNNNNLGIEGRGLEHHHHHH(配列番号20)
構築物11
N−CBD:
ATGTGTTTAAGCTATGAAACGGAAATATTGACAGTAGAATATGGATTATTACCGATTGGTAAAATTGTAGAAAAGCGCATCGAATGTACTGTTTATAGCGTTGATAATAATGGAAATATTTATACACAACCTGTAGCACAATGGCACGATCGCGGAGAACAAGAGGTGTTTGAGTATTGTTTGGAAGATGGTTCATTGATTCGGGCAACAAAAGACCATAAGTTTATGACTGTTGATGGTCAAATGTTGCCAATTGATGAAATATTTGAACGTGAATTGGATTTGATGCGGGTTGATAATTTGCCGAATAAGCTTGGAGGCGGAGGGAGCGGAGGCGGAGGGAGCGCTAGCATGAAAATCGAAGAAGGTAAACTGACAAATCCTGGTGTATCCGCTTGGCAGGTCAACACAGCTTATACTGCGGGACAATTGGTCACATATAACGGCAAGACGTATAAATGTTTGCAGCCCCACACCTCCTTGGCAGGATGGGAACCATCCAACGTTCCTGCCTTGTGGCAGCTTCAACTCGAGCACCACCACCACCACCACTGA(配列番号21)
翻訳されたN−CBD:
MCLSYETEILTVEYGLLPIGKIVEKRIECTVYSVDNNGNIYTQPVAQWHDRGEQEVFEYCLEDGSLIRATKDHKFMTVDGQMLPIDEIFERELDLMRVDNLPNKLGGGGSGGGGSASMKIEEGKLTNPGVSAWQVNTAYTAGQLVTYNGKTYKCLQPHTSLAGWEPSNVPALWQLQLEHHHHHH(配列番号22)
構築物12
NC1A−CBD:
ATGGCTTTAAGCTATGAAACGGAAATATTGACAGTAGAATATGGATTATTACCGATTGGTAAAATTGTAGAAAAGCGCATCGAATGTACTGTTTATAGCGTTGATAATAATGGAAATATTTATACACAACCTGTAGCACAATGGCACGATCGCGGAGAACAAGAGGTGTTTGAGTATTGTTTGGAAGATGGTTCATTGATTCGGGCAACAAAAGACCATAAGTTTATGACTGTTGATGGTCAAATGTTGCCAATTGATGAAATATTTGAACGTGAATTGGATTTGATGCGGGTTGATAATTTGCCGAATAAGCTTGGAGGCGGAGGGAGCGGAGGCGGAGGGAGCGCTAGCATGAAAATCGAAGAAGGTAAACTGACAAATCCTGGTGTATCCGCTTGGCAGGTCAACACAGCTTATACTGCGGGACAATTGGTCACATATAACGGCAAGACGTATAAATGTTTGCAGCCCCACACCTCCTTGGCAGGATGGGAACCATCCAACGTTCCTGCCTTGTGGCAGCTTCAACTCGAGCACCACCACCACCACCACTGA(配列番号23)
翻訳されたNC1A−CBD:
MALSYETEILTVEYGLLPIGKIVEKRIECTVYSVDNNGNIYTQPVAQWHDRGEQEVFEYCLEDGSLIRATKDHKFMTVDGQMLPIDEIFERELDLMRVDNLPNKLGGGGSGGGGSASMKIEEGKLTNPGVSAWQVNTAYTAGQLVTYNGKTYKCLQPHTSLAGWEPSNVPALWQLQLEHHHHHH(配列番号24)
構築物13
C−PTDH:
ATGATCAAAATAGCCACACGTAAATATTTAGGCAAACAAAATGTCTATGACATTGGAGTTGAGCGCGACCATAATTTTGCACTCAAAAATGGCTTCATAGCTTCTAATTGTTTCAATGCTAGCATGCTGCCGAAACTCGTTATAACTCACCGAGTACACGAAGAGATCCTGCAACTGCTGGCGCCACATTGCGAGCTGATAACCAACCAGACCGACAGCACGCTGACGCGCGAGGAAATTCTGCGCCGCTGTCGCGATGCTCAGGCGATGATGGCGTTCATGCCCGATCGGGTCGATGCAGACTTTCTTCAAGCCTGCCCTGAGCTGCGTGTAATCGGCTGCGCGCTCAAGGGCTTCGACAATTTCGATGTGGACGCCTGTACTGCCCGCGGGGTCTGGCTGACCTTCGTGCCTGATCTGTTGACGGTCCCGACTGCCGAGCTGGCGATCGGACTGGCGGTGGGGCTGGGGCGGCATCTGCGGGCAGCAGATGCGTTCGTCCGCTCTGGCAAGTTCCGGGGCTGGCAACCACGGTTCTACGGCACGGGGCTGGATAACGCTACGGTCGGCTTCCTTGGCATGGGCGCCATCGGACTGGCCATGGCTGATCGCTTGCAGGGATGGGGCGCGACCCTGCAGTACCACGCGCGGAAGGCTCTGGATACACAAACCGAGCAACGGCTCGGCCTGCGCCAGGTGGCGTGCAGCGAACTCTTCGCCAGCTCGGACTTCATCCTGCTGGCGCTTCCCTTGAATGCCGATACCCTGCATCTGGTCAACGCCGAGCTGCTTGCCCTCGTACGGCCGGGCGCTCTGCTTGTAAACCCCTGTCGTGGCTCGGTAGTGGATGAAGCCGCCGTGCTCGCGGCGCTTGAGCGAGGCCAGCTCGGCGGGTATGCGGCGGATGTATTCGAAATGGAAGACTGGGCTCGCGCGGACCGGCCGCAGCAGATCGATCCTGCGCTGCTCGCGCATCCGAATACGCTGTTCACTCCGCACATAGGGTCGGCAGTGCGCGCGGTGCGCCTGGAGATTGAACGTTGTGCAGCGCAGAACATCCTCCAGGCATTGGCAGGTGAGCGCCCAATCAACGCTGTGAACCGTCTGCCCAAGGCCAATCCTGCCGCAGACCTCGAGCACCACCACCACCACCAC(配列番号25)
翻訳されたC−PTDH:
MIKIATRKYLGKQNVYDIGVERDHNFALKNGFIASNCFNASMLPKLVITHRVHEEILQLLAPHCELITNQTDSTLTREEILRRCRDAQAMMAFMPDRVDADFLQACPELRVIGCALKGFDNFDVDACTARGVWLTFVPDLLTVPTAELAIGLAVGLGRHLRAADAFVRSGKFRGWQPRFYGTGLDNATVGFLGMGAIGLAMADRLQGWGATLQYHARKALDTQTEQRLGLRQVACSELFASSDFILLALPLNADTLHLVNAELLALVRPGALLVNPCRGSVVDEAAVLAALERGQLGGYAADVFEMEDWARADRPQQIDPALLAHPNTLFTPHIGSAVRAVRLEIERCAAQNILQALAGERPINAVNRLPKANPAADLEHHHHHH(配列番号26)
構築物14
C*−A−GFP:
ATGATCAAAATAGCCACACGTAAATATTTAGGCAAACAAAATGTCTATGGCATTGGAGTTGAGCGCGACCATAATTTTGCACTCAAAAATGGCTTCATAGCTTCTAATGCGTTCAATGTGAGCAAGGGCGAGGAGCTGTTCACCGGGGTGGTGCCCATCCTGGTCGAGCTGGACGGCGACGTAAACGGCCACAAGTTCAGCGTGTCCGGCGAGGGCGAGGGCGATGCCACCTACGGCAAGCTGACCCTGAAGTTCATCTGCACCACCGGCAAGCTGCCCGTGCCCTGGCCCACCCTCGTGACCACCCTGACCTACGGCGTGCAGTGCTTCAGCCGCTACCCCGACCACATGAAGCAGCACGACTTCTTCAAGTCCGCCATGCCCGAAGGCTACGTCCAGGAGCGCACCATCTTCTTCAAGGACGACGGCAACTACAAGACCCGCGCCGAGGTGAAGTTCGAGGGCGACACCCTGGTGAACCGCATCGAGCTGAAGGGCATCGACTTCAAGGAGGACGGCAACATCCTGGGGCACAAGCTGGAGTACAACTACAACAGCCACAACGTCTATATCATGGCCGACAAGCAGAAGAACGGCATCAAGGTGAACTTCAAGATCCGCCACAACATCGAGGACGGCAGCGTGCAGCTCGCCGACCACTACCAGCAGAACACCCCCATCGGCGACGGCCCCGTGCTGCTGCCCGACAACCACTACCTGAGCACCCAGTCCGCCCTGAGCAAAGACCCCAACGAGAAGCGCGATCACATGGTCCTGCTGGAGTTCGTGACCGCCGCCGGGATCACTCTCGGCATGGACGAGTTACTCGAGCACCACCACCACCACCAC(配列番号27)
翻訳されたC*−A−GFP:
MIKIATRKYLGKQNVYGIGVERDHNFALKNGFIASNAFNVSKGEELFTGVVPILVELDGDVNGHKFSVSGEGEGDATYGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTLTYGVQCFSRYPDHMKQHDFFKSAMPEGYVQERTIFFKDDGNYKTRAEVKFEGDTLVNRIELKGIDFKEDGNILGHKLEYNYNSHNVYIMADKQKNGIKVNFKIRHNIEDGSVQLADHYQQNTPIGDGPVLLPDNHYLSTQSALSKDPNEKRDHMVLLEFVTAAGITLGMDELLEHHHHHH(配列番号28)
構築物15
C*−D−GFP:
ATGATCAAAATAGCCACACGTAAATATTTAGGCAAACAAAATGTCTATGGCATTGGAGTTGAGCGCGACCATAATTTTGCACTCAAAAATGGCTTCATAGCTTCTAATGATTTCAATGTGAGCAAGGGCGAGGAGCTGTTCACCGGGGTGGTGCCCATCCTGGTCGAGCTGGACGGCGACGTAAACGGCCACAAGTTCAGCGTGTCCGGCGAGGGCGAGGGCGATGCCACCTACGGCAAGCTGACCCTGAAGTTCATCTGCACCACCGGCAAGCTGCCCGTGCCCTGGCCCACCCTCGTGACCACCCTGACCTACGGCGTGCAGTGCTTCAGCCGCTACCCCGACCACATGAAGCAGCACGACTTCTTCAAGTCCGCCATGCCCGAAGGCTACGTCCAGGAGCGCACCATCTTCTTCAAGGACGACGGCAACTACAAGACCCGCGCCGAGGTGAAGTTCGAGGGCGACACCCTGGTGAACCGCATCGAGCTGAAGGGCATCGACTTCAAGGAGGACGGCAACATCCTGGGGCACAAGCTGGAGTACAACTACAACAGCCACAACGTCTATATCATGGCCGACAAGCAGAAGAACGGCATCAAGGTGAACTTCAAGATCCGCCACAACATCGAGGACGGCAGCGTGCAGCTCGCCGACCACTACCAGCAGAACACCCCCATCGGCGACGGCCCCGTGCTGCTGCCCGACAACCACTACCTGAGCACCCAGTCCGCCCTGAGCAAAGACCCCAACGAGAAGCGCGATCACATGGTCCTGCTGGAGTTCGTGACCGCCGCCGGGATCACTCTCGGCATGGACGAGTTACTCGAGCACCACCACCACCACCAC(配列番号29)
翻訳されたC*−D−GFP:
MIKIATRKYLGKQNVYGIGVERDHNFALKNGFIASNDFNVSKGEELFTGVVPILVELDGDVNGHKFSVSGEGEGDATYGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTLTYGVQCFSRYPDHMKQHDFFKSAMPEGYVQERTIFFKDDGNYKTRAEVKFEGDTLVNRIELKGIDFKEDGNILGHKLEYNYNSHNVYIMADKQKNGIKVNFKIRHNIEDGSVQLADHYQQNTPIGDGPVLLPDNHYLSTQSALSKDPNEKRDHMVLLEFVTAAGITLGMDELLEHHH
HHH(配列番号30)
構築物16
C*−L−GFP:
ATGATCAAAATAGCCACACGTAAATATTTAGGCAAACAAAATGTCTATGGCATTGGAGTTGAGCGCGACCATAATTTTGCACTCAAAAATGGCTTCATAGCTTCTAATCTGTTCAATGTGAGCAAGGGCGAGGAGCTGTTCACCGGGGTGGTGCCCATCCTGGTCGAGCTGGACGGCGACGTAAACGGCCACAAGTTCAGCGTGTCCGGCGAGGGCGAGGGCGATGCCACCTACGGCAAGCTGACCCTGAAGTTCATCTGCACCACCGGCAAGCTGCCCGTGCCCTGGCCCACCCTCGTGACCACCCTGACCTACGGCGTGCAGTGCTTCAGCCGCTACCCCGACCACATGAAGCAGCACGACTTCTTCAAGTCCGCCATGCCCGAAGGCTACGTCCAGGAGCGCACCATCTTCTTCAAGGACGACGGCAACTACAAGACCCGCGCCGAGGTGAAGTTCGAGGGCGACACCCTGGTGAACCGCATCGAGCTGAAGGGCATCGACTTCAAGGAGGACGGCAACATCCTGGGGCACAAGCTGGAGTACAACTACAACAGCCACAACGTCTATATCATGGCCGACAAGCAGAAGAACGGCATCAAGGTGAACTTCAAGATCCGCCACAACATCGAGGACGGCAGCGTGCAGCTCGCCGACCACTACCAGCAGAACACCCCCATCGGCGACGGCCCCGTGCTGCTGCCCGACAACCACTACCTGAGCACCCAGTCCGCCCTGAGCAAAGACCCCAACGAGAAGCGCGATCACATGGTCCTGCTGGAGTTCGTGACCGCCGCCGGGATCACTCTCGGCATGGACGAGTTACTCGAGCACCACCACCACCACCAC(配列番号31)
翻訳されたC*−L−GFP:
MIKIATRKYLGKQNVYGIGVERDHNFALKNGFIASNLFNVSKGEELFTGVVPILVELDGDVNGHKFSVSGEGEGDATYGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTLTYGVQCFSRYPDHMKQHDFFKSAMPEGYVQERTIFFKDDGNYKTRAEVKFEGDTLVNRIELKGIDFKEDGNILGHKLEYNYNSHNVYIMADKQKNGIKVNFKIRHNIEDGSVQLADHYQQNTPIGDGPVLLPDNHYLSTQSALSKDPNEKRDHMVLLEFVTAAGITLGMDELLEHHHHHH(配列番号32)
構築物17
C*−P−GFP:
ATGATCAAAATAGCCACACGTAAATATTTAGGCAAACAAAATGTCTATGGCATTGGAGTTGAGCGCGACCATAATTTTGCACTCAAAAATGGCTTCATAGCTTCTAATCCGTTCAATGTGAGCAAGGGCGAGGAGCTGTTCACCGGGGTGGTGCCCATCCTGGTCGAGCTGGACGGCGACGTAAACGGCCACAAGTTCAGCGTGTCCGGCGAGGGCGAGGGCGATGCCACCTACGGCAAGCTGACCCTGAAGTTCATCTGCACCACCGGCAAGCTGCCCGTGCCCTGGCCCACCCTCGTGACCACCCTGACCTACGGCGTGCAGTGCTTCAGCCGCTACCCCGACCACATGAAGCAGCACGACTTCTTCAAGTCCGCCATGCCCGAAGGCTACGTCCAGGAGCGCACCATCTTCTTCAAGGACGACGGCAACTACAAGACCCGCGCCGAGGTGAAGTTCGAGGGCGACACCCTGGTGAACCGCATCGAGCTGAAGGGCATCGACTTCAAGGAGGACGGCAACATCCTGGGGCACAAGCTGGAGTACAACTACAACAGCCACAACGTCTATATCATGGCCGACAAGCAGAAGAACGGCATCAAGGTGAACTTCAAGATCCGCCACAACATCGAGGACGGCAGCGTGCAGCTCGCCGACCACTACCAGCAGAACACCCCCATCGGCGACGGCCCCGTGCTGCTGCCCGACAACCACTACCTGAGCACCCAGTCCGCCCTGAGCAAAGACCCCAACGAGAAGCGCGATCACATGGTCCTGCTGGAGTTCGTGACCGCCGCCGGGATCACTCTCGGCATGGACGAGTTACTCGAGCACCACCACCACCACCAC(配列番号33)
翻訳されたC*−P−GFP:
MIKIATRKYLGKQNVYGIGVERDHNFALKNGFIASNPFNVSKGEELFTGVVPILVELDGDVNGHKFSVSGEGEGDATYGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTLTYGVQCFSRYPDHMKQHDFFKSAMPEGYVQERTIFFKDDGNYKTRAEVKFEGDTLVNRIELKGIDFKEDGNILGHKLEYNYNSHNVYIMADKQKNGIKVNFKIRHNIEDGSVQLADHYQQNTPIGDGPVLLPDNHYLSTQSALSKDPNEKRDHMVLLEFVTAAGITLGMDELLEHHHHHH(配列番号34)
構築物18
C*−R−GFP:
ATGATCAAAATAGCCACACGTAAATATTTAGGCAAACAAAATGTCTATGGCATTGGAGTTGAGCGCGACCATAATTTTGCACTCAAAAATGGCTTCATAGCTTCTAATCGTTTCAATGTGAGCAAGGGCGAGGAGCTGTTCACCGGGGTGGTGCCCATCCTGGTCGAGCTGGACGGCGACGTAAACGGCCACAAGTTCAGCGTGTCCGGCGAGGGCGAGGGCGATGCCACCTACGGCAAGCTGACCCTGAAGTTCATCTGCACCACCGGCAAGCTGCCCGTGCCCTGGCCCACCCTCGTGACCACCCTGACCTACGGCGTGCAGTGCTTCAGCCGCTACCCCGACCACATGAAGCAGCACGACTTCTTCAAGTCCGCCATGCCCGAAGGCTACGTCCAGGAGCGCACCATCTTCTTCAAGGACGACGGCAACTACAAGACCCGCGCCGAGGTGAAGTTCGAGGGCGACACCCTGGTGAACCGCATCGAGCTGAAGGGCATCGACTTCAAGGAGGACGGCAACATCCTGGGGCACAAGCTGGAGTACAACTACAACAGCCACAACGTCTATATCATGGCCGACAAGCAGAAGAACGGCATCAAGGTGAACTTCAAGATCCGCCACAACATCGAGGACGGCAGCGTGCAGCTCGCCGACCACTACCAGCAGAACACCCCCATCGGCGACGGCCCCGTGCTGCTGCCCGACAACCACTACCTGAGCACCCAGTCCGCCCTGAGCAAAGACCCCAACGAGAAGCGCGATCACATGGTCCTGCTGGAGTTCGTGACCGCCGCCGGGATCACTCTCGGCATGGACGAGTTACTCGAGCACCACCACCACCACCAC(配列番号35)
翻訳されたC*−R−GFP:
MIKIATRKYLGKQNVYGIGVERDHNFALKNGFIASNRFNVSKGEELFTGVVPILVELDGDVNGHKFSVSGEGEGDATYGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTLTYGVQCFSRYPDHMKQHDFFKSAMPEGYVQERTIFFKDDGNYKTRAEVKFEGDTLVNRIELKGIDFKEDGNILGHKLEYNYNSHNVYIMADKQKNGIKVNFKIRHNIEDGSVQLADHYQQNTPIGDGPVLLPDNHYLSTQSALSKDPNEKRDHMVLLEFVTAAGITLGMDELLEHHHHHH(配列番号36)
翻訳されたC*−:
MIKIATRKYLGKQNVYGIGVERDHNFALKNGFIASN(配列番号37)
ELPのアミノ酸配列:
MGHGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGGLVSSNNNNNNNNNNLGIEGRISEF(配列番号38)
インテインN断片のアミノ酸配列:
ALSYETEILTVEYGLLPIGKIVEKRIECTVYSVDNNGNIYTQPVAQWHDRGEQEVFEYCLEDGSLIRATKDHKFMTVDGQMLPIDEIFERELDLMRVDNLPN(配列番号39)
C*−DNA:
ATGATCAAAATAGCCACACGTAAATATTTAGGCAAACAAAATGTCTATGGCATTGGAGTTGAGCGCGACCATAATTTTGCACTCAAAAATGGCTTCATAGCTTCTAAT
(配列番号40)
ELP−インテインN断片:
ATGGGCCACGGCGTGGGTGTTCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGCAGGTGTTCCTGGTGTAGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTACCAGGTGGCGGTGTTCCGGGTGCAGGCGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGCAGGTGTTCCTGGTGTAGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTACCAGGTGGCGGTGTTCCGGGTGCAGGCGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGCAGGTGTTCCTGGTGTAGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTACCAGGTGGCGGTGTTCCGGGTGCAGGCGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGCAGGTGTTCCTGGTGTAGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTACCAGGTGGCGGTGTTCCGGGTGCAGGCGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGCAGGTGTTCCTGGTGTAGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTACCAGGTGGCGGTGTTCCGGGTGCAGGCGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGCAGGTGTTCCTGGTGTAGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTACCAGGTGGCGGTGTTCCGGGTGCAGGCGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGCAGGTGTTCCTGGTGTAGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTACCAGGTGGCGGTGTTCCGGGTGCAGGCGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGCAGGTGTTCCTGGTGTAGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTACCAGGTGGCGGTGTTCCGGGTGCAGGCGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGCAGGTGTTCCTGGTGTAGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTACCAGGTGGCGGTGTTCCGGGTGCAGGCGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGCAGGTGTTCCTGGTGTAGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTACCAGGTGGCGGTGTTCCGGGTGCAGGCGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGCGTGGGTGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGCAGGTGTTCCTGGTGTAGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTGCCGGGTGTTGGTGTACCAGGTGGCGGTGTTCCGGGTGCAGGCGTTCCGGGTGGCGGTGTGCCGGGCGGGCTGGTGAGCTCGAACAACAACAACAATAACAATAACAACAACCTCGGGATCGAGGGAAGGATTTCAGAATTCGGAGGCGGAGGGAGCGGAGGCGGAGGGAGCGCTAGCTGTTTAAGCTATGAAACGGAAATATTGACAGTAGAATATGGATTATTACCGATTGGTAAAATTGTAGAAAAGCGCATCGAATGTACTGTTTATAGCGTTGATAATAATGGAAATATTTATACACAACCTGTAGCACAATGGCACGATCGCGGAGAACAAGAGGTGTTTGAGTATTGTTTGGAAGATGGTTCATTGATTCGGGCAACAAAAGACCATAAGTTTATGACTGTTGATGGTCAAATGTTGCCAATTGATGAAATATTTGAACGTGAATTGGATTTGATGCGGGTTGATAATTTGCCGAATCTCGAGCACCACCACCACCACCAC(配列番号41)。
翻訳されたELP−インテインN断片:
MGHGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGVGVPGVGVPGVGVPGGGVPGAGVPGGGVPGGLVSSNNNNNNNNNNLGIEGRISEFGGGGSGGGGSASCLSYETEILTVEYGLLPIGKIVEKRIECTVYSVDNNGNIYTQPVAQWHDRGEQEVFEYCLEDGSLIRATKDHKFMTVDGQMLPIDEIFERELDLMRVDNLPNLEHHHHHH(配列番号42)
本研究で使用したプライマー:
NPUC_F_NDEI 104:
TTAGAAGGCATATGATCAAAATAGCCACACGTAAATATTTAGG(配列番号43)。
OXP-NC-G-REV:
CCTCGCCCTTGCTCACATTGAAACAATTAGAAGCTATGAAGCCAT(配列番号44)。
OXP-GFP-NC-FWD:
ATAGCTTCTAATTGTTTCAATGTGAGCAAGGGCGAGG(配列番号45)。
XHOI_GFP_R:
TAAAATCTCGAGTAACTCGTCCATGCCGAGAG(配列番号46)。
NPUCD17G-F:
GGCAAACAAAATGTCTATGGCATTGGAGTT(配列番号47)。
NPUCD17G-R:
GTCGCGCTCAACTCCAATGCCATAGACATT(配列番号48)。
HINDIII-LINK-NPU F:
CCTGGAAGCTTGTGGAGGCGGAGGGAGCGGAGGCGGAGGGAGCGCTAGCTGTTTAAGCTATGAAACGGAAATATTGAC(配列番号49)。
NPUN_R_XHOI:
ATATAGCTCGAGATTCGGCAAATTATCAACCCG(配列番号50)。
NDEI-CBD-F:
TAATTTAACATATGAAAATCGAAGAAGGTAAACTGACAAATCCT(配列番号51)。
HINDIII-CBD-R:
AAGATTAAAGCTTCTTGAAGCTGCCACAAGGCA(配列番号52)。
NHEI-C1A-F:
AATTAAGCTAGCGCCTTAAGCTATGAAACGGAAATATTGACA(配列番号53)。
ECORI-LINKER-NPUN F:
AATATGGGAATTCGGAGGCGGAGGGAGCGG(配列番号54)。
HINDIII-6H-NUPN- R:
GTACATTAAGCTTAGCAGCCGGATCTCAGT(配列番号55)。
NHEI-NPUC CFN-R:
ATTCGCGCTAGCATTGAAACAATTAGAAGCTATGAAGCC(配列番号56)。
XHOI_DSRED_R:
TAAAATCTCGAGCAGGAACAGGTGGTGGC(配列番号57)。
HINDII-L-DSRED-FWD:
TTCAATAAGCTTGGAGGCGGAGGGAGCGGAGGCGGAGGGAGCGCTAGCGCCTCCTCCGAGGACG(配列番号58)。
NHEI-PTDH-F:
ATTTAACGCTAGCATGCTGCCGAAACTCGTTATAACTC(配列番号59)。
XHOI-PTDH12X-R:
AGTTTAGCTCGAGGTCTGCGGCAGGATTGG(配列番号60)。
NHEI-LACZ-F:
ATTTCAATGCTAGCATGACCATGATTACGGATTCACT(配列番号61)。
XHOI-LACZ-R:
TGATAATCTCGAGTTTTTGACACCAGACCAACTG(配列番号62)。
NHEI-CAT-F:
GTTTCAATGCTAGCATGGAGAAAAAAATCACTGGATATACCACCGTTGATATAT(配列番号63)。
XHOI-CAT-R:
TAATAATTAACTCGAGCGCCCCGCCCTGCCAC(配列番号64)。
NHEI-MBP-F:
GTTTCAATGCTAGCATGAAAATCGAAGAAGGTAAACTGGTAATCT(配列番号65)。
XHOI-MBP-R:
AAGTTATACTCGAGTCCCCTTCCCTCGATCC(配列番号66)。
Table of sequences used Construct 1
C-GFP:
(SEQ ID NO: 1)
Translated C-GFP:
MIKIATRKYLGKQNVYDIGVERDHNFALKNGFIASNCFNVSKGEELFTGVVPILVELDGDVNGHKFSVSGEGEGDATYGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTLTYGVQCFSRYPDHMKQHDFFKSAMPEGYVQERTIFFKDDGNYKTRAEVKFEGDTLVNRIELKGIDFKEDGNILGHKLEYNYNSHNVYIMADKQKNGIKVNFKIRHNIEDGSVQLADHYQQNTPIGDGPVLLPDNHYLSTQSALSKDPNEKRDHMVLLEFVTAAGITLGMDELLEHHHHHH (SEQ ID NO: 2)
Structure 2
CBD-N
(SEQ ID NO: 3)
Translated CBD-N:
MKIEEGKLTNPGVSAWQVNTAYTAGQLVTYNGKTYKCLQPHTSLAGWEPSNVPALWQLQEACGGGGSGGGGSASCLSYETEILTVEYGLLPIGKIVEKRIECTVYSVDNNGNIYTQPVAQWHDRGEQEVFEYCLEDGSLIRATKDHKFMTVDGQHLPIDEIFERELH
Construction 3
C * -GFP:
(SEQ ID NO: 5)
Translated C * -GFP:
MIKIATRKYLGKQNVYGIGVERDHNFALKNGFIASNCFNVSKGEELFTGVVPILVELDGDVNGHKFSVSGEGEGDATYGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTLTYGVQCFSRYPDHMKQHDFFKSAMPEGYVQERTIFFKDDGNYKTRAEVKFEGDTLVNRIELKGIDFKEDGNILGHKLEYNYNSHNVYIMADKQKNGIKVNFKIRHNIEDGSVQLADHYQQNTPIGDGPVLLPDNHYLSTQSALSKDPNEKRDHMVLLEFVTAAGITLGMDELLEHHHHHH (SEQ ID NO: 6)
Structure 4
CBD-NC1A
(SEQ ID NO: 7)
Translated CBD-NC1A:
MKIEEGKLTNPGVSAWQVNTAYTAGQLVTYNGKTYKCLQPHTSLAGWEPSNVPALWQLQEACGGGGSGGGGSASALSYETEILTVEYGLLPIGKIVEKRIECTVYSVDNNGNIYTQPVAQWHDRGEQEVFEYCLEDGSLIRATKDHKFMTVDGQHLPHIDHELH
Construction 5
ELP-N
(SEQ ID NO: 9)
Translated ELP-N:
(SEQ ID NO: 10)
Construction 6
C * -PTDH:
(SEQ ID NO: 11)
Translated C * -PTDH:
MIKIATRKYLGKQNVYGIGVERDHNFALKNGFIASNCFNASMLPKLVITHRVHEEILQLLAPHCELITNQTDSTLTREEILRRCRDAQAMMAFMPDRVDADFLQACPELRVIGCALKGFDNFDVDACTARGVWLTFVPDLLTVPTAELAIGLAVGLGRHLRAADAFVRSGKFRGWQPRFYGTGLDNATVGFLGMGAIGLAMADRLQGWGATLQYHARKALDTQTEQRLGLRQVACSELFASSDFILLALPLNADTLHLVNAELLALVRPGALLVNPCRGSVVDEAAVLAALERGQLGGYAADVFEMEDWARADRPQQIDPALLAHPNTLFTPHIGSAVRAVRLEIERCAAQNILQALAGERPINAVNRLPKANPAADLEHHHHHH (SEQ ID NO: 12)
Construction 7
C * -DsRed
(SEQ ID NO: 13)
Translated C * -DsRed:
MIKIATRKYLGKQNVYGIGVERDHNFALKNGFIASNCFNASASSEDVIKEFMRFKVRMEGSVNGHEFEIEGEGEGRPYEGTQTAKLKVTKGGPLPFAWDILSPQFQYGSKVYVKHPADIPDYKKLSFPEGFKWERVMNFEDGGVVTVTQDSSLQDGSFIYKVKFIGVNFPSDGPVMQKKTMGWEASTERLYPRDGVLKGEIHKALKLKDGGHYLVEFKSIYMAKKPVQLPGYYYVDSKLDITSHNEDYTIVEQYERAEGRHHLFLLEHHHHHH (SEQ ID NO: 14)
Construction 8
C * -β-Gal
(SEQ ID NO: 15)
Translated C * -β-Gal:
(SEQ ID NO: 16)
Construction 9
C * -CAT
(SEQ ID NO: 17)
Translated C * -CAT:
MIKIATRKYLGKQNVYGIGVERDHNFALKNGFIASNCFNASMEKKITGYTTVDISQWHRKEHFEAFQSVAQCTYNQTVQLDITAFLKTVKKNKHKFYPAFIHILARLMNAHPEFRMAMKDGELVIWDSVHPCYTVFHEQTETFSSLWSEYHDDFRQFLHIYSQDVACYGENLAYFPKGFIENMFFVSANPWVSFTSFDLNVANMDNFFAPVFTMGKYYTQGDKVLMPLAIQVHHAVCDGFHVGRMLNELQQYCDEWQGGALEHHHHHH (SEQ ID NO: 18)
Construct 10
C * -MBP
(SEQ ID NO: 19)
Translated C * -MBP:
MIKIATRKYLGKQNVYGIGVERDHNFALKNGFIASNCFNASMKIEEGKLVIWINGDKGYNGLAEVGKKFEKDTGIKVTVEHPDKLEEKFPQVAATGDGPDIIFWAHDRFGGYAQSGLLAEITPDKAFQDKLYPFTWDAVRYNGKLIAYPIAVEALSLIYNKDLLPNPPKTWEEIPALDKELKAKGKSALMFNLQEPYFTWPLIAADGGYAFKYENGKYDIKDVGVDNAGAKAGLTFLVDLIKNKHMNADTDYSIAEAAFNKGETAMTINGPWAWSNIDTSKVNYGVTVLPTFKGQPSKPFVGVLSAGINAASPNKELAKEFLENYLLTDEGLEAVNKDKPLGAVALKSYEEELAKDPRIAATMENAQKGEIMPNIPQMSAFWYAVRTAVINAASGRQTVDEALKDAQTNSSSNNNNNNNNNNLGIEGRGLEHHHHHH (SEQ ID NO: 20)
Construct 11
N-CBD:
(SEQ ID NO: 21)
Translated N-CBD:
MCLSYETEILTVEYGLLPIGKIVEKRIECTVYSVDNNGNIYTQPVAQWHDRGEQEVFEYCLEDGSLIRATKDHKFMTVDGQMLPIDEIFERELDLMRVDNLPNKLGGGGSGGGGSASMKIEEGKLTNPGVSAWQVNTAYTAGQLVTYNGKTYKCLQPHTSLAGWEPSH
Construct 12
NC1A-CBD:
(SEQ ID NO: 23)
Translated NC1A-CBD:
MALSYETEILTVEYGLLPIGKIVEKRIECTVYSVDNNGNIYTQPVAQWHDRGEQEVFEYCLEDGSLIRATKDHKFMTVDGQMLPIDEIFERELDLMRVDNLPNKLGGGGSGGGGSASMKIEEGKLTNPGVSAWQVNTAYTAGQLVTYNGKTYKCLQPHTSLAGWEPSH
Construction 13
C-PTDH:
(SEQ ID NO: 25)
Translated C-PTDH:
MIKIATRKYLGKQNVYDIGVERDHNFALKNGFIASNCFNASMLPKLVITHRVHEEILQLLAPHCELITNQTDSTLTREEILRRCRDAQAMMAFMPDRVDADFLQACPELRVIGCALKGFDNFDVDACTARGVWLTFVPDLLTVPTAELAIGLAVGLGRHLRAADAFVRSGKFRGWQPRFYGTGLDNATVGFLGMGAIGLAMADRLQGWGATLQYHARKALDTQTEQRLGLRQVACSELFASSDFILLALPLNADTLHLVNAELLALVRPGALLVNPCRGSVVDEAAVLAALERGQLGGYAADVFEMEDWARADRPQQIDPALLAHPNTLFTPHIGSAVRAVRLEIERCAAQNILQALAGERPINAVNRLPKANPAADLEHHHHHH (SEQ ID NO: 26)
Construct 14
C * -A-GFP:
(SEQ ID NO: 27)
Translated C * -A-GFP:
MIKIATRKYLGKQNVYGIGVERDHNFALKNGFIASNAFNVSKGEELFTGVVPILVELDGDVNGHKFSVSGEGEGDATYGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTLTYGVQCFSRYPDHMKQHDFFKSAMPEGYVQERTIFFKDDGNYKTRAEVKFEGDTLVNRIELKGIDFKEDGNILGHKLEYNYNSHNVYIMADKQKNGIKVNFKIRHNIEDGSVQLADHYQQNTPIGDGPVLLPDNHYLSTQSALSKDPNEKRDHMVLLEFVTAAGITLGMDELLEHHHHHH (SEQ ID NO: 28)
Construct 15
C * -D-GFP:
(SEQ ID NO: 29)
Translated C * -D-GFP:
MIKIATRKYLGKQNVYGIGVERDHNFALKNGFIASNDFNVSKGEELFTGVVPILVELDGDVNGHKFSVSGEGEGDATYGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTLTYGVQCFSRYPDHMKQHDFFKSAMPEGYVQERTIFFKDDGNYKTRAEVKFEGDTLVNRIELKGIDFKEDGNILGHKLEYNYNSHNVYIMADKQKNGIKVNFKIRHNIEDGSVQLADHYQQNTPIGDGPVLLPDNHYLSTQSALSKDPNEKRDHMVLLEFVTAAGITLGMDELLEHHH
HHH (SEQ ID NO: 30)
Construct 16
C * -L-GFP:
(SEQ ID NO: 31)
Translated C * -L-GFP:
MIKIATRKYLGKQNVYGIGVERDHNFALKNGFIASNLFNVSKGEELFTGVVPILVELDGDVNGHKFSVSGEGEGDATYGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTLTYGVQCFSRYPDHMKQHDFFKSAMPEGYVQERTIFFKDDGNYKTRAEVKFEGDTLVNRIELKGIDFKEDGNILGHKLEYNYNSHNVYIMADKQKNGIKVNFKIRHNIEDGSVQLADHYQQNTPIGDGPVLLPDNHYLSTQSALSKDPNEKRDHMVLLEFVTAAGITLGMDELLEHHHHHH (SEQ ID NO: 32)
Construct 17
C * -P-GFP:
(SEQ ID NO: 33)
Translated C * -P-GFP:
MIKIATRKYLGKQNVYGIGVERDHNFALKNGFIASNPFNVSKGEELFTGVVPILVELDGDVNGHKFSVSGEGEGDATYGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTLTYGVQCFSRYPDHMKQHDFFKSAMPEGYVQERTIFFKDDGNYKTRAEVKFEGDTLVNRIELKGIDFKEDGNILGHKLEYNYNSHNVYIMADKQKNGIKVNFKIRHNIEDGSVQLADHYQQNTPIGDGPVLLPDNHYLSTQSALSKDPNEKRDHMVLLEFVTAAGITLGMDELLEHHHHHH (SEQ ID NO: 34)
Construct 18
C * -R-GFP:
(SEQ ID NO: 35)
Translated C * -R-GFP:
MIKIATRKYLGKQNVYGIGVERDHNFALKNGFIASNRFNVSKGEELFTGVVPILVELDGDVNGHKFSVSGEGEGDATYGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTLTYGVQCFSRYPDHMKQHDFFKSAMPEGYVQERTIFFKDDGNYKTRAEVKFEGDTLVNRIELKGIDFKEDGNILGHKLEYNYNSHNVYIMADKQKNGIKVNFKIRHNIEDGSVQLADHYQQNTPIGDGPVLLPDNHYLSTQSALSKDPNEKRDHMVLLEFVTAAGITLGMDELLEHHHHHH (SEQ ID NO: 36)
Translated C * -:
MIKIATRKYLGKQNVYGIGVERDHNFALKNGFIASN (SEQ ID NO: 37)
The amino acid sequence of ELP:
(SEQ ID NO: 38)
Amino acid sequence of intein N fragment:
ALSYETEILTVEYGLLPIGKIVEKRIECTVYSVDNNGNIYTQPVAQWHDRGEQEVFEYCLEDGSLIRATKDHKFMTVDGQMLPIDEIFERELDLMRVDNLPN (SEQ ID NO: 39)
C * -DNA:
ATGATCAAAATAGCCACACGTAAATATTTAGGCAAACAAAATGTCTATGGCATTGGAGTTGAGCGCGACCATAATTTTGCACTCAAAAATGGCTTCATAGCTTCTAAT
(SEQ ID NO: 40)
ELP-intein N fragment:
(SEQ ID NO: 41).
Translated ELP-intein N fragment:
(SEQ ID NO: 42)
Primers used in this study:
NPUC_F_NDEI 104:
TTAGAAGGCATATGATCAAAATAGCCACACGTAAATATTTAGG (SEQ ID NO: 43).
OXP-NC-G-REV:
CCTCGCCCTTGCTCACATTGAAACAATTAGAAGCTATGAAGCCAT (SEQ ID NO: 44).
OXP-GFP-NC-FWD:
ATAGCTTCTAATTGTTTCAATGTGAGCAAGGGCGAGG (SEQ ID NO: 45).
XHOI_GFP_R:
TAAAATCTCGAGTAACTCGTCCATGCCGAGAG (SEQ ID NO: 46).
NPUCD17G-F:
GGCAAACAAAATGTCTATGGCATTGGAGTT (SEQ ID NO: 47).
NPUCD17G-R:
GTCGCGCTCAACTCCAATGCCATAGACATT (SEQ ID NO: 48).
HINDIII-LINK-NPU F:
CCTGGAAGCTTGTGGAGGCGGAGGGAGCGGAGGCGGAGGGAGCGCTAGCTGTTTAAGCTATGAAACGGAAATATTGAC (SEQ ID NO: 49).
NPUN_R_XHOI:
ATATAGCTCGAGATTCGGCAAATTATCAACCCG (SEQ ID NO: 50).
NDEI-CBD-F:
TAATTTAACATATGAAAATCGAAGAAGGTAAACTGACAAATCCT (SEQ ID NO: 51).
HINDIII-CBD-R:
AAGATTAAAGCTTCTTGAAGCTGCCACAAGGCA (SEQ ID NO: 52).
NHEI-C1A-F:
AATTAAGCTAGCGCCTTAAGCTATGAAACGGAAATATTGACA (SEQ ID NO: 53).
ECORI-LINKER-NPUN F:
AATATGGGAATTCGGAGGCGGAGGGAGCGG (SEQ ID NO: 54).
HINDIII-6H-NUPN- R:
GTACATTAAGCTTAGCAGCCGGATCTCAGT (SEQ ID NO: 55).
NHEI-NPUC CFN-R:
ATTCGCGCTAGCATTGAAACAATTAGAAGCTATGAAGCC (SEQ ID NO: 56).
XHOI_DSRED_R:
TAAAATCTCGAGCAGGAACAGGTGGTGGC (SEQ ID NO: 57).
HINDII-L-DSRED-FWD:
TTCAATAAGCTTGGAGGCGGAGGGAGCGGAGGCGGAGGGAGCGCTAGCGCCTCCTCCGAGGACG (SEQ ID NO: 58).
NHEI-PTDH-F:
ATTTAACGCTAGCATGCTGCCGAAACTCGTTATAACTC (SEQ ID NO: 59).
XHOI-PTDH12X-R:
AGTTTAGCTCGAGGTCTGCGGCAGGATTGG (SEQ ID NO: 60).
NHEI-LACZ-F:
ATTTCAATGCTAGCATGACCATGATTACGGATTCACT (SEQ ID NO: 61).
XHOI-LACZ-R:
TGATAATCTCGAGTTTTTGACACCAGACCAACTG (SEQ ID NO: 62).
NHEI-CAT-F:
GTTTCAATGCTAGCATGGAGAAAAAAATCACTGGATATACCACCGTTGATATAT (SEQ ID NO: 63).
XHOI-CAT-R:
TAATAATTAACTCGAGCGCCCCGCCCTGCCAC (SEQ ID NO: 64).
NHEI-MBP-F:
GTTTCAATGCTAGCATGAAAATCGAAGAAGGTAAACTGGTAATCT (SEQ ID NO: 65).
XHOI-MBP-R:
AAGTTATACTCGAGTCCCCTTCCCTCGATCC (SEQ ID NO: 66).
Claims (58)
インテインC断片のC末端に融合したPOIを含む第1の融合タンパク質と、インテインN断片及び精製タグを含む第2の融合タンパク質とを接触させて、前記第1の融合タンパク質と、前記第2の融合タンパク質との複合体を形成するステップと、
前記インテインC断片から前記POIを切断するステップであって、前記タンパク質を前記複合体から遊離させるステップと、
前記POIを単離するステップと
を含む、前記方法。 A method for purifying a desired protein (POI) comprising:
A first fusion protein containing POI fused to the C-terminus of an intein C fragment is contacted with a second fusion protein containing an intein N fragment and a purification tag, and the first fusion protein and the second Forming a complex with the fusion protein;
Cleaving the POI from the intein C fragment, releasing the protein from the complex;
Isolating said POI.
方法が
複合体を沈降させるステップと、
前記複合体を洗浄するステップと、
前記複合体を可溶化するステップと、
インテイン切断を誘導するステップと
をさらに含む、請求項1に記載の方法。 The purification tag is a sedimentation tag, and the method precipitates the complex;
Washing the complex;
Solubilizing the complex;
The method of claim 1, further comprising inducing intein cleavage.
方法が
複合体を前記親和性タグに結合することができる親和性樹脂に結合させるステップと、
切断ステップの前に前記複合体を洗浄緩衝液で洗浄するステップと、
インテイン切断を誘導するステップと
をさらに含む、請求項1に記載の方法。 The purification tag is an affinity tag, and the method binds the complex to an affinity resin capable of binding to the affinity tag;
Washing the complex with a washing buffer before the cutting step;
The method of claim 1, further comprising inducing intein cleavage.
方法が、複合体を親和性樹脂に結合させるステップをさらに含み、前記複合体からのPOIの分離が、前記複合体が結合した前記親和性樹脂からPOIを分離することを含む、請求項1に記載の方法。 The purification tag is an affinity tag, and the method further comprises the step of binding the complex to an affinity resin, wherein the separation of the POI from the complex comprises the POI from the affinity resin to which the complex is bound. The method of claim 1, comprising separating.
方法が
複合体を沈降させるステップであって、沈降した複合体を形成し、
前記複合体からのPOIの分離が前記沈降した複合体の可溶化を含み、可溶化した複合体を形成するステップと、
前記可溶化した複合体から前記POIを分離するステップと
をさらに含む、請求項1に記載の方法。 The purification tag is a sedimentation tag, and the method is a step of sedimenting the complex to form a sedimented complex,
Separating the POI from the complex comprises solubilizing the precipitated complex to form a solubilized complex;
2. The method of claim 1, further comprising separating the POI from the solubilized complex.
方法が
C末端タンパク質切断を誘導する前に複合体を親和性樹脂に結合させるステップと、
第2の融合タンパク質からインテインC断片を解離することによって前記親和性樹脂を再生するステップと
をさらに含む、請求項1に記載の方法。 Binding the complex to an affinity resin before the purification tag is an affinity tag and the method induces C-terminal protein cleavage;
The method of claim 1, further comprising regenerating the affinity resin by dissociating an intein C fragment from a second fusion protein.
前記POI及びインテインC断片を含む第1の融合タンパク質を提供するステップであって、前記POIが前記インテインC断片のC末端に融合し、前記インテインが天然にスプリットしたインテインDnaEであり、前記インテインC断片が前記インテインC断片内にAsp118Gly変異を有するステップと、
インテインN断片及び精製タグを含む第2の融合タンパク質を提供するステップであって、前記精製タグを前記インテインN断片のC末端にあるインテインスプリット接合部に挿入し、前記インテインN断片がN末端切断活性を消失させる変異を有するステップと、
結合緩衝液中で前記第1の融合タンパク質と、前記第2の融合タンパク質とを接触させるステップであって、前記第2の融合タンパク質が前記精製タグに結合する樹脂に付着し、前記精製タグが精製樹脂に特異的に結合することができ、前記第1の融合タンパク質と、前記第2の融合タンパク質との複合体が形成され、前記結合緩衝液が、前記POIと前記インテインC断片との間の前記第1の融合タンパク質のC末端タンパク質切断を阻害するステップと、
前記POIと前記インテインC断片との間の前記第1の融合タンパク質のC末端タンパク質切断を誘導し、それによって前記POIを遊離させるステップと、
前記第1の融合タンパク質及び前記インテインC断片のC末端から前記POIを分離するステップと
を含む、前記方法。 A method for purifying a desired protein (POI) comprising:
Providing a first fusion protein comprising the POI and an intein C fragment, wherein the POI is fused to the C-terminus of the intein C fragment, and the intein is a naturally split intein DnaE, the intein C A fragment has an Asp118Gly mutation in said intein C fragment;
Providing a second fusion protein comprising an intein N fragment and a purification tag, wherein the purification tag is inserted into an intein split junction at the C-terminus of the intein N fragment, wherein the intein N fragment is N-terminally cleaved Having a mutation that abolishes activity;
Contacting the first fusion protein with the second fusion protein in a binding buffer, wherein the second fusion protein is attached to a resin that binds to the purification tag; Can bind specifically to a purified resin, a complex of the first fusion protein and the second fusion protein is formed, and the binding buffer is between the POI and the intein C fragment. Inhibiting the C-terminal protein cleavage of the first fusion protein of
Inducing C-terminal protein cleavage of the first fusion protein between the POI and the intein C fragment, thereby releasing the POI;
Separating the POI from the C-terminus of the first fusion protein and the intein C fragment.
POI及びインテインC断片を含む第1の融合タンパク質を提供するステップであって、前記POIが前記インテインC断片のC末端に融合し、インテインが天然にスプリットしたインテインDnaEであり、前記インテインC断片が前記インテインC断片内にAsp118Gly変異を有するステップと、
インテインN断片及び沈降タグを含む第2の融合タンパク質を提供するステップであって、前記沈降タグをインテインN断片のC末端であるインテインスプリット接合部に挿入し、前記インテインN断片がN末端切断活性を消失させる変異を有するステップと、
結合緩衝液中で前記第1の融合タンパク質と、前記第2の融合タンパク質とを接触させるステップであって、前記第1の融合タンパク質と、前記第2の融合タンパク質との複合体が形成され、前記結合緩衝液が、前記POIと前記インテインC断片との間の第1の融合タンパク質のC末端タンパク質切断を阻害するステップと、
前記第1融合タンパク質と、前記第2融合タンパク質との複合体を沈降させるステップと、
低塩緩衝液中で前記複合体を可溶化するステップと、
前記POIと前記インテインC断片との間の前記第1融合タンパク質のC末端タンパク質切断を誘導し、それによって前記POIを遊離させるステップと、
前記第1の融合タンパク質と前記第2の融合タンパク質の前記複合体から2回目の沈降によって前記POIを分離するステップと
を含む、前記方法。 A method for purifying a desired protein (POI) comprising:
Providing a first fusion protein comprising a POI and an intein C fragment, wherein the POI is fused to the C-terminus of the intein C fragment and the intein is a naturally split intein DnaE, wherein the intein C fragment is Having an Asp118Gly mutation in the intein C fragment;
Providing a second fusion protein comprising an intein N fragment and a precipitation tag, wherein the precipitation tag is inserted into an intein split junction, which is the C-terminus of the intein N fragment, and the intein N fragment has N-terminal cleavage activity Having a mutation that eliminates
Contacting the first fusion protein and the second fusion protein in a binding buffer, wherein a complex of the first fusion protein and the second fusion protein is formed; The binding buffer inhibiting C-terminal protein cleavage of the first fusion protein between the POI and the intein C fragment;
Precipitating a complex of the first fusion protein and the second fusion protein;
Solubilizing the complex in a low salt buffer;
Inducing C-terminal protein cleavage of the first fusion protein between the POI and the intein C fragment, thereby releasing the POI;
Separating the POI from the complex of the first fusion protein and the second fusion protein by a second sedimentation.
前記インテインC断片が、変異していないインテインC断片と比較してN末端切断を抑制し、C末端切断を増加させる変異を有し、所望のタンパク質(POI)をコードする第2のDNAエレメントの前記インテインC断片の前記C末端への挿入を可能にするクローニング部位を有する前記ベクター。 A vector comprising a first DNA element encoding the C-terminus of an intein C fragment operably linked to a promoter comprising:
The intein C fragment has a mutation that suppresses N-terminal cleavage and increases C-terminal cleavage compared to an unmutated intein C fragment, and a second DNA element encoding a desired protein (POI) The vector having a cloning site that allows insertion of the intein C fragment into the C-terminus.
前記精製タグが、前記インテインN断片のC末端であるインテインスプリット接合部に位置し、前記インテインN断片が、N末端切断活性を消失させる変異を有する、前記ベクター。 A vector comprising a DNA element encoding a fusion protein comprising an intein N fragment operably linked to a promoter and a purification tag comprising:
The vector, wherein the purification tag is located at an intein split junction that is the C-terminus of the intein N fragment, and the intein N fragment has a mutation that eliminates N-terminal cleavage activity.
プロモーターに作動可能に結合したインテインC断片のC末端をコードする第1のDNAエレメントを含む第1のベクターであって、前記インテインC断片が変異していないインテインC断片と比較してN末端切断を抑制し、C末端切断を増加させる変異を有し、前記第1のベクターがPOIをコードする第2のDNAエレメントの前記インテインC断片のC末端への挿入を可能にするクローニング部位を有する第1のベクターと、
プロモーターに作動可能に結合したインテインN断片及び精製タグを含む融合タンパク質をコードする第2のDNAエレメントを含む第2のベクターであって、前記精製タグが、前記インテインN断片のC末端にあるインテインスプリット接合部に位置し、前記インテインN断片がN末端切断活性を消失させる変異を有する第2のベクター;又はインテインN断片及び前記インテインN断片のC末端にあるインテインスプリット接合部に位置する精製タグを含む融合タンパク質であって、前記インテインN断片が、N末端切断活性を消失させる変異を有する融合タンパク質と、
前記POIをコードするDNAエレメントを前記第1のベクターのクローニング部位に挿入するための指示書と、
前記POIを単離するための指示書と
を含む、前記キット。 A kit for isolating a desired protein (POI) comprising:
A first vector comprising a first DNA element encoding the C-terminus of an intein C fragment operably linked to a promoter, wherein the intein C fragment is N-terminally cleaved compared to an unmutated intein C fragment The first vector has a cloning site that has a mutation that reduces C-terminal cleavage and increases C-terminal truncation, and wherein the first vector allows insertion of a second DNA element encoding POI into the C-terminus of the intein C fragment. 1 vector,
A second vector comprising a second DNA element encoding a fusion protein comprising an intein N fragment operably linked to a promoter and a purification tag, wherein the purification tag is at the C-terminus of the intein N fragment A second vector having a mutation located at the split junction, wherein the intein N fragment has a mutation that eliminates N-terminal cleavage activity; or an intein N fragment and a purification tag located at the intein split junction at the C-terminus of the intein N fragment Wherein the intein N fragment has a mutation that eliminates N-terminal cleavage activity; and
Instructions for inserting the DNA element encoding the POI into the cloning site of the first vector;
The kit comprising instructions for isolating the POI.
インテインC断片のC末端に融合した前記POIを含む第1の融合タンパク質と、インテインN断片及び精製タグを含む第2の融合タンパク質とを接触させて前記第1の融合タンパク質と前記第2の融合タンパク質との複合体を形成するステップであって、前記インテインC断片が変異していないインテインC断片と比較してN末端切断を著しく遅らせ、トランススプライシング能力を抑制し、C末端切断速度及び効率を増加させる変異を有するステップと、
前記インテインC断片から前記POIを切断するステップであって、前記タンパク質を複合体から遊離させるステップと、
前記POIを単離するステップと
を含む、前記方法。 A method for purifying a desired protein (POI) comprising:
A first fusion protein containing the POI fused to the C-terminus of an intein C fragment is contacted with a second fusion protein containing an intein N fragment and a purification tag, so that the first fusion protein and the second fusion A step of forming a complex with a protein, wherein the intein C fragment significantly delays N-terminal cleavage as compared to an intein C fragment that is not mutated, suppresses trans-splicing ability, and reduces C-terminal cleavage rate and efficiency. Having a mutation that increases; and
Cleaving the POI from the intein C fragment, releasing the protein from the complex;
Isolating said POI.
前記POI及びインテインC断片を含む第1の融合タンパク質を提供するステップであって、前記POIが、前記インテインC断片のC末端に融合し、インテインが天然にスプリットしたインテインDnaEであり、前記インテインC断片は前記インテインC断片内にAsp118Gly変異を有するステップと、
インテインN断片及び精製タグを含む第2の融合タンパク質を提供するステップであって、前記インテインN断片が、N末端切断活性を消失させる変異を有するステップと、
結合緩衝液中で前記第1の融合タンパク質と、前記第2の融合タンパク質とを接触させるステップであって、前記第2の融合タンパク質が精製タグに結合する樹脂に付着し、前記精製タグが、精製樹脂に特異的に結合することができ、前記第1の融合タンパク質と、前記第2の融合タンパク質との複合体が形成され、前記結合緩衝液が、前記POIと前記インテインC断片との間の前記第1の融合タンパク質のC末端タンパク質切断を阻害するステップと、
前記POIと前記インテインC断片との間の前記第1の融合タンパク質のC末端タンパク質切断を誘導し、それによって前記POIを遊離させるステップと、
前記第1の融合タンパク質及び前記インテインC断片のC末端から前記POIを分離するステップと
を含む、前記方法。 A method for purifying a desired protein (POI) comprising:
Providing a first fusion protein comprising said POI and intein C fragment, wherein said POI is intein DnaE fused to the C-terminus of said intein C fragment and intein is split naturally, said intein C The fragment has an Asp118Gly mutation in said intein C fragment;
Providing a second fusion protein comprising an intein N fragment and a purification tag, wherein the intein N fragment has a mutation that eliminates N-terminal cleavage activity;
Contacting the first fusion protein and the second fusion protein in a binding buffer, wherein the second fusion protein is attached to a resin that binds to a purification tag, and the purification tag comprises: Can bind specifically to a purified resin, a complex of the first fusion protein and the second fusion protein is formed, and the binding buffer is between the POI and the intein C fragment. Inhibiting the C-terminal protein cleavage of the first fusion protein of
Inducing C-terminal protein cleavage of the first fusion protein between the POI and the intein C fragment, thereby releasing the POI;
Separating the POI from the C-terminus of the first fusion protein and the intein C fragment.
プロモーターに作動可能に結合したインテインC断片のC末端をコードする第1のDNAエレメントを含む第1のベクターであって、前記インテインC断片が前記インテインC断片内にAsp118Gly変異を有し、前記第1のベクターがPOIをコードする第2のDNAエレメントの前記インテインC断片のC末端への挿入を可能にするクローニング部位を有する第1のベクターと、
プロモーターに作動可能に結合したインテインN断片及び精製タグを含む融合タンパク質をコードする第2のDNAエレメントを含む第2のベクター;又はインテインN断片及び精製タグを含む融合タンパク質と、
前記POIをコードするDNAエレメントを前記第1のベクターのクローニング部位に挿入するための指示書と、
前記POIを単離するための指示書と
を含む、前記キット。 A kit for isolating a desired protein (POI) comprising:
A first vector comprising a first DNA element encoding the C-terminus of an intein C fragment operably linked to a promoter, wherein the intein C fragment has an Asp118Gly mutation in the intein C fragment; A first vector having a cloning site that allows insertion of a second DNA element encoding a POI into the C-terminus of said intein C fragment;
A second vector comprising a second DNA element encoding a fusion protein comprising an intein N fragment and a purification tag operably linked to a promoter; or a fusion protein comprising an intein N fragment and a purification tag;
Instructions for inserting the DNA element encoding the POI into the cloning site of the first vector;
The kit comprising instructions for isolating the POI.
インテインC断片のC末端に融合した前記POIを含む第1の融合タンパク質と、インテインN断片及び精製タグを含む第2の融合タンパク質とを接触させて、前記第1の融合タンパク質と、前記第2の融合タンパク質との複合体を形成するステップであって、前記精製タグが、前記インテインN断片のC末端であるインテインスプリット接合部に位置するステップと、
前記インテインC断片から前記POIを切断するステップであって、前記タンパク質を前記複合体から遊離させるステップと、
前記POIを単離するステップと
を含む、前記方法。 A method for purifying a desired protein (POI) comprising:
A first fusion protein containing the POI fused to the C-terminus of an intein C fragment is contacted with a second fusion protein containing an intein N fragment and a purification tag, and the first fusion protein and the second Forming a complex with the fusion protein of wherein the purification tag is located at the intein split junction which is the C-terminus of the intein N fragment;
Cleaving the POI from the intein C fragment, releasing the protein from the complex;
Isolating said POI.
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KR20160118184A (en) * | 2016-09-29 | 2016-10-11 | 한국외국어대학교 연구산학협력단 | Method for producing antimicrobial peptide using intein |
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KR102105352B1 (en) * | 2014-11-03 | 2020-04-29 | 메르크 파텐트 게엠베하 | Soluble intein fusion proteins and methods for purifying biomolecules |
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Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2004535802A (en) * | 2001-05-18 | 2004-12-02 | ユニバーシティ オブ オタゴ | New inteins and their uses |
Family Cites Families (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP1642980A1 (en) | 1995-06-28 | 2006-04-05 | New England Biolabs, Inc. | Modified proteins and methods of their production |
CA2344764C (en) * | 1998-09-30 | 2011-11-29 | New England Biolabs, Inc. | Intein mediated peptide ligation |
DE60040524D1 (en) * | 1999-02-12 | 2008-11-27 | New England Biolabs Inc | INTEIN-MEDIATED LIGATION OF EXPRESSED PROTEINS |
US20060141570A1 (en) | 2004-11-16 | 2006-06-29 | Wood David W | Intein-mediated protein purification using in vivo expression of an aggregator protein |
EP2665744B1 (en) * | 2011-01-20 | 2015-04-08 | University Of Rochester | Macrocyclic compounds with a hybrid peptidic/non-peptidic backbone and methods for their preparation |
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Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2004535802A (en) * | 2001-05-18 | 2004-12-02 | ユニバーシティ オブ オタゴ | New inteins and their uses |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
BIOCHEMISTRY, 2003, VOL.42, PP.5301-5311, JPN6017050902, ISSN: 0003927779 * |
PROTEIN ENGINEERING, DESIGN & SELECTION, PUBLISHED ONLINE DECEMBER 4, 2012, VOL.26, NO.3, PP.215-223, JPN6017050901, ISSN: 0003927778 * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR20160118184A (en) * | 2016-09-29 | 2016-10-11 | 한국외국어대학교 연구산학협력단 | Method for producing antimicrobial peptide using intein |
KR101690186B1 (en) | 2016-09-29 | 2016-12-28 | 한국외국어대학교 연구산학협력단 | Method for producing antimicrobial peptide using intein |
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