JP2016179973A

JP2016179973A - 化合物またはその塩および医薬組成物

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Publication number: JP2016179973A
Application number: JP2016059197A
Authority: JP
Inventors: 和広森下; Kazuhiro Morishita; 加珠子兼田; Kazuko Kaneda; 祐介齋藤; Yusuke Saito; 浩喜永瀬; Hiroki Nagase
Original assignee: University of Miyazaki NUC
Current assignee: University of Miyazaki NUC
Priority date: 2015-03-23
Filing date: 2016-03-23
Publication date: 2016-10-13
Anticipated expiration: 2036-03-23
Also published as: JP6710354B2

Abstract

【課題】少ない副作用で高い効果が得られる化合物またはその塩および医薬組成物を提供する。【解決手段】Ｎ−メチルピロールとＮ−メチルイミダゾールが連なったピロール−イミダゾールポリアミド（ＰＩポリアミド）であるＧＰＲ５６−１もしくはＧＰＲ５６−２、またはこれらの塩を有効成分として含む医薬組成物。当該医薬組成物はＧＰＲ５６発現抑制剤として使用できる。また当該医薬組成物は白血病の治療または予防に使用できる。【選択図】図１３

Description

本発明は、化合物またはその塩および医薬組成物に関する。

骨髄性白血病には、一定の割合で難治性の患者が存在する。難治性の骨髄性白血病に対する様々な治療方法が開発されつつあるが、実用化に至った治療方法は少ない。骨髄性白血病の治療方法を実用化するには、骨髄性白血病の本態と考えられる白血病幹細胞を標的とする治療方法を開発する必要がある。

ゲノムプロジェクトによってヒトの遺伝子のほとんどが同定された現在、白血病幹細胞に関する標的分子の探索が進められている。骨髄性白血病を含む多くの疾患は、生体の恒常性を維持するための生体分子間の相互作用によるシグナル伝達機構の破綻と関係している。したがって、骨髄性白血病に関与するシグナル伝達機構の要となる分子が標的分子となりうる。

例えば、転写因子ＥＶＩ１（ＥｃｏｔｒｏｐｉｃＶｉｒａｌＩｎｔｅｇｒａｔｉｏｎｓｉｔｅ−１）は、難治性の白血病患者において高発現していることから、白血病を発症する原因の１つとして考えられている。さらに、ＥＶＩ１の発現が高い白血病細胞の網羅的解析において、ＥＶＩ１によって制御されていて、かつ白血病細胞で高発現しているＧＰＲ５６（Ｇ−ｐｒｏｔｅｉｎｃｏｕｐｌｅｄｒｅｃｅｐｔｏｒ５６）が同定された（非特許文献１参照）。ＧＰＲ５６遺伝子の転写は、ＥＶＩ１がＧＰＲ５６遺伝子のプロモータ領域に結合することで活性化される（非特許文献２参照）。ＧＰＲ５６は、特許文献１に開示されるように癌治療のターゲット分子として知られている。

ＧＰＲ５６は、幹細胞性の維持に必要不可欠な分子である。ＧＰＲ５６は、難治性の急性骨髄性白血病における接着依存性抗がん剤耐性（ＣＡＭ−ＤＲ）に寄与している。ＧＰＲ５６の転写阻害によって、骨髄ｎｉｃｈｅから白血病幹細胞が追い出され、細胞増殖が抑制され、アポトーシスが誘導される（非特許文献２参照）。

国際公開第２０１２／１５７５８９号

ＳａｉｔｏＹｅｔａｌ．，ＣＤ５２ａｓａｍｏｌｅｃｕｌａｒｔａｒｇｅｔｆｏｒｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒａｐｙｔｏｔｒｅａｔａｃｕｔｅｍｙｅｌｏｉｄｌｅｕｋｅｍｉａｗｉｔｈｈｉｇｈＥＶＩ１ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ．，Ｌｅｕｋｅｍｉａ，２０１１，２５（６），９２１−９３１ＳａｉｔｏＹｅｔａｌ．，ＭａｉｎｔｅｎａｎｃｅｏｆｔｈｅｈｅｍａｔｏｐｏｉｅｔｉｃｓｔｅｍｃｅｌｌｐｏｏｌｉｎｂｏｎｅｍａｒｒｏｗｎｉｃｈｅｓｂｙＥＶＩ１−ｒｅｇｕｌａｔｅｄＧＰＲ５６．，Ｌｅｕｋｅｍｉａ，２０１３，２７（８），１６３７−１６４９

白血病幹細胞は、正常な造血幹細胞と同様のシグナル伝達機構を有している。このため、治療の標的分子としての可能性のある白血病幹細胞のシグナル伝達機構に関与する分子は、正常な造血幹細胞と共通することが多い。したがって、白血病幹細胞のシグナル伝達機構に関与する分子のみに対して選択的に働く治療薬の開発は、原理上、非常に困難である。

本発明は、上記実情に鑑みてなされたものであり、癌幹細胞のシグナル伝達機構に関与する分子のみに対して選択的に作用し、少ない副作用で高い効果が得られる化合物またはその塩および医薬組成物を提供することを目的とする。

本発明者は、ＥＶＩ１を介したＧＰＲ５６の転写を抑制することで、白血病幹細胞のシグナル伝達を選択的に遮断することができると考え、鋭意研究を重ねた。その結果、ＧＰＲ５６の転写を制御するプロモータ領域へのＥＶＩ１の結合を化合物で阻害して、ＧＰＲ５６の転写を抑制することで、造血系に影響なく、白血病に対する非常に高い薬効が得られることを見出した。

すなわち、本発明の第１の観点に係る化合物は、
式
もしくは
式
で表される。

本発明の第２の観点に係る塩は、
上記本発明の第１の観点に係る化合物の塩である。

本発明の第３の観点に係る医薬組成物は、
上記本発明の第１の観点に係る化合物または上記本発明の第２の観点に係る塩を有効成分として含む。

この場合、上記医薬組成物は、
ＧＰＲ５６発現抑制剤であってもよい。

また、上記医薬組成物は、
白血病の治療または予防に使用するためのものであってもよい。

本発明によれば、少ない副作用で高い効果が得られる。

プロモータアッセイの結果を示す図である。クロマチン免疫沈降アッセイの結果を示す図である。（ａ）は陰性コントロールであるＡＰ１−２の結果を示す図である。（ｂ）はＧＰＲ５６−１の結果を示す図である。フローサイトメトリーで評価したＧＰＲ５６−１によるＧＰＲ５６の発現抑制を示す図である。（ａ）および（ｂ）は、それぞれＡＰ１−２を添加した場合の結果およびＧＰＲ５６−１を添加した場合の結果を示す図である。ＲＴ−ＰＣＲで評価したＧＰＲ５６−１によるＧＰＲ５６の発現抑制を示す図である。ＧＰＲ５６−１を作用させた白血病細胞の経時変化を示す図である。（ａ）および（ｂ）は、それぞれＡＰ１−２を添加した場合の結果およびＧＰＲ５６−１を添加した場合の結果を示す図である。ＧＰＲ５６−１による白血病細胞のアポトーシスの誘導を示す図である。ＧＰＲ５６−１による白血病細胞のアポトーシス関連マーカーの発現を示す図である。ＧＰＲ５６−１およびＧＰＲ５６−２を作用させた白血病細胞の細胞数の経時変化を示す図である。（ａ）および（ｂ）は、それぞれＵＳＣＤ／ＡＭＬ１細胞およびＭＯＬＭ１細胞の結果を示す図である。皮下移植白血病モデルの腫瘍サイズの経時変化を示す図である。皮下移植白血病モデルの腫瘍重量を示す図である。皮下移植白血病モデルの外観を示す図である。（ａ）および（ｂ）は、それぞれＡＰ１−２を投与した場合およびＧＰＲ５６−１を投与した場合を示す図である。皮下移植白血病モデルの骨髄画分に対するフローサイトメトリーの結果を示す図である。全身白血病モデルの生存率を示す図である。フローサイトメトリーで評価した全身白血病モデルの各臓器および末梢血にける白血病細胞の割合を示す図である。（ａ）、（ｂ）、（ｃ）および（ｄ）は、それぞれ骨髄、脾臓、肝臓および末梢血の結果を示す図である。

本発明に係る実施の形態について添付の図面を参照して説明する。なお、本発明は下記の実施の形態および図面によって限定されるものではない。

（実施の形態１）
本実施の形態に係る化合物ＧＰＲ５６−１は、次の式で表される。

ＧＰＲ５６−１は、Ｎ−メチルピロールとＮ−メチルイミダゾールが連なったピロール−イミダゾールポリアミド（ＰＩポリアミド）である。ＧＰＲ５６−１は、上記式に基づいて、任意の方法で合成できる。好適には、ＧＰＲ５６−１は、１−［ビス（ジメチルアミノ）メチレン］−５−クロロ−１Ｈ−ベンゾトリアゾリウム３−オキシドヘキサフルオロフォスフェイト（ＨＣＴＵ）と各モノマーとの混合物を、ペプチド合成装置にセットしたチューブ内でβ−アラニン−ワングレジンと、上記式の順番に従って順次反応させることで得られる。

合成後は、ＨＰＬＣで精製し、目的のフラクションを回収してエバポレーターで濃縮してもよい。濃縮したＧＰＲ５６−１溶液を、凍結乾燥して、ＧＰＲ５６−１を粉末としてもよい。ペプチド合成装置としては、例えば、自動固相合成機ＰＳＳＭ−８（島津製作所製）が挙げられる。

ＧＰＲ５６−１は、ヒト１６番染色体にあるＧＰＲ５６遺伝子の転写制御領域の所定の塩基配列の部位に特異的に結合するように設計されている。ＧＰＲ５６遺伝子の転写制御領域には、ＥＶＩ１の８〜１０番目のｚｉｎｃフィンガー部位が結合する部位「Ｄ２Ｂ」がある。Ｄ２Ｂの塩基配列は、５’側から３’側に向かって「ＧＡＡＧＡＴ」である。ＧＰＲ５６−１は、Ｄ２Ｂを含む領域に結合する。ＧＰＲ５６−１が結合する領域の塩基配列は、５’側から３’側に向かって「ＡＣＧＧＡＡＧＡＴ」である。

ＧＰＲ５６−１がＤ２Ｂに結合することで、ＧＰＲ５６遺伝子の転写制御領域へのＥＶＩ１の結合が抑制される。このため、ＥＶＩ１を介したＧＰＲ５６遺伝子の転写が抑制される。つまり、ＧＰＲ５６−１は、ＧＰＲ５６の発現を抑制する。

ＧＰＲ５６−１は、各種実験に用いることができる。例えば、ＧＰＲ５６−１は、培養した細胞のＧＰＲ５６の発現抑制試験に使用することができる。この場合、適切な溶媒に溶解したＧＰＲ５６−１を細胞に暴露させ、当該細胞を所定時間培養すればよい。Ｄ２ＢへのＧＰＲ５６−１への結合は、培養後の細胞を用いたクロマチン免疫沈降などの方法で確認できる。ＧＰＲ５６のｍＲＮＡレベルでの発現抑制を確認するためには、ＰＣＲ（ＰｏｌｙｍｅｒａｓｅＣｈａｉｎＲｅａｃｔｉｏｎ）法などが用いられる。また、細胞表面におけるタンパク質としてのＧＰＲ５６の発現抑制を評価するには、培養後の細胞に対するフローサイトメトリー法などが好適である。

以上詳細に説明したように、本実施の形態に係るＧＰＲ５６−１は、ＧＰＲ５６の転写領域に特異的に結合するため、ＧＰＲ５６の発現を抑制できる。特に、ＧＰＲ５６−１は、白血病細胞で高い発現が見られるＥＶＩ１のＤ２Ｂへの結合を抑制するため、ＥＶＩ１を介したＧＰＲ５６の発現を特異的に抑制することができる。また、ＧＰＲ５６−１は、核酸医薬と違い核酸分解酵素に分解されないため、細胞や生体内で安定である。

なお、本実施の形態に係る化合物は、ＧＰＲ５６−１の塩であってもよい。塩は、特に限定されず、塩酸塩、硫酸塩、硝酸塩、酢酸塩、炭酸塩またはリン酸塩など、適宜選択される。

本実施の形態に係る化合物は、ＰＩポリアミドＧＰＲ５６−２またはその塩であってもよい。ＧＰＲ５６−２は次の式で表される。

ＧＰＲ５６−２は、ＧＰＲ−１と同様にＧＰＲ５６遺伝子の転写制御領域にあるＤ２Ｂに特異的に結合するように設計されている。ＧＰＲ５６−２が結合するＤ２Ｂを含む領域の塩基配列は、５’側から３’側に向かって「ＧＡＡＧＡＴＡＡＴ」である。ＧＰＲ５６−２がＤ２Ｂに結合することで、ＧＰＲ５６遺伝子の転写制御領域へのＥＶＩ１の結合が抑制される。このため、ＥＶＩ１を介したＧＰＲ５６遺伝子の転写が抑制される。つまり、ＧＰＲ５６−２は、ＧＰＲ５６の発現を抑制する。

ＧＰＲ５６−２は、ＧＰＲ５６−１と同種同等の性質を有し、本実施形態に係る化合物としてＧＰＲ５６−１と同様に用いることができる。

（実施の形態２）
本実施の形態に係る医薬組成物は、ＧＰＲ５６−１もしくはＧＰＲ５６−２またはその塩を有効成分として含む。上記実施の形態１に記載のように、ＧＰＲ５６−１およびＧＰＲ５６−２は、ＥＶＩ１を介したＧＰＲ５６の発現を抑制する。このため、当該医薬組成物は、ＧＰＲ５６発現抑制剤として使用できる。

当該医薬組成物は、ＧＰＲ５６が関連する疾患、より詳細には、ＧＰＲ５６の活性化に関連する疾患の治療または予防のために用いられる。好適には、当該疾患は、ＥＶＩ１を介したＧＰＲ５６の発現または活性化に関連する疾患である。当該疾患は、例えば、悪性黒色腫、卵巣がん、前立腺がん、大腸がん、子宮頸がん、すい臓がん、および非小細胞肺癌である。

好ましくは上記疾患の例として骨髄性白血病、特には急性骨髄性白血病、とりわけＥＶＩ１の発現を特徴とする急性骨髄性白血病が挙げられる。上述のように、難治性の白血病患者においてＥＶＩ１が高発現しており、ＥＶＩ１によって発現が制御されるＧＰＲ５６も白血病細胞で高発現している。一方で、ＧＰＲ５６の発現低下は、白血病細胞の細胞死を引き起こす（上記非特許文献２参照）。このため、ＥＶＩ１を介したＧＰＲ５６の発現を抑制することで、白血病細胞の増殖を抑制することができる。したがって、本実施の形態に係る医薬組成物は、白血病の治療または予防に使用するのが好ましい。特に、ＥＶＩ１は、難治性の急性骨髄性白血病患者で特徴的に高発現しているため、標準治療法による治療が困難なＥＶＩ１の発現を特徴とする急性骨髄性白血病の治療または予防に使用するのが特に好ましい。

疾患がＥＶＩ１の発現を特徴とする急性骨髄性白血病であるか否かは、急性骨髄性白血病患者から採取した検体試料におけるＥＶＩ１遺伝子の発現の有無により確認することができる。遺伝子発現は、公知の手法で確認できる。遺伝子発現は、限定されるものではないが、例えば急性骨髄性白血病患者から採取した検体試料より得られたｃＤＮＡをテンプレートとして、ＥＶＩ１遺伝子に特異的なプライマーセットを用いたＰＣＲ法によって確認することができる（国際公開第２０１０／０９８１６６号参照）。

本実施の形態に係る医薬組成物は、ＧＰＲ５６−１またはＧＰＲ５６−２を有効成分として含有するように既知の方法で製造される。当該医薬組成物は、有効成分として０．１〜９９％、１〜５０％、好ましくは１〜２０％（％は重量％）のＧＰＲ５６−１またはＧＰＲ５６−２を含む。

本実施の形態に係る医薬組成物の剤形は、注射剤および経口投与剤が好ましい。この他、当該医薬組成物の剤形は、直腸坐剤、膣坐剤、経鼻吸収剤、経皮吸収剤、経肺吸収剤、口腔内吸収剤などであってもよい。当該医薬組成物は、薬理的に許容される担体と配合された合剤であってもよい。薬理的に許容される担体は、各種の有機担体物質または無機担体物質である。薬理的に許容される担体は、例えば、固形製剤における賦形剤、滑沢剤、結合剤、崩壊剤、または液状製剤における溶剤、溶解補助剤、懸濁化剤、等張化剤、緩衝剤、無痛化剤などとして当該医薬組成物に配合される。また、必要に応じて、防腐剤、抗酸化剤、着色剤、甘味剤などの添加物を用いることもできる。

賦形剤は、例えば、乳糖、白糖、Ｄ−マンニトール、デンプン、結晶セルロース、軽質無水ケイ酸などである。滑沢剤は、例えば、ステアリン酸マグネシウム、ステアリン酸カルシウム、タルク、コロイドシリカなどである。結合剤は、例えば、結晶セルロース、白糖、Ｄ−マンニトール、デキストリン、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ポリビニルピロリドンなどである。崩壊剤は、例えば、デンプン、カルボキシメチルセルロース、カルボキシメチルセルロースカルシウム、クロスカルメロースナトリウム、カルボキシメチルスターチナトリウムなどである。

溶剤は、例えば、注射用水、アルコール、プロピレングリコール、マクロゴールなどである。溶解補助剤は、例えば、ポリエチレングリコール、プロピレングリコール、Ｄ−マンニトール、安息香酸ベンジル、エタノール、トリスアミノメタン、コレステロール、トリエタノールアミン、炭酸ナトリウム、クエン酸ナトリウムなどである。懸濁化剤は、界面活性剤、親水性高分子などであって、例えば、ステアリルトリエタノールアミン、ラウリル硫酸ナトリウム、ラウリルアミノプロピオン酸、レシチン、塩化ベンザルコニウム、塩化ベンゼトニウム、モノステアリン酸グリセリン、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、カルボキシメチルセルロースナトリウム、メチルセルロース、ヒドロキシメチルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロースなどである。

等張化剤は、例えば、塩化ナトリウム、グリセリン、Ｄ−マンニトールなどである。緩衝剤は、例えば、リン酸塩、酢酸塩、炭酸塩、クエン酸塩の緩衝液などである。無痛化剤は、例えば、ベンジルアルコールなどである。防腐剤は、例えば、パラオキシ安息香酸エステル類、クロロブタノール、ベンジルアルコール、フェネチルアルコール、デヒドロ酢酸、ソルビン酸などである。抗酸化剤は、例えば、亜硫酸塩、アスコルビン酸などである。

本実施の形態に係る医薬組成物の投与量は、患者の性別、年齢、体重、症状などによって適宜決定される。当該医薬組成物は、ＧＰＲ５６−１またはＧＰＲ５６−２が治療上有効量となるように投与される。有効量とは、所望の結果を得るために必要なＧＰＲ５６−１またはＧＰＲ５６−２の量であり、治療または処置する状態の進行の遅延、阻害、予防、逆転または治癒をもたらすのに必要な量である。当該医薬組成物の投与量は、典型的には、０．０１〜１０００ｍｇ／ｋｇ、好ましくは０．１〜２００ｍｇ／ｋｇ、より好ましくは０．２〜２０ｍｇ／ｋｇであり、１日に１回、またはそれ以上に分割して投与することができる。当該医薬組成物を分割して投与する場合、当該医薬組成物は、好ましくは１日に１〜４回投与される。また、当該医薬組成物は、毎日、隔日、１週間に１回、隔週、１ヶ月に１回などの様々な投与頻度で投与してもよい。好ましくは、投与頻度は、医師により容易に決定される。なお、必要に応じて、当該医薬組成物は、上記の範囲外の量で使用されてもよい。

本実施の形態に係る医薬組成物の投与方法は、特に限定されないが、注射、経鼻、経皮、経肺、経口などで投与できる。投与方法としては、静脈内投与、動脈内投与または経口投与が特に好ましい。

以上詳細に説明したように、本実施の形態に係る医薬組成物は、ＧＰＲ５６−１もしくはＧＰＲ５６−２またはその塩を有効成分として含むので、ＥＶＩ１を介するＧＰＲ５６の発現を選択的に抑制する。このため、少ない副作用で高い薬効が得られる。

また、本実施の形態に係る医薬組成物は、好ましくは、白血病の治療または予防に使用されることとした。ＥＶＩ１を介するＧＰＲ５６の発現は、白血病細胞のシグナル伝達機構に関するため、ＥＶＩ１を介するＧＰＲ５６の発現を抑制することで、下記実施例６に示すように、白血病細胞のアポトーシスが誘導される。これにより、当該医薬組成物は、白血病細胞の生存を阻害、あるいは白血病細胞の増殖を抑制することができる。このため、当該医薬組成物は、白血病の治療または予防に特に有効である。また、当該医薬組成物は、下記実施例５、９、１１に示すように、白血病に対して強力な薬効を示すため、病態の進行が早い急性骨髄性白血病の治療にも有効である。

なお、本実施の形態に係る医薬組成物が有効成分として含むＧＰＲ５６−１およびＧＰＲ５６−２は、ＥＶＩ１を介したＧＰＲ５６の発現を選択的に抑制し、ＥＶＩ１が介在しないＧＰＲ５６の発現にはほとんど影響しない。下記実施例９〜１２に示すように、当該医薬組成物を、マウスに長期間（１〜３ヶ月）投与しても、副作用が見られず、特に造血系への影響もなかった。このため、当該当該医薬組成物は安全性が高く、長期間の投与も可能である。

また、ＧＰＲ５６は、幹細胞性の維持に必要不可欠な分子であるため、本実施の形態に係る医薬組成物は、白血病幹細胞の機能を傷害し、白血病を根治するための白血病治療薬として使用できる。

また、本実施の形態に係る医薬組成物が有効成分として含むＧＰＲ５６−１またはＧＰＲ５６−２は、ベクターや薬剤輸送システムを利用せずに細胞の核内に取り込まれる。このため、製造コストを増大させることなく、好ましい薬物動態プロファイルが得られる。

なお、本実施の形態に係る医薬組成物は、ＧＰＲ５６の活性化が関与する疾患であれば、任意の疾患の治療または予防に使用できる。例えば、白血病以外のＧＰＲ５６の活性化が関与する癌の治療または予防にも使用することができる。

以下の実施例により、本発明をさらに具体的に説明するが、本発明は実施例によって限定されるものではない。

（実施例１：ＧＰＲ５６−１の合成）
ＧＰＲ５６のプロモータ領域におけるＥＶＩ１が結合する部位（Ｄ２Ｂ）を含む領域の塩基配列ＡＣＧＧＡＡＧＡＴを認識してＤＮＡに結合するＰＩポリアミドとして、ＧＰＲ５６−１（Ｄｐ−β−ＩｍＰｙ−β−Ｉｍ−ＩｍＰｙ−γ−ＩｍＰｙ−Ｐｙ−β−Ｐｙ−Ｐｙ−Ａｃ、化学式Ｃ_７６Ｈ_９５Ｎ_３０Ｏ_１５＋、分子量１６６７．７６）を以下のように合成した。なお、ここでは、Ａｃはアセチルを、Ｐｙはピロールを、Ｉｍはイミダゾールを、βはβ−アラニンを、γはγ−酪酸を、ＤｐはＮ，Ｎ−ジメチル−１，３−プロパンジアミンを、意味する。

自動固相合成機ＰＳＳＭ−８（島津製作所製）に、固相樹脂である０．０１ｍｍｏｌのβ−アラニン−ワングレジンを９．８ｍｇ加えたＬｉｂｒａＴｕｂｅ（商標）をセットした。１０本の２．０ｍＬ丸底エッペンドルフチューブそれぞれに、０．１ｍｍｏｌのＨＣＴＵを４１．４ｍｇ加えた。ＨＣＴＵを加えた丸底エッペンドルフチューブの内の３本各々に、０．１ｍｍｏｌの４−（Ｆｍｏｃ−アミノ）−１−メチル−１Ｈ−ピロール−２−カルボン酸（Ｆｍｏｃ−Ｐｙ）を３６．２ｍｇ、１本に０．１ｍｍｏｌの４−（Ｆｍｏｃ−アミノ）−１−メチル−１Ｈ−イミダゾール−２−カルボン酸（Ｆｍｏｃ−Ｉｍ）を３６．３ｍｇ、３本各々に０．１ｍｍｏｌのＦｍｏｃ−ＩｍＰｙ−ＣＯＯＨを４３．５ｍｇ、２本各々に０．１ｍｍｏｌのＮ−β−Ｆｍｏｃ−β−アラニンを３１．４ｍｇ、１本に０．１ｍｍｏｌのＮ−Ｆｍｏｃ−γ−アミノ酪酸を３２．５ｍｇ加えた。次に、全試料に対して減圧乾燥を行った。

試料を充分に乾燥させてから、Ｌｉｂｒａｔｕｂｅ（商標）に１ｍＬのＮＭＰ（Ｎ−メチル−２−ピロリドン）を加え、１時間膨潤させた後にＮＭＰを溜去した。次に０．７ｍＬの３０％ピペリジン／ＮＭＰ溶液を加えて樹脂上のＦｍｏｃの脱保護を行った。脱保護の後、レジンをＮＭＰ（０．９ｍＬ）で５回繰り返し洗浄した。次に、最初の縮合反応として、上記で調整したＦｍｏｃ―ＩｍＰｙ−ＣＯＯＨとＨＣＴＵの混合物をＬｉｂｒａＴｕｂｅ（商標）に加え、０．３ｍＬのＮＭＰ、塩基として４０μＬのＤＩＥＡを加えて混合物を溶解し、１時間撹拌して反応させた。１時間経過後、反応液を除去し、０．９ｍＬのＮＭＰで５回洗浄後、０．７ｍＬの無水酢酸を加えて１０分間反応させて未反応のアミノ末端をアセチル基で保護し、それ以上の伸長反応が起こらないようにした。反応後、０．９ｍＬのＮＭＰで５回洗浄し、その後、０．７ｍＬの３０％ピペリジン／ＮＭＰ溶液でＦｍｏｃの脱保護を行った。

以後、ＧＰＲ５６−１の構成（レジン−ＩｍＰｙ−β−Ｉｍ−ＩｍＰｙ−γ−ＩｍＰｙ−Ｐｙ−β−Ｐｙ−Ｐｙ）に従って同様の工程を繰り返した。この繰り返し反応は、プログラミングによって、ＰＳＳＭ−８で行った。最後のＰｙの縮合が終了後、０．７ｍＬの３０％ピペリジン／ＮＭＰ溶液でＦｍｏｃの脱保護を行い、０．９ｍＬのＮＭＰで５回洗浄した。最後に０．７ｍＬの無水酢酸を加えて１０分間反応させ、Ｎ末端のアミノ基をアセチル基でキャッピングした。キャッピング後、１．０ｍＬのメタノールで３回樹脂を洗浄し、真空ポンプを用いて乾燥させた後に樹脂をスクリューキャップ付きの１．５ｍＬエッペンドルフチューブに移した。さらに、０．５ｍＬのＮ，Ｎ−ジメチル−１，３−プロパンジアミン（Ｄｐ）を加えて、６５℃で８時間撹拌し、樹脂上から目的化合物を切り出した。

反応液を回収後、ＨＰＬＣで精製し（流速１０ｍＬ／分、０．１％ＡｃＯＨ／Ｈ_２Ｏ−ＣＨ_３ＣＮ、０−１００％、２０分、線形勾配、波長３１０ｎｍ）、目的のフラクションを回収してエバポレーターで濃縮した。ＨＰＬＣで濃縮物の純度検定を行い、四重極ＬＣＭＳで質量分析を行った（［Ｍ＋１］^＋＝１６６８．９５）。最後に凍結乾燥機を用いて粉末にすることで、ＧＰＲ５６−１を白色の粉末として得た。

ＧＰＲ５６のプロモータ領域におけるＥＶＩ１が結合する部位（Ｄ２Ｂ）を含む領域の塩基配列ＧＡＡＧＡＴＡＡＴを認識してＤＮＡに結合するＰＩポリアミドとして、ＧＰＲ５６−２（Ｄｐ−β−Ｐｙ−Ｐｙ−β−Ｐｙ−Ｐｙ−Ｐｙ−γ−Ｐｙ−Ｐｙ−Ｐｙ−β−ＩｍＰｙ−Ａｃ、化学式Ｃ_７９Ｈ_９８Ｎ_２７Ｏ_１５＋、分子量１６６５．７９４８）を、ＧＰＲ５６−１と同様に合成した。

以下、陰性コントロールとして用いるＡＰ１−２は、ＴＧＦ−β遺伝子のＡＰ１サイトに結合するポリアミドである。ＡＰ１−２が認識する塩基配列は、５’側から３’側に向かって「ＷＧＴＣＷＧＣＷ」（Ｗは「Ａ」または「Ｔ」のいずれか）である。

ＡＰ１−２は、次の式で示される。ＡＰ１−２は、下記式に従ってＧＰＲ５６−１と同様に合成した。

（実施例２：プロモータアッセイによる転写調節の確認）
ＥＶＩ１を発現するプラスミドは、ｐＣＭＶ２６ベクター（シグマアルドリッチ社製）に、ＥＶＩ１遺伝子の全長をサブクローニングすることで作製した。ＧＰＲ５６遺伝子の転写調節を評価するために、ＧＰＲ５６遺伝子のプロモータ領域としてＧＰＲ５６遺伝子の転写開始点から上流約３０００塩基対の領域を、ｐＧＬ４．１０Ｌｕｃ２ベクター（プロメガ社製）に組み込んだ。組み換え実験で用いたコンピテントセルはＤＨ５α株である。組み換えＤＨ５α株の培養に使用したＬＢ培地の組成は、１％バクトトリプトン（ベクトン・ディッキンソンアンドカンパニー（ＢＤ）社製）、０．５％酵母エキス（ＢＤ社製）、ｐＨ７．４の０．５％塩化ナトリウム（ナカライテスク社製）である。また、ＬＢプレートは、アガロース（ＢＤ社製）を使用して作成した。

内在のＥＶＩ１の影響を除くため、ＥＶＩ１遺伝子の発現が低い２９３Ｔ細胞（独立行政法人理化学研究所の細胞バンクから取得）に、上述のＥＶＩ１を発現するプラスミド、上記ＧＰＲ５６遺伝子のプロモータ領域を組み込んだプラスミド、およびバックグラウンドを測定するためのｐＴＫ−Ｌｕｃプラスミドを同時に導入した。導入後、ＧＰＲ５６−１を、０．１、０．３、１または１０μＭの濃度で添加した。添加から４８時間経過後、ルシフェラーゼの活性を測定した。なお、ルシフェラーゼの活性は、ＤｕａｌＬｕｃｉｆｅｒａｓｅＲｅｐｏｒｔｅｒＡｓｓａｙＳｙｓｔｅｍ（プロメガ社製）およびＬｕｍａｔ９５０７（ベルトールドジャパン社製）を使用して測定した。なお、２９３Ｔ細胞は、１０％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）（ニチレイ社製）が添加されたＤＭＥＭ（０４４−２９７６５；和光純薬工業社製）で培養した。

（結果）
図１は、ルシフェラーゼの相対的な活性を示す。ルシフェラーゼの活性は、組み込んだプロモータ領域の転写活性に相当する。ＧＰＲ５６−１を添加しないＤ２Ｂ／ＷＴで見られた転写活性は、ＧＰＲ５６−１を添加することで、ほとんど消失した。

（実施例３：ＣｈＩＰアッセイによる結合抑制能の評価）
ＧＰＲ５６−１によるＧＰＲ５６遺伝子のプロモータ領域へのＥＶＩ１の結合抑制能を評価するために、クロマチン免疫沈降（Ｃｈｒｏｍａｔｉｎｉｍｍｕｎｏｐｒｅｃｉｐｉｔａｔｉｏｎ；ＣｈＩＰ）アッセイを実施した。２９３Ｔ細胞に、ＥＶＩ１を発現するプラスミド（ＥＶＩ１ＷＴ）または８〜１０番目のｚｉｎｃｆｉｎｇｅｒ部位を欠くＥＶＩ１を組み込んだプラスミド（ＥＶＩ１Δ８−１０）、および上記ＧＰＲ５６遺伝子のプロモータ領域を組み込んだプラスミドを導入した。導入後、ＡＰ１−２あるいはＧＰＲ５６−１を、０．１、１、１０μＭの濃度で添加した。添加から４８時間経過後、細胞を回収してＰＢＳ（−）で洗浄した。ＣｈＩＰＬｙｓｉｓバッファーで細胞を溶解し、ＦＬＡＧＭ２抗体（シグマアルドリッチ社製）とＤｙｎａＢｅａｄｓ（ベリタス社製）用いて免疫沈降を行った。

常法に従い、ＣｈＩＰＤＮＡを抽出した。抽出したＣｈＩＰＤＮＡに対してＰＣＲを行い、プロモータ領域との結合を評価した。ＰＣＲには、ＥｘＴａｑ（タカラバイオ社製）およびサーマルサイクラー（ＡＢＩ２７２０）を用いた。ＰＣＲに用いたプライマーの塩基配列を以下に示す。
ＧＰＲ５６ＣｈＩＰＦｗ：３’−ＧＣＡＡＧＡＣＡＧＧＴＧＡＧＡＣＡＧＣＡ−５’（配列番号１）
ＧＰＲ５６ＣｈＩＰＲｖ：３’−ＣＴＧＡＧＡＡＧＣＣＴＴＣＣＡＴＧＡＣＣ−５’（配列番号２）

（結果）
図２に示すように、ＥＶＩ１ＷＴでは、ＧＰＲ５６遺伝子のプロモータ領域へのＥＶＩ１の結合が確認された。一方、ＥＶＩ１Δ８−１０では、ＥＶＩ１がｚｉｎｃｆｉｎｇｅｒ部位を欠くため、ＧＰＲ５６遺伝子のプロモータ領域に結合しないことが示された。ＡＰ１−２を添加した場合、ＧＰＲ５６遺伝子のプロモータ領域へのＥＶＩ１の結合が維持されているが（図２（ａ）参照）、ＧＰＲ５６−１では、濃度依存的にバンドが消失した（図２（ｂ）参照）。

このため、ＧＰＲ５６−１がＧＰＲ５６遺伝子のプロモータ領域へのＥＶＩ１の結合を抑制することが示された。なお、ＩｇＧにバンドが現れなかったので、当該実験では、非特異的な抗体の結合ではなく、ＧＰＲ５６遺伝子のプロモータ領域へのＥＶＩ１の結合を評価していることが確認できた。

（実施例４：ＧＰＲ６５の発現抑制の評価）
ＧＰＲ５６の発現量が高い難治性白血病細胞株であるＵＣＳＤ／ＡＭＬ１細胞（カリフォルニア大学サンディエゴ校より提供）を用いて、ＧＰＲ５６−１がＧＰＲ５６の発現を抑制することを確認した。

ＵＳＣＤ／ＡＭＬ１細胞は、１０％ＦＢＳ（０４−００１−１Ａ、ＢｉｏｌｏｇｉｃａｌＩｎｄｕｓｔｒｉｅｓ社製）および１０ｎｇ／ｍＬのｈｒＧＭ−ＣＳＦ（０７７−０４１１３、和光純薬工業社製）を添加したＲＰＭＩ１６４０（１８９−０２０２５、和光純薬工業社製）で、常法に従って培養した。培養したＵＳＣＤ／ＡＭＬ１細胞を、１μＭまたは３μＭのＧＰＲ５６−１で３日間処理した後、細胞表面におけるＧＰＲ５６の発現を、ＧＰＲ５６に対する抗体（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製）を用いてフローサイトメトリーで評価した。検出装置として、ＦＡＣＳＣａｌｉｂｕｒ（ＢＤ社製）を用いた。染色手順は常法に従い、洗浄および懸濁にはＭＡＣＳ（商標）Ｂｕｆｆｅｒ（２ｍＭＥＤＴＡ、０．５％ＢＳＡを含むＰＢＳ（−））を使用した。なお、ＭＡＣＳＢｕｆｆｅｒは、超純水に１０ＸＰＢＳと０．５ＭＥＤＴＡ（ｐＨ８．０）を混合し、ｐＨ７．２に調製したものをオートクレーブで滅菌し、無菌的に１０％ＢＳＡを加えて混合することで調製した。調製後は、脱気し、冷却保存しておいた。

また、ｍＲＮＡレベルでのＧＰＲ５６の発現を、ＲＴ−ＰＣＲで確認した。遺伝子の増幅には、ＥｘＴａｑ（タカラバイオ社製）およびサーマルサイクラー（ＡＢＩ２７２０）を用いた。ＲＴ−ＰＣＲで使用したＧＰＲ５６に対するプライマーの塩基配列を次に示す。
ｈＧＰＲ５６ＲＴＦｗ：５’−ＴＴＧＡＴＣＴＴＣＴＴＣＴＣＣＴＴＴＧＣＴＴＣ−３’（配列番号３）
ｈＧＰＲ５６ＲＴＲｖ：５’−ＣＧＣＡＴＧＧＡＣＣＡＧＴＡＣＣＡＧＡＴ−３’（配列番号４）
β−アクチンに対するプライマーの塩基配列を次に示す。
ｈβ−ａｃｔｉｎＲＴＦｗ：５’−ＧＡＣＡＧＧＡＴＧＣＡＧＡＡＧＧＡＧＡＴＣＡＣＴ−３’（配列番号５）
ｈβ−ａｃｔｉｎＲＴＲｖ：５’−ＴＧＡＴＣＣＡＣＡＴＣＴＧＣＴＧＧＡＡＧＧＴ−３’（配列番号６）

（結果）
図３は、フローサイトメトリーの結果を示す。ＡＰ１−２を添加しても、処理なしと同等のＧＰＲ５６の発現が確認された（図３（ａ）参照）。一方、ＧＰＲ５６−１を添加することで、濃度依存的にＧＰＲ５６の発現が抑制された（図３（ｂ）参照）。

また、図４に示すように、ＧＰＲ５６−１によるＧＰＲ５６の発現抑制は、ｍＲＮＡレベルでも確認された。

（実施例５：ＧＰＲ５６−１の薬効評価１）
ＧＰＲ５６−１の薬効を評価するために、ＵＳＣＤ／ＡＭＬ１細胞の増殖への影響を評価した。ＡＰ１−２またはＧＰＲ５６−１を０．１、０．３、１、３、１０μＭ添加した培地でＵＳＣＤ／ＡＭＬ１細胞を５日間培養した。培養中、細胞を１日１回回収し、トリパンブルーで染色後、生細胞を光学顕微鏡下で計数した。

（結果）
図５は、生細胞数の経時変化を示す。ＡＰ１−２は、ＵＳＣＤ／ＡＭＬ１細胞の増殖を抑制してないのに対し（図５（ａ）参照）、ＧＰＲ５６−１は、ＵＳＣＤ／ＡＭＬ１細胞の増殖を濃度依存的に抑制した（図５（ｂ）参照）。

（実施例６：ＧＰＲ５６−１の薬効評価２）
ＧＰＲ５６−１によるＵＳＣＤ／ＡＭＬ１細胞におけるアポトーシスの誘導を、フローサイトメトリーを用いて評価した。ＵＳＣＤ／ＡＭＬ１細胞をプレートに撒いて、ＡＰ１−２またはＧＰＲ５６−１を１μＭで添加した。添加から３日経過後、７−ＡＡＤ抗体（５５９９２５、ＢＤ社製）およびＦＩＴＣで標識したアネキシンＶ抗体（６４０９０６、ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製）を加え、ＦＡＣＳＣａｌｉｂｕｒ（ＢＤ社製）で解析した。

（結果）
図６は、フローサイトメトリーで得られた結果を示す。ＡＰ１−２に対して、ＧＰＲ５６−１では、７−ＡＡＤおよびアネキシンＶの発現が増加していた。このため、ＧＰＲ５６−１は、ＵＳＣＤ／ＡＭＬ１細胞のアポトーシスを誘導することが示された。

（実施例７：ＧＰＲ５６−１の薬効評価３）
さらに、各種マーカー遺伝子の発現を、Ｗｅｓｔｅｒｎｂｌｏｔ法で評価した。マーカー遺伝子は、アポトーシス関連遺伝子であるｐ５３、ＭＤＭ２、ｐ２１、ｐ２７、ＣＤＫ４およびＣＤＫ６である。ＵＳＣＤ／ＡＭＬ１細胞にＡＰ１−２およびＧＰＲ５６−１をそれぞれ１μＭまたは３μＭで添加した。添加から３日経過後、ＵＳＣＤ／ＡＭＬ１細胞を、ＲＩＰＡＢｕｆｆｅｒで溶解し、ＢＣＡ法でタンパク質濃度を測定した。アクリルアミドゲルは常法に従って作製し、１０％アクリルアミドゲルを用いて泳動した。各レーンには１０μｇのタンパク質を泳動し、１００Ｖ、１時間で転写を行った。その後、５％スキムミルク／ＴＢＳ−Ｔを用いてブロッキングし、ＴＢＳ−Ｔにて３回洗浄し、１／１０００に希釈した抗体液で、４℃で一晩処理した。抗体はＣａｎＧｅｔＳｉｇｎａｌ（商標）液（東洋紡社製）にて希釈した。処理後、ＴＢＳ−Ｔで３回洗浄し、１／５０００に希釈した二次抗体液（抗体はＧＥ社製、希釈液はＣａｎＧｅｔＳｉｇｎａｌ（商標）液）で、常温で一時間処理した。その後、ＴＢＳ−Ｔで３回洗浄の後、Ｌｕｍｉｌｉｇｈｔｐｌｕｓ（ロシュ社製）で検出した。検出に用いた装置は、ＬＡＳ３０００（フジフィルム社製）である。

（結果）
図７は、各種マーカー遺伝子の発現を示す。ＧＰＲ５６−１によって、ＭＤＭ２の発現が抑制され、ｐ５３の蓄積が見られた。この結果から、ＧＰＲ５６−１が、ＵＳＣＤ／ＡＭＬ１細胞のｐ５３を介したアポトーシスを誘導することが示された。

（実施例８：ＧＰＲ５６−１及びＧＰＲ５６−２の薬効評価）
ＧＰＲ５６−１およびＧＰＲ５６−２の薬効を評価するために、ＥＶＩ１高発現ＡＭＬ細胞株の増殖への影響を評価した。ＧＰＲ５６−１もしくはＧＰＲ５６−２、または対照群としてジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）を１μＭ添加した培地で、ＵＳＣＤ／ＡＭＬ１細胞またはＭＯＬＭ１細胞（株式会社林原生物化学研究所製）を５日間培養した。培養中、細胞を１日１回回収し、トリパンブルーで染色後、生細胞を光学顕微鏡下で計数した。

（結果）
図８（ａ）および（ｂ）にそれぞれＵＳＣＤ／ＡＭＬ１細胞およびＭＯＬＭ１細胞の生細胞数の経時変化を示す。ＤＭＳＯ添加群と比較して、ＧＰＲ５６−１添加群及びＧＰＲ５６−２添加群では、ＵＳＣＤ／ＡＭＬ１細胞およびＭＯＬＭ１細胞ともに細胞増殖が有意に抑制された。ＧＰＲ５６−１添加群とＧＰＲ５６−２添加群には差は見られなかった。この結果から、ＧＰＲ５６−１およびＧＰＲ５６−２は、同等にＥＶＩ１高発現白血病細胞の増殖を抑制することが示された。

（実施例９：皮下移植白血病モデルにおけるＧＰＲ５６−１の薬効評価）
公益財団法人実験動物中央研究所より提供されている６週齢の高度免疫不全マウス（ＮＯＤ／Ｓｈｉ−ｓｃｉｄ−ＩＬ２Ｒγｎｕｌｌマウス、以下単に「ＮＯＧマウス」とする）に、１個体あたり５×１０^６個のＵＣＳＤ／ＡＭＬ１細胞を移植した。詳細には、ＵＣＳＤ／ＡＭＬ１細胞を移植当日にサブコンフルエントになるように培養し、ＵＣＳＤ／ＡＭＬ１細胞を１００μＬの滅菌ＰＢＳ（−）に懸濁した。ＵＣＳＤ／ＡＭＬ１細胞の懸濁液と等量のマトリゲル（ＢＤ社製）とを混合し、２９Ｇのシリンジを用いてＮＯＧマウスの皮下へ注入して移植した。移植後、腫瘍が５ｍｍ四方のサイズになったことを確認し（通常約１ヶ月間）、薬剤（ＡＰ１−２またはＧＰＲ５６−１）の投与を開始した。薬剤は、週に１回、１ｍｇ／ｋｇずつ投与し、腫瘍の大きさを測定した。なお、当該投薬スケジュールおよび薬剤濃度は、予備実験において１ヶ月間投与しても外観に目立った影響がないことを確認して設定した。

（結果）
図９に示すように、ＡＰ１−２投与群と比較して、ＧＰＲ５６−１投与群では、有意な腫瘍サイズの抑制が確認された。図１０は、腫瘍の重量を示す。ＧＰＲ５６−１投与群では、腫瘍重量はほとんど増加しなかった。

図１１は、ＡＰ１−２を投与したマウスおよびＧＰＲ５６−１を投与したマウスの外観を示す。ＡＰ１−２を投与したマウスでは、腫瘍が増大しているのに対して（図１１（ａ）参照）、ＧＰＲ５６−１を投与したマウスでは、腫瘍の増大はほとんど見られなかった（図１１（ｂ）参照）。

（実施例１０：ＧＰＲ５６−１の造血系への影響の確認）
薬剤を投与した実施例９に係るマウスの血液を採取し、全自動血球計数器（ＭＫ−６４５０セルタックα、日本光電工業社製）で血液を検査した。また、骨髄画分を次のようにフローサイトメトリーで評価した。

上記マウスより骨髄を分取し、セルストレイナー（３５２３４０、ＢＤ社製）を用いて細胞を含む試料を取得した。試料に溶血試薬（５５５８９９、ＢＤ社製）を加えて溶血させて、試料中の細胞数をカウントした。１×１０^６個の細胞を１００μＬのＭＡＣＳＢｕｆｆｅｒに懸濁し、各種抗体でそれぞれ染色した。染色は、氷上で３０分後静置し、ＭＡＣＳＢｕｆｆｅｒで３回洗浄した。染色した試料を、ＦＡＣＳＣａｌｉｂｕｒ（ＢＤ社製）で解析した。

使用した抗体は、骨髄に関しては、ＣＤ１１ｂ−ＡＰＣ（１０１２１２、ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製）およびＧｒ１−ＰＥ（１０８４０８、ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製）である。赤血球に関しては、ＴＥＲ１１９−ＡＰＣ（１１６２６２、ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製）である。巨核球に関しては、ＣＤ６１−ＰＥ（１０４３０８、ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製）である。Ｂ細胞に関しては、ＣＤ１９−ＰＥ（１１５５０８、ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製）およびＢ２２０−ＡＰＣ（１０３２１２、ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製）である。Ｔ細胞に関しては、ＣＤ３ｅ−ＡＰＣ（１００３１２、ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製）である。

（結果）
表１は、血液検査の項目ごとの測定値の平均を示す。いずれの項目においても、ＡＰ１−２投与群とＧＰＲ５６−１投与群との間に有意差はなかった。

図１２は、フローサイトメトリーの結果を示す。ＡＰ１−２投与群とＧＰＲ５６−１投与群との間で、骨髄（ＣＤ１１ｂ＋Ｇｒ１＋）、赤血球（ＴＥＲ１１９＋）、巨核球（ＣＤ６１＋）、Ｂ細胞（ＣＤ１９＋Ｂ２２０＋）およびＴ細胞（ＣＤ３ｅ）に有意な差は見られなかった。以上の結果から、ＧＰＲ５６−１の投与によって、マウスへの副作用、特に、造血系への副作用はないことが示された。

（実施例１１：全身白血病モデルにおけるＧＰＲ５６−１の薬効評価）
全身白血病モデルを作製するために、熊本大学ＣＡＲＤで樹立された免疫不全マウスＢａｌｂ／ｃ−ＲＪマウス（Ｒａｇ２／Ｊａｋ３ｄＫＯ）に、ＵＣＳＤ／ＡＭＬ１細胞を注射した。マウス１個体あたり５×１０^６個のＵＣＳＤ／ＡＭＬ１細胞を、尾静脈に注射した。薬剤（ＡＰ１−２またはＧＰＲ５６−１）は、週に１回、１ｍｇ／ｋｇで投与した。薬剤の投与は、観察期間（９０日）の間継続した。

（結果）
図１３は、９０日間のマウスの生存率を示す。ＧＰＲ５６−１投与群の約半数は長期に渡って生存した。ＧＰＲ５６−１の投与によって、全身白血病モデルのマウスの有意な延命が確認された。このため、白血病の病態により近い全身白血病モデルに対してもＧＰＲ５６−１は、非常に有効である。

（実施例１２：全身白血病モデルにおける各臓器の白血病細胞浸潤の評価）
薬剤を投与した実施例１１に係るマウスより骨髄、脾臓、肝臓および末梢血を分取し、セルストレイナー（３５２３４０、ＢＤ社製）を用いて細胞を含む試料を取得した。試料に溶血試薬（５５５８９９、ＢＤ社製）を加えて溶血させて、試料中の細胞数をカウントした。１ｘ１０^６個の細胞を１００μＬのＭＡＣＳＢｕｆｆｅｒに懸濁し、ＰＥで標識されたヒトＣＤ４５抗体（３０４００８、ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製）で染色した。染色は、氷上で３０分後静置し、ＭＡＣＳＢｕｆｆｅｒで３回洗浄した。染色した試料を、ＦＡＣＳＣａｌｉｂｕｒ（ＢＤ社製）で解析した。

（結果）
図１４は、骨髄（ａ）、脾臓（ｂ）、肝臓（ｃ）および末梢血（ｄ）それぞれにおけるＣＤ４５陽性、すなわち白血病細胞の割合を示す。骨髄、脾臓、肝臓および末梢血のいずれにおいても、ＧＰＲ５６−１投与群は、ＰＢＳ投与群およびＡＰ１−２投与群と比較して、白血病細胞の割合が有意に低かった。したがって、ＧＰＲ５６−１は、全身白血病モデルにおける各臓器への白血病細胞の浸潤を抑制することが示された。

本発明は、本発明の広義の精神と範囲を逸脱することなく、様々な実施の形態および変形が可能とされるものである。また、上述した実施の形態は、本発明を説明するためのものであり、本発明の範囲を限定するものではない。すなわち、本発明の範囲は、実施の形態ではなく、特許請求の範囲によって示される。そして、特許請求の範囲内およびそれと同等な発明の意義の範囲内で施される様々な変形が、本発明の範囲内とみなされる。

本発明は、白血病の治療または予防に好適である。本発明を適用することにより、白血病の治療の成績が向上し、患者の生活の質が向上する。

Claims

式
もしくは
式
で表される化合物またはその塩。
請求項１に記載の化合物またはその塩を有効成分として含む医薬組成物。
ＧＰＲ５６発現抑制剤である請求項２に記載の医薬組成物。
白血病の治療または予防に使用するための請求項２または３に記載の医薬組成物。