JP2016053003A - Polypeptide derived from coccoidea - Google Patents

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Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a polypeptide derived from Coccoidea [Ceroplastes ceriferus Fabricius.] having hemolytic activity and cytotoxicity.SOLUTION: The invention provides a polypeptide derived from Ceroplastes ceriferus Fabricius. containing the amino acid sequence represented by GSGSVLVRNSGGYVATFSMA, and a hemolytic composition containing the polypeptide. The invention relates to a hemolysis method comprising contacting the polypeptide or the composition to a liquid sample containing red blood cells, and to a cytotoxic composition containing the polypeptide, as well as to an antitumor composition containing the polypeptide. The method of obtaining the polypeptide comprises fractioning a sample obtained by homogenizing entire Ceroplastes ceriferus Fabricius. by a suitable chromatography to separate the fraction representing hemolytic activity.SELECTED DRAWING: Figure 3

Description

本発明は、カイガラムシ由来のポリペプチドに関する。本発明はさらに、カイガラムシ由来のポリペプチドを含む溶血剤組成物、およびカイガラムシ由来のポリペプチドを用いた溶血方法に関する。本発明はさらに、カイガラムシ由来のポリペプチドを含む細胞毒性組成物、およびカイガラムシ由来のポリペプチドを含む抗腫瘍組成物にも関する。   The present invention relates to a scale-derived polypeptide. The present invention further relates to a hemolytic agent composition comprising a scale-derived polypeptide and a hemolysis method using the scale-derived polypeptide. The invention further relates to a cytotoxic composition comprising a polypeptide from scales and an anti-tumor composition comprising a polypeptide from scales.

溶血剤は、赤血球の細胞膜を破壊して原形質を漏出させる物質である。溶血剤は、ヘモグロビン量の測定や、赤血球の除去および白血球の分類などに用いられる(特許文献1)。溶血剤はさらに、種々の疾患の検査・診断にも使用され得(非特許文献1)、例えば血栓関連疾患等における治療的応用の可能性も考えられる。   A hemolytic agent is a substance that breaks down the cell membrane of red blood cells and leaks protoplasm. The hemolytic agent is used for measuring the amount of hemoglobin, removing red blood cells, and classifying white blood cells (Patent Document 1). The hemolytic agent can also be used for testing and diagnosis of various diseases (Non-patent Document 1), and the possibility of therapeutic application in, for example, thrombosis-related diseases is also considered.

溶血は様々な方法で達成され得る。例えば、赤血球を機械的に損傷させたり、低張液に晒したりすることにより、物理的に溶血が達成される。また、有機溶媒や界面活性剤により化学的に溶血を誘導することもできる。   Hemolysis can be achieved in various ways. For example, hemolysis is physically achieved by mechanically damaging red blood cells or exposing them to hypotonic solutions. In addition, hemolysis can be induced chemically with an organic solvent or a surfactant.

生物学的な溶血の例としては、赤血球に対する抗体を介した生体内での溶血現象が知られている。また、レンサ球菌等の細菌が溶血活性を有する因子(溶血素)を産生することが知られている。さらに、ナマコ類の動物やキノコに由来するレクチン(糖結合タンパク質)にも溶血活性を有するものが存在することが知られている(非特許文献2)。しかしながら、生物由来の溶血素はその実体が詳細に理解されていないことが多く、産業的な利用例はまだ乏しい。   As an example of biological hemolysis, hemolysis in vivo via an antibody against red blood cells is known. It is also known that bacteria such as streptococci produce a factor having hemolytic activity (hemolysin). Furthermore, it is known that some lectins (sugar binding proteins) derived from sea cucumber animals and mushrooms have hemolytic activity (Non-patent Document 2). However, the biological origin of hemolysin is often not understood in detail, and industrial applications are still scarce.

特開2003-344387JP2003-344387

第52回東北地区医学検査学会講演抄録集(2011年)Abstracts of the 52nd Tohoku Medical Examination Society (2011) 生物物理49(2)、第075〜079頁(2009年)Biophysics 49 (2), pp. 075-079 (2009)

上記のように、溶血剤には多様な応用可能性が存在し、新規な溶血剤に対するニーズが存在し続けている。特に、安価な材料から簡便に入手できる溶血剤に対するニーズが存在する。特に、生物由来、とりわけポリペプチドに基づく溶血剤は、多様な生化学的および遺伝子工学的技術の適用による開発も可能であり、臨床分野その他において新たなツールとして高い有用性を提供することが期待される。   As described above, hemolytic agents have various application possibilities, and the need for new hemolytic agents continues to exist. In particular, there is a need for hemolytic agents that can be easily obtained from inexpensive materials. In particular, hemolytic agents derived from biological sources, especially polypeptides, can be developed by applying various biochemical and genetic engineering techniques, and are expected to provide high utility as new tools in clinical fields and other fields. Is done.

カイガラムシは、カメムシ目ヨコバイ亜目カイガラムシ上科に属する昆虫である。本発明においては、ツノロウムシ(角蝋虫)(ツノロウカイガラムシともいう。学名Ceroplastes ceriferus)というカイガラムシが溶血剤の供給源として利用される。   The scale insect is an insect belonging to the superfamily of the order of the order of the order of the order of the order of the order of the order of the bugs of the order of the order of the order of the order of the order of the order of the order of the order of the order of the order of the order of the order of the order of the order of the order of the order of the stinkbug In the present invention, a scale insect called a hornworm (also known as a hornworm scale, Ceroplastes ceriferus) is used as a source of a hemolytic agent.

ツノロウムシは、体長6〜9ミリメートルで、大きな蝋殻を有して厚みがあり、淡紅色をわずかに帯びた灰白色の昆虫である(図1 )。成熟した殻はドーム状に丸くなる。ツノロウムシは、年1回発生し、越冬成虫は5月に産卵し、6月中旬から下旬にかけて幼虫が孵化し、9〜10月に成虫となる。ツノロウムシは、ミカン、チャ、ツバキ、ケヤキなど、多くの植物に寄生し、すす病を引き起こして大害を与える。ツノロウムシは、本州の宮城県・山形県以南の日本全土および世界各地に分布する。   The horned weevil is a gray-white insect with a length of 6 to 9 mm, a large wax shell, a thickness, and a slight pale red color (Fig. 1). The mature shell is rounded like a dome. The horned weevil occurs once a year, the overwintering adults lay eggs in May, the larvae hatch from mid to late June, and become adults from September to October. The horned weevil parasitizes many plants such as mandarin orange, tea, camellia, zelkova, etc., causing soot disease and causing great harm. The horned weevil is distributed all over Japan in Miyagi and Yamagata prefectures in Honshu and throughout the world.

ツノロウムシの蝋殻の内部は赤色であり(図1)、この赤色色素のコチニールが食品添加物として利用されている。また、ロウの部分は、床のワックスやコーティング剤として使用されている。このように、広く生息しかつ駆除対象となる害虫であるツノロウムシから、有用な物質を採取して活用することは、産業的観点から非常に有意義かつ効率的である。   The inside of the hornworm wax husk is red (Fig. 1), and this red pigment cochineal is used as a food additive. In addition, the wax part is used as a floor wax or a coating agent. Thus, it is very meaningful and efficient from an industrial point of view to collect and use useful substances from weevil, a pest that is widely inhabited and to be controlled.

本発明者らは、驚くべきことに、ツノロウムシが産生するポリペプチドの中に溶血活性を有するものが存在することを発見し、そのポリペプチドを単離することに成功した。本発明者らはさらに、そのポリペプチドが、非赤血球細胞に対する細胞毒性を有することを発見した。本発明はこれらの発見に基づいて完成された。   The present inventors have surprisingly discovered that there is a hemolytic activity among polypeptides produced by hornworms and succeeded in isolating the polypeptide. The inventors have further discovered that the polypeptide is cytotoxic to non-erythroid cells. The present invention has been completed based on these findings.

従って、本発明は以下の側面を含む。
[1]配列番号1で表されるアミノ酸配列を含む、ツノロウムシ由来のポリペプチド。
[2]前記[1]に記載のポリペプチドを含む、溶血剤組成物。
[3]赤血球を含む液体試料に、前記[1]に記載のポリペプチドまたは前記[2]に記載の組成物を接触させることを含む、溶血方法。
[4]前記液体試料が血液を含む、[3]に記載の溶血方法。
[5]前記[1]に記載のポリペプチドを含む、細胞毒性組成物。
[6]前記[1]に記載のポリペプチドを含む、抗腫瘍組成物。
Accordingly, the present invention includes the following aspects.
[1] A polypeptide derived from weevil, comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1.
[2] A hemolytic agent composition comprising the polypeptide of [1].
[3] A hemolysis method comprising contacting a liquid sample containing erythrocytes with the polypeptide of [1] or the composition of [2].
[4] The hemolysis method according to [3], wherein the liquid sample contains blood.
[5] A cytotoxic composition comprising the polypeptide of [1] above.
[6] An antitumor composition comprising the polypeptide according to [1].

図1は、ツノロウムシの分類学上の位置づけ、および外観の写真を示す。FIG. 1 shows a taxonomic position of the hornworm and a photograph of its appearance. 図2は、ツノロウムシのホモジナイズ液のゲル濾過クロマトグラフィ分離により得られたクロマトグラムを示す。CC-IVポリペプチドの溶出位置を矢印で示している。FIG. 2 shows a chromatogram obtained by gel filtration chromatographic separation of a homogenized liquid of weevil. The elution position of CC-IV polypeptide is indicated by an arrow. 図3は、ゲル濾過クロマトグラフィの各画分を血液と混合する実験の結果を示す。CC-IVポリペプチドを含む画分が入ったウェルを黒枠で囲って示している。FIG. 3 shows the results of an experiment in which each fraction of gel filtration chromatography is mixed with blood. A well containing a fraction containing CC-IV polypeptide is shown surrounded by a black frame. 図4は、精製過程における各サンプルのSDS-PAGEの結果を示す。左から、1. サイズマーカー、2. 透析後のサンプル、3. 陰イオンクロマトグラフィ後の素通り画分のサンプル、および4. ゲル濾過クロマトグラフィのCC-IV画分のサンプルが電気泳動されている。14 kDaのサイズマーカーの位置を矢印で示している。FIG. 4 shows the results of SDS-PAGE of each sample in the purification process. From left, 1. Size marker, 2. Sample after dialysis, 3. Sample of flow-through after anion chromatography, and 4. Sample of CC-IV fraction of gel filtration chromatography are electrophoresed. The position of the 14 kDa size marker is indicated by an arrow. 図5は、pH安定性試験の結果を示す。32および64という数字は、それぞれ、32倍希釈および64倍希釈のCC-IVポリペプチド画分液で溶血活性が確認されたことを表す。FIG. 5 shows the results of the pH stability test. The numbers 32 and 64 indicate that hemolytic activity was confirmed in the 32-fold and 64-fold diluted CC-IV polypeptide fractions, respectively. 図6は、温度安定性試験の結果を示す。CC-IVポリペプチド画分液を、横軸に示された温度でインキュベートした後、溶血活性を測定した。FIG. 6 shows the results of the temperature stability test. The CC-IV polypeptide fraction was incubated at the temperature indicated on the horizontal axis, and then the hemolytic activity was measured. 図7は、様々な単糖類、二糖類、糖タンパク質、またはタンパク質をウェルに添加して、CC-IVポリペプチドの溶血活性の阻害の有無を調べた実験の結果を示す。「NC」は、CC-IVポリペプチドの代わりにPBSを添加した陰性対照である。FIG. 7 shows the results of an experiment in which various monosaccharides, disaccharides, glycoproteins, or proteins were added to wells and examined for inhibition of the hemolytic activity of CC-IV polypeptide. “NC” is a negative control with PBS added instead of CC-IV polypeptide. 図8は、異なる動物種の血液に対する溶血活性の比較実験を示す。数字はCC-IVポリペプチド画分液の希釈率を示す。「凝集」は凝集素RCA120を用いた凝集についての陽性対照であり、「NC」はCC-IVポリペプチドの代わりにPBSを添加した陰性対照であり、「溶血」は界面活性剤Triton X-100を用いた溶血についての陽性対照である。FIG. 8 shows a comparative experiment of hemolytic activity against blood of different animal species. The numbers indicate the dilution rate of the CC-IV polypeptide fraction. “Agglutination” is a positive control for aggregation using agglutinin RCA120, “NC” is a negative control with PBS added instead of CC-IV polypeptide, and “Hemolysis” is the detergent Triton X-100 Is a positive control for hemolysis using 図9は、ベロ細胞を用いた細胞毒性試験の結果を示す。横軸は添加されたCC-IV溶血性ポリペプチドの濃度、縦軸はベロ細胞の生存率を示す。+および−は、培地へのFBS添加の有り無しを表す。FIG. 9 shows the results of a cytotoxicity test using Vero cells. The horizontal axis represents the concentration of the added CC-IV hemolytic polypeptide, and the vertical axis represents the survival rate of Vero cells. + And − represent the presence or absence of addition of FBS to the medium. 図10は、U937細胞を用いた細胞毒性試験の結果を示す。横軸は添加されたCC-IV溶血性ポリペプチドの濃度、縦軸はU937細胞の生存率を示す。+および−は、培地へのFBS添加の有り無しを表す。FIG. 10 shows the results of a cytotoxicity test using U937 cells. The horizontal axis represents the concentration of the added CC-IV hemolytic polypeptide, and the vertical axis represents the survival rate of U937 cells. + And − represent the presence or absence of addition of FBS to the medium.

本発明は、配列番号1で表されるアミノ酸配列を含む、ツノロウムシ由来のポリペプチドを提供する。本発明のポリペプチドは、ツノロウムシから採取し精製することによって得ることができる。使用するツノロウムシの数または重量は特に限定されないが、効率よく採取・精製を行うためには、例えば湿重量で少なくとも10 g、より好ましくは少なくとも100 g、さらに好ましくは約150 g(約3200匹に相当)のツノロウムシを使用することができる。さらに多数の個体を出発材料としてさらに多量のポリペプチドを取得することもできる。   The present invention provides a weevil-derived polypeptide comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1. The polypeptide of the present invention can be obtained by collecting and purifying from weevil. The number or weight of hornworms to be used is not particularly limited, but for efficient collection and purification, for example, at least 10 g by wet weight, more preferably at least 100 g, more preferably about 150 g (about 3200 animals). Equivalent) weevil can be used. Further, a larger amount of polypeptide can be obtained using a large number of individuals as starting materials.

ツノロウムシ全体をホモジナイズした試料を、適切なクロマトグラフィで分画し、溶血活性を示す画分を分離することによって、本発明のポリペプチドを取得することができる。具体的には、上記クロマトグラフィの各画分を、赤血球含有液体試料(通常は血液またはその希釈液)と混合することにより、溶血活性を有する画分、すなわち本発明のポリペプチドを含む画分を同定することができる。溶血活性を有する画分が赤血球含有液体試料と混合された場合には、赤血球が溶解して、ヘモグロビンをはじめとする細胞内部の成分が混合液中に放出され、混合液が均一な赤色溶液となることが視認される。これに対し、溶血活性を有さない画分の場合には、血球が混合液の底部に沈殿するか、または、血球の凝集が起こって、肉眼的もしくは顕微鏡的に上記溶解液とは区別できる懸濁液が得られる。   The polypeptide of the present invention can be obtained by fractionating a sample obtained by homogenizing the whole weevil by appropriate chromatography and separating the fraction showing hemolytic activity. Specifically, each fraction of the above chromatography is mixed with an erythrocyte-containing liquid sample (usually blood or a diluted solution thereof) to obtain a fraction having hemolytic activity, that is, a fraction containing the polypeptide of the present invention. Can be identified. When the hemolytic activity fraction is mixed with the red blood cell-containing liquid sample, the red blood cells are lysed and the components inside the cell, including hemoglobin, are released into the liquid mixture. It is visually recognized that On the other hand, in the case of a fraction having no hemolytic activity, blood cells are precipitated at the bottom of the mixed solution, or blood cells are aggregated, and can be distinguished from the above-mentioned lysate macroscopically or microscopically. A suspension is obtained.

溶血活性同定の目的で使用される赤血球含有液体試料は、例えばヒト、ヒツジ、ウシ、ウマ、ニワトリ等、各種動物由来の血液またはその希釈液であってよい。例えば、血球成分が2体積%程度となるように血液をリン酸緩衝食塩水等で希釈し、その希釈液に同体積のクロマトグラフィ画分を混合することにより、溶血活性のスクリーニングを行うことができる。例えば低張液中では血球が自発的に溶血してしまうなど、溶血活性の検出は浸透圧によって影響を受けるので、希釈液および混合液は等張液とすることが好ましい。クロマトグラフィ画分と上記赤血球含有液体試料との混合は、例えば96ウェルプレートのウェル中で簡便に行うことができ、肉眼または顕微鏡により溶血活性含有画分を確認することができる。   The erythrocyte-containing liquid sample used for the purpose of identifying hemolytic activity may be blood derived from various animals such as humans, sheep, cows, horses, chickens, etc., or diluted solutions thereof. For example, hemolysis activity can be screened by diluting the blood with phosphate buffered saline or the like so that the blood cell component is about 2% by volume and mixing the same volume of the chromatographic fraction into the diluted solution. . For example, since the detection of hemolytic activity is affected by osmotic pressure, such as blood cells spontaneously hemolyze in hypotonic solutions, it is preferable that the dilute solution and the mixed solution be isotonic solutions. Mixing of the chromatographic fraction and the erythrocyte-containing liquid sample can be easily performed, for example, in a well of a 96-well plate, and the hemolytic activity-containing fraction can be confirmed by the naked eye or by a microscope.

上記クロマトグラフィの例としては、陰イオン交換クロマトグラフィ、ゲル濾過クロマトグラフィ、およびこれらの組合せが挙げられるが、これらに限定されない。陰イオン交換クロマトグラフィ用のカラムの例としては、架橋アガロースをマトリックスとし、官能基として四級アンモニウム基を有するものが挙げられ、具体的には、GEヘルスケア社のQ-Sepharose Fast Flowが好適に使用され得る。ゲル濾過クロマトグラフィ用のカラムの例としては、デキストランと高度架橋アガロースからなるものが挙げられ、具体的にはGEヘルスケア社のSuperdex 75(1.6×60 cm、オープンカラム)が好適に使用され得る。分子量3,000〜70,000の範囲の分離能を有するカラムを用いたゲル濾過クロマトグラフィは、本発明のポリペプチドを実質的に純粋な状態で分離することができるので、特に好ましい。陰イオン交換クロマトグラフィを行った後に、その素通り画分を用いてゲル濾過クロマトグラフィを行い、そのゲル濾過クロマトグラフィの各画分を上記のように溶血活性についてアッセイすることによって、本発明のポリペプチドを含む画分を同定することが最も好ましい。クロマトグラフィの前後に、適宜、遠心分離や透析等、追加的な精製工程を行ってもよい。   Examples of such chromatography include, but are not limited to, anion exchange chromatography, gel filtration chromatography, and combinations thereof. Examples of columns for anion exchange chromatography include those having a cross-linked agarose as a matrix and a quaternary ammonium group as a functional group. Specifically, GE Healthcare's Q-Sepharose Fast Flow is suitable. Can be used. An example of a column for gel filtration chromatography is a column composed of dextran and highly crosslinked agarose. Specifically, Superdex 75 (1.6 × 60 cm, open column) manufactured by GE Healthcare can be preferably used. Gel filtration chromatography using a column having a resolution in the molecular weight range of 3,000 to 70,000 is particularly preferable because the polypeptide of the present invention can be separated in a substantially pure state. After performing anion exchange chromatography, the flow-through fraction is used for gel filtration chromatography, and each fraction of the gel filtration chromatography is assayed for hemolytic activity as described above, thereby containing the polypeptide of the present invention. Most preferably, the fraction is identified. Before and after the chromatography, additional purification steps such as centrifugation and dialysis may be appropriately performed.

上記および実施例に示す精製方法は、あくまで一例であり、当業者は、クロマトグラフィの種類および適切な精製工程を適宜選択してタンパク質の分離を行い、分離された画分における溶血活性の存在を指標にして、本発明のポリペプチドを精製・単離することができる。   The purification methods described above and in the examples are merely examples, and those skilled in the art will appropriately select the type of chromatography and appropriate purification steps to separate proteins, and indicate the presence of hemolytic activity in the separated fractions. Thus, the polypeptide of the present invention can be purified and isolated.

本発明のポリペプチドは、ドデシル硫酸ナトリウム-ポリアクリルアミドゲル電気泳動(SDS-PAGE)で決定される分子量が約10〜11kDaである。従って、本発明のポリペプチドを含有する画分を同定する際に、溶血活性に加えて、この分子量を指標とすることもできる。   The polypeptide of the present invention has a molecular weight of about 10 to 11 kDa as determined by sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE). Therefore, in identifying the fraction containing the polypeptide of the present invention, this molecular weight can be used as an index in addition to the hemolytic activity.

本発明のポリペプチドは、GSGSVLVRNSGGYVATFSMA(配列番号1)というアミノ酸配列を含む。このアミノ酸配列は、成熟ポリペプチドのN末端に見出される。しかしながら、最末端のアミノ酸がメチオニンではないことから、翻訳直後のポリペプチドにおいては、上記アミノ酸配列はN末端ではなくポリペプチド内部、すなわちシグナルペプチドに対してC末端側に存在することが理解される。ポリペプチドのN末端または内部の配列を決定する手法は当業者によく知られている。また、シグナルペプチドの切断を阻害する等して翻訳直後のポリペプチドを得る方法も当業者に知られている。分離された画分に含まれるポリペプチドの一部分または全長のアミノ酸配列を決定し、配列番号1のアミノ酸配列が含まれていることを確認することにより、本発明のポリペプチドが単離されたことを確認することができる。   The polypeptide of the present invention comprises the amino acid sequence GSGSVLVRNSGGYVATFSMA (SEQ ID NO: 1). This amino acid sequence is found at the N-terminus of the mature polypeptide. However, since the most terminal amino acid is not methionine, it is understood that in the polypeptide immediately after translation, the amino acid sequence is not in the N-terminal but in the polypeptide, that is, on the C-terminal side with respect to the signal peptide. . Techniques for determining the N-terminal or internal sequence of a polypeptide are well known to those skilled in the art. A method for obtaining a polypeptide immediately after translation by inhibiting cleavage of the signal peptide is also known to those skilled in the art. The polypeptide of the present invention was isolated by determining the partial or full-length amino acid sequence of the polypeptide contained in the separated fraction and confirming that the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 was included. Can be confirmed.

さらに、当業者には理解されるように、配列番号1のアミノ酸配列を有するペプチドに対する抗体を作成して、その抗体に対する結合に基づいて本発明のポリペプチドを精製・単離するアプローチも可能である。そのようなアプローチの具体例としては、抗体親和性クロマトグラフィ、免疫沈降、および発現ライブラリースクリーニングが挙げられるが、これらに限定されない。   Furthermore, as understood by those skilled in the art, an approach is also possible in which an antibody against the peptide having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 is prepared, and the polypeptide of the present invention is purified and isolated based on the binding to the antibody. is there. Specific examples of such approaches include, but are not limited to, antibody affinity chromatography, immunoprecipitation, and expression library screening.

本発明の別の側面では、上記ポリペプチドを含む、溶血剤組成物が提供される。この組成物中に含まれる上記ポリペプチドの濃度は、望まれる溶血の程度にも依存するし、また、使用前の希釈または濃縮を前提とする形態として提供することも可能であることから、特に限定されない。通常は、本組成物は、上記ポリペプチドを0.1〜99.9重量%、1〜99重量%、または10〜90重量%含み得る。あるいは、本組成物は、上記ポリペプチドを、10〜20重量%、20〜30重量%、30〜40重量%、40〜50重量%、50〜60重量%、60〜70重量%、70〜80重量%、または80〜90重量%含んでいてもよい。   In another aspect of the present invention, a hemolytic composition comprising the above polypeptide is provided. The concentration of the polypeptide contained in the composition depends on the degree of hemolysis desired, and can be provided as a form premised on dilution or concentration before use. It is not limited. Typically, the composition may comprise 0.1-99.9%, 1-99%, or 10-90% by weight of the polypeptide. Alternatively, the present composition comprises 10-20% by weight, 20-30% by weight, 30-40% by weight, 40-50% by weight, 50-60% by weight, 60-70% by weight, 70-70% by weight. You may contain 80weight% or 80-90weight%.

本発明の溶血剤組成物は、液状、固形状、または半固形状の組成物として提供され得る。液状組成物である場合には、上記ポリペプチド以外の成分は、典型的には水であるが、当業者に知られるその他の適切な溶媒や、複数の溶媒の混合物であってもよい。本発明の液状組成物は、塩、緩衝剤、安定化剤、防腐剤等の、当業者に知られるその他の成分を含んでいてもよい。本発明の液状組成物のpHは、好ましくは、pH 4.0〜11.5の範囲内である。ポリペプチドの変性をきたすことが知られる成分組成は使用するべきではない。   The hemolytic agent composition of the present invention can be provided as a liquid, solid, or semi-solid composition. In the case of a liquid composition, the component other than the polypeptide is typically water, but may be other suitable solvents known to those skilled in the art or a mixture of a plurality of solvents. The liquid composition of the present invention may contain other components known to those skilled in the art, such as salts, buffers, stabilizers, preservatives and the like. The pH of the liquid composition of the present invention is preferably in the range of pH 4.0 to 11.5. Component compositions known to cause polypeptide denaturation should not be used.

固形状組成物は、粉末、錠剤、カプセル剤等、当業者に知られる形態で提供することができ、上記ポリペプチド以外の成分としては、当業者に知られる賦形剤、結合剤、コーティング剤、乾燥剤等を適宜使用することができる。本発明のポリペプチドの水溶液を凍結乾燥することにより、固形状態のポリペプチドを得ることができ、それを本発明の固形状組成物に含ませることができる。   The solid composition can be provided in a form known to those skilled in the art, such as powders, tablets, capsules and the like, and as components other than the above-mentioned polypeptides, excipients, binders, coating agents known to those skilled in the art A desiccant and the like can be used as appropriate. By lyophilizing an aqueous solution of the polypeptide of the present invention, a solid state polypeptide can be obtained, which can be included in the solid composition of the present invention.

本発明の別の側面では、赤血球を含む液体試料に、本発明のポリペプチドまたは本発明の組成物を接触させることを含む、溶血方法が提供される。赤血球を含む液体試料は、典型的には血液またはその希釈液であり、例えばヒト、ヒツジ、ウシ、ウマ、ウサギ、ニワトリ等、各種動物由来の血液またはその希釈液であり得る。この方法は、液体試料に、本発明のポリペプチドまたは本発明の組成物を液体または固体の状態で混合ないし溶解することにより実施される。この接触反応混合物における赤血球と本ポリペプチドとの量比は、望まれる溶血の程度等に応じて当業者が適宜調節することができるため、特に限定されない。例えば、上述したクロマトグラフィ画分のスクリーニングと同様に、血球成分が2体積%程度となるように液体試料を調製して、その液体試料に、例えば1〜100μg/mlの濃度のポリペプチド溶液を同体積混合することにより、溶血を起こさせることができる。   In another aspect of the present invention, there is provided a method of hemolysis comprising contacting a liquid sample comprising red blood cells with a polypeptide of the present invention or a composition of the present invention. The liquid sample containing erythrocytes is typically blood or a diluted solution thereof, and can be, for example, blood derived from various animals such as humans, sheep, cows, horses, rabbits, chickens, or diluted solutions thereof. This method is carried out by mixing or dissolving the polypeptide of the present invention or the composition of the present invention in a liquid or solid state in a liquid sample. The amount ratio of erythrocytes to the present polypeptide in the contact reaction mixture is not particularly limited because it can be appropriately adjusted by those skilled in the art according to the desired degree of hemolysis and the like. For example, in the same manner as the screening of the chromatographic fraction described above, a liquid sample is prepared so that the blood cell component is about 2% by volume, and a polypeptide solution having a concentration of, for example, 1 to 100 μg / ml is added to the liquid sample. Hemolysis can be caused by volume mixing.

本発明の溶血方法における反応pHとしては、広範囲のpHが利用可能であり、例えばpH 4.0〜11.5における範囲において溶血が達成され得る。これらのpHを維持するために、クエン酸バッファー、リン酸バッファー、トリスバッファー、グリシンバッファー等、各種バッファー液を反応液とすることができる。所望のpHに対応する適切な緩衝剤の種類および濃度は、当業者が適宜選択することができる。   As the reaction pH in the hemolysis method of the present invention, a wide range of pH can be used. For example, hemolysis can be achieved in the range of pH 4.0 to 11.5. In order to maintain these pHs, various buffer solutions such as citrate buffer, phosphate buffer, Tris buffer, and glycine buffer can be used as the reaction solution. Appropriate buffer types and concentrations corresponding to the desired pH can be appropriately selected by those skilled in the art.

本発明のポリペプチドは、50℃以上の温度において失活する。従って、本発明の溶血反応における反応温度は、40℃以下とすることが好ましい。反応温度は、4℃以上であることが好ましい。本発明の溶血反応は、室温において好適に実施することができる。   The polypeptide of the present invention is inactivated at a temperature of 50 ° C. or higher. Accordingly, the reaction temperature in the hemolysis reaction of the present invention is preferably 40 ° C. or lower. The reaction temperature is preferably 4 ° C. or higher. The hemolysis reaction of the present invention can be preferably carried out at room temperature.

本発明のポリペプチドは、赤血球に対する溶血活性に加えて、赤血球以外の細胞に対する細胞毒性を示す。従って本発明の別の側面では、本発明のポリペプチドを含む、細胞毒性組成物が提供される。本明細書において「細胞毒性」とは、物質が細胞を殺す能力を意味する。本発明の細胞毒性組成物における上記ポリペプチドの濃度、上記ポリペプチド以外の成分、液状/固形状の別等については、上記溶血剤組成物の場合に準じるため、特に限定されず、当業者が適宜調節できる。   The polypeptide of the present invention exhibits cytotoxicity against cells other than erythrocytes in addition to hemolytic activity against erythrocytes. Accordingly, in another aspect of the invention, there are provided cytotoxic compositions comprising the polypeptides of the invention. As used herein, “cytotoxic” means the ability of a substance to kill cells. The concentration of the polypeptide in the cytotoxic composition of the present invention, the components other than the polypeptide, the liquid / solid type, etc. are not particularly limited and are not particularly limited because they are the same as in the case of the hemolytic agent composition. It can be adjusted as appropriate.

本発明のポリペプチドは、腫瘍細胞に対して強い細胞毒性を有するため、抗腫瘍剤、すなわち腫瘍の治療、検査、研究等に使用するための細胞毒性剤として有用である。従って本発明の別の側面では、本発明のポリペプチドを含む、抗腫瘍組成物が提供される。ここでいう腫瘍は、上皮性腫瘍または非上皮性腫瘍、例えばリンパ腫であり得、良性腫瘍または悪性腫瘍であり得る。本発明の抗腫瘍組成物における上記ポリペプチドの濃度、上記ポリペプチド以外の成分、液状/固形状の別等については、上記溶血剤組成物の場合に準じるため、特に限定されず、当業者が適宜調節できる。   Since the polypeptide of the present invention has strong cytotoxicity against tumor cells, it is useful as an anti-tumor agent, that is, a cytotoxic agent for use in tumor treatment, examination, research and the like. Accordingly, in another aspect of the invention, an anti-tumor composition comprising a polypeptide of the invention is provided. As used herein, a tumor can be an epithelial tumor or a non-epithelial tumor, such as a lymphoma, and can be a benign tumor or a malignant tumor. The concentration of the polypeptide in the antitumor composition of the present invention, the components other than the polypeptide, the liquid / solid type, etc. are not particularly limited because they are the same as in the case of the hemolytic composition. It can be adjusted as appropriate.

以下、実施例を示して本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されない。   EXAMPLES Hereinafter, although an Example is shown and this invention is demonstrated further in detail, this invention is not limited to these Examples.

[ツノロウムシのホモジナイズ液の分画]
東洋大学板倉キャンパス(群馬県邑楽郡板倉町)内のユキヤナギに寄生しているツノロウカイガラムシを採取した。採取したツノロウカイガラムシのホモジナイズ液を調製するために、約3200匹(湿重量で約150 g)にPBS(リン酸緩衝食塩水、0.15 M NaCl、pH7.4)を加えながらホモジナイザーを用いてホモジナイズした。PBS懸濁液となった状態のホモジナイズ液の体積は約200 mlであった。このホモジナイズ液を遠心分離(4℃、8,000G、20分間)に掛けて、不溶性のロウ部分等を沈殿として分離除去した。上清(約120 ml)をセルロースチューブ(三光純薬株式会社)中に回収し、PBSに対して透析を行って低分子夾雑物等を除去した。透析済みサンプルは、500 ml 容量のガラス製ブフナ型濾過器(三商製)を用いて、陰イオンクロマトグラフィによる精製に付した。すなわち、上記濾過器に入れた強陰イオン交換樹脂(Q-Sepharose Fast Flow、GEヘルスケア社)をPBSで平衡化し、上記透析済みサンプルを静かにアプライした。PBS で溶出を行い、素通り画分を回収した。回収した素通り液に対して、スピンカラムチューブ(50 ml Macrosep、10K MWCO)を用いた遠心分離(4℃、5,000G、30分間)を行い、得られた上清を次工程のためのサンプルとした。このサンプルについて、限外濾過フィルター(NMWL:10,000、ミリポア社)が装着された限外濾過器を用いて限外濾過濃縮を行った。限外濾過濃縮後のサンプルを、HiLoad 16/60 Superdex 75 prep gradeカラム(0.5×0.5×60 cm、GEヘルスケア社)にアプライした。流速1.0 ml/分にて、バッファーはPBSを使用して、ゲル濾過クロマトグラフィを行った。試験管1本当たり2 ml分取して、96本の画分に分画し、60本目付近の画分を回収した。
[Fractionation of homogenized solution of hornworms]
We collected hornworm scale insects parasitizing the snowy willows in Toyo University Itakura Campus (Ikura, Gunma Prefecture). In order to prepare a homogenized solution of collected hornworm scales, homogenize using about 3200 animals (approx. 150 g in wet weight) with PBS (phosphate buffered saline, 0.15 M NaCl, pH 7.4). did. The volume of the homogenizing solution in a PBS suspension was about 200 ml. This homogenized solution was centrifuged (4 ° C., 8,000 G, 20 minutes) to separate and remove insoluble wax and the like as precipitates. The supernatant (about 120 ml) was collected in a cellulose tube (Sanko Junyaku Co., Ltd.) and dialyzed against PBS to remove low molecular impurities and the like. The dialyzed sample was subjected to purification by anion chromatography using a 500 ml glass buchner type filter (manufactured by Sansho). That is, a strong anion exchange resin (Q-Sepharose Fast Flow, GE Healthcare) placed in the filter was equilibrated with PBS, and the dialyzed sample was gently applied. Elution was performed with PBS, and the flow-through fraction was collected. The collected flow-through solution is centrifuged (4 ° C, 5,000G, 30 minutes) using a spin column tube (50 ml Macrosep, 10K MWCO), and the resulting supernatant is used as a sample for the next step. did. This sample was subjected to ultrafiltration concentration using an ultrafilter equipped with an ultrafiltration filter (NMWL: 10,000, Millipore). The sample after ultrafiltration concentration was applied to a HiLoad 16/60 Superdex 75 prep grade column (0.5 × 0.5 × 60 cm, GE Healthcare). Gel filtration chromatography was performed using PBS as the buffer at a flow rate of 1.0 ml / min. A 2 ml aliquot was taken per test tube and fractionated into 96 fractions, and the fractions near the 60th were collected.

図2に、ゲル濾過クロマトグラフィのクロマトグラムを示す。後述するCC-IV画分(本発明のポリペプチドを含む画分)に対応する溶出位置を矢印で示している。分子量3,000〜70,000の範囲の分離能を有するSuperdex 75カラムを用いた場合において、本発明のポリペプチドは最後に溶出するピークに含まれることがわかる。   FIG. 2 shows a chromatogram of gel filtration chromatography. The elution position corresponding to the CC-IV fraction (fraction containing the polypeptide of the present invention) described later is indicated by an arrow. It can be seen that when a Superdex 75 column having a resolution in the molecular weight range of 3,000 to 70,000 is used, the polypeptide of the present invention is contained in the last eluted peak.

[溶血活性を有する画分の同定]
図3に示すように、96ウェルプレートの各ウェルに、PBSで血球分2%(v/v)に希釈したヒツジの血液を入れ、同体積のゲル濾過クロマトグラフィ画分を、溶出順に従って左上から右下のウェルへと加えていった。ここでは、96ウェルプレートの横の並びを「行」と呼び、縦の並びを「列」と呼ぶ。
[Identification of fractions having hemolytic activity]
As shown in FIG. 3, sheep blood diluted to 2% (v / v) blood cells with PBS was placed in each well of a 96-well plate, and the same volume of gel filtration chromatography fraction was added from the upper left according to the elution order. Added to the lower right well. Here, the horizontal arrangement of the 96-well plate is called “row”, and the vertical arrangement is called “column”.

第1行目や第8行目においては、赤血球が画分による影響を受けずにウェルの底に沈殿していることがわかる。第3行目前後の画分においては、血液凝集活性が存在し、赤血球が凝集してウェル中でネットワーク構造を形成して液の懸濁を生じさせている。一方、第6行目の第2〜7列目においては、赤血球が溶解して均一な赤色溶液を生じる溶血活性が見られた(なお、図3の写真では、凝集しているウェルと溶血しているウェルとが区別しにくいが、実際にはこれらは肉眼または顕微鏡によって明確に区別され得る)。この第6行目第2〜7列目の範囲の画分を合わせたものをCC-IV画分と呼び、これは、図2において矢印で示したピークに対応する。   In the first and eighth lines, it can be seen that the red blood cells have settled at the bottom of the well without being affected by the fraction. In the fractions before and after the third row, blood agglutinating activity is present, and erythrocytes aggregate to form a network structure in the well, causing suspension of the liquid. On the other hand, in the 2nd to 7th columns of the 6th row, hemolytic activity was observed in which the red blood cells were lysed to produce a uniform red solution (in the photograph in FIG. Are difficult to distinguish from wells that are present, but in practice they can be clearly distinguished by the naked eye or by a microscope). A combination of the fractions in the range of the sixth row and the second to seventh columns is referred to as a CC-IV fraction, which corresponds to the peak indicated by the arrow in FIG.

図4は、サイズマーカー(第1レーン)、透析後のサンプル(第2レーン)、陰イオンクロマトグラフィ後の素通り画分サンプル(第3レーン)、およびCC-IV画分のサンプル(第4レーン)をSDS-PAGEで分析した結果を示す。CC-IVは約10〜11 kDaの単一のポリペプチドを実質的に純粋な状態で含むことが示されている。また、同サンプルについて質量分析(MALDI-TOF/MS)を行うことより、この本発明のポリペプチドの分子量が10.9 kDaであることが確認された(データは図示していない)。なお、図4において、レーン間の濃度は統一されておらず、特にCC-IVのレーンには濃縮された試料が適用されている。   Figure 4 shows a size marker (1st lane), a sample after dialysis (2nd lane), a flow-through sample after anion chromatography (3rd lane), and a sample of CC-IV fraction (4th lane) The result of having analyzed by SDS-PAGE is shown. CC-IV has been shown to contain a single polypeptide of approximately 10-11 kDa in a substantially pure state. Further, by performing mass spectrometry (MALDI-TOF / MS) on the sample, it was confirmed that the molecular weight of the polypeptide of the present invention was 10.9 kDa (data not shown). In FIG. 4, the concentration between lanes is not uniform, and a concentrated sample is applied particularly to the CC-IV lane.

[pH安定性試験]
CC-IVサンプルの溶血活性についてのpH安定性を調べるために、以下の緩衝液を、各pHについて0.1 Mの濃度で調製した:クエン酸緩衝液(pH 4.0、5.0、5.8)、リン酸緩衝液(pH 5.7、6.0、7.0、8.0)、トリス緩衝液(pH 7.2、8.0、9.0)、グリシン緩衝液(pH 8.6、9.0、10.0、10.6、11.0、11.5)。これらの緩衝液をサンプルと等倍(緩衝液25μl:サンプル25μl)にし、2倍希釈系列で2%(v/v)ヒツジ血液に添加し、室温で1時間放置した。
[PH stability test]
To examine the pH stability for the hemolytic activity of CC-IV samples, the following buffers were prepared at a concentration of 0.1 M for each pH: citrate buffer (pH 4.0, 5.0, 5.8), phosphate buffer Solution (pH 5.7, 6.0, 7.0, 8.0), Tris buffer (pH 7.2, 8.0, 9.0), glycine buffer (pH 8.6, 9.0, 10.0, 10.6, 11.0, 11.5). These buffers were made the same volume as the sample (buffer solution 25 μl: sample 25 μl), added to 2% (v / v) sheep blood in a 2-fold dilution series, and left at room temperature for 1 hour.

図5にpH安定性試験の結果を示す。表内の数値は、希釈倍率を表す。広いpH範囲において、32倍あるいは64倍にまで希釈したサンプルによる溶血活性が検出された。   FIG. 5 shows the results of the pH stability test. The numerical values in the table represent the dilution factor. Over a wide pH range, hemolytic activity was detected with samples diluted to 32-fold or 64-fold.

[温度安定性試験]
CC-IVサンプルの溶血活性についての温度安定性を調べるために、0℃から70℃までの温度(10℃間隔)にて、2倍希釈のCC-IVサンプルを10分間放置した。それからすぐに4℃に置いた後、上記pH安定性試験と同様に、96ウェルUボトムプレート中にサンプル(25μl)を2倍希釈系列で調製し(希釈溶媒はPBS)、これに2%(v/v)赤血球浮遊液を同体積(25μl)添加し、プレートを振とう後、室温で1〜2時間静置した。その後、溶血状態を確認した。
[Temperature stability test]
To examine the temperature stability of the CC-IV sample for hemolytic activity, the CC-IV sample diluted 2 times was left for 10 minutes at a temperature from 0 ° C. to 70 ° C. (10 ° C. interval). Then, immediately after placing at 4 ° C, as in the above pH stability test, a sample (25 µl) was prepared in a 2-fold dilution series in a 96-well U bottom plate (dilution solvent was PBS), and 2% v / v) The same volume (25 μl) of erythrocyte suspension was added, the plate was shaken, and allowed to stand at room temperature for 1-2 hours. Thereafter, the hemolysis state was confirmed.

図6に温度安定性試験の結果を示す。縦軸はAU(Activity Unit)を表し、希釈率に対応する。0〜40℃の温度におけるインキュベート後には安定して溶血活性が維持されていたが、50℃以上の温度では溶血活性が失活したことが示されている。これらの結果は、CC-IVポリペプチド(タンパク質)によって溶血活性が提供されており、50℃以上の温度ではこのポリペプチドが熱変性するということと適合する。なお、データは図示していないが、CC-IVポリペプチドにプロテアーゼ活性は検出されず、CC-IVポリペプチドはプロテアーゼ酵素活性とは異なる機能により溶血を達成していると見られる。   Figure 6 shows the results of the temperature stability test. The vertical axis represents AU (Activity Unit) and corresponds to the dilution rate. Although the hemolytic activity was stably maintained after incubation at a temperature of 0 to 40 ° C., it was shown that the hemolytic activity was inactivated at a temperature of 50 ° C. or higher. These results are consistent with the fact that the CC-IV polypeptide (protein) provides hemolytic activity and that the polypeptide is heat denatured at temperatures above 50 ° C. Although data is not shown, protease activity is not detected in CC-IV polypeptide, and CC-IV polypeptide appears to have achieved hemolysis with a function different from protease enzyme activity.

[糖による溶血阻害の検証]
ある種の生物由来のレクチン(糖結合タンパク質)は溶血活性を有することが知られている(非特許文献2)。そこで、CC-IVのポリペプチドがレクチンであるという仮説を検証するべく、糖による阻害実験を行った。結果を図7に示す。多様な単糖類、二糖類、および糖タンパク質を、図7の上部に示す異なる濃度で添加した(ただし、BSA(ウシ血清アルブミン)、フェチュイン、アシアロフェチュイン、ムチン、および卵アルブミンに関しては、一番左側のウェルが終濃度0.5 mg/mlによる添加であり、右側の各ウェルはその2倍ごとの段階希釈である)。しかしながら、いずれにおいても、糖によるCC-IVの溶血活性の阻害は検出されなかった(図7)。この結果は、CC-IVのポリペプチドはレクチンではないことを示唆するものである。
[Verification of hemolysis inhibition by sugar]
It is known that a lectin (sugar binding protein) derived from a certain organism has hemolytic activity (Non-patent Document 2). In order to verify the hypothesis that the CC-IV polypeptide is a lectin, an inhibition experiment with sugar was conducted. The results are shown in FIG. A variety of monosaccharides, disaccharides, and glycoproteins were added at different concentrations shown at the top of FIG. 7 (however, for BSA (bovine serum albumin), fetuin, asialofetuin, mucin, and egg albumin) The left well is added at a final concentration of 0.5 mg / ml, and each well on the right is a 2-fold serial dilution). However, in any case, inhibition of the hemolytic activity of CC-IV by sugar was not detected (FIG. 7). This result suggests that CC-IV polypeptide is not a lectin.

[動物種特異性の評価]
異なる動物種(ヒツジ、ウシ、ウマ、ニワトリ)の血液を用いて、CC-IVの溶血活性を調べた。2%(v/v)の血液希釈液に対して2倍希釈系列のCC-IV溶液を添加した点は上記の実験と同様である。図8に示すように、CC-IVポリペプチドは、いずれの動物種の血液に対しても溶血活性を示したが、動物種によって溶血の強さに違いがあることが確認された。これは、この溶血性ポリペプチドが、動物種間の細胞膜の構造の違いを認識している可能性を示唆するものである。
[Evaluation of animal species specificity]
The hemolytic activity of CC-IV was examined using blood from different animal species (sheep, cow, horse, chicken). The point that a 2-fold dilution series CC-IV solution was added to 2% (v / v) blood dilution was the same as in the above experiment. As shown in FIG. 8, the CC-IV polypeptide showed hemolytic activity against blood of any animal species, but it was confirmed that there was a difference in hemolysis strength depending on the animal species. This suggests that this hemolytic polypeptide may recognize the difference in cell membrane structure between animal species.

[細胞毒性の評価]
非特許文献2には、溶血活性を有するレクチンが、溶血活性と同様の機序を通じて、非赤血球細胞に対する細胞毒性をも有する例が記載されている。CC-IVポリペプチドが、赤血球以外の細胞に対して毒性を有する可能性を検証するべく、ベロ(Vero)細胞(1×104細胞/ウェル)を使用して、当業者に知られる標準的なMTTアッセイによって細胞毒性試験を行った。ベロ細胞は、アフリカミドリザルの腎臓上皮細胞に由来する接着性の不死化細胞株であり、毒素のスクリーニングに一般的に用いられる。図9に細胞毒性試験の結果を示す。横軸は添加されたCC-IVポリペプチドの濃度、縦軸はベロ細胞の生存率を示す。プラス(+)はFBS(ウシ胎児血清)添加培地(すなわち、細胞培養用の通常の培地)を表し、マイナス(−)はFBS無添加培地を表す。例えばレクチンの細胞毒性を評価する際には、FBSに含まれる種々の糖成分等がアッセイに影響することが知られているため、FBSマイナスで試験することが一般的である。CC-IVポリペプチドの場合、FBSマイナス培地中のベロ細胞に対して、20μg/mlの濃度において細胞毒性が検出された。これは毒素として一般的な毒性である。
[Evaluation of cytotoxicity]
Non-Patent Document 2 describes an example in which a lectin having hemolytic activity also has cytotoxicity against non-erythroid cells through a mechanism similar to that of hemolytic activity. Standards known to those skilled in the art using Vero cells (1 × 10 4 cells / well) to verify the potential of CC-IV polypeptides to be toxic to cells other than erythrocytes Cytotoxicity tests were performed by a novel MTT assay. Vero cells are adherent immortalized cell lines derived from African green monkey kidney epithelial cells and are commonly used for toxin screening. FIG. 9 shows the results of the cytotoxicity test. The horizontal axis indicates the concentration of the added CC-IV polypeptide, and the vertical axis indicates the survival rate of Vero cells. Plus (+) represents a medium supplemented with FBS (fetal bovine serum) (that is, a normal medium for cell culture), and minus (-) represents a medium without FBS. For example, when evaluating the cytotoxicity of a lectin, it is known that various sugar components contained in FBS affect the assay, and therefore testing with FBS minus is common. In the case of CC-IV polypeptide, cytotoxicity was detected at a concentration of 20 μg / ml against Vero cells in FBS minus medium. This is a general toxicity as a toxin.

[血球系悪性腫瘍に対する細胞毒性の評価]
U937細胞(1×104細胞/ウェル)を用いて、上記ベロ細胞の実験と同様にして細胞毒性を調べた。U937細胞は、ヒト血球(リンパ系)由来の悪性腫瘍(がん)であり、浮遊性の細胞株である。図10に結果を示す。図9と同じく、横軸は添加されたCC-IVポリペプチドの濃度、縦軸はU937細胞の生存率を示す。U937細胞に対しては、ベロ細胞よりもさらに強い毒性が検出された。
[Evaluation of cytotoxicity against hematological malignancies]
Cytotoxicity was examined using U937 cells (1 × 10 4 cells / well) in the same manner as in the Vero cell experiment. U937 cells are malignant tumors (cancers) derived from human blood cells (lymphoid system) and are floating cell lines. The results are shown in FIG. As in FIG. 9, the horizontal axis represents the concentration of the added CC-IV polypeptide, and the vertical axis represents the survival rate of U937 cells. For U937 cells, even stronger toxicity than Vero cells was detected.

[N末端アミノ酸配列の決定]
図4に示した例と同様にCC-IVサンプルを電気泳動したSDS-PAGEのゲルから、バンドの部分を切り出して約14μgのポリペプチドを取得し、これをプロテインシーケンサーを用いたエドマン分解法に供して、N末端のアミノ酸配列決定を行った。その結果、GSGSVLVRNSGGYVATFSMA(配列番号1)という配列が得られた。
[Determination of N-terminal amino acid sequence]
As in the example shown in Fig. 4, from the SDS-PAGE gel obtained by electrophoresis of CC-IV sample, the band portion was cut out to obtain about 14 μg of polypeptide, which was then subjected to Edman degradation using a protein sequencer. The N-terminal amino acid sequence was determined. As a result, a sequence called GSGSVLVRNSGGYVATFSMA (SEQ ID NO: 1) was obtained.

NCBI(The National Center for Biotechnology Information)のウェブサイトにて利用可能であるBLASTアルゴリズムを用いたホモロジーサーチにより、GenBankデータベース中に配列番号1と類似の配列が存在するか否かを調べたところ、完全同一の配列はデータベース中に存在していなかった。一方で、配列番号1の最初の15アミノ酸のみが、Leifsonia xyli(サトウキビわい化病の原因となる細菌)の1-ホスホフルクトキナーゼのC末端寄り内部配列と88%の同一性を有することが見出された。その他、より類似性の低い(すなわち、同一性のパーセンテージがより低いか、またはアラインメント可能な配列がより短い)配列が多数見出された。これらは主に細菌の配列であり、昆虫の配列は含まれていなかった。   A homology search using the BLAST algorithm available on the NCBI (The National Center for Biotechnology Information) website was used to check whether there was a sequence similar to SEQ ID NO: 1 in the GenBank database. The same sequence was not present in the database. On the other hand, only the first 15 amino acids of SEQ ID NO: 1 have 88% identity with the C-terminal internal sequence of 1-phosphofructokinase of Leifsonia xyli (bacteria causing sugarcane dwarf disease) It was found. Many other sequences were found that were less similar (ie, have a lower percentage of identity or a shorter alignable sequence). These were mainly bacterial sequences and did not contain insect sequences.

以上のように、BLASTアルゴリズムによる「ヒット」を示す一定数の配列が見出されたものの、配列番号1に対するそれらの配列類似性は非常に限定的であり、そのような限定的な配列類似性が生物学的意義を有するか否かを判断することは不可能であった。いずれにせよ、溶血活性または細胞毒性を明らかに示唆するタンパク質配列は、BLASTアルゴリズムによるホモロジーサーチの結果中に見出されなかった。   Although a certain number of sequences showing “hits” by the BLAST algorithm were found as described above, their sequence similarity to SEQ ID NO: 1 is very limited, and such limited sequence similarity It was impossible to determine whether or not has biological significance. In any case, protein sequences that clearly suggest hemolytic activity or cytotoxicity were not found in the results of homology searches with the BLAST algorithm.

本発明は、溶血活性または細胞毒性を活用する医学・薬学・獣医学・畜産分野等において利用することができる。本発明における活性成分はポリペプチドであり、従って、ポリペプチドの分野で知られる様々な化学修飾もしくは類似体の適用、または遺伝子組換え技術の適用によって、機能調節および大量生産の可能性が存在する。例えば、本発明のポリペプチドの細胞結合能について、化学修飾または配列改変を通して細胞特異性を付与することによって、特定の細胞を標的とする細胞毒性を提供し得る。従って本発明は、さらに幅広く農薬や殺菌剤としての応用可能性も有する。   The present invention can be used in the fields of medicine, pharmacy, veterinary medicine, livestock and the like that utilize hemolytic activity or cytotoxicity. The active ingredient in the present invention is a polypeptide, and therefore there is a possibility of functional regulation and mass production by application of various chemical modifications or analogs known in the field of polypeptides, or by application of genetic recombination techniques. . For example, the cell binding ability of the polypeptides of the present invention can provide cytotoxicity targeting specific cells by conferring cell specificity through chemical modification or sequence modification. Therefore, the present invention has a wider range of applicability as agricultural chemicals and fungicides.

Claims (6)

配列番号1で表されるアミノ酸配列を含む、ツノロウムシ由来のポリペプチド。 A polypeptide derived from a hornworm, comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1. 請求項1に記載のポリペプチドを含む、溶血剤組成物。 A hemolytic agent composition comprising the polypeptide according to claim 1. 赤血球を含む液体試料に、請求項1に記載のポリペプチドまたは請求項2に記載の組成物を接触させることを含む、溶血方法。 A hemolysis method comprising contacting the polypeptide of claim 1 or the composition of claim 2 with a liquid sample containing erythrocytes. 前記液体試料が血液を含む、請求項3に記載の溶血方法。 4. The hemolysis method according to claim 3, wherein the liquid sample contains blood. 請求項1に記載のポリペプチドを含む、細胞毒性組成物。 A cytotoxic composition comprising the polypeptide of claim 1. 請求項1に記載のポリペプチドを含む、抗腫瘍組成物。 An antitumor composition comprising the polypeptide of claim 1.
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