JP2015089366A - 大豆由来糖液の製造方法および化学品の製造方法 - Google Patents

Abstract

【課題】優れた発酵効率を有する大豆由来糖液の製造方法および化学品の製造方法を提供する。
【解決手段】本発明による大豆由来糖液の製造方法は、大豆および／または大豆加工物から大豆由来糖液を製造する方法であって、大豆および／または大豆加工物と、極性有機溶媒および水を含む含水極性有機溶媒とを混合した後固液分離して、大豆由来糖成分および前記極性有機溶媒を含む糖液を得る工程（１）と、工程（１）で得られた糖液から極性有機溶媒を除去して糖懸濁液を得る工程（２）と、工程（２）で得られた糖懸濁液をエステラーゼ処理し、大豆由来糖液を得る工程（３）と、を含むことを特徴とする。
【選択図】なし

Description

本発明は、大豆または大豆加工物から大豆由来糖液を製造する方法および化学品の製造方法に関する。

大豆は、植物性タンパク質、油脂に加え、スクロース、ラフィノース、スタキオースなどの糖成分を含んでいる。こうした大豆由来の糖成分を発酵原料として使用し、エタノールやブタノールを生産する方法などが開示されている（非特許文献１参照、非特許文献２参照）。例えば、非特許文献１には、大豆由来の糖類として含まれるオリゴ糖にα−ガラクトシダーゼを添加して加水分解し、微生物が利用可能なグルコース、ガラクトースなどに変換することで、発酵産物の収率が改善することが開示されている。

また、大豆または大豆原料由来抽出物には、ポリフェノールの１種であるイソフラボン、ステロイド、ステロイドアルカロイド・トリテルペンの１種であるサポニン、リン脂質の１種であるレシチンなどの単糖およびオリゴ糖以外の有機化合物が含まれることが知られている。サポニンまたはイソフラボンは、生理活性作用があることから、大豆原料からの分離抽出が検討されている。例えば、大豆モラセスにアセトンを添加し、固液分離した液体側からサポニンを回収する方法（特許文献１参照）や、限外濾過膜を使用してイソフラボンを分離回収する方法（特許文献２参照）などが開示されている。

特開２００８−５１７８７５号公報 特許第３９１９８７１号公報

Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕａｌ ａｎｄ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ ２０１３；６（１）６２−６８ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｉｎｄｕｓｔｒｉａｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ ＆ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，２００１；２６（５）：２９０−２９５

しかしながら、大豆由来糖液には、微生物の増殖や代謝を阻害する物質（以下、発酵阻害物質ともいう。）が懸濁物質からなる固形物に含まれているため、従来の大豆由来糖液を発酵原料として使用する場合、大豆由来糖液に含まれる懸濁物質の存在により、微生物を用いて化学品などの発酵産物の生産効率を更に向上させることが困難であった。

そのため、大豆由来糖液をより有効利用するにあたり、大豆由来糖液を用いて化学品などの発酵産物の収率を更に向上させることができる大豆由来糖液の製造方法が求められている。

本発明は、かかる状況に鑑み、優れた発酵効率を有する大豆由来糖液の製造方法および化学品の製造方法を提供することを課題とする。

上述した課題を解決するため、本発明者らは、大豆由来糖液の製造方法について鋭意検討を行った。その結果、大豆由来糖液に含まれる発酵阻害物質を予め除去することで、大豆由来糖液を発酵原料（炭素源）などに用いる場合に、微生物の増殖速度や化学品の生産速度および蓄積濃度を向上させることができることを発見した。この得られた知見に基づいて、大豆由来糖成分を含む糖液にエステラーゼを混合して糖液に残留する発酵阻害物質を分解して除去することにより、大豆由来糖液に残留する発酵阻害物質を低減することができるため、大豆由来糖液の発酵効率を向上させ、化学品など発酵産物の生産速度、蓄積濃度を更に向上させることができることを見出した。本発明は、かかる知見に基づいて完成されたものである。

すなわち、本発明による大豆由来糖液の製造方法は、大豆および／または大豆加工物から大豆由来糖液を製造する方法であって、前記大豆および／または大豆加工物と、極性有機溶媒および水を含む含水極性有機溶媒とを混合した後、固液分離して大豆由来糖成分および前記極性有機溶媒を含む糖液を得る工程（１）と、前記工程（１）で得られた前記糖液から極性有機溶媒を除去して糖懸濁液を得る工程（２）と、前記工程（２）で得られた前記糖懸濁液をエステラーゼ処理し、大豆由来糖液を得る工程（３）と、を含むことを特徴とする。

本発明においては、前記工程（３）のエステラーゼが、カルボキシルエスタラーゼ、アリルエステラーゼ、トリアシルグリセロールリパーゼ、ホスホリパーゼ、リソホスホリパーゼ、アセチルエステラーゼ、アセチルコリンエステラーゼ、ブチリルコリンエステラーゼ、トロピンエステラーゼ、およびペクチンエステラーゼからなる群から選択される１種以上を含むことが好ましい。

本発明においては、前前記工程（３）のエステラーゼが、トリコデルマ属、アスペルギルス属、ペニシリウム属、フサリウム属、およびアクレモニウム属のいずれか１種であることが好ましい。

本発明においては、前記極性有機溶媒が、エタノールであることが好ましい。

本発明においては、前記工程（１）において、前記大豆および／または大豆加工物と前記含水極性有機溶媒とを混合した際に、下記式（Ｉ）により算出される有機溶媒濃度が、５０〜９０％（ｗ／ｗ）の範囲であることが好ましい。
有機溶媒濃度＝添加する含水有機溶媒中の有機溶媒質量／（大豆および／または大豆加工物に含まれる水分質量＋添加する含水有機溶媒の全質量） ・・・（Ｉ）

本発明においては、前記工程（２）において、前記糖液を、加熱および／または減圧して極性有機溶媒を除去することが好ましい。

本発明においては、前記工程（３）で得られた前記糖液を、固液分離して精製大豆由来糖液を得る工程（４）を含むことが好ましい。

本発明においては、前記工程（４）において、前記大豆由来糖液のｐＨを、０．５〜３．５の範囲に調製した後、固液分離することが好ましい。

本発明においては、前記工程（４）で得られた前記精製大豆由来糖液を、ナノ濾過膜および／または逆浸透膜を用いて、糖濃縮液を得る工程（５）を含むことが好ましい。

本発明においては、前記工程（３）において、前記糖懸濁液にαガラクトシダーゼおよび／またはインベルターゼを添加して、前記糖懸濁液中のオリゴ糖成分を加水分解する、を混合することが好ましい。

本発明においては、工程（４）において、前記大豆由来糖液にαガラクトシダーゼおよび／またはインベルターゼを添加して、前記大豆由来糖液中の前記大豆由来糖成分を加水分解することが好ましい。

本発明においては、工程（５）において、前記精製大豆由来糖液にαガラクトシダーゼおよび／またはインベルターゼを添加して、前記大豆由来糖液中の前記大豆由来糖成分を加水分解することが好ましい。

本発明の別の態様による化学品の製造方法は、上記いずれかの大豆由来糖液の製造方法を用いて得られた大豆由来糖液を発酵原料として微生物を培養し、化学品を製造することを特徴とする。

本発明においては、前記化学品が、アルコール、または有機酸であることが好ましい。

本発明によれば、糖液に含まれる発酵阻害物質をエステラーゼを用いて分解して除去することで、大豆由来糖液に残留する発酵阻害物質を低減することができるため、大豆および／または大豆加工物から、優れた発酵効率を有する大豆由来糖液を製造することができる。

以下、本発明を実施するための形態について詳細に説明する。

＜大豆由来糖液の製造方法＞
本発明による大豆由来糖液の製造方法は、以下の工程を含むものである。以下、各工程について説明する。
工程（１）：大豆および／または大豆加工物と、極性有機溶媒および水を含む含水極性有機溶媒とを混合した後、固液分離して大豆由来糖成分および前記極性有機溶媒を糖液を得る工程
工程（２）：工程（１）で得られた前記糖液から極性有機溶媒を除去して糖懸濁液を得る工程
工程（３）：工程（２）で得られた前記糖懸濁液をエステラーゼ処理し、大豆由来糖液を得る工程

なお、本明細書において、糖成分とは、水溶性の糖のことをいう。水溶性の糖成分としては、単糖とオリゴ糖との２種に分類される。特に、単糖とは、グルコース、ガラクトースなどの１分子からなる糖である。オリゴ糖とは、２〜１０個の単糖がグリコシド結合によって結合した糖類のことをいう。また、大豆由来糖とは、大豆原料に含まれるオリゴ糖の総称であり、主にスクロース、ラフィノース、スタキオースなどを含んで構成されている。この大豆由来糖は、大豆オリゴ糖ともいう。また、大豆とは、生大豆のことであり、皮付きの大豆、皮を除去した大豆のどちらであってもよい。また、予め粉砕してもよい。大豆加工物は、前述した糖を含むものであればよく、大豆を水に浸漬したものや、大豆を熱水で抽出して得られる豆乳、またはその固形残渣であるオカラ、さらに豆乳から酸沈殿等によりタンパク質等を沈殿除去して得られる大豆ホエー、または大豆から溶媒抽出により脂質を抽出除去した残渣である脱脂大豆などが好ましく用いられる。

［工程（１）：極性有機溶媒による大豆由来糖成分の回収］
工程（１）では、大豆および／または大豆加工物を、極性有機溶媒および水を含む含水極性有機溶媒に添加して、大豆および／または大豆加工物と、極性有機溶媒および水を含む含水極性有機溶媒とを混合する。これにより、大豆および／または大豆加工物由来のタンパク質を主成分とする沈殿物が含水極性有機溶媒中に形成される。

含水極性有機溶媒とは、極性有機溶媒と水との混合液である。極性有機溶媒は、大豆中の糖類を溶解でき、かつ大部分のタンパク質が溶解しないものであれば好ましく使用できる。極性有機溶媒としては、例えば、エタノール、メタノール、アセトン、アセトニトリル、プロパノール、ブタノール、イソブタノール、プロパンジオール、ブタンジオールなどが使用できる。大豆由来糖液を食品用途などへ使用するという観点から、極性有機溶媒としては、特にエタノールが好ましく用いられる。

含水極性有機溶媒の濃度は、特に限定されないが、下記式（Ｉ）：
有機溶媒濃度＝添加した含水有機溶媒中の有機溶媒質量／（大豆および／または大豆加工物に含まれた水分質量＋添加した含水有機溶媒の全質量） ・・・（Ｉ）
により算出される。

水と極性有機溶媒の比率は、特に限定されないが、上記式（Ｉ）により算出される有機溶媒濃度は、５０〜９０％（ｗ／ｗ）の範囲であることが好ましい。有機溶媒濃度が９０％（ｗ／ｗ）以下の場合には、大豆由来糖成分が析出して沈殿することを抑制でき、有機溶媒濃度が５０％（ｗ／ｗ）以上の場合には、タンパク質を中心とする不純物の沈殿物が十分形成されるからである。

含水極性有機溶媒の添加量は、特に限定されないが、後述の固液分離後に得られる有機溶媒含有糖液中の糖濃度が１〜３０％（ｗ／ｗ）の範囲となる添加量であることが好ましく、１０〜２５％（ｗ／ｗ）の範囲となる添加量であることがより好ましい。有機溶媒含有糖液中の糖濃度が、１％（ｗ／ｗ）以上の場合には、後段において大豆由来糖を濃縮するためのエネルギーまたはコストを抑制できる。また、有機溶媒含有糖液中の糖濃度が、３０％（ｗ／ｗ）以下の場合には、大豆由来糖成分が析出して沈殿することを抑制でき、大豆由来糖の収率が損なわれることを抑制できる。なお、糖濃度は、従来より公知の装置を用いて測定することができ、例えば、高速液体クロマトグラフィー（Ｈｉｇｈ ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ ｌｉｑｕｉｄ ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ：ＨＰＬＣ)を用いて標品との比較により定量し、求めることができる。

また、本明細書において、糖濃度とは、特に断りのない限り、スクロース、ラフィノース、およびスタキオースを含む糖濃度の和をいう。

大豆および／または大豆加工物と含水極性有機溶媒との混合時間は、特に限定されないが、１分〜１０時間が好ましく、１０分〜３時間であることがより好ましい。混合時間が１分以上の場合には、大豆由来糖成分の抽出が十分であり、混合時間が１０時間以下の場合には、大豆由来糖成分の抽出量がそれ以上増大することはなく、十分な時間であるからである。

大豆および／または大豆加工物と含水極性有機溶媒との混合時の温度は、特に限定されるものではないが、１０℃〜９０℃が好ましく、２０℃〜４０℃がより好ましい。混合時の温度が１０℃以上の場合には、大豆由来糖成分が極性有機溶媒中に析出するのを抑制でき、９０℃以下の場合には、大豆由来糖の変性が起きることを抑制できるためである。また、混合時の温度が９０℃以下の場合には、メイラード反応により褐変を生じる可能性を低くすることができる。

次に、大豆および／または大豆加工物と含水極性有機溶媒とを混合した後、大豆由来糖成分を含む極性有機溶媒と、沈殿物とを固液分離する。

固液分離の方法は、特に限定されるものではなく、従来より公知の一般の固液分離の方法を使用することができる。固液分離の方法として、例えば、遠心分離、フィルタープレス、ベルトフィルター、自然沈降による分離、メッシュスクリーンによる濾過、不織布による濾過、濾紙による濾過などが挙げられる。極性有機溶媒と沈殿物との固液分離方法は、単独で用いてもよいし、複数を組み合わせて用いてもよい。中でも粒子状の固形物を効率よく除去でき、かつ除去した固形物を圧搾することにより、より多くの糖液を回収することができるという観点から、フィルタープレスを用いることが最も好ましい。

固液分離の方法を用いて、大豆由来糖成分を含む含水極性有機溶媒から沈殿物を除去した後、含水極性有機溶媒を含む糖液（以下、「有機溶媒含有糖液」ともいう。）を回収する。有機溶媒含有糖液としては、例えば、大豆オリゴ糖などの大豆由来糖成分およびその他不純物を含む極性有機溶媒の上清が好適に用いることができる。

［工程（２）：極性有機溶媒の蒸発除去］
工程（２）では、上記工程（１）で得られた糖液から極性有機溶媒を除去して糖懸濁液を得る。

有機溶媒含有糖液から極性有機溶媒を除去する方法としては、有機溶媒含有糖液を、加熱および／または減圧して、極性有機溶媒を蒸発させて除去する方法が好適に用いられる。極性有機溶媒を蒸発させて除去する方法を用いる場合には、装置は特に限定されるものではなく、エバポレーター、加熱缶、効用缶、多重効用缶など従来より公知の装置を用いて行なうことができる。

極性有機溶媒を蒸発させる場合の温度は、特に限定されるものではないが、１０〜１００℃が好ましい。温度が１０℃以上であれば、極性有機溶媒の蒸発量は十分であり、温度が１００℃以下であれば、メイラード反応による褐変を引き起こす可能性を低くすることができるためである。

糖懸濁液に残留する極性有機溶媒の濃度は、特に限定されないが、後述の工程（３）において、酵素であるエステラーゼの反応を阻害しないか失活させない濃度であればよく、１０％（ｖｏｌ／ｖｏｌ）以下が好ましく、１％（ｖｏｌ／ｖｏｌ）以下であることがより好ましい。

本工程において、極性有機溶媒を蒸発させて有機溶媒含有糖液から除去した場合、蒸発した極性有機溶媒は、冷却トラップなどにより回収し、再び工程（１）の極性有機溶媒として再利用することができる。

また、本発明において、糖純度とは、下記式（１）の通り糖の質量の合計値（ｇ）を、水溶液中の全蒸発残留物（以下、ＴＳともいう。）の質量（ｇ）によって除した値とする。
糖純度（％）＝糖の質量の合計値（ｇ）／水溶液中のＴＳ質量（ｇ） ・・・（１）

［工程（３）：糖懸濁液のエステラーゼ処理］
工程（３）では、工程（２）で得られた糖懸濁液にエステラーゼを混合し、糖懸濁液にエステラーゼ処理を施すことにより、大豆由来糖液が得られる。工程（３）において、糖懸濁液中の不純物にエステラーゼを作用させることにより、糖懸濁液に残留する懸濁物質中の発酵阻害物質を分解処理することができる。なお、本明細書では、糖懸濁液にエステラーゼを混合し、糖懸濁液中の不純物にエステラーゼを作用させることを、エステラーゼ処理という。

また、発酵阻害とは、微生物による糖消費速度の低減、増殖速度の低減、微生物の発酵産物の収率低減など具体的な指標によって示すことができ、精製された糖試薬における微生物の発酵性と比較することによって発酵阻害の程度を比較することが可能である。

本発明において、エステラーゼとは、カルボン酸とアルコールの脱水縮合したエステル結合を加水分解する触媒作用を有する酵素のことをいう。エステラーゼとして、具体的には、カルボキシルエスタラーゼ、アリルエステラーゼ、トリアシルグリセロールリパーゼ、ホスホリパーゼ、リソホスホリパーゼ、アセチルエステラーゼ、アセチルコリンエステラーゼ、ブチリルコリンエステラーゼ、トロピンエステラーゼ、ペクチンエステラーゼなどを例示でき、これらのエステラーゼが好ましく使用することができる。前記エステラーゼは、トリコデルマ属、アスペルギルス属、ペニシリウム属、フサリウム属、アクレモニウム属のいずれか１種に由来するエステラーゼであることが好ましい。これは、前記微生物由来のエステラーゼは、前述工程（２）で得られた糖懸濁液に対して高い活性を示すためである。エステラーゼは、これらの１種または２種以上の成分を組み合わせて用いてもよい。

上述の工程（２）で得られた糖懸濁液には、大豆由来糖成分の他に様々な不純物が含まれる。不純物としては脂質が最も多く含まれ、次いで、サポニン、イソフラボン、レシチンなどの両親媒性物質が含まれる。このような両親媒性物質は、微生物の増殖や代謝などを阻害するため、発酵阻害物質ともいう。また、糖懸濁液は、さらに微量のタンパク質を含んでいる。脂質、両親媒性物質、およびタンパク質などのこれら不純物が複合的に作用し、糖懸濁液中に非常に安定なミセル状の懸濁物質を形成しているため、これら不純物と糖とを分離することは困難である。本工程において、糖懸濁液にエステラーゼを添加して混合することにより、エステラーゼが大豆由来のレシチンのエステル結合に作用して、レシチンが加水分解していることなどが推定される。また、エステラーゼが他の化合物の加水分解も同時に起きている可能性がある。よって、糖懸濁液にエステラーゼを混合して、糖懸濁液に含まれる発酵阻害物質にエステラーゼを作用させることにより、発酵阻害物質を分解することができるため、糖懸濁液中の懸濁物質の固液分離の性能を格段に向上させることができる。

本発明において、エステラーゼ処理のｐＨは、特に限定されないが、エステラーゼの至適ｐＨであることが好ましい。特に、トリコデルマ属、アスペルギルス属、ペニシリウム属、フサリウム属、アクレモニウム属の場合、至適ｐＨが４〜６の範囲であって、工程（２）で得られる糖懸濁液のｐＨが通常４．５〜５．５程度であることから、ｐＨ調整は適宜必要な場合にのみ行うようにすればよい。

本発明において、エステラーゼ処理時の糖懸濁液の温度は、使用するエステラーゼの至適温度とすることが好ましく、エステラーゼ処理の温度は、２０℃〜７０℃の範囲で行なうことが好ましい。

糖懸濁液のｐＨ調整に使用する酸またはアルカリは、特に限定されるものではない。酸としては、例えば、塩酸、硫酸、硝酸、リン酸などが挙げられ、発酵時の阻害が起こりにくい観点から、硫酸、硝酸、リン酸が好ましく、経済性の観点から、硫酸を用いることがより好ましい。アルカリとしては、経済性の観点から、アンモニア、水酸化ナトリウム、水酸化カルシウムとそれらを含む水溶液が好ましく、膜ファウリングの観点から、１価イオンであるアンモニア、水酸化ナトリウムがより好ましく、発酵時の阻害が起こりにくい観点から、アンモニアがさらに好ましい。

本発明において、エステラーゼの添加量、およびエステラーゼを添加する処理時間は、特に限定されず、大豆由来糖液の発酵性が十分に改善されるように調節すればよい。一般に、エステラーゼの添加量を増やせば、エステラーゼのコストが増大するが、必要な処理時間は短くなり、設備コストが低減できる。一方、エステラーゼの添加量を減らせば、エステラーゼのコストは低減できるが、必要な処理時間は長くなり、設備コストが増大する。そのため、エステラーゼの添加量と処理時間は、適宜調節することが好ましい。

このように、本発明による大豆由来糖液の製造方法は、上記工程（１）〜工程（３）を含んでおり、工程（３）において、糖懸濁液に含まれる懸濁物質を分解し、糖懸濁液から予め除去することができるため、純度および清澄性の高い大豆由来糖液を得ることができる。このため、本発明による大豆由来糖液の製造方法を用いれば、大豆および／または大豆加工物から、優れた発酵効率を有する大豆由来糖液を製造することができる。このようにして得られた大豆由来糖液を発酵原料（炭素源）に用いることで、微生物の増殖速度や、化学品の生産速度および蓄積濃度を向上させることができるため、大豆由来糖液の発酵効率を向上させ、化学品などの発酵産物の収率を更に向上させることができる。また、大豆由来糖液を発酵原料として使用した場合、大豆由来糖液の攪拌などを容易に行なうことができると共に、凝集沈殿を生じることなく、微生物による化学品などの発酵生産を容易に行なうことができる。

化学品の具体例としては、エタノール、１，３−プロパンジオール、１，４−ブタンジオール、グリセロールなどのアルコール類、酢酸、乳酸、ピルビン酸、コハク酸、リンゴ酸、イタコン酸、クエン酸などの有機酸、イノシン、グアノシンなどのヌクレオシド、イノシン酸、グアニル酸などのヌクレオチド、カダベリンなどのアミン化合物、アミノ酸、核酸など発酵工業において大量生産されている物質などを挙げることができる。こうした化学品は、糖液中の糖成分を炭素源として、その代謝の過程において生体内外に化学品として蓄積生産する。

［工程（４）：大豆由来糖液の固液分離による精製］
工程（３）で得られた大豆由来糖液は、上記のような懸濁物質に起因して生じた固形物を含んでいる。そのため、本発明においては、工程（３）で得られた前記大豆由来糖液を、固液分離して、精製大豆由来糖液を得る工程（工程（４））を含むことが好ましい。。工程（４）において、大豆由来糖液に含まれる固形物を除去することによって、大豆由来糖液を原料とする化学品製造時の大豆由来糖液のハンドリング性、または大豆由来糖液の発酵性を更に向上させることができる。

固液分離の方法は、特に限定されず、上記工程（１）の固液分離の方法と同様、遠心分離、フィルタープレス、ベルトフィルター、自然沈降による分離、メッシュスクリーンによる濾過、不織布による濾過、ろ紙、精密濾過膜による濾過、およびこれらの組み合わせなどを使用することができる。中でも遠心分離が好ましく、連続的に上清の回収を行うことができる連続遠心機を用いることがより好ましい。連続遠心機としては、スクリューデカンタやデラバル型の遠心機などが好適に用いられる。

前記工程（４）において、大豆由来糖液を固液分離する場合、大豆由来糖液のｐＨは、０．５〜３の範囲であることが好ましい。大豆由来糖液のｐＨを上記範囲内とすることにより、大豆由来糖液に含まれる固形物を固液分離する時の大豆由来糖液の固液分離性を向上させることができる。

［工程（５）：大豆由来精製糖液の濃縮］
また、本発明においては、工程（４）で得られた大豆由来精製糖液を、ナノ濾過膜および／または逆浸透膜を用いて濾過する工程（工程（５））を含むことが好ましい。工程（５）において、工程（４）で得られた大豆由来精製糖液を、ナノ濾過膜および／または逆浸透膜を用いて濾過することにより、非透過液として、非透過側から糖成分が濃縮された糖濃縮液を得ることができる。また、ナノ濾過膜および／または逆浸透膜の透過液に、大豆由来精製糖液中に残留する塩またはその他低分子の不純物を含めて除去することができる。したがって、工程（４）で得られた大豆由来精製糖液を、ナノ濾過膜および／または逆浸透膜に通じて処理することによって、大豆由来精製糖液が濃縮および精製されるため、さらに濃度および純度が高い糖濃縮液を得ることができる。

本発明において使用されるナノ濾過膜とは、ナノフィルター（ナノフィルトレーション膜、ＮＦ膜）とも呼ばれるものであり、「一価のイオンは透過し、二価のイオンを阻止する膜」と一般に定義される膜である。数ナノメートル程度の微小空隙を有していると考えられる膜で、主として、水中の微小粒子や分子、イオン、塩類等を阻止するために用いられる。

本発明において使用される逆浸透膜とは、ＲＯ膜とも呼ばれるものであり、「一価のイオンを含めて脱塩機能を有する膜」と一般に定義される膜である。数オングストロームから数ナノメートル程度の超微小空隙を有していると考えられる膜で、主として海水淡水化や超純水製造などイオン成分除去に用いられる。

本発明で使用されるナノ濾過膜または逆浸透膜の素材には、酢酸セルロース系ポリマー、ポリアミド、ポリエステル、ポリイミド、ビニルポリマー、ポリサルホンなどの高分子素材を使用することができるが、前記１種類の素材で構成される膜に限定されず、複数の膜素材を含む膜であってもよい。

本発明で用いるナノ濾過膜は、スパイラル型の膜エレメントが好ましく使用される。好ましいナノ濾過膜エレメントの具体例としては、例えば、酢酸セルロース系のナノ濾過膜エレメントであるＧＥ Ｏｓｍｏｎｉｃｓ社製ＧＥｓｅｐａ、ポリアミドを機能層とするアルファラバル社製ナノ濾過膜エレメントのＮＦ９９またはＮＦ９９ＨＦ、架橋ピペラジンポリアミドを機能層とするフィルムテック社製ナノ濾過膜エレメントのＮＦ−４５、ＮＦ−９０、ＮＦ−２００、ＮＦ−２７０またはＮＦ−４００、または架橋ピペラジンポリアミドを主成分とする東レ株式会社製ナノ濾過膜のＵＴＣ６０を含む同社製ナノ濾過膜エレメントＳＵ−２１０、ＳＵ−２２０、ＳＵ−６００またはＳＵ−６１０が挙げられ、より好ましくは、上記のＮＦ９９またはＮＦ９９ＨＦ、上記のＮＦ−４５、ＮＦ−９０、ＮＦ−２００またはＮＦ−４００、または、上記のＳＵ−２１０、ＳＵ−２２０、ＳＵ−６００またはＳＵ−６１０であり、さらに好ましくは、上記のＳＵ−２１０、ＳＵ−２２０、ＳＵ−６００またはＳＵ−６１０である。

本発明で使用される逆浸透膜の素材としては、酢酸セルロース系のポリマーを機能層とした複合膜（以下、酢酸セルロース系の逆浸透膜ともいう）またはポリアミドを機能層とした複合膜（以下、ポリアミド系の逆浸透膜ともいう）が挙げられる。ここで、酢酸セルロース系のポリマーとしては、酢酸セルロース、二酢酸セルロース、三酢酸セルロース、プロピオン酸セルロース、酪酸セルロース等のセルロースの有機酸エステルの単独もしくはこれらの混合物並びに混合エステルを用いたものが挙げられる。ポリアミドとしては、脂肪族および／または芳香族のジアミンをモノマーとする線状ポリマーまたは架橋ポリマーが挙げられる。

本発明で使用される逆浸透膜の具体例としては、例えば、東レ株式会社製ポリアミド系逆浸透膜モジュールである超低圧タイプのＳＵＬ−Ｇ１０、ＳＵＬ−Ｇ２０、低圧タイプのＳＵ−７１０、ＳＵ−７２０、ＳＵ−７２０Ｆ、ＳＵ−７１０Ｌ、ＳＵ−７２０Ｌ、ＳＵ−７２０ＬＦ、ＳＵ−７２０Ｒ、ＳＵ−７１０Ｐ、ＳＵ−７２０Ｐの他、逆浸透膜としてＵＴＣ８０を含む高圧タイプのＳＵ−８１０、ＳＵ−８２０、ＳＵ−８２０Ｌ、ＳＵ−８２０ＦＡ、同社酢酸セルロース系逆浸透膜ＳＣ−Ｌ１００Ｒ、ＳＣ−Ｌ２００Ｒ、ＳＣ−１１００、ＳＣ−１２００、ＳＣ−２１００、ＳＣ−２２００、ＳＣ−３１００、ＳＣ−３２００、ＳＣ−８１００、ＳＣ−８２００、日東電工株式会社製ＮＴＲ−７５９ＨＲ、ＮＴＲ−７２９ＨＦ、ＮＴＲ−７０ＳＷＣ、ＥＳ１０−Ｄ、ＥＳ２０−Ｄ、ＥＳ２０−Ｕ、ＥＳ１５−Ｄ、ＥＳ１５−Ｕ、ＬＦ１０−Ｄ、アルファラバル製ＲＯ９８ｐＨｔ、ＲＯ９９、ＨＲ９８ＰＰ、ＣＥ４０４０Ｃ−３０Ｄ、ＧＥ製ＧＥ Ｓｅｐａ、Ｆｉｌｍｔｅｃ製ＢＷ３０−４０４０、ＴＷ３０−４０４０、ＸＬＥ−４０４０、ＬＰ−４０４０、ＬＥ−４０４０、ＳＷ３０−４０４０、ＳＷ３０ＨＲＬＥ−４０４０、ＫＯＣＨ製ＴＦＣ−ＨＲ、ＴＦＣ−ＵＬＰ、ＴＲＩＳＥＰ製ＡＣＭ−１、ＡＣＭ−２、ＡＣＭ−４などが挙げられる。

濾過の方法としては、圧濾過、真空濾過、遠心濾過などがあるが、特に限定されるものではない。また、濾過操作として、定圧濾過、定流量濾過、非定圧非定流量濾過に大別されるが特に限定されない。また、濾過操作としては、懸濁物質に起因して生じる固形分を効率的に除去するために、上記膜のいずれかを２回以上使用する多段的な濾過でもよく、またその際使用する膜の素材および性状に関しても特に限定されるものではない。

また、ナノ濾過膜および逆浸透膜を用いた濾過方法としては、具体的には、例えば、国際公開第２０１０／０６７７８５号に記載されている方法に準じて行うことができる。

［その他の工程：大豆由来糖の加水分解］
本発明において、上記工程（３）において得られる大豆由来糖液、上記工程（４）の固液分離によって得られる大豆由来精製糖液、または上記工程（５）で得られる糖濃縮液は、大豆由来糖成分を含んでいるため、加水分解を行なうことが好ましい。加水分解の方法は、酵素を使用することが好ましく、例えば、α−ガラクトシダーゼ、インベルターゼなどを使用することができる。例えば、酵素として、α−ガラクトシダーゼを添加することにより、ラフィノース（３糖）、スタキオース（４糖）などを加水分解することができ、またインベルターゼを添加することによりスクロースを加水分解することができる。このような大豆由来糖成分を加水分解することによって、微生物の種類によっては大豆由来糖成分の利用効率を高めることができる。

本発明において使用する、α−ガラクトシダーゼおよび／またはインベルターゼとしては、糸状菌、担子菌、酵母、バクテリアなどの微生物由来の酵素を使用することができる。また、反応条件は、使用する酵素に応じて、最適な反応時間、ｐＨ、添加量、温度を適宜設定する。

このように、本発明による大豆由来糖液の製造方法を用いて得られる大豆由来糖液、精製糖液、および糖濃縮液（以下、大豆由来糖液など、という）は、発酵阻害物質の大部分が除去された糖液である。そのため、大豆由来糖液などは、食品、医薬品の原料として使用することができる。また、大豆由来糖液などは、特に、発酵阻害物質が低減されていることから、微生物を使用して発酵生産する発酵産物の発酵原料（炭素源）に使用することができ、微生物を使用して化学品を発酵生産するのに好適に使用することができる。例えば、大豆由来糖液などを発酵原料として、化学品を生産する能力を有する微生物を生育させることで、各種化学品を製造することができる。なお、微生物を生育させるとは、糖液に含まれる糖成分またはアミノ源を微生物の栄養素として利用し、微生物の増殖、生育維持を行うことを意味する。

また、本発明による大豆由来糖液の製造方法を用いて得られる大豆由来糖液などは、発酵産物として、化学品の他に、酵素、抗生物質、組換えタンパク質などの生産にも適用することができる。

こうした化学品、酵素、抗生物質、組換えタンパク質などの製造に使用する微生物は、目的の化学品などを効率的に生産可能な微生物であればよく、例えば、大腸菌、酵母、糸状菌、担子菌などの微生物を使用することができる。

以下、本発明の大豆由来糖液の製造方法に関し、さらに詳細に説明するために実施例を挙げて具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。

以下の実施例および比較例において、糖濃度、オリゴ糖純度、タンパク質濃度、エタノール濃度、および乳酸濃度は、以下のようにして測定した。

［参考例１：糖濃度の測定］
各実施例、比較例において得られた糖液（水溶液）に含まれる単糖（グルコース、ガラクトース、フルクトース、スクロース、ラフィノース、およびスタキオース）の各濃度は、下記に示す高速液体クロマトグラフィー（Ｈｉｇｈ ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ ｌｉｑｕｉｄ ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ：ＨＰＬＣ)条件で分析し、標品との比較により定量した。
（ＨＰＬＣ条件）
機器：ＡＣＱＵＩＴＹ ＵＰＬＣ システム（Ｗａｔｅｒｓ社製）
カラム：ＡＣＱＵＩＴＹ ＵＰＬＣ ＢＥＨ Ａｍｉｄｅ １．７μｍ ２．１×１００ｍｍ Ｃｏｌｕｍｎ（Ｗａｔｅｒｓ社製）
移動相：Ａ液；８０％アセトニトリル＋０．２％ＴＥＡ、Ｂ液；３０％アセトニトリル＋０．２％ＴＥＡ
流速：０．１２ｍＬ／ｍｉｎ
温度：３５℃

［参考例２：糖純度の測定］
糖純度（％）は、下記式（１）の通り、上記参考例１に記載の方法によって測定した各糖（スクロース、ラフィノース、スタキオース）の質量（ｇ）の合計値を、水溶液中の全蒸発残留物（ＴＳ）の質量（ｇ）によって除した値とした。水溶液中のＴＳ質量は、赤外式水分計（ＦＤ−７２０、Ｋｅｔｔ社製）を使用して測定した。なお、ＴＳ質量を全水溶液の質量で除した値を、ＴＳ濃度（％（ｗ／ｗ））という。
糖純度（％）＝各糖（スクロース、ラフィノース、スタキオース）の質量の合計値（ｇ）／水溶液中のＴＳ質量（ｇ） ・・・（１）

［参考例３：濁度の測定］
水溶液の濁度は、濁度計（ポータブル濁度計、２１００Ｐ、Ｈａｃｈ社製）を使用して測定した（単位は、ＮＴＵ）。なお、本装置の濁度の測定上限は、１０００ＮＴＵであるため、以下の実施例および比較例では、濁度の測定上限を超えるものは全て「１０００（ＮＴＵ）以上」と記載した。

［参考例４：大豆由来糖液を使用したエタノールおよび乳酸の発酵生産］
（前培養）
下記ＹＰＤ培地２ｍＬを試験管に投入し、１２１℃にて２０分間オートクレーブ殺菌した。放冷後、クリーンベンチ内にて、下記ＹＰＤ寒天培地でのプレート培養（３０℃、２４時間）して形成された酵母のコロニー１つを、白金耳を使用して植菌した。これを、振とう装置（ＴＡＩＴＥＣ社製 ＢＩＯ−ＳＨＡＫＥＲ ＢＲ−４０ＬＦ）を用いて、３０℃、１２０ｒｐｍで２４時間振とう培養し、前培養液を得た。
ＹＰＤ培地：酵母エキス１％（ｗ／ｖｏｌ）、バクトペプトン（Ｄｉｆｃｏ社製）２％（ｗ／ｖｏｌ）、グルコース２％（ｗ／ｖｏｌ）
ＹＰＤ寒天培地：上記ＹＰＤ培地組成に加え、寒天２％（ｗ／ｖｏｌ）を含む。
（本培養１：エタノールの発酵生産）
発酵原料となる大豆由来糖液に、水酸化カリウム水溶液（５ｍｏｌ／Ｌ）を加えてｐＨ５．５となるように調整した。このうち１０ｍＬを、上記前培養液０．５ｍＬとともに試験管に投入・混合した。これを、３０℃、１２０ｒｐｍにて４３時間振とう培養した。
（本培養２：乳酸の発酵生産）
発酵原料となる大豆由来糖液に、水酸化カリウム水溶液（５ｍｏｌ／Ｌ）を加えてｐＨ５．５となるように調整し、更に炭酸カルシウムを２％（ｗ／ｖｏｌ）の終濃度となるように添加した。このうち１０ｍＬを、上記前培養液０．５ｍＬとともに試験管に投入して混合した。これを３０℃、１２０ｒｐｍにて６８時間振とう培養した。

［参考例５：エタノール濃度の測定］
水溶液中のエタノール濃度は、下記に示すガスクロマトグラフィー（ＧＣ）条件で、水素塩イオン化検出器により検出して算出し、標品との比較により定量した。
機器：Ｓｈ ｉｍａｄｚｕ ＧＣ−２０１０（株式会社島津製作所製）
カラム：ＴＣ−１（内径０．５３ｍｍ、長さ１５ｍ、膜厚１．５０μｍ（ＧＬ サイエンス株式会社製）
検出方法：水素炎イオン化検出器（ＦＩＤ）

［参考例６：乳酸濃度の測定］
水溶液中の乳酸濃度は、下記に示すＨＰＬＣ条件で、標品との比較により定量した。
カラム：Ｓｈｉｍ−Ｐａｃｋ ＳＰＲ−Ｈ（株式会社島津製作所製）
移動相：５ｍＭ ｐ−トルエンスルホン酸（流速０．８ｍＬ／分）
反応液：５ｍＭ ｐ−トルエンスルホン酸、２０ｍＭ ビストリス、０．１ｍＭ ＥＤＴＡ・２Ｎａ（流速０．８ｍＬ／分）
検出方法：電気伝導度
温度：４５℃

＜実施例１：大豆由来糖液の製造＞
（工程（１）：極性有機溶媒による大豆由来糖成分の回収）
無調整豆乳と９６％（ｖｏｌ／ｖｏｌ）エタノールとを、液量比で３：７の割合で混合した後、十分に攪拌した。これを、遠心分離装置を用いて８０００Ｇで、１分間、遠心分離した後、上清として、有機溶媒含有糖液を回収した。

（工程（２）：極性有機溶媒の蒸発除去）
上記工程（１）で得られた上清のうちの６００ｍＬを、１Ｌ容積のナスフラスコに投入し、ロータリーエバポレータ（ＮＶＣ−２１００、ＥＹＥＬＡ社製）および湯浴（ＳＢ−１０００、ＥＹＥＬＡ社製）を使用して、５０℃、２３０ｈＰａの条件下減圧濃縮を行った。濃縮は、液量が１５０ｍＬになるまで行い、残った液を糖懸濁液として回収した。なお、必要量の糖懸濁液が得られるまで本工程を繰り返し行った。得られた糖懸濁液中の糖濃度、糖純度、濁度、および固形物濃度（ＴＳ濃度）を、参考例１〜３に記載の方法で測定した結果を、表１に示す。

（工程（３）：大豆由来糖液の作製）
上記工程（２）で得られた糖懸濁液を水で希釈し、固形物濃度が３５％になるように調整した。硫酸（３ｍｏｌ／Ｌ）を使用してｐＨ５．０に調整してよく攪拌した後、液量１Ｌに対して、表２に示す各種エステラーゼを添加した（最終濃度１０ｍｇ酵素／Ｌ懸濁液）。反応は、５０℃、２４時間保温することで行なった。各エステラーゼ処理で得られた大豆由来糖液を、大豆ＥＳ１、大豆ＥＳ２、大豆ＥＳ３、大豆ＥＳ４として、以下、実施例に使用した。

＜実施例２：工程（４）の大豆由来糖液の固液分離＞
前記実施例１で得られた大豆由来糖液（大豆ＥＳ１、大豆ＥＳ２、大豆ＥＳ３、大豆ＥＳ４）の固液分離を行なった。固液分離は、遠心分離機を使用して行い、８０００Ｇとして１０分行なった。遠心分離後、得られた上清を、大豆ＥＳ１（ＳＬ）、大豆ＥＳ２（ＳＬ）、大豆ＥＳ３（ＳＬ）、大豆ＥＳ４（ＳＬ）として、以下の実施例に使用した。

＜比較例１：工程（３）（エステラーゼ処理）を行わない場合＞
比較例として、工程（３）のエステラーゼ処理を実施しない大豆由来糖液（大豆ＮＣ）、アミラーゼ処理を行なった大豆由来糖液（大豆ＡＭ）、およびエンドグルカナーゼ処理をした大豆由来糖液（大豆ＥＧ）を、それぞれ以下の手順で調整した。

工程（１）および工程（２）は、実施例１に準じて行なった。工程（３）において、大豆ＮＣは、工程（３）のエステラーゼを添加することなく、実施例１と同じく、５０℃で２４時間保温することによって調整した。大豆ＡＭおよび大豆ＥＧは、グルコアミラーゼ（Ｅ−ＧＡＭＰ、Ｍｅｇａｚｙｍｅ社製）、およびエンドグルカナーゼ（Ｅ−ＣＥＬＡＮ、Ｍｅｇａｚｙｍｅ社製）をそれぞれ添加し、実施例１と同様に、５０℃で２４時間保温することによって調整した。

＜実施例３：大豆由来糖液からのエタノールの発酵生産＞
参考例４に記載のエタノールの発酵生産方法において、酵母として、サッカロマイセス・セレビシエＯＣ２株（ＡＴＣＣ ４６２７６）、キャンディダ・トロピカリスＮＢＲＣ０１９９株、キャンディダ・ユーティリスＮＢＲＣ０９８８株の３種を用い、かつそれぞれについて、原料として、実施例１に記載の工程（３）で得られる大豆由来糖液、および実施例２に記載の固液分離後の大豆由来糖液のそれぞれ４種と、比較例１で得られる大豆由来糖液（大豆ＮＣ、大豆ＡＭ、および大豆ＥＧ）の３種とを使用した場合、すなわち、合計１１通りの場合について、エタノールの発酵生産を行なった。

３種の微生物のそれぞれをＹＰＤプレート（２％グルコース、１％酵母エキス、２％ペプトン、２％精製寒天、１２１℃−２０ｍｉｎ高圧蒸気滅菌）にグリセロールストックとして保存していた菌を播種してコロニー形成させた。２ｍＬのＹＰＤ（２％グルコース、１％酵母エキス、２％ペプトン、１２１℃−２０ｍｉｎ高圧蒸気滅菌）培地を入れた試験管に白金耳を用いてプレート上のコロニーを植菌し、３０℃、１２０ｍｉｎ^−１で振とう培養した（前培養）。各大豆由来糖液を１０ｍＬ入れた試験管に前培養液を５％植菌し、３０℃、１２０ｍｉｎ^−１で振とう培養した（本培養）。２４時間後に試験管を回収し、各糖濃度およびエタノール濃度を、参考例１、５に従ってそれぞれ測定した結果を、表３〜表５に示す。

表３〜表５から明らかなように、いずれの酵母を使用した場合も、原料としてエステラーゼ処理を行なった実施例１および実施例２の糖液の方が、エステラーゼ処理を行なっていない比較例１の糖液よりもエタノールの蓄積濃度が共に高くなった。また、エステラーゼ処理を行なった実施例１よりも、エステラーゼ処理後に固液分離を行なった実施例２の糖液の方が、エタノールの蓄積濃度が更に高くなった。よって、エステラーゼ処理を行なって得られた糖液を用いることで、エタノールの蓄積濃度を高くすることができることが確認された。

＜実施例３：大豆由来糖液からのＤ−乳酸の発酵生産＞
参考例４に記載の乳酸の発酵生産方法において、酵母として国際公開公報第２０１０／１４０６０２号に記載の方法で作製したＤ−乳酸生産酵母を使用し、大豆由来糖液として、実施例１に記載の工程（３）で得られる大豆由来糖液、および実施例２に記載の固液分離後の精製糖液のそれぞれ４種と、比較例１で得られる大豆由来糖液（大豆ＮＣ、大豆ＡＭ、および大豆ＥＧ）の３種とを使用した場合、すなわち、合計１１通りの場合について、乳酸の発酵生産を行なった。

ＹＰＤプレートにグリセロールストックとして保存していた上記Ｄ−乳酸酵母を播種してコロニー形成させた。２ｍＬのＹＰＤ培地を入れた試験管に白金耳を用いてプレート上のコロニーを植菌し、３０℃、１２０ｍｉｎ^−１で振とう培養した（前培養）。各大豆由来糖液９ｍＬと２００ｇ／Ｌの炭酸カルシウム懸濁液１ｍＬとを添加した試験管に前培養液を５％植菌し、３０℃、１２０ｍｉｎ^−１で振とう培養した（本培養）。２４時間後に試験管を回収し、参考例１に記載の方法で各糖濃度を測定し、乳酸濃度を参考例６に従って測定した結果を、表６に示す。

表６から明らかなように、いずれの酵母を使用した場合も、原料としてエステラーゼ処理を行なった実施例１および実施例２の糖液の方が、エステラーゼ処理を行なっていない比較例１の糖液よりも乳酸の蓄積濃度が共に高くなった。また、エステラーゼ処理を行なった実施例１よりも、エステラーゼ処理後に固液分離を行なった実施例２の糖液の方が、乳酸の蓄積濃度が更に高くなった。よって、エステラーゼ処理を行なって得られた糖液を用いることで、乳酸の蓄積濃度を高くすることができることが確認された。

Claims (14)

1. 大豆および／または大豆加工物から大豆由来糖液を製造する方法であって、
   前記大豆および／または大豆加工物と、極性有機溶媒および水を含む含水極性有機溶媒とを混合した後、固液分離して大豆由来糖成分および前記極性有機溶媒を含む糖液を得る工程（１）と、
   前記工程（１）で得られた前記糖液から前記極性有機溶媒を除去して糖懸濁液を得る工程（２）と、
   前記工程（２）で得られた前記糖懸濁液をエステラーゼ処理し、大豆由来糖液を得る工程（３）と、
   を含むことを特徴とする、大豆由来糖液の製造方法。
2. 前記工程（３）のエステラーゼが、カルボキシルエスタラーゼ、アリルエステラーゼ、トリアシルグリセロールリパーゼ、ホスホリパーゼ、リソホスホリパーゼ、アセチルエステラーゼ、アセチルコリンエステラーゼ、ブチリルコリンエステラーゼ、トロピンエステラーゼ、およびペクチンエステラーゼからなる群から選択される１種以上を含む、請求項１に記載の大豆由来糖液の製造方法。
3. 前記工程（３）のエステラーゼが、トリコデルマ属、アスペルギルス属、ペニシリウム属、フサリウム属、およびアクレモニウム属のいずれか１種である、請求項１または２のいずれかに記載の大豆由来糖液の製造方法。
4. 前記極性有機溶媒が、エタノールである、請求項１〜３のいずれか一項に記載の大豆由来糖液の製造方法。
5. 前記工程（１）において、前記大豆および／または大豆加工物と前記含水極性有機溶媒とを混合した際に、下記式（Ｉ）により算出される有機溶媒濃度が、５０〜９０％（ｗ／ｗ）の範囲である、請求項１〜４のいずれか一項に記載の大豆由来糖液の製造方法。
   有機溶媒濃度＝添加する含水有機溶媒中の有機溶媒質量／（大豆および／または大豆加工物に含まれる水分質量＋添加する含水有機溶媒の全質量） ・・・（Ｉ）
6. 前記工程（２）において、前記糖液を、加熱および／または減圧して極性有機溶媒を除去する、請求項１〜５のいずれか一項に記載の大豆由来糖液の製造方法。
7. 前記工程（３）で得られた前記大豆由来糖液を、固液分離して精製大豆由来糖液を得る工程（４）を含む、請求項１〜６のいずれか１に記載の大豆由来糖液の製造方法。
8. 前記工程（４）において、前記大豆由来糖液のｐＨを、０．５〜３．５の範囲に調製した後、固液分離する、請求項７に記載の大豆由来糖液の製造方法。
9. 前記工程（４）で得られた前記精製大豆由来糖液をナノ濾過膜および／または逆浸透膜を用いて、糖濃縮液を得る工程（５）を含む、請求項７または８に記載の大豆由来糖液の製造方法。
10. 工程（３）において、前記糖懸濁液にαガラクトシダーゼおよび／またはインベルターゼを混合して、前記糖懸濁液中の前記大豆由来糖成分を加水分解する、請求項１〜９のいずれか１に記載の大豆由来糖液の製造方法。
11. 工程（４）において、前記大豆由来糖液にαガラクトシダーゼおよび／またはインベルターゼを混合して、前記大豆由来糖液中の前記大豆由来糖成分を加水分解する、請求項７〜１０のいずれか１に記載の大豆由来糖液の製造方法。
12. 工程（５）において、前記精製大豆由来糖液にαガラクトシダーゼおよび／またはインベルターゼを混合して、前記精製大豆由来糖液中の前記大豆由来糖成分を加水分解する、請求項９〜１１のいずれか１に記載の大豆由来糖液の製造方法。
13. 請求項１〜１２のいずれか一項に記載の大豆由来糖液の製造方法を用いて得られた大豆由来糖液を発酵原料として微生物を培養し、化学品を製造することを特徴とする、化学品の製造方法。
14. 前記化学品が、アルコール、または有機酸である、請求項１３に記載の化学品の製造方法。