JP2014533495A - 第ｖｉｉｉ因子の生産のための方法 - Google Patents

Abstract

本発明は、哺乳動物細胞培養において第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドを生産する方法に関する。

Description

本発明は、第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドの生産のための方法に関する。

第ＶＩＩＩ因子は、重要な血液凝固因子である。第ＶＩＩＩ因子タンパク質の減少又は欠損をもたらす第ＶＩＩＩ因子遺伝子における突然変異は、再発性出血エピソードを特徴とする遺伝的疾患である血友病Ａを引き起こす。血友病Ａの治療は、血漿由来の又は組換えの第ＶＩＩＩ因子の静脈内注入を必要とする。

血漿由来の第ＶＩＩＩ因子は、血友病を治療するために使用することができるが、このアプローチを用いる場合、患者へのウイルスの感染を含む多数の問題が存在している。したがって、組換え的に発現された第ＶＩＩＩ因子を投与することが好ましい。

大量の第ＶＩＩＩ因子を、細胞培養物から取得することは困難である。第ＶＩＩＩ因子は、哺乳動物細胞において非常に低いレベルで発現されることが知られる。また、第ＶＩＩＩ因子は、無血清培地又は無タンパク質培地において不安定なタンパク質であることが知られる。様々な物質の添加が、組換え的に生産された第ＶＩＩＩ因子の収量を改善するために使用されている。例えば、高強度の緩衝剤を使用することは、第ＶＩＩＩ因子の収量を増大させる。しかしながら、この手荒な（harsh）処理は、細胞のその後の再使用を可能としない。

第ＶＩＩＩ因子の調節への洞察に関わらず、第ＶＩＩＩ因子の収量は、商業的な製造において使用される異種の系における他の組換えタンパク質よりも顕著に低い状態が続いている。ＷＯ２００８／１３５５０１は、第ＶＩＩＩ因子のＣ２ドメインと結合するリガンド（例えば、オルト−ホスホ−Ｌ−セリン（ＯＰＬＳ））を使用して、第ＶＩＩＩ因子の収量の改善を取得することを開示する。しかしながら、細胞培養物から単離することができる第ＶＩＩＩ因子の収量をさらに増大させるための方法及び組成物が必要とされている。

ＷＯ２００８／１３５５０１

驚くべきことに、本発明者らは、ホスファチジルセリンと結合する作用剤と培養細胞を接触させることによって、培養培地中に放出され、その後回収される第ＶＩＩＩ因子の量が、実質的に増大することを見出した。特に、第ＶＩＩＩ因子の収量は、第ＶＩＩＩ因子のＣ２ドメインと結合する作用剤であるＯＰＬＳが培養培地に添加される場合に観察される収量と比較して、顕著に増大する。

したがって、本発明は、第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドの生産のための方法であって、
ａ）前記ポリペプチドが発現されるような条件下で、第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドを発現することが可能である哺乳動物細胞を培養する工程；及び
ｂ）工程（ａ）中に又は工程（ａ）後に、ホスファチジルセリンと結合する作用剤と前記細胞を接触させる工程
を含む、方法を提供する。

本発明は、以下のものをさらに提供する：
− 血清を含まず、ｉ）ラクトアドヘリン、アネキシンＶ、抗リン脂質抗体及び第ＶＩＩＩ因子軽鎖から選択される作用剤、並びにｉｉ）オルト−ホスホ−Ｌ−セリン（ＯＰＬＳ）又は抗アポトーシスタンパク質を含む、細胞培養培地。
− 哺乳動物細胞培養物から単離することができる第ＶＩＩＩ因子の収量を増大させるための、ホスファチジルセリンと結合することが可能である化合物の使用。

配列
配列番号１（ヒトＢ−ドメイン欠失（deleted）第ＶＩＩＩ因子）：

配列番号２（ヒトアネキシンＶ）：

配列番号３（ヒトラクトアドヘリン）：

配列番号４（ヒト第ＶＩＩＩ因子軽鎖）：

配列番号５（ヒトラクトアドヘリンのＣ２ドメインの残基２０７〜３６４）：

配列番号６（ヒト第ＶＩＩＩ因子軽鎖のＣ２ドメイン）：

配列番号７：ＣＤ３３−ＦＬＡＧ−ラクトアドヘリン

発明の詳細な説明
本発明は、ホスファチジルセリンと結合する作用剤と第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドを発現する哺乳動物細胞を接触させることが、培養細胞培地からを回収することができる第ＶＩＩＩ因子の収量を実質的に増大させるという、予期せぬ知見に由来する。本発明は、したがって、第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドの生産のための方法であって、ａ）前記ポリペプチドが発現されるような条件下で、第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドを発現することが可能である哺乳動物細胞を培養する工程；及びｂ）工程（ａ）中に又は工程（ａ）後に、ホスファチジルセリンと結合する作用剤と前記細胞を接触させる工程を含む、方法に関する。

第ＶＩＩＩ因子ポリペプチド
成熟したヒト第ＶＩＩＩ因子分子は、Ａ１−Ａ２−Ｂ−Ａ３−Ｃ１−Ｃ２という順序に配列される３つの相同Ａドメイン、２つの相同Ｃドメイン、及びＢドメインへとグループ分けすることができる２３３２個のアミノ酸からなる。Ｂ−ドメイン由来の小リンカーと連結される第ＶＩＩＩ因子の重鎖（ＨＣ）及び軽鎖（ＬＣ）からなる第ＶＩＩＩ因子分子（Ｂ−ドメイン欠失第ＶＩＩＩ因子、又はＢＤＤ−ＦＶＩＩＩ）は、全長（未変性（native））第ＶＩＩＩ因子の生物学的活性を保持する。

本明細書において使用される場合、「第ＶＩＩＩ因子ポリペプチド」は、第ＶＩＩＩ因子、及び第ＶＩＩＩ因子関連ポリペプチド、好ましくはヒト第ＶＩＩＩ因子を包含するがこれらに限定されない。

「第ＶＩＩＩ因子ポリペプチド」は、Toole et al., Nature 1984, 312: 342-347に記載されるようなアミノ酸配列を有するポリペプチド（野生型ヒト第ＶＩＩＩ因子）、並びに例えばウシ、ブタ、イヌ、マウス及びサケの第ＶＩＩＩ因子等の、他の種由来の野生型第ＶＩＩＩ因子を含む。好ましくは、第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドは、ヒト第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドである。最も好ましくは、ヒト第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドは、Ｂ−ドメイン欠失／切断ヒト第ＶＩＩＩ因子である。

変異体を含む第ＶＩＩＩ因子関連ポリペプチドは、第ＶＩＩＩ因子の生物学的活性に関するアッセイにおいて試験された場合、同じ細胞型において生産された野生型第ＶＩＩＩ因子の少なくとも約１０％、少なくとも約２０％、少なくとも約３０％、少なくとも約４０％、少なくとも約５０％、少なくとも約６０％、少なくとも約７０％、少なくとも約８０％、少なくとも約９０％、少なくとも約１００％、少なくとも約１１０％、少なくとも約１２０％、及び少なくとも約１３０％の比活性を示すものを包含する。

第ＶＩＩＩ因子の生物学的活性に関する試験は、当該技術分野において既知である。例えば、１つの技法は、カルシウム及びリン脂質の存在下において第ＩＸａ因子による第Ｘ因子の活性化を刺激する第ＶＩＩＩ因子の試料の能力を試験することを伴う。

Ｂ−ドメイン欠失ヒト第ＶＩＩＩ因子のポリペプチド配列は、配列番号１に示される。

ベクター
第ＶＩＩＩ因子をコードする核酸分子は、挿入される配列と作動可能に連結される制御配列を含み、それによって、標的とされる細胞においてインビボで本発明のポリペプチドの発現を可能とする、発現カセットの形態で提供することができる。これらの発現カセットは、典型的には、ベクター（例えば、プラスミドベクター又は組換えウイルスベクター）内で提供される。したがって、本発明における使用のためのポリペプチドは、細胞へそのようなベクターを送達すること、及びベクターからの転写を起こさせることによって、取得することができる。

哺乳動物宿主細胞
本発明の方法は、哺乳動物細胞における第ＶＩＩＩ因子の生産を伴う。培養物中における第ＶＩＩＩ因子の生産に好適な任意の哺乳動物宿主細胞を、使用することができる。例えば、宿主細胞は、ヒト、マウス又はげっ歯類の細胞由来であり得る。宿主細胞は、第ＶＩＩＩ因子以外の目的のポリペプチドを発現するために使用することもできる。例えば、ホスファチジルセリンと結合することが可能であるポリペプチドを、第ＶＩＩＩ因子と前記ポリペプチドを同時発現することによって、第ＶＩＩＩ因子を発現する哺乳動物細胞と接触させることができる。

２つ以上の目的のポリペプチド、例えば第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドと、ホスファチジルセリンと結合することが可能であるポリペプチドとの両方が異種発現される細胞株が使用される場合、これらのタンパク質は、単一のベクターから、又は２つの別々のベクターから、発現することができる。タンパク質をコードする配列の２つ以上のコピーが、ベクター中に存在し得る。

現在のところ好ましい細胞は、ＨＥＫ２９３、ＣＯＳ、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞、ベビーハムスター腎臓（ＢＨＫ）及び骨髄腫細胞、特にチャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞である。

細胞培養
幾つかの実施形態では、本発明を実施する際に使用される細胞は、懸濁培養物において成長することが可能である。本明細書において使用される場合、懸濁物適格（competent）細胞は、大きく堅い凝集物を形成することなく懸濁物において成長することができる細胞、すなわち、凝集物１つ当たり数個の細胞のみを含む緩い凝集物において単分散状態である又は成長する細胞である。

本発明を実施する際に使用される細胞は、接着（adhesion）細胞（固着（anchorage）依存性細胞又は付着（attachment）依存性細胞としても知られる）であり得る。本明細書において使用される場合、接着細胞は、増殖及び成長に好適な表面に自らを接着又は固着させることを必要とする細胞である。

細胞生存率
細胞生存率は、全細胞試料に基づく生細胞又は死細胞の測定値である。細胞死は、ネクローシス及びアポトーシスという２つの異なる事象に分けることができる。ネクローシスは、疾患又は傷害の結果としての細胞の死である。細胞は膨潤し、それらの形質膜は崩壊し、細胞の内容物が細胞外空間中へと放出され、それらは多くの場合、炎症応答を誘発する。ネクローシスのプロセスは制御されない。他方、アポトーシスは、適当な誘発因子によって刺激されたときに、細胞を自己破壊させるメカニズムである。それは、細胞がもはや必要でないとき、細胞が生物の健康に対する脅威となるとき、又は他の理由で、開始されることがある。

細胞生存率に関する試験は通常、試料細胞集団を見ること、及び、細胞を染色すること又はどの細胞が生きておりどの細胞が死んでいるかを示すための化学物質を適用することを伴う。細胞生存率を測定するための多数の試験及び方法が存在する。

たいていの正常且つ生存する真核細胞においては、負に荷電したリン脂質ホスファチジルセリン（ＰＳ）は、形質膜脂質二重層の細胞質側に位置する。ホスファチジルセリンは、真核細胞のアポトーシス時に内葉（inner leaflet）から外葉（outer leaflet）へと再分配される。アネキシンＶは、ホスファチジルセリン（ＰＳ）と反応するＣａ＋＋依存性リン脂質結合タンパク質である。アポトーシスは、蛍光標識されたアネキシンＶとともに細胞をインキュベートすることによって、フローサイトメトリーにおいて検出することができる。ネクローシスの早い段階において、細胞膜は破壊された状態となり、アネキシンＶは、同様に、これらの細胞の内葉においてＰＳに接近することができる。

膜透過性を検出するための方法は、一般的（common）色素排除方法である。蛍光性の、ＤＮＡ結合プローブ、例えばヨウ化プロピジウム（ＰＩ）及び７−アミノアクチノマイシンＤ（７−ＡＡＤ）が、死にかけている細胞に侵入し、ＤＮＡを染色する。フローサイトメーターの知識を必要としない色素排除方法は、トリパンブルー及び血球計数器を使用する顕微鏡法のための色素排除手順である。

生存率を決定する他の方法は、代謝が活性な細胞の指標である細胞のＡＴＰ含有量に基づくものである。ＣｌｌＴｉｔｅｒ−ＧＬＯキットは、ＡＴＰを発光へと変換し、当該発光が、細胞の生存率に比例する。この方法は相対的なものであり、個々の細胞を研究することは可能ではない。

ラージスケール動物細胞培養が、製薬産業によって及びバイオテクノロジー会社によって、治療用タンパク質の生産において広範に使用される。培地枯渇を経験した細胞は、アポトーシス（飢餓誘導性アポトーシス）を介して死に、高いストレスレベル（例えば、ｐＨの急激な低下、又は高濃度の毒素）でのみ、細胞は、ネクローシスを介して死ぬ。

ＦＶＩＩＩ及びＦＶＩＩＩａは、その性質から、それらのホスファチジルセリンの露出によって活性化血小板と結合し、この細胞表面上で、ＦＶＩＩＩａ／ＦＩＸａ複合体が、インビボでＦＸを活性化する。アポトーシス細胞、又はネクローシス細胞由来の膜断片上のホスファチジルセリンも、ＦＶＩＩＩによって結合される。動物細胞培養におけるＦＶＩＩＩの生産は、死にかけている細胞とのＦＶＩＩＩの結合をもたらし、その結果として、ＦＶＩＩＩタンパク質は、そこに「捕捉される」。

細胞培地
「細胞培養培地」（又は、単に「培地」）という用語は、以下の分類：
（１）培地の浸透圧に寄与する、例えばナトリウム、カリウム、マグネシウム及びカルシウムの塩；（２）通常、炭水化物の形態である、エネルギー源、例えばグルコース；（３）全必須アミノ酸、通常、２０種類のアミノ酸の基礎セット；（４）低い濃度で必要とされるビタミン及び／又は他の有機化合物；並びに（５）微量元素（ここで、微量元素は、非常に低い濃度で、通常マイクロモルの範囲で典型的には必要とされる無機化合物と定義される）
の１つ又は複数から少なくとも１成分を典型的には供給する、哺乳動物細胞成長させるために使用される栄養溶液を表す。栄養溶液は、任意で、以下の分類：
（ａ）ホルモン及び他の成長因子、例えばインスリン、トランスフェリン及び上皮成長因子等；並びに（ｂ）タンパク質及び組織の加水分解産物
のいずれか由来の成分の１つ又は複数が添加される場合がある。好ましくは、細胞培養培地は、動物起源のいかなる成分をも含有しない。

一実施形態では、培地は、動物由来の成分を欠き、タンパク質を欠く（「無タンパク質」）。動物由来の成分及び／又はタンパク質を欠く培地は、商業的供給業者、例えば、Sigma、JRH Biosciences、Gibco、Hyclone及びGemini等から入手可能である。

一実施形態では、細胞培養培地は、血清を含まない。好ましくは、細胞培養培地は、０．２５体積％未満の血清を含む。さらなる実施形態では、培地は、タンパク質を全く含まず（「無タンパク質」）、動物由来の成分を欠く。

好ましくは、本発明の方法では、ヒト第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドを発現することが可能である哺乳動物細胞は、動物由来の成分を含まない細胞培地において培養され、ホスファチジルセリンと結合する作用剤、例えばラクトアドヘリンと、培地に前記作用剤を添加することによって、接触させられる。好ましくは、本発明の方法では、ヒト第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドを発現することが可能である哺乳動物細胞は、動物由来の成分を含まない細胞培地において培養され、ホスファチジルセリンと結合する作用剤、例えばアネキシンＶと、培地に前記作用剤を添加することによって、接触させられる。本発明との関係では、前記作用剤は、０．０１〜１００μＭ、例えば０．０１〜５０μＭ、０．０１〜２５μＭ、０．０１〜１０μＭ、若しくは０．０１〜１μＭ、０．０１〜０．１μＭ、０．１〜１００μＭ、０．１〜５０μＭ、０．１〜２５μＭ、０．１〜１０μＭ、０．１〜１μＭ、１〜１００μＭ、１〜５０μＭ、１〜２５μＭ、１〜１０μＭ、１０〜１００μＭ、１０〜５０μＭ、又は１０〜２５μＭ等の濃度で培養培地に添加され得る。

本発明の方法では、ホスファチジルセリンと結合する１つ又は複数の作用剤を、培養培地に添加することによって、培養細胞と接触させることができる。細胞培地は、また、細胞膜との第ＶＩＩＩ因子の結合を低減する、及び／又は第ＶＩＩＩ因子の安定性若しくは力価（titer）を改善する付加的な作用剤を含んでいてもよい。例えば、作用剤、例えばオルト−ホスホ−Ｌ−セリン（ＯＰＬＳ）、抗アポトーシスタンパク質又はヘパリンが、培養培地に添加され得る。

本発明の一実施形態では、本発明の方法における使用のための、血清を含まず、ｉ）ラクトアドヘリン、アネキシンＶ、抗リン脂質抗体及び第ＶＩＩＩ因子軽鎖から選択される化合物、並びにｉｉ）オルト−ホスホ−Ｌ−セリン（ＯＰＬＳ）又は抗アポトーシスタンパク質を含む、細胞培養培地が提供される。最も好ましくは、培養培地は、動物由来の成分を含まず、ラクトアドヘリン及びＯＰＬＳを含む。本発明の動物由来の成分を含まない培養培地は、第ＶＩＩＩ因子軽鎖及びＯＰＬＳを含み得る。典型的には、培養培地におけるＯＰＬＳの濃度は、１ Ｍ〜１００ｍＭ、１０ Ｍ〜５０ｍＭ、１００ Ｍ〜５０ｍＭ、１ｍＭ〜５０ｍＭ、又は１ｍＭ〜３０ｍＭである。

ラージスケール培養条件
本発明は特に、ラージスケール生産に関わりがある。「ラージスケール生産」という用語は、少なくとも１００Ｌの培養容器を伴う生産を意味する。しかしながら、好ましい実施形態では、スケールは、典型的には、少なくとも２５０Ｌ、例えば少なくとも５００Ｌ、例えば少なくとも１０００Ｌ、又はさらには５０００Ｌ以上である。「ラージスケール（large-scale）」という用語は、「工業スケール（industrial-scale）」及び「生産スケール（production-scale）」という用語と交換可能な用語として、使用することができる。

ホスファチジルセリンと結合する作用剤との細胞培養物の接触
本発明の一実施形態では、ホスファチジルセリンと結合する１つ又は複数の作用剤は、第ＶＩＩＩ因子を生産する培養細胞と接触させられる。さらに、ホスファチジルセリンと結合する作用剤に加えて、細胞膜との第ＶＩＩＩ因子の結合を低減する、及び／又は第ＶＩＩＩ因子の安定性若しくは力価を改善する１つ又は複数の付加的な作用剤を、培養細胞と接触させることができる。

ホスファチジルセリンと結合することが可能である任意の作用剤を、本発明の方法において、使用することができる。ホスファチジルセリンと結合する作用剤は、ポリペプチド、抗体、抗体断片、ポリヌクレオチド、小分子若しくは他の作用剤であり得るか、又はポリペプチド、抗体、抗体断片、ポリヌクレオチド、小分子若しくは他の作用剤を含み得る。

典型的に、ホスファチジルセリンと結合する作用剤は、細胞膜上におけるホスファチジルセリンとの第ＶＩＩＩ因子の結合を低減することが可能である。作用剤は、第ＶＩＩＩ因子と競合して、ホスファチジルセリンと結合することができる。好ましい作用剤は、細胞膜との第ＶＩＩＩ因子の結合を、作用剤の非存在下で観察される結合と比較して、少なくとも１０％、少なくとも２０％、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％低減する作用剤である。

ホスファチジルセリンと結合する作用剤は、好ましくは、細胞培養物から単離される第ＶＩＩＩ因子の収量を増大させる。典型的には、第ＶＩＩＩ因子の収量は、細胞培養培地から単離される。したがって、好ましい作用剤は、第ＶＩＩＩ因子の収量、又は培養培地中に放出される第ＶＩＩＩ因子の量を、作用剤の非存在下における第ＶＩＩＩ因子の収量又は放出と比較して、少なくとも１０％、少なくとも２０％、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％増大させる作用剤である。

競合的結合アッセイを、細胞膜上においてホスファチジルセリンと競合的に結合する作用剤を同定するために使用することができる。この技法は、細胞膜上においてホスファチジルセリンに対して競合する標識されていない分析物及び標識された分析物の使用を伴う。競合的結合アッセイの一般的な技法は、当該技術分野において既知である。このアッセイは、標的分析物の濃度が増大するにつれて減少するシグナルをもたらす。競合的アッセイアプローチは、細胞膜との結合に関して第ＶＩＩＩ因子と競合するその能力によってホスファチジルセリンと結合する作用剤を検出するために使用することができる。例えば、ホスファチジルセリンと結合し、本発明の方法における使用に好適である作用剤を、競合アッセイにおいて、細胞膜との第ＶＩＩＩ因子の結合を少なくとも５０％低減するその能力によって同定することができる。

本発明の方法における使用のためのアネキシンＶ（アネキシンＡ５、又は血管抗凝固αタンパク質）は、天然のアネキシンＶポリペプチド、又はホスファチジルセリンと結合することが依然として可能であるその断片若しくは変異体であり得る。変異体ポリペプチドは、種の相同体（homologue）、例えば哺乳動物の相同体（典型的には、ヒト、霊長類、又はマウス、ラット、若しくは他のげっ歯類の相同体）であり得る。好ましくは、アネキシンＶは、ヒトアネキシンＶである。好適なヒトアネキシンＶポリペプチドは、配列番号２のアミノ酸配列を含んでいてもよく、配列番号２のアミノ酸配列からなっていてもよく、又は配列番号２のアミノ酸配列から本質的になっていてもよい。好適なアネキシンＶ配列は、ホスファチジルセリンと結合することが可能であるこの配列の断片又は変異体であり得る。例えば、アネキシンＶの変異体は、置換変異体、欠失変異体若しくは付加変異体、又はその断片であり得る。

好ましくは、天然のアネキシンＶの断片又は変異体は、細胞膜上において結合部位に対して第ＶＩＩＩ因子と競合することが可能である。典型的には、断片又は変異体は、少なくとも１つの細胞膜結合ドメインを保持する。断片又は変異体は、細胞膜との第ＶＩＩＩ因子の結合をブロックするタンパク質−タンパク質複合体の形成に必要とされる少なくとも１つのタンパク質結合ドメインも保持し得る。

本発明の方法における使用のためのラクトアドヘリンは、天然のラクトアドヘリンポリペプチド、又はホスファチジルセリンと結合することが依然として可能であるその断片若しくは変異体であり得る。変異体ポリペプチドは、種の相同体、例えば哺乳動物の相同体（典型的には、ヒト、霊長類、又はマウス、ラット、若しくは他のげっ歯類の相同体）であり得る。好ましくは、ラクトアドヘリンは、ヒトラクトアドヘリンである。好適なヒトラクトアドヘリンポリペプチドは、配列番号３のアミノ酸配列を含んでいてもよく、配列番号３のアミノ酸配列からなっていてもよく、又は配列番号３のアミノ酸配列から本質的になっていてもよい。好適なラクトアドヘリン配列は、ホスファチジルセリンと結合することが可能であるこの配列の断片又は変異体であり得る。例えば、ラクトアドヘリンの変異体は、置換変異体、欠失変異体若しくは付加変異体、又はその断片であり得る。

本発明の方法における使用のための第ＶＩＩＩ因子軽鎖は、第ＶＩＩＩ因子のドメインＡ３−Ｃ１−Ｃ２を含み得る。第ＶＩＩＩ因子軽鎖は、第ＶＩＩＩ因子ドメインＡ３−Ｃ１−Ｃ２をコードする核酸を組換え的に発現させることによって、生産することができる。代替的に又は付加的に、第ＶＩＩＩ因子軽鎖は、第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドのＢ−Ａ３接合部（junction）のタンパク質分解処理によって、生産することができる。

第ＶＩＩＩ因子軽鎖の断片又は変異体も、断片又は変異体がホスファチジルセリンと結合することが依然として可能であれば、本発明の方法において使用することができる。典型的には、断片又は変異体は、細胞膜上において結合部位に対して第ＶＩＩＩ因子と競合することが可能である。典型的には、断片又は変異体は、少なくとも１つの細胞膜結合ドメインを保持する。例えば、断片又は変異体は、ドメインＣ２を含み得る。最も好ましくは、断片又は変異体は、ドメインＣ１及びＣ２を含む。特に、断片又は変異体は、配列番号６によって表されるＣ２ドメイン配列（ヒト第ＶＩＩＩ因子のアミノ酸２１７３〜２３３２）、又は最大で２０個、最大で１０個、最大で５若しくは最大で２個のアミノ酸置換及び／若しくは欠失を含むそのＣ２ドメインの変異体を含む。断片又は変異体は、ヒト第ＶＩＩＩ因子のＣ２ドメインのアミノ酸配列２３０３〜２３３２、又は１個、２個、３個、４個、５個、６個若しくは７個のアミノ酸置換及び／若しくは欠失を含むその配列の変異体を含み得る。

本発明の方法における使用に好適な抗リン脂質抗体は、ホスファチジルセリンを含む１つ又は複数のリン脂質と結合する任意の抗体を含む。抗リン脂質抗体は、ホスファチジルセリン、及び両親媒性リン脂質、脂質二重層リン脂質、ホスホグリセリド、ホスファチデート、ホスファチジルコリン、ホスファチジルエタノールアミン、ホスファチジルイノシトール、ジホスファチジルグリセロール又はスフィンゴミエリンを含むがこれらに限定されない１つ又は複数の他のリン脂質と結合し得る。典型的には、抗リン脂質抗体は、細胞膜との第ＶＩＩＩ因子の結合に関して競合する、細胞膜との第ＶＩＩＩ因子の結合を低減する、又は細胞膜との第ＶＩＩＩ因子の結合を阻害することが可能である。

抗体は、ヒト、マウス、ラット、ヤギ、ウサギ、モルモット、ニワトリ、ヒツジ又はウマ抗体であり得る。好ましくは、抗リン脂質抗体は、ヒト、ヒト化、キメラ、ラット又はマウス抗体である。

好適な抗リン脂質抗体配列は、ホスファチジルセリンと結合することが可能である、この配列の断片又は変異体であり得る。例えば、天然の抗リン脂質抗体の変異体は、置換変異体、欠失変異体若しくは付加変異体、又はその断片であり得る。

ポリペプチド並びにその変異体及び断片は、上で論じられるように、核酸分子からの発現によって提供され得る。本発明は、したがって、アネキシンＶ、ラクトアドヘリン、第ＶＩＩＩ因子軽鎖、若しくは抗リン脂質抗体、又はその任意の誘導体、断片若しくは変異体をコードする核酸配列を含むポリヌクレオチドにも関する。

作用剤は、細胞膜との第ＶＩＩＩ因子の結合を低減又は阻害するのに十分な濃度で、培養培地において提供され得る。典型的には、作用剤は、培養細胞を取り囲む培養培地における第ＶＩＩＩ因子の濃度を増大させることが可能である。好ましくは、ホスファチジルセリンと結合する作用剤は、０．００１〜１０００μＭ、０．０１〜５００μＭ、０．０１〜１００μＭ、０．０１〜１０μＭ、又は０．１〜１００μＭの濃度で細胞培養培地に添加することによって、培養細胞と接触させられる。

ホスファチジルセリンと結合する作用剤は、第ＶＩＩＩ因子を発現する細胞を培養する期間中に又は当該期間後に、しかし、培養培地からの第ＶＩＩＩ因子の単離前に、細胞培養培地に添加される。典型的には、第ＶＩＩＩ因子を発現する細胞は、培養培地からの第ＶＩＩＩ因子の単離前に、少なくとも６時間、少なくとも１２時間、少なくとも２４時間、少なくとも４８時間、少なくとも４日間、又は少なくとも１０日間培養される。ホスファチジルセリンと結合する作用剤は、細胞が最初に培養培地と接触させられるときに対して同時に、実質的に同時に、又は異なる時に、培養細胞と接触させることができる。作用剤は、繰返して、例えば一定間隔の後に、又は、新鮮な培地が培養細胞と接触させられる各時点において、培養培地に添加することができる。作用剤は、培養培地から第ＶＩＩＩ因子を単離する直前に添加することができる。

ホスファチジルセリンと結合する１つ又は複数、２つ以上、３つ以上、４つ以上の作用剤が、第ＶＩＩＩ因子を発現する培養細胞と接触させられてもよい。例えば、アネキシンＶ、ラクトアドヘリン、第ＶＩＩＩ因子軽鎖及び抗リン脂質抗体から選択される２つの作用剤を、本発明の方法において、使用することができる。

培養培地における第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドの量は、当該技術分野において既知の技法によって測定することができる。第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドは、例えば、放射性同位体、放射性ヌクレオチド、蛍光部分、例えばＧＦＰ、酵素、アフィニティタグ、例えばビオチン、ヒスチジン若しくはＧＳＴ、エピトープタグ、抗体、又はポリヌクレオチドを使用して、標識することができる。第ＶＩＩＩ因子が標識された場合、収量は、例えば、当該技術分野において既知である分光学的手段、光化学的手段、放射化学的手段、生化学的手段、免疫化学的手段、化学的手段又は電気化学手段によって、培養培地における標識された第ＶＩＩＩ因子を単離及び検出することによって、算出することができる。

標識されない場合、第ＶＩＩＩ因子は、以下で記載されるように、当該技術分野において既知の技法を使用して、培養培地から単離することができる。第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドの精製は、抗第ＶＩＩＩ因子抗体カラムにおけるアフィニティクロマトグラフィ、及びタンパク質分解的切断による活性化を伴い得る。

第一の態様では、本発明は、したがって、第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドの生産のための方法であって、
ａ）前記ポリペプチドが発現されるような条件下で、第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドを発現することが可能である哺乳動物細胞を培養する工程；及び
ｂ）工程（ａ）中に又は工程（ａ）後に、ホスファチジルセリンと結合する作用剤と前記細胞を接触させる工程
を含む、に関する。

一実施形態では、前記方法は、細胞の生存率が少なくとも８０％、好ましくは少なくとも８５％、最も好ましくは少なくとも９０％、最も好ましくは少なくとも９５％である時点で、第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドを回収する工程をさらに含む。

別の実施形態では、前記方法は、２〜３日後に、又は２〜４日後に、例えば２日後に、又は３日後に、又は４日後等に、第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドを回収する工程をさらに含む。

別の実施形態では、哺乳動物細胞は、細胞培養培地において培養され、第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドは、ヒト第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドである。

別の実施形態では、作用剤は、ｉ）第ＶＩＩＩ因子と作用剤を同時発現すること、又はｉｉ）細胞が培養される培養培地に作用剤を添加することによって、哺乳動物細胞と接触させられる。細胞は、一時的に又は安定的に形質転換された細胞であり得る。

別の実施形態では、作用剤は、ホスファチジルセリンと特異的に結合するタンパク質、好ましくはラクトアドヘリン、アネキシンＶ、抗リン脂質抗体又は第ＶＩＩＩ因子軽鎖である。

別の実施形態では、ラクトアドヘリン、アネキシンＶ又は第ＶＩＩＩ因子軽鎖が、０．０１〜１００μＭの濃度で添加又は同時発現される。

別の実施形態では、細胞膜上においてホスファチジルセリンと結合することが可能である１つ、２つ、３つ又はそれ以上の作用剤が、哺乳動物細胞と接触させられる。

別の実施形態では、ラクトアドヘリン、アネキシンＶ、抗リン脂質抗体又は第ＶＩＩＩ因子軽鎖が、オルト−ホスホ−Ｌ−セリン（ＯＰＬＳ）又は抗アポトーシスタンパク質とともに、哺乳動物細胞と接触させられる。

別の実施形態では、哺乳動物細胞は、動物由来の成分を含まない細胞培養培地において培養される。代替的には、本発明に係る方法は、第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドを単離する工程、及び任意で、医薬組成物中に第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドを配合する工程をさらに含む。

別の実施形態では、第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドは、細胞の生存率の低減を実質的に伴わずに、好ましくは細胞の少なくとも７５％、又は８０％、又は８５％、又は９０％が生存した状態で、哺乳動物細胞が培養される細胞培養培地から単離される。

別の実施形態では、第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドを単離した後で、前述の請求項のいずれか一項に記載の方法において同じ細胞が使用される。

本発明の別の態様は、血清を含まず、ｉ）ラクトアドヘリン、アネキシンＶ、抗リン脂質抗体及び第ＶＩＩＩ因子軽鎖から選択される作用剤、並びにｉｉ）オルト−ホスホ−Ｌ−セリン（ＯＰＬＳ）又は抗アポトーシスタンパク質を含む、細胞培養培地に関する。

本発明の別の態様は、哺乳動物細胞培養物から単離することができる第ＶＩＩＩ因子の収量を増大させるための、ホスファチジルセリンと結合することが可能である作用剤の使用に関する。

実施例
結合アッセイ
方法
ＨＥＫ２９３細胞の細胞膜との、精製されたＢ−ドメイン欠失第ＶＩＩＩ因子（ＢＤＤ−ＦＶＩＩＩ）（J. Karlsson and L. Thim, Novo Nordisk A/Sによって親切にも提供された）の親和性を、^１２５Ｉ−ＢＤＤ−ＦＶＩＩＩ及び非標識ＢＤＤ−ＦＶＩＩＩを使用する相同競合アッセイによって調査した。細胞を、ＰＢＳ＋１％ＢＳＡ中で１回洗浄した。５×１０^５個の細胞を、マイクロタイターウェルに分配し、プレートを、４℃まで冷却した。細胞表面のブロッキング中に、ＢＤＤ−ＦＶＩＩＩの結合を検証した。一定濃度の^１２５Ｉ−ＦＶＩＩＩ（０．５ｎＭ）を、エンドサイトーシスを防ぐために４℃で、アネキシンＶ（０．５μＭ、Sigma）、オルト−ホスホ−Ｌ−セリン（２０ｍＭ、Sigma）、ヘパリン（１００μｇ／ｍＬ、Leo Pharmaceuticals）及び受容体関連タンパク質（ＲＡＰ）０．５μＭ（H.H. Petersen, Novo Nordisk A/Sによって親切にも提供された）のいずれかと同時に、添加した。

プレートを、穏やかに振とうしながら４℃で２時間インキュベートした。遠心分離後、結合していない（膜付着していない）^１２５Ｉ−ＦＶＩＩＩを除去し、細胞を、氷冷アッセイ緩衝剤（１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、４ｍＭ ＫＣｌ、１１ｍＭ グルコース、５ｍＭ ＣａＣｌ_２、１ｍｇ／ｍｌ ＢＳＡ、ｐＨ７．４）中で２回洗浄した。表面に結合した^１２５Ｉ−ＦＶＩＩＩを、ガンマ・カウンター上でカウントした。実験を、三連で２回行った。非特異的結合を、１２０００×過剰の標識されていないＢＤＤ第ＶＩＩＩ因子の存在下において評価した。

細胞膜相互作用の強力な阻害剤を決定する試みにおいて、１）ホスファチジルセリンをブロッキングすること（アネキシンＶ）、２）ＦＶＩＩＩのＣ２ドメインと相互作用すること（ＯＰＬＳ）、３）内部移行その後の分解を促進する受容体、例えばＬＲＰ（リポタンパク質受容体関連タンパク質）及びＨＳＰＧ（ヘパリンスルフェートプロテオグリカン）と相互作用すること（ＲＡＰ、ヘパリン）におけるそれらの特異的効果に関して知られる４つのタンパク質を試験した。

結果
結果は、以下の表２に示される。

アネキシンＶは、膜に付着したＦＶＩＩＩを、約７０％低減し、オルト−ホスホ−Ｌ−セリン（ＯＰＬＳ）は、膜に付着したＦＶＩＩＩを、約３０％低減した。ヘパリンは、小さいが有意ではない効果を示した。ＲＡＰは、効果を示さなかった。

アネキシンＶは、膜結合を最も効率的に低減することが可能であったため、本発明者らは、細胞表面上におけるＦＶＩＩＩのＰＳ結合を阻害するであろう他の化合物の調査を継続した。これは、次の実験において記載される。

ＦＶＩＩＩ膜置換細胞培養
方法
ＢＤＤ−ＦＶＩＩＩを安定的に発現するＣＨＯ ＤＵＫＸ Ｂ１１細胞を、５０ｍＬフィルターチューブ（TPP、スイス）中の血清を含まない培地において、高密度（１ｍＬ当たりの細胞数８×１０^６個）で設定した。以下で言及される添加剤（ラクトアドヘリン、第ＶＩＩＩ因子軽鎖及び／又はＯＰＬＳ）を培養培地に添加し、培養液及び膜結合画分のアッセイに従って、細胞を２４時間インキュベートした。

結果
結果は、以下の表３Ａ及び３Ｂに示される。

ＯＰＬＳを添加することによって、ＦＶＩＩＩの活性は、培養培地において４０００から６０００ｍＵ／ｍＬまで増大し、膜上の活性は、比例的に低下しない。これは、添加されたＯＰＬＳの安定化効果を示すことができるだろう。ラクトアドヘリンの添加は、培養培地におけるＦＶＩＩＩの量をさらに増大させ、また、膜に結合したＦＶＩＩＩの低下が観察される。両方の化合物（ラクトアドヘリン及びＯＰＬＳ）が添加された場合、ラクトアドヘリン単独の添加と比較して小さな増大が観察されるにすぎない。対照培養と比較して、液相におけるＦＶＩＩＩの量は、２．２倍増大する。

同様の傾向が、ＦＶＩＩＩ ＬＣが培地に添加された場合に、観察される。しかしながら、液相におけるＦＶＩＩＩの収量の増大は、ラクトアドヘリンの添加と比較して、かなり高い。これは、細胞膜由来のＦＶＩＩＩのより完全な競合をもたらす、添加されたＦＶＩＩＩ ＬＣのはるかに高い濃度のために、考え得ることである。この場合、ＦＶＩＩＩ ＬＣ及びＯＰＬＳの添加は、液相のＦＶＩＩＩ画分にさらにもっと寄与し、全体的な改善は、３倍を超える。

同時発現実験
細胞培養
ＨＥＫ２９３細胞を、
５０Ｕ／ｍＬのペニシリン及び５０ｕｇ／ｍＬのストレプトマイシンを添加した市販のＦｒｅｅＳｔｙｌｅ培地において維持した。細胞を、振とう器において細胞懸濁物として成長させ、５％ＣＯ_２下３７℃、９５％相対湿度条件においてインキュベートした。

細胞を、３×１０^５細胞／ｍＬの密度で播種し、３〜４日毎に継代した。トランスフェクション実験のために、細胞培養を、標的密度に到達するまで、スケールアップした。生存する全ての細胞の濃度を、Ｃｅｄｅｘ（Innovartis）解析によって評価した。この機器は、細胞数計測の自動化のための画像解析ソフトウェアを使用する。生存する細胞は、トリパンブルーを排除するそれらの能力に基づいて同定した。

一時的トランスフェクション
プラスミドＤＮＡを、製造業者の推奨に従って、２９３ｆｅｃｔｉｎによって、ＨＫＢ１１細胞中にトランスフェクトした。調整された培地を、懸濁培養物の穏やかな遠心分離の後で、表示された日に回収した。細胞ペレットを、０．５Ｍ ＮａＣｌを含有するＦｒｅｅＳｔｙｌｅ培地中に再懸濁し、穏やかな遠心分離の後、細胞膜に付着したＦＶＩＩＩを表す試料を採取した。試料を、解析まで、−８０℃で保存した。

第ＶＩＩＩ因子活性及び抗原分析
ＦＶＩＩＩ凝固活性を、２段階発色アッセイ（Coamatic Factor VIII分析キット、Chromogenix）によって、測定した。第ＶＩＩＩ因子：Ａｇアッセイを、Affinity Biologicals（Ｆ８Ｃ−ＥＩＡ）のポリクローナル抗体を使用して行った。両方のアッセイを、製造業者の取扱説明書に従って、標準として自社製（in-house）Ｂ−ドメイン欠失親和性精製第ＶＩＩＩ因子を用いて行った。

結果
Ｆ８をコードする発現プラスミドを、ＨＫＢ１１細胞においてラクトアドヘリンと、及びヒト成長ホルモンのＣ末端と融合したラクトアドヘリン（ｈＧＨ−ラクトアドヘリン）と、一時的に同時発現させた。また、Ｆ８を、ｈＧＨ−ラクトアドヘリンＣ１Ｃ２（ｈＧＨのＣ末端と融合したラクトアドヘリンのＣ１Ｃ２ドメイン）及びｈＦｃ−ラクトアドヘリンＣ１Ｃ２（ヒトＦｃのＣ末端と融合したラクトアドヘリンのＣ１Ｃ２ドメイン）と同時発現させた。融合パートナーは、ラクトアドヘリン又はそのドメインの発現の増大を促進する可能性があるそれらの能力に関して選択した。ＨＫＢ１１細胞において、３日目に、ラクトアドヘリン及びｈＧＨ−ラクトアドヘリンによって、並びにまた、より低い程度ではあるが、ｈＧＨ−ラクトアドヘリンＣ１Ｃ２及びｈＦｃ−ラクトアドヘリンＣ１Ｃ２によって、Ｆ８が効果的に置換されたことが見出された（表４Ａ及び４Ｂ）。しかしながら、細胞の生存率が３日目の約９０％から約８０％まで低下した４日目には、ラクトアドヘリンの同時発現は、もはや、Ｆ８を上清中に維持することはできず、Ｆ８は、Ｆ８単独による発現と等しく、細胞表面上に主に位置した（表４Ａ、４Ｂ及び４Ｃ）。

結論
これらの結果は、ラクトアドヘリン（又は、Ｎ末端融合パートナーと融合したラクトアドヘリン、又は、Ｎ末端融合パートナーを伴うラクトアドヘリンのＣ１Ｃ２ドメイン）との同時発現が、３日目に、細胞膜上に局在する状態から、上清中に位置する状態へと、Ｆ８を変化させることができることを示す。本発明者らは、これは、ラクトアドヘリンが、ＨＫＢ１１細胞上のＰＳ結合部位をブロックし、それによって、Ｆ８が同部位と結合するのを防いだことの結果であると考える。結果として、Ｆ８は、上清中へと効果的に置換される。結果は、４日目に、ラクトアドヘリンとの同時発現が、Ｆ８の局在性に対するいかなる効果をも、もはや有しないことも示す。本発明者らは、これが、発現された量のラクトアドヘリンが遮蔽することができる部位の数を増大させる、ＰＳ結合部位の数と相関する可能性が高い、約８０％という相対的に低い生存率の結果であると考える。また、したがって、４日目に、Ｆ８が結合する、細胞上における未結合の（free）ＰＳ結合部位が存在する可能性がある。

表５：ラクトアドヘリン（配列番号７）及びＦＶＩＩＩをコードするプラスミドによって安定的にトランスフェクトされたクローン。「ＣＯＡ」は、ＦＶＩＩＩ活性の尺度である（この種の発色アッセイ（例えば、ChromogenixのＣＯＡＴＥＳＴ ＳＰＦＶＩＩＩアッセイ＃８２４０８６６３）は、当該技術分野において既知である）。したがって、上清における高いレベルのＣＯＡは、上清中に高い比率のＦＶＩＩＩが存在することを意味する。「洗浄」において測定されたＣＯＡのレベルは、細胞膜と結合又は付着したＦＶＩＩＩを放出させるために高塩培地を用いて細胞が洗浄されたときに抽出されたＦＶＩＩＩの量に等しい。低い「洗浄」ＣＯＡレベルは、したがって、あまり多くのＦＶＩＩＩが細胞膜に付着してはいないことを示す。８つのクローンが、さらなる特徴づけのために選択された（表６）。

表６：８つのクローンを、表５から選択した。クローン「１Ｃ９」は、対照であり、細胞は、ＦＶＩＩＩのみを用いて（ラクトアドヘリンを用いずに）安定的にトランスフェクトされた。上清中に存在するＦＶＩＩＩの量は、ラクトアドヘリンプラスミドを用いて安定的にトランスフェクトされたクローンにおいて顕著に増大する。最後の２つのカラムによれば、ＦＶＩＩＩ抗原（標準ＦＶＩＩＩ ＥＬＩＳＡを使用して測定された）ほど多くは、上清中に存在する活性なＦＶＩＩＩ（ＣＯＡ活性アッセイを使用して）は、存在しない。この比率は、安定化剤、例えばＯＰＬＳの添加によって、改善することができる。

安定な細胞株の作製
ＢＤＤ−ＦＶＩＩＩを安定的に発現する細胞株１Ｃ９を、プラスミド＃２１４０を用いてトランスフェクトした。＃２１４０は、ＦＬＡＧエピトープとその後のラクトアドヘリンからなる融合構築物をコードし、また、ネオマイシン耐性遺伝子を有する。１Ｃ９細胞に対して、エレクトロポレーションを行い、５００ｕｇ／ｍｌのＧ４１８を用いて選択した。トランスフェクション及び選択は、無血清培地Ｂ−ＣＭ２０８において実施した。

スクリーニング
３週間の選択の後、細胞を、限界希釈によってクローニングし、２４ウェルプレートに移した。上清及び「洗浄」試料を、これらの２４ウェルプレートにおける５０のクローンから回収した。表（５０のクローン）から分かるように、全てのクローンが、洗浄画分よりも上清中により多くのＦＶＩＩＩを発現するようであった。洗浄画分を、０．５５Ｍ ＮａＣｌを添加したＢ−ＣＭ２０８の溶液に細胞を曝すことによって、調製した。

表（１０のクローン）において、これらのクローンのうちの幾つか及び１Ｃ９クローンを、２〜３週間の期間にわたって、シェーカーフラスコ中の３０ｍｌの培地において成長させた。ＣＯＡ活性及びＥＬＩＳＡ収量の平均値が示される。ＦＬＡＧ−エピトープに対するＥＬＩＳＡアッセイからの結果も示される。１Ｃ９クローン由来の上清は、予想された通り、ＦＬＡＧ ＥＬＩＳＡにおいていかなる応答をも示さないことを観察することができる。Ｇ４１８を用いて安定的に選択された他のクローンが、種々のレベルのＦＬＡＧエピトープを発現することも観察することができる。したがって、本発明者らは、ＦＬＡＧ−ラクトアドヘリンの発現と、上清におけるＦＶＩＩＩの局在性の増大との間の相関関係を見出す。

方法：
ＦＬＡＧ ＥＬＩＳＡ
上清又は洗浄試料を、抗ＦＬＡＧ高感度Ｍ２コーティング９６ウェルプレート（カタログ番号Ｐ２９７３−１ＥＡ、SIGMA）に適用した。６０分間のインキュベーション後、プレートを、ＰＢＳにおいて洗浄し、ラクトアドヘリンに対する抗体（カタログ番号Ｈ００００４２４０−Ｄ０１Ｐ、ABNOVA）を添加した。さらなる６０分間のインキュベーション後、プレートを洗浄し、抗ウサギ−ＨＲＰ結合型抗体を用いて発色させ、吸光度を４５０ｎｍで読み取った。

Claims (14)

1. 第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドの生産のための方法であって、
   ａ）前記ポリペプチドが発現されるような条件下で、第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドを発現することが可能である哺乳動物細胞を培養する工程；及び
   ｂ）工程（ａ）中に又は工程（ａ）後に、ホスファチジルセリンと結合する作用剤と前記細胞を接触させる工程
   を含む、方法。
2. 前記細胞の生存率が少なくとも８０％である時点で前記第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドを回収する工程をさらに含む、請求項１に記載の方法。
3. ２〜３日後に前記第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドを回収する工程をさらに含む、請求項１又は２に記載の方法。
4. 前記哺乳動物細胞が、細胞培養培地において培養され、前記第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドが、ヒト第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドである、請求項１に記載の方法。
5. ｉ）第ＶＩＩＩ因子と前記作用剤を同時発現すること、又はｉｉ）前記細胞が培養される培養培地に前記作用剤を添加することによって、前記作用剤が、前記哺乳動物細胞と接触させられる、請求項１〜４のいずれか一項に記載の方法。
6. 前記作用剤が、ホスファチジルセリンと特異的に結合するタンパク質、好ましくはラクトアドヘリン、アネキシンＶ、抗リン脂質抗体又は第ＶＩＩＩ因子軽鎖である、請求項１〜５のいずれか一項に記載の方法。
7. 前記ラクトアドヘリン、アネキシンＶ又は第ＶＩＩＩ因子軽鎖が、０．０１〜１００μＭの濃度で添加又は同時発現される、請求項６に記載の方法。
8. 細胞膜上においてホスファチジルセリンと結合することが可能である１つ、２つ、３つ又はそれ以上の作用剤が、前記哺乳動物細胞と接触させられる、請求項１〜７のいずれか一項に記載の方法。
9. ラクトアドヘリン、アネキシンＶ、抗リン脂質抗体又は第ＶＩＩＩ因子軽鎖が、オルト−ホスホ−Ｌ−セリン（ＯＰＬＳ）又は抗アポトーシスタンパク質とともに、前記哺乳動物細胞と接触させられる、請求項１〜８のいずれか一項に記載の方法。
10. 前記哺乳動物細胞が、動物由来の成分を含まない細胞培養培地において培養され、前記方法が、前記第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドを単離する工程、及び、医薬組成物中に前記第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドを配合する工程をさらに含む、請求項１〜９のいずれか一項に記載の方法。
11. 前記細胞の生存率の低減を実質的に伴わずに、好ましくは前記細胞の少なくとも８５％が生存した状態で、前記第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドが、前記哺乳動物細胞が培養される細胞培養培地から単離される、請求項１〜１０のいずれか一項に記載の方法。
12. 前記第ＶＩＩＩ因子ポリペプチドを単離した後で、請求項１〜１１のいずれか一項に記載の方法において同じ細胞が使用される、請求項１〜１１のいずれか一項に記載の方法。
13. 血清を含まず、ｉ）ラクトアドヘリン、アネキシンＶ、抗リン脂質抗体及び第ＶＩＩＩ因子軽鎖から選択される作用剤、並びにｉｉ）オルト−ホスホ−Ｌ−セリン（ＯＰＬＳ）又は抗アポトーシスタンパク質を含む、細胞培養培地。
14. 哺乳動物細胞培養物から単離することができる第ＶＩＩＩ因子の収量を増大させるための、ホスファチジルセリンと結合することが可能である作用剤の使用。