JP2013005802A - Ｔｎｆスーパーファミリーのメンバーであるｎｆ−ｋａｐｐａｂの受容体アクティベーターに対するリガンド - Google Patents

Ｔｎｆスーパーファミリーのメンバーであるｎｆ−ｋａｐｐａｂの受容体アクティベーターに対するリガンド Download PDF

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Abstract

【課題】単離されたリガンド、そのようなリガンドをコードするDNA、およびそれらから
作られた薬剤組成物を開示する。
【解決手段】 単離されたリガンドは免疫応答を調節するのに用い得る。このリガンドはそれらのインヒビターのスクリーニングにも有用である。
【選択図】なし

Description

発明の属する技術分野
本発明は、概してサイトカインの分野、より明確には免疫調節活性を有するサイトカイン受容体／リガンド対に関連している。
発明の背景
免疫系が効率的に機能するには、免疫系が自己抗原にではなく外来抗原に対して反応できるということを確実にするために、細胞増殖および分化と細胞死の間の微妙なバランスが必要である。免疫および炎症応答を調節する過程に絶対に必要なのは、腫瘍壊死因子（TNF）受容体／神経増殖因子受容体スーパーファミリーの多様なメンバーである（Smith et al., Science 248:1019; 1990）。この受容体ファミリーには、2つの異なるTNF受容体
（I型およびII型；上記Smith et al.；およびSchall et al., Cell 61:361, 1990）、神
経増殖因子受容体（Johnson et al., Cell 47:545, 1986）、B細胞抗原CD40（Stamenkovic et al., EMBO J. 8:1403, 1989）、CD27（Camerini et al., J. Immunol. 147:3165, 1991）、CD30（Durkop et al., Cell 68:421, 1992）、T細胞抗原OX40（Mallett et al., EMBO J. 9:1063, 1990）、ヒトFas抗原（Itoh et al., Cell 66:233, 1991）、マウス4-1BB受容体（Kwon et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86:1963, 1989）およびアポトー
シス誘導受容体（AIR; USSN 08/720,864、1996年10月4日出願）と呼ばれる受容体が含ま
れる。
CD40は、Bリンパ球、上皮細胞およびいくつかのカルシノーマ細胞株上に存在する受容
体で、活性化T細胞上に見いだされるリガンド、CD40L（USSN 08/249,189、1994年5月24日出願）と相互作用する。このリガンド／受容体対の相互作用は細胞性および液性免疫応答の両方に必須である。CD40を介したシグナル伝達は、この分子の細胞質ドメインがTNF受
容体関連因子（TRAFs；Baker and Reddy, Oncogene 12:1, 1996）のメンバーと結合する
ことにより伝達される。TRAF3をコードする遺伝子の標的破壊によりTRAF3発現を欠いたマウスが、出生時には正常であるように見えるものの、進行性低血糖症および末梢白血球減少を起こし、およそ10日齢までに死亡することが最近明らかになった（Xu et al., Immunity 5:407, 1996）。TRAF3-/- B細胞は機能的には正常であるように見えるが、TRAF3-/-
胎児肝細胞にて再構成したキメラマウスの免疫応答はCD40欠失マウスの免疫応答に似ている。
シグナル伝達におけるTRAF3の決定的な役割は、例えばT細胞上に存在するCD30あるいはCD27などの、TNF受容体スーパーファミリーの他のメンバーのひとつと相互作用すること
にある可能性がある。あるいは、TRAF3と相互作用し、出生後の発育にもそして有能な免
疫系の発達にも重要な役割を果たす、この受容体ファミリーのまだ同定されていないメンバーとして、別のものが存在する可能性がある。TNF受容体スーパーファミリーのさらな
るメンバーを同定すると、免疫および炎症応答を調節するさらなる方法が提供されるであろうし、ほ乳類における出生後の発育になお一層の洞察が提供される可能性もある。
発明の概要
本発明は、TNFスーパーファミリーのメンバーである、RANK（NF-κBの受容体アクティ
ベーターとして）と呼ばれる新規受容体に対するカウンター構造、あるいはリガンドを提
供する。このリガンドは、RANKLと呼ばれるが、約50アミノ酸以下の細胞内ドメイン、膜
貫通ドメインおよび約240から250アミノ酸の細胞外ドメインを有する2型膜貫通タンパク
質である。RANKLは、属するTNFファミリーの他のメンバーと同様に、膜貫通ドメインと受容体結合ドメインの間に、受容体結合には必要でない‘スペーサー’領域を有する。それゆえ、RANKLの可溶型は、全細胞外ドメインあるいは、その受容体結合領域を含む断片を
含み得る。
RANKは、TNFRスーパーファミリーのメンバーである、616アミノ酸残基を有するI型膜貫通タンパク質であって、TRAF3と相互作用する。RANKおよび膜結合RANKLの過剰発現、共発現により、あるいは可溶性RANKLまたはRANKに対する拮抗抗体によりRANKを刺激すると、
免疫系の細胞内で最も広範に利用されているユビキタスな転写因子である、転写因子NF-
κBがアップレギュレーションされるという結果になる。
本発明のこれらおよび他の観点は、以下の発明の詳細な説明を参照すれば明らかになるだろう。
発明の詳細な説明
CD40といくらかの類似性を有する予想オープンリーディングフレームを持つ、新規部分cDNAインサートを、ヒト骨髄由来樹状細胞（DC）から作製されたcDNAの配列情報を含むデータベース内で同定した。このインサートを、全長cDNAを含むDC cDNAライブラリーから
作製したコロニーブロットにハイブリダイズさせるのに用いた。コロニーハイブリダイゼーションを数回行い、2つのクローン（SEQ ID NO:1および3）を単離した。SEQ ID NO:5は、SEQ ID NO:1および3のオーバーラップする配列の対応に基づいて予想された、全長タンパク質のヌクレオチドおよびアミノ酸配列を示す。
RANKはTNF受容体スーパーファミリーのメンバーで、CD40と細胞外領域において最も近
密に似ている。CD40と同様に、RANKは（実質的にはRothe et al., Cell 83:1243, 1995に記載の、共免疫沈降アッセイにより求められたように）TRAF2およびTRAF3と結合する。TRAF類は免疫および炎症応答の調節において決定的に重要である。それらとTNF受容体スー
パーファミリーの様々なメンバーとの結合を介し、シグナルは細胞へと伝達される。そのシグナルは、どの受容体（類）が刺激されるかおよびどのTRAF（類）が受容体（類）と結合するかに応じて、細胞の増殖、分化あるいはアポトーシスという結果をもたらし；様々なシグナリングイベントの協調を介して異なるシグナルが細胞へと伝達され得る。したがって、このファミリーのひとつのメンバーを介して伝達されるシグナルは、細胞に伝達される他のシグナル、および／または細胞の分化段階に応じて、増殖の、分化のまたはアポトーシスのものであり得る。この増殖／アポトーシス経路のこのように精妙な調節は、病原体に対する防御を発達そして維持するのに必要であり；バランスが崩れると、自己免疫疾患をおこす可能性がある。
RANKは上皮細胞、いくつかのB細胞株上、および活性化T細胞上に発現している。しかし、活性化T細胞上での発現は遅く、活性化から約4日後である。この発現の時間推移は、既知のアポトーシス作用物質であるFasの発現と一致する。RANKは抗アポトーシスシグナル
として作用し、CD40がすると知られているように、RANKを発現している細胞をアポトーシスから救う可能性がある。あるいは、やはりCD40と同様に、RANKは適切な状況でアポトーシスシグナルを強める可能性がある。RANKおよびそのリガンドは、免疫および炎症応答の調節において絶対に必要な役割を果たしているようである。
さらに、TRAF3遺伝子を標的破壊したマウスが出生後に致死であることは、この分子が
免疫応答においてのみならず発生においても重要であることを示している。TRAF3と結合
するタンパク質としてRANKを、さらにそのリガンドであるRANKLを単離することにより、
このシグナリング経路をさらに明確にすること、および自己免疫および／または炎症性疾患の領域に用いる診断および様式の開発ができるだろう。
DNA、タンパク質および類似体
本発明は、単離RANKLポリペプチドおよび、天然の分子が示す活性を有するその類似体
（またはムテイン（変異タンパク質、mutein））（すなわち、細胞上に発現しているかあるいは表面に固定されているRANKに、あるいはRANKL特異的な抗体に、特異的に結合するRANKLムテイン；RANKを介してRANKリガンドが誘導するシグナリングを阻害する、それらの可溶体）を提供する。そのようなタンパク質は、内在性の物質の混入が実質上なく、任意に、天然型のグリコシレーションを受けていない。本発明の範囲内にあるRANKLの誘導体
には、生物活性を保持している、本来のタンパク質の様々な構造上の形も含まれる。イオン化され得るアミノ基およびカルボキシル基が存在するために、例えばRANKLタンパク質
は酸性または塩基性塩の形である可能性があるか、あるいは中性の形である可能性がある。個々のアミノ酸残基は、酸化または還元によっても修飾し得る。一次アミノ酸構造は、グリコシル基、脂質、リン酸、アセチル基などの他の化学機能基と共有または集合共役体を形成することにより、あるいはアミノ酸配列の変異を作ることにより、修飾し得る。共有誘導体は、特定の官能基をアミノ酸側鎖またはN-あるいはC-末端で結合させることにより調製する。
RANKLの誘導体は、システインおよびリジン残基にM-マレイミドベンゾイルスクシンイ
ミドエステルおよびN-ヒドロキシスクシンイミドなどの架橋剤を作用させることによっても得ることができる。本発明のタンパク質は、臭化シアン活性化、ビスオキシラン活性化、カルボニルジイミダゾール活性化またはトシル活性化したアガロース構造などの様々な不溶性基質に反応性のある側基を介して、あるいはポリオレフィン表面に吸着（グルタルアルデヒド架橋あり、あるいは無しで）により、共有結合している可能性もある。いったん基質に結合したら、これらのタンパク質は、そのタンパク質に対してまたはRANKLに類
似の他のタンパク質に対して作製した抗体や、RANKLまたはその相同体に結合する他のタ
ンパク質に選択的に結合させる（アッセイまたは精製の目的で）のに用い得る。
RANKLの可溶体も本発明の範囲内である。RANKLのヌクレオチド配列および予想されるアミノ酸配列をSEQ ID NO:10および12（それぞれマウスおよびヒト）に示す。コンピューター解析により、RANKLは2型膜貫通タンパク質であること；マウスRANKLは予想される、48
アミノ酸の細胞内ドメイン、21アミノ酸の膜貫通ドメインおよび247アミノ酸の細胞外ド
メインを含み、ヒトRANKLは予想される、47アミノ酸の細胞内ドメイン、21アミノ酸の膜
貫通ドメインおよび249アミノ酸の細胞外ドメインを含むことが示された。
可溶性RANKLには、シグナルペプチドおよび細胞外ドメインあるいはその断片が含まれ
る。典型的なシグナルペプチドはSEQ ID NO:9に示すものであり；他のシグナル（または
リーダー）ペプチドはこの技術分野では十分に知られており、マウスインターロイキン-7またはヒト成長ホルモンのものを含む。RANKLは、膜貫通ドメインと受容体結合領域の間
に、生物活性には必要ないとみられるアミノ酸の領域を有する点でTNFファミリーの他の
メンバーと類似しており；これは‘スペーサー’領域と呼ばれている。アミノ酸配列の対応付けにより、受容体結合領域はヒトRANKLのおよそアミノ酸162からおよそアミノ酸317
まで（SEQ ID NO:10のマウスRANKLのアミノ酸139から294に相当する）であり、このファ
ミリーの多くのメンバーの間で保存されているAla残基で始まっている（SEQ ID NO:12の
アミノ酸162）。
さらに、細胞外ドメインの断片はRANKLの可溶体をも提供するだろう。当業者は、実際
の受容体結合領域はコンピューター解析により予想されたものとは異なり得るということ
を理解するだろう。したがって、可溶性RANKLのN-末端アミノ酸は、保存されたAla残基の両側約5個のアミノ酸内にあると予想される。あるいは、スペーサー領域の全部または一
部が可溶性RANKLのN-末端に含まれる可能性があり、もし得られる可溶性RANKLが膜結合でないとすれば、膜貫通および／または細胞内ドメインの全部または一部であり得る。したがって、可溶性RANKLは、SEQ ID NO:12のアミノ酸1から162（SEQ ID NO:10の1から139）
からなる群から選択されるN-末端アミノ酸を有するだろう。好ましくは、アミノ末端のアミノ酸は、SEQ ID NO:12のアミノ酸69から162の間にある（ヒトRANKL；SEQ ID NO:10のアミノ酸48から139に相当する）。同様に、カルボキシ末端のアミノ酸は、SEQ ID NO:12の
アミノ酸313から317の間にある（ヒトRANKL；SEQ ID NO:10のアミノ酸290から294に相当
する）。当業者は、これらおよびさらに別の可溶体をごく普通の実験法により調製することができる。
断片は、細胞外領域の望みの部分を単離するという既知の手法を用いて調製することができ、例えば細胞外領域をTNFファミリー（RANKLはそのメンバーである）の他のメンバーのものと比較し、他のファミリーメンバーに関して調製されたものと類似した形を選択することにより調製することができる。あるいは、発現させ、活性を解析することができる、多数の短縮形を調製するのに、この技術分野で既知の、独特の制限酵素認識部位またはPCRの手法を用いることができる。
本発明の範囲内にあるRANKLタンパク質の他の誘導体には、例えばN-末端またはC-末端
融合体として組換え体培養にて合成することによる、タンパク質またはそれらの断片と他のタンパク質またはポリペプチドの共有または集合共役体が含まれる。例えば、共役させたペプチドは、翻訳と同時にあるいは翻訳後に、そのタンパク質を合成部位から細胞膜または細胞壁の中または外の機能部位へと運ぶのを指示する、タンパク質のN末端領域のシ
グナル（またはリーダー）ポリペプチド配列であり得る（例えば、酵母α-因子リーダー
）。
タンパク質融合体は、RANKLタンパク質および相同体の精製または同定を容易にするた
めに加えられたペプチド（例えば、ポリ-Hisなど）を含み得る。本発明のタンパク質のアミノ酸配列は、Hoppiら（Bio/Technology 6:1204 (1988)）に記載されているような同定
ペプチドに結合している可能性もある。このように非常に抗原性のあるペプチドは、特異的なモノクローナル抗体が可逆的に結合するエピトープを提供し、発現させた組換え体タンパク質の迅速なアッセイおよび容易な精製を可能にする。Hoppらの配列は、ウシ粘膜エンテロキナーゼにより特異的に切断されもし、精製したタンパク質からペプチドを除くことが可能になる。このようなペプチドによりキャップされた融合タンパク質は、大腸菌内における細胞内分解にも耐性であり得る。
融合タンパク質には、免疫グロブリンFc領域に結合したRANKLのアミノ酸配列がさらに
含まれる。典型的なFc領域は、SEQ ID NO:8に示すアミノ酸配列を有するヒトIgG1である
。Fc領域の断片も、Fcムテインも用い得る。例えば、Fc領域のヒンジ領域内の特定の残基は、FcγRIへの高親和性結合に決定的である。CanfieldおよびMorrison（J. Exp. Med. 173:1483; 1991）は、Leu(234)およびLeu(235)がU937細胞上に存在するFcγRIへのIgG3の
高親和性結合に決定的であったと報告した。同様の結果がLundら（J. Immunol. 147:2657, 1991; Molecular Immunol. 29:53, 1991）により得られた。このような変異は、単独または組合わさって、IgG1Fc領域内に作られ、FcRに対するIgG1の親和性を減少させること
ができる。用いたFc領域の部分に応じて、融合タンパク質は鎖内ジスルフィド結合の形成によって二量体として発現し得る。融合タンパク質が抗体の重鎖および軽鎖の両方により作られている場合は、4つものRANKL領域にてタンパク質オリゴマーを形成することができる。
もう一つの態様において、RANKLタンパク質には、ロイシンジッパードメインのような
オリゴマー化ペプチドがさらに含まれる。ロイシンジッパーはもともと数個のDNA結合タ
ンパク質内に同定されたものである（Landschulz et al., Science 240:1759, 1988）。
ロイシンジッパードメインは、タンパク質の二量化の要因となる、これらの（および他の）タンパク質内に存在する保存されたペプチドドメインを呼ぶのに使われる用語である。ロイシンジッパードメイン（本明細書中ではオリゴマー化ドメイン、あるいはオリゴマー形成ドメインとも呼ぶ）は、他のアミノ酸の間に散在する4または5個のロイシン残基を持つ、反復される7個の繰り返しを含む。ロイシンジッパードメインの例には、酵母転写因
子GCN4およびラット肝内に見いだされる熱安定DNA結合タンパク質（C/EBP; Landschulz et al., Science 243:1681, 1989）内に見いだされるものがある。2つの核形質転換タンパク質、fosおよびjunも、ロイシンジッパードメインを示しており、マウスプロトオンコジーンであるc-mycの遺伝子産物も同様である（Landschulz et al., Science 240:1759, 1988）。核オンコジーンfosおよびjunの産物には、選択的にヘテロ二量体を形成するロイシンジッパードメインが含まれる（O’Shea et al., Science 245:646, 1989; Turner and Tjian, Science 243:1689, 1989）。ロイシンジッパードメインは、これらのタンパク質
において生物活性（DNA結合）に必要である。
パラミクソウイルス、コロナウイルス、麻疹ウイルスおよび多くのレトロウイルスを含む数種の異なるウイルスの紡錘形成（fusogenic）タンパク質も、ロイシンジッパードメ
インを有する（Buckland and Wild, Nature 338:547, 1989; Britton, Nature 353:394, 1991; Delwant and Mosialos, AIDS Research and Human Retroviruses 6:703, 1990）。これらの紡錘形成ウイルスタンパク質内のロイシンジッパードメインは、そのタンパク質の膜貫通領域の近くにあり、ロイシンジッパードメインは紡錘形成タンパク質のオリゴマー構造に寄与し得るということが示唆されてきた。紡錘形性ウイルスタンパク質のオリゴマー化は、融合孔形成に関与している（Spruce et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A.
88:3523, 1991）。ロイシンジッパードメインは熱ショック転写因子のオリゴマー化に役割を果たすと、最近報告された（Rabindran et al., Science 259:230, 1993）。
ロイシンジッパードメインは短い、平行高次コイルとして折りたたまれている（O’Shea et al., Science 254:539; 1991）。平行高次コイルの一般的な構造は、Crickにより1953年に提唱された（Acta Crystallogr. 6:689）“穴中ノブ（knobs-into-holes）”パッ
キングを含め、十分に特徴が分かっている。ロイシンジッパードメインにより形成される二量体は、McLachlanおよびStewartの意見（J. Mol. Biol. 98:293; 1975）にしたがって(abcdefg)nと表される7個の繰り返しによって安定化されており、その中で残基aおよびd
は一般的に疎水性残基であり、dはロイシンであり、らせんの同じ面上に一列に並んでい
る。逆に荷電した残基は、一般に位置gおよびeに現れる。したがって、2つのらせん状の
ロイシンジッパードメイン間で形成される平行高次コイルにおいては、第1のらせんの疎
水性側鎖によって形成される“ノブ（knobs）”が、第2のらせんの側鎖間に形成される“穴（holes）”内に詰められている。
位置dのロイシン残基は、大きな疎水性安定化エネルギーに寄与しており、二量体形成
に重要である（Krystek et al., Int. J. Peptide Res. 38:229, 1991）。Lovejoyらは最近、らせんが上-上-下に走行する3本鎖α-らせん束の合成を報告した（Science 259:1288, 1993）。彼らの研究により、らせん単量体から高次コイルを形成するための主な駆動力を、疎水性安定化エネルギーが提供するということが確認された。これらの研究は、静電相互作用が高次コイルの化学量論および結合構造に寄与するということも示している。
いくつかの研究により、二量化する能力の減少は最小限にしたまま、保存されたアミノ酸で個々のロイシン残基を置換し得るが；複数の交換はたいていこの能力を失わせるということが示されている（Landshulz et al., Science 243:1681, 1989; Turner and Tjian
, Science 243:1689, 1989; Hu et al., Science 250:1400, 1990）。van Heekerenらは
、多数の異なるアミノ酸残基でGCN4のロイシンジッパードメイン内のロイシン残基を置換し得ることを報告し、さらに、2つのロイシン置換を含むいくつかのGCN4タンパク質は活
性が弱かったことを見いだした（Nucl. Acids Res. 20:3721, 1992）。麻疹ウイルス融合タンパク質（MVF）のロイシンジッパードメインの最初のおよび二番目の7個のロイシンの変異はシンシチウム形成（ウイルスにより誘導される細胞融合の尺度）に影響しなかったが；4個すべてのロイシン残基の変異は融合を完全に阻害した（Buckland et al., J. Gen. Virol. 73:1703, 1992）。どの変異も、MVFの四量体形成能には影響しなかった。
GCN4ロイシンジッパードメインに相当する合成ペプチドのaおよびd残基におけるアミノ酸置換は、そのロイシンジッパードメインのオリゴマー化特性を変えることがわかった（Alber, Sixth Symposium of Protein Society, San Diego, CA）。位置aにあるすべての
残基をイソロイシンに変えても、ロイシンジッパーは依然として平行な二量体を形成する。この変換に加えて、位置dにあるすべてのロイシン残基もイソロイシンに変えると、得
られたペプチドは溶液中で自然に三量体の平行高次コイルを形成する。位置dにあるすべ
てのアミノ酸をイソロイシンで、位置aはロイシンで置換すると、四量化するペプチドが
得られる。これらの置換を含むペプチドを、それでもロイシンジッパードメインと呼ぶ。
本発明には、天然型のグリコシレーションを持つあるいは持たないRANKLも含まれる。
酵母あるいは例えばCOS-7細胞などのほ乳類発現系に発現させたタンパク質は、その発現
系に応じて、分子量およびグリコシレーションのパターンの点で、天然の分子と同様であるかあるいはわずかに異なり得る。本発明のタンパク質をコードするDNAを大腸菌などの
細菌に発現させると、グリコシレーションされていない分子が提供される。不活性化されたN-グリコシレーション部位を有する、RANKLタンパク質の機能的な変異類似体を、オリ
ゴヌクレオチド合成およびライゲーションにより、あるいは部位特異的な変異誘発手法により作製し得る。これらの類似体タンパク質を、酵母発現系を用いて収率よく、均質な還元糖の形で作出し得る。真核生物のタンパク質中のN-グリコシレーション部位は、アミノ酸三つ組みAsn-A1-Zを特徴とし、ここでA1はPro以外のあらゆるアミノ酸であり、ZはSer
またはThrである。この配列において、アスパラギンは糖の共有結合のための側鎖アミノ
基を提供する。Asnあるいは残基Zを別のアミノ酸で置換すること、AsnまたはZを削除すること、またはA1とZの間にZではないアミノ酸を、あるいはAsnとA1の間にAsn以外のアミノ酸を挿入することにより、このような部位を除去することができる。
RANKLタンパク質誘導体は、天然のRANKLまたはそのサブユニットの変異によっても得ることができる。本明細書中で呼ぶようなRANKL変異タンパク質とは、天然のRANKLタンパク質に相同なポリペプチドのことだが、ひとつまたは多数の欠失、挿入または置換のために、天然のタンパク質とは異なるアミノ酸配列を有する。変異ペプチドをコードするDNA内
に作られたあらゆる変異の影響は、変異ペプチドがそのカウンター構造に特異的に結合する能力を分析することにより容易に決定し得る。さらに、RANKL類似体、ムテインまたは
誘導体の活性は、本明細書中に記載のあらゆるアッセイ（例えば、NF-κB活性化の誘導など）により求めることができる。
本発明のタンパク質の類似体は、例えば、残基または配列の様々な置換を作ること、あるいは生物活性に必要ではない、末端または内部の残基または配列を欠失させることにより構築し得る。例えば、システイン残基は、復元の際の間違った分子内ジスルフィド架橋の形成を防ぐために欠失させるかあるいは他のアミノ酸と置き換えることができる。変異誘発への他のアプローチは、KEX2プロテアーゼ活性が存在する酵母系における発現を増強するために、近接した二塩基性アミノ酸残基を修飾することを伴う。
欠失または挿入戦略を採用する場合は、欠失または挿入が生物活性に対して与え得る影
響を考慮しなければならない。本発明のタンパク質のサブユニットは、末端または内部の残基あるいは配列を欠失させることにより構築し得る。RANKLの可溶体は迅速に調製でき
、NF-κB活性化を誘導する能力について試験することができる。細胞質領域に相当するポリペプチドおよびその断片（例えば、デスドメインなど）は、同様の手法により調製し得る。作り得る変異の型に関するさらなる手引きは、RANKLの配列と、同様の構造を有する
タンパク質との比較によっても、本発明のRANKLタンパク質の構造解析を行うことによっ
ても提供される。
一般的に、置換は保存的に行わなければならない；すなわち、アミノ酸の最も好ましい置換とは、RANKLの生物活性（すなわち、本発明のタンパク質の対応する天然のタンパク
質に対する抗体に実質上同等に結合する能力、天然のタンパク質と実質上同様にカウンター構造に結合する能力、RANKLシグナルを誘導する能力、あるいはNF-κB活性化を誘導す
る能力）に影響しないような置換である。保存的な置換の例には、結合ドメイン外のアミノ酸置換（細胞外ドメインについてはリガンド／受容体または抗体の結合領域、あるいは細胞質ドメインについては他の細胞内タンパク質と相互作用する領域のいずれか）、および天然のタンパク質の二次および／または三次構造を変えないようなアミノ酸置換が含まれる。別の例には、ある脂肪族残基を別のものと、例えばIle、Val、Leu、またはAlaなどを互いに置換すること、あるいはある極性残基を別のものと、例えばLysとArg、GluとAsp、またはGlnとAsnの間で置換することが含まれる。例えば同様の疎水性特性を有する領域全体の置換などの、他のこのような保存的な置換が十分に知られている。
類似体タンパク質またはその断片を発現するために構築されたヌクレオチド配列内の変異は、コーディング配列の読み枠相を当然保存していなければならず、好ましくは、ハイブリダイズして、mRNAの翻訳に不都合に影響するであろうループまたはヘアピンなどのmRNA二次構造を作り得るような相補的な領域を作り出さないだろう。
RANKLタンパク質またはその断片をコードするヌクレオチド配列内のすべての変異が最
終産物に発現されるわけではなく、例えば、ヌクレオチド置換は、発現を増強するために、主として転写されたmRAN内の二次構造ループを避けるために（本明細書中で参考文献として援用しているEPA 75,444A参照）、あるいは、例えば有名な大腸菌は大腸菌発現用の
コドンを好む大腸菌など、選択した宿主によってより迅速に翻訳されるコドンを提供するために作られ得る。
変異部位はあらかじめ決めることができるが、変異の性質それ自体があらかじめ決められている必要はない。例えば、変異の最適な性質について選択するために、無作為な変異誘発を行うことができ、望ましい活性を求めて、発現された変異タンパク質をスクリーニングする。変異配列を含み、天然配列の断片とのライゲーションを可能にする制限酵素認識部位に隣接するようなオリゴヌクレオチドを合成することにより、変異を特定の位置に導入し得る。ライゲーションの後、得られた再構築された配列は、望みのアミノ酸挿入、置換、あるいは欠失を有する類似体をコードしている。
あるいは、必要な置換、欠失、または挿入にしたがって改変された特定のコドンを有する改変遺伝子を提供するために、オリゴヌクレオチド特異的部位特異的変異誘発の手順を用いることができる。上に示す改変を行う典型的な方法はWalderら（Gene 42:133, 1986
）；Bauerら（Gene 37:73, 1985）；Craikら（BioTechniques, January 1985, 12-19）；Smithら（Genetic Engineering: Principles and Methods, Plenum Press, 1981）；によって開示されており、アメリカ合衆国特許番号4,518,584および4,737,462は適切な手法を開示し、本明細書中で参考文献として援用されている。
本発明のタンパク質のさらなる態様には、RANKLをコードするDNA配列に、適度に厳しい
条件下（5 X SSC、0.5% SDS、1.0 mM EDTA(pH 8.0)というプレ洗浄溶液および50℃、5 X SSC、一晩というハイブリダイゼーション条件）で、あるいは、より好ましくは厳しい条
件下（例えば、6 X SSC中、63℃で一晩ハイブリダイゼーション；3 X SSC中、55℃で洗浄）で、SEQ ID NO:10または12のDNAにハイブリダイズすることができるDNAによりコードされるRANKLポリペプチド、およびRANKLをコードする配列と縮重した他の配列が含まれる。一態様においては、RANKLポリペプチドは、SEQ ID NO:10および12に示す天然のRANKLタンパク質のアミノ酸配列と、アミノ酸配列の点で少なくともおよそ70%同一である。好まし
い態様においては、RANKLポリペプチドは、RANKLの天然型とアミノ酸配列の点で少なくともおよそ80%同一であり、最も好ましいポリペプチドは天然のRANKLと少なくともおよそ90%同一なものである。
パーセント同一性は、例えばDevereuxら（Nucl. Acids Res. 12:387, 1984）によって
記載され、ウイスコンシン大学遺伝学コンピューターグループ（UWGCG）から入手可能なGAPコンピュータープログラムなどのコンピュータープログラムを用いて求め得る。RANKL
タンパク質由来の断片に関しては、同一性は断片内に存在するRANKLタンパク質の部分に
基づいて算出する。
RANKL類似体またはムテインの生物活性は、類似体またはムテインの、例えば本明細書
中の実施例に記載の転写活性化などの、RANKを介するシグナルを誘導する能力を調べることにより求め得る。あるいは、例えば、天然のRANKLに結合する抗体またはRANKLの可溶体を用いた酵素免疫アッセイまたはドットブロットなどの適切なアッセイを、RANKL類似体
またはムテインの活性を評価するのに用い得る。適切なアッセイには、例えば、RANKLペ
プチドまたはムテインの、RANKを発現している細胞に結合する能力、および／またはその結果の生物効果を測るアッセイも含まれる。そのような方法はこの技術分野では十分に知られている。
RANKLヌクレオチド配列の断片も有用である。一態様において、そのような断片は、本
明細書中に開示するRANKL DNAの少なくとも約17個の連続したヌクレオチドを、好ましく
は少なくとも約25個のヌクレオチドを、より好ましくは少なくとも30個の連続したヌクレオチドを含む。そのような断片のDNAおよびRNA相補体は、SEQ ID NO:10および12のRANKL DNAの一本鎖および二本鎖型の両方、および前記ポリペプチドをコードするものとあわせ
て、本明細書中に提供されている。RANKL DNAの断片は、一般的に少なくとも約17個のヌ
クレオチドを、好ましくは約17から約30個のヌクレオチドを含む。そのような核酸断片（例えば、RANKLの細胞外ドメインに対応するプローブなど）は、プローブとしてあるいは
ポリメラーゼ連鎖反応（PCR）におけるプライマーとして用いる。
プローブは、in vitroアッセイにおいて、そしてノーザンおよびサザンブロットのような手順において、RANKL核酸の存在を検出するのにも利用できる。RANKLを発現している細胞の種類も同様に同定し得る。そのような手順は十分に知られており、当業者は目的とする特定の適用に応じて適切な長さのプローブを選択し得る。PCRに関しては、常法を用い
、目的のRANKL DNA配列の末端に対応する5’および3’プライマーを使用してその配列を
増幅する。
RANKL核酸の他の有用な断片は、目的とするRANKL mRNA（センス）またはRANKL DNA（アンチセンス）配列に結合できる一本鎖核酸配列（RNAまたはDNAのいずれか）を含む、アンチセンスまたはセンスオリゴヌクレオチドである。あるタンパク質についてcDNA配列に基づいてアンチセンスまたはセンスオリゴヌクレオチドを作り出せるということは、例えばSteinとCohen（Cancer Res. 48:2659, 1988）およびvan der Krolら（BioTechniques 6:958, 1988）に記載されている。
DNA、タンパク質および類似体の使用
本明細書中に記載のRANKL DNA、タンパク質および類似体には、薬剤組成物の調製を含
め、非常に多くの利用法があるだろう。例えば、RANKLの可溶体はRANKを介したシグナル
を伝達するのに有用であろう。RANKL組成物（タンパク質とDNAの両方）は、RANKLに対す
る、RANKへの結合を阻害するものと阻害しないものとの両方の抗体の開発にも有用であろう。本発明のDNAは、組換え体タンパク質の発現に、そしてRANKL転写物の存在または分布の解析（定量的または定性的のいずれか）のためのプローブとして有用である。
本発明のタンパク質は、例えば患者標本において、可溶性RANKまたはRANKLを検出する
、あるいはRANKに関連した活性を測定するのに用いるキットを調製するのにも有用であろう。RANKLタンパク質は、他の試料または組成物におけるRANKに関連した活性を測定する
のにも利用されるだろうし、この活性のアンタゴニストまたは模倣体（例えば、相互作用をそれぞれ阻害または模倣するペプチドまたは小分子）のスクリーニングの際にも必要である。様々なアッセイ形式が、ELISA、ドットブロット、固相結合アッセイ（バイオセン
サーを用いるものなど）、迅速な形式のアッセイおよびバイオアッセイを含む（しかしそれらに限定はされない）、そのようなキットに有用である。
本発明にしたがって精製されたRANKLは、RANKの阻害物質、そしてそれゆえ炎症応答の
阻害物質（NF-κB活性化の阻害を介する）の発見を容易にするだろう。可能性のある阻害物質のスクリーニングにおいて精製RANKLポリペプチドを利用することは重要であり、混
入物との妨害反応の可能性を事実上消し得る。そのようなスクリーニングアッセイには、RANKLの細胞外ドメインかその断片のいずれかを利用し得る。ある分子の阻害活性の検出
は典型的には、RANKに結合しRANKLの結合を阻害できる分子を検出するためのスクリーニ
ングアッセイにおいて細胞外ドメイン由来のRANKLの可溶体を使用することを伴う。
加えて、RANKLポリペプチドは、構造に基づいたRANKL阻害物質の設計にも使用できる。そのような構造に基づいた設計は、“合理的な薬剤設計”としても知られている。RANKL
ポリペプチドは、例えばX線結晶学、核磁気共鳴あるいは相同性モデリングなどによって
三次元的に解析することができ、それらすべてが有名な方法である。阻害物質の設計を助けるために分子モデリングソフトウエアシステムにRANKL構造情報を利用することも、本
発明に包含される。そのようなコンピューターに助けられたモデリングおよび薬剤設計は、化学配座解析、分子の静電ポテンシャル、タンパク質折りたたみなどといった情報を利用し得る。本発明の特定の方法には、基質の結合しそうな部位に関してRANKLの三次元構
造を解析すること、予想反応部位を結合している新規の分子を合成すること、およびその新規分子を上記のようにアッセイすることが含まれる。
さらに、本明細書中の実施例に示すように、RANKLの可溶体は樹状細胞（DC）の成熟を
誘導するのに、そしてそれらの同種異系刺激能を増強するのに有用であろう。したがって、RANKLタンパク質は免疫応答を増大させるのに有用であろうし、ex vivo（すなわち、個体からDCなどの細胞を得て、それらをex vivoで抗原およびサイトカインにさらし、それ
らを個体に再び投与すること）、あるいはin vivo（すなわち、液性および／または細胞
性免疫を増大させるであろうワクチンアジュバントとして）のいずれかにおいて、それらの目的のために用い得る。RANKLはTGFβの存在下でT細胞の生存率を促進するのにも有用
であろうし、それは免疫応答を調節するのにも役立つだろう。
組換え体RANKLの発現
本発明のタンパク質は好ましくは、RANKLタンパク質またはその類似体をコードするDNA配列を組換え体発現ベクターに挿入し、そのDNA配列を発現を促進する条件下、組換え体
発現系で発現させることによる、組換え体DNAの手法によって作出する。本発明により提
供されるタンパク質をコードするDNA配列は、cDNA断片および短いオリゴヌクレオチドリ
ンカーから、あるいは一連のオリゴヌクレオチドから、組換え体発現ベクターに挿入し組換え体転写単位内で発現できるような合成遺伝子を提供するように組み立てることができる。
組換え体発現ベクターには、ほ乳類、微生物、ウイルスあるいは昆虫遺伝子に由来する適切な転写または翻訳調節要素に制御可能なように結合した、RANKLあるいはその相同体
、ムテインまたは生物学的に同等な類似体をコードする合成またはcDNA由来のDNA断片が
含まれる。そのような調節要素には、以下に詳細に記載する、転写プロモーター、転写を制御するためのオプションのオペレーター配列、適切なmRANリボソーム結合部位をコードする配列、および転写および翻訳の終結を制御する配列が含まれる。通常は複製の開始点によって与えられる、宿主内で複製する能力および、形質転換体の識別を容易にするための選択遺伝子を、さらに取り入れ得る。
DNA領域は、それらが互いに機能的に関連している場合には、制御可能なように結合さ
れる。例えば、ポリペプチドの分泌に関係する前駆体として発現する場合には、シグナルペプチド（分泌リーダー）に対するDNAをポリペプチドに対するDNAに制御可能なように結合させ；その配列の転写を制御する場合は、プロモーターをコーディング配列に、制御可能なように結合させ；あるいは翻訳できるように配置されている場合には、リボソーム結合部位をコーディング配列に、制御可能なように結合させる。一般的に、制御可能なように結合させるとは隣接しているということを、そして分泌リーダーの場合は、隣接しており読み枠にあっているということを意味する。微生物に発現させる、RANKL、あるいはそ
の相同体または類似体をコードするDNA配列は好ましくは、DNAのmRNAへの転写を成熟前に終結させ得るイントロンを含まないだろう。
細菌利用に有用な発現ベクターは、選択マーカーおよび、有名なクローニングベクターpBR322（ATCC 37017）の遺伝要素を含む商業的に入手可能なプラスミドに由来する、細菌の複製開始点を含み得る。そのような商業用ベクターには、例えばpKK223-3（Pharmacia Fine Chemicals, Uppsala, Sweden）およびpGEM1（Promega Biotec, Madison, WI, USA）が含まれる。これらのpBR322“骨格”部分が、適切なプロモーターおよび発現させるべき構造配列と連結されている。大腸菌は、一般的には大腸菌種由来のプラスミドである（Bolivar et al., Gene 2:95, 1977）pBR322の誘導体を用いて形質転換される。pBR322には
、アンピシリンおよびテトラサイクリン耐性のための遺伝子が含まれ、それゆえ形質転換された細胞を同定する簡単な手段を提供する。
組換え体微生物発現ベクターに一般的に用いられるプロモータには、β-ラクタマーゼ
（ペニシリナーゼ）およびラクトースプロモーター系（Chang et al., Nature 275:615, 1978;およびGoeddel et al., Nature 281:544, 1979）、トリプトファン（trp）プロモーター系（Goeddel et al., Nucl. Acids Res. 8:4057, 1980;およびEPA 36,776）およびtacプロモーター（Maniatis, Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, p.412, 1982）が含まれる。特に有用な細菌発現系は、ファージλ PLプロモーターおよびcI857ts熱不安定性リプレッサーを用いている。λ PLプロモーターの誘導体を取り入れている、American Type Culture Collectionから入手可能なプラスミドベクターには、大腸菌株JMB9中に含まれるプラスミドpHUB2（ATCC 37092）および大腸菌RR1中に含まれるpPLc28（ATCC 53082）が含まれる。
酵母ベクターにおいて適切なプロモーター配列は、メタロチオネイン、3-ホスホグリセリン酸キナーゼ（Hitzeman et al., J. Biol. Chem. 255:2073, 1980）あるいは、エノラーゼ、グリセルアルデヒド-3-リン酸デヒドロゲナーゼ、ヘキソキナーゼ、ピルビン酸デ
カルボキシラーゼ、ホスホフルクトキナーゼ、グルコース-6-リン酸イソメラーゼ、3-ホ
スホグリセリン酸ムターゼ、ピルビン酸キナーゼ、トリオースリン酸イソメラーゼ、ホス
ホグルコースイソメラーゼ、およびグルコキナーゼなどの他の解糖酵素（Hess et al., J. Adv. Enzyme Reg. 7:149, 1968;およびHolland et al., Biochem. 17:4900, 1978）に
対するプロモーターを含む。酵母発現に用いる適切なベクターおよびプロモーターは、R.
HitzemanらのEPA 73,657にさらに記載されている。
好ましい酵母ベクターは、大腸菌における選択および複製用のpBR322由来のDNA配列（Ampr遺伝子および複製開始点）と、グルコース抑制性ADH2プロモーターおよびα-因子分泌リーダーを含む酵母DNA配列を用いて組み立て得る。ADH2プロモーターはRussellら（J. Biol. Chem. 258:2674, 1982）およびBeierら（Nature 300:724, 1982）によって記載されている。異種のタンパク質の分泌を導く酵母α-因子リーダーは、プロモーターと発現さ
せるべき構造遺伝子の間に挿入され得る（例えばKurjan et al., Cell 30:933, 1982;お
よびBitter et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 81:5330, 1984などを参照のこと）。
リーダー配列は、その3’末端の近くで、リーダー配列の外来遺伝子との融合を容易にす
るためにひとつまたはそれ以上の有用な制限酵素認識部位を含むように修飾し得る。
脊椎動物細胞の形質転換に用いられる発現ベクター内の転写および翻訳調節配列は、ウイルス起源から提供され得る。例えば、一般的に用いられるプロモーターおよびエンハンサーは、ポリオーマ、アデノウイルス2、シミアンウイルス40（SV40）、およびヒトサイ
トメガロウイルスに由来する。例えば、SV40開始点、早期および後期プロモーター、エンハンサー、スプライス、およびポリアデニル化部位などの、SV40ウイルスゲノム由来のDNA配列は、異種のDNA配列の発現に必要な他の遺伝的要素を提供するために用いられ得る。早期および後期プロモーターは、両者ともSV40ウイルス複製起点をも含む断片としてウイルスから容易に得られるため（Fiers et al., Nature 273:113, 1978）特に有用である。ウイルス複製起点に位置する、Hind III部位からBgl I部位まで広がるおよそ250 bpの配列が含まれるならば、より小さなあるいは大きなSV40断片をも用い得る。さらに、ウイルスゲノムプロモーター、調節および／またはシグナル配列を、そのような調節配列が選んだ宿主細胞と適応するならば、用い得る。典型的なベクターは、OkayamaおよびBerg（Mol. Cell. Biol. 3:280, 1983）によって開示されているように構築し得る。
C127マウス乳上皮細胞におけるほ乳類受容体cDNAの安定な高レベルの発現に有用な系は、Cosmanら（Mol. Immunol. 23:935, 1986）によって記載されているようにして実質的に構築することができる。RANKL DNAの発現に関して好ましい真核細胞ベクターは、pDC406
（McMahan et al., EMBO J. 10:2821, 1991）と呼ばれ、SV40、ヒト免疫不全ウイルス（HIV）、およびエプスタイン-バーウイルス（EBV）由来の調節配列を含む。他の好ましいベクターには、pDC409およびpDC410が含まれるが、それらはpDC406に由来する。pDC410は、EBV複製開始点をSV40ラージT抗原をコードする配列で置換することによりpDC406から得た。pDC409は、マルチクローニング部位の外のBgl II制限酵素認識部位が欠失されて、マルチクローニング部位内のBgl II部位が唯一のものになっているという点でpDC406とは異なる。
EBV複製開始点を含むpDC406およびpDC409などの発現ベクターを染色体外複製させる有
用な細胞株は、CV-1/EBNA（ATCC CRL 10478）である。CV-1/EBNA細胞株は、CV-1細胞株にエプスタイン-バーウイルス核抗原-1（EBNA-1）をトランスフェクトすることにより得ら
れたもので、ヒト CMV即時早期エンハンサー／プロモーターから駆動されるEBNA-1を構成的に発現している。
宿主細胞
形質転換された宿主細胞は、組換え体DNAの手法を用いて構築された発現ベクターで形
質転換または形質導入された細胞であり、それは本発明のタンパク質をコードする配列を含む。形質転換された宿主細胞は、目的のタンパク質（RANKL、あるいはその相同体また
は類似体）を発現し得るが、本発明のDNAをクローニングまたは増幅する目的で形質転換
された宿主細胞は、そのタンパク質を発現する必要はない。発現されたタンパク質は好ましくは、選択したDNAに応じて培養上清中に分泌されるであろうが、細胞膜内に置かれる
可能性がある。
タンパク質の発現に適した宿主細胞には、適切なプロモーターの制御下にある原核細胞、酵母あるいは高等な真核細胞が含まれる。原核細胞には、例えば大腸菌またはバチルス種などのグラム陰性またはグラム陽性生物が含まれる。高等な真核細胞には、樹立されている、以下に記載のほ乳類起源の細胞株が含まれる。無細胞翻訳系を用い、本明細書中に開示するDNA構築物に由来するRNAを使用してタンパク質を生成することもできる。細菌の、菌類の、酵母のおよびほ乳類の細胞宿主とともに用いるための適切なクローニングおよび発現ベクターは、Pouwelsら（Cloning Vectors: A Laboratory Manual, Elsevier, New
York, 1985）に記載されており、それに関連した開示は本明細書中で参考文献として援
用している。
原核細胞発現宿主を、RANKL、あるいは、大規模なタンパク質分解およびジスルフィド
プロセッシングを必要としないその相同体または類似体の発現のために用い得る。原核細胞発現ベクターには一般的に、例えば、抗生物質耐性を与えるあるいは独立栄養体の要求性を補足するタンパク質をコードする遺伝子などの、表現型選択可能なマーカーをひとつまたはそれ以上と、さらに宿主によって認識されて宿主内での増幅を確実にする複製起点が含まれる。選択の問題として他のものも用い得るが、形質転換に適した原核細胞宿主には、大腸菌、Bacillus subtilis、Salmonella typhimurium、およびPseudomonas、Streptomyces、およびStaphylococcus属の中の様々な種が含まれる。
組換え体RANKLは、好ましくはS. cerevisiaeのようなSaccharomyces種由来の酵母宿主
に発現させることもできる。PichiaまたはKluyveromycesのような他の属の酵母も用い得
る。酵母ベクターは一般的には、2μ酵母プラスミド由来の複製起点または自律的に複製
する配列（ARS）、プロモーター、そのタンパク質をコードするDNA、ポリアデニル化および転写終結のための配列および選択遺伝子を含むだろう。好ましくは、酵母ベクターには複製開始点および、例えば大腸菌のアンピシリン耐性遺伝子およびトリプトファン中で増殖する能力を欠いた酵母の変異系統を選択するマーカーを提供するS. cerevisiae trp1遺伝子などの、酵母と大腸菌の両方の形質転換ができる選択可能なマーカー、そして下流の構造配列の転写を誘導する非常に発現する酵母遺伝子由来のプロモーターが含まれるだろう。酵母宿主細胞ゲノム内のtrp1損傷の存在は、トリプトファン非存在下での増殖により形質転換を検出するための効果的な環境を提供する。
適切な酵母形質転換のプロトコールは当業者には知られており、典型的な手法は、0.67%酵母窒素塩基、0.5%カザミノ酸、2%グルコース、10 μg/mlアデニンおよび20 μg/mlウ
ラシルを含む選択培地中でTrp+形質転換体を選択するというもので、Hinnenら（Proc. Natl. Acad. Sci. USA 75:1929, 1978）に記載されている。ADH2プロモーターを含むベクターで形質転換した宿主系統は、発現のために80 μg/mlアデニンおよび80 μg/mlウラシルを補充した1%酵母抽出物、2%ペプトン、および1%グルコースを含む、栄養に富んだ培地中で培養し得る。ADH2プロモーターの抑制解除は培地グルコースが枯渇した時に起こる。粗酵母上清を濾過によって回収し、さらなる精製の前に4℃に置いた。
様々なほ乳類または昆虫細胞培養系を用いて組換え体タンパク質を発現させ得る。昆虫細胞内で異種のタンパク質を産生するためのバキュロウイルス系は、LuckowとSummers（Bio/Technology 6:47 (1988)）によって総説されている。適したほ乳類宿主細胞株の例に
は、Gluzman（Cell 23:175, 1981）により記載されているサル腎細胞のCOS-7株、および
例えばCV-1/EBNA（ATCC CRL 10478）、L細胞、C127、3T3、チャイニーズハムスター卵巣
（CHO）、HeLaおよびBHK細胞株などを含む、適切なベクターを発現し得る他の細胞株が含まれる。ほ乳類発現ベクターは、複製開始点、発現させるべき遺伝子に連結した適切なプロモーターおよびエンハンサーなどの非転写要素、および他の5’または3’隣接非転写配列、そして、必要なリボソーム結合部位、ポリアデニル化部位、スプライス供与および受容部位、および転写終結配列などの5’または3’非翻訳配列を含み得る。
組換え体RANKLの精製
適した宿主／ベクター系を培養して本発明のDNAの組換え体翻訳産物を発現させ、それ
から培養培地または細胞抽出物から精製することにより、精製されたRANKL、およびその
相同体または類似体を調製する。例えば、組換え体タンパク質を培養培地中に分泌するような系の上清を最初に、例えばAmiconまたはMillipore Pellicon 限外濾過ユニットなど
の商業的に入手可能なタンパク質濃縮フィルターを用いて濃縮し得る。
濃縮段階の後、濃縮物を適切な精製基質に適用し得る。例えば、適したアフィニティーマトリックスは、適切な担体に結合したカウンター構造タンパク質またはレクチンまたは抗体分子を含み得る。あるいは、例えば張り出したジエチルアミノエチル（DEAE）基を有するマトリックスまたは基質など、陰イオン交換樹脂を用い得る。マトリックスはアクリルアミド、アガロース、デキストラン、セルロースあるいはタンパク質精製に一般的に用いられる他の種類のものであり得る。あるいは、陽イオン交換の段階を用い得る。適切な陽イオン交換体には、スルホプロピルまたはカルボキシメチル基を含む様々な不溶性マトリックスが含まれる。スルホプロピル基が好ましい。ゲル濾過クロマトグラフィーも、本発明のタンパク質を精製する手段を提供する。
アフィニティークロマトグラフィーは、RANKLおよびその相同体を精製する、特に好ま
しい方法である。例えば、免疫グロブリンFc領域を含む融合タンパク質として発現させたRANKLは、プロテインAまたはプロテインGアフィニティークロマトグラフィーを用いて精
製し得る。さらに、オリゴマー化ジッパードメインを含むRANKLタンパク質は、オリゴマ
ー化ジッパードメインに特異的な抗体を含む樹脂にて精製し得る。RANKLタンパク質に対
するモノクローナル抗体も、この技術分野で十分知られている方法を用いることにより、アフィニティークロマトグラフィー精製に有用であり得る。リガンドも、RANKLのアフィ
ニティー精製用のアフィニティーマトリックスを調製するのに用い得る。
最終的に、例えば張り出したメチルあるいは他の脂肪族基を有するシリカゲルなどの疎水性RP-HPLC媒体を用いた、1回あるいはそれ以上の逆相高速液体クロマトグラフィー（RP-HPLC）段階を、RANKL組成物をさらに精製するのに用い得る。上述の精製段階のいくつかまたはすべては、様々な組み合わせで、同種の組換え体タンパク質を提供するのにも用い得る。
細菌培養中に産生された組換え体タンパク質は、通常は細胞沈渣の最初の抽出物により単離され、続いて1回またはそれ以上の濃縮、塩析、水性イオン交換またはサイズ排除ク
ロマトグラフィーの段階を行う。最後に、高速液体クロマトグラフィー（HPLC）を最終精製段階に用い得る。組換え体タンパク質の発現に用いた細菌細胞は、凍結-融解の繰り返
し、音波処理、機械による破壊、あるいは細胞可溶化剤の使用を含む、都合のよいあらゆる方法により破壊し得る。
本発明のタンパク質を分泌タンパク質として発現する酵母の発酵は、精製を非常に簡単にする。大規模な発酵から得られる分泌組換え体タンパク質は、Urdal ら（J. Chromatog. 296:171, 1984）により開示されているものと類似の方法によって精製し得る。この参
考文献では、分離用HPLCカラム上で組換え体ヒト GM-CSFを精製するための2つの連続した逆相HPLC段階を記載している。
組換え体培養中で合成されるタンパク質は、培養物から本発明のタンパク質を回収するのにとる精製段階に応じた量および性質の、タンパク質を含む細胞構成成分の存在を特徴とする。これらの構成成分は、通常は酵母、原核細胞またはヒト以外の高等な真核細胞起源のものであろうが、好ましくは、重量で約1パーセント以下のオーダーの、特に害のな
い混入量で存在する。さらに、組換え体細胞培養により本発明のタンパク質を、起源となる種において天然に見いだされるのと同様に正常ではこのタンパク質と結合し得るような他のタンパク質を含まずに産生することができる。
RANKL組成物の使用および投与
本発明は、効果的な量のタンパク質および適切な希釈剤およびキャリアーを含む治療組成物の使用方法、そして免疫または炎症応答を調節する方法を提供する。RANKLを可溶性
サイトカイン受容体またはサイトカイン、あるいは他の免疫調節分子と組み合わせて用いることも企図している。
治療利用については、適応症に適した方法で治療するために精製タンパク質を患者、好ましくはヒトに投与する。例えば、免疫機能を調節するために投与されるRANKLタンパク
質組成物を、ボーラス注射、連続注入、インプラントからの持続放出、または他の適切な手法により与え得る。典型的には、治療剤は、精製RANKLを生理的に許容可能なキャリア
ー、賦形剤または希釈剤と組み合わせて含む組成物の形で投与されるだろう。そのようなキャリアーは、用いる用量および濃度ではレシピエントに対して無毒だろう。
一般的には、そのようなタンパク質組成物の調製は、本発明のタンパク質を緩衝剤、アスコルビン酸などの抗酸化剤、低分子量（約10残基以下）ポリペプチド、タンパク質、アミノ酸、グルコース、スクロースまたはデキストリンを含む糖、EDTAなどのキレート剤、グルタチオンおよび他の安定化剤および賦形剤と混ぜることを必要とする。中性緩衝生理食塩水または同種の血清アルブミンと混ぜた生理食塩水は、典型的な適切な希釈剤である。好ましくは、適切な賦形剤溶液（例えばスクロース）を希釈剤として用いた凍結乾燥品として産物を製剤化する。適切な投与量は試行により決定しうる。投与の量および頻度は、当然ながら、治療される適応症の性質および厳しさ、目的とする応答、患者の状態などの要因に依存するだろう。
本明細書中で示すように、RANKLは免疫系において重要である様々な細胞に対して有益
な効果を有する。したがって、RANKLをワクチンアジュバントとして、あるいは例えば流
行感染症などにおける免疫応答をアップレギュレートするための治療剤として個体に投与し得る。さらに、NF-κBは、TNF-αまたは化学療法によって誘導される細胞のアポトーシス死を防ぐ防御機能を果たすことが見いだされた。したがって、RANKのアゴニスト（すなわち、RANKLおよび拮抗抗体）はRANK発現細胞を、化学療法の負の効果または敗血症など
で起こる高レベルのTNF-αの存在（すなわち、Barinaga, Science 274”724, 1996、および同じ号のScienceの782および784ページのBegとBaltimoreおよびWangらによる論文を参
照のこと）から守るのに有用であるだろう。
本発明の態様
本発明は以下の態様を含む。
１． (a) SEQ ID NO:10に示すアミノ酸配列を有するタンパク質であって、0アミノ酸1とアミノ酸139の間のアミノ酸すべてからなる群から選択されるアミノ末端と、アミノ酸290とアミノ酸294の間のアミノ酸すべてからなる群から選択されるカルボキシ末端を有す
るものをコードするDNA；
(b) SEQ ID NO:12に示すアミノ酸配列を有するタンパク質であって、アミノ酸1とア
ミノ酸162の間のアミノ酸すべてからなる群から選択されるアミノ末端と、アミノ酸313と
アミノ酸317の間のアミノ酸すべてからなる群から選択されるカルボキシ末端を有するも
のをコードするDNA；
(c) 厳しい条件下で(a)または(b)のDNAとのハイブリダイゼーションが可能で、かつ
生物学的に活性なRANKLをコードするDNA分子；および
(d) (a)、(b)または(c)のDNAによってコードされるタンパク質の断片をコードするDNA分子；
からなる群から選択される、単離されたDNA。
２． SEQ ID NO:10および12に示す天然型のRANKLとアミノ酸配列が少なくとも約70%同一であるRANKLポリペプチドをコードする、態様１の単離されたDNA。
３． 可溶性RANKLポリペプチドをコードする、態様１の単離されたDNA。
４． 可溶性RANKLポリペプチドをコードする、態様２の単離されたDNA。
５． (a) SEQ ID NO:10に示すアミノ酸配列を有するタンパク質であって、アミノ酸48とアミノ酸139の間のアミノ酸すべてからなる群から選択されるアミノ末端と、アミノ酸290とアミノ酸294の間のアミノ酸すべてからなる群から選択されるカルボキシ末端を有す
るものをコードするDNA；
(b) SEQ ID NO:12に示すアミノ酸配列を有するタンパク質であって、アミノ酸69とアミノ酸162の間のアミノ酸すべてからなる群から選択されるアミノ末端と、アミノ酸313とアミノ酸317の間のアミノ酸すべてからなる群から選択されるカルボキシ末端を有するも
のをコードするDNA；
(c) 厳しい条件下で(a)または(b)のDNAとのハイブリダイゼーションが可能で、かつ
生物学的に活性なRANKLをコードするDNA分子；および
(d) (a)、(b)または(c)のDNAによってコードされるタンパク質の断片をコードするDNA分子；
からなる群から選択される、可溶性RANKLをコードする単離されたDNA。
６． 免疫グロブリンFcドメイン、免疫グロブリンFcドメインムテイン、FLAGTMタグ、少なくとも約6個のHis残基を含むペプチド、ロイシンジッパー、およびそれらの組み合わせ、からなる群から選択されるポリペプチドをコードするDNAをさらに含む、態様５の単
離されたDNA。
７． 態様１に記載のDNA配列を含む組み換え体発現ベクター。
８． 態様２に記載のDNA配列を含む組み換え体発現ベクター。
９． 態様３に記載のDNA配列を含む組み換え体発現ベクター。
１０． 態様４に記載のDNA配列を含む組み換え体発現ベクター。
１１． 態様５に記載のDNA配列を含む組み換え体発現ベクター。
１２． 態様６に記載のDNA配列を含む組み換え体発現ベクター。
１３． 態様７に記載の発現ベクターで形質転換または形質導入した宿主細胞。
１４． 態様８に記載の発現ベクターで形質転換または形質導入した宿主細胞。
１５． 態様９に記載の発現ベクターで形質転換または形質導入した宿主細胞。
１６． 態様１０に記載の発現ベクターで形質転換または形質導入した宿主細胞。
１７． 態様１１に記載の発現ベクターで形質転換または形質導入した宿主細胞。
１８． 態様１２に記載の発現ベクターで形質転換または形質導入した宿主細胞。
１９． RANKLの発現および回収を促進する条件下で態様１３に記載の宿主細胞を培養
することを含む、RANKLタンパク質の製造方法。
２０． RANKLの発現および回収を促進する条件下で態様１４に記載の宿主細胞を培養
することを含む、RANKLタンパク質の製造方法。
２１． RANKLの発現および回収を促進する条件下で態様１５に記載の宿主細胞を培養
することを含む、RANKLタンパク質の製造方法。
２２． RANKLの発現および回収を促進する条件下で態様１６に記載の宿主細胞を培養
することを含む、RANKLタンパク質の製造方法。
２３． RANKLの発現および回収を促進する条件下で態様１７に記載の宿主細胞を培養
することを含む、RANKLタンパク質の製造方法。
２４． RANKLの発現および回収を促進する条件下で態様１８に記載の宿主細胞を培養
することを含む、RANKLタンパク質の製造方法。
２５． SEQ ID NO:10またはSEQ ID NO:12のDNAの断片である、少なくとも約17ヌクレ
オチドの長さのオリゴヌクレオチド、少なくとも約25ヌクレオチドの長さのオリゴヌクレオチド、および少なくとも約30ヌクレオチドの長さのオリゴヌクレオチドからなる群から選択される、単離されたDNA。
２６． (a) SEQ ID NO:11に示すアミノ酸配列を有するポリペプチドであって、アミノ酸1とアミノ酸139の間のアミノ酸すべてからなる群から選択されるアミノ末端と、アミノ酸290とアミノ酸294の間のアミノ酸すべてからなる群から選択されるカルボキシ末端を有するもの；
(b) SEQ ID NO:13に示すアミノ酸配列を有するポリペプチドであって、アミノ酸1と
アミノ酸162の間のアミノ酸すべてからなる群から選択されるアミノ末端と、アミノ酸313とアミノ酸317の間のアミノ酸すべてからなる群から選択されるカルボキシ末端を有する
もの；
(c) 厳しい条件下で(a)または(b)のタンパク質をコードするDNAとのハイブリダイゼ
ーションが可能であるDNAによりコードされ、かつ生物学的に活性なRANKLポリペプチド；および
(d) 生物学的に活性な、(a)、(b)または(c)のポリペプチドの断片；
からなる群から選択される、単離されたRANKLポリペプチド。
２７． SEQ ID NO:11または13と少なくとも約80%同一であるアミノ酸配列を有する、
態様２６のタンパク質。
２８． 可溶性RANKLである、態様２７に記載のタンパク質。
２９． 可溶性RANKLである、態様２６に記載のタンパク質。
３０． 免疫グロブリンFcドメイン、免疫グロブリンFcドメインムテイン、FLAGTMタグ、少なくとも約6個のHis残基を含むペプチド、ロイシンジッパー、およびそれらの組み合わせ、からなる群から選択されるペプチドをさらに含む、可溶性RANKLタンパク質。
３１． 態様２６のRANKLポリペプチドと免疫反応性のある抗体。
３２． モノクローナル抗体である、態様３１の抗体。
３３． 樹状細胞（DC）の生存を促進し、DCを成熟させる条件下で、DC上のCD1b/c発現量を減少させるのに十分な量のRANKLポリペプチドとCD1a+ DCを接触させることを含む、DCの成熟を誘導する方法。
３４． 樹状細胞（DC）の生存を促進し、DCをT細胞に対して抗原を提示するようにさ
せる条件下で、混合リンパ球反応（MLR）におけるDCの同種異系刺激能を上昇させるのに
十分な量のRANKLポリペプチドとCD1a+ DCを接触させることを含む、DCの同種異系刺激能
を増強する方法。
３５． TGFβ非存在下でT細胞の生存を促進し、T細胞をT細胞寛容に感化させる条件下で、TGFβの存在下で生存能を維持しているT細胞の数を増加させるのに十分な量のRANKL
ポリペプチドと、TGFβにさらされたT細胞を接触させることを含む、TGFβ存在下でT細胞の生存を促進する方法。
以下の実施例は説明として提供されているのであって、限定のために提供されたものではない。当業者は、実施例に包含される本発明の変形物を、とりわけ本明細書中に引用している様々な参考文献の手法に照らして作ることができるということを理解するだろうし、それらの開示は参考文献として援用している。
実施例1
本実施例では、TNF受容体スーパーファミリーの新規メンバーをコードするDNAの同定および単離を説明する。CD40（B細胞の増殖および分化に重要な役割を果たすことが示され
た、正常のおよび腫瘍性の両方のヒトB細胞の表面上に存在する細胞表面抗原；Stamenkovic et al., EMBO J. 8:1403, 1989）といくらかの類似性を有する予想オープンリーディ
ングフレームを持った部分cDNAインサートを、ヒト骨髄由来の樹状細胞（DC）から作製されたcDNAの配列情報を含むデータベース内で同定した。このインサートを制限エンドヌクレアーゼ切断によってベクターから切り出し、ゲル精製し、32Pにて標識して、これを用
いて、より大きなcDNAインサートを含むDC cDNAライブラリーから作製したコロニーブロ
ットと、非常に厳しいハイブリダイゼーションおよび洗浄の手法（5 x SSC、50%ホルムアミド中、42℃で一晩ハイブリダイゼーション、0.5 x SSC中、63℃で洗浄）を用いてハイ
ブリダイズさせ；他の適切な非常に厳しい条件は、Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2nd ed.（Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, NY; 1989）, 9.52-9.55 のSambrookらの中に開示されている。最初の実験では、9D-8A（SEQ ID NO:1）と名付けたクローンが得られ、続く解析により、このクローンが新規cDNAの5’最末端を除
くすべてを含み、5’最末端に予想イントロン配列を有することが示された（SEQ ID NO:1のヌクレオチド1-92）。さらなるコロニーハイブリダイゼーションを行い、2つめのクロ
ーンを単離した。9D-15C（SEQ ID NO:3）と名付けた2つめのクローンは、イントロンの介在のない5’末端を含んでいたが、完全な3’末端を含んでいなかった。SEQ ID NO:5は、SEQ ID NO:1および3のオーバーラップする配列の対応付けに基づいて予想された全長タン
パク質のヌクレオチドおよびアミノ酸配列を示す。
コードされるタンパク質は、NF-κB受容体アクティベーターとしてRANKと名付けた。このcDNAは、616アミノ酸残基を有し、24アミノ酸予想シグナル配列（コンピューターで予
想した切断部位はLeu24の後である）、188アミノ酸細胞外ドメイン、21アミノ酸膜貫通ドメイン、および383アミノ酸細胞質尾部を持った、予想1型膜貫通タンパク質をコードしている。RANKの細胞外領域はCD40と有意なアミノ酸相同性（38.5%同一性、52.3%類似性）を示した。pBluescript:huRANK（大腸菌DH10B内）と名付けた、ヒトRANK配列を含むクロー
ニングベクター（pBluescriptSK-）を、ブダペスト条約の条件で1996年12月20日にAmerican Type Culture Collection, Rockville, MD（ATCC）に寄託し、受託番号98285を得た。
実施例2
本実施例では、RANK/Fc融合タンパク質を発現するためのRANK DNA構築物の構築を説明
する。ヒトIgG1のFc領域と融合したRANK可溶体を、ほ乳類発現ベクターpDC409（USSN 08/571,579）にて構築した。この発現ベクターは、サイトメガロウイルス（CMV）のオープンリーディングフレームR27080（SEQ ID NO:9）のリーダー配列、それに続くRANKのアミノ
酸33-213、それに続くFc受容体に対する親和性が減少している、ヒトIgG1の定常ドメイン
の変異体（SEQ ID NO:8；融合タンパク質については、構築物のうちのFc部分はArg3からLys232までを含んでいた）をコードしている。RANKのアミノ酸1-213（天然のリーダー配列を用いる）、それに続くIgG1ムテインを包含する別のベクターも調製した。両発現ベクターは、トランスフェクトした細胞内で高レベルにRANK/Fc融合タンパク質の発現を誘導す
ることがわかった。
RANK/Fcタンパク質を得るために、RANK/Fc発現プラスミドをCV-1/EBNA細胞にトランス
フェクトし、上清を約1週間集める。RANK/Fc融合タンパク質を、例えば、製造者の推奨に従ってプロテインAセファロースカラムクロマトグラフィー（すなわち、Pharmacia、Uppsala、Sweden）によってなど、Fc融合タンパク質の精製についてこの技術分野では十分に
知られている手段によって精製する。SDS-ポリアクリルアミドゲル電気泳動解析により、精製RANK/Fcタンパク質は還元剤の存在下では分子量約50kDaで、そして還元剤の非存在下では分子量約110kDaの位置に移動したことが示された。
CMV R27080リーダーを用いて作られた精製タンパク質のN-末端アミノ酸配列を決定すると、Ala20の後で60%切断され、Pro22の後で20%切断され、そしてArg28の後で20%切断されることが示され（これはFurin切断部位であり、アミノ酸残基はSEQ ID NO:9と関連する）；天然のリーダーにより発現させた融合タンパク質のN-末端アミノ酸を解析すると、Gln25の後で主に切断されることが示された（Gln25の後で80%、Arg23の後で20%であり、アミ
ノ酸残基は全長RANKであるSEQ ID NO:6と関連する）。両融合タンパク質は、RANKに対す
るリガンドと特異的に結合することができ（すなわち、マウス胸腺腫細胞株EL4などの様
々な細胞株の表面に結合した）、これはRANKのN-末端にさらにアミノ酸が存在してもRANKLに結合する能力を妨害しないということを示している。さらに、アミノ酸33から始まるRANKをコードする、CMVリーダーを含む構築物、したがってArg23とPro33両方の間のアミノ酸にN-末端を有するRANKペプチドを、RANKに対するリガンドに特異的に結合できると予想される。
TNF受容体スーパーファミリーの他のメンバーは、膜貫通ドメインとリガンド結合ドメ
インの間に‘スペーサー’領域とよばれる、リガンド結合には必要ではないアミノ酸の領域を有する。RANKにおいては、196と213との間のアミノ酸は、このようなスペーサー領域を形成すると予想される。したがって、この領域の中のアミノ酸で終わるRANK可溶体は、RANKのリガンドに対して特異的に結合する能力を保持していると予想される。可溶性RANKペプチドの好ましいC-末端アミノ酸は、スペーサー領域内の他のアミノ酸もC-末端として用いられ得るが、SEQ ID NO:6のアミノ酸213および196からなる群から選択される。
実施例3
本実施例ではRANKに対するモノクローナル抗体の調製を説明する。例えば、精製組み換え体RANKの調製物、あるいはRANKを高レベルに発現するトランスフェクトされた細胞などが、アメリカ合衆国特許4,411,993に開示されているような常法を用いてRANKに対するモ
ノクローナル抗体を作製するのに使用される。RANKをコードするDNAも、例えばImmunity 3:165, 1995でPardollおよびBeckerlegによって総説されているように、免疫原として用
い得る。そのような抗体は、RANKが誘導するシグナリングを妨げるのに（アンタゴニストまたはブロッキング抗体）、あるいはRANKまたはRANK活性に関する診断上のあるいは研究上のアッセイの構成要素として、RANKを架橋することによってシグナルを誘導するのに（アゴニスト抗体）、あるいはRANKのアフィニティー精製に有用であるとみられる。
齧歯類を免疫するために、RANK免疫原をアジュバント（完全または不完全フロイントアジュバント、ミョウバン、またはRibiアジュバントR700（Ribi, Hamilton, MT）といった他のアジュバントなど）にエマルジョン化し、例えばBALB/cマウスまたはLewisラットな
ど選択した齧歯類個体に10-100 μgの範囲の量を皮下投与する。DNAを皮内に（Raz et al
., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91:9519, 1994）あるいは筋肉内に（Wang et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90:4156, 1993）投与することができ、生理食塩水がDNAをもと
にした抗原に適した希釈剤であることが分かっている。10日から3週間後に、免疫した動
物個体に免疫原を追加してブーストし、その後1週間ごと、2週間ごと、または3週間ごと
の免疫日程で定期的にブーストする。
ドットブロットアッセイ（抗体サンドイッチ）、ELISA（酵素結合免疫吸着アッセイ）
、免疫沈降、またはFACS解析を含めた他の適切なアッセイによる分析のために、眼窩後方放血または尾先端切断により血清試料を定期的に採取する。適切な抗体価の検出後、陽性の動物個体に生理食塩水に溶かした抗体を静脈内投与する。3から4日後、その動物個体を犠牲死させ、脾細胞を回収し、マウスミエローマ細胞株（例えばNS1、あるいは好ましく
はAg 8.653 [ATCC CRL 1580]）と融合させる。この手順によって作製したハイブリドーマ細胞株を、複マイクロタイタープレートに、融合していない細胞、ミエローマ-ミエロー
マハイブリッド、および脾細胞-脾細胞ハイブリッドの増殖を阻害するための選択培地（
例えば、ハイポキサンチン、アミノプテリン、およびチミジンを含むもの、すなわちHAT
）中でまく。
このように作製されたハイブリドーマクローンを、例えばEngvallら（Immunochem. 8:871 (1971)）およびアメリカ合衆国特許4,703,004によって開示されている手法を適用することにより、RANKとの反応性に関するELISAにてスクリーニングし得る。好ましいスクリ
ーニング法は、Beckmanら（J. Immunol. 144:4212 (1990)）によって記載されている抗体捕捉法である。それから、陽性クローンを同系の齧歯類の腹腔内に投与して、高濃度（>1
mg/ml）の抗RANKモノクローナル抗体を含む腹水を作り出す。得られたモノクローナル抗体は、硫酸アンモニウム沈殿、続いてゲル排除クロマトグラフィーにより精製し得る。あるいは、プロテインAまたはプロテインGへの抗体の結合に基づいたアフィニティークロマトグラフィーも、RANKタンパク質への結合に基づいたアフィニティークロマトグラフィーも用い得る。
RANK/Fc融合タンパク質を免疫原として用い、モノクローナル抗体を作製した。これら
の試薬をスクリーニングして、RANKタンパク質に対する反応性を確認した。本明細書中に記載の方法を、mAbの活性を測定するために用い、ブロッキング（すなわち、RANKに結合
し、リガンドがRANKに結合するのを阻害する抗体）および非ブロッキング（すなわち、RANKに結合し、リガンド結合を阻害しない抗体）の両方を単離した。
実施例4
本実施例では、293/EBNA細胞（ヒト CMV即時-早期エンハンサー／プロモーターに駆動
されて構成的にエプスタイン-バーウイルス核抗原-1（ENBA-1）を発現する細胞株を、293細胞にENBA-1をコードする遺伝子をトランスフェクトすることによって得た）における、RANKによるNF-κB活性の誘導を説明する。もともとYaoら（Immunity 3:811, 1995）によ
って記載されているように、NF-κB活性の活性化を293/EBNA細胞内で測定した。核抽出物を調製し、NF-κB結合部位にまたがる25塩基対オリゴヌクレオチドを用いたゲル遅延アッセイによりNF-κB活性について解析した。DNAトランスフェクションの2日前に、200万個
の細胞を10 cmディッシュにまき、2.5% FBS（ウシ胎児血清）を含むDMEM-F12培地中で培
養した。DANトランスフェクションを、IL-8プロモーター／レポーターアッセイに関して
本明細書中で記載しているように行った。
単離した核を400 mM NaClにて可溶化することにより、核抽出物を調製した（上記Yaoら）。NF-κB結合部位を含むオリゴヌクレオチドを、アニールさせT4 DNAポリヌクレオチドキナーゼを用いて32Pにて末端標識した。移動度シフト反応物は、10 μgの核抽出物、4
μgのポリ(dI-dC)および15,000 cpm標識二本鎖オリゴヌクレオチドを含み、室温で20分間
インキュベートした。得られたタンパク質-DNA複合体を、0.25 X Tris-ホウ酸-EDTAバッ
ファー中、6%非変性ポリアクリルアミドゲル上で分離した。
RANKの過剰発現の結果、放射活性のあるプローブの、ゲル上での移動度の適切なシフトが示すように、NF-κB活性が誘導された。同様の結果は、RANKに結合して受容体を発現している細胞にシグナルを伝達するリガンドによってRANKを刺激した時に（すなわち、細胞にヒトRANKとマウスRANKL DNAを共トランスフェクトすることによる；以下の実施例7を参照）観察され、アゴニスト抗体によって刺激が行われた時に起こると予想された。
実施例5
本実施例では、in vivoで遺伝子転写の活性化を解析するために用いる、ヒトインター
ロイキン-8（IL-8）プロモーターをもとにした遺伝子プロモーター／レポーターシステムを説明する。サイトカインインターロイキン-1（IL-1）または腫瘍壊死因子-アルファ（TNF-α）によるヒトIL-8遺伝子転写の誘導は、無傷のNF-κBとNF-IL-6転写因子結合部位に依存していることが知られている。サイトカイン応答性IL-8プロモーターを、マウスIL-4受容体（mIL-4R）をコードするcDNAと融合させると、トランスフェクトした細胞の細胞表面の異種受容体タンパク質（mIL-4R）を検出することにより、プロモーター活性化の測定が可能になる。
ヒト腎上皮細胞（293/EBNA）に、1). レポーター／プロモーター構築物（pIL-8repと名付けた）および2). 目的のcDNA(s)、をコードするプラスミドをトランスフェクトした（DEAE/DEXTRAN法による）。空のベクターDNAを添加することによりDNA濃度を一定に保つ。293/EBNA細胞を、2.5 x 104細胞/ml（3 ml/穴）の密度で6穴プレートにまき、トランスフ
ェクションの前に2日間インキュベートする。トランスフェクションの2日後、mIL-4受容
体を、以下に説明する放射免疫アッセイ（RIA）により検出する。
そのような一実験においては、293/EBNA細胞にRANKをコードするDNAとRANKLをコードするDNAを共トランスフェクトした（以下の実施例7を参照）。細胞によってこの受容体とそのカウンター構造が共発現される結果、RANKのシグナリング過程が活性化される。このような共トランスフェクション研究に関しては、DEAEトランスフェクション用のDNA濃度/穴は以下の通りであった。すなわち、40 ngのpIL-8rep [pBluescriptSK-ベクター（Stratagene）]；0.4 ng CD40（対照受容体であるCD40をコードするDNA；pCDM8ベクター）；0.4 ng RANK（RANKをコードするDNA；pDC409ベクター）および、1-50 ng CD40L（CD40のリガンドをコードするDNAで、CD40と共トランスフェクトされた場合には陽性の対照として、RANKと共トランスフェクトされた場合には陰性の対照として働く；pDC304内）またはRANKL（RANKのリガンドをコードするDNA；pDC406内）のいずれかであった。RANKをトランスフェ
クトした細胞を刺激することにより、可溶性RANKLあるいはRANKに対するアゴニスト抗体
を用いて同様の実験を行い得る。
mIL-4R特異的なRIAについては、mIL-4Rと反応性のあるモノクローナル抗体をChloramine T結合法により125Iにて標識する。得られる比活性は典型的には1.5 x 106 cpm/nmolで
ある。48時間後、トランスフェクトされた細胞を培地（DMEM/F12 5% FBS）で1回洗う。5%脱脂乾燥乳を含む、あらかじめ暖めた結合培地を加え、37℃/5% CO2で組織培養インキュ
ベーター内にて1時間インキュベートすることにより、非特異的な結合部位をブロックす
る。ブロッキング培地をデカントし、125I抗mIL-4R（クローンM1；ラットIgG1）を含む結合バッファーを細胞に加えて、室温で1時間、揺すりながらインキュベートする。細胞を
放射標識した抗体とインキュベートした後、細胞を結合バッファー（2 X）にて大規模に
、そしてリン酸緩衝生理食塩水（PBS）にて2回洗う。細胞を1 mlの0.5M NaOHにて可溶化
し、総放射活性をガンマカウンターで測定する。
このアッセイを用い、RANKをコードするDNAを共トランスフェクトした293/EBNAは、細
胞表面のmuIL-4Rの検出によって示されるように、転写活性化を示した。RANKの過剰発現
の結果、RANKLによるRANK刺激と同様に、muIL-4Rが転写された。RANKをアゴニスト抗体で刺激した場合に、同様の結果が観察される。
実施例6
本実施例では、RANKとTRAFタンパク質の結合を説明する。RANKと細胞質TRAFタンパク質の相互作用を、もともとHsuら（Cell 84:299; 1996）によって説明されている共免疫沈降アッセイにより行った。簡潔に述べると、RANKおよびエピトープでタグ付けした（FLAG(R); SEQ ID NO:7）TRAF2またはTRAF3の合成を指示するプラスミドを、293/EBNA細胞にトランスフェクトした。トランスフェクションの2日後に、表面タンパク質をビオチン-エステルにて標識し、細胞を0.5% NP40を含むバッファーにて可溶化した。RANKおよびこの受容
体に結合しているタンパク質を、抗RANKにて免疫沈降し、大規模に洗い、6-10% SDSポリ
アクリルアミドゲル上の電気泳動分離により分離し、ウエスタンブロット用のニトロセルロース膜に電気泳動で移した。TRAF2およびTRAF3タンパク質のRANKとの結合を、FLAG(R)
エピトープを特異的に認識する抗体で膜をプローブすることにより可視化した。RANK発現がない場合には、TRAF2および3は抗RANKで免疫沈降されなかった。
実施例7
本実施例では、直接的な発現クローニングによる、RANKLと名付けたRANKのリガンドの
同定を説明する。このリガンドはもともと、1994年5月24日出願のUSSN 08/249,189（その関連する開示は、参照により本明細書中で援用されている）に記載のようにCD40Lに対し
てクローニングされたものである。簡潔に述べると、ビオチン化したCD40/Fc融合タンパ
ク質でFACS（蛍光活性化細胞分析分離装置）により5回ソーティングして得た、EL-40.5と名付けたマウス胸腺腫細胞株EL-4（ATCC TIB 39）のクローンから、ライブラリーを調製
した。標準的な方法論を用いてcDNAライブラリーを作製し、プラスミドDNAを単離して、DEAE-デキストラン法を用いてサブコンフルエントなCV-1EBNA細胞にトランスフェクトした。実施例2で調製したRANK/Fc融合タンパク質、続いて放射性ヨウ素と結合したヤギ抗ヒトIgG抗体を用いた2段階の結合方法を用い、RANKLの発現に関してスライドオートラジオグ
ラフィーにより形質転換体をスクリーニングした。
RANKに特異的に結合するタンパク質をコードするクローンを単離し、配列を決定した。そのクローンを11Hと名付けた。pDC406:muRANK-L（大腸菌DH10B中）という、マウスRANKL配列を含む発現ベクターを、ブダペスト条約の条件で1996年12月20日にAmerican Type Culture Collection, Rockville, MD（ATCC）に寄託し、受託番号98284を得た。このクローンのヌクレオチド配列および予想アミノ酸配列は、SEQ ID NO:10に示す。このクローンは開始メチオニンを含んで織らず；追加の全長クローンを7B9ライブラリー（実質的には、1997年2月4日に刊行されたアメリカ合衆国特許5,599,905に記載のように調製した）から得た。5’領域は、残基9のThrがGlyに置換されていること以外はSEQ ID NO:12アミノ酸1か
ら22までに示すようなヒトRANKLのものと同一であることが分かった。
このリガンドは、多くの異なるアッセイによりRANKの、RANKLに結合する能力を評価す
るのに有用である。例えば、RANKLを発現する、形質転換細胞は、可溶性RANKのRANKLに結合する能力を評価するためにFACSアッセイ（あるいは同様のアッセイ）に用いられ得る。さらに、RANKLの可溶体は調製でき、この技術分野で知られているアッセイ（すなわち、ELISAまたはもともと1994年5月24日出願のUSSN 08/249,189に記載のBIAcoreアッセイ）に
用い得る。RANKLはRANKのアフィニティー精製にも、試料中のRANKの量を測定する方法に
おける試薬としても有用である。可溶性RANKLはNF-κB活性化を誘導するのにも有用であ
り、それゆえRANKを発現している細胞をアポトーシスから守るのに有用である。
実施例8
本実施例では、PCRをもとにした手法を用いたヒトRANKリガンド（RANKL）の単離を説明する。マウスRANKリガンド特異的なオリゴヌクレオチドプライマーを、ヒト細胞株由来のファーストストランドcDNAを鋳型として使ったPCR反応に用いた。プライマーは、マウスRANKリガンド（SEQ ID NO:10）のヌクレオチド478-497に、そしてヌクレオチド858-878に
相補的なものに対応した。ヒト類表皮細胞株KB（ATCC CCL-17）を用いた一反応由来の、
長さ約400 bpの増幅されたバンドを、ゲル精製し、そのヌクレオチド配列を決定したところ、その配列はマウスRANKリガンドの対応する領域と85%同一であり、この断片がヒトRANKL由来であることが確認された。
全長ヒトRANKL cDNAを得るために、KB PCR産物ヌクレオチド配列に由来する2つのヒトRANKL特異的オリゴヌクレオチドを放射標識し、ハイブリダイゼーションプローブとして用いて、1997年2月4日刊行のアメリカ合衆国特許5,599,905に実質的に記載のようにしてラ
ムダgt10（Stratagene, La Jolla, CA）に調製した、ヒトPBL cDNAライブラリーをスクリーニングした。陽性にハイブリダイズしたいくつかのプラークを同定し精製して、それらのインサートをpBluescript SK-（Stratagene, La Jolla, CA）にサブクローニングし、
そのヌクレオチド配列を決定した。単離されたもののひとつPBL3は、予想されるヒトRANKLの大部分をコードしていることが分かったが、5’コーディング領域のおよそ200 bpが欠けているとみられた。第二の単離されたものPBL5は、完全な5’末端とさらに200bpの5’
非翻訳配列を含む、予想されるヒトRANKLのほとんどをコードしていることが分かった。
PBL5の5’末端とPBL3の3’末端を互いに連結し、ヒトRANKLをコードする全長cDNAを作
った。全長ヒトRANKリガンドのヌクレオチドおよび予想アミノ酸配列を、SEQ ID NO:12に示す。ヒトRANKリガンドは、マウスRANKリガンドと83%のヌクレオチド同一性および84%のアミノ酸同一性を有する。pBluescript:huRANK-L（大腸菌DH10B中）と名付けた、ヒトRANKL配列を含むプラスミドを、ブダペスト条約の条件で1997年3月11日にAmerican Type Culture Collection, Rockville, MD（ATCC）に寄託し、受託番号98354を得た。
マウスおよびヒトRANKLは2型膜貫通タンパク質である。マウスRANKLは、予想される48
アミノ酸の細胞内ドメイン、21アミノ酸の膜貫通ドメインおよび247アミノ酸の細胞外ド
メインを含む。ヒトRANKLは、予想される47アミノ酸の細胞内ドメイン、21アミノ酸の膜
貫通ドメインおよび249アミノ酸の細胞外ドメインを含む。
実施例9
本実施例では、PCRをもとにしたマッピング戦略を用いた、ヒトRANKの染色体マッピン
グを説明する。最初のヒト染色体対応付けを、RANKおよびRANKL特異的なPCRプライマーと、BIOS Laboratories（New Haven, CT）のBIOS Somatic Cell Hybrid PCRable DNA kitを用い、製造者の使用説明書にしたがって行った。RANKはヒト第18番染色体にマップされ、RANKリガンドはヒト第13番染色体にマップされた。放射線照射したハイブリッドマッピングパネルGenebridge 4 Radiation Hybrid Panel（Research Genetics, Huntsville, AL；Walter, MA et al., Nature Genetics 7:22-28, 1994に記載されている）を用いて、さらに詳細なマッピングを行った。それから、この解析のデータをMIT Radiation Hybrid Mapper（URL: http://www-genome.wi.mit.edu/cgi-bin/contig/rhmapper.pl）に、そこに含
まれていた説明にしたがって電子的に提出した。この解析により、NCBI Entrezブラウザ
（URL: http//www3.ncbi.nlm.nih.gov/htbinpost/Entrez/query?db=c&form= 0）に電子的に提出すると特異的なマップ位置が得られる、特異的な遺伝子マーカー名がわかった。RANKは染色体18q22.1に、RANKLは染色体13q14にマップされた。
実施例10
本実施例では、RANKLに対するモノクローナル抗体の調製を説明する。アメリカ合衆国
特許4,411,993に開示されているもののような常法を用い、例えば、精製組み換え体RANKLの調製物、あるいは穿刺した（transfixed）、高レベルにRANKLを発現する細胞を用いて
、RANKLに対するモノクローナル抗体を作製した。RANKLをコードするDNAも、例えばImmunity 3:165, 1995中でPardollおよびBeckerlegにより総説されているように、免疫原とし
て用いることができる。このような抗体は、RANKLまたはRANKL活性に関する診断上のまたは研究上のアッセイの構成要素としてRANKLシグナリングを妨げる（アンタゴニストまた
はブロッキング抗体）のに、あるいはRANKLのアフィニティー精製に有用であるとみられ
る。
齧歯類を免疫するために、RANKL免疫原をアジュバント（完全または不完全フロイント
アジュバント、ミョウバン、またはRibiアジュバントR700（Ribi, Hamilton, MT）といった他のアジュバントなど）にエマルジョン化し、例えばBALB/cマウスまたはLewisラット
など選択した齧歯類個体に10-100 μgの範囲の量を皮下投与する。DNAを皮内に（Raz et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91:9519, 1994）あるいは筋肉内に（Wang et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90:4156, 1993）投与することができ、生理食塩水がDNAをも
とにした抗原に適した希釈剤であることが分かっている。10日から3週間後に、免疫した
動物個体に免疫原を追加してブーストし、その後1週間ごと、2週間ごと、または3週間ご
との免疫日程で定期的にブーストする。
ドットブロットアッセイ（抗体サンドイッチ）、ELISA（酵素結合免疫吸着アッセイ）
、免疫沈降、またはFACS解析を含めた他の適切なアッセイによる分析のために、眼窩後方放血または尾先端切断により血清試料を定期的に採取する。適切な抗体価の検出後、陽性の動物個体に生理食塩水に溶かした抗原を静脈内投与する。3から4日後、その動物個体を犠牲死させ、脾細胞を回収し、マウスミエローマ細胞株（例えばNS1、あるいは好ましく
はAg 8.653 [ATCC CRL 1580]）と融合させる。この手順によって作製したハイブリドーマ細胞株を、複マイクロタイタープレートに、融合していない細胞、ミエローマ-ミエロー
マハイブリッド、および脾細胞-脾細胞ハイブリッドの増殖を阻害するための選択培地（
例えば、ハイポキサンチン、アミノプテリン、およびチミジンを含むもの、すなわちHAT
）中でまく。
このように作製されたハイブリドーマクローンを、例えばEngvall et al., Immunochem. 8:871 (1971)およびアメリカ合衆国特許4,703,004によって開示されている手法を適用
することにより、RANKLとの反応性に関するELISAにてスクリーニングし得る。好ましいスクリーニング法は、Beckmanら（J. Immunol. 144:4212 (1990)）によって記載されている抗体捕捉法である。それから、陽性クローンを同系の齧歯類の腹腔内に投与して、高濃度（>1 mg/ml）の抗RANKモノクローナル抗体を含む腹水を作り出す。得られたモノクローナル抗体は、硫酸アンモニウム沈殿、続いてゲル排除クロマトグラフィーにより精製し得る。あるいは、プロテインAまたはプロテインGへの抗体の結合に基づいたアフィニティークロマトグラフィーも、RANKLタンパク質への結合に基づいたアフィニティークロマトグラ
フィーも用い得る。本明細書中に記載の方法を、mAbの活性を測定するために用い、ブロ
ッキング（すなわち、RANKLに結合し、RANKに結合するのを阻害する抗体）および非ブロ
ッキング（すなわち、RANKLに結合し、リガンド結合を阻害しない抗体）の両方を単離す
る。
実施例11
本実施例では、RANK発現をアップレギュレーションし得るということを明らかにする。ヒト末梢血T細胞を、フローサイトメーターソーティングにより、あるいは抗体をコート
したビーズを用いた負の選択により精製し、インターロイキン-4（IL-4）、トランスフォーミング増殖因子-β（TGF-β）および商業的に入手可能な他のサイトカイン（IL-1α、IL-2、IL-3、IL-6、IL-7、IL-8、IL-10、IL-12、IL-15、IFN-γ、TNF-α）を含む様々なサ
イトカインの存在または非存在下、抗CD3（OKT3, Dako）をコートしたプレートあるいは
フィトヘムアグルチニンにより活性化した。以下の表に示すように、マウスモノクローナル抗体mAb144（実施例3に記載のように調製したもの）を用い、2日目から8日目までの経
時的な実験にて、RANKの発現を FACSにより評価した。結果を、抗RANKによる染色強度の
相対的な増加につれて‘+’から‘++++’までと表す。抗RANKおよび抗CD8または抗CD4抗
体の両方を用いた二重標識実験も行った。
調べたサイトカインのうち、IL-4とTGF-βはCD8+細胞傷害性およびCD4+ヘルパーT細胞
上のRANK発現量を4日目から8日目まで上昇させた。IL-4とTGF-βの組み合わせは、活性化T細胞上におけるこの受容体の発現を共同的にアップレギュレートするように作用した。
サイトカインのこの特別な組み合わせは、サプレッサーT細胞によって分泌され、寛容の
成立に重要であると考えられており（Mitchison and Sieper, Z. Rheumatol. 54:141, 1995にて総説されている）、これは、RANKの相互作用を、寛容あるいは活性な免疫応答の誘導のいずれか向かわせる免疫応答の調節に関係づけている。
実施例12
本実施例では、活性化T細胞増殖に対するRANK.FcおよびhRANKLの影響を記述する。抗CD3で活性化したヒト末梢血Tリンパ球にTGFβを加えると、増殖阻止と、ついには培養の最
初の数日の間にほとんどのリンパ球の死が誘導される。我々は、RANK:RANKL相互作用がTGF-β処理T細胞に与える影響を、RANK.Fcまたは可溶性ヒトRANKLをT細胞培養に添加することにより試験した。
ヒト末梢血T細胞（7 x 105 PBT）を、抗CD3（OKT3、5 μg/ml）および抗Flag（M1、5μg/ml）をコートした24穴プレート上で、TGFβ（1ng/ml）およびIL-4（10ng/ml）存在下、組み換え体FLAG-タグ付加可溶性hRANKL（1μg/ml）あるいはRANK.Fc（10μg/ml）ありま
たはなしで、6日間培養した。生存T細胞の回収率を3重のトリパンブルー計数によって求
めた。
RANK.Fcを添加すると、6日後の回収される生存T細胞の数が有意に減少したが、可溶性RANKLは生存T細胞の回収率を大きく増加させた（図1）。このように、内在性または外来性
のRANKLは、TGFβ存在下で生じた生存T細胞の数を増加させる。TGFβはIL-4と共に、TH3/調節性T細胞亜集団によって分泌された場合に免疫応答の調節と関係づけられている。こ
れらのT細胞は、エフェクターT細胞の傍観的（bystander）抑制を媒介すると考えられて
いる。したがって、RANKとそのリガンドは自己／傍分泌的に作用してT細胞寛容に影響し
得る。さらに、TGFβは、特定の病原体または日和見性生物によってもたらされる免疫系
の回避に役割を果たしていると考えられている。寛容の成立に機能することに加え、RANKは病原体による免疫系の回避にも機能し得る。
実施例13
本実施例では、CD1a+樹状細胞（DC）に対する、RANK相互作用の影響を記述する。機能
的に成熟した樹状細胞（DC）をin vitroでCD34+骨髄（BM）始原細胞から生じさせた。手
短に述べると、健常なボランティア由来のヒトBM細胞を、Ficoll培地を用いて密度分画し、抗CD34マトリックスカラム（Ceprate, CellPro）を用いてCD34+細胞を免疫アフィニテ
ィー単離した。それから、CD34+ BM細胞を、10%ウシ胎児血清を添加したSuper McCoy培
地にてヒトGM-CSF（20 ng/ml）、ヒトIL-4（20 ng/ml）、ヒトTNF-α（20 ng/ml）、ヒトCHO-由来Flt3L（FL; 100 ng/ml）中、十分に加湿した37℃インキュベーター（5% CO2）内で14日間培養した。それから、 FACStar PlusTMを用いてCD1a+、HLA-DR+DCをソートし、RANKを生物学的に評価するのに用いた。
CD34+骨髄細胞由来のヒトCD1a+DCに関しては、フローサイトメーター解析によって評価すると、CD1a+DC亜集団（20-30%）のみがRANKを細胞表面に発現していただけであった。
しかし、DC培養にCD40Lを加えた結果、大多数のCD1a+DC表面にRANKが発現するようになった。CD40Lは、in vitroのクラスター形成を増強し、DCの形態的な変化を誘導し、HLA-DR
、CD54、CD58、CD80およびCD86発現をアップレギュレーションすることによってDCを活性化することが示されている。
DC培養にRANKLを加えると、対照の培養よりも、DC凝集およびクラスター形成の程度が
有意に上昇し、CD40Lで見られた効果と同様であった（図2）。ソートしたヒトCD1a+DCを
、サイトカインカクテル（GM-CSF、IL-4、TNF-αおよびFL）（左上のパネル）中、カクテルプラスCD40L（1μg/ml）（右上）中、カクテルプラスRANKL（1μg/ml）（左下）中、あるいはカクテルプラス熱で不活性化した（ΔH）RANKL（1μg/ml）（右下）中、24穴平底
培養プレート内で1 ml培地中、48-72時間培養し、それから倒立顕微鏡を用いて撮影した
。対照培養以上の、DC凝集およびクラスター形成の増加は、熱で不活性化したRANKLを用
いた場合には明らかではなく、この効果が生物学的に活性なタンパク質に依存していたことを示している。しかし、接着分子の発現の初期形質解析では、RANKLが誘導するクラス
ター形成はCD2、CD11a、CD54またはCD58の量の増加のためではないことが示された。
CD1a+DCにRANKLを加えると、混合リンパ球反応（MLR）における同種異系刺激能が、CD40L培養DCと比較して少なくとも3から10倍に上昇した（図3）。同種異系T細胞（1 x 105
）を、図2について上に示したように培養した様々な数の放射線照射した（2000 rad）DC
と、96穴丸底培養プレート内で0.2 ml培地中、4日間インキュベートした。培養物に0.5 mCi [3H]チミジンを8時間パルスし、気相βカウンターで計数するためのガラス繊維板上に細胞を回収した。単独で培養したT細胞またはDCのいずれかに対応するバックグラウンド
のカウントは、<100 cpmであった。数値は三重の培養の平均±SDを表す。熱で不活性化したRANKLは全く効果がなかった。RANKLおよびCD40Lを組み合わせて用いても、DC同種異系
刺激活性はそれ以上は増強されなかったが、おそらくDCの機能的な能力はそれぞれのサイトカイン単独で最大限にまで達してしまったためであろう。RANKLおよびCD40Lのいずれも、3日間の培養期間を越えてDCのin vitro増殖を増強することはなかった。CD40Lと異なり、RANKLはHLA-DR発現量も、CD80またはCD86発現量も有意に上昇させはしなかった。
RANKLは、すべてCD40/CD40Lシグナリングによって制御されている、細胞接着（CD18、CD54）、抗原提示（HLA-DR）または共刺激（CD86）に関わる既知の分子を調節することな
くDCのクラスター形成および機能的な能力を増強し得る。これらの分子の発現に対する影響がないことは、RANKLがCD40/CD40Lとは異なる、代替経路を介してDC機能を制御し得る
ということを示唆している。CD40LがRANKの、in vitroで生じさせたDCの表面発現を調節
し、CD40LがDC-T細胞相互作用の間に活性化T細胞上でアップレギュレーションされるとすれば、RANKとそのリガンドは、DCが介するT細胞拡張の間に誘導される、活性化カスケー
ドの重要な部分を形成し得る。さらに、RANKL中でDCを培養した結果、CD1b/c発現量が増
加し、さらにCD83の量が増加した。これら両方の分子はCD40LによるDC成熟の間に同様に
調節されており（Caux et al., J. Exp. Med. 180:1263; 1994）、RANKLがDC成熟を誘導
するということを示している。
樹状細胞は、“専門的な”抗原提示細胞と呼ばれており、MHC拘束性のT細胞を感作する高い能力を有する。樹状細胞をex vivoで腫瘍または感染性疾患のワクチンアジュバント
として用いることに、ますます興味が持たれている（例えばRomani, et al., J. Exp. Med., 180:83, 1994参照）。それゆえ、DC成熟を誘導し、樹状細胞の免疫応答を刺激する能力を増強するRANKLのような薬剤は、様々な疾患の免疫療法に有用であると見られる。
実施例14
本実施例では、muRANKと名付けたRANKのマウス相同体の単離を説明する。種交差PCRと
コロニーハイブリダイゼーションの組み合わせにより、muRANKを単離した。TNFRスーパーファミリーメンバータンパク質の細胞外ドメインのCysに富んだ疑似繰り返し内にあるCys残基が保存されていることを、様々な起源由来のマウスファーストストランドcDNAに対して用いる、ヒトRANKに基づいたPCRプライマーを設計するのに利用した。センス上流プラ
イマーとアンチセンス下流プライマーの両方を、Cys残基内に3’末端終止があるように設計した。
上流センスプライマーは、SEQ ID NO:5（アミノ酸79-86をコードする領域）のヌクレオチド272-295をコードしており、下流アンチセンスプライマーはヌクレオチド409-427（アミノ酸124-130をコードする領域）に相補的なものをコードしていた。これらのプライマ
ーと、様々なマウス細胞株または組織起源由来のファーストストランドcDNAを用い、標準的なPCR反応を組み立てて行った。94℃を30秒間、50℃を30秒間、72℃を20秒間という反
応サイクル30回を行った。PCR産物を電気泳動にて解析し、特異的なバンドをいくつかの
サンプル中に認めた。あるサンプル由来のバンドをゲル精製し、DNA配列を決定したとこ
ろ、プライマーー間の配列が、対応するヒトRANKヌクレオチド配列とおよそ85%一致して
いることが判明した。
マウス肝上皮細胞株FLE18（PCRスクリーニングで陽性と同定された細胞株の一つ）から調製した、プラスミドに基づいたcDNAライブラリーを、PCR産物の配列決定により決まっ
たマウスRANK配列に由来する、マウスRANK特異的なオリゴヌクレオチドプローブを用い、全長RANK cDNAに関してスクリーニングした。1つは全長マウスRANKの5’末端をコードし
、もう1つが3’末端をコードする（全長ヒトRANKとの配列比較に基づく）という、2つのcDNAを再結合させ、全長マウスRANK cDNAを作った。muRANKのヌクレオチドおよびアミノ酸配列を、SEQ ID NO:14および15に示す。
このcDNAは、625アミノ酸残基を有する、予想30アミノ酸のシグナル配列、184アミノ酸の細胞外ドメイン、21アミノ酸の膜貫通ドメイン、および390アミノ酸の細胞質尾部を持
った予想1型膜タンパク質をコードしている。muRANKの細胞外領域は、huRANKと有意なア
ミノ酸相同性（69.7%同一性、80.8%類似性）を示した。当業者は、実際の切断部位はコンピューターによって予想されたものとは異なる可能性があるということを理解するだろう
。従って、RANKのN-末端はアミノ酸25からアミノ酸35の間にあり得る。
TNF受容体スーパーファミリーの他のメンバーは、膜貫通ドメインとリガンド結合ドメ
インの間に、リガンド結合には必要ではない‘スぺーサー’領域と呼ばれるアミノ酸の領域を有する。muRANKでは、アミノ酸197と214の間がそのようなスペーサー領域を形成すると予想される。したがって、この領域内のアミノ酸で終結するRANKの可溶体は、RANKのリガンドに特異的に結合する能力を維持していると予想される。可溶性RANKペプチドの好ましいC末端アミノ酸は、このスペーサー領域内の他のアミノ酸がC末端として使われる可能性があるものの、SEQ ID NO:14のアミノ酸214および197からなる群から選択される。
実施例15
本実施例では、RANKおよびRANKLの様々な可溶体のいくつかの調製を記述する。都合の
よい制限酵素認識部位が存在しない断片をPCRに基づいて単離することと組み合わせて、
切断し連結する制限酵素の標準的な手法を用いた。PCRを用いる場合は、PCR産物を配列決定し、変異が導入されていないかどうかを確認したが、そのような変異は見つからなかった。
実施例2に記載のhuRANK/Fcに加え、SEQ ID NO:６のアミノ酸1-213をコードするDNAを、以前に記載したFcムテイン（SEQ ID NO:8）のアミノ酸3-232をコードするDNAと連結する
ことにより、別のRANK/Fc融合タンパク質を調製した。全長マウスRANK（SEQ ID NO:5）
のアミノ酸1-213をコードするDNAを、Fcムテイン（SEQ ID NO:8）のアミノ酸3-232をコードするDNAと連結することにより、同様の構築物をマウスRANKについて調製した。
免疫グロブリンカッパ鎖（SEQ ID NO:16）由来のリーダーペプチドをコードするDNAに
、短いタイプのFLAG(R)タグ（SEQ ID NO:17）をコードするDNA、その後にGly Serをコー
ドするコドン、それからポリ-Hisタグ（SEQ ID NO:18）、その後にGly Thr Serをコード
するコドン、さらにSEQ ID NO:13のアミノ酸138-317をコードするDNAを連結することにより、可溶性の、タグ付加された、poly-HisタイプのhuRANKLを調製した。CMVリーダー配列（SEQ ID NO:9）をコードするDNAに、Arg Thr Serをコードするコドン、それからポリ-Hisタグ（SEQ ID NO:18）、その後にSEQ ID NO:11のアミノ酸119-294をコードするDNAを連
結することにより、可溶性の、ポリ-Hisタグ付加されたタイプのマウスRANKLを調製した
。
CMVリーダー配列（SEQ ID NO:9）をコードするDNAに、Aspをコードするコドン、その後に三量体形成“ロイシン”ジッパー（SEQ ID NO:19）をコードするDNA、それからThr Arg
Ser、その後にSEQ ID NO:13のアミノ酸138-317をコードするコドンを連結することによ
り、可溶性の、オリゴマータイプのhuRANKLを調製した。
これらおよび他の構築物は、日常の実験によって調製される。それから、様々なDNAを
適切な発現ベクターに挿入し、発現させる。特に好ましい発現ベクターは、ほ乳類細胞内で使用できるものである。例えば、本明細書中に記載のpDC409およびpDC304は、一過性の発現に有用である。安定トランスフェクションのためには、CHO細胞を用いるのが好まし
く、いくつかの有用なベクターは現在特許されているUSSN 08/785,150に記載されており
、例えば、2A5-3 l由来発現ベクターのひとつがその中で議論されている。
実施例16
本実施例では、RANKL発現がマウスT細胞上でアップレギュレートされ得るということを明らかにする。細胞をC57BL/6マウスの腸間膜リンパ節から得て、抗CD3をコートしたプレート、コンカナバリンA（ConA）またはホルボールミリステートアセテートを、イオノマ
イシン（抗CD3：500A2；Immunex Corporation, Seattle WA；ConA、PMA、イオノマイシン
、Sigma, St. Louis, MO）と組み合わせて用いることにより、実質的に本明細書中で記載のようにして活性化し、約2から5日間培養した。RANKL発現を、T細胞マーカーCD4、CD8およびCD45RB、そして本明細書中で記載したようにして調製したRANK/Fcを用い、FACSによ
る三色解析にて評価した。
RANKLは無刺激のマウスT細胞上には発現していなかった。抗CD3、ConAまたはPMA/イオ
ノマイシンのいずれで刺激したT細胞も、特異なRANKL発現を示し、CD4+/CD45RBLoおよびCD4+/CD54RBHi細胞はRANKLに関して陽性であったが、CD8+細胞はそうではなかった。RANKLはB細胞上には観察されず、ヒトの細胞でも同様の結果が観察された。
実施例17
本実施例では、細胞増殖および活性化に対するマウスRANKLの効果を記述する。免疫応
答に役割を果たす細胞の典型である様々な細胞および細胞株（マウス脾臓、胸腺およびリンパ節）を、RANKLの存在または非存在下、それらの生存を促進する条件下で培養するこ
とにより評価した。RANKLは調べたいずれの細胞の増殖も促進しなかった。一つの細胞株
、RAW 264.7（ATCC受託番号TIB 71）と呼ばれるマクロファージ細胞株が、活性化のしる
しをいくらか示していた。
RAW細胞は、少量のTNF-αを構成的に産生している。ヒトまたはマウスRANKLのいずれかとインキュベートすると、これらの細胞からのTNF-α産生が用量依存的に増強された。RANKLを10分間煮沸するとTNF-α産生が無くなったのに対し、精製エンドトキシン（LPS）を同様に処理してもLPSのTNF-α産生刺激能には影響しなかったことから、この結果はRANKL調製物にエンドトキシンが混入したためではなかった。RANKLはマクロファージ細胞株RAW
T64.7をTNF-α産生に関して活性化したという事実にも関わらず、ヒトRANKLとマウスRANKLのいずれも、これらの細胞からの一酸化窒素産生を促進しなかった。
実施例18
本実施例では、胎児マウスにおける胸腺の増殖および発生に対するマウスRANKLの影響
を記述する。妊娠マウスに、1 mgのRANK/Fcまたは媒体の対照タンパク質（マウス血清ア
ルブミン；MSA）を、妊娠13、16および19日目に注入した。誕生後、新生児にRANK/Fcを、腹腔内に（IP）毎日注入し続け、1 mgの投与量から開始し、最終用量4 mgまで4日ごとに
用量を倍にした。新生児を生後1、8および15日目に取り、胸腺と脾臓を回収し、大きさ、細胞性および表現型の組成を調べた。
1日目に胸腺の大きさのわずかな減少が、RANK/Fcを注入したメスから産まれた新生児において観察され、大きさの同様の減少は対照の新生児では観察されなかった。8日目には
、MSA処理マウスと比較してRANK/Fc処理マウスにおいて胸腺の大きさと細胞性が約50%減
少した。表現型解析により、胸腺内の異なるT細胞集団の相対的な特性は、RANK/Fcマウスと対照マウスで同じであったことが明らかになり、細胞性の減少は特定の集団の減少とは全く異なり、胸腺T細胞数の全体的な減退のためであることが示された。RANK/Fc処理新生児は、胸腺細胞の大きさ、細胞性または表現型のいずれの点においても15日目には対象の新生児と有意に異なるということはなかった。評価したどの時点においても、脾臓の大きさ、細胞性または組成におけるいかなる有意な違いも観察されなかった。細胞性が8日目
には異なり、15日目には変わらなかったことは、RANK/Fcが胸腺発生の初期に明らかに影
響を及ぼす可能性があるということを示唆し得る。
実施例19
本実施例では、RANKの細胞質ドメインのC末端領域がいくつかの異なるTRAFタンパク質
の結合に重要であることを明らかにする。RANKには、TRAF連結部位であろう認識可能なPXQX(X)Tモチーフが少なくと2つ含まれている。それゆえ、RANKの細胞質ドメインの様々な
領域の、TRAF結合に対する重要性を評価した。RANK/GST融合タンパク質を、実質的にSmithとJohnson（Gene 67:31 (1988)）に記載のようにして調製し、以下に説明する様々な切
断体の調製に用いた。
マウスおよびヒトRANKのヌクレオチド配列の比較により、TRAF結合に重要であり得るいくつかの保存された領域があることが示された。それゆえ、PCRに基づいた手法を開発し
て、保存された領域を保持しているであろう様々なC末端切断体の調製を容易にした。選
択した場所に終止コドンおよび制限酵素認識部位を導入するようにPCRプライマーを設計
し、以下の表1に記載する切断体を得た。配列決定により、目的としない変異は構築物に
一つも導入されなかったことが確認された。
放射標識した（35S-Met、Cys）TRAFタンパク質を、商業的に入手可能な網状赤血球可溶化物キットを製造者（Promega）の指示に従って用いたin vitro翻訳により調製した。切断されたGST融合タンパク質を、実質的にSmithおよびJohnson（上記）に記載のようにし
て精製した。手短に述べると、融合タンパク質をコードする発現ベクターを大腸菌にトランスフェクトし、このタンパク質を発現するように誘導した。その細菌を可溶化し、不溶性の物質を除き、グルタチオンをコートしたビーズ（Sepharose 4B, Pharmacia, Uppsala
Sweden）で沈降させることにより、融合タンパク質を単離した。
ビーズを洗い、様々な放射標識TRAFタンパク質とインキュベートした。インキュベーションと洗いの段階の後、0.1% SDS + β-メルカプトエタノール中で煮沸することにより融合タンパク質/TRAF複合体をビーズから除き、12% SDSゲル（Novex）にロードした。ゲル
をオートラジオグラフィーにかけ、放射標識された物質が存在するかあるいは存在しないかを記録した。結果を以下の表2に示す。
これらの結果は、TRAF1、TRAF2、TRAF3、TRAF5およびTRAF6がRANK細胞質ドメインの最
も遠い部分（アミノ酸G544とA616の間）に結合することを示している。TRAF6はS339とY412の間にも結合部位を有する。この実験においては、TRAF5もRANKの細胞質ドメイン結合した。
図1は、活性化T細胞の増殖に対するRANK.FcおよびhRANKLの影響を示す。ヒト末梢血T細胞を実施例12に記載のように培養し、生存T細胞回収率を3重のトリパンブルー計数により求めた。 図2は、RANKLが、ヒトDCクラスター形成を誘導する能力を説明する。機能的に成熟した樹状細胞（DC）をCD34+骨髄（BM）始原細胞からin vitroで発生させ、実施例13に記載のように培養した。CD1a+ DCをサイトカインカクテルのみ（図2A）、カクテルにCD40L（図2B）、RANKL（図2C）、あるいは熱で不活性化した（ΔH）RANKL（図2D）を加えて培養し、それから倒立顕微鏡を用いて撮影した。 図3は、RANKLがDCの同種異系刺激能を増強することを示す。同種異系のT細胞を、実施例13に記載のように培養した、様々な数の放射線照射DCとインキュベートした。培養したものに[3H]-チミジンをパルスし、細胞を計数用のガラス繊維板上に回収した。数値は3重の培養の平均±標準偏差（SD）を表す。 図4は、構造上保存されている、細胞外のシステインに富んだ疑似繰り返しの領域内で、ヒトRANKと他のTNFRファミリーのメンバーとを対応させたものを示す。予想されるジスルフィド結合（DS1-DS3）を示してある。RANKおよびCD40は、2番目の疑似繰り返し内のDS2を消去する、同じアミノ酸置換（C∧H、C∧G）を含む。 図5は、ヒトRANKLと他のTNFファミリーのメンバーとの対応を示す。 図5は、ヒトRANKLと他のTNFファミリーのメンバーとの対応を示す。

配列表

(2) INFORMATION FOR SEQ ID NO:1:
(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:
(A) LENGTH: 3115 base pairs
(B) TYPE: nucleic acid
(C) STRANDEDNESS: single
(D) TOPOLOGY: linear
(ii) MOLECULE TYPE: cDNA
(iii) HYPOTHETICAL: NO
(iv) ANTI-SENSE: NO
(vi) ORIGINAL SOURCE:
(A) ORGANISM: HOMO SAPIENS
(vii) IMMEDIATE SOURCE:
(A) LIBRARY: BONE-MARROW DERIVED DENDRITIC CELLS
(B) CLONE: 9D-8A
(ix) FEATURE:
(A) NAME/KEY: CDS
(B) LOCATION: 93..1868
(xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO:1:
GCTGCTGCTG CTCTGCGCGC TGCTCGCCCG GCTGCAGTTT TATCCAGAAA GAGCTGTGTG 60
GACTCTCTGC CTGACCTCAG TGTTCTTTTC AG GTG GCT TTG CAG ATC GCT CCT 113
Val Ala Leu Gln Ile Ala Pro
1 5
CCA TGT ACC AGT GAG AAG CAT TAT GAG CAT CTG GGA CGG TGC TGT AAC 161
Pro Cys Thr Ser Glu Lys His Tyr Glu His Leu Gly Arg Cys Cys Asn
10 15 20
AAA TGT GAA CCA GGA AAG TAC ATG TCT TCT AAA TGC ACT ACT ACC TCT 209
Lys Cys Glu Pro Gly Lys Tyr Met Ser Ser Lys Cys Thr Thr Thr Ser
25 30 35
GAC AGT GTA TGT CTG CCC TGT GGC CCG GAT GAA TAC TTG GAT AGC TGG 257
Asp Ser Val Cys Leu Pro Cys Gly Pro Asp Glu Tyr Leu Asp Ser Trp
40 45 50 55
AAT GAA GAA GAT AAA TGC TTG CTG CAT AAA GTT TGT GAT ACA GGC AAG 305
Asn Glu Glu Asp Lys Cys Leu Leu His Lys Val Cys Asp Thr Gly Lys
60 65 70
GCC CTG GTG GCC GTG GTC GCC GGC AAC AGC ACG ACC CCC CGG CGC TGC 353
Ala Leu Val Ala Val Val Ala Gly Asn Ser Thr Thr Pro Arg Arg Cys
75 80 85
GCG TGC ACG GCT GGG TAC CAC TGG AGC CAG GAC TGC GAG TGC TGC CGC 401
Ala Cys Thr Ala Gly Tyr His Trp Ser Gln Asp Cys Glu Cys Cys Arg
90 95 100
CGC AAC ACC GAG TGC GCG CCG GGC CTG GGC GCC CAG CAC CCG TTG CAG 449
Arg Asn Thr Glu Cys Ala Pro Gly Leu Gly Ala Gln His Pro Leu Gln
105 110 115
CTC AAC AAG GAC ACA GTG TGC AAA CCT TGC CTT GCA GGC TAC TTC TCT 497
Leu Asn Lys Asp Thr Val Cys Lys Pro Cys Leu Ala Gly Tyr Phe Ser
120 125 130 135
GAT GCC TTT TCC TCC ACG GAC AAA TGC AGA CCC TGG ACC AAC TGT ACC 545
Asp Ala Phe Ser Ser Thr Asp Lys Cys Arg Pro Trp Thr Asn Cys Thr
140 145 150
TTC CTT GGA AAG AGA GTA GAA CAT CAT GGG ACA GAG AAA TCC GAT GCG 593
Phe Leu Gly Lys Arg Val Glu His His Gly Thr Glu Lys Ser Asp Ala
155 160 165
GTT TGC AGT TCT TCT CTG CCA GCT AGA AAA CCA CCA AAT GAA CCC CAT 641
Val Cys Ser Ser Ser Leu Pro Ala Arg Lys Pro Pro Asn Glu Pro His
170 175 180
GTT TAC TTG CCC GGT TTA ATA ATT CTG CTT CTC TTC GCG TCT GTG GCC 689
Val Tyr Leu Pro Gly Leu Ile Ile Leu Leu Leu Phe Ala Ser Val Ala
185 190 195
CTG GTG GCT GCC ATC ATC TTT GGC GTT TGC TAT AGG AAA AAA GGG AAA 737
Leu Val Ala Ala Ile Ile Phe Gly Val Cys Tyr Arg Lys Lys Gly Lys
200 205 210 215
GCA CTC ACA GCT AAT TTG TGG CAC TGG ATC AAT GAG GCT TGT GGC CGC 785
Ala Leu Thr Ala Asn Leu Trp His Trp Ile Asn Glu Ala Cys Gly Arg
220 225 230
CTA AGT GGA GAT AAG GAG TCC TCA GGT GAC AGT TGT GTC AGT ACA CAC 833
Leu Ser Gly Asp Lys Glu Ser Ser Gly Asp Ser Cys Val Ser Thr His
235 240 245
ACG GCA AAC TTT GGT CAG CAG GGA GCA TGT GAA GGT GTC TTA CTG CTG 881
Thr Ala Asn Phe Gly Gln Gln Gly Ala Cys Glu Gly Val Leu Leu Leu
250 255 260
ACT CTG GAG GAG AAG ACA TTT CCA GAA GAT ATG TGC TAC CCA GAT CAA 929
Thr Leu Glu Glu Lys Thr Phe Pro Glu Asp Met Cys Tyr Pro Asp Gln
265 270 275
GGT GGT GTC TGT CAG GGC ACG TGT GTA GGA GGT GGT CCC TAC GCA CAA 977
Gly Gly Val Cys Gln Gly Thr Cys Val Gly Gly Gly Pro Tyr Ala Gln
280 285 290 295
GGC GAA GAT GCC AGG ATG CTC TCA TTG GTC AGC AAG ACC GAG ATA GAG 1025
Gly Glu Asp Ala Arg Met Leu Ser Leu Val Ser Lys Thr Glu Ile Glu
300 305 310
GAA GAC AGC TTC AGA CAG ATG CCC ACA GAA GAT GAA TAC ATG GAC AGG 1073
Glu Asp Ser Phe Arg Gln Met Pro Thr Glu Asp Glu Tyr Met Asp Arg
315 320 325
CCC TCC CAG CCC ACA GAC CAG TTA CTG TTC CTC ACT GAG CCT GGA AGC 1121
Pro Ser Gln Pro Thr Asp Gln Leu Leu Phe Leu Thr Glu Pro Gly Ser
330 335 340
AAA TCC ACA CCT CCT TTC TCT GAA CCC CTG GAG GTG GGG GAG AAT GAC 1169
Lys Ser Thr Pro Pro Phe Ser Glu Pro Leu Glu Val Gly Glu Asn Asp
345 350 355
AGT TTA AGC CAG TGC TTC ACG GGG ACA CAG AGC ACA GTG GGT TCA GAA 1217
Ser Leu Ser Gln Cys Phe Thr Gly Thr Gln Ser Thr Val Gly Ser Glu
360 365 370 375
AGC TGC AAC TGC ACT GAG CCC CTG TGC AGG ACT GAT TGG ACT CCC ATG 1265
Ser Cys Asn Cys Thr Glu Pro Leu Cys Arg Thr Asp Trp Thr Pro Met
380 385 390
TCC TCT GAA AAC TAC TTG CAA AAA GAG GTG GAC AGT GGC CAT TGC CCG 1313
Ser Ser Glu Asn Tyr Leu Gln Lys Glu Val Asp Ser Gly His Cys Pro
395 400 405
CAC TGG GCA GCC AGC CCC AGC CCC AAC TGG GCA GAT GTC TGC ACA GGC 1361
His Trp Ala Ala Ser Pro Ser Pro Asn Trp Ala Asp Val Cys Thr Gly
410 415 420
TGC CGG AAC CCT CCT GGG GAG GAC TGT GAA CCC CTC GTG GGT TCC CCA 1409
Cys Arg Asn Pro Pro Gly Glu Asp Cys Glu Pro Leu Val Gly Ser Pro
425 430 435
AAA CGT GGA CCC TTG CCC CAG TGC GCC TAT GGC ATG GGC CTT CCC CCT 1457
Lys Arg Gly Pro Leu Pro Gln Cys Ala Tyr Gly Met Gly Leu Pro Pro
440 445 450 455
GAA GAA GAA GCC AGC AGG ACG GAG GCC AGA GAC CAG CCC GAG GAT GGG 1505
Glu Glu Glu Ala Ser Arg Thr Glu Ala Arg Asp Gln Pro Glu Asp Gly
460 465 470
GCT GAT GGG AGG CTC CCA AGC TCA GCG AGG GCA GGT GCC GGG TCT GGA 1553
Ala Asp Gly Arg Leu Pro Ser Ser Ala Arg Ala Gly Ala Gly Ser Gly
475 480 485
AGC TCC CCT GGT GGC CAG TCC CCT GCA TCT GGA AAT GTG ACT GGA AAC 1601
Ser Ser Pro Gly Gly Gln Ser Pro Ala Ser Gly Asn Val Thr Gly Asn
490 495 500
AGT AAC TCC ACG TTC ATC TCC AGC GGG CAG GTG ATG AAC TTC AAG GGC 1649
Ser Asn Ser Thr Phe Ile Ser Ser Gly Gln Val Met Asn Phe Lys Gly
505 510 515
GAC ATC ATC GTG GTC TAC GTC AGC CAG ACC TCG CAG GAG GGC GCG GCG 1697
Asp Ile Ile Val Val Tyr Val Ser Gln Thr Ser Gln Glu Gly Ala Ala
520 525 530 535
GCG GCT GCG GAG CCC ATG GGC CGC CCG GTG CAG GAG GAG ACC CTG GCG 1745
Ala Ala Ala Glu Pro Met Gly Arg Pro Val Gln Glu Glu Thr Leu Ala
540 545 550
CGC CGA GAC TCC TTC GCG GGG AAC GGC CCG CGC TTC CCG GAC CCG TGC 1793
Arg Arg Asp Ser Phe Ala Gly Asn Gly Pro Arg Phe Pro Asp Pro Cys
555 560 565
GGC GGC CCC GAG GGG CTG CGG GAG CCG GAG AAG GCC TCG AGG CCG GTG 1841
Gly Gly Pro Glu Gly Leu Arg Glu Pro Glu Lys Ala Ser Arg Pro Val
570 575 580
CAG GAG CAA GGC GGG GCC AAG GCT TGA GCGCCCCCCA TGGCTGGGAG 1888
Gln Glu Gln Gly Gly Ala Lys Ala
585 590
CCCGAAGCTC GGAGCCAGGG CTCGCGAGGG CAGCACCGCA GCCTCTGCCC CAGCCCCGGC 1948
CACCCAGGGA TCGATCGGTA CAGTCGAGGA AGACCACCCG GCATTCTCTG CCCACTTTGC 2008
CTTCCAGGAA ATGGGCTTTT CAGGAAGTGA ATTGATGAGG ACTGTCCCCA TGCCCACGGA 2068
TGCTCAGCAG CCCGCCGCAC TGGGGCAGAT GTCTCCCCTG CCACTCCTCA AACTCGCAGC 2128
AGTAATTTGT GGCACTATGA CAGCTATTTT TATGACTATC CTGTTCTGTG GGGGGGGGGT 2188
CTATGTTTTC CCCCCATATT TGTATTCCTT TTCATAACTT TTCTTGATAT CTTTCCTCCC 2248
TCTTTTTTAA TGTAAAGGTT TTCTCAAAAA TTCTCCTAAA GGTGAGGGTC TCTTTCTTTT 2308
CTCTTTTCCT TTTTTTTTTC TTTTTTTGGC AACCTGGCTC TGGCCCAGGC TAGAGTGCAG 2368
TGGTGCGATT ATAGCCCGGT GCAGCCTCTA ACTCCTGGGC TCAAGCAATC CAAGTGATCC 2428
TCCCACCTCA ACCTTCGGAG TAGCTGGGAT CACAGCTGCA GGCCACGCCC AGCTTCCTCC 2488
CCCCGACTCC CCCCCCCCAG AGACACGGTC CCACCATGTT ACCCAGCCTG GTCTCAAACT 2548
CCCCAGCTAA AGCAGTCCTC CAGCCTCGGC CTCCCAAAGT ACTGGGATTA CAGGCGTGAG 2608
CCCCCACGCT GGCCTGCTTT ACGTATTTTC TTTTGTGCCC CTGCTCACAG TGTTTTAGAG 2668
ATGGCTTTCC CAGTGTGTGT TCATTGTAAA CACTTTTGGG AAAGGGCTAA ACATGTGAGG 2728
CCTGGAGATA GTTGCTAAGT TGCTAGGAAC ATGTGGTGGG ACTTTCATAT TCTGAAAAAT 2788
GTTCTATATT CTCATTTTTC TAAAAGAAAG AAAAAAGGAA ACCCGATTTA TTTCTCCTGA 2848
ATCTTTTTAA GTTTGTGTCG TTCCTTAAGC AGAACTAAGC TCAGTATGTG ACCTTACCCG 2908
CTAGGTGGTT AATTTATCCA TGCTGGCAGA GGCACTCAGG TACTTGGTAA GCAAATTTCT 2968
AAAACTCCAA GTTGCTGCAG CTTGGCATTC TTCTTATTCT AGAGGTCTCT CTGGAAAAGA 3028
TGGAGAAAAT GAACAGGACA TGGGGCTCCT GGAAAGAAAG GGCCCGGGAA GTTCAAGGAA 3088
GAATAAAGTT GAAATTTTAA AAAAAAA 3115

(2) INFORMATION FOR SEQ ID NO:2:
(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:
(A) LENGTH: 591 amino acids
(B) TYPE: amino acid
(D) TOPOLOGY: linear
(ii) MOLECULE TYPE: protein
(xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO:2:
Val Ala Leu Gln Ile Ala Pro Pro Cys Thr Ser Glu Lys His Tyr Glu
1 5 10 15
His Leu Gly Arg Cys Cys Asn Lys Cys Glu Pro Gly Lys Tyr Met Ser
20 25 30
Ser Lys Cys Thr Thr Thr Ser Asp Ser Val Cys Leu Pro Cys Gly Pro
35 40 45
Asp Glu Tyr Leu Asp Ser Trp Asn Glu Glu Asp Lys Cys Leu Leu His
50 55 60
Lys Val Cys Asp Thr Gly Lys Ala Leu Val Ala Val Val Ala Gly Asn
65 70 75 80
Ser Thr Thr Pro Arg Arg Cys Ala Cys Thr Ala Gly Tyr His Trp Ser
85 90 95
Gln Asp Cys Glu Cys Cys Arg Arg Asn Thr Glu Cys Ala Pro Gly Leu
100 105 110
Gly Ala Gln His Pro Leu Gln Leu Asn Lys Asp Thr Val Cys Lys Pro
115 120 125
Cys Leu Ala Gly Tyr Phe Ser Asp Ala Phe Ser Ser Thr Asp Lys Cys
130 135 140
Arg Pro Trp Thr Asn Cys Thr Phe Leu Gly Lys Arg Val Glu His His
145 150 155 160
Gly Thr Glu Lys Ser Asp Ala Val Cys Ser Ser Ser Leu Pro Ala Arg
165 170 175
Lys Pro Pro Asn Glu Pro His Val Tyr Leu Pro Gly Leu Ile Ile Leu
180 185 190
Leu Leu Phe Ala Ser Val Ala Leu Val Ala Ala Ile Ile Phe Gly Val
195 200 205
Cys Tyr Arg Lys Lys Gly Lys Ala Leu Thr Ala Asn Leu Trp His Trp
210 215 220
Ile Asn Glu Ala Cys Gly Arg Leu Ser Gly Asp Lys Glu Ser Ser Gly
225 230 235 240
Asp Ser Cys Val Ser Thr His Thr Ala Asn Phe Gly Gln Gln Gly Ala
245 250 255
Cys Glu Gly Val Leu Leu Leu Thr Leu Glu Glu Lys Thr Phe Pro Glu
260 265 270
Asp Met Cys Tyr Pro Asp Gln Gly Gly Val Cys Gln Gly Thr Cys Val
275 280 285
Gly Gly Gly Pro Tyr Ala Gln Gly Glu Asp Ala Arg Met Leu Ser Leu
290 295 300
Val Ser Lys Thr Glu Ile Glu Glu Asp Ser Phe Arg Gln Met Pro Thr
305 310 315 320
Glu Asp Glu Tyr Met Asp Arg Pro Ser Gln Pro Thr Asp Gln Leu Leu
325 330 335
Phe Leu Thr Glu Pro Gly Ser Lys Ser Thr Pro Pro Phe Ser Glu Pro
340 345 350
Leu Glu Val Gly Glu Asn Asp Ser Leu Ser Gln Cys Phe Thr Gly Thr
355 360 365
Gln Ser Thr Val Gly Ser Glu Ser Cys Asn Cys Thr Glu Pro Leu Cys
370 375 380
Arg Thr Asp Trp Thr Pro Met Ser Ser Glu Asn Tyr Leu Gln Lys Glu
385 390 395 400
Val Asp Ser Gly His Cys Pro His Trp Ala Ala Ser Pro Ser Pro Asn
405 410 415
Trp Ala Asp Val Cys Thr Gly Cys Arg Asn Pro Pro Gly Glu Asp Cys
420 425 430
Glu Pro Leu Val Gly Ser Pro Lys Arg Gly Pro Leu Pro Gln Cys Ala
435 440 445
Tyr Gly Met Gly Leu Pro Pro Glu Glu Glu Ala Ser Arg Thr Glu Ala
450 455 460
Arg Asp Gln Pro Glu Asp Gly Ala Asp Gly Arg Leu Pro Ser Ser Ala
465 470 475 480
Arg Ala Gly Ala Gly Ser Gly Ser Ser Pro Gly Gly Gln Ser Pro Ala
485 490 495
Ser Gly Asn Val Thr Gly Asn Ser Asn Ser Thr Phe Ile Ser Ser Gly
500 505 510
Gln Val Met Asn Phe Lys Gly Asp Ile Ile Val Val Tyr Val Ser Gln
515 520 525
Thr Ser Gln Glu Gly Ala Ala Ala Ala Ala Glu Pro Met Gly Arg Pro
530 535 540
Val Gln Glu Glu Thr Leu Ala Arg Arg Asp Ser Phe Ala Gly Asn Gly
545 550 555 560
Pro Arg Phe Pro Asp Pro Cys Gly Gly Pro Glu Gly Leu Arg Glu Pro
565 570 575
Glu Lys Ala Ser Arg Pro Val Gln Glu Gln Gly Gly Ala Lys Ala
580 585 590

(2) INFORMATION FOR SEQ ID NO:3:
(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:
(A) LENGTH: 1391 base pairs
(B) TYPE: nucleic acid
(C) STRANDEDNESS: single
(D) TOPOLOGY: linear
(ii) MOLECULE TYPE: cDNA
(iii) HYPOTHETICAL: NO
(iv) ANTI-SENSE: NO
(vi) ORIGINAL SOURCE:
(A) ORGANISM: HOMO SAPIENS
(vii) IMMEDIATE SOURCE:
(A) LIBRARY: BONE-MARROW DERIVED DENDRITIC CELLS
(B) CLONE: 9D-15C
(ix) FEATURE:
(A) NAME/KEY: CDS
(B) LOCATION: 39..1391
(xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO:3:
CCGCTGAGGC CGCGGCGCCC GCCAGCCTGT CCCGCGCC ATG GCC CCG CGC GCC 53
Met Ala Pro Arg Ala
1 5
CGG CGG CGC CGC CCG CTG TTC GCG CTG CTG CTG CTC TGC GCG CTG CTC 101
Arg Arg Arg Arg Pro Leu Phe Ala Leu Leu Leu Leu Cys Ala Leu Leu
10 15 20
GCC CGG CTG CAG GTG GCT TTG CAG ATC GCT CCT CCA TGT ACC AGT GAG 149
Ala Arg Leu Gln Val Ala Leu Gln Ile Ala Pro Pro Cys Thr Ser Glu
25 30 35
AAG CAT TAT GAG CAT CTG GGA CGG TGC TGT AAC AAA TGT GAA CCA GGA 197
Lys His Tyr Glu His Leu Gly Arg Cys Cys Asn Lys Cys Glu Pro Gly
40 45 50
AAG TAC ATG TCT TCT AAA TGC ACT ACT ACC TCT GAC AGT GTA TGT CTG 245
Lys Tyr Met Ser Ser Lys Cys Thr Thr Thr Ser Asp Ser Val Cys Leu
55 60 65
CCC TGT GGC CCG GAT GAA TAC TTG GAT AGC TGG AAT GAA GAA GAT AAA 293
Pro Cys Gly Pro Asp Glu Tyr Leu Asp Ser Trp Asn Glu Glu Asp Lys
70 75 80 85
TGC TTG CTG CAT AAA GTT TGT GAT ACA GGC AAG GCC CTG GTG GCC GTG 341
Cys Leu Leu His Lys Val Cys Asp Thr Gly Lys Ala Leu Val Ala Val
90 95 100
GTC GCC GGC AAC AGC ACG ACC CCC CGG CGC TGC GCG TGC ACG GCT GGG 389
Val Ala Gly Asn Ser Thr Thr Pro Arg Arg Cys Ala Cys Thr Ala Gly
105 110 115
TAC CAC TGG AGC CAG GAC TGC GAG TGC TGC CGC CGC AAC ACC GAG TGC 437
Tyr His Trp Ser Gln Asp Cys Glu Cys Cys Arg Arg Asn Thr Glu Cys
120 125 130
GCG CCG GGC CTG GGC GCC CAG CAC CCG TTG CAG CTC AAC AAG GAC ACA 485
Ala Pro Gly Leu Gly Ala Gln His Pro Leu Gln Leu Asn Lys Asp Thr
135 140 145
GTG TGC AAA CCT TGC CTT GCA GGC TAC TTC TCT GAT GCC TTT TCC TCC 533
Val Cys Lys Pro Cys Leu Ala Gly Tyr Phe Ser Asp Ala Phe Ser Ser
150 155 160 165
ACG GAC AAA TGC AGA CCC TGG ACC AAC TGT ACC TTC CTT GGA AAG AGA 581
Thr Asp Lys Cys Arg Pro Trp Thr Asn Cys Thr Phe Leu Gly Lys Arg
170 175 180
GTA GAA CAT CAT GGG ACA GAG AAA TCC GAT GCG GTT TGC AGT TCT TCT 629
Val Glu His His Gly Thr Glu Lys Ser Asp Ala Val Cys Ser Ser Ser
185 190 195
CTG CCA GCT AGA AAA CCA CCA AAT GAA CCC CAT GTT TAC TTG CCC GGT 677
Leu Pro Ala Arg Lys Pro Pro Asn Glu Pro His Val Tyr Leu Pro Gly
200 205 210
TTA ATA ATT CTG CTT CTC TTC GCG TCT GTG GCC CTG GTG GCT GCC ATC 725
Leu Ile Ile Leu Leu Leu Phe Ala Ser Val Ala Leu Val Ala Ala Ile
215 220 225
ATC TTT GGC GTT TGC TAT AGG AAA AAA GGG AAA GCA CTC ACA GCT AAT 773
Ile Phe Gly Val Cys Tyr Arg Lys Lys Gly Lys Ala Leu Thr Ala Asn
230 235 240 245
TTG TGG CAC TGG ATC AAT GAG GCT TGT GGC CGC CTA AGT GGA GAT AAG 821
Leu Trp His Trp Ile Asn Glu Ala Cys Gly Arg Leu Ser Gly Asp Lys
250 255 260
GAG TCC TCA GGT GAC AGT TGT GTC AGT ACA CAC ACG GCA AAC TTT GGT 869
Glu Ser Ser Gly Asp Ser Cys Val Ser Thr His Thr Ala Asn Phe Gly
265 270 275
CAG CAG GGA GCA TGT GAA GGT GTC TTA CTG CTG ACT CTG GAG GAG AAG 917
Gln Gln Gly Ala Cys Glu Gly Val Leu Leu Leu Thr Leu Glu Glu Lys
280 285 290
ACA TTT CCA GAA GAT ATG TGC TAC CCA GAT CAA GGT GGT GTC TGT CAG 965
Thr Phe Pro Glu Asp Met Cys Tyr Pro Asp Gln Gly Gly Val Cys Gln
295 300 305
GGC ACG TGT GTA GGA GGT GGT CCC TAC GCA CAA GGC GAA GAT GCC AGG 013
Gly Thr Cys Val Gly Gly Gly Pro Tyr Ala Gln Gly Glu Asp Ala Arg
310 315 320 325
ATG CTC TCA TTG GTC AGC AAG ACC GAG ATA GAG GAA GAC AGC TTC AGA 061
Met Leu Ser Leu Val Ser Lys Thr Glu Ile Glu Glu Asp Ser Phe Arg
330 335 340
CAG ATG CCC ACA GAA GAT GAA TAC ATG GAC AGG CCC TCC CAG CCC ACA 109
Gln Met Pro Thr Glu Asp Glu Tyr Met Asp Arg Pro Ser Gln Pro Thr
345 350 355
GAC CAG TTA CTG TTC CTC ACT GAG CCT GGA AGC AAA TCC ACA CCT CCT 157
Asp Gln Leu Leu Phe Leu Thr Glu Pro Gly Ser Lys Ser Thr Pro Pro
360 365 370
TTC TCT GAA CCC CTG GAG GTG GGG GAG AAT GAC AGT TTA AGC CAG TGC 205
Phe Ser Glu Pro Leu Glu Val Gly Glu Asn Asp Ser Leu Ser Gln Cys
375 380 385
TTC ACG GGG ACA CAG AGC ACA GTG GGT TCA GAA AGC TGC AAC TGC ACT 253
Phe Thr Gly Thr Gln Ser Thr Val Gly Ser Glu Ser Cys Asn Cys Thr
390 395 400 405
GAG CCC CTG TGC AGG ACT GAT TGG ACT CCC ATG TCC TCT GAA AAC TAC 301
Glu Pro Leu Cys Arg Thr Asp Trp Thr Pro Met Ser Ser Glu Asn Tyr
410 415 420
TTG CAA AAA GAG GTG GAC AGT GGC CAT TGC CCG CAC TGG GCA GCC AGC 349
Leu Gln Lys Glu Val Asp Ser Gly His Cys Pro His Trp Ala Ala Ser
425 430 435
CCC AGC CCC AAC TGG GCA GAT GTC TGC ACA GGC TGC CGG AAC 391
Pro Ser Pro Asn Trp Ala Asp Val Cys Thr Gly Cys Arg Asn
440 445 450

(2) INFORMATION FOR SEQ ID NO:4:
(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:
(A) LENGTH: 451 amino acids
(B) TYPE: amino acid
(D) TOPOLOGY: linear
(ii) MOLECULE TYPE: protein
(xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO:4:
Met Ala Pro Arg Ala Arg Arg Arg Arg Pro Leu Phe Ala Leu Leu Leu
1 5 10 15
Leu Cys Ala Leu Leu Ala Arg Leu Gln Val Ala Leu Gln Ile Ala Pro
20 25 30
Pro Cys Thr Ser Glu Lys His Tyr Glu His Leu Gly Arg Cys Cys Asn
35 40 45
Lys Cys Glu Pro Gly Lys Tyr Met Ser Ser Lys Cys Thr Thr Thr Ser
50 55 60
Asp Ser Val Cys Leu Pro Cys Gly Pro Asp Glu Tyr Leu Asp Ser Trp
65 70 75 80
Asn Glu Glu Asp Lys Cys Leu Leu His Lys Val Cys Asp Thr Gly Lys
85 90 95
Ala Leu Val Ala Val Val Ala Gly Asn Ser Thr Thr Pro Arg Arg Cys
100 105 110
Ala Cys Thr Ala Gly Tyr His Trp Ser Gln Asp Cys Glu Cys Cys Arg
115 120 125
Arg Asn Thr Glu Cys Ala Pro Gly Leu Gly Ala Gln His Pro Leu Gln
130 135 140
Leu Asn Lys Asp Thr Val Cys Lys Pro Cys Leu Ala Gly Tyr Phe Ser
145 150 155 160
Asp Ala Phe Ser Ser Thr Asp Lys Cys Arg Pro Trp Thr Asn Cys Thr
165 170 175
Phe Leu Gly Lys Arg Val Glu His His Gly Thr Glu Lys Ser Asp Ala
180 185 190
Val Cys Ser Ser Ser Leu Pro Ala Arg Lys Pro Pro Asn Glu Pro His
195 200 205
Val Tyr Leu Pro Gly Leu Ile Ile Leu Leu Leu Phe Ala Ser Val Ala
210 215 220
Leu Val Ala Ala Ile Ile Phe Gly Val Cys Tyr Arg Lys Lys Gly Lys
225 230 235 240
Ala Leu Thr Ala Asn Leu Trp His Trp Ile Asn Glu Ala Cys Gly Arg
245 250 255
Leu Ser Gly Asp Lys Glu Ser Ser Gly Asp Ser Cys Val Ser Thr His
260 265 270
Thr Ala Asn Phe Gly Gln Gln Gly Ala Cys Glu Gly Val Leu Leu Leu
275 280 285
Thr Leu Glu Glu Lys Thr Phe Pro Glu Asp Met Cys Tyr Pro Asp Gln
290 295 300
Gly Gly Val Cys Gln Gly Thr Cys Val Gly Gly Gly Pro Tyr Ala Gln
305 310 315 320
Gly Glu Asp Ala Arg Met Leu Ser Leu Val Ser Lys Thr Glu Ile Glu
325 330 335
Glu Asp Ser Phe Arg Gln Met Pro Thr Glu Asp Glu Tyr Met Asp Arg
340 345 350
Pro Ser Gln Pro Thr Asp Gln Leu Leu Phe Leu Thr Glu Pro Gly Ser
355 360 365
Lys Ser Thr Pro Pro Phe Ser Glu Pro Leu Glu Val Gly Glu Asn Asp
370 375 380
Ser Leu Ser Gln Cys Phe Thr Gly Thr Gln Ser Thr Val Gly Ser Glu
385 390 395 400
Ser Cys Asn Cys Thr Glu Pro Leu Cys Arg Thr Asp Trp Thr Pro Met
405 410 415
Ser Ser Glu Asn Tyr Leu Gln Lys Glu Val Asp Ser Gly His Cys Pro
420 425 430
His Trp Ala Ala Ser Pro Ser Pro Asn Trp Ala Asp Val Cys Thr Gly
435 440 445
Cys Arg Asn
450

(2) INFORMATION FOR SEQ ID NO:5:
(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:
(A) LENGTH: 3136 base pairs
(B) TYPE: nucleic acid
(C) STRANDEDNESS: single
(D) TOPOLOGY: linear
(ii) MOLECULE TYPE: cDNA
(iii) HYPOTHETICAL: NO
(iv) ANTI-SENSE: NO
(vi) ORIGINAL SOURCE:
(A) ORGANISM: HOMO SAPIENS
(vii) IMMEDIATE SOURCE:
(A) LIBRARY: BONE-MARROW DERIVED DENDRITIC CELLS
(B) CLONE: FULL LENGTH RANK
(ix) FEATURE:
(A) NAME/KEY: CDS
(B) LOCATION: 39..1886
(xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO:5:
CCGCTGAGGC CGCGGCGCCC GCCAGCCTGT CCCGCGCC ATG GCC CCG CGC GCC 53
Met Ala Pro Arg Ala
1 5
CGG CGG CGC CGC CCG CTG TTC GCG CTG CTG CTG CTC TGC GCG CTG CTC 101
Arg Arg Arg Arg Pro Leu Phe Ala Leu Leu Leu Leu Cys Ala Leu Leu
10 15 20
GCC CGG CTG CAG GTG GCT TTG CAG ATC GCT CCT CCA TGT ACC AGT GAG 149
Ala Arg Leu Gln Val Ala Leu Gln Ile Ala Pro Pro Cys Thr Ser Glu
25 30 35
AAG CAT TAT GAG CAT CTG GGA CGG TGC TGT AAC AAA TGT GAA CCA GGA 197
Lys His Tyr Glu His Leu Gly Arg Cys Cys Asn Lys Cys Glu Pro Gly
40 45 50
AAG TAC ATG TCT TCT AAA TGC ACT ACT ACC TCT GAC AGT GTA TGT CTG 245
Lys Tyr Met Ser Ser Lys Cys Thr Thr Thr Ser Asp Ser Val Cys Leu
55 60 65
CCC TGT GGC CCG GAT GAA TAC TTG GAT AGC TGG AAT GAA GAA GAT AAA 293
Pro Cys Gly Pro Asp Glu Tyr Leu Asp Ser Trp Asn Glu Glu Asp Lys
70 75 80 85
TGC TTG CTG CAT AAA GTT TGT GAT ACA GGC AAG GCC CTG GTG GCC GTG 341
Cys Leu Leu His Lys Val Cys Asp Thr Gly Lys Ala Leu Val Ala Val
90 95 100
GTC GCC GGC AAC AGC ACG ACC CCC CGG CGC TGC GCG TGC ACG GCT GGG 389
Val Ala Gly Asn Ser Thr Thr Pro Arg Arg Cys Ala Cys Thr Ala Gly
105 110 115
TAC CAC TGG AGC CAG GAC TGC GAG TGC TGC CGC CGC AAC ACC GAG TGC 437
Tyr His Trp Ser Gln Asp Cys Glu Cys Cys Arg Arg Asn Thr Glu Cys
120 125 130
GCG CCG GGC CTG GGC GCC CAG CAC CCG TTG CAG CTC AAC AAG GAC ACA 485
Ala Pro Gly Leu Gly Ala Gln His Pro Leu Gln Leu Asn Lys Asp Thr
135 140 145
GTG TGC AAA CCT TGC CTT GCA GGC TAC TTC TCT GAT GCC TTT TCC TCC 533
Val Cys Lys Pro Cys Leu Ala Gly Tyr Phe Ser Asp Ala Phe Ser Ser
150 155 160 165
ACG GAC AAA TGC AGA CCC TGG ACC AAC TGT ACC TTC CTT GGA AAG AGA 581
Thr Asp Lys Cys Arg Pro Trp Thr Asn Cys Thr Phe Leu Gly Lys Arg
170 175 180
GTA GAA CAT CAT GGG ACA GAG AAA TCC GAT GCG GTT TGC AGT TCT TCT 629
Val Glu His His Gly Thr Glu Lys Ser Asp Ala Val Cys Ser Ser Ser
185 190 195
CTG CCA GCT AGA AAA CCA CCA AAT GAA CCC CAT GTT TAC TTG CCC GGT 677
Leu Pro Ala Arg Lys Pro Pro Asn Glu Pro His Val Tyr Leu Pro Gly
200 205 210
TTA ATA ATT CTG CTT CTC TTC GCG TCT GTG GCC CTG GTG GCT GCC ATC 725
Leu Ile Ile Leu Leu Leu Phe Ala Ser Val Ala Leu Val Ala Ala Ile
215 220 225
ATC TTT GGC GTT TGC TAT AGG AAA AAA GGG AAA GCA CTC ACA GCT AAT 773
Ile Phe Gly Val Cys Tyr Arg Lys Lys Gly Lys Ala Leu Thr Ala Asn
230 235 240 245
TTG TGG CAC TGG ATC AAT GAG GCT TGT GGC CGC CTA AGT GGA GAT AAG 821
Leu Trp His Trp Ile Asn Glu Ala Cys Gly Arg Leu Ser Gly Asp Lys
250 255 260
GAG TCC TCA GGT GAC AGT TGT GTC AGT ACA CAC ACG GCA AAC TTT GGT 869
Glu Ser Ser Gly Asp Ser Cys Val Ser Thr His Thr Ala Asn Phe Gly
265 270 275
CAG CAG GGA GCA TGT GAA GGT GTC TTA CTG CTG ACT CTG GAG GAG AAG 917
Gln Gln Gly Ala Cys Glu Gly Val Leu Leu Leu Thr Leu Glu Glu Lys
280 285 290
ACA TTT CCA GAA GAT ATG TGC TAC CCA GAT CAA GGT GGT GTC TGT CAG 965
Thr Phe Pro Glu Asp Met Cys Tyr Pro Asp Gln Gly Gly Val Cys Gln
295 300 305
GGC ACG TGT GTA GGA GGT GGT CCC TAC GCA CAA GGC GAA GAT GCC AGG 1013
Gly Thr Cys Val Gly Gly Gly Pro Tyr Ala Gln Gly Glu Asp Ala Arg
310 315 320 325
ATG CTC TCA TTG GTC AGC AAG ACC GAG ATA GAG GAA GAC AGC TTC AGA 1061
Met Leu Ser Leu Val Ser Lys Thr Glu Ile Glu Glu Asp Ser Phe Arg
330 335 340
CAG ATG CCC ACA GAA GAT GAA TAC ATG GAC AGG CCC TCC CAG CCC ACA 1109
Gln Met Pro Thr Glu Asp Glu Tyr Met Asp Arg Pro Ser Gln Pro Thr
345 350 355
GAC CAG TTA CTG TTC CTC ACT GAG CCT GGA AGC AAA TCC ACA CCT CCT 1157
Asp Gln Leu Leu Phe Leu Thr Glu Pro Gly Ser Lys Ser Thr Pro Pro
360 365 370
TTC TCT GAA CCC CTG GAG GTG GGG GAG AAT GAC AGT TTA AGC CAG TGC 1205
Phe Ser Glu Pro Leu Glu Val Gly Glu Asn Asp Ser Leu Ser Gln Cys
375 380 385
TTC ACG GGG ACA CAG AGC ACA GTG GGT TCA GAA AGC TGC AAC TGC ACT 1253
Phe Thr Gly Thr Gln Ser Thr Val Gly Ser Glu Ser Cys Asn Cys Thr
390 395 400 405
GAG CCC CTG TGC AGG ACT GAT TGG ACT CCC ATG TCC TCT GAA AAC TAC 1301
Glu Pro Leu Cys Arg Thr Asp Trp Thr Pro Met Ser Ser Glu Asn Tyr
410 415 420
TTG CAA AAA GAG GTG GAC AGT GGC CAT TGC CCG CAC TGG GCA GCC AGC 1349
Leu Gln Lys Glu Val Asp Ser Gly His Cys Pro His Trp Ala Ala Ser
425 430 435
CCC AGC CCC AAC TGG GCA GAT GTC TGC ACA GGC TGC CGG AAC CCT CCT 1397
Pro Ser Pro Asn Trp Ala Asp Val Cys Thr Gly Cys Arg Asn Pro Pro
440 445 450
GGG GAG GAC TGT GAA CCC CTC GTG GGT TCC CCA AAA CGT GGA CCC TTG 1445
Gly Glu Asp Cys Glu Pro Leu Val Gly Ser Pro Lys Arg Gly Pro Leu
455 460 465
CCC CAG TGC GCC TAT GGC ATG GGC CTT CCC CCT GAA GAA GAA GCC AGC 1493
Pro Gln Cys Ala Tyr Gly Met Gly Leu Pro Pro Glu Glu Glu Ala Ser
470 475 480 485
AGG ACG GAG GCC AGA GAC CAG CCC GAG GAT GGG GCT GAT GGG AGG CTC 1541
Arg Thr Glu Ala Arg Asp Gln Pro Glu Asp Gly Ala Asp Gly Arg Leu
490 495 500
CCA AGC TCA GCG AGG GCA GGT GCC GGG TCT GGA AGC TCC CCT GGT GGC 1589
Pro Ser Ser Ala Arg Ala Gly Ala Gly Ser Gly Ser Ser Pro Gly Gly
505 510 515
CAG TCC CCT GCA TCT GGA AAT GTG ACT GGA AAC AGT AAC TCC ACG TTC 1637
Gln Ser Pro Ala Ser Gly Asn Val Thr Gly Asn Ser Asn Ser Thr Phe
520 525 530
ATC TCC AGC GGG CAG GTG ATG AAC TTC AAG GGC GAC ATC ATC GTG GTC 1685
Ile Ser Ser Gly Gln Val Met Asn Phe Lys Gly Asp Ile Ile Val Val
535 540 545
TAC GTC AGC CAG ACC TCG CAG GAG GGC GCG GCG GCG GCT GCG GAG CCC 1733
Tyr Val Ser Gln Thr Ser Gln Glu Gly Ala Ala Ala Ala Ala Glu Pro
550 555 560 565
ATG GGC CGC CCG GTG CAG GAG GAG ACC CTG GCG CGC CGA GAC TCC TTC 1781
Met Gly Arg Pro Val Gln Glu Glu Thr Leu Ala Arg Arg Asp Ser Phe
570 575 580
GCG GGG AAC GGC CCG CGC TTC CCG GAC CCG TGC GGC GGC CCC GAG GGG 1829
Ala Gly Asn Gly Pro Arg Phe Pro Asp Pro Cys Gly Gly Pro Glu Gly
585 590 595
CTG CGG GAG CCG GAG AAG GCC TCG AGG CCG GTG CAG GAG CAA GGC GGG 1877
Leu Arg Glu Pro Glu Lys Ala Ser Arg Pro Val Gln Glu Gln Gly Gly
600 605 610
GCC AAG GCT TGAGCGCCCC CCATGGCTGG GAGCCCGAAG CTCGGAGCCA 1926
Ala Lys Ala
615
GGGCTCGCGA GGGCAGCACC GCAGCCTCTG CCCCAGCCCC GGCCACCCAG GGATCGATCG 1986
GTACAGTCGA GGAAGACCAC CCGGCATTCT CTGCCCACTT TGCCTTCCAG GAAATGGGCT 2046
TTTCAGGAAG TGAATTGATG AGGACTGTCC CCATGCCCAC GGATGCTCAG CAGCCCGCCG 2106
CACTGGGGCA GATGTCTCCC CTGCCACTCC TCAAACTCGC AGCAGTAATT TGTGGCACTA 2166
TGACAGCTAT TTTTATGACT ATCCTGTTCT GTGGGGGGGG GGTCTATGTT TTCCCCCCAT 2226
ATTTGTATTC CTTTTCATAA CTTTTCTTGA TATCTTTCCT CCCTCTTTTT TAATGTAAAG 2286
GTTTTCTCAA AAATTCTCCT AAAGGTGAGG GTCTCTTTCT TTTCTCTTTT CCTTTTTTTT 2346
TTCTTTTTTT GGCAACCTGG CTCTGGCCCA GGCTAGAGTG CAGTGGTGCG ATTATAGCCC 2406
GGTGCAGCCT CTAACTCCTG GGCTCAAGCA ATCCAAGTGA TCCTCCCACC TCAACCTTCG 2466
GAGTAGCTGG GATCACAGCT GCAGGCCACG CCCAGCTTCC TCCCCCCGAC TCCCCCCCCC 2526
CAGAGACACG GTCCCACCAT GTTACCCAGC CTGGTCTCAA ACTCCCCAGC TAAAGCAGTC 2586
CTCCAGCCTC GGCCTCCCAA AGTACTGGGA TTACAGGCGT GAGCCCCCAC GCTGGCCTGC 2646
TTTACGTATT TTCTTTTGTG CCCCTGCTCA CAGTGTTTTA GAGATGGCTT TCCCAGTGTG 2706
TGTTCATTGT AAACACTTTT GGGAAAGGGC TAAACATGTG AGGCCTGGAG ATAGTTGCTA 2766
AGTTGCTAGG AACATGTGGT GGGACTTTCA TATTCTGAAA AATGTTCTAT ATTCTCATTT 2826
TTCTAAAAGA AAGAAAAAAG GAAACCCGAT TTATTTCTCC TGAATCTTTT TAAGTTTGTG 2886
TCGTTCCTTA AGCAGAACTA AGCTCAGTAT GTGACCTTAC CCGCTAGGTG GTTAATTTAT 2946
CCATGCTGGC AGAGGCACTC AGGTACTTGG TAAGCAAATT TCTAAAACTC CAAGTTGCTG 3006
CAGCTTGGCA TTCTTCTTAT TCTAGAGGTC TCTCTGGAAA AGATGGAGAA AATGAACAGG 3066
ACATGGGGCT CCTGGAAAGA AAGGGCCCGG GAAGTTCAAG GAAGAATAAA GTTGAAATTT 3126
TAAAAAAAAA 3136

(2) INFORMATION FOR SEQ ID NO:6:
(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:
(A) LENGTH: 616 amino acids
(B) TYPE: amino acid
(D) TOPOLOGY: linear
(ii) MOLECULE TYPE: protein
(xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO:6:
Met Ala Pro Arg Ala Arg Arg Arg Arg Pro Leu Phe Ala Leu Leu Leu
1 5 10 15
Leu Cys Ala Leu Leu Ala Arg Leu Gln Val Ala Leu Gln Ile Ala Pro
20 25 30
Pro Cys Thr Ser Glu Lys His Tyr Glu His Leu Gly Arg Cys Cys Asn
35 40 45
Lys Cys Glu Pro Gly Lys Tyr Met Ser Ser Lys Cys Thr Thr Thr Ser
50 55 60
Asp Ser Val Cys Leu Pro Cys Gly Pro Asp Glu Tyr Leu Asp Ser Trp
65 70 75 80
Asn Glu Glu Asp Lys Cys Leu Leu His Lys Val Cys Asp Thr Gly Lys
85 90 95
Ala Leu Val Ala Val Val Ala Gly Asn Ser Thr Thr Pro Arg Arg Cys
100 105 110
Ala Cys Thr Ala Gly Tyr His Trp Ser Gln Asp Cys Glu Cys Cys Arg
115 120 125
Arg Asn Thr Glu Cys Ala Pro Gly Leu Gly Ala Gln His Pro Leu Gln
130 135 140
Leu Asn Lys Asp Thr Val Cys Lys Pro Cys Leu Ala Gly Tyr Phe Ser
145 150 155 160
Asp Ala Phe Ser Ser Thr Asp Lys Cys Arg Pro Trp Thr Asn Cys Thr
165 170 175
Phe Leu Gly Lys Arg Val Glu His His Gly Thr Glu Lys Ser Asp Ala
180 185 190
Val Cys Ser Ser Ser Leu Pro Ala Arg Lys Pro Pro Asn Glu Pro His
195 200 205
Val Tyr Leu Pro Gly Leu Ile Ile Leu Leu Leu Phe Ala Ser Val Ala
210 215 220
Leu Val Ala Ala Ile Ile Phe Gly Val Cys Tyr Arg Lys Lys Gly Lys
225 230 235 240
Ala Leu Thr Ala Asn Leu Trp His Trp Ile Asn Glu Ala Cys Gly Arg
245 250 255
Leu Ser Gly Asp Lys Glu Ser Ser Gly Asp Ser Cys Val Ser Thr His
260 265 270
Thr Ala Asn Phe Gly Gln Gln Gly Ala Cys Glu Gly Val Leu Leu Leu
275 280 285
Thr Leu Glu Glu Lys Thr Phe Pro Glu Asp Met Cys Tyr Pro Asp Gln
290 295 300
Gly Gly Val Cys Gln Gly Thr Cys Val Gly Gly Gly Pro Tyr Ala Gln
305 310 315 320
Gly Glu Asp Ala Arg Met Leu Ser Leu Val Ser Lys Thr Glu Ile Glu
325 330 335
Glu Asp Ser Phe Arg Gln Met Pro Thr Glu Asp Glu Tyr Met Asp Arg
340 345 350
Pro Ser Gln Pro Thr Asp Gln Leu Leu Phe Leu Thr Glu Pro Gly Ser
355 360 365
Lys Ser Thr Pro Pro Phe Ser Glu Pro Leu Glu Val Gly Glu Asn Asp
370 375 380
Ser Leu Ser Gln Cys Phe Thr Gly Thr Gln Ser Thr Val Gly Ser Glu
385 390 395 400
Ser Cys Asn Cys Thr Glu Pro Leu Cys Arg Thr Asp Trp Thr Pro Met
405 410 415
Ser Ser Glu Asn Tyr Leu Gln Lys Glu Val Asp Ser Gly His Cys Pro
420 425 430
His Trp Ala Ala Ser Pro Ser Pro Asn Trp Ala Asp Val Cys Thr Gly
435 440 445
Cys Arg Asn Pro Pro Gly Glu Asp Cys Glu Pro Leu Val Gly Ser Pro
450 455 460
Lys Arg Gly Pro Leu Pro Gln Cys Ala Tyr Gly Met Gly Leu Pro Pro
465 470 475 480
Glu Glu Glu Ala Ser Arg Thr Glu Ala Arg Asp Gln Pro Glu Asp Gly
485 490 495
Ala Asp Gly Arg Leu Pro Ser Ser Ala Arg Ala Gly Ala Gly Ser Gly
500 505 510
Ser Ser Pro Gly Gly Gln Ser Pro Ala Ser Gly Asn Val Thr Gly Asn
515 520 525
Ser Asn Ser Thr Phe Ile Ser Ser Gly Gln Val Met Asn Phe Lys Gly
530 535 540
Asp Ile Ile Val Val Tyr Val Ser Gln Thr Ser Gln Glu Gly Ala Ala
545 550 555 560
Ala Ala Ala Glu Pro Met Gly Arg Pro Val Gln Glu Glu Thr Leu Ala
565 570 575
Arg Arg Asp Ser Phe Ala Gly Asn Gly Pro Arg Phe Pro Asp Pro Cys
580 585 590
Gly Gly Pro Glu Gly Leu Arg Glu Pro Glu Lys Ala Ser Arg Pro Val
595 600 605
Gln Glu Gln Gly Gly Ala Lys Ala
610 615

(2) INFORMATION FOR SEQ ID NO:7:
(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:
(A) LENGTH: 8 amino acids
(B) TYPE: amino acid
(C) STRANDEDNESS: not relevant
(D) TOPOLOGY: linear
(ii) MOLECULE TYPE: peptide
(vii) IMMEDIATE SOURCE:
(B) CLONE: FLAG(R) peptide
(xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO:7:
Asp Tyr Lys Asp Asp Asp Asp Lys
1 5

(2) INFORMATION FOR SEQ ID NO:8:
(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:
(A) LENGTH: 232 amino acids
(B) TYPE: amino acid
(C) STRANDEDNESS: not relevant
(D) TOPOLOGY: linear
(ii) MOLECULE TYPE: protein
(vi) ORIGINAL SOURCE:
(A) ORGANISM: Human
(vii) IMMEDIATE SOURCE:
(B) CLONE: IgG1 Fc mutein
(xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO:8:
Glu Pro Arg Ser Cys Asp Lys Thr His Thr Cys Pro Pro Cys Pro Ala
1 5 10 15
Pro Glu Ala Glu Gly Ala Pro Ser Val Phe Leu Phe Pro Pro Lys Pro
20 25 30
Lys Asp Thr Leu Met Ile Ser Arg Thr Pro Glu Val Thr Cys Val Val
35 40 45
Val Asp Val Ser His Glu Asp Pro Glu Val Lys Phe Asn Trp Tyr Val
50 55 60
Asp Gly Val Glu Val His Asn Ala Lys Thr Lys Pro Arg Glu Glu Gln
65 70 75 80
Tyr Asn Ser Thr Tyr Arg Val Val Ser Val Leu Thr Val Leu His Gln
85 90 95
Asp Trp Leu Asn Gly Lys Asp Tyr Lys Cys Lys Val Ser Asn Lys Ala
100 105 110
Leu Pro Ala Pro Met Gln Lys Thr Ile Ser Lys Ala Lys Gly Gln Pro
115 120 125
Arg Glu Pro Gln Val Tyr Thr Leu Pro Pro Ser Arg Asp Glu Leu Thr
130 135 140
Lys Asn Gln Val Ser Leu Thr Cys Leu Val Lys Gly Phe Tyr Pro Arg
145 150 155 160
His Ile Ala Val Glu Trp Glu Ser Asn Gly Gln Pro Glu Asn Asn Tyr
165 170 175
Lys Thr Thr Pro Pro Val Leu Asp Ser Asp Gly Ser Phe Phe Leu Tyr
180 185 190
Ser Lys Leu Thr Val Asp Lys Ser Arg Trp Gln Gln Gly Asn Val Phe
195 200 205
Ser Cys Ser Val Met His Glu Ala Leu His Asn His Tyr Thr Gln Lys
210 215 220
Ser Leu Ser Leu Ser Pro Gly Lys
225 230

(2) INFORMATION FOR SEQ ID NO:9:
(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:
(A) LENGTH: 31 amino acids
(B) TYPE: amino acid
(C) STRANDEDNESS: not relevant
(D) TOPOLOGY: linear
(ii) MOLECULE TYPE: peptide
(iii) HYPOTHETICAL: NO
(iv) ANTI-SENSE: NO
(vi) ORIGINAL SOURCE:
(A) ORGANISM: CMV (R2780 Leader)
(ix) FEATURE:
(D) OTHER INFORMATION: Met1-Arg28 is the actual leader
peptide; Arg29 strengthens the furin cleavage site;
nucleotides encoding Thr30 and Ser31 add a Spe1 site.
(xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO:9:
Met Ala Arg Arg Leu Trp Ile Leu Ser Leu Leu Ala Val Thr Leu Thr
1 5 10 15
Val Ala Leu Ala Ala Pro Ser Gln Lys Ser Lys Arg Arg Thr Ser
20 25 30

(2) INFORMATION FOR SEQ ID NO:10:
(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:
(A) LENGTH: 1630 base pairs
(B) TYPE: nucleic acid
(C) STRANDEDNESS: single
(D) TOPOLOGY: linear
(ii) MOLECULE TYPE: cDNA
(iii) HYPOTHETICAL: NO
(iv) ANTI-SENSE: NO
(vi) ORIGINAL SOURCE:
(A) ORGANISM: Mus musculus
(vii) IMMEDIATE SOURCE:
(A) LIBRARY:
(B) CLONE: RANKL
(ix) FEATURE:
(A) NAME/KEY: CDS
(B) LOCATION: 3..884
(xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO:10:
CC GGC GTC CCA CAC GAG GGT CCG CTG CAC CCC GCG CCT TCT GCA CCG 47
Gly Val Pro His Glu Gly Pro Leu His Pro Ala Pro Ser Ala Pro
1 5 10 15
GCT CCG GCG CCG CCA CCC GCC GCC TCC CGC TCC ATG TTC CTG GCC CTC 95
Ala Pro Ala Pro Pro Pro Ala Ala Ser Arg Ser Met Phe Leu Ala Leu
20 25 30
CTG GGG CTG GGA CTG GGC CAG GTG GTC TGC AGC ATC GCT CTG TTC CTG 143
Leu Gly Leu Gly Leu Gly Gln Val Val Cys Ser Ile Ala Leu Phe Leu
35 40 45
TAC TTT CGA GCG CAG ATG GAT CCT AAC AGA ATA TCA GAA GAC AGC ACT 191
Tyr Phe Arg Ala Gln Met Asp Pro Asn Arg Ile Ser Glu Asp Ser Thr
50 55 60
CAC TGC TTT TAT AGA ATC CTG AGA CTC CAT GAA AAC GCA GAT TTG CAG 239
His Cys Phe Tyr Arg Ile Leu Arg Leu His Glu Asn Ala Asp Leu Gln
65 70 75
GAC TCG ACT CTG GAG AGT GAA GAC ACA CTA CCT GAC TCC TGC AGG AGG 287
Asp Ser Thr Leu Glu Ser Glu Asp Thr Leu Pro Asp Ser Cys Arg Arg
80 85 90 95
ATG AAA CAA GCC TTT CAG GGG GCC GTG CAG AAG GAA CTG CAA CAC ATT 335
Met Lys Gln Ala Phe Gln Gly Ala Val Gln Lys Glu Leu Gln His Ile
100 105 110
GTG GGG CCA CAG CGC TTC TCA GGA GCT CCA GCT ATG ATG GAA GGC TCA 383
Val Gly Pro Gln Arg Phe Ser Gly Ala Pro Ala Met Met Glu Gly Ser
115 120 125
TGG TTG GAT GTG GCC CAG CGA GGC AAG CCT GAG GCC CAG CCA TTT GCA 431
Trp Leu Asp Val Ala Gln Arg Gly Lys Pro Glu Ala Gln Pro Phe Ala
130 135 140
CAC CTC ACC ATC AAT GCT GCC AGC ATC CCA TCG GGT TCC CAT AAA GTC 479
His Leu Thr Ile Asn Ala Ala Ser Ile Pro Ser Gly Ser His Lys Val
145 150 155
ACT CTG TCC TCT TGG TAC CAC GAT CGA GGC TGG GCC AAG ATC TCT AAC 527
Thr Leu Ser Ser Trp Tyr His Asp Arg Gly Trp Ala Lys Ile Ser Asn
160 165 170 175
ATG ACG TTA AGC AAC GGA AAA CTA AGG GTT AAC CAA GAT GGC TTC TAT 575
Met Thr Leu Ser Asn Gly Lys Leu Arg Val Asn Gln Asp Gly Phe Tyr
180 185 190
TAC CTG TAC GCC AAC ATT TGC TTT CGG CAT CAT GAA ACA TCG GGA AGC 623
Tyr Leu Tyr Ala Asn Ile Cys Phe Arg His His Glu Thr Ser Gly Ser
195 200 205
GTA CCT ACA GAC TAT CTT CAG CTG ATG GTG TAT GTC GTT AAA ACC AGC 671
Val Pro Thr Asp Tyr Leu Gln Leu Met Val Tyr Val Val Lys Thr Ser
210 215 220
ATC AAA ATC CCA AGT TCT CAT AAC CTG ATG AAA GGA GGG AGC ACG AAA 719
Ile Lys Ile Pro Ser Ser His Asn Leu Met Lys Gly Gly Ser Thr Lys
225 230 235
AAC TGG TCG GGC AAT TCT GAA TTC CAC TTT TAT TCC ATA AAT GTT GGG 767
Asn Trp Ser Gly Asn Ser Glu Phe His Phe Tyr Ser Ile Asn Val Gly
240 245 250 255
GGA TTT TTC AAG CTC CGA GCT GGT GAA GAA ATT AGC ATT CAG GTG TCC 815
Gly Phe Phe Lys Leu Arg Ala Gly Glu Glu Ile Ser Ile Gln Val Ser
260 265 270
AAC CCT TCC CTG CTG GAT CCG GAT CAA GAT GCG ACG TAC TTT GGG GCT 863
Asn Pro Ser Leu Leu Asp Pro Asp Gln Asp Ala Thr Tyr Phe Gly Ala
275 280 285
TTC AAA GTT CAG GAC ATA GAC TGAGACTCAT TTCGTGGAAC ATTAGCATGG 914
Phe Lys Val Gln Asp Ile Asp
290
ATGTCCTAGA TGTTTGGAAA CTTCTTAAAA AATGGATGAT GTCTATACAT GTGTAAGACT 974
ACTAAGAGAC ATGGCCCACG GTGTATGAAA CTCACAGCCC TCTCTCTTGA GCCTGTACAG 1034
GTTGTGTATA TGTAAAGTCC ATAGGTGATG TTAGATTCAT GGTGATTACA CAACGGTTTT 1094
ACAATTTTGT AATGATTTCC TAGAATTGAA CCAGATTGGG AGAGGTATTC CGATGCTTAT 1154
GAAAAACTTA CACGTGAGCT ATGGAAGGGG GTCACAGTCT CTGGGTCTAA CCCCTGGACA 1214
TGTGCCACTG AGAACCTTGA AATTAAGAGG ATGCCATGTC ATTGCAAAGA AATGATAGTG 1274
TGAAGGGTTA AGTTCTTTTG AATTGTTACA TTGCGCTGGG ACCTGCAAAT AAGTTCTTTT 1334
TTTCTAATGA GGAGAGAAAA ATATATGTAT TTTTATATAA TGTCTAAAGT TATATTTCAG 1394
GTGTAATGTT TTCTGTGCAA AGTTTTGTAA ATTATATTTG TGCTATAGTA TTTGATTCAA 1454
AATATTTAAA AATGTCTCAC TGTTGACATA TTTAATGTTT TAAATGTACA GATGTATTTA 1514
ACTGGTGCAC TTTGTAATTC CCCTGAAGGT ACTCGTAGCT AAGGGGGCAG AATACTGTTT 1574
CTGGTGACCA CATGTAGTTT ATTTCTTTAT TCTTTTTAAC TTAATAGAGT CTTCAG 1630

(2) INFORMATION FOR SEQ ID NO:11:
(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:
(A) LENGTH: 294 amino acids
(B) TYPE: amino acid
(D) TOPOLOGY: linear
(ii) MOLECULE TYPE: protein
(xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO:11:
Gly Val Pro His Glu Gly Pro Leu His Pro Ala Pro Ser Ala Pro Ala
1 5 10 15
Pro Ala Pro Pro Pro Ala Ala Ser Arg Ser Met Phe Leu Ala Leu Leu
20 25 30
Gly Leu Gly Leu Gly Gln Val Val Cys Ser Ile Ala Leu Phe Leu Tyr
35 40 45
Phe Arg Ala Gln Met Asp Pro Asn Arg Ile Ser Glu Asp Ser Thr His
50 55 60
Cys Phe Tyr Arg Ile Leu Arg Leu His Glu Asn Ala Asp Leu Gln Asp
65 70 75 80
Ser Thr Leu Glu Ser Glu Asp Thr Leu Pro Asp Ser Cys Arg Arg Met
85 90 95
Lys Gln Ala Phe Gln Gly Ala Val Gln Lys Glu Leu Gln His Ile Val
100 105 110
Gly Pro Gln Arg Phe Ser Gly Ala Pro Ala Met Met Glu Gly Ser Trp
115 120 125
Leu Asp Val Ala Gln Arg Gly Lys Pro Glu Ala Gln Pro Phe Ala His
130 135 140
Leu Thr Ile Asn Ala Ala Ser Ile Pro Ser Gly Ser His Lys Val Thr
145 150 155 160
Leu Ser Ser Trp Tyr His Asp Arg Gly Trp Ala Lys Ile Ser Asn Met
165 170 175
Thr Leu Ser Asn Gly Lys Leu Arg Val Asn Gln Asp Gly Phe Tyr Tyr
180 185 190
Leu Tyr Ala Asn Ile Cys Phe Arg His His Glu Thr Ser Gly Ser Val
195 200 205
Pro Thr Asp Tyr Leu Gln Leu Met Val Tyr Val Val Lys Thr Ser Ile
210 215 220
Lys Ile Pro Ser Ser His Asn Leu Met Lys Gly Gly Ser Thr Lys Asn
225 230 235 240
Trp Ser Gly Asn Ser Glu Phe His Phe Tyr Ser Ile Asn Val Gly Gly
245 250 255
Phe Phe Lys Leu Arg Ala Gly Glu Glu Ile Ser Ile Gln Val Ser Asn
260 265 270
Pro Ser Leu Leu Asp Pro Asp Gln Asp Ala Thr Tyr Phe Gly Ala Phe
275 280 285
Lys Val Gln Asp Ile Asp
290

(2) INFORMATION FOR SEQ ID NO:12:
(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:
(A) LENGTH: 954 base pairs
(B) TYPE: nucleic acid
(C) STRANDEDNESS: single
(D) TOPOLOGY: linear
(ii) MOLECULE TYPE: cDNA
(iii) HYPOTHETICAL: NO
(iv) ANTI-SENSE: NO
(vi) ORIGINAL SOURCE:
(A) ORGANISM: Homo sapiens
(vii) IMMEDIATE SOURCE:
(A) LIBRARY:
(B) CLONE: huRANKL (full length)
(ix) FEATURE:
(A) NAME/KEY: CDS
(B) LOCATION: 1..951
(xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO:12:
ATG CGC CGC GCC AGC AGA GAC TAC ACC AAG TAC CTG CGT GGC TCG GAG 48
Met Arg Arg Ala Ser Arg Asp Tyr Thr Lys Tyr Leu Arg Gly Ser Glu
1 5 10 15
GAG ATG GGC GGC GGC CCC GGA GCC CCG CAC GAG GGC CCC CTG CAC GCC 96
Glu Met Gly Gly Gly Pro Gly Ala Pro His Glu Gly Pro Leu His Ala
20 25 30
CCG CCG CCG CCT GCG CCG CAC CAG CCC CCC GCC GCC TCC CGC TCC ATG 144
Pro Pro Pro Pro Ala Pro His Gln Pro Pro Ala Ala Ser Arg Ser Met
35 40 45
TTC GTG GCC CTC CTG GGG CTG GGG CTG GGC CAG GTT GTC TGC AGC GTC 192
Phe Val Ala Leu Leu Gly Leu Gly Leu Gly Gln Val Val Cys Ser Val
50 55 60
GCC CTG TTC TTC TAT TTC AGA GCG CAG ATG GAT CCT AAT AGA ATA TCA 240
Ala Leu Phe Phe Tyr Phe Arg Ala Gln Met Asp Pro Asn Arg Ile Ser
65 70 75 80
GAA GAT GGC ACT CAC TGC ATT TAT AGA ATT TTG AGA CTC CAT GAA AAT 288
Glu Asp Gly Thr His Cys Ile Tyr Arg Ile Leu Arg Leu His Glu Asn
85 90 95
GCA GAT TTT CAA GAC ACA ACT CTG GAG AGT CAA GAT ACA AAA TTA ATA 336
Ala Asp Phe Gln Asp Thr Thr Leu Glu Ser Gln Asp Thr Lys Leu Ile
100 105 110
CCT GAT TCA TGT AGG AGA ATT AAA CAG GCC TTT CAA GGA GCT GTG CAA 384
Pro Asp Ser Cys Arg Arg Ile Lys Gln Ala Phe Gln Gly Ala Val Gln
115 120 125
AAG GAA TTA CAA CAT ATC GTT GGA TCA CAG CAC ATC AGA GCA GAG AAA 432
Lys Glu Leu Gln His Ile Val Gly Ser Gln His Ile Arg Ala Glu Lys
130 135 140
GCG ATG GTG GAT GGC TCA TGG TTA GAT CTG GCC AAG AGG AGC AAG CTT 480
Ala Met Val Asp Gly Ser Trp Leu Asp Leu Ala Lys Arg Ser Lys Leu
145 150 155 160
GAA GCT CAG CCT TTT GCT CAT CTC ACT ATT AAT GCC ACC GAC ATC CCA 528
Glu Ala Gln Pro Phe Ala His Leu Thr Ile Asn Ala Thr Asp Ile Pro
165 170 175
TCT GGT TCC CAT AAA GTG AGT CTG TCC TCT TGG TAC CAT GAT CGG GGT 576
Ser Gly Ser His Lys Val Ser Leu Ser Ser Trp Tyr His Asp Arg Gly
180 185 190
TGG GCC AAG ATC TCC AAC ATG ACT TTT AGC AAT GGA AAA CTA ATA GTT 624
Trp Ala Lys Ile Ser Asn Met Thr Phe Ser Asn Gly Lys Leu Ile Val
195 200 205
AAT CAG GAT GGC TTT TAT TAC CTG TAT GCC AAC ATT TGC TTT CGA CAT 672
Asn Gln Asp Gly Phe Tyr Tyr Leu Tyr Ala Asn Ile Cys Phe Arg His
210 215 220
CAT GAA ACT TCA GGA GAC CTA GCT ACA GAG TAT CTT CAA CTA ATG GTG 720
His Glu Thr Ser Gly Asp Leu Ala Thr Glu Tyr Leu Gln Leu Met Val
225 230 235 240
TAC GTC ACT AAA ACC AGC ATC AAA ATC CCA AGT TCT CAT ACC CTG ATG 768
Tyr Val Thr Lys Thr Ser Ile Lys Ile Pro Ser Ser His Thr Leu Met
245 250 255
AAA GGA GGA AGC ACC AAG TAT TGG TCA GGG AAT TCT GAA TTC CAT TTT 816
Lys Gly Gly Ser Thr Lys Tyr Trp Ser Gly Asn Ser Glu Phe His Phe
260 265 270
TAT TCC ATA AAC GTT GGT GGA TTT TTT AAG TTA CGG TCT GGA GAG GAA 864
Tyr Ser Ile Asn Val Gly Gly Phe Phe Lys Leu Arg Ser Gly Glu Glu
275 280 285
ATC AGC ATC GAG GTC TCC AAC CCC TCC TTA CTG GAT CCG GAT CAG GAT 912
Ile Ser Ile Glu Val Ser Asn Pro Ser Leu Leu Asp Pro Asp Gln Asp
290 295 300
GCA ACA TAC TTT GGG GCT TTT AAA GTT CGA GAT ATA GAT TGA 954
Ala Thr Tyr Phe Gly Ala Phe Lys Val Arg Asp Ile Asp
305 310 315

(2) INFORMATION FOR SEQ ID NO:13:
(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:
(A) LENGTH: 317 amino acids
(B) TYPE: amino acid
(D) TOPOLOGY: linear
(ii) MOLECULE TYPE: protein
(xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO:13:
Met Arg Arg Ala Ser Arg Asp Tyr Thr Lys Tyr Leu Arg Gly Ser Glu
1 5 10 15
Glu Met Gly Gly Gly Pro Gly Ala Pro His Glu Gly Pro Leu His Ala
20 25 30
Pro Pro Pro Pro Ala Pro His Gln Pro Pro Ala Ala Ser Arg Ser Met
35 40 45
Phe Val Ala Leu Leu Gly Leu Gly Leu Gly Gln Val Val Cys Ser Val
50 55 60
Ala Leu Phe Phe Tyr Phe Arg Ala Gln Met Asp Pro Asn Arg Ile Ser
65 70 75 80
Glu Asp Gly Thr His Cys Ile Tyr Arg Ile Leu Arg Leu His Glu Asn
85 90 95
Ala Asp Phe Gln Asp Thr Thr Leu Glu Ser Gln Asp Thr Lys Leu Ile
100 105 110
Pro Asp Ser Cys Arg Arg Ile Lys Gln Ala Phe Gln Gly Ala Val Gln
115 120 125
Lys Glu Leu Gln His Ile Val Gly Ser Gln His Ile Arg Ala Glu Lys
130 135 140
Ala Met Val Asp Gly Ser Trp Leu Asp Leu Ala Lys Arg Ser Lys Leu
145 150 155 160
Glu Ala Gln Pro Phe Ala His Leu Thr Ile Asn Ala Thr Asp Ile Pro
165 170 175
Ser Gly Ser His Lys Val Ser Leu Ser Ser Trp Tyr His Asp Arg Gly
180 185 190
Trp Ala Lys Ile Ser Asn Met Thr Phe Ser Asn Gly Lys Leu Ile Val
195 200 205
Asn Gln Asp Gly Phe Tyr Tyr Leu Tyr Ala Asn Ile Cys Phe Arg His
210 215 220
His Glu Thr Ser Gly Asp Leu Ala Thr Glu Tyr Leu Gln Leu Met Val
225 230 235 240
Tyr Val Thr Lys Thr Ser Ile Lys Ile Pro Ser Ser His Thr Leu Met
245 250 255
Lys Gly Gly Ser Thr Lys Tyr Trp Ser Gly Asn Ser Glu Phe His Phe
260 265 270
Tyr Ser Ile Asn Val Gly Gly Phe Phe Lys Leu Arg Ser Gly Glu Glu
275 280 285
Ile Ser Ile Glu Val Ser Asn Pro Ser Leu Leu Asp Pro Asp Gln Asp
290 295 300
Ala Thr Tyr Phe Gly Ala Phe Lys Val Arg Asp Ile Asp
305 310 315

(2) INFORMATION FOR SEQ ID NO:14:
(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:
(A) LENGTH: 1878 base pairs
(B) TYPE: nucleic acid
(C) STRANDEDNESS: single
(D) TOPOLOGY: linear
(ii) MOLECULE TYPE: cDNA
(iii) HYPOTHETICAL: NO
(iv) ANTI-SENSE: NO
(vi) ORIGINAL SOURCE:
(A) ORGANISM: Murine
(vii) IMMEDIATE SOURCE:
(A) LIBRARY: Murine Fetal Liver Epithelium
(B) CLONE: muRANK
(ix) FEATURE:
(A) NAME/KEY: CDS
(B) LOCATION: 1..1875
(xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO:14:
ATG GCC CCG CGC GCC CGG CGG CGC CGC CAG CTG CCC GCG CCG CTG CTG 48
Met Ala Pro Arg Ala Arg Arg Arg Arg Gln Leu Pro Ala Pro Leu Leu
1 5 10 15
GCG CTC TGC GTG CTG CTC GTT CCA CTG CAG GTG ACT CTC CAG GTC ACT 96
Ala Leu Cys Val Leu Leu Val Pro Leu Gln Val Thr Leu Gln Val Thr
20 25 30
CCT CCA TGC ACC CAG GAG AGG CAT TAT GAG CAT CTC GGA CGG TGT TGC 144
Pro Pro Cys Thr Gln Glu Arg His Tyr Glu His Leu Gly Arg Cys Cys
35 40 45
AGC AGA TGC GAA CCA GGA AAG TAC CTG TCC TCT AAG TGC ACT CCT ACC 192
Ser Arg Cys Glu Pro Gly Lys Tyr Leu Ser Ser Lys Cys Thr Pro Thr
50 55 60
TCC GAC AGT GTG TGT CTG CCC TGT GGC CCC GAT GAG TAC TTG GAC ACC 240
Ser Asp Ser Val Cys Leu Pro Cys Gly Pro Asp Glu Tyr Leu Asp Thr
65 70 75 80
TGG AAT GAA GAA GAT AAA TGC TTG CTG CAT AAA GTC TGT GAT GCA GGC 288
Trp Asn Glu Glu Asp Lys Cys Leu Leu His Lys Val Cys Asp Ala Gly
85 90 95
AAG GCC CTG GTG GCG GTG GAT CCT GGC AAC CAC ACG GCC CCG CGT CGC 336
Lys Ala Leu Val Ala Val Asp Pro Gly Asn His Thr Ala Pro Arg Arg
100 105 110
TGT GCT TGC ACG GCT GGC TAC CAC TGG AAC TCA GAC TGC GAG TGC TGC 384
Cys Ala Cys Thr Ala Gly Tyr His Trp Asn Ser Asp Cys Glu Cys Cys
115 120 125
CGC AGG AAC ACG GAG TGT GCA CCT GGC TTC GGA GCT CAG CAT CCC TTG 432
Arg Arg Asn Thr Glu Cys Ala Pro Gly Phe Gly Ala Gln His Pro Leu
130 135 140
CAG CTC AAC AAG GAT ACG GTG TGC ACA CCC TGC CTC CTG GGC TTC TTC 480
Gln Leu Asn Lys Asp Thr Val Cys Thr Pro Cys Leu Leu Gly Phe Phe
145 150 155 160
TCA GAT GTC TTT TCG TCC ACA GAC AAA TGC AAA CCT TGG ACC AAC TGC 528
Ser Asp Val Phe Ser Ser Thr Asp Lys Cys Lys Pro Trp Thr Asn Cys
165 170 175
ACC CTC CTT GGA AAG CTA GAA GCA CAC CAG GGG ACA ACG GAA TCA GAT 576
Thr Leu Leu Gly Lys Leu Glu Ala His Gln Gly Thr Thr Glu Ser Asp
180 185 190
GTG GTC TGC AGC TCT TCC ATG ACA CTG AGG AGA CCA CCC AAG GAG GCC 624
Val Val Cys Ser Ser Ser Met Thr Leu Arg Arg Pro Pro Lys Glu Ala
195 200 205
CAG GCT TAC CTG CCC AGT CTC ATC GTT CTG CTC CTC TTC ATC TCT GTG 672
Gln Ala Tyr Leu Pro Ser Leu Ile Val Leu Leu Leu Phe Ile Ser Val
210 215 220
GTA GTA GTG GCT GCC ATC ATC TTC GGC GTT TAC TAC AGG AAG GGA GGG 720
Val Val Val Ala Ala Ile Ile Phe Gly Val Tyr Tyr Arg Lys Gly Gly
225 230 235 240
AAA GCG CTG ACA GCT AAT TTG TGG AAT TGG GTC AAT GAT GCT TGC AGT 768
Lys Ala Leu Thr Ala Asn Leu Trp Asn Trp Val Asn Asp Ala Cys Ser
245 250 255
AGT CTA AGT GGA AAT AAG GAG TCC TCA GGG GAC CGT TGT GCT GGT TCC 816
Ser Leu Ser Gly Asn Lys Glu Ser Ser Gly Asp Arg Cys Ala Gly Ser
260 265 270
CAC TCG GCA ACC TCC AGT CAG CAA GAA GTG TGT GAA GGT ATC TTA CTA 864
His Ser Ala Thr Ser Ser Gln Gln Glu Val Cys Glu Gly Ile Leu Leu
275 280 285
ATG ACT CGG GAG GAG AAG ATG GTT CCA GAA GAC GGT GCT GGA GTC TGT 912
Met Thr Arg Glu Glu Lys Met Val Pro Glu Asp Gly Ala Gly Val Cys
290 295 300
GGG CCT GTG TGT GCG GCA GGT GGG CCC TGG GCA GAA GTC AGA GAT TCT 960
Gly Pro Val Cys Ala Ala Gly Gly Pro Trp Ala Glu Val Arg Asp Ser
305 310 315 320
AGG ACG TTC ACA CTG GTC AGC GAG GTT GAG ACG CAA GGA GAC CTC TCG 1008
Arg Thr Phe Thr Leu Val Ser Glu Val Glu Thr Gln Gly Asp Leu Ser
325 330 335
AGG AAG ATT CCC ACA GAG GAT GAG TAC ACG GAC CGG CCC TCG CAG CCT 1056
Arg Lys Ile Pro Thr Glu Asp Glu Tyr Thr Asp Arg Pro Ser Gln Pro
340 345 350
TCG ACT GGT TCA CTG CTC CTA ATC CAG CAG GGA AGC AAA TCT ATA CCC 1104
Ser Thr Gly Ser Leu Leu Leu Ile Gln Gln Gly Ser Lys Ser Ile Pro
355 360 365
CCA TTC CAG GAG CCC CTG GAA GTG GGG GAG AAC GAC AGT TTA AGC CAG 1152
Pro Phe Gln Glu Pro Leu Glu Val Gly Glu Asn Asp Ser Leu Ser Gln
370 375 380
TGT TTC ACC GGG ACT GAA AGC ACG GTG GAT TCT GAG GGC TGT GAC TTC 1200
Cys Phe Thr Gly Thr Glu Ser Thr Val Asp Ser Glu Gly Cys Asp Phe
385 390 395 400
ACT GAG CCT CCG AGC AGA ACT GAC TCT ATG CCC GTG TCC CCT GAA AAG 1248
Thr Glu Pro Pro Ser Arg Thr Asp Ser Met Pro Val Ser Pro Glu Lys
405 410 415
CAC CTG ACA AAA GAA ATA GAA GGT GAC AGT TGC CTC CCC TGG GTG GTC 1296
His Leu Thr Lys Glu Ile Glu Gly Asp Ser Cys Leu Pro Trp Val Val
420 425 430
AGC TCC AAC TCA ACA GAT GGC TAC ACA GGC AGT GGG AAC ACT CCT GGG 1344
Ser Ser Asn Ser Thr Asp Gly Tyr Thr Gly Ser Gly Asn Thr Pro Gly
435 440 445
GAG GAC CAT GAA CCC TTT CCA GGG TCC CTG AAA TGT GGA CCA TTG CCC 1392
Glu Asp His Glu Pro Phe Pro Gly Ser Leu Lys Cys Gly Pro Leu Pro
450 455 460
CAG TGT GCC TAC AGC ATG GGC TTT CCC AGT GAA GCA GCA GCC AGC ATG 1440
Gln Cys Ala Tyr Ser Met Gly Phe Pro Ser Glu Ala Ala Ala Ser Met
465 470 475 480
GCA GAG GCG GGA GTA CGG CCC CAG GAC AGG GCT GAT GAG AGG GGA GCC 1488
Ala Glu Ala Gly Val Arg Pro Gln Asp Arg Ala Asp Glu Arg Gly Ala
485 490 495
TCA GGG TCC GGG AGC TCC CCC AGT GAC CAG CCA CCT GCC TCT GGG AAC 1536
Ser Gly Ser Gly Ser Ser Pro Ser Asp Gln Pro Pro Ala Ser Gly Asn
500 505 510
GTG ACT GGA AAC AGT AAC TCC ACG TTC ATC TCT AGC GGG CAG GTG ATG 1584
Val Thr Gly Asn Ser Asn Ser Thr Phe Ile Ser Ser Gly Gln Val Met
515 520 525
AAC TTC AAG GGT GAC ATC ATC GTG GTG TAT GTC AGC CAG ACC TCG CAG 1632
Asn Phe Lys Gly Asp Ile Ile Val Val Tyr Val Ser Gln Thr Ser Gln
530 535 540
GAG GGC CCG GGT TCC GCA GAG CCC GAG TCG GAG CCC GTG GGC CGC CCT 1680
Glu Gly Pro Gly Ser Ala Glu Pro Glu Ser Glu Pro Val Gly Arg Pro
545 550 555 560
GTG CAG GAG GAG ACG CTG GCA CAC AGA GAC TCC TTT GCG GGC ACC GCG 1728
Val Gln Glu Glu Thr Leu Ala His Arg Asp Ser Phe Ala Gly Thr Ala
565 570 575
CCG CGC TTC CCC GAC GTC TGT GCC ACC GGG GCT GGG CTG CAG GAG CAG 1776
Pro Arg Phe Pro Asp Val Cys Ala Thr Gly Ala Gly Leu Gln Glu Gln
580 585 590
GGG GCA CCC CGG CAG AAG GAC GGG ACA TCG CGG CCG GTG CAG GAG CAG 1824
Gly Ala Pro Arg Gln Lys Asp Gly Thr Ser Arg Pro Val Gln Glu Gln
595 600 605
GGT GGG GCG CAG ACT TCA CTC CAT ACC CAG GGG TCC GGA CAA TGT GCA 1872
Gly Gly Ala Gln Thr Ser Leu His Thr Gln Gly Ser Gly Gln Cys Ala
610 615 620
GAA TGA 1878
Glu
625

(2) INFORMATION FOR SEQ ID NO:15:
(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:
(A) LENGTH: 625 amino acids
(B) TYPE: amino acid
(D) TOPOLOGY: linear
(ii) MOLECULE TYPE: protein
(xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO:15:
Met Ala Pro Arg Ala Arg Arg Arg Arg Gln Leu Pro Ala Pro Leu Leu
1 5 10 15
Ala Leu Cys Val Leu Leu Val Pro Leu Gln Val Thr Leu Gln Val Thr
20 25 30
Pro Pro Cys Thr Gln Glu Arg His Tyr Glu His Leu Gly Arg Cys Cys
35 40 45
Ser Arg Cys Glu Pro Gly Lys Tyr Leu Ser Ser Lys Cys Thr Pro Thr
50 55 60
Ser Asp Ser Val Cys Leu Pro Cys Gly Pro Asp Glu Tyr Leu Asp Thr
65 70 75 80
Trp Asn Glu Glu Asp Lys Cys Leu Leu His Lys Val Cys Asp Ala Gly
85 90 95
Lys Ala Leu Val Ala Val Asp Pro Gly Asn His Thr Ala Pro Arg Arg
100 105 110
Cys Ala Cys Thr Ala Gly Tyr His Trp Asn Ser Asp Cys Glu Cys Cys
115 120 125
Arg Arg Asn Thr Glu Cys Ala Pro Gly Phe Gly Ala Gln His Pro Leu
130 135 140
Gln Leu Asn Lys Asp Thr Val Cys Thr Pro Cys Leu Leu Gly Phe Phe
145 150 155 160
Ser Asp Val Phe Ser Ser Thr Asp Lys Cys Lys Pro Trp Thr Asn Cys
165 170 175
Thr Leu Leu Gly Lys Leu Glu Ala His Gln Gly Thr Thr Glu Ser Asp
180 185 190
Val Val Cys Ser Ser Ser Met Thr Leu Arg Arg Pro Pro Lys Glu Ala
195 200 205
Gln Ala Tyr Leu Pro Ser Leu Ile Val Leu Leu Leu Phe Ile Ser Val
210 215 220
Val Val Val Ala Ala Ile Ile Phe Gly Val Tyr Tyr Arg Lys Gly Gly
225 230 235 240
Lys Ala Leu Thr Ala Asn Leu Trp Asn Trp Val Asn Asp Ala Cys Ser
245 250 255
Ser Leu Ser Gly Asn Lys Glu Ser Ser Gly Asp Arg Cys Ala Gly Ser
260 265 270
His Ser Ala Thr Ser Ser Gln Gln Glu Val Cys Glu Gly Ile Leu Leu
275 280 285
Met Thr Arg Glu Glu Lys Met Val Pro Glu Asp Gly Ala Gly Val Cys
290 295 300
Gly Pro Val Cys Ala Ala Gly Gly Pro Trp Ala Glu Val Arg Asp Ser
305 310 315 320
Arg Thr Phe Thr Leu Val Ser Glu Val Glu Thr Gln Gly Asp Leu Ser
325 330 335
Arg Lys Ile Pro Thr Glu Asp Glu Tyr Thr Asp Arg Pro Ser Gln Pro
340 345 350
Ser Thr Gly Ser Leu Leu Leu Ile Gln Gln Gly Ser Lys Ser Ile Pro
355 360 365
Pro Phe Gln Glu Pro Leu Glu Val Gly Glu Asn Asp Ser Leu Ser Gln
370 375 380
Cys Phe Thr Gly Thr Glu Ser Thr Val Asp Ser Glu Gly Cys Asp Phe
385 390 395 400
Thr Glu Pro Pro Ser Arg Thr Asp Ser Met Pro Val Ser Pro Glu Lys
405 410 415
His Leu Thr Lys Glu Ile Glu Gly Asp Ser Cys Leu Pro Trp Val Val
420 425 430
Ser Ser Asn Ser Thr Asp Gly Tyr Thr Gly Ser Gly Asn Thr Pro Gly
435 440 445
Glu Asp His Glu Pro Phe Pro Gly Ser Leu Lys Cys Gly Pro Leu Pro
450 455 460
Gln Cys Ala Tyr Ser Met Gly Phe Pro Ser Glu Ala Ala Ala Ser Met
465 470 475 480
Ala Glu Ala Gly Val Arg Pro Gln Asp Arg Ala Asp Glu Arg Gly Ala
485 490 495
Ser Gly Ser Gly Ser Ser Pro Ser Asp Gln Pro Pro Ala Ser Gly Asn
500 505 510
Val Thr Gly Asn Ser Asn Ser Thr Phe Ile Ser Ser Gly Gln Val Met
515 520 525
Asn Phe Lys Gly Asp Ile Ile Val Val Tyr Val Ser Gln Thr Ser Gln
530 535 540
Glu Gly Pro Gly Ser Ala Glu Pro Glu Ser Glu Pro Val Gly Arg Pro
545 550 555 560
Val Gln Glu Glu Thr Leu Ala His Arg Asp Ser Phe Ala Gly Thr Ala
565 570 575
Pro Arg Phe Pro Asp Val Cys Ala Thr Gly Ala Gly Leu Gln Glu Gln
580 585 590
Gly Ala Pro Arg Gln Lys Asp Gly Thr Ser Arg Pro Val Gln Glu Gln
595 600 605
Gly Gly Ala Gln Thr Ser Leu His Thr Gln Gly Ser Gly Gln Cys Ala
610 615 620
Glu
625

(2) INFORMATION FOR SEQ ID NO:16:
(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:
(A) LENGTH: 20 amino acids
(B) TYPE: amino acid
(D) TOPOLOGY: linear
(ii) MOLECULE TYPE: protein
(xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO:16:
Met Glu Thr Asp Thr Leu Leu Leu Trp Val Leu Leu Leu Trp Val Pro
1 5 10 15
Gly Ser Thr Gly
20

(2) INFORMATION FOR SEQ ID NO:17:
(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:
(A) LENGTH: 5 amino acids
(B) TYPE: amino acid
(D) TOPOLOGY: linear
(ii) MOLECULE TYPE: protein
(xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO:17:
Asp Tyr Lys Asp Glu
5

(2) INFORMATION FOR SEQ ID NO:18:
(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:
(A) LENGTH: 6 amino acids
(B) TYPE: amino acid
(D) TOPOLOGY: linear
(ii) MOLECULE TYPE: protein
(xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO:18:
His His His His His His
5

(2) INFORMATION FOR SEQ ID NO:19:
(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:
(A) LENGTH: 33 amino acids
(B) TYPE: amino acid
(D) TOPOLOGY: linear
(ii) MOLECULE TYPE: protein
(xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO:19:
Arg Met Lys Gln Ile Glu Asp Lys Ile Glu Glu Ile Leu Ser Lys Ile
1 5 10 15
Tyr His Ile Glu Asn Glu Ile Ala Arg Ile Lys Lys Leu Ile Gly Glu
20 25 30
Arg

Claims (2)

  1. ＲＡＮＫＬポリペプチドで非ヒト動物個体を免疫化することを含む、抗体の調製方法であって、ＲＮＡＬポリペプチドが
    （ａ） ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１３に示されたアミノ酸配列の全部又は一部のアミノ酸配列を含むポリペプチドであって、ここにおいて、当該アミノ酸配列は、アミノ酸１とアミノ酸１６２の間のアミノ酸（アミノ酸１およびアミノ酸１６２を含む）からなる群から選択されるアミノ末端と、アミノ酸３１３とアミノ酸３１７の間のアミノ酸（アミノ酸３１３およびアミノ酸３１７を含む）からなる群から選択されるカルボキシ末端を有し、そして、当該ポリペプチドはＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：６からなるＲＡＮＫポリペプチドに結合可能である、上記ポリペプチド；および
    （ｂ） ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１３のアミノ酸１−３１７、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１３のアミノ酸１６２−３１７、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１３のアミノ酸１−３１３、またはＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１３のアミノ酸１６２−３１３のアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸の欠失、挿入又は置換を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドであって、そして、当該ポリペプチドはＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：６からなるＲＡＮＫポリペプチドに結合可能である、上記ポリペプチド
    からなる群から選択される、前記方法。
  2. ＲＡＮＫＬポリペプチドで非ヒト動物個体を免疫化することを含む、抗体の調製方法であって、ＲＮＡＬポリペプチドが
    （ａ） ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１３に示されたアミノ酸配列の全部又は一部のアミノ酸配列を含むポリペプチドであって、ここにおいて、当該アミノ酸配列はアミノ酸６９とアミノ酸１６２の間のアミノ酸（アミノ酸６９およびアミノ酸１６２を含む）からなる群から選択されるアミノ末端と、アミノ酸３１３とアミノ酸３１７の間のアミノ酸（アミノ酸３１３およびアミノ酸３１７を含む）からなる群から選択されるカルボキシ末端を有し、そして、当該ポリペプチドはＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：６からなるＲＡＮＫポリペプチドに結合可能である、上記ポリペプチド；および
    （ｂ） ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１３のアミノ酸６９−３１７、またはＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１３のアミノ酸６９−３１３のアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸の欠失、挿入又は置換を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドであって、そして、当該ポリペプチドはＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：６からなるＲＡＮＫポリペプチドに結合可能である、上記ポリペプチド
    からなる群から選択される、前記方法。
JP2012173637A 1996-12-23 2012-08-06 Ｔｎｆスーパーファミリーのメンバーであるｎｆ−ｋａｐｐａｂの受容体アクティベーターに対するリガンド Pending JP2013005802A (ja)

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US81350997A 1997-03-07 1997-03-07
US08/813,509 1997-03-07
US6467197P 1997-10-14 1997-10-14
US60/064,671 1997-10-14

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Citations (1)

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