JP2012139167A - Stabilized s-adenosylhomocysteine hydrolase preparation - Google Patents

Stabilized s-adenosylhomocysteine hydrolase preparation Download PDF

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Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To stably maintain an S-adenosylhomocysteine hydrolase to be used in an immunoassay measuring method of a homocysteine, in a freeze-dried condition or the like.SOLUTION: Coexisting of the S-adenosylhomocysteine hydrolase and a collagen peptide stably maintains the S-adenosylhomocysteine hydrolase in a solution condition, in a frozen condition, or in the freeze-dried condition, and prevents its deactivation.

Description

本発明は、安定化されたS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素の調製物に関するものである。本発明の調製物は、水溶液の状態、凍結した状態又は凍結乾燥した状態で提供されるもので、例えば血液中に含まれるホモシステインをS−アデノシルホモシステインに変換後、標識物質と結合された抗S−アデノシルホモシステイン抗体を用いて免疫的な測定を行う場合に必要となる、S−アデノシルホモシステイン加水分解酵素の失活が防止された、安定な調製物を提供するものである。   The present invention relates to a preparation of stabilized S-adenosylhomocysteine hydrolase. The preparation of the present invention is provided in the form of an aqueous solution, frozen state or lyophilized state. For example, homocysteine contained in blood is converted to S-adenosylhomocysteine and then bound to a labeling substance. The present invention provides a stable preparation in which the inactivation of S-adenosylhomocysteine hydrolase, which is necessary when immunoassay is performed using an anti-S-adenosylhomocysteine antibody, is prevented. is there.

ホモシステイン(homocysteine)は、含SH基の必須アミノ酸であるメチオニン代謝の中間代謝物である。ホモシステイン高値はホモシステイン尿症として知られる遺伝的代謝異常によって引き起こされる他、栄養障害(葉酸、ビタミンB6、ビタミンB12の欠乏)などに起因する。近年ホモシステインと血管障害とのかかわりが注目され、またホモシステイン尿症の動脈硬化との関係性が報告され、血栓、心血管疾患、脳梗塞の独立した危険因子であることが明らかになっている。(非特許文献1、2)。このような知見に基づいて、血液中に存在する総ホモシステイン量の測定が、尿又は血液をサンプルとして、実施されている。   Homocysteine is an intermediate metabolite of methionine metabolism that is an essential amino acid of the SH-containing group. The high homocysteine level is caused by a genetic metabolic disorder known as homocysteineuria, and also due to nutritional disorders (folic acid, vitamin B6, vitamin B12 deficiency) and the like. In recent years, attention has been paid to the relationship between homocysteine and vascular disorders, and the relationship between homocysteineuria and arteriosclerosis has been reported, and it has become clear that it is an independent risk factor for thrombosis, cardiovascular disease, and cerebral infarction. Yes. (Non-Patent Documents 1 and 2). Based on such findings, measurement of the total homocysteine amount present in blood is performed using urine or blood as a sample.

上記ホモシステインの測定方法として、液体クロマトグラフィーを用いる方法や免疫的な測定方法が知られている。中でも免疫的な測定方法は、迅速性にすぐれていることから、臨床的目的で実施されるホモシステイン量の測定において多用されている。   Known methods for measuring homocysteine include a method using liquid chromatography and an immunoassay method. Among them, the immunoassay method is frequently used in the measurement of the amount of homocysteine performed for clinical purposes because of its rapidity.

免疫的なホモシステイン測定としては、サンプル中のホモシステインを還元して遊離状態とし、更にS−アデノシルホモシステインに変換する前処理工程と、S−アデノシルホモシステインに対する抗体(抗S−アデノシルホモシステイン抗体)を利用していわゆる競合法によってS−アデノシルホモシステインを測定する方法が知られている。そしてこの前処理工程では、サンプル中に酸化型のジスルフィド化合物として存在するホモシステイン(非特許文献3)を還元剤で処理することにより実施され、またS−アデノシルホモシステインへの変換は、アデノシンの共存下でS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素によって実施される。   As immunoassay, homocysteine in a sample is reduced to a free state and further converted to S-adenosylhomocysteine, and an antibody against S-adenosylhomocysteine (anti-S-adenosine). A method for measuring S-adenosylhomocysteine by a so-called competition method using a sylhomocysteine antibody) is known. In this pretreatment step, homocysteine (Non-patent Document 3) present as an oxidized disulfide compound in the sample is treated with a reducing agent, and the conversion to S-adenosylhomocysteine is performed by adenosine. In the presence of S-adenosylhomocysteine hydrolase.

McCully, K.S., Carvalho, A.V.A. : Homocysteine thiolactone, n−homocysteine thiolactonyl retinamide, and platelet aggregation. Res. Commum. Chem. Pathol. Pharmacol. 56:349−360, 1987.McCully, K.M. S. Carvalho, A .; V. A. : Homocysteine thiolactone, n-homocysteine thiolactonyl retinamide, and platelet aggregation. Res. Commum. Chem. Pathol. Pharmacol. 56: 349-360, 1987. 佐々木 淳ら. :動脈硬化性疾患と血中ホモシステイン値の関係. Progress in Medicine. 21, 6:1543−1549, 2001.Sasaki, et al. : Relationship between arteriosclerotic disease and blood homocysteine level. Progress in Medicine. 21, 6: 1543-1549, 2001. D. W. Jacobsen Homocysteine and vitamins in cardiovascular disease. Clin. Chem., August 1, 1998; 44(8): 1833 − 1843D. W. Jacobsen Homocystein and vitamins in cardiovascular disease. Clin. Chem. , August 1, 1998; 44 (8): 1833-1843.

前記したように、総ホモシステイン量を測定するための前処理工程では、S−アデノシルホモシステイン加水分解酵素が使用される。この酵素は、溶液状態での安定性が悪く、還元剤、EDTA、グリセロール溶液及び/又はウシ血清アルブミン(BSA)等、一般に蛋白質を安定化させる試薬を共存させたとしても、なおも低温にて保存する必要がある。そのため、ホモシステインを測定するために室温下においただけで劣化が進行してしまう等、取扱いが難しいという課題がある。   As described above, S-adenosylhomocysteine hydrolase is used in the pretreatment step for measuring the total amount of homocysteine. This enzyme has poor stability in a solution state, and even when a reagent for stabilizing a protein such as a reducing agent, EDTA, glycerol solution and / or bovine serum albumin (BSA) is generally present at a low temperature. Need to save. Therefore, there is a problem that handling is difficult, for example, deterioration proceeds only at room temperature in order to measure homocysteine.

そこで本発明の目的は、室温下でも安定なS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素調製物を提供することにある。   Accordingly, an object of the present invention is to provide a preparation of S-adenosylhomocysteine hydrolase that is stable even at room temperature.

本発明者らは、前記目的を達成すべく鋭意検討を行い、本発明を完成した。前記目的を達成した本発明は、S−アデノシルホモシステイン加水分解酵素及びコラーゲンペプチドを含む、安定化されたS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素調製物である。以下、本発明を詳細に説明する。   The present inventors have intensively studied to achieve the above object, and completed the present invention. The present invention that has achieved the above object is a stabilized S-adenosylhomocysteine hydrolase preparation comprising S-adenosylhomocysteine hydrolase and a collagen peptide. Hereinafter, the present invention will be described in detail.

本発明は、S−アデノシルホモシステイン加水分解酵素の調製物であるが、本発明の調製物にはS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素を含む溶液、当該溶液の凍結物及び当該凍結物を乾燥させた凍結乾燥物が含まれる。中でも、凍結乾燥物に対しては、本発明の効果は顕著である。調製物に含まれるS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素は、ヒト胎盤から採取されるもの、またはS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素をコードする遺伝子(cDNA、S−アデノシルホモシステイン加水分解酵素をコードする遺伝子の塩基配列は公知である)を他の微生物に組み込むことによって遺伝子工学的に製造されたもの、又は、天然に存在するS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素のアミノ酸一次構造に変異が導入された変異型のS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素類縁酵素である。調製物中に含有されるS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素の量(濃度)に特に制限はない。本発明の調製物は、例えばガラス、プラスチック等、種々の材質の容器であって、バイアル状、プレート状、カップ状等、種々の形状の容器に入れることができる。   The present invention is a preparation of S-adenosylhomocysteine hydrolase. The preparation of the present invention includes a solution containing S-adenosylhomocysteine hydrolase, a frozen product of the solution, and the frozen product. A dried lyophilized product is included. Among them, the effect of the present invention is remarkable for freeze-dried products. The S-adenosylhomocysteine hydrolase contained in the preparation is collected from human placenta or a gene encoding S-adenosylhomocysteine hydrolase (cDNA, S-adenosylhomocysteine hydrolase). The nucleotide sequence of the gene coding for is known to have been genetically engineered by incorporating it into other microorganisms, or the amino acid primary structure of a naturally occurring S-adenosylhomocysteine hydrolase Is a mutant S-adenosylhomocysteine hydrolase-related enzyme into which is introduced. There is no particular limitation on the amount (concentration) of S-adenosylhomocysteine hydrolase contained in the preparation. The preparation of the present invention is a container made of various materials such as glass and plastic, and can be placed in containers of various shapes such as vials, plates and cups.

本発明は、コラーゲンペプチドをS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素と共存させることに特徴を有するものである。コラーゲンペプチドはコラーゲンを加水分解して得られるものであれば、その由来に特に制限はなく、例えばブタの骨、ブタの皮、魚の鱗、ウシの骨、ウシの皮等に由来するコラーゲンを加水分解したコラーゲンペプチドを例示することができる。中でも、ブタの皮由来のものは、原料が豊富であり、その入手が容易であるという観点から特に好ましい。なお加水分解の程度にも特に制限はなく、常法に従い、例えばコラーゲンをパパイン、ペプシン又はトリプシンといったタンパク質加水分解酵素の共存下、例えば50℃で180分間加熱等すれば良い。   The present invention is characterized in that a collagen peptide coexists with S-adenosylhomocysteine hydrolase. There is no particular limitation on the origin of the collagen peptide as long as it is obtained by hydrolyzing collagen. For example, collagen derived from pig bone, pig skin, fish scale, cow bone, cow skin, etc. is hydrolyzed. Degraded collagen peptides can be exemplified. Among them, those derived from pig skin are particularly preferable from the viewpoint that they are abundant in raw materials and are easily available. The degree of hydrolysis is not particularly limited. For example, collagen may be heated, for example, at 50 ° C. for 180 minutes in the presence of a protein hydrolase such as papain, pepsin or trypsin.

コラーゲンペプチドの使用量、即ちS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素と共存させる量(濃度)は、溶液状態の調製物において1から10重量%、より好ましくは1から5重量%とすることが例示できる。なお、本発明の調製物を製造するにあたっては、コラーゲンペプチドを含む溶液にS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素を添加しても良いし、逆にS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素を含む溶液にコラーゲンペプチドを添加しても良い。また凍結物や凍結乾燥物を製造するためには、このようにして製造した溶液を単に凍結し、またその後に乾燥すれば良い。   The amount of collagen peptide used, that is, the amount (concentration) to coexist with S-adenosylhomocysteine hydrolase is 1 to 10% by weight, more preferably 1 to 5% by weight in the preparation in the solution state. it can. In producing the preparation of the present invention, S-adenosylhomocysteine hydrolase may be added to a solution containing collagen peptide, or conversely, a solution containing S-adenosylhomocysteine hydrolase. Collagen peptide may be added to. In order to produce a frozen product or a lyophilized product, the solution thus produced may be simply frozen and then dried.

本発明の調製物は、S−アデノシルホモシステイン加水分解酵素及びコラーゲンペプチドを含むものであるが、更にトレハロースを共存させることによりコラーゲンペプチドによるS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素の安定化効果を強化することができる。トレハロースとしては特に制限はなく、例えば市販のトレハロースを使用することが例示できる。トレハロースを更に共存させる場合のその使用量(濃度)は、溶液状態の調製物において1から10重量%、好ましくは2から5重量%とすることが例示できる。   The preparation of the present invention contains S-adenosylhomocysteine hydrolase and collagen peptide, but further enhances the stabilizing effect of S-adenosylhomocysteine hydrolase by collagen peptide by coexisting with trehalose. be able to. There is no restriction | limiting in particular as a trehalose, For example, using a commercially available trehalose can be illustrated. When trehalose is further coexisted, the amount (concentration) to be used is 1 to 10% by weight, preferably 2 to 5% by weight, in the preparation in the solution state.

上記の通り、本発明の調製物は、S−アデノシルホモシステイン加水分解酵素及びコラーゲンペプチドを含み、また好ましくは更にトレハロースを含むが、これらの調製物成分が適当な緩衝剤を含む緩衝液に溶解された溶液状態であるか、又は適用な緩衝液に溶解された後凍結、凍結乾燥されていることが好ましい。緩衝液としては、例えばトリス緩衝液やリン酸緩衝液の他、MES、Bis−Tris、ADA、PIPES、ACES、BES、MOPS、TES、HEPPES、Tricine、Bicine、CHES又はCAPS等のGOOD緩衝液等が例示できるが、かかる緩衝液によって溶液状態でそのpHをS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素が安定なpH5.0からpH9.0、好ましくはpH7.0からpH7.5に維持することが好ましい。   As described above, the preparation of the present invention contains S-adenosylhomocysteine hydrolase and collagen peptide, and preferably further contains trehalose, but these preparation components are added to a buffer containing an appropriate buffer. It is preferably in a dissolved solution state, or after being dissolved in an appropriate buffer solution, it is then frozen and lyophilized. Examples of the buffer solution include a GOOD buffer solution such as MES, Bis-Tris, ADA, PIPES, ACES, BES, MOPS, TES, HEPPES, Tricine, Bicine, CHES, and CAPS, as well as Tris buffer and phosphate buffer. However, it is preferable to maintain the pH at a pH of 5.0 to 9.0, preferably 7.0 to 7.5, in which S-adenosylhomocysteine hydrolase is stable, in a solution state with such a buffer. .

本発明の調製物は、更に、S−アデノシルホモシステイン加水分解酵素の安定性に影響を与えない範囲で緩衝剤以外の成分を含有することができる。かかる成分として、例えば微生物の繁殖を防止する防腐剤、脂溶性成分の分散・可溶化のための界面活性化剤、酸化を防止するための酸化防止剤、調製物の形状を維持するための結合剤、S−アデノシルホモシステイン加水分解酵素の保護のための膨潤剤、調製物を他の試薬等から識別するための着色剤、S−アデノシルホモシステイン加水分解酵素の構造を維持するための懸濁化剤、調製物中の成分の分散・可溶化のための乳化剤、調製物溶液を均一化するための溶解補助剤、S−アデノシルホモシステイン加水分解酵素の構造を維持するための等張化剤等を例示できる。防腐剤としては、例えば、アジ化ナトリウム、キレート剤、抗生物質、防菌剤又は防黴剤等が例示できる。界面活性化剤としては、非イオン性界面活性剤、陽イオン性界面活性剤、陰イオン性界面活性剤又は両イオン性界面活性化剤等が例示できる。抗酸化剤としては、例えばアスコルビン酸やビタミンE等が例示できる。結合剤としては、例えばカルボキシメチルセルロース等が例示できる。湿潤剤としては、例えばセルロースやポロエチレングリコール等が例示できる。着色剤としては、例えば合成食用色素等が例示できる。懸濁化剤としては、例えばポリビニルピロリドン等が例示できる。乳化剤としては、例えばアルキルスルホン酸等が例示できる。溶解補助剤としては、例えばグリセリン等が例示できる。等張化剤としては、例えばD−ソルビトールや塩化ナトリウム等が例示できる。これらの成分は、その使用目的に合わせて、必要に応じて随時調製物中に含ませることが可能であるが、その量(濃度)については、種々濃度を共存させる予備的な試験を実施し、所望の効果を達成し得る濃度を決定すれば良い。   The preparation of the present invention can further contain components other than the buffer as long as the stability of the S-adenosylhomocysteine hydrolase is not affected. Such components include, for example, preservatives that prevent the growth of microorganisms, surfactants for dispersing and solubilizing fat-soluble components, antioxidants for preventing oxidation, and bonds for maintaining the shape of the preparation. Agent, swelling agent for protecting S-adenosylhomocysteine hydrolase, colorant for distinguishing the preparation from other reagents, etc., for maintaining the structure of S-adenosylhomocysteine hydrolase Suspending agents, emulsifiers for dispersing and solubilizing the components in the preparation, solubilizing agents for homogenizing the preparation solution, maintaining the structure of S-adenosylhomocysteine hydrolase, etc. A tonicity agent etc. can be illustrated. Examples of antiseptics include sodium azide, chelating agents, antibiotics, antibacterial agents, and antifungal agents. Examples of the surfactant include nonionic surfactants, cationic surfactants, anionic surfactants, and amphoteric surfactants. Examples of the antioxidant include ascorbic acid and vitamin E. Examples of the binder include carboxymethyl cellulose. Examples of the wetting agent include cellulose and polyethylene glycol. Examples of the colorant include synthetic food colorants. Examples of the suspending agent include polyvinyl pyrrolidone. Examples of the emulsifier include alkyl sulfonic acid. Examples of solubilizers include glycerin. Examples of the isotonic agent include D-sorbitol and sodium chloride. These components can be included in the preparation at any time according to the purpose of use, but the amount (concentration) is subjected to a preliminary test in which various concentrations coexist. What is necessary is just to determine the density | concentration which can achieve a desired effect.

本発明の調製物は、例えば免疫測定を実施する際の前処理工程にて使用されるものである。この免疫測定における前処理工程は、サンプル中のホモシステインの還元と、還元したホモシステインをアデノシンの共存下でS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素と接触させてS−アデノシルホモシステインに変換する工程である。この工程に使用する場合、本発明の調製物と還元剤とは前処理工程を実施する直前まで混合せず、分離した状態にしておくことが、S−アデノシルホモシステイン加水分解酵素を安定的に保持する上で好ましい。具体的には、まずジチオステイトール(DTT)、トリス(カルボキシエチル)ホスフィン(TCEP)、メルカプトエタノール等から選ばれる一種以上の還元剤をサンプルに添加してホモシステインを還元し、次に本発明の調製物及びアデノシンをサンプルに添加するか、または前記還元剤と本発明の調製物及びアデノシンを同時にサンプルに添加すれば良い。添加するアデノシンの量は逆反応が生じない範囲で適宜決定すれば良いが、通常0.04から0.2mol/Lの範囲とすれば十分である。   The preparation of the present invention is used, for example, in a pretreatment step when performing immunoassay. In the pretreatment step in this immunoassay, the homocysteine in the sample is reduced, and the reduced homocysteine is contacted with S-adenosylhomocysteine hydrolase in the presence of adenosine to convert to S-adenosylhomocysteine. It is a process. When used in this step, the preparation of the present invention and the reducing agent are not mixed until immediately before the pretreatment step, but are kept separated so that S-adenosylhomocysteine hydrolase is stable. It is preferable to hold it. Specifically, first, one or more reducing agents selected from dithiostatol (DTT), tris (carboxyethyl) phosphine (TCEP), mercaptoethanol and the like are added to the sample to reduce homocysteine, and then the present invention. The above preparation and adenosine may be added to the sample, or the reducing agent and the preparation of the present invention and adenosine may be added to the sample simultaneously. The amount of adenosine to be added may be appropriately determined within the range in which the reverse reaction does not occur, but it is usually sufficient to be within the range of 0.04 to 0.2 mol / L.

本発明のS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素調製物は、溶液状態、凍結状態又は凍結乾燥状態のいずれの状態においてもS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素を活性を安定的に保持したまま保存することが可能である。しかも本発明の調製物は、S−アデノシルホモシステイン加水分解酵素を含む溶液にコラーゲンペプチドを添加するという極めて簡単な操作によって製造することが可能であるため、試薬の製造に要する時間が短く、しかも製造に多大なコストを要することもない。
本発明の調製物を、例えばサンプル中のホモシステインをS−アデノシルホモシステインへ転換することが要求される免疫測定用の試薬に使用する場合には、長きに渡り活性を保持したまま保存可能な本発明の効果により、より長期間に渡って品質劣化のない測定試薬を提供することが可能となる。また更に、活性を安定的に保持し得る本発明の調製物によれば、免疫測定における測定間の再現性を向上することも可能である。
The S-adenosylhomocysteine hydrolase preparation of the present invention is preserved while maintaining the activity of S-adenosylhomocysteine hydrolase stably in any state of solution, frozen state or lyophilized state. Is possible. Moreover, since the preparation of the present invention can be produced by a very simple operation of adding a collagen peptide to a solution containing S-adenosylhomocysteine hydrolase, the time required for producing the reagent is short, In addition, it does not require a large cost for manufacturing.
When the preparation of the present invention is used, for example, as an immunoassay reagent that requires conversion of homocysteine in a sample to S-adenosylhomocysteine, it can be stored for a long time while retaining its activity. With this advantageous effect of the present invention, it is possible to provide a measurement reagent that does not deteriorate in quality over a longer period of time. Furthermore, according to the preparation of the present invention that can stably maintain the activity, it is possible to improve reproducibility between measurements in immunoassays.

以下、実施例により本発明の実施の形態を説明するが、本発明はこれら実施例に限定されるものでない。 EXAMPLES Hereinafter, although an Example demonstrates embodiment of this invention, this invention is not limited to these Examples.

実施例1 S−アデノシルホモシステイン加水分解酵素調製物の製造1
ガラス製バイアル中で、BSA及び40キロユニット/LのS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素を含む100mmol/Lのトリス緩衝液(pH8.0)に対し、5.0重量%となるようにブタ皮由来のコラーゲンペプチドを添加し、更に5.0重量%となるようにトレハロースを添加して本発明の調製物を製造した。また比較のため、コラーゲンペプチドを添加しないもの、及び/又はトレハロースを添加しないものも調製し、これらを凍結後、更に乾燥し、凍結乾燥後直後の酵素活性、凍結乾燥後、40℃で7日間保存した後の調製物の酵素活性を測定し、比較した。
Example 1 Production of S-adenosylhomocysteine hydrolase preparation 1
In a glass vial, swine was adjusted to 5.0% by weight with respect to 100 mmol / L Tris buffer (pH 8.0) containing BSA and 40 kilounit / L S-adenosylhomocysteine hydrolase. A skin-derived collagen peptide was added, and trehalose was further added to a concentration of 5.0% by weight to produce the preparation of the present invention. In addition, for comparison, one without collagen peptide and / or one without trehalose is prepared, and after freezing, further dried, enzyme activity immediately after freeze-drying, after freeze-drying, at 40 ° C. for 7 days The enzyme activities of the preparations after storage were measured and compared.

酵素活性の測定は、市販の免疫測定装置(商品名 AIA−2000、東ソー(株)製)を用い、血液試料を前処理工程に供した後、1ステップ競合法により行った。   The enzyme activity was measured using a commercially available immunoassay device (trade name: AIA-2000, manufactured by Tosoh Corporation), and after subjecting the blood sample to a pretreatment step, was performed by a one-step competition method.

免疫測定用の試薬としては、(ア)マウスを用いて調製した抗S−アデノシル−L−ホモシステイン抗体と標識物質であるアルカリ性ホスファターゼ(ALP)の結合物、(イ)人為的に調製したS−アデノシル−L−ホモシステインとBSAとの結合物であって、そのBSAフルオレセインを更に結合した結合物、及び、(ウ)マウスを用いて調製した抗フルオレセイン抗体を固定化した、直径約2mmの球状の固相を含む試薬を使用した。なおこの試薬は、前記(ア)と(ウ)をプラスチック製のカップに分注して凍結し、更に(イ)を分注して凍結した後、(ア)から(ウ)を凍結乾燥して製造した試薬である。   As a reagent for immunoassay, (a) a conjugate of an anti-S-adenosyl-L-homocysteine antibody prepared using a mouse and alkaline phosphatase (ALP) as a labeling substance, and (a) an artificially prepared S -A conjugate of adenosyl-L-homocysteine and BSA, which further binds the BSA fluorescein, and (c) an anti-fluorescein antibody prepared using a mouse, having a diameter of about 2 mm A reagent containing a spherical solid phase was used. This reagent is prepared by dispensing (a) and (c) in a plastic cup and freezing, further dispensing (a) and freezing, and then lyophilizing (a) to (c). It is a reagent manufactured in this way.

前処理には、還元剤とアデノシンを含む前処理試薬(1)として、4.0mmol/LのTCEP及び8.0 mmol/Lのアデノシンを含む10 mmol/LのBis−Tris緩衝液を使用し、これを前記のようにして調製したS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素を含む調製物と混合後、血液由来サンプルと混合し、37℃で10分間攪拌した。その後、装置のB/F分離機構によりB/F分離操作を実施し、固相成分としてカップ中に残った成分に含まれる標識物質(ALP)の量を測定した。ALPの測定は、その基質である4−メチルウンベリフリルリン酸(4MUP)を加え、ALPによって4MUPが分解されて生成する4−メチルウンベリフェロン(4MU)の増加速度(nmol/秒)を4MUからの蛍光強度を測定して算出した。   In the pretreatment, as a pretreatment reagent (1) containing a reducing agent and adenosine, 10 mmol / L Bis-Tris buffer containing 4.0 mmol / L TCEP and 8.0 mmol / L adenosine is used. This was mixed with a preparation containing S-adenosylhomocysteine hydrolase prepared as described above, then mixed with a blood-derived sample, and stirred at 37 ° C. for 10 minutes. Then, B / F separation operation was implemented by the B / F separation mechanism of the apparatus, and the amount of the labeling substance (ALP) contained in the component remaining in the cup as a solid phase component was measured. ALP was measured by adding 4-methylumbelliferyl phosphate (4MUP), its substrate, and increasing rate (nmol / sec) of 4-methylumbelliferone (4MU) produced by decomposition of 4MUP by ALP. The fluorescence intensity from 4MU was measured and calculated.

結果を表1に示す。表1中、HPLC測定値とあるのは、HPLC法によって決定された、各調製物中のS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素の量(μmol/L)を示し、各測定値は、測定結果から算出されたS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素の量(μmol/L)を示す。また酵素活性(%)は、HPLC法によって測定されたS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素の量と測定結果から算出されたS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素の量の割合の平均値を示すものである。表1から、コラーゲンペプチド及びトレハロースを共存させた場合に、調製物中のS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素を安定的に保持できることが分かる。   The results are shown in Table 1. In Table 1, the HPLC measurement value indicates the amount (μmol / L) of S-adenosylhomocysteine hydrolase in each preparation determined by the HPLC method, and each measurement value is a measurement result. The amount of S-adenosylhomocysteine hydrolase calculated from (μmol / L) is shown. Moreover, enzyme activity (%) shows the average value of the ratio of the quantity of S-adenosyl homocysteine hydrolase measured by HPLC method, and the quantity of S-adenosyl homocysteine hydrolase computed from the measurement result. Is. From Table 1, it can be seen that the S-adenosylhomocysteine hydrolase in the preparation can be stably retained when the collagen peptide and trehalose coexist.

Figure 2012139167
Figure 2012139167

実施例2 S−アデノシルホモシステイン加水分解酵素調製物の製造2
ガラス製バイアル中で、BSA及び40キロユニット/LのS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素を含む100mmol/Lのトリス緩衝液(pH8.0)に対し、5.0重量%となるようにブタ皮由来のコラーゲンペプチドを添加し、更に5.0重量%となるようにトレハロースを添加して本発明の調製物を製造した。また比較のため、トレハロースに代えてスクロースを5.0重量%となるように添加した比較調製物調製し、これらを凍結後、更に乾燥し、凍結乾燥後直後の酵素活性、凍結乾燥後、40℃で7日間保存した後の調製物の酵素活性を測定し、比較した。
Example 2 Production of S-adenosylhomocysteine hydrolase preparation 2
In a glass vial, swine was adjusted to 5.0% by weight with respect to 100 mmol / L Tris buffer (pH 8.0) containing BSA and 40 kilounit / L S-adenosylhomocysteine hydrolase. A skin-derived collagen peptide was added, and trehalose was further added to a concentration of 5.0% by weight to produce the preparation of the present invention. For comparison, a comparative preparation was prepared by adding sucrose to 5.0% by weight in place of trehalose. After freezing, these were further dried, and enzyme activity immediately after lyophilization, after lyophilization, 40 The enzyme activity of the preparations after storage at 7 ° C. for 7 days was measured and compared.

酵素活性の測定は、市販の免疫測定装置(商品名 AIA−2000、東ソー(株)製)を用い、血液試料を前処理工程に供した後、1ステップ競合法により行った。   The enzyme activity was measured using a commercially available immunoassay device (trade name: AIA-2000, manufactured by Tosoh Corporation), and after subjecting the blood sample to a pretreatment step, was performed by a one-step competition method.

免疫測定用の試薬としては、(ア)マウスを用いて調製した抗S−アデノシル−L−ホモシステイン抗体と標識物質であるアルカリ性ホスファターゼ(ALP)の結合物、(イ)人為的に調製したS−アデノシル−L−ホモシステインとBSAとの結合物であって、そのBSAフルオレセインを更に結合した結合物、及び、(ウ)マウスを用いて調製した抗フルオレセイン抗体を固定化した、直径約2mmの球状の固相を含む試薬を使用した。なおこの試薬は、前記(ア)と(ウ)をプラスチック製のカップに分注して凍結し、更に(イ)を分注して凍結した後、(ア)から(ウ)を凍結乾燥して製造した試薬である。   As a reagent for immunoassay, (a) a conjugate of an anti-S-adenosyl-L-homocysteine antibody prepared using a mouse and alkaline phosphatase (ALP) as a labeling substance, and (a) an artificially prepared S -A conjugate of adenosyl-L-homocysteine and BSA, which further binds the BSA fluorescein, and (c) an anti-fluorescein antibody prepared using a mouse, having a diameter of about 2 mm A reagent containing a spherical solid phase was used. This reagent is prepared by dispensing (a) and (c) in a plastic cup and freezing, further dispensing (a) and freezing, and then lyophilizing (a) to (c). It is a reagent manufactured in this way.

前処理には、還元剤とアデノシンを含む前処理試薬(1)として、4.0mmol/LのTCEP及び8.0 mmol/Lのアデノシンを含む10 mmol/LのBis−Tris緩衝液を使用し、これを前記のようにして調製したS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素調製物と混合後、血液由来サンプルと混合し、37℃で10分間攪拌した。その後、装置のB/F分離機構によりB/F分離操作を実施し、固相成分としてカップ中に残った成分に含まれる標識物質(ALP)の量を測定した。ALPの測定は、その基質である4−メチルウンベリフリルリン酸(4MUP)を加え、ALPによって4MUPが分解されて生成する4−メチルウンベリフェロン(4MU)の増加速度(nmol/秒)を4MUからの蛍光強度を測定して算出した。   In the pretreatment, as a pretreatment reagent (1) containing a reducing agent and adenosine, 10 mmol / L Bis-Tris buffer containing 4.0 mmol / L TCEP and 8.0 mmol / L adenosine is used. This was mixed with the S-adenosyl homocysteine hydrolase preparation prepared as described above, then mixed with the blood-derived sample, and stirred at 37 ° C. for 10 minutes. Then, B / F separation operation was implemented by the B / F separation mechanism of the apparatus, and the amount of the labeling substance (ALP) contained in the component remaining in the cup as a solid phase component was measured. ALP was measured by adding 4-methylumbelliferyl phosphate (4MUP), its substrate, and increasing rate (nmol / sec) of 4-methylumbelliferone (4MU) produced by decomposition of 4MUP by ALP. The fluorescence intensity from 4MU was measured and calculated.

結果を表2に示す。表2中、各測定値は、測定結果から算出されたS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素の活性を示し、調製物を調製した直後の活性を100%として、凍結乾燥直後及び凍結乾燥後40℃で7日間保存した後の活性を示す。表2から、S−アデノシルホモシステイン加水分解酵素を安定的に保存するためには、コラーゲンペプチドとトレハロースの組合せが最も効果的であることが分かる。   The results are shown in Table 2. In Table 2, each measured value indicates the activity of the S-adenosylhomocysteine hydrolase calculated from the measurement results, and the activity immediately after preparing the preparation is defined as 100%. Activity after storage at 7 ° C. for 7 days is shown. From Table 2, it can be seen that the combination of collagen peptide and trehalose is the most effective for stably storing S-adenosylhomocysteine hydrolase.

Figure 2012139167
Figure 2012139167

実施例 3 サンプル中のホモシステインの免疫測定
市販の免疫測定装置(商品名 AIA−2000、東ソー(株)製)を用い、血液試料を前処理工程に供した後、1ステップ競合法によりS−アデノシルホモシステイン(ホモシステイン)の測定を行った。
Example 3 Immunoassay of homocysteine in a sample Using a commercially available immunoassay device (trade name AIA-2000, manufactured by Tosoh Corporation), a blood sample was subjected to a pretreatment step, and then subjected to S- Adenosyl homocysteine (homocysteine) was measured.

還元剤とアデノシンを含む前処理試薬(1)として、4.0mmol/LのTCEP及び8.0mmol/Lのアデノシンを含む10 mmol/LのBis−Tris緩衝液を調製した。S−アデノシルホモシステイン加水分解酵素を含む前処理試薬(2)として、実施例2で製造した調製物のうち、ブタ皮由来のコラーゲンペプチド及びトレハロースを含む調製物を使用した。   A 10 mmol / L Bis-Tris buffer solution containing 4.0 mmol / L TCEP and 8.0 mmol / L adenosine was prepared as a pretreatment reagent (1) containing a reducing agent and adenosine. As a pretreatment reagent (2) containing S-adenosylhomocysteine hydrolase, a preparation containing porcine skin-derived collagen peptide and trehalose among the preparations produced in Example 2 was used.

免疫測定用の試薬としては、(ア)マウスを用いて調製した抗S−アデノシル−L−ホモシステイン抗体と標識物質であるアルカリ性ホスファターゼ(ALP)の結合物、(イ)人為的に調製したS−アデノシル−L−ホモシステインとBSAとの結合物であって、そのBSAフルオレセインを更に結合した結合物、及び、(ウ)マウスを用いて調製した抗フルオレセイン抗体を固定化した、直径約2mmの球状の固相を含む試薬を使用した。なおこの試薬は、前記(ア)と(ウ)をプラスチック製のカップに分注して凍結し、更に(イ)を分注して凍結した後、(ア)から(ウ)を凍結乾燥して製造した試薬である。   As a reagent for immunoassay, (a) a conjugate of an anti-S-adenosyl-L-homocysteine antibody prepared using a mouse and alkaline phosphatase (ALP) as a labeling substance, and (a) an artificially prepared S -A conjugate of adenosyl-L-homocysteine and BSA, which further binds the BSA fluorescein, and (c) an anti-fluorescein antibody prepared using a mouse, having a diameter of about 2 mm A reagent containing a spherical solid phase was used. This reagent is prepared by dispensing (a) and (c) in a plastic cup and freezing, further dispensing (a) and freezing, and then lyophilizing (a) to (c). It is a reagent manufactured in this way.

測定は、前記した装置により実施した。前処理試薬1と前処理試薬2の混合液をまず血液由来サンプルと混合し、37℃で10分間攪拌した。その後、装置のB/F分離機構によりB/F分離操作を実施し、固相成分としてカップ中に残った成分に含まれる標識物質(ALP)の量を測定した。ALPの測定は、その基質である4−メチルウンベリフリルリン酸(4MUP)を加え、ALPによって4MUPが分解されて生成する4−メチルウンベリフェロン(4MU)の増加速度(nmol/秒)を4MUからの蛍光強度を測定して算出した。   The measurement was performed with the above-described apparatus. The mixed solution of the pretreatment reagent 1 and the pretreatment reagent 2 was first mixed with the blood-derived sample and stirred at 37 ° C. for 10 minutes. Then, B / F separation operation was implemented by the B / F separation mechanism of the apparatus, and the amount of the labeling substance (ALP) contained in the component remaining in the cup as a solid phase component was measured. ALP was measured by adding 4-methylumbelliferyl phosphate (4MUP), its substrate, and increasing rate (nmol / sec) of 4-methylumbelliferone (4MU) produced by decomposition of 4MUP by ALP. The fluorescence intensity from 4MU was measured and calculated.

その結果、ブタ皮コラーゲンペプチド及びトレハロースを添加して凍結乾燥を行った本発明の調製物は、S−アデノシルホモシステイン加水分解酵素の失活が抑制されており、前記のように前処理試薬として使用することによって良好な免疫測定の結果を得ることができた。   As a result, the preparation of the present invention in which pig skin collagen peptide and trehalose were added and lyophilized had suppressed inactivation of S-adenosylhomocysteine hydrolase, and the pretreatment reagent as described above As a result, it was possible to obtain good immunoassay results.

Claims (3)

S−アデノシルホモシステイン加水分解酵素及びコラーゲンペプチドを含む、安定化されたS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素調製物。   A stabilized S-adenosylhomocysteine hydrolase preparation comprising S-adenosylhomocysteine hydrolase and a collagen peptide. 更にトレハロースを含むことを特徴とする、請求項1の安定化させたS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素調製物。   The stabilized S-adenosylhomocysteine hydrolase preparation of claim 1, further comprising trehalose. 凍結乾燥されていることを特徴とする、請求項1又は請求項2の安定化させたS−アデノシルホモシステイン加水分解酵素調製物。   3. Stabilized S-adenosylhomocysteine hydrolase preparation according to claim 1 or 2, characterized in that it is freeze-dried.
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2020092705A (en) * 2014-04-24 2020-06-18 ジーンウィーブ バイオサイエンシズ,インコーポレイティド Reagent cartridge and methods for detection of cells

Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH08506478A (en) * 1992-01-22 1996-07-16 アクシス バイオケミカルズ エイエス Homocysteine assay
JPH09176196A (en) * 1995-12-27 1997-07-08 Miyagi Kagaku Kogyo Kk Non-antigenic stabilizer and physiologically active substance
JPH11507918A (en) * 1995-06-10 1999-07-13 ペンタファルム・アーゲー Collagen peptide fraction and its use
JP2005523016A (en) * 2002-04-19 2005-08-04 アマシャム・バイオサイエンス・コーポレイション Thermostable DNA polymerase and method for producing the same
JP2007223981A (en) * 2006-02-24 2007-09-06 Nara Institute Of Science & Technology Stabilizing agent for peptides
JP2009153469A (en) * 2007-12-27 2009-07-16 Chisso Corp Protein stabilizer
JP2010143860A (en) * 2008-12-19 2010-07-01 Chisso Corp Protein stabilizer

Patent Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH08506478A (en) * 1992-01-22 1996-07-16 アクシス バイオケミカルズ エイエス Homocysteine assay
JPH11507918A (en) * 1995-06-10 1999-07-13 ペンタファルム・アーゲー Collagen peptide fraction and its use
JPH09176196A (en) * 1995-12-27 1997-07-08 Miyagi Kagaku Kogyo Kk Non-antigenic stabilizer and physiologically active substance
JP2005523016A (en) * 2002-04-19 2005-08-04 アマシャム・バイオサイエンス・コーポレイション Thermostable DNA polymerase and method for producing the same
JP2007223981A (en) * 2006-02-24 2007-09-06 Nara Institute Of Science & Technology Stabilizing agent for peptides
JP2009153469A (en) * 2007-12-27 2009-07-16 Chisso Corp Protein stabilizer
JP2010143860A (en) * 2008-12-19 2010-07-01 Chisso Corp Protein stabilizer

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2020092705A (en) * 2014-04-24 2020-06-18 ジーンウィーブ バイオサイエンシズ,インコーポレイティド Reagent cartridge and methods for detection of cells

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