JP2012055307A - Development of system for efficient ethanol production from biomass using mushroom - Google Patents

Development of system for efficient ethanol production from biomass using mushroom Download PDF

Info

Publication number
JP2012055307A
JP2012055307A JP2011160196A JP2011160196A JP2012055307A JP 2012055307 A JP2012055307 A JP 2012055307A JP 2011160196 A JP2011160196 A JP 2011160196A JP 2011160196 A JP2011160196 A JP 2011160196A JP 2012055307 A JP2012055307 A JP 2012055307A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
alcohol
basidiomycete
production method
carbon source
alcohol production
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP2011160196A
Other languages
Japanese (ja)
Inventor
Kenji Okamoto
賢治 岡本
Eiji Yanase
英司 簗瀬
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Tottori University NUC
Original Assignee
Tottori University NUC
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Tottori University NUC filed Critical Tottori University NUC
Priority to JP2011160196A priority Critical patent/JP2012055307A/en
Publication of JP2012055307A publication Critical patent/JP2012055307A/en
Pending legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Alcoholic Beverages (AREA)

Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To elucidate an efficient alcohol production method using a basidiomycete, a production method for an alcoholic beverage, a production method for alcohol-containing food products, or a spawn used therefor.SOLUTION: An alcohol production method producing alcohol from a carbon source by using a basidiomycete of genus Trametes, is used, or, an alcohol production method producing alcohol from a carbon source by using one or more basidiomycetes selected from the group consisting of Trametes hirsuta, Trametes versicolor and Trametes suaveolens, is used.

Description

本発明は、アルコールの生産方法、アルコール飲料の生産方法、アルコール含有食品の生産方法、またはそれらに用いる種菌に関する。   The present invention relates to an alcohol production method, an alcoholic beverage production method, an alcohol-containing food production method, or an inoculum used for them.

現在、世界のエネルギー消費は約9割が石油をはじめとする化石燃料に依存しており、エネルギー枯渇の窮地に立たされている。また、近年の原油価格の上昇に加え、炭酸ガスの増加や地球温暖化等の世界的な環境問題が注目されており、将来的に予想される化石燃料の枯渇および原油価格の高止まり等に先立ち、世界各国で化石燃料に代わる新たな再生可能エネルギーの開発が進められている。このような状況の下、バイオエタノールをはじめとするバイオ燃料の開発導入に係る動きがブラジル、米国、アジア各国を中心に各国で活発化するなど、バイオ燃料への期待が高まっている。しかしながら、これらの大半は、サトウキビやトウモロコシ等の食用や飼料作物を原料として生産されているため、現在、農家の転作等による余波が穀物市場の高騰を連鎖的に招いている。したがって、中長期的には、食用や飼料作物と競合しないバイオ燃料の実用化を目指して、廃木材や草本類等の未利用資源の活用が世界規模で重要となる。   Currently, about 90% of the world's energy consumption depends on fossil fuels such as oil, and it is in a place of energy depletion. In addition to the recent rise in crude oil prices, global environmental issues such as an increase in carbon dioxide and global warming are attracting attention, which may lead to future depletion of fossil fuels and high crude oil prices. Prior to this, new renewable energy alternatives to fossil fuels are being developed around the world. Under such circumstances, expectations for biofuels are increasing, with movements related to the development and introduction of biofuels such as bioethanol becoming active mainly in Brazil, the United States, and Asian countries. However, most of these are produced using food and feed crops such as sugarcane and corn as raw materials, and the aftermath of farmers' crop rotations, for example, has led to a rapid increase in the grain market. Therefore, in the medium to long term, the utilization of unused resources such as waste wood and herbs is important on a global scale with the aim of putting biofuels that do not compete with food and feed crops into practical use.

これに対して、木質系や草本系等のバイオマス資源から糖を生成し、その得られた糖から燃料として有用なエタノール等のアルコールを生成する技術が知られている。例えば、特許文献1および非特許文献1には、木質系バイオマス(または、リグノセルロース系植物材料)からバイオ燃料を生産する際の糖化処理に先駆けて、リグニン分解能を有する白色腐朽菌によりリグニンを分解する生物的処理(前処理)を行う方法について開示されている。   On the other hand, a technique is known in which sugar is produced from biomass resources such as woody and herbaceous, and alcohol such as ethanol that is useful as a fuel is produced from the obtained sugar. For example, Patent Document 1 and Non-Patent Document 1 disclose that lignin is decomposed by white rot fungi having lignin-decomposition prior to saccharification when producing biofuel from woody biomass (or lignocellulosic plant material). A method for performing biological treatment (pretreatment) is disclosed.

また、菌類を用いて炭素源からアルコールを生産する研究もなされている。例えば、特許文献2〜4、非特許文献2〜6には、アガリクスタケ(Agaricus blazei)、ブナシメジ(Hypsizygus marmoreus)、マツタケ(Tricholoma matsutake)、ヒラタケ(Pleurotus ostreatus)、ミミナミハタケ(Lentinellus cochleatus)、およびエノキタケ(Flammulina velutipes)等の担子菌を用いて炭素源からアルコールを生産する方法が開示されている。   Research has also been conducted on producing alcohol from carbon sources using fungi. For example, Patent Documents 2 to 4 and Non-Patent Documents 2 to 6 include Agaricus blazei, Hypsizygus marmoreus, Tricholoma matsutake, Pleurotus ostreatus, Lentinellus cochleatus, and Enokitake. A method for producing alcohol from a carbon source using basidiomycetes such as (Flammulina velutipes) is disclosed.

特開2008-6372号公報JP 2008-6372 特開2001-286276号公報JP 2001-286276 A 特開2004-298109号公報JP 2004-298109 A 特開2006-223159号公報Japanese Unexamined Patent Publication No. 2006-223159

バイオエネルギー技術と応用展開、2003年10月31日発行、(株)シーエムシー出版、pp.165-171Bioenergy technology and application development, issued October 31, 2003, CMC Publishing Co., pp.165-171 Tokumitsu OKAMURA, Tomoko OGATA, Norie MINAMOTO, Tomomi TAKENO, Hiroko NODA, Shoko FUKUDA and Masahiro OHSUGI, "Characteristics of Wine Produced by Mushroom Fermentation", Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry Vol. 65 (2001), No. 7 pp.1596-1600Tokumitsu OKAMURA, Tomoko OGATA, Norie MINAMOTO, Tomomi TAKENO, Hiroko NODA, Shoko FUKUDA and Masahiro OHSUGI, "Characteristics of Wine Produced by Mushroom Fermentation", Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry Vol. 65 (2001), No. 7 pp.1596 -1600 Tokumitsu Okamura-Matsui, Tomomi Tomoda, Shoko Fukuda and Masahiro Ohsugi, "Discovery of alcohol dehydrogenase from mushrooms and application to alcoholic beverages", Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic、Volume 23, Issues 2-6, 1 September 2003, pp.133-144Tokumitsu Okamura-Matsui, Tomomi Tomoda, Shoko Fukuda and Masahiro Ohsugi, "Discovery of alcohol dehydrogenase from mushrooms and application to alcoholic beverages", Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic, Volume 23, Issues 2-6, 1 September 2003, pp. 133-144 化学工業日報、2007年10月22日発行、(株)化学工業日報社Chemical Industry Daily, published on October 22, 2007, Chemical Industry Daily Inc. 'Use of whole crop sorghums as a raw material in consolidated bioprocessing bioethanol production using Flammulina velutipes.' Mizuno et al., Biosci Biotechnol Biochem. 2009 Jul;73(7):1671-3. Epub 2009 Jul 7.'Use of whole crop sorghums as a raw material in consolidated bioprocessing bioethanol production using Flammulina velutipes.' Mizuno et al., Biosci Biotechnol Biochem. 2009 Jul; 73 (7): 1671-3. Epub 2009 Jul 7. 'Properties of ethanol fermentation by Flammulina velutipes.' Mizuno et al., Biosci Biotechnol Biochem. 2009 Oct;73(10):2240-5. Epub 2009 Oct 7.'Properties of ethanol fermentation by Flammulina velutipes.' Mizuno et al., Biosci Biotechnol Biochem. 2009 Oct; 73 (10): 2240-5. Epub 2009 Oct 7.

しかしながら、従来の木質系等のバイオマスからのアルコールの生産においては、バイオマスの主要成分であるセルロースやヘミセルロースを加水分解して糖を生成(糖化)する工程と、生成した糖を酵母や細菌により糖を発酵させることによりアルコールを生成する工程、の2工程が必要であった。したがって、バイオマスからのアルコール生産工程全体では、煩雑な作業が必要となり、コストおよび作業時間が嵩むという問題があった。   However, in the production of alcohol from biomass such as conventional woody materials, the steps of hydrolyzing cellulose and hemicellulose, which are the main components of biomass, to produce sugar (saccharification), and the produced sugar to sugar by yeast and bacteria The two steps of producing alcohol by fermenting the alcohol were necessary. Therefore, in the whole alcohol production process from biomass, complicated work is required, and there is a problem that costs and work time increase.

また、上述した糖化する工程においては、硫酸による加水分解が必要となるため、処理コスト面および環境面で問題視されていた。また、生成したグルコース等の糖の過分解を抑制するために反応制御が必要であった。   Moreover, in the process of saccharification mentioned above, since hydrolysis with sulfuric acid is required, it has been regarded as a problem in terms of processing cost and environment. Moreover, reaction control was required in order to suppress the excessive decomposition of sugars, such as produced | generated glucose.

さらに、硫酸を用いる以外の糖化方法として、バイオマスに、(1)粉砕、蒸煮(蒸煮爆砕、蒸煮、熱水分解・加圧熱水処理等)、エネルギー線(電子線、γ線、マイクロウエーブ)の照射等の物理的方法で処理する物理的前処理、(2)酸(硫酸、亜硫酸、リン酸)、アルカリ(カセイソーダ、アンモニアなど)などを用いて化学的処理する化学的前処理、または、(3)白色腐朽菌等のリグニン分解菌を用いて行う生物的前処理、による前処理を行い、リグニン等の難分解性成分を分解した後に、セルラーゼのような糖化酵素を加えてセルロースを加水分解して糖にする酵素糖化方法がある。   Furthermore, as a saccharification method other than using sulfuric acid, (1) pulverization, steaming (steaming explosion, steaming, hydrothermal decomposition, pressurized hot water treatment, etc.), energy rays (electron beams, γ rays, microwaves) (2) Chemical pretreatment that uses an acid (sulfuric acid, sulfurous acid, phosphoric acid), alkali (caustic soda, ammonia, etc.), etc. (3) Pretreatment by biological pretreatment using lignin-degrading bacteria such as white rot fungi, decomposes refractory components such as lignin, and then adds saccharifying enzyme such as cellulase to hydrolyze cellulose. There is an enzymatic saccharification method that breaks down into sugar.

しかしながら、上述の(1)の前処理方法では、蒸煮のための高温・高圧装置や、電子線、γ線、マイクロウエーブ等のエネルギー線の照射装置などの高価な装置が必要なため、設備費が高くなり、さらに、前処理工程の管理を厳密に行う必要があった。また、上述の(2)の前処理方法においては、バイオマスの糖化または前処理に当たり、酸やアルカリ等の化学薬品を用いるため、それらの薬品に耐え得る設備を使用する必要があることから、設備費が高くなるという問題があった。そして、糖化または前処理に用いた酸やアルカリの中和処理とそれによって発生する大量の中和廃棄物(例えば、硫酸カルシウムなど)の処理、あるいは、前処理に用いた溶媒の除去を行う必要があるため、手間やコストが掛かり、しかも、環境面での問題があった。さらに、上述の(3)の前処理方法では、糖化酵素を用いるため、コストが掛かり、しかも、当該酵素による糖の過分解を抑制するために反応制御が必要であった。またこの方法は、他の前処理方法のような不都合は生じないが、酵素糖化工程およびその次工程である酵母等の糖の発酵工程のために、白色腐朽菌を除去する必要が生じ、手間が掛かるという問題があった。また、そもそも、白色腐朽菌は、アルコール生成を企図して導入されるものでなく、実際のアルコール生成は、酵母等の発酵により行われるので、上述の(3)の方法で用いられる白色腐朽菌のアルコール生成能については、特に考慮する必要はなかった。   However, the above-described pretreatment method (1) requires expensive equipment such as a high-temperature / high-pressure apparatus for cooking and an irradiation apparatus for energy beams such as electron beams, γ-rays, and microwaves. In addition, the pretreatment process must be strictly managed. In the pretreatment method (2) described above, since chemicals such as acids and alkalis are used for saccharification or pretreatment of biomass, it is necessary to use equipment that can withstand such chemicals. There was a problem of high costs. Then, it is necessary to neutralize the acid or alkali used for saccharification or pretreatment and to treat a large amount of neutralized waste (such as calcium sulfate) generated by the treatment, or to remove the solvent used for the pretreatment. Therefore, it took time and cost, and there was an environmental problem. Furthermore, since the saccharifying enzyme is used in the pretreatment method (3) described above, it is expensive, and reaction control is necessary to suppress the excessive decomposition of sugar by the enzyme. Although this method does not cause inconveniences like other pretreatment methods, it is necessary to remove white rot fungi for the enzymatic saccharification step and the subsequent step of sugar fermentation such as yeast. There was a problem that it took. In the first place, white rot fungi are not introduced with the intention of producing alcohol, and actual alcohol production is carried out by fermentation of yeast or the like, so that the white rot fungus used in the above method (3) is used. There was no particular need to consider the alcohol-producing ability.

また、従来の担子菌を使用したアルコール生産方法では、キシロースのようなペントースに分類される糖をほとんどアルコールに発酵できなかった。そのため、バイオマスから得られるエタノール量も十分とはいえなかった。   Moreover, in the conventional alcohol production method using basidiomycetes, sugars classified as pentose such as xylose could hardly be fermented to alcohol. Therefore, the amount of ethanol obtained from biomass was not sufficient.

本発明は上記事情に鑑みてなされたものであり、特定の担子菌を用いた効率的なアルコール生産方法を提供することを目的とする。   The present invention has been made in view of the above circumstances, and an object thereof is to provide an efficient alcohol production method using a specific basidiomycete.

本発明によれば、シロアミタケ(Trametes)属の担子菌を用いて、炭素源からアルコールを生成する、アルコール生産方法が提供される。   ADVANTAGE OF THE INVENTION According to this invention, the alcohol production method which produces | generates alcohol from a carbon source using the basidiomycete of the genus Trametes is provided.

この生産方法は、後述する実施例で効率的にアルコールを生産するために利用できることが実証されている。そのため、この生産方法を用いれば、効率的にアルコールを生産できる。   It has been demonstrated that this production method can be used to efficiently produce alcohol in the examples described below. Therefore, if this production method is used, alcohol can be produced efficiently.

また本発明によれば、シロアミタケ属の担子菌を用いて、炭素源からアルコールを含有する液体を生成する、アルコール飲料の生産方法が提供される。   Moreover, according to this invention, the production method of the alcoholic beverage which produces | generates the liquid which contains alcohol from a carbon source using the basidiomycete genus Basiophilus is provided.

ここで、後述する実施例でシロアミタケ属の担子菌を用いて、炭素源からアルコールを含有する液体を効率的に生成できることが実証されている。そのため、この生産方法を用いれば、効率的にアルコールを含有する液体を生産できる。   Here, it has been demonstrated that a liquid containing alcohol can be efficiently generated from a carbon source using a basidiomycete genus basidiomycete in Examples described later. Therefore, if this production method is used, a liquid containing alcohol can be produced efficiently.

また本発明によれば、シロアミタケ属の担子菌を用いて、炭素源からアルコールを含有する組成物を生成する、アルコール含有食品の生産方法が提供される。   Moreover, according to this invention, the production method of the alcohol containing foodstuff which produces | generates the composition containing alcohol from a carbon source using the basidiomycete belonging to the genus White mushroom is provided.

ここで、後述する実施例でシロアミタケ属の担子菌を用いて、炭素源からアルコールを含有する組成物を効率的に生成できることが実証されている。そのため、この生産方法を用いれば、効率的にアルコール含有食品を生産できる。   Here, it has been demonstrated that a composition containing alcohol can be efficiently generated from a carbon source using a basidiomycete genus basidiomycete in Examples described later. Therefore, if this production method is used, an alcohol-containing food can be produced efficiently.

また本発明によれば、シロアミタケ属の担子菌の菌糸と、菌糸を担持する担体と、を備えることを特徴とする、シロアミタケ属の担子菌を用いて炭素源からアルコールを生成するための種菌が提供される。   According to the present invention, there is provided an inoculum for producing alcohol from a carbon source using a basidiomycete genus basidiomycetes, comprising: Provided.

この種菌は、後述する実施例で効率的にアルコールを生産できることが実証されている担子菌の菌糸を備えている。そのため、この種菌を用いれば、効率的にアルコールを生産できる。   This inoculum comprises basidiomycete hyphae that have been proven to be able to produce alcohol efficiently in the examples described below. Therefore, if this inoculum is used, alcohol can be produced efficiently.

本発明によれば、アルコール生産効率および炭素源の資化性に優れた菌類により、バイオマス等から効率的なアルコール生産を実現することができる。   ADVANTAGE OF THE INVENTION According to this invention, efficient alcohol production from biomass etc. is realizable by the fungi excellent in alcohol production efficiency and the utilization property of a carbon source.

図1(a)および図1(b)は、実施形態に係るシロアミタケ属の担子菌により炭素源からアルコールを生成する方法を説明するためのフローチャートである。FIG. 1 (a) and FIG. 1 (b) are flowcharts for explaining a method of producing alcohol from a carbon source by a basidiomycete basidiomycete according to an embodiment. 図2(a)、図2(b)および図2(c)は、実施形態に係るシロアミタケ属の担子菌を用いた種菌の構成を模式的に示した概念図である。FIG. 2A, FIG. 2B, and FIG. 2C are conceptual diagrams schematically showing the structure of an inoculum using a basidiomycete genus basidiomycete according to the embodiment. 図3は、従来の典型的なバイオマスからのエタノール生産プロセスを説明するための概念図である。FIG. 3 is a conceptual diagram for explaining a conventional ethanol production process from typical biomass. 図4は、実施形態に係るシロアミタケ属の担子菌を用いた、未利用バイオマス資源の再利用方法の一例を説明するための概念図である。FIG. 4 is a conceptual diagram for explaining an example of a method for reusing unused biomass resources using the basidiomycetous basidiomycetes according to the embodiment. 図5は、実施形態に係るシロアミタケ属の担子菌を用いた未利用バイオマス資源の燃料用アルコールとしての再利用のサイクルを説明するための概念図である。FIG. 5 is a conceptual diagram for explaining a cycle of reusing an unused biomass resource as a fuel alcohol using a basidiomycete basidiomycete according to an embodiment. 図6は、シロアミタケ属の担子菌の培養および菌体回収の方法を説明するための実験プロトコルである。FIG. 6 is an experimental protocol for explaining a method for culturing and recovering fungus basidiomycetes belonging to the genus White mushroom.

本発明者らは、鋭意検討を重ねた結果、シロアミタケ属の担子菌が各種炭素源を糖化することにより糖を生成する工程、および糖を発酵することによりアルコールを生成する工程を単一で行うことができ、かつ高いアルコール生産性を有することを確認してバイオマスから直接アルコールが生産可能であることを見出し、本発明を完成するに至った。   As a result of intensive studies, the present inventors have performed a single step of producing a sugar by saccharifying a variety of carbon sources and a step of producing an alcohol by fermenting the sugar. The present invention was completed by finding that alcohol can be produced directly from biomass by confirming that it has high alcohol productivity.

以下、本発明の実施の形態について詳細に説明する。なお、同様な内容については繰り返しの煩雑を避けるために、適宜説明を省略する。   Hereinafter, embodiments of the present invention will be described in detail. In addition, in order to avoid the repetition complexity about the same content, description is abbreviate | omitted suitably.

本発明の一実施形態は、シロアミタケ属の担子菌を用いて、炭素源からアルコールを生成する、アルコール生産方法である。この生産方法を適切に利用すれば、後述する実施例で実証されているように、効率的にアルコールを生産できる。上記シロアミタケ属の担子菌は特に限定されないが、例えばアラゲカワラタケ(Trametes hirsuta)、カワラタケ(Trametes versicolor)、シロアミタケ(Trametes suaveolens)、オオチリメンタケ(Trametes gibbosa)、ウサギタケ(Trametes trogiiBerkeley)、クジラタケ(Trametes orientalis)、ヤキフタケ(Trametes pubescens)、チリメンタケ(Trametes elegans )、Trametes lactinea を挙げることができる。この中でもアラゲカワラタケ、カワラタケ、およびシロアミタケは、フルクトース、マンノース、ガラクトース、セロビオース、マルトース、アラビノース、キシロース、スクロース、デンプン、CMC、小麦フスマ、稲わら、およびボールミル処理後の稲わらからアルコールを生産できることが後述する実施例で実証されている。このアラゲカワラタケ、カワラタケ、シロアミタケは、一般的にリグニン分解能を有し、世界的に分布している白色腐朽菌である。特に、アラゲカワラタケおよびカワラタケは、小麦フスマ、稲わら、およびボールミル処理後の稲わらのようなバイオマスからでも、高い濃度のアルコールを生産できることが後述する実施例で実証されている。   One embodiment of the present invention is an alcohol production method in which alcohol is produced from a carbon source using a basidiomycete genus basidiomycete. If this production method is appropriately used, alcohol can be produced efficiently as demonstrated in the examples described later. The basidiomycetes of the genus Shilotake mushroom are not particularly limited, but, for example, Aragekawaratake (Trametes hirsuta), Kawaratake (Trametes versicolor), Shiroamitake (Trametes suaveolens), Ouchirimentaitake (Trametes gibbosa), Rabbittake (Trametes trogiiBerkeient), ), Yakifukutake (Trametes pubescens), Tirimentake (Trametes elegans), and Trametes lactinea. Among them, Algae kawatake, Kawaratake, and white mushroom can produce alcohol from fructose, mannose, galactose, cellobiose, maltose, arabinose, xylose, sucrose, starch, CMC, wheat bran, rice straw, and rice straw after ball milling. This is demonstrated in the examples described below. This jellyfish, bamboo moth, and white mushroom are white rot fungi that generally have lignin-degrading ability and are distributed worldwide. In particular, it is demonstrated in the Examples described later that Alagekawaratake and Kawaratake can produce a high concentration of alcohol even from biomass such as wheat bran, rice straw, and rice straw after ball milling.

また従来、担子菌を使用したアルコール生産方法では、キシロースのようなペントースに分類される糖をほとんどアルコールに発酵できなかった。そのため、バイオマスから得られるエタノール量も十分とはいえなかった。一方で、シロアミタケ属の担子菌はそのような糖からでもアルコールを生産できるため、より効率的にバイオマスからアルコールを生産できる。特に、アラゲカワラタケおよびカワラタケが、そのような糖を効率よくエタノールに変換できることが後述する実施例で実証されている。特にカワラタケで顕著であった。キシロースはヘミセルロースの一つであるキシランを構成するものとして植物に広く存在することが知られている。なお、キシロースを発酵できる酵母としてPichia stipitisが知られているが、エタノール耐性が低く、エタノール変換効率、グルコースの発酵効率も十分とはいえなかった。また、この酵母は糖化能を有しないため、バイオマスからエタノールを生産するには糖化工程を別に設けるか、遺伝子改変等の方法を行う必要があった。   Conventionally, in alcohol production methods using basidiomycetes, sugars classified as pentose such as xylose could hardly be fermented to alcohol. Therefore, the amount of ethanol obtained from biomass was not sufficient. On the other hand, basidiomycetous basidiomycetes can produce alcohol from such sugars, and thus can produce alcohol from biomass more efficiently. In particular, it is demonstrated in the examples described later that Aragekawaratake and Kawaratake can efficiently convert such sugars to ethanol. This was particularly noticeable in Kawatake. Xylose is known to exist widely in plants as a constituent of xylan, one of hemicelluloses. Although Pichia stipitis is known as a yeast capable of fermenting xylose, ethanol tolerance is low, and ethanol conversion efficiency and glucose fermentation efficiency are not sufficient. Moreover, since this yeast has no saccharification ability, it was necessary to provide a saccharification step separately or to carry out a method such as genetic modification in order to produce ethanol from biomass.

本実施形態では、アルコール生成にシロアミタケ属の担子菌を用いることを特徴の一つとする。一方で、以下に示すとおり、シロアミタケ属の担子菌のアルコール生成能についてはこれまで何ら報告されていなかった。例えば特許文献1および非特許文献1に記載されている担子菌は、上述した糖化工程における生物的前処理用として用いるものであって、直接的にアルコールを生成するために用いるものではない。したがって、特許文献1および非特許文献1では担子菌のアルコール生成能については考慮する必要がないので、当然のことながら、アルコール生成能については示唆すらされていない。また、特許文献2〜4、非特許文献2〜6においても、シロアミタケ属の担子菌を用いて炭素源からアルコールを生産することについては何ら記載されていない。   In the present embodiment, one of the characteristics is that a basidiomycete belonging to the genus Shiroamitake is used for alcohol production. On the other hand, as shown below, nothing has been reported so far on the alcohol-producing ability of basidiomycetes belonging to the genus Shiroamitake. For example, basidiomycetes described in Patent Document 1 and Non-Patent Document 1 are used for biological pretreatment in the saccharification process described above, and are not used for directly generating alcohol. Therefore, in Patent Document 1 and Non-Patent Document 1, it is not necessary to consider the alcohol-producing ability of basidiomycetes, and naturally, the alcohol-producing ability is not even suggested. Also, Patent Documents 2 to 4 and Non-Patent Documents 2 to 6 do not describe anything about producing alcohol from a carbon source using a basidiomycete genus basidiomycete.

即ち、シロアミタケ属の担子菌のアルコール生成能についてはこれまで何ら報告されておらず、本実施形態は、これまで存在しなかった優れたアルコール生産方法といえる。加えて、目、科、または属が異なればそれぞれの担子菌が持つ機能も異なるため、これらの文献から本実施形態のアルコール生産方法に想到することは困難である。   That is, no alcohol-producing ability of the basidiomycetes belonging to the genus White mussel has been reported so far, and this embodiment can be said to be an excellent alcohol production method that has not existed so far. In addition, since the functions of the respective basidiomycetes are different for different eyes, families, or genera, it is difficult to conceive the alcohol production method of the present embodiment from these documents.

また、本実施形態においては、シロアミタケ属の担子菌は、毒性はなく、遺伝子組換え体でなく、野生のものを用いることができる。したがって、本実施形態のアルコール生産方法では、安全性の高いアルコールの生産が実現可能となる。   In the present embodiment, the basidiomycetes belonging to the genus Shiroamitake are not toxic and can be wild, not genetically modified. Therefore, in the alcohol production method of the present embodiment, highly safe alcohol production can be realized.

さらに、シロアミタケ属の担子菌は一般的に食用として汎用されていない。また、産業的に有効に利用されているという報告はなく、これまでほとんど利用されていなかった。そして、シロアミタケ属の担子菌は、成長が比較的早く、世界的に分布しており比較的入手しやすい。したがって、本実施形態に係るアルコール生産方法においては、用いるシロアミタケ属の担子菌は、少なくとも産業界と直接競合することは考え難く、資源として有用性および優位性に富むものである。   Further, basidiomycetes belonging to the genus Lactobacillus are not generally used for food. Moreover, there was no report that it was used effectively industrially, and it was hardly used until now. And the basidiomycetes belonging to the genus Lactobacillus grow relatively fast, are distributed worldwide and are relatively easy to obtain. Therefore, in the alcohol production method according to the present embodiment, it is unlikely that the basidiomycete basidiomycete used will at least directly compete with the industry, and is highly useful and advantageous as a resource.

図1は、実施の形態に係るシロアミタケ属の担子菌により炭素源からアルコールを生成する方法を説明するためのフローチャートである。後述するようにシロアミタケ属の担子菌が、幅広い糖の資化性を有することを、本発明者らは見出している。   FIG. 1 is a flow chart for explaining a method for producing alcohol from a carbon source by a basidiomycete basidiomycete according to an embodiment. As will be described later, the present inventors have found that basidiomycetes belonging to the genus White mussel have a wide range of sugar utilization.

具体的には、図1(a)に示すように、まず、シロアミタケ属の担子菌を木質系・草本系等のバイオマスまたは各種の糖などを含む炭素源に接種する(S102)。次いで、シロアミタケ属の担子菌の種菌を接種された炭素源を培養する(S104)。そして、シロアミタケ属の担子菌により炭素源から生成されたアルコールを含む液体を濾過などの手法により回収する(S106)。   Specifically, as shown in FIG. 1A, first, basidiomycetous basidiomycetes are inoculated into a woody or herbaceous biomass or a carbon source containing various sugars (S102). Next, the carbon source inoculated with the inoculum of the basidiomycete belonging to the genus Shiroamitake is cultured (S104). And the liquid containing the alcohol produced | generated from the carbon source by the basidiomycete genus basidiomycete is collect | recovered by methods, such as filtration (S106).

上述の炭素源が木質系等のバイオマスを含む場合には、上述の培養工程において、図1(b)に示すように、シロアミタケ属の担子菌により炭素源を糖化する(S108)。そして、糖化された炭素源をシロアミタケ属の担子菌により発酵してアルコールを生成する(S110)。   When the carbon source includes woody biomass or the like, the carbon source is saccharified by basidiomycetous basidiomycetes (S108) as shown in FIG. Then, the saccharified carbon source is fermented with a basidiomycete basidiomycete to produce alcohol (S110).

なお、上述の発酵工程は、嫌気的条件であってもよく、好気的条件であってもよいが、微好気的条件または嫌気的条件が、アルコール生成効率の面から好ましい。   In addition, although the above-mentioned fermentation process may be anaerobic conditions and may be aerobic conditions, microaerobic conditions or anaerobic conditions are preferable from the surface of alcohol production efficiency.

また、上述の炭素源は、糖を含んでいてもよい。さらに、上述の炭素源は、グルコース、フルクトース、マンノース、ガラクトース、セロビオース、マルトース、アラビノース、キシロース、スクロース、およびラクトースからなる群より選ばれる一種以上の糖を含んでいてもよい。後述するように、シロアミタケ属の担子菌は、これらの糖に対する資化性を有していることを、本発明者らは見出している。さらに、上述の炭素源は、糖蜜、廃糖蜜、上白糖、黒糖、マルツエキスおよびデンプン等を含んでいてもよい。なお本実施形態に係るシロアミタケ属の担子菌は、複数の炭素源が混在した培地からアルコールを生成してもよい。培地中の個々の炭素源の質量%または容量%は、例えば1、2、3、5、10、20、50、80、または100%であってもよく、それらの値の範囲内またはそれらの値以上であってもよい。   Moreover, the above-mentioned carbon source may contain saccharide | sugar. Furthermore, the above-described carbon source may contain one or more sugars selected from the group consisting of glucose, fructose, mannose, galactose, cellobiose, maltose, arabinose, xylose, sucrose, and lactose. As will be described later, the present inventors have found that basidiomycetes belonging to the genus White mussel have assimilation properties for these sugars. Furthermore, the above-mentioned carbon source may contain molasses, molasses, super white sugar, brown sugar, malt extract, starch and the like. The basidiomycetous basidiomycetes according to this embodiment may produce alcohol from a medium in which a plurality of carbon sources are mixed. The mass% or volume% of the individual carbon sources in the medium may be, for example, 1, 2, 3, 5, 10, 20, 50, 80, or 100%, within the range of those values or their It may be greater than or equal to the value.

あるいは、上述の炭素源は、セルロース、木質系または草本系の材料(バイオマス等)を含んでいてもよい。セルロースとしては、綿リンター、木材パルプや溶解パルプ等から得られる植物系のセルロース、アセトバクター属(Acetobacter)等に属する微生物が生産するセルロース、再生セルロースおよび微結晶セルロース等が挙げられる。木質系の材料としては、建築廃材等の廃木材、製材残材、間伐材、林地残材などを含む木材、おがくず、古紙・廃紙等の紙類およびパルプ等を挙げることができる。草本系の材料としては、小麦フスマ等のフスマ、稲わら・麦わら等のわらおよびもみ殻などを含む農業残渣、バガス、刈り草および雑草類等を挙げることができる。なお、後述するようにシロアミタケ属の担子菌が、小麦フスマおよび稲わらを炭素源として直接的にアルコール生成能を有し、アルコール収率が高いことを本発明者らは見出している。また、後述する実施例でセルロース分解能を有していることが示唆されている。   Or the above-mentioned carbon source may contain the material (biomass etc.) of cellulose, woody, or herbaceous. Examples of cellulose include plant cellulose obtained from cotton linter, wood pulp, dissolved pulp and the like, cellulose produced by microorganisms belonging to the genus Acetobacter, regenerated cellulose, microcrystalline cellulose, and the like. Examples of the wood-based material include waste wood such as building waste, lumber from sawmill, thinned wood, and forest land, wood, sawdust, paper such as waste paper and waste paper, and pulp. Examples of herbaceous materials include agricultural residues including bran such as wheat bran, straw such as rice straw and straw, and rice husks, bagasse, cut grass and weeds. As described later, the present inventors have found that basidiomycetous basidiomycetes have an alcohol-producing ability directly from wheat bran and rice straw as a carbon source and have a high alcohol yield. Moreover, it is suggested that it has a cellulose resolution in the Example mentioned later.

また上述の炭素源は生ゴミまたは廃棄飲料(以下、「生ゴミ等」と称することもある)を含んでいてもよい。上記生ゴミ等は、業務用または家庭用の生ゴミ等であってもよい。また、食堂、病院、学校、ホテル、食品工場、または農畜産場等から排出される生ゴミ等であってもよい。また、実験室や工場において調製した生ゴミ等であってもよい。また生ゴミは、廃棄食品または廃棄飲料を含んでいてもよい。なお、本明細書において廃棄食品は、廃棄された食品、食用としての商品価値がない食品、または消費期限後の食品を意味する。本明細書において廃棄飲料は、廃棄された飲料、飲用としての商品価値がない飲料、または消費期限後の飲料を意味する。廃棄食品は、例えば、廃棄野菜、廃棄果物、廃棄肉、廃棄魚、廃棄米飯、廃棄コーン、廃棄卵、または廃棄麺等を含んでいてもよい。廃棄飲料は、例えば、廃棄乳系飲料等を含んでいてもよい。また、生ゴミは破砕処理後の状態であってもよい。生ゴミの組成としては糖、リグニン、蛋白質、脂質、アミノ酸、有機酸、ビタミン類、またはミネラル等の無機物を含んでいてもよい。   Moreover, the above-mentioned carbon source may include raw garbage or waste beverage (hereinafter also referred to as “raw garbage”). The above-mentioned garbage etc. may be commercial or household garbage. Moreover, the garbage etc. which are discharged | emitted from a cafeteria, a hospital, a school, a hotel, a food factory, an agricultural livestock farm, etc. may be sufficient. Moreover, the garbage etc. which were prepared in the laboratory or the factory may be sufficient. Moreover, the garbage may contain a discarded food or a discarded beverage. In addition, in this specification, a discarded food means a discarded food, a food having no commercial value as food, or a food after the expiration date. In the present specification, the discarded beverage means a discarded beverage, a beverage having no commercial value for drinking, or a beverage after the expiration date. The discarded food may include, for example, discarded vegetables, discarded fruits, discarded meat, discarded fish, discarded cooked rice, discarded corn, discarded eggs, or discarded noodles. The discarded beverage may include, for example, a discarded milk-based beverage. Moreover, the garbage may be in a state after crushing treatment. The composition of raw garbage may include an inorganic substance such as sugar, lignin, protein, lipid, amino acid, organic acid, vitamins, or mineral.

また上述の炭素源は、食品または乳系飲料を含んでいてもよい。食品は、加工食品または生鮮食品を含んでいてもよい。食品は、例えば野菜、果物、肉、魚、米飯、コーン、卵、または麺等を含んでいてもよい。乳系飲料は、例えば牛乳を含んでいてもよい。牛乳は、例えば明治おいしい牛乳(株式会社明治)等、市販の牛乳であってもよい。牛乳は、例えば成分無調整牛乳、または調整(例えば低脂肪、無脂肪、高脂肪)牛乳であってもよい。食品または乳系飲料は、消費期限内または消費期限後であってもよい。   The above-mentioned carbon source may contain a food or a dairy beverage. The food may include processed food or fresh food. The food may contain, for example, vegetables, fruits, meat, fish, cooked rice, corn, eggs, or noodles. The milk-based beverage may contain milk, for example. The milk may be commercially available milk such as Meiji delicious milk (Meiji Co., Ltd.). The milk may be, for example, component unadjusted milk or adjusted (eg, low fat, no fat, high fat) milk. The food or dairy beverage may be within the expiration date or after the expiration date.

また、上述のシロアミタケ属の担子菌により生成されるアルコールは、エタノールを含んでいてもよい。後述するように、シロアミタケ属の担子菌は、炭素源からエタノールを生成することを、本発明者らは見出している。   Moreover, the alcohol produced | generated by the above-mentioned Bacillus subtilis genus basidiomycete may contain ethanol. As will be described later, the present inventors have found that basidiomycetes belonging to the genus White mushroom produce ethanol from a carbon source.

そして、上述のシロアミタケ属の担子菌により生成されるアルコールを用いて、アルコール飲料またはアルコール含有食品を生産してもよい。これらのアルコール飲料またはアルコール含有食品には、アルコール以外にも、シロアミタケ属の担子菌の生成する各種成分が含まれていてもよ
い。また、アルコール含有食品は、固体であってもよく、液体であってもよく、ゲル状体などであってもよい。
And you may produce alcoholic beverages or alcohol-containing foods using the alcohol produced | generated by the above-mentioned basidiomycete basidiomycetes. In addition to alcohol, these alcoholic beverages or alcohol-containing foods may contain various components produced by the basidiomycetes of the genus Shiroamitake. In addition, the alcohol-containing food may be solid, liquid, or gel.

図2は、実施の形態に係るシロアミタケ属の担子菌を用いた種菌の構成を模式的に示した概念図である。種菌とは、研究対象の菌類を育て、増やす際の基になる培養物のことである。種菌は、アルコール生産用材料と言い換えることもできる。図2(a)は、おがくずを担体として用いたシロアミタケ属の担子菌の種菌である。この種菌200では、蓋204を備える容器202内に、おがくず208が敷き詰められている。このおがくず中にシロアミタケの菌糸206a、206bが担持されている。なお、シロアミタケ属の担子菌の菌糸は、図2(a)のように、きのこを形成している必要はない。   FIG. 2 is a conceptual diagram schematically showing a configuration of an inoculum using a basidiomycete belonging to the genus White mushroom according to the embodiment. An inoculum is a culture that is the basis for growing and increasing the fungi to be studied. An inoculum can be paraphrased as a material for alcohol production. FIG. 2 (a) shows an inoculum of a basidiomycete belonging to the genus Shiroamitake using sawdust as a carrier. In this inoculum 200, sawdust 208 is spread in a container 202 having a lid 204. In this sawdust, white mycelia 206a and 206b are carried. In addition, the mycelium of the basidiomycete belonging to the genus White mushroom does not need to form a mushroom as shown in FIG.

図2(b)は、木材チップを担体として用いたシロアミタケ属の担子菌の種菌である。この種菌300では、容器302内に、コルク栓状の形状からなる木材チップ304a、304b、304c、304d、304e、304fが収納されている。これらの木材チップには、シロアミタケ属の担子菌の菌糸306a、306b、306c、306d、306e、306fが担持されている。なお、シロアミタケ属の担子菌の菌糸は、図2(b)のように、きのこを形成している必要はない。   FIG. 2 (b) shows an inoculum of the basidiomycete of the genus Shirotake using wood chips as a carrier. In this inoculum 300, wood chips 304a, 304b, 304c, 304d, 304e, and 304f having a cork stopper shape are accommodated in a container 302. These wood chips carry hyphae 306a, 306b, 306c, 306d, 306e, and 306f of basidiomycetes belonging to the genus White mushroom. In addition, the mycelium of the basidiomycete belonging to the genus White mushroom does not need to form a mushroom as shown in FIG.

図2(c)は、液体培地を担体として用いたシロアミタケ属の担子菌の種菌である。この種菌400では、蓋404を備える容器402内に、各種の糖などの炭素源を含む液体培地408が収納されている。これらの液体培地には、シロアミタケ属の担子菌の菌糸406が担持されている。なお、シロアミタケ属の担子菌の菌糸は、図2(c)のように、きのこを形成している必要はない。   FIG. 2 (c) shows an inoculum of a basidiomycete belonging to the genus Shiroamitake using a liquid medium as a carrier. In the inoculum 400, a liquid medium 408 containing a carbon source such as various sugars is stored in a container 402 having a lid 404. These liquid media carry the mycelium 406 of basidiomycetous basidiomycetes. In addition, the mycelium of the basidiomycete belonging to the genus White mushroom does not need to form a mushroom as shown in FIG.

上述の種菌は、菌類を用いて炭素源からアルコールを生成するための種菌であって、シロアミタケ属の担子菌の菌糸と、この菌糸を担持する担体とを備える。なお、この菌糸は、定常期の菌糸であってもよい。具体的には、この菌糸は、培養開始5〜7日経過後の菌糸であってもよい。   The inoculum described above is an inoculum for producing alcohol from a carbon source using fungi, and includes a mycelium of a basidiomycete belonging to the genus Shiroamitake and a carrier that carries this mycelium. The hypha may be a stationary hypha. Specifically, this mycelium may be a mycelium 5 to 7 days after the start of culture.

以下、実施の形態に係るアルコール生産方法の作用効果についてさらに説明する。
シロアミタケ属の担子菌は、後述するように、カビや酵母と同等以上のアルコール生産能を有するので、優れたアルコール生産効率を実現することができる。
Hereinafter, the effect of the alcohol production method according to the embodiment will be further described.
As described below, the basidiomycete belonging to the genus Shiroamitake has an alcohol-producing ability equal to or higher than that of mold and yeast, and thus can achieve excellent alcohol production efficiency.

また、シロアミタケ属の担子菌は、後述するように、グルコース、フルクトース、マンノース、ガラクトース、セロビオース、マルトース、アラビノース、キシロース、およびスクロースに対する資化性を有するので、担子菌類では困難であった幅広い種類の炭素源を用いてアルコール発酵を行うことができる。   In addition, as mentioned below, basidiomycetes belonging to the genus Shiroamitake have an assimilation property for glucose, fructose, mannose, galactose, cellobiose, maltose, arabinose, xylose, and sucrose, and therefore, a wide variety of basidiomycetes that have been difficult for basidiomycetes Alcohol fermentation can be performed using a carbon source.

そのため、上述の実施の形態に係るアルコール生産方法によれば、アルコール生産効率および炭素源の資化性に優れるシロアミタケ属の担子菌を用いるため、アルコール生産方法の生産効率を向上し、炭素源の種類の幅を拡大することができる。   Therefore, according to the alcohol production method according to the above-described embodiment, the production efficiency of the alcohol production method is improved because the basidiomycete of the genus Shiroamitake, which is excellent in the alcohol production efficiency and the assimilability of the carbon source, is used. The range of types can be expanded.

図3は従来の典型的なバイオマスからのエタノール生産プロセスを説明するための概念図である。従来は、炭素源を糖化する工程と、糖を発酵する工程は別々のユニットによって行われていた。図4は、本実施形態に係るシロアミタケ属の担子菌を用いた、未利用バイオマス資源の再利用方法の一例を説明するための概念図である。この方法は、シロアミタケ属の担子菌が炭素源を糖化することにより糖を生成する工程と、シロアミタケ属の担子菌が糖を発酵することによりアルコールを生成する工程と、を含むため、従来の酸等による加水分解の工程を経ずに、糖化・発酵の両工程を行うことができる。このため、未利用バイオマス資源をシロアミタケ属の担子菌による糖化・発酵工程により効率よくエタノールに変換することができる。また、環境負荷、コストや手間の削減につながるのはいうまでもない。また糖化・発酵は同一容器で並行して、または同一容器で同時に行われてもよく、この場合、より効率的である。   FIG. 3 is a conceptual diagram for explaining a conventional ethanol production process from typical biomass. Conventionally, the step of saccharifying the carbon source and the step of fermenting the sugar have been performed by separate units. FIG. 4 is a conceptual diagram for explaining an example of a method for reusing unused biomass resources using the basidiomycetous basidiomycetes according to the present embodiment. Since this method includes a step of producing sugar by saccharifying the genus Basidium of the genus Shiroamitake, and a step of producing alcohol by fermenting the saccharide of the genus Shiroamitake genus Both the saccharification and fermentation steps can be performed without going through the hydrolysis step. For this reason, an unused biomass resource can be efficiently converted into ethanol by a saccharification / fermentation process using a basidiomycete genus basidiomycete. Moreover, it goes without saying that it leads to a reduction in environmental load, cost and labor. Moreover, saccharification and fermentation may be performed in the same container in parallel or simultaneously in the same container, and in this case, it is more efficient.

糖化と発酵を並行して行いアルコールを生産するプロセスは、一般的に統合バイオプロセス(consolidated bioprocessing :CBP)と呼ばれる。CBPは例えば[Lynd et al., Curr Opin Biotechnol. 2005 Oct;16(5):577-83.]、[van Zyl et al., Adv Biochem Eng Biotechnol. 2007;108:205-35.]、[Mizuno et al., Biosci Biotechnol Biochem. 2009 Jul;73(7):1671-3. Epub 2009 Jul 7.]などに記載されている。そして、本実施形態に係るシロアミタケ属の担子菌は、CBPによってアルコールを精製することができる。このCBPにおいては、リグニンやセルロース等を分解するために酵素や酸等を加えてもよいが、上記シロアミタケ属の担子菌を用いた場合には酵素や酸等を加えなくても、効率的にアルコールを生産可能である。なお、従来アルコール生産にはセルロースの分解が重要と考えられていたが、本実施形態においては、優れたリグニン分解能を有する上記シロアミタケ属の担子菌を用いたことが、従来予想しえない高いエタノール生産性を実現できた一因になっていると考えられる。リグニンは木質系または草本系の材料に含まれている。   The process of producing alcohol by performing saccharification and fermentation in parallel is generally referred to as consolidated bioprocessing (CBP). CBP is described, for example, in [Lynd et al., Curr Opin Biotechnol. 2005 Oct; 16 (5): 577-83.], [Van Zyl et al., Adv Biochem Eng Biotechnol. 2007; 108: 205-35.], [ Mizuno et al., Biosci Biotechnol Biochem. 2009 Jul; 73 (7): 1671-3. Epub 2009 Jul 7.]. And the basidiomycete belonging to the genus White mushroom according to the present embodiment can purify alcohol by CBP. In this CBP, enzymes and acids may be added to decompose lignin, cellulose, etc., but when using the above-mentioned basidiomycetous basidiomycetes, it is efficient without adding enzymes or acids. Can produce alcohol. In the present embodiment, it was considered that degradation of cellulose was important for alcohol production. However, in this embodiment, the use of the above-mentioned basidiomycete basidiomycetes having excellent lignin resolving power is an unpredictable high ethanol. This is thought to be one of the reasons why productivity has been achieved. Lignin is contained in woody or herbaceous materials.

またこのCBPにおいては、本実施形態に係るシロアミタケ属の担子菌がリグニン、セルロース、またはヘミセルロースを分解し、さらに生成した単糖またはオリゴ糖を発酵することによってアルコールを生産してもよい。このとき、上記単糖はヘキソースまたはペントースであってもよく、グルコース、フルクトース、マンノース、ガラクトース、アラビノース、およびキシロースからなる群より選ばれる一種以上の糖であってもよい。また上記オリゴ糖はセロビオース、マルトース、およびスクロースからなる群より選ばれる一種以上の糖であってもよい。そしてこのようなCBPは、低コストで、低環境負荷である。なお、CBPと同様の原理は醸造酒の生産過程でも利用されており、その場合、並行複発酵とも呼ばれる。この並行複発酵も、糖化と発酵とが並行して行なわれる。   In this CBP, the basidiomycete basidiomycete according to the present embodiment may decompose lignin, cellulose, or hemicellulose, and further produce the alcohol by fermenting the produced monosaccharide or oligosaccharide. At this time, the monosaccharide may be hexose or pentose, and may be one or more sugars selected from the group consisting of glucose, fructose, mannose, galactose, arabinose, and xylose. The oligosaccharide may be one or more sugars selected from the group consisting of cellobiose, maltose, and sucrose. Such CBP is low in cost and low in environmental load. In addition, the principle similar to CBP is utilized also in the production process of brewing sake, and in that case, it is also called parallel double fermentation. In this parallel double fermentation, saccharification and fermentation are performed in parallel.

ここで、木材や紙類などの木質系のバイオマスを酸糖化して得られる炭素源には、一般的にグルコースにくわえて、マンノース等が数%含まれる。酵母は、グルコースを好適に資化するが、マンノースに対する資化性は低い。一方、シロアミタケ属の担子菌は、酵母により資化することが困難なマンノースに対しても資化性を有するため、酵母による発酵後に残存するマンノースも資化することができる。そのため、木質系のバイオマスを糖酸化し、酵母およびシロアミタケ属の担子菌を組み合わせてアルコール発酵を行うことにより、資源のリサイクル効率およびアルコール生産効率を高めることができる。また、天然の酵母は、小麦フスマ等のバイオマスを直接的にエタノールに変換することはできない。これに対して、シロアミタケ属の担子菌は、後述するように、小麦フスマおよび稲わらから直接的にエタノールを生産することができる。したがって、実施の形態に係るアルコール生産方法においては、天然の酵母が利用することができないバイオマスからアルコールを直接的に生産することができる点でも、優位性および有用性に富むものである。   Here, carbon sources obtained by acid saccharification of woody biomass such as wood and paper generally contain several percent of mannose in addition to glucose. Yeast suitably assimilate glucose, but has low assimilation ability for mannose. On the other hand, the basidiomycetes belonging to the genus Shiroamitake have the ability to assimilate mannose which is difficult to assimilate with yeast, and therefore can also assimilate mannose remaining after fermentation with yeast. Therefore, resource recycling efficiency and alcohol production efficiency can be increased by sugar-oxidizing woody biomass and performing alcoholic fermentation by combining yeast and basidiomycetous basidiomycetes. Natural yeast cannot directly convert biomass such as wheat bran into ethanol. In contrast, basidiomycetous basidiomycetes can produce ethanol directly from wheat bran and rice straw, as will be described later. Therefore, the alcohol production method according to the embodiment is rich in superiority and usefulness in that alcohol can be produced directly from biomass that cannot be used by natural yeast.

図5は、実施の形態に係るシロアミタケ属の担子菌を用いた、未利用バイオマス資源の燃料用アルコールとしての再利用のサイクルを説明するための概念図である。このサイクルは、未利用バイオマス資源をシロアミタケ属の担子菌による糖化・発酵工程により効率よくアルコールに変換することができるため、バイオマスと燃料用アルコールとの間で資源の循環システムを構築することができる。そのため、地球環境保全および産業の発展を両立しうるエネルギー供給システムを構築することができる。   FIG. 5 is a conceptual diagram for explaining a cycle of reusing unused biomass resources as alcohol for fuel using the basidiomycetous basidiomycetes according to the embodiment. In this cycle, unused biomass resources can be efficiently converted to alcohol by the saccharification / fermentation process using basidiomycetous basidiomycetes, so a resource circulation system can be constructed between biomass and fuel alcohol. . Therefore, it is possible to construct an energy supply system that can achieve both global environmental conservation and industrial development.

また、実施の形態に係るアルコール飲料の生産方法によれば、アルコール生産効率および炭素源の資化性に優れるシロアミタケ属の担子菌を用いるため、アルコール飲料の生産方法の生産効率を向上し、炭素源の種類の幅を拡大することができる。   In addition, according to the method for producing an alcoholic beverage according to the embodiment, the production efficiency of the method for producing an alcoholic beverage is improved by using a basidiomycete genus Basidiomycete, which is excellent in alcohol production efficiency and assimilation of a carbon source. The range of source types can be expanded.

さらに、実施の形態に係るアルコール含有食品の生産方法によれば、アルコール生産効率および炭素源の資化性に優れるシロアミタケ属の担子菌を用いるため、アルコール含有食品の生産方法の生産効率を向上し、炭素源の種類の幅を拡大することができる。   Furthermore, according to the method for producing an alcohol-containing food according to the embodiment, the production efficiency of the method for producing an alcohol-containing food is improved because the basidiomycete belonging to the genus Shiroamitake, which is excellent in alcohol production efficiency and assimilation of the carbon source, is used. Can widen the range of carbon source types.

そして、実施の形態に係る種菌によれば、アルコール生産効率および炭素源の資化性に優れるシロアミタケ属の担子菌の菌糸を担体に担持させているため、菌類を用いて炭素源からアルコールを生成するための種菌として好適に用いることができる。   And, according to the inoculum according to the embodiment, the mycelia of the white basidiomycete belonging to the genus Shiroamitake, which are excellent in alcohol production efficiency and carbon source utilization, are supported on the carrier, so that alcohol is generated from the carbon source using fungi. Therefore, it can be suitably used as an inoculum.

以上、図面を参照して本発明の実施形態について述べたが、これらは本発明の例示であり、上記以外の様々な構成を採用することもできる。   As mentioned above, although embodiment of this invention was described with reference to drawings, these are the illustrations of this invention, Various structures other than the above are also employable.

以下、本発明を実施例によりさらに説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。ただし、実施例中に表示される%は、特に断りのない限り質量パーセントを示す。
[使用菌株]
表1の菌株を準備した。表1の各菌株の28S rDNA塩基配列を解析し、GenBank/DDBJ/EMBL等の塩基配列データベースに基づく相同性検索を行ったところ、データベースに登録されている28S rDNA塩基配列とそれぞれ100%の相同率を示した。
EXAMPLES Hereinafter, although an Example demonstrates this invention further, this invention is not limited to these. However,% displayed in the examples indicates mass percent unless otherwise specified.
[Used strain]
The strains in Table 1 were prepared. 28S rDNA nucleotide sequences of each strain in Table 1 were analyzed, and homology search was performed based on nucleotide sequence databases such as GenBank / DDBJ / EMBL. 100% homology with the 28S rDNA nucleotide sequences registered in the database. Showed the rate.

1)使用培地
使用培地としては、MYG培地もしくはT培地を用いた。下記に、各培地の基本的組成を示す。
MYG培地
グルコース* :0.4 %
Yeast extract :0.4 %
Malt extract :1.0 %
T培地
グルコース* :2.0 %
Yeast extract :1.0 %
KHPO :1.0 %
(NHSO :0.2 %
MgSO・7HO :0.05 %
*)グルコースについては、必要に応じて、他の炭素源に変更した。
1) Medium used MYG medium or T medium was used as the medium used. Below, the basic composition of each culture medium is shown.
MYG medium Glucose *: 0.4%
Yeast extract: 0.4%
Malt extract: 1.0%
T medium Glucose *: 2.0%
Yeast extract: 1.0%
KH 2 PO 4 : 1.0%
(NH 4 ) 2 SO 4 : 0.2%
MgSO 4 .7H 2 O: 0.05%
*) About glucose, it changed into the other carbon source as needed.

2)培養および菌体回収
図6は、カワラタケの培養方法を説明するための実験プロトコルである。まず、前培養ステップでは、カワラタケの平板培地から5mm四方の大きさの菌糸断片を切り取り、500ml容三角フラスコに入ったMYG培地50mlに加え、綿栓もしくはシリコ栓を用いて三角フラスコを好気状態にして、28℃で5〜7日間培養を行った。
2) Cultivation and microbial cell recovery FIG. 6 is an experimental protocol for explaining the cultivation method of Kawaratake. First, in the pre-culture step, a 5 mm square mycelium fragment was cut out from Kawaratake's plate medium, added to 50 ml of MYG medium in a 500 ml Erlenmeyer flask, and the Erlenmeyer flask was aerobic using a cotton stopper or a silico stopper. The culture was performed at 28 ° C. for 5 to 7 days.

次いで、本培養ステップでは、500ml容三角フラスコにT培地を50ml加え、無菌的にろ過、洗浄したカワラタケの前培養菌糸を接種し、シリコンゴム栓を用いて三角フラスコを密栓状態にして、28℃で静置培養(微好気的件下での培養)を行った。   Next, in the main culture step, 50 ml of T medium was added to a 500 ml Erlenmeyer flask, inoculated with pre-cultured mycelia of Kawaratake that was aseptically filtered and washed, and the Erlenmeyer flask was sealed with a silicon rubber stopper, and 28 ° C. Was subjected to stationary culture (culture under microaerobic conditions).

続いて、培養液の回収ステップでは、経時的に次の手順で回収を行った。すなわち、培養液をサンプリングし、遠心分離後、0.22μmのフィルターでろ過した。培養濾液pHの測定、HPLC分析、および活性測定して、その後、冷凍保存した。表1に記載のカワラタケ以外の各菌株についても、カワラタケの場合と同様の手順で培養およびサンプルの回収を行なった。   Subsequently, in the culture solution collection step, collection was performed over time according to the following procedure. That is, the culture solution was sampled, centrifuged, and filtered through a 0.22 μm filter. Culture filtrate pH measurement, HPLC analysis, and activity measurement were followed by cryopreservation. For each of the strains other than Kawaratake listed in Table 1, cultivation and sample collection were performed in the same procedure as in the case of Kawaratake.

3)HPLC分析
表1に記載の各菌株の培養濾液をHPLC分析した。その分析条件は以下に示すとおりである。
(HPLC分析条件)
キャピラリーカラム :Shodex SUGAR SP0810またはShodex SUGAR KS−801
キャピラリーサイズ :8.0mmID×300mmL
流量 :0.6ml/min
カラム温度 :80℃
抽出液 :脱気蒸留水
試料 :10μl
3) HPLC analysis The culture filtrate of each strain described in Table 1 was subjected to HPLC analysis. The analysis conditions are as follows.
(HPLC analysis conditions)
Capillary column: Shodex SUGAR SP0810 or Shodex SUGAR KS-801
Capillary size: 8.0mmID × 300mmL
Flow rate: 0.6 ml / min
Column temperature: 80 ° C
Extract liquid: Degassed distilled water Sample: 10 μl

4)グルコース以外の炭素源を用いた培養
T培地の炭素源であるグルコースに代わり、同濃度のフルクトース、マンノース、ガラクトース、セロビオース、マルトース、アラビノース、キシロース、スクロース、デンプン(Starch)、CMC(カルボキシメチルセルロース)、小麦フスマ(Wheat bran)、稲わら(Rice straw)、ボールミル処理後の稲わら(BM-Rice straw)を用いて、その資化性とエタノール生産性を確かめた。手順は2)および3)と同様である。なお、ボールミル処理は遊星ボールミルGokin planet M2-3F(ナガオシステム社製)でジルコニア容器とジルコニアボールにより、トータル4時間(10分稼働、10分休止)行った。
4) Cultivation using a carbon source other than glucose Instead of glucose, which is the carbon source of T medium, the same concentration of fructose, mannose, galactose, cellobiose, maltose, arabinose, xylose, sucrose, starch (Starch), CMC (carboxymethylcellulose) ), Wheat bran, rice straw, and rice straw after ball milling (BM-Rice straw), the assimilation and ethanol productivity were confirmed. The procedure is the same as 2) and 3). The ball mill treatment was performed for 4 hours (10 minutes operation, 10 minutes pause) with a planetary ball mill Gokin planet M2-3F (manufactured by Nagao System) using a zirconia container and zirconia balls.

上記1)〜4)の結果を表2および表3に示す。各数値は3回実験を行った結果の平均値である。   The results of the above 1) to 4) are shown in Table 2 and Table 3. Each numerical value is an average of the results of three experiments.

表2は、グルコースを基質としてアラゲカワラタケ(Trametes hirsuta)、カワラタケ(Trametes versicolor)を培養したときのエタノール生産率を、カビ(Rhizopus oryzae、Mucor corticolous)および酵母(Saccharomyces cerevisiae)と比較した表である。この表から、アラゲカワラタケやカワラタケがカビや酵母と比較して高いエタノール生産性を有していることがわかる。   Table 2 is a table comparing the ethanol production rate when cultivating Trametes hirsuta and Trametes versicolor with glucose as a substrate with mold (Rhizopus oryzae, Mucor corticolous) and yeast (Saccharomyces cerevisiae). . From this table, it can be seen that Aragekawaratake and Kawaratake have higher ethanol productivity than mold and yeast.

表3は、各種炭素源(20g/培地1L)を基質として、表1に記載の4種類の菌株(アラゲカワラタケ(Trametes hirsuta)、カワラタケ(Trametes versicolor)、シロアミタケ(Trametes suaveolens)、ヒラタケ(Pleurotus ostreatus)を5日間培養したときのエタノール生産量(g/培地1L)を表している。この表から、アラゲカワラタケ、カワラタケ、およびシロアミタケは、フルクトース、マンノース、ガラクトース、セロビオース、マルトース、アラビノース、キシロース、スクロース、デンプン(Starch)、CMC(カルボキシメチルセルロース)、小麦フスマ(Wheat bran)、稲わら(Rice straw)、およびボールミル処理後の稲わら(BM-Rice straw)を代謝することで、比較的高い濃度のエタノールを生産できることがわかる。このエタノール生産量は、特にグルコース、マンノース、セロビオース、デンプンで高い値を示した。   Table 3 shows various types of carbon sources (20 g / 1 L of medium) as substrates, and the four strains described in Table 1 (Trametes hirsuta, Trametes versicolor, White-faced bamboo (Trametes suaveolens), Pleurotus ostreatus) ) Is cultivated for 5 days (g / medium 1 L) From this table, it can be seen that, for example, Aragekawaratake, Kawaratake, and White-fly, fructose, mannose, galactose, cellobiose, maltose, arabinose, xylose, sucrose By metabolizing starch (Starch), CMC (carboxymethylcellulose), wheat bran (Rice straw), and rice straw after ball milling (BM-Rice straw) It can be seen that ethanol can be produced. Leucose, mannose, cellobiose and starch showed high values.

また、カワラタケ、アラゲカワラタケはキシロース、小麦フスマ、稲わら、およびボールミル処理後の稲わらを基質としたときに、他の菌株に比べて顕著に高いエタノール生産量を示した。特に、通常のキノコを用いた場合、キシロースを炭素源にして2g/Lを超える量のエタノールを生産することは困難であるにも関わらず、カワラタケが7.2g/L、アラゲカワラタケが3.9g/Lの高い生産量を示したことは驚くべき結果であった。キシロースは種々のバイオマスに多く含まれる成分であるため、カワラタケやアラゲカワラタケを用いれば従来法よりも効率よくエタノールを種々のバイオマスから生産できると考えられる。なお、同様の実験を複数回行なったところ、カワラタケによるキシロースからのエタノール生産量は高いときで8.0g/Lを超えることもあった。また、アラゲカワラタケを用いた場合のキシロース、小麦フスマ、稲わら、およびボールミル処理後の稲わらからのエタノール生産量は、高いときでカワラタケの場合の9割程度の数値を示すこともあった。   Moreover, Kawaratake and Aragekawaratake showed significantly higher ethanol production than other strains when xylose, wheat bran, rice straw and rice straw after ball milling were used as substrates. In particular, when ordinary mushrooms are used, it is difficult to produce ethanol in an amount exceeding 2 g / L using xylose as a carbon source, but Kawaratake is 7.2 g / L and Aragekawaratake is 3. It was a surprising result that it showed a high output of 9 g / L. Since xylose is a component that is abundantly contained in various biomasses, it is considered that ethanol can be produced from various biomasses more efficiently than conventional methods when using Kawaratake or Aragekawaratake. In addition, when the same experiment was conducted a plurality of times, the amount of ethanol produced from xylose by Kawaratake was sometimes higher than 8.0 g / L. In addition, the amount of ethanol produced from xylose, wheat bran, rice straw, and rice straw after ball milling when using Aragekawaratake was high and sometimes showed a value of about 90% of that of Kawaratake.

また、アラゲカワラタケ、カワラタケ、およびシロアミタケを用いた場合において、稲わらをボールミル処理しない場合(3.0、3.3、1.5)でも、ボールミル処理をした場合(3.4、3.7、1.7)に近い生産性が見られた。通常、ボールミルはセルロースの骨格を破壊することで糖化を促進させると考えられており、2倍くらいの効率でエタノール生産性を促進すると言われている。一方で本実施例においてアラゲカワラタケ、カワラタケ、およびシロアミタケを用いた場合には、これらの菌株がセルロースを分解したために、ボールミル処理の前後で生産性があまり変化しなかったと考えられる。従って、アラゲカワラタケ、カワラタケ、およびシロアミタケを用いたエタノール生産方法は、ボールミルのような特殊な破砕工程を行なわなくても効率的にエタノールを生産できる、優れた方法であるといえる。特に、ボールミルは大きなエネルギーを必要とする操作なので、省エネルギーの観点からも上記方法の意義は大きい。   In addition, when using Arakawakawatake, Kawaratake, and white mushroom, even when the rice straw is not ball milled (3.0, 3.3, 1.5), it is treated with the ball mill (3.4, 3.7). Productivity close to 1.7) was observed. Usually, the ball mill is considered to promote saccharification by destroying the skeleton of cellulose, and is said to promote ethanol productivity with twice the efficiency. On the other hand, it is considered that the productivity did not change so much before and after the ball mill treatment when using agaricus mushrooms, mushrooms and white mushrooms in this example, because these strains decomposed cellulose. Therefore, it can be said that the ethanol production method using Algae kawatake, Kawaratake, and Shiroamitake is an excellent method that can produce ethanol efficiently without performing a special crushing step such as a ball mill. In particular, since the ball mill is an operation that requires a large amount of energy, the above method is significant from the viewpoint of energy saving.

5)微好気培養、好気培養および嫌気培養
アラゲカワラタケ、カワラタケ、およびシロアミタケをグルコースを炭素源とするT培地で、微好気、好気、または嫌気培養を行い、エタノール生産性を調査した。微好気条件は上記2)と同様である。好気条件は上記2)の培養手順において、シリコンゴム栓に変えて、通気性を有するシリコ栓で蓋をして培養した。嫌気条件は上記2)の培養手順において、窒素ガスを充填してシリコンゴム栓で密栓状態にすることにより行った。その結果、アラゲカワラタケ、カワラタケ、およびシロアミタケは、微好気性および嫌気性条件下で培養したときに、同程度のエタノール生産量を示した。またアラゲカワラタケおよびカワラタケは、好気性条件下の場合には、微好気性条件下の7割程度のエタノール生産量を示した。
5) Microaerobic culture, aerobic culture, and anaerobic culture Microalbic, aerobic, or anaerobic culture was carried out in T medium using glucose as a carbon source. . The microaerobic condition is the same as 2) above. The aerobic condition was changed to the silicone rubber stopper in the culture procedure of 2) above, and the culture was carried out with a lid with a breathable silico stopper. Anaerobic conditions were performed in the culture procedure of 2) above by filling nitrogen gas and sealing with a silicon rubber stopper. As a result, agaricus mushroom, agaricus mushroom and white mushrooms showed similar ethanol production when cultured under microaerobic and anaerobic conditions. In addition, agaricus mushrooms and mushrooms showed an ethanol production amount of about 70% under microaerobic conditions under aerobic conditions.

6)バイオマスからの直接的なエタノール生産性の検討
カワラタケが、糖化処理を行うことなく、バイオマスから直接的に単一の工程によりエタノールを生産することができるか否かについて、またその生産性について、小麦フスマ培地および稲わら培地を炭素源として用いて検討を行った。
6) Examination of direct ethanol productivity from biomass Whether or not Kawaratake can produce ethanol directly from biomass in a single step without saccharification, and its productivity The wheat bran medium and the rice straw medium were used as carbon sources.

小麦フスマは、製粉後に残った外皮と胚芽、胚乳の一部が混ざったもので、製粉時に30%ほど発生し、不溶性食物繊維としてヘミセルロース、セルロースおよびリグニンを含んでいる。一般的な小麦フスマの組成は、グルコース35.7%、キシロース17.9%、リグニン他46.4%である。小麦フスマは、その大半が家畜の飼料として利用されているのが現状であるが、国内の飼料の需要が伸び悩んでいることや、食品リサイクル法の実施に伴い、他の食品残渣の飼料化が行われることなどから、今後は小麦フスマの飼料としての需要が低下し、その価格が下落することも考えられる。そのため、飼料用以外での小麦フスマの有効利用が重要な課題となっていた(例えば、[樋口誠一、高橋学、山路明俊、「小麦由来機能性成分の新規利用技術の開発」、埼玉県産業技術総合センター研究報告 第5巻(2007)]参照)。   Wheat bran is a mixture of the outer skin, germ, and endosperm remaining after milling. It is generated about 30% during milling and contains hemicellulose, cellulose and lignin as insoluble dietary fibers. The composition of common wheat bran is 35.7% glucose, 17.9% xylose, 46.4% lignin and others. Most of the wheat bran is currently used as livestock feed, but due to sluggish domestic demand for feed and the implementation of the Food Recycling Law, other food residues are becoming feedstuffs. In the future, the demand for wheat bran feed will decline and the price may decline. For this reason, effective use of wheat bran other than for feed has become an important issue (for example, [Seiichi Higuchi, Manabu Takahashi, Akitoshi Yamaji, “Development of New Utilization Technology for Wheat-derived Functional Components”, Saitama Sangyo Refer to Technical Center Research Report Vol. 5 (2007)].

また、稲わらは稲の茎を乾燥させたもので、不溶性食物繊維としてヘミセルロース、セルロースおよびリグニンを含んでいる。一般的な稲わらの組成は、グルコース29.4%、キシロース15.6%、リグニン他55%である。   Rice straw is dried rice stalk and contains hemicellulose, cellulose and lignin as insoluble dietary fibers. The general rice straw composition is 29.4% glucose, 15.6% xylose, 55% lignin and others.

なお、小麦フスマ培地および稲わら培地は、上記1)のT培地において、グルコースを小麦フスマまたは稲わら培地に代えた以外は、基本的な組成は同様である。   The wheat bran medium and the rice straw medium have the same basic composition except that glucose is replaced with wheat bran or rice straw medium in the T medium of 1) above.

上記6)の結果、20gの小麦フスマから、培養4日後に5.2gのエタノール生産を確認した。これは、小麦フスマに含まれる発酵に利用可能なグルコースおよびキシロースの総量10.7gから、収率95%で変換されたと見積もられる。なお、上記収率とは小麦フスマに含まれるグルコースおよびキシロースが、全てエタノール生産に利用されたと仮定したときのエタノール量を100%として計算している。なお、グルコース100gからエタノールが生産されるときの反応は、C12(100g)→2COH(51.1g)+CO(48.9g)で表すことができる。キシロース100gからエタノールが生産されるときの反応は、3C10(100g)→5COH(51.1g)+5CO(48.9g)で表すことができる。仮に、1トンの小麦フスマがあった場合、535kg(発酵に利用可能な糖)×0.51×0.95(変換率)=259.2kg(328L)のエタノールが回収可能である。 As a result of the above 6), 5.2 g of ethanol was confirmed from 20 g of wheat bran after 4 days of culture. This is estimated to have been converted in a yield of 95% from the total amount of glucose and xylose available for fermentation contained in wheat bran, 10.7 g. The above yield is calculated assuming that the amount of ethanol is 100% when it is assumed that glucose and xylose contained in wheat bran are all used for ethanol production. The reaction when ethanol is produced from 100 g of glucose can be represented by C 6 H 12 O 6 (100 g) → 2C 2 H 5 OH (51.1 g) + CO 2 (48.9 g). The reaction when ethanol is produced from 100 g of xylose can be expressed as 3C 5 H 10 O 5 (100 g) → 5C 2 H 5 OH (51.1 g) + 5CO 2 (48.9 g). If there is 1 ton of wheat bran, 535 kg (sugar that can be used for fermentation) × 0.51 × 0.95 (conversion rate) = 259.2 kg (328 L) of ethanol can be recovered.

また、20gの稲わらから、培養3日後に3.3gのエタノール生産を確認した。これは、稲わらに含まれる発酵に利用可能なグルコースおよびキシロースの総量9.0gから、収率72%で変換されたと見積もられる。仮に、1トンの稲わらがあった場合、450kg(発酵に利用可能な糖)×0.51×0.72(変換率)=165.2kg(209L)のエタノールが回収可能である。   In addition, 3.3 g of ethanol was confirmed after 20 days of cultivation from 20 g of rice straw. This is estimated to have been converted in a yield of 72% from 9.0 g of the total amount of glucose and xylose available for fermentation contained in rice straw. If 1 ton of rice straw is present, 450 kg (sugar usable for fermentation) × 0.51 × 0.72 (conversion rate) = 165.2 kg (209 L) of ethanol can be recovered.

また通常、硫酸等で前処理を行ない、従来の遺伝子組換え菌を用いて稲わらからエタノールを作った場合でも、収率は80%未満である。一方で、カワラタケを用いれば、硫酸等の化学処理をしなくても、従来の方法に近い72%という収率でエタノールが生産できることがわかった。   In addition, even when ethanol is produced from rice straw using a conventional genetically modified bacterium and usually pretreated with sulfuric acid or the like, the yield is less than 80%. On the other hand, it was found that if Kawaratake is used, ethanol can be produced with a yield of 72%, which is close to the conventional method, without chemical treatment such as sulfuric acid.

さらに、カワラタケをアラゲカワラタケに変えて、同様の手順で小麦フスマまたは稲わらからの直接的なエタノール生産性を調査した。その結果、カワラタケを用いた場合に近い収率を示した。   Furthermore, the direct productivity of ethanol from wheat bran or rice straw was investigated in the same manner by changing the moth bamboo to the moth moth bamboo. As a result, the yield was close to that obtained when Kawaratake was used.

7)生ゴミからの直接的なエタノール生産性の検討
生ゴミを炭素源として、アラゲカワラタケ、カワラタケ、およびシロアミタケのエタノール生産能を検討した。生ゴミは、国立大学法人鳥取大学内(鳥取県鳥取市湖山町南4丁目101番地)の食堂において、生ゴミとして処分されたものをその日のうちに入手した。その後、生ゴミは4℃で保管した。この生ゴミには、野菜、果物、肉、魚、米飯、コーン等が含まれている。次に、生ゴミに水を加えて、生ゴミ培地を調製した(pHは未調整)。生ゴミ培地の調製は、生ゴミを食堂から入手後24時間以内に行った。この生ゴミ培地1L当たりの生ゴミは385gである。また、生ゴミの全糖量は約6%(23.1g)として見積もった。
7) Examination of direct ethanol productivity from raw garbage Using the raw garbage as a carbon source, the ethanol production ability of Aragekawaratake, Kawaratake, and Shiroamitake was examined. The garbage that was disposed of as garbage was obtained on the same day at the cafeteria in the national university corporation Tottori University (4-1, Koyamacho, Tottori City, Tottori Prefecture, 101-101). Thereafter, the garbage was stored at 4 ° C. This raw garbage contains vegetables, fruits, meat, fish, cooked rice, corn and the like. Next, water was added to the garbage to prepare a garbage medium (pH not adjusted). The preparation of the garbage medium was performed within 24 hours after the garbage was obtained from the cafeteria. The amount of garbage per liter of the garbage medium is 385 g. In addition, the total sugar amount of raw garbage was estimated to be about 6% (23.1 g).

上記2)〜3)の手順において、T培地を生ゴミ培地に変えて、エタノール生産量を評価した。その結果を表4に示す。なお、表中の値はエタノール生産量(g/L)を示す。各数値は3回実験を行った平均値である。   In the above procedures 2) to 3), the ethanol production was evaluated by changing the T medium to a garbage medium. The results are shown in Table 4. In addition, the value in a table | surface shows ethanol production amount (g / L). Each numerical value is an average of three experiments.

表4に示すとおり、カワラタケ、アラゲカワラタケ、およびシロアミタケを用いたことによって、別途糖化処理を行うことなく単一の工程で、生ゴミから高い濃度のエタノールを生産できた。具体的には、カワラタケの場合、385gの生ごみから培養5日後に8.4gのエタノール生産を確認した。これは、生ごみに含まれる全糖量23.1g(約6%含有として)から、エタノールが収率71%で変換されたと見積もられる。   As shown in Table 4, high concentrations of ethanol could be produced from raw garbage in a single step without using a separate saccharification treatment by using Kawaratake, Aragekawaratake and Shiroamitake. Specifically, in the case of Kawaratake, 8.4 g of ethanol was confirmed from 385 g of garbage after 5 days of culture. This is estimated that ethanol was converted in a yield of 71% from the total sugar amount of 23.1 g (assuming about 6% content) contained in the garbage.

平均的な生ゴミの含水量は77±4%、全糖量は9±4%であることが知られている。従って、1トンの生ゴミがあったとすると、90kg(全糖量)×0.51(Glucoseを基準)×0.71(変換率)=33kg(41L)のエタノールが回収可能である。   It is known that the average water content of raw garbage is 77 ± 4% and the total sugar content is 9 ± 4%. Accordingly, if there is 1 ton of garbage, 90 kg (total sugar amount) × 0.51 (based on glucose) × 0.71 (conversion rate) = 33 kg (41 L) of ethanol can be recovered.

生ゴミは、日本では年間約2000万トンが排出され、そのうち約1700万トンがリサイクルされていない。人口30万〜40万人の都市の排出量としては、1日あたり約60トンと見積もられる。通常、ゴミ焼却費用は1トンあたり10,000円以上を要す。仮に、従来法で生ゴミからエタノール生産を試みたとしても、糖化と発酵を単一工程で行うことができず、コスト、エネルギー、作業時間が嵩むという問題がある。一方で、上記の通りカワラタケ、アラゲカワラタケ、またはシロアミタケを利用すれば、生ゴミからのエタノール生産において、糖化と発酵を単一工程で行えることがわかった。また、使用する生ゴミは、水と混ぜるだけでよく、pH調整等の特別な前処理を必要としなかった。従って、カワラタケ、アラゲカワラタケ、またはシロアミタケを利用した生ゴミからのエタノール生産方法は、これまでにない低コストかつ低環境負荷型のエタノール生産方法といえる。   In Japan, about 20 million tons of garbage is discharged annually, of which about 17 million tons are not recycled. Emissions from cities with a population of 300,000 to 400,000 are estimated to be about 60 tons per day. Normally, the incineration cost is more than 10,000 yen per ton. Even if ethanol production from garbage is attempted by a conventional method, saccharification and fermentation cannot be performed in a single step, and there is a problem that costs, energy, and work time increase. On the other hand, it was found that saccharification and fermentation can be performed in a single step in the production of ethanol from garbage by using Kawaratake, Aragekawaratake, or Shiroamitake as described above. Moreover, the raw garbage to be used only needs to be mixed with water, and no special pretreatment such as pH adjustment was required. Therefore, the ethanol production method from raw garbage using Kawaratake, Aragekawaratake or Shiroamitake can be said to be an unprecedented low cost and low environmental impact type ethanol production method.

8)市販デンプン系食品からの直接的なエタノール生産性の検討
市販デンプン系食品を炭素源として、カワラタケのエタノール生産能を検討した。まず、市販のうどん(生麺)、中華そば(生麺)、または米飯に水を加えて、3種類の市販デンプン系食品培地を調製した(pHは未調整)。いずれも培地も、培地1L当たりの市販デンプン系食品含量は235gである。全糖量は、うどんの場合は約24%(57.1g)、中華そばの場合は約28%(66.4g)、米飯の場合は約37%(88.1g)として見積もった。なお、上記で使用した市販デンプン系食品は、いずれも消費期限から2日程度過ぎたものを使用した。
8) Examination of direct ethanol productivity from commercially available starch-based foods Ethanol-producing ability of Kawaratake was examined using commercially available starch-based foods as a carbon source. First, water was added to commercially available udon (raw noodles), Chinese noodles (raw noodles), or cooked rice to prepare three types of commercially available starch food media (pH not adjusted). In any medium, the commercially available starch-based food content per liter of the medium is 235 g. The total sugar amount was estimated as about 24% (57.1 g) for udon, about 28% (66.4 g) for Chinese soba noodles, and about 37% (88.1 g) for cooked rice. In addition, as for the commercially available starch-type food used above, all used what passed about 2 days from the expiration date.

上記2)〜3)の手順において、T培地を3種類の市販デンプン系食品培地に変えて、エタノール生産量を評価した。その結果を表5に示す。なお、表中の値はエタノール生産量(g/L)を示す。各数値は3回実験を行った平均値である。   In the above procedures 2) to 3), the ethanol production was evaluated by changing the T medium to three types of commercially available starch-based food medium. The results are shown in Table 5. In addition, the value in a table | surface shows ethanol production amount (g / L). Each numerical value is an average of three experiments.

表5に示すとおり、カワラタケを用いたことによって、別途糖化処理を行うことなく単一の工程で、市販デンプン系食品から高い濃度のエタノールを生産できた。具体的には、238gのうどんから、培養21日後に28.8gのエタノール生産を確認した。また、238gの中華そばから、培養21日後に34.8gのエタノール生産を確認した。また、238gの米飯から、培養21日後に37.6gのエタノール生産を確認した。これらの結果はいずれも、含有する糖に対し、エタノールへの変換率が80%以上であったことを示している。以上の通り、カワラタケを用いたことによって、商品として価値のなくなった食品を無駄にせず、効率的にエタノールを生産することができた。また、使用する食品は、pH調整等の特別な前処理を必要としなかった。   As shown in Table 5, by using Kawaratake, a high concentration of ethanol could be produced from a commercially available starch-based food in a single step without any additional saccharification treatment. Specifically, from 238 g of udon, 28.8 g of ethanol was confirmed after 21 days of culture. In addition, production of 34.8 g of ethanol was confirmed from 238 g of Chinese buckwheat after 21 days of culture. In addition, 37.6 g of ethanol was confirmed after culturing 21 days from 238 g of cooked rice. All of these results indicate that the conversion rate to ethanol was 80% or more with respect to the contained sugar. As described above, by using Kawaratake, it was possible to efficiently produce ethanol without wasting food that had lost its value as a product. Moreover, the food to be used did not require special pretreatment such as pH adjustment.

9)牛乳からの直接的なエタノール生産性の検討
牛乳を炭素源として、カワラタケのエタノール生産能を検討した。まず、市販の牛乳に水を容量比1:1で加えて、牛乳培地を調製した(pHは未調整)。この牛乳培地1L当たりのラクトースの量は23gである。上記牛乳は、消費期限から2日程度過ぎたものを使用した。
9) Examination of direct ethanol productivity from milk We examined the ethanol production ability of Kawaratake using milk as a carbon source. First, water was added to commercially available milk at a volume ratio of 1: 1 to prepare a milk medium (pH not adjusted). The amount of lactose per liter of this milk medium is 23 g. The milk used was about 2 days after the expiration date.

上記2)〜3)の手順において、T培地を牛乳培地に変えて、エタノール生産量を評価した。その結果を表6に示す。なお、表中の値はエタノール生産量(g/L)を示す。各数値は2回実験を行った平均値である。括弧内の数値は培地中のラクトース残量(g/L)を示す。   In the procedures 2) to 3), the T medium was changed to a milk medium, and the ethanol production was evaluated. The results are shown in Table 6. In addition, the value in a table | surface shows ethanol production amount (g / L). Each numerical value is an average value of two experiments. The numbers in parentheses indicate the remaining amount of lactose (g / L) in the medium.

表6に示すとおり、カワラタケを用いたことによって、別途糖化処理を行うことなく単一の工程で、牛乳から高い濃度のエタノールを生産できた。具体的には、1Lの牛乳培地から、8日後に9.1gのエタノール生産を確認した。これは、牛乳に含まれるラクトース23gから、エタノールが収率70%以上で変換されたと見積もられる。以上の通り、カワラタケを用いたことによって、商品として価値のなくなった牛乳を無駄にせず、効率的にエタノールを生産することができた。また、使用する牛乳は、pH調整や乳脂肪分除去等の特別な前処理を必要としなかった。   As shown in Table 6, by using Kawaratake, a high concentration of ethanol could be produced from milk in a single step without separate saccharification treatment. Specifically, 9.1 g of ethanol was confirmed after 8 days from 1 L of milk medium. This is estimated that ethanol was converted at a yield of 70% or more from 23 g of lactose contained in milk. As described above, by using Kawaratake, it was possible to efficiently produce ethanol without wasting milk that was no longer valuable as a product. Moreover, the milk to be used did not require special pretreatment such as pH adjustment or milk fat removal.

<結果の考察>
以上の結果を踏まえて考察する。本実施例のアルコール生産方法によれば、バイオマスを加水分解して糖を生成(糖化)する工程を行うことなく、単一の担子菌で、バイオマスから直接的に単一工程で効率的にエタノールを生産することができる。またこの生産方法は、従来法とは異なり、酸等による糖化処理を行わなくてもよいため、これに伴う環境面、設備面、作業面およびコスト面等での負荷が低減される。またこの生産方法によれば、ボールミル処理を行わなくても、ボールミル処理を行った場合に近いエタノール生産性が得られる。従って、ボールミル処理のような破砕工程にかかるエネルギーを削減できる。
<Consideration of results>
Considering the above results. According to the alcohol production method of the present example, ethanol is efficiently produced in a single process directly from biomass with a single basidiomycete without performing a process of hydrolyzing biomass to produce sugar (saccharification). Can be produced. In addition, unlike the conventional method, this production method does not require saccharification treatment with an acid or the like, so that the environmental, facility, work, and cost burdens associated with this are reduced. Further, according to this production method, ethanol productivity close to that obtained when the ball mill treatment is performed can be obtained without performing the ball mill treatment. Therefore, energy required for a crushing process such as ball milling can be reduced.

また、カワラタケおよびアラゲカワラタケを用いたアルコール生産方法によれば、キシロースを効率的に炭素源として利用できる。これにより、従来法よりも効率的にバイオマスからエタノールを生産することが可能になる。   Moreover, according to the alcohol production method using Kawaratake and Aragekawaratake, xylose can be efficiently used as a carbon source. This makes it possible to produce ethanol from biomass more efficiently than the conventional method.

以上、本発明を実施例に基づいて説明した。この実施例はあくまで例示であり、種々の変形例が可能なこと、またそうした変形例も本発明の範囲にあることは当業者に理解されるところである。   In the above, this invention was demonstrated based on the Example. It is to be understood by those skilled in the art that this embodiment is merely an example, and that various modifications are possible and that such modifications are within the scope of the present invention.

例えば、上述の実施例では、炭素源としてT培地、小麦フスマ培地、および稲わら培地等を含有する培地を用いているが、他の炭素源も同様に利用可能である。具体的には、木質系のバイオマスなどを炭素源として用いることもできる。   For example, in the above-described embodiment, a medium containing T medium, wheat bran medium, rice straw medium, or the like is used as the carbon source, but other carbon sources can be used as well. Specifically, woody biomass can be used as a carbon source.

以上のように、本発明で用いる担子菌は、アルコール生産効率および炭素源の資化性に優れるため、アルコール生産効率を向上し、アルコール生産方法、アルコール飲料の生産方法、アルコール含有食品の生産方法およびそれらに用いる種菌等として有用である。   As described above, the basidiomycete used in the present invention is superior in alcohol production efficiency and carbon source assimilation, so that alcohol production efficiency is improved, an alcohol production method, an alcohol beverage production method, and an alcohol-containing food production method. It is useful as an inoculum for them.

200 種菌
202 容器
204 蓋
206 菌糸
208 おがくず
300 種菌
302 容器
304 木材チップ
306 菌糸
400 種菌
402 容器
404 蓋
406 菌糸
408 液体培地
200 Inoculum 202 Container 204 Lid 206 Hypha 208 Sawdust 300 Inoculum 302 Container 304 Wood chip 306 Hypha 400 Inoculum 402 Container 404 Lid 406 Hypha 408 Liquid medium

Claims (23)

シロアミタケ(Trametes)属の担子菌を用いて、炭素源からアルコールを生成する、アルコール生産方法。   A method for producing alcohol, wherein a basidiomycete belonging to the genus Trametes is used to produce alcohol from a carbon source. 前記担子菌が、アラゲカワラタケ(Trametes hirsuta)、カワラタケ(Trametes versicolor)、およびシロアミタケ(Trametes suaveolens)からなる群から選ばれる1種以上の担子菌を含む、請求項1に記載のアルコール生産方法。   The alcohol production method according to claim 1, wherein the basidiomycete comprises one or more basidiomycetes selected from the group consisting of Trametes hirsuta, Trametes versicolor, and Trametes suaveolens. 前記担子菌を用いて、前記炭素源を発酵させることによりアルコールを生成する、請求項1または2に記載のアルコール生産方法。   The alcohol production method of Claim 1 or 2 which produces | generates alcohol by fermenting the said carbon source using the said basidiomycete. 前記炭素源が糖を含む、請求項1乃至3いずれかに記載のアルコール生産方法。   The method for producing alcohol according to claim 1, wherein the carbon source contains sugar. 前記炭素源が、フスマ、稲わら、セルロース、木材、おがくず、紙類、パルプ、わら、もみ殻、生ゴミ、食品、乳系飲料、廃棄乳系飲料、農業残渣、バガス、刈り草、および雑草類からなる群より選ばれる一種以上を含む、請求項1乃至4いずれかに記載のアルコール生産方法。   The carbon source is bran, rice straw, cellulose, wood, sawdust, paper, pulp, straw, rice husk, raw garbage, food, milk beverage, waste milk beverage, agricultural residue, bagasse, cut grass, and weed The alcohol production method according to any one of claims 1 to 4, comprising one or more selected from the group consisting of catechols. 前記炭素源が、生ゴミである、請求項1〜5いずれかに記載のアルコール生産方法。   The alcohol production method according to claim 1, wherein the carbon source is raw garbage. 前記炭素源が、廃棄乳系飲料である、請求項1〜5いずれかに記載のアルコール生産方法。   The alcohol production method according to claim 1, wherein the carbon source is a waste milk-based beverage. 前記担子菌が前記炭素源を糖化することにより糖を生成する工程と、
前記担子菌が糖化により生成された前記糖を発酵することによりアルコールを生成する工程と、
を含む、請求項1乃至7いずれかに記載のアルコール生産方法。
The basidiomycete saccharifies the carbon source to produce sugar;
The basidiomycete produces alcohol by fermenting the sugar produced by saccharification;
The method for producing alcohol according to claim 1, comprising:
前記糖化と前記発酵が、同一容器で並行して行われる、請求項8に記載のアルコール生産方法。   The alcohol production method according to claim 8, wherein the saccharification and the fermentation are performed in parallel in the same container. 前記炭素源が、グルコース、フルクトース、マンノース、ガラクトース、セロビオース、マルトース、アラビノース、キシロース、およびスクロースからなる群より選ばれる一種以上の糖を含む、請求項1乃至7いずれかに記載のアルコール生産方法。   The alcohol production method according to any one of claims 1 to 7, wherein the carbon source contains one or more sugars selected from the group consisting of glucose, fructose, mannose, galactose, cellobiose, maltose, arabinose, xylose, and sucrose. 統合バイオプロセスによってアルコールを生成する、請求項1乃至10いずれかに記載のアルコール生産方法。   The alcohol production method according to any one of claims 1 to 10, wherein alcohol is produced by an integrated bioprocess. 前記統合バイオプロセスが、前記担子菌を用いて前記炭素源に含まれるリグニンを分解する工程を含む、請求項11に記載のアルコール生産方法。   The alcohol production method according to claim 11, wherein the integrated bioprocess includes a step of degrading lignin contained in the carbon source using the basidiomycete. 前記統合バイオプロセスが、前記担子菌を用いて前記炭素源に含まれるセルロースおよびヘミセルロースを分解する工程を含む、請求項11または12に記載のアルコール生産方法。   The alcohol production method according to claim 11 or 12, wherein the integrated bioprocess includes a step of decomposing cellulose and hemicellulose contained in the carbon source using the basidiomycete. 前記統合バイオプロセスは、
前記担子菌を用いてリグニン、セルロース、およびヘミセルロースを分解し、単糖またはオリゴ糖を生成する工程と、
前記担子菌を用いて前記単糖または前記オリゴ糖を発酵する工程と、
を含む、請求項11乃至請求項13に記載のアルコール生産方法。
The integrated bioprocess is:
Decomposing lignin, cellulose, and hemicellulose using the basidiomycetes to produce monosaccharides or oligosaccharides;
Fermenting the monosaccharide or the oligosaccharide using the basidiomycete,
The method for producing alcohol according to claim 11, comprising:
前記単糖がヘキソースまたはペントースを含み、
前記オリゴ糖がセロビオース、マルトース、およびスクロースからなる群より選ばれる一種以上の糖を含む、
請求項14に記載のアルコール生産方法。
The monosaccharide comprises hexose or pentose;
The oligosaccharide includes one or more sugars selected from the group consisting of cellobiose, maltose, and sucrose;
The alcohol production method according to claim 14.
前記単糖がグルコース、フルクトース、マンノース、ガラクトース、アラビノース、およびキシロースからなる群より選ばれる一種以上の糖を含む、請求項15に記載のアルコール生産方法。   The alcohol production method according to claim 15, wherein the monosaccharide includes one or more sugars selected from the group consisting of glucose, fructose, mannose, galactose, arabinose, and xylose. 前記担子菌がアラゲカワラタケまたはカワラタケである、請求項1乃至16いずれかに記載のアルコール生産方法。   The alcohol production method according to any one of claims 1 to 16, wherein the basidiomycete is Aragekawaratake or Kawaratake. 前記アラゲカワラタケまたはカワラタケを用いてペントースからアルコールを生成する、請求項17に記載のアルコール生産方法。   The alcohol production method of Claim 17 which produces | generates alcohol from a pentose using the said Alage Kawaratake or Kawaratake. 前記ペントースがキシロースである、請求項18に記載のアルコール生産方法。   The alcohol production method according to claim 18, wherein the pentose is xylose. 前記アルコールが、エタノールを含む、請求項1から19に記載のアルコール生産方法。   The alcohol production method according to claim 1, wherein the alcohol includes ethanol. シロアミタケ属の担子菌を用いて、炭素源からアルコールを含有する液体を生成する、アルコール飲料の生産方法。   A method for producing an alcoholic beverage, comprising using a basidiomycete basidiomycete to produce a liquid containing alcohol from a carbon source. シロアミタケ属の担子菌を用いて、炭素源からアルコールを含有する組成物を生成する、アルコール含有食品の生産方法。   A method for producing an alcohol-containing food, comprising using a basidiomycete basidiomycete to produce a composition containing alcohol from a carbon source. シロアミタケ属の担子菌の菌糸と、
菌糸を担持する担体と、
を備えることを特徴とする、シロアミタケ属の担子菌を用いて炭素源からアルコールを生成するための種菌。
Hyphae of basidiomycetes belonging to the genus Shiroamitake,
A carrier carrying mycelia;
An inoculum for producing alcohol from a carbon source using a basidiomycete basidiomycete, comprising:
JP2011160196A 2010-08-09 2011-07-21 Development of system for efficient ethanol production from biomass using mushroom Pending JP2012055307A (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2011160196A JP2012055307A (en) 2010-08-09 2011-07-21 Development of system for efficient ethanol production from biomass using mushroom

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2010178504 2010-08-09
JP2010178504 2010-08-09
JP2011160196A JP2012055307A (en) 2010-08-09 2011-07-21 Development of system for efficient ethanol production from biomass using mushroom

Publications (1)

Publication Number Publication Date
JP2012055307A true JP2012055307A (en) 2012-03-22

Family

ID=46053157

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2011160196A Pending JP2012055307A (en) 2010-08-09 2011-07-21 Development of system for efficient ethanol production from biomass using mushroom

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP2012055307A (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2017518026A (en) * 2014-02-27 2017-07-06 イー・アイ・デュポン・ドウ・ヌムール・アンド・カンパニーE.I.Du Pont De Nemours And Company Enzymatic hydrolysis of disaccharides and oligosaccharides using alpha-glucosidase enzyme

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2001286275A (en) * 2000-04-06 2001-10-16 Mukogawa Gakuin Method for producing sake and sake obtained by the same
JP2001286276A (en) * 2000-04-06 2001-10-16 Mukogawa Gakuin Method for producing alcoholic beverage and alcoholic beverage obtained by the same
JP2001286274A (en) * 2000-04-06 2001-10-16 Mukogawa Gakuin Method for producing wine and wine obtained by the same
JP2001286273A (en) * 2000-04-06 2001-10-16 Mukogawa Gakuin Method for producing beer and beer obtained by the same
US20070231869A1 (en) * 2003-12-01 2007-10-04 Swetree Technologies Fermentation Process, Starter Culture and Growth Medium

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2001286275A (en) * 2000-04-06 2001-10-16 Mukogawa Gakuin Method for producing sake and sake obtained by the same
JP2001286276A (en) * 2000-04-06 2001-10-16 Mukogawa Gakuin Method for producing alcoholic beverage and alcoholic beverage obtained by the same
JP2001286274A (en) * 2000-04-06 2001-10-16 Mukogawa Gakuin Method for producing wine and wine obtained by the same
JP2001286273A (en) * 2000-04-06 2001-10-16 Mukogawa Gakuin Method for producing beer and beer obtained by the same
US20070231869A1 (en) * 2003-12-01 2007-10-04 Swetree Technologies Fermentation Process, Starter Culture and Growth Medium

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
JPN6015007989; Antonie Van Leeuwenhoek, 1999, 75(3), pp.191-199 *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2017518026A (en) * 2014-02-27 2017-07-06 イー・アイ・デュポン・ドウ・ヌムール・アンド・カンパニーE.I.Du Pont De Nemours And Company Enzymatic hydrolysis of disaccharides and oligosaccharides using alpha-glucosidase enzyme
JP2017518025A (en) * 2014-02-27 2017-07-06 イー・アイ・デュポン・ドウ・ヌムール・アンド・カンパニーE.I.Du Pont De Nemours And Company Enzymatic hydrolysis of disaccharides and oligosaccharides using alpha-glucosidase enzyme

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Dave et al. A critical review on production of bioethanol from macroalgal biomass
JP6173346B2 (en) Biomass material processing
Okamoto et al. Direct ethanol production from starch, wheat bran and rice straw by the white rot fungus Trametes hirsuta
Elisashvili et al. Lignocellulose-degrading enzyme production by white-rot Basidiomycetes isolated from the forests of Georgia
Srivastava et al. Application of cellulases in biofuels industries: an overview
Eshaq et al. Production of bioethanol from next generation feed-stock alga Spirogyra species
Roukas et al. From food industry wastes to second generation bioethanol: a review
Ebrahimian et al. Efficient coproduction of butanol, ethanol, and biohydrogen from municipal solid waste through a cocultivated biorefinery
Abdeshahian et al. Valorization of lignocellulosic biomass and agri-food processing wastes for production of glucan polymer
CN102174410A (en) Stain for producing heat-resisting and acid-resisting cellulase with high yield and new method for fermenting cellulosic ethanol
Elida et al. Efficiency of cellulase production using coffee pulp waste under solid state fermentation by Aspergillus sp. VT12
Pradechboon et al. Alkali pretreatment and enzymatic saccharification of blue-green alga Nostochopsis lobatus for bioethanol production
KR101075602B1 (en) Mutant Strain of Brettanomyces custersii and Method of Ethanol Production Using the Same
JP5610415B2 (en) Alcohol production method, alcoholic beverage production method, alcohol-containing food production method, and inoculum used therefor
KR102060862B1 (en) Biomass pre-treatment and saccharification method for the production of biofuel or bioplastic
JP2012179043A (en) Efficient ethanol production using xylose fermentation mushroom
JP2012055307A (en) Development of system for efficient ethanol production from biomass using mushroom
KR101599997B1 (en) A novel thermostable yeast Pichia guilliermondii Y-2 and use thereof
JP6167758B2 (en) Ethanol production method
Ezeonu et al. Bioethanol production from fungal treated rice husks fermented with bakers saccharomyces cerevisiae and yeast isolates from palm wine
Devi et al. Comparative assessment on lignocellulose degrading enzymes and bioethanol production from spent mushroom substrate of Calocybe indica and Volvariella volvacea
Yadav et al. Microbial delignification and hydrolysis of paddy straw for ethanol production
Saulawa et al. Optimization of some fermentation conditions for bioethanol production from yam peels (Dioscorea rotundata) using Box-Behnken design (BBD)
Yadav et al. Bioconversion of Rice Straw into Ethanol: Fungi and Yeasts are the Backbone Microbiota of the Process
Jolayemi et al. Utilization of Pachysolen tannophilus and Pichia kudriavzevii for the production of xylitol on undetoxified corn cob hydrolysates

Legal Events

Date Code Title Description
A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20140508

A977 Report on retrieval

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971007

Effective date: 20150224

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20150303

A521 Written amendment

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20150501

A02 Decision of refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A02

Effective date: 20151020