JP2011506274A - ファスチンを阻害するための方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本願に説明される本発明は、国防省(Department of Defense)助成金番号BC050558からの資金を使用してなされた。米国政府は本発明における特定の権利を有する。
本願は、2007年11月21日に出願された米国仮特許出願第60/989,609号明細書の出願日の優先権を主張するものであり、その内容はその全体が具体的に参照により本明細書中に援用される。
XはCH、N、NHもしくはOであり;
R1はOH、CZ3であるか、またはR1およびR2がともに−C=Oであり(式中、Zはハロである);
R2はOH、CZ3であるか、またはR1およびR2がともに−C=Oであり(式中、Zはハロである);
R3はHまたは低級アルキルであり;
R4はHまたは低級アルキルであり;
R5はOHであり;
R6はアルキルオキシであり;
Y1およびY2は別々に−CH2−であるか、またはY1およびY2がともに−C=C−もしくは薬学的に許容されうるその塩を形成する)
の化合物である。使用されうる化合物の例として、次の化合物のいずれか1つまたはかかる化合物の組み合わせが挙げられる。
「有効量」は、一般に所望される効果を提供する量を意味する。例えば、有効用量は、有益であるかまたは所望される結果をもたらすのに十分な量である。用量は、1回以上の投与で投与されうる。何が有効用量であると考えられるかの正確な判定は、各被験体に固有の要素、例えばサイズ、年齢、治療される創傷(例えば欠陥)または疾患(例えば欠陥)、および創傷の発生または疾患の発症からの期間に基づく場合がある。当業者、特に医師であれば、有効用量を決定できるであろう。用量は、投与の形式、例えば、局所か全身か、計量式(free)かカプセル化かに依存して変化しうる。効果は、転移の阻害または他の臨床エンドポイント、例えば転移癌の治療、減少または退縮でありうる。他の効果は、ファスチンmRNAの発現および/またはタンパク質レベルの低下または阻害を含みうる。
ファスチンは、細胞遊走における血漿膜の主要な分化である、葉状仮足などの細胞突起内でのパラレルアクチン束の形成において重要な機能を有するアクチン束化タンパク質である(Adams 2004)。ファスチンmRNAは通常、正常な上皮細胞によって発現されないが、その過剰発現が、乳房、卵巣、結腸、膵臓、食道、胃、肺、および膀胱を含む多くの異なるタイプの上皮性悪性腫瘍、ならびに他の腫瘍、例えばリンパ腫、肉腫、メラノーマ、および星状細胞腫において報告されている。ファスチンmRNAの高い発現は、悪性の臨床経過およびより短い生存率に相関する。ファスチンは、本明細書中に記載のマイグラスタチン類似体のタンパク質標的として同定されている。
1 MTANGTAEAV QIQFGLINCG NKYLTAEAFG FKVNASASSL
41 KKKQIWTLEQ PPDEAGSAAV CLRSHLGRYL AADKDGNVTC
81 EREVPGPDCR FLIVAHDDGR WSLQSEAHRR YFGGTEDRLS
121 CFAQTVSPAE KWSVHIAMHP QVNIYSVTRK RYAHLSARPA
161 DEIAVDRDVP WGVDSLITLA FQDQRYSVQT ADHRFLRHDG
201 RLVARPEPAT GYTLEFRSGK VAFRDCEGRY LAPSGPSGTL
241 KAGKATKVGK DELFALEQSC AQVVLQAANE RNVSTRQGMD
281 LSANQDEETD QETFQLEIDR DTKKCAFRTH TGKYWTLTAT
321 GGVQSTASSK NASCYFDIEW RDRRITLRAS NGKFVTSKKN
361 GQLAASVETA GDSELFLMKL INRPIIVFRG EHGFIGCRKV
401 TGTLDANRSS YDVFQLEFND GAYNIKDSTG KYWTVGSDSA
441 VTSSGDTPVD FFFEFCDYNK VAIKVGGRYL KGDHAGVLKA
481 SAETVDPASL WEY
1 GCTGCGGAGG GTGCGTGCGG GCCGCGGCAG CCGAACAAAG
41 GAGCAGGGGC GCCGCCGCAG GGACCCGCCA CCCACCTCCC
81 GGGGCCGCGC AGCGGCCTCT CGTCTACTGC CACCATGACC
121 GCCAACGGCA CAGCCGAGGC GGTGCAGATC CAGTTCGGCC
161 TCATCAACTG CGGCAACAAG TACCTGACGG CCGAGGCGTT
201 CGGGTTCAAG GTGAACGCGT CCGCCAGCAG CCTGAAGAAG
241 AAGCAGATCT GGACGCTGGA GCAGCCCCCT GACGAGGCGG
281 GCAGCGCGGC CGTGTGCCTG CGCAGCCACC TGGGCCGCTA
321 CCTGGCGGCG GACAAGGACG GCAACGTGAC CTGCGAGCGC
361 GAGGTGCCCG GTCCCGACTG CCGTTTCCTC ATCGTGGCGC
401 ACGACGACGG TCGCTGGTCG CTGCAGTCCG AGGCGCACCG
441 GCGCTACTTC GGCGGCACCG AGGACCGCCT GTCCTGCTTC
481 GCGCAGACGG TGTCCCCCGC CGAGAAGTGG AGCGTGCACA
521 TCGCCATGCA CCCTCAGGTC AACATCTACA GCGTCACCCG
561 TAAGCGCTAC GCGCACCTGA GCGCGCGGCC GGCCGACGAG
601 ATCGCCGTGG ACCGCGACGT GCCCTGGGGC GTCGACTCGC
641 TCATCACCCT CGCCTTCCAG GACCAGCGCT ACAGCGTGCA
681 GACCGCCGAC CACCGCTTCC TGCGCCACGA CGGGCGCCTG
721 GTGGCGCGCC CCGAGCCGGC CACTGGCTAC ACGCTGGAGT
761 TCCGCTCCGG CAAGGTGGCC TTCCGCGACT GCGAGGGCCG
801 TTACCTGGCG CCGTCGGGGC CCAGCGGCAC GCTCAAGGCG
841 GGCAAGGCCA CCAAGGTGGG CAAGGACGAG CTCTTTGCTC
881 TGGAGCAGAG CTGCGCCCAG GTCGTGCTGC AGGCGGCCAA
921 CGAGAGGAAC GTGTCCACGC GCCAGGGTAT GGACCTGTCT
961 GCCAATCAGG ACGAGGAGAC CGACCAGGAG ACCTTCCAGC
1001 TGGAGATCGA CCGCGACACC AAAAAGTGTG CCTTCCGTAC
1041 CCACACGGGC AAGTACTGGA CGCTGACGGC CACCGGGGGC
1081 GTGCAGTCCA CCGCCTCCAG CAAGAATGCC AGCTGCTACT
1121 TTGACATCGA GTGGCGTGAC CGGCGCATCA CACTGAGGGC
1161 GTCCAATGGC AAGTTTGTGA CCTCCAAGAA GAATGGGCAG
1201 CTGGCCGCCT CGGTGGAGAC AGCAGGGGAC TCAGAGCTCT
1241 TCCTCATGAA GCTCATCAAC CGCCCCATCA TCGTGTTCCG
1281 CGGGGAGCAT GGCTTCATCG GCTGCCGCAA GGTCACGGGC
1321 ACCCTGGACG CCAACCGCTC CAGCTATGAC GTCTTCCAGC
1361 TGGAGTTCAA CGATGGCGCC TACAACATCA AAGACTCCAC
1401 AGGCAAATAC TGGACGGTGG GCAGTGACTC CGTGGTCACC
1441 AGCAGCGGCG ACACTCCTGT GGACTTCTTC TTCGAGTTCT
1481 GCGACTATAA CAAGGTGGCC ATCAAGGTGG GCGGGCGCTA
1521 CCTGAAGGGC GACCACGCAG GCGTCCTGAA GGCCTCGGCG
1561 GAAACCGTGG ACCCCGCCTC GCTCTGGGAG TACTAGGGCC
1601 GGCCCGTCCT TCCCCGCCCC TGCCCACATG GCGGCTCCTG
1641 CCAACCCTCC CTGCTAACCC CTTCTCCGCC AGGTGGGCTC
1681 CAGGGCGGGA GGCAAGCCCC CTTGCCTTTC AAACTGGAAA
1721 CCCCAGAGAA AACGGTGCCC CCACCTGTCG CCCCTATGGA
1761 CTCCCCACTC TCCCCTCCGC CCGGGTTCCC TACTCCCCTC
1801 GGGTCAGCGG CTGCGGCCTG GCCCTGGGAG GGATTTCAGA
1841 TGCCCCTGCC CTCTTGTCTG CCACGGGGCG AGTCTGGCAC
1881 CTCTTTCTTC TGACCTCAGA CGGCTCTGAG CCTTATTTCT
1921 CTGGAAGCGG CTAAGGGACG GTTGGGGGCT GGGAGCCCTG
1961 GGCGTGTAGT GTAACTGGAA TCTTTTGCCT CTCCCAGCCA
2001 CCTCCTCCCA GCCCCCCAGG AGAGCTGGGC ACATGTCCCA
2041 AGCCTGTCAG TGGCCCTCCC TGGTGCACTG TCCCCGAAAC
2081 CCCTGCTTGG GAAGGGAAGC TGTCGGGTGG GCTAGGACTG
2121 ACCCTTGTGG TGTTTTTTTG GGTGGTGGCT GGAAACAGCC
2161 CCTCTCCCAC GTGGCAGAGG CTCAGCCTGG CTCCCTTCCC
2201 TGGAGCGGCA GGGCGTGACG GCCACAGGGT CTGCCCGCTG
2241 CACGTTCTGC CAAGGTGGTG GTGGCGGGCG GGTAGGGGTG
2281 TGGGGGCCGT CTTCCTCCTG TCTCTTTCCT TTCACCCTAG
2321 CCTGACTGGA AGCAGAAAAT GACCAAATCA GTATTTTTTT
2361 TAATGAAATA TTATTGCTGG AGGCGTCCCA GGCAAGCCTG
2401 GCTGTAGTAG CGAGTGATCT GGCGGGGGGC GTCTCAGCAC
2441 CCTCCCCAGG GGGTGCATCT CAGCCCCCTC TTTCCGTCCT
2481 TCCCGTCCAG CCCCAGCCCT GGGCCTGGGC TGCCGACACC
2521 TGGGCCAGAG CCCCTGCTGT GATTGGTGCT CCCTGGGCCT
2561 CCCGGGTGGA TGAAGCCAGG CGTCGCCCCC TCCGGGAGCC
2601 CTGGGGTGAG CCGCCGGGGC CCCCCCTGCT GCCAGCCTCC
2641 CCCGTCCCCA ACATGCATCT CACTCTGGGT GTCTTGGTCT
2681 TTTATTTTTT GTAAGTGTCA TTTGTATAAC TCTAAACGCC
2721 CATGATAGTA GCTTCAAACT GGAAATAGCG AAATAAAATA
2761 ACTCAGTCTG CAGCCCCAAA AAAAAAAAAA AAAAAAAAAA
1 MPTNGLHQVL KIQFGLVNDT DRYLTAESFG FKVNASAPSL
41 KRKQTWVLEP DPGQGTAVLL RSSHLGRYLS AEEDGRVACE
81 AEQPGRDCRF LVLPQPDGRW VLRSEPHGRF FGGTEDQLSC
121 FATAVSPAEL WTVHLAIHPQ AHLLSVSRRR YVHLCPREDE
161 MAADGDKPWG VDALLTLIFR SRRYCLKSCD SRYLRSDGRL
201 VWEPEPRACY TLEFKAGKLA FKDCDGHYLA PVGPAGTLKA
241 GRNTRPGKDE LFDLEESHPQ VVLVAANHRY VSVRQGVNVS
281 ANQDDELDHE TFLMQIDQET KKCTFYSSTG GYWTLVTHGG
321 IHATATQVSA NTMFEMEWRG RRVALKASNG RYVCMKKNGQ
361 LAAISDFVGP PPRPAWTGKV AGGAAQQTLS PPGKDEEFTL
401 KLINRPILVL RGLDGFVCHH RGSNQLDTNR SVYDVFHLSF
441 SDGAYRIRGR DGGFWYTGSH GSVCSDGERA EDFVFEFRER
481 GRLAIRARSG KYLRGGASGL LRADADAPAG TALWEY
1 GCAGGCAGGG GGTTCGTGAC GCCGGCTGGG TCTGGGGGCT
41 GTGGGCCAGC CGAGCCGACC CGGGCTTCTG GGGGACCGCG
81 GGGGCCGTGA GCACTCAGAG GGTGCATCCC AGGCCCCTCC
121 GGGGACCCGG CCAGCCTGAA GATGCCGACG AACGGCCTGC
161 ACCAGGTGCT GAAGATCCAG TTTGGCCTCG TCAACGACAC
201 TGACCGCTAC CTGACAGCTG AGAGCTTCGG CTTCAAGGTC
241 AATGCCTCGG CACCCAGCCT CAAGAGGAAG CAGACCTGGG
281 TGCTGGAACC CGACCCAGGA CAAGGCACGG CTGTGCTGCT
321 CCGCAGCAGC CACCTGGGCC GCTACCTGTC GGCAGAAGAG
361 GACGGGCGCG TGGCCTGTGA GGCAGAGCAG CCGGGCCGTG
401 ACTGCCGCTT CCTGGTCCTG CCGCAGCCAG ATGGGCGCTG
441 GGTGCTGCGG TCCGAGCCGC ACGGCCGCTT CTTCGGAGGC
481 ACCGAGGACC AGCTGTCCTG CTTCGCCACA GCCGTTTCCC
521 CGGCCGAGCT GTGGACCGTG CACCTGGCCA TCCACCCGCA
561 GGCCCACCTG CTGAGCGTGA GCCGGCGGCG CTACGTGCAC
601 CTGTGCCCGC GGGAGGACGA GATGGCCGCA GACGGAGACA
641 AGCCCTGGGG CGTGGACGCC CTCCTCACCC TCATCTTCCG
681 GAGCCGACGG TACTGCCTCA AGTCCTGTGA CAGCCGCTAC
721 CTGCGCAGCG ACGGCCGTCT GGTCTGGGAG CCTGAGCCCC
761 GTGCCTGCTA CACGCTGGAG TTCAAGGCGG GCAAGCTGGC
801 CTTCAAGGAC TGCGACGGCC ACTACCTGGC ACCCGTGGGG
841 CCCGCAGGCA CCCTCAAGGC CGGCCGAAAC ACGCGACCTG
881 GCAAGGATGA GCTCTTTGAT CTGGAGGAGA GTCACCCACA
921 GGTGGTGCTG GTGGCTGCCA ACCACCGCTA CGTCTCTGTG
961 CGGCAAGGGG TCAACGTCTC AGCCAATCAG GATGATGAAC
1001 TAGACCACGA GACCTTCCTG ATGCAAATTG ACCAGGAGAC
1041 AAAGAAGTGC ACCTTCTATT CCAGCACTGG GGGCTACTGG
1081 ACCCTGGTCA CCCATGGGGG CATTCACGCC ACAGCCACAC
1121 AAGTTTCTGC CAACACCATG TTTGAGATGG AGTGGCGTGG
1161 CCGGCGGGTA GCACTCAAAG CCAGCAACGG GCGCTACGTG
1201 TGCATGAAGA AGAATGGGCA GCTGGCGGCT ATCAGCGATT
1241 TTGTCGGGCC CCCACCCCGC CCGGCCTGGA CAGGGAAGGT
1281 GGCGGGAGGG GCAGCGCAGC AGACGCTCTC CCCGCCAGGC
1321 AAGGACGAAG AGTTCACCCT CAAGCTCATC AACCGGCCCA
1361 TCCTGGTGCT GCGCGGCCTG GACGGCTTCG TCTGCCACCA
1401 CCGCGGCTCC AACCAGCTGG ACACCAACCG CTCCGTCTAC
1441 GACGTCTTCC ACCTGAGCTT CAGCGACGGC GCCTACCGGA
1481 TCCGAGGCCG CGACGGAGGG TTCTGGTACA CGGGCAGCCA
1521 CGGCAGCGTG TGCAGCGACG GCGAACGCGC CGAGGACTTC
1561 GTCTTCGAGT TCCGTGAGCG CGGCCGCCTG GCCATCCGCG
1601 CCCGGAGCGG CAAGTACCTG CGCGGCGGCG CCTCGGGCCT
1641 GCTGCGGGCC GATGCCGACG CCCCGGCCGG GACCGCGCTT
1681 TGGGAGTACT GAGGCCGCGC CCAGACCAGC CTGTCGCGCA
1721 TTAAAACCGT GTCTCTCCCG CAAAAAAAAA AAAAAAAAAA
1761 AA
1 MDETEWIHRH PKAEDLRVGL ISWAGTYLTF EACKNTVTAT
41 AKSLGRRQTW EILVSNEHET QAVVRLKSVQ GLYLLCECDG
81 TVCYGRPRTS HHGCFLLRFH RNSKWTLQCL ISGRYLESNG
121 KDVFCTSHVL SAYHMWTPRP ALHVHVILYS PIHRCYARAD
161 PTMGRIWVDA AVPCLEECGF LLHFRDGCYH LETSTHHFLS
201 HVDRLFSQPS SQTAFHMQVR PGGLVALCDG EGGMLYPQGT
241 HLLLGMGCNP MRGEEWFILQ HCPTWVSLRS KTGRFISVIY
281 DGEVRAASER LNRMSLFQFE CDSESPTVQL RSANGYYLSQ
321 RRHRAVMADG HPLESDTFFR MHWNCGRIIL QSCRGRFLGI
361 APNSLLMANV ILPGPNEEFG ILFANRSFLV LRGRYGYVGS
401 SSGHDLIQCN QDQPDRIHLL PCRPGIYHFQ AQGGSFWSIT
441 SFGTFRPWGK FALNFCIELQ GSNLLTVLAP NGFYMRADQS
481 GTLLADSEDI TRECIWEF
1 CCCTTTCCCC ACTGTGGTGT GATAAGAGGC TGCCCTCACA
41 GTCACAATGC TCCCGGGTCA CAGAGGTGCT GGGCCCCAGG
81 CCAGCCTCTG CCTGGGAAGT TCTCTCTGGG AACATCTGGT
121 GGGTACTACA GGCCCTATTC CAGGCCCTAT GGCCTGTGGA
161 ACCTCACCAC GGGGGGGAGG GCTGGGCCAG ACGGAGACAT
201 CACCTGTGGT GTCAGCCCCA TGGATGAGAC AGAGTGGATA
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281 TCAGCTGGGC AGGAACCTAC CTCACCTTTG AGGCATGCAA
321 GAATACAGTC ACTGCAACTG CGAAGAGTTT GGGCAGGAGA
361 CAGACCTGGG AGATCTTGGT GAGCAATGAG CATGAGACAC
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1201 GCTGATGGGC ACCCCCTGGA GTCTGACACG TTCTTCCGAA
1241 TGCACTGGAA CTGTGGCAGG ATCATCCTGC AGTCCTGCAG
1281 GGGGCGCTTC CTGGGCATTG CACCCAACAG CCTGCTGATG
1321 GCCAATGTCA TCCTTCCAGG CCCAAATGAG GAATTTGGGA
1361 TTTTATTTGC CAATCGCTCC TTCCTTGTAT TGCGAGGTCG
1401 TTATGGCTAT GTGGGCTCCT CATCGGGCCA TGACCTCATA
1441 CAGTGCAACC AGGATCAGCC CGACCGCATT CATCTACTAC
1481 CCTGCCGACC GGGTATCTAC CACTTCCAGG CACAGGGGGG
1521 ATCCTTCTGG TCAATAACAT CCTTTGGCAC CTTTCGCCCT
1561 TGGGGCAAGT TTGCCCTCAA CTTCTGTATC GAGCTTCAGG
1601 GGAGCAACTT ACTCACTGTA CTGGCCCCCA ATGGCTTCTA
1641 CATGCGAGCC GACCAAAGTG GCACCCTGTT GGCAGACAGT
1681 GAAGACATTA CCAGAGAGTG TATCTGGGAA TTTTAGGTCA
1721 ATGGGATGTC ACCTACCAAA ATCCAAATCC TCCAGGAAAA
1761 ACTACTACAC TAAATGGACC AGGAACCTCA GAGTCAAGAT
1801 CCAAGAGAAG AACATCTGTT ACAACTTTTC CTACCCAGTT
1841 TAGCAAAACA CCTGTTTTAT GCAACAATAC ATCACAACAG
1881 GCC
1 MTANGTAEAV QIQFGLISCG NKYLTAEAFG FKVNASASSL
41 KKKQIWTLEQ PPDEAGSAAV CLRSHLGRYL AADKDGNVTC
81 EREVPDGDCR FLVVAHDDGR WSLQSEAHRR YFGGTEDRLS
121 CFAQSVSPAE KWSVHIAMHP QVNIYSVTRK RYAHLSARPA
161 DEIAVDRDVP WGVDSLITLA FQDQRYSVQT SDHRFLRHDG
201 RLVARPEPAT GFTLEFRSGK VAFRDCEGRY LAPSGPSGTL
241 KAGKATKVGK DELFALEQSC AQVVLQAANE RNVSTRQGMD
281 LSANQDEETD QETFQLEIDR DTRKCAFRTH TGKYWTLTAT
321 GGVQSTASTK NASCYFDIEW CDRRITLRAS NGKFVTAKKN
361 GQLAASVETA GDSELFLMKL INRPIIVFRG EHGFIGCRKV
401 TGTLDANRSS YDVFQLEFND GAYNIKDSTG KYWTVGSDSS
441 VTSSSDTPVD FFLEFCDYNK VALKVGGRYL KGDHAGVLKA
481 CAETIDPASL WEY
1 TGTGGAGAAC TGCAGCGGGC TAAGCCGTGT TGAACAAAGG
41 AGGTCGGGCA CAGCTATCCA AGCTCCCGGG GCCACCGGGC
81 CGCCCTCCGC CACCATGACC GCCAACGGCA CGGCAGAGGC
121 TGTGCAGATT CAGTTCGGGC TCATCAGCTG CGGCAACAAG
161 TACCTGACAG CCGAGGCGTT CGGGTTCAAG GTGAACGCAT
201 CCGCTAGTAG CTTGAAAAAG AAGCAGATCT GGACGCTGGA
241 GCAACCTCCC GATGAGGCGG GCAGCGCGGC CGTGTGTCTG
281 CGCAGCCACC TGGGTCGCTA CCTGGCCGCC GACAAGGACG
321 GCAACGTGAC CTGCGAGCGC GAGGTGCCCG ACGGCGACTG
361 CCGCTTTCTC GTCGTGGCGC ACGACGACGG CCGCTGGTCG
401 CTGCAGTCCG AGGCTCACCG GCGCTACTTT GGCGGCACCG
441 AGGACCGCCT GTCCTGCTTC GCGCAGAGCG TGTCGCCGGC
481 CGAGAAGTGG AGCGTGCACA TCGCCATGCA CCCGCAGGTT
521 AACATCTACA GCGTTACCCG CAAGCGCTAC GCGCATCTGA
561 GCGCGCGGCC GGCCGACGAG ATCGCGGTAG ACCGCGACGT
601 GCCTTGGGGC GTCGACTCGC TCATCACCTT GGCCTTCCAG
641 GACCAACGCT ACAGTGTGCA GACGTCCGAC CACCGCTTCC
681 TGCGCCACGA CGGGCGCCTT GTGGCACGGC CGGAGCCCGC
721 CACGGGCTTC ACGCTGGAGT TCCGCTCCGG CAAGGTGGCC
761 TTTCGCGACT GCGAAGGTCG CTACCTGGCT CCGTCCGGGC
801 CCAGCGGCAC CCTCAAGGCT GGCAAGGCCA CCAAGGTGGG
841 CAAAGATGAG CTCTTCGCCC TGGAACAGAG CTGCGCTCAG
881 GTGGTGCTGC AGGCGGCCAA CGAGAGGAAC GTGTCCACGC
921 GCCAGGGAAT GGACCTGTCA GCCAATCAGG ATGAAGAGAC
961 CGATCAGGAG ACCTTCCAGC TGGAGATCGA CCGCGACACA
1001 AGAAAGTGTG CCTTTCGCAC CCACACGGGC AAGTACTGGA
1041 CACTGACGGC GACCGGAGGT GTGCAATCCA CTGCGTCCAC
1081 CAAGAACGCC AGCTGCTACT TTGACATCGA GTGGTGTGAC
1121 CGCCGGATCA CTCTGAGAGC CTCCAACGGC AAGTTTGTGA
1161 CCGCCAAGAA AAATGGCCAG CTGGCCGCCT CGGTGGAGAC
1201 AGCAGGGGAC TCGGAACTCT TCCTCATGAA GCTGATTAAC
1241 CGCCCCATCA TCGTGTTCCG GGGGGAACAC GGGTTCATTG
1281 GCTGCCGCAA GGTCACGGGC ACTCTGGATG CCAACCGTTC
1321 CAGTTACGAT GTCTTCCAGT TGGAATTCAA TGACGGCGCC
1361 TACAACATCA AAGACTCCAC GGGCAAGTAC TGGACGGTGG
1401 GTAGTGATTC CTCGGTCACC AGCAGCAGCG ACACCCCTGT
1441 GGATTTCTTC CTTGAGTTCT GTGACTACAA TAAGGTGGCT
1481 CTCAAGGTGG GCGGCCGCTA CCTGAAGGGG GACCACGCTG
1521 GGGTCCTGAA GGCCTGCGCG GAGACTATCG ACCCCGCCTC
1561 ACTCTGGGAG TACTAGGGCC ACCTGCCCTC TGCAGGCCGC
1601 TCTCGTCAGT CCCTCCTGTT ATCCTTACTC ATCGGGTGGC
1641 CCTGCAGCAG GTGGCAAACC CCTTGCCTTT CAAACTGGAA
1681 ACCCAAGAGA AAACGGTGCC CTTGCTGTCA CCCTCTGTGG
1721 ACCCCTTTTC CCTAACTCAC TGCTCCCCAT GGGTCGGTGG
1761 CTGCAGACTG TCCCCAGGAG GGACTCTGGT TCCCTCTGTC
1801 CCCTTCTTTC CATGGGGAAC TCTGGCACCT TTCTTCTGAC
1841 CTCAGTCAAC TCTGAGCCTT ATTTCCCCCC AGGAAGTGGC
1881 CTAGGAGAAG CTACAGGGCC TAGGGACTTA CCCTGAGCTT
1921 GTAACTGGAA GACCCCGTCC CTATCCCCGC TCCCGCCCCC
1961 ACCCCACCCC ACCCCTGCTC TGGCCCCAGC CTCTGGAGGC
2001 CAGCCTTTTG GCGGGACTGA AGCCGGGCAT GGCCAACCTT
2041 GCCCACAAGT GTTTTTCTGG ATCTTGGCTG GAAGGCAGTC
2081 TGTCCCATCC TGCAGTGTTT GGGCCTGGCT CTTTGACTCA
2121 AAGCTAGCTA GGTGGCACTC CGTGTCGCTC CTGCACATTC
2161 TGGAAGGGGC GGGCCTCTCA CCCACCTCAT TCCTTTTCCC
2201 CCTGGCCTGA CTGGAAGCAG AAAAATGACC AAATCAGTAT
2241 TTTTTTTTTT TTCTTTAAGG AAATGTTACT GTTGAAAGGC
2281 CCTAGGCAAG CCTGCCCTGT TGGTTGTAGT CGTGAGTGGT
2321 CTTGGGGGGA GATGCTTGGC TCCTGTCCCT GCCTCCCCAG
2361 CGGGTTCCCT CCCTCCCTCC TGCCTGACCA CCCCAGCTCT
2401 GGCTCTGTGA TTGGTGCTCC ACGTCTTCCC AGACACCTCG
2441 GGGCTCCTGG GCGGGAGAAA GCCGGATGTG CCCCTCCCTG
2481 GGAGCCCTGG AGTAAACCTC AGGGGGCCCT TTCCCAATCA
2521 CCCCCTTCCA CCGACCCCTC AACACCATGC ATCTCACTCT
2561 GGGTGTCTCG CTCCTTTATT TTTTTGTAAC TGTCATTTCT
2601 ATAACTCTGA AGACCCATGA TAGTAAGCTT TGAACTGGAA
2641 AATAAAGTAA AATCAAGTCT GCGGCCC
259 SC AQVVLQAANE RNVSTRQGMD
281 LSANQDEETD QETFQLEIDR DTKKCAFRTH TGKYWTLTAT
321 GGVQSTASSK NASCYFDIEW RDRRITLRAS NGKFVTSKKN
361 GQLAASVETA GDSELFLMKL INRPIIVFRG EHGFIGCRKV
401 TGTLDANRSS YDVFQLEFND GAYNIKDSTG KYWTVGSDSA
441 VTSSGDTPVD FFFEFCDYNK VAIKVGGRYL KGDHAGVLKA
481 SAETVDPASL WEY
259 PQ VVLVAANHRY VSVRQGVNVS
281 ANQDDELDHE TFLMQIDQET KKCTFYSSTG GYWTLVTHGG
321 IHATATQVSA NTMFEMEWRG RRVALKASNG RYVCMKKNGQ
361 LAAISDFVGP PPRPAWTGKV AGGAAQQTLS PPGKDEEFTL
401 KLINRPILVL RGLDGFVCHH RGSNQLDTNR SVYDVFHLSF
441 SDGAYRIRGR DGGFWYTGSH GSVCSDGERA EDFVFEFRER
481 GRLAIRARSG KYLRGGASGL LRADADAPAG TALWEY
259 LQ HCPTWVSLRS KTGRFISVIY
281 DGEVRAASER LNRMSLFQFE CDSESPTVQL RSANGYYLSQ
321 RRHRAVMADG HPLESDTFFR MHWNCGRIIL QSCRGRFLGI
361 APNSLLMANV ILPGPNEEFG ILFANRSFLV LRGRYGYVGS
401 SSGHDLIQCN QDQPDRIHLL PCRPGIYHFQ AQGGSFWSIT
441 SFGTFRPWGK FALNFCIELQ GSNLLTVLAP NGFYMRADQS
481 GTLLADSEDI TRECIWEF
259 SC AQVVLQAANE RNVSTRQGMD
281 LSANQDEETD QETFQLEIDR DTRKCAFRTH TGKYWTLTAT
321 GGVQSTASTK NASCYFDIEW CDRRITLRAS NGKFVTAKKN
361 GQLAASVETA GDSELFLMKL INRPIIVFRG EHGFIGCRKV
401 TGTLDANRSS YDVFQLEFND GAYNIKDSTG KYWTVGSDSS
441 VTSSSDTPVD FFLEFCDYNK VALKVGGRYL KGDHAGVLKA
481 CAETIDPASL WEY
ファスチンの発現および/または翻訳を阻害しうる核酸は、本明細書中に記載の本発明の方法において使用してもよい。かかる阻害性核酸は、ファスチン核酸、例えば配列番号2、4、6、もしくは8のいずれかに対応する配列を有するファスチンRNAに結合しうる。阻害性核酸は、4以上のヌクレオチド長を有するリボースヌクレオチドまたはデオキシリボースヌクレオチドのポリマーである。阻害性核酸は、天然ヌクレオチド;合成、修飾、またはホスホロチオレートなどの擬似(pseudo)ヌクレオチド;ならびに32P、ビオチン、蛍光色素またはジゴキシゲニンなどの検出可能な標識を有するヌクレオチドを含みうる。ファスチン核酸の発現および/または活性を低下させうる阻害性核酸は、ファスチン核酸に対して完全に相補的でありうる。あるいは、配列間での一部の変異性(variability)は許容されうる。
マイグラスタチン(1)は細胞遊走の阻害剤である。Nakaeら、J.Antibiot.2000年、53、1130頁;Nakaeら、J.Antibiot.2000年、53、1228頁;Takemotoら、J.Antibiot.2001年、54、1104頁;Nakamuraら、J.Antibiot.2002年、55、442頁;Wooら、J.Antibiot.2002年、55、141頁。マイグラスタチンの構造は次に提供される。
本発明は、ファスチンに特異的な抗体調製物、例えば、配列番号1、3、5、7、9、10および/もしくは12を有するポリペプチドに結合可能な抗体を提供する。一部の実施形態では、抗体はアクチン結合部位またはマイグラスタチン類似体結合部位に結合しうる。例えば、一部の実施形態では、本発明の抗体は、マイグラスタチン類似体結合部位の主要部分を形成する、ファスチンアミノ酸残基His392、Glu391、Ala488、Lys471、His474およびAsp473のいずれかを含むエピトープ(epitopal)部位に結合しうる。他の実施形態では、本発明の抗体は、ファスチンアクチン結合部位の1つの主要部分を形成する、ファスチンアミノ酸残基Thr326、Ser328、Ser329、Lys330、Asn331、Ser333、Arg276、Gln277、Met279、Asp286、Glu287、Gln291、Thr320、Thr318、Lys313、Thr311、Gln362、Asn360、Lys359、Asp168、Pro159、Arg151、Lys150、Arg149、Arg197、Arg201、Glu207、Glu227、Ser237、Pro236、Lys241、Lys247、およびLys250のいずれかを含むエピトープ部位に結合しうる。
(1)Fabは、抗体分子の一価抗原結合断片を有する断片である。Fab断片は、全抗体を酵素パパインによって消化し、無傷軽鎖および1つの重鎖の一部を生じることによって生成されうる。
(2)Fab’は、全抗体をペプシンで処理し、その後に還元し、無傷軽鎖および重鎖の一部を生じることによって得られる抗体分子の断片である。2つのFab’断片が1つの抗体分子に対して得られる。Fab’断片は、重鎖CH1ドメインのカルボキシル末端での抗体ヒンジ領域からの1つ以上のシステインを含む数個の残基の付加により、Fab断片と異なる。
(3)(Fab’)2は、全抗体を酵素ペプシンで処理し、その後に還元しないことによって得られる抗体の断片である。F(ab’)2は、2つのFab’断片の二量体(2つのジスルフィド結合によってともに保持される)である。
(4)Fvは、完全抗原認識および結合部位を有する最小抗体断片である。この領域は、強力な非共有結合での1つの重鎖および1つの軽鎖可変ドメインの二量体(VH−VL二量体)からなる。各可変ドメインの3つのCDRが相互作用し、VH−VL二量体の表面上の抗原結合部位を画定するのはこの配置内である。合わせて6つのCDRが抗体に抗原結合特異性を与える。しかし、単一の可変ドメイン(または抗原に特異的な3つのCDRのみを含むFvの半分)でさえ、親和性は結合部位全体より低いとしても、抗原を認識しかつそれに結合する能力を有する。
(5)一本鎖抗体(「SCA」)は、遺伝的に融合された一本鎖分子として適切なポリペプチドリンカーによって連結される、軽鎖の可変領域、重鎖の可変領域を有する遺伝子操作された分子として定義される。かかる一本鎖抗体はまた、「一本鎖Fv」または「sFv」抗体断片と称される。一般に、Fvポリペプチドは、sFvが抗原に結合するための所望される構造の形成するのを可能にするVHおよびVLドメインの間のポリペプチドリンカーをさらに含む。sFvの概説としては、「Pluckthun in The Pharmacology of Monoclonal Antibodies」、第113巻、RosenburgおよびMoore編 Springer−Verlag(N.Y.)、269−315頁(1994年)を参照のこと。
本発明はさらに、ファスチンの三次元構造に関する。表2は、ファスチン中の原子における三次元座標を提供する。実施例9により詳述されるように、ファスチンは2つのアクチン結合部位を有する。ファスチンがアクチンに結合する場合、それはアクチン束の形成を促進する。例えば、ファスチンの付加により、F−アクチン束の形成が誘発された(図6B)。
本発明は、ファスチンおよびファスチン活性に関連した疾患を阻害するための治療剤を生成または同定するのに有用なスクリーニング方法およびアッセイをさらに提供する。
ファスチンの活性を調節する作用物質は、種々の疾患および症状を治療するために使用されうる。例えば、本明細書中で例示されるように、ファスチンは、アクチン束化を促進し、癌細胞の細胞遊走および転移に主要な役割を果たす。したがって、本明細書中に記載の化合物、マイグラスタチン類似体、阻害性核酸、抗ファスチン抗体、試験作用物質およびファスチン調節候補物質を含む、ファスチンの調節剤および阻害剤を使用し、転移癌が治療され、阻害されうる。
本明細書中に記載の化合物、マイグラスタチン類似体、阻害性核酸、抗ファスチン抗体、試験作用物質およびファスチン調節剤候補を含む本発明の化合物は、医薬組成物として調合され、選択される投与経路に適する種々の形態で、すなわち、経口的または非経口的に、静脈内、筋肉内、局所または皮下経路により、哺乳動物宿主、例えばヒト患者に投与されうる。
化学合成および特徴づけ
本実施例は、化合物の合成ならびに化学的および物理的特徴づけについて説明する。
マイグラスタチン類似体による転移腫瘍細胞遊走の阻害
細胞遊走を阻害するための本発明の化合物の有効性を、2つの方法、創傷治癒アッセイおよびチャンバー細胞遊走アッセイを用いて評価した。
細胞
マウス4T1乳房腫瘍細胞およびヒトMDA−MB−231乳房腫瘍細胞をATCCから入手し、それらは先行的に記載がなされている(Shanら 2005年、Yangら 2005年)。4T1細胞を、10%FBSを補充したRPMI1640培地中で培養した。MDA−MB−231細胞を、10%FBSを補充したDMEM中で培養した。
創傷治癒アッセイは、コンフルエント細胞が、細胞層内での引っ掻き傷(scrape)または創傷を横切って遊走しうるか否かを観察することを含む。細胞遊走アッセイを先行的に記載のように実施した(Yangら 2005年、Shanら 2006年)。腫瘍細胞を、標準培地中、ゼラチンでコーティングした24ウェルプレート内にプレーティングした。細胞がコンフルエンスまで成長後、無菌のピペットチップなどの無菌の器具を使用し、細胞のコンフルエント層内で創傷を作った。細胞をリン酸塩緩衝化生理食塩水(PBS)または他の無菌溶液で洗浄し、次いで、10%FBSを補充した培地を添加することによって遊走を誘発した。陽性対照における創傷が閉じた時、細胞を3.7%ホルムアルデヒドで固定し、クリスタルバイオレット染色液で染色した。低濃度で創傷領域への細胞の遊走を阻害する化合物は、細胞遊走を阻害し、転移癌を治療するのに有用である。
チャンバー細胞遊走アッセイは、細胞が公知のサイズの孔を有するフィルタを介して遊走しうるか否かを評価する。例えば、細胞遊走は、約8.0μmの孔径を有するフィルタを有するボイデンチャンバーでアッセイされうる。つまり、無血清培地中の細胞を第1のチャンバーに添加し、10%ウシ胎仔血清(FBS)を有する500μlの培地を第2のチャンバーに添加する。チャンバーを、2つの両チャンバー内の異なる濃度の化学化合物とともに37℃で約6〜8時間インキュベートする。第1のチャンバー内の細胞を綿棒で除去し、もう一方のチャンバー内またはフィルタの反対側にある細胞を固定し、染色する。第2のチャンバーに面するフィルタのいくつかのランダム領域の写真を撮り、細胞の数をカウントし、遊走した(transmigrated)細胞の平均数を計算する。
インビトロでの腫瘍細胞の遊走に対するコア大環状ケトンおよびコア大環状ラクタム類似体の効果を試験した。図1に示されるように、創傷治癒アッセイおよびボイデンチャンバーアッセイの双方による測定によると、血清が転移性マウス乳房腫瘍4T1細胞の遊走を誘発したが、大環状ケトンまたは大環状ラクタム同族体の添加によって血清誘発性4T1細胞の遊走が阻害された(図1B〜1D)。大環状ケトンおよび大環状ラクタムのコア構造は、IC50値がそれぞれ100および255nMの場合、かなり有効であった(図1Cおよび1D)。親化合物マイグラスタチンは29μMのIC50を有した(Njardarsonら 2004年、Gaulら 2004年)。これらの化合物は、培養物中での4T1細胞の増殖に対してほとんど効果を有しなかった(同上)。
マウスにおけるマイグラスタチン類似体による高度に転移性の乳癌細胞の肺転移の阻害
類似体を試験し、4T1マウス乳房腫瘍モデルにおいて、それらが腫瘍転移に作用しうるか否かを判定した。これらの化学化合物での処理を伴う場合または伴わない場合でのマウスにおける4T1腫瘍細胞の肺転移について試験した。マウス4T1腫瘍は、ヒト乳癌を、その解剖学的部位、免疫原性、成長特性、および転移特性において忠実に再現する(Pulaskiら 1998年)。4T1腫瘍は、乳腺から肺、骨、脳、および肝臓を含む種々の標的器官に自発的に転移する(Aslaksonら 1992年)。BALB/cマウスの乳腺における4T1細胞(1×105)の移植の10日後、マウスの腹腔内に大環状ケトンおよび大環状ラクタムコア構造または対照の生理食塩水PBSを注射した。大環状ケトンまたは大環状ラクタムコア構造の用量は10mg/kgまたは20mg/kgであった。化合物を注射した。20日後、マウスを殺し、肺への転移についてクローン原性アッセイによって試験した(Shenら、2005年)。対照の生理食塩水(媒体単独)を注射したマウスは、肺における転移性4T1細胞が多数あることを示したが、大環状ケトンまたは大環状ラクタムのいずれかで処理したマウスは、肺における転移性4T1細胞の数が91%−99%減少した(図3A)。大環状ケトンまたは大環状ラクタムで処理したマウスは、生理食塩水で処理したマウスの場合に類似したサイズの原発性乳房腫瘍を形成し(図3C)、それは、これらの化学化合物が4T1細胞による原発性腫瘍形成に干渉しなかったことを意味する。マウスは体重減少、不活発、または被毛の乱れ(ruffled fur)のエビデンスが全くなく、正常であるように見られたことから、これらの化合物は明確な副作用を引き起こさなかった。これらの結果は、大環状ケトンおよび大環状ラクタムが乳腺から肺への4T1腫瘍細胞転移の強力な阻害剤であることを示す。
マイグラスタチン類似体による葉状仮足形成の阻害
4T1細胞内のアクチン細胞骨格および微小管に対する大環状ケトンおよび大環状ラクタムの効果について試験した。細胞遊走は逐次的かつ相互関連的な多段階プロセスである(Ridleyら 2003年)。それは、先端部で葉状仮足の形成、接着および脱離のサイクル、細胞体収縮(cell body contraction)、ならびに尾部退縮(tail retraction)を伴う(Ridleyら 2003年)。コア大環状ケトンおよびコア大環状ラクタムは先端部での葉状仮足の形成を阻害した(Shanら 2005年)。血清の添加が葉状仮足の形成を誘発したが、一方、大環状ケトンまたは大環状ラクタムコアのいずれかの添加は葉状仮足の形成を破壊した(Shanら 2005年)。さらに、いずれの化合物も微小管の組織化に対して全く効果を有しなかった。これらのデータは、これらのマイグラスタチン類似体の腫瘍転移に対する作用の細胞基盤が、アクチン細胞骨格の再組織化の破壊を伴うことを示した。
マイグラスタチン類似体はファスチンのアクチン束化活性を阻害する
方法
マイグラスタチン類似体のタンパク質標的としてのファスチンの同定
4T1マウス乳房腫瘍細胞から全細胞溶解液を作製した。細胞溶解液を固定化ニュートラアビジンビオチン結合性タンパク質(Pierce,IL,USA)で予め清浄化し、ビオチンおよびアビジン結合性タンパク質を除去した後、細胞溶解液を(ニュートラアビジンビーズに複合された)ビオチン標識された大環状ケトンで満たしたカラムに装填した。遊離ビオチンおよびニュートラアビジンビーズで満たした対照カラムを並行的に操作した。カラムを、300mMのNaClを有する10床容量(bed volumes)の溶解緩衝液で洗浄後、結合されたタンパク質を、製造業者の使用説明書に従い、pH2.8での0.1Mのグリシン−HClで溶出した。SDS−PAGEでは、1つのバンド(約55kDa)が、ビオチン標識された大環状ケトンカラムから溶出される試料中に存在したが、ビオチンカラムから溶出される試料にはなかった。この約55kDaのタンパク質を有するバンドをゲルから切り取り、タンパク質を質量分析によってマウスfascin 1として同定した。
組換えGST−ファスチン融合タンパク質をBL21大腸菌(Escherichia coli)内で生成させた。1Lの培養物を1.0のA600読み取り値まで成長させ、次いで0.3mMのイソプロピル1−チオ−D−ガラクトピラノシド(IPTG)の添加により、25℃で12時間インキュベートした。細胞を急速冷凍し、次いでトリス緩衝化生理食塩水中で音波処理によって溶解した。次いで、上清をグルタチオン−セファローズとともに4℃で2時間インキュベートした。徹底洗浄後、GST−ファスチンを溶出させ、Centricon Plus−20(Millipore)で濃縮した。融合タンパク質からGSTタグを除去するため、ビーズをトロンビンとともに4℃で一晩インキュベートした。上清を回収し、濃縮した。
精製組換えファスチンタンパク質または対照タンパク質を、ビオチン−大環状ケトンとともに4℃で2時間インキュベートした。ビオチン−大環状ケトンに関連したタンパク質を、Ultralink−固定化ニュートラアビジンアガロース(Pierce)とともに沈殿させた。徹底洗浄後、結合されたタンパク質をSDS試料緩衝液で溶出させ、10%SDS−PAGEによって溶解した。
アクチン重合を上述のように行った。次いで、組換えファスチンタンパク質または対照緩衝液を、F−アクチンとともに室温で60分間インキュベートした。混合物を100,000g(Beckman Airfuge)で30分間遠心分離した。上清およびペレットの双方を等容量のSDS試料緩衝液中に溶解し、SDS−PAGEによって分析した。
ゼラチンでコーティングされたガラスカバースリップ上で培養した細胞を、PBS中、3.7%ホルムアルデヒドで、室温で10分間固定し、0.1%Triton X−100で5分間透過処理し、次いでPBSで3回洗浄した。非特異的結合をブロッキングするため、細胞を1%ウシ血清アルブミンを含有するPBSの溶液とともに30分間インキュベートし、次いで適切に希釈した一次抗体とともに1時間インキュベートした。一次抗体とのインキュベーション後、細胞をPBSで3回洗浄し、蛍光複合二次抗体(Molecular Probes)とともにインキュベートした。次いで、カバースリップをスライド上に固定し、Zeiss蛍光顕微鏡を使用して画像化した。
試料を新たにグロー放電された炭素コートした銅グリッド上に2分間吸収させ、2%酢酸ウラニルで染色した。グリッドを、80kVの加速電圧でZeiss電子顕微鏡を使用して試験した。
マイグラスタチン類似体の作用の分子的基盤を理解するため、マイグラスタチン類似体のタンパク質標的を同定した。ビオチン標識された大環状ケトンを使用したタンパク質標的の同定に向けた公平なアプローチで試験した(図4Aを参照)。このビオチン標識されたマイグラスタチン類似体は、4T1乳房腫瘍細胞遊走の阻害において活性を示した(Gaulら 2004年)。ビオチン標識された大環状ケトンを使用し、親和性カラムを準備し、約55kDaのタンパク質標的を巧妙に精製し(図4B)、質量分析によってマウスfascin 1として同定した。
乳房腫瘍細胞の遊走におけるファスチンの本質的役割
方法
RNA干渉
ファスチンのRNAiを、pSUPERベクター(Oligoengine)を使用し、4T1マウス乳房腫瘍およびMDA−MB−231ヒト乳房腫瘍細胞において行った。マウスファスチンの2対の標的配列は、GGTGGGCAAAGATGAGCTC(配列番号63)およびGTGGAGCGTGCACATCGCC(配列番号64)であった。ヒトファスチンの2対の標的配列は、GGTGGGCAAGGACGAGCTC(配列番号65)およびGCCTGAAGAAGAAGCAGAT(配列番号66)であった。形質移入の前日、細胞を0.5mlの抗生物質を有しない成長培地中にプレーティングした。形質移入時、細胞は30〜50%コンフルエントであった。各形質移入試料においては、siRNAを次のように調製した。
1)50μlの血清を有しないOpti−MEMI低血清培地(または血清を有しない他の培地)中で適量のsiRNAを希釈する。緩やかに混合する。
2)使用前にリポフェクタミン2000を緩やかに混合し、次いで50μlのOpti−MEMI培地(または血清を有しない他の培地)中で適量に希釈する。緩やかに混合し、室温で5分間インキュベートする。注:希釈リポフェクタミン2000を希釈siRNAと30分以内に結合させる。より長いインキュベーション時間が活性を低下させうる。D−MEMがリポフェクタミン2000用の希釈剤として使用される場合、5分以内に希釈siRNAと混合する。
3)5分間のインキュベーション後、希釈siRNAを希釈リポフェクタミン2000と結合させる(全容量は100μlである)。緩やかに混合し、室温で20分間インキュベートし、siRNA:リポフェクタミン2000複合体の形成を可能にする。
飢餓培地中に懸濁した細胞(5×104)を、上部チャンバー(6.5mmの直径、8μmの孔径、Becton Dickenson)のインサートに添加し、インサートを、10%FBSを有する、または有しない飢餓培地を含有する24ウェルディッシュ内に置いた(Yangら 2005年、Shanら 2006年)。阻害剤を使用する場合は、両方のチャンバーに添加した。遊走アッセイを4〜6時間実施し、細胞を3.7%ホルムアルデヒドで固定した。細胞をクリスタルバイオレット染色液で染色し、インサートの上部側の細胞を綿棒で取り出した。インサートの下部側の3つの無作為に選択されるフィールド(10倍対物レンズ)を撮影し、遊走細胞をカウントした。遊走は、フィールド内での遊走細胞の平均数または陽性対照の遊走細胞の百分率のいずれかで表された。百分率を、式P=100×(M−Mnc)/Mpc(式中、Pは遊走細胞の百分率、Mは遊走細胞の数、Mncは陰性対照の遊走細胞の数、またMpcは陽性対照の遊走細胞の数である)を用いて計算した。
浸潤性が高い腫瘍細胞系4T1マウス乳房腫瘍細胞およびMDA−MB−231ヒト乳房腫瘍細胞を使用し、腫瘍細胞内でファスチンタンパク質レベルを低下させる効果について試験した。マウスFascin−1に対して、2つの異なるsiRNAおよび1つの対照siRNAを使用して4T1細胞を処理し、これらのsiRNAを安定的に発現する細胞を選択した。ファスチンsiRNAはファスチンタンパク質レベルをノックダウンしたが、一方、対照siRNAはしなかった(図7A)。ファスチンsiRNAで処理された細胞は、完全な成長培地中で、対照siRNAで処理された細胞および非形質移入4T1細胞に匹敵する速度で成長し(データは示さず)、これはファスチンがインビトロでの乳房腫瘍細胞増殖に必要とされないことを示唆する。これは、マウスモデルにおいて、マイグラスタチン類似体が腫瘍細胞増殖および原発性腫瘍成長に対して明らかな効果を全く有しなかったという先の観察に一致する(Shanら 2005年)。ボイデンチャンバー細胞遊走アッセイによると、ファスチンsiRNA処理により4T1細胞の血清誘発性遊走が低下するが、対照siRNAによる処理では低下しないことが示された(図7B)。ファスチンsiRNAのこの阻害効果は、ヒトファスチンcDNAの形質移入によって救済されうるであろう(この特定の領域内では、アミノ酸変化を伴わず、2つのヌクレオチド変化が生じる)(図7Cおよび7D)。同様に、ファスチンsiRNA処理は、ファスチンタンパク質レベルを下方制御し、MDA−MB−231細胞の遊走を低下させた(図7Eおよび7F)。ファスチンsiRNA処理は、MDA−MB−231細胞の増殖に作用しなかった(データは示さず)。これらの機能喪失(loss−of−function)分析に加え、機能獲得(gain−of−function)実験も行った。転移性MDA−MB−231ヒト乳房腫瘍細胞と比較し、MCF−10A正常乳腺上皮細胞はより少量のファスチンタンパク質を発現した(図7G)。MCF−10A細胞内でのファスチンの過剰発現は、これらの細胞の血清誘発性遊走を増大させた(図7H)。まとめると、これらのデータは、ファスチンが乳房腫瘍細胞の遊走において重要な役割を果たすことを示す。
マウスモデルにおいてファスチンの阻害が乳房腫瘍転移を遮断する
方法
マウスにおける乳房腫瘍転移
すべての動物の研究は、Institutional Animal Care and Use Committee of the Weill Medical Collegeに従って行った。4T1マウス乳房腫瘍の自発的転移アッセイを先行的に記載されるように行った(Shanら 2005年)。NOD−SCID免疫不全マウスを肺転移実験において使用した。TGLレポーターを発現するMDA−MB−231ヒト乳房腫瘍細胞をトリプシン処理し、PBSで洗浄した。この人工的TGLレポーター遺伝子は、高感度GFPのN末端に融合された単純ヘルペスウイルス1チミジンキナーゼおよびGFPのC末端に融合されたホタルルシフェラーゼを有する三重融合タンパク質をコードする(Ponomarevら 2004年)。次いで、0.2ml PBS中の1×106個の細胞を側尾静脈に注射した。ルシフェラーゼベースの非侵襲的生物発光イメージングおよび分析をIVIS Imaging System(Xenogen)を使用して行った。
飢餓培地中に懸濁した細胞(1×105)を、マトリゲルコーティングされたインサート(6.5mmの直径、8μmの孔径、Becton Dickenson)の上部チャンバーに添加し、インサートを、血清を含有する、または含有しない培地を有する24ウェルディッシュ内に置いた。阻害剤を使用する場合には、両方のチャンバーに添加した。浸潤アッセイを16時間行い、細胞を3.7%ホルムアルデヒドで固定した。細胞をクリスタルバイオレット染色液で染色し、インサートの上部側の細胞を綿棒で取った。インサートの下部側の3つの無作為に選択されたフィールド(10倍対物レンズ)を撮影し、インサートの下部表面上の細胞をカウントした。
腫瘍転移におけるファスチンの役割を動物モデルにおいて試験した。(4T1腫瘍細胞を伴う)自発的転移モデルおよび(MDA−MB−231腫瘍細胞を伴う)実験転移モデルを使用した。第1に、ファスチンの抑制が腫瘍浸潤を阻害するか否かについて、3Dマトリックスを介して試験した。図8Aに示されるように、4T1細胞内での2つのファスチンsiRNAの発現が、4T1腫瘍細胞の浸潤を著しく低減した。同様に、ヒトMDA−MB−231乳房腫瘍細胞内でのsiRNAによるファスチンの抑制が細胞浸潤を阻害した(データは示さず)。第2に、4T1腫瘍細胞を伴う自発的転移モデルを使用し、腫瘍転移におけるファスチンの役割について検討した(図8B〜8D)。4T1細胞をマウス乳腺に注射した。ファスチンsiRNAで処理された細胞および対照siRNAで処理された細胞の双方に由来する原発性腫瘍は、同様の速度で発生し(図8B)、4週間後、同様の重量を有し(図8C)、これからファスチンの抑制がインビボでの4T1細胞の増殖に作用しないことが確認された。4T1腫瘍細胞の移植から4週間後、マウスを殺し、肺への腫瘍転移について試験した(図8D)。対照siRNAで処理された細胞を注射したマウスは、肺において多数の転移性4T1細胞を示したが、一方、ファスチンsiRNAで処理された細胞は、肺へ転移することができなかった(図8D)。
ヒト乳癌患者におけるファスチンの発現の増大
方法
マイクロアレイ遺伝子発現分析
ファスチンについての遺伝子発現データを各腫瘍試料から抽出し、各々について全試料にわたって平均化した(mean−centered)。原発性乳癌由来の組織を、Memorial Sloan−Kettering Cancer Centerでの日常的臨床管理の一部として実施される治療手順から得た。ヒト組織を使用するすべての研究手順は、MSKCC臨床試験審査委員会(MSKCC institutional review board)によって認可された(Doaneら 2006年)。組織を液体窒素中でスナップ凍結し(snap−frozen)、−80℃で保存した。各試料を、ヘマトキシリンおよびエオシンで染色されたクリオスタット切片を使用して組織学的に試験した。領域を凍結ブロックから手作業で切り離し、分析に使用される組織内で70%を超える腫瘍細胞含有率を一貫して提供した。全RNAを、グアニジウムイソチオシアネートベースの緩衝液(Trizol;Invitrogen(Carlsbad,CA))中での均質化により、凍結組織から抽出し、RNAeasy(Qiagen(Valencia,CA))を使用して精製し、変性アガロースゲルを使用し、品質について試験した。相補的DNAを、T7−プロモーター−タグ化オリゴ−dTプライマーを使用し、RNAから合成した。RNA標的を、インビトロ転写によってcDNAから合成し、ビオチン化ヌクレオチドで標識した(Enzo Biochem(Farmingdale,NY))。遺伝子発現分析を、製造業者の使用説明書に従い、HG−U133AおよびU133Bオリゴヌクレオチドマイクロアレイを使用して実施した(Affymetrix(Santa Clara,CA))。差次的遺伝子発現を同定するため、2つの異なる尺度、すなわち各群の試料の正規化平均とスチューデントのt検定(Student’s t−test)の間での倍率変化(比)を用いた。
ヒト乳癌患者由来の腫瘍試料中のファスチンの発現レベルを試験した。137の乳癌試料および16の正常な乳房試料から得られるマイクロアレイ遺伝子発現データセットを分析した。乳房腫瘍試料は、正常試料と比べてファスチンの発現が高いことを示した(図9A)。さらに、エストロゲン受容体(ER)陰性群の患者(図9B)およびプロゲステロン受容体(PR)陰性群の患者(図9C)において、ファスチン転写産物が有意に高レベルであることが認められた。抗ファスチン抗体での免疫組織染色により、ファスチンタンパク質がER陰性腫瘍(図9D)において上方制御される一方、ER陽性腫瘍細胞がファスチン染色に対して陰性である(血管内皮がファスチン陽性であることに注意)ことが確認された。これらのデータは、ファスチン転写産物およびタンパク質のレベルが侵襲性の強いER陰性乳房腫瘍内で有意に上昇することを示す。
マイグラスタチン類似体によるファスチンの機能および腫瘍転移の阻害における構造的基盤
マイグラスタチン類似体の不在下および存在下でのファスチンのX線結晶構造を決定した。マイグラスタチン類似体は、アクチン結合のための表面として生化学的および遺伝的に規定されている溝内でファスチンに結合する。これらの構造的データは、マイグラスタチン類似体によるファスチンの阻害における分子的基盤を提供する。
ヒトFascin−1の発現および精製
組換えヒトFascin−1を、大腸菌(E.coli)内でGST−融合タンパク質として発現させた。典型的には、抗生物質を有する1リットルの2YT培地に、pGEX4T−Fascin 1プラスミドで形質転換された3mlのBL21一晩培養物を接種し、それをOD600が約0.8に達するまで37℃で成長させた。次いで、培養物を22℃にし、誘導のために0.1mMのIPTGを添加した。一晩誘導後、5,000rpmで10分間の遠心分離により、細菌を採取した。細菌ペレットを液体窒素で急速凍結し、0.2mMのPMSF、1mM のDTT、1%のTriton X−100および1mMのEDTAを補充した30mlの1×PBS中に懸濁した。超音波処理後、懸濁液を15,000rpmで60分間遠心分離し、細胞残渣を除去した。次いで、上清を、4mlのグルタチオンビーズ(Sigma)とともに4℃で2時間インキュベートした。PBSで徹底洗浄後、ビーズを、10mlのトロンビン切断緩衝液(20mMトリス、pH8.0、150mMのNaCl、2mMのCaCl2、1mMのDTT)中に再懸濁した。ヒトFascin−1を、40〜100単位のトロンビンと4℃で一晩インキュベートすることにより、ビーズから放出させた。遠心分離後、0.2mMのPMSFを上清に添加し、残留トロンビン活性を不活性化した。ファスチンタンパク質をSuperdex 200ゲル濾過カラムでさらに精製し、Centriconで約80mg/mlまで濃縮した。1リットル培養物から得られる典型的な収量は約40mgである。
濃縮されたファスチンストックを、ファスチン緩衝液(20mMトリス、pH8.0、40mMのKBr、0.5mMのEDTA、1mMのDTT)で15mg/mlまで希釈した。ファスチン−大環状ケトン複合体の成長においては、タンパク質を2mMの大環状ケトンとともに室温で1時間インキュベートした。結晶滴(crystal drop)を、100mMヘペス、pH8.0、16%のPEG4000、1%イソプロパノールを含有するリザーバ溶液中、20℃での懸垂滴拡散(hanging drop diffusion)によって準備した。結晶を、低温溶液(cryo−solution)(100mMヘペス、pH8.0、16%のPEG400、15%グリセロール)中で採取し、液体窒素で急速凍結した。X線回折データを、Brookhaven National Laboratoryにて、National Synchrotron Light SourceビームラインX6aで凍結結晶から収集した。ファスチンおよびファスチン−大環状ケトン複合体の原子モデルは最初に、Phaserを使用する1dfcモデルでの分子置換によって得た。構造を、Cootを使用して手作業で調節し、5%の反射を有するRfreeセットを有するCNSおよびRefmac5で改良した。2つのファスチン分子を各非対称単位中に見出した。
アクチン束化アッセイを上の実施例4に記載のように実施した。
ヒトFascin−1の全体構造およびトポロジー
天然ヒトFascin−1およびマイグラスタチン類似体、大環状ケトンコアとの複合体中のFascin−1のX線結晶構造を決定した(図10A、10Bおよび10C)。両結晶はC2空間群に属する。天然ファスチンの構造およびファスチン−大環状ケトン複合体の構造は、それぞれ2.1Åおよび2.7Åであることが決定された(図10A、10Bおよび10C)。ファスチンの全体構造は、ダンベル形状のドメインを形成するβ−トレフォイル1および2、ならびに別の形状をとるβ−トレフォイル3および4を有する4つのβ−トレフォイル折りたたみを示す(図10A)。2つのダンベルは、β−トレフォイル2と3との間のループによって内部連結される。2つのダンベルドメインはトレフォイル2がトレフォイル3および4に直接接触するように配列される一方、トレフォイル4はトレフォイル1および2に直接接触する(図10A)。全体として、2つのダンベルは馬蹄形の外観をもたらす。
ファスチン−大環状ケトン複合体の全体ドメイン配列は、天然ファスチンのそれと酷似し、2つの馬蹄形のアームを形成する2つのダンベルを有する(図10C)。3σ Fobs−Fcalc電子密度のピークがβ−トレフォイル4の表面上に認められた(図11A)。大環状ケトンのマクロライド環は、拡張密度(extra density)と十分に一致する。結合された大環状ケトン分子は、トレフォイル4とトレフォイル1の間のクレフトに面する側のトレフォイル4の表面に位置する(図10C)。大環状ケトンは、His392、Glu391、Ala488、Lys471、およびHis474の側鎖、ならびにAsp473のα炭素と相互作用することによって適所に保持される(図11A−11D)。6つの残基はU形状曲線を形成し、親指および人差し指で環を保持するように大環状ケトンを保持する(図11Aおよび11B)。2つの「指」の上に2つのヒスチジンHis392およびHis474が存在し、それはファスチン−大環状ケトン相互作用に対する大きな寄与因子(major contribution)を有する。His392のNE2窒素は大環状ケトン分子のケトン酸素から3.01Å離れている一方、His474のND1窒素はヒドロキシル酸素から2.57Å離れている。His392およびHis474は、大環状ケトンと水素結合を形成することにより、大環状ケトンの結合に寄与する(図11B)。ファスチンと大環状ケトンの間の相互作用は、マクロライド環炭素と残基Glu391、Ala488、Lys471およびAsp473の間のファンデルワールス力によってさらに安定化される(図11B)。
ファスチンは、アクチンフィラメントを束化する単量体として機能し、ファスチンがこの束化活性のために2つのアクチン結合部位を有することが提起されている(Onoら 1997年)。本明細書中に示される結晶構造は、これに対する構造的説明を提供する(図12Aおよび12B、オレンジおよびシアンで標識された残基)。NおよびC末端の双方は同じクレフト内に位置する(図12Aおよび12B)。さらに、N末端での29〜42の残基のストレッチは、MARCKS(ミリストイル化アラニンリッチCキナーゼ基質)のアクチン結合部位に対する類似性を有し、さらにトレフォイル1〜4クレフトに面している(図12C、原文中、オレンジで標識された残基)。さらに、ファスチンのアクチン束化活性は、N末端領域内部のタンパク質キナーゼCリン酸化部位(Ser39)によって負に調節される(図12D、原文中、赤で標識された残基)。まとめると、これらのデータは、このクレフトが2つのアクチン結合部位のうちの1つを示すことを示唆する。
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Claims (53)
- ファスチンの発現および/または活性を阻害する方法であって、有効量のファスチン阻害剤を、ファスチンを発現する細胞に投与し、それにより前記細胞内での前記ファスチンの発現または活性を阻害するステップを含む、方法。
- 前記ファスチン阻害剤は、配列番号2、4、6もしくは8からなるファスチンRNAもしくはDNAに特異的に結合する阻害性核酸、小分子、ファスチンポリペプチド断片、またはファスチンに特異的に結合する抗体を含む、請求項1に記載の方法。
- 前記阻害性核酸は、配列番号13〜62のいずれかからなるRNAまたはDNAである、請求項2に記載の方法。
- 前記阻害性核酸は、前記阻害性核酸の発現を誘導する発現カセットを含む発現ベクターを投与することによって投与される、請求項3に記載の方法。
- 前記抗体は、ファスチンアクチン結合部位へのアクチンの結合を遮断するか、またはファスチンアクチン結合部位に特異的に結合する、請求項2に記載の方法。
- 前記ファスチンアクチン結合部位は、ファスチンアミノ酸Thr326、Ser328、Ser329、Lys330、Asn331、Ser333、Arg276、Gln277、Met279、Asp286、Glu287、Gln291、Thr320、Thr318、Lys313、Thr311、Gln362、Asn360、Lys359、Asp168、Pro159、Arg151、Lys150、Arg149、Arg197、Arg201、Glu207、Glu227、Ser237、Pro236、Lys241、Lys247、およびLys250のいずれかを含む、請求項5に記載の方法。
- 前記ファスチンアクチン結合部位は、ファスチンアミノ酸His392、Glu391、Ala488、Lys471、His474およびAsp473のいずれかを含む、請求項6に記載の方法。
- 前記抗体は、ファスチンタンパク質に結合される場合、ファスチンアミノ酸His392およびHis474の一方または両方へのアクチンの結合を遮断する、請求項5に記載の方法。
- 前記抗体は、ファスチンタンパク質に結合される場合、ファスチンアミノ酸His392およびHis474の一方または両方に結合する、請求項5に記載の方法。
- 前記ファスチンポリペプチド断片は、ファスチンアミノ酸Thr326、Ser328、Ser329、Lys330、Asn331、Ser333、Arg276、Gln277、Met279、Asp286、Glu287、Gln291、Thr320、Thr318、Lys313、Thr311、Gln362、Asn360、Lys359、Asp168、Pro159、Arg151、Lys150、Arg149、Arg197、Arg201、Glu207、Glu227、Ser237、Pro236、Lys241、Lys247、およびLys250を含む、請求項2に記載の方法。
- 前記ファスチンポリペプチド断片は、ファスチンアミノ酸His392、Glu391、Ala488、Lys471、His474およびAsp473を含む、請求項2に記載の方法。
- 前記ファスチンポリペプチド断片はファスチンアミノ酸259〜493からなる、請求項12または13に記載の方法。
- 前記ファスチンポリペプチド断片は配列番号9、10および/もしくは12からなる、請求項2に記載のファスチン阻害剤。
- 前記細胞は動物細胞である、請求項1〜15のいずれか一項に記載の方法。
- 前記動物はヒトである、請求項16に記載の方法。
- 前記ヒトは疾患または症状に罹患する、請求項17に記載の方法。
- 前記疾患または症状は、転移癌、神経疾患、神経変性、炎症状態、ウイルス感染、細菌感染、リンパ過形成、ホジキン病または虚血関連組織損傷である、請求項18に記載の方法。
- 前記癌は、上皮性悪性腫瘍、リンパ腫、肉腫、メラノーマ、星状細胞腫、中皮腫細胞、卵巣癌、結腸癌、膵癌、食道癌、胃癌、肺癌、尿癌、膀胱癌、乳癌、胃癌、白血病、肺癌、結腸癌、中枢神経系癌、メラノーマ、卵巣癌、腎癌または前立腺癌である、請求項19に記載の方法。
- ファスチンの阻害剤を同定する方法であって、
a)ファスチン配列を有する少なくとも1つのタンパク質またはペプチドを、少なくとも1つの試験作用物質と、前記成分を相互作用させるのに十分な時間接触させるステップと、
b)ファスチン配列を有する前記少なくとも1つのタンパク質またはペプチドと前記試験作用物質の間に結合が生じているか否かを判定するステップと、
を含み、ここでファスチン配列を有する前記少なくとも1つのタンパク質またはペプチドと試験作用物質の間の結合が、前記試験作用物質が癌転移の阻害剤であることを示唆する、方法。 - 前記試験作用物質は、ファスチンアクチン結合部位へのアクチンの結合を遮断するかまたはファスチンアクチン結合部位に結合する、請求項21に記載の方法。
- 前記ファスチンアクチン結合部位は、ファスチンアミノ酸Thr326、Ser328、Ser329、Lys330、Asn331、Ser333、Arg276、Gln277、Met279、Asp286、Glu287、Gln291、Thr320、Thr318、Lys313、Thr311、Gln362、Asn360、Lys359、Asp168、Pro159、Arg151、Lys150、Arg149、Arg197、Arg201、Glu207、Glu227、Ser237、Pro236、Lys241、Lys247、およびLys250を含む、請求項21または22に記載の方法。
- 前記ファスチンアクチン結合部位は、ファスチンアミノ酸His392、Glu391、Ala488、Lys471、His474およびAsp473を含む、請求項21または22に記載の方法。
- 前記試験作用物質は、ファスチンタンパク質に結合される場合、ファスチンアミノ酸His392およびHis474の一方もしくは両方へのアクチンの結合を阻害する、請求項21、22または24のいずれか一項に記載の方法。
- 前記試験作用物質は、ファスチンタンパク質に結合される場合、ファスチンアミノ酸His392およびHis474の一方もしくは両方に結合する、請求項21、22または24のいずれか一項に記載の方法。
- ファスチンに対する前記試験作用物質の結合定数を判定するステップをさらに含む、請求項21〜26のいずれか一項に記載の方法。
- 前記試験作用物質がファスチン媒介性アクチン束形成を阻害するか否かを判定するステップをさらに含む、請求項21〜27のいずれか一項に記載の方法。
- 前記アクチンはF−アクチンである、請求項28に記載の方法。
- ファスチンの阻害剤を同定するための方法であって、
a)表2に従い、ファスチンアミノ酸Thr326、Ser328、Ser329、Lys330、Asn331、Ser333、Arg276、Gln277、Met279、Asp286、Glu287、Gln291、Thr320、Thr318、Lys313、Thr311、Gln362、Asn360、Lys359、Asp168、Pro159、Arg151、Lys150、Arg149、Arg197、Arg201、Glu207、Glu227、Ser237、Pro236、Lys241、Lys247、およびLys250におけるファスチン原子座標からファスチン結合部位の三次元構造画像を生成するステップであって、前記アミノ酸の骨格原子からの±a二乗平均平方根偏差は1.5オングストローム以下であるステップと、
b)有望な阻害剤を前記ファスチン結合部位内部に存在するように設計または選択し、それによりファスチンの阻害剤を同定するステップと、
を含む、方法。 - ファスチンの阻害剤を同定するための方法であって、
a)表2に従い、ファスチンアミノ酸His392、Glu391、Ala488、Lys471、His474およびAsp473におけるファスチン原子座標からファスチン結合部位の三次元構造画像を生成するステップであって、前記アミノ酸の骨格原子からの±a二乗平均平方根偏差は1.5オングストローム以下であるステップと、
b)有望な阻害剤を前記ファスチン結合部位内部に存在するように設計または選択し、それによりファスチンの阻害剤を同定するステップと、
を含む、方法。 - 前記有望な阻害剤を合成または入手するステップと、前記有望な阻害剤をファスチンと接触させるステップと、前記有望な阻害剤がファスチンに結合するか否かを確認するステップと、をさらに含む、請求項30または31に記載の方法。
- 前記有望な阻害剤は、約8オングストローム×約10オングストローム×約10オングストローム以下である、請求項30〜32のいずれか一項に記載の方法。
- 前記方法は、データセットとして前記ファスチン原子座標を含むコンピュータシステムを使用して実施される、請求項30〜33のいずれか一項に記載の方法。
- ファスチンの前記阻害剤は転移癌の阻害剤である、請求項21〜34のいずれか一項に記載の方法。
- 表2のファスチン原子座標を含む機械読取り可能記憶媒体。
- 表2による、ファスチンアミノ酸Thr326、Ser328、Ser329、Lys330、Asn331、Ser333、Arg276、Gln277、Met279、Asp286、Glu287、Gln291、Thr320、Thr318、Lys313、Thr311、Gln362、Asn360、Lys359、Asp168、Pro159、Arg151、Lys150、Arg149、Arg197、Arg201、Glu207、Glu227、Ser237、Pro236、Lys241、Lys247、およびLys250におけるファスチン原子座標を含み、ここで前記アミノ酸の骨格原子からの±a二乗平均平方根偏差は1.5オングストローム以下である、請求項36に記載の機械読取り可能記憶媒体。
- 表2による、ファスチンアミノ酸His392、Glu391、Ala488、Lys471、His474およびAsp473におけるファスチン原子座標を含み、ここで前記アミノ酸の骨格原子からの±a二乗平均平方根偏差は1.5オングストローム以下である、請求項36に記載の機械読取り可能記憶媒体。
- 配列番号2、4、6もしくは8からなるファスチンRNAもしくはDNAに特異的に結合する阻害性核酸、小分子、ファスチンポリペプチド断片、またはファスチンに特異的に結合する抗体を含むファスチン阻害剤。
- 前記阻害性核酸は、配列番号13〜62のいずれかからなるRNAまたはDNAである、請求項39に記載のファスチン阻害剤。
- 前記阻害性核酸は、ファスチン阻害性核酸の発現を誘導する発現カセットを含む発現ベクター内で発現される、請求項39または40に記載のファスチン阻害剤。
- 前記抗体は、ファスチンアクチン結合部位に特異的に結合するかまたはファスチンアクチン結合部位へのアクチンの結合を遮断し、ここで前記アクチン結合部位はファスチンアミノ酸Thr326、Ser328、Ser329、Lys330、Asn331、Ser333、Arg276、Gln277、Met279、Asp286、Glu287、Gln291、Thr320、Thr318、Lys313、Thr311、Gln362、Asn360、Lys359、Asp168、Pro159、Arg151、Lys150、Arg149、Arg197、Arg201、Glu207、Glu227、Ser237、Pro236、Lys241、Lys247、およびLys250を含む、請求項39に記載のファスチン阻害剤。
- 前記抗体は、ファスチンアクチン結合部位に特異的に結合するかまたはファスチンアクチン結合部位へのアクチンの結合を遮断し、ここで前記アクチン結合部位はファスチンアミノ酸His392、Glu391、Ala488、Lys471、His474およびAsp473を含む、請求項42に記載のファスチン阻害剤。
- 前記抗体は、ファスチンアミノ酸259〜493を含む配列を有するポリペプチドを使用して生成された、請求項39または43に記載のファスチン阻害剤。
- 前記抗体は、配列番号9、10および/もしくは12を有するポリペプチドを使用して生成された、請求項39または43に記載のファスチン阻害剤。
- 前記ファスチンポリペプチド断片は、ファスチンアミノ酸Thr326、Ser328、Ser329、Lys330、Asn331、Ser333、Arg276、Gln277、Met279、Asp286、Glu287、Gln291、Thr320、Thr318、Lys313、Thr311、Gln362、Asn360、Lys359、Asp168、Pro159、Arg151、Lys150、Arg149、Arg197、Arg201、Glu207、Glu227、Ser237、Pro236、Lys241、Lys247、およびLys250を含む、請求項39に記載のファスチン阻害剤。
- 前記ファスチンポリペプチド断片は、ファスチンアミノ酸His392、Glu391、Ala488、Lys471、His474およびAsp473を含む、請求項39に記載のファスチン阻害剤。
- 前記ファスチンポリペプチド断片はファスチンアミノ酸259〜493からなる、請求項39または47に記載のファスチン阻害剤。
- 前記ファスチンポリペプチド断片は配列番号9、10および/もしくは12からなる、請求項39または48に記載のファスチン阻害剤。
- 患者における転移癌を治療または阻害する方法であって、前記患者に、請求項39〜49のいずれか一項に記載のファスチン阻害剤を投与するステップを含む、方法。
- 薬剤の製造における、請求項39〜49のいずれか一項に記載のファスチン阻害剤の使用。
- 前記薬剤は、転移癌、神経疾患、神経変性、炎症状態、ウイルス感染、細菌感染、リンパ過形成、ホジキン病または虚血関連組織損傷の治療を目的とする、請求項51に記載の使用。
- 前記薬剤は、哺乳動物における転移癌の治療または阻害を目的とする、請求項51に記載の使用。
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