JP2011047872A - ブロッキング剤 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制するためのブロッキング剤であって、トリス塩酸を含むことを特徴とするブロッキング剤を提供する。
【選択図】図1
Description
ここで、非特異的な反応によるバックグラウンドの低減を目的とする技術として次のような従来技術が知られている。特許文献1には、DNAマイクロアレイにおける非特異的に吸着した蛍光色素付DNA及び未精製蛍光色素誘導体などの影響を受けずに、消光剤を用いて従来よりも検出感度と再現性を向上させる方法が開示されている。そして、消光剤としては、蛍光共鳴エネルギー転移により蛍光を消光させる物質を用いるとあり、具体的には、DNP、テトラメチルローダミンなどが挙げられている。特許文献2には、ハイブリダイゼーション用の特定の固体支持体を調製し、非特異的バックグラウンドを低減する方法が開示されている。
しかし、抗体と未反応蛍光色素の非特異反応自体をブロックするようなブロッキング剤についてはなんら開示も示唆もされていない。
すなわち、本発明は以下の構成を有する。
〔1〕蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制するためのブロッキング剤であって、トリス塩酸を含むことを特徴とするブロッキング剤。
〔2〕抗原抗体反応を利用し蛍光色素で標識した試料中の抗原を検出するタンパク質検出方法において、〔1〕記載のブロッキング剤を用いることを特徴とするタンパク質検出方法。
〔3〕抗原抗体反応が、基板に抗体が固定化されている抗体チップを用いた反応である〔2〕に記載のタンパク質検出方法。
〔4〕〔2〕又は〔3〕に記載のタンパク質検出方法を使用するタンパク質自動検出装置であって、以下の手段を有する検出装置。
(1)試料からタンパク質を抽出する手段
(2)(1)で得られたタンパク質と蛍光色素を反応させ蛍光色素標識タンパク質を作製する手段
(3)〔1〕に記載のブロッキング剤を用いて蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制する手段
(4)(2)で得られた蛍光色素標識タンパク質を抗体チップと反応させる手段
(5)(4)の反応後の抗体チップの蛍光色素を検出する手段
また、本発明のブロッキング剤を用いた検出方法により、従来の検出方法ではサンプルの標識反応から測定まで約3時間程度かかっていたところ、1/2〜1/3程度まで時間を短縮することができた。
本発明のブロッキング剤が抑制する非特異反応とは、蛍光色素と抗体との非特異反応であり、測定対象である抗原を蛍光色素で標識した場合に、余剰の未反応蛍光色素が測定用の抗体と起こす反応のことをいう。
また、本発明のタンパク質検出方法は、定量的な検出、定性的な検出のいずれにも用いることができる。
(1)試料からタンパク質を抽出する手段
(2)(1)で得られたタンパク質と蛍光色素を反応させ蛍光色素標識タンパク質を作製する手段
(3)本発明のブロッキング剤を用いて蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制する手段
(4)(2)で得られた蛍光色素標識タンパク質を抗体チップと反応させる手段
(5)(4)の反応後の抗体チップの蛍光色素を検出する手段
本発明のブロッキング剤(トリス塩酸)の未反応蛍光色素の抗体への結合阻害効果について、G3PDH抗体チップを用いて確認を行った。
(1)材料
(1−1)試料
0、200、400、800ng のG3PDH 精製タンパク質(AbFRONTIER社:LF−P0008)
(1−2)抗体チップ
抗G3PDH抗体(AbFRONTIER社:LF−MA0038)が最終濃度0.1、0.3、0.5、1.0mg/mlとなるように、基板に固定化されたG3PDH抗体チップを用いた。
1つの抗体チップには、8個のウェルが載置され、各ウェルには、20個の抗体スポットが設けられ、固定化されている。抗体の各濃度について1ウェルにつき5スポットずつ固定した抗体チップを用いて試験を行った。各試料濃度について各1ウェルに適用し測定した。なお、抗体チップの作製は、住友ベークライト株式会社に依頼して行った(以下の実施例においても同様)。
(1−3)蛍光色素
Cyanine5(製品名:Cy5 monofunctional dye 、GE Healthcare社製(PA25001)、以下単にCy5と省略することがある。)
(1−4)ブロッキング剤
トリス塩酸 (pH7.4)(和光純薬)を用いた。
(2)試験方法
以下の手順により、測定を行った。
(i)1.5ml容量のプラスチックチューブ(以下チューブとする)に各濃度の試料(50μl)と0.1M Na2CO3(15μl)とを混合し、1分間、室温で放置した。
(ii)Cy5を入れたチューブ前記混合試料を加えて37℃で10分間反応させた。
(iii)1M トリス塩酸を(ii)で反応させた試料に40μl加える。
(iv)抗体チップの各ウェルに試料を添加し37℃で30分間反応させた。
(v)室温下、Wash bufferで抗体チップを5回洗浄した。
(vi)室温下、超純水で抗体チップを2回洗浄した。
(vii)以下の蛍光測定機器及び条件により、蛍光強度を測定した。
蛍光測定機器:Molecular Devices社製 GenePix 4000B
測定条件:PMT Gain(光電子増倍管の感度)を600に設定してレーザースキャンを行い、スキャン後、それぞれのスポットに対するシグナル値を出し、n=5での平均値を算出した。
(3)試験結果
測定結果を図1に示す。抗体濃度1.0mg/mlにおいて、バックグラウンドが抑えられ、試料濃度依存性が見られた。
未反応蛍光色素の抗体への結合阻害試薬(濃度)の検討(トリス塩酸)
本発明のブロッキング剤(トリス塩酸)の未反応蛍光色素の抗体への結合阻害効果について、有効濃度範囲の検討を行った。
(1)材料
(1−1)試料
BLMH精製タンパク質(Abnova社:H00000642−Q01) 0ng(試料なし)、125ng(試料あり)
(1−2)抗体チップ
抗BLMH抗体(Abnova社:H00000642−A01)が最終濃度0.5、1.0mg/mlとなるように、基板に固定化されたBLMH抗体チップを用いた。1つの抗体チップには、10個のウェルが載置され、各ウェルには、20個の抗体スポットが固定化されている。抗体の各濃度について1ウェルにつき5スポットずつ固定した抗体チップを用いて試験を行った。各ブロッキング剤濃度について試料を各1ウェルに適用し測定した。
(1−3)蛍光色素
実施例1と同じものを用いた。
(1−4)ブロッキング剤
0、0.1、0.5、1、2Mのトリス塩酸(pH7.4、和光純薬工業)を用いた。
(2)試験方法
実施例1の試験方法に同じ。
(3)試験結果
抗BLMH抗体濃度が1Mの場合の結果を図2に示す。これによれば、トリス塩酸 1Mの場合に、サンプルありの測定値とサンプルなしの測定値の差が最大であり、本濃度での感度が最大であることがわかった。
未反応蛍光色素の抗体への結合阻害試薬(濃度)の検討(トリス塩酸)
本発明のブロッキング剤(トリス塩酸)の未反応蛍光色素の抗体への結合阻害効果について、有効濃度範囲の検討を行った。
試料として、BLMH精製タンパク質の代わりにAnnexinII精製タンパク質(AmProx社:No.8168−10)、抗体として抗BLMH抗体の代わりに抗AnnexinII抗体(Santa Cruz社:sc−47696)を用いた以外は、実施例2と同様に行った。抗AnnexinII抗体濃度が1Mの場合の結果を図3に示す。これによれば、抗体チップが変わってもトリス塩酸が1Mでサンプルありの測定値とサンプルなしの測定値の差が最大であり、本濃度での感度が最大であることがわかった。
Claims (4)
- 蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制するためのブロッキング剤であって、トリス塩酸を含むことを特徴とするブロッキング剤。
- 抗原抗体反応を利用し蛍光色素で標識した試料中の抗原を検出するタンパク質検出方法において、請求項1に記載のブロッキング剤を用いることを特徴とするタンパク質検出方法。
- 抗原抗体反応が、基板に抗体が固定化されている抗体チップを用いた反応である請求項2に記載のタンパク質検出方法。
- 請求項2又は3に記載のタンパク質検出方法を使用するタンパク質自動検出装置であって、以下の手段を有する検出装置。
(1)試料からタンパク質を抽出する手段
(2)(1)で得られたタンパク質と蛍光色素を反応させ蛍光色素標識タンパク質を作製する手段
(3)請求項1に記載のブロッキング剤を用いて蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制する手段
(4)(2)で得られた蛍光色素標識タンパク質を抗体チップと反応させる手段
(5)(4)の反応後の抗体チップの蛍光色素を検出する手段
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JP2009198177A JP2011047872A (ja) | 2009-08-28 | 2009-08-28 | ブロッキング剤 |
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JP2007178142A (ja) * | 2005-12-27 | 2007-07-12 | Tokuyama Corp | 固定化抗体の製造方法 |
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- 2009-08-28 JP JP2009198177A patent/JP2011047872A/ja active Pending
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