JP2009525744A - リソソーム蓄積疾患を治療するための組成物及び方法 - Google Patents

Abstract

本発明は、少なくとも１つの細胞透過性ペプチド（ＣＰＰ）と融合又は結合したリソソームペプチドを含むキメラポリペプチドに関する。また、リソソーム蓄積障害（ＬＳＤ）を患っている患者を治療する方法が本発明によって提供される。

Description

発明の分野
本発明は、概して、リソソーム蓄積障害（ｌｙｓｏｓｏｍａｌ ｓｔｏｒａｇｅ ｄｉｓｏｒｄｅｒ：ＬＳＤ）を治療するための組成物及び方法に関し、より具体的にはＬＳＤに対する酵素補充療法の効率を高めるための細胞透過性ペプチド（ｃｅｌｌ−ｐｅｎｅｔｒａｔｉｎｇ ｐｅｐｔｉｄｅ：ＣＰＰ）の使用に関する。

発明の背景
酵素補充療法（「ＥＲＴ」）は、欠損酵素を外因的に供給することからなり、ある種のリソソーム蓄積障害に対する最も成功した治療的アプローチであった。この治療法は、マンノース−６−リン酸受容体を媒介したエンドサイトーシス経路を介したリソソーム酵素を摂取する細胞の能力に依存する。

哺乳動物細胞では、２つのタイプのマンノース６−リン酸受容体（「Ｍ６ＰＲ」）が知られている：インスリン様増殖因子ＩＩ受容体（ＩＧＦ−ＩＩＲ）としても知られている約２７０ｋＤａのカチオン非依存性ＭＲＰ（ＣＩ−ＭＰＲ）、及び４６ｋＤａのカチオン依存性ＭＰＲ（ＣＤ−ＭＰＲ）である。両方とも、タイプＩの糖タンパク質であって、リソソーム酵素、及びホスホマンノシル残基を含む他のタンパク質に高い結合親和性を有する。ＣＩ−及びＣＤ−ＭＰＲは、大部分は細胞内に見出され、そこでは、ゴルジから前リソソームコンパートメントにマンノース−６−リン酸（「Ｍ６Ｐ」）発現タンパク質を標的とする主要な役割を果たす（Ｇｒｉｆｆｉｔｈｓら，Ｊ．Ｃｅｌｌ Ｓｃｉ．９５：４４１−４６１（１９９０））。両受容体はまた、細胞表面に存在するが、ＩＧＦ−ＩＩ／ＣＩ−ＭＰ受容体は、Ｍ６Ｐ含有分子への結合及び取り込みのための主要な受容体であると考えられている（Ｓｔｅｉｎら，ＥＭＢＯ Ｊ．６：２６７７−２６８１（１９８７）；Ｍａら，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６６：１０５８９−１０５９５（１９９１））。ＩＧＦ−ＩＩ／ＣＩ−ＭＰ受容体は、細胞及び組織に偏在的に発現しているが、多くの研究では、この受容体の発現レベルは、組織特異的であり、発生学的に調節されていることが示されている（Ｈａｗｋｅｓ及びＫａｒ，Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．Ｒｅｖ．４４：１１７−１４０（２００４））。

リソソーム蓄積障害は、通常、特定の１個の重要な酵素の欠陥によって引き起こされる４０を超える遺伝性疾患のグループである。酵素活性のこの喪失は、リソソーム内でスフィンゴ脂質、グリコーゲン、ムコ多糖類又は糖タンパク質などの非分解性基質の進行的な蓄積をもたらし、結果として細胞小器官の固化（ｅｎｇｏｒｇｅｍｅｎｔ）に至る。これは、細胞及び組織損傷、続く臓器機能不全、ある疾患では早死へと導く。ＩＧＦ−ＩＩ／ＣＩ−ＭＰ受容体のリガンド結合特性に基づいて、最近の臨床試行は、組換え酵素を用いた酵素補充療法がこのようなリソソーム蓄積疾患（ファブリー及びゴーシェ疾患）を患っている患者の治療に主に臨床的な利点を構成することが示されている（Ｄｅｓｎｉｃｋ及びＳｃｈｕｃｈｍａｎ，Ｎａｔ．Ｒｅｖ．Ｇｅｎｅｔ．３：９５４−９６６（２００２），Ｅｒｒａｔｕｍ ｉｎ；Ｎａｔ Ｒｅｖ Ｇｅｎｅｔ．４：１５７（２００３）；Ｓｌｙ，Ｍｏ．Ｍｅｄ．１０１：１００−１０４（２００４））。

それにもかかわらず、効率的な治療法は、Ｍ６Ｐグリコシル化したタンパク質の十分な内在化及び標的化を可能にするＭ６Ｐグリシル化した組換えタンパク質の高服用量を必要とする。Ｍ６ＰＲ発現は、ＥＲＴに対する主要な標的組織である骨格筋では低く、血液脳関門を通過するＭ６ＰＲによって媒介される輸送システムの加齢に関連した喪失が観察され、治療、特にある種のＬＳＤに観察される神経学的徴候に問題である（Ｆｕｎｋら，Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ．Ｍｅｔａｂ．７５：４２４−４３１（１９９２）；Ｒａｂｅｎら，Ｍｏｌ．Ｇｅｎｅｔ．Ｍｅｔａｂ．８０：１５９−１６９（２００３）；Ｕｒａｙａｍａら，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ．１０１：１２６５８−１２６６３（２００４）；Ｗｅｎｋら，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｉｎｔ．２３：７２３−７３１（１９９１））。さらに、ＥＲＴに用いられる組換えタンパク質は、費用のかかる哺乳動物系によって合成しなければならず、時々、Ｍ６Ｐを含む組換え酵素は修飾されにくい（Ｚｈｕら，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７９：５０３３６−５０３４１（２００４））。

さらに、ＣＨＯ細胞において産生される組換え酸性アルファ−グルコシダーゼは、ポンペ病の動物モデルにおける影響を受けた筋肉への輸送を高めるために、Ｍ６Ｐ−糖質部分の直接的な化学的結合によってリモデリングされる必要があることが示されている（Ｚｈｕら，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｊ．２０：（２００５））。

Ｍ６Ｐタグの固有の部位に高親和性でＩＧＦ−ＩＩを結合するＩＧＦ−ＩＩ／ＣＩ−ＭＰＲの能力を用いて、ＬｅＢｏｗｉｔｚら（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ．１０１：３０８３−３０８８（２００４））は、グリコシル化依存性標的化を回避するためにヒトＩＧＦ−ＩＩ（６０アミノ酸）から「ＧＩＬ Ｔタグ」と命名されたポリペプチド配列を設計した。ＧＩＬ Ｔタグ配列は、ベータ−グルクロニダーゼ遺伝子に融合させ、エンドサイトーシスを媒介したＩＧＦ−ＩＩ／ＣＩ−ＭＰ受容体の内在化の喪失なしに組換え酵素の輸送を可能にする（特許出願ＷＯ０２／０８７５１０及びＷＯ０３／１０２５８３も参照されたい）。

ＰＣＴ特許出願ＷＯ０２／０５５６８４及びＸｉａら（Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．１９：６４０−６４４（２００１））は、Ｔａｔタンパク質形質導入ドメイン（Ｔａｔ_47-57及びＴａｔ_57-47）に連結したリソソーム酵素を含む組換えタンパク質形質導入ドメイン（ＰＴＤ）融合タンパク質を開示している。著者らは、インビトロにおいて、ＴａｔのＰＴＤを用いてＣＯＯＨ末端で修飾したベータ−グルクロニダーゼが、（Ｍ６Ｐによる天然のベータ−グルクロニダーゼの取り込みの全体の阻害と比較して）Ｍ６Ｐ依存性及び非依存性のエントリーを可能にすることを示した。しかしながら、このタンパク質を輸送するためのＴａｔペプチドの能力は、マウスに注入された組換えウイルスベクターを用いることによってインビボで評価された。

ＰＣＴ特許出願ＷＯ０４／１０８０７１は、キメラ中枢神経系（ＣＮＳ）標的ポリペプチドに関し、リソソーム酵素（例えばベータ−グルクロニダーゼ）などのペイロード（ｐａｙｌｏａｄ）ポリペプチドドメイン、並びに、例えばアポリポタンパク質Ｂ、アポリポタンパク質Ｅ又はインスリン様増殖因子由来の血管脳関門（ＢＢＢ）受容体結合ドメインを含む。しかしながら、ＢＢＢ受容体結合ドメインは、細胞透過性ペプチドであるとは考えられていない。

Ｏｒｉｉら（Ｍｏｌ．Ｔｈｅｒ．１２：３４５−３５２（２００５））は、安定にトランスフェクトしたＣＨＯ細胞の分泌物から精製したヒト・ベータ−グルクロニダーゼの組換え形体を用いて、天然（ホスホマンノシル化）酵素と、１１個のアミノ酸のＨＩＶ Ｔａｔタンパク質形質導入ドメインを含むベータ−グルクロニダーゼ−Ｔａｔ Ｃ末端融合タンパク質と比較した。産生された組換えベータ−グルクロニダーゼ−Ｔａｔ融合タンパク質は、天然の酵素よりもリン酸化が少なかった（４６％）。著者らは、ベータ−グルクロニダーゼ−Ｔａｔ融合タンパク質が、培養したヒト線維芽細胞による天然のベータ−グルクロニダーゼ取り込みよりも約５０％多くの取り込みを示すことを見出した。著者らはまた、天然のベータ−グルクロニダーゼ取り込みはＭ６Ｐ受容体によって排他的に媒介されるが、ベータ−グルクロニダーゼ−Ｔａｔ融合タンパク質はＭ６Ｐ受容体媒介の取り込みと比較してほんの３０〜５０％を示し、細胞表面のプロテオグリカン類への正に帯電したＴａｔペプチドの結合を介した吸着的なエンドサイトーシスによって取り込まれることを示した。

しかしながら、リソソーム酵素補充療法、即ちリソソーム酵素の細胞への輸送を改善する方法はなおも必要である。

発明の概要
本発明は、少なくとも１つの細胞透過性ペプチド（ＣＰＰ）に融合又は結合したリソソームペプチドを含むキメラポリペプチドに関する。また、本発明によって、リソソーム蓄積障害（ＬＳＤ）を患っている被験者を治療する方法が提供される。

一局面では、本発明は、少なくとも２つのドメインが互いに融合又は結合したキメラポリペプチドを提供する：第１ドメインは、生体膜を通過し、リソソームへの能動輸送を促進する細胞透過性ペプチドを含み、第２ドメインは、リソソーム酵素を含む。

本発明の組成物は、部分的には、ある種のＣＰＰが輸送分子を生体膜を通過させてリソソームへの輸送を可能にするという発見に基づいている。

好ましくは、ＣＰＰは、少なくとも４個の塩基性アミノ酸を含み、及び／又はヘパリン、ヘパリン硫酸又はコンドロイチン硫酸などのグリコサミノグリカンに結合する。

好都合には、本発明はまた、マンノース−６−リン酸（Ｍ６Ｐ）非依存的にリソソーム酵素（例えば、ベータ−グルクロニダーゼ）などの治療化合物をリソソームに標的化することを可能にする。

本発明はまた、細胞透過性ペプチドをコードするヌクレオチド配列に融合したリソソーム酵素をコードするポリヌクレオチド（ＤＮＡ又はＲＮＡ）を提供する。ＣＰＰをコードするヌクレオチド配列は、遺伝子コード内に含まれる情報に基づいて、当業者によって決定することができる。

他に規定がなければ、本明細書中に使用されている全ての技術的及び科学的用語は、本発明が属する当業者に通常理解されるのと同じ意味を有する。本明細書に記載されるものと同じであるか又は同等である方法及び材料は本発明の実施又は試験に用いることができるが、適切な方法及び材料は下記に記載されている。本明細書中に言及されている全ての刊行物、特許出願、特許及び他の参考文献は、全体として参照により援用される。不一致の場合には、定義を含む本明細書が調整する。

発明の詳細な説明
本発明は、少なくとも１つの細胞透過性ペプチドに融合又は結合したリソソーム酵素を含むキメラポリペプチドを提供する。本発明のキメラポリペプチドまたはこれらのキメラポリペプチドをコードする核酸は、組成物、好ましくは医薬組成物に取り込まれ、リソソーム蓄積障害（ＬＳＤ）を患っている被験者に投与することができる。したがって、本発明は、いずれかの順番でキメラポリペプチドに現れ得る少なくとも２つのポリペプチドドメインを含むキメラポリペプチドを提供し、該キメラポリペプチドは、各ドメインを１以上含む。

本明細書中で使用するとき、「キメラポリペプチド（単数または複数）」は、非リソソームペプチド（例えば、ＣＰＰ）に連結された少なくとも１つのリソソーム酵素を含む。

用語「連結した（ｃｏｕｐｌｅｄ）」は、リソソーム酵素が、非リソソームペプチド、例えばＣＰＰなどに「融合」又は「結合」されることを指す。ＣＰＰは、リソソーム酵素のＮ末端又はＣ末端に連結（融合又は結合）することができる。

用語「融合した」は、本発明のキメラポリペプチドが両ドメイン（即ち、リソソーム酵素及びＣＰＰ）を含む融合タンパク質として合成され得ることを指す。キメラポリペプチドをコードする核酸に言及するように使用される場合、用語「融合した」とは、第１及び第２ドメインをコードする核酸が遺伝子操作によって互いにフレームに合わせて融合されることを意味する。用語「結合した」とは、キメラポリペプチドの第１及び第２ドメイン（即ち、リソソーム酵素及びＣＰＰ）が化学的に連結され；最も典型的には、少なくとも１つの融合がリソソーム酵素と関連することができるような方法で、ペプチド結合などの共有結合を介して連結されることを指すことが意図される。この結合は、架橋試薬を介して達成することができる。

本明細書中で使用するとき、用語「リソソーム酵素」は、リソソームと呼ばれる細胞内小器官で生物学的に活性であり、リソソーム蓄積障害（ＬＳＤ）と関連付けられている天然に抽出されるか又は組換え的に産生されるリソソーム酵素を包含するものとして解釈しなければならない。リソソーム酵素は、エンドサイトーシスの経過中に細胞によって取り込まれる高分子（即ち、巨大分子）及び他の材料（細菌など）を分解（即ち、崩壊）する。「生物学的に活性な」とは、酵素がリソソーム蓄積障害（ＬＳＤ）の症状を抑制し、阻害し、又はＬＳＤ遺伝子欠損を救出する能力を有する酵素を意味する。生物学的に活性なリソソーム酵素は、酸性−アルファ−１，４−グルコシダーゼ；ベータ−ガラクトシダーゼ；ベータ−ガラクトシダーゼＡ；ベータ−ヘキソサミニダーゼＡ；ベータ−ヘキソサミニダーゼＢ；ＧＭ₂活性化タンパク質；グルコセレブロシダーゼ；アリールスルファターゼＡ；アリールスルファターゼＢ；ガラクトシルセラミダーゼ；酸性スフィンゴミエリナーゼ；コレステロール；酸性セラミダーゼ；酸性リパーゼ；アルファ−Ｌ−イズロニダーゼ；イズロニダーゼ・スルファターゼ；ヘパリンＮ−スルファターゼ；アルファ−Ｎ−アセチルグルコサミニダーゼ；アセチル−ＣｏＡ−グルコサミニド・アセチルトランスフェラーゼ；Ｎ−アセチルグルコサミン−６−スルファターゼ；ガラクトサミン−６−スルファターゼ；ベータ−グルクロニダーゼ；アルファ−マンノシダーゼ；ベータ−マンノシダーゼ；アルファ−Ｌ−フコシダーゼ；Ｎ−アルパルチル−ベータ−グルコサミニダーゼ；アルファ−ノイラミニダーゼ；リソソーム防御タンパク質；アルファ−Ｎ−アセチル−ガラクトサミニダーゼ；Ｎ−アセチルグルコサミン−１−ホスホトランスフェラーゼ；シスチン輸送タンパク質；シアル酸輸送タンパク質；パルミトイル−タンパク質チオエステラーゼ；サポシンＡ、Ｂ、Ｃ又はＤ；カテプシンタンパク質ファミリーを含む群から選択される。リソソーム酵素は、ヒト、ウシ、ブタ、ウマ、イヌ又はマウスなどのいずれかの種類から誘導されてもよい。

１つの特定の好ましいリソソーム酵素は、ベータ−グルクロニダーゼである。ヒト非ホスホマンノシル化ベータ−グルクロニダーゼの分子量は、約７０ｋＤａ／サブユニットである。

用語「リソソーム酵素誘導体」は、上記で定義される天然の（又は天然に存在している）リソソーム酵素のいずれかの形体を含むことが意図され、該ポリペプチド鎖内の１以上のアミノ酸は、代替のアミノ酸で置換され、及び／又は１以上のアミノ酸は欠失され、又は１以上の追加のアミノ酸は、前記リソソーム酵素のポリペプチド鎖又はアミノ酸配列に添加され、なおも天然のリソソーム酵素の少なくとも１つの機能を有し、即ち、なお生物学的に活性である。リソソーム酵素誘導体は、所定の天然のリソソーム酵素と比較して、少なくとも約５０％、好ましくは少なくとも約７０％、より好ましくは少なくとも約８０％〜８５％、好ましくは少なくとも約９０％、最も好ましくは少なくとも約９５〜９９％のアミノ酸配列相同性を示す。２つのアミノ酸配列間の「相同性」を計算するのに適切な多くのコンピュータプログラムは、一般に当業者に知られ、例えば、スコアリングマトリックスＢＬＯＳＵＭ６２を選ぶＢＬＳＡＴプログラム（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ＢＬＡＳＴ／）がある。

用語「リソソーム酵素」及び「リソソーム酵素誘導体」は、本明細書中では相互に交換可能に用いられる。

リソソーム酵素は、ホスホマンノシル化（即ち、リン酸化）又は非ホスホマンノシル化（即ち、非リン酸化）されて用いることができる。リソソーム酵素の生合成中、酵素は、小胞体でグリコシル化され、ゴルジで高マンノースグリカン上でリン酸化される。ホスホマンノシルユニット取得は、Ｍ６ＰＲへの酵素の結合、その後のリソソームへの転移を可能にする。好ましい態様によれば、リソソーム酵素は、非ホスホマンノシル化されて用いられる。

本発明に使用するためのリソソーム酵素は、Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ、Ｐｒｏｚｙｍｅなどの多数の商業的供給源から得ることができる。

リソソームポリペプチド又はリソソーム酵素若しくはその誘導体をコードする核酸は、任意のリソソーム酵素アミノ酸配列または当該技術分野において知られているコード配列を用いて構築することができる。このような配列の供給源には、ＵｎｉＰｒｏｔＫＢ／Ｓｗｉｓｓ−Ｐｒｏｔ Ｄａｔａｂａｓｅが含まれる。例えば、ある種のホモサピエンスの酵素のＳｗｉｓｓ−Ｐｒｏｔ受け入れ番号が与えられる：ベータ−グルクロニダーゼＰ０８２３６；アルファ−Ｌ−イズロニダーゼＰ３５４７５；グルコシルセラミダーゼ／酸性ベータ−グルコシダーゼＰ０４０６２；酸性スフィンゴミエリナーゼＰ１７４０５；アルファ−ガラクトシダーゼＡ Ｐ０６２８０；ガラクトセレブロシダーゼＰ５４８０３；シアリダーゼ１ Ｑ９９５１９；リソソーム・アルファ−マンノシダーゼＯ００７５４；ベータ−マンノシダーゼＵ６０３３７；及び、カテプシンＫ Ｐ４３２３５。

「リソソーム蓄積障害」（ＬＳＤ）は、限定されないが、糖原病、例えばポンペ病；糖脂質症、例えばＧＭ１ガングリオシドーシス、ＧＭ２ガングリオシドーシスＡＢ変異体；トレイ−サックス（Ｔｒａｙ−Ｓａｃｈｓ）病、サンフホッフ（Ｓａｎｆｈｏｆｆ）病、ファブリー病、ゴーシェ病、異染色性白質ジストロフィー、クラッベ病、Ａ型、Ｂ型又はＣ型ニーマン・ビック病、ファーバー病、ウォルマン病；ムコ多糖障害、例えばフルラー症候群（ＭＰＳ ＩＨ）、シャイエ症候群（ＭＰＳ ＩＳ）、フルラー−シャイエ症候群（ＭＰＳ ＩＨ／Ｓ）、ハンター症候群（ＭＰＳ ＩＩ）、サンフィリポＡ（ＭＰＳ ＩＩＩＡ）、Ｂ（ＭＰＳ ＩＩＩＢ）、Ｃ（ＭＰＳ ＩＩＩＣ）又はＤ（ＭＰＳ ＩＩＩＤ）症候群、モルキオＡ（ＭＰＳ ＩＶＡ）又はＢ（ＭＰＳ ＩＶＢ）症候群、マロトー・ラミー症候群（ＭＰＳ ＶＩ）、スライ症候群（ＭＰＳ ＶＩＩ）；オリゴ糖／糖タンパク質障害、例えばアルファ−マンノシドーシス、ベータ−マンノシドーシス、フコシドーシス、アスパルチルグルコサミン尿症、シアリドーシス（ムト脂質Ｉ）、ガラクトシアリドーシス（ゴールドバーグ症候群）、シンドラー病；リソソーム酵素輸送障害、例えばムコ脂質症ＩＩ（Ｉ−細胞病）、ムコ脂質症ＩＩＩ（偽フルラーポリジストロフィー）；リソソーム膜輸送障害、例えばシスチン蓄積症、サラ病、小児性シアル酸蓄積病；又はバッテン病（若年性神経セロイドリポフスチン症）、小児性神経セロイドリポフスチン症、ムト脂質症ＩＶ、プロサポシンを含む。

用語「細胞透過性ペプチド（単数または複数）」（ＣＰＰ（単数または複数））は、生体膜又は生理的な障壁を横切ることができる担体ペプチドとして定義される。細胞透過性ペプチドはまた、細胞透過性（ｐｅｒｍｅａｂｌｅ）ペプチド、タンパク質形質導入ドメイン（ｐｒｏｔｅｉｎ−ｔｒａｎｓｄｕｃｔｉｏｎ ｄｏｍａｉｎ：ＰＴＤ）又は膜転移配列（ｍｅｍｂｒａｎｅ−ｔｒａｎｓｌｏｃａｔｉｏｎ ｓｅｑｕｅｎｃｅ：ＭＴＳ）と呼ばれている。ＣＰＰは、インビトロ及び／又はインビボにおいて、哺乳動物細胞膜を転移し、細胞及び／又は細胞核に入る能力を有し、対象とする結合した化合物、例えば薬物又はマーカーを所望の細胞の目的地に指向する。したがって、ＣＰＰは、リン脂質、ミトコンドリア、エンドソーム又は核の膜を横切る、対象とする化合物の透過性を指向又は促進することができる。ＣＰＰはまた、細胞外から細胞膜を通じて細胞質に、又は細胞内の所望の位置、例えばリソソーム、核、リボソーム、ミトコンドリア、小胞体、又はペルオキシソームに対象とする化合物を指向することができる。代わりに又は加えて、ＣＰＰは、血液脳関門、経粘膜関門、血液骨液関門、血液網膜関門、皮膚障壁、胃腸管障壁及び／又は肺障壁を横切る対象とする化合物を指向することができる。

生体膜又は生理学的な障壁を横切る透過性は、種々のプロセス、例えば、培養細胞の存在下でマーカーに結合したＣＰＰに対する第１のインキュベーション工程を有する細胞透過性試験、続く、固定化工程、次に、細胞内のペプチドの存在の露呈によって測定することができる。別の態様では、露呈工程は、標識された抗体の存在下でＣＰＰのインキュベーションにより行い、ＣＰＰに対して指向し、細胞質で又は細胞核のごく近傍又は核内でも、ＣＰＰのアミノ酸配列と標識した抗体との間の免疫学的反応の検出によって行うことができる。また、露呈は、ＣＰＰ内のアミノ酸配列をマークし、細胞コンポーネント中のそのマークの存在を検出することによって行うことができる。細胞透過性試験は、当業者に周知である。しかしながら、例えば、細胞透過性試験は、上述した特許出願ＷＯ９７／０２８４０に記載されている。

いくつかのタンパク質及びそれらのペプチド誘導体は、細胞の内在化特性を有することが発見され、限定されないが、１型ヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ−１）タンパク質Ｔａｔ（Ｒｕｂｅｎら，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．６３，１−８（１９８９））、ヘルペスウイルス・テグメントタンパク質ＶＰ２２（Ｅｌｌｉｏｔｔ及びＯ’Ｈａｒｅ、Ｃｅｌｌ ８８，２２３−２３３（１９９７））、キイロショウジョウバエ・アンティナペディアのホメオティックタンパク質（このＣＰＰはペネトラチンと呼ばれる）（Ｄｅｒｏｓｓｉら，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７１，１８１８８−１８１９３（１９９６））、プロテグリン１（ＰＧ−１）抗菌ペプチドＳｙｎＢ（Ｋｏｋｒｙａｋｏｖら，ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．３２７，２３１−２３６（１９９３））及び塩基性線維芽細胞増殖因子（Ｊａｎｓ，Ｆａｓｅｂ Ｊ．８，８４１−８４７（１９９４））が含まれる。多数の他のタンパク質及びそれらのペプチド誘導体はこれらのタンパク質から誘導され、互いに配列相同性はほとんどないが、全てにおいて非常にカチオン性であり、アルギニン又はリジンに富んでいる。実際に、合成ポリアルギニンペプチドは、高レベルの効率で内在化されることが示されている（Ｆｕｔａｋｉら，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｒｅｃｏｇｎｉｔ．１６，２６０−２６４（２００３）；Ｓｕｚｕｋｉら，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．（２００１））。

ＣＰＰは、任意の長さであってもよい。例えば、ＣＰＰは、長さにして５００、２５０、１５０、１００、５０、２５、１０、６又は４個以下のアミノ酸である。例えば、ＣＰＰは、長さにして４、６、１０、２５、５０、１００、１５０、２５０又は５００個のアミノ酸である。ＣＰＰの適切な長さ及び設計は、当業者によって容易に決定される。ＣＰＰに関する一般的な参考文献として、Ｕｌｏ Ｌａｎｇｅｌ編集のＣＥＬＬ ＰＥＮＥＴＲＡＴＩＮＧ ＰＥＰＴＩＤＥＳ：ＰＲＯＣＥＳＳＥＳ ＡＮＤ ＡＰＰＬＩＣＡＴＩＯＮＳ（２００２）；又は、Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ Ｒｅｖｉｅｗｓ ５７：４８９−６６０（２００５）。

好ましい態様では、ＣＰＰは、長さにして６、７、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２２、２３、２４又は２５個のアミノ酸である。

本発明に係る細胞透過性ペプチドは、限定されないが、後述されるもの又はそれらの改変体であり得る。「改変体」は、少なくとも約５０％、好ましくは少なくとも約７０％、より好ましくは約８０〜８５％、好ましくは少なくとも約９０％、及び最も好ましくは約９５〜９９％同一である。例えば、ペプチドは、１、２、３、４以上の残基で置換を有していてもよい。ＣＰＰは、それらの天然の形体（例えば、上述される）又はポリマー形体（二量体、三量体など）で用いることができる。

必要に応じて、いくつかの周知な化学的ストラテジーは、インビボにおいて安定性、生物学的利用能及び／または生物学的活性の上昇を伴う薬物候補をＣＰＰに形質転換するために、当業者によって用いることができる；例えば：

− エキソペプチダーゼ分解を防ぐためのＮ及びＣ端の修飾：
○ Ｃ端のアミノ化
○ Ｎ端のアセチル化はペプチド脂溶性を増加する、

− ジスルフィド架橋の形成による環化、
− エンドペプチダーゼ分解を防ぐためのアミド窒素のアルキル化、

− エンドペプチダーゼの認識部位を修飾するための非天然アミノ酸の導入（２−メチルアラニン、アルファ−ジアルキル化グリシン、オリゴカルバメート、オリゴウレア、グアニジノ又はアミジノ骨格・・・）、

− ＣＰＰアミノ酸配列内に遺伝子的にコードされていないアミノ酸の導入（グリシン又はフェニルアラニンのメチル化、ハロゲン化又は塩素化）、

− いくつか又は全てのＬアミノ酸をそれらの対応するＤ−アミノ酸又はベータ−アミノ酸類似体で置換すること。このようなペプチドは、「インベルソ（ｉｎｖｅｒｓｏ）」又は「レトロ−インベルソ」形体として、即ち、配列のＬ−アミノ酸をＤ−アミノ酸で置換することによって、又はアミノ酸の配列を反転させ、Ｌ−アミノ酸をＤ−アミノ酸で置換することによって合成することができる。構造的には、レトロ−反転（ｉｎｖｅｒｓｅ）ペプチドは、単一のＤ−類似体よりも元々のペプチドに非常に類似している。Ｄ−ペプチドは、ペプチダーゼに対して実質的により耐性であり、したがって、それらのＬ−ペプチド対応物と比較して血清及び組織でより安定である。好ましい態様では、Ｌ−アミノ酸を含有するＣＰＰは、エキソペプチダーゼ破壊を阻害するために１個のＤ−アミノ酸でキャップされる。

− ＣＰＰ誘導のオリゴカルバメートの合成；オリゴカルバメート骨格は、相対的に堅いカルバメート基を介して連結されたキラルエチレン骨格からなる（Ｃｈｏら，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２６１：１３０３−１３０５（１９９３））

別の態様では、ＣＰＰは、隣接するか又は隣接してない塩基性アミノ酸又はアミノ酸類似体、特にグアニジル又はアミジニル部分を含む。用語「グアニジル」及び「グアニジン」は、相互交換的に用いられ、式−ＨＮ＝Ｃ（ＮＨ₂）ＮＨ（非プロトン化形体）を有する部分をいう。例として、アルギニンは、グアニジル（グアニジノ）部分を含み、また、２−アミノ−５−グアニジノ吉草酸又はａ−アミノ−６−グアニジノ吉草酸と呼ばれる。用語「アミジニル」及び「アミジノ」は、相互交換的に用いられ、式−Ｃ（＝ＮＨ）（ＮＨ₂）を有する部分をいう。「塩基性アミノ酸又はアミノ酸類似体」は、ｐＫａが１０を超える側鎖を有する。好ましい高い塩基性アミノ酸はアルギニン及び／又はリジンである。

好ましい態様では、本発明に係るＣＰＰは、少なくとも１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０個の塩基性アミノ酸又はアミノ酸類似体、特にリジン及びアルギニンを含む。

より好ましい態様によれば、ＣＰＰは、さらに、生体膜を横切る能動輸送を促進する及び／又はグリコサミノグリカン（ＧＡＧ）類（繰り返し二糖単位を含む長鎖の未分岐分子）、又は具体的にはヒアルロン酸、ヘパリン、ヘパラン硫酸、デルマタン硫酸、ケラチン硫酸若しくはコンドロイチン硫酸およびそれらの誘導と反応又は結合する能力によって特徴付けられる。「ヘパリン、ヘパラン硫酸又はコンドロイチン硫酸誘導体」又は「グリコサミノグリカン類」は、参考文献（Ｃａｒｄｉｎ及びＷｅｉｎｔｒａｕｂ，Ａｒｔｅｒｉｏｓｃｌｅｒｏｓｉｓ ９：２１（１９８９）；Ｍｅｒｔｏｎら，Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．８：３６５（１９９２）；Ｄａｖｉｄ，ＦＡＳＥＢ Ｊ．７：１０２３（１９９３））に引用された刊行物に定義されるいずれかの生成物又は副産物を意味するものと理解される。

グリコサミノグリカン（ＧＡＧ）類と反応及び／又は結合するＣＰＰの能力は、当該技術分野において直接的又は間接的なグリコサミノグリカン結合アッセイ、例えば、ＰＣＴ特許出願ＷＯ００／４５８３１に記載されているペプチドグリコサミノグリカン結合についてのアフィニティー同時電気泳動（ＡＣＥ）によって測定可能である。当該技術分野において周知ないくつかの他の方法は、ＧＡＧ−ペプチド相互作用を分析するために利用可能であり、例えば、ＰＣＴ特許出願ＷＯ０１／６４７３８又はＷｅｉｓｇｒａｂｅｒ及びＲａｌｌ（Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２６２（３３）：１１０９７−１０３）（アポリポタンパク質Ｂ−１００を用いた具体例）；又は、改変したＥＬＩＳＡ試験による方法である：９６ウェルプレートは、特定のＧＡＧ（コンドロイチン硫酸Ａ、Ｂ及びＣ、ヘパリン、ヘパリン硫酸、ヒアルロン酸、ケラチン硫酸、シンデカン）で被覆し、次に、マーカーに結合したペプチドは所定時間添加される；過度に洗浄後、ペプチド結合はマーカーに関連した特定の分析を用いて測定される。

インビトロ及び／又はインビボでグリコサミノグリカン類と反応することができるＣＰＰは、特許出願ＷＯ０１／６４７３８及びＷＯ０５／０１６９６０に、並びにＤｅ Ｃｏｕｐａｄｅら（Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｊ．３９０：４０７−１８（２００５））に記載されている。これらのペプチドは、下記：リポタンパク質、例えばヒトアポリポタンパク質Ｂ又はＥ（Ｃａｒｄｉｎら，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｓｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍ．１５４：７４１（１９８８））、アグリン（ａｇｒｉｎｅ）（Ｃａｍｐａｎｅｌｌｉら，Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ １２２：１６６３−１６７２（１９９６））、インスリン増殖因子結合タンパク質（Ｆｏｗｌｋｅｓら，Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ．１３８：２２８０−２２８５（１９９７））、ヒト血小板由来増殖因子（Ｍａｈｅｒら，Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．９：２２５１−２２５３（１９８９））、ヒト細胞外スーパオキシド・ジスムターゼ（ＥＣ−ＳＯＤ）（Ｉｎｏｕｅら，ＦＥＢＳ ２６９：８９−９２（１９９０））、ヒトヘパリン結合上皮細胞増殖因子様増殖因子（ＨＢ−ＥＧＦ）（Ａｒｋｏｎａｃら，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７３：４４００−４４０５（１９９８））、酸性線維芽細胞増殖因子（ａＦＧＦ）（Ｆｒｏｍｍら，Ａｒｃｈ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈ．３４３：９２（１９９７））、塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）（Ｙａｙｏｎら，Ｃｅｌｌ ６４：８４１−８４８（１９９１））、ヒト腸内ムチン２配列（Ｘｕら，Ｇｌｙｃｏｎｊｕｇ Ｊ．１３：８１−９０（１９９６））、ヒトガンマインターフェロン（Ｌｏｒｔａｔ−Ｊａｃｏｂ ＆ Ｇｒｉｍａｕｄ，ＦＥＢＳ ２８０：１５２−１５４（１９９１））、ヒトインターロイキン１２のサブユニットｐ４０（Ｈａｓａｎら，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１６２：１０６４−１０７０（１９９９））、間質細胞由来の因子１−α（Ａｍａｒａら，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７２：２００−２０４（１９９９））、ヒト好中球誘導の「ヘパリン結合タンパク質」（ＣＡＰ ３７／アズロシジン）（Ｐｏｈｌら，ＦＥＢＳ ２７２：２００−２０４（１９９０））、免疫グロブリン因子、例えば抗ＤＮＡモノクローナル・マウス抗体Ｆ４．１のＣＤＲ２及び／又はＣＤＲ３領域（Ａｖｒａｍｅａｓら，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．９５：５６０１（１９９８））、ヒト抗ＤＮＡモノクローナル抗体ＲＴＴ７９の超可変ＣＤＲ３領域（Ｓｔｅｖｅｎｓｏｎら，Ｊ．Ａｕｔｏｉｍｍｕｎｉｔｙ ６：８０９（１９９３））、ヒト抗ＤＮＡモノクローナル抗体ＮＥ−１の超可変領域ＣＤＲ２及び／又はＣＤＲ３（Ｈｉｒａｂａｙａｓｈｉら，Ｓｃａｎｄ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．３７：５３３（１９９３））、ヒト抗ＤＮＡモノクローナル抗体ＲＴ７２の超可変領域ＣＤＲ３（Ｋａｌｓｉら，Ｌｕｐｕｓ ４：３７５（１９９５））を含む群から選択されるヒトヘパリン結合タンパク質及び／又は抗ＤＮＡ抗体が起源であるアミノ酸配列である。

より好ましい態様によれば、ＣＰＰは、ａ）（ＸＢＢＢＸＸＢＸ）ｎ；ｂ）（ＸＢＢＸＢＸ）ｎ；ｃ）（ＢＢＸｍＢＢＸｐ）ｎ；ｄ）（ＸＢＢＸＸＢＸ）ｎ；ｅ）（ＢＸＢＢ）ｎ；ｆ）（ＢｍＸＸ）ｎ及びｇ）（抗体断片）からなる群から選択されるアミノ酸配列を含み、ここで、Ｂは、塩基性アミノ酸、好ましくはリジン又はアルギンであり；Ｘは、非塩基性アミノ酸、好ましくは疎水性アミノ酸、例えばアラニン、グルタミン酸、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、セリン、トリプトファン、チロシン又はバリンであり；各ｍは、独立して、０〜５の整数であり；各ｎは、独立して、１〜１０の整数であり；各ｐは、独立して、０〜５の整数である。ある種の態様では、ｎは、２又は３であってもよく、Ｘは、疎水性アミノ酸であってもよい。抗体断片は、全長未満の免疫グロブリンポリペプチド、例えば重鎖、軽鎖、Ｆａｂ、Ｆａｂ２、Ｆｖ又はＦｃを含むことが意味される。抗体は、例えばヒト又はマウスであってもよい。好ましくは、抗体は、抗ＤＮＡ抗体である。好ましくは、抗体断片は、抗体のＣＤＲ２領域の全部又は部分、特に抗ＤＮＡ抗体のＣＤＲ２領域の少なくとも一部を含む。あるいは、抗体は、抗体のＣＤＲ３領域の全部又は部分、特に抗ＤＮＡ抗体のＣＤＲ３領域の少なくとも一部を含む。より具体的には、抗体断片は、抗ＤＮＡヒト抗体の少なくとも１つのＣＤＲ３領域、例えばＲＴＴ７９、ＮＥ−１及びＲＴ７２を含む。このような抗体断片は、ＰＣＴ特許出願ＷＯ９９／０７４１４に記載されている。より好ましくは、抗体は、細胞型特異的な核酸輸送を達成するために特異的なリガンド認識（即ち、標的化）特性を有する。

好ましくは、本発明に係るＣＰＰは、さらに、ヒトのタンパク質（即ち、ヒト細胞によって自然に発現されるタンパク質）が起源であることによって特徴付けられる。したがって、ヒト以外のタンパク質由来のＣＰＰと比較して、ヒトのタンパク質由来のＣＰＰの特徴は、これらのＣＰＰの計画的使用において第一の対象となり、これは、それらの免疫原性が回避され、又は低下されるためである。さらに、Ｄｅ Ｃｏｕｐａｄｅら（Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｊ．３９０：４０７−１８（２００５）は、ヒト由来のペプチドが、Ｔａｔペプチドなどの既存の癌ペプチド（Ｔｒｅｈｉｎ及びＭｅｒｋｌｅ，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｐｈａｒｍ．Ｂｉｏｐｈａｒｍ．５８，２０９−２２３（２００４）とは異なり、治療用輸送システムとしてのそれらの使用と一致して、低いインビボ毒性プロフィールを有することを示した。

上述したＣＰＰの中で、細胞質、具体的には細胞のリソソームに特に浸透することができるものである。リソソームへのＣＰＰの浸透は、当業者に周知なインビトロでの種々のプロセス：例えば、インビトロで細胞とともにＣＰＰをインキュベートすることによって測定することができる；次に、細胞は特異的な抗ＣＰＰ標識抗体及び特異的な抗リソソームタンパク質標識抗体の存在下でインキュベートされ、その後、ＣＰＰと標識した抗体との間の免疫学的な反応をリソソーム中で検出する。別の方法は、ＣＰＰをコロイド金に結合し、この結合体を細胞とともにインキュベートすることである。次に、細胞を常法通りに電子顕微鏡用に処理し、細胞内の局在を視覚化する。

好ましくは、ＣＰＰは、生体膜を横切る能動輸送を促進するアミノ酸配列を含み、４個を超えるアミノ酸、好ましくは６個を超えるアミノ酸の長さを有する。好ましくは、ＣＰＰはまた、５００個未満のアミノ酸、好ましくは２５個未満のアミノ酸を有する。

したがって、好ましいＣＰＰは、ヒトのヘパリン結合タンパク質由来であって、標的細胞の細胞質内に特に透過することができるものであって、下記を含む群から選択される：

−ＤＰＶ３（配列番号２）：ヘパリンと反応し、ヒトの細胞外スーパーオキシド・ジスムターゼ（ＥＣ−ＳＯＤ）の配列（Ｉｎｏｕｅら，ＦＥＢＳ ２６９：８９−９２（１９９０））のＣ末端部分由来のペプチドの二量体と反応するＣＰＰ。好都合には、本出願人は、共有結合したＤＰＶ３ペプチドがインビトロで細胞のリソソームにおいて外因性ベータ−グルクロニダーゼのマンノース６−リン酸受容体非依存性輸送を媒介することができる。さらに、本出願人はまた、ＤＰＶ３−酵素血具体が、Ｍ６Ｐ／ベータ−グルクロニダーゼ細胞内輸送を有意に強め、細胞内でＧＡＧレベルの効率的な減少を可能にする。ＤＰＶ３は、式ｆ）（ＢｍＸＸ）ｎ（ここで、ｍ＝６、ｎ＝２、Ｘは、グルタミン酸及びセリンを含む群ら選択される）のアミノ酸配列を含む。

−ＤＰＶ６（配列番号３）：ヘパリンと反応し、ヒト血小板由来増殖因子のＡ鎖のＣ末端部分のアミノ酸配列から誘導されたＣＰＰ（Ｍａｈｅｒら，Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．９：２２５１−２２５３（１９８９））。ＤＰＶ６は、式ｃ）（ＢＢＸｍＢＢＸｐ）ｎ（ここで、ｍ＝０、ｐ＝０及びｎ＝１）のアミノ酸配列を含む。

−ＤＰＶ７（配列番号４）及びＤＰＶ７ｂ（配列番号５）：ヘパリンと反応し、ヒトのヘパリン結合上皮細胞増殖因子様増殖因子（ＨＢ−ＥＧＦ）の配列（Ａｒｋｏｎａｃら，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈａｍ．２７３：４４００−４４０５（１９８９））のＣ末端部分由来のＣＰＰ。ＤＰＶ７及びＤＰＶ７ｂは、式ｃ）（ＢＢＸｍＢＢＸｐ）ｎ（ここで、ｍ＝０、ｐ＝０、及びｎ＝１のアミノ酸配列を含む。

−ＤＰＶ３／１０（配列番号６）：ヘパリンと反応し、ヒト細胞外スーパーオキシド・ジスムターゼ（ＥＣ−ＳＯＤ）の配列（上記参照）のＣ末端部分及びヒト腸内ムチン２配列（Ｘｕら，Ｇｌｙｃｏｎｊｕｇ Ｊ．１３：８１−９０（１９９６））のＣ末端部分由来のＣＰＰ。ＤＰＶ３／１０は、式ｃ）（ＢＢＸｍＢＢＸｐ）ｎ（ここで、ｍ＝１、ｐ＝２、及びｎ＝１）のアミノ酸配列を含む。

−ＤＰＶ１０／６（配列番号７）：ヘパリンと反応し、ヒト腸内ムチン２配列（上記参照）、及び血小板由来増殖因子のＡ鎖（上記参照）のＣ末端部分由来のＣＰＰ。ＤＰＶ１０／６は、式ｃ）（ＢＢＸｍＢＢＸｐ）ｎ（ここで、ｍ＝１、ｐ＝２、及びｎ＝１）のアミノ酸を含む。

１つの特定の関心のあるＣＰＰは、ＤＰＶ３である。
ＣＰＰ及びリソソーム酵素は、当該技術分野において知られているいずれかの適切な方法で化学的カップリングにより結合／連結され得る。多くの知られている化学的な架橋法は非特異的であり、即ち、それらは、ＣＰＰ又は適切なリソソーム酵素上のいずれかの特定の部位にカップリングする点に指向しない。結果として、非特異的な架橋試薬の使用は、官能部位を攻撃するか又は活性部位を立体的にブッロクし、結合したタンパク質を生物学的に不活性にさせ得る。リソソーム酵素は、末端の１つ（Ｎ若しくはＣ末端）の上、又はアミノ酸の側鎖若しくはアミノ酸の１つの上のいずれかでＣＰＰに直接カップリングすることができる。リソソーム酵素はまた、ペプチドの末端の１つ、又はアミノ酸の側鎖若しくはアミノ酸の１つのいずれかに接続アームによって間接的にカップリングされ得る。

カップリング特異性を高める１つの方法は、架橋されるべきポリペプチドの１つ又は両方においてたった１回、又は数回見出される官能基に直接化学的にカップリングすることである。例えば、多くのタンパク質では、システインは、チオール基を含む唯一のタンパク質アミノ酸であり、数回だけ発生する。また、例えば、ポリペプチドは、リジン残基を含まない場合、第１級アミンに特異的な架橋試薬は、そのポリペプチドのアミノ末端に対して選択的である。カップリング特異性を高めるためのこのアプローチの成功した利用は、分子の生物学的活性の喪失なしに変更され得る分子の領域において、ペプチドが適切に稀に反応性の残基を有することを必要とする。

システイン残基は、ポリペプチド配列の部分において生じる場合に置き換えられてもよく、そこでは、架橋反応におけるそれらの参加は、他には、生物学的活性と干渉しそうである。システイン残基が置換されると、典型的には、ポリペプチド・フォールディングにおいて生じる変化を最小限にすることが望まれる。ポリペプチド・フォールディングの変化は、置換がシステインと化学的及び立体的に同じである場合に最小化される。これらの理由で、セリンは、システインの置換として好ましい。下記の実施例に示されるように、システイン残基は、架橋目的のためのポリペプチドアミノ酸配列に導入することができる。システイン残基が導入されると、アミノ末端又はカルボキシ末端で又はその近傍の導入が好ましい。従来の方法は、対象とするポリペプチドが組換えＤＮＡの化学合成又は発現によって生産されようとも、このようなアミノ酸配列の修飾に利用可能である。

２つの構成物のカップリングは、架橋試薬を介して達成することができる。利用可能ないくつかの分子間架橋試薬があり、例えば、Ｍｅａｎｓ及びＦｅｅｎｅｙ，ＣＨＥＭＩＣＡＬ ＭＯＤＩＦＩＣＡＴＩＯＮ ＯＦ ＰＲＯＴＥＩＮＳ（登録商標），Ｈｏｌｄｅｎ−Ｄａｙ，１９７４，ｐｐ．３９−４３を参照されたい。これらの試薬には、例えば、Ｎ−スクシンイミジル３−（２−ピリジルジチオ）プロピオネート（ＳＰＤＰ）又はＮ，Ｎ’−（１，３−フェニレン）ビスマレイミド（両者は、スルフヒドリル基に非常に特異的であり、不可逆的な連結を形成する）；Ｎ，Ｎ’−エチレン−ビス−（ヨードアセトアミド）又は６〜１１個の炭素メチレンブリッジを有する他のこのような試薬（スルフヒドリル基に相対的に特異的である）；及び、１，５−ジフルオロ−２，４−ジニトロベンゼン（アミノ基及びチロシン基を有する不可逆的な連結を形成する）がある。本目的に有用な他の架橋試薬には、ｐ，ｐ’−ジフルオロ−Ｎ，Ｎ’−ジニトロジフェニルスルホン（アミノ基及びフェノール基と不可逆的な架橋を形成する）；アジピン酸ジメチル（アミノ基に特異的である）；フェノール−１、４−ジスルホニルクロリド（主にアミノ基と反応する）；ヘキサメチレンジイソシアネート又はジイソチオシアネート、又はアゾフェニル−ｐ−ジイソシアネート（主にアミノ基と反応する）；グルタールアルデヒド（いくつかの異なる側鎖と反応する）及びジスジアゾベンジジン（主にチロシン及びヒスチジンと反応する）が含まれる。

架橋試薬は、同じ反応を受けるホモ二官能性、即ち２つの官能基（即ち、反応基）を有するものであってもよい。ホモ二官能性架橋試薬の例は、ビスマレイミドヘキサン（「ＢＭＨ」）である。ＢＭＨは、２つのマレイミド官能基を含み、穏やかな条件（ｐＨ６．５〜７．７）でスルフヒドリル含有化合物と特異的に反応する。２つのマレイミド基は、炭化水素鎖によって連結される。したがって、ＢＭＨは、システイン残基を含むポリペプチドの不可逆的な架橋に有用である。

架橋試薬はまた、へテロ二官能性であってもよい。ヘテロ二官能性架橋試薬は、２種の官能基、例えば、アミノ反応基とチオール反応基を有し、それぞれ遊離アミン及びチオールを有する２つのタンパク質を架橋する。好ましいヘテロ二官能基は、スクシンイミジル４−（Ｎ−マレイミドメチル）シクロヘキサン−１−カルボキシレート（「ＳＭＣＣ」）、Ｎ−マレイミドベンゾイル−Ｎ−ヒドロキシスクシンイミドエステル（「ＭＢＳ」）、及びスクシンイミド４−（ｐ−マレイミドフェニル）ブチレート（「ＳＭＰＢ」）、ＭＢＳの伸長鎖類似体である。これらの架橋試薬のスクシンイミジル基は、アミド結合を形成する第１級アミンと反応し、チオール反応性マレイミドは、システイン残基のチオールとチオールエーテルの共有結合を形成する。

架橋試薬は、多くの場合、水への溶解性が低い。スルホン酸基などの親水性部分は、架橋試薬に添加されて、その水溶性を改善することができる。スルホ−ＭＢＳ及びスルホ−ＳＭＣＣは、水溶性に関して修飾された架橋試薬の例である。

多くの架橋試薬は、細胞条件下で本質的に開裂できない結合体を生じる。しかしながら、いくつかの架橋試薬は、ジスルフィドなどの共有結合を含み、細胞条件下で開裂可能である。例えば、Ｔｒａｕｔ試薬、ジチオビス（スクシンイミジルプロピオネート）（「ＤＳＰ」）、及びＮ−スクシンイミジル３−（２−ピリジルジチオ）プロピオネート（「ＳＰＤＰ」）は、周知な開裂性架橋試薬である。別の例は、ヒドラジン誘導体、例えば４−（４−Ｎ−マレイミドフェニル）酪酸ヒドラジド（ＭＰＢＨ）、４−（Ｎ−マレイミドメチル）シクロヘキサン−１−カルボキシル−ヒドラジド（Ｍ₂Ｃ₂Ｈ）、又は３−（２−ピリジルジチオ）プロピオニルヒドラジド（ＰＤＰＨ）である。開裂性架橋試薬の使用により、標的細胞への輸送後にＣＰＰからリソソーム酵素を分離することが可能となる。直接的なジスルフィド連結もまた有用であり得る。

上記で検討したものを含む多数の架橋試薬は市販されている。それらの使用のための詳細な取扱説明書は、販売業者から容易に利用可能である。タンパク質の架橋及び結合体の調製に関する一般的な参考文献は、Ｗｏｎｇ，ＣＨＥＭＩＳＴＲＹ ＯＦ ＰＲＯＴＥＩＮ ＣＯＮＪＵＧＡＴＩＯＮ ＡＮＤ ＣＲＯＳＳ−ＬＩＮＫＩＮＧ，ＣＲＣ Ｐｒｅｓｓ（１９９１）である。

化学的架橋は、スペーサーアームの使用を含む場合がある。スペーサーアームは、結合したドメイン間の分子間柔軟性を提供するか又は分子間距離を調節し、それにより、生物活性を保存する手助けをすることができる。スペーサーアームは、スペーサーアミノ酸、例えばプロリンを含むポリペプチドドメインの形体であってもよい。あるいは、スペーサーアームは、「長鎖ＳＰＤＰ」（Ｐｉｅｒｃｅ Ｃｈｅｍ．Ｃｏ．，Ｒｏｃｋｆｏｒｄ，ＩＬ．，ｃａｔ．Ｎｏ．２１６５１Ｈ）などの架橋試薬の部分であってもよい。

キメラポリペプチドは、１以上の追加のドメインに連結することができる。例えば、キメラポリペプチドは、キメラポリペプチドがＧＳＴ（グルタチオンＳ−トランスフェラーゼ）配列のＣ末端に融合するＧＳＴタンパク質に付加的に連結されてもよい。このような融合タンパク質は、キメラポリペプチドの精製を促進し得る。

本発明の一態様では、ＣＰＰは、リソソーム酵素に対して強い自然の親和性を有する少なくとも１つの分子（「アンカー分子」と呼ばれる）によってリソソーム酵素に連結される。リソソーム酵素に対するアンカー分子の自然の親和性は、ＣＰＰをリソソーム酵素と非共有的に相互作用させることができ、したがって細胞内移動において一緒にそれを運搬させることができる。このタイプのカップリングの本質的に関心のある別の利点は、リソソーム酵素に対するアンカー分子の自然の親和性により、これらの２つのエレメントは、化学的及び生化学的な相互作用なしに全体的に自然な方法で連結れる。

あるいは、キメラポリペプチドは、既知の適切な宿主細胞で都合良く発現され得るＣＰＰ及び適切なリソソーム酵素配列を含む融合ポリペプチドとして遺伝子操作によって生産可能である。融合ポリペプチドは、本明細書に記載されているように、標準的な組換えＤＮＡ技術に類似しているか又は容易に適合可能な方法で形成され、用いることができる。したがって、本発明は、本発明のリソソーム酵素及びＣＰＰをコードしている核酸分子及び核酸配列を含む発現ベクターを提供し、下記を参照されたい。利用可能な多数の発現ベクターがあり、当業者は適切なベクターを容易に選択することができる。さらに、遺伝子操作に関する標準的な実験室マニュアルは、組換えＤＮＡ法、発現ベクターを作製し、使用する方法を提供する。例えば、ＬＳＤを治療又は予防するための組換え遺伝子輸送ベクターの使用は、ＰＣＴ特許出願ＷＯ００／７３４８２及びＷＯ０２／０５５６８４に記載されている。

所望により、１以上のアミノ酸は、ＣＰＰを含む第１ペプチドドメインと適切なリソソーム酵素を含む第２ポリペプチドドメインとの間に付加的に挿入することができる。ある態様では、第１又は第２ドメインは、ＣＰＰとリソソーム酵素との結合を促進する配列を含む。

本発明の範囲は、リソソーム蓄積障害（ＬＳＤ）の治療又は予防のための薬剤を製造するための本発明のキメラポリペプチドの使用に拡張する。

本発明はまた、リソソーム蓄積障害（ＬＳＤ）の治療又は予防が望まれる被験者に、該被験者において該疾患を治療又は予防するのに十分な量で本発明のキメラポリペプチドを含む組成物を投与することによるリソソーム蓄積障害を治療又は予防するための方法を提供する。いずれかの組成物は、組成物の０．１％〜９９％、好ましくは１％〜７０％の有効量の本発明のキメラポリペプチドを含むことができる。例として、本発明のキメラポリペプチドの服用量は、それらが指示された効果のために用いられる場合、組成物当たり約０．０５〜１，０００ｍｇ、好ましくは０．５、１．０、２．５、５．０、１０．０、１５．０、２５．０、５０．０、１００．０、２５０．０、５００．０ｍｇである。

治療の有効性は、ＬＳＤを診断又は治療するための任意の既知の方法と関連させて測定される。本発明を説明するための選択された酵素的実験モデルに基づいて、本発明は、７型ムコ多糖沈着症（又はＭＰＳ ＶＩＩ）の治療又は予防が望まれる被験者に、該被験者において該疾患を治療又は予防するのに十分な量で、ベータ−グルクロニダーゼと融合若しくは結合したグリコサミノグリカン（ＧＡＧ）類又はそれらの機能的類似体と反応することができるＣＰＰを含む組成物を投与することによる７型ムコ多糖沈着症害を治療又は予防するための方法を提供する。被験者は、任意の哺乳動物、例えばヒト、霊長類、マウス、ラット、イヌ、ネコ、ウシ、ウマ、ブタであり得る。

本発明のキメラポリペプチド、又はこれらのポリペプチドをコードする核酸分子（本明細書中では「治療薬」又は「活性化合物」とも呼ばれる）、それらの誘導体、断片、類似体及び同族体は、投与に適した医薬組成物に組み込むことができ；このような組成物は、医薬として許容される担体を含む。

本明細書中で使用するとき、「医薬として許容される担体」は、医薬としての投与と適合した任意及び全ての溶媒物、分散媒体、被覆剤、抗菌剤及び抗真菌剤、等張性及び吸収遅延剤などを含むことが意図される。適切な担体は、参照により本明細書中に援用される、この分野では標準的な参考テキストであるＲｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓの最新版に記載されている。このような担体又は希釈剤の好ましい例には、限定されないが、水、生理食塩水、フィンガー溶液、デキストロース溶液、及び５％ヒト血清アルブミンが含まれる。リポソーム及び非水性ビヒクル、例えば固定油もまた使用することができる。このような媒体及び医薬として活性な物質のための薬物の使用は、当該技術分野において周知である。任意の従来の媒体又は薬物が活性な化合物と不適合である場合を除いて、組成物におけるその使用が意図される。補足的な活性な化合物もまた組成物に組み込むことができる。

本発明の医薬組成物は、意図された投与経路に適合するように調合される。投与経路の例には、非経口、例えば静脈内、皮内、皮下、経口（例えば、吸入）、経皮（即ち、局所）、経粘膜、及び直腸内投与が含まれる。非経口、皮内、又は皮下適用のために用いられる溶液又は懸濁液には、下記の成分：無菌希釈剤、例えば注入用の水、生理食塩水溶液、固定油、ポリエチレングリコール、グリセリン、プロピレングリコール又は他の合成溶媒；抗菌剤、例えばベンジルアルコール又はメチルパラベン類；抗酸化剤、例えばアスコルビン酸又は亜硫酸水素ナトリウム；キレート剤、例えばエチレンジアミンテトラ酢酸（ＥＤＴＡ）；緩衝剤、例えば酢酸塩、クエン酸塩又はリン酸塩、及び等張を調製する物質、例えば塩化ナトリウム又はデキストロースが含まれる。ｐＨは、酸又は塩、例えば塩酸又は水酸化ナトリウムを用いて調整することができる。非経口調製物は、ガラス又はプラスチックで出来ているアンプル、ディスポーザブルシリンジ又は複数の投薬用バイアルに封入可能である。注射用途に適切な医薬組成物は、無菌の水溶液（水溶性である場合）又は分散液、及び無菌の注射用溶液又は分散液の即時調製のための無菌粉末を含む。静脈内投与については、適切な担体には、生理食塩水、静菌水、ＣｒｅｍｏｐｈｏｒＥＬ（ＢＡＳＦ，Ｐａｒｓｉｐｐａｎｙ，Ｎ．Ｊ．）又はリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）が含まれる。全ての場合において、組成物は、無菌であり、容易な注入可能性（ｓｙｒｉｎｇｅａｂｉｌｉｔｙ）が存在する程度まで流動的でなければならない。製造及び保存の条件下で安定でなければならず、細菌及び真菌などの微生物の汚染作用から防御しなければならない。担体は、例えば水、エタノール、ポリオール（例えば、グリセロール、プロピレングリコール、及び液体ポリエチレングリコール等）、及びそれらの適した混合物を含む溶媒又は分散媒体であり得る。

適切な流動性は、例えば、レイシチンの使用、分散液の場合には必要とされる粒子サイズの維持によって、及び界面活性剤の使用によって維持可能である。微生物作用の防止は、種々の抗菌剤及び抗真菌剤、例えばパラベン類、クロロブタノール、フェノール、アスコルビン酸、チメロサールなどによって達成することができる。多くの場合、等張剤、例えば、糖類、多価アルコール、例えばマンニトール、ソルビトール、塩化ナトリウムを組成物に含めることが好ましい。注射可能な組成物の持続的吸収は、吸収を遅延させる薬物、例えばモノステアリン酸アルミニウム及びゼラチンを組成物に含めることによって引き起こすことができる。

経口組成物には、一般に、不活性な希釈剤又は食用担体が含まれる。それらは、ゼラチンカプセルに取り込まれるか又は錠剤に圧搾され得る。経口による治療薬の投与の目的では、活性な化合物は、賦形剤とともに取り込まれ、錠剤、トローチ又はカプセルの形体で使用可能である。経口組成物はまた、うがい薬として使用するための流体担体を用いて調製することができ、ここで、流体担体中の化合物は、経口的に適用され、音を立て、吐き出されるか又は飲み込まれる。医薬として適合可能な結合剤、及び／又はアジュバント材料は、組成物の一部として含むことができる。錠剤、丸薬、カプセル、トローチなどは、下記の成分のいずれか、又は類似の性質を有する化合物を含むことができる：結合剤、例えば微結晶性セルロース、ガムトラガンタ又はゼラチン；賦形剤、例えばスターチ又はラクトース、崩壊剤、例えばアルギン酸、プリモゲル（Ｐｒｉｍｏｇｅｌ）又はコーンスターチ；潤滑剤、例えばステアリン酸マグネシウム又はステローツ（Ｓｔｅｒｏｔｅｓ）；流動促進剤、例えばコロイド状二酸化ケイ素；甘味剤、例えばスクロース又はサッカリン；又は香味剤、例えばペパーミント、サリチル酸メチル又はオレンジ・フレイバリング。吸入による投与に関しては、化合物は、適切な高圧ガス、例えば二酸化炭素などの気体を含む加圧容器若しくはディスペンサー、又は噴霧器からのエアロゾルスプレイの形体で輸送される。

全身投与はまた、経粘膜又は経皮手段によることが可能である。経粘膜又は経皮投与に関しては、透過されるべき障壁に適している透過剤は、製剤で用いられる。このような透過剤は、一般に当該技術分野において知られ、例えば、経皮投与については界面活性剤、胆汁塩、及びフシジン酸誘導体が含まれる。経粘膜投与は、鼻腔用スプレー又は坐薬の使用を通じて達成することができる。経皮投与については、活性な化合物は、当該技術分野において一般に知られている軟膏（ｏｉｎｔｍｅｎｔ）、軟膏（ｓａｌｖｅ）、ゲル、又はクリームに製剤化される。

組成物はまた、直腸内輸送のための坐剤（例えば、ココアバター及び他のグリセリド類などの伝統的な坐剤の基材を含む）又は直腸浣腸剤の形態で調製可能である。

一態様では、活性な化合物は、生体からの迅速な排出に対して化合物を保護する担体、例えば徐放制御製剤とともに調製することができ、インプラント及びマイクロカプセル化輸送システムが含まれる。生分解性、生体適合性ポリマー、例えばエチレン酢酸ビニル、ポリ無水物、ポリグリコール酸、コラーゲン、ポリオルトエステル、及びポリ乳酸を用いることができる。このような製剤を調製する方法は、当業者に明確である。

ある態様では、経口又は非経口組成物は、投与の容易性及び服用量の均一性のために服用単位形態で調合される。服用単位形態は、本明細書中で使用するとき、治療されるべき被験者に単一服用量として適している物理的に別個の単位を意味する；各単位は、必要とされる医薬的な担体と関連した所望の治療効果を生じるように計算された所定量の活性ナトリウム化合物を含む。本発明の服用単位形態の仕様は、活性な化合物の独特の特徴、達成されるべき特定の治療効果、個体を治療するためのこのような活性な化合物を化合する当該技術分野において備わっている制限によって影響され、直接的に依存している。

本発明の核酸分子は、ベクターに挿入し、遺伝子治療ベクターとして使用することができる。遺伝子治療ベクターは、例えば、静脈内注射、局所投与（例えば、米国特許第５，３２８，４７０号を参照）又は定位注射（例えば、Ｃｈｅｎら，１９９４，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９１：３０５４−３０５７）によって被験者に輸送可能である。遺伝子治療ベクターの医薬調製物には、許容される希釈剤中の遺伝子治療ベクターが含まれ、又は遺伝子輸送ビヒクルが埋め込まれる叙放マトリックスを含むことができる。あるいは、完全な遺伝子輸送ベクターは、組換え細胞、例えばレトロウイルスベクターからそのまま生成することができる場合、医薬調製物は、遺伝子輸送システムを生成する１以上の細胞を含むことができる。

持続放出調製物は、所望により調整することができる。持続放出調製物の適切な例には、活性な化合物を含む固体疎水性ポリマーの半透過性マトリックスが含まれ、成形品、例えばフィルム又はマイクロカプセルの形体である。持続放出材料の例には、ポリエステル類、ハイドロゲル（例えば、ポリ（２−ヒドロキシエチル−メタクリレート）、又はポリ（ビニルアルコール））、ポリラクチド類（米国特許第３，７７３，９１９号）、Ｌ−グルタミン酸とｙエチル−Ｌ−グルタミン酸塩との共重合体、非分解性エチレン酢酸ビニル、分解性乳酸−グリコール酸共重合体、例えばＬＵＰＲＯＮ ＤＥＰＯＴ（乳酸−グリコール酸共重合体及び酢酸ロイプロリドで構成される注射可能なマイクロスフェア）、及びポリ−Ｄ−（−）−３−ヒドロキシ酪酸が含まれる。

例として、本発明のキメラポリペプチドの経口服用量は、指示された効果のために使用される場合、経口経路では、約０．０５〜１，０００ｍｇ／日であり、好ましくは０．５、１．０、２．５、５．０、１０．０、１５．０、２５．０、５０．０、１００．０、２５０．０、５００．０及び１，０００．０ｍｇの活性成分を含む錠剤の形体となる。少なくとも１つの対象とする物質と一緒に取り込まれるベクター又はトランスポーターの有効な血漿レベルは、体重１ｋｇ当たり、１日に０．００２ｍｇ〜５０ｍｇの範囲である。

本発明のキメラポリペプチド又はキメラポリペプチドをコードする核酸は、１日１回の服用形態で投与することができ、又は毎日の服用総回数は、１日当たり２、３又は４回の服用で投与されてもよい。

医薬組成物は、投与するための指示書とともに、容器、キット、パック、又はディスペンサーに含まれ得る。

したがって、本発明は、上述したものなどのＣＰＰを供給することを目的とし、リソソーム中のリソソーム酵素（例えばベータ−グルクロニダーゼ）などの対象とする基質を取り込むことができるという事実によって特徴付けられる。より具体的には、本発明の被験者は、リソソームへの透過がそれに繋がれる対象とする基質の性質とは全く独立しているＣＰである。

本発明の別の局面は、本発明の融合ポリペプチドをコードする核酸、又はその誘導体、断片、類似体若しくは同属体を含むベクター、好ましくは発現ベクターに関連する。本明細書中で使用するとき、用語「ベクター」は、連結された別の核酸を運搬することができる核酸分子を意味する。ベクターの１タイプは、「プラスミド」であり、追加のＤＮＡセグメントがライゲートされ得る直鎖状又は環状の二本鎖ＤＮＡループを意味する。ベクターの別のタイプは、ウイルスベクターであり、ここで、追加のＤＮＡ又はＲＮＡセグメントは、ウイルスゲノムにライゲートされ得る。ある種のベクターは、組み込まれる宿主細胞（例えば、細菌の複製起源を有する細菌ベクター、及びエピソームベクター；酵母ベクター）に自己複製可能である。他のベクター（例えば、非エピソーム哺乳動物用ベクター）は、宿主細胞への導入により宿主細胞のゲノムに組み込まれ、それにより宿主ゲノムとともに修復される。

さらに、ある種のベクターは、作動的に連結されるゲノムの発現を指向することができる。このようなベクターは、「発現ベクター」として本明細書において言及される。一般に、組換えＤＮＡ技術における実用性のある発現ベクターは、多くの場合、プラスミドの形体である。本明細書では、「プラスミド」及び「ベクター」は、プラスミドがベクターの最も一般に用いられる形体であるので、相互交換的に用いることができる。しかしながら、本発明は、このような他の発現ベクターの形態、例えばウイルスベクター（例えば、複製欠損レトロウイルス、アデノウイルス及びアデノ随伴ベクター）を含むことができ、同等の機能を提供する。さらに、いくつかのウイルスベクターは、特異的又は非特異的な特定の細胞型を標的にすることができる。

本発明の組換え発現ベクターは、宿主細胞における核酸の発現に適した形態で本発明の核酸を含み、それは、組換え発現ベクターが、発現用に用いられるべき宿主細胞に基づいて選択され、即ち、発現されるべき核酸配列に作動的に連結されている１以上の制御配列を含むことを意味する。組換え発現ベクターでは、「作動的に連結された」とは、対象とするヌクレオチド配列がヌクレオチド配列の発現を可能にする方法で（例えば、ベクターが宿主細胞に導入される場合、インビトロ転写／翻訳システム又は宿主細胞において）制御配列（単数または複数）に連結していることを意味することが意図される。用語「制御配列」は、プロモーター、エンハンサー、及び他の発現調節エレメント（例えば、ポリアデニル化シグナル）を含むことが意図される。このような制御配列は、例えば、Ｇｏｅｄｄｅｌ；ＧＥＮＥ ＥＸＰＲＥＳＳＩＯＮ ＴＥＣＨＮＯＬＯＧＹ：ＭＥＴＨＯＤＳ ＩＮ ＥＮＺＹＭＯＬＯＧＹ １８５，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，Ｃａｌｉｆ．（１９９０）に記載されている。制御配列には、多くのタイプの宿主細胞においてヌクレオチド配列の構成的発現を指向するもの、ある種の宿主細胞だけにヌクレオチド配列（例えば、組織特異的な制御配列）の発現を指向するものが含まれる。発現ベクターの設計は、形質転換されるべき宿主細胞の選択としてこのような因子、所望のタンパク質の発現レベルなどに依存し得ることは当業者に承認される。本発明の発現ベクターは、宿主細胞に導入され、それにより、本明細書に記載される核酸によってコードされる、融合タンパク質又はペプチドを含むタンパク質又はペプチド（例えば、キメラポリペプチド、キメラタンパク質の変異形態、融合タンパク質など）を産生することができる。

本発明の組換え発現ベクターは、原核細胞又は真核細胞におけるキメラポリペプチドの発現のために設計することができる。例えば、キメラポリペプチドは、細菌細胞、例えば大腸菌、昆虫細胞（バキュロウイルス発現ベクターを用いる）、酵母細胞、植物細胞又は哺乳動物細胞において発現することができる。適した宿主細胞は、Ｇｏｅｄｄｅｌ，ＧＥＮＥ ＥＸＰＲＥＳＳＩＯＮ ＴＥＣＨＮＯＬＯＧＹ：ＭＥＴＨＯＤＳ ＩＮ ＥＮＺＹＭＯＬＯＧＹ １８５，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，Ｃａｌｉｆ．（１９９０）においてさらに検討されている。あるいは、組換え発現ベクターは、例えば、Ｔ７プロモーター制御配列及びＴ７ポリメラーゼを用いて、インビトロで転写及び翻訳され得る。原核生物におけるタンパク質の発現は、最も多くの場合、融合タンパク質又は非融合タンパク質の発現を指向する構成的な又は誘導可能なプロモーターを含むベクターを用いて大腸菌で実行される。融合ベクターは、多数のアミノ酸をそこにコードされるタンパク質、通常、組換えタンパク質のアミノ末端に添加される。このような融合ベクターは、典型的には、３つの目的：（１）組換えタンパク質の発現を高める；（２）組換えタンパク質の溶解性を増加する；及び（３）アフィニティー精製におけるリガンドとして作用することによって組換えタンパク質の精製を助けることを果す。多くの場合、融合発現ベクターでは、タンパク質分解的な開裂部位は、融合タンパク質の精製の後で、融合ドメインから組換えタンパク質の分離を可能にする融合ドメイン及び組換えタンパク質の結合で導入される。このような酵素、それらの同族の認識配列は、Ｘａ因子、トロンビン及びエンテロキナーゼを含む。典型的な融合発現ベクターには、ｐＧＥＸ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ Ｂｉｏｔｅｃｈ Ｉｎｃ；Ｓｍｉｔｈ ａｎｄ Ｊｏｈｎｓｏｎ，Ｇｅｎｅ ６７：３１−４０（１９８８））、ｐＭＡＬ（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ， Ｂｅｖｅｒｌｙ，Ｍａｓｓ）、及びｐＲＩＴ５（Ｐｈａｒｍａｃｉａ，Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ，Ｎ．Ｊ．）が含まれ、それぞれ、グルタチオンＳ−トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）、マルトースＥ結合タンパク質、又はプロテインＡを標的組換えタンパク質に融合する。

適した誘導可能な非融合の大腸菌発現ベクターの例には、ｐＴｒｃ（Ａｍｒａｎｎら，Ｇｅｎｅ ６９：３０１−３１５（１９８８））及びｐＥＴ １１ｄ（Ｓｔｕｄｉｅｒら，ＧＥＮＥ ＥＸＰＲＥＳＳＩＯＮ ＴＥＣＨＮＯＬＯＧＹ：ＭＥＴＨＯＤＳ ＩＮ ＥＮＺＹＭＯＬＯＧＹ １８５，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，Ｃａｌｉｆ．６０−８９（１９９０）。

大腸菌において組換えタンパク質の発現を最小にする１つのストラテジーは、組換えタンパク質をタンパク質分解的に開裂させる能力に障害がある宿主細菌においてタンパク質を発現させることである。Ｇｏｔｔｅｓｍａｎ，ＧＥＮＥ ＥＸＰＲＥＳＳＩＯＮ ＴＥＣＨＮＯＬＯＧＹ：ＭＥＴＨＯＤＳ ＩＮ ＥＮＺＹＭＯＬＯＧＹ １８５，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，Ｃａｌｉｆ．（１９９０）１１９−１２８を参照されたい。別のストラテジーは、各アミノ酸に対する個々のコドンが大腸菌において優先的に利用されるものであるようにするため、発現ベクターに挿入されるべき核酸の核酸配列を改変することである（Ｗａｄａら，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２０：２１１１−２１１８（１９９２））。本発明の核酸配列のこのような改変は、標準的なＤＮＡ合成技術によって実行することができる。

別の態様では、キメラポリペプチド発現ベクターは、酵母発現ベクターである。酵母Ｓ．ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅにおける発現のためのベクターの例は、当該技術分野において周知である。

あるいは、キメラポリペプチドは、バキュロ発現ベクターを用いて昆虫細胞において発現可能である。

なお別の態様では、本発明の核酸は、哺乳動物の発現ベクターを用いて哺乳動物細胞において発現される。哺乳動物細胞を用いて場合、発現ベクターの対照機能は、多くの場合、ウイルス制御エレメントによって提供される。例えば、通常用いられるプロモーターは、ポリオーマ、アデノウイルス２、サイトメガロウイルス及びシミアンウイルス４０由来である。原核細胞及び真核細胞に関する他の適した発現システムについては、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら，ＭＯＬＥＣＵＬＡＲ ＣＬＯＮＩＮＧ：Ａ ＬＡＢＯＲＡＴＯＲＹ ＭＡＮＵＡＬ．第３版の第１６章及び第１７章，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ，Ｎ．Ｙ．，（２００１）を参照されたい。

別の態様では、組換え哺乳動物の発現ベクターは、特定の細胞型に優先的な核酸の発現を指向することができる（例えば、組織特異的な制御エレメントを用いて、核酸を発現させる）。組織特異的な制御エレメントは当該技術分野において知られている。

本発明の別の局面は、本発明の組換え発現ベクターが導入される宿主細胞に関連する。用語「宿主細胞」及び「組換え宿主細胞」は、本明細書において相互に交換可能に使用される。このような用語は、特定の被験者の細胞だけでなく、このような細胞の子孫又は潜在的な子孫にも言及することが理解される。ある種の修飾は、突然変異又は環境的な影響のいずれかにより、後世に起り得ることなので、このような子孫は、実際には、親株とは同一でなくてもよいが、本明細書において使用される用語の範囲内になお含まれる。さらに、宿主細胞は、キメラポリペプチドを発現する変更されたものであってもよく、元々の特徴を維持するか又は喪失してもよい。

宿主細胞は、任意の原核細胞又は真核細胞であり得る。例えば、キメラポリペプチドは、大腸菌、昆虫細胞、酵母又は哺乳動物細胞（例えばチャイニーズ・ハムスター・オバレイ細胞（ＣＨＯ）又はＣＯＳ細胞）に発現可能である。あるいは、宿主細胞は、未成熟の哺乳動物細胞、即ち、多能性幹細胞であってもよい。他の適切な細胞は、当業者に知られている。

ベクターＤＮＡは、伝統的な形質転換、形質導入、インフェクション又はトランスフェクション技術を介して原核細胞又は真核細胞に導入することができる。本明細書中で使用するとき、用途「形質転換」、「形質導入」、「インフェクション」及び「トランスフェクション」とは、宿主細胞に外来核酸（例えば、ＤＮＡ）を導入するための当該技術分野において認識されている種々の技術、例えばリン酸カルシウム又は塩化カルシウム同時沈殿、ＤＥＡＥ−デキストラン媒介のトランスフェクション、リポフェクション又はエレクトロポレーションをいうことが意図される。さらに、トランスフェクションは、トランスフェクション試薬によって媒介することができる。「トランスフェクション試薬」とは、宿主細胞にＤＮＡの導入を媒介する任意の化合物、例えばリポソームを含むことが意味される。宿主細胞を形質転換又はトランスフェクトするための適切な方法は、Ｓａｍｂｒｏｏｋら（ＭＯＬＥＣＵＬＡＲ ＣＬＯＮＩＮＧ：Ａ ＬＡＢＯＲＡＴＯＲＹ ＭＡＮＵＡＬ．第３版，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ，Ｎ．Ｙ．，（２００１））、及び他の実験室マニュアルに見出すことができる。

トランスフェクションは、「安定」（即ち、宿主ゲノムへの外来ＤＮＡの組込み）又は「一時的」（即ち、ＤＮＡは宿主細胞にエピソーム的に発現される）であり得る。

哺乳動物細胞の安定なトランスフェクションについて、使用される発現ベクター及びトランスフェクション技術に依存して、細胞の小画分だけが、それらのゲノムの外来ＤＮＡを組み込むことができ、該ＤＮＡの残りはエピソームのままである。これらの組み込み体を同定し、選択するためには、選択可能なマーカー（例えば、抗生物質に耐性である）をコードする遺伝子は、一般に、対象とする遺伝子とともに宿主細胞に導入される。種々の選択可能なマーカーには、薬剤、例えばＧ４１８、ハイグロマイシン及びメトトレキセートへの耐性を付与するものが含まれる。選択可能なマーカーをコードする核酸は、コードするベクターと同様のベクター上で宿主細胞に導入されるか又は別々のベクター上で導入されることができる。導入された核酸で安定にトランスフェクトされた細胞は、薬剤選択性により識別することができる（例えば、選択可能なマーカー遺伝子を取り込んでいる細胞は生存し、その他の細胞は死滅する）。

別の態様では、キメラポリペプチドによって修飾された細胞又はトランスフェクトされた細胞は、内因性のレポーター遺伝子の発現の誘導により同定される。特定の態様では、プロモーターは、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）の発現を駆動するリソソーム酵素プロモーターである。

実施例
本発明の他の利点及び特徴は、図面に言及する下記の実施例から明確となる。これらの実施例は、本発明を例証するためであり、特許請求の範囲を限定するために提供されるものではない。

Ｉ−材料及び方法
Ｉ−１ 化合物
Ｉ−１−１ ペプチド
ＤＰＶ３ペプチド（配列番号２）（ＢＡＣＨＥＭによって製造される）。このＣＰＰは、受容体タンパク質を細胞質に輸送することが知られている（Ｄｅ Ｃｏｕｐａｄｅら，Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｊ．３９０：４０７−１８（２００５））。

ＤＰＶ１５ｂペプチド（配列番号１２）（Ｎｅｏｓｙｓｔｅｍによって製造される）。このＣＰＰは、受容体タンパク質を核に輸送することが知られている（Ｄｅ Ｃｏｕｐａｄｅら，Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｊ．３９０：４０７−１８（２００５））。

Ｉ−１−２ 酵素
非リン酸化酵素：大腸菌由来のベータ−グルクロニダーゼ（ベータ−ｇｌｕ）、ＶＩＩ−Ａタイプ（Ｓｉｇｍａ ＃Ｇ７６４６）。この酵素は、ヒトのタンパク質と４７％の相同性を示す。

リン酸化酵素：ウシ肝臓由来のＭ６Ｐ−ベータ−グルクロニダーゼ（Ｍ６Ｐ／ベータ−ｇｌｕ）（ＧＬＹＫＯ ＃ＧＫＧＡＧ−５００７）。

Ｉ−１−３ 細胞株
ＨｅＬａ細胞（ＡＴＣＣ ＃ＣＣＬ−２）：子宮腺癌由来のヒト上皮細胞。細胞は、ＤＭＥＭ（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ）＋２ｍＭ Ｌ−グルタミン＋１ｍＭピルビン酸ナトリウム＋１０％熱不活性化ウシ胎児血清（ＦＣＳ）中で培養した。

ＮＩＨ／３Ｔ３細胞（ＡＴＣＣ ＃ＣＲＬ−１６５８）：ＮＩＨ Ｓｗｉｓｓマウス胚由来の不死化線維芽細胞。細胞は、ＤＭＥＭ（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ）＋２ｍＭ Ｌ−グルタミン＋１ｍＭピルビン酸ナトリウム＋１０％熱不活性化ウシ胎児血清（ＦＣＳ）中で培養した。

ＭＰＳＶＩＩ細胞：ＭＰＳ−ＶＩＩのマウスモデル由来のＡｇＴ（ＳＶ４０）形質転換線維芽細胞。これらの細胞は、ベータ−グルクロニダーゼ欠損線維芽細胞であり、Ｄｒ．Ｊ．Ｍ．Ｈｅａｒｄ（Ｉｎｓｔｉｔｕｔ Ｐａｓｔｅｕｒ，Ｐａｒｉｓ，Ｆｒａｎｃｅ）によって提供された。培養物は、ＤＭＥＭ（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ）＋２ｍＭ Ｌ−グルタミン＋１ｍＭピルビン酸ナトリウム＋１０％熱不活性化ウシ胎児血清（ＦＣＳ）＋１ｍｇ／ｍＬ Ｇ４１８（Ｓｉｇｍａ）中で維持された。

Ｉ−２ 酵素へのＤＰＶの化学的結合
同じ３工程の結合ストラテジーは、両タンパク質及び両ペプチドに対して使用された（図１）。第１工程は、架橋試薬Ｎ−マレイミドブチルアミンを用いた接近しやすいチオール機能のマスクを可能にした。次に、ヘテロ二官能性架橋試薬スクシンイミジル−４−（Ｎ−マレイミドメチル）シクロヘキサン−１−カルボキシレート（ＳＭＣＣ）は、酵素上の利用可能なリジンアミン類及びＮ−マレイミドブチルアミンのリンカーアミンとの反応を可能にした。ダイヤルろ過による過剰の架橋試薬の除去後、次に、ＤＰＶペプチドを添加し、そのチオール機能（Ｎ又はＣ末端システイン）をＳＭＣＣのマレイミド部分と反応させた。架橋した結合体は、ＳＤＳ／ＰＡＧＥ（８％）−クーマシーブルーＲ−２５０染色、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ及びベータ−グルクロニダーゼ活性についてのアッセイによって分析した（下記の段落Ｉ−３を参照）（図２を参照されたい）。

Ｉ−３ インビトロのリソソーム酵素取り込みアッセイ
ベータ−グルクロニダーゼ欠損細胞（ＭＰＳＶＩＩ細胞）は、６ウェルの培養ディッシュに播種し、２４時間安定にさせた（８０％コンフルエント）。酵素（即ち、ＤＰＶに結合させたベータ−グルクロニダーゼ又はなし）の添加前に、ＭＰＳＶＩＩ細胞を前加熱したＤＭＥＭで一度洗浄した。酵素は、リン酸化酵素（１４００ユニット／ｍＬ）については２０μｇ／ｍＬの濃度で、及びリン酸化されていない酵素（１５００ユニット／ｍＬ）については５０μｇ／ｍＬの濃度で１０％ＦＣＳを含む培地に添加した。３７℃で１６〜１８時間のインキュベーション後、次に、培地を除去し、細胞をＤＭＥＭで２回洗浄した。次に、細胞を回収し、３０μＬの溶菌バッファー（１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．４；１ｍＭ ＥＤＴＡ、ｐＨ８．０；１５０ｍＭ ＮａＣｌ；１％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ１００；０．１％ ＳＤＳ；１ｍＭ ＰＭＳＦ；２μｇ／ｍＬアプロチニン；１０μｇ／ｍＬリューペプチン；１μｇ／ｍＬペプスタチン）中で３０分間４℃で溶菌させた。細胞残骸物を１２０００ｇ、４℃で１５分間の遠心分離によって除去し、上清中のタンパク質濃度は、標準としてウシ血清アルブミンを用いてＢｒａｄｆｏｒｄ法に基づいて、Ｂｉｏ−Ｒａｄタンパク質アッセイを用いて測定した。上清中のベータ−グルクロニダーゼは、４−メチルウンベリフェリル−ベータ−Ｄ−グルクロニド（ＭＵＧｌｕｃ）基質の加水分解に基づく、「ＦｌｕｏｒＡｃｅ（商標）ベータ−グルクロニダーゼ受容体アッセイキット」（ＢＩＯ−ＲＡＤ ＃１７０−３１５１）を用いて定量した。経口は、蛍光光度計（３５５ｎｍ励起、４６０ｎｍ発光）を用いて測定した。蛍光値を用いて、４−メチルウンベリフェロン蛍光の較正曲線を用いてユニットを計算した。ベータ−グルクロニダーゼ活性の１ユニットは、１時間当たりに放出された１ナノモルの４−メチルウンベリフェロンとして定義された。特異的なベータ−グルクロニダーゼ活性は、１ｍｇのタンパク質当たりのベータ−グルクロニダーゼユニットにおいて表された。

Ｉ−４ グリコサミノグリカン（ＧＡＧ）類の定性的及び定量的分析
細胞を６ウェルの培養ディッシュに播種し、２４時間安定にさせた（８０％コンフルエント）。酵素（即ち、ＤＰＶに結合させたベータ−グルクロニダーゼ又はなし）の添加前に、細胞を前加熱したＤＭＥＭで一度洗浄した。タンパク質は、リン酸化酵素については５０μｇ／ｍＬの濃度で、及びリン酸化されていない酵素については５０又は１００μｇ／ｍＬの濃度で１％ＦＣＳを含む培地に添加した。３７℃で６時間のインキュベーション後、次に、培地を除去し、細胞をＤＭＥＭで２回洗浄した。次に、細胞を回収し、ＰＢＳで洗浄し、Ｋｏｖａスライドでカウントした。定性分析については６．７５×１０⁶細胞、定量分析については５×１０⁶細胞を回収し、１２００ｒｐｍで５分間室温で遠心分離した。細胞プレートをパパイン（０．１Ｍリン酸ナトリウムバッファー中の２ｍｇ／ｍＬ、ｐＨ６．５、５ｍＭ Ｌ−システイン−ＨＣｌ及び１０ｍＭ ＥＤＴＡを含む）とともに６０℃で一晩インキュベートした。１００℃で５分間加熱することによって反応を停止した。試料を室温まで冷却した。その後、残骸物は、マイクロ遠心分離（Ｂｉｏｆｕｇｅ−ｐｉｃｏ、Ｈｅｒａｅｕｓ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ Ｉｎｃ．，Ｎｅｗｔｏｗｎ，ＣＴ）で１３０００ｒｐｍ、３０分の遠心分離によって除去した。トリクロロ酢酸及びＮａＣｌをそれぞれ最大１０％及び１Ｍの最終濃度で上清に添加した。形成した沈殿物はマイクロ遠心分離Ｂｉｏｆｕｇｅ−ｐｉｃｏで１３０００ｒｐｍ、３０分の遠心分離によって除去した。ＧＡＧは、振とうしながら、２容積のエタノールを徐々に添加することによって上清から沈殿させた。−２０℃で２４時間後、沈殿物を４℃、１時間の遠心分離（１９０００ｇ）によって回収し、真空乾燥させ、２０μＬのデオキシリボヌクレアーゼＩ（０．０５ｍｇ／ｍＬ）、１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７．４、２５ｍＭ ＭｇＣｌ₂及び５ｍＭ ＣａＣｌ₂を含む溶液中に再懸濁させ、３７℃で４時間インキュベートした。

ＧＡＧは、（Ｐａｖａｏら，１９９８；Ｏｂａ−Ｓｈｉｎｊｏら，２００３）に記載されるようにアガロースゲル電気泳動を用いて定量的に分析した。試料は、０．１容積の装填溶液（電気泳動バッファー／５０％グリセロール）と混合し、即座に、予め作製したウェルに電気泳動バッファー下で積層した。ＧＡＧをアガロースゲル（０．５％、Ｗ／Ｖ）に適用し、０．０５Ｍの１，３−ジアミノプロパン／酢酸バッファー（ｐＨ９．０）中、５０Ｖ、２時間、４℃で実行した。ゲル中のＧＡＧは、水中の０．１％ Ｎ−セチル−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリメチルアンモニウムブロミドを用いて１２時間固定した。ゲルを乾燥させ、酢酸／エタノール／水（０．１：５：５、Ｖ／Ｖ）中の０．１％トルイジンブルーを用いて２４時間染色した。ゲルを酢酸／エタノール／水（０．１：５：５、Ｖ／Ｖ）中で１５分間洗浄し、乾燥させた。Ｓｉｇｍａの標準ＧＡＧマーカーを用いた（ウシ腎臓由来のヘパラン硫酸［＃Ｈ７６４０］、ブタ腸粘膜由来のデルマタン硫酸又はコンドロイチン硫酸Ｂ［＃Ｃ３７８８］、及びコンドロイチン硫酸Ａ又はコンドロイチン４−硫酸［＃Ｃ８５２９］）。

パパイン／ＤＮＡｓｅ Ｉ消化物中の硫酸化ＧＡＧ濃度は、Ｆａｒｎｄａｌｅら（１９８６）の１，９−ジメチルメチレンブルー（ＤＭＭＢ）染色結合アッセイの修飾によって測定した。呈色試薬は、１．５２ｇグリシン、１．１８５ｇ ＮａＣｌ及び４７．５ｍＬの０．１Ｍ ＨＣｌを含む５００ｍＬの水に８ｍｇの１，９−ジメチルメチレンブルーを溶解させることによって調製し、Ａ₅₂₅が０．３１であるｐＨ３．０の溶液を得た。この試薬は茶色のボトル中、室温で保存した。試薬をＨ₂Ｏ中で３倍に希釈した。二重の各試薬３０μＬを１．２５ｍＬのＤＭＭＢ呈色試薬と混合し、５２５ｎｍの吸光度を即座に読んだ。試料は、ブランク試料及び試料と同じ溶媒中のサケのコンドロイチン−４硫酸（０．５〜１０μｇ／ｍＬ）に対して測定した。結果は、ＧＡＧ量を１００％として定義される未処理のＭＰＳＶＩＩ細胞と比較して表した。

Ｉ−５ 培養中の細胞の発色染色
ベータ−グルクロニダーゼに対する組織化学的分析は、前述（Ｂｒｕｓｓｅｌｂａｃｈ，２００４）に従って行った。ＭＰＳＶＩＩ細胞は、Ｐｅｒｍａｎｏｘ Ｌａｂ−Ｔｅｋ ８−チャンバースライド上で増殖させ、２４時間放置した。酵素（ＤＰＶ−ベータ−グルクロニダーゼ結合体）の添加前に、細胞を前加熱したＤＭＥＭを用いて１回洗浄し、２ｍＭ Ｌ−グルタミン、１ｍＭピルビン酸ナトリウム、１０％ＦＣＳ及び１ｍｇ／ｍＬ Ｇ４１８を含むＤＭＥＭ中で、リン酸化タンパク質（１０μｇ／ｍＬ）とともに４時間３７℃でインキュベートした。次に、細胞をＰＢＳで２回洗浄し、ＰＢＳ中の０．１％グルタールアルデヒドとともに１０分間室温でインキュベートすることによって固定した。細胞をＰＢＳで３回リンスし、最小容積の染色溶液（０．１Ｍ酢酸ナトリウムバッファー、ｐＨ５；３ｍＭフェリシアン化カリウム；３ｍＭフェロシアン化カリウム；０．０８％ ５−ブロモ−４−クロロ−３−インドリル−ベータ−Ｄ−グルクロニドシクロヘキシルアンモニウム（Ｘ−Ｇｌｕｃ））を用いて覆い、３７℃で２〜２４時間インキュベートした。 Ｘ−Ｇｌｕｃとの組織化学的ベータ−グルクロニダーゼ反応は、インジゴ生成ブルー沈殿物を生じる。反応を終了させるために、染色溶液を除去し、細胞をＰＢＳで２回リンスした。３．７％ホルムアルデヒド／ＰＢＳを用いて１５分間、細胞を固定した。ＰＢＳで何度も洗浄後、ＰＢＳ／５０％グリセロール溶液の１滴をスライド上に置き、カバースリップ下でシールした。発色染色した細胞は、通常光（２０Ｘ又は４０Ｘレンズ）で光学Ｌｅｉｃａ顕微鏡を用いて試験した。Ｎｉｋｏｎ ｃｏｏｌｐｉｘ ｎｕｍｅｒｉｃカメラ、最大ズーム及び０．６３Ｘアダプターを用いて写真撮影した。

Ｉ−６ 間接免疫蛍光染色
ＭＰＳＶＩＩ細胞は、Ｐｅｒｍａｎｏｘ Ｌａｂ−Ｔｅｋ ８チャンバースライド上で増殖させ、非リン酸化タンパク質とともに４時間３７℃でインキュベートした。次に、細胞を冷やしたＰＢＳで２回洗浄し、固定し、メタノール／アセトン溶液（３Ｖ／７Ｖ）中で１０分間、−２０℃でインキュベートすることによって透過させた。スライドは空気乾燥させた。２ｍｇ／ｍＬ ＢＳＡ（Ｓｉｇｍａ）を含むＰＢＳを用いて３０分間ブロッキング後、細胞は、ウサギ抗細菌ベータ−グルクロニダーゼ抗血清（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ−＃Ａ−５７９０）及びラット抗マウスＬＡＭＰ−１モノクローナル抗体（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ−＃Ｇ−３０６０−０５）を用いて室温で１時間インキュベートした。両方の一次抗体は、２ｍｇ／ｍＬ ＢＳＡを含むＰＢＳ中で１：２００に希釈した。細胞は、２ｍｇ／ｍＬ ＢＳＡを含むＰＢＳ中で何度も洗浄し、２ｍｇ／ｍＬ ＢＳＡを含むＰＢＳ中の７．５μｇ／ｍＬの濃度の二次抗体：ＴＲＩＴＣ結合ロバ抗ウサギＩｇＧ（Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ−＃７１１−０２５−１５２）及びＦＩＴＣ結合ロバ抗ラットＩｇＧ（Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ−＃７１２−０９５−１５０）を用いて３０分間、室温でインキュベートした。ＰＢＳで何度も洗浄後、ＤＡＰＩ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ）を含むＳｌｏｗ Ｆａｄｅ Ｌｉｇｈｔ Ａｎｔｉｆａｄｅキット溶液の一滴をスライド上に置き、カバースリップ下でシールした。細胞核は、ＤＡＰＩ対比染色によって視覚化した。免疫染色した細胞は、蛍光光学Ｌｅｉｃａ顕微鏡（４０Ｘ又は６３Ｘレンズ）を用いて、適切なフィルターの組合せにより調べた。Ｎｉｋｏｎ ｃｏｏｌｐｉｘデジタルカメラ、最大ズーム及び０．６３Ｘアダプターを用いて写真撮影した。二重染色実験については、同一の光学的断面を示した。

Ｉ−７ 統計分析
統計分析（Ｄｕｎｎｅｔｔ ｔｅｓｔ）は、ＧｒａｐｈＰａｄ（登録商標）プリズム３．０２ソフトウェアを用いて評価した。

結果
ＩＩ−１ 化学的結合
ＤＰＶ３又はＤＰＶ１５ｂペプチドは、材料及び方法に記載されるように、ベータ−グルクロニダーゼ（ｂｅｔａ−ｇｌｕ）又はＭ６Ｐ／ベータ−グルクロニダーゼ（Ｍ６Ｐ／ｂｅｔａ−ｇｌｕ）上に結合した。各結合体は、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析によって特徴付けられた（図２Ａ）。ＤＰＶ又は酵素試料であっても最大８０％のＤＰＶ−酵素結合体が得られた。Ｍａｌｄｉ Ｔｏｆ分析は、酵素モノマー当たりのＤＰＶ数をチェックするために実行し、平均して１個のＤＰＶ配列は酵素モノマー当たり結合していることを示した（図２Ｂ）。酵素活性は、結合によって影響されないことを確かめるためにチェックした。全ての結合した酵素は、完全な活性を保持していることが示された（データ示さず）。Ｂｅｔａ−ｇｌｕ酵素及びＤＰＶ−ｂｅｔａ−ｇｌｕ酵素結合体は、タンパク質１ｍｇ当たり３０，０００ユニットの活性を示した。Ｍ６Ｐ／ｂｅｔａ−ｇｌｕ及びＤＰＶ−Ｍ６Ｐ／ｂｅｔａ−ｇｌｕ酵素は、タンパク質１ｍｇ当たり７０，０００ユニットの活性を示した。

ＩＩ−２ ＤＰＶはＭＰＳＶＩＩ細胞によるベータ−グルクロニダーゼを媒介する
ＩＩ−２−１ 酵素取り込みの定量分析
酵素の内在化を可能及び／又は高めるＤＰＶの能力を測定するために、ＭＰＳＶＩＩ細胞によるＤＰＶ−ベータ−グルクロニダーゼ及びＤＰＶ−Ｍ６Ｐ／ベータ−グルクロニダーゼの取り込みを調べた。この目的を達成するために、タンパク質を培地に外から添加（約１５００ユニット／ｍＬ）し、取り込みは、細胞質の細胞抽出物中のベータ−グルクロニダーゼ活性を定量することによって分析した。

ベータ−グルクロニダーゼ及びＤＰＶ３−ベータ−グルクロニダーゼ結合体の両方は内在化されることを見出したが、取り込まれた酵素活性は、結合していない酵素のものと比較して、ＤＰＶ３−ベータ−グルクロニダーゼ結合体で３〜４倍高かった（図３Ａ）。しかしながら、ＨｅＬａ細胞で検出された活性レベルは到達しなかった。ＭＰＳＶＩＩ細胞のＤＰＶ３−ベータ−グルクロニダーゼ結合体処理後、ベータ−グルクロニダーゼ活性は、ＨｅＬａ細胞中で正常レベルの約３０％であることが分かった。ＤＰＶ１５ｂ−ベータ−グルクロニダーゼに関しては、ベータ−グルクロニダーゼアッセイでは細胞内酵素活性は検出されなかった。それにも関わらず、ＤＰＶ１５ｂ−ベータ−グルクロニダーゼが内在化され、使用した溶菌バッファーによって回収されなかった細胞構造体に局在化するという可能性は排除できなかった。

Ｍ６Ｐ／ベータ−グルクロニダーゼは、前述（ＬｅＢｏｗｉｔｚら，２００４）されるように線維芽細胞内に正常に内在化された。Ｍ６Ｐ／ベータ−グルクロニダーゼへのＤＰＶ３結合は、ＭＰＳＶＩＩ細胞による酵素の取り込みにおいて３倍の増加を可能にした。また、取り込みは、結合したＤＰＶ１５ｂを用いて有意に増加したが、結合したＤＰＶ３よりも低いままであった。

したがって、ＤＰＶ３は、両方の酵素（ベータ−グルクロニダーゼ又はＭ６Ｐ／ベータ−グルクロニダーゼ）と結合した場合に、細胞内への取り込みを増加することができた。

ＩＩ−２−２ 形質導入された酵素の細胞内局在化
内在化されたベータ−グルクロニダーゼ酵素の細胞内局在化をさらに試験するために、間接免疫蛍光染色を行った。ＭＰＳＶＩＩ細胞は、５０μｇ／ｍＬの各タンパク質のある場合とない場合とで４時間３７℃でインキュベートした。抗ベータ−グルクロニダーゼ抗体及び抗ＬＡＭＰ−１抗体（リソソームマーカー）を用いた二重免疫染色は、内在化したＤＰＶ３−ベータ−グルクロニダーゼが細胞質の多孔質構造に局在化し（図４，ｌ）、ＬＡＭＰ−１リソソーム構造物（黄色のシグナル）とともに同時に局在化する（図４，ｋ）することを明確に現した。ＤＰＶ３−ベータ−グルクロニダーゼ結合体は、ベータ−グルクロニダーゼの内在化、及び最適活性について細胞の部位（リソソーム）へのベータ−グルクロニダーゼの標的化を可能にした。ＤＰＶ１５ｂ−ベータ−グルクロニダーゼ結合取り込みに関して、本発明者らは、前述の試験に従って、ＤＰＶ１５ｂペプチドが核ペプチドベクターであることを示している酵素の核局在化を検出した（図４，Ｍ）。さらに、このベータ−グルクロニダーゼ取り込みの核局在化は、ＤＰＶ１５ｂ−ベータ−グルクロニダーゼとともにインキュベートされたＭＰＳＶＩＩ細胞の細胞質抽出物におけるベータ−グルクロニダーゼ活性の欠損を説明することができた（図３Ａ）。

免疫蛍光実験を行い、ＤＰＶ３−ベータ−グルクロニダーゼ内在化を視覚化したが、この技術は、ウシ酵素と交差反応する特異的な抗体が利用できないため、ウシＤＰＶ３−Ｍ６Ｐ／ベータ−グルクロニダーゼを視覚化するために用いることができなかった。したがって、ＤＰＶ３−又は非Ｍ６Ｐ／ベータ−グルクロニダーゼとともに４時間インキュベートした細胞の発色染色を行い、ＤＰＶ３−Ｍ６Ｐ／ベータ−グルクロニダーゼの内在化及び活性を視覚化した。５−ブロモ−４−クロロ−３−インドリル・ベータ−Ｄ−グルクロン酸（Ｘ−ｇｌｕｃ）試薬は、ベータ−グルクロニダーゼ活性の細胞内局在化に関する比色法を提供した。図５に示されるように、Ｍ６Ｐ／ベータ−グルクロニダーゼ及びＤＰＶ３−Ｍ６Ｐ／ベータ−グルクロニダーゼタンパク質の両方で処理された細胞の細胞質染色を観察した。染色強度は、Ｍ６Ｐ−ベータ−グルクロニダーゼを用いてインキュベートした細胞と比較して、ＤＰＶ３−Ｍ６Ｐ−ベータ−グルクロニダーゼとともにインキュベートした細胞において有意に高い。この観察は、Ｍ６Ｐ／ベータ−グルクロニダーゼと比較したＤＰＶ３−Ｍ６Ｐ／ベータ−グルクロニダーゼ内在化の内在化活性において３倍増加を示した前述の実験と一致していた（図３）。

ＩＩ−３ 形質導入された酵素の生物活性のインビトロ特徴付け
ＤＰＶ３ペプチドだけが、両方の酵素形体（リン酸化及び非リン酸化ベータ−グルクロニダーゼ）の取り込みの増加を可能にした。実験は、ＤＰＶ３−ベータ−グルクロニダーゼ又はＤＰＶ３−Ｍ６Ｐ／ベータ−グルクロニダーゼの輸送がＭＰＳＶＩＩ細胞におけるグリコサミノグリカン（ＧＡＧ）の減少を誘導することができるかどうかを評価するために行った。

予備的試験は、培養細胞において細胞の硫酸化ＧＡＧの定量を可能する分析法を定義するために開始した。材料及び方法に記載されるように、硫酸化ＧＡＧは、ＭＰＳＶＩＩ及びＨｅＬａ細胞から抽出し、ジメチレンブルー染色−結合アッセイを用いて定量した。細胞抽出物の硫酸化ＧＡＧはまた、アガロースゲル電気泳動及びトルイジンブルー染色からなる定量法を用いて分析した。ＭＰＳＶＩＩ細胞における硫酸化ＧＡＧレベルは、ＨｅＬａ細胞よりも約１０倍大きかった（図６Ａ）。ＭＰＳＶＩＩ細胞から抽出した主要な多糖は、一本の均質な異染性バンドとしてアガロースゲル上で移動し、哺乳動物のデルマタン硫酸（ＤＳ）とコンドロイチン硫酸Ａ（ＣＳＡ）との間に移動した。ＨｅＬａ抽出物では硫酸化ＧＡＧは見られなかった。これらの結果は、欠損ベータ−グルクロニダーゼ細胞について説明される病理学と一致している（ＧＡＧ蓄積）。

ＧＡＧ保存プロセスにおける内在化したベータ−グルクロニダーゼの効果は、ＤＰＶ３結合酵素とともにインキュベートしたＭＰＳＶＩＩ細胞における硫酸化ＧＡＧレベルを測定することによってさらに調査した。Ｍ６Ｐ／ベータ−グルクロニダーゼへのＤＰＶ３の結合は、Ｍ６Ｐ／ベータ−グルクロニダーゼ単独又はＤＰＶ３（５μｇ／ｍｌのタンパク質、６時間）と組み合わせたものと比較して、ＭＰＳＶＩＩ細胞において見られる細胞内ＧＡＧの分解を有意に改善した（各アッセイで約１．６倍；ｎ＝３）（図７）。

ベータ−グルクロニダーゼ酵素上のＣＰＰ（例えば、ＤＰＶ）のキメラ結合体を示す。 ＤＰＶ３−ベータ−グルクロニダーゼ結合体の分析を示す。Ａ：ベータ−グルクロニダーゼ（１）、ベータ−グルクロニダーゼ−Ｍａｌ−ＮＨ₂中間体（２）、ベータ−グルクロニダーゼ−Ｍａｌ−ＮＨ−ＳＭＣＣ中間体（３）、及びベータ−グルクロニダーゼ−Ｍａｌ−ＮＨ−ＳＭＣＣ−ＤＰＶ３（ＤＰＶ３−ベータ−グルクロニダーゼ）（４）のＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析。タンパク質は、還元条件下で８％ゲル上で分離した。ゲルは、材料及び方法に記載されるようにクーマシーブルーで染色した。Ｂ：ベータ−グルクロニダーゼ及びＤＰＶ３−ベータ−グルクロニダーゼのＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ質量分析。３８〜９８ｋＤａの範囲の質量が期待される。 ＭＰＳＶＩＩ細胞質抽出物におけるベータ−グルクロニダーゼ活性を示す。ＭＰＳＶＩＩ細胞は、未処理（対照）であるか、あるいは（Ａ）非ホスホマンノシル化ベータ−グルクロニダーゼ（ベータ−Ｇｌｕ）又はＤＰＶ（３若しくは１５）−ベータ−グルクロニダーゼ結合体（５０μｇ／ｍＬ）；又は（Ｂ）ホスホマンノシル化ベータ−グルクロニダーゼ（Ｍ６Ｐ／ベータ−Ｇｌｕ）又はＤＰＶ（３若しくは１５）−ベータ−グルクロニダーゼ結合体（２０μｇ／ｍＬ）を用いて、１６〜１８時間３７℃で指示されるようにインキュベートされた。ＨｅＬａ細胞は、内部対照として用いた。数値は、抽出タンパク質の１ｍｇ当たり、１時間における加水分解された基質（ＭＵＧｌｕｃ）のｎｍｏｌとして表現され、３回を超える実験の平均±ＳＥＭを示す。＊：非結合の酵素と比較した有意差（ｐ＜０．０５）。＊＊＊：非結合の酵素と比較した有意差（ｐ＜０．００１）。 ＤＰＶ３−及びＤＰＶ１５ｂ−ベータ−グルクロニダーゼの取り込み及び細胞内局在化を示す。ＭＰＳＶＩＩ細胞は、パネルの左に示されるように、未処理（対照）であるか、又は４時間３７℃でタンパク質（５０μｇ／ｍＬ）を用いてインキュベートされた。次に、細胞を固定し、抗ベータ−グルクロニダーゼｐＡｂ（Ａ、Ｅ、Ｉ及びＭ）及び抗ＬＡＭＰ−１ｍＡｂ（Ｂ、Ｆ、Ｊ及びＮ）を用いて染色し、続いてＴＲＩＴＣ標識した抗ウサギＩｇＧ抗体（Ａ、Ｅ、Ｉ及びＭ）及びＦＩＴＣ標識した抗ラットＩｇＧ抗体（Ｂ、Ｆ、Ｊ及びＮ）とともにインキュベートした。重ねた画像は、第３のカラムに示され、ＤＡＰＩ対比染色は第４カラムに示される。 ＭＰＳＶＩＩ細胞におけるＭ６Ｐ／ベータ−グルクロニダーゼ及びＤＰＶ３−Ｍ６Ｐ／ベータ−グルクロニダーゼの細胞内局在化及び活性を示す。細胞は、両酵素とともに４時間３７℃でインキュベートされた；細胞を洗浄し、０．１％グルタールアルデヒドで固定し、Ｘ−ｇｌｕｃと一緒にインキュベートした。ベータ−グルクロニダーゼ活性は、不溶性インドキシル分子二量体（インジゴ染色）の酵素的開裂の部位で沈着により視覚化された。未処理細胞はネガティブであった（データ示さず）。顕微鏡倍率：Ｘ４０。 ＭＰＳＶＩＩ細胞の硫酸化ＧＡＧ含量を示す。ＨｅＬａ細胞及びＭＰＳＶＩＩ細胞由来の硫酸化ＧＡＧは、材料及び方法に記載されるように抽出された。Ａ：硫酸化されたＧＡＧは、材料及び方法に記載されるように、ジメチレンブルーアッセイを用いることにより、約２．１０⁶細胞からの抽出物において定量された。Ｂ：約７．１０⁶細胞からの硫酸化ＧＡＧ抽出物、並びにコンドロイチン４−硫酸（ＣＳＡ）、デルマタン硫酸（ＤＳ）及びヘパラン硫酸（ＨＳ）のそれぞれを５又は１０μｇを含む標準的なＧＡＧの混合物を０．５％アガロースに適用し、１，３−ジアミノプロパン／酢酸緩衝液（ｐＨ９．０）中で２時間、５０Ｖ、４℃で実行した。ゲル中の硫酸化ＧＡＧは、水中のＮ−セチル−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリメチルアンモニウムブロミド０．１％で固定した。１２時間後、ゲルを乾燥させ、酢酸／エタノール／水（０．１：５：５、Ｖ／Ｖ）中の０．１％トルイジンブルーで染色した。 種々の処理後のＭＰＳＶＩＩ細胞におけるＧＡＧの定量（％）を示す。ＭＰＳＶＶＩＩ細胞のＧＡＧ含量を１００％として考慮する。ＭＰＳＶＩＩ細胞は、酵素とともに又は含まないで６時間３７℃でインキュベートした。細胞内ＧＡＧを抽出し、ジメチレンブルー染色結合アッセイを用いて定量した。結果は、ＧＡＧの量に関して１００％として定義される未処理ＭＰＳＶＩＩ細胞と比較して表した。ＭＰＳＶＩＩ細胞のＧＡＧ含量と比較した統計的なダネット分析：＊ｐ＜０．０５。

Claims (22)

1. 第１ドメインが、アミノグリカンに結合することによって生体膜を横切る能動輸送を促進するアミノ酸配列を含み、ａ）（ＸＢＢＢＸＸＢＸ）ｎ；ｂ）（ＸＢＢＸＢＸ）ｎ；ｃ）（ＢＢＸｍＢＢＸｐ）ｎ；ｄ）（ＸＢＢＸＸＢＸ）ｎ；ｅ）（ＢＸｍＢＢ）ｎ；ｆ）（ＢｍＸＸ）ｎ又はｇ）抗体断片からなる群から選択され、ここで、各Ｂは、独立して、塩基性アミノ酸、好ましくはリジン又はアルギニンであり；各Ｘは、独立して、非塩基性アミノ酸、好ましくは疎水性アミノ酸であり；各ｍは、独立して、０〜５の整数であり；各ｎは、独立して、１〜１０の整数であり；各ｐは、独立して、０〜５の整数であり；及び第２ドメインが、リソソーム酵素のアミノ酸配列を含む、第１ドメイン及び第２ドメインを含むキメラポリペプチド。
2. 第１ドメインが、生体膜を横切る能動輸送を促進するアミノ酸配列を含み、４個を超えるアミノ酸、好ましくは６個を超えるアミノ酸の長さを有する、請求項１に記載のキメラポリペプチド。
3. 第１ドメインが、生体膜を横切る能動輸送を促進するアミノ酸配列を含み、５００個未満のアミノ酸、好ましくは２５個未満の長さを有する、請求項１又は２に記載のキメラポリペプチド。
4. 各Ｘが、独立して、アラニン、グルタミン酸、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、セリン、トリプトファン、バリン又はチロシンである、請求項１〜３のいずれか１項に記載のキメラポリペプチド。
5. 第１ドメインが、配列番号２、配列番号３、配列番号４、配列番号５、配列番号６、配列番号７、配列番号８、配列番号９、配列番号１０、配列番号１１、配列番号１２を含む群から選択されるアミノ酸配列を含む、請求項１〜４のいずれか１項に記載のキメラポリペプチド。
6. 転移（ｔｒａｎｓｌｏｃａｔｉｏｎ）配列が、アミノ酸配列（ＢｍＸＸ）ｎを含み；ここで、Ｂは、任意の塩基性アミノ酸であり；Ｘは、任意の非塩基性アミノ酸であり；各ｍは、独立して、１〜１０の整数であり；各ｎは、独立して、１〜４の整数である、請求項１に記載のキメラポリペプチド。
7. 転位配列は、アミノ酸配列ＢＢＢＢＢＢＸＸＢＢＢＢＢＢＸＸを含み；ここで、Ｂは任意の塩基性アミノ酸であり；Ｘは、任意の非塩基性アミノ酸である、請求項６に記載のキメラポリペプチド。
8. Ｘが、グルタミン酸及びセリンを含む群から選択される、請求項７に記載のキメラポリペプチド。
9. 転位配列が配列番号２を含む、請求項８に記載のキメラポリペプチド。
10. リソソーム酵素が、リソソーム蓄積障害の症状を抑制し、予防し、又はリソソーム蓄積障害遺伝子欠損を救出する、請求項１〜９のいずれか１項に記載のキメラポリペプチド。
11. リソソーム酵素が、酸性−アルファ−１，４−グルコシダーゼ；ベータ−ガラクトシダーゼ；ベータ−ガラクトシダーゼＡ；ベータ−ヘキソサミニダーゼＡ；ベータ−ヘキソサミニダーゼＢ；ＧＭ₂活性化タンパク質；グルコセレブロシダーゼ；アリールスルファターゼＡ；アリールスルファターゼＢ；ガラクトシルセラミダーゼ；酸性スフィンゴミエリナーゼ；コレステロール；酸性セラミダーゼ；酸性リパーゼ；アルファ−Ｌ−イズロニダーゼ；イズロニダーゼ・スルファターゼ；ヘパランＮ−スルファターゼ；アルファ−Ｎ−アセチルグルコサミニダーゼ；アセチル−ＣｏＡ−グルコサミニド・アセチルトランスフェラーゼ；Ｎ−アセチルグルコサミン−６−スルファターゼ；ガラクトサミン−６−スルファターゼ；ベータ−グルクロニダーゼ；アルファ−マンノシダーゼ；ベータ−マンノシダーゼ；アルファ−Ｌ−フコシダーゼ；Ｎ−アスパルチル−ベータ−グルコサミニダーゼ；アルファ−ノイラミニダーゼ；リソソーム防御タンパク質；アルファ−Ｎ−アセチル−ガラクトサミニダーゼ；Ｎ−アセチルグルコサミン−１−ホスホトランスフェラーゼ；シスチン輸送タンパク質；シアル酸輸送タンパク質；パルミトイル−タンパク質チオエステラーゼ；サポシンＡ、Ｂ、Ｃ又はＤ；及びカテプシンタンパク質を含む群から選択される、請求項１〜１０のいずれか１項に記載のキメラポリペプチド。
12. リソソーム酵素がベータ−グルクロニダーゼである、請求項１１に記載のキメラポリペプチド。
13. リソソーム酵素が、転移配列のＮ末端又はＣ末端で結合される、請求項１〜１２のいずれか１項に記載のキメラポリペプチド。
14. リソソーム酵素が、リンカーを介して転移配列に結合される、請求項１３に記載のキメラポリペプチド。
15. リンカーが、スクシニミジル４−（Ｎ−マレイミドメチル）シクロヘキサン−１−カルボキシレート（ＳＭＣＣ）又はＮ−マレイミドブチルアミンである、請求項１４に記載のキメラポリペプチド。
16. 両方のドメインが、遺伝子操作によって融合される、請求項１３又は１４に記載のキメラポリペプチド。
17. 請求項１６に記載のポリペプチドをコードする核酸配列を含むポリヌクレオチド。
18. 対象とする物質をリソソームに移動させるための請求項１〜９のいずれか１項に記載される第１ドメインに対応するアミノ酸配列の使用。
19. 対象とする物質が、請求項１１又は１２に記載されるリソソーム酵素である、請求項１８に記載される使用。
20. 請求項１〜１６のいずれか１項に記載のキメラポリペプチド又は請求項１７に記載のポリヌクレオチド及び場合により医薬として許容される担体を含む組成物。
21. リソソーム蓄積疾患を治療するための医薬を製造するための請求項１〜１６のいずれか１項に記載のキメラポリペプチド又は請求項１７に記載のポリヌクレオチドの使用。
22. リソソーム蓄積疾患がスライ症候群（ＭＰＳ ＶＩＩ）である、請求項２１記載の使用。

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