JP2009296973A - Method for analyzing protein interaction, polynucleotide and composition - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、細胞内のタンパク質間相互作用を非侵襲的に解析する、タンパク質相互作用解析方法、ポリヌクレオチド、および、組成物に関するものである。 The present invention relates to a protein interaction analysis method, polynucleotide, and composition for non-invasively analyzing intracellular protein-protein interactions.
従来、細胞内でのタンパク質の相互作用を観察するために、ルシフェラーゼ等の発光酵素を分割して、対象となる2つのタンパク質にそれぞれ融合させ、細胞内で発現させた融合タンパク質が、対象タンパク質間の相互作用により互いに結合することにより、回復した発光酵素活性を観察・測定していた。 Conventionally, in order to observe the interaction of proteins in cells, a luminescent enzyme such as luciferase is divided and fused to two target proteins, and the fusion protein expressed in the cells As a result of binding to each other by the interaction, the recovered luminescent enzyme activity was observed and measured.
例えば、非特許文献1および2では、分割したスプリットルシフェラーゼをMyoDとIdにそれぞれ結合させて融合タンパクとして細胞内で発現させ、スプリットルシフェラーゼ同士の結合により回復したルシフェラーゼ活性を観察することにより、細胞内におけるMyoD−Id相互作用やその局在を解析する方法(スプリットルシフェラーゼアッセイ)が開発されている。
For example, in
しかしながら、例えば、上述のMyoDやIdには、核局在シグナル(NLS:Nuclear Localization Signal)配列が存在することが、非特許文献3,4等において報告されているが、従来の方法では、対象タンパク質に核局在シグナル配列が存在する場合、対象タンパク質が核に局在するため分割されたルシフェラーゼが効率よく再構成されず、発光強度が弱いという問題がある。 However, for example, it has been reported in Non-Patent Documents 3 and 4 that the above-mentioned MyoD and Id have a nuclear localization signal (NLS) sequence. When a protein has a nuclear localization signal sequence, the target protein is localized in the nucleus, so that there is a problem that the divided luciferase is not efficiently reconstituted and the luminescence intensity is weak.
また、同一の検出装置で同時に複数の対象を色別で検出する場合等では、発光強度差が過大とならないよう発光強度を調節して漏れ込みを防ぐ必要があるが、従来の方法では、ルシフェラーゼ遺伝子を改変させるか種類の異なるルシフェラーゼを用いて調整しなければならなかった。また、同時に検出しない場合であっても、発光強度差がある場合は、検出装置等の感度をその都度、切り換えて設定しなければならず煩雑であり、再現性などにおいても問題があった。 In addition, in the case where a plurality of objects are detected by color at the same time using the same detection device, it is necessary to prevent the leakage by adjusting the emission intensity so that the difference in emission intensity does not become excessive, but in the conventional method, luciferase The gene had to be modified or adjusted with different types of luciferases. Further, even if the detection is not performed at the same time, if there is a difference in emission intensity, the sensitivity of the detection device or the like must be switched and set each time, and there is a problem in reproducibility.
本発明は、上記問題点に鑑みてなされたものであって、対象タンパク質が核局在シグナル配列を含む場合であっても、タンパク質間相互作用の動態を精度よく解析することができ、その結果、実験の再現性を改善することができる、タンパク質相互作用解析方法、ポリヌクレオチド、および、組成物を提供することを目的とする。 The present invention has been made in view of the above problems, and even when the target protein contains a nuclear localization signal sequence, the dynamics of protein-protein interaction can be analyzed with high accuracy. An object of the present invention is to provide a protein interaction analysis method, polynucleotide, and composition that can improve the reproducibility of experiments.
上述した課題を解決し、目的を達成するために、本発明にかかるタンパク質相互作用解析方法は、細胞内においてタンパク質の相互作用を解析するタンパク質相互作用解析方法であって、互いに結合することにより発光酵素活性が回復するよう分割させたN末側発光酵素とC末側発光酵素を調整し、前記N末側発光酵素と融合させた一方の前記タンパク質、および、前記C末側発光酵素と融合させた他方の前記タンパク質を含む前記細胞を作製する作製工程と、前記作製工程で作製した前記細胞に当該細胞外から所定の発光基質を添加する添加工程と、前記添加工程で前記所定の発光基質が与えられた前記細胞の発光画像を撮像する撮像工程と、前記撮像工程で撮像した前記発光画像に基づいて、前記細胞内における前記タンパク質の相互作用の動態を解析する解析工程と、を含み、前記作製工程において、少なくとも一方の前記タンパク質の核局在シグナル配列を変異させること、を特徴とする。 In order to solve the above-described problems and achieve the object, a protein interaction analysis method according to the present invention is a protein interaction analysis method for analyzing protein interactions in cells, and emits light by binding to each other. An N-terminal luminescent enzyme and a C-terminal luminescent enzyme that have been divided so as to recover the enzyme activity are prepared and fused with one of the proteins fused with the N-terminal luminescent enzyme and the C-terminal luminescent enzyme. A production step for producing the cell containing the other protein, an addition step for adding a predetermined luminescent substrate from outside the cell to the cell produced in the production step, and the predetermined luminescent substrate in the addition step. An imaging step of capturing a luminescent image of the given cell, and an interaction between the proteins in the cell based on the luminescent image captured in the imaging step Anda analysis step of the kinetic analysis, in the manufacturing process, to mutate nuclear localization signal sequence of at least one of said protein, characterized by.
また、本発明にかかるタンパク質相互作用解析方法は、上記記載のタンパク質相互作用解析方法において、前記作製工程は、前記核局在シグナル配列のリシン残基および/またはアルギニン残基を、非荷電アミノ酸に置換すること、を特徴とする。 The protein interaction analysis method according to the present invention is the protein interaction analysis method described above, wherein the production step converts a lysine residue and / or an arginine residue of the nuclear localization signal sequence into an uncharged amino acid. It is characterized by replacing.
また、本発明にかかるタンパク質相互作用解析方法は、上記記載のタンパク質相互作用解析方法において、前記非荷電アミノ酸は、アラニンまたはグリシンであること、を特徴とする。 The protein interaction analysis method according to the present invention is characterized in that, in the protein interaction analysis method described above, the uncharged amino acid is alanine or glycine.
また、本発明にかかるタンパク質相互作用解析方法は、上記記載のタンパク質相互作用解析方法において、一方の前記タンパク質は、野生型Idタンパク質であり、他方の前記タンパク質は、前記核局在シグナル配列に対応する、アミノ酸番号102番目、104番目、112番目のリシン残基、および、103番目、110番目、111番目のアルギニン残基を、アラニン残基に変異させた変異型MyoDタンパク質であること、を特徴とする。
The protein interaction analysis method according to the present invention is the protein interaction analysis method described above, wherein one of the proteins is a wild-type Id protein and the other protein corresponds to the nuclear localization signal sequence. A mutated MyoD protein in which the arginine residues at
また、本発明にかかるタンパク質相互作用解析方法は、上記記載のタンパク質相互作用解析方法において、一方の前記タンパク質は、前記核局在シグナル配列に対応する、アミノ酸番号70番目、81番目、84番目のリシン残基、および、68番目、80番目のアルギニン残基を、アラニン残基に変異させた変異型Idタンパク質であり、他方の前記タンパク質は、野生型MyoDタンパク質であること、を特徴とする。 The protein interaction analysis method according to the present invention is the protein interaction analysis method described above, wherein one of the proteins corresponds to the nuclear localization signal sequence at amino acid numbers 70, 81, and 84. It is a mutant Id protein obtained by mutating lysine residues and 68th and 80th arginine residues to alanine residues, and the other protein is a wild-type MyoD protein.
また、本発明にかかるタンパク質相互作用解析方法は、上記記載のタンパク質相互作用解析方法において、前記N末側発光酵素は、ホタルルシフェラーゼのアミノ酸番号1番目から416番目のアミノ酸配列を含むN末側スプリットルシフェラーゼであり、前記C末側発光酵素は、前記ホタルルシフェラーゼのアミノ酸番号399番目から550番目のアミノ酸配列を含むC末側スプリットルシフェラーゼであること、を特徴とする。 The protein interaction analysis method according to the present invention is the above-described protein interaction analysis method, wherein the N-terminal luminescent enzyme comprises an N-terminal split comprising the amino acid sequence of amino acid numbers 1 to 416 of firefly luciferase. It is a luciferase, and the C-terminal luminescent enzyme is a C-terminal split luciferase comprising the amino acid sequence of amino acid numbers 399 to 550 of the firefly luciferase.
また、本発明にかかるポリヌクレオチドは、C末側スプリットルシフェラーゼと、核局在シグナル配列を含むMyoDタンパク質と、の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドにおいて、前記MyoDタンパク質の前記核局在シグナル配列におけるリシン残基およびアルギニン残基が、アラニン残基またはグリシン残基をコードするよう変異されたこと、を特徴とする。 The polynucleotide according to the present invention is a polynucleotide encoding a fusion protein of a C-terminal split luciferase and a MyoD protein containing a nuclear localization signal sequence, wherein a lysine in the nuclear localization signal sequence of the MyoD protein Residues and arginine residues have been mutated to encode alanine or glycine residues.
また、本発明にかかる組成物は、上記記載のポリヌクレオチドと、N末側スプリットルシフェラーゼと野生型Idタンパク質との融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドと、を少なくとも含む組成物であること、を特徴とする。 The composition according to the present invention is a composition comprising at least the polynucleotide described above and a polynucleotide encoding a fusion protein of N-terminal split luciferase and wild-type Id protein. To do.
また、本発明にかかるポリヌクレオチドは、N末側スプリットルシフェラーゼと、核局在シグナル配列を含むIdタンパク質と、の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドにおいて、前記Idタンパク質の前記核局在シグナル配列におけるリシン残基およびアルギニン残基が、アラニン残基またはグリシン残基をコードするよう変異されたこと、を特徴とする。 The polynucleotide according to the present invention is a polynucleotide encoding a fusion protein of N-terminal split luciferase and an Id protein containing a nuclear localization signal sequence, wherein lysine in the nuclear localization signal sequence of the Id protein Residues and arginine residues have been mutated to encode alanine or glycine residues.
また、本発明にかかる組成物は、上記記載のポリヌクレオチドと、C末側スプリットルシフェラーゼと野生型MyoDタンパク質との融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドと、を少なくとも含む組成物であることを特徴とする。 The composition according to the present invention is a composition comprising at least the polynucleotide described above and a polynucleotide encoding a fusion protein of C-terminal split luciferase and wild-type MyoD protein. .
本発明によれば、対象タンパク質が核局在シグナル配列を含む場合であっても、タンパク質間相互作用の動態を精度よく解析することができ、その結果、実験の再現性を改善することができる。 According to the present invention, even if the target protein contains a nuclear localization signal sequence, the dynamics of protein-protein interaction can be analyzed with high accuracy, and as a result, the reproducibility of the experiment can be improved. .
以下に、本発明にかかるタンパク質相互作用解析方法の実施の形態を図面に基づいて詳細に説明する。なお、この実施の形態によりこの発明が限定されるものではない。 Embodiments of a protein interaction analysis method according to the present invention will be described below in detail with reference to the drawings. Note that the present invention is not limited to the embodiments.
まず、本発明にかかるタンパク質相互作用解析方法(具体的には撮像工程および解析工程)で用いる発光観察システム100の構成について、図1〜図4を参照して説明する。図1は、発光観察システム100の全体構成の一例を示す図である。図2および図3は、発光観察システム100の発光画像撮像ユニット106の構成の一例を示すブロック図である。図4は、発光観察システム100の画像解析装置110の構成の一例を示すブロック図である。
First, the structure of the
図1に示すように、発光観察システム100は、細胞102を収納した容器103(具体的にはシャーレ、スライドガラス、マイクロプレート、ゲル支持体、微粒子担体など)と、容器103を配置するステージ104と、発光画像撮像ユニット106と、画像解析装置110と、で構成されている。
As shown in FIG. 1, a
ここで、発光画像撮像ユニット106は、ステージ104の下側に配置してもよい。蛍光よりも微弱な発光を測定するための発光画像撮像ユニット106を下側に配置することにより、カバー開閉によるサンプル上方からの外乱光を完全に遮断できて発光画像のS/N比を増すことができる。なお、この構成の場合、容器103の底部は光透過性を有する素材を用い、ステージ104には光を透過させるよう穴を有していてもよい。
Here, the light emitting
細胞102は、例えば、分割されたN末側発光酵素(例えばN末側スプリットルシフェラーゼなど)と融合させた対象タンパク質(例えばIdタンパク質など)、および、分割されたC末側発光酵素(例えばC末側スプリットルシフェラーゼ)と融合させた他方の対象タンパク質(例えばMyoDタンパク質など)を含む生きた細胞であり、少なくとも一方の対象タンパク質の核局在シグナル配列には、核局在化を防ぐよう所定の変異が導入されている。例えば、核局在シグナル配列のリシン残基および/またはアルギニン残基は、非荷電アミノ酸(例えば、アラニンやグリシン)に置換されていてもよい。また、ここで、細胞102に、上記融合タンパク質がそれぞれ発現されるよう構成した、当該融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターを導入することにより、両融合タンパク質が細胞102内で発現されるよう構成してもよい。なお、細胞102には、当該細胞の撮像時に、当該細胞外から所定の発光基質(例えばルシフェリンなど)が与えられる。
The
発光画像撮像ユニット106は、具体的には正立型の発光顕微鏡であり、細胞102の発光画像を撮像する。発光画像撮像ユニット106は、図示の如く、対物レンズ106aと、ダイクロイックミラー106bと、CCDカメラ106cと、結像レンズ106fと、で構成されている。対物レンズ106aは、具体的には、(開口数/倍率)2の値が0.01以上のものである。ダイクロイックミラー106bは、細胞102から発せられた発光を色別に分離し、2色の発光を用いて発光量を色別に測定する場合に用いる。CCDカメラ106cは、対物レンズ106a、ダイクロイックミラー106bおよび結像レンズ106fを介して当該CCDカメラ106cのチップ面に投影された細胞102の発光画像および明視野画像を撮る。また、CCDカメラ106cは、画像解析装置110と有線または無線で通信可能に接続される。結像レンズ106fは、対物レンズ106aおよびダイクロイックミラー106bを介して当該結像レンズ106fに入射した像(具体的には細胞102を含む像)を結像する。なお、図1では、ダイクロイックミラー106bで分離した2つの発光に対応する発光画像を2台のCCDカメラ106cで別々に撮像する場合の一例を示しており、1つの発光を用いる場合には、発光画像撮像ユニット106は、対物レンズ106a、1台のCCDカメラ106cおよび結像レンズ106fで構成されてもよい。
The luminescence
ここで、2色の発光を用いて発光量や発光強度を色別に測定する場合、発光画像撮像ユニット106は、図2に示すように、対物レンズ106aと、CCDカメラ106cと、スプリットイメージユニット106dと、結像レンズ106fと、で構成されてもよい。そして、CCDカメラ106cは、スプリットイメージユニット106dおよび結像レンズ106fを介して当該CCDカメラ106cのチップ面に投影された生体試料(細胞102等)の発光画像(スプリットイメージ)および明視野画像を撮像してもよい。スプリットイメージユニット106dは、生体試料(細胞102等)から発せられた発光を色別に分離し、ダイクロイックミラー106bと同様、2色の発光を用いて発光量や発光強度を色別に測定する場合に用いる。
Here, when measuring the light emission amount and the light emission intensity for each color using the light emission of two colors, as shown in FIG. 2, the light emission
また、複数色の発光を用いて発光量や発光強度を色別に測定する場合(つまり、多色の発光を用いる場合)、発光画像撮像ユニット106は、図3に示すように、対物レンズ106aと、CCDカメラ106cと、フィルターホイール106eと、結像レンズ106fと、で構成されてもよい。そして、CCDカメラ106cは、フィルターホイール106eおよび結像レンズ106fを介して当該CCDカメラ106cのチップ面に投影された生体試料(細胞102等)の発光画像および明視野画像を撮像してもよい。フィルターホイール106eは、生体試料(細胞102等)から発せられた発光をフィルター交換によって色別に分離し、複数色の発光を用いて発光量や発光強度を色別に測定する場合に用いる。
Further, when measuring the emission amount and emission intensity for each color using light emission of a plurality of colors (that is, when using multicolor light emission), the light emission
再び図1に戻り、画像解析装置110は、例えば、パーソナルコンピュータである。そして、画像解析装置110は、図4に示すように、大別して、制御部112と、システムの時刻を計時するクロック発生部114と、記憶部116と、通信インターフェース部118と、入力装置122や出力装置124に接続された入出力インターフェース部120と、で構成されており、これら各部はバスを介して接続されている。
Returning to FIG. 1 again, the
上記構成において、記憶部116は、ストレージ手段であり、具体的には、RAMやROM等のメモリ装置、ハードディスクのような固定ディスク装置、フレキシブルディスク、光ディスク等を用いることができる。そして、記憶部116は制御部112の各部の処理により得られたデータなどを記憶する。通信インターフェース部118は、画像解析装置110と、CCDカメラ106cと、の間における通信を媒介する。すなわち、通信インターフェース部118は他の端末と有線または無線の通信回線を介してデータを通信する機能を有する。入出力インターフェース部120は、入力装置122や出力装置124に接続する。ここで、出力装置124には、モニタ(家庭用テレビを含む)の他、スピーカやプリンタを用いることができる(なお、以下で、出力装置124をモニターとして記載する場合がある。)。また、入力装置122には、キーボードやマウスやマイクの他、マウスと協働してポインティングデバイス機能を実現するモニターを用いることができる。
In the above configuration, the
制御部112は、OS(Operating System)等の制御プログラムや各種の処理手順等を規定したプログラムや所要データを格納するための内部メモリを有し、これらのプログラムに基づいて種々の処理を実行する。そして、制御部112は、大別して、発光画像撮像指示部112aと、発光画像取得部112bと、画像解析部112cと、解析結果出力部112dと、で構成されている。
The
発光画像撮像指示部112cは、通信インターフェース部118を介して、CCDカメラ106cへ発光画像および明視野画像の撮像を指示する。発光画像取得部112bは、CCDカメラ106cで撮像した発光画像および明視野画像を、通信インターフェース部118を介して取得する。
The luminescent image capturing
画像解析部112cは、発光画像取得部112bで取得した複数の発光画像に基づいて、対象タンパク質の相互作用状態の変動や動態を解析する。換言すると、画像解析部112cは、複数の発光画像に基づいて、対象タンパク質間の相互作用の状態や、相互作用を行っている対象タンパク質が細胞102内でどのように移動していくのか等を解析する。また、画像解析部112cは、複数の発光画像に基づいて、対象タンパク質の相互作用状態がどのように変化していくのかを数値化して解析する。解析結果出力部112dは、画像解析部112cでの解析結果を出力装置124に出力する。具体的には、解析結果出力部112dは、画像解析部112cで得られた対象タンパク質間の相互作用状態の変動についての時系列の数値データを、グラフ化して出力装置124に表示する。
The
本実施の形態における実施例について以下に図5〜図9を用いて説明する。ここで、図5は、スプリットルシフェラーゼアッセイの検出原理を示す図である。 Examples of the present embodiment will be described below with reference to FIGS. Here, FIG. 5 is a diagram showing the detection principle of the split luciferase assay.
スプリットルシフェラーゼアッセイとは、ホタルルシフェラーゼやウミシイタケルシフェラーゼ等のルシフェラーゼを、特定の位置で分割して発光酵素活性(生物発光能)を失活させた後、そのフラグメント(断片)であるN末側ルシフェラーゼ(NLuc)とC末側ルシフェラーゼ(CLuc)を再構成させ発光酵素活性を回復させる手法であり、タンパク質間相互作用の検出や、タンパク質の細胞内小胞体移行検出等に用いられる。 The split luciferase assay is a luciferase such as firefly luciferase or Renilla luciferase, which is divided at a specific position to inactivate luminescent enzyme activity (bioluminescence ability), and then the N-terminal luciferase that is a fragment (fragment) thereof (NLuc) and C-terminal luciferase (CLuc) are reconstituted to recover the luminescent enzyme activity, and are used for detecting protein-protein interactions, detecting intracellular endoplasmic reticulum migration, and the like.
図5は、相互作用を起こすタンパク質として、IdとMyoDを用いた例を示している。すなわち、細胞内で発現させた、NLuc−Id融合タンパク質中のId遺伝子部位と、MyoD−CLuc融合タンパク質中のMyoD遺伝子部位とが相互作用して結合すると、NLuc遺伝子部位とCLuc遺伝子部位とが結合して発光酵素活性が回復し、検出可能なシグナルを発する。本実施例においては、このスプリットルシフェラーゼアッセイ系において、IdまたはMyoD遺伝子中の核局在シグナル配列に変異を導入させた実施の形態について説明する。ここで、本実施例における実験の流れ(手順)は、以下の通りである。 FIG. 5 shows an example in which Id and MyoD are used as proteins that cause interaction. That is, when the Id gene site in the NLuc-Id fusion protein and the MyoD gene site in the MyoD-CLuc fusion protein that are expressed in a cell interact and bind to each other, the NLuc gene site and the CLuc gene site bind to each other. The luminescent enzyme activity is then restored and a detectable signal is emitted. In this example, an embodiment in which mutations are introduced into the nuclear localization signal sequence in the Id or MyoD gene in this split luciferase assay system will be described. Here, the flow (procedure) of the experiment in the present embodiment is as follows.
[スプリットルシフェラーゼ遺伝子の作製およびMyoD遺伝子とId遺伝子のクローニング]
[手順1]
まず、スプリットルシフェラーゼ遺伝子(NLuc/CLuc)の作製のために、PCRに用いる合成オリゴDNAを以下に示す配列で調整した。
(NLuc遺伝子作製用合成オリゴDNA配列)
NLuc_Forward(配列番号1):5’−GCCACCATGGAAGATGCCAAAAACATT−3’
NLuc_Reverse(配列番号2):5’−CAGGGATCCGTCCTTGTCGATGAGAGCGTT−3’
(CLuc遺伝子作製用合成オリゴDNA配列)
CLuc_Forward(配列番号3):5’−ATCGGATCCGGCTACGTTAACAACCCCGAG−3’
CLuc_Reverse(配列番号4):5’−GACTCTAGAATTATTACACGGCGATCT−3’
[Preparation of split luciferase gene and cloning of MyoD and Id genes]
[Procedure 1]
First, in order to produce a split luciferase gene (NLuc / CLuc), a synthetic oligo DNA used for PCR was prepared with the following sequence.
(Synthetic oligo DNA sequence for NLuc gene production)
NLuc_Forward (SEQ ID NO: 1): 5'-GCCACATGGGAAGATGCCAAAAAACTTT-3 '
NLuc_Reverse (SEQ ID NO: 2): 5′-CAGGGATCCGTCCTTGTCGATGAGAGCGTT-3 ′
(Synthetic oligo DNA sequence for CLuc gene production)
CLuc_Forward (SEQ ID NO: 3): 5′-ATCGGATCCGGCTACGTTAACAAACCCCGAG-3 ′
CLuc_Reverse (SEQ ID NO: 4): 5′-GACTCTAGAATTATTACACGGCGATCT-3 ′
また、MyoD遺伝子およびId遺伝子のクローニングのために、PCRに用いる合成オリゴDNAを以下に示す配列で調整した。
(MyoD遺伝子作製用合成オリゴDNA配列)
MyoD_Forward(配列番号5):5’−GGGCCATGGAGCTTCTATCGCCGCCACTC−3’
MyoD_Reverse(配列番号6):5’−GATGGATCCAAGCACCTGATAAATCGCATT−3’
(Id遺伝子作製用合成オリゴDNA配列)
Id_Forward(配列番号7):5’−GAGGGATCCCTTGGTCTGTCGGAGCAAAGC−3’
Id_Reverse(配列番号8):5’−GTGTCTAGACTCAGCGACACAAGATGCGAT−3’
In addition, for the cloning of the MyoD gene and the Id gene, a synthetic oligo DNA used for PCR was prepared with the sequences shown below.
(Synthetic oligo DNA sequence for producing MyoD gene)
MyoD_Forward (SEQ ID NO: 5): 5′-GGGCCATGGAGCTTCTATCGCCGCCACTC-3 ′
MyoD_Reverse (SEQ ID NO: 6): 5′-GATGGATCCAAGCACCTGATAAAATCGCATT-3 ′
(Synthetic oligo DNA sequence for Id gene production)
Id_Forward (SEQ ID NO: 7): 5′-GAGGGATCCCTTGGTCTGTCGGAGCAAAGC-3 ′
Id_Reverse (SEQ ID NO: 8): 5′-GTGTTCTAGACTCAGCGCACAAGATGGCGAT-3 ′
[手順2]
そして、pGL4.10(プロメガ(株)製)を鋳型として、N末側ルシフェラーゼ遺伝子(NLuc:GL4.10遺伝子の1番目から416番目のアミノ酸を含む。)、および、C末側ルシフェラーゼ遺伝子(CLuc:GL4.10遺伝子の399番目から550番目のアミノ酸を含む。)を、上記合成オリゴDNAをプライマーとしてPCRにより増幅した。
[Procedure 2]
Then, using pGL4.10 (manufactured by Promega Corporation) as a template, the N-terminal luciferase gene (NLuc: including the first to 416th amino acids of the GL4.10 gene) and the C-terminal luciferase gene (CLuc) : 399th to 550th amino acids of GL4.10 gene) were amplified by PCR using the above synthetic oligo DNA as a primer.
[手順3]
そして、マウス骨格筋cDNAライブラリ(タカラバイオ(株)製)を鋳型として、MyoD遺伝子(マウスのMyoD遺伝子の1番目から318番目のアミノ酸配列に対応する領域を含む。)、および、Id遺伝子(マウスのId遺伝子の29番目から148番目のアミノ酸配列に対応する領域を含む。)を、上記合成オリゴDNAをプライマーとしてPCRにより増幅した。
[Procedure 3]
Then, using a mouse skeletal muscle cDNA library (manufactured by Takara Bio Inc.) as a template, a MyoD gene (including a region corresponding to the first to 318th amino acid sequences of the mouse MyoD gene), and an Id gene (mouse) The region corresponding to the amino acid sequence from the 29th to the 148th amino acid sequence of Id gene was amplified by PCR using the synthetic oligo DNA as a primer.
[手順4]
そして、PCRで増幅させたNLuc遺伝子およびMyoD遺伝子を、pBluescriptIIベクターにサブクローニングした後、NLuc遺伝子の下流に存在するBamHI部位とXbaI部位の間にId遺伝子を、MyoD遺伝子の下流に存在するBamHI部位とXbaI部位の間にCLuc遺伝子をそれぞれ挿入して、融合遺伝子(NI:NLuc−Id、および、MC:MyoD−CLuc)を作製した。
[Procedure 4]
Then, after sub-cloning the NLuc gene and MyoD gene amplified by PCR into the pBluescript II vector, the Id gene is located between the BamHI site and the XbaI site present downstream of the NLuc gene, and the BamHI site present downstream of the MyoD gene. CLuc genes were inserted between XbaI sites, respectively, to create fusion genes (NI: NLuc-Id and MC: MyoD-CLuc).
[手順5]
そして、それぞれの融合遺伝子を哺乳類細胞の発現ベクターpCI−neo(プロメガ(株)製)へ組み込んだ。
[Procedure 5]
Each fusion gene was incorporated into an expression vector pCI-neo (manufactured by Promega Corp.) for mammalian cells.
[Myo遺伝子およびId遺伝子への変異導入]
つづいて、MyoDおよびId遺伝子の核局在シグナル配列に変異を以下の手順で導入した。
[Introduction of mutations into Myo gene and Id gene]
Subsequently, mutations were introduced into the nuclear localization signal sequences of MyoD and Id genes by the following procedure.
[手順1]
まず、それぞれの遺伝子に変異を導入するため、合成オリゴDNAを以下に示す塩基配列で調整した。
(MyoD遺伝子への変異導入用合成オリゴDNA配列)
Myo_mut_A_des(配列番号9):5’−CTGCAAGGCGTGCGCGGCCGCGACCACCAACGC−3’
Myo_mut_A_opp(配列番号10):5’−GCGTTGGTGGTCGCGGCCGCGCACGCCTTGCAG−3’
Myo_mut_B_des(配列番号11):5’−CCAACGCTGATGCCGCCGCGGCCGCCACCATGC−3’
Myo_mut_B_opp(配列番号12):5’−GCATGGTGGCGGCCGCGGCGGCATCAGCGTTGG−3’
(Id遺伝子への変異導入用合成オリゴDNA配列)
Id_mut_A_des(配列番号13):5’−GGCTGCTACTCAGCCCTCGCGGAGCTGGTGCCC−3’
Id_mut_A_opp(配列番号14):5’−GGGCACCAGCTGCGCGAGGGCTGAGTAGCAGCC−3’
Id_mut_B_des(配列番号15):5’−CCTGCCCCAGAACGCCGCAGTGAGCAAGGTGG−3’
Id_mut_B_opp(配列番号16):5’−CCACCTTGCTCACTGCGGCGTTCTGGGGCAGG−3’
Id_mut_C_des(配列番号17):5’−GCCGCAGTGAGCGCGGTGGAGATCCTGC−3’
Id_mut_C_opp(配列番号18):5’−GCAGGATCTCCACCGCGCTCACTGCGGC−3’
[Procedure 1]
First, in order to introduce a mutation into each gene, a synthetic oligo DNA was prepared with the following base sequence.
(Synthetic oligo DNA sequence for introducing mutation into MyoD gene)
Myo_mut_A_des (SEQ ID NO: 9): 5′-CTGCAAGGCGTCGCGGGCCGCGACCACCAACGC-3 ′
Myo_mut_A_opp (SEQ ID NO: 10): 5′-GCGTTGGGTGTCCGCGCCGCGCACGCCTTGCAG-3 ′
Myo_mut_B_des (SEQ ID NO: 11): 5′-CCAACGCTGATGCCGCCGCGGCCCCACCCATGC-3 ′
Myo_mut_B_opp (SEQ ID NO: 12): 5′-GCATGGTGGGCGCCGCGGCGCATCATGCGTTG-3 ′
(Synthetic oligo DNA sequence for introducing mutation into Id gene)
Id_mut_A_des (SEQ ID NO: 13): 5′-GGCTGCCTACTCAGCCCCTCGCGGAGCTGGTGCCC-3 ′
Id_mut_A_opp (SEQ ID NO: 14): 5′-GGGCACCAGCTGCCGGAGGGCTGAGTAGGCAGCC-3 ′
Id_mut_B_des (SEQ ID NO: 15): 5′-CCTGCCCCAGAACGCCGCAGTGGACAAGGTGG-3 ′
Id_mut_B_opp (SEQ ID NO: 16): 5′-CCACCCTGCTCACTGCGGCGGTCTGGGGCAGG-3 ′
Id_mut_C_des (SEQ ID NO: 17): 5′-GCCGCAGGTGCGCGGGTGGAGATCCTGC-3 ′
Id_mut_C_opp (SEQ ID NO: 18): 5′-GCAGGATCTCCCACCCGCTCCACTGCGGC-3 ′
[手順2]
そして、上述のように作製したNI遺伝子およびMC遺伝子の発現ベクター(NI、および、MC)を鋳型として、上記の合成オリゴDNAを用いて、MyoD遺伝子およびId遺伝子の変異型遺伝子発現ベクター(NI_m、および、MC_m)を作製した。なお、変異型作製には、QuickChange Site−Directed Mutagenesis Kit(Stratagene社製)を用いて、作製はキットのマニュアルに従って行った。
[Procedure 2]
Then, using the NI and MC gene expression vectors (NI and MC) prepared as described above as a template, using the above-mentioned synthetic oligo DNA, the MyoD gene and Id gene mutant gene expression vectors (NI_m, And MC_m). For the preparation of the mutant, QuickChange Site-Directed Mutagenesis Kit (manufactured by Stratagene) was used, and the preparation was performed according to the manual of the kit.
[手順3]
そして、作製した野生型および変異型DNAの配列をDNAシーケンシングにより確認した。ここで、図6〜図9は、それぞれ、作製した各融合遺伝子(NI、NI_m、MC、および、MC_m)の構成を示す図である。以上の操作を行うことにより、図6に示すようにN末側スプリットルシフェラーゼNLucと野生型Id遺伝子との融合遺伝子NI(配列番号19,20)、図7に示すようにN末側スプリットルシフェラーゼNLucと変異型Id遺伝子との融合遺伝子NI_m(配列番号21,22)、図8に示すように野生型MyoD遺伝子とC末側スプリットルシフェラーゼCLucとの融合遺伝子MC(配列番号23,24)、および、図9に示すように変異型MyoD遺伝子とC末側スプリットルシフェラーゼCLucとの融合遺伝子MC_m(配列番号25,26)を有する発現ベクターが得られた。なお、配列番号19,21,23,25の配列は、DNA配列であり、配列番号20,22,24,26の配列は、アミノ酸配列である。ここで、図10および図11は、MyoD遺伝子とId遺伝子の核局在シグナルの野生型および変異型アミノ酸配列を示す図である。
[Procedure 3]
Then, the sequences of the prepared wild type and mutant DNAs were confirmed by DNA sequencing. Here, FIG. 6 to FIG. 9 are diagrams showing the structures of the prepared fusion genes (NI, NI_m, MC, and MC_m), respectively. By performing the above operations, a fusion gene NI (SEQ ID NOS: 19 and 20) of N-terminal split luciferase NLuc and wild-type Id gene as shown in FIG. 6, and N-terminal split luciferase NLuc as shown in FIG. Gene NI_m (SEQ ID NO: 21 and 22), and a fusion gene MC (SEQ ID NO: 23, 24) of wild-type MyoD gene and C-terminal split luciferase CLuc as shown in FIG. 8, and As shown in FIG. 9, an expression vector having a fusion gene MC_m (SEQ ID NO: 25, 26) of a mutant MyoD gene and C-terminal split luciferase CLuc was obtained. The sequences of SEQ ID NOs: 19, 21, 23, and 25 are DNA sequences, and the sequences of SEQ ID NOs: 20, 22, 24, and 26 are amino acid sequences. Here, FIG. 10 and FIG. 11 are diagrams showing the wild-type and mutant amino acid sequences of nuclear localization signals of the MyoD gene and the Id gene.
図10に示すように、本実施例では、野生型MyoDのアミノ酸配列の102番目、104番目、112番目のリシン残基、および、103番目、110番目、111番目のアルギニン残基を、アラニン残基に置換した。また、図11に示すように、野生型Idのアミノ酸配列の70番目、81番目、84番目のリシン残基、および、68番目、80番目のアルギニン残基をアラニン残基に置換した。これにより、核内移行に関与する領域である核局在シグナルの変異によって、MyoDタンパク質およびIdタンパク質が細胞質に留まるので、スプリットルシフェラーゼが細胞質に留まることができる。 As shown in FIG. 10, in this example, the 102th, 104th, and 112th lysine residues, and the 103th, 110th, and 111th arginine residues of the amino acid sequence of wild-type MyoD were replaced with an alanine residue. Substituted for the group. Moreover, as shown in FIG. 11, the 70th, 81st, 84th lysine residues, and the 68th, 80th arginine residues of the amino acid sequence of wild-type Id were substituted with alanine residues. Thereby, since the MyoD protein and Id protein remain in the cytoplasm due to the mutation of the nuclear localization signal, which is a region involved in nuclear translocation, the split luciferase can remain in the cytoplasm.
[スプリットルシフェラーゼ融合遺伝子のトランスフェクションと発光測定]
以上のように作製した融合遺伝子発現ベクター(NI、NI_m、MC、および、MC_m)を、以下の手順で細胞にトランスフェクションし、その発光を測定した。
[Transfection and luminescence measurement of split luciferase fusion gene]
The fusion gene expression vector (NI, NI_m, MC, and MC_m) prepared as described above was transfected into cells by the following procedure, and the luminescence was measured.
[手順1]
HeLa細胞をATCC社より入手し、5% CO2インキュベーター内で低グルコースDMEM培地(GIBCO社製)で培養した。
[Procedure 1]
HeLa cells were obtained from ATCC and cultured in a low glucose DMEM medium (GIBCO) in a 5% CO2 incubator.
[手順2]
そして、96−well multiplate(NUNC社製)に、1x104/wellの細胞密度で播種し、一晩培養した。
[Procedure 2]
And it seed | inoculated at the cell density of 1 * 10 < 4 > / well to 96-well multipleplate (made by NUNC), and it culture | cultivated overnight.
[手順3]
そして、NI融合遺伝子とMC融合遺伝子、NI融合遺伝子とMC_m融合遺伝子、NI_m融合遺伝子とMC融合遺伝子、NI_m融合遺伝子とMC_m融合遺伝子の組み合せで、発現ベクターを混合してLipofectamine2000(インビトロジェン(株)製)を用いて、マニュアルにしたがってトランスフェクションを行い、5% CO2インキュベーター内で一晩培養した。
[Procedure 3]
The combination of the NI fusion gene and the MC fusion gene, the NI fusion gene and the MC_m fusion gene, the NI_m fusion gene and the MC fusion gene, the NI_m fusion gene and the MC_m fusion gene, and the expression vector are mixed to produce Lipofectamine 2000 (Invitrogen Corporation). ) And was cultured overnight in a 5% CO2 incubator.
[手順4]
終濃度0.5mMのルシフェリン(プロメガ(株)製)を加えて、ルミノメーター(Luminescenser JNR−2000(アトー(株)製))で発光量を測定した。図12は、各発現ベクターを導入した細胞において、ルミノメーターで測定した発光量を示すグラフ図である。
[Procedure 4]
Luciferin (manufactured by Promega Corp.) having a final concentration of 0.5 mM was added, and the amount of luminescence was measured with a luminometer (Lumisenser JNR-2000 (manufactured by Atto Corp.)). FIG. 12 is a graph showing the amount of luminescence measured with a luminometer in cells into which each expression vector has been introduced.
[スプリットルシフェラーゼを用いた発光イメージング]
[手順1]
細胞を直径35mmガラスボトムディッシュに、2x105/dishの細胞密度で播種し、5% CO2インキュベーター内で一晩培養した。
[Luminescence imaging using split luciferase]
[Procedure 1]
Cells were seeded in 35 mm diameter glass bottom dishes at a cell density of 2 × 10 5 / dish and cultured overnight in a 5
[手順2]
そして、NI融合遺伝子とMC融合遺伝子、NI融合遺伝子とMC_m融合遺伝子、NI_m融合遺伝子とMC融合遺伝子、NI_m融合遺伝子とMC_m融合遺伝子の組み合せで発現ベクターを混合して、Lipofectamine2000(インビトロジェン(株)製)を用いてトランスフェクションを行い、5% CO2インキュベーター内で一晩培養した。
[Procedure 2]
Then, an expression vector is mixed with a combination of NI fusion gene and MC fusion gene, NI fusion gene and MC_m fusion gene, NI_m fusion gene and MC fusion gene, NI_m fusion gene and MC_m fusion gene, and Lipofectamine 2000 (Invitrogen) ) And cultivated overnight in a 5% CO2 incubator.
[手順3]
そして、培地中にルシフェリン0.5mM(プロメガ(株)製)を加えて発光顕微鏡LV(LUMINOVIEW)−200(オリンパス(株)製)にセットし、CCDカメラORCA−ER(浜松ホトニクス(株)製)を用いて発光イメージを、画像解析装置110として構成したパーソナルコンピュータに取り込んだ。発光イメージの解析は、画像解析部112cとして機能するMetamorphソフトウェア(ユニバーサルイメージング社製)を用いて行った。ここで、図13〜図16は、各発現ベクターの組合せ(NI+MC,NI_m+MC,NI+MC_m,NI_m+MC_m)を導入したHEK293細胞において取得した発光イメージを示す図である。
[Procedure 3]
Then, 0.5 mM luciferin (manufactured by Promega Corp.) is added to the medium and set in a light emission microscope LV (LUMINOWEEW) -200 (manufactured by Olympus Corp.), CCD camera ORCA-ER (manufactured by Hamamatsu Photonics Corp.) ) Was taken into a personal computer configured as the
以上の実験の結果、図12に示すように、NI_mとMCの組合せで導入した場合(図14)では、両方とも野生型であるNIとMCの組合せで導入した場合(図13参照)に比べて、約10分の1倍の発光量を示し、NIとMC_mの組合せ(図15参照)では、両野生型NIとMCの組合せ(図13参照)に比べて約4倍強い発光量を示した。なお、両方とも変異型であるNI_mとMC_mの組合せ(図16参照)では、両野生型NIとMCの組合せと同程度の発光量を示していた。これにより、少なくとも一方の核局在シグナル配列を変異させれば、野生型の組合せ(NI+MC)よりも、それぞれ約10分の1倍、4倍、同程度の感度で測定が可能となり、実験系に応じて感度を調整することが可能となることが判った。 As a result of the above experiment, as shown in FIG. 12, the case of introduction with a combination of NI_m and MC (FIG. 14) is compared to the case of introduction with a combination of NI and MC that are both wild type (see FIG. 13). The combination of NI and MC_m (see FIG. 15) shows a luminescence amount about four times stronger than the combination of both wild type NI and MC (see FIG. 13). It was. Note that the combination of NI_m and MC_m, both of which are mutant types (see FIG. 16), showed the same amount of luminescence as the combination of both wild-type NI and MC. As a result, if at least one of the nuclear localization signal sequences is mutated, it becomes possible to measure at about 1/10 times and 4 times the sensitivity of the wild type combination (NI + MC), respectively. It was found that the sensitivity can be adjusted according to the above.
例えば、発光量が約4倍高くなる変異型のスプリットルシフェラーゼの組合せを用いれば、細胞質に留まったルシフェラーゼが効率よく再構成され、従来の方法より4倍強いシグナルが得られる。また、発光量が約10倍低くなる変異型のスプリットルシフェラーゼの組合せを用いることによって、従来より10倍弱いシグナルが得られ、発光強度差が過大とならないよう発光強度を調節することができる。 For example, if a combination of a mutant split luciferase that increases the amount of luminescence by about 4 times is used, the luciferase remaining in the cytoplasm is efficiently reconstituted, and a signal that is 4 times stronger than the conventional method can be obtained. Further, by using a combination of a mutant split luciferase whose luminescence amount is about 10 times lower, a signal that is 10 times weaker than the conventional one can be obtained, and the luminescence intensity can be adjusted so that the difference in luminescence intensity is not excessive.
以上、本実施例によれば、対象タンパク質が核局在シグナル配列を含む場合であっても、タンパク質間相互作用の動態を精度よく解析することができ、その結果、実験の再現性を改善することができる。 As described above, according to this example, even when the target protein includes a nuclear localization signal sequence, the dynamics of protein-protein interaction can be analyzed with high accuracy, and as a result, the reproducibility of the experiment is improved. be able to.
[他の実施の形態]
上述した実施の形態においては、主に、分割された発光酵素をスプリットルシフェラーゼとして説明を行ったが、本発明はこれに限られず、スプリットルシフェラーゼに替えてスプリットGFPを用いてもよい。なお、この場合、細胞へのルシフェリン添加に替えて励起光を照射することができる。
[Other embodiments]
In the embodiment described above, the split luminescent enzyme has been mainly described as split luciferase. However, the present invention is not limited to this, and split GFP may be used instead of split luciferase. In this case, excitation light can be irradiated instead of adding luciferin to the cells.
以上のように、本発明にかかるタンパク質相互作用解析方法、ポリヌクレオチド、および、組成物は、バイオ、製薬、医療など様々な分野で好適に用いることができる。 As described above, the protein interaction analysis method, polynucleotide, and composition according to the present invention can be suitably used in various fields such as biotechnology, pharmaceuticals, and medicine.
100 発光観察システム
103 容器(シャーレ)
104 ステージ
106 発光画像撮像ユニット
106a 対物レンズ(発光観察用)
106b ダイクロイックミラー
106c CCDカメラ
106d スプリットイメージユニット
106e フィルターホイール
106f 結像レンズ
110 画像解析装置
112 制御部
112a 発光画像撮像指示部
112b 発光画像取得部
112c 画像解析部
112d 解析結果出力部
114 クロック発生部
116 記憶部
118 通信インターフェース部
120 入出力インターフェース部
122 入力装置
124 出力装置
100 Luminescence observation system
103 container (petri dish)
104 stages
106 Luminous image pickup unit
106a Objective lens (for light emission observation)
106b Dichroic mirror
106c CCD camera
106d Split image unit
106e Filter wheel
106f Imaging lens
110 Image analyzer
112 Control unit
112a Luminous image capturing instruction unit
112b Luminescent image acquisition unit
112c Image analysis unit
112d Analysis result output part
114 Clock generator
116 storage unit
118 Communication interface
120 Input / output interface
122 Input device
124 Output device
Claims (10)
互いに結合することにより発光酵素活性が回復するよう分割させたN末側発光酵素とC末側発光酵素を調整し、前記N末側発光酵素と融合させた一方の前記タンパク質、および、前記C末側発光酵素と融合させた他方の前記タンパク質を含む前記細胞を作製する作製工程と、
前記作製工程で作製した前記細胞に当該細胞外から所定の発光基質を添加する添加工程と、
前記添加工程で前記所定の発光基質が与えられた前記細胞の発光画像を撮像する撮像工程と、
前記撮像工程で撮像した前記発光画像に基づいて、前記細胞内における前記タンパク質の相互作用の動態を解析する解析工程と、
を含み、
前記作製工程において、
少なくとも一方の前記タンパク質の核局在シグナル配列を変異させること、
を特徴とするタンパク質相互作用解析方法。 A protein interaction analysis method for analyzing protein interactions in cells,
One of the proteins fused with the N-terminal luminescent enzyme prepared by adjusting an N-terminal luminescent enzyme and a C-terminal luminescent enzyme that have been divided so as to recover the luminescent enzyme activity by binding to each other; and the C-terminal A production step of producing the cell containing the other protein fused with a side luminescent enzyme;
An addition step of adding a predetermined luminescent substrate from the outside of the cell produced in the production step;
An imaging step of capturing a luminescence image of the cell provided with the predetermined luminescent substrate in the adding step;
Based on the luminescence image captured in the imaging step, an analysis step of analyzing the dynamics of the interaction of the protein in the cell;
Including
In the manufacturing process,
Mutating the nuclear localization signal sequence of at least one of the proteins,
A protein interaction analysis method characterized by the above.
前記作製工程は、
前記核局在シグナル配列のリシン残基および/またはアルギニン残基を、非荷電アミノ酸に置換すること、
を特徴とするタンパク質相互作用解析方法。 The protein interaction analysis method according to claim 1,
The manufacturing process includes
Substituting lysine residues and / or arginine residues of the nuclear localization signal sequence with uncharged amino acids;
A protein interaction analysis method characterized by the above.
前記非荷電アミノ酸は、アラニンまたはグリシンであること、
を特徴とするタンパク質相互作用解析方法。 The protein interaction analysis method according to claim 2,
The uncharged amino acid is alanine or glycine;
A protein interaction analysis method characterized by the above.
一方の前記タンパク質は、野生型Idタンパク質であり、
他方の前記タンパク質は、前記核局在シグナル配列に対応する、アミノ酸番号102番目、104番目、112番目のリシン残基、および、103番目、110番目、111番目のアルギニン残基を、アラニン残基に変異させた変異型MyoDタンパク質であること、
を特徴とするタンパク質相互作用解析方法。 The protein interaction analysis method according to claim 1,
One of the proteins is a wild type Id protein,
The other protein comprises amino acid number 102, 104, 112 lysine residues, and 103, 110, 111 arginine residues corresponding to the nuclear localization signal sequence, alanine residues. A mutant MyoD protein mutated to
A protein interaction analysis method characterized by the above.
一方の前記タンパク質は、前記核局在シグナル配列に対応する、アミノ酸番号70番目、81番目、84番目のリシン残基、および、68番目、80番目のアルギニン残基を、アラニン残基に変異させた変異型Idタンパク質であり、
他方の前記タンパク質は、野生型MyoDタンパク質であること、
を特徴とするタンパク質相互作用解析方法。 The protein interaction analysis method according to claim 1,
One of the proteins is obtained by mutating amino acid numbers 70th, 81st, 84th lysine residues and 68th, 80th arginine residues corresponding to the nuclear localization signal sequence to alanine residues. A mutant Id protein,
The other protein is a wild-type MyoD protein;
A protein interaction analysis method characterized by the above.
前記N末側発光酵素は、ホタルルシフェラーゼのアミノ酸番号1番目から416番目のアミノ酸配列を含むN末側スプリットルシフェラーゼであり、
前記C末側発光酵素は、前記ホタルルシフェラーゼのアミノ酸番号399番目から550番目のアミノ酸配列を含むC末側スプリットルシフェラーゼであること、
を特徴とするタンパク質相互作用解析方法。 In the protein interaction analysis method according to any one of claims 1 to 5,
The N-terminal luminescent enzyme is an N-terminal split luciferase comprising the amino acid sequence of amino acid numbers 1 to 416 of firefly luciferase,
The C-terminal luminescent enzyme is a C-terminal split luciferase comprising the amino acid sequence of amino acids 399 to 550 of the firefly luciferase;
A protein interaction analysis method characterized by the above.
前記MyoDタンパク質の前記核局在シグナル配列におけるリシン残基およびアルギニン残基が、アラニン残基またはグリシン残基をコードするよう変異されたこと、
を特徴とするポリヌクレオチド。 In a polynucleotide encoding a fusion protein of C-terminal split luciferase and MyoD protein containing a nuclear localization signal sequence,
Lysine and arginine residues in the nuclear localization signal sequence of the MyoD protein have been mutated to encode alanine or glycine residues;
A polynucleotide characterized by.
N末側スプリットルシフェラーゼと野生型Idタンパク質との融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドと、
を少なくとも含む組成物。 A polynucleotide according to claim 7;
A polynucleotide encoding a fusion protein of N-terminal split luciferase and wild-type Id protein;
A composition comprising at least
前記Idタンパク質の前記核局在シグナル配列におけるリシン残基およびアルギニン残基が、アラニン残基またはグリシン残基をコードするよう変異されたこと、
を特徴とするポリヌクレオチド。 In a polynucleotide encoding a fusion protein of N-terminal split luciferase and Id protein containing a nuclear localization signal sequence,
The lysine and arginine residues in the nuclear localization signal sequence of the Id protein have been mutated to encode alanine or glycine residues;
A polynucleotide characterized by.
C末側スプリットルシフェラーゼと野生型MyoDタンパク質との融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドと、
を少なくとも含む組成物。 The polynucleotide of claim 9;
A polynucleotide encoding a fusion protein of C-terminal split luciferase and wild-type MyoD protein;
A composition comprising at least
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