JP2008546413A - 心筋細胞集団 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、米国国立衛生研究所により授与された認可番号R01 HL071800の下で政府支援により行われた。米国政府は本発明における一部の権利を有し得る。
cad.Sci.98:5643〜5648)Notch 4の構成的発現が、内皮の発芽及び分岐形態形成を阻害し、一方で、脳内皮細胞系中の発現が微小血管様構造の形成を誘導した(Uyttendaeleら、(2000)Microvasc.Res.60:91〜103)ように、解釈が困難である。まとめると、これらの知見は、Notchシグナル伝達が、造血、血管、及び心臓の発生に影響を及し得、観察された効果が、発生段階及び状況の両方に特異的であることを示している。
[ES細胞培養及び分化]
ES細胞を、15%ウシ胎仔血清(FCS)、10%ES細胞馴化培地、ペニシリン、ストレプトマイシン、1.5×10-4Mのモノチオグリセロール(MTG、Sigma社製)、及びLIF(1%馴化培地)を補充したダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)中、照射フィーダー上に保持した。分化誘導の前に、前記と同様の添加物を含有したイスコフ改変ダルベッコ培地(IMDM)中、ゼラチンコーティングしたプレート上で細胞を2回継代し、支持細胞集団を枯渇させた。EB生成のために、細胞を回収し、2mMのL-グルタミン(Gibco社製/BRL)、200μg/mLのトランスフェリン(Boehringer Mannheim社製)、0.5mMのアスコルビン酸(Sigma社製)、4×10-4MのMTG、及び15%FCSを補充したIMDMを有する60mm低接着ペトリグレード皿(VWR社製)中で培養した。造血及び血管系統の分化を支持する再凝集培養のために、3×105Flk-1+細胞/mlを、同じEB分化培地及び5%無タンパク質ハイブリドーマ培地-II(PFHM-II、Invitrogen社製)を有する超低接着24ウェルプレート(Corning Costar社製)中で2日間培養した。
ヘマグルチニン(HA)配列で標識されたNotch 4 cDNA(int-3)の活性型は、Uyttendaele、(1996)Development 122:2251〜2259に記載されている。Tingら、(2005)Methods Mol.Med.105:23〜46に記載されているtet-on誘導ES細胞系であるAinv18は、Fehlingら、(2003)Development 130:4217〜4227に記述されているように、EGFP cDNAをbrachyury遺伝子座にターゲティングすることによってさらに改変した。Kybaら、(2002)Cell 109:29〜37に記載された方法によって、Notch 4 cDNAを、Ainv18及び改変したAinv ES細胞系内に導入した。要するに、HAで標識されたNotch 4の活性型のcDNAフラグメントを、好都合な制限部位によってploxプラスミドに挿入し、plox-Notch 4/HAを生成した。Ainv18及び改変細胞系に、各々40μgのplox-Notch 4/HAとCreリコンビナーゼ発現プラスミドpSalk-Creとの共エレクトロポレーションによって、plox-Notch 4/HAをターゲティングした。陽性クローンを、300μg/mlのG418(GIBCO社製)を有するES培地中でスクリーニングし、単離し、誘導可能な細胞系、Ainv-Notch 4及びGFP-Bry/Ainv-Notch 4を生成した。陽性クローンを、誘導後のHA発現を検出する免疫組織化学によって確認した。
解離細胞を、10%FCSを含有するPBS中で、(Flk-1、VE-cad、またはCD41に対する)ビオチン化mAbと共に、氷上で30分間インキュベーションした。次いで、細胞を1回洗浄し、ストレプトアビジン-PE-Cy5(BD Pharmingen社製)と共に、さらに30分間氷上でインキュベーションした。さらなる2回の洗浄に続いて、細胞を、FACSCaliburフローサイトメーター(Becton Dickinson社製)で分析、またはMofloセルソーター(Cytomation社製)で選別した。トロポニンTまたはHA染色のために、4%パラホルムアルデヒド(PFA)中で30分間細胞を固定し、次いで10%FCSを含有するPBSと、0.1%サポニン(Sigma社製)とからなる透過緩衝液中で10分間インキュベーションした。固定及び透過処理に続いて、細胞を2回洗浄し、抗トロポニンT(非抱合型マウス抗体、Lab Vision社製)または抗HA(ビオチンと抱合、Covance社製)抗体と共に30分間インキュベーションした。2回の洗浄の後、(トロポニンT抗体用)二次APC抱合型ヤギ抗マウス抗体または(ビオチン化HA抗体用)ストレプトアビジン-PE-Cy5と共に、細胞を30分間インキュベーションした。最後に、細胞を透過緩衝液で2回、次いでサポニンを含有しない緩衝液で2回洗浄した。
Kennedyら、(2003)Methods Enzymol.365:39〜59に記載のように、芽細胞及び造血コロニーアッセイを行った。0.5μg/ml のDoxを加えてNotch 4発現を誘導し、5μMのγ-セクレターゼ阻害剤X(L685,458、Calbiochem社製)を加え、芽細胞コロニー培養中のNotchシグナル伝達を阻害した。血管芽細胞/心臓の混合コロニーを生成するために、Doxを含有する標準的芽細胞コロニー培養物中で芽細胞コロニー増殖を24時間誘導した。次いで発生中のコロニーを、10%FCSを含有するIMDMと共にメチルセルロースで洗浄し、Doxを除去した。コロニーを、エリスロポエチン(2U/ml)及びIL-3(1%馴化培地)を補充した芽細胞コロニーメチルセルロース中で再培養した。外側を造血細胞で囲まれた内側の心臓コアを含有する混合コロニーを、7日目に分析のために採取した。
選別された細胞を、超低接着24ウェルプレート(Costar社製)中、3×105細胞/mlで、2mMのL-グルタミン(GIBCO/BRL社製)、トランスフェリン(200μg/ml)、0.5mMアスコルビン酸、及び4.5×10-4MのMTGを含有するStemPro-34無血清培地(Invitrogen社製)中で、24時間再凝集させた。心臓培養のために2mMのL-グルタミンを有するStemProを含有するゼラチンコーティングした96または24ウェルプレートに、単一の凝集物または凝集物プールを再び播いた。培養の2〜4日後に、収縮した細胞を含有する凝集物の割合を記録し、トロポニンT陽性細胞の数をフローサイトメトリー分析によって評価した。凝集した心臓培養物のために、0.5μg/mlのドキシサイクリン(Dox)を、及び(DMSOに溶解した)5μMのγ-セクレターゼ阻害剤Xを使用した。同濃度のDMSOを、コントロールの培養物中に加えた。培地を毎日交換し、新鮮なDox及び阻害剤を提供した。
Robertsonら、(2000)Development 127:2447〜2459に記載のように、ポリA+大規模増幅ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)によって、コロニーまたは少量のmRNAの遺伝子発現解析を行った。増幅したPCR産物を、アガロースゲル上で分離し、ZetaプローブGTメンブレン(Bio Rad社製)に転写した。次いで、対象とする遺伝子を、遺伝子の3'領域に対応する32PランダムプライムドcDNAフラグメント(Ready-to-Goラベリング、Pharmacia社製)でプローブした。遺伝子特異的PCRのために、RNeasyミニキット(Qiagen社製)を使用して、全RNAを細胞から抽出した。1マイクログラムの全RNAを使用し、Omniscript RTキット(Qiagen社製)を用いてランダム6量体による逆転写によってcDNAを生成し、次いでcDNAをPCRにかけた。
細胞凝集体またはコロニーを、ゼラチンコーティングしたカバーガラス上に播き、2mMのL-グルタミンを有するStemPro中で3日間培養した。カバーガラス上で培養した細胞を、4%パラホルムアルデヒド中で30分間固定し、PBS中で2回洗浄し、0.2%Triton X-100/PBS中で10分間透過処理し、10%FCS/1%Tween20/PBS中で洗浄した。カバーガラスに付着した細胞を、心臓トロポニンTに対する抗体と共に1時間インキュベーションした。3回の洗浄後、カバーガラス上の細胞を、FITC抱合型ヤギ抗マウス抗体(Jackson Immuno Research社製)と共に暗所で1時間インキュベーションした。最後に、カバーガラスを3回洗浄し、次いで1滴のDAPI(Vector Laboratories社製)上に反転させた。Leica DMRA2蛍光顕微鏡(Wetzlar社製)を使用して、蛍光を可視化した。
Schmittら、(2004)Nat.Immunol.5:410〜417に記載されたOP9-DL1細胞を、24ウェルプレート中で培養し、使用前に照射した。3.25日EB由来Flk-1+細胞(3×l04/ウェル)を、心臓培養物用に使用したものと同じ培地中で、OP9細胞に接種した。5μMのγ-セクレターゼ阻害剤X(DMSOに溶解)または対応する容量のDMSOを培養物中に含めた。培地を毎日交換し、新鮮な阻害剤を供給した。培養の3日後に細胞を収集し、フローサイトメトリー分析にかけ、トロポニンT-陽性細胞の数を決定した。
雌Swiss Websterマウス(Taconic社製)を、Huberら、(2004)Nature 432:625〜630に記載された雄GFP-Bry+/-マウスと交配させた。妊娠中のマウスを、交尾後7.5日後に屠殺し、胚を単離した。Leica MZFLIII蛍光解剖実体顕微鏡下で解剖を行い、原始線条(PS)におけるGFP発現を可視化した。タングステン針(Fine Science tools社製)を使用して、GFP-Bry+/-胚のPSを単離し、後部及び前部に分離した。前部及び後部PS断片の各々を、心臓培養物用の培地と共に、ゼラチンコーティングした96ウェル皿中に播いた。10μMのγ-セクレターゼ阻害剤または対応する容量のDMSOを培養物中に含めた。培地を毎日交換し、新鮮な阻害剤を提供した。3〜5日後に、存在移植片を収縮する増殖巣について記録し、遺伝子発現解析のために収集した。
心臓、造血、及び血管の運命への分化の間の最も初期の細胞のいくつかに焦点をあてて、胚様体(EB)分化の間に生じた初期中胚葉集団におけるNotch 4の発現を評価した。血清刺激の3.0〜3.5日後に、brachyury遺伝子座(GFP-Bry)を標的とした緑色蛍光タンパク質(GFP)cDNAを有するES細胞は、Flk-1及びGFP発現に基づいた3種の異なる集団(GFP-Bry-/Flk-1-、GFP-Bry+/Flk-1-、及びGFP-Bry+/Flk-1+)を生成した(図1A)。機能調査によって、分化の初期段階のGFP-Bry+/Flk-1+集団は血管芽細胞を含有し、一方、GFP-Bry+/Flk-1-集団は心臓能を示すことが示された(Kouskoffら、(2005)Proc.Natl.Acad.Sci.102:13170〜13157)。発現分析によって、Notch 4は、分化の3.0日目、3.25日目、及び3.5日目に単離したGFP-Bry+/Flk-1-及びGFP-Bry+/Flk-1+集団の両方で発現することが明らかになった。相対的な発現のレベルは、この期間にわたってこれらの集団間で変化するようであり、より高いNotch 4のレベルがGFP-Bry+/Flk-1-細胞において3.0日目に、GFP-Bry+/Flk-1+細胞において3.5日目に検出された(図1B)。NotchリガンドであるJagged-1の発現は、両方の集団において検出されたが、そのレベルは、遅い方の2回の時点でGFP-Bry+/Flk-1-集団においてより高いようであった。Notch 1、2、及び3もまた、両方の集団において、これらの時期に発現していた。
Notch 4が造血及び血管分化の間に役割を担っているか否かを決定するために、Notch 4の活性型を発現する誘導可能なES細胞系を作製した。Notch 4の細胞内ドメイン(Notch 4-IC)をコードするcDNAを、Ainv18 ES細胞中に巧みに処理して導入した。この形態の受容体は、活性化のために遍在性酵素であるγ-セクレターゼによる切断が必要なアンカードメインを含有する。Ainv ES細胞系では、対象の遺伝子の発現は、テトラサイクリンまたはその類似体であるドキシサイクリン(Dox)によって誘導される。ヘマグルチニンエピトープ(HA)配列を、Notch 4 cDNAのカルボキシ末端に挿入し、発現したタンパク質の検出を可能にした。Ainv-Notch 4 ES細胞系は、内皮(Flk-1、VE-cad)及び造血(CD41)発生を示すマーカーの発現パターンに関して、親Ainv18系と同一の分化動態を示した。HA発現についてフローサイトメトリー分析によって決定したところ、Dox(0.5μg/m1)誘導の1日後に、Ainv-Notch 4 ES細胞の90%がNotch 4を発現した(図2A)。
Notch 4が血管芽細胞集団のこの初期段階における心臓発生のプログラムを開始させる潜在能を調査するために、3.25日目のAinv-Notch 4 EBから単離されたFlk-1+細胞を、前記のように、Doxの存在下または非存在下で、24時間再凝集させた。次いで、得られた凝集物を、無血清培地を含有するゼラチンコーティングしたマイクロタイターウェル中で培養した(以下、心臓培養物と称する)。これらの条件は、効率的に心原性中胚葉からの心筋細胞発生を支持する(Kouskoffら、(2005)Proc.Natl.Acad.Sci.102:13170〜13175)。単一の凝集物及び凝集物のプールの両方を、2〜3日間培養した。この成熟工程の後に、単一の凝集物の培養物を、心筋細胞への分化を示す収縮した細胞の存在について記録した。Doxの非存在下(-Dox/-Dox)で生成された凝集物のどれもが、収縮した細胞を含有しなかった(図3A)。むしろ、ヘモグロビン化した赤血球系細胞の発生によって示されるように、これらの凝集物には造血分化が起こった。これは、この集団の血管芽細胞能と一致する観察である。対照的に、24時間誘導された集団からのすべての凝集物は、収縮した細胞を含有した(+Dox/-Dox、図3A)。個々の凝集物からの収縮した細胞の免疫染色は、トロポニンTの心臓形態(cTnT)の存在を示し、さらにこれらの細胞の心筋細胞的性質を確認した。(図3B、右パネル)。誘導されていない凝集物から生成された付着細胞には、cTnT細胞はほとんど検出されなかった(図3B、左パネル)。プールした誘導された凝集物の培養物は、広範な領域にわたる収縮した細胞を生成した。収縮した細胞は、誘導されていない凝集物の培養物中には検出されなかった。心臓培養物中で2日後に全細胞集団の60%超がcTnTを発現したように、プールした誘導された凝集物からの分化した子孫のフローサイトメトリー分析によって、Notch 4の劇的な心臓発生効果を確認された(+Dox/-Dox、図3C)。誘導されていない集団から生成された細胞の1%未満が、cTnTを発現した(-Dox/-Dox、図3C)。cTnT発現及び収縮した細胞の存在と一致して、誘導された集団は、nkx2.5、心臓mhc、α-アクチン、mlc2a、及びmlc2vを含めた心臓特異的遺伝子を発現した(図3D)。凝集物由来の集団における収縮した細胞の生成及び心臓遺伝子の発現は、再凝集工程の間にNotch 4シグナル伝達をγ-セクレターゼ阻害剤で遮断することによって阻害することができた(+Dox+阻害剤/-Dox、図3A、3C、及び3D)。阻害剤によるこの運命の反転は、観察される心臓系統の誘導がNotchシグナル伝達に依存していることを明らかに示している。
BL-CFCは、EB分化の2.75〜4日目にFlk-1+集団中に見出される。この段階を過ぎると、この集団は限られた造血及び血管前駆体から構成される。Notch 4の心臓発生効果が、血管芽細胞段階に限定されるのか、またはこれより後の段階のFlk-1集団に観察観察され得るのかを決定するために、Flk-1+細胞を、3日、4日、及び5日目のEBから単離し、Doxの存在下または非存在下で再凝集させ、次いで心臓能を評価した。3日目のFlk-1+細胞からのすべての凝集物は、収縮した細胞を含有した(図4A)。対照的に、4日目のFlk-1+細胞からの凝集物の25%のみがこの活性を示し、5日目の集団からのものはまったくこの活性を示さなかった。凝集工程直後のnkx2.5発現の分析は、3日目及び4日目のFlk-1+細胞からの凝集物中に転写物の存在を示したが、5日目のFlk-1+細胞からの凝集物中にはその存在が示されなかった(図4B)。これは収縮した細胞の分布と一致する観察結果である。この動態分析からの知見は、Notch 4の効果が、発生段階特異的であることを示し、運命変化を受け得る集団が一時的であり、血管芽細胞段階のFlk-1+細胞に限定されることを示している。
BL-CFCが、Notch 4により誘導された運命変化の標的であるか否かを決定するために、3.25日目のFlk-1+細胞を、BL-CFCアッセイ中に、Doxの存在下または非存在下で培養した。Doxの非存在下では、この集団は、細胞のブドウ状クラスターのように見える典型的な芽細胞コロニーを生成した。Doxの存在下で培養した場合、これらの細胞は、芽細胞コロニーと容易に見分けることができる密に詰まった細胞のコロニーを形成した(図5A)。これらの密集コロニーの数は、誘導されていない培養物中で発生した芽細胞コロニーの数と同程度であった(図5B)。Doxと共にγ-セクレターゼ阻害剤を加えることによって、芽細胞コロニーへの逆転をもたらし、このことにより密集コロニーの発生はNotchシグナル伝達により媒介されたことが示された。分子解析によって、密集コロニーの大部分が、心臓遺伝子であるnkx2.5、心臓α-アクチン、及びmlc-2a、内皮遺伝子であるflk-1及びve-cad、並びに血管平滑筋遺伝子であるsm22を発現していることが明らかになった(図5C、左のパネル)。これらのコロニーのどれもが、gata-1を発現しなかった。前記で示したように、芽細胞コロニーは、内皮遺伝子及びgata-1を発現した。それらは、測定できるレベルの心臓遺伝子を発現しなかった(図5C、右のパネル)。メチルセルロース培養物中で長時間にわたると、密集コロニーのいくつかは、収縮した細胞を生成した。収縮した細胞を生成するコロニーの割合を定量化するために、個々のコロニーを培養の7日目に採取し、マイクロタイターウェル中の心臓培養物中に再び播いた。培養の2〜7日間に、密集コロニーの約70%が、収縮した細胞を生成した。収縮した細胞はcTnTを発現し、このことによってそれらが心筋細胞であることが確認された(図5D)。芽細胞コロニーは、心臓培養物中で増殖された場合、収縮した細胞を生じなかった。密集コロニーの発現プロファイル及び発達能は、それらが血管及び心臓細胞のコロニーを表すことを示唆している。
前記の実施例は、Notch 4の活性型の発現が、中胚葉性の血管芽細胞からの心臓発生を誘導し得ることを示している。当該効果が、内在性Notch受容体を介したシグナル伝達によっても示され得るか否かを決定するために、Bry-GFP ES細胞からのFlk-1+細胞を、NotchリガンドDelta様-1を発現するOP9細胞上に接種した。培養の3日後に、OP9ストローマ細胞上に収縮した細胞の領域が検出され、細胞の約24%がcTnTを発現していた(図6A)。構成的活性型Notch受容体と同様に、OP9-DL1細胞上の心筋細胞発生は、γ-セクレターゼ阻害剤の存在下で阻害された。このことは、当該効果がNotchシグナル伝達に特異的であることを示している(図6B)。
EB発生の初期段階で、brachyuryを発現している中胚葉(GFP-Bry+/Flk-1-)のFlk-1-フラクションに、心臓能が位置付けられた(Kouskoffら、前記)。この中胚葉の心臓分化の間のNotch 4の役割を調査するために、GFPのcDNAは、Ainv細胞のbrachyury遺伝子座を標的にし、GFP-Bry+/Flk-1-集団におけるNotch 4の過剰発現を可能にした。GFP-Bry+/Flk-1-フラクションを、GFP-Bry/Ainv-Notch 4 ES細胞由来の3.25日目のEBから単離し、1日間再凝集させ、得られた凝集物を心臓培養物中に播いた。γ-セクレターゼ阻害剤またはDoxを、再凝集工程の間または心臓培養物に細胞に加え、Notch 4の発生段階特異的な効果をさらに明らかにした。心臓培養物中の凝集物の分化の3日後に、cTnT陽性細胞の割合及び心臓遺伝子の発現を分析した(図7)。凝集段階(+I/-I)の間にγ-セクレターゼ阻害剤の添加によるNotchシグナル伝達の遮断によって、cTnT陽性の収縮した細胞の発生が抑制され、心臓遺伝子の発現のレベルが減少した(図7A及び7B)。このことは、Notchシグナル伝達が、この集団からの心筋細胞発生に重要であるを示している。阻害剤を、凝集物ではなく心臓培養物に加えた場合(-I/+I)、cTnT発現集団の割合は、コントロール(-/-)と比較して穏やかに増加した(図7A及び7B)。予想どおりに、この集団は一連の心臓遺伝子を発現した。再凝集段階(+Dox/-Dox)の間のNotch 4の誘導は、コントロールの培養物において観察されるものをよりも心筋細胞発生を促進した(図7C)。対照的に、コントロールの培養物(-Dox/-Dox)と比較してcTnT陽性細胞の減少及び心臓遺伝子の低い発現によって示されるように、心臓培養物(-Dox/+Dox)における誘導は心筋細胞発生を阻害した(図7C及び7D)。この実施例は、Notchシグナル伝達が、ES細胞由来のGFP-Bry+/Flk-1-集団からの心筋細胞の特異化の初期段階にとって必須であることを示している。しかし、Flk-1+集団で観察されるように(図3C)、心臓の培養工程におけるNotch 4発現は、心臓系統の成熟に対して抑制的である。
マウス胚の系統追跡研究は、心臓原基の心臓中胚葉となる前駆体が、7.0〜7.5日胚(E7.0〜7.5)の先端部及び後部の原始線条の境界に隣接した領域から主に由来することを示す(Kinderら、(1999)Development 126:4691〜4701)。E7.5日胚からの先端部PS(DPS)及び後部PS(PPS)の分析(図8A)によって、4種のNotch受容体及びリガンドであるJagged-1の、重複するが異なる発現パターンを明らかになった(図8B)。Jagged-1及びNotch 1は、PSの両方の領域で発現した。Notch 2及びNotch 3の発現は、PPSにおいてより高いようであり、一方、Notch 4のレベルは、DPSにおいてより高かった。Nkx2.5は、発生のこの段階でPS中に検出されなかった。
Claims (28)
- 胚様体(EB)の形成に十分な条件下で胚性幹(ES)細胞を培養する工程、血管芽細胞/赤血球系前駆細胞への分化に十分な条件下で前記EBを培養する工程、並びに活性化Notchの存在下で前記血管芽細胞/赤血球系前駆細胞を単離及び再凝集させて、心臓前駆細胞を得る工程を含む、ES細胞から心臓細胞の分化を誘導する方法。
- Notchの非存在下、心筋細胞への分化に十分な条件下で、前記心臓前駆細胞を培養する工程をさらに含む、請求項1に記載の方法。
- 活性化Notchが、Notchリガンドを添加することによって得られる、請求項1に記載の方法。
- 前記Notchリガンドが、Delta様-1、Delta様-2、Delta様-3、Jagged 1、及びJagged 2からなる群から選択される、請求項3に記載の方法。
- 前記ES細胞が、誘導可能な発現を制御する調節エレメントに作動可能に連結しているNotchをコードする核酸を含む、請求項1に記載の方法。
- 前記核酸がNotchの細胞内ドメインをコードする、請求項5に記載の方法。
- Notchが、Notch 1、Notch 2、Notch 3、またはNotch 4である、請求項1に記載の方法。
- NotchがNotch 4である、請求項1に記載の方法。
- NotchがNotch 4の細胞内ドメインである、請求項1に記載の方法。
- 活性化Notchが、血管芽細胞/赤血球系前駆細胞においてNotchをコードする核酸の発現を誘導することによって得られる、請求項1に記載の方法。
- 前記ES細胞が、マウスES細胞または霊長類ES細胞である、請求項1に記載の方法。
- 前記ES細胞がヒトES細胞である、請求項1に記載の方法。
- 前記ES細胞がNotch 4-ES細胞である、請求項1に記載の方法。
- Notchの非存在下で心筋細胞を培養する工程をさらに含む、請求項2に記載の方法。
- 前記EBを血清中で約2.5〜4.5日間培養する、請求項1に記載の方法。
- 前記EBを血清中で約3日間培養する、請求項1に記載の方法。
- 前記再凝集した血管芽細胞/赤血球系前駆細胞を活性化Notchの存在下で約12〜48時間培養する、請求項1に記載の方法。
- 前記再凝集した血管芽細胞/赤血球系前駆細胞をNotchの存在下で約24時間培養する、請求項1に記載の方法。
- 前記再凝集した血管芽細胞/赤血球系前駆細胞を無血清条件下で培養する、請求項1に記載の方法。
- 誘導物質によって誘導可能な発現を制御する調節エレメントに作動可能に連結しているNotch 4の活性細胞内ドメインをコードする核酸を含有する胚性幹(ES)細胞を、胚様体(EB)を形成するのに十分な条件下で培養する工程、前記EBを血清中で約3日間培養する工程、Flk-1+細胞を単離する工程、前記誘導物質の存在下で約24時間前記Flk-1+細胞を再凝集させて、心臓前駆細胞を得る工程、及び前記誘導物質の非存在下、無血清培地中で前記心臓前駆細胞を培養して、心筋細胞を得る工程を含む、ES細胞からの心臓細胞の分化を誘導する方法。
- 少なくとも約10%の心筋細胞を含む、請求項2に記載の方法によって生成された細胞集団。
- 少なくとも約50%の心筋細胞を含む、請求項21に記載の細胞集団。
- 少なくとも約60%の心筋細胞を含む、請求項21に記載の細胞集団。
- 請求項2に記載の方法によって生成された心筋細胞を候補薬剤と接触させる工程、及び心筋細胞への効果をアッセイする工程を含み、効果があることが心筋細胞に効果を及ぼす薬剤が同定されたことを示す、心筋細胞に効果を及ぼす薬剤のスクリーニング方法。
- 請求項2に記載の方法によって生成された心筋細胞を含む組成物を、心筋細胞置換療法を必要としている対象に投与する工程を含む、心筋細胞置換療法。
- 前記組成物を注射または移植によって投与する、請求項25に記載の方法。
- 胚様体(EB)の形成に十分な条件下で胚性幹(ES)細胞を培養する工程、Bry+/Flk-1-細胞への分化に十分な条件下で前記EBを培養する工程、Bry+/Flk-1-細胞を単離する工程、及びNotch阻害剤の存在下でBry+/Flk-1-細胞を再凝集させる工程を含む、ES細胞からの心臓細胞の分化を阻害する方法。
- 前記Notch阻害剤がγ-セクレターゼ阻害剤Xである、請求項27に記載の方法。
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