JP2008525008A - Vaccine against Neisseria meningitidis - Google Patents
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Abstract
各種のポリペプチド、あるいはそれらの変異体若しくはフラグメント、又はこれらの融合物が、ワクチンとして有用であることを開示する。前記ポリペプチドは、配列番号(2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、40、42、44、46、48、50、52、54、56、58、60、62、64、66、68)のいずれか1つから選択されるアミノ酸配列;あるいはそのフラグメント若しくは変異体、又はその様なフラグメント若しくは変異体の融合物を含むポリペプチドであって良く、髄膜炎菌に対するワクチンとして有用である。 It is disclosed that various polypeptides, or variants or fragments thereof, or fusions thereof are useful as vaccines. Said polypeptide has the SEQ ID NO: (2, 4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18, 20, 22, 24, 26, 28, 30, 32, 34, 36, 38, 40, 42, An amino acid sequence selected from any one of 44, 46, 48, 50, 52, 54, 56, 58, 60, 62, 64, 66, 68); or a fragment or variant thereof, or such a fragment Alternatively, it may be a polypeptide containing a mutant fusion and is useful as a vaccine against Neisseria meningitidis.
Description
本発明は、ワクチン及びその使用、特に髄膜炎菌性疾患のためのワクチンに関する。 The present invention relates to a vaccine and its use, in particular a vaccine for meningococcal disease.
本明細書に記載又は挙げた過去に公開されている文献は、必ずしも従来技術の一部又は一般的な通常の知識であると認められるべきではない。本明細書に記載の文献は、参照によって本明細書に組み込まれる。 The previously published literature described or listed herein is not necessarily to be construed as part of the prior art or general general knowledge. The documents described herein are hereby incorporated by reference.
微生物感染は、特に多数の病原性微生物(特に細菌)が、抗生物質のような抗微生物剤に耐性となっているか、又はその可能性があるという事実を鑑みると、依然としてヒト及び動物の健康に対する重大なリスクである。 Microbial infections continue to affect human and animal health, especially in light of the fact that many pathogenic microorganisms (especially bacteria) are or can be resistant to antimicrobial agents such as antibiotics. It is a serious risk.
ワクチン接種は、微生物感染に対抗する代替的な手法を提供するが、安全であり、且つ病原性微生物の広範な各種の分離株、特に遺伝的に多様な微生物に対して有効である、ワクチンに使用するための適切な免疫原を同定することが多くの場合において困難である。ビルレンス決定遺伝子に1つ以上の変異を典型的に含有する弱毒化生細菌のような、実質的に完全な微生物を免疫原として使用するワクチンが開発される可能性があるが、全ての微生物がこの手法に適しているわけではなく、常に安全が保障されるわけではなく、特定の微生物に対してこの手法を適用することが常に望ましいわけではない。また、幾つかの微生物は、宿主タンパク質を摸倣した分子を発現し、これらはワクチンに望ましいものではない。 Vaccination provides an alternative approach to combating microbial infections, but is safe and effective against a wide variety of isolates of pathogenic microorganisms, particularly genetically diverse microorganisms. It is often difficult to identify an appropriate immunogen for use. Although vaccines may be developed that use substantially complete microorganisms as immunogens, such as live attenuated bacteria that typically contain one or more mutations in virulence-determining genes, It is not suitable for this method, it is not always safe and it is not always desirable to apply this method to specific microorganisms. Some microorganisms also express molecules that mimic host proteins, which are not desirable for vaccines.
更にワクチンを開発することが重要である微生物の特定の群は、接合血清型C多糖ワクチンが導入されたにもかかわらず、欧州、北米、及び先進諸国で依然として子供の死亡の重大な原因であり生命を脅かす感染症である、髄膜炎性疾患を引き起こす髄膜炎菌である。これは、α2-8結合ポリシアル酸莢膜を発現する血清型B株(NmB)によって生じる感染症がいまだに流行しているためである。髄膜炎菌との関連で、用語「血清型」は細菌上に発現する多糖莢膜を意味する。疾患を引き起こす英国で一般的な血清型はBであり、アフリカではAである。髄膜炎菌敗血症は、依然として高い死亡率を有しており;生存者は多くの場合において重大な精神障害及び/又は身体的な障害が残る。非特異的な病気の前駆期の後に、髄膜炎菌敗血症は、抗微生物治療及びいかなる対症療法に対しても抵抗性の劇症疾患として現れる。そのため、髄膜炎菌性疾患の公衆衛生に対する脅威に対抗するための最も良好な手法は、予防的なワクチン接種によるものである。 In addition, certain groups of microorganisms where it is important to develop vaccines are still a significant cause of child death in Europe, North America, and developed countries, despite the introduction of conjugated serotype C polysaccharide vaccines. It is a Neisseria meningitidis that causes meningitis, a life-threatening infection. This is because infections caused by serotype B strains (NmB) that express α2-8-linked polysialic acid capsules are still prevalent. In the context of Neisseria meningitidis, the term “serotype” means a polysaccharide capsule that is expressed on bacteria. The common serotype in the UK that causes the disease is B, and A in Africa. Meningococcal sepsis still has a high mortality rate; survivors often remain severely mentally and / or physically impaired. After the progenitor phase of non-specific disease, meningococcal sepsis appears as a fulminant disease that is resistant to antimicrobial therapy and any symptomatic treatment. Therefore, the best approach to combat the public health threat of meningococcal disease is through prophylactic vaccination.
髄膜炎菌感染の非特異的な初期の臨床的な兆候及び劇症の経過は、治療が多くの場合に有効でないことを意味する。そのため、ワクチン接種は、この病原菌によって生じる全体的な疾患の苦しみを低減する最も有効なストラテジーであると解される(Feavers (2000) ABC of meningococcal diversity. Nature 404, 451-2)。現存する血清型A、C、W135、及びYの髄膜炎菌感染を予防するワクチンは、細菌の表面に位置する多糖莢膜に基づくものである(Anderson et al (1994) Safety and immunogenicity of meningococcal A and C polysaccharide conjugate vaccine in adults. Infect Immun. 62, 3391-33955; Leach et al (1997) Induction of immunologic memory in Gambian children by vaccination in infancy with a group A plus group C meningococcal polysaccharide-protein conjugate vaccine. J Infect Dis. 175, 200-4; Lieberman et al (1996). Safety and immunogenicity of a serogroups A/C Neisseria meningitidis oligosaccharide-protein conjugate vaccine in young children. A randomized controlled trial. J. American Med. Assoc. 275, 1499-1503)。α2-8結合シアル酸のホモポリマーであるその莢膜がヒトにおいて比較的弱い免疫原であるため、血清型B感染に対するワクチンへの進展はより困難であった。これは、ヒトの細胞の接着分子であるN-CAM1に現れるエピトープを共有するためである(Finne et al (1983) Antigenic similarities between brain components and bacteria causing meningitis. Implications for vaccine development and pathogenesis. Lancet 2, 355-357)。実際、血清型B莢膜に対する免疫応答を産生させることは、事実上危険であることが実証されるであろう。かくして、血清型B髄膜炎菌感染を予防するための新規なワクチンが依然として必要とされている。 Non-specific early clinical signs of meningococcal infection and the course of fulminant means that treatment is often ineffective. Thus, vaccination is considered to be the most effective strategy to reduce the overall disease suffering caused by this pathogen (Feavers (2000) ABC of meningococcal diversity. Nature 404, 451-2). Existing vaccines that prevent meningococcal infections of serotypes A, C, W135, and Y are based on polysaccharide capsules located on the surface of bacteria (Anderson et al (1994) Safety and immunogenicity of meningococcal A and C polysaccharide conjugate vaccine in adults.Infect Immun. 62, 3391-33955; Leach et al (1997) Induction of immunologic memory in Gambian children by vaccination in infancy with a group A plus group C meningococcal polysaccharide-protein conjugate vaccine. Infect Dis. 175, 200-4; Lieberman et al (1996) .Safety and immunogenicity of a serogroups A / C Neisseria meningitidis oligosaccharide-protein conjugate vaccine in young children.A randomized controlled trial.J. American Med. Assoc. 275, 1499-1503). Progress toward vaccines against serotype B infection was more difficult because its capsule, a homopolymer of α2-8 linked sialic acid, is a relatively weak immunogen in humans. This is because they share an epitope appearing in human cell adhesion molecule N-CAM1 (Finne et al (1983) Antigenic similarities between brain components and bacteria causing meningitis.Implications for vaccine development and pathogenesis. 355-357). Indeed, producing an immune response against serotype B capsule would prove to be dangerous in nature. Thus, there remains a need for new vaccines to prevent serotype B meningococcal infection.
髄膜炎菌性疾患に対する防御の最も有効な免疫学的相関は、血清殺菌アッセイ(SBA)である。SBAは、細菌細胞表面に対する補体沈着、細胞膜傷害複合体の集合、及び細菌の溶解を媒介する血清中の抗体(通常はIgG2aサブクラス)の能力を評価する。SBAでは、既知の数の細菌を、既定の補体の供給源と共に一連の血清の希釈物に曝す。生存している細菌の数を測定し、50%の殺滅を媒介する血清の最大希釈の逆数として規定される。SBAは、血清型C感染に対する防御を予測するものであり、NmB感染に対する免疫の代用として広く使用されている。重要なことに、SBAはワクチンの事前の臨床的な評価のための免疫の迅速なマーカーであり、臨床試験における適切な終点を提供する。
NmBワクチンの開発における大多数の試みは、効果的なタンパク質サブユニットを規定することに向けられていた。異種起源の抗原として発現され、動物において意味のある応答を生じさせる能力に関して試験される潜在的に表面に発現するタンパク質に関してゲノム配列を調べる「逆転写学(Reverse vaccinology)」に主に注力されている。しかしながら、この手法は、1)表面に発現する抗原を予測するためのコンピューターアルゴリズム、2)多数の潜在的な免疫原が発現しないこと、3)マウスの免疫応答に対する完全な信頼によって制限される。 The majority of efforts in the development of NmB vaccines have been directed to defining effective protein subunits. Mainly focused on "Reverse vaccinology" that examines genomic sequences for potentially surface expressed proteins that are expressed as heterologous antigens and tested for their ability to produce meaningful responses in animals Yes. However, this approach is limited by 1) a computer algorithm for predicting antigens expressed on the surface, 2) the absence of numerous potential immunogens, and 3) full confidence in the mouse immune response.
ワクチンの成功に重要なことは、血清型又はクローン群にかかわらず広範な疾患の分離株に対する防御を誘導する抗原を規定することである。遺伝的なスクリーニング方法(本発明者は、免疫原のための遺伝的スクリーニング又はGSIと称する)を使用して、遺伝的に多様な微生物の株に亘って保存されている抗原を単離し、髄膜炎菌株に関して実証する。これは、以下により詳細に記載するようなGSIにより、髄膜炎菌抗原のような微生物の抗原を同定することによって為され、組換え抗原によって引き起こされる免疫応答の機能の評価、及び抗原の防御効率の評価によって実証する(実施例及び参照によって本願明細書に組み込まれるPCT/GB2004/005441(2005年7月7日にWO 2005/060995として公開)参照)。本質的に、GSI法は、微生物を対象とする動物における免疫応答に関連する微生物のペプチドを同定するための方法に関し、(1)微生物の多数の異なる変異体を提供する工程;(2) 抗体が微生物の変異体に結合する場合に微生物の変異体を殺滅するような条件下で、微生物又はその一部に対する免疫応答を生じさせた動物に由来する抗体と、多数の微生物の変異体を接触させる工程;(3)工程(2)から生存している微生物の変異体を選択する工程;(4)任意の生存している微生物の変異体における変異を含有する遺伝子を同定する工程;及び(5)前記遺伝子によってコードされるポリペプチドを同定する工程を含む。ポリペプチドが同定される方法によって、それらのポリペプチドが、抗原性ポリペプチドとして非常に関連性があると解されるであろう。 Critical to the success of the vaccine is to define antigens that induce protection against a wide range of disease isolates, regardless of serotype or clonal population. Using genetic screening methods (we refer to genetic screening for immunogens or GSI) to isolate antigens that are conserved across genetically diverse strains of microorganisms, Demonstrate with respect to M.itis strains. This is done by identifying microbial antigens, such as meningococcal antigens, by GSI as described in more detail below, assessing the function of the immune response caused by the recombinant antigen, and protecting the antigen. Demonstrated by evaluation of efficiency (see PCT / GB2004 / 005441 (published on 7 July 2005 as WO 2005/060995) incorporated herein by reference and examples). In essence, the GSI method relates to a method for identifying a peptide of a microorganism that is associated with an immune response in an animal directed to the microorganism, (1) providing a number of different variants of the microorganism; (2) an antibody Antibody derived from an animal that has generated an immune response against the microorganism or a portion thereof under conditions that kill the microbial mutant when it binds to the microbial mutant, and a number of microbial mutants. (3) selecting a surviving microbial variant from step (2); (4) identifying a gene containing a mutation in any surviving microbial variant; and (5) including a step of identifying a polypeptide encoded by the gene. Depending on how the polypeptides are identified, it will be understood that they are very relevant as antigenic polypeptides.
実施例により詳細に記載しているように、特にGSI法によって同定された遺伝子は、髄膜炎菌のNBM0341 (TspA), NMB0338, NMB1345, NMB0738, NBM0792 (NadC ファミリー), NMB0279, NMB2050, NMB1335 (CreA), NMB2035, NMB1351 (Fmu 及び Fmv), NMB1574 (IIvC), NMB1298 (rsuA), NMB1856 (LysR ファミリー), NMB 0119, NMB1705 (rfak), NMB2065 (HemK), NMB0339, NMB0401 (putA), NMB 1467 (PPX), NMB2056, NMB0808, NMB0774 (upp), NMA0078, NMB0337 (分枝鎖アミノ酸トランスフェラーゼ), NMB0191 (ParA ファミリー), NMB1710 (グルタメートデヒドロゲナーゼ (gdhA)), NMB0062 (rfbA-1), NMB1583 (hisB), NMB0377, NMB0264, NMB1333, NMB1036, NMB 1176, NMB1359 ,並びに NMB1138 遺伝子である。髄膜炎菌のゲノム配列は、例えばThe Institute of Genome Research (TIGR); www.tigr.orgから利用可能である。 As described in more detail in the Examples, the genes specifically identified by the GSI method are NBM0341 (TspA), NMB0338, NMB1345, NMB0738, NBM0792 (NadC family), NMB0279, NMB2050, NMB1335 ( CreA), NMB2035, NMB1351 (Fmu and Fmv), NMB1574 (IIvC), NMB1298 (rsuA), NMB1856 (LysR family), NMB 0119, NMB1705 (rfak), NMB2065 (HemK), NMB0339, NMB0401 (putA), NMB 1467 (PPX), NMB2056, NMB0808, NMB0774 (upp), NMA0078, NMB0337 (branched amino acid transferase), NMB0191 (ParA family), NMB1710 (glutamate dehydrogenase (gdhA)), NMB0062 (rfbA-1), NMB1583 (hisB) , NMB0377, NMB0264, NMB1333, NMB1036, NMB 1176, NMB1359, and NMB1138 genes. Meningococcal genomic sequences are available, for example, from The Institute of Genome Research (TIGR); www.tigr.org.
これらの遺伝子は配列決定されているゲノムの一部を形成するが、本発明者が知る限り、それらは単離されておらず、それらのコードするポリペプチドは生産(及び単離)されておらず、それらのコードするポリペプチドがワクチンの成分として有用である可能性があることは示唆されていない。 Although these genes form part of the genome being sequenced, to the best of the inventors' knowledge they are not isolated and the polypeptides they encode have not been produced (and isolated). There is no suggestion that the polypeptides they encode may be useful as components of a vaccine.
かくして、本発明は、上述及び実施例の単離された遺伝子、並びに変異体及びフラグメント、並びにその様な変異体及びフラグメントの融合物を含み、上述の遺伝子ならびにその変異体及びフラグメント、並びにその様な変異体及びフラグメントの融合物がコードするポリペプチドを含む。変異体、フラグメント、及び融合物は、以下により詳細に記載する。好ましくは、上述の遺伝子の変異体、フラグメント、及び融合物は、髄膜炎菌に対する中和抗体を生じさせるポリペプチドをコードするものである。同様に、好ましくは、上述の配列を有するポリペプチドの変異体、フラグメント、及び融合物は、髄膜炎菌に対する中和抗体を生じさせるものである。前記中和抗体は、例えばラット、マウス、又はラビットのような免疫システムを有する任意の動物において生産されて良い。本発明は、実施例に記載の配列(好ましくは単離されたコード領域)を有するポリペプチドをコードするか、又は変異体、フラグメント、若しくは融合物をコードする単離されたポリヌクレオチドも含む。本発明は、その様なポリヌクレオチドを含む発現ベクター、並びにその様なポリヌクレオチド及びベクターを含む宿主細胞 (以下により詳細に記載する)も含む。実施例に記載のポリペプチドは、本発明の方法によって同定された抗原である。 Thus, the present invention includes the isolated genes and variants and fragments of the above and examples, as well as fusions of such variants and fragments, and the genes and variants and fragments thereof, as well as such And polypeptides encoded by fusions of such variants and fragments. Variants, fragments, and fusions are described in more detail below. Preferably, the mutants, fragments, and fusions of the genes described above encode polypeptides that produce neutralizing antibodies against Neisseria meningitidis. Similarly, preferably, variants, fragments, and fusions of polypeptides having the above-described sequences are those that generate neutralizing antibodies against Neisseria meningitidis. The neutralizing antibody may be produced in any animal having an immune system such as a rat, mouse, or rabbit. The invention also includes an isolated polynucleotide that encodes a polypeptide having the sequence described in the Examples (preferably an isolated coding region), or that encodes a variant, fragment, or fusion. The present invention also includes expression vectors comprising such polynucleotides, as well as host cells (described in more detail below) comprising such polynucleotides and vectors. The polypeptides described in the examples are antigens identified by the methods of the present invention.
本発明の方法の実施において使用するための分子生物学的方法は、当該技術分野においてよく知られており、例えば、参照によって本明細書に組み込まれるSambrook & Russell (2001) Molecular Cloning, a laboratory manual, third edition, Cold Spring Harbor laboratory Press, Cold Spring Harbor, New Yorkからよく知られている。 Molecular biological methods for use in the practice of the methods of the present invention are well known in the art, for example, Sambrook & Russell (2001) Molecular Cloning, a laboratory manual, which is incorporated herein by reference. , third edition, Cold Spring Harbor laboratory Press, Cold Spring Harbor, New York.
遺伝子の変異体が、例えば、他の微生物又は微生物の他の株における関連する遺伝子を同定し、遺伝子をクローニング、単離、又は合成することによって作製されて良い。典型的には、遺伝子の変異体は、上述の遺伝子と少なくとも70%の配列同一性、より好ましくは少なくとも85%の配列同一性、最も好ましくは少なくとも95%の配列相同性を有するものである。当然のこととして、置換、欠失、及び挿入がなされても良い。1つの核酸配列と別の核酸配列との類似性の程度は、University of Wisconsin Computer GroupのGAPプログラムを使用して決定されて良い。 Gene variants may be made, for example, by identifying related genes in other microorganisms or other strains of microorganisms and cloning, isolating or synthesizing the genes. Typically, a variant of a gene is one that has at least 70% sequence identity, more preferably at least 85% sequence identity, and most preferably at least 95% sequence homology with the gene described above. Of course, substitutions, deletions and insertions may be made. The degree of similarity between one nucleic acid sequence and another nucleic acid sequence may be determined using the GAP program of the University of Wisconsin Computer Group.
遺伝子の変異体は、ストリンジェントな条件で遺伝子にハイブリダイズするものでもある。「ストリンジェント」は、遺伝子が膜上に固定化され、プローブ(この場合では>200ヌクレオチドの長さ)が溶液中に存在し、固定化された遺伝子/ハイブリダイズしたプローブを65℃で10分間、0.1×SSCで洗浄する際に、前記遺伝子が前記プローブにハイブリダイズすることを意味する。SSCは、0.15 M NaCl/0.015 M クエン酸Naである。 A gene variant also hybridizes to a gene under stringent conditions. “Stringent” means that the gene is immobilized on the membrane, the probe (in this case> 200 nucleotides in length) is present in solution, and the immobilized gene / hybridized probe is placed at 65 ° C. for 10 minutes. Means that the gene hybridizes to the probe when washed with 0.1 × SSC. SSC is 0.15 M NaCl / 0.015 M Na citrate.
遺伝子(又は遺伝子の変異体)のフラグメントは、例えば、遺伝子全体の20%、又は30%、又は40%、又は50%、又は60%、又は70%、又は80%、又は90%で作製されて良い。好ましいフラグメントは、コーディング配列の全体又は一部を含む。前記変異体及びフラグメントは、他の関連のないポリヌクレオチドと融合しても良い。 Fragments of genes (or gene variants) are made, for example, in 20%, or 30%, or 40%, or 50%, or 60%, or 70%, or 80%, or 90% of the entire gene. Good. Preferred fragments include all or part of the coding sequence. The variants and fragments may be fused with other unrelated polynucleotides.
前記ポリヌクレオチドは、遺伝子が同定された微生物に対する動物に由来する抗体に反応性であり、免疫原性であるポリペプチドをコードする。 The polynucleotide encodes a polypeptide that is reactive to an antibody derived from an animal against the microorganism for which the gene has been identified and is immunogenic.
前記抗原は、上述のように同定された遺伝子によってコードされるポリペプチドであって良く、前記ポリペプチドの配列は遺伝子配列から容易に推定されて良い。更なる実施態様では、前記抗原は、同定したポリペプチドのフラグメントであって良く、又は同定したポリペプチドの変異体であって良く、又はポリペプチド若しくはフラグメント若しくは変異体の融合物であって良い。 The antigen may be a polypeptide encoded by the gene identified as described above, and the sequence of the polypeptide may be easily deduced from the gene sequence. In further embodiments, the antigen may be a fragment of the identified polypeptide, may be a variant of the identified polypeptide, or may be a fusion of the polypeptide or fragment or variant.
かくして、本発明の特定の態様は、配列番号2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、40、42、44、46、48、50、52、54、56、58、60、62、64、66、68のいずれか1つから選択されるアミノ酸配列;又はそのフラグメント若しくは変異体、又はその様なフラグメント若しくは変異体の融合物を含むポリペプチドを提供する。かくして、本発明は、以下のような単離されたタンパク質:以下に記載のようなNMB0341, NMB 1583, NMB1345, NMB0738, NMB0792, NMB0279, NMB2050, NMB1335, NMB2035, NMB1351, NMB1574, NMB1298, NMB1856, NMB0119, NMB1705, NMB2065, NMB0339, NMB0401, NMB1467, NMB2056, NMB0808, NMB0774, NMA0078, NMB0337, NMB0191, NMB1710, NMB0062, NMB1333, NMB0377, NMB0264, NMB1036, NMB 1176, NMB1359,及び NMB 1138、又はそれらのフラグメント若しくは変異体、又はこれらの融合物を提供する。 Thus, particular embodiments of the invention include SEQ ID NOs: 2, 4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18, 20, 22, 24, 26, 28, 30, 32, 34, 36, 38, An amino acid sequence selected from any one of 40, 42, 44, 46, 48, 50, 52, 54, 56, 58, 60, 62, 64, 66, 68; or a fragment or variant thereof, or Polypeptides comprising such fragment or variant fusions are provided. Thus, the present invention provides an isolated protein such as: NMB0341, NMB 1583, NMB1345, NMB0738, NMB0792, NMB0279, NMB2050, NMB1335, NMB2035, NMB1351, NMB1574, NMB1298, NMB1856, NMB0119 as described below , NMB1705, NMB2065, NMB0339, NMB0401, NMB1467, NMB2056, NMB0808, NMB0774, NMA0078, NMB0337, NMB0191, NMB1710, NMB0062, NMB1333, NMB0377, NMB0264, NMB1036, NMB 1176, NMB1359, or NMB1359, A body, or a fusion thereof.
同定されるポリペプチドのフラグメントは、例えばポリペプチド全体の20%、又は30%、又は40%、又は50%、又は60%、又は70%、又は80%、又は90%で作製されて良い。典型的には、フラグメントは、少なくとも10、15、20、30、40、50、又は100以上のアミノ酸であり、500、400、300、又は200未満のアミノ酸である。ポリペプチドの変異体が作製されて良い。「変異体」は、タンパク質の通常の機能を実質的に変更しない挿入、欠失、及び置換、保存的若しくは非保存的のいずれかのものを含む。「保存的置換」は、「GIy, Ala; VaI, Ile, Leu; Asp, Glu; Asn, GIn; Ser, Thr; Lys, Arg; 及び Phe, Tyr」のような組み合わせが意図される。その様な変異体は、タンパク質工学のよく知られた方法および部位特異的突然変異誘発法を使用して作製されて良い。 Fragments of the identified polypeptides may be made, for example, 20%, or 30%, or 40%, or 50%, or 60%, or 70%, or 80%, or 90% of the total polypeptide. Typically, a fragment is at least 10, 15, 20, 30, 40, 50, or 100 or more amino acids and less than 500, 400, 300, or 200 amino acids. Polypeptide variants may be generated. “Variants” include insertions, deletions and substitutions, either conservative or non-conservative, that do not substantially alter the normal function of the protein. “Conservative substitutions” are intended to be combinations such as “GIy, Ala; VaI, Ile, Leu; Asp, Glu; Asn, GIn; Ser, Thr; Lys, Arg; and Phe, Tyr”. Such variants can be made using well-known methods of protein engineering and site-directed mutagenesis.
特定の種類の変異体は、例えば関連する微生物又は微生物の他の株由来である、上述の遺伝子の変異体によってコードされるものである。典型的に、ポリペプチドの変異体は、本発明の方法を使用して同定されたポリペプチドと少なくとも70%の配列同一性、より好ましくは少なくとも85%の配列同一性、最も好ましくは少なくとも95%の配列同一性を有する。 A particular type of variant is one that is encoded by a variant of the above-mentioned gene, eg, from a related microorganism or other strain of microorganism. Typically, a variant of a polypeptide has at least 70% sequence identity, more preferably at least 85% sequence identity, most preferably at least 95%, with a polypeptide identified using the methods of the invention. Sequence identity.
2つのポリペプチドの配列同一性の割合は、例えばUniversity of Wisconsin Genetic Computing GroupのGAPプログラムのような適切なコンピュータープログラムを使用して決定されて良く、配列が最適にアラインされて、ポリペプチドに関して同一性の割合が計算されると解されるであろう。 The percent sequence identity between two polypeptides may be determined using an appropriate computer program such as, for example, the University of Wisconsin Genetic Computing Group GAP program, where the sequences are optimally aligned and identical with respect to the polypeptides. It will be understood that the sex ratio is calculated.
アラインメントは、Clustal Wプログラム(Thompson et al, (1994) Nucleic Acids Res 22, 4673-80)を使用して代替的に実施されて良い。使用されるパラメーターは以下のようである:
Fast pairwise alignment parameters: K-tuple(word) size; 1, window size; 5, gap penalty; 3, number of top diagonals; 5. Scoring method: x percent.
Multiple alignment parameters: gap open penalty; 10, gap extension penalty; 0.05. Scoring matrix: BLOSUM。
Alignment may alternatively be performed using the Clustal W program (Thompson et al, (1994) Nucleic Acids Res 22, 4673-80). The parameters used are as follows:
Fast pairwise alignment parameters: K-tuple (word) size; 1, window size; 5, gap penalty; 3, number of top diagonals; 5.Scoring method: x percent.
Multiple alignment parameters: gap open penalty; 10, gap extension penalty; 0.05. Scoring matrix: BLOSUM.
融合物は、任意の適切なポリペプチドとの融合物であって良い。典型的には、前記ポリペプチドは、融合したポリペプチドに対する免疫応答を促進することができるものである。融合パートナーは、例えばアフィニティークロマトグラフィーカラムに固定化し得る部分のための結合部位を構成することによって、精製するのを容易にするポリペプチドであって良い。かくして、前記融合パートナーは、コバルト又はニッケルイオンに結合するオリゴヒスチジン又は他のアミノ酸を含んで良い。Mycエピトープのようなモノクローナル抗体のエピトープであっても良い。 The fusion may be a fusion with any suitable polypeptide. Typically, the polypeptide is capable of promoting an immune response against the fused polypeptide. A fusion partner can be a polypeptide that facilitates purification, for example, by constructing a binding site for a moiety that can be immobilized on an affinity chromatography column. Thus, the fusion partner may comprise an oligohistidine or other amino acid that binds to cobalt or nickel ions. It may be a monoclonal antibody epitope such as Myc epitope.
上述のように、ポリペプチドの変異体若しくはポリペプチドのフラグメント、又はこれらの融合物は、典型的に、髄膜炎菌に対する中和抗体を生じさせるものである。 As noted above, polypeptide variants or polypeptide fragments, or fusions thereof, typically generate neutralizing antibodies to Neisseria meningitidis.
そのため、本発明は、上述の抗原を作製する方法、及びその方法によって得られうる若しくは得られる抗原も含む。 Therefore, the present invention also includes a method for producing the antigen described above, and an antigen that can be obtained or obtained by the method.
本発明のポリペプチドは、当該技術分野においてよく知られている発現ベクターのようなベクターにクローニングされて良い。そのようなベクターは、細菌、酵母、哺乳動物、及び昆虫細胞のような宿主細胞に存在して良い。本発明の抗原は、適切な宿主細胞においてポリヌクレオチドから容易に発現され、ワクチンに使用するためにそこから容易に単離されて良い。 The polypeptides of the present invention may be cloned into a vector such as an expression vector well known in the art. Such vectors can be present in host cells such as bacteria, yeast, mammals, and insect cells. The antigens of the invention can be readily expressed from the polynucleotide in a suitable host cell and easily isolated therefrom for use in vaccines.
典型的な発現システムは、市販のpET発現ベクターシリーズ及びBL21のようなE.coli宿主細胞を含む。発現されるポリペプチドは、当該技術分野で既知の任意の方法で精製される。簡易的に、抗原は、上述のアフィニティーカラムに結合する融合パートナーに融合し、融合物をアフィニティーカラム(例えば、ニッケル若しくはコバルトアフィニティーカラム)を使用して精製する。 Typical expression systems include commercially available pET expression vector series and E. coli host cells such as BL21. The expressed polypeptide is purified by any method known in the art. Briefly, the antigen is fused to a fusion partner that binds to the affinity column described above, and the fusion is purified using an affinity column (eg, a nickel or cobalt affinity column).
抗原又は抗原をコードするポリヌクレオチド(例えばDNA分子)が、ワクチンにおける使用に特に適すると解されるであろう。その様な場合では、前記抗原が、抗原を生産する宿主細胞から単離(又はペプチド合成によって生産する場合は、合成の任意の夾雑物から精製)される。典型的に、前記抗原は、ワクチンに使用するために製剤化される前に5%未満、好ましくは2%、1%、0.5%、0.1%、0.01%未満の共雑物を含有する。望ましくは、前記抗原は実質的に発熱因子を含まない。かくして、本発明は、前記抗原を含むワクチン、及びリン酸緩衝化生理食塩水のような適切な担体と前記抗原を組み合わせる工程を含むワクチンを作製するための方法も含む。本発明の抗原は単独で投与され得るが、1つ以上の許容される担体と共に製薬学的な製剤として存在することが好ましい。前記担体は、本発明の抗原と適合し、その受容者に有毒ではないという意味で「許容される」必要がある。典型的に、前記担体は、滅菌された発熱因子を含まない水又は生理食塩水であろう。 It will be appreciated that an antigen or polynucleotide encoding the antigen (eg, a DNA molecule) is particularly suitable for use in a vaccine. In such cases, the antigen is isolated from the host cell that produces the antigen (or purified from any synthetic contaminant if it is produced by peptide synthesis). Typically, the antigen contains less than 5%, preferably less than 2%, 1%, 0.5%, 0.1%, 0.01% of contaminants before being formulated for use in a vaccine. Desirably, the antigen is substantially free of pyrogenic factors. Thus, the present invention also includes a vaccine comprising the antigen and a method for making a vaccine comprising combining the antigen with a suitable carrier such as phosphate buffered saline. While it is possible for an antigen of the invention to be administered alone, it is preferable to present it as a pharmaceutical formulation with one or more acceptable carriers. The carrier must be “acceptable” in the sense of being compatible with the antigen of the invention and not toxic to the recipient thereof. Typically, the carrier will be sterile pyrogen free water or saline.
好都合には、ワクチンはアジュバントを含んでも良い。患者の能動免疫化は好ましい。この手法では、1つ以上の抗原が、適切なアジュバント及び担体を含有する免疫原性製剤中で調製され、既知の方法で患者に投与される。適切なアジュバントは、フロイント完全又は不完全アジュバント、ムラミルペプチド、EP 109 942、EP 180 564、及びEP 231 039の「Iscoms」、水酸化アルミニウム、サポニン、DEAE-デキストラン、中性油(例えばミグリオール)、植物油(例えばラッカセイ油)、リポソーム、プルロニック(登録商標)ポリオール、又はRibiアジュバントシステム(例えばGB-A-2 189 141参照)を含む。「プルロニック」は登録商標である。免疫接種する患者は、微生物感染からの防御を必要とする患者である。 Conveniently, the vaccine may include an adjuvant. Active immunization of patients is preferred. In this approach, one or more antigens are prepared in an immunogenic formulation containing an appropriate adjuvant and carrier and administered to a patient in a known manner. Suitable adjuvants include Freund's complete or incomplete adjuvant, muramyl peptide, EP 109 942, EP 180 564, and EP 231 039 `` Iscoms '', aluminum hydroxide, saponin, DEAE-dextran, neutral oil (e.g. miglyol) , Vegetable oils (eg peanut oil), liposomes, Pluronic® polyols, or Ribi adjuvant systems (see eg GB-A-2 189 141). “Pluronic” is a registered trademark. Immunized patients are those in need of protection from microbial infection.
本発明は、本発明のペプチド、又はそれらの変異体若しくはフラグメント、又はこれらの融合物、あるいは本発明のポリヌクレオチド、又はそれらの変異体若しくはフラグメント、又はこれらの融合物、及び上述の製薬学的に許容される担体を含む製薬組成物も含む。 The present invention relates to a peptide of the present invention, or a variant or fragment thereof, or a fusion thereof, or a polynucleotide of the present invention, or a variant or fragment thereof, or a fusion thereof, and the aforementioned pharmaceutical Also included are pharmaceutical compositions comprising an acceptable carrier.
本発明の上述の抗原(又はその様な抗原をコードするポリヌクレオチド)は、経口及び非経口(例えば皮下又は筋肉内)の注射を含む任意の従来の方法によって投与されて良い。前記治療は、単回投与又は一定の期間に亘る複数回投与からなって良い。 The above-described antigens of the invention (or polynucleotides encoding such antigens) may be administered by any conventional method, including oral and parenteral (eg, subcutaneous or intramuscular) injection. The treatment may consist of a single dose or multiple doses over a period of time.
抗原成分(又はポリヌクレオチド)に依存して、本発明のワクチンはヒト用医薬品及び獣医薬品の分野において有用である可能性があると解されるであろう。 Depending on the antigen component (or polynucleotide), it will be appreciated that the vaccines of the invention may be useful in the fields of human and veterinary medicine.
微生物によって生じる疾患は、家畜のような多数の動物において既知である。適当な抗原又は抗原をコードするポリヌクレオチドを含有する際は、本発明のワクチンはヒトだけでなく、例えばウシ、ヒツジ、ブタ、ウマ、イヌ、及びネコ、並びにニワトリ、シチメンチョウ、アヒル、及びガチョウのような家禽においても有用である。 Diseases caused by microorganisms are known in many animals, such as livestock. When containing the appropriate antigen or polynucleotide encoding the antigen, the vaccine of the present invention is not limited to humans, such as cattle, sheep, pigs, horses, dogs, and cats, and chickens, turkeys, ducks, and geese. It is also useful in such poultry.
かくして、本発明は、上述の抗原(又は抗原をコードするポリヌクレオチド)又はワクチンを個体に投与する工程を含む、微生物に対する個体へのワクチン接種方法も含む。本発明は、個体にワクチン接種するためのワクチンの製造における上述の抗原(又は抗原をコードするポリヌクレオチド)の使用も含む。 Thus, the present invention also includes a method of vaccinating an individual against a microorganism comprising the step of administering to the individual the antigen (or polynucleotide encoding the antigen) or vaccine described above. The invention also includes the use of an antigen (or a polynucleotide encoding the antigen) described above in the manufacture of a vaccine for vaccinating an individual.
本発明の抗原は、ワクチンにおいて単独の抗原として使用しても良く、又は同一若しくは異なる病原性微生物に対する他の抗原と組み合わせて使用されても良い。髄膜炎菌に関しては、NmBに対して反応性である得られた抗原は、A及び/又はC血清型のワクチンにおいて使用される成分と組み合わせても良い。また、ヘモフィルス属及び/又は肺炎連鎖球菌に対する防御を提供する抗原成分と好都合に組み合わせても良い。更なる抗原成分は、ポリペプチドであるか、又は多糖のような他の抗原成分であって良い。多糖は、免疫応答を促進するために使用しても良い(例えば、Makela et al (2002) Expert Rev. Vaccines 1, 399-410)。 The antigens of the present invention may be used as a single antigen in a vaccine or may be used in combination with other antigens against the same or different pathogenic microorganisms. With respect to Neisseria meningitidis, the resulting antigens reactive to NmB may be combined with components used in A and / or C serotype vaccines. It may also be conveniently combined with an antigen component that provides protection against Haemophilus and / or Streptococcus pneumoniae. The further antigen component may be a polypeptide or other antigen component such as a polysaccharide. Polysaccharides may be used to promote an immune response (eg, Makela et al (2002) Expert Rev. Vaccines 1, 399-410).
抗原が上述(実施例に記載)の遺伝子のいずれかによってコードされるポリペプチド、あるいは上述の変異体若しくはフラグメント、又は融合物(あるいは前記抗原をコードするポリヌクレオチド)である場合に、ワクチン接種する対象である疾患が髄膜炎菌感染(髄膜炎菌性疾患)であることが、上記のワクチン及びワクチン接種の方法において特に好ましい。 Vaccinate when the antigen is a polypeptide encoded by any of the genes described above (described in the Examples), or a variant or fragment or fusion described above (or a polynucleotide encoding said antigen) It is particularly preferred in the above vaccines and vaccination methods that the target disease is a meningococcal infection (meningococcal disease).
本発明は、以下の制限されない実施例を参照することによって、より詳細に開示されるであろう。 The invention will be disclosed in greater detail by reference to the following non-limiting examples.
(実施例1)
髄膜炎菌における免疫原のための遺伝的スクリーニング(GSI)
この実施例におけるGSIの適用は、殺菌抗体による殺滅を受けにくい株のための、髄膜炎菌の挿入変異体のライブラリースクリーニングを伴う。GSIはPCT/GB2005/005441(2005年7月7日にWO 2005/060995として公開)により詳細に開示されている。
Example 1
Genetic screening (GSI) for immunogens in Neisseria meningitidis
Application of GSI in this example involves library screening of meningococcal insertion mutants for strains that are not susceptible to killing by bactericidal antibodies. GSI is disclosed in detail by PCT / GB2005 / 005441 (published as WO 2005/060995 on July 7, 2005).
本発明者は、配列決定されているNmBの分離株であるMC58の変異体のライブラリーを、同じ株を含まない莢膜に対するマウスで生じさせた抗血清を使用してスクリーニングすることによってGSIの効果を実証した。同種の株で腹腔内免疫したマウス由来の血清を使用して、全部で40,000の変異体を分析した;この血清のSBAは野生株に対して約2000である。1:560希釈の血清(野生型の細菌を全て殺滅する)にライブラリーを曝した際に生存している変異体を検出した。生存している変異体におけるトランスポゾン挿入が殺滅に対する能力に寄与しているのかどうかを確立するために、前記変異体を親株に戻し交雑して、SBAにおいて野生株よりも殺滅に耐性であるか戻し交雑した変異体を確認した。マーカーレスキューによりトランスポゾン挿入部位を単離することによって、トランスポゾンによる影響を受けた遺伝子配列を試験した。本発明者は、影響を受けていた2つの遺伝子がTspA及びNMB0338である事を発見した。TspAは強力なCD4+ T細胞応答を引き起こす表面抗原であり、患者由来の血清により認識される(Kizil et al (1999) Infect Immun. 67, 3533-41)。NMB0338は、2つの膜貫通ドメインを含有することが予測されており、細胞表面に位置するポリペプチドをコードする、これまで未知の機能を有する遺伝子である。NMB0338によってコードされるアミノ酸配列は、
MERNGVFGKIVGNRILRMSSEHAAASYPKPCKSFKLAQSWFRVRSCLGGVFIYGA NMKLIYTVIKIIILLLFLLLAVINTDAVTFSYLPGQKFDLPLIVVLFGAFVVGII FGMFALFGRLLSLRGENGRLRAEVKKNARLTGKELTAPPAQNAPESTKQP
である。
We screened a library of mutants of MC58, a sequenced NmB isolate, using antisera raised in mice against the capsule that do not contain the same strain, and the GSI. The effect was demonstrated. A total of 40,000 mutants were analyzed using serum from mice immunized intraperitoneally with the same strain; the SBA of this serum is approximately 2000 relative to the wild strain. Surviving mutants were detected when the library was exposed to 1: 560 dilution of serum (killing all wild-type bacteria). To establish whether transposon insertion in the surviving mutant contributes to the ability to kill, the mutant is backcrossed to the parent strain and is more resistant to killing than the wild strain in SBA A backcrossed mutant was identified. The gene sequences affected by the transposon were examined by isolating the transposon insertion site by marker rescue. The inventor has discovered that the two genes affected were TspA and NMB0338. TspA is a surface antigen that triggers a strong CD4 + T cell response and is recognized by patient-derived serum (Kizil et al (1999) Infect Immun. 67, 3533-41). NMB0338 is predicted to contain two transmembrane domains, and encodes a polypeptide located on the cell surface, and is a gene having a previously unknown function. The amino acid sequence encoded by NMB0338 is
MERNGVFGKIVGNRILRMSSEHAAASYPKPCKSFKLAQSWFRVRSCLGGVFIYGA NMKLIYTVIKIIILLLFLLLAVINTDAVTFSYLPGQKFDLPLIVVLFGAFVVGII FGMFALFGRLLSLRGENGRLRAEVKKNARLTGKELTAPPAQNAPESTKQP
It is.
公衆衛生の要請だけでなく、GSIにNmBを使用する複数の実施上の利点が存在する:a)細菌は遺伝的に扱いやすい;b)エフェクターである免疫機構による細菌の殺滅をアッセイするのが複雑でない;c)異なる血清型及びクローン系列の3つの単離株(血清型A、B、Cの各々に関してIV-A、ET-5、及びET-37)に関して、ゲノム配列を利用することが可能である;並びにd)よく特徴付けられた臨床資源を、この研究に利用することが可能である。 In addition to public health requirements, there are several practical benefits of using NmB in GSI: a) bacteria are genetically easy to handle; b) assaying killing of bacteria by the immune system that is the effector C) Utilize genomic sequences for three isolates of different serotypes and clonal lineages (IV-A, ET-5, and ET-37 for each of serotypes A, B, and C) As well as d) well-characterized clinical resources are available for this study.
GSIは2つの潜在的な制限を有する。第1に、殺菌抗体の標的が固有のものである可能性がある。これは、NmBにおける殺菌抗体の全ての既知の標的が固有のものではないこと、現在認可を受けている細菌ワクチンは固有の遺伝子産物を標的としていないこととは異なる。第2に、血清は多数の抗原に対する抗体を含有し、1つの抗原の欠失が変異体の生存に影響を与えない。本発明者は、同種の株に対して生じた血清を使用するセレクションの間でさえ、関連する抗原が、抗血清の適当な希釈物を使用して同定されることを既に示した。 GSI has two potential limitations. First, the bactericidal antibody target may be unique. This differs from the fact that not all known targets of bactericidal antibodies in NmB are unique, and that currently approved bacterial vaccines do not target unique gene products. Second, serum contains antibodies to multiple antigens, and deletion of one antigen does not affect mutant survival. The inventor has already shown that, even during selection using sera raised against homologous strains, relevant antigens are identified using appropriate dilutions of antisera.
GSIの主な利点は、1)ハイスループットな工程が、技術を要する又は費用がかかる方法(例えばタンパク質発現/精製及び免疫)を含まない、及び2)動物データのみに頼るのではなく、ヒトサンプルをアッセイに使用し得る。GSIは、より少ない数の候補のより詳細な分析を可能にして、殺菌活性を引き起こす表面タンパク質のサブセットを迅速に特定するであろう。 The main advantages of GSI are: 1) high-throughput processes do not involve technically or expensive methods (e.g. protein expression / purification and immunization), and 2) human samples rather than relying solely on animal data Can be used in the assay. GSI will allow a more detailed analysis of a smaller number of candidates and will quickly identify a subset of surface proteins that cause bactericidal activity.
1.GSIを使用する殺菌抗体の標的の同定
異種株に対するマウス血清、及びヒト血清を、交差反応抗原を同定するために使用する。前記血清は、
i)同一の免疫型及びサブ血清型(sub-serotype)を有する分離株を避けるように選択及び/又は構築される異種株を使用して全身的な経路で免疫接種されたマウス
ii)髄膜炎菌の既知の単離株に感染した患者に由来する急性又は回復期の血清(Dr R. Wall, Northwick Parkより提供された)
iii)NmB分離株であるH44/76に由来する所定の外膜ベシクル(OMV)ワクチンを接種したボランティアからの免疫前及び免疫後のサンプル(Meningococcal Reference Laboratoryより提供された)
から得る。これらの血清の供給源の各々は、特定の利点及び不利な点を有する。
1. Identification of bactericidal antibody targets using GSI Mouse and human sera against heterologous strains are used to identify cross-reactive antigens. The serum is
i) Mice immunized by systemic route using heterologous strains selected and / or constructed to avoid isolates with the same immunotype and sub-serotype
ii) Acute or convalescent serum from a patient infected with a known isolate of Neisseria meningitidis (provided by Dr R. Wall, Northwick Park)
iii) Pre- and post-immunization samples from volunteers vaccinated with the prescribed outer membrane vesicle (OMV) vaccine derived from the NmB isolate H44 / 76 (provided by Meningococcal Reference Laboratory)
Get from. Each of these serum sources has certain advantages and disadvantages.
a)異種株(つまり配列決定された血清型A又はC株)で免疫された動物由来の血清をGSIにおいて使用して、MC58変異体のライブラリーをセレクションする。本発明者は、弱毒化生NmBを使用する免疫接種が血清型A及びC株に対して交差反応する殺菌抗体を生じさせることを示した。ヒト血清に対する促進された生存を有する変異体に存在しない抗原は、破壊された遺伝子のマーカーレスキューによって同定する。 a) Serum from animals immunized with heterologous strains (ie, sequenced serotype A or C strain) is used in GSI to select a library of MC58 variants. The inventor has shown that immunization with live attenuated NmB produces bactericidal antibodies that cross-react with serotype A and C strains. Antigens that are not present in variants with enhanced survival against human serum are identified by marker rescue of the disrupted gene.
b)異種起源の血清による殺滅に対する抵抗性を与える変異を同定し、その遺伝子産物が、配列決定された血清型A及びC株であるZ2491及びFAM18の各々の殺滅に関しても標的であるかどうかを決定する。遺伝子の相同性に関してゲノムデータベースを調べる。ホモログが存在する場合は、トランスポゾン挿入をMC58から増幅し、血清型A及びC株に形質転換により導入する。各血清型の変異体及び野生型の株の相対的な生存を比較する。かくして、GSIは、殺菌活性の標的が保存されており、血清型、免疫型、及びサブ血清型にかかわらず髄膜炎菌の多様な株に利用可能であるかどうかの情報を迅速に与えることが可能である。 b) Identify mutations that confer resistance to killing by sera from different sources, and whether the gene product is also a target for killing each of the sequenced serotypes A and C strains Z2491 and FAM18 Decide if. Examine the genomic database for gene homology. If a homolog is present, the transposon insertion is amplified from MC58 and introduced into serotypes A and C by transformation. The relative survival of each serotype mutant and wild type strain is compared. Thus, GSI can quickly provide information on whether the target for bactericidal activity is conserved and available to various strains of Neisseria meningitidis regardless of serotype, immune type, and subserotype Is possible.
c)マウス由来の血清に対して促進された生存を有する変異体を、回復期の患者又は(H44/76由来の)異種起源OMVワクチン接種を受けたヒトからのヒト血清を使用して試験する。これにより、ヒトにおいて殺菌抗体を生じさせることが可能な標的であるかどうかの重要な問題を解決する。他のワクチン手法を使用すると、この情報は、ワクチン候補のGMP製造を必要とする臨床試験の後期の費用が係る段階でのみ得られる。 c) Mutants with accelerated survival against sera from mice are tested using human sera from convalescent patients or from xenogeneic OMV vaccinated (from H44 / 76) . This solves the important question of whether it is a target capable of raising bactericidal antibodies in humans. Using other vaccine approaches, this information is only available at the late cost stage of clinical trials requiring GMP production of vaccine candidates.
GSIは単純で利用可能な技術を使用して実施されるハイスループットな分析であることが利点である。GSIは使用する細菌株及び血清に関して自由に変えられるので、ヒトにおいて殺菌抗体を生じさせ、多数の株の殺滅を媒介する抗原が迅速に同定される。ヒト血清を使用してセレクションされた変異体を、マウス血清によってセレクションされたものと同様に分析する。 The advantage of GSI is that it is a high-throughput analysis performed using simple and available techniques. Since GSI can be freely changed with respect to the bacterial strain and serum used, antigens that produce bactericidal antibodies in humans and mediate killing of multiple strains are rapidly identified. Mutants selected using human serum are analyzed in the same manner as those selected with mouse serum.
2.組換えGSI抗原の抗体応答の評価
回復期の患者からの血清によって認識される殺菌性抗体の標的であるタンパク質及びワクチンは、市販のベクターを使用してE.coliで発現させる。対応するオープンリーディングフレームをMC58からPCRによって増幅し、pCR Topo CT又はpBAD/Hisのようなベクターにライゲートし、T7又はアラビノース誘導プロモーターの各々の調節下でタンパク質発現させる。細胞タンパク質全体からの組換えタンパク質の精製は、ニッケル又はコバルトカラムに対して前記タンパク質のC末端に融合したHisタグによって実施した。
2. Assessment of antibody response of recombinant GSI antigen Proteins and vaccines that are targets of bactericidal antibodies recognized by sera from convalescent patients are expressed in E. coli using commercially available vectors. The corresponding open reading frame is amplified from MC58 by PCR, ligated into a vector such as pCR Topo CT or pBAD / His and protein expressed under the control of the T7 or arabinose inducible promoter, respectively. Purification of the recombinant protein from the whole cellular protein was performed with a His tag fused to the C-terminus of the protein against a nickel or cobalt column.
Adult New Zealand White rabbitを、フロイント不完全アジュバントと共に25μgの精製タンパク質を使用する皮下注射によって、4週間に2回に分けて免疫した。細胞全体のELISAによって、事前に存在する抗Nm抗体に関して、動物からの血清を免疫前に調べる。1:2未満の最初の血清力価を有する動物を免疫実験に使用する。免疫後の血清を二回目の免疫の2週間後に得る。特異的な抗体が生じていることを確認するために、免疫前後の結成を、i)精製タンパク質に対するウエスタン分析及びii)野生型及び対応する変異体(GSIによって産生された)からの細胞を使用するELISAによって試験する。 Adult New Zealand White rabbits were immunized twice a week for 4 weeks by subcutaneous injection using 25 μg of purified protein with Freund's incomplete adjuvant. Sera from animals are examined prior to immunization for pre-existing anti-Nm antibodies by whole cell ELISA. Animals with an initial serum titer less than 1: 2 are used for immunization experiments. Serum after immunization is obtained 2 weeks after the second immunization. To confirm that specific antibodies are raised, use pre- and post-immunization formation, i) Western analysis for purified protein and ii) cells from wild type and corresponding mutants (produced by GSI) Test by ELISA.
MC58(同種株)、及び配列決定されている血清型A及びC株に対して、ウサギ免疫血清を使用してSBAを実施する。少なくとも2回、3重にアッセイを実施する。8より大きいSBAが有意であると解する。結果は、タンパク質候補が組換えタンパクとして殺菌抗体を生じさせ得るかどうかの根拠を提供する。 SBA is performed using rabbit immune sera on MC58 (homologous strain) and serotypes A and C strains that have been sequenced. Perform the assay at least twice in triplicate. SBA greater than 8 is considered significant. The results provide a basis for whether the protein candidate can generate a bactericidal antibody as a recombinant protein.
3.GSI抗原の防御効率の確立
任意の態様の免疫(細胞性又は液性)を1回のアッセイで評価することで、生細菌の攻撃に対して動物を防御する能力に関して、全ての候補を試験する。本発明者は、生細菌の感染に対する活性免疫及び防御のモデルを確立した。このモデルでは、成体のマウスを0及び21日目に免疫して、28日目に、腹腔内に鉄デキストラン(追加の鉄供給源として)中の106又は107 CFUのMC58の生細菌の攻撃を受けさせる。前記モデルは、Tbps Danve et al (1993) Vaccine 11, 1214-1220で免疫の防御効率を評価するために記載されているものと類似している。免疫していない動物は感染の4時間内に菌血症を発症し、24時間までに全身病の徴候を示す。本発明者は、弱毒化Nm株及び生髄膜炎菌の攻撃に対するタンパク質抗原の双方の防御効率を既に示すことができている;PorAは殺菌抗体を生じさせる外膜タンパク質であるが、広範な抗原のばらつきのために優れたワクチンの候補ではない(Bart et al (1999) Infect Immun. 67, 3832-3846)。
3. Establishing GSI antigen protection efficiency All candidates are tested for their ability to protect animals against live bacterial challenge by assessing any aspect of immunity (cellular or humoral) in a single assay . The inventor has established a model of active immunity and protection against live bacterial infections. In this model, adult mice are immunized on days 0 and 21, and on day 28, 10 6 or 10 7 CFU of MC58 live bacteria in iron dextran (as an additional iron source) is injected intraperitoneally. Get attacked. The model is similar to that described for evaluating immune defense efficiency in Tbps Danve et al (1993) Vaccine 11, 1214-1220. Unimmunized animals develop bacteremia within 4 hours of infection and show signs of systemic disease by 24 hours. The inventor has already been able to demonstrate the protective efficiency of both protein antigens against attenuated Nm strains and live meningococcal attack; PorA is an outer membrane protein that produces bactericidal antibodies, but is extensive It is not a good vaccine candidate due to antigenic variation (Bart et al (1999) Infect Immun. 67, 3832-3846).
6週齢のBALB/cマウス(35匹の群)に、フロイント不完全アジュバントと共に25μgの組換えタンパク質を0及び21日目に皮下に受けさせ、次いで28日目に、腹腔内に106(15匹)又は107(15匹)CFUのMC58を使用して攻撃させる。2つの攻撃投与を使用して、高用量及び低用量の攻撃投与量でワクチン効率を試験する;28日目に各群の残る5匹から、及び1回目の免疫前に5匹から血清を得て、更なる免疫学的アッセイのために-70℃で保存する。対照群の動物は、i)アジュバント単独、ii)リフォールディングさせた組換えPorA、及びiii)弱毒化生Nm株のいずれかを受けさせる。対照群の動物の全体数を低減するために、一度に5つの候補のセットを試験する(群の数=5候補+3対照)。前記群の動物の生存をMann Whitney U Testによって比較する。15マウス/投与の群のサイズで、実験は群の間に生存における25%の差を示すことが可能である。 Six-week-old BALB / c mice (group of 35) received 25 μg of recombinant protein subcutaneously on days 0 and 21 with Freund's incomplete adjuvant, and then on day 28, 10 6 (10 6 ( 15) or 10 7 (15) Use CFU MC58 to attack. Test vaccine efficacy at high and low doses using two challenge doses; obtain serum from the remaining 5 animals in each group on day 28 and from 5 animals before the first immunization And store at -70 ° C. for further immunoassay. Control animals receive either i) adjuvant alone, ii) refolded recombinant PorA, and iii) live attenuated Nm strain. To reduce the total number of animals in the control group, a set of 5 candidates is tested at once (number of groups = 5 candidates + 3 controls). The survival of the animals in the groups is compared by Mann Whitney U Test. With a group size of 15 mice / dose, the experiment can show a 25% difference in survival between groups.
攻撃に対する有意な防御を示すワクチンに関して、実験を繰り返し実施して発見を確認する。さらに、候補によるワクチン接種が菌血症に対する防御も引き起こすことを確立するために、菌血症の程度を2度目の実験の間に測定する;免疫した動物及び免疫していない動物において感染の22時間後(この時間に菌血症が最大である)に、血をサンプリングする。両側スチューデント-T試験を使用して結果を分析し、ワクチン接種した動物において菌血症の優位な低減が存在するかどうかを決定する。 For vaccines that show significant protection against attack, experiments are repeated to confirm findings. In addition, the degree of bacteremia is measured during the second experiment to establish that vaccination by the candidate also causes protection against bacteremia; 22 infecting animals in immunized and non-immunized animals. After a time (bacteremia is maximal at this time), blood is sampled. The results are analyzed using a two-sided Student-T test to determine if there is a significant reduction in bacteremia in the vaccinated animals.
更に別の使用する原料及び方法
髄膜炎菌の変異誘発
髄膜炎菌を使用して試験するために、in vitro変異誘発によって変異を構築した。カナマイシン耐性及びE.coliで機能する複製起点をコードするマーカーを含有するTn5変異体を使用して、髄膜炎菌のゲノムDNAを変異誘発させた。これらの要素を複合Tn5末端に結合させる。Tn5の非常に活発な変異体、並びにT4 DNAポリメラーゼで修復される前記DNA、並びにATP及びヌクレオチドの存在下でリガーゼを使用して転移反応を実施した。前記修復されるDNAを使用して髄膜炎菌をカナマイシン耐性に形質転換した。サザン分析によって、各変異体がトランスポゾンの1つの挿入のみを含有することを確認した。
Yet another material and method to be used Mutagenesis of Neisseria meningitidis Mutations were constructed by in vitro mutagenesis for testing using Neisseria meningitidis. A meningococcal genomic DNA was mutagenized using a Tn5 mutant containing kanamycin resistance and a marker encoding an origin of replication that functions in E. coli. These elements are attached to the complex Tn5 terminus. A transfer reaction was performed using a highly active variant of Tn5, as well as the DNA repaired with T4 DNA polymerase, and ligase in the presence of ATP and nucleotides. The repaired DNA was used to transform Neisseria meningitidis to kanamycin resistance. Southern analysis confirmed that each mutant contained only one transposon insertion.
血清殺菌アッセイ(SBA)
細菌を固体培地上(Levanthals supplementを含むブレインハートインフュージョン培地)で一晩増殖させ、次いで実験日の朝に4時間、固体培地に再ストリークした。この後に、細菌をリン酸緩衝生理食塩水中に回収して、計数した。補体の供給源(幼体のウサギ又はヒト)及び約105コロニー形成単位を含有する1mlの容量でSBAを実施した。インキュベーションの終わりに細菌を回収して、固体培地に平板培養して、生存している細菌を回収する。
Serum bactericidal assay (SBA)
Bacteria were grown overnight on solid medium (Brainhart infusion medium with Levanthals supplement) and then restreaked on solid medium for 4 hours in the morning of the experiment. After this, the bacteria were collected in phosphate buffered saline and counted. SBA was performed in a 1 ml volume containing a source of complement (young rabbits or humans) and approximately 10 5 colony forming units. Bacteria are harvested at the end of the incubation and plated on solid media to recover viable bacteria.
トランスポゾン挿入部位の単離
標準的な方法によって興味のある変異体からゲノムDNAを回収し、PvuII、EcoRV、及びDraIを使用して3時間消化し、次いでフェノール抽出によって精製する。次いで、前記DNAをT4 DNAリガーゼの存在下で16℃で一晩、100μlの容量でセルフライゲーションさせ、沈殿させ、次いでエレクトロポレーションによってカナマイシン耐性にE.coliを形質転換するために使用する。
Isolation of the transposon insertion site Genomic DNA is recovered from the mutant of interest by standard methods, digested with PvuII, EcoRV, and DraI for 3 hours and then purified by phenol extraction. The DNA is then self-ligated in a 100 μl volume overnight at 16 ° C. in the presence of T4 DNA ligase, precipitated and then used to transform E. coli to kanamycin resistance by electroporation.
(実施例2)
更なるスクリーニング及びその結果
GSIを使用して、MC58の約40,000挿入変異体のライブラリーをスクリーニングした。pACYC184由来の複製起点を有するトランスポゾンを使用し、in vitro Tn5変異誘発によって前記ライブラリーを構築した。
(Example 2)
Further screening and results
GSI was used to screen a library of approximately 40,000 insertion mutants of MC58. The library was constructed by in vitro Tn5 mutagenesis using a transposon with a replication origin derived from pACYC184.
髄膜炎菌の血清型B分離株であり、この株の完全なゲノム配列が既知であるためMC58を選択した。 MC58 was selected because it is a serogroup B isolate of Neisseria meningitidis and the complete genomic sequence of this strain is known.
前記ライブラリーは、常に、対照として野生型の株と平行してスクリーニングし、前記ライブラリー及び野生型から回収されたコロニーの数を示す。 The library is always screened in parallel with the wild type strain as a control and shows the number of colonies recovered from the library and wild type.
マウス血清を使用するセレクション
最初に、弱毒化株であるYH102を使用して免疫した動物由来の血清を使用して前記ライブラリーを分析した。成体のマウス(Balb/C)に、108コロニー形成単位を腹腔内に3回受けさせ、最後の免疫の10日後に血清を回収した。
Selection using mouse serum First, the library was analyzed using serum from animals immunized with the attenuated strain YH102. Adult mice (Balb / C) received 108 colony forming units intraperitoneally 3 times and serum was collected 10 days after the last immunization.
スクリーニングによって、血清による殺滅に対して促進された生存を有する幾つかの変異体が同定された。これを、個々の変異体の単離、本来の遺伝的背景における変異の再構築、及び野生型に対する補体を介する溶解への感受性に関して個々の変異体を再試験することによって確認した。トランスポゾン挿入は、以下の遺伝子内である。 Screening identified several mutants with enhanced survival against serum killing. This was confirmed by retesting individual mutants for isolation of individual mutants, reconstruction of mutations in the original genetic background, and susceptibility to complement-mediated lysis against wild type. Transposon insertions are within the following genes:
ワクチン接種を受けたヒトの血清を使用するセレクション
ManchesterのMeningococcal Reference Laboratoryからの血清を利用した。この血清は、ボランティアのOMV免疫の臨床試験に由来するものであった。
Selection using serum from vaccinated humans
Serum from the Meningococcal Reference Laboratory in Manchester was used. This serum was derived from a clinical trial of volunteer OMV immunity.
ワクチン接種を受けたヒトのCI血清によってセレクションされた変異体(1回のスクリーニング)
以下の配列が単離された。
Variants selected by vaccinated human CI serum (single screening)
The following sequences were isolated:
NMB0338(上記と同様) NMB0338 (same as above)
ワクチン接種を受けたヒトの17D血清によってセレクションされた変異体(一度のみスクリーニング)。 Variants selected by vaccinated human 17D serum (screened only once).
患者の血清を使用するセレクション
本発明者は、スクリーニングのために利用可能な急性及び回復期の血清のコレクションを有している。これは、異なるサブタイプの髄膜炎菌に感染した個体に由来するものである。スクリーニングは、急性(A)又は回復期(C)の結成を使用して実施した。急性感染と血清の回収との間の期間は、2週間から3ヶ月であった。
Selection using patient sera The inventor has a collection of acute and convalescent sera available for screening. This is from individuals infected with different subtypes of Neisseria meningitidis. Screening was performed using acute (A) or convalescent (C) formation. The period between acute infection and serum collection was between 2 weeks and 3 months.
NMB1335 CreA
DNA及びタンパク質配列は上記のもの。
NMB1335 CreA
DNA and protein sequences are as above.
上述の方法論を本質的に使用して、更に以下の抗原を同定した。 Using the methodology described above essentially, the following antigens were further identified.
配列番号の一覧
配列番号 配列
1 NMB0341 DNA
2 NMB0341 タンパク質
3 NMB1583 DNA
4 NMB1583 タンパク質
5 NMB1345 DNA
6 NMB1345 タンパク質
7 NMB0738 DNA
8 NMB0738 タンパク質
9 NMB0792 DNA
10 NMB0792 タンパク質
11 NMB0279 DNA
12 NMB0279 タンパク質
13 NMB2050 DNA
14 NMB2050 タンパク質
15 NMB1335 DNA
16 NMB1335 タンパク質
17 NMB2035 DNA
18 NMB2035 タンパク質
19 NMB1351 DNA
20 NMB1351 タンパク質
21 NMB1574 DNA
22 NMB1574 タンパク質
23 NMB1298 DNA
24 NMB1298 タンパク質
25 NMB1856 DNA
26 NMB1856 タンパク質
27 NMB0119 DNA
28 NMB0119 タンパク質
29 NMB1705 DNA
30 NMB1705 タンパク質
31 NMB2065 DNA
32 NMB2065 タンパク質
33 NMB0339 DNA
34 NMB0339 タンパク質
35 NMB0401 DNA
36 NMB0401 タンパク質
37 NMB1467 DNA
38 NMB1467 タンパク質
39 NMB2056 DNA
40 NMB2056 タンパク質
41 NMB0808 DNA
42 NMB0808 タンパク質
43 NMB0774 DNA
44 NMB0774 タンパク質
45 NMA0078 DNA
46 NMA0078 タンパク質
47 NMB0337 DNA
48 NMB0337 タンパク質
49 NMB0191 DNA
50 NMB0191 タンパク質
51 NMB1710 DNA
52 NMB1710 タンパク質
53 NMB0062 DNA
54 NMB0062 タンパク質
55 NMB1333 DNA .
56 NMB1333 タンパク質
57 NMB0377 DNA
58 NMB0377 タンパク質
59 NMB0264 DNA
60 NMB0264 タンパク質
61 NMB1036 DNA
62 NMB1036 タンパク質
63 NMB1176 DNA
64 NMB1176 タンパク質
65 NMB1359 DNA
66 NMB1359 タンパク質
67 NMB1138 DNA
68 NMB1138 タンパク質
List of sequence numbers Sequence number Sequence
1 NMB0341 DNA
2 NMB0341 protein
3 NMB1583 DNA
4 NMB1583 protein
5 NMB1345 DNA
6 NMB1345 protein
7 NMB0738 DNA
8 NMB0738 protein
9 NMB0792 DNA
10 NMB0792 protein
11 NMB0279 DNA
12 NMB0279 protein
13 NMB2050 DNA
14 NMB2050 protein
15 NMB1335 DNA
16 NMB1335 protein
17 NMB2035 DNA
18 NMB2035 protein
19 NMB1351 DNA
20 NMB1351 protein
21 NMB1574 DNA
22 NMB1574 protein
23 NMB1298 DNA
24 NMB1298 protein
25 NMB1856 DNA
26 NMB1856 protein
27 NMB0119 DNA
28 NMB0119 protein
29 NMB1705 DNA
30 NMB1705 protein
31 NMB2065 DNA
32 NMB2065 protein
33 NMB0339 DNA
34 NMB0339 protein
35 NMB0401 DNA
36 NMB0401 protein
37 NMB1467 DNA
38 NMB1467 protein
39 NMB2056 DNA
40 NMB2056 protein
41 NMB0808 DNA
42 NMB0808 protein
43 NMB0774 DNA
44 NMB0774 protein
45 NMA0078 DNA
46 NMA0078 protein
47 NMB0337 DNA
48 NMB0337 protein
49 NMB0191 DNA
50 NMB0191 protein
51 NMB1710 DNA
52 NMB1710 protein
53 NMB0062 DNA
54 NMB0062 Protein
55 NMB1333 DNA.
56 NMB1333 protein
57 NMB0377 DNA
58 NMB0377 protein
59 NMB0264 DNA
60 NMB0264 protein
61 NMB1036 DNA
62 NMB1036 protein
63 NMB1176 DNA
64 NMB1176 protein
65 NMB1359 DNA
66 NMB1359 protein
67 NMB1138 DNA
68 NMB1138 protein
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