JP2008289376A - Nucleic acid recovery reagent, nucleic acid amplification reagent kit prepared by using the same, nucleic acid recovery method and nucleic acid amplifying method using the recovery method - Google Patents

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Abstract

<P>PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a reagent and a method of extracting a nucleic acid from a biospecimen, etc., by a simple operation without using a complicate operation, and amplifying the nucleic acid. <P>SOLUTION: The nucleic acid recovery reagent contains an inorganic salt composed of an inorganic cation and an inorganic anion, and the inorganic salt forms a precipitate together with the nucleic acid. <P>COPYRIGHT: (C)2009,JPO&INPIT

Description

本発明は、生体試料等から核酸を回収する核酸回収試薬およびそれを用いた核酸増幅試薬キット、ならびに核酸回収方法およびそれを用いた核酸増幅方法に関する。   The present invention relates to a nucleic acid recovery reagent for recovering nucleic acid from a biological sample or the like, a nucleic acid amplification reagent kit using the same, a nucleic acid recovery method and a nucleic acid amplification method using the same.

ポリメラーゼ連鎖反応を用いた核酸の増幅法の確立は、核酸の用途の拡大をもたらした。また、核酸をより高感受性で、またはより高速で分析するための技術(RT−PCR、LAMP等)の開発に伴い、核酸の増幅法は、研究のツール、診断ツール、治療剤等として、多様な用途において有用性が見出されている。そして、増幅法の出発材料または増幅産物である核酸をサンプル(体液、組織、細胞等)等から回収する技術も一層の改善が必要とされている。   The establishment of nucleic acid amplification methods using the polymerase chain reaction has led to an expanded use of nucleic acids. In addition, with the development of technologies (RT-PCR, LAMP, etc.) for analyzing nucleic acids with higher sensitivity or higher speed, nucleic acid amplification methods are widely used as research tools, diagnostic tools, therapeutic agents, etc. Have found utility in various applications. Further, there is a need for further improvement in a technique for recovering nucleic acid that is a starting material or amplification product of an amplification method from a sample (body fluid, tissue, cell, etc.).

核酸を含む生体試料から核酸を回収する方法として、これまで多くの技術が開発されている。代表的な方法としては、フェノール、クロロホルム等の有機溶媒によりタンパク質等の夾雑物を変性させて沈殿させた後、水相中の核酸を回収する有機抽出法、核酸を含む溶液に沈殿剤(エタノール、イソプロパノール等)または共沈剤(高分子多糖類)を加え、沈殿となった核酸を遠心分離によって回収する沈殿法等が知られており、簡易的な方法としては、イオン交換水で希釈した試料を凍結融解を繰り返し、アルカリ溶液を添加後、油液分離、加熱処理等を行うアルカリ溶解法、細胞または組織を煮沸するだけの方法等が知られている。   Many techniques have been developed so far for recovering nucleic acids from biological samples containing nucleic acids. Typical methods include an organic extraction method in which impurities such as proteins are denatured and precipitated with an organic solvent such as phenol and chloroform, and then the nucleic acid in the aqueous phase is recovered. A precipitant (ethanol) is added to the solution containing the nucleic acid. , Isopropanol, etc.) or a coprecipitation agent (polymer polysaccharide) is added, and a precipitation method is known in which the precipitated nucleic acid is recovered by centrifugation. As a simple method, it is diluted with ion-exchanged water. Known are an alkali dissolution method in which a sample is repeatedly freeze-thawed and an alkali solution is added, followed by oil-liquid separation, heat treatment, and the like, and a method in which cells or tissues are simply boiled.

有機抽出法はタンパク質の除去能力が高いので、夾雑物を大量に含むサンプル(例えば、組織、血液等)から核酸を回収する場合によく使用されている。有機抽出法としては、例えば、回収率を高めるために、水不溶性の高分子化合物を含む有機溶媒を使用して核酸を水相に入りやすくし、核酸を水相に移行した後、水相にアルコールを加えて沈殿させ、遠心分離で回収する方法(特許文献1)が提案されている。しかし、有機抽出法は、フェノール等の毒性の強い有機溶媒を使用するため、試薬の取り扱いに注意が必要である。また、遠心分離後すみやかに液層を分取する必要があり、その手順は、特にサンプル数が多い場合複雑となる。   Since the organic extraction method has a high protein removing ability, it is often used when nucleic acid is recovered from a sample (for example, tissue, blood, etc.) containing a large amount of contaminants. As an organic extraction method, for example, in order to increase the recovery rate, an organic solvent containing a water-insoluble polymer compound is used to facilitate entry of the nucleic acid into the aqueous phase. There has been proposed a method (Patent Document 1) in which alcohol is added to cause precipitation by centrifugal separation and recovery by centrifugation. However, since organic extraction uses a highly toxic organic solvent such as phenol, it is necessary to handle the reagent with care. In addition, the liquid layer needs to be collected immediately after centrifugation, and the procedure becomes complicated especially when the number of samples is large.

沈殿法としては高分子多糖類(デキストランまたはグリコーゲン)等の共沈剤を加えて沈殿を行う方法(特許文献2)、陽イオン洗浄剤を用いて核酸を有機相(アルコール等)に溶解し、無機塩溶液を加えて沈殿させる方法(特許文献3)、2価以上の遷移金属イオンを接触させることにより、試料中の夾雑物を沈殿させ、上清に残るRNAを回収する方法(特許文献4)等が提案されている。沈殿法は、例えばアルコール沈殿の場合、高い回収率を得るために長時間の冷却または共沈剤の添加を必要とし、沈殿を回収するために高速遠心分離と乾燥を必要とする。また、回収される核酸は不溶化しているので、使用するためには再可溶化しなければならない。   As a precipitation method, a method of performing precipitation by adding a coprecipitation agent such as a high molecular weight polysaccharide (dextran or glycogen) (Patent Document 2), a nucleic acid is dissolved in an organic phase (alcohol or the like) using a cationic detergent, A method in which an inorganic salt solution is added for precipitation (Patent Document 3). A method in which impurities in a sample are precipitated by bringing a transition metal ion having a valence of 2 or more into contact therewith, and RNA remaining in the supernatant is recovered (Patent Document 4). ) Etc. have been proposed. For example, in the case of alcohol precipitation, the precipitation method requires long-time cooling or addition of a coprecipitation agent in order to obtain a high recovery rate, and high-speed centrifugation and drying are required to recover the precipitate. Moreover, since the nucleic acid to be recovered is insolubilized, it must be resolubilized for use.

また、核酸をより簡易に回収するための方法として、様々な固相抽出法が開発されている。固相抽出法は、核酸と可逆的に結合する特性を有する固相担体に核酸を吸着させ、次いで担体を回収することによって、サンプル中の夾雑物から核酸を分離する方法であり、必要であれば、核酸を担体から分離する工程がさらに加えられる。固相抽出のための担体として、ガラス粉末、ガラス繊維、シリカ粒子、セライト、不織布等が知られている。固相抽出法としては、例えばBoom法が挙げられ、カオトロピック剤による核酸の溶解およびヌクレアーゼの不活化と、シリカ粒子または珪藻の核酸吸着作用とを組み合わせた核酸回収法(特許文献5)が提案されている。また、ゲル電気泳動によって核酸を分離し、不織布で吸着させて透析精製する方法も開発されている(非特許文献1)。対象とする核酸がmRNAの場合、RNAのポリペプチド配列の5’末端ポリA配列に相補的に結合するポリT配列を成分として含む担体を使用して、mRNAのみを回収することができる(例えば、オリゴdTカラムとして知られている)。さらに、特許文献6には、カオチン性基を結合させた固相担体に核酸を吸着させ、次いでアニオン性物質で処理することによって核酸とカオチン性担体とを分離する方法が開示されており、磁性を有する担体に核酸吸着特性を持たせる手段も開発されている。特許文献7には、酸化鉄等の常磁性粒子に核酸を吸着させ、磁場の作用を利用して常磁性粒子を回収する方法が開示されている。   Various solid-phase extraction methods have been developed as methods for recovering nucleic acids more easily. The solid phase extraction method is a method for separating nucleic acid from contaminants in a sample by adsorbing the nucleic acid to a solid phase carrier having a property of reversibly binding to the nucleic acid, and then recovering the carrier. For example, a step of separating the nucleic acid from the carrier is further added. As a carrier for solid phase extraction, glass powder, glass fiber, silica particles, celite, non-woven fabric and the like are known. Examples of the solid-phase extraction method include the boom method, and a nucleic acid recovery method (Patent Document 5) that combines nucleic acid lysis and nuclease inactivation with a chaotropic agent and nucleic acid adsorption action of silica particles or diatom is proposed. ing. In addition, a method has been developed in which nucleic acids are separated by gel electrophoresis, adsorbed with a non-woven fabric, and purified by dialysis (Non-patent Document 1). When the target nucleic acid is mRNA, only the mRNA can be recovered using a carrier containing as a component a poly T sequence that complementarily binds to the 5 ′ terminal poly A sequence of the RNA polypeptide sequence (for example, , Known as oligo dT columns). Furthermore, Patent Document 6 discloses a method for separating a nucleic acid and a chaotic carrier by adsorbing the nucleic acid to a solid phase carrier to which a chaotic group is bound, and then treating with a anionic substance. Means for imparting nucleic acid adsorption properties to a carrier having a carrier have been developed. Patent Document 7 discloses a method of adsorbing nucleic acids to paramagnetic particles such as iron oxide and recovering the paramagnetic particles using the action of a magnetic field.

固相抽出法の場合、核酸の回収率は、担体の性質および担体の表面積に依存する。すなわち、繊維、粒子等の固相担体を用いる場合、使用可能な担体の量は溶液の容積に制限され、それによって吸着可能な核酸の量が制限される。したがって、サンプルが少量である場合、または目的とする核酸がサンプル中に微量しか存在しない場合等においては、核酸精製の段階で高い回収率を得ることが必要となる。   In the case of the solid phase extraction method, the nucleic acid recovery rate depends on the nature of the carrier and the surface area of the carrier. That is, when a solid phase carrier such as a fiber or particle is used, the amount of the carrier that can be used is limited to the volume of the solution, thereby limiting the amount of nucleic acid that can be adsorbed. Therefore, when the sample is in a small amount, or when the target nucleic acid is present in a very small amount in the sample, it is necessary to obtain a high recovery rate at the stage of nucleic acid purification.

以上のように、核酸を含む試料の種類あるいは抽出された核酸の使用目的により、様々な核酸抽出法が提案されているが、いずれの場合においても、沈殿、分離、洗浄、精製等の煩雑な操作を組み合わせて行う必要であり、簡易的と言われるアルカリ溶解法や煮沸法でも凍結、煮沸等の温度制御が要求される。また、DNAが回収できてもRNAの回収率が低い場合、あるいはその逆にDNAの回収率が低い場合や、短鎖の核酸の回収率が低い場合もあり、効率的で簡易な核酸回収法の開発が望まれている。
特開平11−253158号公報 特開平7−236499号公報 特許2791367号公報 特表2001−516763号公報 米国特許第5,234,809号 特開2001−352979号公報 特開2000−159791号公報 渡辺および大竹、「アガロースゲルからの新しいDNA回収法―透析膜と不織布を用いたDNA回収チップの開発」、蛋白質核酸酵素、1999年、第44巻、第10号
As described above, various nucleic acid extraction methods have been proposed depending on the type of nucleic acid-containing sample or the purpose of use of the extracted nucleic acid. In any case, complicated methods such as precipitation, separation, washing, and purification are required. It is necessary to combine the operations, and temperature control such as freezing and boiling is required even in the alkali dissolution method and boiling method which are said to be simple. Even if DNA can be recovered, the RNA recovery rate is low, or conversely, the DNA recovery rate may be low, or the recovery rate of short-chain nucleic acids may be low. Development is desired.
Japanese Patent Laid-Open No. 11-253158 JP-A-7-236499 Japanese Patent No. 2791367 JP-T-2001-516863 US Pat. No. 5,234,809 JP 2001-352979 A JP 2000-159791 A Watanabe and Otake, "New DNA recovery method from agarose gel-Development of DNA recovery chip using dialysis membrane and non-woven fabric", Protein Nucleic Acid Enzyme, 1999, Vol. 44, No. 10

従って、本発明の目的は、生体試料等に含まれる核酸を、従来のような煩雑な操作を必要とせず、簡単な操作で核酸を抽出し、増幅することができる試薬および方法を提供することである。   Accordingly, an object of the present invention is to provide a reagent and a method capable of extracting and amplifying a nucleic acid contained in a biological sample or the like by a simple operation without requiring a conventional complicated operation. It is.

上記目的に鑑み鋭意研究の結果、本発明者は、無機陽イオンおよび無機陰イオンから構成される無機塩と核酸を接触させると、核酸を含有する沈殿が生成し、夾雑物を含む試料等から核酸を効率的に回収できることを見出し、本発明を完成するに至った。   As a result of earnest research in view of the above object, the present inventor, when contacting an inorganic salt composed of an inorganic cation and an inorganic anion with a nucleic acid, produces a precipitate containing the nucleic acid, from a sample containing impurities. It has been found that nucleic acids can be efficiently recovered, and the present invention has been completed.

すなわち、本発明は、無機陽イオンおよび無機陰イオンから構成される無機塩を含有し、該無機塩が核酸との沈殿を生成する、核酸回収試薬に関する。   That is, the present invention relates to a nucleic acid recovery reagent containing an inorganic salt composed of an inorganic cation and an inorganic anion, and the inorganic salt forms a precipitate with the nucleic acid.

また、本発明は、無機陽イオンが鉄イオンおよび/または銅イオンである、前記核酸回収試薬に関する。   The present invention also relates to the nucleic acid recovery reagent, wherein the inorganic cation is an iron ion and / or a copper ion.

さらに、本発明は、無機陰イオンがリン酸イオンおよび/または水酸化物イオンである、前記核酸回収試薬に関する。   Furthermore, this invention relates to the said nucleic acid collection | recovery reagent whose inorganic anion is a phosphate ion and / or a hydroxide ion.

また、本発明は、無機塩が水酸化鉄、リン酸鉄、水酸化銅およびリン酸銅からなる群から選択される少なくとも1種である、前記核酸回収試薬に関する。   The present invention also relates to the nucleic acid recovery reagent, wherein the inorganic salt is at least one selected from the group consisting of iron hydroxide, iron phosphate, copper hydroxide, and copper phosphate.

さらに、本発明は、無機塩が水酸化鉄であり、さらに、マグネタイトを含有する、前記核酸回収試薬に関する。   Furthermore, the present invention relates to the nucleic acid recovery reagent, wherein the inorganic salt is iron hydroxide and further contains magnetite.

また、本発明は、無機塩がアルカリ水溶液中に含まれる、前記核酸回収試薬に関する。   The present invention also relates to the nucleic acid recovery reagent, wherein an inorganic salt is contained in an alkaline aqueous solution.

さらに、本発明は、さらに、アルブミン類を含有する、前記核酸回収試薬に関する。   Furthermore, the present invention further relates to the nucleic acid recovery reagent containing albumins.

また、本発明は、前記核酸回収試薬を含む、核酸増幅用試薬キットに関する。   The present invention also relates to a nucleic acid amplification reagent kit containing the nucleic acid recovery reagent.

さらに、本発明は、核酸と無機陽イオンおよび無機陰イオンから構成される無機塩との沈殿現象を利用して核酸を回収する、核酸回収方法に関する。   Furthermore, the present invention relates to a nucleic acid recovery method for recovering a nucleic acid by utilizing a precipitation phenomenon between the nucleic acid and an inorganic salt composed of an inorganic cation and an inorganic anion.

また、本発明は、試料中の核酸と無機塩とを共沈させる、前記核酸回収方法に関する。   The present invention also relates to the nucleic acid recovery method, wherein a nucleic acid and an inorganic salt in a sample are coprecipitated.

さらに、本発明は、無機塩の沈殿物を生成させた後、核酸を添加し、該無機塩の沈殿物に該核酸を吸着させる、前記核酸回収方法に関する。   Furthermore, the present invention relates to the method for recovering nucleic acid, wherein a nucleic acid precipitate is added after the inorganic salt precipitate is formed, and the nucleic acid is adsorbed to the inorganic salt precipitate.

また、本発明は、無機陽イオンが鉄イオンおよび/または銅イオンである、前記核酸回収方法に関する。   The present invention also relates to the nucleic acid recovery method, wherein the inorganic cation is an iron ion and / or a copper ion.

さらに、本発明は、無機陰イオンがリン酸イオンおよび/または水酸化物イオンである、前記核酸回収方法に関する。   Furthermore, the present invention relates to the nucleic acid recovery method, wherein the inorganic anion is a phosphate ion and / or a hydroxide ion.

また、本発明は、無機塩が水酸化鉄、リン酸鉄、水酸化銅およびリン酸銅からなる群から選択される少なくとも1種である、前記核酸回収方法に関する。   The present invention also relates to the nucleic acid recovery method, wherein the inorganic salt is at least one selected from the group consisting of iron hydroxide, iron phosphate, copper hydroxide, and copper phosphate.

さらに、本発明は、無機塩として水酸化鉄を用い、水酸化鉄およびマグネタイトと核酸を接触させ、核酸、水酸化鉄およびマグネタイトを含む複合体からなる沈殿物を生成させる、前記核酸回収方法に関する。   Furthermore, the present invention relates to the nucleic acid recovery method, wherein iron hydroxide is used as an inorganic salt, iron hydroxide and magnetite are brought into contact with nucleic acid, and a precipitate comprising a complex containing nucleic acid, iron hydroxide and magnetite is generated. .

また、本発明は、さらに、アルブミン類を含有する、前記核酸回収方法に関する。   Furthermore, the present invention further relates to the nucleic acid recovery method containing albumins.

さらに、本発明は、アルカリ性条件下で行う、前記核酸回収方法に関する。   Furthermore, the present invention relates to the nucleic acid recovery method performed under alkaline conditions.

また、本発明は、前記方法による核酸を含む沈殿物と核酸増幅用試薬とを接触させる工程を含む、核酸増幅方法に関する。   The present invention also relates to a nucleic acid amplification method comprising a step of bringing a precipitate containing a nucleic acid by the above method into contact with a nucleic acid amplification reagent.

さらに、本発明は、核酸以外の物質を洗浄除去する工程を含む、前記核酸増幅方法に関する。   Furthermore, this invention relates to the said nucleic acid amplification method including the process of wash-removing substances other than a nucleic acid.

また、本発明は、前記方法により回収した沈殿物について、以下の工程を施すことを含む、核酸増幅方法に関する。
a)核酸を含む沈殿物を磁性体により吸着させ、核酸以外の物質を除去する工程、および
b)核酸を含む沈殿物と核酸増幅用試薬とを接触させる工程。
The present invention also relates to a nucleic acid amplification method comprising subjecting the precipitate collected by the above method to the following steps.
a) a step of adsorbing a precipitate containing a nucleic acid by a magnetic substance to remove a substance other than the nucleic acid; and b) a step of bringing the precipitate containing a nucleic acid into contact with a nucleic acid amplification reagent.

さらに、本発明は、LAMP法を用いる、前記核酸増幅方法に関する。   Furthermore, the present invention relates to the nucleic acid amplification method using the LAMP method.

本発明によれば、核酸と無機塩との沈殿現象を利用して核酸を簡易に回収することができる。特に、無機陽イオンとして鉄イオンを用いた無機塩は、核酸との沈殿生成速度が速く、核酸を含む混合物から核酸を効率よく回収することができる。核酸は沈殿した無機塩に吸着させてもよいが、核酸の存在下で無機塩を加え、核酸を巻き込んで沈殿させるのがより効率的である。また、無機塩として水酸化鉄を使用する場合には、さらに試薬成分としてマグネタイトを加え、水酸化鉄およびマグネタイトの存在下で核酸を添加し、核酸、水酸化鉄およびマグネタイトを含む複合体からなる沈殿物を生成させるのが効果的である。このようにして生成した複合体は全体として磁性を有するため、磁気分離が可能であり、また、核酸増幅等の後の処理において核酸を含む沈殿物を磁性体で吸着し、核酸以外の物質を洗浄除去することが可能である。   According to the present invention, a nucleic acid can be easily recovered by utilizing a precipitation phenomenon between a nucleic acid and an inorganic salt. In particular, inorganic salts using iron ions as inorganic cations have a high rate of precipitation with nucleic acids, and can efficiently recover nucleic acids from a mixture containing nucleic acids. The nucleic acid may be adsorbed on the precipitated inorganic salt, but it is more efficient to add the inorganic salt in the presence of the nucleic acid and entrain and precipitate the nucleic acid. When iron hydroxide is used as the inorganic salt, magnetite is further added as a reagent component, nucleic acid is added in the presence of iron hydroxide and magnetite, and a complex containing nucleic acid, iron hydroxide and magnetite is formed. It is effective to form a precipitate. Since the complex produced in this way has magnetism as a whole, magnetic separation is possible. In addition, a precipitate containing nucleic acid is adsorbed with a magnetic substance in a subsequent process such as nucleic acid amplification, and a substance other than nucleic acid is adsorbed. It can be washed away.

さらに、本発明の重要な特徴は、生成した沈殿物から核酸を溶出させる操作を必要とせず、沈殿物に直接核酸増幅用試薬を作用させて沈殿物に含まれる核酸を増幅できることである。これは、本発明によって生成する核酸を含む沈殿物においては、核酸と無機塩による沈殿物を生成する場合、または核酸、水酸化鉄およびマグネタイトを含む複合体からなる沈殿物を生成する場合のいずれの場合も、核酸と無機塩または核酸と無機塩およびマグネタイトとがゆるやかな結合を形成するためであると考えられる。したがって、本発明によれば、より簡易に核酸を回収し、増幅することができる。   Furthermore, an important feature of the present invention is that nucleic acid contained in the precipitate can be amplified by directly acting the nucleic acid amplification reagent on the precipitate without requiring an operation for eluting the nucleic acid from the generated precipitate. This is because, in the precipitate containing the nucleic acid produced according to the present invention, either when producing a precipitate due to a nucleic acid and an inorganic salt, or when producing a precipitate comprising a complex containing nucleic acid, iron hydroxide and magnetite. In this case, it is considered that the nucleic acid and the inorganic salt or the nucleic acid and the inorganic salt and magnetite form a loose bond. Therefore, according to the present invention, nucleic acids can be recovered and amplified more easily.

[I]核酸回収試薬
本発明の核酸回収試薬は、無機陽イオンおよび無機陰イオンから構成される無機塩を含有する。
[I] Nucleic acid recovery reagent The nucleic acid recovery reagent of the present invention contains an inorganic salt composed of an inorganic cation and an inorganic anion.

(1)無機塩
無機塩は、核酸と沈殿を生成するものであればよい。無機塩を構成する無機陽イオンは、好ましくは周期律表第3族〜第12族の遷移金属元素のイオンを含有する塩であり、より好ましくは鉄イオンおよび/または銅イオンを含有する塩であり、さらに好ましくは鉄イオンを含有する塩である。鉄イオンは2価であっても3価であってもよい。また、銅イオンは1価であっても2価であってもよいが、通常2価である。
(1) Inorganic salt Any inorganic salt may be used as long as it generates a nucleic acid and a precipitate. The inorganic cation constituting the inorganic salt is preferably a salt containing ions of transition metal elements of Group 3 to Group 12 of the periodic table, more preferably a salt containing iron ions and / or copper ions. More preferably a salt containing iron ions. The iron ion may be divalent or trivalent. The copper ion may be monovalent or divalent, but is usually divalent.

無機塩を構成する無機陰イオンは、無機陽イオンとの組み合わせにより、核酸との反応で生成する沈殿の生成速度の速いものが好ましい。無機陰イオンとしては、例えば、水酸化物イオン、リン酸イオン、ピロリン酸イオン、炭酸イオン等が使用可能である。無機陰イオンは、核酸の回収率の観点から水酸化物イオンおよび/またはリン酸イオンが好ましく、磁気分離等の観点からは水酸化物イオンが好ましい。無機陽イオンおよび無機陰イオンは、それぞれ1種ずつ用いても2種以上を併用してもよい。   The inorganic anion constituting the inorganic salt is preferably a combination of an inorganic cation and a fast precipitation rate generated by a reaction with a nucleic acid. Examples of inorganic anions that can be used include hydroxide ions, phosphate ions, pyrophosphate ions, carbonate ions, and the like. The inorganic anion is preferably a hydroxide ion and / or a phosphate ion from the viewpoint of the nucleic acid recovery rate, and is preferably a hydroxide ion from the viewpoint of magnetic separation or the like. One inorganic cation and one inorganic anion may be used, or two or more inorganic cations may be used in combination.

本発明に用いる具体的な無機塩としては、水酸化鉄、リン酸鉄、水酸化銅、リン酸銅等を挙げることができる。これらの無機塩は単独で用いても2種以上を併用してもよい。本明細書において、水酸化鉄は水酸化第一鉄(水酸化鉄(II))、水酸化第二鉄(水酸化鉄(III))、水酸化第二鉄第一鉄(水酸化鉄(III)鉄(II))等を含み、リン酸鉄はリン酸第一鉄(リン酸鉄(II))、リン酸第二鉄(リン酸鉄(III))、リン酸鉄(III)鉄(II)、ピロリン酸鉄等を含む。また、水酸化銅は水酸化第一銅(水酸化銅(I))、水酸化第二銅(水酸化銅(II))等を含み、リン酸銅はリン酸第二銅(リン酸銅(II))、リン酸銅ナトリウム等を含む。核酸回収試薬に用いる無機塩の量は特に限定されず、試料中の核酸の量に応じて適宜調整してよい。   Specific examples of the inorganic salt used in the present invention include iron hydroxide, iron phosphate, copper hydroxide, copper phosphate and the like. These inorganic salts may be used alone or in combination of two or more. In this specification, iron hydroxide is ferrous hydroxide (iron hydroxide (II)), ferric hydroxide (iron hydroxide (III)), ferric hydroxide ferrous hydroxide (iron hydroxide ( III) iron (II)) and the like, and iron phosphate is ferrous phosphate (iron (II) phosphate), ferric phosphate (iron (III) phosphate), iron (III) phosphate (II), including iron pyrophosphate and the like. Moreover, copper hydroxide contains cuprous hydroxide (copper hydroxide (I)), cupric hydroxide (copper hydroxide (II)), etc., and copper phosphate is cupric phosphate (copper phosphate). (II)), sodium copper phosphate and the like. The amount of the inorganic salt used for the nucleic acid recovery reagent is not particularly limited, and may be appropriately adjusted according to the amount of nucleic acid in the sample.

本発明の核酸回収試薬は、無機塩と試料中の核酸を接触させることができれば、試薬の形態はとくに限定されない。例えば、生体試料(血液、尿等)中に無機塩を直接添加する形態であっても、無機塩を含有する溶液(水溶液、バッファー(緩衝液)等)の形態であってもよい。無機塩が溶液中に含まれる場合、無機塩はその一部が無機陽イオンおよび無機陰イオンに解離していてもよい。   The form of the reagent of the nucleic acid recovery reagent of the present invention is not particularly limited as long as the inorganic salt can be brought into contact with the nucleic acid in the sample. For example, the inorganic salt may be added directly to a biological sample (blood, urine, etc.) or the solution may be in the form of a solution (aqueous solution, buffer (buffer), etc.) containing the inorganic salt. When an inorganic salt is contained in the solution, a part of the inorganic salt may be dissociated into an inorganic cation and an inorganic anion.

無機塩を含有する溶液はアルカリ水溶液であるのが好ましく、アルカリ水溶液は、好ましくはpH7を超えて14以下であり、より好ましくはpH10〜13である。また、アルカリ水溶液は、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム等を含有する水溶液であっても、リン酸バッファー、トリスバッファー等のアルカリ性のバッファーであってもよい。また、アルカリ水溶液にアルコール等の有機溶媒等を添加してもよい。   The solution containing the inorganic salt is preferably an alkaline aqueous solution, and the alkaline aqueous solution is preferably more than pH 7 and 14 or less, more preferably pH 10-13. The alkaline aqueous solution may be an aqueous solution containing sodium hydroxide, potassium hydroxide or the like, or an alkaline buffer such as a phosphate buffer or a tris buffer. Moreover, you may add organic solvents, such as alcohol, to alkaline aqueous solution.

核酸回収試薬は上記の無機塩を直接含有してもよく、また安定性等を考慮して使用時に無機塩を調製してもよい。例えば、無機塩として水酸化鉄を用いる場合、塩化第二鉄(塩化鉄(III))(例えば、塩化鉄を含有する水溶液)と水酸化ナトリウム水溶液等のアルカリ水溶液を用意し、塩化鉄(III)にアルカリ水溶液を加えることにより水酸化鉄を調製してもよい。また、無機塩としてリン酸鉄を用いる場合は、塩化鉄(III)にアルカリ水溶液としてリン酸バッファーを加えることによりリン酸鉄を調製してもよい。ここで用いるアルカリ水溶液は、上記のアルカリ水溶液の場合と同様でよく、例えば、pHは好ましくはpH7を超えて14以下、より好ましくはpH10〜13である。   The nucleic acid recovery reagent may directly contain the above inorganic salt, or may be prepared at the time of use in consideration of stability and the like. For example, when iron hydroxide is used as an inorganic salt, an alkaline aqueous solution such as ferric chloride (iron (III) chloride) (for example, an aqueous solution containing iron chloride) and an aqueous sodium hydroxide solution is prepared, and iron chloride (III ) Iron hydroxide may be prepared by adding an alkaline aqueous solution. In addition, when iron phosphate is used as the inorganic salt, iron phosphate may be prepared by adding a phosphate buffer as an alkaline aqueous solution to iron (III) chloride. The alkaline aqueous solution used here may be the same as the case of the alkaline aqueous solution described above. For example, the pH is preferably more than pH 7 and 14 or less, more preferably pH 10 to 13.

(2)マグネタイト
無機塩が水酸化鉄の場合、核酸回収試薬の構成成分としてマグネタイトを加え、水酸化鉄およびマグネタイトと核酸試料とを接触させ、核酸、水酸化鉄およびマグネタイトの複合体を生成させ、生成した核酸を含む沈殿物を磁気分離により溶液から分離することができる。マグネタイト(Fe)は、核酸と無機塩との複合体を形成する観点から微粒子であるのが好ましく、マグネタイトの粒径は好ましくは0.01〜10μm、より好ましくは0.2〜1μmである。マグネタイトの粒径をかかる範囲に調整することにより、核酸および無機塩との適度な複合体が形成され、核酸の回収効率を高めることができる。
(2) Magnetite When the inorganic salt is iron hydroxide, magnetite is added as a constituent of the nucleic acid recovery reagent, and iron hydroxide and magnetite are brought into contact with the nucleic acid sample to form a nucleic acid, iron hydroxide and magnetite complex. The precipitate containing the produced nucleic acid can be separated from the solution by magnetic separation. Magnetite (Fe 3 O 4 ) is preferably a fine particle from the viewpoint of forming a complex of a nucleic acid and an inorganic salt, and the particle size of the magnetite is preferably 0.01 to 10 μm, more preferably 0.2 to 1 μm. It is. By adjusting the particle size of the magnetite to such a range, an appropriate complex with the nucleic acid and the inorganic salt is formed, and the recovery efficiency of the nucleic acid can be increased.

核酸回収試薬中のマグネタイトの量は特に限定されないが、核酸および無機塩との適度な複合体を形成する観点から、無機塩に対するモル比(無機塩:マグネタイト)が、好ましくは1:0.1〜10、より好ましくは1:0.5〜2である。   The amount of magnetite in the nucleic acid recovery reagent is not particularly limited, but from the viewpoint of forming an appropriate complex with nucleic acid and inorganic salt, the molar ratio to inorganic salt (inorganic salt: magnetite) is preferably 1: 0.1. -10, more preferably 1: 0.5-2.

(3)その他の成分
本発明の核酸回収試薬は、本発明の目的を損わない範囲で上記以外の成分を適宜含有してもよい。他の成分の例としては、pH緩衝剤、アルブミン類[牛血清アルブミン(BSA)等]等のタンパク質、界面活性剤、糖類等が挙げられる。特に、試薬にアルブミン類を添加すると沈殿生成の反応速度が速くなり、回収率が上昇するため好ましい。アルブミン類の添加量は、反応溶液の全質量に対し、好ましくは0.1〜20質量%であり、より好ましくは0.5〜4質量%である。
(3) Other components The nucleic acid recovery reagent of the present invention may appropriately contain components other than those described above as long as the object of the present invention is not impaired. Examples of other components include pH buffers, proteins such as albumins [bovine serum albumin (BSA), etc.], surfactants, saccharides, and the like. In particular, it is preferable to add albumins to the reagent because the reaction rate of precipitation is increased and the recovery rate is increased. The amount of albumin added is preferably 0.1 to 20% by mass, more preferably 0.5 to 4% by mass, based on the total mass of the reaction solution.

本発明の核酸回収試薬は、例えば核酸増幅用試薬キットを構成する試薬として用いることもできる。本発明の核酸回収試薬で回収した核酸は、沈殿物から核酸を溶出する等の操作により分離する必要がなく、汎用性を有することから、PCR、RT−PCR、LAMP等の任意の核酸増幅用試薬に用いることができる。   The nucleic acid recovery reagent of the present invention can also be used as a reagent constituting a nucleic acid amplification reagent kit, for example. The nucleic acid recovered with the nucleic acid recovery reagent of the present invention does not need to be separated by an operation such as elution of the nucleic acid from the precipitate, and has versatility. Therefore, for nucleic acid amplification such as PCR, RT-PCR, LAMP, etc. It can be used as a reagent.

[II]核酸回収方法
本発明の核酸回収方法は、無機陽イオンと無機陰イオンを組み合わせた無機塩と核酸とを接触させることにより、核酸と無機塩との沈殿物を生じさせて核酸を回収するものである。沈殿物は、溶液中、核酸と無機塩を接触させて生成させてもよいし、無機沈殿物自体に核酸の吸着性があるため、予め無機沈殿物を生成させた後に核酸試料を添加して吸着させてもよい。試験の結果では、溶液中で核酸と無機塩を接触させて沈殿物を生成させた方が、高い回収率を示している。これは、無機沈殿物が生成する際に核酸を取り込んで一緒に沈殿するためと考えられる。もちろん、無機沈殿物生成後に核酸試料を添加しても核酸検出等の実用に価する回収率を達成できる。
[II] Nucleic Acid Recovery Method The nucleic acid recovery method of the present invention recovers a nucleic acid by bringing a nucleic acid and an inorganic salt into a precipitate by contacting the nucleic acid with an inorganic salt combining an inorganic cation and an inorganic anion. To do. The precipitate may be generated by bringing the nucleic acid and the inorganic salt into contact with each other in the solution. Since the inorganic precipitate itself has the adsorptivity of nucleic acid, the nucleic acid sample is added after the inorganic precipitate is generated in advance. It may be adsorbed. As a result of the test, a higher recovery rate is obtained when the precipitate is formed by bringing the nucleic acid and the inorganic salt into contact with each other in the solution. This is probably because the nucleic acid is taken in and precipitated together when an inorganic precipitate is formed. Of course, even if a nucleic acid sample is added after the formation of the inorganic precipitate, a recovery rate equivalent to practical use such as nucleic acid detection can be achieved.

本発明の核酸回収方法は、溶液中、核酸と無機塩を接触させて沈殿物を生成させる場合、および予め無機沈殿を生成させた後に核酸を添加して吸着させる場合のいずれの場合も上記の本発明の核酸回収試薬を用いて行うことができる。   The nucleic acid recovery method of the present invention is the above-mentioned method in any case where a nucleic acid and an inorganic salt are brought into contact with each other in a solution to generate a precipitate, and when a nucleic acid is added and adsorbed after an inorganic precipitate has been generated in advance. This can be performed using the nucleic acid recovery reagent of the present invention.

本発明においては、核酸回収反応をアルカリ性条件で行うのが好ましい。また、遺伝子検査においては、測定対象のウイルス、細菌等をアルカリ(例えば、水酸化ナトリウム水溶液)で溶解して核酸を遊離させるという方法を用いることができるが、本発明によれば、アルカリ溶液を用いることにより核酸回収試薬が溶菌化試薬を兼ねることが可能であるため、操作がさらに簡便となる。   In the present invention, the nucleic acid recovery reaction is preferably performed under alkaline conditions. In genetic testing, a method of dissolving a virus, bacteria, etc. to be measured with an alkali (for example, an aqueous sodium hydroxide solution) to release nucleic acid can be used. According to the present invention, an alkaline solution is used. By using it, the nucleic acid recovery reagent can also serve as a lysis reagent, so that the operation is further simplified.

沈殿した核酸の回収方法は、最終的な利用形態によって選択することが可能である。例えば遠心分離、ろ紙によるろ過等の汎用されている方法を用いることもできる。   The method for recovering the precipitated nucleic acid can be selected depending on the final utilization form. For example, a widely used method such as centrifugal separation or filtration with filter paper can be used.

マグネタイトの存在下で、核酸を含む沈殿物を生成させる場合、マグネタイトだけでなく、沈殿物全体が磁性化するため、沈殿物の移送や核酸回収操作に磁力を用いることが可能となる。これは、マグネタイトの微粒子が効率的に沈殿物へ取り込まれるためと推察される。図10に示すように、磁力によって核酸を含む無機沈殿物を回収する方法は、核酸増幅反応の阻害成分等の不溶成分の混入が少ないため、遠心分離等の方法より高い精製度を有する。   When a precipitate containing nucleic acid is generated in the presence of magnetite, not only magnetite but also the entire precipitate is magnetized, so that magnetic force can be used for the transfer of the precipitate and the nucleic acid recovery operation. This is presumed to be because magnetite fine particles are efficiently taken into the precipitate. As shown in FIG. 10, the method of recovering an inorganic precipitate containing nucleic acid by magnetic force has a higher degree of purification than a method such as centrifugation because there is little contamination with insoluble components such as a nucleic acid amplification reaction inhibiting component.

回収した無機沈殿物は、さらにバッファー等を用いて核酸以外の物質を洗浄することが可能である。核酸増幅反応等に供する場合、予め反応を阻害する物質を除去することが望ましい。   The recovered inorganic precipitate can be further washed with substances other than nucleic acids using a buffer or the like. When using for nucleic acid amplification reaction etc., it is desirable to remove the substance which inhibits reaction beforehand.

本発明の核酸回収方法は、核酸として長鎖のDNAに限らず、RNA等の短鎖の核酸も回収することができる。例えば、542bの短鎖核酸であるSARS管理検体も回収することが可能である。   The nucleic acid recovery method of the present invention can recover not only long-chain DNA as nucleic acid but also short-chain nucleic acid such as RNA. For example, it is possible to collect a SARS control sample which is a short-chain nucleic acid of 542b.

このようにして抽出された核酸は、PCR法、LAMP法等の核酸増幅法やハイブリダイゼーション法等の公知の核酸分析等に利用できる。   The nucleic acid thus extracted can be used for known nucleic acid analysis such as a nucleic acid amplification method such as a PCR method and a LAMP method and a hybridization method.

[III]核酸増幅法
代表的な核酸増幅法としてはPCR法が挙げられる。PCR法は、標的配列の両端の一方のセンス鎖を認識するオリゴヌクレオチドと、両端の他方のアンチセンス鎖を認識するオリゴヌクレオチドを2種類のプライマーとして用いた核酸増幅法である。相補的な2本鎖核酸を熱処理により1本鎖核酸に変性させ、各々の1本鎖核酸に3’側からプライマーを相補的に結合(アニール)させ、引き続き、鋳型依存性核酸合成酵素により結合したプライマーからDNA伸長させる。ここまでのサイクルを繰り返し行うことによって、標的配列を指数関数的に増幅することができ、その増幅産物は、電気泳動法、蛍光性インターカレーター法等を用いて検出できる。ただし、PCR法は各段階で反応温度が異なるため、反応の段階に応じて反応温度を制御する必要がある。
[III] Nucleic Acid Amplification Method A typical nucleic acid amplification method is a PCR method. The PCR method is a nucleic acid amplification method using an oligonucleotide that recognizes one sense strand at both ends of a target sequence and an oligonucleotide that recognizes the other antisense strand at both ends as two types of primers. A complementary double-stranded nucleic acid is denatured into a single-stranded nucleic acid by heat treatment, and a primer is complementarily bound (annealed) to each single-stranded nucleic acid from the 3 ′ side, followed by binding with a template-dependent nucleic acid synthase. DNA is extended from the prepared primer. By repeating the cycle so far, the target sequence can be amplified exponentially, and the amplification product can be detected using electrophoresis, fluorescent intercalator method or the like. However, since the reaction temperature differs in each stage in the PCR method, it is necessary to control the reaction temperature according to the stage of the reaction.

本発明に使用可能な核酸増幅法はPCR法に限られず、好適な方法として例えば、LAMP(Loop−mediated isothermal AMPlification of DNA)法と呼ばれるループ媒介等温増幅法(国際公開第00/28082号等参照)が挙げられる。LAMP法は、鋳型となるヌクレオチドに自身の3'末端をアニールさせて相補鎖合成の起点とするとともに、このとき形成されるループにアニールするプライマーを組み合わせることにより、等温での相補鎖合成反応を可能とした核酸増幅法である。また、LAMP法では、プライマーの3'末端が常に試料に由来する領域に対してアニールするため、塩基配列の相補的結合によるチェック機構が繰り返し機能する。その結果、特異性の高い遺伝子配列の増幅反応が可能である。   The nucleic acid amplification method that can be used in the present invention is not limited to the PCR method. As a suitable method, for example, a loop-mediated isothermal amplification method (International Publication No. 00/28082 or the like) called a LAMP (Loop-mediated thermal amplification of DNA) method is used. ). The LAMP method anneals its 3 'end to the template nucleotide and uses it as a starting point for complementary strand synthesis. By combining primers that anneal to the loop formed at this time, isothermal complementary strand synthesis reaction is performed. This is a possible nucleic acid amplification method. In the LAMP method, the 3 ′ end of the primer always anneals to the region derived from the sample, so that the check mechanism by complementary binding of the base sequence functions repeatedly. As a result, a highly specific gene sequence amplification reaction is possible.

LAMP法では、計6領域の塩基配列を認識する少なくとも4種類のオリゴヌクレオチドからなるプライマー(インナープライマーFおよびRとアウタープライマーFおよびR)、鎖置換合成活性を有する鋳型依存性核酸合成酵素、および基質を用い、熱変性を必要とせずに、終始等温で速やかに特異性の高い遺伝子増幅反応を進行させることができる。   In the LAMP method, primers (inner primer F and R and outer primer F and R) consisting of at least four types of oligonucleotides that recognize a total of six regions of base sequences, a template-dependent nucleic acid synthase having strand displacement synthesis activity, and A substrate can be used and a gene amplification reaction with high specificity can proceed promptly at an isothermal temperature without requiring heat denaturation.

本発明の核酸増幅法は、核酸を含む沈殿物と核酸増幅用試薬とを接触させる工程を含む。本発明の核酸回収試薬によって得られる沈殿物は、沈殿物から核酸を溶出させる操作を必要とせず、そのまま上記の核酸増幅法を用いて増幅させることができる。また、核酸増幅において、核酸以外の物質を洗浄除去する工程を含んでもよい。   The nucleic acid amplification method of the present invention includes a step of bringing a precipitate containing a nucleic acid into contact with a nucleic acid amplification reagent. The precipitate obtained by the nucleic acid recovery reagent of the present invention does not require an operation for eluting the nucleic acid from the precipitate, and can be amplified as it is using the above-described nucleic acid amplification method. Further, the nucleic acid amplification may include a step of washing away substances other than the nucleic acid.

本発明の核酸増幅方法の好ましい実施態様は、水酸化鉄およびマグネタイトの存在下で核酸試料を加え、核酸、水酸化鉄およびマグネタイトを含む複合体を沈殿物として回収し、生成した核酸を含む沈殿物について以下の工程による処理を施すことを含む。
a)核酸を含む沈殿物を磁性体により吸着させ、核酸以外の物質を除去する工程、および
b)核酸を含む沈殿物と核酸増幅用試薬とを接触させる工程。
In a preferred embodiment of the nucleic acid amplification method of the present invention, a nucleic acid sample is added in the presence of iron hydroxide and magnetite, a complex containing nucleic acid, iron hydroxide and magnetite is recovered as a precipitate, and a precipitate containing the produced nucleic acid is obtained. It includes processing the object according to the following steps.
a) a step of adsorbing a precipitate containing a nucleic acid by a magnetic substance to remove a substance other than the nucleic acid; and b) a step of bringing the precipitate containing a nucleic acid into contact with a nucleic acid amplification reagent.

この方法は、核酸、水酸化鉄およびマグネタイトを含む複合体からなる沈殿物が、沈殿物全体に磁性を有することを利用したものであり、これにより核酸以外の物質を洗浄除去することができる。また、本発明の回収方法により生成した沈殿物は、核酸が水酸化鉄およびマグネタイトにゆるやかに結合しているため、沈殿物を核酸増幅用試薬と直接接触させることにより、沈殿物に含まれる核酸を増幅することができる。   This method utilizes the fact that a precipitate made of a complex containing nucleic acid, iron hydroxide and magnetite has magnetism in the entire precipitate, whereby substances other than nucleic acid can be washed away. In addition, since the nucleic acid is gently bound to iron hydroxide and magnetite in the precipitate produced by the recovery method of the present invention, the nucleic acid contained in the precipitate is brought into direct contact with the nucleic acid amplification reagent. Can be amplified.

以下、本発明を実施例により更に具体的に説明するが、本発明は、これらの実施例に限定されるものではない。   EXAMPLES Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to examples, but the present invention is not limited to these examples.

実施例1
リン酸鉄(III)を用いた共沈法による核酸の回収およびLAMP法による核酸増幅
1.100mMの塩化鉄(III)水溶液(50mMのHClを含む)2.5μLをPCRチューブ(MJ Research, Inc. 8−strip 0.2mL thin−wall tubes)に分注した。
2.検体液(鋳型核酸(10コピーのλDNA)を含む100mMのリン酸バッファー溶液pH8.0)5μLを添加し、得られた前処理液をピペッティングで混合した。ただちに金属イオンが反応し、リン酸化物の沈殿を生じた。
3.卓上小型遠心分離機(6000rpm)により10秒間遠心分離し、沈殿物をペレットにした。
4.洗浄バッファー(10mMリン酸バッファー、pH8.0、0.1% Tween20)92.5μLを添加し、軽くピペッティングした。
5.卓上小型遠心分離機で軽くスピンダウンした後、添加した洗浄バッファー95μLを抜き取った(洗浄1回目)。
6.洗浄バッファー95μLを加え、軽くピペッティングした後に添加した洗浄バッファー95μLを抜き取った(洗浄2回目)。この操作を2回(2回洗浄)または4回(4回洗浄)繰り返した。洗浄したペレットを核酸増幅の試料とした。
7.ポジティブコントロール(PC)として、塩化鉄(III)水溶液を添加せず、検体液のみを核酸増幅の試料とした。また、ネガティブコントロール(NC)として、100mMリン酸バッファーpH8.0または水酸化ナトリウム水溶液0.25M水溶液を核酸増幅の試料とした。
8.LAMP法による核酸増幅
以下に示すLAMP反応液20μLを上記試料に添加し、ABI−7700(アプライドバイオシステムズ社製)を用いて沈殿物に含まれる核酸を増幅した。
LAMP反応液(Loopamp DNA増幅キット、栄研化学(株)製)の基本組成
Tris-HCl(pH8.8) 20mM
KCl 10mM
(NH)SO 10mM
MgSO 8mM
Tween20 0.1%
ベタイン(Betaine) 0.8M
dNTPs 5.6mM
インナープライマー(FIP,BIP) 3.2μM
アウタープライマー(F3,B3) 0.8μM
(ループプライマー 1.6μM)
YO(オキサゾールイエロー) 0.25μg/mL
Bstポリメラーゼ 8U/tube
Example 1
Nucleic acid recovery by coprecipitation method using iron (III) phosphate and nucleic acid amplification by LAMP method 1. Add 2.5 μL of 100 mM iron (III) chloride aqueous solution (containing 50 mM HCl) to PCR tube (MJ Research, Inc. 8-strip 0.2 mL thin-wall tubes).
2. Sample solution was added (100 mM phosphate buffer solution pH8.0 containing template nucleic acid (10 4 copies of λDNA)) 5μL, a pretreatment solution obtained was mixed by pipetting. Immediately, metal ions reacted to cause precipitation of phosphorous oxide.
3. Centrifugation was carried out for 10 seconds with a desktop small centrifuge (6000 rpm) to pelletize the precipitate.
4). 92.5 μL of washing buffer (10 mM phosphate buffer, pH 8.0, 0.1% Tween 20) was added and lightly pipetted.
5. After lightly spinning down with a desktop small centrifuge, 95 μL of the added washing buffer was extracted (first washing).
6). After adding 95 μL of washing buffer and lightly pipetting, 95 μL of washing buffer added was extracted (second wash). This operation was repeated twice (washing twice) or four times (washing four times). The washed pellet was used as a sample for nucleic acid amplification.
7). As a positive control (PC), an aqueous solution of iron (III) chloride was not added, and only the sample solution was used as a nucleic acid amplification sample. As a negative control (NC), a 100 mM phosphate buffer pH 8.0 or a sodium hydroxide aqueous solution 0.25M aqueous solution was used as a nucleic acid amplification sample.
8). Nucleic acid amplification by the LAMP method 20 μL of the LAMP reaction solution shown below was added to the above sample, and the nucleic acid contained in the precipitate was amplified using ABI-7700 (manufactured by Applied Biosystems).
Basic composition of LAMP reaction solution (Loopamp DNA amplification kit, manufactured by Eiken Chemical Co., Ltd.) Tris-HCl (pH 8.8) 20 mM
KCl 10 mM
(NH 4 ) 2 SO 4 10 mM
MgSO 4 8 mM
Tween 20 0.1%
Betaine 0.8M
dNTPs 5.6 mM
Inner primer (FIP, BIP) 3.2μM
Outer primer (F3, B3) 0.8μM
(Loop primer 1.6μM)
YO (Oxazole Yellow) 0.25 μg / mL
Bst polymerase 8U / tube

プライマー:
・DNA増幅系 λDNA LH4.3
FIP:AGGCCAAGCT GCTTGCGGTA GCCGGACGCT ACCAGCTTCT
BIP:CAGGACGCTG TGGCATTGCA GATCATAGGT AAAGCGCCAC GC
F3: AAAACTCAAAT CAACAGGCG
B3: GACGGATATCA CCACGATCA

鋳型
市販(タカラバイオ(株))のλDNA(48.5kbp)を希釈して使用した。
核酸増幅
検体液から回収した核酸を含む沈殿物に20μLに調製したLAMP反応液(1.25×)を添加し、そのままABI−7700を用いて反応温度64℃で増幅した。図1に示すように核酸の増幅を確認した。
Primer:
・ DNA amplification system λDNA LH4.3
FIP: AGGCCAAGCT GCTTGCGGTA GCCGGACGCT ACCAGCTTCT
BIP: CAGGACGCTG TGGCATTGCA GATCATAGGT AAAGCGCCAC GC
F3: AAAACTCAAAT CAACAGGCG
B3: GACGGATATCA CCACGATCA

Template Commercially available (Takara Bio Inc.) λDNA (48.5 kbp) was diluted and used.
Nucleic acid amplification A LAMP reaction solution (1.25 ×) prepared to 20 μL was added to a precipitate containing nucleic acid recovered from a sample solution, and amplified using ABI-7700 as it was at a reaction temperature of 64 ° C. Nucleic acid amplification was confirmed as shown in FIG.

実施例2
水酸化鉄(III)を用いた共沈法による核酸の回収およびLAMP法による核酸増幅
検体液としてリン酸バッファーの代わりに0.25Mの水酸化ナトリウムを含む溶液を用いた以外、実施例1と同様にして実験を行った。図2に示すように核酸の増幅を確認した。
Example 2
Recovery of nucleic acid by coprecipitation method using iron (III) hydroxide and amplification of nucleic acid by LAMP method Example 1 except that a solution containing 0.25 M sodium hydroxide instead of phosphate buffer was used as a sample solution. The experiment was conducted in the same manner. As shown in FIG. 2, nucleic acid amplification was confirmed.

実施例3
リン酸銅(II)を用いた共沈法による核酸の回収およびLAMP法による核酸増幅
塩化鉄の代わりに硫酸銅を用いた以外、実施例1と同様にして実験を行った。硫酸銅水溶液には50mMの硫酸を含む。図3に示すように核酸の増幅を確認した。
Example 3
Nucleic acid recovery by coprecipitation method using copper (II) phosphate and nucleic acid amplification by LAMP method An experiment was conducted in the same manner as in Example 1 except that copper sulfate was used instead of iron chloride. The aqueous copper sulfate solution contains 50 mM sulfuric acid. Nucleic acid amplification was confirmed as shown in FIG.

実施例4
検体液からのRNAの回収およびLAMP法によるRNAの増幅
検体をSARS管理検体へ変更し、核酸増幅をRNA増幅系で行った以外、実施例1と同様にして実験を行った。
LAMP反応液(Loopamp RNA増幅キット、栄研化学(株)製)の基本組成
Tris−HCl(pH8.8) 20mM
KCl 10mM
(NHSO 10mM
MgSO 8mM
Tween20 0.1%
ベタイン(Betaine) 0.8M
dNTPs 5.6mM
インナープライマー(FIP,BIP) 3.2μM
アウタープライマー(F3,B3) 0.8μM
(ループプライマー 1.6μM)
YO(オキサゾールイエロー) 0.25μg/mL
酵素混合物(enzyme mix) 1μL/tube
Example 4
Recovery of RNA from sample solution and amplification of RNA by LAMP method The experiment was conducted in the same manner as in Example 1 except that the sample was changed to a SARS control sample and nucleic acid amplification was performed in the RNA amplification system.
Basic composition of LAMP reaction solution (Loopamp RNA amplification kit, manufactured by Eiken Chemical Co., Ltd.) Tris-HCl (pH 8.8) 20 mM
KCl 10 mM
(NH 4 ) 2 SO 4 10 mM
MgSO 4 8 mM
Tween 20 0.1%
Betaine 0.8M
dNTPs 5.6 mM
Inner primer (FIP, BIP) 3.2μM
Outer primer (F3, B3) 0.8μM
(Loop primer 1.6μM)
YO (Oxazole Yellow) 0.25 μg / mL
Enzyme mix 1 μL / tube

プライマー
・RNA増幅系 SARSキット
FIP:TGCATGACAG CCCTCGAAGA AGCTATTCGT CAC
BIP:GCTGTGGGTA CTAACCTACC TGTCAACATA ACCAGTCGG
F3: CTAATATGTT TATCACCCGC
B3: CTCTGGTGAA TTCTGTGTT
FLP:AAAGCCAATC CACGC
BLP:CCAGCTAGGA TTTTCTACAG G

鋳型
SARS管理検体(400コピー/5μL;542b)を使用
核酸増幅
検体液から回収した核酸を含む沈殿物に20μLに調製したLAMP反応液(1.25×)を添加し、そのままABI−7700を用いて反応温度62.5℃で増幅した。図4に示すように核酸の増幅を確認した。
Primer / RNA amplification system SARS kit
FIP: TGCATGACAG CCCTCGAAGA AGCTATTCGT CAC
BIP: GCTGTGGGTA CTAACCTACC TGTCAACATA ACCAGTCGG
F3: CTAATATGTT TATCACCCGC
B3: CTCTGGTGAA TTCTGTGTT
FLP: AAAGCCAATC CACGC
BLP: CCAGCTAGGA TTTTCTACAG G

Using template SARS control sample (400 copies / 5 μL; 542b) Nucleic acid amplification Add 20 μL of LAMP reaction solution (1.25 ×) to the precipitate containing nucleic acid recovered from the sample solution, and use ABI-7700 as it is The reaction was amplified at a reaction temperature of 62.5 ° C. Nucleic acid amplification was confirmed as shown in FIG.

実施例5
濾紙による核酸の回収
実施例1で生成した沈澱物を濾紙に回収する実験を行った。沈澱物を生成させた反応液を洗浄液で1mLとした後、ろ過デバイスでろ過し、1mLの洗浄バッファーで2回洗浄した後、その濾紙をLAMP反応液へ投入した。ポジティブコントロール(PC)およびネガティブコントロール(NC)についても同様の操作を行った。蛍光リアルタイム測定機ロータージーンを用いて増幅を調べた。図5に示すように核酸の増幅を確認した。
Example 5
Recovery of nucleic acid using filter paper An experiment was conducted in which the precipitate produced in Example 1 was recovered on filter paper. After making the reaction liquid which produced | generated the precipitate into 1 mL with a washing | cleaning liquid, after filtering with a filtration device and washing | cleaning twice with 1 mL washing | cleaning buffer, the filter paper was thrown into the LAMP reaction liquid. The same operation was performed for the positive control (PC) and the negative control (NC). Amplification was examined using a fluorescence real-time measuring machine rotor gene. As shown in FIG. 5, nucleic acid amplification was confirmed.

実施例6
吸着法による核酸の回収およびLAMP法による核酸増幅
1.50mMのHClを含む100mM塩化鉄(III)水溶液2.5μLをPCRチューブに分注した。
2.鋳型を含まない疑似検体液(100mMリン酸バッファーpH8.0または水酸化ナトリウム水溶液0.25M水溶液)5μLを添加し、得られた前処理液をピペッティングで混合した。ただちに金属イオンが反応し沈殿(リン酸化物あるいは水酸化物)を生じた。
3.卓上小型遠心機(6000rpm)で10秒間遠心分離し、沈殿をペレットにした。
4.上清5μL抜き取り、鋳型核酸(10コピーのλDNA)溶液5μL添加して軽くピペッティングし、10分間放置することによって鋳型核酸を無機沈澱に吸着させた。
5.以下、実施例1のプロトコールと同様の操作で洗浄を行い、核酸増幅の試料とした。
6.ポジティブコントロール(PC)として、検体液のみを核酸増幅の試料とした。また、ネガティブコントロール(NC)として、100mMリン酸バッファーpH8.0または水酸化ナトリウム水溶液0.25M水溶液を核酸増幅の試料とした。
7.上記の試料をLAMP反応に供した。実施例1および2の共沈法による場合と比較した結果を図6に示す。図6(A)および(B)に示すように、無機塩としてリン酸鉄を用いた場合、水酸化鉄を用いた場合のいずれの場合においても核酸の増幅を確認した。
Example 6
Nucleic acid recovery by adsorption method and nucleic acid amplification by LAMP method 2.5 μL of 100 mM iron (III) chloride aqueous solution containing 1.50 mM HCl was dispensed into a PCR tube.
2. 5 μL of a pseudo sample solution not containing a template (100 mM phosphate buffer pH 8.0 or sodium hydroxide aqueous solution 0.25 M aqueous solution) was added, and the resulting pretreatment solution was mixed by pipetting. Immediately, metal ions reacted to form precipitates (phosphorus oxide or hydroxide).
3. The precipitate was pelleted by centrifuging for 10 seconds with a desktop small centrifuge (6000 rpm).
4). Withdrawn supernatant 5 [mu] L, template nucleic acid (10 4 copies of [lambda] DNA) solution 5 [mu] L was added gently pipetted and the template nucleic acid is adsorbed on the inorganic precipitate by leaving 10 minutes.
5. Thereafter, washing was performed in the same manner as in the protocol of Example 1 to obtain a nucleic acid amplification sample.
6). As a positive control (PC), only the sample solution was used as a sample for nucleic acid amplification. As a negative control (NC), a 100 mM phosphate buffer pH 8.0 or a sodium hydroxide aqueous solution 0.25M aqueous solution was used as a nucleic acid amplification sample.
7). The above sample was subjected to a LAMP reaction. The result compared with the case by the coprecipitation method of Example 1 and 2 is shown in FIG. As shown in FIGS. 6A and 6B, nucleic acid amplification was confirmed in both cases where iron phosphate was used as the inorganic salt and iron hydroxide was used.

実施例7
マグネタイトを用いた核酸の回収
1.50mMのHClを含む100mM塩化鉄(III)水溶液2.5μLおよび0.2%マグネタイト懸濁液1μLをPCRチューブに分注した。
2.0.3M水酸化ナトリウム水溶液、0.15%Tween20を含む前処理液に鋳型核酸溶液(検体液)5μLを添加し、95℃で5分間加熱した後に室温で冷却したものを1のチューブに分注し、得られた液をピペッティングで混合した。
3.ネオジウム磁石上にチューブを配置し、沈殿を凝集させた。7.5μLを残して上清を抜き取った。
4.ネオジウム磁石上で洗浄バッファー(10mMリン酸バッファーpH8.0、0.1% Tween20)92.5μLを添加し、軽くピペッティングした後、添加した洗浄バッファー95μLを抜き取った。(洗浄1回目)
5.ネオジウム磁石上で洗浄バッファー92.5μLを添加し、軽くピペッティングした後、添加した洗浄バッファー95μLを抜き取った。(洗浄2回目)
6.対照として水酸化鉄を用いず、マグネタイトのみを添加した前処理液を調製し、これに検体液を加えて同様に処理した。また、ポジティブコントロール(PC)として、検体液のみを核酸増幅の試料とした。また、ネガティブコントロール(NC)として、100mMリン酸バッファーpH8.0または水酸化ナトリウム水溶液0.25M水溶液を核酸増幅の試料とした。
7.以下、実施例1のプロトコールと同様の操作でLAMP反応に供した。図7に示すように核酸の増幅を確認した。
Example 7
Recovery of nucleic acid using magnetite 2.5 μL of 100 mM iron (III) chloride aqueous solution containing 1.50 mM HCl and 1 μL of 0.2% magnetite suspension were dispensed into a PCR tube.
2. Add 5 μL of template nucleic acid solution (specimen solution) to a pretreatment solution containing 0.3M sodium hydroxide aqueous solution and 0.15% Tween 20, heat at 95 ° C. for 5 minutes, and cool at room temperature to 1 tube The obtained liquid was mixed by pipetting.
3. A tube was placed on the neodymium magnet to aggregate the precipitate. The supernatant was removed leaving 7.5 μL.
4). 92.5 μL of a washing buffer (10 mM phosphate buffer pH 8.0, 0.1% Tween 20) was added on a neodymium magnet, and after light pipetting, 95 μL of the added washing buffer was extracted. (First wash)
5. After adding 92.5 μL of washing buffer on a neodymium magnet and lightly pipetting, 95 μL of the added washing buffer was extracted. (2nd wash)
6). As a control, a pretreatment liquid in which only magnetite was added without using iron hydroxide was prepared, and a sample liquid was added thereto for the same treatment. As a positive control (PC), only the sample solution was used as a nucleic acid amplification sample. As a negative control (NC), a 100 mM phosphate buffer pH 8.0 or a sodium hydroxide aqueous solution 0.25M aqueous solution was used as a nucleic acid amplification sample.
7). Thereafter, the LAMP reaction was performed in the same manner as the protocol of Example 1. As shown in FIG. 7, nucleic acid amplification was confirmed.

実施例8
核酸回収における牛血清アルブミン(BSA)の効果
実施例1および6の前処理液(反応溶液)にBSAを1質量%となるように添加し、実験を行った。図8(A)および(B)に示すように、前処理液中にBSAが存在してもリン酸鉄(III)への鋳型DNAの吸着を阻害せず、逆に、BSAを前処理液に1質量%含有する共沈法においては、LAMP反応の立ち上がり時間がPCコントロールとほぼ等しく、見かけ上高い回収率を示すことが分った。
Example 8
Effect of Bovine Serum Albumin (BSA) on Nucleic Acid Recovery BSA was added to the pretreatment liquids (reaction solutions) of Examples 1 and 6 so as to be 1% by mass, and experiments were conducted. As shown in FIGS. 8 (A) and (B), even if BSA is present in the pretreatment liquid, it does not inhibit the adsorption of the template DNA to iron (III) phosphate. In the coprecipitation method containing 1% by mass in LAMP, it was found that the rise time of the LAMP reaction was almost equal to that of the PC control, and an apparently high recovery rate was exhibited.

実施例9
検体液からの核酸の回収およびPCR法による核酸増幅
(1)実施例1と同様にして、検体液から核酸(鋳型DNA)を含む沈殿物ペレットを回収した。得られた沈殿物ペレットに洗浄バッファー(100mMリン酸バッファー、0.1% Tween20)100μLを加え、実施例1と同様にして洗浄した(この洗浄操作を4回繰り返した)。洗浄した沈殿物ペレットに以下のPCR反応液25μLを加え、以下の条件により核酸を増幅した。
PCR反応液の基本組成:
dNTP 1.8mM
Z−Taq(タカラバイオ(株)製) 1Unit
プライマー 0.5μM
BSA 1質量%
YO(オキサゾールイエロー) 0.25μg/mL
(Z−Taqバッファー中)

PCR装置: iCycler(バイオラッド社製)
プライマー配列:
F AAAACTCAAATCAACAGGCG
B GACGATATCACCACGATCA

PCR条件:
95℃−60℃−72℃を40サイクル行った。
Example 9
Recovery of nucleic acid from sample liquid and amplification of nucleic acid by PCR method (1) In the same manner as in Example 1, a pellet pellet containing nucleic acid (template DNA) was recovered from the sample liquid. To the resulting pellet pellet, 100 μL of a washing buffer (100 mM phosphate buffer, 0.1% Tween 20) was added and washed in the same manner as in Example 1 (this washing operation was repeated four times). 25 μL of the following PCR reaction solution was added to the washed precipitate pellet, and nucleic acid was amplified under the following conditions.
Basic composition of PCR reaction solution:
dNTP 1.8 mM
Z-Taq (Takara Bio Inc.) 1Unit
Primer 0.5 μM
1% by mass of BSA
YO (Oxazole Yellow) 0.25 μg / mL
(In Z-Taq buffer)

PCR device: iCycler (manufactured by Bio-Rad)
Primer sequence:
F AAAACTCAAATCAACAGGCG
B GACGATATCACCACGATCA

PCR conditions:
40 cycles of 95 ° C.-60 ° C.-72 ° C. were performed.

(2)対照実験
(a)ポジティブコントロール:検体の代わりに以下の擬似検体を用いた以外、(1)と同様にして核酸を増幅した。
擬似検体:0.1質量%Tween20、1質量%BSA、鋳型DNA(10コピー)を含む100mMリン酸バッファー(pH8.0)
(b)ネガティブコントロール:検体の代わりに100mMリン酸バッファーpH8.0または水酸化ナトリウム水溶液0.25M水溶液を用いた以外、(1)と同様にして核酸を増幅した。
(c)リン酸鉄なし:100mMの塩化鉄(III)水溶液(50mMのHClを含む)2.5μLを添加しなかった以外、(1)と同様にして核酸を増幅した。
(2) Control experiment (a) Positive control: A nucleic acid was amplified in the same manner as in (1) except that the following pseudo sample was used instead of the sample.
Pseudo specimen: 100 mM phosphate buffer containing 0.1 wt% Tween20,1 wt% BSA, template DNA (10 6 copies) (pH 8.0)
(B) Negative control: The nucleic acid was amplified in the same manner as (1) except that 100 mM phosphate buffer pH 8.0 or sodium hydroxide aqueous solution 0.25 M aqueous solution was used instead of the specimen.
(C) No iron phosphate: The nucleic acid was amplified in the same manner as in (1) except that 2.5 μL of 100 mM iron (III) chloride aqueous solution (containing 50 mM HCl) was not added.

(3)結果
上記(1)および(2)により得られた結果を図9に示す。図9から明らかなように、リン酸鉄を用いた本発明のリン酸鉄共沈法の場合は、対照のリン酸鉄なしの場合より増幅サイクルが速かった。このことからリン酸鉄共沈法により回収された鋳型DNAを含む沈殿物から直接PCR法により増幅できることがわかる。ポジティブコントロールの増幅サイクルから推定したリン酸鉄共沈法の回収率は1〜10%であった。なお、ネガティブコントロールで起きている反応は非特異増幅と考えられる。
(3) Results The results obtained from the above (1) and (2) are shown in FIG. As is apparent from FIG. 9, the iron phosphate coprecipitation method using iron phosphate of the present invention had a faster amplification cycle than the control without iron phosphate. This indicates that the PCR product can be directly amplified from the precipitate containing the template DNA recovered by the iron phosphate coprecipitation method. The recovery rate of the iron phosphate coprecipitation method estimated from the positive control amplification cycle was 1 to 10%. The reaction occurring in the negative control is considered nonspecific amplification.

実施例1の方法による核酸増幅反応において、反応時間に対する蛍光強度の関係を示すグラフである。4 is a graph showing the relationship of the fluorescence intensity to the reaction time in the nucleic acid amplification reaction according to the method of Example 1. 実施例2の方法による核酸増幅反応において、反応時間に対する蛍光強度の関係を示すグラフである。In the nucleic acid amplification reaction by the method of Example 2, it is a graph which shows the relationship of the fluorescence intensity with respect to reaction time. 実施例3の方法による核酸増幅反応において、反応時間に対する蛍光強度の関係を示すグラフである。In the nucleic acid amplification reaction by the method of Example 3, it is a graph which shows the relationship of the fluorescence intensity with respect to reaction time. 実施例4の方法による核酸増幅反応において、反応時間に対する蛍光強度の関係を示すグラフである。In the nucleic acid amplification reaction by the method of Example 4, it is a graph which shows the relationship of the fluorescence intensity with respect to reaction time. 実施例5の方法による核酸増幅反応において、反応時間に対する蛍光強度の関係を示すグラフである。In the nucleic acid amplification reaction by the method of Example 5, it is a graph which shows the relationship of the fluorescence intensity with respect to reaction time. 実施例6の方法による核酸増幅反応において、反応時間に対する蛍光強度の関係を示すグラフであり、(A)はリン酸鉄を用いた場合を示し、(B)は水酸化鉄を用いた場合を示す。In the nucleic acid amplification reaction by the method of Example 6, it is a graph which shows the relationship of the fluorescence intensity with respect to reaction time, (A) shows the case where iron phosphate is used, (B) shows the case where iron hydroxide is used. Show. 実施例7の方法による核酸増幅反応において、反応時間に対する蛍光強度の関係を示すグラフである。In the nucleic acid amplification reaction by the method of Example 7, it is a graph which shows the relationship of the fluorescence intensity with respect to reaction time. 実施例8の方法による核酸増幅反応において、反応時間に対する蛍光強度の関係を示すグラフであり、(A)は共沈法におけるBSAの効果を示し、(B)は吸着法におけるBSAの効果を示す。In the nucleic acid amplification reaction by the method of Example 8, it is a graph which shows the relationship of the fluorescence intensity with respect to reaction time, (A) shows the effect of BSA in a coprecipitation method, (B) shows the effect of BSA in an adsorption method. . 実施例9の方法による核酸増幅反応において、サイクル数に対する蛍光強度の関係を示すグラフである。In the nucleic acid amplification reaction by the method of Example 9, it is a graph which shows the relationship of the fluorescence intensity with respect to the cycle number. (a)無機塩として水酸化鉄を用い、遠心分離によって核酸を回収する方法を示す概略図である。(b)無機塩として水酸化鉄を用い、磁気分離によって核酸を回収する方法を示す概略図である。(A) It is the schematic which shows the method of collect | recovering nucleic acids by centrifugation using iron hydroxide as an inorganic salt. (B) It is the schematic which shows the method of collect | recovering nucleic acids by magnetic separation, using iron hydroxide as an inorganic salt.

Claims (21)

無機陽イオンおよび無機陰イオンから構成される無機塩を含有し、該無機塩が核酸との沈殿を生成する、核酸回収試薬。   A nucleic acid recovery reagent comprising an inorganic salt composed of an inorganic cation and an inorganic anion, wherein the inorganic salt forms a precipitate with the nucleic acid. 無機陽イオンが鉄イオンおよび/または銅イオンである、請求項1に記載の核酸回収試薬。   The nucleic acid recovery reagent according to claim 1, wherein the inorganic cation is an iron ion and / or a copper ion. 無機陰イオンがリン酸イオンおよび/または水酸化物イオンである、請求項1または2に記載の核酸回収試薬。   The nucleic acid recovery reagent according to claim 1 or 2, wherein the inorganic anion is a phosphate ion and / or a hydroxide ion. 無機塩が水酸化鉄、リン酸鉄、水酸化銅およびリン酸銅からなる群から選択される少なくとも1種である、請求項1〜3のいずれかに記載の核酸回収試薬。   The nucleic acid recovery reagent according to any one of claims 1 to 3, wherein the inorganic salt is at least one selected from the group consisting of iron hydroxide, iron phosphate, copper hydroxide, and copper phosphate. 無機塩が水酸化鉄であり、さらに、マグネタイトを含有する、請求項1〜4のいずれかに記載の核酸回収試薬。   The nucleic acid recovery reagent according to any one of claims 1 to 4, wherein the inorganic salt is iron hydroxide and further contains magnetite. 無機塩がアルカリ水溶液中に含まれる、請求項1〜5のいずれかに記載の核酸回収試薬。   The nucleic acid recovery reagent according to any one of claims 1 to 5, wherein the inorganic salt is contained in an alkaline aqueous solution. さらに、アルブミン類を含有する、請求項1〜6のいずれかに記載の核酸回収試薬。   Furthermore, the nucleic acid collection | recovery reagent in any one of Claims 1-6 containing albumins. 請求項1〜7のいずれかに記載の核酸回収試薬を含む、核酸増幅用試薬キット。   A reagent kit for nucleic acid amplification, comprising the nucleic acid recovery reagent according to claim 1. 核酸と無機陽イオンおよび無機陰イオンから構成される無機塩との沈殿現象を利用して核酸を回収する、核酸回収方法。   A nucleic acid recovery method for recovering a nucleic acid by utilizing a precipitation phenomenon between the nucleic acid and an inorganic salt composed of an inorganic cation and an inorganic anion. 核酸と無機塩とを共沈させる、請求項9に記載の核酸回収方法。   The nucleic acid recovery method according to claim 9, wherein the nucleic acid and the inorganic salt are coprecipitated. 無機塩の沈殿物を生成させた後、核酸を添加し、該無機塩の沈殿物に該核酸を吸着させる、請求項9に記載の核酸回収方法。   The nucleic acid recovery method according to claim 9, wherein a nucleic acid is added after the inorganic salt precipitate is formed, and the nucleic acid is adsorbed to the inorganic salt precipitate. 無機陽イオンが鉄イオンおよび/または銅イオンである、請求項9〜11のいずれかに記載の核酸回収方法。   The method for recovering nucleic acid according to any one of claims 9 to 11, wherein the inorganic cation is an iron ion and / or a copper ion. 無機陰イオンがリン酸イオンおよび/または水酸化物イオンである、請求項9〜12のいずれかに記載の核酸回収方法。   The method for recovering nucleic acid according to any one of claims 9 to 12, wherein the inorganic anion is a phosphate ion and / or a hydroxide ion. 無機塩が水酸化鉄、リン酸鉄、水酸化銅およびリン酸銅からなる群から選択される少なくとも1種である、請求項9〜13のいずれかに記載の核酸回収方法。   The nucleic acid recovery method according to any one of claims 9 to 13, wherein the inorganic salt is at least one selected from the group consisting of iron hydroxide, iron phosphate, copper hydroxide, and copper phosphate. 無機塩として水酸化鉄を用い、水酸化鉄およびマグネタイトと核酸を接触させ、核酸、水酸化鉄およびマグネタイトを含む複合体からなる沈殿物を生成させる、請求項9に記載の核酸回収方法。   The method for recovering nucleic acid according to claim 9, wherein iron hydroxide is used as the inorganic salt, and iron hydroxide and magnetite are brought into contact with nucleic acid to generate a precipitate comprising a complex containing nucleic acid, iron hydroxide and magnetite. さらに、アルブミン類を含有する、請求項9〜15のいずれかに記載の核酸回収方法。   Furthermore, the nucleic acid collection | recovery method in any one of Claims 9-15 containing albumins. アルカリ性条件下で行う、請求項9〜16のいずれかに記載の核酸回収方法。   The nucleic acid recovery method according to any one of claims 9 to 16, which is carried out under alkaline conditions. 請求項9〜17のいずれかに記載の方法による核酸を含む沈殿物と、核酸増幅用試薬とを接触させる工程を含む、核酸増幅方法。   A nucleic acid amplification method comprising a step of bringing a precipitate containing a nucleic acid according to any one of claims 9 to 17 into contact with a nucleic acid amplification reagent. 核酸以外の物質を洗浄除去する工程を含む、請求項18に記載の核酸増幅方法。   The nucleic acid amplification method according to claim 18, comprising a step of washing and removing a substance other than the nucleic acid. 請求項15〜17のいずれかに記載の方法により回収した沈殿物について、以下の工程を施すことを含む、核酸増幅方法。
a)核酸を含む沈殿物を磁性体により吸着させ、核酸以外の物質を除去する工程、および
b)核酸を含む沈殿物と核酸増幅用試薬とを接触させる工程。
A nucleic acid amplification method comprising performing the following steps on the precipitate collected by the method according to claim 15.
a) a step of adsorbing a precipitate containing a nucleic acid by a magnetic substance to remove a substance other than the nucleic acid; and b) a step of bringing the precipitate containing a nucleic acid into contact with a nucleic acid amplification reagent.
LAMP法を用いる、請求項18〜20のいずれかに記載の核酸増幅方法。   The nucleic acid amplification method according to any one of claims 18 to 20, wherein a LAMP method is used.
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