JP2006238734A

JP2006238734A - 新規プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼ

Info

Publication number: JP2006238734A
Application number: JP2005055971A
Authority: JP
Inventors: Toshihiro Kuroita; 黒板　　敏弘
Original assignee: Toyobo Co Ltd
Current assignee: Toyobo Co Ltd
Priority date: 2005-03-01
Filing date: 2005-03-01
Publication date: 2006-09-14

Abstract

【課題】変性に強い新規なプロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを提供すること、また、それらを含有する試薬・キットおよび製造法を提供すること、さらには、該新規プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを用いて効率的にタンパク質をリフォールディングもしくはフォールディングさせる方法、タンパク質の安定的保存方法を提供すること。
【解決手段】Ａｒｃｈａｅａ由来であって、ＣＰＨＣ（Ｃ：システイン、Ｐ：プロリン、Ｈ：ヒスチジン）モチーフを有することを特徴とする、成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼタンパク質。

Description

本発明は、タンパク質やペプチド等のシステインを介したジスルフィド結合の形成や、その逆反応、すなわちジスルフド結合の乖離に関わる反応を触媒する好熱菌由来のＣＰＨＣモチーフを有する新規プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼ、およびその使用方法に関わる。更には、本プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを含有する試薬・キットにも関する。

大腸菌などの原核生物からヒトを始めとする真核生物まで、タンパク質中もしくはタンパク質間のジスルフィド結合はタンパク質に安定性を付与する手段として進化してきた。特に分泌タンパク質において広く採用されている。

これらの結合は主に、原核生物ではペリプラズムにおいて、また真核生物においては小胞体において形成されることが知られており、合成されたタンパク質はそこに留まるものがあるが、より環境の厳しいリソソームのような他の細胞小器官へ移送されるか（真核生物生物の場合）、細胞外へ分泌される。グラム陰性菌の表層は、一般に細胞膜の外側に薄いペプチドグリカン層、更にその外側に外膜が存在するが、ペリプラズムとは細胞膜と外膜の間のことをいう。グラム陽性菌でも細胞膜と厚いペプチドグリカン層の間をペリプラズムと呼ぶ。この空間は、Ａｒｃｈａｅａにおいても同様に知られており、そこで働く酵素も存在する。

ジスルフィド結合は、原核生物においてはＤｓｂＡもしくはＤｓｂＣと呼ばれるプロテインジスルフィドオキシドレダクターゼによって直接触媒されることが知られている。プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼは、チオール：ジスルフィドインターチェンジプロテインとも呼ばれ、ＤｓｂＡは主にジスルフィド結合の形成に、ＤｓｂＣは主に形成されたジスルフィド結合を正しい組み合わせに組み換える異性化反応に関わっていることが調べられている。これらの酵素は、分子内にＣＸＸＣモチーフを有しており（ＤｓｂＡは主にＣＰＨＣ、まれにＣＰＷＣやＣＰＹＣ、ＤｓｂＣはＣＧＹＣ）、これらが目的のタンパク質のシステインと相互作用することにより、反応を触媒する機構が提唱されている。またそれらのタンパク質のシステインの酸化還元を調整するためのタンパク質（ＤｓｂＢ、ＤｓｂＤ）も見出されている（たとえば非特許文献１を参照。）。
Ｃｅｌｌ，９９，１１７−１１９（１９９９）

モチーフとは各種のタンパク質のアミノ酸配列中に認められる小さい構造部分を指す言葉である。それをコードするアミノ酸配列には特徴的なパターンがあり、その局所的に保存されたブロックにより定義されるものを配列モチーフと呼ぶ。多くの場合、ある機能を発現するために必要な最少の単位となるものである。

一方、真核生物においては、プロテインジスルフィドイソメラーゼ（ＰＤＩ）一分子でＤｓｂＡおよびＤｓｂＣ双方の機能を担っていることが知られている。この酵素は、分子内に二つの保存されたＣＧＨＣモチーフを有している。異性化反応を触媒することが報告されているＤｓｂＣとＰＤＩはＤｓｂＡと比較して、強いレダクターゼ活性を示すことが特徴である。ＤｓｂＡにおけるＣＸＸＣモチーフの二つのシステインはジスルフィド結合による結合しており（酸化型）、ＤｓｂＣのシステインはフリーのＳＨ状態（還元型）であることが知られており、それが各酵素の性質に関わっていると考えられている。

近年、様々なタンパク質の遺伝子が明らかとなり、大腸菌等の組換え細胞を用いたタンパク質生産が盛んに行われるようになっている。しかし、例えば真核生物由来のタンパク質を大腸菌で生産した場合、タンパク質が凝集した封入体（インクルージョンボディー）を形成するものが多く、問題となっている。その解決法として、封入体を一度尿素やグアニジン溶液などで完全に変性溶解し、徐々にそれらの変性剤成分を除去することにより、正しいフォールディングを形成させる方法（リフォールディング）が存在する。しかし、透析や希釈で単に変性剤の濃度を下げるだけでは、きちんとフォールディングされないタンパク質も多く、タンパク質のフォールディングを助ける機能を有するシャペロンと呼ばれるタンパク質を共存させることが有効であることが多く報告されている。さらに、ジスルフィド結合が必須なタンパク質のリフォールディングは困難な場合が多く、単に溶液を酸化状態に保っても、ジスルフィド結合の形成が不完全な場合や、正しい組み合わせのジスルフィド結合が形成されない場合が多いのが現状である。そこで、分離精製したプロテインジスルフィドオキシドレダクターゼをリフォールディング時に添加することが考案され、成果を上げている。また近年、プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼには若干、シャペロンとしての機能が存在することも知られるようになっている。

しかし、タンパク質のリフォールディングは先にも述べたように、まず凝集したタンパク質を尿素やグアニジン等の変性剤で処理し、それらを徐々に除去しながら（すなわちそれらが若干残存した状態）でリフォールディング反応を行うことが多い。そこで、変性に強いプロテインジスルフィドオキシドレダクターゼが求められていた。また、タンパク質の安定化剤や賦形剤等に使用する場合においても、安定性の高いプロテインジスルフィドオキシドレダクターゼが必要であり、同様に求められていた。

本発明の目的は、変性に強い新規なプロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを求めることにある。さらに、該新規プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを用いて効率的にタンパク質をリフォールディングもしくはフォールディングさせる方法を提供することにあり、さらに、タンパク質の安定的保存方法を提供することである。また、それらを含有する試薬・キットおよび製造法を提供することである。

我々は、変性に強い好熱細菌に着目し、種々の好高熱菌について鋭意検討した結果、超好熱細菌であるＡｒｃｈａｅａ（始原菌）から、ペリプラズムで機能していると推定される新規プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを分離し本発明を完成した。

通常新規タンパク質の検索は、まず目的のタンパク質を分離してそのタンパク質の部分配列を指標としてその遺伝子を探索する方法や、遺伝子間のホモロジーを指標としたコロニーハイブリダイゼーションや、共通プライマーを用いるＰＣＲ法などを用いて行われるのが普通である。また、近年全ゲノムが明らかとなった生物種も多く、それらのデータベースを用いてホモロジーなどを指標として検索することによっても、目的タンパク質候補を絞り込むことができる。

今回、本発明者らは、ゲノム配列が明らかとなり、インターネット上でその配列が入手可能な種々の微生物に着目し、それらの遺伝子配列中から新規プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼの探索を実施した。まず、ＤｓｂＡ、ＤｓｂＣおよびＰＤＩ等のすでに報告されているプロテインジスルフィドレダクトオキシダーゼの配列に着目し、それらのタンパク質とのホモロジーを指標として検索を実施した。しかし、ホモロジーのあるタンパク質はヒットしなかった。

ところが、我々がさらに調査したところ、超好熱細菌であるＡｒｃｈａｅａのＰｙｒｏｃｏｃｃｕｓｆｕｒｉｏｓｕｓ（Ｐｆｕ）から、ＰＤＩに類似したタンパク質が発見されていたことがわかった（Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７０，５７４８−５７５５（１９９５））。Ａｒｃｈａｅａは始原菌、もしくは古細菌と訳されるユニークな生物で、原核生物と真核生物の中間的な位置に分類されることもある。さらには、Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓｈｏｒｉｋｏｓｈｉｉからもホモログ（ＯＲＦＩＤ：ＰＨ０１７８）が分離され、同様な検討が行なわれていた。

これらのタンパク質をコードする遺伝子は、リーダー配列と思われる配列が見当たらないため、この分子は、目的のプロテインジスルフィドレダクトオキシダーゼではなく、細胞質内で機能しているタンパク質の一つ、グルタレドキシンの一種であると推定されていた。しかし我々は、これらのタンパク質とのホモロジーについても検討したところ、唯一、前述のＰｙｒｏｃｏｃｃｕｓｆｕｒｉｏｓｕｓ由来の耐熱性プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼとホモロジーを有するタンパク質（ＯＲＦＩＤ：ＰＨ０１７８）のみがヒットした。このタンパク質には既に、アノテーション情報としてその情報が書き込まれていた。

次に、本発明者らは、ＤｓｂＡ、ＤｓｂＣおよびＰＤＩに含まれる、コンセンサス配列（それぞれＣＰＨＣ（ＣＰＷＣ、ＣＰＦＷ）、ＣＧＹＣ、ＣＧＨＣ）に着目し検索を実施した。また、それらのモチーフと併せてリーダー配列（シグナル配列）を有するタンパク質の検索を行った。リーダー配列の有無を条件として挙げた理由としては、ペリプラズムへの移行には本配列が多くの場合必須であるからである。その結果、ＤｓｂＡホモログと思われるタンパク質の存在が明らかとなった。このタンパク質はＰｙｒｏｃｏｃｃｕｓｈｏｒｉｋｏｓｈｉｉ遺伝子の１０２５３４０〜１０２５８５２（ＯＲＦＩＤはＰＨ１１３０として登録）にコードされていることが分かった（配列番号３）。その配列から予想されるアミノ酸配列は配列番号１に示す通りであり（ＳＷＩＳＳ−ＰＬＯＴアクセッション番号：Ｄ７１０５４）、まだ機能は特定されていなかった。

このタンパク質（以下ＰｈＤｓｂタンパク質）は、大腸菌ＤｓｂＡとはほとんどホモロジーはないものの、ＣＰＨＣコンセンサス配列、および５残基前のＦ（フェニルアラニン）も保存されていること、タンパク質のサイズ、およびモチーフが比較的Ｎ末端に近いところに存在することからみても、ＤｓｂＡのホモログである可能性が高いと推測された。また、シグナルペプチド配列検索を実施したところ、本タンパク質はシグナルペプチダーゼによって切り出されると推定される配列をＮ末端に有していることが明らかとなった。

本発明のタンパク質と大腸菌ＤｓｂＡの比較を図１に示した。今まで報告されているＤｓｂは大きく、酸性タンパク質に分類されるものと、塩基性タンパク質に分類されるものに分類されることが知られているが、本タンパク質は後者であることが、そのアミノ酸配列から推測された。アミノ酸配列（リーダー配列込み）から予想される等電点（ｐＩ）は大腸菌ＤｓｂＡが５．９３であるのに対し、ＰｈＤｓｂタンパク質は９．２６と予測された。

また、本ＰｈＤｓｂタンパク質のアミノ酸配列をＢＬＡＳＴ検索（ホモロジー検索）を実施したところ、ＤＤＢＪアクセッション番号ＡＸ０４１９２０に登録されているＰｙｒｏｃｏｃｃｕｓａｂｙｓｓｉ遺伝子の１４０９２２−１４０３７１（配列番号４）にコードされるタンパク質（配列番号６：ＳＷＩＳＳ−ＰＬＯＴアクセッション番号Ｆ７５０８６）に高いホモロジーを示すことが明らかとなった（図２）。この遺伝子にコードされるタンパク質の詳細な機能は明らかにされていないが（チオレドキシン様配列を有するとの記載はあり）、ＰｈＤｓｂタンパク質同様ＤｓｂＡのホモログと予測される。このタンパク質を便宜上ＰａＤｓｂと呼ぶこととする。

配列から本遺伝子のコードしているタンパク質が大腸菌ＤｓｂＡのホモログであることはほぼ明らかであったが、実際にタンパク質を発現させて活性を調べる必要があるとの考えから、本発明者らは、次に、本遺伝子をクローニングし、大腸菌を用いた発現を試みた。しかし、最も効率的発現方法の一つとして知られているｐＥＴ発現系を用いても、本遺伝子産物の発現量は大変低く、また、発現したものはペリプラズムへ移行せず不溶化してしまう傾向にあることが分かった（図３）。一方、コントロール実験として行った大腸菌ＤｓｂＡにおいては、強い発現とペリプラズムへの移行が認められた。このことから、本タンパク質を機能を有する状態で発現させることに関しても何らかの工夫が必要であることが明らかとなった。

次に、本遺伝子の発現効率が低調な理由として、リーダー配列（シグナル配列）が不適であることが予測された為、シグナルペプチダーゼで切断を受けると予測される領域に関して、大腸菌ＤｓｂＡのリーダー配列と入れ替えて発現を試みたが、これに関してもほとんど改善が見られなかった（図３）。

本発明者らは、これらの課題を解決するべく鋭意研究を進めた結果、予想されるリーダー配列を除去したものについて、ペリプラズムへの移行は見られないものの、細胞質内に強い発現を確認することができ、可溶化した状態で回収し得ることが明らかとなった（図３）。今回、シグナルペプチダーゼの切断予測はＰｒｏｔｅｉｎＥｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，１０，１−６（１９９７）に従って実施した。具体的には、インターネットのＳｉｇａｎａｌＰのサイト（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｃｂｓ．ｄｔｕ．ｄｋ／ｓｅｒｖｉｃｅｓ／ＳｉｇｎａｌＰ／）の検索プログラム（Ｖｅｒ．１．１）を利用して予測を行なった。グラム陰性菌のデータを元に予測行った場合、２７番目スレオニンと２８番目のグルタミンの間（ＴＱＴ−ＱＴ）、グラム陽性菌のデータを元にシグナルペプチダーゼ認識サイトの予測を行った場合は２５番目のスレオニンと２６番目のグルタミンの間（ＳＱＴ−ＱＴ）が最も可能性の高い切断サイトであることが予測された。今回は、グラム陰性菌のデータを元に予測された切断部位を採用し、予測される切断末端に開始コドン（メチオニン）を付加した配列（配列番号２）を発現させ、実験に用いた。本検証実験から、本タンパク質の配列に起因する何らかの作用によって、本タンパク質の大腸菌細胞膜の透過性が極端に低くなったことの原因であると推察された。

上にも記述したようにＤｓｂＡのリーダー配列を有するＰｈＤｓｂによる試みにおける結果もこのことを示唆している。この実験で用いたＤｓｂＡリーダー配列を付加したＰｈＤｓｂの配列は、あらかじめＳｉｇｎａｌＰ（Ｖｅｒ．１．１）を用いてシグナルペプチダーゼ認識サイトがあることを確認して用いている。

また、不溶化にはシグナルペプチド配列が除去しきれなかったことが原因である可能性が示唆された。シグナルペプチドは大変疎水性に富むものであると予想される。また本実験は、グラム陽性菌のデータに基づいた予測サイトに基づいて調製したタンパク質を用いても、ほぼ同様の結果が得られたと予測される。さらに、Ｖｅｒ．２以降の本予測プログラムを用いた場合、２５番目のスレオニンと２６番目のグルタミンの間（ＳＱＴ−ＱＴ）が最も可能性の高い切断サイトであると予測されるようであるが、実質は２アミノ酸の差であり、本質的には同様の結果が得られると予測される。

一方、Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓａｂｙｓｓｉ由来のＰａＤｓｂにおいては、グラム陰性菌のデータを元にした予測では２９番目のスレオニンと３０番目のグルタミンの間（ＴＴＴ−ＱＴ）、２３番目のスレオニンと２４セリンの間（ＳＳＴ−ＳＴ）で切断される可能性が高いことが予想され、この予想部位でリーダー配列を除去したタンパク質（当然メチオニンは付加する必要あり）は、ＰｈＤｓｂ同様の活性を示すことが予想される。

このようにして得られたプロテインジスルフィドオキシドレダクターゼは、大腸菌の細胞質内から超音波破砕することにより容易に回収することができ、また、塩基性タンパク質であることから、陽イオン交換（Ｓ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ）カラムクロマトグラフィーにより、容易に精製が可能であった。

次に、この精製したタンパク質に関して、一般的にプロテインジスルフィドオキシドレダクターゼ活性を調べる際に用いられる、還元条件下でのインスリンを基質としたレダクターゼ活性測定（Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２５４，９６２７（１９７９））、および酸化／還元型グルタチオン存在下における変性リボヌクレアーゼを基質としたオキシダーゼ活性測定（Ｂｉｏｃｈｅｍ．３０，６１３（１９９１））を実施し、本酵素が目的の酵素であることを確認した。

まず始めに、インスリンを基質としたジスルフィドレダクターゼ活性の測定を行なった。インスリンは２種類のペプチドがジスルフィド結合により結合したヘテロダイマーであるが、レダクターゼ活性によりジスルフィド結合が乖離すると、β鎖のペプチドが不溶化し濁度が上昇する。それを吸光度（６５０ｎｍ）測定することによりレダクターゼ活性を測定することが可能である。還元条件下でのインスリン乖離反応はＤｓｂＡ、ＤｓｂＣ、およびＰＤＩそれぞれに共通して見られる反応である。今回、対照とするため大腸菌ＤｓｂＡ、ＤｓｂＣをそれぞれ大腸菌ゲノムＤＮＡからクローニングし、文献に従って発現させペリプラズム画分より精製し使用した（Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．１７９，５３３３（１９９７））。それぞれの酵素の最終濃度が２μＭになるような一般的な測定条件を用い、反応時間と測定結果（ＯＤ６５０ｎｍ）をプロットしたのが図４である。結果より、ＰｈＤｓｂタンパク質は明らかにＤｓｂＡに近いパターンを示すことが分かった。ちなみにＤｓｂＡおよびＤｓｂＣの反応パターンは報告させているものとほぼ同じ傾向を示していることを確認している。また、酵素が存在しない条件においても、還元剤の影響で徐々にインスリンのジスルフィド結合は乖離するためコントロールにおいても若干吸光度の上昇が見られたが、一般的な現象であることが知られている。

次に、変性リボヌクレアーゼを用いるジスルフィドオキシダーゼ活性の確認を行なった。酸化／還元型グルタチオン存在下における変性リボヌクレアーゼを基質としたオキシダーゼ活性測定はオキシダーゼ活性を測定する場合に頻繁に使用される方法である。リボヌクレアーゼＡは活性にジスルフィド結合が必須であり、還元剤を含有する変性剤存在下で不活性化されることが知られている。このようにして変性させたリボヌクレアーゼＡはゲル濾過や、希釈、透析などによって変性剤と還元剤濃度を低くすることによって徐々にリフォールディングにより活性が回復することが知られている。また、その回復速度はオキシダーゼ存在を共存させることで早まることが知られている。今回レダクターゼ活性同様に、本測定を用いてＤｓｂＡおよびＤｓｂＣをコントロールとしてＰｈＤｓｂのオキシダーゼ活性を測定した。測定条件は文献に倣い最終濃度が５μＭとなるように各酵素濃度を調整し、一定の比率にした酸化／還元型グルタチオンを含有する緩衝液添加して、変性還元リボヌクレアーゼＡの活性回復をｃ−ＣＭＰを基質として用いＯＤ２９６ｎｍの上昇を指標として測定を行なった。反応時間と測定結果（ＯＤ２９６ｎｍ）をプロットしたのが図５である。結果より、ＰｈＤｓｂタンパク質はＤｓｂＣよりはむしろＤｓｂＡに近い中間的性質を示すことが明らかとなった。

レダクターゼおよびオキシダーゼ活性の測定結果より、ＰｈＤｓｂはＤｓｂＡに近い性質を示すことが明らかとなり、本タンパク質は、アミノ酸配列のホモロジーには乏しいが、ほぼＤｓｂＡのホモログであることを確認することができた。アミノ酸配列が極端に異なっていることは、おそらく酵素を耐熱化させることと何らかの関連性があると推察される。

実際に、本発明のタンパク質の耐熱性を調べるために、１００℃にて加熱処理し、残存プロテインジスルフィドレダクターゼ活性を指標として活性測定を行なったところ、２時間の加熱処理により大腸菌ＤｓｂＡは約４０％まで活性が低下したのに対し、ＰｈＤｓｂはほぼ１００％活性を保っていることが明らかとなった。

以上のような経緯を経て、ようやく、我々はＡｒｃｈａｅａから、変性に強いプロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを分離し、その酵素の性質を明らかにすることが出来た。

本発明は以下の構成からなる。
（１）Ａｒｃｈａｅａ由来であって、ＣＰＨＣ（Ｃ：システイン、Ｐ：プロリン、Ｈ：ヒスチジン）モチーフを有することを特徴とする、成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼタンパク質。
（２）Ａｒｃｈａｅａ由来であって、ＣＰＨＣ（Ｃ：システイン、Ｐ：プロリン、Ｈ：ヒスチジン）モチーフを有し、下記理化学的特徴を有する、（１）に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼタンパク質。
熱安定性：ｐＨ７．０にて１００℃、２時間の加熱で６０％以上の残存活性を保持することができる。
（３）Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ属細菌由来であることを特徴とする（１）に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼタンパク質。
（４）Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓｈｏｒｉｋｏｓｈｉｉ由来であることを特徴とする（３）に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼタンパク質。
（５）該タンパク質の配列が、配列番号１に示される配列に由来することを特徴とする（４）に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼタンパク質。
（６）該タンパク質の配列が、配列番号２に示される配列であることを特徴とする、（５）に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼタンパク質。
（７）ＣＰＨＣモチーフ配列が変更されたことを特徴とする、（１）に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼタンパク質。
（８）（１）〜（７）に記載のタンパク質を発現するように、所望の遺伝子配列を挿入したベクター。
（９）（８）に記載のベクターで形質転換された形質転換体。
（１０）（１）〜（７）に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを生産する菌株を培養し、培養物より該タンパク質を採取することを特徴とする成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼタンパク質の製造方法。
（１１）（１）〜（７）に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを細胞質内に生産する菌株を培養し、培養物より該タンパク質を採取することを特徴とする成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼタンパク質の製造方法。
（１２）（１）〜（７）に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを、無細胞タンパク質合成法を用いて合成することを特徴とする成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼタンパク質の製造方法。
（１３）加熱処理工程を経ることを特徴とする、（１０）〜（１２）に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼの製造方法。
（１４）（１）〜（７）に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを用いてタンパク質内もしくはタンパク質間のジスルフィド結合の切断を促進する方法。
（１５）（１）〜（７）に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを用いてタンパク質のリフォールディングを促進する方法。
（１６）（１）〜（７）に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを用いてタンパク質のフォールディングを促進する方法。
（１７）（１）〜（７）に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを用いて無細胞タンパク質合成時のフォールディングを促進する請求項１３に記載の方法。
（１８）（１）〜（７）に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼをタンパク質安定化剤および／または賦形剤として用いることを特徴とするタンパク質の安定的保存方法。
（１９）（１）〜（７）に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを含有する試薬またはキット。
（２０）生物機能を用いて所望のタンパク質を発現させる方法であって、（１）〜（７）に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを共発現させることにより、該タンパク質の活性を高める方法。

本発明の、変性に強い新規なプロテインジスルフィドオキシドレダクターゼ、および、それらを含有する試薬・キットにより、効率的にタンパク質をリフォールディングもしくはフォールディングさせる方法、タンパク質の安定的保存方法が可能になった。

本発明は、Ａｒｃｈａｅａ由来であって、ＣＰＨＣ（Ｃ：システイン、Ｐ：プロリン、Ｈ：ヒスチジン）モチーフを有することを特徴とする、成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼタンパク質である。Ａｒｃｈａｅａは別名始原菌や古細菌とも訳されることもある菌であり、原核生物と真核生物の中間的な位置に分類されることもある、大変ユニークな生物であり、Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ属以外にも、Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ属等の種々の菌が報告されている。

本発明のタンパク質は大腸菌等の好熱細菌以外の細菌で幅広く見出されているタンパク質であり、シグナルぺプチターゼで切り出されるリーダー配列をＮ末端に有し、それらの多くはＮ末端の近くにＣＨＰＣ、もしくは稀にＣＰＷＣや、ＣＰＹＣ、ＣＰＦＣなどのモチーフを有するのが特徴であるが、Ａｒｃｈａｅａでこの種の酵素が見出されたのは初めてである。

本発明において用いられるタンパク質は、成熟型（Ｍａｔｕｒｅ型）であることが重要である。本発明における成熟とは、リーダー配列（シグナル配列）部分、もしくはＮ末端側に存在する疎水アミノ酸等からなる膜貫通領域が切除されたタンパク質であることを指す。リーダー配列とは、タンパク質がペリプラズムや小胞体などへ膜を貫通して移行する際に必要な配列であり、移行後は速やかにシグナルペプチダーゼの働きで切断を受けることで、タンパク質は成熟化する。その場合、タンパク質はペリプラズム空間に成熟型酵素として、蓄積されることになる。実施例の、大腸菌ＤｓｂＡ、ＤｓｂＣの調製はこの方法に準じている。シグナルペプチダーゼの作用する部位には法則性があり、現在、様々な予測用ソフトウエアを活用して切断サイトを予測することができるようになっている。

一方、今回の場合のように他の生物種の機能を利用してタンパク質を生産する場合においては、リーダー配列の切除が困難な場合も予想される。例えば、今回のようにＡｒｃｈａｅａのタンパク質を大腸菌で発現させるような場合は、タンパク質の膜透過、シグナルペプチダーゼによるリーダー配列の切断がうまく起こらないことがある。そのような場合、リーダー配列部分を除去したタンパク質をデザインし、細胞質内に発現させることで解決できることがある。その場合は、タンパク質合成開始のため、リーダー配列を除去した部分のＮ末端にメチオニンを付加する必要がある。

その場合、リーダー配列の切断部位は、最も好ましくは天然のタンパク質を分離し、Ｎ末端解析を行って決定するが、それには多大なる労力と時間が必要な場合が多く、過去のデータを参考にして予測しても良い。

シグナルペプチダーゼ切断サイトの予測には、種々開発されているソフトウエアを用いることができる。好ましくは、ＳｉｇｎａｌＰ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｃｂｓ．ｄｔｕ．ｄｋ／ｓｅｒｖｉｃｅｓ／ＳｉｇｎａｌＰ／）を用いると良い。この予測方法は、ＰｒｏｔｅｉｎＥｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，１０，１−６（１９９７）に基づいている。本ソフトウエアにも様々なバージョンがあり、予想配列も若干異なる場合があるが、それほど大差なく使用することが可能である。今回の予測にはＶｅｒ．１．１を用いているが、基本的にはどのバージョンを用いても問題ない。また、グラム陰性菌、陽性菌、真核生物等で若干予測が異なるが、多くの場合は、グラム陰性菌のデータを用いることで問題なく予測可能である。特に今回は、宿主にグラム陰性菌である大腸菌を選択したため、グラム陰性菌のデータを用いることとした。

酵素によっては、リーダー配列除去（成熟化）がタンパク質の溶解性や活性に大きな影響を有しているものも多く存在することが知られているが、本発明においては、その除去が大変重要であった。当然、Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓｈｏｒｉｋｏｓｈｉｉを培養して成熟型タンパク質を調製することも考えられるが、実際問題として現実的ではない。すなわち、本発明のタンパク質を得ようとすれば、大腸菌等の扱いの簡単な菌を宿主とすることがもっとも効率的であると考えられる。よって今回、本発明者らが用いた方法は、理にかなった方法であるといえる。

今回実験に用いたタンパク質は、ＳｉｇｎａｌＰ（Ｖｅｒ．１．１）で、グラム陰性菌のデータを元に予測を行い、ＰｈＤｓｂの２７番目スレオニンと２８番目のグルタミンの間（ＴＱＴ−ＱＴ）で切断がおこると仮定して実験を進めた。すなわち、遺伝子をクローニングする段階で、２７番目のスレオニンから上流の配列を除去し、２８番目のグルタミンの上流に開始コドンとなるメチオニンの配列を導入した発現プラスミドを構築した。ちなみに、グラム陽性菌のデータを元に予測を行った場合は２５番目のスレオニンと２６番目のグルタミンの間（ＳＱＴ−ＱＴ）が最も可能性の高い切断サイトであると予想されるが、本実験は、グラム陽性菌のデータに基づいた予測サイトに基づいて調製したタンパク質を用いても、ほぼ同様の結果が得られたと予測される。また、Ｖｅｒ．２以降の本予測プログラムを用いた場合、グラム陰性菌のデータを用いても、２５番目のスレオニンと２６番目のグルタミンの間（ＳＱＴ−ＱＴ）が最も可能性の高い切断サイトであると予測されるようであるが、上記同様、実質は２アミノ酸の差であり、本質的には同様の結果が得られると予測される。

一方、Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓａｂｙｓｓｉ由来のＰａＤｓｂにおいては、グラム陰性菌のデータを元にした予測では２９番目のスレオニンと３０番目のグルタミンの間（ＴＴＴ−ＱＴ）、２３番目のスレオニンと２４セリンの間（ＳＳＴ−ＳＴ）で切断される可能性が高いことが予想され、このサイトで切断することで同様の活性型のプロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを得ることが可能であることが容易に予測される。

当然、これら予測以外の場所でリーダー配列切断部位を決定しても良い。すなわち、発現が向上し、タンパク質の溶解性や活性が向上する条件の場所で切断しさえすれば目的は達成されるのであって、当然、本発明の範囲に含めることができる。

また、タンパク質を発現させる際に、種々のタグを付加して発現させても良い。実施例には示していないが、本発明においてはＣ末端側に６ｘＨｉｓ−タグ配列を付加したものに関しても問題なく発現し、活性型タンパク質を得ることができることを確認している。当然、ＧＳＴ（グルタチオンＳトランスフェラーゼ）やＭＢＰ（マルトースバインディングプロテイン）、ＧＦＰ（緑色蛍光タンパク質）等との融合タンパク質と発現させても良い。タグの位置は、Ｎ末端でもＣ末端でも構わない。当然、機能を有する範囲において、本タンパク質の部分配列を用いてもよい。

また、場合によってはプロテインジスルフィドオキシドレダクターゼ活性を変化させたり、活性を除去したりする場合が有効なことも考えられる。そのような場合は、活性中心であるＣＰＨＣ配列もしくはその前後の配列に変異を導入することが有効である。特に、活性を除去する場合は、システイン残基を片方もしくは両方を別のアミノ酸に変化させることが有効である。また、活性を変化させる場合、ＣＰＨＣ配列の中のＰＨを変異させることが有効である。

本発明のタンパク質の具体的な理化学的性質としては、好ましくは１００℃、２時間の加熱で６０％以上、更に好ましくは８０％以上の活性を保持することを特徴とする。本活性の指標としては、上に挙げたインスリンを基質として測定するプロテインジスルフィドレダクターゼ活性を指標とするのが最も好ましい。条件としては、実施例１０に示すように、十分酵素の初速を評価できる条件で測定する必要がある。また、好ましくは活性の測定は室温（２５℃）前後で行う。

実際に、レダクターゼ活性を指標として酵素の耐熱性の検討を行った例を図６に示した。方法は、１００ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．０）中、１００℃で加熱した後、上記方法でレダクターゼ活性を測定する方法を用いた。１００℃で加熱したのはＤｓｂタンパク質自身が一種のシャペロンタンパク質であり、普通の酵素よりも耐熱性に優れているからである。その結果、大腸菌のＤｓｂＡでは１００℃・２時間の加温で約４０％まで活性が低下したのに対し、ＰｈＤｓｂタンパク質では９８％以上の活性を保持したままであった。この結果より、ＰｈＤｓｂタンパク質が高度に耐熱化されていることが明らかとなった。

本タンパク質（遺伝子）の由来としては、好ましくはＡｒｃｈａｅａであり、さらに好ましくはＰｙｒｏｃｏｃｃｕｓ属細菌由来である。また、最も好ましくはＰｙｒｏｃｏｃｃｕｓｈｏｒｉｋｏｓｈｉｉ由来である。同様に、Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓａｂｙｓｓｉ由来のものも好適に用いられる。

該タンパク質の配列としては、配列番号１に示されるＰｙｒｏｃｏｃｃｕｓｈｏｒｉｋｏｓｈｉｉの配列に由来するものを用いるのがもっとも好ましい。一例としては、予測ソフトによって予測されたリーダー配列を除去し、Ｎ末端にメチオニンを付加した配列番号２に示される配列を用いる。ただ、配列はこれに限定されず、リーダー配列の切断サイトは幅を持って決めればよい。

また同様に配列番号５に示されるＰｙｒｏｃｏｃｃｕｓａｂｙｓｓｉのプロテインジスルフィドオキシドレダクターゼの配列に由来するものを用いることができる。これに関しても、任意の部位でリーダー配列を切断し、同時に成熟型タンパク質として使用することができる。

ＰｈＤｓｂとＰａＤｓｂのアミノ酸レベルでのホモロジーはＧｅｎｅｔｙｘＶｅｒ．３．２を用いて調べたところ６９．８％であった。一方、ＰｈＤｓｂと大腸菌のＤｓｂＡとのホモロジーは３０．２％であり、明らかにＡｒｃｈａｅａ内でのホモロジーは有意に高く、ほぼ同じ機能を有している可能性があるのではないかと推察される。図７には、Ｓｗｉｓｓ−ｐｌｏｔデータベースにＤｓｂＡとして登録されている由来の異なるタンパク質とＰｈＤｓｂ、ＰａＤｓｂのアミノ酸配列を元にＴｒｅｅＶｅｗ（Ｖｅｒ．１．６．６）（ｈｔｔｐ：／／ｔａｘｏｎｏｍｙ．ｚｏｏｌｏｇｙ．ｇｌａ．ａｃ．ｕｋ／ｒｏｄ／ｔｒｅｅｖｉｅｗ．ｈｔｍｌよりダウンロード）を用いて作成した系統図を示している。それぞれの、Ｓｗｉｓｓ−ｐｌｏｔにおけるアクセッション番号は表１に一覧した。その結果、図７から明らかにＡｒｃｈａｅａ由来のＤｓｂＡ（すなわち、ＰｈＤｓｂとＰａＤｓｂは進化的にも同じ傾向を有していることが分かる。

表１は、ＤｓｂＡ類の、アクセッション番号、アミノ酸数、モチーフ、および等電点（ｐＩ）を示している。

また、表１には、それぞれのアミノ酸数、モチーフ配列、およびＧｅｎｅｔｙｘＶｅｒ．３．２を用いて予測した等電点（アミノ酸のｐＫａをアルギニン：１２．５、ヒスチジン：６．０、リジン：１０．５、アスパラギン酸：３．９、システイン：８．３、グルタミン酸：４．３、チロシン：１０．１として計算）を示している。またそれを元に、図７においてｐＩが８以上の塩基性タンパク質は四角で囲み示している。また図７の（）にはモチーフＣＰＸＣ（Ｃ：システイン、Ｐ：プロリン）のＸにあたるところが多型を示していることから、主に用いられている残基であるＨ（ヒスチジン）以外のアミノ酸を採用しているもの関してそのアミノ酸を示している。これらの図から推察して、Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ属のＤｓｂＡは独自の進化を遂げた可能性が示唆される。

本発明は、上記タンパク質の生産方法にも関し、該タンパク質を生産する菌株を適切な培地を用いて培養し、培養物より該タンパク質を採取することを特徴とする。菌としては、特に限定されないが、大腸菌が好ましく用いられ、Ｋ１２株由来、Ｂ株由来等の大腸菌が好適に用いられる。今回の検討では、Ｂ株に由来するＢＬ２１株を用いて生産を行っているが、それに限定されるものではない。さらに詳細には、ＢＬ２１−ＣｏｄｏｎＰｌｕｓ（ＤＥ３）−ＲＩＬ（ストラタジーン社製）を用いているが、これは、ＡｒｃｈａｅａのＣｏｄｏｎｕｓａｇｅが真核生物に近いためである。本菌株はＣｏｄｏｎＵｓａｇｅが真核生物に近くなるように遺伝子工学的手法で改変が施されているものである。当然、大腸菌以外のバチルス属由来の微生物や、真核生物である酵母などを用いて生産しても良い。

また、タンパク質生産時の誘導法としては、今回、ｐＥＴベクター系（Ｔ７系）を用いたが、Ｌａｃ系の誘導システムを用いて生産しても良く、特に限定されるものではない。また、合成法も特に問わない。

また、本タンパク質は種々の無細胞タンパク質合成法によって合成しても良い。無細胞タンパク質合成法の種類については特に限定されないが、一般的に使われるコムギ胚芽抽出液や、大腸菌抽出液、網状赤血球抽出液、昆虫細胞抽出液、酵母抽出液などを好適に用いることができる。

本タンパク質の調製方法に関しては特に限定されないが、大腸菌等を宿主として発現させる場合は、加熱処理することによりその精製効率を飛躍的に向上させることができる。今回は、実施例６で一度カラムクロマトしたフラクションに関して加熱処理を行った例を示しているが、微量混入している夾雑タンパク質を除去するのに大変有効であった。また、精製の初期段階での加熱処理も大変有効である。加熱することにより、立体構造が変化し、活性化されるＡｒｃｈａｅａのタンパク質の例も報告されているが、今回調べた範囲で、本発明のタンパク質にそのような効果は確認されていない。しかし、今回試験した以外の性質においては、加熱処理が有効な場合も当然考えられる。

該酵素の利用法の一つとして、そのレダクターゼ活性を利用したジスルフィド結合の乖離反応を挙げることができる。その用途は特に限定されないが、タンパク質の還元の促進反応が必要なすべての用途に用いることができる。また、産業としては、毛髪のパーマネントなど還元が必要なものへの応用が考えられ、本酵素は耐熱性であることからも、本用途への応用の可能性は高いといえる。また、タンパク質以外にもシスチン（システインがジスルフィド結合により結合したシステインの二量体）の還元促進等への応用にも持ちることが可能であることは容易に予測できる。また、本方法を様々なパターンのジスルフィド結合複合体に応用できることは容易に予想できる。

また、該酵素の利用方法としては、タンパク質のリフォールディングを挙げることができる。リフォールディングとは一度変性させたタンパク質の立体構造を再度形成させ、機能を復活させることである。種々のタンパク質の合成においては、フォールディングがうまくいかずに、変性した凝集体として回収されることがあり、問題となっている。特に、微生物でタンパク質を合成する場合、インクルージョンボディー（封入体）の形成が問題となることが多い。また、無細胞タンパク質合成を行う場合も、タンパク質の凝集不溶化が問題になることがある。それらのタンパク質は一度、尿素やグアニジンなどのタンパク質変性剤で溶解した後、それらの成分を徐々に系から除去することにより、正しい立体構造をとらせることができる場合がある。また、ジスルフィド結合が必須な酵素の場合、変性時に還元剤を添加しておき、ジスルフィド結合も切断しておくと効果的である。その場合は、変性剤を除去する工程で、変性剤も除去し、ジスルフィド結合形成を促進する。ただ、変性剤や還元剤を系から除去するだけでは一般的にリフォールディングの効率は低いことが報告されている。そこで、種々のプロテインジスルフィドオキシドレダクターゼをその工程で働かせることが行なわれてきた。本酵素を用いても、同様に酵素をリフォールディングさせることが可能であることは実施例に示すリボヌクレアーゼを用いた実験例からも明らかである。また、本酵素は熱など過酷な条件に強いことから、種々の変性剤が存在するような条件での使用に関しても適しているといえる。また、本酵素を用いるリフォールディングは、ジスルフィド結合の形成を介さない場合にも有効であることが後述の実施例によっても明らかであり、様々なフォールディング一般への応用を考えることができる。

本発明は、該酵素を用いてタンパク質のフォールディングを促進する方法を含む。フォールディングの促進としては、特に限定されないが、無細胞タンパク質合成等のタンパク質合成の場に本タンパク質を存在させることにより、フォールディング形成を促進させることができる。実際今回、高効率コムギ胚芽無細胞タンパク質合成反応液中でのヒト−Ｓ−アミラーゼの合成反応中に本酵素を存在させておく実験を実施したが、有意にフォールディングを促進する結果を得ている。アミラーゼは１１のシステイン残基を有しており、それらがジスルフィド結合を形成することが活性発現に必須である。今回、酸化グルタチオンと還元グルタチオンを混合した、比較的ジスルフィド結合の形成されやすい条件を用いて無細胞タンパク質合成を実施している。

実際のタンパク質合成には、重層法を用いた（ＦＥＢＳＬｅｔｔｅｒｓ５１４，１０２−１０５（２００２））。タンパク質合成には、ＡＴＰやアミノ酸などの低分子物質が必須であるが、通常のバッチ反応では２〜３時間でそれらの成分が枯渇してしまう。重層法は、反応溶液の上にバッファー層を重層することで、拡散反応によって低分子物質を連続的に供給する方法であり、バッチ法に比べ約１０倍程度の合成量の向上を期待することができる。今回は、その下層すなわち、反応溶液にＤｓｂタンパク質を混合し、実験を行った。バッファー層には一般的に、タンパク質成分を加えない方が良い結果が得られることが確かめられていることから、バッファー層にはタンパク質成分は添加していない。

その結果、無添加（コントロール）でもある程度は活性を示したが、本酵素を添加することでコントロールに比べ約１７０％の活性を有するアミラーゼを合成することができた。また、この効果は大腸菌のＤｓｂＡよりも高く、むしろＤｓｂＣに近いものであった。これは、ジスルフィド結合形成に加え、シャペロンとしての作用が本酵素に高いことを示していると思われる。シャペロンとはヒットショックタンパク質に代表されるタンパク質のフォールディングを助ける作用を有するタンパク質を指す。近年、ジスルフィドオキシドレダクターゼとして報告されていたＰＤＩやＤｓｂタンパク質にも若干ではあるがシャペロン活性があることが知られてきており、ＰｈＤｓｂにはその活性が高いのではないかと予想される。
また、今回実験で証明したこれらの効果は、合成量の増大ではなく、質の向上であることはウェスタンブロッティング解析を用いて確認している。

当然、本酵素は無細胞タンパク質合成によって目的タンパク質と同時合成しても良い。

さらに本発明は、本酵素を賦形剤、安定化剤として用いることを特徴とするタンパク質の安定的保存方法も含有している。上記に記載したように、本酵素は、ジスルフィド結合形成の他にもシャペロンとしての働きも示唆されており、それらの用途には適していることが予想される。特に、本酵素は耐熱性であり、高温での酵素の安定性を向上させる用途とうへの応用も期待される。

また、本発明は、生物機能を用いて所望のタンパク質を発現させる場合にも応用することができる。例えば、大腸菌等でタンパク質を発現させる際に、本発明のタンパク質を共発現させることにより、よりフォールディングのしっかりした質の高いタンパク質を取得することができる可能性が非常に高い。共発現の方法としては、同一ベクターまたは別のベクターでタンパク質を発現する遺伝子を供給する方法が考えられる。

本発明は、本酵素を含有する試薬・キットである。

本発明の実施の一態様としては、ジスルフィド結合乖離用試薬、および／またはキットである。

本発明の実施の一態様としては、タンパク質リフォールディング用試薬、および／またはキットである。

また、本発明の実施の一態様としては、タンパク質フォールディング用試薬、および／またはキットである。

また、本発明の実施の一態様としては、タンパク質安定化剤、および／または賦形剤である。

以下に本発明の実施例をあげることにより、本発明による効果をより一層明瞭なものとする。ただし、これらの実施例によって本発明の範囲は限定されるものではない。

実施例１：ＰｈＤｓｂのクローニング
まず、Ｐ．ＨｏｒｉｋｏｓｈｉｉのゲノムＤＮＡを鋳型として目的タンパク質のＯＲＦをＰＣＲ法にて増幅し、ｐＥＴ−１１ｃ（ストラタジーン社製）へクローニングした。具体的には、Ｐ．ＨｏｒｉｋｏｓｈｉｉのゲノムＤＮＡ（ＡＴＣＣより購入）を鋳型として、配列番号６（ＮｄｅＩサイトを有する）と配列番号７（ＢａｍＨＩサイトを有する）、また、リーダー配列を除去したタンパク質をクローニングする目的で配列番号８（ＮｄｅＩサイトを有する）と配列番号７（ＢａｍＨＩサイトを有する）の配列を有するオリゴヌクレオチドをプライマーとして高正確性ＤＮＡポリメラーゼ（ＫＯＤ −Ｐｌｕｓ− ：東洋紡製）を用いて増幅を実施した（この酵素を用いて増幅したＤＮＡは末端が平滑末端となる）。増幅はＫＯＤ −Ｐｌｕｓ−の取扱い説明書に従って実施した。増幅したＤＮＡはＭａｇＥｘｔｒａｃｔｏｒ−ＰＣＲ＆ＧｅｌＣｌｅａｎｕｐ−キット（東洋紡製）にて精製、末端を制限酵素ＢａｍＨＩで消化した後、更に同キットで精製した。また、一方で、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ（ｐＢＳ）ベクター（ストラタジーン製）をＥｃｏＲＶとＢａｍＨＩで消化し、同様に精製した。精製したＤＮＡ断片とベクターは２：１のモル比で混合し、それと等量のＬｉｇａｔｉｏｎ試薬（Ｌｉｇａｔｉｏｎｈｉｇｈ：東洋紡製）を添加し、１６℃・１時間ライゲーション反応を行った後、大腸菌ＪＭ１０９コンピテントセルを形質転換した。３７℃で一晩薬剤選択培地（ＬＢ／Ａｍｐプレート）にて培養した後、生じたコロニーを、ＬＢ／Ａｍｐ培地を用いて液体培養し、それから分離精製したプラスミドを用いて配列確認を行った。
次に、配列を確認したプラスミド（それぞれｐＢＳ−ＰｈＤｓｂ、ｐＢＳ−ＰｈＤｓｂ（Ｌ−）（Ｌ−：リーダー配列除去））をＮｄｅＩおよびＢａｍＨＩで消化・精製し、目的遺伝子断片の調製を行った。同時に、ｐＥＴ−１１ｃ（ストラタジーン社製）も同様の制限酵素で消化・精製した。精製した目的ＤＮＡ断片とベクターは２：１のモル比で混合し、それと等量のＬｉｇａｔｉｏｎ試薬（Ｌｉｇａｔｉｏｎｈｉｇｈ：東洋紡製）を添加し、１６℃・１時間ライゲーション反応を行った後、大腸菌ＪＭ１０９コンピテントセル（東洋紡製）を形質転換した。最終的には、生じたコロニーからプラスミドＤＮＡ（ｐＥＴ−ＰｈＤｓｂ、ｐＥＴ−ＰｈＤｓｂ（Ｌ−））を抽出し、そのプラスミドＤＮＡを用いて、ＢＬ２１−ＣｏｄｏｎＰｌｕｓ（ＤＥ３）−ＲＩＬコンピテントセル（ストラタジーン製）を形質転換し、下記実験に用いた。

実施例２：大腸菌ＤｓｂＡ、ＤｓｂＣのクローニング
まず、実施例１と同様に大腸菌ゲノムＤＮＡを鋳型として目的タンパク質のＯＲＦをＰＣＲ法にて増幅し、ｐＥＴ−１１ｃ（ストラタジーン社製）へクローニングした。具体的には、大腸菌ゲノムＤＮＡ（ＪＭ１０９株より定法を用いて抽出）を鋳型として、配列番号９（ＮｄｅＩサイトを有する）と配列番号１０（ＢａｍＨＩサイトを有する）、および配列番号１１（ＮｄｅＩサイトを有する）と配列番号１２（ＢａｍＨＩサイトを有する）に示すプライマーをそれぞれ用いて高正確性ＤＮＡポリメラーゼ（ＫＯＤ −Ｐｌｕｓ− ：東洋紡製）によって増幅を実施した（この酵素を用いて増幅したＤＮＡは末端が平滑末端となる）。増幅はＫＯＤ −Ｐｌｕｓ−の取扱い説明書に従って実施した。増幅したＤＮＡはＭａｇＥｘｔｒａｃｔｏｒ−ＰＣＲ＆ＧｅｌＣｌｅａｎｕｐ−キット（東洋紡製）にて精製し、末端を制限酵素ＢａｍＨＩで消化した後、更に同キットで精製した。また一方で、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔベクター（ストラタジーン製）をＥｃｏＲＶとＢａｍＨＩで消化し、同様に精製した。精製した目的ＤＮＡ断片とベクターは２：１のモル比で混合し、それと等量のＬｉｇａｔｉｏｎ試薬（Ｌｉｇａｔｉｏｎｈｉｇｈ：東洋紡製）を添加し、１６℃・１時間ライゲーション反応を行った後、大腸菌ＪＭ１０９コンピテントセルを形質転換した。３７℃で一晩薬剤選択培地（ＬＢ／Ａｍｐプレート）にて培養した後、生じたコロニーをＬＢ／Ａｍｐ培地を用いて液体培養し、それから分離精製したプラスミドを用いて配列確認を行った。
次に、配列確認を行ったプラスミド（ｐＢＳ−ＤｓｂＡ、およびｐＢＳ−ＤｓｂＣ）をＮｄｅＩおよびＢａｍＨＩで消化・精製し、目的遺伝子断片の調製を行った。同時に、ｐＥＴ−１１ｃ（ストラタジーン社製）も同様の制限酵素で消化・精製した。精製したＤＮＡ断片とベクターは２：１のモル比で混合し、それと等量のＬｉｇａｔｉｏｎ試薬（Ｌｉｇａｔｉｏｎｈｉｇｈ：東洋紡製）を添加し、１６℃・１時間ライゲーション反応を行った後、大腸菌ＪＭ１０９コンピテントセル（東洋紡製）を形質転換した。最終的には、生じたコロニーからプラスミドＤＮＡを抽出し、そのプラスミドＤＮＡ（ｐＥＴ−ＤｓｂＡ、ｐＥＴ−ＤｓｂＣ）を用いて、ＢＬ２１−ＣｏｄｏｎＰｌｕｓ（ＤＥ３）−ＲＩＬコンピテントセル（ストラタジーン製）を形質転換し、下記実験に用いた。

実施例３：ＤｓｂＡリーダー配列を有するＰｈＤｓｂのクローニング
まず、上記実験によって調製されたｐＢＳ−ＤｓｂＡを鋳型として、配列番号９と配列番号１３（リンカー配列としてＰｈＤｓｂ配列を一部有する）に示すプライマーを用いて高正確性ＤＮＡポリメラーゼ（ＫＯＤ −Ｐｌｕｓ−：東洋紡製）によってＤｓｂＡのシグナルペプチド配列部分の増幅を実施した（この酵素を用いて増幅したＤＮＡは末端が平滑末端となる）。また一方、同じく上記実験によって調製されたｐＢＳ−ＰｈＤｓｂを鋳型として、配列番号１４（リンカー配列としてＤｓｂＡ配列の一部を有する）と、配列番号７をプライマーとして、同じく高正確性ＤＮＡポリメラーゼ（ＫＯＤ −Ｐｌｕｓ−：東洋紡製）を用いてＤｓｂＡのシグナルペプチド配列部分の増幅を実施した。その後、それぞれの増幅産物を精製した後、１０倍に希釈して混合し、プライマーを添加しない条件で、ＫＯＤ −Ｐｌｕｓ−を用いたエクステンション反応を１０サイクル実施した（この反応で、リンカー部分を解して、それぞれの増幅産物が連結される）。その後、反応液を鋳型に、配列番号９と配列番号７をプライマーとして、同じくＫＯＤ−Ｐｌｕｓ−を用いて融合遺伝子の全長を増幅した。増幅したＤＮＡはＭａｇＥｘｔｒａｃｔｏｒ−ＰＣＲ＆ＧｅｌＣｌｅａｎｕｐ−キット（東洋紡製）にて精製、末端を制限酵素ＢａｍＨＩで消化し、更に同キットで精製した。また一方で、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔベクター（ストラタジーン製）をＥｃｏＲＶとＢａｍＨＩで消化し、同様に精製した。精製したＤＮＡ断片とベクターは２：１のモル比で混合し、それと等量のＬｉｇａｔｉｏｎ試薬（Ｌｉｇａｔｉｏｎｈｉｇｈ：東洋紡製）を添加し、１６℃・１時間ライゲーション反応を行った後、大腸菌ＪＭ１０９コンピテントセルを形質転換した。３７℃で一晩薬剤選択培地（ＬＢ／Ａｍｐプレート）にて培養した後、生じたコロニーを用いて液体培養し、それから分離精製したプラスミドを用いて配列確認を行った。
次に、配列確認を行ったプラスミド（ｐＢＳ−ＤｓｂＡＬ／ＰｈＤｓｂ）をＮｄｅＩおよびＢａｍＨＩで消化・精製し、目的遺伝子の調製を行った。同時に、ｐＥＴ−１１ｃ（ストラタジーン社製）も同様の制限酵素で消化・精製した。精製した目的ＤＮＡ断片とベクターは２：１のモル比で混合し、それと等量のＬｉｇａｔｉｏｎ試薬（Ｌｉｇａｔｉｏｎｈｉｇｈ：東洋紡製）を添加し、１６℃・１時間ライゲーション反応を行った後、大腸菌ＪＭ１０９コンピテントセル（東洋紡製）を形質転換した。最終的には、生じたコロニーからプラスミドＤＮＡを抽出し、そのプラスミドＤＮＡ（ｐＥＴ−ＤｓｂＡＬ／ＰｈＤｓｂ）を用いて、ＢＬ２１−ＣｏｄｏｎＰｌｕｓ（ＤＥ３）−ＲＩＬコンピテントセル（ストラタジーン製）を形質転換し、下記実験に供した。

実施例４：ＰｈＤｓｂ、大腸菌ＤｓｂＡ、およびＤｓｂＣタンパク質の発現条件の検討
それぞれの遺伝子を挿入したｐＥＴ−１１ｃで形質転換したＢＬ２１−ＣｏｄｏｎＰｌｕｓ（ＤＥ３）−ＲＩＬ株（それぞれＰｈＤｓｂ、ＰｈＤｓｂ（Ｌ−）、ＤｓｂＡＬ／ＰｈＤｓｂ、ＤｓｂＡ、およびＤｓｂＣ遺伝子を保有）、を用いてタンパク質の発現を実施した。具体的には３７℃でＬＢ／Ａｍｐ培地を用いて０．４ＯＤになるまで培養した後、ＩＰＴＧを１ｍＭとなるように添加し、３７℃で３時間培養し、目的タンパク質を発現させた。
培養の後、培養液を６，０００ｒ．ｐ．ｍ．で１０分間遠心し、菌体を回収した。その後、１０ｍＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．０）に菌体を懸濁し３０分間放置し、ペリプラズムに発現されたタンパク質を菌外へ放出させた。その懸濁液を１５，０００ｒ．ｐ．ｍ．で１０分間遠心し、その上清を回収した（ペリプラズム画分）。このペリプラズムタンパク質の回収方法は、Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．１７９（１７）５３３３−５３３９（１９９７）を参考にした。また、その時得られたペレットに１０ｍＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．０）を適量添加、懸濁し、２分間超音波処理を行った後、１５，０００ｒ．ｐ．ｍ．で１０分間遠心しその上清を回収した（菌体内可溶性画分）。ＰｈＤｓｂ、ＰｈＤｓｂ（Ｌ−）、およびＤｓｂＡＬ／ＰｈＤｓｂに関して得られた画分をＳＤＳ−ＰＡＧＥ解析を行った結果を図３に示した。コントロールとして、ＤｓｂＡの結果も示している。結果より、ＤｓｂＡタンパク質はペリプラズムに回収されたのに対して、リーダー配列部分を含む完全長の遺伝子発現を行ったＰｈＤｓｂタンパク質およびＤｓｂＡのリーダー配列を融合させたＰｈＤｓｂタンパク質はペリプラズム画分ではまったく回収されなかった。また、その発現レベルも大変低いものであり、菌体内可溶性画分に回収されなかったことから不溶化しているものと推測された。一方、シグナルペプチド部分を除去したＰｈＤｓｂＬ−は、当然ペリプラズム画分にはタンパク質は回収されなかったが、細胞質の可溶性画分に強い発現を認めることができ、可溶性タンパク質として回収できたことが明らかとなった。データは示していないが、ＤｓｂＣもペリプラズム画分に強い発現を認めた。

実施例５：ＤｓｂＡ、およびＤｓｂＣの精製
実施例３の方法に従って回収したＤｓｂＡ、およびＤｓｂＣのペリプラズム画分を１０ｍＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）にて平衡化させたＤＥＡＥ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ（アマシャムバイオサイエンス社製）に供し、同緩衝液で５カラム容量分洗浄した後、０．１Ｍに続き０．２ＭＮａＣｌを含有する同緩衝液でタンパク質を溶出した。ＤｓｂＡは０．１ＭＮａＣｌ画分に、ＤｓｂＣは０．２ＭＮａＣｌ画分にそれぞれ溶出された。フラクションはそれぞれＳＤＳ−ＰＡＧＥ解析を行い、メインフラクションのみを集めて、２０ｍＭＨＥＰＥＳ−ＫＯＨ（ｐＨ７．６）に対して透析し、酵素溶液として種々の実験に使用した。文献等に従うと、この方法で得られるＤｓｂタンパク質は、リーダー配列を切除されていると考えられ、以下の実験には、ここで得られたタンパク質（詳細に記述するとＤｓｂＡ（Ｌ−）、ＤｓｂＣ（Ｌ−）となる）を用いて行った。

実施例６：リーダー配列除去ＰｈＤｓｂ（Ｌ−）の精製
実施例３の方法で発現誘導した菌体（ＢＬ２１−ＣｏｄｏｎＰｌｕｓ（ＤＥ３）−ＲＩＬ／ｐＥＴ−ＰｈＤｓｂ（Ｌ−））を回収し、１０ｍＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）にて懸濁後、超音波破砕の後、１５，０００ｒ．ｐ．ｍ．にて遠心し、その上清を回収した。次に、その上清を１０ｍＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）にて平衡化したＳ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ（アマシャムバイオサイエンス社製）に供し、同緩衝液にて５カラム容量分洗浄した後に、０．２ＭＮａＣｌを含有する同緩衝液にて溶出した。また、必要に応じて精製度を高める目的で、溶出された画分を８０℃、２０分間加熱処理した後、１０ｍＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）にて１０倍希釈し、同緩衝液にて平衡化したＳ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅに供した。カラムを同様に同緩衝液にて洗浄した後に、０．２ＭＮａＣｌを含有する同緩衝液にて溶出した。溶出されたフラクションはＳＤＳ−ＰＡＧＥ解析を行い、メインフラクションのみを混合し、２０ｍＭＨＥＰＥＳ−ＫＯＨ（ｐＨ７．６）に対して透析し、酵素溶液として下記の種々の実験に用いた。

実施例７：ヒト唾液（Ｓ）アミラーゼ遺伝子のクローニング
無細胞タンパク質合成実験に用いるヒト−Ｓ−アミラーゼ遺伝子は、ヒトｃＤＮＡ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社製）からＰＣＲ法を用いてクローニングを行った。具体的には配列番号１５および配列番号１６（ＢａｍＨＩ配列を含む）に記載のプライマーを使って、高正確性ＤＮＡポリメラーゼ（ＫＯＤ −Ｐｌｕｓ−：東洋紡製）を用いて増幅を実施した（この酵素を用いて増幅したＤＮＡは末端が平滑末端となる）。ヒトアミラーゼはリーダー配列を有するタンパク質であるが、無細胞タンパク質合成法においては除去されないことが分かっていることから、今回は最初から、既に報告されているリーダー配列部分を含まない形でクローニングできるよう、プライマー設計を行った。増幅はＫＯＤ −Ｐｌｕｓ−の取扱い説明書に従って実施した。増幅したＤＮＡはＭａｇＥｘｔｒａｃｔｏｒ−ＰＣＲ＆ＧｅｌＣｌｅａｎｕｐ−キット（東洋紡製）にて精製、末端を制限酵素ＢａｍＨＩで消化した後、更に同キットで精製した。また一方で、無細胞タンパク質合成用ベクター（ｐＥＵ３−ＮＩＩベクター：東洋紡製）をＥｃｏＲＶとＢａｍＨＩで消化し、同様に精製した。精製した目的ＤＮＡ断片とベクターは２：１のモル比で混合し、それと等量のＬｉｇａｔｉｏｎ試薬（Ｌｉｇａｔｉｏｎｈｉｇｈ：東洋紡製）を添加し、１６℃・１時間ライゲーション反応を行った後、大腸菌ＪＭ１０９コンピテントセルを形質転換した。３７℃で一晩薬剤選択培地（ＬＢ／Ａｍｐプレート）にて培養した後、生じたコロニーを用いて液体培養し、それから分離精製したプラスミドを用いて配列確認を行った。また、無細胞タンパク質合成用に、ＱＩＡＦＩＬＴＥＲＭＩＤＩＫＩＴ（ＱＩＡＧＥＮ社製）を用いてプラスミドを抽出し、さらにフェノール／クロロホルム抽出、エタノール沈殿法を用いてプラスミドを精製した。ここで構築したプラスミドを以下、ｐＥＵ−Ｓ−ＡＭＹとする。

実施例８：ジスルフィドレダクターゼ活性測定
各酵素のジスルフィドレダクターゼ活性は基本的には、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２４５（１９）９６２７−９６３２（１９７９）に従って測定した。具体的には、アッセイ用緩衝液（１ｍｇ／ｍｌウシインスリン（ロシュダイアグノスティクス社製）、０．１Ｍリン酸カリウム−酢酸緩衝液（ｐＨ７．０）、２ｍＭＥＤＴＡ）を９６ウェルプレートに１５０μｌづつ添加した後、酵素溶液を添加し１８０μｌにした。酵素サンプルとしては、実施例５、および６にて調製した２０ｍＭＨＥＰＥＳ−ＫＯＨ（ｐＨ７．６）に溶解したＤｓｂＡ（Ｌ−）、ＤｓｂＣ（Ｌ−）、ＰｈＤｓｂ（Ｌ−）（以下（Ｌ−）略）を用い、測定時の終濃度が２μＭとなるようにした。その後に、１０ｍＭジチオスレイトール（ＤＴＴ）を７．５μｌ添加、混合し（終濃度０．５ｍＭ）、反応を開始した。反応は、室温（２５℃）にて行い、濁度（６５０ｎｍ）の変化をプレートリーダーにて５分毎に測定した。その結果を、図４に示す。図から明らかなように、ＰｈＤｓｂと大腸菌ＤｓｂＡはほぼ同じ挙動を示し、ＰｈＤｓｂはＤｓｂＡのホモログであることが示唆された。コントロールも最終的には濁度の上昇が見られたが、これは還元状態における自発的な乖離現象であり、一般的な現象である。

実施例９：ジスルフィドオキシダーゼ活性測定
各酵素のジスルフィドオキシダーゼ活性は基本的には、Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ３０，６１３−６１９（１９９１）に従って実施した。すなわち、変性リボヌクレアーゼを酵素溶液で希釈し、リボヌクレアーゼ活性を指標としてその活性の復活を測定した。具体的には、まず、５ｍｇのウシリボヌクレアーゼＡ（Ｓｉｇａｍａ社製）を１ｍｌの変性溶液（６Ｍグアニジン塩酸塩、０．１ＭＴｒｉｓ−酢酸緩衝液（ｐＨ８．０）、２ｍＭＥＤＴＡ、０．１４ｍＭＤＴＴ）に溶解し、一晩放置し変性させた。その後、０．１％酢酸で平衡化したＧ−２５スピンカラム（アマシャムバイオサイエンス社製）にてゲル濾過し、実験に用いた。
５０μｌの２倍濃度のアッセイ溶液（１００ｍＭＴｒｉｓ−酢酸（ｐＨ８．０）、９ｍＭｃＣＭＰ（Ｓｉｇｍａ社製）、０．４ｍＭ酸化型グルタチオン（ＧＳＳＧ）、２ｍＭ還元型グルタチオン（ＧＳＨ））に５０μｌの１０μＭの各種酵素（ＤｓｂＡ（Ｌ−）、ＤｓｂＣ（Ｌ−）、およびＰｈＤｓｂ（Ｌ−）（以下（Ｌ−）略）（２０ｍＭＨＥＰＥＳ−ＫＯＨ（ｐＨ７．６））を混合した後、２．２μｌのゲル濾過後の変性リボヌクレアーゼを添加、混合し、反応を開始した。反応は室温（２５℃）で行い、ほぼ５分毎に２９６ｎｍの変化を測定した。また、ブランクとして、変性リボヌクレアーゼＡを添加しないものも測定し、コンタミ酵素によってバックグラウンドの吸光度が増加しないことを確認した。
その結果、図５に示すようにＤｓｂＣ＞ＰｈＤｓｂ＞ＤｓｂＡの順番でリフォールディング活性を確認することができた。ＰｈＤｓｂはＤｓｂＡより若干活性が強く、ＤｓｂＣとＤｓｂＡの中間的な性質を示した。また、コントロールにも若干吸光度の上昇が見られたが、これも一般的に知られている現象である。

実施例１０：耐熱性の評価
ＤｓｂＡおよびＰｈＤｓｂを１００ｍＭのリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．０）にて６０μＭに調製し、サーマルサイクラーを用いて１００℃で任意の時間加熱した後、基本的には実施例８の方法に従ってジスルフィドレダクターゼ活性を測定した。具体的には、酵素の終濃度は５μＭとなるようにし、２５分後のＡ６５０ｎｍを測定した。２５分後のコントロールの吸光度はブランクとほぼ同じであった。活性は、非加熱のサンプルの吸光度６５０ｎｍを１００％とし、それの相対値で示している。結果を図６に示すが、１００℃、２時間の加熱で大腸菌由来のＤｓｂＡの活性は４０％まで低下したのに対し、ＰｈＤｓｂはほぼ１００％活性を保持していた。今回の測定においては、本条件で測定した実測地をそのまま活性値として評価しているが、今回の実験においては、酵素反応の初速をほぼ観察していると思われることから、妥当な測定方法であるといえる。

実施例１１：無細胞タンパク質合成への応用例
ＰｈＤｓｂタンパク質のフォールディングに及ぼす効果を、無細胞タンパク質合成法を用いて検証した。具体的には、ヒト−Ｓ−アミラーゼ（ジスルフィド結合の形成が活性発現に必須）を高効率コムギ胚芽無細胞タンパク質合成系（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ９６（２），５５９−５６４（２０００））を用いて合成する際に、各種プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを共存させておき、合成後にアミラーゼ活性を測定することにより、そのフォールディングに及ぼす効果を測定した。ヒト−Ｓ−アミラーゼは１１のシステイン残基を有し、それらが複雑なジスルフィド結合を形成して活性を発現すると考えられており、通常の還元条件を用いる無細胞タンパク質合成反応では活性型の酵素を合成することが困難である。よって、今回用いたタンパク質合成に用いる際の低分子成分組成は、参考文献（ＮａｔｕｒｅＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，１５，７９−８４（１９９７））に報告されているように、還元剤（ジチオスレイトール：ＤＴＴ）の代わりに、酸化グルタチオン（ＧＳＳＧ）と還元グルタチオン（ＧＳＨ）を一定の組成になるように添加した組成を用いた。また、無細胞タンパク質合成に用いたバッファー以外の成分は、ＰＲＯＴＥＩＯＳＷｈｅａｔｇｅｒｍｃｅｌｌ−ｆｒｅｅｐｒｏｔｅｉｎｓｙｎｔｈｅｓｉｓｋｉｔ（東洋紡製）のものを用い、キット添付の取扱い説明書に従い、重層法（ＦＥＢＳＬｅｔｔｅｒｓ５１４，１０２−１０５（２００２））を用いて実施した。詳細には、反応液（下層）として、容量の２０％のＷｈｅａｔｇｅｒｍｅｘｔｒａｃｔ（キット添付；２００ＯＤ）、８００ｕｎｉｔｓ／ｍｌＲｉｂｏｎｕｃｌｅａｓｅｉｎｈｉｂｉｔｏｒ（東洋紡製）、３μＭ評価用タンパク質（ＤｓｂＡ（Ｌ−）、ＤｓｂＣ（Ｌ−）、ＰｈＤｓｂ（Ｌ−）、およびＢＳＡ（以下（Ｌ−）略））、バッファー成分（終濃度として；３０ｍＭＨＥＰＥＳ−ＫＯＨ（ｐＨ７．６）、９５ｍＭ酢酸カリウム、２．６５ｍＭ酢酸マグネシウム、０．２５ｍＭＧＴＰ、０．４ｍＭ酸化型グルタチオン（ＧＳＳＧ）、１ｍＭ還元型グルタチオン（ＧＳＨ）、１．２ｍＭＡＴＰ、１６ｍＭクレアチンリン酸、０．５ｍｇ／ｍｌクレアチン（ホスホ）キナーゼ（Ｒｏｃｈｅ製）、０．３８ｍＭスペルミジン、２０種類のＬ−アミノ酸（各０．３ｍＭ）、０．２５ｍｇ／ｍｌｍＲＮＡ（ＰＲＯＴＥＩＯＳの取扱い説明書に従いｐＥＵ−Ｓ−ＡＭＹから転写し、精製したもの））、となるようにそれぞれ５０μｌ調製した。使用したＰｈＤｓｂは、フラクション後、加熱処理を行ない更に精製を行ったものを用いた（実施例６参照）。上層（バッファー層）としては、終濃度として；３０ｍＭＨＥＰＥＳ−ＫＯＨ（ｐＨ７．６）、９５ｍＭ酢酸カリウム、２．６５ｍＭ酢酸マグネシウム、０．２５ｍＭＧＴＰ、０．４ｍＭ酸化型グルタチオン（ＧＳＳＧ）、１ｍＭ還元型グルタチオン（ＧＳＨ）、１．２ｍＭＡＴＰ、１６ｍＭクレアチンリン酸、０．３８ｍＭスペルミジン、２０種類のＬ−アミノ酸（各０．３ｍＭ）となるように調製した。反応は２６℃で１６時間行った。
コムギ胚芽抽出液自体はアミラーゼ活性を有さず、また活性を阻害しないことを確認しているので、合成終了後、その液をそのまま用いてアミラーゼ活性の比較を行った。活性測定は、α−アミラーゼ測定キット・ダイヤカラー・リキッドＡＭＹ（東洋紡製）を用いて測定した。具体的には、酵素試薬（キット添付）３００μｌにサンプル５μｌを添加した後に、基質試薬（キット添付）を１５０μｌ添加し、３７℃にて１１分間反応させ、４１５ｎｍの吸光度をプレートリーダーで測定した。その結果を、図８に示した。図から明らかなように、コムギ胚芽抽出反応液のみを添加したＢｌａｎｋにはまったくアミラーゼ活性は認められなかった。一方、Ｄｓｂサンプルの代わりに２０ｍＭＨＥＰＥＳ−ＫＯＤ（ｐＨ７．６）のみを添加したＣｏｎｔｒｏｌについては活性の発現を認めることができた。これは、通常無細胞タンパク質合成反応で用いられるジチオスレイトール（ＤＴＴ）を用いる代わりに、今回酸化／還元グルタチオン系を用いた効果であると思われた。また、ＢＳＡを添加したものの活性のレベルもＣｏｎｔｒｏｌとほぼ同じレベルであった。Ｄｓｂ類を添加したものについては、ＤｓｂＣ＞ＰｈＤｓｂ＞＞ＤｓｂＡの順番でアミラーゼ活性の向上を認めることができた。ＰｈＤｓｂはジスルフィドレダクターゼ活性レベルがＤｓｂＡとほとんど同レベルであることが確認されている（実施例８）ことから、ＤｓｂＣで知られているようなジスルフィド結合を架けかえる（異性化）する活性（イソメラーゼ活性）は低いことが予想される。よって、この実験における高いリフォールディング活性は、ジスルフィドオキシダーゼ活性に加えて、シャペロンとしての効果が高かった可能性を示唆していると考えられる。
また、この実験における各条件でのアミラーゼの合成量は、別途実施した抗アミラーゼ抗体（ＳａｎｔａＣｒｕｚ社製）を用いたウエスタンブロッティングの結果からほぼ同等であることを確認しており、合成量の違いによるものではなく、質の問題であることは確かである。また、ヒトＳ−アミラーゼ標品を用いた比較より、コントロールでタンパク質あたり約１０％の活性であることが確認されている。よって、ＰｈＤｓｂの添加により、１０％から１７％程度（１．７倍）活性化されたことになる。

本発明は、大腸菌等の組換え細胞を用いたタンパク質生産、あるいは、タンパク質研究の分野においてきわめて有用である。

大腸菌ＤｓｂＡとＰｈＤｓｂのアミノ酸配列を比較した図。四角で囲った部分がＤｓｂＡファミリーに共通するチオレドキシンモチーフを示す。また、＊は共通のアミノ酸配列、−はギャップを示す。↓は、ＳｉｇｎａｌＰプログラム（Ｖｅｒ．１．１）を用いて予測されたシグナルペプチダーゼ認識部位を示す。ＰｈＤｓｂとＰａＤｓｂのアミノ酸配列を比較した図。＊は共通のアミノ酸配列、−はギャップを示す。大腸菌（ＢＬ２１−ＣｏｄｏｎＰｌｕｓ（ＤＥ３）−ＲＩＬ）における種々のタンパク質の発現を示す図。１０−２０％グラジエントゲルを用いてＳＤＳ−ＰＡＧＥ解析を行った。１：ベクターのみ（コントロール）、２：ＰｈＤｓｂ、３：ＰｈＤｓｂ（Ｌ−）、４：ＤｓｂＡＬ／ＰｈＤｓｂ（ＤｓｂＡのリーダー配列を有するＰｈＤｓｂ）、５：ＤｓｂＡ、Ｔ：大腸菌細胞ライゼート（Ｔｏｔａｌ）、Ｐｅ：ペリプラズム画分、Ｓ：菌体内可溶性画分。種々の酵素のプロテインジスルフィドレダクターゼ活性の比較を示す図。縦軸に濁度（Ａ６５０ｎｍ）：レダクターゼ活性を、横軸に反応時間を示している。種々の酵素のプロテインジスルフィドオキシダーゼ活性の比較を示す図。縦軸に吸光度（Ａ２９６ｎｍ）：活性を、横軸に反応時間を示している。ＰｈＤｓｂの耐熱性を示す図。縦軸に相対プロテインジスルフィドレダクターゼ活性、横軸に１００℃での処理時間を示している。ＤｓｂＡ類の進化系統図を示す図。ｐＩ８．０以上の塩基性タンパク質を四角で囲んで示している。また、括弧内のアルファベットはＣＰＸＣモチーフのＸにＨ以外のアミノ酸を採用しているものについてそのアミノ酸を示している。無細胞タンパク質合成でタンパク質を合成する際のフォールディングに及ぼす各酵素の効果を比較する図。縦軸にアミラーゼ活性（Ａ４１５ｎｍ）を示している。

Claims

Ａｒｃｈａｅａ由来であって、ＣＰＨＣ（Ｃ：システイン、Ｐ：プロリン、Ｈ：ヒスチジン）モチーフを有することを特徴とする、成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼタンパク質。
Ａｒｃｈａｅａ由来であって、ＣＰＨＣ（Ｃ：システイン、Ｐ：プロリン、Ｈ：ヒスチジン）モチーフを有し、下記理化学的特徴を有する、請求項１に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼタンパク質。
熱安定性：ｐＨ７．０にて１００℃、２時間の加熱で６０％以上の残存活性を保持することができる。
Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ属細菌由来であることを特徴とする請求項１に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼタンパク質。
Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓｈｏｒｉｋｏｓｈｉｉ由来であることを特徴とする請求項３に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼタンパク質。
該タンパク質の配列が、配列番号１に示される配列に由来することを特徴とする請求項４に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼタンパク質。
該タンパク質の配列が、配列番号２に示される配列であることを特徴とする、請求項５に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼタンパク質。
ＣＰＨＣモチーフ配列が変更されたことを特徴とする、請求項１に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼタンパク質。
請求項１〜７に記載のタンパク質を発現するように、所望の遺伝子配列を挿入したベクター。
請求項８に記載のベクターで形質転換された形質転換体。
請求項１〜７に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを生産する菌株を培養し、培養物より該タンパク質を採取することを特徴とする成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼタンパク質の製造方法。
請求項１〜７に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを細胞質内に生産する菌株を培養し、培養物より該タンパク質を採取することを特徴とする成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼタンパク質の製造方法。
請求項１〜７に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを、無細胞タンパク質合成法を用いて合成することを特徴とする成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼタンパク質の製造方法。
加熱処理工程を経ることを特徴とする、請求項１０〜１２に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼの製造方法。
請求項１〜７に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを用いてタンパク質内もしくはタンパク質間のジスルフィド結合の切断を促進する方法。
請求項１〜７に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを用いてタンパク質のリフォールディングを促進する方法。
請求項１〜７に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを用いてタンパク質のフォールディングを促進する方法。
請求項１〜７に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを用いて無細胞タンパク質合成時のフォールディングを促進する請求項１３に記載の方法。
請求項１〜７に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼをタンパク質安定化剤および／または賦形剤として用いることを特徴とするタンパク質の安定的保存方法。
請求項１〜７に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを含有する試薬またはキット。
生物機能を用いて所望のタンパク質を発現させる方法であって、請求項１〜７に記載の成熟型プロテインジスルフィドオキシドレダクターゼを共発現させることにより、該タンパク質の活性を高める方法。