JP2006194746A - Measuring method of material to be measured, and reagent for immunoassay - Google Patents

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Abstract

<P>PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a measuring method of a material to be measured capable of suppressing a nonspecific reaction caused by a material other than the material to be measured in a specimen, and preventing clogging in an automatic analyzer even when using an alkali cleaning liquid in the automatic analyzer, and a reagent for immunoassay. <P>SOLUTION: In this measuring method of the material to be measured for measuring the material to be measured included in the specimen by the automatic analyzer using the cleaning liquid, an antigen-antibody reaction between the material to be measured and an antibody or an antigen corresponding to the material to be measured is generated in the presence of zinc ions, and the material to be measured is measured based on a turbidity change or a scattered-light change caused by the antigen-antibody reaction. This reagent for immunoassay for the automatic analyzer capable of cleaning by the cleaning liquid includes the antibody or the antigen corresponding to the material to be measured and zinc ions. <P>COPYRIGHT: (C)2006,JPO&NCIPI

Description

本発明は、洗浄液を用いる自動分析装置において検体に含まれる被測定物質を測定する被測定物質測定方法及び免疫測定用試薬に関する。   The present invention relates to a measurement substance measurement method and an immunoassay reagent for measuring a measurement substance contained in a sample in an automatic analyzer using a cleaning solution.

臨床検査などの分野では、検体に含まれる被測定物質を測定する方法として、被測定物質に対応する抗体又は抗原と被測定物質との抗原抗体反応により生じる濁度変化又は散乱光変化を検出することにより、検体に含まれる被測定物質を測定する免疫測定法が知られている。このような免疫測定法としては、免疫比濁法や免疫比ろう法が挙げられる。   In fields such as clinical tests, turbidity changes or scattered light changes caused by an antigen-antibody reaction between an antibody or antigen corresponding to the substance to be measured and the substance to be measured are detected as a method for measuring the substance to be measured contained in the specimen. Thus, an immunoassay method for measuring a substance to be measured contained in a specimen is known. Examples of such an immunoassay include an immunoturbidimetric method and an immunotrophic method.

前記のような免疫測定法においては、測定用試料中に含まれる被測定物質以外の物質により非特異的な反応が起こる場合がある。そして、この非特異的な反応により、測定用試料の濁りが生じ、被測定物質の正確な測定が妨げられる。   In the immunoassay as described above, a nonspecific reaction may occur due to a substance other than the substance to be measured contained in the measurement sample. This non-specific reaction causes turbidity of the measurement sample, which prevents accurate measurement of the substance to be measured.

非特異的な反応を抑制して被測定物質を測定する方法として、2価の金属イオンを含有する試薬を用いる方法が知られている。   As a method for measuring a substance to be measured while suppressing non-specific reactions, a method using a reagent containing a divalent metal ion is known.

特許文献1には、ベリリウムイオン、マグネシウムイオン、ストロンチウムイオン、バリウムイオン、鉄イオン、亜鉛イオン、カドミウムイオンなどの2価金属イオンの1つ又は2つ以上を0.0001〜1.0Mの濃度で含有する試薬を用いることで、非特異的な反応を抑制して被測定物質を測定する方法が記載されている。   Patent Document 1 discloses a reagent containing one or more divalent metal ions such as beryllium ion, magnesium ion, strontium ion, barium ion, iron ion, zinc ion, and cadmium ion at a concentration of 0.0001 to 1.0M. Describes a method for measuring a substance to be measured while suppressing non-specific reactions.

また、特許文献2には、マグネシウムイオンを含有する試薬を用いることで、非特異的な反応を抑制して被測定物質を測定する方法が記載されている。   Patent Document 2 describes a method for measuring a substance to be measured while suppressing a non-specific reaction by using a reagent containing magnesium ions.

ところで、従来、前記のような免疫測定法を実施する自動分析装置が知られている。このような自動分析装置には、検体や試薬を送液する流路や検体と試薬が混合される反応容器が設けられており、これら流路や反応容器などの洗浄にアルカリ性の洗浄液が使用される場合がある。そして、アルカリ性の洗浄液が使用される自動分析装置において、例えば、マグネシウムイオンを含む試薬を用いると、洗浄後の洗浄液や測定終了後の各種試料や試薬といった廃液が流れる部分においてマグネシウムイオンによる析出物が生成され、装置内に詰まりが生じるという問題が発生する場合がある。   By the way, conventionally, an automatic analyzer for performing the immunoassay as described above is known. Such an automatic analyzer is provided with a flow path for supplying a sample and a reagent and a reaction container in which the sample and the reagent are mixed, and an alkaline cleaning liquid is used for cleaning the flow path and the reaction container. There is a case. In an automatic analyzer using an alkaline cleaning liquid, for example, when a reagent containing magnesium ions is used, precipitates due to magnesium ions are present in a portion where waste liquid such as the cleaning liquid after cleaning and various samples and reagents after the measurement flows. There is a case that a problem occurs that the clogging is generated in the apparatus.

特開昭56−2555JP 56-2555

特開平08−211057JP 08-211057

本発明の目的は、検体中の被測定物質以外の物質による非特異的な反応を抑制し、且つ自動分析装置においてアルカリ性の洗浄液を使用する場合であっても装置内の詰まりを防止できる被測定物質測定方法及び免疫測定用試薬を提供する。   It is an object of the present invention to suppress a non-specific reaction caused by a substance other than a substance to be measured in a sample, and to prevent clogging in the apparatus even when an alkaline cleaning liquid is used in an automatic analyzer. A substance measuring method and an immunoassay reagent are provided.

上記の課題に鑑み本発明は、洗浄液を用いる自動分析装置において検体に含まれる被測定物質を測定する被測定物質測定方法であって、亜鉛イオン存在下で被測定物質と被測定物質に対応する抗体又は抗原との抗原抗体反応を生じさせ、その抗原抗体反応によって生じる濁度変化又は散乱光変化に基づいて被測定物質を測定する被測定物質測定方法を提供する。   In view of the above problems, the present invention is a method for measuring a substance to be measured for measuring a substance to be measured contained in a specimen in an automatic analyzer using a cleaning liquid, and corresponds to the substance to be measured and the substance to be measured in the presence of zinc ions. Provided is a method for measuring a substance to be measured, which causes an antigen-antibody reaction with an antibody or antigen and measures the substance to be measured based on a change in turbidity or a change in scattered light caused by the antigen-antibody reaction.

また、本発明は、洗浄液による洗浄を実施可能な自動分析装置用の免疫測定用試薬であって、被測定物質に対応する抗体又は抗原及と亜鉛イオンとを含有する免疫測定用試薬を提供する。   The present invention also provides an immunoassay reagent for an automatic analyzer that can be washed with a washing solution, and contains an antibody or antigen corresponding to a substance to be measured and an antigen and zinc ion. .

免疫測定において本発明の被測定物質測定方法又は免疫測定用試薬を用いることにより、検体中の被測定物質以外の物質による非特異的な反応を抑制し、且つ自動分析装置においてアルカリ性の洗浄液が用いられた場合でも装置内の詰まりを防止することが可能である。   By using the analyte measurement method or immunoassay reagent of the present invention in immunoassay, non-specific reactions caused by substances other than the analyte in the sample are suppressed, and an alkaline cleaning solution is used in the automatic analyzer. Even in such a case, clogging in the apparatus can be prevented.

本実施形態の免疫測定用試薬は、被測定物質に対応する抗体又は抗原と被測定物質との抗原抗体反応により生じる濁度変化又は散乱光変化に基づいて検体に含まれる被測定物質を測定する免疫測定方法を実施する自動分析装置に用いられる免疫測定用試薬である。前記のような免疫測定方法としては、免疫比濁法や免疫比ろう法が挙げられる。さらに、被測定物質に対応する抗体又は抗原を感作した担体粒子を用いる免疫比濁法や免疫比ろう法が挙げられる。   The immunoassay reagent of the present embodiment measures a substance to be measured contained in a specimen based on a change in turbidity or a change in scattered light caused by an antigen-antibody reaction between an antibody or antigen corresponding to the substance to be measured and the substance to be measured. It is a reagent for immunoassay used for the automatic analyzer which implements an immunoassay method. Examples of such immunoassay methods include immunoturbidimetry and immunotrophic method. Furthermore, an immunoturbidimetric method and an immunotrophic method using carrier particles sensitized with an antibody or antigen corresponding to the substance to be measured can be mentioned.

図1は、自動分析装置の構成を示した図である。自動分析装置1には、検体をセットする検体セット部2、試薬をセットする試薬セット部3、洗浄液をセットする洗浄液セット部4、洗浄液を用いて洗浄する洗浄機構5、検体や試薬を分注する分注機構6、検体と試薬が混合される反応容器7、反応容器7がセットされる反応部8、測定機構9、全体を制御するコンピューター10等が設けられており、さらに、検体、試薬や廃液などの各種液体が流れる流路が設けられている。ここで、反応容器7とは、検体や試薬が分注されたり、それぞれが混合されたり、測定用試料が調製されたりするところである。そして、前記反応容器7や流路などの洗浄には、アルカリ性の洗浄液が使用される場合が多い。アルカリ性の洗浄液としては、一般的にpH8以上の洗浄液が用いられており、例えば、日立株式会社製 ハイアルカリ-DやHITERGENT、東芝株式社製 Bianch 14がある。   FIG. 1 is a diagram showing a configuration of an automatic analyzer. The automatic analyzer 1 includes a specimen setting section 2 for setting a specimen, a reagent setting section 3 for setting a reagent, a cleaning liquid setting section 4 for setting a cleaning liquid, a cleaning mechanism 5 for cleaning using the cleaning liquid, and dispensing of the specimen and reagents. A dispensing mechanism 6, a reaction container 7 in which a specimen and a reagent are mixed, a reaction section 8 in which the reaction container 7 is set, a measurement mechanism 9, a computer 10 for controlling the whole, and the like, and further, a specimen and a reagent And a flow path through which various liquids such as waste liquid flow. Here, the reaction container 7 is a place where a specimen or a reagent is dispensed, mixed, or a measurement sample is prepared. An alkaline cleaning liquid is often used for cleaning the reaction vessel 7 and the flow path. As an alkaline cleaning solution, a cleaning solution having a pH of 8 or higher is generally used, and examples thereof include Hitachi Ltd. high alkali-D and HITERGENT, and Toshiba Corporation Bianch 14.

免疫測定用試薬は、非特異的な反応を抑制し、且つ自動分析装置においてアルカリ性の洗浄液が用いられた場合でも装置内の詰まりを防止するために、亜鉛イオンを含有する。ここで、非特異的な反応とは、抗原抗体反応以外の反応のことであり、測定用試料中に含まれる被測定物質以外の物質に起因することが知られている。このような非特異的な反応が起こると、測定用試料に濁りが生じ、被測定物質の正確な測定が妨げられる。本実施形態の免疫測定用試薬により影響が抑制される非特異的な反応の原因物質としては、特に限定されないが、例えば、フィブリノーゲンなどの凝固因子が挙げられる。フィブリノーゲンなどの凝固因子は、血清には含まれず、血漿に含まれるので、血漿に特有の非特異的な反応の原因物質となる。この血漿に特有の非特異的な反応の原因物質により、血清を用いた場合の測定値と血漿を用いた場合の測定値との間に乖離が生じるという問題がある。そのような場合、本実施形態の免疫測定用試薬を用いることにより、前記の問題を解決することができる。また、血清を調製する際に凝固因子を完全に排除することができず、凝固因子の一部が血清中に残る場合がある。そのような場合であっても、本実施形態の免疫測定用試薬を用いることにより、血清中に残った凝固因子の影響を排除し、正確な測定を行うことができる。   The reagent for immunoassay contains zinc ions in order to suppress non-specific reactions and prevent clogging in the apparatus even when an alkaline cleaning solution is used in the automatic analyzer. Here, the non-specific reaction is a reaction other than the antigen-antibody reaction and is known to be caused by a substance other than the substance to be measured contained in the measurement sample. When such a non-specific reaction occurs, the measurement sample becomes turbid, and accurate measurement of the substance to be measured is hindered. The causative substance of the nonspecific reaction whose influence is suppressed by the immunoassay reagent of the present embodiment is not particularly limited, and examples thereof include coagulation factors such as fibrinogen. Coagulation factors such as fibrinogen are not contained in serum but are contained in plasma, and thus cause a non-specific reaction specific to plasma. Due to the causative substance of the non-specific reaction peculiar to plasma, there is a problem that a divergence occurs between the measured value when using serum and the measured value when using plasma. In such a case, the above problem can be solved by using the immunoassay reagent of the present embodiment. In addition, when preparing serum, the clotting factor cannot be completely eliminated, and a part of the clotting factor may remain in the serum. Even in such a case, by using the immunoassay reagent of the present embodiment, it is possible to eliminate the influence of the coagulation factor remaining in the serum and perform an accurate measurement.

免疫測定用試薬に含まれる亜鉛イオンとしては、特に限定されるものではないが、例えば塩化亜鉛や硫酸亜鉛等の化合物由来の亜鉛イオンが挙げられる。なお、免疫測定用試薬は、前記化合物を水や緩衝液など適当な液体に溶解させたものであってもよい。前記緩衝液としては、特に限定されず、例えばヘペス緩衝液、トリス緩衝液、リン酸緩衝液などが挙げられる。また、免疫測定用試薬のpHとしては、抗原抗体反応を抑制しない範囲であれば特に限定されないが、pH 4〜10が好ましく、pH 6〜8がより好ましい。   The zinc ion contained in the immunoassay reagent is not particularly limited, and examples thereof include zinc ions derived from compounds such as zinc chloride and zinc sulfate. The reagent for immunoassay may be one obtained by dissolving the compound in an appropriate liquid such as water or a buffer solution. The buffer solution is not particularly limited, and examples thereof include Hepes buffer solution, Tris buffer solution, and phosphate buffer solution. The pH of the immunoassay reagent is not particularly limited as long as it does not suppress the antigen-antibody reaction, but is preferably 4 to 10 and more preferably 6 to 8.

免疫測定用試薬は、さらに被測定物質に対応する抗体又は抗原を含有する。ここで、被測定物質に対応する抗体又は抗原とは、被測定物質がタンパク質、酵素、ホルモンの場合はこれらに対する抗体を表し、被測定物質が抗体であればその抗原を表す。被測定物質に対する抗体又は抗原は天然のものを用いてもよいし、被測定物質から公知の方法により得られるものを用いてもよい。該抗体又は抗原は、複数の抗体又は抗原からなるものでのよく、抗体又は抗原を限定分解したものあるいは蛋白修飾したものでもよい。さらに、該抗体又は抗原を担体粒子に感作してもよい。この場合、例えば測定項目がC反応性タンパク質(CRP)であれば、抗CRP抗体を担体粒子に感作する。   The reagent for immunoassay further contains an antibody or an antigen corresponding to the substance to be measured. Here, the antibody or antigen corresponding to the substance to be measured represents an antibody against these when the substance to be measured is a protein, enzyme, or hormone, and represents the antigen if the substance to be measured is an antibody. The antibody or antigen against the substance to be measured may be a natural one, or those obtained from the substance to be measured by a known method. The antibody or antigen may be composed of a plurality of antibodies or antigens, and may be those obtained by limited degradation or protein modification of antibodies or antigens. Further, the antibody or antigen may be sensitized to carrier particles. In this case, for example, if the measurement item is C-reactive protein (CRP), the anti-CRP antibody is sensitized to the carrier particles.

免疫測定用試薬は、より高い感度を得るために増感剤を含有してもよい。増感剤としては、ポリエチレングリコール、ポリビニルアルコール、デキストラン等の水溶性高分子が挙げられる。また、増感剤として用いるポリエチレングリコールの分子量としては、1000〜70000が好ましく、5000〜30000がより好ましい。   The immunoassay reagent may contain a sensitizer in order to obtain higher sensitivity. Examples of the sensitizer include water-soluble polymers such as polyethylene glycol, polyvinyl alcohol, and dextran. Further, the molecular weight of polyethylene glycol used as a sensitizer is preferably 1000 to 70000, more preferably 5000 to 30000.

免疫測定用試薬は、亜鉛イオン以外の非特異的な反応を抑制する物質を、亜鉛イオンと共に含有してもよい。例えば、脂質タンパク質による非特異的な反応を抑制する物質として非イオン性界面活性剤が挙げられる。このような非イオン性界面活性剤の中でもポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤が好ましく、このようなものとしては、例えばポリオキシエチレンラウリルエーテル、ポリオキシエチレンポリプロピレンラウリルエーテル、オクチルフェニルエーテル、ノニルフェニルエーテルなどが挙げられる。   The reagent for immunoassay may contain, together with zinc ions, a substance that suppresses nonspecific reactions other than zinc ions. For example, a nonionic surfactant is mentioned as a substance which suppresses the nonspecific reaction by a lipid protein. Among such nonionic surfactants, polyoxyethylene nonionic surfactants are preferred, and examples of such nonionic surfactants include polyoxyethylene lauryl ether, polyoxyethylene polypropylene lauryl ether, octylphenyl ether, and nonyl. Examples include phenyl ether.

また、リウマチ因子による非特異的な反応を抑制する物質としては還元剤が挙げられる。還元剤としては、例えば、チオール化合物、チオール尿素誘導体、ホスフィン誘導体などが挙げられる。具体的には、α−チオグリセロール、2−メルカプトエチルアミン塩酸塩、臭化2−アミノエチルイソチオウロニウム臭化水素酸塩、トリス(2−カルボキシエチル)ホスフィンなどが挙げられる。   Moreover, a reducing agent is mentioned as a substance which suppresses the nonspecific reaction by a rheumatoid factor. Examples of the reducing agent include thiol compounds, thiol urea derivatives, and phosphine derivatives. Specific examples include α-thioglycerol, 2-mercaptoethylamine hydrochloride, 2-aminoethylisothiouronium hydrobromide, tris (2-carboxyethyl) phosphine, and the like.

さらに、免疫測定用試薬は、安定化剤、防腐剤、その他この分野で用いられるものは、試薬などの安定性を阻害したり、抗原抗体反応を阻害したりしないものであれば特に限定されることなく含有してもよい。   Furthermore, reagents for immunoassays are particularly limited as long as they do not inhibit the stability of the reagents or the antigen-antibody reaction. You may contain without.

免疫測定用試薬は、亜鉛イオンを含む第一試薬と被測定物質に対応する抗体又は抗原を含む第二試薬とから構成されるものでもよい。なお、非特異的な反応の影響を効果的に低減する観点から、まず検体と亜鉛イオンを含む第一試薬とを混合して非特異的な反応を抑制し、その混合液に抗体又は抗原を含む第二試薬を混合して測定用試料を調製すること望ましい。   The reagent for immunoassay may be composed of a first reagent containing zinc ions and a second reagent containing an antibody or antigen corresponding to the substance to be measured. From the viewpoint of effectively reducing the influence of non-specific reactions, first, a sample and a first reagent containing zinc ions are mixed to suppress non-specific reactions, and antibodies or antigens are added to the mixture. It is desirable to prepare a measurement sample by mixing the second reagent containing.

また、前記非イオン性界面活性剤や還元剤といった亜鉛イオン以外の非特異的な反応を抑制する物質については、非特異的な反応の影響を効果的に低減する観点から、亜鉛イオンを含む第一試薬に共に含有されることが望ましい。   In addition, for substances that suppress non-specific reactions other than zinc ions, such as the nonionic surfactants and reducing agents, from the viewpoint of effectively reducing the influence of non-specific reactions, It is desirable that they are contained together in one reagent.

さらに、前記増感剤については、第一試薬及び第二試薬いずれに含有させてもよい。また、前記安定化剤や防腐剤などについては、各物質の作用効果などに応じて第一試薬又は第二試薬に含有させればよい。   Furthermore, the sensitizer may be contained in either the first reagent or the second reagent. The stabilizer, preservative and the like may be contained in the first reagent or the second reagent according to the action effect of each substance.

また、免疫測定用試薬が前記第一試薬と前記第二試薬とから構成され、検体15μL、第一試薬250μL、第二試薬50μLを混合して測定用試料を調製する場合、免疫測定用試薬に含まれる亜鉛イオンの濃度は、好ましくは0.2〜50mMであり、より好ましくは1〜10mMである。   In addition, when the immunoassay reagent is composed of the first reagent and the second reagent, and the sample for measurement is prepared by mixing 15 μL of the sample, 250 μL of the first reagent, and 50 μL of the second reagent, The concentration of zinc ions contained is preferably 0.2 to 50 mM, more preferably 1 to 10 mM.

なお、上記亜鉛イオンの濃度は、免疫測定用試薬が前記第一試薬と前記第二試薬とからなり、検体15μL、第一試薬250μL、第二試薬50μLを混合して測定用試料を調製する場合の濃度を記載したが、これに限定されない。検体と各試薬の混合割合が異なる場合、免疫測定用試薬に含まれる亜鉛イオンの濃度は、試薬と検体とを混合した後の亜鉛イオンの最終濃度が上記の場合と同様の範囲となるようにすればよい。   The zinc ion concentration is determined when the immunoassay reagent consists of the first reagent and the second reagent, and the sample for measurement is prepared by mixing 15 μL of the sample, 250 μL of the first reagent, and 50 μL of the second reagent. Although the density | concentration of was described, it is not limited to this. When the mixing ratio of the sample and each reagent is different, the concentration of zinc ions contained in the immunoassay reagent is such that the final concentration of zinc ions after mixing the reagent and sample is in the same range as above. do it.

さらに、免疫測定用試薬は、一つの試薬に亜鉛イオン及び被測定物質に対応する抗体又は抗原が共に含有されるものでもよい。この場合、免疫測定用試薬に含まれる亜鉛イオンの濃度は、試薬と検体とを混合した後の亜鉛イオンの最終濃度が上記の場合と同様の範囲となるようにすればよい。   Further, the immunoassay reagent may contain both zinc ions and an antibody or antigen corresponding to the substance to be measured in one reagent. In this case, the concentration of zinc ions contained in the immunoassay reagent may be such that the final concentration of zinc ions after mixing the reagent and the sample is in the same range as in the above case.

検体としては、例えば血漿、血清、尿などの体液が挙げられる。また、免疫測定用試薬によって測定可能な検体中の被測定物質としては、上記のような免疫測定法において測定可能な被測定物質であれば、特に限定されず、例えば、免疫グロブリン(IgG、IgA、IgM、IgD、IgE)、補体(C3、C4、C5、C1q)、C反応性タンパク質(CRP)、α1-アンチトリプシン、α1-マイクログロブリン、β2-マイクログロブリン、ハプトグロブリン、トランスフェリン、セルロプラスミン、フェリチン、アルブミン、ヘモグロビンA1、ヘモグロビンA1C、ミオグロビン、ミオシン、デュパン-2、α-フェトプロテイン(AFP)、組織ポリペプチド抗原(TPA)、アポリポ蛋白A1、アポリポ蛋白E、リウマチ因子、抗ストレプトリジンO(ASO)、アンチトロンビン-III(AT-III)等が挙げられる。   Examples of the specimen include body fluids such as plasma, serum, and urine. In addition, the substance to be measured in the specimen that can be measured by the immunoassay reagent is not particularly limited as long as it is a substance to be measured by the immunoassay as described above. For example, immunoglobulin (IgG, IgA , IgM, IgD, IgE), complement (C3, C4, C5, C1q), C-reactive protein (CRP), α1-antitrypsin, α1-microglobulin, β2-microglobulin, haptoglobulin, transferrin, ceruloplasmin , Ferritin, albumin, hemoglobin A1, hemoglobin A1C, myoglobin, myosin, dupan-2, α-fetoprotein (AFP), tissue polypeptide antigen (TPA), apolipoprotein A1, apolipoprotein E, rheumatoid factor, anti-streptolysin O ( ASO), antithrombin-III (AT-III) and the like.

(実施例1)
検体として血漿を使用し、亜鉛イオンの濃度が異なる6種類の免疫測定用試薬を用いて、亜鉛イオンの添加による非特異的な反応の抑制効果を検証した。
Example 1
Using plasma as a specimen, six types of immunoassay reagents with different zinc ion concentrations were used to verify the inhibitory effect of nonspecific reactions caused by the addition of zinc ions.

免疫測定用試薬は、R1試薬とR2試薬より構成される。R1試薬としては、塩化亜鉛の濃度が0mM(R1試薬A)、2mM(R1試薬B)、4mM(R1試薬C)、6mM(R1試薬D)、8mM(R1試薬E)又は10mM(R1試薬F)と異なる6種類の緩衝液を用いた。以下にR1試薬Aの組成を示す。なお、R1試薬B〜Fは、R1試薬Aに、それぞれ前記した濃度となるように塩化亜鉛を添加したものである。   The reagent for immunoassay is composed of R1 reagent and R2 reagent. As R1 reagent, the concentration of zinc chloride is 0 mM (R1 reagent A), 2 mM (R1 reagent B), 4 mM (R1 reagent C), 6 mM (R1 reagent D), 8 mM (R1 reagent E) or 10 mM (R1 reagent F). 6 types of buffer solutions different from the above were used. The composition of R1 reagent A is shown below. The R1 reagents B to F are obtained by adding zinc chloride to the R1 reagent A so as to have the aforementioned concentrations.

試薬組成(R1試薬A)
ヘペス緩衝液 50mM
塩化ナトリウム 100mM
ポリエチレングリコール(分子量20000) 2.3%(v/v)
ポリオキシエチレンポリオキシプロピレンラウリルエーテル 1.0%(v/v)
1−チオグリセロール 40mM
EDTA・2Na 1mM
水酸化ナトリウム pHが7.95になる量
Reagent composition (R1 reagent A)
Hepes buffer 50 mM
Sodium chloride 100mM
Polyethylene glycol (molecular weight 20000) 2.3% (v / v)
Polyoxyethylene polyoxypropylene lauryl ether 1.0% (v / v)
1-thioglycerol 40 mM
EDTA ・ 2Na 1mM
Sodium hydroxide The amount that makes the pH 7.95

また、R2試薬としては、以下の組成の緩衝液を用いた。   As the R2 reagent, a buffer solution having the following composition was used.

試薬組成(R2試薬)
ヘペス緩衝液 25mM
塩化ナトリウム 500mM
水酸化ナトリウム pHが7.95になる量
Reagent composition (R2 reagent)
Hepes buffer 25mM
Sodium chloride 500mM
Sodium hydroxide The amount that makes the pH 7.95

まず、検体15μLに、R1試薬250μL加え、5分間予備加温した。その後、その混合液にさらにR2試薬50μLを加えた。なお、R1試薬及びR2試薬には、被測定物質に対応する抗体又は抗原が含有されておらず、これら試薬と検体とを混合しても抗原抗体反応は起こらない。ゆえに、被測定物質に対応する抗体又は抗原を含有しない免疫測定用試薬を用いることにより、非特異的な反応を検出することができる。なお、測定は、R1試薬添加直後からR2試薬添加後5分間までの計10分間行った。測定装置は株式会社日立製作所製 日立7170形自動分析装置を使用し、測定波長は、主波長340nm、副波長700nmであり、37℃で測定を実施した。   First, 250 μL of R1 reagent was added to 15 μL of specimen, and pre-warmed for 5 minutes. Thereafter, 50 μL of R2 reagent was further added to the mixture. The R1 reagent and the R2 reagent do not contain an antibody or an antigen corresponding to the substance to be measured, and no antigen-antibody reaction occurs even when these reagents and the sample are mixed. Therefore, by using an immunoassay reagent that does not contain an antibody or antigen corresponding to the substance to be measured, a nonspecific reaction can be detected. The measurement was performed for 10 minutes in total from immediately after the addition of the R1 reagent to 5 minutes after the addition of the R2 reagent. A Hitachi 7170 automatic analyzer manufactured by Hitachi, Ltd. was used as the measuring device, and the measurement wavelength was a main wavelength of 340 nm and a sub wavelength of 700 nm, and measurement was performed at 37 ° C.

図2は塩化亜鉛の濃度が0mMのR1試薬Aを、図3は塩化亜鉛の濃度が2mMのR1試薬Bを、図4は塩化亜鉛の濃度が4mMのR1試薬Cを、図5は塩化亜鉛の濃度が6mMのR1試薬Dを、図6は塩化亜鉛の濃度が8mMのR1試薬Eを、図7は塩化亜鉛の濃度が10mMのR1試薬Fを用いて測定を行った場合の吸光度の変化を示したものである。なお、日立7170形自動分析装置は、10分間を0〜34のポイントに等分して、各ポイントで吸光度を測定する。各図の横軸は測定ポイントを示し、縦軸は吸光度を示した。   Figure 2 shows R1 reagent A with 0 mM zinc chloride, Figure 3 shows R1 reagent B with 2 mM zinc chloride, Figure 4 shows R1 reagent C with 4 mM zinc chloride, and Figure 5 shows zinc chloride. Fig. 6 shows the change in absorbance when measured using R1 reagent D with a concentration of 6 mM, Fig. 6 shows R1 reagent E with a zinc chloride concentration of 8 mM, and Fig. 7 shows R1 reagent F with a zinc chloride concentration of 10 mM. Is shown. The Hitachi 7170 automatic analyzer divides 10 minutes into 0 to 34 points and measures the absorbance at each point. In each figure, the horizontal axis represents measurement points, and the vertical axis represents absorbance.

図2では、R1試薬を添加してからR2試薬を添加するまで、及び、R2試薬の添加後以降において、時間経過に伴って吸光度が上昇していることが確認された。この吸光度の上昇は、抗原抗体反応以外の反応、つまり非特異的な反応によるものである。一方、図3〜図7では、R1試薬を添加してからR2試薬を添加するまで、及び、R2試薬の添加後以降において、吸光度の上昇は見られず、時間経過に伴って一定の値を示すことが確認された。以上のことから、免疫測定用試薬に塩化亜鉛を添加することにより、非特異的な反応が抑制されることが分かった。なお、検体として用いた血漿中には、フィブリノーゲンなどの凝固因子が含有されている。ゆえに、免疫測定用試薬に塩化亜鉛を添加することにより、フィブリノーゲンなどの凝固因子に起因する非特異的な反応が抑制されると考えられる。   In FIG. 2, it was confirmed that the absorbance increased with the passage of time from the addition of the R1 reagent to the addition of the R2 reagent and after the addition of the R2 reagent. This increase in absorbance is due to a reaction other than the antigen-antibody reaction, that is, a non-specific reaction. On the other hand, in FIGS. 3 to 7, no increase in absorbance was observed from the addition of the R1 reagent to the addition of the R2 reagent, and after the addition of the R2 reagent, and a constant value was observed over time. It was confirmed to show. From the above, it was found that non-specific reactions were suppressed by adding zinc chloride to the immunoassay reagent. The plasma used as a specimen contains a coagulation factor such as fibrinogen. Therefore, it is considered that by adding zinc chloride to the immunoassay reagent, non-specific reactions caused by coagulation factors such as fibrinogen are suppressed.

(実施例2)
10名の被検者より採取した各血液a〜jから調製した血清a〜j及び血漿a〜jをそれぞれ検体として用いた。また、CRPを被測定物質として、各検体に含まれるCRPを測定した。
(Example 2)
Serum aj and plasma aj prepared from each blood aj collected from 10 subjects were used as specimens. In addition, CRP contained in each specimen was measured using CRP as a substance to be measured.

免疫測定用試薬は、R1試薬とR2試薬より構成される。R1試薬としては、実施例1で用いたR1試薬A(塩化亜鉛 0Mm)又は塩化亜鉛の濃度が5mMのR1試薬Gを用いた。なお、R1試薬Gは、R1試薬Aに5mMの塩化亜鉛を含有させたものである。   The reagent for immunoassay is composed of R1 reagent and R2 reagent. As the R1 reagent, R1 reagent A (zinc chloride 0 Mm) used in Example 1 or R1 reagent G having a zinc chloride concentration of 5 mM was used. The R1 reagent G is obtained by adding 5 mM zinc chloride to the R1 reagent A.

また、R2試薬としては、CRP抗体を含む以下の組成の試薬を用いた。   As the R2 reagent, a reagent having the following composition containing a CRP antibody was used.

試薬組成(R2試薬)
ヘペス緩衝液 25mM
塩化ナトリウム 500mM
抗ヒトCRPヤギ血清 1.95mg/mL
水酸化ナトリウム pHが7.95になる量
Reagent composition (R2 reagent)
Hepes buffer 25mM
Sodium chloride 500mM
Anti-human CRP goat serum 1.95mg / mL
Sodium hydroxide The amount that makes the pH 7.95

まず、検体15μLに、R1試薬250μL加え、5分間予備加温した。その後、その混合液にさらにR2試薬50μLを加えて、抗原抗体反応を開始させた。測定は、R1試薬添加直後からR2試薬添加後5分間までの計10分間行い、その測定結果に基づいてCRPの濃度を求めた。なお、測定装置は株式会社日立製作所製 日立7170形自動分析装置を使用し、測定波長は、主波長340nm、副波長700nmであり、37℃で測定を実施した。   First, 250 μL of R1 reagent was added to 15 μL of specimen, and pre-warmed for 5 minutes. Thereafter, 50 μL of R2 reagent was further added to the mixture to initiate an antigen-antibody reaction. The measurement was performed for 10 minutes in total from immediately after the addition of the R1 reagent to 5 minutes after the addition of the R2 reagent. In addition, the Hitachi 7170 type | mold automatic analyzer made from Hitachi, Ltd. was used for the measuring apparatus, the measurement wavelength was 340 nm of main wavelengths, and 700 nm of sub wavelengths, and it measured at 37 degreeC.

図8は、血清a〜j及び血漿a〜jを検体とし、塩化亜鉛の濃度が0mMのR1試薬Aを用いて測定を行い、得られたCRPの濃度について血清と血漿の相関を示した散布図である。図9は、血清a〜j及び血漿a〜jを検体とし、塩化亜鉛の濃度が5mMのR1試薬Gを用いて測定を行い、得られたCRPの濃度について血清と血漿の相関を示した散布図である。図8及び図9の横軸は血清検体を測定して得られたCRPの濃度(mg/dL)を示し、縦軸は血漿検体を測定して得られたCRPの濃度(mg/dL)を示した。また、各図には、血清検体を測定して得られたCRPの濃度と血漿検体を測定して得られたCRPの濃度の相関の程度を示す相関係数(R2)を示した。 FIG. 8 is a scatter showing serum a to j and plasma a to j as specimens, measurement using R1 reagent A with a zinc chloride concentration of 0 mM, and the correlation between serum and plasma for the resulting CRP concentration. FIG. FIG. 9 is a scatter showing serum a to j and plasma a to j as specimens, measurement using R1 reagent G having a zinc chloride concentration of 5 mM, and the correlation between serum and plasma with respect to the resulting CRP concentration. FIG. 8 and 9, the horizontal axis indicates the CRP concentration (mg / dL) obtained by measuring the serum sample, and the vertical axis indicates the CRP concentration (mg / dL) obtained by measuring the plasma sample. Indicated. Each figure shows a correlation coefficient (R 2 ) indicating the degree of correlation between the CRP concentration obtained by measuring the serum sample and the CRP concentration obtained by measuring the plasma sample.

図8と図9を比較すると、図9の方が図8の方よりもデータのばらつきが低いことが分かる。また、それぞれの相関係数(R2)を比較すると、図9の方が図8の方よりもR2の値が大きいことが分かる。これより、免疫測定用試薬に塩化亜鉛を添加することにより、血清と血漿の相関性が向上することが分かった。 Comparing FIG. 8 and FIG. 9, it can be seen that the data variation in FIG. 9 is lower than that in FIG. Further, comparing the correlation coefficients (R 2 ), it can be seen that the value of R 2 is larger in FIG. 9 than in FIG. From this, it was found that the correlation between serum and plasma was improved by adding zinc chloride to the reagent for immunoassay.

また、図10は、血清c及び血漿cを検体とし、R1試薬Aを用いて測定を行った場合の吸光度の変化を示したものである。図11は、血清c及び血漿cを検体とし、R1試薬Gを用いて測定を行った場合の吸光度の変化を示したものである。図10及び図11において、横軸は測定ポイントを示し、縦軸は吸光度を示した。   FIG. 10 shows changes in absorbance when measurement is performed using R1 reagent A using serum c and plasma c as specimens. FIG. 11 shows changes in absorbance when measurement is performed using R1 reagent G using serum c and plasma c as specimens. 10 and 11, the horizontal axis indicates the measurement point, and the vertical axis indicates the absorbance.

血清cと血漿cは、同一被検者から得られた血清及び血漿である。図10において、R1試薬に塩化亜鉛が含まれていない場合では、血清cの吸光度変化と血漿cの吸光度変化が大きく異なっている。一方、図11において、R1試薬に塩化亜鉛が含まれている場合では、血清cの吸光度変化と血漿cの吸光度変化がほぼ一致している。以上のことから、免疫測定用試薬に塩化亜鉛を添加することにより、血清と血漿との間に生じる測定値の乖離を解消することが可能であることが分かった。   Serum c and plasma c are serum and plasma obtained from the same subject. In FIG. 10, when zinc chloride is not contained in the R1 reagent, the absorbance change of serum c and the absorbance change of plasma c are greatly different. On the other hand, in FIG. 11, when zinc chloride is contained in the R1 reagent, the absorbance change of serum c and the absorbance change of plasma c are almost the same. From the above, it has been found that by adding zinc chloride to the immunoassay reagent, it is possible to eliminate the discrepancy in the measured value between serum and plasma.

(実施例3)
金属イオンを含有しない免疫測定用試薬、金属イオンを含有する免疫測定用試薬のそれぞれと、アルカリ性の洗浄液とを混合し、沈殿物の生成の有無を検証した。
(Example 3)
Each of the immunoassay reagent not containing metal ions and the immunoassay reagent containing metal ions was mixed with an alkaline cleaning solution, and the presence or absence of precipitates was verified.

金属イオンを含有しない免疫測定用試薬としては、実施例1で用いたR1試薬Aを用いた。金属イオンを含有する免疫測定用試薬としては、実施例1で用いたR1試薬F(塩化亜鉛 10mM)、実施例2で用いたR1試薬G(塩化亜鉛 5mM)及び5mMの塩化マグネシウムを含むR1試薬Hを用いた。そして、金属イオンを含有しない試薬を用いた場合に得られる吸光度と金属イオンを含有する試薬を用いた場合に得られる吸光度を比較することによって、沈殿物が生成されたか否かを確認した。なお、R1試薬Hは、R1試薬Aに5mMの塩化マグネシウムを含有させたものである。アルカリ性の洗浄液としては、株式会社日立製作所製の自動分析装置で洗浄液として用いられているハイアルカリ‐Dを用いた。   The R1 reagent A used in Example 1 was used as an immunoassay reagent not containing metal ions. As an immunoassay reagent containing metal ions, R1 reagent F (zinc chloride 10 mM) used in Example 1, R1 reagent G (zinc chloride 5 mM) used in Example 2, and R1 reagent containing 5 mM magnesium chloride H was used. And it was confirmed whether the precipitate was produced | generated by comparing the light absorbency obtained when using the reagent containing a metal ion with the light absorbency obtained when using the reagent which does not contain a metal ion. The R1 reagent H is obtained by adding 5 mM magnesium chloride to the R1 reagent A. As the alkaline cleaning liquid, High Alkali-D, which is used as a cleaning liquid in an automatic analyzer manufactured by Hitachi, Ltd., was used.

免疫測定用試薬(R1試薬A、R1試薬F、R1試薬G又はR1試薬H)とアルカリ性の洗浄液とを10:1の割合で混合し、25℃で所定時間経過後(1時間後、72時間後又は1週間後)にその混合液の吸光度(660nm)を測定した。測定結果を表1に示した。   Reagent for immunoassay (R1 reagent A, R1 reagent F, R1 reagent G or R1 reagent H) and alkaline washing liquid are mixed at a ratio of 10: 1, and after a predetermined time at 25 ° C. (1 hour, 72 hours) After or one week later, the absorbance (660 nm) of the mixed solution was measured. The measurement results are shown in Table 1.

Figure 2006194746
Figure 2006194746

表1における各数値は、R1試薬A(金属イオンなし)、R1試薬F(Zn2+ 10mM)、R1試薬G(Zn2+ 5mM)、R1試薬H(Mg2+ 10mM)をそれぞれ試薬として用いた場合に得られた吸光度(660nm)の値である。 Each numerical value in Table 1 uses R1 reagent A (no metal ion), R1 reagent F (Zn 2+ 10 mM), R1 reagent G (Zn 2+ 5 mM), R1 reagent H (Mg 2+ 10 mM) as reagents. It is the value of the absorbance (660 nm) obtained when

表1より、R1試薬Hの場合、1時間後の測定により得られた吸光度は0.076である。さらに、この吸光度とR1試薬Aの場合の吸光度を比較すると、明らかにR1試薬Hの吸光度の方が高い。これより、塩化マグネシウムを含有する試薬とアルカリ性の洗浄液を混合すると沈殿物が生成されることが分かった。なお、R1試薬Hについて、1時間後の測定において沈殿物の生成が確認されたため72時間後及び1週間後の測定は実施しなかった。   From Table 1, in the case of R1 reagent H, the absorbance obtained by measurement after 1 hour is 0.076. Furthermore, when this absorbance is compared with the absorbance in the case of R1 reagent A, the absorbance of R1 reagent H is clearly higher. From this, it was found that a precipitate was formed when a reagent containing magnesium chloride and an alkaline cleaning solution were mixed. In addition, about the R1 reagent H, since the production | generation of the precipitate was confirmed in the measurement after 1 hour, the measurement after 72 hours and 1 week was not implemented.

一方、R1試薬Fの場合の吸光度とR1試薬Aの場合の吸光度を比較すると、1時間後、72時間後、1週間後のいずれの測定においても、類似する結果となった。また、R1試薬Gの場合も同様に、この吸光度とR1試薬Aの場合の吸光度を比較すると、類似する結果となった。以上のことから、塩化亜鉛を含有する試薬とアルカリ性の洗浄液を混合しても沈殿物は生成されないことが分かった。   On the other hand, when the absorbance in the case of R1 reagent F was compared with the absorbance in the case of R1 reagent A, similar results were obtained in all measurements after 1 hour, 72 hours, and 1 week. Similarly, in the case of R1 reagent G, when this absorbance and the absorbance of R1 reagent A were compared, similar results were obtained. From the above, it was found that no precipitate was generated even when a reagent containing zinc chloride and an alkaline cleaning liquid were mixed.

自動分析装置1の構成を示した図である。1 is a diagram showing a configuration of an automatic analyzer 1. FIG. 実施例1において、R1試薬Aを用いて測定を行った場合の吸光度の変化を示すグラフである。In Example 1, it is a graph which shows the change of the light absorbency at the time of measuring using R1 reagent A. 実施例1において、R1試薬Bを用いて測定を行った場合の吸光度の変化を示すグラフである。In Example 1, it is a graph which shows the change of the light absorbency at the time of measuring using R1 reagent B. 実施例1において、R1試薬Cを用いて測定を行った場合の吸光度の変化を示すグラフである。In Example 1, it is a graph which shows the change of the light absorbency at the time of measuring using R1 reagent C. 実施例1において、R1試薬Dを用いて測定を行った場合の吸光度の変化を示すグラフである。In Example 1, it is a graph which shows the change of the light absorbency at the time of measuring using R1 reagent D. 実施例1において、R1試薬Eを用いて測定を行った場合の吸光度の変化を示すグラフである。In Example 1, it is a graph which shows the change of the light absorbency at the time of measuring using R1 reagent E. 実施例1において、R1試薬Fを用いて測定を行った場合の吸光度の変化を示すグラフである。In Example 1, it is a graph which shows the change of the light absorbency at the time of measuring using R1 reagent F. 実施例2において、R1試薬Aを用いて測定を行った場合の血清と血漿の相関を示すグラフである。In Example 2, it is a graph which shows the correlation of serum and plasma at the time of measuring using R1 reagent A. 実施例2において、R1試薬Gを用いて測定を行った場合の血清と血漿の相関を示すグラフである。In Example 2, it is a graph which shows the correlation of serum and plasma at the time of measuring using R1 reagent G. 実施例2において、R1試薬Aを用いて測定を行った場合の吸光度の変化を示すグラフである。In Example 2, it is a graph which shows the change of the light absorbency at the time of measuring using R1 reagent A. 実施例2において、R1試薬Gを用いて測定を行った場合の吸光度の変化を示すグラフである。In Example 2, it is a graph which shows the change of the light absorbency at the time of measuring using R1 reagent G.

Claims (10)

洗浄液を用いる自動分析装置において検体に含まれる被測定物質を測定する被測定物質測定方法であって、亜鉛イオン存在下で被測定物質と被測定物質に対応する抗体又は抗原との抗原抗体反応を生じさせ、その抗原抗体反応によって生じる濁度変化又は散乱光変化に基づいて被測定物質を測定する被測定物質測定方法。 A measurement substance measurement method for measuring a measurement substance contained in a specimen in an automatic analyzer using a cleaning liquid, wherein an antigen-antibody reaction between a measurement substance and an antibody corresponding to the measurement substance or an antigen in the presence of zinc ions A measured substance measurement method for measuring a measured substance based on a change in turbidity or a change in scattered light caused by the antigen-antibody reaction. 前記自動分析装置が前記抗原抗体反応を行わせるための反応容器を備えており、前記洗浄液が反応容器を洗浄する請求項1に記載の被測定物質測定方法。 The method for measuring a substance to be measured according to claim 1, wherein the automatic analyzer includes a reaction container for causing the antigen-antibody reaction to be performed, and the cleaning liquid cleans the reaction container. 前記洗浄液がアルカリ性である請求項1又は請求項2に記載の被測定物質測定方法。 The method for measuring a substance to be measured according to claim 1, wherein the cleaning liquid is alkaline. 洗浄液による洗浄を実施可能な自動分析装置用の免疫測定用試薬であって、被測定物質に対応する抗体又は抗原及と亜鉛イオンとを含有する免疫測定用試薬。 An immunoassay reagent for an automatic analyzer that can be washed with a washing solution, comprising an antibody or an antigen corresponding to a substance to be measured, and a zinc ion. 前記洗浄液がアルカリ性である請求項4に記載の免疫測定用試薬。 The reagent for immunoassay according to claim 4, wherein the washing solution is alkaline. 前記免疫測定用試薬が第一試薬と第二試薬からなり、前記第一試薬が亜鉛イオンを含有し、前記第二試薬が被測定物質に対応する抗体又は抗原を含有する請求項4又は請求項5に記載の免疫測定用試薬。 The immunoassay reagent comprises a first reagent and a second reagent, the first reagent contains zinc ions, and the second reagent contains an antibody or an antigen corresponding to the substance to be measured. 5. The immunoassay reagent according to 5. 前記第一試薬が、さらに、増感剤を含有する請求項4〜6のいずれか一項に記載の免疫測定用試薬。 The reagent for immunoassay according to any one of claims 4 to 6, wherein the first reagent further contains a sensitizer. 前記第一試薬が、さらに、非イオン性界面活性剤を含有する請求項4〜7のいずれか一項に記載の免疫測定用試薬。 The reagent for immunoassay according to any one of claims 4 to 7, wherein the first reagent further contains a nonionic surfactant. 前記第一試薬が、さらに、還元剤を含有する請求項4〜8のいずれか一項に記載の免疫測定用試薬。 The reagent for immunoassay according to any one of claims 4 to 8, wherein the first reagent further contains a reducing agent. 前記被測定物質がC反応性タンパク質(CRP)である請求項4〜9のいずれか一項に記載の免疫測定用試薬。 The reagent for immunoassay according to any one of claims 4 to 9, wherein the substance to be measured is C-reactive protein (CRP).
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