JP2005519635A - 活性クロマチンエレメントを含むdnaマイクロアレイおよびそれを用いた包括的プロファイリング - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、複数の核酸配列を同時に検出するためのDNAアレイ、前記アレイの製造、およびその使用に関する。さらに、本発明は、活性クロマチンエレメント、特に、真核細胞において活性のある遺伝子制御エレメントのパターンを検出するためのアレイ方法およびアレイ装置に関する。
従来の形質発現研究では、転写され、mRNAへスプライシングされる遺伝子転写情報(全転写情報またはその選択領域)に相補的な固定化DNA分子を一般に用いる。この分野の最近の進歩には、複数の異なる転写情報の同時モニタリングが可能な、かかる分子のアレイまたはマイクロアレイが利用されている(例えば、Schenaら、Science 270:467-470 (1995); Lockhartら、Nature Biotechnology 14:1675-1680 (1996); Blanchardら、Nature Biotechnology 14, 1649 (1996); および米国特許第5,569,588号(1996年10月26日にAshbyらに対して発行され、名称は「Methods for Drug Screening」である)を参照されたい)。かかるアレイは、生物の完全ゲノム配列、または少なくとも一配列、またはその遺伝子転写情報のすべてを含むライブラリーが利用可能であれば、実質的には、細胞または細胞群のすべての活性転写部位から転写情報が検出できる可能性を有している。完全な遺伝子セットがまだ不明確であるヒトの場合、かかるアレイは、所与の細胞群内の多数の発現遺伝子を同時にモニターするように用いることができる。
本発明は、現行の方法に関連する問題と欠点を克服し、多数の活性クロマチンエレメント(「ACE」)、したがって、活性遺伝子制御ユニットをプロファイルするための核酸アレイを使用可能にする方法と材料を考案する。
図面の簡単な説明は、後述する。
クロマチンのヌクレアーゼ高感受性部位にはタンパク質コード配列は存在せず、かつ、通常、高度反復配列は存在しない。これらの配列は推定上の制御部位であり、したがって、細胞内ゲノムの全プログラムを制御するのに十分である制御エレメントのセットの一部である(以下、「ACE」と称する)。
アレイを使用する多重高感受性部位の同時検出により、種々の有効性を得るための多様な方法を提供する。いくつかの実施形態では、アレイは、1種以上の内部参照を含んでおり、データプロファイルは参照データとの比較を行うことなく直接使用される。他の実施形態では、部位(配列、ポジション位置、またはその両方)のライブラリーをサンプルから得、次いで、別のライブラリー(既存の「型」ライブラリーなど)と比較する。型ライブラリーは、細胞型、発生状態型、遺伝病などの疾病型、または、ホルモン、栄養、薬学的活性化合物等などの要因の存在に関連する形態型に特有であり得る。型ライブラリーと比較することによって、ライブラリー用の示差「プロファイル情報」のアウトプットセットを得ることができる。
本発明の好ましい実施例では、サンプルから得られた少なくとも10個の高感受性配列および/または位置のセットを組み合わせてサンプルのプロファイルを形成する。一般的に、配列を検出し、少なくとも、a)サンプル中の各配列もしくはACE部位の存在もしくは欠如、または、b)サンプル由来の活性(高感受性)部位の相対存在量、を示すデータプロファイルを得ることができるアレイを作製する。アレイ上の群プロファイルとして、サンプルの少なくとも数種の高感受性ACEを「検出」(すなわち、前記ACEの存在および/または相対存在量の測定)することにより、サンプルの有用な特性を明らかにすることができることを見出した。かかる特性としては、例えば、サンプルが、特定の悪性腫瘍の危険性を高めるDNA切断を含んでいるかどうか、あるいは、標準状態に対して高発現領域を有しているかどうか、などが挙げられる。
本発明の多くの用途は、ライブラリーによって多数の情報を生成し、操作し、かつ分析する能力と、情報を提供するためのマイクロアレイにおけるそれらの使用により生じる。アレイは、一般に、i)アレイの調製;ii)サンプル調製と断片ライブラリーへのコンバージョン;iii)例えば、増幅およびクローニングによる断片の操作;iv)アレイでの検出によるライブラリー(すなわち、調製断片の全セットまたはそれらのサブセットのいずれか)のプロファイル;によって検討可能な種々の方法によって作製され、用いられる。
マイクロアッセイ(「バイオチップ」または「アレイ」とも称する)は、マイクロメートル〜ミリメートル範囲の寸法に一般的に小型化された、化学・生化学反応を実施する装置であり、本発明の実施態様に特に好適である。アレイは、半導体産業および生化学産業において既知の超小型電子技術と微細加工技術によって構築することができる。
ライブラリーメンバーの作製と使用の第1のステップは、多重高感受性部位を標識化することである。シークエンシングで部位を同定または単離するために用いることができる部位は、生化学的改変により標識化することができる。この改変には、特定のACE内の共有結合の切断または作製が含まれる場合が多い。例えば、ヌクレアーゼは、ACEを切断することにより標識化することができる。好ましい実施形態では、DNAアーゼ Iなどの非特異的ヌクレアーゼは、高感受性部位でDNAを切断する。
標識化と断片化後のDNAの単離は、多くの技術によって実施することができる。具体的な方法としては、クローニングベクターへの選択的な組込みを促進する適応可能なクローニングリンカーまたはPCR;ストレプトアビジン/ビオチン回収系;磁性ビーズ、シリカ化合ビーズまたはゲル;ジオキシゲニン/抗ジオキシゲニン回収系;または種々の他の方法が挙げられる。一度単離すると(または単離前)、断片は、検出可能な標識で標識化することができる。好適な検出可能標識には、蛍光性化学薬品、磁性粒子、放射性物質およびそれらの組み合わせが挙げられる。
上に記載しているとおり、ライブラリーは、DNA配列としてのin silicoに存在し得るか、あるいはDNAを含有する物理要素としてin vitroに存在し得る。他の実施形態では、ライブラリーはアレイ上でプロファイリングされる。ライブラリーエレメントの大規模な群から得られたデータは、多くの目的に有用である。基本的に、1つのアレイが他のアレイのコントロールまたは参照の役割をする2種以上のアレイは、同様の条件下で調製する。例えば、薬剤候補などの試験化合物によって誘導される発現の改変は、2種類のアレイを作製することにより検出することができる。前記において、第1のアレイは試験化合物で処理された細胞に対応するものであり、第2のアレイは処理前の細胞に対応するものである。
プライマーペアは、ヒトゲノムDNAから約500bpのPCR産物が増幅できるように設計した。2回の増幅(2回目は、最初のPCR反応の100分の1容量をテンプレートとして用いた)を行った後、PCR産物を精製し(Millipore社マルチスクリーンPCR精製プレートを使用)、定量し(A260)、それらの濃度が50ng/μl〜150ng/μlの範囲にあるように確立した。PCR産物のサイズをアガロースゲル電気泳動により確認した後、Amersham社のLucidea Arrayerを使用して、マイクロアレイをミラースライド(RPK0331、Amersham社製)上にプリント(50%DMSO中)した。PCR産物は、Stratagene社のStratalinkerを用いて、500mJ照射によりスライドに架橋結合させた。スライドは、使用まで乾燥保存した。
K562細胞を集密(血球計数器による分析において、5×105個/cubit mililiter)まで増殖させた。適当な容量(例えば100ml)から核を調製し、さらに核をReitmanら、MCB 13:3990に記載されているようにして調製した。簡単に説明すると、37℃で3分間、2U/マイクロリットルのDNAアーゼ I(Sigma社製)10マイクロリットルとともに、核を8 OD/mlの濃度に再懸濁した。DNAをフェノールクロロホルム抽出とエタノール沈殿によって精製した。メーカーの推薦バッファーに溶解した10マイクログラムのDNAと6UのT4 DNAポリメラーゼ(New England Biolabs社製)を含有する100マイクロリットルの反応混合物中でそのDNAを修復させ、続いて、37℃で15分間、次いで70℃にて15分間インキュベートした。1.5UのTaqポリメラーゼ(Roche社製)を添加し、72℃にてさらに10分間インキュベーションを継続した。Qiagen社製PCRクリーンアップキットを使用してDNAを回収し、そのDNAを10mMトリス塩酸(pH8.0)50マイクロリットル中に溶出させた。
メーカー推奨バッファーに溶解した40UのT4 DNAリガーゼ(New England Biolabs社製)とPS003アダプター(Not I部位を含有するアダプターを生成するために、等モル量のオリゴヌクレオチド5'ビオチン化PS003fと5'リン酸化PS003rをアニリーリングすることによって生成したもの)50pmolを含有する100マイクロリットル容量の反応溶液中に、4℃にて16時間DNAを混合した。その反応液を65℃で20分間インキュベートした後、0.3MのNaOAcの存在下でDNAをイソプロパノール沈殿させ、エタノール洗浄後、20マイクロリットルのTEバッファー(10mMトリス塩酸、1mM EDTA、pH8.0)中に再懸濁した。メーカー推奨のバッファーに20U Hsp92 II(Promega社製)を含有する50マイクロリットル容量の反応液中、37℃にて2時間インキュベーションすることによってDNAを消化し、その後、20Uの酵素をさらに添加し、1時間インキュベーションを継続し、次いで、72℃にて15分間加熱した。メーカーの指示に従って、M-270 Dynalビーズ上でDNAを捕捉した。
DNA2μgを水と2.5×ランダムプライマー溶液(Invitrogen社製, BioPrime Labeling Kitの構成物)20μlで24μl容量まで希釈し、その混合物を95℃にて5分間加熱した。その混合物を5分間氷上にて冷却した後、dNTP溶液(5mMのPromega社製dATP、dGTP、dTTP、および1mMのdCTPからなる溶液)2ml、1mM dCTP-Cy3またはdCTP-Cy5(Amersham社製)3μl、ならびに40U/mlのKlenow(Invitrogen社製)1μlを加えた。その混合物を37℃で2.5時間インキュベートし、次いで、0.5MのEDTA 5μlを添加することによって反応を停止させた。Qiagen QIAquickカラムでプローブを精製し、EB 100μlに溶出させた。550nm(Cy3に対して)と650nm(Cy5に対して)で吸光度を測定することにより組込まれた量を算出し、4:1(pmol Cy3: pmol Cy5)の蛍光物質のモル比でプローブを混合した。通常、Cy3標識化プローブ200pmol、Cy5標識化プローブ50pmolを使用した。
ヌクレアーゼで処理したK562核(8 OD/ml(A260)で核1mlを処理)からゲノムDNAを単離し、続いて完了するまでNla IIIで消化し、Qiagen Dneasyカラムを使用してDNAを精製した。150ng/plにDNAの濃度を補正した。これらのプローブをCy3で標識化した。
計算量のプローブを混合し、暗所にて乾燥させた。8.5μlの4×ハイブリダイゼーションバッファー(Amersham社製、#RPK0325)と8.5μlの水に対のプローブを完全に再懸濁させ、次いで、17μlのホルムアミドと混合し、ボルテックスした。混合物を95℃にて3分間加熱し、次いで、2分間13Kで遠心して冷却した。このハイブリダイゼーション溶液の30μlをスライドガラス全体にわたって細線で分配し、カバーガラスをその上に置くことによってスライドガラス表面にわたって均等に前記溶液を広め、湿度を高くし、かつ暗くしたハイブリダイゼーションチャンバーで16時間42℃にてインキュベートした。
図1に代表的な方法の概要を説明する。この図は、サンプル中のACEの構造完全性(structural integrity)を2ステップ(すなわち、探索試薬を生成するステップと、照会群と比較するステップ)の方法でどのように検出することができるのかを示す。前記試薬を生成するために、ゲノム構造上形成されたACE、またはACEの機能的サブセット(転写プロモーターなど)、または構造的サブセット(メチル化配列など)が多く含まれているゲノムからDNA断片群を単離し、かつ標識化することを目的として開発された手順によって細胞を処理した。本実施例では、これらのDNA断片をマイクロアレイ上の配列群にハイブリダイズさせるプローブとして使用する。これらの配列は、これまでに特徴付けられたACEのセットであってもよく、あるいは、物理的にゲノムのセクションに及んでいてもよく、あるいは複合の結合パターンの判別が可能であるように十分な大きさのオリゴヌクレオチドの組み合わせであってよい。分析後、特定のACEが細胞のその群内に形成されている範囲がシグナルの存在と強度により表される。
Claims (94)
- 複数の活性クロマチンエレメントを含む核酸アレイ。
- 各活性クロマチンエレメントがヌクレアーゼ高感受性部位を含有する、請求項1に記載のアレイ。
- 1個または複数個の高感受性部位を覆う、1セットまたは複数セットの核酸配列をさらに含む、請求項2に記載のアレイ。
- 上記1セットまたは複数セットの各セットが、前記高感受性部位の200ヌクレオチド以内の配列を含む、請求項3に記載のアレイ。
- 複数の活性クロマチンエレメントが1の生物由来の配列を含む、請求項1に記載のアレイ。
- 上記生物が、ヒト、ラット、マウス、ゼブラフィッシュ、ショウジョウバエ、酵母、線虫(C.elegans)、およびそれらの組み合わせからなる生物の群から選択される、請求項3に記載のアレイ。
- 複数の活性クロマチンエレメントが、約16ヌクレオチド〜約1,500ヌクレオチド長の核酸配列を含む、請求項1に記載のアレイ。
- 複数の活性クロマチンエレメントが、約100ヌクレオチド〜約350ヌクレオチド長の核酸配列を含む、請求項1に記載のアレイ。
- 複数の活性クロマチンエレメントが、少なくとも100、少なくとも1,000、少なくとも10,000、少なくとも100,000、または少なくとも1,000,000個の活性クロマチンエレメントを含む、請求項1に記載のアレイ。
- 転写された配列を示す核酸をさらに含む、請求項1に記載のアレイ。
- 活性クロマチンエレメントを挟む配列をさらに含む、請求項1に記載のアレイ。
- 反復配列をさらに含む、請求項1に記載のアレイ。
- アレイの全核酸の5パーセント未満の反復配列を含む、請求項12に記載のアレイ。
- 核酸内で修飾を誘導する物質で細胞を処理することからなる方法によって調製された、請求項1に記載のアレイ。
- 修飾が、切断、メチル化、照射、およびそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項14に記載のアレイ。
- 修飾された核酸が、ヌクレアーゼ処理した非修飾核酸から取り出されたものである、請求項14に記載のアレイ。
- 修飾核酸にビオチンを結合させるステップをさらに含む、請求項14に記載のアレイ。
- PCRによって修飾核酸を増幅するステップをさらに含む、請求項14に記載のアレイ。
- 請求項1に記載のアレイを作製する方法であって、
ゲノムDNA内で修飾を誘導する物質によりゲノムDNAを処理するステップ;
修飾されたDNAの一部分をヌクレアーゼで処理するステップ;
ヌクレアーゼで処理されたDNAを修飾されたDNAから取り出すステップ;および
活性クロマチンエレメントのアレイを得るステップ;
を含む、上記方法。 - 修飾が、DNA断片への切断を含む、請求項19に記載の方法。
- DNA断片をリンカーに連結する、請求項20に記載の方法。
- リンカーに連結されたDNA断片を単離する、請求項21に記載の方法。
- 断片が、制限酵素による消化および超音波処理からなる群から選択される方法によって小さなサイズに切断されたものである、請求項20に記載の方法。
- 細胞の核クロマチンの活性クロマチンエレメントプロファイルを検出する方法であって、
高感受性部位でDNAを優先的に修飾する物質により前記クロマチンの一部を処理し、核酸の第1のセットを作製するステップ;
DNAを非優先的に修飾する別の物質により前記クロマチンの別の一部を処理し、核酸の第2のセットを作製するステップ;および
第1のセットと第2のセットを比較し、前記活性クロマチンエレメントプロファイルを得るステップ;
を含む方法。 - 第1のセットと第2のセットをハイブリダイゼーションによって比較する、請求項24に記載の方法。
- 第1のセットまたは第2のセットをPCRによって増幅させる、請求項25に記載の方法。
- 第1のセットまたは第2のセットを蛍光物質により標識化する、請求項25に記載の方法。
- 真核細胞のDNA制御エレメントのプロファイルを同定する方法であって、
DNA高感受性部位で前記細胞のDNAを修飾する物質により該細胞を処理するステップ;および
前記物質による反応からDNA高感受性部位を同定し、該DNA高感受性部位のヌクレオチド配列と該細胞型のDNA中のその位置が、該細胞型のDNA制御エレメントのプロファイルを構成するステップ;
を含む方法。 - 真核細胞のDNA制御エレメントのプロファイルを作製する方法であって、
DNA高感受性部位で真核細胞のDNAを修飾する物質により前記細胞を処理するステップ;
前記物質による反応からDNA高感受性部位を同定し、該DNA高感受性部位のヌクレオチド配列と該細胞型のDNAのその位置が、該細胞型のDNA制御エレメントのプロファイルを構成するステップ;および
前記高感受性部位のヌクレオチド配列を単離するステップ;
を含む方法。 - 1種または複数種のオリゴヌクレオチドリンカーを前記ヌクレオチド配列に連結させることを特徴とする、請求項29に記載の方法。
- 前記オリゴヌクレオチドリンカーをビオチン化し、前記単離をストレプトアビジンで被覆した磁性ビーズを使用して行うことを特徴とする、請求項30に記載の方法。
- ポリメラーゼ連鎖反応によって前記ヌクレオチド配列を増幅するステップをさらに含む、請求項30に記載の方法。
- 真核細胞が、初代細胞培養系、細胞株、生物から新しく単離された細胞、およびそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項29に記載の方法。
- 真核細胞が正常細胞または異常細胞である、請求項29に記載の方法。
- 異常細胞が癌細胞である、請求項34に記載の方法。
- 前記物質が、照射、化学薬品、酵素、およびそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項29に記載の方法。
- 照射が紫外線照射を含む、請求項36に記載の方法。
- 化学薬品が染色体切断物質である、請求項36に記載の方法。
- 酵素が、特異的エンドヌクレアーゼ、非特異的エンドヌクレアーゼ、トポイソメラーゼ、メチラーゼ、ヒストンアセチラーゼ、ヒストンデアセチラーゼ、およびそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項36に記載の方法。
- 特異的エンドヌクレアーゼが、1種または複数種の4塩基認識制限エンドヌクレアーゼ、1種または複数種の6塩基認識制限エンドヌクレアーゼ、またはそれらの組み合わせを含む、請求項39に記載の方法。
- 4塩基認識制限エンドヌクレアーゼが、Sau3a、Styl、Nla III、Hsp 92、およびそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項40に記載の方法。
- 6塩基認識エンドヌクレアーゼが、EcoR I、Hind III、およびその組み合わせからなる群から選択される、請求項40に記載の方法。
- 非特異的エンドヌクレアーゼがDNAアーゼ Iである、請求項39に記載の方法。
- トポイソメラーゼがトポイソメラーゼIIである、請求項39に記載の方法。
- プロファイルが高感受性部位の単離ヌクレオチド配列を含む、請求項29に記載の方法によって作製されるような真核細胞のDNA制御エレメントのプロファイル。
- 真核細胞が、初代細胞培養系、細胞株、真核生物種から新しく単離された細胞、およびそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項45に記載のプロファイル。
- 真核細胞が正常細胞または異常細胞である、請求項46に記載のプロファイル。
- 前記異常細胞が癌細胞である、請求項47に記載のプロファイル。
- ヌクレオチド配列が、蛍光物質、放射性ヌクレオチド、磁性粒子、またはそれらの組み合わせにより標識化される、請求項45に記載のプロファイル。
- 請求項45に記載のプロファイル上にスポットされているヌクレオチドアレイ。
- アレイが、スライド、チップまたは濾過膜に付着される、請求項50に記載のヌクレオチドアレイ。
- 高感受性部位のヌクレオチド配列の1コピーまたは複数のコピーがアレイ上にスポットされる、請求項50に記載のヌクレオチドアレイ。
- 真核細胞中のDNA制御エレメントを検出する方法であって、
前記細胞からmRNAを単離し、前記mRNAをcDNAに変換し、アレイをプロービングしてプロファイルを作製するステップ;
前記細胞からの活性制御エレメントを単離し、アレイをプロービングしてプロファイルを作製するステップ;および
cDNAプローブからのプロファイルと活性制御エレメントプローブからのプロファイルを比較し、制御エレメント活性と遺伝子活性とを相関させるステップ;
を含む方法。 - 真核細胞中のDNA制御エレメントを検出する方法であって、
細胞からmRNAを単離するステップ;および
請求項23に記載のアレイに前記単離mRNAを接触させ、ハイブリダイゼーションシグナルを検出し、ハイブリダイズしたスポットのヌクレオチド配列が前記細胞のDNA制御エレメントを示すステップ;
を含む方法。 - 真核細胞サンプルの制御状態を検出するためのプロファイルの調製に好適な断片をコードする活性クロマチンエレメントの配列ライブラリー。
- 断片が、サンプルの真核細胞の核の高感受性部位を標識化するステップにより得られる、請求項55に記載のライブラリー。
- 標識化ステップが核とDNAアーゼ Iとをインキュベートすることにより行われ、高感受性部位でDNAにニックが形成される、請求項55に記載のライブラリー。
- 断片の5パーセント未満の反復DNA配列を含有する、請求項55に記載のライブラリー。
- 各断片が、DNAアーゼ Iによる切断によって生じた第1の末端と、別のヌクレアーゼによる切断によって生じた第2の末端を含有する、請求項55に記載のライブラリー。
- ライブラリーがin silicoに存在する、請求項61に記載のライブラリー。
- ライブラリーがベクター中に存在する、請求項61に記載のライブラリー。
- ベクターが、微生物細胞培養物、プラスミドベクター、および真核細胞培養物からなるの群から選択される、請求項67に記載のライブラリー。
- 活性クロマチンエレメント断片のライブラリーを得ることと、活性クロマチンエレメント断片のクローニングに好適な活性クロマチンエレメント断片の外側の配列を検出することにより調製された、活性クロマチンエレメントプライマーのライブラリー。
- 少なくとも10、少なくとも100、少なくとも1,000、少なくとも10,000、少なくとも100,000、または少なくとも1,000,000個の活性クロマチンエレメントプライマーを含む、請求項63に記載のライブラリー。
- ライブラリーがin silicoに存在する、請求項63に記載のライブラリー。
- 核酸を含有するサンプルから活性クロマチンエレメントをプロファイリングする方法であって、
a)サンプルから1種または複数種の精製活性クロマチンエレメントまたは標識化活性クロマチンエレメントを得るステップ;
b)ステップa)により得られた活性クロマチンエレメントを、ゲノムの部位とマッチする別々の配置でDNA種を含有するDNAマイクロアレイと接触させるステップ;および
c)活性クロマチンエレメントとマイクロアレイの部位の結合を検出するステップ;
を含む方法。 - 検出が、アレイ中のポジション位置を検出する、蛍光または化学発光を含む検出系を含んでいる、請求項66に記載の方法。
- DNAマイクロアレイが、アレイの別々の既知の部位を占めている5〜40ヌクレオチド長の固定化オリゴヌクレオチドプローブを含む、請求項66に記載の方法。
- 固定化DNAオリゴヌクレオチドプローブが、少なくとも2セットのプローブを含み、少なくとも1種の参照配列に正確に相補的である第1のセットは、互いにオーバーラップする複数の参照配列にまたがるプローブを含み、少なくとももう1つのプローブのセットは、その各セットにおいて、少なくとも1つのヌクレオチドが異なる以外は第1のセットと同一であり、該異なるヌクレオチドは、各セット中に異なるヌクレオチドが存在すること以外、上記もう1つのセットのそれぞれの中の同一の位置にある、請求項68に記載の方法。
- 固定化DNAオリゴヌクレオチドプローブが、少なくとも2セットのプローブを含み、少なくとも1種の参照配列に正確に相補的である第1のセットは、互いにオーバーラップする複数の参照配列にまたがるプローブを含み、少なくとももう1つのプローブのセットは、その各セットにおいて、少なくとも1つの異なるヌクレオチドの付加または欠失以外は第1のセットと同一である、請求項68に記載の方法。
- DNAマイクロアレイのDNA種がゲノムのエレメントである、請求項66に記載の方法。
- ステップc)の検出された結合が、コンピュータ・メモリー装置の参照プロファイルとして記録される、請求項66に記載の方法。
- 真核生物から得られた組織の制御プロファイルに対する化学的撹乱または他の環境上の撹乱の影響を確認する方法であって、
撹乱に暴露されない組織の活性クロマチンエレメントと請求項1〜7のいずれか1項に記載のマイクロアレイとの結合に対する第1のプロファイルを得るステップ;
組織を撹乱に暴露した後、組織の活性クロマチンエレメントと請求項66に記載のマイクロアレイとの結合に対する第2のプロファイルを得るステップ;および
第1のプロファイルを第2のプロファイルと比較し、撹乱によってもたらされる遺伝因子を検出するステップ;
を含む方法。 - 撹乱が生物から組織を得る前に発生し、かつ環境的撹乱が、真核生物の微生物による感染、真核生物の免疫機能の低下、組織の高温への暴露、組織の低温への暴露、組織の癌、真核生物の別の組織の癌、組織の照射、組織の化学化合物または他の製薬化合物への暴露、および老化からなる群から選択される、請求項73に記載の方法。
- 撹乱が生物から組織を得た後に発生し、かつ撹乱が、高温への組織の暴露、低温への組織の暴露、組織の照射、化学化合物または他の製薬化合物への組織の暴露、および老化からなる群から選択される、請求項73に記載の方法。
- 撹乱が1種以上の化合物の添加である、請求項75に記載の方法。
- 組織の活性クロマチンエレメントとマイクロアレイとの結合に対するプロファイルを得る前に、組織へ少なくとも1種の既知の医薬化合物を添加することをさらに含む、請求項76に記載の方法。
- 真核生物細胞の少なくとも1セットの同時制御遺伝子を識別する方法であって、
調節された培養条件下で、組織の活性クロマチンエレメント間の結合に対する第1のプロファイルを得るステップ;
少なくとも1種の遺伝子の既知のレギュレーターが、調節された培養条件により改変される条件下で、組織の活性クロマチンエレメント間の結合に対する第2のプロファイルを得るステップ;および
第1のプロファイルとb)からの第2のプロファイルとを比較し、どの遺伝因子が既知のレギュレーターの改変により影響されるかを決定するステップ;
を含む方法。 - レギュレーターが、ホルモン、栄養素、または製薬学的に活性のある薬品である、請求項78に記載の方法。
- 1〜70のいずれか1項に記載のプロファイルから得られた5〜75ヌクレオチド長の1セットの核酸上にスポットされたヌクレオチドアレイ。
- 前記のアレイが、スライド、チップまたは濾過膜である、請求項80に記載のヌクレオチドアレイ。
- サンプルが初代細胞、細胞株、真核生物種から新しく単離された細胞、およびそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項19〜44のいずれか1項に記載の方法。
- 核酸を含有するサンプルから活性クロマチンエレメントをプロファイリングする方法であって、
a)サンプルから1種または複数種の精製活性クロマチンエレメントを得、それらを標識化するステップ;
b)ステップa)の標識化活性クロマチンエレメントと、推定上の制御エレメントまたは確認された制御エレメントとマッチする個別の位置にあるDNA種を含有するDNAマイクロアレイとを接触させるステップ;および
c)活性クロマチンエレメントとマイクロアレイの部位の結合を検出するステップ;
を含む方法。 - 検出が、結合を検出するための蛍光または化学発光を含む検出系を含む、請求項83に記載の方法。
- DNAマイクロアレイが、アレイの別々の既知の部位を占める5〜40ヌクレオチド長の固定化オリゴヌクレオチドプローブを含む、請求項83に記載の方法。
- 固定化DNAオリゴヌクレオチドプローブが、少なくとも2セットのプローブを含み、少なくとも1種の参照配列に正確に相補的である第1のセットは、互いにオーバーラップする複数の参照配列にまたがるプローブを含み、少なくとももう1つのプローブのセットは、その各セットにおいて、少なくとも1つのヌクレオチドが異なる以外は第1のセットと同一であり、該異なるヌクレオチドは、各セット中に異なるヌクレオチドが存在すること以外、上記もう1つのセットのそれぞれの中の同一の位置にある、請求項85に記載の方法。
- 固定化DNAオリゴヌクレオチドプローブが、少なくとも2セットのプローブを含み、少なくとも1種の参照配列に正確に相補的である第1のセットは、互いにオーバーラップする複数の参照配列にまたがるプローブを含み、少なくとももう1つのプローブのセットは、少なくとも1種の異なるヌクレオチドの追加または欠損以外は第1のセットと同一である、請求項85に記載の方法。
- DNAマイクロアレイのDNA種が既知の制御配列である、請求項83に記載の方法。
- ステップc)の検出された結合が、コンピュータ・メモリー装置の参照プロファイルとして記録されている、請求項83に記載の方法。
- 核酸を含有するサンプルから活性クロマチンエレメントをプロファイリングする方法であって、
a)サンプルから複数の活性クロマチンエレメントを得、第1の標識でそのエレメントを標識化するステップ;
b)サンプルから複数のゲノムDNA断片を得、第2の標識でそのエレメントを標識化するステップ;
c) a)で得られたエレメントとb)で得られた断片を、推定上の制御エレメントまたは確認された制御エレメントにマッチする別々の配置でDNA種を含有するDNAマイクロアレイとハイブリダイズさせるステップ;および
d)アレイ内の第1標識および第2標識のシグナルの比を検出するステップ;
を含む方法。 - 核酸を含有する2群から異なる制御エレメント活性化をプロファイリングする方法であって、
a)第1の群から複数の活性クロマチンエレメントを得、第1の標識でそのエレメントを標識化するステップ;
b)第2の群から複数の活性クロマチンエレメントを得、第2の標識でそのエレメントを標識化するステップ;
c) a)で得られたエレメントとb)で得られた断片を、推定上の制御エレメントまたは確認された制御エレメントにマッチする別々の配置でDNA種を含有するDNAマイクロアレイとハイブリダイズさせるステップ;および
d)アレイ内の第1標識および第2標識のシグナルの比を検出するステップ;
を含む方法。 - 群のうちの1群が未処理のコントロールであり、他の群が少なくとも1種の化学薬品との接触によって処理され、かつ、ステップd)で得られたシグナルの比が、少なくとも1種の化学薬品による遺伝子制御活性の指標を提供する、請求項91に記載の方法。
- ステップd)で得られたシグナルの比が、少なくとも1種の化学薬品が活性クロマチンエレメントにおける影響を発生するか、停止するか、または有しているかを示す、請求項91に記載の方法。
- 制御エレメント活性化を、核酸を含有するサンプルからの遺伝子発現と相関させる方法であって、
a)サンプルから複数の活性クロマチンエレメントを得、推定上の制御エレメントまたは確認された制御エレメントとマッチする別々の配置でDNA種を含有するDNAマイクロアレイ上に前記エレメントをプロファイリングするステップ;
b)サンプルからRNAを単離し、cDNAに転換するステップ;
c)推定上の制御エレメントまたは確認された制御エレメントとマッチする別々の配置でDNA種を含有するDNAマイクロアレイ上にcDNAをプロファイリングするステップ;および
d)情報ソフトウェアを使用して、a)とc)から得られたプロファイル結果を遺伝子活性と相関させるステップ;
を含む方法。
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