JP2005229956A - Method for detecting microorganism in drink - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、飲料中の微生物を迅速かつ高感度に検出する方法に関する。 The present invention relates to a method for detecting microorganisms in a beverage quickly and with high sensitivity.
従来、飲料中微生物の検査方法としては、試料中で微生物を増菌培養した後、少量を採取して寒天平板培地上で培養する方法（寒天平板法）や、試料液を一定量メンブランフィルターで濾過し、フィルター上で培養する方法（濾過法）が知られている。炭酸飲料やミネラルウォーター等の一部の飲料は、原料由来の微粒子などを含まないため濾過性が高く、これらの飲料の微生物検査は濾過法を主体として実施されている。この濾過法の利点は、試料となる飲料を濾過することにより、該試料中の微生物をフィルター上に濃縮できるため、多量の試料中に混入する少数の微生物を高感度に検出できることであり、飲料によっては全量を濾過することが可能である（例えば、非特許文献１参照。）。一方、茶系飲料やミルクコーヒー、果実飲料等のように、タンパク質や繊維質、ポリフェノール類などの不溶性の微粒子を多く含む飲料は、これらの微粒子がフィルターの目詰まりを引き起こすため濾過性が低く、微生物の検査方法として濾過法を利用することは困難である。 Conventionally, as a method for inspecting microorganisms in beverages, after enrichment culture of microorganisms in a sample, a small amount is collected and cultured on an agar plate medium (agar plate method), or a sample solution is measured with a membrane filter. A method of filtering and culturing on a filter (filtration method) is known. Some beverages such as carbonated beverages and mineral water do not contain fine particles derived from raw materials, and thus have high filterability. Microbial testing of these beverages is carried out mainly by filtration methods. The advantage of this filtration method is that by filtering the sample beverage, the microorganisms in the sample can be concentrated on the filter, so that a small number of microorganisms mixed in a large amount of sample can be detected with high sensitivity. Depending on the case, it is possible to filter the whole amount (for example, see Non-Patent Document 1). On the other hand, beverages containing a lot of insoluble fine particles such as protein, fiber, and polyphenols, such as tea-based beverages, milk coffee, and fruit beverages, have low filterability because these fine particles cause clogging of the filter. It is difficult to use a filtration method as a method for inspecting microorganisms.
そのため、これらの不溶性の微粒子を多く含む飲料では、試料として飲料のごく一部を採取し、寒天平板法、もしくは濾過法を用いて検査している。これらの方法では試料の一部を採取して検査に用いるため、製品中に微生物が存在していた場合、採取する試料内にこれらの微生物が含まれるよう、十分に増菌させるための前培養が必要となる。微生物の中でも、真菌類は生育が遅いことで知られており、これらが採取する試料液中に高確率に含まれる菌数まで増菌させるためには、１週間以上の前培養を必要とする場合がある。また、真菌類の中には、凝集して生育するものも知られており、こうした場合には、飲料中に混入菌が局在し一様には存在しないため、偽陰性が生じる可能性がある。さらに、容器が透明であるＰＥＴボトル製品の場合は、通常、飲料内で７〜１４日間という長い期間恒温培養を行った後、目視で飲料が濁っていないことを確認しており、そのため結果が得られるまでに長時間を要し、製品を出荷できないことによる在庫の増加から、空間的・金銭的な損失が大きかった。 Therefore, in beverages containing a lot of these insoluble fine particles, a very small portion of the beverage is collected as a sample and inspected using the agar plate method or the filtration method. In these methods, a part of the sample is collected and used for inspection. If microorganisms are present in the product, pre-culture is performed to increase the number of these microorganisms so that they are included in the sample to be collected. Is required. Among microorganisms, fungi are known to have a slow growth, and in order to increase the number of bacteria contained in the sample solution collected at a high probability, a pre-culture of one week or more is required. There is a case. In addition, some fungi are known to grow in agglomeration. In such cases, mixed bacteria are localized in the beverage and do not exist uniformly, which may cause false negatives. is there. Furthermore, in the case of a PET bottle product in which the container is transparent, it is usually confirmed that the beverage is not cloudy visually after performing a constant temperature culture for 7 to 14 days in the beverage. It took a long time to obtain the product, and the increase in inventory due to the inability to ship the product caused a large loss in space and money.
これらの問題を解決する方法として、牛乳や乳製品など濾過が困難な飲料に、前処理として凝集剤と濾過促進剤とを添加した後、プレフィルターである高純度濾紙を用いて濾過することにより、メンブランフィルターの目詰まりを起こすことなく飲料を濾過させ、微生物を検出する方法が開発されている（例えば、特許文献１参照。）。しかし、この方法ではプレフィルターに用いる濾紙への微生物の吸着や、前処理に用いた凝集剤の微生物に与える影響を考慮する必要がある。 As a method for solving these problems, after adding a flocculant and a filtration accelerator as a pretreatment to beverages such as milk and dairy products that are difficult to filter, it is filtered using a high-purity filter paper that is a prefilter. A method for detecting a microorganism by filtering a beverage without causing clogging of a membrane filter has been developed (for example, see Patent Document 1). However, in this method, it is necessary to consider the effect of microorganisms adsorbed on the filter paper used for the prefilter and the influence of the flocculant used for the pretreatment on the microorganisms.
本発明は、通常の濾過法では濾過することが困難であるとされている濁度の高い飲料を短時間に濾過することを可能とし、該飲料中の微生物を迅速かつ高感度に検出する方法を提供することを目的とする。 The present invention makes it possible to filter a highly turbid beverage, which is difficult to filter by a normal filtration method, in a short time, and to rapidly and highly sensitively detect microorganisms in the beverage. The purpose is to provide.
本発明者らは、上記課題を解決するため鋭意研究を重ねた結果、メンブランフィルター上に濾紙を重層した濾過材を用いると、濾過性の低い飲料、特に茶系飲料を、目詰まりを起こすことなく簡便かつ短時間に濾過可能であること、さらに、濾過材中に捕捉した微生物は、バイオルミネッセンス法（ＡＴＰ法）により高感度かつ簡便に検出可能であることを見出し、これらの知見に基づいて本発明を完成した。 As a result of intensive research to solve the above problems, the inventors of the present invention cause clogging of beverages with low filterability, particularly tea-based beverages, when a filter medium in which filter paper is overlaid on a membrane filter is used. Based on these findings, it has been found that microorganisms trapped in a filter medium can be detected with high sensitivity and easily by a bioluminescence method (ATP method). The present invention has been completed.
すなわち、本発明は以下の６つの工程を含む、飲料中の微生物の検出方法に関する。
１．メンブランフィルター上に濾紙を重層した濾過材を用いて飲料を濾過する第１工程
２．濾過材を洗浄液で洗浄する第２工程
３．濾過材を液体培地又は寒天平板培地で培養する第３工程
４．濾過材にＡＴＰ消去剤を添加し、遊離ＡＴＰを消去する第４工程
５．濾過材にＡＴＰ抽出剤を添加し、微生物由来ＡＴＰを抽出する第５工程
６．第５工程で得た抽出液に発光試薬を添加し、生じる発光量を測定する第６工程
That is, this invention relates to the detection method of the microorganisms in a drink including the following six processes.
1. 1. A first step of filtering a beverage using a filter medium in which filter paper is layered on a membrane filter. 2. Second step of cleaning the filter medium with a cleaning liquid. 3. Third step of culturing the filter medium in a liquid medium or an
本発明によれば、従来濾過が困難であった飲料を、簡便な操作で短時間に濾過することが可能となり、また、濾過材中に捕捉した微生物を高感度に測定することにより、飲料に混入した少数個の微生物を検出することが可能となる。 ADVANTAGE OF THE INVENTION According to this invention, it becomes possible to filter the drink which was difficult to filter conventionally by simple operation, and also to drink by measuring the microorganisms trapped in the filter material with high sensitivity. A small number of mixed microorganisms can be detected.
本発明において、試料となる飲料は、例えば茶系飲料、果汁飲料、ミネラル水、炭酸飲料、スポーツドリンク、乳性飲料、アルコール飲料（ビール、ワイン）、などが挙げられるが、これらに限定されるものではない。しかし、本発明の効果が顕著に現れる、茶系飲料が試料として好ましい。茶系飲料とは、緑茶、ほうじ茶、麦茶、玄米茶、紅茶、健康茶、ウコン茶、ソバ茶、ウーロン茶、これらを混合したブレンド茶、などが挙げられる。 In the present invention, examples of beverages to be used include tea-based beverages, fruit juice beverages, mineral water, carbonated beverages, sports drinks, dairy beverages, alcoholic beverages (beer, wine), and the like, but are not limited thereto. It is not a thing. However, tea-based beverages, in which the effects of the present invention are conspicuous, are preferred as samples. Examples of the tea-based beverage include green tea, hoji tea, barley tea, brown rice tea, black tea, health tea, turmeric tea, buckwheat tea, oolong tea, blended tea obtained by mixing these, and the like.
本発明において、濾過材とは、メンブランフィルター上に濾紙を重層したものを意味する。濾過材を構成するメンブランフィルターは、微生物を捕捉できる孔径０．４５μｍ以下のものであれば特に限定されず、例えば市販の親水性又は疎水性メンブランフィルターを利用することができる。親水性メンブレンフィルターとしては、例えば、親水性ＰＴＦＥ（ポリトラフルオロエチレン）、親水性ＰＶＤＦ（ポリビニリデンジフルオライド）、親水性ＰＳ（ポリスルフォン）、親水性ＰＣ（ポリカーボネート）、親水性ＰＡ（ポリアミド）、親水性ＰＥ（ポリエチレン）、親水性ＰＰ（ポリプロピレン）等の親水性のプラスチック系材料、又はアセチルセルロース若しくはニトロセルロース等の材料を用いたものを利用することができる。また、疎水性メンブランフィルターとしては、例えばＰＶＤＦ、ＰＴＦＥ、ＰＥ等、あるいは、疎水性の比較的大きい親水性濾過膜、例えばＰＣ、ＰＰ、ＰＡ、ＰＳ等を利用することができる。 In the present invention, the filter medium means a filter paper layered on a membrane filter. The membrane filter constituting the filter medium is not particularly limited as long as it has a pore size of 0.45 μm or less that can capture microorganisms. For example, a commercially available hydrophilic or hydrophobic membrane filter can be used. Examples of the hydrophilic membrane filter include hydrophilic PTFE (polytrifluoroethylene), hydrophilic PVDF (polyvinylidene difluoride), hydrophilic PS (polysulfone), hydrophilic PC (polycarbonate), and hydrophilic PA (polyamide). ), Hydrophilic plastic materials such as hydrophilic PE (polyethylene) and hydrophilic PP (polypropylene), or materials using materials such as acetylcellulose or nitrocellulose can be used. In addition, as the hydrophobic membrane filter, for example, PVDF, PTFE, PE, or the like, or a hydrophilic filtration membrane having relatively high hydrophobicity, such as PC, PP, PA, PS, or the like can be used.
また、濾過材を構成する濾紙としては、例えば、セルロース性の定量濾紙、硼珪酸塩ガラス繊維性のガラス繊維濾紙などが挙げられる。特に、本発明の効果が顕著に現れる、保留粒子径が０．４０〜０．８０μｍであり、厚さが０．２〜０．６ｍｍのガラス繊維濾紙を２枚重層して利用することが好ましい。 Examples of the filter paper constituting the filter medium include cellulosic quantitative filter paper and borosilicate glass fiber glass fiber filter paper. In particular, it is preferable to use two layers of glass fiber filter paper having a reserved particle diameter of 0.40 to 0.80 μm and a thickness of 0.2 to 0.6 mm, in which the effects of the present invention are remarkably exhibited. .
本発明においては、まず第１工程として、上記濾過材を用いて試料である飲料を濾過する。試料の濾過方法としては、フィルターホルダー（例えばアドバンテック東洋社製、減圧濾過用ホルダーＫＧ−４７）に上記濾過材を装着し減圧濾過する方法や、ポリサルホンホルダー（例えばアドバンテック東洋社製、ＫＰ−４７Ｈ）に上記濾過材を装着し減圧濾過する方法などが挙げられるが、その中でも特に、上記濾過材を装着したディスポーザブルタイプのフィルターユニット（例えばアドバンテック東洋社製、３７ｍｍモニター３７ＡＳ２４５ＢＳ−ＨＥ）を用いて減圧濾過し、微生物を捕捉する方法が、フィルターユニットごと培養が可能であり、かつ、ディスポーザブルタイプであることから、作業者の負担を軽減できるため好ましい。 In the present invention, as a first step, the sample beverage is filtered using the filter medium. As a sample filtering method, a filter holder (for example, Advantech Toyo Co., Ltd., vacuum filtration holder KG-47) is attached with the above-mentioned filter material and filtered under reduced pressure, or a polysulfone holder (for example, Advantech Toyo Co., Ltd., KP-47H). The above-mentioned filter medium is attached to the filter medium and vacuum filtration is performed. Among them, a disposable type filter unit (for example, 37 mm monitor 37AS245BS-HE manufactured by Advantech Toyo Co., Ltd.) equipped with the filter medium is vacuum-filtered. However, the method of capturing microorganisms is preferable because the entire filter unit can be cultured and is a disposable type, so that the burden on the operator can be reduced.
次に、試料によっては、微生物の増殖を阻害する抗菌物質を含む場合があり、そのような試料を濾過した場合には、濾過材に抗菌物質が吸着され、続く培養工程に悪影響を与えることがあり、また、試料が微生物に由来しない遊離のＡＴＰや発光物質を含み、これが濾過材に吸着した場合、後の発光測定の工程に悪影響を与えることがあるため、第２工程として、濾過材を、洗浄液を減圧濾過することにより洗浄する。濾過材の洗浄液としては、例えば、レシチン、ポリソルベート液（ＬＰ希釈液）、リン酸緩衝液（ｐＨ７．２）、非イオン性界面活性剤（例えば、Tween20、60、80、Triton X-45、X-100）、有機溶媒（例えばエチルアルコール、ジメチルスルホキシド）、及びこれらを含む滅菌蒸留水などを用いることができるが、中でも本発明の効果が顕著に現れる、0.05〜0.10%のTween20溶液を用いることが好ましい。 Next, some samples may contain antibacterial substances that inhibit the growth of microorganisms. When such samples are filtered, the antibacterial substances are adsorbed on the filter medium, which may adversely affect the subsequent culture process. In addition, if the sample contains free ATP or luminescent material not derived from microorganisms and adsorbs to the filter material, it may adversely affect the subsequent luminescence measurement process. The washing liquid is washed by filtration under reduced pressure. Examples of the filter medium cleaning liquid include lecithin, polysorbate liquid (LP diluted liquid), phosphate buffer (pH 7.2), nonionic surfactant (for example, Tween 20, 60, 80, Triton X-45, X -100), organic solvents (for example, ethyl alcohol, dimethyl sulfoxide), and sterilized distilled water containing these, etc., among them, use 0.05 to 0.10% Tween 20 solution, in which the effect of the present invention appears remarkably. Is preferred.
次に、第３工程として、濾過材上に液体培地を滴下、又は濾過材を寒天平板培地に乗せて、濾過材中に捕捉した微生物を一定時間培養する。培養により、微生物由来のＡＴＰ量を増加させることができ、試料中の微生物が数個であっても、高感度に検出することが可能となる。培養に用いる培地としては、細菌用の培地であればよく、例えば、標準寒天培地、ソイビーン・カゼイン・ダイジェスト寒天培地（ＳＣＤ培地）、ブレインハートインフュージョン培地、普通ブイヨン培地、ＭＲＳ培地、Ｒ２Ａ寒天培地、及びこれらの培地に糖やペプトンを加えた培地などが挙げられる。また、真菌用としては、サブロー寒天培地、ポテトデキストロース寒天培地、ブドウ糖ペプトン培地などが挙げられる。液体培地の場合は、前記のフィルターユニット内に、前記の液体状の培地を添加し、濾過材を培地で浸した状態にして培養する。または、液体培地を適当なパッドに吸収させたものに、微生物を捕捉した濾過材を乗せて培養しても良い。寒天培地の場合は、これに微生物を捕捉した濾過材をのせて培養する。微生物の培養時間としては、細菌であれば１２〜２４時間程度が好ましく、真菌であれば４８〜７２時間程度の培養時間が好ましい。培養温度としては例えば２０〜３７℃とすることが好ましいが、培養温度はこれに限定されるものではなく、対象とする微生物に合わせて試験者が適宜設定することができる。 Next, as a third step, the liquid medium is dropped on the filter medium, or the filter medium is placed on the agar plate medium, and the microorganisms captured in the filter medium are cultured for a certain period of time. By culturing, the amount of microorganism-derived ATP can be increased, and even if there are several microorganisms in the sample, it can be detected with high sensitivity. The medium used for the culture may be a medium for bacteria. For example, standard agar medium, soy bean / casein / digest agar medium (SCD medium), brain heart infusion medium, normal bouillon medium, MRS medium, R2A agar medium And media obtained by adding sugar or peptone to these media. Examples of fungi include Sabouraud agar medium, potato dextrose agar medium, and glucose peptone medium. In the case of a liquid medium, the liquid medium is added to the filter unit, and the filter medium is immersed in the medium and cultured. Or you may culture | cultivate by putting the filter material which capture | acquired the microorganisms on what absorbed the liquid culture medium to the suitable pad. In the case of an agar medium, the culture medium is placed on a filter medium capturing microorganisms. The culture time of microorganisms is preferably about 12 to 24 hours for bacteria, and about 48 to 72 hours for fungi. The culture temperature is preferably 20 to 37 ° C., for example, but the culture temperature is not limited to this, and can be appropriately set by the tester according to the target microorganism.
次に、第４工程として、捕捉した微生物を培養した濾過材に、ＡＴＰ分解酵素を含む試薬（以下「ＡＴＰ消去試薬」という）を接触させ、微生物に由来しない遊離のＡＴＰ（以下「バックグランドＡＴＰ」という）を分解消去する。濾過材をＡＴＰ消去試薬で処理することにより、バックグランドＡＴＰが分解され、後工程の生物発光反応におけるバックグランド発光を低下させることができ、微生物の検出感度を向上させることが可能となる。ＡＴＰ消去試薬としては、例えば、アデノシンリン酸デアミナーゼ溶液、アデノシンリン酸デアミナーゼとその他の酵素（例えば、アピラーゼ、アルカリホスファターゼ、酸性ホスファターゼ、ヘキソキナーゼ、アデノシントリホスファターゼ）溶液などのＡＴＰ分解酵素を一種類、もしくは複数種類を含む混合溶液が好ましい。濾過材とＡＴＰ消去試薬を接触させる場合、ＡＴＰ消去試薬を濾過材上に滴下するか、ＡＴＰ消去試薬に濾過材を浸漬すればよい。ＡＴＰ消去試薬中に含まれるＡＴＰ分解酵素は、次の工程に入る前に失活させておくことが好ましい。濾過材中にＡＴＰ分解酵素が残存していた場合、後の工程で微生物由来ＡＴＰを抽出した際に、このＡＴＰも分解されてしまうため、発光量の減少がおこり、検出感度の低下を引き起こす。酵素活性を失活させる方法としては、特に限定されないが、例えば、活性阻害剤の添加や、酸やアルカリを添加し試料のｐＨを変化させ失活させる方法が挙げられる。 Next, as a fourth step, a reagent containing ATP-degrading enzyme (hereinafter referred to as “ATP elimination reagent”) is brought into contact with the filter medium in which the captured microorganisms are cultured, and free ATP not derived from microorganisms (hereinafter referred to as “background ATP”). )). By treating the filter medium with an ATP elimination reagent, the background ATP is decomposed, the background luminescence in the bioluminescence reaction in the subsequent step can be reduced, and the detection sensitivity of microorganisms can be improved. As the ATP elimination reagent, for example, one kind of ATP degrading enzyme such as adenosine phosphate deaminase solution, adenosine phosphate deaminase and other enzyme (eg, apyrase, alkaline phosphatase, acid phosphatase, hexokinase, adenosine triphosphatase) solution, or A mixed solution containing a plurality of types is preferred. When the filter medium and the ATP erasing reagent are brought into contact with each other, the ATP erasing reagent may be dropped on the filter medium or the filter medium may be immersed in the ATP erasing reagent. The ATP degrading enzyme contained in the ATP elimination reagent is preferably inactivated before entering the next step. If the ATP-degrading enzyme remains in the filter medium, when ATP derived from microorganisms is extracted in a later step, this ATP is also decomposed, resulting in a decrease in the amount of luminescence and a decrease in detection sensitivity. The method for inactivating the enzyme activity is not particularly limited, and examples thereof include a method for adding an activity inhibitor and a method for inactivating the enzyme by changing the pH of the sample by adding an acid or an alkali.
次に、第５工程として、バックグランドＡＴＰを消去した濾過材は、適当な抽出剤と接触させ、微生物由来のＡＴＰを抽出する。ＡＴＰを抽出する方法としては、公知のＡＴＰ抽出試薬を添加する方法が好適である。ＡＴＰ抽出試薬としては、例えば、界面活性剤、エタノールとアンモニアの混合液、メタノール、エタノール、トリクロロ酢酸、過塩素酸等が使用できるが、このうち界面活性剤はＡＴＰの抽出効率が高いほうが好ましい。界面活性剤としては、例えば、ドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）、ラウリル硫酸カリウム、モノラウロイルリン酸ナトリウム、アルキルベンゼンスルホン酸ナトリウム、塩化ベンザルコニウム（ＢＡＣ）、塩化ベンゼトニウム（ＢＺＣ）、塩化セチルピリジニウム、臭化セチルトリメチルアンモニウム、塩化ミリスチルジメチルベンジルアンモニウムなどが挙げられるが、これらに限定されるものではない。 Next, as a fifth step, the filter medium from which the background ATP has been eliminated is brought into contact with a suitable extractant to extract microorganism-derived ATP. As a method for extracting ATP, a method of adding a known ATP extraction reagent is suitable. As the ATP extraction reagent, for example, a surfactant, a mixed solution of ethanol and ammonia, methanol, ethanol, trichloroacetic acid, perchloric acid, and the like can be used. Of these, the surfactant preferably has a higher extraction efficiency of ATP. Examples of the surfactant include sodium dodecyl sulfate (SDS), potassium lauryl sulfate, sodium monolauroyl phosphate, sodium alkylbenzenesulfonate, benzalkonium chloride (BAC), benzethonium chloride (BZC), cetylpyridinium chloride, bromide. Examples thereof include, but are not limited to, cetyltrimethylammonium and myristyldimethylbenzylammonium chloride.
最後に、第６工程として、上記抽出した微生物由来のＡＴＰを測定する。微生物由来ＡＴＰの測定方法としては、従来公知のＡＴＰ測定法により実施することができるが、例えば、ルシフェリンとルシフェラーゼを発光試薬として用いる方法が用いられる。この場合、抽出されたＡＴＰを含む試料を、ルシフェリン−ルシフェラーゼ発光試薬と接触させ、生成した発光量を測定して微生物由来のＡＴＰ量を求める。生物発光試薬中のルシフェラーゼがホタルルシフェラーゼである場合、生物発光試薬は、ルシフェリン、ルシフェラーゼおよびマグネシウムイオンを含むことが好ましい。生成した発光量は、ルミノメーター、例えばルミテスター Ｃ−１００、Ｋ−１００、Ｋ−２００、Ｋ−２１０（いずれもキッコーマン社製）、ルミネッセンスリーダーＢＬＲ−２０１改良型（アロカ社製）、Ｌｕｍａｔ ＬＢ９５０１（ベルトールド社製）により測定することができる。本測定方法を用いた場合、飲料のバックグランド発光は、概ね１０〜５００ ＲＬＵ程度の発光量を示す。これに対し、微生物が濾過材中に捕捉された場合の発光量は１０,０００〜１，０００，０００ ＲＬＵ程度（１，０００，０００ ＲＬＵ以上ではルミテスター Ｃ−１００を用いた場合、ＳＣＡＬＥ ＯＶＥＲと表示される）となるため、微生物を検出可能となる。 Finally, as the sixth step, the extracted microorganism-derived ATP is measured. As a method for measuring microorganism-derived ATP, a conventionally known ATP measurement method can be used. For example, a method using luciferin and luciferase as a luminescent reagent is used. In this case, the sample containing the extracted ATP is brought into contact with a luciferin-luciferase luminescence reagent, and the amount of luminescence produced is measured to determine the amount of ATP derived from the microorganism. When the luciferase in the bioluminescent reagent is firefly luciferase, the bioluminescent reagent preferably contains luciferin, luciferase and magnesium ions. The amount of luminescence generated is a luminometer, for example, Lumitester C-100, K-100, K-200, K-210 (all manufactured by Kikkoman), Luminescence Reader BLR-201 improved (Aloka), Lumat LB9501. It can be measured by (Berthold). When this measurement method is used, the background light emission of the beverage shows a light emission amount of about 10 to 500 RLU. On the other hand, the amount of luminescence when microorganisms are trapped in the filter medium is about 10,000 to 1,000,000 RLU (in the case of using Lumitester C-100 at 1,000,000 RLU or more, SCALE OVER Therefore, the microorganism can be detected.
以下実施例によりさらに詳細に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。 Hereinafter, the present invention will be described in more detail with reference to examples, but the present invention is not limited thereto.
（濾過材の濾過性評価）
濾過材の濾過性を評価するため、図１に示すような構成で、以下の４種類のサンプルを用意した。
１．メンブランフィルター付きフィルターユニット（アドバンテック東洋社製、３７ｍｍモニター３７ＡＳ２４５ＢＳ−ＨＥ）
２．上記１にガラス繊維濾紙ＧＢ−１４０（アドバンテック東洋社製、直径３３ｍｍ、保留粒子径 ０．４μｍ）を重ねたもの
３．上記２にガラス繊維濾紙ＧＣ−５０（アドバンテック東洋社製、直径３３ｍｍ、保留粒子径 ０．５μｍ）を重ねたもの
４．上記２にガラス繊維濾紙ＧＢ−１００Ｒ（アドバンテック東洋社製、直径３３ｍｍ、保留粒子径 ０．６μｍ）を重ねたもの
(Filterability evaluation of filter media)
In order to evaluate the filterability of the filter medium, the following four types of samples were prepared with the configuration shown in FIG.
1. Filter unit with membrane filter (Advantech Toyo Co., Ltd., 37mm monitor 37AS245BS-HE)
2. 2. A glass fiber filter GB-140 (manufactured by Advantech Toyo Co., Ltd., diameter 33 mm, retention particle diameter 0.4 μm) overlaid on 1 above. 3. A glass fiber filter paper GC-50 (manufactured by Advantech Toyo Co., Ltd., diameter 33 mm, retention particle diameter 0.5 μm) is layered on the above 2. A glass fiber filter GB-100R (made by Advantech Toyo Co., Ltd., diameter 33 mm, retention particle diameter 0.6 μm) superimposed on 2 above
上記４種類のサンプルを用いて、まろ茶（コカ・コーラ社製、登録商標）２０００ ｍＬ ＰＥＴボトルを５分間減圧濾過し、その際の濾過量を測定した。測定結果を表１に示す。 Using the above four types of samples, a 2000 mL PET bottle of Marocha (manufactured by Coca-Cola Co., Ltd., registered trademark) was filtered under reduced pressure for 5 minutes, and the filtration amount at that time was measured. The measurement results are shown in Table 1.
表１に示すように、メンブランフィルター上にガラス繊維濾紙を重ねることで濾過量が向上することが示された。 As shown in Table 1, it was shown that the filtration amount was improved by stacking the glass fiber filter paper on the membrane filter.
（芽胞の調製）
オートクレーブ後のＳＣＤ寒天培地４９０ｍｌに塩類溶液Ａ及びＢ (溶液Ａ: 0.25% MnCl2 2H2O、2.5% MgSO4 7H2O、0.0003% FeSO4 7H2O, 0.01 N HCl ; 溶液Ｂ: 1.5% CaCl2 2H2O, 0.01 N HCl)を５ｍｌずつ加え、芽胞調製用の寒天培地を調製した。次いで、調製した培地一面に芽胞菌バチルス・メガテリウム（Bacillus megaterium）を植菌し、３０℃で１週間培養した。培養後、培地上に滅菌超純水５ｍｌを滴下して芽胞を回収し、３５００ｒｐｍ、１０分間遠心分離することにより上清を除き、滅菌超純水に再懸濁することで洗浄を行った。２回洗浄後、４０％ エタノール中に懸濁し、芽胞保存液とした。飲料中に添加する際には、適宜４０％ エタノールを用いて希釈し、好ましい菌濃度に調製したものを用いた。
(Preparation of spores)
Salt solution A and B (solution A: 0.25% MnCl 2 2H 2 O, 2.5% MgSO 4 7H 2 O, 0.0003% FeSO 4 7H 2 O, 0.01 N HCl; solution B: 1.5%) in 490 ml of SCD agar medium after autoclaving 5 ml each of CaCl 2 2H 2 O, 0.01 N HCl) was added to prepare an agar medium for spore preparation. Subsequently, a spore bacterium Bacillus megaterium was inoculated over the prepared medium and cultured at 30 ° C. for 1 week. After culturing, 5 ml of sterilized ultrapure water was dropped onto the medium to collect spores. The supernatant was removed by centrifugation at 3500 rpm for 10 minutes, and washing was performed by resuspending in sterilized ultrapure water. After washing twice, it was suspended in 40% ethanol to obtain a spore storage solution. When it was added to the beverage, it was appropriately diluted with 40% ethanol and prepared to a preferred bacterial concentration.
（試料の濾過及び洗浄）
おーいお茶（伊藤園社製、登録商標）の５００ｍｌ ＰＥＴボトルに芽胞菌バチルス・メガテリウム（Bacillus megaterium）を添加したものと、芽胞菌を添加していないものを、それぞれ５本ずつ、実施例１のサンプル４の濾過材を装着したフィルターユニットを用いて減圧濾過した。次いで、洗浄液として0.05% Tween20溶液５０ｍｌを用い、減圧濾過することで洗浄を行った。
(Sample filtration and washing)
Sample of Example 1 in which five spore bacteria Bacillus megaterium was added to one 500 ml PET bottle of Oi Ocha (Itoen Co., Ltd., registered trademark) and one without spore bacteria. The solution was filtered under reduced pressure using a filter unit equipped with a filter medium No. 4. Next, 50 ml of 0.05% Tween 20 solution was used as a washing solution, and washing was performed by filtration under reduced pressure.
（微生物の培養、残存ＡＴＰの消去、微生物由来ＡＴＰの抽出）
市販の２倍濃度のＳＣＤ 培地（２×ＳＣＤ） １ｍｌに対し、ＡＴＰ消去試薬（キッコーマン社製、付属の溶解液で溶解したもの）０．１ｍｌを加えた培地を１ｍｌ、フィルターユニット内に添加し、３０℃で４８時間培養した。培養後、ＡＴＰ消去試薬をルシフェール希釈液（キッコーマン社製）で１０倍に希釈した希釈液を、フィルターユニット内に１ｍｌ添加し、室温で１０分間反応させることにより、残存するバックグランドＡＴＰを消去した。次いで、フィルターユニット内から培地と希釈液の混合液を減圧濾過により除去した後、フィルターユニット内にＡＴＰ抽出試薬（１００ｍＭ ＣＨＡＰＳ、０．２％ ＢＡＣ）を１ｍｌ添加し、濾過材中の微生物の持つＡＴＰを抽出した。抽出液は、容量５ｍｌのシリンジをフィルターユニットの先端に装着することにより押出した。
(Microbial culture, elimination of residual ATP, extraction of microorganism-derived ATP)
Add 1 ml of a medium containing 0.1 ml of ATP elimination reagent (Kikkoman Co., Ltd., dissolved in attached lysing solution) to 1 ml of commercially available double-concentration SCD medium (2 × SCD) in the filter unit. And cultured at 30 ° C. for 48 hours. After culturing, 1 ml of a diluted solution obtained by diluting the ATP elimination reagent 10 times with a lucifer diluent (manufactured by Kikkoman) was added to the filter unit and reacted at room temperature for 10 minutes to eliminate the remaining background ATP. . Next, after removing the mixed solution of medium and diluent from the filter unit by vacuum filtration, 1 ml of ATP extraction reagent (100 mM CHAPS, 0.2% BAC) is added to the filter unit, and the microorganisms in the filter medium have ATP was extracted. The extract was extruded by attaching a 5 ml syringe to the tip of the filter unit.
（発光量の測定）
抽出液から０．２ｍｌを採取し、そこにルシフェール発光試薬（キッコーマン社製、付属の発光試薬溶解液で溶解したもの）０．１ｍｌを添加して攪拌後、直ちにルミテスター Ｃ−１００（キッコーマン社製）を用いてその発光量を測定した。
(Measurement of light emission)
0.2 ml was collected from the extract, 0.1 ml of Lucifer luminescent reagent (dissolved with the attached luminescent reagent solution, manufactured by Kikkoman Co.) was added thereto and stirred, and immediately, Lumitester C-100 (Kikkoman Co., Ltd.). The amount of luminescence was measured using
（寒天平板法による添加菌数の算出）
通常の表面塗抹の寒天平板法を用いて、添加した芽胞保存液中に含まれる芽胞菌数を求めた。ＳＣＤ寒天平板培地に、希釈した芽胞保存液を０．１ｍｌ、滅菌ピペットで無菌的に加え、コンラージ棒により均一に広げた後、３０℃で２４時間培養し、現れたコロニーを計数した。そのコロニー数を、試料に添加した芽胞菌数とした。
(Calculation of added bacteria by agar plate method)
Using the normal surface smear agar plate method, the number of spore bacteria contained in the added spore preservation solution was determined. 0.1 ml of the diluted spore stock solution was aseptically added to the SCD agar plate medium with a sterile pipette, spread evenly with a congeal rod, and cultured at 30 ° C. for 24 hours, and the colonies that appeared were counted. The number of colonies was defined as the number of spore bacteria added to the sample.
上記で測定した芽胞を添加した試料の発光量、芽胞を添加していない試料の発光量、及び添加芽胞菌数を表２に示す。 Table 2 shows the amount of luminescence of the sample added with the spore measured above, the amount of luminescence of the sample not added with the spore, and the number of added spore bacteria.
芽胞菌バチルス・メガテリウム（Bacillus megaterium）を添加していないサンプルの発光量は、いずれも５００ＲＬＵ以下であった。これに対し、芽胞菌バチルス・メガテリウム（Bacillus megaterium）を添加したサンプルの発光量は、全て１，０００，０００ＲＬＵ以上（ルミテスター Ｃ−１００を用いた場合、ＳＣＡＬＥ ＯＶＥＲと表示される）であった。さらに、寒天平板法によるコロニー数を計数した結果、芽胞の添加菌数は、９．４個／サンプル（ｎ＝５）であり、飲料中の少数個の微生物を高感度に、しかも短時間に検出可能であることが示された。 The amount of luminescence of the sample to which no spore bacteria Bacillus megaterium was added was 500 RLU or less. On the other hand, the amount of luminescence of the sample to which Bacillus megaterium was added was all 1,000,000 RLU or more (displayed as SCALE OVER when Lumitester C-100 was used). . Furthermore, as a result of counting the number of colonies by the agar plate method, the number of spore additions was 9.4 / sample (n = 5), and a small number of microorganisms in the beverage were highly sensitive and in a short time. It was shown to be detectable.
本発明は、飲料中の微生物検査において有効に利用される。 The present invention is effectively used for testing microorganisms in beverages.
１．フィルターユニット
２．ガラス繊維濾紙
３．ガラス繊維濾紙
４．メンブランフィルター
５．吸水パッド
1.
Claims (1)
（１）メンブランフィルター上に濾紙を重層した濾過材を用いて飲料を濾過する第１工程
（２）濾過材を洗浄液で洗浄する第２工程
（３）濾過材を液体培地又は寒天平板培地で培養する第３工程
（４）濾過材にＡＴＰ消去剤を添加し、遊離ＡＴＰを消去する第４工程
（５）濾過材にＡＴＰ抽出剤を添加し、微生物由来ＡＴＰを抽出する第５工程
（６）第５工程で得た抽出液に発光試薬を添加し、生じる発光量を測定する第６工程
A method for detecting microorganisms in a beverage, comprising the following steps.
(1) The first step of filtering the beverage using the filter medium with the filter paper layered on the membrane filter (2) The second step of washing the filter medium with the washing liquid (3) The filter medium is cultured in a liquid medium or an agar plate medium The third step (4) is to add an ATP scavenger to the filter medium and to eliminate the free ATP. The fourth step (5) is to add the ATP extractant to the filter medium and extract the microorganism-derived ATP. Sixth step of adding a luminescent reagent to the extract obtained in the fifth step and measuring the amount of luminescence generated
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- 2004-02-23 JP JP2004046200A patent/JP2005229956A/en active Pending
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