JP2004507266A - 単離ヒトキナーゼタンパク質、ヒトキナーゼタンパク質をコード化する核酸分子、及びその使用 - Google Patents

Abstract

本発明は、ヒトゲノム中の遺伝子によりコード化されるペプチド、本発明のキナーゼペプチドのアミノ酸配列を提供するものである。本発明は、特に、単離ペプチド及び核酸分子、キナーゼペプチドのオルトログ及びパラログを同定する方法、及びキナーゼペプチドのモジュレータを同定する方法を提供するものである。

Description

【０００１】
【技術分野】
本発明は、セリン／スレオニンキナーゼサブファミリーに関連したキナーゼタンパク質、組換えＤＮＡ分子、及びタンパク質の製造に関する。本発明は、特に、タンパク質のリン酸化に影響を与える新規なペプチド、タンパク質、及びこれらのペプチド、タンパク質分子をコード化する核酸分子を提供するものである。そして、これらはヒトの治療及び診断用の組成物、方法の開発に有用である。
【０００２】
【背景技術】
プロテインキナーゼ
キナーゼはタンパク質にリン酸基を付加することにより様々な細胞の増殖、分化、及びシグナル伝達を制御する。シグナル伝達系の制御異常は、炎症、ガン、動脈硬化、及び乾癬等を含む様々な病態に関与していることがわかってきている。可逆的タンパク質リン酸化は、真核生物の活性化を制御する主要な方法である。典型的な哺乳動物細胞では、機能しているタンパク質１００００個中１０００個以上がリン酸化を受けていると推測されている。活性化を制御する高エネルギーリン酸は通常、プロテインキナーゼにより、アデノシン三リン酸分子（ＡＴＰ）から特定のタンパクに移され、またタンパクホスファターゼによってそのタンパク質から外される。リン酸化反応は、細胞外シグナル（ホルモン、神経伝達物質、成長因子、分化因子など）、細胞周期チェックポイント、環境ストレス、栄養性ストレスに反応して起こり、分子スイッチを入れることにほぼ匹敵する。そのスイッチがオンになっていると、代謝酵素、制御タンパク、受容体、細胞骨格タンパク、イオンチャンネル／ポンプ、あるいは転写因子を適当なプロテインキナーゼが活性化する。
【０００３】
キナーゼはこれまでに知られている最大のタンパク質グループであり、広範で多様な機能と特異性を有する酵素のサブファミリーである。キナーゼは普通、その基質、制御分子、あるいは変異型が示すある種の表現型から名前が決められる。基質に基づいた場合、プロテインキナーゼはおおまかに、チロシン残基をリン酸化するキナーゼ（タンパク質チロシンキナーゼ、ＰＴＫ）とセリン残基又はスレオニン残基をリン酸化するキナーゼ（セリン／スレオニンキナーゼ、ＳＴＫ）の２グループに分類される。いくつかのキナーゼは両方の特異性を有し、スレオニン残基とチロシン残基の両方をリン酸化する。ほとんど全てのキナーゼは、２５０〜３００アミノ酸からなる類似した酵素活性部位を有する。サブドメインＩ−ＩＶからなるＮ−末端領域は、通常２葉構造に折りたたまれ、ＡＴＰ（又はＧＴＰ）ドナー分子と結合し、方向付ける。サブドメインＶＩ Ａ−ＸＩからなるさらに大きなＣ−末端領域は、タンパク基質と結合し、ＡＴＰからセリン、スレオニン、又はチロシン残基の水酸基へ、γリン酸塩の移す作業を実行する。サブドメインＶは両端をつないでいる。
【０００４】
キナーゼ領域の一方の端に存在するか、あるいはキナーゼ領域のループに挿入されているアミノ酸配列（通常５〜１００残基からなる）の違いによって、キナーゼはファミリーに分類されることもある。これらの付加アミノ酸配列は、キナーゼの標的タンパク質を認識し、相互作用することでキナーゼごとの制御が可能になる。キナーゼ領域の一次構造は保存されており、１１のサブドメインにさらに分類されうる。１１のサブドメインは、それぞれ特別なアミノ酸残基とモチーフ、あるいはアミノ酸パターンを有しており、それがサブドメインそれぞれの特徴となり、高度に保存されている（Ｈａｒｄｉｅ， Ｇ． ａｎｄ Ｈａｎｋｓ， Ｓ． （１９９５） Ｔｈｅ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｋｉｎａｓｅ Ｆａｃｔｓ Ｂｏｏｋｓ， Ｖｏｌ Ｉ：７−２０ Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ， Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ， Ｃａｌｉｆ．）。
【０００５】
セカンドメッセンジャー依存性プロテインキナーゼは、主に、サイクリックＡＭＰ（ｃＡＭＰ）、サイクリックＧＭＰ、イノシトール三リン酸、ホスファチジルイノシトール、３，４，５−三リン酸、サイクリックＡＤＰリボース、アラキドン酸、ジアシルグリセロール、及びカルシウムカルモジュリン等のセカンドメッセンジャーの機能を主に介在する。サイクリックＡＭＰ依存性プロテインキナーゼ（ＰＫＡ）は、ＳＴＫファミリーの重要なメンバーである。サイクリックＡＭＰは、これまでに調べられたすべての原核生物、および動物細胞におけるホルモン作用の細胞内媒介物である。このようなホルモンが誘導する細胞応答には、甲状腺ホルモン分泌、コルチゾール分泌、プロゲステロン分泌、グリコーゲン分解、骨吸収、及び心拍数と心筋収縮力の制御が挙げられる。ＰＫＡはすべての動物細胞中に存在し、これらの細胞の大部分においてサイクリックＡＭＰの機能に関与していると考えられている。ＰＫＡ発現異常は、ガン、甲状腺疾患、糖尿病、アテローム性動脈硬化、及び心臓血管系疾患などの様々な障害や病気に関与している（Ｉｓｓｅｌｂａｃｈｅｒ， Ｋ． Ｊ． ｅｔ ａｌ． （１９９４） Ｈａｒｒｉｓｏｎ’ｓ Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ ｏｆ Ｉｎｔｅｒｎａｌ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ， ＭｃＧｒａｗ−Ｈｉｌｌ， Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ， Ｎ．Ｙ．， ｐｐ． ４１６−４３１， １８８７）。
【０００６】
カルシウムカルモジュリン（ＣａＭ）依存性プロテインキナーゼもまた、ＳＴＫファミリーのメンバーである。カルモジュリンは、カルシウムとの結合に応答して標的タンパクと結合することにより、カルシウムで制御される過程の多くに介在するカルシウム受容体である。これらの過程における第一の標的タンパクは、ＣａＭ依存性プロテインキナーゼである。ＣａＭキナーゼは、平滑筋収縮（ＭＬＣキナーゼ）、グリコーゲン分解（ホスホリラーゼキナーゼ）、及び神経伝達（ＣａＭキナーゼＩ及びＣａＭキナーゼＩＩ）の制御に関与している。ＣａＭキナーゼＩは、神経伝達関連タンパクシナプシンＩ及びＩＩ、遺伝子転写制御因子ＣＲＥＢ、及び嚢胞性線維症コンダクタンス制御タンパクＣＦＴＲなどの様々な基質をリン酸化する（Ｈａｒｉｂａｂｕ， Ｂ． ｅｔ ａｌ． （１９９５） ＥＭＢＯ Ｊｏｕｒｎａｌ １４：３６７９−８６）。ＣａＭＩＩキナーゼは、シナプシンの別の部位をリン酸化し、チロシン水酸化酵素をリン酸化し活性化することにより、脳におけるカテコールアミンの合成を制御する。ＣａＭキナーゼの多くは、ＣａＭに結合することに加えて、リン酸化によって活性化を受ける。このキナーゼは、自己リン酸化することもあり、また一連の「キナーゼカスケード」において別のキナーゼによってリン酸化される場合もある。
【０００７】
別のリガンド活性化プロテインキナーゼとして、５’−ＡＭＰ活性プロテインキナーゼ（ＡＭＰＫ）がある（Ｇａｏ， Ｇ． ｅｔ ａｌ． （１９９６） Ｊ． Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ． １５：８６７５−８１）。哺乳動物のＡＭＰＫは、アセチル−ＣｏＡカルボキシラーゼやヒドロキシメチルグルタリル−ＣｏＡ還元酵素のリン酸化により、脂肪酸及びステロール合成を制御し、熱ショックや、グルコース、ＡＴＰ欠乏などの細胞ストレスに対するこれらの経路の反応を介在する。ＡＭＰＫは酵素活性を有するαサブユニットと、活性をもたないβとγの２つのサブユニットからなるヘテロ三量体であり、後者はαサブユニットの活性を制御していると考えられている。ＡＭＰＫのサブユニットは、脳、心臓、脾臓、及び肺などの脂質生成のない組織に、想像以上に幅広く分布する。この広範な分布から、脂質代謝制御以外の別の働きがあることが示唆される。
【０００８】
マイトジェン活性化プロテインキナーゼ（ＭＡＰ）もまた、ＳＴＫファミリーのメンバーである。ＭＡＰキナーゼも、細胞内シグナル伝達を制御する。このキナーゼは、リン酸化カスケードを通じて、細胞表面から核内へのシグナル伝達を介在する。これまでにいくつかのサブグループが同定されており、それぞれが異なる基質特異性を示し、異なる細胞外刺激に反応する（Ｅｇａｎ， Ｓ． Ｅ． ａｎｄ Ｗｅｉｎｂｅｒｇ， Ｒ． Ａ． （１９９３） Ｎａｔｕｒｅ ３６５：７８１−７８３）。ＭＡＰキナーゼシグナル伝達経路は、哺乳動物にも酵母にも存在する。哺乳動物の経路を活性化する細胞外刺激には、上皮増殖因子（ＥＧＦ）、紫外線光、高浸透圧培地、熱ショック、内毒素リポ多糖体（ＬＰＳ）、及び腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）やインターロイキン−１（ＩＬ−１）等の前炎症性サイトカインなどがある。
【０００９】
ＰＲＫ（増殖関連キナーゼ）は、血清／サイトカイン誘導性ＳＴＫであり、ヒトの巨核球系細胞の細胞周期や細胞増殖の制御に関与する （Ｌｉ， Ｂ． ｅｔ ａｌ． （１９９６） Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ． ２７１：１９４０２−８）。ＰＲＫは、細胞分裂に関与するＳＴＫのポロ（ヒトのポロ遺伝子に由来する）ファミリーに関係があるキナーゼである。ＰＲＫは肺腫瘍組織で発現が低下しており、正常組織におけるその発現異常が癌化へとつながるガン遺伝子である可能性が考えられている。ＭＡＰキナーゼの発現異常は、ガン、炎症、免疫異常、及び成長や発達に影響する疾患などの様々な病態に関係している。
【００１０】
サイクリン依存性プロテインキナーゼ（ＣＤＫ）は、別のグループのＳＴＫであり、細胞周期を通じて細胞の発達を制御する。サイクリンは小さな調整タンパクであり、ＣＤＫに結合し、活性化する働きがある。サイクリンが結合したＣＤＫはその後、細胞分裂過程に関与する特定のタンパク質をリン酸化、及び活性化することにより、細胞周期の様々な過程を動かす働きをする。ＣＤＫは活性化を受けるために様々な刺激を必要とする点で独特なキナーゼである。サイクリンの結合に加えて、ＣＤＫが活性化されるためには、特定のスレオニン残基のリン酸化、及び特定のチロシン残基の脱リン酸化が必要である。
【００１１】
タンパク質チロシンキナーゼ（ＰＴＫ）は、特に標的タンパクのチロシン残基をリン酸化し、膜型の受容体ＰＴＫ、及び非膜型の非受容体ＰＴＫに分割できる。膜型タンパク質チロシンキナーゼは、大部分の増殖因子の受容体である。増殖因子が受容体へ結合すると、ＡＴＰからのリン酸基が受容体やそれ以外の特定のタンパク質の決められたチロシン残基に写される。受容体ＰＴＫに関与する増殖因子（ＧＦ）には、上皮増殖因子、血小板由来増殖因子、線維芽細胞増殖因子、肝細胞増殖因子、インスリン及びインスリン様増殖因子、神経増殖因子、導管内皮細胞増殖因子、及びマクロファージコロニー刺激因子などがある。
【００１２】
非受容体ＰＴＫは、膜貫通領域を欠いており、細胞表面受容体の細胞内領域と結合して複合体を形成する。このように非受容体ＰＴＫを通じて機能を発揮するする受容体には、サイトカイン受容体、ホルモン（成長ホルモン及びプロラクチン）受容体、及びＴ細胞とＢ細胞の抗原特異的受容体がある。
【００１３】
これらのＰＴＫの多くが最初に同定されたのは、癌細胞中の変異癌遺伝子産物としてであり、癌細胞におけるＰＴＫの活性化はもはや正常な細胞制御を行ってはいない。実際、これまでに知られている癌遺伝子の約１／３がＰＴＫをコードしており、細胞トランスフォーメーション（腫瘍形成）には、しばしば、チロシンリン酸化活性の上昇が伴うことはよく知られている（Ｃａｒｂｏｎｎｅａｕ Ｈ ａｎｄ Ｔｏｎｋｓ ＮＫ （１９９２） Ａｎｎｕ． Ｒｅｖ． Ｃｅｌｌ． Ｂｉｏｌ． ８：４６３−９３）。すなわち、ある種の癌をコントロールするには、ＰＴＫ活性の制御が重要な戦略になり得る。
【００１４】
セリン／スレオニンプロテインキナーゼは、基質のセリン、またはスレオニン残基にリン酸基を付加する。本発明で提供されるキナーゼは、酵母やショウジョウバエにおけるある種のセリン／スレオニンキナーゼに非常に類似している。さらに、この酵素は、シグナル伝達や発育に関与しているＳＮＦキナーゼと相同性を有する。ＳＮＦキナーゼは、酵母や高等植物において、グルコース抑制遺伝子の抑制を解除する。哺乳動物においても、ＳＮＦ様キナーゼの存在が知られている。例えば、ｈｕｎｋ１キナーゼはマウスの乳腺で発現しており、組織発達や癌化に関与する可能性が考えられている。ｍｓｋ（心筋ＳＮＦ様キナーゼ）は、発達中の心臓で発現しており、エフリンレセプター型キナーゼのＨＥＫキナーゼを制御する。
【００１５】
本発明の遺伝子は、酵母で発現させることによりこれを結合する可能性のある因子を同定することが可能である。その方法としては、「コンプリメンテーションアッセイ」や「２−ハイブリッドアッセイ」がある。人工的に合成した酵素やそれ由来のペプチドを用いて、このキナーゼが介在する細胞作用を活性化したり阻害することも可能である。イムノアッセイやＰＣＲを用いて、このタンパク質の濃度を定量し、増殖異常が起こっている組織や癌性増殖を検出することも考えられる。
【００１６】
本発明は、同一の遺伝子から異なるスプライスによって生じる２つのｃＤＮＡ／転写産物、及び２つのタンパク質を提供する。特に、ｃＤＮＡ分子の塩基配列は、スプライス型１のものを提供し、転写産物の塩基配列はスプライス型２のものを提供する。スプライス型１がコードするタンパク質は、精巣特異的セリンキナーゼ（ｔｓｓｋ）と高い類似性を示している（後述）。第２の短いスプライス型にコードされるタンパク配列２は異なる構造を有し、ＨＳＰ９０とある程度の類似性を示している。ＨＳＰ９０はこれまでに性状解析が行われており、ステロイドホルモンレセプターや広範わたるプロテインキナーゼなどの多くのシグナル伝達関連タンパクに対する特異性の高いシャペロンである。したがって、一つの遺伝子がキナーゼとそれに介在するシャペロンの両方をコードしている可能性が考えられる。
【００１７】
精巣特異性セリン／スレオニンキナーゼ
本発明のスプライス型１は、セリン／スレオニンキナーゼのサブファミリーである精巣特異的セリンキナーゼ（ｔｓｓｋ）と高い類似性を示している。精巣特異性セリンキナーゼは、精巣特異的プロテインキナーゼ（ＴＥＳＫ）、セリン／スレオニンキナーゼ２２（２２Ａと２２Ｂを含む）、或いは精子完成関連セリン／スレオニンキナーゼといわれる場合もある。ｔｓｓｋサブファミリーには、ｔｓｓｋ−１とｔｓｓｋ−２がある。ｔｓｓｋタンパクは。性的に成熟した雄の精巣で発現している。さらに、この発現は精子細胞成熟の最終段階に限定されている可能性が考えられている（Ｋｕｅｎｇ ｅｔ ａｌ．， Ｊ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ １９９７ Ｄｅｃ ２９；１３９（７）：１８５１−９）。ＴＥＳＫタンパクは、セリン／スレオニンとチロシンの両基質に特異性を示すデュアル−スペシフィックプロテインキナーゼであるかもしれない。特に、ＴＥＳＫ２は精子形成において重要な役割を果たしている可能性が示唆されている（Ｒｏｓｏｋ ｅｔ ａｌ．， Ｇｅｎｏｍｉｃｓ ６１： ４４−５４， １９９９）。
【００１８】
関連のキナーゼに関する詳細な総説は、Ｂｉｅｌｋｅ ｅｔ ａｌ．， Ｇｅｎｅ １９９４ Ｆｅｂ ２５；１３９（２）：２３５−９； Ｌｅ Ｇｕｅｎ ｅｔ ａｌ．， Ｇｅｎｅ １９９２ Ｏｃｔ ２１；１２０（２）：２４９−５４； Ｇａｒｄｎｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｇｅｎｏｍｉｃｓ ２０００ Ｊａｎ １；６３（１）：４６−５９； Ｒｕｉｚ ｅｔ ａｌ．， Ｍｅｃｈ Ｄｅｖ １９９４ Ｄｅｃ；４８（３）：１５３−６４； ａｎｄ Ｙｏｓｈｉｄａ ｅｔ ａｌ．， Ｇｅｎｏｍｅ １０００ Ｄｅｃ；４２（６）：１０７７−８７を参照。
【００１９】
キナーゼタンパク、特にセリン／スレオニンキナーゼのサブファミリーのメンバーは、薬剤作用と薬剤開発の主要なターゲットである。従って、キナーゼタンパクの仲のサブファミリーに属するこれまでに知られていないメンバーを同定し、性状解析することは製薬開発の分野において価値のあることである。本発明は、セリン／スレオニンキナーゼサブファミリーのメンバーと相同性を有するこれまでに未知のヒトキナーゼタンパクを提供するという点で最先端のものである。
【００２０】
【発明の要約】
本発明は、セリン／スレオニンキナーゼサブファミリーやその対立遺伝子変異体、及び他の哺乳類におけるこれらのオルトログに関連する、ヒトキナーゼペプチド及びタンパク質のアミノ酸配列同定の一部に基づいたものである。これらの特異なペプチド配列及びこれらのペプチドをコード化する核酸配列は、ヒトの治療ターゲット開発のためのモデルとして使用でき、治療に用いるタンパク質の識別に役立ち、また、キナーゼを発現する細胞や組織内でのキナーゼ活性を調節するようなヒトの治療薬の開発におけるターゲットとなり得る。図１の実験データによると、ヒトにおいて精巣、生殖細胞（生殖細胞腫瘍を含む）及び肝臓での発現が認められている。
【００２１】
［発明の詳細な説明］
概論
本発明はヒトゲノム配列解析に基づいている。ヒトゲノムの配列解析及び構築に際して、配列情報を解析することによって、当該分野においてキナーゼタンパク質又はその一部であると同定され、またセリン／スレオニンキナーゼサブファミリーに関連付けられるタンパク質／ペプチド／ドメインに対して、構造及び／又は配列の相同性を有するペプチドをコード化するヒトゲノムの未確認フラグメントが明らかとなった。これらの配列を用いて、付加的なゲノム配列を構築、転写し、及び／又はｃＤＮＡ配列を単離し、特徴付けた。この解析に基づき、本発明は、セリン／スレオニンキナーゼサブファミリーに関連するヒトキナーゼペプチド及びタンパクのアミノ酸配列、これらのタンパク質をコード化する転写配列、ｃＤＮＡ配列及び／又はゲノム配列型の核酸配列、核酸変異（対立遺伝子情報）、発現の組織分布、及び本発明のキナーゼに対して構造又は配列の相同性を有する、最も関連性の高い既知のタンパク質／ペプチド／ドメインに関する情報を提供するものである。
【００２２】
本発明において提供されるペプチドは、従来未知であることに加え、商業的に重要な製品及びサービスの開発にとって有用であるという点に基づいて選択され得るものである。特に、本発明のぺプチドは、セリン／スレオニンキナーゼサブファミリーにおける既知のキナーゼタンパク質に対して相同性及び／又は構造上の相関性を有し、発現パターンが観察されることに基づいて選択される。図１の実験データによると、ヒトにおいて精巣、生殖細胞（生殖細胞腫瘍を含む）、及び肝臓で発現が認められている。この技術は、このファミリーのタンパク質、及び本発明の遺伝子に類似した発現パターンを有するタンパク質の商業的な重要性を確立するものである。本発明のペプチドについてのより特異的な性質、及びその使用については、本明細書、特に背景技術、図面の注釈に記載され、及び／又は公知のセリン／スレオニンキナーゼファミリー又はキナーゼタンパクのサブファミリーのそれぞれにおいて周知である。
【００２３】
【実施例の詳細】
ペプチド分子
本発明は、キナーゼファミリーのタンパク質の１つであると同定されたタンパク分子をコード化する核酸配列を提供するものであり、これらはセリン／スレオニンキナーゼサブファミリー（図２にタンパク質配列、図１に転写／ｃＤＮＡ配列、図３にゲノム配列を示す）に関連付けられる。図２にペプチド配列が記載され、ここには明らかな変異体、特に本明細書及び図３の情報を用いて同定される対立変異体も記載されており、これらは、本発明のキナーゼペプチド、キナーゼペプチド、あるいは本発明のペプチド／タンパク質と呼ばれる。
【００２４】
本発明は、図２に示すキナーゼペプチド（図１の転写／ｃＤＮＡ、又は図３のゲノム配列に示される核酸分子よりコード化される）のアミノ酸配列から成る、あるいは実質的に成る、あるいはこれを含む単離ペプチド及びタンパク質分子を提供するとともに、本技術により作製、使用されるこれらのペプチドの明らかな変異体を提供するものである。これらの変異体については、以下で詳述する。
【００２５】
本発明で使用されているように、ペプチドが細胞物質を実質的に含まない、又は化学前駆物質あるいは他の化学物質を含まない場合に、ペプチドは「単離」又は「精製」されたという。本ペプチドは、均一、又は他の純度になるまで精製することができる。精製のレベルは使用目的に基づく。重要な性質は、調製物中に他成分が多量に存在していたとしても、要求されるペプチドの機能を発揮できるということである（単離核酸分子の性質については後述する）。
【００２６】
いくつかの例によると、「実質的に細胞物質を含まない」とは、他のタンパク質（即ち汚染タンパク質）を少なくとも約３０％（乾燥重量）未満、他のタンパク質を約２０％未満、他のタンパク質を約１０％未南、又は、他のタンパク質を５％見何有するペプチド調製物含む。ペプチドが組換えにより製造される場合、タンパク質調製物の容量に対して培地が約２０％未満の場合には、実質的に培地は存在しないとすることができる。
【００２７】
「実質的に化学前駆物質又は他の化学物質を含まない」という用語は、合成に関与した化学前駆物質又は他の化学物質から分離されたペプチド調製物をいう。ある例においては、「実質的に化学的前駆物質又は他の化学物質を含まない」とは、化学前駆物質又は他の化学物質を約３０％（乾燥重量）未満、化学前駆体物質又は他の化学物質を２０％未満、化学前駆物質又は他の化学物質を１０％未満、又は化学前駆物質又は他の化学物質を５％未満有するキナーゼペプチド調製物を含む。
【００２８】
単離キナーゼペプチドは、自然に発現する細胞、発現のために変形された（組み換えられた）細胞から精製するか、或いは既知のタンパク質合成方法を用いて合成することができる。図１のデータによると、ヒトにおいて精巣、生殖細胞（生殖細胞腫瘍を含む）、及び肝臓での発現が認められている。例えば、キナーゼペプチドをコード化している核酸分子は、発現ベクター中にクローニングされ、さらにこの発現ベクターは宿主細胞へ導入されて、タンパク質が宿主細胞内で発現する。そして、タンパク質は標準的なタンパク質精製技術を用いた適当なスキームによって、細胞から単離することができる。これらの多くの技術については、以下で後述する。
【００２９】
したがって、本発明は、図２に示されるアミノ酸配列（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２及び５）からなるタンパク質、例えば、図１に示される転写／ｃＤＮＡ核酸配列（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１及び４）や、図３に示されるゲノム配列（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：３）によりコード化されるタンパク質を提供するものである。このようなタンパクの最終的なアミノ酸配列がこのアミノ酸配列であるとき、タンパク質はそのアミノ酸配列からなる。
【００３０】
本発明はさらに、図２に示されるアミノ酸配列（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２及び５）から実質的になるタンパク質、例えば、図１に示される転写／ｃＤＮＡ核酸配列（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１及び４）や、図３に示されるゲノム配列（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：３）によりコード化されるタンパク質を提供する。このようなアミノ酸配列が微量の付加アミノ酸残基、例えば最終的にタンパク質中に約１〜１００の付加残基、一般的には約１〜２０の付加残基が存在する場合、タンパク質は実質的にそのアミノ酸配列からなる。
【００３１】
本発明はさらに、図２に示されるアミノ酸配列（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２及び５）を含むタンパク質、例えば、図１に示される転写／ｃＤＮＡ核酸配列（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１及び４）、及び図３に示されるゲノム配列（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：３）によりコード化されるタンパク質を提供するものである。このアミノ酸配列がタンパク質の最終的なアミノ酸配列の少なくとも一部分である場合、タンパク質はアミノ酸配列を含む。このような場合、タンパク質はペプチドのみであるか、又はタンパク質と自然に結びついているアミノ酸残基（コード化された配列と隣接する）や、非相同アミノ酸残基／ペプチド配列のように、付加的なアミノ酸を有することができる。このようなタンパク質は、少量の付加的アミノ酸残基を有するか、又は数百或いはそれ以上の付加的アミノ酸を含むことができる。本発明のキナーゼペプチドが含まれるタンパク質の好適な種として、天然の成熟タンパク質がある。これらの各種タンパク質を調製／単離する方法については、以下に簡単に述べる。
【００３２】
本発明のキナーゼペプチドは、キメラ又は融合タンパクを形成するために非相同性の配列に接合することができる。このようなキメラ又は融合タンパク質は、キナーゼペプチドに対して実質的に相同性のないアミノ酸配列を有する非相同タンパク質に、有効に結合され得るキナーゼペプチドを含む。「有効に結合され得る」とは、キナーゼペプチドと非相同タンパク質がフレーム中で融合していることを意味する。非相同タンパク質は、キナーゼペプチドのＮ末端又はＣ末端に融合されることができる。
【００３３】
いくつかの例では、融合タンパク質は、キナーゼペプチド自体の活性に影響を及ぼさない。例えば、融合タンパク質には、βガラクトシダーゼ融合、イースト２−ハイブリッドＧＡＬ融合、ポリＨｉｓ融合、ＭＹＣ標識、ＨＩ標識、及びＩｇ融合といった酵素融合タンパク質が含まれるが、融合タンパク質はこれに限られるものではない。このような融合タンパク質、特にポリＨｉｓ融合は、組み換えキナーゼペプチドの精製に有用である。ある種の宿主細胞（例えば哺乳類の宿主細胞）においては、タンパク質の発現及び／又は分泌は、非相同信号配列を用いることにより増加させることができる。
【００３４】
キメラ又は融合タンパク質は、標準の組み換えＤＮＡ技術により製造することができる。例えば、異なるタンパク質配列をコードしているＤＮＡフラグメントは、従来技術に従ってフレーム中に共に配置される。あるいは、融合遺伝子は自動ＤＮＡ合成を含む従来技術により合成することが可能である。あるいは、遺伝子フラグメントのＰＣＲ増幅にアンカープライマーを用い、二つの連続的な遺伝子フラグメント間に相補的な突出部を形成し、その後アニールすることにより、キメラ遺伝子配列を再増幅することができる（Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．， ＣｕｒｒｅｎｔＰｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，１９９２を参照）。さらに、発現ベクターとしては、既に融合部分（例えばＧＳＴタンパク質）をコード化した多くのものを、商業的に入手することができる。キナーゼペプチドをコード化した核酸は、融合部がフレーム中でキナーゼペプチドに結合するようにして、このような発現ベクター中にクローニングされることができる。
【００３５】
以上説明したように、本研究はまた、天然のペプチド成熟形態、ペプチドの対立遺伝子／配列変異体、非天然の組み換え誘導変異体、ペプチドのオルトログ及びパラログなど、本発明のタンパク質のアミノ酸配列における明らかな変異体を提供、及び実施可能にするものである。このような変異体は、核酸組み換え技術やタンパク質生化学の分野で公知の技術を用いることにより、容易に生成することができる。しかし、当然のことながら、この変異体には、本発明以前に公開されているいずれのアミノ酸配列をも含まれないものである。
【００３６】
このような変異体は、本発明に示される分子技術や配列情報を用いることにより、容易に同定／製造することが可能である。さらに、このような変異体は、本発明のキナーゼペプチドに対する配列及び／又は構造上の相同性に基づいて、他のペプチドと容易に区別することができる。相同性／同一性の程度は、主にペプチドが機能的な変異体であるか非機能的な変異体であるか、パラログファミリー中に存在する分化量、オルトログ間の進化的相違に基づいて判断される。
【００３７】
２つのアミノ酸配列、又は２つの核酸配列の同一性パーセントを決定するために、最適な比較を行う目的で配列は整列される（例えば、最適な配列比較のために、ギャップが第一及び第二アミノ酸又は核酸配列の一方又は両方に導入され、非相同性配列は比較を行うために無視することができる）。好適な例としては、参照配列の長さの少なくとも３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％又はそれ以上が、比較目的に応じて整列される。そして、対応するアミノ酸配置又はヌクレオチド配置上のアミノ酸残基又はヌクレオチドが比較される。第一配列での配置が、第二配列において対応する配置と同じアミノ酸残基又はヌクレオチドによって占められている時、分子はその配置と同じで同一である（ここで用いられているアミノ酸又は核酸の「同一性」は、アミノ酸又は核酸の「相同性」と同意義である）。２つの配列間の同一性パーセントは、配列において共有される同一配置数の巻数であり、ギャップ数及び各ギャップ長さを考慮し、ギャップは２つの配列が最適な比較を行えるように導入される必要がある。
【００３８】
２つの配列間における、配列の比較及び同一性、類似性パーセントの決定は、数学的アルゴリズムを用いて行うことができる（Ｃｏｍｐｕｔａｔｉｏｎａｌ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ， Ｌｅｓｋ， Ａ．Ｍ．， ｅｄ．， Ｏｘｆｏｒｄ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｐｒｅｓｓ， Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ， １９８８； Ｂｉｏｃｏｍｐｕｔｉｎｇ：　Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｃｓ ａｎｄ Ｇｅｎｏｍｅ Ｐｒｏｊｅｃｔｓ， Ｓｍｉｔｈ， Ｄ．Ｗ．， ｅｄ．， Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ， Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ， １９９３； Ｃｏｍｐｕｔｅｒ Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ Ｓｅｑｕｅｎｃｅ Ｄａｔａ， Ｐａｒｔ １， Ｇｒｉｆｆｉｎ， Ａ．Ｍ．， ａｎｄ Ｇｒｉｆｆｉｎ， Ｈ．Ｇ．， ｅｄｓ．， Ｈｕｍａｎａ Ｐｒｅｓｓ， Ｎｅｗ Ｊｅｒｓｅｙ， １９９４； Ｓｅｑｕｅｎｃｅ Ａｎａｌｙｓｉｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ， ｖｏｎ Ｈｅｉｎｊｅ， Ｇ．， Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ， １９８７； ａｎｄ Ｓｅｑｕｅｎｃｅ Ａｎａｌｙｓｉｓ Ｐｒｉｍｅｒ， Ｇｒｉｂｓｋｏｖ， Ｍ． ａｎｄ Ｄｅｖｅｒｅｕｘ， Ｊ．， ｅｄｓ．， Ｍ Ｓｔｏｃｋｔｏｎ Ｐｒｅｓｓ， Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ， １９９１）。好適な例として、２つのアミノ酸配列間の同一性パーセントは、ＧＣＧソフトウェアパッケージ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｇｃｇ．ｃｏｍより入手可能）のＧＡＰプログラムに組み込まれたＮｅｅｄｌｅｍａｎ ａｎｄ Ｗｕｎｓｃｈアルゴリズム（Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．（４８）：４４４−４５３ （１９７０））を用い、Ｂｌｏｓｓｏｍ ６２ マトリックス又はＰＡＭ２５０ マトリックス、及びギャップ重量１６，１４，１２，１０，８，６，４、長さ重量１，２，３，４，５，６を用いて決定される。他の好適な例としては、２つのヌクレオチド配列の同一性パーセントは、ＧＣＧソフトウェアパッケージ（Ｄｅｖｅｒｅｕｘ，Ｊ．，ｅｔ ａｌ．， Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． １２（１）：３８７（１９８４）（ｈｔｔｐ：／／ｇｃｇ．ｃｏｍより入手可能））のＧＡＰプログラムを用い、ＮＷＳｇａｐｄｎａ．ＣＭＰマトリックス、及びギャップ重量４０，５０，６０，７０，８０、長さ重量１，２，３，４，５，６を用いて決定される。さらに他の一例としては、２つのアミノ酸又はヌクレオチド配列間の同一性パーセントは、ＡＬＩＧＮプログラム（ｖｅｒｓｉｏｎ ２．０）に組み込まれたＥ．Ｍｙｅｒｓ ａｎｄ Ｗ．Ｍｉｌｌｅｒアルゴリズム（ＣＡＢＩＯＳ，４：１１−１７（１９８９））を用い、ＰＡＭ１２０重量残基表、ギャップ長ペナルティー１２、ギャップペナルティー４を用いて決定される。
【００３９】
本発明の核酸及びタンパクの配列は、例えば他のファミリーメンバー又は関連した配列を発見するために、配列データペースに対して検索を行う「クエリー配列」として用いることができる。このような検索は、ＡｌｔｓｃｈｕｌらのＮＢＬＡＳＴ及びＸＢＬＡＳＴプログラム（ｖｅｒｓｉｏｎ ２．０） （Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２１５：４０３−１０（１９９０））を用いて行うことができる。ＢＬＡＳＴヌクレオチド検索は、本発明の核酸分子に相同性のあるヌクレオチド配列を得るために、ＮＢＬＡＳＴプログラムを用い、ｓｃｏｒｅ＝１００、ｗｏｒｄｌｅｎｇｔｈ＝１２で行うことができる。ＢＬＡＳＴタンパク検索は、本発明のタンパクに相同性のあるアミノ酸配列性を得るために、ＸＢＬＡＳＴプログラムを用い、ｓｃｏｒｅ＝５０、ｗｏｒｄｌｅｎｇｔｈ＝３で行うことができる。比較目的のギャップ配列を得るために、ＡｌｔｓｃｈｕｌらのＧａｐｐｅｄ ＢＬＡＳＴ（Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｒｅｓ．２５（１７）：３３８９−３４０２（１９９７））を用いることができる。ＢＬＡＳＴ及びＧａｐｐｅｄ ＢＬＡＳＴプログラムを用いる際には、各プログラム（例えばＸＢＬＡＳＴ及びＮＢＬＡＳＴ）の既定のパラメータを用いることができる。
【００４０】
本発明のペプチドのうちの一つを含むタンパク質における、成熟プロセシングを受ける前の形態、及びプロセシングを受けた形態の全長は、本発明のキナーゼのうち一つに対して完全な配列同一性を有し、本発明のキナーゼペプチドと同じ遺伝子位置によりコード化されているものとして、容易に同定することができる。本発明の新規キナーゼタンパクをコードする遺伝子は、ＳＴＳとＢＡＣのマップデータをはじめとする様々な方面からの証拠に基づき、ゲノム中のヒト第１４染色体上に位置することが示されている（図３に示す）。
【００４１】
キナーゼペプチドの対立遺伝子変異体は、キナーゼペプチドの少なくとも一部に対して高度の（著しい）配列相同性／同一性を有するヒトタンパク質であり、同様に本発明のキナーゼペプチドと同じ遺伝子位置においてコード化されるものとして、容易に同定することができる。遺伝子位置は、対象となるヒトに対してマッピングされたゲノム配列のような、図３に示されるゲノム情報に基づいて容易に決定することができる。本発明の新規キナーゼタンパクをコードする遺伝子は、ＳＴＳとＢＡＣのマップデータをはじめとする様々な方面からの証拠に基づき、ゲノム中のヒト第１４染色体上に位置することが示されている（図３に示す）。本発明に用いられているように、アミノ酸配列において、典型的には少なくとも約７０〜８０％、８０〜９０％、さらに典型的には少なくとも約９０〜９５％、又はそれ以上の相同性を有する場合、２つのタンパク質（又はタンパク質の一領域）は著しい相同性を有している。本発明によれば、著しい相同性を有するアミノ酸配列は、より詳細には以下に述べられるようなストリンジェントな条件の下で、核酸分子にコード化されるキナーゼペプチドとハイブリダイズされる核酸配列によりコード化される。
【００４２】
図３には、本発明のキナーゼタンパクをコード化する遺伝子中に見出されたＳＮＰについての情報を示す。ＳＮＰは、イントロン、及びＯＲＦの５’と３’領域において１１ヶ所の異なる塩基ポジションにおいて確認された。これらのＳＮＰは、特にＯＲＦの外側と第１イントロン中に位置しているので、制御／調整領域に影響を与える可能性がある。
【００４３】
キナーゼペプチドのパラログは、キナーゼペプチドの少なくとも一部に対して、ある程度の著しい配列相同性／同一性を有し、ヒトの遺伝子によってコード化され、また同様の活性又は機能を有しているものとして、容易に同定することができる。アミノ酸配列が、与えられた領域又はドメインを通じて、典型的に少なくとも約６０％以上、さらに典型的には約７０％以上の相同性を有する場合、２つのタンパク質は典型的なパラログであると考えられる。このようなパラログは、より詳細には以下に述べられるような適度にストリンジェントな条件の下で、核酸分子にコード化されるキナーゼペプチドとハイブリダイズする核酸配列によりコード化される。
【００４４】
キナーゼペプチドのオルトログは、キナーゼペプチドの少なくとも一部に対してある程度の著しい配列相同性／同一性を有し、他の生体の遺伝子によってコード化されているものとして、容易に同定することができる。オルトログは、好適には、哺乳類、さらに好適には霊長類から単離され、ヒトの治療のターゲット及び治療薬剤の開発のために用いられる。このようなオルトログは、より詳細には以下に述べられるような、モディレートからストリンジェントな条件の下で核酸をコード化するキナーゼペプチドとハイブリダイズするような核酸配列によりコード化され、これはタンパク質を生成する２つの生体の相関性に依存する。
【００４５】
本発明のキナーゼペプチドの非天然の変異体は、組み換え技術を用いて容易に生成することができる。このような変異体には、キナーゼペプチドのアミノ酸配列中における欠失、付加、置換によるものが含まれるが、これらに限定されるものではない。例えば、置換の１種として、保守的アミノ酸置換が挙げられる。この置換は、キナーゼペプチドにおける特定のアミノ酸が同様の特徴を持つ他のアミノ酸によって置換されるものである。保存的置換においては、脂肪族のアミノ酸Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｌｅｕ及びＩｌｅの中の一つが他の一つに置換；ヒドロキシル残基ＳｅｒとＴｈｒとの置換；酸性残基ＡｓｐとＧｌｕとの置換；アミド残基ＡｓｎとＧｌｎとの置換；塩基性残基ＬｙｓとＡｒｇとの置換；芳香族残基ＰｈｅとＴｙｒとの置換がある。表現型に現れないアミノ酸置換に関する指針については、Ｂｏｗｉｅ ｅｔ ａｌ．， Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４７：１３０６−１３１０（１９９０）に述べられている。
【００４６】
変異体キナーゼペプチドは、完全に機能しているか、あるいは例えば基質結合能、基質脱リン酸化能、信号伝達調整能等の１つ以上の活性において機能が欠落していることがある。完全機能的な変異体は、一般的に、保存的な変異、又は致命的でない残基あるいは領域内での変異体のみが含まれる。図２はタンパク質分析の結果を示しており、致命的ドメイン／領域を特定するのに使用することができる。機能的変異体には、機能が変化しない、又は著しい機能変化のない類似アミノ酸の置換も含まれる。他方、このような置換は、ある程度機能に対してプラス又はマイナスの影響を及ぼすことがある。
【００４７】
非機能的変異体は、典型的には、１つ以上の非保存的アミノ酸の置換、欠失、導入、反転、切断、又は致命的な残基あるいは領域での置換、欠失、導入、反転が含まれる。
【００４８】
機能において必須のアミノ酸は、例えば、特定部位の突然変異誘発、又はアラニンスキャニング突然変異誘発（Ｃｕｎｎｉｎｇｈａｍ ｅｔ ａｌ．， Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４４：１０８１−１０８５（１９８９））等の当該分野における既知の方法により、特に図２に示す結果を用いて確認することができる。アラニンスキャニング突然変異誘発では、分子内のすべての残基において、単独のアラニン突然変異を行う。この結果生じた変異分子は、その後、キナーゼ活性のような生物活性、又はｉｎ ｖｉｔｒｏ増殖活性分析のようなアッセイのために試験される。結合相手／基質結合にとって重要な部位は、結晶化、核磁気共鳴、光学親和性ラベル等の構造分析によって決定される（Ｓｍｉｔｈ ｅｔ ａｌ．， Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２２４：８９９−９０４（１９９２））； ｄｅ Ｖｏｓ ｅｔ ａｌ． Ｓｃｉｅｎｃｅ ２５５：３０６−３１２（１９９２））。
【００４９】
本発明はさらに、キナーゼペプチドのフラグメントを提供し、これに加えて、該フラグメントを含む、及びからなるタンパク質及びペプチド、特に図２に同定された残基を含むタンパク質及びペプチドを提供するものである。しかしながら、本発明に関連するフラグメントは、本発明より以前に公開されているフラグメントを含むものとは見なされない。
【００５０】
ここで用いられているように、フラグメントは、キナーゼペプチドに隣接するアミノ酸残基を、少なくとも８，１０，１２，１４，１６、又はそれ含んでいる。このようなフラグメントは、１以上のキナーゼペプチドの活性を保持する能力によって選択されるか、あるいは、基質との結合又は抗原としての挙動等の機能を果たす能力によって選択され得る。特に重要なフラグメントは生物活性フラグメントであり、これは例えば、８又はそれ以上のアミノ酸のペプチドである。このようなフラグメントは、典型的には例えば活性部位、膜内外ドメイン、又は基質結合ドメインのような、キナーゼペプチドのドメイン又はモチーフを含んでいる。さらに、可能なフラグメントとしては、ドメイン又はモチーフ含有フラグメント、溶解性ペプチドフラグメント、抗原性構造含有フラグメントを含むが、フラグメントはこれに限定されるものではない。予想されるドメイン及び機能性部位は、当業者にとって容易に入手可能な公知のコンピュータプログラム（例えばＰＲＯＳＩＴＥ分析）により容易に確認することができる。このような分析結果の１つを図２に示す。
【００５１】
ポリペプチドは、一般に２０天然アミノ酸と呼ばれている２０種のアミノ酸以外のアミノ酸をしばしば含むことがある。さらに、末端アミノ酸を含む多くのアミノ酸は、プロセシング及び翻訳後修飾等の自然のの過程、又は当該分野において公知の化学修飾技術によって修飾され得る。キナーゼペプチドにおいて自然に生じる一般的な修飾については、基本的なテキスト、詳細な研究論文及び文献に記述されており、これは当業者においては周知である（これらの特性ののいくつかは図２において確認される）。
【００５２】
既知の修飾としては、アセチル化、アシル化、ＡＤＰリボシル化、アミド化、フラビンの共有結合付加、ヘム半部の共有結合付加、ヌクレオチド又はヌクレオチド誘導体の共有結合付加、脂質又は脂質誘導体の共有結合付加、ホスファチジルイノシトールの共有結合付加、架橋結合、環化、ジスルフィド結合形成、脱メチル化、共有結合架橋の形成、シスチンの形成、ピログルタミン酸塩の形成、ホルミン化、ガンマカルボキシル化、グリコシル化、ＧＰＩアンカー形成、ヒドロキシル化、ヨウ素化、メチル化、ミリストイル化、酸化、タンパク質分解プロセシング、リン酸化、プレニル化、ラセミ化、セレノイル化、硫酸化、アルギニル化などのタンパク質へのアミノ酸の転写ＲＮＡ媒介付加、ユビキチン化を含むが、修飾はこれに限定されるものではない。
【００５３】
このような修飾は当業者には周知であり、科学文献に非常に詳細に記載されてきた。グリコシル化、脂質付加、硫酸化、グルタミン酸残基のガンマカルボキシル化、ヒドロキシル化、ＡＤＰリボシル化など、特に一般的な修飾は、Ｐｒｏｔｅｉｎｓ−Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ＡＮＤ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ， ２ｎｄＥｄ．， Ｔ．Ｅ．Ｃｒｅｉｇｈｔｏｎ， Ｗ．Ｈ．Ｆｒｅｅｍａｎ ａｎｄ Ｃｏｍｐａｎｙ， Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ（１９９３）のような、ほとんどの基本テキストにおいて記載されている。この点に関する詳細な文献としては、Ｗｏｌｄ， Ｆ．， Ｐｏｓｔｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎａｌ Ｃｏｖａｌｅｎｔ Ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ， Ｂ．Ｃ． Ｊｏｈｎｓｔｏｎ， Ｅｄ．， Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ， Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ １−１２（１９８３）；Ｓｅｉｆｔｅｒ ｅｔ ａｌ．（Ｍｅｔｈ． Ｅｎｚｙｍｏｌ． １８２：６２６−６４６（１９９０）） ＡＮＤ Ｒａｔｔａｎ ｅｔ ａｌ．（Ａｎｎ． Ｎ．Ｙ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ６６３：４８−６２（１９９２））のような多くの文献を利用することができる。
【００５４】
したがって本発明のキナーゼペプチドは、誘導体又は類似体をも包括するものであり、ここで、置換されたアミノ酸残基は遺伝子コードによってコード化されるものではなく、置換基が含まれ、成熟キナーゼペプチドが、例えばキナーゼペプチドの半減期を長くする化合物（例えばポリエチレングリコール）のような他の化合物と融合するか、又は付加アミノ酸が、例えば主、副配列、成熟キナーゼペプチドの精製配列、あるいは前タンパク質配列のような成熟キナーゼペプチドと融合する。
【００５５】
タンパク質 ／ ペプチドの使用
本発明のタンパクは、図面に示される機能情報に関連した、実質的かつ特異的なアッセイにおいて、例えば、抗体を高める、又は他の免疫反応を誘導させるための、生物液中のタンパク質（又はその結合対象、又はリガンド）レベルの定量のためのアッセイに用いる試薬（ラベル化試薬を含む）として、また、対象となるタンパク質を選択的に発現する組織のマーカー（組織の分化又は発達のある特定段階、あるいは疾患の状態）として使用することができる。タンパク質が、別のタンパク質又はリガンドと結合する、又は結合し得る場合（例えば、キナーゼ関与タンパク質間の相互作用又はキナーゼリガンド間の相互作用）、このタンパク質を用いて結合相手／リガンドを特定し、結合相互作用のインヒビターを同定するシステムを開発することができる。これらの一部又はすべての使用により、試薬グレード、又は商業製品としてのキットフォーマットへと開発することが可能となる。
【００５６】
上に列記した使用を実際に行う方法は、当業者にとって周知のことである。このような方法を開示している参考文献としては、”Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ”， ２ｄ ｅｄ．， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ， Ｓａｍｂｒｏｏｋ， Ｊ．， Ｅ． Ｆ． Ｆｒｉｔｓｃｈ ａｎｄ Ｔ． Ｍａｎｉａｔｉｓ ｅｄｓ．， １９８９， と ”Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ： Ｇｕｉｄｅ ｔｏ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ”， Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ， Ｂｅｒｇｅｒ， Ｓ． Ｌ． ａｎｄ Ａ． Ｒ． Ｋｉｍｍｅｌ ｅｄｓ．， １９８７ がある。
【００５７】
本発明のペプチドの潜在的な用途は、第一に、タンパク源、及びタンパク質の種類／作用に基づいている。例えば、ヒトから単離したキナーゼ、及びそれらのヒト／哺乳動物オルトログは、哺乳類の治療用医薬、例えばヒト用の医薬品、特に、キナーゼを発現する細胞又は組織での生物反応又は病理学的反応の調整に用いられる医薬品を発見するためのターゲットとして有用である。図１の実験データに示されるように、本発明のキナーゼタンパクは実質的なノーザンブロット解析により、ヒトにおいて精巣及び生殖細胞（生殖細胞腫瘍を含む）で発現が認められている。これに加えて、ＰＣＲを用いた組織スクリーニングパネルにより、ヒトにおいて肝臓に発現していることも示されている。キナーゼタンパク質、特にセリン／スレオニンキナーゼサブファミリーの活性を調整する医薬品の多くは、現在開発中である（背景技術を参照）。背景技術や図面に記載されている構造情報及び機能情報は、特に図１の発現情報と組み合わせることによって、本発明の分子の特異的及び本質的な使用が提供される。図１の実験データに示されるように、ヒトにおいて精巣、生殖細胞（生殖細胞腫瘍を含む）、及び肝臓で発現が認められている。このような使用は、本発明で与えられている情報と、当業者において既知の情報、及びルーチン実験を用いて容易に決定することができる。
【００５８】
本発明のタンパク質（本発明以前に開示されている変異体及びフラグメントを含む）は、セリン／スレオニンキナーゼサブファミリーに関連付けられるキナーゼに関する生物学的アッセイに有用である。このようなアッセイは、キナーゼの機能あるいは活性、又は、特にキナーゼを発現する細胞及び組織における本発明の一つが属するキナーゼサブファミリーに特有のキナーゼに関連する症状の診断及び治療に有用な性質、の何れかに関連している。図１の実験データに示されるように、実質的なノーザンブロット解析により、ヒトにおいて精巣、生殖細胞（生殖細胞腫瘍を含む）で発現が認められている。これに加えて、ＰＣＲを用いた組織スクリーニングパネルにより、ヒトの肝臓に発現していることもを示されている。
【００５９】
本発明のタンパク質は、細胞ベース、又は無細胞系における薬剤スクリーニングアッセイにおいても有用である。細胞ベース系は、天然型、すなわちキナーゼを正常に発現する細胞であり、生体組織検査、又は細胞培地中で増殖する。図１の実験データに示されるように、ヒトにおいて精巣、生殖細胞（生殖細胞腫瘍を含む）、及び肝臓で発現が認められている。あるいは、細胞ベースアッセイは、キナーゼタンパク質を発現する組み換え宿主細胞に関係している。
【００６０】
ポリペプチドは、自然状態、又はキナーゼに関連する特定の疾患又は症状を引き起こす変異型のタンパク質のキナーゼ活性を調整する化合物を同定するために用いることができる。本発明のキナーゼ、及び適当な変異体やフラグメントは、このキナーゼに対して結合能力を持つ候補化合物をアッセイするための高効率スクリーンにおいて使用することができる。これらの化合物は、さらに、これらのキナーゼ活性に対する影響を判定するために、機能性のキナーゼに対してスクリーニングを行うことができる。さらにこれらの化合物は、動物又は無脊椎動物系において、活性／効果を判定するために試験することができる。化合物は、キナーゼを望ましい程度まで活性化（アゴニスト）又は不活性化（アンタゴニスト）するかどうか判定される。
【００６１】
さらに、本発明のタンパクは、キナーゼタンパク質と、該キナーゼタンパク質と通常相互作用する分子、例えばキナーゼタンパク質が通常相互作用する信号経路の基質又は含有成分（例えば別のキナーゼ）との間での相互作用を促進又は阻害する能力を持つ化合物をスクリーニングするのに用いることができる。このようなアッセイでは、一般的には、キナーゼタンパク質又はフラグメントがターゲット分子と相互作用するか、タンパク質とターゲットとの複合物を検出するか、又はタンパクリン酸化、ｃＡＭＰ回転、アデニル酸シクラーゼ活性などの信号変換に関連する影響のような、キナーゼタンパク質とターゲットとの間の相互作用の生化学的結果を検出することができる条件で、キナーゼタンパク質と候補化合物が結合される工程が含まれる。
【００６２】
候補化合物としては、例えば、１）最後部がＩｇの融合ペプチド、及びランダムペプチドライブラリを含む可溶性ペプチド（例えばＬａｍ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ ３５４：８２−８４（１９９１）； Ｈｏｕｇｈｔｅｎ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ ３５４：８４−８６（１９９１））や、及びＤ−及び／又はＬ−型アミノ酸の組み合わせからできている化学誘導分子ライブラリを含むペプチド、；２）ホスホペプチド（例えばランダムあるいは部分的に変質したホスホペプチドライブラリ（例えばＳｏｎｇｙａｎｇ ｅｔ ａｌ．， Ｃｅｌｌ ７２：７６７−７７８（１９９３） 参照）。；３）抗体（例えば、ポリクローナル抗体、モノクローン抗体、ヒト化抗体、抗イディオタイプ抗体、キメラ抗体、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆａｂ発現ライブラリフラグメントを含む単鎖抗体、及び抗体のエピトープ結合フラグメントを含む単鎖抗体、及び抗体のえぴとーフ結合フラグメント）；４）小さな有機及び無機分子（例えば、組み合わせ及び天然生成物ライブラリから得られる分子）が含まれる。
【００６３】
ある候補化合物は、基質結合と競合する受容体の可溶性フラグメントである。他の候補化合物には、変異キナーゼ、又はキナーゼ機能に影響を及ぼす変異体を含む適切なフラグメントがあり、このために基質との競合が起こる。したがって、例えば高い親和性を有するか、又はフラグメントが基質と結合し解離しないような、基質と競合するフラグメントが本発明に包含される。
【００６４】
本発明はさらに、キナーゼ活性を調整（刺激又は阻害）する化合物を同定するための、他のエンドポイントアッセイを含む。このアッセイは、一般的に、キナーゼ活性を示す信号変換経路における挙動のアッセイに関連している。このため、キナーゼタンパク質依存信号カスケードに対する応答が促進又は抑制するように調整される、基質のリン酸化、タンパク質の活性化、遺伝子発現の変化についてのアッセイが行われる。
【００６５】
キナーゼにより媒介される、生物学的又は生化学的な機能は、何れもエンドポイントアッセイとして用いることができる。これらは、ここに記載されている全ての生化学／生物学的挙動を含み、ここに引用される文献にはこれらエンドポイントアッセイのターゲットが織り込まれており、また他の機能については、当業者において公知であるか、又は図面、特に図２の情報を用いて、容易に確認することができる。特に、キナーゼを発現する細胞又は組織の生化学的機能についてのアッセイを行うことができる。図１の実験データに示されるように、本発明のキナーゼタンパクは実質的なノーザンブロット解析により、ヒトにおいて精巣、及び生殖細胞（生殖細胞腫瘍を含む）で発現が認められている。これに加えて、ＰＣＲを用いた細胞スクリーニングパネルにより、ヒトの肝臓に発現していることも示されている。
【００６６】
結合及び／又は活性化化合物はまた、アミノ末端細胞外ドメイン又はその一部、あるいは異種ドメイン又はサブリジョンに置換され得る７つの膜内外セグメントの何れかの又は細胞内又は細胞外ループの何れか、及びカルボキシ末端細胞内ドメインのようなまい膜内外ドメインあるいはサブリジョン、又はその一部においてキメラキナーゼタンパク質を用いることによりスクリーニングを行うことができる。例えば、基質結合領域は、異なる基質と相互作用するものとして用いられることができ、さらに天然のキナーゼによって認識されるものとして同定され得る。同様に、異なるセットの信号変換成分を活性化のエンドポイントアッセイとして利用することができる。このような方法により、キナーゼが由来する特定の宿主細胞以外でアッセイを行うことが可能となる。
【００６７】
本発明のタンパク質はまた、キナーゼと相互作用する化合物（例えば結合相手及び／又はリガンド）を発見するために利用される方法である、競合結合アッセイにも有用である。このために、化合物がポリペプチドと結合又は相互作用できる条件下で、化合物をキナーゼポリペプチドと接触させる。可溶性キナーゼポリペプチドも混合物中に加えられる。テスト化合物が可溶性キナーゼポリペプチドと相互作用する場合、キナーゼターゲットから形成される複合体の量、あるいは活性は減少する。このタイプのアッセイは特にキナーゼの特定領域と相互作用する化合物を検索する場合に有用である。したがって、標的のキナーゼ領域と競合する可溶性ポリペプチドは、対象となる領域に対応したペプチド配列を含むよう設計されている。
【００６８】
無細胞系薬剤のスクリーニングアッセイを行うためには、タンパク質の一方又は両方の非複合化形態からの複合化形態の分離を効率化し、アッセイを自動化するために、キナーゼタンパク又はフラグメント、そのターゲット分子の何れかを固定化することが望ましい場合がある。
【００６９】
薬剤スクリーニングアッセイにおいては、マトリックスにタンパク質を固定化する技術を使用することができる。ある例では、融合タンパク質はタンパク質をマトリックスに結合することのできるドメインを付加することができる。例えば、グルタチオン−Ｓ−トラスフェラーゼ融合タンパク質は、グルタチオンセファロースビーズ（Ｓｉｇｍａ Ｃｈｅｍｉｃａｌ， Ｓｔ． Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）、又はグルタチオン誘導マイクロタイタープレート上に吸着され、細胞溶解物（例えば^３５Ｓ標識）と候補化合物とが結合され、複合体形成条件（例えば、塩及びｐＨの生理学的条件）の下で混合物が培養される。培養の後、非結合ラベルの除去のためにビーズは洗浄され、マトリックスを固相化して、放射性ラベルを直接、あるいは複合体を分離した後の上澄みを測定することにより定量される。あるいは、複合体はＳＤＳ−ＰＡＧＥによりマトリックスから分離することができ、標準の電気泳動技術を用いることによって、ゲルからビーズフラクション中のキナーゼ結合タンパク質のレベルを定量することができる。例えば、ポリペプチドあるいはそのターゲット分子は、当業者に周知の技術を利用して、ビオチン及びストレプトアビジンの結合を用いて固定化される。あるいは、タンパク質と反応し、タンパク質とターゲット分子との結合を妨げない抗体は、プレートのウェルに誘導化されこのタンパク質は抗体との結合によりそのウェルの中に捕らえられる。キナーゼ結合タンパク質の組成物と候補化合物は、キナーゼタンパク質存在ウェル中で培養され、ウェルに捕らえられた複合体の量を測定する。このような複合体を検出する方法としては、ＧＳＴ固定複合体による前述の方法に加えて、キナーゼタンパク質ターゲット分子に反応性のある抗体、又は、キナーゼタンパク質に反応性がありターゲット分子と競合する抗体を用いた複合体の免疫検出法、及びターゲット分子と関連する酵素活性の検出に基づく酵素結合アッセイが含まれる。
【００７０】
本発明のキナーゼのうちの一つを変調する薬剤は、上述の分析方法を単独あるいは組み合わせて用いることにより同定することができる。一般的には最初に細胞ベース又は無細胞系を用い、動物又は他のモデルシステムにおける活性を確認することが好ましい。このようなモデル系は当技術において周知であり、この記載において容易に用いることができる。
【００７１】
これらの薬剤スクリーニングアッセイよって同定されるキナーゼタンパク質活性のモジュレータは、キナーゼを発現する細胞又は組織を処置することにより、キナーゼ経路により媒介される疾患を患う患者の治療に用いることができる。図１の実験データによると、本発明のキナーゼタンパクは、ヒトにおいて精巣、生殖細胞（生殖細胞腫瘍を含む）、及び肝臓で発現が認められている。これらの治療方法には、薬剤組成物注のキナーゼ活性のモジュレータを患者の治療に必要な量投与する工程が含まれており、このモジュレータはここに記載されるようにして同定される。
【００７２】
本発明は、他の観点では、キナーゼと結合あるいは相互作用する、又はキナーゼ活性に関連している他のタンパク質を同定するために、２−ハイブリッドアッセイあるいは３−ハイブリッドアッセイ（Ｕ．Ｓ．Ｐａｔｅｎｔ Ｎｏ．５，２８３，３１７；Ｚｅｒｖｏｓ ｅｔ ａｌ．（１９９３）Ｃｅｌｌ ７２：２２３−２３２；Ｍａｄｕｒａ ｅｔ ａｌ．（１９９３）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６８：１２０４６−１２０５４；Ｂａｒｔｅｌ ｅｔ ａｌ．（１９９３） Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ １４：９２０−９２４； Ｉｗａｂｕｃｈｉ ｅｔ ａｌ． （１９９３） Ｏｎｃｏｇｅｎｅ ８：１６９３−１６９６； 及びＢｒｅｎｔ ＷＯ９４／１０３００参照）においてキナーゼタンパク質を「ｂａｉｔタンパク質」として使用することができる。このようなキナーゼ結合タンパク質は、例えば、キナーゼ媒介信号伝達経路の下流因子としてのキナーゼタンパク質、又はキナーゼターゲットによる信号伝達に関与している。あるいは、このようなキナーゼ結合タンパク質は、キナーゼ阻害剤である可能性も考えられる。
【００７３】
２−ハイブリッドシステムは、分離可能なＤＮＡ結合ドメイン及び活性化ドメインからなる、大部分の転写因子のモジュラー性に基づいている。簡単に言うと、このアッセイでは２つの異なるＤＮＡ構造を利用する。一方の構造においては、キナーゼタンパク質をコードしている遺伝子は、既知の転写調節因子（例えばＧＡＬ４）のＤＮＡ結合ドメインをコード化している遺伝子に融合される。他方の構造においては、ＤＮＡ配列ライブラリから得られ、未知のタンパク質（「ｐｒｅｙ」又は「ｓａｍｐｌｅ」）をコード化しているＤＮＡ配列が、既知の転写因子の活性化ドメインをコード化している遺伝子に融合される。「ｂａｉｔタンパク質」及び「ｐｒｅｙタンパク質」がｉｎ ｖｉｖｏで相互作用することができ、キナーゼ依存複合体を形成する場合、転写調節因子のＤＮＡ結合ドメイン及び活性化ドメインは近接する。この近接により、転写調節因子に反応する転写調節部位に結合可能なリポーター遺伝子（例えばＬａｃＺ）の転写を行うことができる。リポーター遺伝子の発現は検出することが可能であり、機能性転写調節因子を含んでいる細胞コロニーを単離及び使用して、キナーゼタンパク質と相互作用するタンパク質をコード化するクローン遺伝子を得ることができる。
【００７４】
本発明はさらに、前述のスクリーニングアッセイにより同定される新規な薬剤にも関係する。したがって、ここで記載されるようにして同定された薬剤を適当な動物のモデルに使用することも本発明の範囲内である。例えば、本発明で同定された薬剤（例えばキナーゼ媒介薬剤、アンチセンスキナーゼ核酸分子、キナーゼ特異抗体、あるいはキナーゼ結合パートナー）は、これらの薬剤の処方における有効性、毒性、副作用を判定するために、動物、又は他のモデルで用いることができる。あるいは、本発明で同定された剤が、このような薬剤の作用のメカニズムを決定するために、動物あるいは他のモデルで使われることができる。さらに、本発明は、治療のための前記スクリーニングアッセイにより同定された新規な薬剤の使用に関する。
【００７５】
本発明のキナーゼタンパク質は、ペプチドにより媒介される疾患又は疾患体質の診断のためのターゲットを提供するのに有用である。したがって、本発明は、タンパク質（又はコード化したｍＲＮＡ）の、細胞、組織、又は生体中の存在、あるいはそのレベルを検出する方法を提供するものである。図１の実験データによると、ヒトにおいて精巣、生殖細胞（生殖細胞腫瘍を含む）、及び肝臓で発現が認められている。方法としては、キナーゼタンパク質との相互作用能力を有する化合物と生物サンプルとを接触させるものが含まれ、この方法により相互作用が検出される。このようなアッセイは、シングル検出形態、又は抗体チップアレイのようなマルチ検出形態で提供される。
【００７６】
サンプル中のタンパクを検出する１つの薬剤は、タンパクに選択的に結合することのできる抗体である。生物サンプルには、被験者から単離されるか、又は被験者の内部に存在する組織、細胞、体液が含まれる。
【００７７】
本発明のペプチドは、ペプチド変異体を持つ患者、特に現存するタンパク質ファミリー以外のものとして知られる活性、及び症状において、タンパク質の活性、疾患、又は疾患素質の診断に用いられるためのターゲットを提供するものである。したがって、ペプチドは生物サンプルから単離されることができ、また、異常ペプチドを生じる遺伝子突然変異の存在についてアッセイを行うことができる。これは、アミノ酸置換、欠失、挿入、再配置（異常なスプライシング挙動の結果生じる）、及び不適当な翻訳後の修飾を含む。分析方法としては、変容電気泳動移動度、変容トリプシンペプチド消化、細胞ベース又は無細胞系アッセイによる変容キナーゼ活性、基質あるいは抗体の変容結合パターン、変容当電点、直接アミノ酸配列、及びタンパク質の変異の検出に有用な他の公知のアッセイ技術を含む。このようなアッセイは、シングル検出形態、あるいは抗体チップアレイのようなマルチ検出形態で提供される。
【００７８】
ペプチドのＩｎ ｖｉｔｒｏ検出技術としては、酵素結合免疫吸着剤アッセイ（ＥＬＩＳＡｓ）ウェスタンブロット、抗体、又はタンパク質結合剤のような検出試薬を用いた免疫沈降、免疫蛍光検査法を含む。あるいは、ラベルされた抗ペプチド抗体、又は他のタイプの検出試薬を被験者に導入することにより、被験者のｉｎ ｖｉｔｒｏ検出を行うことができる。例えば、抗体は放射性マーカーをラベルすることができ、被験者中の子ノーマーカーの存在及び位置は、標準イメージング技術によって検出することができる。被験者において発現されたペプチドの対立変異体を検出する方法、及びサンプル中のペプチドのフラグメントを検出する方法は、特に有用である。
【００７９】
ペプチドはまた、ゲノム薬理学分析においても有用である。ゲノム薬理学では、薬剤の変化の傾向と、影響を受けたヒトの異常挙動に従って、薬剤に対しての応答における著しい遺伝的変異について臨床的に取り扱う。例えばＥｉｃｈｅｌｂａｕｍ，Ｍ．（Ｃｌｉｎ．Ｅｘｐ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．２３（１０−１１）：９８３−９８５（１９９６））、及びＬｉｄｅｒ， Ｍ．Ｗ．（Ｃｌｉｎ．Ｃｅｍ．４３（２）：２５４−２６６（１９９７））を参照。これらの変異の臨床的な結果、個人の代謝変異の結果として、ある個人に対しては治療薬剤が重い毒性となり、又はある個人に対しては治療の失敗に終わる。このように、個人の遺伝子型は、体内で治療化合物を作用させる方法、又は体が化合物を代謝する方法を決定することができる。さらに、酵素を代謝させる薬剤の活性は、薬剤の作用の強度と期間に影響する。このように、個人のゲノム薬理学は、個人の遺伝子型に基づいた予防、あるいは治療的な処置において、効果的な化合物、又はこのような化合物の効果的な投与量の選択を可能とする。遺伝子多性の発見により、酵素代謝性の薬剤において、患者が期待される薬効を得られない、不自然な薬効を示す、あるいは標準の投薬量から重大な毒性を被るといったことの理由を説明することができる。多形性は、強い代謝系の表現型と弱い代謝系の表現型で表されることができる。したがって、遺伝子の多形性は、ある集団のキナーゼ機能の１つ以上が他の集団のそれと異なるような、キナーゼタンパク質の対立タンパク質変異体に至るかもしれない。このように、ペプチドは治療方に影響をする遺伝子の素因を確認するためのターゲットとなり得る。このため、リガンドベースの治療において、多形性は、末端アミノ基の細胞外ドメイン及び／又は他の基質結合領域における基質結合及びキナーゼ活性が、より高い、又はより低いことを引き起こしうる。従って、多形性を含む集団においては、治療効果を最大にするように、基質投薬量は必然的に修正される。遺伝子型に代わるものとしては、特定の多形性のペプチドを同定することができる。
【００８０】
ペプチドはまた、タンパクの発現がない、発現が不適当、あるいは発現が不必要であることによって特徴づけられる障害を治療することに有用である。図１の実験データによると、ヒトにおいて精巣、生殖細胞（生殖細胞腫瘍を含む）、及び肝臓で発現が認められている。従って、処置方法としては、キナーゼタンパク質あるいはフラグメントの使用を含むものである。
【００８１】
抗体
本発明は、本発明のペプチドを含むタンパク質、それらの変異体及びフラグメントの１つに選択的に結合する抗体を提供するものである。ここで用いられているように、抗体がターゲットペプチドと結合し、無関係なタンパク質と強く結合しないような場合、抗体は選択的にターゲットペプチドと結合している。ターゲットペプチドと実質的に相同性のない他のタンパク質と結合していても、そのペプチドが抗体のターゲットとなるペプチドに対してフラグメント又はドメインにおける相同性を有している限り、抗体は選択的にペプチドを結びつけると考えられる。この場合、ペプチドに結合している抗体は、ある程度の交差反応性を持つにも関わらず、選択的であると理解される。
【００８２】
ここで用いられるように、抗体は当該分野で認められているものと同じ用語で定義され、これらは、哺乳類生体により生成され、抗原の攻撃に対して応答するマルチサブユニットタンパク質である。本発明の抗体は、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、及びこれらの抗体のフラグメントを含み、また、Ｆａｂ又はＦ（ａｂ’）_２、及びＦｖを含むが、これに限定されるものではない。
【００８３】
ターゲットペプチドを得るための、抗体の生成及び／又は同定について、多くの方法が知られている。このような方法の幾つかは、Ｈａｒｌｏｗ，Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓ，（１９８９）に記載されている。
【００８４】
一般に、抗体を生成するためには、単離ペプチドを免疫原として用い、例えばラット、ウサギ又はマウスのような哺乳類生体に投与する。全長タンパク質、抗原性ペプチドフラグメント又は融合タンパク質が用いられる。特に重要なフラグメントは、図２に示されるような、機能性ドメインをカバーするものであり、また、タンパク質配置方法を使用して容易に確認することができ、図に示されているようなファミリーと配列相同性又は相違性を持つドメインである。
【００８５】
抗体は、キナーゼタンパク質の領域、又は単離されたフラグメントから好適に調製される。抗体は、ここで述べられているように、ペプチドのどんな領域からでも調製することができる。しかしながら、好適な領域には、機能／活性及び／又はキナーゼ／結合対象相互作用に関係している領域が含まれる。図２は特に重要な領域を特定するのに用いることができ、この時、配列配置は保持されたユニークな配列フラグメントを特定するのに用いることができる。
【００８６】
抗原性フラグメントは、一般的に、少なくとも８つの隣接するアミノ酸残基からなっている。該抗原性ペプチドは、少なくとも１０、１２、１４、１６以上のアミノ酸残基からなることができる。このようなフラグメントは、例えば、タンパクの表面に位置する領域、例えば、親水性の領域に対応するフラグメントのような物理的な性質、あるいは配列の特異性に基づき選択され得る（図２を参照）。
【００８７】
本発明の抗体の検出は、検出可能物質と抗体とのカップリング（即ち、物理的な結合）によって容易にすることができる。検出可能物質の例としては、例えば、様々な酵素、補欠分子族、蛍光性物質、発光性物質、生物発光性物質、及び放射性物質が含まれる。好適な酵素の例としては、セイヨウワサビペルオキシターゼ、アルカリホスファターゼ、β−ガラクトシダーゼ、又はアセチルコリンエステラーゼを含み、好適な補欠分子族の例としては、ストレプタビジン／ビオチン、及びアビジン／ビオチンを含み、好適な蛍光性物質の例としては、ウンベリフェロン、フルオレセイン、フルオレセインイソチオシアナーゼ、ローダミン、ジクロロトリアジニルアミンフルオレセイン、ダンシルクロライド、又はフィコエリトリンを含み、発光性物質の例としては、ルミノールを含み、生物発光性物質の例としては、ルシフェラーゼ、ルシフェリン、及びアエクオリンを含み、そして、適切な放射性物質の例としては、^１２５Ｉ、^１３１Ｉ、^３５Ｓ、又は^３Ｈを含む。
【００８８】
抗体の使用
抗体は、本発明のタンパク質の一つを、アフィニティクロマトグラフィ、又は免疫沈降のような標準的な技術によって単離するために用いることができる。抗体は、細胞からの自然タンパク質、及び宿主細胞に表現される組換えによって生産されたタンパク質の精製を容易にすることができる。さらに、このような抗体は、組織や生体内のタンパク質の発現パターンを決定するため、細胞や組織内における本発明のタンパク質の存在の検出に、通常の開発段階を経ずに用いることができる。図１の実験データに示されるように、本発明のキナーゼタンパク質は実質的なノーザンブロット解析により、ヒトにおいて精巣、生殖細胞（生殖細胞腫瘍）で発現が認められている。これに加えて、ＰＣＲを用いた組織スクリーニングパネルにより、ヒトの肝臓に発現していることも示されている。さらに、このような抗体は、発現の量及びパターンを評価することによって、ｉｎ ｓｉｔｕ、ｉｎ ｖｉｔｒｏ、又は細胞溶解物中、及び上澄み中でのタンパク質を検出に用いることができる。また、このような抗体は、生物学的状態の発展又は進行間における、異常な組織分布又は異常な発現を評価するのに用いることができる。全長タンパク質の循環フラグメントにおける抗体探知は、回転率を同定するのに用いることができる。
【００８９】
さらに抗体は、タンパク質に関連した疾患の活発な段階、又は該疾患素因を持つ個人等の、疾患の症状発現を評価するのに用いることができる。障害が不適当な組織分布、発展性の発現、タンパク質の発現レベル、又は発現／進行状態に起因する場合、抗体は通常のタンパク質に対して調製される。図１の実験データに示されるように、ヒトにおいて精巣、生殖細胞（生殖細胞腫瘍を含む）、及び肝臓で発現が認められている。障害がタンパク質の特定の変異により特徴付けられる場合、この変異タンパク質に特異的な抗体を、特定の変異タンパク質の存在のアッセイを行うために用いることができる。
【００９０】
抗体はまた、生体内の各種組織における、細胞の正常又は異常な細胞小器官の位置を評価するために使用することができる。図１の実験データに示されるように、ヒトにおいて精巣、生殖細胞（生殖細胞腫瘍を含む）、及び肝臓で発現が認められている。診断としての使用は、遺伝子のテストだけでなく、治療法をモニターすることにも適用できる。したがって、治療が最終的に、発現レベル、又は異常配列及び異常組織分布の存在、又は発展性の発現を修正することを目指すものである場合、タンパク質又は関連するフラグメントに直接的に対する抗体を、治療の有効性をモニターするために使用することができる。
【００９１】
さらに、抗体はゲノム薬理学的な分析に有用である。このように、多形態のタンパク質に対して調製される抗体は、治療法の修正を必要とする個人を特定するために使用することができる。抗体は、また、電気泳動、等電点、トリプシンペプチド消化、当該分野において周知な他の物理的アッセイにより分析される異常タンパク質の免疫学的マーカーのような診断上のツールとしても有用である。
【００９２】
抗体はまた、組織型の分類にも有用である。図１の実験データに示されるように、ヒトにおいて精巣、生殖細胞（生殖細胞腫瘍を含む）、及び肝臓で発現が認められている。このように、特定のタンパク質が特定の組織中の発現と相関していた場合、このタンパク質に特異である抗体を、組織型を同定するために使用できる。
【００９３】
抗体はまた、タンパク質機能を阻害するのに有用であり、例えば、基質のような結合相手へのキナーゼペプチドの結合を阻害する。これらの使用は、タンパク質の機能阻害に関連する治療法における、治療環境において適用されることができる。抗体は、例えば結合を阻害することによりペプチドの活性を変調（アゴナイズ又はアンタゴナイズ）を阻害することに使用することができる。抗体は、機能のために必要な部位を含む特定のフラグメントに対して、又は細胞又は細胞膜と関係している完全タンパク質に対して調製される。図２に、本発明のタンパク質に関する構造情報を示す。
【００９４】
本発明は、生物学的サンプル中のタンパクの存在を検出するために抗体を使用したキットをも包含する。キットには、ラベル化された、又はラベル化可能な抗体と、生物学的サンプル中でタンパク質を検出するための化合物又は試薬を含み、サンプル中のタンパク質量を決定する手段；標準サンプルのタンパク質量と比較する手段；及び使用の説明、とを含む。このようなキットは、単一のタンパク質又はエピトープを検出するために提供されるか、あるいは抗体検出アレイのように、多数のエピトープのうちの１つを検出するようことができる。核酸アレイが後述され、またアレイのための同様の方法も開発されている。
【００９５】
核酸分子
本発明はさらに、本発明のキナーゼペプチド又はタンパク質をコード化する核酸分子（ｃＤＮＡ、転写及びゲノム配列）を提供するものである。このような核酸分子は、本発明のキナーゼペプチドの１つをコード化する核酸分子、又はこれらの対立変異体、又はこれらのオルトログあるいはパラログからなる、実質的になる、又は含んでいる。
【００９６】
ここで用いられているように、「単離された」核酸分子とは、核酸の天然起源における他の核酸の存在から分離されたものである。好ましくは、「単離」核酸はその核酸の由来となる生物のゲノムＤＮＡにおいて、核酸の側面に位置する配列（すなわち、５’、及び３’末端に位置する配列）は含まない。しかしながら、例えば、約５ＫＢ、４ＫＢ、３ＫＢ、２ＫＢ又は１ＫＢ以上又はこれ以下、特に配列によりコード化された隣接ペプチドのように、いくつかの側面のヌクレオチド配列があるが、同一の遺伝子の配列によりコード化されたペプチドはゲノム配列中のイントロンにより分離されている。重要な点は、核酸が、このに記載されているような特定の操作、例えば、組換え発現、プローブ及びプライマーの調製、核酸配列のための他の使用等に取り扱うことができるように、遠くの重要でない側面の配列から分離されているということである。
【００９７】
さらに、例えば転写／ｃＤＮＡ分子のような「単離」核酸分子は、他の細胞物質、組換え技術で製造される場合には培地、また化学的に合成される場合には前駆体又は他の化学物質を、実質的に含まない。しかしながら、この核酸分子はコード化又は調節する他の配列に融合されることができるが、これは単離されたものとして考えられる。
【００９８】
例えば、ベクターに含まれる組み換えＤＮＡ分子は、単離されたもとのして考えられる。単離したＤＮＡ分子の例は、非相同的な宿主細胞、又は溶液中で精製（部分的に又は実質的に）されたＤＮＡ中に保持される。単離されたＲＮＡ分子は、本発明の単離したＤＮＡ分子のｉｎ ｖｉｖｏ、又はｉｎ ｖｉｔｒｏで転写されたＲＮＡを含む。本発明により単離された核酸分子としては、更に合成的に製造された分子を含む。
【００９９】
従って、本発明は、図１又は３（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１及び４、転写配列、及びＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：３、ゲノム配列）において示されるヌクレオチド配列よりなる核酸分子、又は図２（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２及び５）に示されるタンパク質をコード化する核酸分子を提供するものである。ヌクレオチド配列がこの核酸分子の完全なヌクレオチド配列である場合、核酸分子はヌクレオチド配列からなる。
【０１００】
本発明はさらに、図１又は３（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１及び４、転写産物配列、及びＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：３、ゲノム配列）において示されるヌクレオチド配列より実質的になる核酸分子、又は図２（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２及び５）に示されるタンパク質をコード化する核酸分子を提供するものである。最終的な核酸分子において、このようなヌクレオチド配列がごくわずかの付加核酸残基とともに存在するとき、核酸分子はヌクレオチド配列から実質的に成る。
【０１０１】
本発明はさらに、図１又は３（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１及び４、転写産物配列、及びＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：３、ゲノム配列）において示されるヌクレオチド配列を含む核酸分子、又は図２（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２及び５）に示されるタンパク質をコード化するいくつかの核酸分子を提供するものである。核酸分子の最終的なヌクレオチド配列においての少なくとも一部がこの核酸配列である時、核酸分子はヌクレオチド配列を含む。これによると、核酸分子は、そのヌクレオチド配列のみであるか、又は付加的な核酸残基、例えば、自然に関連した核酸配列、又は非相同的なヌクレオチド配列を有することもできる。このような核酸分子は、ごくわずかの付加的なヌクレオチドを有するか、あるいは数百又はそれ以上の付加的なヌクレオチドを含むこともできる。これらの様々なタイプの核酸分子を容易に生成／単離する方法について、以下に簡単に述べる。
【０１０２】
図１及び３に、コード及び非コード配列の両方が示される。本発明のソースである、ヒトノゲム配列（図３）、及びｃＤＮＡ／転写配列（図１）のため、図中の核酸分子は、ゲノムイントロン配列、５’と３’の非コード配列、遺伝子調節領域、及び非コード遺伝子間配列を含む。一般に、図１と３の両方において記載されているこのような配列の特徴は、当該分野において公知の計算ツールを使って容易に確認することができる。以下で議論されるように、いくつかの非コーディング部位、特にプロモーターのような遺伝子の調節因子は、例えば、非相同的な遺伝子発現の制御、遺伝子活性を変調する化合物同定のターゲット等の様々な目的に有用であり、また特に、本発明で提供されるゲノム配列のフラグメントとしてクレームされている。
【０１０３】
単離した核酸分子は、成熟したタンパク質と付加的アミノ末端又はカルボキシル末端アミノ酸、又は成熟ペプチド内のアミノ酸（例えば成熟形態が１つ以上のペプチド鎖を有する場合）をコード化することができる。このような配列は、前駆体から成熟した形態へのタンパク質のプロセシングにおいて、タンパク質搬送の促進、タンパク質半減期の延長又は短縮、又はタンパク質のアッセイ又は製造の際の効率化、あるいは他の事象における役割を果たし得る。一般にｉｎ ｓｉｔｕの場合、付加アミノ酸は細胞酵素によって成熟したタンパク質へとプロセシングされる。
【０１０４】
上述したように、単離した核酸分子は、単独でキナーゼペプチドをコード化している配列、成熟したペプチドをコード化している配列、そして、主又は副配列（例えばｐｒｅ−ｐｒｏ又はｐｒｏ−ｐｒｏｔｅｉｎ配列）等の付加的なコード配列を含むが、これに限定されるものではなく、付加的なコード配列、プラス付加的な非コード配列、例えば、イントロン及び非コード化５’及び３’配列のような転写されるものの翻訳はされず、転写、ｍＲＮＡプロセシング（スプライシング及びポリアデニル化を含む）、リボゾーム結合、及びｍＲＮＡの安定性の役割を果たすものを、含んでも含まなくても良い。加えて、核酸分子は、例えば精製を容易にするようなコード化した配列のマーカーと融合されることもできる。
【０１０５】
単離した核酸分子は、ｍＲＮＡのようなＲＮＡの形態、又はクローニング、化学合成技術又はその組み合わせによて生成するｃＤＮＡ及びゲノムＤＮＡを含む、ＤＮＡの形態をとり得る。核酸、特にＤＮＡは、二重鎖又は単鎖であり得る。単鎖の核酸はコード鎖（センス鎖）又は非コード鎖（アンチセンス鎖）であり得る。
【０１０６】
本発明はさらに、本発明のペプチドのフラグメントをコード化する核酸分子と同様に、上記したような本発明のキナーゼタンパク質の明らかな変異体をコード化する核酸分子を提供するものである。このような核酸分子は、対立変異体（同一位置）、パラログ（異なる位置）、オルトログ（異なる生体）のように自然に発生するか、又は組換えＤＮＡ法あるいは化学合成によって生成され得る。このような非自然に発生する変異体は、核酸分子、細胞、又は生体に適用される突然変異生成技術により生成され得る。よって、上述したように、変異体にはヌクレオチドの置換、欠失、当地、挿入が含まれる。変異はコード、非コード領域の一方あるいは両方に起こりうる。変異は保持および非保持アミノ酸置換の両方で生じることができる。
【０１０７】
本発明はさらに図１及び３に示される核酸分子の非コード化フラグメントを提供するものである。好適な非コード化フラグメントとしては、プロモーター配列、エンハンサー配列、遺伝子変調配列、遺伝子終結配列が含まれるが、これに限定されるものではない。このようなフラグメントは、非相同的な遺伝子発現の制御、及び遺伝子変調薬の同定を行うためのスクリーニングの開発において有用であるプロモーターは、図３のゲノム配列における５’からＡＴＧ開始部位において容易に確認される。
【０１０８】
フラグメントは、１２又はそれ以上の隣接するヌクレオチド配列を含む。さらにフラグメントは、少なくとも３０，４０，５０，１００，２５０，又は５００のヌクレオチド長であることができる。フラグメントの長さは使用目的に基づく。例えば、フラグメントはペプチドのエピトープ結果領域をコード化することができるか、又はＤＮＡプローブ及びＤＮＡプライマーとして有用である。このようなフラグメントは、オリゴヌクレオチドプローブを合成するための既知のヌクレオチド配列を用いて、単離することができる。ラベル化されたプローブは、コード化領域に対応する核酸を単離するため、ｃＤＮＡライブラリ、ゲノムＤＮＡライブラリ、又はｍＲＮＡのスクリーニングに用いることができる。さらにプライマーは、遺伝子の特定領域をクローンするためのＰＣＲ反応に用いることができる。
【０１０９】
一般的なプローブプライマーは、実質的に精製されたオリゴヌクレオチド又はオリゴヌクレオチドペアを含む。オリゴヌクレオチドは典型的には、少なくとも約１２，２０，２５，４０，５０又はそれ以上の連続的なヌクレオチドに、ストリンジェント条件下でハイブリダイズされたヌクレオチド配列領域を含む。
【０１１０】
オルトログ、ホモログ、及び対立変異体は、当該技術分野において周知の方法を用いて同定することができる。ペプチドの項で述べたように、これらの変異体はペプチドをコード化するヌクレオチド配列を含み、図面に示されるヌクレオチド配列あるいはこの配列のフラグメントに対し、典型的には６０〜７０％、７０〜８０％，８０〜９０％、より典型的には少なくとも９０〜９５％以上の相同性を有するものである。このような核酸分子は、モディレートな条件からストリンジェント条件の下で、図に示されるヌクレオチド配列、あるいはこの配列のフラグメントに対して、ハイブリダイズできるものとして、容易に同定することができる。対立変異体はコード化している遺伝子の遺伝子位置により容易に決定することができる。本発明の新規キナーゼタンパクをコードする遺伝子は、ＳＴＳとＢＡＣのマップデータをはじめとする様々な方面からの証拠に基づき、ゲノム中のヒト第１４染色体上に位置することが示されている（図３に示す）。
【０１１１】
図３は、本発明のキナーゼタンパク質をコード化している遺伝子において発見されたＳＮＰｓに関する情報を提供するものである。ＳＮＰは、イントロン及びＯＲＦの５’と３’領域において１１ヶ所の異なる塩基ポジションにおいて確認された。これらのＳＮＰは、特に、ＯＲＦの外側と第１イントロン中に位置しているので、制御／調整領域に影響を与える可能性がある。
【０１１２】
ここで用いられるように、「ストリンジェントな条件下でハイブリダイズする」という用語は、相互にハイブリダイズして残存する、ペプチドをコード化するヌクレオチド配列が互いに少なくとも６０〜７０％の相同性を有する程度にハイブリダイズ、及び洗浄が行われる条件を意味する。この条件では、ハイブリダイズして残存する配列が、少なくとも約６０％、少なくとも約７０％、又は少なくとも約８０％、又はそれ以上となる。このようなストリンジェントな条件は、当業者には公知であり、Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ， Ｎ．Ｙ．（１９８９），６．３．１−６．３．６に記載されている。ストリンジェントなハイブリダイズ条件の一例は、６Ｘ塩化ナトリウム／クエン酸ナトリウム（ＳＳＣ）中、約４５℃でハイブリダイズし、続いて０．２ＸＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ中、５０〜６５℃で洗浄する。モディレートな、低ストリンジェントのハイブリダイズ条件の例は、当業者においてよく知られている。
【０１１３】
核酸分子の使用
本発明の核酸分子はプローブ、プライマー、化学合成中間体、及び生物学的アッセイに有用である。核酸分子は、図２に示されているペプチドをコード化する全長ｃＤＮＡとゲノムクローンを単離するため、及び図２に示すペプチドと同じ又は関連したペプチドを生成する変異体（対立遺伝子、オルトログ等）に対応するゲノムクローンを単離するために、ｍＲＮＡ、転写／ｃＤＮＡ、及びゲノムＤＮＡのハイブリダイゼーションプローブとして有用である。図３に示されるように、ＳＮＰは１１ヶ所の異なる塩基ポジションにおいて確認された。
【０１１４】
プローブは、図に示した核酸分子の全長にわたって、どんな配列にも対応することができる。従って、それは５’非コード化領域、コード化領域、及び３’非コード化領域から誘導することができる。しかしながら、すでに述べたように、フラグメントは、本発明以前に公開されたフラグメントを含まないものと見なされる。
【０１１５】
核酸分子はまた、核酸分子の何れかの領域を増幅するＰＣＲのプライマーとしても有用であり、必要な長さ及び配列のアンチセンス分子の合成にも有用である。
【０１１６】
核酸分子はまた、組換ベクターの製造にも有用である。このようなベクターはペプチド配列の一部、又はすべてを表現する発現ベクターを含む。ベクターはまた、挿入ベクターも含み、これは他の核酸分子中に結合され、例えば細胞ゲノム中で、遺伝子及び／又は遺伝子生成物のｉｎ ｓｉｔｕ発現を変化させるために用いられる。例えば、内生コード化配列では、１つ以上の特異的に導入された変異を含むコード化領域の一部、又は全部との相同的な組換えを経て置換され得る。
【０１１７】
核酸分子はまた、タンパク質の抗原部分を発現することにも有用である。
【０１１８】
核酸分子はまた、ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーション法によって、核酸分子の染色体の位置を決定するためのプローブとしても有用である。本発明の新規キナーゼタンパクをコードする遺伝子は、ＳＴＳとＢＡＣのマップデータをはじめとする様々な方面からの証拠に基づき、ゲノム中のヒト第１４染色体上に位置することが示されている（図３に示す）。
【０１１９】
核酸分子はまた、本発明の核酸分子の遺伝子調整領域を含むベクターの製造にも有用である。
【０１２０】
核酸分子また、ここに記載された核酸分子から生成されるｍＲＮＡの、一部又は全部と対応しているリボザイムを設計するのに有用である。
【０１２１】
核酸分子はまた、ペプチドの一部又は全部を発現するベクターの製造にも有用である。
【０１２２】
核酸分子はまた、核酸分子及びペプチドの一部または全部を発現している宿主細胞の製造にも有用である。
【０１２３】
核酸分子はまた、核酸分子及びペプチドの一部又は全部を発現している遺伝子導入動物を製造するのにも有用である。
【０１２４】
核酸分子はまた、核酸発現の存在、レベル、形態及び分布を決定するためのハイブリダイゼーションプローブとしても有用である。図１の実験データによると、本発明のキナーゼタンパクは、実質的なノーザンブロット解析により、ヒトにおいて精巣、生殖細胞（生殖細胞腫瘍を含む）での発現が認められている。これに加えて、ＰＣＲを用いた組織スクリーニングパネルにより、ヒトの肝臓に発現していることも示されている。したがって、このプローブは細胞、組織及び臓器中での特定の核酸分子の存在あるいは量を測定することに使用することができる。定量可能な核酸には、ＤＮＡとＲＮＡがある。したがって、ここで述べられるペプチドに対応するプローブは、与えられた細胞、組織、又は臓器における発現及び／又は遺伝子コピー数の評価に用いることができる。これらの使用は、正常値と比較して上昇、あるいは低下しているキナーゼタンパクの異常の診断に適当である。
【０１２５】
ｍＲＮＡを検出するｉｎ ｖｉｔｒｏ技術には、ノーザンブロットハイブリダイゼーションとｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーションがある。ＤＮＡを検出するｉｎ ｖｉｔｒｏ技術には、サザンブロットハイブリダイゼーションとｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーションがある。
【０１２６】
プローブは、例えばｍＲＮＡやゲノムＤＮＡといったサンプル細胞中でキナーゼをコード化している核酸の量を測定したり、キナーゼ遺伝子が変異しているかを確認することにより、キナーゼタンパクを発現している細胞又は組織を同定する診断キットの一部として使用することができる。図１の実験データによると、本発明のキナーゼタンパクは、実質的なノーザンブロット解析により、ヒトにおいて精巣、生殖細胞（生殖細胞腫瘍を含む）で発現が認められている。これに加えて、ＰＣＲを用いた組織スクリーニングパネルにより、ヒトの肝臓に発現していることも示されている。
【０１２７】
核酸発現アッセイは、キナーゼ核酸発現を変調させる化合物を同定する薬剤スクリーニングに有用である。
【０１２８】
本発明は、キナーゼ遺伝子の核酸発現、特に細胞及び組織においてキナーゼを媒介する生物学的、病理学的プロセスに関連した障害の治療に用いる化合物を同定する方法を提供するものである。図１の実験データによると、ヒトにおいて精巣、生殖細胞（生殖細胞腫瘍を含む）、及び肝臓で発現が認められている。この方法は、典型的にはキナーゼ核酸の発現を変調する化合物の能力についてアッセイを行い、その後不必要なキナーゼ核酸の発現により特徴づけられる障害の治療に使用することができる化合物を同定する。このアッセイは細胞ベース及び無細胞の系において行うことができる。細胞ベースのアッセイには、自然にキナーゼ核酸を発現している細胞、又は特定の核酸配列を発現するように設計された組換え細胞を含む。
【０１２９】
キナーゼ核酸発現のアッセイは、例えばｍＲＮＡレベルのような核酸レベル、又は信号経路に関連する副次化合物の直接的なアッセイと関連している。さらに、キナーゼタンパク質信号経路における応答性を向上、又は低下させる遺伝子の発現についてもアッセイされる。この例として、これらの遺伝子の調整領域は、ルシフェラーゼのようなリポーター遺伝子に結合されることができる。
【０１３０】
よって、キナーゼ遺伝子発現のモジュレータは、細胞を候補化合物に接触させ、ｍＲＮＡの発現を判定する方法により同定される。候補化合物存在下でのキナーゼｍＲＮＡ発現のレベルは、候補化合物非存在下でのキナーゼｍＲＮＡ発現のレベルと比較される。この比較に基づいて、候補化合物は核酸発現のモジュレータとして同定され、例えば異常核酸発現によって特徴付けられる障害の治療に使用できる。候補化合物存在下でのｍＲＮＡ発現が、候補化合物非存在下でのｍＲＮＡ発現と比較して統計的に著しく大きい場合、候補化合物は核酸発現の誘発剤として同定される。候補化合物存在下でのｍＲＮＡ発現が、候補化合物非存在下でのｍＲＮＡ発現と比較して統計的に著しく少ない場合、候補化合物は核酸発現の阻害剤として同定される。
【０１３１】
本発明はさらに、キナーゼを発現する細胞及び組織において、キナーゼ核酸発現を変調する遺伝子モジュレータとしての薬剤スクリーニングを経て同定された化合物を用い、これをターゲットとして用いる治療方法を提供するものである。図１の実験データによると、本発明のキナーゼタンパクは、実質的なノーザンブロット解析により、ヒトにおいて精巣、生殖細胞（生殖細胞腫瘍を含む）での発現が認められている。これに加えて、ＰＣＲを用いた組織スクリーニングパネルにより、ヒトの肝臓に発現していることも示されている。変調は、上方調整（例えば活性化又はアゴニゼーション）又は下方調整（抑制又はアンタゴニゼーション）の両者、又は核酸発現を含む。
【０１３２】
あるいは、薬剤又は小分子がタンパク質を発現している細胞又は組織中でキナーゼ発現を阻害するものである限り、キナーゼ核酸発現のモジュレータは、ここに記載されるスクリーニングアッセイを用いて同定される小分子又は薬剤であり得る。図１の実験データによると、ヒトにおいて精巣、生殖細胞（生殖細胞腫瘍を含む）、及び肝臓での発現が認められている。
【０１３３】
核酸分子はまた、臨床試験又は治療方法において、キナーゼ遺伝子の発現及び活性に対する変調化合物の効果をモニターするのに有用である。よって、遺伝子発現パターンは化合物、特に患者の耐性を向上させる化合物を用いた治療における、継続的効果のバロメーターとなり得る。遺伝子発現パターンは、化合物に対する細胞の生理的反応を示すマーカーとなり得る。したがって、このようなモニタリングにより、化合物の投与量の増加、あるいは患者が耐性を示さない代替化合物の投与を行うことができる。同様に、核酸発現のレベルが好ましいレベルまで低下したら、化合物の投与をこれに比例して減少させることができる。
【０１３４】
核酸分子はまた、キナーゼ核酸発現の質的変化、特に疾患に至る質的変化の診断アッセイにも有用である。核酸分子は、ｍＲＮＡのようなキナーゼ遺伝子及び遺伝子発現生成物の突然変異の検出に用いることができる。核酸分子は、キナーゼ遺伝子において自然発生した遺伝子突然変異を検出し、その変異を持つ被験者が変異により生じる障害の危険性を有しているかどうかを判定するためのハイブリダイゼーションプローブとして用いることができる。突然変異は、遺伝子中の１以上のヌクレオチドの欠失、付加、置換、転置又は転移のような染色体の組換え、異常メチル化パターンのようなゲノムＤＮＡの修飾、又は増幅のような遺伝子コピー数の変化等を含む。障害に関連するキナーゼ遺伝子の変異体の検出は、疾患がキナーゼタンパク質の過剰発現、過小発現又は変異発現の結果生じる場合に、活性又は感受性の診断ツールを提供するものである。
【０１３５】
キナーゼ遺伝子における突然変異をもたらしている個体は、種々の技術によって核酸レベルにおいて検出することができる。図３は、本発明のキナーゼタンパク質をコード化する遺伝子において発見されたＳＮＰｓに関する情報を提供するものである。ＳＮＰは、イントロン、及びＯＲＦの５’と３’領域において１１箇所の異なる塩基ポジションにおいて確認された。これらのＳＮＰは、特に、ＯＲＦの外側と第１イントロン中に位置しているので、制御／調整領域に影響を与える可能性がある。本発明の新規キナーゼタンパクをコードする遺伝子は、ＳＴＳとＢＡＣのマップデータをはじめとする様々な方面からの証拠に基づき、ゲノム中のヒト第１４染色体上に位置することが示されている（図３に示す）。ゲノムＤＮＡは直接分析されるか、又は予めＰＣＲを用いて増幅した後に分析されることができる。ＲＮＡ又はｃＤＮＡも同様にして用いることができる。ある使用においては、突然変異の検出は、アンカーＰＣＲ又はＲＡＣＥ ＰＣＲのようなポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）（Ｕ．Ｓ．Ｐａｔｅｎｔ Ｎｏ．４，６８３，１９５及び４，６８３，２０２参照）、又は他のものとしてリゲーション連鎖反応（ＬＣＲ）（Ｌａｎｄｅｇｒａｎ ｅｔ ａｌ．， Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４１：１０７７−１０８０（１９８８） ａｎｄ Ｎａｋａｚａｗａ ｅｔ ａｌ．， ＰＮＡＳ ９１：３６０−３６４（１９９４）参照）において、プローブ／プライマーの使用に関連し、後者は特に遺伝子の変異位置の同定に有効である（Ａｂｒａｖａｙａ ｅｔ ａｌ．， Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２３：６７５−６８２（１９９５）参照）。この方法は、患者から細胞サンプルを収集する工程；細胞サンプルから核酸（例えばゲノム，ｍＲＮＡ又は両者）を単離する工程；核酸サンプルを遺伝子（もし存在すれば）のハイブリダイズ及び増幅が生じる条件下で、遺伝子に特異的にハイブリダイズされた１以上のプライマーと核酸とを接触させる工程；増幅生成物の存在を検出するか増幅生成物の大きさを検出しコントロールサンプルの長さと比較する工程；を含む。欠失及び挿入は増幅生成物の大きさの変化を、正常遺伝子型と比較することにより検出することができる。点突然変異は、増幅ＤＮＡを正常ＲＮＡ又はアンチセンスＤＮＡ配列とハイブリダイズすることで確認することができる。
【０１３６】
あるいは、キナーゼ遺伝子の突然変異は、例えば、ゲル電気泳動により決定される制限酵素消化パターンの変更により、直接的に確認することができる。
【０１３７】
さらに、配列特定リボザイム（Ｕ．Ｓ． Ｐａｔｅｎｔ Ｎｏ． ５，４９８，５３１）は、リボザイム開裂部位の成長又は減少により、特定の変異の存在を評点することに用いることができる。完全に一致する配列は、ヌクレアーゼ開裂消化分析評価、又は融点の違いによって、不一致の配列から分離することができる。
【０１３８】
特定位置での配列変化は、ＲＮａｓｅ及びＳ１保護、又は化学開裂法のようなヌクレアーゼ保護アッセイにより評価することができる。さらに、変異体キナーゼ遺伝子と野性型遺伝子との間の配列相違は、直接ＤＮＡ配列解析により決定できる。各種の自動配列解析手段は、診断アッセイを実行するときに有効であり（Ｎａｅｖｅ，Ｃ．Ｗ．，（１９９５）Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ １９：４４８）、マススペクトルによる配列化を含む（ＰＣＴ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎ Ｎｏ．ＷＯ９４／１６１０１；Ｃｏｈｅｎ ｅｔ ａｌ．， Ａｄｖ．Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒ．３６：１２７−１６２（１９９６）；及びＧｒｉｆｆｉｎ ｅｔ ａｌ．， Ａｐｐｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ． Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ． ３８；１４７−１５９（１９９３）参照）。
【０１３９】
遺伝子中の変異を検出する他の方法には、ＲＮＡ／ＲＮＡ又はＲＮＡ／ＤＮＡ二重鎖から不一致の塩基を検出するために、開裂試薬から保護する方法（Ｍｙｅｒｓ ｅｔ ａｌ．， Ｓｃｉｅｎｃｅ ２３０；１２４２（１９８５））；Ｃｏｔｔｏｎ ｅｔ ａｌ．，ＰＮＡＳ８５：４３９７（１９８８）；Ｓａｌｅｅｂａ ｅｔ ａｌ．，Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．２１７：２８６−２９５（１９９２））、変異体と及び野性型の核酸の電気泳動移動度を比較する方法（Ｏｒｉｔａ ｅｔ ａｌ．，ＰＮＡＳ ８６；２７６６（１９８９）；Ｃｏｔｔｏｎ ｅｔ ａｌ．， Ｍｕｔａｔ．Ｒｅｓ．２８５：１２５−１４４（１９９３）；及びＨａｙａｓｈｉ ｅｔ ａｌ．，Ｇｅｎｅｔ．Ａｎａｌ．Ｔｅｃｈ．Ａｐｐｌ．９：７３−７９（１９９２））、及び変性剤の勾配を含んだポリアクリルアミドゲル中での変異体又は野生型フラグメントの動きを、勾配ゲル電気泳動を用いてアッセイする方法 （Ｍｙｅｒｓ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ ３１３：４９５（１９８５））が含まれる。点突然変異を検出する他の技術の例には、選択的オリゴヌクレオチドハイブリダイゼーション、選択的増幅、及び選択的プライマー伸長が含まれる。
【０１４０】
核酸分子は、治療方法としての効果を持つにも関わらず、必ずしも疾患を引き起こすわけではない遺伝子型のため、個人テストにおいても有用である。このため、核酸分子は、個人の遺伝子型と、治療に用いられる化合物に対する個人の応答との相関（薬理ゲノム相関）についての研究に用いることができる。したがって、ここに記載されている核酸分子は、治療のための適切な化合物及び投与量を選択することによって、個人のキナーゼ遺伝子の変異の評価に用いることができる。図３は、本発明のキナーゼタンパク質をコード化する遺伝子において発見されたＳＮＰｓに関する情報を提供するものである。ＳＮＰは、イントロン、及びＯＲＦの５’と３’領域において１１ヶ所の異なる塩基ポジションにおいて確認された。これらのＳＮＰは、特に、ＯＲＦの外側と第１イントロン中に位置しているので、制御／調整領域に影響を与える可能性がある。
【０１４１】
このように、治療に影響を与える遺伝子変異を示す核酸分子は、個人に対するテーラー治療に用いることのできる診断ターゲットを提供する。従って、これらの多形性を含んだ組換細胞及び動物の製造は、治療化合物及び薬剤投与についての効果的な臨床設計を可能とする。
【０１４２】
核酸分子は、細胞、組織、及び生体におけるキナーゼ遺伝子発現を制御するためのアンチセンス構成物として有用である。ＤＮＡアンチセンス核酸分子は、転写に関連する遺伝子の部位に相補的になるよう設計され、それ故にキナーゼタンパク質の生成と転写が妨げられる。アンチセンスＲＮＡ又はＤＮＡ核酸分子は、ｍＲＮＡにハイブリダイズされ、ｍＲＮＡのキナーゼタンパクへの翻訳がブロックされる。
【０１４３】
あるいは、アンチセンス分子は、キナーゼ核酸の発現を減少させるためのｍＲＮＡの不活性化に用いることができる。従って、これらの分子は、異常又は不必要なキナーゼ核酸発現により特徴づけられる障害の治療に用いることができる。この技術は、ｍＲＮＡの翻訳能力を減じるような、ｍＲＮＡの１以上の領域に相補的なヌクレオチド配列を含むリボザイムによる開裂に関する。可能な領域としては、コード領域、特に基質結合のようなキナーゼタンパク質の触媒活性及び他の機能的活性に対応したコード領域を含む。
【０１４４】
核酸分子はまた、キナーゼ遺伝子発現において異常な細胞を持つ患者の遺伝子治療のためのベクターを提供するものである。ｅｘ ｖｉｖｏで調製され患者に戻される細胞を含む組み換え細胞は、個人の体内に導入されて、そこで個人の治療のために必要とされるキナーゼタンパク質を生成する。
【０１４５】
本発明は、生物学的サンプル中のキナーゼ核酸の存在を検出するために抗体を用いたキットも含む。図１に示される実験データによると、本発明のキナーゼタンパクは、実質的なノーザンブロット解析により、ヒトにおいて精巣、生殖細胞（生殖細胞腫瘍を含む）で発現が認められている。これに加えて、ＰＣＲを用いた組織スクリーニングパネルにより、ヒトの肝臓に発現していることも示されている。例えば、キットは、ラベル化された又はラベル化可能な核酸、あるいは生物学的サンプル中でキナーゼ核酸を検出することのできる試薬；サンプル中のキナーゼ核酸量を決定する手段；及び標準サンプルのキナーゼ核酸量と比較する手段；を含むことができる。化合物又は試薬は適当な容器に封入される。このキットはさらにキナーゼタンパクｍＲＮＡ又はＤＮＡを検出するキットとして使用するための説明を含むことができる。
【０１４６】
核酸アレイ
本発明はさらに、核酸検出キットを提供するものであり、これらは、例えば、図１及び３（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１、３及び４）に示される配列情報に基づく核酸分子のアレイ又はマイクロアレイである。
【０１４７】
ここで用いられている「アレイ」又は「マイクロアレイ」とは、紙、ナイロン又は他種の膜、フィルター、チップ、ガラススライド又は他の適当な固形支持体のような基板上で合成された別個のポリヌクレオチド又はオリゴヌクレオチドのアレイのことである。１つの例として、マイクロアレイはＵ．Ｓ．Ｐａｔｅｎｔ ５，８３７，８３２，Ｃｈｅｅ ｅｔ ａｌ．， ＰＣＴ 出願 ＷＯ９５／１１９９５（Ｃｈｅｅ ｅｔ ａｌ．）， Ｌｏｃｋｈａｒｔ，Ｄ．Ｊ．ｅｔ ａｌ．（１９９６；Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈ．１４：１６７５−１６８０）及びＳｈｅｎａ，Ｍ．ｅｔ ａｌ．（１９９６；Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．９３：１０６１４−１０６１９）に記載された方法にしたがって調製、使用され、これらの全ては参考としてここに折り込まれる。あるいは、このようなアレイはＢｒｏｗｎ ｅｔ ａｌ．， Ｕ．Ｓ．Ｐａｔｅｎｔ Ｎｏ．５，８０７，５２２に記載される方法により製造される。
【０１４８】
マイクロアレイ又は検出キットは、好ましくは多くの特異的な単鎖核酸配列を構成し、通常合成アンチセンスオリゴヌクレオチド又はｃＤＮＡのフラグメントのいずれかが、固形支持体に固定される。オリゴヌクレオチドは好ましくは約６〜６０のヌクレオチド長で、より好ましくは１５〜３０のヌクレオチド長、もっとも好ましくは約２０〜２５のヌクレオチド長である。ある種のマイクロアレイ又は検出キットでは、７〜２０のヌクレオチド長のオリゴヌクレオチドのみを用いるのが好適である。マイクロアレイあるいは検出キットは、既知の５’又は３’配列を包含するオリゴヌクレオチド、全長配列を包含する配列化オリゴヌクレオチド、又は配列長さの特定領域から選択された特異なオリゴヌクレオチドを含む。マイクロアレイ又は検出キットに用いられるポリヌクレオチドは、遺伝子又は対象となる遺伝子グループにおいて特異的なオリゴヌクレオチドであり得る。
【０１４９】
マイクロアレイ又は検出キットにおいて、既知の配列のオリゴヌクレオチドを製造するため、対象となる遺伝子（あるいは本発明により特定されるＯＲＦ）は、コンピュータアルゴリズムを用いて、典型的にはヌクレオチド配列の５’から開始、あるいは３’で終了する。典型的なアルゴリズムは、遺伝子に特異的な長さに規定されたオリゴマーが同定され、ハイブリダイゼーションに適した範囲にＧＣ成分を有し、ハイブリダイゼーションを妨害する二次構造を有さない。ある条件では、マイクロアレイ又は検出キットにおいて、オリゴヌクレオチドのペアを用いることが好適である。オリゴヌクレオチドの「ペア」は、好ましくは配列の中央部に位置する一つのヌクレオチドを除いて同一である。２つ目のペアのオリゴヌクレオチド（一方とは不一致）はコントロールとして用いられる。オリゴヌクレオチドペアの数は２から百万である。オリゴマーは、基板上の特定領域で、光誘導化学処理により合成される。基板は、紙、ナイロンあるいは他の膜、フィルター、チップ、ガラススライド、又は他の適当な固体支持体である。
【０１５０】
他方、オリゴヌクレオチドは、ＰＣＴ出願 ＷＯ９５／２５１１１６（Ｂａｌｄｅｓｃｈｗｅｉｌｅｒ等）に記載されているように、化学結合処理及びインクジェット処理装置により基板の表面上で合成され、これらのすべては参考としてここに折り込まれる。あるいは、「グリッドした」アレイは、ドット（又はスロット）ブロットとなるように、真空システム、加熱、ＵＶ、機械的又は化学的結合処理により、ｃＤＮＡフラグメント又はオリゴヌクレオチドを、基板の表面に配置及び結合させることができる。上記のようなアレイは、手作業又は適当な装置（スロットブロット又はドットブロット装置）、材料（適当な固体担体）及び機械（ロボット装置を含む）により製造され、８，２４，９６，３８４，１５３６，６１４４又はこれ以上、又は市販の装置に効果的に使用される２〜１００万の他の数のオリゴヌクレオチドを含んでも良い。
【０１５１】
マイクロアレイ又は検出キットを用いてサンプルの分析を行うため、生物サンプルから得られたＲＮＡ又はＤＮＡは、ハイブリダイゼーションプローブ中に調製される。ｍＲＮＡが単離され、そしてｃＤＮＡが製造され、アンチセンスＲＮＡ（ａＲＮＡ）を調製するためのテンプレートとして使用される。ａＲＮＡは蛍光性ヌクレオチドの存在下で増幅し、ラベル化されたプローブはマイクロアレイ又は検出キットとともに培養され、プローブの配列がマイクロアレイ又は検出キット中の相補的なオリゴヌクレオチドとハイブリダイズされる。培養条件は、完全な相補性、又は各種程度の相補性でハイブリダイゼーションが起こるように調整される。ハイブリダイズしていないプローブを除去した後、蛍光レベル及びパターンを決定するためにスキャナーが用いられる。スキャンされたイメージは、マイクロアレイ又は検出キット上の、各オリゴヌクレオチド配列の相補性の程度及び相対的存在度を決定するために検査される。生物学的サンプルは、体液（血液、尿、唾液、痰、胃液等）、培養細胞、生体組織検査、あるいは他の組織調製物からも得ることができる。検出システムは、すべての異なる配列においてハイブリダイゼーションの欠如、存在、及び量を同時に測定するのに用いられる。このデータは、サンプル中での配列、発現パターン、変異、変異体又は多形性といった大規模な相関性の研究に用いられる。
【０１５２】
本発明は、このようなアレイを用い、本発明のキナーゼタンパク質／ペプチドの発現を同定する方法を提供する。詳細には、このような方法はテストサンプルを１以上の核酸分子と共に培養し、テストサンプル中の成分と核酸分子の結合についてのアッセイを含む。このようなアッセイは、少なくとも遺伝子の１つは本発明の遺伝子及び／又は本発明のキナーゼ遺伝子の対立変異体である、多くの遺伝子を含むアレイに関連している。図３は、本発明のキナーゼタンパク質をコード化する遺伝子において発見されたＳＮＰｓの情報を提供する。ＳＮＰは、イントロン、及びＯＲＦの５’と３’領域において１１ヶ所の異なる塩基ポジションにおいて確認された。これらのＳＮＰは、特に、ＯＲＦの外側と第１イントロン中に位置しているので、制御／調整領域に影響を与える可能性がある。
【０１５３】
核酸分子とテストサンプルのインキュベーションの条件は変化する。インキュベーション条件は、使用されるアッセイの形式、使用される検出方法、及びアッセイに用いられた核酸分子のタイプ及び性質に依存する。当業者は、一般的に利用可能なハイブリダイゼーション、増幅、又はアレイアッセイの形式を認識しており、ここに記載されるヒトゲノムの新規なフラグメントを用いるに当たって、容易に適用を行うことができる。このようなアッセイの例は、Ｃｈａｒｄ，Ｔ，Ａｎ Ｉｎｔｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｔｏ Ｒａｄｉｏｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ ａｎｄ Ｒｅｌａｔｅｄ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ， Ｅｌｓｅｖｉｅｒ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ， Ａｍｓｔｅｒｄａｍ， Ｔｈｅ Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ（１９８６）；Ｂｕｌｌｏｃｋ，Ｇ．Ｒ．ｅｔ ａｌ．， Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ｉｎ Ｉｍｍｎｏｃｙｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ， Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ， Ｏｒｌａｎｄｏ， ＦＬ Ｖｏｌ．１（１９８２），Ｖｏｌ．２（１９８３）， Ｖｏｌ．３ （１９８５）；Ｔｉｊｓｓｅｎ， Ｐ．， Ｐｒａｃｔｉｃｅ ａｎｄ Ｔｈｅｏｒｙ ｏｆ Ｅｎｚｙｍｅ Ｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ： Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ｉｎ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ， Ｅｌｓｅｖｉｅｒ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ， Ａｍｓｔｅｒｄａｍ， Ｔｈｅ Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ（１９８５） に記載されている。
【０１５４】
本発明のテストサンプルは、細胞、タンパク質、又は細胞から得られる膜抽出物を含む。上記の方法に使われたテストサンプルは、アッセイの形式、検出方法の性質、及びアッセイのサンプルとして使用される組織、細胞、又はその抽出物に基づき変化する。核酸抽出物、又は細胞抽出物の調製は、当業者によく知られており、利用される系と調和するサンプルを得ることにより、容易に適用することができる。
【０１５５】
本発明の他の例としては、本発明のアッセイを行うために必要な試薬を含むキットが提供される。
【０１５６】
特に本発明は、（ａ）ここに記述されるヒトゲノムのフラグメントと結合することのできる１以上の核酸分子を含む第一の容器；及び（ｂ）１以上の洗浄試薬、又は結合核酸を検出することのできる試薬を含む１以上の容器、とを含む１以上の容器に区分され、、封入されたキットを提供するものである。
【０１５７】
詳細には、区分されたキットには、別々の容器に試薬が入るキットが含まれる。このような容器には、小さなガラス容器、プラスチック容器、帯状のプラスチック、ガラス又は紙、又はシリカのようなアレイ材料が含まれる。このような容器は、サンプルと試薬が混合して汚染しないように、一つの区分から他の区分に試薬を効率的に移行させることができ、各容器の試薬又は溶液は一つの容器から他の容器へ定量的に添加することができる。このような容器には、テストサンプルを入れる容器、核酸プローブを入れる容器、洗浄試薬（リン酸緩衝液、Ｔｒｉｓ緩衝液等）を入れる容器、結合プローブを検出する試薬を入れる容器が含まれる。当業者は、本発明の未知のキナーゼ遺伝子を認識し、ここに開示されている配列情報を用い定型的に確認することができ、さらにこれを周知の確立されたキット形態、特に発現アレイに組み込んで用いることができる。
【０１５８】
ベクター ／ 宿主細胞
本発明は、またこここに記載される核酸分子を含んだベクターを提供するものである。「ベクター」という用語は、ビヒクルのことを言い、好適には核酸分子であり、核酸分子の輸送をすることができるものである。ベクターが核酸分子である場合、核酸分子はベクターの核酸と共有結合している。本発明のこの観点ではベクターはプラスミド、単鎖又は二重鎖のファージ、単鎖又は二重鎖のウイルス性ベクター、又はＢＡＣ、ＰＡＣ、ＹＡＣ、ＯＲＭＡＣのような人工染色体を含む。
【０１５９】
ベクターは宿主細胞中に染色体外の成分として保持され、そこで核酸分子の付加的なコピーを複製及び生成する。あるいは、ベクターは宿主細胞のゲノム中に組み込まれ、宿主細胞の複製の際に核酸分子の付加的なコピーを生成する。
【０１６０】
本発明は、核酸分子の補修のためのベクター（クローニングベクター）、又は核酸分子の発現のためのベクター（発現ベクター）を提供するものである。このベクターは、原核生物細胞又は真核生物細胞、又はその両方で機能することができる（シャトルベクター）。
【０１６１】
発現ベクターは、ベクター中で核酸分子と結合可能なｃｉｓ作用性調節領域を含み、これにより宿主細胞中での核酸分子の転写が可能となる。この核酸分子は転写に影響を及ぼす核酸分子と分けられて、宿主細胞に導入されることができる。したがって、第二の核酸分子は、ベクターからの核酸分子の転写を行うｃｉｓ調節制御領域と相互作用するトランス作用性因子を提供するものである。あるいは、トランス作用性因子は宿主細胞により提供される。最終的に、トランス作用性因子は、ベクター自身から作り出すことができる。しかし、いくつかの例では、核酸分子の転写及び又は翻訳は無細胞系でも起こり得る。
【０１６２】
ここに記載される核酸分子の調節配列は、目的のｍＲＮＡ転写のためのプロモーターを含んで有効に結合されることができる。これらには、バクテリオファージλからの左部プロモーター、Ｅ．ｃｏｌｉから得られたｌａｃ、ＴＲＰ及びＴＡＣプロモーター、ＳＶ４０から得られた初期及び後期のプロモーター、ＣＭＶの極初期のプロモーター、アデノウイルスの初期及び後期のプロモーター、及びレトロウイルスのＬＴＲが含まれるが、これに限定されるものではない。
【０１６３】
転写を促進する制御領域に加えて、発現ベクターはまた、リプレッサー結合部位やエンハンサのような転写を調整する領域を含むものであり得る。この例としては、ＳＶ４０エンハンサ、サイトメガロウイルスの極初期のエンハンサ、ポリオーマエンハンサ、アデノウイルスエンハンサ、レトロウイルスＬＴＲエンハンサが含まれる。
【０１６４】
転写の開始及び制御領域を含む場合に加えて、発現ベクターはまた、転写のためのリボソーム結合部位である転写領域における、転写終了のために必要な配列を含むことができる。他の発現調整制御成分としては、ポリアデニル化信号と同様に、開始及び終止コドンが含まれる。当業者は、発現ベクターに有用な多数の調整配列を知り得る。このような調整配列は、例えば、ｉｎ Ｓａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．， Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ． ２ｎｄ． ｅｄ．， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ， ＮＹ，（１９８９）に記載されている。
【０１６５】
各種発現ベクターは、核酸分子の発現に用いることができる。このようなベクターには、染色体、エピソーム、ウイルス由来のベクターが含まれ、これらは例えば、バクテリアプラスミド、バクテリオファージ、酵母エピソ−ム、人工酵母染色体のような酵母染色体成分、バキュロウイルス、ＳＶ４０のようなパボパウイルス、ワクシニアウイルス、アドノウイルス、ポックスウイルス、シュードラビスウイルス、及びレトロウイルスのようなウイルス由来のベクターである。ベクターはまた、これらの起源の組み合わせから誘導することができ、例えば、コスミドとファージミドのようなプラスミドとバクテリオファージの遺伝子成分から誘導することができる。原核及び真核生物の宿主細胞のための適切なクローニングベクター及び発現ベクターは、Ｓａｍｂｌｏｏｋ ｅｔ ａｌ．， Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ． ２ｎｄ． ｅｄ．， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ，ＮＹ，（１９８９）に記載されている。
【０１６６】
調整配列では、１以上の宿主細胞の構成としての発現（すなわち組織特異性）又は温度、養分添加、又はホルモンや他のリガンドのような外生の要因による１以上の細胞タイプでの指示的な発現を提供するものである。原核及び真核生物の宿主細胞において構成的、及び指示的に発現する種々のベクターは、当業者において周知である。
【０１６７】
核酸分子は、周知の方法によってベクター核酸内に導入されることができる。通常、最終的に発現するＤＮＡ配列は、発現ベクターを１以上の制限酵素によりＤＮＡ配列と開裂し、フラグメントが共に結さつすることによって、発現ベクターと結合される。制限酵素の消化及び結さつの手順は、当業者において周知である。
【０１６８】
適切な核酸分子を含んでいるベクターは、公知の技術を用いて、増殖又は発現のために適切な宿主細胞内へ導入することができる。バクテリア細胞には、Ｅ．ｃｏｉｌ、Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ、及びＳａｌｍｏｎｅｌｌａ ｔｙｐｈｉｍｕｒｉｕｍが含まれるがこれに限定されるものではない。真核生物細胞には、酵母、Ｄｒｏｓｏｐｈｉｌａのような昆虫細胞、ＣＯＳ及びＣＨＯ細胞のような動物細胞、及び植物細胞が含まれるが、これらに限定されるものではない。
【０１６９】
ここに記載されているように、融合タンパク質としてのペプチドの発現が好適である。したがって、本発明はペプチドの生産が可能な融合ベクターを提供するものである。融合ベクターは組み換えタンパク質の発現及び溶解性を向上することができ、また、例えばアフィニティー精製のためのリガンドの作用によってタンパク質精製を促進することができる。タンパク質分解性開裂部位は、融合部分との結合位置に導入され、このために、目的となるペプチドは最終的に融合部分から分離される。タンパク質分解酵素としては、ファクターＸａ、スロンビン、エンテロキナーゼを含むが、これに限定されるものではない。典型的な融合発現ベクターとしては、グルタチオンＳ転移酵素（ＧＳＴ）、マルトースＥ結合タンパク質、又はタンパク質Ａのそれぞれをターゲット組み換えタンパク質に融合した、ｐＧＥＸ（Ｓｍｉｔｈ ｅｔ ａｌ．， Ｇｅｎｅ ６７：３１−４０（１９８８））、ｐＭＡＬ（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ， Ｂｅｖｅｒｌｙ，ＭＡ）、及びｐＲＩＴ５（Ｐｈａｍａｃｉａ，Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ，ＮＪ）を含むが、これに限定されるものではない。好適な指示的非融合Ｅ．ｃｏｌｉ発現ベクターの例としては、ｐＴｒｃ（Ａｍａｎｎ ｅｔ ａｌ．，Ｇｅｎｅ ６９：３０１−３１５（１９８８））やｐＥＴ１１ｄ（Ｓｔｕｄｉｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｇｅｎｅ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ：Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ １８５：６０−８９（１９９０））を含む。
【０１７０】
組み換えタンパク質の発現は、遺伝子の背景を提供することによって、宿主バクテリアにおいて最大化することができ、宿主細胞は組み換えタンパク質のタンパク質分解性の開裂欠損能力を持つ（Ｇｏｔｔｅｓｍａｎ， Ｓ．， Ｇｅｎｅ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ： Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ１８５， Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ， Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ， Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ（１９９０）１１９−２２８）。あるいは、対象となる核酸分子の配列は、例えば、Ｅ．ｃｏｌｉのような特定の宿主細胞のために優先的に使用されるコドンとなるように変更されることができる（Ｗａｄａ ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． ２０：２１１１−２１１８（１９９２））。
【０１７１】
核酸分子はまた、酵母において作用する発現ベクターにより発現されることもできる。Ｓ．ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅのような酵母中で発現するベクターの例としては、ｐＹｅｐＳｅｃ１（Ｂａｌｄａｒｉ， ｅｔ ａｌ．，ＥＭＢＯ Ｊ． ６：２２９−２３４（１９８７））、ｐＭＦａ（Ｋｕｒｊａｎ ｅｔ ａｌ．， Ｃｅｌｌ ３０：９３３−９４３（１９８２））、ｐＪＲＹ８８（Ｓｃｈｕｌｔｚ ｅｔ ａｌ．， Ｇｅｎｅ ５４：１１３−１２３（１９８７））、及びｐＹＥＳ２（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ， Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ）を含む。
【０１７２】
核酸分子はまた、例えばバキュロウイルス発現ベクターを用いて、昆虫細胞内で発現されることもできる。培養昆虫細胞（例えば、Ｓｆ９細胞）中のタンパク質の発現に利用されるベクターは、ｐＡｃシリーズ（Ｓｍｉｔｈ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌ． Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ． ３：２１５６−２１６５（１９８３））や、ｐＶＬシリーズ（Ｌｕｃｋｌｏｗ ｅｔ ａｌ．， Ｖｉｒｏｌｏｇｙ １７０：３１−３９（１９８９））を含む。
【０１７３】
本発明のある実施例においては、ここに記載されている核酸分子は、哺乳類発現ベクターを用いて哺乳類の細胞内で発現される。哺乳類発現ベクターの例としては、ｐＣＤＭ８（Ｓｅｅｄ， Ｂ． Ｎａｔｕｒｅ ３２９：８４０（１９８７））や、ｐＭＴ２ＰＣ（Ｋａｕｆｍａｎ ｅｔ ａｌ．， ＥＭＢＯ Ｊ． ６：１８７−１９５（１９８７））を含む。
【０１７４】
ここに列記される発現ベクターとしては、核酸分子を発現するために有用であり、当業者が利用可能なベクターとして周知のもののみが示されている。ここに記載されている核酸分子の維持増殖、又は発現において好適な他のベクターは、当業者において周知である。これらは、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋ， Ｊ．， Ｆｒｉｔｓｈ， Ｅ． Ｆ．， ａｎｄ Ｍａｎｉａｔｉｓ， Ｔ． Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：　Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ． ２ｎｄ， ｅｄ．， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ， ＮＹ， １９８９に記載されている。
【０１７５】
ここに記載されている核酸配列がベクター中に逆方向にクローンされたベクターは、アンチセンスＲＮＡの転写を許す調節配列に結合可能であるが、本発明はまた、このようなベクターも包含するものである。このように、アンチセンス転写は、ここに記載されている、コード、非コード領域の両方が含まれている核酸分子配列の、全部又は一部を生産することができる。そして、このアンチセンスのＲＮＡの発現は、センスＲＮＡの発現（調整配列、構成的、又は指示的発現、組織特異発現）に関して、前記した各パラメータに対応する。
【０１７６】
本発明はまた、ここに記載されるベクターを含む組み換え宿主細胞に関連するものである。宿主細胞は、したがって原核生物細胞、酵母のような低真核生物細胞、昆虫細胞のような他の真核生物細胞、及び哺乳類の細胞のような高真核生物細胞を含む。
【０１７７】
組み換え宿主細胞は、当業者が容易に利用することのできる技術により、ここに記載されるように構成されるベクターを細胞中に導入することにより、調製することができる。これらには、リン酸カルシウムトランスフェクション、ＤＥＡＥデキストラン媒介トランスフェクション、カチオン性脂質媒介トランスフェクション、エレクトロポレーション、トランスダクション、インフェクション、リポフェクション、及びＳａｍｂｒｏｏｋ， ｅｔ ａｌ． （Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：　Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ． ２ｎｄ， ｅｄ．， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ， ＮＹ， １９８９）に記載されているような他の技術が含まれるが、これらに限定されるものではない。
【０１７８】
宿主細胞は、１以上のベクターを含むことができる。このため、異なるヌクレオチド配列が、同じ細胞の異なるベクター中に導入されることができる。同様に、核酸分子は、単独で又は発現ベクターのトランス作用因子を提供しているような、関連のない他の核酸分子と共に導入されることができる。１以上のベクターが細胞内に導入される場合、ベクターは単独で導入されるか、共に導入されるか、又は核酸分子ベクターに結合されることができる。
【０１７９】
バクテリオファージ及びウィルスベクターの場合、これらはインフェクション及びトランスダクションの標準的な操作により、封入又はカプセル化されたウイルスとして細胞内に導入されることができる。ウイルスベクターは、複製可能、又は複製欠陥であり得る。ウイルスの複製に欠陥がある場合、複製は欠陥を補完する機能が提供される宿主細胞内で起こり得る。
【０１８０】
ベクターは一般に、組み換えベクターの構成物を含む細胞の部分母集団の選択を可能とする選択性マーカーを含む。このマーカーは、ここに記載される核酸分子を含む同一のベクター内か、又は別のベクター中に含まれることができる。マーカーは、原核生物宿主細胞のためのテトラサイクリン又はアンピシリン−抵抗遺伝子、及び真核生物宿主細胞のためのジヒドロフォレート還元酵素又はネオマイシン耐性を含む。しかしながら、表現型特性の選択性を提供するマーカーは何れの場合にも有効である。
【０１８１】
成熟タンパク質は、適切な調整配列の制御下で、バクテリア、酵母、哺乳類の細胞、及び他の細胞で生産されることができるが、無細胞系転写及び翻訳システムもまた、ここに記載されるＤＮＡ構成物から誘導されるＲＮＡを用い、これらのタンパク質を生産するために用いることができる。
【０１８２】
ペプチドの分泌が必要とされる場合、キナーゼのようなタンパク質を含むマルチトランスメンブランドメイン内で達成されることは難しく、適切な分泌信号がベクター内に組み込まれる。信号配列は、これらのペプチドに内生であるか、又はペプチドに非相同であり得る。
【０１８３】
ペプチドが媒体内で分泌されない場合、典型的にはキナーゼの場合、タンパク質は凍結融解、超音波処理、機械的破壊、分解試薬等の標準的な破壊操作によって、宿主細胞から単離されることができる。ペプチドは、硫酸アンモニウム沈降、酸抽出、又はアニオン又はカチオン交換クロマトグラフィ、ホスホセルロースクロマトグラフィ、疎水性相互作用クロマトグラフィ、アフィニテイクロマトグラフィ、ヒドロキシルアパタイトクロマトグラフィ、レクチンクロマトグラフィ、又は高速液体クロマトグラフィを含む、公知の精製方法によって、回収、精製されることができる。
【０１８４】
また、ここに記載されているペプチドの組み換え製造の宿主細胞に依存して、ペプチドは種々のグリコシル化パターンを持ち、細胞に依存して、バクテリア内で製造される際にグリコシル化されないかもしれないことが理解される。さらに、ペプチドは、ホストを媒介する過程の結果として、幾つかの場合で最初に修飾されたメチオニンを含むものであり得る。
【０１８５】
ベクターと宿主細胞の使用
ここに記載されているペプチドを発現している組み換え宿主細胞には、種々の使用用途がある。まず、この細胞はキナーゼタンパク質又はフラグメントを必要量生産するため、さらに精製を行うことのできるキナーゼタンパク質、又はペプチドの生産に有用である。このため、発現ベクターを含む宿主細胞は、ペプチドの生産に有用である。
【０１８６】
宿主細胞は、キナーゼタンパク質又はキナーゼタンパク質フラグメントに関連している細胞ベースのアッセイ、例えば上記したもの、同様に当業者において周知の他の形態のものの実行において有用である。このため、天然のキナーゼタンパク質を発現している組み換え宿主細胞は、キナーゼタンパク質機能を刺激又は阻害する化合物のアッセイに有用である。
【０１８７】
宿主細胞はまた、機能的な影響を受けるキナーゼタンパク質変異体を同定することに有用である。変異が自然に生じ病理を引き起こすような場合、突然変異を含む宿主細胞は、天然のキナーゼタンパク質の効果を示さずに、キナーゼタンパク質変異体に要求される効果（例えば、機能を刺激、又は阻害）を持つ化合物のアッセイに有用である。
【０１８８】
遺伝子的に工作された宿主細胞は、さらにヒト以外の遺伝子組み換え動物を生産するために用いることができる。遺伝子組み換え動物は、好適には哺乳類であり、例えば１以上の細胞が組み換え遺伝子を含んだ、ラット又はマウスのような齧歯類動物である。組み換え遺伝子は、成長中の遺伝子組み換え動物の細胞のゲノムに組み込まれ、１以上の細胞型又は組織において、成熟した動物のゲノム中に残存する外生のＤＮＡである。これらの動物は、キナーゼタンパク質の機能の研究、及びキナーゼタンパク質活性のモジュレータの同定及び評価に有用である。遺伝子組み換え動物の他の例としては、ヒト以外の霊長類、羊、犬、牛、ヤギ、鶏、及び両生類を含む。
【０１８９】
遺伝子組み換え動物は、例えば、マイクロインジェクション、レトロウイルス感染によって、受精卵母細胞の雄性前核細胞内に核酸分子を導入し、卵母細胞は偽妊娠性の雌性育成動物中で育成されることにより作製される。何れのキナーゼタンパク質ヌクレオチド配列も、マウスのようなヒト以外の動物のゲノム中に組み換え遺伝子として導入されることができる。
【０１９０】
発現ベクターに有用な調整配列、又は他の配列は、何れも組み換え遺伝子配列の一部分を形成することができる。これには、イントロン配列及びポリアデニル化信号が、すでに含まれていない場合には含まれる。組織特異性調整配列は、特定の細胞に対しキナーゼタンパク質が直接発現するために、組み換え遺伝子に有効に結合されることができる。
【０１９１】
受胎操作及びマイクロインジェクションを通して、遺伝子組み換え動物を生産する方法、特にマウスのような動物を用いる方法は、当業界において一般化されており、例えば、Ｕ．Ｓ． Ｐａｔｅｎｔ Ｎｏｓ． ４，７３６，８６６ ａｎｄ ４，８７０，００９， ｂｏｔｈ ｂｙ Ｌｅｄｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｕ．Ｓ． Ｐａｔｅｎｔ Ｎｏ． ４，８７３，１９１ ｂｙ Ｗａｇｎｅｒ ｅｔ ａｌ． ａｎｄ ｉｎ Ｈｏｇａｎ， Ｂ．， Ｍａｎｉｐｕｌａｔｉｎｇ ｔｈｅ Ｍｏｕｓｅ Ｅｍｂｒｙｏ， （Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ， Ｎ．Ｙ．， １９８６）に記載されている。また、同様の方法が、他の遺伝子組み換え動物の生産のために用いられている。最初の遺伝子組み換え動物は、ゲノム中の組み換え遺伝子の存在及び／又は動物の組織や細胞内での遺伝子組み換えｍＲＮＡの発現に基づいて確認されることができる。最初の遺伝子組み換え動物は、その後、さらに組み換え遺伝子を有する動物を繁殖するために用いられることができる。その上、組み換え遺伝子を有している遺伝子組み換え動物は、さらに他の組み換え遺伝子を有する他の遺伝子組み換え動物へと生育されることができる。遺伝子組み換え動物はまた、ここに記載されている相同的な組み換え宿主細胞を用いて製造された、全ての動物又は動物の組織を含む。
【０１９２】
他の例では、ヒト以外の遺伝子組み換え動物は、組み換え遺伝子の調節された発現を行う選択システムを含むものとして生産されることができる。このようなシステムの１つの例は、バクテリオファージＰ１のｃｒｅ／ｌｏｘＰリコンビナーゼシステムである。ｃｒｅ／ｌｏｘＰリコンビナーゼシステムについての記載は、例えば、Ｌａｋｓｏ ｅｔ ａｌ． ＰＮＡＳ ８９：６２３２−６２３６（１９９２）参照。リコンビナーゼシステムのもう一つの例は、Ｓ．ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅのＦＬＰリコンビナーゼシステムである（Ｏ’Ｇｏｒｍａｎ ｅｔ ａｌ． Ｓｃｉｅｎｃｅ ２５１：１３５１−１３５５（１９９１）。ｃｒｅ／ｌｏｘＰリコンビナーゼシステムが組み換え遺伝子の発現の調節に用いられる場合は、動物において、ｃｒｅリコンビナーゼ及び選択されたタンパク質をコード化している組み換え遺伝子が含まれていることが必要である。このような動物は、例えば、一方は選択されたタンパク質をコード化した組み換え遺伝子を持ち、他方はリコンビナーゼをコード化した組み換え遺伝子を持った２つの組み換え遺伝子動物を交配させることにより、「二重」遺伝子組み換え動物を構成することによって提供される。
【０１９３】
ここに記載されるヒト以外の遺伝子組み換え動物のクローンは、また、Ｗｉｌｍｕｔ， Ｉ． ｅｔ ａｌ． Ｎａｔｕｒｅ ３８５：８１０−８１３ （１９９７） ａｎｄ ＰＣＴ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎ Ｎｏｓ． ＷＯ９７／０７６６８ ａｎｄ ＷＯ９７／０７６６９に記載されている方法に従って生産されることができる。簡単に述べると、遺伝子組み換え動物からの細胞、例えば体細胞は単離されて、成長サイクルから出てＧ_０相に入れられるように誘導することができる。静止細胞は、例えば、電気パルスの使用によって、静止細胞が単離されたものと同種の動物の細胞核を取り除かれた卵母細胞に融合されることができる。再構成された卵母細胞は、桑実胚又は芽細胞に発達するよう培養され、その後、偽妊娠性の雌性育成動物中に移される。この雌性育成動物から誕生する子孫は、細胞、例えば体細胞を単離した動物のクローンとなる。
【０１９４】
ここに記載されているペプチドを発現する組み換え細胞を含んだ遺伝子組み換え動物は、ｉｎ ｖｉｖｏの環境で、ここに記載したようなアッセイを行うために有用である。したがって、生体内に存在し、基質結合、キナーゼタンパク質活性／活性化、信号伝達に影響を与えている各種の生理学的ファクターは、ｉｎ ｖｉｔｒｏの無細胞系又は細胞ベースのアッセイでは明らかにならないかもしれない。したがって、これらは、基質相互作用、キナーゼタンパク質機能及び基質相互作用に対する特定の変異体キナーゼタンパク質の影響、及びキメラなキナーゼタンパク質の影響を含むプロテーゼタンパク質機能を、ｉｎ ｖｉｖｏでアッセイするための、ヒト以外の遺伝子組み換え動物を提供するために有用である。また、実質的に又は完全に一つ以上のキナーゼタンパク質機能を除去する突然変異である、ヌル変異の影響を評価することも可能である。
【０１９５】
本明細書において、上に記載された全ての刊行物及び特許は、ここに参考として織り込まれている。本発明に記載された方法及びシステムの各種修正及び変形は、本発明の範囲及び精神から外れない限り、当業者において明らかなものである。本発明は、特定の好適な具体例に関連して記述されているが、特許請求の範囲に記載された発明は、このような特定の実施例に不当に限定されないと理解されるべきである。実際に、本発明を実行するための上記方法の各種変形は、分子生物学又は関連した分野の当業者において明らかであり、このようなものも特許請求の範囲に含まれるものである。
【配列表】

【図面の簡単な説明】
【図１】
図１は、本発明にかかるキナーゼタンパク質をコード化するｃＤＮＡ分子（スプライス型１）及び転写配列（スプライス型２）のヌクレオチド配列を示す（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１及び４）。さらに、ＡＴＧ開始、終結、及び組織分布等の、構造及び機能情報を提供しており、この分子配列に基づいて、発明の具体的な用途を容易に決定することができる。図１の実験データによると、ヒトにおいて精巣、生殖細胞（生殖細胞腫瘍を含む）、及び肝臓での発現を示している。
【図２】
図２は、本発明にかかる３つのキナーゼの予測アミノ酸配列を示している（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２及び５）。さらに、タンパク質ファミリー、機能、及び変更部位等の、構造及び機能情報が提供され、この分子配列に基づいて、発明の具体的な用途を容易に決定することができる。
【図３】
図３は、本発明にかかるキナーゼをコード化する遺伝子のゲノム配列を示している（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：３）。さらに、イントロン／エキソン構造、プロモーター位置等の、構造及び機能情報を提供しており、この分子配列に基づいて、発明の具体的な用途を容易に決定することができる。図３に示されているように、ＳＮＰは１１ヶ所の異なる塩基ポジションにおいて確認された。図３には、第１４染色体上に遺伝子がマップされていることも示されている。

Claims (23)

1. 下記グループから選択されるアミノ酸配列からなる単離ペプチド。
   （ａ）ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．２及び５からなるグループから選択されるアミノ酸配列；
   （ｂ）ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．２及び５からなるグループから選択されるアミノ酸配列の対立変異体のアミノ酸配列であって、該対立変異体は、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．１又は３からなるグループから選択される核酸分子の対向鎖に、ストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸分子によってコード化されていることを特徴とするアミノ酸配列；
   （ｃ）ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．２及び５からなるグループから選択されるアミノ酸配列のオルトログのアミノ酸配列であって、該オルトログは、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．１及び３からなるグループから選択される核酸分子の対向鎖に、ストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸分子によってコード化されていることを特徴とするアミノ酸配列；及び
   （ｄ）ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．２及び５からなるグループから選択されるアミノ酸配列のフラグメントであって、該フラグメントは、少なくとも１０の隣接するアミノ酸を含むことを特徴とするアミノ酸配列。
2. 下記グループから選択されるアミノ酸配列を含む単離ペプチド。
   （ａ）ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．２及び５からなるグループから選択されるアミノ酸配列；
   （ｂ）ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．２及び５からなるグループから選択されるアミノ酸配列の対立変異体のアミノ酸配列であって、該対立変異体は、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．１及び３からなるグループから選択される核酸分子の対向鎖に、ストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸分子によってコード化されていることを特徴とするアミノ酸配列；
   （ｃ）ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．２及び５からなるグループから選択されるアミノ酸配列のオルトログのアミノ酸配列であって、該オルトログは、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．１及び３からなるグループから選択される核酸分子の対向鎖に、ストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸分子によってコード化されていることを特徴とするアミノ酸配列；及び
   （ｄ）ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．２及び５からなるグループから選択されるアミノ酸配列のフラグメントであって、該フラグメントは、少なくとも１０の隣接するアミノ酸を含むことを特徴とするアミノ酸配列。
3. 請求項２記載のペプチドに選択的に結合する単離抗体。
4. 下記グループから選択されるヌクレオチド配列からなる単離核酸分子。
   （ａ）ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．２及び５からなるグループから選択されるアミノ酸配列をコード化するヌクレオチド配列；
   （ｂ）ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．２及び５からなるグループから選択されるアミノ酸配列の対立変異体をコード化するヌクレオチド配列であって、該ヌクレオチド配列は、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．１及び３からなるグループから選択される核酸分子の対向鎖にストリンジェントな条件下でハイブリダイズすることを特徴とするヌクレオチド配列；
   （ｃ）ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．２及び５からなるグループから選択されるアミノ酸配列のオルトログをコード化するヌクレオチド配列であって、該ヌクレオチド配列は、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．１及び３からなるグループから選択される核酸分子の対向鎖にストリンジェントな条件下でハイブリダイズすることを特徴とするヌクレオチド配列；及び
   （ｄ）ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．２及び５からなるグループから選択されるアミノ酸配列のフラグメントをコード化するヌクレオチド配列であって、該フラグメントは、少なくとも１０の隣接するアミノ酸を含むことを特徴とするヌクレオチド配列。
   （ｅ）（ａ）〜（ｄ）のヌクレオチド配列に相補的であるヌクレオチド配列。
5. 下記グループから選択されるヌクレオチド配列を含む単離核酸分子。
   （ａ）ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．２及び５からなるグループから選択されるアミノ酸配列をコード化するヌクレオチド配列；
   （ｂ）ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．２及び５からなるグループから選択されるアミノ酸配列の対立変異体をコード化するヌクレオチド配列であって、該ヌクレオチド配列は、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．１及び３からなるグループから選択される核酸分子の対向鎖にストリンジェントな条件下でハイブリダイズすることを特徴とするヌクレオチド配列；
   （ｃ）ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．２及び５からなるグループから選択されるアミノ酸配列のオルトログをコード化するヌクレオチド配列であって、該ヌクレオチド配列は、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．１及び３からなるグループから選択される核酸分子の対向鎖にストリンジェントな条件下でハイブリダイズすることを特徴とするヌクレオチド配列；及び
   （ｄ）ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．２及び５からなるグループから選択されるアミノ酸配列のフラグメントをコード化するヌクレオチド配列であって、該フラグメントは、少なくとも１０の隣接するアミノ酸を含むことを特徴とするヌクレオチド配列。
   （ｅ）（ａ）〜（ｄ）のヌクレオチド配列に相補的であるヌクレオチド配列。
6. 請求項５記載の核酸分子を含む遺伝子チップ。
7. 請求項５記載の核酸分子を含むヒト以外の遺伝子組み換え動物。
8. 請求項５記載の核酸分子を含む核酸ベクター。
9. 請求項８記載のベクターを含む宿主細胞。
10. 請求項１記載の何れかのペプチドを製造する方法であって、（ａ）〜（ｄ）の何れかのアミノ酸配列をコード化するヌクレオチド配列を宿主細胞内に導入し、ペプチドがヌクレオチド配列から発現される条件下で宿主細胞を培養する方法。
11. 請求項２記載の何れかのペプチドを製造する方法であって、（ａ）〜（ｄ）の何れかのアミノ酸配列をコード化するヌクレオチド配列を宿主細胞内に導入し、ペプチドがヌクレオチド配列から発現される条件下で宿主細胞を培養する方法。
12. サンプル中における請求項２記載の何れかのペプチドの存在を検出する方法であって、サンプル中の該ペプチドの存在を特異的に検出する試薬とサンプルとを接触させ、該ペプチドの存在を検出する方法。
13. サンプル中における請求項５記載の核酸分子の存在を検出する方法であって、ストリンジェントな条件下で該核酸分子にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドとサンプルとを接触させ、サンプル中の該核酸分子とオリゴヌクレオチドが結合するかどうかを判定する方法。
14. 請求項２記載のペプチドのモジュレータを同定する方法であって、該ペプチドと試薬とを接触させ、該試薬が該ペプチドの機能又は活性を変調したかどうかを判定する方法。
15. 請求項１４記載の方法において、前記試薬は前記ペプチドを発現する発現ベクターを含む宿主細胞に対して与えられる方法。
16. 請求項２記載の何れかのペプチドに結合する試薬を同定する方法であって、ペプチドと試薬とを接触させ、接触混合物中にペプチドと試薬とが結合した複合体が形成されるかどうかをアッセイする方法。
17. 請求項１６記載の方法により同定された試薬と、薬学的に許容可能なそれらの担体とを含む薬剤組成物。
18. ヒトキナーゼタンパク質により媒介される疾患又は症状を治療する方法であって、請求項１６記載の方法で同定された試薬を薬学的に有効な量、患者に投与する方法。
19. 請求項２記載のペプチドの発現のモジュレータを同定する方法であって、該ペプチドを発現する細胞と試薬とを接触させ、該試薬が該ペプチドの発現を変調したかどうかを測定する方法。
20. ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．２及び５からなるグループから選択されるアミノ酸配列と少なくとも７０％の相同性を持つアミノ酸配列を有する単離ヒトキナーゼペプチド。
21. 請求項２０記載のペプチドにおいて、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．２及び５からなるグループから選択されるアミノ酸配列と少なくとも９０％の相同性を持つアミノ酸配列を有するペプチド。
22. ヒトキナーゼペプチドをコード化している単離核酸分子であって、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．１及び３からなるグループから選択される核酸分子と少なくとも８０％の相同性を有している核酸分子。
23. 請求項２２記載の核酸分子において、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．１及び３からなるグループから選択される核酸分子と少なくとも９０％の相同性を有している核酸分子。

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