JP2004325413A - Antiphospholipid antibody measuring reagent, and antiphospholipid antibody measuring method - Google Patents

Antiphospholipid antibody measuring reagent, and antiphospholipid antibody measuring method Download PDF

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JP2004325413A JP2003124336A JP2003124336A JP2004325413A JP 2004325413 A JP2004325413 A JP 2004325413A JP 2003124336 A JP2003124336 A JP 2003124336A JP 2003124336 A JP2003124336 A JP 2003124336A JP 2004325413 A JP2004325413 A JP 2004325413A
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soluble polymer
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Tetsuya Ota
哲也 大田
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Sekisui Chemical Co Ltd
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Sekisui Chemical Co Ltd
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Abstract

<P>PROBLEM TO BE SOLVED: To make it possible to apply to various biochemical auto-analyzers, to quickly and easily measure a lot of specimens, and to hardly generate a determination failure caused by nonspecific agglutination. <P>SOLUTION: Agglutination by an antigen-antibody reaction between an antiphospholipid antibody and an antigen is measured based on a change of absorbance, using this antiphospholipid antibody measuring reagent. The antiphospholipid antibody measuring reagent comprises an antigen reagent containing an insoluble carrier adsorbed with a lipid antigen comprising cardiolipin, lecithin and cholesterol, and containing a water-soluble polymer for blocking the lipid antigen adsorbed onto the insoluble carrier, and a buffer solution for dilution containing the water-soluble polymer. <P>COPYRIGHT: (C)2005,JPO&NCIPI

Description

【0001】
【発明の属する技術分野】
本発明は、検体中に含まれている抗リン脂質抗体を免疫学的に測定するための抗リン脂質抗体測定試薬及び測定方法に関する。
【0002】
【従来の技術】
梅毒の病原体であるトレポネーマ・パリダム(Treponema Pallidum)が生体に感染すると、該病原体に対する抗体とともに、リン脂質と反応性を有するワッセルマン抗体が産生される。従来の梅毒の検査法は、梅毒菌体に対する抗体を検出するために、梅毒菌体から抽出した抗原そのものを用いる方法と、ワッセルマン抗体を検出するためにカルジオリピンを含む脂質類を抗原として用いる方法の2つに大別される。
【0003】
現在、脂質抗原を用いる方法としては、VDRL法、緒方法、RPR法、及びガラス板法などが存在するが、定性スクリーニングには、RPR法及びガラス板法が主に用いられている。
【0004】
これらの脂質抗原を用いる検査法は、梅毒以外の疾患に対しても陽性反応を呈するという欠点を有するが、ワッセルマン抗体が梅毒の感染状態を良好に反映するという利点を有する。従って、梅毒の治療経過をモニターするために、RPR法やガラス板法が用いられている。
【0005】
RPR法は、カルジオリピン及びレシチンを含む脂質をカオリンまたは炭素粉末に吸着させたものを、白色プレート上で検体とともに混合し、カオリンまたは炭素粉末の凝集の有無を判定する方法である。
【0006】
上記ガラス板法は、ガラス板上において、カルジオリピン、レシチン及びコレステリンを含む脂質抗原液を検体と混合し、コレステリン結晶の凝集の有無を判定する方法である。
【0007】
上記2つの方法は、いずれも用手法であるため、大量の検体を検査するには適していない。また、RPR法では炭素粉末の凝集を目視により、ガラス板法ではコレステリン結晶の生成を顕微鏡下で観察することにより、判定が行われる。従って、いずれの方法においても、判定に熟練を要し、判定者によって判定結果が異なることも起こり得るという問題があった。
【0008】
このような問題を解決するために、下記の特許文献1では、生化学自動分析機に適用可能な梅毒抗リン脂質抗体測定試薬が開示されている。ここでは、ブロッキング剤として不活性なタンパク質が用いられている。
【0009】
他方、下記の特許文献2には、カウンティングイムノアッセイ法で測定可能な梅毒抗リン脂質抗体測定試薬が開示されている。この測定試薬は、カルジオライピン重量1に対して、フォスファジルコリン2〜15倍量、コレステロール0〜6倍量及びこれら脂質抗原の総量が担体粒子1gあたり30〜95mg含む抗原液を担体粒子と混合させることにより、上記担体粒子上に脂質抗原を感作し、さらに担体粒子をポリビニルアルコールでブロッキングすることにより構成されている。
【0010】
【特許文献1】
特許第3290520号
【特許文献2】
特開2001−242171号
【0011】
【発明が解決しようとする課題】
特許文献1において、ブロッキング剤として用いられるタンパク質の代表例として示されている牛血清アルブミンなどでは、抽出過程において混入する他のタンパク質などの影響により非特異反応が起こり、梅毒陰性の検体を陽性と判定する偽陽性が生じるという欠点があった。
【0012】
また、上記特許文献2に記載の測定試薬は、カウンティングイムノアッセイ法を採用する機器に用いられるものであるが、その他の機器に用いた場合には測定を行うことはできない。
【0013】
本発明の目的は、上述した従来技術の現状に鑑み、種々の生化学自動分析機に用いることができ、迅速かつ簡便に大量の検体を測定することを可能とし、かつ客観性の高い検出結果を得ることを可能する抗リン脂質抗体測定試薬及び抗リン脂質抗体測定方法を提供することにある。
【0014】
【課題を解決するための手段】
本発明に係る抗リン脂質抗体測定試薬は、抗リン脂質抗体と抗原との抗原抗体反応による凝集を吸光度の変化により測定するための抗リン脂質抗体測定試薬であって、カルジオリピン、レシチン及びコレステロールからなる脂質抗原が吸着された不溶性担体と、該不溶性担体に吸着された脂質抗原をブロッキングするための水溶性高分子とを含む抗原試薬と、水溶性高分子を含む希釈用緩衝液とからなることを特徴とする。
【0015】
本発明に係る抗リン脂質抗体測定試薬のある特定の局面では、脂質抗原をブロッキングするための前記水溶性高分子が、ポリビニルピロリドン、ポリエチレングリコール、水溶性多糖類及びこれらの誘導体からなる群から選択された少なくとも1種である。
【0016】
本発明に係る抗リン脂質抗体測定試薬の他の特定の局面では、前記水溶性多糖類が、プルラン、デキストラン、デキストラン硫酸及びアルギン酸ナトリウムからなる群から選択された少なくとも1種である。
【0017】
本発明に係る抗リン脂質抗体測定方法は、本発明に従って構成された抗リン脂質抗体測定試薬を用いた測定方法であって、前記抗原試薬と、前記希釈用緩衝液と、検体とを混合し、抗原抗体反応による凝集を生じさせる工程と、前記凝集の程度を、特定波長の吸光度に基づいて測定し、それによって検体中の抗リン脂質抗体を検出する工程とを備える。
【0018】
以下、本発明の詳細を説明する。
本発明に係る抗リン脂質抗体測定試薬を用いた抗リン脂質抗体測定法は、前述したように、上記抗原試薬と、上記希釈用緩衝液と、検体とを混合し、抗原抗体反応による凝集を生じさせ、該凝集の程度波長の吸光度を測定し、該吸光度に基づいて抗リン脂質抗体を検出することにより行われる。
【0019】
上記カルジオリピンとしては、特に限定されないが、牛心臓から精製されたカルジオリピンが好適に用いられる。カルジオリピンの主成分は、ホスファチジルグリセロールであり、ホスファチジルグリセロール純度が高いものが好ましく、より好ましくは、90%以上の純度のものが望ましい。
【0020】
上記レシチンは、卵黄から精製あるいは化学的に合成されたものが用いられる。レシチンの成分はホスファチジルコリンであり、ホスファチジルコリン純度が高いものが好ましく、より好ましくは、70%以上の純度のものが望ましい。
【0021】
上記コレステロールは、動物の脂肪から精製されたものあるいは化学的に合成されたものが用いられ得る。コレステロールについても純度の高いものが好ましく、98%以上の純度を有するものが望ましい。
【0022】
上記カルジオリピン、レシチン及びコレステロールからなる脂質抗原を不溶性担体に吸着させた後、ブロッキングのために用いられる上記水溶性高分子としては、特に限定されるわけではないが、ポリビニルピロリドンに代表される水溶性ポリビニル誘導体;プルラン、デキストラン、デキストラン硫酸及びアルギン酸ナトリウムなどに代表される水溶性多糖類及びその誘導体;ポリエチレングリコルに代表されるアルキルグリコールの共重合体及びその誘導体などを用いることができる。
【0023】
上記水溶性高分子の分子量は水溶性高分子によっても異なるが、約1000〜70000の範囲であることが望ましい。より具体的には、例えばポリビニルピロリドンの場合には、分子量は5000〜40000の範囲が好ましく、プルランの場合には、分子量は10000〜70000の範囲が好ましく、ポリエチレングリコールの場合は、分子量は1000〜30000の範囲が好ましい。
【0024】
水溶性高分子の分子量が低すぎると、ブロッキング作用が十分に得られないことがあり、大きすぎると、溶解性が悪くなることがある。
本発明において用いられる上記不溶性担体としては、例えば有機高分子粉末、微生物、血球、細胞膜片、プラスチック製マイクロタイタープレートなどを挙げることができる。
【0025】
上記有機高分子粉末としては、例えば、不溶性アガロース、セルロース、不溶性デキストランなどの天然高分子粉末、ポリスチレン、スチレン−スチレンスルホン酸共重合体、アクリロニトリル−ブタジエン−スチレン共重合体、塩化ビニル−アクリル酸エステル共重合体、酢酸ビニル−アクリル酸エステル共重合体などの合成高分子粉末などが挙げられ、特に合成高分子ラテックスが望ましい。
【0026】
上記ラテックスを用いる場合、粒径は0.1〜1.0μmが好ましく、より好ましくは0.1〜0.5μmである。
【0027】
上記希釈用緩衝剤としては、pH5.0〜9.0の緩衝液であれば、任意の緩衝液を用いることができる。用い得る緩衝液としては、例えば、リン酸緩衝液、グリシン緩衝液、ベロナール緩衝液、ホウ酸緩衝液、クエン酸緩衝液などを挙げることができる。
【0028】
上記希釈用緩衝液には、測定感度の向上及び抗原抗体反応の促進を目的として、様々な水溶性高分子が含有される。このような水溶性高分子としては、例えば、特開平2−173567号公報に記載のアルキル化多糖類、あるいは特開平5−180838号公報に記載のように、プルランまたはポリビニルピロリドンなどを挙げることができる。希釈用緩衝液に含有される水溶性高分子は、前述したブロッキング用の水溶性高分子と同一であってもよく、異なっていてもよい。
【0029】
希釈用緩衝液中の水溶性高分子の濃度は0.01〜10(w/v)%の範囲が好ましい。0.01(w/v)%未満では、測定感度が十分高くならないことがある。
【0030】
また、上記希釈用緩衝液には、検体中に存在する他の物質により生じる非特異反応抑制を目的として、牛血清アルブミン、卵性アルブミンなどのタンパク質を添加してもよい。
【0031】
本発明に係る抗リン脂質抗体測定試薬を得るにあたっては、まず、不溶性担体に上記脂質抗原が吸着されるが、吸着方法は特に限定されない。例えば、不溶性担体を脂質抗原を含む緩衝液と混合することにより、脂質抗原が不溶性担体に吸着される。しかる後、不溶性担体に吸着された脂質抗原をブロッキングするための水溶性高分子が、脂質抗原が吸着された不溶性担体と混合され、抗原試薬が得られる。
【0032】
また、水溶性高分子を含む希釈用緩衝液は、緩衝液に上記水溶性高分子を混合し、溶解することにより得られる。
本発明に係る抗リン脂質抗体測定試薬は、上記抗原試薬と、希釈用緩衝液とを有する2液型の測定試薬である。
【0033】
本発明に係る抗リン脂質抗体測定方法では、上記抗原試薬と、希釈用緩衝液と、検体とが混合され、それによって抗原抗体反応による凝集が生じる。そして、凝集の程度が、光学的に測定される。すなわち、特定波長の吸光度を測定し、該吸光度変化量に基づいて凝集の程度が検出され、それによって検体中の抗リン脂質抗体が検出される。この場合の吸光度変化量の測定に際しては、種々の生化学自動分析機を用いることができる。
【0034】
【発明の実施の形態】
以下、本発明の具体的な実施例及び比較例を挙げることにより、本発明を明らかにする。なお、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
【0035】
(実施例1)
1)抗原試薬の調製
カルジオリピン(シグマ社製)の5mg/mL濃度のエタノール溶液を3mLと、ホスファチジルコリン(シグマ社製)の15mg/mL濃度のエタノール溶液を10mLと、コレステロール(ナカライテスク社製)の15mg/mL濃度のエタノール溶液を4.5mLとを混合し、脂質抗原液を得た。
【0036】
ポリスチレンラテックス懸濁液[(平均粒径0.4μm、10w/v%)濃度、積水化学工業社製]1mLを予め37℃で穏やかに攪拌しつつ加温し、しかる後、上記脂質抗原液3mLを添加し、37℃で1時間攪拌した。2重量%ポリビニルピロリドン(分子量10000、BASF社製、品番:K−15)を含むリン酸緩衝食塩水(36mLリン酸緩衝液、pH6.5、0.74重量%NaCl、以下PBS緩衝液と略す)5mLを添加し、さらに37℃で1時間攪拌した。しかる後、この液を4℃の温度で、15000rpm及び30分の条件で遠心分離し、上清を除いた。上清を除いた後、沈殿したラテックスを1%牛血清アルブミンを含むPBS緩衝液3mLに懸濁させた。この操作を3回繰り返し、ラテックスを洗浄し、最後に10mLのEDTA・2Na(同仁化学社製)及び500mM塩化コリン(和光純薬社製)を含むPBS緩衝液20mLに懸濁させ、抗原試薬を得た。この抗原試薬は、梅毒抗リン脂質抗体を測定するためのものである。
【0037】
2)希釈用緩衝液の調製
プルラン(林原社製)を1w/v%及び牛血清アルブミンを1w/v%含有する100mMリン酸緩衝液(pH7.4)を調製し、希釈用緩衝液とした。
【0038】
3)測定
上記のようにして得られた抗原試薬と、希釈用緩衝液とを用い、日立製作所製7170型生化学自動分析機を用いて測定を行った。特定波長は700nmとし、1検体の測定について、抗原試薬60μL、希釈用緩衝液180μLを20μLの検体に対して用いた。より具体的には、検体20μLに希釈用緩衝液180μLを添加し、攪拌した後、37℃で保持した後、抗原試薬60μLを添加し、攪拌し、しかる後1分後及び5分後の吸光度を測定し、この間の吸光度変化量を求めた。下記の表1に示す検体No.1〜10について、上記測定を行った。結果を下記の表1に示す。
【0039】
(実施例2)
抗原試薬の測定に際し、2重量%ポリビニルピロリドンK−15に代えて、1重量%ポリビニルピロリドン(分子量30000、BASF社製、品番:K−30)を用いたことを除いては、実施例1と同様にして試薬を作製し、評価した。
【0040】
(実施例3)
実施例1の抗原試薬の調製に際して用いた2重量%ポリビニルピロリドンに代えて、3重量%プルラン(林原社製、品番:PI−20)としたことを除いては、実施例1と同様にして試薬を作製し、評価した。
【0041】
(実施例4)
実施例1の抗原試薬の調製に際しての2重量%ポリビニルピロリドンに代えて、3重量%ポリエチレングリコール(和光純薬社製、分子量20000)としたことを除いては、実施例1と同様にして試薬を作製し、評価した。
【0042】
(比較例1)
実施例1の抗原試薬の調製における2重量%ポリビニルピロリドンに代えて、1重量%牛血清アルブミンとしたことを除いては、実施例1と同様にして試薬を作製し、評価した。
【0043】
(検体No.1〜10)
なお、検体No.1〜10は、用手法であるRPRカードテスト(三光純薬社製)では梅毒陰性と判定されるが、比較例1において非特異的凝集による吸光度変化量が上昇した検体である。
【0044】
検体No.1〜10は、上記のようにRPRカードテストで陰性と判定されるものであるため、表1に示されている比較例1及び実施例1〜4の結果の吸光度変化量は、非特異的凝集の程度を示すものである。
【0045】
表1から明らかなように、比較例1では、全ての検体において凝集の程度が高く、従って前述したようにRPRカードテストでは梅毒陰性と判定されている検体であるにも関わらず、比較例1の試薬を用いた場合には、吸光度変化量が大きく上昇し、陽性と判断されることがある。
【0046】
これに対して、実施例1〜4では、いずれも比較例1の場合に比べて吸光度変化量が小さく、すなわち非特異的凝集が生じ難いことがわかる。
なお、表1では、吸光度変化量としてΔ吸光度×10の値が示されている。
【0047】
【表1】

Figure 2004325413
【0048】
【発明の効果】
本発明に係る抗リン脂質抗体測定試薬は、カルジオリピン、レシチン及びコレステロールからなる脂質抗原が吸着された不溶性担体と、該不溶性担体に吸着された脂質抗原をブロッキングするための水溶性高分子とを含む抗原試薬と、水溶性高分子を含む希釈用緩衝液とからなり、ブロッキングに上記水溶性高分子が用いられているため、抗リン脂質抗体の測定に際しての非特異的凝集を抑制することができる。従って、より確実に梅毒感染状態を検出することができる。また、本発明に係る測定試薬は、上記抗原試薬と希釈用緩衝液とからなるものであり、様々な生化学自動分析機に適用することができる。従って、迅速かつ簡便に大量の検体を測定することができ、しかも上記のように非特異的凝集による判定不良が生じ難いため、客観性に優れた梅毒判定結果を得ることができる。
【0049】
本発明に係る抗リン脂質抗体測定方法では、本発明に係る抗リン脂質抗体測定試薬と検体とを混合し、抗原抗体反応による凝集を生じさせ、該凝集の程度を特定波長の吸光度を測定することにより行われる。従って、様々な生化学自動分析機において測定を行うことができ、迅速かつ簡便に大量の検体を測定することができる。また、本発明に係る抗リン脂質抗体測定試薬を用いるものであるため、非特異的凝集が生じ難く、従って、梅毒の感染状態を高精度に検出することができる。[0001]
TECHNICAL FIELD OF THE INVENTION
The present invention relates to an antiphospholipid antibody measuring reagent and a measuring method for immunologically measuring an antiphospholipid antibody contained in a sample.
[0002]
[Prior art]
When Treponema pallidum, which is a pathogen of syphilis, infects a living body, a Wasselmann antibody reactive with phospholipids is produced together with an antibody against the pathogen. Conventional methods for testing syphilis include a method using an antigen itself extracted from syphilis cells to detect antibodies against syphilis cells and a method using lipids containing cardiolipin as antigens to detect Wasselman antibodies. It is roughly divided into two.
[0003]
At present, methods using lipid antigens include the VDRL method, the cord method, the RPR method, and the glass plate method. For the qualitative screening, the RPR method and the glass plate method are mainly used.
[0004]
Test methods using these lipid antigens have the disadvantage that they exhibit a positive reaction even for diseases other than syphilis, but they have the advantage that the Wasselman antibody satisfactorily reflects the infection status of syphilis. Therefore, the RPR method and the glass plate method are used to monitor the progress of treatment for syphilis.
[0005]
The RPR method is a method in which lipid containing cardiolipin and lecithin is adsorbed on kaolin or carbon powder and mixed with a sample on a white plate to determine whether or not kaolin or carbon powder has aggregated.
[0006]
The glass plate method is a method in which a lipid antigen solution containing cardiolipin, lecithin and cholesterin is mixed with a specimen on a glass plate, and the presence or absence of aggregation of cholesterol crystals is determined.
[0007]
Since the above two methods are both manual methods, they are not suitable for testing a large number of samples. In the RPR method, the determination is made by visually observing the aggregation of the carbon powder, and in the glass plate method, by observing the formation of cholesterol crystals under a microscope. Therefore, in any of the methods, there is a problem that the judgment requires skill and the judgment result may be different depending on the judge.
[0008]
In order to solve such a problem, Patent Literature 1 listed below discloses a syphilis antiphospholipid antibody measuring reagent applicable to a biochemical automatic analyzer. Here, an inactive protein is used as a blocking agent.
[0009]
On the other hand, Patent Literature 2 below discloses a syphilis antiphospholipid antibody measurement reagent that can be measured by a counting immunoassay method. This measurement reagent is obtained by mixing an antigen solution containing 2 to 15 times the amount of phosphadylcholine, 0 to 6 times the amount of cholesterol, and 30 to 95 mg of these lipid antigens per 1 g of the carrier particles with respect to the weight of the cardiolipin. Thereby, the lipid antigen is sensitized on the carrier particles, and the carrier particles are further blocked with polyvinyl alcohol.
[0010]
[Patent Document 1]
Patent No. 3290520 [Patent Document 2]
JP 2001-242171 A
[Problems to be solved by the invention]
In Patent Document 1, in bovine serum albumin and the like shown as a typical example of a protein used as a blocking agent, a non-specific reaction occurs due to the influence of other proteins and the like contaminating during the extraction process, and a syphilis-negative sample is regarded as positive. There was a drawback that false positives occurred.
[0012]
Further, the measurement reagent described in Patent Document 2 is used for a device employing the counting immunoassay method, but cannot be measured when used for other devices.
[0013]
An object of the present invention, in view of the above-mentioned state of the art, is that it can be used for various biochemical automatic analyzers, makes it possible to measure a large amount of samples quickly and easily, and has a highly objective detection result. It is an object of the present invention to provide an anti-phospholipid antibody measuring reagent and an anti-phospholipid antibody measuring method which can obtain the following.
[0014]
[Means for Solving the Problems]
The anti-phospholipid antibody measurement reagent according to the present invention is an anti-phospholipid antibody measurement reagent for measuring aggregation due to an antigen-antibody reaction between an anti-phospholipid antibody and an antigen by a change in absorbance, and comprises cardiolipin, lecithin and cholesterol. An antigen reagent containing an insoluble carrier to which a lipid antigen is adsorbed, a water-soluble polymer for blocking the lipid antigen adsorbed to the insoluble carrier, and a dilution buffer containing a water-soluble polymer. It is characterized by.
[0015]
In a specific aspect of the antiphospholipid antibody measurement reagent according to the present invention, the water-soluble polymer for blocking a lipid antigen is selected from the group consisting of polyvinylpyrrolidone, polyethylene glycol, water-soluble polysaccharides, and derivatives thereof. It is at least one of the following.
[0016]
In another specific aspect of the antiphospholipid antibody measurement reagent according to the present invention, the water-soluble polysaccharide is at least one selected from the group consisting of pullulan, dextran, dextran sulfate, and sodium alginate.
[0017]
The antiphospholipid antibody measurement method according to the present invention is a measurement method using an antiphospholipid antibody measurement reagent configured according to the present invention, wherein the antigen reagent, the dilution buffer, and a sample are mixed. A step of causing aggregation by an antigen-antibody reaction, and a step of measuring the degree of the aggregation based on the absorbance at a specific wavelength, thereby detecting an antiphospholipid antibody in the sample.
[0018]
Hereinafter, details of the present invention will be described.
As described above, the anti-phospholipid antibody measurement method using the anti-phospholipid antibody measurement reagent according to the present invention is such that the antigen reagent, the dilution buffer, and the sample are mixed, and aggregation by the antigen-antibody reaction is performed. This is performed by measuring the absorbance at the wavelength of the degree of aggregation and detecting the antiphospholipid antibody based on the absorbance.
[0019]
The cardiolipin is not particularly limited, but cardiolipin purified from bovine heart is preferably used. The main component of cardiolipin is phosphatidylglycerol, and preferably has high phosphatidylglycerol purity, more preferably 90% or more.
[0020]
The lecithin used is purified or chemically synthesized from egg yolk. The component of lecithin is phosphatidylcholine, preferably having high phosphatidylcholine purity, and more preferably having a purity of 70% or more.
[0021]
The cholesterol used may be purified from animal fat or chemically synthesized. Cholesterol also preferably has a high purity, and preferably has a purity of 98% or more.
[0022]
After adsorbing the lipid antigen consisting of cardiolipin, lecithin and cholesterol to an insoluble carrier, the water-soluble polymer used for blocking is not particularly limited, but may be a water-soluble polymer represented by polyvinylpyrrolidone. Polyvinyl derivatives; water-soluble polysaccharides represented by pullulan, dextran, dextran sulfate and sodium alginate and derivatives thereof; copolymers of alkyl glycols represented by polyethylene glycol, and derivatives thereof can be used.
[0023]
The molecular weight of the water-soluble polymer varies depending on the water-soluble polymer, but is preferably in the range of about 1,000 to 70,000. More specifically, for example, in the case of polyvinylpyrrolidone, the molecular weight is preferably in the range of 5,000 to 40,000, and in the case of pullulan, the molecular weight is preferably in the range of 10,000 to 70,000. A range of 30,000 is preferred.
[0024]
If the molecular weight of the water-soluble polymer is too low, a sufficient blocking effect may not be obtained, and if it is too large, the solubility may be poor.
Examples of the insoluble carrier used in the present invention include organic polymer powders, microorganisms, blood cells, cell membrane fragments, and plastic microtiter plates.
[0025]
As the organic polymer powder, for example, insoluble agarose, cellulose, natural polymer powder such as insoluble dextran, polystyrene, styrene-styrene sulfonic acid copolymer, acrylonitrile-butadiene-styrene copolymer, vinyl chloride-acrylate Examples include a synthetic polymer powder such as a copolymer and a vinyl acetate-acrylate copolymer, and a synthetic polymer latex is particularly desirable.
[0026]
When the above latex is used, the particle size is preferably from 0.1 to 1.0 μm, more preferably from 0.1 to 0.5 μm.
[0027]
As the buffer for dilution, any buffer can be used as long as the buffer has a pH of 5.0 to 9.0. Examples of the buffer that can be used include a phosphate buffer, a glycine buffer, a veronal buffer, a borate buffer, and a citrate buffer.
[0028]
The above-mentioned dilution buffer contains various water-soluble polymers for the purpose of improving the measurement sensitivity and promoting the antigen-antibody reaction. Examples of such a water-soluble polymer include alkylated polysaccharides described in JP-A-2-173567 and pullulan or polyvinylpyrrolidone as described in JP-A-5-180838. it can. The water-soluble polymer contained in the dilution buffer may be the same as or different from the above-described blocking water-soluble polymer.
[0029]
The concentration of the water-soluble polymer in the buffer for dilution is preferably in the range of 0.01 to 10 (w / v)%. If it is less than 0.01 (w / v)%, the measurement sensitivity may not be sufficiently high.
[0030]
Further, proteins such as bovine serum albumin and ovalbumin may be added to the dilution buffer for the purpose of suppressing non-specific reactions caused by other substances present in the specimen.
[0031]
In obtaining the antiphospholipid antibody measurement reagent according to the present invention, first, the lipid antigen is adsorbed on an insoluble carrier, but the adsorption method is not particularly limited. For example, by mixing the insoluble carrier with a buffer containing a lipid antigen, the lipid antigen is adsorbed on the insoluble carrier. Thereafter, a water-soluble polymer for blocking the lipid antigen adsorbed on the insoluble carrier is mixed with the insoluble carrier having the lipid antigen adsorbed thereon to obtain an antigen reagent.
[0032]
The buffer for dilution containing a water-soluble polymer can be obtained by mixing and dissolving the water-soluble polymer in the buffer.
The anti-phospholipid antibody measurement reagent according to the present invention is a two-component measurement reagent having the antigen reagent and a dilution buffer.
[0033]
In the anti-phospholipid antibody measurement method according to the present invention, the antigen reagent, the dilution buffer, and the specimen are mixed, whereby aggregation due to the antigen-antibody reaction occurs. The degree of aggregation is then measured optically. That is, the absorbance at a specific wavelength is measured, and the degree of aggregation is detected based on the change in the absorbance, whereby the anti-phospholipid antibody in the sample is detected. In measuring the change in absorbance in this case, various automatic biochemical analyzers can be used.
[0034]
BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION
Hereinafter, the present invention will be clarified by giving specific examples and comparative examples of the present invention. Note that the present invention is not limited to the following examples.
[0035]
(Example 1)
1) Preparation of antigen reagent 3 mL of a 5 mg / mL ethanol solution of cardiolipin (Sigma), 10 mL of a 15 mg / mL ethanol solution of phosphatidylcholine (Sigma), and cholesterol (Nacalai Tesque) A 15 mg / mL ethanol solution was mixed with 4.5 mL to obtain a lipid antigen solution.
[0036]
1 mL of a polystyrene latex suspension [(average particle size: 0.4 μm, 10 w / v%) concentration, manufactured by Sekisui Chemical Co., Ltd.] was heated at 37 ° C. with gentle stirring in advance, and then 3 mL of the above lipid antigen solution Was added and stirred at 37 ° C. for 1 hour. Phosphate-buffered saline (36 mL phosphate buffer, pH 6.5, 0.74 wt% NaCl, hereinafter abbreviated as PBS buffer) containing 2% by weight polyvinylpyrrolidone (molecular weight 10,000, BASF, product number: K-15) ) 5 mL was added, and the mixture was further stirred at 37 ° C for 1 hour. Thereafter, the solution was centrifuged at a temperature of 4 ° C. and 15000 rpm for 30 minutes to remove the supernatant. After removing the supernatant, the precipitated latex was suspended in 3 mL of PBS buffer containing 1% bovine serum albumin. This operation was repeated three times to wash the latex, and finally suspended in 20 mL of PBS buffer containing 10 mL of EDTA · 2Na (manufactured by Dojindo) and 500 mM choline chloride (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) to remove the antigen reagent. Obtained. This antigen reagent is for measuring syphilis antiphospholipid antibodies.
[0037]
2) Preparation of buffer for dilution A 100 mM phosphate buffer (pH 7.4) containing 1 w / v% of pullulan (manufactured by Hayashibara) and 1 w / v% of bovine serum albumin was prepared and used as a buffer for dilution. .
[0038]
3) Measurement Using the antigen reagent obtained as described above and the dilution buffer, measurement was carried out using an automatic biochemical analyzer 7170 manufactured by Hitachi, Ltd. The specific wavelength was 700 nm, and for the measurement of one sample, an antigen reagent (60 μL) and a dilution buffer (180 μL) were used for a sample of 20 μL. More specifically, 180 μL of the dilution buffer was added to 20 μL of the sample, and the mixture was stirred, kept at 37 ° C., added with 60 μL of the antigen reagent, stirred, and then absorbance was measured 1 minute and 5 minutes later. Was measured, and the change in absorbance during this time was determined. Sample No. shown in Table 1 below. About 1-10, the said measurement was performed. The results are shown in Table 1 below.
[0039]
(Example 2)
In the measurement of the antigen reagent, the procedure of Example 1 was repeated except that 1% by weight of polyvinylpyrrolidone (molecular weight: 30,000, manufactured by BASF, product number: K-30) was used instead of 2% by weight of polyvinylpyrrolidone K-15. A reagent was prepared and evaluated in the same manner.
[0040]
(Example 3)
Example 1 was repeated except that 2% by weight polyvinylpyrrolidone used in the preparation of the antigen reagent of Example 1 was replaced with 3% by weight pullulan (manufactured by Hayashibara, product number: PI-20). Reagents were made and evaluated.
[0041]
(Example 4)
A reagent was prepared in the same manner as in Example 1 except that 3% by weight of polyethylene glycol (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd., molecular weight: 20,000) was used instead of 2% by weight of polyvinylpyrrolidone in preparing the antigen reagent of Example 1. Was prepared and evaluated.
[0042]
(Comparative Example 1)
A reagent was prepared and evaluated in the same manner as in Example 1 except that 1% by weight of bovine serum albumin was used instead of 2% by weight of polyvinylpyrrolidone in the preparation of the antigen reagent of Example 1.
[0043]
(Sample Nos. 1 to 10)
The sample No. Samples 1 to 10 were determined to be negative for syphilis in the RPR card test (manufactured by Sanko Junyaku Co., Ltd.), which is a method for use, but the specimens in Comparative Example 1 in which the amount of change in absorbance due to nonspecific aggregation increased.
[0044]
Sample No. 1 to 10 are determined to be negative in the RPR card test as described above, and thus the absorbance change amounts of the results of Comparative Example 1 and Examples 1 to 4 shown in Table 1 are non-specific. It shows the degree of aggregation.
[0045]
As is clear from Table 1, in Comparative Example 1, the degree of aggregation was high in all the samples. Therefore, as described above, although the sample was determined to be negative for syphilis in the RPR card test, When the reagent of (1) was used, the amount of change in absorbance increased significantly, and it was sometimes judged to be positive.
[0046]
In contrast, in Examples 1 to 4, the amount of change in absorbance was smaller than that of Comparative Example 1, that is, it was found that non-specific aggregation hardly occurred.
In Table 1, the value of Δabsorbance × 10 4 is shown as the amount of change in absorbance.
[0047]
[Table 1]
Figure 2004325413
[0048]
【The invention's effect】
The anti-phospholipid antibody measurement reagent according to the present invention contains an insoluble carrier to which a lipid antigen consisting of cardiolipin, lecithin and cholesterol is adsorbed, and a water-soluble polymer for blocking the lipid antigen adsorbed to the insoluble carrier. It consists of an antigen reagent and a buffer for dilution containing a water-soluble polymer, and the above-mentioned water-soluble polymer is used for blocking, so that non-specific aggregation in the measurement of anti-phospholipid antibodies can be suppressed. . Therefore, the syphilis infection state can be detected more reliably. The measuring reagent according to the present invention comprises the above antigen reagent and a buffer for dilution, and can be applied to various automatic biochemical analyzers. Therefore, a large amount of sample can be measured quickly and easily, and the determination failure due to non-specific aggregation is unlikely to occur as described above, so that a syphilis determination result excellent in objectivity can be obtained.
[0049]
In the antiphospholipid antibody measurement method according to the present invention, the antiphospholipid antibody measurement reagent according to the present invention is mixed with a sample, aggregation is caused by an antigen-antibody reaction, and the degree of the aggregation is measured by measuring absorbance at a specific wavelength. It is done by doing. Therefore, measurement can be performed by various biochemical automatic analyzers, and a large amount of sample can be measured quickly and easily. Further, since the anti-phospholipid antibody measurement reagent according to the present invention is used, non-specific aggregation hardly occurs, and therefore, the infection state of syphilis can be detected with high accuracy.

Claims (4)

抗リン脂質抗体と抗原との抗原抗体反応による凝集を吸光度の変化により測定するための抗リン脂質抗体測定試薬であって、
カルジオリピン、レシチン及びコレステロールからなる脂質抗原が吸着された不溶性担体と、該不溶性担体に吸着された脂質抗原をブロッキングするための水溶性高分子とを含む抗原試薬と、
水溶性高分子を含む希釈用緩衝液とからなることを特徴とする、抗リン脂質抗体測定試薬。
An anti-phospholipid antibody measurement reagent for measuring aggregation due to an antigen-antibody reaction between an anti-phospholipid antibody and an antigen by a change in absorbance,
Cardiolipin, insoluble carrier adsorbed lipid antigen consisting of lecithin and cholesterol, and an antigen reagent containing a water-soluble polymer for blocking the lipid antigen adsorbed on the insoluble carrier,
A reagent for measuring anti-phospholipid antibodies, comprising a dilution buffer containing a water-soluble polymer.
脂質抗原をブロッキングするための前記水溶性高分子が、ポリビニルピロリドン、ポリエチレングリコール、水溶性多糖類及びこれらの誘導体からなる群から選択された少なくとも1種である、請求項1に記載の抗リン脂質抗体測定試薬。The antiphospholipid according to claim 1, wherein the water-soluble polymer for blocking a lipid antigen is at least one selected from the group consisting of polyvinylpyrrolidone, polyethylene glycol, a water-soluble polysaccharide, and a derivative thereof. Antibody measurement reagent. 前記水溶性多糖類が、プルラン、デキストラン、デキストラン硫酸及びアルギン酸ナトリウムからなる群から選択された少なくとも1種である、請求項2に記載の抗リン脂質抗体測定試薬。The reagent according to claim 2, wherein the water-soluble polysaccharide is at least one selected from the group consisting of pullulan, dextran, dextran sulfate, and sodium alginate. 請求項1〜3に記載の抗リン脂質抗体測定試薬を用いた抗リン脂質抗体の測定方法であって、
前記抗原試薬と、前記希釈用緩衝液と、検体とを混合し、抗原抗体反応による凝集を生じさせる工程と、
前記凝集の程度を、特定波長の吸光度に基づいて測定し、それによって検体中の抗リン脂質抗体を検出する工程とを備える、抗リン脂質抗体測定方法。
A method for measuring an antiphospholipid antibody using the antiphospholipid antibody measurement reagent according to claim 1,
Mixing the antigen reagent, the dilution buffer, and the sample to cause aggregation by an antigen-antibody reaction,
Measuring the degree of the aggregation based on the absorbance at a specific wavelength, thereby detecting the anti-phospholipid antibody in the sample.
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