JP3647210B2 - Method for producing antiphospholipid antibody measuring reagent and reagent - Google Patents

Method for producing antiphospholipid antibody measuring reagent and reagent Download PDF

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JP3647210B2
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Description

【0001】
【発明の属する技術分野】
本発明は、脂質抗原を用いる免疫学的診断試薬に関する。特に、梅毒の検査に用いる免疫学的診断試薬に関する。
【0002】
【従来の技術】
梅毒の病原体であるトレポネーマ・パリダム(Treponema Pallidum)が生体に感染すると、該病原体に対する抗体とともに、リン脂質と反応性を持つワッセルマン抗体が産生される。
従来の梅毒の検査法は、梅毒菌体に対する抗体を検出するために、梅毒菌体から抽出した抗原そのものを用いる方法と、ワッセルマン抗体を検出するために、カルジオリピンを含む脂質類を抗原として用いる方法との2つに大別される。
【0003】
現在、脂質抗原を用いる方法としては、VDRL法、緒方法、RPR(Rapid Plasma reagin)法、ガラス板法等があるが、定性スクリーニングには、RPR法、ガラス板法が主に行われている。
このような脂質抗原を用いる検査法は、梅毒以外の疾患においても陽性反応を呈する欠点を有しているが、ワッセルマン抗体は梅毒の感染状態をよく反映する利点を有している。これを利用して梅毒治療経過を追うこと等にも応用されている。
【0004】
上記RPR法は、カルジオリピン及びレシチンを含む脂質をカオリン又は炭素末に吸着させたものを、白色プレート上で検体と混合し、カオリン又は炭素末の凝集の有無を判定する方法である。
上記ガラス板法は、ガラス板上において、カルジオリピン、レシチン及びコレステリンを含む脂質抗原液を検体と混合し、コレステリン結晶の凝集の有無を判定する方法である。
【0005】
上記2つの方法は用手法であるので、大量の検体を検査する場合には適していない。また、RPR法の場合には、炭素末の凝集を目視で判定を行い、ガラス板法の場合には、コレステリン結晶の生成を顕微鏡下で観察し判定を行うので、判定には熟練を要する。よって判定者によっては判定結果が異なることも起こり得る等の欠点を有していた。
【0006】
特開平4−204257号公報には、カルジオリピンを含む脂質抗原ミセルを作成し、これを室温で不溶性担体であるマイクロタイタープレートに吸着させる測定試薬の製造方法が開示されている。この測定試薬による抗リン脂質抗体検出法は、凝集の程度を吸光度で測定するので、陰陽の判定は客観的に行うことができるが、マイクロタイタープレートへの試薬の分注や検体の分注が手作業となり、操作が煩雑である等の問題があった。
【0007】
特開平5−312808号公報には、担体に固相化された脂質抗原と検体中に含まれる目的抗体との抗原抗体反応を行い、ついで、磁界の存在下で、脂質抗原に結合した目的抗体とこの目的抗体に対する抗体で感作した磁性粒子との抗原抗体反応を行って担体上にパターンを形成させることにより、抗リン脂質抗体の検出を行い、梅毒の検査を行う場合には、1〜50重量%のカルジオリピンを含有する脂質抗原を用いる検出法が開示されているが、磁力をかける装置等が必要であり汎用性に乏しい欠点があった。
上述のように、一般的な生化学自動分析機に適用することが可能な抗リン脂質抗体測定試薬はこれまでなかった。
【0008】
【発明が解決しようとする課題】
本発明は、上記に鑑み、迅速、簡便に大量の検体を測定することができ、かつ、客観性が高い梅毒の検出法に用いることができる抗リン脂質抗体測定試薬の製造方法及び試薬を提供することを目的とする。
【0009】
【課題を解決するための手段】
本発明の請求項1記載の抗リン脂質抗体測定試薬の製造方法は、脂質抗原をラテックスからなる不溶性担体に担持させる抗リン脂質抗体測定試薬の製造方法であって、前記脂質抗原は、カルジオリピン、レシチン及びコレステロールからなり、前記脂質抗原を前記不溶性担体に担持させる工程において、脂質抗原が不溶性担体10μgに対してカルジオリピンは0.01〜1.0μg、レシチンはカルジオリピンの3〜15倍量、コレステロールはカルジオリピンの〜5倍量の割合で配合されてなり、反応温度が30〜55℃であり、反応時間が1〜10時間であることを特徴とする。
【0010】
本発明の請求項2記載の抗リン脂質抗体測定試薬の製造方法は、不溶性担体は、ポリスチレン又はスチレン−スチレンスルホン酸共重合体からなるラテックスである請求項1記載の抗リン脂質抗体測定試薬の製造方法である。
【0011】
本発明の請求項3記載の抗リン脂質抗体測定試薬は、請求項1又は2記載の抗リン脂質抗体測定試薬の製造方法により得られることを特徴とする。
以下に本発明の抗リン脂質抗体測定試薬の製造方法を詳述する。
【0012】
本発明においては、脂質抗原を不溶性担体に担持させる。
上記脂質抗原は、カルジオリピン、レシチン及びコレステロールからなり、不溶性担体10μgに対してカルジオリピンは0.01〜1.0μg、好ましくは0.1〜0.8μg、レシチンはカルジオリピンの3〜15倍量、好ましくは5〜12倍量、コレステロールはカルジオリピンの〜5倍量、好ましくは1〜4倍量の割合で配合されてなる。カルジオリピン量が0.01μg未満となると、測定に十分な感度が得られず、1.0μgを超えると非特異凝集が起こり沈殿が生じてしまうため上記範囲に限定される。レシチン量がカルジオリピンの3倍量未満であると、測定に必要な抗原性を持った脂質抗原が形成されず、カルジオリピンの15倍量を超えると非特異凝集が起こり沈殿が生じてしまうため上記範囲に限定される。コレステロールは試薬測定系の感度を向上させるために添加されており、カルジオリピンの5倍量を超えると非特異凝集が起こり沈殿が生じてしまうため上記範囲に限定される。
【0013】
本発明においては、脂質抗原を不溶性担体に担持させる工程における反応温度が30〜55℃である。30℃未満であると、充分な感度を持つ測定試薬を作成することができず、55℃を超えると、ラテックスがその安定性を保つことができず測定試薬を作成することができないので、上記範囲に限定される。より好ましくは、35℃〜50℃である。
【0014】
本発明において、脂質抗原を不溶性担体に担持させる工程は、脂質抗原を不溶性担体と混合し物理化学的吸着を行う工程、及び、ブロッキング剤によりブロッキングを行い、脂質抗原担持不溶性担体を安定化させる工程からなる。
本発明においては、上記2つの工程のうち少なくとも上記物理化学的吸着を行う工程が、上記反応温度とされていることが必要である。
【0015】
本発明において、脂質抗原を不溶性担体に担持させる工程の反応時間は、上記物理化学的吸着を行う工程と上記ブロッキングにより安定化させる工程(以下、この2つの工程をまとめて「感作工程」という)の2つの工程を併せて1〜10時間に限定される。詳細には物理化学的吸着工程が0.5時間以上、安定化工程が0.5時間以上であることが好ましい。また、特に安定化工程を長時間にすることが望ましい。感作工程が1時間未満であると、物理化学的吸着又は安定化させるのに十分ではなくなり、10時間を超えると不溶性担体粒子がその安定性を保つことができにくくなる(特に、反応温度が45℃を超える場合)ので、上記時間に限定される。
【0016】
上記不溶性担体としては、合成高分子粉末を均一に懸濁させたラテックスに限定される
上記合成高分子としては特に限定されず、例えば、ポリスチレン、スチレン−スチレンスルホン酸共重合体、スチレン−メタクリル酸共重合体、アクリロニトリル−ブタジエン−スチレン共重合体、塩化ビニル−アクリル酸エステル共重合体、酢酸ビニル−アクリル酸エステル共重合体等が挙げられる。なかでも、ポリスチレン、スチレン−スチレンスルホン酸共重合体が好ましい。
本発明において、上記ラテックスの粒径は0.1〜1.0μmが好ましく、より好ましくは、0.1〜0.5μmである。
【0017】
上記ブロッキング剤としては特に限定されず、例えば、ウシ血清アルブミン、卵白アルブミン等のアルブミン;ヒト、ウシ、羊、ヤギ、ウサギ、マウス等の動物の血清等が挙げられる。
【0018】
本発明によって作成された試薬は、適当な検体希釈液で希釈することによって使用することもできる。
上記検体希釈液としては、pH5.0〜9.0の緩衝液であれば特に限定されず、例えば、リン酸緩衝液、グリシン緩衝液、ベロナール緩衝液、ホウ酸緩衝液、クエン酸緩衝液等が挙げられる。
【0019】
上記検体希釈液には、測定感度の向上、及び、抗原抗体反応の促進のために、種々の増感剤を添加することができる。
上記増感剤としては、例えば、特開平2−173567号公報に記載されているメチルセルロース、エチルセルロース等のアルキル化多糖類;特開平5−180838号公報に記載されているプルラン及びポリビニルピロリドン等が挙げられる。
【0020】
上記検体希釈液には、検体中に存在する他の物質により起こる非特異反応を抑制するために、ウシ血清アルブミン(BSA)、卵性アルブミン等を添加することもできる。
【0021】
本発明の抗リン脂質抗体測定試薬は、本発明の抗リン脂質抗体測定試薬の製造方法により得られる。
本発明の抗リン脂質抗体測定試薬は、凝集の程度を光学的に測定する一般の生化学自動分析機に適用させることができる。
【0022】
【実施例】
以下に実施例を掲げて本発明を更に詳しく説明するが、本発明はこれら実施例のみに限定されるものではない。
【0023】
実施例1
(1)脂質抗原液の作成
カルジオリピンのエタノール溶液(5mg/ml、シグマ社製)2ml、精製レシチン(ナカライテスク社製)のエタノール溶液(10mg/ml)10ml及びコレステロール(ナカライテスク社製)のエタノール溶液(10mg/ml)3mlを混合し、脂質抗原液を得た。
【0024】
(2)脂質抗原感作ラテックス試薬の作成
ポリスチレンラテックス(平均粒径0.4μm、10%(w/v)、積水化学工業社製)100μlを予め37℃で攪拌しながらあたためておいた。これに先に作成した脂質抗原液250μlを添加し、そのまま37℃で2時間攪拌した。次に1%ウシ血清アルブミン(以下「BSA」という)を含むリン酸塩緩衝食塩水(以下「PBS」という)2mlを添加し、更に1時間37℃で攪拌した(感作工程は合計3時間となる)。15000rpm、4℃で15分間遠心分離し、上清を除き、沈殿したラテックスを再び1%BSAを含むPBS3mlに懸濁した。この操作を3回繰り返しラテックスを洗浄し、最後に1%BSA、10mMEDTA・4Na、500mM塩化コリンを含むPBS4mlに懸濁した。このようにして脂質抗原感作ラテックス試薬を得た。
【0025】
(3)感度の測定
上記(2)で得た脂質抗原感作ラテックス試薬と検体希釈液(メディエースTPLA(積水化学工業社製)に添付されているもの)を使用し、日立7170型生化学自動分析機を用いて測定を行った。測定波長は700nm、1検体測定につき脂質抗原感作ラテックス試薬は30μl、検体希釈液は210μl、検体は20μl使用した。測定にはRPR法による測定値(RPR値)が8、4、2、1、0.5及び0である検体を用い、各検体の吸光度変化量を測定し、図1、図2、図3にその結果を示した。
【0026】
実施例2
実施例1の(2)における感作温度を50℃としたこと以外は実施例1と同様に試薬を作成し、感度を測定した。図1にその結果を示した。
【0027】
実施例3
実施例1の(1)において、カルジオリピンのエタノール溶液(5mg/ml)2ml、精製レシチンのエタノール溶液(10mg/ml)15ml及びコレステロールのエタノール溶液(10mg/ml)3mlを混合し、脂質抗原液としたこと以外は実施例1と同様に試薬を作成し、感度を測定した。図2にその結果を示した。
【0028】
実施例4
実施例1の(1)において、カルジオリピンのエタノール溶液(5mg/ml)2ml、精製レシチンのエタノール溶液(10mg/ml)5ml及びコレステロールのエタノール溶液(10mg/ml)3mlを混合し、脂質抗原液としたこと以外は実施例1と同様に試薬を作成し、感度を測定した。図2にその結果を示した。
【0029】
実施例5
実施例1の(2)脂質抗原感作ラテックス試薬の作成において、1%BSAを含むPBS2mlを添加し、更に3時間37℃で攪拌する(感作工程は合計5時間となる)以外は実施例1と同様に試薬を作成し、感度を測定した。図3にその結果を示した。
【0030】
実施例6
実施例1の(2)脂質抗原感作ラテックス試薬の作成において、1%BSAを含むPBS2mlを添加し、更に6時間37℃で攪拌する(感作工程は合計8時間となる)以外は実施例1と同様に試薬を作成し、感度を測定した。図3にその結果を示した。
【0031】
実施例7
実施例1の(2)脂質抗原感作ラテックス試薬の作成において、脂質抗原液250μlを添加し、そのまま37℃で0.5時間攪拌した。次に1%BSAを含むPBS2mlを添加し、更に0.5時間37℃で攪拌する(感作工程は合計1時間となる)以外は実施例1と同様に試薬を作成し、感度を測定した。図3にその結果を示した。
【0032】
比較例1
実施例1の(2)における感作温度を25℃としたこと以外は実施例1と同様に試薬を作成し、感度を測定した。図1にその結果を示した。
【0033】
比較例2
実施例1の(1)において、カルジオリピンのエタノール溶液(5mg/ml)2ml、精製レシチンのエタノール溶液(10mg/ml)1ml及びコレステロールのエタノール溶液(10mg/ml)3mlを混合し、脂質抗原液としたこと以外は実施例1と同様に試薬を作成し、感度を測定した。図2にその結果を示した。
【0034】
比較例3
実施例1の(1)において、カルジオリピンのエタノール溶液(5mg/ml)2ml、精製レシチンのエタノール溶液(10mg/ml)20ml及びコレステロールのエタノール溶液(10mg/ml)3mlを混合し、脂質抗原液としたこと以外は実施例1と同様に試薬を作成し、感度を測定した。図2にその結果を示した。
【0035】
比較例4
実施例1の(2)脂質抗原感作ラテックス試薬の作成において、脂質抗原液250μlを添加し、そのまま37℃で0.25時間攪拌した。次に1%BSAを含むPBS2mlを添加し、更に0.25時間37℃で攪拌する(感作工程は合計0.5時間となる)以外は実施例1と同様に試薬を作成し、感度を測定した。図3にその結果を示した。
【0036】
【発明の効果】
本発明の抗リン脂質抗体測定試薬の製造方法により、迅速、簡便に大量の検体を測定することができ、かつ、客観性が高い梅毒の検出法に用いることができる抗リン脂質抗体測定試薬を得ることができる。
【図面の簡単な説明】
【図1】実施例における脂質抗原感作ラテックス試薬の感度を示すグラフである。横軸は、RPR値を表し、縦軸は、吸光度変化量(Δabs×10000)を表す。白ぬりの□は、実施例1の測定値であり、黒ぬりの△は、実施例2の測定値であり、白ぬりの○は、比較例1の測定値である。
【図2】実施例における脂質抗原感作ラテックス試薬の感度を示すグラフである。横軸は、RPR値を表し、縦軸は、吸光度変化量(Δabs×10000)を表す。白ぬりの□は、実施例1の測定値であり、黒ぬりの□は、実施例3の測定値であり、×は、実施例4の測定値であり、白ぬりの○は、比較例2の測定値であり、黒ぬりの△は、比較例3の測定値である。
【図3】実施例における脂質抗原感作ラテックス試薬の感度を示すグラフである。横軸は、RPR値を表し、縦軸は、吸光度変化量(Δabs×10000)を表す。白ぬりの□は、実施例1の測定値であり、黒ぬりの□は、実施例5の測定値であり、白ぬりの△は、実施例6の測定値であり、白ぬりの○は、実施例7の測定値であり、黒ぬりの△は、比較例4の測定値である。
[0001]
BACKGROUND OF THE INVENTION
The present invention relates to an immunological diagnostic reagent using a lipid antigen. In particular, it relates to an immunological diagnostic reagent used for syphilis testing.
[0002]
[Prior art]
When Treponema Pallidum, a pathogen of syphilis, infects a living body, a Wasselman antibody reactive with phospholipid is produced together with an antibody against the pathogen.
Conventional methods for testing syphilis include a method using an antigen itself extracted from syphilis cells to detect antibodies against syphilis cells, and a method using lipids containing cardiolipin as antigens to detect Wasselman antibodies. It is roughly divided into two.
[0003]
Currently, methods using lipid antigens include VDRL method, cord method, RPR (Rapid Plasma region) method, glass plate method, etc., but RPR method and glass plate method are mainly used for qualitative screening. .
Such a test method using a lipid antigen has a defect that it exhibits a positive reaction even in diseases other than syphilis, but the Wasselman antibody has an advantage that well reflects the infection state of syphilis. It is also applied to follow the progress of syphilis treatment using this.
[0004]
The RPR method is a method in which a lipid containing cardiolipin and lecithin adsorbed on kaolin or carbon powder is mixed with a specimen on a white plate, and the presence or absence of aggregation of kaolin or carbon powder is determined.
The glass plate method is a method for determining the presence or absence of aggregation of cholesterol crystals by mixing a lipid antigen solution containing cardiolipin, lecithin and cholesterol on a glass plate with a specimen.
[0005]
Since the above two methods are manual techniques, they are not suitable for testing a large amount of specimens. Further, in the case of the RPR method, the carbon powder aggregation is visually determined, and in the case of the glass plate method, since the formation of cholesterol crystals is observed under a microscope, the determination requires skill. . Therefore, it has a defect that the determination result may be different depending on the determiner.
[0006]
Japanese Laid-Open Patent Publication No. 4-204257 discloses a method for producing a measurement reagent in which lipid antigen micelles containing cardiolipin are prepared and adsorbed on a microtiter plate, which is an insoluble carrier, at room temperature. In this anti-phospholipid antibody detection method using a measuring reagent, the degree of aggregation is measured by absorbance, so the determination of yin and yang can be performed objectively. However, reagent dispensing or sample dispensing on a microtiter plate is not possible. There were problems such as manual operations and complicated operations.
[0007]
JP-A-5-312808 discloses an antigen-antibody reaction between a lipid antigen immobilized on a carrier and a target antibody contained in a specimen, and then the target antibody bound to the lipid antigen in the presence of a magnetic field. When an anti-phospholipid antibody is detected by performing an antigen-antibody reaction with a magnetic particle sensitized with an antibody against the target antibody to form a pattern on a carrier and examining syphilis, 1 to Although a detection method using a lipid antigen containing 50% by weight of cardiolipin has been disclosed, there is a drawback that a device for applying a magnetic force is necessary and the versatility is poor.
As described above, there has been no antiphospholipid antibody measurement reagent that can be applied to a general biochemical automatic analyzer.
[0008]
[Problems to be solved by the invention]
In view of the above, the present invention provides a method and a reagent for producing an antiphospholipid antibody measuring reagent that can measure a large amount of specimens quickly and easily and can be used in a highly objective detection method for syphilis. The purpose is to do.
[0009]
[Means for Solving the Problems]
The method for producing an antiphospholipid antibody measurement reagent according to claim 1 of the present invention is a method for producing an antiphospholipid antibody measurement reagent in which a lipid antigen is supported on an insoluble carrier made of latex , wherein the lipid antigen comprises cardiolipin, In the step of supporting the lipid antigen on the insoluble carrier comprising lecithin and cholesterol, the lipid antigen is 0.01 to 1.0 μg of cardiolipin relative to 10 μg of the insoluble carrier, lecithin is 3 to 15 times the amount of cardiolipin, and cholesterol is It is blended at a ratio of 1 to 5 times the amount of cardiolipin, the reaction temperature is 30 to 55 ° C., and the reaction time is 1 to 10 hours.
[0010]
In the method for producing an antiphospholipid antibody measuring reagent according to claim 2 of the present invention, the insoluble carrier is latex made of polystyrene or a styrene-styrenesulfonic acid copolymer. It is a manufacturing method.
[0011]
The antiphospholipid antibody measurement reagent according to claim 3 of the present invention is obtained by the method for producing an antiphospholipid antibody measurement reagent according to claim 1 or 2.
The production method of the antiphospholipid antibody measurement reagent of the present invention is described in detail below.
[0012]
In the present invention, a lipid antigen is supported on an insoluble carrier.
The lipid antigen is composed of cardiolipin, lecithin and cholesterol. The amount of cardiolipin is 0.01 to 1.0 μg, preferably 0.1 to 0.8 μg, and lecithin is 3 to 15 times the amount of cardiolipin, preferably 10 μg of insoluble carrier. 5 to 12 times the amount, cholesterol is 1 to 5 times the amount of cardiolipin, preferably 1 to 4 times the amount. When the amount of cardiolipin is less than 0.01 μg, sufficient sensitivity cannot be obtained, and when it exceeds 1.0 μg, non-specific aggregation occurs and precipitation occurs, so the amount is limited to the above range. If the amount of lecithin is less than 3 times the amount of cardiolipin, lipid antigens having the antigenicity necessary for measurement will not be formed, and if it exceeds 15 times the amount of cardiolipin, non-specific aggregation occurs and precipitation occurs. It is limited to. Cholesterol is added to improve the sensitivity of the reagent measurement system, non aggregation occurs precipitation exceeds 5 times the amount of mosquito Rujioripin is limited to the range for occurs.
[0013]
In the present invention, the reaction temperature in the step of supporting a lipid antigen on an insoluble carrier is 30 to 55 ° C. If the temperature is lower than 30 ° C., a measurement reagent having sufficient sensitivity cannot be prepared. If the temperature exceeds 55 ° C., the stability of latex cannot be maintained and a measurement reagent cannot be prepared. Limited to range. More preferably, it is 35 degreeC-50 degreeC.
[0014]
In the present invention, the step of supporting the lipid antigen on the insoluble carrier includes the step of mixing the lipid antigen with the insoluble carrier and performing physicochemical adsorption, and the step of stabilizing the lipid antigen-carrying insoluble carrier by blocking with a blocking agent. Consists of.
In the present invention, it is necessary that at least the step of performing the physicochemical adsorption among the two steps is the reaction temperature.
[0015]
In the present invention, the reaction time of the step of supporting the lipid antigen on the insoluble carrier is the step of performing the physicochemical adsorption and the step of stabilizing by the blocking (hereinafter, these two steps are collectively referred to as “sensitization step”). ) And the two steps are limited to 1 to 10 hours. Specifically, it is preferable that the physicochemical adsorption step is 0.5 hour or longer and the stabilization step is 0.5 hour or longer. In particular, it is desirable to make the stabilization process longer. If the sensitization process is less than 1 hour, it is not sufficient for physicochemical adsorption or stabilization, and if it exceeds 10 hours, it becomes difficult for the insoluble carrier particles to maintain their stability (particularly, the reaction temperature is Therefore, it is limited to the above time.
[0016]
The insoluble carrier is limited to latex in which a synthetic polymer powder is uniformly suspended.
The synthetic polymer is not particularly limited. For example, polystyrene, styrene-styrene sulfonic acid copolymer, styrene-methacrylic acid copolymer, acrylonitrile-butadiene-styrene copolymer, vinyl chloride-acrylic acid ester copolymer. And vinyl acetate-acrylic acid ester copolymer. Of these, polystyrene and styrene-styrene sulfonic acid copolymer are preferable.
In the present invention, the latex scan the particle size is preferably from 0.1 to 1.0 [mu] m, more preferably 0.1 to 0.5 [mu] m.
[0017]
The blocking agent is not particularly limited, and examples thereof include albumin such as bovine serum albumin and ovalbumin; and serum of animals such as human, cow, sheep, goat, rabbit, and mouse.
[0018]
The reagent prepared by the present invention can also be used by diluting with an appropriate specimen diluent.
The sample dilution solution is not particularly limited as long as it is a buffer solution having a pH of 5.0 to 9.0. For example, phosphate buffer solution, glycine buffer solution, veronal buffer solution, borate buffer solution, citrate buffer solution, and the like. Is mentioned.
[0019]
Various sensitizers can be added to the specimen diluent for improving the measurement sensitivity and promoting the antigen-antibody reaction.
Examples of the sensitizer include alkylated polysaccharides such as methylcellulose and ethylcellulose described in JP-A-2-173567; pullulan and polyvinylpyrrolidone described in JP-A-5-180838. It is done.
[0020]
Bovine serum albumin (BSA), egg albumin, etc. can also be added to the sample dilution liquid in order to suppress non-specific reactions caused by other substances present in the sample.
[0021]
The reagent for measuring antiphospholipid antibody of the present invention is obtained by the method for producing the reagent for measuring antiphospholipid antibody of the present invention.
The antiphospholipid antibody measurement reagent of the present invention can be applied to a general biochemical automatic analyzer that optically measures the degree of aggregation.
[0022]
【Example】
Hereinafter, the present invention will be described in more detail with reference to examples. However, the present invention is not limited to these examples.
[0023]
Example 1
(1) Preparation of lipid antigen solution 2 ml of ethanol solution of cardiolipin (5 mg / ml, manufactured by Sigma), 10 ml of ethanol solution (10 mg / ml) of purified lecithin (manufactured by Nacalai Tesque) and ethanol of cholesterol (manufactured by Nacalai Tesque) 3 ml of the solution (10 mg / ml) was mixed to obtain a lipid antigen solution.
[0024]
(2) Preparation of lipid antigen-sensitized latex reagent 100 μl of polystyrene latex (average particle size 0.4 μm, 10% (w / v), manufactured by Sekisui Chemical Co., Ltd.) was warmed in advance at 37 ° C. with stirring. To this was added 250 μl of the lipid antigen solution prepared previously, and the mixture was stirred at 37 ° C. for 2 hours. Next, 2 ml of phosphate buffered saline (hereinafter referred to as “PBS”) containing 1% bovine serum albumin (hereinafter referred to as “BSA”) was added, and the mixture was further stirred for 1 hour at 37 ° C. Becomes). Centrifugation was performed at 15000 rpm at 4 ° C. for 15 minutes, the supernatant was removed, and the precipitated latex was again suspended in 3 ml of PBS containing 1% BSA. This operation was repeated three times to wash the latex, and finally suspended in 4 ml of PBS containing 1% BSA, 10 mM EDTA · 4Na, and 500 mM choline chloride. In this way, a lipid antigen-sensitized latex reagent was obtained.
[0025]
(3) Sensitivity measurement Using the lipid antigen-sensitized latex reagent obtained in (2) above and a sample diluent (attached to Mediace TPLA (manufactured by Sekisui Chemical Co., Ltd.)), Hitachi 7170 Biochemistry Measurements were made using an automated analyzer. The measurement wavelength was 700 nm, and for each sample measurement, 30 μl of the lipid antigen-sensitized latex reagent, 210 μl of the sample diluent, and 20 μl of the sample were used. For the measurement, samples having RPR method measurement values (RPR values) of 8, 4, 2, 1, 0.5, and 0 were used, and the amount of change in absorbance of each sample was measured. FIG. 1, FIG. 2, FIG. The results are shown in.
[0026]
Example 2
A reagent was prepared in the same manner as in Example 1 except that the sensitization temperature in Example 1 (2) was 50 ° C., and the sensitivity was measured. The results are shown in FIG.
[0027]
Example 3
In Example 1 (1), 2 ml of an ethanol solution of cardiolipin (5 mg / ml), 15 ml of an ethanol solution of purified lecithin (10 mg / ml) and 3 ml of an ethanol solution of cholesterol (10 mg / ml) were mixed, and the lipid antigen solution and Except for the above, a reagent was prepared in the same manner as in Example 1, and the sensitivity was measured. The results are shown in FIG.
[0028]
Example 4
In Example 1 (1), 2 ml of an ethanol solution of cardiolipin (5 mg / ml), 5 ml of an ethanol solution of purified lecithin (10 mg / ml) and 3 ml of an ethanol solution of cholesterol (10 mg / ml) were mixed together with a lipid antigen solution. Except for this, a reagent was prepared in the same manner as in Example 1, and the sensitivity was measured. The results are shown in FIG.
[0029]
Example 5
Example 1 (2) In preparation of lipid antigen-sensitized latex reagent of Example 1, except that 2 ml of PBS containing 1% BSA was added and further stirred at 37 ° C. for 3 hours (the sensitization process was 5 hours in total). A reagent was prepared in the same manner as in 1, and the sensitivity was measured. The results are shown in FIG.
[0030]
Example 6
Example 1 (2) Preparation of latex antigen-sensitized latex reagent of Example 1 except that 2 ml of PBS containing 1% BSA was added and further stirred at 37 ° C. for 6 hours (the sensitization process was 8 hours in total). A reagent was prepared in the same manner as in 1, and the sensitivity was measured. The results are shown in FIG.
[0031]
Example 7
In the preparation of the latex antigen-sensitized latex reagent of Example 1 (2), 250 μl of the lipid antigen solution was added and stirred as it was at 37 ° C. for 0.5 hour. Next, 2 ml of PBS containing 1% BSA was added, and a reagent was prepared and the sensitivity was measured in the same manner as in Example 1 except that the mixture was further stirred at 37 ° C. for 0.5 hour (the sensitization step was 1 hour in total). . The results are shown in FIG.
[0032]
Comparative Example 1
A reagent was prepared in the same manner as in Example 1 except that the sensitization temperature in Example 1 (2) was 25 ° C., and the sensitivity was measured. The results are shown in FIG.
[0033]
Comparative Example 2
In Example 1 (1), 2 ml of an ethanol solution of cardiolipin (5 mg / ml), 1 ml of an ethanol solution of purified lecithin (10 mg / ml) and 3 ml of an ethanol solution of cholesterol (10 mg / ml) were mixed together with a lipid antigen solution. Except for the above, a reagent was prepared in the same manner as in Example 1, and the sensitivity was measured. The results are shown in FIG.
[0034]
Comparative Example 3
In Example 1 (1), 2 ml of an ethanol solution of cardiolipin (5 mg / ml), 20 ml of an ethanol solution of purified lecithin (10 mg / ml) and 3 ml of an ethanol solution of cholesterol (10 mg / ml) were mixed together with a lipid antigen solution. Except for this, a reagent was prepared in the same manner as in Example 1, and the sensitivity was measured. The results are shown in FIG.
[0035]
Comparative Example 4
In the preparation of the latex antigen-sensitized latex reagent of Example 1 (2), 250 μl of the lipid antigen solution was added and stirred as it was at 37 ° C. for 0.25 hour. Next, 2 ml of PBS containing 1% BSA was added, and a reagent was prepared in the same manner as in Example 1 except that the mixture was further stirred at 37 ° C. for 0.25 hours (the sensitization process was 0.5 hours in total). It was measured. The results are shown in FIG.
[0036]
【The invention's effect】
An antiphospholipid antibody measurement reagent that can measure a large amount of specimens quickly and easily by the method for producing an antiphospholipid antibody measurement reagent of the present invention and that can be used in a highly objective detection method for syphilis Can be obtained.
[Brief description of the drawings]
FIG. 1 is a graph showing the sensitivity of a lipid antigen-sensitized latex reagent in an example. The horizontal axis represents the RPR value, and the vertical axis represents the change in absorbance (Δabs × 10000). White squares are measured values in Example 1, black triangles are measured values in Example 2, and white circles are measured values in Comparative Example 1.
FIG. 2 is a graph showing the sensitivity of a lipid antigen-sensitized latex reagent in Examples. The horizontal axis represents the RPR value, and the vertical axis represents the change in absorbance (Δabs × 10000). □ for whitening is the measurement value of Example 1, □ for blackening is the measurement value of Example 3, x is the measurement value of Example 4, and ○ for whitening is a comparative example 2 is a measured value of Comparative Example 3.
FIG. 3 is a graph showing the sensitivity of a lipid antigen-sensitized latex reagent in Examples. The horizontal axis represents the RPR value, and the vertical axis represents the change in absorbance (Δabs × 10000). □ for whitening is the measurement value for Example 1, □ for blackening is the measurement value for Example 5, △ for whitening is the measurement value for Example 6, and ○ for whitening These are measured values of Example 7, and Δ of blackening is a measured value of Comparative Example 4.

Claims (3)

脂質抗原をラテックスからなる不溶性担体に担持させる抗リン脂質抗体測定試薬の製造方法であって、
前記脂質抗原は、カルジオリピン、レシチン及びコレステロールからなり、
前記脂質抗原を前記不溶性担体に担持させる工程において、脂質抗原が不溶性担体10μgに対してカルジオリピンは0.01〜1.0μg、レシチンはカルジオリピンの3〜15倍量、コレステロールはカルジオリピンの〜5倍量の割合で配合されてなり、反応温度が30〜55℃であり、反応時間が1〜10時間である
ことを特徴とする抗リン脂質抗体測定試薬の製造方法。
A method for producing an antiphospholipid antibody measurement reagent in which a lipid antigen is supported on an insoluble carrier made of latex ,
The lipid antigen consists of cardiolipin, lecithin and cholesterol,
In the step of supporting the lipid antigen on the insoluble carrier, cardiolipin is 0.01 to 1.0 μg, lecithin is 3 to 15 times the amount of cardiolipin, and cholesterol is 1 to 5 times the cardiolipin. A method for producing an antiphospholipid antibody measuring reagent, characterized in that the reaction temperature is 30 to 55 ° C. and the reaction time is 1 to 10 hours.
不溶性担体は、ポリスチレン又はスチレン−スチレンスルホン酸共重合体からなるラテックスである請求項1記載の抗リン脂質抗体測定試薬の製造方法。The method for producing an antiphospholipid antibody measuring reagent according to claim 1, wherein the insoluble carrier is a latex made of polystyrene or a styrene-styrenesulfonic acid copolymer. 請求項1又は2記載の抗リン脂質抗体測定試薬の製造方法により得られることを特徴とする抗リン脂質抗体測定試薬。An antiphospholipid antibody measurement reagent obtained by the method for producing an antiphospholipid antibody measurement reagent according to claim 1 or 2.
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