JP2003508047A - 移植片−対−宿主疾患を抑制するサイトカイン、細胞およびマイトジェンの使用 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 本発明の分野は、同種異型の骨髄移植を受けた患者における移植片−対−宿主疾患を処置するのに有用な医薬に一般的に関する。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】 （背景技術） 臓器移植はいまヒトの生活の質を高めるため大成功裏に利用されている。実質
的な進歩は非近縁個体からの腎臓、心臓および肝臓を用いてなされてきた。しか
し、非近縁（あるいは同種異型）のドナーから造血幹細胞の移植はより複雑な努
力が必要である。あらゆる造血要素と免疫系を再生する能力をもつ多能性幹細胞
が、ひとつの個体由来の骨髄や末梢血液から採取され、別の個体に移植される。
しかし、ドナーとレシピエント間の組織適合性の相違が高頻度で移植関連の合併
症を来たし、さらに臓器移植法の利用を制限してきた（Forman et al., Blackwe
ll Scientific Publications 1994）。

【０００２】 移植法によって治療が可能な疾病の範囲は着実に広がっているのに、不幸なこ
とに、同種異型造血幹細胞移植の志願者は現在わずかしか居ない。こういった疾
病には、急性または慢性の白血病のような血液性悪性腫瘍、多発性骨髄腫、骨髄
形成異常症候群、リンパ腫、さらに再生不良性貧血またはサラセミアのような重
篤な貧血が挙げられる。

【０００３】 同種異型幹細胞移植は高度に免疫抑制的な調整療法でレシピエントへの処置が
始まる。このことは、骨髄の血液構成要素をすべて効果的に破壊する高用量の化
学療法剤および放射線照射によって最も一般的に達せられる。ドナー幹細胞移植
のためにレシピエントの骨髄を準備することのほかに、調整療法は体内に残る多
くの悪性腫瘍を殺すのに役立つ。調整療法の完了とドナー幹細胞の植え付けの期
間はレシピエントにとって最も危険である。この期間中レシピエントは完全に免
疫不全状態にあり、生命を脅かす感染症に罹りやすくなっている。この弱みは、
移植されたドナー幹細胞が増殖し必要な白血球細胞および感染と戦うのに要する
免疫細胞に分化するまで持続する。

【０００４】 さらにドナー幹細胞の調製物は、Ｔリンパ球と呼ばれる免疫細胞を一般に含ん
でいる。ドナー幹細胞が全く同じ双胎に由来するのでない限り、移植されたＴ細
胞はレシピエントの組織に敵対し、移植片−対−宿主疾患（ＧＶＨＤ）という致
命的な疾患を誘発する。これはドナーのＴリンパ球がレシピエントの組織適合性
抗原を外来のものと認識し、これに対応して多臓器機能障害と破壊を引き起こす
からである。

【０００５】 現行の免疫抑制の技術によって、近縁の組織適合性（ＨＬＡ適合）ドナーから
同種異型の幹細胞の移植は、従来に比して非常に安全になっている。近縁でない
ＨＬＡ適合ドナーから同種異型幹細胞の移植は、一般的に重篤でしばしば致命的
なＧＶＨＤによって悪化する。ＧＶＨＤの脅威はドナー幹細胞がＨＬＡ不適合の
場合なお一層高い。

【０００６】 同種異型幹細胞を必要とする患者のわずか３０％が同一の組織適合性抗原の血
縁者を持っているので（Dupont, B., Immunol. Reviews 157:12, 1997）、ＨＬ
Ａ適合で非近縁の移植術およびＨＬＡ不適合の移植術をより安全な方法とする必
要性は大きい。この問題を解決する原理的なアプローチはふたつある。一つは移
植片からＴリンパ球の汚染を無くすこと、もう一つはＴ細胞がレシピエントを攻
撃できないようにＴ細胞を不活化することである。

【０００７】 １９７０年代に、骨髄移植片を植えた動物で、移植に先立ち骨髄の移植片から
成熟Ｔリンパ球を生体外で除去すると、主要組織適合性障害を克服してＧＶＨＤ
を劇的に減少または防止することが明らかになった（Rodt, H., J. Immunol. 4:
25-29, 1974; Vallera et al., Transplantation 31:218-222, 1981）。しかし
、Ｔ細胞の減少によって移植の失敗、移植の拒絶、白血病の再発、およびウイル
ス誘発性のリンパ球増殖性疾患の頻度が著しく増加した（Martin et al., Blood
66:664-672, 1985; Patterson et al., Br. J. Hematol. 63:221-230, 1986; G
oldman et al., Ann. Intern. Med. 108:806-814, 1988; Lucas et al., Blood
87:2594-2603, 1966）。このようにドナーＴ細胞の幹細胞への移植は有害と有益
な作用をもっている。幹細胞移植に対するＴ細胞の促進作用、および移植片−対
−宿主疾患（ＧＶＨＤ）ではなく、移植片−対−腫瘍をよく認識する作用を必要
としている。

【０００８】 Ｔ細胞の活性化を弱めるためには幾つかのアプローチがある。それらを以下に
挙げると：（１）ＦＫ５０６およびラパマイシンのような薬剤の生体内免疫抑制
効果（Blazar et al., J. Immunol. 153:1836-1846, 1994; Dupont et al., J.
Immunol. 144:251-258, 1990; Morris, Ann. NY Acad. Sci. 685:68-72, 1993;
Blazar et al., J. Immunol. 151:5726-5741, 1993)、（２）Ｔ細胞決定因子に
対して活性なモノクロナール抗体（ｍＡｂ）または毒素に結合したｍＡＢの、無
傷およびＦ（ａｂ'）２フラグメントを用いたＧＶＨＤ活性Ｔ細胞の生体内標識
化（Gratama et al., Am. J. Kidney Dis. 11:149-152, 1984; Hiruma et al.,
Blood 79:3050-3058, 1992; Anasetti et al., Transplantation 54:844-851, 1
992; Martin et al., Bone Marrow Transplant 3:437-444, 1989） 、（３）Ｉ
Ｌ−２／サイトカイン受容体相互作用（Herve et al., Blood 76:2639-2640, 19
90) 経由、または共刺激性または接着原性シグナルのブロックによるＴ細胞活性
化阻害を経由したＴ細胞のシグナル伝達阻害（Boussiotis et al., J. Exp. Med
. 178:1753-1763, 1993; Gribben et al., Blood 97:4887-4893, 1996; Blazar
et al., Immunol. Rev. 157:79-90, 1997）、（４） 急性ＧＶＨＤ誘導Ｔヘルパ
ー１型Ｔ細胞間のバランスが、それらの細胞が作られるサイトカイン環境を経由
して、抗炎症性Ｔヘルパー２型Ｔ細胞に移ること(Krenger et al., Transplanta
tion 58:1251-1257,1994; Blazar et al., Blood 84:247, 1996, abstract; Kre
gner et al., J. Immunol. 153:585-593, 1995; Fowler et al., Blood 84:3540
-3549, 1994)、（５）Ｔ細胞受容体／主要組織適合性遺伝子複合体（ＭＨＣ）相
互作用、クラスIIＭＨＣ／ＣＤ４相互作用、またはクラスＩＭＨＣ／ＣＤ８相互
作用に影響を与えるペプチド誘導体で処置することによる同種異型反応性Ｔ細胞
の活性化の調整（Townsend、Korngold（未発表データ））、および（６）供与さ
れた細胞のレシピエント組織に対する攻撃を停止させる遺伝子治療の利用(Bonin
i et al., Science 276:1719-24, 1997)である。

【０００９】 同一ではないドナー由来のＴリンパ球がレシピエントの組織に寛容となり得る
ことを示唆する証拠がある。慢性拒絶反応を管理するために、生涯にわたる免疫
抑制治療を必要とするような固形の臓器同種移植を受けた患者とは異なり、幹細
胞の同種移植には免疫寛容を示す証拠がある。このような大多数の患者はＧＶＨ
Ｄに罹った証拠なく免疫抑制を免れることができる（Storb et al., Blood 80:5
60-561, 1992; Sullivan et al., Semin. Hematol. 28:250-259, 1992）。

【００１０】 免疫寛容は抗体に対する非応答の特異な状態をいう。免疫寛容は免疫応答の欠
如以上のことを一般に含んでいる。この状態は免疫系の適応応答であり、免疫応
答の特質である抗原特異性と記憶に適っている。寛容は成熟動物よりも胎児また
は新生動物においてより容易に生起し、このことは幼若Ｔ細胞およびＢ細胞は寛
容誘導に対する感受性がより高いことを示唆している。さらに、Ｔ細胞とＢ細胞
はその寛容誘導において異なっていることが研究で示された。寛容誘導は一般に
クロナール欠如またはクロナール・アネルギーによってなされる。クロナール欠
如では幼若リンパ球が成熟中に除去される。クロナール・アネルギーでは、末梢
リンパ様器官に存在する成熟リンパ球が機能的に不活性となる。

【００１１】 抗原のチャレンジ刺激に続いて、一般にＴ細胞が刺激されて抗体生成あるいは
細胞性免疫を促進する。しかし、Ｔ細胞は刺激を受けてその免疫応答も阻害する
。この下方調節の性質をもつＴ細胞は「サプレッサー細胞」と呼ばれる。

【００１２】 サプレッサーＴ細胞は、免疫抑制効果を有する形質転換成長因子ベータ（ＴＧ
Ｆ−β）、インターロイキン４（ＩＬ−４）あるいはインターロイキン１０（Ｉ
Ｌ−１０）のようなサイトカインを生産することが知られているが、最近までこ
れら調節性細胞の生成に関わるメカニズムはあまり知られていなかった。一般に
考えられていたことは、ＣＤ４+Ｔ細胞がＣＤ８−Ｔ細胞を生成して下方調節活
性を生起すること、およびＣＤ４＋細胞によって作られたインターロイキン２（
ＩＬ−２）がその作用を仲介することであった。ＩＬ−２がサプレッサーＴ細胞
の生起に重要な役割を持っていることに、たいていの免疫学者は同意するが、こ
のサイトカインが直接に働くのかあるいは間接的に働くのかについては異論があ
る（Via et al., International Immunol. 5:565-572, 1993; Fast, J. Immunol
. 149:1510-1515, 1992; Hirohata et al., J. Immunol. 142:3104-3112, 1989;
Taylor, Advances Exp. Med. Biol. 319:125-135, 1992; Kinter et al., Proc
. Natl. Acad. Sci. USA 92:10985-10989, 1995）。最近ＩＬ−２がＣＤ８＋細
胞を生成して、非分解メカニズムによりＣＤ４−Ｔ細胞でのＨＩＶの複製を抑制
することが示された。この作用はサイトカイン仲介であるが、この作用を持つ特
異なサイトカインはまだ同定されていない（Baker et al., J. Immunol. 156:44
76-83, 1996; Kinter et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 99:10985-9, 1995
）。

【００１３】 他の副細胞のない状態でＴ細胞／Ｂ細胞の相互作用を研究するため、ヒトの末
梢血リンパ球を使ったモデルが開発された（Hirokawa et al., J. Immunol. 149
:1859-1866, 1992）。このモデルを用いてＣＤ４＋Ｔ細胞は、強力なサプレッサ
ー細胞となるＣＤ８＋Ｔ細胞を作る能力を欠いていることが分った。しかし、Ｃ
Ｄ８＋Ｔ細胞とＮＫ細胞の組み合わせは、強い抑制性活性を誘導する（Gray et
al., J. Exp. Med. 180: 1937-1942, 1994）。ついでＮＫ細胞は活性型ＴＧＦ−
βの生成に寄与することが示された。このサイトカインの非免疫抑制の低濃度（
１０−１００ｐｇ／ｍｌ）は、ＩｇＧおよびＩｇＭ生成に対する強い抑制効果を
生み出す補因子として役立つことが報告された（Gray et al., J. Exp. Med. 18
0:1937-1942, 1994）。さらに、ＮＫ細胞はＴＧＦ−βの主たるリンパ球源であ
ることが示された（Gray et al., J. Immunol. 160:2248-2254, 1998）。

【００１４】 ＴＧＦ−βは組織修復、炎症および免疫制御に重要な多機能性サイトカインの
一族である（Border et al., J. Clin. Invest. 90:1-7, 1992; Sporn et al.,
J. Cell Biol. 105:1039-1045, 1987）。ＴＧＦ−βは、放出されたタンパク質
が生理学的に不活性であり特異な受容体に結合できない点で、他の大部分のサイ
トカインとは異なる（Massague, Cell 69:1067-1070, 1992）。潜伏性から活性
のＴＧＦ−βへの転換はこのサイトカインの生理学的作用を決定する重要な段階
である。

【００１５】 ＮＫ細胞誘導のＴＧＦ−βはＧＶＨＤの予防に対して役割を持つという幾つか
の証拠がある。マウス株由来の幹細胞を他の組織不適合な株に移転すると、すべ
てのレシピエントがＧＶＨＤによって１９日以内に死に至るが、ドナー動物から
ＮＫ細胞への同時的移転はこの結末を完全に防止した。すべてのレシピエントマ
ウスは、期間は不定であるが生存した。しかし、この治療効果は中和抗体の投与
によってＴＧＦ−βの効果に拮抗させると完全に阻止された（Murphy et al., I
mmunol. Rev. 157:167-176, 1997）。

【００１６】 したがって、ＮＫ細胞誘導ＴＧＦ−βがＧＶＨＤを予防するメカニズムは、抗
体生成の下方調節についての報告（Horwitz et al., Arthritis Rheum. 41:838-
844, 1998）と確かに類似しているようである。各々の場合、ＮＫ細胞誘導のＴ
ＧＦ−βによって、それぞれの免疫応答を阻止する抑制性リンパ球の生成が起き
る。遺伝的に異種同型交配マウス間での組織適合性の相違は、非近縁のヒト・ド
ナーのそれを反映するであろうから、マウスでの研究は特に興味がある。したが
って、戦略の修正は組織不適合のヒトのＧＶＨＤを克服するに違いない。

【００１７】 ＧＶＨＤを予防する一つの戦略はＮＫ細胞を単離して幹細胞と共に移転させる
ことであろう。もう一つは、同種異型幹細胞を受けた免疫不全状態のレシピエン
トをＴＧＦ−β、抗ＣＤ２モノクロナール抗体、ＩＬ−２、あるいはこれらサイ
トカインの組み合わせで処置することであろう。初めの戦略は難しい。というの
は、ＮＫ細胞は全リンパ球のわずか１０ないし２０％より成っているので、移転
に十分な細胞数を採取することが困難である。二番目の戦略は、モノクロナール
抗体およびサイトカインの全身的毒性副作用により制約を受ける。ＩＬ−２およ
びＴＧＦ−βは異なる体組織に対し様々な作用を有しており、患者に全身的に投
与するのは安全ではない。したがって必要なことは、生体外でＧＶＨＤの生起を
抑制する哺乳動物細胞を誘発する方法である。

【００１８】 生体外でサプレッサーＴ細胞を生成させるアプローチはＧＶＨＤの生起を抑制
する効果的な方法を提供するのであろう。生体外でサプレッサーＴ細胞を生成さ
せるという目標に向けての第一段階は、強力な抑制効果を持つＴ細胞を同定する
ことである。ＣＤ８＋細胞に加えてＣＤ４＋細胞が強力な抑制効果を持っている
との注目に値する証拠がある。この証拠は以下の知見に依る。先ずＣＤ４５ＲＢ ^hi ＣＤ４＋ＣＤ２５＋Ｔ細胞を除去した正常マウス由来の末梢Ｔ細胞を無胸腺マ
ウスに注射すると、器官特異的自己免疫疾患が高率で発症する（Powrie F. et a
l., J. Exp. Med. 183:2669-74, 1996）。第二は、新生児期に胸腺を摘出したマ
ウスのある株が多臓器特異性的自己免疫を生起させることである（Powrie F. et
al., J. Exp. Med. 183: 2669-74, 1996; Skaguchi S. et al., J. Exp. Med.
161(1):72-87, 1985）。これらの知見を合わせて考えると、正常な免疫系は自己
反応性Ｔ細胞を含んでいることを示すが、この結果は調節性Ｔ細胞により防ぎ得
ることを示唆している。この示唆は、上記の自己免疫症候群がＣＤ４＋ＣＤ２５
＋Ｔ細胞の転換によって防げるとの知見でもって確認されている（Asano, M., e
t al., J. Exp. Med. 184:387-396, 1996; Sakaguchi, S., et al., J. Immunol
. 155:1151-1164, 1995; Papiernik, M., et al., J. Immunol. 158:4642-4653,
1997; Suri-Payer, E., et al., J. Immunol. 160:1212-1218, 1998; Jackson,
A. L., et al., Clin. Immunol. Immunopthol. 54(1):126-133, 1990; Kanegan
e, H., et al., Int. Immunol. 3(12):1349-1356, 1991）。新生マウスは、出生
後一週間まではＣＤ４＋ＣＤ２５＋細胞を生成しないので、それを持っていない
（Asano, M., et al., J. Exp. Med. 184:387-396, 1996; Suri-Payer, E., et
al., Eur. J. Immunol. 29:669-677, 1999）。

【００１９】 このようにＣＤ４＋ＣＤ２５＋Ｔ細胞はポリクロナールＴ細胞の活性化の強力
な抑制因子である（Thornton, A.M., Shevach, E.M., J. Exp. Med. 188:287-29
6, 1998）。Ｔ細胞受容体（ＴＣＲ）を経て活性化後、該Ｔ細胞は応答Ｔ細胞に
よりＩＬ−２の生産を阻害する（Takahashi, T., et al., Int. Immunol. 10:19
69-80, 1998; Thornton, A.M., Shevach, E.M., J. Immunol. 164(1):183-190,
1999）。阻害性サイトカインを生成する他の調節性Ｔ細胞とは異なり（Powrie,
F., et al., J. Exp. Med. 183:2669-74, 1996; Weiner, H.L., et al., Annu.
Rev. Immunol. 12:809-837, 1994）、該細胞は、少なくとも試験管内で、接触依
存性メカニズムによって免疫応答を抑制する（Thornton, A.M., Shevach, E.M.,
J. Immunol. 164(1):183-190, 1999）。他には、新生児様に寛容なマウスでア
ネルギーを調節するＣＤ４＋ＣＤ２５＋細胞についての報告がある（Gao, Q., e
t al., Transplantation 68:1891-1897, 1999）。

【００２０】 調節性ＣＤ４＋ＣＤ２５＋Ｔ細胞は胸腺のみならず末梢にて生産され得ること
、またＴＧＦ−βはナイーブＣＤ４＋細胞を方向づけその性質を生起することを
我々は見出した。したがって、よく知られた免疫抑制効果に加え、ＴＧＦ−βは
Ｔ細胞の成長と生起に肯定的な作用を持っている。ＴＧＦ−βはＣＤ８＋Ｔ細胞
とＣＤ４＋Ｔ細胞の両方を区別するのに重要な役割を果たしサプレッサー細胞と
なる。

【００２１】 したがって、レシピエントへの導入時にかろうじて増殖できるサプレッサーＴ
細胞を生体外で生成させる戦略が望まれる。このような戦略は、非近縁個体の白
血球細胞に対しＣＤ４＋細胞を免疫することを含むであろう。この方法で免疫さ
れたＣＤ４＋細胞は活性化されてＣＤ２５＋となり、自然発生の胸腺誘導ＣＤ４
＋ＣＤ２５＋細胞と同一でないにしろ、それに類似の抑制性質を生起する。幹細
胞の移植に続いて、ＣＤ４＋ＣＤ２５＋サプレッサー細胞は、ドナーの造血細胞
により繰り返し再刺激を受けるであろうし、こうして長期にわたる阻害作用を発
揮する。

【００２２】 （本発明の要旨） ここに概略する目的のように、本発明は、生体外の末梢血単核細胞 (ＰＢＭＣ
)サンプル中のＴ細胞寛容を誘発する方法であって、細胞に阻害誘発組成物を添
加することを含む方法を提供する。阻害誘発組成物は、ＩＬ−２、ＩＬ−１０、
ＴＧＦ−βまたはそれらの混合物であり得る。

【００２３】 更なる態様で、本発明は、レシピエント患者の移植片−対−宿主疾患を軽減す
る方法を提供する。この方法は、ドナーから末梢血単核細胞(ＰＢＭＣ)を取り出
すこと、およびこの細胞を阻害誘発組成物で、Ｔ細胞寛容を誘発するのに十分な
時間、処理することを含む。次いで、細胞をレシピエント患者に導入する。所望
により、ＰＢＭＣにＣＤ８＋細胞またはＣＤ４＋細胞を富み得る。この方法は、
患者への導入前に、処置細胞をドナー幹細胞に加えることをさらに含み得る。

【００２４】 更なる態様で、本発明は、Ｔ細胞を活性化してサプレッサー細胞とする方法を
提供する。この方法は、Ｔ細胞をＴＧＦ−βで処置することを含む。この方法は
、Ｔ細胞をＴＧＦ−βで、活性化剤と併用して処置することをさらに含み得る。

【００２５】 更なる態様で、本発明は、ドナー細胞を処置するためのキットを提供する。こ
のキットは、ドナーから細胞を受容するのに適した細胞処置容器、および少なく
とも１用量の阻害誘発組成物を含む。このキットは、説明書および試薬をさらに
含み得る。細胞処置容器は、分析のために細胞の分画を取り出し得るサンプリン
グ口、および細胞の少なくとも部分をレシピエント患者に移転し得るのに適した
出口を含み得る。

【００２６】 （図面の説明） 図１Ａおよび１Ｂは、ＴＧＦ−βがＴ細胞上でＣＤ４０リガンド（ＣＤ４０Ｌ
）の発現を上方調節し得ることを示す。精製Ｔ細胞をＰＭＡ（２０ｎｇ／ｍｌ）
およびイオノマイシン（５μＭ）でＴＧＦ−βの存在または不存在下に刺激した
。６時間後に細胞を抗ＣＤ４０Ｌ抗体で染色した。ＴＧＦ−βの不存在で３０％
の陽性細胞があった（実線、パネルＡ）。１００ｐｇ／ｍｌのＴＧＦ−βでもっ
て、６６％の細胞が陽性であった（実線、パネルＢ）。両パネルの破線は対照抗
体の活性を示す。

【００２７】 図２Ａ、２Ｂ、２Ｃ、２Ｄは、ＴＧＦ−βがＣＤ８＋細胞によるＴＧＦ−α発
現を増加せしめることを示す。精製ＣＤ８＋細胞を２４時間ＣｏｎＡ（５μｇ／
ｍｌ）±ＴＧＦ−β（１０ｐｇ／ｍｌ）±ＩＬ−２（１０Ｕ）で刺激した。最後
の６時間ではモネンシン（２μＭ）も存在してサイトカイン放出を防いだ。細胞
を最初に抗ＣＤ６９で染色し、活性化細胞を識別した。ついで細胞を固定し（４
％パラホルムアルデヒド）、浸透化し（０.１％サポニン）、ＴＧＦ−α抗体で
染色した。

【００２８】 図３Ａおよび３Ｂは、ＴＧＦ−βがＴ細胞によるＩＬ−２発現を増加せしめる
ことを示す。精製Ｔ細胞をＴＧＦ−β（１ｎｇ／ｍｌ）の存在または不存在下に
刺激した。ＴＧＦ−βの不存在で３０％の陽性細胞があった（実線、パネルＡ）
。ＴＧＦ−βの存在で５３％が陽性であった（実線、パネルＢ）。

【００２９】 図４Ａ、４Ｂ、４Ｃは、ＴＧＦ−βが細胞毒性活性を増加または阻害し得るこ
とを示す。パネルＡは、ドナーＴ細胞がレシピエント血液細胞を認識し殺す能力
を示す。パネルＢでは、精製Ｔ細胞を、刺激した同種異型スティムレーター細胞
とともに、表示したサイトカインの存在または不存在下で培養した。４８時間後
に細胞を洗い、さらなる３日後に^３１Ｃｒ標識スティムレーターＣｏｎＡ芽細胞
に対する細胞毒性活性を調べた。パネルＣでは、精製ＣＤ８＋細胞を表示量のＴ
ＧＦ−βで処理した。４８時間後に細胞を洗った。培養５日後に細胞毒性活性を
測定した。

【００３０】 図５は、ＴＧＦ−βで処理されたＣＤ８＋Ｔ細胞による不適合ヒト細胞に対す
る細胞毒性Ｔ細胞活性の抑制を示す。ドナーＡからの精製ＣＤ８＋細胞を、非近
縁のドナーＢからの刺激したＴ細胞除去単核細胞とともに４８時間、１０ｐｇ／
ｍｌのＴ細胞の存在または不存在で培養した。ついで細胞を洗い、ドナーＡから
のＴ細胞およびドナーＢからの刺激した非Ｔ細胞に加え、さらに５日間培養した
。ドナーＢのクロム標識ＣｏｎＡ芽細胞に対するドナーＡのＴ細胞による細胞毒
性を、通常の４時間クロム放出アッセイで測定した。エフェクターと標的との種
々の割合を示す。白丸：ドナーＡからのＴ細胞およびドナーＢからの非Ｔ細胞、
添加のＣＤ８＋なし。黒四角：対照ＣＤ８＋Ｔ細胞を添加。黒丸：ＴＧＦ−β処
理ＣＤ８＋を添加。

【００３１】 図６は、ナイーブＣＤ８＋Ｔ細胞が、ＴＧＦ−βの存在で活性化されると、強
力な抑制活性を起こすことを示す。２段階共培養法において、ドナーＡからの精
製Ｔ細胞サブセットを５日間、ドナーＢからの刺激された（３０００ｃＧｙ）同
種異型スティムレーター細胞±ＴＧＦ−β（１ｎｇ／ｍｌ）で刺激した。第２培
養においては、免疫起動Ｔ細胞サブセットと新鮮な同系のＴ細胞とを１：４の比
率で混合し、これらの細胞をドナーＢからの刺激されたスティムレーター細胞と
ともに５日間培養した。ドナーＢからのＣｏｎＡ芽細胞に対するＣＴＬ活性を、
標準的な４日間クロム放出アッセイにより、表示のようなエフェクターと標的細
胞との割合で測定した。図６Ａは、ＴＧＦ−βで免疫起動された同種異型活性化
ＣＤ４＋ＣＤ４５ＲＡ＋細胞が対照のＣＤ４＋細胞に比して顕著にＣＴＬ活性の
生成を抑制することを示す。示していない追加の対照は、ＴＧＦ−βと５日間培
養したが、同種異型のＭＨＣ刺激のないＣＤ４＋細胞である。この細胞は抑制作
用を有しなかった。図６Ｂでは、試験プロトコールはＣＤ４＋ＣＤ４５ＲＡ＋を
ＣＤ８＋ＣＤ４５ＲＡ＋に置き換えた以外同じである。これらの条件で、同種異
型抗原での免疫起動ＣＤ８＋ＣＤ４５ＲＡ＋細胞はＴＧＦ−βの存在で抑制活性
の生成を高めない。

【００３２】 図７は、ＴＧＦ−βで免疫起動されたＣＤ４＋細胞の同種異型細胞毒性リンパ
球（ＣＴＬ）活性に対する作用を示す。スティムレーターなしで５日間培養され
たＣＤ４＋ＣＤ４５ＲＡの添加は、ＣＴＬ活性に対する作用を有しなかった（結
果は示さない）。スティムレーターとともにこのＴ細胞を培養すると、低度から
中程度の阻害活性をもたらした。すべての試験において、このＴ細胞のＴＧＦ−
βの１ｎｇ／ｍｌとの培養は同種異型ＣＴＬ活性を抑制または消失せしめた。

【００３３】 図８は、調節性Ｔ細胞が細胞接触でＣＴＬ活性を阻害することを示す。ＣＤ４
reg および対照ＣＤ４＋細胞の生成は、上記のようにナイーブＣＤ４＋細胞を
同種異型スティムレーター細胞±ＴＧＦ−βで活性化して行った。第２培養にお
いて、ＣＤ４ reg または対照ＣＤ４＋細胞を応答細胞と直接混合するか、また
は Transwell（商標）チェンバーを用いる半浸透性膜により単離した。Transwel
l はＣＤ４＋細胞およびスティムレーター細胞を含有している。示した結果は３
つの独立した実験のひとつである。

【００３４】 図９は、ナイーブＣＤ４＋Ｔ細胞のＴＧＦ−β存在下での活性化によって、こ
の細胞が同種異型抗原に対して強く応答し得るようになり、その活性化表現型へ
の転換が促進され、活力が増加することを示す。精製ナイーブＣＤ４＋Ｔ細胞の
５日間培養を、スティムレーター細胞なし（灰色部分）、刺激された同種異型ス
ティムレーター細胞とともに（薄い破線）、スティムレーター細胞およびＴＧＦ
−β（１ｎｇ／ｍｌ）とともに（濃い線）で行った。細胞表面および細胞内抗原
の発現をフローサイトメトリーにより測定した。細胞（１０^５）を、ＦＩＴＣコ
ンジュゲート（抗ＣＤ４、抗ＣＤ２５）、フィコエリトリン−コンジュゲート（
抗ＣＤ４５ＲＡ、抗ＣＴＬＡ−４）またはチクローム−コンジュゲート（抗ＣＤ
４）ｍＡｂで標識した。ＣＴＬＡ−４発現を細胞内染色により分析した。アポト
ーシス細胞を検出するために、アネキシン−Ｖ染色を製造者の説明どおり行った
。この実験は各マーカーでの少なくとも５試験についての代表例である。

【００３５】 図１０は、ＣＤ４ reg がＣＤ２５を表現し、強力な抑制活性にかなり少数を
要することを示す。刺激された同種異型スティムレーター細胞±ＴＧＦ−β（１
ｎｇ／ｍｌ）およびＣＤ４ reg で免疫起動されたナイーブＣＤ４＋Ｔ細胞を細
胞選別によりＣＤ２５＋とＣＤ２５−分画に分けた。図１０Ａは、免疫起動ＣＤ
４＋細胞および新鮮Ｔ細胞の１：４割合の混合での効果を示す。図１０Ｂは、新
鮮な応答細胞に加えられた免疫起動ＣＤ４＋Ｔ細胞について種々の稀釈でのＣＴ
Ｌ活性の生成に対する作用を示す。示した結果はエフェクターと標的細胞の割合
１００：１についてである。この結果は３つの同じ実験の代表例である。

【００３６】 図１１は、ＣＤ４＋ＣＤ２５＋Ｔ細胞を増量し、その強力な阻害作用を保持せ
しめ得ることを示す。ＴＧＦ−βの存在で免疫起動したナイーブＣＤ４＋細胞の
ＣＤ４＋ＣＤ２５＋分画を細胞選別により得て、ＩＬ−２（１０Ｕ／ｍｌ）の存
在下で５日間培養した。表示の％で新鮮なＴ細胞に加え、ＣＴＬ活性の生成に対
する阻害を調べた。刺激したＣＤ４＋ＣＤ２５＋細胞を対照とした。

【００３７】 図１２は、ＴＧＦ−βで誘発された調節性ＣＤ４＋Ｔ細胞によるリンパ球増殖
の抑制を示す。ドナーＡからのナイーブＣＤ４＋Ｔ細胞を上記のようにスティム
レーター細胞と混合し、表示の割合で新鮮な応答細胞およびスティムレーター細
胞に加えた。バーは、培養７日後のトリチウム・チミジンの取り込み±ＳＥＭを
示す。白いバーは、ＣＤ４＋細胞添加なしの応答細胞の増殖性応答を示す。斜線
のバーは、ＴＧＦ−βなしでスティムレーター細胞と混合されたＣＤ４＋細胞の
作用を示す。黒いバーは、ＴＧＦ−βの存在（１ｎｇ／ｍｌ）でスティムレータ
ー細胞と混合されたＣＤ４＋細胞の作用を示す。刺激されたスティムレーター細
胞に加えられた新鮮な応答細胞の増殖性応答に対するＣＤ４＋細胞の作用を示す
。バは、トリチウム・チミジンの取り込みの平均値である。

【００３８】 図１３は、ＣＤ２５＋ＣＤ４Ｔ細胞の調節性活性を示す。ＣＤ４＋細胞を、刺
激した同種異型非Ｔ細胞±ＴＧＦ−β（１ｎｇ／ｍｌ）で５日間刺激した。洗っ
た後、ＣＤ４＋細胞をＤIIで染色し、新鮮な応答Ｔ細胞をカルボキシフルオレセ
イン（ＣＦＳＥ）で染色した。対照またはＴＧＦ−β免疫起動のＣＤ４＋細胞を
、応答Ｔ細胞および同種異型スティムレーター細胞に１：４の割合で加えた。５
日後に細胞を採取し、フローサイトメトリーで分析した。ＣＤ８＋細胞における
ＣＦＳＥ強度の測定をＤII陰性細胞に対するゲーティングで行った。ＴＧＦ−β
免疫起動ＣＤ４＋細胞を応答細胞に加えると、ＣＤ８＋細胞による細胞分割が顕
著に低下した。

【００３９】 図１４は、細胞毒性Ｔ細胞活性について、ＣＤ４ reg が応答Ｔ細胞の同種異
型抗原に対する増殖性応答をブロックし、ＣＤ８＋Ｔ細胞がその主要な標的であ
ることを示す。図１４Ａでは、ＣＤ４ reg または免疫起動された対照ＣＤ４＋
細胞を新鮮なＴ細胞と１：４の割合で混合し（１０^５／ウエル）、刺激されたス
ティムレーター細胞（１０^５／ウエル）とともに５日間３組培養した。この培養
基を［^３Ｈ］ＴｄＲで最後の１８時間処理した。図１４Ｂでは、培養ＣＤ８＋細
胞の表現型を、ＣＤ８＋細胞をゲーティングするフローサイトメトリーで測定し
た。灰色部分は、スティムレーター細胞なしで５日間培養された細胞を示す。濃
い線は、スティムレーター細胞およびＣＤ４ reg とともに培養されたＣＤ８細
胞を示す。薄い破線は、対照ＣＤ４細胞とともに培養されたＣＤ８細胞を示す。
リンパ球を、ＦＩＴＣコンジュゲート（抗ＣＤ６９）、フィコエリトリン−コン
ジュゲート（抗ＣＤ２５、抗ＣＤ９５）またはチクローム−コンジュゲート（抗
ＣＤ８）ｍＡｂで標識した。アネキシン−Ｖ染色、ＣＦＳＥレベル、ヨウ化プロ
ピジウム染色によるＤＮＡ含量も示す。

【００４０】 図１５は、低量のブドウ球菌性エンテロトキシンＢ（ＳＥＢ）によるＴ細胞の
反復刺激がＴ細胞を誘発してＴＧＦ−βの免疫抑制レベルをつくることを示す。
ＣＤ４＋Ｔ細胞を、ＳＥＢ（０.０１ｎｇ／ｍｌ）およびスーパー抗原表示細胞
としての刺激Ｂ細胞で、ＴＧＦ−βの有無で、矢印で表示の時点で刺激した。活
性ＴＧＦ−βを２日または５日後に測定した。

【００４１】 図１６は、低量のＳＥＢによるＣＤ４＋Ｔ細胞の反復刺激がＴ細胞を誘発して
ＴＧＦ−βの免疫抑制レベルをつくることを示す。ＣＤ４＋Ｔ細胞を、ＳＥＢ（
０.０１ｎｇ／ｍｌ）およびスーパー抗原表示細胞としての刺激Ｂ細胞で、ＴＧ
Ｆ−βの有無で、矢印で表示の時点で刺激した。活性ＴＧＦ−βを２日または５
日後に測定した。

【００４２】 図１７は、ＳＥＢのナイーブ（ＣＤ４５ＲＡ＋ＣＤ４５ＲＯ−）ＣＤ４＋およ
びＣＤ８＋Ｔ細胞に対する作用を示す。細胞をＳＥＢで５日毎に計３回刺激した
。各Ｔ細胞サブセットおよびＣＤ２５ＩＬ−２受容体活性化マーカーを発現する
細胞を、各刺激後に測定した。パネルＡおよびＣは、ＴＧＦ−βの１ｎｇ／ｍｌ
が最初の刺激時に含まれていると、ＣＤ４＋Ｔ細胞が反復刺激後に培養基中で優
勢なサブセットになることを示す。パネルＢおよびＤは、ＳＥＢ刺激細胞による
ＣＤ２５発現が対照培養基で第３回刺激により低下することを示す。しかし、Ｔ
細胞がＴＧＦ−βで免疫起動されていると、ＣＤ２５発現は高いままである。

【００４３】 （発明の詳細な説明） 本発明は、生命に危険性のある移植片−対−宿主疾患を防ぐ方法を用いて、種
々の悪性または遺伝性疾患のヒトに、組織不適合性幹細胞を移転することを可能
にする。これは、ドナー細胞を同種異型抗原および／またはサイトカインの併用
で生体外で処置することを伴う。この方法の特に優れた点は、幹細胞移植を容易
にし、かついかなる残存の悪性細胞を攻撃する力を有するドナーＴ細胞を除去し
ないでよいことである。ドナーと宿主間の寛容状態が達成されると、非処置ドナ
ーＴ細胞を移転して、好ましい移植片−対−腫瘍の免疫応答を最大にできる。

【００４４】 この戦略は、現在行われているすべての他の処置方法と異なる。記載のような
サイトカインおよびマイトジェンは、インビボ投与されると、重い毒性副作用を
有する。記載の生体外プロトコールはこのような副作用を回避できる。生命を脅
かす疾患の処置に組織不適合性幹細胞を移植し得ることは、医学におけるひとつ
の大きい進歩となろう。

【００４５】 さらに、本発明の別の利点は、ＧＶＨＤを防ぐためにレシピエントに与えねば
ならない非常に毒性の免疫抑制薬物の使用をなくするか少なくし得ることである
。この薬物は、レシピエントの免疫系を再び増やすドナー誘導リンパ球がその新
しい宿主を「教育する」ようになる能力もブロックする。本発明のような他の処
置を用いない限り、免疫抑制薬物を中止することは難しい。

【００４６】 本発明の戦略は、ドナーＴ細胞のレシピエント移植抗原に対するＴ細胞応答を
阻害し、ドナー細胞における寛容状態を誘発することによるＧＶＨＤの抑制であ
る。この結果、ドナー細胞がレシピエント細胞を攻撃するのを防止する。驚くべ
きことに、この方法は、処置した細胞の抑制をもたらすだけでなく、ある種のＣ
Ｄ８＋およびＣＤ４＋Ｔ細胞を誘発して、他のドナーＴ細胞がレシピエント細胞
を殺すのを防ぐ。すなわち、これらの細胞が寛容となる。このことは、本発明方
法によって、ドナー細胞のレシピエント細胞攻撃能力を低下せしめるが、いくつ
かのドナー細胞を誘発して監視的役割を喚起し、他のドナー細胞がレシピエント
宿主に対する免疫攻撃を起こすのを防止することを意味する。直接的な結果は、
ドナーリンパ球がレシピエントの組織適合抗原に対して寛容となるが、新しいリ
ンパ球が腫瘍細胞を攻撃する能力を損なわないことである。

【００４７】 この戦略の他の顕著な大きい利点は、重い有害副作用の蓋然性が低いことであ
る。極少量の阻害誘発組成物、例えばサイトカインを患者に戻すだけであるので
、最小の毒性しかないはずである。

【００４８】 したがって、本発明は、レシピエントへの移植のためのドナー細胞を処置する
方法に関する。この方法は、末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）をドナーから取り出し
、その細胞を、一方で抑制性であるが他方で免疫攻撃を防止する監視細胞をつく
る組成物で処置することを含む。

【００４９】 本発明は、ドナー細胞の阻害誘発組成物での処置がレシピエント細胞に対する
免疫攻撃をブロックすることを示す。理論に縛られる意図でないが、本発明方法
が働くのにいくつかの道があるようである。まず最初に、ドナー細胞が活性化さ
れてレシピエント細胞に対して寛容となる。第２に、ドナー細胞が活性化されて
調節性細胞となる。すなわち、この調節性細胞は、他のドナー細胞がレシピエン
ト細胞に応答して増殖しそれらの細胞を殺すのを防ぐように働く。これらの結果
はＧＶＨＤ応答の軽減をもたらす。理論に縛られる意図でないが、細胞毒性活性
の阻害は、図に示すように、ＴＧＦ−βなどの調節性Ｔ細胞により細胞上でつく
られた阻害性サイトカインの結果として、または接触依存性メカニズムにより起
きるようである。

【００５０】 このように、好ましい実施態様において、本発明は、阻害誘発組成物でのドナ
ー細胞の生体外処置により、ドナー細胞にレシピエント組織に対する寛容を誘発
し、もってＧＶＨＤをなくする。

【００５１】 したがって、本発明は、ドナー細胞を処置してレシピエント患者への移植前に
レシピエント細胞に対する寛容を誘発または確立して、移植片−対−宿主応答を
低下または消失せしめる方法を提供する。本明細書で「Ｔ細胞寛容」とは、Ｔ細
胞が他の細胞に対する有害な免疫応答を起こさないことを意味する。これは、Ｔ
細胞が抗原に応答して増殖しないこと、または細胞毒性Ｔ細胞とならないことに
より得る。理論に縛られる意図でないが、これはＴ細胞のアネルギーまたは死に
よるのであろう。好ましくは、Ｔ細胞は、異物としての他の抗原を認識し腫瘍の
殺傷を容易にする能力、および異物抗原に対する一般的な免疫原性応答を保持し
ている。

【００５２】 本発明方法を用いて、阻害誘発組成物でＴ細胞集団を生体外で処置し寛容を作
る。活性化剤および阻害誘発組成物でＴ細胞集団を生体外で処置して、調節性細
胞を作る。本発明方法を用いて、ＧＶＨＤ応答を抑制または処置する。ＧＶＨＤ
の「処置」とは、ＧＶＨＤの少なくとも１つの症状が、本明細書に記載の方法で
改善されることである。その評価は、種々の方法で行うことができ、当分野で知
られているように、患者側の主観的または客観的な因子を含む。例えば、ＧＶＨ
Ｄは、発疹、肝機能検査値の異常、発熱、疲労や貧血を含む一般的症状を呈する
。

【００５３】 本明細書で「患者」とは、処置の対象となる哺乳動物を意味するが、ヒトが好
ましい。ある場合において、本発明方法は、実験動物、獣性学分野、疾患モデル
動物にも使用できる。これらの動物には、限定ではないが、マウス、ラット、ハ
ムスターなどのゲッシ類および霊長類がある。

【００５４】 本発明では、患者から血液細胞を取り出す。一般に、標準的な方法で患者から
末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）を取り出す。本明細書で「末梢血単核細胞」すなわ
ち「ＰＢＭＣ」とは、リンパ球（Ｔ細胞、Ｂ細胞、ＮＫ細胞などを含む）および
単球を意味する。詳しく下記するように、阻害誘発組成物の主要な作用は、ＣＤ
８＋Ｔ細胞またはＣＤ４＋Ｔ細胞が寛容となり、他のＴ細胞に寛容を与える能力
をつくるのを可能にすることのようである。したがって、ＰＢＭＣ集団は少なく
ともＣＤ８＋またはＣＤ４＋Ｔ細胞を含むはずである。

【００５５】 好ましくは、ＰＢＭＣのみを採取する。赤血球または多形核白血球を患者に残
すようにするか、これらを患者にもどす。これは既知の方法、例えば、白血球分
析法(leukophoresis)で行う。一般に５から７リットルの白血球分析法の工程を
行う。患者からＰＢＭＣを主に取り出し、他の血液成分を戻す。細胞サンプルの
採取は、ヘパリンなど抗凝固剤の存在下で、既知方法により行う。

【００５６】 ある実施態様においては、実施例７に述べるように、白血球分析法を必要とし
ない。例えば、ナイーブＣＤ４＋Ｔ細胞の集団は、図１１に示すようにＴＧＦ−
βの存在で刺激して増量できる。

【００５７】 一般に、ＰＢＭＣ含有のサンプルは、種々の方法であらかじめ処理し得る。ま
ず細胞を採取し、次いで採取に際して自動的に濃縮されていなければ、濃縮し、
さらに精製および／または濃縮する。細胞を水洗し、計数し、緩衝液に再懸濁し
、さらなる精製および活性化のために無菌の閉鎖系に移す。

【００５８】 ＰＢＭＣは、標準的方法で処置のためには通常濃縮する。好ましい実施態様に
おいて、白血球分析法の採取工程によってＰＢＭＣの濃縮サンプルを無菌の血球
パックに得る。このパックは、試薬や用量の阻害誘発組成物を含有し得る。詳し
くは下記する。一般に、追加の濃縮／精製工程を行なう。既知のＦicoll−Ｈypa
que密度勾配遠心法などである。分離法または濃縮法には、限定でないが、抗原
被覆磁気ビードを用いる磁気分離法、アフィニティー・クロマトグラフィー、モ
ノクローナル抗体と結合するか補体を用いる細胞毒性物質、固体マトリックスに
接着したモノクローナル抗体を用いる「ふるいわけ」を使用することがある。磁
気ビード、アガロースビード、ポリスチレンビードなどの固体マトリックスに接
着した抗体を線維膜およびプラスチック面に移し、直接の分離を可能とする。抗
体が結合した細胞の取り出しまたは濃縮は、細胞懸濁液から固体支持体の物理的
分離で行い得る。厳密な条件および手法は用いる系についての具体的な因子によ
り変る。適当な条件の選択は当分野で既知である。

【００５９】 抗体をビオチン（後に支持体に結合したアビジンまたはストレプタビジンで除
去できる）または蛍光色素（蛍光活性化細胞選別（ＦＡＣＳ）で使用できる）に
コンジュゲートして、細胞分離をなし得る。いかなる技法も、所望の細胞の活力
に影響を与えない限り使用できる。

【００６０】 好ましい実施態様において、ＰＢＭＣの分離を自動化閉鎖システム、例えば、
Nexell Isolex 300i 磁気細胞選別システムで行う。一般的に、無菌状態を保持
し、細胞分離、活性化、サプレッサー細胞機能の生起に使用する方法の標準性を
確保して行う。

【００６１】 一旦精製または濃縮して、細胞のアリコートをとり、好ましくは液体窒素中で
凍結するか、下記のようにすぐに使用する。凍結細胞は必要に応じて解凍し使用
できる。

【００６２】 寒冷保護剤を使用でき、これには、限定でないが、ジメチルスルホキシド（Ｄ
ＭＳＯ）(Lovolock, J. E. and Bishop, M. W. H., 1959, Nature 183: 1394-13
95; Ashwood-Smith, M. J., 1961, Nature 190: 1204-1205)、ヘタデンプン,グ
リセロ−ル,ポリビニルピロリドン（Rinfret, A. P., 1960, Ann. N.Y. Acad. S
ci. 85: 576)、ポリエチレングリコール（Sloviter, H.A. and Ravdin, R.G., 1
962, Nature 196: 548)、アルブミン、デキストラン、スクロース、エチレング
リコール、i−エリトリトール、Ｄ−リビトール、Ｄ−マニトール（Rowe, A.W.,
et al., 1962, Fed. Proc. 21: 157)、Ｄ−ソルビトール、i−イノシトール、
Ｄ−ラクトース、塩化コリン（Bender, M.A., et al., 1960, J. Appl. Physiol
. 15: 520)、アミノ酸（Phan The Tran and Bender, M.A., 1960, Exp. Cell Re
s. 20: 651)、メタノール、アセタミド、グリセロールモノアセテート（Loveloc
k, J.E., 1954. Biochem, J. 56: 256)、無機塩（Phan The Tran and Bender, M
.A.,1960, Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 104: 388; Phan The Tran and Bender,
M.A., 1961, in Radiobiology Proceedings of the Third Australian Cnofere
nce on Radiobiology, Ilbery, P.L.T., ed., Butterworth, London, p.59）が
ある。典型的には、細胞を１０％ＤＭＳＯ、５０％血清、４０％ＲＰＭＩ１６６
０培地に保存する。細胞の分離および精製の方法は米国特許５,８８８,４９９（
出典明示により本明細書の一部とする）に記載されている。

【００６３】 好ましい実施態様において、ＰＢＭＣを洗い、血清タンパク質および溶性血液
成分、例えば自己抗体、阻害剤などを既知方法で取り出す。一般に、生理媒質ま
たは緩衝液を加え、遠心法を行なう。必要に応じて繰り返す。ＰＢＭＣを生理培
養液、好ましくはＡＩＭ−Ｖ血清なしの培地（Technologie）に再懸濁するが（
血清がかなりの量のＴＧＦ−βの阻害剤を含有するので）、ハンクス緩衝塩類溶
液（ＨＢＢＳ）や生理塩緩衝液（ＰＢＳ）も使用できる。

【００６４】 一般に、次いで細胞数を数える。通常１×１０⁹から２×１０⁹の白血球を５−
７リットル白血球分析法の工程から採取する。これらの細胞を大略２００ｍｌの
緩衝液または培地に移す。

【００６５】 好ましい実施態様において、ＰＢＭＣは１以上の細胞型を富ます。例えば、Ｐ
ＢＭＳはＣＤ８＋Ｔ細胞またはＣＤ４＋Ｔ細胞を富ます。幹細胞以外の細胞を富
ますには、市販の免疫吸収カラムを用いるか、研究的方法で行う（ＰＢＭＣをナ
イロンウールカラムに加え、溶出の非接着細胞をＣＤ４、ＣＤ１６、ＣＤ１１ｂ
、ＣＤ７４に対する抗体で処理し、免疫磁気ビードで処理して、ＣＤ８＋Ｔ細胞
に富んだ集団を取る）。さらに詳しく下記するように、幹細胞、例えばＣＤ３４
＋幹細胞の分離は、Nexell セパレーターを使用する閉鎖系で既知である。

【００６６】 好ましい実施態様において、細胞集団はＣＤ８＋またはＣＤ４＋のいずれかに
富んでいる。他の実施態様において、他の細胞型はＣＤ３＋ＣＤ４−ＣＤ８−ま
たはＮＫ細胞に富んでいることがある。

【００６７】 ＰＢＭＣを使用する利点は、ＰＢＭＣ集団中の他の細胞型がＴＧＦ−βをつく
ることであり、ＴＧＦ−βを含む阻害誘発組成物の必要性を減じるか無くするこ
とである。このように、ある実施態様では富化工程を使用しない。

【００６８】 好ましい実施態様において、ＣＤ４＋細胞をさらに精製して、非分化ナイーブ
細胞のみを含むようにし得る。これはモノクローナル抗体を使用してＣＤ４５Ｒ
Ｏ＋細胞からＣＤ４＋細胞を無くする。この方法は、サプレッサーＴ細胞の生成
または活性を妨害するかもしれない機能を獲得しているであろうＣＤ４＋細胞の
集団を消失せしめる。

【００６９】 細胞に必要な前処理を一旦ほどこしてから、細胞を阻害誘発組成物で処置する
。本明細書で「処置」とは、細胞を阻害誘発組成物と共に十分な時間でインキュ
ベートし、特に患者に移植したときに、Ｔ細胞寛容を得るようにすることである
。インキュベーションは一般に生理的温度で行う。

【００７０】 阻害誘発組成物は、レシピエント細胞にＴ細胞が寛容になるように誘発する少
なくとも１つの化合物を含む。本明細書で「阻害誘発組成物」とは、Ｔ細胞寛容
を誘発し得る組成物を意味する。一般に、この組成物はサイトカインである。適
切な阻害誘発組成物は、限定でないが、ＩＬ−１０、ＩＬ−２、ＩＬ−４、ＩＬ
−１５、ＴＧＦ−βを含む。

【００７１】 Ｔ細胞寛容を誘発するのに使用する化合物は、限定でないが、プロスタグラン
ジン、酸化窒素、ケモカイン、サイトカイン、Ｔ細胞アクチベーターを含む。好
ましい実施態様において、Ｔ細胞寛容を誘発するのに使用する化合物はサイトカ
インである。

【００７２】 １以上の化合物を含有する阻害誘発組成物を使用して、Ｔ細胞に寛容を与え得
る。阻害誘発組成物は、２以上の同じ類の化合物を含有し得る。すなわち２以上
のサイトカイン、ケモカイン、プロスタグランジンなどを一緒に混合し得る。阻
害誘発組成物はまた、他の類の化合物、例えば、サイトカインとケモカイン、ま
たはサイトカインとプロスタグランジンを含有し得る。 好ましい実施態様において、阻害誘発組成物はＴＧＦ−βを含むサイトカイン
の混合物を含有する。

【００７３】 阻害誘発組成物の濃度は、組成物の性質によって非常に変ってくる。しかし、
一般的に、生理的濃度、すなわち、所望の作用、調節性細胞の特異的な型を高め
る作用が得られる濃度である。好ましい実施態様おいて、ＴＦＧ−βを阻害誘発
組成物に用いる。本明細書で「形質転換成長因子−β」すなわち「ＴＧＦ−β」
は、ＴＧＦ−βファミリーのいずれか１つを意味する。３種のイソ型、ＴＧＦ−
β１、ＴＧＦ−β２、ＴＧＦ−β３がある。参照、Massague,J.(1980),J.Ann.Re
v.Cell Biol 6:597。リンパ球および単球は、このサイトカインのβ１のイソ型
である(Kehrl,J.H.et al.(1991),lnt J Cell Cloning 9:438-450)。ＴＧＦ−β
は、処置される哺乳動物に対して活性であるＴＦＧ−βのすべての型であり得る
。

【００７４】 ヒトでは、組換えＴＦＧ−βが現在のところ好ましい。好ましいヒトＴＧＦ−
β２は、Genzyme Pharmaceuticals，Farmington，MA．から購入できる。一般に
、ＴＧＦ−βの濃度は、細胞懸濁液の約２picogram／ｍｌから約２nanogramであ
って、約１０ｐｇから約５００ｐｇが好ましく、約５０ｐｇから約１５０ｐｇが
特に好ましく、１００ｐｇが理想的である。一般的に、免疫抑制作用について約
１ｎｇ／ｍｌが最適のようである。サプレッサー細胞の生成には、低濃度（例え
ば、約０.１ｎｇ／ｍｌ）が最適である。

【００７５】 ある実施態様態様において、ＩＬ−２を阻害誘発組成物として使用する。ＩＬ
−２は、処置される哺乳動物に対して活性であるＩＬ−２のすべての型であり得
る。ヒトでは組換えＩＬ−２が現在のところ好ましい。組換えＩＬ−２はCetus
，Emerville、CA.から購入できる。一般に、使用されるヒトＩＬ−２の濃度は、
細胞懸濁液の約１Ｕnit／ｍｌから約１００Ｕ／ｍｌであり、約５Ｕ／ｍｌから
約２５Ｕ／ｍｌが好ましく、１０Ｕ／ｍｌが特に好ましい。好ましい実施態様で
はＩＬ−２を単独で用いない。

【００７６】 好ましい実施態様において、本発明は、調節性Ｔ細胞をつくるために、阻害誘
発組成物およびＴ細胞アクチベーターでＴ細胞を処置する方法を提供する。他の
Ｔ細胞がレシピエント細胞を増殖し殺すのを防止する能力を生起するＴ細胞集団
を、ここでは「調節性細胞」または「サプレッサー細胞」とよぶ。

【００７７】 本明細書で「Ｔ細胞アクチベーター」は、サイトカイン受容体の発現を刺激す
る化合物を意味する。適当なＴ細胞アクチベーターは、抗ＣＤ３および抗ＣＤ２
８抗体、モノクローナル抗体の抗ＣＤ２抗体組合せ、知られておれば特異的自己
抗原、移植レシピエントからの細胞（例えば、同種異型抗原）、ＩＬ−２、ＩＬ
−４、ＩＬ−１５およびマイトジェン、例えば、コンカナバリンＡやブドウ球菌
性エンテロトキシンＢ（ＳＥＢ）を含む。

【００７８】 好ましい実施態様において、細胞を、サイトカイン含有の阻害誘発組成物およ
びＴ細胞アクチベーターで処置する。例えば、移植レシピエントからの細胞をＴ
細胞アクチベーターとして、ＴＧＦ−βを含む阻害誘発組成物と併用できる。同
様に、抗ＣＤ３および抗ＣＤ２８抗体、抗ＣＤ２抗体、コンカナバリンＡ（Ｃｏ
ｎＡ）、ブドウ球菌性エンテロトキシンＢ（ＳＥＢ）などのＴ細胞アクチベータ
ーをＴＧＦ−βとともに使用できる。阻害誘発組成物とＴ細胞アクチベーターの
他の組合せも可能であり、ＣＤ２リガンド、ＬＦＡ−３、ＬＩ−２やＩＬ−４、
ＴＧＦ−αなどのサイトカインを使用する。

【００７９】 コンカナバリンＡ（ＣｏｎＡ）、ブドウ球菌性エンテロトキシンＢ（ＳＥＢ）
などのマイトジェンをサイトカイン受容体発現の促進に用いるとき、既知方法で
知られているように、その濃度範囲は１μｇ／ｍｌから約１０μｇ／ｍｌである
。さらに、既知方法のように、マイトジェンを離す成分、例えばα−メチルマン
ノシッドと共に細胞を洗うのが望ましい。

【００８０】 好ましい実施態様において、ＣＤ２リガンドＬＦＡ−３を含み得る抗ＣＤ２抗
体などのＣＤアクチベーターを活性化剤として用い得る。ＣＤ２はＴリンパ球に
より発現される細胞表面糖タンパク質である。本明細書で「ＣＤ２アクチベータ
ー」とは、ＣＤ２情報伝達経路を開始する化合物を意味する。好ましいＣＤ２ア
クチベーターは、抗ＣＤ２抗体（OKT11,American Type Culture Collection,Roc
kville MD and GT2, Huets, et al., (1986) J. Immunol. 137: 1420）を含み得
る。一般に、ＣＤ２アクチベーターの濃度は、ＴＧＦ−βの生成を誘導するのに
十分なものである。抗ＣＤ２抗体の濃度は、約１ｎｇ／ｍｌから約１０μｇ／ｍ
ｌの範囲にあり、約１０ｎｇ／ｍｌから約１００ｎｇ／ｍｌが特に好ましい。

【００８１】 好ましい実施態様において、移植レシピエントからの細胞を用いて、ドナーＣ
Ｄ４＋またはＣＤ８＋Ｔ細胞を活性化する。他のサイトカイン、例えば、ＩＬ−
２、ＩＬ−４、ＩＬ−１５をも含む阻害誘発組成物中にＴＧＦ−βを使用して、
ＴＧＦ−βの作用発揮を容易にする。

【００８２】 阻害誘発組成物をドナー細胞および刺激したＰＭＢＣレシピエント細胞（上記
のように採取）とともにインキュベートする。レシピエント細胞の刺激は、レシ
ピエント細胞がドナー細胞を攻撃できないが、ドナー細胞がレシピエント細胞に
対して寛容となるように行う。インキュベーションは作用が生じるのに十分な時
間行う。一般に４時間から５日であるが、より短いまたは長い時間も可能である
。

【００８３】 このように、レシピエント細胞は抗原特異的Ｔ細胞アクチベーターとして機能
する。この活性化は調節性細胞の生成に必要である。理論に縛られる意図でない
が、レシピエント細胞はドナー細胞上のサイトカイン受容体を上方調節し、もっ
てドナー細胞がＴＧＦ−β応答性となり、調節性細胞となるのを可能にするよう
である。

【００８４】 好ましい実施態様において、ＣＤ４＋Ｔ細胞を、ＴＧＦ−βを含む阻害誘発組
成物およびＴ細胞アクチベーターで処置して、接触依存性抑制を生起せしめる。
この調節性Ｔ細胞は非常に強力であり、１％以下にすぎない全Ｔ細胞を含むとき
でも抑制作用を発揮する。

【００８５】 好ましい実施態様において、調節性ＣＤ４＋Ｔ細胞を、その抑制特性に影響を
与えないで、増量できる。好ましくは、ＣＤ４＋Ｔ細胞を少なくとも１回増量す
る。さらに好ましくは、ＣＤ４＋Ｔ細胞を１４回まで増量する。さらに好ましく
は、ＣＤ４＋Ｔ細胞をさらに増量する。

【００８６】 好ましい実施態様において、ＣＤ４＋Ｔ細胞をＴＧＦ−βの存在下で活性化し
、刺激を繰り返して、活性ＴＧＦ−βの免疫抑制レベルをつくる。本明細書で「
活性ＴＧＦ−βの免疫抑制レベル」とは、細胞機能に対する直接的免疫抑制作用
を有するＴＧＦ−βの濃度、すなわち、ドナー細胞をレシピエント組織適合性抗
原に対して非応答性とするＴＧＦ−βの濃度を意味する。一般的に、ＴＧＦ−β
の５００ｐｇ／ｍｌを越える濃度が細胞機能に対する免疫抑制作用を有する。

【００８７】 ひとつの実施態様において、ドナー細胞を阻害誘発組成物で処置し、ついでレ
シピエント患者にすぐに移植する。一般的に、細胞を洗い阻害誘発組成物を除去
した後に行う。この実施態様では、ドナー細胞を阻害誘発組成物で処理または処
置した後、凍結などして保存し得る。

【００８８】 好ましい実施態様において、第２工程として、骨髄またはＰＢＭＣから吸引で
ドナー造血性幹細胞の集団を得ることを含む。幹細胞は血中に非常に小さい％の
白血球を含む。幹細胞を、米国特許５,６３５,３８７および４,８６５,２０４（
両者を出典明示により本明細書の一部とする）に記載された既知の方法で分離す
るか、Nexell 市販のシステムを用いて採取する。上記したように、ＣＤ３４＋
幹細胞はアフィニティーカラムで濃縮できる。溶出細胞はＣＤ３４＋幹細胞とリ
ンパ球の混合物である。汚染物であるリンパ球の除去には、一般的に、既知のモ
ノクローナル抗体での染色などの技法や通常の陰性選択法を用いる。

【００８９】 ＣＤ３４＋幹細胞を単離すると、阻害誘発組成物で予め処置したドナー細胞と
混合し、すぐにレシピエント患者に導入できる。

【００９０】 ある実施態様において、細胞を一定の時間インキュベートし、水洗して阻害誘
発組成物を除去し、再びインキュベートする。患者に導入する前に、ここに概記
したように細胞を好ましくは水洗し、阻害誘発組成物を除去する。試験すなわち
検査のために、さらなるインキュベーションも行うことができ、数時間から数日
間である。患者への導入前に細胞特性の検査をしょうとするときは、細胞を数日
間から数週間インキュベートすると、サプレッサー細胞を増量し得る。

【００９１】 細胞を一旦処置して、患者に移植する前に細胞を検査することができる。例え
ば、細胞を採取して行う。無菌検査、グラム染色、微生物学的検査、ＬＡＬ試験
、マイコフラズマ検査、細胞型同定のためのフローサイトメトリー、機能検査な
どである。同様に、これらの検査などの試験を処置の前や後に行うことができる
。好ましい分析は標識レシピエント細胞を用いる試験である。処置された寛容ド
ナー細胞をレシピエント細胞の標識集団とともにインキュベートすると、ドナー
細胞が寛容でレシピエント細胞を殺さないことを確認できる。

【００９２】 好ましい実施態様において、処置によってＴ細胞がレシピエントの組織適合抗
原に対して非応答性となり、ＧＶＨＤが防がれる。 好ましい実施態様において、移植の前に全または活性ＴＧＦ−βの量を検査す
る。本明細書で述べるように、ＴＧＦ−βは、翻訳後に活性化される潜在性前駆
体としてつくられている。

【００９３】 細胞処置後、ドナー細胞をレシピエント患者に移植する。ドナーとレシピエン
トの両方のＭＨＣクラスＩおよびクラスIIの状態を調べる。好ましくは、非近縁
ドナーがレシピエントＨＬＡ抗原に適合し、適合ドナーを同定できなければ１以
上の座 locus で不適合である。レシピエント患者は骨髄隔離を通常受けており
、高量の化学療法を受けており、全身の放射線照射を受けていることもある。

【００９４】 ドナー細胞をレシピエント患者に移植する。一般的に既知のように行う。通常
は、処置細胞を患者に注射すなわち導入する。静脈内投与により行い得るが、静
脈内、動脈内、腹腔内の投与もある。例えば、無菌シリンジなどの移転手段を用
いて注射により Fenwall注入バッグに細胞を入れる。次いで細胞をすぐに静脈投
与によって一定の時間、例えば、１５分間で患者の自由に流れている静脈に注入
する。ある実施態様では、緩衝剤や塩などの追加の試薬も加え得る。

【００９５】 細胞を患者に再導入後に、処置の効果を所望に応じて、上記または既知方法で
検査できる。 処置は必要に応じて繰り返し得る。ある期間後に、白血病性細胞が再び現れる
ことがある。ドナー白血球がすでにレシピエント細胞に寛容であるので、白血病
性細胞を異物として認識して殺す非処理ドナーリンパ球の注入を、患者は受ける
ことになる。

【００９６】 好ましい実施態様において、本発明は、本発明方法を実施するためのキット、
すなわち細胞を阻害誘発組成物と共にインキュベートするためのキットを提供す
る。キットはいくつかの成分を含有し得る。キットは、ドナーからの細胞を受容
するのに用いられる細胞処置容器を含む。この容器は無菌である。ある実施態様
において細胞処置容器は、細胞の採取に用いる。例えば、入口を介して白血球分
析法と共に用い得る。他の実施態様では、離した細胞採取容器を用い得る。

【００９７】 細胞処置容器の形および材質は様々であり、当業者によく知られている。一般
に、容器はいくつかの異なる形態を取る。例えば、ＩＶバッグのような柔かいバ
ッグであり、または細胞培養器のような硬い容器である。攪拌できるようになっ
ている。一般に、容器の材質は何でもよいが、生物学的に非活性の物質であり、
例えばガラス、ポリプロピレンやポリエチレンなどを含むプラスチックである。
細胞処置容器は１以上の入口または出口を有し得る。細胞、試薬、阻害組成物な
どの導入または除去のためのものである。例えば、容器は、患者に再導入する前
の分析のために細胞の分画を採取するサンプル採取口を有する。同様に、容器は
、レシピエント患者に細胞を導入するための出口を有する。例えば、容器はＩＶ
装置につけるためのアダプターを含み得る。

【００９８】 キットは阻害誘発組成物の少なくとも１つの用量を含む。本明細書での「用量
」とは、サイトカインなどの阻害誘発組成物の１つの量で、作用を発揮するのに
十分な量を意味する。ある場合には、複数用量を含み得る。ある実施態様におい
て、用量の細胞処置容器への添加は入口を介して行なう。あるいは好ましい実施
態様において、用量は細胞処置容器にすでに存在している。好ましい実施態様に
おいて、用量は安定性のために乳濁形態にあり、細胞培養液や他の試薬を用いて
再構築できる。

【００９９】 ある実施態様において、キットは少なくとも１種の試薬を追加的に含む。それ
には緩衝液、塩、培養液、タンパク質、薬剤などがある。例えば、マイトジエン
を含み得る。 ある実施態様において、キットはその使用に際しての説明書を追加的に含む。

【０１００】 下記の実施例は、上記の本発明をより完全に記述したものであり、また、本発
明の種々の態様を実施するために考えられる最上の方法を記述した。これらの実
施例は、本発明の範囲を限定するものでなく、説明の目的のために提示する。出
典明示されたすべての引用文献は全体を本明細書の一部とする。

【０１０１】 実施例 実施例１ 個体の血液細胞に対する免疫攻撃についてのドナーＣＤ８＋細胞の処置 ドナーから血液サンプルを得て、密度勾配遠心法によりリンパ球を得た。Ｔ細
胞は通常の陰性選別法を用いて調整した。該Ｔ細胞はレシピエント細胞を攻撃し
ないよう調整した。この調整のため、レシピエント由来の照射スティムレーター
細胞にＣＤ８＋Ｔ細胞を混合した。該スティムレーター細胞はレシピエント由来
のＴ細胞依存性血液細胞から誘導した。ドナーＴ細胞とレシピエントのスティム
レーター細胞との混合物を異なる濃度で一種以上のサイトカインと４８時間培養
した。実施例で用いたサイトカインはＴＧＦ−βおよびＩＬ−１０であった。こ
の方法は、レシピエント細胞を殺すドナーＴ細胞の能力を無くした(図４Ｂ)。

【０１０２】 ドナーＴ細胞がレシピエントの血液細胞を認識して殺す能力を試験するため、
ドナーＴ細胞を照射スティムレーター細胞と５日間培養した。ついでドナー細胞
は、レシピエントの放射標識血液細胞のサンプルと４時間培養した。レシピエン
ト細胞が殺されると、培養培地に放射性同位元素が放出される。放出された放射
性同位元素の量を測定することにより、死滅した細胞の割合を算出することがで
きる。図４Ａに示す標準の細胞毒性の試験で、ドナー細胞は標識したレシピエン
ト細胞と３０対１、１５対１、および７.５対１の比率で培養した。ドナーとレ
シピエント細胞のこれらの組み合わせは、エフェクターと標的との割合と名づけ
る。死滅を記号で示す。予期されるとおり、最も高いエフェクターと標的との割
合で死滅の極大を認めた。図４Ａにおいて白丸の記号は、ドナー細胞３０に対し
レシピエント細胞１を混合すれば該レシピエント細胞の４０％が死滅することを
示す。ドナーＴ細胞が極めて低濃度のＴＧＦ−β（０.０１または０.１ｎｇ／ｍ
ｌ）で処置した場合に、死滅に全く影響しなかった（図４Ｄ）。しかしＴ細胞を
１ｎｇ／ｍｌのＴＧＦ−βで処置するとレシピエント細胞の死滅は５０％減少し
た。図４Ｂは、Ｔ細胞をＩＬ−１０で処置すると、死滅が５０％減少したことを
示す。Ｔ細胞をＩＬ−１０とＴＧＦ−βの各１ｎｇ／ｍｌで処置すると、でき上
がった細胞はレシピエント細胞の死滅を阻止した。つまり死をほとんど検出しな
かった。マイトジェン、サイトカイン、モノクロナール抗体の種々の組み合わせ
は、Ｔ細胞を不応答にするために使うことができる。

【０１０３】 実施例２ 他のドナーＴ細胞が非近縁個体由来の血液細胞に対して免疫攻撃するのを防ぐた
めの、生体外ドナーＣＤ８＋Ｔ細胞の処置（すなわちＧＶＨＤの阻止） ＣＤ８＋細胞は、非近縁のドナー細胞に対する個体の細胞毒性免疫応答を抑制
するためＴＧＦ−βによって調整できる。この方法でドナーＢの組織適合性不適
合の血液単核細胞に対するドナーＡの細胞毒性活性を評価できる。抑制細胞を生
起させるため、ドナーＡ由来の精製ＣＤ８＋細胞は、加えたＴＧＦ−βとドナー
細胞由来の照射Ｔ細胞除去の単核細胞と培養した。別にドナーＢ細胞に対するド
ナーＡのＴ細胞の細胞毒性活性を文献的に立証した。図５は、ドナーＡ由来のＴ
ＧＦ−βで調整したＣＤ８＋Ｔ細胞の添加が細胞毒性活性を減弱させたことを示
す。対照のＣＤ８＋細胞の添加では最少の作用であった。これらの実験で、ドナ
ーＡ由来のＣＤ８＋Ｔ細胞は、ドナーＢによって表示される外来抗原により活性
化した。追加のＩＬ−２の必要は無かった。これらの実験で明らかになったこと
は、ＴＧＦ−βはＣＤ８＋Ｔ細胞を誘発して抗体の生産を抑制するのみならず、
ＣＤ８＋細胞も誘発して細胞仲介の免疫応答を抑制することである。

【０１０４】 実施例３ 慢性骨髄性白血病患者の組織不適合性ドナー由来幹細胞による処置：マイトジェ
ンによる寛容化 実施例１と同様に、採取したドナーの末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）を滅菌容器
中のハンクス緩衝塩類溶液（ＨＢＢＳ）に入れる。ついで該細胞をマイトジェン
とインキュベートしてレシピエントの組織適合性抗原に不応答となるようリンパ
球を誘発させる。この場合、細胞は標準のインキュベーション技術を用いて４な
いし７２時間、生理的濃度のコンカナバリンＡ（ＣｏｎＡ）と培養する。用いる
ＣｏｎＡの濃度は、好ましくは１μｇ／ｍｌであるが、約０.０１から約１０μ
ｇ／ｍｌの範囲で変え得る。また別に、０.００１から１００ｎｇ／ｍｌの濃度
でブドウ球菌性エンテロトキシンＢ（ＳＥＢ）をマイトジェンとして用いてもよ
い。

【０１０５】 マイトジェン溶液中の単核細胞のインキュベーションはサプレッサーＴ細胞を
増加させる。これらの細胞は、レシピエントに移転すると、ＧＶＨＤを誘発する
ことなく幹細胞の移植を可能にする。どのようにマイトジェンが働くかは不明で
あるが、調整中に単核細胞がＴＧＦ−βの生産を誘発すると考えられ、またＴＧ
Ｆ−βはＴ細胞に作用してサプレッサー細胞になるか、または他のＴ細胞を不応
答にさせる。

【０１０６】 該細胞をマイトジェンとインキュベートした後、細胞をＨＢＢＳで洗浄して溶
液中に残るマイトジェンを除去する。細胞を２００−５００ｍｌのＨＢＢＳに懸
濁し、幹細胞と混合し、移植の幹細胞を調製するため、骨髄剥離剤で処置した慢
性骨髄性白血病（ＣＭＬ）患者に投与する。

【０１０７】 ひとたびドナーの造血細胞リンパ球をレシピエントに移植すると、患者は再び
健康を取り戻し白血病細胞がなくなる。もし白血病細胞が再発生すれば、患者は
ドナーのリンパ球の輸液を受け、白血病細胞は再び消失する。

【０１０８】 実施例４ 慢性骨髄性白血病患者の組織不適合性ドナー由来幹細胞による処置：ＴＧＦ−β
の生産を誘発するための抗ＣＤ２モノクロナール抗体の使用 ドナー由来の、採取した幹細胞の豊富な調製物を実施例１と同様に滅菌容器中
のＨＢＢＳに入れる。ついで該細胞を抗ＣＤ２モノクローナル抗体とインキュベ
ートしてレシピエントの組織適合性抗原に不応答となるようリンパ球を誘発させ
る。この場合、細胞は標準の培養技術を用いて４ないし７２時間、抗ＣＤ２モノ
クロナール抗体とインキュベートする。抗ＣＤ２モノクロナール抗体の濃度は１
０ｎｇ／ｍｌないし１０μｇ／ｍｌである。ＩＬ−２の１−１０００単位を随意
に加えることができる。

【０１０９】 抗ＣＤ２溶液中の単核細胞をインキュベートすると、サプレッサーＴ細胞の数
が増加する。これらの細胞は、レシピエントに移転するとＧＶＨＤを誘発するこ
となく幹細胞の移植を可能にする。調整中に単核細胞がＴＧＦ−βの生産を誘発
すると考えられ、またＴＧＦ−βはＴ細胞に作用してサプレッサー細胞となる。

【０１１０】 該細胞を抗ＣＤ２モノクロナール抗体とインキュベートした後、細胞をＨＢＢ
Ｓで洗浄して溶液中に残る抗体を除去する。細胞を、予め採取した幹細胞と混合
したＨＢＢＳの２００−５００ｍｌに懸濁し、移植の幹細胞を調製するため、骨
髄剥離剤で処置した慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）の患者に投与する。

【０１１１】 ひとたびドナーの造血細胞リンパ球をレシピエントに移植すると、患者は再び
健康を取り戻し白血病細胞がなくなる。もし白血病細胞が再発生すれば、患者は
ドナーのリンパ球の輸液を受け、白血病細胞は再び消失する。

【０１１２】 実施例５ 慢性骨髄性白血病患者の組織不適合性ドナー由来幹細胞による処置：マイトジェ
ンおよびサイトカインによる寛容化 採取したドナーのＰＢＭＣを、実施例１と同様に滅菌容器中のＨＢＢＳに入れ
る。ついで該細胞をサイトカインおよびマイトジェンとインキュベートしてレシ
ピエントの組織適合性抗原に不応答となるようリンパ球を誘発する。この場合、
細胞は標準のインキュベーション技術を用いて、生理的濃度のＣｏｎＡまたはＳ
ＥＢ、ＴＧＥ−β、および／またはＩＬ−２、ＩＬ−４またはＩＬ−１５と４時
間ないし７２時間インキュベートする。

【０１１３】 該細胞をサイトカインおよびマイトジェンとインキュベートした後、細胞をＨ
ＢＢＳで洗浄して溶液中に残るサイトカインおよびマイトジェンを除去する。細
胞を幹細胞と混合したＨＢＢＳの２００−５００ｍｌに懸濁し、移植の幹細胞を
調製するため、骨髄剥離剤で処置した慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）患者に投与す
る。

【０１１４】 ひとたびドナーの造血細胞リンパ球がレシピエントに移植すると、患者は再び
健康を取り戻し白血病細胞がなくなる。もし白血病細胞が再発生すれば、患者は
ドナーのリンパ球の輸液を受け、白血病細胞は再び消失する。

【０１１５】 実施例６ 慢性骨髄性白血病患者の組織不適合性ドナー由来幹細胞による処置：マイトジ
ェンおよびサイトカインによる寛容化

【０１１６】 採取したドナーのＰＢＭＣを、実施例１と同様に滅菌容器中のＨＢＢＳに入れ
る。ついで該細胞をサイトカインおよびマイトジェンとインキュベートしてレシ
ピエントの組織適合性抗原に不応答となるようリンパ球を誘発する。この場合、
細胞は標準のインキュベーション技術を用いて、生理的濃度のＣｏｎＡおよびＩ
Ｌ−２と４時間ないし７２時間インキュベートする。別の場合にはＳＥＢを用い
得る。

【０１１７】 該細胞をサイトカインおよびマイトジェンと培養した後、細胞をＨＢＢＳで洗
浄して溶液中に残るサイトカインおよびマイトジェンを除去する。細胞を幹細胞
と混合したＨＢＢＳの２００−５００ｍｌに懸濁し、移植の幹細胞を調製するた
め、骨髄剥離剤で処置した慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）患者に投与する。

【０１１８】 実施例７ 精製ＣＤ８＋細胞に対するＴＧＦ−βの作用 ＣＤ８＋のＴＧＦ−βよる処置は、少なくとも三様にＣＤ８＋細胞に作用する
。まず、ＴＧＦ−βの存在下、Ｔ細胞のＰＭＡ（２０ｎｇ／ｍｌ）およびイオノ
マイシン（５μＭ）による処置は、ＣＤ４０リガンドの発現を上方調節する（図
１）。第２に、ＩＬ−２発現はＴＧＦ−βの存在下にＣｏｎＡで刺激されたＴ細
胞で高い（図３）。第３に、精製ＣＤ８＋細胞をＣｏｎＡ（５μｇ／ｍｌ）±Ｔ
ＧＦ−β（１０ｐｇ／ｍｌ）±ＩＬ−２（１０Ｕ）で２４時間刺激すると、ＴＧ
Ｆ−βはＣＤ８＋細胞によるＴＮＦ−α発現を増加する（図２）。

【０１１９】 実施例８ 免疫攻撃を阻止するための生体外ＣＤ４＋細胞の処置 調節性Ｔ細胞を誘発するマイトジェンの代わりに、同種異型の混合リンパ球反
応を当目的に用いる。該反応において、ドナーＡ由来のＴ細胞は、ドナーＢ由来
のＰＢＭＣにより表示された外来の組織適合性抗原を確認し、それに応答する。
この応答Ｔ細胞は、ドナーＢ細胞を殺す能力を増殖し発展さす。

【０１２０】 サプレッサーＴ細胞を生起させるため、ドナーＡ由来の種々のＣＤ４＋細胞サ
ブセットをドナーＢ由来の照射Ｔ細胞除去単核細胞と培養した。該細胞は懸濁下
にＴＧＦ−β（１ｎｇ／ｍｌ）の存在または不存在で５日間培養した。その後、
ＴＧＦ−βを除去し、該細胞をドナーＡ由来の新鮮なＴ細胞およびドナーＢ由来
の非Ｔ細胞に加えた。

【０１２１】 ナイーブＣＤ４＋細胞はＴＧＦ−βの存在下に活性化すると強力な抑制活性を
生起した。該ＣＤ４＋Ｔ細胞は、同種異型の標的細胞に対するＣＴＬ活性が現れ
るのを阻止する能力を有する。２段階共培養実験にて、初めにＣＤ４＋ＣＤ４５
ＲＡ＋ＲＯ−Ｔ細胞を、照射した同種異型スティムレーター細胞±ＴＧＦ−β１
と５日間インキュベートした。ついで該細胞の種々の量を新鮮なＴ細胞およびス
ティムレーター細胞に加え、ＣＴＬ活性の生成に対する該細胞の作用を評価した
。対照のＣＤ４＋細胞は低度ないし中程度の抑制活性をもっていたのに反し、Ｔ
ＧＦ−βの存在下に処置した該細胞は、標準の４時間クロム放出試験で、応答Ｔ
細胞が同種異型の標的細胞を殺すのをほとんど完全にブロックした（図６Ａ）。
ＣＤ４＋細胞の活性化は阻害活性の生起に必要であった。刺激なしでＴＧＦ−β
と培養したＴ細胞は該抑制作用（２０）を生起しない。ＴＧＦ−βの存在下に同
種異型抗原で免疫起動したＣＤ４＋サプレッサー細胞をここでは「ＣＤ４ｒｅｇ
」と呼ぶ。スティムレーター細胞で処置したナイーブＣＤ８＋Ｔ細胞もまた中程
度の抑制活性を生起するが、ＣＤ４＋細胞と違って、ＴＧＦ−βの存在は該活性
を高めなかった（図６Ｂ）。

【０１２２】 図７は、ＴＧＦ−βにより誘発されたＣＤ４＋抑制Ｔ細胞を用いた二つの追加
的実験を示す。さらなる実験により、この方法で生成した抑制性ＣＤ４＋Ｔ細胞
は特異な作用様式をもっていることが明らかとなった。阻害性サイトカインを分
泌して抑制する、先に生成したＣＤ８＋およびＣＤ４＋細胞とは異なり、この同
種異型の特異的調節性ＣＤ４＋Ｔ細胞は接触依存性作用メカニズムをもっている
（図８）。

【０１２３】 ＴＧＦ−βの存在下、ナイーブＣＤ４＋Ｔ細胞の活性化は、それらを同種異型
抗原にかなり激しく応答し、活性化発現型への転換を促進し、活力を高めた。図
９は、培養５日後の対照およびＴＧＦ−β調整ＣＤ４＋細胞の性質を示す。同種
異型刺激ＣＤ４＋細胞は典型的な特徴を示し、アネキシンＶ染色により示された
ように、あるものはすでに進行している活性化誘発の細胞死であった。重要なこ
とは、ＴＧＦ−βの存在下に同種異型活性化したものは随分多く、分画はＣＤ４
を強く染色し、ＣＤ２５の発現が顕著に増加した。１３回の実験によるＣＤ２５
発現の平均値は、ナイーブ細胞で検出できないレベルから、ＴＧＦ−βの存在下
に同種異型活性化ＣＤ４＋細胞の４２.３±３.６％に増加した。対照の同種異型
活性化ＣＤ４＋細胞の平均値は、３４.５±３.８％であった（ｐ＜０.０１％、
ペアーｔ検定）。細胞内および細胞表面でのＣＴＬＡ−４の発現は、対照のＣＤ
４＋細胞と比較してＣＤ４ｒｅｇで増加した（細胞内：３１.５±４.１％対２３
.２±４.５％、ｐ＜０.０１；表面：１０.８±０.９％対５.２±０.４％、ｐ＜
０.０１）。ＣＤ４ｒｅｇの大きな比率は、ＣＤ４５ＲＡの表面発現を下方調節
した。有意に、アネキシンＶ染色は顕著に減少し、回収されたＣＤｒｅｇの総数
は対照のＣＤ４＋細胞を５６％上回った。このようにＣＤ４ｒｅｇは対照のＣＤ
４細胞より強く活性化されたが、また活性化誘導のアポトーシスに対しより抵抗
性であった。

【０１２４】 Shevachとその協同研究者によって記載されたムレインＣＤ４＋調節性Ｔ細胞
（Suri-Paer, E., et al., J. Immunol. 160:1212-1218, 1998; Suri-Paer, E.,
et al., Eur. J. Immunol. 29:669-677, 1999; Thornton, A.M., Shevach, E.M
., J. Exp. Med. 188:287-296, 1998）と同様に、細胞選別によりＣＤ４ｒｅｇ
をＣ２５＋とＣＤ２５−との分画に分離すると、抑制活性の大部分はＣＤ２５＋
分画に含まれていることが明らかとなった（図１０Ａ）。ＣＤ４＋ＣＤ２５−分
画は最少の抑制活性を示した。さらに、わずかな数のＣＴＬ活性の生成を著しく
阻害する能力で分るように、ＣＤ４＋ＣＤ２５＋分画は非常に強力であった。図
１０Ｂは、ＣＤ４＋サプレッサー細胞の数が総Ｔ細胞の２５％から３％に低下し
たとき、抑制活性はごくわずか減少したことを示す。わずかに添加したＣＤ４＋
でもって、ＣＤ２５−サブセットで仲介される最少の抑制活性は消失した。

【０１２５】 ＩＬ−１０の増殖能力は低いが（Groux, H., et al., Nature 389:737-742. 2
4, 1997）、そのＩＬ−１０での反復刺激により生成したＣＤ４＋調節性Ｔ細胞
とは異なって、ＴＧＦ−βの存在下で誘導されたＣＤ４ｒｅｇはＩＬ−２に応答
して増殖し、その抑制能力を保持した。ＣＤ４ｒｅｇのＣＤ２５＋分画を細胞選
別により分離し、ＩＬ−２と５日間培養した。該細胞はこの期間に７ないし１４
倍に増し、３つの別々の実験でその抑制能を維持した。図１１は、ＣＤ４ｒｅｇ
が全Ｔ細胞のわずか５％を含むとき、ＣＴＬ活性の生成を強く阻害することを示
す。さらに、ＣＤ４＋ＣＤ２５細胞の数が全細胞のわずか０.２％に減少したと
き、この抑制活性はそのまま残った。しかし、この抑制Ｔ細胞を照射すると抑制
効果は消失した。

【０１２６】 該Ｔ細胞を応答Ｔ細胞および同種異型スティムレーター細胞に加えると増殖が
抑制され（図１２）、応答ＣＤ８＋キラー前駆体細胞の能力が弱められて活性と
なる（図１３）。

【０１２７】 ＣＤ４ｒｅｇは同種異型抗原に対する応答Ｔ細胞の増殖性応答をブロックし（
図１４Ｂ）、ＣＤ８＋Ｔ細胞が主要な標的であった。５日間の培養後、フローサ
イトメトリーによってＣＤ８＋細胞にゲーティングすると、同種異型活性ＣＤ８
＋細胞はＣＤ２５の顕著な増加、ＣＤ６９およびＦａｓの発現の増加、ならびに
ＣＳＦＥ標識およびヨウ化プロピジウム標識したエフェクターＴ細胞による細胞
分割の証拠を示した。さらにあるＣＤ８＋細胞は、アネキシンＶ染色により示さ
れたように、活性化誘導の細胞死を受けた。非常に対照的に、ＣＤ４ｒｅｇを含
む培養液中、ＣＤ８＋細胞によるＣＤ２５、ＣＤ６９およびＦａｓの上方調節は
著しく阻害され、ほとんどどれもアポトーシスあるいは細胞分割を受けなかった
。培養液中ＣＤ８＋細胞の絶対数の検査から、全体の数からほんのわずかの変化
であることが明らかとなった。このようにＣＤ４ｒｅｇはＣＤ８＋細胞をアネル
ギーにさせた。

【０１２８】 実施例９ ＣＤ４＋Ｔ細胞を刺激して、ＴＧＦ−βの免疫抑制レベルをつくり得る ＴＧＦ−βの免疫抑制レベルをつくるＣＤ４＋Ｔ細胞はＴｈ３細胞と名づけら
れているが、その生起に関わるメカニズムはほとんど知られていない。我々は、
スーパー抗原、ブドウ球菌性エンテロトキシンＢ（ＳＥＢ）によるＣＤ４＋細胞
の強い刺激、または低濃度のＳＥＢによるＣＤ４＋細胞の反復刺激がこれらの細
胞を誘発してＴＧＦ−βの免疫抑制レベルをつくるとの確証を得た。

【０１２９】 図１５は、ＳＥＢの濃度を増加させながらＣＤ４＋Ｔ細胞を刺激し、これによ
る全活性ＴＧＦ−βの生成量が増加していることを示す。図１６は、低量のＳＥ
ＢによるＣＤ４＋Ｔ細胞の反復刺激の作用を示す。Ｔ細胞をＳＥＢで刺激すると
、刺激３回目までにかなりの量の活性型ＴＧＦ−βが生成した。

【０１３０】 図１７は、ナイーブ（ＣＤ４５ＲＡ＋ＣＤ４５ＲＯ−）ＣＤ４＋およびＣＤ８
＋Ｔ細胞に対するＳＥＢの作用を示す。細胞をＳＥＢで５日毎に計３回刺激した
。各Ｔ細胞サブセットおよびＣＤ２５ＩＬ−２受容体活性化マーカーを発現する
細胞の割合を各刺激後に測定した。パネルＡおよびＣは、最初の刺激時にＴＧＦ
−βの１ｎｇ／ｍｌを含んでいることによって、ＣＤ４＋Ｔ細胞が反復刺激後に
培地中で優勢なサブセットになることを示す。パネルＢおよびＤは、ＳＥＢ刺激
を受けた細胞によるＣＤ２５発現が対照の培地中３回目の刺激により低下するこ
とを示す。しかし、Ｔ細胞をＴＧＦ−βで免疫起動するとＣＤ２５の発現は高い
ままである。このように、Ｔ細胞が反復して刺激を受け、２０日間の培養後、こ
の細胞のほとんどがＣＤ２５＋であれば、ＴＧＦ−βはＣＤ４＋細胞に対して優
先的作用を持っているようである。

【０１３１】 要約すると、Ｔ細胞の刺激につづいて、ＴＧＦ−βの初期抑制効果はＣＤ８＋
細胞に向けられる。該サイトカインは、長いまたは反復した刺激によりＣＤ４＋
細胞を生成して調節性細胞となり、そしてこの細胞の抑制活性はＣＤ８＋細胞の
それよりも強い。

【０１３２】 実施例１０ 幹細胞の移植後にＧＶＨＤを引き起こした慢性骨髄性白血病患者の処置 幹細胞の移植に伴う初期または後期ＧＶＨＤを予防する最初の方法が成功しな
かった場合に、サプレッサー細胞になるよう調整したドナーＴ細胞を大量移転す
ることにより、ＧＶＨＤを処置できる。白血球除去法により得た約１×１０^９の
ＰＢＭＣを、滅菌したロイコパック、すなわちハンクス緩衝塩類溶液（ＨＢＢＳ
）中で濃縮する。ＰＢＭＣは、適当なモノクロナール抗体で被膜した磁性ビーズ
によってＣＤ４＋とＣＤ８＋に分離する。細胞を望ましいＴ細胞アクチベーター
および阻害誘発組成物と最適時間処置し、最大の調節性活性を発揮させる。該細
胞を増量し、レシピエントに移転する。調整したこのＴ細胞はリンパ器官に移行
しＧＶＨＤを抑制する。

【０１３３】 慢性骨髄性白血病以外に、急性および慢性白血病、リンパ腫のような他の血液
系悪性腫瘍、乳癌または腎性細胞癌のような固形癌、および重篤な貧血（サラセ
ミア、鎌状赤血球貧血）のような非悪性疾患などを、不適合の同種異型幹細胞で
処置し得る。

【０１３４】 本発明の他の態様は、サイトカインと細胞インキュベーションを行なうための
キットである。該キットは容器内に予め入れた適当な濃度のサイトカインを含む
滅菌培養容器を含む。キットの一つの実施態様で、サイトカインは容器中に凍結
乾燥型で存在する。該容器は静脈注射用（ＩＶ）バッグのようなバッグが望まし
い。凍結乾燥したサイトカインは、ハンクス緩衝塩類溶液（ＨＢＢＳ）によって
再構成し、ついで細胞を該容器に注入して完全に混合しインキュベートする。更
なる本発明の実施態様で、サイトカインは予め溶液状態で容器内にあって、ただ
なすべきことは洗浄した幹細胞調製物の注入およびインキュベーションである。

【図面の簡単な説明】

【図１】 図１Ａおよび１Ｂは、ＴＧＦ−βがＴ細胞上でＣＤ４０リガンド
（ＣＤ４０Ｌ）の発現を上方調節し得ることを示す。

【図２】 図２Ａ、２Ｂ、２Ｃ、２Ｄは、ＴＧＦ−βがＣＤ８＋細胞による
ＴＧＦ−α発現を増加せしめることを示す。

【図３】 図３Ａおよび３Ｂは、ＴＧＦ−βがＴ細胞によるＩＬ−２発現を
増加せしめることを示す。

【図４】 図４Ａ、４Ｂ、４Ｃは、ＴＧＦ−βが細胞毒性活性を増加または
阻害し得ることを示す。

【図５】 図５は、ＴＧＦ−βで処理されたＣＤ８＋Ｔ細胞による不適合ヒ
ト細胞に対する細胞毒性Ｔ細胞活性の抑制を示す。

【図６】 図６は、ナイーブＣＤ８＋Ｔ細胞が、ＴＧＦ−βの存在で活性化
されると、強力な抑制活性を起こすことを示す。

【図７】 図７は、ＴＧＦ−βで免疫起動されたＣＤ４＋細胞の同種異型細
胞毒性リンパ球（ＣＴＬ）活性に対する作用を示す。

【図８】 図８は、調節性Ｔ細胞が細胞接触でＣＴＬ活性を阻害することを
示す。

【図９】 図９は、ナイーブＣＤ４＋Ｔ細胞のＴＧＦ−β存在下での活性化
によって、この細胞が同種異型抗原に対して強く応答し得るようになり、その活
性化表現型への転換が促進され、活力が増加することを示す。

【図１０】 図１０は、ＣＤ４ reg がＣＤ２５を表現し、強力な抑制活性
にかなり少数を要することを示す。

【図１１】 図１１は、ＣＤ４＋ＣＤ２５＋Ｔ細胞を増量し、その強力な阻
害作用を保持せしめ得ることを示す。

【図１２】 図１２は、ＴＧＦ−βで誘発された調節性ＣＤ４＋Ｔ細胞によ
るリンパ球増殖の抑制を示す。

【図１３】 図１３は、ＣＤ２５＋ＣＤ４Ｔ細胞の調節性活性を示す。ＣＤ
４＋細胞を、刺激した同種異型非Ｔ細胞±ＴＧＦ−β（１ｎｇ／ｍｌ）で５日間
刺激した。

【図１４】 図１４は、細胞毒性Ｔ細胞活性について、ＣＤ４ reg が応答
Ｔ細胞の同種異型抗原に対する増殖性応答をブロックし、ＣＤ８＋Ｔ細胞がその
主要な標的であることを示す。

【図１５】 図１５は、低量のブドウ球菌性エンテロトキシンＢ（ＳＥＢ）
でのＴ細胞の反復刺激がＴ細胞を誘発してＴＧＦ−βの免疫抑制レベルをつくる
ことを示す。

【図１６】 図１６は、低量のＳＥＢでのＣＤ４＋Ｔ細胞の反復刺激がＴ細
胞を誘発してＴＧＦ−βの免疫抑制レベルをつくることを示す。

【図１７】 図１７は、ＳＥＢのナイーブ（ＣＤ４５ＲＡ＋ＣＤ４５ＲＯ−
）ＣＤ４＋およびＣＤ８＋Ｔ細胞に対する作用を示す。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ， ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，Ｉ Ｔ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＧＷ，ＭＬ， ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＧＭ，Ｋ Ｅ，ＬＳ，ＭＷ，ＭＺ，ＳＤ，ＳＬ，ＳＺ，ＴＺ，ＵＧ ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ， ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＥ，ＡＧ，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ， ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＢＺ，Ｃ Ａ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＲ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＤＭ ，ＤＺ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＤ，ＧＥ，ＧＨ， ＧＭ，ＨＲ，ＨＵ，ＩＤ，ＩＬ，ＩＮ，ＩＳ，ＪＰ，Ｋ Ｅ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＡ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ， ＭＷ，ＭＸ，ＭＺ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，Ｒ Ｕ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ，ＴＪ，ＴＭ ，ＴＲ，ＴＴ，ＴＺ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＺ，ＶＮ，ＹＵ， ＺＡ，ＺＷ

Claims (17)

【特許請求の範囲】
1. 【請求項１】 生体外の末梢血単球細胞（ＰＢＭＣ）のサンプルにおいてサ
   プレッサー細胞を生成せしめる方法であって、阻害誘発組成物を該細胞集団に加
   えることを含む方法。
2. 【請求項２】 レシピエント患者の移植片−対−宿主疾患を軽減するために
   ドナー細胞を処置する方法であって、 ａ）ドナーから末梢血単球細胞（ＰＢＭＣ）を取り出し、 ｂ）該細胞を阻害誘発組成物で、サプレッサー細胞を生成せしめるのに十分な
   時間処置し、 ｃ）該細胞を該患者に導入する、 ことを含む方法。
3. 【請求項３】 該阻害誘発組成物がＴＧＦ−βを含む、請求項１または２の
   方法。
4. 【請求項４】 該阻害誘発組成物がＩＬ−２とＴＧＦ−βの混合物を含む、
   請求項１または２の方法。
5. 【請求項５】 該ドナー細胞をＴ細胞アクチベーターで処理することをさら
   に含む、請求項１または２の方法。
6. 【請求項６】 該Ｔ細胞アクチベーターがレシピエント細胞である、請求項
   ５の方法。
7. 【請求項７】 該組成物方法が、該細胞をドナー幹細胞に、該患者への導入
   前に加えることをさらに含む、請求項２の方法。
8. 【請求項８】 該ＰＢＭＣがＣＤ８＋細胞に富む、請求項１または２の方法
   。
9. 【請求項９】 該ＰＢＭＣがＣＤ４＋細胞に富む、請求項１または２の方法
   。
10. 【請求項１０】 ドナー細胞を処置するためのキットであって、 ａ）ドナーから細胞を受容するのに適した細胞処置容器、 ｂ）少なくとも１用量のＴ細胞アクチベーター、 を含むキット。
11. 【請求項１１】 該Ｔ細胞アクチベーターがブドウ球菌性エンテロトキシン
    Ｂである、請求項１０のキット。
12. 【請求項１２】 処置方法の説明書をさらに含む、請求項１０のキット。
13. 【請求項１３】 該用量が該細胞処置容器中に含有されている、請求項１０
    のキット。
14. 【請求項１４】 該用量が凍結乾燥形態にある、請求項１０のキット。
15. 【請求項１５】 該細胞処置容器が少なくとも１つの試薬をさらに含有する
    、請求項１０のキット。
16. 【請求項１６】 該細胞処置容器が、該細胞の分画を分析のために取り出し
    得るサンプル口をさらに含む、請求項１０のキット。
17. 【請求項１７】 該細胞処置容器が、該細胞の少なくとも部分を該患者に移
    転し得るのに適した出口をさらに含む、請求項１０のキット。