JP2003304896A - ヒトcyp3a誘導能の測定法 - Google Patents
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Abstract
(57)【要約】
【解決手段】 被検薬物を投与された非ヒト動物又は被
検薬物含有培地で培養されたヒト培養細胞に、(A)ア
デノウイルスベクターに、検出可能なレポーター遺伝子
と、ヒトCYP3A遺伝子の非翻訳領域中のヒトPXRに結合す
る領域の少なくとも3ケ所以上を組み込んでなるウイル
ス、及び(B)アデノウイルスベクターにヒトPXR遺伝
子を組み込んでなるウイルスを導入し、当該非ヒト動物
又はヒト培養細胞におけるレポーター遺伝子の発現量を
測定することを特徴とする、被検薬物投与時のヒトCYP3
A誘導能の測定法。 【効果】 本発明方法によれば、ヒトに被検薬物を投与
したときのヒトCYP3A誘導能が簡便かつ正確に評価でき
ることから、当該薬物の有効性、副作用の発現、薬効の
消失等が正確に評価できる。
検薬物含有培地で培養されたヒト培養細胞に、(A)ア
デノウイルスベクターに、検出可能なレポーター遺伝子
と、ヒトCYP3A遺伝子の非翻訳領域中のヒトPXRに結合す
る領域の少なくとも3ケ所以上を組み込んでなるウイル
ス、及び(B)アデノウイルスベクターにヒトPXR遺伝
子を組み込んでなるウイルスを導入し、当該非ヒト動物
又はヒト培養細胞におけるレポーター遺伝子の発現量を
測定することを特徴とする、被検薬物投与時のヒトCYP3
A誘導能の測定法。 【効果】 本発明方法によれば、ヒトに被検薬物を投与
したときのヒトCYP3A誘導能が簡便かつ正確に評価でき
ることから、当該薬物の有効性、副作用の発現、薬効の
消失等が正確に評価できる。
Description
【0001】
【発明の属する技術分野】本発明は、ヒト型薬物代謝酵
素であるヒトCYP3Aの誘導能を簡便かつ正確に測定する
方法及び測定試薬に関する。
素であるヒトCYP3Aの誘導能を簡便かつ正確に測定する
方法及び測定試薬に関する。
【0002】
【従来の技術及び発明が解決しようとする課題】ヒトに
投与された種々の薬物は、肝臓等において種々の代謝を
受ける。かかる薬物代謝に関与する酵素のうちシトクロ
ムP450、特にCYP3Aは、薬物の有効性、副作用の発現、
薬効の消失に最も影響を与える酵素であり、薬物投与時
のCYP3A誘導能の測定は医薬品開発上必須の項目となっ
ている。そして、当該CYP3A誘導能は、薬物固有の特性
であり、薬物毎に測定し評価する必要がある。
投与された種々の薬物は、肝臓等において種々の代謝を
受ける。かかる薬物代謝に関与する酵素のうちシトクロ
ムP450、特にCYP3Aは、薬物の有効性、副作用の発現、
薬効の消失に最も影響を与える酵素であり、薬物投与時
のCYP3A誘導能の測定は医薬品開発上必須の項目となっ
ている。そして、当該CYP3A誘導能は、薬物固有の特性
であり、薬物毎に測定し評価する必要がある。
【0003】従来のCYP3A誘導能の測定手段としては、
ヒトCYP3Aの誘導能を測定するのでなく、ラットにおけ
るCYP3AであるCYP3A1又はCYP3A2の誘導能を測定するこ
とにより行われている。しかし、ヒトとラット等の動物
では薬物に対する酵素の作用が異なり、ヒトにおける薬
物動態が正確に評価できなかった。
ヒトCYP3Aの誘導能を測定するのでなく、ラットにおけ
るCYP3AであるCYP3A1又はCYP3A2の誘導能を測定するこ
とにより行われている。しかし、ヒトとラット等の動物
では薬物に対する酵素の作用が異なり、ヒトにおける薬
物動態が正確に評価できなかった。
【0004】従って本発明は、薬物投与時のヒトCYP3A
誘導能を簡便かつ正確に測定する方法を提供することを
目的とする。
誘導能を簡便かつ正確に測定する方法を提供することを
目的とする。
【0005】
【課題を解決するための手段】そこで本発明者は、アデ
ノウイルスベクターにレポーター遺伝子と、ヒト核内レ
セプターPXR(PregnaneX Receptor)遺伝子を組み込んだ
ウイルスを用いてマウスにおけるヒトCYP3A誘導能を測
定したところ、良好な測定系が構築できることを見出し
た。そしてさらに研究を進めたところ、(A)アデノウ
イルスベクターに、レポーター遺伝子とヒトPXR結合領
域の少なくとも3ケ所以上とを組み込んだウイルス、及
び(B)アデノウイルスベクターにヒトPXR遺伝子を組
み込んだウイルスの2つのウイルスを導入したヒト培養
細胞系(invitro)又は非ヒト動物(in vivo)でレポーター
アッセイを行えば、従来法及び単一プラスミドを用いる
方法に比べて飛躍的に正確にヒトCYP3A誘導能が測定で
きることを見出した。また、(a)プラスミドベクター
に、検出可能なレポーター遺伝子と、ヒトCYP3A遺伝子
の非翻訳領域中のヒトPXRに結合する領域の少なくとも
3ケ所以上を組み込んでなるDNAを導入したヒト培養細
胞の中には、継代培養してもその形質を保持している形
質転換細胞が存在し、これを用いればインビトロにおけ
るヒトCYP3A誘導能の測定が更に容易になることを見出
し、本発明を完成するに至った。
ノウイルスベクターにレポーター遺伝子と、ヒト核内レ
セプターPXR(PregnaneX Receptor)遺伝子を組み込んだ
ウイルスを用いてマウスにおけるヒトCYP3A誘導能を測
定したところ、良好な測定系が構築できることを見出し
た。そしてさらに研究を進めたところ、(A)アデノウ
イルスベクターに、レポーター遺伝子とヒトPXR結合領
域の少なくとも3ケ所以上とを組み込んだウイルス、及
び(B)アデノウイルスベクターにヒトPXR遺伝子を組
み込んだウイルスの2つのウイルスを導入したヒト培養
細胞系(invitro)又は非ヒト動物(in vivo)でレポーター
アッセイを行えば、従来法及び単一プラスミドを用いる
方法に比べて飛躍的に正確にヒトCYP3A誘導能が測定で
きることを見出した。また、(a)プラスミドベクター
に、検出可能なレポーター遺伝子と、ヒトCYP3A遺伝子
の非翻訳領域中のヒトPXRに結合する領域の少なくとも
3ケ所以上を組み込んでなるDNAを導入したヒト培養細
胞の中には、継代培養してもその形質を保持している形
質転換細胞が存在し、これを用いればインビトロにおけ
るヒトCYP3A誘導能の測定が更に容易になることを見出
し、本発明を完成するに至った。
【0006】すなわち、本発明は、被検薬物を投与され
た非ヒト動物又は被検薬物含有培地で培養されたヒト培
養細胞に、(A)アデノウイルスベクターに、検出可能
なレポーター遺伝子と、ヒトCYP3A遺伝子の非翻訳領域
中のヒトPXRに結合する領域の少なくとも3ケ所以上を
組み込んでなるウイルス、及び(B)アデノウイルスベ
クターにヒトPXR遺伝子を組み込んでなるウイルスを導
入し、当該非ヒト動物又はヒト培養細胞におけるレポー
ター遺伝子の発現量を測定することを特徴とする、被検
薬物投与時のヒトCYP3A誘導能の測定法を提供するもの
である。
た非ヒト動物又は被検薬物含有培地で培養されたヒト培
養細胞に、(A)アデノウイルスベクターに、検出可能
なレポーター遺伝子と、ヒトCYP3A遺伝子の非翻訳領域
中のヒトPXRに結合する領域の少なくとも3ケ所以上を
組み込んでなるウイルス、及び(B)アデノウイルスベ
クターにヒトPXR遺伝子を組み込んでなるウイルスを導
入し、当該非ヒト動物又はヒト培養細胞におけるレポー
ター遺伝子の発現量を測定することを特徴とする、被検
薬物投与時のヒトCYP3A誘導能の測定法を提供するもの
である。
【0007】また本発明は、(a)プラスミドベクター
に、検出可能なレポーター遺伝子と、ヒトCYP3A遺伝子
の非翻訳領域中のヒトPXRに結合する領域の少なくとも
3ケ所以上を組み込んでなるDNAを導入してなる形質転
換ヒト培養細胞を、被検薬物含有培地で培養し、レポー
ター遺伝子の発現量を測定することを特徴とする、被検
薬物投与時のヒトCYP3A誘導能の測定法を提供するもの
である。
に、検出可能なレポーター遺伝子と、ヒトCYP3A遺伝子
の非翻訳領域中のヒトPXRに結合する領域の少なくとも
3ケ所以上を組み込んでなるDNAを導入してなる形質転
換ヒト培養細胞を、被検薬物含有培地で培養し、レポー
ター遺伝子の発現量を測定することを特徴とする、被検
薬物投与時のヒトCYP3A誘導能の測定法を提供するもの
である。
【0008】また本発明は、(A)アデノウイルスベク
ターに、検出可能なレポーター遺伝子と、ヒトCYP3A遺
伝子の非翻訳領域中のヒトPXRに結合する領域の少なく
とも3ケ所以上を組み込んでなるウイルス、及び(B)
アデノウイルスベクターにヒトPXR遺伝子を組み込んで
なるウイルスを含有することを特徴とするヒトCYP3A誘
導能測定試薬を提供するものである。
ターに、検出可能なレポーター遺伝子と、ヒトCYP3A遺
伝子の非翻訳領域中のヒトPXRに結合する領域の少なく
とも3ケ所以上を組み込んでなるウイルス、及び(B)
アデノウイルスベクターにヒトPXR遺伝子を組み込んで
なるウイルスを含有することを特徴とするヒトCYP3A誘
導能測定試薬を提供するものである。
【0009】さらに本発明は、(a)プラスミドベクタ
ーに、検出可能なレポーター遺伝子と、ヒトCYP3A遺伝
子の非翻訳領域中のヒトPXRに結合する領域の少なくと
も3ケ所以上を組み込んでなるDNAを導入してなる形質
転換ヒト培養細胞を含有することを特徴とするヒトCYP3
A誘導能測定試薬を提供するものである。
ーに、検出可能なレポーター遺伝子と、ヒトCYP3A遺伝
子の非翻訳領域中のヒトPXRに結合する領域の少なくと
も3ケ所以上を組み込んでなるDNAを導入してなる形質
転換ヒト培養細胞を含有することを特徴とするヒトCYP3
A誘導能測定試薬を提供するものである。
【0010】
【発明の実施の形態】本発明のヒトCYP3A誘導能測定法
においては、次の2つのウイルスが用いられる。 (A)アデノウイルスベクターに、検出可能なレポータ
ー遺伝子と、ヒトCYP3A遺伝子の非翻訳領域中のヒトPXR
に結合する領域の少なくとも3ケ所以上を組み込んでな
るウイルス〔ウイルス(A)〕。 (B)アデノウイルスベクターにヒトPXR遺伝子を組み
込んでなるウイルス〔ウイルス(B)〕。
においては、次の2つのウイルスが用いられる。 (A)アデノウイルスベクターに、検出可能なレポータ
ー遺伝子と、ヒトCYP3A遺伝子の非翻訳領域中のヒトPXR
に結合する領域の少なくとも3ケ所以上を組み込んでな
るウイルス〔ウイルス(A)〕。 (B)アデノウイルスベクターにヒトPXR遺伝子を組み
込んでなるウイルス〔ウイルス(B)〕。
【0011】ウイルス(A)及びウイルス(B)に用い
られるアデノウイルスベクターとしては、通常遺伝子治
療用のベクターとして用いられているアデノウイルスベ
クターであってもよいが、真核細胞のプロモーターやエ
ンハンサーを含まないもの、例えば初期遺伝子EIA・EIB
遺伝子を欠損させたものが好ましい。市販のアデノウイ
ルスベクターとしては、Ad5dIX又はAdEasyが挙げられ
る。
られるアデノウイルスベクターとしては、通常遺伝子治
療用のベクターとして用いられているアデノウイルスベ
クターであってもよいが、真核細胞のプロモーターやエ
ンハンサーを含まないもの、例えば初期遺伝子EIA・EIB
遺伝子を欠損させたものが好ましい。市販のアデノウイ
ルスベクターとしては、Ad5dIX又はAdEasyが挙げられ
る。
【0012】ウイルス(A)に用いられる検出可能なレ
ポーター遺伝子としては、検出可能なタンパク又は酵素
をコードする遺伝子であればよく、例えばGFP(Green Fl
uorescent Protein)遺伝子、GUS(β−Glucuronidase)遺
伝子、LUS(Lusiferase)遺伝子、CAT(Chloramphenicolac
etyl transferase)遺伝子等が挙げられる。市販のレポ
ーター遺伝子としてはGFP、LUS、CATが挙げられる。
ポーター遺伝子としては、検出可能なタンパク又は酵素
をコードする遺伝子であればよく、例えばGFP(Green Fl
uorescent Protein)遺伝子、GUS(β−Glucuronidase)遺
伝子、LUS(Lusiferase)遺伝子、CAT(Chloramphenicolac
etyl transferase)遺伝子等が挙げられる。市販のレポ
ーター遺伝子としてはGFP、LUS、CATが挙げられる。
【0013】ウイルス(A)に用いられるヒトCYP3A遺
伝子の非翻訳領域中のヒトPXRに結合する領域の少なく
とも3ケ所以上としては、ヒトCYP3A4遺伝子の非翻訳領
域中の7.7k(dNR-1)領域、362(ER-6)領域、7.6〜7.4k(MI
E)領域及び、7.3k領域から選ばれる3ケ所以上が挙げら
れるが、7.7k領域、7.6〜7.4k領域及び362領域が特に好
ましい。本発明においては、このヒトPXRに結合する領
域の3ケ所以上を用いることが重要であり1ケ所又は2
ケ所だけを用いた場合にはヒトCYP3A遺伝子の発現が十
分でなく、ヒトCYP3A誘導能が正確に測定できない。
伝子の非翻訳領域中のヒトPXRに結合する領域の少なく
とも3ケ所以上としては、ヒトCYP3A4遺伝子の非翻訳領
域中の7.7k(dNR-1)領域、362(ER-6)領域、7.6〜7.4k(MI
E)領域及び、7.3k領域から選ばれる3ケ所以上が挙げら
れるが、7.7k領域、7.6〜7.4k領域及び362領域が特に好
ましい。本発明においては、このヒトPXRに結合する領
域の3ケ所以上を用いることが重要であり1ケ所又は2
ケ所だけを用いた場合にはヒトCYP3A遺伝子の発現が十
分でなく、ヒトCYP3A誘導能が正確に測定できない。
【0014】ここでヒトPXRは核内レセプターの一種Pre
gnane X Receptor遺伝子であり、ヒトCYP3Aの発現に関
与することが知られている。しかし、ヒトCYP3A遺伝子
の非翻訳領域中のヒトPXRに結合する領域の3ケ所以上
が、ヒトCYP3Aの発現に重要であることは知られていな
い。
gnane X Receptor遺伝子であり、ヒトCYP3Aの発現に関
与することが知られている。しかし、ヒトCYP3A遺伝子
の非翻訳領域中のヒトPXRに結合する領域の3ケ所以上
が、ヒトCYP3Aの発現に重要であることは知られていな
い。
【0015】またヒトCYP3Aとしては、ヒトCYP3A4、CYP
3A5、CYP3A7及びCYP3A43が挙げられるが、CYP3A4が薬物
代謝上最も重要であり、CYP3A4が好ましい。
3A5、CYP3A7及びCYP3A43が挙げられるが、CYP3A4が薬物
代謝上最も重要であり、CYP3A4が好ましい。
【0016】ウイルス(A)の作製は、ヒトPXRに結合
する領域の少なくとも3ケ所以上、例えば7.7k領域、7.
6〜7.4k領域及び362領域をLUC遺伝子の上流に連結した
レポーターウイルスを作製し、これをアデノウイルスベ
クターのEIA・EIB遺伝子領域に挿入することにより行わ
れる。
する領域の少なくとも3ケ所以上、例えば7.7k領域、7.
6〜7.4k領域及び362領域をLUC遺伝子の上流に連結した
レポーターウイルスを作製し、これをアデノウイルスベ
クターのEIA・EIB遺伝子領域に挿入することにより行わ
れる。
【0017】ウイルス(B)に用いられるヒトPXR遺伝
子としては、ヒトPXR cDNAが挙げられる。
子としては、ヒトPXR cDNAが挙げられる。
【0018】ウイルス(B)の作製は、例えばMolecula
r cloning(Maniatisetal)記載の方法に従って調製した
ヒトPXR遺伝子をアデノウイルスベクターのEIA・EIB遺
伝子領域に挿入することにより行われる。
r cloning(Maniatisetal)記載の方法に従って調製した
ヒトPXR遺伝子をアデノウイルスベクターのEIA・EIB遺
伝子領域に挿入することにより行われる。
【0019】本発明においては、これらのウイルス
(A)及びウイルス(B)は、被検薬物を投与された非
ヒト動物、又は被検薬物含有培地で培養されたヒト培養
細胞に導入する。ここで両ウイルスは、同時に機能する
ように導入する必要があるが、これらのウイルスを混合
液として導入してもよいし、いずれか一方のウイルスを
導入し、続いて他方のウイルスを導入して両ウイルスが
同時に機能するようにしてもよい。
(A)及びウイルス(B)は、被検薬物を投与された非
ヒト動物、又は被検薬物含有培地で培養されたヒト培養
細胞に導入する。ここで両ウイルスは、同時に機能する
ように導入する必要があるが、これらのウイルスを混合
液として導入してもよいし、いずれか一方のウイルスを
導入し、続いて他方のウイルスを導入して両ウイルスが
同時に機能するようにしてもよい。
【0020】非ヒト動物としては、ラット、マウス、モ
ルモット、ウサギ、イヌ、サル等が挙げられるが、実験
操作の点からラット、マウスが特に好ましい。これらの
非ヒト動物への被検薬物の投与方法は、当該被検薬物の
臨床における投与手段の他、腹腔内投与が挙げられる。
また被検薬物の投与量は、臨床投与量を考慮して決定す
ればよい。当該ヒト動物へのウイルス(A)及び(B)
の導入手段としては、腹腔内投与、静脈投与等により行
うのが好ましい。
ルモット、ウサギ、イヌ、サル等が挙げられるが、実験
操作の点からラット、マウスが特に好ましい。これらの
非ヒト動物への被検薬物の投与方法は、当該被検薬物の
臨床における投与手段の他、腹腔内投与が挙げられる。
また被検薬物の投与量は、臨床投与量を考慮して決定す
ればよい。当該ヒト動物へのウイルス(A)及び(B)
の導入手段としては、腹腔内投与、静脈投与等により行
うのが好ましい。
【0021】ヒト培養細胞としては、HepG2、LS174T、H
ela、Caco-2等が挙げられるが、HepG2、LS174Tが特に好
ましい。当該ヒト培養細胞は、そのまま、又は被検薬物
を含有する培地で培養したものが用いられる。当該ヒト
培養細胞へのウイルス(A)及び(B)の導入は、培地
にウイルスを添加する等により行うのが好ましい。
ela、Caco-2等が挙げられるが、HepG2、LS174Tが特に好
ましい。当該ヒト培養細胞は、そのまま、又は被検薬物
を含有する培地で培養したものが用いられる。当該ヒト
培養細胞へのウイルス(A)及び(B)の導入は、培地
にウイルスを添加する等により行うのが好ましい。
【0022】本発明のヒトCYP3A誘導能測定に用いられ
る形質転換ヒト培養細胞は、ヒト培養細胞に次のDNAを
導入することにより得られる。(a)プラスミドベクタ
ーに、検出可能なレポーター遺伝子と、ヒトCYP3A遺伝
子の非翻訳領域中のヒトPXRに結合する領域の少なくと
も3ケ所以上を組み込んでなるDNA〔DNA(a)〕。
る形質転換ヒト培養細胞は、ヒト培養細胞に次のDNAを
導入することにより得られる。(a)プラスミドベクタ
ーに、検出可能なレポーター遺伝子と、ヒトCYP3A遺伝
子の非翻訳領域中のヒトPXRに結合する領域の少なくと
も3ケ所以上を組み込んでなるDNA〔DNA(a)〕。
【0023】DNA(a)に用いられるプラスミドベクタ
ーとしては、マルチクローニングサイトを有するベクタ
ー、例えばpGL3Basic Vector(promega社)、pDSRed 2-1
などのGFP遺伝子を含むベクター(Clontech社)等が挙げ
られる。
ーとしては、マルチクローニングサイトを有するベクタ
ー、例えばpGL3Basic Vector(promega社)、pDSRed 2-1
などのGFP遺伝子を含むベクター(Clontech社)等が挙げ
られる。
【0024】DNA(a)に用いられる検出可能なレポー
ター遺伝子、ヒトCYP3A遺伝子の非翻訳領域中のヒトPXR
に結合する領域の少なくとも3ケ所としては、いずれも
前記ウイルス(A)に用いられるものが採用できる。
ター遺伝子、ヒトCYP3A遺伝子の非翻訳領域中のヒトPXR
に結合する領域の少なくとも3ケ所としては、いずれも
前記ウイルス(A)に用いられるものが採用できる。
【0025】DNA(a)の作製は、ヒトPXRに結合する領
域の少なくとも3ケ所以上、例えば7.7k領域、7.6〜7.4
k領域及び362領域を連結したレポーターベクターを作製
し、これをレポーター遺伝子を有するプラスミドベクタ
ーのマルチクローニングサイトのMluI-HindIII切断サイ
ト領域に挿入することにより行われる。より強い誘導能
を示すクローンを得るには、これらの領域及びレポータ
ー遺伝子を直線上に有するプラスミドをタンデムに複数
個、より好ましくは5個以上、特に好ましくは5〜10個
連結したDNAを用いるのが好ましい。
域の少なくとも3ケ所以上、例えば7.7k領域、7.6〜7.4
k領域及び362領域を連結したレポーターベクターを作製
し、これをレポーター遺伝子を有するプラスミドベクタ
ーのマルチクローニングサイトのMluI-HindIII切断サイ
ト領域に挿入することにより行われる。より強い誘導能
を示すクローンを得るには、これらの領域及びレポータ
ー遺伝子を直線上に有するプラスミドをタンデムに複数
個、より好ましくは5個以上、特に好ましくは5〜10個
連結したDNAを用いるのが好ましい。
【0026】本発明においては、このDNA(a)をヒト
培養細胞に導入する。導入方法としては、例えばリン酸
カルシウム法により行うのが好ましい。
培養細胞に導入する。導入方法としては、例えばリン酸
カルシウム法により行うのが好ましい。
【0027】用いられるヒト培養細胞としては、HepG
2、LS174T、Hela、Caco-2等が挙げられるが、HepG2、LS
174Tが特に好ましい。DNA(a)を保持している形質転
換細胞の選択は、継代培養した後のレポーター遺伝子発
現量を測定すればよい。
2、LS174T、Hela、Caco-2等が挙げられるが、HepG2、LS
174Tが特に好ましい。DNA(a)を保持している形質転
換細胞の選択は、継代培養した後のレポーター遺伝子発
現量を測定すればよい。
【0028】このように継代培養してもDNA(a)を保
持してなる形質転換ヒト培養細胞を用いる場合には、こ
の形質転換ヒト培養細胞を薬物含有培地で培養し、レポ
ーター遺伝子の発現量を測定することにより、被検薬物
投与時のヒトCYP3A誘導能が測定できる。
持してなる形質転換ヒト培養細胞を用いる場合には、こ
の形質転換ヒト培養細胞を薬物含有培地で培養し、レポ
ーター遺伝子の発現量を測定することにより、被検薬物
投与時のヒトCYP3A誘導能が測定できる。
【0029】非ヒト動物におけるレポーター遺伝子発現
量の測定は、例えばウイルス(A)及び(B)投与、2
〜5日後に肝臓、脾臓等の臓器中のレポーター活性を測
定することにより行われる。例えば肝臓のレポーター活
性は、摘出した肝臓をホモジネートし、その遠心上清の
レポーター活性、例えば蛍光強度、レポーター酵素活性
等を測定することにより行われる。
量の測定は、例えばウイルス(A)及び(B)投与、2
〜5日後に肝臓、脾臓等の臓器中のレポーター活性を測
定することにより行われる。例えば肝臓のレポーター活
性は、摘出した肝臓をホモジネートし、その遠心上清の
レポーター活性、例えば蛍光強度、レポーター酵素活性
等を測定することにより行われる。
【0030】ヒト培養細胞におけるレポーター遺伝子発
現量の測定は、例えばウイルス(A)及び(B)導入2
〜4日後に、培養細胞をホモジネートし、その遠心上清
のレポーター活性を測定することにより行われる。
現量の測定は、例えばウイルス(A)及び(B)導入2
〜4日後に、培養細胞をホモジネートし、その遠心上清
のレポーター活性を測定することにより行われる。
【0031】得られたレポーター活性を、被検薬物非投
与群又は被検薬物非含有培地培養群のそれと対比するこ
とにより、被検薬物投与によりヒトCYP3A誘導能が評価
できる。ウイルス(A)及び(B)を用いる本発明測定
系のうち、非ヒト動物を使用したin vivo系が特に好ま
しい。
与群又は被検薬物非含有培地培養群のそれと対比するこ
とにより、被検薬物投与によりヒトCYP3A誘導能が評価
できる。ウイルス(A)及び(B)を用いる本発明測定
系のうち、非ヒト動物を使用したin vivo系が特に好ま
しい。
【0032】
【実施例】次に実施例を挙げて本発明を更に詳細に説明
するが、本発明は何らこれに限定されるものではない。
するが、本発明は何らこれに限定されるものではない。
【0033】実施例1
A.実験方法
(1)ウイルス(A)の作製
本組換えアデノウイルスの作製にあたり、まず、CYP3A4
遺伝子上流(-362 to +11)をPCR法により単離し、制限酵
素BglII、Hind IIIで処理した後に、プロモーターを持
たないホタルルシフェラーゼベクターpGL3-Basicに挿入
したpGL3-CYP3A4-362を作製した。次に、さらにCYP3A4
遺伝子上流dNR-1およびMajorInducible Element(MIE)を
含む領域(-7836 bp to -7208 bp)をPCRにより単離サブ
クローニングした後、pGL3-CYP3A4-362のBglIIおよびXb
a Iサイトに挿入し、pGL3-CYP3A4-362-7Kを作製した。
このpGL3-CYP3A4-362を制限酵素Xmn Iで平滑に切断し
て、コスミドベクターpAxcwをSwaIにより平滑に切断し
た部位に組み込んだ。このインサートを持つコスミドベ
クターと制限酵素処理済みアデノウイルスDNA-TPCを293
細胞へ同時に導入し、細胞内での相同組換えにより、目
的のウイルス(A)(AdCYP3A4-362-7K)を作製した(図
1)。また、AdCYP3A4-362ウイルスも作製したが、これは
先に述べた-7836bpから-7208 bpを含まないウイルスで
ある。
遺伝子上流(-362 to +11)をPCR法により単離し、制限酵
素BglII、Hind IIIで処理した後に、プロモーターを持
たないホタルルシフェラーゼベクターpGL3-Basicに挿入
したpGL3-CYP3A4-362を作製した。次に、さらにCYP3A4
遺伝子上流dNR-1およびMajorInducible Element(MIE)を
含む領域(-7836 bp to -7208 bp)をPCRにより単離サブ
クローニングした後、pGL3-CYP3A4-362のBglIIおよびXb
a Iサイトに挿入し、pGL3-CYP3A4-362-7Kを作製した。
このpGL3-CYP3A4-362を制限酵素Xmn Iで平滑に切断し
て、コスミドベクターpAxcwをSwaIにより平滑に切断し
た部位に組み込んだ。このインサートを持つコスミドベ
クターと制限酵素処理済みアデノウイルスDNA-TPCを293
細胞へ同時に導入し、細胞内での相同組換えにより、目
的のウイルス(A)(AdCYP3A4-362-7K)を作製した(図
1)。また、AdCYP3A4-362ウイルスも作製したが、これは
先に述べた-7836bpから-7208 bpを含まないウイルスで
ある。
【0034】(2)ウイルス(B)の作製
hPXR遺伝子をヒト肝cDNAライブラリーからPCRによりク
ローニングし、CMVプロモーターをもつプラスミドpCMV4
のBamHI、Hind IIIサイトに挿入した(pCMV4-hPXR)。こ
のプラスミドをSca Iにより平滑に切断し、以下、前述
のウイルス(A)と同様の手順により、ウイルス(B)
(AdhPXR)の作製をおこなった(図2)。
ローニングし、CMVプロモーターをもつプラスミドpCMV4
のBamHI、Hind IIIサイトに挿入した(pCMV4-hPXR)。こ
のプラスミドをSca Iにより平滑に切断し、以下、前述
のウイルス(A)と同様の手順により、ウイルス(B)
(AdhPXR)の作製をおこなった(図2)。
【0035】(3)in vitroアッセイ
実験は図3に示したようにおこなった。すなわち、細胞
を1ウェルあたり2.0×105で24ウェルプレートに播き、
翌日に薬物処理、翌々日にウイルス感染をおこない、ウ
イルス感染48時間後に細胞を回収した。回収した細胞は
ReporterLysis Buffer(RLB)を用いて溶解し、その細胞
溶解液を用いてルシフェラーゼ活性の測定をおこなっ
た。
を1ウェルあたり2.0×105で24ウェルプレートに播き、
翌日に薬物処理、翌々日にウイルス感染をおこない、ウ
イルス感染48時間後に細胞を回収した。回収した細胞は
ReporterLysis Buffer(RLB)を用いて溶解し、その細胞
溶解液を用いてルシフェラーゼ活性の測定をおこなっ
た。
【0036】(4)in vivoアッセイ
ウイルスの投与法は、当初尾静注を検討したが、ウイル
スの毒性のために投与後数時間で死亡するケースが見ら
れた。そのため投与経路を腹腔内投与に変更し急性毒性
を回避した。薬物はコーン油に懸濁し、100mg/kgの用量
で腹腔内にウイルス投与前日、4時間前、翌日の3回投与
した。動物をウイルス投与2日後に解剖して臓器を摘出
し、ホモジナイズ後9000×gにて延伸しその上清(S-9)を
用いてルシフェラーゼ活性の測定をおこなった(図4)。
スの毒性のために投与後数時間で死亡するケースが見ら
れた。そのため投与経路を腹腔内投与に変更し急性毒性
を回避した。薬物はコーン油に懸濁し、100mg/kgの用量
で腹腔内にウイルス投与前日、4時間前、翌日の3回投与
した。動物をウイルス投与2日後に解剖して臓器を摘出
し、ホモジナイズ後9000×gにて延伸しその上清(S-9)を
用いてルシフェラーゼ活性の測定をおこなった(図4)。
【0037】B.実験結果
図5に、AdCYP3A4-362ウイルスを用いて培養細胞での薬
物によるCYP3A4の誘導をルシフェラーゼ活性で示した。
デキサメサゾン、リファンピシンおよびクロトリマゾー
ルはDMSOに溶解し、10μMの濃度で培地に添加した。こ
れらの薬物をヒトに投与した場合、何れもCYP3A4の誘導
を引き起こすことが知られているが、中でもリファンピ
シンは種特異性が高く、代表的なヒト型CYP3A4誘導剤と
して知られている。一方、デキサメサゾンは、ラットで
強いCYP3A分子種の誘導を引き起こすことが知られてい
る。ヒト肝ガン由来培養細胞ではルシフェラーゼ活性の
上昇がクロトリマゾールおよびデキサメサゾン処理によ
って認められたが、リファンピシン処理ではその作用は
観察されなかった。その上昇レベルはクロトリマゾール
で約8倍、デキサメサゾンで約2倍であった。
物によるCYP3A4の誘導をルシフェラーゼ活性で示した。
デキサメサゾン、リファンピシンおよびクロトリマゾー
ルはDMSOに溶解し、10μMの濃度で培地に添加した。こ
れらの薬物をヒトに投与した場合、何れもCYP3A4の誘導
を引き起こすことが知られているが、中でもリファンピ
シンは種特異性が高く、代表的なヒト型CYP3A4誘導剤と
して知られている。一方、デキサメサゾンは、ラットで
強いCYP3A分子種の誘導を引き起こすことが知られてい
る。ヒト肝ガン由来培養細胞ではルシフェラーゼ活性の
上昇がクロトリマゾールおよびデキサメサゾン処理によ
って認められたが、リファンピシン処理ではその作用は
観察されなかった。その上昇レベルはクロトリマゾール
で約8倍、デキサメサゾンで約2倍であった。
【0038】図6に、ウイルス(A)(AdCYP3A4-362-7K)
を用いて、AdCYP3A4-362ウイルスと同じ条件で行ったin
vitroレポーターアッセイの結果を示した。デキサメサ
ゾンではほとんど誘導はみられなかったが、クロトリマ
ゾールで強い(21倍)誘導応答がみられ、AdCYP3A4-362ウ
イルスではみられなかったリファンピシンによるルシフ
ェラーゼの活性上昇がみられた(5倍)。これにウイルス
(B)(AdhPXR)によりhPXRを強発現させたところ、薬剤
無処置の細胞でも10〜30倍のルシフェラーゼ活性の上昇
がみられた。さらに薬物処理による誘導も増強され、デ
キサメサゾンでのルシフェラーゼ活性の上昇は3倍であ
ったが、リファンピシンとクロトリマゾールはそれぞれ
15倍、60倍とウイルス(B)(AdhPXR)非感染群よりも強
く転写活性化された。
を用いて、AdCYP3A4-362ウイルスと同じ条件で行ったin
vitroレポーターアッセイの結果を示した。デキサメサ
ゾンではほとんど誘導はみられなかったが、クロトリマ
ゾールで強い(21倍)誘導応答がみられ、AdCYP3A4-362ウ
イルスではみられなかったリファンピシンによるルシフ
ェラーゼの活性上昇がみられた(5倍)。これにウイルス
(B)(AdhPXR)によりhPXRを強発現させたところ、薬剤
無処置の細胞でも10〜30倍のルシフェラーゼ活性の上昇
がみられた。さらに薬物処理による誘導も増強され、デ
キサメサゾンでのルシフェラーゼ活性の上昇は3倍であ
ったが、リファンピシンとクロトリマゾールはそれぞれ
15倍、60倍とウイルス(B)(AdhPXR)非感染群よりも強
く転写活性化された。
【0039】次にddY系雄性マウスを用いて、in vivoで
の誘導評価検討を行った。薬物は100mg/kgの用量で1日1
回3日間腹腔内投与した。2回目の薬物投与後4時間に、
まず、AdCYP3A4-362ウイルスを腹腔内に投与し、2日後
に肝臓重量、肝臓中のルシフェラーゼ活性およびテスト
ステロン6β-水酸化活性を測定した。デキサメサゾン、
リファンピシンおよびクロトリマゾールはコーン油に懸
濁して使用した。マウス肝臓S-9中のルシフェラーゼ活
性が全ての誘導剤投与によって上昇し、その活性上昇は
コントロールに対してデキサメサゾンおよびリファンピ
シンで約5倍、クロトリマゾールでは約9倍であった。ま
た、肝臓の相対重量増加およびテストステロン6β-水酸
化活性の上昇がいずれの誘導剤処理群においても認めら
れた。誘導剤処理したマウス肝臓におけるテストステロ
ン6β-水酸化活性とルシフェラーゼ活性上昇とはよく相
関していた(図7)。
の誘導評価検討を行った。薬物は100mg/kgの用量で1日1
回3日間腹腔内投与した。2回目の薬物投与後4時間に、
まず、AdCYP3A4-362ウイルスを腹腔内に投与し、2日後
に肝臓重量、肝臓中のルシフェラーゼ活性およびテスト
ステロン6β-水酸化活性を測定した。デキサメサゾン、
リファンピシンおよびクロトリマゾールはコーン油に懸
濁して使用した。マウス肝臓S-9中のルシフェラーゼ活
性が全ての誘導剤投与によって上昇し、その活性上昇は
コントロールに対してデキサメサゾンおよびリファンピ
シンで約5倍、クロトリマゾールでは約9倍であった。ま
た、肝臓の相対重量増加およびテストステロン6β-水酸
化活性の上昇がいずれの誘導剤処理群においても認めら
れた。誘導剤処理したマウス肝臓におけるテストステロ
ン6β-水酸化活性とルシフェラーゼ活性上昇とはよく相
関していた(図7)。
【0040】培養細胞においてウイルス(A)(AdCYP3A
4-362-7K)とウイルス(B)(AdhPXR)の共感染で薬物に
より誘導が認められていることから、これを感染させて
AdCYP3A4-362ウイルスとウイルス(A)(AdCYP3A4-362-
7K)のクロトリマゾールによる誘導の強弱を検討したと
ころ、細胞での結果と同様にウイルス(A)(AdCYP3A4-
362-7K)感染マウスでより高い転写活性化が認められ、
その誘導率は細胞の場合よりも著しいものであった(100
0倍)(図8)。
4-362-7K)とウイルス(B)(AdhPXR)の共感染で薬物に
より誘導が認められていることから、これを感染させて
AdCYP3A4-362ウイルスとウイルス(A)(AdCYP3A4-362-
7K)のクロトリマゾールによる誘導の強弱を検討したと
ころ、細胞での結果と同様にウイルス(A)(AdCYP3A4-
362-7K)感染マウスでより高い転写活性化が認められ、
その誘導率は細胞の場合よりも著しいものであった(100
0倍)(図8)。
【0041】次に、ウイルス(A)(AdCYP3A4-362-7K)
とウイルス(B)(AdhPXR)を同時に投与して、リファン
ピシンによる誘導とPXR強発現による影響を検討した。
ウイルス(B)(AdhPXR)非投与群には投与ウイルス量を
合わせるために、コントロールウイルスとしてAxCALacZ
を投与した。その結果リファンピシンでコントロールウ
イルス群(約9倍)に対し、ウイルス(B)(AdhPXR)併用
で非常に高い(約320倍)転写活性化がみられ、ヒトPXRを
発現させることによりマウス肝臓において、リファンピ
シン投与によるヒト型のCYP3A4誘導を見ることが可能と
なった(図9)。さらに、デキサメサゾン、リファンピシ
ン、クロトリマゾールの誘導剤としての作用を比較する
ために、ウイルス(AdCYP3A4-362-7K)とウイルス(B)
(AdhPXR)をマウスに共感染させ、3種の誘導剤を同時に
検討した。リファンピシンは他の二つに比べその誘導は
若干弱いものの、何れも強い誘導がみられた(図10)。
とウイルス(B)(AdhPXR)を同時に投与して、リファン
ピシンによる誘導とPXR強発現による影響を検討した。
ウイルス(B)(AdhPXR)非投与群には投与ウイルス量を
合わせるために、コントロールウイルスとしてAxCALacZ
を投与した。その結果リファンピシンでコントロールウ
イルス群(約9倍)に対し、ウイルス(B)(AdhPXR)併用
で非常に高い(約320倍)転写活性化がみられ、ヒトPXRを
発現させることによりマウス肝臓において、リファンピ
シン投与によるヒト型のCYP3A4誘導を見ることが可能と
なった(図9)。さらに、デキサメサゾン、リファンピシ
ン、クロトリマゾールの誘導剤としての作用を比較する
ために、ウイルス(AdCYP3A4-362-7K)とウイルス(B)
(AdhPXR)をマウスに共感染させ、3種の誘導剤を同時に
検討した。リファンピシンは他の二つに比べその誘導は
若干弱いものの、何れも強い誘導がみられた(図10)。
【0042】実施例2
(1)安定発現株の単離
PCR法によりヒトゲノミックDNAからCYP3A4の5’-フラン
キング領域+15から-362bpおよび-7208bpから-7836bpま
でを増幅単離し、図11に示したpGL3-Basicvectorの制限
酵素サイトに挿入してpCYP3A4-362-7Kを作成した。pCYP
3A4-362-7KをBamH Iで制限酵素処理を行い直線化した。
ネオマイシン耐性遺伝子を持つプラスミドBFPを同様にB
glII処理した。pCYP3A4-362-7KとBFPをそれぞれ5:1の割
合でライゲーションした。このpCYP3A4-362-7KとBFPの
コンストラクトをHepG2細胞にリン酸カルシウム法を用
いてトランスフェクトした。この際、安定発現株のセレ
クションのマーカーとしてゲネチシンを用いたが、この
ゲネチシンの最適濃度を決定するためにあらかじめ予備
実験を行った。この結果よりゲネチシンの濃度を900μg
/mlにしてセレクションを行った。トランスフェクトし
てから14日後、生成したコロニーを一つずつ24ウェルプ
レートに移し、ゲネチシンのないメディウム中で更に1
週間インキュベートした。このコロニーを適量のメディ
ウムを入れたエッペンドルフチューブにとり、ピペッテ
ィングで懸濁し、新しい24ウェルプレート2枚に移し
た。上記の24ウェルプレートがコンフレントになったと
ころでルシフェラーゼ活性(誘導剤処理せず)を測定し
た。この時点で活性が現れたのは48コロニー中8コロニ
ーだった。活性が現れたコロニーについて、10cmディッ
シュを用いゲネチシンのないメディウム中で継代した。
リファンピシン、クロトリマゾールを誘導剤として処理
し、ルシフェラーゼ活性を測定した。また、これらの細
胞のストックも作成した。 (2)細胞培養条件 24ウェルプレートに1.0×105/wellで細胞をまく。翌
日、誘導剤の入ったメディウムに交換し、更に24時間イ
ンキュベートする。誘導剤はDMSOにて希釈し、最終濃度
が10μMとなるよう添加した後、2日間培養しルシフェラ
ーゼ活性を測定した。 (3)細胞の溶解 培地を取り除き、PBSにて洗浄する。適量のPBSを加え、
細胞を剥がして回収した。4℃、15,000rpmで5分間遠心
し、上清を取り除いた後、ReporterLysis Buffer(Prime
ga)を100ml加え、十分に攪拌した後、-80℃で6時間以上
保存した。 (4)ルシフェラーゼ活性の測定 凍結した細胞溶解液を室温で溶解し、4℃、15,000rpmで
5分間遠心した。上清20μlにLuciferaseassay system(P
romega)を35μl加えてTurner Desingns Luminometer Mo
delTD-20/20(Promega)を使用して行った。 得られた値はタンパク定量(Bradford法)を行い、タンパ
ク量で補正した。結果を図12に示す。その結果、安定に
継代培養できる形質転換細胞を用いて、種々の薬物によ
るヒトCYP3A誘導能がinvitroで測定できることがわかっ
た。
キング領域+15から-362bpおよび-7208bpから-7836bpま
でを増幅単離し、図11に示したpGL3-Basicvectorの制限
酵素サイトに挿入してpCYP3A4-362-7Kを作成した。pCYP
3A4-362-7KをBamH Iで制限酵素処理を行い直線化した。
ネオマイシン耐性遺伝子を持つプラスミドBFPを同様にB
glII処理した。pCYP3A4-362-7KとBFPをそれぞれ5:1の割
合でライゲーションした。このpCYP3A4-362-7KとBFPの
コンストラクトをHepG2細胞にリン酸カルシウム法を用
いてトランスフェクトした。この際、安定発現株のセレ
クションのマーカーとしてゲネチシンを用いたが、この
ゲネチシンの最適濃度を決定するためにあらかじめ予備
実験を行った。この結果よりゲネチシンの濃度を900μg
/mlにしてセレクションを行った。トランスフェクトし
てから14日後、生成したコロニーを一つずつ24ウェルプ
レートに移し、ゲネチシンのないメディウム中で更に1
週間インキュベートした。このコロニーを適量のメディ
ウムを入れたエッペンドルフチューブにとり、ピペッテ
ィングで懸濁し、新しい24ウェルプレート2枚に移し
た。上記の24ウェルプレートがコンフレントになったと
ころでルシフェラーゼ活性(誘導剤処理せず)を測定し
た。この時点で活性が現れたのは48コロニー中8コロニ
ーだった。活性が現れたコロニーについて、10cmディッ
シュを用いゲネチシンのないメディウム中で継代した。
リファンピシン、クロトリマゾールを誘導剤として処理
し、ルシフェラーゼ活性を測定した。また、これらの細
胞のストックも作成した。 (2)細胞培養条件 24ウェルプレートに1.0×105/wellで細胞をまく。翌
日、誘導剤の入ったメディウムに交換し、更に24時間イ
ンキュベートする。誘導剤はDMSOにて希釈し、最終濃度
が10μMとなるよう添加した後、2日間培養しルシフェラ
ーゼ活性を測定した。 (3)細胞の溶解 培地を取り除き、PBSにて洗浄する。適量のPBSを加え、
細胞を剥がして回収した。4℃、15,000rpmで5分間遠心
し、上清を取り除いた後、ReporterLysis Buffer(Prime
ga)を100ml加え、十分に攪拌した後、-80℃で6時間以上
保存した。 (4)ルシフェラーゼ活性の測定 凍結した細胞溶解液を室温で溶解し、4℃、15,000rpmで
5分間遠心した。上清20μlにLuciferaseassay system(P
romega)を35μl加えてTurner Desingns Luminometer Mo
delTD-20/20(Promega)を使用して行った。 得られた値はタンパク定量(Bradford法)を行い、タンパ
ク量で補正した。結果を図12に示す。その結果、安定に
継代培養できる形質転換細胞を用いて、種々の薬物によ
るヒトCYP3A誘導能がinvitroで測定できることがわかっ
た。
【0043】
【発明の効果】本発明方法によれば、ヒトに被検薬物を
投与したときのヒトCYP3A誘導能が簡便かつ正確に評価
できることから、当該薬物の有効性、副作用の発現、薬
効の消失等が正確に評価できる。
投与したときのヒトCYP3A誘導能が簡便かつ正確に評価
できることから、当該薬物の有効性、副作用の発現、薬
効の消失等が正確に評価できる。
【図1】ウイルス(A)(AdCYP3A4-362-7K)ウイルスの
作製手順を示す図である。
作製手順を示す図である。
【図2】ウイルス(B)(AdhPXR)ウイルスの作製手順を
示す図である。
示す図である。
【図3】培養細胞を用いたレポーター活性測定の手順を
示す図である。
示す図である。
【図4】実動物を用いたレポーター活性測定の手順を示
す図である。
す図である。
【図5】培養細胞にAdCYP3A4-362ウイルスを感染させた
場合のレポーター活性への薬物の影響を示す図である(D
MSO:ジメチルスルホキシド、DEX:デキサメサゾン、RIF:
リファンピシン、CLO:クロトリマゾール、濃度:10μ
M)。
場合のレポーター活性への薬物の影響を示す図である(D
MSO:ジメチルスルホキシド、DEX:デキサメサゾン、RIF:
リファンピシン、CLO:クロトリマゾール、濃度:10μ
M)。
【図6】ウイルス(B)(AdhPXR)およびウイルス(A)
(AdCYP3A4-362-7K)を培養細胞に同時感染した場合のレ
ポーター活性への薬物の影響を示す図である(DMSO:ジメ
チルスルホキシド、DEX:デキサメサゾン、RIF:リファン
ピシン、CLO:クロトリマゾール、濃度:10μM)。
(AdCYP3A4-362-7K)を培養細胞に同時感染した場合のレ
ポーター活性への薬物の影響を示す図である(DMSO:ジメ
チルスルホキシド、DEX:デキサメサゾン、RIF:リファン
ピシン、CLO:クロトリマゾール、濃度:10μM)。
【図7】AdCYP3A4-362を投与したマウス肝におけるレポ
ーターおよびテストステロン6β-水酸化活性への薬物の
影響を示す図である(DEX:デキサメサゾン、RIF:リファ
ンピシン、CLO:クロトリマゾール、投与量:100mg/kg/da
y×3)。
ーターおよびテストステロン6β-水酸化活性への薬物の
影響を示す図である(DEX:デキサメサゾン、RIF:リファ
ンピシン、CLO:クロトリマゾール、投与量:100mg/kg/da
y×3)。
【図8】ウイルス(B)(AdhPXR)をマウスに同時投与し
た場合のAdCYP3A4-362ウイルス(A)(AdCYP3A4-362-7
K)による転写誘導率の比較を示す図である(CLO:クロト
リマゾール、Cont:コントロール、投与量:100mg/kg/day
×3)。
た場合のAdCYP3A4-362ウイルス(A)(AdCYP3A4-362-7
K)による転写誘導率の比較を示す図である(CLO:クロト
リマゾール、Cont:コントロール、投与量:100mg/kg/day
×3)。
【図9】ウイルス(B)(AdhPXR)投与によるマウスCYP3
A誘導のヒト化を示す図である(RIF:リファンピシン、Co
nt:コントロール、投与量:100mg/kg/day×3)。
A誘導のヒト化を示す図である(RIF:リファンピシン、Co
nt:コントロール、投与量:100mg/kg/day×3)。
【図10】ウイルス(A)(AdCYP3A4-362-7K)とウイル
ス(B)(AdhPXR)を同時投与したマウスの肝に発現する
レポーター活性への薬物の影響を示す図である(DEX:デ
キサメサゾン、RIF:リファンピシン、CLO:クロトリマゾ
ール、Cont:コントロール、投与量:100mg/kg/day×3)。
ス(B)(AdhPXR)を同時投与したマウスの肝に発現する
レポーター活性への薬物の影響を示す図である(DEX:デ
キサメサゾン、RIF:リファンピシン、CLO:クロトリマゾ
ール、Cont:コントロール、投与量:100mg/kg/day×3)。
【図11】安定発現株の作製手順を示す図である。
【図12】DNA(a)を導入した形質転換細胞(安定発
現株)を用いた場合のレポーター活性への薬物の影響を
示す図である。
現株)を用いた場合のレポーター活性への薬物の影響を
示す図である。
フロントページの続き
(51)Int.Cl.7 識別記号 FI テーマコート゛(参考)
C12Q 1/66 C12N 5/00 B
(72)発明者 永田 清
宮城県仙台市青葉区中山五丁目18−8−
405
Fターム(参考) 4B024 AA11 BA08 BA80 CA04 DA02
EA02 FA02 GA11
4B063 QA18 QQ20 QQ22 QR60 QR77
QR80 QS05 QS24 QS28 QX02
4B065 AA90X AA90Y AB01 AC14
BA02 BA25 CA46
Claims (4)
- 【請求項1】 被検薬物を投与された非ヒト動物又は被
検薬物含有培地で培養されたヒト培養細胞に、(A)ア
デノウイルスベクターに、検出可能なレポーター遺伝子
と、ヒトCYP3A遺伝子の非翻訳領域中のヒトPXRに結合す
る領域の少なくとも3ケ所以上を組み込んでなるウイル
ス、及び(B)アデノウイルスベクターにヒトPXR遺伝
子を組み込んでなるウイルスを導入し、当該非ヒト動物
又はヒト培養細胞におけるレポーター遺伝子の発現量を
測定することを特徴とする、被検薬物投与時のヒトCYP3
A誘導能の測定法。 - 【請求項2】 (a)プラスミドベクターに、検出可能
なレポーター遺伝子と、ヒトCYP3A遺伝子の非翻訳領域
中のヒトPXRに結合する領域の少なくとも3ケ所以上を
組み込んでなるDNAを導入してなる形質転換ヒト培養細
胞を、被検薬物含有培地で培養し、レポーター遺伝子の
発現量を測定することを特徴とする、被検薬物投与時の
ヒトCYP3A誘導能の測定法。 - 【請求項3】 (A)アデノウイルスベクターに、検出
可能なレポーター遺伝子と、ヒトCYP3A遺伝子の非翻訳
領域中のヒトPXRに結合する領域の少なくとも3ケ所以
上を組み込んでなるウイルス、及び(B)アデノウイル
スベクターにヒトPXR遺伝子を組み込んでなるウイルス
を含有することを特徴とするヒトCYP3A誘導能測定試
薬。 - 【請求項4】 (a)プラスミドベクターに、検出可能
なレポーター遺伝子と、ヒトCYP3A遺伝子の非翻訳領域
中のヒトPXRに結合する領域の少なくとも3ケ所以上を
組み込んでなるDNAを導入してなる形質転換ヒト培養細
胞を含有することを特徴とするヒトCYP3A誘導能測定試
薬。
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US9237294B2 (en) | 2010-03-05 | 2016-01-12 | Sony Corporation | Apparatus and method for replacing a broadcasted advertisement based on both heuristic information and attempts in altering the playback of the advertisement |
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-
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-
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