JP2002518332A - Administration method of camptothecin compound for cancer treatment with reduction of side effects - Google Patents

Administration method of camptothecin compound for cancer treatment with reduction of side effects

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Abstract

(57)【要約】 下痢副作用を低減するためのカンプトテシン化合物、例えば塩酸イリノテカンの投与方法、ならびに小腸管腔および胆汁をアルカリ性pHに保持しながらカンプトテシン化合物を投与することを含めたカンプトテシン化合物による癌およびエイズの治療方法。   (57) [Summary] A method of administering a camptothecin compound, such as irinotecan hydrochloride, for reducing side effects of diarrhea, and a method of treating cancer and AIDS with a camptothecin compound, which comprises administering the camptothecin compound while maintaining the small intestinal lumen and bile at an alkaline pH.

Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】 (技術分野) 本発明は、カンプトテシン化合物、特に塩酸イリノテカン組成物処方物および
副作用低減を伴う癌およびエイズの治療のための塩酸イリノテカンのようなカン
プトテシン化合物の投与方法に関する。
TECHNICAL FIELD [0001] The present invention relates to camptothecin compounds, particularly irinotecan hydrochloride composition formulations and methods of administering camptothecin compounds such as irinotecan hydrochloride for the treatment of cancer and AIDS with reduced side effects.

【0002】 (発明の背景) カンプトテシンは、ミズキ類の喜樹Chinese Canptotheca treeおよびAsian no
thapodytes treeの樹皮中に見出されるキノリンベースのアルカロイドである。
それは、アミノカンプトテシン、CPT−11(イリノテカン)、DX−895
1Fおよびトポテカンと化学的に近い関係にある。これらの化合物は、乳癌、卵
巣癌、結腸癌、悪性黒色腫、小細胞肺癌、甲状腺癌、リンパ腫および白血病を治
療するのに有用である。これらの化合物は、エイズの治療にも用いられる。
BACKGROUND OF THE INVENTION [0002] Camptothecins are known as Chinese Canptotheca tree and Asian no
It is a quinoline-based alkaloid found in the bark of the thapodytes tree.
It is composed of aminocamptothecin, CPT-11 (irinotecan), DX-895
Closely related to 1F and topotecan. These compounds are useful for treating breast, ovarian, colon, malignant melanoma, small cell lung cancer, thyroid cancer, lymphoma and leukemia. These compounds are also used for treating AIDS.

【0003】 塩酸イリノテカン(CPT−11)(4S)−4,11−ジエチル−4−ヒド
ロキシ−9−[(4−ピペリジノピペリジノ)カルボニルオキシ]−1H−ピラ
ノ[3’,4’:6,7]インドリジノ[1,2−b]キノリン−3,14(4
h,12H)ジオン塩酸塩は、抗腫瘍活性、即ちDNAトポイソメラーゼIの抑
制の新規のメカニズムを有する。トポイソメラーゼは、染色体を構成するDNA
を巻いたりほどいたりする酵素である。染色体はタンパク質を作るためにはほど
かれねばならないので、カンプトテシン化合物は、タンパク質を作れないように
染色体をしっかり巻く。癌細胞は正常細胞よりはるかに速い速度で増殖するため
、それらはトポイソメラーゼ抑制に対して正常細胞より傷つきやすい。
Irinotecan hydrochloride (CPT-11) (4S) -4,11-diethyl-4-hydroxy-9-[(4-piperidinopiperidino) carbonyloxy] -1H-pyrano [3 ′, 4 ′ : 6,7] indolizino [1,2-b] quinoline-3,14 (4
(h, 12H) dione hydrochloride has a novel mechanism of antitumor activity, ie, suppression of DNA topoisomerase I. Topoisomerase is the DNA that makes up the chromosome
It is an enzyme that winds and unwinds. Since chromosomes must be unwound to make proteins, camptothecin compounds tightly wind chromosomes so that they cannot make proteins. Because cancer cells grow at a much faster rate than normal cells, they are more vulnerable to topoisomerase suppression than normal cells.

【0004】 CPT−11は臨床的に有効な抗腫瘍活性を示しており(2、3)、近年、C
PT−11による生存効果が結腸直腸癌で示された。しかしながら、それは、臨
床的実践において白血球減少および下痢という大きな毒性を有する。高投与量で
のCPT−11の臨床的使用は、下痢の予期せぬかつ有意の発生率に関連し(4
、6、7、12)、下痢はこの薬剤の用量限定毒性と、目下認識されている(4
〜7)。大きな患者間変動性を示した多数の薬物動態分析は下痢の発生数を予測
するためになされてきたが、しかし多少の相反する結果が存在する(8〜11)
[0004] CPT-11 has shown clinically effective antitumor activity (2,3), and recently C
The survival effect of PT-11 was shown in colorectal cancer. However, it has great toxicity in clinical practice: leukopenia and diarrhea. Clinical use of CPT-11 at high doses is associated with an unexpected and significant incidence of diarrhea (4
, 6, 7, 12), diarrhea is now recognized as the dose limiting toxicity of this drug (4).
~ 7). Numerous pharmacokinetic analyzes showing large inter-patient variability have been performed to predict the incidence of diarrhea, but there are some conflicting results (8-11).
.

【0005】 CPT−11およびその代謝物質であるSN−38およびSN−38−Glu
は、ヒト血漿中だけでなくヒト胆汁中でも検出された。3つの化合物のうち、S
N−38は強い細胞傷害性を有し、SN−38のグルクロニド化形態であるSN
−38−Gluは失活され、そしてCPT−11はSN−38に比してかなり少
ない細胞傷害性を有する。これらの化合物はα−ヒドロキシ−3−ラクトン環を
有し、これは主にpHによる速度での可逆的加水分解を受ける(15、16、1
7)。生理的pHより高いpHでは、ラクトン形態は不安定で、平衡は加水分解
の方に与してラクトン環を開環し、カルボキシレート形態を生じる。酸性条件下
では、ラクトンの生成を伴う逆の反応が有利である。同様の反応がCPT−11
およびSN−38−Gluでも起こる。
[0005] CPT-11 and its metabolites SN-38 and SN-38-Glu
Was detected in human bile as well as in human plasma. Of the three compounds, S
N-38 has strong cytotoxicity and is a glucuronidated form of SN-38, SN
-38-Glu is inactivated and CPT-11 has significantly less cytotoxicity compared to SN-38. These compounds have an α-hydroxy-3-lactone ring, which undergoes reversible hydrolysis mainly at a rate dependent on pH (15, 16, 1).
7). At pH above physiological pH, the lactone form is unstable and equilibrium favors hydrolysis to open the lactone ring, yielding the carboxylate form. Under acidic conditions, the reverse reaction with formation of the lactone is advantageous. A similar reaction is CPT-11.
And also occurs with SN-38-Glu.

【0006】 いくつかの報告から、ヒトにおける主な代謝経路は以下のようであると考えら
れる;CPT−11は主に肝臓起源のカルボキシルエステラーゼにより活性代謝
物質である7−エチル−10−ヒドロキシ−カンプトテシン(SN−38)に加
水分解される。SN−38のあるものは、その後、肝臓酵素のUDP−グルクロ
ニルトランスフェラーゼにより結合されてSN−38β−グルクロニド(SN−
38−Glu)となり、他の構成成分CPT−11およびSN−38と一緒に胆
汁中に排出される(13、14)。3つの化合物は、小腸細胞により再吸収され
て腸肝循環に入ると考えられる。近年、肝臓シトクロムP−450 3A酵素は
CPT−11を、SN−38の500分の1の抗腫瘍活性を有する7−エチル−
10−[4−N−(5−アミノペンタン酸)−1−ピペリジノ]カルボニルオキ
シカンプトテシンに代謝するということが判明した(Rivory et al., 1996b; Ha
az et al., 1997)。CPT−11,SN−38およびSN38−Gluはα−
ヒドロキシ−3−ラクトン環を有し、これは主にpHによる速度での可逆的加水
分解を受ける(Fassbery et al., 1992)。生理的pH以上では、ラクトン形態
は不安定で、平衡は加水分解の方に与してラクトン環を開環し、カルボキシレー
ト形態を生じる。酸性条件下では、ラクトン−カルボキシレート変換はラクトン
形態に変化する。CPT−11、SN−38およびSN38−Gluは胆汁中に
排出され、それと一緒に小腸管腔中に放出される(Atsumi et al., 1991; Lokie
c et al., 1995; Chu et al., 1997a,b)。さらに、少ないけれども(Atsumi et
al., 1995)、付加的経路が、血清から小腸上皮細胞を通って管腔へのCPT−
11およびその代謝物質の直接輸送に関与する。小腸に入ると、SN38−Gl
uは、盲腸および結腸で細菌β−グルクロニダーゼによりSN−38に脱結合さ
れる(Takatsuna et al., 1996)。CPT−11、SN−38およびSN38−
Gluは、小腸細胞によりある程度まで再吸収されて腸肝循環に入ると考えられ
る。
[0006] Several reports suggest that the major metabolic pathways in humans are as follows; CPT-11 is the active metabolite, 7-ethyl-10-hydroxy-, mainly due to carboxylesterases of hepatic origin. It is hydrolyzed to camptothecin (SN-38). Some of SN-38 are subsequently bound by the liver enzyme UDP-glucuronyltransferase to form SN-38β-glucuronide (SN-38).
38-Glu) and is excreted in bile together with other components CPT-11 and SN-38 (13, 14). The three compounds are thought to be reabsorbed by the small intestine cells and enter the enterohepatic circulation. Recently, the liver cytochrome P-450 3A enzyme converts CPT-11 to 7-ethyl-, which has 500 times less antitumor activity than SN-38.
It was found to be metabolized to 10- [4-N- (5-aminopentanoic acid) -1-piperidino] carbonyloxycamptothecin (Rivory et al., 1996b; Ha
az et al., 1997). CPT-11, SN-38 and SN38-Glu are α-
It has a hydroxy-3-lactone ring, which undergoes reversible hydrolysis primarily at a rate dependent on pH (Fassbery et al., 1992). Above physiological pH, the lactone form is unstable and equilibrium favors hydrolysis towards opening the lactone ring and producing the carboxylate form. Under acidic conditions, the lactone-carboxylate conversion changes to the lactone form. CPT-11, SN-38 and SN38-Glu are excreted in bile and are released together with it into the small intestinal lumen (Atsumi et al., 1991; Lokie
c et al., 1995; Chu et al., 1997a, b). In addition, to a lesser degree (Atsumi et
al., 1995), an additional pathway is in which CPT- from serum into the lumen through small intestinal epithelial cells.
11 and its metabolites. Once in the small intestine, SN38-Gl
u is decoupled to SN-38 by bacterial β-glucuronidase in the cecum and colon (Takatsuna et al., 1996). CPT-11, SN-38 and SN38-
It is believed that Glu is reabsorbed to some extent by small intestinal cells and enters the enterohepatic circulation.

【0007】 今日まで、CPT−11およびその誘導体の小腸取込みおよび輸送メカニズム
についての情報はほとんどない。この知識は、CPT−11が下痢を誘発するメ
カニズムを理解する場合の重大な行程である。本研究では、小腸上皮細胞による
CPT−11およびSN−38の取込みを概算し、細胞傷害性に及ぼすそれらの
それぞれの作用を相関させた。
[0007] To date, there is little information about the intestinal uptake and transport mechanisms of CPT-11 and its derivatives. This knowledge is a critical step in understanding the mechanism by which CPT-11 induces diarrhea. In this study, the uptake of CPT-11 and SN-38 by small intestinal epithelial cells was estimated and their respective effects on cytotoxicity were correlated.

【0008】 いくつかのカンプトテシン誘導体の構造が知られている。[0008] The structures of some camptothecin derivatives are known.

【0009】[0009]

【化1】 Embedded image

【0010】 さらに、米国特許第5,552,154号は、カンプトテシン(CPT)および閉環ラ
クトン環形態のその誘導体が筋肉内にまたは傾向的に投与されることを開示する
。このような場合、従来CPT Naを用いて観察された毒性を伴わずにヒト
癌の広大な範囲の全体的緩解を得ることができた。使用されたCPTの誘導体は
、9−アミノ−20(S)−カンプトテシン(9AC)、9−ニトロ−20(S
)−カンプトテシン(9NO)であった。
[0010] Further, US Pat. No. 5,552,154 discloses that camptothecin (CPT) and its derivatives in the form of a closed lactone ring are administered intramuscularly or predominantly. In such cases, a wide range of global remissions of human cancer could be obtained without the toxicity previously observed with CPT Na + . The derivatives of CPT used were 9-amino-20 (S) -camptothecin (9AC), 9-nitro-20 (S
) - it was a camptothecin (9NO 2).

【0011】 米国特許第5,468,754号は、CPT 11およびその他のカンプトテシン誘導
体がE−環ラクトンのアルカリ性pH依存性加水分解を受けると記載する。反応
速度の遅さが、本薬剤のラクトンおよび非ラクトン形態の両方がトポイソメラー
ゼ−開裂DNA複合体を安定化するか否かを査定するのを可能にする。研究はカ
ンプトテシンの閉ラクトン形態のみが開裂複合体の安定化を助けることを示す。
したがって、本特許は、ラクトン形態のカンプトテシンに優勢を示させるには7
より低いpHレベルを用いることを推奨する。本特許は、製薬上許容可能な塩と
ともに本化合物を投与することを示唆する。
[0011] US Pat. No. 5,468,754 states that CPT 11 and other camptothecin derivatives undergo an alkaline pH-dependent hydrolysis of E-ring lactones. The slow rate of the reaction allows one to assess whether both the lactone and non-lactone forms of the drug stabilize the topoisomerase-cleaved DNA complex. Studies show that only the closed lactone form of camptothecin helps stabilize the cleavage complex.
Therefore, the present patent provides a method for lactone forms of camptothecin that has a 7
It is recommended that lower pH levels be used. The patent suggests administering the compound with a pharmaceutically acceptable salt.

【0012】 米国特許第5,447,936号は、HECPT形態の薬剤は、高細胞内pHレベルを
有する細胞中よりも酸性環境中での方がトポイソメラーゼ−Iを抑制するにはよ
り有効であるということを記載する。本特許は、有機カルボン酸、例えばクエン
酸とともに本薬剤を投与することを記載する。
US Pat. No. 5,447,936 states that agents in HECPT form are more effective at inhibiting topoisomerase-I in acidic environments than in cells with high intracellular pH levels. I do. This patent describes administering the agent with an organic carboxylic acid, such as citric acid.

【0013】 米国特許第5,225,404号は、水溶性化合物のための水ベースの溶媒、例えば正
規生理食塩水またはリン酸緩衝生理食塩溶液を伴うカンプトテシン化合物の投与
を記載する。本特許は、下痢および膀胱炎の徴候が防止され、全体的毒性が得ら
れなかったことを示す。
[0013] US Pat. No. 5,225,404 describes the administration of a camptothecin compound with a water-based solvent for the water-soluble compound, such as normal saline or phosphate buffered saline solution. The patent shows that diarrhea and signs of cystitis were prevented and no overall toxicity was obtained.

【0014】 米国特許第5,637,770号は、カンプトテシンへの水溶性環の付加により得られ
る六環式化合物の作製を示す。これはカンプトテシンより優れた特徴を有した。
米国特許第5,633,016号は、有効量のトポテカンをシスプラチンとともに投与す
ることを含めた組合せ癌療法を記載する。
US Pat. No. 5,637,770 shows the preparation of hexacyclic compounds obtained by adding a water-soluble ring to camptothecin. It had characteristics superior to camptothecin.
US Patent No. 5,633,016 describes a combination cancer therapy that involves administering an effective amount of topotecan with cisplatin.

【0015】 米国特許第5,633,260号は、7−11−置換カンプトテシン誘導体を開示する
。本特許は、処方物のpHを酸性(3〜4)に保持することが、生理的pHで生
じるE−環−ヒドロキシル化カルボキシレートによる11,7−HECPTラク
トンの遅い転換を低減するには重要であるということも記載する。本特許は、化
合物の毒性を排除するための調節投与量を規定する。
US Patent No. 5,633,260 discloses 7-11-substituted camptothecin derivatives. This patent states that keeping the pH of the formulation acidic (3-4) is important in reducing the slow conversion of 11,7-HECPT lactone by E-ring-hydroxylated carboxylate which occurs at physiological pH. Is also described. The patent defines a controlled dose to eliminate the toxicity of the compound.

【0016】 米国特許第5,652,244号は、カンプトテシン誘導体によるヒト癌腫の治療方法
を記載する。米国特許第5,658,920号は、カンプトテシンの六環式化合物誘導体
を記載する。
US Pat. No. 5,652,244 describes a method of treating human carcinoma with a camptothecin derivative. U.S. Patent No. 5,658,920 describes hexacyclic derivative of camptothecin.

【0017】 米国特許第5,597,829号は、CPTは腎臓により変化を受けずに排出されるが
、しかし投与された薬剤は尿中では大きい割合を占めることができないというこ
とを開示する。本特許は、カルボキシレート形態のCPTの腎排出の増強が5よ
り低いpHに曝された場合に生じることを示唆する。したがって、有機カルボン
酸とともに本化合物を投与することにより酸性pH値を保証するための薬剤投与
が推奨される。
US Pat. No. 5,597,829 discloses that CPT is excreted unchanged by the kidneys, but the administered drug cannot make up a large proportion in urine. The patent suggests that enhanced renal excretion of the carboxylate form of CPT occurs when exposed to a pH below 5. Therefore, drug administration to ensure an acidic pH value by administering the compound with an organic carboxylic acid is recommended.

【0018】 米国特許第5,674,874号は、CPT11のHECPTへの薬理学的転換を記載
する。本特許は、製薬上許容可能な酸の投与により処方物のpHを約2〜約6に
保持するのに十分な量での化合物の投与を記載する。
US Pat. No. 5,674,874 describes the pharmacological conversion of CPT11 to HECPT. This patent describes the administration of a compound in an amount sufficient to maintain the pH of the formulation between about 2 and about 6 by administration of a pharmaceutically acceptable acid.

【0019】 Cancer Investigation, Volume 14, supplement 1, No.31は、結腸癌および非
小細胞性肺癌を治療するためのイリノテカン(CPT11)の使用を記載する。
この出版物は、CPT11の投与に関連した等級4の下痢の発生率が、攻撃的ロ
ペリミド療法の適応後に17%から5%に低下したことを確証する。
[0019] Cancer Investigation, Volume 14, supplement 1, No. 31 describes the use of irinotecan (CPT11) to treat colon and non-small cell lung cancer.
This publication confirms that the incidence of Grade 4 diarrhea associated with CPT11 administration decreased from 17% to 5% after the indication of aggressive loperimide therapy.

【0020】 Irinotecan Approved for Advance Colorectal Cancer, Med. Sci. Bull 1996
; Volume 18, No. 12は、下痢がイリノテカン投与の一般的副作用であることを
記載する。
Irinotecan Approved for Advance Colorectal Cancer, Med.Sci. Bull 1996
Volume 18, No. 12, states that diarrhea is a common side effect of irinotecan administration.

【0021】 Journal of the National Cancer Institute, September 4, 1996, Vol. 88,
No. 17は、盲腸でのスルホムチンの過剰産生がCPT−11誘発性下痢の主因で
あり得ることを示唆する。
[0021] Journal of the National Cancer Institute, September 4, 1996, Vol. 88,
No. 17 suggests that overproduction of sulfomucine in the cecum may be a major cause of CPT-11-induced diarrhea.

【0022】 Camptosar Patient Management Guidelinesは、ロペリミドおよびガトラデを
投与することによりカンプトサルの下痢副作用を回避することを示唆する。
[0022] The Camptosar Patient Management Guidelines suggest that administering loperimide and gatrade avoids the diarrheal side effects of Camptosar.

【0023】 本発明は、カンプトテシン化合物、特に塩酸イリノテカンの投与に関連した主
要な副作用の1つである下痢を克服する。これは、腫瘍の治療のための塩酸イリ
ノテカンの送達における従来技術における主な欠陥の1つである。本発明は、塩
酸イリノテカンおよびその関連化合物の投与に伴う下痢副作用を克服する。
The present invention overcomes diarrhea, one of the major side effects associated with the administration of camptothecin compounds, especially irinotecan hydrochloride. This is one of the major deficiencies in the prior art in delivering irinotecan hydrochloride for treatment of tumors. The present invention overcomes the diarrhea side effects associated with the administration of irinotecan hydrochloride and related compounds.

【0024】 (発明の概要) 本発明は、肝臓により浄化されるカンプトテシン、好ましくは塩酸イリノテカ
ンおよびその誘導体の投与方法を提供する。
SUMMARY OF THE INVENTION The present invention provides a method of administering camptothecin, preferably irinotecan hydrochloride and its derivatives, which is cleared by the liver.

【0025】 本発明は、肝臓により浄化されるカンプトテシン化合物、例えば塩酸イリノテ
カン(CPT−11)、SN38−GluおよびSN−38(これらに限定され
ない)の下痢副作用の抑制方法であって、小腸管腔をアルカリ性pHに保持しな
がら塩酸イリノテカンを投与することを包含する方法を提供する。
The present invention relates to a method for suppressing diarrheal side effects of camptothecin compounds purified by the liver, such as, but not limited to, irinotecan hydrochloride (CPT-11), SN38-Glu and SN-38. And administering irinotecan hydrochloride while maintaining the pH at an alkaline pH.

【0026】 本発明は、小腸管腔をアルカリ性pHに保持しながらカンプトテシン化合物、
例えば塩酸イリノテカンを投与することを包含する癌の治療方法も提供する。
The present invention provides a camptothecin compound while maintaining the small intestinal lumen at an alkaline pH,
Also provided are methods of treating cancer comprising, for example, administering irinotecan hydrochloride.

【0027】 好ましい実施形態では、癌は、乳癌、卵巣癌、結腸癌、悪性黒色腫、小細胞肺
癌、甲状腺癌、リンパ腫および白血病から選択されるがこれらに限定されない。
In a preferred embodiment, the cancer is selected from, but not limited to, breast cancer, ovarian cancer, colon cancer, malignant melanoma, small cell lung cancer, thyroid cancer, lymphoma and leukemia.

【0028】 別の実施形態では、本発明は、小腸管腔をアルカリ性pHに保持しながら塩酸
イリノテカンを投与することを包含するエイズの治療方法を提供する。
In another embodiment, the present invention provides a method of treating AIDS comprising administering irinotecan hydrochloride while maintaining the small intestinal lumen at an alkaline pH.

【0029】 本発明は、カンプトテシン化合物、例えば塩酸イリノテカン(CPT−11)
の静注投与方法であって、前記カンプトテシン化合物の投与の前またはそれと同
時に重炭酸塩およびアルカリ性HOを経口投与することを包含する方法を有益
に提供する。
The present invention relates to camptothecin compounds, such as irinotecan hydrochloride (CPT-11)
Intravenously, wherein the method comprises the oral administration of bicarbonate and alkaline H 2 O prior to or simultaneously with the administration of the camptothecin compound.

【0030】 本発明は、カンプトテシン化合物、例えば塩酸イリノテカン(CPT−11)
の静注投与方法であって、前記カンプトテシン化合物の投与の前またはそれと同
時にホウ酸を含有する組成物を経口投与することを包含する方法を有益に提供す
る。
The present invention relates to camptothecin compounds, such as irinotecan hydrochloride (CPT-11)
, Wherein the composition comprising boric acid is administered orally before or simultaneously with the administration of the camptothecin compound.

【0031】 本発明は、前記のカンプトテシン化合物の投与の前またはそれと同時にウルソ
デオキシコール酸を含有する組成物を経口投与することを包含するカンプトテシ
ン化合物の投与方法も提供する。
The present invention also provides a method of administering a camptothecin compound, comprising orally administering a composition containing ursodeoxycholic acid before or simultaneously with the administration of the camptothecin compound.

【0032】 組成物、キットおよび方法が特定の構成成分を含有または包含すると記載され
た本発明の明細書を通して、本発明の組成物は列挙した構成成分でも本質的に構
成されるかまたはそれらからなることが、本発明人により意図される。
Throughout the description of the invention in which the compositions, kits and methods contain or include particular components, the compositions of the invention may consist essentially of, or consist of, the listed components. Is intended by the present inventors.

【0033】 本発明の前記およびその他の目的は、単に本発明の最良の実行方式の説明によ
り本発明の好ましい実施形態だけが示され、説明される以下の詳細な説明および
図面から当業者には容易に明らかになる。容易に認識されるように、本発明の精
神および範囲を逸脱しない限り、本発明は関連業界の技術内での修正が可能であ
る。
The above and other objects of the present invention will become apparent to those skilled in the art from the following detailed description and drawings, in which only preferred embodiments of the invention are shown and described solely by the description of the best mode of carrying out the invention. It will be easily apparent. As will be readily appreciated, the invention is capable of modifications within the skill of the relevant art without departing from the spirit and scope of the invention.

【0034】 (発明の説明) 小腸によるカンプトテシン化合物、例えばCPT−11およびその代謝物質の
細胞輸送メカニズムについての知識は、カンプトテシン化合物、例えばCPT−
11が下痢を誘発するメカニズム、ならびに薬物動態におけるその大きな患者間
変動性を理解する場合の重大な行程である。本発明者は、小腸上皮細胞によるい
くつかのカンプトテシン化合物、CPT−11およびSN−38の取込みを再検
討した。結果は、塩酸イリノテカンおよびその関連化合物を用いた癌および腫瘍
の治療の臨床的実践における下痢および薬物動態の大きな患者間変動性を防止す
るためのアプローチについての新規の計画に備えるものである。
Description of the Invention [0034] Knowledge of the cellular transport mechanism of camptothecin compounds, such as CPT-11 and its metabolites, by the small intestine may be found in camptothecin compounds, such as CPT-
11 is a critical step in understanding the mechanisms that induce diarrhea, as well as its large interpatient variability in pharmacokinetics. We have reviewed the uptake of several camptothecin compounds, CPT-11 and SN-38, by small intestinal epithelial cells. The results provide a new plan for an approach to prevent diarrhea and large inter-patient variability in pharmacokinetics in the clinical practice of treating cancer and tumors with irinotecan hydrochloride and its related compounds.

【0035】 本発明は、カンプトテシン化合物、例えば塩酸イリノテカン(CPT−11)
、SN−38−Glu、N−38およびそれらの誘導体の下痢副作用の抑制方法
であって、胆汁および/または小腸管腔をアルカリ性pHに保持しながら塩酸イ
リノテカンを投与することを包含する方法を提供する。好ましい実施形態では、
小腸管腔は、重炭酸塩およびアルカリ性HOの投与によりアルカリ性pHに保
持される。重炭酸塩量およびアルカリ性pHはカンプトテシン化合物の取込みを
低減するために、したがって細胞傷害性副作用、例えば下痢の副作用を低減する
ために適切である。カンプトテシン化合物または塩酸イリノテカンは、静脈内に
、経口的にまたは筋肉内に投与され得る。本発明の方法は、再吸収を抑制し、小
腸によるCPT−11およびSN−38のラクトン取込みを低減して、したがっ
てカンプトテシン化合物、例えば塩酸イリノテカンに関連した下痢副作用を低減
する。
The present invention relates to camptothecin compounds such as irinotecan hydrochloride (CPT-11)
, SN-38-Glu, N-38 and derivatives thereof, which comprises administering irinotecan hydrochloride while maintaining bile and / or small intestinal lumen at an alkaline pH. I do. In a preferred embodiment,
Small intestine lumen is held to alkaline pH by administration of bicarbonate and alkaline H 2 O. Bicarbonate levels and alkaline pH are appropriate to reduce uptake of the camptothecin compound, and thus to reduce cytotoxic side effects such as diarrhea. The camptothecin compound or irinotecan hydrochloride can be administered intravenously, orally or intramuscularly. The method of the present invention inhibits reabsorption and reduces lactone uptake of CPT-11 and SN-38 by the small intestine, thus reducing diarrheal side effects associated with camptothecin compounds, such as irinotecan hydrochloride.

【0036】 本発明は、小腸管腔をアルカリ性pHに保持しながら塩酸イリノテカンおよび
その誘導体またはそれらの混合物を投与することを包含する癌の治療方法も提供
する。好ましい実施形態では、癌は、乳癌、卵巣癌、結腸癌、悪性黒色腫、小細
胞肺癌、甲状腺癌、リンパ腫および白血病からなる群から選択されるがこれらに
限定されない。アルカリ性pHは、約7〜約10のpHであり得る。別の実施形
態では、癌は、小腸管腔をアルカリ性pHに保持しながら、7−ヒドロキシメチ
ルカンプトテシン、塩酸イリノテカン、アミノカンプトテシン、DX−8951
F、SN−38、HAR4、HAR5、HAR6、HAR7、HAR8およびト
ポテカンから選択される化合物を投与することにより治療される。
The present invention also provides a method for treating cancer comprising administering irinotecan hydrochloride and its derivatives or mixtures thereof while maintaining the small intestinal lumen at an alkaline pH. In a preferred embodiment, the cancer is selected from, but not limited to, the group consisting of breast, ovarian, colon, malignant melanoma, small cell lung, thyroid, lymphoma and leukemia. The alkaline pH can be a pH from about 7 to about 10. In another embodiment, the cancer is 7-hydroxymethylcamptothecin, irinotecan hydrochloride, aminocamptothecin, DX-8951 while maintaining the small intestinal lumen at an alkaline pH.
It is treated by administering a compound selected from F, SN-38, HAR4, HAR5, HAR6, HAR7, HAR8 and topotecan.

【0037】 本発明は、小腸管腔をアルカリ性pHに保持しながら塩酸イリノテカンまたは
その誘導体を投与することを包含するエイズの治療方法を有益に提供する。
The present invention advantageously provides a method of treating AIDS comprising administering irinotecan hydrochloride or a derivative thereof while maintaining the small intestinal lumen at an alkaline pH.

【0038】 塩酸イリノテカンを含む製剤組成物およびキットは、重炭酸ナトリウム、重炭
酸マグネシウムおよび重炭酸カリウムから選択される重炭酸塩と組合せて投与さ
れる。あるいは、塩酸イリノテカン(CPT−11)は、ホウ酸を包含する組成
物と組合せて投与され得る。この化学物質は、緩衝液組成物中に、例えばブリッ
トン−ロビンソン緩衝液に用いられており、強アルカリ性緩衝作用を有する。
[0038] Pharmaceutical compositions and kits comprising irinotecan hydrochloride are administered in combination with a bicarbonate selected from sodium bicarbonate, magnesium bicarbonate and potassium bicarbonate. Alternatively, irinotecan hydrochloride (CPT-11) can be administered in combination with a composition that includes boric acid. This chemical is used in buffer compositions, for example, in Britton-Robinson buffer and has a strong alkaline buffering action.

【0039】 本発明は、前記カンプトテシン化合物の投与の前またはそれと同時に、ウルソ
デオキシコール酸を包含する組成物を経口投与することを包含するカンプトテシ
ン化合物の投与方法も提供する。この組成物は、任意に重炭酸塩とともに投与さ
れる。ウルソデオキシコール酸は、胆汁に分泌される重炭酸塩を刺激する。
The present invention also provides a method of administering a camptothecin compound, comprising orally administering a composition comprising ursodeoxycholic acid before or simultaneously with the administration of the camptothecin compound. The composition is optionally administered with a bicarbonate. Ursodeoxycholic acid stimulates bicarbonate secreted into bile.

【0040】 以下の実施例は、本発明の方法にしたがって、塩酸イリノテカン化合物の下痢
副作用を低減する能力を示す。
The following examples demonstrate the ability to reduce diarrheal side effects of irinotecan hydrochloride compounds according to the methods of the present invention.

【0041】 (実施例) (薬剤および動物) 14C−標識化SN−38(3.68MBg/mg)および14C−標識化C
PT−11(1.47MBg/mg)は、Daiichi Pharmaceutical Co., Ltd. (
Tokyo, Japan)のご厚意により寄贈された。非標識化CPT−11、SN−38
およびSN−38−GluはYakult Honsha Co., Ltd.(Tokyo, Japan)により
供給された。14C−標識化SN−38は、非常に疎水性で水中に十分には溶解
しないために、最終濃度2μMでDMSO中に溶解した。DMSOは2%では、
標識化CPT−11およびSN−38の初期取込みに影響を及ぼさないことが確
証された。その他の薬剤は、蒸留水に溶解した。ラクトンおよびカルボキシレー
ト形態の14C−標識化CPT−11およびSN−38は、それぞれ、pH6ま
たは9で50mMのリン酸緩衝液中で一晩、化合物を溶解することにより生成し
た。DNP−SGは、グルタチオンおよびCDNB(1−クロロ−2,4−ジニ
トロベンゼン)から化学的に製造した。他の試薬はすべて、分析等級であった。
そのモデルがヒトで観察された(28)のと同様の胆汁酸プロフィールを示す成
熟雄ゴールデンシリアハムスター(6〜8週齢)を用いた。
EXAMPLES Drugs and Animals 14 C-labeled SN-38 (3.68 MBg / mg) and 14 C-labeled C
PT-11 (1.47 MBg / mg) was obtained from Daiichi Pharmaceutical Co., Ltd.
Courtesy of Tokyo, Japan). Unlabeled CPT-11, SN-38
And SN-38-Glu were supplied by Yakult Honsha Co., Ltd. (Tokyo, Japan). 14 C-labeled SN-38 was dissolved in DMSO at a final concentration of 2 μM because it was very hydrophobic and did not dissolve well in water. DMSO is 2%
It was confirmed that it did not affect the initial uptake of labeled CPT-11 and SN-38. Other drugs were dissolved in distilled water. The lactone and carboxylate forms of 14 C-labeled CPT-11 and SN-38 were generated by dissolving the compound overnight in 50 mM phosphate buffer at pH 6 or 9, respectively. DNP-SG was made chemically from glutathione and CDNB (1-chloro-2,4-dinitrobenzene). All other reagents were of analytical grade.
Mature male Golden Syrian hamsters (6-8 weeks old) whose model showed a bile acid profile similar to that observed in humans (28) were used.

【0042】 (小腸細胞の調製) 以前の記載(28、29)と同様に、小腸細胞を単離した。要するに、雄ハム
スターをナトリウムペントバルビタール(ネンブトール 70mg/体重1kg
)で麻酔した。全小腸を取り出した。小腸管腔を37℃ハンク溶液で洗浄した。
回腸(盲腸から12.5cm)および空腸(残りの小腸)の嚢、ならびに小腸の
肛門側部位(盲腸から12.5cm)および口腔側部位(他の小腸部分)を洗浄
した。嚢をクエン酸ナトリウムを含有する酸素添加緩衝液(96mMのNaCl
、1.5mMのKCl、5.6mMのKHPO、27mMのクエン酸ナトリ
ウム、pH7.3)で洗浄し、同一緩衝液中で37℃で10分間インキュベート
した。次に嚢を空にして、EDTAを含有する酸素添加緩衝液(140mMのN
aCl、16mMのNaHPO、2mMのEDTA、0.5mMのジチオト
レイトール、pH7.3)を充填し、37℃で10分間インキュベートした。次
に各嚢をペトリ皿に入れ、1分間静かにかき回した。小腸細胞を含有する緩衝液
を50mLのハンク溶液中に回収し、2回洗浄して、ハンク培地(0.5%ウシ
血清アルブミンを含有する細胞ストック溶液、pH7.4)1ml中に10
胞の割合に調整した。
(Preparation of small intestine cells) Small intestine cells were isolated as described previously (28, 29). In short, a male hamster was treated with sodium pentobarbital (Nembutol 70 mg / 1 kg body weight).
). The entire small intestine was removed. The small intestinal lumen was washed with a 37 ° C. Hank's solution.
The pouches of the ileum (12.5 cm from the cecum) and jejunum (remaining small intestine), as well as the anal (12.5 cm from the cecum) and buccal sites (other small intestinal segments) of the small intestine were washed. The capsules were treated with an oxygenation buffer containing sodium citrate (96 mM NaCl
, 1.5 mM KCl, 5.6 mM KH 2 PO 4 , 27 mM sodium citrate, pH 7.3) and incubated in the same buffer at 37 ° C. for 10 minutes. The capsule was then emptied and oxygenated buffer containing EDTA (140 mM N
aCl, 16 mM Na 2 HPO 4 , 2 mM EDTA, 0.5 mM dithiothreitol, pH 7.3) and incubated at 37 ° C. for 10 minutes. Each sac was then placed in a Petri dish and gently agitated for 1 minute. The buffer containing small intestine cells is recovered in 50 mL of Hank's solution, washed twice, and 10 6 cells in 1 ml of Hank's medium (cell stock solution containing 0.5% bovine serum albumin, pH 7.4). Was adjusted to the ratio.

【0043】 (14C−標識化CPT−11およびSN−38のそれぞれの細胞取込みの確
定) 急速真空濾過検定(28、29)により、14C−標識化CPT−11および
SN−38の取込みを測定した。細胞懸濁液0.95mlを、37℃水浴中で攪
拌しながら15分間インキュベートした。37℃での標識化SN−38またはC
PT−11を含有するPBS(pH3または9で)0.05mlの付加により、
取込みを開始させた。種々の間隔の時間に、100μLの試料アリコートを4℃
で3mLのハンク培地中で希釈して、取込みを停止させた。細胞を含有する停止
溶液を、真空下(20psi)でガラスマイクロファイバーフィルター(Glass
Fiber Filter Circles G4, Fisherbrand, PA)を通して濾過した。細胞を、0.
5%ウシ血清アルブミン含有ハンク培地(4℃)5mLで1回、そしてハンク溶
液(4℃)20mLで1回、洗浄した。濾液を、シンチレーション液(Ultra Go
ld, Packard, CT)4mLを含有するバイアル中に入れて、βシンチレーション
計数器(LS3801, Beckman, MD)で計数した。
[0043] The (14 C-each determination of cellular uptake of labeled CPT-11 and SN-38) rapid vacuum filtration assay (28,29), 14 C- uptake of labeled CPT-11 and SN-38 It was measured. 0.95 ml of the cell suspension was incubated in a 37 ° C. water bath with stirring for 15 minutes. Labeled SN-38 or C at 37 ° C
By addition of 0.05 ml of PBS (at pH 3 or 9) containing PT-11,
The acquisition was started. At various intervals of time, aliquots of 100 μL of sample were placed at 4 ° C.
Diluted in 3 mL of Hank's medium with to stop uptake. The stop solution containing the cells was applied under vacuum (20 psi) to a glass microfiber filter (Glass
(Fibre Filter Circles G4, Fisherbrand, PA). The cells were
Washed once with 5 mL of Hank's medium (4 ° C.) containing 5% bovine serum albumin and once with 20 mL of Hank's solution (4 ° C.). The filtrate is used as a scintillation solution (Ultra Go
(ld, Packard, CT) was placed in a vial containing 4 mL and counted on a beta scintillation counter (LS3801, Beckman, MD).

【0044】 14C−CPT−11または14C−SN−38(2μM)の3分前に、代謝
阻害剤2,4−ジニトロフェノール(1mM)を付加して、この薬剤の作用を調
べた。CPT−11およびSN−38の取込みに及ぼす20mMのタウロコール
酸(TCA)の作用を、pH7.4で、TCAの存在下および非存在下でのハン
ク溶液中での14C−CPT−11(20μM)および14C−SN−38(2
μM)の一晩インキュベーション後に調べた。200μMのDNP−SGまたは
SN−38−Gluの作用も、これらの薬剤を細胞調製物に付加することにより
14C−CPT−11(20μM)および14C−SN−38(2μM)の7
分前に調べた。
Three minutes before 14 C-CPT-11 or 14 C-SN-38 (2 μM), a metabolic inhibitor 2,4-dinitrophenol (1 mM) was added to examine the effect of the drug. The effect of 20 mM taurocholic acid (TCA) on the uptake of CPT-11 and SN-38 was determined by comparing 14 C-CPT-11 (20 μM) in Hank's solution at pH 7.4 with and without TCA. ) And 14 C-SN-38 (2
(μM) after overnight incubation. The effect of 200 μM of DNP-SG or SN-38-Glu was also determined by adding these agents to cell preparations, resulting in 7C of 14 C-CPT-11 (20 μM) and 14 C-SN-38 (2 μM).
Checked a minute ago.

【0045】 CPT−11およびSN−38の小腸取込み初速度に及ぼす生理的pHの作用
を、それぞれpH6.2、6.8、7.4および8のリン酸緩衝液中で、14
−CPT−11(20μM)および14C−SN−38(2μM)の一晩インキ
ュベーション後に調べた。
The effect of physiological pH on the initial intestinal uptake rates of CPT-11 and SN-38 was determined by 14 C in phosphate buffers at pH 6.2, 6.8, 7.4 and 8, respectively.
-Investigated after overnight incubation of CPT-11 (20 μM) and 14 C-SN-38 (2 μM).

【0046】 (ミセル形成の概算) CPT−11およびSN−38がミセルを形成するか否かを査定するために、
これらの薬剤を、10mMのTCAを含有するカルシウムおよびマグネシウム非
含有ハンク溶液中で、pH4および9で一晩インキュベートした。それぞれの溶
液を、0.04ml/分の定速で1000分子量切断膜YM1(Diaflo, Amicon
, MA)を通して濾過した。濾過が停止されると、初期溶液中の、ならびに濾過後
の濾液および保持溶液中の放射能を、従来記載されているのと同様に確定した。
Estimation of micelle formation To assess whether CPT-11 and SN-38 form micelles,
The agents were incubated overnight at pH 4 and 9 in calcium and magnesium free Hank's solution containing 10 mM TCA. Each solution was prepared at a constant speed of 0.04 ml / min using a 1000 molecular weight cut membrane YM1 (Diaflo, Amicon
, MA). Once filtration was stopped, the radioactivity in the initial solution and in the filtrate and the retentate after filtration was determined as previously described.

【0047】 (細胞傷害性検定) ミトコンドリアデヒドロゲナーゼ活性に関する急速比色検定を修正して、SN
−38の細胞傷害性の概算のために用いた(Mosmann, 1983)。要するに、HT
29細胞を12ウエルプレート(Falcon-3043, Lincoln Park, NJ)中に播種し
て、48時間後に、 pH6.2、6.8、7.4および8でSN−38を付加
した。24時間曝露後、細胞を2回洗浄して、24時間、薬剤非含有インキュベ
ーションを施した。次に、0.5mg/mlの3−(4,5−ジメチルチアゾー
ル−2−イル)−2,5−ジフェニル−テトラゾリウムブロミド(MTT)とと
もに細胞を4時間インキュベートし、0.01NのHCl中での10%n−ドデ
シルスルフェートナトリウム塩(SDS)の付加および一晩インキュベーション
により、ブルーフォルマザン結晶を可溶化した。ブルーフォルマザン化合物の生
成は、560nmで分光測光的に確定される(Ultraspec 4050, LKB, Bromma, S
weden)。
Cytotoxicity Assay A rapid colorimetric assay for mitochondrial dehydrogenase activity was modified to
Used for estimation of cytotoxicity of -38 (Mosmann, 1983). In short, HT
Twenty-nine cells were seeded in 12-well plates (Falcon-3043, Lincoln Park, NJ) and after 48 hours SN-38 was added at pH 6.2, 6.8, 7.4 and 8. After a 24-hour exposure, the cells were washed twice and subjected to a drug-free incubation for 24 hours. The cells were then incubated with 0.5 mg / ml of 3- (4,5-dimethylthiazol-2-yl) -2,5-diphenyl-tetrazolium bromide (MTT) for 4 hours and then incubated in 0.01 N HCl. The blue formazan crystals were solubilized by addition of 10% n-dodecyl sulfate sodium salt (SDS) and incubation overnight. The formation of the blue formazan compound is determined spectrophotometrically at 560 nm (Ultraspec 4050, LKB, Bromma, S
weden).

【0048】 (統計分析) CPT−11またはSN−38の取込みの初速度は、時間の一関数として取込
みのプロットから得られるそれぞれの回帰線の線状回帰分析から得られた。取込
み初速度は、対応する濃度に対してプロットされた。データは、等式V=(V ax S)/(K+S)+KS(式中、Vは取込み初速度を表し、Vmax
最大取込み速度であり、Kは見掛けのミカエリス定数であり、Kは拡散速度
であり、そしてSはCPT−11またはSN−38の濃度である)を用いた最小
自乗非線状回帰分析(SigmaStat, Jandel Scientific, CA)により適合された。
Statistical Analysis The initial rate of uptake of CPT-11 or SN-38 was obtained from linear regression analysis of each regression line obtained from plots of uptake as a function of time. The initial uptake rate was plotted against the corresponding concentration. Data in the equation V = (V m ax S) / (K m + S) + K d S ( wherein, V is represent uptake initial velocity, V max is the uptake rate maximum, K m is the Michaelis constant apparent , Kd is the diffusion rate, and S is the concentration of CPT-11 or SN-38), fitted by a least squares non-linear regression analysis (SigmaStat, Jandel Scientific, CA).

【0049】 2群間の比較は、マン−ホイットニー順位合計検定により評価した。2つより
多い群間の有意差を順位の変動のクルスカル−ワリス一方向分析Kruskal-Wallis
One Way Analysis of Variance on Ranksにより確定し、次にダンの方法により
、対照群に対する多数の比較を実施した。SN−38の取込み初速度と細胞傷害
性との相関を、簡易最小自乗回帰法によりプロットした。
The comparison between the two groups was evaluated by the Mann-Whitney rank sum test. Kruskal-Wallis one-way analysis of rank variance for significant differences between more than two groups
A number of comparisons to the control group were performed by the One Way Analysis of Variance on Ranks, followed by Dunn's method. The correlation between the initial rate of SN-38 uptake and cytotoxicity was plotted by a simple least squares regression method.

【0050】 (小腸細胞によりCPT−11およびSN−38ラクトンおよびカルボキシレ
ートのそれぞれの取込み) 単離空腸細胞によるラクトンおよびカルボキシレートの両形態での20μMの 14 C−CPT−11および2μMの14C−SN−38の時間依存性取込みを
、図2に示す。0時間目の取込み値の外挿は、細胞表面の標識化薬剤への吸着の
ような非特異的結合を示す正の妨害を生じる。ラクトンおよびカルボキシレート
形態のCPT−11およびSN−38の両方のそれぞれの取込みは、90秒まで
の間、線状であった。したがって、取込み初速度は、初期期間中の取込みの線状
回帰適合により確定した。それぞれの薬剤のラクトン形態とカルボキシレート形
態との間の取込み速度の比較は、明らかに、カルボキシレート形態に比して、C
PT−11およびSN−38ラクトンの両方のより迅速な取込みを示した(図2
)。
(CPT-11 and SN-38 lactone and carboxyl
Incorporation of 20 μM in both lactone and carboxylate forms by isolated jejunal cells 14 C-CPT-11 and 2 μM14Time-dependent uptake of C-SN-38
Shown in FIG. Extrapolation of the uptake value at time 0 indicates the adsorption of the cell surface to the labeled drug.
This results in a positive interference indicating non-specific binding. Lactone and carboxylate
Each uptake of both forms CPT-11 and SN-38 takes up to 90 seconds
During the period, it was linear. Therefore, the initial acquisition speed is linear for acquisition during the initial period.
Determined by regression fit. Lactone and carboxylate forms of each drug
The comparison of the uptake rate between the carboxylate form and the
It showed faster uptake of both PT-11 and SN-38 lactone (FIG. 2).
).

【0051】 表1は、空腸および回腸細胞による20μMの14C−CPT−11および2
μMの14C−SN−38のそれぞれの取込み初速度を要約する。CPT−11
およびSN−38ラクトンは、両小腸領域からの細胞中でそれらのカルボキシレ
ート形態よりも迅速に取り込まれたが、空腸細胞と回腸細胞との間に有意な差は
認められなかった。
Table 1 shows that 20 μM 14 C-CPT-11 and 2 by jejunal and ileal cells.
The initial uptake rate of each of μM of 14 C-SN-38 is summarized. CPT-11
And SN-38 lactones were taken up faster than their carboxylate forms in cells from both small intestinal regions, but no significant difference was observed between jejunal and ileal cells.

【0052】 (CPT−11およびSN−38ラクトンおよびカルボキシレートの輸送系) CPT−11ラクトンおよびカルボキシレートのそれぞれの取込み初速度を、
濃度の一関数としてプロットし、データを、空腸および回腸細胞の両方で、等式
v=(VmaxS)/(K+S)+KSを用いた最小自乗非線状回帰分析(
図3)により適合させたが、CPT−11ラクトンの取込みの優勢構成成分は非
飽和可能性であって、これは受動的拡散または流体相エンドサイトーシスによる
取込みを示唆する。CPT−11カルボキシレートの取込み曲線の分析は、取込
み行程の少なくとも2つの別々の構成成分も示唆した。曲線の飽和可能性構成成
分は、147および157pmol/10細胞/分/μMという最大取込み速
度(Vmax)と、空腸および回腸細胞でのそれぞれ51.3および50.5μ
Mというミカエリス定数(K)を特徴とする。小非飽和可能性構成成分は、<
0.05pmol/10細胞/分/μMの拡散定数を特徴とし、両小腸領域の
細胞中のCPT−11ラクトンに関する値の12分の1未満を示した(表2)。
さらに、CPT−11ラクトンに関するKdは、SN−38ラクトンの1.8〜
2.5分の1であった。
(Transport System of CPT-11 and SN-38 Lactone and Carboxylate) The initial uptake rate of each of CPT-11 lactone and carboxylate was calculated as follows:
Plotted as a function of concentration, the data were plotted for both jejunal and ileal cells using a least squares non-linear regression analysis with the equation v = (V max S) / (K m + S) + K d S (
As adapted more (FIG. 3), the predominant component of CPT-11 lactone uptake is desaturability, suggesting uptake by passive diffusion or fluid phase endocytosis. Analysis of the CPT-11 carboxylate uptake curve also indicated at least two separate components of the uptake process. The saturable components of the curves are the maximum uptake rates (V max ) of 147 and 157 pmol / 10 cells 6 / min / μM, and 51.3 and 50.5 μm in jejunal and ileal cells, respectively.
It is characterized by the Michaelis constant (K m ) of M. The small desaturable components are <
It was characterized by a diffusion constant of 0.05 pmol / 10 6 cells / min / μM and showed less than one-twelfth the value for CPT-11 lactone in cells in both small intestinal regions (Table 2).
In addition, the Kd for CPT-11 lactone is 1.8- for SN-38 lactone.
It was 2.5 times lower.

【0053】 SN−38ラクトンおよびカルボキシレートの取込み初速度を、濃度の一関数
としてプロットした(図4)。この研究で用いたSN−38の最大濃度は、化合
物の低溶解性のために2μMより低く、したがって、取込みの飽和可能および不
飽和可能性構成成分の確定を難しくさせた。この濃度範囲では、SN−38ラク
トンおよびカルボキシレートの取込みは、ほとんどが不飽和可能であった(図4
)。
Initial uptake rates of SN-38 lactone and carboxylate were plotted as a function of concentration (FIG. 4). The maximum concentration of SN-38 used in this study was below 2 μM due to the low solubility of the compound, thus making it difficult to determine the saturable and unsaturated components of the uptake. In this concentration range, uptake of SN-38 lactone and carboxylate was largely unsaturated (Figure 4).
).

【0054】 担体媒介性輸送は、代謝性毒剤、例えば細胞代謝を妨げて、エネルギー産生反
応を低減する2,4−ジニトロフェノールにより抑制されることが知られている
(23)。したがって、2,4−ジニトロフェノールは、本出願人の研究におい
ては、CPT−11およびSN−38ラクトンおよびカルボキシレートのそれぞ
れの取込みのメカニズムを確定するために用いた。この研究の結果を、表3に要
約する。CPT−11およびSN−38ラクトンの両方の取込み速度は2,4−
ジニトロフェノールの付加により有意に影響されないが、しかしCPT−11お
よびSN−38カルボキシレートの取込み速度は2,4−ジニトロフェノールに
よりそれぞれ22.6および30.8%に低減されたが、これはこれらの化合物
の両方に関する能動輸送メカニズムを示唆する。
[0054] Carrier-mediated transport is known to be inhibited by metabolic toxins, such as 2,4-dinitrophenol, which interfere with cellular metabolism and reduce the energy production response (23). Thus, 2,4-dinitrophenol was used in applicants' studies to determine the mechanism of incorporation of CPT-11 and SN-38 lactone and carboxylate, respectively. The results of this study are summarized in Table 3. The uptake rate of both CPT-11 and SN-38 lactone was 2,4-
Although not significantly affected by the addition of dinitrophenol, the uptake rates of CPT-11 and SN-38 carboxylate were reduced by 2,4-dinitrophenol to 22.6 and 30.8%, respectively, which were Suggest an active transport mechanism for both compounds.

【0055】 2、4−ジニトロフェノール−S−グルタチオン(DNP−SG)は、肝臓中
の能動的多特異性有機陰イオン輸送体(cMOAT)のための基質であることが
知られている(24)。さらに、SN−38のUDP−グルクロニルトランスフ
ェラーゼによる結合は、これも肝臓cMOATのための基質であるSN−38−
Gluの形成をもたらす(12、17)。CPT−11カルボキシレートおよび
/またはSN−38カルボキシレートが小腸細胞中でcMOAT様メカニズムを
介して輸送されるか否かを確定するために、DNP−SGおよびSN−38−G
luの存在下または非存在下で、CPT−11およびSN−38の取込み速度を
調べた。結果を、表3に要約する。DNP−SGおよびSN−38−Gluは、
カルボキシレート形態のSN−38の取込みを60%以上有意に抑制したが、一
方、CPT−11カルボキシレートの取込みは変わらないままであった。ラクト
ン形態のCPT−11およびSN−38の取込み速度は、 DNP−SGまたは
SN−38−Gluの存在により有意に影響されなかった。
2,4-Dinitrophenol-S-glutathione (DNP-SG) is known to be a substrate for an active multispecific organic anion transporter (cMOAT) in the liver (24). ). In addition, the binding of SN-38 by UDP-glucuronyltransferase indicates that SN-38-, a substrate for liver cMOAT, is also present.
This leads to the formation of Glu (12, 17). To determine whether CPT-11 carboxylate and / or SN-38 carboxylate are transported in small intestinal cells via a cMOAT-like mechanism, DNP-SG and SN-38-G
The rate of uptake of CPT-11 and SN-38 was determined in the presence or absence of lu. The results are summarized in Table 3. DNP-SG and SN-38-Glu
Uptake of the carboxylate form of SN-38 was significantly inhibited by over 60%, while uptake of CPT-11 carboxylate remained unchanged. The rate of uptake of the lactone forms of CPT-11 and SN-38 was not significantly affected by the presence of DNP-SG or SN-38-Glu.

【0056】 (ミセル形成およびCPT−11およびSN−38の取込み初速度に及ぼすそ
の影響) 臨界ミセル濃度より高い濃度のタウロコール酸(TCA)は、CPT−11お
よびSN−38の両方に対比して、1,000分子量切断膜を通過できないミセ
ルを形成する(25)。この特性を用いて、CPT−11およびSN−38ラク
トンおよびカルボキシレートがTCAミセルと会合し得るか否かを確定した。図
5に報告した結果は、TCAが、CPT−11ラクトンおよびカルボキシレート
、ならびにSN−38ラクトンの%モノマー濃度を有意に低減したことを示す。
しかしながら、SN−38カルボキシレートは、TCAミセルと有意に会合しな
かった。
Concentration of Taurocholic Acid (TCA) above the Critical Micellar Concentration on Both Micelles Formation and Initial Uptake Rate of CPT-11 and SN-38 Compared to Both CPT-11 and SN-38 To form micelles that cannot pass through the 1,000 molecular weight cut membrane (25). This property was used to determine whether CPT-11 and SN-38 lactone and carboxylate could associate with TCA micelles. The results reported in FIG. 5 show that TCA significantly reduced the% monomer concentration of CPT-11 lactone and carboxylate, and SN-38 lactone.
However, SN-38 carboxylate did not significantly associate with TCA micelles.

【0057】 次に、出願人等は、CPT−11およびSN−38の細胞取込みに及ぼすミセ
ル形成の影響を調べた。この一連の実験では、空腸および回腸からの細胞を併合
した。20mMのTCAの存在下では、CPT−11およびSN−38の取込み
初速度(平均±SD)はそれぞれ、TCAを含有しない対照の48.5±10.
8および69.3±12.7%に低減された(n=5、マン−ホイットニー検定
、CPT−11およびSN−38に関して、それぞれp=0.015およびp=
0.343)。
Next, Applicants examined the effect of micelle formation on cell uptake of CPT-11 and SN-38. In this series of experiments, cells from the jejunum and ileum were merged. In the presence of 20 mM TCA, the initial uptake rates of CPT-11 and SN-38 (mean ± SD) were respectively 48.5 ± 10.
8 and 69.3 ± 12.7% (n = 5, p = 0.015 and p = 15 for Mann-Whitney test, CPT-11 and SN-38, respectively)
0.343).

【0058】 (CPT−11およびSN−38の取込み初速度に及ぼすpHおよび重炭酸塩
の作用) それぞれラクトンおよびカルボキシレートCPT−11およびSN−38間の
相互転換は可逆的かつpH駆動性である(11)。20μMの14C−CPT−
11および2μMの14C−SN−38の取込み初速度に及ぼす生理的pH(p
H6.2〜8)の影響を調べた。図6に要約した結果は、CPT−11およびS
N−38の取込み速度が6.8より高いpHで約65%有意に低減されたことを
示す。重炭酸塩の存在下および非存在下でCPT−11およびSN−38の取込
み初速度を測定した場合にも、取込みの変化が観察された。 CPT−11およ
びSN−38の取込みは、ハンク緩衝液のHEPES構成成分を重炭酸ナトリウ
ムに置換し、pHを7より高く調整した場合に、低減された。
Effect of pH and Bicarbonate on Initial Uptake Rate of CPT-11 and SN-38 Interconversion between lactone and carboxylate CPT-11 and SN-38, respectively, is reversible and pH driven. (11). 20 μM of 14 C-CPT-
Physiological pH (p) affects the initial uptake rate of 11 and 2 μM 14 C-SN-38.
H6.2 to 8) were examined. The results summarized in FIG. 6 show that CPT-11 and SPT
9 shows that the uptake rate of N-38 was significantly reduced by about 65% at pH above 6.8. Changes in uptake were also observed when measuring the initial uptake rates of CPT-11 and SN-38 in the presence and absence of bicarbonate. Incorporation of CPT-11 and SN-38 was reduced when the HEPES component of the Hank buffer was replaced with sodium bicarbonate and the pH was adjusted above 7.

【0059】 ハムスター小腸細胞を用いた場合、本研究の結果は、非イオン性ラクトン形態
のCPT−11およびSN−38はともに、主として受動的メカニズムにより、
しかしそれぞれそれらの陰イオン性カルボキシレート形態の数倍の速度で吸収さ
れた(表1、2および3。図2、3および4)。空腸細胞と回腸細胞との間の輸
送メカニズムに、ならびに運動パラメーターに、有意性が認められた(表2およ
び3)。図示してはいないが、盲腸および結腸細胞の両方を用いてCPT−11
およびSN−38の取込みを実施した場合にも、同様の結果が観察された(26
)。
Using hamster small intestine cells, the results of this study indicate that both non-ionic lactone forms of CPT-11 and SN-38 are primarily due to a passive mechanism.
However, each was absorbed at several times the rate of their anionic carboxylate form (Tables 1, 2 and 3; Figures 2, 3 and 4). Significance was found in the transport mechanism between jejunal and ileal cells, as well as in motility parameters (Tables 2 and 3). Although not shown, CPT-11 was used with both cecal and colon cells.
Similar results were observed when the uptake of SN-38 and SN-38 was performed (26
).

【0060】 単離ハムスター小腸細胞は、生存能力が約2時間に限定されているために、S
N−38の細胞傷害性作用を概算するための最良のモデルというわけではない(
Gore et al., 1993)。したがって、HT29細胞は、2μMの[14C]SN
−38の取込み初速度および0.4μMのSN−38の細胞傷害性の両方に及ぼ
す生理的pHの比較作用を調べるためにも用いられた。SN−38の取込み初速
度は、単離ハムスター小腸細胞よりもHT−29細胞の方が低かった(図3およ
び4)。しかしながら、単離ハムスター小腸細胞で観察されたのと同様に、HT
29細胞におけるSN−38の取込み速度は、pH6.2および6.8では、p
H7.4および8.0よりも有意に大きかった(クルスカル−ワリス検定:p=
0.008、ダン法:p<0.05)(図7)。HT−29細胞に対するSN−
38の細胞傷害性は、pH6.2および6.8では、pH7.4および8.0よ
りも有意に高かった(クルスカル−ワリス検定:p=0.007、ダン法:p<
0.05)。図5は、[14C]SN−38の取込みの初速度とSN−38の細
胞傷害性との間の関係を示すが、これは、pHの低減に伴って、高取込み速度が
高細胞傷害作用と相関したことを示している。
[0060] The isolated hamster small intestine cells have a limited viability to
It is not the best model to estimate the cytotoxic effects of N-38 (
Gore et al., 1993). Therefore, HT29 cells have 2 μM [ 14 C] SN.
It was also used to examine the relative effect of physiological pH on both the initial uptake rate of -38 and the cytotoxicity of SN-38 at 0.4 μM. The initial uptake rate of SN-38 was lower in HT-29 cells than in isolated hamster small intestine cells (Figures 3 and 4). However, similar to that observed in isolated hamster small intestine cells, HT
The uptake rate of SN-38 in 29 cells at pH 6.2 and 6.8
Significantly higher than H7.4 and 8.0 (Kruskal-Wallis test: p =
0.008, Dunn's method: p <0.05) (FIG. 7). SN- against HT-29 cells
The cytotoxicity of 38 was significantly higher at pH 6.2 and 6.8 than at pH 7.4 and 8.0 (Kruskal-Wallis test: p = 0.007, Dunn's method: p <
0.05). FIG. 5 shows the relationship between the initial rate of [ 14 C] SN-38 uptake and the cytotoxicity of SN-38, which shows that with decreasing pH, high uptake rates It shows that it was correlated with the action.

【0061】 結果は明らかに、能動的メカニズムを介して小腸細胞にCPT−11およびS
N−38カルボキシレートが取り込まれたということを示した(表2および3、
図3)。近年、肝臓小管膜に主として発現されるcMOATは、いくつかの種類
の有機陰イオンを一次能動輸送系として胆汁中に輸送すると提案されている(2
4、27〜29)。さらに、肝臓cMOATは、陰イオンである、SN−38カ
ルボキシレート、SN−38−Gluラクトンおよびカルボキシレートの胆汁中
排出に関与することが報告されている(12、17)。陰イオンCPT−11カ
ルボキシレートは、一部だけcMOATにより排除されることが報告された(1
2、17)。本発明人の研究は、CPT−11カルボキシレートに対比して、S
N−38カルボキシレートの取込み初速度がDNP−SGおよびSN−38−G
luにより有意に抑制されたことを示す(表3)。これらの結果は、肝臓小管膜
小胞を用いたCho等(12、17)の結果と一致する。したがって、この研究は
、SN−38の空腸および回腸細胞取込みにおけるcMOATまたはcMOAT
様輸送体の関与を裏付ける。
The results clearly show that CPT-11 and S
It was shown that N-38 carboxylate was incorporated (Tables 2 and 3,
(Fig. 3). Recently, cMOAT, which is mainly expressed in the hepatic canalicular membrane, has been proposed to transport some types of organic anions into bile as the primary active transport system (2).
4, 27-29). In addition, hepatic cMOAT has been reported to be involved in the bile excretion of the anions SN-38 carboxylate, SN-38-Glu lactone and carboxylate (12, 17). The anion CPT-11 carboxylate was reported to be only partially eliminated by cMOAT (1
2, 17). The inventor's work has shown that SPT, as opposed to CPT-11 carboxylate,
The initial uptake rate of N-38 carboxylate is DNP-SG and SN-38-G
This indicates that lu was significantly suppressed (Table 3). These results are consistent with those of Cho et al. (12, 17) using liver tubule membrane vesicles. Therefore, this study demonstrates that cMOAT or cMOAT in the jejunal and ileal cell uptake of SN-38.
Support the involvement of transporters.

【0062】 本発明は、CPT−11ラクトンおよびカルボキシレート、ならびにSN−3
8ラクトンが高濃度のTCAの存在下でミセルを形成し得ることも報告する(図
5)。モノマー濃度のパーセンテージは、38〜47%の範囲であった。これら
の濃度は、長鎖脂肪酸(即ち、オレイン酸に関しては2.3%)およびコレステ
ロール(3%)の濃度とは異なる。さらに、ミセル形成はCPT−11取込みを
抑制したが、これは、長鎖脂肪酸およびコレステロールの小腸取込みで胆汁酸ミ
セル形成が演じた正の役割とは異なる。これらの結果は、ミセル形成が短鎖脂肪
酸、例えばパルミチン酸の取込みを抑制したことを示すデータを支持する。
The present invention relates to CPT-11 lactone and carboxylate, and SN-3
We also report that 8 lactones can form micelles in the presence of high concentrations of TCA (FIG. 5). The percentage of monomer concentration ranged from 38 to 47%. These concentrations differ from those of long chain fatty acids (ie, 2.3% for oleic acid) and cholesterol (3%). Furthermore, micelle formation suppressed CPT-11 uptake, which differs from the positive role played by bile acid micelle formation in intestinal uptake of long chain fatty acids and cholesterol. These results support data indicating that micelle formation suppressed uptake of short chain fatty acids, such as palmitic acid.

【0063】 図1に記載したように、CPT−11およびSN−38ラクトンからカルボキ
シレートへの転換はpH駆動性である(11、12)。pH7.4では、SN−
38およびCPT−11のそれぞれ13%がラクトン形態であったと過去に報告
されている(30)。本研究は、CPT−11およびSN−38の取込み初速度
が酸性pH(pH6.2および6.8)では中性またはアルカリ性pH(pH7
.4および8)の数倍であったということを示した(図6)。1)酸性pHでは
、非イオン性ラクトン形態のCPT−11およびSN−38は受動的に輸送され
、2)中性/塩基性pHでは、陰イオン性カルボキシレート形態のCPT−11
およびSN−38は主に能動的に吸収され、そして3)CPT−11およびSN
−38ラクトンの取込み速度はそれらのカルボキシレート形態の数倍速いという
事実を考慮すると、小腸細胞によるCPT−11およびSN−38の取込みメカ
ニズムは短鎖脂肪酸の場合と非常によく似ている。この仮説は、短鎖脂肪酸の場
合と同様に、ミセル形成はCPT−11およびSN−38の取込みを低減し、C
PT−11およびSN−38の取込みは小腸に限定されず、盲腸および結腸でも
起こるという事実により支持されると思われる。
As described in FIG. 1, the conversion of CPT-11 and SN-38 lactone to carboxylate is pH driven (11, 12). At pH 7.4, SN-
It has previously been reported that 13% of each of 38 and CPT-11 were in lactone form (30). This study demonstrated that the initial uptake rates of CPT-11 and SN-38 were neutral or alkaline pH (pH 7) at acidic pH (pH 6.2 and 6.8).
. 4 and 8) (FIG. 6). 1) At acidic pH, the non-ionic lactone forms CPT-11 and SN-38 are passively transported, and 2) at neutral / basic pH, the anionic carboxylate form of CPT-11.
And SN-38 are mainly actively absorbed, and 3) CPT-11 and SN
Given the fact that the uptake rate of -38 lactones is several times faster than their carboxylate forms, the mechanism of uptake of CPT-11 and SN-38 by small intestinal cells is very similar to that of short chain fatty acids. This hypothesis states that, as with short chain fatty acids, micelle formation reduces uptake of CPT-11 and SN-38,
It appears that the uptake of PT-11 and SN-38 is not restricted to the small intestine but is also supported by the fact that it also occurs in the cecum and colon.

【0064】 したがって、短鎖脂肪酸の場合と同様に、胆汁および管腔内容物のアルカリ化
はCPT−11およびSN−38の小腸取込みを低減する。CPT−11および
その代謝物質の胆汁含量を、シスプラチンで処置し、CPT−11を静注された
2名の男性に関して確定した(9)。胆汁の主要構成成分はCPT−11(75
.6〜91.9%)であったが、一方SN−38およびSN−38−Gluは小
構成成分で、それぞれ0.9〜3.3%および7.3〜18.9%であった。さ
らに、ヒト胆汁のpHは、6.5〜8.0の範囲であると報告されている(31
)。したがって、小腸上皮細胞によりCPT−11ラクトンがより多量に吸収さ
れ、腸肝循環中のCPT−11レベルが増大されるため、カルボキシレート形態
だけでなく、ラクトン形態のCPT−11も、薬物動態において重要な役割を演
じると考えられる。
Thus, as with short chain fatty acids, alkalinization of bile and luminal contents reduces small intestinal uptake of CPT-11 and SN-38. The bile content of CPT-11 and its metabolites was determined for two men treated with cisplatin and intravenously administered CPT-11 (9). The main component of bile is CPT-11 (75
. 6-91.9%), while SN-38 and SN-38-Glu were minor constituents, 0.9-3.3% and 7.3-18.9%, respectively. In addition, the pH of human bile has been reported to be in the range of 6.5 to 8.0 (31).
). Thus, not only the carboxylate form but also the lactone form of CPT-11 is not only pharmacokinetic, since CPT-11 lactone is absorbed more by small intestinal epithelial cells and CPT-11 levels in the enterohepatic circulation are increased. It is thought to play an important role.

【0065】 SN−38は主にラクトン形態として活性であるが、一方SN−38カルボキ
シレートは小トポイソメラーゼI−抑制活性だけを示す(32)。ラット全身オ
ートラジオグラフィーを用いて、14C−SN−38のIV注入後24時間目、
放射能が独占的に消化管で見出された(33)。SN−38は強い細胞傷害性を
示し、SN−38−Gluは失活化グルクロニド化形態のSN−38であり、そ
してCPT−11はSN−38に比して細胞傷害性が非常に低い(Kawato et al
., 1991)。小腸中でのSN−38の蓄積がラットで示され(Atsumi et al., 19
95)、ヌードマウスにおいてはCPT−11投与による下痢に関与すると考えら
れた(Araki et al., 1993)。盲腸における小腸上皮の崩壊が、CPT−11投
与後に下痢を生じたマウスおよびラットで観察された(Takatsuna et al., 1996
; Ikuno et al., 1995; Araki et al., 1993)。ヒトにおけるCPT−11投与
により誘発される下痢は、分泌性下痢であると報告された(Bleiberg and Cvitk
ovic, 1996)。しかしながら、動物モデルで報告されているのと同様に、患者に
おいて、CPT−11誘発性副作用に関連した致死的小腸損傷を我々は観察した
(Kobayashi et al., 1998b)。
SN-38 is mainly active as a lactone form, while SN-38 carboxylate shows only small topoisomerase I-inhibitory activity (32). 24 hours after IV injection of 14 C-SN-38 using rat whole body autoradiography,
Radioactivity was found exclusively in the gastrointestinal tract (33). SN-38 shows strong cytotoxicity, SN-38-Glu is an inactivated glucuronidated form of SN-38, and CPT-11 is much less cytotoxic than SN-38 ( Kawato et al
., 1991). The accumulation of SN-38 in the small intestine has been shown in rats (Atsumi et al., 19
95) In nude mice, it was thought to be involved in diarrhea due to CPT-11 administration (Araki et al., 1993). Disruption of small intestinal epithelium in the cecum was observed in mice and rats that developed diarrhea after CPT-11 administration (Takatsuna et al., 1996).
Ikuno et al., 1995; Araki et al., 1993). Diarrhea induced by CPT-11 administration in humans has been reported to be secretory diarrhea (Bleiberg and Cvitk).
ovic, 1996). However, in patients, we observed lethal small intestinal damage associated with CPT-11-induced side effects, as reported in animal models (Kobayashi et al., 1998b).

【0066】 さらに、SN−38の蓄積、即ち放射能は独占的に消化管に見出された(33
)。小腸におけるSN−38の蓄積は、ヌードマウスではCPT−11による下
痢に関与することが示された(34)。盲腸における小腸上皮の崩壊は、ラット
においては、CPT−11誘発性下痢に関与すると考えられた(35)。最後に
、欧州における臨床的概算から、CPT−11により誘発される下痢は分泌性下
痢であると報告された(36)が、一方我々の研究では、出願人等は重度の小腸
損傷発生率を見た(37)。
Furthermore, the accumulation of SN-38, ie the radioactivity, was exclusively found in the gastrointestinal tract (33
). The accumulation of SN-38 in the small intestine has been shown to be involved in diarrhea due to CPT-11 in nude mice (34). Disruption of the small intestinal epithelium in the cecum was thought to be involved in CPT-11-induced diarrhea in rats (35). Finally, clinical estimates in Europe have reported that diarrhea induced by CPT-11 is secretory diarrhea (36), whereas in our study applicants reported that the incidence of severe small intestinal injury was reduced. I saw (37).

【0067】 解剖により、偽膜空腸−回腸炎の存在が示されたが、この外観は光学顕微鏡下
では小腸上皮の崩壊を特徴とし、これは損傷性下痢が重症症例において起こり得
ることを示唆する。CPT−11誘発性下痢に関するメカニズムは、小腸上皮に
より主としてラクトンSN−38およびCPT−11が再吸収され、その結果、
これらの代謝物質に小腸上皮が高度に曝露され、これが小腸管の構造的および機
能的損傷を引き起こすと考えられる。
Dissection showed the presence of pseudomembrane jejuno-ileitis, which under the light microscope is characterized by disruption of the small intestinal epithelium, suggesting that damaging diarrhea can occur in severe cases. The mechanism for CPT-11-induced diarrhea is that the intestinal epithelium mainly reabsorbs lactone SN-38 and CPT-11,
High exposure of the small intestinal epithelium to these metabolites is thought to cause structural and functional damage to the small intestinal tract.

【0068】 本研究で示唆されたように、胆汁および/または小腸管腔内容物のアルカリ化
は、小腸上皮のCPT−11およびSN−38ラクトンに対する取込みおよび曝
露を低減する。小腸における短鎖脂肪酸の吸収は過去10年間研究されてきたが
、相反する結果が報告されている。図6に示したように、pH低減は短鎖脂肪酸
の取込み増大を誘発すると考えられる。したがって、カンプトテシンおよびCP
T−11誘発性下痢の本発明の治療は、2つの目的:即ち、1)小腸管腔のアル
カリ化、および2)身体からのCPT−11およびSN−38の浄化(即ち、排
便制御)に集中する。CPT−11の標準TV投与の前および/またはそれと同
時に、7より高いpHでの重炭酸ナトリウム、酸化マグネシウムおよび水の組合
せを患者に経口投与する。下痢の発生率が低減される。
As suggested in this study, alkalization of bile and / or small intestinal luminal contents reduces uptake and exposure of small intestinal epithelium to CPT-11 and SN-38 lactone. The absorption of short chain fatty acids in the small intestine has been studied for the past decade, but conflicting results have been reported. As shown in FIG. 6, it is believed that pH reduction induces increased uptake of short chain fatty acids. Therefore, camptothecin and CP
The treatment of the present invention for T-11-induced diarrhea is for two purposes: 1) alkalinization of the small intestinal lumen, and 2) purification of CPT-11 and SN-38 from the body (ie, defecation control). concentrate. Prior to and / or simultaneously with the standard TV administration of CPT-11, a combination of sodium bicarbonate, magnesium oxide and water at a pH greater than 7 is orally administered to the patient. The incidence of diarrhea is reduced.

【0069】 SN−38の細胞取込みとその関連細胞傷害性との関係も、本発明の研究で概
算した。HT29細胞におけるSN−38の細胞取込みと細胞傷害性はpH依存
性であり、細胞傷害性は取込み初速度とよく相関するということが判明した(図
8)。上述のように、酸性pHではSN−38の優勢形態はラクトンであると考
えられる。これは、SN−38ラクトンのより高度の細胞取込みおよび細胞内濃
度をともにもたらす。SN−38は主にラクトン形態で活性であり、一方SN−
38カルボキシレートは小トポイソメラーゼT抑制活性だけを示す(Kawato et
al., 1991)ため、これは細胞死の増大に関連があるのであろう。したがって、
CPT−11誘発性下痢に関して考え得る一つのメカニズムは、小腸上皮による
SN−38ラクトンの再吸収とその結果生じる小腸管に対する構造的および機能
的損傷を包含し得る。
The relationship between SN-38 cellular uptake and its associated cytotoxicity was also estimated in studies of the present invention. It was found that cell uptake and cytotoxicity of SN-38 in HT29 cells were pH-dependent, and that cytotoxicity correlated well with the initial uptake rate (FIG. 8). As noted above, at acidic pH, the predominant form of SN-38 is believed to be lactone. This results in both higher cellular uptake and intracellular concentrations of SN-38 lactone. SN-38 is mainly active in the lactone form, while SN-38
38 carboxylate shows only small topoisomerase T inhibitory activity (Kawato et al.
al., 1991), so this may be related to increased cell death. Therefore,
One possible mechanism for CPT-11-induced diarrhea may involve reabsorption of SN-38 lactone by the small intestinal epithelium and resulting structural and functional damage to the small intestinal tract.

【0070】 要するに、本発明の研究は、小腸上皮細胞によるCPT−11およびSN−3
8の取込みを概算した最初のものである。CPT−11およびSN−38ラクト
ンはともに受動的に輸送されるが、一方CPT−11およびSN−38カルボキ
シレートはともに能動的に吸収される。CPT−11およびSN−38ラクトン
の取込み速度は、それぞれのカルボキシレート形態の場合の数倍である。さらに
、SN−38の高取込み速度は、HT29細胞における細胞傷害作用の増大に関
連する。これらの知見は、カルボキシレートへの転換がCPT−11およびSN
−38の両方の細胞取込みを低減するということを示唆する。したがって、これ
らの知見は、臨床的実践におけるCPT−11およびSN−38の再吸収を低減
するための考え得る一メカニズムとしての小腸管腔のアルカリ化に対する支持を
提供する。小腸再吸収の制限は、次に腸肝循環するこの薬剤の生物学的利用能を
調節して、小腸上皮に及ぼすSN−38の毒性副作用を低減することが可能であ
る。
In summary, the study of the present invention demonstrates that CPT-11 and SN-3 by intestinal epithelial cells
This is the first estimate of the uptake of 8. Both CPT-11 and SN-38 lactone are passively transported, while both CPT-11 and SN-38 carboxylate are actively absorbed. The uptake rates of CPT-11 and SN-38 lactones are several times higher than for the respective carboxylate forms. In addition, high uptake rates of SN-38 are associated with increased cytotoxic effects in HT29 cells. These findings indicate that the conversion to carboxylate is significant for CPT-11 and SN.
Suggests that both -38 reduce cellular uptake. Thus, these findings provide support for alkalization of the small intestinal lumen as one possible mechanism for reducing reabsorption of CPT-11 and SN-38 in clinical practice. Limiting small intestinal reabsorption can modulate the bioavailability of the drug, which in turn circulates in the enterohepatic circulation, to reduce the toxic side effects of SN-38 on small intestinal epithelium.

【0071】 結果は、臨床的実践に、そして肝臓により浄化されるカンプトテシン化合物、
例えば塩酸イリノテカンおよびその誘導体の投与に直接的に強い影響を与える。
本発明人は、肝臓により浄化されるカンプトテシン化合物、例えばCPT−11
の投与による経口的アルカリ化を提供する。
The result is a camptothecin compound that is cleared in clinical practice and by the liver
For example, it has a strong direct effect on the administration of irinotecan hydrochloride and its derivatives.
The present inventors have discovered that camptothecin compounds that are cleared by the liver, such as CPT-11
Provides oral alkalinization by administration of

【0072】 最後に、本発明人は、小腸によるカンプトテシン化合物、例えばCPT−11
およびSN−38の取込みを説明する。CPT−11およびSN−38ラクトン
はともに、小腸細胞により受動的に輸送される。CPT−11およびSN−38
カルボキシレートはともに能動的に吸収されるが、異なる輸送メカニズムによる
。TCAによるミセルの形成は、CPT−11およびSN−38の両方の取込み
を低減した。CPT−11およびSN−38ラクトンの取込み速度はカルボキシ
レート形態の場合の数倍であるが、一方取込み速度は、重炭酸塩の存在下では、
そしてpH増大条件下では低減した。CPT−11およびSN−38に関するこ
れらの知見は、臨床的実践に有用であり得る。
Finally, the present inventors have discovered that camptothecin compounds such as CPT-11 by the small intestine
And the acquisition of SN-38 will be described. Both CPT-11 and SN-38 lactones are passively transported by small intestinal cells. CPT-11 and SN-38
Both carboxylates are actively absorbed, but by different transport mechanisms. The formation of micelles by TCA reduced the uptake of both CPT-11 and SN-38. The rate of uptake of CPT-11 and SN-38 lactones is several times that of the carboxylate form, while the rate of uptake in the presence of bicarbonate is
And it decreased under pH increasing conditions. These findings regarding CPT-11 and SN-38 may be useful in clinical practice.

【0073】 小腸によるCPT−11およびSN−38の取込み初速度Initial rate of uptake of CPT-11 and SN-38 by the small intestine

【表1】 14C]CPT−11(20μM)および[14C]SN−38(2μM)
のラクトンおよびカルボキシレートのそれぞれの取込み初速度を比較した。結果
は、pmol/10細胞/分で表され、10回の実験の平均±SEである。統
計分析には、マン−ホイットニー検定を用いた。
[Table 1] [ 14 C] CPT-11 (20 μM) and [ 14 C] SN-38 (2 μM)
Of lactone and carboxylate were compared. Results are expressed as pmol / 10 6 cells / min and are the mean ± SE of 10 experiments. Mann-Whitney test was used for statistical analysis.

【0074】 小腸によるCPT−11およびSN−38取込みの運動パラメーターMotor parameters of CPT-11 and SN-38 uptake by the small intestine

【表2】 ):溶解度が限定されているため、2μMまでのSN−38濃度だけを調べ
た。 ():SN−38カルボキシレートはジニトロフェノールの存在下ではその
取込みの概算から能動的に輸送されると判断されるため(表3)、これらの値は
生理学的に関連があるとは考えられない。 注:データは、等式V=(Vmax・S)/(K+S)+K・Sを用いた
最小自乗非線状回帰分析(SigmaStat, Jandel Scientific, CA)により適合され
た。Vmax(pmol/10細胞/分)は最大取込み速度であり、K(μ
M)は見掛けのミカエリス定数であり、K( pmol/10細胞/分/μ
M)は拡散速度であり、そしてS(μM)はCPT−11またはSN−38の濃
度である。値は平均±SEである。CPT−11ラクトン、SN−38ラクトン
およびSN−38カルボキシレートの取込みの主要構成成分はそれぞれ、非飽和
性であり、したがって、KおよびVmax値は確定されなかった(ND)。
[Table 2] ( * ): Due to limited solubility, only SN-38 concentrations up to 2 μM were examined. ( + ): Since SN-38 carboxylate is determined to be actively transported in the presence of dinitrophenol from estimates of its uptake (Table 3), these values are considered to be physiologically relevant. I can't. Note: The data were fit equation V = (V max · S) / (K m + S) + K d · S least squares non-linear regression analysis using (SigmaStat, Jandel Scientific, CA) by. V max (pmol / 10 6 cells / min) is the maximum uptake rate and K m
M) is the apparent Michaelis constant, K d (pmol / 10 6 cells / min / μ
M) is the diffusion rate and S (μM) is the concentration of CPT-11 or SN-38. Values are means ± SE. CPT-11 lactone, SN-38 major constituent of lactones and SN-38 carboxylate uptake, respectively, are non-saturable, therefore, K m and V max values were not determined (ND).

【0075】 CPT−11およびSN−38の取込み初速度に及ぼすジニトロフェノール、
SN−38−GluおよびDNP−SGの影響
Effect of dinitrophenol on the initial uptake rate of CPT-11 and SN-38,
Effect of SN-38-Glu and DNP-SG

【表3】 NE 概算せず;NS 対照と有意に異ならず。 注:ジニトロフェノール、SN−38グルクロニド(SN38−Glu)または
2,4−ジニトロフェニル−S−グルタチオン(DNP−SG)を,それぞれ[ 14 C]CPT−11(20μM)および[14C]SN−38(2μM)の付
加前に、指示細胞懸濁液に付加した(詳細に関しては、材料と方法の項参照)。
各化合物の存在下でのCPT−11およびSN−38の取込み初速度は、対照の
パーセンテージ(%)として表された。ジニトロフェノールとその対照との間の
差は、マン−ホイットニー検定により評価した。SN−38−Glu、DNP
−SGおよびそれらの対照の間の差は、クルスカル−ワリス検定により評価し
、ダン法によりそれぞれの対照からの有意差を分析した(p<0.05)。
[Table 3]NE Not estimated; not significantly different from NS control. Note: dinitrophenol, SN-38 glucuronide (SN38-Glu) or
2,4-Dinitrophenyl-S-glutathione (DNP-SG) was each [ 14 C] CPT-11 (20 μM) and [14C] With SN-38 (2 μM)
Prior to addition, they were added to the indicator cell suspension (see Materials and Methods for details).
The initial uptake rate of CPT-11 and SN-38 in the presence of each compound was
It was expressed as a percentage (%). Between dinitrophenol and its control
The difference is1It was evaluated by the Mann-Whitney test. SN-38-Glu, DNP
-The difference between SG and their controls is2Assessed by the Kruskal-Wallis test
, The significant difference from each control was analyzed by the Dan method (*p <0.05).

【0076】 (塩酸イリノテカン処方物) 好ましい実施形態では、カンプトテシン化合物、例えばCPT−11およびそ
の誘導体で処理された患者に提供される約7より高いpHで、好ましくは8〜1
0のpHで、最も好ましくは8〜9のpHで、重炭酸ナトリウム、酸化マグネシ
ウムおよび水を投与する。
Irinotecan Hydrochloride Formulation In a preferred embodiment, at a pH greater than about 7, provided to a patient treated with a camptothecin compound, eg, CPT-11 and its derivatives, preferably from 8 to 1
Administer sodium bicarbonate, magnesium oxide and water at a pH of 0, most preferably at a pH of 8-9.

【0077】 さらに、本発明のCPT−11化合物は、適量の有効成分を含有する単位投薬
形態、例えば錠剤、カプセル、ピル、粉末、顆粒、座薬、滅菌非経口溶液または
懸濁液、滅菌非腸管外溶液または懸濁液、経口溶液または懸濁液、水中油型また
は油中水型エマルション等で、ヒトおよび動物に全身投与するための製剤組成物
中で有用である。経口投与のためには、固体または流体単位投薬形態が、本化合
物を用いて調製し得る。本化合物は、約1〜20%、好ましくは約5〜15%で
組成物中に担体またはビヒクルを用いた有効成分の製剤組成物(重量%)中で有
用である。
In addition, the CPT-11 compounds of the invention may be administered in unit dosage forms containing an appropriate amount of the active ingredient, such as tablets, capsules, pills, powders, granules, suppositories, sterile parenteral solutions or suspensions, sterile parenteral External solutions or suspensions, oral solutions or suspensions, oil-in-water or water-in-oil emulsions, etc. are useful in pharmaceutical compositions for systemic administration to humans and animals. For oral administration, solid or fluid unit dosage forms can be prepared using the compounds. The compounds are useful in pharmaceutical compositions (% by weight) of the active ingredient with carriers or vehicles in the composition at about 1-20%, preferably about 5-15%.

【0078】 流体または固体単位投薬形態は、経口投与のために容易に調製し得る。例えば
、CPT−11は、従来の成分、例えばリン酸二カルシウム、ケイ酸アルミニウ
ムマグネシウム、ステアリン酸マグネシウム、硫酸カルシウム、デンプン、タル
ク、ラクトース、アラビアゴム、メチルセルロースおよび製剤賦形剤または担体
として機能的に類似の物質と混合し得る。持効性処方物も任意に用い得る。カプ
セルは、本化合物を不活性である製剤希釈剤と混合し、この混合物を適切なサイ
ズを有する硬質ゼラチンカプセル中に挿入することにより処方し得る。軟質カプ
セルが望ましい場合には、化合物のスラリーを許容可能な植物油、軽油またはそ
の他の不活性油とともに、ゼラチンカプセル中に機械で封入し得る。
Fluid or solid unit dosage forms can be readily prepared for oral administration. For example, CPT-11 is functionally compatible with conventional ingredients such as dicalcium phosphate, aluminum magnesium silicate, magnesium stearate, calcium sulfate, starch, talc, lactose, acacia, methylcellulose and pharmaceutical excipients or carriers. Can be mixed with similar materials. A depot formulation may optionally be used. Capsules can be formulated by mixing the compound with an inert formulation diluent and inserting the mixture into a suitably sized hard gelatin capsule. If soft capsules are desired, the compound slurry can be machine encapsulated in a gelatin capsule with an acceptable vegetable, light or other inert oil.

【0079】 懸濁液、シロップおよびエリキシルは、流体単位投薬形態の経口投与のために
用い得る。油を含めた流体製剤は、油溶性形態用に用い得る。植物油、例えばコ
ーン油、落花生油またはベニバナ油は、例えば風味剤、甘味剤および任意の防腐
剤とともに許容可能な流体製剤を生成する。界面活性剤を水に付加して、流体単
位投薬用のシロップを生成し得る。許容可能な甘味剤、例えば砂糖、サッカリン
または生物甘味剤および風味剤をエリキシル形態で有する水−アルコール性薬剤
も用い得る。
Suspensions, syrups and elixirs can be used for oral administration in fluid unit dosage form. Fluid formulations, including oils, may be used for oil-soluble forms. Vegetable oils, such as corn oil, peanut oil or safflower oil, produce an acceptable fluid formulation with, for example, flavoring agents, sweetening agents and any preservatives. Surfactants can be added to the water to produce a syrup for fluid unit dosage. Water-alcoholic agents having an acceptable sweetening agent, for example, sugar, saccharin or biological sweetening agents and flavoring agents in elixir form may also be used.

【0080】 当業界で標準の技術を用いて、非経口および座薬投与のための製剤も得られる
Formulations for parenteral and suppository administration may also be obtained using techniques standard in the art.

【0081】 適切な製剤担体としては、滅菌水、食塩水、デキストロース、水または食塩水
中のデキストロース、ヒマシ油1モル当たり約30〜約35モルのエチレンオキ
シドを組合せるヒマシ油とエチレンオキシドとの縮合物質、液体酸、低級アルカ
ノール、油、例えばコーン油、落花生油、ゴマ油等で乳化剤、例えば脂肪酸のモ
ノ−またはジ−グリセリド、またはホスファチド、例えばレシチンなどを伴う;
グリコール;ポリアルキルグリコール;沈澱防止剤、例えばナトリウムカルボキ
シメチルセルロースの存在下での水性媒質;アルギン酸ナトリウム;ポリ(ビニ
ルピロリドン)等を単独でまたは適切な分配剤、例えばレシチンを伴う;ポリオ
キシエチレンステアレートなどが挙げられる。担体は、アジュバント、例えば防
腐剤、安定剤、湿潤剤、乳化剤等も本発明の浸透増強剤と一緒に含有し得る。
Suitable pharmaceutical carriers include sterile water, saline, dextrose, dextrose in water or saline, condensate of castor oil and ethylene oxide, combining about 30 to about 35 moles of ethylene oxide per mole of castor oil, Liquid acids, lower alkanols, oils such as corn oil, peanut oil, sesame oil and the like, with emulsifiers such as fatty acid mono- or di-glycerides or phosphatides such as lecithin;
Glycol; polyalkyl glycol; aqueous medium in the presence of a suspending agent, such as sodium carboxymethylcellulose; sodium alginate; poly (vinylpyrrolidone), etc. alone or with a suitable dispersing agent such as lecithin; polyoxyethylene stearate. And the like. The carrier may also contain adjuvants such as preserving, stabilizing, wetting, emulsifying, and the like, along with the penetration enhancers of the present invention.

【0082】 哺乳類のための有効投与量は、処置される被験者の年齢、体重、活動レベルま
たは症状といった因子によって変化し得る。典型的には、本発明の化合物の有効
投与量は、経口投与または直腸投与により1日1〜3回投与される場合、約10
mg/m〜700mg/mである。CPT−11は、好ましくは週に1回、
1〜5週間投与され得る。癌および主な治療のためのCPT−11の投与回数お
よび投与量は、既知である。
The effective dosage for a mammal can vary depending on factors such as the age, weight, activity level, or condition of the subject being treated. Typically, an effective dose of a compound of the present invention will be about 10 to 10 when administered orally or rectally 1 to 3 times daily.
a mg / m 2 ~700mg / m 2 . CPT-11 is preferably administered once a week,
It can be administered for 1-5 weeks. The frequency and dosage of CPT-11 for cancer and primary treatment is known.

【0083】 (塩酸イリノテカンの投与) 塩酸イリノテカン(Pharmacia-Upjohn)の平均末端排泄半減期は、約6時間で
ある。
(Administration of Irinotecan Hydrochloride) The average terminal elimination half-life of irinotecan hydrochloride (Pharmacia-Upjohn) is about 6 hours.

【0084】 カンプトテシン化合物は、単独で、または化学療法レジメン、例えばロイコボ
リン、シスプラチン、5−FU、オキシプラチン、ならびにその他の既知の化学
療法薬と組合せても投与し得る。代替的実施形態では、カンプトテシン化合物、
例えば塩酸イリノテカンは、ロペラミドとともに投与し得る。
The camptothecin compound may be administered alone or in combination with a chemotherapeutic regimen, such as leucovorin, cisplatin, 5-FU, oxyplatin, and other known chemotherapeutic agents. In an alternative embodiment, a camptothecin compound,
For example, irinotecan hydrochloride can be administered with loperamide.

【0085】 参考文献 (1)&#9;Rivory LP, Rovert J. Molecular, cellular, and clinical aspects of
the pharmacology of 20(s) camptothecin and its derivatives. Pharmacol.
Ther. 1995; 68:269-96. (2)&#9;Fukuoka M, Niitani H, Suzuki A, Motomiya M, Hasegawa K, Nishiwaki
Y, et al. A phase II study of CPT-II, a new derivative of camptothecin,
for previously untreated non-small-cell lung cancer. J. Clin. Oncol. 19
92; 10:16-20. (3)&#9;Shimada Y, Yoshino M, Wakui A, Nakao I, Futatsuki K, Sakata Y, et
al. Phase II study of CPT-II, a new camptothecin derivative, in metasta
tic colorectal cancer. J. Clin. Oncol. 1993; 11:909-913. McCloud E, Mathis RK. Grant KP, Said HM. Intestinal uptake of uridine i
n suckling rats: Mechanism and ontogeny. Proc Soc Exp Boil Med 1994; 206
:425-30. Masuda N, Fukuoka M, Kudoh S, Kusunoki Y, Matsui K, Tekifuji N, et al. P
hase I and pharmacologic study of irinotecan in combination with cisplat
in for advanced lung cancer. Br. J. Cancer 1993; 68:777-782. (6)&#9;Kudoh S, Fukuoka M, Masuda N. Kusunoki Y, Matsui K, Negoro S, et
al. Relationship between CPT-II pharmacokinetics and diarrhea in the com
bination chemotherspy of irinotecan (CPT-II) and cisplatin (CDDP). Proc.
Am. Soc. Clin. Oncol. 1993; 12:141. Gupta E, Lestingi TM, Mick R, Ramirez J, Vokes EE, Ratain MJ. Metabolic
fate of irinotecan in humaps: correlation of glucuronidarion with diarr
hea. Cancer Res. 1994; 54:3723-3725. (8)&#9;Sasaki Y, Hakusui H, Mizuno S, Morita M, Miya T, Eguchi K, et al. A pharmacokinetic and pharmacodynamic analysis of CPT-II and its activ
e metabolite SN-38. Jpn. J. Cancer Res. 1995;86:101-110. (9)&#9;Lokiec F, Canal P, Gay C, Chatelut E, Armand JP, Roche H,et al. Pharmacokinetics of irinotecan and its metabolites in human blood, bile, and urine. Cancer- Chemother- Pharmacol. 1995; 36:79-82. (10)&#9;Kawato Y, Aonuma M, Hirota Y, Kuga H, Sato K. &#9;Intracellular roles of SN-38, a metabolite of the camptothecin derivative CPT-II, in the antitumor effect of CPT-II. Cancer Res. 1991;51:4187-91. (11)&#9;Fasaberg J, Stella VJ. A kinetic and mechanistic study of the hydrolysis of camptothecin and some analogues. J. Pharm. Sci. 1992; 81:676-684. (12)&#9;Chu XY, Kato Y, Sugiyama Y. Mutiplicity of biliary excretion mechanisms for irinotecan, CPT-II, and its metabolites in rats. Cancer Res. 1997; 57:1934-38. (13)&#9;Rivory LP, Bowels MR, Robert J. Pond SM. Conversion of irinotecan (CPT-II) to its active metabolite, 7-ethyl- 10-hydoroxyeamptothecin (SN-88), by human liver carboxylesterase. Biochemical Pharmacol 1996;52:1103- 11. Senter PD, Marquardt H, Thomas BA. Hammock BD, Frank IS, Svensson HP&#9;. The role of rat serum carboxyleateruse in the activation of paclitaxel and camptothecin prodrugs. Cancer Research 1996; 56:1471-4. Kaneda N, Yokokura T.Nonlinear pharmacokinetics of CPT-II in rate. Cance
r Res., 1990; 50:1721-1726. Atsumi R, Suzuki W, Hakusui H, Identification of the metabolites of irin
otecan. a new derivative of camptothecin, in rat bile and its biliary ex
cretion. Xenobiotica, 1991; 21:1159-1169. Chu XY, Kato Y, Sugiyama Y. Multiplicity of biliary excretion mechanisms
for irinotecan, CPT-II, and its metabolites in rats. Cancer Research. 1
997; 57:1934-38. Saxena M, Henderson GB. ATP-dependent efflux of 2,4-dinitrophenyl-S-glut
athione. J. Biological Chemistry 1995; 270:5312-19. Gore J. Hoinard C. Linoleic acid transport in hamster intestinal cells i
s carrisa-mediated. J.Nutr. 1993; 123:66-73. Gore J, Hoinard C. Evidence of facilitated transport of Biotin by hamste
r enterocytes. J. Nutr. 1987; 117:527-532. Shiau YF, Levine GM. PH dependence of micellar diffusion and dissociatio
n. Am. J. Physiol. 1980; 299:G177-82. Chijiiwa K, Linscheer WG. Distribution and monomer activity of cholester
ol in micellar bile salt. effect of cholesterol level. Am. J. Physiol. 1
987; 252:G309-314. Charman WN, Porter CJ, Mithani S, Dressman JB. Physicochemical and physi
ological mechanisms for the effects of food on drug absorption: the role
of lipids and pH. J Pharmacol Sei 1997; 86:269-82. Sathirakul K, Suzuki H, Yasuda K, Hanano M, Tageya O, Horie T, et al. Ki
netic analysis of hepatobiliary transport of organic anions in Eisai hyp
erbilirubinemic mutant rats. J. Pharmacol. Exp. Ther. 1993; 265:1301-131
2. Charman WN, Porter CJ, Mithani S, Dressman JB. Physiochemical and physio
logical mechanisms for the effects of food on drug absorption: the role
of lipids and pH. J Pharmacol Sci 1997; 86:269-82. Kobayashi K, Bouscarel B, Matsuzaki Y, Ceryak s, Fromm H. Uptake mechani
sm of irinotecan (CPT-II) and its metabolite (SN-38) by hamster intestin
al cells. Gastroenterology 1998; 114(4):A626 (proceeding). Ishikawa T, Muller M, Klunemann C, Schnub T, Keppler D. ATP-dependent pr
imary active transport of cysteinyl leukotrienes across liver canalicula
r membrane. J.Biel. Chem. 1990; 265:19279-19266. Nishida T, Hardenbrook C, Gatmaitan Z, Arias L, ATP-dependent organic an
ion transport system in normal and TR rat liver canalicular membranes. A
m. J. Physiol. 1992; 258:G629-G635. Pikuia S, Hayden JB, Awasthi S, Awasthi YC, Zimniak P. Organic anion-tra
nsporting ATPase of rat liver. J. Biol. Chem. 1994; 269:27566-27573. Burke TG, Mi Z. The structural basis of camptothecin interactions with h
uman serum albumin: Impact on drug stability. J. Med. Chem. 1994;37:40-4
6. bile pH Slichenmyer WJ, Rowinsky EK, Donehower RC, Kaufmann SH. The current stat
us of camptothecin and analogues as antitumor agents. J. Natl. Cancer In
st. 1993; 85:271-291. Atsumi R, Okazaki O, Hakusui H. Pharmacokinetics of SN-38[(+)-(4S)-4,11-
Diethyl-4,9-dihydruxy-lH-pyrario [3’,4’:6,7]-indolizino [1,2-b] quinol
ine-3,14(4H,12H) ?dions], metabolite of irinotecan, after a single in
travenous dosing of 14C-SN-38 to rats. Biol. Pharm. Bull. 1995; 18:1114-
1119. Araki E, Ishikawa M, Iigo M, Koide T, Itabashi M, Hoshi A. Relationship
between development of diarrhea and the concentration of SN-38, an activ
e metabolite of CPT-11, in the intestine and the blood plasma of athymi
c mica following intraperitoneal administration of CPT-11. Jpn. J. Cance
r Res., 1991; 51:4187-4191. Takasuna K, Hagiwara T, Hirohashi M, Kato M, Nomura M, Nagai E, et al. I
nvolvement of beta-glucuronidase in intestinal microflora in the intesti
nal toxicity of the antitumor camptothecin derivative irinotecan hydroch
lorida. Cancer Research. 1996; 56:3752-3757. Abigerges D, Armand JP, Chabot GC, DsCosta L, Fadel E, Cotc C, et al. Ir
inotecan (CPT-II) high-dose escalation using intensive high-dose loperam
ides to control diarrhes. J. Matl. Cancer Inat., 1994;86:446-449. Kobayashi K, Shinbara A, Kamimura M, Takeda Y, Kudo K, et al. Irinotecan
(CPT-II) in combination with weekly administration of cisplatin (CDDP)
for non-small-cell lung cancer. Cancer Chemother Pharmacol in printing.
Bugaut M. Occurrence, absorption and metabolism of short chain fatty aci
ds in the digestive track of mammals. Comp Biochem Physiol 1987; 87B:439
-72. AKIMOTO K, KWAI A, OHYA K, Kinetic studies of the hydrolysis and lacton
ization of camptothecin and its derivatives, CPT-11 and SN-38, in aqueou
s solution. Chem. Pharm. Bull., 42, 2135-2138 (1994). ARAKI E, ISHIKAWA, M., IIGO, M., KOIDE. T., ITABASHI. M., HOSHI, A., Re
lationship between development of diarrhea and the concentration of SN-3
8, an active metabolite of CPT-11, in the intestine and the blood plasma
of athymic mice following intraperitoneal administration of CPT-11. Jpn
. J. Cancer Res., 84, 697-702 (1993). ATUMI, R., SUZUKI, W., HAKUSUI, H., Identification of the metabolites of
irinotecan. a new derivative of camptothecin, in rat bile and its bilia
ry excretion. Xenobiotica, 21, 1159-1169 (1991). ATUMI, R., OKAZAKI, O., HAKUSUI, H., Pharmacokinetics of SN-38 [(+)-(4S)
-4,11-Diethy1-4,9-dihydroxy-1H-pyrano [3’,4’:6,7]-indolizino [1,2-b]qu
inoline-3,14(4H,12H)-dione], an metabolite of irinotecan, after a single
intravenous dosing of 14C-SN-38 to rats. Biol. Pharm. Bull., 18, 1114-1
119 (1995). BLEIBERG, H., CVITKOVIC, E., Characterisation and clinical management of
CPT-11 (irinotecan)-induced adverse events: the European perspective. E
ur. J. Cancer, 32A Suppl 3, S18-23 (1996). BUGAUT, M., occurrence, absorption and metabolism of short chain fatty a
cids in the digestive tract of mammals. Comp. Biochem. Physiol., 86B, 43
9-472 (1987). BURKE, T.G., MI, Z., The structural basis of camptothecin interactions w
ith human serum albumin: Impact on drug stability. J. Med. Chem.,37, 40-
46 (1994). CHARMAN, W.N., PORTER, C.J., MITHANI, S., DRESSMAN, J.B., physiochemical
and physiological mechanisms for the effects of food on drug absorption
: the role of lipids and pH. J.Pharm.Sci., 86, 269-282 (1997). CHU, X.Y., KATO, Y., NIINUMA, K., SUDO, K., HAKUSUI, H., SUGIYAMA, Y., M
ultispecific organic anion transporter is responsible for the biliary ex
cretion of the camptothecin derivative irinotecan and its metabolites in
rats. J. Pharmacol. Exp. Ther., 281, 304-314 (1997a). CHU, X.Y., KATO, Y., SUGIYAMA, Y., Multiplicity of biliary excretion mec
hanisms for irinotecan, CPT-11, and its metabolites in rats. Cancer Rese
arch, 57, 1934-1938 (1997b). CUNNINGHAM, D.,PYRHONEN, S., JAMES, R.D., PUNT, C.J.A., HICKISH, T.S., HEIKKILA, R., JOHANNESES, T., STARKHAMMAR, H., TOPHAM, C.
A., ONG, E., HERAIT, P., JACQUES, C., A phase III multicenter randomized
study of CPT-11 Versus supportive care alone in patients with 5-FU-resi
stant metastatic colorectal cancer. Proc. Am. Soc. Clin. Oncol., 17, la
(1998). FASSBERG. J., STELLA, V.J., A Kinetic and mechanistic study of the hydro
lysis of camptothecin and some analogues. J. Pharm. Sci., 81, 676-684 (1
992). FUKUOKA, M., NIITANI, H., SUZUKI, A., MOTOMIYA, M., HASEGAWA, K., NISHIW
AKI, Y., KURIYAMA, T., ARIYOSHI, Y., NEGORO, S., MATSUDA, N., NAKAJIMA,
S., TAGUCHI, T., for the CPT-11 Lung Cancer Study Group. A phase II stud
y of CPT-11, a new derivative of camptothecin, for previously untreated
non-small-cell lung cancer. J.Clin. Oncol.,10, 16-20 (1992). GORE, J., HOINARD, C., Linoleic acid transport in hamster intestinal cel
ls is cattier-mediated. J. Nutr., 123, 66-73 (1993). HAAZ, M.C., RIVORY, L.P., RISHE, C., ROBERT, J. Metabolism of irinotecan
(CPT-11) by human hepatic mictrosomes: participation of cytochrome P-45
0 3A (cYP3A) and drug interactions. Proc. Am. Assoc. Cancer Res., 38 17 (1997) (Abstr.). IKUNO, N., SODA, H., WATANABE, M., OKA, M., Irinotecan (CPT-11) and char
acteristic mucosal change in the mouse ileum and cecum. J.Natl. Cancer I
nst., 87, 1876-1883 (1995). KAWATO,Y., AONUMA, M., HIROTA, Y., KUGA, H., SATO, K., intracellular roles of SN-38, a metabolite of the camptothecin derivativ
e CPT-11, in the antitumor effect of CPT-11. Cancer Res., 51, 4187-4191
(1991). KOBAYASHI, K., BOUSCAREL, B., MATSUZAKI, Y., CERYAK, S., FROMM, H., Upta
ke mechanism of irinotecan (CPT-11) and its metabolite (SN-38) by hamste
r intestinal cells. Gastroenterology,114 (4), A626, proceeding (1998a). KOBAYASHI, K., SHINBARA,A., KAMIMURA, M., TAKEDA, Y., KUDO, K., KABE, J.
, HIBINO, S., HINO, M., SHIBUYA, M., KUDOH, S., irinotecan (CPT-11) in c
ombination with weekly administration of cisplatin (CDDP) for non-small-
cell lung cancer. Cancer Chemother. Pharmacol., 42, 53-58 (1998b). LOKIEC. F., CANAL, P., GAY, C., CHATELUT, E., ARMAND, J.P., ROCHE, H., B
UGAT, R., GONCALVES, E., MATHIEU-BOUE, A., Pharmacokinetics of irinotecan and its metabolities in human blood, bile
, and urine. Cancer Chemother. Pharmacol., 36, 79-82 (1995). MCCLOUD, E, MATHIS, R.K., GRANT, K.E., SAID, H.M., Intestinal uptake of
uridine in suckling rats: mechanism and ontogeny. Proc. Soc. Exp. Biol. Med., 206, 425-430 (1994). MOSMANN, T., Rapid colorimetiric assay for cellular growth and survival:
Application to proliferation and cytotoxicity assay. J.Immunol. Methods
, 65, 55-63 (1983). RIVORY, L.P., BOWLES, M.R., ROBERT, J., POND, S.M., Conversion of irinot
ecan (CPT-11) to its active metabolite, 7-ethyl-10-hydroxycamptothecin (
SN-38), by human liver carboxylesterase. Biochemical Pharmacol., 52, 11
03-1111 (1996a). RIVORY, L.P., RIOU, J.F., HAAZ, M.C., SABLE, S., VUIHORGNE, M., COMERSON
, A., POND, S.M., ROBERT, J. Identification and properties of a major pl
asma metabolite of irinotecan (CPT-11) isolated from the plasma of patie
nts. Cancer Res.,56, 3689-3694 (1996b). TAKATSUNA, K., HAGIWARA, T., HIROHASHI, M., KATO, M., NOMURA, M., NAGAI,
E., YOKOI, T., KAMATAKI, T., Involvement of beta-glucuronidase in intes
tinal microflora in the intestinal toxicity of the antitumor camptotheci
n derivative irinotecan hydrochloride. Cancer Research, 56, 3752-3757 (1
996).
References (1) &#9; Rivory LP, Rovert J. Molecular, cellular, and clinical aspects of
the pharmacology of 20 (s) camptothecin and its derivatives.Pharmacol.
Ther. 1995; 68: 269-96. (2) &#9; Fukuoka M, Niitani H, Suzuki A, Motomiya M, Hasegawa K, Nishiwaki
Y, et al. A phase II study of CPT-II, a new derivative of camptothecin,
for previously untreated non-small-cell lung cancer.J. Clin. Oncol. 19
92; 10: 16-20. (3) &#9; Shimada Y, Yoshino M, Wakui A, Nakao I, Futatsuki K, Sakata Y, et
al. Phase II study of CPT-II, a new camptothecin derivative, in metasta
tic colorectal cancer. J. Clin. Oncol. 1993; 11: 909-913. McCloud E, Mathis RK. Grant KP, Said HM. Intestinal uptake of uridine i.
n suckling rats: Mechanism and ontogeny. Proc Soc Exp Boil Med 1994; 206
: 425-30. Masuda N, Fukuoka M, Kudoh S, Kusunoki Y, Matsui K, Tekifuji N, et al. P
hase I and pharmacologic study of irinotecan in combination with cisplat
in for advanced lung cancer.Br. J. Cancer 1993; 68: 777-782. (6) &#9; Kudoh S, Fukuoka M, Masuda N. Kusunoki Y, Matsui K, Negoro S, et
al. Relationship between CPT-II pharmacokinetics and diarrhea in the com
bination chemotherspy of irinotecan (CPT-II) and cisplatin (CDDP).
Am. Soc. Clin. Oncol. 1993; 12: 141. Gupta E, Lestingi TM, Mick R, Ramirez J, Vokes EE, Ratain MJ. Metabolic
fate of irinotecan in humaps: correlation of glucuronidarion with diarr
hea. Cancer Res. 1994; 54: 3723-3725. (8) &#9; Sasaki Y, Hakusui H, Mizuno S, Morita M, Miya T, Eguchi K, et al. A pharmacokinetic and pharmacodynamic analysis of CPT-II and its activ
e metabolite SN-38. Jpn. J. Cancer Res. 1995; 86: 101-110. (9) &#9; Lokiec F, Canal P, Gay C, Chatelut E, Armand JP, Roche H, et al. Pharmacokinetics. of irinotecan and its metabolites in human blood, bile, and urine. Cancer- Chemother- Pharmacol. 1995; 36: 79-82. (10) &#9; Kawato Y, Aonuma M, Hirota Y, Kuga H, Sato K. &#9; Intracellular roles of SN-38, a metabolite of the camptothecin derivative CPT-II, in the antitumor effect of CPT-II.Cancer Res. 1991; 51: 4187-91. (11) &#9; Fasaberg J , Stella VJ.A kinetic and mechanistic study of the hydrolysis of camptothecin and some analogues.J. Pharm.Sci. 1992; 81: 676-684. (12) &#9; Chu XY, Kato Y, Sugiyama Y. biliary excretion mechanisms for irinotecan, CPT-II, and its metabolites in rats.Cancer Res. 1997; 57: 1934-38. (13) &#9; Rivory LP, Bowels MR, Robert J. Pond SM. Conversion of irinotecan ( CPT-II) to its active metabolite, 7-ethyl-10-hydoroxyeamptothecin (SN-88), by human liver carboxylesterase.Biochemical Pharmacol 1996; 52: 1103- 11.S enter PD, Marquardt H, Thomas BA.Hammock BD, Frank IS, Svensson HP &#9; .The role of rat serum carboxyleateruse in the activation of paclitaxel and camptothecin prodrugs. Cancer Research 1996; 56: 1471-4.Kaneda N, Yokokura T.Nonlinear pharmacokinetics of CPT-II in rate.Cance
r Res., 1990; 50: 1721-1726.Atsumi R, Suzuki W, Hakusui H, Identification of the metabolites of irin
otecan.a new derivative of camptothecin, in rat bile and its biliary ex
cretion. Xenobiotica, 1991; 21: 1159-1169. Chu XY, Kato Y, Sugiyama Y. Multiplicity of biliary excretion mechanisms
for irinotecan, CPT-II, and its metabolites in rats.Cancer Research. 1
997; 57: 1934-38. Saxena M, Henderson GB. ATP-dependent efflux of 2,4-dinitrophenyl-S-glut
athione. J. Biological Chemistry 1995; 270: 5312-19. Gore J. Hoinard C. Linoleic acid transport in hamster intestinal cells i
s carrisa-mediated. J. Nutr. 1993; 123: 66-73. Gore J, Hoinard C. Evidence of facilitated transport of Biotin by hamste.
r enterocytes. J. Nutr. 1987; 117: 527-532. Shiau YF, Levine GM.PH dependence of micellar diffusion and dissociatio.
n. Am. J. Physiol. 1980; 299: G177-82. Chijiiwa K, Linscheer WG.Distribution and monomer activity of cholester.
ol in micellar bile salt.effect of cholesterol level. Am. J. Physiol. 1
987; 252: G309-314.Charman WN, Porter CJ, Mithani S, Dressman JB.Physicochemical and physics.
biological mechanisms for the effects of food on drug absorption: the role
of Lipids and pH. J Pharmacol Sei 1997; 86: 269-82. Sathirakul K, Suzuki H, Yasuda K, Hanano M, Tageya O, Horie T, et al. Ki
netic analysis of hepatobiliary transport of organic anions in Eisai hyp
erbilirubinemic mutant rats. J. Pharmacol. Exp. Ther. 1993; 265: 1301-131
2. Charman WN, Porter CJ, Mithani S, Dressman JB. Physiochemical and physio
logical mechanisms for the effects of food on drug absorption: the role
Kobayashi K, Bouscarel B, Matsuzaki Y, Ceryak s, Fromm H. Uptake mechani of lipids and pH. J Pharmacol Sci 1997; 86: 269-82.
sm of irinotecan (CPT-II) and its metabolite (SN-38) by hamster intestin
al cells.Gastroenterology 1998; 114 (4): A626 (proceeding) .Ishikawa T, Muller M, Klunemann C, Schnub T, Keppler D. ATP-dependent pr
imary active transport of cysteinyl leukotrienes across liver canalicula
r membrane. J. Biel. Chem. 1990; 265: 19279-19266. Nishida T, Hardenbrook C, Gatmaitan Z, Arias L, ATP-dependent organic an
ion transport system in normal and TR rat liver canalicular membranes.A
m. J. Physiol. 1992; 258: G629-G635. Pikuia S, Hayden JB, Awasthi S, Awasthi YC, Zimniak P. Organic anion-tra
nsporting ATPase of rat liver. J. Biol. Chem. 1994; 269: 27566-27573. Burke TG, Mi Z. The structural basis of camptothecin interactions with h.
uman serum albumin: Impact on drug stability. J. Med. Chem. 1994; 37: 40-4
6.bile pH Slichenmyer WJ, Rowinsky EK, Donehower RC, Kaufmann SH.The current stat
us of camptothecin and analogues as antitumor agents. J. Natl. Cancer In
st. 1993; 85: 271-291. Atsumi R, Okazaki O, Hakusui H. Pharmacokinetics of SN-38 [(+)-(4S) -4,11-
Diethyl-4,9-dihydruxy-lH-pyrario [3 ', 4': 6,7] -indolizino [1,2-b] quinol
ine-3,14 (4H, 12H)? dions], metabolite of irinotecan, after a single in
travenous dosing of 14C-SN-38 to rats. Biol. Pharm. Bull. 1995; 18: 1114-
1119.Araki E, Ishikawa M, Iigo M, Koide T, Itabashi M, Hoshi A. Relationship
between development of diarrhea and the concentration of SN-38, an activ
e metabolite of CPT-11, in the intestine and the blood plasma of athymi
cmica following intraperitoneal administration of CPT-11. Jpn. J. Cance
r Res., 1991; 51: 4187-4191. Takasuna K, Hagiwara T, Hirohashi M, Kato M, Nomura M, Nagai E, et al. I
nvolvement of beta-glucuronidase in intestinal microflora in the intesti
nal toxicity of the antitumor camptothecin derivative irinotecan hydroch
lorida. Cancer Research. 1996; 56: 3752-3757. Abigerges D, Armand JP, Chabot GC, DsCosta L, Fadel E, Cotc C, et al. Ir
inotecan (CPT-II) high-dose escalation using intensive high-dose loperam
ides to control diarrhes. J. Matl. Cancer Inat., 1994; 86: 446-449.Kobayashi K, Shinbara A, Kamimura M, Takeda Y, Kudo K, et al. Irinotecan
(CPT-II) in combination with weekly administration of cisplatin (CDDP)
for non-small-cell lung cancer.Cancer Chemother Pharmacol in printing.
Bugaut M. Occurrence, absorption and metabolism of short chain fatty aci
ds in the digestive track of mammals.Comp Biochem Physiol 1987; 87B: 439
-72. AKIMOTO K, KWAI A, OHYA K, Kinetic studies of the hydrolysis and lacton
ization of camptothecin and its derivatives, CPT-11 and SN-38, in aqueou
s solution. Chem. Pharm. Bull., 42, 2135-2138 (1994) .ARAKI E, ISHIKAWA, M., IIGO, M., KOIDE. T., ITABASHI. M., HOSHI, A., Re.
lationship between development of diarrhea and the concentration of SN-3
8, an active metabolite of CPT-11, in the intestine and the blood plasma
of athymic mice following intraperitoneal administration of CPT-11. Jpn
J. Cancer Res., 84, 697-702 (1993). ATUMI, R., SUZUKI, W., HAKUSUI, H., Identification of the metabolites of.
irinotecan.a new derivative of camptothecin, in rat bile and its bilia
ry excretion. Xenobiotica, 21, 1159-1169 (1991) .ATUMI, R., OKAZAKI, O., HAKUSUI, H., Pharmacokinetics of SN-38 [(+)-(4S)
-4,11-Diethy1-4,9-dihydroxy-1H-pyrano [3 ', 4': 6,7] -indolizino [1,2-b] qu
inoline-3,14 (4H, 12H) -dione], an metabolite of irinotecan, after a single
intravenous dosing of 14C-SN-38 to rats.Biol.Pharm. Bull., 18, 1114-1
119 (1995) .BLEIBERG, H., CVITKOVIC, E., Characterization and clinical management of
CPT-11 (irinotecan) -induced adverse events: the European perspective.E
ur.J. Cancer, 32A Suppl 3, S18-23 (1996) .BUGAUT, M., occurrence, absorption and metabolism of short chain fatty a
cids in the digestive tract of mammals.Comp.Biochem.Physiol., 86B, 43
9-472 (1987) .BURKE, TG, MI, Z., The structural basis of camptothecin interactions w
ith human serum albumin: Impact on drug stability.J. Med. Chem., 37, 40-
46 (1994) .CHARMAN, WN, PORTER, CJ, MITHANI, S., DRESSMAN, JB, physiochemical.
and physiological mechanisms for the effects of food on drug absorption
: the role of lipids and pH. J. Pharm. Sci., 86, 269-282 (1997) .CHU, XY, KATO, Y., NIINUMA, K., SUDO, K., HAKUSUI, H., SUGIYAMA, Y., M
ultispecific organic anion transporter is responsible for the biliary ex
cretion of the camptothecin derivative irinotecan and its metabolites in
rats. J. Pharmacol. Exp. Ther., 281, 304-314 (1997a) .CHU, XY, KATO, Y., SUGIYAMA, Y., Multiplicity of biliary excretion mec.
hanisms for irinotecan, CPT-11, and its metabolites in rats.Cancer Rese
arch, 57, 1934-1938 (1997b). C.
A., ONG, E., HERAIT, P., JACQUES, C., A phase III multicenter randomized
study of CPT-11 Versus supportive care alone in patients with 5-FU-resi
stant metastatic colorectal cancer. Proc. Am. Soc. Clin. Oncol., 17, la
(1998). FASSBERG. J., STELLA, VJ, A Kinetic and mechanistic study of the hydro.
lysis of camptothecin and some analogues.J. Pharm.Sci., 81, 676-684 (1
992) .FUKUOKA, M., NIITANI, H., SUZUKI, A., MOTOMIYA, M., HASEGAWA, K., NISHIW
AKI, Y., KURIYAMA, T., ARIYOSHI, Y., NEGORO, S., MATSUDA, N., NAKAJIMA,
S., TAGUCHI, T., for the CPT-11 Lung Cancer Study Group.A phase II stud
y of CPT-11, a new derivative of camptothecin, for previously untreated
non-small-cell lung cancer.J. Clin. Oncol., 10, 16-20 (1992) .GORE, J., HOINARD, C., Linoleic acid transport in hamster intestinal cel.
ls is cattier-mediated. J. Nutr., 123, 66-73 (1993) .HAAZ, MC, RIVORY, LP, RISHE, C., ROBERT, J. Metabolism of irinotecan.
(CPT-11) by human hepatic mictrosomes: participation of cytochrome P-45
0 3A (cYP3A) and drug interactions. Proc. Am. Assoc. Cancer Res., 38 17 (1997) (Abstr.). IKUNO, N., SODA, H., WATANABE, M., OKA, M., Irinotecan (CPT-11) and char
acteristic mucosal change in the mouse ileum and cecum.J.Natl. Cancer I
nst., 87, 1876-1883 (1995) .KAWATO, Y., AONUMA, M., HIROTA, Y., KUGA, H., SATO, K., intracellular roles of SN-38, a metabolite of the camptothecin derivativ.
e CPT-11, in the antitumor effect of CPT-11. Cancer Res., 51, 4187-4191
(1991) .KOBAYASHI, K., BOUSCAREL, B., MATSUZAKI, Y., CERYAK, S., FROMM, H., Upta
ke mechanism of irinotecan (CPT-11) and its metabolite (SN-38) by hamste
r intestinal cells. Gastroenterology, 114 (4), A626, proceeding (1998a) .KOBAYASHI, K., SHINBARA, A., KAMIMURA, M., TAKEDA, Y., KUDO, K., KABE, J.
, HIBINO, S., HINO, M., SHIBUYA, M., KUDOH, S., irinotecan (CPT-11) in c
ombination with weekly administration of cisplatin (CDDP) for non-small-
Cell lung cancer. Cancer Chemother. Pharmacol., 42, 53-58 (1998b). LOKIEC. F., CANAL, P., GAY, C., CHATELUT, E., ARMAND, JP, ROCHE, H., B
UGAT, R., GONCALVES, E., MATHIEU-BOUE, A., Pharmacokinetics of irinotecan and its metabolities in human blood, bile
, and urine. Cancer Chemother. Pharmacol., 36, 79-82 (1995) .MCCLOUD, E, MATHIS, RK, GRANT, KE, SAID, HM, Intestinal uptake of
uridine in suckling rats: mechanism and ontogeny. Proc. Soc. Exp.Biol. Med., 206, 425-430 (1994) .MOSMANN, T., Rapid colorimetiric assay for cellular growth and survival:
Application to proliferation and cytotoxicity assay. J. Immunol. Methods
, 65, 55-63 (1983) .RIVORY, LP, BOWLES, MR, ROBERT, J., POND, SM, Conversion of irinot.
ecan (CPT-11) to its active metabolite, 7-ethyl-10-hydroxycamptothecin (
SN-38), by human liver carboxylesterase.Biochemical Pharmacol., 52, 11
03-1111 (1996a). RIVORY, LP, RIOU, JF, HAAZ, MC, SABLE, S., VUIHORGNE, M., COMERSON
, A., POND, SM, ROBERT, J. Identification and properties of a major pl
asma metabolite of irinotecan (CPT-11) isolated from the plasma of patie
nts. Cancer Res., 56, 3689-3694 (1996b). TAKATSUNA, K., HAGIWARA, T., HIROHASHI, M., KATO, M., NOMURA, M., NAGAI,
E., YOKOI, T., KAMATAKI, T., Involvement of beta-glucuronidase in intes
tinal microflora in the intestinal toxicity of the antitumor camptotheci
n derivative irinotecan hydrochloride. Cancer Research, 56, 3752-3757 (1
996).

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

【図1】 CPT−11、SN−38およびSN−38−グルクロニド(SN−38−G
lu)の構造を示す。ラクトン形態のCPT−11およびSN−38は荷電され
た非イオンであり、そしてカルボキシレート形態のCPT−11およびSN−3
8は陰イオンである。そのグルクロニド部分に付加的カルボキシル器を保有する
カルボキシレート形態のSN−38−Gluだけでなくそのラクトン形態も、陰
イオンである。ラクトン形態とカルボキシレート形態の間の可逆的転換は、pH
駆動性である。
FIG. 1. CPT-11, SN-38 and SN-38-glucuronide (SN-38-G
lu) shows the structure. The lactone forms of CPT-11 and SN-38 are charged non-ionic and the carboxylate forms of CPT-11 and SN-3
8 is an anion. The lactone form as well as the carboxylate form SN-38-Glu, which carries an additional carboxyl moiety in its glucuronide moiety, is an anion. The reversible conversion between the lactone and carboxylate forms depends on the pH
Drivability.

【図2】 図2Aおよび2Bは、単離小腸細胞によるCPT−11およびSN−38取込
みの時間経過を示す。十二指腸からの単離小腸細胞によるそれぞれラクトンおよ
びカルボキシレート形態の[14C]CPT−11(20μM)および[14
]SN−38(2μM)の取込みは、時間の一関数として測定された。0時間で
、それぞれの薬剤が、永久振盪下で37℃に保持された小腸細胞懸濁液に付加さ
れた。15、30、45、60、90、120、240および480秒で、細胞
懸濁液のアリコートが取り出され、材料と方法の項に記載されたように処理され
た。示された結果は、n回の実験の平均±SEである。
FIGS. 2A and 2B show the time course of CPT-11 and SN-38 uptake by isolated small intestinal cells. Lactone and carboxylate forms respectively by isolation intestinal cells from the duodenum [14 C] CPT-11 ( 20μM) and [14 C
] SN-38 (2 μM) uptake was measured as a function of time. At 0 hours, each drug was added to the small intestine cell suspension maintained at 37 ° C. under permanent shaking. At 15, 30, 45, 60, 90, 120, 240 and 480 seconds, aliquots of the cell suspension were removed and processed as described in Materials and Methods. The results shown are the mean ± SE of n experiments.

【図3】 図3A、3B、3Cおよび3Dは、CPT−11取込みの初速度とその濃度と
の間の関係を示す。取込み初速度は、初期90秒インキュベーション期間の細胞
取込みの線状勾配から確定された。データは、等式v=(VmaxS)/(K +S)+KS(式中、Vは取込み初速度を表し、Vmaxは最大取込み速度で
あり、Kは見掛けのミカエリス定数であり、Kは拡散速度であり、そしてS
はCPT−11の濃度である)を用いた最小自乗非線状回帰分析により適合され
た。
FIGS. 3A, 3B, 3C and 3D show the relationship between the initial rate of CPT-11 uptake and its concentration. The initial uptake rate was determined from the linear gradient of cell uptake during the initial 90 second incubation period. The data is expressed by the equation v = (V max S) / (K m + S) + K d S, where V represents the initial capture speed, V max is the maximum capture speed, and K m is the apparent Michaelis constant. Where K d is the diffusion rate and S
Is the concentration of CPT-11) by least squares non-linear regression analysis.

【図4】 図4Aおよび4Bは、SN−38取込みの初速度とその濃度との間の関係を示
す。取込み初速度は、図3の凡例に、そして材料と方法の項に記載されたように
確定された。データは、最小自乗線状回帰により適合された。溶解度が限定され
ていたために、2μMまでのSN−38の濃度だけを検査した。
FIGS. 4A and 4B show the relationship between the initial rate of SN-38 uptake and its concentration. Initial uptake rates were determined as described in the legend of FIG. 3 and in the Materials and Methods section. Data were fitted by least squares linear regression. Due to the limited solubility, only concentrations of SN-38 up to 2 μM were tested.

【図5】 それぞれCPT−11およびSN−38ミセル形成に及ぼすタウロコレート(
TCA)の作用を示す。[14C]CPT−11(20μM)および[14C]
SN−38(2μM)を、TCA(20mM)の存在下または非存在下でハンク
溶液中で一晩保存した。材料と方法の項に記載されたように1000分子量切断
膜(YM1)を通す限外濾過により、ミセル集合体からモノマーが分離された。
値は、限外濾過前の初期溶液の濃度のパーセンテージとして表されるモノマー形
態の指示代謝物質の値である。TCAと対照との間の比較は、マン−ホイットニ
ー検定により概算された( )。SN−38カルボキシレートは、TCAの存在
下で試験されたその他の薬剤とは有意に異なった(クルスカル−ワリス検定:p
=0.023,スチューデント−ニューマン−ケウルス法、p<0.05)。使
用した略号:CPTラクトン(CPT lact.)、CPTカルボキシレート
(CPT carb.)、SN−38ラクトン(SN lact.)およびSN
−38カルボキシレート(SN carb.)。
FIG. 5 shows the effect of taurocholate (CPT-11 and SN-38 micelle formation, respectively)
TCA). [ 14 C] CPT-11 (20 μM) and [ 14 C]
SN-38 (2 μM) was stored overnight in Hank's solution in the presence or absence of TCA (20 mM). The monomers were separated from the micellic aggregates by ultrafiltration through a 1000 molecular weight cut membrane (YM1) as described in Materials and Methods.
The value is the value of the indicator metabolite in monomeric form, expressed as a percentage of the concentration of the initial solution before ultrafiltration. Comparisons between TCA and controls were estimated by the Mann-Whitney test (). SN-38 carboxylate was significantly different from the other drugs tested in the presence of TCA (Kruskal-Wallis test: p
= 0.023, Student-Newman-Keuls method, p <0.05). Abbreviations used: CPT lactone (CPT lact.), CPT carboxylate (CPT carb.), SN-38 lactone (SN lact.) And SN
-38 carboxylate (SN carb.).

【図6】 図6Aおよび6Bは、CPT−11およびSN−38の取込みの初速度に及ぼ
すpHの作用を示す。[14C]CPT−11(20μM)および[14C]S
N−38(2μM)をpH6.2、6.8、7.4および8.0でPBS中に溶
解し、一晩保存した。全小腸からの小腸細胞を含有するハンク溶液に本薬剤を付
加することにより、取込み試験を実施した。クルスカル−ワリス検定(CPT−
11およびSN−38に関してそれぞれp<0.001およびp<0.001)
、ならびにスチューデント−ニューマン−ケウルス法(p<0.05)により、
pHによる取込み初速度の差を分析した。
FIGS. 6A and 6B show the effect of pH on the initial rate of CPT-11 and SN-38 uptake. [ 14 C] CPT-11 (20 μM) and [ 14 C] S
N-38 (2 μM) was dissolved in PBS at pH 6.2, 6.8, 7.4 and 8.0 and stored overnight. An uptake test was performed by adding the drug to Hank's solution containing small intestinal cells from the whole small intestine. Cruzcal-Wallis test (CPT-
P <0.001 and p <0.001 for 11 and SN-38, respectively.
And the Student-Newman-Keuls method (p <0.05)
The difference in initial uptake rate with pH was analyzed.

【図7】 HT29細胞の取込み初速度に及ぼすpHの作用を示す。[14C]SN−3
8(2μM)をpH6.2、6.8、7.4および8.0でPBS中に一晩溶解
した。HT29細胞を含有するハンク溶液に本化合物を付加することにより、取
込み試験を開始した。クルスカル−ワリス検定(p<0.001)およびダン法
p<0.05)により、pHの関数としての取込みの比較初速度を分析した
FIG. 7 shows the effect of pH on the initial uptake rate of HT29 cells. [ 14 C] SN-3
8 (2 μM) was dissolved in PBS overnight at pH 6.2, 6.8, 7.4 and 8.0. The uptake test was started by adding this compound to Hank's solution containing HT29 cells. The comparative initial rate of uptake as a function of pH was analyzed by the Kruskal-Wallis test (p <0.001) and the Dunn's method ( * p <0.05).

【図8】 SN−38の取込み初速度と細胞傷害性との間の関係を示す。HT29細胞を
用いて、2μM[14C]SN−38の取込み初速度に及ぼす生理的pHの作用
を、図3の凡例に記載したように概算した。前記のMTT検定により、HT−2
9細胞における0.4μMのSN−38誘発性細胞傷害性を試験した。SN−3
8の取込み初速度と細胞傷害性との関係を、簡易最小自乗回帰法によりプロット
した。
FIG. 8 shows the relationship between initial uptake rate of SN-38 and cytotoxicity. Using HT29 cells, the effect of physiological pH on the initial uptake rate of 2 μM [ 14 C] SN-38 was estimated as described in the legend to FIG. According to the above MTT test, HT-2
Nine cells were tested for 0.4 μM SN-38 induced cytotoxicity. SN-3
The relationship between the initial uptake rate of No. 8 and cytotoxicity was plotted by a simple least squares regression method.

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Claims (17)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 カンプトテシン化合物の下痢副作用の抑制方法であって、
前記カンプトテシン化合物をアルカリ性pHで投与することを包含する方法。
1. A method for suppressing diarrheal side effects of a camptothecin compound, comprising:
A method comprising administering the camptothecin compound at an alkaline pH.
【請求項2】 前記カンプトテシン化合物は塩酸イリノテカン(CPT−
11)、SN38−Glu、SN−38およびそれらの誘導体からなる群から選
択される請求項1記載の方法。
2. The camptothecin compound is irinotecan hydrochloride (CPT-
11) The method according to claim 1, wherein the method is selected from the group consisting of SN38-Glu, SN-38 and derivatives thereof.
【請求項3】 前記小腸管腔および胆汁はアルカリ性pHに保持される請
求項1記載の方法。
3. The method of claim 1, wherein said small intestinal lumen and bile are maintained at an alkaline pH.
【請求項4】 前記塩酸イリノテカンは静脈内に、経口的にまたは筋肉内
に投与される請求項1記載の方法。
4. The method of claim 1, wherein said irinotecan hydrochloride is administered intravenously, orally or intramuscularly.
【請求項5】 前記小腸による前記カンプトテシン化合物の再吸収が抑制
される請求項1記載の方法。
5. The method of claim 1, wherein re-absorption of said camptothecin compound by said small intestine is suppressed.
【請求項6】 前記小腸管腔をアルカリ性pHに保持しながら塩酸イリノ
テカンおよびその誘導体を投与することを包含する癌の治療方法。
6. A method for treating cancer comprising administering irinotecan hydrochloride and a derivative thereof while maintaining the small intestinal lumen at an alkaline pH.
【請求項7】 前記癌が、乳癌、卵巣癌、結腸癌、悪性黒色腫、小細胞肺
癌、甲状腺癌、リンパ腫および白血病からなる群から選択される請求項6記載の
方法。
7. The method according to claim 6, wherein said cancer is selected from the group consisting of breast cancer, ovarian cancer, colon cancer, malignant melanoma, small cell lung cancer, thyroid cancer, lymphoma and leukemia.
【請求項8】 前記アルカリ性pHは7〜10のpHである請求項6記載
の方法。
8. The method according to claim 6, wherein said alkaline pH is a pH of 7-10.
【請求項9】 前記アルカリ性pHはpH7からである請求項6記載の方
法。
9. The method of claim 6, wherein said alkaline pH is from pH 7.
【請求項10】 前記アルカリ性pHはpH8からである請求項6記載の
方法。 【請求項10】 前記アルカリ性pHはpH9からである請求項5記載の
方法。
10. The method of claim 6, wherein said alkaline pH is from pH 8. 10. The method of claim 5, wherein said alkaline pH is from pH 9.
【請求項11】 前記アルカリ性pHはpH10からである請求項5記載
の方法。
11. The method of claim 5, wherein said alkaline pH is from pH 10.
【請求項12】 前記小腸管腔をアルカリ性pHに保持しながら塩酸イリ
ノテカンおよびその誘導体を投与することを包含するエイズの治療方法。
12. A method for treating AIDS, comprising administering irinotecan hydrochloride and a derivative thereof while maintaining the small intestinal lumen at an alkaline pH.
【請求項13】 前記小腸管腔をアルカリ性pHに保持しながら、7−ヒ
ドロキシ−メチルカンプトテシン、塩酸イリノテカン、アミノカンプトテシン、
DX−8951F、SN−38、HAR4、HAR5、HAR6、HAR7、H
AR8およびトポテカンからなる群から選択される化合物を投与することを包含
する癌の治療方法。
13. The method according to claim 13, wherein the lumen of the small intestine is maintained at an alkaline pH while 7-hydroxy-methylcamptothecin, irinotecan hydrochloride, aminocamptothecin,
DX-8951F, SN-38, HAR4, HAR5, HAR6, HAR7, H
A method for treating cancer, comprising administering a compound selected from the group consisting of AR8 and topotecan.
【請求項14】 塩酸イリノテカンを含む製剤組成物を前記小腸管腔をア
ルカリ性に保持するのに適した量の重炭酸塩と組合せて包含するキット。
14. A kit comprising a pharmaceutical composition comprising irinotecan hydrochloride in combination with an amount of bicarbonate suitable for keeping the small intestinal lumen alkaline.
【請求項15】 前記重炭酸塩が重炭酸ナトリウム、重炭酸マグネシウム
、重炭酸カリウムおよびそれらの混合物からなる群から選択される請求項14記
載の組成物。
15. The composition according to claim 14, wherein said bicarbonate is selected from the group consisting of sodium bicarbonate, magnesium bicarbonate, potassium bicarbonate and mixtures thereof.
【請求項16】 前記カンプトテシン化合物の投与の前またはそれと同時
にホウ酸を含有する組成物を経口投与することを包含するカンプトテシン化合物
の投与方法。
16. A method for administering a camptothecin compound, comprising orally administering a composition containing boric acid before or simultaneously with the administration of the camptothecin compound.
【請求項17】 前記カンプトテシン化合物の投与の前またはそれと同時
にウルソデオキシコール酸を含有する組成物を経口投与することを包含するカン
プトテシン化合物の投与方法。
17. A method for administering a camptothecin compound, which comprises orally administering a composition containing ursodeoxycholic acid before or simultaneously with the administration of the camptothecin compound.
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2010505934A (en) * 2006-10-11 2010-02-25 フージョン アンティボディーズ リミテッド Combination therapy

Families Citing this family (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1003516A4 (en) * 1998-06-18 2006-07-12 Univ George Washington Methods of administering camptothecin compounds for the treatment of cancer with reduced side effects
ES2270834T3 (en) 1999-05-17 2007-04-16 Cancer Research Ventures Limited COMPOSITIONS TO IMPROVE THE BIODISPONIBILITY OF ORALLY MANAGED DRUGS.
CA2295429A1 (en) * 2000-01-06 2001-07-06 Michael Michael Treatment or prevention of diarrhea
WO2002074246A2 (en) * 2001-03-20 2002-09-26 New Century Pharmaceuticals, Inc. Method and compositions for optimizing blood and tissue stability of camptothecin and other albumin-binding therapeutic compounds
US8410045B2 (en) 2006-03-30 2013-04-02 Drais Pharmaceuticals, Inc. Camptothecin-peptide conjugates and pharmaceutical compositions containing the same
US20170246190A1 (en) * 2014-10-21 2017-08-31 Johnpro Biotech Inc. Methods and formulation for improving oral availability of cpt-11 while reducing cpt-11 induced gastrointestinal toxicity in cancer therapy
KR102293907B1 (en) 2015-06-30 2021-08-26 한미약품 주식회사 Solid formulation for for oral administration containing irinotecan and a process for the preparation thereof
CN107281462A (en) * 2017-08-21 2017-10-24 滨州医学院 Sha Kuilawei mitigates the new medical use of toxicity of irinotecan
US11000540B1 (en) * 2019-11-22 2021-05-11 Al Siamon Treatment for reducing adverse events including chemotherapy discomfort and other conditions

Family Cites Families (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3894029A (en) * 1971-08-26 1975-07-08 Basf Ag Production of camptothecin and camptothecin-like compounds
US4294819A (en) * 1980-08-18 1981-10-13 Bristol-Myers Company Alkaline analgesic capsule
AU634746B2 (en) * 1989-02-07 1993-03-04 Dimminaco Ag/Sa/Ltd. Effervescent composition for oral rehydration
HU9202318D0 (en) * 1991-07-22 1992-10-28 Bristol Myers Squibb Co Method for preparing medical preparatives containing didesoxi-purine nucleoside
US5552156A (en) * 1992-10-23 1996-09-03 Ohio State University Liposomal and micellular stabilization of camptothecin drugs
DK66493D0 (en) * 1993-06-08 1993-06-08 Ferring A S PREPARATIONS FOR USE IN TREATMENT OF INFLAMMATORY GAS DISORDERS OR TO IMPROVE IMPROVED HEALTH
GB9417524D0 (en) * 1994-08-31 1994-10-19 Cortecs Ltd Pharmaceutical compositions
WO1996011005A2 (en) * 1994-10-06 1996-04-18 Atlas Leon T Use of camptothecin or derivatives thereof for the manufacture of a medicament for the treatment of viral diseases
US5726181A (en) * 1995-06-05 1998-03-10 Bionumerik Pharmaceuticals, Inc. Formulations and compositions of poorly water soluble camptothecin derivatives
JPH10201821A (en) * 1997-01-23 1998-08-04 Material Eng Tech Lab Inc Container for medical treatment
EP1003516A4 (en) * 1998-06-18 2006-07-12 Univ George Washington Methods of administering camptothecin compounds for the treatment of cancer with reduced side effects

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2010505934A (en) * 2006-10-11 2010-02-25 フージョン アンティボディーズ リミテッド Combination therapy

Also Published As

Publication number Publication date
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