【発明の詳細な説明】
ポリケチド様合成遺伝子を植物内で発現させることによる多不飽和脂肪酸の製造
序論 発明の分野
本発明は、宿主細胞内で長鎖多不飽和脂肪酸(PUFA)を修飾しうる酵素および
/または酵素成分のレベルのモジュレーション、ならびに宿主細胞内でPUFAを製
造するための構築物および方法に関する。本発明は、シュウワネラ・プトレファ
シエンス(Shewanella putrefaciens)およびビブリオ・マリヌス(Vibrio mari
nus)に由来する遺伝子を使用するエイコサペンタエン酸(eicosapentenoic aci
d(EPA))の製造により例示される。背景
多不飽和脂肪酸(PUFA)の2つの主要ファミリーは、エイコサペンタエン酸な
どのω3脂肪酸およびアラキドン酸などのω6脂肪酸である。PUFAは細胞の形質膜
の重要な成分であり、該形質膜においては、それはリン脂質のような形態で見出
され、また、トリグリセリドのような形態でも見出されうる。また、PUFAは、プ
ロスタサイクリン、ロイコトリエン、プロスタグランジンなどのヒトおよび動物
において重要な他の分子の前駆体として機能する。重要な長鎖PUFAには、種々の
タイプの魚油中に主として見出されるドコサヘキサエン酸(docosahexenoic aci
d(DHA))およびエイコサペンタエン酸(EPA)、メマツヨイグサ(Oenothera bienni
s)、ルリチシャ(Borago officinalis)およびクロフサスグリ(Ribes nigrum)
などの多数の植物の種子中に見出されるγ-リノレン酸(GLA)、海洋油および植物
種子中に見出されるステアリドン酸(SDA)、ならびにGLAと共に糸状菌中で見出さ
れるアラキドン酸(ARA)が含まれる。ARAは、肝臓、副腎などの動物組織から精
製することができる。EPAまたはDHAのいずれかを合成する海洋細菌のいくつかの
属が公知である。DHAは、ARAと共にヒト乳中に存在する。
PUFAは、適切な発達、特に乳児の脳の発達、および組織の形成および修復
に必要である。例えば、DHAは、多数のヒト細胞膜、特に神経細胞(灰白質)、筋
細胞および精子の重要な構成成分であり、脳機能全般の発達に影響を及ぼし視覚
の発達に必須であると考えられている。EPAおよびDHAは、多数の栄養的および薬
理学的用途を有する。例えば、糖尿病(特に、インスリン非依存性糖尿病)に罹
患した成人は、後の冠状状態の一因になると考えられているDHAレベルの欠乏お
よび不均衡を示す。したがって、調和のとれたDHAを含む食物は、糖尿病に対し
て有益かもしれない。
DHAに関しては、種々の海洋生物、冷水海洋魚類から得た油および卵黄画分な
どの多数の商業的製造起源が存在する。魚類起源からのDHAの精製は、技術的な
困難性のため比較的高い費用を要し、DHAを高価かつ供給不十分なものにする。
アンフィディニウム(Amphidinium)、スキゾチトリウム(Schyzochytrium)な
どの藻類およびトラウストキトリウム(Thraustochytrium)などの海洋菌類では、
DHAが該細胞の脂肪酸含量の48%までに相当する。また、少数の細菌がDHAを産生
すると報告されている。これらは、一般に、ビブリオ・マリヌス(VIbrio marin
us)などの深海細菌である。ARAに関しては、モルティエレラ(Mortierella)属
、エントモフトラ(Entomophthora)属、フィチウム(Phytium)属およびチノリ
モ(Porphyridium)属を含む微生物を、商業的製造に使用することができる。SD
Aの商業的起源には、トリコデスマ(Trichodesma)属およびエチウム(Echium)
属が含まれる。GLAの商業的起源には、メマツヨイグサ、クロフサスグリおよび
ルリチシャが含まれる。しかしながら、天然起源からPUFAを商業的に製造するこ
とに関連したいくつかの欠点がある。動物、植物などのPUFAの天然起源は、非常
に不均一な油組成を有する傾向にある。これらの起源から得た油は、1以上の所
望のPUFAを分離したり又は1以上の所望のPUFAに富む油を製造するためには、徹
底的な精製を要する可能性がある。
また、天然起源は、入手可能性における制御できない変動にさらされる。魚類
資源は、自然変異を受けたり、あるいは乱獲により枯渇する可能性がある。動物
油、および特に魚油は、環境汚染物質を蓄積している可能性がある。天候および
病気が、魚および植物の両方の起源からの収量の変動を引き起こす可能性がある
。
代替油産生作物の生産に利用可能な農耕地は、一定の人口増加と、それに伴う、
残りの耕地上の食物生産に対する需要の増加とからの競合にさらされる。PUFAを
産生する作物(例えば、ルリチシャ)は、商業的栽培に順応化されておらず、単
一栽培においては十分に得られない可能性がある。したがって、そのような作物
の栽培は、より有益かつ定評ある作物の栽培が可能な場合には、経済的な競争力
を有さない。また、シュウワネラ(Shewanella)などの生物の大規模発酵は高い
費用を要する。天然動物組織は、少量のARAしか含有せず、加工が困難である。
チノリモ(Porphyridium)、シュウワネラ(Shewanella)などの微生物は、商業的
規模で培養することが困難である。
PUFAを含有する食物補充剤および医薬製剤は、PUFA起源の欠点を保有している
可能性がある。魚油カプセルなどの補充剤は、特定の所望の成分を低レベルでし
か含有していないことがあり、したがって大用量を要する。高用量は、汚染物を
含む望ましくない成分の高レベルの摂取につながる。過剰添加は、内因性生合成
経路の抑制を引き起こし、in vivoにおける種々の脂質画分中の他の必要な脂肪
酸との競合を引き起こし、望ましくない結果を招く可能性があるため、脂肪酸補
充剤を与える際には注意が必要である。例えば、ω3脂肪酸に富む食物を摂取す
るエスキモー人は、高い出血傾向を有する(米国特許第4,874,603号)。魚油は不
快な風味および香りを有し、それを食物補充剤などの所望の製品から経済的に分
離することが不可能な場合がある。該補充剤の不快な風味および香りは、該補充
剤が係わるそのような投与計画を望ましくないものにすることがあり、患者によ
る応諾を妨げる可能性がある。
多数の酵素がPUFAの生合成に関与していることが確認されている。リノール酸
(LA,18:2 Δ9,12)は、Δ12-デサチュラーゼによりオレイン酸(18:1 Δ9)
から産生される。GLA(18:3 Δ6,9,12)は、Δ6-デサチュラーゼによりリノー
ル酸(LA,18:2 Δ9,12)から産生される。ARA(20:4 Δ5,8,11,14)は、Δ5-デ
サチュラーゼにより触媒されてDGLA(20:3 Δ8,11,14)から産生される。エイ
コサペンタエン酸(EPA)は、すべてシス配置の5個の二重結合(Δ5,8,11,14,1
7)を含有する炭素数20のω3脂肪酸である。EPAおよび関連するDHA(Δ4,7,10,1
3,16,19,C22:6)は、一連の伸長および不飽和化反応によりオレ
イン酸から産生される。また、炭素数18のPUFAを炭素鎖長20および22にまで伸長
させるためには、エロンガーゼ(elongase)が必要である。しかしながら、動物
はオレイン酸(18:1 Δ9)をリノール酸(18:2 Δ9,12)に変換することができ
ない。同様に、哺乳類は、μ-リノレン酸(ALA,18:3 Δ9,12,15)を合成する
ことができない。菌類および植物を含む他の真核生物は、Δ12位およびΔ15位で
不飽和化する酵素を有する。したがって、動物の主要な多不飽和脂肪酸は、食物
に由来するか、および/または、リノール酸(18:2 Δ9,12)もしくはμ-リノ
レン酸(18:3 Δ9,12,15)の不飽和化および伸長に由来する。
多不飽和脂肪酸は、栄養的、医薬的、産業的および他の目的に有用と考えられ
る。天然起源および化学合成からの多不飽和脂肪酸の広範な供給は、市場の需要
を満たしていない。ほとんどの植物種に共通するリノール酸(LA,18:2 Δ9,12)
から、より飽和した、より長い鎖のPUFAへと脂肪酸が合成されるためには、多数
の分離したデサチュラーゼおよびエロンガーゼ酵素が必要であるため、少なくと
もEPAおよびDHAに関しては、発現を達成するためには、EPAおよびDHAの発現のた
めの植物宿主細胞の操作は、5個または6個の分離した酵素活性の発現を要する
可能性があり、そのようなPUFAの大量生産のためには、追加的な操作労力(例え
ば、基質に関して競合する酵素のダウンレギュレーション、突然変異誘発または
色素体オルガネラへの酵素のターゲッティングなどによる、より高い酵素活性の
操作)を要するかもしれない。したがって、これらの脂肪酸を天然で産生する種
から、PUFAの生合成に関与する遺伝物質を得ること、およびそのような単離され
た物質を、単独で又は組合せて、商業的量のPUFAの産生を可能にするように操作
されうる異種系内で発現させることに関心が持たれている。関連文献
EPAまたはDHAのいずれかを合成する海洋細菌のいくつかの属が同定されている
(DeLongおよびYayanos,Applied and Environmental Microbiology(1986)51:730
-737)。Sagami Chemical Research Instituteの研究者は、海洋細菌シュウワネ
ラ・プトレファシエンス(Shewanella putrefaciens)由来の遺伝子クラスター
で形質転換された大腸菌(E.coli)内でのEPA産生を報告してい
る。大腸菌(E.coli)内でのEPAの脂肪酸合成には、少なくとも5個のオープン
リーディングフレーム(ORF)が必要である。現在までに、これらの遺伝子にコ
ードされるタンパク質の機能の広範な特徴づけは報告されていない(Yazawa(1996
)Lipids 31,S-297;WO 93/23545;WO 96/21735)。
Yazawa,米国特許第5,683,898号に公開されているオープンリーディングフレ
ーム(ORF)3のタンパク質配列は、機能的なタンパク質ではない。Yazawaは、
該タンパク質を、シュウワネラ(Shewanella)PKS様クラスター(Genbank受託第U
73935号)のヌクレオチド9016〜9014のメチオニンコドンから開始しシュウワネ
ラ(Shewanella)PKS様クラスターのヌクレオチド8185〜8183の終結コドンで終
結するものと定義している。しかしながら、このORFが、ORF3を除く全PKS様ク
ラスターを含有する大腸菌(E.coli)株において異種プロモーターの制御下で
発現される場合には、該組換え細胞はEPAを産生しない。
ポリケチドは、脂肪酸合成の酵素反応に類似した一組の酵素反応を含む合成に
より生じる二次代謝産物である(以下の概説を参照されたい:HopwoodおよびSher
man,Annu.Rev.Genet.(1990)24:37-66、ならびにKatzおよびDonadio,Annual Revi
ew of Microbiology(1993)47:875-912)。新規抗生物質を産生させるためにポリ
ケチドシンターゼを使用することが提案されている(HutchinsonおよびFujii,Ann
ual Review of Microbiology(1995)49:201-238)。
発明の概要
植物および植物細胞内でポリケチド様合成(PKS様)遺伝子を使用して長鎖多
不飽和脂肪酸(PUFA)を製造するための新規組成物および方法を提供する。脂肪
酸合成遺伝子を使用してPUFAを製造するための公知の及び提案されている方法と
は異なり、本発明は、PKS様系の遺伝子を使用することによりPUFAを製造するた
めの構築物および方法を提供する。該方法は、発現カセットで形質転換された目
的の宿主細胞を成長(増殖)させることを含み、該発現カセットは該宿主細胞内
で機能的であり、該発現カセットは、PUFAの産生をモジュレーションしうるPKS
様系の遺伝子(PKS様遺伝子)または成分に対してDNA配列の5'側にリーディング
フレームを合わせて連結された転写および翻訳開始調
節領域を含む。宿主細胞のPUFAプロフィールの改変は、PUFAの生合成を引き起こ
す完全なPKS様系を宿主細胞内に導入した後の発現により達成される。本発明は
、例えば、DHAおよびEPAの大規模製造、ならびに宿主細胞および食用植物組織お
よび/または植物部分の脂肪酸プロフィールの修飾に有用である。
図面の簡単な説明
図1は、シュウワネラ(Shewanella)のEPA遺伝子クラスターのORFの名称を示
す。図1Aは、該遺伝子の構成を示し、大腸菌(E.coli)内でのEPA産生に必須の
ORFに番号が付されている。図1Bは、サブクローンに与えられた名称を示す。
図2は、ORF6(図2A)、ORF7(図2B)、ORF8(図2C)、ORF9(図2D)およびORF
3(図2E)のシュウワネラ(Shewanella)PKS様ドメイン構造、モチーフおよび
「ブラスト(Blast)」のマッチを示す。図2Fは、シュウワネラ(Shewanella)EPA
ORF中に存在するドメインに関連したアナベナ(Anabeana)染色体の領域の構
造を示す。
図3は、大腸菌(E.coli)株SJ16におけるORF3のパンテテニル化(pantethe
nylation)の結果を示す。
図4は、ORF3、4、5、7、8および9を含有する、シュウワネラ(Shewane
lla)において見出されるPKS様クラスターの配列である。各ORFの開始コドンお
よび最終コドンは以下のとおりである:ORF3(公開されているもの一不活性):9
016、8186;ORF3(EPA合成において活性):9157、8186;ORF6:13906、22173;
ORF7:22203、24515;ORF8:24518、30529;ORF9:30730、32358。
図5は、ORF6、7、8および9を含有するビブリオ・マリヌス(Vibrio marinu
s)の約40kbのDNA断片内のPKS様クラスターの配列を示す。各ORFの開始コドンお
よび最終コドンは以下のとおりである:ORF6:17394、25352;ORF7:25509、281
60;ORF8:28209、34265;ORF9:34454、36118。
図6は、ORF6、7、8および9を含有する図5のPKS様クラスターの約19kbの
部分の配列を示す。各ORFの開始コドンおよび最終コドンは以下のとおりである
:ORF6:411、8369;ORF7:8526、11177;ORF8:11226、17282;ORF
9:17471、19135。
図7は、シュウワネラ・プトレファシエンス(Shewanella putrefaciens)お
よびビブリオ・マリヌス(Vibrio marinus)のPKS様遺伝子クラスターの比較を
示す。図7Bは、ビブリオ・マリヌス(Vibrio marinus)のオペロン配列である。
図8は、ORF6、7および8がリーディングフレーム2中に存在しORF9がリー
ディングフレーム3中に存在することを示す、図7Bに示すビブリオ・マリヌス(
Vibrio marinus)のPKS様遺伝子クラスター部分の拡大図である。
図9は、シュウワネラ・プトレファシエンス(Shewanella putrefaciens)お
よびビブリオ・マリヌス(Vibrio marinus)のORF6の配列相同性を示す。シュ
ウワネラ(Shewanella)ORF6が縦軸に示されており、ビブリオ(Vibrio)ORF6が横
軸に示されている。線は、60%の同一性を有するタンパク質領域を示す。中央部
の反復線は、ORF6中に見出される複数のACPドメインに相当する。
図10は、シュウワネラ・プトレファシエンス(Shewanella putrefaciens)お
よびビブリオ・マリヌス(Vibrio marinus)のORF7の配列相同性を示す。シュ
ウワネラ(Shewanella)ORF7が縦軸に示されており、ビブリオ(Vibrio)ORF7
が横軸に示されている。線は、60%の同一性を有するタンパク質領域を示す。
図11は、シュウワネラ・プトレファシエンス(Shewanella putrefaciens)お
よびビブリオ・マリヌス(Vibrio marinus)のORF8の配列相同性を示す。シュ
ウワネラ(Shewanella)ORF8が縦軸に示されており、ビブリオ(Vibrio)ORF8が横
軸に示されている。線は、60%の同一性を有するタンパク質領域を示す。
図12は、シュウワネラ・プトレファシエンス(Shewanella putrefaciens)お
よびビブリオ・マリヌス(Vibrio marinus)のORF9の配列相同性を示す。シュ
ウワネラ(Shewanella)ORF9が縦軸に示されており、ビブリオ(Vibrio)ORF9
が横軸に示されている。線は、60%の同一性を有するタンパク質領域を示す。
図13は、種々の相補性実験および得られたPUFA産生の図である。左側に示すビ
ブリオ(Vibrio)およびシュウワネラ(Shewanella)遺伝子を含有する大
腸菌(E.coli)株中で生成した最長のPUFAを、右側に示す。中空の枠は、シュ
ウワネラ(Shewanella)由来のORFを示す。黒塗りの枠は、ビブリオ(Vibrio)由来
のORFを示す。
図14は、大腸菌(E.coli)FadE-における、シュウワネラ(Shewanella)由来
のpEPAD8(欠失ORF8)をシュウワネラ(Shewanella)由来のORF8で相補するこ
とによる脂肪酸の産生を示すクロマトグラムである。該クロマトグラムは、EPA
(20:5)のピークを示す。
図15は、大腸菌(E.coli)FadE-における、シュウワネラ(Shewanella)由来
のpEPAD8(欠失ORF8)をビブリオ・マリヌス(Vibrio marinus)由来のORF8で
相補することによる脂肪酸の産生を示すクロマトグラムである。該クロマトグラ
ムは、EPA(20:5)およびDHA(22:6)のピークを示す。
図16は、図15に示すクロマトグラムを与えたORF8相補性実験からのPUFA値の
表である。
図17は、pCGN7770の要素を示すプラスミド地図である。
図18は、pCGN8535の要素を示すプラスミド地図である。
図19は、pCGN8537の要素を示すプラスミド地図である。
図20は、pCGN8525の要素を示すプラスミド地図である。
図21は、Yazawaにより定義されているシュウワネラ(Shewanella)ORFと図4
に開示のものとの比較である。ヌクレオチド9157〜9155のロイシン(TTG)コド
ンから開始しヌクレオチド8185〜8183の終結コドンで終結するタンパク質が、OR
F3以外の全PKS様クラスターを含有する大腸菌(E.coli)株において異種プロ
モーターの制御下で発現される場合には、該組換え細胞はEPAを産生する。した
がって、その公開されているタンパク質配列は誤っている可能性があり、該タン
パク質のコード配列は、ヌクレオチド9157〜9155のTTGコドンまたはヌクレオチ
ド9172〜9170のTTGコドンから開始する可能性がある。この情報は、機能的PKS様
クラスター異種系の発現に決定的に重要である。
図22は、pCGN8560の要素を示すプラスミド地図である。
図23は、pCGN8556の要素を示すプラスミド地図である。
図24は、公開されているORF3の上流の翻訳されるDNA配列を示す。9016
位のATG開始コドンは、Yazawaら(1996)(前掲)に記載されているタンパク質の
開始コドンである。その他の矢印は、同様に細菌内で開始コドンとして機能しう
るTTGまたはATTコドンを示す。ORF3が、公開されている9016位のATGコドンから
開始する場合には、該タンパク質は、EPAの生成において機能的ではない。ORF3
が、9157位のTTGコドンから開始する場合には、該タンパク質は、EPA合成を促進
しうる。
好ましい実施形態の説明
本発明では、宿主細胞(特に宿主植物細胞)の多不飽和長鎖脂肪酸含量を改変
するための、シュウワネラ(Shewanella)、ビブリオ(Vibrio)または他の微生物
に由来するポリケチド様合成(PKS様)経路遺伝子の一部または全部を含む新規D
NA配列、DNA構築物および方法を提供する。本発明は、シュウワネラ・プトレフ
ァシエンス(Shewanella putrefaciens)中のEPA合成遺伝子がポリケチド様合成
経路を構成することを示す。機能は、シュウワネラ(Shewanella)およびビブリ
オ(Vibrio)遺伝子によるものであり、宿主細胞内でのEPAおよびDHAの製造方法
を提供する。該方法は、宿主細胞内の1以上のPUFAの量を増加させうるポリペプ
チドをコードするDNAを含む発現カセットで該細胞を形質転換する工程を含む。
望ましくは、宿主細胞のゲノム内への該発現カセットの組込みを引き起こす組込
み構築物を調製する。PKS様遺伝子活性を有するポリペプチドをコードするセン
スまたはアンチセンスDNAを発現させるために、宿主細胞を操作する。「PKS様遺
伝子」は、目的のPKS様活性の機能の任意の1以上をもたらすポリペプチドを意
味する。「ポリペプチド」は、長さまたは翻訳後修飾(例えば、グリコシル化ま
たはリン酸化)には無関係に、アミノ酸の任意の鎖を意味する。宿主細胞の性質
に応じて、発現される酵素の基質は、宿主細胞により産生させるか、あるいは外
因的に供給することが可能である。特に関心が持たれるのは、植物組織および/
または植物部分(例えば、葉、根、果実および種子)におけるPUFA産生の選択的
制御である。本発明は、宿主細胞内でEPA、DHAおよび他の関連PUFAを合成するた
めに使用することができる。
PUFAのトランスジェニック産生には、多数の利点がある。例えば、シュウ
ワネラ(Shewanella)の場合と同様にトランスジェニック大腸菌(E.coli)で
は、EPAはリン脂質画分中、特にsn-2位に蓄積する。シュウワネラ(Shewanella)
または大腸菌(E.coli)内で産生されるものとは実質的に異なる構造化脂質を所
望の宿主細胞内で産生させることが可能かもしれない。また、特定の宿主細胞内
でのPUFAのトランスジェニック産生は、魚類、植物などの天然起源からの精製に
優るいくつかの利点を与える。トランスジェニック植物においては、PKS様系を
用いることにより、マロニルCo-AおよびアセチルCo-Aを基質として使用する脂肪
酸のde novo産生を介してPUFAを産生する系により細胞質内でPUFAの脂肪酸合成
が達成される。このようにして、基質の競合に関連した問題、宿主内での脂肪酸
合成の正常な産物がPUFA産生へ迂回されることに関連した問題などの潜在的な問
題が回避される。
組換え植物からの脂肪酸の産生は、宿主内に新たな合成経路を付与することに
より、あるいは望ましくない経路を抑制し、それにより望ましいPUFAまたはその
コンジュゲート化形態のレベルを増加させ、望ましくないPUFAのレベルを減少さ
せることにより、天然に生じる植物脂肪酸プロフィールを改変しうる。また、特
定の組織および/または植物部分におけるPKS様遺伝子の発現は、それらの組織
および/または部分における所望のPUFAの著しく増加したレベルの達成が可能で
あること意味し、それらの組織からの回収を、より経済的なものにしうることを
意味するという利点も、トランスジェニック植物内での脂肪酸の産生は与える。
植物組織および/または植物部分における発現は、該組織または部分が容易に収
穫されるもの(例えば、種子、葉、果実、花、根など)である場合には特に、確
かな効率を与える。例えば、所望のPUFAを種子中で発現させることができ、種子
油を単離する方法は十分に確立されている。所望のPUFAの精製用起源(source f
or purification)が得られることに加えて、PKS様遺伝子を単独で又は他の遺伝
子(例えば、エロンガーゼ)と組合せて発現させることにより種子油成分を操作
して、ある特定のPUFAプロフィールを有する種子油を濃縮形態で得ることができ
る。ついで、ヒトの母乳を与えることが不可能または望ましくない場合あるいは
成人および乳児の両方における栄養失調または病気の場合には、該濃縮種子油を
動物の乳および/または合成もしくは半合成乳に加
えて、乳児用製剤として使用することができる。
トランスジェニック微生物による脂肪酸の産生には、高等生物のものと比べて
著しく単純な油組成を有する多数の微生物が公知であり所望の成分の精製を容易
にするという利点がある。微生物による産生は、天候および食物供給などの外的
変数により生じる変動にさらされない。微生物が産生した油は、環境汚染物によ
る汚染を実質的に伴わない。また、微生物は、特定の用途を有しうる個々の形態
のPUFAを与えることが可能である。例えば、スピルリナ(Spirulina)は、トリ
グリセリドの1位および3位に優勢に位置するPUFAを与えることが可能であり、
膵リパーゼによる消化は、これらの位置から優先的に脂肪酸を遊離する。スピル
リナ(Spirulina)由来のトリグリセリドをヒトまたは動物が摂取した後、これ
らのPUFAは、膵リパーゼにより遊離脂肪酸として遊離され、したがって、例えば
乳児の脳の発達に直接利用されうる。また、培養条件を制御することにより、あ
るいは、注目すべきは、微生物により発現される酵素の個々の基質を付与するこ
とにより、あるいは、望ましくない生化学的経路を抑制する化合物を加えること
により、微生物による油の産生を操作することができる。これらの利点に加えて
、組換え微生物からの脂肪酸の産生は、宿主内に新たな合成経路を付与すること
により、あるいは望ましくない経路を抑制し、それにより望ましいPUFAまたはそ
のコンジュゲート化形態のレベルを増加させ、望ましくないPUFAのレベルを減少
させることにより、天然に生じる微生物脂肪酸プロフィールを改変しうる。
動物における脂肪酸の産生もまた、いくつかの利点を与える。動物におけるデ
サチュラーゼ遺伝子の発現は、著しく増加したレベルの所望のPUFAを動物組織内
で産生し、それらの組織からの回収を、より経済的なものにしうる。例えば、所
望のPUFAが動物の母乳中で発現される場合、動物の乳からPUFAを単離する方法は
十分に確立されている。所望のPUFAの精製用起源が得られることに加えて、デサ
チュラーゼ遺伝子を単独で又は他のヒト遺伝子と組合せて発現させることにより
動物の母乳を操作して、乳児の発達の種々の段階においてヒトの母乳と実質的に
同様のPUFA組成を有する動物の乳を得ることが可能である。ヒトの母乳を与える
ことが不可能または望ましくない場合あるいは栄養失調または
病気の場合には、ヒトの母乳に近づくように処理(humanized)された動物の乳
を、乳児用製剤として使用することができるであろう。
所望のPKS様遺伝子をコードするDNAは、種々の方法で同定することができる。
1つの方法では、所望のPKS様遺伝子の起源、例えば、シュウワネラ(Shewanell
a)またはビブリオ・スピーシーズ(Vibrio spp)由来のゲノムライブラリーを
、酵素的または化学的に合成された検出可能なプローブでスクリーニングする。
PKS様遺伝子を有するORFの起源は、所望のPUFAを産生する生物(例えば、高圧下
または比較的低温で優先的に増殖しDHAまたはEPAを産生する深海細菌)である。
また、EPAまたはDHAを産生するシュウワネラ(Shewanella)などの微生物を、PK
S様遺伝子の起源として使用することができる。該プローブは、DNA、RNAもしく
は天然に存在しないヌクレオチドまたはそれらの混合物から作製することができ
る。正常の又は減少したストリンジェンシーのハイブリダイゼーション方法のた
めのプローブは、公知のPKS様遺伝子のDNAから酵素的に合成することができる。
核酸プローブの設計およびアニーリング条件の検討には、例えば、Sambrookら,M
olecular Cloning:A Laboratory Manual(第2版),Vol.1-3,Cold Spring Harbor
Laboratory,(1989)またはCurrent Protocols in Molecular Biology,F.Ausubel
ら編,Greene Publishing and Wiley-Interscience,New York(1987)(それらの
各々を、参照により本明細書に組み入れるものとする)を参照されたい。PUFA酵
素をコードする核酸の操作のための技術(例えば、ポリペプチドをコードする核
酸配列の、発現ベクター内へのサブクローニング、プローブの標識、DNAのハイ
ブリダイゼーションなど)は、Sambrook(前掲)に一般的に記載されている。
また、オリゴヌクレオチドプローブは、起源をスクリーニングするために使用
することが可能であり、公知のPKS様遺伝子間で保存された配列を含む公知のPKS
様遺伝子の配列、または所望の精製タンパク質から得たペプチド配列に基づくこ
とが可能である。アミノ酸配列に基づくオリゴヌクレオチドプローブは、遺伝暗
号の縮重を含むように縮重していることが可能であり、あるいは起源生物の好ま
しいコドンを優先するよう偏っていることが可能である。別法として、所望のタ
ンパク質を、完全に配列決定し、そのポリペプチドをコードするDNAの
全合成を行なうことができる。
所望のDNAを単離したら、それを公知方法により配列決定することができる。
当技術分野においては、そのような方法は過誤を受けやすいと認識されており、
そのため、同一領域の多重配列決定が常套手段となっていろが、それでもなお、
反復ドメイン、広範な二次構造または異常な塩基組成を有する領域(例えば、高
いGC塩基含量を有する領域)においては特に、得られる推定配列内の無視できな
い過誤率を招くと予想される。相違が生じる場合には、再び配列決定を行なうこ
とができ、特別な方法を用いることができる。特別な方法には、異なる温度;異
なる酵素;より高次の構造を形成するオリゴヌクレオチドの能力を改変するタン
パク質;改変されたヌクレオチド、例えばITPまたはメチル化dGTP;異なるゲル
組成、例えば、ホルムアルデヒドの添加;異なるプライマーまたは問題の領域か
ら異なる距離に位置するプライマー;または異なる鋳型、例えば一本鎖DNAを用
いることによる配列決定条件の改変を含めることができる。また、mRNAの配列決
定を用いることができる。
通例、PKS様遺伝子活性を有するポリペプチドのコード配列の一部または全部
は、天然由来である。しかしながら、場合によっては、例えば、宿主に好ましい
コドンを用いることにより発現を増強するために、コドンの全部または一部を修
飾することが望ましい。宿主に好ましいコドンは、目的の特定の宿主種において
最大量で発現されるタンパク質における最高頻度のコドンから決定することがで
きる。したがって、PKS様遺伝子活性を有するポリペプチドのコード配列の全部
または一部を合成することができる。また、転写されたmRNA中に存在する任意の
不安定化配列または二次構造の領域を除去するよう、該DNAの全部または一部を
合成することができる。また、塩基組成を、所望の宿主細胞にとって更に好まし
いものに改変するために、該DNAの全部または一部を合成することができる。配
列を合成し配列を合体させるための方法は、文献において十分に実証されている
。in vitro突然変異誘発および選択、部位特異的突然変異誘発または他の手段を
用いて、天然に存在するPKS様遺伝子の突然変異を得、それにより、所望の多不
飽和脂肪酸のより長い半減期またはより高い産生速度などの宿主細胞内での機能
に関するより望ましい物理的および速度論的パラメーターを有す
るPKS様遺伝子活性を有するポリペプチドをin vivoで産生させることができる。
特に関心が持たれるのは、シュウワネラ・プトレファシエンス(Shewanella p
utrefaciens)のORFおよびビブリオ・マリヌス(Vibrio marinus)の対応ORFで
ある。EPAの生合成を達成させるために、シュウワネラ・プトレファシエンス(S
hewanella putrefaciens)PKS様遺伝子をトランスジェニック植物内で発現させ
ることができる。また、シュウワネラ・プトレファシエンス(Shewanella putre
faciens)PKS様遺伝子と配列が実質的に同一であるか、またはシュウワネラ・プ
トレファシエンス(Shewanella putrefaciens)のPKS様遺伝子と実質的に同様の
ポリペプチドをコードする他のDNA(例えば、ビブリオ・マリヌス(Vibrio mari
nus)から同定したもの)を使用することもできる。配列において実質的に同一
は、シュウワネラ・プトレファシエンス(Shewanella putrefaciens)のPKS様遺伝
子のDNA配列またはそのような遺伝子に関するアミノ酸配列をコードする核酸配
列に対して少なくとも60%、80%、90%または95%(この順序で好ましさが増加
する)の相同性を示すアミノ酸配列または核酸配列を意味する。ポリペプチドの
場合には、比較配列の長さは、一般には少なくとも16アミノ酸、好ましくは少な
くとも20アミノ酸、最も好ましくは35アミノ酸である。核酸の場合には、比較配
列の長さは、一般には少なくとも50ヌクレオチド、好ましくは少なくとも60ヌク
レオチド、より好ましくは少なくとも75ヌクレオチド、最も好ましくは110ヌク
レオチドである。
相同性は、典型的には、配列分析ソフトウェア、例えばGenetics Computer Gr
oup,University of Wisconsin Biotechnology Center,1710 University Avenue,
Madison,Wisconsin 53705のSequence Analysisソフトウェアパッケージ、MEGAli
gn(DNAStar,Inc.,1228 S.Park St.,Madison,Wisconsin 53715)およびMacVecto
r(Oxford Molecular Group,2105 S.Bascom Avenue,Suite200,Campbell,Californ
ia 95008)、BLAST(National Center for Biotechnology Information(WCBI)ww
w.ncbi.nlm.gov)、FASTA(PearsonおよびLipman,Science(1985)227:1435-1446)
を使用して測定する。そのようなソフトウェアは、種々の置換、欠失および他の
修飾に対して相同性の度合を当てはめることに
より、同様の配列に適合する。同類置換には、典型的には、以下の基の範囲内の
置換が含まれる:グリシンおよびアラニン;バリン、イソロイシンおよびロイシ
ン;アスパラギン酸、グルタミン酸、アスパラギンおよびグルタミン;セリンお
よびトレオニン;リシンおよびアルギニン;ならびにフェニルアラニンおよびチ
ロシン。また、置換は、保存された疎水性または親水性に基づいて(Kyteおよび
Doolittle,J.Mol.Biol.(1982)157:105-132)あるいは同様のポリペプチド二次構
造をとる能力に基づいて(ChouおよびFasman,Adv.Enzymol.(1978)47:45-148,197
8)行なうことが可能である。プローブしている配列に対する関連タンパク質は
、p≧0.01、好ましくは、p≧10-7または10-8の場合に同定される。
本発明には、同じまたは他の生物に由来する関連PKS様遺伝子が含まれる。そ
のような関連PKS様遺伝子には、シュウワネラ(Shewanella)の同じまたは異な
る種内に天然に存在する開示されているPKS様ORFの変異体、および他の種に由来
する開示されているPKS様遺伝子のホモログ、および同様の機能および活性を有
する進化的に関連したタンパク質が含まれる。また、シュウワネラ・プトレファ
シエンス(Shewanella putrefaclens)PKS様遺伝子と実質的に同一ではないが、
PKS様系の一部としてPUFAを産生するように同様に機能するPKS様遺伝子も含まれ
る。関連PKS様遺伝子は、開示されているPKS様遺伝子と実質的に同じように機能
するそれらの能力[すなわち、それらが、シュウワネラ(Shewanella)またはビ
ブリオ(Vibrio)の対応ORFの代わりに使用され、それでもなお、EPAまたはDHA
を有効に産生しうること]により同定することができる。また、開示されている
PKS様遺伝子に相同な配列に関して配列データベースをスクリーニングすること
により、あるいは開示されているPKS様遺伝子に基づくプローブを、起源生物か
ら構築されたライブラリーにハイブリダイズさせることにより、あるいは起源生
物に由来するmRNAと開示されているPKS様遺伝子に基づくプライマーとを使用す
るRT-PCRにより、関連PKS様遺伝子を同定することができる。したがって、「PKS
様遺伝子」なる語は、本明細書に開示のヌクレオチド配列だけでなく、これらの
ヌクレオチド配列の対立遺伝子または種変異体である他の核酸をも意味する。ま
た、これらの語は、単一部
位突然変異などの組換え技術を用いる意図的な突然変異により、あるいはPUFA酵
素をコードするDNAオープンリーディングフレームの短い断片を切り出すことに
より、あるいは新たなコドンで置換したり又は新たなコドンを付加することによ
り導入される非天然突然変異を含むと理解される。そのような軽微な改変は、本
来の発現産物の免疫同一性および/またはその生物活性を実質的に維持する。改
変されたPUFA酵素の生物学的特性は、適当な細胞系内で該酵素を発現させること
により、また、該酵素がPUFAを合成する能力を測定することにより確認すること
ができる。軽微とみなされる個々の酵素修飾には、同様の化学特性のアミノ酸の
置換(例えば、アスパラギン酸の代わりにグルタミン酸、アスパラギンの代わり
にグルタミン)が含まれるであろう。
別の生物に由来するPUFA PKS様系を用いる場合には、PKS様遺伝子活性に重要
なPKS様遺伝子ポリペプチドの領域を、通常の突然変異誘発、生じる突然変異ポ
リペプチドの発現、およびそれらの活性の測定により決定することができる。該
突然変異体のコード領域には、欠失、挿入および点突然変異またはそれらの組合
せを含めることができる。典型的な機能分析は、欠失突然変異誘発から開始して
、機能に必要なタンパク質のNおよびC末端境界を決定し、ついで該オープンリー
ディングフレームにおいて内部欠失、挿入または点突然変異体を作製して、機能
に必要な領域を更に決定する。また、カセット突然変異誘発または全合成などの
他の技術を用いることもできる。欠失突然変異誘発は、例えば、5'または3'コー
ド領域を順次除去するためにエキソヌクレアーゼを使用することにより行なう。
そのような技術のためのキットが入手可能である。欠失後、開始コドンまたは終
結コドンを含有するオリゴヌクレオチドを、それぞれ5'側または3'側の欠失の後
に該欠失コード領域に連結することにより、該コード領域を完成させる。別法と
して、開始コドンまたは終結コドンをコードするオリゴヌクレオチドを、部位特
異的突然変異誘発、突然変異PCRなどの種々の方法により、あるいは既存の制限
部位で消化されたDNAに対する連結により、該コード領域内に挿入する。内部欠
失は、部位特異的突然変異誘発または突然変異誘発PCRを介した突然変異誘発プ
ライマーの使用による、該DNA内の既存の制限部位の使用などの種々の方法によ
り、同様に作製することができる。挿入は、リンカースキ
ャニング突然変異誘発、部位特異的突然変異誘発または突然変異誘発PCRなどの
方法により行なう。点突然変異は、部位特異的突然変異誘発または突然変異誘発
PCRなどの技術により作製する。
また、活性に重要なPKS様遺伝子ポリペプチドの領域を同定するために、化学
突然変異誘発を用いることができる。突然変異構築物を発現させ、得られた改変
タンパク質がPKS様遺伝子として機能する能力をアッセイする。そのような構造
−機能分析により、どの領域を欠失させることが可能か、どの領域が挿入を許容
するか、およびどのような点突然変異が、該突然変異タンパク質が天然PKS様遺
伝子と実質的に同じように機能するのを可能にするのかを判定することができる
。そのようなすべての突然変異タンパク質およびそれらをコードするヌクレオチ
ド配列は、本発明の範囲内である。EPAは、PKS様系の産物としてシュウワネラ(
Shewanella)内で産生され、そのため、該EPA遺伝子はこの系の成分をコードし
ている。ビブリオ(Vibrio)では、DHAが同様の系により産生される。これらの
脂肪酸を合成する酵素は、典型的には細菌内および植物内で見出されるC16およ
びC18脂肪酸の合成に関与する酵素をコードする脂肪酸合成遺伝子とは異なる遺
伝子のクラスターによりコードされる。シュウワネラ(Shewanella)EPA遺伝子
は、PKS様遺伝子クラスターを代表するため、EPAの産生は、少なくとも或る程度
は、典型的な細菌II型FAS系から独立している。したがって、植物細胞の細胞質
内でのEPAの産生は、適当な植物調節シグナルの制御下での植物細胞内のPKS様経
路遺伝子の発現により達成させることができる。
シュウワネラ(Shewanella)EPA遺伝子で形質転換した大腸菌(E.coli)内で
のEPAの産生は、嫌気性増殖中に進行し、このことは、O2依存性デサチュラーゼ
反応が関与していないことを示している。EPA産生に必須のORFにコードされるタ
ンパク質の分析は、PKS様系に特徴的なドメイン構造の存在を示している。図2A
は、「BLAST」データバンク検索により検出されたドメイン、モチーフおよび主
要な相同性の概要を示す。EPAは、PKS様経路により産生される他の基質の多くと
は異なる(すなわち、それは、該分子に沿って3炭素ごとに位置する5個のシス
二重結合を含有する)ため、EPAの合成のためのPKS様系
は予測されない。
さらに、シュウワネラ(Shewanella)EPA ORF内に存在するドメインを使用し
たBLAST検索は、いくつかが、アナベナ(Anabeana)において見出されるPKS様遺
伝子クラスターにコードされるタンパク質に関連していることを示している。ア
ナベナ(Anabeana)染色体のその領域の構造を図2Fに示す。アナベナ(Anabeana
)のPKS様遺伝子は、異質細胞の糖脂質層内に見出される長鎖(C26)ヒドロキシ
脂肪酸の合成に連関している。アナベナ(Anabeana)タンパク質に対する相同性
を有するEPAタンパク質ドメインを、図2Fに示す。
シュウワネラ(Shewanella)のORF6は、活性部位モチーフ(DXAC*)と多数の
II型KASタンパク質の末端に存在する「GFGG」モチーフとを含むKASドメインを含
有する(図2Aを参照されたい)。拡張された(extended)モチーフが存在するが、
ここには示されていない。つぎに、マロニル-CoA:ACPアシルトランスフェラーゼ
(AT)ドメインが存在する。活性部位モチーフ付近の配列(GHS*XG)は、それが
、メチルマロン酸ではなくマロン酸を転移する(すなわち、それは、アセテート
様ATに類似している)ことを示唆している。リンカー領域の後には、PKS様ACP配
列に相同である各々約100アミノ酸長の6個の反復ドメインのクラスターが存在
する。それぞれは、パンテテイン結合部位モチーフ(LGXDS*(L/I))を含有する
。6個のそのようなACPドメインの存在は、これまでのところ、脂肪酸シンター
ゼ(FAS)またはPKS様系においては認められていない。該タンパク質の末端付近
には、β-ケト-ACPレダクターゼ(KR)に対する相同性を示す領域が存在する。
それは、ピリジンヌクレオチド結合部位モチーフ「GXGXX(G/A/P)」を含有する。
シュウワネラ(Shewanella)ORF8は、活性部位と終結モチーフとを含むKASド
メインから開始する(図2C)。該データバンクにおける最良のマッチは、アナベナ
(Anabeana)HglDに対するものである。また、アナベナ(Anabeana)HglCのN末端
半分に対する配列相同性を有するドメインが存在する。また、この領域は、活性
部位および終結モチーフを欠くが、KASタンパク質に対して弱い相同性を示す。
それは、II型PKS様系のいわゆる鎖長因子(chain length factors:CLF)の特徴
を有する。ORF8は、PKS様系によるEPA対DHAの産
生を指令するらしい。また、ORF8は、β-ヒドロキシアシル-ACPデヒドラーゼ(
DH)に対する相同性を有する2個のドメインを有する。両ドメインに対する最良
のマッチは、デヒドラーゼ反応と生成した二重結合の異性化(トランスからシス
)との両方を行なう二官能性酵素である大腸菌(E.coli)FabAに対するもので
ある。第1DHドメインは、FabAの触媒に関与する活性部位ヒスチジン(H)およ
び隣接システイン(C)の両方を含有する。第2DHドメインは、活性部位Hを有す
るが、隣接Cを欠く(図2C)。また、第2DHドメインでのBlast検索は、もう1つの
大腸菌(E.coli)DHであるFabZ(これは、イソメラーゼ活性を有さない)に対す
るマッチを示す。
ORF7(図2B)のN末端半分は、該データバンクにおいては有意なマッチを有さ
ない。該C末端半分の最良のマッチは、アナベナ(Anabeana)HglCのC末端部分に
対するものである。このドメインは、アシルトランスフェラーゼ(AT)モチーフ(
GXSXG)を含有する。大腸菌(E.coli)マロニル-CoA:ACP ATの結晶構造に基づ
く拡張された活性部位配列の比較は、ORF7が、該活性部位からの水の排除に必
須の2個の残基を欠くことを示している(大腸菌(E.coli)名;Q11およびR117)
。これらのデータは、ORF7がチオエステラーゼとして機能しうることを示唆し
ている。
ORF9(図2D)は、アナベナ(Anabeana)Hglクラスター内の未知機能のORFと
相同である。また、それは、窒素固定細菌における調節タンパク質であるNIFAに
対して非常に弱い相同性を示す。ORF9タンパク質に関する調節的役割は除外さ
れていない。ORF3(図2E)は、アナベナ(Anabeana)HetIならびに大腸菌(E.
coli)由来のEntDおよびバシラス(Bacillus)のSfpと相同である。最近、HetI
、EntDおよびSfpを含むホスホパンテテイニルトランスフェラーゼの新規酵素フ
ァミリーが同定された[Lamblot RHら(1996),新規酵素スーパーファミリー−ホ
ホパンテテイニルトランスフェラーゼ(A new enzyme superfamily-the phophopa
ntetheinyl transferases).Chemistry & Biology,Vol 3,#11,923-936]。図3の
データは、該ORF6タンパク質へのβ-アラニン(すなわち、パンテテイン)の付
加にはORF3の存在が要求されることを示している。したがって、ORF3は、該OR
F6ACPドメインに特異的なホ
スホパンテテイニルトランスフェラーゼをコードしている[Haydock SFら(1995
)モジュラーポリケチドシンターゼ中の(メチル)マロニル-CoA:アシル担体タン
パク質トランスアシラーゼドメインの基質特異性と相関した分岐配列モチーフ(D
ivergent sequence motifs correlated with the substrate specificity of (m
ethyl)malonyl-CoA:acyl carrier protein transacylase domains in modular p
olyketide synthases),FEBS Lett.,374,246-248を参照されたい]。マロン酸は
、EPA合成の伸長反応に利用される炭素源である。また、マロニル-ACPではなく
マロニル-CoAがAT基質である。すなわち、ORF6のAT領域は、マロニルCo-Aを使
用する。
PUFA産生を引き起こす生物のPKS様遺伝子をコードするDNA配列が得られたら、
それらを、宿主細胞内で複製可能なベクター内に配置するか、あるいはPCRまた
はロング(long)PCRなどの技術によりin vitroで増殖させる。複製ベクターに
は、プラスミド、ファージ、ウイルス、コスミドなどを含めることができる。望
ましいベクターには、目的の遺伝子の突然変異誘発に又は宿主細胞内での目的の
遺伝子の発現に有用なものが含まれる。PUFA合成酵素または相同タンパク質を、
組換え的に操作された種々の細胞内で発現させることができる。PUFA酵素をコー
ドするDNAの発現には、多数の発現系が利用可能である。PUFA酵素をコードする
天然または合成核酸の発現は、典型的には、発現ベクター内のプロモーター(構
成的プロモーターまたは誘導プロモーター)に該DNAを機能しうる形で連結するこ
とにより達成される。発現ベクターは、PUFA酵素をコードするセグメント(これ
は、その転写をもたらす追加的セグメントに、機能しうる形で連結されている)
を含む線状または環状のDNA分子を意味する。そのような追加的セグメントには
、プロモーターおよびターミネーター配列が含まれる。また、発現ベクターには
、1以上の複製起点、1以上の選択マ一カー、エンハンサー、ポリアデニル化シ
グナルなどを含めることが可能である。発現ベクターは、一般には、プラスミド
またはウイルスDNAに由来し、両方の要素を含有することが可能である。「機能
しうる形で連結(された)」なる語は、それらのセグメントが、それらの意図され
る目的のために協奏的に機能するように配置していることを意味し、例えば、転
写はプロモーターにおいて開始し、コードセ
グメントを経由してターミネーターへと進行する(Sambrookら,前掲を参照され
たい)。
ロングPCRの技術は、大きな構築物のin vitro増殖を可能にし、その結果、目
的の遺伝子に対する修飾、例えば、突然変異誘発または発現シグナルの付加、お
よび得られた構築物の増殖を、複製ベクターまたは宿主細胞を使用することなく
、完全にin vitroで行なうことができる。in vitroでの発現は、例えば、in vit
ro用に設計された発現ベクター内にデサチュラーゼポリペプチドのコード領域を
配置し、ウサギ網状赤血球ライゼートおよび補因子を加えることにより行なうこ
とができ、所望により、標識されたアミノ酸を取込ませることができる。そのよ
うなin vitro発現ベクターは、使用する系に必要な発現シグナルの一部または全
部を付与することが可能である。これらの方法は当技術分野で良く知られており
、該系の成分は商業的に入手可能である。ついで該反応混合物を、PKS様酵素に
関して、例えばその活性を測定することにより直接アッセイすることができ、あ
るいは合成された酵素を精製し、ついでアッセイすることができる。
宿主細胞内での発現は、一過性または安定に達成させることができる。一過性
発現は、宿主細胞内で機能的である発現シグナルを含有する導入された構築物か
ら生じうる(ただし、この構築物は複製されず、めったに宿主細胞内に組込まれ
ないか、またはこの場合、該宿主細胞は増殖性でない)。また、目的の遺伝子に
機能しうる形で連結された調節可能なプロモーターの活性を誘導することにより
、一過性発現を達成させることができる(ただし、そのような誘導可能な系は、
低い基底レベルの発現を示すことが多い)。安定発現は、宿主ゲノム内に組込ま
れうる又は宿主細胞内で自律複製する核酸構築物の導入により達成させることが
できる。発現構築物上に位置するか又は発現構築物と共にトランスフェクトされ
た選択マーカーを使用し、ついで該マーカーを発現する細胞に関して選択するこ
とにより、目的の遺伝子の安定発現を選択することができる。安定発現が組込み
から生じる場合には、構築物の組込みは、宿主ゲノム内でランダムに生じること
が可能であり、あるいは宿主遺伝子座との組換えを標的化するのに十分な程度に
宿主ゲノムに相同な領域を含有する構築物の使用により標的化されることが可能
である。構築物を内因性遺伝子座に標的化する場合には、転写および翻訳の調節
領
域の全部または一部は、該内因性遺伝子座により付与されることが可能である。
宿主細胞内で発現を行なうためには、該宿主細胞内で機能的である、転写および
翻訳の開始および終結調節領域に、形質転換DNAを機能しうる形で連結させる。
転写および翻訳の開始および終結領域は、発現させるDNA、所望の系内での発
現が可能であることが公知の又は疑われる遺伝子、発現ベクター、化学合成など
の種々の非排他的(nonexclusive)起源に由来する。該終結領域は、該開始領域
を入手した遺伝子の3'領域または異なる遺伝子に由来することが可能である。多
数の終結領域が、同一または異なる属および種からの種々の宿主において満足し
うるものであることが、公知かつ判明している。該終結領域は、通常、特定の任
意の特性よりも、むしろ簡便性の点から選ばれる。2以上のPKS様ORFを同一細胞
内で発現させる場合には、適当な調節領域および発現方法を使用すべきである。
導入された遺伝子は、複製ベクターの使用により又は宿主ゲノム内への組込みに
より、宿主細胞内で増殖させることができる。別々の複製ベクターから2以上の
遺伝子を発現させる場合には、各ベクターが、異なる複製手段を有することが望
ましい。導入された各構築物は、組込まれているか否かにかかわらず、異なる選
択手段を有すべきであり、その他の構築物に対する相同性を欠くべきであり、そ
れにより、安定発現が維持され構築物間の要素の再構築が妨げられるようにする
。調節領域、選択手段および導入構築物の増殖方法の適切な選択は、すべての導
入遺伝子が必要レベルで発現されて所望の産物の合成をもたらすように、実験的
に決定することができる。
PUFA酵素を発現させるためには、種々の原核生物の発現系を用いることができ
る。転写を指令するプロモーター、リボソーム結合部位および転写ターミネータ
ーを含有する発現ベクターを構築することができる。大腸菌(E.coli)における
この目的に適した調節領域としては、例えば、Yanofsky(1984)J.Bacteriol.,158
:1018-1024に記載の大腸菌(E.coli)トリプトファン生合成経路のプロモータ
ーおよびオペレーター領域、ならびにHerskowitzおよびHagen,(1980)Ann.Rev.Ge
net.,14:399-445に記載のファージラムダ(Pλ)の左側プロモーターが挙げられ
る。大腸菌(E.coli)において形質転換するDNAベクター内に選択マーカーを含
有させることも有用である。そのようなマーカーには、例えば、アン
ピシリン、テトラサイクリンまたはクロラムフェニコールに対する耐性を特徴づ
ける遺伝子が含まれる。細菌宿主内で外来遺伝子を発現させるために使用するベ
クターは、一般には、抗生物質耐性に関する遺伝子などの選択マーカー、および
該宿主細胞内で機能するプロモーターを含有する。細菌を形質転換するのに有用
なプラスミドには、pBR322(Bolivarら,(1977)Gene 2:95-113)、pUCプラスミド(M
essing,(1983)Meth.Enzymol.101:20-77,VieiraおよびMessing,(1982)Gene 19:25
9-268)、pCQV2(Queen,同誌)、およびそれらの誘導体が含まれる。プラスミドは
、ウイルス性および細菌性要素を含有することが可能である。該タンパク質を生
物学的に活性な形態で回収するための方法は、参照により本明細書に組み入れる
米国特許第4,966,963号および第4,999,422号において検討されている。他の原核
生物の発現系の説明は、Sambrookらを参照されたい。
真核生物内での発現の場合、本発明の実施で使用するための宿主細胞には、哺
乳類、鳥類、植物、昆虫および菌類細胞が含まれる。例えば、植物の場合には、
プロモーターの選択は、1つには、構成的発現または誘導的発現のいずれが望ま
しいのか、および植物の発達の特定の段階および/または特定の組織においてPU
FAを産生させることが望ましいか否かに左右されるであろう。該ORFの発現のた
めの特定の組織および/または発達段階の選択に関する考慮事項は、競合基質、
または特定のPUFAの発現を許容する該宿主細胞の能力に左右される可能性がある
。特異的調節配列(例えば、米国特許第5,463,174号、米国特許第4,943,674号、
米国特許第5,106,739号、米国特許第5,175,095号、米国特許第5,420,034号、米
国特許第5,188,958号および米国特許第5,589,379号に記載のもの)を使用するこ
とにより、種子、葉、果実、花、根などの宿主植物内の特定の位置に発現を標的
化することができる。宿主細胞が酵母の場合には、酵母細胞内で機能的である転
写および翻訳領域は、特に該宿主種から付与される。該転写開始調節領域は、例
えば、アルコールデヒドロゲナーゼ、グリセルアルデヒド-3-リン酸デヒドロゲ
ナーゼ(GPD)、ホスホグルコイソメラーゼ、ホスホグリセリン酸キナーゼなどの
解糖系内の遺伝子、または酸性ホスファターゼ、ラクターゼ、メタロチオネイン
、グルコアミラーゼなどの調節可能な遺伝子がら得ることができる。構成的転写
または誘導的転写のいずれが望ましいのか、目的のオープンリ
ーディングフレームと組合されるプロモーターの個々の効率、強力なプロモータ
ーと誘導的転写を可能にする異なるプロモーターに由来する制御領域とを一緒に
しうる可能性、構築の容易さなどに応じて、多数の調節配列の任意の1つを、個
々の状況で使用することができる。特に関心が持たれるのは、ガラクトースの存
在下で活性化されるプロモーターである。ガラクトースにより誘導されうるプロ
モーター(GAL1、GAL7およびGAL10)は、酵母内での高レベルかつ調節されたタ
ンパク質発現に広く利用されている(Lueら,(1987)Mol.Cell.Biol.7:3446;Johns
ton,(1987)Microbiol.Rev.51:458)。GALプロモーターからの転写は、ガラクトー
スの存在下で該プロモーター領域に結合し転写を活性化するGAL4タンパク質によ
り活性化される。ガラクトースの不在下では、アンタゴニストであるGAL80がGAL
4に結合し、GAL4による転写活性化を妨げる。ガラクトースの添加は、GAL80がGA
L4による活性化を抑制するのを妨げる。好ましくは、該終結領域は、酵母遺伝子
、特に、サッカロミセス(Saccharomyces)、シゾサッカロミセス(Schizosaccharo
myces)、カンジダ(Candida)またはクライベロマイセス(Kluyveromyces)に由
来する。また、2つの哺乳類遺伝子(γインターフェロンおよびα2インターフ
ェロン)の3'領域が酵母内で機能することが公知である。
翻訳開始コドンATGの周囲のヌクレオチド配列は、酵母細胞内での発現に影響
を及ぼすことが判明している。所望のポリペプチドが酵母内で十分に発現されな
い場合には、最適な遺伝子発現を得るために、効率的な酵母翻訳開始配列を含む
ように外因性遺伝子のヌクレオチド配列を修飾することができる。サッカロミセ
ス(Saccharomyces)内での発現のためには、これを、非効率的に発現される遺
伝子の部位特異的突然変異誘発[それを内因性サッカロミセス(Saccharomyces
)遺伝子、好ましくは、高度に発現される遺伝子(例えば、ラクターゼ遺伝子)
にインフレームで融合することによるもの]により行なうことができる。
植物細胞細胞質内でPKS様遺伝子を発現させることに代わる方法として、該酵
素を葉緑体に標的化することが挙げられる。タンパク質を葉緑体に標的化するた
めの1つの方法は、該タンパク質のN末端に結合したリーダーペプチドの使
用を伴う。一般に使用されるリーダーペプチドは、植物リブロース-ビスリン酸
カルボキシラーゼの小サブユニットに由来する。また、他の葉緑体タンパク質に
由来するリーダー配列を使用することも可能である。タンパク質を葉緑体に標的
化するためのもう1つの方法は、葉緑体ゲノムを形質転換させることである[外
来DNAで被覆された高速タングステン微粒子を受容細胞に射撃することによるク
ラミドモナス・レインハルドティ(Chlamydomonas reinhardtii)(1緑藻類)の
葉緑体の安定な形質転換が記載されている。例えば、BlowersらPlant Cell(198
9)1:123-132およびDebuchyらEMBO J(1989)8:2803-2809を参照されたい。タン
グステン微粒子を使用する形質転換技術は、Klineら,Nature(London)(1987)327:
70-73に記載されている]。葉緑体を形質転換させる最も一般的な方法は、バイオ
リスチック(biolistic)技術の使用を含むが、この目的のために開発された他
の技術を使用することも可能である。外来遺伝子産物を葉緑体内(ShrierらEMBO
J.(1985)4:25-32)またはミトコンドリア内(Boutryら前掲)に標的化するため
の方法が記載されている。また、核遺伝子産物を葉緑体内に輸送するための輸送
ペプチドの使用に関しては、TomaiらGen.Biol.Chem.(1988)263:15104-1510
9および米国特許第4,940,835号を参照されたい。タンパク質の輸送を葉緑体へ方
向づけるための方法は、Kenauf TIBTECH(1987)5:40-47に概説されている。
鳥類の種および細胞においてPUFAを産生させるためには、当技術分野で公知の
方法に従い、PUFA酵素をコードする核酸配列を該細胞内に導入することにより、
遺伝子導入を行なうことができる。トランスジェニック動物が望ましい場合には
、胚の多能性幹細胞に、PUFA酵素をコードするトランスジーンを保持するベクタ
ーを付与し、該細胞を成体動物にまで発育させることができる(米国特許第5,162
,215号;Onoら(1996)Comparative Biochemisty and Physiology A 113(3):287-29
2;WO 9612793;WO 9606160)。ほとんどの場合、PUFAの産生を増加させるために、
高レベルのPKS様酵素を発現するように該トランスジーンを修飾する。該トラン
スジーンは、例えば、特定の組織および卵部分(例えば、卵黄)内での発現を指
令するプロモーターなどの鳥類細胞内で機能する転写および/または翻訳調節領
域を付与することにより修飾することができる。該遺
伝子調節領域は、ニワトリ貧血または鳥類白血病ウイルスまたは鳥類遺伝子、例
えばニワトリオボアルブミン遺伝子を含む種々の起源から得ることができる。
昆虫細胞内でのPUFAの産生は、PKS様トランスジーンを保持するバキュロウイ
ルス発現ベクターを使用して行なうことができる。バキュロウイルス発現ベクタ
ーは、Clontechなどのいくつかの商業的供給元から入手可能である。また、デサ
チュラーゼトランスジーンを含有し発現する藻類(例えば、海洋藻類)のハイブ
リッドおよびトランスジェニック株の生産方法を提供する。例えば、トランスジ
ェニック海洋藻類は、米国特許第5,426,040号に記載のとおりに作製することが
できる。前記のその他の発現系の場合と同様に、デサチュラーゼトランスジーン
の発現の時期、程度および活性は、個々の用途のために選ばれる適当な転写およ
び翻訳調節領域を該ポリペプチドコード配列に設けることにより調節することが
できる。特に関心が持たれるのは、予め選択した増殖条件下で誘導されうるプロ
モーター領域である。例えば、デサチュラーゼトランスジーンをコードする配列
、その調節領域および/または該トランスジーンを導入する細胞のゲノム内への
温度感受性および/または代謝産物応答性突然変異の導入を、この目的のために
用いることができる。
形質転換された宿主細胞を、所望の最終結果に適合させた適当な条件下で増殖
させる。宿主細胞を培養内で増殖させるためには、典型的には、選択したデサチ
ュラーゼ活性に関連したPUFAの最大の又は最も経済的な収量が得られるように該
条件を最適化する。最適化されうる培地条件には、炭素源、窒素源、基質の添加
、添加する基質の最終濃度、添加する基質の形態、好気性または嫌気性増殖、増
殖温度、誘導剤、誘導温度、誘導時の増殖期、収穫時の増殖期、pH、密度および
選択の維持が含まれる。例えば酵母などの微生物は、好ましくは、酵母ペプトン
ブロス(YPD)および最少培地(アミノ酸、酵母窒素塩基および硫酸アンモニウ
ムを含有し、選択のための成分、例えばウラシルを欠く)を含む選ばれた目的の
培地を使用して増殖させる。望ましくは、添加する基質をまずエタノールに溶解
する。必要に応じて、例えば、GALプロモーターから発現を誘導するためにガラ
クトースを含有させるかまたは加えることにより、目的のポリペプチドの発現を
誘導することができる。
PKS様系からPUFAを発現する宿主細胞内でのPKS様遺伝子ポリペプチドの発現を
増加させたい場合には、いくつかの方法を用いることができる。PKS様遺伝子ポ
リペプチドをコードする追加的な遺伝子を、宿主生物内に導入することができる
。また、例えば、より強力なプロモーターを宿主ゲノム内に挿入して発現の増強
を引き起こすことにより、あるいは該mRNAまたは該コード化タンパク質から不安
定化配列を、その情報を該宿主ゲノムから欠失させて除去することにより、ある
いは該mRNAに安定化配列を付加することにより、相同組換えを介して、天然PKS
様遺伝子座からの発現を増加させることができる(米国特許第4,910,141号および
米国特許第5,500,365号を参照されたい)。したがって、該対象宿主は、該発現構
築物の少なくとも1つのコピーを有し、また、該遺伝子がゲノム内に組込まれる
か又は増幅されるか又は多コピー数を有する染色体外要素上に存在するかに応じ
て、2以上のコピーを有することが可能である。該対象宿主が酵母である場合に
は、主要な4つの型の酵母プラスミドベクター、すなわち酵母組込み型プラスミ
ド(YIp)、酵母自己複製型プラスミド(YRp)、酵母セントロメアプラスミド(YCp
)および酵母エピソーム様プラスミド(YEp)を使用することができる。YIpは、
酵母複製起点を欠き、酵母ゲノム内の組込み要素として増殖させなければならな
い。YRpは、染色体由来の自律複製配列を有し、中等度のコピー数(20〜40)の
自律複製する不安定に分離(segregating)するプラスミドとして増殖する。YCp
は、複製起点およびセントロメア配列の両方を有し、低コピー数(10〜20)の自
律複製する安定に分離するプラスミドとして増殖する。YEpは、酵母2μmプラス
ミド由来の複製起点を有し、高コピー数の自律複製する不規則に分離するプラス
ミドとして増殖する。酵母内の該プラスミドの存在は、該プラスミド上のマーカ
ーに関する選択を維持することにより確保することができる。特に関心が持たれ
るのは、酵母ベクターpYES2(Invitrogenから入手可能なYEpプラスミドは、ウラ
シル原栄養性および発現のためのGAL1ガラクトース誘導可能プロモーターを付与
する)、およびpYX424(構成的TP1プロモーターを有しロイシン原栄養性を付与す
るYEpプラスミド)(AlberおよびKawasaki(1982).J.Mol.& Appl.Genetics 1:419)
である。
宿主細胞の選択は、1つには、トランスジェニック細胞の所望のPUFAプロ
フィールおよび宿主細胞の天然プロフィールに影響される。宿主細胞が1つのPU
FAのPKS様遺伝子活性を発現する場合であっても、もう1つのPKS様系のPKS様遺
伝子の発現が、該宿主細胞により産生されない新規PUFAの産生をもたらすことが
ある。PKS様遺伝子活性の発現を、異なるPUFAを産生する生物のORF8PKS様遺伝
子の発現と共役させる特定の場合には、宿主細胞が、ORF8に関する低いPKS様遺
伝子活性を本来有すること、またはそのような活性を有するように該宿主細胞を
突然変異させることが望ましい場合がある。例えば、EPAの産生には、使用するD
NA配列は、EPAを産生する生物のPKS様遺伝子活性を有するポリペプチドをコード
し、一方、DHAの産生には、使用するDNA配列は、DHAを産生する生物からのDNA配
列である。PKS様遺伝子活性を既に発現している宿主細胞内での使用には、所望
のPKS様遺伝子の過剰発現をもたらす発現カセットを、単独で又は既存のPKS様系
の既存のORFの活性をダウンレギュレーション(例えば、アンチヤンスまたは共
抑制により)する構築物と共に、使用することが必要な場合がある。同様に、PK
S様系を用いて同じ又は異なるPUFAを産生する別々の生物に由来するORFの組合せ
を用いることができる。例えば、ビブリオ(Vibrio)のORF8は、ORF3、6、7
および9がシュウワネラ(Shewanella)に由来する場合であっても[それらは、
シュウワネラ(Shewanella)のORF8と共役させた場合にはEPAを産生する]、宿
主細胞内でDHAの発現を指令する。したがって、エイコサペンタエン酸(EPA)の
産生のためには、使用する発現カセットは、一般には、海洋細菌であるシュウワ
ネラ・プトレファシエンス(Shewanella putrefaciens)(EPA産生のため)または
ビブリオ・マリヌス(Vibrio marinus)(DHA産生のため)などのPUFA産生生物に
由来するORF3、6、7、8および9を含む1以上のカセットを含む。DHA産生を
誘導するためには、ORF8を使用することができ、DHAを産生させるためには、ビ
ブリオ(Vibrio)のORF8を、シュウワネラ(Shewanella)のORF3、6、7およ
び9と共に使用することができる。シュウワネラ(Shewanella)遺伝子クラスタ
ー内で同定されたORFの体制および番号づけの体系を図1Aに示す。この研究で言
及されるいくつかのサブクローンの地図を、図1Bに示す。PKS様遺伝子ポリペプ
チドの発現には、宿主細胞内で機能的で
ある転写および翻訳の開始および終結領域を、PKS様遺伝子ポリペプチドをコー
ドするDNAに機能しうる形で連結させる。
目的のPKS様ORFを含む構築物は、1つには宿主細胞の型に応じて種々の標準的
な技術のいずれかにより、宿主細胞内に導入することができる。これらの技術に
は、トランスフェクション、感染、ボリスチック(bolistic)衝撃、エレクトロ
ポレーション、マイクロインジェクション、擦り取り、または目的の遺伝子を宿
主細胞内に導入する他の任意の方法が含まれる(米国特許第4,743,548号、米国特
許第4,795,855号、米国特許第5,068,193号、米国特許第5,188,958号、米国特許
第5,463,174号、米国特許第5,565,346号および米国特許第5,565,347号を参照さ
れたい)。用いる形質転換の方法には、酢酸リチウム形質転換(Methods in Enzym
ology,(1991)194:186-187)が含まれる。便宜上、DNA配列または構築物を取込ま
せる任意の方法により操作された宿主細胞を、本発明では、「形質転換(された)
」または「組換え(体)」と称することにする。該対象宿主は、該発現構築物の少
なくとも1つのコピーを有することになり、また、該遺伝子がゲノム内に組込ま
れるか又は増幅されるか又は多コピー数を有する染色体外要素上に存在するかに
応じて、2以上のコピーを有することが可能である。
PUFAの産生のためには、宿主細胞に応じて、pEPAにより産生されるいくつかの
ポリペプチド(ORF3、6、7、8および9)を、別個の発現構築物として導入す
るか、あるいは宿主細胞内に個別的に導入される又は共形質転換される2以上の
カセット内に合体させることができる。標準的な形質転換プロトコールを用いる
。PUFAの合成に要求されるPKS様遺伝子の一部が単一の植物内に挿入されている
植物の場合には、相補遺伝子を含有する植物と交雑させて、所望のPUFAを合成す
るPKS様遺伝子の完全相補体を含有する植物を得ることができる。
PUFAのPKS様媒介産生は、原核または真核宿主細胞内で行なうことができる。
該細胞は、培養したり、あるいは動物を含む宿主生物の一部または全部として形
成させることができる。また、PUFAの産生においては、特に遺伝子導入、細胞タ
ーゲッティングおよび選択のために、ウイルスおよびバクテリオファージを適当
な細胞と共に使用することができる。宿主細胞としては、双子葉植物、単子葉植
物、穀類などの任意の種類の植物細胞を使用することができる。特に関心
が持たれるのは、アブラナ(Brassica)、シロイヌナズナ(Arabidopsis)、ダイズ
、トウモロコシなどの栽培植物である。目的の原核細胞には、エシェリキア(Esc
hericia)、バシラス(Baccillus)、ラクトバシラス(Lactobaccillus)、藍細菌(cy
anobacteria)などが含まれる。真核細胞には、植物細胞、乳を分泌する動物の細
胞などの哺乳類細胞、ニワトリ細胞などの鳥類細胞、および昆虫、菌類および藻
類細胞を含む遺伝子操作に適した他の細胞が含まれる。宿主動物には、例えば、
マウス、ラット、ウサギ、ニワトリ、ウズラ、シチメンチョウ、ウシ、ヒツジ、
ブタ、ヤギ、ヤクなど、トランスジーンを発現する集団の迅速な増殖のための遺
伝子操作およびクローニングに適した動物が含まれる。動物の場合には、遺伝子
調節領域の修飾により、PKS様トランスジーンを、標的細胞小器官、組織および
体液内での発現に適合させることができる。特に関心が持たれるのは、宿主動物
の母乳中でのPUFAの産生である。
宿主微生物には、例えば、サッカロミセス・セレビシエ(Saccharomyces cerev
isiae)、サツカロミセス・カールスバージェンシス(Saccharomyces carlsberge
nsis)または他の酵母、例えばカンジダ(Candida)、クライベロマイセス(Kluyv
eromyces)または他の菌類、例えば糸状菌、例えばアスペルギルス(Aspergillus
)、ニユ一ロスポラ(Neurospora)、ペニシリウム(Penicillium)などが含まれる。
宿主微生物の望ましい特性としては、例えば、それが遺伝的に十分に特徴づけら
れていること、超高密度発酵を用いる該産物の高レベルの発現に使用可能である
こと、提案されている最終産物はヒトによる摂取が意図されるためGRAS(genera
lly recognized as safe;安全であると一般に認められている)リストに掲載さ
れていることである。特に関心が持たれるのは、本発明における細胞宿主として
酵母、特にパン酵母(S.cerevisiae)を使用することである。特に関心が持たれ
る株としては、SC334(Mat a pep4-3 prbl-1122 ura3-52 leu2-3,112regl-501 ga
l1;(Hovland P.ら(1989)Gene 83:57-64)、BJ1995(Yeast Genetic Stock Centre,
1021 Donner Laboratory,Berkely,CA94720)、INVSC1(Matα hiw3Δ1 leu2 trp1-
289 ura3-52(Invitrogen,1600 Faraday Ave.,Carlsbad,CA 92008)およびIN
VSC2(Matα his3Δ200 ura3-167;(Invitrogen))が挙げられる。細菌細胞を宿
主として使用することも可能である。
これには、発酵法に有用でありうる大腸菌(E.coli)が含まれる。あるいは、PK
S様経路の産物をヨーグルトなどの産物中に導入するための宿主として、ラクト
バシラス(Lactobaccillus)種などの宿主を使用することができる。
形質転換された宿主細胞は、導入した構築物上に含まれるマーカーに関する選
択により同定することができる。あるいは、多くの形質転換技術は宿主細胞内に
多数のDNA分子を導入するため、分離したマーカー構築物を所望の構築物と共に
導入することができる。典型的には、形質転換された宿主は、それが選択培地上
で増殖する能力に関して選択される。選択培地は、抗生物質を含んでいたり、あ
るいは未形質転換宿主の増殖に必要な因子(例えば、栄養因子または増殖因子)
を欠いていてもよい。そのための導入マーカー遺伝子は、抗生物質耐性を付与し
、あるいは必須の増殖因子または酵素をコードし、形質転換宿主内で発現された
場合に選択培地上での増殖を可能にしうる。望ましくは、カナマイシンおよびア
ミノグリコシドG418に対する耐性に特に関心が持たれる(米国特許第5,034,322号
を参照されたい)。酵母形質転換体の場合には、酵母内で機能する任意のマーカ
ー(例えば、ウラシル、ロイシン、リシンまたはトリプトファンを欠く培地上で
増殖しうるもの)を使用することができる。
また、発現されたマーカータンパク質が直接的または間接的に検出可能な場合
に、形質転換宿主の選択を行なうことができる。該マーカータンパク質は、単独
で又は別のタンパク質との融合体として発現させることができる。該マーカータ
ンパク質は、その酵素活性により検出されるものであってもよく、例えば、βガ
ラクトシダーゼは基質X-galを着色産物に変換することが可能であり、ルシフェ
ラーゼはルシフェリンを発光性産物に変換することが可能である。該マーカータ
ンパク質は、その光生成または修飾特性により検出されるものであってもよく、
例えば、発光オワンクラゲ(Aequorea victoria)のグリーン蛍光タンパク質は
、青色光が照射されると蛍光を発する。該マーカータンパク質または分子タグ(
例えば、目的のタンパク質上のもの)を検出するために、抗体を使用することが
できる。該マーカータンパク質またはタグを発現する細胞は、例えば、視覚的に
、またはFACSまたは抗体を使用するパンニングなどの技術により選択することが
できる。
本発明の方法および組成物を用いて製造されたPUFAは、遊離脂肪酸として及び
/又はアシルグリセロール、リン脂質、硫脂質または糖脂質などのコンジュゲー
ト化形態で、宿主植物組織および/または植物部分において見出され、当技術分
野で良く知られている種々の手段により宿主細胞から抽出することができる。そ
のような手段には、有機溶媒での抽出、音波処理、例えば二酸化炭素を使用する
超臨界流体抽出、および圧搾(プレス)などの物理的手段、またはそれらの組合
せを含めることができる。特に関心が持たれるのは、メタノールおよびクロロホ
ルムでの抽出である。適宜、水層を酸性化して、負に荷電した部分をプロトン化
し、それにより有機層中への所望の産物の分配を増加させることができる。抽出
後、窒素気流下での蒸発により有機溶媒を除去することができる。該産物がコン
ジュゲート化形態で単離される場合には、該産物を酵素的または化学的に切断し
て、該遊離脂肪酸、または目的の、より単純なコンジュゲートを遊離させ、つい
で更なる操作に付して所望の最終産物を得る。望ましくは、コンジュゲート化形
態の脂肪酸を水酸化カリウムで切断する。
更なる精製が必要な場合には、標準的な方法を用いることができる。そのよう
な方法には、抽出、尿素での処理、分別晶出、HPLC、分別蒸留、シリカゲルクロ
マトグラフィー、高速遠心分離もしくは蒸留、またはこれらの技術の組合せを含
めることができる。アルキル化またはヨウ素化などの公知技術により、酸または
アルケニル基などの反応性基の保護を任意の工程で行なうことができる。用いる
方法には、メチルエステルを得るための脂肪酸のメチル化が含まれる。同様に、
任意の工程で保護基を除去することができる。望ましくは、DHAおよびEPAを含有
する画分の精製を、尿素での処理および/または分別蒸留により行なうことがで
きる。
本発明は、いくつかの用途を有する。本発明のDNAに基づくプローブは、関連
分子の単離方法またはPKS様遺伝子を発現する生物の検出方法において有用であ
る。該DNAまたはオリゴヌクレオチドは、プローブとして使用される場合には、
検出可能でなければならない。これは、通常、例えば修飾された残基の取込みに
より内部部位に又は5'もしくは3'末端に標識を付けることにより達成される。そ
のような標識は、直接検出されうるものであってもよく、あるいは検出
されうるように標識された二次分子に結合させることが可能であり、あるいは未
標識二次分子および検出されうるように標識された三次分子に結合させることが
可能である。この方法は、非許容レベルのバックグラウンドシグナルを伴わずに
満足に検出されうるシグナルを得るために実施可能である限り、拡張適用するこ
とができる。二次、三次または架橋系は、他の任意の分子(標識または他の抗体
を含む)に対する抗体の使用を含むことが可能であり、あるいは互いに結合する
任意の分子、例えば、ビオチン-ストレプトアビジン/アビジン系を関与させるこ
とが可能である。典型的には、検出可能な標識には、放射性同位体、化学的また
は酵素的に光を生成または改変する分子、検出可能な反応産物を与える酵素、磁
性分子、蛍光分子または結合に際して変化する蛍光または光放出特性を有する分
子が含まれる。標識方法の具体例は、米国特許第5,011,770号に記載されている
。あるいは、標的分子の結合は、標的に対するプローブの結合の際の溶解熱の変
化を等温滴定熱量測定により測定することにより、あるいは該プローブまたは標
的を表面上にコートし、それぞれ標的またはプローブの結合により生じる表面か
らの光の散乱の変化を検出することにより(例えば、BIAcore系で行なうことがで
きる)、直接検出することができる。
組換え手段により産生されるPUFAは、多種多様な領域において有用である。ヒ
トまたは動物を種々の形態のPUFAで補うと、添加したPUFAのレベルだけでなく、
それらの下流代謝産物のレベルも増加しうる。複雑な調節メカニズムは、種々の
PUFAを組合せること又はPUFAの種々のコンジュゲートを加えることが、そのよう
なメカニズムを阻害、制御または抑制して個体において所望のレベルの特異的PU
FAを得るために望ましいものとしうる。この場合、PKS様遺伝子またはアンチセ
ンスPKS様遺伝子転写産物の発現は、植物部分および/または植物組織中に見出
される特定のPUFAまたはその誘導体のレベルを改変しうる。PKS様遺伝子ポリペ
プチドをコードする領域は、単独で、または他の遺伝子と共に発現されて、未修
飾の組織および/または植物部分よりも高い割合の所望のPUFAを含有する又はヒ
トの母乳のPUFA組成に一層よく似たPUFA組成を含有する組織および/または植物
部分を与える(Prietoら,PCT公開WO 95/24494)。
開示している方法により製造したPUFAまたはその誘導体は、静脈内栄養補給を
受けている患者のための食物補充剤として、あるいは栄養失調を予防または治療
するために使用することができる。食物補充のためには、精製されたPUFAまたは
その誘導体を、通常用途において摂取者が所望の量のPUFAを摂取するように製剤
化された調理用油、脂肪またはマーガリン中に加えることができる。また、該PU
FAは、乳児用製剤、栄養補充剤または他の食品中に加えることが可能であり、ま
た、抗炎症剤およびコレステロール低下剤として有用である。
EPAなどの特定の脂肪酸は、ヒトの母乳のPUFA組成をより良く模倣するよう乳
児用製剤の組成を改変するために使用することができる。ヒトの母乳中に優勢な
トリグリセリドは、1,3-ジ-オレオイル-2-パルミトイルであると報告されており
、2-パルミトイルグリセリドは2-オレオイルまたは2-リネオイルグリセリドより
良く吸収されると報告されている(米国特許第4,876,107号)。典型的には、ヒト
の母乳は、DHAを約0.15%〜約0.36%、EPAを約0.03%〜約0.13%、ARAを約0.30
%〜約0.88%、DGLAを約0.22%〜約0.67%、およびGLAを約0.27%〜約1.04%含
む脂肪酸プロフィールを有する。乳児用製剤におけるGLA:DGLA:ARAの好ましい
比は、それぞれ約1:1:4〜約1:1:1である。当業者であれば、これらのPUFAの
比を与える油の量を、過度な実験を行なうことなく決定することができる。また
、動物の組織または乳の脂肪酸組成をヒトまたは動物の消費にとって一層好まし
いものに改変するために、PUFAまたはそれを含有する宿主細胞を動物用食物補充
剤として使用することができる。
医薬用途(ヒト用または獣医学用)には、該組成物を一般には経口的に投与す
るが、それらがうまく吸収されうる任意の経路により、例えば、非経口的(すな
わち、皮下、筋肉内または静脈内)、直腸内または膣内、または局所的(例えば
、皮膚軟膏またはローションとして)に投与することが可能である。利用可能な
場合には、ゼラチンカプセル剤が経口投与の好ましい形態である。また、前記の
食物補充剤は、経口投与経路を意図したものであってもよい。本発明の不飽和酸
は、コンジュゲート化形態で又は該脂肪酸の塩、エステル、アミドまたはプロド
ラッグとして投与することができる。製薬上許容される塩が本発明に含まれ、特
に好ましいのは、ナトリウム、カリウムまたはリチウム塩である。また、PCT公
開
WO 96/33155に記載のN-アルキルポリヒドロキシアミン塩、例えばN-メチルグル
カミンが含まれる。好ましいエステルはエチルエステルである。
本発明のPUFAは、単独で又は製薬上許容される担体もしくは賦形剤と共に投与
することができる。また、固体塩としては、PUFAを錠剤形態で投与することがで
きる。静脈内投与には、PUFAまたはその誘導体を、Intralipidsなどの市販の製
剤中に封入することができる。所望により、製剤の個々の成分は、単一または複
数の使用のためのキットの形態で、別々に提供されることが可能である。個々の
脂肪酸の典型的な投与量は、1日約0.1mg〜20gまたは更には100g、好ましくは、
1日10mg〜1、2、5または10g(必要に応じて)、あるいはその誘導体形態のモ
ル等価量である。トリグリセリドとして計算した場合に約2〜約30重量%の脂肪
酸を含む非経口栄養組成物が、本発明に含まれる。所望により、他のビタミン、
特に脂溶性ビタミン、例えばビタミンA、D、EおよびL-カルニチンを含むことが
できる。所望により、トコフェロールなどの保存剤を、典型的には約0.1重量%
で加えることができる。
以下の実施例は、例示にすぎず、本発明を限定するものではない。
実施例 実施例1 ビブリオ・マリヌス(Vibrio marinus)に由来するORFの実体
シュウワネラ(Shewanella)のORF6(Sp ORF6)配列に基づくプライマー[FW
5'プライマー:ビブリオ(Vibrio)およびSS9に関してそれぞれCUACUACUACUACC
AAGCTAAAGCACTTAACCGTGおよびCUACUACUACUAACAGCGAAATGCTTATCAAG、ならびに3'B
Wプライマー:ビブリオ(Vibrio)およびSS9の両方に関してCAUCAUCAUCAUGCGACC
AAAACCAAATGAGCTAATAC]と、ビブリオ(Vibrio)およびEPAを産生するボロフィ
リック・フォトバクター(borophyllic photobacter)(UC San DiegoのBartlett
博士から提供された)に由来するゲノムDNA鋳型を使用するポリメラーゼ連鎖反
応(PCR)により、ビブリオ・マリヌス(Vibrio marinus)に関しては約400塩基
の、SS9に関しては約900塩基のPCR産物を得、これらは、相同アミノ酸の直接計
数による測定でSp ORF6
の対応断片に対して75%を上回る相同性を示した(図25を参照されたい)。
ついでビブリオ(Vibrio)コスミドライブラリーを調製し、ビブリオ(Vibrio
)ORF6PCR産物をプローブとして使用して(図26を参照されたい)、少なくともOR
F6を含有するクローンをコロニーハイブリダイゼーションにより選択した。
選択したコスミド(例えば、コスミド#9およびコスミド#21)の追加的配列を
介して、シュウワネラ(Shewanella)のORF6〜9と相同で該ORF6〜9と同じ連続し
た順序(ORF6〜9)で構成されたORFを有するビブリオ(Vibrio)クラスター(図
5)を得た(図7)。この配列からのビブリオ(Vibrio)ORFは、17394〜36115位に
見出され、ORF6〜9を含む。
表 ビブリオ(Vibrio)オペロンの図
17394〜25349 長さ=7956nt
25509〜28157 長さ=2649nt
28209〜34262 長さ=6054nt
34454〜36115 長さ=1662nt
シュウワネラ(Shewanella)遺伝子のORFの名称は、図4に開示のものに基づい
ており、シュウワネラ(Shewanella)クラスターに関して公開されているもの(
Yazawaら,米国特許第5,683,898号)とは異なる。例えば、図4のORF3は、その
他のORFとは逆方向に読取られ、Yazawaら,米国特許第5,683,898号との比較では
、Yazawaら,米国特許第5,683,898号には開示されていない(図24を参照されたい
)。
ORF3に相同な配列は、ORF6付近(ORF6の17000塩基上流)にもORF9付近(O
RF9の約4000塩基下流)にも見出されなかった。ホスホパンテテイニルトランス
フェラーゼに特徴的なモチーフ(Lambalotら(1996)Current Biology 3:923-93
6)は、これらのモチーフに関してスクリーニングされたビブリオ(Vibrio)配
列には存在しなかった。また、ビブリオ(Vibrio)およびSC2Aシュウワネラ(She
wanella)(同様にEPAを産生しうるUniversity of San Diegoにより提供されたも
う1つの細菌)のゲノム消化物中には、Sp ORF3に由来
するプローブに対するマッチが存在しなかった。ORF3はビブリオ(Vibrio)中
に存在しうるが、そのDNAは、Sp ORF3のDNAとは相同でない可能性があり、およ
び/または、配列決定しなかったゲノム部分に位置している可能性がある。
図6には、ORF6〜9を含む約19kbのビブリオ(Vibrio)クローンの配列を記載
する。図7および8では、ビブリオ・マリヌス(Vibrio marinus)およびシュウ
ワネラ・プトレファシエンス(Shewanella putrefaciens)のPKS様系の遺伝子ク
ラスター体制を比較する。図9〜12は、それぞれ、対応するORF6、7、8および
9の間の配列相同性のレベルを示す。
実施例2 ORF 8はDHA産生を指令する
実施例1に記載のとおり、Sp ORF6に相同的なDNAが、同様にEPAを産生しうる
無関係な種であるSS9フォトバクター(Photobacter)において見出された。また
、Sp ORF6〜9と相同なORFが、DHAを産生するビブリオ・マリヌス(Vibrio marinu
s)において見出された。これらのORFから、大腸菌(E.coli)においてEPA合成を抑
制するSp ORF6〜9(Yazawa(1996)前掲)のそれぞれにおける欠失をビブリオ(Vi
brio)由来の対応相同遺伝子で相補する一連の実験を設計した。
該Sp EPAクラスターを使用して、該ビブリオ(Vibrio)ORF6〜9のいずれかがD
HAの産生を引き起こすか否かを確認した。該SP ORFのそれぞれに関して得られた
欠失突然変異体は、EPAおよびDHAヌルである。ついで各欠失を、lacプロモータ
ーの後方で発現される対応ビブリオ(Vibrio)ORFで相補した(図13)。
ビブリオ(Vibrio)ORF6によるSp ORF6欠失の相補は、EPAの産生を回復させ
た。Sp ORF7およびORF9の欠失を相補することにより、同様の結果が得られた
。これに対して、Sp ORF8欠失の相補は、C22:6の産生を引き起こした。したが
って、ビブリオ(Vibrio)ORF8は、DHAの合成における鍵要素であるらしい。図
14および15は、ビブリオ(Vibrio)ORF6によるSp del ORF6の相補(EPA(DHAは無
し))およびビブリオ(Vibrio)ORF8によるSp del ORF
8の相補(DHA)からの脂肪酸プロフィールのクロマトグラムを示す。図16は、O
RF8の相補に関する脂肪酸の割合(%)を示し、ここでもまた、ORF8がDHAの産
生を引き起こすことが示されている。
これらのデータは、関連した又は類似したORFを有するポリケチド様合成遺伝
子を合体させ異種系において発現させ、該宿主系における異なるPUFA種の産生の
ために使用することができること、およびORF8が、最終的な鎖長の決定におい
て何らかの役割を有することを示している。ビブリオ(Vibrio)ORF6、7、8
および9は、EPA合成を回復させる。また、ビブリオ(Vibrio)ORF8の場合には
、DHA(約0.7%)がEPA(約0.6%)と共に存在し、このことは、この遺伝子が、
これらの系に関するDHA対EPAの合成の指令において重要な役割を果たすことを示
している。
実施例3 DHA の産生のための要件
クラスターORF6〜9のビブリオ(Vibrio)ORFをビブリオ(Vibrio)ORF8と組
合せてどのように使用するかを決定し、DHAの合成を明らかにするために、ビブ
リオ(Vibrio)ORF8とその他のビブリオ(Vibrio)ORF6〜9クラスターの一部ま
たは全部とのいくつかの組合せを作製した。
ビブリオ(Vibrio)ORF6〜9を、Sp ORF3で相補した。この相補の結果を、図1
6bおよび16cに示す。測定されたDHAの有意な量(約9%を上回る)およびEPAの
不存在は、Sp ORF3との組合せの場合にはビブリオ(Vibrio)ORF6〜9以外のORF
がDHA合成に要求されないことを示唆している。これは、Sp ORF3が、細菌PUFA
の合成において普遍的な役割を果たすことを示唆している。
DHA対EPAの産生に関しては、DHAを特異的に産生させるためには、ビブリオ(V
ibrio)ORF8と該6〜9クラスターの他のビブリオ(Vibrio)ORFとを組合せるこ
とが必要かもしれない。DHAの合成におけるビブリオ(Vibrio)ORF9の役割およ
びビブリオ(Vibrio)ORF(6,8)、(7,8)、(8,9)などの各組合せの役割について
は、現在研究中である。
実施例4 植物発現構築物
大きな断片のクローニングおよびそれに続くそれらの操作を容易にするために
、非常に少数の制限部位を有するクローニングベクターを設計した。配列AAGCCC
GGGCTTおよびGTACAAGCCCGGGCTTAGCTを有するオリゴヌクレオチドを互いにアニー
リングさせることにより、アダプターを組立てた。ベクターpBluescript II SK+
(Stratagene)を制限エンドヌクレアーゼAsp718およびSstIで消化した後、この
アダプターを該ベクターに連結した。得られたベクターpCGN7769は、平滑末端化
DNA断片のクローニングのための単一のSrfI(および埋め込まれたSmaI)クロー
ニング部位を有していた。
pCGN3223(米国特許第5,639,790号)由来のナピン(napin)カセットを含有す
るプラスミドを修飾して、それを、複数の制限部位を含有する大きなDNA断片の
クローニングに、より有用なものにし、植物バイナリー形質転換ベクター内への
複数のナピン融合遺伝子のクローニングを可能にした。ベクターpBCSK+(Strata
gene)を制限エンドヌクレアーゼBssHIIで消化した後、配列CGCGATTTAAATGGCGCG
CCCTGCAGGCGGCCGCCTGCAGGGCGCGCCATTTAAATの自己アニール化オリゴヌクレオチド
を含むアダプターを該ベクターに連結して、ベクターpCGN7765を構築した。プラ
スミドpCGN3223およびpCGN7765をNotIで消化して、共に連結した。得られたベク
ターpCGN7770(図17)は、pCGN7765バックボーンと、pCGN3223由来のナピン種子
特異的発現カセットとを含有する。シュウワネラ(Shewanella)構築物
PCRを用いて適当なクローニング部位をORFの5'および3'に導入するために、シ
ュウワネラ(Shewanella)タンパク質をコードする遺伝子を突然変異誘発した。
該PCR反応の鋳型は、コスミドpEPA(Yazawaら,前掲)のDNAであった。Pfu DNA
ポリメラーゼを製造業者のプロトコールに従い使用して、PCR反応を行なった。S
rfIで消化されたpCGN7769中に、該PCR産物をクローニングした。プライマーCTGC
AGCTCGAGACAATGTTGATTTCCTTATACTTCTGTCCおよびGGATCCAGATCTCTAGCTAGTCTTAGCTG
AAGCTCGAを使用してORF3を増幅し、プラスミドpCGN8520を生成した。
プライマーTCTAGACTCGAGACAATGAGCCAGACCTCTAAACCTACAおよびCCCGGGCTCGAGCTAAT
TCGCCTCACTGTCGTTTGCTを使用してORF6を増幅し、プラスミドpCGN7776を生成し
た。プライマーGAATTCCTCGAGACAATGCCGCTGCGCATCGCACTTATCおよびGGTACCAGATCTT
TAGACTTCCCCTTGAAGTAAATGGを使用してORF7を増幅し、プラスミドpCGN7771を生
成した。プライマーGAATTCGTCGACACAATGTCATTACCAGACAATGCTTCTおよびTCTAGAGTC
GACTTATACAGATTCTTCGATGCTGATAGを使用してORF8を増幅し、プラスミドpGCN7775
を生成した。プライマーGAATTCGTCGACACAATGAATCCTACAGCAACTAACGAAおよびTCTAG
AGGATCCTTAGGCCATTCTTTGGTTTGGCTTCを使用してORF9を増幅し、プラスミドpCGN7
773を生成した。
pCGN7771、pCGN8520およびpCGN7773のインサートのDNA配列決定により、該PCR
産物の完全性を確認した。ORF6およびORF8は非常に大きなサイズを有していた
。全クローンの配列決定を避けるために、該ORFの中央部分をpEPAの制限断片で
置換した。ORF6の中央部分を含有するpEPAの6.6キロベースのPacI/BamHI断片を
、PacI/BamHIで消化されたpCGN7776に連結して、pCGN7776B4を得た。ORF8の中
央部分を含有するpEPAの4.4キロベースのBamHI/BglII断片を、BamHI/BglIIで消
化されたpCGN7775に連結して、pCGN7775Aを得た。該pEPA断片に隣接した領域お
よび該クローニング結合部を、DNA配列決定により確認した。
プラスミドpCGN7771をXhoIIおよびBglIIで切断し、SalIおよびBglIIで消化後
のpCGN7770に連結した。得られたナピン/ORF7遺伝子融合プラスミドをpCGN7783
と称することにした。プラスミドpCGN8520をXhoIおよびBglIIで切断し、SalIお
よびBglIIで消化後のpCGN7770に連結した。得られたナピン/ORF3遺伝子融合プ
ラスミドをpCGN8528と称することにした。プラスミドpCGN7773をSalIおよびBamH
Iで切断し、SalIおよびBglIIで消化後のpCGN7770に連結した。得られたナピン/O
RF9遺伝子融合プラスミドをpCGN7785と称することにした。プラスミドpCGN7775
AをSalIで切断し、SalI
で切断後のpCGN7770に連結した。得られたナピン/ORF8遺伝子融合プラスミドを
pCGN7782と称することにした。プラスミドpCGN7776B4をXhoIで切断し、SalIで消
化後のpCGN7770に連結した。得られたナピン/ORF6遺伝子融合プラスミドをpCGN
7786B4と称することにした。
植物形質転換用のバイナリーベクターpCGN5139を、pCGN1558(McBrideおよびS
ummerfelt(1990)Plant Molecular Biology,14:269-276)から構築した。pCGN1558
のポリリンカーを、HindIII/Asp718断片として、ユニークな制限エンドヌクレア
ーゼ部位AscI、PacI、XbaI、SwaI、BamHIおよびNotIを含有するポリリンカーで
置換した。該Asp718およびHindIII制限エンドヌクレアーゼ部位は、pCGN5139内
に保有されている。pCGN5139をNotIで消化し、NotIで消化されたpCGN7786B4に連
結した。ナピン/ORF6遺伝子融合体を含有する得られたバイナリーベクターを、
pCGN8533と称することにした。プラスミドpCGN8533をSse8387Iで消化し、Sse838
7Iで消化されたpCGN7782に連結した。ナピン/ORF6遺伝子融合体およびナピン/O
RF8遺伝子融合体を含有する得られたバイナリーベクターを、pCGN8535(図18)
と称することにした。
植物バイナリー形質転換ベクターpCGN5139をAsp718で消化し、Asp718で消化さ
れたpCGN8528に連結した。ナピン/ORF3遺伝子融合体を含有する得られたバイナ
リーベクターを、pCGN8532と称することにした。プラスミドpCGN8532をNotIで消
化し、NotIで消化されたpCGN7783に連結した。ナピン/ORF3遺伝子融合体および
ナピン/ORF7遺伝子融合体を含有する得られたバイナリーベクターを、pCGN8534
と称することにした。プラスミドpCGN8534をSse8387Iで消化し、Sse8387Iで消化
されたpCGN7785に連結した。ナピン/ORF3遺伝子融合体、ナピン/ORF7遺伝子融
合体およびナピン/ORF9遺伝子融合体を含有する得られたバイナリーベクターを
、pCGN8537(図19)と称することにした。ビブリオ(Vibrio)構築物
植物発現用のビブリオ(Vibrio)ORFはすべて、出発分子としてビブリオ(Vib
rio)コスミド#9を使用して得た。ビブリオ(Vibrio)コスミド#9は、実施例1
に記載のビブリオ(Vibrio)ORF6PCR産物を使用したビブリオ(Vibrio)
コスミドライブラリーから単離したコスミドの1つであった。
PCRプライマーTCTAGAGTCGACACAATGGCGGAATTAGCTGTTATTGGTおよびGTCGACGGATCC
CTATTTGTTCGTGTTTGCTATATGを使用し、ビブリオ(Vibrio)ORF7をコードする遺
伝子(図6)を突然変異誘発して、該オープンリーディングフレームの上流にSal
I部位を、該オープンリーディングフレームの下流にBamHI部位を導入した。PCR
プライマーGTCGACGGATCCACAATGAATATAGTAAGTAATCATTCGGCAおよびGTCGACCTCGAGTT
AATCACTCGTACGATAACTTGCCを使用し、ビブリオ(Vibrio)ORF9をコードする遺伝
子(図6)を突然変異誘発して、該オープンリーディングフレームの上流にBamHI
部位を、該オープンリーディングフレームの下流にXhoHI部位を導入した。該制
限部位は、PCRを用いて導入し、突然変異誘発したプラスミドの完全性はDNA配列
により確認した。ビブリオ(Vibrio)ORF7遺伝子をSalI-BamHI断片として、Sal
-BglIで消化されたpCGN7770(図17)のナピンカセット中にクローニングして、p
CGN8539を得た。ビブリオ(Vibrio)ORF9遺伝子をSalI-BamHI断片として、Sal-
BglIで消化されたpCGN7770(図17)のナピンカセット中にクローニングして、pC
GN8543を得た。
ビブリオ(Vibrio)ORF6およびORF8をコードする遺伝子を突然変異誘発して
、該オープンリーディングフレームに隣接するSalI部位を導入した。ORF6に隣
接するSalI部位を、PCRを用いて導入した。使用したプライマーは、CCCGGGTCGAC
ACAATGGCTAAAAAGAACACCACATCGAおよびCCCGGGTCGACTCATGACATATCGTTCAAAATGTCACT
GAであった。該PCR産物の中央の7.3kbのBamHI-XhoI断片を、ビブリオ(Vibrio)
コスミド#9由来の対応断片で置換した。突然変異誘発したORF6をpCGN7770のナ
ピンカセットのSalI部位中にクローニングして、プラスミドpCGN8554を得た。
ORF8の突然変異誘発では、異なる方法を用いた。ORF8を含有するBamHI断片
をプラスミドpHC79中にサブクローニングして、コスミド#9"を得た。該コード領
域の上流のSalI部位を、オリゴヌクレオチドTCGACATGGAAAATATTGCAGTAGTAGGTATT
GCTAATTTGTTCおよび
CCGGGAACAAATTAGCAATACCTACTACTGCAATATTTTCCATGを含むアダプター上に導入した
。該アダプターを、SalIおよびXmaIでの消化後にコスミド#9"に連結した。突然
変異誘発のためにPCRを用いて、SalI部位を終結コドンの下流に導入した。該終
結コドンを含有するDNA断片は、プライマーTCAGATGAACTTTATCGATACおよびTCATGA
GACGTCGTCGACTTACGCTTCAACAATACTと共にコスミド#9"を鋳型として使用して作製
した。該PCR産物を制限エンドヌクレアーゼClaIおよびAatIIで消化し、同じ酵素
で消化されたコスミド#9"誘導体中にクローニングして、プラスミド8P3を得た。
8P3からのSalI断片を、SalIで消化されたpCGN7770中にクローニングして、pCGN8
515を得た。
ナピンプロモーターの制御下にシュウワネラ(Shewannella)ORF3を含有する
バイナリー植物形質転換ベクターであるpCGN8532をNotIで消化し、ナピンビブリ
オ(Vibrio)ORF7遺伝子融合体を含有するpCGN8539のNotI断片を挿入して、pCG
N8552を得た。ナピンプロモーターの制御下にシュウワネラ(Shewannella)ORF
3ならびにビブリオ(Vibrio)ORF7および9を含有するプラスミドpCGN8556(
図23)を、Sse8387で消化されたpCGN8552中にpCGN8543からのSse8357断片をクロ
ーニングすることにより構築した。
NotIで消化された、プラスミドpCGN8515からのナピン/ORF8遺伝子を、NotIで
消化された植物バイナリー形質転換ベクターpCGN5139中にクローニングして、pC
GN8548を得た。Sse8387で消化された、pCGN8554からのナピン/ORF6遺伝子をつ
いで、pCGN8566のSse8387部位中にクローニングした。ナピン/ORF6遺伝子融合
体およびナピン/ORF8遺伝子融合体を含有する得られたバイナリーベクターを、
pCGN8560(図22)と称することにした。
実施例5 植物の形質転換およびPUFAの産生 EPA の産生
シュウワネラ(Shewanella)構築物pCGN8535およびpCGN8537は、同一または別
々の植物中に形質転換することができる。別々の植物を使用する場合には、該ト
ランスジェニック植物を交雑させて、両方の構築物を含有するヘテロ接
合種子を得ることができる。
pCGN8535およびpCGN8537を、西洋アブラナ(Brassica napus)中に別々に形質
転換する。カナマイシンを含有する培地上で植物を選択し、該構築物の完全長イ
ンサートによる形質転換を、サザン分析により確認する。また、ORF3、6、7
、8または9にコードされる酵素のタンパク質発現について、ウエスタン分析を
用いて未熟種子を試験することができ、この場合には、最も良く発現しているpC
GNE8535およびpCGN8537T1で形質転換された植物を、更なる実験および交雑のた
めに選択し成長させる。あるいは、サザン法で挿入が示された、T1で形質転換さ
れた植物を、互いに交雑させて、両方の挿入を有するT2種子を得る。この種子の
うちの半分の種子を、脂肪画分中のEPAの発現から直接分析することができる。
最良のEPA産生の事象を有する残りの半分の種子を成長させ、従来の育種技術に
より発育させて、EPAの産生のためのアブラナ(Brassica)系統を得る。
また、プラスミドpCGN7792およびpCGN7795を、西洋アブラナ(Brassica napus
)宿主細胞内に同時に導入する。標準的な形質転換プロトコール(例えば、米国
特許第5,463,174号および米国特許第5,750,871号を参照されたい)を用いるが、
両プラスミドを含有するアグロバクテリア(Agrobacteria)を共に混合し、共培
養工程中にアブラナ(Brassica)子葉と共にインキュベートする。得られた植物
の多数は、両プラスミドで形質転換されている。DHA の産生
EPAの産生に関して記載したとおりに、DHAの産生のために、pCGN8556およびpC
GN8560を別々の植物内に又は同時に同一植物内に導入することにより、植物を形
質転換する。
別法として、シュウワネラ(Shewanella)ORFをビブリオ(Vibrio)のORF6お
よび8と共に協同的に、例えば、構築物pCGN8560およびpCGN7795で植物を形質転
換することにより使用し、植物細胞内での該対応ORFの発現を可能にすることが
できる。この組合せは、シュウワネラ(Shewanella)のORF3、7および9をビ
ブリオ(Vibrio)由来のORF6およびビブリオ(Vibrio)由来のORF8と共に含む
PKS様遺伝子配置を与える。前記のとおり、ORF8は、最
終的なPUFA産物の種類を制御するPKS様遺伝子である。したがって、得られた形
質転換植物は、植物油中にDHAを産生する。
実施例6 シュウワネラ(Shewanella)PUFA遺伝子を含有するトランスジェニック植物アブ ラナ(Brassica)植物
プラスミドpCGN8535およびpCGN8537で同時形質転換した52個の植物を、PCRに
より分析して、該シュウワネラ(Shewanella)ORFが該トランスジェニック植物
内に存在するか否かを確認した。41個の植物がプラスミドpCGN8537を含有し、35
個の植物がpCGN8535を含有していた。該植物のうちの11個は、EPAの合成に必要
な5個のORFすべてを含有していた。いくつかの植物は、該バイナリープラスミ
ドの両方からの遺伝子を含有していたが、該ORFの少なくとも1つを欠いている
らしかった。さらに約20個の植物に関する分析を現在実施中である。
pCGN8535のみで形質転換した23個の植物をPCRにより分析して、該シュウワネ
ラ(Shewanella)ORFが該トランスジェニック植物内に存在するか否かを確認し
た。これらの植物のうちの13個は、シュウワネラ(Shewanella)ORF6およびシ
ュウワネラ(Shewanella)ORF8の両方を含有していた。該植物のうちの6個は
、1個のORFのみを含有していた。
pCGN8537のみで形質転換した19個の植物をPCRにより分析して、該シュウワネ
ラ(Shewanella)ORFが該トランスジェニック植物内に存在するか否かを確認し
た。該植物のうちの18個は、シュウワネラ(Shewanella)ORF3、シュウワネラ
(Shewanella)ORF7およびシュウワネラ(Shewanella)ORF9を含有していた。
1個の植物はシュウワネラ(Shewanella)ORF3および7を含有していた。シロイヌナズナ(Arabidopsis)
プラスミドpCGN8535およびpCGN8537で同時形質転換した40個を超えるトランス
ジェニック・シロイヌナズナ(Arabidopsis)植物が、本発明者らの生育箱内で
成長中である。該ORFのいずれが該植物内に存在するのかを確認するためのPCR分
析が、現在進行中である。
種々の生物に由来するPKS様遺伝子を使用して、植物細胞を形質転換し、該形
質転換植物細胞内でのPUFAの生合成を介して植物細胞膜または植物種子油の脂肪
酸組成を修飾することが、本発明により可能となった。該PKS様系の性質のため
、該植物細胞内で産生された脂肪酸最終産物は、多数の特異的化学構造を含有す
るように選択または設計することができる。例えば、該脂肪酸は、以下の変異体
を含むことが可能である:該炭素鎖に沿った種々の位置のケトまたはヒドロキシ
ル基の数における変異;二重結合の数および型(シスまたはトランス)における
変異;該炭素直鎖からの分枝(メチル、エチルおよびより長い分枝部分)の数お
よび型における変異;および飽和炭素における変異。また、最終産物脂肪酸の個
々の長さは、使用する個々のPKS様遺伝子により制御することができる。
本明細書中で言及したすべての刊行物および特許出願は、本発明に関連する当
業者の技術水準に相当する。すべての刊行物および特許出願は、個々の刊行物ま
たは特許出願が参照により組み入れられると具体的かつ個別的に示されている場
合と同じ程度に、参照により本明細書に組み入れるものとする。
以上で本発明は十分に記載されており、添付の請求の範囲の精神または範囲か
ら逸脱することなく本発明に多数の変更および改変を施すことが可能であること
が、当業者に明らかであろう。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION
Production of polyunsaturated fatty acids by expressing polyketide-like synthetic genes in plants
Introduction Field of the invention
The present invention relates to an enzyme capable of modifying long chain polyunsaturated fatty acids (PUFA) in a host cell, and
Modulation of levels of enzyme components and / or production of PUFAs in host cells
Constructs and methods for making. The present invention relates to Shuwanella putrefa.
Shewanella putrefaciens and Vibrio marinus
eusosapentenoic acid (eicosapentenoic aci)
d (EPA)).background
Two major families of polyunsaturated fatty acids (PUFAs) are eicosapentaenoic acid.
Which are ω3 fatty acids and ω6 fatty acids such as arachidonic acid. PUFA is the plasma membrane of cells
In the plasma membrane, it is found in a phospholipid-like form.
And can also be found in forms such as triglycerides. PUFA also
Humans and animals such as rostacyclin, leukotrienes, prostaglandins
Act as precursors for other important molecules. Important long-chain PUFAs include a variety of
Docosahexenoic acid found mainly in fish oils
d (DHA)) and eicosapentaenoic acid (EPA), primrose (Oenothera bienni)
s), Borago officinalis and blackcurrant (Ribes nigrum)
Gamma-linolenic acid (GLA) found in the seeds of many plants, such as marine oils and plants
Stearidonic acid (SDA) found in seeds, and found in filamentous fungi with GLA
Arachidonic acid (ARA). ARA is purified from animal tissues such as liver and adrenal glands.
Can be manufactured. Some of the marine bacteria that synthesize either EPA or DHA
The genus is known. DHA is present in human milk along with ARA.
PUFAs are responsible for proper development, especially in infant brain development, and tissue formation and repair
Is necessary for For example, DHA is found in many human cell membranes, especially neurons (gray matter), muscle
It is an important component of cells and sperm and affects the development of brain
It is considered essential for the development of children. EPA and DHA have a number of nutritional and
Has physical use. For example, if you have diabetes (especially non-insulin-dependent diabetes)
Affected adults have deficiencies in DHA levels, which are thought to contribute to later coronary status.
And imbalance. Therefore, foods containing harmonious DHA may not
May be useful.
For DHA, oil and egg yolk fractions from various marine organisms, cold-water marine fish
There are many commercial production sources. Purification of DHA from fish sources is technically
Difficulty costs relatively high, making DHA expensive and undersupplied.
Amphidinium, Schyzochytrium
In any algae and marine fungi such as Thraustochytrium,
DHA represents up to 48% of the fatty acid content of the cells. A small number of bacteria also produce DHA
It has been reported. These are generally VIbrio marinus
us) and other deep-sea bacteria. As for ARA, the genus Mortierella
, Entomophthora, Phytium and Chinori
Microorganisms containing the genus Porphyridium can be used for commercial production. SD
Commercial origin of A includes Trichodesma and Echium
Genera is included. Commercial origins of GLA include primrose, black currant and
Lulitisha is included. However, commercial production of PUFAs from natural sources
There are several drawbacks associated with: The natural origin of PUFAs such as animals and plants is extremely
Tend to have a non-uniform oil composition. Oil from these sources may be
To separate the desired PUFAs or to produce one or more desired PUFA-rich oils,
Bottom purification may be required.
Also, natural sources are subject to uncontrolled fluctuations in availability. Fish
Resources can be naturally mutated or depleted by overfishing. animal
Oil, and especially fish oil, may have accumulated environmental pollutants. Weather and
Disease can cause fluctuations in yield from both fish and plant sources
.
The arable land available for the production of alternative oil-producing crops is
The remaining arable land is subject to competition from increased demand for food production. PUFA
Producing crops (eg, rulitia) are not adapted for commercial cultivation and
There is a possibility that it cannot be obtained sufficiently in one cultivation. Therefore, such crops
Cultivation is economically competitive if more profitable and established crops can be grown
Do not have. Large-scale fermentation of organisms such as Shewanella is high.
Expensive. Natural animal tissues contain only small amounts of ARA and are difficult to process.
Microorganisms such as Porphyridium and Shewanella are commercially available.
It is difficult to culture on a scale.
Dietary supplements and pharmaceutical formulations containing PUFAs retain drawbacks of PUFA origin
there is a possibility. Replenishers, such as fish oil capsules, have low levels of certain desired ingredients.
Or do not contain it and therefore require large doses. High doses reduce contaminants
Leads to high levels of intake of undesirable ingredients, including: Excessive addition can result from endogenous biosynthesis.
Other necessary fats in various lipid fractions in vivo, causing suppression of the pathway
Fatty acid supplements can cause competition with acids and have undesirable consequences.
Care must be taken when applying fillers. For example, eating foods rich in ω3 fatty acids
Eskimos have a high propensity to bleed (US Pat. No. 4,874,603). Fish oil
It has a pleasant flavor and aroma, which can be economically separated from desired products such as food supplements.
It may not be possible to release them. The unpleasant flavor and aroma of the replenisher
Such a dosage regimen involving the drug may be undesirable and may
Compliance may be hindered.
A number of enzymes have been identified that are involved in PUFA biosynthesis. Linoleic acid
(LA, 18: 2 Δ9, 12) is converted to oleic acid (18: 1 Δ9) by Δ12-desaturase.
Produced from GLA (18: 3 Δ6,9,12) is ligated by Δ6-desaturase
Produced from luic acid (LA, 18: 2 Δ9, 12). ARA (20: 4 Δ5,8,11,14) is Δ5-de
Produced from DGLA (20: 3 Δ8,11,14) catalyzed by saturase. Stingray
Cosapentaenoic acid (EPA) has five double bonds (Δ5,8,11,14,1) all in cis configuration.
It is a 20-carbon ω3 fatty acid containing 7). EPA and related DHA (Δ4,7,10,1
3,16,19, C22: 6) are converted to oleic acid by a series of extension and desaturation reactions.
Produced from formic acid. Also extends PUFA with 18 carbon atoms to carbon chain lengths 20 and 22
To do this, elongase is required. However, animals
Can convert oleic acid (18: 1 Δ9) to linoleic acid (18: 2 Δ9,12)
Absent. Similarly, mammals synthesize μ-linolenic acid (ALA, 18: 3 Δ9, 12, 15)
Can not do. Other eukaryotes, including fungi and plants, are at positions Δ12 and Δ15
Has enzymes to desaturate. Therefore, the major polyunsaturated fatty acids in animals are
And / or linoleic acid (18: 2 Δ9,12) or μ-lino
Derived from desaturation and elongation of renic acid (18: 3 Δ9,12,15).
Polyunsaturated fatty acids are considered useful for nutritional, pharmaceutical, industrial and other purposes
You. The widespread supply of polyunsaturated fatty acids from natural sources and chemical synthesis is
Does not meet. Linoleic acid common to most plant species (LA, 18: 2 Δ9,12)
From fatty acids to more saturated, longer-chain PUFAs
Required for the isolated desaturase and elongase enzymes
Even for EPA and DHA, to achieve expression,
Manipulation of plant host cells requires expression of five or six separate enzyme activities
It is possible that for the mass production of such PUFAs, additional operating effort (e.g.
For example, down-regulation, mutagenesis or
Higher enzyme activity by targeting enzymes to plastid organelles
Operation). Therefore, species that naturally produce these fatty acids
Obtaining genetic material involved in the biosynthesis of PUFAs, and from such isolated
Materials, alone or in combination, are engineered to allow the production of commercial quantities of PUFAs.
There is interest in expressing in heterologous systems that can be used.Related literature
Several genera of marine bacteria that synthesize either EPA or DHA have been identified
(DeLong and Yayanos, Applied and Environmental Microbiology (1986) 51: 730
-737). Researchers at the Sagami Chemical Research Institute found that marine bacteria
Gene cluster from Shewanella putrefaciens
EPA production in E. coli transformed with
You. EPA fatty acid synthesis in E. coli requires at least five open
A reading frame (ORF) is required. To date, these genes have been
No extensive characterization of the function of loaded proteins has been reported (Yazawa (1996
) Lipids 31, S-297; WO 93/23545; WO 96/21735).
Yazawa, Open Reading Framework Published in US Patent No. 5,683,898
The protein sequence of ORF3 is not a functional protein. Yazawa
The protein is transformed into a Shewanella PKS-like cluster (Genbank accession no.
73935) starting from the methionine codon at nucleotides 9016 to 9014
Ends with a stop codon at nucleotides 8185 to 8183 of the Shewanella PKS-like cluster
Is defined. However, this ORF is not available for all PKS-like
Under control of a heterologous promoter in a raster-containing E. coli strain
When expressed, the recombinant cells do not produce EPA.
Polyketides are synthesized using a set of enzymatic reactions similar to those of fatty acid synthesis.
(See review below: Hopwood and Sher)
man, Annu. Rev. Genet. (1990) 24: 37-66, and Katz and Donadio, Annual Revi.
ew of Microbiology (1993) 47: 875-912). Poly to produce new antibiotics
It has been proposed to use ketide synthase (Hutchinson and Fujii, Ann
ual Review of Microbiology (1995) 49: 201-238).
Summary of the Invention
Use of polyketide-like synthesis (PKS-like) genes in plants and plant cells
Novel compositions and methods for producing unsaturated fatty acids (PUFAs) are provided. fat
Known and proposed methods for producing PUFAs using acid synthesis genes and
In contrast, the present invention provides a method for producing PUFAs by using genes of the PKS-like system.
Constructs and methods are provided. The method comprises the steps of transforming an expression cassette with an expression cassette.
Growing (proliferating) a target host cell, wherein the expression cassette is within the host cell.
And the expression cassette is capable of modulating PUFA production.
5 'to the DNA sequence relative to genes (PKS-like genes) or components
Transcription and translation initiation tone linked in frame
Includes nodal regions. Alteration of the host cell's PUFA profile causes PUFA biosynthesis
This is achieved by expression after introducing a complete PKS-like system into the host cell. The present invention
For example, large-scale production of DHA and EPA, and host cells and edible plant tissues and
And / or useful for modifying the fatty acid profile of plant parts.
BRIEF DESCRIPTION OF THE FIGURES
Figure 1 shows the ORF names of the Shewanella EPA gene cluster.
You. FIG. 1A shows the organization of the gene, which is essential for EPA production in E. coli.
ORFs are numbered. FIG. 1B shows the names given to the subclones.
FIG. 2 shows ORF6 (FIG. 2A), ORF7 (FIG. 2B), ORF8 (FIG. 2C), ORF9 (FIG. 2D) and ORF
3 (FIG. 2E), Shewanella PKS-like domain structure, motifs and
Indicates a "Blast" match. Figure 2F shows Shewanella EPA
Structure of the region of the Anabeana chromosome associated with the domain present in the ORF
Show the structure.
Figure 3 shows pantethenylation of ORF3 in E. coli strain SJ16.
nylation).
FIG. 4 shows Shewane containing ORFs 3, 4, 5, 7, 8 and 9.
lla) is the sequence of the PKS-like cluster found in Start codon for each ORF
And the final codons are as follows: ORF3 (public but inactive): 9
ORF3 (active in EPA synthesis): 9157, 8186; ORF6: 13906, 22173;
ORF 7: 22203, 24515; ORF 8: 24518, 30529; ORF 9: 30730, 32358.
FIG. 5 shows Vibrio marinus containing ORFs 6, 7, 8 and 9.
2 shows the sequence of a PKS-like cluster in a DNA fragment of about 40 kb in s). Start codon for each ORF
And the final codons are as follows: ORF 6: 17394, 25352; ORF 7: 25509, 281
ORF 8: 28209, 34265; ORF 9: 34454, 36118.
FIG. 6 shows the approximately 19 kb PKS-like cluster of FIG. 5 containing ORFs 6, 7, 8 and 9.
The sequence of the parts is shown. The start codon and final codon for each ORF are as follows:
ORF 6: 411, 8369; ORF 7: 8526, 11177; ORF 8: 11226, 17282; ORF
9: 17471, 19135.
Figure 7 shows Shewanella putrefaciens and
Of PKS-like gene clusters from Vibrio marinus and Vibrio marinus
Show. FIG. 7B is the operon sequence of Vibrio marinus.
FIG. 8 shows that ORFs 6, 7 and 8 are in reading frame 2 and ORF 9 is in reading frame 2.
Vibrio marinus (shown in FIG. 7B)
It is an enlarged view of the PKS-like gene cluster part of Vibrio marinus).
Figure 9 shows Shewanella putrefaciens and
1 shows the sequence homology of ORF6 of Vibrio marinus and Vibrio marinus. Sh
The vertical axis indicates Shewanella ORF6, and the horizontal axis indicates Vibrio ORF6.
Shown on the axis. Lines indicate protein regions with 60% identity. Center
Repeat lines correspond to multiple ACP domains found in ORF6.
Figure 10 shows Shewanella putrefaciens and
2 shows the sequence homology of ORF7 of Vibrio marinus and Vibrio marinus. Sh
The vertical axis indicates Shewanella ORF7, and the Vibrio ORF7
Is shown on the horizontal axis. Lines indicate protein regions with 60% identity.
Figure 11 shows Shewanella putrefaciens and
1 shows the sequence homology of ORF8 of Vibrio marinus and Vibrio marinus. Sh
The vertical axis indicates Shewanella ORF8, and the horizontal axis indicates Vibrio ORF8.
Shown on the axis. Lines indicate protein regions with 60% identity.
Figure 12 shows Shewanella putrefaciens and
2 shows the sequence homology of ORF9 of Vibrio marinus and Vibrio marinus. Sh
The vertical axis indicates Shewanella ORF9, and the Vibrio ORF9
Is shown on the horizontal axis. Lines indicate protein regions with 60% identity.
FIG. 13 is a diagram of various complementation experiments and the resulting PUFA production. The video shown on the left
Large containing the Vibrio and Shewanella genes
The longest PUFAs produced in E. coli strains are shown on the right. The hollow frame is
1 shows an ORF derived from Shewanella. The black frame is from Vibrio
This shows the ORF.
FIG. 14 shows E. coli FadE- derived from Shewanella.
Of pEPAD8 (deleted ORF8) with ORF8 derived from Shewanella
5 is a chromatogram showing fatty acid production by The chromatogram is EPA
(20: 5) is shown.
FIG. 15 shows E. coli FadE- from Shewanella.
PEPAD8 (deleted ORF8) with ORF8 from Vibrio marinus
5 is a chromatogram showing fatty acid production by complementation. The chromatograph
The EPA (20: 5) and DHA (22: 6) peaks.
FIG. 16 shows PUFA values from ORF8 complementation experiments that gave the chromatograms shown in FIG.
It is a table.
FIG. 17 is a plasmid map showing the elements of pCGN7770.
FIG. 18 is a plasmid map showing the elements of pCGN8535.
FIG. 19 is a plasmid map showing the elements of pCGN8537.
FIG. 20 is a plasmid map showing the elements of pCGN8525.
FIG. 21 shows the Shewanella ORF defined by Yazawa and FIG.
This is a comparison with the disclosure. Leucine (TTG) codons at nucleotides 9157-9155
The protein starting at the end and ending at the stop codon at nucleotides 8185 to 8183 is OR
Heterologous production in E. coli strains containing all PKS-like clusters except F3
When expressed under the control of a motor, the recombinant cells produce EPA. did
Thus, the published protein sequence may be incorrect and the protein
The coding sequence for the protein may be a TTG codon at nucleotides 9157-9155 or a nucleotide.
It is possible to start with the TTG codon at 9172-9170. This information is functional PKS
Critical for the expression of the cluster heterologous system.
FIG. 22 is a plasmid map showing the elements of pCGN8560.
FIG. 23 is a plasmid map showing the elements of pCGN8556.
FIG. 24 shows the translated DNA sequence upstream of the published ORF3. 9016
The ATG initiation codon at position is the one of the protein described in Yazawa et al.
Start codon. Other arrows may also function as start codons in bacteria
Indicates the TTG or ATT codon. ORF3 from the published ATG codon at position 9016
When started, the protein is not functional in the production of EPA. ORF3
Starts at the TTG codon at position 9157, the protein promotes EPA synthesis
Can.
Description of the preferred embodiment
In the present invention, the polyunsaturated long chain fatty acid content of host cells (particularly host plant cells) is modified.
Shewanella, Vibrio or other microorganisms for
Novel D containing some or all of the polyketide-like synthesis (PKS-like) pathway genes derived from
Provided are NA sequences, DNA constructs and methods. The present invention relates to Shuwanella Putref
Polyketide-like synthesis of EPA synthesis gene in Shewanella putrefaciens
Indicates that a route is configured. Features include Shewanella and Vibri
Method for producing EPA and DHA in host cells, based on the Vibrio gene
I will provide a. The method comprises providing a polypeptide capable of increasing the amount of one or more PUFAs in a host cell.
Transforming the cells with an expression cassette containing DNA encoding the tide.
Desirably, an integration that causes integration of the expression cassette into the genome of the host cell.
Prepare the construct. Sen which encodes a polypeptide having PKS-like gene activity
The host cell is engineered to express the antisense or antisense DNA. `` PKS's remains
"Gene" refers to a polypeptide that provides any one or more of the functions of a PKS-like activity of interest.
To taste. A “polypeptide” is a length or post-translational modification (eg, glycosylated or otherwise).
Or phosphorylation) means any chain of amino acids. Host cell properties
Depending on the enzyme, the substrate for the expressed enzyme may be produced by the host cell or
It is possible to supply the same. Of particular interest are plant tissues and / or
Or selective production of PUFAs in plant parts (eg leaves, roots, fruits and seeds)
Control. The present invention provides for the synthesis of EPA, DHA and other related PUFAs in host cells.
Can be used for
Transgenic production of PUFA has a number of advantages. For example, Shu
Transgenic E. coli as in the case of Shewanella
EPA accumulates in the phospholipid fraction, especially at the sn-2 position. Shewanella
Or use a structured lipid that is substantially different from that produced in E. coli.
It may be possible to produce it in the desired host cell. Also, in certain host cells
Production of PUFAs in plants can be used for purification from natural sources such as fish and plants.
Gives some advantages over. In transgenic plants, PKS-like
By using malonyl Co-A and acetyl Co-A as a substrate
PUFA fatty acid synthesis in the cytoplasm by a system that produces PUFA via acid de novo production
Is achieved. Thus, problems associated with substrate competition, fatty acids in the host
Potential questions, such as those related to the diversion of the normal product of synthesis to PUFA production
Problem is avoided.
The production of fatty acids from recombinant plants is conferring a new synthetic pathway in the host.
More or less undesirable pathways, thereby reducing the desired PUFA or its
Increase the level of conjugated form and reduce the level of unwanted PUFAs
Can alter the naturally occurring plant fatty acid profile. Also,
Expression of PKS-like genes in certain tissues and / or plant parts
And / or achieve a significantly increased level of desired PUFA in the part
In a sense, it means that recovery from those organizations can be more economical.
The advantage of meaning also confers the production of fatty acids in transgenic plants.
Expression in a plant tissue and / or plant part is easily obtained by the tissue or part.
Especially when harvested (eg, seeds, leaves, fruits, flowers, roots, etc.)
Gives kana efficiency. For example, the desired PUFA can be expressed in seeds,
Methods for isolating oils are well established. The desired PUFA source for purification (source f
or purification) in addition to the PKS-like gene alone or
Manipulate seed oil components by expressing them in combination with offspring (eg, elongase)
To obtain a seed oil having a certain PUFA profile in a concentrated form.
You. If it is not possible or desirable to feed human milk, or
In the case of malnutrition or disease in both adults and infants, use the concentrated seed oil.
Add to animal milk and / or synthetic or semi-synthetic milk
Instead, it can be used as an infant formula.
Fatty acid production by transgenic microorganisms is higher than that of higher organisms.
Many microorganisms with a very simple oil composition are known and facilitate purification of the desired components
There is an advantage that. Microbial production is limited to external factors such as weather and food supply.
Not subject to fluctuations caused by variables. Oil produced by microorganisms is
With virtually no contamination. In addition, microorganisms are individual forms that can have specific uses
It is possible to give a PUFA. For example, Spirulina is a bird
It is possible to give PUFAs predominantly located in the first and third positions of glyceride,
Digestion with pancreatic lipase preferentially releases fatty acids from these locations. Spill
After the human or animal ingests triglycerides from lina (Spirulina),
These PUFAs are released as free fatty acids by pancreatic lipase, and thus, for example,
It can be directly used for infant brain development. Also, by controlling the culture conditions,
Alternatively, it should be noted that individual substrates for enzymes expressed by microorganisms may be provided.
Or by adding a compound that inhibits an undesirable biochemical pathway
Thereby, the production of oil by microorganisms can be manipulated. In addition to these benefits
Production of fatty acids from recombinant microorganisms may provide a new synthetic pathway in the host
Or suppresses unwanted paths, thereby reducing the desired PUFA or its
Increase the level of conjugated forms and reduce the level of unwanted PUFAs
Can alter the naturally occurring microbial fatty acid profile.
The production of fatty acids in animals also offers several advantages. De in animals
Saturase gene expression significantly increases the level of desired PUFAs in animal tissues.
And their recovery from tissues may be more economical. For example,
If the desired PUFA is expressed in the milk of the animal, a method of isolating PUFA from animal milk is
Well established. In addition to obtaining the desired source of PUFA purification,
By expressing the Turase gene alone or in combination with other human genes
Manipulating the milk of an animal to substantially match human milk at various stages of infant development
It is possible to obtain animal milk with a similar PUFA composition. Human breastfeeding
When it is impossible or undesirable or malnutrition or
In the case of disease, the milk of an animal that has been treated (humanized) to approximate human milk
Could be used as an infant formula.
DNA encoding the desired PKS-like gene can be identified by various methods.
In one method, the source of the desired PKS-like gene, for example, Shewanell
a) or a genomic library from Vibrio spp.
, Enzymatically or chemically synthesized with a detectable probe.
ORFs with PKS-like genes originate from organisms that produce the desired PUFA (eg, under high pressure).
Or a deep-sea bacterium that grows preferentially at relatively low temperatures and produces DHA or EPA).
In addition, microorganisms such as Shewanella that produce EPA or DHA are
It can be used as a source for S-like genes. The probe can be DNA, RNA or
Can be made from non-naturally occurring nucleotides or mixtures thereof
You. Hybridization methods of normal or reduced stringency
The probe can be enzymatically synthesized from DNA of a known PKS-like gene.
For design of nucleic acid probes and examination of annealing conditions, see, for example, Sambrook et al., M.
olecular Cloning: A Laboratory Manual (2nd edition), Vol. 1-3, Cold Spring Harbor
Laboratory, (1989) or Current Protocols in Molecular Biology, F. Ausubel
Ed., Greene Publishing and Wiley-Interscience, New York (1987)
Each of which is incorporated herein by reference). PUFA yeast
Techniques for the manipulation of nucleic acids encoding elements (eg, a nucleus encoding a polypeptide)
Subcloning of acid sequences into expression vectors, labeling of probes, DNA sequencing
Hybridization, etc.) are generally described in Sambrook (supra).
Oligonucleotide probes are also used to screen for origin
Known PKSs containing sequences conserved between known PKS-like genes
Based on the sequence of the like gene or the peptide sequence obtained from the desired purified protein.
And it is possible. Oligonucleotide probes based on amino acid sequences are
Can be degenerate to include the degeneracy of the
It can be biased to give preference to new codons. Alternatively, the desired tag
The protein is completely sequenced and the DNA encoding the polypeptide
Total synthesis can be performed.
Once the desired DNA has been isolated, it can be sequenced by known methods.
It is recognized in the art that such methods are susceptible to error,
For this reason, multiplex sequencing of the same region may be a common practice, but nevertheless,
Repetitive domains, regions with extensive secondary structure or abnormal base composition (eg, high
Regions with high GC base content), especially in the resulting deduced sequence.
It is expected to cause a high error rate. If differences occur, resequencing should be performed.
And a special method can be used. Special methods include different temperatures;
Enzymes that modify the ability of the oligonucleotide to form higher order structures
Proteins; modified nucleotides, such as ITP or methylated dGTP; different gels
Composition, eg addition of formaldehyde; different primers or areas of interest
Primers at different distances from each other; or use different templates, for example, single-stranded DNA
Modification of the sequencing conditions due to the In addition, mRNA sequencing
Can be used.
Typically, part or all of the coding sequence of a polypeptide having PKS-like gene activity
Is of natural origin. However, in some cases, for example, it is preferred for the host
In order to enhance expression by using codons, all or part of the codons must be modified.
It is desirable to decorate. Preferred codons for the host are specific to the particular host species of interest.
Can be determined from the highest frequency codons in the protein expressed at the highest level.
Wear. Therefore, the entire coding sequence of a polypeptide having PKS-like gene activity
Or a part can be synthesized. Also, any of the present in the transcribed mRNA
All or part of the DNA is removed to remove destabilizing sequences or regions of secondary structure.
Can be synthesized. Also, the base composition may be more favorable for the desired host cell.
To modify the DNA, all or a part of the DNA can be synthesized. Distribution
Methods for synthesizing sequences and coalescing sequences are well documented in the literature
. In vitro mutagenesis and selection, site-directed mutagenesis or other means
To obtain a mutation in a naturally occurring PKS-like gene, thereby providing the desired polymorphism.
Functions in the host cell, such as longer half-life or higher production rate of saturated fatty acids
Have more desirable physical and kinetic parameters for
Polypeptides having PKS-like gene activity can be produced in vivo.
Of particular interest is the Shewanella p.
utrefaciens) and the corresponding ORF of Vibrio marinus
is there. In order to achieve EPA biosynthesis, Shuwanella putrefaciens (S
hewanella putrefaciens) Expression of PKS-like gene in transgenic plants
Can be In addition, Shewanella putrefaiensu (Shewanella putre
faciens) is substantially identical in sequence to the PKS-like gene, or
Substantially similar to the PKS-like gene of Trefaciens (Shewanella putrefaciens)
Other DNAs encoding polypeptides (eg, Vibrio marinus)
nus) can also be used. Substantially identical in sequence
Is the PKS-like inheritance of Shewanella putrefaciens
Nucleic acid sequence encoding the offspring DNA sequence or amino acid sequence for such a gene
At least 60%, 80%, 90% or 95% for the columns (in this order the preference increases
The amino acid sequence or the nucleic acid sequence showing the homology. Polypeptide
In some cases, the length of the comparison sequence will generally be at least 16 amino acids, preferably
At least 20 amino acids, most preferably 35 amino acids. In the case of nucleic acids,
The length of the sequence is generally at least 50 nucleotides, preferably at least 60 nucleotides.
Reotide, more preferably at least 75 nucleotides, most preferably 110 nuclei
Reotide.
Homology is typically determined by sequence analysis software, such as Genetics Computer Gr.
oup, University of Wisconsin Biotechnology Center, 1710 University Avenue,
Madison, Wisconsin 53705 Sequence Analysis Software Package, MEGAli
gn (DNAStar, Inc., 1228 S. Park St., Madison, Wisconsin 53715) and MacVecto
r (Oxford Molecular Group, 2105 S. Bascom Avenue, Suite200, Campbell, California
ia 95008), BLAST (National Center for Biotechnology Information (WCBI) ww
w.ncbi.nlm.gov), FASTA (Pearson and Lipman, Science (1985) 227: 1435-1446)
Measure using Such software includes various substitutions, deletions and other
Applying degree of homology to modification
Better fits a similar sequence. Conservative substitutions typically include within the following groups:
Substitutions included: glycine and alanine; valine, isoleucine and leucine
Aspartic acid, glutamic acid, asparagine and glutamine; serine and
Lysine and arginine; and phenylalanine and thionine.
Rosin. Also, substitutions can be made on the basis of conserved hydrophobicity or hydrophilicity (Kyte and
Doolittle, J. Mol. Biol. (1982) 157: 105-132) or a similar polypeptide secondary structure.
(Chou and Fasman, Adv. Enzymol. (1978) 47: 45-148, 197).
8) It is possible to do. The relevant protein for the sequence being probed is
, P ≧ 0.01, preferably p ≧ 10-7Or 10-8Is identified.
The present invention includes related PKS-like genes from the same or other organisms. So
Related PKS-like genes, such as the same or different in Shewanella
Variants of the disclosed PKS-like ORF naturally occurring in one species, and from other species
Homologues of the disclosed PKS-like genes and have similar functions and activities
And evolutionarily related proteins. Also, Shuwanera Putrefa
Although it is not substantially the same as the Sheensella putrefaclens PKS-like gene,
Also includes a PKS-like gene that functions similarly to produce PUFAs as part of the PKS-like system
You. Related PKS-like genes function substantially similarly to the disclosed PKS-like genes
Their ability to perform [i.e., if they are Shewanella or
Used in place of the Vibrio's corresponding ORF, but nevertheless EPA or DHA
Can be produced effectively]. Also disclosed
Screening sequence databases for sequences homologous to PKS-like genes
Or a probe based on the disclosed PKS-like gene
By hybridizing to a library constructed from
Product-derived mRNA and primers based on the disclosed PKS-like gene.
RT-PCR can identify related PKS-like genes. Therefore, "PKS
The term "like gene" refers not only to the nucleotide sequences disclosed herein, but also to these
Also meant are other nucleic acids that are allelic or species variants of the nucleotide sequence. Ma
These words are a single part
By intentional mutagenesis using recombination techniques such as
To cut out a short fragment of DNA open reading frame encoding element
Or by substituting or adding a new codon.
It is understood to include unnatural mutations introduced. Such minor modifications are
Substantially maintain the immunoidentity of the original expression product and / or its biological activity. Break
The biological properties of the altered PUFA enzyme are such that the enzyme can be expressed in a suitable cell line.
And by measuring the ability of the enzyme to synthesize PUFAs
Can be. Individual enzymatic modifications that are considered minor include amino acids with similar chemical properties.
Substitution (eg, glutamic acid instead of aspartic acid, alternative to asparagine
Glutamine).
When a PUFA PKS-like system derived from another organism is used, it is important for PKS-like gene activity.
Regions of the various PKS-like gene polypeptides can be
It can be determined by measuring the expression of the repeptides and their activity. The
Mutant coding regions may include deletions, insertions and point mutations or a combination thereof.
Can be included. A typical functional analysis starts with deletion mutagenesis
Determine the N- and C-terminal boundaries of the protein required for function, and then
Create internal deletions, insertions or point mutants in the
Further, the area required for is determined. Also, such as cassette mutagenesis or total synthesis
Other techniques can be used. Deletion mutagenesis can be performed, for example, on 5 'or 3'
By using an exonuclease to sequentially remove the protected regions.
Kits for such techniques are available. After deletion, start codon or end
Oligonucleotides containing connection codons are deleted after 5 'or 3' deletion, respectively.
The coding region is completed by ligation to the deletion coding region. Alternative
The oligonucleotide encoding the start codon or stop codon.
Different methods such as mutagenesis, mutant PCR, or existing limitations
Insertion into the coding region by ligation to the DNA digested at the site. Internal gap
Loss can be reduced by mutagenesis via site-directed mutagenesis or mutagenesis PCR.
By various methods, such as by using an existing restriction site in the DNA, by using a primer.
And can be similarly manufactured. Insert the linker
Tanning mutagenesis, site-directed mutagenesis or mutagenesis PCR
Performed by the method. Point mutation can be site-directed mutagenesis or mutagenesis.
Produced by techniques such as PCR.
To identify regions of the PKS-like gene polypeptide that are important for activity,
Mutagenesis can be used. Expressing the mutated construct and the resulting modification
The ability of the protein to function as a PKS-like gene is assayed. Such a structure
-Functional analysis shows which regions can be deleted and which regions allow insertion
And what point mutations occur when the mutated protein
Can be determined to allow it to function in substantially the same way as the gene
. All such muteins and the nucleoti encoding them
The sequence is within the scope of the present invention. EPA is a PKS-like product of Shuwanella (
Shewanella), so the EPA gene encodes a component of this system
ing. In Vibrio, DHA is produced by a similar system. these
Enzymes that synthesize fatty acids include C16 and C16, which are typically found in bacteria and plants.
Genes that are different from the fatty acid synthesis genes that encode enzymes involved in the synthesis of
Coded by a cluster of genes. Shewanella EPA gene
Represents a PKS-like gene cluster, so EPA production is at least to some extent
Is independent of the typical bacterial type II FAS system. Therefore, the cytoplasm of plant cells
EPA production in plants is controlled by PKS-like processes in plant cells under the control of appropriate plant regulatory signals.
Can be achieved by expression of tract genes.
In E. coli transformed with the Shewanella EPA gene
EPA production proceeds during anaerobic growth, indicating that OTwoDependent desaturase
This indicates that no reaction was involved. The ORF code required for EPA production
Analysis of the protein indicates the presence of a domain structure characteristic of the PKS-like system. Figure 2A
Indicates the domain, motif, and main domain detected by the "BLAST" databank search.
Here is an overview of the important homology. EPA works with many of the other substrates produced by the PKS-like pathway.
Are different (ie, it has five cis-sites located every three carbons along the molecule).
PKS-like system for the synthesis of EPA because it contains a double bond)
Is not predicted.
In addition, we use domains that exist within the Shewanella EPA ORF.
BLAST searches found that some PKS-like remains found in Anabeana
This indicates that it is related to the protein encoded by the gene cluster. A
The structure of that region of the Anabeana chromosome is shown in FIG. 2F. Anabeana
) Is a long-chain (C26) hydroxyl found in the glycolipid layer of allogeneic cells.
It is linked to the synthesis of fatty acids. Homology to Anabeana protein
The EPA protein domain with is shown in FIG. 2F.
The ORF6 of Shewanella is an active site motif (DXAC*) And numerous
Includes a KAS domain containing the “GFGG” motif at the end of the type II KAS protein.
(See FIG. 2A). There is an extended motif,
Not shown here. Next, malonyl-CoA: ACP acyltransferase
(AT) domain exists. Sequence near the active site motif (GHS*XG) is that
Transfers malonic acid but not methylmalonic acid (ie, it is acetate
(Similar to AT). After the linker region, a PKS-like ACP
There is a cluster of six repeat domains, each about 100 amino acids long, homologous to the sequence
I do. Each has a pantethein binding site motif (LGXDS*(L / I))
. The presence of six such ACP domains, so far, fatty acid sintering
Not found in ze (FAS) or PKS-like systems. Near the end of the protein
Contains a region showing homology to β-keto-ACP reductase (KR).
It contains a pyridine nucleotide binding site motif “GXGXX (G / A / P)”.
Shewanella ORF8 is a KAS domain containing an active site and a termination motif.
Start from the main (Figure 2C). The best match in the data bank is Anabena
(Anabeana) For HglD. Also, N-terminal of Anabeana HglC
There are domains with sequence homology to one half. This region is also active
Lacks site and termination motifs but shows weak homology to KAS proteins.
It is characteristic of the so-called chain length factors (CLF) of type II PKS-like system
Having. ORF8 is a PKS-like system that produces EPA versus DHA.
It seems to command life. ORF8 is a β-hydroxyacyl-ACP dehydrase (
DH). Best for both domains
Matches between the dehydrase reaction and the isomerization of the resulting double bond (trans to cis
), Which is a bifunctional enzyme that does both. coli) for FabA
is there. The first DH domain contains the active site histidine (H) involved in FabA catalysis and
And both adjacent cysteines (C). Second DH domain has active site H
But lacks adjacent C (FIG. 2C). Blast search in the second DH domain is another
E. coli (E. coli) DH FabZ, which has no isomerase activity
Indicates a match.
The N-terminal half of ORF7 (FIG. 2B) has a significant match in the databank.
Absent. The best match for the C-terminal half is in the C-terminal part of Anabeana HglC.
Against. This domain contains an acyltransferase (AT) motif (
GXSXG). E. coli (E. coli) based on the crystal structure of malonyl-CoA: ACP AT
Comparison of extended active site sequences indicates that ORF7 is required to exclude water from the active site.
Lacking two residues in E. coli (E. coli) name; Q11 and R117)
. These data suggest that ORF7 can function as a thioesterase.
ing.
ORF9 (Fig. 2D) is linked to the ORF of unknown function in the Anabeana Hgl cluster.
Homologous. It also provides NIFA, a regulatory protein in nitrogen-fixing bacteria.
It shows very weak homology to them. Regulatory role for ORF9 protein excluded
Not. ORF3 (FIG. 2E) was obtained from Anabeana HetI as well as E. coli (E.
E. coli) and homologous to Sfp of Bacillus. Recently, HetI
, A new enzyme for phosphopantetheinyl transferase, including EntD and Sfp
The family was identified [Lamblot RH et al. (1996), a new enzyme superfamily-ho
Hopanteteinyl transferase (A new enzyme superfamily-the phophopa
ntetheinyl transferases). Chemistry & Biology, Vol 3, # 11,923-936]. Of FIG.
Data shows the addition of β-alanine (ie, pantethein) to the ORF6 protein.
In addition, it indicates that the presence of ORF3 is required. Therefore, ORF3 is
E specific to the F6ACP domain
It encodes suhopantetheinyl transferase [Haydock SF et al. (1995
) (Methyl) malonyl-CoA in modular polyketide synthase: acyl carrier tan
Branch sequence motif (D) correlated with substrate specificity of the protein transacylase domain.
ivergent sequence motifs correlated with the substrate specificity of (m
ethyl) malonyl-CoA: acyl carrier protein transacylase domains in modular p
olyketide synthases), FEBS Lett. , 374, 246-248]. Malonic acid
, A carbon source used for the elongation reaction of EPA synthesis. Also, instead of malonyl-ACP
Malonyl-CoA is the AT substrate. In other words, the AT region of ORF6 uses malonyl Co-A.
To use.
Once the DNA sequence encoding the PKS-like gene of the organism that causes PUFA production is obtained,
They can be placed in a vector that is replicable in the host cells, or
Is grown in vitro by techniques such as long PCR. Into a replication vector
Can include plasmids, phages, viruses, cosmids, and the like. Hope
Preferred vectors contain the desired gene for mutagenesis or the desired purpose in the host cell.
Those useful for gene expression are included. PUFA synthase or homologous protein,
It can be expressed in a variety of recombinantly engineered cells. Coat PUFA enzyme
Numerous expression systems are available for expressing DNA to be loaded. Encodes PUFA enzyme
Expression of natural or synthetic nucleic acids is typically accomplished by using a promoter (construct) in the expression vector.
Functional DNA or an inducible promoter).
Is achieved by The expression vector contains a segment encoding the PUFA enzyme (this
Is operably linked to an additional segment that provides for its transcription)
Means a linear or circular DNA molecule containing Such additional segments include
, Promoter and terminator sequences. In addition, expression vectors include
One or more origins of replication, one or more selection markers, enhancers, polyadenylation
It is possible to include a signal or the like. Expression vectors are generally plasmids
Alternatively, it can be derived from viral DNA and contain both elements. "function
The term `` linkable '' refers to those segments whose intended
Means that they are arranged to function in concert for the purpose of
Transcription starts at the promoter and the code
To the terminator via a fragment (see Sambrook et al., Supra).
Want).
The technology of long PCR allows large constructs to be propagated in vitro, and
Modifications to specific genes, such as mutagenesis or the addition of expression signals,
And propagation of the resulting constructs without the use of replicating vectors or host cells.
Can be done completely in vitro. In vitro expression, for example, in vit
Insert the coding region of the desaturase polypeptide into an expression vector designed for ro
This is done by placing and adding rabbit reticulocyte lysate and cofactors.
If desired, a labeled amino acid can be incorporated. That's it
Such an in vitro expression vector contains some or all of the expression signals required for the system used.
It is possible to add parts. These methods are well known in the art
The components of the system are commercially available. The reaction mixture is then converted to a PKS-like enzyme.
Can be assayed directly, for example by measuring its activity,
Alternatively, the synthesized enzyme can be purified and then assayed.
Expression in a host cell can be achieved transiently or stably. Transient
Expression can be performed using an introduced construct containing an expression signal that is functional in the host cell.
(However, this construct is not replicated and is rarely integrated into the host cell.
Or in this case, the host cell is not viable). In addition, the target gene
By inducing the activity of a operably linked regulatable promoter
Can achieve transient expression (however, such inducible systems include:
Often exhibit low basal levels of expression). Stable expression is integrated into the host genome
Or can be achieved by introducing a nucleic acid construct that replicates autonomously in the host cell.
it can. Located on or transfected with the expression construct
Using the selected marker and then selecting for cells that express the marker.
Thus, stable expression of the target gene can be selected. Built-in stable expression
The integration of the construct, if it occurs from
Is possible or is sufficient to target recombination with the host locus.
Can be targeted by use of constructs containing regions homologous to the host genome
It is. Regulation of transcription and translation when targeting the construct to an endogenous locus
Territory
All or part of the region can be conferred by the endogenous locus.
For expression in a host cell, transcription and
The transforming DNA is operably linked to the translation initiation and termination control regions.
The initiation and termination regions for transcription and translation depend on the DNA to be expressed, and the expression in the desired system.
Genes known or suspected to be capable of expression, expression vectors, chemical synthesis, etc.
From a variety of nonexclusive origins. The end area is the start area
Can be derived from the 3 'region of the gene obtained or from a different gene. Many
A number of termination regions are satisfactory in various hosts from the same or different genera and species.
It is known and known to be possible. The termination area is usually a specific task.
It is chosen for convenience rather than for desired characteristics. Two or more PKS-like ORFs in the same cell
If it is expressed in, appropriate regulatory regions and expression methods should be used.
The introduced gene can be used for integration into the host genome by using a replication vector or
Thus, it can be propagated in host cells. Two or more from separate replication vectors
When expressing genes, it is desirable that each vector has a different replication means.
Good. Each construct introduced, whether integrated or not, has a different selection.
Should have alternative means, lack homology to other constructs, and
Ensures that stable expression is maintained and that rearrangement of elements between constructs is hampered
. Appropriate selection of regulatory regions, selection means and propagation methods for introduced constructs should
Experimentation so that the transgene is expressed at the required level and results in the synthesis of the desired product
Can be determined.
Various prokaryotic expression systems can be used to express the PUFA enzyme.
You. Promoter that directs transcription, ribosome binding site and transcription terminator
Can be constructed. E. coli (E. coli)
Regulatory regions suitable for this purpose include, for example, Yanofsky (1984) J. Bacteriol. , 158
Escherichia coli (E. coli) Tryptophan biosynthetic pathway promoter
And operator regions, and Herskowitz and Hagen, (1980) Ann. Rev. Ge
net. , 14: 399-445, the left promoter of phage lambda (Pλ).
You. E. coli (E. E. coli) containing a selectable marker in the DNA vector to be transformed.
It is also useful to have. Such markers include, for example,
Characterized for resistance to picillin, tetracycline or chloramphenicol
Genes. Vectors used to express foreign genes in bacterial hosts
Are generally selected markers, such as genes for antibiotic resistance, and
It contains a promoter that functions in the host cell. Useful for transforming bacteria
PBR322 (Bolivar et al., (1977) Gene 2: 95-113), pUC plasmid (M
essing, (1983) Meth. Enzymol. 101: 20-77, Vieira and Messing, (1982) Gene 19:25
9-268), pCQV2 (Queen, Id.), And derivatives thereof. The plasmid is
, Viral and bacterial elements. Raw protein
Methods for recovering in a physically active form are incorporated herein by reference.
It is discussed in U.S. Patent Nos. 4,966,963 and 4,999,422. Other prokaryotic
See Sambrook et al. For a description of an organism's expression system.
For expression in eukaryotes, host cells for use in practicing the present invention include mammalian cells.
Includes milk, bird, plant, insect and fungal cells. For example, in the case of plants,
The choice of a promoter may be based, in part, on either constitutive or inducible expression.
And at certain stages of plant development and / or at certain tissues
It will depend on whether it is desirable to produce FA. Expression of the ORF
The considerations for selecting a particular tissue and / or stage of development for
Or may depend on the ability of the host cell to allow expression of a particular PUFA
. Specific regulatory sequences (eg, US Patent No. 5,463,174, US Patent No. 4,943,674,
U.S. Pat.No. 5,106,739, U.S. Pat.No. 5,175,095, U.S. Pat.
U.S. Pat. No. 5,188,958 and U.S. Pat. No. 5,589,379).
Target expression at specific locations in the host plant, such as seeds, leaves, fruits, flowers, roots, etc.
Can be If the host cell is yeast, a transformant that is functional in the yeast cell
The transcribed and translated regions are particularly provided by the host species. The transcription initiation regulatory region may be, for example,
For example, alcohol dehydrogenase, glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogen
Kinase (GPD), phosphoglucoisomerase, phosphoglycerate kinase, etc.
Genes in glycolysis, or acid phosphatase, lactase, metallothionein
And regulatable genes such as glucoamylase. Constitutive transcription
Or inducible transcription is desirable.
Individual efficiency of the promoter combined with the loading frame, a strong promoter
Together with regulatory regions from different promoters that allow inducible transcription.
Any one of a number of regulatory sequences, depending on the potential for
Can be used in various situations. Of particular interest is the presence of galactose.
It is a promoter that is activated in the presence. Galactose-inducible pro
The motors (GAL1, GAL7 and GAL10) are responsible for high and regulated levels of yeast.
Widely used for protein expression (Lue et al., (1987) Mol. Cell. Biol. 7: 3446; Johns
ton, (1987) Microbiol. Rev. 51: 458). Transcription from the GAL promoter is
GAL4 protein that binds to the promoter region and activates transcription in the presence of
Activated. In the absence of galactose, the antagonist GAL80 is
4 and prevents transcriptional activation by GAL4. Galactose was added by GAL80
Prevents suppression of activation by L4. Preferably, the termination region is a yeast gene
In particular, Saccharomyces, Schizosaccharo
myces), from Candida or Kluyveromyces
Come. In addition, two mammalian genes (γ interferon and α2
Is known to function in yeast.
Nucleotide sequence around translation initiation codon ATG affects expression in yeast cells
Has been found to have The desired polypeptide is not sufficiently expressed in yeast
If necessary, include an efficient yeast translation initiation sequence for optimal gene expression
The nucleotide sequence of the exogenous gene can be modified as described. Saccharomyce
For expression in Saccharomyces, this must be done with inefficiently expressed residues.
Site-directed mutagenesis of the gene [Saccharomyces
2.) genes, preferably highly expressed genes (eg lactase genes)
By in-frame fusing to an object].
As an alternative to expressing a PKS-like gene in the cytoplasm of a plant cell,
Targeting chloroplasts to chloroplasts. Target proteins to chloroplasts
One approach is to use a leader peptide attached to the N-terminus of the protein.
Accompanied by A commonly used leader peptide is plant ribulose-bisphosphate
Derived from the small subunit of carboxylase. In addition, to other chloroplast proteins
It is also possible to use derived leader sequences. Targeting proteins to chloroplasts
Another method for transformation is to transform the chloroplast genome.
By projecting high-speed tungsten microparticles coated with
Chlamydomonas reinhardtii (1 green algae)
Stable transformation of chloroplasts has been described. For example, Blowers et al. Plant Cell (198
9) See 1: 123-132 and Debuchy et al. EMBO J (1989) 8: 2803-2809. Tan
Transformation techniques using gustene microparticles are described in Kline et al., Nature (London) (1987) 327:
70-73]. The most common method for transforming chloroplasts is bio
Including the use of biolistic technology, but other developed for this purpose
It is also possible to use the technique of. The foreign gene product is transferred to the chloroplast (Shrier et al. EMBO
J. (1985) 4: 25-32) or within mitochondria (Boutry et al., Supra).
Is described. Transport for transporting nuclear gene products into chloroplasts
Regarding the use of peptides, see Tomai et al. Gen. Biol. Chem. (1988) 263: 15104-1510
9 and U.S. Pat. No. 4,940,835. Transporting proteins to chloroplasts
Methods for directing are outlined in Kenauf TIBTECH (1987) 5: 40-47.
In order to produce PUFAs in avian species and cells, known in the art
According to the method, by introducing a nucleic acid sequence encoding a PUFA enzyme into the cells,
Gene transfer can be performed. When transgenic animals are desirable
, A vector that carries a PUFA-encoding transgene in embryonic pluripotent stem cells
To allow the cells to develop into adult animals (U.S. Pat.
No., 215; Ono et al. (1996) Comparative Biochemisty and Physiology A 113 (3): 287-29
2; WO 9612793; WO 9606160). In most cases, to increase PUFA production,
The transgene is modified to express high levels of a PKS-like enzyme. The tran
Genes, for example, indicate expression in certain tissues and egg parts (eg, yolk).
Transcriptional and / or translational regulatory regions functioning in avian cells, such as
It can be modified by giving a region. The remains
The gene regulatory region is a chicken anemia or avian leukemia virus or avian gene, e.g.
For example, it can be obtained from various sources including the chicken ovalbumin gene.
The production of PUFAs in insect cells is based on the baculois that retains the PKS-like transgene.
This can be done using a lus expression vector. Baculovirus expression vector
Is available from several commercial sources, such as Clontech. Also, Desa
Algae (e.g., marine algae) hives that contain and express a Turase transgene
Methods for producing lid and transgenic strains are provided. For example, Trans
Marine algae can be made as described in U.S. Patent No. 5,426,040.
it can. As in the other expression systems described above, the desaturase transgene
The timing, extent and activity of expression of the
And a translational regulatory region provided in the polypeptide coding sequence.
it can. Of particular interest are those that can be induced under preselected growth conditions.
Motor area. For example, a sequence encoding a desaturase transgene
, Into the genome of a cell into which the transgene is introduced and / or its regulatory region.
Introduction of temperature sensitive and / or metabolite responsive mutations for this purpose
Can be used.
Growing the transformed host cells under appropriate conditions tailored to the desired end result
Let it. In order to grow host cells in culture, typically selected
To obtain the largest or most economical yield of PUFAs associated with
Optimize conditions. Media conditions that can be optimized include the addition of carbon sources, nitrogen sources, and substrates.
, Final concentration of substrate to be added, form of substrate to be added, aerobic or anaerobic growth,
Growth temperature, inducer, induction temperature, growth phase at induction, growth phase at harvest, pH, density and
This includes maintaining choices. For example, microorganisms such as yeast are preferably yeast peptone.
Broth (YPD) and minimal medium (amino acids, yeast nitrogen base and ammonium sulfate)
(For example, lacks ingredients for selection, e.g., uracil)
Grow using medium. Preferably, the substrate to be added is first dissolved in ethanol
I do. If necessary, for example, to induce expression from the GAL promoter,
By including or adding fructose, the expression of the polypeptide of interest is increased.
Can be guided.
Expression of PKS-like gene polypeptide in host cells expressing PUFA from PKS-like system
If it is desired to increase, several methods can be used. PKS-like gene
Additional genes encoding the repeptide can be introduced into the host organism
. Also, for example, inserting a stronger promoter into the host genome to enhance expression
Anxiety or from the mRNA or the encoded protein
A stabilizing sequence is deleted by removing its information from the host genome.
Alternatively, by adding a stabilizing sequence to the mRNA, the natural PKS
(U.S. Pat.Nos. 4,910,141 and
See U.S. Patent No. 5,500,365). Therefore, the target host is the expression construct.
Has at least one copy of the building and the gene is integrated into the genome
Depending on whether it is amplified or present on an extrachromosomal element with high copy number
It is possible to have more than one copy. When the target host is yeast
Are the four main types of yeast plasmid vectors, namely yeast integrated plasmids.
(YIp), yeast self-replicating plasmid (YRp), yeast centromere plasmid (YCp
) And yeast episome-like plasmid (YEp) can be used. YIp,
It must lack the yeast origin of replication and must grow as an integrated element in the yeast genome.
No. YRp has an autonomously replicating sequence derived from chromosome and has a moderate copy number (20 to 40).
It grows as an unstable, segregating plasmid that replicates autonomously. YCp
Has a low copy number (10-20), having both an origin of replication and a centromere sequence.
Proliferate as a stably segregating plasmid that replicates regularly. YEp is yeast 2μm plus
It has a replication origin derived from a mid-side and has a high copy number and autonomously replicates irregularly separated plus
Proliferates as mid. The presence of the plasmid in yeast is a marker on the plasmid.
Can be assured by maintaining choices regarding Especially interested
The reason is that the yeast vector pYES2 (YEp plasmid available from Invitrogen
Provides GAL1 galactose inducible promoter for siroprototrophy and expression
And pYX424 (constituting the constitutive TP1 promoter and conferring leucine prototrophy)
YEp plasmid) (Alber and Kawasaki (1982). J. Mol. & Appl. (Genetics 1: 419)
It is.
The choice of host cells depends, in part, on the desired PUFA profile of the transgenic cells.
Affected by the natural profile of the feel and host cell. One PU host cell
Even when expressing PKS-like gene activity of FA, PKS-like members of another PKS-like system
Expression of the gene may result in the production of a novel PUFA not produced by the host cell.
is there. Expression of PKS-like gene activity is determined by ORF8 PKS-like inheritance of organisms producing different PUFAs.
In certain cases, coupled with offspring expression, the host cell may have a low PKS-like residue for ORF8.
The host cell has native gene activity, or has such activity.
It may be desirable to mutate. For example, for the production of EPA, the D
The NA sequence encodes a polypeptide having PKS-like gene activity in an EPA-producing organism
On the other hand, for the production of DHA, the DNA sequence used is a DNA sequence from an organism producing DHA.
Column. For use in host cells already expressing PKS-like gene activity,
Expression cassettes that result in overexpression of PKS-like genes
Down-regulate the activity of existing ORFs (eg, anti-
In some cases, it may be necessary to use it with a construct (due to suppression). Similarly, PK
Combining ORFs from different organisms producing the same or different PUFAs using an S-like system
Can be used. For example, ORF8 of Vibrio is ORF3, 6, 7
And 9 are from Shewanella [they are
When combined with Shewanella ORF8, it produces EPA.]
Directs DHA expression in primary cells. Therefore, eicosapentaenoic acid (EPA)
For production, the expression cassette used is generally the marine bacterium Shuwa.
Nella putrefaciens (for Shewanella putrefaciens) (for EPA production) or
For PUFA producing organisms such as Vibrio marinus (for DHA production)
It contains one or more cassettes containing ORFs 3, 6, 7, 8 and 9 from which they are derived. DHA production
To induce, ORF8 can be used, and to produce DHA,
ORF8 from Vibrio was replaced by ORF3, 6, 7, and 7 from Shewanella.
And 9 can be used. Shewanella gene cluster
The organization and numbering system of the ORFs identified within the group are shown in FIG. 1A. The words in this study
A map of some of the subclones affected is shown in FIG. 1B. PKS-like gene polypep
It is functional in host cells for the expression of
Certain transcription and translation initiation and termination regions are coded for by a PKS-like gene polypeptide.
Operably linked to the DNA to be loaded.
Constructs containing the PKS-like ORF of interest can be of various standard types, depending in part on the type of host cell.
It can be introduced into host cells by any of a variety of techniques. With these technologies
Are transfection, infection, bolistic shock, electro
Poration, microinjection, scraping, or harboring the gene of interest
Any other method of introduction into the main cell is included (U.S. Pat.
No. 4,795,855, U.S. Patent No. 5,068,193, U.S. Patent No. 5,188,958, U.S. Patent
No. 5,463,174, U.S. Pat.No. 5,565,346 and U.S. Pat.
Want to be). The transformation method used includes lithium acetate transformation (Methods in Enzym
ology, (1991) 194: 186-187). Incorporate DNA sequences or constructs for convenience
In the present invention, a host cell that has been manipulated by any method
Or "recombinant". The target host is a host in which the expression construct is present.
Will have at least one copy and the gene will be integrated into the genome.
Whether it is amplified or amplified or present on an extrachromosomal element with high copy number
Accordingly, it is possible to have more than one copy.
For the production of PUFAs, depending on the host cell, several
Introduce the polypeptides (ORF3, 6, 7, 8 and 9) as separate expression constructs
Or two or more separately introduced or co-transformed into a host cell.
It can be combined in a cassette. Use standard transformation protocols
. Part of the PKS-like gene required for PUFA synthesis is inserted into a single plant
In the case of a plant, it is crossed with a plant containing a complementary gene to synthesize a desired PUFA.
Thus, a plant containing the complete complement of the PKS-like gene can be obtained.
PKS-like mediated production of PUFAs can be performed in prokaryotic or eukaryotic host cells.
The cells can be cultured or formed as part or all of a host organism, including animals.
Can be achieved. In addition, in the production of PUFA, gene transfer and cell
Suitable for virus and bacteriophage for targeting and selection
Can be used with various cells. Host cells include dicotyledonous plants and monocotyledonous plants
Any kind of plant cells, such as foods, cereals, etc., can be used. Of particular interest
It has rape (Brassica), Arabidopsis (Arabidopsis), soybean
And cultivated plants such as corn. Prokaryotic cells of interest include Escherichia (Esc
hericia), Bacillus (Baccillus), Lactobacillus (Lactobaccillus), Cyanobacteria (cy
anobacteria) and the like. Eukaryotic cells include plant cells and the details of lactating animals.
Mammalian cells such as vesicles, bird cells such as chicken cells, and insects, fungi and algae
Other cells suitable for genetic manipulation, including cell-like, are included. Host animals include, for example,
Mouse, rat, rabbit, chicken, quail, turkey, cow, sheep,
Genes for rapid growth of transgene expressing populations such as pigs, goats and yaks
Animals suitable for genetic manipulation and cloning are included. In the case of animals, the gene
Modification of the regulatory region allows PKS-like transgenes to be targeted to organelles, tissues and
It can be adapted for expression in body fluids. Of particular interest are host animals
Of PUFAs in human breast milk.
Host microorganisms include, for example, Saccharomyces cerev
isiae), Saccharomyces carlsberge
nsis) or other yeasts such as Candida, Kluyveromyces (Kluyv
eromyces) or other fungi, such as filamentous fungi, such as Aspergillus
), Neurospora, Penicillium and the like.
Desirable characteristics of the host microorganism include, for example, if it is genetically well-characterized.
Can be used for high-level expression of the product using ultra-high density fermentation
GRAS (genera) because the proposed end product is intended for human consumption
lly recognized as safe; generally recognized as safe)
That is. Of particular interest are the cell hosts in the present invention.
Yeast, especially baker's yeast (S. cerevisiae). Especially interested
SC334 (Mat a pep4-3 prbl-1122 ura3-52 leu2-3,112regl-501 ga
l1; (Hovland P. (1989) Gene 83: 57-64), BJ1995 (Yeast Genetic Stock Centre,
1021 Donner Laboratory, Berkely, CA94720), INVSC1 (Matα hiw3Δ1 leu2 trp1-
289 ura3-52 (Invitrogen, 1600 Faraday Ave. , Carlsbad, CA 92008) and IN
VSC2 (Matα his3Δ200 ura3-167; (Invitrogen)). Harbors bacterial cells
It can also be used mainly.
This includes E. coli (E. coli). Or PK
As a host for introducing products of the S-like pathway into products such as yogurt,
Hosts such as Bacillus (Lactobaccillus) species can be used.
The transformed host cells are selected for a marker contained on the introduced construct.
Can be identified by selection. Alternatively, many transformation techniques involve host cells.
To introduce large numbers of DNA molecules, separate the marker constructs with the desired construct.
Can be introduced. Typically, the transformed host is placed on a selective medium.
Selected for their ability to grow on Selection media may contain antibiotics or
Or factors necessary for growth of the untransformed host (eg, trophic or growth factors)
May be missing. Introduced marker genes confer antibiotic resistance
Or encoding an essential growth factor or enzyme and expressed in the transformed host
In some cases, it may allow for growth on selective media. Preferably, kanamycin and
Of particular interest is resistance to minoglycoside G418 (U.S. Pat.No. 5,034,322)
Please refer to). In the case of yeast transformants, any marker that functions in yeast
(Eg, on media lacking uracil, leucine, lysine, or tryptophan)
Which can proliferate) can be used.
When the expressed marker protein is directly or indirectly detectable
Next, a transformed host can be selected. The marker protein is used alone
Or as a fusion with another protein. The marker
The protein may be detected by its enzymatic activity.
Lactosidase can convert the substrate X-gal to a colored product,
Lase is capable of converting luciferin to a luminescent product. The marker
The protein may be one that is detected by its light-generating or modifying properties,
For example, the green fluorescent protein of the luminescent jellyfish (Aequorea victoria)
, Emits fluorescence when irradiated with blue light. The marker protein or molecular tag (
For example, antibodies can be used to detect
it can. Cells expressing the marker protein or tag can be, for example, visually
Or by techniques such as FACS or panning using antibodies.
it can.
PUFAs produced using the methods and compositions of the present invention are available as free fatty acids and
Conjugation of acylglycerol, phospholipid, sulfated lipid or glycolipid
In a host plant tissue and / or plant part
It can be extracted from host cells by various means well known in the art. So
Means such as extraction with organic solvents, sonication, for example using carbon dioxide
Supercritical fluid extraction and physical means such as pressing, or a combination thereof
Can be included. Of particular interest are methanol and chlorophos.
It is an extraction with LUM. Acidify the aqueous layer as appropriate to protonate negatively charged parts
Thus, the distribution of the desired product into the organic layer can be increased. Extraction
Thereafter, the organic solvent can be removed by evaporation under a stream of nitrogen. The product is
When isolated in conjugated form, the product is cleaved enzymatically or chemically.
To release the free fatty acids or the simpler conjugate of interest.
Further processing is performed to obtain the desired end product. Desirably conjugated form
Fatty acids are cleaved with potassium hydroxide.
If further purification is required, standard methods can be used. Like that
Methods include extraction, treatment with urea, fractional crystallization, HPLC, fractional distillation, silica gel chromatography.
Including mattography, high speed centrifugation or distillation, or a combination of these techniques
Can be By known techniques such as alkylation or iodination, acid or
Protection of a reactive group such as an alkenyl group can be performed in any step. Use
The method involves methylation of a fatty acid to obtain a methyl ester. Similarly,
The protecting group can be removed at any step. Desirably contains DHA and EPA
Can be purified by treatment with urea and / or fractional distillation.
Wear.
The present invention has several uses. Probes based on the DNA of the present invention
Useful in methods for isolating molecules or detecting organisms that express PKS-like genes
You. The DNA or oligonucleotide, when used as a probe,
Must be detectable. This is usually the case for incorporation of modified residues, for example.
Achieved by labeling at a more internal site or at the 5 'or 3' end. So
Labels such as can be directly detectable or can be detected
Can be attached to a labeled secondary molecule, or
Attached to a labeled secondary molecule and a detectably labeled tertiary molecule
It is possible. This method does not involve unacceptable levels of background signal.
Extensions should be applied as far as practicable to obtain a signal that can be detected satisfactorily.
Can be. The secondary, tertiary or cross-linking system can be any other molecule (label or other antibody
Or the use of antibodies against
Any molecule, such as the biotin-streptavidin / avidin system, may be involved.
And it is possible. Typically, detectable labels include radioisotopes, chemical or
Are molecules that produce or alter light enzymatically, enzymes that provide a detectable reaction product,
Molecules with fluorescent or light-emitting properties that change upon binding, fluorescent molecules or binding
Includes children. Specific examples of the labeling method are described in U.S. Pat.No. 5,011,770
. Alternatively, the binding of the target molecule is altered by the heat of solution upon binding of the probe to the target.
Is measured by isothermal titration calorimetry or by the probe or standard.
Target is coated on the surface and the surface generated by the binding of the target or probe, respectively.
By detecting changes in their light scattering (e.g.,
Can be detected directly.
PUFAs produced by recombinant means are useful in a wide variety of areas. Hi
Supplementing animals or animals with various forms of PUFAs, not only the level of added PUFAs,
The levels of their downstream metabolites may also increase. Complex regulatory mechanisms are
Combining PUFAs or adding various conjugates of PUFAs can
The desired level of specific PU in an individual by inhibiting, controlling or suppressing
It may be desirable to get FA. In this case, the PKS-like gene or
Expression of transcription PKS-like gene transcripts is found in plant parts and / or plant tissues.
The level of a particular PUFA or derivative thereof may be altered. PKS-like gene polype
The region encoding the peptide may be expressed alone or with other genes and
Contains a higher proportion of the desired PUFA than the tissue and / or plant parts of the decoration or
Tissues and / or plants containing a PUFA composition that more closely resembles the PUFA composition of human breast milk
Give part (Prieto et al., PCT Publication WO 95/24494).
PUFAs or derivatives thereof produced by the disclosed method provide intravenous nutritional support.
As a dietary supplement for patients receiving or to prevent or treat malnutrition
Can be used to For food supplements, purified PUFA or
The derivative is formulated so that the consumer will ingest the desired amount of PUFA in normal use
It can be added to a cooked cooking oil, fat or margarine. In addition, the PU
FA can be added to infant formulas, nutritional supplements or other foods.
It is also useful as an anti-inflammatory and cholesterol lowering agent.
Certain fatty acids, such as EPA, are used in milk to better mimic the PUFA composition of human breast milk.
It can be used to modify the composition of the infant formula. Predominant in human breast milk
Triglycerides have been reported to be 1,3-di-oleoyl-2-palmitoyl.
, 2-palmitoyl glyceride is better than 2-oleoyl or 2-lineoyl glyceride
It is reported to be well absorbed (US Pat. No. 4,876,107). Typically, human
Breastfeeding has a DHA of about 0. 15% to about 0. 36%, EPA approx. 03% to about 0. 13%, ARA approx. 30
% To about 0. 88%, DGLA approx. 22% to approx. 67% and GLA approx. 27% to about 1. 04% included
Have a fatty acid profile. GLA: DGLA: ARA preferred for infant formula
The ratios are each from about 1: 1: 4 to about 1: 1: 1. If you are skilled in the art,
The amount of oil giving the ratio can be determined without undue experimentation. Also
Make the fatty acid composition of animal tissues or milk more favorable for human or animal consumption
Animal feed supplementation of PUFAs or host cells containing them to
It can be used as an agent.
For pharmaceutical use (human or veterinary), the compositions are generally administered orally.
But by any route by which they can be successfully absorbed, e.g., parenterally (e.g.,
That is, subcutaneously, intramuscularly or intravenously), rectally or intravaginally, or topically (eg,
, As a skin ointment or lotion). Available
In some cases, gelatin capsules are a preferred form for oral administration. Also,
The food supplement may be intended for the oral route of administration. Unsaturated acid of the present invention
Is a salt, ester, amide or prod of the fatty acid in conjugated form or
It can be administered as a rag. Pharmaceutically acceptable salts are included in the present invention,
Preferred are sodium, potassium or lithium salts. Also, PCT public
Open
N-alkyl polyhydroxyamine salts described in WO 96/33155, such as N-methyl glu
Contains cumin. Preferred esters are ethyl esters.
The PUFA of the present invention is administered alone or together with a pharmaceutically acceptable carrier or excipient.
can do. As a solid salt, PUFA can be administered in tablet form.
Wear. For intravenous administration, PUFA or a derivative thereof is commercially available from Intralipids and other commercial sources.
It can be enclosed in an agent. If desired, the individual components of the formulation may be single or multiple.
It can be provided separately, in the form of a kit for use in numbers. Individual
A typical dose of fatty acids is about 0. 1 mg to 20 g or even 100 g, preferably
10 mg to 1, 2, 5, or 10 g per day (as needed), or a derivative form thereof
This is the equivalent amount. From about 2 to about 30% fat by weight, calculated as triglycerides
Parenteral nutritional compositions that include an acid are included in the present invention. Other vitamins, if desired,
Especially contains fat soluble vitamins such as vitamins A, D, E and L-carnitine
it can. If desired, a preservative such as tocopherol, typically at about 0. 1% by weight
Can be added.
The following examples are illustrative only and do not limit the invention.
Example Example 1 ORF entity derived from Vibrio marinus
Primer [FW based on the Shewanella ORF6 (Sp ORF6) sequence
5 'primer: CUACUACUACUACC for Vibrio and SS9 respectively
AAGCTAAAGCACTTAACCGTG and CUACUACUACUAACAGCGAAATGCTTATCAAG, and 3'B
W primer: CAUCAUCAUCAUGCGACC for both Vibrio and SS9
AAAACCAAATGAGCTAATAC] and borophy producing Vibrio and EPA
Rick Photobacter (Bartlett, UC San Diego)
Polymerase chain reaction using a genomic DNA template derived from
About 400 bases for Vibrio marinus by PCR
For SS9, a PCR product of about 900 bases was obtained.
Sp ORF6 by number measurement
Showed greater than 75% homology to its corresponding fragment (see FIG. 25).
Next, a Vibrio cosmid library was prepared, and the Vibrio cosmid library was prepared.
2.) Using the ORF6 PCR product as a probe (see FIG. 26), at least OR
Clones containing F6 were selected by colony hybridization.
Additional sequences of selected cosmids (eg, cosmid # 9 and cosmid # 21)
Through the same sequence as the ORF 6-9, which is homologous to the ORF 6-9 of Shewanella
Clusters with ORFs organized in different order (ORF6-9) (Figure
5) was obtained (FIG. 7). The Vibrio ORF from this sequence is at positions 17394-36115
Found and include ORFs 6-9.
table Diagram of Vibrio operon
17394-25349 length = 7956nt
25509-28157 length = 2649nt
28209-34262 length = 6054nt
34454〜36115 Length = 1662nt
The name of the ORF of the Shewanella gene is based on that disclosed in FIG.
Published on the Shewanella cluster (
Yazawa et al., US Patent No. 5,683,898). For example, ORF3 in FIG.
It was read in the opposite direction to the other ORFs and compared with Yazawa et al., US Pat. No. 5,683,898.
Yazawa et al., U.S. Patent No. 5,683,898 (see FIG. 24).
).
Sequences homologous to ORF3 can be located near ORF6 (17,000 bases upstream of ORF6) or near ORF9 (O
(About 4,000 bases downstream of RF9). Phosphopantetheinyl trans
Motif characteristic of ferase (Lambalot et al. (1996) Current Biology 3: 923-93
6) is the Vibrio strain screened for these motifs.
Did not exist in the column. Also, Vibrio and SC2A Shuwanera (She
wanella) (also provided by the University of San Diego, which can also produce EPA
Genomic digest of the other bacterium) is derived from Sp ORF3
There was no match for the probe. ORF3 is in Vibrio
But its DNA may not be homologous to the Sp ORF3 DNA, and
And / or may be located in parts of the genome that have not been sequenced.
FIG. 6 shows the sequence of an approximately 19 kb Vibrio clone containing ORFs 6 to 9.
I do. 7 and 8, Vibrio marinus and Shu
Genes related to the PKS-like system of Shewanella putrefaciens
Compare raster regimes. 9 to 12 show the corresponding ORFs 6, 7, 8 and
The level of sequence homology between 9 is shown.
Example 2 ORF 8 directs DHA production
As described in Example 1, DNA homologous to Sp ORF6 can also produce EPA
Found in an unrelated species, SS9 Photobacterium. Also
ORFs that are homologous to Sp ORFs 6-9 produce DHA and produce Vibrio marinus.
s). These ORFs inhibit EPA synthesis in E. coli.
The deletion in each of the Sp ORFs 6 to 9 (Yazawa (1996) supra) is
A series of experiments were designed to complement with the corresponding homologous gene from brio).
Using the Sp EPA cluster, if any of the Vibrio ORFs 6-9 are D
It was confirmed whether it caused the production of HA. Obtained for each of the SP ORFs
Deletion mutants are EPA and DHA null. Each deletion is then replaced with the lac promoter.
And complemented with the corresponding Vibrio ORF expressed behind (FIG. 13).
Complementation of the Sp ORF6 deletion by Vibrio ORF6 restores EPA production
Was. Complementing the deletion of Sp ORF7 and ORF9 gave similar results.
. In contrast, complementation of the Sp ORF8 deletion caused the production of C22: 6. But
Thus, Vibrio ORF8 appears to be a key element in the synthesis of DHA. Figure
14 and 15 show the complementation of Sp del ORF6 by Vibrio ORF6 (EPA (without DHA)
)) And Sp del ORF with Vibrio ORF8
8 shows a chromatogram of the fatty acid profile from the complement of 8 (DHA). FIG.
Shows the percentage of fatty acids for RF8 complementation, where again, ORF8 produces DHA.
It has been shown to cause life.
These data indicate that polyketide-like synthetic genes with related or similar ORFs
Pups are combined and expressed in a heterologous system to produce different PUFA species in the host system.
ORF8 can be used to determine the final chain length
Has a certain role. Vibrio ORF 6, 7, 8
And 9 restore EPA synthesis. In the case of Vibrio ORF8
, DHA (about 0.7%) is present with EPA (about 0.6%), which means that this gene
Demonstrates significant role in DHA vs EPA synthesis directives for these systems
are doing.
Example 3 DHA Requirements for the production of
Combination of Vibrio ORF8 with cluster ORF6-9 with Vibrio ORF8
To determine how to use them together and to determine the synthesis of DHA
Part of the Vibrio ORF8 and other Vibrio ORF6-9 clusters
Or some combinations with all were made.
Vibrio ORFs 6-9 were complemented with Sp ORF3. Figure 1 shows the result of this complementation.
Shown in 6b and 16c. Significant amounts of DHA measured (greater than about 9%) and EPA
Absence is an ORF other than Vibrio ORF6-9 in combination with Sp ORF3
Is not required for DHA synthesis. This is because Sp ORF3 is a bacterial PUFA
Suggests a universal role in the synthesis of.
Regarding the production of DHA versus EPA, in order to specifically produce DHA, Vibrio (V
ibrio) ORF8 in combination with other Vibrio ORFs in the 6-9 cluster
May be necessary. Role of Vibrio ORF9 in DHA synthesis
About the role of each combination such as Vibrio ORF (6,8), (7,8), (8,9)
Is currently under study.
Example 4 Plant expression construct
To facilitate the cloning of large fragments and their subsequent manipulation
Designed a cloning vector with very few restriction sites. Array AAGCCC
Oligonucleotides with GGGCTT and GTACAAGCCCGGGCTTAGCT are annealed to each other
The adapter was assembled by ringing. Vector pBluescript II SK +
(Stratagene) after digestion with the restriction endonucleases Asp718 and SstI,
An adapter was ligated to the vector. The resulting vector pCGN7769 was blunt-ended.
Single SrfI (and embedded SmaI) clone for cloning DNA fragments
Had a tanning site.
Contains a napin cassette from pCGN3223 (US Pat. No. 5,639,790)
To a large DNA fragment containing multiple restriction sites.
Make it more useful for cloning, and into a plant binary transformation vector
It enabled the cloning of multiple napin fusion genes. Vector pBCSK + (Strata
gene) after digestion with the restriction endonuclease BssHII, followed by the sequence CGCGATTTAAATGGCGCG
Self-annealed oligonucleotide of CCCTGCAGGCGGCCGCCTGCAGGGCGCGCCATTTAAAT
Was ligated to the vector to construct the vector pCGN7765. Plastic
Smids pCGN3223 and pCGN7765 were digested with NotI and ligated together. The obtained vector
PCGN7770 (Fig. 17) contains the pCGN7765 backbone and napin seeds from pCGN3223.
And a specific expression cassette.Shewanella construct
In order to introduce appropriate cloning sites at 5 'and 3' of the ORF using PCR,
The gene encoding the Shewanella protein was mutagenized.
The template for the PCR reaction was cosmid pEPA (Yazawa et al., Supra) DNA. Pfu DNA
PCR reactions were performed using the polymerase according to the manufacturer's protocol. S
The PCR product was cloned into pCGN7769 digested with rfI. Primer CTGC
AGCTCGAGACAATGTTGATTTCCTTATACTTCTGTCC and GGATCCAGATCTCTAGCTAGTCTTAGCTG
ORF3 was amplified using AAGCTCGA to generate plasmid pCGN8520.
Primers TCTAGACTCGAGACAATGAGCCAGACCTCTAAACCTACA and CCCGGGCTCGAGCTAAT
Amplify ORF6 using TCGCCTCACTGTCGTTTGCT to generate plasmid pCGN7776
Was. Primers GAATTCCTCGAGACAATGCCGCTGCGCATCGCACTTATC and GGTACCAGATCTT
Amplify ORF7 using TAGACTTCCCCTTGAAGTAAATGG to generate plasmid pCGN7771
Done. Primers GAATTCGTCGACACAATGTCATTACCAGACAATGCTTCT and TCTAGAGTC
ORF8 was amplified using GACTTATACAGATTCTTCGATGCTGATAG and the plasmid pGCN7775
Generated. Primers GAATTCGTCGACACAATGAATCCTACAGCAACTAACGAA and TCTAG
ORF9 was amplified using AGGATCCTTAGGCCATTCTTTGGTTTGGCTTCTC and the plasmid pCGN7
Generated 773.
By DNA sequencing of the inserts of pCGN7771, pCGN8520 and pCGN7773, the PCR
The integrity of the product was confirmed. ORF6 and ORF8 had very large sizes
. To avoid sequencing of all clones, the central part of the ORF was
Replaced. A 6.6 kilobase PacI / BamHI fragment of pEPA containing the central portion of ORF6
And pCGN7776B4, which was ligated to pCGN7776 digested with PacI / BamHI. In ORF8
A 4.4 kb BamHI / BglII fragment of pEPA containing the central portion was digested with BamHI / BglII.
The resulting product was ligated to pCGN7775 to obtain pCGN7775A. The region adjacent to the pEPA fragment
And the cloning junction was confirmed by DNA sequencing.
Plasmid pCGN7771 is cut with XhoII and BglII and digested with SalI and BglII
Linked to pCGN7770. The obtained napin / ORF7 gene fusion plasmid was cloned into pCGN7783
I decided to call it. Plasmid pCGN8520 is cut with XhoI and BglII and SalI and
And ligated into pCGN7770 after digestion with BglII. The obtained napin / ORF3 gene fusion
Rasmid has been named pCGN8528. Plasmid pCGN7773 with SalI and BamH
I was cut and ligated into pCGN7770 after digestion with SalI and BglII. Napin / O obtained
The RF9 gene fusion plasmid was designated as pCGN7785. Plasmid pCGN7775
A is cut with SalI and SalI
And ligated to pCGN7770 after cleavage. The obtained napin / ORF8 gene fusion plasmid
It was named pCGN7782. Plasmid pCGN7776B4 is cut with XhoI and deleted with SalI.
The product was ligated to pCGN7770. The obtained napin / ORF6 gene fusion plasmid was
7786B4.
The binary vector pCGN5139 for plant transformation was transformed into pCGN1558 (McBride and
ummerfelt (1990) Plant Molecular Biology, 14: 269-276). pCGN1558
Polylinker as a HindIII / Asp718 fragment as a unique restriction endonuclease
With a polylinker containing AscI, PacI, XbaI, SwaI, BamHI and NotI
Replaced. The Asp718 and HindIII restriction endonuclease sites are in pCGN5139
Is held. pCGN5139 is digested with NotI and linked to NotC digested pCGN7786B4.
Tied. The resulting binary vector containing the Napin / ORF6 gene fusion was
It was named pCGN8533. Plasmid pCGN8533 was digested with Sse8387I and Sse838
It was ligated to pCGN7782 digested with 7I. Napin / ORF6 gene fusion and Napin / O
The resulting binary vector containing the RF8 gene fusion was cloned into pCGN8535 (FIG. 18).
I decided to call it.
The plant binary transformation vector pCGN5139 was digested with Asp718 and digested with Asp718.
Was linked to pCGN8528. Resulting binner containing napin / ORF3 gene fusion
The lead vector was designated as pCGN8532. Plasmid pCGN8532 deleted with NotI
And ligated to pCGN7783 digested with NotI. Napin / ORF3 gene fusion and
The resulting binary vector containing the napin / ORF7 gene fusion was cloned into pCGN8534.
I decided to call it. Plasmid pCGN8534 is digested with Sse8387I and digested with Sse8387I
And linked to pCGN7785. Napin / ORF3 gene fusion, Napin / ORF7 gene fusion
The resulting binary vector containing the fusion and napin / ORF9 gene fusion
, PCGN8537 (FIG. 19).Vibrio construct
All Vibrio ORFs for plant expression use Vibrio (Vibrio) as the starting molecule.
rio) Obtained using cosmid # 9. Vibrio cosmid # 9 is from Example 1
(Vibrio) using the Vibrio ORF6 PCR product described in
It was one of the cosmids isolated from the cosmid library.
PCR primers TCTAGAGTCGACACAATGGCGGAATTAGCTGTTATTGGT and GTCGACGGATCC
Using CTATTTGTTCGTGTTTGCTATATG to encode Vibrio ORF7
The gene (FIG. 6) was mutagenized and Sal upstream of the open reading frame.
An I site was introduced downstream of the open reading frame at a BamHI site. PCR
Primers GTCGACGGATCCACAATGAATATAGTAAGTAATCATTCGGCA and GTCGACCTCGAGTT
Gene encoding Vibrio ORF9 using AATCACTCGTACGATAACTTGCC
Mutants were mutated to create a BamHI upstream of the open reading frame.
An XhoHI site was introduced downstream of the open reading frame. The system
The restriction site was introduced using PCR and the integrity of the mutagenized plasmid was determined by the DNA sequence.
Confirmed by Using the Vibrio ORF7 gene as a SalI-BamHI fragment,
Cloning into the napin cassette of pCGN7770 (FIG. 17) digested with -BglI, p
CGN8539 was obtained. The Vibrio ORF9 gene was converted to a SalI-BamHI fragment as Sal-
Cloning into the napin cassette of pCGN7770 (FIG. 17) digested with BglI,
I got GN8543.
Mutagenesis of the genes encoding Vibrio ORF6 and ORF8
A SalI site adjacent to the open reading frame was introduced. Next to ORF6
The flanking SalI site was introduced using PCR. The primer used was CCCGGGTCGAC
ACAATGGCTAAAAAGAACACCACATCGA and CCCGGGTCGACTCATGACATATCGTTCAAAATGTCACT
GA. The central 7.3 kb BamHI-XhoI fragment of the PCR product was transferred to Vibrio
It was replaced with the corresponding fragment from cosmid # 9. Mutagenized ORF6 is transferred to pCGN7770
Cloning into the SalI site of the pin cassette resulted in plasmid pCGN8554.
Different methods were used for mutagenesis of ORF8. BamHI fragment containing ORF8
Was subcloned into plasmid pHC79 to obtain cosmid # 9 ″.
The SalI site upstream of the region to the oligonucleotide TCGACATGGAAAATATTGCAGTAGTAGGTATT
GCTAATTTGTTC and
Introduced on adapter containing CCGGGAACAAATTAGCAATACCTACTACTGCAATATTTTCCATG
. The adapter was ligated to cosmid # 9 "after digestion with SalI and XmaI.
A SalI site was introduced downstream of the stop codon using PCR for mutagenesis. The end
The DNA fragment containing the connection codon was prepared using primers TCAGATGAACTTTATCGATAC and TCATGA
Made using cosmid # 9 "as a template with GACGTCGTCGACTTACGCTTCAACAATACT
did. The PCR product was digested with the restriction endonucleases ClaI and AatII and the same enzymes
And cloned into cosmid # 9 "derivative digested with to yield plasmid 8P3.
The SalI fragment from 8P3 was cloned into SalI digested pCGN7770 to generate pCGN8
I got 515.
Contains Shewannella ORF3 under the control of the Napin promoter
Digest pCGN8532, a binary plant transformation vector, with NotI,
The NotI fragment of pCGN8539 containing the Vibrio ORF7 gene fusion was inserted into pCG
N8552 was obtained. Shewannella ORF under the control of the Napin promoter
3 and the plasmid pCGN8556 containing Vibrio ORFs 7 and 9 (
Figure 23) shows that the Sse8357 fragment from pCGN8543 was cloned into pCGN8552 digested with Sse8387.
It was constructed by training.
The NotI digested napin / ORF8 gene from plasmid pCGN8515 was digested with NotI.
Cloning into digested plant binary transformation vector pCGN5139,
GN8548 was obtained. The napin / ORF6 gene from pCGN8554 digested with Sse8387
Then, it was cloned into the Sse8387 site of pCGN8566. Napin / ORF6 gene fusion
The resulting binary vector containing the body and the napin / ORF8 gene fusion,
pCGN8560 (FIG. 22).
Example 5 Plant transformation and PUFA production EPA Production of
The Shewanella constructs pCGN8535 and pCGN8537 can be the same or different.
It can be transformed into various plants. If separate plants are used, the
Transgenic plants are crossed to obtain a heterozygous plant containing both constructs.
A mixed seed can be obtained.
pCGN8535 and pCGN8537 were separately expressed in western rape (Brassica napus)
Convert. Plants are selected on a medium containing kanamycin and the full-length
The transformation by the insert is confirmed by Southern analysis. ORF3, 6, 7
Western analysis for protein expression of the enzyme encoded by, 8 or 9
Can be used to test immature seeds, where the best expressing pC
GNE8535 and pCGN8537T1Plants transformed for further experimentation and crossing
Select and grow for. Alternatively, the Southern method showed an insertion, T1Transformed with
Plants were crossed with each other to obtain TTwoGet the seeds. Of this seed
Half of the seeds can be analyzed directly from the expression of EPA in the fat fraction.
Grow the remaining half of the seeds with the best EPA-producing events and use traditional breeding techniques
Growing more to obtain a Brassica line for the production of EPA.
Plasmids pCGN7792 and pCGN7795 were also transferred to western rape (Brassica napus
) Introduce simultaneously into host cells. Standard transformation protocols (eg, US
See US Patent No. 5,463,174 and US Patent No. 5,750,871), but
Agrobacteria containing both plasmids are mixed together and co-cultured.
Incubate with rape (Brassica) cotyledons during the feeding process. The resulting plant
Are transformed with both plasmids.DHA Production of
As described for the production of EPA, pCGN8556 and pCGN8556
Plants can be formed by introducing GN8560 into separate plants or simultaneously into the same plant.
Change quality.
Alternatively, the Shewanella ORF can be replaced with the Vibrio ORF6.
And 8 cooperate, for example, to transform plants with the constructs pCGN8560 and pCGN7795.
Can be used to allow expression of the corresponding ORF in plant cells.
it can. This combination provides the ORFs 3, 7 and 9 of Shewanella
Includes with ORF6 from Vibrio and ORF8 from Vibrio
Gives a PKS-like gene arrangement. As mentioned above, ORF8
It is a PKS-like gene that controls the type of final PUFA product. Therefore, the obtained shape
Transgenic plants produce DHA in vegetable oils.
Example 6 Transgenic plant ab containing Shewanella PUFA gene Lana (Brassica) plant
52 plants co-transformed with plasmids pCGN8535 and pCGN8537 were subjected to PCR.
More analysis shows that the Shewanella ORF is the transgenic plant
It was confirmed whether or not it exists. 41 plants contain plasmid pCGN8537, 35
Individual plants contained pCGN8535. 11 of the plants are required for EPA synthesis
All five ORFs. Some plants use the binary plasmid
Contains genes from both of the genes, but lacks at least one of the ORFs
It was likely. Analysis on about 20 additional plants is currently underway.
Twenty-three plants transformed with pCGN8535 alone were analyzed by PCR and
To determine if a Shewanella ORF is present in the transgenic plant.
Was. Thirteen of these plants contain Shewanella ORF6 and
It contained both Shewanella ORF8. Six of the plants
It contained only one ORF.
Nineteen plants transformed with pCGN8537 alone were analyzed by PCR and
To determine if Shewanella ORF is present in the transgenic plant.
Was. Eighteen of the plants are Shewanella ORF3, Shewanella
(Shewanella) ORF7 and Shewanella ORF9.
One plant contained Shewanella ORFs 3 and 7.Arabidopsis
More than 40 transformers co-transformed with plasmids pCGN8535 and pCGN8537
A transgenic Arabidopsis plant is grown in our growth box
Growing. PCR components to confirm which of the ORFs are present in the plant
Analysis is currently underway.
Plant cells are transformed using PKS-like genes from various organisms,
Plant Cell Membrane or Plant Seed Oil Fat via PUFA Biosynthesis in Transformed Plant Cells
Modification of the acid composition has been made possible by the present invention. Due to the nature of the PKS-like system
The fatty acid end product produced in the plant cell contains a number of specific chemical structures.
Can be selected or designed. For example, the fatty acids are
May include: keto or hydroxy at various positions along the carbon chain.
In the number and type of double bonds (cis or trans)
Mutation; number and number of branches (methyl, ethyl and longer branches) from the straight carbon chain
And mutations in type; and mutations in saturated carbons. Also, the final product fatty acids
Each length can be controlled by the particular PKS-like gene used.
All publications and patent applications mentioned in this specification are
Equivalent to the technical level of the trader. All publications and patent applications are
Or where the patent application is specifically and individually indicated to be incorporated by reference.
To the same extent, they are incorporated herein by reference.
The present invention has been fully described above and is intended to be within the spirit or scope of the appended claims.
Many changes and modifications can be made to the present invention without departing from the invention.
Will be apparent to those skilled in the art.
【手続補正書】特許法第184条の8第1項
【提出日】平成10年12月30日(1998.12.30)
【補正内容】
【図1】【図1】【図2】【図2】【図3】
【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図4】【図5】【図5】【図5】【図5】【図5】【図5】【図5】【図5】【図5】【図5】【図5】【図5】【図5】【図5】【図5】【図5】【図5】【図5】【図5】【図5】【図5】【図5】【図5】【図5】【図5】【図5】【図5】【図5】【図5】【図6】【図6】【図6】【図6】【図6】【図6】【図6】【図6】【図6】【図6】【図6】【図6】【図6】【図7】【図7】
【図8】【図9】
【図10】【図11】
【図12】
【図13】【図14】【図15】【図16】【図17】【図18】【図19】【図20】【図21】【図22】【図23】【図24】【図25】【図26】【図26】【図26】【図26】 [Procedure for Amendment] Article 184-8, Paragraph 1 of the Patent Act [Date of Submission] December 30, 1998 (December 30, 1998) [Contents of Amendment] [Figure 1] FIG. FIG. 2 FIG. 2 FIG. 3 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 4 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 5 FIG. 6 FIG. 6 FIG. 6 FIG. 6 FIG. 6 FIG. 6 FIG. 6 FIG. 6 FIG. 6 FIG. 6 FIG. 6 FIG. 6 FIG. 6 FIG. 7 FIG. 7 FIG. 8 FIG. 9 FIG. 10 FIG. 11 FIG. FIG. 13 FIG. 14 FIG. FIG. 16 FIG. FIG. FIG. FIG. FIG. 21 FIG. FIG. 23 FIG. 24 FIG. 25 FIG. 26 FIG. 26 FIG. 26 FIG. 26
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(51)Int.Cl.7 識別記号 FI テーマコート゛(参考)
C12N 5/10 C12R 1:01)
C12P 7/64 (C12N 1/21
//(C12N 15/09 ZNA C12R 1:225)
C12R 1:01) (C12N 1/21
(C12N 1/21 C12R 1:19)
C12R 1:225) C12N 15/00 ZNAA
(C12N 1/21 5/00 B
C12R 1:19) C
(72)発明者 ラスナー,マイケル
アメリカ合衆国 95616 カリフォルニア
州,デイビス,ファルコン アベニュー
721──────────────────────────────────────────────────続 き Continued on the front page (51) Int.Cl. 7 Identification symbol FI Theme coat ゛ (Reference) C12N 5/10 C12R 1:01) C12P 7/64 (C12N 1/21 // (C12N 15/09 ZNA C12R 1: 225) C12R 1:01) (C12N 1/21 (C12N 1/21 C12R 1:19) C12R 1: 225) C12N 15/00 ZNAA (C12N 1/21 5/00 B C12R 1:19) C ( 72) Inventor Rasner, Michael United States 95616 Falcon Avenue, Davis, California 721