JP2002509433A - Nucleic acids specific to cardiac and skeletal muscle, and methods for their production and use - Google Patents

Nucleic acids specific to cardiac and skeletal muscle, and methods for their production and use

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JP2002509433A JP50164199A JP50164199A JP2002509433A JP 2002509433 A JP2002509433 A JP 2002509433A JP 50164199 A JP50164199 A JP 50164199A JP 50164199 A JP50164199 A JP 50164199A JP 2002509433 A JP2002509433 A JP 2002509433A
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ホルスト、ドンデイ
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Abstract

(57)【要約】 本発明は、心筋および骨格筋に特異的な核酸、診断補助剤、すなわち医薬製剤としてのその製造方法および使用、ならびに機能的反応体同定試験。   (57) [Summary] The present invention relates to nucleic acids specific for cardiac and skeletal muscle, diagnostic aids, ie methods for their production and use as pharmaceutical preparations, and tests for identifying functional reactants.

Description

【発明の詳細な説明】 心筋および骨格筋に特異的な核酸、ならびにその製造方法および使用 本発明は、ヒト心筋および骨格筋で発現する核酸、診断補助剤、すなわち医薬 製剤としてのその製造方法および使用、ならびに機能的反応体同定試験に関する 。 心臓は、心房および心室の収縮(心収縮)と弛緩(心弛緩)が交互することに よる運動で血管の血流を維持する働きを有する筋肉の中空器官である。 心臓の筋肉、すなわち心筋は間に結合組織がある特徴的な横紋筋細胞よりなる 。各々の細胞は中央核を有し、原形質膜、すなわち筋細胞膜によって境界づけら れており、筋形質によって不規則に分離された多くの収縮性筋原繊維を含む。心 臓の収縮性物質は長い平行な筋原繊維で形成されている。各筋原繊維はいくつか の同一構造および機能単位、すなわち筋節に分割されている。次ぎに筋節は、主 にアクチン、トロポミオシンおよびトロポニンからなる薄いフィラメントと、主 にミオシンからなる厚いフィラメントからなっている。 筋収縮の分子メカニズムは、球形のミオシンヘッドとFアクチンフィラメント との付着と脱離のサイクルに基づいている。心筋の電気的刺激時には、筋細胞膜 細網からCa2+が放出され、これがアロステリック反応によりトロポニン複合体 およびトロポミオシンに影響を及ぼし、次いでアクチンフィラメントとミオシン ヘッドの接触のための通路が開く。この付着によりミオシンのコンホメーション 変化が起こり、次いでそれ自身にそってアクチンフィラメントが引っ張られる。 このようなコンホメーション変化を逆転させ、収縮サイクルの開始時に戻すには ATPが必要とされる。 神経およびホルモン調節の測定により、評価に身体のある灌流要求、すなわち 血流要求に対して心筋活性の短時間での調節が可能である。このように収縮力と 収縮率の双方を増加させることができる。長時間にわたる過度の緊張は、心筋に 生理学的な変質プロセスをもたらし、これは主に筋原繊維の増加(筋細胞の肥大 )を特徴とする。 心筋が損なわれれば、しばしば本来の生理学的適応機構が長期にわたって慢性 心不全、すなわち心虚弱を発症させる病状をもたらし、通常、最後には急性心不 全が起こる。重篤な慢性不全の場合、心臓は変化した出力要求にもはや適切には 応答しなくなる可能性があり、わずかな身体運動でも呼吸の涸渇や息切れをもた らす。 心筋の損傷は虚血、すなわち冠状動脈疾患、細菌またはウイルス感染、毒物、 代謝異常、自己免疫疾患または遺伝子欠損によって引き起こされる放血に起囚す る。一般に治療上の測定は収縮力を強め、代償的な神経およびホルモン的補償機 構を調節することを目的としている。このような治療にもかかわらず、この疾病 の死亡率は依然として高い(診断後最初の5年内に35〜50%)。心不全は世 界中で主要な死因である。唯一の病因的治療は心臓移植である。 慢性心不全における分子的変化は十分には知られていない。特に、心不全の基 底にある遺伝子変異は実質的に知られていない。なぜ毒物やウイルスによるの二 次的な損傷がある人には心不全をもたらし、ある人にはもたらさないのかという 疑問にも依然として答えられない。 このように本発明は、事実上遺伝子が関連する心疾患の原因でなくとも、少な くともそれに部分的にあずかる遺伝子を同定および単離するという目的に基づい ている。 驚くべきことに、いま、1つの遺伝子がヒト心臓組織cDNAバンクで見出さ れ、それは健常型心臓組織におけるより不全型心臓組織でより強くし発現し、遺 伝子が関連する心不全に原因として関係する。不完全であり、機能が必ずしも総 てそれに割り当てられているわけではないが、いわゆるEST(発現配列タグ) がすでにこの遺伝子として存在する(Tanaka,T.et al.(1996)Genemics,35,2 31-235;EMBL AC:CO4498;クローン3NHC3467)。 従って、本発明の1つの態様は図4に示されるアミノ酸配列を有するポリペプ チド、またはその機能的変異体をコードする核酸および少なくとも8個のヌクレ オチド、好ましくは少なくとも10個のヌクレオチド、特に少なくとも15個の ヌクレオチド、特には少なくとも20ヌクレオチドを有するその一部である{た だし、配列:(ここで、NはA、T、GまたはCを表す) を有する核酸は除く}。 本発明の核酸をヒト心臓組織cDNAバンクから単離し、配列決定した。この ために、まず完全なRNAを標準法により健常型、また不全型心臓サンプルから 単離し、次いで3’アンカープライマー混合物、例えば5’−T12ACN−3’ プライマー(ここで、Nはデオキシヌクレオチドのいずれかを表す)および逆転 写酵素を用いて転写させてcDNAとした。次いでこのcDNAをいわゆるLi angとPardeeのディファレンシャルディスプレイ法(Liang,P.& Parde e,A.(1992)Science 257,967-970)に基づく方法を用いて、3’プライマー、 例えばT12ACNプライマーおよび任意に選択した5’−デカマープライマー、 例えば5’−CCTTCTACCC−3’10量体プライマーを用いる特定のP CR条件下で増幅させた。それにより、驚くべきことに健常型心臓サンプル中に は存在せず、不全型心臓サンプル中には明らかに存在する321塩基対(bp) 長のDNA断片を増幅させることができた。ディファレンシャルディスプレイ法 またはサブトラクティブcDNA遺伝子バンクなどの常法には、クローンが過剰 であり、表現が不十分なクローンがあり、擬陽性クローンがあるという問題が伴 うので、このことは驚くべきことであった。特に、特異な条件下でのみ弱く発現 する遺伝子の遺伝子産物を同定することが可能である。従って、一般にヒット率 が非常に低いこと(10〜20%)、また例えばディファレンシャルディスプレ イ法においては、選択されたPCR条件、すなわちプライマー長に依存すること も、または例えばサブトラクティブバンクの製造においてはハイブリダイゼーシ ョン温度に依存することも驚くべきことではない。次いで、見出したDNA断片 を用いて完全な遺伝子をcDNA遺伝子バンクから単離し、さらに配列決定した 。 総ての場合で、さらなる方法により、見出したcDNAが活性な、かつ/また は組織特異的な遺伝子に割り当てられているかどうか見極める必要がある。従っ て、いわゆるノーザンブロットにおいて種々のヒト組織に由来するmRNAを、 見出したDNA断片とハイブリダイズさせ、次いで結合したmRNAの量を、例 えばDNA断片の放射標識によって測定した。この実験により、特に横文筋、す なわち心筋および骨格筋組織において、また前立腺組織においては非常に弱くで はあるが、相当するRNAを検出した。健常型また不全型心臓組織間を比較する さらなる実験では、高い発現、例えば健常型組織に比べ不全型組織において約3 5%まで増加したRNAの発現を検出した。健常型組織に比べて不全型組織にお いて、特に比較的小さいRNA種が優先的に発現の増加を示すということが実証 できた。比較的小さいRNA種の発現の増加は、例えばノーザンブロットにおけ る二重のバンドの形で容易に明らかとなる(図5bを参照)。 誘導したポリペプチド配列とタンパク質データベースとの比較により、タンパ ク質トロポモジュリンとの確かな関係(相同性)がさらに示された(図4を参照 )。トロポモジュリンはニワトリ心筋細胞において筋原繊維の発達および細胞の 収縮性に影響を及ぼすポリペブチドであることが知られている(Gregorio et a l.(1995)Nature 377,83-86)。このタンパク質は一方ではトロポミオシンへ、 他方ではアクチン繊維へ結合するが、それ自身はその活性を調節されない。誘導 した本発明のポリペプチドも同様に、例えばトロポミオシン結合ドメインなどの いくつかのトロポモジュリンの構造的特徴を有する。トロポモジュリンとは対照 的に、本発明のポリペプチドは、いわゆるチロシンキナーゼによるポリペプチド の活性の調節を示すさらなる構造的特徴を有する(図4を参照)。 従って、「機能的変異体」とは、本発明のポリペプチドと機能的に関連があり 、すなわち同様に心筋細胞の収縮性の調節可能なモジュレーターといえ、横文筋 で、好ましくは心筋、骨格筋および/もしくは前立腺組織で、特に心筋および/ もしくは骨格筋で、また特には心筋細胞で発現し、例えば1以上のトロポミオシ ン結合ドメインなどのトロポモジュリンの構造的特徴を有し、かつ/またはその 活性がチロシンキナーゼにより調節され得る本発明の目的のためのポリペプチド を意味する。機能的変異体の例としては、ヒト以外の生物、好ましくは例えはサ ルなどの非ヒト哺乳類由来の相当するポリペプチドが挙げられる。 広義には、「機能的変異体」とは、配列の相同性、特に図4に示されるアミノ 酸配列を有するポリペプチドと約70%、好ましくは約80%、特に約90%、 特別には約95%の配列同一性を有するポリペプチドを含む。これらは例えば非 心臓特異的組織、例えば骨格筋組織から単離される核酸によりコードされるが、 心臓特異的細胞で発現した後は同一の機能を有するポリペプチドを含む。さらに 、これらは約1〜60個の、好ましくは約1〜30個の、特に約1〜15個の、 特別には約1〜5個のアミノ酸領域においてポリペプチドの欠失を含む。例えば 、最初のアミノ酸メチオニンがポリペプチドの機能にごくわずかな変化を伴って 存在しなくてもよい。これらにはまた、前記の本発明のポリペプチドを含んでな る融合タンパク質が含まれ、この融合タンパク質自身が心筋細胞の収縮性の調節 可能なモジュレーターの機能を有すること、または融合部分の除去後にはじめて 特 定の機能を獲得することが可能である。特に、それらは融合タンパク質を特に約 1〜200個、好ましくは約1〜150個、特に約1〜100個、特別には約1 〜50個のアミノ酸の非心臓特異的配列の含量で含む。非心臓特異的ペプチド配 列の例としては、例えば大腸菌(E.coli)のガラクトシダーゼに由来し得る原核生 物のペプチド配列が挙げられる。 本発明の核酸は一般的にはDNAまたはRNA、好ましくはDNAである。一 般には適切な遺伝子の発現のためには二本鎖DNA、またプローブとしての使用 のためには一本鎖DNAが好ましい。特に好ましいポリペプチドをコードするD NA領域とともに、図1、2もしくは3に示される核酸配列および前記に詳細に 記載されたその一部を有する二本鎖または一本鎖DNAが特に好ましい。この領 域は89位でメチオニンをコードする核酸「ATG」で始まり、1747位で「 アンバー」(終結)をコードする「TAG」までである。 例えば、本発明の核酸は、図1〜3に開示された配列を基にして、または遺伝 子コードの使用によって図4に開示されたポリペプチド配列を基にして、例えば ホスホトリエステル法(例えば、Uhlmann,E.& Peyman,A.(1990)Chemical Rev iews,90,543-584,No.4を参照)により化学的合成できる。本発明の核酸を得 るためのもう1つの可能性は、好適なプローブを用いて好適な遺伝子バンク、例 えば心臓特異的遺伝子バンクから単離することである(例えばJ.Sambrook et a l.,(1989),Molecular Croning.A Laboratory Manual第2版,Cold Spring Ha rbor Laboratory,Cold Spring Harbor,NYを参照)。プローブとして好適なも のは例えば、その配列が図1〜3に示される核酸配列に由来し得る、約100〜 1000ヌクレオチドの長さの、好ましくは約200〜500ヌクレオチドの長 さの、特に約300〜400ヌクレオチドの長さの一本鎖DNA断片である。プ ローブの1つの例としては、321bpの大きさで、図1の下線を引いた領域に 相当する実施例1のDNA断片が挙げられ、これを用いてヒトの心臓組織から 本発明の核酸がすでに首尾よく単離されている(実施例2を参照)。 本発明の核酸は通常、ベクター中に、好ましくは発現ベクターまたは遺伝子治 療に有効なベクター中に存在する。遺伝子治療に有効なベクターは例えばトロポ ニンC(cTNC)プロモーター(例えば、Parmacek,M.S.et al.(1990)J.B iol.Chem.265(26)15970-15976およびParmacek,M.S.et al.(1992)Mol.Ce ll Biol.12(5),1967-1976を参照)などの心臓特異的調節配列を含むことが好 ましく、これは本発明の核酸と機能的に関連する。 発現ベクターは原核生物または真核生物の発現ベクターであってよい。大腸菌 で発現させるための原核生物の発現ベクターの例としては、例えばベクターpG EMまたはpUC誘導体が挙げられ、サッカロミセス・セレビシエ(Sacharomyce s cerevisiae)で発現させるための真核生物の発現ベクターの例としては、例え ばベクターp426Met25またはp426GAL1が挙げられ(Mumberg et al.(1994)Nucl.Acids Res.,22,5767-5768)、昆虫細胞で発現させるためには 、例えばEP-B1 0 127 839またはEP-B1 0 549 721に開示されたようなバキュロウ イルスベクターが挙げられ、哺乳類細胞で発現させるためには、例えばベクター Rc/CMVおよびRc/RSVまたはSV40ベクターが挙げられ、これらは 総て一般に入手可能である。 一般に、発現ベクターはまた、例えば大腸菌で発現させるためのtrpプロモ ーター(例えばEP-B1 0 154 133を参照)、酵母で発現させるためのADH2プ ロモーター(Russell et al.(1983),J.Biol.Chem.258,2674-2682)、昆虫細 胞で発現させるためのバキュロウイルスポリヘドリンプロモーター(例えばEP-B 1 0 127 839を参照)または例えばMMTV(マウス乳癌ウイルス;Lee et al. (1981)Nature 214,228-232)のSV40初期プロモーターまたはLTRプロモ ーターなどの特定の宿主細胞に対して好適なプロモーターを含む。 遺伝子治療に有効なベクターの例としては、ウイルスベクター、好ましくはア デノウイルスベクター、特に複製欠陥性アデノウイルスベクター、またはアデノ 随伴ウイルスベクター、例えば2個の逆方向末端反復配列(ITR)のみからな るアデノ随伴ウイルスベクターが挙げられる。 アデノウイルスベクターおよび特に複製欠陥性アデノウイルスベクターは以下 の理由のために特に好ましい。 ヒトアデノウイルスは約36キロ塩基対(kb)のゲノムを持つ二本鎖DNA ウイルスのクラスに属する。このウイルスDNAは約2700の種々の遺伝子産 物をコードし、初期(「初期遺伝子」)と後期(「後期遺伝子」)とに区別され る。この「初期遺伝子」はE1〜E4の4個の転写単位に分割される。後期遺伝 子産物はキャプシドタンパク質をコードする。少なくとも42の種々のアデノウ イルスおよびA〜Fの亜群に免疫学的に分類することが可能であり、これらの総 てが本発明に適している。ウイルス遺伝子の転写のための前提条件は、アデノウ イルス遺伝子発現のトランスアクチベーターをコードするE1領域の発現である 。このように、それに次ぐ総てのウイルス遺伝子の発現がE1トランスアクチベ ーターに依存しているということを利用すれば、複製できないアデノウイルスベ クターを構築することができる(例えば、McGrory W.J.et al.(1988)Virol.1 63 ,614-617およびGluzman,Y.et al.(1982)、「Eukaryotic Viral Vectors」 (Gluzman,Y.編)187-192,Cold Spring Harbor Press,Cold Spring Harbor N ew Yorkを参照)。アデノウイルスベクター、特に5型(配列についてはChroboc zek,J.et al.(1992)Virol.186,280-285を参照)および特に亜群Cにおいて 、一般にE1遺伝子領域をそれ自身のプロモーターを伴う外来の遺伝子または本 発明の核酸構築物に置き換える。下流のアデノウイルス遺伝子の発現のための前 提条件であるE1遺伝子領域の置換の結果、複製できないアデノウイルスが生ず る。ゆえに、これらのウイルスは失われたE1遺伝子をもとに戻す細胞系統中で のみ複製できる。 従って、複製欠陥性アデノウイルスは一般に、ゲノムに安定に組み込まれたE 1領域のコピーを有する、いわゆる293細胞系統(ヒト胎児性腎臓細胞系統) において相同組換えにより形成される。この目的のために、本発明の核酸をそれ 自身のプロモーター、例えば前記に記載のトロポニンCプロモーターの制御下に ある組換えアデノウイルスプラスミドにクローン化する。次いで、例えば293 ヘルパー細胞系統においてd1327またはde11324(アデノウイルス5 )などのE1に欠陥のあるアデノウイルスゲノムで相同組換えを行う。組換えが 成功した場合にはウイルスプラークが得られる。このように作出された複製欠陥 性ウイルスを、細胞培養物に感染させるため、または身体の遺伝子治療のために 高い力価(例えば109〜1011プラーク形成単位)で使用する。 一般に、アデノウイルスゲノムへの本発明の核酸の正確な挿入部位は重要では ない。例えば本発明の核酸を、欠失したE3遺伝子の代わりにクローン化するこ とも可能である(Karlsson,S.et al.(1986),EMBO J.5,2377-2385)。 しかしながら、特にE3領域も欠失している場合には、E1領域またはその一 部、例えばE1AもしくはE1B領域(例えば、WO95/00655を参照)を本発明の 核酸で置換することが好ましい。 しかしながら、本発明はアデノウイルスベクター系に限定されるものではなく 、それどころかアデノ随伴ウイルスベクターも、以下の理由のために本発明の核 酸と組み合わせるのに特に適している。 AAVウイルスはパルボウイルス科に属する。これらは直径18〜30nmを 有し、かつ約5kbの直鎖一本鎖DNAを含む、正二十面体のエンベロープのな いキャプシドにより分類される。AAVの有効な複製のためには、ヘルパーウイ ルスを伴う宿主細胞の同時感染が必要である。好適なヘルパーの例としてはアデ ノウイルス(Ad5またはAd2)、ヘルペスウイルスおよびワクシニアウイル スが挙げられる(Muzyczka,N.(1992)Curr.Top.Microbiol.Immunol.158,9 7-129)。ヘルパーウイルスの不在下では、AAVはウイルスゲノムを宿主細胞ゲ ノムに安定に組み込むことができるところで潜在状態に移行する。AAVの宿主 ゲノムへの組み込み特性は、哺乳類細胞に対する形質導入ベクターとして特に興 味深いものである。一般的に、ベクターの機能に関して能力があるのは約145 bp長の2つの逆方向末端反復配列(ITR:例えばWO95/23867を参照)である 。それらは複製、パッケージング、および宿主細胞ゲノムへの組み込みのために 、「シス」位に必要なシグナルを有する。組換えベクター粒子へのパッケージン グのためには、非構造タンパク質(repタンパク質)および構造タンパク質( capタンパク質)遺伝子を含むベクタープラスミドをアデノウイスルが感染し た細胞へトランスフェクトする。数日後、組換えAAV粒子の他にアデノウイル スも含有している、細胞フリー細胞溶解物を調製する。このアデノウイルスは5 6℃で加熱することにより、または塩化セシウム勾配でバンドを形成させること により都合よく取り除くことができる。この同時トランスフェクト法を用いて1 05〜106IE/mlのrAAV力価を達成することが可能である。パッキング プラスミドおよびベクタープラスミドが重複配列を持たない場合には、野生型ウ イルスの夾雑は検出限界より低い(Samulski,R.J.(1989)J.Virol.63,3822- 3828)。 本発明の核酸の体細胞への導入は、静止中の分化細胞へのAAVにより達成で き、これは心臓の遺伝子治療に特に有利である。記載した組み込み能はまた、in vivoにおいて長期間持続する遺伝子発現を確実なものとし、これもまた特に有 利である。AAVのさらに有利な点は、ウイルスがヒトに病原性がなく、in viv oで比較的安定であるという点である。本発明の核酸のAAVベクターまたはそ の一部へのクローニングは、例えばWO95/23867、Chiorini,J.A.et al.(1995) ,Human Gene Therapy 6,1531-1541またはKotin,R.M.(1994),Human Gene Th erapy 5,793-801に記載の当業者に公知の方法により行う。 遺伝子治療に有効なベクターはまた、本発明の核酸をリポソームと複合化させ ることにより非常に高いトランスフェクション効率を達成することが可能である ので、これにより得られる(Felgner,P.L.et al.,(1987),Proc.Natl.Acad .Sci USA 84,7413-7417)。リポフェクションではリポソーム懸濁液の超音波処 理により陽イオン脂質の小さな単ラメラ小胞を調製する。DNAは、特に正の正 味荷電が残り、かつ、プラスミドDNAがリポソームにより100%複合化され るような割合で、リポソームの表面にイオン結合されている。Felgner et al.に より使用された脂質混合物DOTMA(1,2−ジオレオイルオキシプロピル− 3−トリメチル−アンモニウムブロミド)およびDOPE(ジオレオイルホスフ ァチジル−エタノールアミン)(1987,前記)の他にも、今や多数の新規脂質組成 物が合成され、種々の細胞系統をトランスフェクトする際のそれらの効率に関し て試験されている(Behr,J.P.et al.(1989),Proc.Natl.Acad.Sci.USA 86 ,6982-6986;Felgner,J.H.et al.(1994)J.Biol.Chem.269,2550-2561;Gao ,X.& Huang,L.(1991),Biochim.Biophys.Acta 1189,195-203)。新規脂質 組成物の例としては、DOTAP N−[1−(2,3−ジオレオイルオキシ)プ ロピル]−N,N,N−トリメチルアンモニウムエチルスルフェートまたはDOG S(TRANSFECTAM;ジオクタデシル−アミドグリシルスペルミン)が挙げられる 。DNA−リポソーム複合体の調製および心臓特異的トランスフェクションにお けるその使用の1つの成功例がDE 44 11402に記載されている。 遺伝子治療において本発明の核酸を使用するには、ポリペプチドをコードする 核酸の一部が、イントロン配列を、好ましくはプロモーターとポリペプチドの開 始コドンの間に、および/またはポリA(ployA)配列を、特に天然に存在するポ リA配列もしくはSV40ウイルスポリA配列を、特に遺伝子の3’末端に含有 する1以上の非コード配列を含むならば、心筋細胞においてmRNAを安定化さ せることができるので、それもまた有利である(Jackson,R.J.(1993)Cell 74, 9-14およびPalmiter,R.D.et al.(1991)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 88,478 -482)。 本発明はさらに図4に示されるアミノ酸配列を有するポリペプチド自身または その機能的変異体および少なくとも6個のアミノ酸を有する、好ましくは少なく とも12個のアミノ酸を有する、特に少なくとも15個のアミノ酸を有する、特 別には少なくとも164個のアミノ酸を有するその一部に関する(ただし、配列 : を有するポリペプチドを除く)。 例えば、このポリペプチドは、前記の好適な発現系において当業者に一般に知 られている方法を用いて本発明の核酸を発現させることにより調製される。好適 な宿主細胞の例としては、大腸菌系統DH5、HB101もしくはBL21、酵 母系統サッカロミセス・セレビシエ、鱗翅目の昆虫細胞系統、例えばスポドプテ ラ・フルギペルダ(Spodoptera frugiperda)、または動物細胞COS、ベロ、2 93およびHeLaが挙げられ、これらの総てが一般的に入手できる。 前記のポリペプチドの一部はまた、従来の合成法(Merrifield法)により合成 することができる。それらは、本発明のポリペプチドのさらなる機能的変異体を 得ることを目的として、好適な遺伝子発現バンクをスクリーニングするために使 用できる、抗血清を得るために特に適している。 従って、本発明はまた、図4に示されるアミノ酸配列を有するポリペプチドと 、またはその機能的変異体と、および少なくとも6個のアミノ酸を有する、好ま しくは少なくとも12個のアミノ酸を有する、特に少なくとも15個のアミノ酸 を 有する、特別には少なくとも164個のアミノ酸を有するその一部と、例えばウ シ血清アルブミンなどの好適な担体と組み合わせることにより、それ自身が免疫 原性であるか、または免疫原性にさせることができるか、またはそれらの免疫原 性を増加させ得るかのいずれかである前記のポリペプチドの一部と特異的に反応 する抗体に関する。 抗体はポリクローナルまたはモノクローナルのいずれかである。例えば一般に 知られている方法により、前記ポリペプチド、または前記のその一部を用いて、 適当であれば、例えばフロイントのアジュバントおよび/または水酸化アルミニ ウムゲルの存在下で哺乳類、例えばウサギを免疫化することにより製造が行われ 、本発明はまたこれに関する(例えばDiamond,B.A.et al.(1981)The New Eng land Journal of Medicine,1344-1349を参照)。次いで、動物中で免疫応答に 基づいて作製されたポリクローナル抗体は、一般に知られている方法により血液 から容易に単離でき、また例えばカラムクロマトグラフィーにより精製できる。 このように、例えばウサギにおいて、細菌において融合タンパク質として発現し 、次いでアフィニティークロマトグラフィーにより精製された、図4に示される アミノ酸1〜90を有する本発明のポリペプチドに対するポリクローナル抗血清 を作成することができた。本発明の抗体はヒト心臓組織の抽出物中の約80kD の相当タンパク質を特異的に認識した。 モノクローナル抗体は、例えば公知のWinter&Milstein法(Winter,G.& Milst ein,C.(1991)Nature,349,293-299)により製造できる。 本発明はまた、図4に示されるアミノ酸配列を有するポリペプチド、もしくは その機能的変異体をコードする核酸および少なくとも8個のヌクレオチドを有す る前記のその一部、または図4に示されるアミノ酸配列を有するポリペプチドも しくはその機能的変異体および少なくとも6個のアミノ酸を有する前記のその一 部、および適当であれば、好適な添加剤もしくは賦形剤を含む医薬製剤ならびに 前記核酸または前記ポリペプチドが医薬上許容される担体とともに処方される、 心臓疾患、特に心不全の治療用の医薬製剤の製造方法に関する。 治療薬としての核酸断片の使用の1例として、アンチセンスオリゴヌクレオチ ドの形でのDNA断片の使用が挙げられる(Uhlmann,E.& Peyman,A.(1990)Ch emical Reviews,90,543-584,No.4)。 ヒト遺伝病に使用するための特に好適な医薬製剤は裸の形態、でまたは前記の 遺伝子治療に有効なベクターの1つの形態で、またはリポソームと複合化した形 態で前記ヌクレオチドを含むものである。医薬担体には、例えば好ましくは約6 .0〜8.0の、さらに好ましくは約6.8〜7.8の、特に約7.4のpH、 かつ/または約200〜400ミリオスモル/リットルの、好ましくは約290 〜310ミリオスモル/リットルの浸透性を持つ生理的緩衝液がある。医薬担体 は、例えばヌクレアーゼ阻害剤などの好適な安定剤、好ましくはEDTAなどの 錯生成剤および/または当業者に公知の他の賦形剤をさらに含んでもよい。 前記核酸は通常、例えばカテーテルを用いて、適当であれば、前記に詳細に記 載されたウイルスベクターの形態で、またはリポソーム複合体として静脈投与ら れる。例えば、本発明の核酸を、特に組換えアデノウイルスベクターまたはアデ ノ随伴ウイルスベクターの形態で患者の冠状動脈へ直接注入すること(いわゆる 経皮的冠状動脈遺伝子導入、PCGT)が有利である。バルーンカテーテルを用 いる投与は、それによりトランスフェクションが心臓へというだけでなく心臓内 の注入部位へと限定できるので特に好ましい(例えば、Feldman,L.J.et al.( 1994)JACC 235A,906-934を参照)。 ポリペプチド自身を静脈内にまたはカテーテルもしくはバルーンカテーテルを 用いて、適当であれば、心臓の機能に直ちに、かつ、直接影響を及ぼすために、 例えば生理的塩類溶液、安定剤、プロテナーゼ阻害剤などの好適な添加剤または 賦形剤とともに投与することも可能である。 本発明はさらに本発明の核酸、ポリペプチドまたは抗体、および適当であれば 、好適な添加剤もしくは賦形剤を含有する診断補助剤、ならびにその中に本発明 の核酸、ポリペプチドもしくは抗体が好適な添加剤もしくは賦形剤と混合されて いる、心臓疾患、特に心不全を診断するための診断補助剤の製造方法に関する。 例えば本発明によれば、ポリメラーゼ連鎖反応に基づいた診断補助剤(例えば EP-0 200 362に開示されたPCR診断法)またはプローブとして本発明の321 bpのDNA断片を用いる実施例3に詳細に記載されたノーザンブロットに基づ く診断補助剤を、前記核酸を基にして製造することができる。これらの試験は前 記核酸の、通常、相当するmRNAの相補鎖との特異的ハイブリダイゼーション に基づいている。この核酸はまた、この場合には例えばEP 0 063 879に記載のよ うに改変してもよい。DNA断片、特に実施例1に記載のDNA断片を、一般的 に知られている方法により好適な試薬を用いて、例えばα−32P−dCTPを用 いて放射性標識、またはビオチンを用いて非放射性標識し、次いで好ましくは例 えば、セルロースまたはナイロンからなる好適な膜に予め結合させた単離RNA とともにインキュベートすることが好ましい。ハイブリダイゼーションおよび膜 への結合に先立って、例えばアガロースゲル電気泳動により単離したRNAを大 きさによって分画すればさらに有利である。かくして、各々の組織サンプルから 同量の調べられたRNAを用いれば、プローブにより特異的に標識されたmRN Aの量を決定することができる。 従って、本発明の診断補助剤を用いることにより、起こり得る心不全を確実に 診断できるようにするために、相当する遺伝子の発現強度に関してin vitroで心 臓組織サンプルを明確に評価することも可能である(実施例1を参照)。図1に 示される配列を有するcDNAは起こり得る心不全を診断するために特に適して いる(実施例2を参照)。 さらなる診断補助剤は、本発明のポリペプチドまたは前記に詳細に記載された 免疫原性のあるその一部を含む。好ましくは例えばニトロセルロースもしくはナ イロンからなる固相に結合させたポリペプチドまたはその一部を、例えば自己免 疫抗体と反応させるためにin vitroにおいて調べられる体液、例えば血液と例え ば接触させることができる。次いで、抗体−ペプチド複合体は、例えば標識した 抗ヒトIgGまたは抗ヒトIgM抗体により検出できる。この標識は例えば呈色 反応を触媒するペルオキシダーゼなどの酵素である。かくして呈色反応により、 存在する自己免疫抗体の有無および量を容易、かつ、迅速に検出できる。 もう1つの診断補助剤は本発明の抗体自身を含む。例えば、関連のポリペプチ ドの存在量が増加しているかどうかを調べるため、このように起こり得る心不全 についての情報を得ることを目的として、これらの抗体を心臓組織サンプルを容 易、かつ、迅速に調べるために使用することができる。この場合、本発明の抗体 は例えば、すでに前記したように酵素で標識される。このように特異的抗体−ペ プチド複合体は酵素の呈色反応により容易、かつ、同等に迅速に検出できる。 本発明はまた、図4に示されるアミノ酸配列を有するポリペプチドもしくはそ の機能的変異体をコードする本発明の核酸および少なくとも8個のヌクレオチド を有する前記のその一部、図4に示されるアミノ酸配列を有するポリペプチドも しくはその機能的変異体および少なくとも6個のアミノ酸を有する前記のその一 部または本発明の抗体、ならびに適当であれば好適な添加剤もしくは賦形剤を含 有する機能的反応体を同定する試験に関する。 機能的反応体を同定する好適な試験には、例えばいわゆる二重ハイブリッド系 (Fields,S.& Sternglanz,R.(1994)Trends in Genetics,10,286-292)があ る。 この試験では、細胞、例えば酵母細胞は、本発明のポリペプチドおよび公知の タンパク質、例えば大腸菌のGal4もしくはLexA DNA結合ドメインを 含む融合タンパク質を発現させる1以上の発現ベクターで形質転換もしくはトラ ンスフェクトされ、かつ/または未知のポリペプチドおよび例えばGal4、ヘ ルペスウイルスVP16もしくはB42の転写活性化ドメインを含む融合タンパ ク質を発現する。この細胞は例えばLexAプロモーター/オペレーターなどの 調節配列により、またはいわゆる酵母の上流活性化配列(UAS)により制御さ れるリポーター遺伝子、例えば大腸菌に由来するlacZ遺伝子、緑色蛍光タン パク質または酵母のアミノ酸生合成遺伝子His3もしくはLeu2をさらに含 む。未知のポリペプチドは、例えば遺伝子バンク、例えばヒト心臓組織特異的遺 伝子バンクから得たDNA断片によりコードされている。通常、cDNA遺伝子 バンクは記載の発現ベクターを用いて直接作製され、その後直ちに酵母で試験を 行うことができる。 例えば、本発明の核酸をLexA DNA結合ドメインをコードする核酸を含 む機能的単位中に酵母発現ベクターにクローン化し、形質転換酵母で本発明のポ リペプチドとLexA DNA結合ドメインからなる融合タンパク質を発現させ る。もう1つの酵母発現ベクターでは、cDNA遺伝子バンクに由来するcDN A断片をGal4転写活性化ドメインをコードする核酸を含む機能的単位にクロ ーン化し、形質転換酵母において未知のポリペプチドとGal4転写活性化ドメ インからなる融合タンパク質を発現させる。2個の発現ベクターを用いて形質転 換された、かつ、例えばLeu2-である酵母はLeu2をコードする核酸をさ らに含み、かつ、LexAプロモーター/オペレーターにより制御される。本発 明のポリペプチドと未知のポリペプチドの間の機能的相互作用の結果、Gal4 転写活性化ドメインはLexA DNA結合ドメイン経由でLexAプロモータ ー/オペレーターに結合し、それにより後者は活性化され、次いでLeu2遺伝 子が発現する。この結果、Leu2-酵母がロイシンを含まない最小培地上で増 殖できる。 アミノ酸生合成遺伝子の代わりにlacZまたは緑色蛍光タンパク質リポータ ー遺伝子を使用する際には、青または緑色蛍光コロニーの形成により転写が活性 化されたことを検出できる。この青または蛍光色はまた、分光光度計において、 例えば青色の場合には585nmで容易に定量できる。 このように、本発明のポリペプチドと相互作用するポリペプチドに関して発現 遺伝子バンクを容易、かつ、迅速にスクリーニングすることが可能である。次い で見出された新規ペプチドを単離し、さらに同定することができる。 もう1つの二重ハイブリッド系の可能性ある使用としては、例えば化学化合物 などの他の物質による本発明のポリペプチドと既知のまたは未知のポリペプチド の間の相互作用に作用させることである。従って、化学的に合成され得る、かつ 心臓疾患の治療用の治療薬として使用できる新規、かつ、価値ある有効物質を容 易に見出すことも可能である。それゆえ本発明はポリペプチド様反応体を発見す る方法に限定されるものではなく、前記に記載のタンパク質−タンパク質複合体 と相互作用できる物質を発見する方法にも拡張される。ゆえに、かかるポリペプ チド様、ならびに化学反応体は本発明の目的のための機能的反応体といわれる。 このように本発明の驚くべき利点は、心臓疾患、特に心不全の特異的、かつ、 確実な診断および治療のために本発明の主題を用いることができるということで ある。しかしながら、他の価値ある治療上のおよび診断上の可能性も明らかにな っている。例えば、記載の試験法を用いて容易に同定され得る機能的反応体は、 好適な医薬製剤の形態にあるそれらの補助剤を用いて、心筋中のその天然環境に おいて本発明のポリペプチドの活性に、従って心筋細胞の収縮性にも緩やかに作 用することができ、特にこのポリペブチドの活性がすでに前記に詳細に記載され たように調節され得るので非常に有利である。 以下、図面および実施例により本発明を詳しく説明するが、これらに限定する ものではない。図面の説明 図1は、1936個のヌクレオチド長の心臓特異的DNA配列を示す。相当す るポリペプチドをコードする領域は太字で示されている。実施例1のDNA断片 には下線が引かれている。 図2は、図1のDNA配列の5'末端に付加部分を有する2080個のヌクレ オチド長の心臓特異的DNA配列を示す。相当するポリペプチドをコードする領 域はここでも太字で示されている。 図3は、図1または図2のDNA配列の5’末端に付加部分を有する2268 個のヌクレオチド長の心臓特異的DNA配列を示す。相当するポリペプチドをコ ードする領域は同様に太字で示されている。 図4は、図1〜3に示されるDNA配列の1つによりコードされた552個の アミノ酸長のポリペプチド配列を示す。ヒトトロポモジュリンと相同な領域は太 字で示されている。チロシンキナーゼシグナル形質導入経路によるポリペプチド の調節を示す配列モチーフには下線が引かれている。 図5aおよび5bは、種々のヒト組織における発現を検出するための(図5a )、また健常型および不全型ヒト心臓組織における発現を検出するための(図5 b)、図1〜3に示される核酸配列に相当するmRNAのノーザンブロットを示 す。実施例 . ヒトの不全型心臓組織に由来するDNA断片の単離 まず、標準法(Chomczynski & Sacchi(1987),Anal.Biochem,162(1),156-15 9)により、健常型および不全型心臓組織サンプルから完全なRNAを単離した。 次いで夾雑DNAを取り除くためにRNAをDNアーゼで処理した。次いで、こ のRNAのアリコート(0.2μg)を1×RT緩衝液(Gibco Y00121)、10 mM DTT、20μM dNTP混合物、1U/μl RNAsin(Promeg a N2511)、1μM 5’−T12ACN−3’型(ここでNはいずれのデオキシ ヌクレオチドであってもよい)の3’アンカープライマー混合物および10U/ μl SuperScriptRNアーゼH-逆転写酵素を含む、20μlの反応混合液中で 37℃で60分間インキュベートし、次いでcDNAへと転写させた。次いでc DNAのアリコートを1μM 3’プライマーT12ACおよび1μM 5’−1 0量体プライマー(5’−CCTTCTACCC−3’)の他に10μCiのα −32P−dCTP、2μM dNTP混合物および1UのAmpliTaq(Pe rkin Elmer)を含む1×PCR緩衝液(Perkin-Elmer)にて20μlをPCRに 付した。混合物をまず94℃で1分間、次いで各々94℃で30秒の40サイク ル、40℃で2分間、次いで72℃で30秒間、最後に72℃で10分間インキ ュベートした。次いで得られたDNA断片混合物を6%ポリアクリルアミドゲル 上で分画し、次いでオートラジオグラムを作製した。このように、321bpの 長さで、健常型心臓サンプル中には存在しないが不全型心臓サンプル中には明確 に存在するDNA断片を調製した。次いで、X線フィルムに基づいてこの断片を ゲルから切り出し、さらにすでに記載した条件下でPCRにより再び増幅させた 。次いで、得られた断片を適当なベクターにクローン化し、さらにこのDNA配 列を決定した。このように調製した断片は請求項1の配列のヌクレオチド162 7−1936および3’アンカープライマーに由来する12個のチアミンヌクレ オチドを含む。 . 心臓特異的核酸の単離 図1における1627−1936位のヌクレオチドを含んでなる実施例1から 得られたα−32P−dCTPで標識したDNA断片を用いて標準条件(Sambrook ,J.,Frisch,E.F.& Maniatis,T.(1989)Molecular Cloning,A Laboratory Manual,ch.8-10を参照)下で心臓組織に由来するcDNA遺伝子バンクでブラ ークハイブリダイゼーションを行った。次いで、見出したcDNAを単離し、さ らに配列決定した。この配列は図1〜3に示されている。このことにより、健常 型心臓組織から高い確率で単離され得る図2または3に示される配列を有するc DNAよりも、不全型心臓組織からは図1に示される配列を有するcDNAが、 高い確率で単離され得ることが明らかとなった。 . ノーザンブロットによる、種々のヒト組織における心臓特異的遺伝子の発 現強度の検出 まず、実施例1および2ならびに図1においてすでに記載の321bpの長さ のDNA断片をランダムプライマー標識法(Feinberg,A.P.& Vogelstein,B. (1983)Anal.Biochem.,132,6)によりα−32P−dCTPで放射性標識した 。この目的のためにRTS RadPrime DNA標識系(GibcoBRL 10387-017)を使用 した。製造業者の説明書(Multiple Tissue Northern Blots I & II,Clontech L aboratories GmbH,Heidelberg,#7760-1,#7759-1)に従い68℃で1時間、E spressHybハイブリダイゼーション溶液(Clontech #8015-1)中でヒト組 織由来の(図5aおよび5bを参照)ポリA+RNAとブロットのハイブリダイ ゼーションを行った。次いで、このブロットを2×SSCおよび0.05% S DSで30分、その後0.1×SSCおよび0.1% SDSで1時間洗浄し、 さらにオートラジオグラムを作製した。321bpの長さのプローブが約240 0bpのポリA+RNAと心臓組織および骨格筋では強くハイブリダイズし、前 立腺組織では非常に弱くしかハイブリダイズせず、白血球、大腸、小腸、卵巣、 精巣、胸腺、脾臓、腎臓、肝臓、肺、胎盤および脳組織ではハイブリダイズしな いということが明らかとなった(図5a)。 また、健常型および不全型心臓組織において相当するRNAの発現も調べた。 この目的のために、完全なRNAを種々のヒト心臓組織サンプルから単離した(C homczynski & Sacchi(1987),Anal.Biochem.162,156-159)。次いで、各々の 場合において10μgのRNAを1%ホルムアルデヒドアガロースゲルを用いて 分画し、キャピラリー法により荷電したナイロン膜にトランスファーした(Zeta- Probe GT BioRad #162-0197)。この膜を2×SSCで簡単に洗浄し、次いで80 ℃で30分焼き付けた。この膜をプレハイブリダイゼーション溶液(0.5M Na2HPO4、pH7.2;7% SDS)とともに65℃で少なくとも1時間 インキュベートした。次いでこの溶液を新しい溶液に置き換え、次いで熱変性さ せた放射性プローブを加えた。ハイブリダイゼーションは65℃にて15時間行 った。次いで、この膜をまず40mM Na2HPO4、pH7.2;5% SD Sで65℃にて15時間、次いで40mM Na2HPO4、pH7.2;1% SDSで65℃にて2×30分洗浄し、続いてオートラジオグラムを作製した。 1%アガロースゲルにおいて約2200〜2400bpの長さを有する種々のR NA種が分画されたということが明らかになった。これらの種々の種は、見出さ れた3種のcDNAのサイズとよく一致し、平均してポリA末端150bp長を 含んでいた(図1〜3を参照)。特に、最小のRNA種は健常型組織よりも罹患 組織でより明確に検出可能であった。PhosphorImagerおよびImageQuantソフトウ ェア(Molecular Dynamics GmbH,Krefeld)を用いるブロットの定量化は、β4− チモシンおよびアクチンとの対照ハイブリダイゼーションを考慮すれば、健常型 組織に比べて不全型心臓組織において、検出RNAの約35%高い発現を示した 。 DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION      Nucleic acids specific to cardiac and skeletal muscle, and methods for their production and use   The present invention relates to nucleic acids expressed in human cardiac muscle and skeletal muscle, diagnostic aids, The method of manufacture and use as a pharmaceutical, and the functional reactant identification test .   In the heart, atrial and ventricular contractions (systole) and relaxation (cardiac relaxation) alternate. It is a hollow organ of muscle that has the function of maintaining blood flow in blood vessels by exercise.   The heart muscle, or myocardium, consists of characteristic striated muscle cells with connective tissue in between . Each cell has a central nucleus and is bounded by the plasma membrane, the muscle cell membrane. And contains many contractile myofibrils that are randomly separated by muscle traits. heart Viscera contractiles are formed of long parallel myofibrils. Some myofibrils Are divided into identical structural and functional units, namely sarcomere. Next is the sarcomere A thin filament consisting of actin, tropomyosin and troponin, And a thick filament of myosin.   The molecular mechanism of muscle contraction is spherical myosin head and F-actin filament. Based on the cycle of adhesion and desorption. During electrical stimulation of the heart muscle, the muscle cell membrane Ca from fine mesh2+Is released, and this is caused by the allosteric reaction of the troponin complex. And tropomyosin, then actin filaments and myosin A passage opens for head contact. This attachment causes the conformation of myosin A change occurs, which then pulls the actin filament along itself. To reverse these conformational changes and return to the beginning of the contraction cycle ATP is required.   By measuring nerve and hormonal regulation, the assessment of the body's perfusion requirements, Short-term adjustment of myocardial activity to blood flow requirements is possible. And the contraction force Both shrinkage can be increased. Excessive tension over a long period This leads to a physiological alteration process, mainly due to an increase in myofibrils (myocyte hypertrophy). ).   If the heart muscle is compromised, the original physiological adaptation mechanism often becomes chronic over time. It results in heart failure, a condition that causes heart failure, and usually ends with acute heart failure. Everything happens. In the case of severe chronic failure, the heart is no longer adequate to May become unresponsive, with slight physical exertion resulting in exhaustion or shortness of breath Sir.   Myocardial damage is ischemia, that is, coronary artery disease, bacterial or viral infection, poisons, Involved in exsanguination caused by metabolic disorders, autoimmune diseases or genetic defects You. In general, therapeutic measurements increase contractile forces and compensate neurological and hormonal compensators. It is intended to adjust the structure. Despite such treatment, the disease Mortality is still high (35-50% within the first 5 years after diagnosis). Heart failure is the world It is the leading cause of death in the world. The only etiological treatment is heart transplant.   The molecular changes in chronic heart failure are not well known. In particular, heart failure The underlying gene mutation is virtually unknown. Why poisons and viruses Does the next injury cause heart failure in some people but not others? I still can't answer questions.   Thus, the present invention provides for a minimal, if not all, cause of a gene-related heart disease. At least based on the objective of identifying and isolating genes that are partially ing.   Surprisingly, one gene has now been found in the human heart tissue cDNA bank. It is more pronounced and expressed in failing heart tissue than in healthy heart tissue, The gene has been implicated as a cause in associated heart failure. Imperfect and not necessarily functional So-called EST (expressed sequence tag) Already exists as this gene (Tanaka, T. et al. (1996) Genemics, 35, 2). 31-235; EMBL AC: CO4498; clone 3NHC3467).   Accordingly, one aspect of the invention is a polypeptide having the amino acid sequence shown in FIG. Nucleic acid encoding a peptide, or a functional variant thereof, and at least eight nucleic acids Otides, preferably at least 10 nucleotides, especially at least 15 nucleotides Nucleotides, especially parts thereof having at least 20 nucleotides But the array:(Where N represents A, T, G or C) Nucleic acids having are excluded.   The nucleic acids of the invention were isolated from a human heart tissue cDNA bank and sequenced. this First, complete RNA was prepared from healthy and failing heart samples by standard methods. Isolated and then a 3 'anchor primer mixture, e.g. 5'-T12ACN-3 ' Primer (where N represents any of the deoxynucleotides) and reverse Transcribed using transcriptase to obtain cDNA. This cDNA is then converted to a so-called Li Ang and Pardee Differential Display Method (Liang, P. & Parde e, A. (1992) Science 257, 967-970) using the 3 'primer, For example, T12An ACN primer and an optionally selected 5'-decamer primer, Specific P using, for example, 5'-CCTTCTACCC-3 '10-mer primer Amplified under CR conditions. Surprisingly, in healthy heart samples Is absent and 321 base pairs (bp) clearly present in failing heart samples A long DNA fragment could be amplified. Differential display method Or, in a conventional method such as a subtractive cDNA gene bank, The problem is that some clones are poorly expressed and some have false positive clones. That was surprising. Especially weakly expressed only under specific conditions It is possible to identify the gene product of the gene involved. Therefore, generally the hit rate Is very low (10-20%) and, for example, differential display In method a, it depends on the selected PCR conditions, that is, primer length. Or hybridization, for example, in the manufacture of subtractive banks. It is not surprising that it depends on the solution temperature. Then, the found DNA fragment The complete gene was isolated from the cDNA gene bank using and further sequenced .   In all cases, the additional method is such that the found cDNA is active and / or Need to determine if is assigned to a tissue-specific gene. Follow Thus, mRNAs derived from various human tissues in a so-called Northern blot were The amount of mRNA that was hybridized with the found DNA fragment and then bound For example, it was measured by radiolabeling of a DNA fragment. This experiment shows that It is very weak in cardiac and skeletal muscle tissue and in prostate tissue. However, the corresponding RNA was detected. Comparing healthy and failing heart tissue In further experiments, high expression, eg, about 3 in failing tissue compared to healthy tissue, RNA expression increased to 5% was detected. Compared to healthy tissue, Demonstrated that particularly small RNA species preferentially showed increased expression did it. Increased expression of relatively small RNA species can be seen, for example, in Northern blots. It is readily apparent in the form of a double band (see FIG. 5b).   By comparing the derived polypeptide sequence with the protein database, Certain relationships (homologies) with cytoplasmic tropomodulin were further demonstrated (see FIG. 4). ). Tropomodulin is involved in myofibrillar development and cellular regulation in chicken cardiomyocytes. It is known to be a polypeptide that affects contractility (Gregorio et a l. (1995) Nature 377, 83-86). This protein, on the other hand, goes to tropomyosin, On the other hand, it binds to actin fibers, but is not itself regulated in its activity. Guidance The polypeptides of the present invention also include, for example, tropomyosin-binding domains and the like. It has several tropomodulin structural features. Contrast with tropomodulin Preferably, the polypeptide of the present invention is a polypeptide by so-called tyrosine kinase. It has additional structural features that indicate regulation of the activity of (see FIG. 4).   Accordingly, a “functional variant” is functionally related to the polypeptide of the present invention. Ie, also a regulatable modulator of cardiomyocyte contractility, And preferably in myocardial, skeletal and / or prostate tissue, especially myocardial and / or Alternatively, it is expressed in skeletal muscle, and especially in cardiomyocytes, for example, one or more tropomyos Has the structural characteristics of tropomodulin, such as a binding domain, and / or Polypeptides for the purposes of the present invention whose activity can be regulated by tyrosine kinases Means Examples of functional variants include non-human organisms, preferably And corresponding polypeptides from non-human mammals, such as   In a broad sense, “functional variant” refers to sequence homology, particularly the amino acid sequence shown in FIG. About 70%, preferably about 80%, especially about 90%, of a polypeptide having an acid sequence; Specifically, it includes polypeptides having about 95% sequence identity. These are for example non- Encoded by a nucleic acid isolated from a heart-specific tissue, such as skeletal muscle tissue, After expression in a heart-specific cell, it contains a polypeptide having the same function. further , These are about 1 to 60, preferably about 1 to 30, especially about 1 to 15, Specifically, it involves deletion of the polypeptide in the region of about 1-5 amino acids. For example , With the first amino acid methionine having only minor changes in the function of the polypeptide It does not have to exist. These also do not include the polypeptides of the invention described above. Fusion proteins that themselves regulate the contractility of cardiomyocytes Having a possible modulator function, or only after removal of the fusion moiety Special It is possible to obtain certain functions. In particular, they are particularly useful for fusion proteins 1 to 200, preferably about 1 to 150, especially about 1 to 100, especially about 1 Includes a non-cardiac specific sequence content of 5050 amino acids. Non-cardiac specific peptide arrangement Examples of columns include prokaryotes that can be derived, for example, from E. coli galactosidase. Product peptide sequence.   The nucleic acids of the invention are generally DNA or RNA, preferably DNA. one Generally double-stranded DNA for expression of appropriate genes and use as probe For this purpose, single-stranded DNA is preferred. D encoding a particularly preferred polypeptide Along with the NA region, the nucleic acid sequence shown in FIG. 1, 2 or 3 and as detailed above Double- or single-stranded DNA having a part thereof as described is particularly preferred. This territory The region begins at position 89 with the nucleic acid "ATG" encoding methionine, and at position 1747 " Until "TAG" which codes "amber" (end).   For example, the nucleic acids of the invention may be based on the sequences disclosed in FIGS. Based on the polypeptide sequence disclosed in FIG. 4 by use of the child code, for example, Phosphotriester method (for example, Uhlmann, E. & Peyman, A. (1990) Chemical Rev. iews, 90, 543-584, No. 4) can be chemically synthesized. Obtain the nucleic acid of the present invention Another possibility for suitable gene banks using suitable probes, e.g. For example, isolation from a heart-specific gene bank (eg, J. Sambrook et al. l., (1989), Molecular Croning. A Laboratory Manual 2nd edition, Cold Spring Ha rbor Laboratory, Cold Spring Harbor, NY). Suitable as a probe For example, from about 100 to 100, whose sequence may be derived from the nucleic acid sequences shown in FIGS. 1000 nucleotides in length, preferably about 200-500 nucleotides in length In particular, a single-stranded DNA fragment of about 300 to 400 nucleotides in length. Step One example of a lobe is 321 bp in size, with the area underlined in FIG. The corresponding DNA fragment of Example 1 is used, and is used to obtain human heart tissue. The nucleic acids of the invention have already been successfully isolated (see Example 2).   The nucleic acid of the present invention is usually contained in a vector, preferably an expression vector or a gene therapy. Present in therapeutically effective vectors. Vectors useful for gene therapy include, for example, tropo Nin C (cTNC) promoter (see, eg, Parmacek, MS et al. (1990) J. B. iol. Chem. 265 (26) 15970-15976 and Parmacek, M.S. et al. (1992) Mol. Ce ll Biol. 12 (5), 1967-1976). Preferably, it is functionally related to the nucleic acids of the invention.   The expression vector may be a prokaryotic or eukaryotic expression vector. E. coli Examples of prokaryotic expression vectors for expression in EM or pUC derivatives, including Sacharomyce cerevisiae. Examples of eukaryotic expression vectors for expression in S. cerevisiae include Examples include the vectors p426Met25 or p426GAL1 (Mumberg et al. al. (1994) Nucl. Acids Res., 22, 5767-5768), for expression in insect cells For example, baculo as disclosed in EP-B1 0 127 839 or EP-B1 0 549 721 Irs vector, for expression in mammalian cells, for example, a vector Rc / CMV and Rc / RSV or SV40 vectors, which are All are publicly available.   In general, the expression vector also contains a trp promoter for expression in E. coli, for example. (See, for example, EP-B1 0 154 133), an ADH2 vector for expression in yeast. Lomotor (Russell et al. (1983), J. Biol. Chem. 258, 2674-2682), insect cells Baculovirus polyhedrin promoter (eg, EP-B Or MMTV (mouse mammary tumor virus; Lee et al. (1981) Nature 214, 228-232) SV40 early promoter or LTR promoter. And a promoter suitable for a particular host cell, such as a promoter.   Examples of vectors useful for gene therapy include viral vectors, preferably Denovirus vectors, especially replication-defective adenovirus vectors, or adenoviruses An associated viral vector, eg, consisting of only two inverted terminal repeats (ITRs). Adeno-associated virus vectors.   Adenovirus vectors and especially replication-defective adenovirus vectors are: Are particularly preferred for the following reasons.   Human adenovirus is a double-stranded DNA having a genome of about 36 kilobase pairs (kb). Belongs to the class of virus. This viral DNA produces about 2700 different genes. Encodes a product and is distinguished between early ("early genes") and late ("late genes") You. This “early gene” is divided into four transcription units E1 to E4. Late inheritance The offspring encodes the capsid protein. At least 42 different adenoids It is possible to classify immunologically into subgroups of irs and AF, Is suitable for the present invention. Prerequisites for viral gene transcription are Expression of the E1 region encoding a transactivator of ils gene expression. . Thus, the expression of all subsequent viral genes was determined to be E1 transactive. By taking advantage of its dependence on the (Eg, McGrory W.J. et al. (1988) Virol.1 63 , 614-617 and Gluzman, Y .; et al. (1982), `` Eukaryotic Viral Vectors '' (Gluzman, Y. ed.) 187-192, Cold Spring Harbor Press, Cold Spring Harbor N ew York). Adenovirus vectors, especially type 5 (for sequence see Chroboc zek, J .; et al. (1992) Virol.186, 280-285) and especially in subgroup C The E1 gene region, generally a foreign gene or book with its own promoter. Replace with the nucleic acid construct of the invention. Before for downstream adenovirus gene expression As a result of the replacement of the E1 gene region, which is a prerequisite, an adenovirus that cannot replicate You. Therefore, these viruses are used in cell lines to restore the lost E1 gene. Only can be duplicated.   Thus, replication-defective adenoviruses generally have E. coli stably integrated into the genome. A so-called 293 cell line with one region copy (human embryonic kidney cell line) Is formed by homologous recombination. For this purpose, the nucleic acids of the invention Under the control of its own promoter, such as the troponin C promoter described above. Clone into a recombinant adenovirus plasmid. Then, for example, 293 In helper cell lines, d1327 or de11324 (adenovirus 5 )), Homologous recombination is performed with an adenovirus genome defective in E1. Recombination If successful, a viral plaque is obtained. Duplicate defects created in this way To infect a cell culture with an infectious virus or for gene therapy in the body High titer (eg 109-1011Plaque-forming unit).   In general, the exact insertion site of the nucleic acid of the invention into the adenovirus genome is not critical. Absent. For example, the nucleic acids of the invention can be cloned in place of the deleted E3 gene. Both are possible (Karlsson, S. et al. (1986), EMBO J. et al.Five, 2377-2385).   However, particularly when the E3 region is also deleted, the E1 region or one thereof Parts, such as the E1A or E1B region (see, eg, WO 95/00655) It is preferable to substitute with a nucleic acid.   However, the invention is not limited to adenovirus vector systems On the contrary, adeno-associated virus vectors have also been described in the core of the present invention for the following reasons. Particularly suitable for combination with acids.   AAV virus belongs to the parvoviridae family. These have diameters of 18-30 nm. And has an icosahedral envelope containing approximately 5 kb of linear single-stranded DNA. Are classified by their capsids. For a valid copy of AAV, helper Co-infection of host cells with lus is required. An example of a suitable helper is Ade Virus (Ad5 or Ad2), herpes virus and vaccinia virus (Muzyczka, N. (1992) Curr. Top. Microbiol. Immunol.158, 9 7-129). In the absence of a helper virus, AAV harbors the viral genome It transitions to a latent state where it can be incorporated stably into the nom. AAV host Its genomic integration properties make it particularly attractive as a transduction vector for mammalian cells. It is delicious. Generally, about 145 are competent for the function of the vector. bp long inverted terminal repeats (ITR: see, for example, WO95 / 23867) . They are used for replication, packaging, and integration into the host cell genome. , Have the necessary signal in the “cis” position. Packaging into recombinant vector particles For non-structural proteins (rep proteins) and structural proteins ( adenovirus infects a vector plasmid containing the cap protein) gene. Transfected cells. A few days later, in addition to the recombinant AAV particles, A cell-free cell lysate is also prepared, which also contains cells. This adenovirus is 5 Banding by heating at 6 ° C. or with a cesium chloride gradient Can be conveniently removed. Using this co-transfection method, 0Five-106It is possible to achieve rAAV titers of IE / ml. packing If the plasmid and the vector plasmid do not have overlapping sequences, Ils contamination is below the detection limit (Samulski, R.J. (1989) J. Virol.63, 3822- 3828).   Introduction of the nucleic acids of the invention into somatic cells can be achieved by AAV into quiescent differentiated cells. This is particularly advantageous for cardiac gene therapy. The incorporation capabilities described are also in  Ensure long-lasting gene expression in vivo, which is also particularly valuable It is profitable. A further advantage of AAV is that the virus is not pathogenic to humans and It is relatively stable at o. The AAV vector of the nucleic acid of the present invention or the AAV vector For cloning into a part of E. coli is described, for example, in WO95 / 23867, Chiorini, J.A. et al. (1995) , Human Gene Therapy6, 1531-1541 or Kotin, R.M. (1994), Human Gene Th This is performed by a method known to those skilled in the art described in erapy 5, 793-801.   Vectors effective for gene therapy also allow the nucleic acids of the invention to be complexed with liposomes. Can achieve very high transfection efficiency Thus, this is obtained (Felgner, P.L. et al., (1987), Proc. Natl. Acad. . Sci USA84, 7413-7417). In lipofection, the liposome suspension is sonicated. A small unilamellar vesicle of cationic lipid is prepared by the process. DNA is particularly positive Taste charge remains and plasmid DNA is 100% complexed by liposome At such a ratio that they are ionically bonded to the surface of the liposome. Felgner et al. The lipid mixture DOTMA (1,2-dioleoyloxypropyl- 3-trimethyl-ammonium bromide) and DOPE (dioleoylphosphine) Atidyl-ethanolamine) (1987, supra), as well as a number of new lipid compositions. Are synthesized and their efficiency in transfecting various cell lines (Behr, J.P. et al. (1989), Proc. Natl. Acad. Sci. USA86 , 6982-6986; Felgner, J.H. et al. (1994) J. Am. Biol. Chem.269, 2550-2561; Gao , X. & Huang, L.A. (1991), Biochim. Biophys. Acta1189, 195-203). New lipid As an example of the composition, DOTAP N- [1- (2,3-dioleoyloxy) propyl] Ropyl] -N, N, N-trimethylammonium ethyl sulfate or DOG S (TRANSFECTAM; dioctadecyl-amidoglycylspermine) . Preparation of DNA-liposome complex and heart-specific transfection One successful example of its use is described in DE 44 11402.   Use of the nucleic acids of the invention in gene therapy involves encoding a polypeptide. A portion of the nucleic acid may contain an intron sequence, preferably a promoter and polypeptide. Between the initiation codon and / or the polyA (ployA) sequence, Contains the A sequence or SV40 virus poly A sequence, especially at the 3 'end of the gene Containing one or more non-coding sequences that stabilize mRNA in cardiomyocytes. Which is also advantageous (Jackson, R.J. (1993) Cell 74, 9-14 and Palmiter, R.D. et al. (1991) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 88,478 -482).   The present invention further relates to a polypeptide having the amino acid sequence shown in FIG. Preferably a functional variant having at least 6 amino acids, preferably at least Having at least 12 amino acids, in particular having at least 15 amino acids, Alternatively, for a portion thereof having at least 164 amino acids (provided that the sequence : Excluding polypeptides having   For example, the polypeptide is generally known to those of skill in the suitable expression system described above. It is prepared by expressing the nucleic acids of the invention using known methods. Suitable Examples of suitable host cells include E. coli strains DH5, HB101 or BL21, Mother line Saccharomyces cerevisiae, insect cell line of the order Lepidoptera, such as Spodopte La Frugiperda (Spodoptera frugiperda) or animal cell COS, Vero, 2 93 and HeLa, all of which are commonly available.   Some of the above polypeptides may also be synthesized by conventional synthetic methods (Merrifield method). can do. They provide additional functional variants of the polypeptides of the invention. Used to screen suitable gene expression banks for the purpose of obtaining It is particularly suitable for obtaining antisera that can be used.   Therefore, the present invention also relates to a polypeptide having the amino acid sequence shown in FIG. Or a functional variant thereof, and having at least 6 amino acids. Or at least 12 amino acids, especially at least 15 amino acids To Having at least 164 amino acids, for example, Combined with a suitable carrier such as serum albumin, it is Can be immunogenic or can be made immunogenic or their immunogens Specifically reacts with a part of said polypeptide which can either increase the Antibodies.   Antibodies are either polyclonal or monoclonal. For example, in general According to known methods, using said polypeptide, or a part thereof, If appropriate, for example, Freund's adjuvant and / or aluminum hydroxide Production is carried out by immunizing a mammal, for example a rabbit, in the presence of The present invention also relates to this (eg Diamond, B.A. et al. (1981) The New Eng). land Journal of Medicine, 1344-1349). Then the immune response in the animal The polyclonal antibody produced based on the blood is obtained by a generally known method. And can be purified, for example, by column chromatography. Thus, for example, in rabbits, expressed as a fusion protein in bacteria And then purified by affinity chromatography as shown in FIG. Polyclonal antiserum against a polypeptide of the invention having amino acids 1-90 Could be created. The antibody of the present invention has an activity of about 80 kD in human heart tissue extracts. Was specifically recognized.   Monoclonal antibodies can be obtained, for example, by the well-known Winter & Milstein method (Winter, G. & Milst). ein, C. (1991) Nature, 349, 293-299).   The present invention also provides a polypeptide having the amino acid sequence shown in FIG. Having a nucleic acid encoding the functional variant and at least 8 nucleotides Or a polypeptide having the amino acid sequence shown in FIG. Or a functional variant thereof and one of the foregoing having at least 6 amino acids. And a pharmaceutical formulation comprising, if appropriate, suitable additives or excipients; Wherein the nucleic acid or the polypeptide is formulated with a pharmaceutically acceptable carrier, The present invention relates to a method for producing a pharmaceutical preparation for treating heart disease, especially heart failure.   One example of the use of nucleic acid fragments as therapeutics is in antisense oligonucleotides. (Uhlmann, E. & Peyman, A. (1990) Ch. emical Reviews, 90, 543-584, No. Four).   Particularly suitable pharmaceutical preparations for use in human genetic diseases are those in naked form or as described above. One form of a vector effective for gene therapy or complexed with liposomes And the above-mentioned nucleotide. Pharmaceutical carriers include, for example, preferably about 6 . A pH of from 0 to 8.0, more preferably from about 6.8 to 7.8, especially about 7.4; And / or about 200-400 milliosmol / liter, preferably about 290 There is a physiological buffer with a permeability of ~ 310 milliosmol / liter. Pharmaceutical carrier Are suitable stabilizers, such as, for example, nuclease inhibitors, preferably such as EDTA It may further comprise complexing agents and / or other excipients known to those skilled in the art.   The nucleic acid is typically described in detail above, if appropriate, for example, using a catheter. Intravenous administration in the form of a loaded viral vector or as a liposome complex. It is. For example, a nucleic acid of the invention can be used, in particular, for recombinant adenovirus vectors or adenoviruses. Direct injection into the patient's coronary artery in the form of a virus-associated virus vector (so-called Percutaneous coronary gene transfer (PCGT) is advantageous. For balloon catheter Dosing not only allows transfection to the heart but also Is particularly preferred because it can be limited to the injection site of (for example, Feldman, L.J. et al. 1994) JACC 235A, 906-934).   Intravenous polypeptide or catheter or balloon catheter Use, if appropriate, to have an immediate and direct effect on the function of the heart, Suitable additives such as physiological salt solutions, stabilizers, proteinase inhibitors or It can be administered together with an excipient.   The invention further relates to nucleic acids, polypeptides or antibodies of the invention and, where appropriate, Auxiliaries containing suitable additives or excipients and the invention in which Nucleic acids, polypeptides or antibodies are mixed with suitable additives or excipients The present invention relates to a method for producing a diagnostic aid for diagnosing heart disease, particularly heart failure.   For example, according to the present invention, a diagnostic aid based on the polymerase chain reaction (eg, The PCR diagnostics disclosed in EP-0 200 362) or 321 of the invention as probes. Based on the Northern blot described in detail in Example 3 using the DNA fragment of bp Alternatively, a diagnostic aid can be produced based on the nucleic acid. Before these tests Specific hybridization of the nucleic acid, usually with the complement of the corresponding mRNA Based on The nucleic acid may also be used in this case, for example, as described in EP 0 063 879. It may be modified as follows. The DNA fragment, in particular the DNA fragment described in Example 1, was Using suitable reagents according to the methods known from32Use P-dCTP Radiolabeled, or non-radioactively labeled with biotin, and then preferably For example, isolated RNA previously bound to a suitable membrane of cellulose or nylon It is preferred to incubate with. Hybridization and membrane Prior to binding to RNA, RNA isolated, for example, by agarose gel electrophoresis It is more advantageous to fractionate by size. Thus, from each tissue sample Using the same amount of examined RNA, the mRN specifically labeled with the probe The amount of A can be determined.   Therefore, by using the diagnostic aid of the present invention, possible heart failure can be reliably prevented. To be able to make a diagnosis, the in vitro intensity of the corresponding gene It is also possible to clearly evaluate the organ tissue samples (see Example 1). In FIG. A cDNA having the sequence shown is particularly suitable for diagnosing possible heart failure (See Example 2).   Further diagnostic aids are polypeptides of the invention or as described in detail above. Includes immunogenic parts thereof. Preferably, for example, nitrocellulose or na The polypeptide or a part thereof bound to a solid phase composed of iron can be A body fluid that can be tested in vitro to react with an antibody, such as blood Contact. The antibody-peptide conjugate was then, for example, labeled. It can be detected by anti-human IgG or anti-human IgM antibody. This sign is colored, for example It is an enzyme such as peroxidase that catalyzes the reaction. Thus, by the color reaction, The presence and amount of autoimmune antibodies present can be easily and quickly detected.   Another diagnostic aid comprises the antibody itself of the present invention. For example, related polypeptides This can be done to determine whether the presence of For the purpose of obtaining information about It can be used to easily and quickly check. In this case, the antibody of the present invention Is, for example, labeled with an enzyme as already described above. Thus, the specific antibody The peptide complex can be easily and equally rapidly detected by the color reaction of the enzyme.   The present invention also relates to a polypeptide having the amino acid sequence shown in FIG. And at least 8 nucleotides of the invention encoding a functional variant of And a polypeptide having the amino acid sequence shown in FIG. Or a functional variant thereof and one of the foregoing having at least 6 amino acids. Or the antibody of the invention, and, where appropriate, suitable additives or excipients. The present invention relates to a test for identifying a functional reactant.   Suitable tests for identifying functional reactants include, for example, so-called double hybrid systems (Fields, S. & Sternglanz, R. (1994) Trends in Genetics, 10, 286-292) You.   In this test, a cell, for example, a yeast cell, comprises a polypeptide of the invention and a known polypeptide. A protein, such as E. coli Gal4 or LexA DNA binding domain Transformation or transformation with one or more expression vectors to express the fusion protein Transfected and / or unknown polypeptides and, for example, Gal4, Fusion proteins containing the transcriptional activation domain of Lupes virus VP16 or B42 Express the protein. This cell contains, for example, a LexA promoter / operator. Controlled by regulatory sequences or by the so-called yeast upstream activation sequence (UAS) Reporter genes such as the lacZ gene from Escherichia coli, green fluorescent tan It further contains the protein or yeast amino acid biosynthesis gene His3 or Leu2. No. Unknown polypeptides can be found in, for example, gene banks, such as human heart tissue-specific genes. It is encoded by a DNA fragment obtained from the gene bank. Usually a cDNA gene Banks were created directly using the described expression vectors and then tested immediately in yeast. It can be carried out.   For example, a nucleic acid of the invention includes a nucleic acid encoding a LexA DNA binding domain. Cloned into a yeast expression vector in a functional unit, and Expression of a fusion protein consisting of a repeptide and a LexA DNA binding domain You. Another yeast expression vector is the cDN derived from the cDNA gene bank. The A fragment is cloned into a functional unit containing the nucleic acid encoding the Gal4 transcription activation domain. In the transformed yeast, unknown polypeptide and Gal4 transcription activation domain Of a fusion protein consisting of quinone. Transformation using two expression vectors And, for example, Leu2-Is a nucleic acid encoding Leu2. And controlled by the LexA promoter / operator. Departure As a result of the functional interaction between the light polypeptide and the unknown polypeptide, Gal4 The transcription activation domain is a LexA promoter via the LexA DNA binding domain. -/ Operator, whereby the latter is activated and then the Leu2 gene The child develops. As a result, Leu2-Yeast grows on minimal medium without leucine Can breed.   LacZ or green fluorescent protein reporter instead of amino acid biosynthesis gene -When using genes, transcription is activated by the formation of blue or green fluorescent colonies. Can be detected. This blue or fluorescent color is also For example, in the case of blue, it can be easily determined at 585 nm.   Thus, expression with respect to a polypeptide that interacts with a polypeptide of the invention Gene banks can be easily and rapidly screened. Next Can be isolated and further identified.   Another possible use of the dual hybrid system is for example chemical compounds Polypeptides of the invention and known or unknown polypeptides by other substances such as Is to act on the interaction between Therefore, it can be chemically synthesized, and New and valuable active substances that can be used as therapeutics for the treatment of heart disease It is also possible to find it easily. Therefore, the present invention finds polypeptide-like reactants The protein-protein complex described above is not limited to It also extends to methods of finding substances that can interact with. Hence, such polypep Tide-like, as well as chemical reactants are referred to as functional reactants for the purposes of the present invention.   Thus, the surprising advantage of the present invention is the specificity of heart disease, especially heart failure, and That the subject matter of the present invention can be used for reliable diagnosis and treatment is there. However, other valuable therapeutic and diagnostic possibilities are also apparent. ing. For example, a functional reactant that can be easily identified using the described test method is With their adjuvants in the form of suitable pharmaceutical preparations, their natural environment in the heart muscle In the activity of the polypeptide of the present invention and thus the contractility of cardiomyocytes. In particular, the activity of this polypeptide has already been described in detail above. This is very advantageous because it can be adjusted as described above.   Hereinafter, the present invention will be described in detail with reference to the drawings and examples, but the present invention is not limited thereto. Not something.Description of the drawings   FIG. 1 shows a 1936 nucleotide long heart-specific DNA sequence. Equivalent The region encoding the polypeptide is shown in bold. DNA fragment of Example 1 Is underlined.   FIG. 2 shows 2080 nucleotides having an additional portion at the 5 ′ end of the DNA sequence of FIG. 1 shows an otide-length heart-specific DNA sequence. Region encoding the corresponding polypeptide Areas are again shown in bold.   FIG. 3 shows 2268 with an additional portion at the 5 'end of the DNA sequence of FIG. 1 or FIG. 1 shows a heart-specific DNA sequence of one nucleotide in length. Copy the corresponding polypeptide The regions to be loaded are also shown in bold.   FIG. 4 shows 552 nucleosides encoded by one of the DNA sequences shown in FIGS. 1 shows a polypeptide sequence of amino acid length. The region homologous to human tropomodulin is thick. It is indicated by a letter. Polypeptides via the tyrosine kinase signal transduction pathway Sequence motifs that indicate the regulation of are underlined.   FIGS. 5a and 5b show the results for detecting expression in various human tissues (FIG. 5a). ) And to detect expression in healthy and failing human heart tissue (FIG. 5). b) shows a Northern blot of mRNA corresponding to the nucleic acid sequences shown in FIGS. You.Example 1 . Isolation of DNA fragments from human failing heart tissue   First, the standard method (Chomczynski & Sacchi (1987), Anal. Biochem, 162 (1), 156-15 According to 9), complete RNA was isolated from healthy and failing heart tissue samples. The RNA was then treated with DNase to remove contaminating DNA. Then, Aliquots (0.2 μg) of the RNA in 1 × RT buffer (Gibco Y00121), 10 mM DTT, 20 μM dNTP mixture, 1 U / μl RNAsin (Promeg a N2511) 1 μM 5'-T12ACN-3 'type (where N is any deoxy 3 'anchor primer mixture and 10 U / μl SuperScript RNase H-In a 20 μl reaction mixture containing reverse transcriptase Incubated at 37 ° C. for 60 minutes and then transcribed into cDNA. Then c Aliquots of DNA were added to 1 μM 3 'primer T12AC and 1 μM 5'-1 In addition to the 0-mer primer (5'-CCTTCTACCC-3 '), 10 µCi of α −32P-dCTP, 2 μM dNTP mixture and 1 U AmpliTaq (Pe 20 μl for 1 × PCR buffer (Perkin-Elmer) containing Attached. The mixture is first cycled at 94 ° C for 1 minute and then at 94 ° C for 30 seconds for 40 cycles each. Ink at 40 ° C for 2 minutes, then at 72 ° C for 30 seconds, and finally at 72 ° C for 10 minutes. Was added. Next, the obtained DNA fragment mixture was subjected to 6% polyacrylamide gel. The above was fractionated and then an autoradiogram was generated. Thus, 321 bp Length, not present in healthy heart samples but evident in failing heart samples Was prepared. Then, based on the X-ray film, Gels were excised and re-amplified by PCR under the conditions already described. . Subsequently, the obtained fragment is cloned into an appropriate vector, and the DNA Determined columns. The fragment thus prepared comprises nucleotide 162 of the sequence of claim 1 12 thiamin nucleotides derived from 7-1936 and 3 'anchor primers Including otide.2 . Isolation of heart-specific nucleic acids   From Example 1 comprising the nucleotides at positions 1627-1936 in FIG. The obtained α-32Using DNA fragments labeled with P-dCTP, standard conditions (Sambrook J., Frisch, E.F. & Maniatis, T .; (1989) Molecular Cloning, A Laboratory Manual, ch. (See 8-10) Workup hybridization was performed. Next, the found cDNA is isolated and Were sequenced. This arrangement is shown in FIGS. This makes it healthy C having the sequence shown in FIG. 2 or 3 which can be isolated with high probability from type heart tissue Rather than DNA, cDNA having the sequence shown in FIG. It has been found that it can be isolated with a high probability.3 . Northern blot to generate cardiac-specific genes in various human tissues Detection of current intensity   First, the length of 321 bp already described in Examples 1 and 2 and FIG. DNA fragments were subjected to a random primer labeling method (Feinberg, A.P. & Vogelstein, B.C. (1983) Anal. Biochem., 132, 6)32Radiolabeled with P-dCTP . Use RTS RadPrime DNA labeling system (GibcoBRL 10387-017) for this purpose did. Manufacturer's instructions (Multiple Tissue Northern Blots I & II, Clontech L aboratories GmbH, Heidelberg, # 7760-1, # 7759-1) at 68 ° C. for 1 hour, E human group in pressHyb hybridization solution (Clontech # 8015-1) Poly A from weave (see FIGS. 5a and 5b)+Hybridization of RNA and blot The zation was performed. The blot was then combined with 2 × SSC and 0.05% S Wash for 30 minutes with DS, then 1 hour with 0.1 × SSC and 0.1% SDS, Further, an autoradiogram was prepared. Approximately 240 probes of 321 bp length 0 bp poly A+RNA strongly hybridizes with heart tissue and skeletal muscle, Very weakly hybridized in gonad tissue, leukocytes, large intestine, small intestine, ovaries, Does not hybridize in testis, thymus, spleen, kidney, liver, lung, placenta and brain tissue (FIG. 5a).   In addition, the expression of the corresponding RNA in healthy and failing heart tissues was also examined. For this purpose, complete RNA was isolated from various human heart tissue samples (C homczynski & Sacchi (1987), Anal. Biochem. 162, 156-159). Then each In some cases, 10 μg of RNA was applied using a 1% formaldehyde agarose gel. Fractionated and transferred to a charged nylon membrane by the capillary method (Zeta- Probe GT BioRad # 162-0197). The membrane was briefly washed with 2 × SSC, then 80 Bake at 300C for 30 minutes. This membrane is mixed with a pre-hybridization solution (0.5 M NaTwoHPOFour, PH 7.2; 7% SDS) at 65 ° C for at least 1 hour Incubated. This solution is then replaced with a new solution and then heat denatured. Radioactive probe was added. Hybridization is performed at 65 ° C for 15 hours Was. The membrane was then firstly washed with 40 mM Na.TwoHPOFourPH 7.2; 5% SD S at 65 ° C. for 15 hours, then 40 mM NaTwoHPOFourPH 7.2; 1% After washing with SDS at 65 ° C. for 2 × 30 minutes, an autoradiogram was prepared. Various R having a length of about 2200-2400 bp in a 1% agarose gel It was revealed that the NA species had been fractionated. These various species are found Well matched to the size of the three cDNAs, and the average length of the poly A terminal was 150 bp. (See FIGS. 1-3). In particular, the smallest RNA species is more affected than healthy tissue It was more clearly detectable in the tissue. PhosphorImager and ImageQuant software The quantification of the blots using the software (Molecular Dynamics GmbH, Krefeld) Considering control hybridization with thymosin and actin, Approximately 35% higher expression of detected RNA in failing heart tissue compared to tissue .

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI テーマコート゛(参考) A61P 9/10 C07K 16/18 C07K 14/47 C12P 21/02 C 16/18 C12Q 1/68 A C12P 21/02 G01N 33/53 D C12Q 1/68 C12P 21/08 G01N 33/53 C12N 15/00 ZNAA // C12P 21/08 A61K 37/02 ──────────────────────────────────────────────────の Continued on the front page (51) Int.Cl. 7 Identification code FI Theme coat ゛ (Reference) A61P 9/10 C07K 16/18 C07K 14/47 C12P 21/02 C 16/18 C12Q 1/68 A C12P 21 / 02 G01N 33/53 D C12Q 1/68 C12P 21/08 G01N 33/53 C12N 15/00 ZNAA // C12P 21/08 A61K 37/02

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1. 図4に示されるアミノ酸配列を有するポリペプチドまたはその機能的変 異体、をコードする核酸、および少なくとも8個のヌクレオチドを有するその一 部(ただし、配列: を有する核酸は除く)。 2. 核酸がDNAまたはRNA、好ましくはDNA、特に二本鎖DNAであ る、請求項1記載の核酸。 3. 核酸が、図1、2または3に示されるような核酸配列を有するDNAを 含む、請求項1または2記載の核酸。 4. 核酸が、ベクター中、好ましくは発現ベクターまたは遺伝子治療に有効 なベクター中、に存在する、請求項1〜3のいずれか一項に記載の核酸。 5. ポリペプチドをコードする核酸の一部が1以上の非コード配列および/ またはポリA配列を含む、請求項1〜4のいずれか一項に記載の核酸。 6. 核酸が化学的に合成されるか、またはプローブを用いて遺伝子バンクか ら単離される、請求項1〜5のいずれか一項に記載の核酸の製造方法。 7. 図4に示されるアミノ酸配列を有するポリペプチド、またはその機能的 変異体、および少なくとも6個のアミノ酸を有するその一部(ただし、配列: を有するポリペプチドは除く)。 8. 請求項1〜3のいずれか一項に記載の核酸を好適な宿主細胞で発現させ る、請求項7記載のポリペプチドの製造方法。 9. 図4に示されるアミノ酸配列を有するポリペプチドまたはその機能的変 異体、および少なくとも6個のアミノ酸を有するその一部、に対する抗体。 10. 哺乳類が、図4に示されるアミノ酸配列を有するポリペプチドまたは その機能的変異体、および少なくとも6個のアミノ酸を有するその一部、で免疫 化し、次いで得られた抗体を単離する、請求項9記載の抗体の製造方法。 11. 図4に示されるアミノ酸配列を有するポリペプチド、もしくはその機 能的変異体をコードする核酸、および少なくとも8個のヌクレオチドを有するそ の一部、または図4に示されるアミノ酸配列を有するポリペプチド、もしくはそ の機能的変異体、および少なくとも6個のアミノ酸を有するその一部、ならびに 適当であれば医薬上許容される担体、を含有する、医薬製剤 12. 図4に示されるアミノ酸を有するポリペプチド、もしくはその機能的 変異体をコードする核酸、および少なくとも8個のヌクレオチドを有するその一 部、または図4に示されるアミノ酸配列を有するポリペプチド、もしくはその機 能的変異体、および少なくとも6個のアミノ酸を有するその一部、が医薬上許容 される担体とともに処方されることを特徴とする、心疾患用の医薬製剤の製造方 法。 13. 図4に示されるアミノ酸を有するポリペプチド、もしくはその機能的 変異体をコードする核酸、および少なくとも8個のヌクレオチドを有するその一 部、図4に示されるアミノ酸配列を有するポリペプチド、もしくはその機能的変 異体、および少なくとも6個のアミノ酸を有するその一部、または請求項9記載 の抗体、および適当であれば好適な添加剤もしくは賦形剤、を含有する、診断補 助剤。 14. 図4に示されるアミノ酸を有するポリペプチド、もしくはその機能的 変異体をコードする核酸、および少なくとも8個のヌクレオチドを有するその一 部、図4に示されるアミノ酸配列を有するポリペプチド、その機能的変異体、お よび少なくとも6個のアミノ酸を有するその一部、または請求項9記載の抗体が 医薬上許容される担体と混合されていることを特徴とする、心疾患診断用の診断 補助剤の製造方法。 15. 図4に示されるアミノ酸を有するポリペプチド、もしくはその機能的 変異体をコードする核酸、および少なくとも8個のヌクレオチドを有するその一 部、または図4に示されるアミノ酸配列を有するポリペプチド、その機能的変異 体、および少なくとも6個のアミノ酸を有するその一部、ならびに適当であれば 好適な添加剤もしくは賦形剤を含有する、機能的反応体を同定する試験。[Claims] 1. A nucleic acid encoding a polypeptide having the amino acid sequence shown in FIG. 4 or a functional variant thereof, and a portion thereof having at least 8 nucleotides (provided that the sequence: Are excluded). 2. 2. The nucleic acid according to claim 1, wherein the nucleic acid is DNA or RNA, preferably DNA, especially double-stranded DNA. 3. The nucleic acid according to claim 1 or 2, wherein the nucleic acid comprises DNA having a nucleic acid sequence as shown in FIG. 1, 2 or 3. 4. The nucleic acid according to any one of claims 1 to 3, wherein the nucleic acid is present in a vector, preferably in an expression vector or a vector effective for gene therapy. 5. The nucleic acid according to any one of claims 1 to 4, wherein a portion of the nucleic acid encoding the polypeptide comprises one or more non-coding sequences and / or poly A sequences. 6. The method for producing a nucleic acid according to any one of claims 1 to 5, wherein the nucleic acid is chemically synthesized or isolated from a gene bank using a probe. 7. A polypeptide having the amino acid sequence shown in FIG. 4, or a functional variant thereof, and a portion thereof having at least 6 amino acids (provided that the sequence: Excluding polypeptides having 8. The method for producing a polypeptide according to claim 7, wherein the nucleic acid according to any one of claims 1 to 3 is expressed in a suitable host cell. 9. Antibodies against a polypeptide having the amino acid sequence shown in FIG. 4 or a functional variant thereof, and a portion thereof having at least 6 amino acids. 10. 10. The mammal is immunized with a polypeptide having the amino acid sequence shown in FIG. 4 or a functional variant thereof, and a portion thereof having at least 6 amino acids, and then isolating the resulting antibody. The method for producing the antibody according to the above. 11. A polypeptide having the amino acid sequence shown in FIG. 4, or a nucleic acid encoding a functional variant thereof, and a part thereof having at least 8 nucleotides, or a polypeptide having the amino acid sequence shown in FIG. 11. A pharmaceutical formulation comprising a functional variant, and a part thereof having at least 6 amino acids, and, if appropriate, a pharmaceutically acceptable carrier. A polypeptide having the amino acid shown in FIG. 4, or a nucleic acid encoding a functional variant thereof, and a part thereof having at least 8 nucleotides, or a polypeptide having the amino acid sequence shown in FIG. 4, or a function thereof A method for the manufacture of a pharmaceutical preparation for heart disease, characterized in that the objective variant and a part thereof having at least 6 amino acids are formulated together with a pharmaceutically acceptable carrier. 13. A polypeptide having the amino acid shown in FIG. 4, or a nucleic acid encoding a functional variant thereof, and a part thereof having at least 8 nucleotides, a polypeptide having the amino acid sequence shown in FIG. 4, or a functional thereof A diagnostic aid comprising the variant, and a part thereof having at least 6 amino acids, or the antibody according to claim 9 and, where appropriate, suitable additives or excipients. 14. A nucleic acid encoding a polypeptide having the amino acid shown in FIG. 4 or a functional variant thereof, and a part thereof having at least 8 nucleotides, a polypeptide having the amino acid sequence shown in FIG. 4, a functional variant thereof A method for producing a diagnostic aid for the diagnosis of heart disease, characterized in that the body and a part thereof having at least 6 amino acids or the antibody according to claim 9 are mixed with a pharmaceutically acceptable carrier. . 15. A polypeptide having the amino acid shown in FIG. 4, or a nucleic acid encoding a functional variant thereof, and a part thereof having at least 8 nucleotides, or a polypeptide having the amino acid sequence shown in FIG. A test to identify a functional reactant containing the variant, and a part thereof having at least 6 amino acids, and where appropriate suitable additives or excipients.
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