JP2002238550A - Microorganism for degrading halogenated hydrocarbon and method for environmental cleanup using the same - Google Patents

Microorganism for degrading halogenated hydrocarbon and method for environmental cleanup using the same

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JP2002238550A
JP2002238550A JP2001037429A JP2001037429A JP2002238550A JP 2002238550 A JP2002238550 A JP 2002238550A JP 2001037429 A JP2001037429 A JP 2001037429A JP 2001037429 A JP2001037429 A JP 2001037429A JP 2002238550 A JP2002238550 A JP 2002238550A
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JP
Japan
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halogen
substituted hydrocarbon
microorganism
cyclohexanone
medium
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JP2001037429A
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Japanese (ja)
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Toshiaki Kimura
敏章 木邑
Harumi Kondo
晴美 近藤
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Toyota Motor Corp
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Toyota Motor Corp
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Publication date
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Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a new microorganism capable of degrading halogenated hydrocarbons such as trichloroethylene, to provide an activator for the microorganism, and to provide a method for environmental cleanup using the microorganism and the activator. SOLUTION: The microorganism for degrading halogenated hydrocarbons is the one belonging to Genus Ralstonia such as Ralstonia sp. EFZ4B strain, capable of being activated by cyclohexanone. As the cyclohexanone is low toxic and inexpensive, a practical method for environmental clean up is obtained by using the microorganism.

Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明は、トリクロロエチレ
ン等のハロゲン置換炭化水素により汚染された環境の浄
化方法、この方法に使用するための微生物、該微生物の
活性化剤、及び該微生物の選択方法に関する。
The present invention relates to a method for purifying an environment contaminated with a halogen-substituted hydrocarbon such as trichloroethylene, a microorganism used for the method, an activator for the microorganism, and a method for selecting the microorganism. .

【0002】[0002]

【従来の技術】トリクロロエチレン等のハロゲン置換炭
化水素は種々の工業工程における洗浄用溶剤などとして
多用されており、環境汚染、例えば土壌汚染や排水汚染
等、の原因物質の1つとなっている。このような汚染さ
れた環境の微生物学的浄化方法としては、汚染された環
境に微生物活性化剤を添加することにより汚染環境中に
生来的に存在した微生物を活性化して汚染物質を分解す
るバイオ・スティミュレーション法のほかに、汚染され
た環境に汚染物質分解能を有する微生物を添加して汚染
物質を分解するバイオ・オーギュメンテーション法があ
る。
2. Description of the Related Art Halogen-substituted hydrocarbons such as trichloroethylene are frequently used as cleaning solvents in various industrial processes, and are one of the causative substances of environmental pollution, such as soil pollution and wastewater pollution. As a microbiological purification method for such a contaminated environment, a biodegrading method is used in which a microorganism activator is added to the contaminated environment to activate microorganisms naturally existing in the contaminated environment to decompose the contaminant. -In addition to the stimulation method, there is a bioaugmentation method in which a microorganism having the capability of decomposing pollutants is added to a polluted environment to decompose the pollutants.

【0003】このバイオ・オーギュメンテーション法に
おいては、通常、汚染環境に添加する微生物のための活
性化剤、すなわち、該微生物の増殖の促進及び/又は汚
染物質分解能の誘導のための物質が使用される。しかし
ながら、活性化剤の選択によっては活性化剤自体による
二次汚染のおそれもあり、また処理コストの上昇をまね
く場合もある。従って、バイオ・オーギュメンテーショ
ン法に用いる微生物としては、毒性が低く且つ安価な物
質により活性化され、且つハロゲン置換炭化水素に対す
る高い分解能を有するものであることが好ましい。
In this bioaugmentation method, an activator for microorganisms added to the contaminated environment, that is, a substance for promoting the growth of the microorganisms and / or for inducing the decomposability of the contaminants is usually used. Is done. However, depending on the selection of the activator, there is a risk of cross-contamination by the activator itself, and the treatment cost may be increased. Therefore, it is preferable that the microorganism used for the bioaugmentation method be one which is activated by a low-toxic and inexpensive substance and has a high resolution for halogen-substituted hydrocarbons.

【0004】ハロゲン置換炭化水素で汚染された環境の
浄化のための微生物として、特開平10-52259号公報には
バークホルデリア(Burkholderia)属に属するN16-1
株、N15-1 株及びN15-2 株が記載されている。また特表
平11−514532号公報にはM07 株が記載されてい
る。しかしながら、ラルストニア(Ralstonia)属に属
し、ハロゲン置換炭化水素分解能を有する微生物は知ら
れていない。
As a microorganism for purifying an environment contaminated with a halogen-substituted hydrocarbon, JP-A-10-52259 discloses N16-1 belonging to the genus Burkholderia.
Strain, N15-1 strain and N15-2 strain are described. Japanese Patent Publication No. 11-514532 describes the M07 strain. However, a microorganism belonging to the genus Ralstonia and having the ability to degrade a halogen-substituted hydrocarbon is not known.

【0005】[0005]

【発明が解決しようとする課題】従って本発明は、毒性
が低く且つ安価な物質により活性化がされ、ハロゲン置
換炭化水素分解能を有する新規な微生物;毒性が低く且
つ安価な活性化剤を用いて、ハロゲン置換炭化水素によ
り汚染された環境を浄化する方法;並びに、この方法に
おいて使用できる微生物の新規な選択方法を提供しよう
とするものである。
Accordingly, the present invention provides a novel microorganism which is activated by low-toxic and inexpensive substances and has the ability to degrade halogen-substituted hydrocarbons; A method for purifying an environment contaminated by halogen-substituted hydrocarbons; and a novel method for selecting microorganisms that can be used in this method.

【0006】[0006]

【課題を解決するための手段】本発明者らは、上記の課
題を解決するための種々検討した結果、ラルストニア
(Ralstonia)属に属し、シクロヘキサノンにより活性化
され得る、ハロゲン置換炭化水素分解能を有する微生物
を単離し、本発明を完成した。従って本発明は、ラルス
トニア (Ralstonia)属に属し、ハロゲン置換炭化水素分
解能を有する菌株FEZ4B(FERM P-18190)を提供する。
As a result of various studies to solve the above-mentioned problems, the present inventors have found that they belong to the genus Ralstonia and have a halogen-substituted hydrocarbon resolution which can be activated by cyclohexanone. The microorganism was isolated and the present invention was completed. Accordingly, the present invention provides a strain FEZ4B (FERM P-18190) belonging to the genus Ralstonia and having the ability to degrade a halogen-substituted hydrocarbon.

【0007】本発明はまた、ハロゲン化炭化水素により
汚染された環境に、シクロヘキサノールもしくはシクロ
ヘキサノン又は両者と、ラルストニア (Ralstonia)属に
属しハロゲン置換炭化水素分解能を有する微生物とを添
加することを特徴とする、環境浄化方法に関する。本発
明はまた、ハロゲン置換炭化水素により汚染された環境
に、シクロヘキサノールもしくはシクロヘキサノン又は
その両者の存在下で増殖させた、ラルストニア (Ralsto
nia)属に属しハロゲン置換炭化水素分解能を有する微生
物を添加することを特徴とする環境浄化方法を提供す
る。
The present invention is also characterized in that cyclohexanol or cyclohexanone or both, and a microorganism belonging to the genus Ralstonia and having the ability to degrade a halogen-substituted hydrocarbon are added to an environment contaminated with a halogenated hydrocarbon. The environmental purification method. The invention also relates to Ralstonia (Ralstonia) grown in an environment contaminated with halogen-substituted hydrocarbons in the presence of cyclohexanol and / or cyclohexanone.
The present invention provides an environmental purification method characterized by adding a microorganism belonging to the genus nia) and having the ability to degrade a halogen-substituted hydrocarbon.

【0008】本発明はさらに、シクロヘキサノンにより
活性化され得るハロゲン置換炭化水素分解菌の単離又は
選択方法において、(1)微生物分離源試料、ハロゲン
置換炭化水素及びシクロヘキサノールを含む培地インキ
ュベートして、添加したハロゲン置換炭化水素が減少し
ている培地を選択する工程、並びに(2)前記工程1に
おいて選択された培地中に存在した微生物を、ハロゲン
置換炭化水素及びシクロヘキサノンを含有する培地中で
培養して、ハロゲン置換炭化水素分解能を有する微生物
を選択する工程、を含んで成る方法を提供する。
The present invention further provides a method for isolating or selecting a halogen-substituted hydrocarbon-degrading bacterium which can be activated by cyclohexanone, comprising the steps of (1) incubating a medium containing a microorganism separation source sample, a halogen-substituted hydrocarbon and cyclohexanol, Selecting a medium in which the added halogen-substituted hydrocarbon is reduced, and (2) culturing the microorganisms present in the medium selected in step 1 in a medium containing the halogen-substituted hydrocarbon and cyclohexanone. And selecting a microorganism having the ability to degrade a halogen-substituted hydrocarbon.

【0009】本発明はさらに、シクロヘキサノンにより
活性化され得るハロゲン置換炭化水素分解菌の単離又は
選択方法において、(1)該微生物を含有すると予想さ
れる試料、ハロゲン置換炭化水素及びシクロヘキサノン
を含む培地をインキュベートし、添加したハロゲン置換
炭化水素が減少した培地を選択し、そして(2)前記工
程(1)において選択された培地から、シクロヘキサノ
ンにより活性化され得るハロゲン置換炭化水素分解菌を
単離する、ことを含んで成る方法を提供する。
The present invention further provides a method for isolating or selecting a halogen-substituted hydrocarbon-degrading bacterium which can be activated by cyclohexanone. (1) A sample expected to contain the microorganism, a medium containing a halogen-substituted hydrocarbon and cyclohexanone And selecting a medium in which the added halogen-substituted hydrocarbon has been reduced, and (2) isolating a halogen-substituted hydrocarbon-degrading bacterium that can be activated by cyclohexanone from the medium selected in the step (1). And a method comprising:

【0010】[0010]

【発明の実施の形態】本発明による分解の対象とするハ
ロゲン置換炭化水素は好ましくは塩素化炭化水素であ
り、特にトリクロロエチレンが実用上重要である。本発
明における浄化の対象となる環境は特に限定されない
が、土壌及び排水が実用上特に重要である。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The halogen-substituted hydrocarbons to be cracked according to the invention are preferably chlorinated hydrocarbons, of which trichloroethylene is of practical importance. The environment to be purified in the present invention is not particularly limited, but soil and drainage are particularly important for practical use.

【0011】ハロゲン置換炭化水素分解能を有する微生
物の単離に当っては、その第一工程として、微生物単離
源試料、活性化剤としてのシクロヘキサノール、及びハ
ロゲン置換炭化水素として例えばトリクロロエチレンを
含有する培地をインキュベートし、培地中のトリクロロ
エチレンが減少している培地を選択する。微生物単離源
試料としては、特に限定されないが、種々の土壌、又は
排水を用いるのが好ましい。分離用基礎培地としては、
無機窒素源としてのNH4NO3,(NH4)2SO4, NaNO3等、リン
源としての又は緩衝剤として機能するNa2PO4,KH2PO
4等、金属源であるCaSO4 ・2H2O, MgSO4 ・7H2O, FeSO4
・7H2O等、有機栄養因子として酵母エキス等を含有す
る場合が好ましく、微生物の選択の効率を上げるために
はグルコース等の炭水化物系炭素源を含有しないのが好
ましい。
In the isolation of a microorganism having the ability to degrade a halogen-substituted hydrocarbon, the first step involves, as a first step, a microorganism isolation source sample, cyclohexanol as an activator, and trichloroethylene as a halogen-substituted hydrocarbon. Incubate the medium and select a medium that has reduced trichlorethylene in the medium. The microorganism isolation source sample is not particularly limited, but it is preferable to use various soils or wastewater. As the basal medium for separation,
NH 4 NO 3 , (NH 4 ) 2 SO 4 , NaNO 3 etc. as an inorganic nitrogen source, Na 2 PO 4 , KH 2 PO functioning as a phosphorus source or as a buffer
4th class metal sources such as CaSO 4・ 2H 2 O, MgSO 4・ 7H 2 O, FeSO 4
· 7H 2 O, etc., it is preferred if it contains yeast extract and the like as organic trophic factors, preferably in order to increase the efficiency of the microorganisms of the selection does not contain carbohydrate-based carbon source such as glucose.

【0012】上記の培地に添加する分離源試料の量は特
に限定されないが、例えば試料10gに対して培地10
mLの比率で混合するのが好ましい。活性化剤としてのシ
クロヘキサノールの培地中の濃度におよそ0.1%(V/V)で
あり、トリクロロエチレンの濃度は10ppm 程度が好ま
しい。上記の培地混合物を密閉された培養用容器に入
れ、例えば30℃にて1週間〜10日間振とうし、トリ
クロロエチレンの消費を測定する。トリクロロエチレン
の測定は、例えば培養器中の気体中のトリクロロエチレ
ンの濃度を例えばガスクロマトグラフィーにより測定す
ればよい。
The amount of the separation source sample to be added to the medium is not particularly limited.
It is preferable to mix at a ratio of mL. The concentration of cyclohexanol as an activator in the medium is about 0.1% (V / V), and the concentration of trichlorethylene is preferably about 10 ppm. The above medium mixture is placed in a sealed culture vessel, and shaken at, for example, 30 ° C. for 1 week to 10 days, and the consumption of trichlorethylene is measured. For the measurement of trichlorethylene, for example, the concentration of trichlorethylene in the gas in the incubator may be measured by, for example, gas chromatography.

【0013】次に、振とうによるインキュベーション中
にトリクロロエチレンが減少している培地(すなわち培
養器)を選択する。第二段階として、上記の第一段階に
おいて選択した培地中の微生物を、活性化剤としてのシ
クロヘキサノン及びハロゲン置換炭化水素であるトリク
ロロエチレンを含有する培地に添加し、第一段階のイン
キュベーションと同様にして培養を行う。この場合の培
地組成、活性化剤の濃度、トリクロロエチレンの濃度、
及び培養の条件は、第一段階と同様でよい。また、シク
ロヘキサノンを活性化剤としてトリクロロエチレンを分
解した微生物の選択も、前記段階一と同様に、培養器中
の気体のトリクロロエチレン濃度をガスクロマトグラフ
ィーにより測定すればよい。
Next, a medium (ie, an incubator) in which trichlorethylene is reduced during the incubation by shaking is selected. As a second step, the microorganisms in the medium selected in the first step are added to a medium containing cyclohexanone as an activator and trichloroethylene which is a halogen-substituted hydrocarbon, and the same as in the incubation in the first step Perform culture. In this case, the medium composition, the concentration of the activator, the concentration of trichlorethylene,
The conditions for culturing may be the same as those in the first step. Also, the selection of a microorganism that has decomposed trichloroethylene using cyclohexanone as an activator may be performed by measuring the concentration of trichlorethylene in the gas in the incubator by gas chromatography in the same manner as in Step 1 above.

【0014】第一段階から第二段階への移行は、第一段
階により得た培地の一部分を第二段階の培地に添加する
ことによって行ってもよいが、好ましくは、第一段階に
より得た培地中から、微生物を単離し、次にこの微生物
のトリクロロエチレン分解能を確認して選択した後に、
その選択された微生物を第二段階の培地に接種するのが
好ましい。上記の微生物の単離は、例えば段階1におい
て使用した基礎培地と同様の組成を有する培地にシクロ
ヘキサノール0.1% (V/V)を添加し、寒天で固めた固体培
地土に、段階1において得た培地を適宜希釈したものを
塗布し、30℃にて3〜5日間インキュベートすること
により生成したコロニーを採取すればよい。
The transition from the first step to the second step may be carried out by adding a part of the medium obtained in the first step to the medium in the second step, but preferably the medium obtained in the first step is used. After isolating the microorganism from the culture medium and then selecting and confirming the trichloroethylene decomposability of this microorganism,
Preferably, the selected microorganism is inoculated into a second stage medium. Isolation of the above microorganisms can be performed, for example, by adding cyclohexanol 0.1% (V / V) to a medium having a composition similar to that of the basal medium used in step 1 and obtaining the solid culture medium solidified in agar in step 1. The culture medium may be appropriately diluted, applied, and incubated at 30 ° C. for 3 to 5 days to collect colonies.

【0015】上記のコロニー分離により単離された微生
物のトリクロロエチレン分解能は、前記第一段階におけ
る方法と同様にして検定することができる。また、第一
段階において選択された培地の一部分を直接第二段階の
培地に接種して第二段階を行った場合には、第二段階に
より選択した培地から微生物を単離する必要があるが、
この場合も上記のコロニー単離源を用いることができ
た。上記の方法に代えて、第一段階における培地、第一
段階後の微生物の単離のための寒天培地、及び単離され
た微生物のトリクロロエチレン分解能検定用培地のいず
れか又はすべてにおいて、前記のシクロヘキサノールに
代えてシクロヘキサノンを使用することもできる。
The ability of the microorganism isolated by the above colony separation to degrade trichloroethylene can be assayed in the same manner as in the method in the first step. Further, when the second step is performed by inoculating a part of the medium selected in the first step directly into the medium of the second step, it is necessary to isolate the microorganism from the medium selected in the second step. ,
In this case also, the above-mentioned colony isolation source could be used. In place of the above method, the above-mentioned cycloalkyl is used in any or all of the medium in the first stage, the agar medium for isolation of the microorganism after the first stage, and the medium for assaying the isolated microorganism for trichloroethylene degradation. Cyclohexanone can be used instead of hexanol.

【0016】本発明によれば、上記のごとき選択方法に
より、ラルストニア(Ralstonia)属に属し、ハロゲン置
換炭化水素分解能を有する微生物が得られる。この微生
物の代表例として、工業技術院生命工学工業技術研究所
に2001年1月31日にFERM P18190 として寄託されたFEZ4
B 株を挙げることができる。この菌株の具体的な単離方
法及び菌学的性質は実施例において具体的に記載する。
この微生物は、既知のハロゲン置換炭化水素分解菌とは
異り、シクロヘキサノンを唯一の炭素源として急速に増
殖することができ、且つ高濃度のトリクロロエチレンを
高速で分解することができる。
According to the present invention, a microorganism belonging to the genus Ralstonia and having the ability to degrade a halogen-substituted hydrocarbon can be obtained by the above selection method. As a representative example of this microorganism, FEZ4 deposited on January 31, 2001 as FERM P18190 with the National Institute of Bioscience and Human Technology
B strain can be mentioned. The specific isolation method and mycological properties of this strain are specifically described in Examples.
This microorganism, unlike known halogen-substituted hydrocarbon-degrading bacteria, can grow rapidly with cyclohexanone as the sole carbon source and can degrade high concentrations of trichloroethylene at high speed.

【0017】本発明における活性化剤によるハロゲン置
換炭化水素分解菌の活性化は、活性化剤と当該微生物と
を一緒に土壌等の環境に添加することにおいて、環境中
で行うこともでき、又は当該微生物を活性化剤の存在下
で培養することにより活性化された菌体を得、これを環
境に添加することもできる。本発明においては、活性化
剤としてシクロヘキサノールもしくはシクロヘキサノン
又はこの両者の組合せを用いることができるが、好まし
くはシクロヘキサノンを単独で又はシクロヘキサノール
の組合せにおいて使用し、特に好ましくはシクロヘキサ
ノンを単独で使用する。
The activation of the halogen-substituted hydrocarbon-decomposing bacterium by the activator of the present invention can be carried out in the environment by adding the activator and the microorganism together to the environment such as soil, or Activated cells can be obtained by culturing the microorganism in the presence of an activator, and this can be added to the environment. In the present invention, cyclohexanol or cyclohexanone or a combination of both can be used as the activator. Preferably, cyclohexanone is used alone or in a combination of cyclohexanols, and particularly preferably, cyclohexanone is used alone.

【0018】本発明の微生物の大量培養においては、前
記の選択用基礎培地の組成と同様な組成を有する培地
に、唯一の炭素源としてシクロヘキサノール及び/又は
シクロヘキサノンを添加した培地を使用すればよい。培
養は、通気及び/又は撹拌による好気的条件で行う。本
培養に先立って前培養を行うことにより、段階的に培養
体積を増加するのが好ましい。培養温度は25℃〜35
℃、好ましくは約30℃である。培養時間は2〜3日間
が適当である。
In the mass cultivation of the microorganism of the present invention, a medium having a composition similar to that of the above-mentioned basal medium for selection, to which cyclohexanol and / or cyclohexanone is added as a sole carbon source may be used. . Culture is performed under aerobic conditions by aeration and / or agitation. It is preferable to increase the culture volume stepwise by performing preculture before main culture. The culture temperature is 25 ° C to 35
° C, preferably about 30 ° C. The culturing time is suitably 2 to 3 days.

【0019】汚染土壌の処理に当っては、上記のように
して培養した菌体又は培養物を活性化剤と共に、又は活
性化剤を伴わないで添加する。添加するには、例えば処
理対象の土壌をほり起こして、菌体、又は菌体と活性化
剤とを均一に混合すればよい。排水の処理に当っては、
処理すべき排水に、培養物又は培養菌体を単独で、ある
いは活性化剤と共に添加し、そして通気及び/又は撹拌
により混合すればよい。
In the treatment of the contaminated soil, the cells or culture cultured as described above are added together with or without an activator. For example, the soil to be treated may be unraveled and the cells or the cells and the activator may be uniformly mixed. When treating wastewater,
The culture or cultured cells may be added alone or together with the activator to the waste water to be treated, and mixed by aeration and / or stirring.

【0020】[0020]

【実施例】次に、実施例により本発明をさらに具体的に
説明する。実施例1シクロヘキサノール資化性トリクロロエチレ
ン分解菌の分離 土壌として、FEZ(湿地帯表層腐植土)、FORE3(森林
土)、GOT(水田表層土壌)、KR(関東ローム)、KSM(湿
地帯表層表土)、MZH(畑表層土)、NRT(砂質土壌)、NS
(砂質土壌)、OJH(畑表層土)、OJK(小川泥土)、RSD
(畑深部土壌)、RSS(畑表層土)、SDD(山深部土壌)、S
DS(山表層土壌)、SL(シルト土壌)、WZD(山深部粘
土)、WZS(山表層土壌)、およびYMH(畑表層土壌)を用
い、土壌湿重量10g に対して、無機塩M培地(組成:1
リットルあたり、NH4NO3:3.0g,Na2HPO4:2.2g,KH2P
O4:0.8g,FeSO4 ・7H2O:10.0mg,CaSO4 ・2H2O:10.0
mg,MgSO4 ・7H2O:10.0mg,Yeast Extract:50mg)を2
0ml添加し、十分に振とうし、その懸濁液4mlを20ml
容量のバイアル瓶に分注した。
Next, the present invention will be described more specifically with reference to examples. Embodiment 1 FIG . Cyclohexanol assimilating trichloroethylene
As a separate soil of down-degrading bacteria, FEZ (wetlands surface humus), FORE3 (forest soil), GOT (paddy surface soil), KR (Kanto loam), KSM (wetlands surface topsoil), MZH (field surface soil) , NRT (sandy soil), NS
(Sandy soil), OJH (field surface soil), OJK (ogawa mud), RSD
(Field deep soil), RSS (field surface soil), SDD (mountain deep soil), S
Using DS (mountain surface soil), SL (silt soil), WZD (mountain deep clay), WZS (mountain surface soil), and YMH (field surface soil), 10 g of soil wet weight, inorganic salt M medium ( Composition: 1
Per liter, NH 4 NO 3 : 3.0g, Na 2 HPO 4 : 2.2g, KH 2 P
O 4: 0.8g, FeSO 4 · 7H 2 O: 10.0mg, CaSO 4 · 2H 2 O: 10.0
mg, MgSO 4 · 7H 2 O : 10.0mg, Yeast Extract: 50mg) and 2
0 ml, shake well, and add 4 ml of the suspension to 20 ml
Dispensed into vials of capacity.

【0021】このバイアル瓶に、被検試料0.1% (V/V)及
び、10ppm のトリクロロエチレンを添加し、密栓し、
30℃にて1週間振とう培養した。培養後、気相中の残
存トリクロロエチレンをガスクロマトグラフィーで測定
した。活性の測定は、同様に調製した土壌懸濁液を用い
て3連で行った。トリクロロエチレン分解活性が確認さ
れた土壌懸濁液をM培地で適宜希釈し、シクロヘキサノ
ール0.1% (V/V)を含むM培地寒天プレートに塗布した。
30℃で3〜5日間培養した後、生育したコロニーを釣
菌し、同培地に塗布した。生育した菌体を用いて分解能
の評価を行った。
To this vial, 0.1% (V / V) of a test sample and 10 ppm of trichloroethylene were added, and the vial was sealed.
Shaking culture was performed at 30 ° C. for 1 week. After the culture, the residual trichlorethylene in the gas phase was measured by gas chromatography. The activity was measured in triplicate using a soil suspension prepared similarly. The soil suspension in which trichlorethylene decomposition activity was confirmed was appropriately diluted with M medium, and applied to an M medium agar plate containing 0.1% (V / V) cyclohexanol.
After culturing at 30 ° C. for 3 to 5 days, the grown colonies were picked and applied to the same medium. The resolution was evaluated using the grown cells.

【0022】分解能の試験は次のようにして行った。上
記培地で生育した菌体1白金耳を取り、上に記載したよ
うに20ml容のバイアル瓶にM培地4ml中に植菌し、シ
クロヘキサノール0.1% (V/V)および10ppmのトリクロ
ロエチレンを添加し、密栓し、30℃にて1週間振とう
培養した。培養後、気相中の残存トリクロロエチレンを
ガスクロマトグラフィーで測定した。活性測定は最低3
連でおこなった。その結果、活性の認められた株につい
ては、栄養培地(Difco, LB broth)の寒天プレートに塗
布し、純粋分離を行い、再度分解活性を確認し、実験に
供するまでプレートにて保存した。この結果、分離源RD
S からRSD5,YMH からYMH6A 及びYMH6C 、並びにFEZ か
らFEZ4B 株を単離した。
The resolution test was performed as follows. Take one loopful of cells grown on the above medium, inoculate 4 ml of M medium into a 20 ml vial as described above, add cyclohexanol 0.1% (V / V) and 10 ppm of trichloroethylene. Then, the cells were sealed and cultured with shaking at 30 ° C. for 1 week. After the culture, the residual trichlorethylene in the gas phase was measured by gas chromatography. Activity measurement must be at least 3
It was done in ream. As a result, the strains showing the activity were applied to an agar plate of a nutrient medium (Difco, LB broth), subjected to pure separation, confirmed again for degradative activity, and stored on the plate until used for the experiment. As a result, the separation source RD
Strain RSD5 was isolated from S, strain YMH6A and YMH6C from YMH, and strain FEZ4B from FEZ.

【0023】実施例2シクロヘキサノン存在下での液
体中のトリクロロエチレンの分解 50ml容積のチューブに、M培地20ml、及びシクロヘキ
サノール0.1% (V/V)添加し、実施例1において得た各種
菌株のコロニー1白金耳を釣菌し、30℃で3日、振と
うし、前培養とした。生育した前培養液を遠心分離にて
菌体を回収し、培養液と等量のリン酸バッファー(10mM
KH2PO4-NaOH pH7.0)で洗浄し、リン酸バッファーにOD
600=0.1 となるように再懸濁した。
Embodiment 2 FIG. Liquid in the presence of cyclohexanone
Decomposition of trichlorethylene in the body 20 ml of M medium and 0.1% (v / v) of cyclohexanol were added to a tube having a volume of 50 ml. Shake for 3 days to perform preculture. The grown pre-culture solution is centrifuged to collect the cells, and an equal amount of phosphate buffer (10 mM
Wash with KH 2 PO 4 -NaOH pH7.0) and add OD to phosphate buffer
Resuspended to 600 = 0.1.

【0024】20ml容量のバイアル瓶に懸濁液3ml、シ
クロヘキサノン0.1% (V/V)、および最終トリクロロエチ
レン濃度10ppm となるように添加し、30℃、1週間
振とう培養した。培養後、気相中の残存トリクロロエチ
レンをガスクロマトグラフィーで測定した。活性の測定
は、同様に調製した菌体懸濁液を用いて3連で行った。
その結果、いずれの菌株でも良好な生育を示したが、FE
Z4B 株のみが、シクロヘキサノンを活性化剤として使用
して有意なトリクロロエチレン分解活性を示した(図
1)。
3 ml of the suspension, 0.1% of cyclohexanone (V / V), and a final trichloroethylene concentration of 10 ppm were added to a 20-ml vial, followed by shaking culture at 30 ° C. for one week. After the culture, the residual trichlorethylene in the gas phase was measured by gas chromatography. The measurement of the activity was performed in triplicate using the cell suspension similarly prepared.
As a result, all strains showed good growth, but FE
Only the Z4B strain showed significant trichlorethylene degradation activity using cyclohexanone as an activator (FIG. 1).

【0025】実施例3シクロヘキサノール資化性TC
E分解菌の同定 実施例2において選択したFEZ4B 株について、形態学
的、および生理・生化学的な性質を調べたところ、表1
に示すような結果が得られた。
Embodiment 3 FIG. Cyclohexanol assimilating TC
The morphological, physiological and biochemical properties of the FEZ4B strain selected in Example 2 were examined.
The result as shown in FIG.

【0026】[0026]

【表1】 [Table 1]

【0027】また、本発明の微生物について16SrRNA 遺
伝子の配列を決定した。決定された本微生物の16SrRNA
遺伝子の塩基配列を図2に示す。得られた塩基配列を公
知の微生物の配列と比較し(図3及び図4)、NJ(近接
接合)法により系統樹を作成した。近縁の菌との遺伝子
の相同性は、Ralstoniabasilensisと98%、Ralstonia
eutrophaと96%であった。
The 16S rRNA gene sequence of the microorganism of the present invention was determined. 16S rRNA of this microorganism determined
FIG. 2 shows the nucleotide sequence of the gene. The obtained nucleotide sequence was compared with the sequence of a known microorganism (FIGS. 3 and 4), and a phylogenetic tree was created by the NJ (proximity junction) method. 98% homology between Ralstoniabasilensis and Ralstonia
eutropha and 96%.

【0028】また、Ralstonia eutrophaの基準株の文献
(J.G. Holt, N.R. Krieg, P.H.A.Senath, J.T. Staley
and S.T. Williams, "Bergey's Manual of Determinat
iveBacteriology" Ninth edition (1994) Williams and
Wilkins) 記載の生理・生化学的性質を比較すると、明
らかに異なる性質を示す部分がある事(表2) から、同
種ではないと判断し、本微生物はRalstonia 属に分類さ
れ、Ralstonia sp.FEZ4B 株であると同定した。また、
本微生物は、既知の病原微生物とは合致せず、安全な微
生物であることが確認された。
References of the reference strain of Ralstonia eutropha
(JG Holt, NR Krieg, PHASenath, JT Staley
and ST Williams, "Bergey's Manual of Determinat
iveBacteriology "Ninth edition (1994) Williams and
Comparing the physiological and biochemical properties of Wilkins) described, since it is part showing a clearly different nature (Table 2), it is determined not to be the same type, the microorganism is classified as Ralstonia genus, Ralstonia Sp.FEZ4B The strain was identified. Also,
This microorganism did not match any known pathogenic microorganism, and was confirmed to be a safe microorganism.

【0029】[0029]

【表2】 [Table 2]

【0030】実施例4シクロヘキサノール又はシクロ
ヘキサノン存在下での液体中のトリクロロエチレンの分
50ml容積のチューブにLB培地20mlを添加し、シク
ロヘキサノールを唯一の炭素源として含むM培地プレー
トに生育した菌株のコロニー1白金耳を釣菌し、30℃
で1日、振とうし、前培養とした。生育した前培養液を
遠心分離にて菌体を回収し、培養液と等量のM培地で洗
浄し、M培地に108cfu/mlとなるように再懸濁した。
Embodiment 4 FIG. Cyclohexanol or cyclo
Trichlorethylene content in liquids in the presence of hexanone.
LB medium was added 20ml in the tube of the solution 50ml volume, colonies were picked loopful of strains grown in M medium plate containing cyclohexanol as the sole carbon source, 30 ° C.
For 1 day to perform preculture. The grown preculture was collected by centrifugation to collect the cells, washed with an equal amount of the M medium and resuspended in the M medium to a concentration of 10 8 cfu / ml.

【0031】20ml容量のバイアル瓶に懸濁液3ml、シ
クロヘキサノール0.1% (V/V)またはシクロヘキサノン0.
1% (V/V)、および最終トリクロロエチレン濃度各10pp
m ,30ppm 、又は50ppm となるように添加し、30
℃、1日または3日振とう培養した。培養後、気相中の
残存トリクロロエチレンをガスクロマトグラフィーで測
定した。活性の測定は、同様に調製した菌体懸濁液を用
いて3連で行った。その結果、シクロヘキサノール添加
の場合108cfu/ml添加、3日の反応で、10ppm TCE
が40%分解された(図5)。シクロヘキサノン添加の
場合108cfu/ml添加、3日の反応で、10ppm TCE が90
% 、30ppm TCE が50% 分解された(図6)。
In a 20 ml vial, 3 ml of the suspension, cyclohexanol 0.1% (V / V) or cyclohexanone 0.
1% (V / V) and final trichlorethylene concentration 10pp each
m, 30 ppm, or 50 ppm.
C., shaking culture for 1 or 3 days. After the culture, the residual trichlorethylene in the gas phase was measured by gas chromatography. The measurement of the activity was performed in triplicate using the cell suspension similarly prepared. As a result, when cyclohexanol was added, 10 8 cfu / ml was added, and after 3 days of reaction, 10 ppm TCE
Was decomposed by 40% (FIG. 5). In the case of adding cyclohexanone, 10 8 cfu / ml was added, and after 3 days, 10 ppm TCE
%, 30 ppm TCE was degraded by 50% (FIG. 6).

【0032】実施例5シクロヘキサノールで培養した
菌体を用いた液体中のトリクロロエチレンの分解 50ml容積のチューブにM培地20ml、シクロヘキサノ
ール0.1% (V/V)添加し、シクロヘキサノールを唯一の炭
素源として含むM培地プレートに生育したFEZ4B 株のコ
ロニー1白金耳を釣菌し、30℃で1日、振とうし、前培
養とした。500ml 容積の三角フラスコに、M培地170ml
、シクロヘキサノール0.1% (V/V)添加し、生育した前
培養液を1%植菌し、30℃で振とう培養を行った。経時
的にサンプリングし、適宜希釈し、菌体濃度を分光光度
計を用いて、吸収波長600nm の吸光度(OD600)として測
定した。
Embodiment 5 FIG. Cultured in cyclohexanol
Decomposition of Trichlorethylene in Liquid Using Microorganisms 20 ml of M medium and 0.1% (V / V) of cyclohexanol were added to a 50-ml tube, and FEZ4B strain grown on an M medium plate containing cyclohexanol as the sole carbon source One platinum loop of colony 1 was picked, shaken at 30 ° C. for 1 day, and precultured. In a 500 ml Erlenmeyer flask, add 170 ml of M medium
, 0.1% (V / V) of cyclohexanol, 1% of the grown preculture was inoculated, and shaking culture was performed at 30 ° C. Samples were taken over time, diluted appropriately, and the bacterial cell concentration was measured as an absorbance (OD 600 ) at an absorption wavelength of 600 nm using a spectrophotometer.

【0033】活性測定は、以下の様にして行った。経時
的にサンプリングし、菌体懸濁液から遠心分離にて菌体
を回収し、培養液と等量のリン酸バッファー(10mM KH2
PO4-NaOH pH7.0)で洗浄し、リン酸バッファーにOD600=
0.1 となるように再懸濁した。20ml容量のバイアル瓶
に懸濁液3mlおよび最終トリクロロエチレン濃度30pp
m となるように添加し、30℃、24時間振とう培養した。
培養後、気相中の残存トリクロロエチレンをガスクロマ
トグラフィーで測定した。活性の測定は、同様に調製し
た菌体懸濁液を用いて3連で行った。その結果、30時
間で定常期に達した。培養24時間後の対数増殖後期に
は30%程度の分解活性が認められた。
The activity was measured as follows. The cells were sampled over time, and the cells were collected from the cell suspension by centrifugation. The phosphate buffer (10 mM KH 2
Wash with PO 4 -NaOH pH7.0) and add OD 600 =
Resuspended to 0.1. 3 ml suspension and 20 pp final trichlorethylene concentration in a 20 ml vial
m, and cultured with shaking at 30 ° C. for 24 hours.
After the culture, the residual trichlorethylene in the gas phase was measured by gas chromatography. The measurement of the activity was performed in triplicate using the cell suspension similarly prepared. As a result, the stationary phase was reached in 30 hours. Degradation activity of about 30% was observed in the late logarithmic phase after 24 hours of culture.

【0034】実施例6シクロヘキサノンで培養した菌
体を用いた液体中のトリクロロエチレンの分解 50ml容積のチューブにM培地20ml、シクロヘキサノ
ン0.1% (V/V)添加し、シクロヘキサノンを唯一の炭素源
として含むM培地プレートに生育したFEZ4B 株のコロニ
ー1白金耳を釣菌し、30℃で1日、振とうし、前培養
とした。500ml容積の三角フラスコに、M培地170ml 、
シクロヘキサノン0.1% (V/V)添加し、生育した前培養液
を1%植菌し、30℃で振とう培養を行った。経時的に
サンプリングし、適宜希釈し、菌体濃度を分光光度計を
用いて、吸収波長600nm の吸光度(OD600)として測定し
た。
Embodiment 6 FIG. Bacteria cultured in cyclohexanone
Decomposition of Trichlorethylene in Liquid Using Liquid Body 20 ml of M medium and 0.1% (V / V) of cyclohexanone were added to a 50-ml tube, and a colony of platinum 1 of FEZ4B strain grown on an M medium plate containing cyclohexanone as a sole carbon source Ears were picked, shaken at 30 ° C. for 1 day, and precultured. In a 500 ml Erlenmeyer flask, 170 ml of M medium,
0.1% (V / V) of cyclohexanone was added, and 1% of the grown preculture was inoculated and shake-cultured at 30 ° C. Samples were taken over time, diluted appropriately, and the bacterial cell concentration was measured as an absorbance (OD 600 ) at an absorption wavelength of 600 nm using a spectrophotometer.

【0035】活性測定は、以下の様にして行った。経時
的にサンプリングし、菌体懸濁液から遠心分離にて菌体
を回収し、培養液と等量のリン酸バッファー(10mM KH2
PO4-NaOH pH7.0)で洗浄し、リン酸バッファーにOD600=
0.1 となるように再懸濁した。20ml容量のバイアル瓶
に懸濁液3mlおよび最終トリクロロエチレン濃度30pp
m となるように添加し、30℃、24時間振とう培養した。
培養後、気相中の残存トリクロロエチレンをガスクロマ
トグラフィーで測定した。活性の測定は、同様に調製し
た菌体懸濁液を用いて3連で行った。その結果、24時
間で定常期に達した。この時の菌体濁度は、OD600=4.5
と非常に良好な生育を示した。培養26時間後には25
%程度の分解活性が認められた。
The activity was measured as follows. Sampling was performed over time, the cells were collected from the cell suspension by centrifugation, and a phosphate buffer (10 mM KH 2
Wash with PO 4 -NaOH pH 7.0) and add OD 600 =
Resuspended to 0.1. 3 ml of the suspension and a final trichlorethylene concentration of 30 pp in a 20 ml vial
m, and cultured with shaking at 30 ° C. for 24 hours.
After the culture, the residual trichlorethylene in the gas phase was measured by gas chromatography. The activity was measured in triplicate using the cell suspension similarly prepared. As a result, the stationary phase was reached in 24 hours. At this time, the cell turbidity was OD 600 = 4.5
And showed very good growth. 25 hours after culture for 26 hours
% Decomposition activity was observed.

【0036】[0036]

【配列表】 <110> Toyota Jidosha Kabushiki Kaisha <120> Microganism which decomposes halogenated hydrocanbons and environmental cleaning method using the same <130> 994363 <160> 3 <210> 1 <211> 305 <212> DNA <213> Ralstonia sp. <223> Nucleotide sequence of 16SrRHA gene of Ralstonia sp. <400> 1 gaccgtaagg cctcgcgcga taggagcggc cgatgtctga ttagctagtt ggtggggtaa 60 aggcccacca aggcgacgat cagtagctgg tctgagagga cgatcagcca cactgggact 120 gagacacggc ccagactcnt acgggaggca gcagtgggga attttggaca atgggggcaa 180 ccctgatcca gcaatgccgc gtgtgtgaag aaggccttcg ggttgtaaag cacttttgtc 240 cggaaagaaa tcccctgctc taatacagcg gggggatgac ggtaccggaa gaataagcac 300 cggct 305[Sequence List] <110> Toyota Jidosha Kabushiki Kaisha <120> Microganism which decomposes halogenated hydrocanbons and environmental cleaning method using the same <130> 994363 <160> 3 <210> 1 <211> 305 <212> DNA <213> Ralstonia sp. <223> Nucleotide sequence of 16SrRHA gene of Ralstonia sp. <400> 1 gaccgtaagg cctcgcgcga taggagcggc cgatgtctga ttagctagtt ggtggggtaa 60 aggcccacca aggcgacgat cagtagctgg tctgagagga cgatcagcca cactgggact 120 gagacacggc ccagactcnt acgggaggca gcagtgggga attttggaca atgggggcaa 180 ccctgatcca gcaatgccgc gtgtgtgaag aaggccttcg ggttgtaaag cacttttgtc 240 cggaaagaaa tcccctgctc taatacagcg gggggatgac ggtaccggaa gaataagcac 300 cggct 305

【0037】 <210> 2 <211> 298 <212> DNA <213> Ralstonia basilensis <223> Nucleotide sequence of S16rRHA gene of Ralstonia basilensis <400> 2 gaccgtaagg cctcgcgcga taggagcggc cgatgtctga ttagctagtt ggtggggtaa 60 aggcccacca aggcgacgat cagtagctgg tctgagagga cgatcagcca cactgggact 120 gagacacggc ccagactcct acgggaggca gcagtgggga attttggaca atgggggcaa 180 ccctgatcca gcaatgccgc ttgtgtgaag aaggccttcg ggttgtaaag cacttttgtc 240 cggaaagaaa tcccttgccc taatacggcg gggggatgac ggtaccggaa gaataagc 298<210> 2 <211> 298 <212> DNA <213> Ralstonia basilensis <223> Nucleotide sequence of S16rRHA gene of Ralstonia basilensis <400> ccagactcct acgggaggca gcagtgggga attttggaca atgggggcaa 180 ccctgatcca gcaatgccgc ttgtgtgaag aaggccttcg ggttgtaaag cacttttgtc 240 cggaaagaaa tcccttgccc taatacggcg gggggatgacggtag 298

【0038】 <210> 3 <211> 305 <212> DNA <213> Ralstonia eutropha <223> Nucleotide sequence of 16SrRNA of Ralstonia eutropha <400> 3 gaccgtaagg cctcgcgcaa taggagcggc cgatgtctga ttagctagtt ggtggggtaa 60 aggcccacca aggcgacgat cagtagctgg tctgagagga cgatcagcca cactgggact 120 gagacacggc ccagactcct acgggaggca gcagtgggga attttggaca atgggggcaa 180 ccctgatcca gcaatgccgc gtgtgtgaag aaggccttcg ggttgtaaag cacttttgtc 240 cggaaagaaa tggctctggc taatacctgg ggtcgatgac ggtaccggaa gaataagcac 300 cggct 305<210> 3 <211> 305 <212> DNA <213> Ralstonia eutropha <223> Nucleotide sequence of 16SrRNA of Ralstonia eutropha <400> 3 gaccgtaagg cctcgcgcaa taggagcggccgatgtctga ttagcgg gaggggcccag taggtgcgag cagat caggcgcccatc gagggccacact 120 acgggaggca gcagtgggga attttggaca atgggggcaa 180 ccctgatcca gcaatgccgc gtgtgtgaag aaggccttcg ggttgtaaag cacttttgtc 240 cggaaagaaa tggctctggc taatacctgg ggtcgatgac ggtaccggaa gaataagcac 300

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

【図1】図1は、シクロヘキサノンにより活性化した各
種菌株によるトリクロロエタンの分解能を示すグラフで
ある。M07 株は公知株であり、その他は本発明において
単離した株である。
FIG. 1 is a graph showing the resolution of trichloroethane by various strains activated by cyclohexanone. The M07 strain is a known strain, and the others are isolated in the present invention.

【図2】図2は、本発明のFEZ4B 株の16SrRHA 遺伝子の
塩基配列を示す図である。
FIG. 2 is a diagram showing the nucleotide sequence of the 16SrRHA gene of the FEZ4B strain of the present invention.

【図3】図3は、本発明のFEZ4B 株の16SrRHA 遺伝子の
塩基配列と、類縁菌ラルストニア・バシレンシス(Rals
tonia basilensis)の16SrRNA 遺伝子の塩基配列を比較
した図である。Identities=293/298(98%) ;Positives=2
93/298(98%) 。
FIG. 3 shows the nucleotide sequence of the 16SrRHA gene of the FEZ4B strain of the present invention and the relative bacterium Ralstonia basilensis (Rals).
FIG. 3 is a diagram comparing the nucleotide sequences of 16S rRNA genes of C. tonia basilensis) . Identities = 293/298 (98%); Positives = 2
93/298 (98%).

【図4】図4は、本発明のFEZ4B 株の16SrRHA 遺伝子の
塩基配列と、類縁菌ラルストニア・ユートロパ(Ralsto
nia eutropha)の16SrRHA 遺伝子の塩基配列比較した図
である。Identities=294/306(96%) ;Positives=294/306
(96%) ;Gaps=2/306(0%)。
FIG. 4 shows the nucleotide sequence of the 16SrRHA gene of the FEZ4B strain of the present invention and the relative fungus Ralstonia eutropa.
1 is a diagram comparing the nucleotide sequences of the 16SrRHA gene of S. nia eutropha) . Identities = 294/306 (96%); Positives = 294/306
(96%); Gaps = 2/306 (0%).

【図5】図5は、本発明のFEZ4B 株をシクロヘキサノー
ルの存在下で培養してトリクロロエチレンを分解させた
場合の分解率を示すグラフである。
FIG. 5 is a graph showing the degradation rate when the FEZ4B strain of the present invention was cultured in the presence of cyclohexanol to degrade trichlorethylene.

【図6】図6は、本発明のFEZ4B 株をシクロヘキサノン
の存在下で培養してトリクロロエチレンを分解させた場
合の分解率を示すグラフである。
FIG. 6 is a graph showing the degradation rate when the FEZ4B strain of the present invention was cultured in the presence of cyclohexanone to decompose trichlorethylene.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI テーマコート゛(参考) C02F 3/34 C12N 1/02 C12N 1/02 (C12N 1/20 //(C12N 1/20 C12R 1:01) C12R 1:01) (C12N 1/02 (C12N 1/02 C12R 1:01) C12R 1:01) B09B 3/00 ZABE Fターム(参考) 2E191 BA15 BB01 BD20 4B065 AA01X AC12 AC20 BA23 BB01 BB03 BB06 BC03 BC26 CA56 4D004 AA41 AB06 CA18 CC07 4D040 DD01 DD11 ──────────────────────────────────────────────────続 き Continued on the front page (51) Int.Cl. 7 Identification symbol FI theme coat ゛ (Reference) C02F 3/34 C12N 1/02 C12N 1/20 (C12N 1/20 // (C12N 1/20 C12R 1: 01) C12R 1:01) (C12N 1/02 (C12N 1/02 C12R 1:01) C12R 1:01) B09B 3/00 ZABE F term (reference) 2E191 BA15 BB01 BD20 4B065 AA01X AC12 AC20 BA23 BB01 BB03 BB06 BC03 BC26 CA56 4D004 AA41 AB06 CA18 CC07 4D040 DD01 DD11

Claims (10)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 ラルストニア(Ralstonia)属に属し、ハ
ロゲン置換炭化水素分解能を有する菌株FEZ4B(FERM P-1
8190)。
1. A strain FEZ4B (FERM P-1 ) belonging to the genus Ralstonia and having the ability to degrade halogen-substituted hydrocarbons.
8190).
【請求項2】 ハロゲン置換炭化水素により汚染された
環境に、シクロヘキサノールもしくはシクロヘキサノン
又はその両者と、ラルストニア(Ralstonia)属に属しハ
ロゲン置換炭化水素分解能を有する微生物とを添加する
ことを特徴とする、環境浄化方法。
2. A method comprising adding cyclohexanol or cyclohexanone or both thereof and a microorganism belonging to the genus Ralstonia and having the ability to degrade a halogen-substituted hydrocarbon to an environment contaminated with the halogen-substituted hydrocarbon, Environmental purification method.
【請求項3】 ハロゲン置換炭化水素により汚染された
環境に、シクロヘキサノールもしくはシクロヘキサノン
又はその両者の存在下で増殖させた、ラルストニア(Ra
lstonia)属に属しハロゲン置換炭化水素分解能を有する
微生物を添加することを特徴とする、環境浄化方法。
3. Ralstonia (Ra) grown in an environment contaminated with halogen-substituted hydrocarbons in the presence of cyclohexanol and / or cyclohexanone.
lstonia), which comprises adding a microorganism having the ability to degrade a halogen-substituted hydrocarbon.
【請求項4】 前記ハロゲン置換炭化水素がトリクロロ
エチレンである、請求項2又は3に記載の方法。
4. The method according to claim 2, wherein the halogen-substituted hydrocarbon is trichloroethylene.
【請求項5】 シクロヘキサノンを有効成分とする、ハ
ロゲン置換炭化水素分解菌の活性化剤。
5. An activator for halogen-substituted hydrocarbon-decomposing bacteria comprising cyclohexanone as an active ingredient.
【請求項6】 前記ハロゲン置換炭化水素分解菌が、ラ
ルストニア (Ralstonia)属に属する微生物である、請求
項5に記載の活性化剤。
6. The activator according to claim 5, wherein the halogen-substituted hydrocarbon-degrading bacterium is a microorganism belonging to the genus Ralstonia.
【請求項7】 前記ハロゲン置換炭化水素がトリクロロ
エチレンである、請求項5又は6に記載の活性化剤。
7. The activator according to claim 5, wherein the halogen-substituted hydrocarbon is trichloroethylene.
【請求項8】 シクロヘキサノンにより活性化され得る
ハロゲン置換炭化水素分解菌の単離又は選択方法におい
て、 (1)微生物分離源試料、ハロゲン置換炭化水素及びシ
クロヘキサノールを含む培地をインキュベートして、添
加したハロゲン置換炭化水素が減少している培地を選択
する工程、並びに(2)前記工程1において選択された
培地中に存在した微生物を、ハロゲン置換炭化水素及び
シクロヘキサノンを含有する培地中で培養して、ハロゲ
ン置換炭化水素分解能を有する微生物を選択する工程、
を含んで成る方法。
8. A method for isolating or selecting a halogen-substituted hydrocarbon-degrading bacterium that can be activated by cyclohexanone, comprising the steps of: (1) incubating a medium containing a microorganism separation source sample, a halogen-substituted hydrocarbon, and cyclohexanol; Selecting a medium in which the halogen-substituted hydrocarbon is reduced, and (2) culturing the microorganisms present in the medium selected in the step 1 in a medium containing the halogen-substituted hydrocarbon and cyclohexanone; A step of selecting a microorganism having a halogen-substituted hydrocarbon resolution,
A method comprising:
【請求項9】 シクロヘキサノンにより活性化され得る
ハロゲン置換炭化水素分解菌の単離又は選択方法におい
て、 (1)該微生物を含有すると予想される試料、ハロゲン
置換炭化水素及びシクロヘキサノンを含む培地をインキ
ュベートし、添加したハロゲン置換炭化水素が減少した
培地を選択し、そして(2)前記工程(1)において選
択された培地から、シクロヘキサノンにより活性化され
得るハロゲン置換炭化水素分解菌を単離する、ことを含
んで成る方法。
9. A method for isolating or selecting a halogen-substituted hydrocarbon-degrading bacterium which can be activated by cyclohexanone, comprising: (1) incubating a sample expected to contain the microorganism, a medium containing a halogen-substituted hydrocarbon and cyclohexanone; Selecting a medium in which the added halogen-substituted hydrocarbon has been reduced, and (2) isolating a halogen-substituted hydrocarbon-degrading bacterium that can be activated by cyclohexanone from the medium selected in step (1). Comprising a method.
【請求項10】 前記ハロゲン置換炭化水素がトリクロ
ロエチレンである、請求項8又は9に記載の方法。
10. The method according to claim 8, wherein the halogen-substituted hydrocarbon is trichloroethylene.
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