JP2002186486A

JP2002186486A - Ｂ細胞上のｃｄ２８レセプターに対するリガンドおよび該リガンドを用いた細胞間相互作用の調節方法

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Publication number: JP2002186486A
Application number: JP2001278438A
Authority: JP
Inventors: Peter S Linsley; ピーターエスリンズリー; Jeffrey A Ledbetter; ジェフリーエイレドベター; Nitin K Damle; ナイティンケイダムル; William Brady; ウィリアムブレディー
Original assignee: Bristol Myers Squibb Co
Current assignee: Bristol Myers Squibb Co
Priority date: 1990-07-02
Filing date: 2001-09-13
Publication date: 2002-07-02
Also published as: CA2086325C; EP0537293A4; CA2086325A1; EP0537293A1; WO1992000092A1; JPH06508501A

Abstract

(57)【要約】【課題】 CD28ポジティブＴ細胞応答、およびＴ
細胞により媒介される免疫応答を調節する方法、及び細
胞間付着を媒介する細胞レセプタと反応性のリガンドを
検出するアッセイ法を提供する。【解決手段】 B7抗原がＴ細胞上のCD28レセプタ
と反応性のリガンドであることを見出した。B7抗原、そ
のフラグメントおよび誘導体、およびCD28レセプタ、そ
のフラグメントおよび誘導体並びにB7抗原および／また
はCD28レセプタと反応性の抗体および他の分子を使用し
て、CD28ポジティブＴ細胞応答、およびＴ細胞により媒
介される免疫応答を調節する方法を提供する。本発明
は、また細胞間付着を媒介する細胞レセプタと反応性の
リガンドを検出するアッセイ法をも包含する。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】

【発明の属する技術分野】関連分野本発明は、ＣＤ２８レセプターおよびそのリガンドであ
るＢ７抗原間の相互作用の同定、および該抗原、そのフ
ラグメント、およびその誘導体を用いた細胞間相互作用
の調節方法に関する。

【０００２】

【従来の技術】関連技術Ｔリンパ球（“Ｔ細胞”）免疫応答は、細胞−細胞間、
特に、Ｔ細胞およびＢ細胞間の相互作用（スプリンガー
等、Ａ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．５：２２３−２５２
（１９８７））、および可溶性免疫仲介物（サイトカイ
ンまたはリンホカイン)(ディナレロおよびミア、Ｎｅｗ
Ｅｎｇｌ．Ｊｏｕｒ．Ｍｅｄ．３１７：９４０−９４
５（１９８７））の生産を含む複雑な過程である。この
応答は、Ｔ細胞レセプター複合体（ウェイス等、Ａｎ
ｎ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．４：５９３−６１９（１
９８６））および他の“アクセサリー”表面分子（スプ
リンガー等、（１９８７）上述）を含む幾つかのＴ細胞
表面レセプターによって調節される。これらのアクセサ
リー分子の多くは本来存在する細胞表面分化（ＣＤ）抗
原であって、細胞表面でのモノクローナル抗体の反応性
で定義される、（マクミカエル編、“白血球分類 II
I”、オックスフォード大学出版、オックスフォード、
Ｎ．Ｙ．（１９８７））。

【０００３】このようなアクセサリー分子の１つに、殆
どの成熟ヒトＴ細胞に存在する（ダムレ等、Ｊ．Ｉｍｍ
ｕｎｏｌ．１３１：２２９６−２３００（１９８３））
免疫グロブリン・スーパーファミリー（アルフォおよび
シード、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳ
Ａ８４：８５７３−８５７７（１９８７））のホモ二
量体糖蛋白質の１つであるＣＤ２８抗原がある。最近の
実験結果で、この分子がＴ細胞レセプター複合体によっ
て開始される経路とは異なる別のＴ細胞活性化経路で機
能していることが示された（ジューン等、Ｍｏｌ．Ｃｅ
ｌｌ．Ｂｉｏｌ．７：４４７２−４４８１（１９８
７））。ＣＤ２８抗原と反応するモノクローナル抗体
（ｍＡｂｓ）は、種々のポリクローナル刺激によって開
始するＴ細胞応答を増加しうる（ジューン等、上述の総
説）。これらの刺激効果は、ｍＲＮＡ安定性の増加の結
果として（リンドステン等、（１９８９）上述）、ｍＡ
ｂ誘導のサイトカイン生産に由来する（トンプソン等、
Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．,Ｓｃｉ．ＵＳＡ８
６：１３３３−１３３７（１９８９）；リンドステン
等、Ｓｃｉｅｎｃｅ２４４：３３９−３４３（１９８
９））。また、抗−ＣＤ２８ｍＡｂは阻害効果も有す
る。即ち、これらは、自発的混合リンパ球反応（ダムレ
等、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ７
８：５０９６−６００１（１９８１））および抗原特異
的Ｔ細胞クローンの活性化（レスラウア等、Ｅｕｒ．
Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１６：１２８９−１２９６（１９
８６））を阻害しうる。

【０００４】ＣＤ２８抗原のインビボでの機能は分かっ
ていないが、その構造は（アルフォおよびシード、（１
９８７）、上述）、免疫グロブリン・スーパーファミリ
ーの他のメンバーと同様に（ウイリアムスおよびバーク
レー、Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．６：３８１−
４０５（１９８８）、レセプターとして機能することを
示している。ＣＤ２８抗原はサイトカインレセプターと
して機能することが想像されるが、他のリンホカインま
たはサイトカインレセプターとのホモロジーを有してい
ない事から、そのようなことは考えにくい（アルフォお
よびシード、（１９８７）上述）。

【０００５】また、ＣＤ２８は、細胞−細胞接触（“細
胞間粘着”）を仲介するレセプターでもありうる。リン
パ球アクセサリー分子が関連する抗原非依存的細胞間相
互作用は、免疫応答において基本的なものである（スプ
リンガー等、(１９８７)上述)。例えば、広範囲に発現さ
れる糖蛋白質であるリガンドＬＦＡ−３へのＴ細胞関連
タンパク質であるＣＤ２の結合（ショーおよびシムズの
総説、ＣｕｒｒｅｎｔＯｐｉｎｉｏｎｉｎＩｍｍｕｎ
ｏｌｏｇｙ、カインドおよびロング編、１：９２−９７
（１９８８））は、抗原−特異的Ｔ細胞の活性化を至適
化する上で重要である（モインジョン等、Ｎａｔｕｒｅ
３３９：３１４（１９８８））。他の重要な粘着シス
テムは、リンパ球、マクロファージおよび顆粒球に存在
する糖蛋白質ＬＦＡ−１のリガンドＩＣＡＭ−１（マク
ゴバ等、Ｎａｔｕｒｅ３３１：８６−８８（１９８
８))およびＩＣＡＭ−２（ストーントン等、Ｎａｔｕｒ
ｅ３３９：６１−６４（１９８９））への結合に関連す
る（スプリンガー等、,（１９８７）上述；ショーおよ
びシムズ（１９８８）上述）。Ｔ細胞アクセサリー分子
ＣＤ８およびＣＤ４は、それぞれＭＨＣクラスＩ（ノー
メント等、Ｎａｔｕｒｅ３３６：７９−８１（１９８
８））およびクラスII（ドイルおよびストロミンガー、
Ｎａｔｕｒｅ３３０：２５６−２５９（１９８７））
との相互作用によりＴ細胞粘着を強化する。リンパ球移
動のコントロールには“ホーミング・レセプター”が重
要である（ストールマン、Ｃｅｌｌ５６：９０７−９
１０（１９８９））。糖蛋白質ＶＬＡは、細胞外マトリ
クス成分への粘着に必要なリンパ球の機能を仲介すると
考えられているインテグリンである（ヘムラー、,Ｉｍ
ｍｕｎｏｌｏｇｙＴｏｄａｙ９：１０９−１１３
（１９８８))。ＣＤ２／ＬＦＡ−３、ＬＦＡ−１／ＩＣ
ＡＭ−１およびＩＣＡＭ−２、およびＶＬＡ粘着システ
ムは、広範囲な細胞型に分布している（スプリンガー
等、（１９８７）上述；ショーおよびシムズ、（１９８
８）上述およびヘムラー、（１９８８）上述）。

【０００６】インテグリンによって仲介される細胞間粘
着相互作用は、他の細胞間粘着相互作用をマスクしうる
強力な相互作用である。例えば、インテグリンによって
仲介される相互作用は、二価イオンを必要とする（キシ
モト等、Ａｄｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．４６：１４９−１８
２（１９８９））。これらの相互作用は、他の二価イオ
ン非依存的細胞間粘着相互作用をマスクしうる。従っ
て、この相互作用は、インテグリンが仲介しないリガン
ド／レセプター相互作用を同定する検定法の開発に有用
である。

【０００７】Ｔ細胞およびＢ細胞等のその他の細胞との
相互作用は、免疫応答において重要である。Ｔ細胞およ
びＢ細胞に存在する多くの粘着分子の量が免疫応答の際
に増加する（スプリンガー等、（１９８７）上述；ショ
ーおよびシムズ、(１９８８）上述；ヘムラー、(１９８
８)上述）。これらの分子の増加で、刺激化抗原−特異
的Ｔ細胞増殖に関し、休止Ｂ細胞よりも活性化Ｂ細胞の
方が有効である理由を説明しうる(カイウチ等、Ｊ．Ｉ
ｍｍｕｎｏｌ．１３１：１０９−１１４(１９８３）；
クレイガー等、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３５：２９３７
−２９４５(１９８５）；マッケンジー、Ｊ．Ｉｍｍｕ
ｎｏｌ．１４１：２９０７−２９１１(１９８８）；お
よびホーリロウィクおよびウナニュー、Ｊ．Ｉｍｍｕｎ
ｏｌ．１４１：４０８３−４０８８（１９８８））。抗
−ＣＤ２８ｍＡｂが混合リンパ球反応,（ＭＬＲ）を阻
害するという事実は、ＣＤ２８抗原も粘着分子であるこ
とを示している。

【０００８】Ｂリンパ球の至適活性化、およびそれらの
免疫グロブリン分泌細胞への分化は、主要組織適合性複
合体（ＭＨＣ）クラスII抗原（Ａｇ）−反応性ＣＤ４ポ
ジティブＴヘルパー（ＣＤ４⁺Ｔ_h）細胞のヘルパー効果
に依存し、かつ直接的（コグネート）Ｔ_h−Ｂ細胞細胞
間接触仲介の相互作用および抗原非特異的サイトカイン
（ノン・コグネート活性化；例えば、ノエルおよびスノ
ー、Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｔｏｄａｙ１１：３６１（１９
９０））の両方により仲介される。Ｔ_h由来のサイトカ
インはＢ細胞を刺激しうるが（モラー、Ｉｍｍｕｎｏ
ｌ．Ｒｅｖ．９９：１（１９８７））、これらの合成お
よび指向的エクソサイトーシスは、抗原刺激化Ｔ_h細胞
および抗原提示Ｂ細胞間のコグネート相互作用を介して
開始および維持される（モラー、上述）。Ｔ_h−Ｂ相互
作用の成功には、ＣＤ２（ＬＦＡ−２)；ＣＤ５８（Ｌ
ＦＡ−３)、ＣＤ４：ＭＨＣクラスII、ＣＤ１１ａ／Ｃ
Ｄ１８（ＬＦＡ−１）：ＣＤ５４（ＩＣＡＭ−１）を含
む、Ｔ_hおよびＢ細胞表面の共刺激性アクセサリー／粘
着分子のトランスメンブレン・レセプター／リガンド・
ペアの関与が必要である。

【０００９】Ｔ_h：Ｂコグネート相互作用の際に両Ｔ_hお
よびＢ細胞は相互刺激するが、それらの機能的分化は、
Ｔ_h細胞によるＩＬ−２、ＩＬ−４およびＩＬ−６等の
増殖および分化誘導サイトカインの提供に依存している
（ノエル、上述、クプファ等、上述、ブライアン、上述
およびモラー、上述）。クローン化したＴ_h：Ｂ細胞の
相互作用に関するプー等（Ｎａｔｕｒｅ３３２：３７
８（１９８８））の研究は、Ｔ細胞レセプター複合体
（ＴｃＲ）とＢ細胞の名目上のＡｇ−ＭＨＣクラスIIと
の相互作用がＴ_hおよびＢ細胞接触領域においてＴ_h細胞
由来のサイトカインの集中的放出を起こすことを示した
（指向的エクソサイトーシス）。この事は、Ｂ細胞提示
抗原のみがＴ_h細胞を活性化することを保証し、かつ無
関係なＢ細胞の活性化を回避している。

【００１０】以前は、Ｂリンパ球の活性化に２つのシグ
ナルが必要であると提唱されていたが（ブレッシャーお
よびコーン、Ｓｃｉｅｎｃｅ１６９：１０４２−１０
４９（１９７０））、現在は全てのリンパ球が、その至
適活性化のための２つのシグナル、抗原特異的またはク
ローナルシグナル、および第２の抗原非特異的シグナル
を必要としていると考えられている（ジェーンウェイ、
上述）。Ｔヘルパー細胞（Ｔ_h）の抗原応答に必要なシ
グナルは、抗原提示細胞（ＡＰＣ）によって提供され
る。第１のシグナルは、Ｔ細胞レセプター複合体（ウェ
イス、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．８６：１０１５
（１９９０））とＡＰＣ上のクラスII主要組織適合性複
合体（ＭＨＣ）分子中に提示されている抗原との相互作
用により開始する（アレン、Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｔｏｄａ
ｙ８：２７０（１９８７））。この抗原特異的シグナ
ルだけでは十分な応答を起こすには不十分であり、実際
に第２のシグナルが無いと、クローンの不活性化または
アネルギーを起こしてしまう（シュワルツ、Ｓｃｉｅｎ
ｃｅ２４８：１３４９（１９９０))。ＭＨＣによって
提供される第２の“共刺激性”シグナルの必要性は、多
くの実験システムで示されてきた（シュワルツ、上述；
ウェーバーおよびウナニュー、Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｔｏｄ
ａｙ１１：４９（１９９０））。これらの第２シグナ
ルの分子的特性は完全に理解されていないが、特定の場
合に限り、インターロイキン（ＩＬ）−１等の可溶性分
子およびメンブレンレセプターの両方が、共刺激性シグ
ナルを提供しうる細胞間粘着に関与していることが明ら
かになっている（スプリンガー、Ｎａｔｕｒｅ３４
６：４２５（１９９０））。

【００１１】フリーマン等（Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４
３（８）：２７１４−２７２２（１９８９）は、ｍＡｂ
Ｂ７（フリーマン等、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３８：
３２６０（１９８７））は、認識されるＢ細胞活性化抗
原をコードするｃＤＮＡクローンを単離し、シーケンシ
ングした。このｃＤＮＡでトランスフェクトしたＣＯＳ
細胞は、ラベル化したｍＡｂＢ７およびｍＡｂＢＢ
−１の両方で染色されることが示された（クラーク等、
ＨｕｍａｎＩｍｍｕｎｏｌ．１６：１００−１１３
（１９８６）；ヨコチ等、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１２
８：８２３(１９８１)；フリーマン等、(１９８９)上
述；およびフリーマン等、(１９８７）上述））。Ｂ細
胞活性化抗原の発現は、他の細胞系列にも検出された。
例えば、フリーマン等（１９８９）の研究は、単球がＢ
７に関する低レベルのｍＲＮＡを発現していることを示
した。

【００１２】免疫グロブリン遺伝子スーパーファミリー
における細胞表面糖蛋白質の可溶性誘導体の発現は、Ｈ
ＩＶ−１に対するレセプターであるＣＤ４に関し、キャ
ポン等、Ｎａｔｕｒｅ３３７：５２５−５３１（１９
８９）に報告されているように抗体ドメイン（ヒト免疫
グロブリンＣガンマ１）に融合したＣＤ４レセプターの
細胞外ドメインの一部をコードするＤＮＡ配列を含むハ
イブリッド融合分子を用いて行われた。

【００１３】ＣＤ２８抗原はレセプターの機能的および
構造的特性を有しているが、現在まで、この分子に対す
る天然のリガンドは同定されていない。ＣＤ２８抗原お
よび他のレセプターと結合するリガンドが同定されれば
有用であるし、また、病気を治療する上で、Ｔ細胞およ
びＢ細胞相互作用の様な細胞応答を調節するのにこのよ
うなリガンドを使用することは有効である。

【００１４】

【発明が解決しようとする課題及び課題を解決するため
の手段】発明の概要本発明は、ＣＤ２８レセプターにより認識されるリガン
ドであるＢ７抗原を同定する。該Ｂ７抗原、そのフラグ
メント、またはその誘導体は、ＣＤ２８ポジティブＴ細
胞と反応し、Ｔ細胞と他の細胞との相互作用を調節す
る。あるいは、該ＣＤ２８レセプター、そのフラグメン
ト又はその誘導体をＢ７抗原と反応させてＢ７ポジティ
ブ細胞とＴ細胞の相互作用を調節する。さらに、Ｂ７抗
原または、ＣＤ２８レセプターと反応する抗体または他
の分子を、これらの分子と会合する細胞の相互作用を阻
害するのに使用し、それによりＴ細胞応答の調節を行う
ことが出来る。

【００１５】本発明の好ましい態様は、ＣＤ２８ポジテ
ィブＴ細胞をＢ７抗原、そのフラグメント、またはその
誘導体と反応させ、Ｔ細胞と他の細胞との機能的相互作
用を阻害することにより、ＣＤ２８特異的Ｔ細胞の相互
作用を調節する方法を提供する。さらに、ＣＤ２８に対
するリガンドとＴ細胞とを反応させる方法には、抗ＣＤ
２、および／または抗ＣＤ３モノクローナル抗体等の抗
ＣＤモノクローナル抗体の使用が含まれる。

【００１６】別の態様において、本発明は、ＣＤ２８ポ
ジティブＴ細胞とＢ７抗原の細胞外ドメインに対応する
アミノ酸配列をコードするＤＮＡ配列の少なくとも一部
を含むフラグメントを作用させることによる免疫応答の
調節方法を提供する。さらに、Ｂ７抗原の誘導体であっ
て、Ｂ７抗原の細胞外ドメインの少なくとも一部と、,
Ｂ７抗原の可溶性、結合アフィニティー、および／また
は価数を変化させるヒト免疫グロブリンＣガンマ１等の
別のタンパク質を含む融合タンパク質構築物を免疫応答
の調節に使用する。例えば、好ましい態様おいては、Ｂ
７抗原の細胞外ドメインに対応する配列の部位約１乃至
約２１５のアミノ酸残基をコードするＤＮＡをヒトＩｇ
Ｃγ１のヒンジ、ＣＨ２およびＣＨ３領域に対応する
配列のアミノ酸残基をコードするＤＮＡに結合して、Ｂ
７Ｉｇ融合タンパク質をコードするＤＮＡ融合物を調製
している。

【００１７】別の好ましい態様においては、ＣＤ２８レ
セプターの細胞外ドメインに対応する配列の部位約１乃
至約１３４のアミノ酸をコードするＤＮＡを、ヒトＩｇ
Ｃγ１のヒンジ、ＣＨ２およびＣＨ３領域に対応する配
列のアミノ酸残基をコードするＤＮＡと結合し、ＣＤ２
８Ｉｇ融合タンパク質を調製している。また、ＣＤ２８
レセプターのフラグメントまたは誘導体を、Ｂ細胞と反
応してＢ７抗原と結合させ、Ｔ細胞／Ｂ細胞間相互作用
を調節することが出来る。さらに、Ｔ細胞相互作用を調
節する方法は、サイトカインを添加して補ってもよい。

【００１８】別の態様において、本発明は、Ｂ７Ｉｇ融
合タンパク質を含むＢ７抗原を投与し、ＣＤ２８レセプ
ターに結合するようにＴ細胞と反応させることによりＴ
細胞によって仲介される免疫病を治療する方法を提供す
る。また、別の態様において、対宿主移植片病における
Ｔ細胞増殖の阻害方法であって、ＣＤ２８ポジティブＴ
細胞を、例えば、Ｂ７Ｉｇ融合タンパク質等のＢ７抗原
と反応させてＣＤ２８レセプターに結合させ、かつ免疫
抑制物質を投与する方法を提供する。また、本発明は、
細胞間粘着、特に二価カチオン非依存的粘着を仲介する
標的レセプターと相互作用するリガンドを同定する細胞
粘着検定法を提供する。

【００１９】

【発明の実施の形態】発明の詳細な説明本発明がより完全に理解されることを目的として以下に
説明を行う。本発明は、ＣＤ２８抗原と反応するリガン
ド（以後“ＣＤ２８レセプター”と呼ぶ）の同定、およ
び該リガンド、そのフラグメントおよび融合タンパク質
を含むその誘導体を使用する方法の開発を目的とする。
また、本発明は、細胞表面レセプターに対するリガンド
を検出する細胞粘着検定法に関する。

【００２０】最近、フリーマン等（Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏ
ｌ．１４３(８)：２７１４−２７２２（１９８９））
は、モノクローナル抗体（ｍＡｂ）Ｂ７（フリードマン
等、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３９：３２６０（１９８
７））によって認識されるＢ細胞活性化抗原をコードす
るｃＤＮＡクローンの単離およびシーケンシングを行っ
た。このｃＤＮＡでトランスフェクトしたＣＯＳ細胞細
胞は、ｍＡｂＢ７およびｍＡｂＢＢ−１の両方で染
色されることが示された（クラーク等、ＨｕｍａｎＩｍ
ｍｕｎｏｌｏｇｙ１６：１００−１１３（１９８
６）、およびヨコチ等、(１９８１)上述；フリーマン等
(１９８９)上述；フリードマン等（１９８７）上述）。
ＣＤ２８に対するリガンドは、本明細書に示す実験によ
りフリーマン等により単離されたＢ７／ＢＢ−１である
ことが同定された(フリーマン等(１９８９）上述、およ
びフリードマン等（１９８７）上述、いずれも参考とし
て引用する）。便宜上、本明細書ではＢ７／ＢＢ−１抗
原と同定されたＣＤ２８に対するリガンドを“Ｂ７抗
原”と呼ぶ。

【００２１】本明細書で使用する“フラグメント”と
は、Ｂ７抗原またはＣＤ２８レセプターに対応するアミ
ノ酸配列の一部を意味する。例えば、本発明の方法で有
用なＢ７抗原のフラグメントは、Ｂ７抗原の細胞外部分
に対応するアミノ酸配列の一部を含むポリペプチド、す
なわち、フリーマン等（上述）により示されているＢ７
抗原に対応する配列の部位１乃至２１５のアミノ酸残基
をコードしているＤＮＡである。使用しうるＣＤ２８抗
原のフラグメントには、アルフォおよびシード、Ｐｒｏ
ｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８４：８５
７３−８５７７（１９８７）に示されているＣＤ２８レ
セプターに対応する配列の部位約１乃至約１３４のアミ
ノ酸残基を含むポリペプチドがある。

【００２２】本明細書で使用する“誘導体”には、Ｂ７
抗原およびＣＤ２８抗原に対応するアミノ酸配列の一部
を有するポリペプチドを含む融合タンパク質が含まれ
る。例えば、本発明の方法に有用なＢ７抗原の誘導体
は、Ｂ７抗原の細胞外ドメインおよびＢ７抗原の可溶
性、アフィニティーおよび／または価数（価数とは、分
子当たり使用可能な結合部位の数と定義する）を変化さ
せる免疫グロブリン不変部に対応するポリペプチドを含
むＢ７Ｉｇ融合タンパク質である。

【００２３】また、“誘導体”には、Ｂ７抗原またはＣ
Ｄ２８レセプターと反応するモノクローナル抗体または
そのフラグメント、および本発明のＢ７ＩｇおよびＣＤ
２８Ｉｇ融合タンパク質と反応する抗体が含まれる。

【００２４】本発明で使用するＢ７、および／またはそ
のフラグメント、またはその誘導体は、フリーマン等
（上述）により報告されているｃＤＮＡ配列に基づく従
来の分子生物学的技術を用いた組み換え体で生産しう
る。特に、Ｂ７抗原、またはそのフラグメント、または
その誘導体に対応するアミノ酸配列をコードするｃＤＮ
Ａ配列は、報告されている該抗原の配列に基づくプライ
マーを用いたポリメレース・チェーン・リアクション
（米国特許Ｎｏ．４,６８３,２０２参照）により合成し
うる（フリーマン等（上述））。ついで、これらのｃＤ
ＮＡ配列を真核または原核性発現ベクターに組み込み、
該ベクターを用いて適当な宿主細胞、例えばＣＯＳ細胞
またはＣＨＯ細胞によりＣＤ２８に対するリガンドを合
成しうる。また、ＣＤ２８レセプター、および／または
そのフラグメント、またはその誘導体も組み換え法を用
いて生産しうる。

【００２５】望ましい態様においては、部位約１乃至約
２１５のアミノ酸を含むＢ７抗原の細胞外ドメインに対
応するアミノ酸配列をコードするＤＮＡを、ＰＣＲを用
いてヒトＩｇＣγ１のヒンジ、ＣＨ２およびＣＨ３に
対応するアミノ酸配列をコードするＤＮＡに結合し、Ｂ
７Ｉｇ融合タンパク質を発現する構築物を生成する。こ
のＢ７Ｉｇ融合タンパク質に対応するアミノ酸配列をコ
ードするＤＮＡは、１９９１年３月３１日、ブダペスト
条約に基づきメリーランド、ロックビルのアメリカン・
タイプ・カルチャー・コレクション(ＡＴＣＣ)に受理番
号６８６２７で寄託されている。

【００２６】別の態様においては、部位約１乃至約１３
４のアミノ酸を含むＣＤ２８レセプターの細胞外ドメイ
ンに対応するアミノ酸配列をコードするＤＮＡを、ＰＣ
ＲによりヒトＩｇＣγ１のヒンジ、ＣＨ２およびＣＨ
３の領域に対応するアミノ酸配列をコードするＤＮＡに
結合し、ＣＤ２８Ｉｇ融合タンパク質を発現する構築物
を調製している。このＣＤ２８Ｉｇ融合タンパク質に対
応するアミノ酸配列をコードするＤＮＡは、１９９１年
３月３１日、ブダペスト協定に基づきメリーランド、ロ
ックビルのアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクシ
ョン（ＡＴＣＣ）に受理番号６８６２８で寄託されてい
る。

【００２７】Ｂ７抗原および可溶性Ｂ７ＩｇおよびＣＤ
２８Ｉｇ融合タンパク質に対応するアミノ酸配列をコー
ドするＤＮＡの組み込みおよび発現に関する技術、例え
ば、オリゴヌクレオチドの合成、ＰＣＲ、細胞のトラン
スホーメーション、ベクターの構築、発現システムなど
は、当分野で良く知られているものであり、当業者は特
定の条件や操作に関する標準的方法に精通している。し
かし、以下のパラグラフは簡便性や必要な修正に関する
事項を提供しており、ガイドラインとして使用すること
が出来る。

【００２８】レセプターおよび融合タンパク質のコード
配列のクローニングおよび発現アルフォおよびシード、
Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８４：
８５７３−８５７９（１９８７）（ＣＤ２８）およびフ
リーマン等、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４３：２７１４−
２７２２（１９８９）（Ｂ７）（いずれも参考として引
用する）に示されている方法を用いて、ＣＤ２８および
Ｂ７融合タンパク質を構築するためのＤＮＡを提供する
ために、ＣＤ２８およびＢ７タンパク質をコードするＤ
ＮＡを含むｃＤＮＡクローンを単離した。これとは別
に、標準的操作を用い、これらのタンパク質に関して報
告されている配列（アルフォおよびシード、およびフリ
ーマン等、上述）に基づいてＢ７抗原およびＣＤ２８レ
セプターを発現する細胞由来のＲＮＡからｃＤＮＡクロ
ーンを調製しうる。

【００２９】該ｃＤＮＡを、プライマーとしてＣＤ２８
の細胞外ドメインおよびＢ７タンパク質に対応する配列
をコードする合成オリゴヌクレオチドを用いたポリメレ
ース・チェーン・リアクション（“ＰＣＲ”)(ムリス
等、米国特許Ｎｏ．４，６８３，１９５および４，６８
３，２０２、およびムリスおよびファローナ、Ｍｅｔｈ
ｏｄｓＥｎｚｙｍｏｌ．１５４：３３５−３５０（１
９８７））で増幅する。ついでＰＣＲを用い、該フラグ
メントを、ヒト免疫グロブリンγ１不変部に対応するア
ミノ酸フラグメントをコードするＤＮＡ、即ちＢ７Ｉｇ
およびＣＤ２８Ｉｇ融合タンパク質を生成するためのＩ
ｇＣγ１のヒンジ、ＣＨ２およびＣＨ３領域をコード
する配列、およびＢ７またはＣＤ２８融合タンパク質に
対応する配列を含むクローニングおよび発現プラスミド
を生成するための発現プラスミドＤＮＡへのライゲーシ
ョンに適合させる。

【００３０】大量のクローン化ＤＮＡを生産するために
は、本発明の融合構築物に対応するアミノ酸配列をコー
ドするＤＮＡを含むベクターを、標準的操作を用いてバ
クテリア細胞系列ＭＣ１０６１/ｐ３等の適当な宿主細
胞にトランスホーメーションし、ついでコロニーを適当
なプラスミドに関してスクリーニングする。先に示した
方法で得られたクローンを適当な発現用の宿主細胞にト
ランスフェクトする。使用する宿主細胞に依存して、適
当な標準的操作でトランスフェクションを行う。例え
ば、哺乳類細胞へのトランスフェクションは、ＤＥＡＥ
−デキストラン法、ＣａＰＯ₄共沈殿法、リポフェクシ
ョン、エレクトロポレーション、またはプロトプラスト
融合法、および、リゾチーム融合または赤血球融合、ス
クレイピング、直接取り込み、浸透圧またはスクロース
ショック、直接的マイクロインジェクション、赤血球仲
介法、および／または宿主細胞への加電等による間接的
マイクロインジェクション等を含むその他の従来法を用
いて行う。細胞への遺伝情報の導入に関する他の操作が
開発されることは疑いの無いことから、トランスフェク
ションに関する上記のリストが全てを含んでいるとは考
えられない。

【００３１】ＣＤ２８ＩｇおよびＢ７Ｉｇ融合タンパク
質のクローニングおよび発現のための、ＣＤ２８および
Ｂ７に対応する配列をコードするｃＤＮＡを含む発現プ
ラスミドには、アルフォおよびシード、Ｐｒｏｃ．Ｎａ
ｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ（１９８７）上述
（ＣＤ２８）およびフリーマン等(１９８９)上述(Ｂ
７）（参考として引用する）に報告されているベクター
を修正したＯＭＣＥ２８およびＯＭＢ７が含まれる。Ｃ
Ｄ２８ＩｇおよびＢ７Ｉｇタンパク質発現用の望ましい
宿主細胞には、ＣＯＳ細胞およびＣＨＯ細胞がある。

【００３２】多細胞生物由来の真核性宿主細胞の培養に
よる発現が望ましい（組織培養、アカデミック・プレ
ス、クルツおよびパターソン編、（１９７３））。これ
らのシステムはイントロンをスプライシングする利点が
あり、従って、ゲノムフラグメントを直接発現するのに
使用しうる。有用な宿主細胞系列には、チャイニーズ・
ハムスター卵巣細胞（ＣＨＯ）、サル腎臓（ＣＯＳ細
胞）細胞、ＶＥＲＯ細胞およびＨｅＬａ細胞がある。本
発明においては、安定して融合構築物を発現する細胞系
列が望ましい。

【００３３】通常、このような細胞に適した発現ベクタ
ーには、例えば、ＣＭＶプロモーター（ＣＤＭ８ベクタ
ー）およびサル・ザルコーマ・ウイルス（ＡＳＶ）（π
ＬＮベクター）等の哺乳類細胞に適合したプロモーター
およびコントロール配列が含まれる。他の一般に使用さ
れるアーリーおよびレート・プロモーターには、シミア
ン・ウイルス４０（ＳＶ４０）（フィアス等、Ｎａｔｕ
ｒｅ２７３：１１３（１９７３))、またはポリオー
マ、アデノウイルス２、およびウシ・パピローマ・ウイ
ルス由来のウイルス・プロモーターがある。コントロー
ル可能なプロモーター、ｈＭＴＩＩ(カリン等、Ｎａｔ
ｕｒｅ２９９：７９７−８０２(１９８２)) も使用し
うる。哺乳類細胞宿主システムのトランスホーメーショ
ンに関する一般的特徴は、アクセル（１９８３年８月１
６日刊行の米国特許Ｎｏ．４,３９９,２１６）によって
報告されている。現在、発現に重要なのは“エンハンサ
ー”領域であると考えられている。一般に、これらの領
域は非コード領域中のプロモーター領域の上流または下
流に存在する。必要ならば、ウイルスから複製オリジン
を得ることが出来る。しかし、染色体への組み込みが真
核生物におけるＤＮＡ複製の一般的メカニズムである。

【００３４】ＤＮＡ構築物の発現に適した宿主細胞に
は、ＣＯＳ細胞またはＣＨＯ細胞などの真核細胞が含ま
れるが、他の真核微生物も宿主として使用しうる。サッ
カロミセスセレビシエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ
ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）、即ちベイカーズ・イースト
の実験室用菌株が最も使用されているが、シゾサッカロ
モセス・ポンベ(Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃ
ｅｓｐｏｍｂｅ)等のその他の株も使用しうる。例え
ば、ブローチ、Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚ．１０１：３０７(１
９８３)に報告されている２μ複製オリジン、または他
のイースト適合性複製オリジン（例えば、スチンクコー
ム等、Ｎａｔｕｒｅ２８２：３９（１９７９）；チェ
ンペ等、Ｇｅｎｅ１０：１５７(１９８０)およびクラ
ーク等、Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚ．１０１：３００（１９８
３）参照）を使用したベクターも使用しうる。イースト
ベクターのコントロール配列には、解糖酵素合成用のプ
ロモーターが含まれる（ヘス等、Ｊ．Ａｄｖ．Ｅｎｚｙ
ｍｅＲｅｇ．７：１４９（１９６８）；ホランド等、
Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ１７：４９００（１９７
８））。当分野で知られている他のプロモーターには、
ＣＤＭ８ベクター中に提供されているＣＭＶプロモータ
ー（トヤマおよびオカヤマ、ＦＥＢＳ２６８：２１７
−２２１（１９９０）；３−ホスホグリセレート・キナ
ーゼのプロモーター（ヒッツェマン等、Ｊ．Ｂｉｏｌ．
Ｃｈｅｍ．２５５：２０７３（１９８０）および他の解
糖酵素のプロモーターが含まれる。増殖条件で転写をコ
ントロール出来る利点を持つプロモーターにはアルコー
ル・デヒドロゲナーゼ２、イソチトクームＣ、酸ホスフ
ァターゼ、窒素代謝関連の分解酵素およびマルトースお
よびガラクトース利用に関する酵素のプロモーター領域
がある。また、コード配列の３’末端にターミネーター
配列があることが望ましいと考えられている。このよう
なターミネーターは、イースト由来の遺伝子中のコード
配列の下流の３’側非翻訳領域に存在する。

【００３５】一方、発現用の宿主として原核細胞も使用
しうる。最も頻繁に使用される原核細胞は種々の大腸菌
株であるが、他の微生物株も使用しうる。一般に使用さ
れる原核性コントロール配列であって、本明細書でリボ
ゾーム結合部位と共に、場合によってはオペレーターを
伴う転写開始のためのプロモーターを含むと定義される
配列には、ベータ・ラクタマーゼ(ペニシリナーゼ)およ
びラクトース（ｌａｃ）プロモーターシステム(チャン
グ等、Ｎａｔｕｒｅ１９８：１０５６(１９７７))、
トリプトファン（ｔｒｐ）プロモーターシステム（ゴー
デル等、Ｎｕｃｌ．ＡｃｉｄｓＲｅｓ．８：４０５７
（１９８０））およびラムダ由来のＰ_L プロモーターお
よびＮ−遺伝子のリボゾーム結合部位（シマタケ等、Ｎ
ａｔｕｒｅ２９２：１２８（１９８１））等の一般に使
用されるプロモーターが含まれる。ＣＤ２８Ｉｇおよび
Ｂ７Ｉｇに対応するアミノ酸配列をコードするヌクレオ
チド配列は、以下に示す種々のシステムで発現しうる。
ｃＤＮＡを適当な制限酵素で切断し、適当な発現用の原
核または真核性発現ベクターにライゲーションする。Ｃ
Ｄ２８レセプターは、天然においてダイマーとして存在
するので、これらのタンパク質の発現には、ダイマーを
形成させる発現システムが必要である。これらのタンパ
ク質の短縮型（即ち、このタンパク質の膜通過部分の上
流の配列に終止コドンを導入することにより生成する）
は発現しないと考えられる。融合タンパク質型のＣＤ２
８抗原の発現は、このタンパク質のダイマー形成を許容
する。従って、融合生産物としてのＣＤ２８抗原の発現
は、本発明にとって望ましいものである。

【００３６】生成したタンパク質構築物の配列は、例え
ば、サンガー等、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃ
ｉ．，ＵＳＡ，７４：５４６３（１９７７）、さらにメ
シング等、Ｎｕｃｌ．ＡｃｉｄｓＲｅｓ．９：３０９
（１９８１）、またはマキサム等、ＭｅｔｈｏｄｓＥ
ｎｚｙｍｏｌ．６５：４９９（１９８０）に報告されて
いるような従来法を用いたＤＮＡシーケンシングにより
確認する。

【００３７】タンパク質生産物の回収先に述べたように、短縮型タンパク質に対応するアミノ
酸をコードするＤＮＡの直接的発現を用いることによる
ＣＤ２８レセプターの成熟型タンパク質の発現は容易で
はない。ホモダイマー形成を可能にするために、ＣＤ２
８の細胞外ドメインに対応するアミノ酸配列をコード
し、かつ、適当なプロセシングが可能な細胞中、オンコ
スタチンＭ等のシグナル配列のコドンを含むＤＮＡを、
天然のダイマータンパク質のＦｃドメインに対応するア
ミノ酸をコードするＤＮＡと融合することが望ましい。
細胞からの分泌後の融合タンパク質生産物の精製は、こ
の融合タンパク質の抗免疫グロブリン部分と反応する抗
体を用いることにより容易となる。培地に分泌される場
合、この融合タンパク質生産物は、例えば、プロテイン
Ａカラムの使用など、標準的タンパク質精製技術を用い
て回収する。

【００３８】本発明の融合タンパク質に加えて、Ｂ７抗
原およびＣＤ２８レセプター、およびＢ７ＩｇおよびＣ
Ｄ２８Ｉｇ融合タンパク質と反応するモノクローナル抗
体は、細胞相互作用を調節するためにコラーおよびミル
スタイン（コラーおよびミルスタイン、Ｎａｔｕｒｅ
２５６：４９５−９７（１９７５））により導入された
方法、およびその修正法などの従来法を用いて調製され
るハイブリドーマにより生産しうる。

【００３９】これらの技術には、特定の抗体を生産する
よう感作した動物の使用が含まれる。動物を免疫原（例
えば、Ｂ７Ｉｇ融合タンパク質）の注射により感作し、
目的の免疫応答、即ち、感作した動物からのＣＤ２８に
対するリガンド、Ｂ７抗原と反応する抗体の生産を起こ
すことが出来る。また、感作動物は、病気を発現するも
のでもよい。感作した病気の動物のリンパ節由来のリン
パ球、脾臓又は末梢血液も特定の抗体を探査するのに使
用しうる。目的の免疫グロブリンをコードするリンパ球
染色体は、一般的には、ポリエチレングリコール（ＰＥ
Ｇ）等の融合促進剤の存在下、該リンパ球をミエローマ
細胞と融合することにより不朽化する。標準的方法に従
い、多くのミエローマ細胞系列、例えば、Ｐ３−ＮＳ１
／１−Ａｇ４−１、Ｐ３−ｘ６３−Ａｇ８．６５３、Ｓ
ｐ２／０−Ａｇ１４、またはＨＬ１−６５３ミエローマ
細胞系列を融合パートナーとして使用しうる。これらの
ミエローマ系列は、メリーランド、ロックビルのＡＴＣ
Ｃから入手しうる。

【００４０】目的のハイブリドーマを含む細胞を、未融
合のミエローマまたはリンパ球が死んでしまうＨＡＴ培
地などの選択培地で培養する。ハイブリドーマのみが生
存し、これを限界希釈条件下で生育させることによりク
ローンを単離することが出来る。例えば、免疫化に使用
したＢ７Ｉｇ融合タンパク質を用いたイムノアッセイ法
を用いて、ハイブリドーマの上清を望ましい特異性の存
在に関してスクリーニングする。ポジティブ・クローン
を限界希釈条件下でサブクローニングし、ついで生産さ
れるモノクローナル抗体を単離する。

【００４１】他のタンパク質や混入物を含まないモノク
ローナル抗体を得るための単離および精製法には、種々
の従来法を使用しうる。一般に、モノクローナル抗体を
精製するのに使用される方法には、硫安沈殿法、イオン
交換クロマトグラフィー、およびアフィニティークロマ
トグラフィー（ゾラ等、“モノクローナル・ハイブリド
ーマ・抗体：技術と応用”、フレル（編）、ｐｐ５１−
５２（ＣＲＣプレス、１９８２））がある。これらの方
法に従って生産したハイブリドーマは、従来法（一般的
には、フィンク等、Ｐｒｏｇ．Ｃｌｉｎ．Ｐａｔｈｏ
ｌ．９：１２１−１３３（１９８４）、ｐ．１２３の第
６−１図参照）を用いて、インビトロまたはインビボで
増殖しうる。

【００４２】一般に、各細胞系列を、例えば、実験培養
容器中などインビトロで増殖し、ついで単一の特異的モ
ノクローナル抗体を高濃度で含む培養培地からデカンテ
ーション、濾過または遠心により該抗体を回収する。さ
らに、Ｆab、Ｆ（ab'）₂およびＦv フラグメント等の、
Ｂ７抗原またはＣＤ２８抗原の細胞外ドメインの活性結
合領域を含むこれらの抗体のフラグメントも生産しう
る。このようなフラグメントは、当分野でよく知られて
いる技術を用いて生産しうる（ローゾウクス等、Ｍｅｔ
ｈｏｄｓＥｎｚｙｍｏｌ．，１２１：６６３−６９、
アカデミック・プレス（１９８６））。

【００４３】使用法一般以下に示す実施例の実験は、ＣＤ２８レセプターおよび
そのリガンドであるＢ７抗原が、インビボにおけるＴ細
胞とＢ細胞等他の細胞との相互作用を仲介することによ
り機能していることを示している。これらの相互作用の
機能的結末は、本来のＣＤ２８レセプター、またはＢ７
抗原に結合するリガンドを用いることにより誘導、また
は阻害しうる。

【００４４】Ｂ７抗原の投与は、インビボにおいてＣＤ
２８レセプターと反応する抗ＣＤ２８モノクローナル抗
体(ｍＡｂ)の使用と同様の効果をあげることが期待され
る。従って、抗ＣＤ２８ｍＡｂは、部分的にＣＤ２８レ
セプターのクロスリンキング、または“凝集”の程度に
応じて、Ｔ細胞に関する刺激または阻害効果を示しうる
ので（ダムレ、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４０：１７５３
−１７６１（１９８８）；レッドベター等、Ｂｌｏｏｄ
７５（７）：１５３１−１５３９（１９９０))、Ｂ７
抗原、そのフラグメントおよびその誘導体は、インビボ
における同様の条件下、抗ＣＤ２８モノクローナル抗体
に関して見られる効果と同様に、Ｔ細胞の刺激、または
阻害することが期待できる。例えば、ＣＤ２８ポジティ
ブＴ細胞と反応する可溶性Ｂ７Ｉｇ融合タンパク質等の
Ｂ７抗原を投与すると、これがＴ細胞のＣＤ２８レセプ
ターと結合し、Ｔ細胞の機能的応答を阻害する。Ｔ細胞
とＢ細胞の接触の結果としてＴ細胞相互作用が起こる条
件下における、ＣＤ２８ポジティブＴ細胞のＣＤ２８レ
セプターに結合する融合タンパク質型の誘導Ｂ７抗原の
結合は、Ｔ細胞のＢ細胞との相互作用を妨害、即ち阻害
する。同様に、インビボにおいて、ＣＤ２８抗原、また
はそのフラグメント、およびその誘導体、例えば、可溶
性ＣＤ２８Ｉｇ融合タンパク質を投与すると、Ｂ７抗原
に可溶性ＣＤ２８Ｉｇが結合し、活性化Ｂ細胞等のＢ７
ポジティブ細胞によるＣＤ２８レセプターの内部刺激が
妨害され、Ｔ細胞とＢ７ポジティブ細胞との相互作用が
阻害される。

【００４５】また、固定化したリガンドとＴ細胞を反応
させるか、またはレッドベター等、Ｂｌｏｏｄ７５
（７）：１５３１−１５３９（１９９０）に報告されて
いるクロスリンキングする事によるＣＤ２８レセプター
を凝集する既知の効果に基づき、例えば、Ｔ細胞と反応
させるためにＢ７抗原またはＢ７Ｉｇ融合タンパク質を
固定化する事などにより、Ｂ７抗原、および／またはそ
のフラグメントまたは誘導体を用いてＴ細胞を刺激しう
る。このような方法で刺激化した活性化Ｔ細胞は、イン
ビボにおける養子治療に使用しうる。

【００４６】従って、Ｂ７抗原、および／または該抗原
のフラグメント、または誘導体をＴ細胞と反応させる事
により、ＣＤ２８レセプターの刺激に対するＴ細胞の機
能的応答によって仲介される免疫応答を調節しうる。Ｂ
７抗原は、種々の型のＣＤ２８ポジティブＴ細胞との反
応に使用しうる。このように、Ｂ７抗原を発現する活性
化Ｂ細胞を用いることに加えて、Ｂ７抗原を、例えば、
リポソームの中に入れるか、またはＴ細胞上のＣＤ２８
レセプターを刺激する抗原を発現するように、例えば遺
伝子転移等を用いて遺伝子工学的に作製した細胞を用い
ることによりカプセル化することもできる。

【００４７】また、ＣＤ２８レセプター、および／また
はそのフラグメントまたは誘導体をＢ細胞等のＢ７抗原
を発現する細胞と反応に使用する事もできる。この反応
で、Ｔ細胞の活性化が阻害されたり、また、例えば、Ｔ
細胞のサイトカイン生産が阻害される結果としてＴ細胞
依存のＢ細胞の応答が阻害されたりするであろう。

【００４８】本発明の別の態様においては、Ｂ７抗原ま
たはＣＤ２８レセプターと反応する分子等、別の試薬を
用いてＴ細胞、および／またはＢ細胞の応答を調節す
る。例えば、先に説明したように、免疫原としてＣＤ２
８Ｉｇ融合タンパク質を用いて、ＣＤ２８Ｉｇ融合タン
パク質と反応する抗体、並びにＣＤ２８ＩｇのＦabフラ
グメントを調製しうる。これらの抗ＣＤ２８抗体は、Ｃ
Ｄ２８抗原に対するＢ７抗原の結合を阻害しうるものを
同定することでスクリーニングしうる。このように、こ
の抗体、またはＦabフラグメント等の抗体フラグメント
は、Ｔ細胞との反応で、例えばＣＤ２８ポジティブＴ細
胞の増殖を阻害するのに使用しうる。本明細書に示され
ている９．３モノクローナル抗体のＦabフラグメント、
または抗ＣＤ２８Ｉｇモノクローナル抗体のＦabは、Ｔ
細胞上のＣＤ２８レセプターの、例えばＢ細胞上のＢ７
抗原への結合を阻害する事が期待される。この事で、Ｔ
細胞の機能的応答の阻害が起こるであろう。

【００４９】同様に、ＢＢ−１ｍＡｂ等の抗Ｂ７モノ
クローナル抗体、または免疫原としてＢ７Ｉｇ融合タン
パク質を用いて先に述べたように調製した抗Ｂ７Ｉｇモ
ノクローナル抗体を、Ｂ細胞等のＢ７抗原ポジティブ細
胞との反応に用いてＣＤ２８ポジティブＴ細胞とのＢ７
抗原を介するＢ細胞相互作用を阻害しうる。

【００５０】別の態様においては、Ｂ７抗原とＣＤ２８
抗原との相互作用を調節しうる別の化合物の同定するの
にＢ７抗原を使用している。このような化合物には、Ｂ
７抗原またはＣＤ２８抗原の可溶性フラグメント、また
はＢ細胞および／またはＴ細胞との反応に使用しうる天
然の小分子が含まれる。例えば、Ｂ７抗原の細胞外ドメ
イン（例えば、アミノ酸１−２１５）を含むＣＤ２８に
対するリガンドの可溶性フラグメントについて、Ｔ細胞
の増殖に関する効果のテストを行ってもよい。

【００５１】インビトロおよびインビボにおける使用法本発明の方法においては、ＣＤ２８ポジティブ（ＣＤ２
８⁺）Ｔ細胞の調節にＣＤ２８に対するリガンドである
Ｂ７抗原を使用している。例えば、Ｂ７抗原を発現する
ＣＨＯ細胞を用いるか、または固体基質にＢ７を固定化
することにより、インビトロでＢ７抗原をＴ細胞と反応
させてＣＤ２８Ｉｇをクロスリンクまたは凝集し、養子
治療で使用するためのインビボ投与に適した活性化Ｔ細
胞を生産している。養子治療においては、Ｔリンパ球を
患者から採取し、薬剤を用いてインビトロで活性化す
る。活性化した細胞を、その提供者に再び注入して腫瘍
細胞を死滅させる（ローゼンバーグ等、Ｓｃｉｅｎｃｅ
２２３：１３１８−１３２１（１９８６））。また、
この方法を用いて、１９９０年１月２５日出願の米国特
許出願第４７１，９２３号（参考として引用する）に示
されている養子治療に有効な細胞毒性Ｔ細胞を生産しう
る。

【００５２】また、適当な医薬キャリヤー中のＣＤ２８
に対するリガンド、そのフラグメントまたは誘導体を生
体内に導入することが出来る。即ち、これを免疫系の病
気または癌などの症状の治療を目的として患者に投与し
うる。インビボへの該リガンドの導入は、該リガンドの
Ｔ細胞への結合の結果としてＴ細胞／Ｂ細胞相互作用を
阻害することが期待される。正常なＴ細胞／Ｂ細胞の接
触の阻害は、Ｔ細胞活性の低下、例えば、Ｔ細胞増殖の
低下をもたらす。

【００５３】さらに、インビボへのＢ７抗原の投与は、
インターロイキン、例えばインターロイキン（“Ｉ
Ｌ”）−２、ＩＬ−３、ＩＬ−４、ＩＬ−６、ＩＬ−
８、腫瘍増殖因子（“ＴＧＦ”）、コロニー刺激化因子
（“ＣＳＦ”）、インターフェロン(“ＩＦＮ”)および
腫瘍壊死因子(“ＴＮＦ”)などの増殖因子を含むサイト
カインのインビボにおけるレベルを調節し、患者体内で
望ましい効果を促進することが期待される。このよう
に、Ｂ７Ｉｇ融合タンパク質およびＦabフラグメント等
のＣＤ２８に対するリガンドは、インビボにおける癌の
治療を目的としてＩＬ−２等のサイトカインの代わりに
使用しうることが予想される。例えば、ＣＤ２８に対す
るリガンドをインビボに導入した場合に、これがＣＤ２
８抗原ポジティブＴ細胞と反応してＢ細胞接触と同様の
効果をあげ、今度はＢ細胞と相互作用を起こすサイトカ
インの生産を増加させることが出来る。

【００５４】先に述べたように、ある環境下では、Ｂ７
抗原、そのフラグメントまたは誘導体のインビボへの投
与の効果は、ＣＤ２８レセプターの凝集の結果として刺
激物として働いた。Ｔ細胞上のＣＤ２８抗原をトリガー
するＴ細胞／Ｂ細胞接触の効果を真似ることでＴ細胞が
刺激され、Ｔ細胞サイトカインのレベルの上昇を起こし
た。別の環境では、Ｔ細胞／Ｂ細胞接触に由来するＣＤ
２８トリガリングのＢ７抗原による妨害で阻害効果がお
こる。例えば、Ｂ７抗原がＴ細胞増殖を阻害する。この
ように、インビボへのＢ７抗原の導入は、Ｔ細胞および
Ｂ細胞仲介の両免疫応に関して効果を示す。また、この
リガンドをサイトカインまたは他の治療薬の投与と組み
合わせて患者に投与することもできる。また、Ｂ７リン
パ腫、カルシノーマ、およびＴ細胞白血病等のＢ７抗原
関連の癌に対しては、抗Ｂ７Ｉｇモノクローナル抗体な
どのＢ７抗原と反応するリガンドを用いて、悪性Ｂ細胞
の機能を阻害しうる。

【００５５】ＣＤ２８は、ＴＮＦおよびガンマ・インタ
ーフェロンを含む幾つかのサイトカインの生産の調節に
関与しているので（リンドステン等、上述（１９８
９））、本発明のＣＤ２８に対するリガンドは、感染物
の存在に応答するサイトカイン・レベルのインビボにお
ける調節に有効である。例えば、ＣＤ２８に対するリガ
ンドは、腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）およびＩＦＮ生産を刺
激することにより抗細菌および抗ウイルス耐性を増加す
るのに使用しうる。ＴＮＦ生産は、感染の初期の段階で
の抗細菌耐性に役割を果たしていると考えられている
（ハベル、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４３：２８９４−２
８９９（１９９０））。さらに、ヘルペス・ウイルスに
感染した細胞は、未感染の細胞よりもＴＮＦ仲介の分解
を受けやすいことから（コッフおよびファン、Ｌｙｍｐ
ｈｏｋｉｎｅＲｅｓ．５：２１５（１９８６））、Ｔ
ＮＦは抗ウイルス免疫においても役割を果たしている。

【００５６】また、ガンマ・インターフェロンは、ＣＤ
２８によって調節されている（リンドステン等、上
述）。アルファおよびベータＩＦＮのｍＲＮＡは、その
３’非翻訳領域中の潜在的調節配列を、ＣＤ２８によっ
て調節されるサイトカインと共有しているので、これら
のサイトカインのレベルもＣＤ２８に対するリガンドに
よって調節しうる。従って、ＣＤ２８に対するリガンド
は、インターフェロンに応答するウイルス病の治療にも
有効である（デ・メイヤーおよびデ・メイヤー・ギナー
ド、“インターフェロンおよび他の調節サイトカイ
ン”、ウイリー・パブリッシャー、ニューヨーク（１９
８８））。同様の理由に従い、ＣＤ２８に対するリガン
ドは、毛状細胞白血病、メラノーマおよび腎臓細胞ガン
腫（ゴールドスタインおよびラスジオ、ＣＡ：ａＣａ
ｎｃｅｒＪｏｕｒｎａｌｆｏｒＣｌｉｎｉｃｉａ
ｎｓ３８：２５８−２７７（１９８８））等のガン、
陰部の疣およびカポシ・ザルコーマの治療においてアル
ファ−ＩＦＮの代替物として使用しうる。

【００５７】さらに、先に述べたＢ７Ｉｇ融合タンパク
質は、Ｔ細胞増殖を調節するのに使用しうる。例えば、
可溶性ＣＤ２８ＩｇおよびＢ７Ｉｇ融合タンパク質は、
同種骨髄移植に伴う対宿主移植片（ＧＶＨ）病における
Ｔ細胞増殖の阻害に使用しうる。ＣＤ２８仲介Ｔ細胞増
殖経路は、ＣＤ３／Ｔｉ細胞レセプター複合体による増
殖（ジュン等、１９８７、上述）とは対照的にシクロス
ポリン耐性である。シクロスポリンは、ＧＶＨ病の治療
に関しては比較的効果がない（ストーブ、Ｂｌｏｏｄ
６８：１１９−１２５（１９８６））。ＧＶＨ病は、Ｃ
Ｄ２８抗原を発現するＴリンパ球によって仲介されると
考えられている（ストーブおよびトーマス、Ｉｍｍｕｎ
ｏｌ．Ｒｅｖ．８８：２１５−２３８（１９８５））。
従って、Ｂ７Ｉｇ融合タンパク質型のＢ７抗原、または
シクロスポリン等の免疫抑制物と組み合わせたＢ７抗原
は、ＧＶＨ病におけるＴ細胞増殖を阻害しうる。さら
に、例えば、固定化したＢ７Ｉｇ融合タンパク質をＴ細
胞と接触させることにより、Ｂ７Ｉｇ融合タンパク質に
よるＣＤ２８レセプターのクロスリンクを起こしてＴ細
胞増殖を刺激し、骨髄移植後の免疫機能の回復を助ける
ことも出来る。

【００５８】本発明の融合タンパク質は、ガン（ブラン
ト等、Ｎ．Ｅｎｇ．Ｊ．Ｍｅｄ．３１８：８６９−８７
６（１９８８））、ＡＩＤＳ（グループマン等、Ｎ．Ｅ
ｎｇ．Ｊ．Ｍｅｄ．３１７：５９３−６２６８１９８
７））およびミエロジスプラシア（ベイダン・ラ等、
Ｎ．Ｅｎｇ．Ｊ．Ｍｅｄ．３１７：１５４５−１５５１
（１９８７））の治療を目的とした顆粒球・マクロファ
ージ・コロニー刺激化因子（ＧＭ−ＣＳＦ）のレベルの
調節に有効である。従って、本発明の方法によるＴ細胞
相互作用の調節を用いて、自己免疫、移植、感染病およ
び悪性腫瘍などの病気の治療を行うことが出来る。

【００５９】望ましい態様においては、Ｔ細胞およびＢ
細胞の機能におけるＣＤ２８仲介粘着の役割を、各々Ｃ
Ｄ８およびＣＤ４アクセサリー分子を伴うＭＨＣクラス
Ｉ（ノーメント等、（１９８８）上述）およびクラスII
（ドイルおよびストミンガー、（１９８７）上述）分子
によって仲介される細胞間粘着を説明するのに使用され
る操作を用いて研究した。ＣＤ２８抗原をチャイニーズ
・ハムスター・卵巣（ＣＨＯ）細胞中で高レベルで発現
させ、このトランスフェクト細胞を用いて、先に示した
ＣＤ２８仲介細胞粘着検定法を開発した。この検定法を
用いて、ＣＤ２８抗原と活性化Ｂリンパ球で発現したそ
のリガンド、即ちＢ７抗原との相互作用を示した。ＣＨ
Ｏ細胞で発現したＣＤ２８抗原は、ヒトリンパ腫および
白血病Ｂ細胞系列、および活性化マウスＢ細胞との特異
的細胞間粘着を仲介することが示された。ＣＤ２８仲介
粘着は、二価イオンに依存しなかった。Ｂ７抗原と反応
するｍＡｂであるＢＢ−１は、ＣＤ２８仲介粘着を阻害
することが示された。また、Ｂ７抗原を発現するトラン
スフェクトＣＯＳ細胞も、ＣＤ２８⁺ＣＨＯ細胞に粘着
することが示された。即ち、この粘着はＣＤ２８レセプ
ターおよびＢ７抗原に対するｍＡｂにより阻害された。
Ｂ７抗原のＣＤ２８レセプターによる特異的認識は、Ｂ
７抗原がＣＤ２８抗原のリガンドであることを示してい
る。

【００６０】また、本明細書に示されている結果は、Ｃ
Ｄ２８およびＢ７抗原と反応する抗体が、同種のＢ細胞
によるヘルパーＴ_h仲介の免疫グロブリン生産を特異的
に阻害することを示しており、この事は、Ｔ細胞および
Ｂ細胞間の共同作業におけるＣＤ２８／Ｂ７の相互作用
の役割の関する証拠を提供している。別の望ましい態様
においては、Ｂ７抗原の細胞外ドメインまたはＣＤ２８
レセプターをコードするＤＮＡを、ヒト免疫グロブリン
Ｃガンマ１の一部をコードするＤＮＡに融合することに
より、Ｂ７ＩｇおよびＣＤ２８Ｉｇ融合タンパク質を構
築した。さらに、これらの融合タンパク質を用いて、Ｃ
Ｄ２８レセプターおよびそのリガンドであるＢ７抗原の
相互作用を示した。

【００６１】本発明の細胞粘着検定法により、標的細胞
表面レセプターが仲介する細胞間粘着、特に二価カチオ
ン非依存的粘着に関するリガンドの同定および単離が可
能となった。標的レセプターは、Ｔ細胞またはＢ細胞等
のリンパ球、単球、ウイルスなどの微生物、または病原
体上の抗原、またはその他のレセプターであってもよ
い。この方法は、リガンドに対するレセプターのアフィ
ニティーが低く、可溶性リガンドと標的レセプター間の
相互作用の検出が困難な場合のリガンド／レセプター相
互作用に関するリガンドの検出に応用しうる。この系に
おいては、二価カチオン依存的な他のリガンドとレセプ
ター間の粘着相互作用は、標的レセプターに対するリガ
ンド間の別の相互作用を“マスク”してしまうので、結
果的に、これらの相互作用は、この系から二価カチオン
を除いた場合にのみ観察される。

【００６２】この細胞粘着検定法は、標的細胞表面レセ
プターを発現する細胞、および該レセプターとのリガン
ド仲介粘着の存在をテストする細胞が使用される。標的
レセプターを発現する細胞は、チャイニーズ・ハムスタ
ー・卵巣（ＣＨＯ）またはＣＯＳ細胞等、目的のレセプ
ターをトランスフェクトした細胞であってもよい。リガ
ンドの存在をテストする細胞の場合は、これを標準法を
用いて、例えば⁵¹Ｃｒでラベルし、エチレンジアミン四
酢酸（ＥＤＴＡ）またはエチレングリコール四酢酸（Ｅ
ＧＴＡ）等の二価カチオンキレート剤を含む適当な培地
中でインキュベートする。また、この検定法は、二価カ
チオンを含まないか、または例えば、イオンクロマトグ
ラフィー等、当分野で良く知られた方法で二価カチオン
を除いた培地で行うことが出来る。二価カチオンキレー
ト剤または無カチオン培地の使用で、カチオン依存の粘
着相互作用を除き、二価カチオン非依存的粘着相互作用
の検出が可能となる。ついで、ラベル化したテスト細胞
を標的レセプターを発現する細胞と接触させ、例えば、
ガンマ・カウンターを用いてラベルを測定することによ
り、レセプター発現細胞に結合したラベル化細胞の数を
測定する。粘着の特異性に関する適当なコントロールと
しては、標的レセプターへの結合に関して該リガンドと
競合するブロッキング抗体等を使用しうる。

【００６３】以下の実施例は、本発明を説明し、並びに
本発明の実施を助けることを目的として提供されてい
る。従って、実施例は請求の範囲、または特許によって
保証される保護を制限するものではない。

【００６４】実施例１ＣＤ２８レセプターに対するリガンドの同定もしも、ＣＤ２８レセプター抗原が細胞表面リガンドに
結合すれば、そのリガンドを発現する細胞は、ＣＤ２８
レセプターを発現しない細胞よりも発現する細胞の方に
容易に粘着するはずである。これを試すために、選択可
能なマーカーと共に高い活性のプロモーター（アルフォ
およびシード、（１９８７)上述)のコントロール下にあ
るＣＤ２８をコードするｃＤＮＡクローン（ｐＳＶ２ｄ
ｈｆｒ）（ムリガンおよびバーグ、Ｓｃｉｅｎｃｅ２
０９：１４１４−１４２２（１９８０))を、ジハイドロ
ホレート・リダクターゼ（ｄｈｆｒ）欠失のＣＨＯ細胞
にトランスフェクトした。

【００６５】細胞培養：Ｔ５１、１Ａ２、５Ｅ１、ダ
ウジ（Ｄａｕｄｉ）、ラジ（Ｒａｊｉ）、ジジョエ（Ｊ
ｉｊｏｙｅ）、ＣＥＭ、ジャーカット（Ｊｕｒｋａ
ｔ）、ＨＳＢ２、ＴＨＰ−１およびＨＬ６０細胞（ブリ
ストル・メーヤー・スクイブ・ファーマシューティカル
・リサーチ・インスチチュート、シアトル、ＷＡ）を完
全ＲＰＭＩ培地（ＲＰＭＩに、１０％ウシ胎児血清（Ｆ
ＢＳ）、１００Ｕ/mlペニシリンおよび１００μg/mlス
トレプトマイシンが含まれている）で培養した。ｄｈｆ
ｒ欠失チャイニーズ・ハムスター・卵巣（ＣＨＯ）細胞
（アーローブおよびチャシン、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａ
ｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ７７：４２１６−４２２０
（１９８０））は、メンテナンス培地（１０％ＦＢＳ、
０．１５mMＬ−プロリン、１００Ｕ/mlペニシリンおよ
び１００μg/mlストレプトマイシンを補ったハムズＦ１
２培地（ＧＩＢＣＯ、グランド・アイランド、ＮＹ）で
培養した。ｄｈｆｒポジティブのトランスフェクタント
を選択し、選択培地（１０％ＦＢＳ、０．１５mMＬ−プ
ロリン、１００Ｕ/mlペニシリンおよび１００μg/mlス
トレプトマイシンを補ったＤＭＥＭ）で培養した。

【００６６】脾臓Ｂ細胞は、Ｂａｌｂ／ｃマウスの全脾
臓細胞を抗−Ｔｈｙ１．２ｍＡｂ（３０Ｈ１２）（レッ
ドベターおよびヘルゼンバーグ、Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｒｅ
ｖ．４７：３６１−３８９（１９７９））およびウサギ
乳児補体で処理することにより精製した。フルオレセイ
ン・イソチオシアネート（ＦＩＴＣ）結合ヤギ抗−マウ
ス免疫グロブリン（ＴＡＧＯ）の染色につづくＦＡＣＳ
^R分析による判断では、この調製物は約８５％のＢ細胞
を含んでいた。これらの細胞を完全ＲＰＭＩ中、１０μ
g/mlの大腸菌リポポリサッカライド（ＬＰＳ、リスト・
バイオロジカル・ラボラトリーズ、キャンベル、ＣＡ）
で７２時間処理することにより活性化した。モノクロー
ナル抗体：モノクローナル抗体（ｍＡｂ）９．３（抗−
ＣＤ２８）（ＡＴＣＣＮｏ．ＨＢ１０２７１、ハンセ
ン等、Ｉｍｍｕｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ１０：２４７−２
６０（１９８０））は、使用前に腹水から精製した。ｍ
Ａｂ９．３Ｆ(ab')₂フラグメントは、パーハム、Ｊ．Ｉ
ｍｍｕｎｏｌ．１３１：２８９５−２９０２(１９８３)
の方法に従って調製した。簡単に言うと、精製したｍＡ
ｂ９．３をｐＨ４．１で７５分間ペプシンを用いて消化
し、ついでプロテインＡセファロースに通して未消化の
ｍＡｂを除去した。Ｂ細胞関連抗原に対する多くのｍＡ
ｂを、ＣＤ２８仲介の粘着を阻害する能力に関してスク
リーニングした。ｍＡｂ６０．３（ＣＤ１８）；１Ｆ５
（ＣＤ２０）；Ｇ２９−５（ＣＤ２１）；Ｇ２８−７，
ＨＤ３９，およびＨＤ６（ＣＤ２２）；ＨＤ５０（ＣＤ
２３）ＫＢ６１（ＣＤ３２）；Ｇ２８−１（ＣＤ３
７）；Ｇ２８−１０（ＣＤ３９）；Ｇ２８−５（ＣＤ４
０）；ＨＥＲＭＥＳ１（ＣＤ４４）；９．４（ＣＤ４
５）；ＬＢ−２（ＣＤ５４）および７２Ｆ３（ＣＤ７
１）が以前から報告されており、また、ヒト白血球分化
抗原に関する国際会議Ｉ−IIIでその特徴が明らかにさ
れている（バーナード等編、“白血球分類”、スプリン
ガー・バーラグ、ニューヨーク（１９８４）；レインヘ
ルツ等編、“白血球分類II、第２巻”ニューヨーク（１
９８６）；およびマクミカエル等編、“白血球分類II
I”オックスフォード大学版、ニューヨーク（１９８
７））。これらのｍＡｂは、使用前にプロテインＡセフ
ァロースクロマトグラフィーまたは塩析およびイオン交
換クロマトグラフィーで精製した。また、使用前にδＴ
Ａ４０１（クリタニおよびクーパー、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅ
ｄ．１５５：８３９−８４８（１９８２））（抗−Ｉｇ
Ｄ）；２Ｃ３（クラーク等、（１９８６）上述）（抗−
ＩｇＭ）；Ｎａｍｂ１、Ｈ１ＤＥ、Ｐ１０．１、Ｗ６／
３２（クラーク等、（１９８６）上述；およびギリラン
ド等、ＨｕｍａｎＩｍｍｕｎｏｌｏｇｙ２５：２６
９−２８９（１９８９）、抗−ヒトクラスＩ）；および
ＨＢ１０Ａ（クラーク等、（１９８６）上述、抗−ＭＨ
ＣクラスII）も精製した。第四回のヒト白血球分化抗原
に関する国際会議の参加者に提供されたコード化サンプ
ル：ｍＡｂＢ４３（ＣＤ１９）；ＢＬ−４０（ＣＤ７
２）；ＡＤ２、１Ｅ９．２８．１および７Ｇ２．２．１
１（ＣＤ７３）；ＥＢＵ−１４１、ＬＮ１（ＣＤｗ７
５）；ＣＲＩＳ−１（ＣＤ７６）；４２４／４Ａ１１、
４２４／３Ｄ９（ＣＤ７７）；Ｌｅｕ２１、Ｂａ、１５
８８、ＬＯ−ｐａｎＢ−１、ＦＮ１、およびＦＮ４（Ｃ
Ｄｗ７８）；およびＭ９、Ｇ２８−１０、ＨｕＬｙｍ１
０、２−７、Ｆ２Ｂ２．６、１２１、Ｌ２６、ＨＤ７
７、ＮＵ−Ｂ１、ＢＬＡＳＴ−１、ＢＢ−１、抗−ＢＬ
７、抗−ＨＣ２、およびＬ２３を使用した（ナップ編、
“白血球分類IV”、オックスフォード大学版、ニューヨ
ーク（１９９０））。これらは腹水の形で使用した。ま
た、ｍＡｂＢＢ−１およびＬＢ−１（ヨコチ等、（１
９８１）上述）も使用前に腹水から精製した。抗−イン
テグリンレセプターｍＡｂＰ３Ｅ３、Ｐ４Ｃ２、Ｐ４
Ｇ９（ウェイナー等、Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，１０
９：１３２１−１３３０（１９８９))に関してはハイブ
リドーマ培養上清を使用した。

【００６７】免疫染色技術：間接的免疫蛍光法の場合、
細胞を４℃で１時間、１０μg/mlのｍＡｂを含む完全Ｒ
ＰＭＩ中でインキュベートした。ｍＡｂの結合は、ＦＩ
ＴＣ結合ヤギ抗マウス免疫グロブリン（第２ステップ試
薬）を用いて検出した。直接的結合実験の場合、ゴーテ
ィング、“モノクローナル抗体：基本と実践”アカデミ
ック・プレス、オーランド、ＦＬ（１９８３）の方法を
用いて、ｍＡｂ９．３およびＢＢ−１をＦＩＴＣと直
接結合させ、４℃で１時間かけて完全ＲＰＭＩに飽和さ
せた。ＦＩＴＣ結合ｍＡｂの非特異的結合は、非ラベル
のｍＡｂ９．３またはＢＢ−１で予めブロックした
（４℃、２０−３０分）抗原に続いて、このＦＩＴＣ結
合体を添加することで測定した。粘着性のリンパ腫細胞
の免疫組織学的検出は、ヘルストロム等、Ｊ．Ｉｍｍｕ
ｎｏｌ．１２７：１５７−１６０（１９８１）に報告さ
れているホースラディッシュ・パーオキシデース(ＨＲ
Ｐ）法を用いて行った。

【００６８】プラスミドおよびトランスフェクション：
発現ベクターｐπＨ３Ｍ（アルフォおよびシード（１９
８７）上述）のＴ細胞抗原ＣＤ４、ＣＤ５およびＣＤ２
８に対応するアミノ酸配列をコードするｃＤＮＡクロー
ンは、Ｓ．アルフォおよびＢ．シード両博士(マサチュ
ーセッツ・ゼネラル・ホスピタル、ボストン、ＭＡ)か
ら提供された。Ｂ７抗原に対応するアミノ酸配列をコー
ドする、ベクターＣＤＭ８中の発現可能なｃＤＮＡクロ
ーン（フリーマン等、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４３：２
７１４−２７２２（１９８９））は、ゴードン・フリー
マン博士（ダナ・ファーバー・キャンサー・インスチチ
ュート、ボストン、ＭＡ）から提供された。ｄｈｆｒ欠
失ＣＨＯ細胞を、リン酸カルシウム法（グラハムおよび
ヴァン・デル・エブ、Ｖｉｒｏｌｏｇｙ５２：４５６
−４６７（１９７３））を用い、９μgのプラスミドπ
Ｈ３Ｍ−ＣＤ２８（アルフォおよびシード、(１９８７)
上述）および３μgのプラスミドｐＳＶ２ｄｈｆｒ（ム
リガンおよびバーグ、(１９８０)上述）でコトランスフ
ェクトした。ｄｈｆｒポジティブコロニーを単離し、徐
々にメソトレキセート（シグマ・ケミカル、セントルイ
ス、ＭＯ）量を増加させる選択培地で生育させた。１０
mM ＥＤＴＡを含むＰＢＳ中でインキュベートすること
により、１０nMのメソトレキセートに耐性の細胞を回収
し、間接的免疫蛍光によるＣＤ２８レセプターの染色を
行った後、ＦＡＣＳによりＣＤ２８ポジティブ（ＣＤ２
８⁺）およびＣＤ２８ネガティブ（ＣＤ２８^-）の集団に
分別した。再び両集団を１μMまでメソトレキセート濃
度を増加させる選択培地で培養し、ＣＤ２８抗原に対す
る染色を行った後、再度ＣＤ２８⁺およびＣＤ２８^-の集
団に分別した。

【００６９】マリク等、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒａｎｄ
ＣｅｌｌｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙ９：２８４７−２８
５３（１９８９）の方法により、ＣＯＳ細胞をＢ７、Ｃ
Ｄ４、またはＣＤ５ｃＤＮＡでトランスフェクトし
た。トランスフェクションから４８−７２時間後、１０
mM ＥＤＴＡを含むＰＢＳ中でインキュベートすること
により細胞を回収し、フローサイトメトリー分析または
先に述べたＣＤ２８仲介粘着検定法に使用した。

【００７０】高（ＣＤ２８⁺）および低（ＣＤ２８^- ）
レベルのＣＤ２８レセプターを発現する細胞系列を、ｍ
Ａｂ９．３による間接的免疫染色後のＦＡＣＳソーティ
ングにより増幅した集団から単離した。二回のＦＡＣＳ
選択の後、ＣＤ２８⁺集団は、ＦＩＴＣ結合ｍＡｂ９．
３で均一にポジティブに染色されたが（線型蛍光単位で
平均チャンネル１１６）、ＣＤ２８^-集団は、非染色細
胞（平均チャンネル３．７）よりも強く染色されなかっ
た（平均チャンネル３．９）。ＣＤ２８⁺ＣＨＯ細胞に
よる染色は、フィトヘマグルチン−刺激化Ｔ細胞（平均
チャンネル１１．３）よりも約１０倍も強かった。ＣＤ
２８⁺およびＣＤ２８^- 集団は、１μMのメソトレキセー
トを含む選択培地による６カ月以上の連続培養の後も、
その発現型を安定に維持した。

【００７１】ＣＤ２８に対するリガンドの細胞粘着検定ＣＤ２８に対するリガンドを発現する細胞によるＣＤ２
８⁺およびＣＤ２８^-ＣＨＯ細胞への結合の差を検出する
粘着検定法を開発した。アロ抗原源としてリンパ腫細胞
系列を用いることにより、ｍＡｂ９．３が混合リンパ球
反応を阻害することが示されたことから（ダムレ等、
（１９８１）上述；およびレスラウア等、Ｅｕｒ．Ｊ．
Ｉｍｍｕｎｏｌ．１６：１２８９−１２９６（１９８
６））、最初にＢリンパ腫細胞系列について、ＣＤ２８
仲介粘着に関するテストを行った。ＣＤ２８仲介粘着検
定法：粘着テストを行う細胞を０．２−２cpm /細胞の
比活性となるように⁵¹Ｃｒ（０．２−１mCi) でラベル
した。このラベル化反応物に、無関係な特異性の、即ち
ヒト肺ガン関連ムチンに対するマウスｍＡｂであるｍＡ
ｂＷ１（リンスレー等、ＣａｎｃｅｒＲｅｓ．４
６：５４４４−５４５０（１９８６））を最終濃度１０
０μg/mlとなるように添加し、Ｆｃレセプターを飽和し
た。ラベル化後、洗浄した細胞を１０μg/mlのｍＡｂ
Ｗ１、および特筆しないかぎり１０mM ＥＤＴＡも含む
完全ＲＰＭＩ中でプレインキュベートした。このサンプ
ルに１０μg/mlのｍＡｂ９．３またはｍＡｂ９．３Ｆ(a
b')₂を添加し、２３℃で約１時間インキュベートした。

【００７２】ラベル化細胞（ウェル当たり、指示されて
いるように、ＥＤＴＡおよびｍＡｂを含む完全ＲＰＭＩ
０．２mlに１−１０×１０⁶ 個）をＣＨＯ単層培養物に
添加した。プレートキャリヤー中、４℃、３分間の遠心
（１，０００rpm、ソーバルＨＢ１０００ローター、約
２１０×g ）で粘着を開始した。その後、このプレート
を３７℃で１時間インキュベートした。反応は、未結合
の細胞を吸引し、冷完全ＲＰＭＩ培地で５回洗浄するこ
とにより停止した。０．５N のＮａＯＨを添加して単層
を溶かし、ガンマカウンターで放射能を測定した。ほと
んどの実験に関する結合細胞数は、全結合放射能（cpm
）をラベル化細胞の比活性（cpm/細胞)で割ることによ
り計算した。ＣＯＳ細胞用いた場合、実験の終わりにお
ける生存率は一般に５０％以下であったので、比活性の
計算の精度は高くない。従って、ＣＯＳ細胞の結果は、
結合したcpm で表した。

【００７３】パイロット実験により、Ｔ５１リンパ腫細
胞は、ＣＤ２８^- ＣＨＯ細胞よりもＣＤ２８⁺ＣＨＯ細
胞の方により好く粘着することが分かった。さらに、Ｔ
５１細胞のＣＤ２８⁺ＣＨＯ細胞への粘着は、ｍＡｂ
９．３によって部分的に阻害されるが、ＣＤ２８^- ＣＨ
Ｏ細胞への粘着は、一定して影響を受けなかった。この
粘着は、ｍＡｂ９．３と同じアイソタイプである（Ｉｇ
Ｇ２ａ）コントロールｍＡｂＬ６（ＡＴＣＣＮｏ．
ＨＢ８６７７、ヘルストロム等、ＣａｎｃｅｒＲｅｓ．
４６：３９１７−３９２３（１９８６））によって影響
を受けなかった。これらの実験は、Ｔ５１細胞がＣＤ２
８⁺ＣＨＯ細胞に特異的に粘着していることを示してい
る。ｍＡｂ９．３による粘着の阻害は不完全であるの
で、ＣＤ２８粘着検定法の特異性を増す方法を探索し
た。

【００７４】ＣＤ２８⁺およびＣＤ２８^- ＣＨＯ細胞へ
のＴ５１細胞の粘着に関する二価カチオン消失の効果を
調べた。予備実験が、ＥＤＴＡ処理が洗浄の際のＣＨＯ
細胞のロスの原因となっていることを示したので、ＥＤ
ＴＡ処理前にＣＨＯ細胞単層をパラホルムアルデヒドで
固定した。この固定は、ｍＡｂ９．３の有無にかかわら
ずＴ５１細胞によるＣＤ２８仲介粘着に対し有意な影響
を示さなかった。ＣＤ２８⁺およびＣＤ２８^- ＣＨＯ細
胞の単層（４８穴プラスチックプレート中１−１．２×
１０⁵ /cm² ）を２３℃、２０分間、０．５％パラホル
ムアルデヒド中で固定し、洗浄後、１時間、完全ＲＰＭ
Ｉ中でブロックし、さらに完全ＲＰＭＩ中１０μg/mlの
濃度のｍＡｂ９．３またはｍＡｂ９．３Ｆ(ab')₂有無の
条件下、３７℃で１時間プレインキュベートした。Ｔ５
１細胞は、⁵¹Ｃｒでラベル後、１０mM ＥＤＴＡ有無の
条件下でプレインキュベートし、ＣＨＯ細胞に添加して
細胞粘着を測定した。この結果を第１図に示す。三回の
測定の平均および標準偏差（エラーバー）を示す。

【００７５】ＥＤＴＡ存在下では、ＣＤ２８仲介粘着の
特異性が非常に増加した（第１図）。ＥＤＴＡ存在下で
のＣＤ２８⁺細胞への粘着は、ＥＤＴＡ存在下でのＣＤ
２８^-細胞への粘着の１７倍も高く、ＥＤＴＡ非存在下
での比率５．５倍に比べて高い値を示した。ｍＡｂのみ
存在した場合、ＣＤ２８⁺細胞への粘着は６２％減少し
たのに比べ、ｍＡｂ９．３およびＥＤＴＡ存在下での粘
着は、９３％減少した。また、ＥＤＴＡ存在下でのＴ５
１細胞のＣＤ２８仲介粘着は、Ｔ５１細胞の免疫組織学
的染色後の顕微鏡観察で明確に観察しえた。上述のよう
にＥＤＴＡ存在下での非ラベル化Ｔ５１細胞とＣＤ２８
⁺またはＣＤ２８^- ＣＨＯ細胞との細胞粘着を測定し
た。粘着性Ｔ５１細胞を、ビオチン化した抗ヒトクラス
II Ａｂ、ＨＢ１０ａで染色し、０．２％グルタルアル
デヒドで固定化後、アビジン結合ＨＲＰ（ベクター・ラ
ボラトリー、バーミンガム、ＣＡ）、ついでジアミノベ
ンジジン溶液（ヘルストロムおよびヘルストロム、Ｊ．
Ｉｍｍｕｎｏｌ．１２７：１５７−１６０（１９８
１））とインキュベートすることにより可視化した。染
色の結果を第２図に示す。カルシウム特異的キレーター
ＥＧＴＡの存在下でも、粘着特異性に関し僅かに有意性
は落ちるが同様の増加が得られた。

【００７６】ＣＤ２８に対するリガンドは、Ｂ細胞活性
化マーカーであるＥＤＴＡ存在下におけるＣＤ２８仲介粘着の特異性の増
加で、Ｔ５１以外の細胞による粘着をより簡単に検出す
ることが可能になった。さらに、３種のリンパ腫系列
（Ｔ５１、１Ａ２、および５Ｅ１）；４種のバーケット
・リンパ腫系列（ダウジ、ラジ、ジジョエ、およびナマ
ルワ）；１種の急性リンパ腫（Ｂ細胞）白血病（ＲＥ
Ｈ）；３種のＴ細胞白血病（ＣＥＭ、ジャーカットおよ
びＨＳＢ２）；および２種の単球白血病（ＴＨＰ−１お
よびＨＬ６０）を含む多くの細胞系列をテストした。一
次Ｂ細胞源として、ＬＰＳによる活性化前後のマウス脾
臓Ｂ細胞をテストした。ｍＡｂ９．３有無の条件下、両
ＣＤ２８⁺およびＣＤ２８^-ＣＨＯ細胞への粘着をこれら
全ての細胞に関してテストした。細胞を⁵¹Ｃｒでラベル
化し、上述の方法でＣＤ２８仲介粘着を測定した。ＣＤ
２８ＣＨＯ細胞への粘着を示す代表的実験結果を第３図
に示す。ｍＡｂ９．３による阻害を特異性の指標として
示す。殆どの場合、ｍＡｂ９．３の存在下で測定した粘
着は、ＣＤ２８⁺細胞への粘着にほぼ等しかった。

【００７７】ＣＤ２８特異的粘着（即ち、粘着の７０％
以上がｍＡｂ９．３で阻害可能である）は、Ｔ５１、５
Ｅ１、ラジおよびジジョエ細胞について観測された。ま
た、ダウジ細胞も僅かではあるが特異的粘着を示した。
他の細胞系列は、ＣＤ２８仲介粘着を示さなかったが、
いくつかの細胞（例えば、ナマルワ）は比較的高い非特
異的粘着を示した。一次マウス脾臓Ｂ細胞は、ＣＤ２８
仲介粘着を示さなかったが、ＬＰＳでの活性化の後に粘
着する能力を獲得した。他の実験では、さらに６種のリ
ンパ腫系列がＣＤ２８仲介粘着を示し、一方、Ｕ９３７
細胞系列、非刺激化ヒト扁桃腺Ｂ細胞およびフィトヘマ
グルチニン刺激化Ｔ細胞は粘着を示さなかった。これら
の実験で、ＣＤ２８に対するリガンドは、ヒトまたはマ
ウス由来の活性化したＢ細胞の細胞表面に存在すること
が示された。

【００７８】ＣＤ２８仲介粘着は、Ｂ７抗原に対するｍ
Ａｂ（ＢＢ−１）により特異的に阻害される。ＣＤ２８
仲介粘着に関するＢ細胞分子を同定する最初の試みにお
いては、別の既知の細胞粘着分子中に突然変異を有する
リンパ腫細胞による粘着を、上述の粘着検定法で測定し
た。６１６リンパ腫細胞（ＭＨＣクラスII−欠失）（グ
ラッドストンおよびピアス、Ｎａｔｕｒｅ２７１：４
５９−４６１（１９７８））は、親細胞Ｔ５１と同様ま
たはそれ以上にＣＤ２８⁺ＣＨＯ細胞に結合した。同様
に、白血球粘着不全患者由来のＣＤ１８欠失細胞系列
（ガンバロ細胞）（ビーテイー等、Ｌａｎｃｅｔ１：
５３５−５３７（１９８４））もＣＤ２８に特異的に粘
着した。従って、ＭＨＣクラスIIおよびＣＤ１８分子
は、ＣＤ２８への粘着を仲介しない。

【００７９】次に、Ｂ細胞表面抗原に対する１群のｍＡ
ｂについて、Ｔ５１細胞のＣＤ２８仲介粘着の阻害能力
をテストした。この実験では、Ｂ細胞関連抗原ＣＤ１９
ＣＤ２０、ＣＤ２１、ＣＤ２２、ＣＤ２３、ＣＤ３７、
ＣＤ３９、ＣＤ４０、ＣＤ７１、ＣＤ７２、ＣＤ７３、
ＣＤｗ７５、ＣＤ７６、ＣＤ７７、ＣＤｗ７８、ＩｇＭ
およびＩｇＤ；他の非系列制限抗原ＣＤ１８、ＣＤ３
２、ＣＤ４５、ＣＤ５４、およびＣＤ７１；ＣＤ４４お
よびその他のインテグリン；ＭＨＣクラスＩおよびクラ
スII抗原；および３０種の非クラスター化Ｂ細胞関連抗
原に対するｍＡｂを含む、Ｔ５１と反応する５７種のｍ
Ａｂをテストした。これらの加えて、ＦＡＣＳ分析でＴ
５１との反応を示さなかった多くのｍＡｂをテストし
た。最初のスクリーニング実験はＥＤＴＡ非存在下で行
い、つづいて、粘着を阻害する,ｍＡｂをＥＤＴＡ有無
の条件下で再テストした。これらのｍＡｂの内、ＭＨＣ
クラスＩ分子に対するｍＡｂ（Ｎａｍｂ１、Ｈ１ＤＥ、
Ｐ１０．１、Ｗ６／３２）、および、元々Ｂ細胞活性化
マーカーとして報告されていた（ヨコチ等、(１９８１)
上述）非クラスター化Ｂ細胞抗原（ＢＢ−１）に対する
ｍＡｂが、一定してＣＤ２８仲介粘着を３０％以上阻害
した。

【００８０】第４図に示した実験において、ＥＤＴＡ存
在下での抗−クラスＩｍＡｂ、Ｈ１ＤＥ、ＢＢ−１およ
び９．３による粘着阻害の投与量依存性を比較した。ジ
ジョエ細胞を⁵¹Ｃｒでラベルし、先に述べたように１０
mM ＥＤＴＡの存在下、ＣＤ２８⁺ＣＨＯ細胞に粘着さ
せた。指示量のｍＡｂ９．３、Ｈ１ＤＥ（抗−ヒトクラ
スＩＭＨＣ、ガウア等、Ｉｍｍｕｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ
２７：３５６−３６１（１９８８))またはｍＡｂＢ
Ｂ−１の存在下で測定した粘着は、ｍＡｂ非存在下で測
定した最高粘着数(結合細胞４５,０００) に対するパー
セセンテージで表した。ｍＡｂ９．３が阻害に最も効果
的であったが、ｍＡｂＢＢ−１は、１μg/ml以下の濃
度で粘着を約６０％も阻害しえた。また、ｍＡｂＨ１
ＤＥは、テストした全ての濃度で粘着の部分的阻害を示
した。粘着検定からＥＤＴＡを除去した場合、クラス１
ｍＡｂによる阻害は一貫してｍＡｂ９．３またはＢＢ−
１よりも小さくなり、より高いｍＡｂ濃度を必要とし
た。

【００８１】種々の細胞によるｍＡｂＢＢ−１の結合
は、ＣＤ２８特異的粘着と相関するＣＤ２８仲介粘着に
おける抗−クラスＩおよびＢＢ−１ｍＡｂにより認識さ
れる分子の役割を研究するために、第３図でＣＤ２８特
異的粘着に関してテストした特定の細胞系列に関する抗
原レベルを比較した。細胞をｍＡｂＨ１ＤＥおよびＢ
Ｂ−１を用いて間接的免疫蛍光染色した後、ＦＡＣＳで
分析した。細胞系列１Ａ２、ナマルワ、ＲＥＨおよびＨ
Ｌ６０（ＣＤ２８には特異的に粘着しなかった）は、全
て高レベルでｍＡｂＨ１ＤＥを結合したが、ダウジ細
胞（粘着しなかった）は検出可能な結合を示さなかっ
た。従って、ＣＤ２８仲介粘着およびクラスＩ抗原の発
現の間に直接的相関は見られなかった。一方、これらの
実験は、ＣＤ２８に対する粘着とｍＡｂＢＢ−１によ
る染色との間の相関を示した。

【００８２】この相関を確認するために、第３図でＣＤ
２８仲介粘着を試験した細胞系列をＦＩＴＣ結合ｍＡｂ
ＢＢ−１を用いた直接免疫蛍光による染色に関してテ
ストした（表１）。細胞系列をｍＡｂ非存在下、または
ＦＩＴＣ結合ｍＡｂＢＢ−１と共に、コールド（非ラ
ベル）ＢＢ−１ｍＡｂとのプレインキュベーション有無
の条件下でインキュベートした。表１に示した値は、線
型単位の平均蛍光強度を示している。ＣＤ２８レセプタ
ーに特異的に粘着した全ての細胞系列（第３図）は、特
異的に粘着しなかったものに比べて高いレベルでＦＩＴ
Ｃ結合体と結合した。ＦＩＴＣ結合体への結合に関して
競合する非ラベルｍＡｂＢＢ−１により、全ての場合
に抗原特異性が示された。

【００８３】表１ＣＤ２８レセプターに粘着する細胞は、ｍＡｂＢＢ−
１とも結合する。ＦＩＴＣ−ＢＢ−１特異的結合⁴ 細胞系列細胞型¹ NO ｍＡｂ −コールド＋コールドＣＤ２８粘着ポジティブ² Ｔ５１Ｂ−ＬＣＬ２．３１６．４３．０１３．４５Ｅ１Ｂ−ＬＣＬ２．１１３．０２．４１０．６ジジョエＢＬ２．３１７．８２．８１５．０ラジＢＬ２．１７．１２．８４．３ダウジＢＬ２．１６．４２．８３．６ＣＤ２８粘着ネガティブ³ １Ａ２Ｂ−ＬＣＬ２．１４．５４．３＜１ナマルワＢＬ２．２３．８２．２１．６ＲＥＨＢ−ＡＬＬ２．０２．１２．０＜１ＣＥＭＴ−ＡＬＬ２．３２．０１．９＜１ジャーカットＴ−ＡＬＬ２．２２．２２．０＜１ＨＳＢ２Ｔ−ＡＬＬ２．１２．３２．３＜１ＨＬ６０ＡＭＬ２．３３．１３．１＜１ＴＨＰ−１ＡＭＬ２．３３．１３．０＜１ ¹ Ｂ−ＬＣＬ＝Ｂ−リンパ腫細胞系列ＢＬ＝バーケッツ・リンパ腫Ｂ−ＡＬＬ＝Ｂ細胞由来急性リンパ腫白血病Ｔ−ＡＬＬ＝Ｔ細胞由来急性リンパ腫白血病ＡＭＬ＝急性単球白血病² ＣＤ２８粘着ポジティブ＝＞７０％でｍＡｂ９．３による粘着を阻害³ ＣＤ２８粘着ネガティブ＝＜７０％でｍＡｂ９．３による粘着を阻害⁴ 特異的結合＝（ＦＩＴＣ−ＢＢ−１−コールド）−（ＦＩＴＣ−ＢＢ−１＋コールド）

【００８４】Ｂ７抗原を発現するＣＯＳ細胞は、ＣＤ２
８に特異的に粘着する。ＣＤ２８仲介粘着においてｍＡ
ｂＢＢ−１により認識されるＢ７抗原の役割を、フリ
ーマン等、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４３：２７１４−２
７２２(１９８９）において単離およびシーケンシング
されたｃＤＮＡクローンを用いて調べた。ＣＯＳ細胞
を、先に示したフリーマン等（１９８９）上述の方法を
用い、Ｂ７抗原をコードするｃＤＮＡクローンを含む発
現ベクターでトランスフェクトした。４８時間後、１０
mM ＥＤＴＡを含むＰＢＳ中でのインキュベーションに
より、トランスフェクトしたＣＯＳ細胞をプレートから
取り出し、⁵¹Ｃｒでラベル化した。フリーマン等（上
述）により報告されているように、ｍＡｂＢＢ−１で
間接的に染色した後のＦＡＣＳ分析により、これらの細
胞がＢ７抗原を発現することが示された。先に述べた方
法を用い、Ｂ７トランスフェクトＣＯＳ細胞とＣＤ２８
⁺またはＣＤ２８^- ＣＨＯ細胞との粘着を、１０mM Ｅ
ＤＴＡの存在下で測定した。指示されている場合は、ｍ
Ａｂ９．３またはＢＢ−１（１０μg/ml）の存在下で粘
着を測定した。第５図に示したように、Ｂ７/ＢＢ−１
トランスフェクトＣＯＳ細胞は、容易にＣＤ２８⁺ＣＨ
Ｏ細胞に粘着する。すなわち、この粘着はｍＡｂ９．３
およびＢＢ−１の両方により完全に阻害される。ＣＤ２
８^-ＣＨＯ細胞への粘着は検出されなかった。この実験
を五回繰り返し、同様の結果を得た。

【００８５】別の実験において、この粘着が、非反応性
で同アイソタイプのコントロール、ｍＡｂＷ５（Ｉｇ
Ｍ）（リンスレー、（１９８６）上述）およびｍＡｂ
Ｌ６（ＩｇＧ２Ａ）（ヘルストロム等、（１９８６）上
述）、またはＣＯＳ細胞上のクラスＩ抗原と反応するｍ
ＡｂＨ１ＤＥによって阻害されないことが示された。
また、Ｂ７トランスフェクト細胞によるＣＤ２８仲介粘
着が、検定後のＣＨＯ細胞単層の顕微鏡観測で明確に観
測できた。ＣＯＳ細胞を発現可能なＣＤ４またはＣＤ５
ｃＤＮＡクローンでトランスフェクトした場合、ＣＤ２
８仲介粘着は検出できなかった。ＣＤ４およびＣＤ５の
発現は、免疫蛍光染色後のＦＡＣＳ分析で確かめた。Ｅ
ＤＴＡをこの系から除くと、ＣＤ５トランスフェクトＣ
ＯＳ細胞で測定される粘着は非常に増加するが、ｍＡｂ
９．３による阻害は受けなかった。一方、これらの条件
下、Ｂ７トランスフェクトＣＯＳ細胞による粘着は、な
おもｍＡｂ９．３により部分的に阻害された（約４０
％）。従って、ＣＯＳ細胞へのＢ７トランスフェクショ
ンがＣＤ２８レセプターに特異的に粘着する能力をその
細胞に提供している。

【００８６】先に示したＣＤ２８レセプターによって仲
介される細胞間粘着の検定法は、いくつかのリンパ腫お
よび白血病細胞系列、またはＬＰＳによる活性化後のマ
ウス脾臓細胞によるＣＤ２８仲介粘着を示した。これら
の結果は、いくつかの活性化Ｂリンパ球の細胞表面上の
ＣＤ２８レセプターに対する天然リガンドの存在を示し
ている。いくつかの証拠は、ＣＤ２８レセプターで阻害
されるＢ細胞分子がＢ７抗原であることを示している。
ｍＡｂＢＢ−１は、一群のｍＡｂの内で最も有意にＣ
Ｄ２８仲介粘着を阻害するｍＡｂであると同定された。
更に、Ｂ７抗原およびＣＤ２８仲介粘着の間に相関が見
られた（表１）。最後に、Ｂ７のｃＤＮＡでトランスフ
ェクトしたＣＯＳ細胞は、ＣＤ２８仲介粘着を示した。
以上の事を合わせると、これらの観察はＢ７抗原がＣＤ
２８レセプターのリガンドであるという強力な証拠を提
供している。ＣＤ２８（アルフォおよびシード、（１９
８７）上述）およびＢ７（フリーマン等（１９８９）上
述）の両方が免疫グロブリン・スーパーファミリーのメ
ンバーであるので、これらの相互作用は、本遺伝子ファ
ミリーのメンバー間の異好性認識の例を提示している
（ウイリアムスおよびバークレー、（１９８８）上
述）。

【００８７】先に示した結果に示されているように、Ｃ
Ｄ２８仲介粘着は、その他の細胞粘着システムとは幾つ
かの点で異なる。ＣＤ２８仲介粘着は、ＩＣＡＭ−１
（ＬＢ−２）、ＭＨＣクラスII（ＨＢ１０ａ）ＣＤ１８
（６０．３）、ＣＤ４４（ＨＥＲＭＥＳ−１ホーミング
・レセプター）、およびインテグリン（Ｐ３Ｅ３、Ｐ４
Ｃ２、Ｐ４Ｇ９）に対するｍＡｂを含む、その他の粘着
分子に対するｍＡｂによっては阻害されない。また、Ｃ
Ｄ２８仲介粘着は、ＥＤＴＡおよびＥＧＴＡに対して耐
性であり、この事は、このシステムが二価カチオンを必
要とするインテグリン（キシモト等、Ａｄｖ．Ｉｍｍｕ
ｎｏｌ．４６：１４９−１８２（１９８９)) およびホ
ーミング・レセプター（ストールマン、Ｃｅｌｌ５
６：９０７−９１０（１９８９））とは対照的に、二価
カチオンを必要としない。ＣＤ２８レセプターを活性化
Ｔ細胞の場合と比べて高レベルに発現する該システムに
おいては、カチオン依存性の“バックグランド”粘着
（即ち、ｍＡｂ９．３により阻害されない、第１図参
照）のために、ＣＤ２８仲介粘着を測定することが困難
な場合がよくある。予備実験では、ＥＤＴＡ非存在下で
のバックグランド粘着は、ＬＦＡ−１に仲介される粘着
を阻害するｍＡｂ６０．３によって阻害されることが示
された（ポールマン等、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３６：
４５４８−４５５３（１９８６))。至適条件下でさえ、
いくつかの細胞（ナマルワ等、第３図参照）はＣＨＯ細
胞に対する有意な非ＣＤ２８依存的粘着を示した。ま
た、非ＣＤ２８仲介粘着システムは、ｍＡｂＢＢ−１
による細胞粘着阻害の不完全性の原因かもしれない（第
４図）。トランスフェクトＣＯＳ細胞による粘着の阻害
に関して、このｍＡｂがより有効であることは（第５
図）、非ＣＤ２８仲介システムがＣＯＳ細胞中ではあま
り有効ではないことを示している。

【００８８】最後に、ＣＤ２８仲介粘着は、他の粘着分
子の場合と比較して、その細胞分布がＴ細胞およびＢ細
胞に限定されているように思われる。ＣＤ２８レセプタ
ーは、最初にＴリンパ球系列の細胞により発現される。
Ｂ７抗原は、まずＢリンパ球系列の細胞により発現され
る。この分布と一致して、ＣＤ２８に対するリガンドは
Ｂリンパ球系列の細胞のみに検出された。このように使
用可能なデータはＤ２８が主にＴ細胞およびＢ細胞間の
粘着を仲介していることを示している。しかし、ＣＤ２
８の発現は血漿細胞でも検出され（コズボー等、Ｊ．Ｉ
ｍｍｕｎｏｌ．１３８：４１２８−４１３２（１９８
７））、またＢ７は、単球等のその他の細胞系列でも検
出されたことから（フリーマン等（１９８９）上述）、
他の細胞型もこのシステムを採用していると考えること
が出来る。多くの粘着分子が、免疫応答の際にＴ細胞お
よびＢ細胞間の相互作用を仲介することが知られてお
り、また、ＣＤ２８およびＢ７抗原を含めて、これらの
分子の中には、活性化後、そのレベルが増加するものが
あると報告されている。このような分子の増加は、活性
化Ｂ細胞が休止Ｂ細胞に比べて抗原特異的Ｔ細胞増殖の
刺激に関してより有効である理由を説明するのに役立
つ。Ｂ７抗原は休止Ｂ細胞では発現されないので、ＣＤ
２８仲介粘着は、免疫応答の開始よりはむしろその維持
または増幅に働いているのかも知れない。また、このよ
うな働きは、リンホカインおよびサイトカイン・レベル
の調節におけるＣＤ２８の機能と一致している（トンプ
ソン等、（１９８９）上述；およびリンドステン等、
（１９８９）上述）。

【００８９】実施例２：CD28レセプタとB7抗原との間の
相互作用の特徴付け本例ではモデル系としてＢ細胞のアロ抗原−誘発性成熟
を利用して、主組織適合性錯体(MHC) クラスII抗原−反
応性CD4 正Ｔヘルパー(T_h ）細胞および抗原提示Ｂ細胞
表面上での、Ｂ細胞の免疫グロブリン−分泌細胞(IgSC)
への分化に導くＴ_h -B細胞同族相互作用の際の該CD28レ
セプタの関与を立証する。CD4 ⁺Ｔ_h と抗原提示Ｂ細胞
との間の同族相互作用は両細胞型の活性化および分化を
もたらし、結果として免疫グロブリン−分泌細胞の発現
に導く（モラー(Moller)編、Immunol. Rev., 1987, 99:
1、上記文献）。同種内のMLR は同族Ｔ_h-B細胞相互作用
を解析するための理想的な系を与える。というのは、ア
ロ抗原特異的CD4 ⁺Ｔ_h がアロ抗原担持Ｂ細胞の活性化
並びにその免疫グロブリン分泌細胞への分化の両者を誘
起するからである（チオラッツィ(Chiorazzi) 等, Immu
nol. Rev., 1979, 45:219;コツィン(Kotzin)等, J. Imm
unol., 1981, 127:931; フリードマン(Friedman)等, J.
Immunol., 1982, 129:2541;ゴールドバーグ(Goldberg)
等, J. Immunol., 1985, 135:1012;およびクロー(Crow)
等, J. Ex. Med., 1986,164:1760)。先ず、該同種内のM
LR におけるＴ_h およびＢ細胞の活性化の際のＴ_h細胞上
のCD28レセプタおよびそのリガンドB7の関与を、これら
分子に向けられた二十日ネズミmAb を使用して調べた。

【００９０】培地：完全培地(CM)は、100 U/mlのペニ
シリンＧ、100 μg/mlのストレプトマイシン、2 mMのL-
グルタミン、５×10^-5M の2-MEおよび10% のFBS(イルビ
ンサイエンティフィック(Irvine Scientific) 社）を補
充したRPMI1640（カリフォルニア州サンタアナのイルビ
ンサイエンティフィック社）からなっていた。細胞およびmAb ： EBV-形質転換Ｂ細胞ラインCESS(HLA
-AS1, A3; B5, B17; DR7）、JIJOYEおよびSKW6.4(HLA-A
la; B27, B51; DR7)をATCCから得た。EBV-形質転換Ｂ細
胞ラインARENT(HLA-A2; B38, B39; DRw6) およびMSAB(H
LA-A1, A2; B57;DR7)はカリフォルニア州スタンフォー
ドのスタンフォードユニバーシティースクールオブメデ
ィスン(Stanford University School of Medicine)のD
r. E.G.イングルマン(Engleman)により提供された。ハ
イブリドーマOKT4(IgG抗−CD4)、OKT8(IgG抗−CD8)およ
びHNK1(IgM抗−CD57) はATCCから入手し、かつこれらハ
イブリドーマからの腹水液をプリスタンで感作したBALB
/cマウス内に発生させた。抗−CD28 mAb 9.3(IgG2a) の
生成並びに特徴付けはレッドベター(Ledbetter) 等, J.
Immunol., 1985, 135:2331;ハラ(Hara)等, J, Exp. Me
d., 1985, 161:1513およびマーチン(Martin)等, J. Imm
unol., 1986, 136:3282 に記載されている。これらを本
発明の参考文献とする。ダムル＆ドイル(Damle and Doy
le) により記載されたように（J. Immunol., 1989, 14
3:1761 、これを本発明の参考文献とする）、mAb4H9(Ig
G2a 抗-CD7) はDr. イングルマン(Engleman)により提供
され、かつトコチ(Tokochi) 等により記載された（J. I
mmunol., 1981, 128:823、これを本発明の参考文献とす
る）、mAb 抗−B7抗体(BB1; IgM)はワシントン、シアト
ル、ユニバーシティーオブワシントンのDr.E. クラーク
(Clark) により提供された。

【００９１】健康なドナーからの抹消血単核細胞(PBMC)
を羊赤血球ロゼット形成技術を利用して、Ｔおよび非-T
細胞に分離し、パニングによりCD4 ⁺サブセットに分離
し、更にダムル等のJ. Immunol., 1987, 139:1501(これ
を本発明の参考とする）に記載のようにCD4 ⁺CD45RA-CD
45RO ⁺記憶サブポピュレーション(memory subpopulatio
n)に分離した。

【００９２】Ｔ細胞の増殖応答：Ｔ細胞の増殖応答に
及ぼす抗−CD28および抗−B7の効果を調べるために、5
0,000個のCD4 ⁺CD45RO⁺Ｔ細胞を、１×10⁴ 放射線照射
した（¹³ ⁷Cs 源から8000ラド）EBV-形質転換した同種内
のＢ細胞（または2.5 ×10⁴個の非-T細胞）と共に、0.2
mlのCM中で湿潤した5%CO₂ と95% 空気との雰囲気内
で、CD7 、CD28、CD57またはB7抗原と反応性の10μg/ml
のmAb の存在下で培養することにより感作した。CD4 ⁺C
D45RO⁺Ｔ細胞も、ツベルクリンの可溶性、精製タンパク
誘導体（PPD,カナダ、オンタリオ、ウイローデールのコ
ンノーラボラトリーズ(Connough Laboratories))100 μ
g/mlにより、１×10⁴ 放射線照射した(3,000ラド）オー
トロガス非-T細胞および上記のmAbsの存在下で独立に感
作した。３種の培養物を、細胞を収穫して新たに合成さ
れたDNA 中への放射性標識の取り込みを測定する前に、
１μCi／ウエル = 37 kBq/ウエルの[³H]dThd(6.7 Ci/m
M,NEN,マサーチュセッツ州、ボストン）で16時間パルス
処理した。結果をcpm ±SEMで表した。増殖応答は培養
の７日後に調べた。EBV-形質転換Ｂ細胞をこれら実験に
おける感作細胞として使用した。というのは、これらＢ
細胞が種々の活性化Ｂ細胞の特徴、例えば高いレベルの
MHC クラスIIおよびB7分子の発現を示すからである（フ
リーマン（Freeman）等， J. Immunol.， 1987， 139:
3260;およびヨコチ(Yokochi) 等, J. Immunol., 1981,
128:823）。

【００９３】第６図はこれら実験の結果を示す。抗−CD
28 mAb(9.3 IgG2a) は存在するが、イソタイプ−適合抗
−CD7 mAb(4H9, IgG2a）は存在しないことにより、CD4
⁺Ｔ細胞の同種内のＢ細胞に対する該MLR 増殖応答が矛
盾なく阻害された。同様に、該同種内のMLR への抗−B7
mAb(BB1; IgM)の添加はＴ細胞の増殖を阻害したが、イ
ソタイプ−適合抗−CD57(HNK1; IgM) の添加はこれを阻
害しなかった。Ｔ細胞のMLR 応答に及ぼす抗−CD28 mAb
9.3の阻害作用は、以前にダムル(Damle) 等,J. Immuno
l., 1988, 120:1753 およびダムル(Damle) 等, Proc. N
atl. Acad. Sci. USA, 1981, 78:5096 に報告された観
測と一致している。該同種内のMLR と同様に、オートロ
ガス非−Ｔ細胞により示される可溶性のAg PPDに対する
CD4 ⁺Ｔ細胞の増殖応答も、抗−CD28および抗−B7によ
り阻害された。抗−CD28 mAb 9.3(IgG2a) および抗−B7
mAb, BB1(IgM)両者は同種内のMLR および可溶性抗原−
誘起増殖応答を阻害するが、抗−CD28−媒介阻害は、調
べた全ての応答固体−感作体の組み合わせに対して、常
に抗−B7による阻害よりも強力であった。これらの観測
は、上記の如く、B7⁺Ｂ細胞に対する該CD28−媒介付着
の遮断に関する抗−B7 mAbのより低い能力と一致してい
る。

【００９４】Ｂ細胞によるＴ細胞誘起免疫グロブリン(I
g)産生同種Ｔ_h -B相互作用中のCD28およびB7の役割を更に調べ
るために、２種のEBV-形質転換Ｂ細胞ライン、即ちIgG-
分泌DR7 ⁺CESSおよびIgM-分泌DR7 ⁺SKW を使用した。適
当に感作すると、これらの両Ｂ細胞ラインは各対応する
Igイソタイプの産生を有意に増大する。先ず、ダムル等
のJ. Immunol., 1984, 133: 1235（これを本発明の参考
文献とする）に記載されているように、CESSおよびSKW
両Ｂ細胞のIg産生に及ぼすDR7-特異的CD4 ⁺CD45RO⁺Ｔ_h
ラインの効果を調べた。DR7-感作CD4 ⁺Ｔ_h 細胞を、応
答体CD4 ⁺CD45RO⁺Ｔ細胞(HLA-A26, A29; B7, B55; DR9,
DR10)および感作体細胞としての放射線照射したMSAB(D
R7⁺)B細胞とからなる同種内のMLC から誘導した。不連
続パーコール(Percoll) 密度勾配遠心分離を利用した、
静止CD4 ⁺CD45RO⁺Ｔ細胞の単離およびDR7-感作CD4 ⁺CD4
5RO⁺Ｔリンパ芽球の単離も、同様にダムル等の上記文献
(1984)に記載されている。これらのDR7-感作CD4 ⁺Ｔ_h
細胞は、放射線照射したMSAB B細胞および50U/mlのIL-2
の存在下で連続的に増殖した。その機能解析に先立っ
て、生存DR7-感作Ｔ_h 細胞をフィコールハイパック(Fic
oll-Hypaque)濃度勾配遠心分離により単離し、DR7 ⁺供
給細胞またはIL-2の不在下でCM中で一夜維持し、その後
細胞を含まない上澄(SN)中に分泌された免疫グロブリン
を、固層ELISA 法を利用して定量した。

【００９５】HLA-DR7 ⁺EBV-形質転換Ｂ細胞ラインから
のCESSおよびSKW 両Ｂ細胞２×10⁴-2.5 ×10⁴ 細胞によ
る、Ig産生に及ぼすＴ_h 細胞の効果を調べるために、Ig
M-産生SKW またはIgG-産生CESSを、96時間に渡り変動す
る数のDR7-感作CD4 ⁺CD45RO⁺Ｔ_h 細胞と共に培養し、そ
の後これら培養物から細胞を含まないSNを集め、固層EL
ISA 法を利用してIgM(SKW 培養物）またはIgG(CESS培養
物）の定量のために分析した。これらＢ細胞による外因
性のIL-6(1-100 U/ml)により誘発されたIg産生は、これ
らのＢ細胞ラインによる非−同種Ig産生をモニタするた
めの正のコントロールとしても使用された。新たに単離
された静止CD4 ⁺CD45RO⁺Ｔ_h 細胞（DRt-感作CD4 ⁺Ｔ_h
細胞に対してオートロガスである）をもDR7-感作CD4 ⁺
Ｔ_h 細胞に対するコントロールとして同時に調べた。

【００９６】Ig定量化：培養SN中のIgG またはIgM は
フォルクマン(Volkman) 等のProc. Natl. Acad. Sci. U
SA, 1981, 78:2528(これを本発明の参考文献とする）に
記載のように、固層ELISA 法を利用して測定した。簡単
に言えば、96−ウエルの平底マイクロタイタELISA プレ
ート（コーニング(Corning),コーニング, NY) を、一夜
４℃にてインキュベートした10μg/mlのアフィニティー
−精製山羊抗−ヒトIgGまたはIgM Ab（タゴ(Tago), カ
リフォルニア州、バーリンガム）を含む200 μl/ウエル
の炭酸ナトリウムバッファー(pH 9.6)で被覆し、次いで
PBS で洗浄し、ウエルを更に2%の BSAのPBS 溶液(BSA-P
BS) で遮断した。アッセイすべき試料を適当な希釈率で
該ウエルに添加し、アフィニティー−精製山羊抗−ヒト
IgG またはIgM Ab（タゴ）のホースラディッシュペルオ
キシダーゼ(HRP)-結合F(ab')₂ 画分の1:1000希釈物200
μl/ウエルと共にインキュベートした。次いで、これら
のプレートを洗浄し、100 μl/ウエルのo-フェニレンジ
アミン（ミズーリー州、セントルイスのシグマ（Sigm
a）社）溶液（pH5.5 のシトレート−燐酸バッファー中
0.6 mg/ml および0.045%の過酸化水素）を添加した。発
色を2N硫酸で停止させた。490 nmにおける吸収を自動化
ELISA プレートリーダーで測定した。テスト試料および
コントロール試料を３回テストし、得られた吸収値を、
該SN試料を用いて同時に実施した公知のIgG またはIgM
標準と比較し、標準曲線を得、これを使用して培養SN中
のIgの濃度を定量した。データは３回または４回行った
培養物のng/ml単位で表したIg±SEM である。

【００９７】第７図は、1:1 または1:2 Ｔ_h :Bにおいて
誘発された最適Ig産生を有するDR7-感作Ｔ_h の濃度の関
数としての、各Ｂ細胞ラインによるIg産生を示す。1:1
より高いＴ_h :B比において、Ig産生の阻害が観測され
た。従って、全てのさらなる実験はＴ_h :B比1:2 を使用
して実施した。第７図に示した如く、未感作静止CD4 ⁺
Ｔ_h細胞はSKW Ｂ細胞による僅かなIgM 産生の誘起を示
したが、培養４日目のCESS B細胞によるIgG 産生には何
等効果を示さなかった。この僅かなヘルパー効果は未感
作のCD4 ⁺CD45RO⁺集団について、該Ig誘起培養の際に観
測された。DR7-感作CD4 ⁺Ｔ_h 細胞により誘発されたCES
S(IgG) またはSKW(IgM)Ｂ細胞によるIg産生はHLA-DR7
に対して特異的であった。というのは、同様に活性化さ
れたDRw6-感作CD4 ⁺Ｔ_h (DRw6 ⁺ARENT B 細胞により感
作され、DR7-感作Ｔ_h に対してオートロガスである）
は、CESSまたはSKW Ｂ細胞の何れによってもそのIg産生
が誘起され得なかったからである。

【００９８】同種Ｔ_h :B−誘起Ig生産の際のCD28および
B7の役割を抗−CD28および抗−B7 mAbを使用して更に調
べた。CESSおよびSKW Ｂ細胞両者は本質的にB7抗原をそ
の表面上に発現し、かくしてＴ_h -B同種相互作用または
サイトカイン−誘起非−同種成熟で利用するための均一
に活性化されたＢ細胞の源となる。従って、DR7 ⁺Ｂ細
胞（CESSまたはSKW)を、Ｔ_h :B比1:2 にて４日間DR7-特
異的CD4 ⁺Ｔ_h ラインと共に培養し、またCD28およびB7
に対するmAb(およびコントロールとしてのCD7およびCD5
7）を種々の濃度でこれら培養物に添加した。培養３日
目の終了時点におけるIg生産（IgM 第8a図およびIgG 第
8b図) を細胞を含まないSNについて定量した。第８図は
抗−CD28および抗−B7のイソタイプ−適合性mAb コント
ロール（それぞれ抗−CD7 および抗−CD57) ではなく、
抗−CD28および抗−B7両者が、ドーズに依存した様式
で、Ｂ細胞によるＴ_h 誘起Ig産生を阻害した。ここで
も、Ig産生の抗−CD28mAb-媒介阻害は抗−B7mAb による
阻害よりも強力であった。対照的に、外因性IL-6（非−
同種分化）で誘起されたＢ細胞によるIg産生は上記mAb
の何れによっても影響されなかった。

【００９９】これらの結果は、Ｔ_h 細胞の活性化の他
に、同種Ｔ_h -B共同の際のCD28とB7との相互作用が活性
化Ｂ細胞のIg分泌性細胞への分化にとって重要であるこ
とを強く示唆している。上記の結果は、Ｔ_h :B相互作用
に影響を与える同時−感作性トランスメンブランレセプ
タ−リガンド対としての、CD28レセプタとそのリガン
ド、即ちB7抗原との相関関係を立証している。Ｔ_h -B共
同の際のCD28およびB7両者の関与は、抗−CD28および抗
−B7によるＴ_h 細胞の活性化ばかりか、Ｔ_h により誘起
されたＢ細胞のIgSCへの分化をも阻害するという事実に
より立証された。抗−CD28および抗−B7mAb の該観察さ
れた阻害効果はこれらの応答に根源的なCD28:B7 相互作
用の阻害によるものである。

【０１００】CD28レセプタとB7抗原との間の相互作用は
サイトカイン類の産生およびその結果としてのＢ細胞の
分化に影響を与える可能性がある。Ｔ_h -B共同の際のB7
によるCD28の結合は、Ｂ細胞の免疫グロブリン分泌性細
胞への分化の際に利用するためのサイトカイン類の持続
的な合成並びに放出を容易なものとすることができる。
外因性のIL-4またはIL-6により誘起されるCESSまたはSK
W Ｂ細胞の細胞依存性分化の抗−CD28および抗−B7 mAb
による阻害がないことは、CD28:B7 相互作用がこれらの
サイトカイン類の生産またはＢ細胞に対するこれらサイ
トカイン類の放出もしくはこれら事象の両者を制御して
いることを示唆する。

【０１０１】CD28とB7との間の相互作用はＴ_h -B相互作
用に制限されないことは明白であり、より一般的に他の
抗原−提示細胞、例えばモノサイト/Mφ、樹枝状細胞お
よび表皮ランゲルハンス細胞においても正しい。Ｔ_h 細
胞表面上のTcR/CD3 複合体による、抗原−提示細胞表面
上のMHC クラスII分子との関連で示された呼称上の抗原
の結合は、これら細胞による高いB7抗原の発現に導き、
これはCD28との相互作用を介して、次にＴ_h による種々
のサイトカイン類の生産を容易化する可能性がある。こ
のことは、順にＴ_h およびＢ細胞両者の成長並びに分化
を誘起する。

【０１０２】実施例３：CD28レセプタとB7抗原との間の
相互作用の特徴付け I. 融合タンパクの調製 CD28レセプタとB7抗原との間の相互作用の生化学的およ
び機能的な局面を更に特徴付けするために、B7およびCD
28のヒト免疫グロブリン Cγ1(ヒトIg Cγ1)連鎖との融
合タンパクを構築し、発現させ、これら分子間の相互作
用の特異性および見掛けのアフィニティーを測定するの
に使用した。精製したB7Ig融合タンパクおよびB7抗原で
トランスフェクションしたCHO 細胞を、Ｔ細胞の活性化
およびサイトカイン産生に及ぼすこの相互作用の機能的
効果を調べるために使用した。

【０１０３】B7IgおよびCD28Ig融合タンパクの調製 B7IgおよびCD28Ig融合タンパクを以下の如く調製した。
各タンパク（B7およびCD28）の細胞外ドメインに対応す
るアミノ酸配列をコードするDNA を、ヒト免疫グロブリ
ンＣγ１のヒンジ領域CH2 およびCH3 に相当するアミノ
酸配列をコードするDNA と接合した。これは以下の如く
実施した。

【０１０４】プラスミドの構築アルフォおよびシード(Aruffo and Seed), Proc. Natl.
Acad. Sci. USA, 1987, 84:8573（これを本発明の参考
文献とする）に記載され、またマサーチュセッツ州、ボ
ストンのマスジェネラルホスピタル(Mass General Hosp
ital) のDr. アルフォおよびDr. シードにより提供され
たCD28に対応するアミノ酸配列をコードするcDNAを含む
発現プラスミド(pCD28) を使用した。アルフォ(Aruff
o), Cell,1990, 61:1303 に記載され、かつDr. アルフ
ォにより提供されたCD5 に相当するアミノ酸配列をコー
ドするcDNAを含む発現プラスミド（pCD5）およびフリー
マン(Freeman) 等, J. Immunol., 1989, 143:2714 に記
載され、かつDr. フリーマン（マサーチュセッツ州、ボ
ストンのダナファーバーキャンサーインスチチュート(D
ana Farber Cancer Institute)) により提供されたB7に
相当するアミノ酸配列をコードするcDNAを含む発現プラ
スミド(pB7) をも使用した。

【０１０５】CD28およびB7の可溶性型の発現という初期
の試みのために、（OMCD28 およびOMB7）の構築を行っ
たが、ここでは終止コドンを該トランスメンブランドメ
インの上流側に導入し、かつ固有のシグナルペプチドを
オンコスタチンＭ（マリク(Malik) 等, Mol. Cell Bio
l., 1989, 9:2847)からの該シグナルペプチドで置換し
た。これらは再構築(OMCD28)のための、またはPCR のた
めのプライマー(OMB7)として合成オリゴヌクレオチドを
使用して実施した。OMCD28は、そのシグナルペプチドを
オンコスタチンＭからの同様な領域で置換することによ
ってより効果的な発現を達成すべく変性したCD28cDNAで
ある。CD28IgおよびB7Ig融合構築物は２つの部分で作ら
れた。5'部分は鋳型としてOMCD28およびOMB7を使用し、
かつオリゴヌクレオチド：CTAGCCACTGAAGCTTCACCATGGGT
GTACTGCTCACAC(SEQ ID NO:1)( オンコスタチンＭシグナ
ルペプチドに対応）を正プライマーとし、かつ以下のオ
リゴヌクレオチド：TGGCATGGGCTCCTGATCAGGCTTAGAAGGTC
CGGGAAA(SEQ ID NO:2)またはTTTGGGCTCCTGATCAGGAAAATG
CTCTTGCTTGGTTGT(SEQ ID NO:3)の何れかを逆プライマー
として使用して作成した。このPCR 反応の生成物を、該
PCR プライマー中に導入されたサイトとして、制限エン
ドヌクレアーゼ(Hind III およびBclI）で開裂し、ゲル
精製した。

【０１０６】ヒトIg Cγ１配列に相当するこの融合構築
物の3'部分は、鋳型としてミエローマ細胞ライン産生ヒ
ト−マウスキメラmAb L6（ワシントン州、シアトルのブ
リストル−マイヤーズスクイブファルマシューティカル
リサーチインスチチュート(Bristol-Myers Squibb Phar
maceutical Research Institute)のDr.P. フェル(Fell)
& M. ゲイル(Gayle) により提供された）からのRNA を
使用して、組み合わせた逆転写酵素（鳥類骨髄芽球症ウ
イルス由来のもの、ニューヨーク州、ベイポートのライ
フサイエンスアッソシエーツ(Life Science Associate
s))-PCR反応により作成した。正プライマーとしてオリ
ゴヌクレオチド：AAGCAAGAGCATTTTCCTGATCAGGAGCCCAAAT
CTTCTGACAAAACTCACACATCCCCACCGTCCCCAGCACCTGAACTCCTG
(SEQ ID NO:4)を使用し、逆プライマーとしてかつオリ
ゴヌクレオチド：CTTCGACCAGTCTAGAAGCATCCTCGTGCGACCG
CGAGAGC(SEQ ID NO:5)を使用した。反応生成物をBclIお
よびXbaIで開裂し、ゲル精製した。最終的構築物は、Ig
Cγ１配列を含むBclI／XbaI開裂フラグメントと共に、
CD28またはB7配列を含むHindIII/BclI開裂フラグメント
をHindIII/XbaI開裂CDM8に接合することにより組み立て
た。接合生成物をMC1061/p3 E.コリ細胞内で形質転換
し、コロニーを適当なプラスミドについてスクリーニン
グした。得られた構築物の配列はDNA 配列決定により確
認した。該B7構築物中で使用したDNA は、該B7抗原の細
胞外ドメインに対応する配列のほぼ位置１からほぼ位置
215 までのアミノ酸をコードし、またCD28に対しては該
DNA は該CD28レセプタの細胞外ドメインに対応する配列
のほぼ位置１からほぼ位置134 までのアミノ酸をコード
する。

【０１０７】CD5Ig を同様にして、正プライマーとして
オリゴヌクレオチド：CATTGCACAGTCAAGCTTCCATGCCCATGG
GTTCTCTGGCCACCTTG(SEQ ID NO:6)を使用し、かつ逆プラ
イマーとしてオリゴヌクレオチド：ATCCACAGTGCAGTGATC
ATTTGGATCCTGGCATGTGAC(SEQID NO:7)を使用して構築し
た。このPCR 生成物を制限エンドヌクレアーゼで消化
し、上記の如くIg Cγ１フラグメントと接合した。得ら
れた構築物(CD5Ig) はCD5 のほぼ位置１からほぼ位置34
7 までの残基を含むアミノ酸配列、該Ig Cγ１ヒンジ領
域を伴う該構築手順により導入された２種のアミノ酸
（アミノ酸DQ）をコードする。

【０１０８】B7およびCD28の可溶性誘導体を作成すると
いう初期の企てにおいては、cDNA構築物はそのトランス
メンブランドメインのNH₂-末端側において端部が切り取
られた分子をコードするようにされた。いずれの場合に
おいても、元のシグナルペプチドはオンコスタチンＭ
（マリクの1989年の上記文献）由来のシグナルペプチド
で置換され、これは過渡的な発現アッセイにおける分泌
タンパクの効果的な放出を媒介する。これらのcDNAは発
現ベクターにクローニングされ、COS 細胞中にトランス
フェクションされ、かつ使用済培地をB7およびCD28の分
泌型を知るためにテストした。この様にして、B7の数種
の可溶性型を生成したが、繰り返し実施した試みでは可
溶性CD28分子は検出されなかった。

【０１０９】次の工程はレセプタIg Cγ１融合タンパク
を構築する工程である。第９図に示したように、B7およ
びCD28の細胞外領域に対応するアミノ酸配列をコード
し、前方にオンコスタチンＭのシグナルペプチドをもつ
DNA はIg Cγ１cDNAに対するフレーム内に融合された。
構築中、該Igヒンジジスルフィドはセリン残基に関して
変異形成を生じて、鎖内ジスルフィド結合が破壊され
る。この得られる融合タンパクはCOS 細胞中で生成さ
れ、これを以下に記載するように固定化タンパクＡ上で
のアフィニティークロマトグラフィーにより精製した。
精製タンパクの収量は使用した培地１Ｌ当たり典型的に
は1.5-4.5 mgであった。

【０１１０】ポリメラーゼ連鎖反応(PCR): PCR のため
に、各融合タンパクに関して、以下に記載するようにプ
ライマー対を使用して、DNA フラグメントを増幅した。
PCR 反応（最終体積0.1 ml）をTag ポリメラーゼバッフ
ァー（ストラタジーヌ(Stratagene)、カリフォルニア
州、ラジョラ) 中で実施した。このバッファーは各20μ
モルのdNTP、50-100ピコモルの指定したプライマー、鋳
型（カワサキ(Kawasaki)のPCR プロトコールズ(PCR Pro
tocols),アカデミックプレス, 1990, pp. 21-27(これを
本発明の参考文献とする）に記載されているように、ラ
ンダムヘキサマープライマーを使用して≦１μg の全RN
A から合成した１ngのプラスミドまたはcDNA）、および
Tag ポリメラーゼ（ストラタジーヌ）を含む。反応をサ
ーモサイクラー（パーキンエルマー社(Perkin Elmer Co
rp.)、コネチカット州、ノルウォーク）で16-30 サイク
ル（典型的なサイクルは、94℃にて１分、50℃にて1-2
分および72℃にて1-3 分の段階を含む）実施した。

【０１１１】細胞培養およびトランスフェクション：CO
S(猿の腎臓細胞）をシードおよびアルフォ(Seed and Ar
uffo), Proc. Natl. Acad. Sci., 1987, 84:3365（これ
を本発明の参考文献とする）のプロトコールの改良法を
使用して発現プラスミドでトランスフェクションした。
このトランスフェクションに先立ち、細胞を10cm径の培
養皿１個当たり10⁶ 個接種し、18〜24時間培養した。５
mlの血清を含まないDMEM(0.1 Mm のクロロキンおよび60
0 μg/mlのDEAEデキストラン(DEAE Dextran)を含む）中
のプラスミドDNA(約15μg/皿）を添加し、細胞を37℃に
て3-3.5 時間インキュベートした。トランスフェクショ
ンした細胞を、次いでPBS 中の10％ジメチルスルホキシ
ドで簡単に処理（約２分）し、10%FCS含有DMEM中で37℃
にて16〜24時間インキュベートした。トランスフェクシ
ョンの24時間後に、培地を取り出し、血清を含まないDM
EM(6 ml/皿）で置換した。インキュベーションを37℃に
て３日間継続し、この時点で使用済培地を集め、新たな
血清を含まない培地を添加した。37℃にて更に３日間イ
ンキュベートした後、使用済培地を再度集め、細胞を捨
てた。

【０１１２】CD28、CD5 またはB7を発現するCHO 細胞
を、リンスレイ(Linsley) 等の1991年の上記文献記載の
如く、以下のようにして単離した。簡単に言えば、CD2
8、CD5またはB7を発現する安定なトランスフェクタント
をジヒドロ葉酸リダクターゼ−欠乏卵巣細胞(dhfr ^- CH
O)と、上記実施例１に記載のような適当な発現プラスミ
ドと選別可能なマーカー、pSV2dhfr、との混合物との同
時トランスフェクションに従って単離した。次いで、ト
ランスフェクタントを最終濃度１μＭまで増大する濃度
のメトトレキセート中で育成し、かつ10% の子牛血清(F
BS) 、0.2 mMのプロリンおよび１μＭのメトトレキセー
トを補充したDMEM中に維持した。高レベルでCD28(CD28
⁺CHO)またはB7(B7 ⁺CHO)を発現するCHO 細胞ラインを、
mAb 9.3またはBB-1による間接的免疫染色に引き続き多
数回の蛍光−活性化細胞選別(FACS ^R ) を実施すること
により単離した。CD28またはB7(DHFR ⁺CHO)の表面発現
に関して負に増幅されたCHO 細胞もCD28−トランスフェ
クション処理集団からのFACS ^R により単離した。

【０１１３】免疫染色およびFACS^R 分析：トランスフ
ェクション処理したCHO 細胞または活性化Ｔ細胞を間接
的免疫染色により分析した。染色前に、CHO 細胞を10mM
のEDTAを含むPBS 中でインキュベートすることによりそ
の培養容器から取り出した。細胞を、先ず10μ/ml の二
十日ネズミのmAb 9.3(ハンセン(Hansen)等, Immunogene
tics, 1980, 10:247) またはBB-1（ヨコチ(Yokochi) 等
の上記文献）あるいはIg融合タンパク(CD28Ig 、B7Ig、
CD5Ig またはIg Cγ１を含むmAb L6、これらは全て10%F
CSを含有するDMEM中10μ/ml)と共に４℃にて１〜２時間
インキュベートした。次いで、細胞を洗浄し、FITC−複
合化第二段階試薬（mAb に対して山羊抗−マウスIg血
清、または融合タンパクに対して山羊抗−ヒトIg Cγ血
清；タゴ社、カリフォルニア州、バーリンガム）と共に
0.5-２時間４℃にて更にインキュベートした。４組の10
個からなる対数増幅器を備えたFACS IV ^R 選別機（カリ
フォルニア州、マウンテンビューのベクトンディッキン
ソン＆社(Becton Dickinson and Co.)を使用して、蛍光
を10,000個の染色細胞につき分析した。

【０１１４】Ig融合タンパクの精製：トランスフェク
ション処理したCOS 細胞から得た使用済の血清を含まな
い培地の第一、第二および第三回収物をIg融合タンパク
精製用の源として使用した。低速遠心処理により細胞デ
ブリスを除去した後、pH8.0 の0.05 Mクエン酸ナトリウ
ムで平衡化した固定化プロテインＡ（リプリゲン社(Rep
ligen Corp.)、ケンブリッジ、MA) のカラム（床容積約
200-400 ml培地／mlに充填）に培地を適用した。該培地
の適用後、該カラムを1Mの燐酸カリウム(pH 8)で洗浄
し、結合タンパクを0.05 Mのクエン酸ナトリウム(pH 3)
で溶出した。画分を集め、即座に1/10体積の2MTris(pH
8)の添加により中和した。A₂₈₀吸収性物質のピークを含
む画分をプールし、使用前にPBS に対して透析した。吸
光係数は、既知の吸光度をもつ溶液のアミノ酸解析によ
り、CD28IgおよびB7Igに対してそれぞれ2.4 および2.8
ml/mg であることがわかった。精製されたCD28Igおよび
B7Igの結合活性の回収率は、B7⁺およびCD28⁺CHO 細胞の
間接的蛍光染色後のFACS^R 解析により判定したところほ
ぼ定量的であった。

【０１１５】SDS-PAGE： SDS-PAGEを、アクリルアミド
の積層ゲルを含む線形アクリルアミド勾配ゲル上で実施
した。B7Ig（第10図のレーン１および３）またはCD28Ig
（レーン２および４）のアリコート(1μg)を非還元(-β
ME、レーン１および２）または還元(+βME、レーン３お
よび４）条件下でSDS-PAGE(4-12%アクリルアミド勾配）
にかけた。第10図のレーン５は分子量(M_r ) マーカーを
表す。ゲルをクーマシーブリリアントブルーで染色し、
脱染色し、写真撮影または乾燥し、オートラジオグラフ
ィー用のX-線フィルム（コダック(Kodak) XAR-5;ニュー
ヨーク州、ロチェスターのイーストマンコダック社(Eas
tman Kodak Co.))に暴露してタンパクを可視化した。

【０１１６】第10図に示した如く、該B7Ig融合タンパク
は、非還元条件下でのSDS-PAGEの際に、支配的にM _r 7
0,000の単一種として泳動し、少量のM _r 約150,000 の
種として泳動する物質を含んでいた。還元後には、単一
のM _r 約75,000の種が観察された。CD28Igは非還元条件
下ではM _r 約140,000 の種として、また還元後はM _r 約
70,000の種として泳動した。このことは、これがホモダ
イマーとして発現されることを示している。該Ig Cγ１
ヒンジシステインは変異形成されているので、ジスルフ
ィド結合は恐らくシステイン残基を含み、該システイン
残基は当然該CD28ホモダイマー中に鎖間結合を形成する
（ハンセン(Hansen)等, Immunogenetics,1980, 10:24
7）。

【０１１７】B7Ig融合タンパクおよびCD28Ig融合タンパ
クに相当するアミノ酸配列をコードするDNA は、ブダペ
スト条約に基いて、1991年５月31日付けでロックビルメ
リーランドのATCCに寄託され、承認番号68627(B7Ig) お
よび68628(CD28Ig) が与えられている。

【０１１８】II. B7IgおよびCD28Ig Cγ１融合タンパク
の特徴付け B7IgおよびCD28Igの機能的活性を調べるために、CD28ま
たはB7を発現するCHO細胞ラインの結合を以下の如くテ
ストした。初期の実験において、トランスフェクション
処理したCHO 細胞からの使用済培地を融合タンパク源と
して使用し、一方後の実験では精製タンパクを使用した
（第11図参照）。

【０１１９】B7IgおよびCD28IgのCHO 細胞に対する結
合： B7IgおよびCD28Ig融合タンパクの結合を、上記の
如くFITC−複合化山羊抗−ヒトIg第二段階試薬の添加に
より検出した。B7IgはCD28⁺CHO に結合し、一方CD28Ig
はB7⁺CHO に結合した。また、B7IgはB7⁺CHO に弱く結合
したが、このことはこの分子がホモフィリック(homophi
lic)相互作用を生ずる傾向があることを示す。ヒトIg C
γ1 を含むmAb L6またはもう一つの融合タンパクCD5Ig
の結合は検出されなかった。かくして、B7IgおよびCD28
Igはそのそれぞれの対−レセプタに対する結合活性を維
持している。次に、B7とCD28との間の相互作用の見掛け
上のアフィニティーを決定した。B7Igを沃素化するかあ
るいは代謝により[³⁵S] メチオニンで標識して、放射性
標識した誘導体を固定化CD28IgまたはCD28⁺CHO 細胞に
対する結合に関してテストした。

【０１２０】B7Igの放射能標識： pH6.8 の0.12M 燐酸
ナトリウム溶液0.25ml中の精製したB7Ig(25 μg)を２mC
i ¹²⁵Iおよび10μｇのクロラミンＴを使用して沃素化し
た。５分間23℃に維持した後、この反応を20μｇのメタ
重亜硫酸ナトリウムの添加により停止し、次いで３mgの
KIおよび１mgのBSA を添加した。沃素化したタンパクを
10%FCSを含有するPBS で平衡化したセファデックス(Sep
hadex) G-10 の5-mlカラム上でクロマトグラフィー処理
することにより未処理の¹²⁵Iから分離した。ピーク画分
を集めて、プールした。このようにして標識した¹²⁵I-B
7Ig の特異的活性は1.5 ×10⁶ cpm/pmolであった。

【０１２１】B7Igは、また代謝により[³⁵S] メチオニン
でも標識した。COS 細胞を、上記の如くB7Igをコードす
るプラスミドでトランスフェクション処理した。このト
ランスフェクションの５分後に、10%FCSおよび10% の通
常のレベルのメチオニンを含むDMEM中の[³⁵S] メチオニ
ン(<800 Ci/mM;イリノイ州、アーリントンハイツのアマ
ーシャム社(Amersham Corp.)を濃度115 μCi/ml まで添
加した。37℃にて３日間インキュベートした後、培地を
集め、上記の如くB7Igの精製のために使用した。[³⁵S]
メチオニン−標識したB7Igの濃度はSDS-PAGE後の染色強
度を既知量の未標識B7Igの強度と比較することにより見
積もった。[³⁵S] メチオニン−標識したB7Igの特異的活
性は約２×10⁶ cpm/μｇであった。

【０１２２】結合アッセイ：固定化CD28Igを使用した
アッセイのために、96−ウエルのプラスチック皿をCD28
Ig(0.5μｇ; pH 8の10mMTris0.05ml中）を含む溶液で16
-24 時間処理して被覆した。次いで、¹²⁵I-B7Ig(約３×
10⁶ cpm;２×10⁶ cpm/pM) または[³⁵S]-B7Ig(1.5×10⁵
cpm)を含む結合バッファー(50 mMのBES を含むpH 6.8の
DMEM、0.1% BSAおよび10%FCS）により、第12図に示した
ような種々の濃度の未標識のキメラL6 mAb、mAb 9.3 、
mAb BB-1またはB7Igの存在下で、24nMの濃度までの競合
体の存在下または不在下で、これらウエルを遮断した。
23℃にて２〜３時間インキュベートした後、該ウエルを
結合バッファーで１回およびPBS で４回洗浄した。次い
で、プレート−結合放射線活性を0.5NのNaOHの添加によ
り可溶化し、液体シンチレーションまたはγ線計数によ
り定量した。第12図において、放射能は競合体の不在下
で処理したウエルに結合した放射能(7,800cpm)に対する
百分率として表した。各点は２回の測定の平均を表し、
個々の測定値は一般に該平均からの偏差≦20% を有して
いた。濃度はmAb に対しては結合サイト当たりのM_r75,0
00に基いて、またB7Igに対しては結合サイト当たりのM
_r 51,000に基いて算出した。¹²⁵I-B7 のCD28⁺CHO 細胞
に対する結合を測定する際、この実験を開始する16-24
時間前に、細胞を96−ウエルプレートに接種(2.5×10⁴/
ウエル）した。結合は上記の如くして測定した。

【０１２３】¹²⁵I-B7Ig および固定化CD28Igを使用した
競合結合実験の結果を第12図に示した。¹²⁵I-B7Ig は濃
度−依存様式で未標識B7Ig、およびmAb 9.3 並びにBB-1
と競合した。mAb 9.3 は最も効果的な競合体であり(4.3
nMに1/2-最大阻害値）、次いでmAb BB-1(140nMに1/2-最
大阻害値）およびB7Ig(280nMに1/2-最大阻害値）であっ
た。かくして、mAb 9.3 はB7Igよりも約65−倍高い競合
体としての効果を有しており、このことはmAb がより高
いCD28に対する見掛け上のアフィニティーをもつことを
示している。[³⁵S] メチオニン−標識B7Igを使用した場
合にも、結合活性における同様な差異が見られた。キメ
ラmAb L6は結合を有意に阻害しなかった。

【０１２４】第12図における高濃度での阻害は他の実験
では見られなかった。第12図に示した競合データをスキ
ャッチャード(Scatchard) の表示で再度プロットした場
合（第13図）、結合サイトの単一の組が観測された（実
験値に最も合う曲線(r = -0.985)の傾斜から見積もった
結合定数(K_d ）約200nM)。同一のK _dが¹²⁵I-B7Ig のCD2
8⁺CHO 細胞に対する結合に関して検出された。かくし
て、膜結合したCD28および固定化したCD28Ig両者は¹²⁵I
-B7 に対する同様な見掛け上のアフィニティーを示し
た。

【０１２５】Ｔ細胞上に発現されたCD28に対するB7Igの
結合 B7Igは固定化CD28IgおよびCD28⁺CHO 細胞に結合する
が、Ｔ細胞上で自然に発現されたCD28に結合できるか否
かは知られていない。これは重要な考察である。という
のは、トランスフェクション処理した細胞上のCD28の濃
度が、上記実施例１で示した如く、PHA-活性化Ｔ細胞に
見られる濃度よりも約10倍も高いからである。PHA-活性
化Ｔ細胞は以下のように調製した。

【０１２６】細胞の分離および感作： PBL をリンパ球
分離培地(Lymphocyte Separation Medium)（ケンシント
ン、MDのリットンバイオネティックス(Litton Bionetic
s)社）で遠心処理することにより単離し、96−ウエルを
もつ平底型プレート（４×10⁴細胞／ウエル、0.2 ml容
量）内の10%FCS含有RPMI中でインキュベートした。４種
の培養物の細胞増殖を、３日(d) 間の培養の最後の５時
間中の、[³H]チミジンの取り込みにより測定した。PHA-
活性化Ｔ細胞を、PBL を１μg/mlのPHA(ウエルカム）と
共に5dおよびPHA に乏しい培地中で1d培養することによ
り調製した。生細胞を使用前にリンパ球分離培地から沈
降により回収した。

【０１２７】PHA-活性化Ｔ細胞を、次いで上記の如く間
接的な免疫蛍光法の実施後に、FACS ^R分析によりB7Ig（1
0 μg/ml）の結合に関してテストした。図示した例にお
いて（第14図）、細胞にはB7Igと共に10μg/mlの濃度で
mAb 9.3 またはBB-1をも添加した。結合mAb をFITC−複
合化山羊抗−ヒトIg Cγ1 試薬により検出した。第14図
に示したように、これらの細胞は有意な濃度のB7Igと結
合し、この結合はmAb 9.3 およびBB-1により阻害され
た。B7Ig−結合タンパクの同等性も、以下の如くして、
¹²⁵I−表面標識細胞の免疫沈降分析により測定した。

【０１２８】細胞表面沃素化および免疫沈降 PHA-活性化Ｔ細胞を、ビテッタ(Vitetta) 等のJ. Exp.
Med., 1971, 134:242（これを本発明の参考文献とす
る）に記載されたようにラクトペルオキシダーゼとH₂O₂
とを使用して、¹²⁵Iで細胞−表面標識した。標識細胞の
ノニオン性洗浄剤抽出物のアリコート（約３×10⁸ cpm
、容量0.12 ml)をリンスレイ(Linsley) 等のJ. Biol.
Chem., 1988, 263:8390（これを本発明の参考文献とす
る）に記載の如く調製し、これを上記の如く5-15% のア
クリルアミド勾配を使用し、還元条件下（第15図、＋β
ME、レーン１〜７）または非−還元条件下(-βME、レー
ン８および９）で、mAb 9.3 を添加せずに（レーン１）
または添加して (５μｇ、レーン２）、B7Igを添加し(1
0 μｇ、レーン３）またはキメラL6mAb を添加(10 μ
ｇ、レーン７）した条件下で、免疫沈降およびSDS-PAGE
にかけた。

【０１２９】第15図に示した如く、mAb 9.3 およびB7Ig
両者は還元条件下でM _r 約45,000のタンパクを免疫沈降
し、また非−還元条件下でM _r 約45,000および90,000の
タンパクを免疫沈降した（後者がより顕著であった）。
キメラL6mAb により沈降された試料中に見られたM _r 約
45,000のタンパクはスピルオーバーによるものであり、
他の実験では観測されなかった。mAb 9.3 は免疫沈降に
関してB7Igよりも効果的であり、このことは該mAb がよ
り高いアフィニティーを有することと一致している（第
12および13図）。同等の結果が、CD28⁺CHO 細胞を免疫
沈降実験に使用した場合にも得られた。mAb 9.3 を使用
した免疫沈降によるCD28の予備浄化(preclearing) はB7
Ig−沈降可能な物質をも除去し、このことはmAb 9.3 お
よびB7Ig両者が同一の¹²⁵I−標識タンパクに結合するこ
とを示唆している。これら実験結果を一緒に考察する
と、CD28がPHA-活性化Ｔ細胞上のB7Igに対する主なレセ
プタであることが分かる。

【０１３０】B7とCD28との結合のCD28−媒介付着に及ぼ
す効果Ｔ細胞上において、mAb はCD28に対して強力な生物学的
活性を有し、このことはCD28とその天然リガンドとの相
互作用が重要な機能上の帰結をも有する可能性を示唆し
ている。B7とCD28との間の相互作用の機能上の帰結を決
定する第一の段階として、B7Igが上記のCD28−媒介付着
アッセイを遮断できるか否かを決定した。⁵¹Cr−標識し
たPMリンパ芽球細胞のCD28⁺CHO 細胞の単層への付着
を、上記の如く指定した量のmAb 9.3 またはB7Igの存在
下で測定した。データを第16図にプロットし、競合体の
ない条件下での細胞結合(40,000cpmまたは約1.1 ×10⁵
細胞）に対する百分率として表した。各点は３回の測定
の平均値を表し、変動係数は≦25% であった。

【０１３１】第16図に示したように、B7IgはCD28−媒介
付着を遮断したが、その効果はmAb9.3 よりも幾分低か
った（1/2-最大阻害はmAb 9.3 の10nMに比して、200 nM
であった）。CD28−媒介付着の阻害に関するこれら分子
の相対的な有効性は競合結合実験（第12図）に見られた
これら分子の相対的結合アフィニティーに類似してい
た。CD28Igは、950 nMまでの濃度にてCD28−媒介付着を
阻害せず、このことはトランスフェクション処理した細
胞上に存在するCD28の局所的に高い濃度との競合のため
に、より一層高いCD28Igの濃度が必要とされることを示
唆する。

【０１３２】Ｔ細胞増殖に及ぼすB7の効果 B7によるCD28の誘発がＴ細胞増殖に対して同時刺激的で
あるか否かを更に調べた。抗−CD3 と共にPBL の増殖を
同時刺激するB7Igの能力を先ず求めた。PBL を単離し、
表２に示したＴ細胞増殖の共刺激体(costimulators) の
存在下で培養した。抗−CD3 刺激は溶液中で１μg/mlの
mAb G19-4 により行った。CD28刺激のために、mAb 9.3
またはB7Igを１μg/mlの濃度で溶液に添加し、あるいは
PBS 中10μg/mlなる濃度で23℃にて３時間タンパクを予
備インキュベーションすることにより該培養ウエル上に
固定化し、次いで該培養ウエルを洗浄した。B7⁺CHO お
よびコントロールdhfr⁺CHO 細胞を、4:1 のPBL/CHO 細
胞比にてPBL と混合する前に1,000 ラドで照射した。3d
の培養後、増殖を５時間に対する[³H]チミジンの取り込
みにより測定した。示された値は４回の培養から決定し
た平均である(SEM<15%)。

【０１３３】幾つかの実験において、抗−CD28 mAb 9.3
は有効であったが、濃度１〜10μg/mlの溶液中のB7Igは
ほんの僅かな増殖の増強を示したに過ぎなかった。CD28
架橋がCD28シグナル形質導入の重要な決定因子として確
認されているので（レッドベター(Ledbetter) 等, Bloo
d, 1990, 75:1531）、B7Igもプラスチックウエル上に固
定化された9.3 と比較した（表２、実験１）。

【０１３４】表２実験１ CD28刺激 [³H]-T組み込み(cpm×10^-3) - 抗−CD3 +抗−CD3 1 なし 0.1 26.0 mAb 9.3 （溶液） 0.3 156.1 mAb 9.3 （固定化） 0.1 137.4 B7Ig （固定化） 0.1 174.5 2 なし 0.2 19.3 mAb 9.3 （溶液） 0.4 75.8 B7 +CHO細胞 9.4 113.9 dhfr +CHO細胞 23.8 22.1

【０１３５】これら条件下で、B7Igは増殖を高め、mAb
9.3 とほぼ匹敵するものであった。B7⁺CHO 細胞をもテ
ストし、静止リンパ球に及ぼす共刺激活性につきコント
ロールdhfr⁺CHO 細胞と比較した（表２、実験２）。こ
の実験において、増殖は抗−CD3 mAb の不在下でdhfr⁺C
HO 細胞について見られた。これは、該細胞の照射後の[
³H]チミジンの残留組み込みのためである。dhfr⁺細胞に
よる該刺激は抗−CD3 mAb により増強されず、かつトラ
ンスフェクション処理したCHO 細胞を低い比で添加した
場合には他の実験で観測されなかった（表３および
４）。

【０１３６】表３に示した実験に関連して、PHA 芽細胞
を変動する量の照射されたCHO)細胞トランスフェクタン
トと共に50,000細胞／ウエルにて培養した。２日間の培
養後、[³H]チミジンの５時間パルスにより測定した。表
に示した数値は４回の測定の平均値である(SEM < 15%)
。PHA 芽細胞のCHO 細胞を添加しない条件下でのバッ
クグラウンド増殖は11,200 cpmであった。照射されたB7
⁺CHO およびCD5 ⁺CHO 細胞単独による[³H]チミジンの組
み込みは各細胞濃度において> 1,800 cpm であり、かつ
表に示した値から差し引かれた。表４にまとめた実験に
関連して、PHA 芽細胞を表３に関連して記載して如く、
Ｔ細胞/CHO細胞の比40:1において照射されたCHO 細胞で
刺激した。培養の開始時点で、10μg/mlの濃度でmAb を
添加した。mAb LB-1（ヨコチ等の上記文献）はmAb BB-1
に対するイソタイプ−適合コントロールである。培養の
２日後の５時間パルス中の[³H]チミジンの取り込みによ
り増殖を測定した。表中の値は４回の培養の平均値を表
す(SEM <15%)。

【０１３７】B7⁺CHO 細胞は抗−CD3 mAb との共刺激に
おいて非常に効果的であり、このことは細胞表面B7がこ
のアッセイにおいて該抗−CD28 mAbと同様な活性を有す
ることを示している。B7⁺CHO 細胞を、これらがmAb 9.3
によるCD28の架橋に直接応答する静止PHA芽細胞の増殖
を直接刺激できるか否かに関してもテストした。この場
合も、該B7⁺CHO 細胞は増殖の刺激において極めて強力
であり（表３）、かつ非常に低細胞数(PHA芽細胞:B7 ⁺C
HO 細胞比 > 800:1) の下で増殖刺激可能であった。コ
ントロールのCD5 ⁺CHO 細胞は同様な活性を示さなかっ
た。多数の異なる実験において、dhfr CHO、CD5 ⁺CHO
およびCD7 ⁺CHO 細胞の何れもＴ細胞増殖を刺激しなか
った。従って、これらを、B7⁺CHO 細胞により誘発され
る効果に対する負のコントロールとして互換的に使用し
た。B7⁺CHO 細胞の刺激活性は、更にCD28/B7相互作用か
ら生ずることが示された。というのは、CD7 ⁺CHO 細胞
の存在下でのバックグラウンド増殖に影響を与えること
なしに、mAb BB-1がB7⁺CHO 細胞による刺激を阻害する
からである（表４）。mAb LB-1（ヨコチ等の上記文
献）、即ち異なるＢ細胞抗原に対するIgM mAb は増殖を
阻害しなかった。mAb 9.3(Fab フラグメント）はB7⁺CHO
細胞により誘起される増殖並びにCD7 ⁺CHO 細胞につい
てよられたバックグラウンド増殖を阻害した。

【０１３８】表３ [³H]-T組み込み (cpm ×10^-3) Ｔ細胞/CHO細胞の比 +B7⁺CHO +CD5⁺CHO 25:1 92.7 15.5 50:1 135.4 19.4 100:1 104.8 16.8 200:1 90.3 17.7 400:1 57.0 13.7 800:1 42.3 17.6

【０１３９】表４刺激 mAb (cpm×10^-3) [³H]-T (cpm ×10^-3) 組み込みナシナシ 10.8 B7⁺CHO ナシ 180 B7⁺CHO 9.3 Fab 132 B7⁺CHO BB-1 98.3 B7⁺CHO LB-1 196 CD7 ⁺CHO ナシ 11.5 CD7 ⁺CHO 9.3 Fab 10.0 CD7 ⁺CHO BB-1 10.0 CD7 ⁺CHO LB-1 11.3

【０１４０】これらの実験はB7がシグナル形質導入を刺
激でき、かつCD28に結合することによりＴ細胞活性を増
大できるが、架橋が必要であり、かつ該細胞表面上で発
現されたB7が最も有効であることを示している。

【０１４１】IL-2 mRNA 蓄積に及ぼすB7の効果 IL-2生産に及ぼすCD28/B7 相互作用の効果を、B7⁺CHO
細胞またはCD7 ⁺CHO細胞により刺激されたPHA-芽細胞に
おける転写物レベルを解析することにより調べた。刺激
された細胞からRNA を調製し、以下のようにしてIL-2転
写物の存在につきRNA ブロット分析によりテストした。
PHA-芽細胞（５×10⁷)を、第17図に示した如く、トラン
スフェクション処理したCHO 細胞と40:1Ｔ細胞/CHO細胞
比にておよび／またはmAb と混合した。mAb 9.3 は10μ
g/mlで使用した。B7⁺CHO 細胞添加の１時間前に、20μg
/mlのmAb BB-1を添加した。mAb 9.3 を架橋した場合に
は、山羊抗−マウスIg(40 μg/ml) を、mAb 9.3 添加の
10分後に添加した。細胞を37℃にて６時間インキュベー
トし、RNA を単離し、以下に記載するように、³²P-標識
IL-2またはGAPDH プローブを使用してRNA ブロット分析
にかけた。

【０１４２】チョムツィンキ＆サッチ(Chomczynki and
Sacchi), Anal. Biochem., 1987,162:156(これを本発明
の参考文献とする）に記載の手順により刺激したPHA 芽
細胞からRNA を調製した。RNA のアリコート（20μg)を
ホルムアルデヒドアガロースゲル上で分画し、次いで毛
管作用によりニトロセルロースに移した。RNA をストラ
タリンカー(Stratalinker)（ストラタジーヌ(Stratagen
e)、サンジエゴ、CA）内でUV光により膜に架橋し、該ブ
ロットを予備ハイブリッド化し、ヒトIL-2用の ³²P-標識
プローブ（シアトル、WAのイムネックス社(Immunex Cor
p.) のDr.S. ギリス(Gillis)により提供された約600-bp
のcDNAフラグメントから調製したもの）でハイブリッド
化した。RNA 試料の等ローディングは、rRNA染色および
ラットグリセルアルデヒド-6- 燐酸デヒドロゲナーゼプ
ローブ（GAPDH; シアトル、WAのブリストル−マイヤー
ズスクイブファルマシューティカルリサーチインスチチ
ュート(Bristol-Myers Squibb Pharmaceutical Researc
h Institute)のDr.Aパーチオ(Purchio) により提供され
た約1.2 kbのcDNAフラグメント）によるハイブリダイゼ
ーションの両者により立証した。

【０１４３】第17図に示した如く、B7⁺CHO 細胞はIL-2
mRNA 転写物の蓄積を誘起したが、CD7 ⁺CHO 細胞はこれ
を誘起しなかった。B7⁺CHO 細胞による誘起はmAb BB-1
により部分的に遮断された。B7⁺CHO 細胞による誘起は
溶液中のmAb 9.3 により達成された誘起よりも僅かに良
好であったが、山羊抗−マウスIgにより架橋した後はmA
b 9.3 の方が有効であった。かくして、並置した細胞上
の細胞表面B7によるCD28の誘発はIL-2mRNAの蓄積を刺激
した。

【０１４４】上記実験から得られる、CD28とB7との可溶
性Ig Cγ融合物（約200nM)の相互作用に対する見掛けの
K _d 値はmAb(2-10,000 nM;アルザリ(Alzari)等, Annu.
Ref.Immunol., 1988, 6:555）について観測されるアフ
ィニティーの範囲内にあり、かつ他のリンパ様付着分子
に対して見積もったアフィニティーとほぼ匹敵する。シ
ュネック(Schneck) 等はCell, 1989, 56:47 において、
二十ネズミのＴ細胞ハイブリドーマTCR と可溶性アロ抗
原（クラスＩ MHC分子）との間のアフィニティーを見積
もった（K _d 約100 nM）。K _d 400 nMなる値がCD2 とLF
A3との間で観測された（レクニー(Recny) 等, J. Biol.
Chem., 1990, 265:8542）。クラスII MHCに対するCD4
のアフィニティーは、直接測定したわけではないが、gp
120-CD4相互作用のアフィニティー(K_d = 4 nM; ラスキ
ー(Lasky) 等, Cell, 1987, 50:975)よりも≧10,000倍
程低いと見積もられた（クレイトン(Clayton) 等, Natu
re（ロンドン), 1989, 339:548) 。このように、CD28に
対するB7のアフィニティーは、幾つかの他のリンパ様の
付着系について報告されたアフィニティーよりも大きい
ものと考えられる。

【０１４５】結合活性とは逆に、CD28/B7 相互作用の見
掛けのK _d がその真のアフィニティーを反映する程度
は、該融合タンパク処方の抗原価および／または凝集に
依存する。これら処方の凝集の程度を、サイズ分画(TSK
G3000SWカラム、PBS で溶出）により調べた。これらの
条件下で、B7IgはM _r 約350,000 で溶出され、またCD28
IgはM _r 約300,000 にて溶出された。このように、これ
ら両タンパクは、SDS-PAGE（第10図）で観測された分子
量よりも大きな分子として、溶液中で挙動した。このこ
とは、これらがより大きな凝集体を形成することを示唆
している。また、これらの結果は、これら両タンパクが
溶液中で拡がった形状をとり、大きなストークス半径を
与えることを示唆する可能性がある。にもかかわらず、
可溶性タンパクを使用して測定された相互作用は、元々
の膜−結合した状態でのCD28とB7との真の結合活性の過
少評価をもたらす恐れがある。

【０１４６】異なる付着系の、Ｔ細胞−Ｂ細胞相互作用
の全体的強度に対する相対的寄与は簡単には評価できな
いが、多分アフィニティー／結合活性および、関与する
異なるレセプタおよび対−レセプタの並置細胞表面上の
密度との両者の関数である。CD28およびB7両者は静止リ
ンパ様細胞上において比較的低濃度で見出される（レス
ラウアー(Lesslauer) 等, Eur. J. Immuno., 1986, 16:
1289、フリーマン(Freeman) 等, 1989年の上記文献) の
で、これらは細胞間相互作用の開始には他の付着系（ス
プリンガー(Springer), Nature (ロンドン), 1990, 34
6:425）程には関与していない。CD28/B7 相互作用の主
要な役割はそれぞれの細胞型上の該対−レセプタの誘起
に引き続く応答を維持しもしくは増幅することにあると
考えられる。

【０１４７】B7のＴ細胞上のCD28への結合はＴ細胞増殖
に対して共刺激性であり（表２〜４）、このことは抗−
CD28 mAbの生物学的効果の幾つかが、CD28とその対−レ
セプタであるB7との間の自然な相互作用から生ずる該抗
−CD28 mAbの模擬Ｔ細胞活性化能力から結果することを
示唆している。mAb 9.3 はB7Igよりも高いCD28に対する
アフィニティーを有し（第15および16図）、これにより
ポリクローナルＴ細胞応答の共刺激におけるこのmAb の
極めて強力な生物学的効果を説明できる（ジューン(Jun
e)等の1989年の上記文献）。しかし、驚くべきことに抗
−CD28 mAbは抗原−特異的Ｔ細胞応答に対して阻害性で
ある（ダムル(Damle) 等, Proc. Natl.Acad. Sci. USA,
1981, 78:5096;レスラウアー(Lesslauer) 等の1986年
の上記文献）。このことは、抗原−特異的Ｔ細胞応答が
CD28/B7 の相互作用を介して共刺激依存性であり、また
その結果としてCD28刺激の遮断のために阻害が生ずるこ
とを示唆する可能性がある。該阻害にもかかわらず、こ
れらの条件下でCD28はmAbと結合する必要があり、この
ことはmAb による誘発がB7による誘発と常に等価である
訳ではないことを示している。mAb 9.3 はB7よりも高い
CD28に対する見掛けのアフィニティーを有する（第12
図）が、これらの状況下では刺激のために最適のCD28ク
ラスター化度（レッドベター(Ledbetter) 等の1990年の
上記文献）を誘起し得ない可能性がある。

【０１４８】CD28/B7 相互作用は、またＢ細胞の活性化
および／または分化にとっても重要であり得る。実施例
２で既に述べた如く、mAb 9.3 およびBB-1はＢ細胞によ
るＴ _h細胞−誘発Ig産生を遮断する。この遮断効果は一
部にはこれらmAb によるＴ_h細胞−誘発Ｂ細胞−指向性
サイトカインの産生の阻害によるものであるが、B7を介
する直接的なシグナル形質導入の妨害によるＢ細胞活性
化の阻害をも含む可能性がある。これらの結果は、Ｂリ
ンパ球並びにＴ_h リンパ球の同族活性化がCD28とB7との
間の相互作用に依存することを示唆する。

【０１４９】上記の結果は、CD28レセプタに対するリガ
ンド、即ちB7抗原が活性化Ｂ細胞および他の種の細胞上
に発現されることを立証する。これらの結果は、またCD
28レセプタ、およびそのリガンドB7が、CD4 ⁺Ｔ_h 細胞
およびＢ細胞のＴ_h −誘起分化両者の活性化の際に重要
な役割を演ずることを示している。該同種Ｔ_h :B相互作
用における抗−CD28および抗−B7 mAbの阻害は、またCD
28IgおよびB7Ig融合タンパクおよびこれらタンパクと反
応性のモノクローナル抗体を、種々の過度のＢ細胞活性
化に関連した自己免疫疾患、例えばインシュリン−依存
性真正糖尿病、重症筋無力症、リウマトイド関節炎およ
び全身性紅斑性狼瘡(SLE) の治療に使用するための基礎
を与える。

【０１５０】本発明に関連する当業者には明らかである
ように、本発明の精神並びに本質的な特徴を逸脱するこ
となく、本発明は具体的に上記した以外の形式で実施す
ることができる。従って、上記本発明の特定の態様は本
発明を例示するものであり、本発明を限定するものでは
ないと理解すべきである。本発明の範囲は、これまでの
記載に含まれる実施例により限定されるものではなく、
むしろ添付した請求の範囲に示されている。

【０１５１】

【配列表】配列リスト (1) 一般的情報 (i) 出願人：リンスレー，ペーターＳ(Linsley, Peter S) レッドベター，ジェフリーＡ(Ledbetter, Jeffrey A) ダムル，ニチンＫ(Damle, Nitin K) ブラディー，ウイリアム(Brady, William) (ii) 発明の名称：Ｂ細胞上のCD28レセプタ用のリガンドおよび方法 (iii) 配列数：７ (iv) 通信用住所： (A) 受信人：シェルドン＆マック(Sheldon & Mak) (B) ストリート：201 サウスレークアベニュー，スート800 (C) 市：パサデナ(Pasadena) (D) 州：カリフォルニア (E) 国：米国 (F) ジップコード：91101 (v) コンピュータ読出形式： (A) 媒体型：フロッピー（登録商標）ディスク (B) コンピュータ：IBM PCコンパーティブル (C) 動作系：ＰＣ−ＤＯＳ／ＭＳ−ＤＯＳ（登録商標） (D) ソフトウエアー：パテンチンリリース(PatentIn Release) #1.0,バージョン
# 1.25 (vi) 現出願データ： (A) 出願番号： (B) 出願日： (C) 分類： (viii) 代理人の情報： (A) 名前：マンデル，サラリン(Mandel, Saralynn) (B) 登録番号：31,853 (C) 参照／事件番号： 7794 (ix) 遠距離通信情報： (A) 電話：(818) 796-4000 (B) ファックス：(818) 795-6321 (2) SEQ ID NO:１の情報： (i) 配列の特徴： (A) 長さ：39塩基対 (B) 型：核酸 (C) ストランドの状態：一本鎖 (D) 形状：線状 (ii) 分子の型：DNA （ゲノム） (iii) 仮定：なし (iv) アンチセンス：なし (vi) 起源： (A) 生物：ホモサピエンス (xi) 配列の記載：SEQ ID NO:１ CTAGCCACTG AAGCTTCACC ATGGGTGTAC TGCTCACAC 39 (2) SEQ ID NO:２の情報： (i) 配列の特徴： (A) 長さ：39塩基対 (B) 型：核酸 (C) ストランドの状態：一本鎖 (D) 形状：線状 (ii) 分子の型：DNA （ゲノム） (iii) 仮定：なし (iv) アンチセンス：なし (vi) 起源： (A) 生物：ホモサピエンス (xi) 配列の記載：SEQ ID NO:２ TGGCATGGGC TCCTGATCAG GCTTAGAAGG TCCGGGAAA 39 (2) SEQ ID NO:３の情報： (i) 配列の特徴： (A) 長さ：39塩基対 (B) 型：核酸 (C) ストランドの状態：一本鎖 (D) 形状：線状 (ii) 分子の型：DNA （ゲノム） (iii) 仮定：なし (iv) アンチセンス：なし (vi) 起源： (A) 生物：ホモサピエンス (xi) 配列の記載：SEQ ID NO:３ TTTGGGCTCC TGATCAGGAA AATGCTCTTG CTTGGTTGT 39 (2) SEQ ID NO:４の情報： (i) 配列の特徴： (A) 長さ：84塩基対 (B) 型：核酸 (C) ストランドの状態：一本鎖 (D) 形状：線状 (ii) 分子の型：DNA （ゲノム） (iii) 仮定：なし (iv) アンチセンス：なし (vi) 起源： (A) 生物：ホモサピエンス (xi) 配列の記載：SEQ ID NO:４ AAGCAAGAGC ATTTTCCTGA TCAGGAGCCC AAATCTTCTG ACAAAACTCA CACATCCCCA 60 CCGTCCCCAG CACCTGAACT CCTG 84 (2) SEQ ID NO:５の情報： (i) 配列の特徴： (A) 長さ：41塩基対 (B) 型：核酸 (C) ストランドの状態：一本鎖 (D) 形状：線状 (ii) 分子の型：DNA （ゲノム） (iii) 仮定：なし (iv) アンチセンス：なし (vi) 起源： (A) 生物：ホモサピエンス (xi) 配列の記載：SEQ ID NO:５ CTTCGACCAG TCTAGAAGCA TCCTCGTGCG ACCGCGAGAG C 41 (2) SEQ ID NO:６の情報： (i) 配列の特徴： (A) 長さ：47塩基対 (B) 型：核酸 (C) ストランドの状態：一本鎖 (D) 形状：線状 (ii) 分子の型：DNA （ゲノム） (iii) 仮定：なし (iv) アンチセンス：なし (vi) 起源： (A) 生物：ホモサピエンス (xi) 配列の記載：SEQ ID NO:６ CATTGCACAG TCAAGCTTCC ATGCCCATGG GTTCTCTGGC CACCTTG 47 (2) SEQ ID NO:７の情報： (i) 配列の特徴： (A) 長さ：39塩基対 (B) 型：核酸 (C) ストランドの状態：一本鎖 (D) 形状：線状 (ii) 分子の型：DNA （ゲノム） (iii) 仮定：なし (iv) アンチセンス：なし (vi) 起源： (A) 生物：ホモサピエンス (xi) 配列の記載：SEQ ID NO:７ ATCCACAGTG CAGTGATCAT TTGGATCCTG GCATGTGAC 39

【図面の簡単な説明】

【図１】実施例１で説明するＣＤ２８ポジティブ（ＣＤ
２８⁺）およびＣＤ２８ネガティブ（ＣＤ２８^- ）ＣＨ
Ｏ細胞を用いた細胞粘着実験の結果を示す棒グラフであ
る。

【図２】実施例１で説明する第１図の細胞粘着実験の顕
微鏡写真である。

【図３】実施例１で説明する種々のヒト細胞系列、およ
び正常および活性化マウス脾臓Ｂ細胞に関するＣＤ２８
⁺ＣＨＯ細胞に粘着する能力をテストした実験結果の棒
グラフである。

【図４】実施例１で説明するＣＤ２８仲介のヒトＢ細胞
への粘着に関するｍＡｂによる阻害効果のグラフであ
る。

【図５】実施例１で説明するＢ７抗原でトランスフェク
トしたＣＯＳ細胞細胞とＣＤ２８⁺またはＣＤ２８^- Ｃ
ＨＯ細胞間の粘着の結果の棒グラフである。

【図６】実施例２で説明するＴ細胞の増殖に関する抗Ｃ
Ｄ２８および抗Ｂ７ｍＡｂの効果を示す棒グラフであ
る。

【図７】実施例２で説明するＢ細胞の免疫グロブリン分
泌細胞への分化に関するＤＲ７感作ＣＤ４５ＲＯ⁺Ｔ_h
細胞の効果を示すグラフである（７ａ：ＳＫＷＢ細胞
によるＩｇＭ生産；７ｂ：ＣＥＳＳＢ細胞によるＩｇ
Ｇ生産）。

【図８】実施例２で説明するＢ細胞による免疫グロブリ
ンのＴ_h誘導生産に関する抗ＣＤ２８および抗Ｂ７ｍ
Ａｂの効果を示すグラフである（８ａ：ＩｇＭ生産；８
ｂ：ＩｇＧ生産）。

【図９】実施例３で説明するＢ７Ｉｇ（９ａ）およびＣ
Ｄ２８Ｉｇ（９ｂ）タンパク質融合構築物の模式図であ
る（黒部分：オンコスタチンＭ；白部分：Ｂ７およびＣ
Ｄ２８；灰色部分：ヒトＩｇＣγ１）。

【図１０】実施例３で説明するＢ７ＩｇおよびＣＤ２８
タンパク質融合構築物の精製に関するゲルの写真であ
る。

【図１１】実施例３で説明するＢ７ＩｇおよびＣＤ２８
Ｉｇ融合タンパク質のトランスフェクトＣＨＯ細胞への
結合に関するＦＡＣＳ^R 分析の結果を示している。

【図１２】実施例３で説明する固定化ＣＤ２８Ｉｇ融合
タンパク質に対する¹²⁵Ｉ−ラベル化Ｂ７Ｉｇ融合タン
パク質の拮抗結合分析を示すグラフである。

【図１３】実施例３で説明するＢ７Ｉｇ融合タンパク質
の固定化ＣＤ２８Ｉｇ融合タンパク質への結合に関する
スキャッチャード分析の結果を示すグラフである。

【図１４】実施例３で示すＢ７Ｉｇ融合タンパク質のＰ
ＨＡ幼若細胞への結合に関するＦＡＣＳ分析のグラフで
ある。

【図１５】実施例３で説明するＢ７Ｉｇで免疫沈殿した
¹²⁵Ｉ−ラベル化タンパク質のオートラジオグラムであ
る。

【図１６】実施例３で説明するＣＤ２８仲介の粘着に関
するＢ７ＩｇのＣＤ２８への結合の効果を示すグラフで
ある。

【図１７】実施例３で説明するＩＬ−２ｍＲＮＡの蓄積
に関するＢ７の効果のＲＮＡブロット分析の結果を示す
写真である。

─────────────────────────────────────────────────────

【手続補正書】

【提出日】平成１３年１０月１５日（２００１．１０．
１５）

【手続補正１】

【補正対象書類名】明細書

【補正対象項目名】特許請求の範囲

【補正方法】変更

【補正内容】

【特許請求の範囲】

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号ＦＩテーマコート゛(参考）Ｃ１２Ｎ 5/10 Ｃ１２Ｑ 1/02 ４Ｈ０４５Ｃ１２Ｐ 21/08 Ｇ０１Ｎ 33/15 ＺＣ１２Ｑ 1/02 33/50 ＺＧ０１Ｎ 33/15 33/53 Ｙ 33/50 33/577 Ｂ 33/53 Ｃ１２Ｎ 15/00 ＺＮＡＡ 33/577 5/00 Ａ (72)発明者レドベタージェフリーエイアメリカ合衆国ワシントン州 98177 シアトルノースウェストワンハンドレッドアンドサーティースプレイス 306 (72)発明者ダムルナイティンケイアメリカ合衆国ワシントン州 98056 レントンサウスイーストシックスティースプレイス 11717 (72)発明者ブレディーウィリアムアメリカ合衆国ワシントン州 98021 ボーセルトゥーハンドレッドアンドナインティーンスプレイスサウスウェスト 618 Ｆターム(参考） 2G045 AA34 AA35 BB14 BB20 BB50 BB51 FB01 FB03 FB06 FB08 4B024 AA11 BA21 BA41 BA44 CA04 CA07 DA03 EA04 HA01 4B063 QA01 QA18 QQ20 QR80 4B064 AG27 4B065 AA01X AA57X AA87X AA93Y AB01 AC14 BA02 CA24 CA25 CA44 CA46 4H045 AA10 AA11 AA20 BA10 CA40 DA76 EA20 EA50

Claims

【特許請求の範囲】

【請求項１】 ATCC No.68627のDNAに相当する、Ｔ細胞
上のCD28レセプターと反応性のB7融合タンパクのアミノ
酸配列をコードする核酸分子。
【請求項２】請求項１記載の核酸を含むプラスミド。
【請求項３】適する宿主細胞中に請求項２記載のプラ
スミドを含む、宿主ベクター系。
【請求項４】適する該宿主細胞がバクテリア細胞であ
る、請求項３記載の宿主ベクター系。
【請求項５】適する該宿主細胞が真核細胞である、請
求項３記載の宿主ベクター系。
【請求項６】 ATCC No.68628のDNAに相当する、B7抗原
と反応性のCD28融合タンパクのアミノ酸配列をコードす
る核酸分子。
【請求項７】請求項６記載の核酸を含むプラスミド。
【請求項８】適する宿主細胞中に請求項７記載のプラ
スミドを含む、宿主ベクター系。
【請求項９】適する該宿主細胞がバクテリア細胞であ
る、請求項８記載の宿主ベクター系。
【請求項１０】適する該宿主細胞が真核細胞である、
請求項８記載の宿主ベクター系。
【請求項１１】細胞間接着を媒介するターゲット細胞
表面レセプターのリガンドを同定する方法であって、試
料を有効量のCD28Igと接触させ、前記リガンドを同定す
ることを含む上記方法。
【請求項１２】細胞間接着を媒介するターゲット細胞
表面レセプターのリガンドを同定する方法であって、試
料を有効量のCB7Igと接触させ、前記リガンドを同定す
ることを含む上記方法。
【請求項１３】細胞間接着を媒介するターゲット細胞
表面レセプターのリガンドを同定する方法であって、試
料を有効量のCD28Igと接触させ、前記リガンドを単離す
ることを含む上記方法。
【請求項１４】細胞間接着を媒介するターゲット細胞
表面レセプターのリガンドを同定する方法であって、試
料を有効量のCB7Igと接触させ、前記リガンドを単離す
ることを含む上記方法。
【請求項１５】該細胞間接着が二価カチオン接着であ
る、請求項１１〜１４のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１６】該ターゲット細胞表面レセプターがリ
ンパ球上に存在する、請求項１１〜１４のいずれか一項
に記載の方法。
【請求項１７】該リンパ球がＴ細胞である、請求項１
６記載の方法。
【請求項１８】該リンパ球がＢ細胞である、請求項１
６記載の方法。
【請求項１９】該ターゲット細胞表面レセプターが単
球上にある、請求項１１〜１４のいずれか一項に記載の
方法。
【請求項２０】該ターゲット細胞表面レセプターが微
生物上にある、請求項１１〜１４のいずれか一項に記載
の方法。
【請求項２１】該微生物がウィルスである、請求項２
０記載の方法。
【請求項２２】該ターゲット細胞表面レセプターが寄
生虫上にある、請求項１１〜１４のいずれか一項に記載
の方法。
【請求項２３】 B7の細胞外ドメインと反応性の活性結
合領域を含むモノクローナル抗体であって、B7融合タン
パクを免疫源として用いて既知の方法により得ることが
できる上記抗体。
【請求項２４】 CD28の細胞外ドメインと反応性の活性
結合領域を含むモノクローナル抗体であって、CD28融合
タンパクを免疫源として用いて既知の方法により得るこ
とができる上記抗体。
【請求項２５】 B7融合タンパクにより初回抗原刺激を
受けた動物のリンパ球由来の細胞系を提供し、既知の方
法により前記細胞系から産生されたモノクローナル抗体
を回収することを含む、B7の細胞外ドメインと反応性の
活性結合領域を有するモノクローナル抗体の製造方法。
【請求項２６】 CD28融合タンパクにより初回抗原刺激
を受けた動物のリンパ球由来の細胞系を提供し、既知の
方法により前記細胞系から産生されたモノクローナル抗
体を回収することを含む、CD28の細胞外ドメインと反応
性の活性結合領域を有するモノクローナル抗体の製造方
法。