JP2002062299A - Method and reagent for detecting tubercle bacillus - Google Patents

Method and reagent for detecting tubercle bacillus

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JP2002062299A
JP2002062299A JP2000253874A JP2000253874A JP2002062299A JP 2002062299 A JP2002062299 A JP 2002062299A JP 2000253874 A JP2000253874 A JP 2000253874A JP 2000253874 A JP2000253874 A JP 2000253874A JP 2002062299 A JP2002062299 A JP 2002062299A
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mycobacterium tuberculosis
biological sample
reagent
tuberculosis
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Takeshi Nagai
豪 永井
Hideji Mori
秀治 森
Tetsuo Tomiyama
哲雄 富山
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Kyowa Medex Co Ltd
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Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To eliminate an obstacle against an identification diagnosis and early treatment of tuberculosis in a conventional tubercle bacillus detecting method costing long hours, labor, and costs and to solve public health problems such as peripheral infection caused by discharged bacteria. SOLUTION: In this method and reagent for quickly and easily detecting a tubercle bacillus, a highly sensitive immunoassay is used so as to detect a tubercle bacillus-specific secretory protein existing in a biological sample without cultivating any tubercle bacillus in the biological sample.

Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明は、生体試料中の結核
菌群特異的分泌蛋白質を免疫学的測定法で測定すること
によって結核菌を検出する方法及び試薬に関する。さら
に詳しくは、生体試料中の結核菌を培養することなく、
生体試料中の結核菌群特異的分泌蛋白質を抗結核菌群特
異的分泌蛋白質抗体を用いた免疫学的測定法で測定する
ことによって結核菌を検出する方法及び試薬に関する。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to a method and a reagent for detecting Mycobacterium tuberculosis by measuring a secretion protein specific for Mycobacterium tuberculosis in a biological sample by an immunoassay. More specifically, without culturing Mycobacterium tuberculosis in a biological sample,
The present invention relates to a method and a reagent for detecting Mycobacterium tuberculosis by measuring a Mycobacterium tuberculosis group-specific secreted protein in a biological sample by an immunoassay using an anti-M. Tuberculosis group-specific secreted protein antibody.

【0002】[0002]

【従来の技術】ヒトの結核は、結核菌の感染によって起
こる、呼吸器などの感染症である。結核の大多数を占め
る肺結核は、肺癌、肺真菌症、呼吸虫症などと臨床的に
鑑別するのは困難である。結核菌の確定診断には、検体
の培養により結核菌を検出する方法を用いているが、検
出までには長期間を要し、更に検出菌の同定が必須であ
った。また迅速に結核菌を検出する方法としてPCR法が
応用されているが、この方法は多大の労力と費用を要
し、また検出感度が必ずしも満足すべきものではない。
BACKGROUND OF THE INVENTION Tuberculosis in humans is a respiratory and other infections caused by infection with Mycobacterium tuberculosis. Pulmonary tuberculosis, which accounts for the majority of tuberculosis, is difficult to clinically distinguish from lung cancer, pulmonary mycosis, respiratory worm and the like. For the definitive diagnosis of Mycobacterium tuberculosis, a method of detecting Mycobacterium tuberculosis by culturing a specimen is used, but it takes a long time to detect the Mycobacterium tuberculosis, and identification of the detected bacterium is essential. The PCR method has been applied as a method for rapidly detecting M. tuberculosis, but this method requires a great deal of labor and cost, and the detection sensitivity is not always satisfactory.

【0003】結核菌群は300種にも及ぶ多種多様な蛋白
質を培地中に分泌するといわれている。中でもMPT64は
結核菌群特異的な分泌蛋白質として知られている[Infec
tionand Immunity, 62(5), 2058 (1994)]。また、BCG菌
が産生する特異的蛋白質としてMPB64[Infection and Im
munity, 57(1), 283 (1989)]が知られている。両者のア
ミノ酸配列は同一である。
It is said that the group of Mycobacterium tuberculosis secretes as many as 300 kinds of various proteins into a medium. Among them, MPT64 is known as a Mycobacterium tuberculosis group-specific secreted protein [Infec
tionand Immunity, 62 (5) , 2058 (1994)]. As a specific protein produced by BCG bacteria, MPB64 [Infection and Im
munity, 57 (1) , 283 (1989)]. The amino acid sequences of both are identical.

【0004】MPT64に対する抗体(以下、抗MPT64抗体と
略記する)を用いた免疫学的な方法により結核菌を検出
する方法が知られている(特開平7-110332号公報)。ま
た、その免疫学的な方法としてイムノクロマトグラフィ
ーを用いた方法が知られている[特開平11−1089
31号公報、医学検査, 48(6), 976(1999)]。しかしな
がら、これらの方法では、生体試料中の結核菌を培養
し、その培養液を試料としているため、やはり検出でき
るまでには1週間程度の日数を必要とし、また培養及び
同定操作を必要とするため多大な労力と費用がかかる。
[0004] A method of detecting Mycobacterium tuberculosis by an immunological method using an antibody against MPT64 (hereinafter abbreviated as anti-MPT64 antibody) is known (Japanese Patent Application Laid-Open No. Hei 7-110332). As an immunological method, a method using immunochromatography is known [JP-A-11-1089].
No. 31, Medical Examination, 48 (6), 976 (1999)]. However, in these methods, since the tuberculosis bacterium in the biological sample is cultured and the culture solution is used as the sample, it also takes about one week before detection, and requires culturing and identification operations. Therefore, a lot of labor and cost are required.

【0005】[0005]

【発明が解決しようとする課題】上記のように、従来の
方法では結核菌の検出に長時間を要し、また多大な労力
と費用を必要とするため、結核の確定診断および早期の
治療に大きな障害となっているばかりでなく、排菌によ
る周囲の人への感染など公衆衛生上も問題が大きい。本
発明は、迅速かつ簡便に、結核菌を検出する方法、試薬
及びキットを提供することを目的とする。
As described above, the conventional method requires a long time to detect M. tuberculosis and requires a great deal of labor and cost. Not only is it a major obstacle, but it also poses a serious public health problem, such as infection of surrounding people by bacterial germination. An object of the present invention is to provide a method, a reagent and a kit for quickly and easily detecting Mycobacterium tuberculosis.

【0006】[0006]

【課題を解決するための手段】本発明者らは、上記課題
を解決するために鋭意研究し、高感度な免疫学的測定法
を用いて、生体試料中の結核菌を培養することなく、生
体試料より結核菌群特異的分泌蛋白質を検出することに
よって、迅速かつ簡便に結核菌を診断することを見出
し、本発明を完成するに至った。すなわち本発明は、以
下の(1)〜(20)に関する。 (1) 生体試料中の結核菌を培養することなく、結核
菌群特異的分泌蛋白質を免疫学的測定法により検出する
ことを特徴とする、生体試料中の結核菌の検出方法。 (2) 生体試料中の結核菌を培養することなく、生体
試料を前処理した後に結核菌群特異的分泌蛋白質を、抗
結核群特異的分泌蛋白質抗体を用いる免疫学的測定法に
より検出することを特徴とする、生体試料中の結核菌の
検出方法。 (3) 生体試料中の結核菌を培養することなく、生体
試料を前処理した後に結核菌群特異的分泌蛋白質を、抗
結核群特異的分泌蛋白質抗体および標識体増感試薬を用
いる免疫学的測定法により検出することを特徴とする、
生体試料中の結核菌の検出方法。 (4) 生体試料が、喀痰、胸水である上記(1)〜
(3)のいずれか1項に記載の方法。 (5) 前処理が、生体試料中の結核菌を不活性化させ
る工程を含む、上記(2)または(3)に記載の方法。
Means for Solving the Problems The present inventors have conducted intensive studies in order to solve the above-mentioned problems, and using a highly sensitive immunological assay method, without culturing Mycobacterium tuberculosis in a biological sample, The present inventors have found that a Mycobacterium tuberculosis bacterium can be diagnosed quickly and easily by detecting a Mycobacterium tuberculosis group-specific secreted protein from a biological sample, thereby completing the present invention. That is, the present invention relates to the following (1) to (20). (1) A method for detecting Mycobacterium tuberculosis in a biological sample, wherein the Mycobacterium tuberculosis group-specific secreted protein is detected by an immunological assay without culturing the Mycobacterium tuberculosis in the biological sample. (2) Detecting a Mycobacterium tuberculosis group-specific secreted protein by an immunoassay using an anti-tuberculosis group-specific secreted protein antibody after pretreating the biological sample without culturing the M. tuberculosis in the biological sample. A method for detecting Mycobacterium tuberculosis in a biological sample. (3) An immunological method using a tuberculosis group-specific secreted protein antibody and a labeled body sensitizing reagent after pretreatment of the biological sample without culturing the tuberculosis bacterium in the biological sample; Characterized by detecting by a measuring method,
A method for detecting Mycobacterium tuberculosis in a biological sample. (4) The biological sample is sputum or pleural effusion as described in (1) to above.
The method according to any one of (3). (5) The method according to (2) or (3), wherein the pretreatment includes a step of inactivating tuberculosis bacteria in the biological sample.

【0007】(6) 前処理が、アルカリ性物質、還元
性物質、プロテアーゼ、糖、界面活性剤、蛋白変性剤か
ら選ばれる少なくとも一種で行うことを特徴とする上記
(2)または(3)に記載の方法。 (7) 結核菌群特異的分泌蛋白質が、MPT64である上
記(1)〜(3)のいずれか1項に記載の方法。 (8) 抗結核菌群特異的分泌蛋白質抗体が、抗MPT64
抗体である上記(2)または(3)に記載の方法。 (9) 抗MPT64抗体が、モノクローナル抗体である上
記(8)記載の方法。 (10) 免疫学的測定法が、酵素免疫測定法であるこ
とを特徴とする上記(1)〜(3)のいずれか1項に記
載の方法。
(6) The above (2) or (3), wherein the pretreatment is performed with at least one selected from an alkaline substance, a reducing substance, a protease, a sugar, a surfactant, and a protein denaturant. the method of. (7) The method according to any one of (1) to (3) above, wherein the Mycobacterium tuberculosis group-specific secretory protein is MPT64. (8) Anti-M. Tuberculosis group-specific secreted protein antibody is anti-MPT64
The method according to the above (2) or (3), which is an antibody. (9) The method according to the above (8), wherein the anti-MPT64 antibody is a monoclonal antibody. (10) The method according to any one of the above (1) to (3), wherein the immunological assay is an enzyme immunoassay.

【0008】(11) 免疫学的測定法が、発光免疫測
定法であることを特徴とする上記(1)〜(3)のいず
れか1記載の方法。 (12) 免疫学的測定法が、蛍光免疫測定法であるこ
とを特徴とする上記(1)〜(3)のいずれか1記載の
方法。 (13) 上記(10)〜(12)のいずれか1項に記
載の免疫測定法が、サンドイッチ法である上記(10)
〜(12)のいずれか1項に記載の方法。 (14) アルカリ性物質を有効成分として含有する、
生体試料中の結核菌群特異的蛋白質を前処理する試薬。 (15) 生体試料が、喀痰、胸水である上記(14)
記載の試薬。
(11) The method according to any one of the above (1) to (3), wherein the immunological assay is a luminescent immunoassay. (12) The method according to any one of the above (1) to (3), wherein the immunological assay is a fluorescent immunoassay. (13) The immunoassay according to any one of (10) to (12), wherein the immunoassay is a sandwich method.
-The method according to any one of (12). (14) containing an alkaline substance as an active ingredient,
A reagent for pretreating a Mycobacterium tuberculosis complex-specific protein in a biological sample. (15) The above-mentioned (14), wherein the biological sample is sputum or pleural effusion.
The reagent as described.

【0009】(16) 上記(14)または(15)に
記載の試薬および抗結核菌群特異的分泌蛋白質抗体を含
む試薬を含んでなる、結核菌検出用キット。 (17) 上記(14)または(15)に記載の試薬、
抗結核菌群特異的蛋白質抗体を含む試薬および該抗体の
標識を検出する試薬を含んでなる、結核菌検出用キッ
ト。 (18) 上記(14)または(15)に記載の試薬、
抗結核菌群特異的分泌蛋白質抗体を含む試薬、該抗体の
標識を検出する試薬および標識体増感試薬を含んでな
る、結核菌検出用キット。 (19) 結核菌群特異的分泌蛋白質がMPT64である、
上記(16)〜(18)のいずれか1項に記載のキッ
ト。 (20) 抗結核菌群特異的蛋白質抗体が抗MPT64抗体
である上記(16)〜(18)のいずれか1項に記載の
キット。
(16) A kit for detecting Mycobacterium tuberculosis, comprising the reagent according to (14) or (15) and a reagent containing an anti-M. Tuberculosis group-specific secreted protein antibody. (17) The reagent according to the above (14) or (15),
A kit for detecting Mycobacterium tuberculosis, comprising a reagent containing an anti-M. Tuberculosis group-specific protein antibody and a reagent for detecting a label of the antibody. (18) The reagent according to the above (14) or (15),
A kit for detecting Mycobacterium tuberculosis, comprising a reagent containing an anti-Mycobacterium tuberculosis group-specific secretory protein antibody, a reagent for detecting the label of the antibody, and a labeled sensitizing reagent. (19) the Mycobacterium tuberculosis group-specific secreted protein is MPT64;
The kit according to any one of the above (16) to (18). (20) The kit according to any one of (16) to (18) above, wherein the anti-tuberculosis group-specific protein antibody is an anti-MPT64 antibody.

【0010】[0010]

【発明の実施の形態】本発明において、生体試料中の結
核菌を培養することなく、結核菌群特異的分泌蛋白質を
免疫学的測定法により検出することは、生体試料中の結
核菌を培養することなく、結核菌群特異的分泌蛋白質を
免疫学的測定法により測定できればいかなる方法でもよ
いが、生体試料中の結核菌を前処理した後に免疫学的測
定法に供する方法が好ましい。
BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION In the present invention, detecting a Mycobacterium tuberculosis group-specific secreted protein by an immunoassay without culturing the M. tuberculosis in a biological sample involves culturing the M. tuberculosis in the biological sample. Any method can be used as long as the method can measure the Mycobacterium tuberculosis group-specific secreted protein by an immunological assay without performing the method. However, a method in which the Mycobacterium tuberculosis in a biological sample is pretreated and then subjected to the immunological assay is preferable.

【0011】本発明に用いる生体試料としては、結核菌
の存在しうるものであればいかなる生体試料も用いるこ
とができる。例えば、喀痰、胸水等を用いることができ
る。好ましくは、菌濃度が高いことから、喀痰が用いら
れる。本発明の前処理とは、結核菌群特異的分泌蛋白質
を抗原活性を損なうことなく該蛋白質に対する抗体への
感受性を高めるように処理する工程を含む工程を意味す
る。測定上の安全のために、結核菌を不活性化する工程
を含むことが好ましい。なお、結核菌を不活性化する工
程は、結核菌群特異的分泌蛋白質を前処理する工程の前
でも後でもよい。
As the biological sample used in the present invention, any biological sample in which M. tuberculosis can be present can be used. For example, sputum, pleural effusion and the like can be used. Preferably, sputum is used because of its high bacterial concentration. The pretreatment of the present invention means a step including a step of treating a Mycobacterium tuberculosis group-specific secreted protein so as to increase sensitivity to an antibody against the protein without impairing antigenic activity. It is preferable to include a step of inactivating Mycobacterium tuberculosis for safety in measurement. The step of inactivating M. tuberculosis may be before or after the step of pretreating the M. tuberculosis group-specific secretory protein.

【0012】本発明における生体試料から結核菌群特異
的分泌蛋白質を前処理するための試薬としては、結核菌
群特異的分泌蛋白質を抗原活性を損なうことなく該蛋白
質に対する抗体への感受性を高めることが可能であれば
いかなるものでもよい。好ましくは、生体試料、特に喀
痰の粘性を低下させる作用を有し、さらに好ましくは生
体試料中の蛋白質の可溶化能を有している物質を含む試
薬が用いられる。
The reagent for pretreating a Mycobacterium tuberculosis group-specific secretory protein from a biological sample according to the present invention includes increasing the sensitivity of a Mycobacterium tuberculosis group-specific secretory protein to an antibody to the protein without impairing antigenic activity. Can be anything if possible. Preferably, a reagent having a function of lowering the viscosity of a biological sample, particularly sputum, and more preferably containing a substance capable of solubilizing proteins in the biological sample is used.

【0013】喀痰の粘性を低下させる物質としては、ア
ルカリ性物質、還元性物質、プロテアーゼ、糖、界面活
性剤、蛋白変性剤等があげられ、好ましくは、アルカリ
性物質、還元性物質があげられる。アルカリ性物質とし
ては水酸化ナトリウムがあげられ、その濃度は特に制限
されないが、結核菌分泌蛋白質の抗原活性に及ぼす影響
を考慮すると、0.5%〜4%で使用するのが好ましい。
Examples of the substance that reduces the viscosity of sputum include an alkaline substance, a reducing substance, a protease, a sugar, a surfactant, a protein denaturant, and the like, and preferably, an alkaline substance and a reducing substance. Examples of the alkaline substance include sodium hydroxide, and the concentration thereof is not particularly limited. However, considering the effect on the antigen activity of the M. tuberculosis secretory protein, it is preferably used in an amount of 0.5% to 4%.

【0014】還元性物質としては、N-アセチル-L-シス
テイン、ジチオトレイトール等があげられ、その濃度は
特に制限されないが、0.05%〜1%で使用するのが好まし
い。プロテアーゼとしては、プロテイナーゼK(Proteina
se K)、フィシン(FICIN)等があげられ、その濃度は特
に制限されないが、0.05%〜1%で使用するのが好まし
い。
Examples of the reducing substance include N-acetyl-L-cysteine and dithiothreitol, and the concentration thereof is not particularly limited, but is preferably used at 0.05% to 1%. As protease, proteinase K (Proteina
se K), ficin (FICIN) and the like, and the concentration thereof is not particularly limited, but is preferably used at 0.05% to 1%.

【0015】糖としてはフコース、トレハロース等があ
げられ、その濃度は特に制限されないが、5%〜50%で使
用するのが好ましい。界面活性剤としては、ノニルフェ
ノキシ-ポリエトキシ-エタノール(NP-40)、3-[(3-コ
ラミドプロピル)ジメチルアンモニオ]-1-プロパンスル
ホン酸(CHAPS)等があげられ、その濃度は特に制限さ
れないが、1%〜50%で使用するのが好ましい。
Examples of the sugar include fucose, trehalose and the like, and the concentration thereof is not particularly limited, but it is preferable to use 5% to 50%. Examples of the surfactant include nonylphenoxy-polyethoxy-ethanol (NP-40) and 3-[(3-cholamidopropyl) dimethylammonio] -1-propanesulfonic acid (CHAPS). Although not limited, it is preferable to use 1% to 50%.

【0016】蛋白変性剤としては、尿素、塩酸グアニジ
ン等があげられ、その濃度は特に制限されないが、0.5M
〜10Mで使用するのが好ましい。上記の試薬を生体試料
に作用させた後、必要に応じて中和反応を行うことによ
り、結核菌群特異的分泌蛋白質を抗原活性を損なうこと
なく該蛋白質に対する抗体に対する感受性を高めること
ができる。中和反応は、例えば、喀痰前処理剤としてア
ルカリ性物質を使用した場合には、酸性物質を添加する
ことにより行うことができ、喀痰前処理剤としてプロテ
アーゼを使用した場合には、プロテアーゼインヒビター
の添加あるいは加熱処理等により行うことができる。
Examples of the protein denaturing agent include urea and guanidine hydrochloride, and the concentration thereof is not particularly limited.
Preferably it is used at ~ 10M. By reacting the above reagent on a biological sample and then performing a neutralization reaction as needed, the sensitivity of the Mycobacterium tuberculosis group-specific secreted protein to an antibody to the protein can be increased without impairing the antigen activity. The neutralization reaction can be performed by, for example, adding an acidic substance when an alkaline substance is used as a sputum pretreatment agent, and adding a protease inhibitor when using a protease as a sputum pretreatment agent. Alternatively, the heat treatment can be performed.

【0017】結核菌を不活性化させる工程としては、加
熱処理、濾過処理等があげられる。好ましくは加熱処理
があげられる。加熱温度としては、特に制限されない
が、50℃〜140℃、好ましくは、100℃である。加熱時間
としては、特に制限されないが、1〜60分間、好ましく
は15〜30分間である。
The step of inactivating M. tuberculosis includes heat treatment, filtration and the like. Preferably, a heat treatment is used. The heating temperature is not particularly limited, but is 50 ° C to 140 ° C, preferably 100 ° C. The heating time is not particularly limited, but is 1 to 60 minutes, preferably 15 to 30 minutes.

【0018】加熱処理を施す際には、結核菌群特異的分
泌蛋白質の抗原活性低下を防止するために、抗原活性を
安定化させる物質を添加することが好ましい。抗原活性
を安定化させる物質としては、ウシ血清アルブミン、ゼ
ラチン等があげられる。抗原活性を安定化させる物質の
濃度は、特に制限されないが、好ましくは0.01〜10%、
さらに好ましくは、0.1%である。
When performing the heat treatment, it is preferable to add a substance that stabilizes the antigen activity in order to prevent a decrease in the antigen activity of the M. tuberculosis group-specific secretory protein. Examples of substances that stabilize antigen activity include bovine serum albumin, gelatin and the like. The concentration of the substance that stabilizes the antigen activity is not particularly limited, but is preferably 0.01 to 10%,
More preferably, it is 0.1%.

【0019】結核菌を不活性化させる方法を行うことに
より、後述する以後の操作を安全キャビネットの中で行
う必要がなく、容易に試験を実施することができるの
で、臨床検査に適している。本発明の結核菌群特異的分
泌蛋白質としては、結核菌群が特異的に分泌していれ
ば、いかなる蛋白質でもよい。好ましくは、MPT64があ
げられる。
By performing the method for inactivating M. tuberculosis, the subsequent operations described later do not need to be performed in a safety cabinet, and the test can be easily carried out. Therefore, the method is suitable for clinical examination. The M. tuberculosis group-specific secreted protein of the present invention may be any protein as long as it is specifically secreted by the M. tuberculosis group. Preferably, MPT64 is used.

【0020】本発明における結核菌群特異的分泌蛋白質
に対する抗体としては、ポリクローナル抗体、モノクロ
ーナル抗体のいずれでもよく、これら抗体としては、公
知の方法により調製した抗体を用いることができる。本
発明に用いる抗体を作製するための抗原の調製方法とし
ては、MPB64蛋白質をコードするDNA(特許第26247
59号)を用いた遺伝子工学の手法により調製する方
法、結核菌を培養した培養上清からMPT64蛋白質を分離
し、精製することにより調製する方法、またはMPT64蛋
白質のアミノ酸配列の部分アミノ酸配列を選択し、合成
ペプチドを調製する方法などがあげられる。
The antibody against the Mycobacterium tuberculosis group-specific secretory protein in the present invention may be either a polyclonal antibody or a monoclonal antibody. As these antibodies, antibodies prepared by known methods can be used. As a method for preparing an antigen for preparing an antibody used in the present invention, DNA encoding the MPB64 protein (Japanese Patent No. 26247)
No. 59), a method of preparing MPT64 protein by separating and purifying MPT64 protein from a culture supernatant of M. tuberculosis, or selecting a partial amino acid sequence of the amino acid sequence of MPT64 protein And a method for preparing a synthetic peptide.

【0021】本発明で用いた抗体は、前述の抗原を免疫
原として用い、公知のモノクローナル抗体の製造法に従
い製造することができる。モノクローナル抗体の製造法
としては、例えば「富山朔二編、単クローン抗体実験マ
ニュアル、講談社」等に記載された方法により行うこと
ができる。免疫原を免疫する動物としてはマウス、ラッ
ト、ハムスター、ウサギ、モルモット、ヤギ、ヒツジや
ニワトリなどがあげられ、モノクローナル抗体作製には
マウス、ラットを用いるのが好ましい。
The antibody used in the present invention can be produced according to a known method for producing a monoclonal antibody using the aforementioned antigen as an immunogen. The monoclonal antibody can be produced by a method described in, for example, "Sakuji Toyama, Monoclonal Antibody Experimental Manual, Kodansha". Animals immunized with the immunogen include mice, rats, hamsters, rabbits, guinea pigs, goats, sheep and chickens, and it is preferable to use mice and rats for monoclonal antibody production.

【0022】免疫方法としては、例えば[西道、豊島、
新生化学実験講座、1, 389 (1990)、東京化学同人]等
に記載の方法を用いて行うことができる。例えば免疫原
をフロイントの完全または不完全アジュバントにエマル
ジョン化し、腹腔内、皮下、筋肉内に投与することによ
り行われる。例えば、7ないし30日、好ましくは12
ないし16日間隔の一定間隔をおいて2回以上好ましく
は2回〜4回投与し、免疫を完成させることができる。
Examples of the immunization method include [Nishimichi, Teshima,
New Chemistry Experiment Course, 1 , 389 (1990), Tokyo Kagaku Doujin] and the like. For example, the immunogen is emulsified in Freund's complete or incomplete adjuvant and administered intraperitoneally, subcutaneously, or intramuscularly. For example, 7 to 30 days, preferably 12
The administration can be carried out two or more times, preferably two to four times at regular intervals of from 16 days to complete immunity.

【0023】モノクローナル抗体作製の場合には、抗体
産生細胞の採取源としては免疫した動物の脾臓、リンパ
節、末梢血液などがあげられる。また免疫を行っていな
い動物の脾臓、リンパ節、末梢血液等より抗体産生担当
細胞を取り出し、これら細胞に対し直接免疫を行って抗
体産生細胞とする所謂 in vitro 免疫[新井、太田、実
験医学、 6, 43(1988)]を行った細胞を用いてもよい。
In the case of preparing a monoclonal antibody, the source of the antibody-producing cells may be the spleen, lymph node, peripheral blood, etc. of the immunized animal. Also, so-called in vitro immunization (Arai, Ota, Experimental Medicine, etc.), in which antibody-producing cells are extracted from the spleen, lymph nodes, peripheral blood, etc. of non-immunized animals, and these cells are directly immunized to produce antibody-producing cells. 6 , 43 (1988)].

【0024】抗体産生細胞と骨髄腫細胞との細胞融合を
行う際に使用する骨髄腫細胞は特に限定はないが、抗体
産生細胞と同種の動物由来の細胞株を使用するのが好ま
しい。また適切に細胞融合が行われた細胞のみを効率よ
く選択するために、特定の薬物マーカーを有するものが
好ましい。例えば8−アザグアニン耐性の骨髄腫細胞は
ヒポキサンチン、アミノプテリン、およびチミンジンを
含有した培地(以下、HAT培地と称する。)中では生育
できないが、この細胞と正常細胞とが融合した細胞はHA
T培地中で生育できるようになり、未融合の骨髄腫細胞
と区別できることから好んで使用される。具体的にはP3
×63-Ag.8.653[ジャーナル・オブ・イムノロジー(J.
Immunol.), 123, 1548 (1979)]やP3×63-Ag.8.U1[Cur
r. Topics. Microbiol. Immunol., 81, 1 (1978) ](以
下、単にP3U1と略記する。)、Sp/O-Ag14[ネイチ
ャー(Nature), 276, 269 (1978)]などがあげられ
る。
The myeloma cells used for cell fusion between the antibody-producing cells and myeloma cells are not particularly limited, but it is preferable to use animal-derived cell lines of the same species as the antibody-producing cells. In order to efficiently select only cells that have been appropriately subjected to cell fusion, those having a specific drug marker are preferable. For example, 8-azaguanine-resistant myeloma cells cannot grow in a medium containing hypoxanthine, aminopterin, and thyminedin (hereinafter referred to as HAT medium), but cells in which these cells are fused with normal cells are HA.
It is preferably used because it can grow in T medium and can be distinguished from unfused myeloma cells. Specifically, P3
× 63-Ag.8.653 [Journal of Immunology (J.
Immunol.), 123 , 1548 (1979)] and P3 × 63-Ag.8.U1 [Cur
r. Topics. Microbiol. Immunol., 81 , 1 (1978)] (hereinafter simply abbreviated as P3U1), Sp / O-Ag14 [Nature, 276 , 269 (1978)] and the like.

【0025】細胞融合はケーラーとミルシュタイン[ネ
イチャー(Nature), 256, 495 (1975)]によって発明さ
れ、急速に発展し、様々に改良されてきた方法が応用で
きる。良く用いられる方法としては抗体産生細胞と骨髄
腫細胞を10〜3:1の割合で混合し、30〜50%の
ポリエチレングリコール(平均分子量1,500〜6,
000)を融合剤に用いて処理する方法である。また電
気パルスにより融合することもできる[河内ら、実験医
学、 6, 50 (1988)]。
Cell fusion was invented by Koehler and Milstein [Nature, 256 , 495 (1975)], and rapidly developed and variously improved methods can be applied. As a frequently used method, antibody-producing cells and myeloma cells are mixed at a ratio of 10 to 3: 1 and mixed with 30 to 50% of polyethylene glycol (average molecular weight of 1,500 to 6,6).
000) as a fusion agent. It can also be fused by electric pulses [Kawachi et al., Experimental Medicine, 6 , 50 (1988)].

【0026】細胞融合を終えた細胞は選択培地に浮遊
し、96ウェル培養プレートのような後の目的細胞選択
に有利な培養容器を用いて融合細胞のみを生育させる。
融合細胞のみが選択的に生育された段階で、MPT64蛋白
質に対する抗体を産生している細胞のみを選択する。こ
の選択は融合細胞の培養上清中の目的抗体の有無を、例
えば酵素免疫測定や放射線免疫測定などの方法を用いて
調べる。選択された細胞はたとえば限界希釈法や軟寒天
培地法などの方法を用いて単クローン化し、MPT64蛋白
質特異的モノクローナル抗体産生ハイブリドーマ細胞株
を樹立する。
The cells after cell fusion are suspended in a selection medium, and only the fused cells are grown using a culture vessel such as a 96-well culture plate, which is advantageous for the subsequent selection of target cells.
At the stage where only the fused cells have been selectively grown, only cells producing antibodies to the MPT64 protein are selected. In this selection, the presence or absence of the target antibody in the culture supernatant of the fused cells is examined using a method such as enzyme immunoassay or radioimmunoassay. The selected cells are cloned using, for example, a limiting dilution method or a soft agar medium method to establish a hybridoma cell line producing an MPT64 protein-specific monoclonal antibody.

【0027】モノクローナル抗体は樹立したハイブリド
ーマ細胞株を適当な培地で培養してその培養液を回収
し、あるいは細胞株を動物の腹腔内に移植して腹水中で
増殖させて腹水を回収し、得られた培養液または腹水か
ら得ることが出来る。培養液あるいは腹水中の抗体は必
要に応じて精製して使用することができる。精製方法と
しては例えば硫酸アンモニウムを用いた塩析分画、イオ
ン交換クロマトグラフィー法、ゲル濾過カラムクロマト
グラフィー法、プロテインAやプロテインGを用いたア
フィニティカラムクロマトグラフィー法、さらに抗原を
固相化したゲルを用いるアフィニティカラムクロマトグ
ラフィー法など様々な方法またはこれらの方法を組合わ
せた方法があげられる。また、本発明に使用する抗体と
しては上述の方法で得られた抗体をペプシン等の酵素処
理および/または還元処理して得られるFab、Fab'、F(a
b)2などの抗体フラグメントを用いてもよい。
The monoclonal antibody is obtained by culturing the established hybridoma cell line in an appropriate medium and collecting the culture, or by transplanting the cell line into the peritoneal cavity of an animal and growing it in ascites to collect ascites. It can be obtained from the obtained culture solution or ascites. The antibody in the culture solution or ascites can be purified and used as needed. Purification methods include, for example, salting-out fractionation using ammonium sulfate, ion-exchange chromatography, gel filtration column chromatography, affinity column chromatography using protein A or protein G, and a gel on which an antigen is immobilized. Various methods such as an affinity column chromatography method to be used or a method combining these methods can be mentioned. Further, as the antibody used in the present invention, Fab, Fab ′, F (a) obtained by treating the antibody obtained by the above-mentioned method with an enzyme such as pepsin and / or a reduction treatment.
b) Antibody fragments such as 2 may be used.

【0028】本発明に用いる結核菌群特異的分泌蛋白質
の免疫学的測定法としては、任意の公知の免疫学的測定
方法があげられる。例えば、標識方法の違いにより、放
射免疫測定法(RIA)、酵素免疫測定法(EIAまたはELIS
A)、蛍光免疫測定法(FIA)、発光免疫測定法(lumine
scent immunoassay)、物理化学的検出法(TIA,LAPI
A,PCIA)などがあげられるが、好ましくは酵素免疫測
定法があげられる。
The immunological assay for the secretory protein specific to the Mycobacterium tuberculosis group used in the present invention includes any known immunological assay. For example, radioimmunoassay (RIA), enzyme immunoassay (EIA or ELIS)
A), fluorescence immunoassay (FIA), luminescence immunoassay (lumine
scent immunoassay), physicochemical detection method (TIA, LAPI
A, PCIA) and the like, preferably an enzyme immunoassay.

【0029】酵素免疫測定法で用いる標識体としては、
任意の公知(石川榮次ら編、酵素免疫測定法、医学書
院)の酵素標識を用いることができる。例えば、アルカ
リフォスファターゼ標識、ペルオキシダーゼ標識、ルシ
フェラーゼ標識等を用いることができる。発光免疫測定
法で用いる標識体としては、任意の公知[今井一洋編、
生物発光と化学発光、廣川書店; 臨床検査42(1998)]
の発光体標識を用いることができる。例えば、アクリジ
ニウムエステル標識、ロフィン標識等を用いることがで
きる。
The label used in the enzyme immunoassay includes:
Any known enzyme label (edited by Eiji Ishikawa et al., Enzyme immunoassay, Medical Shoin) can be used. For example, alkaline phosphatase label, peroxidase label, luciferase label and the like can be used. As the label used in the luminescence immunoassay, any known [Imai Kazuhiro,
Bioluminescence and chemiluminescence, Hirokawa Shoten; Clinical Laboratory 42 (1998)]
Can be used. For example, an acridinium ester label, a roffin label, or the like can be used.

【0030】蛍光免疫測定法で用いる標識体としては、
任意の公知(川生明著、蛍光抗体法、ソフトサイエンス
社)の蛍光標識を用いることができる。例えば、FITC標
識、RITC標識等を用いることができる。免疫学的測定法
とは、上述した各種標識を施した抗原または抗体を用い
て、抗体量または抗原量を測定する方法である。本発明
の免疫学的測定法としては、抗原の検出または測定を行
う方法であればいかなる方法でもよい。例えば、競合
法、サンドイッチ法[免疫学イラストレイテッド 第5
版 (南光堂)]があげられるが、サンドイッチ法が好ま
しい。
The label used in the immunofluorescence assay includes:
Any known fluorescent label (Akira Kawao, fluorescent antibody method, Soft Science) can be used. For example, FITC labels, RITC labels, and the like can be used. The immunological measurement method is a method for measuring the amount of an antibody or the amount of an antigen using the above-described variously labeled antigens or antibodies. As the immunological measurement method of the present invention, any method may be used as long as it is a method for detecting or measuring an antigen. For example, competitive method, sandwich method [Immunology Illustrated
Plate (Nankodo)], but the sandwich method is preferred.

【0031】サンドイッチ法は、固相に第一の抗体を結
合させた後、測定したい抗原をトラップさせ、標識した
第二の抗体を反応させる方法である。サンドイッチ法に
用いる抗体としては、ポリクローナル抗体、モノクロー
ナル抗体のいずれを用いてもよく、上述したFab、Fa
b'、F(ab)2などの抗体フラグメントを用いてもよい。サ
ンドイッチ法で用いる2種類の抗体の組み合わせとして
は、異なるエピトープを認識するモノクローナル抗体あ
るいは抗体フラグメントの組み合わせでもよいし、ポリ
クローナル抗体とモノクローナル抗体あるいは抗体フラ
グメントの組み合わせでもよい。
The sandwich method is a method in which after binding a first antibody to a solid phase, an antigen to be measured is trapped, and a labeled second antibody is reacted. As the antibody used for the sandwich method, any of a polyclonal antibody and a monoclonal antibody may be used.
Antibody fragments such as b 'and F (ab) 2 may be used. The combination of the two types of antibodies used in the sandwich method may be a combination of a monoclonal antibody or an antibody fragment that recognizes a different epitope, or a combination of a polyclonal antibody and a monoclonal antibody or an antibody fragment.

【0032】以下に免疫学的測定法を具体的に説明す
る。まず、適当な固体担体の表面に上述で得られた結核
菌群特異的分泌蛋白質に対する抗体を吸着固定する。該
抗体を前処理を施した結核菌群特異的蛋白質を含有する
生体試料と接触せしめる。これにより、生体試料中の結
核菌群特異的分泌蛋白質が、固体担体に固定されている
結核菌群特異的分泌蛋白質に対する抗体と特異的に結合
する。この結果、生体試料中の結核菌群特異的分泌蛋白
質があらかじめ固体されている結核菌群特異的分泌蛋白
質に対する抗体を介して固定担体に固定される。
Hereinafter, the immunoassay will be described in detail. First, an antibody against the Mycobacterium tuberculosis group-specific secreted protein obtained above is adsorbed and fixed on the surface of a suitable solid carrier. The antibody is brought into contact with a pretreated biological sample containing a Mycobacterium tuberculosis complex-specific protein. Thereby, the Mycobacterium tuberculosis group-specific secreted protein in the biological sample specifically binds to the antibody against the Mycobacterium tuberculosis group-specific secreted protein immobilized on the solid support. As a result, the Mycobacterium tuberculosis group-specific secretory protein in the biological sample is immobilized on the immobilization carrier via an antibody against the Mycobacterium tuberculosis group-specific secretory protein which has been solidified in advance.

【0033】次に、結核菌群特異的分泌蛋白質が固定さ
れた前記担体を、二次抗体として、標識された結核菌群
特異的分泌蛋白質に対する抗体を含有する溶液と接触せ
しめる。これにより該二次抗体は、あらかじめ固定され
ている結核菌群特異的分泌蛋白質に対する抗体及び結核
菌群特異的分泌蛋白質を介して、固相担体に結合し、こ
の場合二次抗体の固定量が生体試料中の結核菌群特異的
分泌蛋白質の量を反映する。
Next, the carrier on which the Mycobacterium tuberculosis group-specific secretory protein is immobilized is brought into contact with a solution containing a labeled antibody against the Mycobacterium tuberculosis group-specific secretory protein as a secondary antibody. Thereby, the secondary antibody binds to the solid-phase carrier via the antibody against the Mycobacterium tuberculosis group-specific secretory protein and the Mycobacterium tuberculosis group-specific secretory protein, which are fixed in advance, and in this case, the immobilized amount of the secondary antibody is reduced. It reflects the amount of Mycobacterium tuberculosis group-specific secreted proteins in biological samples.

【0034】上記のようにして固定された二次抗体の量
の測定は、二次抗体の標識体に応じて測定することがで
きる。また、微量の抗原を測定するために標識体増感試
薬を用いることもできる。上記のようにして、固定され
た二次抗体の量を測定することにより、生体試料中の結
核菌群特異的分泌蛋白質の量を決定することができる。
The amount of the secondary antibody immobilized as described above can be measured according to the label of the secondary antibody. In addition, a labeled sensitizing reagent can be used to measure a trace amount of antigen. By measuring the amount of the immobilized secondary antibody as described above, the amount of the M. tuberculosis group-specific secreted protein in the biological sample can be determined.

【0035】固体担体としては、ポリ塩化ビニル製マイ
クロタイタープレート、ポリスチレン製マイクロタイタ
ープレート等があげられる。抗体の固定は、例えば、当
該抗体を適当な緩衝液、例えばリン酸緩衝液、ホウ酸緩
衝液、炭酸緩衝液等に希釈した後、これを固定担体の表
面に接触させ、そして4〜37℃にて30分間以上のインキ
ューベーション等により行うことができる。
Examples of the solid carrier include a polyvinyl chloride microtiter plate and a polystyrene microtiter plate. For immobilization of the antibody, for example, after diluting the antibody in an appropriate buffer, for example, a phosphate buffer, a borate buffer, a carbonate buffer, or the like, the diluted antibody is brought into contact with the surface of the immobilization carrier, and then heated to 4 to 37 ° C. For 30 minutes or more.

【0036】未吸着の結核菌群特異的分泌蛋白質に対す
る抗体を除去するには、Tween20等の界面活性剤を含有
する緩衝液、例えばリン酸緩衝液、ホウ酸緩衝液、炭酸
緩衝液等を用いて数回洗浄する。固体担体表面上の遊離
結合基をブロックするブロッキング緩衝液としては、例
えば1〜10%のウシ血清アルブミン、10〜30%ブロックエ
ース(雪印乳業社製)を含有する緩衝液、例えば、リン
酸緩衝液、ホウ酸緩衝液、炭酸緩衝液等があげられる。
ブロッキング処理は、4〜37℃にて30分間以上のインキ
ュベーション等により行うことができる。
In order to remove the antibody against the unadsorbed Mycobacterium tuberculosis group-specific secreted protein, a buffer containing a surfactant such as Tween 20, for example, a phosphate buffer, a borate buffer, a carbonate buffer, or the like is used. And wash several times. Examples of the blocking buffer for blocking free binding groups on the surface of the solid carrier include a buffer containing 1 to 10% bovine serum albumin and 10 to 30% Block Ace (manufactured by Snow Brand Milk Products), for example, phosphate buffer. Liquid, borate buffer, carbonate buffer and the like.
The blocking treatment can be performed by incubation at 4 to 37 ° C. for 30 minutes or more.

【0037】生体試料としては、例えば0.01〜1%のウシ
血清アルブミンのような蛋白質を含有する緩衝液、リン
酸緩衝液、ホウ酸緩衝液、炭酸緩衝液等で希釈されたも
のでもよい。抗体と生体試料との接触は、4〜37℃にて3
0分間以上のインキュベーション等により行うことがで
きる。接触後、Tween20等の界面活性剤を含有する緩衝
液、例えばリン酸緩衝液、ホウ酸緩衝液、炭酸緩衝液等
を用いて数回洗浄する。
The biological sample may be one diluted with a buffer containing a protein such as bovine serum albumin of 0.01 to 1%, a phosphate buffer, a borate buffer, a carbonate buffer or the like. Contact between the antibody and the biological sample should be performed at
It can be carried out by incubation for 0 minutes or more. After the contact, the substrate is washed several times with a buffer containing a surfactant such as Tween 20, for example, a phosphate buffer, a borate buffer, a carbonate buffer, or the like.

【0038】結合固定された二次抗体の検出または測定
は、任意の公知の方法に従って行うことができる。例え
ば、上述のように、二次抗体自体を、酵素、発光体、蛍
光体等により標識しておき、直接検出または測定するこ
とも可能であるし、二次抗体に対して特異的な三次抗体
を用い、この三次抗体を種々の方法により標識してお
き、三次抗体の標識を検出または測定することもでき
る。
Detection or measurement of the bound and immobilized secondary antibody can be performed according to any known method. For example, as described above, the secondary antibody itself is labeled with an enzyme, a luminescent material, a fluorescent material, or the like, and can be directly detected or measured, or a tertiary antibody specific to the secondary antibody , The tertiary antibody can be labeled by various methods, and the label of the tertiary antibody can be detected or measured.

【0039】標識体増感試薬としては、例えば酵素免疫
測定においてアルカリフォスファターゼ標識を用いた場
合は、酵素サイクリング増感試薬であるAmplifier(DAK
O社製)、ペルオキシダーゼ標識を用いた場合は、電子
スピン共鳴を用いたRadical-EIA法(特開平9-28396)を
用いることができる。本発明は結核菌検出用キットを提
供し、該キットには、少なくとも生体試料の前処理液お
よび結核菌群特異的蛋白質に対する抗体を含む試薬を含
む。結核菌群特異的分泌蛋白質に対する抗体としては、
前記した抗体が用いられる。用いる免疫学的測定法がサ
ンドイッチである場合には2種類の抗体を用いるが、異
なるエピトープを認識するモノクローナル抗体あるいは
抗体フラグメントの組み合わせでもよいし、ポリクロー
ナル抗体とモノクローナル抗体あるいは抗体フラグメン
トの組み合わせでもよい。
As a labeled sensitizing reagent, for example, when an alkaline phosphatase label is used in enzyme immunoassay, an enzyme cycling sensitizing reagent, Amplifier (DAK
In the case of using peroxidase labeling, a Radical-EIA method using electron spin resonance (JP-A-9-28396) can be used. The present invention provides a kit for detecting Mycobacterium tuberculosis, the kit including at least a pretreatment liquid for a biological sample and a reagent containing an antibody against a Mycobacterium tuberculosis group-specific protein. Antibodies to Mycobacterium tuberculosis group-specific secreted proteins include:
The antibodies described above are used. When the immunological assay to be used is a sandwich, two kinds of antibodies are used, but a combination of a monoclonal antibody or an antibody fragment that recognizes a different epitope may be used, or a combination of a polyclonal antibody and a monoclonal antibody or an antibody fragment may be used.

【0040】また、2種類の抗体のいずれかは、上述し
た標識体を施す。したがって、標識体を検出する試薬
も、結核菌検出用キットに含まれる。また、必要に応じ
て、生体試料の希釈緩衝液、各種の試薬希釈用緩衝液、
洗浄液等も本発明のキットに含まれる。以下、本発明を
実施例により、更に詳細に説明するが、本発明の技術的
範囲は、かかる実施例等により何ら制限を受けるもので
はない。
In addition, any one of the two types of antibodies is labeled with the above-described label. Therefore, a reagent for detecting a labeled substance is also included in the kit for detecting Mycobacterium tuberculosis. Also, if necessary, a biological sample dilution buffer, various reagent dilution buffers,
A washing solution and the like are also included in the kit of the present invention. Hereinafter, the present invention will be described in more detail with reference to Examples, but the technical scope of the present invention is not limited by the Examples and the like.

【0041】[0041]

【実施例】実施例1 MPT64に対するモノクローナル抗
体の作製 (1)動物の免疫と抗体産生細胞の調整 公知の方法[Jpn. J. Med. Sci. Biol., 49, 15 (1996)]
に従って、結核菌培養上清からMPT64を取得した。
EXAMPLES Example 1 Preparation of Monoclonal Antibody Against MPT64 (1) Immunization of Animals and Preparation of Antibody-Producing Cells Known Methods [Jpn. J. Med. Sci. Biol., 49 , 15 (1996)]
, MPT64 was obtained from the M. tuberculosis culture supernatant.

【0042】MPT64は、免疫原性を高める目的で以下の
方法でメチル化BSA(シグマ社)とのコンジュゲートを
作製し、免疫原とした。すなわち、2回蒸留水に溶解し
たメチル化BSAを、BSA:HVC002=1:4(重量比)になるよ
うに4℃で混合し、10秒間ボルテックスミキサーで攪
拌した。その後、HVC002濃度が200μg/mlになるよう
に、0.4M NaCl溶液で希釈後、連結針付きシリンジを用
いて完全フロインドアジュバント、あるいは不完全フロ
イントアジュバントと容量比1:1で混合し、免疫原と
した。
For the purpose of enhancing the immunogenicity of MPT64, a conjugate with methylated BSA (Sigma) was prepared by the following method and used as an immunogen. That is, methylated BSA dissolved in double distilled water was mixed at 4 ° C. so that BSA: HVC002 = 1: 4 (weight ratio), and stirred with a vortex mixer for 10 seconds. Then, after diluting with a 0.4 M NaCl solution so that the HVC002 concentration becomes 200 μg / ml, the mixture was mixed with complete Freund's adjuvant or incomplete Freund's adjuvant at a volume ratio of 1: 1 using a syringe with a connecting needle, and mixed with the immunogen. did.

【0043】5週令雌マウス(Balb/c)に、完全フロイ
ンドアジュバントを用いて上記のように調製した免疫原
であるMPT64を30μg投与し、2週間後より不完全フ
ロインドアジュバントを用いて同様に調整した免疫原を
1週間に1回、計4回投与した。眼底静脈叢より採血
し、その血清抗体価を実施例1(4)に示すバインディ
ングELISAで調べ、十分な抗体価を示したマウスから最
終免疫3日後に脾臓を摘出した。
To a 5-week-old female mouse (Balb / c), 30 μg of the immunogen MPT64 prepared as described above using complete Freund's adjuvant was administered. Two weeks later, the same procedure was performed using incomplete Freund's adjuvant. The adjusted immunogen was administered once a week for a total of four times. Blood was collected from the fundus venous plexus, and its serum antibody titer was examined by the binding ELISA described in Example 1 (4). From the mouse showing a sufficient antibody titer, the spleen was extracted 3 days after the last immunization.

【0044】脾臓をMEM培地(日水製薬社製)中で細断
し、ピンセットでほぐし、遠心分離(1200rpm、
5分間)した後、上清を捨て、トリス−塩化アンモニウ
ム緩衝液(pH7.65)で1〜2分間処理し赤血球を
除去し、MEM培地で3回洗浄し、細胞融合に用いた。 (2)マウス骨髄腫細胞の調製 8−アザグアニン耐性マウス骨髄腫細胞株P3−U1を
正常培地で培養し、細胞融合時に2×107以上の細胞
を確保し、細胞融合に親株として供した。
The spleen was shredded in a MEM medium (manufactured by Nissui Pharmaceutical Co., Ltd.), loosened with forceps, and centrifuged (1200 rpm,
After 5 minutes), the supernatant was discarded and treated with a Tris-ammonium chloride buffer (pH 7.65) for 1 to 2 minutes to remove red blood cells, washed three times with MEM medium, and used for cell fusion. (2) Preparation of mouse myeloma cells An 8-azaguanine-resistant mouse myeloma cell line P3-U1 was cultured in a normal medium, and 2 × 10 7 or more cells were secured at the time of cell fusion and used as a parent strain for cell fusion.

【0045】(3)ハイブリドーマの作製 実施例1(1)で得られたマウス脾細胞と(2)で得ら
れた骨髄腫細胞とを10:1になるよう混合し、遠心分
離(1,200rpm、5分間)した後、上清を捨て、
沈澱した細胞群をよくほぐした後、攪拌しながら、37
℃で、ポリエチレングライコール−1,000(PEG
−1,000)2g、MEM培地2mlおよびジメチル
スルホキシド0.7mlの混液0.2〜1ml/108
マウス脾細胞を加え、1〜2分間毎にMEM培地1〜
2mlを数回加えた後、MEM培地を加えて全量が50
mlになるようにした。遠心分離(900rpm、5分
間)後、上清を捨て、ゆるやかに細胞をほぐした後、メ
スピペットによる吸込み、吸出しでゆるやかに細胞をH
AT培地100ml中に懸濁した。
(3) Preparation of hybridoma The mouse spleen cells obtained in Example 1 (1) and the myeloma cells obtained in (2) were mixed at a ratio of 10: 1, and centrifuged (1,200 rpm). 5 minutes), discard the supernatant,
After loosening the precipitated cell group, the mixture was stirred for 37
At room temperature, polyethylene glycol-1,000 (PEG
-1,000) 2 g, MEM medium 2 ml and dimethyl sulfoxide 0.7 ml mixture 0.2-1 ml / 10 8
Mouse spleen cells were added, and MEM medium 1
After adding 2 ml several times, a total amount of 50 ml was added by adding MEM medium.
ml. After centrifugation (900 rpm, 5 minutes), the supernatant was discarded, and the cells were loosened gently.
The cells were suspended in 100 ml of AT medium.

【0046】この懸濁液を96ウェル培養用プレートに
100μl/ウェルずつ分注し、5%CO2インキュベ
ーター中、37℃で10〜14日間CO25%下で培養
した。この培養上清を実施例1(4)に示すバインディ
ングELISAで調べ、MPT64に反応してMPT64を含まな
い抗原に反応しないウェルを選び、さらにHT培地と正
常培地に換え、2回クローニングを繰り返して、抗MPT6
4蛋白質モノクローナル抗体産生ハイブリドーマを確立
した。
This suspension was dispensed at 100 μl / well into a 96-well culture plate and cultured in a 5% CO 2 incubator at 37 ° C. for 10 to 14 days under 5% CO 2 . The culture supernatant was examined by a binding ELISA described in Example 1 (4), a well that did not react with an antigen not containing MPT64 in response to MPT64 was selected, and further replaced with an HT medium and a normal medium, and cloning was repeated twice. , Anti-MPT6
A four protein monoclonal antibody producing hybridoma was established.

【0047】(4)モノクローナル抗体の選択―バイン
ディングELISA アッセイ用の抗原としては、MPT64を実施例1(1)で
述べた方法によりメチル化BSAとコンジュゲートしたも
のを用いた。コントロール抗原としては、抗原コンジュ
ゲートの調製に使用したBSAを使用した。96ウェルの
EIA用プレート(グライナー社製)に、上述のように
調製したコンジュゲートをMPT64またはIL-1β濃度1μ
g/mlで50μl/ウェルで分注し、4℃で一晩放置し
て吸着させた。洗浄後、1%BSA-PBSを100μl/ウェルで
加え、室温1時間反応させて残っている活性基をブロッ
クした。1%BSA-PBSを捨て、被免疫マウス抗血清、抗MPT
64蛋白質モノクローナル抗体の培養上清もしくは精製抗
MPT64蛋白質モノクローナル抗体を50μl/ウェルで分
注し2時間反応させた。tween−PBSで洗浄後、希釈した
ペルオキシダーゼ標識ウサギ抗マウスイムノグロブリン
(ダコ社製)を50μl/ウェルで加えて室温、1時間反
応させ、tween−PBSで洗浄後ABTS基質液[2.2-アジノビ
ス(3-エチルベンゾチアゾール-6-スルホン酸)アンモ
ニウム]を用いて発色させOD415nmの吸光度をプレート
リーダー(Emax;和光純薬社製)にて測定した。
(4) Selection of Monoclonal Antibody As an antigen for binding ELISA assay, MPT64 conjugated with methylated BSA by the method described in Example 1 (1) was used. BSA used for preparation of the antigen conjugate was used as a control antigen. The conjugate prepared as described above was added to a 96-well EIA plate (manufactured by Greiner) at an MPT64 or IL-1β concentration of 1 μm.
The solution was dispensed at 50 μl / well at g / ml and allowed to stand at 4 ° C. overnight for adsorption. After washing, 1% BSA-PBS was added at 100 μl / well and allowed to react at room temperature for 1 hour to block the remaining active groups. Discard 1% BSA-PBS, immunized mouse antiserum, anti-MPT
64 protein monoclonal antibody culture supernatant or purified antibody
The MPT64 protein monoclonal antibody was dispensed at 50 μl / well and allowed to react for 2 hours. After washing with tween-PBS, diluted peroxidase-labeled rabbit anti-mouse immunoglobulin (manufactured by Dako) was added at 50 μl / well and reacted at room temperature for 1 hour. -Ethylbenzothiazole-6-sulfonic acid) ammonium], and the absorbance at OD 415 nm was measured with a plate reader (Emax; manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.).

【0048】(5)モノクローナル抗体の精製 プリスタン処理した8週令ヌード雌マウス(Balb/c)に
実施例1(3)で得られたハイブリドーマ株を5〜20
×106細胞/匹それぞれ腹腔内注射した。10〜21
日後に、ハイブリドーマは腹水癌化した。腹水のたまっ
たマウスから、腹水を採取(1〜8ml/匹)し、遠心
分離(3,000rpm、5分間)して固形分を除去し
た。モノクローナル抗体がIgGのときは、カプリル酸沈
殿法〔Antibodies - A Laboratory Manual, Cold Sprin
g Harbor Laboratory, 1988〕により精製し、精製モノ
クローナル抗体とした。
(5) Purification of Monoclonal Antibody 5 to 20 weeks of the hybridoma strain obtained in Example 1 (3) was added to pristane-treated 8-week-old nude female mice (Balb / c).
× 10 6 cells / animal were injected intraperitoneally. 10-21
One day later, the hybridoma developed ascites cancer. Ascites was collected (1-8 ml / animal) from the mice with accumulated ascites, and the solid content was removed by centrifugation (3,000 rpm, 5 minutes). When the monoclonal antibody is IgG, caprylic acid precipitation method [Antibodies-A Laboratory Manual, Cold Sprin
g Harbor Laboratory, 1988] to obtain a purified monoclonal antibody.

【0049】抗体のサブクラスはサブクラスタイピング
キットを用いて酵素免疫測定法により行ない、IgG1
であると決定した。
The antibody subclass was determined by enzyme immunoassay using a subcluster typing kit.
Was determined.

【0050】実施例2 酵素サンドイッチ免疫測定法を
用いたMPT64測定 実施例1で得られた100μLの抗MPT64モノクローナル抗
体(10μg/mL)含有PBS溶液を96穴のマイクロプレート
に加え、室温で4時間放置することで、固相化抗体とし
た。次に非特異的吸着を抑える為に、ウェルをPBS溶液
で3回洗浄した後、250μLの1% ウシ血清アルブミンを含
むPBS溶液を添加し、室温で4時間放置した。ウェルをPB
Sで3回洗浄後に、0.1% ウシ血清アルブミンを含むPBS溶
液で希釈した結核菌の培養液(1〜80000希釈したも
の)100μLを加え、37℃で2時間保温した。ウェルをAmp
liQ洗浄液(ダコ社製)で3回洗浄した後、100μLのアル
カリフォスファターゼ標識抗MPT64モノクローナル抗体
を添加し、37℃で2時間保温した。ウェルをAmpliQ洗浄
液(ダコ社製)で5回洗浄した後に、100μLのAmpliQ Am
plifierA(ダコ社製)と100μLのAmpliQ AmplifierB
(ダコ社製)を添加し、室温で40分間撹拌後、100μLの
AmpliQ stop solution(DAKO社)を添加して発色反応を
停止させた。最後にマイクロタイタープレートリーダー
で492nmの吸収を測定した。その結果を図1に示す。こ
の結果、結核菌の培養液を10000倍希釈したもので
も結核菌の検出が可能であることが示された。
Example 2 MPT64 Measurement Using Enzyme Sandwich Immunoassay 100 μL of the anti-MPT64 monoclonal antibody (10 μg / mL) -containing PBS solution obtained in Example 1 was added to a 96-well microplate and incubated at room temperature for 4 hours. This was left as an immobilized antibody. Next, in order to suppress nonspecific adsorption, the wells were washed three times with a PBS solution, and then 250 μL of a PBS solution containing 1% bovine serum albumin was added, and the mixture was allowed to stand at room temperature for 4 hours. PB Well
After washing three times with S, 100 µL of a culture solution of Mycobacterium tuberculosis (diluted from 1 to 80,000) diluted with a PBS solution containing 0.1% bovine serum albumin was added, and the mixture was incubated at 37 ° C for 2 hours. Amp Well
After washing three times with a liQ washing solution (manufactured by Dako), 100 μL of an alkaline phosphatase-labeled anti-MPT64 monoclonal antibody was added, and the mixture was incubated at 37 ° C. for 2 hours. After washing the wells 5 times with AmpliQ washing solution (manufactured by Dako), 100 μL of AmpliQ Am
plifierA (manufactured by Dako) and 100 μL AmpliQ AmplifierB
(Manufactured by Dako) and stirred at room temperature for 40 minutes.
The color reaction was stopped by adding AmpliQ stop solution (DAKO). Finally, the absorbance at 492 nm was measured with a microtiter plate reader. The result is shown in FIG. As a result, it was shown that detection of M. tuberculosis was possible even when the culture solution of M. tuberculosis was diluted 10,000 times.

【0051】実施例3 喀痰の前処理 0.5mLの喀痰に0.5mLの喀痰前処理剤であるNALC-NaOH溶
液(BBLマイコプレップ;日本ベクトンディッキンソン
社製)を添加し、旋回ミキサーで数秒間混合し、室温で
5分間放置した。pHを中和する為に、0.3mLの2M NaH2PO4
溶液を添加し、旋回ミキサーで数秒間混合した。次い
で、加熱処理によるMPT64抗原活性の低下を防止するた
めに、ウシ血清アルブミンを0.1%の濃度となるように添
加したあと、喀痰中の結核菌を不活性化するために、10
0℃、30分間の加熱処理を行った。
Example 3 Pretreatment of sputum 0.5 mL of sputum pretreatment agent NALC-NaOH solution (BBL mycoprep; manufactured by Nippon Becton Dickinson Company) was added to 0.5 mL of sputum, and mixed for several seconds with a vortex mixer. At room temperature
Left for 5 minutes. 0.3 mL of 2M NaH 2 PO 4 to neutralize pH
The solution was added and mixed on a vortex mixer for several seconds. Then, in order to prevent a decrease in MPT64 antigen activity due to the heat treatment, bovine serum albumin was added to a concentration of 0.1%, and then to inactivate Mycobacterium tuberculosis in sputum, 10
Heat treatment was performed at 0 ° C. for 30 minutes.

【0052】実施例4 結核患者由来喀痰中のMPT64の
測定による結核菌検出 実施例3と同様の方法により、結核患者由来喀痰の前処
理を行ったものを測定試料とした。各試料のMPT64測定
を、実施例2と同様の方法により行った。結果の判定
は、測定値により行い(吸光度492nm)、測定値が0.180を
超えた場合を陽性とした。対照として、小川培地を用い
て常法により8週間培養し、結核菌の生育を目視により
確認した。結果を表1に示す。
Example 4 Detection of Mycobacterium tuberculosis by Measurement of MPT64 in Sputum from a Tuberculosis Patient Sputum from a tuberculosis patient which had been pretreated by the same method as in Example 3 was used as a measurement sample. The MPT64 measurement of each sample was performed in the same manner as in Example 2. The determination of the result was performed based on the measured value (absorbance 492 nm), and the case where the measured value exceeded 0.180 was defined as positive. As a control, the cells were cultured for 8 weeks using an Ogawa medium by a conventional method, and the growth of Mycobacterium tuberculosis was visually confirmed. Table 1 shows the results.

【0053】[0053]

【表1】 [Table 1]

【0054】この結果、結核患者の検体のみが陽性とな
り、小川培地による所見でも同様の結果が得られた。
As a result, only the tuberculosis patient specimen became positive, and the same results were obtained with the Ogawa medium.

【0055】[0055]

【発明の効果】本発明の結核菌を検出する試薬及び方法
により、生体試料中の結核菌を培養することなく、結核
菌の検出を行うことができる。これにより従来1〜8週間
要していた検査期間を数時間に短縮でき、迅速かつ簡便
に結核の確定診断を行うことができる。
According to the reagent and method for detecting Mycobacterium tuberculosis of the present invention, Mycobacterium tuberculosis can be detected without culturing Mycobacterium tuberculosis in a biological sample. As a result, the test period, which conventionally required 1 to 8 weeks, can be reduced to several hours, and a definite diagnosis of tuberculosis can be made quickly and easily.

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

【図1】実施例2の方法により、結核菌(Mycobacterium
tuberculosis)培養液中のMPT64を測定した結果を示す
図である。
FIG. 1 shows the results obtained in Example 2 by the method of Example 2.
FIG. 4 shows the results of measuring MPT64 in a culture solution.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 森 秀治 静岡県駿東郡長泉町南一色字上山地600− 1 協和メデックス株式会社協和メデック ス研究所内 (72)発明者 富山 哲雄 東京都練馬区大泉学園7−2−2 ──────────────────────────────────────────────────続 き Continuing on the front page (72) Inventor Shuji Mori 600-1 Kamiyamachi, Minami-Ishiki, Nagaizumi-cho, Sunto-gun, Shizuoka Pref. -2-2

Claims (20)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 生体試料中の結核菌を培養することな
く、結核菌群特異的分泌蛋白質を免疫学的測定法により
検出することを特徴とする、生体試料中の結核菌の検出
方法。
1. A method for detecting Mycobacterium tuberculosis in a biological sample, comprising detecting a Mycobacterium tuberculosis group-specific secreted protein by an immunoassay without culturing the Mycobacterium tuberculosis in the biological sample.
【請求項2】 生体試料中の結核菌を培養することな
く、生体試料を前処理した後に結核菌群特異的分泌蛋白
質を、抗結核群特異的分泌蛋白質抗体を用いる免疫学的
測定法により検出することを特徴とする、生体試料中の
結核菌の検出方法。
2. A method for detecting a Mycobacterium tuberculosis group-specific secreted protein by an immunological assay using an anti-tuberculosis group-specific secreted protein antibody after pretreating the biological sample without culturing the Mycobacterium tuberculosis in the biological sample. A method for detecting Mycobacterium tuberculosis in a biological sample.
【請求項3】 生体試料中の結核菌を培養することな
く、生体試料を前処理した後に結核菌群特異的分泌蛋白
質を、抗結核群特異的分泌蛋白質抗体および標識体増感
試薬を用いる免疫学的測定法により検出することを特徴
とする、生体試料中の結核菌の検出方法。
3. A method of pretreating a biological sample without culturing the M. tuberculosis in the biological sample, and then immunizing the M. tuberculosis group-specific secretory protein with an anti-M. Tuberculosis group-specific secretory protein antibody and a labeled sensitizing reagent. A method for detecting Mycobacterium tuberculosis in a biological sample, wherein the method is performed by a biological measurement method.
【請求項4】 生体試料が、喀痰、胸水である請求項1
〜3のいずれか1項に記載の方法。
4. The biological sample is sputum or pleural effusion.
The method according to any one of claims 1 to 3.
【請求項5】 前処理が、生体試料中の結核菌を不活性
化させる工程を含む、請求項2または3に記載の方法。
5. The method according to claim 2, wherein the pretreatment includes a step of inactivating tuberculosis bacteria in the biological sample.
【請求項6】 前処理が、アルカリ性物質、還元性物
質、プロテアーゼ、糖、界面活性剤、蛋白変性剤から選
ばれる少なくとも一種で行うことを特徴とする請求項2
または3に記載の方法。
6. The method according to claim 2, wherein the pretreatment is performed with at least one selected from an alkaline substance, a reducing substance, a protease, a sugar, a surfactant, and a protein denaturant.
Or the method of 3.
【請求項7】 結核菌群特異的分泌蛋白質が、MPT64で
ある請求項1〜3のいずれか1項に記載の方法。
7. The method according to any one of claims 1 to 3, wherein the Mycobacterium tuberculosis group-specific secreted protein is MPT64.
【請求項8】 抗結核菌群特異的分泌蛋白質抗体が、抗
MPT64抗体である請求項2または3に記載の方法。
8. An anti-tuberculosis group-specific secreted protein antibody,
The method according to claim 2 or 3, which is an MPT64 antibody.
【請求項9】 抗MPT64抗体が、モノクローナル抗体で
ある請求項8記載の方法。
9. The method according to claim 8, wherein the anti-MPT64 antibody is a monoclonal antibody.
【請求項10】 免疫学的測定法が、酵素免疫測定法で
あることを特徴とする請求項1〜3のいずれか1項に記
載の方法。
10. The method according to claim 1, wherein the immunoassay is an enzyme immunoassay.
【請求項11】 免疫学的測定法が、発光免疫測定法で
あることを特徴とする請求項1〜3のいずれか1記載の
方法。
11. The method according to claim 1, wherein the immunoassay is a luminescence immunoassay.
【請求項12】 免疫学的測定法が、蛍光免疫測定法で
あることを特徴とする請求項1〜3のいずれか1記載の
方法。
12. The method according to claim 1, wherein the immunological assay is a fluorescent immunoassay.
【請求項13】 請求項10〜12のいずれか1項に記
載の免疫測定法が、サンドイッチ法である請求項10〜
12のいずれか1項に記載の方法。
13. The immunoassay according to any one of claims 10 to 12, wherein the immunoassay is a sandwich method.
13. The method according to any one of 12 above.
【請求項14】 アルカリ性物質を有効成分として含有
する、生体試料中の結核菌群特異的蛋白質を前処理する
試薬。
14. A reagent for pretreating a Mycobacterium tuberculosis group-specific protein in a biological sample, comprising an alkaline substance as an active ingredient.
【請求項15】 生体試料が、喀痰、胸水である請求項
14記載の試薬。
15. The reagent according to claim 14, wherein the biological sample is sputum or pleural effusion.
【請求項16】 請求項14または15に記載の試薬お
よび抗結核菌群特異的分泌蛋白質抗体を含む試薬を含ん
でなる、結核菌検出用キット。
16. A kit for detecting Mycobacterium tuberculosis, comprising the reagent according to claim 14 or 15 and a reagent comprising an anti-M. Tuberculosis group-specific secreted protein antibody.
【請求項17】 請求項14または15に記載の試薬、
抗結核菌群特異的蛋白質抗体を含む試薬および該抗体の
標識を検出する試薬を含んでなる、結核菌検出用キッ
ト。
17. The reagent according to claim 14 or 15,
A kit for detecting Mycobacterium tuberculosis, comprising a reagent containing an anti-M. Tuberculosis group-specific protein antibody and a reagent for detecting a label of the antibody.
【請求項18】 請求項14または15に記載の試薬、
抗結核菌群特異的分泌蛋白質抗体を含む試薬、該抗体の
標識を検出する試薬および標識体増感試薬を含んでな
る、結核菌検出用キット。
18. The reagent according to claim 14 or 15,
A kit for detecting Mycobacterium tuberculosis, comprising a reagent containing an anti-Mycobacterium tuberculosis group-specific secretory protein antibody, a reagent for detecting the label of the antibody, and a labeled sensitizing reagent.
【請求項19】 結核菌群特異的分泌蛋白質がMPT64で
ある、請求項16〜18のいずれか1項に記載のキッ
ト。
19. The kit according to claim 16, wherein the Mycobacterium tuberculosis group-specific secreted protein is MPT64.
【請求項20】 抗結核菌群特異的蛋白質抗体が抗MPT6
4抗体である請求項16〜18のいずれか1項に記載の
キット。
20. The anti-M. Tuberculosis group-specific protein antibody is anti-MPT6.
The kit according to any one of claims 16 to 18, which is a 4 antibody.
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