JP2001505425A - Humanized anti-CD11a antibody - Google Patents

Humanized anti-CD11a antibody

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Abstract

(57)【要約】 ヒト化抗CD11a抗体とそれの各種の使用が開示される。該ヒト化抗CD1la抗体は、ヒトCD11aIドメインに特異的に結合され、通常のヒト表皮ケラチノサイト発現ICAM‐1へのジャーカット細胞の接着を防止するため約1nMまでのIC50(nM)値を、及び/又は混合リンパ球応答アッセイにおいて約1nMまでのIC50(nM)値を有し得る。   (57) [Summary] Disclosed are humanized anti-CD11a antibodies and various uses thereof. The humanized anti-CD1la antibody is specifically bound to the human CD11aI domain and has an IC50 (nM) value of up to about 1 nM to prevent adhesion of Jurkat cells to normal human epidermal keratinocyte-expressed ICAM-1; and And / or have an IC50 (nM) value of up to about 1 nM in a mixed lymphocyte response assay.

Description

【発明の詳細な説明】 ヒト化抗CD11a抗体 発明の背景 発明の分野 本発明は、一般にヒト化抗CD11a抗体に関する。 関連技術の記載 リンパ球機能関連抗原1(LFA‐1;CD11a/CD18)は、免疫学的応 答及び炎症のために必須な細胞の相互作用の間に白血球粘着に含まれる(Larson ら、Immunol.Rev.114:181-217(1990))。LFA‐1は、β2インテグリンファ ミリーのメンバーであり且つユニークαサブユニット、CD11a及びβサブユ ニット、CD18、共通の他のβ2インテグリンレセプターMac‐1およびp1 50,95からなる。LFA‐1のリガンドは、白血球、内皮及び皮膚の線維芽細胞 上で発現した、細胞間接着分子‐1、ICAM‐1(Dustinら、J.Immunol.137: 245-254(1986))、休眠内皮及びリンパ球上で発現したICAM‐2(de Fougerol lesら、J.Exp.Med.174:253-267(1991))、及び単球と休眠リンパ球で発現した ICAM‐3(de Fougerollesら、J.Exp.Med.179:619-629(1994))を含む。 LFA‐1とICAMsに対するモノクローナル抗体(MAbs)は、インビトロで 、T細胞活性化(Kuypersら、Res.Immunol.140:461(1989)))、T細胞依存B細 胞増殖(Fischerら、J.Immunol.136:3198-3203(1986))、標的細胞渙散(Krensky ら、J.Immunol.131:611-616(1983))、及び脈管内皮へのT細胞の接着(Loら、J .Immunol.143:3325-3329(1989))を含む幾つかのT細胞依存免疫機能を抑制す ることが示されている。マウスにおいて、抗CD11a MAbsは、タンパク 質抗原に対する耐性(タナカら、Eur.J.Immunol.25:1555-1558(1995))、及び 心臓(Cavazzana-calvoら、Transplantation 59:1576-1582(1995);ナカクラら、T ransplantation 55:1112-417(1993))、骨髄(Cavazzana-Calvoら、Transplantati on 59:1576-1582(1995);van Dijkenら、Transplantation 49:882-886(1990))、 角膜(Heら、Invest.Opthamol.Vis.Sci.35:3218-3225(1994))、小島(ニシハ ラら、Transp lantation Proc.27:372(1995))及び甲状腺(Talentoら、Transplantation 55:41 8-422(1993))同種移植片の存続延長を誘導する。 ヒトにおいて、抗CD11a MAbsは、骨髄移植後の移植片不全を予防し 、(Fischerら、Blood 77:249-256(1991);Stoppaら、Transplant Intl.4:3-7(19 91))及びコルチコステロイド及びアザチオプリンに加えて、抗CD11a MA bによって予防的に処理した腎臓同種移植片の予備の臨床的研究が有望視される (Hourmantら、Transplantation 58:377-380(1994))。移植拒絶に対する現行の治 療は、OKT3、ネズミの抗‐ヒトCD3 MAb、及びシクロスポリンAの使 用を含む。OKT3治療は、有効であるがしかし、幾つかの望ましくない副作用 を有する;それの使用は、発熱、悪寒及び胃腸の苦痛の結果を生じる腫瘍壊死因 子‐α、インターフェロン‐γ、インターロイキン‐2、及びインターロイキン ‐6を含む多数のサイトカインの放出の結果を生じる(再考のため、Parlevliet ら、Transplant Intl.5:234-246(1992);Dantalら、Curr.Opin.Immunol.3:74 0-747(1991)参照)。シクロスポリンAは有効であるが、しかしまた、深刻な副作 用をも有する(再考のため、Barry,Drugs,44:554-566(1992)参照)。 発明の要約 本発明は、ヒト化抗CD11a抗体を提供する。好ましい抗体は、ヒトCD1 1aのI‐ドメインに(例えば、ここで定義したような「エピトープMHM24 」に)結合し、及び/又は約1x10-8Mまたはより強い親和性(affinity)とと もにCD11aと結合する。好ましい実施態様において、該抗体は、ICAM- 1を発現する通常のヒト表皮ケラチノサイトへのジャーカット細胞の接着を防ぐ ために約1nMまでのIC50(nM)値を有する。好ましいヒト化抗体は、混合 リンパ球反応(MLR)アッセイにおいて約1nMまでのIC50(nM)の値を有 するそれらである。MLRアッセイにおけるヒト化抗体のこのIC50は、イン ビボで予め試験されているネズミMAb25.3のそれよりも著しく良好である (Fischerら、Blood 77:249-256(1991);Stoppaら、Transplant Intl.4:3‐7(1991 );Hourmantら、Transplantation 58:377‐380(1994))。 ヒト化抗CD11a抗体は、図1中のヒト化抗体MHM24F(ab)‐8の、C D R1(GYSFTGHWHN;配列番号:10)及び/又はCDR2(MIHPSDSETRYNQKFKD;配列 番号:11)及び/又はCDR3(GIYFYGTTYFDY;配列番号:12)のアミノ酸配列 を備える重鎖可変領域及び/又は図1中のヒト化抗体MHM24F(ab)‐8の、 CDR1(RASKTISKYLA;配列番号:13)及び/又はCDR2(SGSTLQS;配列番号 :14)及び/又はCDR3(QQHNEYPLT;配列番号:15)のアミノ酸配列を備え る軽鎖可変領域を有し得る。他の実施態様において、該抗体は、ヒト化MHM2 4抗体F(ab)‐8のCDRsの1又はそれ以上のアミノ酸配列変異体を備え、該 変異体は、CDR残基内又は隣接した1又はそれ以上のアミノ酸挿入及び/又は CDR残基内又は隣接した削除及び/又はCDR残基の置換(そのような変異体 を生成するための好適なタイプのアミノ酸代替とする置換と共に)を備える。そ のような変異体は、約1x10-8MまでのヒトCD11aの結合親和力を通常は 有するであろう。 好適な実施態様において、該ヒト化抗体は、配列番号:2のアミノ酸配列を備 える軽鎖可変領域及び/又は図1中のヒト化抗体MHM24F(ab)‐8の配列番 号:5のアミノ酸配列を備える重鎖可変領域及び/又はそれのアミノ酸配列変異 体を包含する。 ここに記載した通り、アカゲザルCD11a(即ち、「アカゲザル化」抗体)に 結合するための能力を与えるために、ヒトCD11a抗原と結合するが、しかし アカゲザルCD11a抗原と有意ではない、ヒト化抗体を後で工作することは可 能とされている。この実施態様において、アカゲザルCD11aと結合する抗体 は、例えば配列番号:23中のCDR2アミノ酸配列を備え得る。他のCDRs は、ヒト化MHM24抗体F(ab)‐8のためのそれらと同じとされ得る。かくし て、該抗体は、配列番号:2中のアミノ酸配列を備える軽鎖と任意に結合した、 配列番号:24中の「アカゲザル化」重鎖のアミノ酸配列を備え得る。該抗体の 各種の形が、ここに意図される。例えば、該抗CD11a抗体は、完全長抗体( 例えば、ヒト免疫グロブリン定常領域を有する)又は抗体フラグメント(例えば、 F(ab')2)とされ得る。さらに、該抗体は、検出可能な標識で標識化、固相上で 固定化及び/又は異質な化合物(細胞毒性剤のような)と接合され得る。 該抗体の診断的及び治療的な使用が意図される。一つの診断的な適用において 、 本発明は、抗CD11a抗体に、CD11aタンパク質の含有を疑われるサンプ ルをさらすこと及びそのサンプルへの抗体の結合を測定することを備えるCD1 1aタンパク質の存在を測定するための方法を提供する。この使用のため、本発 明は、CD11aタンパク質を検出するための抗体を用いるための抗体を備える キットと指示とを提供する。 本発明はさらに:該抗体をコード化する分離した核酸;その核酸を備えるベク ター、該ベクターにより形質転換される宿主細胞によって認識した配列を制御す るために任意に操作可能に結合した;そのベクターを備える宿主細胞;その核酸 が発現されるように宿主細胞を培養すること、及び、任意に、宿主細胞培養物か ら(例えば宿主細胞培養培地から)抗体を回収することを備える該抗体の製造のた めの方法を提供する。本発明はまた、ヒト化抗CD11a抗体と製薬的に許容さ れるキャリア又は賦形剤とを備える組成物も提供する。治療的な使用のためのこ の組成物は無菌であり且つ凍結乾燥され得る。本発明はさらに、哺乳動物にヒト 化CD11a抗体の製薬的有効量を投与することを備える、LFA‐1介在疾患 に罹った哺乳動物を処置するための方法を提供する。そのような治療的使用のた め、他の免疫抑制剤又は接着分子アンタゴニスト(例えば、別のLFA‐1アン タゴニスト又はVLA‐4アンタゴニスト)が、該ヒト化抗CD11a抗体の前 、後又は同時のいずれかで該哺乳動物に共投与され得る。 図面の簡単な説明 図1Aは、ネズミMHM24軽鎖(配列番号:1)、ヒト化MHM24 F(ab) ‐8軽鎖(配列番号:2)、サブグループ軽鎖κI(humκI)のヒトコンセンサス配 列(配列番号:3)のアミノ酸配列を示した。 図1Bは、ネズミMHM24重鎖(配列番号:4)、ヒト化MHM24 F(ab) ‐8重鎖(配列番号:5)、重鎖サブグループIII(humIII)のヒトコンセンサス配 列(配列番号:6)及び実施例の「アカグザル化」抗体変異体重鎖(配列番号:2 4)のアミノ酸配列を示した。 図1Aと1Bにおいて、配列超可変性に基づいた超可変性領域(Kabatら、Sequ ences of Proteins of Immunological Interest.5th Ed.Public Health Servi ce,National Institutes of Health,Bethesda,MD.(1991))は、ブラケット内 に納められ、且つF(ab)‐抗原複合体の構造に基づく超可変ループ(Chothiaら、 Nature 342:8767(1989))は、イタリックとした。残基の番号付けは、a,b,及びc で示した挿入物によって、Kabatらに従う。 図2は、ヒトCD11a I-ドメイン(配列番号:7)及びアカゲザルCD11 a I‐ドメイン(配列番号:8)の配列を示した。β鎖とαへリックスは、下線 を付し、且つQuら、Proc.Natl.Acad.Sci.92:10277-10281(1995)に従い標識 される。該アカゲザルI‐ドメイン配列(rhCD11a)は、ヒトI‐ドメイン と4つの相違のみであることを示した。MHM24 MAb(配列番号:9)のた めの結合エピトープは、肉太字で示した(Champeら、J.Biol.Chem.270:1388-1 394(1995))。 図3は、ネズミMHM24(詰まった円)、キメラMHM25(開放三角)、ヒト 化MHM24(HuIgG1)(詰まった四角)、およびヒトIgG1アイソタイプコント ロール(+)による通常のヒト ケラチノサイトへのヒト ジャーカットT細胞の抑 制を表す。パーセント結合は、標識化ジャーカット細胞の蛍光により測定した。 図4A−4Cは、通常のヒト ケラチノサイトに対するアカゲザル リンパ球の (図4A)、プレート上に被覆した組換えヒト ICAM‐1に対するアカゲザル リンパ球の(図4B)、及び通常のヒト ケラチノサイトに対するアカゲザル/ヒ トCD11aキメラー移入化293細胞(図4C)の結合の抑制を示した。アカゲ ザル結合MHM24(RhIgG1)(詰まった四角)、抗CD18MHM23(詰まった 円)、ヒトIgG1アイソタイプコントロール(+)(図4Aと4C)、およびネズミ IgG1アイソタイプコントロール(+)(図4B)による抑制。パーセント結合は 標識化リンパ球(図4AとB)又は標識化293細胞(図4C)の蛍光により測定 した。 図5は、ヒトリンパ球反応アッセイ(MLR)が、ネズミMHM24(詰まった 円)、ヒト化MHM24(HuIgG1)(詰まった四角)、及びヒト化アイソタイプIg Gコントロール(詰まったダイアモンド)によってブロック化されることを示した 。パーセント刺激インデックス(%SI)は、MAb不在での最大応答に対し与え られたMAb濃度での応答の比である。データは、少なくとも2つの異なる刺激 /応答対を用いる複数アッセイの実例である。 好適な実施態様の詳細な説明 I. 定義 他に指示されぬ限り、ここで用いた場合、用語「CD11a」は、いずれかの 哺乳動物からの、しかし好ましくはヒトからのLFA‐1のαサブユニットに関 する。該CD11aは、天然ソースの分子から分離され得るし、又は合成手段に より生産され得る(例えば、組換えDNA技術を用い)。ヒトCD11aのための アミノ酸配列ば、例えば、欧州特許第362 526B1中に記載される。 用語「I‐ドメイン」は、Champeら、J.Biol.Chem.270:1388-1394(1995)及 び/又はQuら、Proc.Natl.Acad.Sci.92:10277-10281(1995)中に記載したこの分 子のその領域に関する。ヒトCD11a I‐ドメイン(配列番号:7)とアカゲ ザルCD11a I‐ドメイン(配列番号:8)のアミノ酸配列は、図2の図面中 に図示される。 ここで用いた場合、用語「エピトープMHM24」は、他に示さない限り、M HM24抗体(後述を参照)に結合するヒトCD11aのI‐ドメイン中の領域に 関する。このエピトープは、配列番号:9のアミノ酸配列を、及び任意に、CD 11a及び/又はCD18の他のアミノ酸残基を含む。 用語「LFA‐1介在疾患」は、リンパ球上のLFA‐1レセプターを含んだ 細胞接着相互作用によって生起される病理学的な状態に関する。そのような疾患 の実例は、乾癬を含む炎症性皮膚疾患のようなT細胞炎症性の応答;炎症性の腸 疾患(クローン病及び潰瘍性大腸炎のような)と関連した応答;成人呼吸窮迫症候 群;皮膚炎;髄膜炎;脳炎;ブドウ膜炎;湿疹及び喘息のようなアレルギー状態 ;T細胞及び慢性炎症性応答の浸潤を含む状態;皮膚知覚過敏反応(ウルシ皮膚 炎(poison ivyとpoison oak)を含む);アテローム硬化症;白血球接着不全;リ ウマチ様動脈炎、全身性エリテマトーデス(SLE)、糖尿病、多発性硬化症、レ ナード症候群、自己免疫性甲状腺炎、実験的自己免疫性脳脊髄炎、シェーグレン 症候群、若年開始糖尿病、及びサイトカイン及び脈管中に典型的に見出されるT リンパ球が介在した遅延形知覚過敏に関連した免疫応答、サルコイドージス、多 発性筋炎、肉芽腫症及び脈管炎のような自己免疫疾患;悪性貧血;慢性閉塞性肺 疾患(COPD);気管支炎;インスリン炎;鼻炎;蕁麻疹;糸球体腎炎;白血球 漏 出を含む疾患;CNS炎症性疾患;敗血症又は外傷に対する多器官二次的損傷症 候群;自己免疫性溶血性貧血;ミエセミアグラビス(myethemia gravis);抗原抗 体複合体介在性疾患;ネフローゼ症候群;悪性疾患(例えば、慢性リンパ球性白 血病又はヘアリーセル白血病のようなB細胞悪性疾患);移植片対宿主又は宿主 対移植片を含む全ての形の移植の疾患;HIVとライノウイルス属感染;肺の線 維症二次器官内への腫瘍細胞の転化などを含む。 付属する治療のためにここで用いるような、用語「免疫抑制剤」は、その移植 片が移植されている中での宿主の免疫系を抑制又はマスクするように作用する物 質に関する。これは、サイトカイン生産を抑制する、自動抗原発現をダウンレギ ュレーションする又は抑制する、或いはMHC抗原をマスクする物質を含むであ ろう。そのような剤の実例は、2-アミノ‐6-アリール‐5-置換化ピリミジン(米 国特許第4,665,077号参照)、アザチオプリン(又はシクロフォスファミド、もし アザチオプリンに対する不利な反応があれば);ブロモクリプチン;グルタルア ルデヒド(米国特許第4,120,649号中に記載した通り、MHC抗原をマスクする) ;MHC抗原及びMHCフラグメントのための抗イディオタイプ抗体;シクロス ポリンA;グルココルチコイド、例えばプレドニゾン、メチルプレドニゾン、及 びデキサメタゾンのようなステロイド;抗‐インターフェロン‐γ、‐β、又は ‐α抗体を含むサイトカイン又はサイトカインレセプターアンタゴニスト;抗腫 瘍壊死因子α抗体;抗腫瘍壊死因子β抗体:抗インターロイキン‐2抗体及び抗 IL‐2レセプター抗体;抗L3T4抗体;異種抗リンパ球グロブリン;全T抗 体、好ましくは抗CD3又は抗CD4/CD4a抗体;LFA‐3結合領域を含 む可能性ペプチド(1990年7月26日公開のWO 90/08187);ストレプトキナーゼ;T GF‐β;ストレプトドルナーゼ;宿主からのRNA又はDNA;FK506; RS‐61443;デオキシスパガリン;ラパマイシン;T細胞レセプター(米 国特許第5,114,721号);T細胞レセプターフラグメント(Offnerら、Science 251 :430-432(1991);WO 90/11294;及びWO 91/01133);及びT10B9のようなT細 胞レセプター抗体(EP340,109)を含む。これらの剤は、CD11a抗体と同時に 又は隔たった時間で投与され、且つ当該技術において述べられたと同じ又はそれ よりも劣った投薬量で用いられる。好ましい付属の免疫抑制剤は、患者の経歴と 同じく、実施されてい る移植の形を含めた治療されている疾患の形を含む多くのファクターに基づくで あろうが、しかし一般に全般に好ましくは、該剤は、シクロスポリンA、グルコ コルチコイド(基も好ましくはプレドニゾン又はメチルプレドニゾン)、OKT‐ 3モノクローナル抗体、アザチオプリン、ブロモクリプチン、異種抗リンパ球グ ロブリン、又はそれらの混合物から選択される剤である。 「処置(treatment)」は、治療的な処置と予防的又は予防手段の両方に関する 。処置の必要におけるそれらは、疾患が予防されるべき者であるそれらと同じく 、疾患を既に持ったそれらを含む。 処置の目的のための「哺乳動物」は、ヒト、イヌ、ウマ、ネコ、ウシなどの飼 育又は家畜動物、および動物園、運動用、又は愛玩動物を含んだ哺乳動物として 分類されるいずれかの動物に関する。好ましくは、その動物はヒトである。 ここで用いたような用語「移植片」は、被術者内に移植するためのドナーから 得た生体材料に関する。移植片は、小島細胞及び神経誘導細胞(例えばシュワン 細胞)のような分離した細胞、新生児の羊膜、骨髄、造血前駆体細胞のような組 織、及び皮膚、心臓、肝臓、脾臓、膵臓、甲状腺葉、肺、腎臓、脈管器官(例え ば、血管又は食道)等の器官のような多様な材料を含む。脈管器官は、食道、血 管、又は朋管の損傷部分に代えて用いることができる。皮膚移植片は、やけどの みならず、損傷を受けた腸に、−或いは横隔膜ヘルニアの様な一定の欠陥を塞ぐ ことに調製するために使用され得る。該移植片は、死体又は生存ドナーからのい ずれかの、ヒトを含むいずれかの哺乳動物ソースから得られる。好ましくは、該 移植片は、骨髄又は心臓のような器官であり、且つ該移植片のドナー及び宿主は 、HLAクラスII抗原に適合される。 ここで用いた用語「ドナー」は、移植片が得られる、死亡した又は生きた哺乳 動物種に関する。好ましくは、該ドナーはヒトである。ヒトドナーは、主要血液 群の交差が同種移植の生存に不利益となる可能性の障壁であることから、生理学 的検査において性状で且つ同じ主要ABO血液群であるボランティアの血液関連 ドナーが好適である。しかしながらそれは、例えばA,B又はAB受容者内への O型ドナーの腎臓の移植が可能となる。 用語「移植」及びそれのバリエーションは、その移植が同系の(ここでドナー と 受容者は一般に同一である)、同種異系の(ここでドナーと受容者は遺伝的起源が 異なるが、同じ種である)、又は異種の(ここでドナーと受容者は異なる種からの ものである)のいずれかの、宿主内への移植片の挿入に関する。かくして、典型 的なシナリオにおいて、宿主がヒトであり且つ移植片は、同じか異なる遺伝的起 源のヒトから得られた同系移植片である。別のシナリオにおいて、移植片は、ヒ ト受容者宿主内に移植したヒヒの心臓のような、及び例えばブタの心臓弁、又は ヒト宿主内に移植した動物ベータ小島細胞又は神経細胞のような系統発生的に広 く分離した種からの動物を含む、それが移植される者とは異なる種から得られる 。 宿主による「移植した移植片の抵抗増加」は、それか移植された宿主中の移植 片の生存を延長させること、即ち、それが他者からの移植を良好に許容するだろ うように宿主免疫系を抑制することに関する。 「間欠性の」又は「周期性の」投与は、一定期間の時間、および一以上の数に 分離することか好適である規則的なインターバルで継続する投与である。 疾患の「選択された耐性」は、疾患の原因となる特異的な因子のための宿主の 免疫系によって許容されること、しかし第2の同種の又は異種の移植片を拒絶す る宿主の能力を維持することに関する。好ましくは、その耐性は該免疫系が他方 を完全なままにしておくようなものである。 用語「LFA‐1アンタゴニスト」は、ICAM‐1とのLFA‐1の相互作 用の競合的インヒビターとして作用する分子に関する。そのような分子の実例は 、CD11a(例えば、ここに記載したヒト化抗CD11a)又はCD18又は両 方、ICAM‐1に対する抗体、及びペプチドのような他の分子(例えば擬ペプ チドアンタゴニスト)のいずれかに対し向けられる抗体を含む。 用語「VLA−4」は、VCAMとのVLA‐4の相互作用の競合的インヒビ ターとして作用する分子に関する。そのような分子の実例は、VLA‐4又はV CAM及び他の分子(例えば擬ペプチドアンタゴニスト)のいずれかに対しで向け られる抗体を含む。 用語「抗体」は、モノクローナル抗体(完全長モノクローナル抗体を含む)、ポ リクローナル抗体、多特異性抗体(例えば二特異性抗体)、及びそれらが望ましい 生物学的活性を示す限り、抗体フラグメントを最も広く理解し且つ特異的に包含 することにおいて用いられる。 「抗体フラグメント」は、完全長抗体の部分、一般的に抗原の結合するまたは それの可変領域を備える。抗体フラグメントの実例は、Fab、Fab'、F(a b')2、及びFvフラグメント;二量体;線状抗体;単鎖抗体分子;及び抗体フ ラグメントから形成した多特異性抗体を含む。 ここで使用したような用語「モノクローナル抗体」は、実質的に均質な抗体の 集団から得られた抗体に関し、即ちその集団に含まれる個別の抗体は、微量にお いて存在され得る自然発生的変異の可能性を除き同一とされる。モノクローナル 抗体は、単独抗原サイトに対して向けられている、高度に特異的なものである。 さらに、異なる決定要素(エピトープ)に対し向けられた異なる抗体を典型的に含 む通常の(ポリクローナル)抗体調製物に対して、それぞれのモノクローナル抗体 は、抗原上の単一の決定因子に対して向けられる。修飾語「モノクローナル」は 、抗体の実質的に均質な集団から得られているような抗体の特徴を示し、且つい ずれかの特別な方法によって抗体の生産を要求することを構成するためのもので ない。本発明に従い使用されるべきモノクローナル抗体は、Kohlerら、Nature 2 56:495(1975)によって最初に記載されたハイブリドーマ法によって作製され得る し、又は組換えDNA法によって作製され得る(例えば米国特許第4,816,567号参 照)。該「モノクローナル抗体」はまた、例えば、Clacksonら、Nature 352:624- 628(1991)とMarksら、J.Hol.Biol.222:581-597(1991)中に記載した技法を用 い、ファージ抗体ライブラリーからも分離され得る。 ここでのモノクローナル抗体は、特有な種又は特有な抗体クラス又はサブクラ スに属するものから得られた抗体における配列と同一であるか又は一致する相同 物である重及び/又は軽鎖の部分において「キメラの」抗体(免疫グロブリン)を 特異的に含む一方で、該鎖の残りは別な種の又は別な抗体クラス又はサブクラス に属するものから得られた抗体における配列と同一であるか又は一致する相同物 、同様にそれが望まれる生物学的活性を示す限りは、そのような抗体のフラグメ ントである(米国特許第4,816,567号;及びMorrisonら、Proc.Natl.Acad.Sci .USA 81:6851-6855(1984))。 ここで用いる場合、用語「超可変領域」は、抗原結合のために応答可能である 抗体のアミノ酸残基に関する。該超可変領域は、「相補的検出領域」又は「CD R」からのアミノ酸残基(即ち、軽鎖可変ドメイン中の残基24-34(L1)、50-56(L2 )及び89-97(L3)及び重鎖可変領域中の31-35(H1)、50-65(H2)及び95-1021(H3);K abatら、Sequences of Proteins of Immunological Interest,5th Ed.Public Health Service,National Institutes of Health,Bethesda,MD.(1991))及び /又は「超可変ループ」(即ち、軽鎖可変ドメイン中の残基26-32(L1)、50-:52(L 2)及び91-96(L3)及び重鎖可変領域中の26-32(H1)、53-55(H2)及び96-101(H3);Ch othiaとLesk J.Mol.Biol.196:901-917(1987))からのアミノ鎖残基を備える。 「フレームワーク」又は「FR」残基は、ここに記載したような超可変領域残基 以外のそれら可変領域残基である。 非ヒト化(例えばネズミ)抗体の「ヒト化」型は、非ヒト免疫グロブリンから得 た最小配列を含むキメラの抗体である。大部分のために、ヒト化抗体は、受容者 の超可変領域残基が、望ましい特異性、親和性、及び容量を有するマウス、ラッ ト、ウサギ又は非ヒト霊長類のような非ヒト種からの超可変領域残基によって置 換された(ドナー抗体)ヒト免疫グロブリン(受容体抗体)とされる。幾つかの実例 において、ヒト免疫グロブリンのFvフレームワーク領域(FR)残基は、一致 する非ヒト残基によって置き換えられる。さらに、ヒト化抗体は、受容者抗体に おいて又はドナー抗体において見出されない残基を備える。これらの修正は、抗 体の効率をさらに洗練するために実行される。一般に、該ヒト化抗体は、非ヒト 免疫グロブリンのそれに一致する超可変ループの全て又は実質的に全でである、 及びFR領域の全てが又は実質的に全てがヒト免疫グロブリン配列のそれである 可変領域の、少なくとも1、及び典型的には2つの実質的に全てを備えるであろ う。該ヒト化抗体は任意に、免疫グロブリン、典型的にはヒト免疫グロブリン定 常領域(Fc)の少なくとも一部も含むであろう。更なる詳細のために、Jonesら 、Nature 321:522-525(1986);Reichmannら、Nature 332:323-329(1988);及びPre sta,Curr.Op.Struct.Biol.2:593-596(1992)を参照。 「単鎖Fv」又は「sFv」抗体フラグメントは、抗体のVHとVLドメインと を備え、これらのドメインは、単ポリペプチド鎖中に存在される。一般に、該F vポリペプチドは、VHとVLドメイン間に、抗原結合化のための望ましい構造を 形成するためのsFvを与えるペプチドリンカーをさらに備える。sFvの再考 のため、The Pharmacology of Monoclonal Antibodies,vol.113、RosenburgとM oore eds.Springer-Verlag,New York,pp.269-315(1994)中のPluckthunを参照 。 用語「ダイアボディ(diabodies)」は、2の抗原結合サイトを持つ小さい抗体 フラグメントに関し、フラグメントは同じポリペプチド鎖中に軽鎖可変領域(VL )に接合した重鎖可変領域(VH)とを備える(VH-VL)。同じ鎖上の2つのドメイ ン間を対にすることを許す非常に短いリンカーを用いることにより、その領域は 別の鎖の相補的ドメインと対をなすことを強いるとともに、2つの抗原結合サイ トを創作する。ダイアボディは、例えば、EP 404,097;WO 93/11161;及びHolling erら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 90:6444-6448(1993)においてより完全に記 載される。 この出願を通して使用した場合、「線状抗体」の表現は、Zapataら、Protein Eng.8(10):1057-1062(1995)中に記載される抗体に関する。簡略には、これらの 抗体は、抗原結合領域の対を形成するタンデムFdセグメントの対(VH‐CH1 ‐VH‐CH1)を備える。線状抗体は、二特異的又は多特異的とされ得る。 「分離した抗体」は、それの自然な環境の成分から同定され且つ分離され及び /又は回収されている一つである。その自然環境の汚染成分は、該抗体の診断的 又は治療的使用を妨げるであろう材料であり、酵素、ホルモン及び他の蛋白様の 又は非蛋白様の溶質を含み得る。好適な実施態様において、該抗体は、(1)ロー リー法によって測定されるような抗体の95重量%より以上に、最も好ましくは 99重量%以上に、(2)スピニングカップシークエネーターの使用によってN- 末端又は中間のアミノ酸配列の少なくとも15残基を得るために十分な度合いに 、又は(3)クマシーブルー又は、適当には銀染色を用いて還元又は非還元条件下 でSDS‐PAGEによって均質化するために精製されるであろう。分離した抗 体は、抗体の自然環境の少なくとも1の構成要素が存在されないであろうことか ら、組換え細胞内の本来の位置の抗体を含む。通常、しかしながら、分離した抗 体は、少なくとも1の精製化工程によって調製されるであろう。 ここで使用した場合、用語「エピトープタグ化」は、「エピトープタグ」に融 合した抗CD11a抗体に関する。エピトープタグポリペプチドは、それに対す る抗体を作製することができ、それがCD11a抗体の活性を妨げないような十 分に短いものに対するエピトープを提供するために十分な残基を有する。該エピ トープタグは好ましくは、それに対する抗体が他のエピトープと実質的に交差反 応しないために十分独自性である。好適なタグポリペプチドは、一般に、少なく とも6のアミノ酸残基を、大抵は8−50アミノ酸残基(好ましくは9−30残 基)を有する。実例は、flu HAタグポリペプチド及びそれの抗体12CA5 (Hieldら、Mol.Cell.Biol.8:2159-2165(1988));c-mycタグ及びそれに対 する8F9,3C7,6E10,G4,B7及び9E10抗体(Evanら、Hol.Ce ll.Biol.5(12):3610-3616(1985));及びヘルペス単純ウイルスグリコプロイテ インD(gD)タグ及びそれの抗体(Paborskyら、Protein Engineering 3(6):547- 553(1990))を含む。ある実施態様において、そのエピトープタグは、「サルベー ジレセプター結合エピトープ」である。 ここで用いたような、用語「サルベージレセプター結合エピトープ」は、Ig G分子(例えば、IgG1、IgG2、IgG3、又はIgG4)のFc領域のエピト ープに関し、すなわち、IgG分子のインビボでの血漿半減期を増加させるため に応答可能である。 ここで使用したような用語「細胞毒性剤」は、細胞の機能を抑制する又は妨げ る及び/又は細胞の分解の原因となる物質に関する。その用語は、放射性アイソ トープ(I131、I125、Y90及びRe186)、化学療法剤、及び細菌の、カビの、 植物又は動物の酵素学的活性毒のような毒物、又はそれのフラグメントを含むこ とが意図される。 「化学療法剤」は、癌の治療において有用な化合物である。化学療法剤の実例 は、アドリアマイシン、ドキソルビシン、5‐フルオロウラシル、シトシンアラ ビノシド(「Ara-C」)、シクロホスホアミド、チオテパ、タキソテール(docetaxe l)、ブスルファン、サイトキシン、タキソール、メトトレキセート、シスプラチ ン、メルファラン、ビンブラスチン、ブレオマイシン、エトポシド、イフォスフ ァミド、マイトマイシンC、ミトザントロン、ビンクレイスチン、ビノールエル ビン、カルボプラチン、テニポシド、ダウノマイシン、カーミノマイシン、アミ ノプテリン、ダクチノマイシン、マイトマイシン、エスペラミシン(米国特許第4 ,675,1 87号参照)、メルファランおよびナイトロジェンマスタードに関係したその他の ものを含む。 本発明において用いたような、用語「プロドラッグ」は、製薬的活性物質の前 駆体又は誘導体形に関し、即ち、親薬剤に比べて腫瘍細胞への細胞毒性が劣るも のであり、且つより活性な形に酵素的に活性化され又は転換され得るものである 。例えば、Wilman,”Prodrugs in Cancer Chemotherapy”Biochemical Society Transactions,14,pp.375-382,615th Meeting Belfast(1986)及びStellaら、 ”Prodrugs:A Chemical Approach to Targeted Drug Delivery,”Directed Drug Delivery,Borchardtら(ed.),pp.247-267,Humana Press(1985)を参照。本発明 のプロドラッグは、制限されるものではないが、ホスファート含有プロドラッグ 、チオホスファート含有プロドラッグ、サルファート含有プロドラッグ、ペプチ ド含有プロドラッグ、D-アミノ酸変成プロドラッグ、グリコシル化プロドラッグ 、β‐ラクタム含有プロドラッグ、任意に置換したフェノキシアセトアミドプロ ドラッグまたは任意に置換したフェニルアセトアミド含有プロドラッグ、5-フ ルオロシトシン及びより活性な細胞毒性フリードラッグに変換され得る他の5‐ フルオロウリジンプロドラッグを含む。本発明において使用するためのプロドラ ッグ型に誘導化が可能な細胞毒性医薬の実例は、制限されることなしに、上記の 化学療法剤を含む。 ここで使用した場合、用語「標識」は、抗体に直接又は間接的に接合される検 出可能な化合物又は組成物に関する。該標識は、それ自身によって検出可能とさ れ得るし(例えば放射性同位体標識又は蛍光標識)、又は酵素標識のケースにおい て、検出可能な基質化合物又は組成物の触媒的化学交代し得る。 「固相」によって、本発明の交代が接着可能であるような非水性マトリックス が意味される。ここに包含される固相の実例は、ガラス(例えば制御化多孔ガラ ス)、ポリサッカリド(例えばアガロース)、ポリアクリルアミド、ポリスチレン 、ポリビニルアルコール及びシリコーンで部分的に又は完全に形成されたそれら を含む。ある実施態様において、該背景に基づいて、該固相は、アッセイプレー トのウェルを含むことができる;他においてそれは、精製カラムである(例えば アフィニティークロマトグラフィーカラム)。この用語はまた、米国特許第4,27 5,149号中に 記載されるそれのような、分離し得る粒子の不連続な固相をも含む。 「リポソーム」は、哺乳動物への薬剤(ここに記載した抗CD11a及び、任 意の化学療法剤のような)のデリバリーのため有用とされる、各種のタイプの脂 質、リン脂質及び/又は界面活性剤から構成される小さなベシクルである。該リ ポソームの成分は、生物膜の脂質配列に似た二層形態において通例は配置される 。 「分離した」核酸分子は、抗体核酸の天然ソースにおいてそれが通常に結合さ れることによって少なくとも1の汚染核酸分子から同定され且つ分離される核酸 分子である。分離した核酸分子は、自然においてそれが見出されるものにおける 形又はセッティング以外のものである。分離した核酸分子は、それ故に、天然細 胞中に存在するそれのような核酸分子と区別される。しかしながら、分離した核 酸分子は、例えばその核酸分子が、染色体において天然細胞のそれと異なる配置 である場合には、該抗体が通常発現する細胞中に含んだ核酸分子を含む。 表現「コントロール配列」は、特有な宿主生物中の操作可能に結合したコード 化配列の発現のために必要なDNA配列に関する。原核生物のために好適とされ るコントロール配列は、例えばプロモーター、任意のオペレーター配列、及びリ ボソーム結合サイトを含む。真核生物は、プロモーター、ポリアデニル化シグナ ル、及びエンハンサーを利用することが知られる。 核酸は、それが別の核酸配列との機能的な相関関係中に置かれた場合、「操作 可能に結合」される。例えば、プレ配列用DNA又は分泌のリーダーは、もしそ れがポリペプチドの分泌において参加するプレタンパク質として発現される場合 、ポリペプチドのためのDNAに操作可能に結合され;プロモーターとエンハン サーは、該配列の転写にそれが影響を与える場合、コード化配列に操作可能に結 合されるリボソーム結合サイトは、もしそれが翻訳を促進するために置かれた場 合、コード化配列に操作可能に結合される。一般に、「操作可能に」は、結合さ れているDNA配列が隣接しており、且つ、分泌リーダーのケースにおいて、隣 接し且つリーディング相においてであることを意味する。しかしながら、エンハ ンサーは、隣接されるように有してはいない。結合は、便利な制限サイトでの結 紮によって達成される。もしそのようなサイトが存在しないなら、該合成オリゴ ヌクレオチドアダプター又はリンカーは、通常のプラクティスに従って使用され る。 ここで用いたように、用語「細胞」、「細胞系」、及び「細胞培養」は、相互 に取り替え可能に用いられ、且つそのような定義の全ては、結果物を含む。かく して、用語「形質転換」及び「形質転換した細胞」は、転移の数に関係なく最初 に受ける細胞とそれから得られた培養物を含む。それはまた、全ての結果物が、 意図的な又は偶然の突然変異のために、DNA内容物において完全な同一性とさ れなくとも良いとも解される。独創的に形質転換した細胞においてスクリーンさ れると同じ機能又は生物学的活性を有する変異結果物が含まれる。個別な定義が 意図される場合に、その内容から明らかとされるであろう。 II. 発明を実施するための形態 A. 抗体調製 非ヒトCD11a抗体をヒト化するための方法が以下の実施例中に記載される 。抗CD11a抗体をヒト化するために、非ヒト抗体出発材料が調製される。そ のような抗体を精製するための典型的な方法が以下のセクション中に記載される 。 (i)抗原調製 抗体の調製用に使用されるべきCD11a抗原は、例えばCD11a又はCD 11aフラグメントの細胞外ドメインの可溶型(例えばCD11a Iドメインフ ラグメントのような「MHM24エピトープ」を備えるCD11aフラグメント )とされ得る。代替的に、それの細胞表面でCD11aを発現する細胞が、抗体 を生成するために使用され得る。そのような細胞は、CD11a且つ任意に、C D18を発現するために形質転換でき、又は他の天然発生細胞(例えば、ヒトリ ンパ芽球細胞、Hildrethら、Eur.J.Immunol.13:202-208(1983)参照)又はジャ ーカット細胞(後述の実施例参照)とされ得る。抗体を生成するために有用なCD 11aの他の形態は、当業者にとって明らかであろう。 (ii)ポリクローナル抗体 ポリクローナル抗体は、関連抗原とアジュバントとの複数の皮下(sc)又は 腹腔内(ip)注射によって好ましくは生起される。例えば鍵穴リムペットヘモ シアニン、血清アルブミン、ウシチログロブリン、又は二機能又は誘導化剤、例 えばマレイミドベンゾイルスルホスクシンイミドエステル(システイン残基を経 て接合)、N‐ヒドロキシスクシンイミド(リジン残基を経て)、グルタルアルデ ヒド、無水コハク酸、SOCl2、又はR1N=C=NR、式中RとR1は異なる アルキル基、を用いるダイズトリプシンインヒビターのような、免疫化されるべ き種において免疫原性であるタンパク質に関連抗原を接合するのに有用とされ得 る。 動物は、例えばフロイント完全アジュバントの3容量と共に、該タンパク質又 は結合物の100μg又は5μg(それぞれウサギ又はマウスのための)を複数サ イトで皮下的に溶液を注入することによって、抗原、免疫原性接合体、又は結合 化による誘導体に対して免疫化される。1ヶ月後、該動物は、複数サイトでの皮 下注射によってフロイント完全アジュバント中のオリジナルの量の1/5から1/10 のペプチド又は接合体によってブーストされる。7日から14日後、該動物は放 血され、かつその血清が抗体力価について分析される。動物は力価プラトーまで ブーストした。好ましくは、該動物は同じ抗原の接合によってブーストされるが 、異なるタンパク質に及び/又は異なる架橋剤を通して接合される。接合体はま た、タンパク質融合として組み換え細胞培養中に作製され得る。また、明礬のよ うな凝集剤は、免疫応答を増大するために適当に用いられる。 (iii)モノクローナル抗体 モノクローナル抗体は、Kohlerら、Nature,256:495(1975)によって最初に記 載されたハイブリドーマ法を用いて作製でき、又は組換えDNA法(米国特許第4 ,816,567号)によって作製され得る。 ハイブリドーマ法において、マウス、又はハムスター又はマカク属サル等の他 の適当な宿主動物は、免疫化のために使用したタンパク質の特異的に結合するで あろう抗体を生産する又は生産する可能性のあるリンパ球を引き出すために上述 したように免疫化される。代替的に、リンパ球は、インビトロにおいて免疫化さ れ得る。リンパ球は次いで、ハイブリドーマ細胞を形成するため、ポリエチレン グリコールのような適当な融合剤を用い、骨髄腫細胞と融合させる(Goding,Mon oclonal Antibodies:Principles and Practice,pp.59-103(Academic Press,19 86))。 かくて調製したハイブリドーマ細胞は、シード化され且つ、非融合、親の骨髄 腫細胞の成長又は生存を抑制する1又はそれ以上の物質を好ましくは含有する適 当な培地中で培養される。例えば、もしその親の骨髄腫細胞が酵素ヒポキサンチ ングアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ(HGPRT又はHPRT)を欠い たならば、典型的なハイブリドーマのための培地は、HGPRT‐欠損細胞の成 長を防止する物質、ヒポキサンチン、アミノプテリン及びチミジンを含むであろ う(HAT培地)。 好ましい骨髄腫細胞は、選択した抗体生産細胞を、効率的に融合し安定な高レ ベル生産を支持する、及びHAT培地のような培地への感受性のあるそれらであ る。これらの中で、好ましい骨髄腫細胞系は、Salk Institute Cell Distributi on Center,サンディエゴ、カリフォルニア、米国から利用可能なMOP−21と M.C.-11マウス腫瘍から得られるそれら、及びAmerican Type Culture Collect ion,Rockville,メリーランド、米国から利用し得るSP‐2又はX63-Ag 8‐653細胞のようなネズミ骨髄腫系である。ヒト骨髄腫及びマウス‐ヒト異 種骨髄腫細胞系は、ヒトモノクローナル抗体の生産のためにも記載されている(K ozbor,J.Immunol.,133:3001(1984);Brodeurら、Monoclonal Antibody Produc tion Techniques and Applications,pp.51-63(Harcel Dekker,Inc.,New York ,1987))。 ハイブリドーマ細胞が増殖している培地は、該抗原に対し向けられたモノクロ ーナル抗体の生産のために分析される。好ましくは、ハイブリドーマ細胞によっ て生産されるモノクローナル抗体の結合特異性は、免疫沈降によって又はラジオ イムノアッセイ(RIA)又は酵素免疫吸着アッセイ(ELISA)のようなインビ トロでの結合アッセイによって測定される。 モノクローナル抗体の結合親和性は、例えば、Hunsonら、Anal.Biocllem.,107 :220(1980)のスキャッチャード分析によって測定され得る。 ハイブリドーマ細胞が望ましい特異性、親和性、及び/又は活性の抗体を生産 することが同定された後、そのクローンは、制限した希釈法によりサブクローン 化されて良く且つ標準の方法により増殖される(Goding、Monoclonal Antibodies :Principles and Practice,pp.59-103(Academic Press,1986))。この目的のた めの適当な培地は、例えばD‐MEM又はRPMI‐1640培地を含む。加え て、 ハイブリドーマ細胞は、動物中の腹水腫瘍としてインビボで増殖させ得る。 該サブクローンによって分泌したモノクローナル抗体は、例えばプロテインA ‐セファロース、ヒドロキシアパタイトクロマトグラフィー、ゲル電気泳動、透 析、またはアフィニティークロマトグラフィーのような通常の免疫グロブリン精 製法によって、培地、腹水液、又は血清から適切に分離される。 DNAコード化モノクローナル抗体は、直ちに分離され、且つ通常の方法(例 えば、モノクローナル抗体の重及び軽鎖をコード化する遺伝子に特異的に結合す ることができるオリゴヌクレオチドプローブを用いることによって)を用いて配 列決定される。該ハイブリドーマ細胞は、そのようなDNAの好適なソースとし て奉仕する。一度の分離で、該DNAは、組換え宿主細胞におけるモノクローナ ル抗体の合成を獲得するために、大腸菌、類人猿COS細胞、チャイニーズハム スター卵(CHO)細胞、又は別のやり方で免疫グロブリンタンパク質を生産しな い骨髄腫細胞のような宿主細胞内に移入される、発現ベクター内に配置され得る 。抗体の組換え体生産は、より詳細に後述されるであろう。 (iv)ヒト化及びアミノ酸配列変異体 下記の実施例は、抗CD11a抗体のヒト化のための手順を記載する。ある実 施態様において、ヒト化抗体のアミノ酸配列変異体を生産するため、特にこれら がヒト化抗体の結合親和性又は他の生物学的特性を改善する場合に望ましいもの とされ得る。 ヒト化抗CD11a抗体のアミノ酸配列変異体は、ヒト化抗CD11a抗体D NAを変える適当なヌクレオチドを導入することによって、又はペプチド合成に よって調製される。そのような変異体は、ヒト化抗CD11a F(ab)-8のため に示したアミノ酸配列(例えば、配列番号2及び5のような)の中の残基の削除、 及び/又は挿入及び/又は置換を包含する。最終的な構造で生起するように作製 される削除、挿入、及び置換のいずれかの組合せは、最終の構造が望ましい特徴 を所有するように提供される。変更したアミノ酸はまた、グリコシル化サイトの 数又は位置を変更するような、ヒト化抗CD11a抗体の後翻訳プロセスをも変 え得る。変異誘発のための配置が好適とされたヒト化抗CD11a抗体ポリペプ チドの一定の残基又は領域の同定のための有用な方法は、CunninghamとWells Sc ience,244:1081-1085(1989)によって開示されたような「アラニン走査変異誘発 」と称される。ここで、残基又は標的残基の群が同定され(例えば、arg,asp,his ,lys,及びgluのような荷電した残基)、及びCD11a抗原によってアミノ酸の 相互作用に影響を及ぼすような中性又は陰性に電荷したアミノ酸(最も好ましく はアラニン又はポリアラニン)によって置換される。その置換体に機能的な選択 性を示すそれらのアミノ酸配置は、更なる導入又は置換のサイトで、又はそのた めの他の変異体によって精製される。かくして、アミノ酸配列変異体を導入する ためのサイトが予め決定される一方、変異それ自身の本質は、予め決定される必 要はない。例えば、与えられたサイトでの変異の遂行を分析するために、ala走 査又はランダム変異誘発が標的コドン又は領域で導入され且つ発現したヒト化抗 CD11a抗体変異体は、望ましい活性のためにスクリーンされる。 アミノ酸配列挿入物は、単一又は多数のアミノ酸残基の配列間挿入体と同様に 、100又はそれ以上の残基を含む1残基からポリペプチドまでの長さを範囲内 とするアミノ‐及び/又はカルボキシ末端融合を含む。末端挿入体の実例は、N -末端メチオニル残基を持ったヒト化抗CD11a抗体又はエピトープタグに融 合した該抗体を含む。ヒト化CD11a抗体分子の他の挿入の変異体は、抗体の 血清半減期を増加させる、酵素又はポリペプチドのヒト化抗CD11a抗体のN -又はC-末端への融合物を含む(後述を参照)。 変異体の別の型は、アミノ酸置換変異体である。これらの変異体は、取り除い たヒト化抗CD11a抗体分子中の少なくとも1のアミノ酸残基を有し且つ異な る残基がその場所に挿入される。代りの変異誘発のため最も重要なサイトは、超 可変ループを含むが、しかしFR交代もまた意図される。後述の実施例中の表I Vは、変更され得る超可変領域残基のためのガイダンスを提供する。抗原結合中 の含まれた超可変領域残基又はFR残基は、相対的に保存的な手法において一般 に置換される。そのような保存的置換は「好適な置換体」の頭書きの下に表I中 に示した。もしそのような置換が生物学的活性における変化を生じる結果となる なら、表I中の「典型的な置換体」に示した又はアミノ酸クラスに関する更なる 後述のようなより本質的な変化が導入され且つその生産物がスクリーンされる。 表I 該抗体の生物学的特性における実質的な修正は、(a)例えばシート又はヘリ カル組織のような、その置換のエリアにおけるポリペプチドバックボーンの構造 、(b)標的サイトでの分子の電荷又は疎水性、又は(c)側鎖のかさ、を維持 することについてのそれの効果において顕著に相違する置換体を選択することに よって達成される。自然に生じる残基は、通例の側鎖特性の基づいた基の中に分 割される: (1)疎水性:norleucine、met、ala、val、leu、ile; (2)中性親水性:cys、ser、thr; (3)酸性:asp、glu; (4)塩基:asn、gln、his、lys、arg; (5)鎖配向に影響する残基:gly、pro;及び (6)芳香族;trp、tyr、phe。 非保存置換は、別のクラスのためにこれらクラスの一つのメンバーを交換する ことを伴うであろう。ヒト化抗CD11a抗体の適切な構造を維持することにお いて包含されないいずれかのシステイン残基はまた、分子の酸化安定性を改善す るため及び異常な交差反応を防止するために、一般にセリンによって置換され得 る。逆に、システイン結合は、その安定性を改善するために抗体に付加され得る (特に、抗体がFvフラグメントのような抗体フラグメントである場合)。 該抗体のアミノ酸変異体の別のタイプは、抗体の本来のグリコシル化パターン を変更する。変更によって抗体中に見出される1又はそれ以上の炭水化物部分を 削除すること及び抗体中に存在しない1又はそれ以上のグリコシル化を加えるこ とを意味する。 抗体のグリコシル化は、典型的にN-結合化又はO-結合化のいずれかである。 N-結合化は、アスパラギン残基の側鎖への炭水化物部分の接合に関する。トリ ペプチド配列 アスパラギン-X-セリン及びアスパラギン‐X‐トレオニン(式 中Xはプロリン以外のいずれかのアミノ酸)は、アスパラギン側鎖への炭水化物 部分の酵素的接合のための認識配列とされる。かくして、ポリペプチド中のこれ らトリペプチドのいずれかの存在は、潜在的なグリコシル化サイトを創製する。 O-結合化グリコシル化は、5‐ヒドロキシプロリン又は5‐ヒドロキシリシン が使用され得るとしても、ヒドロキシアミノ酸、最も普通にはセリン又はトレオ ニンへの糖N-ガラクトサミン、ガラクトース、又はキシロースの接合に関する 。 抗体へのグリコシル化サイトの付加は、それが1又はそれ以上の上述したトリ ペプチド配列(N-結合化グリコシル化サイトのための)を含むようなアミノ酸配 列を変更することによって有利に達成される。その変更はまた、本来の抗体の配 列への1またはそれ以上の残基(O-結合化グリコシル化サイトのための)の付加 又はそれによる置換によってなされ得る。 ヒト化抗CD11a抗体のアミノ酸配列変異体をコード化する核酸分子は、当 該分野で周知の各種の方法によって調製される。これらの方法は、制限されるこ となく、天然ソースからの分離(自然発生的アミノ酸配列変異体のケースにおい て)又はオリゴヌクレオチド介在(又はサイト管理化)変異誘発、PCR変異誘発 、及びヒト化抗CD11a抗体の早期調製変異体又は非変異型のカセット変異誘 発による調製を含む。 通常、ヒト化抗CD11a抗体のアミノ酸配列変異体は、重鎖又は軽鎖のいず れかの本来のヒト化抗体アミノ酸配列(例えば、配列番号:2又は5のような)と の少なくとも75%の、好ましくは少なくとも80%の、より好ましく(は少な くとも85%の、より好ましくは少なくとも90%の、最も好ましくは少なくと も95%の、アミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を有するであろう。この 配列に関する同一性と相同性は、もし必要なら、配列同一性最大パーセントを達 成するために、及び配列同一性の一部のようないずれかの保存置換(上記表I中 に定義した通りの)を考慮しないために、配列を揃え及ひギャップを導入した後 に、ヒト化抗CD11a残基と同一性のある配列候補中のアミノ酸残基のパーセ ンテージとしてここに定義される。抗体配列内へのN末端、C末端、又は内部拡 大、削除又は、挿入のないものは、配列同一性又は相同性に影響を及ぼすように 構成されるべきである。 (v)生物学的特性のためのスクリーニング ヒト化抗CD11a抗体中に望ましいとされるようにここに同定した特徴を有 する抗体がそのためにスクリーンされる。 興味のある抗体によって結合CD11a上のエピトープに結合する抗体のため のスクリーニングのために(例えば、CD11aへのMHM24抗体の結合をブ ロックするそれの)、Antibodies,A Laboratory Manual,Cold Spring Harbor L aboratory,Ed Harlow and David Lane(1988)中に記載されたそれのような、ル ーチンの交差ブロック化アッセイが実行され得る。代替的に、例えば、Champeら 、J.Biol.Chem.270:1388-1394(1995)中に記載したような、エピトープマッピ ングは、興味あるエピトープを結合する抗体かどうかを決定することができる。 抗体親和性(例えばヒトCD11aまたはアカゲザルCD11aのための)は、 後述の実施例中に記載した通り末梢血液単核細胞又はアカゲザル白血球のいずれ かを用いて結合飽和によって決定され得る。抗体親和性を決定するためのこの方 法に従い、リンパ球又はアカゲザル白血球は、ウェル当たり170μlの容量で プレートに加えられ、且つプレートは室温で2時間インキュベートされる。イン キュベーションの後、細胞が収穫され、10回洗浄される。サンプルが次いで計 数される。飽和プロットのナノモルと4パラメーター曲線適合性に対する分当た りのカウント(結合対トータル)の形を変えたデータは、Kd(app)値の決定が実行 される。好ましいヒト化抗体は約1x10-7までの;好ましくは約1x10-8ま での、より好ましくは約1x10-9までの;最も好ましくは約2x10-10のK d値を持ったヒトCD11aを結合するそれらである。 それはまた、「ケラチノサイト単層接着アッセイ」における有益な抗接着特性 を有するヒト化抗体を選択することも望まれる。好適な抗体は、約250nMま での;好ましくは約100nMまでの;より好ましくは約1nMまでの及び通常 のヒト表皮ケラチノサイト発現ICAM‐1へのジャーカット細胞の接着を防止 するために最も好ましくは0.5nMまでのIC50(nM)値を有するそれらであ る。このアッセイに従い、通常のヒト表皮ケラチノサイトは、培養フラスコから 取り除かれ、5x105生存細胞/mlの濃度でリンパ球アッセイ培地中に懸濁 される。0.1μl/ウェルのアリコートは、ついで平底96ウェルプレート中 で一晩培養され;適当なウェルは、100単位/ウェルでインターフェロン‐ガ ンマの添加によって刺激される。ジャーカットクローンE6−1細胞は標識され 、洗浄され、1x106細胞/mlに再懸濁され、30分間、4℃で500ng /mlで2倍連続希釈を開始することでインキュベートされる。ケラチノサイト 単層からの培地の除去の後、標識化細胞の0.1ml/ウェルが加えられ且つ1 時間、37℃でインキュベートされる。該ウェルは、未結合細胞を取り除くため に洗浄され、かつ蛍光が測定される。 望ましいヒト化抗CD11a抗体は、ヒトリンパ球を用いる混合リンパ球応答 (MLR)アッセイにおいて、約100nMまでの;好ましくは約50nMまでの ;より好ましくは約5nMまでの、及び最も好ましくは約1nMまでのIC50 (nM)値を有するそれらである。ヒト及びアカゲザルの両方のMLRのために、 二つの無関係なドナーからの末梢血液が、ヘパリン化全血から分離され、後述の 実施例中に記載した通りの添加物によってRPMI 1640(GIBCO)中、 3x106細胞/mlの濃度に再懸濁される。該刺激細胞は、照射によって非応 答性が作られる。ウェル当たり1.5x105細胞の濃度でのレスポンダー細胞 は、96ウェル、平底プレート中の等しい数の刺激細胞とともに共培養される。 10nMの濃度で開始する2倍連続希釈物が、200μl/ウェルの全量を与え るための培養物に加えられる。その培養物は、5日間、5%CO2中、37℃で インキュベートされ、ついで16時間、[3H]チミジンの1μCi/ウェルによ りパルスされ、且つ[3H]チミジン結合が測定される。 (vi)抗体フラグメント ある実施態様において、ヒト化抗CD11a抗体は、抗体フラグメントである 。各種の技術が、抗体フラグメントの生産のために発展している。伝統的には、 これらのフラグメントは、完全な抗体の蛋白分解性消化を経て誘導される(例え ば、Morimotoら、Jornal of Biochemical and Biophysical Methods 24:107‐11 7(1992)及びBrennanら、Science 229:81(1985)参照)。しかしながら、これらの フラグメントは、組換え宿主細胞によって現在は直接生産され得る。例えば、F ab'‐SHフラグメントは、大腸菌から直接回収することができ、且つF(ab ')2フラグメントを形成するため化学的に対化される(Carterら、Bio/Technology 10:163-167(1992))。別なアプローチに従い、F(ab')2フラグメントは、組 換え宿主細胞培養から直接分離され得る。抗体フラグメントの生産のための他の 方法は、熟練した専門家に明らかとなるであろう。 (vii)多特異的抗体 いずれかの実施態様において、少なくとも2つの異なるエピトープのための結 合特異性を有する多特異性(例えば二特異性)ヒト化抗CD11a抗体を生成する ことが望ましいものとされ得る。二特異性抗体の実例は、CD11aタンパク質 の2つの異なるエピトープに結合し得る。代替的に、抗CD11aアームは、T 細胞レセプター分子(例えばCD2又はCD3)、又はCD11a発現細胞に細胞 防御メカニズムを集中するためのFcγRI(CD64)、FcγRII(CD32) 、及びFcγRIII(CD16)のようなIgG(FcγR)のためのFcレセプタ ー、のような白血球上の誘発化分子に結合するアームを結合させ得る。二特異的 抗体は、CD11aを発現する細胞に対する細胞毒因子を局在化するためにも使 用され得る。これらの抗体は、CD11a結合アームと、細胞毒因子(例えば、 サポリン、抗インターフェロンα、ビンカアルカロイド、リチンA鎖、メトトレ キサート又は放射性同位体ハプテン)を結合するアームとを所有する。二特異性 抗体は、完全長抗体又は抗体フラグメント(例えば、F(ab')2二特異性抗体)。 二特異性抗体を作製するための別なアプローチに従い、抗体分子の対の間の界 面は、組換え細胞培養から回収されるヘテロダイマーのパーセンテージを最小化 するために加工することができる。好ましい界面は、抗体定常ドメインのCH3 ドメインの少なくとも一部を含む。この方法において、第1の抗体分子の界面か らの1又はそれ以上の小さいアミノ酸側鎖が、より大きい側鎖(例えば、チロシ ン又はトリプトファン)によって置換される。大きい側鎖と同じかまたは似たサ イズの埋め合わせとなる「キャビティ」は、より小さいもの(例えばアラニン又 はトレオニン)によって大きいアミノ酸側鎖を置換することによって第2の抗体 分子の界面上に創製される。これは、ホモダイマーのような他の望まれていない 終端生産物を越えるヘテロダイマーの収量を増加するためのメカニズムを提供す る。1996年9月6日に公表のWO96/27011を参照。 二特異性抗体は、架槁化又は「異結合」抗体を含む。例えば、該異結合抗体中 の一つの抗体は、アビジン、その他にビオチンに結合し得る。異結合抗体は、い ずれかの好適な架橋法を用いて作製され得る。適当な架橋剤は、当該分野で周知 であり、多数の架橋技法と一緒に、米国特許第4,676,980号中に開示される。 抗体フラグメントから二特異性抗体を生成するための方法は、文献中にも記載 されている。例えば、二特異性抗体は、化学結合を用い調製することができる。 Brennanら、Science 229:81(1985)は、その手順を記載し、そこでの完全な抗体 は、F(ab')2フラグメントを生成するため蛋白分解的に切断される。これらの フラグメントは、近傍のジチオールを安定化するため及び分子間ジスルフィド形 成を 防止するためにジチオール錯化剤ヒ酸ナトリウムの存在中で還元される。該Fa b'フラグメントは、チオニトロベンゾアート(TNB)誘導体に変換される。F ab'‐TNB誘導体の一つは、メルカプトエチルアミンによる還元によりFa b'‐チオールに再変換され、さらに二特異性抗体を形成するため他のFab'- TNB誘導体の等モル量と混合される。生産した二特異性抗体は、酵素の選択的 な固定化のための剤として使用され得る。 最近の進歩は、二特異性抗体を形成するために化学的に対化され得る大腸菌か らのFab'‐SHフラグメントの直接回収を容易にしている。Shalabyら、J.E xp.Med.175:217-225(1992)は、完全なヒト化二特異性抗体F(ab')2分子の生 産を記載する。それぞれのFab'フラグメントは、大腸菌から独自に分泌され 且つ二特異的抗体を形成するためにインビトロにおいて指向した化学的対化にか けられる。かくして形成した二特異性抗体は、ヒト胸部腫瘍標的に対するヒト細 胞毒性リンパ球の溶解活性を誘発すると同じく、HER2レセプター及び通常の ヒトT細胞を過発現する細胞に結合され得る。 組換え細胞培養から直接に二特異性抗体フラグメントを作製及び分離するため の各種の技法もまた、記載されている。例えば、二特異性抗体は、ロイシンジッ パーを用いて作製されている。Kostelnyら、J.Immunol.148(5):1547-1553(199 2)。Fos及びJunタンパク質からのロイシンジッパーペプチドは、遺伝子融 合によって異なる抗体のFab'部分に結合した。該抗体ホモダイマーは、モノ マーを形成するためにヒンジ領域で還元され、抗体ヘテロダイマーを形成するた めに再酸化される。この方法は、抗体ホモダイマーの生産のためにも利用され得 る。Hollingerら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 90:6444-6448(1993)によって記 載される「ディアボディー」技法は、二特異性抗体フラグメントを作製するため の代替的なメカニズムを提供している。該フラグメントは、あまりに短いため同 じ鎖上の2つのドメイン間の対化を与えないリンカーによって軽鎖可変ドメイン (VL)に結合した重鎖可変ドメイン(VH)を含む。従って、一つのフラグメントの VHとVLドメインは、別のフラグメントの相補的なVHとVLドメインとともに対 を成すことを強制され、それによって2つの抗原結合サイトを形成する。単鎖F v(sFv)ダイマーの使用によって二特異性抗体フラグメントを作製するための 別な戦略 もまた、報告されている。Gruberら、J.Immunol.152:5368(1994)参照。代替的 に、該二特異性抗体は、Zapataら、Protein Eng.8(10):1057-1062(1995)中に記 載した通り生産した「線状抗体」とされ得る。 二価以上を持つ抗体が意図される。例えば、三特異性抗体が調製される。Tutt ら、J.Immunol.147:60(1991)。 (viii)他の変形 ヒト化抗CD11a抗体の他の変形が意図される。例えば、癌の治療における ような抗体の有効性の増大のために、エフェクター機能に関して本発明の抗体を 修正することが希望され得る。例えばシステイン残基は、Fc領域中に導入され て良く、それによってこの領域において鎖間のジスルフィド結合形成を与える。 かくして生成したホモダイマーの抗体は、内在化容量を改善して良く及び/又は 相補介在殺細胞化及び抗体依存細胞毒性(ADCC)を増加し得る。Caronら、J. Exp Med.176:1191‐1195(1992)とShopes、B.J.Immunol.148:2918-2922(1992 )を参照。増大した抗腫瘍活性を持つホモダイマー抗体は、Wolffら、Callcer Re search 53:2560-2565(1993)中に記載したようなヘテロ二機能性架橋剤を用いて も調製され得る。代替的に、抗体は、二つのFc領域を有するように加工するこ とができ且つそれによって増加した相補溶解性及びADCC能力を有し得る。St evensonら、Anti-Cancer Drug Design 3:219-230(1989)を参照。 本発明はまた、化学療法剤、毒(例えば、細菌、カビ、植物又は動物由来の酵 素的活性毒、又はそれらのフラグメント)、又は放射性同位体(すなわち、放射性 接合体)のような細胞毒性剤に結合したここに記載した抗体を含む免疫接合体に 関連する。そのような免疫接合体の生成において利用される化学療法剤は、上述 されている。使用され得る酵素的活性毒及びそれのフラグメントは、ジフテリア A鎖、ジフテリア毒素の非結合活性フラグメント、エキソトキシンA鎖(シュー ドモナスアエルギノーサからの)、リシンA鎖、アブリンA鎖、モデクシンA鎖 、アルファサルシン、Aleurites fordiiタンパク質、ジアンチンタンパク質、Ph ytolaca americanaタンパク質(PAPI,PAPII,及びPAP-S)、momordica charantia インヒビター、クルシン、クロチン、サパオナリア オフィシナリスインヒビタ ー、ゲロニン、 ミトゲリン、レストリクトシン、フェノマイシン、エノマイシン及びトリコセセ ンを含む。核種の放射性核種が、放射性接合化抗CD11a抗体の生産のために 利用可能である。実例は、212Bi、131I、131In、90Y及び186Reを含む。 抗体と細胞毒性剤の接合物は、N-スクシンイミジル‐3-(2‐ピリジルジチ オール)プロピオナート(SPDP)、イミノチオラン(IT)、イミドエステルの 二機能性誘導体(ジメチルアジピミダート塩酸のような)、活性エステル(ジスク シンイミジルスベラートのような)、アルデヒド(グルタルアルデヒドのような) 、ビスアゾ化合物(ビス‐(p‐アジドベンゾイル)ヘキサンジアミン)、ビスジア ゾニウム誘導体(ビス‐(p−ジアゾニウムベンゾイル)‐エチレンジアミンのよう な)、ジイソシアナート(トリレン2,6-ジイソシアナートのような)、およびビス ‐活性フッ素化合物(1,5-ジフルオロ-2,4‐ジニトロベンゼンのような)のような 各種の二機能性タンパク質カップリング剤を用いて作製される。例えば、リチン 免疫毒は、vitettaら、Science 238:1098(1987)中に記載されたように調製され 得る。炭素-14-標識化1‐イソチオジアナトベンジル-3-メチルジエチレントリア ミン五酢酸(MX‐DTPA)は、抗体への放射性ヌクレオチドの共役のための典 型的なキレート化剤である。WO 94/11026を参照。 別な実施態様において、該抗体は、腫瘍予備標的化において利用のための「レ セプター」(ストレプトアビジンのような)に接合されて良く、ここで該抗体‐レ セプター接合物は、清澄化剤を用いる循環からの非結合共役物の除去と細胞毒性 剤(例えば放射性核種)に共役される「リガンド」(例えばアビジン)の投与に続い て患者に投与される。 ここに開示した抗CD11a抗体は、イムノリポソームとしても調製され得る 。抗体を含んだリポソームは、Epsteinら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 82:368 8(1985);Hwangら、Proc.Natl Acad.Sci.USA 77:4030(1980);及び米国特許 第4,485,045号と4,544,545号中に記載されたような、当該分野で周知の方法によ り調製される。増加した循環時間を持つリポソームは、米国特許第5,013,556号 中に開示される。 特に有用なリポソームは、ホスファチジルコリン、コレステロール及びPEG ‐誘導化ホスファチジルエタノールアミン(PEG−PE)を含んだ脂質組成物と と もに逆相エバポレーション法によって生成され得る。リポソームは、望ましい直 径を持ったリポソームを得るため定義されたポアサイズのフィルターを通して押 し出しされる。本発明の抗体のFab'フラグメントは、ジスルフィド交互反応 を経て、Martinら、J.Biol.Chem.257:286-288(1982)中に記載されたようなリ ポソームに共役され得る。化学療法剤(ドキソルビシンのような)は、リポソーム の内部に任意に含有せしめ得る。Gabizonら、J.National Cancer Inst.81(19): 1484(1989)を参照。 本発明の抗体は、活性抗癌薬にプロドラッグを変える(例えば、ペプチジル化 学療法剤、WO 81/01145を参照)プロドラッグ活性化酵素に抗体を接 合することによってADEPT中で使用され得る。例えば、WO 88/073 78及び米国特許第4,975,278号を参照。 ADEPTのために有用な免疫接合体の酵素成分は、それをより活性化する、 細胞毒性形態に変換するためのそのような手法においてプロドラッグに作用する ことができるいずれかの酵素を含む。 本発明に方法において有用である酵素は、制限されることなしに、ホスファー ト含有プロドラッグを遊離の薬に変換するために有用なアルカリホスファターゼ ;スルファート含有プロドラッグを遊離の薬に変換するのに有用なアリールスル ファターゼ;非毒性5-フルオロシトシンを抗癌薬、5‐フルオロウラシルに変 換するのに有用なシトシンデアミナーゼ;ペプチド含有プロドラッグを遊離の薬 に変換するのに有用である、セラティアプロテアーゼ、セルモリシン、ズブチリ シン、カルボキシペプチダーゼ及びカテプシン(カテプシンB及びLのような)の ようなプロテアーゼ;D-アミノ酸置換体を含むプロドラッグを変換するのに有 用なD-アラニルカルボキシペプチダーゼ:グリコシル化プロドラッグを遊離の 薬に変換するのに有用なβ‐ガラクトシダーゼとノイラミニダーゼのような炭水 化物切断酵素;β‐ラクタム誘導体化薬を遊離の薬に変換するのに有用なβ‐ラ クタマーゼ;及びそれぞれフェノキシアセチル又はフェニルアセチル基によって それのアミン窒素において誘導体化した薬を遊離の薬に変換するのに有用な、ペ ニシリンVアミダーゼ又はペニシリンGアミダーゼのようなペニシリンアミダー ゼを含む。代替的に、「アブザイム」として当該分野において周知でもある、酵 素活性を持 った抗体は、本発明のプロドラッグを遊離の活性薬に変換するために使用され得 る(例えば、Massey、Nature 328:457-458(1987)を参照)。抗体‐アブザイム接合 体は、腫瘍細胞集団へのアブザイムのデリバリーのためにここに記載したように 調製され得る。 本発明の酵素は、上述したヘテロ二機能性架橋試薬の使用のような当該分野で 周知の方法によって抗CD11a抗体に共有的に結合され得る。代替的に、本発 明の酵素の少なくとも機能的活性部分に結合した本発明の抗体の少なくとも抗原 結合領域を備える融合タンパク質は、当該分野で周知の組換えDNA技術を用い て構成され得る(Neubergerら、Nature 312:604-608(1984)を参照)。 本発明のある実施態様において、例えば腫瘍穿通を増加するために、完全な抗 体と言うよりはむしろ、抗体フラグメントを使用することが望ましいとされ得る 。このケースにおいて、それの血清半減期を増加するために抗体フラグメントを 変更することが望ましいとされ得る。これは、例えば、抗体フラグメント中への サルベージレセプター結合エピトープの合併によって達成され得る(例えば、抗 体フラグメント中の適当な領域の変異によって、又はペプチドタグ内への該エピ トープの合併によって、すなわち末端又は中位でのいずれか一方で抗体フラグメ ントに融合される、例えばDNA又はペプチド合成によって)。1996年10月17日 公表のWO 96/32478を参照。 サルベージレセプター結合エピトープは、一般に領域を構成し、ここで、Fc ドメインの一又はそれ以上のループからのいずれかーつ又はそれ以上のアミノ酸 残基は、抗体フラグメントの類似位置に転移される。より好ましくは、Fcドメ インの1又は2つのループからの3又はそれ以上の残基は、転移される。さらに より好ましくは、該エピトープは、Fc領域の(例えばIgGの)CH2ドメイ ンから取り出され且つ該抗体のCH1,CH3、又はVH領域、或いは一以上の そのような領域に転移される。代替的に、該エピトープは、Fc領域のCH2ド メインから取り出され、該抗体フラグメントのCL領域又はVL領域、或いは両方 、に転移される。 最も好ましい実施態様において、該サルベージレセプター結合エピトープは、 該配列(5'から3'):PKNSSMISNTP(配列番号:16)を備え、且つ、HQSLGTQ(配列 番 号:17)、HQNLSDGK(配列番号:18)及びHQNISDGK(配列番号:19)、又は特 に該抗体フラグメントがFab又はF(ab')2である場合、VISSHLGQ(配列番号: 20)からなる群から選択される配列を任意にさらに備える。別の最も好ましい 実施態様において、該サルベージレセプター結合エピトープは、配列(5'から3') :HQNLSDGK(配列番号:18)、HQNISDGK(配列番号:19)、又はVISSHLGQ(配列 番号:20)と配列:PKNSSMISNTP(配列番号:16)を含むポリペプチドである。 ヒト化CD11a抗体の共有結合修飾もまた、本発明の範囲内に含まれる。そ れらは、化学合成によって又はもし適用可能であれば、該抗体の酵素的又は化学 的切断によって作製され得る。該抗体の共有結合修飾の他のタイプは、選択した 側鎖又はN-又はC-末端残基との反応が可能な有機誘導化剤によって抗体の標的 化アミノ酸残基の反応により分子内に導入される。 最も普通にはシステイニル残基が、カルボキシメチル又はカルボキシアミドメ チル誘導体を与えるために、クロロ酢酸又はクロロアセトアミドのようなα‐ハ ロアセタート(及び相対するアミン)と反応される。システイニル残基はまた、ブ ロモトリフルオロアセトン、α‐ブロモ‐β-(5-イミドゾイル)プロピオン酸、 リン酸クロロアセチル、N-アルキルマレイミド、3-ニトロ‐2‐ピリジルジス ルフィド、メチル2−ピリジルジスルフィド、p‐クロロ水銀ベンゾアート、2 -クロロ水銀‐4ニトロフェノール、又はクロロ‐7‐ニトロベンゾ‐2‐オキ サ-1,3-ジアゾールとの反応によって誘導される。 ヒスチジル残基は、この剤がヒスチジル側鎖のための相対的に特異的であるた め、pH5.5-7.0でジエチルピロカーボナートとの反応により誘導される。臭化パ ラブロモフェナシルも有用である;その反応は、pH6.0で0.1Mカコジル 酸ナトリウム中で好ましくは実行される。 リシニル及びアミノ末端残基は、コハク酸又は他のカルボン酸無水物と反応さ せる。これら剤による誘導体化は、リシニル残基の電荷を逆転する影響を有する 。α‐アミノ含有残基を誘導体化するための他の好適な試薬は、メチルピコリン イミダート、リン酸ピリドキサル、ピリドキサル、塩化ホウ素水素化物トリニト ロベンゼンスルホン酸、O-メチルイソウレア、2,4-ペンタンジオンのようなイ ミドエステル、及びグリオキシラートとのトランスアミナーゼ触媒反応を含む。 アルギニル残基は、フェニルグリオキサル、2,3-ブタンジオン、1,2-シクロヘ キサンジオン、及びニンヒドリンのそれらのうちの1又は幾つかの通常の試薬と の反応によって修飾される。アルギニン残基の誘導体化は、グアニジン官能基の 高いpKaのためにその反応がアルカリ条件において実行されることを要求する 。さらに、これらの試薬は、アルギニンエプシロンアミノ基と同じくリシンの基 と反応し得る。 チロシル残基の特異的修飾は、芳香族ジアゾニウム化合物又はテトラニトロメ タンとの反応によってチロシル残基内にスペクトルの標識を導入することへの特 別な関心により作製され得る。最も普通には、N-アセチルイミジゾールとテト ラニトロメタンが、それぞれO-アセチルチロシル種及び3-ニトロ誘導体を形成 するために使用される。チロシル残基は、ラジオイムノアッセイにおける使用の ために標識化タンパク質を調製するために、125I又は131Iを用いてヨウ素化さ れる。 カルボキシル側鎖(アスパルチル又はグルタミル)は、1-シクロヘキシル‐3‐ (2-モルホリニル‐4-エチル)カルボジイミド又は1-エチル‐3-(4‐アゾニ ア-4,4-ジメチルフェニル)カルボジイミドのようなカルボジイミド(R-N=C=N ‐R')(式中RとR'は異なるアルキル基である)との反応によって選択的に修飾 される。さらに、アスパルチルとグルタミル残基は、アンモニウムイオンとの反 応によってアスパラギニル及びグルタミニル残基に変換される。 グルタミニルとアスパラギニル残基は、それぞれの相当するグルタミルとアス パルチル残基にしばしば脱アミド化される。これら残基は、中性又は塩基性条件 下で脱アミド化される。これら残基の脱アミド化形態は本発明の範囲内にある。 他の修飾は、プロリンとリシンの水酸化、セリル又はトレオニル残基の水酸基 のリン酸化、リシン、アルギニン及びヒスチジン側鎖のα‐アミノ基のメチル化 (T.E.Creighton,Proteins:Structure and Molecular Properties,W.H.Freema n & Co.,San Francisco,pp.79-86(1983))、N-末端アミンのアセチル化、いずれ かのC-末端カルボニル基のアミド化を含む。 別のタイプの共有結合修飾は、該抗体への化学的又は酵素的カップリンググリ コシルを含む。これらの方法は、それらがN-又はO-結合グリコシル化のための グリコシル化能力を有する宿主細胞中で該抗体の生産が要求されないことにおい て有効である使用したカップリングモードに基づいて、その糖は、(a)アルギニ ンとヒスチジン、(b)遊離カルボキシル基、(c)システインのそれのような遊離ス ルフィドリル基、(d)セリン、トレオニン、又はヒドロキシプロリンのそれのよ うな遊離水酸基、(e)フェニルアラニン、チロシン、又はトリプトファンのそれ のような芳香族残基、又は(f)グルタミンのアミド基に付着させ得る。これらの 方法は、1987年9月11日公表のWO 87/05330中に、及びAplinとWristo n,CRC Crit.Rev.Biochem.,pp.259-306(1981)中に記載される。 該抗体上に存在するいずれかの炭水化物部分の除去は、化学的又は酵素的に達 成され得る。化学的脱グリコシル化は、化合物トリフルオロメタンスルホン酸、 又は同等の化合物に該抗体をさらすことを要求する。この処理は、結合糖(N-ア セチルグルコサミン又はN-アセチルガラクトサミン)を除く大部分の又は全ての 糖の切断の結果となり、一方抗体は完全に残される。化学的脱グリコシル化は、 Hakimuddinら、Arch.Biochem.Biophys.259:52(1987)により及びEdgeら、Anal .Biochem.,118:131(1981)により記載される。該抗体上の炭水化物部分の酵素 的切断は、Thotakuraら、Meth.Enzymol.138:350(1987)により記載されるよう な、各種のエンド‐及びエキソ‐グリコシダーゼの使用により達成され得る。 該抗体の共有結合修飾の別なタイプは、米国特許第4,640,835号;4,496,689号 ;4,301,144号;4,670,417号;4,791,192号又は4,179,337号中に記載の手法にお いて、各種の非タンパク質ポリマー、例えばポリエチレングリコール、ポリプロ ピレングリコール、又はポリオキシアルキレンの一つに該抗原を結合することを 備える。 B.ベクター、宿主細胞、及び組換え方法 本発明はまた、ヒト化抗CD11a抗体をコードする単離核酸、該核酸を具備 するベクター及び宿主細胞、並びに該抗体を産生するための組換え技術も提供す る。 前記抗体の組換産生のため、それをコードする前記核酸が単離され、更なるク ローニング(DNAの増幅)又は発現を行うために複製ベクターへ挿入される。 モノクローナル抗体をコードするDNAを直ぐに単離して通常の方法(例えば当 該抗体の重鎖及び軽鎖をコードしている遺伝子に特異的に結合可能なオリゴヌク レオチドプローブにより)を使用して配列決定する。多くのベクターが入手可能 である。ベクターの構成には一般的に、以下のものの一またはそれ以上を含むが これには限定されない:シグナル配列、複製起点、一又はそれ以上のマーカー遺 伝子、エンハンサーエレメント、プロモーター、及び転写終止配列。 (i)シグナル配列要素 本発明の抗CD11a抗体は、組換え的に直接に産生するのみならず、好まし くはシグナル配列又は他のポリペプチドであって成熟した蛋白質又はポリペプチ ドのN末端に特異的開裂部位を有する非相同性ポリペプチドとの融合ポリペプチ ドとして産生してもよい。選択される非相同的シグナル配列は宿主細胞により認 識されて処理(即ち、シグナルペプチダーゼにより)されるものである。未変性 の抗CD11a抗体シグナル配列について認識も処理も行わない原核性の宿主細 胞の場合、このシグナル配列は例えば以下の群よりなる原核細胞のシグナル配列 から選択される:アルカリホスファターゼ、ぺニシリナーゼ、lpp、又は熱安 定性エンテロトキシンIIリーダー。酵母の分泌の場合、未変性のシグナル配列 は、例えば酵母インベルターゼリーダー、α因子リーダー(サッカロマイセス( Saccharomyces)及びクルイベロマイセス(Kluyveromy ces)のα因子リーダーを含む)、酸ホスファターゼリーダー、C.アルビカ ンス(albicans)グルコアミラーゼリーダー、又はWO90/1364 6に記載のシグナルにより置換されていてもよい。哺乳動物細胞の発現において は、哺乳類シグナル配列はウイルス性分泌リーダー、例えば単純ヘルペスのgD シグナルと同様に入手可能である。 そのような前駆体領域は、抗CD11a抗体をコードするDNAにリーディン グフレームにおいて連結される。 (ii)複製起点要素 発現用及びクローニング用ベクターのいずれも、一又はそれ以上の選択した宿 主内でベクターを複製させることを可能にする核酸配列を含んでいる。一般的に 、クローニンダベクターにおいては、この配列は宿主の染色体DNAとは独立に 複 製することを可能にするものであり、複製起点又は自律性複製配列を含んでいる 。このような配列は種々の細菌、酵母、及びウイルスに対して知られている。プ ラスミドpBR322由来の複製起点は、ほとんどのグラム陰性細菌に適し、2 μプラスミド起点は酵母に適し、そして種々のウイルス起点(SV40、ポリオ ーマ、アデノウイルス、VSV、またはBPV)は、哺乳動物細胞におけるクロ ーニングベクターに有益である。一般的に、複製起点の構成要素は、哺乳類の発 現べクター(SV40の起点を典型的に使用しても良いが、これは初期プロモー ターを含むという理由のみのためである)には必要ではない。 (III)選択遺伝子要素 発現及びクローニングベクタには、選択遺伝子、または選択可能マーカーとも いう、を含むことができる。典型的な選択遺伝子は、(a)抗生物質やその他の 毒素、例えばアンピシリン、ネオマイシン、メトトレキセート、又はテトラサイ クリンに対して抵抗性を与え、(b)栄養要求性欠損を補完し、又は(c)例え ば桿菌に対するD−アラニンラセマーゼをコードする遺伝子のように、複合培地 からは得られない重要な栄養素を供給する、蛋白質をコードする。 選択スキームの一つの例は、宿主細胞の成長を停止させる薬剤を使用する。非 相同性遺伝子でうまく形質転換された細胞は、薬剤抵抗を与える蛋白質を産生し 、よって選択プログラムで生存する。このような優性選択の例は、ネオマイシン 、マイコフェノール酸(Mycophenolic acid)、ハイグロマイシンの薬剤を使用 する。 哺乳動物細胞用の適切な選択マーカーの別の例は、DHFR、チミジンキナー ゼ、メタロチオネイン−I、及び−II、好ましくは霊長類メタロチオネイン遺 伝子、アデノシンデアミナーゼ、オルニチンデカルボキシラーゼ等のように、抗 CD11a抗体核酸を取り上げるコンピテント細胞を同定することを可能にする ものである。 例えば、DHFR選択性遺伝子で形質転換された細胞はまず、DHFRのアン タゴニストであるメトトレキセート(Mtx)を含む培養液中の形質転換体の全 てを培養することによって同定される。野生型のDHFRを用いる場合の適切な 宿主細胞は、DHFR活性に欠失があるチャイニーズハムスター卵巣(CHO) 細胞株である。 或いは、宿主細胞(特には内在性のDHFRを含む野生型の宿主)を、抗CD 11a抗体、野生型DHFR蛋白質、及びアミノグリコシド3’−ホスホトラン スフェラーゼ(APH)等の別の選択マーカーをコードするDNA配列で形質転 換又は同時形質転換したものは、アミノグリコシド系抗生物質、例えばカナマイ シン、ネオマイシン若しくはG418の選択性マーカー用選択剤を含む培養液中 で細胞増殖させることにより選択することが可能である。米国特許番号4,96 5,199を参照。 酵母で使用する適切な選択遺伝子は、酵母プラスミドYRp7中に存在するt rp1遺伝子である(Stinchcombら、Nature、282:39( 1979))。このtrp1遺伝子は、トリプトファン中で増殖する能力を欠く 、酵母の変異株、例えばATCC番号44076又はPEP4−1用の選択マー カーを提供するものである(Jones、Genetics、85:12(19 77))。酵母細胞のゲノム中のtrp1障害の存在は、次に、トリプトファン が欠如する中で増殖する形質転換体を検出するのに効果的な環境を提供する。同 様に、Leu2−欠失酵母株(ATCC20,622、又は38,626)は、 Leu2遺伝子を持つ既知のプラスミドで補完される。 更に、1.6μm環状プラスミドpKD1に由来するベクターは、クルイベロ マイセス(Kluyveromyces)酵母の形質転換に用いることができる 。或いは、組換え子ウシキモシンの大量の生産用の発現システムがK.ラクチス (lactis)に対して報告されている(Van der Berg、Bio /Technology、8:135(1990))。クルイベマイセスの工業 用株による、成熟組換えヒト血清アルブミンの分泌用の、安定な多コピー発現ベ クターもまた開示されている(Fleerら、Bio/Technology、 9:968−975(1991))。 (iv)プロモーター要素 発現用及びクローニング用ベクターは通常、宿主生物により認識され、抗CD 11a抗体核酸に機能的に連結されるプロモーターを含んでいる。原核性宿主で 使用するのに適するプロモーターには、phoAプロモーター、β−ラクタマー ゼ及びラクトースプロモーター系、アルカリホスファターゼ、トリプトファン( trp)プロモーター系、及びtacプロモーター等のようなハイブリッドプロ モーターが含まれる。しかしながら、他の既知の細菌性プロモーターも適してい る。細菌系で使用されるプロモーターはまた、抗CD11a抗体をコードするD NAに機能的に連結されたシャイン−ダルガーノ(S.D.)配列を含んでいる 。 真核細胞についてもプロモーターが知られている。実質的に全ての真核遺伝子 は、転写か開始される部位の上流、約25乃至30塩基に位置するAT−リッチ な領域を有している。多くの遺伝子の転写開始点の上流70乃至80塩基に見ら れる別の配列は、CNCAAT領域であり、ここでNはいかなるヌクレオチドを も意味する。多くの真核遺伝子の3’末端には、ボリAテイルをコード配列の3 ’末端に付加するシグナルとなりえるAATAAA配列がある。これらの配列の 全ては、真核発現ベクター中に適切に挿入されている。 酵母宿主で用いるのに適切な促進性配列の例には、3−ホスホグリセレートキ ナーゼ、又はエノラーゼ、グリセルアルデヒド−3−ホスフェートデヒドロゲナ ーゼ、ヘキソキナーゼ、ビルビン酸デカルボキシラーゼ、ホスホフルクトキナー ゼ、グルコース−6−リン酸イソメラーゼ、3−ホスホグリセレートムターゼ、 ピルビン酸キナーゼ、トリオースホスフェートイソメラーゼ、ホスホグルコース イソメラーゼ、及びグルコキナーゼ等の他の解糖系酵素用のプロモーターが含ま れる。 他の酵母プロモーターで、増殖条件により転写が制御されるという付加的な利 点を有する誘導性プロモーターであるものは、アルコールデヒドロゲナーゼ2、 イソチトクロームC、酸性ホスファターゼ、窒素代謝に関連する分解性酵素、メ タロチオネイン、グリセルアルデヒド−3−ホスフェートデヒドロゲナーゼ、並 びにマルトース及びガラクトースの利用に関与する酵素用のプロモーター領域で ある。酵母中での発現に使用する適切なベクター及びプロモーターは、更にはE P73,657中に記載されている。酵母エンハンサーもまた、酵母プロモータ ーと有利に使用される。 哺乳動物宿主細胞中におけるベクターからの抗CD11a抗体の転写は、例え ばポリオーマウイルス、伝染性上皮腫ウイルス、アデノウイルス(例えばアデノ ウイルス2型)、ウシパピローマウイルス、トリ肉腫ウイルス、サイトメガロウ イルス、レトロウイルス、B型肝炎ウイルス、そして最も好ましくはシミアンウ イルス40(SV40)等のようなウイルスのゲノムから得たプロモーターや、 非相同性の哺乳動物性プロモーター、例えばアクチンプロモーター又は免疫グロ ブリンプロモーター、更には熱ショックプロモーターから得られるプロモーター により制御されているが、但しそのようなプロモーターは宿主細胞系と適合する ものであるという条件がつく。 SV40ウイルスの初期及び後期プロモーターはSV40の複製起点をも含む SV40制限断片として都合よく得られる。ヒトサイトメガロウイルスの極初期 プロモーターは、HindIII E制限断片として都合よく得られる。哺乳類 の宿主で、ウシパピローマウイルスをベクターとして利用した、DNAを発現さ せる系が、米国特許番号4,419,446に開示されている。この系を改変し たものが、米国特許番号4,601,978に記載されている。単純ヘルペスウ イルス由来のチミジンキナーゼプロモーターの制御下にあるヒトβ−インターフ ェロンcDNAをマウス細胞で発現させたReyesらの文献(Nature, 297:598−601(1982))を参照。或いは、ラウス肉腫ウイルスの 末端反復配列もプロモータとして使用することができる。 (v)エンハンサーエレメント要素 本発明の抗CD11a抗体をコードするDNAについての、高等真核生物によ る転写はしばしば、ベクター中にエンハンサー配列を挿入することで増大する。 哺乳類の既知の遺伝子(グロビン、エラスターゼ、アルブミン。α−フェトプロ テイン、及びインスリン)より、多くのエンハンサー配列が知られている。しか しながら典型的には、真核細胞ウイルス由来のエンハンサーを使用する例として は、複製起点の後ろ側(100−270bp)にあるSV40エンハンサー、サ イトメガロウイルス初期プロモーターのエンハンサー、複製起点の後ろ側にある ポリオーマエンハンサー、及びアデノウイルスエンハンサーが含まれる真核性プ ロモーターを活性化する宜進生配列エレメントについての、Yanivの文献( Nature,297:17−18(1982))も参照されたい。エンハ ンサーは、ベクター中の抗CD11a抗体をコードする配列の5’又は3’側に 接合させても良いが、好ましくはプロモーターより5’側に位置させる。 (vi)転写終止要素 真核宿主細胞(酵母、菌類、昆虫、植物、動物、ヒト、又は他の多細胞性生物 由来の有核細胞)中で使用される発現ベクターにはまた、転写の終止及びmRN Aの安定化に必要な配列が含まれるであろう。このような配列は通常は、真核性 若しくはウイルス性のDNA、又はcDNAの非翻訳領域の5’、ときには3’ より得ることができる。これらの領域には、抗CD11a抗体をコードするmR NAの非翻訳領域におけるポリアデニル化断片として転写されるヌクレオチド配 列が含まれる。有益な転写終止要素の一つは、ウシ成長ホルモンポリアデニレー ション領域である。WO94/11026及びその中で開示されている発現ベク ターを参照されたい。 (vii)宿主細胞の選択及び形質転換 本願においては、ベクター中のDNAを発現、又はクローニングするベクター に適する宿主としては、上記したような、原核細胞、酵母、又は高等な真核細胞 がある。この目的に適した原核細胞には、グラム陰性又はグラム陽性の生物等の ような真正細菌、例えばエシェリシア(Escherichia)(例:大腸菌(E.coli) )、エンテロバクター(Enterobacter)、エルウィニア(Erwinia)、クレブシ エラ(Klebsiella)、プロテウス(Proteus)、サルモネラ(Salmonella)(例 :サルモネラ.ティフィムリウム(Salmonella typhimurium))、セラチア(S erratia)(例:セラチア マルセスカンス(Serratia marcescans))、及び 赤痢菌(Shigella)のようなエンテロバクテリア科と同様に、桿菌(Bacilli) (例:B.サブチリス(subtilis)、B.リヒェニフォルミス(licheniformis )(例:1989年4月12日発行のDD266,710に開示されているB. リヒェニフォルミス(licheniformis)41P))、シュードモナス(Pseudomon as)(例:P.アエルギノサ(aeruginosa))及びストレプトミセス(Streptom yces)が含まれる。他の株、例えばE.coli B、E.coli X177 6(ATCC31,537)、及びE.coliW3110(ATCC27,3 25)も適しているが、大腸菌クローニング宿主のうちの好ましいものの一つは 、E.coli 294(ATCC31,446)である。これらは限定するものではなく、例示 するものである。 原核細胞に加えて、糸状真菌、または酵母のような真核性の微生物も、抗CD 11a抗体をコードするベクターのクローニング又は発現用の宿主として適する 。サッカロミセス セレビシエ(Saccharomyce cerevisiaes)、又はベーカー ズ酵母として知られるものは、低級な真核性宿主微生物の中では最もよく使用さ れる。しかしながら、数多くの他の属、種、及び株が入手可能でありまた本願で も有益であり、例えばシゾサッカロミセス ポンベ(Schizosaccharomyces pom be);クルイベロミセス(Kluyveromyces)宿主(例:K.ラクチス(lactis) 、K.フラギリス(fragilis)(ATCC12,424)、K.ブルガリクス( bulgaricus)(ATCC16,045)、K.ウィカラミイ(wickeramii)(A TCC24,178)、K.ワルチイ(waltii)(ATCC56,500)、K .ドロソフィラルム(drosopilarum)(ATCC36,906)、K.サーモト ・レランス(thermotolerans)、及びK.マルキシアヌス(marxianus));ヤ ロウィア(yarrowia)(EP402,226);ピチア パストリス(Pichia pastoris)(EP183,070);カンジダ(Candida);トリコデルマ レ エシア(Trichoderma reesia)(EP244,234);ニューロスポラ ク ラッサ(Neurospora crassa);シュワンニオマイセス(Schwanniomyces)(例 :シュワンニオマイセス オクシデンタリス(Schwanniomyces occidentalis) );及び糸状菌類(例:ニューロスポラ(Neurospora)、ペニシリウム(Penici llium)、トリポクラディウム(Trypocladium)、及びアスペルギルス(Aspergi llus)宿主(例:A.ニズランス(nidulans)、及びA.ニガー(niger))が ある。 グルコシル化した抗CD11a抗体を発現するための適切な宿主細胞は、多細 胞生物に由来する。無脊椎生物の細胞の例としては植物及び昆虫の細胞がある。 多数のバキュロウイルス株及び変異体、並びにスポドプテラ フルギペルダ(Spo doptera frugiperda)(イモムシ)、アエデス アエギプチ(Aedes aegypti )(カ)、アエデス アルボピクタス(Aedes albopictus)(カ)、ドロソフ ィラ メラノガスタ(Drosophila melanogaster)(ショウジョウバエ)、及び ボンビクス モリ(Bombyx mori)などの宿主由来の、対応する許容性昆虫宿主 細胞 が同定されている。数多くの形質移入用ウイルス株、例えばオートグラファ カ リフォルニカ(Autographa californica)NPVのL−1変異体、及びボンビ クス モリ(Bombyx mori)NPVのBm−5株が入手可能であり、このような ウイルスは本発明によれば、本願のウイルスとして使用することが可能であり、 特にスポドプテラ フルギペドラ(Spodoptera frugiperda)細胞の形質移入用 に使用できる。 ワタ、トウモロコシ、ジャガイモ、ダイズ、ペチュニア、トマト、及びタバコ の植物細胞培養を宿主として使用することが可能である。 しかしながら、脊髄生物の細胞が最も興味を持たれていて、脊髄生物の細胞の 培養(組織培養)による増殖は、日常的な方法になっている。有益な哺乳類宿主 細胞の例としては、SV40で形質転換したサルの腎臓CV−1株(COS−7 、ATCC CRL1651);ヒト胎児性腎臓株(293、又は懸濁培養中で 増殖させた293細胞のサブクローン、Grahamら、J.Gen.Viro l.36:59(1977))ベビーハムスター腎臓細胞(BHK、ATCC CCL10);チャイニーズハムスター卵巣細胞/−DHFR(CHO、Url aubら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 77:4216( 1980));マウスセルトリ細胞(TM4、Mather、Biol.Rep rod.23:243−251(1980));サル腎臓細胞(CV1 ATC CCCL70);アフリカミドリザル腎臓細胞(VERO−76、ATCC C RL−1587);ヒト頚部癌細胞(HELA、ATCC CCL2);イヌ腎 臓細胞(MDCK、ATCC CCL34);バッファロラット肝臓細胞(BR L3A、ATCC CRL 1442);ヒト肺細胞(W138、ATCC C CL75);ヒト肝臓細胞(HepG2、HB8065);マウス乳腺癌(MM T060562、ATCC CCL51);TRI細胞(Matherら、An nal.N.Y.Acad.Sci.383:44−68(1982));MR C5細胞;FS4細胞;及びヒト肝細胞腫株(HepG2)である。 宿主細胞は、上記の抗CD11a抗体産生用の発現用又はクローニング用ベク ターで形質転換されて、プロモーターを誘導し、形質転換体を選択し、又は所望 の配列をコードする遺伝子を増幅させるために適切に改変した通常の栄養培地中 で培養される。 (viii)宿主細胞の培養 本発明の抗CD11a抗体を産生するのに使用した宿主細胞は、種々の培地中 で培養することができる。商業的に入手可能な培地、例えばハムF10(シグマ )、最小必須培地(MEM)(シグマ)、RPMI−1640(シグマ)、及び ダルベッコ改変イーグル培地((DMEM)、シグマ)等が当該宿主細胞を培養 するのに適している。更に、Hamら(Meth.Enz.58:44(197 9))、Barnesら(Anal.Biochem.102:255(198 0))、米国特許番号の4,767704;4,657,866;4,927, 762;4,560,655;若しくは5,122,469;WO90/03Z 130;WO87/00195;又は米国特許番号のRe 30,985に記載 される何れも、当該宿註細胞用の培地として使用することができる。これらの培 地の何れも必要であればホルモン、及び/又は他の成長因子(例えばインスリン 、トランスフェリン、又は土皮細胞成長因子)、塩(例えば塩化ナトリウム、カ ルシウム、マグネシウム、及びリン酸塩)、緩衝液(例えばHEPES)、ヌク レオチド(例えばアデノシン及びチミジン)、抗生物質(例えばゲンタマイシン (商標)薬剤)、微量元素(マイクロモルの範囲の最終濃度で通常は存在する無 機化合物と定義される)、及びグルコース又は等価なエネルギー源で補充してい てもよい。当業者に知られる他の必要な補充物のいかなるものも、適切な濃度で 含めることができる。温度、pH等の培養条件は、発現用に選択した宿主細胞で 以前に使用したものであり、当業者には明らかである。 (ix)抗CD11a抗体の精製 組換え技術を使用すると、当該抗体は細胞内で、周辺質の空間で、又は直接培 地中へ分泌されるようにして産生することが可能である。抗体を細胞内で産生す るならば、第一段階として粒子状の細片、即ち宿主細胞又は溶解断片を、例えば 遠心又は超遠心により除去する。Carterらは、大腸菌の周辺質空間に分泌される 抗体の単離方法を記載している(Bio/Technology10:163− 167(1992))。簡単にいうと、細胞ペーストを酢酸ナトリウム(pH3 .5)、EDTA、及びフェニルメチルスホニルフルオリド(PMSF)存在下 で 約30分間解凍する。細胞細片は遠心で除去できる。抗体が培地中に分泌される 場合には、そのような発現系の上清は、一般的にはまず、商業的に入手可能な蛋 白質濃縮フィルター、例えばアミコン又はミリポアペリコン限外ろ過ユニットを 使用して濃縮する。PMSF等のプロテアーゼ阻害剤を、以後のいかなる工程に 含ませて蛋白分解を阻害することができ、また抗生物質を含めて外来性の汚染物 質の増殖を防止しても良い。 細胞より調製される抗体組成物は、例えばヒドロキシアパタイトクロマトグラ フィー、ゲル電気泳動、透析、及びアフィニティークロマトグラフィーを利用し て精製することができるが、中でもアフィニティークロマトグラフィーが好まし い精製技術である。アフィニティーリガンドとしてのプロテインAの適合性は、 抗体中に存在するいずれかの免疫グロブリンのFc領域種及びアイソタイプに依 存する。プロテインAを利用して、ヒトのγ1、γ2、又はγ4重鎖に基礎を置 く抗体を精製することができる(Lindmarkら、J.Immunol.M eth.62:1−13(1983))。全てのマウスアイソタイプ、及びヒト のγ3に対しては、プロテインGが推奨される(Gussら、EMBO J.5 :15671575(1986))。アフィニティーリガンドを付けるマトリッ クスは、多く:の場合、アガロースであるが、他のマトリックスでもよい。機械 的に安定なマトリックス、例えば制御されたポアグラス又はポリ(スチレンジビ ニル)ベンゼンなどは、アガロースで行うものよりも、より大きい流速とより短 い処理時間を可能にする。抗体がCH3領域を具備する場合、Bakerbon dABX(商標)レジン(J.T.Baker、Phillipsburg、N J)が精製に有益である。蛋白精製用の他の技術、例えばイオン交換カラム、エ タノール沈殿、逆相HPLC、シリカでのクロマトグラフィー、アニオン若しく はカチオン交換レジン(例えばポリアスパラギン酸カラム)でのヘパリンSEP HAROSE(商標)クロマトグラフィー、クロマトフォーカシング、SDS− PAGE、及び硫安沈殿などによる分画も、回収する抗体によっては可能である 。 予備的精製工程に引き続いて、興味のある抗体及び汚染部質を具備する混合物 を、pHが2.5乃至4.5の間の溶出緩衝液を、好ましくは低塩濃度(例:約 0乃至0.25Mの塩)において使用する低pH疎水性相互作用クロマトグラフ ィーにかける。 C. 製剤 所望の精製度の抗体と、適宜生理学的に許容されるキャリア、賦形剤、又は安 定化剤を混合することにより、凍結乾燥した製剤、又は水溶液の形態で、保存用 の治療用抗体製剤を調製する(Remington’s Pharmaceut ical Sciences、16版、Osol,A.編集、(1980))。 許容可能なキャリア、賦形剤、又は安定化剤は使用する投薬量及び濃度において 摂取者に毒性がないものであり、またリン酸塩、クエン酸塩、若しくは他の有機 酸などの緩衝液;アスコルビン酸及びメチオニンを含む酸化防止剤;保存料(例 えばオクタデシルジメチルベンジル塩化アンモニウム;塩化ヘキサメトニウム; 塩化ベンザルコニウム、塩化ベンゼトニウム;フェノール、ブチル若しくはベン ジルアルコール:メチル若しくはプロピルパラベン等のアルキルパラベン;カテ コール;レゾルシノール(resorcinol);シクロヘキサノール;3−ペンタノー ル;及びm−クレゾール);低分子量(約10残基未満)のポリペプチド;血清 アルブミン、ゲラチン、又は免疫グロブリン等の蛋白質;ポリビニルピロリドン 等の親水性ポリマー;グリシン、グルタミン、アスパラギン、ヒスチジン、アル ギニン、リジン等のアミノ酸;モノサッカライド、ジサッカライド、並びにグル コース、マンノース、又はデキストリンを含む他の炭水化物;EDTA等のキレ ート剤;ショ糖、マンニトール、トレハロース又はソルビトール等の糖;ナトリ ウムなどの塩形成対イオン;金属錯体(例:Zn−蛋白質錯体);及び/又はT WEEN(商標)、PLURONICS(商標)、又はポリエチレングリコール (PEG)等の非イオン性界面活性剤を含む。 ここでの製剤はまた、治療する特定の適応症に必要な一よりも多い活性化合物 、好ましくはそれぞれが互いに有害とならない、相補的な活性を有するものを含 んでいても良い。例えば、免疫抑制剤をさらに提供することが望ましいかもしれ ない。そのような分子は適切には、意図する目的に効果的である量において組合 せて存在する。 有効成分はまた、例えばコアセルベーション法や界面重合により調整されるミ クロカプセル中に取り込ませてもよいが、この例としてはそれぞれコロイド性ド ラッグデリバリーシステム中(例えばリポソーム、アルブミン微粒子、ミクロエ マルジョン、ナノ−粒子、及びナノカプセル)、又はマクロエマルジョン中にお けるヒドロキシメチルセルロース若しくはゲラチン−ミクロカプセル、及びポリ −(メチルメタクリレート)マイクロカプセルがある。このような技術は、Re mington’s Pharmaceutical Sciences、16 版、Osol,A.編集、(1980)に開示されている。 インビボ投与に使用する製剤は、無菌である必要がある。これは無菌のろ過膜 によるろ過で直ぐに達成される。 持続性放出の製剤を調製してもよい。持続性放出の適切な例には、固体の疎水 性ポリマーでできた、抗体を含む半透過性マトリックスが含まれるが、これは例 えばフィルムやミクロカプセルのように形作られた物品の形態をとる。持続性の 放出マトリックスの例は、ポリエステル、ヒドロゲル(例えば、ポリ(2−ヒド ロキシエチル−メタクリレート)、又はポリ(ビニルアルコール))、ポリ乳酸 (米国特許番号3,773,919)、L−グルタミン酸とγエチル−L−グル タミン酸の共重合体、非分解性エチレンビニルアセテート、分解性乳酸−グリコ ール酸共重合体(例えばLupron Depot(商標)(乳酸−グリコール 酸共重合体と酢酸ロイプロリドを具備する注射用ミクロ粒子))、及びポリ−D −(−)−3−ヒドロキシ酪酸が含まれる。エチレン−ビニルアセテート及び乳 酸−グリコール酸等のようなポリマーが100日以上の間分子の放出を可能にす るのに対し、ある種のヒドロゲルは蛋白質をより短い期間しか放出しない。カプ セル化した抗体が体内に長期間残る場合、37℃で水分に露出される結果として それらは変性するか、又は凝集し、生物学的活性の喪失がおき、免疫原性の変化 が起る可能性がある。関与する機構に応じて安定化する合理的な戦略が発明され うる。例えば、凝集機構がチオ−ジスルフィドの交換による分子間S−S結合の 形成であることか発見されれば、スルフィドリル残基を修飾したり、酸性溶液か ら凍結乾燥したり、含有水分を調節したり、適切な添加剤を使用したり、特別な ポリマーマトリックス組成物を開発したりして、安定化を達成することが可能で ある。 D.抗体の非治療的使用 本発明の抗体は、アフィニティー精製媒介物として使用することができる。こ の方法においては、セファデックスレジンやフィルター紙のような固相に当該抗 体を当該技術分野でよく知られた方法を使用して固定化する。固定化された抗体 をCD11a蛋白質(又はその断片)を含む、精製用試料と接触させ、その後に 支持体を、試料中のCD11a蛋白質以外の物質を実質的に全て除去する適切な 溶媒で洗浄するが、CD11aは固定化された抗体に結合している。最後に支持 体を、CD11aを抗体から放出させる他の適切な溶媒、例えばグリシン緩衝液 、pH5.0で洗浄する。 抗CD11a抗体はまた、CD11a蛋白質の診断用アッセイ、例えばその発 現を特別な細胞、組織、又は血清中で検出することにおいて有益である可能性が ある。 診断的適用においては、当該抗体は検出可能な成分で標識されるであろう。以 下のカテゴリーに分類することが可能な、数多くの標識が入手可能である: (a)35S、14C、125I、3H、及び131Iのような放射性同位体。例えば Current Protocol in Immunology(第1巻、2 巻、Coligenら編集、Wiley−Interscience、New York、New York、Pubs.(1991))に記載される技術を使 って、抗体を放射性同位体で標識することができ、また放射性はシンチレーショ ンカウンターを使用して測定できる。 (b)希土類キレート(例えばユーロピウムキレート)のような蛍光標識又は フルオレセイン及びその誘導体、ローダミン及びその誘導体、ダンシル、リサミ ン、フィコエリトリン、及びテキサスレッドが入手可能である。蛍光性の標識は 、例えば上記のCurrent Protocol in Immuncolo gyに開示されている技術を利用して抗体に共役させることができる。蛍光は蛍 光定量機を使用して定量することができる。 (c)種々の酵素−基質標識が入手可能であり、米国特許番号4,275,1 49は、これらのいくつかについてのレビューを提供している。この酵素は一般 に、種々の技術で測定することができる色素生産性基質の化学的変化を触媒する 。 例えば、この酵素は基質中の色の変化を触媒してもよいが、これは分光学的に測 定することが可能である。或いは、この酵素は基質の蛍光又は化学発光を変化さ せてもよい。蛍光の変化を定量する技術は上記に記載してある。化学発光基質は 、化学反応により電気的に励起し、次いで(例えば化学発光定量機で)測定可能 な光を発するか、又は蛍光受容体へエネルギーを与える。酵素標識の例には、ル シフェラーゼ(例えば、ホタルルシフェラーゼ、細菌性ルシフェラーゼ;米国特 許番号4,737,456)、ルシフェリン、2,3−ジヒドロフタラジンジオ ン、リンゴ酸デヒドロゲナーゼ、ウレアーゼ、ホースラディッシュペルオキシダ ーゼ(HRPO)のようなペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、β−ガ ラクトシダーゼ、グルコアミラーゼ、リゾチーム、サッカリドオキシダーゼ(例 えばグルコースオキシダーゼ、ガラクトースオキシダーゼ、及びグルコース−6 −リン酸デヒドロゲナーゼ)、ヘテロサイクリックオキシダーゼ(例えばウリカ ーゼ及びキサンチンオキシダーゼ)、ラクトペルオキシダーゼ、ミクロペルオキ シダーゼ等が含まれる。酵素を抗体に共役する技術は、O’Sullivanら の酵素免疫アッセイで使用するための酵素−抗体共役物の調製方法に記載されて いる(Methods in Enzym.編集J.Langone&H.Va n Vunakis;Academic press、New York、 73 :147−1616(1981))。 酵素−基質の組合せの例は、例えば以下のものが含まれる: (i)ホースラディッシュペルオキシダーゼ(HRPO)と基質としての過酸 化水素;ここで過酸化水素は、色素前駆体(例えばオルトフェニレンジアミン( OPD)、又は3,3’,5,5’−テトラメチルベンジジンヒドロクロリド( TMB))を酸化する; (ii)アルカリホスファターゼ(AP)と色素産生性基質としてのパラーニ トロフェニルホスフェート;及び (iii):β−D−ガラクトシダーゼ(β−D−Gal)と色素生産性基質 (例えばp−ニトロフェニル−β−D−ガラクトシダーゼ)又は蛍光生産性基質 の4−メチルウンベルリフェリル−β−D−ガラクトシダーゼ(4-methylumbell iferyl-β−D−galactosidase)。 他の数多くの酵素−基質の組合せも当業者にとって入手可能である。これらの 一般的レビューとしては、米国特許番号4,275,149及び4,318,9 80を参照されたい。 ときには標識は抗体に間接的に共役される。熟練者はこれを達成する種々の技 術を知っているであろう。例えば、抗体はビオチンや上記したラベルについての 3つの広いカテゴリーのいかなるものに対してもアビジンで共役させることがで きるし、その逆も可能である。ビオチンは、選択的にアビジンに結合し、よって この標識は抗体とこの間接的方法によって共役されることが可能である。或いは 、標識と抗体との間接的な共役を達成するため、当該抗体を小さいハプテン(例 えばジゴキシン)と共役して、上記した標識の異なるタイプのものの一つを抗− ハプテン抗体(例えば抗−ジゴキシン抗体)と共役させる。故に、標識の抗体と の間接的共役が達成される。 本発明の別の態様においては、抗CD11a抗体は標識される必要はなく、そ の存在はCD11a抗体に結合する標識済抗体を使用して検出されることが可能 である。 本発明の抗体はいかなる既知のアッセイ方法、例えば競合的結合アッセイ、直 接及び間接サンドイッチアッセイ、及び免疫沈降アッセイにおいても用いること ができる(Zola、Monoclonal Antibodies:A Ma nual of Techniques、pp147−158(CRC Pre ss、Inc. 1987))。 競合的結合アッセイは、限られた量の抗体との結合に対して、標識した標準物 質が試験試料分析物と競合する能力に依存している。試験試料中のCD11aの 量は、抗体に結合する標準物質の量と反比例する。結合する標準物質の量を決定 するのを促進するため、抗体は一般的には競合の前又は後で不溶化させて、抗体 に結合した標準物質及び分析物が、結合しないで残った標準物質及び分析物質と 便利に分離できるようにする。 サンドイッチアッセイは、二つの抗体を使用するが、それぞれは検出する蛋白 質の異なる免疫原性部分、又はエピトープに結台することができる。サンドイッ チアッセイにおいては、試験試料分析物は、固相支持体に固定されている第一抗 体によって結合され、その後に第二抗体が分析物に結合し、よって不溶性の三部 複合体を形成する。例えば米国特許番号4,376,110を参照されたい。第 二抗体はそれ自体で検出可能部え標識されていても良く(直接的サンドイッチア ッセイ)、又は検出可能部で標識された抗−免疫グロブリン抗体を使用して測定 することも可能である(間接的サンドイッチアッセイ)。例えば、サンドイッチ アッセイの一つのタイプはELISAアッセイであり、この場合には検出可能な 部分は酵素である。免疫組織化学の場合、腫瘍試料は新鮮なものであっても又は 凍結されたものであっても、或いはパラフィン中に包埋され、例えばホルマリン 等の保存料により固定されていてもよい。 抗体は、インビボの診断アッセイにも使用することが可能である。一般的に、 抗体は放射性核種(例えば111In、99Tc、14C、131I、125I、3H、32P、 又は35S等)で標識されていて、免疫シンチオグラフィーを使用して腫瘍が位置 づけられるようになっている。 E.診断キット 便宜上の問題として、本発明の抗体はキット、即ち予め決められた量の試薬を 、診断アッセイの実施用の指示書とともに組み合わせてパッケージしたものとし て提供することが可能である。抗体が酵素で標識されている場合には、キットに は当該酵素により要求される基質及び補助因子が含まれるであろう(例えば検出 可能な発色団又は蛍光団を提供する基質前駆体)。更に、安定化剤や、緩衝液( 例:ブロック緩衝液又は溶解緩衝液)等の他の添加物を含めることが可能である 。種々の試薬の相対量を大きく変化させて、アッセイの感受性を実質的に最適化 する試薬についての溶液中の濃度を規定する。特に試薬は、溶解すると適切な濃 度の試薬溶液を提供する賦形剤を含み、通常は凍結乾燥された乾燥粉末とするこ とかできる。 F.抗体についての治療的使用 本発明の抗CD11a抗体は、、本願に記載する種々のLFA−1媒介性疾患 を治療するのに使用することができるように考慮されている。 この抗CD11a抗体は、いかなる適切な手段によって投与することができ、 これには非経口的、皮下的、腹腔内、肺内、及び鼻孔内投与が含まれるが、部分 的な免疫抑制治療の場合には、必要とあらば病巣内投与(灌流適用、又はさもな くば移植前に移植片を抗体に接触させることを含む)が含まれる。非経口的な注 入には、筋肉内、静脈内、動脈内、腹腔内、又は皮下的投与が含まれる。更に、 抗CD11a抗体は適切にはパルス注入により投与され、特には抗体を減少させ て行う。好ましくは、投薬は注射により行われ、最も好ましくは静脈内又は皮下 的注射により行われるが、これらは投薬か短期間であるか又は慢性的であるかに より、一部依存する。 疾患の予防又は治療の場合、抗体の適切な投薬量は治療する疾患のタイプ、上 に定義したように疾患の重症度及び経緯、予防若しくは治療目的で投与するか否 か、以前の治療、患者の臨床的病歴、及び抗体に対する反応、並びに従事してい る医者の慎重さによっても依存するであろう。抗体は適切には一回、又は一連の 治療に渡って患者に投与される。 疾患のタイプ及び重症度に依存するが、例えば一又はそれ以上の別々の投与に よっても、又は連続的な注入によっても、約1μg/kg乃至15mg/kg( 例えば0.1乃至2.0mg/kg)の抗体が、患者に対する初期的な投薬量の 候補である。典型的な一日当たりの投与量は、約1μg/kg乃至100mg/ kgの範囲か、それより多いが、これは上記したような因子に依存する。数日間 またはそれよりも長い期間、繰り返して投与する場合には、疾患の症状が望まし く抑制されるまで治療は持続される。しかしながら、他の投薬療法も有益である かもしれない。治療の進行は通常の技術及びアッセイによって簡単にモニターさ れる。規範的な投薬療法がWO94/04188に開示されている。 抗体組成物は、好ましい医学的習慣によって、製剤化、服用、及び投与される 。この点において考慮する要素には、治療する特定の疾患、治療する特定の哺乳 類、個々の患者の臨床的状態、疾患の原因、用剤のデリバリー部位、投与方法、 投与のスケジュール、及び医学従事者に知られる他の要素が含まれる。投与する 抗体の”治療的に有効な量”とは、上記のような考慮により決まるであろうし、 またこれはLFA−1媒介性の疾患を予防、回復、又は治療すること(リウマチ 性関 節炎の治療、炎症性反応の低減、免疫賦活薬の許容誘導、ホストによる移植片の 拒絶若しくはその逆が生じるかもしれない免疫反応の防止、又は移植片の生存の 引き延ばしが含まれる)に必要な最小の量のことである。このような量は好まし くは、ホストにとって毒性のあるか、より顕著にホストを感染に感受性を与える 量よりも低い。 抗体は必ずしもそうである必要はないが、問題となっている疾患の予防若しく は治療に現在使用されている一又はそれ以上の薬剤とともに適宜製剤化される。 例えば、リウマチ性関節炎においては、抗体はグルココルチコステロイドと組み 合わせて与えられる。更に、T細胞受容体ペプチドセラピーは、適切には自己免 疫性脳脊髄炎の臨床的サインを予防するための補助的セラピーである。移植片の 場合、抗体は上に定義したような、例えばシクロスポリンAなどの免疫抑制剤と ともに、又はこれとは別にして投与されて、免疫抑制効果を調節する。或いは、 又は更に、VLA−4アンタゴニスト若しくはその他のLFA−1アンタゴニス トをLFA−1媒介性疾患に苦しむ哺乳動物に投与してもよい。このような他の 薬剤の効果的な量は、製剤中に存在する抗CD11a抗体の量、治療する疾患又 は処置のタイプ、及び上記で考察した他の要素に依存する。これらは一般に同じ 投薬量で、また上記で用いたような投与経路で用いられるか、またはこれまで用 いた投薬量の約1乃至99%で用いられる。 G.製造物 本発明の別の態様においては、上記した疾患の治療に有益である物質を含んだ 製造物が提供される。この製造物は、容器及びラベルを具備している。適切な容 器には例えば、ビン、バイアル、シリンジ、及び試験管が含まれる。この容器は 、ガラスやプラスチックなどの種々の物質から形成されていてもよい。この容器 は、状態を処置するのに効果的な組成物を保持し、また無菌のアクセスポートを 有していても良い(例えば容器は、皮下組織注射用の針で突き刺すことが可能な ストッパーを有する静脈用溶液バッグやバイアルであってもよい)。組成物中の 有効成分は、抗CD11a抗体である。容器の上、又はそれに取付たラベルは、 当該組成物が選択する状態の治療に用いられることを表示する。製造物は更に、 第二 の容器であって薬学的に許容される緩衝液、例えばリン酸塩緩衝生理食塩水、リ ンゲル(Ringer’s)溶液、及びデキストロース溶液等を含んだものを具 備していても良い。更には、商業的若しくは使用者的観点から望ましい他の物質 を含んでいても良く、これには他の、緩衝液、希釈液、フィルター、針、シリン ジ、及び使用にあたっての指示書を含んだパッケージ挿入物などが含まれる。 実施例 ヒト化抗CD11a抗体の産生 本実施例は、マウス抗ヒトCD11aモノクローナル抗体であるMHM24( Hildrethら、Eur.J.Immunol.13:202−208(1 983))のヒト化、及びインビトロでの生物学的有効性を記載する。マウスの MHM24についての以前の研究においては、他の抗CD11a抗体のように、 T細胞の機能を阻害することを示している(Hildrethら、J.Immu nol.134:3272−3280(1985);Doughertyら、E ur.J.Immunol.17:943−947(1987))。マウスの及 びヒト化したMAbsの両方は、ヒトT細胞がヒトケラチノサイトに接着するの を効果的に防止し、またMHCクラスII抗原の応答性のモデルである、混合リ ンパ球応答(MLR)における非自己性リンパ球へ応答したT細胞の増殖も防止 する(McCabeら、Cellular Immunol.150:364− 375(1993))。しかしながら、マウスの(Reimannら、cyto metry、17:102−108(1994))、及びヒト化したMAbsは ヒト以外の霊長類のCD11aとは、チンパンジーのCD11aを除いて交差反 応しなかった。アカゲザルにおける前臨床的研究に役立つヒト化MAbを得るた め、可変重鎖領域における相補性決定領域の一つである、CDR−H2における 4つの残基を代えることによりアカゲザルのCD11aに結合するように、ヒト 化したMAbを再操作した。アカゲザルのCD11aI−領域のクローニング及 び分子モデリングは、ヒトCD11aI−領域中のリジン残基の、アカゲザルC D11aI−領域中のグルタミン残基への変化が、マウスの及びヒト化したMA bsがアカゲザルCD11aへ結合しない理由であることを示唆した。 材料及び方法 (a)ヒト化したF(ab’)sの構築 マウスの抗−ヒトCD11aMAb、MHM24(Hildrethら、Eu r.J.Immunol.13:202−208(1983);Hildret hら、J.Immunol.134:3272−3280(1985))をクロ ーン化して配列決定した。突然変異誘発に有益であり、そして同様に大腸菌内で F(ab)を発現させるためのプラスミドを得るためにファージミドpEMX1 を構築した。pB0475(Cunninghamら、Science 243 :1330−1336(1989))の誘導体であるファージミドpb−072 0に基づき、pEMX1は、ヒト化したκ−サブグループI軽鎖及びヒト化した サブグループIII重鎖(VH−CH1)をコードするDNA断片と、アルカリ ホスファターゼプロモーター及びシャイン−ダルガーノ配列を含んでいるが、こ れら両者は以前に記載された別のpUC119に基づくプラスミドであるpAK 2(Carterら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 89: 4285(1992))に由来するものである。ユニークなSpel制限部位が また、F(ab)の軽鎖及び重鎖をコードするDNAの間に挿入されている。 ヒト化したMHM24の最初のF(ab)変異体を構築するため、部位特異的 突然変異誘発(Kunkel、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 82:488(1985))を、デオキシウリジンを含有する、pEMX1の 鋳型に対して行った;六つのCDRの全てをMHM24配列に変化させた。他の F(ab)変異体の全ては、F(ab)−1の鋳型より構築した。二本鎖及び一 本鎖DNAを調製するため、プラスミドを、大腸菌株XL−1 Blue(St ratagene、San Diego、CA)に形質転換した。それぞれの変 異体については、軽鎖及び重鎖の両方ともに、ジデオキシヌクレオチド法を使っ て完全に配列決定した(シーケナーゼ、U.S.Biochemical Co rp.)。プラスミドは、MM294の誘導体である大腸菌株16C9に形質転 換して、5μg/mlのカルベニシリンを含んだLBプレートにまいて、蛋白発 現用に単一コロニーを選択した。この単一コロニーを100μg/mlカルベニ シリンを含む5mlのLB培地中で、37℃で5−8時間増殖させた。この5m lの培養 物を500mlのAP5−100μg/mlカルベニシリンに加えて、4リット ルのバッフル付震盪フラスコ中で37℃で16時間増殖させた。APS培地は、 1.5gのグルコース、11.0Hycase SF、0.6gの酵母抽出物( 保証済)、0.19gのMgSO4(無水物)、1.07gのNH4C1、3.7 3gのKCl、1.2gのNaCl120mlの1MトリエタノールアミンpH 7.4、を1Lの水へ加えたものからなり、0.1μmのSealkeenフィ ルターを通して無菌化した。 細胞はILの遠心ボトル(Nalgene)中で3000×gで遠心して回収 し、上清を取り除いた。1時間の凍結後、ペレットを25mlの冷却した10m M MES−10mM EDTA、pH5.0(緩衝液A)中に再懸濁した。2 50μlの0.1M PMSF(シグマ)を加えて蛋白分解を阻害し、10mg /mlの雌鳥卵白のリゾチームのストックを3.5ml加えて、細菌の細胞壁の 溶解を援助した。氷上で1時間穏やかに震盪した後、試料を40,000×gで 15分間遠心した。緩衝液Aで上清を50mlにして、緩衝液Aで平衡化した2 mlDEAEカラムにかけた。フロースルーを、緩衝液Aで平衡化したプロテイ ンG−セファロースCL−4B(ファルマシア)カラム(0.5mlのベッド容 量)にかけた。カラムを10mlの緩衝液Aで洗浄して、3mlの0.3Mグリ シン、pH3.0で溶出して1,25mlの1Mトリス、pH8.0に入れた。 F(ab)を次いで、セントリコン−30(アミコン)を使用してPBSへ緩衝 液交換し、最終容量を0.5mlに濃縮した。全てのF(ab)についてSDS −PAGEゲルを行って純度を確認し、またエレクトロスプレー質量分析により それそれの変異体の分子量を確認した。 (b)キメラ及びヒト化したIgGの構築 キメラ(chIgG1)のヒトIgG1変異体、及びヒト化した(HuIgG 1)MHM24について、適切なマウス又はヒト化した可変軽鎖及び可変重鎖( F(ab)−8、表II)領域をそれぞれ、pRKベクターとして以前記載され ているもの(Gormanら、DNA Protein Eng.Tech.2 :3(1990))へ別々にサブクローン化した。HuIgG1軽鎖及び重鎖の プラスミドについて部位特異的突然変異導入(Kunkel、Proc.Na tl.Acad.Sci.USA 82:488(1985))を行って、アラ ニン−スキャン変異体を構築した。それぞれの変異体のDNA配列はジデオキシ ヌクレオチド配列決定法により確認した。 高効率法(Grahamら、J.Gen.Virol.36:59(1977 );Gormanら、Science,221:551(1983))を利用し て、重鎖及び軽鎖のプラスミドを、アデノウイルスで形質転換したヒト胎児性腎 臓細胞株、293(Grahamら、J.Gen.Virol.36:59(1 977))に同時形質移入した。培地を無血清のものに交換して、5日間、毎日 回収した。プロテインA−セファロースCL−4B(ファルマシア)を使用して 、上清のプールから抗体を精製した。溶出した抗体を、セントリコン−30(ア ミコン)を使用してPBSに緩衝液交換し、0.5mlに濃縮して、Mille x−GV(ミリポア)でフィルターにかけて無菌化して、4℃で保存した。 抗体の濃度は、全Ig−結合性ELISAで決定した。参照用のヒト化抗−p 185HERIgG1(Carterら、Proc.Natl.Acad.Sci .USA 89:4285(1992))の濃度はアミノ酸組成分析により決定 した。96穴プレートのそれぞれのウェルを1μg/mlのヤギ抗−ヒトIgG F(ab’)2(Cappel Laboratories、Westches ter,PA)で4℃で24時間コートした。精製した抗体を希釈し、二つ一組 にしてコート済プレートに加えた。1.5時間のインキュベーション後、プレー トをPBS−0.02%Tween20で洗浄し、1:2000に希釈したホー スラディッシュペルオキシダーゼ共役ヒツジ抗−ヒトIgGF(ab’)2を加 えた。1.5時間のインキュベーション後、プレートを洗浄して0.1mlの0 .2mg/mlのo−フェニレンジアミンジヒドロクロリド−0.01%過酸化 水素−PBSを加えた。10分後、2Mの硫酸で反応を停止させ、490nmの 0.D.を測定した。 (c)アカゲザルCD11aI−領域のクローニング RT−PCR及びヒトCD11aDNA配列由来のプライマーを使用してアカ ゲザルのI領域のDNA配列を得た。簡単にいうと、Fast Track m RNA精製キット(Invtorgen)を使用して、mRNAを約107のア カ ゲザルリンパ球より単離した。MuLV逆転写酵素を利用して、10μgのmR NAを逆転写した。次いで、第一鎖cDNAを以下のプライマーを使用して40 サイクルのPCRで増幅させた: 5’−CACTTTGGATACCGCGTCCTGCAGGT−3’(前向 き)(配列認識番号:21)、及び 5−CATCCTGCAGGTCTGCCTTCAGGTCA−3’(逆向き )(配列認識番号:22)。 アガロース電気泳動により、予想したサイズの単一バンドをPCR反応物から 精製した。PCR産物を制限酵素Sse8387I(タカラ)で消化し、同じ制 限酵素で消化済のヒトCD11a含有プラスミドに連結した。ヒトCD11a配 列には二つのSse8387I部位があり、一つはI−領域の何れか側にある。 得られたプラスミドはアカゲザルI−領域でヒトI−領域を置換したヒトCD1 1aからなるキメラをコードしている。DNA配列分析により、ヒトどアカゲザ ルとの間で5アミノ酸の違いがあることが判明した。一つはI−領域のN−末端 領域側にあり(Thr59Ser)、その他の4つはI−領域自身内にあった: Va1133Ile、Arg189Gln、Lys197G1u、及びVa13 08A1a(図2)。 (d)F(ab)及びIgGのジャーカット細胞への結合のFACScan分 析 ヒト化した及び対照の抗体について、PBS−0.1%BSA−10m Mアジ化ナトリウムで連続的に希釈したもので、106のジャーカツトT−細胞 の一定分量を、4℃で45分間インキュベーションした。細胞を洗浄し、次いで フルオレセイン共役ヤギ抗−ヒトF(ab’)2(Organon Tekni ka、Westchester、PA)中で、4℃で45分間インキュベーショ ンした。細胞を洗浄してFACScan(Becton Dickinson、 Mountain View、CA)で分析した。8×103の細胞をリストモ ードで得て、前光スキャッター 対 側光スキャッターでゲートして、これによ って死滅細胞及び細片を除外した。 (e)見かけのKdsを決定するための飽和結合 Iodo−Gen(Pierce,Rockford、IL)を、製造者の指 示に従って使用して、放射性標識した抗体を調製した。50μgの抗体及び1m Ciの125I(DuPont、Wilmington、DE)をそれぞれのチュ ーブに加えて、25℃で15分間インキュベーションした。放射性標識した蛋白 質を、0.2%ゲラチン含有のハンクの均衡塩溶液(HBSS、Life Te chnologies、Grand Island、NY)で平衡化したPD− 10カラム(ファルマシア、Uppsala、Sweden)を使用して、残り のフリー遊離125Iから精製した。 リンパ球分離培地(LSM、Organon Teknika、Durham 、NC)を製造者の指示に従って使用して、単核細胞を、二人の提供者より得た 、ヘパリン処理済ヒト末梢血から精製した。血液は、400×gで40分間25 ℃で、ブレーキなしで遠心した。LSMと血漿の界面の細胞を回収して、次いで HBSS−0.2%ゲラチン中に再懸濁した。 デキストラン沈殿により二匹のアカゲザルの個体より回収した、ヘパリン処理 済末梢血より、リンパ球を精製した。血液は、等量のPBS中の3%デキストラ ンT500(ファルマシア)で希釈して、25℃で30分間放置して沈殿させた 。沈殿後、上清中に残っている細胞を回収して、400×gで5分間遠心して沈 殿させた。残った赤血球は、蒸留水及び2×HBSSを使用した、2サイクルの 低浸透圧性溶解により除去した。赤血球の溶解後、細胞をPBSで洗浄して、次 いでHBSS−0.2%ゲラチン中に再懸濁した。 抗体の親和性は、末梢血単核細胞(マウスMHM24及びHuIgG1)、又 はアカゲザルリンパ球(MHM23、RhIgG1)の何れかを使用して、飽和 結合により決定した。それぞれのアッセイでは、放射性標識した抗体を、4つ一 組にしてHBSS−0.2%ゲラチンで連続的に希釈した。非特異的結合は、最 終濃度500nMの相同性非標識抗体を二つ一組にして連続的に希釈して加える ことにより決定した。ヒトリンパ球又はアカゲザルリンパ球を、1ウェル当たり 170μlの容量でプレートに加えた。プレートを、軌道プレート震盪機上で2 時間、室温でインキュベーションした。インキュベーション後、SKATRON (商標)細胞回収器(Lier、Norway)を使用して回収し、0.25% ゲラチン及び0.1%アジ化ナトリウムを含有するPBSで10回洗浄した。次 いで試料は、LBK Wallac GammaMaster ガンマカウンタ ー(Gaitherburg、MD)中で1分間カウントした。データは、毎分 のカウント数から、ナノモル濃度に変換し、次いで飽和プロットの4変数曲線最 適化(結合 対 全)を行ってKd(app)値を決定した。 (f)ケラチノサイト単層接着アッセイ 正常なヒト上皮ケラチノサイト(Clonetics、San Diego、 CA)を、トリプシン−EDTAで培養フラスコより除去し、遠心し、リンパ球 アッセイ培地(RPMI1640(GIBCO)−10%ウシ胎児血清−1%ペ ニシリン/ストレプトマイシン)中に、5×105生細胞/mlの濃度で再懸濁 した。0.1ml/ウェルの一定分量を次いで、底が平面の96穴プレート中で 一晩培養した;インターフェロン−ガンマ(Genentech、South San Francisco、CA)を100単位/ウェルで加えて、適当なウ ェルを刺激した。 ジャーカット細胞クローンE6−1(ATCC、Rockville、MD) 又は精製済アカゲザルリンパ球(MLR法を参照されたい)を、20μg/ml のCalcein AM(Molecular Probe、Eugene、O R)で、37℃で45分間標識した。リンパ球アッセイ培地で3回洗浄した後、 ジャーカット又はアカゲザルリンパ球細胞を1×106細胞/mlに再懸濁し、 連続的に希釈した抗体とともに、4℃で30分間インキュベーションした。ケラ チノサイトの単層より培地を除去した後、0.1ml/ウェルの標識済細胞を加 えて、37℃で1時間インキュベーションした。ウェルを0.2ml/ウェル/ 回で、37℃のリンパ球培地で5回洗浄して、非接着細胞を除去した。Cyto fluor2330(ミリポア、Bedford、MA)を使用して、蛍光を測 定した。 アカゲザルのI−領域を有するヒトCD11aを具備した、アカゲザル−ヒト キメラCD11a(Rh/HuCD11a)を、部位特異的突然変異導入(Ku nkel、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 82:488(1 985))により、ヒトCD11aをコードしたデオキシウリジン含有鋳型プラ スミド上で構築した。4つの残基を変化させた:Va1133Ile、Arg1 89Gln、Lys197G1u、及びVa1308A1a(図2)。RH/H uCD11bi及びヒトCD11aをコードするプラスミド(EP364,69 0)を、高効率法(Grahamら、J.Gen.Virol.36:59(1 977);Gormanら、Science,221:551(1983))を 利用して、アデノウイルスで形質転換したヒト胎児性腎臓細胞株、293(Gr ahamら、J.Gen.Virol.36:59(1977))に同時形質移 入した。Rh/HuCD11aで形質移入した293細胞を、20μg/mlの Calcein AMで、37℃で45分間標識した。リンパ球アッセイ培地で 3回洗浄した後、Rh/HuCD11aで形質移入した293細胞を、1×106 細胞/mlに再懸濁し、連続的に希釈した抗体とともに、4℃で30分間イン キュベーションした。培地をケラチノサイト単層より除去した後、0.1ml/ ウェルの標識済293細胞を加えて、37℃で1時間インキュベーションした。 ウェルを、0.2ml/ウェル/回の、37℃のリンパ球培地で5回洗浄して、 非接着細胞を除去した。Cytof1uor2300を使用して蛍光を測定した 。 (g)ICAM接着アッセイ Maxisorp(Nunc)96穴のプレートを0.1ml/ウェルの1μ g/mlヤギ抗−ヒトIgGFc(Caltag)で、37℃で1時間コートし た。プレートをPBSで3回洗浄した後、プレートを1%BSA−PBSで、2 5℃で1時間ブロックした。次いでプレートをPBSで3回洗浄し、0.1ml /ウェルの50ng/ml組換えヒトICAM−IgGを加えて、一晩インキュ ベーションした。 ICAM−IgGは、ヒトIgGFcに融合させたヒトICAMの5つの細胞 外領域からなる。ヒトICAM−1(Simmonsら、Cell、331:6 24−627(1988)、及びStautonら、Cell、52:925− 933(1988))イムノアドヘシンの発現用のプラスミドで、pRK.5d ICAMGaIGと呼ばれるものを構築した。これは、ICAM−1のIg−様 領域を5つ、サブチリシンBPN’のH64A変異体であるGenenaseI (Carterら、Proteins:Structure Function 、 and Genetics 6:240−248(1989))により認識され る6アミノ酸の開裂部位、及ひヒトIgG1(Ellisonら、Nuclei c Acids Research 10:4071−4079(1982)) のFc領域をpRK5ベクター(Eatonら、Biochemistry 2 5:8343−8347(1986))に含むものである。ヒト胎児性腎臓29 3細胞(Grahamら、J.Gen.Virol. 36:59(1977) )をpRK.5dICAMGaIg、及びRSV−neoプラスミド(Gorm anら、Science、221:551−553(1983))で安定に形質 転換して、ICAMIgの5つの領域(5dICAMIg)を発現する細胞株を 作り出した。ヒトIgGFcに対する抗体(Caltag、Burlingam e、CA)及びICAM−1(BBIG−II;R&D System、Min neapolis、MN)を使用した酵素結合免疫吸着検定法(ELISA)に より、分泌した5dICAMIgを20μg/ml発現するクローンを選択した 。0.01M Hepes緩衝液(pH7.0)、0.15M NaCl(HB S)、で平衡化したProteinAカラム(ProsepA、Bioproc essing、Ltd.、Durham、England)にこの細胞株の細胞 培養の上清をかけ、カラムをHBS、次いで0.01M Hepes緩衝液(p H7.0)、0.5MNaCl、0.5M TMAC(テトラ−メチルアンモニ ウムクロリド)で洗浄して、非特異的結合物質を除去した。HBSで、TMAC 緩衝液をカラムから完全に洗浄し、5dICAMIgを0,01M Hepes (pH7.0)、3.5M MgCl2及び10%(w/v)グリセロールで溶 出した。ProteinAプールをHBSに対して徹底的に透析して濃縮した。 精製したアカゲザルのリンパ球(MLR法を参照されたい)を、20μg/m lのCalceinAM(Molecular Probe、Eugene、O R)で37℃で45分間標識した。リンパ球アッセイ培地で3回洗浄した後、ア カゲザルリンパ球細胞を1×106細胞/mlに再懸濁し、連続的に希釈した抗 体とともに、4℃で30分間インキュベーションした。ICAM−IgGでコー トしたプレートより培地を除去した後、0.1ml/ウェルの標識済細胞を加え て、37℃で1時間インキュベーションした。ウェルを0.2ml/ウェル/回 で、 37℃のリンパ球培地で5回洗浄して、非接着細胞を除去した。Cytoflu or2330(Millipore、Bedford、MA)を使用して、蛍光 を測定した。 (h)一方向混合リンパ球応答(MLR) ヒト及びアカゲザルのMLRに対し、リンパ球分離培地(Organon T eknika、Durham、NC)を使用して、二つの関連していない提供者 に由来する末梢血リンパ球を、ヘパリン処理した全血より単離した。リンパ球は 、RPMI1640(GIBCO)−10%ヒトAB血清−1%グルタミン−1 %ペニシリン/ストレプトマイシン−1%非必須アミノ酸−1%ピルビン酸塩− 5×10-5M 2−β−メルカプトエタノール−50μg/mlゲンタマイシン −5μg/mlポリミキシンB中に3×106細胞/mlの濃度で再葱濁した。 セシウム照射装置中で3000ラッドの放射を行って、刺激細胞を非反応性にし た。ウェル当たり1.5×105細胞の濃度の応答細胞を、等数の刺激細胞とと もに、96ウェルの平底プレート中で一緒に培養した。2倍づつ連続して希釈し たそれぞれの抗体を、培養物に加えて全量を200μl/ウェルにした。培養物 を、5%CO2中で37℃で5日間培養した後、1μCi/ウェルの[3H]チミ ジンとともに16時間、パルスした。[3H]チミジンの取り込みを、Beckm anシンチレーションカウンターで測定した。アッセイは3つ一組にして行った 。ヒト化抗−ヒトp185HERMAb(Carterら、Proc.Natl. Acad.Sci.USA 89:4285(1992))を、HuIgG1及 びRhIgG1に対するアイソタイプ対照として使用した。マウス抗−ハムスタ ーtPA MAb(Genentech)を、MHM23 MAbに対するアイ ソタイプ対照(マウスIgG1)として使用した。MAb25.3は、Immu notech社(Westbrook、ME)より購入した。 (i)マウス及びヒト化MHM24にコンピュータグラフィックスモデル VL及び、VH領域の配列(図1A及びB)を使用して、マウスのMHM24 VL−VH領域のコンピュータグラフィックスモデルを構築した。このモデルを 使って、どのフレームワーク残基をヒト化抗体へ組み込むべきかを決定した。F (ab)−8のモデルもまた構築して、マウスのフレームワーク残基の正しい選 択を確認した。モデルの構築は、以前記載されたようにして(Carterら、 Proc.Natl.Acad.Sci.USA89:4285(1992); Eigenbrotら、J.Mol.Biol.229:969(1993)) 行った。 結果 (a)ヒト化 ヒト重鎖サブグループIII及び軽鎖サブグループκIのコンセンサス配列を ヒト化のフレームワークとして使用した(Kabatら、Sequenceso f Proteins of Immunological Interes. 5th Ed.Public Health Service、Nationa l Institute of Health、Bethesda,MD.(1 991))(図1A及びB)。このフレームワークをうまく使用してマウスの他 の抗体のヒト化に成功した(Carterら、Proc.Natl.Acad. Sci.USA 89:4285(1992);Pretaら、J.Immun ol.151:2623−2632(1993);Eigenbrotら、Pr oteins 18:49−62(1994))。ヒト化変異体の全てをまず作 製して大腸菌内で発現したF(ab)sについての結合性によりスクリーニング した。典型的な収量としては、500mlの震盪フラスコ当たり、0.2−0. 5mgのF(ab)であった。マススペクトロスコピーによって、それぞれのF (ab)の質量は5質量単位内にあることが確認された。 CDR−H1はH28−H35残基を含んでいたが、これにはKabatら( Sequences of Proteins of Immunologic al Interes.5th Ed.Public Health Serv ice、National Institute of Health、Bet hesda,MD.(1991))、及びChothiaら(Nature、3 42:877−883(1989))の露出残基の全てが含まれていた。他の超 可変ループは、Chothiaら(1989)に従って定義した。軽鎖の残基数 はLの接頭辞が付き、重鎖の残基数はHの接頭辞が付く。 表II ヒト化MHM24変異体の、ジャーカット細胞上のヒトCD11aへの結合 a マウスの残基は太字;残基数はKabatら、Sequences of Proteins of Immunological Intere st.5th Ed.Public Health Service、Nati onal Institute of Health、Bethesda,MD .(1991)による。 b 平均及び標準偏差は独立したそれぞれのFACscan分析に対し て計算した割合の平均である;F(ab)‐2のEC50は771±320ng / mlであった。 c HuIgG1は、ヒトの軽鎖及び重鎖の定常部に融合されたF(a b)−8 VL及びVH領域である。 d chIgG1は、ヒトの軽鎖及び重鎖の定常部に融合したマウスの VL及びVH領域を有するキメラIgGである。 最初の変異体であるF(ab)−1においては、CDR残基はマウスの抗体か らヒトのフレームワークへと移行されている。更に、残基H71について、ヒト のArgからマウスのValに変化させたが、それはこの残基かCDR−H1及 びCDR−H2のコンホメーションに影響することが以前に示されたからである (Chothiaら、Nature、342:877−883(1989);T ramontano J.Mol.Biol.215:175(1990))。 このF(ab)では検出可能な結合は見られなかった。F(ab)−2において は、CDR−H2は、配列に基づく定義(即ち、残基H60−H65を含む)を 含むように伸長された。ヒトCD11aに対するF(ab)−2の結合のEC5 0は、771±320ng/mlであったが、これはキメラIgG1のEC50 (5.2±3.0ng/ml)よりも148倍弱いものである。 以前行ったヒト化においては、CDR−H1及びCDR−H2に隣接するフレ ームワークループ(FR−3)中の残基が結合に影響することが発見されている (Eigenbrotら、Proteins 18:49−62(1994) )。F(ab)−5においては、このループ中の3つの残基が対応するマウスの もの代えられていて、またこの変異体は結合において23倍の改善がみられた( 表II)。ヒトのL53及びL55の残基をマウスのものにすると(即ち、Se rL53The、及びGluL55Gln)、更に4倍も結合が改善された(F (ab)−6、表II);これはCDR−L2を、構造に基づく定義(残基L5 0−L52)から、配列に基づく定義(残基L50−L56)に効果的に変換し た。CDR−H1において引き続いて行ったPheH27からマウスのTyrへ の変換により、更に3倍の改善がなされた(F(ab)−7;表II)。最後に 、マウスの及びヒト化したMHM24のモデルに基づいて、FR−3における3 つの マウス残基のうち2つ(H75及びH76)をヒトに戻し、この二つの残基は結 合にはなんら影響を与えないことがわかった(F(ab)−7及びF(ab)− 8を参照;表II)。F(ab)−8のEC50の平均はキメラIgGのものよ りも若干良かった(表II)。必ずしもヒトからマウスへの変化の全てが結合を 改善したわけではない。PheH67をマウスのAlaに変化させたか、それは この部位が結合に影響を与えることが以前にわかっていたが(Prestaら、 J.Immunol.151:2623−2632(1993))、効果が明ら かではなかったためである(F(ab)−3、表II)。ValH71をヒトA rgに戻すと、結合性が3倍減少したが(F(ab)−4、表II)、これはF (ab)−1にVa1H71を取り込むことを支持する。 F(ab)−8由来のVL及びVH領域を、ヒトIgG1の定常領域に移行し た。全長の無処置の抗体であるHuIgG1は、F(ab)−8と同等のEC5 0を示し、全長のキメラIgG1と比較したときには改善されていた(表II) 。アラニン−スキャン及びMLRアッセイ用の標準物質としての使用を含む(以 下参照)HuIgG1の全てのアッセイのデータを考慮すると、ヒトCD11a に対するHuIgGのEC50は、0.042±0.072nM(N=15)で あった。飽和結合アッセイも更に行って、見かけの解離定数Kd(app)を決 定した:マウスMHM24については0.15±0.02nM;HuIgG1に ついては0.15±0.04nM(表III)。 表III ヒトリンパ球及びアカゲザル白血球に対する飽和結合による見かけのKd a アカゲザルのドナー3についてのアッセイは、RhIgG1につい ての二つのバッチを使用して行った;このアッセイは1mg/mlのヒトIgG 1の存在下で、Fc受容体相互作用をブロックして行った。 (b)CDR残基のアラニン−スキャン どのCDR残基がヒトCD11aへの結合に関るのかを決めるため、H uIgG1のCDR残基についてのアラニン−スキャン(Cunningham ら、Science、244:1081(1989))を行った。それぞれの変 異体につい-て、ジャーカット細胞上のCD11aへの結合を試験した。軽鎖に おいては、CDR−L3のみが結合に寄与した。HisL91は、大きな効果が あったが(表IV)、この側鎖は一部が埋まっているはずであるから、おそらく はコンホメーション的なものであろう。残基AsnL92及びTyrL94はよ り適度の効果があり、それぞれ3倍及び12倍の減少があった。しかしながら、 これらの二つの残基を(GluL93A1aと同様に)アラニンに同時に変化さ せ ると、結合については付加的な影響を与えることがないことに注目されたい(変 異体L3、表IV)。 表IV ヒト化したMHM24のCDR残基についてのアラニン−スキャン 表IV(続き) a CDRとFR−3は、Kabatら(1991、上記)に定義され るものである。 b ヒトのCD11aに対するHuIgG1のEC50=0.042n M(S.D.=0.072;N=15)。 c アカゲザルのCD11aに対するHuIgG1のEC50=45. 6nM(S.D.=40.4;N=16);アカゲザルノCD11aに対する全 ての値は、特に断らないかぎり単一の結合アッセイに対するものである;nbは HuIgG1よりも10倍以上弱い、変異体の結合を意味する。 d 多重アラニン変異体: H1,SerH28Ala/TheH30Ala/HisH32Ala; H2,HisH52Ala/SerH53Ala/SerH55Ala; H2B,AspH54Ala/GluH56Ala/ArgH58Ala; H2A1,HisH52Ala/SerH53Ala; H2A2,SerH53Ala/SerH55Ala; H2A3,HisH52Ala/SerH55Ala; H3,TryrH97Ala/TyrH99Ala; H3B,ThrH100aAla/ThrH100bAla/TyrH100cAla; L1,LysL27Ala/ThrL28Ala/SerL30Ala/LysL31Ala; L2,SerL50Ala/SerL52Ala/ThrL53Ala; L3,AsnL92Ala/GluL93Ala/TyrL94Ala。 e hu4D5はヒト化した抗−p185HER2抗体であり、huMHM 24抗体(Carterら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA8 9:4285(1992))と同じIgG1フレームワークを有するものである 。 重鎖においては、CDR−H2及びCDR−H3は結合に関しての顕著な貢献 をしている。CDR−H1のTrpH33Ala残基は大きな効果を有するが、 TrpH33が一部において埋まっているはずであるためコンホメーション変化 によるものであると思われる。結合について最も重要な単一残基は、CDR−H 2中のAsp-H54である;この残基をアラニンに代えると、結合について1 47倍の減少が起きる(表IV)。CDR−H2中の、結合に関る他の残基には 、GluH56、GlnH61、及びLysH64(表IV)が含まれる。CD R−H3においては、TyrH97Alaにより、結合が11倍減少し、Tyr H100cAlaにより結合が8倍減少した。CDR−L3のように、複数のC DR−H3残基を同時にアラニンに変化させると、結合についての、非付加的な 大きな変化が起きた(変異体H3と、TyrH97Ala及びTyrH99Al aとの対比を参照されたい;表IV)。更に、ヒト化したものに含まれるFR− 3のLysH73残基はまた、アラニン又はアルギニンへ変化したときには、結 合 について5倍の減少を示した(表IV)。 (c)アカゲザルCD11aへ結合させるためのHuIgG1の再改変 マウスMHM24及びHuIgG1は共に、アカゲザルCD11aへの結合に ついて約1000倍の減少を示した:HuIgG1は、アカゲザルCD11aに 対して45.6±40.4nM(N=16)であるEC50を有し、これに対し 、ヒトCD11aに対してのEC50は0.042±0.072nMである。M HM24の生物学、毒性及び有効性において、霊長類モデルは重要であるため、 HuIgG1のアカゲザルCD11aに対する結合を改善することは、有益であ ると思われる。初期においては、アカゲザルにとっては重要であるがヒトとって はそうではないものが変化されるようにして、MAbの超可変領域の残基でヒト CD11a及びアカゲザルのCD11aへの結合に重要であるものが決定された 。従って、アラニン−スキャン変異体もまた、末梢血リンパ球上のアカゲザルの CD11aに対してアッセイにかけられた。最も重要な発見は、多重アラニン− 変異体株の一つであるH2変異体が、HuIgG1よりも18倍よくアカゲザル CD11aに結合したことである(表IV)。しかしながら、H2変異体に含ま れる3つの残基における個々の変異は、結合について最小の改善しか示さなかっ た:HisH52Ala、0.7倍改善、SerH53Ala、0.7倍改善、 及びSerH55Ala、 1.3倍悪化(表IV)。これら3つの残基におけ る一連の二重変異は、HisH52Ala−SerH53A1aの組合せが最も 良いことを示したが、これによってHuIgG1に比較して77倍の改善が提供 される(変異体H2A1,H2A2,及びH2A3を参照、表IV)。更に、H uIgG1におけるAspH54は、ヒトCD11aについて最も重要な結合性 残基であるが、AspH54Ala及びGluH56Ala変異体はまた、Hu IgGよりも3倍の改善を示した(表IV)。 アカゲザルのCD11aへの結合を改善するがヒトCD11aへの結合は低減 しないと思われる、部位H54における単一の置換を発見するため、部位H54 を種々のアミノ酸で置換した。全ての置換において、1オーダー以上の大きさに で結合性が低減されたが、一方、AspH54Asn置換によりアカゲザルの結 合が10倍改善された(表V)。 表V AspH54におけるアミノ酸置換 a ヒトCD11aに対するHuIgG1のEC50=0.042nM (S.D.=0.072;N=15);アカゲザルCD11aに対するHuIg G1のEC50=45.6nM(S.D.=40.4;N=16)。 b 値は二つのアッセイの平均である。 c 値は単一のアッセイの平均である。 部位H52−H53での変異について、非付加的効果が見られたので、 これらを部位H54及びH56における種々の変化と組み合わせた(表VI)。 全ての変異体に対しては、H52及びH53はアラニンであった。一つのシリー ズにおいては、部位H54はAsnであり、部位H56はGlu(オリジナル) 、 Ala、Asn、又はGlnであった。これらの変異体のいずれも、H2A1変 異体をうわまる、アカゲザルCD11aへの改善した結合を示さなかった(表V I)。別のシリーズにおいては、部位H54はAlaであり、H56はGlu( オリジナル)、Ala、Ser、又はAsnであり、再び、H2A1よりも悪か った。第三のシリーズにおいては、部位54はSerであり、部位H56はGl u(オリジナル)、Ala、Ser、又はAsnであった。これらの変異体の内 の二つは、H2A1変異体と比較して改善された、アカゲザルCD11aに対す る結合を示した(H2C11及びH2C12、表VI)。これら二つの変異体に ついてのアカゲザルCD11aのEC50は、H2C11については0.11± 0.11nM(N=9)であり、H2C12については0.19±0.08(N =7)であった。これらの値は、ヒトCD11aに対するHuIgG1のEC5 0(0.042nM)よりも3倍から5倍弱いものであるが、アカゲザルCD1 1aに対するHuIgG1のEC50(45.6nM)よりも24.0倍から4 15倍も改善されている。H2C12は以後、RhIgG1と呼ぶ。飽和結合実 験由来の見かけのKd値は、マウスMHM23がアカゲザルCD18に結合した のと同様に、RhIgG1がアカゲザルCD11aに対して結合することを示し た(表III)。 表VI ヒト及びアカゲザルのCD11aに対するCDR−H2の結合 a ヒトCD11aに対するHuIgG1のEC50=0.042nM (S.D.=0.072、N=15);アカゲザルCD11aに対するHuIg G1のEC51=45.6nM(S.D.=40.4;N=16);アカゲザル CD11aについての全ての値は、注記した場合を除いて、二つの独立した結合 アッセイの平均値である。 HuIgG1−ヒトCD11aの相互作用については、AspH54が最も重 要な残基であった(表IV);この残基を他のアミノ酸に代えると、顕著に結合 性を低減したが、そのなかでは、Glu、Asn、及びGlnへ代えるものが最 も減少が低かった。しかしながら、HuIgG1−アカゲザルCD11aの相互 作用の場合には、AspH54は、この残基をAlaやAsnに代えると結合が 改善されるので有害であった(表V)。ヒト及びアカゲザルのCD11aの結合 の間の差異を理解するため、後者をアカゲザルPBLライブラリーよりクローン 化した。図2は、アカゲザルCD11aI−領域は、ヒトCD11aI−領域と は、4つの部位:133、189、197、308のみにおいて異なっているこ とを示している。以前、MHM24のヒトCD11aエピトープが、残基197 −203にマッピングされたが(Champeら、J.Biol.Chem.2 70:1388−1394(1995))、これにはアカゲザルにおける、ヒト Lys197からアカゲザルGlu197への変化が含まれている。 (d)ケラチノサイト細胞付着アッセイ マウスMHM24、キメラIgG1及びHuIgG1を、ジャーカット細胞( LFA−1を発現するヒトT−細胞)の、ICAM−1を発現する正常なヒト上 皮ケラチノサイトへの付着を阻止する能力について比較した。3つの抗体全ては 、同様のIC50で同様に振る舞った(図3)(表VII)。 表VII MHM24変異体による細胞付着の阻止 a HuK=正常なヒト上皮ケラチノサイト b RhLy=アカゲザルリンパ球 c HuICAM=組換えのヒトICAM−1 d Rh/HuCD11a=アカゲザルI−領域を有するヒトCD11 aをヒト293細胞へ形質移入したもの マウス及びヒト化したMHM24のいずれも、アカゲザルとカニクイザルのリ ンパ球がヒトケラチノサイトに付着するのを阻止しなかった。ヒトケラチノサイ トに対するアカゲザルリンパ球の付着を阻止することにおいて、RhIgG1を マウスの抗−ヒトCD18抗体MHM23(Hildrethら、Eur.J. Immunol.13:202−208(1983):Hildrethら、J .Immunol.134:3272−3280(1985))と比較すると、 RhIgG1はMHM23よりも74倍、効果が低い(図4A、表VII)。し かしながら、組換体のヒトICAM−1を(ヒトケラチノサイトの代りに)プレ ートにコートすると、RhIgG1はMHM23よりも4倍効果が低いのみであ った(図4B、表VII)。I−領域がアカゲザルに変異したヒトCD11a( V al133Ile、Arg189Gln、Lys197G1u、Val308A la)を具備するキメラCD11aを、ヒト胎児性腎臓293細胞内へ形質移入 した。これらのRh/HuCD11a−293細胞についての、ヒトケラチノサ イトへの付着を阻止することにおいて、RhIgG1は再び、MHM23よりも 4倍低かった(図4C、表VII)。 RhIgG1に対する、対照のアイソタイプ抗体(ヒト化抗−p185HER2抗 体;Carterら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA89:4 285(1992))、及びMHM23(マウスMAb354、マウスIgG1 抗−ハムスターtpA)は、ヒトケラチノサイトに対するアカゲザルリンパ球の 結合も、ヒトケラチノサイトに対する組換体ICAM−1(図4A、4B)、や Rh/HuCD11a(図4C)の結合も阻止することはなかった。これは、ア カゲザルリンパ球:ヒトケラチノサイトアッセイにおけるマウスMHM23と比 較した場合の、RIgG1の低減した成績は、(MHM23のマウスFcと比較 したときの)HuIgG1のヒトFcのアカゲザルリンパ球との予期せぬ相互作 用によるものではないことを示唆しているが、これはアカゲザルCD11aへの 結合が可能なRhIgG1の濃度を低減させるかもしれない。組換体のヒトIC AM−1のデータは、RhIgG1はアカゲザルリンパ球に結合していて、マウ スMHM23とほとんど同様に付着を阻止していることを示している(図4B、 表VII)。Rh/HuCD11a−293のデータ(図4C、表VII)は、 RhIgG1が、ヒトケラチノサイト上の標的には結合しておらず(HuIgG 1と比較した場合)、これはアカゲザルCD11aへ結合することが可能なRh IgG1の濃度を低減させるかもしれない。更に、アカゲザルIgG1に対する RhIgG1のKd(app)は、1mg/mlのヒトIgG1有(アカゲザル ドナー3)の場合、無し(アカゲザルドナー1)の場合と同様であった(表II I)。これは、RhIgG1の結合が、アカゲザルCD11aに特異的であるこ とを示している。 (e)混合リンパ球応答アッセイ MLRにおいては、HuIgG1はマウスMHM24よりも2倍弱いIC50 値を示した(表VIII、図5)。 表VIII 混合リンパ球応答アッセイの結果 a murMHM24、HuIgG1、及びmAb25.3はヒトML Rで試験した:RhIgG1及びMHM23は、アカゲザルMLRで試験した。 マウスの及びヒト化したMAbsは、MAb25.3よりも10倍から20倍 、うまくいったが、MAb25.3は以前にin vivoで試験されている( Fisherら、Blood77:249−256(1991);Stoppa ら、Transplant Intl.4:3−7(1991);Hourma ntら、Transplantation、58:377−380(1994) )。アカゲザル−結合性変異体のRhIgG1は、マウスMHM23よりも若干 だけよいIC50を示した(表VIII)。異なる応答者:刺激者の血液提供者 を、独立したアッセイにおいて使用したが、結果は顕著には異ならなかった。ア カゲザルCD11aに対するRhIgG1のKdは、ヒトCD11aに対するH uIgG1のKdよりも26倍低く(表III)、これはMLRアッセイに由来 するIC50値に反映されている(表VIII)。 DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION                          Humanized anti-CD11a antibody                                Background of the Invention Field of the invention   The present invention relates generally to humanized anti-CD11a antibodies. Description of related technology   Lymphocyte function-related antigen 1 (LFA-1; CD11a / CD18) Answer: Included in leukocyte adhesion during cell interactions essential for inflammation (Larson Et al., Immunol. Rev. 114: 181-217 (1990)). LFA-1 is a β2 integrinpha Millie members and unique α subunits, CD11a and β subunits Knit, CD18, other common β2 integrin receptors Mac-1 and p1 Consists of 50,95. LFA-1 ligands include leukocytes, endothelial and dermal fibroblasts Intercellular adhesion molecule-1, ICAM-1, expressed above (Dustin et al., J. Immunol. 137: 245-254 (1986)), ICAM-2 expressed on dormant endothelium and lymphocytes (de Fougerol les et al. Exp. Med. 174: 253-267 (1991)), and expressed on monocytes and resting lymphocytes ICAM-3 (de Fougerolles et al., J. Exp. Med. 179: 619-629 (1994)).   Monoclonal antibodies (MAbs) against LFA-1 and ICAMs are , T cell activation (Kuypers et al., Res. Immunol. 140: 461 (1989)), T cell dependent B cells. Vesicle proliferation (Fischer et al., J. Immunol. 136: 3198-3203 (1986)), target cell lysis (Krensky J. et al. Immunol. 131: 611-616 (1983)), and adhesion of T cells to vascular endothelium (Lo et al., J. . Immunol. 143: 3325-3329 (1989)). Is shown. In mice, anti-CD11a MAbs are Resistance to cytoplasmic antigens (Tanaka et al., Eur. J. Immunol. 25: 1555-1558 (1995)), and Heart (Cavazzana-calvo et al., Transplantation 59: 1576-1582 (1995); Nakakura et al., T ransplantation 55: 1112-417 (1993)), bone marrow (Cavazzana-Calvo et al., Transplantati on 59: 1576-1582 (1995); van Dijken et al., Transplantation 49: 882-886 (1990)), Cornea (He et al., Invest. Opthamol. Vis. Sci. 35: 3218-3225 (1994)), Kojima (Nishiha La et al., Transp lantation Proc. 27: 372 (1995)) and thyroid (Talento et al., Transplantation 55:41). 8-422 (1993)) Induces prolonged survival of allografts.   In humans, anti-CD11a MAbs prevent graft failure after bone marrow transplantation (Fischer et al., Blood 77: 249-256 (1991); Stoppa et al., Transplant Intl. 4: 3-7 (19). 91)) and, in addition to corticosteroids and azathioprine, anti-CD11a MA Preliminary clinical studies of renal allografts treated prophylactically with b look promising (Hourmant et al., Transplantation 58: 377-380 (1994)). Current cure for transplant rejection Treatment with OKT3, murine anti-human CD3 MAb, and cyclosporin A Including OKT3 treatment is effective but has some undesirable side effects Its use is a cause of tumor necrosis resulting in fever, chills and gastrointestinal distress Child-α, interferon-γ, interleukin-2, and interleukin Resulting in the release of a number of cytokines, including -6 (for review, Parlevliet Et al., Transplant Intl. 5: 234-246 (1992); Dantal et al., Curr. Opin. Immunol. 3:74 0-747 (1991)). Cyclosporin A is effective but also has serious side effects (See Barry, Drugs, 44: 554-566 (1992) for reconsideration).                                Summary of the Invention   The present invention provides a humanized anti-CD11a antibody. A preferred antibody is human CD1 1a in the I-domain (eg, "Epitope MHM24 as defined herein" ") And / or about 1 x 10-8With M or stronger affinity It binds to CD11a. In a preferred embodiment, the antibody is ICAM- Prevents Jurkat Cell Adhesion to Normal Human Epidermal Keratinocytes Expressing Escherichia coli Have an IC50 (nM) value of up to about 1 nM. Preferred humanized antibodies are mixed With an IC50 (nM) value of up to about 1 nM in the lymphocyte reaction (MLR) assay Those who do. This IC50 of the humanized antibody in the MLR assay is Significantly better than that of murine MAb 25.3, previously tested in vivo (Fischer et al., Blood 77: 249-256 (1991); Stoppa et al., Transplant Intl. 4: 3-7 (1991). Hourmant et al., Transplantation 58: 377-380 (1994)).   The humanized anti-CD11a antibody was obtained by converting the humanized antibody MHM24F (ab) -8 in FIG. D R1 (GYSFTGHWHN; SEQ ID NO: 10) and / or CDR2 (MIHPSDSETRYNQKFKD; sequence No. 11) and / or the amino acid sequence of CDR3 (GIYFYGTTYFDY; SEQ ID NO. 12) And / or the humanized antibody MHM24F (ab) -8 in FIG. CDR1 (RASKTISKYLA; SEQ ID NO: 13) and / or CDR2 (SGSTLQS; SEQ ID NO: : 14) and / or the amino acid sequence of CDR3 (QQHNEYPLT; SEQ ID NO: 15). Light chain variable region. In another embodiment, the antibody is humanized MHM2 4 comprising one or more amino acid sequence variants of CDRs of antibody F (ab) -8, A variant may have one or more amino acid insertions within and / or adjacent CDR residues and / or Deletions within or adjacent to CDR residues and / or substitutions of CDR residues (such variants With substitutions as a suitable type of amino acid replacement to produce So Is about 1 × 10-8The binding affinity of human CD11a up to M Will have.   In a preferred embodiment, the humanized antibody has the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2. 1 and / or the sequence number of the humanized antibody MHM24F (ab) -8 in FIG. No .: Heavy chain variable region comprising the amino acid sequence of 5 and / or amino acid sequence variation thereof Includes the body.   As described herein, rhesus monkey CD11a (ie, a "rhesus" antibody) Binds the human CD11a antigen to confer the ability to bind, but Humanized antibodies not significant with rhesus monkey CD11a antigen can be engineered later It is said to be capable. In this embodiment, an antibody that binds rhesus monkey CD11a May comprise, for example, the CDR2 amino acid sequence in SEQ ID NO: 23. Other CDRs Can be the same as those for the humanized MHM24 antibody F (ab) -8. Hide The antibody optionally linked to a light chain comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2; The amino acid sequence of the "rhesus" heavy chain in SEQ ID NO: 24 may be provided. The antibody Various forms are contemplated herein. For example, the anti-CD11a antibody is a full-length antibody ( For example, having a human immunoglobulin constant region) or an antibody fragment (e.g., F (ab ')Two). Further, the antibody is labeled with a detectable label and It can be immobilized and / or conjugated to a foreign compound (such as a cytotoxic agent).   Diagnostic and therapeutic uses for the antibodies are contemplated. In one diagnostic application , The present invention relates to a method for preparing a sample suspected of containing a CD11a protein in an anti-CD11a antibody. CD1 comprising exposing the sample and measuring the binding of the antibody to the sample Methods are provided for measuring the presence of the 1a protein. For this use, Ming comprises an antibody for using the antibody for detecting the CD11a protein Provide kit and instructions.   The invention further includes: an isolated nucleic acid encoding the antibody; a vector comprising the nucleic acid. Controls the sequence recognized by the host cell transformed with the vector. Operably linked to a host cell comprising the vector; the nucleic acid Culturing the host cell so that is expressed, and optionally, Producing the antibody comprising recovering the antibody (e.g., from a host cell culture medium). Provide a method for The present invention also relates to pharmaceutically acceptable humanized anti-CD11a antibodies. Also provided is a composition comprising a carrier or excipient. This for therapeutic use Is sterile and can be lyophilized. The invention further relates to a mammal comprising a human LFA-1 mediated disease, comprising administering a pharmaceutically effective amount of a humanized CD11a antibody Methods for treating a mammal afflicted with A. For such therapeutic uses Other immunosuppressive agents or adhesion molecule antagonists (eg, another LFA-1 Agonist or VLA-4 antagonist) before the humanized anti-CD11a antibody. May be co-administered to the mammal, either later, or simultaneously.                             BRIEF DESCRIPTION OF THE FIGURES   FIG. 1A shows the murine MHM24 light chain (SEQ ID NO: 1), humanized MHM24 F (ab) -8 light chain (SEQ ID NO: 2), human consensus arrangement of subgroup light chain κI (humκI) The amino acid sequence of the row (SEQ ID NO: 3) is shown.   FIG. 1B shows murine MHM24 heavy chain (SEQ ID NO: 4), humanized MHM24 F (ab) -8 heavy chain (SEQ ID NO: 5), human consensus arrangement of heavy chain subgroup III (humIII) Sequence (SEQ ID NO: 6) and the “rhesus monkey” antibody variant weight chain of the example (SEQ ID NO: 2) The amino acid sequence of 4) was shown.   1A and 1B, a hypervariable region based on sequence hypervariability (Kabat et al., Sequ ences of Proteins of Immunological Interest. 5th Ed. Public Health Servi ce, National Institutes of Health, Bethesda, MD. (1991)) And a hypervariable loop based on the structure of the F (ab) -antigen complex (Chothia et al., (Nature 342: 8767 (1989)) is italicized. Residue numbering is a, b, and c According to Kabat et al.   FIG. 2 shows human CD11a I-domain (SEQ ID NO: 7) and rhesus monkey CD11. a The sequence of the I-domain (SEQ ID NO: 8) is shown. β chain and α helix are underlined And Qu et al., Proc. Natl. Acad. Sci. 92: 10277-10281 (1995) Is done. The rhesus monkey I-domain sequence (rhCD11a) And only four differences. MHM24 MAb (SEQ ID NO: 9) Binding epitopes are shown in boldface type (Champe et al., J. Biol. Chem. 270: 1388-1). 394 (1995)).   FIG. 3 shows murine MHM24 (closed circle), chimeric MHM25 (open triangle), human MHM24 (HuIgG1) (filled square) and human IgG1 isotype control Roll (+) suppresses human Jurkat T cells to normal human keratinocytes Represents a system. Percent binding was measured by fluorescence of labeled Jurkat cells.   Figures 4A-4C show rhesus monkey lymphocyte response to normal human keratinocytes. (FIG. 4A) Rhesus monkey against recombinant human ICAM-1 coated on plate Rhesus monkeys / humans on lymphocytes (FIG. 4B) and normal human keratinocytes Inhibition of binding of the transfected 293 cells (FIG. 4C) was demonstrated. Rhesus Monkey-bound MHM24 (RhIgG1) (packed squares), anti-CD18MHM23 (packed squares) Circles), human IgG1 isotype control (+) (FIGS. 4A and 4C), and murine Suppression by IgG1 isotype control (+) (FIG. 4B). The percent join is Measured by fluorescence of labeled lymphocytes (FIGS. 4A and B) or labeled 293 cells (FIG. 4C) did.   FIG. 5 shows that the human lymphocyte reaction assay (MLR) was performed in murine MHM24 (clogged). Circles), humanized MHM24 (HuIgG1) (filled squares), and humanized isotype Ig Shown to be blocked by G control (full diamond) . Percent stimulation index (% SI) is given for maximal response in the absence of MAb. The ratio of the response at the given MAb concentration. The data contains at least two different stimuli 9 is an illustration of a multiple assay using a / response pair.                        Detailed Description of the Preferred Embodiment I. Definition   Unless otherwise indicated, as used herein, the term “CD11a” refers to any term For the α subunit of LFA-1 from mammals, but preferably from humans I do. The CD11a can be separated from molecules of natural source or can be synthesized (Eg, using recombinant DNA technology). For human CD11a The amino acid sequence is described, for example, in EP 362 526B1.   The term "I-domain" is described in Champe et al. Biol. Chem. 270: 1388-1394 (1995) and And / or Qu et al., Proc. Natl. Acad. Sci. 92: 10277-10281 (1995). Regarding that area of the child. Human CD11a I-domain (SEQ ID NO: 7) and rhesus The amino acid sequence of the monkey CD11a I-domain (SEQ ID NO: 8) is shown in FIG. Illustrated in FIG.   As used herein, the term “epitope MHM24”, unless otherwise indicated, refers to A region in the I-domain of human CD11a that binds to the HM24 antibody (see below) Related. This epitope comprises the amino acid sequence of SEQ ID NO: 9, and optionally, the CD 11a and / or other amino acid residues of CD18.   The term "LFA-1 mediated disease" involved the LFA-1 receptor on lymphocytes. It relates to pathological conditions caused by cell adhesion interactions. Such a disease Examples of T cell inflammatory responses, such as inflammatory skin diseases including psoriasis; Responses associated with disease (such as Crohn's disease and ulcerative colitis); adult respiratory distress symptoms Group; dermatitis; meningitis; encephalitis; uveitis; allergic conditions such as eczema and asthma Conditions involving the infiltration of T cells and chronic inflammatory responses; Inflammation (including poison ivy and poison oak); atherosclerosis; leukocyte adhesion failure; Rheumatoid arthritis, systemic lupus erythematosus (SLE), diabetes, multiple sclerosis, Nard syndrome, autoimmune thyroiditis, experimental autoimmune encephalomyelitis, Sjogren Syndrome, juvenile onset diabetes, and cytokines and T typically found in the vessels Immune responses associated with lymphocyte-mediated delayed hypersensitivity, sarcoidosis, Autoimmune diseases such as spontaneous myositis, granulomatosis and vasculitis; pernicious anemia; chronic obstructive lung Diseases (COPD); bronchitis; insulinitis; rhinitis; hives; glomerulonephritis; leukocytes Leak CNS inflammatory disease; multi-organ secondary injury to sepsis or trauma Climate group; autoimmune hemolytic anemia; myethemia gravis; Complex-mediated diseases; nephrotic syndrome; malignant diseases (eg, chronic lymphocytic white B-cell malignancies such as hematologic or hairy cell leukemia); graft-versus-host or host All forms of transplant disease, including anti-grafts; HIV and rhinovirus infection; lung lines Including the conversion of tumor cells into secondary organs of fibrosis.   The term "immunosuppressant," as used herein for accompanying treatment, refers to the Anything that acts to suppress or mask the host's immune system while the piece is being transplanted About quality. This downregulates autoantigen expression, suppressing cytokine production. Or substances that modulate or suppress or mask MHC antigens. Would. An example of such an agent is 2-amino-6-aryl-5-substituted pyrimidine (US No. 4,665,077), azathioprine (or cyclophosphamide, if Bromocriptine; glutarua) Rudehydride (masks MHC antigens as described in U.S. Pat. No. 4,120,649) Anti-idiotypic antibodies for MHC antigens and fragments; cyclos Porin A; glucocorticoids such as prednisone, methylprednisone, and And steroids such as dexamethasone; anti-interferon-γ, -β, or -Cytokine or cytokine receptor antagonist containing -α antibody; antitumor Tumor necrosis factor α antibody; anti-tumor necrosis factor β antibody: anti-interleukin-2 antibody and anti-tumor necrosis factor-2 antibody IL-2 receptor antibody; anti-L3T4 antibody; heterologous anti-lymphocyte globulin; Body, preferably an anti-CD3 or anti-CD4 / CD4a antibody; including an LFA-3 binding region. Peptide (WO 90/08187 published July 26, 1990); Streptokinase; T GF-β; streptodornase; RNA or DNA from a host; FK506; RS-61443; deoxyspagarin; rapamycin; T cell receptor (US No. 5,114,721); T cell receptor fragment (Offner et al., Science 251). : 430-432 (1991); WO 90/11294; and WO 91/01133); and T-cells such as T10B9. Vesicle receptor antibody (EP340,109). These agents are used simultaneously with the CD11a antibody. Or administered at discrete times, and is the same or as described in the art. Used at lower dosages. Preferred ancillary immunosuppressants are based on patient history Also implemented Based on a number of factors, including the form of the disease being treated, including the form of transplant Yes, but generally generally preferred the agent is cyclosporin A, glucosporin Corticoids (groups are also preferably prednisone or methylprednisone), OKT- 3 monoclonal antibody, azathioprine, bromocriptine, heterologous anti-lymphocyte An agent selected from roblin or a mixture thereof.   "Treatment" refers to both therapeutic treatment and prophylactic or preventative measures. . Those in need of treatment are the same as those in whom the disease is to be prevented , Including those who already have the disease.   A “mammal” for the purpose of treatment is a domestic animal such as a human, dog, horse, cat, cow, or the like. Breeding or domestic animals, and mammals, including zoos, sports, or pets For any animal that is classified. Preferably, the animal is a human.   As used herein, the term "graft" refers to a donor for transplantation within a subject. It relates to the obtained biomaterial. Grafts include islet cells and nerve-derived cells (e.g., Schwann Cells), such as neonatal amniotic membrane, bone marrow, hematopoietic progenitor cells Tissue, skin, heart, liver, spleen, pancreas, thyroid lobe, lung, kidney, vascular organs (e.g. (Eg, blood vessels or esophagus). Vascular organs, esophagus, blood It can be used in place of a damaged part of a tube or a tube. Skin graft In addition, it blocks certain injuries in the damaged intestine, such as-or diaphragmatic hernia It can be used in particular for preparation. The graft can be from a cadaver or a living donor. Obtained from any mammalian source, including humans. Preferably, the The graft is an organ such as bone marrow or heart, and the donor and host of the graft are , HLA class II antigen.   The term "donor" as used herein refers to a dead or live mammal from which a graft is obtained. Regarding animal species. Preferably, the donor is a human. Human donor with major blood Because group crossing is a potential barrier to allogeneic transplant survival, -Related in volunteers who are characteristic of the same test and are the same major ABO blood group Donors are preferred. However, it does not allow, for example, into A, B or AB recipients. Transplantation of a type O donor kidney is possible.   The term “transplant” and variations thereof are used when the transplant is syngeneic (where the donor is When Recipients are generally identical), allogeneic (where the donor and recipient are of genetic origin Different but the same species) or heterogeneous (where the donor and recipient are from different species) The insertion of a graft into a host. Thus, typical In a typical scenario, the host is human and the graft is the same or different genetic origin. Syngeneic grafts obtained from the source human. In another scenario, the implant is Such as the heart of a baboon transplanted into a recipient host, and, for example, a porcine heart valve, or Phylogenetic spreads such as animal beta islet cells or neurons transplanted into a human host Obtained from a different species than the one to which it is transplanted, including animals from well-separated species .   "Increasing the resistance of the transplanted graft" by the host means that Prolong the survival of the piece, ie it will well tolerate transplantation from others And suppressing the host immune system.   "Intermittent" or "periodic" dosing can be for a period of time, and for one or more Separation or continuous administration at regular intervals, which is preferred.   The "selected resistance" of a disease is the host's resistance to specific factors that cause the disease. Tolerated by the immune system, but rejecting a second allogeneic or xenograft To maintain the capacity of the host. Preferably, the resistance is such that the immune system It's like leaving a complete.   The term "LFA-1 antagonist" refers to the interaction of LFA-1 with ICAM-1. Molecules that act as competitive inhibitors for Examples of such molecules are , CD11a (eg, humanized anti-CD11a described herein) or CD18 or both Alternatively, antibodies to ICAM-1 and other molecules such as peptides (eg, pseudo-peptides) Antibodies directed against any of them.   The term "VLA-4" is a competitive inhibitor of VLA-4 interaction with VCAM. Related to molecules that act as a ligand. Examples of such molecules are VLA-4 or VLA-4 Directed against either CAM and other molecules (eg, pseudopeptide antagonists) Antibodies.   The term `` antibody '' refers to monoclonal antibodies (including full-length monoclonal antibodies), Riclonal antibodies, multispecific antibodies (e.g., bispecific antibodies), and preferably The broadest understanding and specific inclusion of antibody fragments as long as they exhibit biological activity Used in doing.   An "antibody fragment" is a portion of a full-length antibody, generally It has a variable region for it. Illustrative examples of antibody fragments include Fab, Fab ', F (a b ')TwoAnd Fv fragments; dimers; linear antibodies; single-chain antibody molecules; Includes multispecific antibodies formed from fragments.   The term "monoclonal antibody" as used herein refers to a substantially homogeneous antibody. For antibodies obtained from a population, i.e., individual antibodies contained in the Except for the possibility of spontaneous mutations that may be present. monoclonal Antibodies are highly specific, being directed against a single antigenic site. In addition, they typically include different antibodies directed against different determinants (epitope). Each monoclonal antibody against a normal (polyclonal) antibody preparation. Are directed against a single determinant on the antigen. The modifier "monoclonal" Exhibit characteristics of the antibody as obtained from a substantially homogeneous population of antibodies, and For composing requesting production of antibodies by some special method Absent. Monoclonal antibodies to be used in accordance with the present invention are described in Kohler et al., Nature 2 56: 495 (1975). Or can be made by recombinant DNA methods (see, e.g., U.S. Pat.No. 4,816,567). See). The "monoclonal antibody" can also be described, for example, in Clackson et al., Nature 352: 624-. 628 (1991) and Marks et al. Hol. Biol. 222: 581-597 (1991) Alternatively, it can be isolated from a phage antibody library.   A monoclonal antibody here is a unique species or unique antibody class or subclass. Homology identical or identical to a sequence in an antibody obtained from a member of the family A "chimeric" antibody (immunoglobulin) in the heavy and / or light chain While specifically comprising, the rest of the chain is of another species or another antibody class or subclass. Homologues identical or identical to sequences in antibodies obtained from those belonging to As well as the fragmentation of such antibodies, as long as they exhibit the desired biological activity. (U.S. Pat. No. 4,816,567; and Morrison et al., Proc. Natl. Acad. Sci. . USA 81: 6851-6855 (1984)).   As used herein, the term "hypervariable region" is responsive for antigen binding Regarding the amino acid residues of the antibody. The hypervariable region may be a “complementary detection region” or “CD R '' (ie, residues 24-34 (L1), 50-56 (L2 ) And 89-97 (L3) and 31-35 (H1), 50-65 (H2) and 95-1021 (H3) in the heavy chain variable region; K abat et al., Sequences of Proteins of Immunological Interest, 5th Ed. Public Health Service, National Institutes of Health, Bethesda, MD. (1991)) and / Or "hypervariable loop" (i.e., residues 26-32 (L1), 50-: 52 (L 2) and 91-96 (L3) and 26-32 (H1), 53-55 (H2) and 96-101 (H3) in the heavy chain variable region; Ch othia and Lesk J. Mol. Biol. 196: 901-917 (1987)). “Framework” or “FR” residues are hypervariable region residues as described herein. Are those variable region residues other than.   A `` humanized '' form of a non-humanized (e.g., murine) antibody is derived from a non-human immunoglobulin. Chimeric antibody containing the minimum sequence. For the most part, humanized antibodies are Hypervariable region residues have the desired specificity, affinity and capacity in mice, rat Hypervariable region residues from a non-human species such as a human, rabbit or non-human primate. The human immunoglobulin (receptor antibody) is replaced (donor antibody). Some examples Wherein the Fv framework region (FR) residues of the human immunoglobulin are identical. Is replaced by a non-human residue. In addition, humanized antibodies are Or residues not found in the donor antibody. These fixes are anti- Performed to further refine the body's efficiency. Generally, the humanized antibody is a non-human All or substantially all of the hypervariable loop corresponding to that of an immunoglobulin; And all or substantially all of the FR regions are those of a human immunoglobulin sequence Would comprise at least one, and typically substantially all, of the variable regions U. The humanized antibody optionally may be an immunoglobulin, typically a human immunoglobulin assay. It will also include at least a portion of the normal region (Fc). For further details, see Jones et al. Nature 321: 522-525 (1986); Reichmann et al., Nature 332: 323-329 (1988); and Pre. sta, Curr. Op. Struct. Biol. 2: 593-596 (1992).   “Single-chain Fv” or “sFv” antibody fragments are those that express the VHAnd VLDomain and And these domains are present in a single polypeptide chain. Generally, the F The v polypeptide is VHAnd VLDesirable structure for antigen binding between domains It further comprises a peptide linker that provides the sFv for formation. Reconsideration of sFv The Pharmacology of Monoclonal Antibodies, vol. 113, Rosenburg and M oore eds. See Pluckthun in Springer-Verlag, New York, pp. 269-315 (1994). .   The term "diabodies" is a small antibody with two antigen binding sites With respect to fragments, the fragments may comprise the light chain variable region (VL Heavy chain variable region (VH) And (VH-VL). Two domains on the same chain By using a very short linker that allows pairing between the regions, the region is Compelling it to pair with the complementary domain of another chain and To create Diabodies are described, for example, in EP 404,097; WO 93/11161; and Holling. er et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90: 6444-6448 (1993). Will be posted.   As used throughout this application, the expression “linear antibody” is defined by Zapata et al., Protein Eng. 8 (10): 1057-1062 (1995). Briefly, these Antibodies comprise a pair of tandem Fd segments (VH-CH1 -VH-CH1) is provided. Linear antibodies can be bispecific or multispecific.   An “isolated antibody” is identified and separated from components of its natural environment and And / or one that has been recovered. Contaminants in its natural environment are diagnostic for the antibody. Or materials that would interfere with therapeutic use, such as enzymes, hormones and other proteins. Or it may contain non-proteinaceous solutes. In a preferred embodiment, the antibody comprises: Greater than 95% by weight of the antibody as measured by the Lie method, most preferably To 99% by weight or more, (2) N- by using spinning cup sequenator To a degree sufficient to obtain at least 15 residues of the terminal or intermediate amino acid sequence. Or (3) Coomassie blue or, as appropriate, silver staining, under reducing or non-reducing conditions. Will be purified to homogenize by SDS-PAGE. Anti isolated Whether the body will be absent of at least one component of the antibody's natural environment And antibodies in situ within recombinant cells. Usually, however, isolated anti The body will be prepared by at least one purification step.   As used herein, the term “epitope tagging” translates to “epitope tag”. The combined anti-CD11a antibodies. Epitope tag polypeptides Antibodies that do not interfere with the activity of the CD11a antibody. It has enough residues to provide an epitope for something short. The epi Tope tags preferably have antibodies that substantially cross-react with other epitopes. Unique enough to not respond. Suitable tag polypeptides are generally Both have 6 amino acid residues, usually 8-50 amino acid residues (preferably 9-30 residues). Group). Illustrative examples are the flu HA tag polypeptide and its antibody 12CA5. (Hield et al., Mol. Cell. Biol. 8: 2159-2165 (1988)); c-myc tag and 8F9, 3C7, 6E10, G4, B7 and 9E10 antibodies (Evan et al., Hol. Ce. ll. Biol. 5 (12): 3610-3616 (1985)); and herpes simplex virus glycoployte In-D (gD) tag and its antibody (Paborsky et al., Protein Engineering 3 (6): 547- 553 (1990)). In some embodiments, the epitope tag is "salvae". Direceptor binding epitope ".   As used herein, the term "salvage receptor binding epitope" refers to Ig G molecules (eg, IgG1, IgGTwo, IgGThreeOr IgGFourEpitope of Fc region To increase plasma half-life of IgG molecules in vivo Can respond to   The term “cytotoxic agent” as used herein refers to inhibiting or preventing the function of a cell. And / or substances that cause cell degradation. The term radioactive iso Tope (I131, I125, Y90And Re186), Chemotherapeutic agents, and bacterial, moldy, Contains toxic substances, such as plant or animal enzymatically active poisons, or fragments thereof. Is intended.   "Chemotherapeutic agents" are compounds useful in the treatment of cancer. Examples of chemotherapeutic agents Means adriamycin, doxorubicin, 5-fluorouracil, cytosine Vinoside (`` Ara-C ''), cyclophosphamide, thiotepa, taxotere (docetaxe l), busulfan, cytoxin, taxol, methotrexate, cisplatin , Melphalan, vinblastine, bleomycin, etoposide, ifosuf Amid, mitomycin C, mitozantrone, vincristine, binoruel Bottle, carboplatin, teniposide, daunomycin, carminomycin, ami Nopterin, dactinomycin, mitomycin, esperamicin (U.S. Pat. , 675,1 No. 87), other related to melphalan and nitrogen mustard Including things.   The term “prodrug”, as used in the present invention, precedes the pharmaceutically active substance. With respect to the precursor or derivative form, i.e. less cytotoxic to tumor cells compared to the parent drug And can be enzymatically activated or converted to a more active form . For example, Wilman, “Prodrugs in Cancer Chemotherapy” Biochemical Society Transactions, 14, pp. 375-382, 615th Meeting Belfast (1986) and Stella et al. "Prodrugs: A Chemical Approach to Targeted Drug Delivery," Directed Drug  See Delivery, Borchardt et al. (Ed.), Pp. 247-267, Humana Press (1985). The present invention Prodrugs of, but not limited to, phosphate-containing prodrugs , Thiophosphate-containing prodrugs, sulfate-containing prodrugs, pepti -Containing prodrugs, D-amino acid modified prodrugs, glycosylated prodrugs , Β-lactam-containing prodrug, optionally substituted phenoxyacetamide pro Drugs or optionally substituted prodrugs containing phenylacetamide Luorocytosine and other 5- that can be converted to more active cytotoxic free drugs Includes fluorouridine prodrugs. Prodora for use in the present invention Illustrative examples of cytotoxic drugs that can be derivatized to the egg type include, but are not limited to, those described above. Contains chemotherapeutic agents.   As used herein, the term “label” refers to a test directly or indirectly conjugated to an antibody. It relates to a compound or composition that can be delivered. The label is detectable by itself. (E.g., radioisotope labeling or fluorescent labeling) or in the case of enzyme labeling. And a catalytic chemical replacement of the detectable substrate compound or composition.   Non-aqueous matrix such that the alternation of the invention is adherent by "solid phase" Is meant. Examples of solid phases included here are glass (e.g., controlled pore glass). ), Polysaccharides (e.g., agarose), polyacrylamide, polystyrene Partially or completely formed of polyvinyl alcohol and silicone including. In certain embodiments, based on the context, the solid phase is an assay plate. Can be included; in others it is a purification column (eg, Affinity chromatography column). This term is also used in U.S. Pat. In 5,149 It also includes a discontinuous solid phase of separable particles, such as those described.   "Liposome" refers to a drug for mammals (the anti-CD11a described herein and any Various types of fats that are useful for the delivery of Small vesicles composed of carbohydrates, phospholipids and / or surfactants. The re The components of the posome are typically arranged in a bilayer morphology resembling the lipid arrangement of biofilms .   An "isolated" nucleic acid molecule is one to which it is normally bound in the natural source of the antibody nucleic acid. Nucleic acid identified and separated from at least one contaminating nucleic acid molecule by Is a molecule. An isolated nucleic acid molecule is one in which it is found in nature. Other than shape or setting. Isolated nucleic acid molecules are therefore Distinguishing from nucleic acid molecules such as those present in cells. However, the separated nucleus An acid molecule is an arrangement in which, for example, its nucleic acid molecule differs in chromosome from that of a natural cell. In the case of, it includes a nucleic acid molecule contained in a cell in which the antibody is normally expressed.   The expression "control sequence" refers to an operably linked code in a unique host organism. DNA sequences necessary for the expression of the functionalized sequence. Suitable for prokaryotes Control sequences include, for example, promoters, optional operator sequences, and Includes bosome binding site. Eukaryotes contain the promoter, polyadenylation signal It is known to utilize files and enhancers.   When a nucleic acid is placed into a functional relationship with another nucleic acid sequence, "Combined as possible." For example, presequence DNA or secretion leaders may be If it is expressed as a preprotein that participates in the secretion of the polypeptide Operably linked to DNA for a polypeptide; promoter and enhancer Operatively binds to the coding sequence if it affects the transcription of the sequence. The combined ribosome binding site is the site where it is placed to facilitate translation. Is operably linked to the coding sequence. Generally, "operable" DNA sequences that are contiguous and, in the case of a secretory leader, Contact and in the reading phase. However, Enha The sensors do not have to be adjacent. Joins are useful at restricted sites. Achieved by ligation. If no such site exists, the synthetic oligo Nucleotide adapters or linkers are used according to normal practices. You.   As used herein, the terms “cell,” “cell line,” and “cell culture” are used interchangeably. And all such definitions include the resultant. Scratch The terms "transformation" and "transformed cells" And cultures obtained therefrom. It also means that all the results Perfect identity in DNA content due to deliberate or accidental mutations It is understood that it is not necessary. Screen in uniquely transformed cells Mutations having the same function or biological activity. Individual definitions Where intended, it will be clear from the context. II. BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION   A. Antibody preparation   Methods for humanizing non-human CD11a antibodies are described in the Examples below. . To humanize an anti-CD11a antibody, a non-human antibody starting material is prepared. So Exemplary methods for purifying antibodies such as are described in the sections below. .         (I) Preparation of antigen   The CD11a antigen to be used for the preparation of the antibody is, for example, CD11a or CD11a. A soluble form of the extracellular domain of the 11a fragment (eg, the CD11a I domain CD11a fragment with "MHM24 epitope" like fragment ). Alternatively, the cell expressing CD11a on its cell surface is an antibody Can be used to generate Such cells contain CD11a and optionally C It can be transformed to express D18, or other naturally occurring cells (eg, human Empablast cells, Hildreth et al., Eur. J. Immunol. 13: 202-208 (1983)) or ja -Cut cells (see Examples below). CDs useful for generating antibodies Other forms of 11a will be apparent to those skilled in the art.         (Ii) Polyclonal antibody   Polyclonal antibodies can be derived from multiple subcutaneous (sc) or related antigens and adjuvants. It is preferably raised by intraperitoneal (ip) injection. For example, keyhole rimpet hemo Cyanine, serum albumin, bovine thyroglobulin, or a bifunctional or inducing agent, eg For example, maleimidobenzoylsulfosuccinimide ester (via cysteine residue N-hydroxysuccinimide (via lysine residue), glutaraldehyde Hyd, succinic anhydride, SOClTwoOr R1N = C = NR, where R and R1Is different Should be immunized, such as soybean trypsin inhibitor using an alkyl group Can be useful for conjugating related antigens to proteins that are immunogenic in You.   The animal may, for example, receive the protein or protein together with 3 volumes of Freund's complete adjuvant. 100 μg or 5 μg of conjugate (for rabbit or mouse, respectively) Antigen, immunogenic conjugate, or binding by injecting the solution subcutaneously with the Immunization against the derivative due to One month later, the animals were skinned at multiple sites 1/5 to 1/10 of original amount in Freund's complete adjuvant by lower injection Of the peptide or conjugate. After 7 to 14 days, the animals are released Blood is collected and the serum is analyzed for antibody titers. Animals up to titer plateau Boosted. Preferably, the animals are boosted by conjugation of the same antigen but , To different proteins and / or through different crosslinkers. Joint body Alternatively, it can be made in recombinant cell culture as a protein fusion. Also, alum Such aggregating agents are suitably used to increase the immune response.         (Iii) Monoclonal antibody   Monoclonal antibodies were first described by Kohler et al., Nature, 256: 495 (1975). It can be made using the hybridoma method described, or can be made using recombinant DNA methods (U.S. Pat. No., 816,567).   In the hybridoma method, mice, hamsters or macaque monkeys Suitable host animals will specifically bind to the protein used for immunization. Above to elicit lymphocytes that produce or may produce antibodies Immunized as you did. Alternatively, the lymphocytes are immunized in vitro. Can be The lymphocytes then form polyethylene to form hybridoma cells. It is fused with myeloma cells using a suitable fusion agent such as glycol (Goding, Mon. oclonal Antibodies: Principles and Practice, pp.59-103 (Academic Press, 19 86)).   The hybridoma cells thus prepared are seeded and unfused, parental bone marrow. Suitably containing one or more substances that inhibit the growth or survival of the tumor cells. Cultured in the appropriate medium. For example, if the parental myeloma cell is Lacks guanguanine phosphoribosyltransferase (HGPRT or HPRT) If so, the medium for a typical hybridoma is the growth of HGPRT-deficient cells. May contain substances that prevent length, hypoxanthine, aminopterin and thymidine (HAT medium).   Preferred myeloma cells are those that fuse the selected antibody-producing cells efficiently and are stable and high-reactive. Those that support bell production and are sensitive to media such as HAT media. You. Among these, the preferred myeloma cell line is the Salk Institute Cell Distributi on Center, MOP-21 available from San Diego, California, USA Those obtained from MC-11 mouse tumors and American Type Culture Collect SP-2 or X63-Ag available from ion, Rockville, Maryland, USA A murine myeloma line such as 8-653 cells. Human myeloma and mouse-human differences Seed myeloma cell lines have also been described for the production of human monoclonal antibodies (K ozbor, J. Immunol. , 133: 3001 (1984); Brodeur et al., Monoclonal Antibody Produc. tion Techniques and Applications, pp.51-63 (Harcel Dekker, Inc., New York , 1987)).   The medium in which the hybridoma cells are growing is made up of a monoclonal medium directed against the antigen. And analyzed for the production of local antibodies. Preferably, the hybridoma cells The binding specificity of monoclonal antibodies produced by immunoprecipitation or radio In vivo assays such as immunoassays (RIAs) or enzyme-linked immunosorbent assays (ELISAs) It is measured by a binding assay in vitro.   The binding affinity of the monoclonal antibody can be determined, for example, by the method of Hunson et al., Anal. Biocllem., 107 : 220 (1980).   Hybridoma cells produce antibodies of desired specificity, affinity, and / or activity Clones, the clones are subcloned by limited dilution. And can be propagated by standard methods (Goding, Monoclonal Antibodies : Principles and Practice, pp.59-103 (Academic Press, 1986)). For this purpose Suitable culture media include, for example, D-MEM or RPMI-1640 medium. In addition hand, Hybridoma cells can be grown in vivo as ascites tumors in animals.   The monoclonal antibody secreted by the subclone is, for example, protein A -Sepharose, hydroxyapatite chromatography, gel electrophoresis, Analysis or normal immunoglobulin purification, such as affinity chromatography. Depending on the manufacturing method, it is appropriately separated from the culture medium, ascites fluid, or serum.   DNA-encoded monoclonal antibodies can be readily isolated and used in standard procedures (eg, For example, it specifically binds to the genes encoding the heavy and light chains of the monoclonal antibody. (By using oligonucleotide probes that can be The columns are determined. The hybridoma cells serve as a suitable source of such DNA. Serve. In a single separation, the DNA is isolated from the monoclonal host in a recombinant host cell. Escherichia coli, apes COS cells, Chinese ham to obtain antibody synthesis Do not produce star egg (CHO) cells or otherwise immunoglobulin proteins. Can be placed in an expression vector that is transferred into a host cell, such as a myeloma cell. . Recombinant production of antibodies will be described in more detail below.           (Iv) Humanized and amino acid sequence variants   The following example describes a procedure for humanization of an anti-CD11a antibody. A certain fruit In one embodiment, to produce amino acid sequence variants of the humanized antibody, Is desirable if it improves the binding affinity or other biological properties of the humanized antibody And   The amino acid sequence variant of the humanized anti-CD11a antibody is humanized anti-CD11a antibody D By introducing appropriate nucleotides that change NA or for peptide synthesis It is thus prepared. Such a mutant is for humanized anti-CD11a F (ab) -8 Deletion of residues in the amino acid sequence shown in (for example, like SEQ ID NOs: 2 and 5), And / or insertions and / or substitutions. Created to occur in the final structure Any combination of deletions, insertions, and substitutions that make the final structure desirable Provided to own. The modified amino acids also appear at the glycosylation site. Alter the post-translation process of the humanized anti-CD11a antibody, such as altering its number or position. I can get it. Humanized anti-CD11a antibody polypeptes in a suitable arrangement for mutagenesis Useful methods for identifying certain residues or regions of the tides are described in Cunningham and Wells Sc ience, 244: 1081-1085 (1989), "Alanine scanning mutagenesis. ". Here, a group of residues or target residues is identified (e.g., arg, asp, his , lys, and glu) and amino acids by the CD11a antigen. Neutral or negatively charged amino acids that affect the interaction (most preferred Is replaced by alanine or polyalanine). Functional choice for the replacement The amino acid configuration that indicates the sex may be at the site of further introduction or substitution or at that site. Purified by other variants. Thus, introducing an amino acid sequence variant Sites for mutations are predetermined, while the nature of the mutations themselves must be predetermined. No need. For example, to analyze the performance of a mutation at a given site, Humanized antisense or random mutagenesis has been introduced and expressed at the target codon or region CD11a antibody variants are screened for the desired activity.   Amino acid sequence inserts are similar to intersequence inserts of single or multiple amino acid residues. Within the length from 1 residue containing 100, or more residues to the polypeptide Amino- and / or carboxy-terminal fusions. An example of a terminal insert is N -Humanized anti-CD11a antibody with terminal methionyl residue or epitope tag The combined antibody. Other insertional variants of the humanized CD11a antibody molecule are those of the antibody. Enzyme or polypeptide humanized anti-CD11a antibody N that increases serum half-life Or a fusion to the C-terminus (see below).   Another type of variant is an amino acid substitution variant. These mutants are removed Having at least one amino acid residue in a humanized anti-CD11a antibody molecule Residue is inserted in its place. The most important sites for alternative mutagenesis are Includes a variable loop, but FR alternations are also contemplated. Table I in Examples described below V provides guidance for hypervariable region residues that can be changed. During antigen binding Hypervariable region residues or FR residues are generally used in a relatively conservative manner. Is replaced by Such conservative substitutions are listed in Table I under the heading "Preferred Substitutions". It was shown to. If such a substitution results in a change in biological activity If further shown in Table I for “typical substitutions” or for amino acid classes More essential changes are introduced and the product is screened as described below.                                   Table I  Substantial modifications in the biological properties of the antibody include (a) The structure of the polypeptide backbone in the area of its replacement, such as the cal tissue , (B) maintaining the charge or hydrophobicity of the molecule at the target site, or (c) maintaining the bulk of the side chain. In selecting substitutions that differ significantly in their effect on Is achieved. Naturally occurring residues are grouped into groups based on customary side chain characteristics. Cracked:         (1) hydrophobicity: norleucine, met, ala, val, leu, ile;         (2) Neutral hydrophilicity: cys, ser, thr;         (3) acidic: asp, glu;         (4) bases: asn, gln, his, lys, arg;         (5) Residues affecting chain orientation: gly, pro; and         (6) aromatic; trp, tyr, phe.   Non-conservative substitutions exchange one member of these classes for another class It will be accompanied. Maintaining the proper structure of the humanized anti-CD11a antibody Any cysteine residues that are not included also improve the oxidative stability of the molecule. Can be generally replaced by serine to prevent and prevent abnormal cross-reactivity. You. Conversely, a cysteine bond can be added to an antibody to improve its stability (Especially when the antibody is an antibody fragment such as an Fv fragment).   Another type of amino acid variant of the antibody is the native glycosylation pattern of the antibody. To change. One or more carbohydrate moieties found in the antibody by alteration Delete and add one or more glycosylation that is not present in the antibody. Means   Glycosylation of antibodies is typically either N-linked or O-linked. N-linked involves the attachment of a carbohydrate moiety to the side chain of an asparagine residue. bird Peptide sequence asparagine-X-serine and asparagine-X-threonine (formula Where X is any amino acid other than proline) is a carbohydrate to the asparagine side chain It is a recognition sequence for enzymatic conjugation of the parts. Thus, this in the polypeptide The presence of any of these tripeptides creates a potential glycosylation site. O-linked glycosylation is 5-hydroxyproline or 5-hydroxylysine Although hydroxy amino acids, most commonly serine or threo, may be used Conjugation of sugar N-galactosamine, galactose, or xylose to nin .   The addition of glycosylation sites to the antibody can be caused by one or more of the above-mentioned tris. Amino acid sequences such as those containing a peptide sequence (for N-linked glycosylation sites) Advantageously achieved by changing the columns. The change also affects the original antibody distribution. Addition of one or more residues (for O-linked glycosylation sites) to the sequence Or by substitution therewith.   A nucleic acid molecule encoding an amino acid sequence variant of a humanized anti-CD11a antibody It is prepared by various methods well known in the art. These methods are limited. Separation from natural sources (in the case of naturally occurring amino acid sequence variants) ) Or oligonucleotide-mediated (or site-controlled) mutagenesis, PCR mutagenesis Preparation of humanized anti-CD11a antibody and cassette mutagenesis of mutant or non-mutant form Including preparation by development.   Usually, amino acid sequence variants of the humanized anti-CD11a antibody are either heavy or light chain. The amino acid sequence of the original humanized antibody (eg, as in SEQ ID NO: 2 or 5) and At least 75%, preferably at least 80%, more preferably (less At least 85%, more preferably at least 90%, most preferably at least Will also have an amino acid sequence with 95% amino acid sequence identity. this Sequence identity and homology reach maximum percent sequence identity, if necessary. And any conservative substitutions such as part of sequence identity (see Table I above) After aligning sequences and introducing gaps in order not to take into account The percentage of amino acid residues in the sequence candidate having identity with the humanized anti-CD11a residue Is defined here as a percentage. N-terminal, C-terminal, or internal extensions within the antibody sequence Those without large, deleted or inserted may affect sequence identity or homology. Should be composed.           (V) Screening for biological properties   Having the features identified herein as desired in a humanized anti-CD11a antibody Antibodies are screened for that.   For antibodies that bind to an epitope on CD11a bound by the antibody of interest (Eg, binding of MHM24 antibody to CD11a Locking it), Antibodies, A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor L aboratory, Ed Harlow and David Lane (1988) A cross-blocking assay of proteins can be performed. Alternatively, for example, Champe et al. J. Biol. Chem. 270: 1388-1394 (1995). Can determine whether the antibody binds to the epitope of interest.   Antibody affinity (eg, for human CD11a or rhesus monkey CD11a) Either peripheral blood mononuclear cells or rhesus monkey leukocytes as described in the Examples below. And can be determined by bond saturation. This one to determine antibody affinity According to the method, lymphocytes or rhesus monkey leukocytes were collected in a volume of 170 μl per well. Added to the plate and the plate is incubated for 2 hours at room temperature. Inn After the incubation, the cells are harvested and washed 10 times. The sample then counts Be counted. Assignment of nanomolar saturation plots to 4-parameter curve fits Data that changed the form of thed(app) value is determined Is done. A preferred humanized antibody is about 1 × 10-7Up to about; preferably about 1 × 10-8Ma More preferably about 1 × 10-9Up to; most preferably about 2 × 10-TenK Those that bind human CD11a with a d-value.   It also has beneficial anti-adhesion properties in the "keratinocyte monolayer adhesion assay" It is also desirable to select a humanized antibody having Suitable antibodies are up to about 250 nM. Preferably up to about 100 nM; more preferably up to about 1 nM and usually Prevents Jurkat Cell Adhesion to Human Epidermal Keratinocyte-Expressed ICAM-1 Most preferably those having an IC50 (nM) value of up to 0.5 nM. You. According to this assay, normal human epidermal keratinocytes are obtained from culture flasks. Removed, 5x10FiveSuspended in lymphocyte assay medium at a concentration of viable cells / ml Is done. Aliquots of 0.1 μl / well were then placed in flat bottom 96 well plates. Overnight; in suitable wells, 100 units / well of interferon-gas Stimulated by addition of comma. Jurkat clone E6-1 cells are labeled Washed, 1x106Resuspended in cells / ml, 500 ng at 4 ° C. for 30 minutes Incubate by initiating a two-fold serial dilution at / ml. Keratinocytes After removal of the medium from the monolayer, 0.1 ml / well of labeled cells was added and 1 Incubate at 37 ° C. for hours. The wells are used to remove unbound cells And the fluorescence is measured.   A preferred humanized anti-CD11a antibody is a mixed lymphocyte response using human lymphocytes. (MLR) assays up to about 100 nM; preferably up to about 50 nM More preferably an IC50 of up to about 5 nM, and most preferably up to about 1 nM. (nM) values. For both human and rhesus MLR, Peripheral blood from two unrelated donors was separated from heparinized whole blood and described below. In RPMI 1640 (GIBCO) with additives as described in the examples, 3x106Resuspend to a concentration of cells / ml. The stimulator cells become unresponsive by irradiation. Responsiveness is created. 1.5x10 per wellFiveResponder cells at cell concentration Are co-cultured with an equal number of stimulator cells in a 96-well, flat bottom plate. A two-fold serial dilution starting at a concentration of 10 nM gives a total volume of 200 μl / well To be added to the culture. The culture is 5 days with 5% CO2TwoMedium, at 37 ° C Incubated, then for 16 hours [Three1 μCi / well of [H] thymidine Pulsed and [Three[H] thymidine binding is measured.           (Vi) Antibody fragment   In one embodiment, the humanized anti-CD11a antibody is an antibody fragment . Various techniques have evolved for the production of antibody fragments. Traditionally, These fragments are derived via proteolytic digestion of whole antibodies (e.g., For example, Morimoto et al., Journal of Biochemical and Biophysical Methods 24: 107-11 7 (1992) and Brennan et al., Science 229: 81 (1985)). However, these Fragments can now be produced directly by recombinant host cells. For example, F The ab'-SH fragment can be recovered directly from E. coli and F (ab ')TwoChemically paired to form fragments (Carter et al., Bio / Technology  10: 163-167 (1992)). According to another approach, F (ab ')TwoFragments are paired It can be isolated directly from the recombinant host cell culture. Other for the production of antibody fragments Methods will be apparent to the skilled expert.         (Vii) Multispecific antibody   In any embodiment, the binding for at least two different epitopes Generate multispecific (eg, bispecific) humanized anti-CD11a antibodies with mixed specificity May be desirable. An example of a bispecific antibody is the CD11a protein Can bind to two different epitopes. Alternatively, the anti-CD11a arm has a T Cell receptor molecules (eg, CD2 or CD3), or cells expressing CD11a FcγRI (CD64), FcγRII (CD32) for focusing defense mechanisms And Fc receptor for IgG (FcγR) such as FcγRIII (CD16) An arm that binds to the triggering molecule on leukocytes, such as, can be attached. Bispecific Antibodies can also be used to localize cytotoxic factors to cells expressing CD11a. Can be used. These antibodies have a CD11a binding arm and a cytotoxic factor (eg, Saporin, anti-interferon alpha, vinca alkaloid, ritin A chain, methotrex Xanthate or radioisotope hapten). Bispecific Antibodies can be full-length antibodies or antibody fragments (e.g., F (ab ')TwoBispecific antibody).   According to another approach to making bispecific antibodies, the boundary between pairs of antibody molecules is Aspects minimize the percentage of heterodimers recovered from recombinant cell culture Can be processed to The preferred interface is the C of the antibody constant domain.H3 Contains at least part of the domain. In this method, the interface between the first antibody molecule One or more of these smaller amino acid side chains is replaced with a larger side chain (eg, Or tryptophan). Same or similar to the larger side chains The “cavities” that make up the size are smaller (for example, alanine or Replaces the large amino acid side chain with threonine) Created on the interface of molecules. This is another unwanted like homodimer Providing a mechanism for increasing the yield of heterodimers over terminal products You. See WO 96/27011 published September 6, 1996.   Bispecific antibodies include crosslinked or "heteroconjugate" antibodies. For example, in the heteroconjugate antibody One antibody can bind to avidin, as well as biotin. Heteroconjugate antibodies It can be made using any suitable crosslinking method. Suitable crosslinkers are well known in the art And, along with a number of crosslinking techniques, are disclosed in U.S. Pat. No. 4,676,980.   Methods for generating bispecific antibodies from antibody fragments are also described in the literature Have been. For example, bispecific antibodies can be prepared using chemical linkage. Brennan et al., Science 229: 81 (1985) describes the procedure and describes a complete antibody Is F (ab ')TwoProteolytic cleavage to produce fragments. these Fragments are used to stabilize nearby dithiols and to form intermolecular disulfides. Make To prevent it is reduced in the presence of the dithiol complexing agent sodium arsenate. The Fa The b 'fragment is converted to a thionitrobenzoate (TNB) derivative. F One of the ab'-TNB derivatives is obtained by reducing Facap by reduction with mercaptoethylamine. b'-thiol, which is further converted to another Fab'- to form a bispecific antibody. It is mixed with an equimolar amount of the TNB derivative. The bispecific antibody produced is selective for the enzyme. Can be used as an agent for proper immobilization.   Recent advances have focused on Escherichia coli, which can be chemically paired to form bispecific antibodies. They facilitate the direct recovery of their Fab'-SH fragments. Shalaby et al. E xp. Med. 175: 217-225 (1992) is a fully humanized bispecific antibody F (ab ')TwoMolecular life Describe the birth. Each Fab 'fragment is independently secreted from E. coli. And in vitro directed chemical pairing to form bispecific antibodies? Be killed. The bispecific antibody thus formed is a human antibody against human breast tumor targets. Inducing the lytic activity of alveolar lymphocytes as well as HER2 receptor and normal It can be bound to cells that overexpress human T cells.   For making and isolating bispecific antibody fragments directly from recombinant cell culture Are also described. For example, bispecific antibodies are It is made using par. Kostelny et al. Immunol. 148 (5): 1547-1553 (199 2). Leucine zipper peptides from Fos and Jun proteins were In some cases, it bound to the Fab 'portion of a different antibody. The antibody homodimer is Reduced at the hinge region to form an antibody heterodimer. Is re-oxidized. This method can also be used for the production of antibody homodimers. You. Hollinger et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90: 6444-6448 (1993) The "diabody" technique described is used to generate bispecific antibody fragments. Offers an alternative mechanism. The fragment is too short to Light chain variable domain by a linker that does not provide pairing between the two domains on the same chain (VLHeavy chain variable domain (VH)including. Therefore, one fragment VHAnd VLThe domain is the complementary V of another fragmentHAnd VLPair with domain , Thereby forming two antigen-binding sites. Single chain F for generating bispecific antibody fragments by use of the v (sFv) dimer Another strategy Have also been reported. Gruber et al. Immunol. 152: 5368 (1994). Alternative In addition, the bispecific antibody is described in Zapata et al., Protein Eng. 8 (10): 1057-1062 (1995) It may be referred to as "linear antibody" produced as described.   Antibodies with more than two valencies are contemplated. For example, a trispecific antibody is prepared. Tutt J. et al. Immunol. 147: 60 (1991).         (Viii) Other variants   Other variations of the humanized anti-CD11a antibody are contemplated. For example, in the treatment of cancer In order to increase the effectiveness of such antibodies, the antibodies of the invention may be used with respect to effector function. It may be desired to correct. For example, a cysteine residue is introduced into the Fc region. Thereby providing interchain disulfide bond formation in this region. The homodimeric antibody thus generated may have improved internalization capacity and / or It can increase complement-mediated cell killing and antibody-dependent cellular cytotoxicity (ADCC). Caron et al. Exp Med. 176: 1191-1195 (1992) and Shopes, B .; J. Immunol. 148: 2918-2922 (1992 ). Homodimeric antibodies with increased antitumor activity are described by Wolff et al., Callcer Re search 53: using a heterobifunctional crosslinker as described in 2560-2565 (1993) Can also be prepared. Alternatively, the antibody can be engineered to have two Fc regions. And thereby have increased complementing solubility and ADCC capacity. St See evenson et al., Anti-Cancer Drug Design 3: 219-230 (1989).   The invention also relates to chemotherapeutic agents, poisons (e.g., bacteria, molds, plant or animal derived enzymes). Elementally active poisons, or fragments thereof), or radioisotopes (i.e., radioactive Immunoconjugate containing an antibody described herein conjugated to a cytotoxic agent such as Related. Chemotherapeutic agents utilized in the generation of such immunoconjugates are described above. Have been. Enzymatically active poisons and fragments thereof that can be used are diphtheria A chain, non-binding active fragment of diphtheria toxin, exotoxin A chain Domonas aeruginosa), ricin A chain, abrin A chain, modexin A chain , Alpha Sarsin, Aleurites fordii protein, Diantin protein, Ph ytolaca americana protein (PAPI, PAPII, and PAP-S), momordica charantia Inhibitor, curcin, crotin, sapaonaria officinalis inhibitor ー, gelonin, Mitgelin, restrictocin, phenomycin, enomycin and tricosese Including The radionuclide of the nuclide is used for the production of radioconjugated anti-CD11a antibody. Available. An example is212Bi,131I,131In,90Y and186Including Re.   The conjugate of the antibody and cytotoxic agent is N-succinimidyl-3- (2-pyridyldithi All) propionate (SPDP), iminothiolane (IT), imidoester Bifunctional derivatives (such as dimethyl adipimidate hydrochloride), active esters (disc Aldehydes (like glutaraldehyde), aldehydes (like cinimidyl suberate) , Bisazo compounds (bis- (p-azidobenzoyl) hexanediamine), bisdia Zonium derivatives (such as bis- (p-diazoniumbenzoyl) -ethylenediamine ), Diisocyanates (such as tolylene 2,6-diisocyanate), and bis -Like active fluorine compounds (like 1,5-difluoro-2,4-dinitrobenzene) It is produced using various bifunctional protein coupling agents. For example, Litin The immunotoxin was prepared as described in vitetta et al., Science 238: 1098 (1987). obtain. Carbon-14-labeled 1-isothiodianatobenzyl-3-methyldiethylenetria Minpentaacetic acid (MX-DTPA) is a reference for conjugation of radionucleotides to antibodies. It is a typical chelating agent. See WO 94/11026.   In another embodiment, the antibody is a “reagent” for use in tumor pre-targeting. May be conjugated to a sceptor (such as streptavidin), where the antibody- Scepter conjugates are used to remove unbound conjugates from the circulation using clarifiers and cytotoxicity Following administration of a “ligand” (eg, avidin) conjugated to the agent (eg, a radionuclide) Administered to patients.   The anti-CD11a antibodies disclosed herein can also be prepared as immunoliposomes. . Liposomes containing antibodies are described in Epstein et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 82: 368 8 (1985); Hwang et al., Proc. Natl Acad. Sci. USA 77: 4030 (1980); and US patents Nos. 4,485,045 and 4,544,545, by methods well known in the art. Prepared. Liposomes with increased circulation time are disclosed in U.S. Patent No. 5,013,556. Disclosed within.   Particularly useful liposomes are phosphatidylcholine, cholesterol and PEG. A lipid composition comprising derivatized phosphatidylethanolamine (PEG-PE) When It can be produced primarily by the reversed-phase evaporation method. Liposomes are desirable Press through a defined pore size filter to obtain liposomes with a diameter. It is started. The Fab 'fragment of the antibody of the present invention can be used for disulfide alternating reaction. Via Martin et al. Biol. Chem. 257: 286-288 (1982). It can be conjugated to a posome. Chemotherapeutic agents (such as doxorubicin) May be arbitrarily contained in the inside of the. Gabizon et al. National Cancer Inst. 81 (19): See 1484 (1989).   The antibodies of the present invention convert prodrugs to active anticancer drugs (e.g., peptidylated (See WO 81/01145) Antibody to prodrug activating enzyme Can be used in ADEPT by combining them. For example, WO 88/073 No. 78 and U.S. Pat. No. 4,975,278.   The enzyme component of an immunoconjugate useful for ADEPT makes it more active, Act on prodrugs in such an approach to convert to cytotoxic forms Including any enzyme that can.   Enzymes useful in the method of the present invention include, without limitation, phosphoric acid Alkaline phosphatase useful for converting prodrugs containing free drugs into free drugs Arylsulfates useful for converting sulfate-containing prodrugs to free drugs Phatase; converts non-toxic 5-fluorocytosine to an anticancer drug, 5-fluorouracil Cytosine deaminase useful for converting; peptide-containing prodrugs as free drugs Seratia Protease, Sermolysin, Subtilis Useful for Converting to Of syn, carboxypeptidase and cathepsin (such as cathepsins B and L) Such proteases; useful for converting prodrugs containing D-amino acid substitutions D-alanyl carboxypeptidase: free glycosylated prodrug Carbohydrates such as .BETA.-galactosidase and neuraminidase useful for conversion into drugs Chloride-cleaving enzyme; β-lac useful for converting β-lactam derivatized drug to free drug By means of ctamases; and respectively phenoxyacetyl or phenylacetyl groups Useful for converting drugs derivatized at their amine nitrogen to free drugs. Penicillin amidases such as nicillin V amidase or penicillin G amidase Including ze. Alternatively, an enzyme, also known in the art as "abzyme", Have elementary activity Antibodies can be used to convert a prodrug of the invention to a free active drug. (See, for example, Massey, Nature 328: 457-458 (1987)). Antibody-abzyme conjugation The body may be used as described herein for delivery of the abzyme to a tumor cell population. Can be prepared.   The enzymes of the present invention are useful in the art, such as the use of heterobifunctional crosslinking reagents described above. It can be covalently linked to the anti-CD11a antibody by well known methods. Alternatively, At least an antigen of an antibody of the invention bound to at least a functionally active portion of the light enzyme Fusion proteins with a binding region can be prepared using recombinant DNA techniques well known in the art. (See Neuberger et al., Nature 312: 604-608 (1984)).   In one embodiment of the present invention, complete anti-tumor activity, e.g., to increase tumor penetration It may be desirable to use antibody fragments rather than the body . In this case, the antibody fragment was added to increase its serum half-life. It may be desirable to make changes. This can be, for example, into antibody fragments. It can be achieved by the merging of salvage receptor binding epitopes (e.g., By mutation of the appropriate region in the body fragment or within the peptide tag. Antibody fragmentation, either by merging the tops, i.e., either terminally or moderately (Eg, by DNA or peptide synthesis). October 17, 1996 See published WO 96/32478.   Salvage receptor binding epitopes generally make up the region, where Fc Any one or more amino acids from one or more loops of the domain Residues are transferred to analogous positions in the antibody fragment. More preferably, Fc domain Three or more residues from one or two loops of the in are transferred. further More preferably, the epitope is the CH2 domain (eg, of an IgG) of the Fc region. CH1, CH3, or VHArea, or one or more It is transferred to such an area. Alternatively, the epitope is the CH2 domain of the Fc region. Removed from the main and the C of the antibody fragmentLArea or VLArea or both Is transferred to.   In a most preferred embodiment, the salvage receptor binding epitope is The sequence (5 ′ to 3 ′): PKNSSMISNTP (SEQ ID NO: 16) and HQSLGTQ (sequence Turn No .: 17), HQNLSDGK (SEQ ID NO: 18) and HQNISDGK (SEQ ID NO: 19), or The antibody fragment is Fab or F (ab ')TwoVISSHLGQ (SEQ ID NO: 20) optionally further comprising a sequence selected from the group consisting of: Another most preferred In an embodiment, the salvage receptor binding epitope has the sequence (5 'to 3') : HQNLSDGK (SEQ ID NO: 18), HQNISDGK (SEQ ID NO: 19), or VISSHLGQ (sequence No. 20) and a polypeptide comprising the sequence: PKNSSMISNTP (SEQ ID NO: 16).   Covalent modifications of the humanized CD11a antibody are also included within the scope of the invention. So They can be obtained by chemical synthesis or, if applicable, the enzymatic or chemical Can be made by mechanical cutting. Other types of covalent modifications of the antibody were selected Antibody targeting by organic derivatizing agents capable of reacting with side chains or N- or C-terminal residues Is introduced into the molecule by the reaction of the functionalized amino acid residue.   Most commonly, the cysteinyl residue is a carboxymethyl or carboxamide An α-halide such as chloroacetic acid or chloroacetamide may be Reacted with roacetate (and the corresponding amine). Cysteinyl residues are also Lomotrifluoroacetone, α-bromo-β- (5-imidozoyl) propionic acid, Chloroacetyl phosphate, N-alkylmaleimide, 3-nitro-2-pyridyldis Sulfide, methyl 2-pyridyl disulfide, p-chloromercury benzoate, 2 -Chloromercury-4-nitrophenol or chloro-7-nitrobenzo-2-oxo Induced by reaction with sa-1,3-diazole.   Histidyl residues indicate that this agent is relatively specific for the histidyl side chain. It is induced by reaction with diethylpyrocarbonate at pH 5.5-7.0. Bromide Labromophenacyl is also useful; the reaction is 0.1 M cacodyl at pH 6.0. It is preferably carried out in sodium acid.   Lysinyl and amino terminal residues are reacted with succinic or other carboxylic anhydrides. Let Derivatization with these agents has the effect of reversing the charge of ricinyl residues . Another suitable reagent for derivatizing an α-amino containing residue is methylpicolin Imidate, pyridoxal phosphate, pyridoxal, borohydride trinitrate Robenzenesulfonic acid, O-methylisourea, 2,4-pentanedione Includes transaminase-catalyzed reactions with midesters and glyoxylates.   Arginyl residues include phenylglyoxal, 2,3-butanedione, Xandione, and one or several of the usual reagents of ninhydrin, with Is modified by the reaction of Derivatization of arginine residues is based on the guanidine function. High pKa requires that the reaction be performed in alkaline conditions . In addition, these reagents, like the arginine epsilon amino group, also have a lysine group. Can react with   The specific modification of the tyrosyl residue can be performed by using an aromatic diazonium compound or tetranitromethane. Features of introducing spectral labels within tyrosyl residues by reaction with tan Can be made with different interests. Most commonly, N-acetylimidizole and tet Lanitromethane forms O-acetyl tyrosyl species and 3-nitro derivatives, respectively Used to Tyrosyl residues are useful for use in radioimmunoassays. To prepare labeled proteins for125I or131Iodized using I It is.   The carboxyl side chain (aspartyl or glutamyl) is 1-cyclohexyl-3- (2-morpholinyl-4-ethyl) carbodiimide or 1-ethyl-3- (4-azoni Carbodiimides such as (a-4,4-dimethylphenyl) carbodiimide (R--N = C = N -R ') wherein R and R' are different alkyl groups. Is done. In addition, aspartyl and glutamyl residues react with ammonium ions. Upon conversion to asparaginyl and glutaminyl residues.   Glutaminyl and asparaginyl residues have the corresponding glutamyl and asparagine residues, respectively. It is often deamidated to a partyl residue. These residues are neutral or basic conditions Deamidated under Deamidated forms of these residues are within the scope of the invention.   Other modifications include hydroxylation of proline and lysine, hydroxyl group of seryl or threonyl residues. Phosphorylation, methylation of α-amino group of lysine, arginine and histidine side chains (T. E. Creighton, Proteins: Structure and Molecular Properties, W. H. Freema n & Co. , San Francisco, pp. 79-86 (1983)), acetylation of N-terminal amine, Amidation of the C-terminal carbonyl group.   Another type of covalent modification involves chemically or enzymatically coupling the antibody to the antibody. Including Kosyl. These methods are based on the fact that they can be used for N- or O-linked glycosylation. The fact that production of the antibody is not required in a host cell capable of glycosylation. Based on the coupling mode used, the sugar is (a) arginine And histidine, (b) free carboxyl groups, (c) free Such as those of the rufidryl group, (d) serine, threonine, or hydroxyproline. Such as free hydroxyl groups, (e) phenylalanine, tyrosine, or tryptophan Or (f) an amide group of glutamine. these The method is described in WO 87/05330 published September 11, 1987, and by Aplin and Wristo. n, CRC Crit. Rev. Biochem. , Pp. 259-306 (1981).   Removal of any carbohydrate moieties present on the antibody can be accomplished chemically or enzymatically. Can be achieved. Chemical deglycosylation involves the compound trifluoromethanesulfonic acid, Or requires exposure of the antibody to an equivalent compound. This treatment is based on the binding sugar (N-A Most or all except cetyl glucosamine or N-acetylgalactosamine) This results in the cleavage of the sugar, while leaving the antibody completely. Chemical deglycosylation is Hakimuddin et al., Arch. Biochem. Biophys. 259: 52 (1987) and Edge et al., Anal. . Biochem. , 118: 131 (1981). Carbohydrate moieties on the antibody Cuts are described in Thotakura et al., Meth. Enzymol. 138: 350 (1987) Can be achieved by the use of various endo- and exo-glycosidases.   Another type of covalent modification of the antibody is disclosed in U.S. Patent Nos. 4,640,835; 4,301,144; 4,670,417; 4,791,192 or 4,179,337 And various non-protein polymers such as polyethylene glycol, Binding the antigen to one of pyrene glycol or polyoxyalkylene. Prepare. B. Vectors, host cells, and recombination methods   The present invention also provides an isolated nucleic acid encoding a humanized anti-CD11a antibody, comprising the nucleic acid. The present invention also provides vectors and host cells to produce, and recombinant techniques for producing the antibodies. You.   For recombinant production of the antibody, the nucleic acid encoding it is isolated and further purified. Inserted into a replication vector for cloning (amplification of DNA) or expression. The DNA encoding the monoclonal antibody is immediately isolated and subjected to conventional methods (eg, Oligonucleotides that can specifically bind to genes encoding the heavy and light chains of the antibody (With a reotide probe). Many vectors available It is. Vector constructions generally include one or more of the following: Without limitation: signal sequence, origin of replication, one or more marker residues Genes, enhancer elements, promoters, and transcription termination sequences.         (I) Signal sequence element   The anti-CD11a antibody of the present invention can be produced not only directly and recombinantly, but also Or a signal sequence or other polypeptide which is a mature protein or polypeptide. Polypeptide with a heterologous polypeptide having a specific cleavage site at the N-terminus of the peptide May be produced as The heterologous signal sequence selected is recognized by the host cell. And processed (ie, with a signal peptidase). Native Prokaryotic host cells that do not recognize or process the anti-CD11a antibody signal sequence In the case of vesicles, this signal sequence is, for example, a prokaryotic signal sequence consisting of Selected from: alkaline phosphatase, penicillinase, lpp, or heat Qualitative enterotoxin II leader. For yeast secretion, the native signal sequence Are, for example, yeast invertase leader, α-factor leader (Saccharomyces ( Saccharomyces) and Kluyveromyces (Kluyveromy) es), acid phosphatase leader, C. ces). Albica Albicans glucoamylase leader, or WO 90/1364 6 may be substituted. In mammalian cell expression Indicates that the mammalian signal sequence is a viral secretory leader, such as herpes simplex gD. Available as well as signals.   Such a precursor region contains leading DNA in the DNA encoding the anti-CD11a antibody. Connected at the same time.         (Ii) Replication origin element   Both expression and cloning vectors contain one or more selected It contains a nucleic acid sequence that allows the vector to replicate within the host. Typically In cloning vector, this sequence is independent of the chromosomal DNA of the host. Duplicate And contains an origin of replication or an autonomous replication sequence . Such sequences are known for various bacteria, yeasts, and viruses. Step The origin of replication from Rasmid pBR322 is suitable for most Gram-negative bacteria and The μ plasmid origin is suitable for yeast and various viral origins (SV40, polio) Virus, adenovirus, VSV, or BPV) It is useful for a training vector. Generally, components of the replication origin are mammalian origins. The current vector (the SV40 origin may typically be used, but this is For the sole reason that it includes           (III) Selection gene element   Expression and cloning vectors may contain a selection gene or a selectable marker. Can be included. Typical selection genes include (a) antibiotics and other Toxins, such as ampicillin, neomycin, methotrexate, or Confer resistance to clin, (b) complement auxotrophic deficiencies, or (c) compare Complex media, such as the gene encoding D-alanine racemase against Bacillus subtilis Encodes a protein that supplies important nutrients not available from   One example of a selection scheme uses an agent to arrest growth of a host cell. Non Cells successfully transformed with the homologous gene produce proteins that confer drug resistance. And thus survive in the selection program. An example of such a dominant selection is neomycin Uses mycophenolic acid and hygromycin drugs I do.   Another example of a suitable selectable marker for mammalian cells is DHFR, thymidine kinase Ze, metallothionein-I and -II, preferably primate metallothionein Such as genes, adenosine deaminase, ornithine decarboxylase, etc. Enables the identification of competent cells that take up the CD11a antibody nucleic acid Things.   For example, cells transformed with a DHFR-selective gene may first be All transformants in a culture solution containing the tagonist methotrexate (Mtx) And identified by culturing. When using wild-type DHFR The host cell is a Chinese hamster ovary (CHO) with a deletion in DHFR activity. Cell line.   Alternatively, host cells (particularly wild-type hosts containing endogenous DHFR) can be 11a antibody, wild-type DHFR protein, and aminoglycoside 3'-phosphotran Transformation with a DNA sequence encoding another selectable marker such as spherase (APH) The transformed or co-transformed product is an aminoglycoside antibiotic such as In a culture solution containing a selective agent for a selectable marker of syn, neomycin or G418 Can be selected by growing cells. US Patent No. 4,96 See 5,199.   A suitable selection gene for use in yeast is the t gene present in the yeast plasmid YRp7. rp1 gene (Stinchcomb et al., Nature, 282: 39 ( 1979)). This trp1 gene lacks the ability to grow in tryptophan , A selection marker for a mutant strain of yeast, eg, ATCC No. 44076 or PEP4-1 Cars (Jones, Genetics, 85:12 (19 77)). The presence of the trp1 disorder in the yeast cell genome was then attributed to tryptophan. Provides an effective environment for detecting transformants that grow in the absence of DNA. same Thus, the Leu2-deleted yeast strain (ATCC 20,622 or 38,626) Complemented with a known plasmid carrying the Leu2 gene.   Furthermore, 1. The vector derived from the 6 μm circular plasmid pKD1 is Cruyvero. It can be used for transformation of Myces (Kluyveromyces) yeast. . Alternatively, an expression system for large-scale production of recombinant calf chymosin is described in K. et al. Lactis (Landis) (Van der Berg, Bio / Technology, 8: 135 (1990)). Kluybemais Industries Stable multicopy expression vector for secretion of mature recombinant human serum albumin Are also disclosed (Fleer et al., Bio / Technology, 9: 968-975 (1991)).         (Iv) Promoter element   Expression and cloning vectors are usually recognized by the host organism and contain anti-CD It contains a promoter operably linked to the 11a antibody nucleic acid. In prokaryotic hosts Suitable promoters to use include the phoA promoter, β-lactamer Enzyme and lactose promoter systems, alkaline phosphatase, tryptophan ( trp) promoter system and hybrid promoters such as the tac promoter, etc. Motor included. However, other known bacterial promoters are also suitable. You. Promoters used in bacterial systems also contain a D-encoding anti-CD11a antibody. Shine-Dalgarno operatively linked to NA. D. ) Contains an array .   Promoters are also known for eukaryotic cells. Virtually all eukaryotic genes Is an AT-rich located approximately 25-30 bases upstream of the site where transcription is initiated Region. Found 70 to 80 bases upstream of the transcription start site of many genes Another sequence that can be used is the CNCAAT region, where N is any nucleotide. Also means. At the 3 'end of many eukaryotic genes, the Bol A tail is inserted into the 3' coding sequence. There is an AATAAA sequence that can be a signal added to the 'end. Of these arrays All are properly inserted into eukaryotic expression vectors.   Examples of suitable promoter sequences for use in yeast hosts include 3-phosphoglycerate Nase or enolase, glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogena Protease, hexokinase, birubic acid decarboxylase, phosphofructokiner Ze, glucose-6-phosphate isomerase, 3-phosphoglycerate mutase, Pyruvate kinase, triose phosphate isomerase, phosphoglucose Includes promoters for isomerase and other glycolytic enzymes such as glucokinase It is.   Other yeast promoters have the added advantage that transcription is regulated by growth conditions. Those that are inducible promoters with dots include alcohol dehydrogenase 2, Isocytochrome C, acid phosphatase, degradative enzymes involved in nitrogen metabolism, Tarothionine, glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase, And the promoter region for enzymes involved in maltose and galactose utilization. is there. Suitable vectors and promoters for use in yeast expression are also E. P73,657. Yeast enhancers are also yeast promoters. -It is used advantageously.   Transcription of an anti-CD11a antibody from a vector in a mammalian host cell, for example, For example, polyoma virus, infectious epithelioma virus, adenovirus (eg, adenovirus) Virus 2), bovine papilloma virus, avian sarcoma virus, cytomegalo Ills, retrovirus, hepatitis B virus, and most preferably simian virus A promoter obtained from the genome of a virus such as irs40 (SV40), Heterologous mammalian promoters, such as actin promoters or immunoglobulins Promoters obtained from Blin promoters, and also heat shock promoters , Provided that such promoters are compatible with the host cell system. There is a condition that they are things.   The early and late promoters of the SV40 virus also contain the SV40 origin of replication It is conveniently obtained as an SV40 restriction fragment. The very early days of human cytomegalovirus The promoter is conveniently obtained as a HindIII E restriction fragment. mammalian DNA expressed using bovine papilloma virus as a vector One such system is disclosed in US Pat. No. 4,419,446. Modify this system No. 4,601,978. Herpes simplex Human β-Interface under the control of the thymidine kinase promoter from Irus Reyes et al. (Nature, 297: 598-601 (1982)). Alternatively, Rous sarcoma virus Terminal repeats can also be used as promoters.         (V) Enhancer element element   The DNA encoding the anti-CD11a antibody of the present invention is obtained from higher eukaryotes. Transcription is often increased by inserting an enhancer sequence into the vector. Known mammalian genes (globin, elastase, albumin; α-fetopro (Tein, and insulin), many enhancer sequences are known. Only Typically, however, as an example of using an enhancer from a eukaryotic cell virus Is the SV40 enhancer located on the rear side (100-270 bp) of the replication origin. Enhancer of the itomegalovirus early promoter, behind the origin of replication Eukaryotic promoters containing polyoma and adenovirus enhancers Yaniv's literature on Yinjin sequence elements that activate the promoter ( Nature, 297: 17-18 (1982)). Enha Is located 5 'or 3' to the sequence encoding the anti-CD11a antibody in the vector. Although they may be conjugated, they are preferably located 5 'to the promoter.         (Vi) transcription termination element   Eukaryotic host cells (yeast, fungi, insects, plants, animals, humans, or other multicellular organisms Expression vectors used in nucleated cells of origin also include termination of transcription and mRN. Sequences required for stabilization of A will be included. Such sequences are usually eukaryotic Or 5 ', sometimes 3' of the untranslated region of viral DNA or cDNA You can get more. These regions contain the mR encoding the anti-CD11a antibody. Nucleotide sequences transcribed as polyadenylation fragments in the untranslated region of NA Contains columns. One of the beneficial transcription termination elements is bovine growth hormone polyadenylate. Area. WO94 / 11026 and expression vectors disclosed therein Please refer to the         (Vii) Selection and transformation of host cells   In the present application, a vector for expressing or cloning DNA in a vector Suitable hosts include, as described above, prokaryotic cells, yeast, or higher eukaryotic cells. There is. Prokaryotic cells suitable for this purpose include gram-negative or gram-positive organisms. Such eubacteria, for example, Escherichia (eg, E. coli (E. coli) ), Enterobacter, Erwinia, Klebsi Ella (Klebsiella), Proteus (Proteus), Salmonella (Salmonella) (eg : Salmonella. Salmonella typhimurium, Serratia (S erratia) (eg, Serratia marcescans), and Bacilli, as well as Enterobacteriaceae such as Shigella (Example: B. Subtilis, B.I. Licheniformis (E.g., B.B.I. disclosed in DD 266,710 issued on Apr. 12, 1989). Licheniformis (41P)), Pseudomon as) (Example: P. Aeruginosa) and Streptomyces (Streptom) yces). Other strains, such as E. coli B, E. coli. coli X177 6 (ATCC 31, 537); coliW3110 (ATCC27,3 25) is also suitable, but one of the preferred E. coli cloning hosts is , E .; coli 294 (ATCC 31, 446). These are not limiting, but exemplify Is what you do.   In addition to prokaryotic cells, eukaryotic microbes such as filamentous fungi or yeast also have anti-CD Suitable as a host for cloning or expression of a vector encoding the 11a antibody . Saccharomyce cerevisiaes or baker Known as yeast strains, they are the most commonly used of lower eukaryotic host microorganisms. It is. However, many other genera, species, and strains are available and Are also beneficial, for example, Schizosaccharomyces pom be); Kluyveromyces host (eg, K. Lactis , K .; Fragilis (ATCC 12,424); Bulgarix ( bulgaricus) (ATCC 16,045); Wickeramii (A) TCC 24, 178); Waltii (ATCC 56,500), K . Drosopilarum (ATCC 36, 906); Thermoto ・ Relance (thermotolerans) and K.K. Marxianus); Yarrowia (EP402,226); Pichia pastoris (Pichia pastoris) (EP183,070); Candida; Trichoderma Esia (Trichoderma reesia) (EP244, 234); Neurosporaq Lassa (Neurospora crassa); Schwanniomyces (example) : Schwanniomyces occidentalis ); And filamentous fungi (eg, Neurospora, Penicillium) llium), Trypocladium, and Aspergis llus) host (eg, A. Nidulans, and A. Niger) is there.   Suitable host cells for expressing glucosylated anti-CD11a antibodies are Derived from spore organisms. Examples of invertebrate cells include plant and insect cells. Numerous baculovirus strains and variants, and Spodoptera frugiperda (Spo doptera frugiperda (caterpillar), Aedes aegypti (Aedes aegypti) ) (F), Aedes albopictus (f), Drosov Drosophila melanogaster (Drosophila), and Corresponding permissive insect hosts from hosts such as Bombyx mori cell Have been identified. Numerous transfection virus strains such as autographa L-1 mutant of Refornica (Autographa californica) NPV and Bombi Bm-5 strain of Bombyx mori NPV is available and such According to the present invention, a virus can be used as the virus of the present application, Especially for transfection of Spodoptera frugiperda cells Can be used for   Cotton, corn, potato, soybean, petunia, tomato, and tobacco Can be used as a host.   However, cells of spinal cord organisms are of most interest, Propagation by culture (tissue culture) has become a routine method. Beneficial mammalian host Examples of cells include monkey kidney CV-1 strain (COS-7) transformed with SV40. ATCC CRL1651); human embryonic kidney strain (293, or in suspension culture). A subclone of expanded 293 cells, Graham et al. Gen. Viro l. 36:59 (1977)) Baby hamster kidney cells (BHK, ATCC CCL10); Chinese hamster ovary cells / -DHFR (CHO, Url aub et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 77: 4216 ( 1980)); mouse Sertoli cells (TM4, Mather, Biol. Rep rod. 23: 243-251 (1980)); monkey kidney cells (CV1 ATC) CCCL70); African green monkey kidney cells (VERO-76, ATCC C RL-1587); human cervical cancer cells (HELA, ATCC CCL2); dog kidney Spleen cells (MDCK, ATCC CCL34); buffalo rat liver cells (BR L3A, ATCC CRL 1442); human lung cells (W138, ATCC C CL75); human liver cells (HepG2, HB8065); mouse mammary adenocarcinoma (MM T060562, ATCC CCL51); TRI cells (Mather et al., An) nal. N. Y. Acad. Sci. 383: 44-68 (1982)); MR C5 cells; FS4 cells; and a human hepatoma cell line (HepG2).   The host cell is an expression or cloning vector for producing the anti-CD11a antibody. To induce a promoter, select transformants, or In a normal nutrient medium modified appropriately to amplify the gene encoding the sequence Cultured in         (Viii) Culture of host cells   The host cells used to produce the anti-CD11a antibodies of the invention may be in various media. Can be cultured. Commercially available media such as Ham F10 (Sigma ), Minimum Essential Medium (MEM) (Sigma), RPMI-1640 (Sigma), and Dulbecco's modified Eagle's medium ((DMEM), Sigma) etc. cultures the host cells Suitable to do. Further, Ham et al. (Meth. Enz. 58:44 (197 9)), Barnes et al. (Anal. Biochem. 102: 255 (198 0)), U.S. Patent Nos. 4,767,704; 4,657,866; 4,927, 762; 4,560,655; or 5,122,469; WO90 / 03Z 130; WO 87/00195; or as described in U.S. Patent No. Re 30,985. Any of these can be used as a medium for the host cells. These cultures Hormone and / or other growth factors (eg insulin , Transferrin, or epidermal growth factor), salts (eg, sodium chloride, Lucium, magnesium, and phosphate), buffers (eg, HEPES), Nuku Leotide (eg, adenosine and thymidine), antibiotics (eg, gentamicin) (Trademark) drug), trace elements (absent normally at final concentrations in the micromolar range). Supplemented with glucose or an equivalent energy source. You may. Any of the other necessary supplements known to those skilled in the art, at the appropriate concentration Can be included. Culture conditions such as temperature and pH depend on the host cells selected for expression. Used previously and will be apparent to those skilled in the art.         (Ix) Purification of anti-CD11a antibody   Using recombinant techniques, the antibody can be cultured intracellularly, in the periplasmic space, or directly. It can be produced so as to be secreted into the ground. Producing antibodies intracellularly If so, the first step is to remove particulate debris, i.e. host cells or lysed fragments, e.g. Remove by centrifugation or ultracentrifugation. Carter et al. Are secreted into the periplasmic space of E. coli A method for isolating antibodies is described (Bio / Technology 10: 163-). 167 (1992)). Briefly, the cell paste was washed with sodium acetate (pH 3 . 5) in the presence of EDTA and phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF) so Thaw for about 30 minutes. Cell debris can be removed by centrifugation. Antibodies are secreted into the medium In some cases, supernatants of such expression systems are generally first prepared from commercially available proteins. White matter concentration filters, such as Amicon or Millipore Pellicon ultrafiltration units Use and concentrate. Protease inhibitors such as PMSF for any subsequent steps Can inhibit proteolysis and contain foreign contaminants, including antibiotics Quality growth may be prevented.   The antibody composition prepared from the cells is, for example, hydroxyapatite chromatograph. Utilize fee, gel electrophoresis, dialysis, and affinity chromatography And affinity chromatography is preferred. It is a refining technology. The suitability of Protein A as an affinity ligand is Depends on the Fc region species and isotype of any immunoglobulin present in the antibody. Exist. Using protein A to base human γ1, γ2, or γ4 heavy chains Antibodies can be purified (Lindmark et al., J. Am. Immunol. M eth. 62: 1-13 (1983)). All mouse isotypes and human For γ3, protein G is recommended (Guss et al., EMBOJ. 5 : 15671575 (1986)). Matrix with affinity ligand The matrix is often: agarose, but may be other matrices. machine Stable matrices such as controlled pore glass or poly (styrenedivinyl) Nyl) benzene, etc., have higher flow rates and shorter times than those performed on agarose. Process time. Antibody is CHIf you have three regions, Bakerbon dABX ™ resin (JT Baker, Phillipsburg, N J) is useful for purification. Other techniques for protein purification, such as ion exchange columns, Tanol precipitation, reverse phase HPLC, chromatography on silica, anion or Is heparin SEP on cation exchange resin (eg polyaspartic acid column) HAROSE ™ chromatography, chromatofocusing, SDS- Fractionation by PAGE, ammonium sulfate precipitation, etc. is also possible depending on the antibody to be recovered. .   Following the preliminary purification step, a mixture comprising the antibody of interest and a contaminant With an elution buffer having a pH between 2.5 and 4.5, preferably at a low salt concentration (eg, about Low pH Hydrophobic Interaction Chromatograph for Use at 0-0.25M Salt) I put it on.   C. Formulation   Antibodies of the desired degree of purification and, where appropriate, a physiologically acceptable carrier, excipient, or For storage, in the form of a lyophilized formulation or aqueous solution by mixing a stabilizing agent A therapeutic antibody formulation (Remington's Pharmaceutical) ical Sciences, 16th edition, Osol, A .; Edit, (1980)). Acceptable carriers, excipients, or stabilizers are used at the dosages and concentrations employed. It is not toxic to the consumer and is not phosphate, citrate, or other organic Buffers such as acids; antioxidants containing ascorbic acid and methionine; preservatives (eg For example, octadecyldimethylbenzylammonium chloride; hexamethonium chloride; Benzalkonium chloride, benzethonium chloride; phenol, butyl or ben Zyl alcohol: alkyl paraben such as methyl or propyl paraben; Cole; resorcinol; cyclohexanol; 3-pentanoe M-cresol); low molecular weight (less than about 10 residues) polypeptide; serum Proteins such as albumin, gelatin or immunoglobulin; polyvinylpyrrolidone Hydrophilic polymers such as glycine, glutamine, asparagine, histidine, and al Amino acids such as ginine and lysine; monosaccharides, disaccharides, Course, mannose, or other carbohydrates containing dextrin; Sugars such as sucrose, mannitol, trehalose or sorbitol; Salt forming counterions such as chromium; metal complexes (eg, Zn-protein complexes); and / or T WEEN ™, PLURONICS ™, or polyethylene glycol (PEG) and other nonionic surfactants.   The formulation herein may also include more than one active compound required for the particular indication being treated , Preferably those having complementary activities that do not adversely affect each other. You may go out. For example, it may be desirable to further provide an immunosuppressant Absent. Such molecules are suitably combined in amounts that are effective for the intended purpose. Let it exist.   The active ingredient may also be prepared by, for example, coacervation or interfacial polymerization. They may be incorporated into black capsules, but in this case, In a rug delivery system (eg, liposomes, albumin microparticles, microemulsions) Emulsion, nano-particles, and nanocapsules) or macroemulsion. Hydroxygel cellulose or gelatin-microcapsules and poly -(Methyl methacrylate) microcapsules. Such technology is called Re Mington's Pharmaceutical Sciences, 16 Edition, Osol, A .; Edited, (1980).   Formulations for use in in vivo administration must be sterile. This is a sterile filtration membrane Achieved immediately by filtration through.   Sustained-release preparations may be prepared. Suitable examples of sustained release include solid hydrophobic Include semi-permeable matrices containing antibodies made of conductive polymers, such as It takes the form of shaped articles such as films and microcapsules, for example. Lasting Examples of release matrices include polyesters, hydrogels (e.g., poly (2-hydr) Roxyethyl-methacrylate) or poly (vinyl alcohol)), polylactic acid (U.S. Pat. No. 3,773,919), L-glutamic acid and γ-ethyl-L-glu Tamic acid copolymer, non-degradable ethylene vinyl acetate, degradable lactic acid-glyco Copolymers such as Lupron Depot ™ (lactic acid-glycol) Injectable microparticles comprising an acid copolymer and leuprolide acetate))), and poly-D -(-)-3-hydroxybutyric acid is included. Ethylene-vinyl acetate and milk Polymers such as acid-glycolic acid enable release of molecules for over 100 days In contrast, some hydrogels release proteins for shorter periods of time. Cap If cellular antibody remains in the body for a long period of time, as a result of exposure to moisture at 37 ° C They denature or aggregate, resulting in loss of biological activity and altered immunogenicity May occur. A rational strategy to stabilize according to the mechanism involved was invented sell. For example, the mechanism of aggregation is the formation of intermolecular SS bonds by thio-disulfide exchange. If it is discovered that it is forming, modify sulfhydryl residues or use acidic solutions. Freeze-drying, adjusting the water content, using appropriate additives, Stability can be achieved by developing a polymer matrix composition. is there.   D. Non-therapeutic use of antibodies   The antibodies of the present invention can be used as affinity purification vehicles. This In this method, the solid phase such as Sephadex resin or filter paper The body is immobilized using methods well known in the art. Immobilized antibody Is contacted with a sample for purification containing the CD11a protein (or a fragment thereof). The support is made of a suitable material that removes substantially all substances other than the CD11a protein in the sample. After washing with a solvent, CD11a is bound to the immobilized antibody. Finally support The body may be exposed to other suitable solvents that release CD11a from the antibody, such as glycine buffer. , PH 5.0.   Anti-CD11a antibodies may also be used in diagnostic assays for the CD11a protein, such as its generation. Could be useful in detecting the current in special cells, tissues, or serum is there.   In diagnostic applications, the antibody will be labeled with a detectable moiety. Less than Numerous labels are available that can be classified into the following categories:     (A)35S,14C,125I,ThreeH, and131Radioisotopes such as I. For example Current Protocol in Immunology (Vol. 1, 2 Vol., Edited by Colligen et al., Wiley-Interscience, New York, New York, Pubs. (1991)). Thus, antibodies can be labeled with radioisotopes, and radioactivity can be Can be measured using a counter.   (B) fluorescent labels such as rare earth chelates (eg europium chelates) or Fluorescein and its derivatives, Rhodamine and its derivatives, Dansyl, Lissami , Phycoerythrin, and Texas Red are available. Fluorescent labels For example, the above Current Protocol in Immuncolo gy can be conjugated to an antibody. Fluorescence is firefly It can be quantified using a light meter.   (C) Various enzyme-substrate labels are available and are described in U.S. Patent No. 4,275,1. 49 provides reviews on some of these. This enzyme is commonly used Catalyze chemical changes in chromogenic substrates that can be measured by various techniques . For example, the enzyme may catalyze a color change in the substrate, which is measured spectrophotometrically. It is possible to specify. Alternatively, the enzyme alters the fluorescence or chemiluminescence of the substrate. You may let it. Techniques for quantifying the change in fluorescence are described above. Chemiluminescent substrates Electrically excited by a chemical reaction and then measurable (eg with a chemiluminescence meter) Or emit energy to the fluorescent receptor. Examples of enzyme labels include Luciferase (eg, firefly luciferase, bacterial luciferase; (License number 4,737,456), luciferin, 2,3-dihydrophthalazinedio , Malate dehydrogenase, urease, horseradish peroxida Such as peroxidase such as HRPO, alkaline phosphatase, β- Lactosidase, glucoamylase, lysozyme, saccharide oxidase (eg For example, glucose oxidase, galactose oxidase, and glucose-6 -Phosphate dehydrogenase), heterocyclic oxidase (eg, Urica And xanthine oxidase), lactoperoxidase, microperoxy And the like. Techniques for coupling enzymes to antibodies are described by O'Sullivan et al. For the preparation of enzyme-antibody conjugates for use in enzyme immunoassays of (Methods in Enzym. Edited by J. Langone & H. Va n Vunakis; Academic Press, New York, 73 147-1616 (1981)).   Examples of enzyme-substrate combinations include, for example:   (I) Horseradish peroxidase (HRPO) and peracid as substrate Hydrogen peroxide; wherein hydrogen peroxide is a dye precursor (for example, orthophenylenediamine ( OPD) or 3,3 ', 5,5'-tetramethylbenzidine hydrochloride ( Oxidizes TMB));   (Ii) Alkaline phosphatase (AP) and Parani as chromogenic substrate Trophenyl phosphate; and   (Iii): β-D-galactosidase (β-D-Gal) and chromogenic substrate (Eg, p-nitrophenyl-β-D-galactosidase) or a fluorogenic substrate 4-methylumbelliferyl-β-D-galactosidase (4-methylumbell iferyl-β-D-galactosidase).   Numerous other enzyme-substrate combinations are also available to those skilled in the art. these A general review includes U.S. Patent Nos. 4,275,149 and 4,318,9. See 80.   Sometimes the label is conjugated indirectly to the antibody. The skilled person has various skills to achieve this. You will know the art. For example, antibodies are available for biotin and the labels Avidin can be conjugated to any of the three broad categories. It is possible, and vice versa. Biotin selectively binds to avidin, thus The label can be conjugated to the antibody by this indirect method. Or In order to achieve indirect conjugation between the label and the antibody, the antibody is converted to a small hapten (eg, Digoxin) and one of the different types of labels described above is anti- Conjugate to a hapten antibody (eg, anti-digoxin antibody). Therefore, with the labeled antibody Is achieved indirectly.   In another aspect of the invention, the anti-CD11a antibody need not be labeled, Can be detected using a labeled antibody that binds to the CD11a antibody It is.   The antibodies of the present invention can be prepared by any known assay method, such as competitive binding assays, Use in contact and indirect sandwich and immunoprecipitation assays (Zola, Monoclonal Antibodies: A Ma natural of Technologies, pp. 147-158 (CRC Pre ss, Inc. 1987)).   Competitive binding assays use labeled standards for binding to limited amounts of antibody. Quality depends on the ability to compete with the test sample analyte. CD11a in the test sample The amount is inversely proportional to the amount of standard that binds to the antibody. Determine the amount of standard to bind Antibodies are generally insolubilized before or after competition to facilitate The reference material and the analyte bound to the Provide convenient separation.   The sandwich assay uses two antibodies, each with the protein to be detected. It can be linked to immunogenic portions or epitopes of different quality. Sandwich In a bioassay, the test sample analyte is a primary antibody immobilized on a solid support. Bound by the body, after which the second antibody binds to the analyte, and thus becomes insoluble Form a complex. See, for example, U.S. Patent No. 4,376,110. No. The two antibodies may themselves be detectable and labeled (direct sandwich Assay) or using an anti-immunoglobulin antibody labeled with a detectable moiety It is also possible (indirect sandwich assay). For example, a sandwich One type of assay is an ELISA assay, where a detectable Part is an enzyme. In the case of immunohistochemistry, the tumor sample may be fresh or Frozen or embedded in paraffin, for example, formalin May be fixed by a preservative such as   Antibodies can also be used in in vivo diagnostic assays. Typically, Antibodies are radionuclides (eg,111In,99Tc,14C,131I,125I,ThreeH,32P, Or35S) and the location of the tumor using immunoscintigraphy It can be attached.   E. FIG. Diagnostic kit   As a matter of convenience, the antibodies of the present invention require a kit, i.e., a predetermined amount of reagents. Packaged together with instructions for performing the diagnostic assay. Can be provided. If the antibody is labeled with an enzyme, Will include the substrates and cofactors required by the enzyme (eg, detection A substrate precursor that provides a possible chromophore or fluorophore). In addition, stabilizers and buffers ( It is possible to include other additives such as eg block buffer or lysis buffer). . Substantially optimize assay sensitivity by greatly varying the relative amounts of various reagents Specify the concentration in the solution for the reagent to be used. In particular, the reagents should Containing the excipients that provide the desired reagent solution, usually a lyophilized dry powder. I can do it.   F. Therapeutic uses for antibodies   The anti-CD11a antibody of the present invention can be used for various LFA-1-mediated diseases described in the present application. It has been considered so that it can be used to treat.   The anti-CD11a antibody can be administered by any suitable means, This includes parenteral, subcutaneous, intraperitoneal, intrapulmonary, and intranasal administration, but In the case of effective immunosuppressive treatment, intralesional administration (perfusion application or (Including contacting the graft with the antibody prior to transplantation). Parenteral note Entry includes intramuscular, intravenous, intraarterial, intraperitoneal, or subcutaneous administration. Furthermore, The anti-CD11a antibody is suitably administered by pulse infusion, particularly to reduce antibody Do it. Preferably, dosing is by injection, most preferably intravenous or subcutaneous Injections, which may be medications, short-term or chronic More dependent.   In the case of disease prevention or treatment, the appropriate dosage of antibody will depend on the type of disease being treated, Severity and history of the disease, as defined in, whether administered for prophylactic or therapeutic purposes Or prior treatment, the patient's clinical history, and response to antibodies, and It will also depend on the prudent care of a doctor. Antibodies are suitably administered once or in series. Administered to the patient throughout the treatment.   Depending on the type and severity of the disease, for example, one or more separate administrations Thus, or by continuous infusion, about 1 μg / kg to 15 mg / kg ( For example, 0.1 to 2.0 mg / kg) of antibody may be It is a candidate. A typical daily dosage might range from about 1 μg / kg to 100 mg / kg. In the kg range or higher, this depends on factors such as those mentioned above. a few days If the drug is administered repeatedly for a longer period of time, Treatment is sustained until well controlled. However, other medications may be beneficial Maybe. Treatment progress is easily monitored by conventional techniques and assays. It is. An exemplary dosing regimen is disclosed in WO 94/04188.   Antibody compositions are formulated, dosed, and administered according to the desired medical practice. . Factors to consider in this regard include the particular disease being treated, the particular mammal being treated. Type, clinical condition of individual patient, cause of disease, delivery site of drug, administration method, The schedule of administration and other factors known to the medical practitioner are included. Administer The "therapeutically effective amount" of an antibody will depend on such considerations, It also prevents, ameliorates or treats LFA-1-mediated diseases (rheumatism). Sex Treatment of arthritis, reduction of inflammatory response, induction of tolerance of immunostimulants, host transplantation Prevent immune reactions that may result in rejection or vice versa, or (Including stretching)). Such an amount is preferred Or toxic to the host or more significantly sensitizes the host to infection Lower than the amount.   Antibodies do not have to be, but they can help prevent disease in question. Is suitably formulated with one or more agents currently used for treatment. For example, in rheumatoid arthritis, antibodies are combined with glucocorticosteroids. Given together. In addition, T cell receptor peptide therapy should Adjunct therapy to prevent clinical signs of epidemic encephalomyelitis. Graft In some cases, the antibody is combined with an immunosuppressant, such as cyclosporin A, as defined above. Administered together or separately to modulate the immunosuppressive effect. Or, Or, additionally, a VLA-4 antagonist or other LFA-1 antagonis May be administered to a mammal suffering from an LFA-1-mediated disease. Other like this The effective amount of the drug will depend on the amount of anti-CD11a antibody present in the formulation, the disease to be treated or Depends on the type of treatment and other factors discussed above. These are generally the same Used in the dosage form and by the route of administration as used above, or Used at about 1-99% of the given dosage.   G. FIG. Product   In another aspect of the present invention, the composition comprises a substance that is useful for treating the above-mentioned diseases. An article of manufacture is provided. The product comprises a container and a label. Proper content Instruments include, for example, bottles, vials, syringes, and test tubes. This container And may be formed from various substances such as glass and plastic. This container Holds a composition that is effective in treating the condition and also provides a sterile access port. (E.g., container can be pierced with a needle for subcutaneous tissue injection) An intravenous solution bag or vial having a stopper). In the composition The active ingredient is an anti-CD11a antibody. Labels on or attached to containers Indicates that the composition is used for treating the condition of choice. The product further second A pharmaceutically acceptable buffer, such as phosphate buffered saline, Including those containing Ringer's solution and dextrose solution You may have. Furthermore, other substances that are desirable from a commercial or user standpoint And may include other buffers, diluents, filters, needles, And package inserts containing instructions for use.         Example   Production of humanized anti-CD11a antibody   This example demonstrates that a mouse anti-human CD11a monoclonal antibody, MHM24 ( Hildreth et al., Eur. J. Immunol. 13: 202-208 (1 983)), and describes the biological efficacy in vitro. of mouse In previous studies on MHM24, like other anti-CD11a antibodies, Have been shown to inhibit T cell function (Hildreth et al., J. Immu. nol. 134: 3272-3280 (1985); Dougherty et al., E ur. J. Immunol. 17: 943-947 (1987)). Mouse And humanized MAbs both bind human T cells to human keratinocytes. , Which is a model for the effective response of MHC class II antigens Prevents proliferation of T cells in response to non-self lymphocytes in the lymphocyte response (MLR) (McCabe et al., Cellular Immunol. 150: 364-). 375 (1993)). However, the mouse (Reimann et al., Cyto metry, 17: 102-108 (1994)), and humanized MAbs Except for chimpanzee CD11a, it is cross-reactive with nonhuman primate CD11a. Did not respond. Obtaining humanized MAbs useful for preclinical studies in rhesus monkeys In CDR-H2, which is one of the complementarity determining regions in the variable heavy chain region, Human binding to rhesus monkey CD11a by replacing four residues The converted MAb was re-manipulated. Cloning of the Rhesus monkey CD11aI-region And molecular modeling were performed on rhesus monkey C for lysine residues in the human CD11aI-region. Changes to a glutamine residue in the D11aI-region were detected in mouse and humanized MA. This suggested that bs did not bind to rhesus monkey CD11a.   Materials and methods   (A) Construction of humanized F (ab ') s   Mouse anti-human CD11a MAb, MHM24 (Hildreth et al., Eu r. J. Immunol. 13: 202-208 (1983); h et al. Immunol. 134: 3272-3280 (1985)) And sequenced. Useful for mutagenesis and also in E. coli Phagemid pEMX1 to obtain a plasmid for expressing F (ab) Was built. pB0475 (Cunningham et al., Science 243) 1330-1336 (1989)). 0, pEMX1 was humanized κ-subgroup I light chain and humanized A DNA fragment encoding a subgroup III heavy chain (VH-CH1); Contains the phosphatase promoter and the Shine-Dalgarno sequence, but Both of them are pAK, another pUC119-based plasmid previously described. 2 (Carter et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89: 4285 (1992)). Unique Spel restriction site It is inserted between DNAs encoding the light chain and heavy chain of F (ab).   To construct the first F (ab) variant of humanized MHM24, site-specific Mutagenesis (Kunkel, Proc. Natl. Acad. Sci. USA)  82: 488 (1985)) with pEMX1 containing deoxyuridine. Performed on template; all six CDRs were changed to MHM24 sequence. other All of the F (ab) variants were constructed from the F (ab) -1 template. Double strand and one To prepare the single-stranded DNA, the plasmid was transformed into the E. coli strain XL-1 Blue (St ratagene, San Diego, CA). Each change For variants, use the dideoxynucleotide method for both light and heavy chains. And completely sequenced (Sequenase, US Biochemical Co.). rp. ). The plasmid was transformed into E. coli strain 16C9, a derivative of MM294. Then, spread on an LB plate containing 5 μg / ml carbenicillin, A single colony was selected for work. This single colony was 100 μg / ml The cells were grown at 37 ° C. for 5-8 hours in 5 ml of LB medium containing cillin. This 5m Culture of l The product was added to 500 ml of AP5-100 μg / ml carbenicillin and 4 liters were added. And grown in a baffled shake flask at 37 ° C. for 16 hours. APS medium is 1.5 g glucose, 11.0 Hycase SF, 0.6 g yeast extract ( Guaranteed), 0.19 g MgSO4 (anhydrous), 1.07 g NH4C1, 3.7 3 g KCl, 1.2 g NaCl 120 ml 1 M triethanolamine pH 7.4, added to 1 L of water and containing 0.1 μm Sealken filter. The solution was sterilized through a luter.   Cells are harvested by centrifugation at 3000 xg in IL centrifuge bottles (Nalgene) And the supernatant was removed. After 1 hour of freezing, the pellet was cooled to 25 ml in 10 m Resuspended in M MES-10 mM EDTA, pH 5.0 (buffer A). 2 50 μl of 0.1 M PMSF (Sigma) was added to inhibit proteolysis and 10 mg / Ml of hen egg white lysozyme stock at 3.5 ml / well to add to the bacterial cell wall. Assisted dissolution. After gently shaking on ice for 1 hour, the samples were weighed at 40,000 × g. Centrifuge for 15 minutes. The supernatant was made up to 50 ml with buffer A and equilibrated with buffer A 2 Loaded on ml DEAE column. The flow-through was adjusted to the protein equilibrated with buffer A. G-Sepharose CL-4B (Pharmacia) column (0.5 ml bed volume) Volume). The column was washed with 10 ml of buffer A and 3 ml of 0.3 M Eluted with Syn, pH 3.0 and placed in 1,25 ml 1 M Tris, pH 8.0. F (ab) is then buffered into PBS using Centricon-30 (Amicon) The solution was exchanged, and the final volume was concentrated to 0.5 ml. SDS for all F (ab) -Check the purity by running a PAGE gel and also by electrospray mass spectrometry The molecular weight of each variant was confirmed.   (B) Construction of chimeric and humanized IgG   A chimeric (chIgG1) human IgG1 variant and a humanized (HuIgG1 1) For MHM24, the appropriate mouse or humanized variable light and heavy chains ( F (ab) -8, Table II) regions, each described previously as a pRK vector. (Gorman et al., DNA Protein Eng. Tech. 2) : 3 (1990)). Of HuIgG1 light and heavy chains Site-directed mutagenesis of plasmids (Kunkel, Proc. tl. Acad. Sci. USA 82: 488 (1985)). Nin-scan mutants were constructed. The DNA sequence of each mutant was dideoxy Confirmed by nucleotide sequencing.   High efficiency method (Graham et al., J. Gen. Virol. 36:59 (1977) Gorman et al., Science, 221: 551 (1983)). The human fetal kidney transformed with the heavy and light chain plasmids by adenovirus 293 (Graham et al., J. Gen. Virol. 36:59 (1 977)). Replace the medium with serum-free medium for 5 days Collected. Using Protein A-Sepharose CL-4B (Pharmacia) Antibodies were purified from the pool of supernatants. The eluted antibody was used for Centricon-30 (A) The buffer solution was exchanged with PBS using Mikon), concentrated to 0.5 ml, and milled. Filtered with x-GV (Millipore) for sterilization and stored at 4 ° C.   Antibody concentrations were determined in a total Ig-binding ELISA. Humanized anti-p for reference 185HERIgG1 (Carter et al., Proc. Natl. Acad. Sci. . USA 89: 4285 (1992)) determined by amino acid composition analysis. did. 1 μg / ml goat anti-human IgG was added to each well of a 96-well plate. F (ab ')Two(Cappel Laboratories, Westches ter, PA) at 4 ° C. for 24 hours. Dilute the purified antibody and duplicate And added to the coated plate. After 1.5 hours incubation, play Washed with PBS-0.02% Tween20 and diluted 1: 2000 Sladish peroxidase conjugated sheep anti-human IgGF (ab ')TwoAdd I got it. After a 1.5 hour incubation, the plate is washed and 0.1 ml of 0 . 2 mg / ml o-phenylenediamine dihydrochloride-0.01% peroxide Hydrogen-PBS was added. After 10 minutes, the reaction was stopped with 2M sulfuric acid and 490 nm 0. D. Was measured.   (C) Cloning of the rhesus monkey CD11aI-region   Using RT-PCR and primers derived from the human CD11a DNA sequence, The DNA sequence of the I region of Gesar was obtained. Simply put, Fast Track m Approximately 10 mRNA was prepared using an RNA purification kit (Invtorgen).7No Mosquito It was isolated from Gesar lymphocytes. 10 μg of mR using MuLV reverse transcriptase NA was reverse transcribed. The first-strand cDNA was then converted to 40 using the following primers: Amplified in cycles of PCR:   5'-CACTTTGGATACCGCGTCCTGCAGGT-3 '(forward) (SEQ ID NO: 21), and   5-CATCCTGGCAGGTCTGCCTTCAGGTCA-3 '(reverse direction ) (Sequence recognition number: 22).   Agarose gel electrophoresis shows a single band of the expected size from the PCR reaction. Purified. Digest the PCR product with the restriction enzyme Sse8387I (Takara) and It was ligated to a plasmid containing human CD11a digested with restriction enzymes. Human CD11a distribution There are two Sse8387I sites in the row, one on either side of the I-region. The resulting plasmid was human CD1 in which the human I-region was replaced with the rhesus monkey I-region. Encodes a chimera consisting of 1a. DNA sequence analysis shows that It was found that there was a difference of 5 amino acids between the two. One is the N-terminus of the I-region On the region side (Thr59Ser), the other four were within the I-region itself: Va1133Ile, Arg189Gln, Lys197G1u, and Va13 08A1a (FIG. 2).   (D) FACScan content of binding of F (ab) and IgG to Jurkat cells Analysis         For humanized and control antibodies, PBS-0.1% BSA-10m M serially diluted with sodium azide, 106Jerkat T-cell Aliquots were incubated at 4 ° C. for 45 minutes. Wash cells, then Fluorescein conjugated goat anti-human F (ab ')Two(Organon Tekni ka, Westchester, PA) at 4 ° C for 45 minutes. I did. The cells are washed and FACScan (Becton Dickinson, (Mountain View, CA). 8 × 10ThreeCell list Gated with the front light scatter versus the side light scatter, Dead cells and debris were excluded.   (E) Apparent KdSaturated bonds to determine s   Iodo-Gen (Pierce, Rockford, IL) Radiolabeled antibodies were prepared as indicated. 50 μg antibody and 1 m Ci's125I (DuPont, Wilmington, DE) to each tube And incubated at 25 ° C. for 15 minutes. Radiolabeled protein The quality was determined using Hank's balanced salt solution containing 0.2% gelatin (HBSS, Life Te). (e.g., PD-Chnologies, Grand Island, NY). Using 10 columns (Pharmacia, Uppsala, Sweden), the remaining Free liberation125Purified from I.   Lymphocyte separation medium (LSM, Organon Teknika, Durham , NC) were used according to the manufacturer's instructions and mononuclear cells were obtained from two donors. And purified from heparin-treated human peripheral blood. Blood is 25 at 400 xg for 40 minutes Centrifuge at 0 ° C without brake. Collect cells at the interface of LSM and plasma, then Resuspended in HBSS-0.2% gelatin.   Heparin treatment recovered from two rhesus monkeys by dextran precipitation Lymphocytes were purified from the peripheral blood. Blood is 3% dextra in an equal volume of PBS Diluted with T500 (Pharmacia) and left at 25 ° C. for 30 minutes to precipitate. . After the precipitation, the cells remaining in the supernatant are collected and centrifuged at 400 × g for 5 minutes to precipitate the cells. I let you go. The remaining erythrocytes were subjected to two cycles of distilled water and 2 × HBSS. Removed by hypotonic dissolution. After lysis of the red blood cells, the cells are washed with PBS and And resuspended in HBSS-0.2% gelatin.   The affinity of the antibody was determined for peripheral blood mononuclear cells (mouse MHM24 and HuIgG1), Indicates saturation using any of rhesus monkey lymphocytes (MHM23, RhIgG1). Determined by binding. In each assay, radiolabeled antibodies were Sets were serially diluted with HBSS-0.2% gelatin. Non-specific binding is best Serially dilute and add 500 nM final concentration of homologous unlabeled antibody in duplicate It was decided by that. Human or rhesus monkey lymphocytes per well Added to the plate in a volume of 170 μl. Plates are placed on an orbital plate shaker for 2 hours. Incubated for hours at room temperature. After incubation, SKATRON Harvest using a cell harvester (Lier, Norway), 0.25% Washed 10 times with PBS containing gelatin and 0.1% sodium azide. Next The sample was an LBK Wallac GammaMaster gamma counter. -(Gaitherburg, MD) for 1 minute. Data every minute From the counts of the above, it was converted to nanomolar concentration, and then Optimization (binding vs. total)d(App) values were determined.   (F) Keratinocyte monolayer adhesion assay   Normal human epithelial keratinocytes (Clonetics, San Diego, CA) was removed from the culture flask with trypsin-EDTA, centrifuged, and lymphocytes Assay medium (RPMI1640 (GIBCO) -10% fetal calf serum-1% 5x10 in nisin / streptomycin)FiveResuspend at a concentration of viable cells / ml did. An aliquot of 0.1 ml / well is then placed in a flat bottom 96-well plate. Cultured overnight; interferon-gamma (Genentech, South) San Francisco, CA) at 100 units / well and add the appropriate Stimulated the well.   Jurkat cell clone E6-1 (ATCC, Rockville, MD) Or purified rhesus monkey lymphocytes (see MLR method) at 20 μg / ml Calcein AM (Molecular Probe, Eugene, O.) R) for 45 minutes at 37 ° C. After washing three times with lymphocyte assay medium, 1 × 10 Jurkat or rhesus monkey lymphocyte cells6Resuspend in cells / ml, Incubated with serially diluted antibodies at 4 ° C. for 30 minutes. Kera After removing the medium from the monolayer of Tinocyte, 0.1 ml / well of labeled cells was added. And incubated at 37 ° C. for 1 hour. 0.2 ml / well / well Non-adherent cells were removed five times by washing with a lymphocyte medium at 37 ° C. five times. Cyto Measure fluorescence using fluor2330 (Millipore, Bedford, MA). Specified.   Rhesus monkey-human, comprising human CD11a with rhesus monkey I-region Chimeric CD11a (Rh / HuCD11a) was transformed by site-directed mutagenesis (Ku nkel, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 82: 488 (1 985)), a deoxyuridine-containing template plasmid encoding human CD11a Constructed on Sumid. Four residues were changed: Va1133Ile, Arg1. 89Gln, Lys197G1u, and Va1308A1a (FIG. 2). RH / H Plasmids encoding uCD11bi and human CD11a (EP364,69) 0) by the high efficiency method (Graham et al., J. Gen. Virol. 36:59 (1) 977); Gorman et al., Science, 221: 551 (1983)). Utilizing an adenovirus-transformed human embryonic kidney cell line, 293 (Gr aham et al. Gen. Virol. 36:59 (1977)). Entered. 293 cells transfected with Rh / HuCD11a were transformed with 20 μg / ml Labeled with Calcein AM at 37 ° C for 45 minutes. In lymphocyte assay medium After three washes, 293 cells transfected with Rh / HuCD11a were added to 1 × 106 Resuspend cells / ml and incubate with serially diluted antibody for 30 minutes at 4 ° C. It was cubified. After removing the medium from the keratinocyte monolayer, 0.1 ml / Wells of labeled 293 cells were added and incubated at 37 ° C for 1 hour. The wells were washed 5 times with 0.2 ml / well / times of lymphocyte medium at 37 ° C., Non-adherent cells were removed. Fluorescence was measured using Cytofluor 2300 .   (G) ICAM adhesion assay   Maxisorp (Nunc) 96-well plate with 0.1 ml / well of 1 μl g / ml goat anti-human IgG Fc (Caltag) for 1 hour at 37 ° C. Was. After washing the plate three times with PBS, the plate was washed with 1% BSA-PBS for 2 hours. Blocked at 5 ° C for 1 hour. The plate is then washed three times with PBS, 0.1 ml / Well of 50 ng / ml recombinant human ICAM-IgG and incubate overnight. Privation.   ICAM-IgG is 5 cells of human ICAM fused to human IgGFc It consists of an outer area. Human ICAM-1 (Simons et al., Cell, 331: 6 24-627 (1988), and Stauton et al., Cell, 52: 925-. 933 (1988)) is a plasmid for expression of an immunoadhesin, and contains pRK. 5d What was termed ICAMGaIG was constructed. This is the ICAM-1 Ig-like Five regions, Genenase I, an H64A mutant of subtilisin BPN ' (Carter et al., Proteins: Structure Function) , and Genetics 6: 240-248 (1989)). Cleavage sites of 6 amino acids and human IgG1 (Ellison et al., Nuclei c Acids Research 10: 4071-4079 (1982)) Of the Fc region of pRK5 vector (Eaton et al., Biochemistry 2). 5: 8343-8347 (1986)). Human fetal kidney 29 3 cells (Graham et al., J. Gen. Virol. 36:59 (1977)). ) With pRK. 5dICACAMGaIg and RSV-neo plasmid (Gorm , et al., Science, 221: 551-553 (1983)). A cell line expressing the five regions of ICAMIg (5dICAMIg) Created. Antibodies to human IgG Fc (Caltag, Burlingam) e, CA) and ICAM-1 (BBIG-II; R & D System, Min. neapolis, MN) using an enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). A clone expressing 20 μg / ml of secreted 5dICAMIg was selected from the above. . 0.01 M Hepes buffer (pH 7.0), 0.15 M NaCl (HB S), a ProteinA column (ProsepA, Bioproc) equilibrated with essing, Ltd. , Durham, England) cells of this cell line The culture supernatant is applied and the column is HBS, then 0.01M Hepes buffer (p H7.0), 0.5 M NaCl, 0.5 M TMAC (tetra-methyl ammonium) Um chloride) to remove non-specifically bound material. At HBS, TMAC The buffer was thoroughly washed from the column and 5d ICAMIg was added to 0.01 M Hepes. (PH 7.0) Dissolve in 3.5M MgCl2 and 10% (w / v) glycerol Issued. The Protein A pool was concentrated by extensive dialysis against HBS.   Purified rhesus monkey lymphocytes (see MLR method) l of Calcein AM (Molecular Probe, Eugene, O R) at 37 ° C. for 45 minutes. After washing three times with lymphocyte assay medium, 1 × 10 rhesus monkey lymphocyte cells6Cells resuspended in cells / ml and serially diluted Incubated with the body at 4 ° C. for 30 minutes. Coding with ICAM-IgG After removing the medium from the washed plate, 0.1 ml / well of labeled cells was added. And incubated at 37 ° C. for 1 hour. 0.2 ml / well / well so, The cells were washed 5 times with a lymphocyte medium at 37 ° C. to remove non-adherent cells. Cytoflu or2330 (Millipore, Bedford, Mass.) Was measured.   (H) One-way mixed lymphocyte response (MLR)   Lymphocyte separation medium (Organon T) was used for human and rhesus monkey MLR. eknika, Durham, NC) and two unrelated providers Was isolated from heparinized whole blood. Lymphocytes , RPMI 1640 (GIBCO) -10% human AB serum-1% glutamine-1 % Penicillin / streptomycin-1% non-essential amino acids-1% pyruvate 5 × 10-FiveM 2-β-mercaptoethanol-50 μg / ml gentamicin 3 × 10 5 in -5 μg / ml polymyxin B6It was re-turbid at a concentration of cells / ml. Irradiate 3000 rads in a cesium irradiator to render the stimulator cells non-reactive. Was. 1.5 × 10 per wellFiveResponding cells at the same cell concentration as equal number of stimulating cells Originally, they were cultured together in a 96-well flat bottom plate. Dilute two times continuously Each antibody was added to the culture to a total volume of 200 μl / well. Culture Was cultured at 37 ° C. in 5% CO 2 for 5 days, and then 1 μCi / well of [ThreeH] Chimi Pulsed with gin for 16 hours. [ThreeH] thymidine incorporation, It was measured with an scintillation counter. Assays were performed in triplicate . Humanized anti-human p185HERMAbs (Carter et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89: 4285 (1992)). And RhIgG1 were used as isotype controls. Mouse anti-hamster -TPA MAb (Genentech) was used as an eye to the MHM23 MAb Used as a sotype control (mouse IgG1). MAb 25.3 is Immu purchased from notech (Westbrook, ME).   (I) Computer graphics model for mouse and humanized MHM24   Using the sequences of the VL and VH regions (FIGS. 1A and B), mouse MHM24 A computer graphics model in the VL-VH domain was constructed. This model Was used to determine which framework residues to incorporate into the humanized antibody. F A model of (ab) -8 was also constructed to correct the selection of mouse framework residues. Was confirmed. The construction of the model was performed as previously described (Carter et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89: 4285 (1992); Eigenbrot et al. Mol. Biol. 229: 969 (1993)) went.         result   (A) Humanization   Consensus sequences of human heavy chain subgroup III and light chain subgroup κI Used as a framework for humanization (Kabat et al., Sequenceo) f Proteins of Immunological Interes. 5th Ed. Public Health Service, Nationa l Institute of Health, Bethesda, MD. (1 991)) (FIGS. 1A and B). Use this framework well for other mouse Was successfully humanized (Carter et al., Proc. Natl. Acad. Sci. ScL USA 89: 4285 (1992); Preta et al. Immun ol. 151: 2623-2632 (1993); Eigenbrot et al., Pr. oteins 18: 49-62 (1994)). First of all humanized variants Screening for F (ab) s expressed in Escherichia coli did. Typical yields are 0.2-0.500 per 500 ml shake flask. It was 5 mg of F (ab). By mass spectroscopy, each F It was confirmed that the mass of (ab) was within 5 mass units.   CDR-H1 contained residues H28-H35, as described in Kabat et al. Sequences of Proteins of Immunological al Interes. 5th Ed. Public Health Server ice, National Institute of Health, Bet hesda, MD. (1991)), and Chothia et al. (Nature, 3 42: 877-883 (1989)). Other super The variable loop was defined according to Chothia et al. (1989). Light chain residue number Is prefixed with L, and the number of residues in the heavy chain is prefixed with H.                                   Table II   Binding of humanized MHM24 mutant to human CD11a on Jurkat cells        a Residues in mouse are in bold; number of residues is in Kabat et al., Sequences   of Proteins of Immunological Inter st. 5th Ed. Public Health Service, Nati onal Institute of Health, Bethesda, MD . (1991).         b Mean and standard deviation are calculated for each independent FACscan analysis. EC50 for F (ab) -2 771 ± 320 ng / ml.         c HuIgG1 is fused to the constant region of human light and heavy chains by F (a b) -8 VL and VH regions.         d chIgGl is a mouse fusion of the constant regions of human light and heavy chains. Chimeric IgG with VL and VH regions.   In the first variant, F (ab) -1, the CDR residues are To the human framework. Furthermore, for residue H71, human Was changed from mouse Arg to mouse Val. And has been shown previously to affect the conformation of CDR-H2. (Chothia et al., Nature, 342: 877-883 (1989); T ramontano J .; Mol. Biol. 215: 175 (1990)). No detectable binding was seen with this F (ab). In F (ab) -2 Indicates that CDR-H2 has a sequence-based definition (ie, including residues H60-H65). Extended to include. EC5 for binding of F (ab) -2 to human CD11a 0 was 771 ± 320 ng / ml, which is the EC50 of chimeric IgG1. (5.2 ± 3.0 ng / ml).   In previous humanizations, the frames adjacent to CDR-H1 and CDR-H2 were Residues in the framework loop (FR-3) have been found to affect binding (Eigenbrot et al., Proteins 18: 49-62 (1994). ). In F (ab) -5, three residues in this loop correspond to the corresponding mouse And this variant showed a 23-fold improvement in binding ( Table II). When the residues of human L53 and L55 are changed to those of mouse (ie, Se rL53The, and GluL55Gln), a further 4 fold improved binding (F (Ab) -6, Table II); this defines CDR-L2 as structurally based (residue L5 0-L52) to an effective sequence-based definition (residues L50-L56). Was. Subsequent PheH27 in CDR-H1 to mouse Tyr A further 3-fold improvement was achieved with the conversion of (F (ab) -7; Table II). Finally 3 in FR-3, based on the mouse and humanized model of MHM24 Horn Two of the mouse residues (H75 and H76) were returned to humans and these two residues were linked. In this case, no effect was found (F (ab) -7 and F (ab)- 8; Table II). The average EC50 of F (ab) -8 is that of chimeric IgG Was slightly better (Table II). Not all human-to-mouse changes are binding It has not improved. Did you change PheH67 to mouse Ala? It was previously known that this site affects binding (Presta et al., J. Immunol. 151: 2623-632 (1993)), the effect is clear (F (ab) -3, Table II). ValH71 to human A Returning to rg reduced binding by a factor of 3 (F (ab) -4, Table II), Supports incorporation of Va1H71 into (ab) -1.   The VL and VH regions from F (ab) -8 were transferred to the constant region of human IgG1. Was. HuIgG1, a full-length intact antibody, has an EC5 equivalent to F (ab) -8. 0 and improved when compared to full length chimeric IgG1 (Table II) . Includes use as a standard for alanine-scan and MLR assays (hereinafter See below) Considering the data of all assays of HuIgG1, human CD11a EC50 of HuIgG against 0.042 ± 0.072 nM (N = 15) there were. A saturation binding assay was also performed to determine the apparent dissociation constant Kd(App) Determined: 0.15 ± 0.02 nM for mouse MHM24; HuIgG1 About 0.15 ± 0.04 nM (Table III).                                 Table III   Apparent K by saturation binding to human lymphocytes and rhesus monkey leukocytesd         a Assay for rhesus monkey donor 3 is for RhIgG1 The assay was performed using 1 mg / ml human IgG. 1 in the presence of Fc receptor interaction.         (B) Alanine-scan of CDR residues         To determine which CDR residues are involved in binding to human CD11a, Alanine-scan for CDR residues of uIgG1 (Cunningham) Science, 244: 1081 (1989)). Each change Variants were tested for binding to CD11a on Jurkat cells. Light chain In this case, only CDR-L3 contributed to the binding. HisL91 has a great effect But (Table IV), this side chain must be partially buried, so Is probably a conformational one. Residues AsnL92 and TyrL94 are There was a modest effect, with a 3-fold and 12-fold reduction, respectively. However, These two residues were simultaneously changed to alanine (similar to GluL93A1a). Let Note that there is no additional effect on the coupling. Variant L3, Table IV).                                  Table IV       Alanine-scan for humanized MHM24 CDR residues                              Table IV (continued)        a CDR and FR-3 are defined in Kabat et al. (1991, supra). Things.         b EC50 of HuIgG1 against human CD11a = 0.042n M (SD = 0.072; N = 15).         c EC50 of HuIgG1 against rhesus monkey CD11a = 45. 6 nM (SD = 40.4; N = 16); total against Rhesus sarno CD11a All values are for a single binding assay unless otherwise noted; nb is Means binding of the mutant, more than 10 times weaker than HuIgG1.         d Multiple alanine variants:         H1, SerH28Ala / TheH30Ala / HisH32Ala;         H2, HisH52Ala / SerH53Ala / SerH55Ala;         H2B, AspH54Ala / GluH56Ala / ArgH58Ala;         H2A1, HisH52Ala / SerH53Ala;         H2A2, SerH53Ala / SerH55Ala;         H2A3, HisH52Ala / SerH55Ala;         H3, TryrH97Ala / TyrH99Ala;         H3B, ThrH100aAla / ThrH100bAla / TyrH100cAla;         L1, LysL27Ala / ThrL28Ala / SerL30Ala / LysL31Ala;         L2, SerL50Ala / SerL52Ala / ThrL53Ala;         L3, AsnL92Ala / GluL93Ala / TyrL94Ala.         ehu4D5 is a humanized anti-p185HER2Antibody, huMHM 24 antibody (Carter et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA8 9: 4285 (1992)). .   In the heavy chain, CDR-H2 and CDR-H3 make significant contributions to binding You are. The TrpH33Ala residue of CDR-H1 has a great effect, Conformational change because TrpH33 should be partially buried It seems to be due to. The single residue most important for binding is CDR-H Asp-H54 in 2; replacing this residue with alanine gives 1 for binding. A 47-fold reduction occurs (Table IV). Other residues involved in binding in CDR-H2 include , GluH56, GlnH61, and LysH64 (Table IV). CD In R-H3, TyrH97Ala reduces binding by 11-fold and TyrH97Ala H100cAla reduced binding by 8-fold. Multiple CDRs such as CDR-L3 Simultaneously changing the DR-H3 residue to alanine, non-additive Large changes occurred (mutant H3, TyrH97Ala and TyrH99Al See contrast to a; Table IV). Furthermore, FR- contained in the humanized product The LysH73 residue at 3 was also converted when converted to alanine or arginine. Combination Showed a 5-fold reduction for (Table IV).   (C) Re-modification of HuIgG1 to bind to rhesus monkey CD11a   Mouse MHM24 and HuIgG1 both bind to rhesus monkey CD11a About 1000-fold reduction: HuIgG1 was associated with rhesus monkey CD11a. Has an EC50 of 45.6 ± 40.4 nM (N = 16), whereas The EC50 for human CD11a is 0.042 ± 0.072 nM. M Because the primate model is important in the biology, toxicity and efficacy of HM24, Improving the binding of HuIgG1 to rhesus monkey CD11a would be beneficial. It seems to be that. Initially important for rhesus monkeys, but important for humans The human variable in the hypervariable region residues of the MAb so that CD11a and what is important for rhesus monkey binding to CD11a have been determined . Therefore, the alanine-scan mutant was also used for rhesus monkeys on peripheral blood lymphocytes. The assay was performed against CD11a. The most important finding is that multiple alanine- The H2 mutant, one of the mutant strains, is 18 times better than HuIgG1 It bound to CD11a (Table IV). However, included in the H2 mutant Individual mutations at the three residues shown show minimal improvement in binding : HisH52Ala, 0.7 times improvement, SerH53Ala, 0.7 times improvement, And SerH55Ala, 1.3-fold worse (Table IV). In these three residues A series of double mutations is most likely to be the HisH52Ala-SerH53A1a combination. Demonstrated good, but provided a 77-fold improvement over HuIgG1 (See variants H2A1, H2A2 and H2A3, Table IV). Furthermore, H AspH54 in uIgG1 is the most important binding for human CD11a Residues, the AspH54Ala and GluH56Ala mutants also It showed a 3-fold improvement over IgG (Table IV).   Improves Rhesus Monkey Binding to CD11a but Reduces Human CD11a Binding To find a single substitution at site H54 that would not Was replaced with various amino acids. For all replacements, at least one order of magnitude The binding was reduced by AspH54 Asn substitution, whereas the binding of rhesus monkeys was Case was improved by a factor of 10 (Table V).                                   Table V                     Amino acid substitutions at AspH54        a EC50 of HuIgG1 against human CD11a = 0.042 nM (SD = 0.072; N = 15); HuIg against rhesus monkey CD11a EC50 for G1 = 45.6 nM (SD = 40.4; N = 16).         b values are the average of two assays.         c values are the average of a single assay.         For mutations at sites H52-H53, a non-additive effect was seen, These were combined with various changes at sites H54 and H56 (Table VI). For all mutants, H52 and H53 were alanine. One Silly In addition, site H54 is Asn and site H56 is Glu (original). , Ala, Asn, or Gln. All of these mutants have H2A1 mutations. It did not show improved binding to rhesus monkey CD11a harboring variants (Table V I). In another series, site H54 is Ala and H56 is Glu ( Original), Ala, Ser, or Asn, again worse than H2A1 Was. In the third series, site 54 is Ser and site H56 is Gl u (original), Ala, Ser, or Asn. Of these mutants Are improved against rhesus monkey CD11a compared to H2A1 mutant (H2C11 and H2C12, Table VI). These two mutants The EC50 of rhesus monkey CD11a was 0.11 ± for H2C11. 0.11 nM (N = 9) and 0.19 ± 0.08 (N = 7). These values are based on the EC5 of HuIgG1 against human CD11a. Rhesus monkey CD1 which is 3 to 5 times weaker than 0 (0.042 nM) 24.0-fold higher than the EC50 of HuIgG1 against 1a (45.6 nM). A 15-fold improvement. H2C12 is hereinafter referred to as RhIgG1. Saturated bond Apparent K from the experimentdValues indicate that mouse MHM23 bound to rhesus monkey CD18 Shows that RhIgG1 binds to rhesus monkey CD11a (Table III).                                  Table VI         Binding of CDR-H2 to human and rhesus monkey CD11a        a EC50 of HuIgG1 against human CD11a = 0.042 nM (SD = 0.072, N = 15); HuIg against rhesus monkey CD11a EC1 of G1 = 45.6 nM (SD = 40.4; N = 16); Rhesus monkey All values for CD11a are two independent linkages, unless otherwise noted Mean of the assay.   For the interaction of HuIgG1-human CD11a, AspH54 is the most severe. Key residues (Table IV); replacing this residue with another amino acid significantly bound , But among them, Glu, Asn, and Gln are the best alternatives. Even the decline was low. However, the interaction of HuIgG1-rhesus monkey CD11a In the case of action, AspH54 shows that binding of this residue to Ala or Asn Harmful as improved (Table V). Binding of human and rhesus monkey CD11a Cloned from a rhesus monkey PBL library to understand the differences between It has become. FIG. 2 shows that the rhesus monkey CD11aI-region corresponds to the human CD11aI-region. Differ only in the four regions: 133, 189, 197, 308 Are shown. Previously, a human CD11a epitope on MHM24 was identified at residue 197 -203 (Champe et al., J. Biol. Chem. 2 70: 1388-1394 (1995)), including humans in rhesus monkeys. Changes from Lys197 to rhesus monkey Glu197 are included.   (D) Keratinocyte cell attachment assay   Mouse MHM24, chimeric IgG1 and HuIgG1 were transferred to Jurkat cells ( LFA-1 expressing human T-cells) on a normal human expressing ICAM-1. The ability to block adhesion to skin keratinocytes was compared. All three antibodies , With similar IC50 (FIG. 3) (Table VII).                                  Table VII                   Inhibition of cell adhesion by MHM24 mutant         a HuK = normal human epithelial keratinocytes         b RhLy = Rhesus monkey lymphocyte         c HuICAM = recombinant human ICAM-1         dRh / HuCD11a = human CD11 with rhesus monkey I-region a transfected into human 293 cells   Both mouse and humanized MHM24 were used to control rhesus and cynomolgus monkeys. It did not prevent the adhering spheres from attaching to human keratinocytes. Human keratin rhino In inhibiting rhesus monkey lymphocyte adhesion to Mouse anti-human CD18 antibody MHM23 (Hildreth et al., Eur. Immunol. 13: 202-208 (1983): Hildreth et al., J. . Immunol. 134: 3272-3280 (1985)) RhIgG1 is 74 times less effective than MHM23 (FIG. 4A, Table VII). I However, recombinant human ICAM-1 was pre-purified (instead of human keratinocytes). When coated on a plate, RhIgG1 is only 4 times less effective than MHM23. (FIG. 4B, Table VII). Human CD11a (I-region mutated to rhesus monkey) V al133Ile, Arg189Gln, Lys197G1u, Val308A l) transfecting chimeric CD11a with human embryonic kidney 293 cells did. Human keratinosa for these Rh / HuCD11a-293 cells RhIgG1 is again more effective than MHM23 in blocking adhesion to 4 times lower (FIG. 4C, Table VII).   A control isotype antibody against RhIgG1 (humanized anti-p185HER2Anti Body; Carter et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89: 4 285 (1992)) and MHM23 (mouse MAb354, mouse IgG1 Anti-hamster tpA) is a rhesus monkey lymphocyte against human keratinocytes Binding was also due to recombinant ICAM-1 to human keratinocytes (FIGS. 4A, 4B), and It also did not block Rh / HuCD11a (FIG. 4C) binding. This is a Rhesus monkey lymphocytes: ratio with mouse MHM23 in human keratinocyte assay The reduced performance of RIgG1 when compared to (MHM23 mouse Fc Interaction of HuIgG1 with rhesus monkey lymphocytes (when performed) Suggest that this is not due to the use of rhesus monkey CD11a. It may reduce the concentration of RhIgG1 capable of binding. Recombinant human IC The data for AM-1 indicate that RhIgG1 binds to rhesus monkey lymphocytes, 4 shows that adhesion is inhibited almost similarly to MHM23 (FIG. 4B, Table VII). The data for Rh / HuCD11a-293 (FIG. 4C, Table VII) RhIgG1 does not bind to targets on human keratinocytes (HuIgG1 1) when compared to Rh capable of binding to rhesus monkey CD11a. May reduce the concentration of IgG1. Furthermore, against rhesus monkey IgG1 RhIgG1 Kd(App) is 1 mg / ml human IgG1 (Rhesus monkey) In the case of donor 3), it was similar to the case without (rhesus monkey donor 1) (Table II). I). This indicates that the binding of RhIgG1 is specific for rhesus monkey CD11a. Are shown.   (E) Mixed lymphocyte response assay   In the MLR, HuIgG1 has an IC50 that is twice as weak as mouse MHM24. The values are shown (Table VIII, FIG. 5).                                Table VIII                      Mixed lymphocyte response assay results         a murMHM24, HuIgG1 and mAb 25.3 are human ML Tested on R: RhIgG1 and MHM23 were tested on rhesus monkey MLR.   Mouse and humanized MAbs are 10- to 20-fold greater than MAb 25.3 Worked, but MAb 25.3 has been previously tested in vivo ( Fisher et al., Blood 77: 249-256 (1991); Stoppa. Et al., Transplant Intl. 4: 3-7 (1991); Hourma. nt et al., Transplantation, 58: 377-380 (1994). ). Rhesus monkey-binding mutant RhIgG1 is slightly less than mouse MHM23 A good IC50 is shown (Table VIII). Different responders: stimulator blood donor Was used in an independent assay, but the results were not significantly different. A RhIgG1 K against rhesus monkey CD11adIs H to human CD11a 26-fold lower than the Kd of uIgG1 (Table III), derived from the MLR assay (Table VIII).

【手続補正書】 【提出日】平成11年5月28日(1999.5.28) 【補正内容】 請求の範囲 1. ヒトCD11aI‐ドメインに特異的に結合するヒト化抗CD11a抗体 。 2. CD11a上のエピトープMHM24に結合する請求項1記載のヒト化抗 CD11a抗体。 3. ヒト カッパIコンセンサス軽鎖フレームワーク残基66Lを有する、請 求項1又は2記載のヒト化抗CD11a抗体。 4. 全てのヒト カッパIコンセンサス軽鎖フレームワーク残基を有する、請 求項1から3のいずれか1項記載のヒト化抗CD11a抗体。 5. ヒトVHサブグループIIIコンセンサス重鎖フレームワーク残基93Hを有 する 請求項1から4のいずれか1項記載のヒト化抗CD11a抗体。 6. HサブグループIIIコンセンサスヒト抗体可変ドメイン内に組み入れた非 ヒトCDRを有する可変ドメインを含有し、且つ27H、28H、30H、49 H、71H及び73Hからなる群から選択したサイトでアミノ酸置換をさらに備 える請求項1から5のいずれか1項記載のヒト化抗CD11a抗体。 . ヒト化抗体MHM24(F(ab)-8のCDR1(配列番号:10)、CDR2( 配列番号:11)及び/又はCDR3(配列番号:12)のアミノ酸配列を含んだ 重鎖可変領域を有する請求項1又は2記載のヒト化抗CD11a抗体。 . 配列番号:5のアミノ酸配列を含む請求項1又は2記載のヒト化抗CD1 1a抗体。 . ヒト化MHM24(F(ab)-8のCDR1(配列番号:13)、CDR2(配列 番号:14)及び/又はCDR3(配列番号:15)のアミノ酸配列を含んだ軽鎖 可変領域を有する請求項1又は2記載のヒト化抗CD11a抗体。10 . 配列番号:2のアミノ酸配列を含む請求項1又は2記載のヒト化抗CD 11a抗体。 1. 配列番号:5のアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域と、配列番号::2の アミノ酸配列を含む軽鎖可変領域を有する請求項1又は2記載のヒト化抗CD1 1a抗体。 1. 完全長抗体又は抗体フラグメントである請求項1から11のいずれか1 記載のヒト化抗CD11a抗体。13以下の特性: (a)約1x10-8MまでのKd値でヒトCD11aに結合する、 (b)通常のヒト表皮ケラチノサイト発現ICAM‐1へのジャーカット細胞の 接着を防止するため約1nMまでのIC50(nM)値を有する、又は (c)混合リンパ球応答アッセイにおいて約1nMまでのIC50(nM)値を有 する、 の少なくとも1つを有する請求項1から12のいずれか1項記載のヒト化抗CD 11a抗体 。 1. 検出可能な標識に結合した請求項1から13のいずれか1項記載のヒト 化抗CD11a 抗体を備えた標識化抗体。 1. 固相上に固定化した請求項1から13のいずれか1項記載のヒト化抗C D11a 抗体を備えた固定化抗体。 1. 細胞毒性剤に合した請求項1から13のいずれか1項記載のヒト化抗 CD11a 抗体を備えた接合体。 1. 請求項1から13のいずれか1項記載のヒト化抗CD11a抗体にCD 11aタンパク質の含有を予期したサンプルをさらすこと、及び該サンプルに対 する上記抗体の結合を測定することを備えるCD11aタンパク質の存在を測定 するための方法。 1. 請求項1から13のいずれか1項記載のヒト化項CD11a抗体と、C D11aタンパク質を検出するための抗体を使用するめの指示を備えたキット。19 . 請求項1から13のいずれか1項記載のヒト化抗CD11a抗体をコー ド化する分離核酸。 2. 請求項19記載の核酸を含むベクター。 2. 請求項2記載のベクターを含む宿主細胞。 2. 核酸が発現されるように請求項2記載の宿主細胞を培養すること;及 び該宿主細胞培養物からヒト化抗CD11a抗体を回収することを備えるヒト化 抗CD11a抗体の製造方法。 2それの必要においてLFA介在疾患の患者の処置のための薬剤を調製す るための、請求頂1から13のいずれか1項記載のヒト化抗CD11a抗体の使 [Procedure amendment] [Submission date] May 28, 1999 (1999.5.28) [Content of amendment] Claims 1. A humanized anti-CD11a antibody that specifically binds to the human CD11aI-domain. 2. The humanized anti-CD11a antibody of claim 1, which binds to the epitope MHM24 on CD11a. 3. 3. The humanized anti-CD11a antibody of claim 1 or 2 having human Kappa I consensus light chain framework residues 66L . 4. 4. The humanized anti-CD11a antibody of any one of claims 1-3 , having all human kappa I consensus light chain framework residues . 5. Human V H subgroup III consensus heavy chain framework residues 93H to have a billing humanized anti CD11a antibody according to any one of claim 1 to 4. 6. The VH subgroup III consensus contains a variable domain with a non- human CDR incorporated within a human antibody variable domain and further comprises amino acid substitutions at a site selected from the group consisting of 27H, 28H, 30H, 49H , 71H and 73H. Bei obtain claims 1 to 5 any one of claims humanized anti CD11a antibody of. 7 . Claims having a heavy chain variable region comprising the amino acid sequence of CDR1 (SEQ ID NO: 10), CDR2 (SEQ ID NO: 11) and / or CDR3 (SEQ ID NO: 12) of humanized antibody MHM24 (F (ab) -8) Item 3. A humanized anti-CD11a antibody according to claim 1 or 2. 8. A humanized anti-CD11a antibody according to claim 1 or 2, which comprises the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5. 9. A humanized MHM24 (F (ab) -8) The humanized anti-CD11a antibody according to claim 1 or 2, which has a light chain variable region including an amino acid sequence of CDR1 (SEQ ID NO: 13), CDR2 (SEQ ID NO: 14) and / or CDR3 (SEQ ID NO: 15). . 10 SEQ ID NO: claim 1 or 2, wherein the humanized anti-CD 11a antibody comprising amino acid sequence 1 1 SEQ ID NO:.. and a light chain variable region comprising the amino acid sequence of the 5, SEQ ID NO: 2 amino acids Light chain variable region containing sequence .... Claim 1 or 2, wherein the humanized anti-CD1 1a antibody having 1 2 full length antibodies or humanized anti-CD11a antibody according to any one of the antibody fragment is a claims 1 to 11 13 following characteristics: (A) binds to human CD11a with a K d value up to about 1 × 10 −8 M; (b) IC50 (nM up to about 1 nM to prevent adhesion of Jurkat cells to normal human epidermal keratinocyte-expressed ICAM-1 ) has a value, or (c) mixing have a IC50 (nM) values of up to about 1nM in lymphocyte response assay as claimed any one of claims 1 to 12 having at least one humanized anti-CD 11a antibody. 1 4. detectable with a humanized anti-CD11a antibody of any one of claims 1 to 13 bound to a label labeled antibody. 1 5. immobilized on a solid phase Claims 1 to 13 immobilized antibodies with humanized anti-C D11a antibody according to any one of. 1 6. Humanization of any one of cytotoxic agents from claim 1 engaged binding to 13 conjugate comprising an anti-CD11a antibody. 1 7. exposing a sample expected to contain the humanized anti CD11a antibody CD 11a proteins according to any one of claims 1 to 13, and the antibody to said sample and methods. 1 8. of any one of claims 1 to 13 human estuary CD11a antibodies for determining the presence of CD11a protein comprising measuring the binding, the antibody to detect the C D11a protein Kit with instructions for use. 19 . An isolated nucleic acid encoding the humanized anti-CD11a antibody according to any one of claims 1 to 13 . 2 0. A vector comprising the nucleic acid according to claim 19 . 2 1. Host cell comprising the vector of claim 2 0, wherein. 2 2. Culturing a host cell according to claim 2 1, wherein such nucleic acid is expressed; and a method for manufacturing human anti CD11a antibody comprising recovering the humanized anti-CD11a antibody from the host cell culture. 23 . The order to prepare a medicament for the treatment of patients with LFA-mediated disease in its necessary use of humanized anti-CD11a antibody according to any one of the preceding top 1 13.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI テーマコート゛(参考) C12N 5/10 G01N 33/53 D G01N 33/53 C12P 21/08 // C12P 21/08 C12N 5/00 A (81)指定国 EP(AT,BE,CH,DE, DK,ES,FI,FR,GB,GR,IE,IT,L U,MC,NL,PT,SE),OA(BF,BJ,CF ,CG,CI,CM,GA,GN,ML,MR,NE, SN,TD,TG),AP(GH,KE,LS,MW,S D,SZ,UG,ZW),EA(AM,AZ,BY,KG ,KZ,MD,RU,TJ,TM),AL,AM,AT ,AU,AZ,BA,BB,BG,BR,BY,CA, CH,CN,CU,CZ,DE,DK,EE,ES,F I,GB,GE,GH,HU,ID,IL,IS,JP ,KE,KG,KP,KR,KZ,LC,LK,LR, LS,LT,LU,LV,MD,MG,MK,MN,M W,MX,NO,NZ,PL,PT,RO,RU,SD ,SE,SG,SI,SK,SL,TJ,TM,TR, TT,UA,UG,UZ,VN,YU,ZW──────────────────────────────────────────────────続 き Continued on the front page (51) Int.Cl. 7 Identification symbol FI Theme coat ゛ (Reference) C12N 5/10 G01N 33/53 D G01N 33/53 C12P 21/08 // C12P 21/08 C12N 5/00 A (81) Designated countries EP (AT, BE, CH, DE, DK, ES, FI, FR, GB, GR, IE, IT, LU, MC, NL, PT, SE), OA (BF, BJ, CF, CG, CI, CM, GA, GN, ML, MR, NE, SN, TD, TG), AP (GH, KE, LS, MW, SD, SZ, UG, ZW), EA (AM, AZ) , BY, KG, KZ, MD, RU, TJ, TM), AL, AM, AT, AU, AZ, BA, BB, BG, BR, BY, CA, CH, CN, CU, CZ, DE, DK, EE, ES, FI, GB, GE, GH, HU, ID, IL, IS, JP, KE, KG, KP, KR, KZ, LC, LK, LR, LS, LT, LU, LV , MD, MG, MK, MN, MW, MX, NO, NZ, PL, PT, RO, RU, SD, SE, SG, SI, SK, SL, TJ, TM, TR, TT, UA, UG, UZ, VN, YU, ZW

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1. ヒトCD11aI‐ドメインに特異的に結合するヒト化抗CD11a抗体 。 2. CD11a上のエピトープMHM24に結合する請求項1記載のヒト化抗 CD11a抗体。 3. 約1x10-8MまでのKd値でヒトCD11aに結合するヒト化抗CD1 1a抗体。 4. 通常のヒト表皮ケラチノサイト発現ICAM‐1へのジャーカット細胞の 接着を防止するため約1nMまでのIC50(nM)値を有するヒト化抗CD11 a抗体。 5. 混合リンパ球応答アッセイにおいて約1nMまでのIC50(nM)値を有 するヒト化抗CD11a抗体。 6. ヒト化抗体MHM24(F(ab)-8のCDR1(配列番号:10)、CDR2( 配列番号:11)及びCDR3(配列番号:12)のアミノ酸配列を含んだ重鎖可 変領域を有する請求項1記載のヒト化抗CD11a抗体。 7. 配列番号:5のアミノ酸配列を含む請求項6記載のヒト化抗CD11a抗 体。 8. ヒト化MHM24(F(ab)-8のCDR1(配列番号:13)、CDR2(配列 番号:14)及びCDR3(配列番号:15)のアミノ酸配列を含んだ軽鎖可変領 域を有する請求項1記載のヒト化抗CD11a抗体。 9. 配列番号:2のアミノ酸配列を含む請求項8記載のヒト化抗CD11a抗 体。 10. 配列番号:5のアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域と、配列番号:2のア ミノ酸配列を含む軽鎖可変領域を有する請求項1記載のヒト化抗CD11a抗体 。 11. 完全長抗体である請求項1記載のヒト化抗CD11a抗体。 12. ヒトIgGである請求項11記載のヒト化抗CD11a抗体。 13. 抗体フラグメントである請求項1記載の抗体。 14. F(ab')2である請求項13記載の抗体フラグメント。 15. 検出可能な標識により標識化した請求項1記載の抗体。 16. 固相上に固定化した請求項1記載の抗体。 17. 細胞毒性剤に接合した請求項1記載の抗体。 18. 請求項1記載の抗体にCD11aタンパク質の含有を予期したサンプル をさらすこと、及び該サンプルに対する上記抗体の結合化を測定することを備え るCD11aタンパク質の存在の測定方法。 19. 請求項1記載の抗体と、CD11aタンパク質を検出するための抗体を 使用するための指示を備えたキット。 20. 請求項1記載の抗体をコード化する分離核酸。 21. 請求項20記載の核酸を含むベクター。 22. 請求項21記載のベクターを含む宿主細胞。 23. 核酸が発現されるように請求項22記載の宿主細胞を培養することを備 えるヒト化抗CD11a抗体の製造方法。 24. 宿主細胞培養物からヒト化抗CD11a抗体を回収することをさらに備 える請求項23記載の方法。 25. ヒト化抗CD11a抗体が、宿主細胞培地から回収される請求項24記 載の方法。[Claims] 1. A humanized anti-CD11a antibody that specifically binds to the human CD11aI-domain. 2. The humanized anti-CD11a antibody of claim 1, which binds to the epitope MHM24 on CD11a. 3. A humanized anti-CD11a antibody that binds to human CD11a with a K d value of up to about 1 × 10 −8 M. 4. A humanized anti-CD11a antibody having an IC50 (nM) value of up to about 1 nM to prevent adhesion of Jurkat cells to normal human keratinocyte expressing ICAM-1. 5. A humanized anti-CD11a antibody having an IC50 (nM) value of up to about 1 nM in a mixed lymphocyte response assay. 6. 2. A heavy chain variable region comprising an amino acid sequence of CDR1 (SEQ ID NO: 10), CDR2 (SEQ ID NO: 11) and CDR3 (SEQ ID NO: 12) of the humanized antibody MHM24 (F (ab) -8). 7. The humanized anti-CD11a antibody according to claim 7. 7. The humanized anti-CD11a antibody according to claim 6, comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5. 8. The CDR1 of humanized MHM24 (F (ab) -8 (SEQ ID NO: 13)) 2. A humanized anti-CD11a antibody according to claim 1, which has a light chain variable region comprising the amino acid sequences of CDR2 (SEQ ID NO: 14) and CDR3 (SEQ ID NO: 15) 9. Includes the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 9. The humanized anti-CD11a antibody according to claim 8. 10. The humanized antibody according to claim 1, comprising a light chain variable region comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5 and a light chain variable region comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2. Anti-CD11a antibody 11. The humanized anti-CD11a antibody according to claim 1, which is a full-length antibody 12. The humanized anti-CD11a antibody, according to claim 11, which is human IgG 13. The antibody according to claim 1, which is an antibody fragment. 14. The antibody fragment of claim 13, which is F (ab ') 2. 15. The antibody of claim 1, labeled with a detectable label 16. The antibody of claim 1, immobilized on a solid phase. 18. The antibody of claim 1, conjugated to a cytotoxic agent 18. Exposure to a sample expected to contain the CD11a protein to the antibody of claim 1, and measuring the binding of the antibody to the sample. 19. A method for measuring the presence of the CD11a protein 19. A kit comprising the antibody according to claim 1 and instructions for using the antibody for detecting the CD11a protein. 20. An isolated nucleic acid encoding the antibody of claim 1. 21. A vector containing the nucleic acid of claim 20. 22. A host cell containing the vector of claim 21 23. Claiming that the nucleic acid is expressed Item 23. A method for producing a humanized anti-CD11a antibody, comprising culturing the host cell according to item 22. 24. The method according to claim 23, further comprising recovering the humanized anti-CD11a antibody from the host cell culture. 25. The method of claim 24, wherein the anti-CD11a antibody is recovered from the host cell medium.
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