【発明の詳細な説明】
植物有害生物の抑制方法および固定化物
本発明は、架橋結合された担体構造体中にある、植物有害生物を死滅させる微
生物を、植物または植物の種子と接触させることにより植物有害生物を抑制する
ための方法に関する。本発明はさらに生物学的な有害生物抑制のための固定化物
(immobilizate)にも関する。
環境および海水の保護に関する関心が高まり、これまでの一般的な化学的植物
保護剤の使用を減少させるか、または禁止することが要求されるため、化学的植
物保護剤を生物学的な有害生物防除剤で代替するための試みが行われてきている
。そこで例えば、サトウダイコン線虫であるヘテロデラ・シャッヒチイ（Hetero
dera schachtii）をヒルステラ・ロッシリエンシス（Hirsutella rhossiliensis
）の如き線虫病原性真菌を用いて抑制することが知られている。
生物学的に活性な微生物の調節された投与を可能にし且つ土壌中でのそれらの
安定性を改良するために、微生物を架橋結合された構造体の中で固定化すること
がすでに提唱されている（1995 Annual Report of the Bundesforschungsanstal
t fur Landwirtschaft(FAL)，page 90，section 1.1）。
細胞および酵素を含む微生物を固定化する方法はかなり昔から知られており、
非常に広範囲の高分子電解質系が固定化手段として提唱されていた。例えば、Ｃ
ａイオンのような低分子量架橋結合用反応物は、アルギン酸塩の、完全に架橋結
合された球を形成するために使用でき、アル
ギン酸塩は微生物を架橋結合された構造体の中に固定化する。架橋結合された反
応物を含有しうる中空球、例えば液体芯を取り囲む中空球を形成することも知ら
れている。水中油滴型または油中水滴型エマルションの界面重合により膜を形成
することも知られており、そこでは第１の重合反応物が水相に加えられそして第
２の重合反応物が油相中に加えられるため、２種の重合反応物の共重合により界
面で膜を形成する。
米国特許第５,３５８,８３６号は固定化された真菌、細菌および線虫からなる
植物保護剤を開示している。アルギン酸塩および澱粉が固定化マトリックスとし
て挙げられている。固定化された活性物質が早期に乾燥することを防止するため
に、固定化物にエマルション−逆転油、例えばパラフィン油、を油用の吸収剤、
例えばシリカ、と共に加えて固定化物からの水の蒸発を遅らせることが提唱され
ている。
有効な生物学的に活性な微生物の植物上での固定化が所望する程度の効果を与
えなかったことが見いだされており、そのために実用的な応用は考えられなかっ
た。微生物と有害生物との間の相互作用が固定化により非常に大きく減じられる
。
本発明の基礎をなす問題は、存在する困難にもかかわらず生物学的な有害生物
防除剤の実用可能な適用方法を見いだすことである。
この問題に基づき、最初に挙げられたタイプの方法は、本発明によれば、架橋
結合された外側殻の内部に微生物が栄養培地と一緒に含まれていること並びに微
生物が、外側殼の内部で最初に成長しそして次にそこから脱出するように外側殻
が設計されていることにより特徴づけられる。
本発明によれば、微生物は中空構造体、好適には中空球、中に固定化され、こ
こで微生物用の栄養培地は微生物と共に中空構造体の内部に含
まれる。このようにして固定化物は微生物の増殖用の反応器として作用する。こ
の反応器の内部で、例えば微生物が増殖中のバイオマスにより生じた圧力により
外側殻を破壊することによりまたは好適にはそこを通って外側に成長することに
より、外側殻から脱出するほど多量のバイオマスを生成するまで微生物は安定な
生存可能な培養菌を生成しうる。
本発明に従う方法の好適な態様では、低い初期濃度の微生物だけが栄養培地と
共に含まれ、そして微生物が少なくとも１００の係数(factor)だけ増殖するまで
外側殻からの脱出が起きないように外側殻が設計される。
この方法では比較的大規模な微生物の費用のかかる発酵を省略することができ
そして適用部位における固定化物内部での発酵により代替されるため、生物学的
な有害生物の抑制を効果的に且つ安価にすることができる。
本発明に従う方法は、従って、これまでは臨界的であり、重要であるとみなさ
れていた、有害生物抑制目的のための十分な量のバイオマスの適用を、適用部位
に相対的に高い濃度の微生物を適用することによってではなく、適用部位におい
てのみ固定化物により保護されている環境の中で必要量の微生物バイオマスを生
成することにより、行うということを基にしている。十分な量のバイオマスが生
成したら、固定化物はその目的を達成したこととなりそして微生物が固定化物の
外側殻を破壊するかまたは好適には成長して固定化物から出て、そしてそれによ
り有害生物と直接接触しうる。
本発明に従う方法の一部として、架橋結合された担体構造体の多数の非常に小
さい球の中に固定された外側殻の内部に、微生物を含むことが
好適である。これは少なくとも１個の種子も外側殻の中に含まれている場合に特
に有利である。この場合に形成される系は有害生物の種子への侵入を防止する。
球を、種子に付着させそして次に栄養培地と一緒に外側殻の中に含ませることが
でき、この球は非常に小さい（５０μｍ程度の直径）ため栄養培地との相互作用
は妨害されない。
種子を好適には外側殻用の第１の好適には低分子量の架橋結合用反応物で洗浄
しそして次に微生物と一緒に第２の架橋結合用反応物で取り囲むことにより外側
殻と共にビーズ状にすることができる。
長期間の乾燥による恐れのある土壌用には、固定化物の中に水分供与体を微生
物および栄養培地と共に含むことが好適である。
上記の問題に基づき、生物学的な有害生物抑制用の固定化物は、本発明による
と、内部に微生物が栄養培地と共に含まれている架橋結合された外側殻からなっ
ている。
以上で説明したように、固定化物はさらに少なくとも１個の種子を含有するこ
とができる。
微生物は、架橋結合された担体構造体の多数の小球の中に固定された外側殻の
内部に含まれうる。この形態で球は種子に付着しうる。
外側殻を、微生物が付着している種子および付着している栄養培地上に直接形
成することができる。
外側殻は好適には少なくとも１種の高分子電解質から形成される。特に適する
高分子電解質は、穏やかな架橋結合条件の理由から、アルギン酸塩類であり、特
にＣａイオンを有するもの、好適にはＣａＣｌ2の形態、またはセルロース類、
例えばカルボキシアルキルセルロース類、特にカルボキシメチルセルロース、ま
たはスルホアルキル基を含有するセ
ルロースエーテル類、特にスルホアルキルセルロース、好適にはスルホエチルセ
ルロースである。スルホエチルエーテル（ＳＥＣ）とは別の適当なセルロースエ
ーテル類は特にスルホプロピルエーテル（ＳＰＣ）並びにヒドロプロピルスルホ
アルキルセルロース類（例えばＨＰＳＥＣ、ＨＰＳＰＣ）、ヒドロキシエチルア
ルキルセルロース類（例えばＨＥＳＥＣ、ＨＥＳＰＣ）およびカルボキシメチル
スルホアルキルセルロース類（例えばＣＭＳＥＣ、ＣＭＳＰＣ）のような混合セ
ルロース類である。これらのセルロース類はチトサンまたは好適にはポリジメチ
ルジアリルアンモニウムクロリド（ＰＤＭＤＡＡＣ）と架橋結合しうる。１.５
−２.５重量％の間のＰＤＭＤＡＡＣ濃度で特に安定な架橋結合が得られる。
架橋結合された外側殻の内部に微生物を含む小さい固体球を形成するためにア
ルギン酸塩を使用することが好ましい。もちろん他の既知の固定化系、例えばカ
ラギーナン、ポリビニルアルコールなどを使用することも可能である。
アルギン酸塩またはスルホエチルセルロース（ＳＥＣ）の使用は少なくとも高
度の生分解性という利点を有する。
含まれる栄養培地は当然含まれる微生物に依存する。ヒルステラ・ロッシリエ
ンシス（Hirsutella rhossiliensis）のような真菌培養菌用には、トウモロコシ
粉末またはトウモロコシグルテンが特に適しており、好適には少割合の酵母濃縮
物が加えられる。
珪藻土、ベントナイト、ポリアクリレート、セラミックスなどを水分安定剤と
して使用することができる。実施例１：
１２１℃で１０分間にわたりオートクレーブ処理された１２０ｇの２．６％ＳＥ
Ｃ溶液をオートクレーブ処理されたトウモロコシグルテン（粒
ＳＥＣの中空小球を形成した。真菌培養菌であるヒルステラ・ロッシリエンシス
（Hirsutella rhossiliensis）を加えて５％の最終濃度にした。ふるいわけ（メ
ッシュ寸法２００μｍ）によりトウモロコシグルテンの比較的大きい粒子を次に
分離した。
この溶液をＰＤＭＤＡＡＣのオートクレーブ処理された２％溶液に１時間３２
分の期間にわたり滴下した。球を二次架橋結合のために１５分間にわたり溶液中
に放置した。球を次にふるいわけにより分離しそしてオートクレーブ処理された
脱イオン水で洗浄することができた。それらを殺菌乾燥器バンク下で乾燥しそし
て乾燥状態で貯蔵することができるが、新鮮な状態でオートクレーブ処理された
６℃の水道水の中に数日間にわたり貯蔵することもできる。球の直径は１．３〜
１．４ｍｍであった。
ＰＤＭＤＡＡＣ溶液はＳＥＣ溶液中にある程度だけ透過することができ、それ
以上の透過は架橋結合されたＳＥＣ外側殻により妨害されるため、形成された球
は中空である。実施例２：
１２１℃で１０分間にわたりオートクレーブ処理された１２０ｇの２．６％Ｓ
ＥＣ溶液をオートクレーブ処理されたスキムミルク粉末と混合して２０％の最終
濃度にした。細菌シュードモナス・フルオレッセンス（Pseudomonas fluorescen
s）を加えて１０３個の細胞／ｇの最終濃度にした。ふるいわけ（メッシュ寸法
２００マイクロメートル）により比較的大きい粒子を次に分離した。この溶液を
ＰＤＭＤＡＡＣのオートクレー
ブ処理された２％溶液に１時間４０分の期間にわたり滴下した。球を二次架橋結
合のために１５分間にわたり溶液中に放置しそして次にふるいわけにより分離し
そしてオートクレーブ処理された脱イオン水で洗浄した。球の直径は１.３〜１.
４ｍｍであった。１０日後に、細胞が成長して球を通って出たことが明白に観察
できた。
本発明を以下で図面に示されている態様によりさらに詳細に説明する。
図１Ａ、１Ｂは製造された状態および細胞が増殖により成長して出た後の架橋
結合された外側殻の中にある栄養培地および種子と一緒になっている微生物の配
置の第１の態様を示す。
図２Ａ、２Ｂは図１に従う配置の第２の態様の図１に従う表示である。
図３Ａ、３Ｂは微生物を含まない殻の内部にある栄養培地と一緒になっている
微生物の配置の図１に従う表示である。
図４Ａ、４Ｂは栄養培地を取り囲んでいる架橋結合された殻の内部に微生物が
存在している配置の図３に従う表示である。
図１Ａは薄膜１の形態の架橋結合された外側殻を有する固定化物を示す。膜１
は栄養培地３の中を動いている微生物２を含む。膜１の内部には微生物２により
有害生物から保護されている種子４も存在する。
微生物は栄養培地３の中にそのままでまたは予備固定化された形態で存在しう
る。後者は微生物を小球中に含ませることにより製造でき、アルギン酸Ｃａ固体
球の中に含むことが好適である。図１Ｂは微生物２の増殖を示しており、それは
栄養培地３により激しい成長剌激を受けそして成長して膜１を通って出ていくた
め認識できる量のバイオマスが膜１の外側にも生成する。
図２Ａは、外側殻１'が内部に微生物２が存在している架橋結合され
た媒体により形成されるような配置を示す。種子４および種子４を取り囲む薄い
層状の栄養培地３が外側殻１'の芯領域に局在する。
栄養培地により養分を受け、微生物２も図２Ｂに表示されている方法で成長し
て外側殻１'を通って出ていく。
図３Ａは表示されている態様における微生物を含まない安定な外側殻１"を有
する配置を示す。栄養培地３は微生物２と共に外側殻１"の内部に局在する。こ
こでも図３Ｂに示されているように、微生物２は成長して外側殻１"を通って出
ていく。
図４Ａに示されている態様では、微生物２が図３Ａの外側殻１"と同一である
架橋結合された外側殻１"の内部で固定化されている。栄養培地３が外側殻１"の
芯に局在しており、栄養培地により微生物２は激しい成長刺激を受け、この微生
物は図４Ｂに示されているように成長して外側殻１"を通って出ていく。
示されている全ての態様において、微生物２の激しい成長は固定化物の内部で
始まるため、微生物が成長して固定化物から出ていく前に大量のバイオマスがす
でに存在しており、微生物２を、微生物を植物または種子に直接適用する場合よ
り外部の有毒なまたは機械的な影響に対してはるかに良好に保護する。The present invention relates to a method for controlling plant pests and an immobilized substance, which comprises contacting a microorganism that kills plant pests in a cross-linked carrier structure with a plant or plant seeds. It relates to a method for controlling plant pests. The invention further relates to immobilizates for biological pest control. Increasing interest in the protection of the environment and seawater and the need to reduce or ban the use of traditional chemical plant protection agents has led to the use of chemical plant protection agents as biological pests. Attempts have been made to replace with control agents. Thus, it is known to suppress, for example, Hetero dera schachtii, a sugar beet nematode, using nematode pathogenic fungi such as Hirsutella rhossiliensis. It has already been proposed to immobilize microorganisms in cross-linked structures in order to allow controlled administration of biologically active microorganisms and improve their stability in soil. (1995 Annual Report of the Bundesforschungsanstal fur Landwirtschaft (FAL), page 90, section 1.1). Methods for immobilizing microorganisms, including cells and enzymes, have been known for quite some time, and a very wide range of polyelectrolyte systems have been proposed as immobilization means. For example, low molecular weight cross-linking reactants, such as Ca ions, can be used to form alginate, fully cross-linked spheres, which allow microorganisms to crosslink microorganisms into the cross-linked structure. Immobilize. It is also known to form hollow spheres that may contain cross-linked reactants, eg, hollow spheres surrounding a liquid core. It is also known to form films by interfacial polymerization of oil-in-water or water-in-oil emulsions, where a first polymerization reactant is added to an aqueous phase and a second polymerization reactant is formed in an oil phase. To form a film at the interface by copolymerization of the two polymerization reactants. U.S. Pat. No. 5,358,836 discloses plant protectants consisting of immobilized fungi, bacteria and nematodes. Alginate and starch are mentioned as immobilized matrices. To prevent the immobilized active substance from drying out prematurely, add an emulsion-reversing oil, e.g. paraffin oil, to the immobilized material together with an absorbent for the oil, e.g. silica, to evaporate water from the immobilized material. It has been proposed to delay. It has been found that immobilization of effective biologically active microorganisms on plants did not have the desired degree of effect, and therefore no practical application was conceivable. The interaction between microorganisms and pests is greatly reduced by immobilization. The problem underlying the present invention is to find a practical application of biological pesticides despite the difficulties that exist. Based on this problem, a method of the type initially mentioned, according to the invention, is characterized in that the microorganisms are contained together with the nutrient medium inside the cross-linked outer shell, and that the microorganisms are contained inside the outer shell. In which the outer shell is designed to grow first and then escape therefrom. According to the invention, the microorganism is immobilized in a hollow structure, preferably a hollow sphere, wherein the nutrient medium for the microorganism is contained inside the hollow structure together with the microorganism. In this way, the immobilized material acts as a reactor for the growth of microorganisms. Inside this reactor, a large quantity of biomass escapes from the outer shell, for example by breaking down the outer shell by the pressure created by the growing biomass or, preferably, growing out therethrough. The microorganism can produce a stable, viable culture until it produces. In a preferred embodiment of the method according to the invention, only a low initial concentration of the microorganism is included with the nutrient medium and the outer shell is protected from escape from the outer shell until the microorganism has grown by a factor of at least 100. Designed. In this way, expensive fermentation of relatively large microorganisms can be omitted and replaced by fermentation inside the immobilisation at the site of application, so that the control of biological pests is effective and inexpensive. Can be The method according to the present invention therefore allows the application of a sufficient amount of biomass for pest control purposes, heretofore regarded as critical and important, to a relatively high concentration at the site of application. It is based not on application of microorganisms but on production of the required amount of microbial biomass in an environment protected by immobilization only at the site of application. When a sufficient amount of biomass has been produced, the immobilized material has achieved its purpose and the microorganisms have destroyed the outer shell of the immobilized material or, preferably, have grown out of the immobilized material, and are thereby free of pests. May be in direct contact. As part of the method according to the invention, it is preferred to include the microorganisms inside an outer shell fixed in a number of very small spheres of a cross-linked carrier structure. This is particularly advantageous if at least one seed is also contained in the outer shell. The system formed in this case prevents pests from entering the seeds. The spheres can be attached to the seed and then included in the outer shell together with the nutrient medium, the spheres being so small (diameter of the order of 50 μm) that their interaction with the nutrient medium is not hindered. The seed is preferably beaded with the outer shell by washing with the first preferably lower molecular weight cross-linking reactant for the outer shell and then surrounding with a second cross-linking reactant with the microorganism. Can be For soils that may be subject to prolonged drying, it is preferred to include a moisture donor in the immobilization along with the microorganism and nutrient medium. Based on the above problems, the immobilization for biological pest control comprises, according to the invention, a cross-linked outer shell in which the microorganisms are contained together with the nutrient medium. As explained above, the immobilized material can further contain at least one seed. Microorganisms can be contained within an outer shell that is immobilized within a number of globules of a cross-linked carrier structure. In this form, the spheres can adhere to the seed. The outer shell can be formed directly on the seed to which the microorganism is attached and the nutrient medium to which it is attached. The outer shell is preferably formed from at least one polyelectrolyte. Particularly suitable polyelectrolytes are alginates, for reasons of mild crosslinking conditions, especially those with Ca ions, preferably in the form of CaCl 2 , or celluloses, such as carboxyalkylcelluloses, especially carboxymethylcellulose, Alternatively, cellulose ethers containing a sulfoalkyl group, particularly sulfoalkyl cellulose, preferably sulfoethyl cellulose. Suitable cellulose ethers other than sulfoethyl ether (SEC) are in particular sulfopropyl ether (SPC) and hydropropylsulfoalkylcelluloses (eg HPSEC, HPSPC), hydroxyethylalkylcelluloses (eg HESEC, HESCC) and carboxy. Mixed celluloses such as methylsulfoalkyl celluloses (eg, CMSEC, CMSPC). These celluloses can be cross-linked with chitosan or, preferably, polydimethyldiallylammonium chloride (PDMDAAC). Particularly stable crosslinks are obtained at PDMDAAC concentrations between 1.5-2.5% by weight. It is preferred to use alginate to form small solid spheres containing microorganisms inside the cross-linked outer shell. Of course, it is also possible to use other known immobilization systems, for example carrageenan, polyvinyl alcohol and the like. The use of alginate or sulfoethylcellulose (SEC) has the advantage of at least a high degree of biodegradability. The nutrient medium contained naturally depends on the microorganisms involved. For fungal cultures such as Hirsutella rhossiliensis, corn flour or corn gluten is particularly suitable, preferably with a small percentage of yeast concentrate. Diatomaceous earth, bentonite, polyacrylate, ceramics and the like can be used as a moisture stabilizer. Example 1 120 g of a 2.6% SEC solution autoclaved at 121 ° C. for 10 minutes was mixed with autoclaved corn gluten (grain). SEC hollow spheres were formed. A fungal culture, Hirsutella rhossiliensis, was added to a final concentration of 5%. The relatively large particles of corn gluten were then separated by sieving (mesh size 200 μm). This solution was added dropwise to an autoclaved 2% solution of PDMDAAC over a period of 1 hour and 32 minutes. The spheres were left in solution for 15 minutes for secondary crosslinking. The spheres could then be separated by sieving and washed with autoclaved deionized water. They can be dried under a sterile dryer bank and stored dry, but can also be stored fresh in autoclaved 6 ° C. tap water for several days. The diameter of the sphere was between 1.3 and 1.4 mm. The formed spheres are hollow because the PDMDAAC solution can only partially penetrate into the SEC solution and further permeation is hindered by the cross-linked SEC outer shell. Example 2: 120 g of a 2.6% SEC solution autoclaved at 121 ° C for 10 minutes was mixed with autoclaved skim milk powder to a final concentration of 20%. The bacterium Pseudomonas fluorescens was added to a final concentration of 103 cells / g. The larger particles were then separated by sieving (mesh size 200 micrometers). This solution was added dropwise to an autoclaved 2% solution of PDMDAAC over a period of 1 hour and 40 minutes. The spheres were left in solution for 15 minutes for secondary cross-linking and then separated by sieving and washed with autoclaved deionized water. The diameter of the sphere was 1.3-1.4 mm. After 10 days, it was clearly visible that the cells had grown and exited through the sphere. The invention is explained in more detail below by means of the embodiments shown in the drawings. FIGS. 1A and 1B show a first embodiment of the arrangement of microorganisms together with the nutrient medium and seeds in the cross-linked outer shell in the manufactured state and after the cells have grown out by growth. Show. 2A and 2B are views according to FIG. 1 of a second embodiment of the arrangement according to FIG. 3A, 3B are representations according to FIG. 1 of the arrangement of the microorganisms together with the nutrient medium inside the shell without microorganisms. 4A, 4B are representations according to FIG. 3 of an arrangement in which the microorganisms are present inside a cross-linked shell surrounding the nutrient medium. FIG. 1A shows an immobilizate with a cross-linked outer shell in the form of a thin film 1. The membrane 1 contains microorganisms 2 moving in a nutrient medium 3. Inside the membrane 1 there are also seeds 4 which are protected from pests by the microorganisms 2. The microorganisms can be present in the nutrient medium 3 as such or in pre-immobilized form. The latter can be produced by including the microorganisms in small spheres, and is preferably contained in Ca alginate solid spheres. FIG. 1B shows the growth of the microorganism 2, which is subjected to more intense growth stimulus by the nutrient medium 3 and grows out through the membrane 1 so that a recognizable amount of biomass is also produced outside the membrane 1. . FIG. 2A shows an arrangement in which the outer shell 1 'is formed by a cross-linked medium in which the microorganisms 2 are present. The seed 4 and the thin layered nutrient medium 3 surrounding the seed 4 are localized in the core region of the outer shell 1 '. Upon receiving nutrients from the nutrient medium, the microorganisms 2 also grow and exit through the outer shell 1 'in the manner shown in FIG. 2B. FIG. 3A shows an arrangement with a stable outer shell 1 "free of microorganisms in the embodiment shown. The nutrient medium 3 is located together with the microorganisms 2 inside the outer shell 1". Again, as shown in FIG. 3B, the microorganism 2 grows and exits through the outer shell 1 ". In the embodiment shown in FIG. 4A, the microorganism 2 is Immobilized inside the same cross-linked outer shell 1 ". The nutrient medium 3 is localized in the core of the outer shell 1", and the nutrient medium causes the microorganisms 2 to undergo a severe growth stimulus. The microorganism grows and exits through the outer shell 1 "as shown in Figure 4B. In all of the embodiments shown, the vigorous growth of microorganism 2 begins inside the immobilizate, and A large amount of biomass is already present before growing out of the immobilizate and microorganisms 2 are much more susceptible to external toxic or mechanical effects than if the microorganisms were applied directly to plants or seeds. Good protection.
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(81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，
ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，Ｌ
Ｕ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ
，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，
ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，Ｓ
Ｄ，ＳＺ，ＵＧ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ
，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ
，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，
ＣＨ，ＣＮ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，Ｆ
Ｉ，ＧＢ，ＧＥ，ＧＨ，ＨＵ，ＩＬ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ
，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，
ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，Ｍ
Ｘ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ
，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，
ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ，ＹＵ
(72)発明者 パネク，イエルン―ベルント
ドイツ連邦共和国デー―29683フアリング
ボステル・ブルメンラーゲ61
(72)発明者 フオルロープ，クラウス―デイーター
ドイツ連邦共和国デー―38102ブラウンシ
ユバイク・ホーホシユトラーセ７
(72)発明者 パテル，アラント・フアラブバ
ドイツ連邦共和国デー―38100ブラウンシ
ユバイク・ベートーベンシユトラーセ２────────────────────────────────────────────────── ───
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(81) Designated countries EP (AT, BE, CH, DE,
DK, ES, FI, FR, GB, GR, IE, IT, L
U, MC, NL, PT, SE), OA (BF, BJ, CF)
, CG, CI, CM, GA, GN, ML, MR, NE,
SN, TD, TG), AP (GH, KE, LS, MW, S
D, SZ, UG, ZW), EA (AM, AZ, BY, KG)
, KZ, MD, RU, TJ, TM), AL, AM, AT
, AU, AZ, BA, BB, BG, BR, BY, CA,
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I, GB, GE, GH, HU, IL, IS, JP, KE
, KG, KP, KR, KZ, LC, LK, LR, LS,
LT, LU, LV, MD, MG, MK, MN, MW, M
X, NO, NZ, PL, PT, RO, RU, SD, SE
, SG, SI, SK, TJ, TM, TR, TT, UA,
UG, US, UZ, VN, YU
(72) Inventor Panek, Iern-Berndt
Germany Day-29683 Fairing
Bostel Blumenlage 61
(72) Inventor Forrope, Claus-Data
Federal Republic Day-38102 Brown
Ubike Hohoshi Jurase 7
(72) Inventor Patel, Allant Farababa
Federal Republic of Germany Day-38100 Brown
Ubike Beethoven Shuttle 2