JP2000511408A - New treatment - Google Patents

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JP2000511408A JP09538552A JP53855297A JP2000511408A JP 2000511408 A JP2000511408 A JP 2000511408A JP 09538552 A JP09538552 A JP 09538552A JP 53855297 A JP53855297 A JP 53855297A JP 2000511408 A JP2000511408 A JP 2000511408A
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スミスクライン・ビーチャム・パブリック・リミテッド・カンパニー
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Abstract

(57)【要約】 プレセニリン−1(PS−1)の切断を阻害するかさもなければ変調する化合物を同定するための化合物をスクリーニングする方法であって、PS−1の18kDaおよび28kDa種への切断の程度を試験化合物が存在しない場合の切断の程度と比較して測定する方法、それにより同定された化合物および治療におけるその化合物の使用。   (57) [Summary] A method for screening compounds to identify compounds that inhibit or otherwise modulate presenilin-1 (PS-1) cleavage, comprising determining the extent of cleavage of PS-1 into 18 kDa and 28 kDa species by a test compound. , A method of measuring relative to the extent of cleavage in the absence of, the compound identified thereby and the use of the compound in therapy.

Description

【発明の詳細な説明】 新規治療 本発明は治療において有用である可能性のある化合物を同定するために用いる アッセイに関する。本発明はまた、治療におけるポリペプチド切断のモデュレー ターの使用、および、アルツハイマー病の診断におけるポリペプチド切断産物の 使用にも関する。 アルツハイマー病(AD)は臨床的には痴呆、および神経病理学的には多数の 老人性斑および神経細繊維癒着の存在を特徴とする中枢神経系の進行性変性疾患 である。典型的には、ADは老人の遅発性疾患である。しかしながら、早発性の 該疾患を、年齢依存性浸透度を伴う常染色体の優性形質として遺伝する少数の家 系が報告されている。最も一般的には、該疾病の発症の年齢は60歳以下である 。早発性および後発性AD発症の両方への遺伝的因子の関与が示されている。 少なくとも4種の異なる遺伝子座の変異がADへの遺伝的感受性と関連する。 染色体19上のアポリポタンパク質E(ApoE)遺伝子のe4対立遺伝子は遅 発性ADと関連している(Strittmatterら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 1993, 90:1997-1981;Saundersら、Neurology 1993,43:1467-1472);Corderら、Science 1993,261:921-923)。染色体21上のβ−アミロイド前駆体タンパク質(βAP P)遺伝子の変異が、早発性ADのいくつかの家系において見られている(Goat eら、Nature 1991,349:704-706;Chartier-Harlinら、Nature 1991,353:844-846; Murrellら、Science 1991,254:97-99;Karlinskyら、Neurology 1992,42:1445-14 53)。最近、STM2と呼ばれる遺伝子中の新規なAD遺伝子座が「ボルガ・ゲ ルマン」一族(「Volga German」kindred)の遺伝子連鎖分析から、染色体1(lq31 -41)上に同定された(Ephrat Levy-Lahadら、Science 1995,269:970-973;ibid.9 73-977)。STM2遺伝子は、AD−関連遺伝子、S182と注目すべき類似性 を有している。 染色体14q24.3に対する遺伝子連鎖研究により第4の遺伝子座(AD3 ) がマッピングされ、早発性常染色体優性形質ADの70%異常の原因である可能 性がある。(Sche11enbergら、Science 1992,258:668-670;George-Hyslopら、Na ture Genet.1992,2:330-334;Van Boreckhovenら、Nature Genet.1992,2:335-339 )。AD3遺伝子座はこの疾患の最も進行的な形態に関連しており(30歳から6 0歳の間で発症)、この遺伝子座での突然変異はADに至る生物学的に基本的な 過程であることが示唆されている。 最近、AD3遺伝子座において早発性常染色体優性形質ADを分離する7つの 家系において5個のミスセンス突然変異を有する新規遺伝子、S182がクロー ニングされ、Sherrigtonら、Nature 1995,375:754-760に記載された。S182 転写物のヌクレオチド配列分析により、6つの大きな家系の罹患者由来の逆転写 ポリメラーゼ連鎖反応生成物において異型接合体ヌクレオチド置換体が示された 。S182の推定オープン・リーディング・フレーム(ORF)は7−膜貫通タ ンパク質であると予想されるタンパク質をコードし、家系に関係するヌクレオチ ド置換により、膜貫通(TM)ヘリックスII(L146M)、VI(E246A )、およびVII(Y410C)において、ならびにTMII−TMIII(R 163H)およびTMVI−TMVII(V286L)の間のループにおいてコ ードされるアミノ酸が変化する。加えて、S182遺伝子(以後プレセニリンー 1(presenilin-1)遺伝子と称する)のコーディング領域に影響しない遺伝子のイ ントロン9における多型性は、後発性散発性アルツハイマー病の危険因子である ことが示された(M.Wraggら、The Lancet,347:509-512(1996))。 本発明は、プレセニリン−1が細胞内で酵素により大部分がメチオニン298 およびアラニン299間で切断され: プレセニリン−1のN末端領域に対して上昇した抗体により免疫的に検出でき るが、C末端に対して上昇した抗体によっては検出できない28kDaのN末端 フラグメント;および プレセニリン−1のC末端領域に対して上昇した抗体により免疫的に検出でき るが、N末端に対して上昇した抗体によっては検出できない18kDaのC末端 フラグメント; を生じるという知見に基づいている(D.Selkoe,Neurobiology of Aging Supple ment Volume 17,number 4S Abstract 146,pS37 1996)。 プレセニリン−1における突然変異が早発性AD惹起し、イントロン性多型性 が遅発性散発性アルツハイマー病の発症の危険性の増加を伴うので、プレセニリ ン−1の切断はアルツハイマー病の病理学におけるその役割において、重要な事 象である。 したがって、本発明はPS−1の切断を阻害またはさもなければ調節する化合 物を同定するための化合物をスクリーニングする方法であって、プレセニリン− 1(PS−1)の18kDaおよび28kDa種への切断の程度を試験化合物が ない場合の切断の程度と比較して測定することを含む方法を提供する。本発明は また、それにより同定される化合物にも関する。 好ましい態様において、この方法ではPS−1をコードするDNAを含有する 発現ベクターでトランスフェクトしたヒト宿主細胞を用いる。切断産物の存在は 、切断産物のごときPS−1のフラグメントに対して作成され、28kDa種よ りも18kDa種に対して特異的、およびその逆のポリクローナルまたはモノク ローナル抗体を用いて宿主細胞のタンパク質含量をアッセイすることにより検出 できる。イムノアッセイの任意の適当な構成、例えばウェスタン・ブロット・ア ッセイまたはELISAを用いてもよい。 PS−1のフラグメントに対して作成され、28kDa種よりも18kDa種 に特異的、およびその逆のモノクローナルおよびポリクローナル抗体はそれ自体 新規であり、本発明のさらなる態様を形成する。特に、本発明はポリペプチドC RSLGHPEPLSNGRPQGNSRおよびCRDSHLGPHRSTPE SRに対して作成した抗体を提供する。 本発明はまた、単離形態の新規18kDaおよび28kDaの切断産物、それ に対する特異的抗体およびポリペプチド切断産物をコードするポリヌクレオチド (DNAまたはRNA)をも提供する。C末端18kDa種を通常のN末端配列 決定することにより切断部位を決定でき、メチオニン298およびアラニン29 9間に大部分が存在することが見出された(D.Selkoe,Neurobiology of Aging Supplement Volume 17,number 4S Abstract 146,pS37,1996)。切断部位に関 する知見により、本発明の方法において全長のPS−1に代えて用いることがで き、PS−1の切断に関与する酵素活性を解析し、測定できる、切断部位にわた る短いポリペプチド(例えばアミノ酸3から10個の長さ)を設計できる。また 、切断部位に関する知見により、ポリペプチドを本発明にしたがって特異的抗体 を作成するのに用いることができ、本発明の方法において有用な、PS−1の2 8kDa種のC末端および18kDa種のN末端に対応する短いポリペプチド( 例えばアミノ酸3から20個の長さ)をも設計できる。 本発明のポリペプチドおよびポリヌクレオチドは好ましくは単離形態で提供さ れ、好ましくは均質にまで精製される。 「単離された」なる用語はその物質が元来の環境(例えばそれが天然物である 場合、天然の環境)から除去されていることを意味する。例えば、生存動物に存 在する天然のポリヌクレオチドまたはポリペプチドは単離されていないが、天然 の系において共存する物質の一部または全てから分離されている場合、同じポリ ヌクレオチドまたはポリペプチドは単離されている。かかるポリヌクレオチドは ベクターの一部であることができ、および/またはかかるポリヌクレオチドもし くはポリペプチドは組成物の一部であることができ、かかるベクターもしくは組 成物が自然環境の一部ではないので単離されている。好ましくは、ポリペプチド は精製された形態である。精製形態はその他のタンパク質狭雑物に対して少なく とも80%、より好ましくは90%、さらに好ましくは95%、最も好ましくは 99%の純度であることを意味する。 本発明はまた本発明のポリヌクレオチドを含有するベクター、本発明のベクタ ーで遺伝子操作した宿主細胞および組み換え技術による本発明のポリペプチドの 製造にも関する。 従って本発明のさらなる態様によれば、宿主において該ポリペプチドをコード するポリヌクレオチドを発現させ、発現した産生物を回収する組み換え技術によ り本発明のポリペプチドを製造する方法が提供される。別法として本発明のポリ ペプチドをペプチド合成の常法により合成的に製造できる。 宿主細胞を例えばクローニングベクターまたは発現ベクターであってもよいベ クターで遺伝子操作する(トランスダクトまたはトランスフォームまたはトラン スフェクトする)。ベクターは、例えばプラスミド、コスミド、ファージ等の形 態であってもよい。操作した宿主細胞をプロモーターを活性化し、形質転換体を 選別し、または遺伝子を増幅するのに適するように修飾した慣用の栄養培地中で 培養できる。温度、pH等の培養条件は発現用に選択した宿主細胞で以前に用い られた条件であり、これは当業者には明らかであろう。 適当な発現ベクターには染色体性、非染色体性および合成DNA配列、例えば SV40の誘導体;細菌性プラスミド;ファージDNA;バキュロウイルス;酵 母プラスミド;プラスミドおよびファージDNA、ワクシナ、アデノウイルス、 鶏痘ウイルスおよび仮性狂犬病のごときウイルス性DNAの組み合わせ由来のベ クターが包含される。しかしながら宿主細胞中で複製可能であり生存可能な限り 、その他のいかなるベクターを用いてもよい。 適当なDNA配列を種々の方法によりベクターに挿入してもよい。概して、D NA配列は当該分野で知られる方法により適当な制限エンドヌクレアーゼ部位に 挿入する。かかる方法およびその他の方法は当業者の範囲内であると考えられる 。 発現ベクター内のDNA配列を適当な発現調節配列(プロモーター)に作動的 に連結させ、mRNAの合成を調整する。かかるプロモーターの代表例としては 、LTRまたはSV40プロモーター、イー・コリ(E.coli)racまたはtr p、ファージラムダPLプロモーターおよび原核細胞もしくは真核細胞またはそ れらのウイルスにおいて遺伝子の発現を調節することが知られているその他のプ ロモーターが挙げられる。発現ベクターはまた、翻訳開始および転写終止のため のリボソーム結合部位をも含有する。ベクターはまた発現を増幅するための適当 な配列をも含有してもよい。 加えて発現ベクターは、1個またはそれ以上の選別マーカー遺伝子を含有し、 真核細胞培養用のジヒドロ葉酸リダクターゼもしくはネオマイシン耐性またはイ ー・コリのテトラサイクリンもしくはアンピシリン耐性のごとき形質転換した宿 主細胞を選別するための表現型の特性を提供するのが好ましい。 遺伝子をプロモーター、リボソーム結合部位(細菌発現用)および所望により オペレーター(本明細書では総括して「調節」エレメントと称する)の調節下に おくことができ、所望のタンパク質をコードするDNA配列が、この発現構築物 を含有するベクターにより形質転換された宿主細胞中でRNAに転写されるよう にできる。コーディング配列はシグナルペプチドまたはリーダ配列を含有しても しなくてもよい。例えばイー・コリtacプロモーターまたはプロテインA遺伝 子(spa)プロモーターおよびシグナル配列を用いて本発明のタンパク質配列 を発現できる。リーダー配列は翻訳後プロセッシングにおいて細菌宿主により除 去できる。CAT(クロラムフェニコール・トランスフェラーゼ)ベクターまた は選択マーカーを有するその他のベクターを用いてプロモーター領域を所望の遺 伝子から選別できる。2種の適当なベクターはPKK232−8およびPCM7 である。特別に命名された細菌性プロモーターにはlacI、lacZ、T3、 T7、gpt、ラムダPR、PLおよびtrpが包含される。真核生物プロモータ ーにはCMV極初期プロモーター、HSVチミジンキナーゼ、初期および後期S V40、レトロウイルス由来のLTR、およびマウス・メタロチオネイン−Iが 包含される。適当なベクターおよびプロモーターの選択は当業者の範囲内である 。 調節配列に加えて宿主細胞の成長に応じてタンパク質配列の発現を制御できる 制御配列を加えるのが望ましい。制御配列は当業者に既知であり、例としては制 御化合物の存在を含め化学的または物理的刺激に応答して遺伝子発現をオンまた はオフするものが包含される。例えばエンハンサー配列などの別の型の制御エレ メントもまたベクターに存在してもよい 特定のコーディング配列を適当な制御配列を有するベクター中に置き、コーデ ィング配列の位置および配向を、調節配列に関して、コーディング配列が調節配 列の「調節」下で転写される(すなわち調節配列でDNA分子に結合するRNA ポリメラーゼがコーディング配列を転写する)ように発現ベクターを構築する。 コーディング配列の修飾は、この目的を達成するために望ましい。例えば、適当 な配向で調節配列に結合できるように、すなわち解読枠を維持するように配列を 修飾することが必要な場合もある。調節配列および他の制御配列を、前記のクロ ーニングベクターなどのベクターに挿入する前にコーディング配列にライゲート してもよい。別法としてコーディング配列をすでに調節配列および適当な制限部 位を含有している発現ベクターに直接クローニングできる。コーディング配列の 修飾を行い、発現を増強するために、選択した宿主細胞に適合するようコドンの 使用を変化させてもよい。 一般に、組み換え発現ベクターは、宿主細胞の形質転換を可能にする複製起点 および選択マーカー、例えばイー・コリのアンピシリン耐性遺伝子およびエス・ セレビシアエ(S.cerebisiae)TRP1遺伝子、および下流の構造配列の転写を 指示する高−発現遺伝子由来のプロモーターを含有する。異種構造配列を翻訳開 始および終止配列、好ましくは翻訳されたタンパク質の周辺腔または細胞外培地 への分泌を指示できるリーダー配列を用いて適当な状態に組み立てる。所望によ り、異種配列は望ましい特性、例えば発現組み換え産物の安定化または精製の容 易化を付与するN−末端同定ペプチドを含有する融合タンパク質をコードできる 。 本明細書で前記したような適当なDNA配列、ならびに適当なプロモーターま たは調節配列を含有するベクターを用いて適当な宿主細胞を形質転換し、宿主に タンパク質を発現させることができる。 クローニング用の組換えDNAベクターおよびそれらが形質転換できる宿主細 胞の例としては、バクテリオファージλ(イー・コリ)、pBR322(イー・コ リ)、pACYC177(イー・コリ)、pKT230(グラム陰性細菌)、pGV 1106(グラム陰性細菌)、pLAFR1(グラム陰性細菌)、pME290(イ ー・コリ以外のグラム陰性細菌)、pHV14(イー・コリおよびバシラス・サブ チリス(Bacillus subtilis))、pBD9(バシラス)、pIJ61(ストレプトミ セス(Streptomyces))、pUC6(ストレプトミセス)、YIp5(サッカロミセス (Saccharomyces))、バキュロウイルス(baculovirus)昆虫細胞系、YCp19 (サッカロミセス)等が挙げられる。概要は「DNA Cloning」:Vols I&II,Glove rら、ed.IRL Press Oxford(1985)(1987)および;T.Maniatisら、「Molecular Cloning」Cold Spring Harbor Laboratory(1982)を参照のこと。 宿主生物からポリペプチドの分泌を惹起する配列を加え、続いて分泌シグナル を切断することが望ましい場合もある。 酵母発現ベクターもまた当業界で知られている。例えば、米国特許第4446 235号;第4443539号;第4430428号を参照のこと;また欧州特 許出願第103409号;第100561号;第96491号をも参照のこと。 SV40後期プロモーターを用いて哺乳動物細胞における発現を誘導するpSV 2neo(J.Mol.Appl.Genet.1:327-341に記載される)またはCMVプロモ ーターを用いて発現を誘導するpCDNA1(Mol.Cell Biol.7:4125-4129) に由来するベクターpCDNA1neo。これらの後者の2種のベクターは共に 哺乳動物細胞中で一過性または安定した(G418耐性を用いる)発現用に用い ることができる。昆虫細胞発現系、例えばドロソフィラ(Drosophila)もまた有 用であり、例えばPCT出願WO90/06358およびWO92/06212 ならびにEP290261−B1を参照のこと。 高等な真核生物によるDNAの転写はエンハンサー配列をベクターに挿入する ことにより増強される。エンハンサーはDNAのシス作動性エレメントであり、 通常約10から300塩基対であり、プロモーターに作用してその転写を増強す る。例には複製起点の後方の100から270塩基対のSV40エンハンサー、 サイトメガロウイルス初期プロモターエンハンサー、複製起点の後方のポリオー マ・エンハンサーおよびアデノウイルスエンハンサーが包含される。 前記のベクターを含有する宿主細胞は、哺乳動物細胞のごとき高等な真核細胞 もしくは酵母細胞のごとき下等な真核細胞であることができ、または細菌細胞の ごとき原核細胞であることもできる。適当な宿主の代表例としては:原核生物、 例えばイー・コリ、ストレプトミセス、サルモネラ・チフィムリウム(Salmonel la thyphimurium)のごとき細菌細胞、および真核生物、例えば酵母のごとき真 菌細胞、ドロソフィラ(Drosophila)およびスポドプテラ・フルギペルダ(Spod optera frugiperda)のごとき昆虫細胞、CHO、COSまたはボウズ(Bowes) 黒色腫のごとき哺乳動物細胞、植物細胞等が挙げられる。適当な宿主の選択は本 明細書の教示より当業者の範囲内であると考える。 構築物をリン酸カルシウム・トランスフェクション、DEAE−デキストラン 媒介トランスフェクション、またはエレクトロポレーションにより宿主細胞へ導 入できる。(Davis,L.,Dibner,M.,Battey,I.,Basic Methods in Molecular Biology,(1986))。 適当な宿主株を形質転換し、宿主株を適当な細胞密度にまで成長させた後、選 択したプロモーターを適当な手段(例えば温度シフトまたは化学的誘導)により 誘導し、さらなる期間細胞を培養する。 典型的には、遠心により細胞を回収し、物理的または化学的手段により粉砕し 、得られた粗抽出物をさらに精製するために保持する。 凍結−融解サイクル、ソニケーション、機械的粉砕または細胞溶解剤の使用を 含む常法によりタンパク質の発現に用いた微生物細胞を粉砕でき、かかる方法は 当業者に周知である。 種々の哺乳動物細胞系を用いて組み換えタンパク質を発現することもできる。 哺乳動物発現系の例には、サル腎臓繊維芽細胞のCOS−7ライン(Gluzman,C ell,23:175(1981)に記載される)および適合するベクターを発現できるその他 のセルライン、例えばC127、3T3、CHO、HeLaおよびBHKセルラ イン等が包含される。哺乳動物発現ベクターは複製起点、適当なプロモーターお よびエンハンサー、ならびに任意の所望のリボソーム結合部位、ポリアデニル化 部位、スプライス・ドナーおよびアクセプター部位、転写終止配列ならびに5’ フランキング非転写配列を含む。SV40プライスに由来するDNA配列および ポリアデニル化部位を用いて所望の非転写遺伝的エレメントを提供してもよい。 また、ヒト以外のトランスジェニック動物を宿主として用いてもよい。 発現したポリペプチドの回収方法は、選択した発現系および宿主に依存する。 発現系がポリペプチドを成長培地に分泌する場合、ポリペプチドを培地から直接 精製できる。ポリペプチドが分泌されない場合は、細胞溶解物から単離するかま たは細胞膜分画から回収する。ポリペプチドが細胞表面に局在する場合、細胞全 体または単離した膜を所望の遺伝子産物の検定源として用いることができる。イ ー・コリのごとき細菌宿主に発現されポリペプチドは封入体から単離し、再生す る必要がある。適当な成長条件および回収方法の選択は当業者の範囲内である。 硫酸アンモニウムまたはエタノール沈殿、酸抽出、陰イオンまたは陽イオン交 換クロマトグラフィー、ホスホセルロースクロマトグラフィー、疎水性相互作用 クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、ヒドロキシルアパタ イトクロマトグラフィーおよびレクチンクロマトグラフィーを含む方法により組 み換え細胞培養物からポリペプチドを回収および精製できる。必要ならばタンパ ク質の再生工程を用いて成熟タンパク質の立体配置を完全にすることができる。 最後に高速液体クロマトグラフィー(HPLC)を最終精製工程に用いることが できる。 組み換え製造法で用いる宿主に応じて、ポリペプチドをグリコシル化してもグ リコシル化しなくてもよい。ポリペプチドはまた、開始メチオニンアミノ酸残基 を含有してもよい。 「組換え」ポリペプチドは、組換えDNA技術により産生した、すなわち所望 のポリペプチドをコードする外因性DNA構築物により形質転換された細胞から 産生したポリペプチドを意味する。「合成」ポリペプチドは化学的合成により製 造したポリペプチドである。 「レプリコン」は、インビボでDNA複製の自立的ユニットとして機能する; すなわちそれ自体の調節下で複製可能な遺伝的エレメント(例えばプラスミド、 染色体、ウイルス)である。 「ベクター」は、付着したセグメントが複製できるように、別のDNAセグメ ントがするプラスミド、ファージ、またはコスミド等のレプリコンである。 「二本鎖DNA分子」は弛緩および超らせんの両方の二本鎖らせんのデオキシ リボヌクレオチド(アデニン、グアニン、チミンまたはシトシン塩基)のポリマ ーの形態を意味する。この用語は分子の1次および2次構造のみを意味し、特定 の3次形態を限定するものではない。従って、この用語はとりわけ直鎖DNA分 子(例えば制限断片)、ウイルス、プラスミドおよび染色体に見出される二本鎖 DNAを包含する。特定の二本鎖DNA分子の構造に関して論じる場合、DNA のセンス鎖に沿って5’から3’の方向の配列のみを示す慣用法に従って本明細 書に配列を記載できる。 特定のタンパク質のDNA「コーディング配列」、または特定のタンパク質を「 コードするヌクレオチド配列」は、適当な制御配列の調節下においた場合、ポリ ペプチドに転写および翻訳されるDNA配列である。 「プロモーター配列」は、細胞内でRNAポリメラーゼに結合し、下流(3’ 方向)のコーディング配列の転写を開始する能力のあるDNA制御領域である。 プロモーター配列内には、転写開始部位(ヌクレアーゼS1のマッピングにより 簡便に示される)およびRNAポリメラーゼの結合に寄与するタンパク質結合ド メイン(コンセンサス配列)がある。真核生物プロモーターは、いつもではない が、しばしば、「TATA」ボックスおよび「CAT」ボックスを含有する。 DNA「調節配列」とはプロモーター配列、リボソーム結合部位、ポリアデニ ル化シグナル、転写終止配列、上流制御ドメイン、エンハンサー等を総称し、総 じて宿主細胞におけるコーディング配列の発現(すなわち転写および翻訳)を提 供する。 RNAポリメラーゼがプロモーター配列に結合し、コーディング配列をmRN Aに転写し、次いでコーディング配列によりコードされるポリペプチドに翻訳す る場合、調節配列は細胞においてコーディング配列の「発現を指示する」。 「宿主細胞」は、外因性DNA配列によりトランスフォームもしくはトランス フェクトされた、またはトランスフォームもしくはトランスフェクト可能な細胞 である。 外因性DNAが細胞膜内に導入された場合、細胞はかかる外因性DNAにより「 形質転換されている」。外因性DNAは、細胞のゲノムを構成する染色体DNA に組み込まれて(共有結合して)も組み込まれなくてもよい。原核生物および酵 母では、例えば外因性DNAはプラスミド等のエピソームエレメント上に保持さ れ得る。真核細胞に関しては、安定して形質転換またはトランスフェクトされた 細胞は、外因性DNAが染色体内に組み込まれ、染色体複製を介して娘細胞によ り遺伝される細胞である。この安定性は真核細胞が外因性DNAを含有する娘細 胞の集団からなるセルラインまたはクローンを確立する能力により示される。 「クローン」は、単一の細胞または有糸分裂による共通の先祖に由来する細胞 の集団である。「セルライン」は、多世代にわたってインビトロで安定した成長 が可能な1次細胞のクローンである。 2個のDNAまたはポリペプチド配列が「実質的に相同」または「実質的に同一」 とは、分子の所定の長さにわたりヌクレオチドまたはアミノ酸が少なくとも約8 5%(好ましくはすくなくとも約90%、および最も好ましくは少なくとも約9 5%)対合する場合であり、対立遺伝子変異を包含する。また、本明細書で用い るように実質的に相同とは、特定のDNAまたはポリペプチド配列と同一性を示 す配列を意味する。実質的に相同なDNA配列は、例えば特定の系で規定される ようなストリンジェント条件下でサザンハイブリダイゼーション実験で同定でき る。適当なハイブリダイゼーション条件の規定は当業者の範囲内である。例えば 「Current Protocols in Mol.Biol.」Vol.I&II,Wiley Interscience,Ausbel ら(編)(1992)を参照のこと。実質的に同一のタンパク質配列はタンパク質溶解 性消化、ゲル電気泳動およびマイクロシークエンシングにより同定できる。 「機能的に等価」なる用語は、対象のタンパク質のアミノ酸配列が元来のタン パク質の活性と同種の活性を示す配列であることを意味する。 DNA構築物の「異種」領域は、天然で他の分子と結合して見出されない、他 のDNA分子内またはその分子に付着した同定可能なDNAのセグメントである 。 ポリペプチドまたはそれを発現する細胞を免疫原として用いてそれに対する抗 体を製造できる。これらの抗体は例えばポリクローナルまたはモノクローナル抗 体であることができる。本発明はまたキメラ、一本鎖およびヒト化抗体ならびに FabフラグメントまたはFab発現ライブラリーの産物をも包含する。当該分 野で知られる種々の方法を用いて、かかる抗体およびフラグメントを製造するこ とができる。 ポリペプチドを動物に直接注射して、またはポリペプチドを好ましくはヒト以 外の動物に投与してポリペプチドに対して生成された抗体を得ることができる。 このようにして得た抗体を次いでポリペプチド自体に結合する。このようにして ポリペプチドのフラグメントのみをコードする配列を用いて完全な天然のポリペ プチドに結合する抗体を生成することさえもできる。 連続セルライン培養により産生される抗体を提供する任意の技術を用いてモノ クローナル抗体を製造することができる。例には、ハイブリドーマ技術(Kohler and Milstein,1975,Nature,256:495-497)、トリオーマ技術、ヒトBセルハイ ブリドーマ技術(Kozborら、1983,Immunology Today,4:72)、およびヒト・モノ クローナル抗体を製造するためのEBVハイブリドーマ技術(Coleら、1985,Mono clonal Antibodies and Cancer Therapy,Alan R.Liss,Inc.77-96)が包含さ れる。 一本鎖抗体の製造に関して記載された技術(米国特許第4946778号)を 適用して、免疫原性ポリペプチドに対する一本鎖抗体を製造できる。 本発明はまた、PS−1の18kDaおよび28kDa種への切断のモデュレ ーターである化合物およびPS−1の機能を変調するためのそれらの使用も提供 する。 本発明はさらにPS−1の機能を変調するための医薬の製造における本発明に よる化合物の使用を提供する。 本発明はさらにアルツハイマー病の治療または予防の方法であって、本発明の 化合物、とりわけPS−1の18kDaおよび28kDa種への切断のモデュレ ーターである化合物の有効量を患者に投与することを含む方法を提供する。 治療に用いる場合、本発明の化合物を標準的な製剤方法にしたがって処方する 。 したがって、本発明はまた、本発明の化合物および医薬上許容される担体を含 む医薬組成物を提供する。 経口投与した場合に活性である化合物は、液剤、例えばシロップ、懸濁剤また は乳剤、錠剤、カプゼルおよびロゼンジに処方できる。 一般に、液体製剤は、懸濁化剤、保存剤、着香剤または着色剤と共に、適当な 液体担体、例えばエタノール、グリセリン、非水性溶媒、例えばポリエチレング リコール、油または水中の化合物または医薬上許容される塩の懸濁液または溶液 からなる。 錠剤の形態の組成物は、固体製剤を製造するために慣用される適当な医薬担体 を用いて製造できる。かかる担体の例には、ステアリン酸マグネシウム、デンプ ン、ラクトース、シュークロースおよびセルロースが包含される。 カプセルの形態の組成物は、慣用のカプセル方法を用いて製造できる。例えば 、活性成分を含有するペレットを標準的な担体を用いて製造し、次いで硬質ゼラ チンカプセルに充填できる;別法として、適当な医薬担体、例えば水性ガム、セ ルロース、珪酸塩または油を用いて分散物または懸濁液を製造し、次いで分散物 または懸濁液を軟質ゼラチンカプセルに充填できる。 典型的な非経口用組成物は、滅菌水性担体または非経口用に許容される油、例 えばポリエチレングリコール、ポリビニルピロリドン、レシチン、落花生油、ゴ マ油中の化合物または医薬上許容される塩の溶液または懸濁液からなる。別法と して溶液を凍結乾燥し、次いで投与直前に適当な溶媒で復元できる。 典型的な坐剤処方は、坐剤で投与した場合に活性である式(I)で示される化 合物または医薬上許容されるその塩を、グリコール・ポリマー、ゼラチンもしく はココアバターまたはその他の低融点植物性もしくは合成ワックスもしくは脂肪 のごとき結合剤および/または滑沢剤と共に含む。 好ましくは組成物を、錠剤もしくはカプセルのごとき単位投与形態にする。 経口投与用の各投与量単位は、好ましくは、本発明の阻害剤を1から250m g含有する(非経口投与用には好ましくは0.1mgから25mg含有する)。 成人の患者の1日の投与計画は例えば式(I)の化合物もしくは医薬上許容さ れるその塩を遊離塩基として計算して、経口投与用量は1mgから500mg、 好ましくは1mgから250mg、または静脈内、皮下もしくは筋肉内投与用量 は0.1mgから100mg、好ましくは0.1mgから25mgにでき、化合 物を1日1から4回投与する。適当には化合物を治療期間中連続して投与する。 さらなる態様において、本発明は患者におけるアルツハイマー病を予測する診 断方法であって、患者から組織サンプルを単離し、該サンプルをPS−1の18 kDaおよび28kDa種への切断に関してアッセイすることを含む方法を提供 する。 化合物のスクリーニング方法に関して前記したように、切断産物に対して製造 したポリクローナルまたはモノクローナル抗体を用いてサンプルのタンパク質含 量をアッセイことにより切断産物の存在を検出できる。 本発明はさらに以下の実施例に関して記載する;しかしながら本発明をかかる 実施例に制限するものではないことを理解すべきである。特記しなければ全ての 部分または量は重量で示す。 実施例 実施例1 細胞中のプレセニリン−1の切断の証明 PS−1のN末端領域のアミノ酸42−60を含有するペプチドCRSLGH PEPLSNGRPQGNSR、およびPS−1のC末端領域のアミノ酸344 −358を含有するペプチドCRDSHLGPHRSTPESRに対するウサギ ポリクローナル抗体を作成した(R.Sherringtonら、Nature,375:754-760,1995 )。これらの抗体は: PS−1のcDNAでトランスフェクトした細胞の細胞溶解物をウェスタン・ イムノブロット分析により、ベクター対照細胞に比較してトランスフェクトした 細胞におけるタンパク質のバンドの免疫反応性が強いことが示される; タンパク質バンドに対する免疫反応性が抗体を作成するのに用いたペプチドに 対して競合することが示される; ペプチドを接種する前にウサギから採取した血清では、ペプチドを接種した後 の血清を用いて検出されるタンパク質バンドを検出することができないことが示 される; ことにより特徴付けられている。 神経芽腫セルラインSHSY5YをPS−1遺伝子のcDNAを含有する発現 ベクターでトランスフェクトし、安定してトランスフェクトされたセルラインを 確立した。トランスフェクトされた細胞において、およびベクター対照細胞にお いても、PS−1タンパク質はタンパク質のN末端およびC末端の領域の両方に 対して作成した抗体で検出できる43−46kDaのタンパク質として現れる。 全長PS−1タンパク質は、ベクター対照細胞よりもPS−1でトランスフェク トされた細胞においてより容易に検出できる。トランスフェクトした細胞および トランスフェクトしていない両方の細胞内でPS−1がタンパク質溶解的に切断 され:プレセニリン−1のN末端領域に対して作成した抗体により免疫的に検出 できるが、C末端に対して作成した抗体では検出されない28kDaのN末端フ ラグメント:およびプレセニリン−1のC末端領域に対して作成した抗体により 免疫的に検出できるが、N末端に対して作成した抗体では検出されない18kD aのC末端フラグメントを生成する。 実施例2 プレセニリン−1の切断のモデュレーターに関するアッセイ 前記した抗体を用いて細胞におけるPS−1の切断、およびPS−1の切断の 程度に影響しうる外来性物質の効果が測定できる。これはPS−1タンパク質を 切断する酵素の活性を阻害またはさもなければ変調する物質を包含し、かかる物 質はアルツハイマー病の治療に有用である。 プレセニリン−1(PS−1)遺伝子のcDNAを含有する発現ベクターでト ランスフェクトしたヒト神経芽腫細胞におけるプレセニリン−1の切断の阻害剤 の能力を、以下の方法を用いて試験した: pcDNA3またはpCEP4発現ベクターのどちらかのPS−1 cDNA でトランスフェクトした付着SHSY5Yヒト神経芽腫細胞をマイクロタイター プレート中で成長させる。88%(v/v)DMEM/NUT MIX F−12 、10%(v/v)ウシ胎仔血清、50μg/mlペニシリン/ストレプトマイ シン、G−418ゲネチシン400μg/ml、および2mMグルタミンからな る成長培地(pH7.4)において80%集密にまで細胞を成長させる。試験化 合物をジメチルスルホキシド中、保存濃度2mMで溶解し、次いで成長培地中1 :200に希釈する。成長培地を除去した後、希釈した化合物200μlを3つ のウェル内の付着細胞に加える。希釈した溶媒を含有する適当な対照培養物を3 検体用意する。プレートを加湿インキュベーター中95%空気/5%CO2で3 7℃にて、24時間インキュベートする。細胞をリン酸緩衝塩水(pH7.4) で2回洗浄する。 50mM Tris HCl(pH8.0)中150mM塩化ナトリウム、1% v/vNP40、0.5%v/vデオキシコール酸ナトリウム、0.1%v/v ドデシル硫酸ナトリウムからなるRIPA緩衝液中で細胞を溶解し、サンドウィ ッチアッセイにおいて特異的抗体を用いる96ウェル・イムノアッセイ・フォー マットでアッセイする。第1の抗プレセニリン−1抗体を細胞内のC末端フラグ メントに対する捕獲物質として供し、第2の抗プレセニリン−1特異的抗体(こ れは切断により生成されるN末端ネオエピトープを認識する)を検出に用いる複 合体の成分として供する。デキストランに結合し、ビオチニル化した第3のウサ ギIgG特異的抗体を経時分解する蛍光で検出し、次いでストレプトアビジン− ユーロピウム複合体(Delfia;EG&GBerthold and Wallac)と、続いてエン ハンサー溶液とさらにインキュベートする。陽性の結果は対照群に相対して蛍光 が変化するものであり、これは試験化合物の効果の結果切断が変調されたことを 示唆する。結果を溶媒のみを含有する培地で条件づけしたウェルで得られたシグ ナルの阻害%として表す。 実施例3 診断方法 アルツハイマー病を予測するための手段として、またアルツハイマー病の治療 としてプレセニリンの切断を変調するために投与されている物質の効果を評価す る手段として、前記した抗体を診断用に用いて、患者組織、例えば血液における PS−1の18kDaおよび28kDa種への切断の程度をアッセイできる。 化合物のスクリーニング方法について前記したように、切断産物に対して産生 したポリクローナルまたはモノクローナル抗体を用いてサンプルの免疫活性をア ッセイすることにより切断産物の存在を検出してもよい。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION Novel Therapies The present invention relates to assays used to identify compounds that may be useful in therapy. The invention also relates to the use of polypeptide cleavage modulators in therapy, and the use of polypeptide cleavage products in the diagnosis of Alzheimer's disease. Alzheimer's disease (AD) is a progressive degenerative disease of the central nervous system characterized clinically by dementia and neuropathologically by the presence of numerous senile plaques and neurofibrillary adhesions. Typically, AD is a late onset disease of the elderly. However, a small number of families have been reported that inherit the premature disease as an autosomal dominant trait with age-dependent penetrance. Most commonly, the age of onset of the disease is 60 years or less. The involvement of genetic factors in both early and late AD development has been shown. Mutations in at least four different loci are associated with genetic susceptibility to AD. The e4 allele of the apolipoprotein E (ApoE) gene on chromosome 19 is associated with late-onset AD (Strittmatter et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1993, 90: 1997-1981; Saunders et al., Neurology). 1993, 43: 1467-1472); Corder et al., Science 1993, 261: 921-923). Mutations in the β-amyloid precursor protein (βAPP) gene on chromosome 21 have been found in some families with early-onset AD (Goate et al., Nature 1991, 349: 704-706; Chartier-Harlin). Et al., Nature 1991, 353: 844-846; Murrell et al., Science 1991, 254: 97-99; Karlinsky et al., Neurology 1992, 42: 1445-1453). Recently, a novel AD locus in a gene called STM2 was identified on chromosome 1 (lq31-41) from gene linkage analysis of the "Volga German" kindred (Ephrat Levy-Lahad). Et al., Science 1995, 269: 970-973; ibid. 973-977). The STM2 gene has remarkable similarities to the AD-related gene, S182. Gene linkage studies on chromosome 14q24.3 have mapped the fourth locus (AD3) and may be responsible for the 70% abnormality of the early-onset autosomal dominant trait AD. (Sche11enberg et al., Science 1992, 258: 668-670; George-Hyslop et al., Nature Genet. 1992, 2: 330-334; Van Boreckhoven et al., Nature Genet. 1992, 2: 335-339). The AD3 locus is associated with the most progressive form of the disease (onset between the ages of 30 and 60), and mutations at this locus are a biologically fundamental process leading to AD. It is suggested that there is. Recently, a novel gene, S182, with five missense mutations in seven families that segregates the early-onset dominant trait AD at the AD3 locus has been cloned and described in Sherrigton et al., Nature 1995, 375: 754-760. Was done. Nucleotide sequence analysis of the S182 transcript showed heterozygous nucleotide substitutions in reverse transcriptase polymerase chain reaction products from six large family members. The putative open reading frame (ORF) of S182 encodes a protein predicted to be a 7-transmembrane protein and transmembrane (TM) helix II (L146M), VI (E246A) ), And VII (Y410C), and in the loop between TMII-TMIII (R163H) and TMVI-TMVII (V286L). In addition, a polymorphism in intron 9 of a gene that does not affect the coding region of the S182 gene (hereinafter referred to as the presenilin-1) gene has been shown to be a risk factor for late sporadic Alzheimer's disease. (M. Wragg et al., The Lancet, 347: 509-512 (1996)). The present invention is based on the finding that presenilin-1 is predominantly cleaved intracellularly between methionine 298 and alanine 299 by cells: detectable by antibodies raised against the N-terminal region of presenilin-1, A 28 kDa N-terminal fragment undetectable by raised antibodies; and an 18 kDa immunodetectable by antibodies raised to the C-terminal region of presenilin-1 but not detected by antibodies raised to the N-terminus. (D. Selkoe, Neurobiology of Aging Supplement Volume 17, number 4S Abstract 146, pS37 1996). Cleavage of presenilin-1 is an important factor in the pathology of Alzheimer's disease, since mutations in presenilin-1 cause premature AD and intronic polymorphisms are associated with an increased risk of developing late-onset sporadic Alzheimer's disease. An important event in that role. Accordingly, the present invention is a method of screening compounds to identify compounds that inhibit or otherwise modulate the cleavage of PS-1, comprising the steps of presenilin-1 (PS-1) cleavage to 18 kDa and 28 kDa species. A method is provided that comprises measuring the extent relative to the extent of cleavage in the absence of the test compound. The present invention also relates to the compounds identified thereby. In a preferred embodiment, the method uses human host cells transfected with an expression vector containing DNA encoding PS-1. The presence of the cleavage product was determined for a fragment of PS-1 such as the cleavage product, and the protein content of the host cell was determined using polyclonal or monoclonal antibodies specific for the 18 kDa species over the 28 kDa species and vice versa. It can be detected by performing an assay. Any suitable configuration of an immunoassay may be used, for example, a Western blot assay or an ELISA. Monoclonal and polyclonal antibodies raised against fragments of PS-1 and specific for 18 kDa species over 28 kDa species, and vice versa, are novel per se and form a further aspect of the invention. In particular, the present invention provides antibodies raised against polypeptides C RSLGHPEPSNLSGRPQGNSR and CRDSHLGPHRSTPESR. The present invention also provides isolated forms of the novel 18 kDa and 28 kDa cleavage products, specific antibodies thereto, and polynucleotides (DNA or RNA) encoding the polypeptide cleavage products. Cleavage sites could be determined by conventional N-terminal sequencing of the C-terminal 18 kDa species and the majority was found between methionine 298 and alanine 299 (D. Selkoe, Neurobiology of Aging Supplement Volume 17). , Number 4S Abstract 146, pS37, 1996). Based on knowledge of the cleavage site, short polypeptides (eg, amino acids) across the cleavage site that can be used in the methods of the invention in place of full-length PS-1 and can analyze and measure the enzymatic activity involved in PS-1 cleavage 3 to 10 lengths). Also, knowledge of the cleavage site allows the polypeptide to be used to generate specific antibodies in accordance with the present invention, and is useful in the methods of the present invention for the C-terminal and 18 kDa species of the 28 kDa species of PS-1. Short polypeptides corresponding to the N-terminus (eg, 3 to 20 amino acids in length) can also be designed. The polypeptides and polynucleotides of the present invention are preferably provided in an isolated form, and preferably are purified to homogeneity. The term "isolated" means that the material has been removed from its original environment (eg, the natural environment if it is a natural product). For example, a natural polynucleotide or polypeptide present in a living animal is not isolated, but the same polynucleotide or polypeptide is isolated when separated from some or all of the coexisting materials in the natural system. Have been. Such a polynucleotide can be part of a vector, and / or such a polynucleotide or polypeptide can be part of a composition, since such a vector or composition is not part of the natural environment. Separated. Preferably, the polypeptide is in a purified form. Purified form means at least 80%, more preferably 90%, even more preferably 95% and most preferably 99% pure relative to other protein contaminants. The invention also relates to vectors containing the polynucleotides of the invention, host cells genetically engineered with the vectors of the invention, and the production of the polypeptides of the invention by recombinant techniques. Therefore, according to a further aspect of the present invention, there is provided a method for producing a polypeptide of the present invention by recombinant techniques in which a polynucleotide encoding the polypeptide is expressed in a host, and the expressed product is recovered. Alternatively, the polypeptides of the invention can be produced synthetically by conventional methods for peptide synthesis. The host cell is genetically engineered (transducted or transformed or transfected) with a vector which may be, for example, a cloning vector or an expression vector. The vector may be in the form of, for example, a plasmid, cosmid, phage or the like. The engineered host cells can be cultured in conventional nutrient media that have been modified to activate the promoter, select for transformants, or amplify the gene. Culture conditions, such as temperature, pH, etc., are those previously used in the host cell selected for expression, and will be apparent to those skilled in the art. Suitable expression vectors include chromosomal, non-chromosomal and synthetic DNA sequences, such as derivatives of SV40; bacterial plasmids; phage DNA; baculovirus; yeast plasmid; plasmid and phage DNA, vaccinia, adenovirus, fowlpox virus and pseudotype. Vectors derived from combinations of viral DNA such as rabies are included. However, any other vector may be used as long as it is replicable and viable in the host cell. The appropriate DNA sequence may be inserted into the vector by various methods. Generally, the DNA sequence is inserted into an appropriate restriction endonuclease site by methods known in the art. Such and other methods are deemed to be within the purview of those skilled in the art. The DNA sequence in the expression vector is operably linked to an appropriate expression control sequence (promoter) to regulate mRNA synthesis. Representative examples of such promoters include the LTR or SV40 promoter, E. coli rac or trp, phage lambda P L Promoters and other promoters known to regulate the expression of genes in prokaryotic or eukaryotic cells or their viruses are included. Expression vectors also contain ribosome binding sites for translation initiation and transcription termination. Vectors may also contain appropriate sequences for amplifying expression. In addition, the expression vector contains one or more selectable marker genes to select for transformed host cells, such as dihydrofolate reductase or neomycin resistance or e. Coli tetracycline or ampicillin resistance for eukaryotic cell culture. It is preferable to provide phenotypic characteristics for The gene can be under the control of a promoter, a ribosome binding site (for bacterial expression) and, if desired, an operator (collectively referred to herein as "regulatory" elements), and the DNA sequence encoding the desired protein is Vectors containing this expression construct can be transcribed into RNA in transformed host cells. The coding sequence may or may not contain a signal peptide or leader sequence. For example, the protein sequences of the present invention can be expressed using the E. coli tac promoter or the protein A gene (spa) promoter and signal sequence. The leader sequence can be removed by the bacterial host during post-translational processing. The promoter region can be selected from the desired gene using a CAT (chloramphenicol transferase) vector or another vector having a selection marker. Two suitable vectors are PKK232-8 and PCM7. Specially named bacterial promoters include lacI, lacZ, T3, T7, gpt, lambda P R , P L And trp. Eukaryotic promoters include the CMV immediate early promoter, HSV thymidine kinase, early and late SV40, LTRs from retrovirus, and mouse metallothionein-I. Selection of the appropriate vector and promoter is within the skill of the art. It is desirable to add, in addition to regulatory sequences, control sequences that can control the expression of the protein sequence as the host cell grows. Regulatory sequences are known to those of skill in the art and include those that turn gene expression on or off in response to chemical or physical stimuli, including the presence of regulatory compounds. Another type of control element, such as an enhancer sequence, may also be present in the vector. A particular coding sequence is placed in a vector having appropriate control sequences, and the position and orientation of the coding sequence are adjusted relative to the regulatory sequences. The expression vector is constructed such that is transcribed “under control” of the regulatory sequence (ie, the RNA polymerase that binds to the DNA molecule at the regulatory sequence transcribes the coding sequence). Modifications of the coding sequence are desirable to achieve this goal. For example, it may be necessary to modify the sequence so that it can bind to the regulatory sequence in the proper orientation, ie, maintain the reading frame. Regulatory and other control sequences may be ligated to the coding sequence prior to insertion into a vector such as the cloning vector described above. Alternatively, the coding sequence can be cloned directly into an expression vector that already contains the regulatory sequences and appropriate restriction sites. Codon usage may be changed to be compatible with the chosen host cell in order to make modifications to the coding sequence and enhance expression. In general, recombinant expression vectors provide an origin of replication and selectable markers that allow transformation of the host cell, such as the ampicillin resistance gene of E. coli and the S. cerebisiae TRP1 gene, and downstream structural sequences. Contains the promoter from the indicated high-expressed gene. The heterologous structural sequence is assembled in an appropriate state using translation initiation and termination sequences, preferably a leader sequence capable of directing secretion of the translated protein into the periplasmic or extracellular medium. If desired, the heterologous sequence can encode a fusion protein containing an N-terminal identification peptide that confers desired properties, such as stabilization of the expressed recombinant product or ease of purification. A suitable host cell can be transformed with a vector containing the appropriate DNA sequence as described herein, and the appropriate promoter or regulatory sequence, to allow the host to express the protein. Examples of recombinant DNA vectors for cloning and host cells which can be transformed include bacteriophage λ (E. coli), pBR322 (E. coli), pACYC177 (E. coli), pKT230 (Gram negative bacteria), pGV 1106 (Gram negative bacteria), pLAFR1 (Gram negative bacteria), pME290 (Gram negative bacteria other than E. coli), pHV14 (E. coli and Bacillus subtilis), pBD9 (Bacillus), pIJ61 (Strepto) Streptomyces), pUC6 (Streptomyces), YIp5 (Saccharomyces), baculovirus insect cell line, YCp19 (Saccharomyces) and the like. The outline is "DNA Cloning": Vols I & II, Glover et al., Ed. IRL Press Oxford (1985) (1987); See Maniatis et al., "Molecular Cloning" Cold Spring Harbor Laboratory (1982). In some cases, it may be desirable to add a sequence that causes secretion of the polypeptide from the host organism, followed by cleaving the secretion signal. Yeast expression vectors are also known in the art. See, for example, U.S. Patent Nos. 4,446,235; 4,443,539; 4,430,428; and also see European Patent Applications 103409; 100561; 96491. PSV2neo (described in J. Mol. Appl. Genet. 1: 327-341) that induces expression in mammalian cells using the SV40 late promoter or pCDNA1 (Mol. Cell) that induces expression using the CMV promoter. Biol. 7: 4125-4129). Both of these latter two vectors can be used for transient or stable (using G418 resistance) expression in mammalian cells. Insect cell expression systems, such as Drosophila, are also useful, see, for example, PCT applications WO90 / 06358 and WO92 / 06212 and EP290261-B1. Transcription of DNA by higher eukaryotes is increased by inserting an enhancer sequence into the vector. Enhancers are cis-acting elements of DNA, usually about 10 to 300 base pairs, that act on a promoter to enhance its transcription. Examples include the SV40 enhancer 100 to 270 base pairs behind the origin of replication, the cytomegalovirus early promoter enhancer, the polyoma enhancer behind the origin of replication, and the adenovirus enhancer. The host cell containing the vector can be a higher eukaryotic cell, such as a mammalian cell, or a lower eukaryotic cell, such as a yeast cell, or can be a prokaryotic cell, such as a bacterial cell. Representative examples of suitable hosts include: prokaryotes, for example, bacterial cells such as E. coli, Streptomyces, Salmonel la thyphimurium, and eukaryotes, for example, fungal cells such as yeast, Drosophila and Insect cells such as Spodoptera frugiperda, mammalian cells such as CHO, COS or Bowes melanoma, and plant cells. The selection of an appropriate host is deemed to be within the skill of the art in light of the teachings herein. The construct can be introduced into host cells by calcium phosphate transfection, DEAE-dextran mediated transfection, or electroporation. (Davis, L., Dibner, M., Battey, I., Basic Methods in Molecular Biology, (1986)). After transforming the appropriate host strain and allowing the host strain to grow to an appropriate cell density, the selected promoter is induced by appropriate means (eg, temperature shift or chemical induction) and the cells are cultured for an additional period. Typically, cells are harvested by centrifugation, triturated by physical or chemical means, and the resulting crude extract is retained for further purification. Microbial cells used for protein expression can be disrupted by conventional methods, including freeze-thaw cycles, sonication, mechanical trituration or the use of cell lysing agents, and such methods are well known to those skilled in the art. A variety of mammalian cell lines can be used to express the recombinant protein. Examples of mammalian expression systems include the COS-7 line of monkey kidney fibroblasts (described in Gluzman, Cell, 23: 175 (1981)) and other cell lines capable of expressing compatible vectors, such as C127. , 3T3, CHO, HeLa and BHK cell lines and the like. Mammalian expression vectors contain an origin of replication, a suitable promoter and enhancer, and any desired ribosome binding, polyadenylation, splice donor and acceptor sites, transcription termination sequences and 5 'flanking non-transcribed sequences. DNA sequences derived from the SV40 price and polyadenylation sites may be used to provide the desired non-transcribed genetic element. Further, a transgenic animal other than human may be used as a host. The method of recovering the expressed polypeptide depends on the chosen expression system and host. If the expression system secretes the polypeptide into the growth medium, the polypeptide can be purified directly from the medium. If the polypeptide is not secreted, it is isolated from cell lysates or recovered from cell membrane fractions. If the polypeptide is localized on the cell surface, whole cells or isolated membranes can be used as a source for the desired gene product. Polypeptides expressed in bacterial hosts such as E. coli need to be isolated from inclusion bodies and regenerated. Selection of appropriate growth conditions and recovery methods are within the skill of the art. From recombinant cell culture by methods including ammonium sulfate or ethanol precipitation, acid extraction, anion or cation exchange chromatography, phosphocellulose chromatography, hydrophobic interaction chromatography, affinity chromatography, hydroxylapatite chromatography and lectin chromatography. The polypeptide can be recovered and purified. If necessary, the configuration of the mature protein can be made complete using a protein regeneration step. Finally, high performance liquid chromatography (HPLC) can be used for the final purification step. The polypeptide may or may not be glycosylated, depending on the host used in the recombinant production process. The polypeptide may also contain an initial methionine amino acid residue. By “recombinant” polypeptide is meant a polypeptide produced by recombinant DNA technology, ie, from a cell transformed with an exogenous DNA construct encoding the desired polypeptide. "Synthetic" polypeptides are polypeptides produced by chemical synthesis. "Replicons" function as autonomous units of DNA replication in vivo; that is, genetic elements (eg, plasmids, chromosomes, viruses) that are capable of replicating under their own control. A "vector" is a replicon, such as a plasmid, phage, or cosmid, that another DNA segment carries so that the attached segment can replicate. "Double-stranded DNA molecule" means a polymeric form of deoxyribonucleotides (adenine, guanine, thymine or cytosine base) in both a relaxed and a supercoiled double-stranded helix. This term refers only to the primary and secondary structure of the molecule and does not limit any particular tertiary form. Thus, the term includes double-stranded DNA found, inter alia, in linear DNA molecules (eg, restriction fragments), viruses, plasmids, and chromosomes. When discussing the structure of a particular double-stranded DNA molecule, the sequences can be described herein according to conventional methods that show only sequences in the 5 'to 3' direction along the sense strand of the DNA. A DNA "coding sequence" of a particular protein, or a "nucleotide sequence" that encodes a particular protein, is a DNA sequence that is transcribed and translated into a polypeptide under the control of appropriate regulatory sequences. A "promoter sequence" is a DNA regulatory region capable of binding RNA polymerase in a cell and initiating transcription of a downstream (3 'direction) coding sequence. Within the promoter sequence are a transcription initiation site (conveniently indicated by mapping nuclease S1) and a protein binding domain (consensus sequence) that contributes to RNA polymerase binding. Eukaryotic promoters will often, but not always, contain "TATA" boxes and "CAT" boxes. DNA "regulatory sequence" refers generically to promoter sequences, ribosome binding sites, polyadenylation signals, transcription termination sequences, upstream regulatory domains, enhancers, and the like, and generally provides for the expression of coding sequences (ie, transcription and translation) in host cells. When RNA polymerase binds to a promoter sequence, transcribes the coding sequence into mRNA, and then translates it into a polypeptide encoded by the coding sequence, the regulatory sequence “directs expression” of the coding sequence in the cell. A "host cell" is a cell that has been transformed or transfected, or is capable of being transformed or transfected by an exogenous DNA sequence. A cell has been "transformed" by exogenous DNA when such DNA has been introduced inside the cell membrane. Exogenous DNA may or may not be integrated (covalently linked) into chromosomal DNA making up the genome of the cell. In prokaryotes and yeast, for example, exogenous DNA can be maintained on episomal elements, such as plasmids. With respect to eukaryotic cells, stably transformed or transfected cells are cells in which exogenous DNA has become integrated into a chromosome and is inherited by daughter cells via chromosomal replication. This stability is indicated by the ability of eukaryotic cells to establish cell lines or clones consisting of a population of daughter cells containing exogenous DNA. A "clone" is a population of cells derived from a single cell or a common ancestor by mitosis. A “cell line” is a clone of a primary cell that is capable of stable growth in vitro for many generations. Two DNA or polypeptide sequences are "substantially homologous" or "substantially identical" when they have at least about 85% (preferably at least about 90%, and preferably at least about 85%, nucleotides or amino acids over a given length of the molecule. Most preferably at least about 95%) and encompasses allelic variation. Also, as used herein, substantially homologous refers to a sequence that shows identity to a particular DNA or polypeptide sequence. Substantially homologous DNA sequences can be identified in Southern hybridization experiments, for example, under stringent conditions as defined in the particular system. Defining appropriate hybridization conditions is within the skill of the art. See, for example, "Current Protocols in Mol. Biol." Vol. I & II, Wiley Interscience, Ausbel et al. (Eds.) (1992). Substantially identical protein sequences can be identified by proteolytic digestion, gel electrophoresis and microsequencing. The term "functionally equivalent" means that the amino acid sequence of the protein of interest is a sequence that exhibits the same activity as that of the original protein. A "heterologous" region of a DNA construct is an identifiable segment of DNA within or attached to another DNA molecule that is not found in association with the other molecule in nature. Antibodies can be produced using the polypeptide or cells expressing it as an immunogen. These antibodies can be, for example, polyclonal or monoclonal antibodies. The invention also includes chimeric, single chain and humanized antibodies and Fab fragments or the products of a Fab expression library. Such antibodies and fragments can be produced using various methods known in the art. The polypeptide can be injected directly into the animal, or the polypeptide can be administered, preferably to a non-human animal, to obtain antibodies raised against the polypeptide. The antibody thus obtained is then bound to the polypeptide itself. In this way, it is even possible to generate antibodies that bind to the fully native polypeptide using sequences encoding only fragments of the polypeptide. Monoclonal antibodies can be produced using any technique that provides antibodies produced by continuous cell line cultures. Examples include hybridoma technology (Kohler and Milstein, 1975, Nature, 256: 495-497), trioma technology, human B-cell hybridoma technology (Kozbor et al., 1983, Immunology Today, 4:72), and human monoclonal antibodies. EBV hybridoma technology for production (Cole et al., 1985, Monoclonal Antibodies and Cancer Therapy, Alan R. Liss, Inc. 77-96) is included. Techniques described for the production of single-chain antibodies (US Pat. No. 4,946,778) can be applied to produce single-chain antibodies to immunogenic polypeptides. The present invention also provides compounds that are modulators of the cleavage of PS-1 into 18 kDa and 28 kDa species and their use to modulate the function of PS-1. The present invention further provides the use of a compound according to the present invention in the manufacture of a medicament for modulating the function of PS-1. The present invention further provides a method of treating or preventing Alzheimer's disease, comprising administering to a patient an effective amount of a compound of the present invention, particularly a compound that is a modulator of the cleavage of PS-1 into 18 kDa and 28 kDa species. I will provide a. For use in therapy, the compounds of the invention are formulated according to standard pharmaceutical methods. Accordingly, the present invention also provides a pharmaceutical composition comprising a compound of the present invention and a pharmaceutically acceptable carrier. Compounds that are active when administered orally can be formulated in solutions, for example, syrups, suspensions or emulsions, tablets, capzels and lozenges. Generally, the liquid formulation will be a compound in a suitable liquid carrier, such as ethanol, glycerin, a non-aqueous solvent such as polyethylene glycol, oil or water, or a pharmaceutically acceptable agent, together with a suspending agent, preservative, flavoring or coloring agent. A salt suspension or solution. A composition in the form of a tablet can be prepared using any suitable pharmaceutical carrier (s) routinely used for preparing solid formulations. Examples of such carriers include magnesium stearate, starch, lactose, sucrose and cellulose. A composition in the form of a capsule can be prepared using conventional capsule methods. For example, pellets containing the active ingredient can be prepared using a standard carrier, and then filled into hard gelatin capsules; alternatively, dispersed in a suitable pharmaceutical carrier such as an aqueous gum, cellulose, silicate or oil An emulsion or suspension can be prepared and the dispersion or suspension can then be filled into soft gelatin capsules. A typical parenteral composition is a solution or suspension of the compound or pharmaceutically acceptable salt in a sterile aqueous carrier or parenterally acceptable oil, such as polyethylene glycol, polyvinylpyrrolidone, lecithin, peanut oil, sesame oil. Consists of a suspension. Alternatively, the solution can be lyophilized and then reconstituted with a suitable solvent just prior to administration. A typical suppository formulation comprises a compound of formula (I) or a pharmaceutically acceptable salt thereof, which is active when administered in a suppository, comprising a glycol polymer, gelatin or cocoa butter or other low melting plant. Together with binders and / or lubricants, such as sexual or synthetic waxes or fats. Preferably, the composition is in unit dosage form, such as a tablet or capsule. Each dosage unit for oral administration preferably contains 1 to 250 mg of the inhibitor according to the invention (preferably 0.1 mg to 25 mg for parenteral administration). The daily dosage regimen for adult patients is calculated, for example, as the free base of the compound of formula (I) or a pharmaceutically acceptable salt thereof, and the oral dose is 1 mg to 500 mg, preferably 1 mg to 250 mg, or intravenous. The subcutaneous or intramuscular dose can be 0.1 mg to 100 mg, preferably 0.1 mg to 25 mg, and the compound is administered 1 to 4 times a day. Suitably, the compound will be administered continuously during the treatment period. In a further aspect, the present invention is a diagnostic method for predicting Alzheimer's disease in a patient, comprising isolating a tissue sample from the patient and assaying the sample for cleavage of PS-1 into 18 kDa and 28 kDa species. I will provide a. As described above for compound screening methods, the presence of a cleavage product can be detected by assaying the protein content of the sample using a polyclonal or monoclonal antibody raised against the cleavage product. The present invention is further described with reference to the following examples; however, it should be understood that the present invention is not limited to such examples. All parts or amounts are by weight unless otherwise specified. EXAMPLES Example 1 Demonstration of Cleavage of Presenilin-1 in Cells Peptide CRSLGH PEPLSNGRPQGNSR containing amino acids 42-60 in the N-terminal region of PS-1 and amino acids 344-358 in the C-terminal region of PS-1 A rabbit polyclonal antibody was raised against the peptide CRDSHLGPHRRSTPESR (R. Sherrington et al., Nature, 375: 754-760, 1995). These antibodies were: Western immunoblot analysis of cell lysates of cells transfected with the cDNA of PS-1 showed that the protein band in the transfected cells had a stronger immunoreactivity compared to the vector control cells. It is shown that the immunoreactivity for the protein band competes with the peptide used to generate the antibody. In the serum collected from the rabbit before the peptide inoculation, the serum after the peptide inoculation was It is shown that the protein band detected with the protein cannot be detected. The neuroblastoma cell line SHSY5Y was transfected with an expression vector containing the cDNA for the PS-1 gene to establish a stably transfected cell line. In transfected cells, and also in vector control cells, the PS-1 protein appears as a 43-46 kDa protein detectable with antibodies raised against both the N-terminal and C-terminal regions of the protein. Full length PS-1 protein is more easily detectable in cells transfected with PS-1 than vector control cells. PS-1 is proteolytically cleaved in both transfected and untransfected cells: detectable immunologically by antibodies raised against the N-terminal region of presenilin-1, but not at the C-terminus. A 28 kDa N-terminal fragment that is not detectable with antibodies raised against it: and an 18 kDa N-terminal fragment that can be immunologically detected with antibodies raised against the C-terminal region of presenilin-1 but not detected with antibodies raised against the N-terminus Generate a C-terminal fragment. Example 2 Assay for Modulator of Presenilin-1 Cleavage The antibodies described above can be used to measure PS-1 cleavage in cells and the effect of foreign substances that can affect the extent of PS-1 cleavage. This includes substances that inhibit or otherwise modulate the activity of the enzyme that cleaves the PS-1 protein, such substances being useful in treating Alzheimer's disease. The ability of inhibitors of presenilin-1 cleavage in human neuroblastoma cells transfected with an expression vector containing the cDNA of the presenilin-1 (PS-1) gene was tested using the following methods: pcDNA3 or pCEP4. Adherent SHSY5Y human neuroblastoma cells transfected with either PS-1 cDNA of the expression vector are grown in microtiter plates. Growth medium consisting of 88% (v / v) DMEM / NUT MIX F-12, 10% (v / v) fetal calf serum, 50 μg / ml penicillin / streptomycin, 400 μg / ml G-418 geneticin, and 2 mM glutamine (pH 7). Grow cells to 80% confluence in 4). Test compounds are dissolved in dimethylsulfoxide at a stock concentration of 2 mM and then diluted 1: 200 in growth medium. After removing the growth medium, 200 μl of the diluted compound is added to the adherent cells in three wells. Prepare three appropriate control cultures containing the diluted solvent. 95% air / 5% CO in a humidified incubator Two And incubate at 37 ° C for 24 hours. The cells are washed twice with phosphate buffered saline (pH 7.4). Cells were immersed in a RIPA buffer consisting of 150 mM sodium chloride, 1% v / v NP40, 0.5% v / v sodium deoxycholate, 0.1% v / v sodium dodecyl sulfate in 50 mM Tris HCl (pH 8.0). Lyse and assay in a 96-well immunoassay format using specific antibodies in a sandwich assay. The first anti-presenilin-1 antibody serves as a capture agent for intracellular C-terminal fragments to detect a second anti-presenilin-1 specific antibody, which recognizes the N-terminal neo-epitope generated by cleavage. It serves as a component of the complex used. A third rabbit IgG-specific antibody bound to dextran and biotinylated is detected by fluorescence over time and then further incubated with streptavidin-europium complex (Delfia; EG & GBerthold and Wallac), followed by an enhancer solution. A positive result is a change in fluorescence relative to the control group, indicating that the effect of the test compound has modulated the cleavage. Results are expressed as% inhibition of signal obtained in wells conditioned with medium containing only solvent. Example 3 Diagnostic methods The above-mentioned antibodies are used for diagnosis as a means for predicting Alzheimer's disease and as a means for evaluating the effect of substances administered to modulate the cleavage of presenilin as a treatment for Alzheimer's disease. Thus, the extent of cleavage of PS-1 into 18 kDa and 28 kDa species in patient tissues, eg, blood, can be assayed. As described above for compound screening methods, the presence of the cleavage product may be detected by assaying the immune activity of the sample using polyclonal or monoclonal antibodies raised against the cleavage product.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI テーマコート゛(参考) C07K 14/47 C07K 14/47 16/18 16/18 C12N 5/10 C12P 21/02 C C12P 21/02 C12Q 1/02 C12Q 1/02 G01N 33/15 Z G01N 33/15 33/50 Z 33/50 33/53 D 33/53 C12N 5/00 B (72)発明者 グレイ,キャロル イギリス、シーエム19・5エイダブリュ ー、エセックス、ハーロウ、ニュー・フロ ンティアーズ・サイエンス・パーク・サウ ス、スミスクライン・ビーチャム・ファー マシューティカルズ (72)発明者 デイビス,ジョン・ビー イギリス、シーエム19・5エイダブリュ ー、エセックス、ハーロウ、ニュー・フロ ンティアーズ・サイエンス・パーク・サウ ス、スミスクライン・ビーチャム・ファー マシューティカルズ (72)発明者 ウォード,ロビン・ブイ イギリス、シーエム19・5エイダブリュ ー、エセックス、ハーロウ、ニュー・フロ ンティアーズ・サイエンス・パーク・サウ ス、スミスクライン・ビーチャム・ファー マシューティカルズ──────────────────────────────────────────────────続 き Continued on the front page (51) Int.Cl. 7 Identification symbol FI Theme coat ゛ (Reference) C07K 14/47 C07K 14/47 16/18 16/18 C12N 5/10 C12P 21/02 C C12P 21/02 C12Q 1/02 C12Q 1/02 G01N 33/15 Z G01N 33/15 33/50 Z 33/50 33/53 D 33/53 C12N 5/00 B (72) Inventor Gray, Carroll 19.5 CM, UK Adablue, Essex, Harlow, New Frontiers Science Park South, SmithKline Beecham Pharmaceuticals (72) Inventor Davis, John Bee United Kingdom, CM 19.5 Adablue, Essex, Harlow, New Frontiers Science Park・ South, Smithkline Beecham Pharmaceuticals (72) Inventor Ward, Robin Buoy United Kingdom, CM 19.5 Adabrew, Essex, Harlow, New Frontiers Science Park South, SmithKline Beecham Far Matthewicals

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1.プレセニリン−1(PS−1)の切断を阻害するかさもなければ変調する 化合物を同定するための化合物をスクリーニングする方法であって、PS−1の 18kDaおよび28kDa種への切断の程度を試験化合物が存在しない場合の 切断の程度と比較して測定することを含む方法。 2.PS−1をコードするDNAを含有する発現ベクターでトランスフェクト されたヒト宿主細胞を用いる請求項1に記載の方法。 3.PS−1のフラグメントに対して作成し、28kDa種よりも18kDa 種に対して特異的またはその逆であるポリクローナルまたはモノクローナル抗体 を用いて宿主細胞のタンパク質含量をアッセイすることにより切断産物の存在を 検出する請求項1または2に記載の方法。 4.ウェスタン・ブロット・アッセイまたはELISAである請求項3に記載 の方法。 5.単離形態のPS−1 18kDaまたは28kDa切断産物。 6.PS−1の28kDa種のC末端または18kDa種のN末端に対応する 3ないし20個のアミノ酸長のポリペプチド。 7.PS−1フラグメントに対して作成され、28kDa種よりも18kDa 種に特異的またはその逆である抗体。 8.請求項5または6に記載のポリペプチドに対して作成された請求項7に記 載の抗体。 9.ポリペプチドCRSLGHPEPLSNGRPQGNSRまたはCRDS HLGPHRSTPESRに対して作成された請求項7に記載の抗体。 10.抗体が請求項7ないし9で定義されるものである請求項3または4に記 載の方法。 11.PS−1の切断部位にわたる3ないし10個のアミノ酸のポリペプチド 。 12.請求項11に記載のポリペプチドを用いる請求項1に記載の方法。 13.請求項5、6または11に記載のポリペプチドをコードするポリヌクレ オチド(DNAまたはRNA)。 14.請求項13に記載のポリヌクレオチドを含むベクター。 15.請求項14に記載のベクターで形質転換した宿主細胞。 16.宿主においてポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを発現させ、 発現した産物を回収する組み換え技術による請求項5、6または11に記載のポ リペプチドの製造方法。 17.pcDNA3またはpCEP4発現ベクターのPS−1 cDNAでト ランスフェクトしたSHSY5Yヒト神経芽腫細胞。 18.請求項1ないし4のいずれかに記載の方法により同定される化合物。 19.PS−1の18kDaおよび28kDa種への切断のモデュレーターで ある化合物。 20.請求項18または19に記載の化合物および医薬上許容される担体を含 んでなる医薬組成物。 21.PS−1の機能を変調する医薬品の製造における請求項18または19 に記載の化合物の使用。 22.アルツハイマー病の治療または予防方法であって、請求項18または1 9に記載の化合物の有効量を患者に投与することを含む方法。 23.患者におけるアルツハイマー病を予測するための診断方法であって、患 者から組織サンプルを単離し、PS−1の18kDaおよび28kDa種への切 断に関して該サンプルをアッセイすることを含む方法。[Claims]   1. Inhibits or otherwise modulates presenilin-1 (PS-1) cleavage A method for screening a compound for identifying a compound, comprising: The extent of cleavage to 18 kDa and 28 kDa species was determined in the absence of the test compound. A method comprising measuring relative to the degree of cutting.   2. Transfected with an expression vector containing DNA encoding PS-1 The method according to claim 1, wherein a human host cell obtained is used.   3. Generated for PS-1 fragment, 18kDa than 28kDa species Polyclonal or monoclonal antibodies specific for the species or vice versa The presence of cleavage products by assaying the protein content of the host cell using The method according to claim 1 or 2, wherein the detection is performed.   4. 4. The method according to claim 3, which is a western blot assay or an ELISA. the method of.   5. Isolated form of PS-1 18 kDa or 28 kDa cleavage product.   6. Corresponds to the C-terminus of the 28 kDa species or the N-terminus of the 18 kDa species of PS-1 A polypeptide 3 to 20 amino acids in length.   7. Generated on PS-1 fragment, 18 kDa over 28 kDa species Antibodies that are species specific or vice versa.   8. The method according to claim 7, which is prepared for the polypeptide according to claim 5 or 6. The listed antibodies.   9. The polypeptide CRSLGHPELSNGRPQGNSR or CRDS 8. The antibody of claim 7, generated against HLGPPHRSTPESR.   10. The antibody according to claim 3 or 4, wherein the antibody is as defined in claims 7 to 9. The method described.   11. Polypeptides of 3 to 10 amino acids spanning the PS-1 cleavage site .   12. The method according to claim 1, wherein the polypeptide according to claim 11 is used.   13. A polynucleotide encoding the polypeptide according to claim 5, 6 or 11. Otide (DNA or RNA).   14. A vector comprising the polynucleotide according to claim 13.   15. A host cell transformed with the vector of claim 14.   16. Expressing a polynucleotide encoding the polypeptide in a host, The poiy according to claim 5, 6 or 11 by a recombinant technique for recovering the expressed product. A method for producing a peptide.   17. Triggered by PS-1 cDNA of pcDNA3 or pCEP4 expression vector. Transfected SHSY5Y human neuroblastoma cells.   18. A compound identified by the method according to claim 1.   19. Modulator of the cleavage of PS-1 into 18 kDa and 28 kDa species Certain compounds.   20. A compound according to claim 18 or 19 and a pharmaceutically acceptable carrier. A pharmaceutical composition comprising:   21. 20. The manufacture of a medicament that modulates the function of PS-1. Use of the compound described in 1.   22. 21. A method for treating or preventing Alzheimer's disease, wherein the method comprises the steps of: A method comprising administering to a patient an effective amount of the compound of claim 9.   23. A diagnostic method for predicting Alzheimer's disease in a patient, the method comprising: Tissue samples from the donor and cutting PS-1 into 18 kDa and 28 kDa species. A method comprising assaying said sample for cleavage.
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