HU226379B1 - Use of triazinone derivatives for the preparation of compositions treating diseases resulting from infestation with parasitic protozoans - Google Patents

Use of triazinone derivatives for the preparation of compositions treating diseases resulting from infestation with parasitic protozoans Download PDF

Info

Publication number
HU226379B1
HU226379B1 HU0203534A HUP0203534A HU226379B1 HU 226379 B1 HU226379 B1 HU 226379B1 HU 0203534 A HU0203534 A HU 0203534A HU P0203534 A HUP0203534 A HU P0203534A HU 226379 B1 HU226379 B1 HU 226379B1
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
cells
toltrazuril
neospora
treatment
caninum
Prior art date
Application number
HU0203534A
Other languages
English (en)
Inventor
Gisela Greif
Original Assignee
Bayer Ag
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Bayer Ag filed Critical Bayer Ag
Publication of HUP0203534A2 publication Critical patent/HUP0203534A2/hu
Publication of HUP0203534A3 publication Critical patent/HUP0203534A3/hu
Publication of HU226379B1 publication Critical patent/HU226379B1/hu

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/33Heterocyclic compounds
    • A61K31/395Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins
    • A61K31/53Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins having six-membered rings with three nitrogens as the only ring hetero atoms, e.g. chlorazanil, melamine
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N43/00Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing heterocyclic compounds
    • A01N43/64Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing heterocyclic compounds having rings with three nitrogen atoms as the only ring hetero atoms
    • A01N43/661,3,5-Triazines, not hydrogenated and not substituted at the ring nitrogen atoms
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N43/00Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing heterocyclic compounds
    • A01N43/64Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing heterocyclic compounds having rings with three nitrogen atoms as the only ring hetero atoms
    • A01N43/7071,2,3- or 1,2,4-triazines; Hydrogenated 1,2,3- or 1,2,4-triazines
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P25/00Drugs for disorders of the nervous system
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P33/00Antiparasitic agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P33/00Antiparasitic agents
    • A61P33/02Antiprotozoals, e.g. for leishmaniasis, trichomoniasis, toxoplasmosis
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P43/00Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Dentistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Agronomy & Crop Science (AREA)
  • Pest Control & Pesticides (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Neurology (AREA)
  • Neurosurgery (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Description

A jelen találmány tárgya triazinonvegyületek állatok kezelésére, különösen megelőző kezelésére, amelyek olyan parazitákkal vannak fertőzve, melyek vetélést vagy neurológiai betegségeket okoznak. A jelen találmány tárgya különösen olyan triazinonvegyületek, amelyek alkalmasak parazita protozoonok, például coccidia kezelésére, melyek vetéléshez vagy neurológiai betegségekhez vezetnek. A jelen találmány tárgya kiemelten azok a triazinonvegyületek, amelyek alkalmasak Neospora-fertőzések kezelésére.
Triazinonvegyületeket, például triazindionokat, például diclazurilokat, és triazintrionokat, például toltrazurilokat számos emlős, rovar és hal kezelésére használtak olyan betegségek ellen, amelyeket különféle protozoonok okoztak; lásd például a 4 631 218; 4 933 341;
935 423; 5 114 938; 5 141 938; 5 188 832;
196 562; 5 256 631 és 5 464 837 számú amerikai egyesült államokbeli szabadalmi leírást vagy az EP A 170 316 számú szabadalmi leírást. A fenti vegyületekre érzékeny protozoonok közé tartoznak azok a paraziták, amelyek a madarak, emlősök és rovarok zsigereit fertőzik, és ez hasmenésben, levertségben, émelygésben és hányásban nyilvánul meg. Általában a triazinonok hatásuk kifejtésekor megtámadják a belek és zsigerek falsejtjeiben jelen levő paraziták közbülső állapotait, aminek hatására az endoplazmás retikulum, a parazita sejtmagját és mitokondriumát körülvevő zóna megnő. Ez valószínűleg zavarja a sejtmag osztódási képességét, így a schizonták és mikrogamonták kicsik maradnak, és minden esetben csak kevés merozoitát és mikrogametát képeznek. Ennek az a végeredménye, hogy ezek a későbbi parazitaállapotok elveszítik azt a képességüket, hogy az új emlőssejtekbe behatoljanak, így a parazita szaporodása a gazdaszervezetben hatásosan visszaszorul.
Bizonyos protozoonok, amelyekről a 70-es évek óta feltételezik, hogy neurológiai betegségeket okoznak és/vagy vetéléshez vezetnek, különösen fontosak. Néhány ilyen protozoon sikeres izolálása és in vitro tenyésztése nehéznek bizonyult. Például csak a 80-as évek vége felé tudták az agyi vagy gerincagyburki folyadékot sikeresen izolálni. Mivel igazolták, hogy az agyat megfertőző paraziták neurológiai betegségeket okozhatnak, a magzatot megfertőző paraziták pedig a vetéléshez vezető betegségeket okozhatnak, szükségessé váltak a protozoonok elleni gyógyszerek, amelyek káros mellékhatások nélkül juthatnak át a vér-agy gáton és a placentagáton. Az emlősök vér-agy gátján vagy placentagátján nagyon kevés gyógyszer képes átjutni. A technika állása szerinti sok gyógyszer, amely képes átjutni a vér-agy gáton és/vagy a placentagáton az agyi parazitafertőzések hatékony kezeléséhez, káros mellékhatásokkal rendelkezik, és nagy kockázat nélkül nem használható. Ezért a mai napig nem engedélyeztek olyan hatékony gyógyszert, amely alkalmas lenne az ilyen neurológiai betegségek és a vetéléshez vezető betegségek hatékony kezelésére. A következőben röviden leírjuk a paraziták által okozott betegségeket.
A Neospora caninum nevű új parazita olyan protozoonok csoportjából származik, amelyet 1984-ben egy norvég kutyában írtak le Bjerkas és munkatársai. A kutyán és a szarvasmarhán kívül juhban, kecskében és lóban is találtak természetes fertőzést [Dubey és Rommel, 1992, Dubey és Lindsay, (1993)]. A kutyán és a szarvasmarhán kívül rókát, macskát, juhot és egeret is sikeresen fertőztek meg kísérleti úton. A Neospora caninum végleges gazdaszervezete valószínűleg a kutya [McAllister és munkatársai, (1998)], de egyelőre nem áll rendelkezésre teljes életciklusra vonatkozó vizsgálat.
Sok különböző sejt szolgálhat gazdasejtként a Neospora caninum számára, például makrofágok, neutrofilek, fibroblasztok, a véredények endoteliás sejtjei, miociták, a vesecsatornák epithelialis sejtjei, hepatociták és idegsejtek. A tachizoitákon keresztül való szaporodás azonban előnyösen organellákban megy végbe, például izom- és idegsejtekben. Ezért a kóros tünetek a természetes fertőzést követően főként ezekben a sejtekben jelentkeznek. Az 5-6 hetes vagy idősebb kutyák, amelyek természetes úton fertőződtek meg, tehát a betegség tüneteit mutatják, amit jelez a radiculitis miatti túlzott érzékenység és a hátsó lábak fokozódó sántítása. További szövetkórtani rendellenesség található az idegrendszerben, elsősorban az agyban és a gerincagyban. Itt dominálnak a kiterjedt, nem gennyedő gyulladások, a neuroglla burjánzásai, a perivascularis infiltratiók egymagvú sejtekkel (makrofágok, limfociták, néhány plazmasejt), néhány esetben az eozinofilek és a neutrofilek is. Az izomzat nekrotikus-degeneratív változásai szabad szemmel is láthatók. A többé-kevésbé erős sorvadás mellett hosszú, halvány, longitudinális csíkok figyelhetők meg. Ez különösen a hátsó lábakra vonatkozik. Szövettanilag a változások erőteljes myocytist, kisebb nekrózisokat és nem gennyedő vesiculitist foglalnak magukban. Ezek a változások kevésbé erőteljesen az első lábak izomzatában, a rekeszizomban és a nyelv izomzatában is megfigyelhetők. Az olyan 5-12 hetes kutyákon, amelyeknél ezek a tünetek jelentkeznek, eutanáziát kell alkalmazni [Dubey és munkatársai, (1988)]. A Neosporafertőzések a következő generációhoz ismételt, placentán keresztüli átadással jutnak el. A betegségnek egyáltalán nem kell egy alom összes állatára kiterjednie. Amikor 6 szukát fertőztek meg kísérletileg a terhesség 21. napján, 1 szuka 3 élő kutyát szült, a többi 5 N. caninum-pozitív magzat elvetélt. Az élve született 3 kutyában nem voltak kimutathatók a paraziták [Colé és munkatársai, (1995)].
Szarvasmarhák esetében a legelső leírás, egy újmexikói elvetélt magzat agyszövetében, Thilsted és Dubey (1989) nevéhez fűződik. További izolációt végeztek szarvasmarhából az Amerikai Egyesült Államokban [Conrad és munkatársai, (1993), Barr és munkatársai, (1993), Marsh és munkatársai, (1995)], Japánban [Yamane és munkatársai, (1996)] és Svédországban [Stenlund és munkatársai, (1996)]. Kaliforniában és Ausztráliában a Neospora caninum-fertőzéseket tartják a szarvasmarha-állományban a vetélések fő okának (Barr és munkatársai, 1990).
Valószínű, hogy a legtöbb Λ/eospora-fertőzött szarvasmarhát 3-9 hónapos korában vetélik el. Ezekben a
HU 226 379 Β1 magzatokban főleg tachizoitát találnak jelentős számban. Eddig ciszták csak azokban a szarvasmarhákban mutatkoztak, amelyek megszülettek. A fertőzött szarvasmarhák legkésőbb a szülés után 3-17 nappal kimúlnak. A betegség tünetei hasonlók, mint a kutyákban. Ataxia figyelhető meg, az ízületi reflexek jelentősen romlanak, a hátsó lábak sántítanak, néha mind a négy láb sántít. A szövettani eredmények hasonlóak, mint a kutyák esetében: a nem gennyedő meningitis és myelitis dominál. Csakúgy, mint a kutyáknál és más állatoknál, egymagvú sejt infiltratiókat és nekrózisokat találtak az agyban, különösen a perivascularis zónákban. Parazitákat, elsősorban tachizoitákat vagy pszeudocisztákat tachizoitákkal találtak különösen, de többnyire kis számban, gócokként az idegszövetekben és néha az izomsejtekben is. Figyelemre méltó, és a Toxoplasmával ellentétes, hogy a Neospora ismételten átadható az anyaállattól az utódnak. Ezt demonstrálják a kutyák és a szarvasmarhák [Bjerkas és munkatársai, 1984, Dubey és Rommel, 1992, Dubey és munkatársai, (1988)].
A kutyákból és szarvasmarhákból kinyert N. caninum-izolátumok eddig semmilyen különbséget nem mutattak, sem a morfológiai ultraszerkezet, a fehérjeelemzés szintjén, sem az rRNS- vagy az ITS1-szekvencia molekuláris-biológiai szekvenciavizsgálatakor [Holmdahl és Mattson, (1996)].
Eloszlás és gazdasági jelentőség
Mióta az N. caninumot 1984-ben felfedezték, az egész világon azonosították (Dubey/Lindsay áttekintése). Kaliforniában különösen magasnak tartják az N. caninum miatti szarvasmarha-vetélések becsült értékét. 468 elvetélt magzat 45,5%-a a Neospora caninumfertőzés következménye volt [Dubey és Lindsay, (1993)]. Svájcban Weospora-specifikus DNS-t detektáltak az elvetélt magzatok 29%-ának agyában. Ennek megfelelően az évi veszteséget 10,2 millió svájci frankra (Gottstein/Bem), illetve Ausztráliában 100 millió dollárra (Johnson/Sydney) becsülik. Kaliforniában a betegségek előfordulása télen, december és február között éri el a csúcsát. Hasonlót tapasztaltak Új-Zélandon [Thornton és munkatársai, (1991)]. Itt a legtöbb N. caninum miatti vetélést május és július között figyelték meg. Eddig még nem írtak le hatékony kezelési eljárást, különösen megelőző módszert, az N. caninumfertőzésekre.
A ló protozoonos myeloencephalitis (EPM) neurológiai betegség, amely elsősorban fiatal, feszültségben tartott lovakban fordul elő (például túltenyésztett versenylovakban és fajtiszta, bemutatókon szereplő lovakban), ezért a betegségnek jelentős anyagi hatása van a lógazdálkodásra. Az EPM-et először a 70-es években azonosították betegségként. A kórokozót csak 1991 végén tenyésztették ki egy EPM-es lóból, és Sarcocystis neuronának nevezték el. 1997-ben Neospora spp.-t, amit most Neospora hugesinek neveznek, izoláltak egy EPM-es ló agyából. Ennek megfelelően most arra következtetnek, hogy az EPM-et csak ez az újonnan azonosított organizmus, csak Sarcocystis neurona, vagy ezeknek az organizmusoknak a kombinációja okozhatja. Többnyire az EPM aszimmetrikus ataxiában, gyengeségben és izommerevségben jelentkezik. A betegség bármilyen neurológiai állapotban megnyilvánulhat. A betegség nagyon heveny vagy krónikus formában fordulhat elő. A krónikus forma gyakran lappangó a kialakulásakor, a betegség előrehaladott állapotáig nehéz diagnosztizálni, és halálban végződhet. A legenyhébb esetekben a betegség egyetlen jele a hátsó végtag kevéssé érzékelhető sántítása vagy kisebb légzési zörej lehet. A legsúlyosabb esetekben a lovak nem tudnak nyelni vagy állni. Ma már ismert, hogy a legsúlyosabb esetekben a parazita, például az S. neurona megfertőzi az agyat, ahol jelentős kárt okoz. A betegség jeleit a parazitától származó közvetlen idegkárosodás (az agyban és a gerincagyban), a gyulladt sejtek infiltratiója miatti agykárosodás, ödéma, valamint merozoitákkal és merontákkal kapcsolatos központi idegrendszeri idegpusztulás okozza. Az EPM ellen jelenleg nincs hatékony profilaxis. A trimethoprim és a szulfonamid gyógyszerek kombinációját alkalmazták, amit humán használatra engedélyeztek. A kezelés azonban drága és sok ismételt dózist igényel.
A coccidia csoport egyik további parazitáját, a Toxo plasma gondiit is ismerik egy ideje. Először macska zsigeri és izomszövetéből izolálták. Ennek a parazitának végleges gazdaszervezete a macska, amely sokáig tenyésztheti az organizmust, miközben az oociszták más állatokra, például szarvasmarhára, juhra, sertésre és emberre is átterjednek. A juh, szarvasmarha és az ember fertőzése vetélést és olyan veleszületett betegségeket okozhat, amelyek főként a központi idegrendszert támadják meg. A legutóbbi időkben összefüggésbe hozták fertőzött nőstény macska vetélésével és macskák fejlődési rendellenességeivel olyan esetekben, amikor a vemhes macska a fertőzés előtt szeronegatív volt. A macskától eltérő gazdaszervezetek, például a szarvasmarha, a juh, a sertés és az ember nem termelnek oocisztákat, de tachizoiták és bradizoiták fejlődnek ki, és ezek megtámadhatják az izmokat és az agyat. A tachizoiták és a bradizoiták kiváltják a betegség tüneteit, amelyek lehetnek neurológiai tünetek és bekövetkezhet fejlődési rendellenességet mutató magzatok elvetélése. Kimutatták, hogy az összes macska 60%-a szerológiailag pozitív a T. gondiira. A toxoplazmózisra ugyancsak nincs kezelés, különösen nincs megelőző kezelés.
A technika állása szerinti irodalomban, beleértve a leírás elején említett irodalmat, nincs ismertetés vagy kitanítás a triazinonvegyületek, például a diclazurilvagy a toltrazuril-szulfon (újabban „ponazuril’’ néven említik) alkalmazására az elfogadhatatlan mellékhatások nélküli kezelésben, különösen nem a megelőző kezelésben, olyan állatok esetén, amelyek coccidia, különösen a Sarcocystidae család tagjától eredő fertőzés veszélyének vannak kitéve. Ezért célunk hatékony kezelés, különösen megelőző kezelés kidolgozása volt olyan állatok esetén, amelyek a fent említett parazitáktól eredő fertőzés veszélyének vannak kitéve.
Meglepő módon azt tapasztaltuk, hogy kiterjedt védelmet érhetünk el a parazita protozoonoktól származó
HU 226 379 Β1 fertőzés ellen, ha a kezeléshez, különösen a megelőző kezeléshez triazinonokat alkalmazunk.
Ennek megfelelően a jelen találmány tárgya Toltrazuril vagy Ponazuril alkalmazása állatok Neospora caninum elleni megelőző kezelésére szolgáló szer előállítására. Ilyen állatok például korlátozás nélkül, a ló, a szarvasmarha, a macska, a kutya, a sertés, a juh, a madarak és a rovarok, valamint az eljárást az emberi szervezet esetében is alkalmazhatjuk.
A fertőzést vagy a betegséget okozó paraziták a Sarcocystidae családba tartozó coccidiák, amelyek neurológiai betegségekben vagy vetéléshez vezető betegségekben nyilvánulnak meg. Illusztrációként - korlátozás nélkül - példaként említhető a Sarcocystis spp., Neospora spp. vagy Toxoplasma spp. Jellemzően a Sarcocystidae lehetnek S. neurona, N. hugesi, N. caninum vagy T. gondii, különösen Neospora spp. A protozoonos fertőzések vagy protozoonos betegségek közé tartozik az EPM, a neosporosis és a toxoplazmózis, de a betegségek nemcsak ezekre korlátozódnak.
A találmány megvalósításakor az állatok kezelése, különösen megelőző kezelése a protozoonok által okozott, itt leírt parazitafertőzések vagy betegségek ellen az azokkal kapcsolatos tünetek és betegségek megelőzéséhez vezet. Általában ezeknek a betegségeknek a tünetei közé tartozik a sántítás, az ataxia, a paralízis, a vetélés, a gyenge újszülött és a többi rokon rendellenesség. Jellemzően a kezelés 1-30 napig tart, előnyösen kb. 1-20 napig, különösen előnyösen 1-10 napig, és igen különösen előnyösen 1-6 napig. A kezelés, különösen a megelőző kezelés ütemezése lehet napi egyszeri, napi kétszeri vagy napi többszöri, történhet másnaponként vagy hetenként egyszer, a körülményektől és a patogén parazita fajától függően.
Az előnyös dózis 1-500 mg aktív vegyület a kezelendő állat testtömegének egy kilogrammjára számítva, különösen előnyös dózis 10-200 mg/kg, igen különösen előnyös dózis 20-150 mg/kg.
Anélkül, hogy egyetlen elmélet mellett elköteleznénk magunkat, felételezzük, hogy a leírásban ismertetett kezelés, különösen megelőző kezelés váratlan sikere annak a következménye, hogy a triazinonvegyületek képesek átjutni a vér-agy gáton vagy a placentagáton. Feltételezzük, hogy a jelen találmány szerinti vegyületek könnyen átjutnak a vér-agy gáton, és képesek a placentába is behatolni, és a protozoonokat in situ pusztítják el az agyban és a gerincagyburki folyadékban a gerincagyban.
Eddig nem álltak rendelkezésre olcsó, könnyen beadható gyógyszerek az ilyen betegségek elleni hatékony védekezésre olyan elfogadhatatlan mellékhatások nélkül, mint a mérgezés vagy a mutagenezis az állatokban. A triazinonvegyületeket a leírás következő részében ismertetjük, különös tekintettel a toltrazurilvegyületekre, ám korlátozó jelleg nélkül. A jelen leírás és a találmány igénypontjai más olyan triazinonvegyületeket is tartalmaznak, amelyek a toltrazurilvegyületekhez hasonlóan hasznosak.
A találmány értelmében (B) képletű Toltrazurilt és (C) képletű Ponazurilt alkalmazunk.
A triazin-trionokat egy általános eljárás szerint állíthatjuk elő úgy, hogy
a) egy (II) általános képletű vegyületet, ahol R1, R2, R3 és X jelentése a fenti, egy (III) általános képletű szubsztítuált karbonsav-izocianáttal reagáltatjuk, ahol R5 jelentése halogénatom, alkoxicsoport vagy aril-oxicsoport, és a keletkező (IV) általános képletű, szubsztituált 1,3,5-triazinszármazékokat, ahol R1, R2, R3 és X jelentése a fenti, adott esetben elkülönítjük és adott esetben (V) általános képletű vegyülettel reagáltatjuk, ahol A jelentése alkil-, alkenil- vagy alkinilcsoport, és Z jelentése halogén; vagy
b) egy (II) általános képletű vegyületeket, ahol R1, R2, R3 és X jelentése a fenti, egy (VI) általános képletű bisz(klór-karbonsav)-aminnal reagáltatunk, ahol R6 jelentése alkilcsoport, adott esetben savakceptorok jelenlétében; vagy
c) az olyan (I) általános képletű vegyületek, ahol R2, R3, R4 és X szubsztituens jelentése a fenti, és R1 halogén-alkil-szulfinil- vagy halogén-alkil-szulfonílcsoport, úgy Is előállíthatok, hogy egy (VII) általános képletű vegyületet, ahol R2, R3 és R4 jelentése a fenti, R1’ jelentése halogén-alkil-tio-csoport, megfelelő oxidálószer kellő mennyiségével reagáltatunk.
Ha az a) eljárásban N-[3-klór-4-(4’-trifIuor-metil-tiofenoxi)-fenil]-N'-metil-karbamidot és klór-karbonil-izocianátot alkalmazunk, a reakció az 1. reakcióvázlat szerint megy végbe.
Ha a b) eljárásban N-[3-etoxi-4-(4’-trifluor-metil-tiofenoxi)-fenil]-tiokarbamidot és N-metil-bisz(klór-karbonsav)-amint használunk kiindulási anyagként, a reakció a 2. reakcióvázlat szerint megy végbe.
Az (I) általános képlet szerinti vegyületeket, ahol R1 jelentése halogén-alkil-tio-csoport és X jelentése O, és amelyeket az a) vagy b) eljárással állítunk elő, a c) eljárással oxidálhatjuk, és így a megfelelő halogén-alkilszulfinil- vagy halogén-alkil-szulfonil-származékokat kapjuk. Ha a hidrogén-peroxidot alkalmazunk oxidálószerként, a reakciót a 3. reakcióvázlat szerint megy végbe.
A (II), (IV), (V), (VI) és (VII) általános képletekben az R6 vagy A jelentésében meghatározott alkilcsoport egyenes vagy elágazó láncú, előnyösen 1-6 szénatomos, különösen 1-4 szénatomos alkilcsoport. Példaként említhető az adott esetben szubsztítuált metil, etil, n- és izopropil, valamint η-, izo- és terc-butil-csoport.
A (II), (IV) (V) és (VII) általános képletekben az A jelentésében meghatározott alkenilcsoport egyenes vagy elágazó láncú, előnyösen 2-6 szénatomos, különösen előnyösen 2-4 szénatomos alkenilcsoport. Megemlíthető például az adott esetben szubsztítuált etenil-, propen-1-il-, propen-2-il- és buten-3-il-csoport.
A (II), (IV), (V) és (VII) általános képletekben az A jelentésében meghatározott alkinilcsoport egyenes vagy elágazó láncú, előnyösen 2-6 szénatomos, különösen előnyösen 2-4 szénatomos alkinilcsoport. Megemlíthető például az adott esetben szubsztítuált etinil-, propin-1-il-, propin-2-il- és butin-3-il-csoport.
A (II), (III), (IV) és (VII) általános képletekben az R5 jelentésében meghatározott alkoxicsoport egyenes
HU 226 379 Β1 vagy elágazó láncú, előnyösen 1-6 szénatomos, különösen előnyösen 1-4 szénatomos alkoxicsoport. Megemlíthető például az adott esetben szubsztituált metoxi-, etoxi-, n- és izopropoxi-, valamint n- és izobutoxicsoport.
A (II), (lll), (IV), (V) és (VII) általános képletekben az R5 vagy Z jelentésében meghatározott halogén előnyösen fluor-, klór-, bróm- vagy jódatom, különösen előnyösen klór- vagy brómatom.
A (lll) általános képletben az R5 jelentésében meghatározott aril-oxi-csoport előnyösen monociklusos karbociklusos aril-oxi- vagy biciklusos karbociklusos aril-oxi-, különösen előnyösen fenoxicsoport.
A (lll) általános képletben az R5 jelentésében meghatározott aril-oxi-csoport, előnyösen fenoxicsoport. A (II) általános képletű szubsztituált karbamidok és tiokarbamidok többsége, amelyeket kiindulási anyagként alkalmazunk, új vegyület, de könnyen előállítható a már ismert eljárásokkal, ha a) egy szubsztituált 4-amino-difenil-étert reagáltatunk egy megfelelő szubsztituált izocianáttal vagy izotiocianáttal inért oldószerben 0-100 °C hőmérsékleten, vagy a reakciót fordított sorrendben végezzük, b) ammóniát vagy egy szubsztituált amint és egy megfelelő szubsztituált izocianát-difenilétert vagy 4-izotiocianát-difenil-étert reagáltatunk hasonló körülmények között, vagy c) egy szubsztituált 4-hidroxi-fenil-karbamidot vagy -tiokarbamidot kondenzációs reakciónak vetünk alá egy aktív, halogénnel szubsztituált aromás vegyülettel aprotonos oldószerben, például dimetil-szulfoxidban, dimetil-formamidban vagy hexametil-foszfor-triamidban bázis, például nátrium-hidrid, kálium-hidroxid, kálium-karbonát és hasonlók jelenlétében, 20-150 °C hőmérsékleten.
Ha megfelelő oldószert választunk, a reakciótermékek általában hűtés hatására kikristályosodnak az oldatból. Alternatív megoldásként azonban a karbamidokat aminok és izocianátok reagáltatásával állítjuk elő a következő hivatkozás szerint: Methoden dér Org. Chemie [A szerves kémia módszerei (Houben-Weyl) IV. kiadás, Vili. kötet, 157-158. oldal].
Néhány (VI) általános képletű bisz(klór-karbonsav)amin, amely a jelen találmány értelmében alkalmazható a b) eljárásban, már ismert (Synthesis 1970, 542-543. oldal). Az eddig ismeretlen vegyületeket analóg módon állíthatjuk elő ciklusos diacil diszulfidokból inért szerves oldószerben, előnyösen szén-tetrakloridban végzett klórozással.
Azok a hígítószerek, amelyeket felhasználhatunk a (II) általános képletű karbamidoknak vagy tiokarbamidoknak vagy a (lll) általános képletű karbonsav izocianátokkal [a) eljárás], vagy a (VI) általános képletű bisz(klór-karbonsav)-aminokkal [b) eljárás] való reakciójához és a (IV) általános képletű 1,3,5-triazonszármazékoknak az A-Z általános képletű vegyületekkel való reakciójához, mindazok a szerves oldószerek lehetnek, amelyek inertek ezekkel a reakciókkal szemben.
A piridinen kívül előnyösen idetartoznak az aromás szénhidrogének, például a benzol, a toluol és a xilol, a halogénezett aromás szénhidrogének, például a klórbenzol és a diklór-benzol, és az éterek, például a tetrahidrofurán és a dioxán.
A sósav, amely a reakció során képződhet, gáz formájában távozik vagy szerves vagy szervetlen savakceptorok köthetik meg. Ezek közé a savakceptorok közé tartoznak előnyösen a tercier szerves bázisok, például a trialkil-aminok, például a trietil-amin, az aromás N-hetero(mono- vagy biciklusos aminok, például a mono- vagy biciklusos piridin-aza-cikloalkil-aminok, például a diaza-biciklononén, diaza-bicikloundecén és a szervetlen bázisok, például alkálifém-karbonátok, alkálifém-oxidok, alkálifém-hidroxidok, alkáliföldfém-karbonátok, alkáliföldfém-oxidok vagy alkáliföldfém-hidroxidok.
A fenti reakciólépések hőmérséklete széles határok között változhat. Általában a reakciót kb. 0-150 °C-on, előnyösen körülbelül 20-100 °C-on hajtjuk végre.
A fenti reakciólépéseket légköri nyomáson vagy nagyobb nyomáson is végrehajthatjuk. Általában légköri nyomáson hajtjuk végre.
Az X jelentésében oxigént tartalmazó (I) általános képletű trifluor-metil-tio-vegyületek c) eljárás szerinti átalakításában a megfelelő szulfinil- vagy szulfonilvegyületek előállítsa során alkalmazható oxidálószerként H2O2/jégecet, H2O2/ecetsavanhidrid, H2O2/metanol, persavak, mint például az m-klór-perbenzoesav, valamint krómsav, kálium-permanganát, nátrium-perjódát, cérium(IV)-ammónium-nitrát és salétromsav.
Egy triazinonvegyületet megfelelő addíciós sóvá alakíthatunk át például szervetlen vagy szerves bázissal lejátszódó reakció révén.
A találmány megvalósításakor a triazinonvegyületet bármely módon előállíthatjuk, úgy hogy az állatoknak való beadásra alkalmasak legyenek. Orális beadásra, amely a találmány szempontjából előnyös, a készítmények lehetnek oldatok, szuszpenziók, tabletták, kapszulák, gélek, paszták, bóluszok vagy por-, granulátum- vagy pasztillakészítmények. További lehetőség a parenterális, helyi, intramuszkuláris vagy nyálkahártyán keresztüli beadás, vagy a szakemberek által ismert más beadási mód. A helyi kezelés önthető formában kialakított termékkel szintén előnyös (pour on).
Különösen hatékony alkalmazás a Toltrazuril vagy Ponazuril kombinációja parazita protozoonok elleni élő vagy elölt vakcinákkal, különösen a Neospora spp. ellen. Ebben az esetben aktivitásfokozó hatásokat is megfigyelhetünk.
A kompozíciókat és a készítményeket úgy állítjuk elő, hogy a komponenseket megfelelő berendezésekben, például kevert edényekben vagy más alkalmas berendezésben összekeverjük.
A találmányt a következő példák pontosabban ismertetik.
Példák
Neospora caninum-ferfőzésefc
A Neospora caninum diagnosztizálásának és a Toxoplasma gondika való korlátozás alapját klinikai, mikroszkópos, immun-szövettani-kémiai és molekulabiológiai paraméterek képezik. Klinikailag a végtagok bénulása
HU 226 379 Β1 és ismételt, placentán keresztüli átvitel figyelhető meg. Tachizoiták és ciszták láthatók a mikroszkóp alatt a izomzatban és az idegszövetben. Erőteljesen megvastagodott falú ciszták csak és kizárólag az idegszövetben találhatók kis számban. Az 1:200 titerek jellegzetesek a közvetett immunfluoreszcencia tesztben (IFAT) a sejttenyészetben keletkező tachizoiták alkalmazásakor. Ha a klinikai tünetek megjelennek, 1:20 000 titerek is előfordulhatnak. A molekulabiológiát tekintve, a Neospora caninum gyorsan és egyértelműen azonosítható az ITS1 tartomány (internál transcriber spacer 1) in vitro erősítésével (Holmdale és Mattson, 1996).
Az in vitro tesztrendszer leírása
VERŐ gazdasejttenyészet
A Neospora caninum obiigát intracelluláris parazita. VERŐ sejteket (afrikai zöldmajom vesesejtek, ATCCszám: CCL 81 Verő) használtunk, hogy a paraziták szaporodását elősegítsük a standardizálásra és definícióra alkalmas körülmények között. A Vero-sejteket a következő közegben tenyésztettük: 87% RPMI 1648 (ICN, 12-602-54) 10% FCS (magzati borjúszérum, ICN, 29-101-49) 1% 200 mM L-glutamin (ICN, 15-801-13) 1% nátrium-hidrogén-karbonát (ICN, 16-883-49) 1% penicillin/streptomycin (ICN, 16-700-49). Nem fertőzött tenyészeteket tartottunk fenn és passzáltunk 25 cm2-es (Falcon, B 769031) és 75 cm2-es (Falcon, B 769051) szövettenyésztő lombikokba. A Vero-sejteket 37 °C-on tenyésztettük 5% CO2-atmoszférában, CO2-inkubátorban (Heraeus), amíg a sejtekből monoréteget nem kaptunk.
ED sejttenyészet
ED (ló dermális sejtek, ATTC-szám: CCL 57) sejteket tenyésztettünk a következő közegben: 87% EMEM (ICN, 12-106-54) 10% FCS (magzati borjúszérum, ICN, 29-101-49) 1% 200 mM L-glutamin (ICN,
15- 801-13) 1% NEA (nem esszenciális aminosavak, Gibco, 11140-035) 1% penicillin/streptomycin (ICN,
16- 700-49). Nem fertőzött tenyészeteket tartottunk fenn és passzáltunk 25 cm2-es (Falcon, B 769031) és 75 cm2-es (Falcon, B 769051) szövettenyésztő lombikokba. Az ED sejteket 37 °C-on tenyésztettük 5% CO2atmoszféra nélkül, inkubátorban (Heraeus), amíg a sejtekből monoréteget nem kaptunk.
Sejtpasszálás
A gazdasejteket passzáltuk, vagyis friss sejttenyésztő edényekbe osztottuk el, amikor a tenyészet teljesen összefolyó sejtpázsitot képezett. Amikor a tenyésztőközeg 10% FCS-t tartalmazott, ez rendszerint hetente kétszer következett be. Először a tenyésztőközeget dekantáltuk, a sejtpázsitot 5 ml tripszin-EDTA-val mostuk (ICN, 16-891-49) és 5-10 percig 37 °C-on inkubáltuk CO2-inkubátorban további 5 ml tripszin-EDTA-val, amíg a sejtek el nem váltak a hordozótól. A tripszin-EDTA sejtszuszpenziót 1-2 ml előmelegített FCSsel centrifugáltuk 5 percig 1500 fordulat/perc mellett (Varifuge 3.0, Heraeus). A felülúszót eltávolítottuk és a pasztillát 15 ml közegben oldottuk fel (92% RPM11640,
5% FCS, 1% L-glutamin, 1% nátrium-hidrogén-karbonát, 1% penicillin/streptomycin). Minden szövettenyésztő lombik esetén 3 új lombikot oltottunk be, minden esetben 5 ml sejtszuszpenzióval, vagyis az osztási arány 1:3 volt.
A sejtek alacsony hőmérsékletű tárolása folyékony nitrogénben
A tenyésztőlombikokból származó sejteket vagy C541 közegben [50% RPMI 1640, 40% magzat borjúszérum (FCS), 10% dimetil-szulfoxid (DMSO, Merck 9578), vagy C2 közegben (86% RPMI 1640, 10% DMSO, 2% FCS, 1% L-glutamin, 1% streptomycin/penicillin] fagyasztottuk le. Előzőleg a sejteket tripszinnel kezeltük a leírás szerint (lásd fent), az elválasztott sejteket centrifugáltuk és újraszuszpendáltuk 3 ml C541 fagyasztóközegben vagy C2 közegben, és 2 ml-es fagyasztócsövekbe vittük át. A végső tárolást cseppfolyós nitrogénben végeztük -196 °C-on, ahol a sejteket korlátlanul eltarthatjuk. A cseppfolyós nitrogénben végzett végső tárolás előtt a fagyasztócsöveket a sejtvonalakkal lassan -80 °C-ra hűtöttük egy 1 cm falvastagságú Styropor dobozban. A Styropor dobozt folyamatosan hűthetjük 1-2 °C/perc sebességgel, ami lehetővé teszi, hogy a sejtek ozmózissal veszítsék el intracelluláris víztartalmukat. Ez döntő fontosságú a vitalitás megmaradása szempontjából.
Az alacsony hőmérsékletre hűtött sejtek kifagyasztása
A cseppfolyós nitrogénnel hűtött hűtőcsövek kifagyasztását a lehető leggyorsabban végeztük 37 °C-os vízfürdőben. A sejtszuszpenziót 10 ml közegbe pipettáztuk, majd egyformán elosztottuk két 50 ml-es szövettenyésztő lombikba. A sejttenyészetet 37 °C-on, 5% CO2 mellett tartottuk fenn. 24 óra múlva a sejttenyésztő közeget kicseréltük, hogy eltávolítsuk a DMSO-t, amely a hűtőközegben jelen van.
A sejttenyészetek megfertőzése Neospora caninummal
A következő Neospora can/num-izolátumokat használtuk a sejttenyészetek megfertőzésére: NC-1 [kutyaizolátum, DUBEY (1988)] és NC Swe B—1/9. passzálás (borjúizolátum, Országos Állatorvosi Intézet, Uppsala, Svédország). A felhasznált fertőzött anyagok a nitrogénes tárolásból származó, fertőzött sejttenyészetek (lásd fent) vagy fertőzött tenyészetek tisztított tachizoitái voltak (lásd alább).
A tachizoiták izolálása sejttenyészetekből
Sephadex alkalmazásával
A Neospora caninumot a fertőzött VERŐ és ED monorétegekből steril körülmények között izoláltuk. Először a fertőzött sejttenyészeteket spatulával (Tec No Mara, 3010) leválasztottuk a lombik fenekéről, majd 23 G kanüllel (Luer 23 Gx1, 0,6*25 mm) egy 10 ml-es eldobható fecskendőbe szívtuk fel. Ez alatt az eljárás alatt a fecskendőben levő gazdasejteket és szövetcisztákat mechanikus úton roncsoltuk. A sejtszuszpenziót
HU 226 379 Β1 ezután 7 percig 1500 fordulat/perc mellett centrifugáltuk (Varifuge 3.0, Heraeus), a felülúszót eltávolítottuk, és a mintapasztillát pontosan 2,5 ml fiziológiai foszfátpufferben újraszuszpendáltuk (PBS: 1 mM PO4, 12 mM NaCI, 0,87 mM KCI, pH 7,4). A következő izolációs lépést Sephadex-oszloppal végeztük (PD-10™/Sephadex G-25 M, Pharmacia Biotech, 17-0851). Az oszlopot először 25 ml PBS-sel hoztuk egyensúlyba, a minta térfogatot 2,5 ml PBS-ben alkalmaztuk, és az elúciót 5 ml PBS-sel végeztük. A tachizoiták gyorsan vándorolnak az oszlopban és az eluátum első 3 ml-ében találhatók, míg a Sephadex-oszlopról lejövő, nagy molekulatömegű sejttörmelék és membrán hátramarad. A nemkívánatos sejtorganellák és a szabad gazdasejt-DNS eltávolítása érdekében a mintát 7 percig 1500 fordulat/perc mellett centrifugáltuk, a felülúszót eltávolítottuk és a pasztillát 3-szor mostuk 40 ml PBS-ben.
Az anyagok vizsgálata fertőzött Neospora caninum sejttenyészeteken
Az anyagokat 96 lyukú lemezeken vizsgáltuk (Falcon 3872), mert ebben a rendszerben csak kis mennyiségű kiindulási anyagra (kb. 1 mg) van szükség. Először a gazdasejtekből (Verő vagy ED) sejttenyésztő monoréteget alakítottunk ki a sejttenyésztő lemezeken. Erre a célra szükség volt két 50 ml-es szövettenyésztő lombikra (teljes szövettenyésztő terület 50 cm2), amelyben nem fertőzött monoréteget hoztunk létre. Ennek a tenyészetnek a sejtpázsitját 5 ml tripszin-EDTAval választottuk le (Gibco, 45300-19) CO2-inkubátorban 37 °C-on. 10 perces inkubációs idő után a sejtek többsége levált. Egy 5 ml-es pipettával a sejtszuszpenziót átvittük egy 50 ml-es centrifugacsőbe (Greiner, B769331), amelybe kb. 1 ml meleg magzat borjúszérummal töltöttünk. 5 perces, 1500 fordulat/perc melletti centrifugálás (Varifuge 3.0, Heraeus) után a felülúszót eltávolítottuk és a sejtpasztillát újraszuszpendáltuk 100 ml RPMI közegben (95% RPM11640, 2% FCS, 1% L-glutamin, 1% nátrium-hidrogén-karbonát, 1% penicillin/streptomycin). Ebből a sejtszuszpenzióból 150 μΙ-t egy 96 lyukú lemez minden mélyedésébe bepipettáztunk. 100 ml közeg elegendő 6 mikrolyukú lemez borítására. A borított sejttenyésztő lemezeken 24 órán át végeztünk tenyésztést az inkubátorban, 37 °C-on, 5% CO2 mellett. A lemezeket ezután tisztított Neospora caninum tachizoitákkal fertőztük, amelyek koncentrációja 48 000 tachizoita/lyuk volt, és 24 óráig tovább inkubáltuk 37 °C és 5% CO2 mellett. A vizsgálandó anyagokat 1,5 ml-es Eppendorf-csövekbe mértük be, az anyagok tömege kb. 0,5-1,5 mg volt. Ezután 1 ml DMSO/mg anyag mennyiséget pipettáztunk be, ami 1*10-3 g/ml hígításnak felelt meg. A kezeléshez használt közeg, amelyben a további hígítási sorozatot végrehajtottuk, 87% RPMI 1640-et, 10% FCS-t, 1% L-glutamint, 1% nátrium-hidrogén-karbonátot, 1 % penicillin/streptomycint tartalmazott. Az első szkrineléskor 10 ppm, 25 ppm és 50 ppm koncentrációkat alkalmaztunk. 24 órával a Neospora caninum-fertőzés után a híg készítményeket átvittük a sejttenyésztő lemezekre, 150 μΙ/lyuk térfogatban. Az első sorban kezeletlen közeget használtunk, és ez a sor tartalmazta mind a fertőzött kontrollt, mind a nem fertőzött kontrollt. A sejtlemezeket ezután 5 napon át inkubáltuk 37 °C-on 5% CO2 mellett. Ez alatt az idő alatt a tachizoiták a gazdasejtekben szaporodnak, így a monoréteget lerombolják. Ha egy anyag teljesen aktív, a tachizoiták elpusztulnak, és a monoréteg megmarad. Az érintetlen monoréteget fehérjekötő tesztben mutathatjuk ki (vitális festés). Az egyik alkalmazható módszer a 0,25%-os kristályibolyával való festés (Sigma C 3886). A festés előtt a tesztlemezeket 100 μΙ PBS-sel mostuk és 100 μΙ metanollal fixáltuk. A mikroszkópos elemzést 4 nappal a kezelés megkezdése után és 5 nappal a fertőzés után végeztük 25*10-es nagyítással inverz mikroszkóp alatt. A következő értékelést használtuk:
Értékelés Szemmel látható jelek
0=nincs hatás A monoréteg teljesen tönkrement.
1=valamennyi hatás A monoréteg részben tönkrement, a parazitafészkek megfigyelhetők.
2=teljes hatás A monoréteg nem ment tönkre, nem figyelhetők meg tachizoiták.
T=citotoxikus A sejtek elhaltak, összegömbölyödtek.
1. táblázat
A toltrazuril hatékonysága a Neospora caninummal szemben VERŐ sejtek esetén
Anyag 50 ppm 25 ppm 10 ppm
Fertőzött kontroll 0 0 0
Toltrazuril tiszta aktív vegyület 2 2 1
Toltrazuril 2,5%-os oldat 2 2 1
*100 ml oldat tartalmazott:
2,50 g toltrazurilt,
30,00 g trietanol-amint,
80,70 g polietilénglikolt, a komponensek egyszerűen össze vannak keverve.
Értékelés Szemmel látható jelek
0=nincs hatás A monoréteg teljesen tönkrement.
=valamennyi hatás A monoréteg részben tönkrement, a parazitafészkek megfigyelhetők.
2=teljes hatás A monoréteg nem ment tönkre, nem figyelhetők meg tachizoiták.
T=citotoxikus A sejtek elhaltak, összegömbölyödtek.
II. In vivő hatékonyság
Csak nagyon kevés információnk van eddig az anyagok in vivő hatékonyságáról, mert a megfelelő in vivő tesztrendszereket még ki kell fejleszteni. A kísérle7
HU 226 379 Β1 tileg megfertőzött egerekben a sulfadiazine (amelyet ivóvízzel adtunk be), csak akkor volt hatásos, amikor a kezelést megelőzőan kezdték, vagyis a fertőzés előtt. Ebben az esetben a klinikai tüneteket megelőzték, mielőtt parazitológiai értelemben gyógyulás következett volna be. A kezelés későbbi megkezdése sikertelen volt (Bjerkas és munkatársai, 1984, Dubey és munkatársai, 1988, Lindsay és Dubey, 1989, Lindsay és Dubey, 1990). A kutyák esetében a sulfadiazine- és a clindamycinkezelésnek csak akkor van esélye a sikerre, ha nagyon korán kezdődik, amikor a reticulitis miatti első tüneteket észlelik.
A tesztmodell leírása egerek esetén
A BAYER AG a Berni Egyetem Állatorvosi és Orvosi Karának Parazitológiai Tanszékén Dr. Simoné Eperont és Prof. Brúnó Gottsteint bízta meg a kísérletek megtervezésével és elvégzésével [Eperon és munkatársai: Parasite Immunology, 21, 225-236 (1999)].
Egerek
Nőstény Wt C57BL/6 egerek, életkor a kezeléskor: 71/2 hét.
Neospora caninum tachizoiták
Neospora caninum tachizoitákat VERŐ sejteken passzáltunk át, és oszlopkromatográfiával izoláltunk. 2*106 parazita/100 μΙ koncentrációjú aliquotokat készítettünk steril PBS-ben. A vitális festés Trypan-kékkel 97% viabilis tachizoitát mutatott ki.
A profilaxishoz alkalmazott anyagok (2. táblázat)
Tiszta toltrazuril aktív vegyületet készítettünk törzsoldatként 50 mg/10 ml H2O+100 μΙ Cremophor felhasználásával. Alkalmazásonként 0,5 mg tiszta aktív vegyület volt az oldat 0,1 ml-ében. Egy 20 g tömegű egérben ez 25 mg/kg koncentrációnak felel meg. Az anyagokat perorálisan alkalmaztuk gyomorszondával 6 egymást követő napon át, ami összesen 150 mg/egér felvételnek felel meg.
2,5%-os toltrazuril oldatkészítményt állítottunk elő (100 ml oldat tartalmaz: 2,50 g toltrazurilt, 30,00 g trietanol-amint, 80,70 g polietilénglikolt, a komponensek egyszerűen össze vannak keverve). 6,25 ml 2,5%-os oldatot 250 ml vízzel felhígítottunk, és az egereknek 6 egymást követő napon át beadtunk az ivóvízzel.
Fertőzés
Négy órával a megelőző kezelés kezdete után minden egeret megfertőztünk 2*106 parazita állapot/100 μΙ steril PBS anyaggal.
Eutanázia nappal a fertőzés után a vizsgált egereket CO2dal elpusztítottuk. Véletlenszerűen megszámoztuk őket, hogy az értékeléskor véletlenszerű sorrendet tartsunk fenn (vak értékelés). A szérum kinyeréséhez vért vettünk a myocardiumból. Az agyat óvatosan kimetszettük. Egyik felét -80 °C-on tartottuk a PCR-elemzéshez. A maradékot 4% paraformaldehid/PBS rendszerben fixáltuk az Immunszövettani vizsgálatokhoz (IFAT).
Eredmények
1. IgG a szérumban (3. táblázat)
Az anti-N. caninum teljes immunglobulin G-t (IgG) ELISA-val határoztuk meg Eperon és munkatársai módszerével (Parasite Immunology 21:225-236, 1999). A kezelt csoportokat összehasonlítottuk egy nem fertőzött és egy fertőzött kontrollcsoporttal. A pozitív kontroliegeret N. caninum tachizoiták nyers extraktumával oltottuk be, majd 106 N. caninum parazita állapottal fertőztük meg. A parazitaspecifikus IgG-értékek különösen magasak voltak ebben az egérben.
Azok az egerek, amelyeket toltrazurillal (tiszta aktív vegyület) kezeltünk, csökkentett koncentrációjú Neospora can/num-specifikus IgG-antitestet mutattak a fertőzött és a kezeletlen kontrollcsoportokhoz képest. Ez a koncentráció jóval kisebb volt azokban az egerekben, amelyeket 2,5%-os toltrazuril oldatkészítménnyel kezeltünk (megközelítette a nem fertőzött kontrollcsoportot).
2. PCR-elemzés (4. táblázat)
DNS-t izoláltunk a fertőzött egerek agyából, és Neospora can/num-specifikus polimeráz-láncreakciót (PCR) hajtottunk végre Eperon és munkatársai szerint (Parasite Immunology 21: 225-236, 1999). Minden nem fertőzött egér negatív volt az N. caninum-specifikus PCR-reakcióban. Az összes fertőzött kontroliegér PCR-pozitív volt. Abban a csoportban, amelyet megelőzőan kezeltünk toltrazuril tiszta aktív vegyüiettel, 4/7 egér PCR-negatív volt. Abban a csoportban, amelyet 2,5%-os toltrazuril oldatkészítménnyel kezeltünk, minden egér PCR-negatív volt.
3. Immunfluoreszcencia teszt (IFAT, 4. táblázat)
Paraformaldehiddel fixált agyi mintákat paraffinba ágyaztunk és vízmentesítettünk. Három egymást követő sagittalis metszetet készítettünk. Egy metszetet hematoxilin-eozinnal festettünk meg, míg a másik kettőt immunfluoreszcenciás jelzésre készítettünk el [Eperon és munkatársai, Parasite Immunology 21, 225-236, (1999)] a következő módosításokkal: az első antitest nyúl poliklónozott antitest volt teljes N. caninum tachizoiták ellen, 1:400 hígításban 1% BSA-ban PBS-ben. A második antitest kecske-antinyúl FITC-jelzett antitest volt 1:400 koncentrációban 0,5% BSA-ban PBS-ben.
Semmilyen zavart vagy abnormális változást nem figyeltünk meg a hematoxilin-eozinnal festett metszetek egyik csoportjában sem. Ezért használtunk immunjelzést speciális N. caninum antitestekkel, hogy megjelöljük a parazita állapotokat az agyszövetben. A vizsgálathoz a teljes metszeteket tanulmányoztuk. Minden jelen levő parazita állapotot megszámoltunk, és a következő fokozatokat alkalmaztuk:
HU 226 379 Β1
-=nincs tachizoita, +=kevesebb, mint 10 tachizoita, ++=10-200 tachizoita, +++=több, mint 200 parazita.
+++ fokozatot csak a pozitív kontroliban találtunk.
A pozitív kontroll knock-out mutáns volt (μΜΤ egér), amely nem állít elő antitestet, és a fertőzés következtében kimúlt a fertőzést követő 31. napon. Az összes nem fertőzött egér negatív volt az IFAT-tesztben. Az összes toltrazurillal kezelt csoport negatív volt az IFAT5 tesztben.
2. táblázat
A toltrazuril hatékonysága a Neospora caninummal szemben egerekben
Nap Dátum Toltrazuril tiszta aktív vegyület 25 mg/kg/nap po. 2,5%-os toltrazurilkészítmény Fertőzött kontroll Nem fertőzött kontroll
BL/6 egér 7 egér 5 egér 5 egér 5 egér
0. nap 99.06.21. 25 mg/egér 2,5% vízben - -
Fertőzés 4 órával később 99.06.21. 2*10® tachizoita ip. 2*10® tachizoita ip. 2*10® tachizoita ip. nincs fertőzés
1. nap p.i. 99. 06. 22. 25 mg/egér 2,5% vízben - -
2. nap p.i. 99. 06. 23. 25 mg/egér 2,5% vízben - -
3. nap p.i. 99. 06. 24. 25 mg/egér 2,5% vízben - -
4. nap p.i. 99. 06. 25. 25 mg/egér 2,5% vízben - -
5. nap p.i. 99. 06. 26. 25 mg/egér 2,5% vízben - -
14. nap p.i. 99. 07. 05. eutanázia eutanázia eutanázia eutanázia
p.i.: fertőzés után po.: orálisan.
3. táblázat
Anti-Neospora caninum IgG az egyes egerek szérumában és átlagos IgG-koncentráció a szérumban kezelt csoportokként
Kísérleti csoport Egér száma* OD (anti Neospora IgG a szérumban OD átlag
Nem fertőzött kontroll 242 0,034 0,0340 (+/- 0,0044)
228 0,03
240 0,028
227 0,045
233 0,033
Fertőzött kontroll 239 0,178 0,2352 (+/- 0,0542)
224 0,224
246 0,168
234 0,242
222 0,364
HU 226 379 Β1
3. táblázat (folytatás)
Kísérleti csoport Egér száma* OD (anti Neospora IgG a szérumban OD átlag
Toltrazuril 25 mg/kg 241 0,338 0,1689 (+/- 0,0807)
225 0,271
244 0,056
220 0,066
231 0,18
235 0,103
245 0,168
Toltrazurii 2,5% vízben 230 0,085 0,0838 (+/- 0,0254)
238 0,109
243 0,121
221 0,022
229 0,082
Pozitív kontroll 14 0,381 0,381 (+/- 0)
4. táblázat
N. can/num-specifikus PCR és IFAT
Kísérleti csoport Egér száma* Neospora PCR IFAT
Nem fertőzött kontroll 242 - -
228 - -
240 - -
227 - -
233 - -
Fertőzött kontroll 239 + +
224 + +
246 + ++
234 + -
222 + +
Toltrazuril 25 mg/kg 241 + -
225 - -
244 - -
220 - -
231 + -
235 - -
245 + -
HU 226 379 Β1
4. táblázat (folytatás)
Kísérleti csoport Egér száma* Neospora PCR IFAT
Toltrazuril 2,5% vízben 230 - -
238 - -
243 - -
221 - -
229 - -
Pozitív kontroll 14 + +++
* A számokat véletlenszerűen osztottuk ki, hogy torzltatlan értékelést kapjunk; ezért nem logikai sorrendben követik egymást.

Claims (3)

  1. SZABADALMI IGÉNYPONTOK
    1. Toltrazuril vagy Ponazuril alkalmazása állatok Neospora caninum elleni megelőző kezelésére szolgá- 20 ló szer előállítására.
  2. 2. Toltrazuril vagy Ponazuril alkalmazása állatok parazita protozoonok elleni kezelésére szolgáló szer előállítására élő és elhalt vakcinákkal kombinált felhasználásra.
  3. 3. Triazinon hatóanyagként Toltrazurilt vagy Ponazurilt és élő vagy elhalt vakcinát kombinációs készítményként tartalmazó szer parazita protozoonok ellen.
HU0203534A 1999-12-03 2000-11-21 Use of triazinone derivatives for the preparation of compositions treating diseases resulting from infestation with parasitic protozoans HU226379B1 (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE19958388A DE19958388A1 (de) 1999-12-03 1999-12-03 Triazinonverbindungen zur Behandlung von durch den Befall mit parasitischen Protozoen bedingten Krankheiten
PCT/EP2000/011837 WO2001039778A2 (de) 1999-12-03 2000-11-21 Triazinonverbindungen zur behandlung von durch den befall mit parasitischen protozoen bedingten krankheiten

Publications (3)

Publication Number Publication Date
HUP0203534A2 HUP0203534A2 (hu) 2003-01-28
HUP0203534A3 HUP0203534A3 (en) 2003-10-28
HU226379B1 true HU226379B1 (en) 2008-10-28

Family

ID=7931344

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU0203534A HU226379B1 (en) 1999-12-03 2000-11-21 Use of triazinone derivatives for the preparation of compositions treating diseases resulting from infestation with parasitic protozoans

Country Status (16)

Country Link
US (1) US9399037B2 (hu)
EP (1) EP1246624B1 (hu)
JP (1) JP5031163B2 (hu)
CN (2) CN101632676A (hu)
AT (1) ATE298573T1 (hu)
AU (1) AU783437B2 (hu)
BR (1) BR0015996A (hu)
CA (1) CA2394188C (hu)
DE (2) DE19958388A1 (hu)
DK (1) DK1246624T3 (hu)
ES (1) ES2243323T3 (hu)
HU (1) HU226379B1 (hu)
MX (1) MXPA02005479A (hu)
NZ (1) NZ519327A (hu)
WO (1) WO2001039778A2 (hu)
ZA (1) ZA200203476B (hu)

Families Citing this family (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE102007025908A1 (de) 2007-06-01 2008-12-04 Bayer Healthcare Ag Formulierungen enthaltend Triazinone und Eisen
MX2008009818A (es) 2008-07-31 2010-02-01 Avi Mex S A De C V Lab Combinacion coccidicida para uso veterinario.
DE102009012423A1 (de) 2009-03-10 2010-09-16 Bayer Animal Health Gmbh Zubereitung auf Ölbasis
DE102009038949A1 (de) * 2009-08-26 2011-03-03 Bayer Animal Health Gmbh Neue Verwendung von heterocyclisch substituierten 1,2,4-Triazindionen
MX2020008816A (es) 2018-02-26 2020-09-28 AlzeCure Pharma AB Derivados de triazina para el tratamiento de enfermedades relacionadas con neurotrofinas.
GB201810668D0 (en) 2018-06-28 2018-08-15 Stiftelsen Alzecure New compounds

Family Cites Families (21)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4631278A (en) 1984-08-01 1986-12-23 Janssen Pharmaceutica N.V. Anti-protozoal α-aryl-4-(4,5-dihydro-3,5-dioxo-1,2,4-triazin-2(3H)-yl)-benzeneacetonitrile derivatives, pharmaceutical compositions, and method of use therefor
US4778887A (en) 1984-08-01 1988-10-18 Janssen Pharmaceutica N.V. α-aryl-4-(4,5-dihydro-3,5-dioxo-1,2,4-triazin-2(3H)-yl)-benzeneacetonitriles
DE3805660A1 (de) 1988-02-24 1989-09-07 Bayer Ag Substituierte 1,2,4-triazindione, verfahren zu ihrer herstellung und ihre verwendung
DE3826058A1 (de) 1988-07-30 1990-02-08 Bayer Ag Mittel gegen fischparasiten
US5196562A (en) 1988-10-08 1993-03-23 Bayer Aktiengesellschaft Substituted 1,3,5-triazinetriones, for use against parasitic protozoa
US4933341A (en) 1988-10-08 1990-06-12 Bayer Aktiengesellschaft Substituted 1,3,5-triazinetriones, for use against parasitic protozoa
EP0377903A3 (de) 1989-01-09 1991-07-17 Bayer Ag Substituierte Hexahydro-1,2,4-triazindione, Verfahren zu ihrer Herstellung, Zwischenprodukte dafür und ihre Verwendung
CN1044905A (zh) 1989-02-16 1990-08-29 赫彻斯特股份公司 鱼和昆虫寄生虫对抗剂
DE4030042A1 (de) 1990-05-17 1991-11-21 Bayer Ag Verwendung von substituierten 1,2,4-triazindionen
US5256632A (en) 1990-05-30 1993-10-26 Bayer Aktiengesellschaft Herbicidal sulphonylated carboxamides
DE19519821A1 (de) * 1995-05-31 1996-12-05 Bayer Ag Mittel gegen parasitäre Protozoen
DK0841392T3 (da) 1996-11-12 2004-11-22 Pfizer Svækket levende Neospora vaccine
US5883095A (en) * 1997-08-07 1999-03-16 University Of Kentucky Research Foundation Formulations and methods to treat and prevent equine protozoal myeloencephalitis
BR9808114A (pt) * 1997-03-31 2000-03-08 David Granstrom Formulação de ração para cavalos utilizável para tratar epm, processos para tratar pm em um cavalo que necessita deste tratamento, para prevenir infecção com s. neutrona em cavalos, e, para exterminar s. neurona em cavalos
US5830893A (en) * 1997-04-23 1998-11-03 Mortar & Pestle Veterinary Pharmacy, Inc. Treatment of equine protozoan myeloencephalitis using triazinediones
NZ504035A (en) * 1997-10-20 2002-04-26 Bayer Ag Neospora vaccines comprising Neospora caninum antigens
US6248329B1 (en) 1998-06-01 2001-06-19 Ramaswamy Chandrashekar Parasitic helminth cuticlin nucleic acid molecules and uses thereof
CN1189175C (zh) 1998-10-08 2005-02-16 高新研究公司 用于预防和治疗原虫病的组合物和方法
AU2198100A (en) * 1998-12-22 2000-07-12 Bayer Corporation Triazineone compounds for treating diseases due to sarcosystis, neospora and toxoplasma
US6150361A (en) * 1998-12-22 2000-11-21 Bayer Corporation Triazineone compounds for treating diseases due to sarcosystis, neospora and toxoplasma
US6194408B1 (en) * 1998-12-22 2001-02-27 Bayer Corporation Triazineone compounds for treating diseases due to Sarcocystis, Neospora and Toxoplasma

Also Published As

Publication number Publication date
US20090181040A1 (en) 2009-07-16
CN1407893A (zh) 2003-04-02
NZ519327A (en) 2004-10-29
AU783437B2 (en) 2005-10-27
MXPA02005479A (es) 2003-01-28
ATE298573T1 (de) 2005-07-15
CA2394188A1 (en) 2001-06-07
HUP0203534A2 (hu) 2003-01-28
ZA200203476B (en) 2003-05-02
DE19958388A1 (de) 2001-06-07
EP1246624B1 (de) 2005-06-29
DK1246624T3 (da) 2005-10-03
BR0015996A (pt) 2002-08-06
EP1246624A2 (de) 2002-10-09
US9399037B2 (en) 2016-07-26
CA2394188C (en) 2010-01-26
DE50010648D1 (de) 2005-08-04
CN101632676A (zh) 2010-01-27
JP2003515563A (ja) 2003-05-07
WO2001039778A2 (de) 2001-06-07
JP5031163B2 (ja) 2012-09-19
HUP0203534A3 (en) 2003-10-28
AU1524401A (en) 2001-06-12
ES2243323T3 (es) 2005-12-01
WO2001039778A3 (de) 2002-01-31

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US9399037B2 (en) Triazinone compounds for treating diseases resulting from infestation with parasitic protozoans
US5935591A (en) Method for treatment of equine protozoal myeloencephalitis with thiazolides
KR100661102B1 (ko) 사르코시스티스, 네오스포라 및 톡소플라즈마에 의한 질병치료용 트리아진온 화합물
AU2009266125A1 (en) Use of nifurtimox for treating giardiasis
KR20010080571A (ko) 사르코시스티스, 네오스포라 및 톡소플라즈마에 의한 질병치료용 트리아진온 화합물
JP4991076B2 (ja) 住肉胞子虫、ネオスポラ、トキソプラズマおよびイソスポラによる疾患処置のためのプラジカンテル化合物
US20030109529A1 (en) Use of s-triazines for treating Apicomplexan parasitic infections
EP1055427B1 (en) Use of primaquine derivatives for the treatment of malaria
TW201120032A (en) Novel use of heterocycle-substituted 1,2,4-triazinediones
PERRIN International Symposion on In Vitro Cultivation of Parasites and Alternatives to Animal Experimentation in Parasitology
MXPA01006436A (en) Triazineone compounds for treating diseases due to sarcosystis, neospora and toxoplasma

Legal Events

Date Code Title Description
GB9A Succession in title

Owner name: BAYER INTELLECTUAL PROPERTY GMBH, DE

Free format text: FORMER OWNER(S): BAYER AG., DE; BAYER ANIMAL HEALTH GMBH, DE