HU207536B - Process for producing 1-threonine with fermentation - Google Patents
Process for producing 1-threonine with fermentation Download PDFInfo
- Publication number
- HU207536B HU207536B HU845290A HU845290A HU207536B HU 207536 B HU207536 B HU 207536B HU 845290 A HU845290 A HU 845290A HU 845290 A HU845290 A HU 845290A HU 207536 B HU207536 B HU 207536B
- Authority
- HU
- Hungary
- Prior art keywords
- threonine
- valine
- culture
- escherichia coli
- resistant
- Prior art date
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
A találmány tárgya eljárás L-treonin előállítására fermentálással, mégpedig egy, az Escherichia nemzetséghez tartozó, valin-analógra rezisztens és L-treonin termelésére képes mikroorganizmus alkalmazásával.The present invention relates to a process for the production of L-threonine by fermentation using a microorganism of the genus Escherichia which is resistant to valine analogue and capable of producing L-threonine.
Az L-treonin nem csak a gyógyászatban használható aminosavkészítmények hatóanyagaként, hanem állati takarmányok adalékaként is hasznosítható.L-threonine can be used not only as an active ingredient in pharmaceutical amino acid formulations, but also as an additive in animal feed.
Napjainkig több különböző eljárás vált ismeretessé L-treonin fermentációs úton való előállítására. Példákként említhetők a következők: egy Escherichia nemzetséghez tartozó és borrelidinre szenzitív mikroorganizmust alkalmazó eljárás (6572/76 számú nyilvánosságra hozott japán szabadalmi bejelentés), egy Escherichia nemzetséghez tartozó és növekedéséhez diamino-pimelinsavat és metionint igénylő olyan mikroorganizmust alkalmazó eljárás, amelynek bioszintézis-rendszere rezisztens a treonin által kifejtett visszacsatolásos gátlásra (10037/81 számú nyilvánosságra hozott japán szabadalmi bejelentés), egy Serratia nemzetséghez tartozó és treonin dehidrogenáz deficiens olyan mikroorganizmust alkalmazó eljárás, amely treonin métából ikus antagonistára rezisztens (48 197/77 számú nyilvánosságra hozott japán szabadalmi bejelentés), egy Corynebacterium nemzetséghez tartozó, a-amino-βhidroxi-valeriánsavra és S-(2-amino-etil)-L-ciszteinre rezisztens és metionint igénylő mikroorganizmust alkalmazó eljárás (19087/72 számú nyilvánosságra hozottjapán szabadalmi bejelentés), egy Brevibacterium nemzetséghez tartozó, a-amino-P-hidroxi-valeriánsavra és S-(2-amino-etil)-L-ciszteinre rezisztens és L-leucint igénylő mikroorganizmust alkalmazó eljárás (31 093/75 számú nyilvánosságra hozott japán szabadalmi bejelentés), egy Brevibacterium nemzetséghez tartozó, a-amino-P-hidroxi-valeriánsavra és S-(2-amino-etil)-L-ciszteinre rezisztens és L-izoleucint és L-lizint igénylő mikroorganizmust alkalmazó eljárás (224684/83 számú nyilvánosságra hozott japán szabadalmi bejelentés), egy Escherichia nemzetséghez tartozó, a rifampicin, lizin, metionin, aszparaginsav és homoszerin által alkotott csoport legalább egyik tagjára rezisztens olyan mikroorganizmust alkalmazó eljárás, amelynek L-treonint lebontó képessége csökkent (33693/87 számú nyilvánosságra hozott japán szabadalmi bejelentés és 0237 819 számú nyilvánosságra hozott európai szabadalmi bejelentés) és egy Escherichia nemzetséghez tartozó, rifampicinre, lizinre, metioninra, aszparaginsavra és homoszerinre rezisztens mikroorganizmust alkalmazó eljárás (37295/89 számú nyilvánosságra hozott japán szabadalmi bejelentés és 0301 527 számú nyilvánosságra hozott európai szabadalmi bejelentés).To date, various processes for the preparation of L-threonine by fermentation have become known. Examples include a process using an Escherichia genus and a microorganism susceptible to borrelidine (Japanese Patent Application Publication 6572/76), a microorganism belonging to the genus Escherichia and needing diamine-pimelic acid and methionine to grow, threonine feedback inhibition (Japanese Patent Application Laid-Open No. 10037/81), a method of the genus Serratia that is deficient in threonine dehydrogenase and is resistant to a threonine-metric antagonist (Japanese Patent Laid-Open Publication No. 48 197/77), Method using a microorganism of the genus Corynebacterium resistant to α-amino-β-hydroxy-valeric acid and S- (2-aminoethyl) -L-cysteine and requiring methionine (U.S. Pat. No. 19087/72) Japanese Patent Application), a process using a microorganism of the genus Brevibacterium which is resistant to α-amino-β-hydroxyvaleric acid and S- (2-aminoethyl) -L-cysteine and which requires L-leucine (Publication No. 31,093/75). Japanese Patent Application), a method of using a microorganism belonging to the genus Brevibacterium, resistant to α-amino-β-hydroxyvaleric acid and S- (2-aminoethyl) -L-cysteine and requiring L-isoleucine and L-lysine (224684 / Japanese Patent Application Publication No. 83), a process using a microorganism resistant to at least one member of the family Escherichia of the group consisting of rifampicin, lysine, methionine, aspartic acid and homoserine, which has a reduced ability to degrade L-threonine (Publication No. 33693/87) Japanese Patent Application and European Patent Application Publication No. 0237 819) and an Esch a method using a microorganism resistant to rifampicin, lysine, methionine, aspartic acid and homoserine of the genus Erichia (Japanese Patent Application Publication No. 37295/89 and European Patent Application Publication No. 0301 527).
Ami másrészt a valin-analógra rezisztens mikroorganizmusokat illeti, ismeretes egy, a Corynebacterium vagy Brevibacterium nemzetséghez tartozó, 2-tiazolilalaninra rezisztens és L-valin termelésére képes mikroorganizmus [Agr. Bioi. Chem., 39 (6), 1319-1322 (1975)], egy Serratia marcescens fajhoz tartozó, aamino-vajsavra rezisztens és L-valin termelésére képes mikroorganizmus [Journal of Bacteriology, 106 (2), 493-499 (1971)], egy, a Brevibacterium nemzetséghez tartozó, α-amino-vajsavra rezisztens és L-valin termelésére képes mikroorganizmus (276 286/88 számú nyilvánosságra hozott japán szabadalmi bejelentés) és egy, az Escherichia coli fajhoz tartozó, valinra rezisztens és izoleucin termelésére képes mikroorganizmus [Microbiol. Rév., 43, 42 (1979)] és hasonlók.On the other hand, microorganisms resistant to the valine analog are known from the genus Corynebacterium or Brevibacterium capable of producing 2-thiazolylalanine and capable of producing L-valine [Agr. Biol. Chem., 39 (6), 1319-1322 (1975)], a microorganism of the species Serratia marcescens resistant to aminobutyric acid and capable of producing L-valine (Journal of Bacteriology 106 (2), 493-499 (1971)). , a microorganism of the genus Brevibacterium capable of producing α-aminobutyric acid and L-valine (Japanese Patent Application Publication No. 276,286/88) and a microorganism capable of producing valine resistant and isoleucine of the Escherichia coli species [ Microbiol. Rev., 43, 42 (1979)] and the like.
Felmerült az igény egy L-treonin ipari méretekben alacsony költséggel való előállítására szolgáló eljárásra.There is a need for a process for the low cost production of L-threonine on an industrial scale.
A feltalálók kiterjedt kutatásokat végeztek egy Ltreonin fermentálással történő előállítására szolgáló eljárás kidolgozására, és arra a felismerésre jutottak, hogy az L-treonin-termelőképesség növelhető, ha egy, az Escherichia nemzetséghez tartozó, L-treonint termelő mikroorganizmusba valin-analógra való rezisztenciát visznek be.The inventors have undertaken extensive research to develop a process for the production of Ltreonine by fermentation and have discovered that L-threonine production capacity can be increased by introducing resistance to a valine analogue into an L-threonine-producing microorganism belonging to the genus Escherichia.
A jelen találmány L-treonin fermentációval való előállítására olyan eljárást bocsát rendelkezésünkre, amely eljárás egy Escherichia nemzetséghez tartozó, valin-analógra rezisztens és L-treonin termelésére képes mikroorganizmusnak egy táptalajban az L-treonin felhalmozódásáig tartó tenyésztéséből és az L-treonin kinyeréséből áll.The present invention provides a process for the production of L-threonine by fermentation comprising culturing a microorganism of the genus Escherichia that is resistant to valine analogue and capable of producing L-threonine in a culture medium until the accumulation of L-threonine and recovering L-threonine.
A jelen találmány szerinti eljárásban az Escherichia nemzetséghez tartozó, valin-analógra rezisztens és L-treonin termelésére képes mikroorganizmus használható.The microorganism of the genus Escherichia, which is resistant to the valine analogue and capable of producing L-threonine, can be used in the process of the present invention.
A val in-analógként valin, valin-hidroxamát, N-metil-valin, α-amino-vajsav és hasonlók említhetők.Valine analogs include valine, valine hydroxamate, N-methylvaline, α-aminobutyric acid and the like.
Valin-analógra rezisztens törzsek az Escherichia nemzetség egy L-treonint termelő mikroorganizmusának szokásos mutációs technika alkalmazásával a fentiekben említett rezisztencia-tulajdonsággal való felruházásával kaphatók. A valin-analógra rezisztens törzsre az Escherichia coli H-7538, H-7600 és H-8014 törzsek említhetők, amelyek mindegyike az Escherichia coli H-4258 törzsből származik. A H-4258 törzs az FRI-nél [Fermentation Research Institute (=Fermentációs Kutató Intézet), Agency of Indnstrial Science and Technology, Japan] van letétbe helyezve FERM BP-985 számon.Strains resistant to the valine analogue are obtained by conferring the above-mentioned resistance property on a L-threonine-producing microorganism of the genus Escherichia by conventional mutation techniques. The strain resistant to the valine analogue includes strains Escherichia coli H-7538, H-7600 and H-8014, each of which is derived from Escherichia coli strain H-4258. Strain H-4258 is deposited with the FRI (Fermentation Research Institute (= Fermentation Research Institute), Agency of Industrial Science and Technology, Japan) under FERM BP-985.
Az Escherichia nemzetség L-treonint termelő mikroorganizmusainak előnye, hogy kisebb mértékben termelnek melléktermékként más aminosavakat.The L-threonine-producing microorganisms of the genus Escherichia have the advantage of producing other amino acids as a by-product.
A fent említett törzsek előállítására az alábbi specifikus példákat adjuk:The following specific examples for the preparation of the above strains are given:
Escherichia coli H-7538 törzs:Escherichia coli strain H-7538:
Escherichia coli Η-4258-at (diamino-pimelinsavat és metionint igényel. ct-amino-P-hidroxi-valeriánsavra és rifampicinre rezisztens) N-metil-N’-nitro-N-nitrozoguanidinnel (NTG) végzett szokásos mutációs kezelésnek (0,2 mg/ml, 30 °C, 30 perc) vetettünk alá, majd 1 g/liter DL-valin-hidroxamálot tartalmazó minimál táptalajon [5 g/liter glükóz, 2 g/liter ammónium-kloríd, 2 g/liter kálium-dihidrogén-foszfát, 0,1 g/liter magnézium-szulfát-heptahidrát, 20 mg/liter vas (Il)-szulfátheptahidrát, 50 mg/liter diaminopimelinsav, 50 g/liter DL-metionin és 20 g/liter agar, pH 7,2] szélesztettük, és 30 °C-on 2-6 napig tenyésztettük, amíg az ezen a táptalajon növekedésre.képes, DL-valin-hidroxamátra rezisztens mutáns telepek kinőtték. Utána 50 mutáns törzset leszedtünk, és L-treonin termelési vizsgálatnakEscherichia coli Η-4258 (requires diaminopimellic acid and methionine. Resistance to α-amino-β-hydroxyvaleric acid and rifampicin) by conventional mutation treatment with N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine (NTG) (0, 2 mg / ml, 30 ° C, 30 minutes) and then on a minimal medium containing 1 g / l DL-valine hydroxamal [5 g / l glucose, 2 g / l ammonium chloride, 2 g / l potassium dihydrogen phosphate, 0.1 g / l magnesium sulfate heptahydrate, 20 mg / l ferric sulfate heptahydrate, 50 mg / l diaminopimelic acid, 50 g / l DL-methionine and 20 g / l agar, pH 7.2 ] were plated and cultured at 30 ° C for 2-6 days until mutant colonies resistant to DL-valine hydroxamate were able to grow on this medium. 50 mutant strains were then harvested and subjected to L-threonine production assay
HU 207 536 Β vetettünk alá, hogy kiválasszuk a legjobb L-treonin termelőképességű törzset.HU 207,536 Β to select the best L-threonine productive strain.
Az így szelektált H-7538 törzs az FRI-nél 1989. december 21. óta a FERM BP-2696 nyilvántartási számon letétbe van helyezve.The strain H-7538 so selected has been deposited with the FRI since December 21, 1989 under the accession number FERM BP-2696.
Escherichia coli H-7600 és H-8014 törzsek:Escherichia coli strains H-7600 and H-8014:
Hasonló módon kaptunk egy α-amino-vajsavra rezisztens vagy L-valinra rezisztens mutáns törzset H-4258 törzsből az előbb leírtakkal azonos mutációs technikával, azzal az eltéréssel, hogy a táptalajban DL-válin-hidroxamát helyett 2 g/liter α-amino-vajsavat, illetve 1 g/liter Lvalint használtunk. Az így szelektált, ct-amino-vajsavra rezisztens H-7600 törzset és L-valinra rezisztens H-8014 törzset, amelyek a legjobb L-treonin termelőképességűek, az FRI-nél FERM BP-2698, illetve FERM BP-3161 nyilvántartási számon helyeztük letétbe.Similarly, an α-amino-butyric acid-resistant or L-valine-resistant mutant strain was obtained from the H-4258 strain using the same mutation technique as described above except that 2 g / l of α-amino-butyric acid was replaced with DL-valine hydroxamate in the medium. and 1 g / liter Lvalin was used. The so-selected α-aminobutyric acid-resistant strain H-7600 and L-valine-resistant strain H-8014, which have the best L-threonine productivity, are deposited under the accession number FRM BP-2698 and FERM BP-3161, respectively. .
Az előbbiekben említett törzsknek az 1. táblázatban megadott különböző koncentrációkban DL-valin-hidroxamátot, α-amino-vajsavat vagy L-valint tartalmazó minimál agar lemezen 30 °C-on 24 óra hosszat való tenyésztésénél észlelt növekedési fokozatokat az 1. táblázatban mutatjuk be.The growth rates of the above strain cultured in minimal agar plates containing DL-valine hydroxamate, α-aminobutyric acid or L-valine at 30 ° C for 24 hours at various concentrations are shown in Table 1.
1. táblázatTable 1
+: megfelelő növekedés; ±: mérsékelt növekedés; nincs növekedés+: adequate growth; ±: moderate growth; no growth
Az L-treonint ügy állítjuk elő, hogy a fentebb említett mikroorganizmusokat szokásos módon szénforrásokat, nitrongénforrásokat, szervetlen sókat, növekedési faktorokat és hasonlókat tartalmazó szintetikus táptalajon vagy természetes táptalajon addig tenyésztjük, amíg az L-treonin felhalmozódik a tenyészetben, és az L-treonint kinyerjük onnan.The L-threonine is prepared by culturing the above-mentioned microorganisms in conventional manner on synthetic media containing carbon sources, nitrogen sources, inorganic salts, growth factors and the like until L-threonine accumulates in the culture and k-threonine is collected. there.
Szénforrásokként szénhidrátok, például glükóz, fruktóz, laktóz, melaszok, keményitő-hidrolizátum vagy nyers cukor stb. és szerves savak, például piroszőlősav, ecetsav, propionsav, hangyasav, fumársav, almasav stb. használhatók. A tenyésztett mikroorganizmus asszimilálóképességétől függően egy alkohol, például glicerin és etanol is használható szénforrásként.Carbon sources include carbohydrates such as glucose, fructose, lactose, molasses, starch hydrolyzate or raw sugar and the like. and organic acids such as pyruvic acid, acetic acid, propionic acid, formic acid, fumaric acid, malic acid and the like. They can be used. Depending on the assimilation capacity of the cultured microorganism, an alcohol such as glycerol and ethanol may also be used as a carbon source.
Nitrogénforrásokként ammónia, szervetlen vagy szerves savak ammóniumsói, például ammónium-klorid, ammónium-szulfát, ammónium-acetát, ammónium-foszfát stb., aminok, egyéb nitrogéntartalmú vegyületek, peptonok, húskivonat, kukoricalekvár, kazeinhidrolizátum, szójapogácsa hidrolizátum, különböző fermentált sejtek és emésztett termékeik stb. használhatók.Nitrogen sources include ammonia, ammonium salts of inorganic or organic acids such as ammonium chloride, ammonium sulfate, ammonium acetate, ammonium phosphate, etc., amines, other nitrogenous compounds, peptones, meat extracts, maize starch hydrolysates, casein hydrolysates, casein hydrolysates, their products, etc. They can be used.
Szervetlen vegyületekként kálium-dihidrogén-foszfát, magnézium-foszfát, magnézium-szulfát, nátriumklorid, vas(II)-szulfát, mangán-szulfát, réz-szulfát, kálium-karbonát stb. használhatók.Inorganic compounds include potassium dihydrogen phosphate, magnesium phosphate, magnesium sulfate, sodium chloride, ferrous sulfate, manganese sulfate, copper sulfate, potassium carbonate and the like. They can be used.
A tenyésztést aerob körülmények között, rázatott tenyészetben vagy keverés közben, merített tenyészetben és hasonló körülmények között végezzük. A táptalaj pH-ja 5-9 közötti tartományban lehet, és előnyös, ha közel semlegesen tartjuk. A pH-t kalcium-karbonáttal, szervetlen vagy szerves savakkal, lúgos oldatokkal, ammóniával, pH-pufferoldatokkal és hasonlókkal állítjuk be. Az L-treonin 2-7 nap alatt halmozódhat fel a tenyészetben. A tenyésztés befejezése után a kiválásokat, például sejteket, centrifugálással stb. eltávolítjuk a tenyészetből, és az L-treonint ioncserés kezelés, töményítés, kisózás és hasonló műveletek együttes alkalmazásával nyerhetjük ki.Culturing is carried out under aerobic conditions, in shake culture or under agitation, in immersion culture and the like. The pH of the medium may be in the range of 5-9, and it is preferable to maintain it at a near neutral level. The pH is adjusted with calcium carbonate, inorganic or organic acids, alkaline solutions, ammonia, pH buffer solutions and the like. L-threonine can accumulate in the culture within 2-7 days. After completion of the culture, the precipitates, e.g., cells, by centrifugation, etc., are removed. is removed from the culture and L-threonine can be recovered by the combined application of ion exchange treatment, concentration, salting and the like.
A találmányt a következő példával szemléltetjük.The invention is illustrated by the following example.
1. példa:Example 1:
L-Treonin termelési kísérleteket végzünk oltó törzsként Escherichia coli H-4258, H-7538, H-7600 vagy H-8014 törzseket használva.L-Threonine production experiments were performed using Escherichia coli strains H-4258, H-7538, H-7600 or H-8014 as inoculum strains.
Az oltó törzset 30 °C-on 16 óra hosszat rázatva tenyésztjük 20 g/liter glükózt, 10 g/liter peptont, 10 g/liter élesztőkivonatot, 2,5 g/liter nátrium-kloridot és 0,5 g/liter diamino-pimelinsavat tartalmazó 7,4 pH-jú oltó táptalajban. Az így kapott oltó tenyészet 100 ml-ét inokuláljuk egy 1 literes kis fermentorba, amely 1 liter későbbiekben megadott összetételű fermentációs táptalajt tartalmaz, és a tenyésztést 30 °C-on, 800 ford./perc keverés közben és 1 liter/perc levegőztetés mellett 80 óra hosszat folytatjuk. Közben a fermentációs táptalajhoz szükség szerint 60 tömeg%-os glükóz-oldatot adagolunk, és a táptalaj pH-ját a tenyésztés alatt vizes ammónium-hídroxid-oldattal 6,5-re állítjuk.The inoculum strain was cultivated at 30 ° C for 16 hours with 20 g / l glucose, 10 g / l peptone, 10 g / l yeast extract, 2.5 g / l sodium chloride and 0.5 g / l diaminopimelic acid. containing 7.4 inoculum medium. 100 ml of this inoculum culture is inoculated into a 1 liter small fermenter containing 1 liter of fermentation broth of the following composition and cultured at 30 ° C with 800 rpm stirring and 1 liter / min aeration. hours. In the meantime, 60% by weight glucose solution is added to the fermentation broth and the pH of the broth is adjusted to 6.5 with aqueous ammonium hydroxide solution during culture.
A tenyésztés befejezése után a felhalmozódott Ltreonin mennyiségét nagy hatékonyságú folyadékkromatográfiával határozzuk meg. Az eredmények a 2. táblázatban láthatók (egyszeri fermentálásból).After completion of the culture, the amount of accumulated Ltreonine is determined by high performance liquid chromatography. The results are shown in Table 2 (from single fermentation).
A fermentációs táptalaj (pH 7,4) összetétele a következő:The fermentation broth (pH 7.4) has the following composition:
tartalmazó fermentlé egy literét 3000 ford./perc-nél 10 percig centrifugálva eltávolítjuk a sejteket és egyéb szennyező anyagokat az oldatból. A kapott felülúszót egy erősen savas ioncserélő gyantával, Diaion SK IBvel (hidrogén-ciklus, a Mitsubishi Kaséi Corporation,Centrifugation of one liter of fermentation broth containing 3000 rpm for 10 minutes removes cells and other contaminants from the solution. The supernatant was obtained with a highly acidic ion-exchange resin, Diaion SK IB (Hydrogen Cycle, Mitsubishi Kasé Corporation,
HU 207 536 ΒHU 207 536 Β
Japan terméke) töltött oszlopon átengedve adszorbeáltatjuk a gyantán az L-treonint. Az oszlopot utána vízzel mossuk, és 0,5 n vizes ammónium-hidroxid-oldattal eluáljuk; az L-treonint tartalmazó frakciókat egyesítjük. Az egyesített frakciókat koncentráljuk, és a bepá- 5 rolt oldathoz etanolt adunk. Az elegyet lehűtés után állni hagyjuk, így 30,0 g kristályos L-treonint kapunk, amely legalább 98%-os tisztaságú(Product of Japan) is passed through a packed column to adsorb L-threonine to the resin. The column was then washed with water and eluted with 0.5 N aqueous ammonium hydroxide; the fractions containing L-threonine were pooled. The combined fractions were concentrated and ethanol was added to the evaporated solution. The mixture was allowed to stand after cooling to give 30.0 g of crystalline L-threonine of at least 98% purity.
2. táblázat jqTable 2 jq
A kapott L-treonin tisztaságát úgy határoztuk meg, hogy 1 g autentikus L-treonint 100 ml ammónium- 20 hidroxidban oldva kontrollmintát készítettünk. A példa szerint előállított L-treoninból szintén 1 g-ot 100 ml ammónium-hidroxidban oldva készítettük a vizsgálati mintát. Mindkét mintát nagy teljesítményű folyadékkromatografálással elemeztük, és a csúcsokat mértük. A kontrollminta és a vizsgálati minta csúcs alatti területét összevetve ez 0,98-nak adódott. Mivel a csúcsok alatti terület arányos az anyag tisztaságával, a találmányunk szerinti eljárással előállított L-treonin legalább 98%-os tisztaságú.The purity of the resulting L-threonine was determined by dissolving 1 g of authentic L-threonine in 100 ml of ammonium hydroxide to prepare a control sample. Also, 1 g of the L-threonine prepared in the example was dissolved in 100 ml of ammonium hydroxide. Both samples were analyzed by high performance liquid chromatography and peaks were measured. Compared to the peak area of the control sample and the test sample, this was 0.98. Because the area under the peaks is proportional to the purity of the material, the L-threonine produced by the process of the present invention is at least 98% pure.
Claims (2)
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP33893789A JP2810739B2 (en) | 1989-12-27 | 1989-12-27 | Method for producing L-threonine by fermentation |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
HU908452D0 HU908452D0 (en) | 1991-07-29 |
HUT60329A HUT60329A (en) | 1992-08-28 |
HU207536B true HU207536B (en) | 1993-04-28 |
Family
ID=18322730
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
HU845290A HU207536B (en) | 1989-12-27 | 1990-12-22 | Process for producing 1-threonine with fermentation |
Country Status (2)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JP2810739B2 (en) |
HU (1) | HU207536B (en) |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN116334155A (en) * | 2023-05-31 | 2023-06-27 | 齐齐哈尔龙江阜丰生物科技有限公司 | Clean production method of low-content L-threonine |
-
1989
- 1989-12-27 JP JP33893789A patent/JP2810739B2/en not_active Expired - Lifetime
-
1990
- 1990-12-22 HU HU845290A patent/HU207536B/en unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JP2810739B2 (en) | 1998-10-15 |
JPH03198786A (en) | 1991-08-29 |
HU908452D0 (en) | 1991-07-29 |
HUT60329A (en) | 1992-08-28 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
EP0530803B1 (en) | Process for producing L-threonine | |
KR960016135B1 (en) | Process for producing l-isoleucine | |
KR960016872B1 (en) | Process for the production of l-threonine by fermentation | |
US4996147A (en) | Process for producing L-threonine by fermentation | |
EP0237819B1 (en) | Process for producing L-threonine | |
HU225737B1 (en) | Process for producing l-amino acids by fermentation | |
JP3717970B2 (en) | Method for producing L-isoleucine by fermentation | |
EP0595163B1 (en) | Process for producing L-isoleucine | |
CA2002464C (en) | Process for producing l-threonine | |
EP0205849B1 (en) | Process for producing l-threonine by fermentation | |
JP2578463B2 (en) | Production method of L-lysine by fermentation method | |
JP2971089B2 (en) | Method for producing L-threonine by fermentation | |
HU207536B (en) | Process for producing 1-threonine with fermentation | |
JP2877414B2 (en) | Method for producing L-threonine by fermentation | |
EP0076516B1 (en) | Method for fermentative production of l-proline | |
US5302521A (en) | Process for producing L-lysine by iodothyronine resistant strains of Mucorynebacterium glutamicum | |
US5034319A (en) | Process for producing L-arginine | |
JP3029868B2 (en) | Method for producing L-alanine by fermentation method | |
HU215184B (en) | Process for the production of 1-lysine and l-lysine producing mutant brevibacteria and corynebacteria | |
KR960016870B1 (en) | Process for the production of l-isoleucine by fermentation |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
GB9A | Succession in title |
Owner name: KYOWA HAKKO BIO CO., LTD., JP Free format text: FORMER OWNER(S): KYOWA HAKKO KOGYO CO. LTD., JP |