HU204081B - Process for producing myeloperoxidase enzyme - Google Patents
Process for producing myeloperoxidase enzyme Download PDFInfo
- Publication number
- HU204081B HU204081B HU105188A HU105188A HU204081B HU 204081 B HU204081 B HU 204081B HU 105188 A HU105188 A HU 105188A HU 105188 A HU105188 A HU 105188A HU 204081 B HU204081 B HU 204081B
- Authority
- HU
- Hungary
- Prior art keywords
- enzyme
- myeloperoxidase
- purification
- blood cells
- white blood
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/0004—Oxidoreductases (1.)
- C12N9/0065—Oxidoreductases (1.) acting on hydrogen peroxide as acceptor (1.11)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/26—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving oxidoreductase
- C12Q1/28—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving oxidoreductase involving peroxidase
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
Abstract
Description
Atalálmány tárgya eljárás myeloperoxidáz enzim előállítására emberi fehérvérsejtek tisztítása, aktiválása feltárása és az enzim tisztítása útján olymódon, hogy kiindulási anyagként interferon vagy interleukin gyártásra már felhasznált buffy-coatot használunk, és az finzim tisztítása során a kromatográfiás lépést karboximetil funkciós csoportokkal rendelkező, ellenőrzött pórusméretű üveggyöngy oszloptölteten végezzük.The present invention relates to a process for the production of the enzyme myeloperoxidase by purifying, activating, and purifying human white blood cells by using buffy coats already used as starting materials for the production of interferon or interleukin, and by purifying the fin carried out.
A myeloperoxidáz enzim diagnosztikumként használható infarktusos esetekben, ugyanis az infarktus mértéke a szövetimyeloperoxidáz szinttel arányos. Az enzimnek erről af elhasználásilehetőségéről a Journal of Cardiovascular Pharmacology 7, 1154-1160, [1985], RavenPress, New York, irodalmihely tudósít. Gyulladásos betegségekés a myeloperoxidáz szint közötti összefüggést a Blood Vol 60, No. 3 (szeptember) [1982] publikáció tárgyalja. A Biochemistry 3 [9], 1234-38 [1964] irodalmi hely myeloperoxidáz enzim etnállításáról .számfii he, melyneksorán egészséges donorokból származó buffy-coat tisztításával nyert fehérvérsejteket tripszines emésztéssel feltárnak, 50%os hideg etanollal precipitálnak. A csapadékból az enzimet foszfát-pufferrel extrahálják, majd XE-64 típusú Amberlite oszlopon kromatográfiásan tisztítják.The myeloperoxidase enzyme can be used as a diagnostic agent in cases of infarction, as the extent of infarction is proportional to the level of tissue myeloperoxidase. This major utilization of the enzyme is reported in the Journal of Cardiovascular Pharmacology 7, 1154-1160 (1985), RavenPress, New York. The association between inflammatory disease and myeloperoxidase levels is discussed in Blood Vol 60, No. 3 (September) [1982]. Biochemistry 3 [9], 1234-38 [1964], on the ethnicity of the enzyme myeloperoxidase, whereby white blood cells obtained by purifying buffy coat from healthy donors are digested by trypsin digestion, are precipitated with 50% cold ethanol. From the precipitate, the enzyme is extracted with phosphate buffer and purified by chromatography on an XE-64 type Amberlite column.
Az Archives of Biochemistry and Biophysics 245 [1], 167-173 [1986] közleményben ugyancsak buffycoat-hól származó fehérvérsejteket extrahálják. Az extraktumhól az enzimet előbb DEAE-Sepharose tölteten, majd ConA-Sepharose affinitás-oszlopon tisztítják.Archives of Biochemistry and Biophysics 245 [1], 167-173 (1986) also extract buffy blood cells from buffycoat. The enzyme from the extract is purified first on DEAE-Sepharose and then on a ConA-Sepharose affinity column.
A fent idézett irodalomban az enzim izolálására szolgaló eljárások egyrészt nem üzemi méretű eljárások, másrészt a buffy-coat-hól származó fehérvérsejteket nem kezelik az intracelluláris enzim mennyiségéneknövelése céljából.In the literature cited above, methods for isolating the enzyme, on the one hand, are non-farm-scale methods and, on the other hand, buffy coat white blood cells are not treated to increase the amount of intracellular enzyme.
A találmányunk szerinti eljárás két lényeges pontban tér el az irodalomhanleú-taktóLThe process of the present invention differs from the literature in two important respects
1.A fehérvérsejtek intracelluláris myeloperoxidáz tartalmát aktiváló szerek alkalmazásával növeljük.1.The intracellular myeloperoxidase content of white blood cells is increased by the use of activating agents.
Az aktiváló szerek lehetnek: Sendai-vífus, Concanavalin-A Phytohemagglutinin, Lens cullinaris lectin, Ca2+-íonofórok vagy forhol-mirisztát-acetát. Az aktiválás különösen előnyös formája, ha az enzim forrásaként interferonok vagy interleukinok termelésére már előzőlegfelhasználtfehérvérsejteket alkalmazunk; ugyanis megfigyeltük, hogy ezen leukokinek indukcióját a fenti aktivátorok valamelyikével végezve, egyben a sejtek enzimtartalma is jelentősenmegnő. Aleukokin termelés során keletkező „hulladék” fehérvérsejtekígy még előnyösebb forrásai a myeloperoxidáz enzimnek, mint a kezeletlen, friss sejtek.Activating agents may include Sendai virus, Concanavalin-A Phytohemagglutinin, Lens cullinaris lectin, Ca 2+ ionophores or forhormyristate acetate. A particularly preferred form of activation is the use of white blood cells previously used for the production of interferons or interleukins as an enzyme source; in fact, it has been observed that the induction of these leukotins by one of the above activators also significantly increases the cellular enzyme content. The "waste" white blood cells produced during aleukokine production are thus more preferred sources of the myeloperoxidase enzyme than untreated fresh cells.
2. Az enzim tisztítását karboximetil funkciós csoportokat tartalmazó, ellenőrzött pórusméretű üvegygyönggyel (”CM-CPG — ezentúl az oszloptőltet megjelölésére az angol nyelvű szakirodalomban általánosan használt rövidítést alkalmazzuk a jelen szabadalmi leírásban --) végezzük, amely a más típusú ioncserélőkhöz vagy a szuhsztituálatlan CPGhez képest az enzimet többszörös kapacitással képesabszorbeálni.2. Purification of the enzyme is carried out with a controlled pore size glass bead containing carboxymethyl functional groups ("CM-CPG - henceforth used in the English patent to denote columnar kits") for other types of ion exchangers or unstituent CPGs. it is capable of absorbing the enzyme with multiple capacities.
Afentiek alapján a találmány szerinti eljárás myeIoperoxídáz enzim előállítására szolgál emberi buffycoatból ammónium-kloridos hemolízissel kapott fehérvérsejtek tisztítása, a kapott sejtek feltárása és az enzim tisztítása útján. Kiindulási anyagként interferon vagy interleukin gyártására márfelhasználtfehérvérsejteket alkalmazunk, aktiválószerként Sendai-ví10 rust, Concanavalin A-t, Phytohemagglutinint, Lens cullinaris lectint vagy Ca2+-ionofórt alkalmazunk, és az enzim tisztítása során akromatográfiáslépést CMCPG oszloptölteten végezzük. Atalálmány szerinti eljárással átlagosan 70-100E/mgfehérjespecifikusak15 tivitású enzimet nyerhetünk. Ezzel szemben a kereskedelmi forgalomban lévő myeloperoxidáz-készítmény (Calbiochem) aktivitása mindössze 20 E/mg fehérje.Accordingly, the process of the present invention is for the preparation of the enzyme myeloperoxidase by purifying white blood cells obtained from human buffycoat by hemolysis with ammonium chloride, digesting the resulting cells and purifying the enzyme. The starting material used is white blood cells used for the production of interferon or interleukin, the sending agent used is Sendai virus 10, Concanavalin At, Phytohemagglutinin, Lens cullinaris lectin or Ca 2+ ionophore, and the column is purified by chromatography on CMCP. The invention provides an average protein specific activity of 70-100E / mg. In contrast, the commercial myeloperoxidase preparation (Calbiochem) has an activity of only 20 U / mg protein.
A fehérjevérsejt-tisztítást, az aktiválást, a féhér20 vérsejtek feltárását és az enzim tisztítását a példákon kersztül mutatjuk be anélkül, hogy igényünket azokra korlátoznánkProtein Blood Cell Purification, Activation, Protein Blood Cells Reversal, and Enzyme Purification are illustrated by the following examples, without limiting our need to
1. példaExample 1
Myeloperoxidáz enzim előállítása az interferon gyártás melléktermékeként keletkezett fehérvérsejtekbőlProduction of myeloperoxidase enzyme from white blood cells produced as a by-product of interferon production
a) Fehérvérsejt-tisztítás(a) Purification of white blood cells
Kiindulási anyagként ún. „buffy-coat”-ot haszná30 lünk, mely a teljes vér szétválasztásakor keletkező fehérvérsejtdús frakció. 1 db buffy-coat l,4xl09 fehérvérsejtet tartalmaz; térfogata körülbelül 40 mL Ennek töményített változata forgalomban van, annak térfogata 10 ml. A buffy-coat a fehérvérsejteken kívül vö35 rösvértesíeket és vérplazmát is tartalmaz. A tisztítás során ezen anyagoktól kell megszabadulni.The starting material is the so-called. A buffy coat is used, which is a fraction of the white blood cell rich in the separation of whole blood. Contains 1 buffy coat 1, 4x10 9 white blood cells; volume about 40 mL A concentrated version of this is commercially available with a volume of 10 mL. In addition to white blood cells, buffy-coat also contains blood cells and blood plasma. These materials should be disposed of during cleaning.
100 db buffy-coathoz (4000ml, illetve 1000ml) háromszoros mennyiségű +4 ’C-ra hűtött 0,83%-os ammónium-klorid-oldatot adunk, majd 10 percen ke40 resztül jégen hűtve állni hagyjuk a vörösvértestek oldódásáig. Ezt követően a szuszpenzióból a fehérvérsejteket centrifugálissal (1400 ford/perc; 20 perc) kiülepítjük, a felülúszót leöntjük, és a kitapadt sejteket PBS-pufferben felszuszpendáljuk (mintegy 400 mlTo 100 buffy coats (4000ml and 1000ml respectively), add three times the volume of 0.83% ammonium chloride solution cooled to +4 'C and allow to stand on ice for 10 minutes until the red blood cells have dissolved. Thereafter, white blood cells from the suspension are pelleted by centrifugation (1400 rpm; 20 minutes), the supernatant is discarded, and the adherent cells are resuspended in PBS buffer (approximately 400 mL).
PBS-ben). A sejtszuszpenzió térfogata hozzávetőleg 500ml, a sejtkoncentráció 3-4xl08 sejt/ml.In PBS). The cell suspension volume of approximately 500 ml, the cell concentration 3-4xl0 8 cells / ml.
A PBS pufferóldaí összetétele a következő:The buffer composition of PBS is as follows:
Az ammónium-kloridos kezelést megismételjük azzal az eltéréssel, hogy 1 térfogatrész sejtszuszpenzióhoz 9 térfogatrész 0,83%-os ammónium-klorid-oldatot adunk.The ammonium chloride treatment was repeated except that 9 volumes of 0.83% ammonium chloride solution were added to 1 volume of cell suspension.
gQ Az így kapott sejteket 400 ml PBS-pufferben ismétgQ The cells thus obtained were again in 400 ml PBS buffer
HU 204 081 Β felszuszpendáljuk; a sejtszuszpenzió térfogata körülbelül 500 ml.Resuspend; the volume of the cell suspension is about 500 ml.
b) Aktivitásb) Activity
Az aktiválás során a fehérvérsejteket myeloperoxidáz enzim termelésére késztetjük.During activation, white blood cells are induced to produce myeloperoxidase enzyme.
500 ml fehérvérsejt-szuszpenziót, amely körülbelül 1,4x1011 sejtet tartalmaz, 10 000 ml tápfolyadékba teszünk, melynek Összetétele az alábbi:500 ml of a white blood cell suspension containing approximately 1.4 x 10 7 cells are added to 10,000 ml of medium having the following composition:
(rcg/l)(RCG / l)
Az aktiválást 15 ml 100 HE/ml Sendai-vírussal végezzük. A Sendai-vírus az intracelluláris a-DFN-termelés ismert aktivátora, a kereskedelemben beszerezhető víruskészítmény, amelyet azonban saját célra SPF-tojásban (sterilé, pathogen-free- steril, csíramentes) való szaporítással magunk is előállítottunk.Activation is performed with 15 ml of 100 HE / ml Sendai virus. Sendai virus, a known activator of intracellular α-DFN production, is a commercially available virus preparation, which, however, has been produced by self-propagation in SPF eggs (sterile, pathogen-free, sterile).
Az inkubálás után a sejteket centrifugálással távolítjuk el a tápoldatból (2000 g, 30 perc).After incubation, cells are removed from the culture medium by centrifugation (2000 g, 30 min).
A felülúszó a nyers α-interferon. Az elválasztott sejteket PBS-pufferben felszuszpendáljuk úgy, hogy 500 ml térfogatú szuszpenziót kapjunk.The supernatant is crude α-interferon. The separated cells were resuspended in PBS buffer to give a volume of 500 ml.
c) Afebérvérsejtekfeltárása és elválasztása(c) Detection and separation of pituitary blood cells
A feltárás célja a myeloperoxidáz enzim kinyerése a sejtekből. A sejtszuszpenziót egymást követően hétszer lefagyasztjuk, illetve felolvasztjuk, A fagyasztás -70 ‘C hőmérsékleten, a felolvasztás szobahőmérsékleten történik. A sejtek ennek hatására szétesnek, az enzim oldatba kerül. A sejttörmeléket centrifugálással választjuk el az enzimtartalmú oldatból (20 000 g, 60 perc).The purpose of the digestion is to recover the enzyme myeloperoxidase from the cells. The cell suspension is frozen and thawed seven times in succession. Freezing is performed at -70 ° C and thawed at room temperature. This causes the cells to disintegrate and the enzyme into solution. Cell debris was separated from the enzyme-containing solution by centrifugation (20,000 g, 60 min).
d) Myeloperoxidáz enzim tisztításad) Purification of myeloperoxidase enzyme
Az alacsony molekulatömegű szennyezések elválasztása ultraszűréssel történik, folyamatos üzemben.Low molecular weight impurities are separated by ultrafiltration in continuous operation.
Az enzimtartalmú oldatot 100 000 „cut off ” értékű, ún. „hollow fiber” (belül üres, vékony csövecskékből álló betét) szűrőbetét (AMICON DC-4) felhasználásával diafiltráljuk. Ez a szűrőbetét a 100 kD molekulatömegnél nagyobb molekulákat visszatartja, az annál kisebbeket átereszti.The enzyme-containing solution has a value of 100,000 cut-offs. Diafiltrated using a "hollow fiber" filter insert (AMICON DC-4). This filter cartridge holds molecules larger than 100 kD, permeable to smaller molecules.
Az enzimaktivitás a 100 000 D-nál nagyobb molekulatömegű frakcióban található. A kapott enzimtartalmú frakció térfogatát körülbelül 200 ml-re állítjuk be.Enzyme activity is found in the fraction of molecular weight greater than 100,000 D. The volume of the resulting enzyme-containing fraction was adjusted to about 200 mL.
A szennyezésekkicsapása a pH változtatásávalDeposition of impurities by changing the pH
A fenti 200 ml térfogatú frakcióhoz 200 ml 0,1 M kálium-citrát (pH- 4) oldatot adunk; így 400 ml pH4,5 érték körüli oldatot kapunk. A megváltozott pH hatására a szennyező fehérjék egy része kicsapódik. A csapadékot 7000 g értékben, 30 perc centrifugálással távolítjuk el. Akapott mintegy350mlmennyiségűfelülúszó tartalmazza az enzimet.To the above 200 mL fraction was added 200 mL of 0.1 M potassium citrate (pH 4); 400 ml of a solution at pH 4.5 are obtained. As a result of the changed pH, some of the contaminating proteins are precipitated. The precipitate was removed by centrifugation at 7000 g for 30 minutes. Approximately 350 ml of the supernatant obtained contains the enzyme.
Kromatográfia CM-CPG (Serva-gyártmány) töltetenChromatography on CM-CPG (Serva)
1. abszorpció: A 350 ml, pH- 4,5 enzimtartalmú frakciót 100 ml/h térfogatárammal rányomatjuk a 20 ml CM-CPG-t tartalmazó C16/20 kromatográfiás oszlopra, majd az oszlop alján kifolyó oldatpt visszavezetjük az adszorpció hatásosságának fokozása érdekében. Az adszorpciót így egy éjszakán át végezzük 0-(+4) 'hőmérsékleten.Absorption 1: 350 ml of pH 4.5 enzyme-containing fraction was pressed onto a C16 / 20 chromatography column containing 100 ml / h of a flow rate of 100 ml / h and recycled at the bottom of the column to enhance the adsorption efficiency. The adsorption is thus carried out overnight at 0 - (+ 4) '.
2. mosás I: A töltetet 60 ml 0,1 M kálium-citrát (pH- 4) oldattal mossuk; az oszlopról lejövő anyag enzimaktivitást nem mutat, elöntjük.Wash 2: Wash the cartridge with 60 mL of 0.1 M potassium citrate (pH 4); the column material does not show enzymatic activity, discard.
3. mosás Π: A töltetet 60 ml PBS-pufferoldattal mossuk, a lemosott anyagot élönt jük.Wash 3 Π: Wash the cartridge with 60 mL of PBS buffer and apply the wash.
4. Elúció: A myeloperoxidázt az oszlopról 1,5 M NaQ+0,5 M tris, pH- 8,2 oldattal eluáljuk; az aktivitás egyetlen éles frakcióban jelenikmeg, a frakció térfogata körülbelül 20 ml, amelynek aktivitása 10Ö150 E/ml.4. Elution: The myeloperoxidase was eluted from the column with 1.5 M NaQ + 0.5 M Tris pH 8.2; the activity appears in a single sharp fraction with a volume of about 20 ml having an activity of 10-150 U / ml.
e) A myeloperoxidáz enzim mennyiségének meghatározása(e) Determination of the amount of myeloperoxidase enzyme
Az enzim mennyiségét aktivitása alapján meghatározott enzim-egységben szokás megadni.The amount of enzyme is usually expressed in units of enzyme based on its activity.
Definíció: 1 egységnyi az az enzimmennyiség, mely 1 pMH2O2-ot bont el 1 perc alatt, 25 “C-on, pH- 6,00 kémhatású közegben.Definition: 1 unit is the amount of enzyme which liberates 1 pMH 2 O 2 in a minute at 25 ° C, pH 6.00.
A H^-bomlás sebességét spektrofotometriásán lehet követni. A módszer pontos leírása az alábbi irodalmi helyen található meg:The rate of H 2 decomposition can be monitored spectrophotometrically. The exact method is described in the following literature:
G. Allan, P. Bhattacherjee, CJD, Brook, N. G. Read,G. Allan, P. Bhattacherjee, CJD, Brook, N. G. Read,
A. S. Parké, J. Cardiovasc. Pharm. 7, 1154-1160 [1985].A. S. Parké, J. Cardiovasc. Pharm. 7, 1154-1160 [1985].
f) További tisztítás gélkromatográfia segítségével(f) Further purification by gel chromatography
A CM-CPG osriopról nyert 20 ml térfogatú enzimtartalmú frakciót 1800 ml ULTROGEL AcA 54 gélszűrésre használt akrilamid-alapú töltetet — gyártja az LKB, forgalmazza a Pharmacia AB — tartalmazó K50/100 oszlopra visszük, majd 2 MNaCl/PBS oldattal eluáljuk. A 6040-8040 molekulatömegű frakcióban a myeloperoxidázt tisztán megkapjuk. A megfelelő frakciók kiválasztásához az oszlopot előzetesenmolekulatömeg-standardok segítségével kalibráljuk.The 20 ml enzyme-containing fraction obtained from the CM-CPG osriol was loaded onto a K50 / 100 column containing 1800 ml of an ULTROGEL AcA 54 gel filtration acrylamide-based packing, manufactured by LKB, marketed by Pharmacia AB, and eluted with 2 MNaCl / PBS. In the fraction of molecular weight 6040-8040, myeloperoxidase is clearly obtained. The column is pre-calibrated using molecular weight standards to select the appropriate fractions.
A kapott tennék összes aktivitása átlagosan 2000E; a tennék tisztaságára jellemző specifikus aktivitás 70-100E/mg fehérje érték között van. A kapott oldat koncentrációja lOOE/ml.The average activity of the obtained products was 2000E; specific purity of the product is between 70-100E / mg protein. The concentration of the resulting solution was 100E / ml.
2. példaExample 2
Az 1. példábanleírtakszerint járunk el azzal az eltéréssel, hogy Sendai-vírus helyett aktiválószerként Concanavalin A-t használunk 15 pg/ml koncentrációban.The procedure described in Example 1 was followed, except that Concanavalin A was used as activating agent instead of Sendai virus at a concentration of 15 pg / ml.
3. példaExample 3
Az 1. példa szerint járunk el azzal az eltéréssel, hogy Sendai-vírus helyett Phytohemagglutinint használunk aktiválószerként 10 pg/ml koncentrációban.Example 1 except that Phytohemagglutinin was used as activating agent at a concentration of 10 pg / ml instead of Sendai virus.
HU 204081 ΒHU 204081 Β
4. példaExample 4
Az 1. példa szerint járunk el azzal az eltéréssel, hogy Sendai-vírus helyett Lens culinaris Lectint használunk aktiválószerként 30 jig/mlkoncentrációban.Example 1 except that Lens culinaris Lectin was used as the activating agent in a concentration of 30 µg / ml instead of Sendai virus.
5. példaExample 5
Az 1. példaszerűit járunkel azzal az eltéréssel, hogy aktíválószerként Ca2+-ionofórt, mégpedig A23137 jelzésű Ca2+-kelátifomplexképzőthasználunk.Exemplary of Example 1 is the use of Ca 2+ ionophore as the activating agent, Ca 2+ chelate complexing agent A23137.
SZABADALMIIGÉNYPONT
Claims (1)
Priority Applications (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
HU105188A HU204081B (en) | 1988-03-04 | 1988-03-04 | Process for producing myeloperoxidase enzyme |
JP5021189A JPH0663B2 (en) | 1988-03-04 | 1989-03-03 | How to adjust myeloperoxidase |
AT48089A AT391480B (en) | 1988-03-04 | 1989-03-03 | METHOD FOR PRODUCING THE MYELOPEROXYDASE ENZYME |
DE19893907162 DE3907162A1 (en) | 1988-03-04 | 1989-03-06 | Process for the preparation of the enzyme myeloperoxidase |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
HU105188A HU204081B (en) | 1988-03-04 | 1988-03-04 | Process for producing myeloperoxidase enzyme |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
HUT50210A HUT50210A (en) | 1989-12-28 |
HU204081B true HU204081B (en) | 1991-11-28 |
Family
ID=10952641
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
HU105188A HU204081B (en) | 1988-03-04 | 1988-03-04 | Process for producing myeloperoxidase enzyme |
Country Status (4)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0663B2 (en) |
AT (1) | AT391480B (en) |
DE (1) | DE3907162A1 (en) |
HU (1) | HU204081B (en) |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR20120132529A (en) | 2010-04-14 | 2012-12-05 | 에프. 호프만-라 로슈 아게 | Immunoglobulin aggregate removal |
-
1988
- 1988-03-04 HU HU105188A patent/HU204081B/en not_active IP Right Cessation
-
1989
- 1989-03-03 AT AT48089A patent/AT391480B/en not_active IP Right Cessation
- 1989-03-03 JP JP5021189A patent/JPH0663B2/en not_active Expired - Lifetime
- 1989-03-06 DE DE19893907162 patent/DE3907162A1/en active Granted
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
DE3907162A1 (en) | 1989-09-14 |
JPH01269491A (en) | 1989-10-26 |
HUT50210A (en) | 1989-12-28 |
ATA48089A (en) | 1990-04-15 |
JPH0663B2 (en) | 1994-01-05 |
DE3907162C2 (en) | 1992-05-21 |
AT391480B (en) | 1990-10-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
EP0317376B1 (en) | Preparation of a concentrate of high-purity human factor IX and of other plasma proteins | |
Palfree et al. | Yeast killer toxin: purification and characterisation of the protein toxin from Saccharomyces cerevisiae | |
US3743722A (en) | Anti-coagulant isolation | |
Volanakis et al. | Human factor D of the alternative complement pathway: purification and characterization | |
Lien et al. | Purification of a derepressible arylsulfatase from Chlamydomonas reinhardti: Properties of the enzyme in intact cells and in purified state | |
JPH01238534A (en) | Removal of endotoxin | |
JPS59222421A (en) | Manufacture of antithrombic iii heparin concentrate | |
Beydemir et al. | Purification and characterization of glucose 6-phosphate dehydrogenase from sheep erythrocytes and inhibitory effects of some antibiotics on enzyme activity | |
HU204081B (en) | Process for producing myeloperoxidase enzyme | |
JPS61189228A (en) | Production of blood coagulation factor viii | |
US5814504A (en) | Protein involved in regenerating firefly luciferin | |
Chiang et al. | Purification and properties of porcine gastricsin | |
BG64875B1 (en) | Method for the purification of thrombino-like proteases from snake poison | |
JPS6229975A (en) | Purification of crude tpa | |
Ogawa et al. | Digestion of the fifth component of complement by eosinophil lysosomal enzymes: production of eosinophil specific chemotactic activity | |
WO2002008249A1 (en) | Method of purifying calcium ion-binding protein | |
Robinson et al. | Partial characterization of in vivo chemotactic activity: comparison to human C5a | |
JPH0244510B2 (en) | ||
Baski et al. | Purification of the restriction endonuclease PalI | |
Patil et al. | A simple and rapid high recovery protocol for the purification of arginase | |
JPH022390A (en) | Novel stimulation factor for human granulocyte macrophage colony | |
Pellegrini et al. | Isolation and characterization of two new low-molecular-weight protein proteinase inhibitors from the granule-rich fraction of equine neutrophilic granulocytes | |
Sjostrom et al. | Isolation and purification of a prolidase from pig intestinal mucosa | |
RU2650755C1 (en) | Method for cleaning the medicament of prolonged action on the basis of the recombinant analogue of alpha-17 interferon for viral hepatitis c treatment | |
KR100339153B1 (en) | Purification method of recombinant streptokinase expressed as inclusion body |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
HC9A | Change of name, address |
Owner name: EGIS GYOGYSZERGYAR NYRT., HU Free format text: FORMER OWNER(S): EGIS GYOGYSZERGYAR, HU |
|
MM4A | Lapse of definitive patent protection due to non-payment of fees |