HU196624B - Process for producing chymopapain with high specific activity - Google Patents
Process for producing chymopapain with high specific activity Download PDFInfo
- Publication number
- HU196624B HU196624B HU865090A HU509086A HU196624B HU 196624 B HU196624 B HU 196624B HU 865090 A HU865090 A HU 865090A HU 509086 A HU509086 A HU 509086A HU 196624 B HU196624 B HU 196624B
- Authority
- HU
- Hungary
- Prior art keywords
- specific activity
- crude
- buffer
- chymopamine
- chymopapain
- Prior art date
Links
Abstract
A találmány tárgya eljárás kimopapain előállítására nyers kimopapainból, oly módon, hogy a nyers kimo- ■ papaipt redukálószer jelenlétében vízben vagy puffer- v ben feloldják, a tiszta felülúszót gélkromatografálják, majd az aktív enzimet tartalmazó frakciókat gyűjtik és fagyasztva szárítják. -1-The present invention relates to a process for preparing kimopain from crude kimopain by dissolving the crude chimera in the presence of a reducing agent in water or buffer, the clear supernatant being gel chromatographed, and the fractions containing the active enzyme are collected and freeze-dried. -1-
Description
Találmányunk tárgya eljárás nagy tisztaságú, nagy specifikus aktivitású kimopapain előállítására nyers kimopapapinból, gélkromatográfiával.The present invention relates to a process for the preparation of high purity, high specific activity chymopamine from crude chymopapine by gel chromatography.
Ismeretes, hogy a kimopapain egy tiolprotcáz, ami a papainnal és a papaya peptidázzal együtt a papaya latex proteolitikus, fehérjebontó komponensét alkotja. A papaya latex egy, a trópusokon élő fa, a Carica papaya még éretlen gyümölcséből nyerhető úgy, hogy a gyümölcsöt több helyen megkarcolják, és a kifolyó tejszerű nedvet felfogják, majd megszárítják.Chimeropamine is known to be a thiol protease, which, together with papain and papaya peptidase, forms the proteolytic protein-degrading component of papaya latex. Papaya latex can be obtained from the unripe fruit of the tropical tree, Carica papaya, by scratching the fruit in several places and catching the milky juice that is spilled and then drying it.
A latex legismertebb és legjobban tanulmányozott enzime a papain. Balls és mtsai (Balls, A. K. Lineweaver, H. és Thompson, R. R. /1937/ Science 86, 3794) kristályosították először. Jansen és Balls (Jansen, E. P. és Balls, Λ. K. /1941/ .1. Bioi. Chcm. 127. 459 460) mutál Iák ki, hogy a papaya latex cxlraktumából a papaint aininóniumszulfátos kicsapással eltávolítva a felülúszóban egy másik tiolproteűz marad. Ezt a viszonylag jól oldódó és pH 2-nél stabilis enzimet nevezték kimopapainnak. Az ammóniumszulfát koncentráció-növelésével ez azenzim is kicsapható. Ez az úgynevezett ,.nyers kimopapain” nem homogén anyag, amint azt gélclcktroforézisscl és ioncserés kromatográfiával kimutatták (Kálin, I. U. és Polgár,Papain is the best known and best studied enzyme in latex. It was first crystallized by Balls et al. (Balls, A. K. Lineweaver, H. and Thompson, R. R. / 1937 / Science 86, 3794). Jansen and Balls (Jansen, E.P. and Balls, J. K. (1941) .1, Bioi. This relatively soluble enzyme, which is stable at pH 2, has been termed chymopamine. By increasing the concentration of ammonium sulphate, this enzyme can also be precipitated. This so-called "crude chymopamine" is not homogeneous material, as revealed by gel-chromatography and ion-exchange chromatography (Kálin, I. U. and Polgár,
L. Biochim. Biophys. Acta 760, /1983/ 350—356; 0 065 395 lajstromszáixtú európa szabadalmi leírás).L. Biochim. Biophys. Acta 760, 350-356 (1983); European Patent Specification 0 065 395).
A kimopapaint széles körben használják a klinikai gyakorlatban gerincporckorongsérv kezelésére, mivel megfelelő mennyiségben alkalmazva szelektíven oldja a porckorong nucleus pulposus részét (3.320.131 lajstromszámú USA szabadalmi leírás). A kezelés következtében azonban - a kb. 50 %-os előfordulási gyakoriságú enyhébb mellékhatások mellett - a betegek közel 1 %-ánál veszélyes anafilaxiás tünetek lépnek fel (4.039.682 lajstromszámú USA szabadalmi leírás; Robinson, C. P. Drugsof Today Vol· 19, No. 8, /1983/454 460).Chymopapain is widely used in clinical practice for the treatment of spinal disc hernia because, when used in an appropriate amount, it selectively solubilizes the portion of the intervertebral disc nucleus (U.S. Patent No. 3,320,131). However, as a result of the treatment - approx. With a 50% incidence of mild side effects, approximately 1% of patients develop dangerous anaphylactic symptoms (U.S. Patent No. 4,039,682; Robinson, CP Drugsof Today Vol. 19, No. 8, 1983 / 454,460). .
A már említett 0.065.395 lajstromszámú európai szabadalmi leírás szerint az anafilaktikus mellékreakcióért a heterogén kimopapain készítmény egyik feliérjekomponcnsc a felelős, amely komponens bárium-kloriddal csapadékot ad, és ioncserés kromatográfiával eltávolítható. Ez a proteolitikusan inaktív anyag szerintük azzal is jellemezhető, hogy színes, kellemetlen szagú anyag.According to the aforementioned European Patent No. 0.065.395, one of the superficial components of the heterogeneous chymopamine preparation, which gives off a precipitate with barium chloride, is responsible for the anaphylactic side reaction and can be removed by ion exchange chromatography. This proteolytically inactive substance is also characterized by a colorless, odorless substance.
Találmányunk célja az ismert eljárás hátrányainak kiküszöbölésével olyan megoldás biztosítása, amely egyszerűbb és olcsóbb módon magasabb specifitású kimopapaint eredményez.It is an object of the present invention to overcome the disadvantages of the prior art by providing a solution which, in a simpler and less expensive manner, produces higher specificity chymopapine.
Találmányunk alapja az a felismerés, hogy a kimopapain mellől a káros, bárium-kloriddal csapadékot adó komponens gélkromatográfiával elválasztható, ami technológiailag egyszerűbb, olcsóbb és legalább tízszer gyorsabb a hagyományos ioncserés kromatográfiánál.The present invention is based on the discovery that, apart from chymopamine, the deleterious barium chloride precipitating component can be separated by gel chromatography, which is technologically simpler, less expensive and at least ten times faster than conventional ion-exchange chromatography.
Találmányunk további alapja az a felismerés, hogy a gélkromatográfia során a kimopapain részleges inaktiválódása kivédhető redukálószerek adásával.The present invention is further based on the discovery that partial inactivation of chymopamine by gel chromatography can be prevented by the addition of reducing agents.
Találmányunk tárgya eljárás kimopapain előállítására nyers kimopapainbó) gélkromatográfiával. Ennek értelmében úgy járunk el, hogy a nyers kimopapaint redukálószer jelenlétében vízben vagy pufferben feloldjuk, a tiszta felülúszót gélkromatografáljuk, majd az aktív enzimet tartalmazó frakciókat gyűjtjük és fagyasztva szárítjuk. A nyers kimopapaint célszerűen pH 5 és 7 közötti foszfát vagy acctát pufferben oldjuk, amely redukálószerként ciszteint, merkaptoetanolt vagy nátrium-szulfitot tartalmaz. Kromatográfiás oszlopként célszerűen Sephadex G-50 vagy Sephadex G-25 oszlopot alkalmazunk, amelyet előzőleg valamilyen puffer vagy sótartalmú oldattal, előnyösen cisztein tartalmú pH 6,5 foszfátpufferrel hoztunk egyensúlyba. A hatásos kromatográfia érdekében az oszlopot úgy választjuk meg, hogy hosszának és átmérőjének aránya 5—50:1, előnyösen 20:1 legyen.The present invention relates to a process for the preparation of chymopamine by crude chymopamine gel chromatography. Accordingly, the crude chymopapine is dissolved in water or buffer in the presence of a reducing agent, the pure supernatant is subjected to gel chromatography, and the fractions containing the active enzyme are collected and freeze-dried. The crude chymopapine is conveniently dissolved in a phosphate or acetate buffer of pH 5 to 7, containing cysteine, mercaptoethanol or sodium sulfite as reducing agent. Preferably, the chromatographic column is a Sephadex G-50 or Sephadex G-25 column previously equilibrated with a buffer or saline solution, preferably a cysteine-containing pH 6.5 phosphate buffer. For effective chromatography, the column is chosen to have a length to diameter ratio of 5 to 50: 1, preferably 20: 1.
A fagyasztást -20 °C és -70 °C között, előnyösen 40 °C-on, a jég eltávolítását vákuumban, 1,333 Pa és 13,33 Pa közölt, előnyösen 6,665 l’a-on végezzük, önmagában ismert módon.Freezing is carried out between -20 ° C and -70 ° C, preferably 40 ° C, and the ice is removed in vacuo at a rate of 1.333 Pa and 13.33 Pa, preferably 6.665 l'a.
A bárium-kloriddal csapadékot adó, kellemetlen szagú anyag az aktív enzimet követő kromatográfiás csúcsban található.The odorous material which precipitates with barium chloride is found in the chromatographic peak following the active enzyme.
A találmányunk szerinti eljárás főbb előnyei a következőkben foglalhatók össze.The main advantages of the process of the invention may be summarized as follows.
A káros rnelleékreakciókért felelős, bárium-kloriddal csapadékot adó fehérjekomponens gélkromatográfiás eltávolítása olcsóbb, kb. tízszer gyorsabb és kíméletesebb, így ipari méretű megvalósításra is sokkal alkalmasabb, mint az ioncserés kromatográfia. Ez utóbbi kb. 40 órás művelet, amely idő alatt az enzim károsodása elkerülhetetlen. A gélkromatográfia ezzel szemben nem egészen 4 óra alatt megvalósítható, és lehetőséget ad az enzim kémiai úton való védelmének biztosítására is, fiziológiásán nem káros, ionos redukálószerekkel. A gélkromatógráfíás módszerrel — nagyobb elválasztási hatásfoka révén — tisztább terméket kapunk, amely várhatóan jelentős mellékhatás-csökkenést eredményez.Removal of the barium chloride protein component responsible for adverse reactions by gel chromatography is cheaper, approx. ten times faster and more gentle, so much more suitable for industrial scale implementation than ion exchange chromatography. The latter approx. 40 hours, during which time enzyme damage is inevitable. Gel chromatography, on the other hand, is not feasible in less than 4 hours and also provides the ability to chemically protect the enzyme with physiologically non-harmful ionic reducing agents. Gel chromato- graphy gives a cleaner product with higher separation efficiency, which is expected to result in a significant reduction in side effects.
A találmányunk szerinti eljárás részleteit az alábbi példákban ismertetjük.The following examples illustrate the process of the present invention.
7. példaExample 7
2,5 g nyers kimopapaint 135 ml 10 mM ciszteint tartalmazó 3 mM foszfát pufferben (pH 6,5) oldunk.2.5 g of crude chymopapain are dissolved in 135 ml of 3 mM phosphate buffer pH 6.5 containing 10 mM cysteine.
Ha zavaros, centrifugáljuk. 15—30 perc inkubálás után a 135 ml oldatot Sephadex G-25 oszlopon (4X X100 cm) gélkromatografáljuk a következő pufferben: 3 mM foszfát, pH 6,5 1 mM cisztein. Az első csúcs, amit az 1. ábrán A-val jelöltünk, tartalmazza a kimopapaint, kb. 1,3 g-ot.If turbid, centrifuge. After incubation for 15-30 minutes, 135 ml of the solution is gel chromatographed on a Sephadex G-25 column (4X X100 cm) in 3 mM phosphate, pH 6.5 1 mM cysteine. The first peak, indicated by A in Figure 1, contains chymopapain, ca. 1.3 g.
A B csúcs tartalmazza a bárium-kloriddal csapadékot adó, kellemetlen szagú inaktív anyagot. Az A csúcsban levő enzimet sterilen szűrjük és liofilizáljuk.Peak B contains a barium chloride inactive material which gives off a precipitate. The enzyme at Peak A is sterile filtered and lyophilized.
A kimopapain aktivitását minden esetben benzíloxi-karbonil-glicin p-nitrofenil észter (ZGN) szubsztráttal, szubsztráttelítésnél mértük (Asbótli, B., Polgár, L. /1977/ Acta Biochim. Biophys. Acad. Sci. Hung. 12, 223-230), a következő reakcióelegyben:In all cases, the activity of chymopamine was measured with a substrate saturation of a benzyloxycarbonylglycine p-nitrophenyl ester (ZGN) (Asbótli, B., Polgár, L. / 1977 / Acta Biochim. Biophys. Acad. Sci. Hung. 12, 223-230). ), in the following reaction mixture:
100 pl I mg/ml-cs ZGN acetonitrilbcn oldva.100 µl of 1 mg / ml ZGN in acetonitrile.
2,8 ml I mM EDTA-t tartalmazó, 0,1 M pH 5,5 acetát piifi'cr.2.8 mL of 0.1 M pH 5.5 acetate in 0.5 mM ITA EDTA.
100 pl kimopapain.100 µl Kimopain.
196 624196,624
A készítmény jellemzésére megadtuk azt a fenti reakcióelegyben 340 nm-nél 25 °C-on 1 perc alatt bekövetkező extinkcióváltozást, amit 1 mg kimopapain/ml reakcióelegy okoz. Az enzim specifikus aktivitása: 62.To characterize the composition, the change in extinction at 340 nm at 25 ° C for 1 minute caused by 1 mg of chymopamine / ml reaction mixture was reported. Specific activity of the enzyme: 62.
10. példaExample 10
Az 1. példa szerinti eljárás, azzal a különbséggel, hogy az 1 mM cisztein helyett 5 mM ciszteint használunk. Specifikus aktivitás: 64.Example 1 except that 5 mM cysteine was used instead of 1 mM cysteine. Specific activity: 64.
2. példaExample 2
Az 1. példa szerinti eljárás, azzal a különbséggel, hogy nagyobb átmérőjű oszloppal (5X100 cm) dolgozunk. Specifikus aktivitás: 70.The procedure of Example 1, except that a larger diameter column (5 x 100 cm) was used. Specific activity: 70.
3. példaExample 3
Az 1. példa szerinti eljárás, azzal a különbséggel, hogy rövid és gyors oszlopot (10X16 cm) használunk. Itt a bárium-kloriddal csapadékot adó szennyező fehérje nem különül el a kimopapaintól. Specifikus aktivitás: 42.The procedure of Example 1, except that a short and fast column (10 x 16 cm) was used. Here, the contaminating protein precipitating with barium chloride is not separated from the chymopapine. Specific activity: 42.
4. példaExample 4
Az 1. példa szerinti eljárás, azzal a különbséggel, hogy a gélkromatográfiás pufferből kihagyjuk az I mM ciszteint. Specifikus aktivitás: 51.The procedure of Example 1 except that I mM cysteine was omitted from the gel chromatography buffer. Specific activity: 51.
5. példaExample 5
Az 1. példa szerinti eljárás, azzal a különbséggel, hogy a nyers kimopapaint töményebben okijuk, úgy, hogy az oldat fehérjetartalma 5 %-os (törneg/térfogat) legyen. Specifikus aktivitás: 55.The procedure of Example 1, with the exception that the crude chymopapine is more concentrated, is such that the solution has a protein content of 5% (w / v). Specific activity: 55.
6. példaExample 6
Az 1. példa szerinti eljárás, azzal a különbséggel, hogy az izolálást szobahőmérséklet helyett 2-10 °C között végezzük. Specifikus aktivitás: 65.The procedure of Example 1, except that the isolation is carried out at 2-10 ° C instead of room temperature. Specific activity: 65.
7. példaExample 7
Az 1. példa szerinti eljárás, azzal a különbséggel, hogy Sephadex G-25 helyett Sephadex G-50 oszlopon végezzük a kromatográfiát. Specifikus, aktivitás: 53.The procedure of Example 1, except that Sephadex G-25 is chromatographed on a Sephadex G-50 column. Specific, activity: 53.
8. példaExample 8
Az 1. példa szerinti eljárás, azzal a különbséggel, hogy a 3 mM foszfát helyett 10 mM foszfát puffért használunk. Specifikus aktivitás: 63.The procedure of Example 1, except that 10 mM phosphate buffer was used instead of 3 mM phosphate. Specific activity: 63.
9. példaExample 9
Az 1. példa szerinti eljárás, azzal a különbséggel, hogy a pH 6,5-es foszfát puffer helyett 5,5-es acélát puffért használunk. Specifikus aktivitás: 67.The procedure of Example 1, with the exception that a pH 5.5 steel buffer is used in place of the pH 6.5 phosphate buffer. Specific activity: 67.
11. példaExample 11
Az 1. példa szerinti eljárás, azzal a különbséggel, hogy az aktív anyagot tartalmazó frakcióhoz (A csúcs) annyi cisz.lciul adunk, amennyi c jelenlevő fehérje 10 %-a (lönicg%). Specifikus aktivitás: 63.The procedure of Example 1, except that the fraction containing the active substance (Peak A) is added in the amount of cis / lculus to 10% (% lcg) of protein c present. Specific activity: 63.
12. példaExample 12
Az 1. példa szerinti eljárás, azzal a különbséggel, hogy cisztein helyett nátrium-szulfit redukálószert használunk. Specifikus aktivitás: 60.The procedure of Example 1 except that sodium sulfite reducing agent was used instead of cysteine. Specific activity: 60.
13. példaExample 13
Az I. példa szerinti eljárás, azzal a különbséggel, hogy mindhárom kromatográfiás csúcsból 1 ml mintát veszünk és mindegyikhez előbb 0,2 ml 1 N sósavat, majd 0,2 ml 12 %-os bárium-kloridot adunk. Csapadékot csak a B csúcs esetében kapunk.The procedure of Example I, except that 1 mL of each of the chromatographic peaks is taken and 0.2 mL of 1N hydrochloric acid is added, followed by 0.2 mL of 12% barium chloride. Precipitation is obtained only at peak B.
14. példaExample 14
Referenciamérés:Reference Measurement:
A „ChimodiactinR” (Smilh Laboratories, Inc. USA) készítmény specifikus aktivitása az 1. példában megadott módszerrel mérve: 28.The specific activity of "Chimodiactin R" (Smilh Laboratories, Inc. USA) as measured by the method of Example 1 is 28.
Claims (6)
Priority Applications (5)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
HU865090A HU196624B (en) | 1986-12-08 | 1986-12-08 | Process for producing chymopapain with high specific activity |
CU8870A CU22158A3 (en) | 1986-12-08 | 1988-05-18 | Procedure for the manufacture of chemopapaine in extremely pure form. |
BG84338A BG50942A3 (en) | 1986-12-08 | 1988-06-01 | Method for production of chymopapain |
DD31628488A DD270723A5 (en) | 1986-12-08 | 1988-06-01 | Process for the preparation of high purity chymopapain |
CS883773A CS271346B2 (en) | 1986-12-08 | 1988-06-01 | Method of high-purity chymopapain production |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
HU865090A HU196624B (en) | 1986-12-08 | 1986-12-08 | Process for producing chymopapain with high specific activity |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
HU196624B true HU196624B (en) | 1988-12-28 |
Family
ID=10969645
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
HU865090A HU196624B (en) | 1986-12-08 | 1986-12-08 | Process for producing chymopapain with high specific activity |
Country Status (5)
Country | Link |
---|---|
BG (1) | BG50942A3 (en) |
CS (1) | CS271346B2 (en) |
CU (1) | CU22158A3 (en) |
DD (1) | DD270723A5 (en) |
HU (1) | HU196624B (en) |
Families Citing this family (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB8909836D0 (en) * | 1989-04-28 | 1989-06-14 | Boots Co Plc | Therapeutic agent |
CN1320111C (en) * | 2004-08-09 | 2007-06-06 | 王美岭 | Process for preparing papain |
-
1986
- 1986-12-08 HU HU865090A patent/HU196624B/en not_active IP Right Cessation
-
1988
- 1988-05-18 CU CU8870A patent/CU22158A3/en unknown
- 1988-06-01 CS CS883773A patent/CS271346B2/en unknown
- 1988-06-01 DD DD31628488A patent/DD270723A5/en not_active IP Right Cessation
- 1988-06-01 BG BG84338A patent/BG50942A3/en unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CU22158A3 (en) | 1994-01-31 |
DD270723A5 (en) | 1989-08-09 |
CS271346B2 (en) | 1990-09-12 |
BG50942A3 (en) | 1992-12-15 |
CS377388A2 (en) | 1989-12-13 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
DK166566B1 (en) | Enzyme preparation for cleansing purposes, and production of this preparation, and the use of the preparation for non-therapeutic cleansing | |
Starcher et al. | Purification and comparison of elastins from different animal species | |
US4439423A (en) | Chymopapain and method for its use | |
US4719108A (en) | Chymopapain composition and method for its use | |
Khoo et al. | Biological activities of Synanceja horrida (stonefish) venom | |
Taylor | Proteinases of the stomach in health and disease | |
JPH0764751B2 (en) | Process for producing alpha-1-proteinase inhibitor | |
EA006600B1 (en) | Pharmaceutical compositions of fibrinolytic agent | |
Yarleque et al. | Isolation and characterization of a fibrinogen-clotting enzyme from venom of the snake, Lachesis muta muta (Peruvian bushmaster) | |
JPH0559095B2 (en) | ||
Marambaud et al. | Protein Kinase A Phosphorylation of the Proteasome: A Contribution to the α‐Secretase Pathway in Human Cells | |
US3019171A (en) | Activated enzyme compositions | |
JPH0322399B2 (en) | ||
JPS5948422A (en) | Novel polypeptide and isolation and purification | |
AU681237B2 (en) | Novel protease for treating devitalized tissue | |
HU196624B (en) | Process for producing chymopapain with high specific activity | |
EP0397571A1 (en) | Use of K-Caseinoglycopeptide for preparation of a composition, especially a drug, for prevention and treatment of thrombosis | |
US3912704A (en) | Protease inhibitor from horse urine | |
EP0218479A2 (en) | Reagent and process | |
GB1581472A (en) | Compounds of the plasminogen type processes for their production and pharmaceutical compositions containing them | |
JPS61162184A (en) | Novel fibrinolytic enzyme an production thereof | |
JP3430176B2 (en) | Method for purifying angiotensin converting enzyme inhibitory peptide | |
Campos et al. | Partial separation and characterization of a thrombin-like enzyme from the venom of the Peruvian Bushmaster snake, Lachesis muta muta | |
CN106632632B (en) | Armadillidium fibrinolytic active protein and application thereof | |
EP0763596A1 (en) | Process for producing thrombin |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
HU90 | Patent valid on 900628 | ||
HMM4 | Cancellation of final prot. due to non-payment of fee |