HU195522B - Process for cleaning raw insulin by exclusion chromatography - Google Patents
Process for cleaning raw insulin by exclusion chromatography Download PDFInfo
- Publication number
- HU195522B HU195522B HU202285A HU202285A HU195522B HU 195522 B HU195522 B HU 195522B HU 202285 A HU202285 A HU 202285A HU 202285 A HU202285 A HU 202285A HU 195522 B HU195522 B HU 195522B
- Authority
- HU
- Hungary
- Prior art keywords
- carrier phase
- insulin
- concentration
- aqueous carrier
- methanol
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
A találmány szerint úgy járunk el, hogy egy 2-10 tf.% metanolt, és egy 1-3 közötti pH-jú pufferrendszert tartalmazó vizes vivőfázissal egyen súlyba hozott hidrofób, alkilezett szilikagél állófázisra a nevezett vivőfázisban oldva felvisszük a tisztítandó nyers inzulint, majd a tiszta inzulin fő tömegét 10-100 mmól/liter koncentrációban cetil-triinetil-ammóniumbroinidot tartalmazó fenti vivőfázissal, és kívánt esetben a maradékát a főtömeg eltávolításánál alkalmazottat meghaladó cetil-trimetil-ammónium-bromid-koncentrációjú fenti vivőfázissal végzett kiszorításos kromatográfiával távolítjuk el az állófázisról. -1-According to the invention, a hydrophobic alkylated silica gel stationary phase, which is equilibrated with an aqueous carrier phase containing 2 to 10% by weight of methanol and a buffer system of 1 to 3 pH, dissolved in the said carrier phase, is then applied to the crude insulin to be purified, followed by the main weight of pure insulin at a concentration of 10-100 mmol / l with the above carrier phase containing cetyl triinetylammonium bromide and optionally removing the residue from the stationary phase by displacement chromatography with a cetyltrimethylammonium bromide concentration above that used to remove the major mass. -1-
Description
195 522195 522
A találmány tárgya eljárás inzulin kiszorításé»s kromatográfiás módszerrel történő tisztítására.The present invention relates to a method for purifying insulin by displacement chromatography.
Az inzulin a diabetes mellkasban szenvedők gyógyításához nélkülözhetetlen anyag. A gyógyászati készítmények általában sertés- vagy marhainzulint tartalmaznak. Az állati eredetű inzulinokba a feldolgozás során számos, így inzulin bomlástermék, inzulin-származék, inzulin prekurzor és egyéb polipeptid jellegű anyag kerül be. Ezek károsak, mert hatásukra azonos gyógyászati hatás elérésére egyre nagyobb mennyiségű inzulin-készítményt kell a betegeknek adni: fellép az úgynevezett fokozódó inzulinéhség. Ilyen szempontból a legkedvezőtlenebb hatású az inzulin prekurzorja, a proinzulin. Az inzulin-készítmények szennyezőinek eltávolítására általában gélkromatográfiás módszereket, ioncserés módszereket és ezek kombinációit alkalmazzák. Az első csoportból figyelemre méltó a nyers inzulin Sephadex G-50 (Pharmacia, Svédország) dextrán gélen 0,01 mól/1 koncentrációjú sósavas eluenssel [J. Agr. Food Chem., 19, (4), 581. (1971)] és Sephadex LH-60 (Pharmacia, Svédország) hidrofobizált dextrángélen, 65 % etilalkohol, 35% acetátpuffer (pH 7,3) elegyével végzett tisztítása (0439 sz. európai szabadalmi bejelentés). A gélkromatográfiás tisztítások közös hátránya, hogy segítségükkel az inzulinhoz közelálló molekulatömegű szennyezők nem távolíthatók el.Insulin is an essential ingredient for the cure of people with diabetes. The pharmaceutical compositions generally contain porcine or bovine insulin. Animal insulins are processed during processing into a variety of substances such as insulin degradation products, insulin derivatives, insulin precursors and other polypeptide-like substances. These are detrimental because, to achieve the same therapeutic effect, they need to be given more and more insulin to patients: so-called increasing insulin starvation. In this respect, the pro-insulin precursor, insulin, has the most unfavorable effect. Gel chromatography methods, ion exchange methods, and combinations thereof are commonly used to remove impurities in insulin formulations. Of the first group, noteworthy was a crude insulin on a Sephadex G-50 (Pharmacia, Sweden) dextran gel with a 0.01 M hydrochloric acid eluent [J. Agr. Food Chem., 19 (4), 581 (1971)] and purification of Sephadex LH-60 (Pharmacia, Sweden) on a hydrophobized dextran gel with 65% ethyl alcohol, 35% acetate buffer, pH 7.3 (European 0439). patent application). A common disadvantage of gel chromatographic purifications is that they do not remove impurities of molecular weight close to insulin.
Hatékony ioncserés tisztítást ismertet a 2 629 568 számú NSZK-beli nyilvánosságra hozatali irat, amely szerint 1%-nyi nem-ionos detergenst, 0,1 mól/1 koncentrációjú Tris puffért (pH 7) és 0,5 mól/1 nátriumkloridot tartalmazó eluenssel, DEAE Sephadex A-25 ioncserélőn (Pharmacia, Svédország) végzik az elválasztást.Effective ion-exchange purification is disclosed in German Patent Publication No. 2,629,568, which discloses an eluent containing 1% nonionic detergent, 0.1 M Tris buffer, pH 7, and 0.5 M sodium chloride. , DEAE Sephadex A-25 ion exchange (Pharmacia, Sweden).
Jól alkalmazható a kosárcentrifugába töltött SP Sephadex C-25-ös ioncserélőt (Pharmacia, Svédország) és 0,1 mól/1 koncentrációjú, pH 8,2 Tris puffért alkalmazó. 65 %-os etilalkoholt alkalmazó eljárás (2 757 377 sz. NSZK-beli nyilvánosságra hozatali irat) is.It is well-suited to use a SP Sephadex C-25 ion exchanger (Pharmacia, Sweden) filled in a basket centrifuge and a 0.1 M Tris buffer pH 8.2. It is also a process using 65% ethyl alcohol (German Patent Publication No. 2,757,377).
Az ioncserés és gélkromatográfiás tisztítási lépések kombinációját alkalmazzák a Diabetes, 17, 725, (1968) szakcikkben úgy, hogy Biogel P-30 gélen végzett előtisztítás után 7 ntól/l karbamidot és 0,01 mól/1 citrátpuffert tartalmazó pH 7.4 eluenssel DEAE-Cellulose (Pharmacia, Svédország) ioncserélőn tisztítják meg az inzulint.A combination of ion exchange and gel chromatography purification steps is used in Diabetes, 17, 725, (1968), after pre-purification on a Biogel P-30 gel with pH 7.4 containing 7 U / L urea and 0.01 M citrate buffer DEAE-Cellulose (Pharmacia, Sweden) purifies insulin by ion exchange.
Bonyolult elegyek alkotóinak elválasztására általában oszlopkromatográfíát alkalmaznak. Az oszlopok frontális, eluációs és kiszorításos üzemmódban használhatók.Column chromatography is usually used to separate the components of complex mixtures. The columns can be used in frontal, elution and displacement modes.
A legelterjedtebb üzemmód — még a preparatív jellegű elválasztások esetén is - az eltició. Az clúció során az oszlopon megkötött, annak csak kis hányadát elfoglaló komponenseket a komponensnél kevésbé kötődő oldattal, az úgynevezett eluenssel mossák le az oszlopról.The most widespread mode of operation, even in the case of preparatory separations, is elution. During the formation, the components bound on the column, occupying only a small proportion thereof, are washed off the column with a solution which is less bound than the component, the so-called eluent.
Az eluált minta az elúció során azonban hígul, ami a preparatív elválasztások esetén hátrányos.However, the eluted sample is diluted during elution, which is disadvantageous for preparative separations.
Kiszorításos kromatográfia esetén, melyet elsőnek az Ark. Kern. Mineral Geol. 16 (A), 1, (1943) szakcikkben írtak le az oszlopon megkötendő komponenst nálánál erősebben adszorbeálódó komponenssel szorítják le az oszlopról. Többkomponensű minta esetén a komponensek egymás utáni zónákban helyezkednek el, melyeket azonos sebességgel töl maga előtt a kiszorító anyag frontja. Ideális esetben az oszlopot elhagyó komponensek koncentrációja négyszöghullám-szerűen változik. E módszer előnye, hogy elválasztás közben az oszlop 2 jelentős hányadát foglalja el a minta, és az elválasztás során a komponensek nem hígulnak. Kimutatták [J. Chromatogr., 218, 365. (1981) és J. Chromatogr., 215, 295, (1981)]. hogy a sikeres kiszorításos kromatográfiás elválasztás feltétele az egyensúlyban lévő és állandó sebességgel haladó zónasorozat kialakulása. Ebben az esetben a komponensek koncentrációja csak anyagi minőségüktől és a munkaegyenes helyzetétől, míg a zónák szélessége az oszlopra felvitt anyag mennyiségétől függ.In the case of displacement chromatography, which was first described by Ark. Kern. Mineral Geol. 16 (A), 1, (1943) described the component to be bound on the column with a more adsorbent component than the column. In a multicomponent pattern, the components are located in successive zones, which are filled at the same velocity by the displacement material front. Ideally, the concentration of the components leaving the column varies in a rectangular wave. The advantage of this method is that during separation, the column occupies a significant portion of the column and the components do not dilute during separation. It has been shown [J. Chromatogr., 218, 365 (1981) and J. Chromatogr., 215, 295 (1981)]. that a successful series of displacement chromatographic separations requires the formation of a series of equilibrium and constant velocities. In this case, the concentration of the components depends only on their material quality and the position of the working line, while the width of the zones depends on the amount of material applied to the column.
A kiszorításos kromatográfiás eljárást korábban csak kis luolckulntömcgfi. elsősorban 500-nál kisebb relatív molekulatömegű komponensek elválasztására és tisztítására használták [Chromatogr., 218, 365, (1981)]. Ennek oka az, hogy hidrofób állófázisbél (például fordított fázisú alkilezctt szilikagcl töltetből) és liidroorganikus mozgólazisból (például mctanol-viz vagy acetonitril-víz elcgyből) álló kromatográfiás fázisrendszerben a kis molekulatömegű komponensek diffúziója és anyagátadása gyors, így az elválasztás alapjául szolgáló egyensúly viszonylag gyorsan, kis sávszélességet okozva áll be.Previously, the displacement chromatography procedure had been carried out only on a small scale. used primarily for the separation and purification of components with a relative molecular weight of less than 500 (Chromatogr., 218, 365 (1981)). This is due to the rapid diffusion of the low molecular low bandwidth setting.
Rövidszénláncú alkil-csoportokkal alkilezett szilikagél fázist és ionpárkromatográfiás üzemmódot alkalmazva sikerült a kiszorításos kromatográfiás módszerrel elválasztható komponensek molekulatömeg határát 1200-ig kiterjeszteni [J. Chromatogr., 215, 295, (1981)]. Ily módon oktil-dodecil-dimetil-amniónium-klond kiszorítószer vizes oldatát alkalmazva Polymixin B-típusú antibiotikumok elválasztását sikerült laboratóriumi körülmények között megoldani.Using silica gel alkylated with lower alkyl groups and ion-pair chromatography, it was possible to extend the molecular weight limit of the components separable by displacement chromatography to 1200 [J. Chromatogr., 215, 295 (1981)]. In this way, the isolation of Polymixin B-type antibiotics was achieved under laboratory conditions using an aqueous solution of octyldodecyldimethylammonium clone displacement agent.
Kromatográfiás eluátumok kétdimenziós gélelektroforézises vizsgálatról számolnak be aClin. Chem., 28(4), 998-999, (1982) alatti szakcikkben. Proteinek ioncserés kromatográfiás vizsgálati módszereit ismertetik a Methods Enzymol,, 104, 113—13, (1984) szakcikkben.Chromatographic eluates report a two-dimensional gel electrophoresis assay in aClin. Chem., 28 (4), 998-999, (1982). Methods for assaying proteins for ion exchange chromatography are described in Methods Enzymol, 104, 113-13 (1984).
Meglepő módon azt találtuk, hogy a nagy molekulatömegű nyers inzulin tisztítására is alkalmassá tehető a kiszorításos kromiitográfia, ha úgy járunk el, hogy egy 2-10 tf% metanolt, és egy 1-3 közötti pH-jú pufferrendszert tartalmazó vizes vivőfázissal egyensúlyba hozott hidrofób, alkilezett szilikagél állófázisra a nevezett vivőfázisban oldva felvisszük a tisztítandó nyers inzulint, majd a tiszta inzulin fő tömegét 10—100 mmól/Iiter koncentrációban cetil-trimetil-ammóniumbromidot tartalmazó fenti vivőfázissal, és kívánt esetben a maradékát a fő tömeg eltávolításánál alkalmazottat meghaladó cetil-trimetil-ammónium-bromid-koncentrációjú fenti vivőfázissal végzett kiszorításos kroinatográfiával távolítjuk el az állófázisról.Surprisingly, it has now been found that displacement chromatography can also be used to purify high molecular weight crude insulin by equilibrating with a hydrophobic aqueous phase containing 2 to 10% v / v methanol and a pH 1 to 3 buffer system. dissolving the crude insulin to be purified into said stationary phase of an alkylated silica gel in said carrier phase, followed by the above carrier phase containing cetyltrimethylammonium bromide at a concentration of 10-100 mmol / l of pure insulin and, if desired, is removed from the stationary phase by displacement chromatography with the aforementioned carrier phase containing ammonium bromide.
Találmányunk azon a felismerésen alapul, hogy az igen nagy molekulatömegű, polipeptid szerkezetű inzulin, amely fordított fázisú folyadékkromatográfiás rendszerekben erős szilanofil és hidrofób kölcsönhatással kötődik az oszlophoz [J. Chromatogr., 236,,51, (1982)], megfelelő, szilanofil és hidrofób kölcsönhatásra egyaránt képes kiszorítószert alkalmazva a gyengébben kötődő szennyezőktől megtisztítható. Találmányunk szerint a kiszorításos kromatográf iában' a stacioner állapot megbontásával csökkenthető az elválasztás időszükséglete, növelhető az erősebben kötődő komponensek koncentrációja, javítható a preparatív célból végzett kiszorításos elválasztás termelékenysége, és csökkenthető a teljesen el nem választott komponensek újbóli elválasztása előtt alkalmazandó inintakoncentrálás mértéke. (Ezt a fajta elválasztási módszert a továbbiakban gradiensThe present invention is based on the discovery that very high molecular weight polypeptide insulin is bound to the column by strong silanophilic and hydrophobic interactions in reverse phase liquid chromatography systems [J. Chromatogr., 236, 51 (1982)], can be used to purify weakly bound impurities using a suitable displacement agent capable of both silanophilic and hydrophobic interactions. According to the present invention, displacement chromatography can reduce the time required for separation, increase the concentration of the more strongly bound components, improve the productivity of the preparative displacement separation, and reduce the amount of inactivated prior to re-separation of the completely separated components. (This kind of separation method is hereafter called gradient
-2195 522 kiszorításnak nevezzük.) Találmányunk további előnye az is, hogy gradiens kiszorítást alkalmazva a szennyezőket tartalmazó inzulin készítmények egyetlen művelettel preparatív méretben is tisztíthatók. Találmányunk szerint e kedvező változások elérését az teszi lehetővé, 5 hogy a szomszédos komponens-zónák közötti átfedés mértéke elsősorban az oszloptöltct szemcseméretétől, az ágy szerkezetétől és az áramlási sebességtől függ, de nem függ a kiszorítószer aktuális koncentrációjától. Ha a találmányunk szerint végzett elválasztás célja a minta 10 gyengébben kötődő komponenseinek tisztán történő kinyerése és az erősebben kötődő komponensek tisztán történő előállítására nincs szükség, akkor az elválasztást kis koncentrációjú kiszorítószerrel kezdjük, majd miután a tisztán kinyerni kívánt komponensek elhagyták az 15 oszlopot, megnöveljük a kiszorítószer koncentrációját vagy betáplálás! sebességét. Ennek hatására az oszlopon maradt anyag az eredetinél nagyobb koncentrációban, minimális oldattérfogattal eltávolítható az oszlopból.Another advantage of the present invention is that, using a gradient displacement, insulin formulations containing impurities can be purified to a preparative size in a single operation. According to the present invention, the extent of the overlap between adjacent component zones is achieved by the fact that the degree of overlap between the adjacent component zones is primarily dependent on the column pack grain size, bed structure and flow rate, but not on the actual displacement concentration. If the purpose of the separation according to the invention is to purify the weakly bound components of the sample 10 purely and to prepare the more strongly bound components purely, the separation begins with a low concentration of displacement agent, and after purifying the desired components has left the column 15, concentration or feed! speed. This results in the removal of residual material from the column at a higher concentration than the original with minimal volume of solution.
A találmányunk szerinti eljárásban pufferként elő- 20 nyösen foszforsav/dihidrogén-foszfát pufferrendszert alkalmazunk. Különösen előnyös, ha a vivőfázis 210 tf.%, például 5 tf.% metanolt tartalmaz, és a foszfátpuffer koncentrációja 10-100 mmól/liter. előnyösen 50 mmól/liter. 25The buffer of the present invention is preferably a phosphoric acid / dihydrogen phosphate buffer system. It is particularly advantageous if the carrier phase contains 210% by volume, for example 5% by volume of methanol, and the concentration of phosphate buffer is 10-100 mmol / l. preferably 50 mmol / l. 25
A kiviteli példánkban kiindulási anyagként felhasznált „nyers inzulin” a kereskedelmi forgalomban beszerezhető tisztítatlan nyers marhainzulin volt. A nyers marhainzulin inzulin-tartalma 76,7 % volt.The raw crude insulin used in our exemplary embodiment was commercially available crude bovine insulin. The crude bovine insulin content was 76.7%.
A találmányunk további részleteit a kiviteli példák 30 szemléltetik a találmány korlátozásának szándéka nélkül.Further details of the present invention are illustrated by the following non-limiting examples.
1. példaExample 1
4,6 mm belső átmérőjű, 250 mm hosszú, 5 μπι szem- 35 cseméretű (Nucleosil C8 jelű. alkilezett szilikagélből álló, Macherey-Nagel, NSZK gyártmányú) lúdrofób állófázissal töltött oszlopot 5 tf.% metanolt tartalmazó pH 2,2-es, 50 mmól/1 koncentrációjú vizes foszfátpufferrel (vivőfázis) egyensúlyba hozunk. Az oszlopra 1400 μΐ-nyi fenti vivőfázisban oldva 140 mg szennyezett, nyers marhainzulint injektálunk 0,1 ml/min áramlási sebességgel. A minta felvitele után 0,1 ml/min sebességgel 10,mmól/1 cetil-trimetil-ammónium-bromid koncentrációjú vivőfázis kiszorítószert viszünk az oszlopra. Az 45 oszlopról eltávozó oldat fényelnyelését 295 nm-en mérve az i. ábrán látható kiszorításos kromatogramot kapjuk.A column of 4.6 mm internal diameter, 250 mm long, 5 μπι grain size (Nucleosil C8. Alkylated silica gel, Macherey-Nagel, Federal Republic of Germany) filled with a hydrophobic stationary column containing 5% v / v methanol, pH 2.2, It is equilibrated with 50 mM aqueous phosphate buffer (carrier phase). The column is injected with 1400 μΐ of the above carrier phase and injected with 140 mg of contaminated crude bovine insulin at a flow rate of 0.1 ml / min. After sample application, a displacement medium of 10 mM cetyltrimethylammonium bromide at a flow rate of 0.1 ml / min is applied to the column. Measure the absorbance of the solution exiting the 45 columns at 295 nm using i. The displacement chromatogram shown in FIG.
Az inzulin minta 76 és 114 ml között, 38 ml eluens térfogatban, 3,7 mg/ml átlagos koncentrációban hagyja el az oszlopot. A frakciók nagynyomású rétegkromatográfiás elemzéséből szerkesztett kiszorításos kromatogramból (2. ábra) kiszámolva a mintában lévő inzulin mennyisége és tisztasága a felhasználásra kiválasztott eluátum térfogatok függvényében az alábbiak szerint alakul: cc The insulin sample leaves the column between 76 and 114 ml in an eluent volume of 38 ml at an average concentration of 3.7 mg / ml. Calculated from the displacement chromatogram (Fig. 2), computed from the HPLC analysis of the fractions, the amount and purity of the insulin in the sample, depending on the volumes of eluate selected for use, are as follows: cc
A táblázat adataiból látható, hogy a kiindulási anyagul felhasznált 140 mg nyers marhainzulinban lévő 107,4 mg (100% tisztaságú) inzulin 50,6 %-a (88 mg) nyerhető ki a példa szerint 90,7 %-os tisztaságban. A végtermék tisztaságának rovására kinyerhető mennyiség növelhető.From the data in the table it can be seen that 50.6% (88 mg) of the 107.4 mg (100% purity) insulin used as starting material in crude bovine insulin (140 mg) was obtained in a purity of 90.7% as exemplified. The yield obtained at the expense of the purity of the final product may be increased.
2. példaExample 2
Mindenben az 1. példában megadottak szerint járunk cl azzal az eltéréssel, hogy 150 mg nyers marhainzulinból indulunk ki, és 25 mmól/1 cetil-annnónium-bromid koncentrációjú vivőfázissal végezzük az eluálást. A 295 nm-en mért kiszorításos kromatogram a 3, ábrán látható. Az inzulin a 34 és 51 ml eluenstérfogat között, 8,8 mg/ml átlagos koncentrációban hagyja el az oszlopot. A frakciók elemzési adataiból szerkesztett kiszorításos kromatogram a 4. ábrán látható. Ebből kiszámítható, hogy a 34 és 36 tnl közötti frakciók felhasználásával a bemért 150 mg nyers inzulinban lévő 115 mg tiszta inzulin 15,3 %-a nyerhető ki 99%-os tisztaságban.All of the procedures described in Example 1 were followed except that 150 mg of crude bovine insulin was used and eluted with a 25 mM cetylnonium bromide carrier phase. The displacement chromatogram at 295 nm is shown in Figure 3. Insulin leaves the column at a mean concentration of 8.8 mg / ml between 34 and 51 ml of eluent. The displacement chromatogram constructed from the analysis of the fractions is shown in Figure 4. From this it can be calculated that 15.3% of the 115 mg of pure insulin contained in 150 mg of crude insulin can be recovered in 99% purity using fractions between 34 and 36 µl.
3. példaExample 3
Mindenben az 1. példában megadottak szerint járunk el azzal az eltéréssel, hogy az eluálást 92 ml 10 mmól/1 cetil-trimetil-ammónium-bromid tartalmú vivőfázis átbocsátása után 50 mmól/1 cetil-trimetil-ammóniumbromid koncentrációjú vivőfázissal folytatjuk. A 295 nm-en mért kiszorításos kromatogram az 5. ábrán látható. A frakciók elemzéséből szerkesztett kiszorításos kromatogramot a 6. ábra tűnteti fel. Ebből látható, hogy a 95 ml-es frakció után erősen megnőtt az oszlopról lejövő oldatban az inzulin és a szennyező anyagok koncentrációja. Az cluált anyagok jelenlétére utaló jel 102 ml eluátum térfogatnál ésik vissza az alapvonalra. Ekkor már az oszlopról lejött az összes felvitt anyag. Ha ezután az oszlopot újra a cetil-trimetil-ammóniumbromidot nem tartalmazó vivőfázissal öblítjük át, az újra alkalmassá válik inzulin tisztítására.All procedures described in Example 1 were followed, except that elution was continued after passing through 92 ml of a 10 mM cetyltrimethylammonium bromide carrier phase with a 50 mM cetyltrimethylammonium bromide carrier phase. The displacement chromatogram at 295 nm is shown in Figure 5. The displacement chromatogram obtained from the analysis of the fractions is shown in Figure 6. This shows that after the 95 ml fraction, the concentration of insulin and impurities in the column solution increased significantly. The presence of cluted substances at 102 ml of eluate volume returns to baseline. By this time all the applied material had come down from the column. Thereafter, the column is rinsed again with the carrier phase, which does not contain cetyltrimethylammonium bromide, and becomes again suitable for purifying insulin.
Az 1. és 2. példában megadott eredményekhez hasonlókat kapunk, ha az oszlop töltetet a fentiekben megadott Nucleosil C8 helyett oktadecilezett szilikagélből (LiChrosorb RP-18 jelű, Merck, NSZK gyártmányú termék) készítjük, illetve ha a vivőfázis pH-ját 1 és 3 között választjuk meg, vagy a tiszta inzulin fő tömegének eluálását 10-50 mmól/1 cetil-trimetil-ammóniumbroniidot tartalmazó fenti vivőfázissal végezzük. A nyers inzulin felvitelénél és duálisánál alkalmazott oldatok metanol tartalma 2 és 10 tf.% között volt változtatható.Similar results to those of Examples 1 and 2 were obtained when the column packing was made from octadecylated silica gel (LiChrosorb RP-18 from Merck, Germany) instead of Nucleosil C8 above, or when the pH of the carrier phase was between 1 and 3. or by eluting the bulk mass of pure insulin with the above vehicle phase containing 10-50 mM cetyltrimethylammoniumumbonide. The methanol content of the solutions used for the loading and dual application of crude insulin was between 2 and 10% by volume.
Kiválasztott eluens frakcióSelected eluent fraction
A kiválasztott frakcióban lévő inzulin mennyisége [mg] tisztasága [%]Insulin content of selected fraction [mg] Purity [%]
Claims (6)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
HU202285A HU195522B (en) | 1985-05-28 | 1985-05-28 | Process for cleaning raw insulin by exclusion chromatography |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
HU202285A HU195522B (en) | 1985-05-28 | 1985-05-28 | Process for cleaning raw insulin by exclusion chromatography |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
HU195522B true HU195522B (en) | 1988-05-30 |
Family
ID=10957360
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
HU202285A HU195522B (en) | 1985-05-28 | 1985-05-28 | Process for cleaning raw insulin by exclusion chromatography |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
HU (1) | HU195522B (en) |
-
1985
- 1985-05-28 HU HU202285A patent/HU195522B/en not_active IP Right Cessation
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Swingle et al. | Tricalcium phosphate as an adsorbent in the chromatography of proteins | |
JP2502551B2 (en) | High purity acarbose | |
US4667016A (en) | Erythropoietin purification | |
EP0228452B1 (en) | Protein purification | |
CA1185178A (en) | Method for purifying interferon | |
AU2003232704A1 (en) | Method, use and kit for separating albumin from contaminants in a liquid | |
JP2002511484A (en) | Novel protein separation method using eluent containing Ca ++ | |
JP3110078B2 (en) | Mass production of high-purity antimicrobial peptides | |
US6001974A (en) | Method of separating albumin from serum by ion-exchange chromatography with membrane adsorbers | |
UA92145C2 (en) | Purified lh | |
US5986089A (en) | Process for the preparation of moenomycin A | |
EP0013826A1 (en) | Process for purifying insulin and insulin so prepared | |
US5338834A (en) | Ultrapure human interleukin-6 | |
HU195522B (en) | Process for cleaning raw insulin by exclusion chromatography | |
NL8501105A (en) | PROCESS FOR THE PURIFICATION OF INSULIN. | |
JP2003532874A (en) | Separation of sugar-containing entities | |
US6734300B2 (en) | Acarbose purification process | |
EP0358463A1 (en) | Purification of erythropoietin | |
US20210355160A1 (en) | Process for the purification of lipopolypeptide antibiotics | |
US4723000A (en) | Human interferon gamma and interleukin-2 | |
Kuehl Jr et al. | Pituitary Hormones. VI. The Purification of Corticotropin-B by Countercurrent Distribution | |
US2996428A (en) | Process for the manufacture of acth by cmc chromatography | |
EP0508371B1 (en) | Isolation and purification of lantibiotics | |
US11440937B2 (en) | Chromatography process for purification of insulin analogues | |
US5760187A (en) | Purification process of a human growth hormone |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
HU90 | Patent valid on 900628 | ||
HMM4 | Cancellation of final prot. due to non-payment of fee |